Реакция антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков на воздействие повреждающих факторов среды тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.16, кандидат биологических наук Довженко, Надежда Владимировна

• Довженко, Надежда Владимировна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Довженко, Надежда Владимировна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Краткая характеристика современной экологической ситуации в Мировом океане.

1.2. Загрязнение внутренних морей стран ЕС и России.

1.3. Экологическая характеристика залива Петра Великого.

1.4. Биологический мониторинг.

1.5. Окислительный стресс.

ГЛАВА 2. РАЙОН РАБОТ. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 2.1 Район работ.

2.2. Общая биологическая характеристика объектов исследования.

2.3. Общие условия проведения экспериментов.

2.4. Биохимические методики.

2.4.1. Определение белка.

2.4.2. Определение глутатиона.

2.4.3. Определение продуктов перекисного окисления липидов (ПОЛ).

2.4.4. Количественное определение каротиноидов.

2.4.5. Определение индекса интегральной антирадикальной активности (ИАА).

2.4.6. Определение активности АО ферментов.

2.4.7. Определение металлов.

ГЛАВА 3. ХАРАКТЕРИСТИКА АНТИОКСИДАНТНОЙ СИСТЕМЫ

МОРСКИХ ДВУСТВОРЧАТЫХ МОЛЛЮСКОВ.

3.1. Сравнительная характеристика низкомолекулярного звена антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков.

3.1.1. Глутатион.

3.1.2. Каротиноиды.

3.2. Сравнительная характеристика интегральной антирадикалыюй активности (И А А) двустворчатых моллюсков.

ГЛАВА 4. ОКИСЛИТЕЛЬНЫЙ СТРЕСС В ТКАНЯХ РАЗЛИЧНЫХ ДВУСТВОРЧАТЫХ МОЛЛЮСКОВ.

4.1. Реакция антиоксидантной защитной системы двустворчатых моллюсков на влияние абиотических факторов.

4.2. Реакция антиоксидантной системы на кадмий-индуцированный окислительный стресс.

4.3. Реакция антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков на аккумуляцию тяжелых металлов в условиях аноксии.

ГЛАВА 5. РЕАКЦИЯ АНТИОКСИДАНТНОЙ СИСТЕМЫ ДВУСТВОРЧАТЫХ МОЛЛЮСКОВ НА ЗАГРЯЗНЕНИЕ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ.

5.1. Сравнительная характеристика антиоксидантной системы С. grayanus из различных акваторий зал. Петра Великого.

5.2. Реакция антиоксидантной системы С. grayanus на хроническое загрязнение б. Десантная (Активный мониторинг).

ГЛАВА 6. БИОМОНИТОРИНГ АКВАТОРИЙ ЗАЛИВА

ПЕТРА ВЕЛИКОГО.

6.1. Crenomytilus grayanus.

6.2. Anadara broughtonii.

6.3. Crassosrea gigas.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Реакция антиоксидантной системы двустворчатых моллюсков на воздействие повреждающих факторов среды»

Начиная со второй половины XX века, прибрежные акватории постоянно подвергаются влиянию разносторонней деятельности человека, которая нередко приводит к различным негативным последствиям. В настоящее время масштабы загрязнения морских экосистем все сильнее опережают возможности научно-обоснованных оценок и прогнозирования последствий антропогенного воздействия. Гидробиологические индикаторы не позволяют оперативно оценить экотоксикологическую ситуацию в акваториях и нередко информация, собранная с их помощью, может быть проанализирована тогда, когда результаты воздействия проявятся на экосистемном уровне и приобретут необратимый характер. Поэтому, в последние годы в экологических исследованиях с возрастающей интенсивностью разрабатываются новые экспресс-методы, основанные на анализе тонких биохимических изменений, происходящих в организме на ранних стадиях воздействия неблагоприятных факторов среды.

Применительно к биологическому мониторингу, биохимические показатели (маркеры) могут служить для оценки раннего проявления повреждающего действия негативных факторов среды и, по своей сути, являются сигналами возникновения угрозы развития патологических процессов, т.е. носят предупредительный характер. Более того, такие маркеры приобретают особое значение при оценке совместного влияния различных видов антропогенного стресса и варьирующих факторов биотического и абиотического характера, а также при прогнозировании отдаленных последствий воздействия поллютантов на морские экосистемы. Для двустворчатых моллюсков, как и для большого числа водных беспозвоночных, характерны периодические перестройки метаболизма, индуцируемые флуктуирующими абиотическими факторами среды (температура, соленость, доступность кислорода, химическое загрязнение). В результате сдвигов в функционировании биохимических регуляторных систем, сопровождающиеся, как правило, либо активацией процессов генерирования оксирадикалов, либо снижением уровня компонентов с антиоксидантной активностью, возрастает опасность развития окислительного стресса. Не исключена вероятность, что выживать в таких условиях обитания гидробионтам способствует хорошо развитая антиоксидантная система. Поэтому, нагрузки, которые периодически испытывает антиоксидантная система под влиянием экстремальных факторов, в условиях хронического воздействия металлов могут оказаться чрезмерными и привести к вспышке свободнорадикального окисления со всеми соответствующими деструктивными последствиями.

В хронологическом отношении накопление пероксидов и дезорганизация в составе основных компонентов АО системы может быть наиболее ранним этапом развития всей совокупности событий, приводящих организм к окислительному стрессу с последующим летальным исходом. Расшифровка биохимических механизмов, лежащих в основе патологических сдвигов, повышает обоснованность и надежность прогнозирования экологических последствий загрязнения гидросферы и грамотного использования биологических ресурсов океана. Тем не менее, имеющиеся в литературе сведения пока не позволяют судить об универсальности и распространенности показателей окислительного стресса в биомониторииге загрязнения морской среды.

