Роль оксида азота (II) в модуляции осморегулирующего эффекта вазопрессина тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Правикова Полина Дмитриевна

• Правикова Полина Дмитриевна
• кандидат наук
• 2023

Оглавление диссертации кандидат наук Правикова Полина Дмитриевна

Введение

1 Обзор литературы

1. 1 Регуляция водно-электролитного гомеостаза у млекопитающих. Общие принципы

1.2 Почка - основной эффектор осморегулирующей системы. Структура почки. Процесс мочеобразования

1.2.1 Гидроуретическая функция почки. Молекулярные механизмы вазопрессин-зависимого транспорта воды в эпителии собирательных трубок почки

1.2.2 Натрийуретическая функция почки. Роль вазопрессина в регуляции транспорта натрия в эпителии почечных канальцев

1.3 Роль почечных аутакоидов в модуляции осморегулирующей функции почек. Оксид азота (II)

1.3.1 Действие N0 на транспортные процессы в нефроне и собирательной трубке

1.4 Роль интерстиция почки в регуляции процесса осмотического концентрирования

1.5 Крысы линии ВгаШеЬого как модель для изучения вазопрессин-независимых механизмов регуляции процесса осмотического концентрирования

1.6 Выводы по главе

2 Материалы и методы

2.1 Экспериментальные животные

2.2 Экспериментальные воздействия: дизайн эксперимента

2.2.1 Блокада синтеза N0

2.2.2 Активация синтеза N0 в условиях острого эксперимента

2.2.3 Активация аденилатциклазной и гуанилатциклазной систем селективной блокадой фосфодиэстераз

2.3 Количественная оценка почечных функций

2.4 Светооптическое исследование структуры мозгового вещества почки

2.5 Оценка экспрессии генов, кодирующих ферменты метаболизма НА, а также а-субъединицу Е№С в почке крыс

2.6 Определение концентрации cGMP в моче иммуноферментным методом

2.7 Статистическая обработка данных

3 Результаты исследования

3.1 Влияние блокады синтеза N0 на осморегулирующую функцию почек у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови

3.1.1 Гидроуретическая функция почек в условиях блокады синтеза N0

3.1.2 Натрийуретическая функция почек при блокаде синтезаN0

3.2 Влияние активации синтеза N0 на процесс осмотического концентрирования у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови

3.2.1 Гидроуретическая функция почек при активации синтеза N0

3.2.2 Натрийуретическая функция почек в условиях активации синтеза N0

3.3 Влияние блокады специфичных фосфодиэстераз (PDE-4, PDE-5) на процесс осмотического концентрирования у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови

3.3.1 Гидроуретическая функция почек в условиях ингибирования PDE-4 и РШ-5

3.3.2 Натрийуретическая функция почек в условиях ингибирования PDE-4 иРШ-5

3.4 Анализ структурных элементов концентрирующего механизма в условиях блокады синтеза N0 у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови

3.4.1 Морфометрический анализ эпителия собирательных трубок медуллярной зоны почки

3.4.2 Гистохимическое исследование состояния экстрацеллюлярного матрикса в зоне внутреннего мозгового вещества почки

3.4.3 Анализ экспрессии генов, кодирующих ферменты метаболизма

гиалуронана в зоне внутреннего мозгового вещества

4 Обсуждение результатов

Заключение

Список условных обозначений и сокращений

Список литературы

Введение

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Роль оксида азота (II) в модуляции осморегулирующего эффекта вазопрессина»

Актуальность проблемы исследования

Адекватность и устойчивость работы любой регуляторной системы у высших животных зависит от функционирования механизмов, модулирующих эффект основного стимулирующего фактора по принципу отрицательной обратной связи. Основным фактором в системе регуляции осмотического гомеостаза у млекопитающих является нейрогипофизарный гормон вазопрессин (ВП), определяющий как интенсивность реабсорбции воды в почке [Agre, 2002], так и внеклеточную проницаемость интерстиция почечной медуллы, разделяющий элементы концентрирующего механизма [Stridh et al., 2012]. Оксид азота (NO) относится к числу аутакоидных, ренопротективных факторов почки [Shirazi et al., 2019], синтез которого в почке активируется самим ВП [Park et al., 1998; Martin et al., 2002; O'Connor & Cowley, 2006]. Определение NO - небольшой газообразной молекулы - как ключевого биологического сигнала, стало ориентиром в понимании регуляции многих физиологических функций. NO -короткоживущий аутакоидный фактор, который является важнейшим компонентом действия ряда вазодилататоров [Francis et al., 2005]. NO, реализуя свой эффект в почечной ткани через cGMP-зависимый путь [Chang et al., 2018], участвует в регуляции как реабсорбции солей и воды [Kone & Baylis, 1997; Stoos & Garvin, 1997], так и почечной гемодинамики [Kurtz & Wagner et al., 2000; Dautzenberg et al., 2014; Morton et al., 2016]. Поскольку ранее установлена ВП-независимая стимуляция водной проницаемости эпителия собирательных трубок (СТ), индуцируемая NO и cGMP [Bouley et al., 2005], применение препаратов, повышающих активность cGMP-сигнального пути, является одним из новых экспериментальных терапевтических подходов в лечении различных нарушений концентрирующей функции почек [Sanches et al., 2012; Assadi et al., 2015]. Вместе с тем к настоящему времени получены противоречивые данные о влиянии аутакоида почки NO на процесс осмотического концентрирования, а также

отсутствует информация об участии структур интерстиция почечной медуллы в модуляции оксидом азота осморегулирующего эффекта ВП.

Таким образом, исследование механизмов модуляции аутакоидным фактором почки оксидом азота (NO) осморегулирующего эффекта ВП дает возможность не только расширить представления о регуляции концентрирующей функции почек, но также подойти с новых позиций к изучению патогенеза нарушений процесса осмотического концентрирования и послужить основой для поиска путей ее коррекции при таких заболеваниях, как несахарный диабет, артериальная гипертония, сердечная недостаточность и др.

Степень разработанности темы исследования

К настоящему времени достигнут существенный прогресс в понимании молекулярных механизмов, индуцируемых ВП в эпителии почечных канальцев, завершающихся транслокацией водных каналов белков аквапоринов (AQPs) и увеличением водопроницаемости эпителия [Rinschen et al., 2010; Fenton et al., 2020]. Вместе с тем получены данные, согласно которым ВП способен регулировать проницаемость внеклеточного матрикса почечной медуллы посредством изменения полимерности его компонентов, определяющих физико-химические свойства интерстиция почки [Иванова и др., 2016]. В последние годы при изучении механизмов модуляции осморегулирующего эффекта ВП значительное внимание уделяется роли местных, аутакоидных факторов, выделение которых стимулирует сам гормон, формируя, тем самым, отрицательную обратную связь [Pearce et al., 2015; Leipziger & Praetorius, 2020; Carlström, 2021]. Локальными, аутакоидными почечными факторами, участвующими в модуляции антидиуретического эффекта ВП, являются эндотелин, простагландин Е2, дофамин, брадикинин, NO и др. [Pearce et al., 2015]. Одним из наиболее изученых почечных аутакоидов является простагландин E2, который действуя в почке паракринным и аутакринным способом, регулирует почечную гемодинамику, а также влияет на реабсорбцию солей и воды в канальцах почки [Olesen et al, 2013; Nasrallah et al., 2014; Wang et al., 2018]. Несмотря на то, что NO многими исследователями определяется в качестве

диуретического и натрийуретического агента [Garvin et al., 2011; Krishnan et al., 2018], механизмы вовлечения аутакоида в модуляцию осморегулирующей функции ВП во многом остаются неясными. NO реализует эффект через cGMP-сигнальный путь, все компоненты которого экспрессируются в различных сегментах нефрона, включая СТ [Chang et al., 2018], тогда как классический сигнальный путь для ВП в эпителии СТ при активации V2R представлен cAMP-системой [Tamma et al., 2011]. Ранее было установлено, что NO/cGMP-сигнальный путь индуцирует транслокацию AQP2 в апикальную мембрану СТ [Bouley et al., 2000; Noda & Sasaki, 2006], что подтверждалось в условиях применения факторов, повышающих внутриклеточный уровень cGMP [Bouley et al., 2005; Wang et al., 2006; Boone et al., 2010]. Вместе с тем другие авторы установили, что стимуляция NO/cGMP-сигнального пути уменьшает фософорилирование AQP2, снижая водопроницаемость эпителия СТ [Garcia et al., 1996; Klokkers et al., 2009]. Предполагается, что внутриклеточные каскады ВП и NO взаимосвязаны, и NO может осуществлять своё влияние на почечные процессы, модулируя эффект антидиуретического гормона посредством воздействия на активность cAMP-системы [Bouley et al., 2008].

Таким образом, несмотря на большой массив данных о молекулярных механизмах, индуцируемых ВП и NO, выявление новых звеньев и их взаимодействия в реализации процесса осмотического концентрирования представляется актуальным, поскольку дает возможность расширить современные представления о регуляции почечных функций для разработки новых подходов к коррекции тубулоинтерстициальных повреждений почек.

Цель и задачи исследования

Целью данного исследования явился анализ механизмов модуляции аутакоидным фактором почки оксидом азота (NO) осморегулирующего эффекта вазопрессина.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать гидроуретическую и натрийуретическую функцию почек у крыс WAG и у ВП-дефицитных крыс Brattleboro в условиях блокады синтеза NO, а также при активации его синтеза.

2. Оценить влияние активации аденилатциклазной и гуанилатциклазной сигнальных систем на параметры осморегулирующей функции почек у крыс WAG и ВП-дефицитных крыс Brattleboro при блокаде специфичных фосфодиэстераз (PDE-4 и PDE-5), устраняющих деградацию cAMP и cGMP.

3. Изучить влияние аутакоида NO на состояние межклеточного матрикса почечной медуллы, формирующего барьер между структурами концентрирующей системы для диффузии воды и ионов у крыс WAG и у ВП-дефицитных крыс Brattleboro.

Научная новизна исследования

В экспериментах in vivo с использованием уникальной генетической модели ВП-дефицитных крыс Brattleboro, а также на крысах WAG с нормальным и сниженным в результате гидратации уровнем ВП впервые проведено комплексное морфофункциональное исследование роли NO в модуляции осморегулирующего эффекта ВП.

Установлено, что NO модулирует антидиуретический эффект вазопрессина. При блокаде синтеза NO установлен диуретический ответ вследствие устранения тонического активирующего эффекта NO на реабсорбцию воды, тогда как при активации NO/cGMP-сигнального пути при введении как экзогенного донора NO (НПН), так и силденафила, устраняющего деградирующего влияния PDE-5 на уровень cGMP, не выявлено изменений параметров гидроуреза.

Впервые установлено, что NO оказывает влияние на параметры натрийуретической функции почек, направленность изменений которых зависит от уровня эндогенного ВП в крови. При активации NO/cGMP-сигнального пути у крыс WAG с высоким уровнем ВП в крови выявлен антинатрийуретический эффект в связи со стимуляцией реабсорбции натрия, тогда как на крысах линии Brattleboro, лишенных эндогенного ВП, установлен прямой ВП-независимый

ингибирующий эффект NO на реабсорбцию натрия в эпителии почечных канальцах. В то же время наличие существенных изменений осморегулирующей функции при введении ингибитора PDE-4 ролипрама, повышающего активность cAMP-системы, определяется высоким уровнем эндогенного ВП в крови: у крыс WAG установлено снижение эффективности осмотического концентрирования вследствие торможения реабсорбции натрия и воды.

Впервые выявлено, что в модуляцию осморегулирующего эффекта ВП оксидом азота вовлекаются структуры интерстиция почечной медуллы, определяющие интенсивность внеклеточной диффузии воды и ионов. У крыс WAG при блокаде синтеза NO зафиксировано увеличение количества гистохимически выявляемого гиалуронана (ГН) почечной медуллы вследствие изменения экспрессии генов, кодирующих ферменты его метаболизма (HAS2, Hyal2).

Научно-практическая значимость работы

Результаты исследования механизмов модуляции оксидом азота осморегулирующего эффекта вазопрессина расширяют современные представления о клеточных и молекулярных основах регуляции концентрирующей функции почки и могут способствовать разработке новых подходов к коррекции тубулоинтерстициальных повреждений, развивающихся при многих поражениях почечной ткани. Данные, полученные в ходе исследования, используются в курсе лекций по физиологии для студентов как факультета естественных наук, так и Института медицины и психологии В. Зельмана Новосибирского Государственного Университета.

Методология и методы исследования

Исследование выполнено на базе Лаборатории физиологической генетики Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ФИЦ ИЦиГ СО РАН, г. Новосибирск), а также на кафедре физиологии Факультета естественных наук Новосибирского государственного университета (ФЕН НГУ). Выполнение процедур проводилось как в соответствии с международными рекомендациями по работе с экспериментальными животными

[The UFAW Handbook on the Care and Management of Laboratory Animals, Eighth Edition, 2010], так и с соблюдением Правил проведения работ с экспериментальными животными (приложение к приказу Министерства здравоохранения №755 от 12.08.1977), а также с разрешением комитета по биоэтике ИЦиГ СО РАН.

В опытах использованы крысы линии инбредной WAG и ВП-дефицитные крысы линии Brattleboro из ЦКП вивария конвенциональных животных ИЦиГ СО РАН. Каждая экспериментальная группа содержала от 9 до 12 особей. Исследование, посвященное исследованию роли оксида азота в модуляции осморегулирующего эффекта вазопрессина, включало три экспериментальные серии: блокада синтеза NO, стимуляция синтеза NO, а также активации cAMP- и cGMP-сигнальных систем при селективном ингибировании фосфодиэстераз. Исследовалась количественная оценка почечной функции: СКФ по клиренсу эндогенного креатинина, диурез (V), клиренс осмотически активных веществ (Cosm), уровень реабсорбции осмотически свободной воды (Тсн20), экскреция (ENa) и экскретируемая фракция натрия (FENa). В экспериментах с пролонгированным ингибированием синтеза NO у животных постмортально выделяли образцы ткани для гистохимического и морфометрического анализа структур мозгового вещества почки, для определения кортико-медуллярного градиента натрия, а также для выделения тотальной РНК с последующим анализом уровня мРНК генов, кодирующих ферменты метаболизма гиалуронана почечной медуллы.

Положения, выносимые на защиту:

1. NO модулирует антидиуретический эффект вазопрессина. Блокада синтеза NO приводит к развитию диуретической реакции вследствие торможения реабсорбции осмотически свободной воды, тогда как при активации NO/cGMP-сигнального пути не установлено существенных изменений параметров гидроуретической функции почек.

2. NO модулирует осморегулирующий эффект вазопрессина, стимулируя реабсорбцию натрия, тогда как прямой ВП-независимый эффект NO направлен на торможение транспорта натрия в эпителии почечных канальцев.

3. В модуляцию осморегулирующего эффекта вазопрессина оксидом азота вовлекаются компоненты интерстиция почечной медуллы, реструктуризация которых при блокаде синтеза N0 обусловлена изменением экспрессии генов, кодирующих ферменты метаболизма гиалуронана.

Степень достоверности полученных результатов

Достоверность полученных данных определяется высоким уровнем используемых современных методов, которые соответствовали поставленной цели и задачам. Исследование проводилось на современном сертифицированном оборудовании с последующей апробацией полученных данных в реферируемых научных журналах, включённых в список ВАК. Результаты исследования можно считать достоверными, поскольку применяемые методы статистического анализа характеризовались использованием адекватных критериев в соответствие с размерами и однородностью выборки с учетом пола и возраста животных.

Апробация материалов диссертации

Материалы настоящей диссертации вошли в отчёты по грантам Российского фонда фундаментальных исследований (проекты № 17-04-01073, № 20-04-00298). Основные результаты работы были представлены на научных конференциях в виде устных докладов: на XXII международной конференции студентов, аспирантов и молодых учёных, Л0М0Н0С0В-2015 (Москва, 2015), на XXIII съезде Физиологического общества им. И.П.Павлова (Воронеж, 2017), Всероссийской молодёжной конференции с международным участием «Современные аспекты интегративной физиологии» (Санкт-Петербург, 2018), на объединённом научном форуме VI съезда физиологов СНГ (Сочи, 2019), на 58-й международной научной студенческой конференции, МНСК (Новосибирск, 2020), на объединённом научном форуме VII съезда физиологов СНГ (Сочи, 2021).

Публикации по теме диссертации

По теме диссертации опубликовано 11 работ, в том числе 2 статьи в журналах, включенных в Перечень рецензируемых научных изданий, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук, на соискание ученой степени доктора

наук (из них 1 статья в российском научном журнале, переводная версия которого входит в Scopus, 1 статья в российском журнале, переводная версия которой входит в журнал, входящем в Web of Science), 3 статьи в прочем научном журнале, 6 публикаций в сборниках материалов международных и всероссийской с международным участием конференций, научных форумов, съезда с международным участием.

