Разработка тест-систем на основе реакции агглютинации латекса для диагностики инфекционной бурсальной болезни кур тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат наук Гетманова, Екатерина Александровна

• Гетманова, Екатерина Александровна
• кандидат наук
• 2017

Оглавление диссертации кандидат наук Гетманова, Екатерина Александровна

Оглавление стр.

1. Введение 4-11

2. Основная часть 2.1. Обзор литературы

2.1.1. Инфекционная бурсальная болезнь (ИББ) кур

2.1.1.1. Распространение и ущерб, причиняемый этой болезнью 12-13

2.1.1.2. Характеристика рода Birnavirus семейства Birmviridae 14-15

2.1.1.3.Клинические признаки и патологоанатомческие изменения 16-17

2.1.1.4. Патогенез болезни 17-18

2.1.1.5. Диагностика инфекционной бурсальной болезни 19-20

2.1.2. Использование иммунологических реакций в диагностике инфекционных заболеваний 21-37

2.1.3. Использование полимерных микросфер в диагностике инфекционных заболеваний 37-41

2.1.4. Заключение по обзору литературы 41 -42

3. Собственные исследования 43-44

3.1. Материалы и методы 44-52

3.2. Получение специфических компонентов для изготовления латексных диагностикумов

3.2.1. Получение очищенного антигена вируса ИББ 53-56

3.2.2. Получение отрицательной и специфической (положительной) сыворотки к вирусу ИББ 56-57

3.2.3. Выделение специфических иммуноглобулинов 57-59

3.2.4. Оценка качества ПС 60-62

3.3. Разработка латексной тест-системы для выявления антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни кур 62-66 3.3.1. Определение оптимальных концентраций и условий приготовления антительного иммуносорбента для реакции латексной агглютинации

3.3.2. Изучение диагностической ценности антительного латексного диагностикума 67-68

3.3.2.1. Изучение специфичности антительных латексных диагностикумов

3.3.2.2. Оценка чувствительности антительных латексных диагностикумов

69-70

3.3.2.3. Изучение стабильности антительных латексных диагностикумов

71

3.4. Разработка латексной тест-системы для выявления антигена вируса инфекционной бурсальной болезни кур 72-74

3.4.1. Отработка оптимальных концентраций и условий приготовления антигенного иммуносорбента для реакции латексной агглютинации

3.4.2. Изучение диагностической ценности антигенных латексных диагностикумов 75-76

3.4.2.1. Оценка чувствительности антигенной латексной тест-системы

3.4.2.2. Изучение специфичности антигенной латексной тест-системы 76-77

3.4.2.3. Исследование стабильности диагностической латексной тест-системы для выявления антител к вирусу ИББ 77-79 4.Заключение 79-86 4.1.Обсуждение результатов исследований

4.2. Выводы 87-90

4.3. Практические предложения

5. Список сокращений 92-93

6. Список литературы 94-112

7. Приложение. 113-119

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Разработка тест-систем на основе реакции агглютинации латекса для диагностики инфекционной бурсальной болезни кур»

1. Введение

Актуальность темы. Благополучие по инфекционным болезням является одним из непременных условий успешного ведения промышленного птицеводства. Для крупных птицеводческих комплексов особую опасность представляют вирусные болезни, в том числе инфекционная бурсальная болезнь, из-за их недостаточной изученности, высокой контагиозности, большого разнообразия путей и факторов передачи инфекционного агента. Проблема вирусных болезней приобретает все возрастающую актуальность еще и по той причине, что некоторые инфекционные болезни стали протекать атипично, значительно возросла роль ассоциации различных агентов вирусной и бактериальной природы.

Инфекционная бурсальная болезнь (ИББ, инфекционный бурсит, болезнь Гамборо) - вирусная высококонтагиозная болезнь птиц, поражающая цыплят 2-15 - недельного возраста, сопровождающаяся диареей, поражением фабрициевой сумки и в меньшей степени других лимфоидных органов. Болезнь представляет большую опасность, обусловленную подавлением иммунитета птиц к другим вирусным инфекциям [16;19;20] , вызывая задержку роста, развития молодняка и гибель птицы. В настоящее время, несмотря на повсеместное применение средств специфической профилактики против ИББ, наибольшее распространение приобрела субклиническая форма болезни, которая протекает без клинических проявлений, с продолжительным подавлением иммунитета, что создает благоприятный фон для развития вторичных инфекций [5; 15; 38; 83; 47], в этом случае болезнь протекает со сложной симптоматикой. В связи с этим основная роль в постановке правильного диагноза на ИББ принадлежит лабораторным методам.

Степень разработанности. Большинство методов, позволяющих выявить вирус ИББ в организме птицы, обнаружить антитела к нему, основано на реакции диффузионной преципитации, реакции нейтрализации, методе флуоресцирующих антител и иммуноферментном анализе [71; 43; 4; 80]. По данным литературы имеются сообщения о возрастающей роли в диагностике инфекционных болезней реакции агглютинации латекса (РАЛ), позволяющая повысить скорость в постановке диагноза. Реакция более проста в исполнении, не требует специального оборудования и высококвалифицированного персонала, экономически выгодна и тем самым наиболее приемлема в ветеринарной практике [19]. Учитывая широкое распространение в РФ инфекционной бурсальной болезни и масштабное производство биологических препаратов против нее, актуальным является разработка чувствительного и специфического экспресс-метода индикации антигена вируса в патологическом материале и выявлении специфических антител в сыворотке крови кур к вирусу ИББ.

Цель и задачи исследований. Цель исследований - разработка тест-систем на основе реакции агглютинации латекса (РАЛ) для индикации антигена вируса ИББ в патологическом материале и выявления антител к вирусу ИББ в сыворотке крови кур.

В соответствии с поставленной целью необходимо было решить следующие задачи:

1. Разработать технологические схемы получения иммуноспецифических компонентов тест систем на основе РАЛ:

- изготовить очищенный препарат вируса ИББ, полученного из патологического материала кур;

- изготовить очищенный и концентрированный препарат иммуноглобулинов из сыворотки крови кур, иммунизированных вирусом ИББ;

2. Определить оптимальные концентрации компонентов и условия приготовления латексных иммуносорбентов, сенсибилизированных антигеном вируса ИББ и специфическими антителами.

3. Провести оценку лабораторных серий тест-систем по показателям качества и определить возможность их применения для диагностики ИББ кур.

4. Сконструировать тест-системы (наборы) на основе РАЛ для выявления вируса ИББ в патологическом материале и антител к вирусу в сыворотках крови кур.

5. Разработать Методические положения по лабораторной диагностике ИББ птиц на основе реакции агглютинации латекса и проекты нормативной документации (Инструкцию по применению тест-систем, ТУ на тест-системы).

Научная новизна работы. Впервые в РФ для экспресс - диагностики ИББ кур разработаны тест-системы на основе реакции агглютинации латекса (РАЛ). Получены иммуноспецифические компоненты латексных тест- систем для индикации антигена вируса ИББ в патологическом материале, в процессе культивирования вируса, а также для выделения специфических к вирусу ИББ антител в сыворотках крови переболевших и/или вакцинированных кур.

Определены оптимальные концентрации компонентов и условия приготовления латексных иммуносорбентов, сенсибилизированных антигеном вируса ИББ и специфическими антителами.

Установлена высокая специфичность и чувствительность разработанных тест-систем на основе реакции агглютинации латекса при обнаружении антигена вируса ИББ в патологическом материале и выявлении антител в сыворотке крови кур, вакцинированных против ИББ.

Проведены сравнительные исследования по индикации антигена вируса ИББ в РАЛ и РДП и выявления специфических к вирусу ИББ антител методами РАЛ, ИФА. Установлена корреляция результатов, полученных при определении уровня антител методами РАЛ и ИФА.

Показано, что метод диагностики ИББ с использованием тест-систем на основе РАЛ является простым в применении, и не требует специального оборудования, больших затрат труда и времени.

Разработана схема иммунизации кур вирусом ИББ с целью получения специфической иммунной сыворотки.

Теоретическая и практическая значимость исследований. На

основании проведенных исследований разработаны эффективный экспресс-метод индикации антигена ИББ птиц в патологическом материале и в процессе культивирования и выявления антител в сыворотках крови кур на основе реакции агглютинации латекса.

Разработаны:

«Методические положения по лабораторной диагностике ИББ птиц на основе реакции агглютинации латекса», рассмотрены Северо-Западным научным центром РАН, Санкт-Петербург, 2016 г. и утверждены в установленном порядке ФГБНУ ВНИВИП.

Технические условия - ТУ «Тест-система для индикации антигена вируса инфекционной бурсальной болезни кур в реакции агглютинации латекса (РАЛ)» - проект

ИНСТРУКЦИЯ по применению тест-системы для индикации антигена вируса инфекционной бурсальной болезни кур в реакции агглютинации латекса (РАЛ);

Технические условия - ТУ «Тест-система для выявления антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни кур в реакции агглютинации латекса (РАЛ)» - проект

ИНСТРУКЦИЯ по применению тест-системы для выявления антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни кур в реакции агглютинации латекса (РАЛ).

Документы рекомендованы к применению для ветврачей - вирусологов региональных, областных, зональных, и специализированных лабораторий, и научно-исследовательских учреждений ветеринарного и биологического профиля.

Положения, выносимые на защиту:

1. Технологические схемы получения иммуноспецифических компонентов тест- систем на основе РАЛ:

- очищенного препарата вируса ИББ из патологического материала кур;

- очищенного и концентрированного препарата иммуноглобулинов из сывороток крови кур, иммунизированных вирусом ИББ.

2. Оптимальные концентрации компонентов и условия приготовления латексных иммуносорбентов, сенсибилизированных антигеном вируса ИББ и специфическими антителами.

З.Оценка показателей качества новых тест-систем и возможности их применения для диагностики ИББ кур.

4. Конструирование тест-систем (наборов) на основе реакции агглютинации латекса, Методические положения по лабораторной диагностике ИББ кур, проекты нормативной документации.

Степень достоверности и апробация результатов.

Научные положения, выводы и практические рекомендации, сформулированные в диссертационной работе научно-обоснованы, достоверны и вытекают из результатов собственных исследований. Исследования проведены на большом фактическом материале с использованием современных методов исследований.