Цель и задачи работы. Выявить степень участия антиоксидантной системы в защитной реакции морских организмов, испытывающих воздействие комплексного загрязнения водной среды, исходя из представлений о ведущей роли окислительного стресса в развитии различных патологических изменений.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи: 1. Разработать метод для оценки общего антиоксидантного потенциала биологической системы; ч

2. Провести сравнительный анализ содержания отдельных компонентов антиоксидантной системы в тканях массовых видов двустворчатых моллюсков;

3. В экспериментальных условиях оценить степень воздействия аноксии -реоксигенации и аккумуляции тяжелых металлов на биохимические показатели окислительного стресса и охарактеризовать роль антиоксидантной системы у двустворчатых моллюсков в экстремальных условиях;

4. На основе экспериментов по пересадке моллюсков из относительно чистых районов в загрязненную акваторию проследить динамику развития процессов окислительного стресса и оценить степень чувствительности антиоксидантной системы к комплексу тяжелых металлов, присутствующих в воде и донных отложениях;

5. Выявить взаимосвязь изменения уровня индивидуальных компонентов и антиоксидантной системы в целом с количеством продуктов ПОЛ в тканях моллюсков, обитающих в акваториях зал. Петра Великого с различной степенью загрязнения.

Решение этих задач способствуют применению показателей окислительного стресса в качестве адекватных биомаркеров в оценке загрязнения прибрежных морских акваторий.

Научная новизна.

Впервые дана комплексная характеристика антиоксидантной системы массовых видов дальневосточных двустворчатых моллюсков.

Выявлена высокая чувствительность отдельных антиоксидантов к воздействию неблагоприятных факторов среды, в частности к тяжелым металлам и аноксии.

Заложены теоретические и практические основы применения биохимических маркеров окислительного стресса в диагностическом и прогностическом мониторинге морской среды.

Практическое значение работы.

Использование результатов при выборе научно-обоснованных критериев рационального природопользования и оценки допустимой нагрузки для морских прибрежных экосистем. Защищаемые положения.

1. В основе механизмов действия экстремальных факторов среды лежит окислительный стресс, что выражается в накоплении продуктов перекиспой деструкции липидов и снижением антиоксидантного потенциала организма;

2. Для оценки воздействия неблагоприятных факторов среды на гидробионтов предлагается универсальный биохимический индикатор состояния антиоксидантной системы (ИАА), отражающий предрасположенность организма к окислительному стрессу. Апробаиия работы.

Результаты и основные положения диссертации были представлены и обсуждены на Международных конференциях: «Прибрежное рыболовство -XXI век, 2001» (Южно-Сахалинск, 2001), «Современные проблемы океанологии шельфовых морей России» (Ростов-на-Дону, 2002), Ocean 2003. Marine Technology and Ocean Science Conference (2003), PRIMO 12 (Florida, 2003), «Биотехнология - охране окружающей среды» (Москва, 2004), «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2004), Sixth ЮС/ WESTPAC International Scientific Symposium Challenges for Marine Science in the Western Pacific (Hangzhou, China, 2004), «Mollusks of the Notheastern Asia and Nothern Pacific: Biodiversity, Ecology, Biogeography and Faunal History» (Vladivostok, 2004), «Current problems of aquatic toxicology» (Borok, Russia, 2005), «Экологические проблемы использования прибрежных морских акваторий» (Владивосток, 2006), «Проблемы устойчивого функционирования водных и наземных экосистем» (Ростов-на-Дону, 2006); Международный симпозиум Экология 2006» (Солнечный Берег, Болгария, 2006), Всероссийской конференции с участием специалистов из стран ближнего и дальнего зарубежья «Современные проблемы водной токсикологии» (Борок, 2002); 5-й региональной конференции «Актуальные проблемы экологии, морской биологии и биотехнологии» (Владивосток, 2002), VII Дальневосточной молодежной школе конференции по актуальным проблемам химии и биологии МЭС ТИБОХ (Владивосток, 2003); Региональной школе-семинаре молодых ученых, аспирантов и студентов «Анализ современного состояния и перспективы развития регионов Дальнего Востока», (Биробиджан, 2003); Конференции молодых ученых Тихоокеанского океанологического института им. В.И. Ильичева ДВО РАН. (Владивосток, 2001).

Публикации По теме диссертации опубликовано 18 работ.

Заключение диссертации по теме «Экология», Довженко, Надежда Владимировна

169 ВЫВОДЫ

1. Предложен и апробирован в экспериментальных и полевых условиях новый метод количественного определения защитного аптиоксидантного потенциала биологической системы (на примере морских двустворчатых моллюсков).

2. Выявлены видовые и тканевые особенности в содержании отдельных антиоксидантов и уровне интегральной антирадикальпой активности у ряда дальневосточных видов морских двустворчатых моллюсков. Наиболее высокий уровень активности антиоксидантной системы и отдельных ее компонентов отмечен для эврибионтного моллюска М. kurilensis и зарывающегося в грунт G. yessoensis.

3. Установлено, что в основе механизмов повреждающего действия аноксии и аккумуляции тяжелых металлов (па примере Cd и Си) в тканях М. kurilensis и А. broughtonii лежит окислительный стресс, который сопровождается образованием продуктов окислительной деструкции липидов и резким снижением уровня интегральной аптирадикальной активности.

4. В экспериментах по пересадке животных из чистых районов в загрязненную акваторию показана высокая чувствительность антиоксидантной системы моллюсков к комплексу загрязняющих веществ, присутствующих в воде и донных отложениях. Отмечена динамика изменений биохимических показателей окислительного стресса и тканевые особенности в реакции отдельных компонентов антиоксидантной системы па загрязнение.

5. Выявлена взаимосвязь между уровнем интегральной аптирадикальной активности и количеством продуктов перекисного окисления, а также содержанием отдельных антиоксидантов (глутатиона) в тканях двустворчатых моллюсков, собранных из мест с различной степенью антропогенной нагрузки.

6. Показана перспективность применения предлагаемого показателя интегральной антирадикальной активности (индекса ИАА) в качестве важнейшего индикатора степени развития окислительного стресса у гидробионтов и его использования в программах мониторинга морской среды наряду с изменениями уровня отдельных компонентов антиоксидантной системы.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Довженко, Надежда Владимировна, 2006 год

1. Аникиев В.В., Перепелица С.А., Шумилин Е.Н. Оценка влияния антропогенных и природных источников на пространственное распределение тяжелых металлов в донных осадках залива Петра Великого, Японское море // Геохимия. 1993. № 9. С. 1328-1340.

