Распространение гельминтозов и антигельминтная резистентность нематод лошадей на территории Центральной России тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Баранова Мария Вячеславовна

  • Баранова Мария Вячеславовна
  • кандидат науккандидат наук
  • 2024, ФГБНУ «Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук»
  • Специальность ВАК РФ00.00.00
  • Количество страниц 131
Баранова Мария Вячеславовна. Распространение гельминтозов и антигельминтная резистентность нематод лошадей на территории Центральной России: дис. кандидат наук: 00.00.00 - Другие cпециальности. ФГБНУ «Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук». 2024. 131 с.

Оглавление диссертации кандидат наук Баранова Мария Вячеславовна

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Видовой состав и распространение возбудителей паразитозов желудочно-кишечного тракта лошадей на территории России

1.2 Распространение антигельминтной резистентности в России и мире

1.3 Методы определения антигельминтной резистентности нематод лошадей и меры профилактики ее развития

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материалы и методы

2.1.1 Эпизоотологическое обследование лошадей

2.1.2 Тест на снижение количества яиц в фекалиях

2.1.3 Тест вылупления личинок из яиц гельминтов

2.1.4 Определение периода повторного появления яиц нематод

2.1.5 Количественная копроовоскопия

2.2 Результаты исследований

2.2.1 Эпизоотологическая характеристика возбудителей паразитозов желудочно-кишечного тракта лошадей на территории Центральной

России

2.2.1.1 Распространение возбудителей паразитозов желудочно-кишечного тракта лошадей

2.2.1.2 Анализ сочетанных инвазий среди поголовья лошадей

2.2.1.3 Результаты идентификации личинок стронгилид лошадей

2.2.1.4 Зависимость зараженности лошадей нематодами от возраста

2.2.1.5 Зараженность лошадей нематодами в разные сезоны года

2.2.1.6 Зараженность нематодами лошадей разного пола

2.2.1.7 Анализ влияния породы лошади на инвазию нематодами

2.2.1.8 Влияние типа хозяйствования на зараженность лошадей

2.2.1.9 Зараженность лошадей в зависимости от типа содержания

2.2.2 Изучение антигельминтной резистентности нематод лошадей

2.2.2.1 Результаты изучения антигельминтной резистентности при помощи теста по снижению количества яиц в фекалиях

2.2.2.2 Результаты изучения антигельминтной резистентности при помощи теста вылупления личинок из яиц гельминтов

2.2.2.3 Определение периода повторного появления яиц нематод после терапии

2.2.3 Рекомендации по предотвращению развития антигельминтной

резистентности у нематод лошадей

3. Обсуждение результатов

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Практические предложения

Перспективы дальнейшей разработки

Список сокращений и условных обозначений

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Приложение

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Другие cпециальности», 00.00.00 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Распространение гельминтозов и антигельминтная резистентность нематод лошадей на территории Центральной России»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Паразитарные болезни в коневодстве имеют большое значение. Наиболее распространены нематоды желудочно-кишечного тракта. Они становятся причиной значительных экономических потерь, связанных с клиническим заболеванием животных, снижением или потерей работоспособности, снижением продуктивности и массы тела. В настоящее время наиболее распространенными и патогенными паразитами в популяциях лошадей являются стронгилиды, включающие два подсемейства: Cyathostominae и Strongylinae, а также представитель аскаридид - Parascaris equorum [6, 13, 18, 25, 29, 30, 32, 36, 37, 44- 46, 51, 55, 58-60, 62, 63, 66, 76-79, 81, 86, 87, 88, 92, 93, 94, 105, 114, 143, 147, 178]. Представителей подсемейства Cyathostominae у лошадей описано до 52 видов, хотя известно, что 90% диагностируемых инвазий вызваны 5-10 наиболее распространенными видами [43, 129, 149, 150, 174, 179, 186]. Параскарида является крупнейшей нематодой кишечника лошади и наиболее патогенным паразитом молодых животных. Зрелые самки параскарид могут достигать размера 50 см в длину и производить около 200 000 яиц в день [3, 112, 163]. Нередко инвазии кишечника лошади становятся причиной колик, поэтому эффективный контроль над паразитами лошадей важен для поддержания здоровья всего поголовья [147, 163].

Лечение и профилактика нематодозов лошадей длительное время проводилось с обязательным применением антигельминтных средств. В коневодстве контроль нематод желудочно-кишечного тракта основан на применении антигельминтных препаратов классов бензимидазолов, тетрагидропиримидинов и макроциклических лактонов. Однако, длительное применение одних и тех же препаратов и допущение ошибок в их применении приводит к развитию антигельминтной устойчивости паразитов. Это приводит к снижению эффективности лечебных мероприятий, а экономический ущерб вследствие этого может быть очень существенным [10, 136, 170, 176].

В мире изучению распространения антигельминтной резистентности и механизмам ее развития посвящено много работ [113, 135, 136, 143, 154, 155, 170,

177]. Нет сомнений, что развитие устойчивости гельминтов и распространение резистентных популяций гельминтов характерны и для России, поскольку антигельминтные препараты, применяемые для терапии те же самые, что и за рубежом. Однако данная проблема в нашей стране остается практически не исследованной. В этой ситуации бесконтрольное применение антигельминтных препаратов, не учитывающее возможности возникновения резистентности к ним, неизбежно ведет к появлению и распространению устойчивых популяций гельминтов, против которых существующие препараты окажутся неэффективными. В связи с этим актуальным является исследование эпизоотической ситуации по паразитозам лошадей в стране, направленное на выявление резистентных популяций гельминтов, разработка для этих целей эффективных тестов для оценки антигельминтной устойчивости, а также изучение механизмов возникновения резистентности.

Степень разработанности темы исследования. На территории бывшего СССР первые гельминтофаунистические исследования проводили Попов Н.П. и Ершов В.С. (1929) [83]. В 1933 году Скрябин К.И. и Ершов В.С. опубликовали монографию по гельминтозам лошадей [91]. В последнее десятилетие на территории России исследования проводились на отдельных территориях: в Приморском Крае Любченковой Е.Н. с соавт.; в Республике Татарстан Щитковской Т.Р. с соавт. и Шариповой М.Х. с соавт; в Якутии Коколовой Л.М. и Гаврильевой Л.Ю.; в Брянской области Кривопушкиной Е.А. с соавт.; в Новосибирской области Смертиной М.А. с соавт.; в Забайкальском Крае Дашинимаевым Б.Ц. и Бояровой Л.И.; в г. Иванове Абарыковой О.Л.; в Тюменской области Калугиной Е.Г. и Столбовой О.А.; в Амурской области Бондаренко Г.А. с соавт.; в Иркутской области Мельцовым И.В. с соавт.; в Республике Алтай Ефремовой Е.А. с соавт.; в Псковской, Новгородской и Ленинградской областях Домацким В.Н.; в г. Кирове Бяковой О.В.; в г. Калуге Василевичем Ф.И. с соавт.; в Курганской области Борисовым И.В. с соавт.; в Москве и Московской области Бундиной Л.А. с соавт., Цепиловой И.И. с соавт., Акбаевым Р.М. с соавт.,

Давыдовой О.Е. с соавт., Арисовым М.В. с соавт. [1, 6, 8, 15, 16, 19, 20, 21, 25, 27, 38, 41, 46,50,54, 55, 59, 60, 62, 63, 64,68,73, 92, 99,101,104].

На территории России информации об устойчивости гельминтов животных к антигельминтным препаратам недостаточно, чтобы составить общее представление о проблеме. Информация представлена отдельными разрозненными сообщениями. Впервые вопрос резистентности гельминтов к препаратам поставил Малахов А.В., занимаясь аскаридиями кур. Им были выявлены резистентные к пиперазину штаммы [72]. В Казахстане у овец выявлены резистентные к фенотиазину штаммы Haemonchus contortus [57]. В Калмыкии установлены резистентные штаммы нематодирусов у овец к действию бензимидазолкарбаматов [10]. Данные о понижении эффективности фенбендазола при стронгилидозах пищеварительного тракта молодняка крупного рогатого скота в хозяйствах Западного Казахстана, где препарат ранее длительное время применялся, получены Кармалиевым Р.С. с соавт. [56].

Данной проблеме в мире посвящено много работ, направленных на изучение распространения резистентности и механизмам ее развития. Так, есть сообщения об устойчивости нематод к бензимидазолу в Индии [143], Нигерии [180]. Резистентность к фенбендазолу у циатостом зарегистрирована в Англии, Шотландии, Бразилии, Эфиопии, США и других странах. Устойчивость к фенбендазолу у P. equorum описана во Франции, Великобритании, Саудовской Аравии. Описаны различные случаи снижения эффективности ивермектина у циатостом. Растет число сообщений, описывающих сниженную эффективность терапии моксидектином P. equorum [153, 155, 170, 176, 191].

Информация по устойчивости нематод лошадей к действию антигельминтных препаратов на территории России на настоящий момент отсутствует.

Цель и задачи исследований. Цель - исследовать распространение и устойчивость нематод лошадей к различным группам антигельминтных препаратов на территории Центральной России, отработать схему выявления антигельминтной резистентности на основе диагностических тестов и предложить

практические рекомендации по предотвращению возникновения резистентных популяций гельминтов.

Задачи исследования:

1. Изучить эпизоотологическую ситуацию по паразитозам желудочно-кишечного тракта лошадей на территории Центральной России. Учесть половозрастные особенности поголовья, влияние сезона года, породы, типа хозяйствования и типа содержания на зараженность животных.

2. Отработать тесты in vivo и in vitro для выявления резистентности к антигельминтным препаратам нематод лошадей.

3. Получить данные о распространении антигельминтной устойчивости к основным классам антигельминтных препаратов у нематод лошадей на территории Центральной России методами in vivo и in vitro.

4. Разработать практико-ориентированные мероприятия по профилактике развития резистентности нематод лошадей к антигельминтным препаратам.

Научная новизна. На территории Центральной России нами описана современная ситуация по зараженности паразитами поголовья лошадей. Преимущественно выявлены нематодозы желудочно-кишечного тракта, общая зараженность составила 47,5%.

Проведен анализ сочетанных инвазий и зависимость уровня зараженности лошадей от возраста лошадей, сезона года, типа содержания, типа хозяйствования, пола и породы.

Впервые применены методы эпизоотологического мониторинга антигельминтной резистентности нематод лошадей на территории Центральной России.

«Рекомендации по предотвращению развития антигельминтной резистентности у нематод лошадей» доложены и одобрены на заседании научно-методической комиссии ВНИИП - филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, одобрены Ученым советом ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН от 28.11.2023 г. протокол № 4 (Приложение 1).

Теоретическая и практическая значимость. Выявленные особенности эпизоотологического процесса нематодозов желудочно-кишечного тракта у лошадей дают возможность отследить закономерности возникновения и распространения инвазии на территории Центральной России. Регистрируемые изменения фауны гельминтов имеют значение для выбора наиболее перспективной тактики лечения и профилактики в долгосрочном периоде.