Результаты исследований по теме диссертации доложены и обсуждены на заседаниях Методического совета отдела вирусологии и ОБП и Ученого совета ФГБНУ ВНИВИП (2013-2016гг.); Всероссийской научно-практической конференции «Современные подходы к решению актуальных ветеринарно-санитарных и зоотехнических проблем в птицеводстве», 18 октября 2013 г., Санкт-Петербург - Ломоносов; Международной научно-практической конференции «Ветеринарная наука в промышленном птицеводстве, посвящ. 50-летию ГНУ ВНИВИП Россельхозакадемии» (г. Санкт-Петербург, 30-31 октября 2014); Международной конференции «Актуальные проблемы развития ветеринарной науки, посвящ. 85-летию Самарской НИВС», (г. Самара, 16-17 октября 2014 г.).

Публикации. Основные положения диссертационной работы опубликованы 5 в научных работах, в том числе 2 статьи в изданиях по перечню журналов, рекомендованному ВАК Минобрнауки России для публикации материалов докторских и кандидатских диссертаций.

Соответствие диссертации паспорту научной специальности. Результаты научных исследований соответствуют пунктам 1, 2 и 11 паспорта специальности 03.01.06. и пунктам 5, 9 и 14 паспорта специальности 06.02.02

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 119 страницах компьютерного текста и состоит из следующих разделов: введение; обзор литературы; собственных исследований, включающих материалы и методы, результаты исследований; заключение, выводы; практические предложения; список литературы, список сокращений и приложение.

Диссертация иллюстрирован 13 таблицами, 8 рисунками. Список литературы включает 228 источников, из которых 132 зарубежных.

2. Основная часть 2.1. Обзор литературы

2.1.1.Инфекционная бурсальная болезнь 2.1.1.1. Распространение и ущерб, причиняемый этой болезнью

Инфекционная бурсальная болезнь (ИББ) (болезнь Гамборо, инфекционный бурсит кур) представляет собой острую, высококонтагиозную вирусную болезнь молодняка кур [ 122, 123, 124,125, 141, 155, 181, 186, 191, 199]. Основными клетками-мишенями являются лимфоидные, особенно В-клетки, вырабатываемые фабрициевой сумкой [112, 113, 143, 149]. Болезнь впервые описал A. S. Cosgrove [113] под названием «нефроз птиц», вследствие значительного поражения почек. Зарегистрирована она была в 1957 году в США, в местечке Гамборо, и название «болезнь Гамборо» стало его синонимом. Позже R. W. Winterfield , S. B. Hitchner [222] предложили название болезни «инфекционный бурсит», подразумевая под ним поражение фабрициевой сумки и, как вторичный признак-нефроз.

В 1972 году Allan W. H. [96] сообщил, что вирус инфекционного бурсита птиц вызывает иммуносупрессию у цыплят в раннем возрасте. Признание способности вируса инфекционного бурсита птиц подавлять иммунитет в значительной мере повысило интерес к борьбе с этой инфекцией. Контроль инфекций, вызванных вирусом инфекционного бурсита птиц, осложнялся наличием «вариантных» штаммов вируса серотипа 1, которые были обнаружены в области Делмарва, где развито промышленное птицеводство [198, 200]. Эти штаммы вызывали болезнь даже при наличии материнского иммунитета против «стандартных» штаммов [197, 200]. В 1980 году было сообщено о существовании второго серотипа вируса [161]. Таким образом, эти «вариантные» штаммы вируса либо уже присутствовали в природе и выделялись при подавлении иммунитета, либо были мутантами, которые появились и развились вследствие подавления иммунитета.

ИББ, вызванная вирусом 1 серотипа, распространена по всему миру и встречается во всех областях с промышленным птицеводством. Заболеваемость в этих областях очень высокая. По существу, все стада заражаются вирусом в раннем возрасте. Поэтому производители осуществляют вакцинацию родительских стад против ИББ. Однако в США клиническое течение болезни наблюдается редко, потому что инфекция либо защищена материнскими антителами или персистенция вариантных штаммов в стаде вызывает иммуносупрессию [45].

Экономическая значимость этой болезни проявляется клинической болезнью и смертностью цыплят 2-15 - недельного возраста, и, что более важно, болезнь проявляется продолжительной иммунодепрессией у кур, что ведет к повышению чувствительности птиц к другим инфекциям и потере способности к иммунному ответу на вакцинацию [11, 122, 125, 155, 181, 186, 201, 226]. Иммунодепрессия, вызванная вирусом инфекционного бурсита еще опасна и тем, что вырабатываемые антитела к разным антигенам в функциональном отношении являются неполноценными [177]. Также, иммунодепрессивное действие вируса проявляется снижением уровня сывороточного комплемента и нарушением системы свертывания крови.

В настоящее время болезнь зарегистрирована во всех странах мира. За период 1999-2002гг. в 5 провинциях нижнего и верхнего Египта зарегистрировано 8 вспышек инфекционного бурсита кур. Во время этих вспышек получено 8 изолятов высоковирулентного вируса ИББ, которые исследовали в антигенном отношении и в их способности реплицироваться в различных культурах клеток. При оценке репродукции вирусных изолятов in vitro испытано 6 перевиваемых линий и 1 первичная культура клеток. Ни один из изолятов не удалось адаптировать к этим клеткам. Серологическим типированием с помощью вируснейтрализующих антител выявлено антигенное различие изолятов вируса ИББ [129].

2.1.1.2. Характеристика рода В1гпау1гш семейства Birnaviridae

Вирус инфекционного бурсита является представителем семейства В1гпаутёае [107, 117, 171]. В этом семействе вирусы имеют геном, состоящий из двух сегментов спиральной РНК, отсюда и их название бирнавирусы [162, 171, 212]. Вирус покрыт белковой оболочкой. Вирион безоболочечный, имеет икосаэдральную симметрию, диаметром от 55 до 65 нм [133, 178]. Капсид обладает неправильной симметрией с коэффициентом триангуляции Т-13 и прямосторонностью [185]. В структуре вируса выявлено 5 белков, которые были названы УР1, УР2, УР3, УР4, УР5 [102, 117, 118, 178, 218]. В структуре вириона выявлены белки УР1, УР2Ь (происходящий из УР2), УР2а, предшественник протеина УР2 и УР3 [58]. Протеин УР2 ответственен за типоспецифичность, а УР3- за группо- специфичность.

Установлено 2 серотипа вируса ИББ. Вирусы 1 серотипа являются антигенно-гетерогенными (АГ). Вирус 1-го серотипа вызывает болезнь только у цыплят и насчитывает 6 подтипов. Вирус 2-го серотипа, выделенный от индеек, патогенен для различных видов домашних птиц [20]. Но дальнейшие исследования показали, что вирусы серотипа 2 могут быть выделены от кур [138], а антитела на серотип 2 часто встречаются как у кур, так и у индеек [139, 200] .

Вирус 1-го серотипа содержит белки УР1, УР2, УР3, УР4, а также УРх, являющийся предшественником УР2. У вируса 2-го серотипа обнаружены белки, соответствующие УР1, УР2, УР3 и УР4. Между вирусами двух серотипов существует небольшое родство. Так, например, АГ-родство двух серотипов вируса ИББ (Си-1 от цыплят и 23/82 от индюшат) не превышало 1030%, поэтому перекрестный иммунитет минимальный [139]. ВесЫ: Н. [102] сравнивал изоляты серотипов 1 и 2, и отметил схожесть результатов для изолятов одного серотипа. При этом оказалось невозможным различить штаммы вирусов серотипа 1 по разнице в структурных белках [218]. Серотипы

различаются с помощью перекрестной реакции нейтрализации вируса с гомологичными сыворотками к серотипам. Иммунизация серотипом 2 не защищает от серотипа 1. Белки VP2 и VP3 являются основными белками вируса инфекционного бурсита птиц, которые составляют 51% и 40% из всего количества вирусных белков соответственно [116]. В то же время белки УР1 (3%) и VP4 (6%) являются второстепенными белками. Белок VP1 является полимеразной вирусной РНК, а VP4-вирусной протеазой [135, 174, 209]. Наличие белков, связанных с геномом, показывает, что вирус воспроизводит свою нуклеиновую кислоту по механизму замещения цепи РНК. РНК-полимеразная активность может быть продемонстрирована без предварительной обработки вируса. Это показывает, что транскрипция и репликация происходят после проникновения в клетку без "раздевания" вируса [209]. Небольшой сегмент генома вируса болезни Гамборо (В) кодирует белок VP1, а большой сегмент (А)- оставшиеся вирусные белки [99, 135, 168]. На белке VP2 был обнаружен конформационный прерывистый нейтрализующий эпитоп, а на белке VP3-конформационный непрерывный эпитоп. Антитела на эти эпитопы осуществляют пассивную защиту птиц [100].

Серотип 1 представлен двумя вариантами -УА и 1М. У цыплят, зараженных изолятом 1М, некроз тканей фабрициевой сумки сопровождается воспалительной реакцией, а у птиц, зараженных вариантом УА, воспалительная реакция менее выражена. Кроме этого, изолят 1М вызывает более сильные изменения в тимусе по сравнению с изолятом УА. Эти два варианта патогенны и не нейтрализуются полностью АТ против вируса серотипа 1 [203].

У переболевших ИББ цыплят продуцируются сывороточные вируснейтрализующие и преципитирующие антитела. Вирус не агглютинирует эритроциты кур, крупного рогатого скота, овец, коз, лошадей, крыс, морских свинок, лошадей, кроликов, человека [10, 81].

2.1.1.3. Клинические признаки и патологоанатомические изменения

Инкубационный период болезни короткий, а клинические признаки появляются через 2-3 дня после заражения. Гистологические изменения при болезни обнаруживают уже через 24 часа [130]. Различают клиническую и субклиническую формы болезни. Наибольшие экономические потери вызывает субклиническая инфекция [18, 19, 41], особенно у бройлеров моложе 4-х недель. Главным образом, она выражается в замедлении роста. При этом, раннее инфицирование приводит к иммуносупрессии, что способствует возникновению сопутствующих инфекционных болезней. При заболевании родителей наблюдается лишь некоторое снижение процента жизнеспособности эмбрионов. Вирус проникает через пищеварительный тракт и через 24-48 ч обнаруживается в фабрициевой сумке [171]. Куры яйценоских пород более чувствительны к заражению, чем бройлеры. При заболевании их смертность составляет 5-15% [211].