2. Арзамасцев И.С., Яковлев Ю.М., Евсеев Г.А., Гульбин В.В., Клочкова Н.Г., Селин Н.И., Ростов И.Д., Юрасов Г.И., Жук А.П., Буяновский А.И. Атлас промысловых беспозвоночных и водорослей Дальнего Востока России. Владивосток: Изд-во «Аванте». 2001. 192 е.;

3. Атлас двустворчатых моллюсков дальневосточных морей России // Сост. С.В. Явнов; Науч. ред. С.Е. Поздняков // Атласы промысловых и перспективных для промысла гидробионтов дальневосточных морей России. Владивосток: Дюма. 2000. 168 с.

4. Болдырев А.А. Окислительный стресс и мозг // Соросовский Образ. Журн. 2001. Т. 7. №4. С. 21-28.

5. Бурдин К.С. Основы биологического мониторинга. М.: Изд-во Моск. Ун-та, 1985. 158 с.

6. Ващенко М.А. Загрязнение залива Петра Великого Японского моря и его биологические последствия // Биология моря. 2000. Т. 26. № 3. С. 149— 159.

7. Ващенко М.А., Жадан П.М. Нарушение развития потомства морского ежа как показатель загрязнения среды // Экология. 2003. № 6. С. 459-465.

8. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах // М.: Наука. 1972. 242 с.

9. Вернадский В.И. Химическое строение биосферы Земли и ее окружения. М.: Наука, 1965. 374 с.

10. Долговременная программа охраны природы и рационального использования природных ресурсов Приморского края до 2005 г. Экологическая программа. Часть 2, Владивосток: Дальнаука. 1992. 276 с.

11. Израэль Ю.А. Экология и контроль состояния природной среды. JL: Гидрометеоиздат. 1979. 375 с.

12. Израэль Ю.А., Цыбань А.В. Экология и проблемы комплексного глобального мониторинга // Комплексный глобальный мониторинг Мирового океана: Тр. I Междунар. Симпоз. Таллин, 1983 г. JL: Гидрометеоиздат. 1985. Т. 1. С. 19-48.

13. Итоги науки и техники. Биофизика. Под ред. Владимирова Ю.А., Анизова О.А., Деева А.И. ВИНИТИ. 1986 М.: 91. Т.29.

14. Кавун В.Я., Шулькин В.М. Изменение микроэлементарного состава органов итканей двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus при акклиматизации в биотопе, хронически загрязненном тяжелыми металлами // Биол. моря. 2005. Т. 31, № 2. С. 123-128.

15. Карнаухов В.Н. О роли каратиноидов в формировании липофусцина и адаптации клеток животных к недостатку кислорода // Цитология. 1973в. Т. 15. №5. с. 538-542.

16. Карнаухов В.Н. Роль моллюсков с высоким содержанием каротиноидов в охране окружающей среды от загрязнения. Пущино, 1978. 73 с.

17. Карнаухов В.Н. Биологические функции каратиноидов. М.: Наука, 1988. 296 с.

18. Крепе Е.М., Тюрин В.А., Горбунов Н.В. и др. Активация перекисного окисления липидов при миграционном стрессе у горбуши: возможный механизм адаптации // Докл. АН СССР, 1986. Т. 286, № 4. С. 1009-1012.

19. Лукьянова О.Н. Молекулярные биомаркеры. Владивосток: Изд-во ДВГАЭУ, 2001. 196 с.

20. Лукьянова О.Н., Шмидт Т.Я. Каротиноиды морских беспозвоночных при действии загрязнения // Биол. моря. 1993. № 2. С. 92-101.

21. Лутаенко К.А. Фауна двустворчатых моллюсков Амурского залива (Японское море) и прилегающих районов // Бюллетень Дальневосточного малакологического общества. Владивосток. Дальнаука. 2002. Вып. 6. С. 5-61.

22. Магомедов С.К., Ченышов В.И. О роли антиокислителей при перестройке осморегуляторных механизмов рыб // Биоантиокислители. Труды МОИП, М.: Наука, 1975. Т. LII. С. 79-81.

23. Мишин В.М., Ляхович В.В. Множественные формы цитохрома Р-450. Новосибирск. Наука. 1985. С. 182.

24. Никаноров A.M., Жулидов А.В., Покаржевский А.Д. Биомониторинг тяжелых металлов в пресных экосистемах // Л.: Гидрометеоиздат, 1985. 144 с.

25. Огородникова А.А. Эколого-экономическая оценка воздействия береговых источников загрязнения на природную среду и биоресурсы залива Петра Великого. Владивосток: ТИНРО-Центр. 2001. 193 с.

26. Одум Ю. Экология. Т. 1. М.: Мир, 1986. 328 с.

27. Олейник Е.В., Мощенко А.В., Лишавская Т.С. Влияние загрязнения донных отложений на видовой состав и обилие двустворчатых моллюсков в заливе Петра Великого Японского моря // Биол. моря. 2004. Т. 30, № 1. С. 39-45.

28. Патин С.А. Загрязнение Мирового океана и его биопродуктивность // Биологические ресурсы гидросферы и их использование. Биологические ресурсы Мирового океана. М.: Наука, 1979. С. 208-230.

29. Скулачев В.П. Кислород в живой клетке: Добро и зло // Соросовский Образ.

30. Журн. 1996. №3. С. 2-10. Супрунович А.В., Макаров Ю.Н. Культивируемые беспозвоночные: мидии, устрица, гребешки, раки, креветки. Киев: Изд-во Наукова Думка, 1990. 196 с.

31. Тинсли И. Поведение химических загрязнителей в окружающей среде. М.: Мир, 1982. 280 с.

32. Фридович И. Свободнорадикальные механизмы повреждения липидов и их значение для клеточных мембран // Свободные радикалы в биологии (Ред. У. Прайор), М.: Мир, 1979. С. 272-314.

33. Хочачка П., Сомеро Д. Стратегия биохимической адаптации (Ред. Крепе Е.М.), М.: Мир, 1977.398 с.

34. Христофорова Н.К. Биоиндикация и мониторинг загрязнения морских вод тяжелыми металлами. JL: Наука, 1989. 192 с.

35. Христофорова Н.К., Шулькин В.М., Кавун В.Я., Чернова Е.Н. Тяжелые металлы в промысловых и культивируемых моллюсках залива Петра Великого. Владивосток: Дальнаука, 1993. 296 с.

