Продуктивность фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris L.) при обработке семян микробными препаратами тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.01, кандидат сельскохозяйственных наук Белоброва, Светлана Николаевна

• Белоброва, Светлана Николаевна
• кандидат сельскохозяйственных наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат сельскохозяйственных наук Белоброва, Светлана Николаевна

ВВЕДЕНИЕ.

1. РАСТИТЕЛЬНО-МИКРОБНЫЕ СИСТЕМЫ И ИХ ЗНАЧЕНИЕ

В ЗЕМЛЕДЕЛИИ (обзор литературы).

1.1. Фасоль обыкновенная.

1.1.1. Ботаническая характеристика и биологические особенности фасоли обыкновенной.

1.1.2. Значение фасоли в различных производственных отраслях.

1.1.3. Районы возделывания и площади посева фасоли в мире.

1.2. Бобово-ризобиальный симбиоз.

1.2.1. Механизмы взаимодействия в макро- и микро- симбионтов в бобово-ризобиальном симбиозе.

1.2.2. Эффективность применения клубеньковых бактерий на различных бобовых культурах.

1.3. Ассоциативные ризобактерии.

1.3.1. Механизм взаимодействия ассоциативных ризобактерий с растениями.

1.3.2. Влияние ассоциативных ризобактерий на продуктивность растений.

1.4. Эндомикоризный симбиоз.

1.4.1. Механизмы взаимодействия арбускулярной микоризы с растениями.

1.4.2. Значение арбускулярной микоризы для бобовых культур.

2. МЕСТО, УСЛОВИЯ, МЕТОДЫ И ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.1. Место и схема проведения опытов.

2.2. Метеорологические условия в годы постановки опытов.

2.3. Агрохимическая характеристика почв.

2.4. Методы исследований.

2.5. Характеристика сорта фасоли и микробных препаратов, изучаемых в опытах.

3. ПРОДУКТИВНОСТЬ ФАСОЛИ ОБЫКНОВЕННОЙ

В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ИНОКУЛЯЦИИ СЕМЯН ПРИ РАЗЛИЧНОМ СОЧЕТАНИИ МИКРОБНЫХ ПРЕПАРАТОВ (результаты исследований).

3.1. Рост и развитие растений фасоли обыкновенной.

3.2. Фотосинтетическая продуктивность растений.

3.3. Клубенькообразование, нитрогенназная активность и накопление азота в различных частях растений.

3.4. Урожайность семян и выход белка с урожаем.

4. АГРОЭНЕРГЕТИЧЕСКАЯ И ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ ОБРАБОТКИ СЕМЯН МИКРОБНЫМИ ПРЕПАРАТАМИ

ПРИ ВОЗДЕЛЫВАНИИ ФАСОЛИ ОБЫКНОВЕННОЙ.

4. 1. Агроэнергетическая эффективность возделывания фасоли обыкновенной.

4.2. Экономическая эффективность возделывания фасоли обыкновенной.П

ВЫВОДЫ.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Продуктивность фасоли обыкновенной (Phaseolus vulgaris L.) при обработке семян микробными препаратами»

В настоящее время проблема производства необходимого количества полноценного растительного белка в питании человека и кормлении сельскохозяйственных животных приобретает первостепенное значение. В рационе населения России дефицит пищевого белка составляет около 600 тысяч тонн и один из наиболее эффективных путей решения этой проблемы является увеличение производства пищевых белков из растительного сырья.

Решающая роль в сокращении дефицита растительного белка принадлежит бобовым культурам. Способность бобовых растений в симбиозе с клубеньковыми бактериями усваивать атмосферный азот обеспечивает им экологические преимущества в условиях дефицита азота и не требует внесения дорогостоящих и экологически не безопасных азотных удобрений. Применение при возделывании бобовых культурах препаратов на основе симбиотических азотфиксаторов повышает вклад бобовых культур, как накопителей азота не только в урожае, но и служит важнейшим фактором вовлечения в земледелие биологического азота, который после минерализации пожнивно-корневых остатков используется для урожая последующих культур севооборота (Завалин, Благовещенская, Кожемяков, 2007; Завалин, Алметов, 2009; Мишустин, Черепков, 1979).

Среди продовольственных зернобобовых культур фасоль обыкновенная {Phaseolus vulgaris) выделяется по питательности и многообразию использования на пищевые цели. В ее семенах содержится до 30% белка, до 3% жира, а в белке - все необходимые для человека аминокислоты, по питательности, приближающиеся к белкам животного происхождения (Акулов с соавт., 2010).

Актуальность темы. В последние годы ареал возделывания фасоли существенно расширился до центральной и северо-западной части России. Для ее выращивания в условиях Северо-Запада РФ необходима разработка адаптивной технологии возделывания. Одним из элементов технологии выращивания фасоли обыкновенной в новых агроклиматических условиях является обработка семян микробными биопрепаратами. Инокуляция семян фасоли ризоторфином, на основе селекционных штаммов клубеньковых бактерий, хорошо известна. Его применение позволяет существенно повысить симбиотическую азотфикса-цию, снизить дозы минеральных удобрений и удешевить производство семян фасоли высокого качества (Самцевич с оавт., 1980; Андреева с соавт., 1990,1991; Ва-сильчиков, 2005; Туаева, 2006; Осин с соавт., 2011). Работы, связанные с изучением использования на фасоли других микробных препаратов и их сочетаний с ри-зоторфином, незначительны, данная тема актуальна, так как направлена на поиск новых возможностей экологизации земледелия.

Целью настоящей работы являлся поиск наиболее эффективного сочетания различных микробных препаратов, на основе микроорганизмов образующих различные типы симбиозов и анализ их влияния на показатели продуктивности растений фасоли обыкновенной в условиях Северо-Запада РФ.

Для выполнения поставленной цели были решены следующие задачи:

• изучено влияние микробных препаратов в различных сочетаниях на динамику роста и развития растений, фотосинтетическую деятельность и продуктивность фасоли обыкновенной;

• установлено количество накопленного растениями азота, его содержание и доля в различных частях растений фасоли обыкновенной под влиянием изучаемых сочетаний микробных препаратов при инокуляции семян;

• проведен анализ структурных элементов роста продуктивности фасоли под воздействием микробных препаратов в использовании их при различных сочетаниях;

• рассчитана агроэнергетическая и экономическая эффективность при инокуляции семян микробными препаратами в различных сочетаниях.

Научная новизна. Впервые установлено, что в повышении семенной продуктивности и качества семян фасоли большое значение имеют микробные препараты. Наибольший эффект оказывала бинарная и тройная (смешенная) инокуляция семян фасоли микробными препаратами на основе: штаммов клубеньковых бактерий, ассоциативных ризобактерии и грибов арбускулярной микоризы.