Финансовая поддержка исследования

Основная часть работ была с была выполнена в рамках грантов Российского фонда фундаментальных исследований (проекты № 17-04-01073 А, № 20-0400298 А).

Личный вклад автора

Весь экспериментальный материал, представленный в диссертации, получен, обработан и проанализирован лично автором. Автор принимал непосредственное участие в подготовке публикаций по материалам работ.

Благодарности

Автор выражает искреннюю благодарность научному руководителю Ивановой Л.Н. за общее руководство на всех этапах выполнения диссертации, а также за ценные советы, начиная с планирования экспериментальных циклов и заканчивая подготовкой статей к публикации. Автор благодарит сотрудников кафедры физиологии ФЕН НГУ, на базе которой проводилось светооптическое изучение структур почечной ткани. Автор благодарен инженерам лаборатории физиологической генетики ИЦиГ СО РАН Бонюховой Н.В. и Кочкаевой Л.Н. за помощь в работе с лабораторными животными.

Объем и структура диссертации

Материалы диссертации изложены на 164 страницах, содержат 28 рисунков и 8 таблиц. Список литературы включает 439 российских и зарубежных источников. Текст диссертации построен по классическому типу и состоит из введения, четырех глав, заключения, списка условных обозначений и сокращений и списка литературы.

1 Обзор литературы

1.1 Регуляция водно-электролитного гомеостаза у млекопитающих.

Общие принципы

В процессе эволюции приспособление живых существ изначально к водной среде обитания, а затем и к наземному существованию было сопряжено с решением ряда проблем, связанных с контролем водно-солевого баланса организма. Обитание в водной среде предполагало защиту организма от поступления в него избытка воды, тогда как для наземного существования, напротив, было необходимо сохранение концентрации электролитов, а также поддержание достаточного объема жидкости. Ещё в середине 19 столетия Клод Бернар сформулировал представление о внутренней среде организма «milieu intérieur», сохранение стабильности параметров которой является условием свободного и независимого существования несмотря на изменения окружающей среды [Normandin, 2007]. Более полувека спустя американский физиолог Уолтер Кеннон в своей книге «The Wisdom of the Body» предложил термин «гомеостаз» в качестве обозначения «согласованных физиологических процессов, служащих для поддержания большинства состояний организма» [Cannon, 1926; Cooper, 2008].

Жидкостное пространство организма распределено между двумя большими секторами: внутриклеточным (до 70% от общего количества жидкости организма) и внеклеточным (до 30 % жидкости тела) со специфичным электролитным составом для каждого компартмента (рисунок 1). Внеклеточный сектор, в свою очередь, подразделяется на интерстициальное пространство, циркулирующую кровь, а также на так называемую жидкость трансцеллюлярных пространств, заключённую в специализированных региональных полостях (цереброспинальная, внутриглазная, внутрисуставная, плевральная и т.д.) [Tortora et al., 2008]. Интерстициальная жидкость находится в пространстве между клетками, но доля свободной, легко перемещающейся фракции составляет не более 1-2%, в то время как остальная жидкость удерживается в геле межклеточного основного вещества,

представленного главным образом гликозаминогликанами (ГАГ) и протеогликанами. Плазма крови, является частью внеклеточного сектора и взаимодействует с интерстициальной жидкостью через эндотелий капилляров [Seifter & Chang, 2017; Seifter, 2019].

Рисунок 1 - Электролитный состав жидкостных секторов организма [Svensen et al., 2018]

Регуляция водно-солевого гомеостаза у высших позвоночных осуществляется благодаря работе сложной многокомпонентной системы, интегративная деятельность которой служит для сохранения постоянства объёма жидкости (волюморегуляция), её ионного состава и суммарной концентрации осмотически активных веществ (осморегуляция), а также для регуляции кислотно-основного равновесия жидкости [Наточин, 1993].

Гипоталамо-нейрогипофизарная система является ключевым звеном в регуляции водно-электролитного баланса и состоит из центральных и периферических нейрогормональных компонентов, основным эффекторным звеном которых является почка. В первой половине 20 века, анализируя опыты на собаках со снижением скорости мочеотделения в условиях введения гипертонических растворов в кровоток сонной артерии, было выявлено, что торможение диуреза связано с раздражением гипертонической плазмой крови нейронов супраоптического (SON) и паравентрикулярного (PVN) ядер

гипоталамуса, названных впоследствии осморецепторами [Verney, 1947]. Как позднее было обнаружено, центральные осморецепторы представлены нейронами супраптического и паравентрикулярного ядер гипоталамуса, синтезирующими ВП [Rhodes et al., 1981], а также нейронами циркумвентрикулярных структур [McKinley et al., 2004]. Гиперосмия тканевой жидкости, как полагал, Е. Верней, независимо от химической природы раствора, способствует выходу воды по осмотическому градиенту из клеток, что приводит к их сжатию, результатом которого является возбуждение нейронов ядер гипоталамуса, приводящее к увеличению секреции антидиуретического гормона вазопрессина (ВП) и стимуляции реабсорбции воды [Walters et al., 1974; Brimble et al., 1977]. Увеличение концентрации ВП в плазме крови, в свою очередь, приводит к развитию антидиуретической реакции вследствие стимуляции реабсорбции воды почками, результатом которой является снижение осмоляльности плазмы крови [Wang et al., 2011; De Luca et al., 2014] (рисунок 2).

ВП - аргинин вазопрессин, PVN - паравентрикулярное ядро гипоталамуса, SON -

супраоптическое ядро гипоталамуса Рисунок 2 - Гипоталамо-нейрогипофизарной система регуляции водно-солевого

гомеостаза [Knepper et al., 2015]

Позднее установлено, что гиперосмоляльность плазмы крови вызывает деполяризацию мембраны магноцеллюлярных клеток посредством активации неселективных кальциевых каналов [Dreifuss et al., 1971]. Однако оставался открытым вопрос о природе сигнала: является ли возникший стимул результатом изменений внутриклеточного ионного состава в условиях обезвоживания или же это механический эффект, связанный со сжатием клеточной мембраны. Было выявлено, что клеточная кренация вследствие гиперосмии активирует катионные каналы SICs (инактивированные растяжением катионные каналы), приводящие к высвобождению ВП, в то время как в условиях гипосмии катионные каналы инактивируются, снижая, таким образом, секрецию ВП [Kusano et al., 1999; Voisin & Bourque, 2002]. Дальнейшие исследования показали, что каналы SIC в ядрах гипоталамуса связаны с классом каналов транзиторного рецепторного потенциала (TRPV), имеющих механическую природу растяжения [Emir, 2017]. Было найдено, что элементы цитоскелета, включающие актиновые филаменты и микротрубочки, имея непосредственную ассоциацию с С-концом TRPV4, являются важным регуляторным звеном TRP канала [Goswami et al., 2010]. Известно, что блокада полимеризации актина, а также разрушение сети микротрубочек блокирует возбуждение центральных осморецепторов [Prager-Khoutorsky & Bourque, 2010]. В последние годы, основываясь на принципах слуховой рецепции [Martinac, 2014], предполагается, что гиперосмия приводит к активации TRP каналов (TRPV1,4) вследствие взаимодействия сети внутриклеточных микротрубочек с интегринами, в то время как при гипосмии наблюдается натяжение внутриклеточного скелета, приводящее к блокаде каналов вследствие конформационных изменений цитоскелета [Prager-Khoutorsky & Bourque, 2015]. Вместе с тем отсутствие изменений в уровне секреции ВП у нокаутных TRPV1 мышей, предполагает более сложную регуляцию секреции ВП [Tucker & Stocker, 2016].

Как известно, поддержание осмотического равновесия обеспечивается не только осморецепторами мозга. А.Г. Гинецинский в середине 20 века выдвинул гипотезу о сложном рефлекторном устройстве осморегулирующей системы, предположив включение в регуляторную сеть периферических осморецепторов

помимо гипоталамических нейронов. В 1959 г. впервые был обнаружен «печёночный рефлекс», который приводил к торможению диуреза при введении в кровоток воротной вены гипертонического раствора хлористого натрия [Великанова, Финкинштейн, 1959]. Позднее в электрофизиологических исследованиях было установлено, что антидиуретическая реакция возникает в результате возбуждения осморецепторов печени [Тырышкина и др., 1978; Tyryshkina et al., 1981]. Впоследствии было обнаружено, что снижение скорости мочеотделения может быть вызвано осмотическим раздражением и других органов. Например, антидиуретическая реакция на раздражение рецепторного поля миокарда раствором хлорида натрия, содержащим 523 ммоль/л, была весьма отчётливой [Лучкин, 1968]. Кроме того, большой интерес представляли опыты, в которых гипертонические растворы вводили в кровоток почки [Борисова, 1964], что приводило к антидиуретической реакции. Почка, как оказалось, выполняющая при осморегуляции роль эффектора, одновременно является афферентным звеном, реагирующим на изменения осмотической концентрации в кровотоке.

Уровень секреции ВП находится под непосредственным влиянием изменений не только осмоляльности плазмы крови, но и объёма циркулирующей крови и уровня кровяного давления. Впервые О.Г. Гауэр и Дж. П. Генри в экспериментах на собаках установили, что повышение давления в левом предсердии вызывает рефлекторное торможение секреции ВП, что приводит к выделению воды и солей почками [Gauer et al., 1976]. Позднее было показано, что повышение артериального давления приводит к увеличению растяжения кардиомиоцитов предсердия и желудочков, результатом которого является выделение натрийуретических пептидов, названных в соответствии с локализацией первой экстракции: предсердный и мозговой натрийуретический пептид (ANP, BNP) [Bold et al., 1981; Sudoh et al., 1988].

Восполнение жидкостных потерь осуществляется за счёт активации жажды, стимуляция которой происходит при увеличении концентрации натрия во внеклеточном пространстве, а также при снижении объёма циркулирующей крови. Сигналы, влияющие на чувство жажды, интегрируются, главным образом, в

области терминальной пластинки, включающей сосудистый орган терминальной пластинки (OVLT) и субфорникальный орган (SFO) [Zimmerman et al., 2016]. Восприятие жажды, как предполагают, связано с активацией передней поясной коры и островковой доли, которые опосредованы с релейными нейронами медиального таламуса [McKinley et al., 2015]. Сигналы от периферических осморецепторов, барорецепторов и волюморецепторов достигают центра жажды через висцеральные афференты, проходящие через спинномозговые пути и блуждающего нерва. В то же время гуморальные сигналы, опосредованные ангиотензином II и ANP, способны оказывать влияние на активность нейронов, расположенных в SFO [Gizowski et al., 2018]. Вместе с тем недавние оптогенетические исследования выявили, что стимуляция питьевого поведения и секреции ВП является прямым следствием не только изменений осмоляльности крови, но также благодаря упреждающим сигналам [Deisseroth & Schnitzer, 2013; Bichet, 2018, 2019]. При стимуляции центра жажды сигналы предварительно сходятся на уровне SFO, нейроны которого контролируют состав крови и тонус сосудов [Zimmerman et al., 2016; Mandelblat-Cerf et al., 2017].

1.2 Почка - основной эффектор осморегулирующей системы. Структура

почки. Процесс мочеобразования

В результате длительного эволюционного развития почка высших животных превращается в высоко дифференцированный орган, позволяющий одинаково успешно бороться с излишним потреблением или потерей солей, дегидратацией и гипергидратацией организма. Основным механизмом, обеспечивающим столь совершенное выполнение почкой её осморегулирующей функции, является канальцевая реабсорбция натрия и воды, интенсивность которых регулируется рефлекторными и местными внутрипочечными процессами [Pearce et al., 2015].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Правикова Полина Дмитриевна, 2023 год

Список литературы

1. Борисова С. А. Роль почек в осморегуляции организма / С. А. Борисова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1964. - Т. 58, № 10. - С. 18-20.

2. Великанова Л. К. Осморецепторы печени / Л. К. Великанова, Я. Д. Финкинштейн // Физиологический журнал СССР. - 1959. - Т. 45, № 12. - С. 14721476.

3. Виноградова М. С. Особенности пре- и постнатального развития почек у вазопрессин-дефицитных крыс Браттлборо / М. С. Виноградова, А. Р. Боярская, Е. А. Прокопьева // Морфология. - 2013. - Т. 143, № 1. - С. 53-58.

4. Гинецинский А. Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия: монография / А. Г. Гинецинский. - Москва-Ленинград : Изд-во АН СССР, 1963.-430 с.

5. Голосова Д. В. Влияние селективных агонистов V1a, V2 и V1b рецепторов на транспорт натрия в почке крыс / Д. В. Голосова, Т. А. Каравашкина, А. В. Кутина, А. С. Марина, Ю. В. Наточин // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2015. - Т. 160, № 12. - С. 712-715.

6. Иванова Л. Н. Физиологические механизмы регуляции водно-солевого баланса у животных и человека / Л. Н. Иванова // ISSEP Соросовский образовательный журнал. - 1996. - Т. 10. - С. 4-12.

7. Иванова Л. Н. Влияние вазопрессина на экспрессию генов, кодирующих ключевые ферменты метаболизма гиалуронана интерстициальной ткани, и на концентрирующую функцию почки крыс WAG / Л. Н. Иванова, А. В. Бабина, Г. С. Батурина, Л. Е. Каткова // Вавиловский журнал генетики и селекции. - 2016. - Т. 20, № 2. - С. 234-242.

8. Иванова Л. Н. Активность тканевой гиалуронидазы в почке белых крыс в условиях дегидратации и действия экзогенного антидиуретического гормона / Л. Н. Иванова, Т. Е. Горюнова, В. П. Климова // Доклады Академии наук СССР. -1975.-Т. 224, №5.-С. 1209-1211.

9. Иванова Л. Н. Структура и концентрирующая способность почек крыс Браттлборо в условиях длительного введения вазопрессина / Л. Н. Иванова, В. А. Лавриненко, А. В. Бабина, И. И. Хегай // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2008. - Т. 146, № 11. - С. 580-584.

10. Иванова Л. Н. Структурно-функциональные изменения эпителиоцитов собирательных трубок сосочка почки крыс Браттлборо в условиях действия вазопрессина / Л. Н. Иванова, В. А. Лавриненко, Л. В. Шестопалова, С. М. Короткова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2007. - Т. 143, № 1. - С. 101-105.

11. Иванова Л. Н. Эффект вазопрессина на систему гиалуронат гидролаз в мочевом пузыре амфибий / Л. Н. Иванова, Н. Н. Мелиди // Доклады Академии наук. - 1997. - Т. 353, № 5. - С. 687-689.

12. Иванова Л. Н. Система гиалуронан-гидролаз и гидроосмотический эффект вазопрессина / Л. Н. Иванова, Н. Н. Мелиди // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 1999. - Т. 85, № 6. - С. 847-856.

13. Иванова Л. Н. Эффект ретроградного введения препарата гиалуронидазы и лизозима на реабсорбцию осмотически свободной воды в почке собаки / Л. Н. Иванова, Т. В. Перехвальская // Доклады Академии наук СССР. - 1968. - Т. 181, №4.-С. 1013-1016.

14. Кабилова Н. О. Экспрессия гена гиалуронан-синтазы типа 2 в почке крыс вистар и крыс браттлборо с несахарным диабетом. Влияние вазопрессина и его аналогов / Н. О. Кабилова, А. А. Бондарь, Л. Н. Иванова // Доклады Академии наук. - 2009. - Т. 425, № 1. - С. 113-116.

15. Курляндчик Т. С. Исследование роли цАМФ-системы в регуляции осморегулирующей функции и состояния интерстициального матрикса почки крыс с различным уровнем эндогенного вазопрессина в крови / Т. С. Курляндчик, П. Д. Правикова // МНСК-2020 : материалы 58-й международной научной студенческой конференции. Новосибирск, 10-13 апреля 2020 г. - Новосибирск, 2020.-С. 134-135.

16. Лучкин Ю. Н. Осморецепторы сердца / Ю. Н. Лучкин // Физиологический журнал СССР. - 1968. - Т. 54, № 11. - С. 1302-1307.

17. Наточин Ю. В. Физиология водно-солевого обмена и почки / Ю. В. Наточин. - Санкт-Петербург : Наука, 1993. - 576 с.

18. Никифоровская Л. Ф. Система гликозаминогликаны-гликаногидралазы в почечной ткани крыс Браттлеборо с наследственным дефектом синтеза антидиуретического гормона / Л. Ф. Никифоровская, Н. И. Тищенко, Л. Н. Иванова // Физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 1987. - Т. 73, № 7. - С. 978-985.

19. Правикова П. Д. Влияние оксида азота на осморегулирующую функцию почки и на метаболизм гиалуроновой кислоты / П. Д. Правикова // ЛОМОНОСОВ-2015 : тезисы докладов XXII Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых: секция «Биология». Москва, 13-17 апреля 2015 г. - Москва, 2015. - С. 392-393.