Полученные результаты исследования антигельминтной резистентности дают основу для анализа механизмов развития устойчивости в популяции нематод. Изучение распространения устойчивости нематод к конкретным антигельминтным препаратам на территории России позволяет контролировать режим дачи антигельминтных средств и повысить эффективность проводимой терапии нематодозов с минимальными экономическими затратами и минимальным ущербом для окружающей среды и здоровья животных.

Результаты исследований используются при чтении лекций и проведении практических занятий по курсу «Паразитология и инвазионные болезни» на кафедре «Ветеринарная медицина» ФГБОУ ВО «Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ)» (125080, г. Москва, Волоколамское шоссе, дом 11). Справка о внедрении в учебный процесс результатов диссертационной работы приложена (Приложение 2).

Методология и методы исследования. Методологические подходы в решении задач основаны на особенностях жизненных циклов возбудителей гельминтозов желудочно-кишечного тракта лошадей. В работе были применены специальные паразитологические методы (флотационные, методы культивирования личинок), методы детекции антигельминтной резистентности (in vivo тест на снижение количества яиц в фекалиях, период повторного появления яиц нематод, in vitro тест вылупления личинок из яиц гельминтов), методы количественного подсчёта яиц в 1 г фекалий, микроскопические и статистические методы. При проведении исследований и анализе полученных результатов учтены вид, возраст, порода лошадей, условия содержания и лечебно-профилактические мероприятия, проводимые в хозяйствах.

Положения, выносимые на защиту:

1. Результаты эпизоотологической ситуации по паразитозам пищеварительного тракта лошадей на территории Центральной России.

2. Отработка теста по снижению количества яиц в фекалиях лошадей для выявления антигельминтной резистентности нематод.

3. Результаты изучения антигельминтной устойчивости стронгилид и параскарид лошадей на территории Центральной России.

4. Предложения по практико-ориентированным мероприятиям для профилактики развития резистентности нематод лошадей к антигельминтным препаратам.

Степень достоверности и апробация результатов. Достоверность результатов определяется использованием общепринятых методов исследований, достаточного объема выборки изучаемых объектов и соответствием контрольных значений, полученных в настоящей работе и представленных в литературных источниках. Достоверность результатов подтверждена статистической обработкой данных с использованием доверительного интервала, рассчитанного по методу Вильсона, приведенного в статье Brown D. et al. [117]. Для анализа взаимосвязи показателей зараженности с характеристиками содержания и возрастом лошадей использовался критерий Хи-квадрат и z-тест с поправкой Бонферрони на множественные сравнения (в случае 3 и более сравниваемых групп).

Результаты исследований доложены и обсуждены на научно-практических конференциях:

1. XIV научно-практической конференции памяти профессора В.А. Ромашова «Современные проблемы общей и прикладной паразитологии» (Воронеж, 08-09 октября 2020 г.).

2. 28-й Международной конференции всемирной ассоциации по развитию ветеринарной паразитологии (28th International conference of the world association for the advancement of veterinary parasitology, WAAVP) (Dublin, 19-22 июля 2021 г.).

3. Научно-практической конференции «Степановские чтения» («Якутский научно-исследовательский институт сельского хозяйства имени М.Г. Сафронова» - обособленное подразделение Федерального государственного бюджетного учреждения науки Федеральный исследовательский центр «Якутский научный центр Сибирского отделения Российской академии наук» (ЯНИИСХ), г. Якутск, 28 марта 2022 г.).

4. Международной научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями» (ВНИИП - филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, Москва, 18-20 мая 2022 г.).

5. IV Международном паразитологическом симпозиуме «Современные проблемы общей и прикладной паразитологии» (Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины" (ФГБОУ ВО СПбГУВМ), Санкт-Петербург, 0709 декабря 2022 г.).

6. Международной научно-практической конференции «Устойчивое развитие: ветеринария, сельское хозяйство, аграрная техника и экология" (VMAEE2022) (Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К. И. Скрябина, г. Москва, 2729 июня 2022 г.).

Работа по диссертационной работе выполнялась в рамках проекта Российского научного фонда №2 20-76-00035 «Изучение молекулярно-генетических характеристик и антигельминтной резистентности возбудителей нематодозов лошадей методами in vivo и in vitro на территории Российской Федерации» (Соглашение от 20.07.2020 г.). Срок реализации проекта с 20 июля 2020 г. по 30 июня 2022 года.

Публикации результатов исследований. По результатам исследования опубликовано 10 научных статей: 3 статьи в журналах, рецензируемых в Scopus, из них один журнал Q2, 2 статьи в журналах, входящих в перечень рекомендованных

ВАК - журнал Ветеринария, Российский паразитологический журнал, 5 статей в материалах конференций.

Личный вклад автора. Представленная диссертационная работа является результатом четырехлетних научных исследований автора, проведенных в лаборатории биологии и биологических основ профилактики ВНИИП - филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН. Автором лично проведен анализ литературных данных по вопросам эпизоотологии паразитозов лошадей, антигельминтной устойчивости нематод лошадей к антигельминтным препаратам в России и в мире, проведены паразитологические исследования поголовья лошадей в Московском регионе, изучены и применены методы определения антигельминтной резистентности нематод лошадей к разным группам антигельминтных препаратов. Автором лично проводился выезд в конные хозяйства: выполнялся отбор проб, формирование опытных групп, дача антигельминтных препаратов. Статьи, написанные в соавторстве, включают не менее 85% от общего количества всех материалов исследования аспиранта. Основная часть исследований выполнена автором лично, и соавторы не возражают в использовании результатов совместных исследований.

Объем и структура диссертации. Диссертационная работа изложена на 131 странице компьютерного текста и включает разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования, состоящий из материалов и методов, результатов исследований и их обсуждения, заключения, практических предложений, перспектив дальнейшей разработки темы, списка сокращений и условных обозначений, списка литературы, приложения. Диссертация иллюстрирована 17 таблицами и 13 рисунками. Список литературы включает 193 источника (105 отечественных и 88 иностранных).

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Видовой состав и распространение возбудителей паразитозов желудочно-кишечного тракта лошадей на территории России

На территории России за последние 10-15 лет заметно увеличилось поголовье лошадей, чему способствовали организация частного сектора в коневодстве (конюшни, конноспортивные комплексы, базы отдыха и др.), развитие экотуризма, спортивно-оздоровительных комплексов. При этом актуальной проблемой остаются паразитарные болезни, которые наносят существенный ущерб здоровью животных и приводят к экономическим потерям.

На территории России у лошадей зарегистрировано более 80 видов возбудителей гельминтозов. Чаще в организме восприимчивого животного обнаруживается несколько возбудителей, находящихся в сложных взаимоотношениях как друг с другом (при единой локализации), так и с организмом хозяина [34, 40].

Наиболее часто регистрируемыми паразитозами лошадей являются нематодозы желудочно-кишечного тракта, вызываемые разными видами стронгилид из подсемейств Cyathostommae и Strongylinae, а также аскаридами Parascaris equorum [112, 118, 152, 178]. Нематоды могут вызывать значительную заболеваемость и смертность. У молодняка лошадей инвазии приводят к плохому состоянию кожных покровов, вздутию живота, замедленному росту, слабости, плохому пищеварению и нарушению всасывания, потерю в привесах и ослабление иммунитета [153, 154]. Имеется мнение, что взрослые лошади, старше 3 - 4-х лет являются так же источниками инвазии [109, 122, 151]. У взрослых лошадей, зараженных нематодами, проявляются различные клинические симптомы, включая выделения из носа, кашель, анорексию, кишечную непроходимость, разрыв и воспаление кишечной стенки. Более того, заражение жеребят и годовиков может привести к тяжелым заболеваниям и даже смерти [163].

На организм лошади гельминты и продукты их жизнедеятельности оказывают многостороннее патологическое воздействие. Известно токсическое и

механическое патологическое воздействие нематод, влияние гельминтов на состояние иммунной системы, белковый обмен веществ. У естественно инвазированных лошадей происходит интенсивное формирование циркулирующих иммунных комплексов антиген-антитело, они формируются при нейтрализации антигенов гельминтов, воздействующих на организм. В результате развивается токсический эффект [39, 40]. Но также имеются мнения, что уровень циркулирующих иммунных комплексов не имеет достоверных различий у здоровых лошадей и животных с низкой интенсивностью инвазии нематодами [34].

При регистрации явления бессимптомного течения нематодозов в организме животного все равно происходят изменения: снижение естественной резистентности, уменьшение фагоцитарной активности нейтрофилов (на 20,4%), уменьшение количества у- глобулинов (на 19,7%), уменьшение концентрации общих иммуноглобулинов (на 14,9%). Отмечено увеличение уровня лизоцима в 1,5 раза и в- лизинов в 1,3 раза. Кислородзависимая микробицидность нейтрофилов возрастает до предельных значений (45,5% против 12,0%) [26].

Самая крупная нематода в кишечнике лошади - это Parascaris equorum. Половозрелые самки могут достигать 50 см в длину. Они обладают уникальной плодовитостью, отрождая в среднем 200 000 яиц в день. Яйца становятся инвазионными при благоприятных условиях окружающей среды уже через 2 недели. Заражение лошадей и жеребят происходит на пастбище [163]. Это происходит благодаря способности яиц Р. equorum перезимовывать, а также вследствие совместного содержания кобыл и жеребят. Яйца параскарид обладают высокой устойчивостью, как к климатическим факторам, так и к дезинфицирующим средствам, и могут оставаться жизнеспособными в почве до 10 лет. Для жеребят текущего года рождения и для годовиков параскариды являются особенно патогенными [166, 188, 189].

В таблице №1 объединены результаты по изучению распространения гельминтозов у лошадей на территории России за последние 20 лет.