Практическая значимость результатов исследований состоит в том, что при возделывании фасоли обыкновенной сорта «Сакса без волокна 615» обосновано применение для инокуляции семян при посеве наиболее эффективного сочетания микробных препаратов (ризоторфин + микориза), позволяющее повысить урожайность семян по сравнению с контролем на 40% и содержание в них белка на 0,8% без применения минеральных и органических удобрений.

Основные положения, выносимые на защиту.

• Пути повышения продуктивности растений фасоли за счет бинарной и тройной инокуляции семян при посеве на основе клубеньковых бактерий в сочетании с арбускулярной микоризой и мизорином;

• фотосинтетическая деятельность в зависимости от обработки семян фасоли при посеве микробными препаратами;

• пути увеличения клубенькообразующей активности и накопления азота в растениях фасоли за счет применения микробных препаратов;

• бинарная и тройная инокуляция семян с включением в ее состав микробного препарата арбускулярной микоризы обеспечивает наибольшую урожайность семян фасоли обыкновенной и накопление белка в растениях.

• агроэнергетическая и экономическая оценка эффективности инокуляции семян микробными препаратами при возделывании фасоли.

Апробация работы и публикации. Материалы диссертации были представлены на международной школе молодых учёных "Прикладные и фундаментальные аспекты сигнальных процессов, развития и эффективности симбиозов микроорганизмов с корнями" (Санкт-Петербург, 2007); на конференции профессорско-преподавательского состава Санкт-Петербургского Государственного аграрного университета (Санкт-Петербург, 2007; 2011).

По результатам исследований опубликовано 6 работ, в том числе 3 - в журналах, рекомендованных ВАК.

Декларация личного участия автора. В основу диссертационной работы включены результаты вегетационных исследований за 4 года (2005.2006 и 2010.2011 гг.) и полевых за 2 года (2005.2006 гг.) исследований. Приведен6 ные в диссертации фактические данные, их анализ, статистическая обработка и обобщение выполнены лично автором.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 163 страницах печатного текста, состоит из введения, 4 глав, выводов, предложения производству, приложений, содержит 34 таблицы, 24 рисунка. Список использованной литературы включает 344 наименования, в том числе 169 на иностранных языках.

Заключение диссертации по теме «Общее земледелие», Белоброва, Светлана Николаевна

выводы

1. Установлено, что инокуляция семян фасоли перед посевом изученными микробными препаратами оказала положительное стимулирующее влияние на формирование продукционного процесса растений в целом.

2. Применение микробных препаратов для инокуляции семян фасоли оказало положительное влияние на основные показатели фотосинтетической продуктивности посева. Обработка семян арбускулярной микоризой (шт. 8) и ми-зорином (шт. 7) способствовало увеличению площади листьев на 15.23% по сравнению с контролем. Наибольший фотосинтетический потенциал посева 38 тыс. см2*дн./раст. был получен при бинарной инокуляции семян фасоли ризо-торфином (шт. 653) с микоризой (шт. 8), что на 17% больше по сравнению с контролем. Самый высокий показатель чистой продуктивности фотосинтеза -7,92 г/м *сут. был при бинарной инокуляции семян фасоли ризотрфином (шт. 653) и мизорином (шт. 7), что подтверждается долей влияния взаимодействия факторов АВ на ЧПФ, которая составляла 41%.

3. Существенное влияние на увеличение количества активных клубеньков на корнях фасоли оказала обработка семян ризоторфином (шт. 653), как раздельная, так и её применение в сочетании с микоризой (шт. 8) и мизорином (шт. 7) в течение вегетационного периода развития растений. В среднем за годы исследований в фазу образования бобов количество активных клубеньков было в 1,4. .2,1 раза больше по сравнению с контрольным вариантом без инокуляции.

4. Применение бинарной инокуляции семян фасоли (ризоторфин + мизо-рин) увеличивало накопление азота в общей биомассе на 12 % по сравнению с контролем. Основная часть накопленного азота аккумулировалась в семенах (66.80% от общего азота в растениях) и была максимальной при бинарной (ризоторфин + микориза) и тройной инокуляции (ризоторфин + микориза + ми-зорин).

6. Урожайность фасоли в большей степени зависела от совместной инокуляции семян фасоли клубеньковыми бактериями (ризоторфин, шт. 653) и арбу-скулярной микоризы (шт. 8). Урожайность на этом варианте была наибольшей и составила 3,27 т/га, что в 1,4 раза больше по сравнению с контролем. Бинарная (ризоторфин + микориза) и тройная инокуляции (ризоторфин + микориза + мизорин) семян способствовали наибольшему выходу белка с урожаем, на 27.42% по сравнению с контролем.

7. Обоснована агроэнергетическая эффективность применение микробных препаратов для инокуляции семян при возделывании фасоли на семена. Самый высокий коэффицент энергетической эффективности - 2,25 получен на варианте с совместной обработкой семян ризоторфином (шт. 653) и арбускулярной микоризой (шт. 8).

8. Применение инокуляции семян микробными препаратами при возделывании фасоли на семена экономически эффективно. Наибольший условно чистый доход получен 48,9 тыс. руб./га при бинарной инокуляции семян ризоторфином (шт. 653) и микоризой (шт. 8). При этом уровень рентабельности повысился с 69 до 99%.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ

При возделывании фасоли обыкновенной в условиях Северо-запада Нечерноземной зоны Российской Федерации на дерново-подзолистых почвах целесообразно проведение предпосевной инокуляции семян ризоторфином (штамм №653) совместно с мизорином (штамм №7) или арбускулярной микоризой (штамм №8), это обеспечивает:

• получение стабильной урожайности семян фасоли обыкновенной на уровне 2,5.3,3 т/га;

• выход растительного белка с урожаем 570. .722 кг/га;

• способствует накоплению биологического азота и сохранению положительного баланса органического вещества в почве.

Список литературы диссертационного исследования кандидат сельскохозяйственных наук Белоброва, Светлана Николаевна, 2012 год

1. Абрамов A.A. Опыт выращивания семян козлятника восточного в условиях Киевской области // Кормовые растительные ресурсы — фактор научно-производственного прогресса в кормопроизводстве. Киев: Белая Церковь, 1989. С. 21-22.

2. Агроклиматические ресурсы Ленинградской области. Л., 1971. 119 с.

3. Агрохимические методы исследования почв. М.: Наука, 1975. С. 656.