20. Правикова П. Д. Влияние оксида азота (II) на натрийуретическую и диуретическую функции почки крыс с различным уровнем эндогенного вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Материалы XXIII съезда Физиологического общества им. И. П. Павлова с международным участием. Воронеж, 18-22 сентября 2017 г. - Воронеж, 2017. - С. 520-521.

21. Правикова П. Д. Влияние блокады синтеза оксида азота на диуретическую и натрийуретическую функции почки у крыс с различным уровнем эндогенного вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2018. - Т. 104, № 1. -С. 97-103.

22. Правикова П. Д. Гидроуретическая и натрийуретическая функция почек у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови в условиях активации и инактивации синтеза оксида азота / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Современные аспекты интегративной физиологии : материалы всероссийской молодежной конференции с международным участием. Санкт-Петербург, 09-11 октября 2018 г. - Санкт-Петербург, 2018. - С. 83-84.

23. Правикова П. Д. Исследование интерстициального матрикса мозгового вещества почки у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови в условиях ингибирования синтеза N0 / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // II объединенный научный форум. VI Съезд физиологов СНГ : научные труды. Сочи, Дагомыс, 0106 октября 2019. - Москва, 2019. - Т. 1. - С. 85-86.

24. Правикова П. Д. Влияние блокады синтеза оксида азота на гидроуретическую функцию и состояние экстрацеллюлярного матрикса почек у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, В. А. Лавриненко, Л. Н. Иванова // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2019. - Т. 167, № 2. - С. 184-187.

25. Правикова П. Д. Роль гуанилатциклазной системы в реализации осморегулирующей функции почек у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2019. - Т. 105, № 12. - С. 1502-1513.

26. Правикова П. Д. Влияние ролипрама на осморегулирующую функцию почек у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Т. С. Курляндчик, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2020. - Т. 106, № 12. - С. 1564-1570.

27. Правикова П. Д. Влияние блокады синтеза N0 в условиях гипотиреоза на состояние экстрацеллюлярного матрикса почек у крыс с различным уровнем вазопрессина / П. Д. Правикова, Т. С. Курляндчик, Л. Н. Иванова // Научные труды III объединенного научного форума физиологов, биохимиков и молекулярных биологов. Сочи, Дагомыс, 03-08 октября 2021. - Москва, 2021. - Т. 1. - С. 129-130.

28. Правикова П. Д. Влияние блокады синтеза N0 на осморегулирующую функцию почек в условиях моделирования гипотиреоза у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2021. - Т. 107, № 12. - С. 15051517.

29. Правикова П. Д. Анализ роли D1- и D2-pe^rnopoB дофамина в модуляции функции осмотического концентрирования у крыс с различным уровнем вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2022. - Т. 108, № 6. - С. 771-780.

30. Правикова П. Д. Влияние блокады рецепторов вазопрессина V1a на осморегуляторную функцию почек у гипертиреоидных крыс с различным уровнем вазопрессина в крови / П. Д. Правикова, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2022. - Т. 108, № 8. - С. 970-983.

31. Тищенко Н. И. Гликозаминогликаны сосочка почки крыс Браттлеборо с наследствнным несахарным диабетом / Н. И. Тищенко, Л. Н. Иванова // Известия СО РАН СССР. Серия биологичеких наук. - 1985. -№ 1. - С. 141-148.

32. Тырышкина Е. М. Электрофизиологическая характеристика, природа и локализация осморецепторов печени / Е. М. Тырышкина // Физиологический журнал СССР. - 1978. -№ 3. - С. 349-356.

33. Хегай И. И. Фенотипическое проявление мутантного гена diabetes insipidus у крыс и критерии генотипирования по фенотипу / И. И. Хегай // Генетика. - 2003. - Т. 39, № 1. - С. 70-74.

34. Ходус Г. Р. Роль кальций зависимых процеесов в регуляции вазопрессином водной проницаемости клеток собирательных трубок почек мыши / Г. Р. Ходус, Е. И. Соленов, В. В. Нестеров, Л. Е. Каткова, Л. Н. Иванова // Российский физиологический журнал им. И. М. Сеченова. - 2006. - Т. 92, № 5. -С. 626-632.

35. Abramova O. The role of oxytocin and vasopressin dysfunction in cognitive impairment and mental disorders / O. Abramova, Y. Zorkina, V. Ushakova, E. Zubkov, A. Morozova, V. Chekhonin // Neuropeptides. - 2020. - Vol. 83. - P. 102079.

36. Agre P. Aquaporin water channels - from atomic structure to clinical medicine / P. Agre , L. S. King , M. Yasui, W. B. Guggino, O. P. Ottersen, Y. Fujiyoshi, A. Engel, S. Nielsen // The Journal of physiology. - 2002. - Vol. 542. - P. 3-16.

37. Agre P. Purification and partial characterization of the Mr 30,000 integral membrane protein associated with the erythrocyte Rh(D) antigen / P. Agre, A. M.

Saboori, A. Asimos, B. L. Smith // The Journal of biological chemistry. - 1987. - Vol. 262. - P. 17497-17503.

38. Ahloulay M. Cyclic AMP-phosphodiesterases inhibitor improves sodium excretion in rats with cirrhosis and ascites / M. Ahloulay, L. Bankir, C. Lugnier, A. Le Bec, O. Poirel // Liver international: official journal of the International Association for the Study of the Liver. - 2005. - Vol. 25. - P. 403-409.

39. Ahmad A. Role of nitric oxide in the cardiovascular and renal systems / A. Ahmad, S. K. Dempsey, Z. Daneva, M. Azam, N. Li, P. L. Li, J. K.Ritter // International journal of molecular sciences. - 2018. - Vol. 19, № 9. - P. 2605.

40. Albertoni Borghese M. F. Aquaporin-2 promoter is synergistically regulated by nitric oxide and nuclear factor of activated T cells / M. F. Albertoni Borghese, L. M. Bettini, C. H. Nitta, S. de Frutos, M. Majowicz, L. V. Gonzalez Bosc // Nephron extra. -2011.-Vol. 1.-P. 124-138.

41. Albertoni Borghese M. F. A. Renal sodium-glucose cotransporter activity and aquaporin-2 Renal Effects of L-Arginine in Diabetic Rats expression in rat kidney during chronic nitric oxide synthase inhibition / M. F. Albertoni Borghese, M. P. Majowicz, M. C. Ortiz, M. F. Delgado, N. B. Sterin Speziale, N. A. Vidal // Nephron physiology. - 2007. - Vol. 107. - P. 77-86.

42. Alcorn D. Development of the renal interstitium / D. Alcorn, C. Maric, J. McCausland // Pediatric nephrology. - 1999. - Vol. 13, № 4. - P. 347-354.

43. Ares G. R. cGMP decreases surface NKCC2 levels in the thick ascending limb: role of phosphodiesterase 2 (PDE2) / G. R. Ares, P. Caceres, F. J. Alvarez-Leefmans, P. A. Ortiz // American journal of physiology. Renal physiology. - 2008. -Vol. 295. - P. F877-F887.

44. Ares G. R. Molecular regulation of NKCC2in the thick ascending limb / G. R. Ares, P. S. Caceres, P. A. Ortiz // American journal of physiology. Renal physiology. -2011.-Vol. 301.-P. F1143-F1159.

45. Armando I. Dopamine and Renal Function and Blood Pressure Regulation /1. Armando, A. Villar, and P. Jose // Comprehensive Physiology. - 2011. - Vol. 1, № 3. -P. 1075-1117.

46. Armando I. Dopamine D3 receptor inhibits the ubiquitin-specific peptidase 48 to promote NHE3 degradation /1. Armando, V. A. Villar, J. E. Jones, H. Lee, X. Wang, L. D. Asico, P. Yu, J. Yang, C. S. Jr Escano, A. M. Pascua-Crusan, R. A. Felder, P. A. Jose // FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. - 2014. - Vol. 28. - P. 1422-1434.

47. Arthur J. Characterization of the putative phosphorylation sites of the AQP2 C terminus and their role in AQP2 trafficking in LLC-PK1 cells / J. Arthur, J. Huang, N. Nomura, W. W. Jin, W. Li, X. Cheng, D. Brown, H. J. Lu // American journal of physiology. Renal physiology. -2015. - Vol. 309. - P. F673-F679.

48. Assadi F. Sildenafil for the treatment of congenital nephrogenic diabetes insipidus / F. Assadi, F. G. Sharbaf // American journal of nephrology. - 2015. - Vol. 42. - P. 65-69.

49. Balasubramanian L. Calcium signaling in vasopressin-induced aquaporin-2 trafficking / L. Balasubramanian, J. S. Sham, K. P. Yip // Pflugers Archiv: European journal of physiology. - 2008. - Vol. 456, № 4. - P. 747-754.

50. van Balkom B. W. Proteomic analysis of long-term vasopressin action in the inner medullary collecting duct of the Brattleboro rat / B. W. van Balkom, J. D. Hoffert,

C. L. Chou, M. A. Knepper // American journal of physiology. Renal physiology. -2004. - Vol. 286. - P. F216-F224.

51. Bancroft J. Theory and practice of histological techniques / J. Bancroft, M. Gamblee. - London : Churchill Livingstone, 2008. - 6 ed. - 744 p.

52. Bankir L. Vasopressin V2 receptors, ENaC, sodium reabsorption: a risk factor for hypertension? / L. Bankir, D. G. Bichet, N. Bouby // American journal of physiology. Renal physiology. -2010. - Vol. 299. - P. F917-F928.

53. Bankir L. Vasopressin: physiology, assessment and osmosensation / L. Bankir,

D. G. Bichet, N. G. Morgenthaler // Journal of internal medicine. - 2017. - Vol. 282, № 4. - P. 284-297.

54. Bankir L. Vasopressin-V2 receptor stimulation reduces sodium excretion in healthy humans / L. Bankir, S. Fernandes, P. Bardoux, N. Bouby, D. G. Bichet //

Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2005. - Vol. 16, № 7. - P. 1920-1928.

55. Bankir L. Medullary and cortical thick ascending limb: similarities and differences / L. Bankir, L. Figueres, C. Prot-Bertoye, N. Bouby, G. Crambert, J. H. Pratt, P. Houillier // American journal of physiology. Renal physiology. - 2020. - Vol. 318, №2. - P. F422-F442.

56. Bardoux P. Vasopressin contributes to hyperfiltration, albuminuria, and renal hypertrophy in diabetes mellitus: study in vasopressin-deficient Brattleboro rats / P. Bardoux, H. Martin, M. Ahloulax, F. Schmitt, N. Bouby, M. T. Marcelle, T. Tan, L. Bankir // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1999. - Vol. 96. - P. 10397-10402.

57. Barrett K. E. Ganong's Review of Medical Physiology: a LANGE medical book / K. E. Barrett, S. M. Barman, S. Boitano, H. Brooks. - New York : Mcgraw-hill, 2015.-25 ed. -768 p.

58. Barry E. F. Intrarenal bradykinin elicits reno-renal reflex sympatho-excitation and renal nerve-dependent fluid retention / E. F. Barry, E. J. Johns // Acta physiologica. -2015. - Vol. 213, №3. - P. 731-739.

59. Bech A. P. Effects of sildenafil, metformin, and simvastatin on ADH-independent urine concentration in healthy volunteers / A. P. Bech, J. F. M. Wetzels, T. Nijenhuis // Physiological reports. - 2018. - Vol. 6, № 7. - P. e13665.

60. Bender A. T. Cyclic nucleotide phosphodiesterases: molecular regulation to clinical use / A. T. Bender , J. A. Beavo // Pharmacological reviews. - 2006. - Vol. 58, №3. - P. 488-520.

61. Bennett T. Water deprivation: effects on fluid andelectrolyte handling and plasma biochemistry in Long-Evans and Brattlebororats / T. Bennett, S. M. Gardiner // The Journal of physiology. - 1987. - Vol. 385. - P. 35-48.

62. Bhave G. Body fluid dynamics: back to the future / G. Bhave, E. G. Neilson // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2011. - Vol. 22, № 12. - P. 2166-2181.

63. Biber J. Regulation of phosphate transport in proximal tubules / J. Biber, N. Hernando, I. Forster, H. Murer // Pflugers Archiv: European journal of physiology. -2009. - Vol. 458. - P. 39-52.

64. Bichet D. G. Nephrogenic diabetes insipidus / D. G. Bichet // Advances in chronic kidney disease. - 2006. - Vol. 13. - P. 96-104.

65. Bichet D. G. Vasopressin and the Regulation of Thirst / D. G. Bichet // Annals of nutrition & metabolism. - 2018. - Vol. 72, № 2. - P. 3-7.

66. Bichet D. G. Regulation of Thirst and Vasopressin Release / D. G. Bichet // Annual review of physiology. - 2019. - Vol. 81. - P. 359-373.

67. Bichet D. G. GENETICS IN ENDOCRINOLOGY Pathophysiology, diagnosis and treatment of familial nephrogenic diabetes insipidus / D. G. Bichet // European journal of endocrinology. - 2020. - Vol. 183, № 2. - P. R29-R40.

68. Bidani A. K. Renal microvascular dysfunction, hypertension and CKD progression / A. K. Bidani, A. J. Polichnowski, R. Loutzenhiser, K.A. Griffin // Current opinion in nephrology and hypertension. - 2013. - Vol. 22. - P. 1-9.

69. Bishop J. R. Heparan sulphate proteoglycans finetune mammalian physiology / J. R. Bishop, M. Schuksz, J. D. Esko // Nature. - 2007. - Vol. 446. - P. 1030-1037.

70. Bobulescu I. A. Na1/H1 exchangers in renal regulation of acid-base balance / I. A. Bobulescu, O. W. Moe // Seminars in nephrology. - 2006. - Vol. 26. - P. 334-344.

71. Boron W. F., Boulpaep E. L. Medical Physiology: A Cellular And Molecular Approaoch / W. F. Boron, E. L. Boulpaep. - Philadelphia : Saunders, 2005. - 1 ed. -1336 p.

72. Böger R. H. Long-term administration of L-arginine, L-NAME, and the exogenous NO donor molsidomine modulates urinary nitrate and cGMP excretion in rats / R. H. Böger, S. M. Bode-Böger, U. Gerecke, J. C. Frölich // Cardiovascular research. - 1994. - Vol. 28, № 4. - P. 494-499.

73. de Bold A. J. A rapid and potent natriuretic response to intravenous injection of atrial myocardial extract in rats / A. J. de Bold, H. B. Borenstein, A. T. Veress, H. Sonnenberg // Life sciences. - 1981. - Vol. 28. - P. 89-94.

74. Bookout A. L. Highthroughput real-time quantitative reverse transcription PCR / A. L. Bookout, C. L. Cummins, D. J. Mangelsdorf, J. M. Pesola & M. F. Kramer // Current protocols in molecular biology. - 2006. - Vol. 15., № 2. - P. 1-28.

75. Boone M. Physiology and pathophysiology of the vasopressin-regulated renal water reabsorption / M. Boone, P. M. Deen // Pflugers Archiv : European journal of physiology. - 2008. - Vol. 456. - P. 1005-1024.

76. Boone M. Effect of the cgmp pathway on aqp2 expression and translocation: Potential implications for nephrogenic diabetes insipidus / M. Boone, M. Kortenoeven, J. H. Robben, P. M. Deen // Nephrology, dialysis, transplantation: official publication of the European Dialysis and Transplant Association-European Renal Association. - 2010.

- Vol. 25. - P. 48-54.

77. Bouley R. Nitric oxide and atrial natriuretic factor stimulate cGMP-dependent membrane insertion of aquaporin 2 in renal epithelial cells / R. Bouley, S. Breton, T. Sun, M. McLaughlin, N. N. Nsumu, H. Y. Lin, D. A. Ausiello, D. Brown // The Journal of clinical investigation. - 2000. - Vol. 106. - P. 1115-1126.

78. Bouley R. Bypassing vasopressin receptor signaling pathways in nephrogenic diabetes insipidus / R. Bouley, U. Hasler, H.A. Lu, P. Nunes, D. Brown // Seminars in nephrology. - 2008. - Vol. 28. - P. 266-278.

79. Bouley R. Stimulation of AQP2 membrane insertion in renal epithelial cells in vitro and in vivo by the cGMP phosphodiesterase inhibitor sildenafil citrate (Viagra) / R. Bouley, N. Pastor-Soler, O. Cohen, M. McLaughlin, S. Breton, D. Brown // American journal of physiology. Renal physiology. - 2005. - Vol. 288. - P. F1103-F1112.

80. Boulkroun S. Vasopressin-inducible ubiquitinspecific protease 10 increases ENaC cell surface expression by deubiquitylating and stabilizing sorting nexin 3 / S. Boulkroun, D. Ruffieux-Daidié, J. J. Vitagliano, O. Poirot, R. P. Charles, D. Lagnaz, D. Firsov, S. Kellenberger, O. Staub // American journal of physiology. Renal physiology.