Таблица 1 - Результаты исследования распространения гельминтозов у лошадей на территории России

Автор (ы) Год Территория Распространение, %

Р. equo-гит нематоды сем. 81хо^у-Мае О. equi Цестоды

Худов Г.Н. 2002 Волгоградская область 60,0 0 50,0 0

Ткаченко А.В., Дерхо М.А., Концевая С.Ю 2008 Ханты-Мансийский Автономный Округ 9,5 38,0 11,5 0

Гатауллин И.З., Фазлаев Р.Г. 2008 Республика Башкортостан Степная зона 84,7 100,0 92,5 0

Республика Башкортостан Лесостепная зона 97,5 100,0 100,0 0

Самигуллин Р.Н., Байрамгулова Г.Р. 2008 Республика Башкортостан 12,0 62,0 58,0 0,23

Куликова О.Л. 2009 Костромская область 23,0 52,0 0 0

Рязанская область 16,0 13,2 0 0

Нижегородская область 21,7 54,4 0 0

Куликова О.Л. 2009 Нижний Новгород 32,1 52,1 8,5 0

Борский район 43,0 49,0 5,6 0

Богородский район 38,5 44,0 12,3 0

Шатковский район 26,3 59,3 6,7 0

Сергачевский район 42,3 41,2 11,1 0

Любченко Е.Н., Овчаренко О.С. 2011 Приморский Край (п=754) 12,2 4,6 16,3 0

Колокова Л.М., Гаврильева Л.Ю., Иванова З.К., Степанова С.М. 2014 Республика Саха (Якутия) 56,4 0 0 0

Тимербаева Р.Р., Латыпов Д.Г., Шакирова Ч.Р. 2016 Нурлатский район 0 40,6 0 0

Актанышский район 0 40,0 0 0

Пестреченский район 0 44,0 0 0

Борисова А.О. 2016 Рязанский район (п=7) 0 57,1 0 0

Рыбновский район (п=8) 0 37,5 0 0

Ефремова Е.А., Марченко В.А. 2017 Республика Алтай 74,0 14,9 0 14,9

Усть -Каннский 88,5 30,8 0 34,6

Шебалинский 80,0 10,0 0 15,0

район

Майминский 0 10,0 0 0

район

Чемальский 100,0 0 0 23,8

район

Кош-Агачский 75,6 13,3 0 6,7

район

Онгудайский район 86,9 21,7 0 13,0

Дашинимаев Б.Ц., Боярова Л.И. 2018 Забайкальский Край Лесостепная зона 64,7 82,4 0 41,7

Забайкальский Край Степная зона 52,9 88,2 0 29,4

Щитковская Т.Р., Латыпов Д.Г., Гайсина Л.А. 2018 Республика Татарстан 16,9 63,5 5,5 0

Колокова Л.М., Степанова С.М. 2018 Якутия 77,6 100,0 65,3 0

Калугина Е.Г., Столбова О.А. 2019 Тюменская область (п=25) 36,0 24,0 16,0 0

Дашинимаев Б.Ц., Боярова Л.И. 2019 Забайкальский Край Лесостепная зона 25,2 80,5 0 0

Забайкальский Край Степная зона 22,6 72,0 0 0

Мельцов И.В., Батомункуев А.С., Таничев А.И. 2020 Иркутская область 18,9 41,2 0,4 0

Ефремова Е.А., Марченко В.А., Смертина М.А. 2021 Центральный Алтай 13,0 86,8 0 8,8

Калугина Е.Г., Столбова О.А. 2021 Тюменская область (п=25) 39,5 26,5 34,9 0

Ефремова Е.А., Марченко В.А., Смертина М.А. 2021 Центральный Алтай 13 74,2 0 8,5

Шебалинский район 7,2 87,2 0 4,0

Онгудайский район 14,7 79,4 0 8,8

Чемальский район 0 100,0 0 23,8

Усть - Коксинский район 22,1 94,2 0 11,5

Борисов И.В., Лычагин Е.А. 2022 Курганская область 60,5 98,0 14,0 4,5

Дашинимаев Б.Ц., Боярова Л.И., Смертина М.А. 2022 Шебалинский (п=125) 7,2 87,2 0 4,0

Онгудайский (п= 34) 14,7 79,4 0 8,8

Чемальский (п=21) 0 100,0 0 23,8

Усть - Коксинский (п=104) 22,1 94,2 0 11,5

Центральный Алтай (п=446) 13,0 74,2 0 8,5

Зимина А.О., Вологжанина Е.А. 2022 Рязанская область (п=32) 15,6 56,3 6,3 0

Москва и Московская область

Бундина Л.А. 2012 Москва (п=122) 9,8 31,9 0 0

Раменский район (п=58) 38 74,1 0 5,2

Район Котельники (п=24) 0 16,6 0 0

Акбаев Р.М., Астафьев Б.А. 2015 Московская область 0 77,0 0 0

Цепилова И.И. 2019 Можайский район (п=32) 18,7 34,4 0 0

Ногинский район (п=19) 0 84,2 0 0

Красногорский район (п=17) 0 35,3 0 0

Раменский район (п=14) 0 42,8 0 0

Акбаев Р.М., Генералов А.А., Борец Л.С. 2020 Московская область (п=72) 72,2 66,6 0 4,2

Стронгилидозы лошадей на территории России регистрируются регулярно. В 2002 году зараженность стронгилидами в специализированных коневодческих предприятиях Кирова и Кировской области составила 38,7%, при обследовании животных подсобных хозяйств стронгилидами было заражено 40,2%. Официальная статистика Кировской областной ветеринарной лаборатории за 2020 год показывает обнаружение стронгилид в 30,7% исследованных проб. В 2008-2020 гг. было выявлено, что доминирующими паразитами лошадей в конных хозяйствах являются стронгилиды с зараженностью от 61,2 до 80,0%, а в частном секторе она составила 30,8% [25].

В Ханты-Мансийском Автономном округе в 2008 г. стронгилидоз зарегистрирован у 38% поголовья лошадей. В Республике Башкортостан в степной и лесостепной зоне отмечена 100% зараженность [33].

В Республике Саха (Якутия) у лошадей табунного содержания зарегистрировано 47 видов гельминтов, из них 3 вида цестод и 44 вида нематод. Заражение стронгилидами с 2014 по 2022 г. поголовное [60 - 63]. При определении видового состава стронгилид были определены Alfortia (Strongylus) edentatus, Delafondia (Strongylus) vulgaris, Strongylus equinus, относящиеся к подсем.

Strongylinae и многочисленные виды подсем. Cyathostominae. При вскрытии установлено у 58,9 % лошадей паразитировали Alfortia (Strongylus) edentatus, у 49,3% Delafondia (Strongylus) vulgaris, у 87,7 % Strongylus equinus [60].

В коневодческих хозяйствах и предприятиях Костромской и Нижегородской областей стронгилиды регистрировали у 48% и 49,2% лошадей, соответственно [65, 66]. В частных конюшнях Можайского, Ногинского и Красногорского районов исследовали лошадей всех возрастов, стронгилиды найдены у 35,2%, 85,0% и 35,0% лошадей [98]. В Рязанской области стронгилиды обнаружены у 50,0 - 71,4% лошадей коневодческих хозяйств и у 50,0% лошадей конезавода [17, 99].

На территории Московского региона данные исследования проведены только в отдельных хозяйствах с малой выборкой исследованных образцов. Весной стронгилидами в частных хозяйствах Московской области заражено 31,9 - 47,4%, осенью показатель повышается до 52,1% [8, 18]. В частных конюшнях зараженность отмечена от 77,0% до 90,5% [5, 6]. На Московском ипподроме зараженность лошадей от 1,5 до двух лет составила 75,6% [45].

Инвазированность нематодами сем. Strongylidae может доходить до 100,0% и у жеребят (в возрасте до года), и у взрослых лошадей. Регулярные исследования в Республике Саха (Якутия) установлено, что табунные лошади в возрасте 3-6 месяцев заражены стронгилидами на 100,0% в мае и июне. Возрастная группа 9-12 месяцев в летнее время заражена на 98,4 %, осенью на 95,2 %, в зимнее время года на 100 %. У молодых лошадей в возрасте до двух лет в летнее время зараженность понижается до 81,2 %, осенью — 68,8 %, зимой — 62,5 %. У лошадей в возрасте от двух до трех лет зараженность летом и осенью была 66,6 %, зимой - 33,3 %. Заражены были лошади во всех возрастных группах с наиболее высокими показателями у молодых. Так же отмечены высокие показатели зараженности основного поголовья лошадей — кобыл и жеребцов старше пяти лет [60].

В Костромской области 63,5% жеребят до года и 52,0% лошадей в возрасте 3-9 лет заражены стронгилидами. Зараженность лошадей старше девяти лет снижается до 30,0% [65].

Такие высокие показатели зараженности стронгилидами по результатам обследования лошадей связаны с условиями содержания животных, наличием выгульных площадок и их обработки, типом содержания животных, разделением на возрастные группы, наличием выпаса, поддержанием чистоты в конюшнях, с профилактическими мероприятиями, их кратностью и используемыми лекарственными препаратами.

Похожие диссертационные работы по специальности «Другие cпециальности», 00.00.00 шифр ВАК

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Баранова Мария Вячеславовна, 2024 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абарыкова, О.Л. Эпизоотологические особенности гельминтозов лошадей в г. Иваново /О.Л. Абарыкова // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2019. - Вып. 20. - С36 - 39.

2. Абдуллаев, И.М. Эпизоотические особенности оксиуроза лошадей в Прикаспийском регионе /И.М. Абдуллаев, А.М. Атаев // Матер. науч. конф. Всерос. о-ва гельминтол. «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». -2000. - С. 23-26.

3. Айтуганов, Б.Е. Яйце продукция Parascaris equorum у лошадей /Айтуганов Б.Е., Архипов И.А. // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарныи болезнями». - 2006. - Вып. 7. -С. 1415.

4. Айтуганов, Б.Е. Эпизоотология и усовершенствование терапии нематодозов лошадей при табунном содержании в условиях Западного Казахстана// Автореферат дисс. на соиск.уч.степ. кандидата ветеринарных наук. Айтуганов Булат Ермекович, 03.00.19 - паразитология. - Москва, 2007. - 25 с.

5. Акбаев, Р.М. Видовой состав кишечных гельминтов лошадей в условиях конюшен частного сектора Подмосковья и эффективность различных антигельминтиков в отношении их /Р.М. Акбаев, Т.Ю. Воробьева // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2015. - № 10. - С. 20-24.

6. Акбаев, Р.М. Гельминтозы лошадей в условиях конюшен частного сектора/ Р.М. Акбаев, А.А. Генералов, Л.С. Борец //В сборнике: Знания молодых для развития ветеринарной медицины и АПК страны. Материалы международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых. - 2020. - С. 6-7.

7. Арипшева, Б.М. Особенности эпизоотологии оксиуроза лошадей в Кабардино-балкарской Республике / Б.М. Арипшева, А.С. Канокова, А.М. Биттиров//Российский паразитологический журнал. - 2010. - № 2. - С. 30-32.

8. Арисов, М.В. Риск развития резистентности к антигельминтным препаратам у стронгилид лошадей Московской области /М.В. Арисов, О.А. Панова,

М.В. Баранова, Н.Ю. Сысоева, И.Г. Гламаздин, А.В. Трофимова //Журнал Ветеринария. -2022. - № 5. - С. 39-44.

9. Архипов, И.А. Антигельминтики: фармакология и применение. Москва. - 2009. - 409 с.

10. Архипов, И.А.К профилактике развития резистентности паразитов к химиотерапевтическим препаратам / И.А. Архипов, Р.С. Кармалиев, А.Н. Смирнов //Материалы докладов научной конференции Всероссийского общества гельминтологов РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». -2006. - С. 34.

11. Астафьев, Б.А., Яроцкий, Л.С., Лебедева, М.Н. Экспериментальные модели паразитоза в биологии и медицине// Москва, "Наука". - 1989. - 279 с.

12. Беспалова, Н.С. Сезонная динамика стронгилятозов пищеварительного тракта лошадей в Центральном Черноземье России // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2013. - №4. - С. 62-65.