4. Азаров Б.Ф. Симбиотический азот в земледелии ЦентральноЧерноземной зоны Российской Федерации: Автореф. дис. док. с/х наук. М. 1995. 59 с.

5. Алисова С.М., Чундерова С.М. Методические указания по использованию ацетиленового метода при селекции бобовых культур на повышение азот-фиксации. Л., 1982. 11 с.

6. Андреева И.Н., Мандхан К., Редькина Т.В., Мишустин E.H., Измайлов С.Ф. Влияние Azospirillum brasilense на формирование и азотфиксирующую активность клубеньков фасоли и сои // Физиология растений. 1991. Том 38. Вып.5. С.897-903.

7. Андреева И.Н., Редькина Т.В., Мандхан К., Козлова Г.И., Измайлов С.Ф. Стимулирующее действие Azospirillum brasilense на бобово-ризобиальный сим

8. Анитипчук А.Ф. Канцелярук P.M., Рангелова В.Н., Скончинская H.H., Садовников Ю.С. Связь между симбиотической азотфиксацией и урожаем бобовых растений//Микробиология. 1989. Вып.4. С. 649-652.

9. И. Барбер С.А. Биологическая доступность питательных веществ в почве //Агропромиздат, 1988. 376 с.

10. Башков A.C. Влияние ризоагрина и других биопрепаратов на урожайность и качество продукции яровой пшеницы / Научное обеспечение развития АПК в современных условиях // Материалы Всерос. науч.-практ. конф. 15-18 февр., 2011. T.I. С. 3-9.

11. Безгодов A.B. Азотфиксирующие бактерии в жизни бобовых культур и применение ризоторфина//Агро-Компас. Екатеринбург. 1999. С. 3-7.

12. Белимов A.A., Кожемяков А.П. Смешанные культуры азотфиксирую-щих бактерий и перспективы их использования в земледелии (Обзор) // С.- х. биология. 1992. № 5. С. 77-87.

13. Белимов A.A., Поставская С.М., Хамова О.Ф., Кожемяков А.П., Куна-кова А.М., Груздева Е.В. Приживаемость и эффективность корневых диазотро-фов при инокуляции ячменя в зависимости от температуры и влажности почвы //Микробиология. 1994. Т. 63. С. 900-908.

14. Белимов A.A., Кунакова А.М., Сафронова В.И., Степанок В.В., Юдкин Л.Ю., Алексеев Ю.В., Кожемяков А.П. Использование ассоциативных бактерий для инокуляции ячменя в условиях загрязнения почвы свинцом и кадмием // Микробиология. 2004. Т. 73. С. 118-125.

15. Биологическая фиксация азота / Под ред. В.К. Шумного, И. А. Сидоровой с соавт. // Новосибирск: Наука, 1991. 271с.

16. Биологическое разнообразие клубеньковых бактерий в экосистемах и агроценозах // Под. ред. М.Л. Румянцевой, Б.В. Симарова. 2011. 104 с.

17. Борисов A.A. Климат // Природа Ленинграда и окрестностей. Л., 1964. С. 251.

18. Васильчиков А.Г., Орлов В.П. Повышение эффективности биологической фиксации азота у фасоли // Матер, междун. конференции, приурочен, к 35-летию ВНИИЗБК. Орел, 1997. С. 176-179.

19. Васильчиков А.Г. Повышение продуктивности фасоли путем подбора эффективных штаммов ризобий // Материалы Всероссийской науч.-практ. конференции. Орел. 2005. С.311-317.

20. Васюк Л.Ф., Корженевская H.H., Иванова И.Б., Баскакова Л.А. Испытание эффективности штаммов Rhizobium meliloti в полевых опытах с люцерной // Труды ВНИИСХМ, 1979. Т.48. С. 113-122.

21. Васюк Л.Ф. Азотфиксирующие микроорганизмы на корнях небобовых растений и их практическое использование // Биологический азот в сельском хозяйстве СССР. -М.: Наука, 1989. С. 88.

22. Васюк Л.Ф., Кожемяков А.П., Смирнова Т.В. Эффективность совместного применения препаратов клубеньковых и ассоциативных азотфиксирую-щих бактерий на бобовых культурах / Билютень ВИУА. М., №110. 1997. С.6-7.

23. Воробейков Г.А., Дубенская Г.И., Павлова Т.К. Минеральное питание и продуктивность котовника кошачьего при обработке семян бактериальными препаратами // Агрохимия. 1998. № 4. С. 48-51.

24. Гагарина Э.И., Матинян H.H., Счастная Л.С., Касаткина Г.А. Почвы и123почвенный покров Северо-Запада России. СПб.: Изд-во СпбГУ, 1995.

25. Газаль Н.С. Синтез гетероауксина клубеньковыми бактериями люцерны и люпина // Микроорганизмы, их роль в плодородии почвы и охране окружающей среды М., 1985. С. 66-71.

26. Генетические основы селекции клубеньковых бактерий / Под ред. Б.В. Симарова. Л.: Агропромиздат, 1990. 192 с.

27. Гончарова Л.Ю., Симонович Е.И., Казадаев A.A., Везденеева Л.С. Изменение биологической активности чернозема обыкновенного и продуктивности кормового лугового агроценоза под влиянием биоудобрений // Доклады РАСХН. 2009. №2. С. 35-36.

28. ГОСТ Р52325-2005. Семена сельскохозяйственных растений. Сортовые и посевные качества. Общие технические условия. М.: Стандартинформ, 2005.24 с.

29. Государственный реестр селекционных достижений допущенных к использованию. Москва. 2011. Т1. С. 24.

30. Гусева, Е.Г. Подбор растений, отзывчивых на микоризацию, для получения инокуляционного материала // Бюл. ВНИИ с.-х. микробиол., 1986. № 43.

31. Данилов В.П. Влияние азотных, бактериальных и биологических удобрений на продуктивность многолетних трав в лесостепной зоне Западной Сибири: Автореф. дис. . канд. е.- х. наук. Новосибирск, 1996. 18 с.

32. Доросинский, Л.М., Афанасьева Л.М. Значение сорта люцерны эффективного симбиоза с клубеньковыми бактериями // Сборник науч. трудов ВНИ-ИСХМ. 1976. С. 27-32.

33. Доросинский Л.М. Клубеньковые бактерии и нитрагин. Л., 1970. 187 с.

34. Доросинский Л.М., Кожемяков А.П. Эффективность применения нитрагина в СССР // Бюл. ВНИИСХМ. Л., 1981. № 34. С. 3-6.