- 2008. - Vol. 295. - P. F889-F900.

81. Bradford D. Use of LC-MS/MS and Bayes' theorem to identify protein kinases that phosphorylate aquaporin-2 at Ser256 / D. Bradford, V. Raghuram, J. L.

Wilson, C. L. Chou, J. D. Hoffert, M. A. Knepper, T. Pisitkun // The American journal of physiology. - 2014. - Vol. 307. - P. C123-C139.

82. Breyer M. D. Prostaglandin E receptors and the kidney / M. D. Breyer, R. M. Breyer // American journal of physiology. Renal physiology. - 2000. - Vol. 279. - P. F12-F23.

83. Breyer M. D. Epidermal growth factor inhibits the hydroosmotic effect of vasopressin in the isolated perfused rabbit cortical collecting tubule / M. D. Breyer, H. R. Jacobson, J. A. Breyer // The Journal of clinical investigation. - 1988. - Vol. 82. - P. 1313-1320.

84. Brimble M. J. Influenceof oxytocin on sodium excretion in the anaesthetized Brattleboro rat / M. J. Brimble, R. J. Balment, C. P. Smith, R. J. Windle, M. L. Forsling // The Journal of endocrinology. - 1991.- Vol. 129, № 1. - P. 49-54.

85. Brimble M. J. Characterization of the responses of oxytocin- and vasopressin-secreting neurones in the supraoptic nucleus to osmotic stimulation / M. J. Brimble, R. E. Dyball // The Journal of physiology. - 1977. - Vol. 271. - P. 253-271.

86. Brooks H. L. cDNA array identification of genes regulated in rat renal medulla in response to vasopressin infusion / H. L. Brooks, S. Ageloff, T. H. Kwon, W. Brandt, J. M. Terris, A. Seth, L. Michea, S. Nielsen, R. Fenton, M. A. Knepper // American journal of physiology. Renal physiology. - 2003. - Vol. 284. - P. F218-F228.

87. Brown D. The cell biology of vasopressin action / D. Brown, R. Fenton -Philadelphia : Elsevier Saunders. -2015. - P. 281-302.

88. Brunton L. L. Goodman and Gilman's the pharmacological basis of therapeutics / L. L. Brunton, B. A. Chabner, B. C. Knollman. - New York : McGraw Hill, 2011. - 12 ed.- 1808 p.

89. Bryan N. S. Discovery of the nitric oxide signaling pathway and targets for drug development / N. S. Bryan, K. Bian, and F. Murad // Frontiers in bioscience. -2009.-Vol. 14.-P. 1-18.

90. Bulger R. E. (1987). Composition of renal medullary tissue / R. E. Bulger // Kidney international. - 1987. - Vol. 31, № 2. - P. 556-561.

91. Burg M. B. Function of the thick ascending limb of Henle's loop / M. B. Burg, N. Green // The American journal of physiology. - 1973. - Vol. 224. - P. 659-668.

92. Cannon W. B. Organization for physiological homeostasis / W. B. Cannon // Physiological reviews. - 1929. - Vol. 9. - P. 399-431.

93. Carlstrom M. Nitric oxide signalling in kidney regulation and cardiometabolic health / M. Carlstrom // Nature reviews. Nephrology. - 2021. - Vol. 17, № 9. - P. 575590.

94. Carney E. F. Cell biology : Vasopressin-independent AQP2 trafficking / E. F. Carney // Nature reviews. Nephrology. - 2016. - Vol. 12. - P. 509.

95. Casteel D. E. A crystal structure of the cyclic GMP-dependent protein kinase IP dimerization/docking domain reveals molecular details of isoform-specific anchoring / D. E. Casteel, E. V. Smith-Nguyen, B. Sankaran, S. H. Roh, R. B. Pilz, C. Kim // The Journal of biological chemistry. - 2010. - Vol. 285. - P. 32684-32688.

96. Centrone M. AQP2 trafficking in health and diseases: an updated overview / M. Centrone, M. Ranieri, A. Di Mise, M. D'Agostino, M. Venneri, A. Ferrulli, G. Valenti, G. Tamma // The international journal of biochemistry & cell. - 2022. - Vol. 149. - P. 106261.

97. Chang J. Transepital fluid and salt re-absorbtion regulated by cGK2 signals / J. Chang, Y. Ding, Z. Zhou, H. Nie, H. Ji // International journal of molecular sciences. -2018. - Vol. 19, №3. - P. 1-8.

98. Chen L. Improvement of inflammatory responses associated with NF-kappa B pathway in kidneys from diabetic rats / L. Chen, J. Zhang, Y. Zhang, Y. Wang, B. Wang // Inflammation research : official journal of the European Histamine Research Society. - 2008. - Vol. 57. - P. 199-204.

99. Chen J. Epithelial sodium channel enhanced osteogenesis via cGMP/PKGII/ENaC signaling in rat osteoblast / J. Chen, H. Zhang, X. Zhang, G. Yang, L. Lu, X. Lu, C. Wan, K. Ijiri, H. Ji, Q. Li // Molecular biology reports. - 2014. - Vol. 41. -P. 2161-2169.

100. Cheng C. Y. Vasopressin-independent mechanisms in controlling water homeostasis / C. Y. Cheng, J. Y. Chu, B. K. Chow // Journal of molecular endocrinology. - 2009. - Vol. 43. - P. 81-92.

101. Cheung P. W. Targeting the Trafficking of Kidney Water Channels for Therapeutic Benefit / P. W. Cheung, R. Bouley, D. Brown // Annual review of pharmacology and toxicology. -2020. - Vol. 60. - P. 175-194.

102. Cheung P. W. Protein phosphatase 2C is responsible for VP-induced dephosphorylation of AQP2 serine 261 / P.W. Cheung, L. Ueberdiek, J. Day, R. Bouley, D. Brown // American journal of physiology. Renal physiology. - 2017. - Vol. 313, № 2. - P. F404-F413.

103. Coletti R. Nitric oxide acutely modulates hypothalamic and neurohypophyseal carbon monoxide and hydrogen sulphide production to control vasopressin, oxytocin and atrial natriuretic peptide release in rats / R. Coletti, J. B. M. de Lima, F. M. V. Vechiato, F. L. de Oliveira, L. K. Debarba, G. Almeida-Pereira, L. L. K. Elias, J. Antunes-Rodrigues // Journal of Neuroendocrinology. - 2019. - Vol. 31, № 2. - P. e12686.

104. Colombaro V. Lack of hyaluronidases exacerbates renal post-ischemic injury, inflammation, and fibrosis / V. Colombaro, I. Jadot, A. E. Decleves, V. Voisin, L. Giordano, I. Habsch, J. Malaisse, B. Flamion, N. Caron // Kidney international. - 2015. -Vol. 88. - P. 61-71.

105. Cooper S. J. From Claude Bernard to Walter Cannon. Emergence of the concept of homeostasis / S.J. Cooper // Appetite. - 2008. - Vol. 51. - P. 419-427.

106. Cowman M. K. Hyaluronan and Hyaluronan Fragments / M. K. Cowman // Advances in carbohydrate chemistry and biochemistry. - 2017. - Vol. 74. -P.1-59.

107. Csoka A. B. The six hyaluronidase-like genes in the human and mouse genomes / A. B. Csoka, G. I. Frost and R. Stern // Matrix biology : journal of the International Society for Matrix Biology. - 2001. - Vol. 20. - P. 499-508.

108. Cuevas S. Renal dopamine receptors, oxidative stres and hypertension / S. Cuevas, V. A. Villar, P. A. Jose, I. Armando // International journal of molecular sciences. -2013. - Vol. 14. - P. 17553-17572.

109. Culpepper R. M. Interactions among prostaglandin E2, antidiuretic hormone, and cyclic adenosinemonophosphate inmodulating Cl- absorption in single mouse medullary thick ascending limbs of Henle / R. M. Culpepper, T. E. Andreoli // The Journal of clinical investigation. - 1983. - Vol. 71. - P. 1588-1601.

110. Curnow A. C. Low Nitric Oxide Bioavailability Increases Renin Production in the Collecting Duct / A. C. Curnow, S. R. Gonsalez, V. R. Gogulamudi, B. Visniauskas, E. E. Simon, A. A. Gonzalez , D. S. A. Majid, L. S. Lara, M. C. Prieto // Frontiers in physiology. - 2020. - Vol. 11. - P. 559341.

111. Dantzler W. H. Urineconcentrating mechanism in the inner medulla: function of the thin limbs of the loops of Henle / W. H. Dantzler, A. T. Layton, H. E. Layton and T. L. Pannabecker // Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. - 2014. - Vol. 9. - P. 1781-1789.

112. Datta A. PKA-independent vasopressin signaling in renal collecting duct / A. Datta, C. R. Yang, K. Limbutara, C. L. Chou, M. M. Rinschen, V. Raghuram, M. A. Knepper // FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. - 2020. - Vol. 34. - P. 6129-6146.

113. Dautzenberg M. Role of soluble guanylate cyclase in renal hemodynamics and autoregulation in the rat / M. Dautzenberg, A. Kahnert, J. P. Stasch, A. Just // American journal of physiology. Renal physiology. - 2014. - Vol. 307. - P. F1003-F1012.

114. Deen P. M. T. A Vasopressin-Induced Change in Prostaglandin Receptor Subtype Expression Explains the Differential Effect of PGE2 on AQP2 Expression / P. M. T. Deen, M. Boone, H. Schweer, E. T. B. Olesen, C. Carmone, J. F. M. Wetzels, R. A. Fenton, M. L. A. Kortenoeven // Frontiers in physiology. - 2022. - Vol. 12. - P. 787598.

115. Deisseroth K. Engineering approaches to illuminating brain structure and dynamics / K. Deisseroth, M. J. Schnitzer // Neuron. - 2013. - Vol. 80. - P. 568-577.

116. Delpire E. Water Homeostasis and Cell Volume Maintenance and Regulation / E. Delpire, K. B. Gagnon // Current topics in membranes. - 2018. - Vol. 81. - P. 3-52.

117. De Luca L. A. Jr. Neurobiology of Body Fluid Homeostasis : Transduction and Integration / L. A. Jr. De Luca, J. V. Menani and A. K. Johnson. - Boca Raton, Florida : CRC Press/Taylor & Francis, 2014. - 336 p.

118. Deshpande V. Phosphoproteomic identification of vasopressin V2 receptor-dependent signaling in the renal collecting duct / V. Deshpande, A. Kao, V. Raghuram, A. Datta, C. L. Chou, M. A. Knepper // American journal of physiology. Renal physiology. - 2019. - Vol. 317. - P. F789-F804.

119. Deshpande M. Hydrocortisone and triiodothyronine regulate hyaluronate synthesis in a tissue-engineered human dermal equivalent through independent pathways / M. Deshpande, S. Papp, L. Schaffer, T. Pouyani // Journal of bioscience and bioengineering. - 2015. - Vol. 119, № 2. - P. 226-236.

120. DiGiovanni S. R. Regulation of collecting duct water channel expression by vasopressin in Brattleboro rat / S. R. DiGiovanni, S. Nielsen, E. I. Christensen and M. A. Knepper // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 1994. - Vol. 91. - P. 8984-8988.

121. Ding H. PDE/cAMP/Epac/C/EBP-beta signaling cascade regulates mitochondria biogenesis of tubular epithelial cells in renal fibrosis / H. Ding , F. Bai, H. Cao, J. Xu, L. Fang, J. Wu, Q. Yuan, Y. Zhou, Q. Sun, W. He, C. Dai, K. Zen, L. Jiang, J. Yang // Antioxidants & redox signaling. - 2018. - Vol. 29. - P. 637-652.

122. Dobrowolski L. Role of atrial natriuretic peptide in mediating the blood pressure independent natriuresis elicited by systemic inhibition of nitric oxide / L. Dobrowolski, M. Kuczeriszka, A.Castillo, D. S. Majid, L. G. Navar // Pflugers Archiv : European journal of physiology. - 2015. - Vol. 467. - P. 833-841.

123. Dousa T. P. Cyclic-3',5'-nucleotide phosphodiesterase isozymes in cell biology and pathophysiology of the kidney / T. P. Dousa // Kidney international. - 1999. -Vol. 55, № 1. - P. 29-62.

124. Dreifuss J. J. Action potentials and release of neurohypophysial hormones in vitro / J. J. Dreifuss, I. Kalnins, J. S. Kelly, K. B. Ruf // The Journal of physiology. -1971. - Vol. 215, № 3. - P. 805-817.

125. Dunn R. B. USMLE Step 1: Physiology lecture notes / R. B. Dunn, W. Kudrath, S. S. Passo, L. B. Wilson. - Florida : Kaplan Medical, 2011. - 412 p.

126. Dzgoev S. G. Selective V2-Agonist of Vasopressin Desmopressin Stimulates Activity of Serum Hyaluronidase / S. G. Dzgoev // Bulletin of experimental biology and medicine. - 2015. - Vol. 159, № 4. - P. 424-426.

127. Edwards R. M. Dopamine inhibits vasopressin action in the rat inner medullary collecting duct via a2-adrenoceptors / R. M. Edwards, D. P. Brooks // The Journal of pharmacology and experimental therapeutics. - 2001. - Vol. 298. - P. 10011006.

128. Edwards B. R. Antidiuretic effect of endogenous oxytocin indehydrated Brattleboro homozygous rats / B. R. Edwards, F. T. La Rochelle // The American journal of physiology. - 1984. - Vol. 247. - P. 453-465.

129. Emir T. L. R. Neurobiology of TRP Channels / T. L. R. Emir (ed.). - Boca Raton (FL): CRC Press/Taylor & Francis, 2017. - 364 p.

130. Engelmann M. Microdialysis administration of vasopressin into the septum improves social recognition in Brattleboro rats / M. Engelmann, R. Landgraf // Physiology & Behavior. - 1994. - Vol. 55. - P. 145-149.

131. Erickson M. Chain gangs: new aspects of hyaluronan metabolism / M. Erickson, R. Stern // Biochemistry research international. - 2012. - Vol. 2012. - P. 893947.

132. Eto K. Phosphorylation of aquaporin-2 regulates its water permeability / K. Eto, Y. Noda, S. Horikawa, S. Uchida, and S. Sasaki // The Journal of biological chemistry. -2010. - Vol. 285. - P. 40777-40784.

133. Evans L. C. Increased perfusion pressure drives renal t-cell infiltration in the dahl salt-sensitive rat / L. C. Evans, G. Petrova, T. Kurth, C. Yang, J. D. Bukowy, D. L. Mattson, A. W. Jr. Cowley // Hypertension. - 2017. - Vol. 70. - P. 543-551.

134. Fathollahi A. Effect of polyuria on bladder function in diabetics versus non-diabetics: an article review / A. Fathollahi, F. Daneshgari, A. T. Hanna-Mitchell // Current urology. - 2015. - Vol. 8, № 3. - P. 119-125.

135. Feinberg R. N. Hyaluronate in vasculogenesis / R. N. Feinberg and D. C. Beebe // Science. - 1983. - Vol. 220. - P. 1177-1179.

136. Fejes-Toth A. N. Urinary kinin excretion following alterations of vasopressin levels in man and rat / A. N. Fejes-Toth, G. Fejes-Totah // Renal physiology.

- 1986.-Vol. 9.-P. 302-307.

137. Felder R. A. Mechanisms of disease: The role of GRK4 in the etiology of essential hypertension and salt sensitivity / R. A. Felder, P. A. Jose // Nature clinical practice. Nephrology. - 2006. - Vol. 2. - P. 637-650.

138. Fenton R. A. Mouse models and the urinary concentrating mechanism in the new millennium / R. A. Fenton, M. A. Knepper // Physiological reviews. - 2007. - Vol. 87. - P. 1083-1112.

139. Fenton R. A. Acute regulation of aquaporin-2 phosphorylation at Ser-264 by vasopressin / R. A. Fenton, H. B. Moeller, J. D. Hoffert, M. J. Yu, S. Nielsen, M. A. Knepper // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2008. - Vol. 105. - P. 3134-3139.

140. Fenton R. A. Advances in Aquaporin-2 trafficking mechanisms and their implications for treatment of water balance disorders / R. A. Fenton, S. K. Murali and H. B. Moeller // American journal of physiology. Cell physiology. - 2020. - Vol. 319, № 1. -P. C1-C10.

141. Feraille E. Sodium-potassium-adenosinetriphosphatasedependent sodium transport in the kidney: hormonal control / E. Feraille, A. Doucet // Physiological reviews. -2001. - Vol. 81. - P. 345-418.

142. Feraille E. Renal water transport in health and disease / E. Feraille, A. Sassi, V. Olivier, G. Arnoux, P. Y. Martin // Pflugers Archiv : European journal of physiology.

- 2022. - Vol. 474, № 8. - P. 841-852.