Одним из первых симптомов инфекционного бурсита является диарея, сопровождающаяся выделением водянистого беловато-желтого помета. Затем наступает депрессия, а в более поздней стадии - сенсорные нарушения: тремор головы и шеи, потеря координации [72, 145]. Организм больных цыплят обезвоживается, а температура на последних этапах болезни понижается [113]. Развивающиеся на фоне инфекционного бурсита хронические респираторные болезни, приводят к появлению синдрома опухания головы. При этом, у цыплят обнаруживают опухшие подглазничные синусы, экссудат в носовых полостях, трахее и легких. При вскрытии из пораженных тканей часто выделяют секундарную микрофлору, стафилококки, стрептококки и др. Инфекционный бурсит обычно наблюдают у цыплят между 21-35 днями жизни, как правило, после вакцинации их против инфекционного бронхита кур (ИБК) и ньюкаслской болезни (НБ) [81]. Первые вспышки в птицеводческих хозяйствах обычно протекают наиболее остро. Возвратные вспышки у потомства проходят менее остро и часто остаются незамеченными.

При патологоанатомическом исследовании у цыплят наблюдают обезвоживание и потемнение грудных мышц. Часто в голенях и грудных мышцах присутствуют кровоизлияния, зоб пустой. В кишечнике отмечают повышенное количество слизи. У цыплят, находящихся на поздних стадиях болезни, обычно заметны изменения в почках [113]. Фабрициевая сумка на 3 день после инфицирования вследствие отека и гиперемии начинает увеличиваться в размере и весе и на ней наблюдается студенистый желтоватый экссудат. К 4 дню ее вес и размер обычно удваиваются по отношению к нормальным, после чего начинается обратный процесс. К 5 дню прогрессирует атрофия, и фабрициевая сумка приобретает серый цвет. На 8 день ее вес составляет примерно одну треть от первоначального. Селезенка может быть увеличена с равномерно распределенными серыми очагами. Печень резко увеличена [112].

2.1.1.4. Патогенез болезни

Основной путь заражения инфекционным бурситом алиментарный, интраназальный и конъюнктивальный. При попадании вируса с кормом и водой репликация его происходит в клетках лимфоидных скоплений кишечника. Через 24 ч после заражения вирус поражает другие лимфоидные ткани, и в первую очередь начинает разрушать лимфоциты фабрициевой сумки и селезенки. Более чувствительными к данному вирусу лимфоциты, на поверхности которых имеется М. Именно поэтому, основной мишенью для вируса являются В-лимфоциты [130, 170, 175, 203]. Первичная атрофия фабрициевой сумки сопровождается пролиферацией кортико-медулярного эпителия и образованием слизи в секреторных железах. Диарея при данной болезни развивается вследствие репликации вируса в энтероцитах крипт, что приводит к дисфункции кишечника, его секреторной деятельности и обезвоживанию организма [126]. В крови увеличивается уровень мочевой

кислоты, лактатдегидрогеназы и глютаматоксолаттрансминазы. Также в крови обнаруживают лимфопению и эритроцитоз. На 3-й день болезни снижается общее количество лейкоцитов, а на 5-й день оно возрастает и достигает максимума на 7-й день после заражения. Содержание лейкоцитов перед смертью птицы может достигать 70% [12, 171]. В почках появляются кристаллические ураты, вследствие образования комплекса АГ-АТ, который разрушает эндотелий извитых канальцев и почечных клубочков. Почечная ткань дегенерирует с образованием лимфоидных скоплений [107]. Фабрициева сумка и селезенка подвергаются лимфоидному некрозу [11, 49, 112, 178]. В печени возможна незначительная периваскулярная инфильтрация моноцитов. В селезенке на ранних этапах развития инфекции наблюдается гиперплазия ретиколоэндотелиальных клеток периартериальных лимфоидных муфт, а к третьему дню возникает некроз. Тимус и лимфоидные бляшки слепой кишки дают небольшую клеточную реакцию. Но, как и в селезенке, повреждение менее обширное, чем в сумке [144, 183].

Из-за подавленного иммунитета у заболевших цыплят повышается чувствительность к интеркурентным болезням - болезнь Марека (БМ), ньюкаслская болезнь (НБ) [51, 123, 177], инфекционный бронхит кур (ИБК) [182], инфекционный ларинготрахеит (ИЛТ) [187, 195]. При инфекционном бурсите может повышаться чувствительность к Esherichia coli и тогда у цыплят наблюдаются сходные дегенеративные изменения в фабрициевой сумке и тимусе. При инфицировании двумя этими агентами, цыплята погибали в 90% случаев [191]. Данные серологического исследования показывают, что зараженность стад, в основном, в птицеводческих хозяйствах промышленного направления, колеблется от 2 до 100% [81]. Падеж обычно начинается на 3 день после инфицирования, достигает пика и начинает снижаться через 5-7 дней [23].

2.1.1.5. Диагностика инфекционной бурсальной болезни

ИББ сравнительно легко диагностируется при типичном течении болезни по клиническим и паталогоанатомическим признакам, которые описаны выше. На ранней стадии или при субклиническом течении болезни необходима лабораторная диагностика [23]. Она основана на анализе эпизоотологических данных, выявлении антител в сыворотке крови в РН, РДП, ИФА, идентификации вируса с помощью РДП, ИФА, ПЦР, РН, МФА, на результатах гистологических исследований фабрициевых сумок, выделения вируса в культуре клеток, на развивающихся эмбрионах кур или восприимчивых цыплятах [16].

Материалом для выделения вируса ИББ являются фабрициева сумка, печень, почки, селезенка павших или больных цыплят. Выделение вируса обычно успешно до 7-го дня после заражения. Для заражения используют 10-11 - суточные куриные эмбрионы (КЭ), первично-трипсинизированную культуру клеток куриного эмбриона и перевиваемые линии клеток [4, 73, 114, 129, 132, 143, 151].

Куринные эмбрионы заражают на хориоаллантоисную оболочку, при этом смертность у эмбрионов составляет 95% [202]. Наиболее чувствительна для репродукции вируса является хориоаллантоисная оболочка 9-11 дневных эмбрионов [132]. Вирус может быть последовательно адаптирован к инокуляции через аллантоисный или желточный мешок. При наличии вируса эмбрионы погибают на 3-4 день после заражения. При этом отмечают гиперемию и точечные кровоизлияния в области головы и конечностей, отек живота, увеличение печени и отставание эмбриона в росте. Селезенка увеличена, бледная, с некротическими очажками на поверхности. Сердечная мышца бледная. Наибольшее накопление вируса в курином эмбрионе отмечается в хориоаллантоисной оболочке (ХАО) и теле эмбриона, особенно в вируса можно применять 24-48 ч культуру клеток куриных эмбрионов. Репликация вируса происходит в В-лимфоцитах, поэтому для выделения вируса

лучше использовать первичные клетки. Несмотря на то, что их репликация может происходить в оплодотворенных яйцах или В-лимфоцитах, они не могут быть легко адаптированы к клеткам фибробластов куриного эмбриона или клеткам других органов, таких как почки и печень [151, 161]. ЦПД вируса ИББ наступает через 48-96 ч и характеризуется образованием в монослое пустот, округлых клеток, с последующим цитолизом и пикнозом ядер, деструкцией клеточного монослоя и отслоением его от стекла [ 208].

Для постановки биопробы на цыплятах с целью выделения вируса, изучения его патогенности и экспериментального воспроизведения болезни, заражают цыплят 20-25 —суточного возраста, не имеющих антител к вирусу. Для этого используют гомогенат пораженной фабрициевой сумки, селезенки или почек. Вирус вводят интраназально, per os, на конъюнктиву или в фабрициеву сумку [48, 72, 119, 155]. Оценку результатов биопробы учитывают по динамике падежа, по клиническим проявлениям болезни, патологоанатомическим изменениям, по наличию специфических антител в сыворотке крови. Главным условием для постановки данной пробы является наличие SPF-цыплят, свободных от материнских антител и других патогенных агентов [48]. Клинические симптомы на 3-й день, и обширное поражение бурсы наблюдается на 4-й день. Вирус ИББ успешно выделяется от зараженных цыплят до 14-го дня после заражения [135]. При инокуляции слабовирулентного вируса ИББ симптомы болезни и видимые патологоанатомические изменения в органах и тканях могут не развиваться. В этом случае для диагностики болезни Гамборо используются серологические методы исследования: РН, ИФ, РДП, РНГА, ELISA и ПЦР [18, 68, 102, 110, 133, 146,152, 163, 220, 223, 227].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Гетманова, Екатерина Александровна, 2017 год

6. Список литературы

1. Абраменко Т. В. Разработка метода экспресс-диагностики чумы плотоядных на основе реакции латекс- агглютинации / Т. В. Абраменко, В. А. Алешкин, М. А. Мягкова // Вопросы вирусологии.- 1999.- №1.- С. 44-46.

2. Александер С. К. Определение титров противокоревых антител в реакции латекс - агглютинации / С. К. Александер // Вопросы вирусологии. -1992. - Т. 37, №5-6.- С. 259-261.

3. Александрова И. П. Разработка метода латекс-агглютинации для диагностики синегнойной инфекции/ И. П. Александрова , Н. Г. Анцифирова, А.Д. Александров, А. Ф. Мороз // ЖМЭИ.- 1986.-№4.- С. 1014.

4. Алиев, А.С. Биологические и физико-химические свойства вируса инфекционного бурсита/ А.С. Алиев , Ф.С. Кудрявцев , Н.П. Зеленская // Ветеринария. - 1986.- №7.- С. 36-38.

5. Алиев А. С. Иммунофлуоресцентный метод диагностики инфекционной бурсальной болезни: дис.... канд. вет. наук: / А. С. Алиев -Л., 1982.-173 с.

6. Алиев А.С. Инфекционная бурсальная болезнь птиц // А. С. Алиев. - Спб., 2010. - С.5-6.

7. Алиев, А.С. Биологические и физико-химические свойства вируса инфекционного бурсита/ А.С. Алиев , Ф.С. Кудрявцев , Н.П. Зеленская // Ветеринария. - 1986.- №7.- С. 36-38.

8. Алиев А. С. Лабораторная диагностика инфекционного бурсита кур / А. С. Алиев, Ф. С. Кудрявцев, Э. Д. Джавадов // Ветеринария.- 1990. - № 5.- С. 3739.

9. Алиев А. С. Методические рекомендации по диагностике инфекционной бурсальной болезни птиц // А. С. Алиев.- СПб., 1995.- С. 3-10.

10. Ашмарин, И.П.,. Быстрые методы статистической обработки и планирование экспериментов/ И. П. Ашмарин, Н. Н. Васильев, В. А. Амбросов // Л.: Изд-во ЛГУ: Л., 1975.- 78 с.

11. Бакулин В. А. Болезни птиц / В. А. Бакулин // СПб: издательский код по ОКВЭД 22.11.1, 2006. - С.164-166.