35. Доросинский, Л.М. Повышение продуктивности бобовых культур и улучшение их качества // Минеральный и биологический азот в земледелии СССР. 1985. С. 142-149.

36. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М., 1985. 351 с.124

37. Жученко A.A. Обеспечение продовольственной безопасности России в XXI веке на основе адаптивной стратегии устойчивого развития АПК. М.: Трибуна Академии наук, 2008. 97 с.

38. Завалин А. А., Чистотин М.Ф., Кожемяков А.П. Эффективность инокуляции зерновых культур Agrobacterium radiobacter в зависимости от азотного удобрения, почвенных и метеорологических условий // Агрохимия. 2001а. № 2. С.31-35.

39. Завалин A.A., Кожемяков А.П., Сологуб Д.Б., Зинковская Т.С. Действие биопрепарата ризоагрин на продуктивность и азотное питание яровой пшеницы // Доклады РАСХН, 20016, № 2. С. 23-25.

40. Завалин A.A. Биопрепараты, удобрения и урожай / М.: ВНИИА, 2005. С. 18-19.

41. Завалин A.A., Благовещенская Г.Г., Кожемяков А.П. М. Вклад биологического азота бобовых культур в азотном балансе земледелия России // Методика определения. М.: Россельхозакадемия, 2007. С. 4-5.

42. Завалин A.A., Алметов Н.С. Применение биопрепаратов и биологический азот в земледелии Нечерноземья / М.: ВНИИА. 2009. С.9.

43. Завалин A.A., Кожемяков А.П. Новые технологии производства и применения биопрепаратов комплексного действия / СПб: ХИМИЗДАТ. 2010. С. 27.

44. Ефимов В.Н., Воробейков Г.А., Патил А.Б., Мирюгина Т.А. Азотное питание и продуктивность гороха и кормовых бобов при обработке семян комплексом бактериальных препаратов //Агрохимия, 1996. № 1. С. 10-15.

45. Иванов, Н.Р. Фасоль. 2-е изд., испр. и доп. М.; Д.; 1961. 280 с.

46. Иванова Н.С., Васюк Л.Ф., Кислин E.H. Эффективность инокуляции люпина желтого ассоциативными азотфиксаторами // С.-х. биология. 1992. №5. С.97-103.

47. Казанцева Е.В., Ашмарина Л.Ф. Эффективность предпосевной обработки семян сои бактериями рода Pseudomonas и Rhizobium / Вклад молодых ученых в развитие сиб. аграр. науки: Новосибирск, 1999. С. 95-96.

48. Каладжян Н.Л. Образование физиологически активных веществ клубеньковыми бактериями и их влияние на высшие растения: Автореф. дис. канд. биол. наук. Ереван, 1970. 20 с.

49. Кант Г. Биологическое растениеводство: Возможности биологических агросистем. М., 1988. 135 с.

50. Карбанович А.И. Влияние клубеньковых бактерий и молибдена на заселенность корней люпина микроорганизмами // Микроорганизмы почвы и растение. Минск. 1972. С. 121-128.

51. Карпунина Л.В. Роль агглютинирующих белков ризобий и азотфиксирующих бацилл при взаимодействии с растениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. М.: Наука, 2005. С. 98-117.

52. Каталог районированных сортов сельскохозяйственных культур в Российской Федерации. М., 1992. 123 с.

53. Каталог районированных сортов сельскохозяйственных культур в РСФСР. М.: Колос, 1967.

54. Квасников Е.И., Писарчук Е.И. Артробактер в природе и производстве. Киев, 1980. 120 с.

55. Киризий Д.А., Воробей H.A., Коць С.Я. Взаимосвязь азотфиксации и126фотосинтеза как основных составляющих продукционного процесса у люцерны // Физиология растений. 2007. Т.54. №5. С.666-671.

56. Кожевин П.А., Корчмару С.С. На пути к теории применения микробных удобрений // Вестник МГУ. Сер. Почвоведение. 1995 № 5. С. 52-62.

57. Кожемяков А.П. Основные итоги работы географической сети опытов с нитрагином // Технология производства и эффективность применения бактериальных удобрений. М., 1982. С. 19-27.

58. Кожемяков А.П., Афанасьева JIM. Влияние производственных штаммов клубеньковых бактерий на белковую продуктивность бобовых культур // Бюлл. ВНИИСХМ. 1986. Вып.43. С. 15-18.

59. Кожемяков А.П., Доросинский Л.М. Роль нитрагинизации в повышении урожая и накопление белка бобовыми культурами // Тр. ВНИИ с.-х. микробиологии. Л., 1987. Т. 57. С. 7-16.

60. Кожемяков А.П., Белимов A.A. Перспективы использования ассоциаций азотфиксирующих бактерий для инокуляции важнейших сельскохозяйственных культур // Труды ВНИИСХМ. 1991. Т.61. С. 7-18.

61. Кожемяков А.П., Иванов Н.С., Курлович Б.С. Эффективность инокуляции кормового многолистного люпина (Lupinus Polyphyllus Lindl.) клубеньковыми бактериями и корневыми диазотрофами // Бюл. ВИР. 1992. Вып. 220. С.3-5.

62. Кожемяков А.П., Белимов A.A. Эффективность препаратов корневых диазотрофов при бактеризации ярового рапса // Агрохимия. 1994. № 7-8. С. 6267.

63. Кожемяков А.П. Продуктивность азотфиксации в агроценозах // Микробиологический журнал. Киев, 1997. Т.59. № 4. С. 22-28.

64. Кожемяков А.П., Тихонович И.А. Использование инокулянтов бобовых и биопрепаратов комплексного действия в сельском хозяйстве // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. М., 1998. №6. С. 7-10.

65. Кожемяков А.П., Васюк Л.Ф. Применение ацетиленового метода дляизмерения азотфиксирующей активности у ассоциативных ризобактерий // Ме127то дика исследований эффективности препаратов ризосферных диазотрофов. М., 1998. С. 28-33.

66. Кожемяков А.П., Доросинский JIM. Биологический азот -альтернатива применению минеральных азотных удобрений в земледелии // Труды ВНИИСХМ. 1990. Т.60. С. 18-26.

67. Кожемяков А.П., Хоанг Хай Изучение эффективности и основных механизмов действия землеудобрительных биопрепаратов на растения в длительных опытах географической сети // Матер, междун. н.-практ. конференции. СП(б), 2000. С. 180-185.

68. Кожемяков А.П. Приемы повышения продуктивности азотфиксации и урожая бобовых культур // Биологический азот в сельском хозяйстве СССР. М., 1989. С. 15-27.