143. Figueroa C. D. Probing for the bradykinin B2 receptor in rat kidney by anti-peptide and anti-ligand antibodies / C. D. Figueroa, C. B. Gonzalez, S. Grigoriev, S. A. Alla, M. Haasemann, K. Jarnagin, W. Muller-Esterl // The journal of histochemistry and cytochemistry : official journal of the Histochemistry Society. - 1995. - Vol. 43. - P. 137-148.

144. Fock E. M. Nitric oxide inhibits arginine-vasotocin-induced increase of water osmotic permeability in frog urinary bladder / E. M. Fock, E.A. Lavrova, V. T. Bachteeva, E. V. Chernigovskaya, R. G. Parnova // European journal of endocrinology. - 2004. - Vol. 448. - P. 197-203.

145. Fonseca R. G. Lack of kinin B(1) receptor potentiates leptin action in the liver / R. G. Fonseca, V. M. Sales, E. Ropelle, C. C. Barros, L. Oyama, S. S. Ihara, M. J. Saad, R. C. Araujo, J. B. Pesquero // Journal of molecular medicine. - 2013. - Vol. 91. -P. 851-860.

146. Francis S. H. Mammalian cyclic nucleotide phosphodiesterases: molecular mechanisms and physiological functions / S. H. Francis, M. A. Blount, J. D. Corbin // Physiological reviews. -2011. - Vol. 91. - P. 651-690.

147. Francis S. H. Adapted from:Phosphodiesterase-5 inhibition: the molecular biology of erectile function and dysfunction / S. H. Francis and J. D. Corbin // The Urologic clinics of North America. - 2005. - Vol. 32. - P. 419-429.

148. Francis S. H. cGMP-Dependent Protein Kinases and cGMP Phosphodiesterases in Nitric Oxide and cGMP Action / S. H. Francis, J. L. Busch, and J. D. Corbin // Pharmacological reviews. - 2010. - Vol. 62, № 3. - P. 525-530.

149. Frindt G. Effects of insulin on Na and K transporters in the rat CCD / G. Frindt, L. G. Palmer // American journal of physiology. Renal physiology. - 2012. -Vol. 302. - P. 1227-1233.

150. Fuller L. Thirst in brattleboro rats / L. Fuller, J. T. Fitzsimons // The American journal of physiology. - 1988. - Vol. 255. - P. 217-225.

151. Furtado M. R. F. Inhibition of the permeability response to vasopressin and oxytocin in the toad bladder effects of bradykinin, kallidin, eleodoisin and physalaemin / M. R. F. Furtado // The Journal of membrane biology. - 1981. - Vol. 4. - P. 165-168.

152. Fushimi K. Phosphorylation of serine 256 is required for cAMPdependent regulatory exocytosis of the aquaporin-2 water channel / K. Fushimi, S. Sasaki, F. Marumo // The Journal of biological chemistry. - 1997. - Vol. 272. - P. 14800-14804.

153. Fushimi K. Cloning and expression of apical membrane water channel of rat kidney collecting tubule / Fushimi K., Uchida S., Hara Y, Hirata Y, Marumo F, Sasaki S. //Nature. - 1993. - Vol. 361. - P. 549-552.

154. Garantziotis S. Hyaluronan biology: A complex balancing act of structure, function, location and context / S. Garantziotis, R. C. Savani // Matrix biology : journal of the International Society for Matrix Biology. - 2019. - Vol. 78-79. - P. 1-10.

155. Garcia N. Nitric oxide inhibits ADH-stimulated osmotic water permeability in cortical collecting ducts / N. Garcia, S. Pomposiello, J. Garvin // The American journal of physiology. - 1996. - Vol. 270. - P. F206-F210.

156. Garvin J. L. Regulation of renal NaCl transport by nitric oxide, endothelin, and ATP: clinical implications / J. L. Garvin, M. Herrera, P. A. Ortiz // Annual review of physiology. - 2011. - Vol. 73. - P. 359-376.

157. Garvin J. L. Nitric oxide inhibits sodium/hydrogen exchange activity in the thick ascending limb / J. L. Garvin, N. J. Hong // American journal of physiology. Renal physiology. - 1999. - Vol. 277. - P. 377-382.

158. Gauer O. H. Neurohormonal control of plasma volume / O. H. Gauer, J. P. Henry // International review of physiology. - 1976. - Vol. 9. - P. 145-190.

159. Ge Y. Collecting duct-specific knockout of endothelin-1 alters vasopressin regulation of urine osmolality / Y. Ge, D. Ahn, P. K. Stricklett, A. K. Hughes, M. Yanagisawa, G. Verbalis, D. E. Kohan // American journal of physiology. Renal physiology. - 2005. - Vol. 288. - P. F912-F920.

160. Giesecke T. Vasopressin Increases Urinary Acidification via V1a Receptors in Collecting Duct Intercalated Cells / T. Giesecke, N. Himmerkus, J. Leipziger, M. Bleich, T. A. Koshimizu, M. Fahling, A. Smorodchenko, J. Shpak, C. Knappe, J. Isermann, N. Ayasse, K. Kawahara, J. Schmoranzer, N. Gimber, A. Paliege, S. Bachmann, K. Mutig // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2019. -Vol. 30, №6. - P. 946-961.

161. Gildea J. J. The cooperative roles of the dopamine receptors, D1R and D5R, on the regulation of renal sodium transport / J. J. Gildea, I. T. Shah, R. E. Van Sciver, J.

A. Israel, C. Enzensperger, H. E. McGrath, P. A. Jose, R. A. Felder // Kidney international. - 2014. - Vol. 86. - P. 118-126.

162. Ginetzinsky A. G. Role of hyaluronidase in the re-absorption of water in renal tubules: the mechanism of action of the antidiuretic hormone / A. G. Ginetzinsky //Nature. - 1958. - Vol. 182. - P. 1218-1219.

163. Gizowski C. The neural basis of homeostatic and anticipatory thirst / C. Gizowski, C. W. Bourque // Nature reviews. Nephrology. - 2018. - Vol. 14, № 1. - P. 11-25.

164. Goswami C. Importance of non-selective cation channel TRPV4 interaction with cytoskeleton and their reciprocal regulations in cultured cells / C. Goswami, J. Kuhn, P. A. Heppenstall, and T. Hucho // PLoS One. - 2010. - Vol. 5. - P. e11654.

165. Goransson V. Renomedullary and intestinal hyaluronan content during body water excess. A comparative study in rats and gerbils / V. Goransson, C. Johnsson, O. Nylander and P. Hansell // The Journal of physiology. - 2002. - Vol. 542. - P. 315-322.

166. Gupta R. C. Hyaluronic Acid: Molecular Mechanisms and Therapeutic Trajectory / R. C. Gupta, R. Lall, A. Srivastava, A. Sinha // Frontiers in veterinary science. - 2019. - Vol. 6. - P. 192.

167. Han J. S. Vasopressin independent regulation of collecting duct water permeability / J. S. Han, Y.,Maeda, C. Ecelbarger, M. A. Knepper // The American journal of physiology. - 1994. - Vol. 266. - P. F139-F146.

168. Han D. 8-(4-Chlorophenylthio)-Guanosine-39,59-Cyclic Monophosphate-Na Stimulates Human Alveolar Fluid Clearance by Releasing External Na1 Self-Inhibition of Epithelial Na1 Channels / D. Han, H. Nie, X. Su, X. Shi, D. Bhattarai, M. Zhao, R. Zhao, K. Landers, H. Tang, L. Zhang, H. Ji // American journal of respiratory cell and molecular biology. -2011. - Vol. 45. - P. 1007-1014.

169. Hansell P. Hyaluronan content in the kidney in different states of body hydration / P. Hansell, V. Goransson, C. Odlind, B. Gerdin, R. Hallgren // Kidney international. - 2000. - Vol. 58. - P. 2061-2068.

170. Hansell P. Renomedullary interstitial cells regulate hyaluronan turnover depending on growth media osmolality suggesting a role in renal water handling / P.

Hansell, C. Maric, D. Alcorn, V. Goransson, C. Johnsson, R. Hallgren // Acta physiologica Scandinavica. - 1999. - Vol. 165. -P. 115-116.

171. Harada H. and Takahashi M. CD44-dependent intracellular and extracellular catabolism of hyaluronic acid by hyaluronidase-1 and -2 / H. Harada, M. Takahashi // The Journal of biological chemistry. - 2007. - Vol. 282. - P. 5597-5607.

172. He J. Aquaporins in Renal Diseases / J. He, B. Yang // International journal of molecular sciences. - 2019. - Vol. 20, № 2. - P. 366.

173. Hebert R. L. Bradykinin B2 type receptor activation regulates fluid and electrolyte transport in the rabbit kidney / R. L. Hebert, D. Regoli, H. Xiong, M. Breyer, G. E. Plante//Peptides. -2005. - Vol. 26. - P. 1308-1316.

174. Helms M. N. Role of SGK1 in nitric oxide inhibition of ENaC in Na1-transporting epithelia/ M. N. Helms, L. Yu, B. Malik, D. J. Kleinhenz, C. M. Hart, D. C. Eaton // The American journal of physiology. - 2005. - Vol. 289. - P. C717-C726.

175. Hinrichs G. R. Treatment of Nephrogenic Diabetes Insipidus Patients with cGMP-Stimulating Drugs Does Not Mitigate Polyuria or Increase Urinary Concentrating Ability / G. R. Hinrichs, L. A. Mortensen, C. Bistrup, H. H. Dieperink, B. L. Jensen // Kidney International Reports. - 2020. - Vol. 5. - P. 1319-1325.

176. Hirsch J. R. Effects of sodium nitroprusside in the rat cortical collecting duct are independent of the NO pathway / J. R. Hirsch, Cermak R., W. G. Forssmann, R. Kleta, M. Kruhoffer, M. Kuhn, J. A. Schafer, D. Sun, E. Schlatter // Kidney international. - 1997. - Vol. 51. - P. 473-476.

177. Hoenig M. P. Homeostasis, the milieu interieur, and the wisdom of the nephron / M. P. Hoenig, M.L. Zeidel // Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. - 2014. - Vol. 9, № 7. - P. 1272-1281.

178. Hofmann F. cGMP regulated protein kinases (cGK) / F. Hofmann, D. Bernhard, R. Lukowski, P. Weinmeister // Handbook of experimental pharmacology. -2009.-Vol. 191.-P. 137-162.

179. Hoffert J. D. Aquaporin-2 in the "-omics" Era / J. D. Hoffert, C. L. Chou, M. A. Knepper // The Journal of biological chemistry. - 2009. - Vol. 284, № 22. - P. 14683-14687.

180. Holst M. R. Regulated exocytosis: renal aquaporin-2 3D vesicular network organization and association with F-actin / M. R. Holst, L. G. Jensen, J. Aaron, F. H. Login, S. Rajkumar, U. Hahn, L. N. Nejsum // The American journal of physiology. -2021. - Vol. 21, № 6. - P. C1060-C1069.

181. Hottinger D. G. Sodium nitroprusside in 2014: a clinical concepts review / D. G. Hottinger, D. S. Beebe, T. Kozhimannil, R. C. Prielipp, K. G. Belani // Journal of anaesthesiology, clinical pharmacology. - 2014. - Vol. 30, № 4. - P. 462-471.

182. Hou J. Paracellular transport in the collecting duct / J. Hou // Current opinion in nephrology and hypertension. - 2016. - Vol. 25, № 5. - P. 424-428.

183. Hubrecht R. The UFAW handbook on the care and management of laboratory animals / M. F. Festing In: R. Hubrecht, J. Kirkwood. - Chichester : Wiley-Blackwell, 2010.-8 ed. - 848 p.

184. Hughes A. K. Mechanism of vasopressin-induced contraction of renal medullary interstitial cells / A. K. Hughes and D. E. Kohan // Nephron physiology. -2006. - Vol. 103, № 1. - P. 119-124.

185. Hyndman K. A. Renal collecting duct NOS1 maintains fluid-electrolyte homeostasis and blood pressure / K. A. Hyndman, E. I. Boesen, A. A. Elmarakby, M. W. Brands, P. Huang, D. E. Kohan, D. M. Pollock, J. S. Pollock // Hypertension. - 2013. -Vol. 62, № 1. - P. 91-98.

186. Hyndman K. A. Collecting Duct Nitric Oxide Synthase 1B Activation Maintains Sodium Homeostasis During High Sodium Intake Through Suppression of Aldosterone and Renal Angiotensin II Pathways / K. A. Hyndman, E. V. Mironova, J. F. Giani, C. Dugas, J. Collins, A. A. McDonough, J. D. Stockand, J. S. Pollock // Journal of the American Heart Association. - 2017. - Vol. 6, № 10. - P. e006896.

187. Ignarro L. J. Nitric oxide / L. J. Ignarro // Current topics in medicinal chemistry. - 2005. - Vol. 5, № 7. - P. 595.

188. Ikeda M. Regulation of aquaporins by vasopressin in the kidney / M. Ikeda, T. Matsuzaki // Vitamins and hormones. - 2015. - Vol. 98. - P. 307-337.

189. Ilatovskaya D. V. ROS production as a common mechanism of ENaC regulation by EGF, insulin and IGF-1 / D. V. Ilatovskaya, T. S. Pavlov,V. Levchenko

and A. Staruschenko // The American journal of physiology. - 2013. - Vol. 304. - P. C102-C111.

190. Itano N. Simple Primary Structure, Complex Turnover Regulation and Multiple Roles of Hyaluronan / N. Itano // Journal of biochemistry. - 2008. - Vol. 144. -P. 131-137.

191. Itano N. Mammalian hyaluronan synthases / N. Itano and K. Kimata // IUBMB life. - 2002. - Vol. 54. - P. 195-199.

192. Ivanova L. N. Effect of vasopressin on the expression of genes for the key enzymes of hyaluronan turmover in WAG and Brattleboro rat kidney / L. N. Ivanova, A. V. Babina, G. S. Baturina, L. E. Katkova // Experimental physiology. - 2013. - Vol. 98, № 11.-P. 1608-1619.

193. Ivanova L. N. Hyaluronate hydrolase activity and glycosaminoglycans in the Brattleboro rat kidney / L. N. Ivanova, T. E. Goryunova, L. F. Nikiforovskaya, N. I. Tishchenko // Annals of the New York Academy of Sciences. - 1982. - Vol. 394. - P. 503-508.

194. Ivanova L. N. Effects of vasopressin on hyaluronate hydrolase activities and water permeability in the frog urinary bladder / L. N. Ivanova, N. N. Melidi // Pflugers Archiv : European journal of physiology. - 2001. - Vol. 443. - P. 72-77.

195. Izumi Y. Downregulation of vasopressin V2 receptor promoter activity via V1a receptor pathway / Y. Izumi, Y. Nakayama, T. Mori, H. Miyazaki, H. Inoue, Y. Kohda, T. Inoue, H. Nonoguchi, K. Tomita // American journal of physiology. Renal physiology. - 2007. - Vol. 292. - P. F1418-F1426.

196. Jadot I. Restored nitric oxide bioavailability reduces the severity of acute-to-chronic transition in a mouse model of aristolochic acid nephropathy / I. Jadot, V. Colombaro, B. Martin, I. Habsch, O. Botton, J. Nortier, A. E. Decleves, N. Caron // PLoS One. - 2017. - Vol. 12, № 8. - P. e0183604.

197. Jedrzejas M. J. Structures of vertebrate hyaluronidases and their unique enzymatic mechanism of hydrolysis / M. J. Jedrzejas, R. Stern // Proteins. - 2005. - Vol. 61, №2. - P. 227-238.

198. Ji H. L. CPT-cGMP is a new ligand of epithelial sodium channels / H. L. Ji,

H. G. Nie, Y. Chang, Q. Lian, S. L. Liu // International journal of biological sciences. -2016.-Vol. 12.-P. 359-366.

199. Jones G. 25-Hydroxyvitamin D-24-hydroxylase (CYP24A1): Its important role in the degradation of vitamin D / G. Jones, D. E. Prosser, M. Kaufmann // Archives of biochemistry and biophysics. - 2012. - Vol. 523. - P. 9-18.

200. Jourde-Chiche N. Endothelium structure and function in kidney health and disease / N. Jourde-Chiche, F. Fakhouri, L. Dou, J. Bellien, S. Burtey, M. Frimat, P. A. Jarrot, G. Kaplanski, M. Le Quintrec, V. Pernin, C. Rigothier, M. Sallee, V. Fremeaux-Bacchi, D. Guerrot, L. T. Roumenina // Nature reviews. Nephrology. - 2019. - Vol. 15, №2. - P. 87-108.

201. Jung H. J. Molecular mechanisms regulating aquaporin-2 in kidney collecting duct / H. J. Jung, T. H. Kwon // American journal of physiology. Renal physiology. -2016. - Vol. 311. - P. F1318-F1328.