36. Цыбань А.В. Научное обоснование программы комплексного экологического мониторинга океана (программа МОНОК) // Продуктивность и охрана морских и пресных вод: Труды Всесоюз. гидробиол. об-ва. Из-во «Наука». 1989. Т. 29. С. 79-94.

37. Челомин В.П. Экотоксилогические аспекты биоаккумуляции кадмия (на примере двустворчатых моллюсков): Автореферат доктор, дисс. Владивосток, 1998. 23 с.

38. Челомин В.П., Бельчева Н.Н., Захарцев М.В. Биохимические механизмы адаптации мидии Mytilus trossulus к ионам кадмия и меди // Биол. моря, 1998. Т. 24, № 5. С.319-325.

39. Шулькин В. М. Оценка загрязнения металлами реки Туманной и прилегающих морских вод // Экологическое состояние и биота юго-западной части залива Петра Великого и устья реки Туманной. Владивосток. Дальнаука. 2000.Т. 1., с.76-85.

40. Шулькин В. М. Металлы в экосистемах морских мелководий // Владивосток. Дальнаука. 2004. 279 с.

41. Шулькин В.М., Кавун В.Я., Ткалин А.В., Пресли Б.Дж. Влияние концентрации металлов в донных отложениях на их накоплениемитилидами Crenomytilus grayanus и Modiolus kurilensis II Биология Моря. 2002. Т. 28, № 1. С. 53-60

42. Aksnes A., Njaa L.R. Catalase, glutathione peroxidase and superoxide dismutase in different fish species // Сотр. Biochem. Physiol. 1981. Vol. 69b. P. 893-896.

43. АН M.M., Shukla G.S., Srivastava R.S., Mathur N., Chandra S.V. Effects of vitamin E on cadmium-induced locomotor dysfunctions in rats // Vet. Hum. Toxicol. 1993. Vol. 35. P. 109-111.

44. Amiard-Triquet C., Berthet В., Metayer C., Amiard J.C. Contribution to the ecotoxicological study of cadmium, copper and zinc in the mussel Mytilus edulis II. Experimental study //Mar. Biol. 1986. Vol. 92. P. 7-13.

45. Araujo G.M.N., Silva C.B., Hasson-Voloch A. Comparison of the inhibitory effects of mercury and cadmium on the creatine kinase from Electrophorus electricus II Int. J. Biochem. Cell Biol. 1996. Vol. 28. № 4. P. 491-497.

46. Bannister W.H., Wood E.J. // Сотр. Biochem. Physiol. 1971. Vol. 40. P. 7-18.

47. Barclay L.R.C. The cooperative antioxidant role of glutathione with a lipid-soluble and water-soluble antioxidant during peroxidation of liposomes initiated in the aqueous phase and in the lipid phase// J. Biol. Chem. 1988. Vol.263. N31. P.16138-16142.

48. Bay S.M., Greenstein D.J., Szalay P., Brown D.A. Exposure of scorpionfish (Scorpaena guttata) to cadmium: biochemical effects of chronic exposure // Aquatic Toxicol. 1990. Vol. 16. P. 311 -320.

49. Beloqui О., Cederbaum A. Preventation of microsomal production of hydroxyl radicals, but not lipid peroxidation, by the glutathione-glutathione peroxidase system//Вiochem. Pharmacol. 1986. Vol.35. N16. P.2663-2669.

50. Besten P.J., Bosma P.T., Herwig H.J., Zandee D.J., Voogt P.A. Effects of cadmium on metal composition and adenylate energy charge in the star Asterias rubens L. // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1991. Vol. 21. P. 112117.

51. Blackstock J. Biochemical metabolic regulatory responses of marine invertebrates to natural environmental change and marine pollution // Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev., Ed. by M. Barnes, Aberdeen Univ. Press, 1984. Vol. 22. P. 263313.

52. Blum D.C., Fridovich I. Enzymatic defenses against oxygen toxicity in the hydrothermal vent animals Rift a pachyptila and Calyptogena magnified // Archs. Biochem. Biophys. 1984. Vol. 228. P. 617-620.

53. Braddon S.A., Mcllvaine C.M., Balthrop J.E. Distribution of GSH and GSH cycle enzymes in black sea bass (Centropristis striata) II Сотр. Biochem. Physiol. 1985. Vol. 80b. P. 213-216.

54. Bremner I., Beattie J.H. Metallothionein and trace minerals // Ann. Rev. Nutr. 1990. Vol. 10. P. 63-83.

55. Buege J.A., Aust S.D. Microsomal lipid peroxidation // In: Methods in Enzymology. Academic Press. N.Y. 1978. V. 52. P. 302-310.

56. Campbell S.A. Seasonal cycles in the carotenoid content in Mytilus edulis II Marine Biology. 1969. V. 4. P. 227-232.

57. Canesi L., Ciacci C., Piccoli G., Stocchi V., Viarengo A., Gallo G. In vitro and in vivo effects of heavy metals on mussel digestive gland hexokinase activity:the role of glutathione // Compar. Biochem. Physiol. 1998. Vol. 120C. P. 261268.

58. Canli M., Stagg R.M. The effects of in vivo exposure to cadmium, copper and zinc on the activities of gill ATPases in the Norway lobster, Nephrops norvegicus //Archiv. Environ. Contam. Toxicol. 1996. Vol. 31. P. 494-501.

59. Carpene E., George S.G. Absorption of cadmium by gills of Mytilus edulis (L.) // Mol. Physiol. 1981. Vol. 1. P. 23-34.

60. Cassini A., Tallandini L., Favero N., Albergoni V. Cadmium bioaccumulation studies in the freshwater molluscs Anodonta cygnea and Unio elongatulus II Сотр. Biochem. Physiol. 1986. Vol. 84C. P.35-41.

61. Chan H.M. Accumulation and tolerance to cadmium, copper, lead and zinc by the green mussel Perna viridis II Mar. Ecol. Prog. Ser. 1988. Vol. 48. P. 295-303.

62. Chandran R., Sivakumar A., Mohandass S., Aruchami M. Effect of cadmium and zine on antioxidant enzyme activity in the gastropod Achatina filica // Compar. Biochem. Physiol. 2005. Vol. 140C. P. 422-426.