12. Бакулин В. А. Патоморфология инфекционного бурсита/ В. А. Бакулин, Ф. С. Кудрявцев, Л. А. Радчук // Ветеринария.- 1982. - №3. -С. 37-39.

13. Бакулин В.А. Патоморфогенез и патоморфологическая диагностика инфекционной бурсальной болезни птиц: автореф. дисс... док. вет. наук : / В. А. Бакулин - Санкт- Петербург, 1992. - 35с.

14. Бакулин В.А. Эпизоотология и патоморфология "гидроперикардита" цыплят [Аденовирусный гепатит и ассоциация "гидроперикардита" с болезнью Гамборо у бройлеров]/В. А. Бакулин, Е.Г. Аксенова, Т. И. Горецкая // Ветеринария.-1998.- №8. - С. 17-19.

15. Басырева Л.Ю. Создание диагностических тест- систем на основе полимерных суспензий и факторы, определяющие их чувствительность и специфичность: дисс. ... канд. хим. наук: / Л. Ю. Басырева - М.,1994.

16.Бекер М.Е. Биотехнология // М. Е. Бекер, Г. К. Лиепиньш, Е. П. Райпулис.-М.: Агропромиздат, 1990. - 334 с.

17. Бирман Б.Я. Методические указания по диагностике инфекционной бурсальной болезни // Б. Я. Бирман, В. П. Голубничий, В. С. Литвяк, И. В. Насонов, Н. В. Захарик. - Минск, 1998. - 46 с.

18. Борисов А. В. Соврем. аспекты патологии животных // А. В. Борисов, А. А. Гусев, В. В. Дрыгин. - Владимир, 1999.- С. 118-126.

19. Борисов А.В. Штаммовая дифференциация вируса ИББ на основе ПЦР и прямого секвенирования / А. В. Борисов, Л. О. Щербакова, В. В. Дрыгин, А. А. Гусев // Современные аспекты ветеринарной патологии животных. -Владимир,1998.- С.203-215.

20.Боско О.У Тест-система на основе полимерных микросфер для лабораторной диагностики ИБК: дис. ... канд. вет. наук: /О. У Боско- М., 2002. - 138 с.

21. Бровкина А.Н. Разработка метода и теста-системы выявления бактерий рода Salmonella на основе латекс-агглютинации / А. Н Бровкина // Научный журнал КубГАУ - 2011.- №72(08).- С. 1-9.

22. Быков В.А. Полимерные микросферы в диагностике. Учебное пособие / В. А. Быков. - М., 2004.

23. Васильев А. В. Разработка и совершенствование экспресс-методов для серодиагностики вирусных инфекций животных: автореф. дис. ... док. биол. наук: / А. В. Васильев - М., 2000.

24. Виноходов В. О. Болезнь Гамборо-национальная проблема отечественного птицеводства/ В. О. Виноходов // Ветеринария.-2007.- №1 (30).-С. 4-15.

25.Волков М. С. Применение синтетических микроносителей в диагностике микоплазмозов птиц / М. С. Волков, В. Н. Ирза, Т. Ю. Черняева, А. В. Борисов // Ветеринария.- 2010.- №10. - С. 60-63.

26. Волков М. С. Применение латексных антигенов в диагностике микоплазмозов птиц/ М. С. Волков, В. Н. Ирза, Т. Ю. Черняева // Труды федерального центра охраны здоровья животных.-2011.- Т. 9.- С. 228-236.

27. Воробьева З. Г. Метод латекс-агглютинации для выявления иммуноглобулинов класса М / З. Г. Воробьева, Т. В. Блинова // Клиническая лабораторная диагностика.-2000.-№5.-С. 44-46.

28. Воробьева З. Г. Определение иммуноглобулинов класса М реакции агглютинации латекса / З. Г. Воробьева, А. Н. Бурко, Т. В. Блинова // Клин. Лаб. Диагн..- 1999.- №5.- С.54-56.

29. Воробьева З. Г. Определение концентрации иммуноглобулинов с помощью реакции агглютинации латекса / З. Г. Воробьева, Т. В. Блинова // Клиническая лабораторная диагностика.-2000.-№2.-С. 20-22.

30. Воробьева З.Г. Реакция латекс-агглютинации для диагностики туберкулеза крупного рогатого скота/ З. Г. Воробьева, А Л. Лазовская, Ю. В.Лукин // Ветеринария.-1996.-№4.- С. 27-28.

31. Воробьева З. Г. Экспериментальные основы реакции латекс-ааглютинации / З. Г. Воробьева, Е. Н. Фокина // Клиническая лабораторная диагностика.-1992.-№7-8.-С. 60-62.

32. Георгиу Х. Применение иммуноферментного анализа при диагностике токсоплазмоза и саркоцистоза/ Х. Георгиу // Вестн. ветеринарии.- 1999.-№13(2).-С. 59-63.

33.Гизатулина Н.М. Способ экспресс-диагностики туберкулеза на основе латекс агглютинации/ Н. М. Гизатулина, И. Р. Головлев // Б.И.- 1999, 14 - С. 566.

34. Горбачев Е.Н. Разработка агглютинационного латексного теста для обнаружения возбудителей из группы кишечных инфекций/ Е. Н. Горбачев, А. И. Артюхов, Ф. С. Носков, Ю. В. Лукин // Актуальные вопросы медицинской биотехнологии.- Томск, 1991.- С. 151-152.

35. Грицкова И. А. Адсорбция белков на полистирольных микросферах и постановка реакции латекс-агглютинации / И. А. Грицкова, П. В. Нусс, Е. А.Дорохова, С. А. Гусев, И. Г. Крашенинникова, Д. И. Аль-Хаварин // Коллоидный журнал. -1994.- Т. 56, № 4.- С. 491-495.

36. Грицкова И.А. Полимерные микросферы в диагностике. Учебное пособие / И. А. Грицкова, Н. И. Прокопов, В. А. Быков. -М.: Научно-исслед. и учеб.-метод. центр БМТ ВИЛАР, 2005. - 137с.

37. Гусев С.А. Сравнительная оценка пассивного иммунитета против ИББ у цыплят, полученных от непривитых и вакцинированных кур/ С. А. Гусев, Т. В. Оковытая, Н. С. Мудрак, А. В. Борисов, К. Ю. Федосеев, З. Я. Михалишина, М. В. Гирин , А. А. Гусев, В. В. Дрыгин // Соврем. аспекты веет. патологии животных. - Владимир, 1998. - С. 192-196.

38. Демина А. А. Специфические латекс-препараты в этиологической диагностике гнойных бактериальных менингитов/ А. А. Демина, Т. В.Ильина // ЖМЭИ.-1985.-С. 3-6.

39.Джавадов Э.Д. Диагностика иммунодефицита птиц (иммунологические методы) / Э. Д. Джавадов, Ф. И. Полежаев, В. Л. Пастушенков // Ветеринария.- 2003, № 10.- С. 11-13.

40. Джавадов Э.Д. Иммуноферментный метод диагностики болезни Гамборо: дис. ... канд. вет. наук: 16.00.03 / Джавадов Эдуард Джавадович - Л., 1988.126 с.

41. Джавадов Э.Д. Методические рекомендации по применению иммуноферментного анализа для диагностики инфекционной бурсальной болезни / Э. Д. Джавадов, А. С. Алиев, Ф. С. Кудрявцев.- Л.,1988.- С. 3-14.

42. Доронин М.И. Выявление антигенов вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб с помощью метода латекс-агглютинации / М. И. Доронин, В. А. Пыльнов, Н. А. Назаров, С. С. Рыбаков // Ветеринария.- 2014.-№9.- С.56-61.

43. Дрыгин В.В. Молекулярная эпизоотология некоторых вирусных болезней птиц на территории Российской Федерации: на примере болезней Гамборо, Ньюкасла, ССЯ-76 и инфекционного бронхита кур/ В. В. Дрыгин, В. В. Борисов, С. К. Старов , А. В. Борисов, А. А. Гусев //Состояние, пробдемы и перспективы развития ветеренарной науки России.-М.,1999.-Т.2.-С.220-224.

44. Егоров А.М., Теория и практика иммуноферментного анализа / А. М. Егоров, А. П. Осипов, Б. Б. Дзантиев // М. : Высш. шк., 1991.-288 с.

45. Ерусланов Б. В. Латексная тест-система для быстрой серологической диагностики лептоспироза у животных / Б. В. Ерусланов // Ветеринария. -2014.-№3.- С. 24-28.

46. Калнек Б. У Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц // Б. У Калнек. - 2003. - С. 829-830.

47. Кирилов А. И. Кокцидиозы птиц // А. И. Кирилов. -М.:[б. и.], 2008.-229 с.

48. Клюкина В.И.Промышленные технологии производства тест-систем для диагностики инфекционных болезней свиней: Автореф.дисс. д-ра био. наук.-Щелково, 2002.-50с.

49.Кононенко А. Б. Вопросы ветеринарной дезинфекции на современном этапе / А. Б. Кононенко, Д. Ш. Булатова, В. Н. Сологуб // Труды ВНИИВС.- М.: 1984.-____с.

50. Красников Г.А. Гистологические исследования Фабрициевой бурсы при болезни Гамборо / Г. А. Красников, В. В. Герман, И. И. Берхане, Л. А. Ольховик // Ветеринария. - 1996. - № 2. - С. 21- 25.

51. Кудрявцев Ф. С. Иммунофлуоресцентный метод диагностики инфекционной бурсальной болезни: Методические рекомендации // Ф. С. Кудрявцев, А. С. Алиев.- Л.: 1982.-10 с.

52. Кудрявцев Ф. С. Иммуноингибирующее действие вируса болезни Гамборо/ Ф. С. Кудрявцев, С. А. Барышников, Л. А. Радчук // Ветеринария.- 1981. -№3. - С. 36-37.

53. Кудрявцев Ф. С. Иммунопрофилактика инфекционного бурсита / Ф. С. Кудрявцев, А. С. Алиев // Ветеринария.- 1984. - № 5.-С.37-39.

54. Лагуткин Н. А. Инфекционная бурсальная болезнь птиц / Н. А. Лагуткин, И. Ф. Вишняков // Вет. Газета.- 1996.-№ 14.- С. 4.

55. Лакин Г. Ф. Биометрия : учеб пособие / Г. Ф. Лакин // - 3-е изд., перераб. и доп.- М.: Высш.школа. -1980.-293с.

56. Левковитс И. Методы исследований в иммунологии / И. Левковитс, Б. Пермис // М.: Мир, 1981.- Т. 1.- 485 с.