202. Kaissling B. The renal cortical interstitium: morphological and functional aspects / B. Kaissling, M. Le Hir // Histochemistry and cell biology. - 2008. - Vol. 130, № 2. - P. 247-262.

203. Kakeshita K. Altered arginine vasopressin-cyclic AMP-aquaporin 2 pathway in patients with chronic kidney disease / K. Kakeshita, T. Koike, T. Imamura, H. Fujioka, H. Yamazaki, K. Kinugawa // Clinical and experimental nephrology. - 2022. -Vol. 26, №8. - P. 788-796.

204. Kamsteeg E. J. Short-chain ubiquitination mediates the regulated endocytosis of the aquaporin-2 water channel / E. J. Kamsteeg, G. Hendriks, M. Boone,

I. B. Konings, V. Oorschot, P. van der Sluijs, J. Klumperman, P. M. Deen // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. -2006. - Vol. 103. - P. 18344-18349.

205. Karousou E. Roles and targeting of the HAS/hyaluronan/CD44 molecular system in cancer / E. Karousou, S. Misra, S. Ghatak, K. Dobra, M. Gotte, D. Vigetti, A. Passi, N. K. Karamanos, S. S. Skandalis // Matrix biology: journal of the International Society for Matrix Biology. - 2017. - Vol. 59. - P. 3-22.

206. Katori M. Renal (Tissue) Kallikrein-Kinin System in the Kidney and Novel Potential Drugs for Salt-Sensitive Hypertension. Recent Developments in the Regulation of Kinins / M. Katori, M. Masataka // Progress in Drug Research. - 2014. -Vol. 69. - P. 59-109.

207. Kaul A. Hyaluronan, a double-edged sword in kidney diseases / A. Kaul, K. L. Singampalli, U. M. Parikh, L. Yu, S. G. Keswani, X. Wang // Pediatric nephrology. -2022. - Vol. 37, № 4. - P. 735-744.

208. Kennedy C. R. Salt-sensitive hypertension and reduced fertility in mice lacking the prostaglandin EP2 receptor / C. R. Kennedy, Y. Zhang, S. Brandon, Y. Guan, K. Coffee, C. D. Funk, M. A. Magnuson, J. A. Oates, M. D. Breyer, R. M. Breyer // Nature medicine. - 1999. - Vol. 5. - P. 217-220.

209. Kim H. J. Evaluation of Protein Expression in Housekeeping Genes across Multiple Tissues in Rats / H. J. Kim, J. I. Na, B. W. Min, J. Y. Na, K. H. Lee, J. H. Lee, Y. J. Lee, H. S. Kim, J. T. Park // Korean journal of pathology. - 2014. - Vol. 48, № 3. -P. 193-200.

210. Klokkers J. Atrial natriuretic peptide and nitric oxide signaling antagonizes vasopressin-mediated water permeability in inner medullary collecting duct cells / J. Klokkers, P. Langehanenberg, B. Kemper, S. Kosmeier, G. von Bally, C. Riethmüller, F. Wunder, A. Sindic, H. Pavenstädt, E. Schlatter, B. Edemir // American journal of physiology. Renal physiology. - 2009. - Vol. 297. - P. F693-F703.

211. Knepper M. A. Molecular physiology of water balance / M. A. Knepper, T. H. Kwon, S. Nielsen // New England journal of medicine. - 2015. - Vol. 372, № 14. - P. 1349-1358.

212. Kobayashi T. Hyaluronan: Metabolism and Function / T. Kobayashi, T. Chanmee, N. Itano // Biomolecules. - 2020. - Vol. 10, № 11. - P. 1525.

213. Kokko J. P. Jr: Countercurrent multiplication system without active transport in innermedulla / J. P. Kokko, F. C. Rector // Kidney international. - 1972. - Vol. 2. - P. 214-223.

214. Kone B. C. Nitric oxide synthesis in the kidney: isoforms, biosynthesis, functions in health / B. C. Kone // Seminars in nephrology. - 2004. - Vol. 24. - P. 299315.

215. Kone B. C. Biosynthesis and homeostatic roles of nitric oxide in the normal kidney / B. C. Kone, C. Baylis // American journal of physiology. Renal physiology. -1997. - Vol. 272. - P. F561-F578.

216. Kortenoeven M. L. A. Vasopressin regulation of sodium transport in the distal nephron and collecting duct / M. L. A. Kortenoeven, N. B. Pedersen, L. L. Rosenbaek, R. A. Fenton // American journal of physiology. Renal physiology. - 2015. -Vol. 309. - P. F280-F299.

217. Koshimizu T. Vasopressin V1a and V1b receptors: from molecules to physiological systems / T. Koshimizu, K. Nakamura, N. Egashira, M. Hiroyama, H. Nonoguchi, A. Tanoue // Physiological reviews. - 2012. - Vol. 92. - P. 1813-1864.

218. Krishnan S. M. The Impact of the Nitric Oxide (NO)/Soluble Guanylyl Cyclase (sGC) Signaling Cascade on Kidney Health and Disease: A Preclinical Perspective / S. M. Krishnan, J. R. Kraehling, F. Eitner, A. Benardeau, P. Sandner // International journal of molecular sciences. - 2018. - Vol. 19, № 6. - P. 1712.

219. Kurtz A. Mode of nitric oxide action on the renal vasculature / A. Kurtz, K. H. Gotz, M. Hamann, and P. Sandner // Acta physiologica Scandinavica. - 2000. - Vol. 168. - P. 41-45.

220. Kurtz A. Role of nitric oxide in the control of renin secretion / A. Kurtz, C. Wagner // American journal of physiology. Renal physiology. - 1998. - Vol. 275. - P. F849-F862.

221. Kusano K. Effects of osmotic pressure andbrain-derived neurotrophic factor on the survival of postnatal hypothalamic oxytocinergic and vasopressinergic neurons in dissociated cell culture / K. Kusano, S. B. House, H. Gainer // Neuroendocrinol. - 1999. -Vol. 11.-P. 145-152.

222. Kutina A. V. The involvement of V 1b-subtype vasopressin receptors in regulation of potassium ions excretion in the rat kidneys / A. V. Kutina, A. S. Marina, Y. V. Natochin // Doklady Biological Sciences. - 2014. - Vol. 459, № 1. - P. 338-340.

223. Kuwahara M. cAMP-dependent phosphorylation stimulates water permeability of aquaporin-collecting duct water channel protein expressed in Xenopus oocytes / M. Kuwahara, K. Fushimi, Y. Terada, L. Bai, F. Marumo, S. Sasaki // The Journal of biological chemistry. - 1995. - Vol. 270. - P. 10384-10387.

224. Lahera V. Exogenous cGMP prevents decrease in diuresis and natriuresis induced by inhibition of NO synthesis / V. Lahera, J. Navarro, M. L. Biondi, L. M. Ruilope, J. C. Romero // The American journal of physiology. - 1993. - Vol. 264. - P. F344-F347.

225. Lahera V. Effects of NG monomethyl-L-arginine and L-arginineon acetylcholine renal response / V. Lahera, M. G. Salom, M. J. Fiksen-Olsen, L. Raij, J. C. Romero // Hypertension. - 1990. - Vol. 15. - P. 659-663.

226. Larsen T. Effect of nitric oxide inhibition on blood pressure and renal sodium handling: a dose-response study in healthy man / T. Larsen, F. H. Mose, J. N. Bech, E. B. Pedersen // Clinical and experimental hypertension. - 2012. - Vol. 34, № 8.

- P. 567-574.

227. Laurent T. C. Hyaluronan / T. C. Laurent, J. R. E. Fraser // FASEB journal: official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. -1992. - Vol. 6. - P. 2397-2404.

228. Laycock J. F. A comparison of the learning abilities of Brattleboro rats with hereditary diabetes insipidus and Long-Evans rats using positively reinforced operant conditioning / J. F. Laycock, I. B. Gartside, J. T. Chapman // Progress in brain research.

- 1983. - Vol. 60. - P. 183-187.

229. Layton A. T. Urine concentrating mechanism: impact of vascular and tubular architecture and a proposed descending limb urea-Na+ cotransporter / A. T. Layton, W. H. Dantzler, T. L. Pannabecker // American journal of physiology. Renal physiology. -2012. - Vol. 302. - P. F591-F605.

230. Layton A. T. A region-based mathematical model of the urine concentrating mechanism in the rat outer medulla. I. Formulation and base-case results / A. T. Layton, H. E. Layton // American journal of physiology. Renal physiology. - 2005. - Vol. 289. -P. F1346-F1366.

231. Layton A. T. The mammalian urine concentrating mechanism: Hypotheses and uncertainties / A. T. Layton, H. E. Layton, W. H. Dantzler, T. L. Pannabecker // Physiology. - 2009. - Vol. 24. - P. 250-256.

232. Layton A. T. A computational model of epithelial solute and water transport along a human nephron / A. T. Layton, H. E. Layton // PLoS computational biology. -2019. - Vol. 15, №2. - P. e1006108.

233. Layton A. T. Two modes for concentrating urine in rat inner medulla / A. T. Layton, T. L. Pannabecker, W. H. Dantzler, H. E. Layton // American journal of physiology. Renal physiology. - 2004. - Vol. 287. - P. F816-F839.

234. Ledderhos C. In vivo diuretic actions of renal vasopressin V1 receptor stimulation in rats / C. Ledderhos, D. L. Matsin, M. M. Skelton, A. W. Cowley // The American journal of physiology. - 1995. - Vol. 268. - P. 796-807.

235. Lee S. P. Dopamine D1 and D2 receptor Co-activation generates a novel phospholipase C-mediated calcium signal / S. P. Lee, C. H. So, A. J. Rashid, G. Varghese, R. Cheng, A. J. Lanca, B. F. O'Dowd, S. R. George // The Journal of biological chemistry. - 2004. - Vol. 279. - P. 35671-35678.

236. Lee J. Y. Hyaluronan: a multifunctional, megaDalton, stealth molecule / J. Y. Lee, A. P. Spicer // Current opinion in cell biology. - 2000. - Vol. 12, № 5. - P. 581586.

237. Leipziger J. Renal Autocrine and Paracrine Signaling: A Story of Self-protection / J. Leipziger, H. Praetorius // Physiological reviews. - 2020. - Vol. 100, № 3.-P. 1229-1289.

238. Li Y. Aquaporins in urinary system / Y. Li, W. Wang, T. Jiang, B. Yang // Advances in experimental medicine and biology. - 2017. - Vol. 969. - P. 131-148.

239. Li C. Molecular mechanisms of antidiuretic effect of oxytocin / C. Li, W. Wang, S. N. Summer, D. Timothy, W. D. P. Brooks, S. Falk, R. W. Schrier // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2008. - Vol. 19. - P. 225-232.

240. Li Y. Prostaglandins in the pathogenesis of kidney diseases / Y. Li, W. Xia, F. Zhao, Z. Wen, A. Zhang, S. Huang, Z. Jia, Y. Zhang // Oncotarget. - 2018. - Vol. 9, №41.-P. 26586-26602.

241. Liu C. S. Actin-related protein 2/3 complex plays a critical role in the aquaporin-2 exocytotic pathway / C. S. Liu, P. W. Cheung, A. Dinesh, N. Baylor, T. C. Paunescu, A. V. Nair, R. Bouley, D. Brown // American journal of physiology. Renal physiology. - 2021. - Vol. 321, № 2. - P. F179-F194.

242. Loffing J. Regulated sodium transport in the renal connecting tubule (CNT) via the epithelial sodium channel (ENaC) / J. Loffing, C. Korbmacher // Pflugers Archiv : European journal of physiology. - 2009. - Vol. 458, № 1. - P. 111-135.

243. Lu H. A. Diabetes Insipidus / H. A. Lu // Advances in experimental medicine and biology. - 2017. - Vol. 969. - P. 213-225.

244. Lytle C. Distribution and diversity of Na-K-Cl cotransport proteins: a study with monoclonal antibodies / C. Lytle, J. C. Xu, D. Biemesderfer, B. Forbush // The American journal of physiology. - 1995. - Vol. 269. - P. 1496-14505.

245. Ma F. Adrenomedullin Inhibits Osmotic Water Permeability in Rat Inner Medullary Collecting Ducts / F. Ma, G. Chen, E. L. Rodriguez, J. D. Klein, J. M. Sands, Y. Wang // Cells. - 2020. - Vol. 9, № 12. - P. 25-33.

246. Maghnie M. Diabetes insipidus / M. Maghnie // Hormone research. - 2003. -Vol. 1. - P. 42-54.

247. Majid D. S. Intrarenal nitric oxide activity and pressure natriuresis in anesthetized dogs / D. S. Majid, S. A. Omoro, S. Y. Chin, L. G. Navar // Hypertension.

- 1998. - Vol. 32. - P. 266-272.

248. Majid D. S. Renal responses to intra-arterial administration of nitric oxide donor in dogs / D. S. Majid, A. Williams, P. J. Kadowitz, L. G. Navar // Hypertension. -1993.-Vol. 22.-P. 535-541.

249. Majors A. K. Nitric oxide alters hyaluronan deposition by airway smooth muscle cells / A. K. Majors, R. Chakravarti, L. M. Ruple, R. Leahy, D. J. Stuehr, M. Lauer, S. C. Erzurum, A. Janocha, M. A. Aronica // PLoS One. - 2018. - Vol. 13, № 7.

- P. e0200074.

250. Mandelblat-Cerf Y. Bidirectional anticipation of future osmotic challenges by vasopressin neurons / Y. Mandelblat-Cerf, A. Kim, C. R. Burgess, S. Subramanian,

B. A. Tannous, B. B. Lowell, M. L. Andermann // Neuron. - 2017. - Vol. 93. - P. 5765.

251. Mansley M. K. Prostaglandin E2 stimulates the epithelial sodium channel (ENaC) in cultured mouse cortical collecting duct cells in an autocrine manner / M. K. Mansley, C. Niklas, R. Nacken, K. Mandery, H. Glaeser, M. F. Fromm, C. Korbmacher, M. Bertog // The Journal of general physiology. - 2020. - Vol. 152, № 8. - P. e201912525.

252. Martin P. Y. Arginine vasopressin modulates expression of neuronal NOS in rat renal medulla / P. Y. Martin, M. Bianchi, F. Roger, L. Niksic, E. Feraille // American journal of physiology. Renal physiology. - 2002. - Vol. 283. - P. F559-F568.

253. Martinac B. The ion channels to cytoskeleton connection as potential mechanism of mechanosensitivity / B. Martinac // Biochimica et biophysica acta. -2014. - Vol. 1838. - P. 682-691.

254. Matsuyama T. The Relationship between the Intrarenal Dopamine System and Intrarenal Renin-angiotensin System Depending on the Renal Function / T. Matsuyama, N. Ohashi, S. Ishigaki, S. Isobe, N. Tsuji, T. Fujikura, T. Tsuji, A. Kato, H. Miyajima, H. Yasuda // Internal medicine. - 2018. - Vol. 57, № 22. - P. 3241-3247.

255. Mattson D. L. Kinin actions on renal papillary blood flow and sodium excretion / D. L. Mattson, A. W. Jr. Cowley // Hypertension. - 1993. - Vol. 21. - P. 961-965.

256. Mattson D. L. Influence of dietary sodium intake on renal medullary nitric oxide synthase / D. L. Mattson, D. J. Higgins // Hypertension. - 1996. - Vol. 27, № 2. -P. 688-692.

257. Mattson D. L. Control of arterial blood pressure and renal sodium excretion by nitric oxide synthase in the renalmedulla / D. L. Mattson, F. Wu // Acta physiologica Scandinavica. - 2000. - Vol. 168. - P. 149-154.

258. Mcauliffe W. G. Histochemistry and ultrastructure of the interstitium of the renal papilla in rats with hereditary diabetes insipidus (Brattleboro strain) / W. G. Mcauliffe // The American journal of anatomy. - 1980. - Vol. 157, № 1. - P. 17-26.

259. McDonald J. Hyaluronan minireview series / J. McDonald, V. C. Hascall // The Journal of biological chemistry. - 2002. - Vol. 15. - P. 4575-4579.

260. McKinley M. S. The physiologic regulation of thirst and fluid intake / M. S. McKinley, A. K. Johnson // News in physiological sciences: an international journal of physiology produced jointly by the International Union of Physiological Sciences and the American Physiological Society. - 2004. - Vol. 9. - P. 1-6.

261. McKinley M. J. Vasopressin secretion: osmotic and hormonal regulation by the lamina terminalis / M. J. McKinley, M. L. Mathai, R. M. McAllen, R. C. McClear, R. R. Miselis, G. L. Pennington, L. Vivas, J. D. Wade, B. J. Oldfield // Journal of Neuroendocrinology. - 2004. - Vol. 16. - P. 340-347.