13. Биттиров, А.М. Формирование гельминтологических комплексов животных на Центральном Кавказе и способы регуляции численности гельминтов: Автореф. дис. ... д-ра биол. наук. - М., 1999. - 43 с.

14. Большакова, В.А. Нематодозы пищеварительного тракта лошадей республики Саха (Якутия) и усовершенствование мер борьбы с ними/ Большакова Виктория Афанасьевна: автореф. дисс. канд. вет. наук: 03.00.20. М., 1998. - 16 с.

15. Бондаренко, Г.А. Эпизоотологическая ситуация по гельминтофауне в животноводческих хозяйствах Амурской области / Г.А. Бондаренко, Т.И. Тарухина, И.А. Соловьева // БИО. - 2019. - №8. - С. 20-22.

16. Борисов, И.В. Инвазионные болезни лошадей в Курганской области / И.В. Борисов, Е.А. Лычагин // Инновации и современные технологии в производстве и переработке сельскохозяйственной продукции. - 2022. - С. 31-35.

17. Борисова, О.А. Стронгилятозы желудочно-кишечного тракта и стронгилоидоз лошадей в Рязанской области/ О.А. Борисова // Сетевой научный журнал Орел ГАУ. - 2016. - №2. - С. 38-41.

18. Бундина, Л.А. Распространение кишечных нематод и эффективность дегельминтизации лошадей в спортивных клубах Московской области / Л.А. Бундина, С.В. Енгашев//Ветеринария. - 2015. - № 5. - С. 32-35.

19. Бундина, Л.А. Влияние вновь завозимых лошадей на распространение гельминтозов в коневодческих хозяйствах/ Л.А. Бундина // Российский паразитологический журнал. - 2012. - №2. - С. 51-54.

20. Бундина, Л.А. Методы прижизненной диагностики оксиуроза у лошадей / Л.А. Бундина//Российский паразитологический журнал. 2014. №2 2. С. 6669.

21. Бундина, Л.А. Первое обнаружение Eimeria leuckarti у лошади на территории Российской Федерации / Л.А. Бундина, А.В. Хрусталев // Российский паразитологический журнал, 2016. - Vol. 35(1) - P. 7 - 12. DOI: 10.12737/18353

22. Бундина, Л. А. Эпизоотический процесс при стронгилоидозе лошадей / Л. А. Бундина // Ветеринария. - 2006. - № 12. - С. 32-34.

23. Бундина, Л. А. Аноплоцефалидозы лошадей / Л. А. Бундина, С. В. Енгашев // Ветеринария. - 2008. - № 5. - С. 8-10.

24. Бундина, Л. А. Эффективность альбена при нематодозах лошадей / Л. А. Бундина, Г. Б. Арисова // Ветеринария. - 2004. - № 9. - С. 9.

25. Бякова, О.В. Анализ гельминтофауны лошадей в Кировской области / О.В. Бякова, Л.В. Пилип// Вестник Вятской ГСХА. - 2021.- № 2 (8). - С. 1.

26. Бякова, О.В. Перекисное окисление липидов и естественная резистентность при гельминтозах лошадей /О.В. Бякова, Л.В. Пилип// Киров, 2018. - 149 с.

27. Василевич, Ф.И. Гельминтофауна лошадей города Калуги /Ф.И. Василевич, А.М. Никанорова, Д.С. Маркина //Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2021. - № 22. - С. 138-141.

28. Вислобоков, В.А. Эпизоотология стронгилоидоза лошадей / В.А. Вислобоков, И.Б. Сорокина // Международная научно - методическая конференция, посвященная 90-летию академика Д.К. Беляева. Иваново. - 2007. -том 2. - С. 209-211.

29. Гаврилова, Н.А. Эпизоотическая ситуация по гельминтозам лошадей в хозяйствах Ленинградской области/ Н.А. Гаврилова Н.А., Л.М. Белова, Е.В. Ермакова //Актуальные вопросы ветеринарной биологии. -2019. - № 1 (41). - С.17-21.

30. Гаврилова, Н.А. Эпизоотическая ситуация по гельминтозам лошадей в частных хозяйствах Ленинградской области/ Н.А. Гаврилова Н.А., Л.М. Белова, Логинова О.А., Роберман М.Г., Ситникова Р.С. //Международный вестник ветеринарии. - 2020. - № 2. - С. 37-41.

31. Гаврилова, Н.А. Ассоциативная желудочно-кишечная инвазия лошадей в Ленинградской области/ Н.А. Гаврилова Н.А., Л.М. Белова, Логинова О.А., Ситникова Р.С. //Международный вестник ветеринарии. - 2020. - № 2. - С. 31-36.

32. Гаврильева, Л.Ю. Основные стронгилятозы лошадей табунного содержания Якутии и мероприятия по борьбе с ними: автореферат дис. ... канд. вет. наук: 03.02.11 / Гаврильева Любовь Юрьевна; [Место защиты: Всерос. науч.-исслед. ин-т гельминтологии им. К.И. Скрябина]. - Якутск, 2014. - 26 с.

33. Гатауллин, И.З. Распространенность кишечных нематодозов лошадей в республике Башкортостан и результаты сравнительного испытания антигельминтиков при них / И.З Гатауллин, Р.Г. Фазлаев // Ветеринарный врач. -2008. - № 5. - С. 58-60.

34. Герке, А.Н. Нематодозы лошадей (клинико-биохимические аспекты) / Герке Анна Николаевна: диссертация на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук: 03.00.19, 03.00.04. - Санкт-Петербург. - 2007. - 142 с.

35. Герке, А.Н. Параскариоз лошадей в некоторых хозяйствах Ленинградской области / А.Н. Герке // Материалы научной международной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПбГАВМ. - СПб, 2005. - С. 26-27.

36. Глушков, В.В. Заболеваемость лошадей стронгилятозами в условиях республики Хакасия // Достижения науки и техники АПК. - 2013. - №6. - С. 67-69.

37. Григорьев, В.П. Эколого-эпизоотологическая характеристика параскариоза и оптимальные схемы дегельминтизаций табунных лошадей в

центральной зоне Республики Саха (Якутия)/ Григорьев Виктор Павлович: дисс... канд. вет. наук: 03.00.19-паразитология / В.П. Григорьев Якутск. - 2001. -168 с.

38. Давыдова, О.Е. Распространенность и фауна нематод - стронгилят спортивных лошадей в конноспортивных комплексах Московской области / О.Е. Давыдова, Е.С. Александрова //Сборник научных статей по материалам ХУнациональной научно-практической конференции памяти профессора В.А. Ромашова. - 2021. - С. 18-24.

39. Даугалиева, Э.Х. Иммуносупрессия при гельминтозах / Э.Х. Даугалиева, К.Г. Курочкина // Труды Всероссийского института гельминтологии им. К.И. Скрябина. - 1996. - Т. 32. - С. 31-36.

40. Даугалиева, Э.Х. Методические рекомендации по изучению влияния антгельминтиков на иммунный статус животных при гельминтозах / Э.Х. Даугалиева, О.И. Мамыкова, И.С. Каныгина, М.И. Кузнецов, Ю.Н. Федоров, М.В. Якубовский, С.И. Пономарь. - Москва, 1989. - 27 с.

41. Дашинимаев, Б.Т., Боярова Л.И., Дашинимаев С.М. Паразитоз пищеварительного тракта лошадей впервые обнаружен в Забайкальском крае// Журнал Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2022. - № 6. - С. 89-94. DOI: 10.36871/vet.zoo.bio.202206010 .

42. Дашинимаев, Б.Ц. Нематодозы пищеварительного тракта у лошадей Забайкальского края и вызываемый ими ущерб / Б.Ц. Дашинимаев, Л.И. Боярова // Международный научно-исследовательский журнал. - 2018. - №2 11-1(77). - С. 187190.

43. Двойнос, Г.М. Стронгилиды (Nematoda: Stronygidae) домашних и диких лошадей: автореф. дис. ... д-ра биол. наук. Киев. - 1993. - 39 с.

44. Дильман, П.Н. К эпизоотологии стронгилоидоза животных в Таджикистане/ П.Н. Дильман //Сб. науч. тр.: Совершенствование мер борьбы с болезнями с.-х. животных в Таджикистане. -1988. - С. 102-112.

45. Динченко, О.И. К вопросу о проблемах профилактики и лечения паразитозов лошадей// Материалы докладов научной конференции Всероссийского

общества гельминтологов РАН «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - 2017. - № 18. - С. 138-142.

46. Домацкий, В.Н. Распространение, терапия и профилактика гельминтозов лошадей в Российской Федерации// Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2021. - № 3 (89). - С. 196-199.

47. Дурдусов, С.Д. Ассоциативные инвазии лошадей в аридной зоне и методы борьбы с ними // Ветеринария. - 2000. - № 3. - С.53-55.

48. Енгашев, С.В. Применение результатов эпизоотологического мониторинга в лечебно-профилактических мероприятиях при паразитарных болезнях лошадей/ С.В. Енгашев, М.Д. Новак, Енгашева Е.С., А.И. Новак, Е.Е. Русакова // В сборнике: Современные проблемы общей и частной паразитологии. материалы IV Международного паразитологического симпозиума. Санкт-Петербург, 2022. - С. 74-78.

49. Ермакова, Е.В. Гельминтозы лошадей в Ленинградской области/Е.В. Ермакова//Материалы II симпозиума «Современные проблемы общей и частной паразитологии. - СПб, Изд-во ФГБОУ ВО СПбГАВМ. - 2017. - С.100-104.

50. Ефремова, Е.А. Параскариоз лошадей в условиях центрального Алтая /Е.В. Ермакова, Марченко В.А., Смертина М.А. //Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями, 2021. - Вып. 22. - С. 187 - 192.

51. Ефремова, Е.А. Распространение гельминтов желудочно-кишечного тракта лошадей в Центральном Алтае/Е.В. Ермакова, В.А. Марченко, Смертина М.А. //Сибирский вестник сельскохозяйственной науки.- 2022. - Т. 52. - № 5. - С. 89-97.

52. Зимина, А.О. Гельминтозы лошадей на территории Рязанской области / А.О. Зимина, Е.А. Вологжанина // Материалы национальной студенческой научно-практической конференции. - 2022. - С. 93-98.

53. Иванюк, В.П. Микстинвазии лошадей: распространение, патогенез, клиника и лечение / В.П. Иванюк, Бобкова Г.Н., Кривопушкина Е.А. //Известия Оренбургского государственного аграрного университета. - 2021.- № 3 (89). - С. 192-195.

54. Калугина, Е.Г. Гельминтозы у лошадей в условиях Тюменской области / Е.Г. Калугина, О.А. Столбова // АПК: инновационные технологии. - 2019. - № 2 (45). - С. 6-10.

55. Калугина, Е.Г. Паразитозы у лошадей в условиях Тюменской области / Е.Г. Калугина, О.А. Столбова //Вестник КрасГАУ. - 2021. - № 2 (167). - С. 112-117.

56. Кармалиев, Р.С., Байтуганов Б.А. Антигельминтная резистентность возбудителей стронгилятозов пищеварительного тракта жвачных в регионе Западного Казахстана// Российский паразитологический журнал. - 2013. - № 1. -С. 85-88.