57. Ленинджер А. Биохимия / А. Ленинджер // М.: Мир, 1974. - 957с.

58. Лисенкова А.С. Экспресс-метод диагностики метопневмовирусной инфекции птиц на основе иммуноферментного анализа: дис. ... канд. вет. наук/А. С. Лисенкова. - Санкт-Петербург, 2013. - 115 с.

59. Лукин Ю. В. Метод латекс-агглютинации для выявления иммуноглобулинов класса М / Ю. В. Лукин, В. Л. Трифонов, С. И. Туркин, В. П. Зубов // Тр. МХТИ.-1985. Вып. 135.- с. 1892.

60. Макарян Э. А. Биотехнологические экспресс-методы в микробиологии и вирусологии: автореферат дис. ... докт. биол. наук. / Э.А. Макарян.- Тверь, 2011.- С. 19.

61. Матвеев А. Г. Латекс - агглютинационный экспресс- диагностикум на основе неорганического пигмента / А. Г. Матвеев, А. Г. Мешандин // VI Всероссийский съезд эпидемиологов, микробиологов и паразитологов: тезисы докладов. -Нижний Новгород, 1991.-Т. 2.- С. 226.

62. Милютина Л. Н. Диагностика сальмонеллеза у детей с помощью теста

латекс-агглютинации / Л. Н. Милютина // Тез. Докл. VI Всеросс.

Съезда Микробиол., Эпидем. и Паразитол. - М. , 1991. - Т. 1.- С. 108-109.

63. Милютина Л.Н. Применение теста латекс-агглютинации для экспресс-диагностики сальмонеллеза у детей / Л. Н. Милютина, Ю. Я. Тендетник // ЖМЭИ.-1994.- №3-С. 73-78.

64. Мудрак Н.С. Сравнительная оценка ИФА и РДП в диагностике ИББ/ Н. С. Мудрак, К. Ю. Федосеев, Т. В. Оковытая, В. Н. Кузнецов, А. В. Борисов // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф.-Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - С. 246.

65. Назаров Н. А. Латекс-агглютинационный тест для диагностики бешенства животных / С. С. Рыбаков, А. Е. Метлин // Ветеринария.- 2013.- №6.-С. 5661.

66. Нестеренко Л.Н. Руководство по диагностике инфекционных заболеваний методом полимеразной цепной реакции [под ред. А.Л. Гинцбурга] // Л. Н. Нестеренко, Н. А. Зигангирова, О. В. Попова - М.:1998.-26с.

67. Никонова З.Б. Разработка и применение методов диагностики метапневмовирусной инфекции птиц: автореф. дис. ... канд. биол. наук: 03.02.02 / Никонова Зоя Борисовна. - Владимир, 2012. - 25 с.

68. Новиков Б. В. Влияние вируса Гамборо и В-активина на формирование иммунитетау цыплят против ньюкаслской болезни / Б. В. Новиков, В. В. Дмитренко // Вопросы вет. вирусологии, микробиологии и эпизоотологии. -1992.- №1 -С. 166- 167.

69. Норкина С. Н. Диагностика и иммуномониторинг инфекционной бурсальной болезни (болезни Гамборо) в птицехозяйствах / С. Н. Норкина // Состояние, пробл. и перспективы развития вет. Науки России.-М., 1999.-Т. 2.-С. 268-270.

70. Опалейчук И. С. Использование реакции агглютинации латекса для диагностики бруцеллезной инфекции / И. С. Опалейчук, Н. С. Умнова, М. М. Желудков // Журн. микробиол.-1991.-№7.-С. 61-63.

71. Парфенова Е. В. Приготовление латексных диагностикумов на основе поверхностных антигенов Candida Tropicalis / Е. В. Парфенова, Н. В. Прокопов, В. Р. Черкасов // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии.- 1994.-С. 97-99.

72. Перадзе Т. В. Реакция агглютинации латекса / Т. В. Перадзе, П. Халонен // Иммунологическая диагностика вирусных инфекций.- М.: Медицина, 1985.301 с.

73. Радчук Л. А. Диагностика болезни Гамборо / Л. А. Радчук, Ф. С. Кудрявцев. - Л.,1980.- №1.- С. 68-69.

74. Радчук Л.А. Цитопатическое действие вируса инфекционной бурсальной болезни (болезни Гамборо) на культуру клеток куриных фибробластов / Л. А. Радчук, Ф. С. Кудрявцев, В. Н. Сюрин // Передовой научно-производственный опыт в птицеводстве.- М., 1976. - №11.- С. 29-32.

75. Рождественская Т. Н. Результаты сравнительной оценки опытной вакцины "Авивак-сальмовак-3" и зарубежных аналогов / Т. Н. Рождественская, С. С. Яковлев, В. В. Борисов, С. А. Емельянова, Э. А. Светоч, В. А. Борзенков, Б. В. Ерусланов, С. В. Смолов, Е. В. Аракелян // Иновационное обеспечение яичного и мясного птицеводства России: тезисы докл. Матер. XVII Междунар. конф. - Сергиев Посад, 2015.- С. 504-506.

76. Ройт А. Иммунология// А. Ройт, Д. Бростофф, Д. Мейл - М. : Мир, 2000. -592 с.

77. Рудник М. П. Применение реакции агглютинации латекса для выявления туляремийного микроба / М. П. Рудник, А. А. Вейде // Актуальные проблемы профилактики туляремии: тез. докл. Всерос. Съезда Микробиол., Эпидем. и Паразитол (15-17 Октября). - Н. Новгород, 1991. - Т. 1. - С. 14-15.

78. Сергеев В.Д. Методические рекомендации по очистке и концентрированию аденовирусов птиц // В. Д. Сергеев, И. К. Рождественский - Л., 1988.- 30 с.

79. Сонин П. Ф. Лабораторная диагностика вирусных болезней у животных: учебно-методическое пособие.-4-е изд. // П. Ф. Сонин -Спб: 2001.-91 с.

80.Станишевский Я.М. Создание тест-систем для безаппаратной диагностики динамических макромолекулярных маркеров / Я. М. Станишевский // Фармацевтическая технология и нанотехнологии разработка и регистрация лекарственных средств.- 2014.- №3(8) -С. 1-10.

81. Сюрин В.Н. Ветеринарная вирусология // В. Н. Сюрин, Р. В. Белоусова, Н. В. Фомина -М.: Агропромиздат, 1991.- С.376.

82. Сюрин В. Н. Вирусные болезни животных // В. Н. Сюрин, А. Я. Самуйленко, Б. В. Соловьев , Н. В. Фомина. -М.: ВНИТИБП, 2001.- С. 65-83.

83. Сюрин В. Н. Вирусные болезни животных / В. Н. Сюрин // Учеб. пособие.-М. : ВНИТИБП, 1998. -С.17-20.

84.Сюрин В.Н. Диагностика вирусных болезней животных // В. Н. Сюрин. - М: ВО "Агропромизд", 1991.

85. Терентьев П.В. Практикум по биометрии // П. В. Терентьев, Н. С. Ростова. -Л., 1977.-151 с.

86. Тыщенко И. П. Применение реакции латекс-агглютинации для индикации миелинспецифических антител в сыворотке крови кур при болезни Марека / И. П. Тыщенко, Э. Д. Джавадов // Всесоюзный научно-исследовательский ветеринарный институт птицеводства: тезисы докладов Всесоюз. Конф. -Ломоносов, 1990.- С. 2-4.

87. Тыщенко Е. П. Серологическая диагностика болезни Марека / Е. П. Тыщенко, Э. Д. Джавадов // Ветеринария.- 1991.- №9.- С. 33-36.

88. Угрюмцева Т.И. Разработка экспресс-метода лабораторной диагностики инфекционного гепатита собак: дисс. ... вет.наук / Татьяна Игоревна Угрюмцева.- Павлодар, 2004.- с. 125.

89.Фикс Л. И. Разработка и апробация реакции латекс-агглютинации для экспресс-диагностики стафилококковой инфекции / Л. И. Фикс, Л. В. Иноземцева, Л. Т. Мусина, Н. А. Семина, Л. И. Райхер, И. И. Райхер, Л. Ю. Смурова // ЖМЭИ.- 1995.-№6.- С. 73-74.

90. Фикс Л.И. Разработка и апробация реакции латекс-агглютинации для экспресс-диагностики стафилококковой инфекции //ЖМЭИ.- 1995.-№6-С. 73-74.

91. ФирсоваТ.Е. Ранняя диагностика заболеваний и индикация возбудителей при помощи латекс-агглютинации / Т. Е. Фирсова // Вестник РАСХН.- 2004.-№ 5.- С.15-16

92. Фримель Г. Иммунологические методы // Г. Фримель.- М.: Медицина, 1987. - 472с.

93. Фримель Х. Иммунологические методы // Х. Фримель. -М.: Мир, 1979.-518 с.

94.Чайка Н.А. Применение реакции агглютинации сенсибилизированного латекса для диагностики вирусных инфекций / Н. А. Чайка, Е. Н. Горбачев // Вопросы вирусологии.-1985.-№5.- С. 516-523.

95. Чайка Н. А. Реакция агглютинации латекса / Н. А. Чайка // ВНИИМИ.-1982.-С. 14-25.

96. Ясин А. Е. Сравнительная оценка некоторых серологических методов диагностики вирусного гепатита А / А. Е. Ясин, И. Ф. Баринский, И. П. Павлова // Вопросы вирусологии.- 1981.-№1.-С. 120-122.

97. Allan W. H. Immunosuppression by the infectious bursal agent in chickens immunized against Newcastle disease / W. H. Allan, J. T.Faragher, G. A. Cullen // Vet. Rec. - 1972. T. 90. - P. 511-512.

98. Avrameas S. Indirect immunoenzyme techniques for the intracellular detection of antigens /S. Avrameas // Immunochem.-1969.- Vol. 6.-P. 825-831.

99. Azad A.A. The characterization and molecular cloning of the double-stranded RNA genome of an Australian strain of infectious bursal disease virus/ A.A.Azad, S.A. Barret, K.J. Fahey // Virology. - 1985. - Vol. 143.- P. 35-44.

100. Azad A.A. Deletion mapping and expression in Escherichia coli of the large genomic segment of a bimavims / A.A. Azad, M.N. Jagadish, M.A. Brown, P.J. Hudson // Virology-1987. -Vol. 161.- P. 145-152.