69. Кожемяков А.П., Проворов H.A., Завалин A.A., Шотт П.Р. Оценка взаимодействия сортов ячменя и пшеницы с ризосферными ростсти-мулирующими бактериями на различном азотном фоне // Агрохимия. 2004. № 3. С. 33-40.

70. Кожемяков А.П., Чеботарь В.К. Биопрепараты для земледелия // Биопрепараты в сельском хозяйстве. М.: Тип. Россельхозакадемии., 2005. С. 1854.

71. Кожемяков А.П. Эффективность и основные функции симбиотических и ассоциативных бактерий инокулянтов сельскохозяйственных культур // Докл.РАСХН. 2001. С.25-26.

72. Кокорина А.Л., Кожемяков А.П. Бобово-ризобиальный симбиоз и применение микробиологических препаратов комплексного действия важный резерв повышения продуктивности пашни. СПб., 2010. 50 е.

73. Коренев Г.В., Подгорный П.И., Щербак С.Н.; Растениеводство с основами селекции и семеноводства. М.; Агропромиздат, 1990. 575с.

74. Кравченко Л. В., Кравченко И.К., Боровков A.B., Пшикрил. 3. Возможность биосинтеза ауксинов ассоциативными азотфиксаторами в ризосферепшеницы // Микробиология. 1991. Т. 60. №5. С. 927.128

75. Кравченко Л.В. Роль корневых экзометаболитов в интеграции микроорганизмов с растениями: Автореф. дис. . д-ра биол. наук. М.: МГУ. 2000. 45 с.

76. Кретович В.Л. Содержание ß-индолилуксусной кислоты в корневых клубеньках и в корнях люпина // Физиология растений. 1972. Т. 19. Вып. 3. С. 504-509.

77. Кретович В.Л., Евстигнеева З.Г., Карякина Т.И., Львов Н.П., Мелик-Саркисян С.С., Пушкин A.B., Романов В.И., Успенская Ж.В., Шатилов В.Р. Молекулярные механизмы усвоения азота растениями / Ред. E.H. Мишустина // М.: Наука, 1983. 263 с.

78. Кунакова A.M. Взаимодействие ассоциативных ризобактерий с растениями при различных агроэкологических условиях: Автореф. дис. канд. биол. наук. СПб, 1998. 18 с.

79. Курчак О.Н, Проворов H.A., Симаров Б.В. Эффективность симбиоза с клубеньковыми бактериями у различных видов рода Vicia L. // Раст. ресурсы-1995. Т.31, № 1. С.88-93.

80. Лабутова Н.М, Левина Р.Л. Влияние способов инокуляции на формирование тройного симбиоза и продуктивность сои // Аграрный вестник Урала. 2011 №2(81). С. 6-9.

81. Лобков В.Т, Донская М.В, Васильчиков А.Г. Повышение эффективности симбиотических систем нута (Cicer Arietinum L.) // Научное обеспечениеразвития селекции: сб. науч. Материалов. Орел: Орел ГАУ, 2011. С. 39-43.129

82. Маршунова Г.Н. Эффективность инокуляции вики эндомикоризными грибами и Rhizobium // Бюл. ВНИИ с.-х. микробиол. 1987. № 47. С. 8-11.

83. Маршунова Г.Н., Якоби JIM. Принципы отбора эффективных культур эндомикоризных грибов // В кн. Микроорганизмы в сельском хозяйстве. Кишинев. 1988. С. 166-168.

84. Медведев П.Ф., Сметанникова А.И. Кормовые растения европейской части СССР: Справочник. Л., 1981. 336 с.

85. Методическое руководство по проектированию применения удобрений в технологиях адаптивно-ландшафтного земледелия / под ред.: А. Л. Иванова, Л. М. Державина. М.: МСХ РФ; РАСХН, 2008. - 392 с.

86. Методические указания к лаб.-практ. занятиям и самостоятельным работам студентов агроэнргетической эффективности технологий возделывания полевых культур. СПб, 2009. 33 с.

87. Методические указания по определению и расчету показателей фотосинтетической и корневой деятельности / Л.А. Синякова, Ф.Ф. Ганусевич, А.Л. Кокорина, З.М. Нечипорук. Л., 1990. 22 с.

88. Мильто, Н.И. Клубеньковые бактерии и продуктивность бобовых растений. Минск: Наука и техника, 1982. С.36.

89. Мильто Н.И., Тевелева М.К., Харко В.К. Взаимоотношения между азотобактером и клубеньковыми бактериями в смешанной культуре // Микроорганизмы-продуценты биол. активных веществ. Минск, 1973. С. 149-153.

90. Миронова E.H., Самсонова A.C. Изучение антибиотических свойств клубеньковых бактерий // Микроорганизмы в промышленности и сел. хоз-ве. Минск: Наука и техника, 1975. С. 106-109.

91. Мишустин E.H. Биологический азот в сельском хозяйстве и использование бактериальных удобрений / науч.-метод. совещание по бактер. удоб. Л. 1962.31 с.

92. Ю1.Мишустин Е. Н., Шильникова В. К. Биологическая фиксация атмосферного азота. М.: Наука, 1968. 530 с.

93. Мишустин E.H. Микробиология // учебник для студ. по агрон. спец. / E.H. Мишустин, В.Т. Емцев. 3-е изд., перераб. и доп. М.: Агропромиздат, 1987. 368с.

94. Мишустин E.H., Черепков Н.И. Биологический азот как источник белка и удобрений // Изв. АН СССР сер. Биологическая. 1979. № 5. С. 349-358.

95. Москвичев А.Ю., Балашов A.B., Пятибратов В.В. Применение мизо-рина и бишофита при возделывании картофеля на фоне разуплотнения почвы // Плодородие. 2009. №6 (51). С. 29-30.

96. Муромцев Г.С. Методы исследования грибов, образующих с растениями микоризу арбускулярно-визикулярного типа. СПб.: ВНИИСХМ. 1992. 44 с.

97. Муромцев Г. С, Маршунова Г. Н. Эндомикориза бобовых культур. // Биологический азот в сельском хозяйстве СССР. М.: Наука, 1989. С. 81—87.

98. Муромцев Г.С., Гусева Е.Г., Вострякова В.И., Серебренникова Н.В., Зольникова Н.В. Роль почвенных микроорганизмов в фосфорном питании растений // Успехи микробиологии. 1985. № 20. С. 16-24.

99. Натмен П.С. Клубеньковые бактерии в почве // Сборник почвенная микроб. М., 1979. С.141-167.

100. Наумкина Т.С. Эндомикоризный симбиоз / Т.С. Наумкина, А.Ю. Борисов, О.Ю. Штарк // Научно-техн. бюллетень ВНИИ ЗБК. 2005. Вып. 43 С. 8590.