57. Кармалиев, Р.С., Черепанов А.А. Методические рекомендации по выявлению антгельминтной резистентности у стронгилят пищеварительного тракта жвачных. М.: ВАСХНИЛ. - 1991. - 20 с.

58. Кленова, И.Ф. Гельминтозы лошадей и меры борьбы с ними / И.Ф. Кленова, В.В. Горохов, Л.А. Бундина // Ветеринария. - 2002. - № 10. - С. 26-29.

59. Коколова, Л.М., Гаврильева Л.Ю., Слепцова С.С. Профилактика инвазионных болезней лошадей табунного содержания в Якутии//Российский паразитологический журнал, - 2022. - Т. 16. - № 4. - С. 475-482. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2022-16-4-475-482

60. Коколова, Л.М., Гаврильева Л.Ю., Слепцова С.С. Экологическое благополучие лошадей табунного содержания при круглогодичном пастбищном содержании в экстремальных условиях Якутии// Природные ресурсы, среда и общество. - 2021. - № 4 (12). - С. 63-69. DOI: 10.24412/2658-4441-2021-4-63-69

61. Коколова, Л.М., Гаврильева Л.Ю., Степанова С.М., Дулова С.В., Слепцова С.С., Нифонтов К.Р. Организация профилактической подкормки и лечение паразитарных болезней лошадей табунного содержания в условиях Якутии//Ветеринария и кормление. - 2020. - № 3. - С. 17-20.

62. Коколова, Л.М. Гельминтозы лошадей табунного содержания в республике Саха (Якутия) / Л.М. Коколова, Л.Ю. Гаврильева, З.К. Иванова, С.М. Степанова // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2014. - №15. - С. 116-119.

63. Коколова, Л.М. Изучение сезонной и возрастной динамики инвазированности лошадей табунного содержания стронгилятами / Л.М. Коколова, Л.Ю. Гаврильева // Научный поиск в современном мире: сборник материалов 10-й международной научно-практической конференции. - 2015. - С. 132-133.

64. Кривопушкина, Е.А. Кишечные нематодозы лошадей Брянской области / Е.А. Кривопушкина, В.В. Кривопушкин // Актуальные проблемы инновационного развития животноводства: сб. тр. междунар. науч.-практ. конф., Брянский ГАУ. - 2020. - С. 179 - 182.

65. Куликова, О.Л. Микстинвазии лошадей в Нижегородской области // Ветеринарная патология. - 2009. - №2. - С. 82-84.

66. Куликова, О.Л. Распространение кишечных нематодозов лошадей // Международный вестник ветеринарии. - 2009. - №3. - С. 25-28

67. Куликова, О.Л. Эпизоотология кишечных нематодозов лошадей в условиях крупного промышленного города / О.Л. Куликова // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями».-2006. - Вып. 7. - С. 199-201.

68. Любченко, Е.Н. Гельминтозы лошадей в условиях Приморского края / Е.Н. Любченко, О.С. Овчаренко // Аграрный вестник Урала. - 2011. - №1. - С. 2730.

69. Малахов, А.В. Выявление резистентности у Ascaridia galli Schrank,1788 к антгельминтикам методом пассажей на цыплятах//Вест.с.-х.науки. - 1982. - №.2. - С.81-85.

70. Малахов, А.В. Выявление устойчивости у Ascaridia galli Schrank и испытание новых препаратов при аскаридозе и гетеракидозе кур: Диссертация кандидата ветеринарных наук: 03.00.20. Москва. 1982. - 131 с.

71. Малахов, А.В. Изучение чувствительности различных изолятов Ascaridia galli к пиперазину и нилверму в зависимости от частоты дегельминтизации кур. //Материалы науч. конф. Всес. об-ва гельминтологов АН СССР. - 1981. - Вып. 33. - С.34 42.

72. Малахов, А.В. Чувствительность интактной расы Ascaridia gaШ к различным антгельминтикам и дальнейшее испытание бензимидазолов при нематодозах кур//Материалы науч. конф. Всес. общества гельминтологов. М. -1980. - Вып. 32. - С.53 59.

73. Мельцов, И.В. Эпизоотология паразитарных болезней мелкого рогатого скота, свиней и лошадей Иркутской области / И.В. Мельцов, А.С. Батомункуев, А.И. Таничев // ВЕСТНИК ИРГСХА. - 2020. - № 98. - С. 76 - 86.

74. Муромцева, О.О. Нематодозы лошадей Кировской области: Эпизоотология, иммунологическая реактивность, меры борьбы/ Муромцева Ольга Олеговна: диссертация на соискание ученой степени кандидата ветеринарных наук: 03.00.19. - Киров. - 2004. - 162с.

75. Мусаев, М.Б., Защепкина В.В., Вацаев Ш.В., Джамалова А.З., Ильин М.М., Халиков С.С. Эффективность супрамолекулярного комплекса ивермектина в условиях производства при нематодозах пищеварительного тракта лошадей табунного содержания// Российский паразитологический журнал. - 2020. - Т. 14. -№ 3. - С. 104-108.

76. Мусаев, М.Б., Защепкина В.В., Халиков С.С., Джамалова А.З. Влияние супрамолекулярного комплекса ивермектина 2%-ного в повышенных дозах на организм лошадей// Российский паразитологический журнал. - 2022. - Т. 16. - № 2. - С. 203-212.

77. Новак, М.Д., Енгашев С.В., Енгашева Е.С. Стронгилятозы желудочно-кишечного тракта и стронгилоидоз лошадей в Центральном районе Российской Федерации/Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2020. - № 21. - С. 301-306.

78. Новак, М.Д. Регулирование эпизоотического процесса при стронгилятозах желудочно - кишечного тракта и стронгилоидозе лошадей с использованием препарата Иверсал / М.Д. Новак, Е.С. Ингашева, А.В. Кадыров // Вестник Рязанского ГАТУ им. Костычева. Рязань. - 2019. - №1 (14). - С. 52 - 58.

79. Очиров, П.Б. Эпизоотология кишечных нематодозов лошадей Калмыкии/ П.Б. Орлов // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». В. 3. - М., 2002. - С. 232- 234.

80. Панова О.А., Курносова О.П., Хрусталев А.В., Арисов М.В. Методы копрологической диагностики паразитозов животных // Российский паразитологический журнал. 2023. Т. 17. № 3. С. 365-377. https://doi.org/10.31016/1998-8435-2023-17-3-365-377

81. Петров, Ю.Ф. Паразиты лошадей в центральном районе Нечерноземья России/ Ю.Ф. Петров, Смирнов Д.А. // Труды ВИГИС. Т. 40. - М., 2004. -- С.285-290.

82. Понамарев, Н.М., Тихая Н.В. Эколого-эпизоотологическая характеристика оксиуроза лошадей в Алтайском крае//Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2018. - № 4 (162). - С. 146-149.

83. Попов, Н.П. К познанию гельминтофауны лошадей Армении/ Н.П. Попов // Журнал научной и практич. ветеринарии. - 1929. - Т. 11. - Вып. 8. - С. 14.

84. Разиков, Ш.Ш., Азамов А.А., Шодмонов И. Гельминтозы лошадей в Республике Таджикистан// Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями.

- 2014. - № 15. - С. 235-237.

85. Садов, В.А. Оксиуроз лошадей // Тез. докл. Всерос. науч.-практ. конф. «Методы профилактики и борьбы с трематодозами человека и животных». - 1997.

- С. 197-200.

86. Самигуллин, Р. Н. Паразитофауна лошадей в Республике Башкортостан (РБ) / Р. Н. Самигуллин, Г. Р. Байрамгулова // Фундаментальные исследования. -2008. - № 9. - С. 56-57.

87. Сибен, А.Н. Инвазионные заболевания лошадей Тюменской области / А.Н. Сибен, А.А. Никонов, Т.А. Петрова // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. - 2015. - №7. - С. 185-189.

88. Синяков, М.П. Гельминтозы лошадей республики Беларусь и их профилактика//Ученые записки учреждения образования Витебская ордена Знак

почета государственная академия ветеринарной медицины. - 2017. - Т. 53. - № 4. - С. 54-56.

89. Синяков, М.П., Ятусевич А.И., Стогначева Г.А. Противопаразитарные препараты для лечения и профилактики болезней лошадей//Вестник АПК Верхневолжья. - 2021. - № 1 (53). - С. 28-32.

90. Ситникова, Р.С., Гаврилова Н.А., Белова Л.М. Ассоциации паразитов желудочно-кишечного тракта лошадей на территории Ленинградкой области в хозяйствах различной формы собственности/В сборнике: Современные проблемы общей и частной паразитологии. материалы IV Международного паразитологического симпозиума. Санкт-Петербург. - 2022. - С. 230-232.

91. Скрябин, К. И., Ершов В. С. Гельминтозы лошади: Монография для вет. врачей и зоотехников, биологов и студентов / Проф. К. И. Скрябин, В. С. Ершов. -Москва; Ленинград: Сельхозгиз. - 1933. - 408 с.

92. Смертина, М.А., Ефремова Е.А., Марченко В.А. Некоторые аспекты эпизоотологии стронгилятозов лошадей в Новосибирской области// Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - 2020. - № 21. - С. 397-402. DOI: 10.31016/978-5-9902341-54.2020.21.397-402.

93. Смирнов, Д.А. Паразитофауна и меры борьбы с основными гельминтозами лошадей в центральном районе Нечерноземной зоны РФ // автореф. дис. ... канд. вет. наук. Иваново, 2003. - 18 с.

94. Смирнов, Д.А. Гельминтофауна лошадей в центральном районе Нечерноземья Российской Федерации/ Смирнов Д.А., Петров Ю.Ф. // Материалы докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - М., 2003. - Вып. 4. -С. 424-425.

95. Тимербаева, Р.Р. Основные гельминтозы лошадей в некоторых районах республики Татарстан / Р.Р. Тимербаева, М.А. Колосова, Р.К. Сулайманов / Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2016. - Т. 226. - №2. - С. 155-157.

96. Хасанова, Р.И. Распространение параскаридоза у лошадей при разной технологии содержания в условиях Восточного Кавказа. // Российский паразитологический журнал. - 2013. - №4. - С. 59-61.

97. Хасанова, Р.И. Плотность популяции Parascaris equorum (Goeze, 1782) в организме лошадей разного возраста // Российский паразитологический журнал. - 2015. - №2. - С. 20-23.

98. Худов, Г.Н. Эпизоотология и терапия основных гельминтозов лошадей в Нижнем Поволжье / Г.Н. Худов: дисс. Кандидата ветеринарных наук: 03.00.19. Паразитология. Саратов. - 2002. - С. 115.

99. Цепилова, И.И. Гельминтозы лошадей Московский области: Распространение и усовершенствование мер борьбы с ними // статья в сборнике трудов конференции. - 2019. - С.194-195.