101. Bech H. Infectious bursal disease virus / H. Bech // Curr Top Micribiol Immunol.- 1980.- Vol. 90.- P. 107- 121.

102. Becht H. Comparative studies on structural and antigenic properties of two serotypes of infectious bursal disease virus / H. Becht, H. Muller , H. Miller // J. Gen Virol.- 1988. -Vol. 69.- P. 631-640.

103. Berg N. W. Rapid detection of infectious bursal disease antibodies by counterimmunoelectrophoresis / N. W. Berg // Avian Pathol.-1982. -Vol. 11, №4-P. 611-614.

104. Bolin V. Epidemiology of viral hepatitis / V. Bolin , B. Chase , J. Alsever // Amer. J. Clin. Path.- 1968. -Vol. 49. P. 635-648.

105. Briggs D. J. Application of the positive/negative ratio method of analysis to quantitate antibody responses to infectious bursal disease virus using a commercially available ELISA / D. J. Briggs, C. E. Whitfill, J. K. Skeeles, J. D. Story, K. D. Reed // Avian Dis. -1986.-Vol. 30. -P. 216-218.

106. Brown F. The classification and nomenclature of viruses: Summary of results of meetings of the International Committee on Taxonomy of Viruses in Sendai / F. Brown // Intervirilogy.- 1986. -Vol. 25.- P. 141-143.

107. Camargos P.A.M. Latex particle agglutination-test in the diagnosis of Haemophilus -Influenzae Type B, Streptococcus-Pneumoniae and Neisseria-Meningitidis A and Neisseria-Meningitidis C in infants and children / P.A.M. Camargos, M. S. Almeida, I. Cardoso // J. Clin. Epidemiol.- 1995. -Vol. 48. Iss. 10. -P. 1245-1250.

108. Casnocha E. Vyskyt choroby Gumboro, resp. infekcnej bursitidyv prodmienkach vykrmu brojlerovych kurciat / E. Casnocha // Veterinarstvi.-1980. -R. 30, C. 3.- S. 128-131.

109. Casstellano G. A. Comparison of the enzyme-linked immunosorbent assay and the indirect hemaagglutination test for detection of antibody to cytomegalovirus / G. A. Casstellano, D.L. Madden, G. T. Hazzard, J. L. Sever // J. Infect. Dis.-1981.- Vol. 143. - P. 578-584.

110. Cessi D. Infectious bursal disease and its control in Italy/ D. Cessi , G. Gualandi // Bull off Int. Eppizzt.- 1977.- Vol.88.- P. 255-266.

111. Chai Y. F. Evaluation of serological, histological and immunocytochemical methods for the detection of infectious bursal disease virus infection in broiler flocks in New Zealand / Y. F. Chai, J. Meers, N. H. Christensen // N. Z. veter. J.-1999. -Vol. 47, №5.-P.-175-179.

112. Changhong Y. Poly(styren-co-acrolein) latex particles: copolymerization and characteristics / Y. Changhong , X. Zhang , Z. Sun, H. Kitano, N. Ise // J. of Appl. Polym. Sci.- 1990. -Vol. 40. - P. 89-98.

113. Cheville E. N. Studies on the pathogenesis of Gumboro disease in the bursa of Fabricius , spleen and thymus of the chicken / E. N. Cheville // Amer. J. Pathol.-1967.- Vol. 51, №4.- P. 527-551.

114. Cosgrove A.S. An apparently new disease of chickens- avian nephrosis / A.S. Cosgrove // Avian. Dis.- 1962. -Vol. 6.- P. 385-389.

115. Cursiefen D., Kaufer I., Becht H. Loss of virulence in a small plaque mutant of the infectious bursal disease virus / D. Cursiefen ,I. Kaufer, H. Becht // Arch. Virol. -1979. -Vol. 59. №1-2. -P. 39-46.

116. Dobos P. Biophysical and biochemical characterization of five animal viruses with bisegmented double- stranded RNA genomes/ P. Dobos, B. J. Hill, R. Hallet , D. T. Kells , H. Becht, D. Teninges // J. Virol.- 1979. -Vol. 32.- P. 593-605.

117. Dobos P. Peptide map comparison of the proteins of infectious bursal disease virus / P. Dobos // J. Virol.-1979. -Vol. 32.- P. 1046-1050.

118. Dorman L. C. Method for covalent coupling of a protein molecules onto amide containing polymer particles/ L. C. Dorman // US Pat.- 1977 -№ 4046723.

119. Dorman L. C. Method for forming an amide bound between a latex and protein / L. C. Dorman // US Pat.-1976.- № 4045384.

120. Fadly A. M. Pathogenesis of infectious bursal disease in chickens infected with virus at various ages/ A. M. Fadly, K. Nazerian // Avian Dis. - 1983. -Vol. 27, №3- P. 714-723.

121. Giambrone J.J. Effects of early infectious bursal disease virus infection on immunity to Newcastle disease in adult chickens / J.J. Giambron //Poultry Sci.-1979.- Vol.58, №4 -P. 794-798.

122. Giambrone J.J. Effects if infectious bursal disease on the response of chickens to Mycoplasma synoviae, Newcastle disease virus, and infectious bronchitis virus

/ J.J. Giambrone, C. S. Eidson, S. H. Kleven // Amer. J. Veter. Res.- 1977.- Vol. 38, №2.- P. 251-253.

123. Giambrone J.J. Effect of infectious agent bursal on the response of chickens to Newcastle disease and Marek's disease vaccination/ J.J. Giambrone , C. S. Eidson , R. K. Page // Avian Dis.- 1976.- Vol. 20, №3.- P. 534-544.

124. Gonzales A.A. Subclinical infectious bursal disease as a possible cause of increased disease problem in broiler flocks in the Philippines/ A.A. Gonzales // Phillip. J. Anim.-1982. -Vol.37,№1-4.-P.85-88.

125. Hager H. J. Latex polymer reagent for diagnostics tests/ H. J. Hager // US Pat.- 1974- № 3857931.

126. Hassan M.K. Pathogenicity, attenuation, and immunogenicity of infectious bursal disease virus/ M.K. Hassan, M.Q. Al- Natour , L.A. Ward , YM. Saif // Avian. Dis. - 1996. -Vol. 40, № 3. - P. 567- 571.

127. Hassan M.K. Comparison between antigen- capture ELISA and conventional methods used for titration of infectious bursal disease virus/ M.K. Hassan , Y.M. Saif , S. Shawky // Avian Dis. - 1996. -Vol. 40, № 3. - P. 562- 566.

128. Hassan M. K. Very virulent infectious bursal disease virus in Egypt: epidemiology, isolation and immunogenicity of classic vaccine/ M. K. Hassan // Veterinary Research Communications; Dordrecht.- 2004.- Vol. 28, № 4.- P. 347356.

129. Helmboldt C. Experimentally induced Gumboro disease (IBA)/ C. Helmboldt , E. Garner // Avian. Dis. - 1964.- P. 561-575.

130. Hirai K. In vitro replication of infectious bursal disease virus in established lymphoid cell lines and chicken B-lymphocytes/ K. Hirai, B.W. Calnek // Infect. Immun. - 1979.- Vol. 25, №3.- P. 964-970.

131. Hirai K. Sequential changes in the number of surface immunoglobulin-bering B-lymphocytes in infectious bursal virus-infected chickens/ K. Hirai , T. Funakoshi, T. Nakai , S. Shimakura // Avian Dis.- 1981.-Vol. 25, №2.- P. 484-496.

132. Hirai K. Structure of infectious bursal disease virus / K. Hirai , S. Shimakura // J. Virol.- 1974. -Vol. 14.- P. 957- 964.

133. Hitchner S.B. Infectivity of infectious bursal disease virus for embryonating eggs / S.B. Hitchner // Poult Sci-1970. -Vol. 49.- P. 511-516.

134. Howie R. An enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for infectious bursal disease virus/ R. Howie, J. Thorsen // Can. J. comp. Med.-1981. -Vol. 45, №1.-P. 51-55.

135. Hudson P. J. Genomic structure of the large RNA segment of infectious bursal disease virus nucleic / P.J. Hudson, M.N. McKern , B.E. Power , A.A. Azad // Acids Res-1986. -Vol. 14.- P. 5001-5012.

136. Ide P. R. A comparison of gel diffusion, fluorescent antibody and virus isolation methods in experimental and natural cases of infectious bursal disease / P. R. Ide // Can. J. comp. Med.-1975. -Vol. 39, №2.-P. 183-190.

137. Ismail N. Infectious bursal disease virus variant from commercial leghorn pullets/ N. Ismail, Y. M. Saif, W. L. Wigle , G. B. Havenstein , C. Jackson // Avian Dis. -1990.- Vol. 34.- P. 141-145.

138. Jackwood D. J. Prevalence of antibodies to infectious bursal disease virus serotypes I and II in 75 Ochio chicken flocks/ D. J. Jackwood , I. M. Saif // Avian Dis.- 1983.- Vol. 27.- P 850- 854.

139. Jackwood D. J. Nucleic acid and structural proteins of infectious bursal disease virus isolates belonging to serotypes I and II / D. J. Jackwood , Y M. Saif , J. H. Hughes // Avian Dis.- 1984.- Vol. 28.- P. 990-1006.

140. Jen L.-W. Effects of infectious bursal disease on Marek's disease vaccination: Suppression of antiviral immune response/ L.-W. Jen, B.R. Cho // Avian. Dis.-1980.- Vol.24, №4.-P. 896-907.

141. Johansen L. The new latex agglutination test kit for immunological assay/ L. Johansen, K. Nustad, T. B. Orstavik , J. Ugelstad , A. Berge , T. Ellengsen // J. Immunol. Methods.- 1983. -№ 59.- P. 255-264.

142. Kasempimolporn S. Detection of virus antigen in dog saliva using a latex agglutination test/ S. Kasempimolporn, W. Saengsesom , B. Lumlerrtdacha , V. Sitprija //J. Clinical Microbiology.- 2000. -Vol. 38, №8.- P. 3098-3099.

143. Kaufer I. Significance of bursa Fabricius as target organ in infectious bursal disease of chickens/ I. Kaufer , E. Weis // Infect. Immunal.-1980. -Vol. 27,№2.- P. 364-367.

144. Kawamura H. Growth of infectious bursal disease virus in established cell lines from lymphoid leukosis tumors/ H. Kawamura, S. Yamaguchi // VII th International Congress of the World Veterinary Association. Olso-Norway: 1981. July 1-3. - P. 34.

145. Khatri M. Response of embryonic chicken lymphoid cells to infectious bursal disease virus/ M. Khatri , J. M. Sharma // Veterinary Immunology and Immunophology.-2009. -Vol. 127, №3/4.-P. 316-324.