101. Нзитабакузе Ж.Б. Цитокининовая активность клубеньковых бактерий фасоли и сои из разных почвенно-климатических зон // Изв. Моск. с.-х. акад. им. Тимирязева. 1977. Вып. 4. С. 224-227.

102. Нестеренко В.П, Карягина JI.A, Редькина Т.В. Эффективность ассоциативных азотфиксаторов на зерновых и кормовых культурах в условиях Белоруссии // Труды ВНИИСХМ. Т.59. 1989. С.76-84.

103. Никитина В.Е, Пономарева Е.Г, Аленькина С.А. Лектины клеточной поверхности азоспирилл и их роль в ассоциативных взаимоотношениях с астениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. М.: Наука, 2005. С. 70-97.

104. Носаль, М.А, Носаль И.М. Лекарственные растения и способы их применения в народе. Киев, 1959. 256 с.

105. Овцина А.О, Тихонович И.А. Структура, функции и возможности практического применения сигнальных молекул, инициирующих развитие бо-бово-ризобиального симбиоза // Экологическая генетика. 2004. Т.П. №3. С. 1424.

106. Орлов В.П, Князева Л.Д. Реакция на нитрагинизацию зернобобовых культур на выщелоченном черноземе // Труды ВНИИСХМ. 1979. Т.48. С. 106112.

107. Парахин Н.В. Основные приоритеты устойчивого развития растениеводства // Вестник ОрелГАУ. 2006. №2-3. С. 7-11.

108. Парахин Н.В. Проблемы современного растениеводства и пути их решения // Вестник ОрелГАУ. 2006. №1. С. 10-13.

109. Парахин Н.В, Кузмичева Ю.В, Петрова С.Н. Биологическая и хозяй132ственная эффективность применения эндомикоризы в сортовых посевах Pisum sativum L. в условиях Орловской области // Сельскохозяйственная биология. 2010. №1. С. 75-80.

110. Посыпанов Г.С. Методические аспекты изучения симбиотического аппарата бобовых культур в полевых условиях. // Известия ТСХА. М., 1983. Вып. 5. С. 17-26.

111. Посыпанов Г.С. Основные направления исследований по симбиотиче-ской азотфиксации // Известия ТСХА. М., 1988, Вып. 5. С. 101-110.

112. Посыпанов Г.С. Биологический азот. Проблемы экологии и растительного белка // М.: МСХА, 1993. 272 с.

113. Пошон Ж., БаржакГ. Почвенная микробиология. М., 1960. 224с.

114. Практикум по агрохимическому анализу почв / Учебное пособие под ред. к. б. н С.М. Аксенова. JL: Ленинградского университета, 1984. С. 91.

115. Проворов H.A., Борисов А.Ю., Тихонович И.А. Сравнительная генетика и эволюционная морфология симбиозов растений с микробами-азотфиксаторами и эндомикоризными грибами // Журнал общей биологии. 2002. Т. 63. №6. С. 451-472.

116. Проворов H.A. Генетико-эволюционные основы учения о симбиозе. Журн. общей биол., 2001, 61(6). С. 472-495.

117. Растениеводство / П.П. Вавилова, В.В. Гриценко, B.C. Кузнецов и др.; Под ред. П.П. Вавилова. 5-е изд., перераб. и доп. М.: Агропромиздат, 1986. С. 191.

118. Рашевская И. В. Продуктивность козлятника восточного (Galegae orientalis L.) при инокуляции семян клубеньковыми и ассоциативными ризобак-териями // Вестник Адыгейского государственного университета. 2006. № 2. С. 213-214.

119. Романов В.И. Взаимосвязь процессов азотфиксации и фотосинтеза в бобовом растении // Биологическая фиксация молекулярного азота. Киев, 1983. С. 147-159.

120. Руководство по апробации овощных культур и кормовых корнеплодов /Под ред. Д.Д. Брежнева. М.: Колос, 1982. С.396.

121. Сабельникова В.И. Биологически активные вещества клубеньковых бактерий//Кишинев: Штиинца, 1979. 142 с.

122. Садыков Б.Ф. Биологическая азотфиксация в агроценозах // БНЦ УрОАН СССР. Уфа, 1989. 109 с.

123. Садыков Б.Ф, Пропадущая JI.A. Инокуляция пшеницы различными препаратами бактерий и другие возможности усиления ассоциативной азотфиксации в ризосфере пшеницы // Бюлл. ВНИИСХМ. №54. 1991. С. 20-26.

124. Самсонова A.C. Динамика микрофлоры корней люпина под влиянием инокуляции и микроэлементов при заражении Fusarium avenaceum // Экология почв, микроорганизмов. Минск, 1974. С. 96-100.

125. Самцевич С.А. Взаимодействие микроорганизмов почвы и высших растений // Микробный синтез биол. активных соединений. Минск, 1976. С. 915.

126. Самцевич С.А. Значение клубеньковых бактерий как симбионта бобовых растений // Роль микроорганизмов в питании растений и повышении плодородия почв. Минск, 1969. 253с.

127. Серёгин В.В, Янишевский Ф.В, Муравин Э.А. Использование ячменём меченого азота растительной массы бобовых культур с различным отношением C:N при применении ингибитора нитрификации // Агрохимия. 2000. № 6. С. 42-51.

128. Синякова JI.A, Ганусевич Ф.Ф, Кокорина A.JI, Нечипорук З.М. Методические указания по определению и расчету показателей фотосинтетической и корневой деятельности растений. Л, 1990. 22 с.

129. Спайнк Г., Кондороши А., Хукас П. Rhizobiaceae. Молекулярная биология бактерий, взаимодействующих с растениями. (Пер. с англ. под ред. И.А. Тихоновича и H.A. Проворова) СПб.: ВНИИСХМ. 2002. 568 с.

130. Спектрова К.С. Химия и биохимия бобовых растений / Пер. с англ. К. С. Спектрова; Под ред. М. Н. Запрометова. М.: Агропромиздат. 1986. 336 с.

131. Стаканов Ф.С. Фасоль. Кишинев: Штииннца, 1986. С.5-35.

132. Старченков Е.П. О состоянии и перспективах исследований азотфик-сации бобово-ризобиальными системами // Физиология и биохимия культурных растений. Киев, 1987. Т. 29. №1. С. 3-19.

133. Стефанович Л.И. Синтез витаминов Rhizobium lupini и их влияние на растения люпина желтого // Автореф. канд. дис. Минск, 1974. 23 с.