100. Черепанов, А.А., Москвин, А.С., Котельников, Г.А., Хренов, В.М. Дифференциальная диагностика гельминтозов по морфологической структуре яиц и личинок возбудителей: Атлас / Под ред. Черепанова А.А. - М.: Колос. - 2001. -77 с.

101. Шарипова, М.Х. Гельминтозы лошадей в крестьянско - фермерском хозяйстве «Аланлык» высокогорного района республике Татарстан / М.Х. Шарипова, Р.Р. Тимербаева, Г.С. Фролов // Сборник трудов VIII Международной научно-практической конференции, Уфа. - 2020. - С. 30-33.

102. Шарова, И.С. Возрастные особенности эпизоотологии гельминтозов лошадей / И.С. Шарова//Ветеринарный консультант. - 2007. - №6 (145). - С.18-19.

103. Шарова, И.С. Сезонная динамика гельминтозов лошадей в Центральном районе Российской Федерации / И.С. Шарова//Ветеринарная патология. - 2007. - № 1 (20). - С.157-160.

104. Щитковская, Т.Р. Изучение распространения кишечных нематодозов лошадей в хозяйствах Республике Татарстан/ Т.Р. Щитковская, Д.Г. Латыпов, Л.А. Гайсина // Научно - производственный журнал. - 2018. - №3. - С 33-36.

105. Ятусевич, А.И. Паразитозы лошадей и меры борьбы с ними / А.И. Ятусевич, М.П. Синяков // Сборник трудов ФГБОУ ВО Костромская Государственная Сельскохозяйственная Академия. Кострома. - 2015. -С. 98-103.

106. Anutescu, S.M., Buzatu, M.C., Gruianu, A., Bellaw, J., Mitrea, I.L., Ionita, M. Use of larval cultures to investigate the structure of strongyle populations in working horses, Romania: preliminary data//Agro Life Scientific Journal. - 2016. - Vol. 5, № 1. - P. 9-14.

107. Avramenko, R.W. Deep amplicon sequencing as a powerful new tool to screen for sequence polymorphisms associated with anthelmintic resistance in parasitic nematode populations / Redman, E.M., Melville, L., Bartley, Y., Wit, J., Queiroz, C., Bartley, D.J., Gilleard, J.S. //Int J Parasitol. - 2019. - 49(1). - Р.13-26. doi: 10.1016/j.ijpara.2018.10.005

108. Baranova, M.V., Panova, O.A., Polukhina, D.N., Panova, D.S. Reduction of the nematode egg-reappearance period in horses after anthelmintic therapy// Veterinary World. - 2022. - 15(6). - P. 1530-1534. doi: www.doi.org/10.14202/vetworld.2022.1530-1534

109. Baudena, M.A. Efficacy of the nematophagous fungus Duddingtonia flagrans in reducing equine cyathostome larvae on pasture in south Louisiana/ М.А. Baudena, M.R. Chapman, М., Larsen, T.R.// Vet. Parasitol. - 2000. - Vol.89. - Р.219-30.

110. Beasley, A. Suspected ivermectin resistance in a south-east Queensland Parascaris equorum population/Coleman, G. and Kotze, A.C.//Australian Veterinary Journal. - 2015. -Vol. 93. - P. 305-307.

111. Belay, W. Study on the Prevalance of gastrointestinal helminthes infection in equines in and around Kombolcha / Teshome, D., Abiye, A. // Journal of veterinary science and technology. - 2016. - Vol. 7.-P. 372. doi: 10.4172/2157-7579.1000372

112. Bellaw, J.L. Meta-analysis of cyathostomin species-specific prevalence and relative abundance in domestic horses from 1975-2020: emphasis on geographical region and specimen collection method/ Bellaw, J.L., Nielsen, M.K. // Parasit Vectors.-2020. -Vol. 13(1).-P. 509. doi: 10.1186/s13071-020-04396-5.

113. Bellaw, J.L. Anthelmintic therapy of equine cyathostomin nematodes -larvicidal efficacy, egg reappearance period, and drug resistance / Krebs K, Reinemeyer, C.R., Norris, J.K., Scare, J.A., Pagano, S., Nielsen, M.K. // International Journal for Parasitology. - 2018. - Vol. 48. - P. 97-105.

114. Bello, T.R. Comparison of two fecal egg recovery techniques and larval culture for cyathostomins in horses/ Bello T.R., Allen T.M.//Am. J. Vet. Res. - 2009.- №2 70. - P. 571-573.DOI: 10.2460/ajvr.70.5.571.

115. Besier, R.B. Anthelmintic resistance in sheep nematodes in Australia: the need for new approaches/ R.B. Besier, S.C.J. Love // Australian Journal of Experimental Agriculture. - 2003. - Vol. 43. - P. 1383-1391. https://doi.org/10.1071/EA02229

116. Boersema, J.H. Apparent resistance of Parascaris equorum to macrocylic lactones / J.H. Boersema, Eysker M., Nas J.W.M.//Vet. Rec.- 2002. - № 150. - P. 279-281.doi: 10.1136/vr.150.9.279.

117. Brown, D. Interval Estimation for a Binomial Proportion /Cai T.T., Das Gupta A. //Statistical Science. - 2001. - Vol. 16. - № 2. - P. 101-117. https://doi.org/10.1214/ss/1009213286

118. Cernea, M. Atlas of diagnosis of equine strongylidosis/ Cernea M., de Carvalho M.L.M., Vasile C.// 2008. - 123p.

119. Coles, G.C. World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) methods for the detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance / Bauer, C., Borgsteede, F.H., Geerts, S., Klei, T.R., Taylor, M.A., Waller, P.J. //Veterinary Parasitology. - 1992. - № 44. - P. 35-44. doi: 10.1016/0304-4017(92)90141-u.

120. Coles, G.C. The detection of anthelmintic resistance in nematodes of veterinary importance/ Pomroy W.E., Prichard R.K., von Samson-Himmelstjerna G., Silvestre A., Taylor M.A., Vercruysse J.// Veterinary Parasitology. - 2006. - №2 136. - P. 167-185.doi: 10.1016/j.vetpar.2005.11.019.

121. Coles, G.C. Anthelmintic resistance - looking to the future: a UK perspective // Research in Veterinary Science. - 2005. - Vol. 78. - P. 99-108. DOI: 10.1016/j.rvsc.2004.09.001

122. Coop, R.L. Nutrition and parasite interaction/ Coo, R.L., Holmes P.H.//International Journal for Parasitology. - 1996. - №26. - P. 951-962. DOI: 10.1016/s0020-7519(96)80070-1.

123. Craig, T.M. Anthelmintic resistance and alternative control methods//Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. - 2006. - №2 22. -P. 567-581. DOI: 10.1016/j.cvfa.2006.07.003.

124. Dobson, R.J. Reid Preserving new anthelmintics: a simple method for estimating faecal egg count reduction test (FECRT) confidence limits when efficacy and/or nematode aggregation is high / B.C. Hosking, C.L. Jacobson, J.L. Cotter, R.B. Besier, P.A. Stein, S.A. //Vet. Parasitol. -2012. - Vol. 186. - P. 79-93. http://dx.doi.org/10.1016Zj.vetpar.2011.11.049

125. Domke, A.V. Prevalence of anthelmintic resistance in gastrointestinal nematodes of sheep and goats in Norway/ Chartier C., Gjerde B., Hoglund J., Leine N., Vatn S., Stuen S. // Parasitology Research. - 2012. - Vol. 111. - P. 185-193. DOI: 10.1007/s00436-012-2817-x

126. Drogemuller, M. Evidence of p-glycoprotein sequence diversity in cyathostomins / Schnieder T., von Samson-Himmelstjerna G. // Journal of Parasitology. -2004. - Vol. 90. - P. 998-1003.

127. Easton, S. Investigating interactions between UK horse owners and prescribers of anthelmintics // Preventive Veterinary Medicine. -2016. - Vol. 135. - P. 17-27.

128. Egerton, J.R. The antiparasitic activity of ivermectin in horses / Brokken, E.S. SuhaydaD., Eary, C.H., Wooden, J.W., Kilgore R.L. // Vet. Parasitol. - 1981. - Vol. 8. -P. 83-88.

129. Epe, C., Coati, N., Schnieder, T. Ergebnisse parasitologischer Kotuntersuchungen von Pferden, Wiederkäuern, Schweinen, Hunden, Katzen, Igeln und Kaninchen in den Jahren 1998-2002 // Dtsch Tierarztl Wochenschr. -2004. - Vol. 111. -P. 243-247.

130. Fleming, S.A., Nielsen, M.K., Ballweber, L.R. Large Animal Internal Medicine (Sixth Edition). -2020. - P. 1669-1693.e5 https://doi.org/10.1016/B978-0-323-55445-9.00049-5

131. Gao, J.F. According to mitochondrial DNA evidence, Parascaris equorum and Parascaris univalens may represent the same species / Zhang X.X., Wang X.X., Li Q., Li Y., Xu W.W., Gao Y., Wang C.R. //Journal of Helminthology.-2018. -P. 1-6. https://doi.org/10.1017/ S0022149X18000330

132. Geurden, T. Anthelmintic resistance to ivermectin and moxidectin in gastrointestinal nematodes of cattle in Europe / Chartier C., Fanke J., di Regalbono A.F., Traversa D., von Samson-Himmelstjerna G., Demeler J., Vanimisetti H.B., Bartram D.J., Denwood M.J.//International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance. -2015. -№ 5. - P. 163-171. doi: 10.1016/j.ijpddr.2015.08.001.

133. Ihler, C.F. A field survey on anthelmintic resistance in equine small strongyles in Norway // Acta Vet. Scand. - 1995. - № 36. - 135-143.

134. Jacobs, D.E. Equine Cyathostome infection: suppression of faecal egg output with moxidectin / Hutchinson, M.J., Parker,L., Gibbons L.M. // Vet. Rec. - 1995. - Vol. 137. -P. 545.

135. Kaplan, R.M. Anthelmintic resistance in nematodes of horses//Vet. Res. -2002. -№ 33. - P. 491-507.doi: 10.1051/vetres:2002035.

136. Kaplan R.M., Denwood M.J., Nielsen M.K., Thamsborg S. M., Torgerson P.R., Gilleard J. S. World Association for the Advancement of Veterinary Parasitology (W.A.A.V.P.) guideline for diagnosing anthelmintic resistance using the faecal egg count reduction test in ruminants, horses and swine// Veterinary Parasitology, 2023. - V. 318. - 109936. https://doi.org/10.1016Zj.vetpar.2023.109936

137. Kaplan, R.M. Drug resistance in nematodes of veterinary importance. A status report//Trend. Parasitol. - 2004. - № 20. - P. 477-481. doi: 10.1016/j.pt.2004.08.001

138. Kaplan, R.M., Vidyashankar, A.N. An inconvenient truth: global worming and anthelmintic resistance // Vet. Parasitol. - 2012. - Vol. 186. - P. 70-78. doi: 10.1016/j.vetpar.2011.11.048.