63. Chelomin V.P., Belcheva N.N. The effect of heavy metals on processes of lipid peroxidation in microsomal membranes from the hepatopancreas of the bivalve mollusc Mizuhopecten yessoensis II Сотр. Biochem. Physiol. 1992. Vol. 103C. № 2. P. 419-422.

64. Chelomin V.P., Bobkova E.A., Lukyanova O.N., Chekmasova N.M. Cadmium-induced alterations in essential trace element homoeostasis in the tissues of scallop Mizuhopecten yessoensis II Сотр. Biochem. Physiol. 1995. Vol. 110. № 3. P. 329-335.

65. Chou S.T., McAuliffe C.A., Sayle B.J. Reactions of the tripeptide, glutathione, with divalent cobalt, nickel, copper and palladium salts // J. Inorg. Nucl. Chem. 1975. Vol.37. P.451-454.

66. Cossu С., Doyotte A., Babut M., Exinger A., Vasseur P. Antioxidant biomarkers in freshwater Bivalves, Unio tumidus in response to different contamination profies of aquatic sediments // Ecotox. Environ. Safety. 2000. Vol. 45. № 2. P. 106-121.

67. Czeczuga B. The presence of carotenoids in some invertebrates of the antarctic coast// Сотр. Biochem. Physiol. 1981. Vol. 69b. P. 611-615.

68. Davies J.F., Kratzer T.W. Fate of environmental pollutants // Water Environ. Res. 1996. Vol. 68, №4. P. 737-755.

69. De Almeida E., De Almeida Marques S., Klitzke C.F., Bainy A., De Medeiros M., Di Mscio P., De Melo Loureiro A. DNA damage in digestive gland and mantle tissue of the mussel Perna perna И Сотр. Biochem. Phys. 2003. Vol. 135C.P. 295-303.

70. De Groot H., Littauer H. Hypoxia, reactive oxygen, and cell injury // Free Radical Biol. Med. 1989. Vol. 6. P. 541-551.

71. Depledge M.N., Aagaard A., Gyorkos P. assessment of trace metal toxicity using molecular, physiological and behavioural biomarkers // Mar. Biol. Bullet. 1995. Vol. 31. P. 19-27.

72. Dickhut R.M., Gustafson K.E. Atmospheric inputs of selected polycyclic hydrocarbons and polychlorinated biphenyls to Southern Chesapeake Bay // Mar. Pollut. Bull. 1995. V. 30, P. 385-396.

73. Di Giulio Induces of oxidative stress as biomarkers for environmental contamination. In: Mayes M.A., Barrons M.G. (Eds.) // Aquat. Toxicol and RiskAssesm. 1991. Vol. 14. P. 15-31.

74. Eisler R. Trace Metal Concentrations in Marine Organisms. Oxford: Pergamon

75. Fridovich I. Overview: biological sources of 02* // Methods in Enzymology. 1984. V. 105. P. 59-61.

76. Garcia Martinez P., O'Hara S., Winston G.W., Livingston D.R. Oxyradical generation and redox cycling mechanisms in digestive gland microsomes of the common mussel, Mytilus edulis L. // Mar. Environ. Res. 1989. Vol. 28. P. 271-274.

77. Gabbott P.A. Developmental and seasonal metabolic activities in marine mollusks // Mollusca. Ed. by P. Hochachka. Vol. 2, N.Y.: Acad. Press, 1983. P. 165219.

78. Goodwin T.W. The biochemistry of the carotenoids. 2-nd ed. London, New York.

79. Vol. 2. Animals. 1984. 224 p. Greenberg C.S., Gaddock P.R. Rapid single-step membrane protein assay // Clin.

80. Chem. 1982. Vol. P. 1725-1726. Halliwell В., Arouma O.I. DNA damage by oxygenderived species. Its mechanism and measurement in mammalian systems //FEBS Lett. 1991. V. 281. P. 9-19.

81. Halliwell В., Gutteridge J.M.C. Oxygen toxicity, oxygen radicals, transition metals and disease // Biochem. J. 1984. V. 219. P. 1-14.

82. HamerD.H. Metallothionein//Ann. Rev. Biochem. 1986. Vol. 55. P. 913-951.

83. Hatcher E.L., Chen Y., Kang Y.J. Cadmium resistance in A549 cells correlates with elevated glutathione content but not antioxidant enzymatic activities// Free Radical Biology & Medicine, 1995. Vol.19. N 6. P.805-812.

84. Hoare K., Beaumont A.R., Davenport J. Variation among populations in the resistance of Mytilus edulis embryos to copper: adaptation to pollution // Mar. Ecol. Prog. Ser. 1995. V. 120. P. 155-161.

85. Holman R.H. Spectrophotometric studies of the oxidation fats. VIII. Coupled oxidation of carotene // Arch. Biochem. 1949. Vol. 21. P. 54-57.

86. Hussain Т., Shukla G.S., Chandra S.V. Effects of cadmium on superoxide dismutase and lipid peroxidation in liver and kidney of growing rats: in vivo and in vitro studies // Pharmacol. Toxicol. 1987. Vol. 60. № 5. P. 355-358.

87. Jamall I.S., Smith J.C. Effects of cadmium on glutathione peroxidase, superoxide dismutase, and lipid peroxidation in the rat heart: a possible mechanism of cadmium cardiotoxicity // Toxicol. Appl. Pharmacol. 1985. Vol. 80. P. 33-42.

88. Janssen H.H., Scholz N. Uptake and cellular distribution of cadmium in Mytilus edulis II Mar. Biol. 1979. Vol. 55. P. 133-141.

89. Jenkins K.D., Sanders B.M. Relationships between free cadmium ion activity in seawater, cadmium accumulation and subcellular distribution, and growth in polychaetes//Environ. Health Persp. 1986. Vol. 65. P. 205-210.

90. Jones D.P., Aw T.Y., Shan X. Drug metabolism and toxicity during hypoxia // Drug Metab. Rev. 1989. Vol. 20. P. 247-260.

91. Jorgenssen K., Skibsten L.H. Carotenoid scavenging of radicals // Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1993. Vol. 196. P. 423-429.

92. Kadiiska M., Serbinova E., Stoichev Ts. Influence of the multiple administration of salts of some heavy metals on the ascorbate-dependent peroxide oxidation of lipids // Eks. Med. Morfol. (Bulgaria), 1986. Vol. 25. № 1. P. 20-23.