134. Тихонович И.А., Проворов H.A. Симбиозы растений и микроорганизмов: молекулярная генетика агросистем будущего // СПб.: С.-Петерб. Ун-та, 2009. С.3-36.

135. Тихонович И.А., Кожемяков А.П. Оценка продуктивности симбиоти-ческой азотфиксации с использованием изотопного и ацетиленового методов // Экологические последствия применения агрохимикатов (удобрения). Пущино, 1982. С. 38-39.

136. Тихонович И.А., Круглов Ю.В. Биопрепараты в сельском хозяйстве / Методология и практика примен. микроорг. в растениев. и кормопроизв. М.: 2005. С. 40-42.

137. Тихончук П.В., Муратов A.A. Фотосинтетическая деятельность и урожайность фасоли обыкновенной в зависимости от предпосевной обработки семян // Аграрный вестник Урала. 2008. №6(48). С.42-44.

138. Толкачев Н. 3. Симбиотическая азотфиксация экологически безопасный путь повышения продуктивности земледелия // Вюник ОНУ. Сер1я

139. Бюлопя. Одеса, 2001. Т. 6. Вип. 4. С. 309-312.135

140. Трепачев, Е.П. Вопросы интенсификации накопления биологического азота // Биологический азот в земледелии Нечерноземной зоны СССР. Научные труды. М.: Колос, 1970. С. 200-231.

141. Трепачев Э. П. Биологический и минеральный азот в земледелии: пропорции и проблемы // С.-х. биология . 1980. Т. 15. № 2. С. 178-189.

142. Трепачев, Е.П. Агрохимические аспекты биологического азота в современном земледелии // М.: Колос, 1999. 532 с.

143. Туркова Е.В. Морфофизиологические аспекты репродуктивной биологии галеги восточной // Эколого-популяционный анализ кормовых растений естественной флоры, интродукция и использование. Сыктывкар, 1999. С. 220221.

144. Умаров М.М. Ассоциативная азотфиксация в биогеоценозах // Почвенные организмы как компоненты биогеоценозов. М.: Наука, 1984. С. 185-199.

145. Умаров М.М. Ассоциативная азотфиксация. М.: Изд-во МГУ, 1986. -133 с.

146. Умаров М.М, Кураков A.B., Степанов A.JI. Микробиологическая трансформация азота в почве. М.: ГЕОС, 2007. 138 с.

147. Федоров М.В. Почвенная микробиология // учеб.пособие для высш. с/хучебн. завед. М.: Советская наука, 1954. С. 275-276.

148. Федулова Н.Г, Черменская И.Е. Связь обмена поли-Р-оксибутирата у Rhizobium с азотфиксацией и фотосинтезом // Биологическая фиксация молекулярного азота. Киев, 1983. С. 182-184.

149. Цавкелова Е.А, Климова С.Ю, Чердынцева Т.А, Нетрусов А.И. Микробные продуценты стимуляторов роста растений и их практическое использование: обзор // Прикладная Биохимия и Микробиология. 2006. № 2. С. 133-143.

150. Чеботарь В.К, Завалин A.A., Кипрушкина Е.И. Эффективность применения биопрепарата экстрасол. М.: ВНИИА, 2007. 216 С.

151. Чеботарь B.K. Некоторые аспекты взаимодействий ассоциативных диазотрофов с небобовыми растениями // Тез. Докл. 9-го Баховского коллокв. по азотфиксации. 1995. С.72.

152. Черепков, Н.И. О доступности растениям азота корневых систем бобовых и злаковых трав // Агрохимия. 1965. № 2. С. 23 27.

153. Черепков, Н.И. Об усвоении растениями азота из различных источников // Агрохимия. 1969. № 2. С. 11 17.

154. Шабаев В.П., Смолин В.Ю. Симбиотическая азотфиксация при инокуляции сои клубеньковыми бактериями с ризосферными псевдомонадами в зависимости от уровня фосфорного питания // Агрохимия, 1993. № 6. С. 21-28.

155. Шабаев В.П. Минеральное питание и продуктивность люцерны при инокуляции смешанными культурами бактерий // Агрохимия, 2006. №9. С.24-34.

156. Шабаев В.П., Смолин В.Ю. Урожай сои и содержание в растениях «биологического» азота при применении клубеньковых бактерий с ризосферными псевдомонадами и эндомикоризными грибами и локальном внесении азотного удобрения // Агрохимия. 1992. №10. С. 9-17.

157. Шевелуха B.C. Периодичность роста сельскохозяйственных растений и пути ее регулирования // 2-е изд. испр. и доп. М.: Колос, 1980. 485 с.

158. Шенин Ю.Д., Кругликова Л.Ф., Васюк Л.Ф., Кожемяков А.П., Чеботарь В.К., Попова Т. А. Новый метаболит с фунгистатической и бактериостати-ческой активностью, продуцируемый штаммом ЛЗО Flavobecterium sp. II Анти-биот. Химиотер. 1996. № 5. С. 6-12.

159. Abel G.H, Erdman L.W. (1964) Agron. J.V. 56. P. 423-424.

160. Aguilar О. M, Riva O, Peltzer E. Analysis of Rhizobium etli and its symbiosis with Phaseolus vulgaris supports coevolution in centers of host diversification // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004. Vol. 101. P. 13548-13553.

161. Aikio S. and Ruotsalainen A.L. (2002) The modelled growth of mycorrhiz-al and non-mycorrhizal plants under constant vs. variable soil nutrient concentration. Mycorrhiza 12:257-261.

162. Allen O.N, Allen E.K. (1980) The Leguminosae, a source book of characteristics, uses, and nodulation. The University of Wisconsin Press, Madison, WI.

163. Amarger N, Bours M, Revoy F, Allard M R, Laguerre G. Rhizobium tropici nodulates field-grown Phaseolus vulgaris in France // Plant and Soil. 1994. №161. C. 147-156.

164. Ames Q.N, Porter L.K, StJohn T.V, Reid CPP. 1984. Nitrogen sources and "A" values for vesicular-arbuscular and non-mycorrhizal sorhum grown at three rates of 15N-ammonium sulphate. New Phytologist. 97. P. 269-276.

165. Arkhipova T.N, Veselov S.U, Melentiev A.I. et al. Ability of bacterium Bacillus subtilis to procede cytokinins and to influence the growth and endogenous hormone content of lettuce plants // Plant and Soil. 2004. V. 272. P. 201-209.

166. Azcon-Aguilar C, Alba C, Montilla M, Barea J.V. 1993. Isotopic (15N) evidence of the use of less available N forms by VA mycorrhizas. Symbiosis. 15: P. 39-48.