139. Kooyman, F.N.J. Species composition of larvae cultured after anthelmintic treatment indicates reduced moxidectin susceptibility of immature Cylicocyclus species in horses / van Doorn, D.C.K., Geurden, T., Mughini-Gras, L., Ploeger, H.W., Wagenaar, J.A.//Veterinary Parasitology. - 2016. - № 227. - P. 77-84. DOI: 10.1016/j.vetpar.2016.07.029.

140. Kopp, S.R. High-level pyrantel resistance in the hookworm Ancylostoma caninum / Kotze, A.C., McCarthy, J.S., Coleman, G.T. // Veterinary Parasitology. - 2007.

- Vol. 143. - P. 299-304. doi: 10.1016/j.vetpar.2006.08.036.

141. Kornas, S., Gawor, J., Cabaret, J., Molenda, K., Skalska, M., Nowosad, B. Morphometric identification of equid cyathostome (Nematoda: Cyathostominae) infective larvae//Veterinary Parasitology. - 2009. - Vol. 162. - P. 290-294. DOI: 10.1016/j.vetpar.2009.03.018

142. Kotze, A.C. Relative level of thiabendazole resistance associated with the E198A and F200Y SNPs in larvae of a multi-drug resistant isolate of Haemonchus contortus/ Cowling K., Bagnall N.H., Hines B.M., Ruffell A.P., Hunt P.W., Coleman G.T. // International Journal for Parasitol: Drugs and Drug Resistance. - 2012. - Vol. 2.

- P. 92-97.

143. Kumar, S. Benzimidazole resistance in equine cyathostomins in India /Garg R., Kumar S., Banerjee P.S., Ram H., Prasad A. //Veterinary Parasitology.- 2016. - Vol. 218. - P. 93-97.

144. Kuzmina, T.A. Gastrointestinal parasite community in a new population of the przewalski's horse (Equus ferusprzewalskii) in the Orenburg state reserve, Russia / Zvegintsova N.S., Zharkikh T.L. // Vestnikzoologii. - 2017. - Vol.51(3). - P. 243-250. DOI 10.1515/vzoo-2017-0030

145. Kwa, M.S. Benzimidazole resistance in Haemonchus contortus is correlated with a conserved mutation at aminoacid 200 in beta-tubulin isotype-1/ Veenstra J.G., Roos M.H. //Molecular and Biochemical Parasitology. - 1994. - Vol. 63.- P. 299-303.

146. Lester, H.E. Anthelmintic efficacy against cyathostomins in horses in Southern England / Spanton J., Stratford C.H., Bartley D.J., Morgan E.R., Hodgkinson J.E., Coumbe K., Mair T., Swan B., Lemon G., Cookson R., Matthews J.B.// Veterinary

Parasitology. - 2013. - Vol. 197. - P.189-196.

147. Lester, H.E. Faecal worm egg count analysis for targeting anthelmintic treatment in horses: points to consider/ Lester H.E., Matthews J.B. // Equine Vet. J. -2014. - Vol. 46(2). - P. 139-45.DOI: 10.1111/evj.12199

148. Lichtenfels, J.R. Nematodes of the tribe cyathostominea (Strongylidae) collected from horses in Scotland / McDonnell, A., Love, S., Matthews, J.B.//Comp. Parasitol. - 2001. - № 68. - P. 265-269.

149. Lichtenfels, J. R. Helminths of domestic equids. Illustrated keys to genera and species with emphasis on North American forms // Proc. Helminthol. Soc. Wash.-1975. - Vol. 42. - P. 1 - 92.

150. Lichtenfels, J.R. Illustrated identification keys to strongylid parasites (Strongylidae: Nematoda) of horses, zebras and asses (Equidae)/ Lichtenfels J.R., Kharchenko V.A., Dvojnos G.M. // Vet. Parasitol.-2008. - Vol. 156(1-2). - P. 4-161. DOI: 10.1016/j .vetpar.2008.04.026

151. Love, S. Pathogenicity of cyathostome infection/ Love S., Murphy D., Mellor D.//Vet. Parasitol. - 1999. - № 85. - P. 113-122.doi: 10.1016/s0304-4017(99)00092-8.

152. Lyons, E.T. Larval cyathostomiasis / Lyons E.T., Drudge J.H., Tolliver S.C.//Vet. Clin. North Am. Equine Pract. - 2000. - № 16. - P. 501-513. doi: 10.1016/s0749-0739(17)30092-5.

153. Lyons, E.T. Field tests demonstrating reduced activity of ivermectin and moxidectin against small strongyles in horses on 14 farms in Central Kentucky in 20072009 / Tolliver S.C., Collins S.S., Ionita M., Kuzmina T.A., Rossano M.//Parasitol. Res. - 2011. - № 108. - P. 355-360.D0I: 10.1007/s00436-010-2068-7.

154. Lyons, E.T. Field studies indicating reduced activity of ivermectin on small strongyles in horses on a farm in Central Kentucky / Tolliver S.C., Ionita M., Lewellen A., Collins S.S.//Parasitol. Res. - 2008. - № 103. - P. 209-215. doi: 10.1007/s00436-008-0959-7.

155. Lyons, E.T. Critical tests evaluating efficacy of moxidectin against small strongyles in horses from a herd for which reduced activity had been found in field tests

in Central Kentucky / Tolliver S.C., Kuzmina T.A., Collins, S.S. //Parasitology Research. - 2010. - Vol. 107. - P. 1495-1498.

156. Martin, F. Exploring the ß-tubulin gene family in a benzimidazole-resistant Parascaris univalens population / Halvarsson P., Delhomme N., Höglund J., Tyden E. // Int. J. Parasitol. Drugs Drug Resist. - 2021. - Vol.17. - P. 84-91. DOI: 10.1016/j.ijpddr.2021.08.004

157. Martin, F. Resistance to pyrantel embonate and efficacy of fenbendazole in Parascaris univalens on Swedish stud farms/ Höglund J., Bergström T.F., Lindsjö O.K., Tyden E. // Vet. Parasitol. - 2018. - Vol. 264. - P. 69-73. DOI: 10.1016/j.vetpar.2018.11.003

158. Martin, F. First report of resistance to ivermectin in Parascaris univalens in Iceland / Svansson V., Eydal M., Oddsdottir C., Ernbac M., Persson, I., Tyden E. // J. Parasitol. - 2021. - Vol.107. - P. 16-22. DOI: 10.1645/20-91

159. Martin, P.J.Detecting benzimidazole resistance with faecal egg count reduction tests and in vitro assays / Martin P.J., Anderson N., Jarrett, R.G. // Australian Veterinary Journal. -1989. - Vol. 66. - P. 236-240.

160. Meier, A. Equine strongyles II. Occurrence of anthelmintic resistance in Switzerland/ Meier A., Hertzberg H. // Schweiz Arch Tierheilkd. - 2005. - Vol. 147. - P. 389-396. DOI: 10.1024/0036-7281.147.9.389

161. Mercier, P.B. White Comparative efficacy, persistent effect, and treatment intervals of anthelmintic pastes in naturally infected horses/ Mercier P.B., Chick F., Alves-Branco C.R. //Vet. Parasitol. - 2001. - Vol. 99. - P. 29-39. https://doi.org/10.1016/S0304-4017(01)00453-8

162. Molento, M.B. Anthelmintic resistant nematodes in Brazilian horses / Antunes J., Bente R.N., Coles, G.C. // Vet. Rec. - 2008. - Vol. 162. - P. 384-385. doi: 10.1136/vr.162.12.384.

163. Morsy, K. Optimizing and evaluating the antihelminthic activity of the biocompatible zinc oxide nanoparticles against the Ascaridid Nematode, Parascaris equorum in vitro / Fahmy S., Mohamed A., Ali S., El-Garhy M., Shazly M. //Acta

Parasitologica. - 2019. -Vol. 64(4). - P. 873-886. https://doi.org/10.2478/s11686-019-00111-2

164. Nielsen, M. K. Anthelmintic resistance in equine nematodes: Current status and emerging trends //Int. J. Parasitol. Drugs Drug Resist. - 2022. - Vol. 20. - P. 76-88. doi: 10.1016/j.ijpddr.2022.10.005.

165. Nielsen, M.K. Selective therapy in equine parasite control - application and limitations/ Nielsen M.K., Pfister K., von Samson-Himmelstjerna G. // Vet. Parasitol.-2014. - Vol. 28 (202, 3-4). - P. 95-103. doi: 10.1016/j.vetpar.2014.03.020.

166. Nielsen, M.K., von Samson-Himmelstjerna, G., Kuzmina, T.A., van Doorn, D.C.K., Meana, A., Rehbein, S., Elliott, T., Reinemeyer, C.R. World association for the advancement of veterinary parasitology (WAAVP): Third edition of guideline for evaluating the efficacy of equine anthelmintics// Veterinary Parasitology, 2022. - V. 303. - 109676. https : //doi.org/10.1016/j .vetpar.2022.109676

167. Panova, O.A., Khrustalev, A.V., Baranova, M.V., Polukhina D.N. The occurrence of resistant strains of equine parasitic nematodes in Russia// AIP Conference Proceedings 2817, 020022 (2023) https://doi.org/10.1063Z5.0148184

168. Panova, O., Baranova, M., Kurnosova, O., Khrustalev, A. Horse gastrointestinal parasites in the Moscow region // BIO Web Conf. 2023. Volume 71, 01064. https://doi.org/10.1051/bioconf/20237101064

169. Peachey, L.E. P-glycoproteins play a role in ivermectin resistance in cyathostomins / Pinchbeck G.L., Matthews J.B., Burden F.A., Lespine A., von Samson-Himmelstjerna G., Krücken J., Hodgkinson, J.E. // International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance. - 2017. - Vol. 7. - P. 388-398.

170. Peregrine, A.S. Anthelmintic resistance in important parasites of horses: does it really matter? / Molento M.B., Kaplan R.M., Nielsen M.K.//Vet Parasitol.- 2014.-№201. - P. 1-8. doi: 10.1016/j.vetpar.2014.01.004.

171. Pook, J.F. Evaluation of tests for anthelmintic resistance in cyathostomes / Power M.L., Sangster N.C., Hodgson J.L., Hodgson D.R.// Veterinary Parasitology. -2002. - Vol. 106. - P. 331-343. DOI: 10.1016/s0304-4017(02)00093-6

172. Prichard, R.K., Geary, T.G. Perspectives on the utility of moxidectin for the control of parasitic nematodes in the face of developing anthelmintic resistance// Int. J. Parasitol. Drugs Drug Resist. - 2019. - Vol.10. - P. 69-83.doi: 10.1016/j.ijpddr.2019.06.002.

173. Prichard, R. Genetic variability following selection of Haemonchus contortus with anthelmintics // Trends in Parasitology. - 2001. - Vol. 17. - P. 445-453.