262. McKinley M. J. The median preoptic nucleus: front and centre for the regulation of body fluid, sodium, temperature, sleep and cardiovascular homeostasis / M. J. McKinley, S. T. Yao, A. Uschakov, R. M. McAllen, M. Rundgren, D. Martelli // Acta physiologica. -2015. - Vol. 214, № 1. - P. 8-32.

263. Mendoza L. D., Hyndman K. A. The contribution of collecting duct NOS1 to the concentrating mechanisms in male and female mice / L. D. Mendoza, K. A. Hyndman // American journal of physiology. Renal physiology. - 2019. - Vol. 317, № 3. - P. F547-F559.

264. Mergia E. Spare guanylyl cyclase NO receptors ensure high NO sensitivity in the vascular system / E. Mergia, A. Friebe, O. Dangel, M. Russwurm, D. Koesling // The Journal of clinical investigation. - 2006. - Vol. 116, № 6. - P. 1731-1737.

265. Mergia E. Role of Phosphodiesterase 5 and Cyclic GMP in Hypertension / E. Mergia, J. Stegbauer // Current hypertension reports. - 2016. - Vol. 18, № 5. - P. 39.

266. Meyer K. Smyth Hydrolysis of polysaccharide acid of vitreous humour of umbilical cord and of streptococcus by autolitic enzyme of pneumococcus / K. Meyer, R. Dubous, E. Smyth // The Journal of biological chemistry. - 1937. - Vol. 118. - P. 71.

267. Meyer C. Role of the human kidney in glucose counterregulation / C. Meyer, J. M. Dostou, J. E. Gerich // Diabetes. - 1999. - Vol. 48. - P. 943-948.

268. Milano S. Hereditary Nephrogenic Diabetes Insipidus: Pathophysiology and Possible Treatment / S. Milano, M. Carmosino, A. Gerbino, M. Svelto, G. Procino // An Update. International journal of molecular sciences. - 2017. - Vol. 18, № 11. - P. 2385.

269. Milne C. M. Adrenocortical function in the Brattleboro rat / C. M. Milne, R. J. Balment, I. W. Henderson, W. Mosley, I. C. Jones // Annals of the New York Academy of Sciences. - 1982. - Vol. 394. - P. 230-240.

270. Mimura Y. In vitro macro- and microautoradiographic localization of V1 and V2 receptors in the rat kidney using OPC-21268 and OPC-31260 / Y. Mimura, T. Ogura, N. Hayakawa, F. Otsuka, M. Hashimoto, T. Yamauchi, H. Makino, N. Ogawa // Nephron. - 1997. - Vol. 76, № 3. - P. 331-336.

271. Moeller H. B. Phosphorylation and ubiquitylation are opposing processes that regulate endocytosis of the water channel aquaporin-2 / H. B. Moeller, T. S. Aroankins, J. Slengerik-Hansen, T. Pisitkun, R. A. Fenton // Journal of cell science. -2014.-Vol. 127.-P. 3174-3183.

272. Moeller H. B. Serine 269 phosphorylated aquaporin-2 is targeted to the apical membrane of collecting duct principal cells / H. B. Moeller, M. A. Knepper, R. A. Fenton // Kidney international. - 2009. - Vol. 75. - P. 295-303.

273. Moneer Z. Nitric oxide co-ordinates the activities of the capacitative and non-capacitative Ca2 entry pathways regulated by vasopressin / Z. Moneer, J. L. Dyer, C. W. Taylor // The Biochemical journal. - 2003. - Vol. 370. - P. 439-448.

274. Monzon C. M. Nitric oxide decreases the permselectivity of the paracellular pathway in thick ascending limbs / C. M. Monzon, J. L. Garvin // Hypertension. - 2015. -Vol. 65. - P. 1245-1250.

275. Monzon C. M. Nitric oxide reduces paracellular resistance in rat thick ascending limbs by increasing Na + and Cl -permeabilities / C. M. Monzon, R. Occhipinti, O. P. Pignataro, J. L. Garvin // American journal of physiology. Renal physiology. -2017. - Vol. 312. - P. F1035-F1043.

276. Morello J. P. Nephrogenic diabetes insipidus / J. P. Morello, D. G. Bichet // Annual review of physiology. - 2001. - Vol. 63. - P. 607-630.

277. Mori M. A. Kinin B1 receptor deficiency leads to leptin hypersensitivity and resistance to obesity / M. A. Mori, R. C. Araujo, F. C. Reis, D. G. Sgai, R. G. Fonseca, C. C. Barros, V. F. Merino, M. Passadore, A. M. Barbosa, B. Ferrari, P. Carayon, C. H. Castro, S. I. Shimuta, J. Luz, J. L. Bascands, J. P. Schanstra, P. C. Even, S. M. Oliveira, M. Bader, J. B. Pesquero // Diabetes. - 2008. - Vol. 57. - P. 1491-1500.

278. Mori T. Vasopressin increases intracellular NO concentration via Ca(2+) signaling in inner medullary collecting duct / T. Mori, J. G. Dickhout, A. W. Jr. Cowley // Hypertension. - 2002. - Vol. 39. - P. 465-469.

279. Morton J. S. In Utero Origins Of Hypertension: Mechanisms And Targets For Therapy / J. S. Morton, C. L. Cooke, and S. T. Davidge // Physiological reviews. -2016. - Vol. 96, № 2. - P. 549-603.

280. Mount D. B. Thick ascending limb of the loop of Henle / D. B. Mount // Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. - 2014. - Vol. 9. - P. 1974-1986.

281. Mount P. F. Nitric oxide in the kidney : functions and regulation of synthesis / P. F. Mount, D. A. Power // Acta physiologica. - 2006. - Vol. 187, № 4. - P. 433-446.

282. Mukai H. Bradykinin B2 receptor antagonist increases chloride and water absorption in rat medullary collecting duct / H. Mukai, W. R. Fitzgibbon, G. Bozeman, H. S. Margolius, D. W. Ploth // American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. - 1996. - Vol. 271. - P. R352-R360.

283. Mullershausen F. Direct activation of PDE5 by cGMP: long-term effects within NO/cGMP signaling / F.Mullershausen, A. Friebe, R. Feil, W. J. Thompson, F. Hofmann, D. Koesling // The Journal of cell biology. - 2003. - Vol. 160, № 5. - P. 719-727.

284. Nakamura N. Insulin stimulates SGLT2-mediated tubular glucose absorption via oxidative stress generation / N. Nakamura, T. Matsui, Y. Ishibashi, S. Yamagishi // Diabetology & metabolic syndrome. - 2015. - Vol. 7. - P. 48.

285. Nakano D. Renal medullary ETB receptors produce diuresis and natriuresis via NOS1 / D. Nakano, J. S. Pollock, D. M. Pollock // American journal of physiology. Renal physiology. - 2008. - Vol. 294. - P. F1205-F1211.

286. Nasrallah R. Chronic kidney disease: targeting prostaglandin E2 receptors / R. Nasrallah, R. Hassouneh, R. L. Hébert // American journal of physiology. Renal physiology. - 2014. - Vol. 307. - P. 243-250.

287. Nasrallah R. PGE2 EP1 receptor inhibits vasopressin-dependent water reabsorption and sodium transport in mouse collecting duct / R. Nasrallah, J. Zimpelmann, D. Eckert, J. Ghossein, S. Geddes, J. C. Beique, J. F. Thibodeau, C. R. J. Kennedy, K. D. Burns, R. L. Hébert // Laboratory investigation; a journal of technical methods and pathology. - 2018. - Vol. 98, № 3. - P. 360-370.

288. Natochin Y. V. Vasopressin receptor subtypes and renal sodium transport / Y. V. Natochin, D. V. Golosova // Vitamins and hormones. - 2020. - Vol. 113. - P. 239-258.

289. Nawata C. M. Mammalian urine concentration: a review of renal medullary architecture and membrane transporters / C. M. Nawata, T. L. Pannabecker // Journal of comparative physiology. B, Biochemical, systemic, and environmental physiology. -2018. - Vol. 188, № 6. - P. 899-918.

290. Nedvetsky P.I. Reciprocal regulation of aquaporin-2 abundance and degradation by protein kinase A and p38-MAP kinase / P.I. Nedvetsky, V. Tabor, G. Tamma, S. Beulshausen, P. Skroblin, A. Kirschner, K. Mutig, M. Boltzen, O. Petrucci, A. Vossenkgmper, B. Wiesner, S. Bachmann, W. Rosenthal, E. Klussmann // Journal of the American Society of Nephrology: JASN. - 2010. - Vol. 21. - P. 1645-1656.

291. Nejsum L. N. Bidirectional regulation of AQP2 trafficking and recycling: involvement of AQP2-S256 phosphorylation / L. N. Nejsum, M. Zelenina, A. Aperia, J. Frokiaer, S. Nielsen // American journal of physiology. Renal physiology. - 2005. - Vol. 288. - P. F930-F938.

292. Nielsen C. B. Enhanced renal production of cyclic GMP and reduced free water clearance during sodium nitroprusside infusion in healthy man / C. B. Nielsen, H. Eiskjaer, E. B. Pedersen // European journal of clinical investigation. - 1993. - Vol. 23, №6. - P. 375-381.

293. Nielsen S. The aquaporin family of water channels in kidney / S. Nielsen, P. Agre // Kidney international. - 1995. - Vol. 48. - P. 1057-1068.

294. Nielsen S. Aquaporins in the kidney: from molecules to medicine / S. Nielsen, J. Frekiaer, D. Marples, T. H. Kwon, P. Agre, M. A. Knepper // Physiological reviews. - 2002. - Vol. 82, № 1. - P. 205-244.

295. Noda Y. Regulation of aquaporin-2 trafficking and its binding protein complex / Y. Noda, S. Sasaki // Biochimica et biophysica acta. - 2006. - Vol. 1758. - P. 1117-1125.

296. Noda Y. Updates and Perspectives on Aquaporin-2 and Water Balance Disorders / Y. Noda, S. Sasaki // International journal of molecular sciences. - 2021. -Vol. 22. - P. 12950.

297. Normandin S. Claude Bernard and an introduction to the study of experimental medicine: "physical vitalism," dialectic, and epistemology / S. Normandin // Journal of the history of medicine and allied sciences. - 2007. - Vol. 62, № 4. - P. 495-528.

298. O'Connor P. M. Vasopressin-induced nitric oxide production in rat inner medullary collecting duct is dependent on V2 receptor activation of the phosphoinositide pathway / P. M. O'Connor, A. W. Jr. Cowley // American journal of physiology. Renal physiology. -2007. - Vol. 293. - P. F526-F532.

299. Olesen E. T. B. Is there a role for PGE2 in urinary concentration? / E. T. B. Olesen, R. A. Fenton // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2013. -Vol. 24.-P. 169-178.

300. Olivares-Hernández A. Dopamine Receptors and the Kidney: An Overview of Health- and Pharmacological-Targeted Implications / A. Olivares-Hernández, L. Figuero-Pérez, Cruz-J. J. Hernandez, R. González Sarmiento, R. Usategui-Martin, J. P. Miramontes-González // Biomolecules. - 2021. - Vol. 11, № 2. - P. 254.

301. Oliveira C. J. Nitric oxide and cGMP activate the Ras-MAP kinase pathway-stimulating protein tyrosine phosphorylation in rabbit aortic endothelial cells / C. J. Oliveira, F. Schindler, A. M. Ventura, M. S. Morais, R. J. Arai, V. Debbas, A. Stern, H. P. Monteiro // Free radical biology & medicine. - 2003. - Vol. 35. - P. 381-396.

302. Ortiz M. C. Renal response to L-arginine in diabetic rats. A possible link between nitric oxide system and aquaporin-2 / M. C. Ortiz, M. F. Albertoni Borghese, S.

E. Balonga, A. Lavagna, A. L. Filipuzzi, R. Elesgaray, M. A. Costa, M. P. Majowicz // PLoS One. - 2014. - Vol. 9. - P. e104923.

303. Ortiz P. A. Autocrine effects of nitric oxide on HCO3- transport by rat thick ascending limb / P. A. Ortiz, J. L. Garvin // Kidney international. - 2000. - Vol. 58. - P. 2069-2074.

304. Ortiz P. A. Role of nitric oxide in the regulation of nephron transport / P. A. Ortiz, J. L. Garvin // American journal of physiology. Renal physiology. - 2002. - Vol. 282. - P. 777-784.

305. Ortiz P. A. NO decreases thick ascending limb chloride absorption by reducing Na(+)-K(+)-2Cl(-) cotransporter activity / P. A. Ortiz, N. J. Hong, J. L. Garvin // American journal of physiology. Renal physiology. - 2001. - Vol. 281, № 5. - P. F819-F825.

306. Paliege A. Inhibition of nNOS expression in the macula densa by COX-2-derived prostaglandin E2 / A. Paliege, Mizel D., C. Medina, A. Pasumarthy, Y. G. Huang, S. Bachmann, J. P. Briggs, J. B. Schnermann, T. Yang // American journal of physiology. Renal physiology. - 2004. - Vol. 287. - P. F152-F159.

307. Pallone T. L. Countercurrent exchange in the renal medulla / T. L. Pallone, M. R. Turner, A. Edwards, R. L. Jamison // American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. - 2003. - Vol. 284. - P. R1153-R1175.

308. Palmer R. M. J. Nitric oxide release accounts for the biological activity of endothelium-derived relaxing factor / R. M. J. Palmer, A. G. Ferrige, S. Moncada // Nature. - 1987. - Vol. 327. - P. 524-526.

309. Palmer L. G. Integrated control of Na transport along the nephron / L. G. Palmer, J. Schnermann // Clinical Journal of the American Society of Nephrology : CJASN. - 2014. - Vol. 10, № 4. - P. 676-687.

310. Pandit J. Mechanism for the allosteric regulation of phosphodiesterase 2A deduced from the X-ray structure of a near full-length construct / J. Pandit, M. D. Forman, K. F. Fennell, K. S. Dillman, F. S. Menniti // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. - 2009. - Vol. 106, № 43. - P. 18225-18230.

311. Pannabecker T. L. Quantitative analysis of functional reconstructions reveals lateral and axial zonation in the renal inner medulla / T. L. Pannabecker, C. S. Henderson, W. H. Dantzler // American journal of physiology. Renal physiology. -2008. - Vol. 294. - P. F1306-F1314.

312. Park F. Arginine vasopressin-mediated stimulation of nitric oxide within the rat renal medulla / F. Park, A. P. Zou, A. W. Cowley // Hypertension. - 1998. - Vol. 32. -P. 896-901.

313. Pavlov T. S. Regulation of ENaC in mice lacking renal insulin receptors in the collecting duct / T. S. Pavlov, D. V. Ilatovskaya, V. Levchenko, L. Li, C. M. Ecelbarger, A. Staruschenko // FASEB journal : official publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology. - 2013. - Vol. 27. - P. 2723-2732.

314. Pearce D. Regulation of distal tubule sodium transport: mechanisms and roles in homeostasis and pathophysiology / D. Pearce, A. D. Manis, V. Nesterov, C. Korbmacher // Pflugers Archiv: European journal of physiology. - 2022. - Vol. 474, № 8. - P. 869-884.

315. Pearce D. Collecting duct principal cell transport processes and their regulation / D. Pearce, R. Soundararajan, C. Trimpert, O. B. Kashlan, P. M. T. Deen, D. E. Kohan // Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. - 2015. -Vol. 10. - P. 135-146.

316. Perez-Rojas J. M. Nitric oxide produced by endothelial nitric oxide synthase promotes diuresis. American Journal of Physiology / J. M. Perez-Rojas, K. M. Kassem, W. H. Beierwaltes, J. L. Garvin, M. Herrera // Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. - 2010. - Vol. 298. - P. R1050-R1055.

317. Perucca J. Sodium excretion in response to vasopressin and selective vasopressin receptor antagonists / J. Perucca, D. G. Bichet, P. Bardoux, N. Bouby, L. Bankir // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2008. - Vol. 19. - P. 1721-1731.

318. Pilz R. B. Regulation of gene expression by cyclic GMP / R. B. Pilz, D. E. Casteel // Circulation Research. - 2003. - Vol. 93. - P. 1034-1046.

319. Pinter G. G. An inner medullary concentrating process actuated by renal pelvic/calyceal muscle contractions: assessment and hypothesis / G. G. Pinter, J. L. Shohet // Nephron Physiology. - 2009. - Vol. 113, № 1. - P. 1-6.

320. Plato C. F. Endogenous nitric oxide inhibits chloride transport in the thick ascending limb / C. F. Plato, B. A. Stoos, D. Wang, J. L. Garvin // American journal of physiology. Renal physiology. - 1999. - Vol. 276. - P. 159-163.

321. Pollak M. R. The glomerulus: The sphere of influence / M. R. Pollak, S. E. Quaggin, M. P. Hoenig, L. D. Dworkin // Clinical journal of the American Society of Nephrology : CJASN. - 2014. - Vol. 9. - P. 1461-1469.