93. Kadiiska M., Stoichev Ts., Serbinova E. Effect of heavy metal salts on hepatic monooxygenases after subchronic exposure // Archiv. Toxicol. (Supply), 1985. Vol. 8. P. 313-315.

94. Kadiiska M., Stoichev Ts., Serbinova E. Influence of the multiple administration of salts of some heavy metals on the NADPH-dependent peroxide oxidation of lipids // Eks. Med. Morfol. (Bulgaria), 1984. Vol. 23. № 3. P. 123-126.

95. Kang Y.-J., Enger M.D. Glutathione is involved in the early cadmium cytotoxic response in human lung carcinoma cells// Toxicology, 1988. Vol.48. P.93-101.

96. Karnaukhov V.N., Milovidova N.Y., Kargopolova I.N. On a role of carotenoids in tolerance of sea molluscs to environment pollution // Сотр. Biochem. Physiol. 1977. Vol. 56a. P. 189-193.

97. Karnauhov V.N. Carotenoids: recent progress, problems and prospects // Сотр. Biochem. Physiol. 1990. V. 95B, № 1. P. 1-21.

98. Kiningham K., Kasarskis E. Antioxidant function of metallothioneins // The Journ. of Trace Elem. in Exper. Med. 1998. Vol. 11. P. 219-226.

99. Klein D., Sato S., Summer K.H. Quantification of oxidized metallothionein in biological material by a Cd saturation method // Analit. Biochem. 1994. Vol. 221. P. 405-409.

100. Kosower N.S., Kosower E.M. The glutathione status of cells // Int. Rev. Cytol. 1978. Vol. 54. P. 109-160.

101. Manduzio H., Monsinjon Т., Rocher В., Lebouienger F., Galap C. Characterization of an inducible isoform of the Cu/Zn superoxide dismutase in the blue mussel Mytilus edulis II Aquat. Toxicol. 2003. Vol. 64. P. 73-83.

102. Maoka Т., Yokoi S., Matsuno T. Comparative biochemical studies of carotenoids in nine species of cephalopoda // Comp.Biochem.Physiol. 1989. Vol. 92b. P. 247-250.

103. Marigomez J.A., Ireland M.P. Accumulation, distribution and loss of cadmium in the marine prosobranch Littorina littorea L. // Sci. Total Environ. 1989. Vol. 78. P. 1-12.

104. Mates J.M., Sanchez-Jimenez F. Antioxidant enzymes and their implications in patophysiological processes // Frontiers in Bioscience. 1999. Vol. 4. P. 339345.

105. Meister A. On the biochemistry of glutathione // Glutathione Centennial. Molecular perspectives and clinical implications. Eds. Taniguchi N. et al. San Diego, Academic Press, 1989. P. 3-22.

106. Mitchelmore C.L., Birmelin C., Livingstone D.R., Chipman J.K. Detection of DNA strand breaks in isolated mussels {Mytilus edulis) digestive gland cells using the "Comet" assay // Ecotoxicology and Environmental Safety. 1998. Vol. 41. P. 51-58.

107. Mitchelmore C.L., Hyatt S. Assessing DNA damage in cnidarians using the Cometassay // Mar. Environ. Res. 2004. Vol. 58. P. 707-711. Moore M.N. Cellular responses to pollutants // Mar. Pollut. Bull. 1985. V. 16. P. 134-139

108. Nimmo D.R., Bahmen L.H., Ricky R.A., Sheppard J.M., Wilson A.C. Jr. Mysidopsis bahia. An Estuarine Species Suitable for Life Cycle Toxicity Tests to Determine the Effects of a Pollutant // Aquatic Toxicology and

109. Hazard Evaluation. Eds. by Mayer E.L., Hamerlin J.L., American Society for Testing and Materials. 1977a. P. 107-106.

110. OBrien P., Salacinski H.J. Evidence that the reactions of cadmium in the presence of metallothionein can produce hydroxyl radicals // Arch. Toxicol. 1998. Vol. 72. P. 690-700.

111. О Connor T.P. national distribution of chemical concentration in mussels and oysters in the USA // Mar. Environ. Res. 2002. Vol. 53. P. 117-143.

112. Olivier F., Ridd M., Klumpp D. The use of transplanted cuitured tropical oysters (Saccostrea commercialis) to monitor Cd levels in North Queensland coastal waters (Australia) // Mar. Poll. Bull. 2002. Vol. 44. P. 1051-1062.

113. Pannunzio Т., Storey K. Antioxidant defenses and lipid peroxidation during anoxia stress and aerobic recovery in the marine gastropod Littorina littorea // J. Exper. Mar. Biol. Ecol. 1998. Vol. 221. P. 277-292.

114. Paoletti F., Aldinuccio D., Mocali A., Carparrini A., 1986. A sensitive spectrophotometric method for the determination of superoxide dismutase in tissue extracts. Anal. Biochem. 154, 526-541.

115. Partali V., Tangen K., Liaanen-Jensen S. Carotenoids in food chain studies. III. Resorption and metabolic transformation of carotenoids in Mytilus edulis (edible mussel) // Сотр. Biochem. Physiol. 1989. Vol. 92b. P. 239-246.

116. Perez U., Jmenez В., Delgado W., Rodriguez-Sierra C. Heavy metals in the false mussel Mytilopsis domingensis from two tropical estuarine lagoons // Bull. Envir. Cont. Tox. 2001. Vol. 66. P. 206-213.

117. Porte C., Sol M., Albaigs J., Livingstone D.R. Responses of mixed-function oxygenase and antioxidase enryme system of Mytilus sp. to organic pollution //Сотр. Biochem. Physiol. 1991. Vol. 100C. P. 183-186.

118. Postal W.S., Vogel E.J., Young C.M., Greenaway F.T. The binding of copper(II) and zinc(II) to oxidized glutathione// J. Inorg. Biochem. 1985. Vol.25. P.25-33.

119. Posthuma L., Straalen N.M. Heavy metal adaptation in terrestrial invertebrates: a review of accurrence, genetics, physiology and ecological consequences // Сотр. Biochem. Physiol. 1993. Vol. 106C. P. 11-38.

120. Prakash N.T., Rao K. Modulations in antioxidant enzymes in different tissues of marine bivalve Perna viridis during heavy metal exposure // Molec. Cell. Biochem. 1995. Vol. 146. P. 107-113.