146. Kim I. -J. Enhanced expression of cytokine genes in spleen macrophages during acute infection with infectious bursal disease virus in chickens / I.-J. Kim , K. Karaca , T. L. Pertile , S.A. Erickson , J.M. Sharma // Veter. Immunol. Immunopathol.-1998.- Vol. 61. №2/4.- P. 331-341.

147. Kulkarni D. D. Detection of infectious bursal disease virus in tissues of infected chicks by immunofluorescent and immunoperoxidase technique/ D. D. Kulkarni, M. N. Kulkarni, M. B. Gujar // Indian J. anim. Sci.-1983.- Vol. 53, №2.-P. 222-224.

148. Kurzer F. Advances in the chemistry of carbodiimides / F. Kurzer , K. Douraghi-Zadeh // Chem. Rev. -1967. -Vol. 67.- P. 107.

149. Lasher H.N. History of infectious bursal disease in the U.S.A - the first two decades/ H.N. Lasher , V.S. Davis // Avian-dis. - 1997. -Vol. 41, № 1. - P.11- 19.

150. Lin Z. A new typing method for the avian infectious bronchitis virus using polymerase chain reaction and restriction enzyme fragment polymorphism / Z. Lin, A. Kato, Y. Kudou // Arch. Virol. -1991. -Vol. 120.- P. 145-149.

151. Liu H. J. Tissue print hybridization and reverse transcriptase PCR in the detection of infectious bursal disease viruses in bursal tissues/ H. J. Liu // Res. in veter. Sc.-2000. -Vol. 68, №1.-P. 99-101.

152. Li Y P. Transcriptional profiles of chicken embryo cell cultures following infection with infectious bursal disease virus / Y. P. Li, K. J. Handberg, H. R. Juul-Madsen, M. F. Zhang, P. H. Jorgensen // Archives of Virology; N.-Y. -2007. -Vol. 152, №3.-P.463-478.

153. Lucio B. Infectious bursal disease emulsified vaccine: effect upon neutralizing antibody levels in the dam and subsequent protection of the progeny/ B. Lucio, S. B. Hitchner // Avian Dis.-1979.- Vol. 23, №2.-P. 466-478.

154. Mallick B.B. Impotance de la maladiae de Gumboro chez les volailles et role dans le developpement de L'immunite envers d'autres maladies mortelles telles que la maladiae de Newcastle / B.B. Mallick // Bull. Acad. Veter. Fr.- 1978. -T. 51, №2.- P. 269-278.

155. Mallinson E. T. Presumptive diagnosis of subclinical infections utilizing computer-assisted analysis of sequential enzyme-linked immunosorbent assays against multiple antigens / E. T. Mallinson, D. B. Snyder, W. W. Marquardt , E. Russek-Cohen , P. K. Savage , D. C. Alien, F. C. Yancey // Poult Sci. -1985. -Vol. 64.- P. 1661-1669.

156. Mandelli A. C. Diagnosi differenzale della bronchita infective (Bi) con particolare rignardo alla malattia di Gumboro/ A. C. Mandelli // Zootecn. avis.-№6.- P. 302-308.

157. Margel S. Characterization and chemistry of polyaldehyde microspheres/ S. Margel // J. of Polym. Sci., Polym. Chem. Ed.- 1984.- Vol. 22.- P. 3521-3533.

158. Margel S. Polychloromethylstyrene Microspheres - Synthesis and Characterization / S. Margel, E. Nov , I. Fisher // J. Polym. Sci., Polym. Chem. Ed. -1991.- Vol. 29 (3).- P. 347-355.

159. Margel S. Synthesis and characterization of poly(glutaraldehyde), a potential reagent for protein immobilization and cell separation / S. Margel, A. Rembaum // Macromol.- 1980.- №3. -P. 19-24.

160. Marquardt W. An indirect enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for measuring antibodies in chickens infected with infectious bursal disease virus/ W. Marquardt , R. B. Johnson , W. F. Odenwald, B. A. Schlotthober // Avian Dis.-1980. -Vol. 24.-P. 375-385.

161. McDonald R. D. Immunofluorescent detection of double- stranded RNA in cells infected with reovirus, infectious pancreatic necrosis virus, and infectious bursal disease virus/ R. D. McDonald // Can J. Microbiol.- 1980. -Vol. 26.- P. 256- 261.

162. McFerran J.B. Isolation serological studies with infectious bursal disease viruses from fowl, rurkey and duck: Demonstration of a second serotype / J.B. McFerran , M.S. McNulty , E.R. McKillop , T.J. Conner , R.M. McChacken , D.S. Collins, G.M. Allan // Avian Pathol.-1980. -Vol. 9.- P. 395-404.

163. Meroz K. H. H. The immunoperoxidase method for rapid diagnosis of Herpes simplex encephalitis( H. S. E) using touchpreparations /K. H. H. Meroz , M. Zimmer // Amer. J. Clin. Pathol.- 1982. -Vol. 77, № 5.- P. 605-607.

164. Meulemans G. Application de I'immunofluorescence au diagnostic de la maladie de Gumboro/ G. Meulemans, O. Antoine , P. Halen // Bull. off int. Epizoot.-1977. -Vol. 88, №4-5.-P. 225-229.

165. Millar D. Ubiquity of infectious bursal disease in east Texas backyard flocks/ D. Millar, S. Nagi // Poultry Sci.- 1980. -Vol. 59. №8. -P. 1949-1950.

166. Minta Z., Domanska - Blicharz K., Bartnicka B., Smietanka K. Applying immunoperoxidase and antigen-capture ELISA methods for rapidly diagnosing infectious bursal disease/ Z. Minta, K. Domanska - Blicharz , B. Bartnicka // Med. weter.-2006.- Vol. 62. №3.- P. 335-338.

167. Molday R. S., Dreyer W. J. New immunolatex spheres visual markers of antigen on lymphocytes for scanning electron microscopy / R. S. Molday , W. J. Dreyer // J. Cell. Biol. -1975.- № 64. -P. 74-88.

168. Morgan M.M. Sequence of the small double-stranded RNA genomic segment of infectious bursal disease virus and its deduced 90-k DA product / M.M. Morgan , I.G. Macreadie, V.R. Harley , P.J. Hudson, A.A. Azad // Virology-1988.- Vol. 163.- P. 240-242.

169. Muller H. Replication of infectious bursal disease virus in lymphoid cells / H. Muller // Arch. Virol. -1986.-Vol. 87, № 3-4.- P. 191-203.

170. Muller H. Genome of infectious bursal disease virus consists of two segments of double- stranded RNA / H. Muller , C. Scholtissek, H. Becht // J. Virol. -1979. -Vol. 31.- P. 584- 589.

171. Muller R. Fluoreszenzmikroskopiche Untersuchungen zur Vermehrung und Ausbreitung des Virus der infektiosen Birsitis des Huhnes (IBDV), Stamm Cu -1, bis 18 Stunden nach peroraler Infektion/ R. Muller // Inaug.-Diss. Gieben.-1977.-S. 1-31.

172. Muller R. Immunofluorescent studies of early virus propagation after oral infection with infectious bursae disease virus (IBDV)/ R. Muller , I. Kaufer , M. Reinacher , E. Weiss // Zbl. Vet. Med.-1979.- Jg. 26, №5.-S. 345-352.

173. Nagi E. Mapping of large RNA genome segment of infectious pancreatic necrosis virus by hybrid arrested translation/ E. Nagi, R. Duncan, P. Krell, P. Dobos // Virology. -1987.- Vol. 158.- P. 211-217.

174. Nagi S. Expression of viral arthritis- tenosynovitis infection in immunosuppressed chickens/ S. Nagi, R. Pugh , N. Sahin // Poultry Sci. -1984. -Vol. 63, №4.- P. 825-827.

175. Nick H. Structural and growth characteristics of infectious bursal disease virus/ H. Nick , D. Cursiefen , H. Becht // J. Virol.- 1976.- Vol. 18.- P. 227-234.

176. Nieper H. Susceptibility of chicken lymphoid cells to infectious bursal disease virus does not correlate with the presence of specific binding sites/ H. Nieper, H. Muller // J. Gen. Virol. - 1996.- Vol. 77, № 6. - P. 1229- 1237.

177. Okoye J. O. A. Persistence of infectious bursal disease virus and the appearance of precipitins in infected chickens / J. O. A. Okoye // Trop. Veter.-1985. -Vol. 2, №2.-P. 97-102.

178. Okoye J. O. A. Newcastle disease in vaccinated flock wich had experienced subclinical infectious bursal disease/ J. O. A. Okoye , S. V. Shoyinka // Trop. Anim. health and prod.-1983.- Vol. 15, №4.- P. 221-225.

179. Okoye J. O. A. Histopathogenesis of infectious bursal disease in bursa of Fabricius / J. O. A. Okoye, M. Uzoukwu // Trop.Veter. - 1984.- Vol. 2, z№2.- P. 91-96.

180. Okubo M. Preparation of micron-size monodisperse polymer microspheres having chloromtyl group / M. Okubo , K. Ikegami , Y Yamamoto // Coll. Polym. Sci. -1989.- Vol. 267. -P. 193-200.

181. Oladele O. A. Sequential hematological study of experimental infectious bursal disease virus infection in chickens, turkeys and ducks/ O. A. Oladele, D. F. Adene, T. U. Obi , H. O. Nottidge , A. I. Aiyedun // Rev. Elevage Med. veter. Pays trop.-2005. -Vol. 58, №4.-P. 211-215.

182. Ozel M. Capsid symmetry of viruses of the proposed bimavirus group/ M. Ozel, H. Gelderblom // Arch Virol.- 1985. -Vol. 84.- P. 149-161.

183. Pejkovski C. Immunosuppressive effect of infectious bursal disease virus vaccination against infectious bronchitis/ C. Pejkovski, F. G. Davelear, B. Konwenhoven // Avian. Hathol.- 1979. -Vol. 18, №1.- P. 95-106.

184. Peters G. Histology of Gumboro disease / G. Peters // Beri Munch Tierarztl Wochenschr. - 1967. - Vol. 80.- P. 394-396.

185. Peula-Garcia J. M. Interaction of bacterial endotoxine (lipopolysacharide) with latex particles: application to latex agglutination immunoassays/ J. M. Peula-Garcia , J. A. Molina-Bolivar , J. Velasco // J. Colloid and interface Sci.- 2002.-Vol. 245- P. 230-236.

186. Phillips W. E. Comparison of precipitin antibodies and virus-neutralizing antibodies to infectious bursal disease virus/ W. E. Phillips // Avian Dis. -1981.-Vol. 25. №4.- P. 1093-1097.