322. Poulsen S. B. Long-term vasopressin-V2-receptor stimulation induces regulation of aquaporin 4 protein in renal inner medulla and cortex of Brattleboro rats / S. B. Poulsen, Y. H. Kim, J. Freki^r, S. Nielsen, B. M. Christensen // Nephrology, dialysis, transplantation : official publication of the European Dialysis and Transplant Association - European Renal Association. - 2013. - Vol. 28, № 8. - P. 2058-2065.

323. Prager-Khoutorsky M. Osmosensation in vasopressin neurons: changing actin density to optimize function / M. Prager-Khoutorsky, C. W. Bourque // Trends in neurosciences. - 2010. - Vol. 33. - P. 76-83.

324. Prager-Khoutorsky M. Mechanical basis of osmosensory transduction in magnocellular neurosecretory neurones of the rat supraoptic nucleus / M. Prager-Khoutorsky, C. W. Bourque // Journal of Neuroendocrinology. - 2015. - Vol. 27. - P. 507-515.

325. Promeneur D. Vasopressin V(2)-receptordependent regulation of AQP2 expression in Brattleboro rats / D. Promeneur, T. H. Kwon, J. Frakiaer, M. A. Knepper, S. Nielsen // American journal of physiology. Renal physiology. - 2000. - Vol. 279. - P. F370-F382.

326. Raizada V. Intracardiac and Intrarenal Renin-Angiotensin Systems:Mechanisms of Cardiovascular and Renal Effects / V. Raizada, B. Skipper, W. Luo, J. Griffith // Journal of investigative medicine: the official publication of the American Federation for Clinical Research. - 2007. - Vol. 55. - P. 341-359.

327. Ranieri M. Vasopressin-aquaporin-2 pathway: recent advances in understanding water balance disorders / M. Ranieri, A. Di Mise, G. Tamma, G. Valenti //F1000Research. -2019. - Vol. 8. - P. F1000.

328. Ranieri M. Calcium sensing receptor exerts a negative regulatory action toward vasopressin-induced aquaporin-2 expression and trafficking in renal collecting duct / M. Ranieri, A. Di Mise, G. Tamma, G. Valenti // Vitamins and hormones. - 2020. -Vol. 112. - P. 289-310.

329. Reis W. L. Central nitrergic system regulation of neuroendocrine secretion, fluid intake and blood pressure induced by angiotensin-II / W. L. Reis, W. A. Saad, L. A. Camargo, L. L. Elias, J. Antunes- Rodrigues // Behavioral and brain functions: BBF. -2010.-Vol. 6.-P. 64.

330. Ren Y. L. Role of macula densa nitric oxide and cGMP in the regulation of tubuloglomerular feedback / Y. L. Ren, J. L. Garvin, O. A. Carretero // Kidney international. - 2010. - Vol. 58. - P. 2053-2060.

331. Rhoades R. A. Medical Physiology-Principles for Clinical Medicine / R. A. Rhoades, D. R. Bell. - Philadelphia : Lippincott Willams & Wilkins, 2009. - 3 ed. - 816 p.

332. Rhodes C. H. Immunohistochemical analysis of magnocellular elements in rat hypothalamus: distribution and numbers of cells containing neurophysin, oxytocin, and vasopressin / C. H. Rhodes, J. I. Morrell, D. W. Pfaff // The Journal of comparative neurology. - 1981. - Vol. 198, № 1. - P. 45-64.

333. Rieg T. Adenylate cyclase 6 determines cAMP formation and aquaporin-2 phosphorylation and trafficking in inner medulla / T. Rieg, T. Tang, F. Murray, J. Schroth, P. A. Insel, R. A. Fenton, H. K. Hammond, V. Vallon // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2010. - Vol. 21. - P. 2059-2068.

334. Rinschen M. M. Quantitative phosphoproteomic analysis reveals vasopressin V2-receptor-dependent signaling pathways in renal collecting duct cells / M. M. Rinschen, M. J. Yu, G. Wang , E. S. Boja, J. D. Hoffert, T. Pisitkun, M. A. Knepper // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. -2010. - Vol. 107, № 8. - P. 3882-3887.

335. Rocha E. Bradykinin, a hypotensive and smooth muscle stimulating factor released from plasma globulin by snake venoms and by trypsin / E. Rocha, M. Silva, W. T. Beraldo, G. Rosenfeld // The American journal of physiology. - 1949. - Vol. 156. -P. 261-273.

336. Roczniak A. Effect of dietary salt on neuronal nitric oxide synthase in the inner medullary collecting duct / A. Roczniak, J. Zimpelmann, K. D. Burns // American journal of physiology. Renal physiology. - 1998. - Vol. 275. - P. 46-54.

337. Rogers R. T. Lack of urea transporters, UT-A1 and UT-A3, increases nitric oxide accumulation to dampen medullary sodium reabsorption through ENaC / R. T. Rogers, M. A. Sun, Q. Yue, H. F. Bao, J. M. Sands, M. A. Blount, D. C. Eaton // American journal of physiology. Renal physiology. - 2019. - Vol. 316, № 3. - P. F539-F549.

338. Rojek A. A current view of the mammalian aquaglyceroporins / A. Rojek, J. Praetorius, J. Frekiaer, S. Nielsen, R. A. Fenton // Annual review of physiology. - 2008. -Vol. 70. - P. 301-327.

339. Ruan J., Xie Qw., Hutchinson N., Cho H., Wolfe G. C., Nathan C. Inducible nitric oxide synthase requires both the canonical calmodulin-binding domain and additional sequences in order to bind calmodulin and produce nitric oxide in the absence of free Ca2+ / J. Ruan, Qw. Xie, N. Hutchinson, H. Cho, G. C. Wolfe, C. Nathan // The Journal of biological chemistry. - 1996. - Vol. 271, № 37. - P. 22679-22686.

340. Ruginsk S. G. Gaseous modulators in the control of the hypothalamic neurohypophyseal system / S. G. Ruginsk, A. S. Mecawi, M. P. da Silva, W. L. Reis, R. Coletti, J. B. de Lima, L. L. Elias, J. Antunes-Rodrigues // Physiology. - 2015. - Vol. 30, №2. - P. 127-138.

341. Rugheimer L. Hormonal regulation of renomedullary hyaluronan / L. Rugheimer, C. Johnsson, C. Maric, P. Hansell // Acta physiologica. - 2008. - Vol. 193. -P. 191-198.

342. Rugheimer L. Hyaluronan synthases and hyaluronidases in the kidney during changes in hydration status / L. Rugheimer, J. Olerud, C. Johnsson, T. Takahashi, K.

Shimizu, P. Hansell // Matrix biology : journal of the International Society for Matrix Biology. - 2009. - Vol. 28. - P. 390-395.

343. Rybalkin S. D. Cyclic GMP phosphodiesterases and regulation of smooth muscle function / S. D. Rybalkin, C. Yan, K. E. Bornfeldt, J. A. Beavo // Circulation Research. - 2003. - Vol. 93, № 4. - P. 280-291.

344. Saboori A. M. Polymorphism in the Mr 32,000 Rh protein purified from Rh(D)-positive and -negative erythrocytes / A. M. Saboori, B. L. Smith, P. Agre // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. -1988. - Vol. 85. - P. 4042-4045.

345. Sanches T. R. Sildenafil reduces polyuria in rats with lithium-induced NDI / T. R. Sanches, R. A. Volpini, M. H. Massola Shimizu, A. C. Braganfa, F. Oshiro-Monreal, A. C. Seguro, L. Andrade // American journal of physiology. Renal physiology. - 2012. - Vol. 302. - P. F216-F225.

346. Sauter D. Long-term effects of vasopressin on the subcellular localization of ENaC in the renal collecting system / D. Sauter, S. Fernandes, N. Goncalves-Mendes, S. Boulkroun, L. Bankir, J. Loffing, N. Bouby // Kidney international. - 2006. - Vol. 69. -P. 1024-1032.

347. Schatz K. C. Investigation of social, affective, and locomotor behavior of adolescent Brattleboro rats reveals a link between vasopressin's actions on arousal and social behavior / K. C. Schatz, R. F. Kyne, S. L. Parmeter, M. J. Paul // Hormones and behavior. -2018. - Vol. 106. - P. 1-9.

348. Schen T. Expression of adenylyl cyclase mRNAs in the adult, in developing, and in the Brattleboro rat kidney / T. Schen, Y. Suzuki, M. Poyard, N. Miyamoto, N. Defer, J. Hanoune // The American journal of physiology. - 1997. - Vol. 273. - P. C323-C330.

349. Schinner E. The cyclic GMP-dependent protein kinase I[alpha] suppresses kidney fibrosis / E. Schinner, A. Schramm, F. Kees, F. Hofmann, J. Schlossmann // Kidney international. -2013. - Vol. 84. - P. 1198-1206.

350. Schmale H. Single base deletion in the vasopressin gene is thecause of diabetes insipidus in Brattleboro rats / H. Schmale, D. Richter // Nature. - 1984.- Vol. 308. - P. 705-709.

351. Schrier R. W. Vasopressin and aquaporin 2 in clinical disorders of water homeostasis / R. W. Schrier // Seminars in nephrology. - 2008. - Vol. 28. - P. 289-296.

352. Seifter J. L. Extracellular acid-Base balance and ion transport between body fluid compartments / J. L. Seifter, H. Y. Chang // Physiology. - 2017. - Vol. 32. - P. 367-379.

353. Seifter J. L. Body fluid compartments, cell membrane ion transport, electrolyte concentrations, and acid-base balance / J. L. Seifter // Seminars in nephrology. - 2019. - Vol. 39. - P. 368-379.

354. Selman G. A hyaluronan synthesis inhibitor delays the progression of diabetic kidney disease in a mouse experimental model / G. Selman, L. Martinez, A. Lightle, A. Aguilar, D. Woltmann, Y. Xiao, R. I. Vazquez-Padron, L. H. Salman // Kidney 360. -2021. - Vol. 2, №5. - P. 809-818.

355. Shen K. The role of cGMP and its signaling pathways in kidney disease / K. Shen, D. W. Johnson, G. C. Gobe // American journal of physiology. Renal physiology. - 2016. - Vol. 311. - P. F671-F681.

356. Shestopalova L. V. Involvement of interstitial structures of the kidney into hydrosmotic effect of vasopressin (morphofunctional study) / L. V. Shestopalova, V. A. Lavrinenko, V. A. Shkurupiy, L. N. Ivanova // Bulletin of experimental biology and medicine. - 2008. - Vol. 146, № 6. - P. 682-686.

357. Shin S. J. Increased nitric oxide synthase mRNA expression in the renal medulla of water-deprived rats / S. J. Shin, F. J. Lai, J. D. Wen, S. R. Lin, M. C. Hsieh, P. J. Hsiao, J. H. Tsai // Kidney international. - 1999. - Vol. 56. - P. 2191-2202.

358. Shirai A. Angiotensin II dose-dependently stimulates human renal proximal tubule transport by the nitric oxide/guanosine 3',5'-cyclic monophosphate pathway / A. Shirai, O. Yamazaki, S. Horita, M. Nakamura, N. Satoh, H. Yamada, M. Suzuki, A. Kudo, H. Kawakami, F. Hofmann, A. Nishiyama, H. Kume, Y. Enomoto, Y. Homma, G.

Seki // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 2014. - Vol. 25, № 7. -P. 1523-1532.

359. Shirazi M. K. The role of nitric oxide signaling in renoprotective effects of hydrogen sulfide against chronic kidney disease in rats: Involvement of oxidative stress, autophagy and apoptosis / M. K. Shirazi, A. Azarnezhad, M. F. Abazari, M. Poorebrahim, P. Ghoraeian, N. Sanadgol, H. Bokharaie, S. Heydari, A. Abbasi, S. Kabiri, M. N. Aleagha, S. E. Enderami, A. S. Dashtaki, H. Askari // Journal of cellular physiology. -2019. - Vol. 234, №. 7. - P. 11411-11423.

360. Shonesy B. C. Cyclic AMP-dependent protein kinase and D1 dopamine receptors regulate diacylglycerol lipase- and synaptic 2-arachidonoyl glycerol signaling / B. C. Shonesy, J. R. Stepheson, C. R. Marks, R. J. Colbran // Journal of neurochemistry. - 2020. - Vol. 153. - P. 334-345.

361. Silva M. P. Hypertonicity increases NO production to modulate the firing rate of magnocellular neurons of the supraoptic nucleus of rats / M. P. Silva, R. R. Ventura, W. A. Varanda // Neuroscience. - 2013. - Vol. 250. - P. 70-79.

362. Snetkov P. Hyaluronic Acid: The Influence of Molecular Weight on Structural, Physical, Physico-Chemical, and Degradable Properties of Biopolymer / P. Snetkov, K. Zakharova, S. Morozkina, R. Olekhnovich, M. Uspenskaya // Polymers. -2020. - Vol. 12, № 8. - P. 1800.

363. Srivastava T. Fluid flow shear stress upregulates prostanoid receptor EP2 but not EP4 in murine podocytes / T. Srivastava, E. T. McCarthy, R. Sharma, A. Kats, C. G. Carlton, U. S. Alon, P. A. Cudmore, A. El-Meanawy, M. Sharma // Prostaglandins & other lipid mediators. - 2013. - Vol. 104. - P. 49-57.

364. Stegbauer J. Phosphodiesterase 5 attenuates the vasodilatory response in renovascular hypertension / J. Stegbauer, S. Friedrich, S. A. Potthoff, K. Broekmans, M. M. Cortese-Krott, I. Quack // PLoS One. - 2013. - Vol. 8, № 11. - P. e80674.

365. Stephenson J. L. Concentration of urine in a central core model of the renal counterflow system / J. L. Stephenson // Kidney international. - 1972. - Vol. 2. - P. 8594.

366. Stern J. E. NO inhibits supraoptic oxytocin and vasopressin neurons via activation of GABAergic synaptic inputs / J. E. Stern, M. Ludwig // American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. - 2001. - Vol. 280. -P. R1815-R1822.

367. Stern R. Devising a pathway for hyaluronan catabolism: are we there yet? / R. Stern //Glycobiology. -2003. - Vol. 13. - P. 105R-115R.

368. Stern R. Hyaluronan catabolism: a new metabolic pathway / R. Stern // European journal of cell biology. - 2004. - Vol. 83. - P. 317-325.

369. Stoos B. A. Nitric oxide inhibits sodium reabsorption in the isolated perfused cortical collecting duct / B. A. Stoos, N. H. Garcia, J. L. Garvin // Journal of the American Society of Nephrology : JASN. - 1995. - Vol. 6. - P. 89-94.

370. Stridh S. Renal interstitial hyaluronan: functional aspects during normal and pathological conditions / S. Stridh, F. Palm, P. Hansell // American journal of physiology. Regulatory, integrative and comparative physiology. - 2012. - Vol. 302. -P. R1235-R1245.

371. Stridh S. Inhibition of hyaluronan synthesis in rats reduces renal ability to excrete fluid and electrolytes during acute hydration / S. Stridh, F. Palm, P. Hansell // Upsala journal of medical sciences. -2013. - Vol. 118, № 4. - P. 217-221.

372. Stridh S. Hyaluronan Production by Renomedullary Interstitial Cells: Influence of Endothelin, Angiotensin II and Vasopressin / S. Stridh, F. Palm, T. Takahashi, M. Ikegami-Kawai, M. Friederich-Persson, P. Hansell // International journal of molecular sciences. - 2017. - Vol. 18. - P. 2701.

373. Sudoh T. A new natriuretic peptide in porcine brain / T. Sudoh, K. Kangawa, N. Minamino, H. Matsuo // Nature. - 1988. - Vol. 332. - P. 78-81.

374. Sugimoto Y. Distinct cellular localization of mRNAs for three subtypes of prostaglandin E receptor in kidney / Y. Sugimoto, T. Namba, R. Shigemoto, M. Negishi, A. Ichikawa, S. Narumiya // American journal of physiology. Renal physiology. - 1994. -Vol. 266. - P. F823-F828.

375. Sun D. Dopamine inhibits AVP-dependent Na+ transport and water permeability in rat CCD via a D4-like receptor / D. Sun, J. A. Schafer // American journal of physiology. Renal physiology. - 1996. - Vol. 271. - P. F391-F400.

376. Svensen C. H. Fluid Therapy for the Surgical Patient / C. H. Svensen, D. S. Prough, L. Feldman, T. J. Gan. - Boca Raton, Florida : CRC Press, 2018.-1 ed. - 304 p.

377. Tain Y. L. Maternal citrulline supplementation prevents prenatal NG-nitro-l-arginine-methyl ester (L-NAME)-induced programmed hypertension in rats / Y. L. Tain, L. T. Huang, C. T. Lee, J. Y. Chan, C. N. Hsu // Biology of reproduction. - 2015. - Vol. 92. - P. 7.