121. Rabenstein D.L., Guevremont R., Evans C.A. Metal complexes of glutathione and their biological significance// Metal Ions in Biological Systems, Ed. by Sigel H., 1989. Vol.9, N. Y.: Marcel Dekker. P.103-141.

122. Radi A.R., Matkovics B. Effects of metal ions on the antioxidant enzyme activities, protein contents and lipid peroxidation of carp tissues // Сотр. Biochem. Physiol. 1988. Vol. 90C. P. 69-72.

123. Ramos-Martinez J.I., Bartolome T.R., Pernas R.V. Purification and properties of glutathione reductase from hepatopancreas of Mytilus edulis L. // Сотр. Biochem. Physiol. 1983. Vol. 75b. P. 689-692.

124. Rana S.V.S., Kumar A. Significance of lipid peroxidation in liver injury after heavy metal poisoning in rats // Curr. Sci. (India), 1984. Vol. 53. № 17. P. 933-934.

125. Regoli F. Total oxyradical scavenging capacity (TOSC) in polluted and translocated mussels: a predictive biomarker of oxidative stress // Aquatic Toxicol. 2000. V. 50. P. 351-361.

126. Regoli F., Gorbi S., Frenzilli G., Nigro M. et al. Oxidative stress in ecotoxicology: from the analysis of individual antioxidants to a more integrated approuch // Mar. Env. Res. 2002. Vol. 54. P. 419-423.

127. Regoli F., Hummel H., Amiard-Triquet C., Larroux C., Sukhotin A. Trace metal and variations of antioxidant enzymes in Arctic bivalve populations // Environ. Contain, and Toxicol. 1998. Vol. 35. P. 594-601.

128. Regoli F., Nigro M., Orlando E. Lysosomal and antioxidant responses to metals in the Antarctic scallop Adamussium colbecki // Aquatic Toxicol. 1998a. V. 40. P. 375-392.

129. Regoli F., Principato G., Bertoli E., Nigro M., Orlando E. Biochemical characterization of the antioxidant system in the scallop Adamussium colbecki, a sentinel organism for monitoring the Antarctic environment // Polar Biol. 1997. Vol. 17. P. 251-258.

130. Regoli F., Winston G.W. Quantification of total oxidant scavenging capacity of antioxidants for peroxynitrite, peroxyl radicals, and hydroxyl radicals // Tox. and Appl. Pharm. 1999. Vol. 156. P. 96-105.

131. Regoli F., Winston G.W., Mastrangelo V. et al. Total oxyradical scavenging capacity in mussel Mytilus sp. as a new index of biological resistance to oxidative stress. Chemosphere, 1998. V. 37, P. 2773-2783.

132. Reischl E. High sulfhydryl content in Turtle erythrocytes: is there a relation with resistance to hypoxia // Сотр. Biochem. Physiol. 1986. Vol. 85B. № 4. P. 723-726.

133. Reisch D.J., Oshida P.S., Mearns A.J., Ginn T.C. Effect of pollution on marine organisms // Water Environ. Res. 1996. Vol. 68. № 4. P. 784-796

134. Reznick A.Z., Packer L. Oxidative damage to proteins: spectrometric method for carbonyl assay // Method of enzymol. 1994. Vol. 233. P. 357-363.

135. Ribera D., Narbonne J.F., Daubeze M., Michel X. Characterization, tissue distribution and sexual differences of some parameters related to lipid peroxidation in mussels// Mar. Environ. Res. 1989. Vol. 28. P. 279-283.

136. Ribera D., Narbonne J.F., Michel X., Livingston D.R., O'Hara S. Responses of antioxidants and lipid peroxidation in mussels to oxidative damage exposure //Сотр. Biochem. Physiol. 1991. Vol. 100C. P. 177-181.

137. Richards M.P. Recent developments in trace element metabolism and function: role of metallothionein in copper and zinc metabolism // J. Nutr. 1989. Vol. 119. P. 1062-1070.

138. Rittschof D., McClellan-Green P. Molluscs as multidisciplinary models in environment toxicology // Mar. Pollut. Bull. 2005. Vol. 50. P. 369-373.

139. Robinson W.E., Ryan D.K. Transport of cadmium and other metals in the blood of the bivalve mollusc Mercenaria mercenaria II Mar. Biol. 1988. Vol. 97. P. 101-109.

140. Roesijadi G. Metallothioneins in metal regulation and toxicity in aquatic animals (Review) // Aquat. Toxicol. 1992. Vol. 22. P. 81-114.

141. Romeo M., Bennani N., Gnassia-Barelli M., Lafaurie M., Girard J.P. Cadmium and copper display different responses towards oxidative stress in kidney of sea bass Dicentrarchus labrax II Aquat. Toxicol. 2000. Vol. 48. P. 185-194.

142. Shen Y., Sangiah S. Na+, K+-ATPase, glutathione, and hydroxyl free radicals in cadmium chloride-induced testicular toxicity in mice // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1995. Vol. 29. P. 174-179.

143. Shugart L.R. DNA damage as a biomarker of exposure // Ecotoxicology. 2000. Vol. 9. P. 329-340.

144. Sies H. Oxidative stress: oxidants and antioxidants. London: Academic Press Limited. 1991.650 р.

145. Singh N.P., McCoy M.T., Tice R.R., Schneider E.L. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells // Experimental Cell Res. 1988. Vol. 175. P. 184-91.

146. Singhal R.K., Anderson M.E., Meister A. Glutathione, a first line of defence against cadmium toxicity//FASEB J. 1987. Vol.1. N3. P.220-223.

147. Simkiss K., Mason A.Z. Cellular responses of molluscan tissues to environmental metals//Mar. Env. Res. 1984. Vol. 14. P. 103-118.

148. Sole M., Porte C., Albaiges J. The use of biomarkers for assessing the effects of organic pollution in mussels // The Sci. Total Environ. 1995. V. 159. P. 147153.

149. Stauber J.L., Florence T.M. Mechanism of toxicity of ionic copper and copper complexes to algae // Mar. Biol. 1987. Vol. 94. P. 511 -519.