174. Raue, K. Strube 10-year parasitological examination results (2003 to 2012) of faecal samples from horses, ruminants, pigs, dogs, cats, rabbits and hedgehogs / Heuer L., Böhm C., Wolken S., Epe C., Strube C. // Parasitol. Res. - 2017. - Vol. 116(12). - P. 3315-3330. https://doi.org/10.1007/s00436-017-5646-0

175. Raza, A. Effects of in vitro exposure to ivermectin and levamisole on the expression patterns of ABC transporters in Haemonchus contortus larvae / Kopp S.R., Bagnall N.H., Jabbar A., KotzeA.C. // International Journal for Parasitology: Drugs and Drug Resistance. - 2016. - Vol. 6. - P. 103-115.

176. Raza, A. Anthelmintic resistance and novel control options in equine gastrointestinal nematodes / Qamar A.G., Hayat K. //Parasitology. - 2019. - Vol.146. -№4. - P. 425-437.doi: 10.1017/S0031182018001786.

177. Reinemeyer, C.R. Anthelmintic resistance among non - strongylid parasites of horses // Vet. Parasitol. - 2012. - Vol.185. - P. 9-15. DOI: 10.1016/j.vetpar.2011.10.009

178. Scala, A. Gastrointestinal strongyles egg excretion in relation to age, gender, and management of horses in Italy / Tamponi C., Sanna G., Predieri G., Dessi G., Sedda G., Buono F.,Cappai M.G.,Veneziano V., VarcasiaA. // Animals (Basel). - 2020. - Vol. 10(12). - P. 2283. doi: 10.3390/ani10122283

179. Schneider, S. Strongyle infections and parasitic control strategies in German horses—a risk assessment / Pfister K., Becher A.M., Scheuerle M.C. // BMC Vet Res. -2014. - Vol. 10. - P. 262.

180. Slivinska, K. Parasitological survey of Polish primitive horses (Equus caballus gmelini Ant.): infl uence of age, sex and management strategies on the parasite

community /Kharchenko V., Wroblewski Z., Gawor J., Kuzmina T.A. // Helminthologia.

- 2016. - Vol. 53 (3). - P. 233-242.DOI 10.1515/helmin-2016-0023

181. Stratford, C.H. An investigation of anthelmintic efficacy against strongyles on equine yards in Scotland / Lester H.E., Pickles K.J., McGorum B.C., Matthews J.B.// Equine Veterinary Journal. - 2014. - Vol. 46. - P. 17-24. DOI: 10.1111/evj.12079

182. Studzinska, M.B., Tomczuk, K., Sadzikowski, A.B. Prevalence of Eimeria leuckarti in young horses and usefulness of some coproscopical methods for its detection// Bull. Vet. Inst. Pulawy. - 2008. - Vol.52. - P. 541-544.

183. Tavassoli, M. A survey on the prevalence of strongyles species in working donkeys in North-West of Iran / Yamchi J.A.,Hajipour N. // Journal of Parasitic Diseases.

- 2016. - Vol. 40. - P. 1210-1212.

184. Taylor, M.A., Hunt, K.R., Goodyear, K.L. Anthelmintic resistance detection methods // Veterinary Parasitology. - 2002. - Vol.103. - P. 183-194.

185. Taylor, S.M., Kenny, J. Comparison of moxidectin with ivermectin and pyrantel pamoate for reduction of faecal egg counts in horses//Vet. Rec. -1995. - Vol. 137. - P. 516-518

186. Traversa, D. Distribution and species-specific occurrence of Cyathostomins (Nematoda, Strongylida) in naturally infected horses from Italy, United Kingdom and Germany / Milillo P., Barnes H., von Samson-Himmelstjerna G., Schurmann S., Demeler J., Otranto D., Lia R.P., Perrucci S., Frangipane di Regalbono A., Beraldo P., Amodie D., Rohn K., Cobb R., Boeckh A. // Vet. Parasitol. - 2010. - Vol. 168. - P. 84-92.

187. Traversa, D. Anthelmintic resistance in cyathostomin populations from horse yards in Italy, United Kingdom and Germany / von Samson-Himmelstjerna G., Demeler J., Milillo P., Schurmann S., Barnes H., Otranto D., Perrucci S., di Regalbono A.F., Beraldo P., Boeckh A., Cobb R. // Parasit. Vectors. - 2009. - Vol. 2 (Suppl. 2). -P. 2. doi: 10.1186/1756-3305-2-S2-S2.

188. Tyden, E. Population genetics of Parascaris equorum based on DNA fingerprinting / Morrison D.A., Engström A., Nielsen M.K., Eydal M., Höglund J. // Infection, Genetics and Evolution. - 2013. - Vol. 13. - P. 236-241 https://doi.org/10.1016Zj.meegid.2012.09.022

189. Veronesi, F. Field effectiveness of pyrantel and failure of Parascaris equorum egg count reduction following ivermectin treatment in Italian horse farms/ F. Veronesi, I. Moretta,A. Moretti // Vet. Parasitol. - 2009. - № 161. - P. 138-141.

190. von Samson-Himmelstjerna, G. Anthelmintic resistance in equine parasites

- detection, potential clinical relevance and implications for control // Veterinary Parasitology. - 2012. - Vol. 185. - P. 2-8.

191. von Samson-Himmelstjerna,G. Cases of reduced cyathostomin egg-reappearance period and failure of Parascaris equorum egg count reduction following ivermectin treatment as well as survey on pyrantel efficacy on German horse farms / Fritzen B., Demeler J., Schurmann S., Rohn K., Schnieder T., Epe C. // Vet. Parasitol. -2007. - Vol. 144. - P. 74-80. doi: 10.1016/j.vetpar.2006.09.036.

192. Wolstenholme, A.J., Martin, R.J. Anthelmintics - From Discovery to Resistance III (Indian Rocks Beach, FL, 2018)//Int. J.Parasitol Drugs Drug Resist. - 2018.

- Vol.8(3). - P. 494-495. doi: 10.1016/j.ijpddr.2018.11.002

193. Zajac, A.M. Veterinary clinical parasitology / Conboy G.A., Little S.E., Reichard M.V.// 9rd edn. Wiley-Blackwell, Chichester. - 2021. - P. 432.

ПРИЛОЖЕНИЕ

ВЫПИСКА ИЗ ПРОТОКОЛА № 04

Заседания учёного совета Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и -Я.Р. Коваленко Российской академии наук» (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) город Москва 28 ноября 2023 года

Председатель - Председатель учёного совета ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН,

директор ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, чл.-корр. РАН, д-р ветеринар, наук. Гулюкин А.М. Учёный секретарь ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН,

канд. биол. наук Исаев Ю.Г.

Из 45 членов списочного состава присутствовали на заседании: 33 - членов учёного совета ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН 21 - присутствующих.

ПОВЕСТКА ДНЯ Вопрос:

Рассмотрение и утверждение Методических рекомендаций по предотвращению развития антигельминтной резистентности у нематод лошадей, автор: Баранова М.В. (ВНИИП -филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН).

СЛУШАЛИ:

Арисова Михаила Владимировича, профессора РАН, д.в.н., руководителя ВНИИП -филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, председателя научно-методической комиссии ВНИИП - филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, который доложил решение НМК ВНИИП - филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН (№5 от 30.10.2023 г.) об одобрении Методических рекомендаций по предотвращению развития антигельминтной резистентности у нематод лошадей. На все заданные присутствующими вопросы были получены полные, обстоятельные ответы.

ПОСТАНОВИЛИ:

Утвердить Методические рекомендации по предотвращению развития антигельминтной резистентности у нематод лошадей, автор: Баранова М.В. (ВНИИП -филиал ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН), и рекомендовать их к открытой печати.

Результаты голосования: «за» - 33, «против» - нет, «воздержался» - нет. Принято единогласно.

Председатель учёного совета

ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН Учёный секретарь 28 ноября 2023 года

подпись подпись

А.М. Гулюкин Ю.Г. Исаев

Учёный секретарь

Ю.Г. Исаев

Министерство науки и высшего образования Российской" Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Российский биотехнологический университет (РОСБИОТЕХ)»

125080, г. Москва, Волоколамское шоссе, дом 11

Тел./факс +7 (499) 750-01-11 доб. 7371, +7 (499) 750-01-11 E-mail: mguppiaimaupp.ru

о внедрении в учебный процесс ФГБОУ ВО «Российский биотехнологический университет» результатов диссертационной работы Барановой Марии Вячеславовны на тему «Распространение гельминтозов и антигельминтная резистентность нематод

Результаты диссертационной работы Барановой Марии Вячеславовны, аспиранта ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, используются в учебном процессе при чтении лекций и проведении практических занятий с обучающимися 3, 4 и 5 курсов кафедры ветеринарной медицины.

Проректор по образовательной деяте

Справка

лошадей на территории Центральной России».

д.в.н., профессор

ФГБОУ ВО РОСБИОТЕХ

А <

и агробезопасности ФГБОУ ВО РОС

И.Г. Гламаздин

Н.В. Жукова

ФГБУН ФИЦ ЯНЦ СО РАН Якутский научно - исследовательский институт сельского хозяйства

имени М.Г. Сафронова Малая сельскохозяйственная академия

ДИПЛОМ

III СТЕПЕНИ

НАГРАЖДАЕТСЯ

участник научно-практической конференции «Степановские чтения»,

посвященной

видному государственному руководителю, научному и общественному деятелю, лауреату Государственной премии Республики Саха (Якутия) в области науки и техники,' члену Международной Академии аграрного образования, Почетному работнику агропромышленного комплекса России и Республики Саха (Якутия), Заслуженному работнику народного хозяйства Республики Саха (Якутия), доктору сельскохозяйственных наук -Айаалу Ивановичу Степанову

Директор ЯНИИСХ, член-корреспондент

Руководитель МС Президент МСХА

г. Якутск, 2022 г.

Л.Н. Владимиров

Л.М. Коколова Л.Ю. Гаврильева

Veterinary World

Open access and peer reviewed international journal

SCOPUS: Citescore - 3.0f SJR - 0.457, SNIP - 1.121

PUBLICATION CERTIFICATE

This is to certify that article entitled:

Reduction of the nematode egg reappearance period in horses after anthelmintic therapy

Maria V. Baranova, Olga A. Panova, Daria N. Polukhina and Daria S. Panova

has been published online at https://www.veterinaryworld.org/Vol.15/June-2022/16.pdfon 24-06-2022.

Citation: Baranova MVy Panova OA, Polukhina DN, Panova DS (2022) Reduction of the nematode egg reappearance period in horses after anthelmintic therapy, Veterinary World, 15(6): 1530-1534. doi: www.doi.org/10.14202/vetworld.2022.1530-1534.

Anjum V. Sherasiya

Editor-in-Chief

Certificate issue date: 24-06-2022

EISSN: 2231-0916, Website: http://www.veterinaryworld.org

Corresponding author: Olga A. Panova, Laboratory of Biology and Biological basis of Preventive Measures, Federal State Budget Scientific Institution "Federal Scientific Centre VIEV" (FSC VIEV), St. B. heryomushkinskaya, 28, Moscow, 117218, Russia. E-mail: panova@vniigis.ru

a -ö

K

u

o *

a> X K a>

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.