187. Pichot C. Latex structures et functionnalises/ C. Pichot // Bulletin de la Societe Chimique de france.-1987. -№4.- P. 725-733.

188. Provost A., Borredon C., Bocguet P. Deux maladies aviaries nouvelles au Tchad: La Laryngotracheite infectieuse et la maladies de Gumboro/ A. Provost, C. Borredon , P. Bocguet // Rev. Elevage Med. Veter. -1972. -T. 25, №3- P. 347-355.

189. Quash G. Method of a carboxylate latex producing / G. Quash // French.- Pat. № 2378094.- 1982.

190. Quash G. The preparation of latex particles with covalently bound polyamines , Ig G and measees agglutinins and their use in visual agglutination tests / G. Quash, A. Roch , A. Niveleau , J. Grenge , T. Keolouangkhot , J. Huppert // J. Immunol. Meth. -1978.- Vol. 166. -P. 219-226.

191. Rembaum A. Synthesis and characterization hydrophilic microspheres / A. Rembaum , M. Chang , J. Richards, Li.// J. Polym. Sci., Polym. Chem. Ed. -1984. -Vol. 22.- P. 609-619.

192. Riggenbach C. Apparition de la maladie de Gumboro in Suisse / C. Riggenbach // Schweiz. arch Tierkeiln.-1967.- Bd. 109. H. 7.- P/398-400.

193. Rinaldi A. Coltura del virus di Gumboro (IBA) su fibroblasti embrioni pollo allestiti con nova embrionate con anticorpi anti-IBA/ A. Rinaldi, E. Lebrini , E. Lodetti // Nuova Veter.- 1972. -An 48. № 4.- P. 202-205.

194. Rosenberger J.K. Sentinel bird survey of Delmara broiler flocks / J.K Rosenberger, S.S. Cloud , Jr. Gelb, E. Odor, J.E. Dohms // Proc 20 th Nati Meet Poulth Heaith Condemn Ocean City, MD.- 1985.- P.94-101.

195. Rosenberger J.K. Isolation and acterization of variant infectious bursal disease viruses/ J.K. Rosenberger, S.S. Cloud // J. Vet. Med. Assoc.-1985. -Vol. 189. -P. 357.

196. Rosenberger J. K. Response to several avian respiratory viruses as affected by infectious bursal disease virus / J. K. Rosenberger, J. Gelb // Avian Dis.- 1978. -Vol. 22,№1.- P. 95-105.

197. Saif I. M. Infectious bursal disease virus types / I. M. Saif // 19th Nati Meet Poulth Heaith Condemn Ocean City, MD.- 1984.- P. 105-107.

198. Santivatr D. Effect of infectious bursal disease virus infection on the phagocytosis of staphylococcus aureus by mononuclear and resistant strains of chicken/ D. Santivatr , J. Newman, B. Pomeroy, S. Mahesvaran // Avian. Dis. -1981. -Vol. 25, №2.- P. 303-311.

199. Schlund B. Syntheses et caracteristiques structurelles de latex reactifs / B. Schlund, T. Pith, M. Lambla // Macromol. Chem. Suppl.- 1985.- №10/11.- P.419-433.

200. Schmidt W. Ein Latex-Agglutination test zur Typenbestimmung von Enteroviren / W. Schmidt, M. Klein // Arch. Ges. Virusforsch.- 1973.- Bd 43, №3-S. 213-220.

201. Shahar M. Synthesis and characteristics of microspheres of polystyrene derivatives / M. Shahar, H. Meshylam, S. Margel// J. of Polym. Sci., Polym. Chem. Ed. -1986. -Vol. 24. -P. 203-213.

202. Sharma J. M. Comparative pathogenesis of serotype 1 and variant serotype I isolates of infectious bursal disease virus and their effect on humoral and cellular immune competence of specific-pathogen-free chickens/ J. M. Sharma, J. E. Dohms, A. L. Metz // Avian Dis.- 1988.- Vol. 33.- P. 112-124.

203. Shedeker G. Some studies on the infectious bursal agent / G. Shedeker, F.K. Wills , I.M. Moulthrop // Avian Dis.-1967. -Vol. 11. - P. 519-528.

204. Sivanandan V. Immune profile of infectious bursal disease (IBD). 2. Effect of IBD virus on pokeweed-mitogen-stimulated peripheral blood lymphocytes of chickens/ V. Sivanandan, S. Maheswaran // Avian Dis. -1980.- Vol. 24, №3.- P. 734-742.

205. Snyder D. B. Rapid serological profiling by enzyme-linked immunosorbent assay. IV. Association of infectious bursal disease serology with broiler flock performance/ D. B. Snyder, W. W. Marquardt , E. T. Mallinson , E. Russek-Cohen , P. K. Savage , D. C. Alien // Avian Dis.- 1986.- Vol. 30.- P. 139-148.

206. Solano W., Giambrone J. J. Comparison of a kinetic-based enzyme-linked immunosorbent assay (KELISA) and virus-neutralization test for infectious bursal

disease virus. I. Quantitation of antibody in white leghorn hens/ W. Solano, J. J. Giambrone, V. S. Panan-Gala // Avian Dis.- 1985.- Vol. 29. -P. 662-671.

207. Solano W. Effect of maternal antibody on timing of initial vaccination of young white Legborn chickens against infectious bursal disease virus/ W. Solano, J. J. Giambrone, J. C. Williams // Avian Dis. -1986.- Vol. 30.- №4.- P. 648-652.

208. Spies U. Properties of RNA polymerase activity associated with infectious bursal disease virus and characterization of its reaction products/ U. Spies, H. Muller, H. Becht // Virus Res.-1987. -Vol. 8.- P. 127-140.

209. Steger D. Helix- core transitions in double- stranded viral RNA: Fine resolution melting and ionic strength dependence/ D. Steger, H. Muller, D. Riesner // Biochem. Biophys. Acta.-1980.- Vol. 606.- P. 274- 285.

210. Suen C. H. Reactive latex studies. I. Kinetics of reactions of poly (vinilbenzylchloride) latex with water- soluble dyes/ C. H. Suen, H. Moravetz // Macromol.- 1984.- № 17.- P. 1800-1803.

211. Sundaram P. Protein carrying lattices for immunoserological research/ P. Sundaram // Biochem. Biophys. Res. Commun. -1974.- Vol. 61.- № 2. -P. 667672.

212. Survashe B. D. Watch out for Gumboro/ B. D. Survashe // Poultry. -1990. -Vol. 6. -№3.- P. 37-39.

213. Suzawa T. Adsorption of plasma proteins onto polymer lattices / T. Suzawa , H. Shirahama // Advances in Colloid and Interface Science.-1991. -Vol. 35.-P. 139-172.

214. Thayer S. G. Comparison of two commercial enzyme-linked immunosorbent assays and conventional methods for avian serology / S. G. Thayer , P. Villegas , O. J. Pletcher // Avian Dis.- 1987.- Vol. 31. -P. 120-124.

215. Todd D. Biochemical studies with infectious bursal disease virus: Comparison of some of its properties with infectious pancreatic necrosis viruses / D. Todd , M. S. McNulty // Arch Virol.- 1979. -Vol. 60.- P. 265- 277.

216. Tsai H. A. Influence of surface Hydrophobic Groups on the Adsorption of Proteins onto Nonporous Polymeric Particles with Immobilized Metal-Ions/ H. A. Tsai, C. H. Chen , W. C. Lee // J. Colloid and Interfaces Sci.- 2001.- Vol. 240-№ 2.- P. 379-383.

217. Ture O. Structural proteins of classic and variant strains of infectious bursal disease viruses / O. Ture , I.M. Saif // Avian Dis.-1992.- Vol. 36.- P. 829-836.

218. Umoh J. U. Surveillance of infectious bursal disease by precipitating antibody survey in Zaria area, Nigeria / J. U. Umoh , C. D. Ezeokoli , A. A. Adesium // J. Anim. Prod. Res.-1982.- Vol. 2.- №2.-P. 153-162.

219. Upson D. A. Reactive functional latex poiymers / D. A. Upson // J. of Polym. Sci., Polym. Symposium. -1985. -№ 72. -P. 45-54.

220. Vasicek L. Untersuchungen zum Vorkommen der infectiozen Bursitis (Gumboro-krankheit)/ L. Vasicek // Wien Tierarztl. Machr. -1979.- Vol. 66. -№4. -P. 116-123.

221. Vindevogel H., Maulemans G., Halen P. Maladia de Gumboro cineique des anticorps precipitans et neutralisants / H. Vindevogel, G. Maulemans , P. Halen // Ann. Med. Veter.-1975. -An. 119, №4.-P.221-225.

222. Voller A., Bidwell D. The enzyme linked immunosorbent assay (ELISA)/ A. Voller, D. Bidwell // - In: A review of recent developments with abstracts of microplate applications, London.- 1980.- V.2.- P. 126.

223. Winterfild R. W. Avian nephrosis, nephritis and Gumboro disease / R. W. Winterfild , S. B. Hitchner // L. and M. News Views, L. and M. Laboratories, selbyvylle, Delaware.- 1962.- V. 3.- № 5.-P. 122.

224. Wit J. J. Analyses of the results of different test systems in the 2005 global proficiency testing schemes for infectious bursal disease virus and Newcastle disease virus antibody detection in chicken serum / J. J. Wit, H. W. Sande , G. H. M. Counotte , G. J. Wellenberg // Avian Pathol.-2007. -Vol. 36.- №2.-P. 177-183.

225. Wood G. W. Thornton D. H. Standardization of the quantitative agar gel precipitin test for antibodies to infectious bursal disease / G. W. Wood, J. C. Muskett , C. N. Habert // J. Brit. Standardiz.-1979.- Vol 7.- №2.- P. 89-86.

226. Wood G. W. A rapid quantitative agar gel precipitin test / G. W. Wood, S. J. P. Southern, D. H. Thornton // J. Biol. Standardiz.-1983. -Vol. 11.- №2.- P. 129132.

227. Wyeth P. J. Effect of infectious bursal disease on the response of chickens to S. typhimurium and E. coli infectious / P. J. Wyeth // Veter. Rec. -1975. -Vol. 96.-№11.- P. 238-243.

228. Zorman-Rojs O. Very virulent infectious bursal disease virus in Southeastern Europe / O. Zorman-Rojs , D. Barlic-Maganja , D. Mitevski , W. Lubke , E. Mundt // Avian Dis.-2003. Vol. 47.-№1.-P. 186-192.