150. Stien X., Percic Ph., Gnassia-Barelli M., Romeo M., Lafaurie M. Evaluation of biomarkers in caged fishes and mussels to assess the quality of waters in a bay of the NW Mediterranean Sea // Envir. Poll. 1998. Vol. 99. P. 339-345.

151. Stohs S. J., Bagchi D. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions // Free Rad. Biol. Medic. 1995. Vol. 18. № 2. P. 312-336.

152. Storey K.B. Oxidative stress: animal adaptations in nature Brasil // J. Med. Biol. Res. 1996. V. 29. P. 1715-1733.

153. Suteau P., Narbonne J-F. Preliminary data on PAH metabolism in the marine mussel M. galloprovincialis from Arcachon Bay, France // Mar. Biol. 1988. Vol. 98. P. 421-425.

154. Tappel M.E., Chaudiere J., Tappel A.L. Glutathione peroxidase activities of animal tissues // Сотр. Biochem. Physiol. 1982. Vol. 73b. P. 945-949.

155. Thomson E.A., Luoma S.N., Johansson C.E., Cain D.J. Comparison of sediments and organisms in identifying source of bioavailable trace metal contamination //Water Res. 1984. Vol. 18. № 6. P. 755-765.

156. Tkalin A.V., Belan T.A., Shapovalov E.N. The state of the marine environment near Vladivostok, Russia // Mar. Pollut. Bull. 1993. V. 26. № 8. P. 418-422.

157. Tkalin A.V., Lishavskaya T.S., Shulkin V.M. Radionuclides and trace metals in mussels and bottom sediments around Vladivostok // Mar. Pollut. Bull. 1998. V. 36. №7. P. 551-554.

158. Tkalin A.V., Presley B.J., Booth P.N. Spatial and temporal variations of trace metals in bottom sediments of Peter the Great Bay, the Sea of Japan // Environ. Pollut. 1996. V. 92. № 1. P. 73-78.

159. Tkalin A.V., Samsonov D.P., Lishavskaya T.S., Chernik G.V. New data on organochlorine distributions in the marine environment near Vladivostok // Mar. Pollut. Bull. 2000. V. 40. № 10. P 879-881.

160. Tribble D.L., Jones D.P. Oxygen dependence of oxidative stress. Rate of NADPH supply for maintaining the GSH pool during hypoxia // Biochem. Pharmac. 1990. Vol.39. P. 729-736.

161. Viarengo A. Biochemical effects of trace metals // Mar. Pollut. Bull. 1985. Vol. 16. №4. p. 153-158.

162. Viarengo A. Heavy metals in marine invertebrates: mechanisms of regulation and toxicity at the cellular level // CRC Crit. Rev. Aquat. Sci. 1989. Vol. 1. P. 295-317.

163. Viarengo A., Burlando В., Ceratto N., Panfoli I. Antioxidant role of metallothioneins: a comparative overview // Cellular and Molecular Biology. 2000. Vol.46 (2). P. 407-417.

164. Viarengo A., Burlando В., Giordana A., Bolognesi C., Gabrielides G. Networking and expert-system analysis: next frontier in biomonitoring // Mar. Environ. Res. 2000. Vol. 49. P. 483-486.

165. Viarengo A., Canesi L., Pertica M., Livingston D.R. Seasonal variations in the antioxidant defence systems and lipid peroxidation of the digestive gland of mussels // Сотр. Biochem. Physiol. 1991b. Vol. 100C. № 1-2. P. 187-190.

166. Viarengo A., Canesi L., Pertica M., Livingston D.R., Orunesu M. Age-related lipid peroxidation in the digestive gland of mussels: the role of the antioxidant defence systems // Experientia, 1991a. Vol. 47. P. 454-457.

167. Viarengo A., Canesi L., Pertica M., Mancinelli G., Accomando R., Smaal A. Orunesu M. Stress on stress response: a simple monitoring tool in the assessment of a general stress syndrome in mussels // Mar. Environ. Res. 1995. Vol.39. P. 245-248.

168. Viarengo A., Canesi L., Pertica M., Poli G., Moore M.N., Orunesu M. Heavy metal effects on lipid peroxidation in the tissues of Mytilus galloprovicialis Lam. // Сотр. Biochem. Physiol. 1990. Vol. 97C. P. 37-42.

169. Viarengo A., Marro A., Marchi В., Burlando B. Single and combinated effects of heavy metals and hormones on lysosomes of haemolymph cells from the mussel Mytilus galloprovincialis II Mar. Biol. 2000. Vol. 137. P. 907-912.

170. Viarengo A., Pertica M., Canesi L., Biasi F., Cecchini G., Orunesu M. Effects of heavy metals on lipid peroxidation in mussel tissues // Mar. Environ. Res. 1988. Vol. 24. P. 355-359.

171. Watling H.R. Accumulation of seven metals by Crassostrea gigas, Crassostrea margaritacea, Perna perna and Choromytilus meridionalis // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1983. Vol. 30. P. 317-322.

172. Wayner D.D.M., Burton G.W., Ingold K.U. The antioxidant efficiency of vitamin E is concentration-dependent // Biochem. Biophys. Acta. 1986. Vol. 884. P. 119-123.

173. Wenning R.J., Di Giulio R.T. Microsomal enzyme activities, superoxide production, and antioxidant defenses in ribbed mussels (Geukensia demissa) and wedge clams (Rangia cuneata) II Сотр. Biochem. Physiol. 1988a. Vol. 90C. P. 21-28.

174. Wenning R.J., Di Giulio R.T., Gallagher F.P. Oxidant-mediated biochemical effects of paraquat in the ribbed mussels, Geukensia demissa II Aquat. Toxicol. 1988. Vol. 12. P. 157-170.

175. Widdows J. Combined effects of body size, food concentration and season on the physiology of Mytilus edulis II J. Mar. Biol. Ass. U. K. 1978. Vol. 58. P. 109124.

176. Winston G.W., Di Giulio R.T. Pro-oxidant and antioxidant mechanisms in aquqtic organisms//Aquatic Toxicol., 1991, V. 19, P. 137-161.

177. Winston G.W., Livingston D.R., Lips F. Oxygen reduction metabolism by the digestive gland of the common marine mussel Mytilus edulis II J. Exp. Zool. 1990. Vol. 255. P. 296-308.

178. Wright D.A. Trace metal and major ion interactions in aquatic animals// Mar.