167. Bago B, Becard G 2002 Bases of the obligate biotrophy of arbuscular mycorrhizal fungi. In: Eds. Gianinazzi S, Schuepp H, Barea J M, Haselwandter K.

168. Bago B., Pfeffer P.E., Shachar-Hill Y. Carbon metabolism and transport in arbuscular mycorrhizas. // Plant Physiology. 2000. V. 124. P. 949-957.

169. Bago B., Azcon-Aguilar C., Piche Y. Architecture and developmental dynamics of the external mycelium of the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices growth under monoxenic conditions // Mycologia. 1998. Vol. 90. P. 5262.

170. Barton L.L., Abadia J. (Eds.). Iron Nutrition in Plants and Rhizospheric Microorganisms. Springer. Berlin, Heidelberg, N.Y. 2006. XVIII. 477 p.

171. Belimov A.A., Kozhemyakov A.P., Chuvarliyeva G.V. Interaction bet-weenbarley and mixed cultures of nitrogen fixing and phosphate solubilizing bacteria // Plant Soil. 1995, Vol. 173. P. 29-37.

172. Berg R.K., Loynachan T.E., Zablotowicz R.M., Liebermann M.T. (1988) Agron. J,V. 80. P. 876-891.

173. Bernal G., Graham P. H. Diversity on the rhizobia associated with Phaseo-lus vulraris L. in Ecuador, the comparison with Mexican bean rhizobia // Canad. J. Microbiol. 2001. Vol. 47. P. 526-534.

174. Bethlenfalvay G.J. Mycorrhizae and crop productivity. // Mycorrhizae in sustainable agriculture. 1992. N 54. P. 1-28.

175. Bloemberg G. V, Lugtenberg B J. J. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria // Current Opinion in Plant Biology. 2001. Vol. 4. P. 343-350.

176. Bowen, G.D, Rovira, A.D. 1976. Microbial colonization of plant roots, Annual Review of Phytopathology , 14, P. 121-144

177. Brom S, Girard L, Garcia-de los Santos A. et al. Conservation of plasmid-encoded traits among bean-nodulating Rhizobium species // Appl. Environ. Microbiol. 2002. Vol. 68. P. 2555-2561.

178. Brockwell J, Gault R.R, Zorin M, Roberts M.J. (1982) Austral. J. Agric. Res. V. 33. P. 803-815.

179. Brockwell J, Bottomley P.J. (1995) Soil Biol. Biochem. V. 27. P. 683-697.

180. Brockwell J, Bottomley P.J, Thies J.E. // Plant and Soil. 1995. V. 174. P. 143-180.

181. Brunei B, Cleyet-Marel J.-C, Normand P, Bardin R. (1988) Appl. Environ. Microbiol. V. 54. P. 2636-2242.

182. Bottomley P.J. (1992) In: G. Stacey et al. (eds.) Chapman and Hall, NY. P. 293-348.

183. Burton J. C. (1979). Rhizobium species. In: H. J. Peppier, D. Perlman (eds.). Microbial Technology 2nd ed. V. 1, Microbial Processes, Academic Press Inc., NY.

184. Caron M. Potential use of mycorrhizae in control of soilborne diseases. // Can. J. Plant Pathol. 1989. V. 11. P. 177-179.

185. Cho, P.F., Gamberi, C., Cho-Park, Y.A., Cho-Park, I.B., Lasko, P., Sonen-berg, N. (2006). Cap-dependent translational inhibition establishes two opposing morphogen gradients in Drosophila embryos. Curr. Biol. 16(20): 2035—2041.

186. Celik, M., C. Tureli, M. Celik, Y. Yanar, U. Erdem and A. Kucukgulmez, 2004. Fatty acid composition of the blue crab (Callinectes sapidus Rathbun, 1896) in the North Eastern Mediterranean. Food Chem., 88: 271-273.

187. Ciarfardini G., Lombardo G.M. (1991) Agron. J. V. 83. P. 622-625.

188. Conn H.J. (1938) J. Bacteriol. V. 36. P. 320-321.

189. Date R.A. (1991) Soil Biol. Biochem. V. 23. P. 533-541.

190. De Faria S. M., Franco A.A., de Jesus R.M., de Menandro M., Baitello J.B., Mucci E.S.F., Dobereiner J., Sprent J.I. (1984) New Phitol. V. 98. P. 317-328.

191. De Faria S. M., de Lima H.C., Franco A.A., Mucci E.S.F., Sprent J.I. (1987) Plant and Soil. V. 99. P. 347-356.

192. De Faria S. M., Lewis G.P., Sprent J.I., Sutherland J.M. (1989) New Phy-tol. V. 111.-P. 607-619.

193. Dehne H.W. Interactions between vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi and plant pathogens. // Phytopathology. 1982. V. 72. P. 1115-1119.

194. Denarie J., Debelle F., Prome J.C. (1996) Annu. Rev. Biochim. V. 65. P. 503-535.

195. Diatloff A. (1977) Soil Biol. Biochem. V. 9. P. 85-88.

196. Dullaart J.A. The bioproduction of indole-3-acetic acid and related compo-sunds in root nodules and roots of Lupinus luteus L. and by its Rhizobial simbiont // ActaBot. Nearl, 1970. Vol. 19. № 5. P. 573-575.

197. Eardly B. D, Wang F.-S, Whittam T. S, Selander R. K. Species limits in Rhizobium populations that nodulate the common bean (Phaseolus vulgaris) II Appl. Environ. Microbiol. 1995. Vol. 61. P. 507-512.

198. Ellis W.R, Ham G.E, Schmidt E.L. (1984) Agron. J. V. 76. P. 129-137.

199. Elmerich C, Newton W.E. (Eds.). Associative and Endophytic Nitrogen-fixing Bacteria and Cyanobacterial Associations. Ser. Nit. Fix, 2007. V. 5. 321 p.

200. Esperanza M.R. Diversuty of Rhizobium-Phaseolus symbiosis: overview and perspectives / Plant and Soil. 252. 11-23, 2003. P. 11-23.

201. Ezawa T, Hayatsu M, Saito M. A new hypothesis on the strategy for acquisition of phosphorus in arbuscular mycorrhiza: up-regulation of secreted acid phosphatase gene in the host plant. // Mol. Plant-Microbe Interact. 2005. V. 18. P. 1046-1053.

202. FAO (Food and Agriculture Organization of the United Nations) (1991) Expert consultation on legume inoculants production and quality control, FAO, Rome. P. 145.

203. Frank B. Uber die Pilzsymbiose der Leguminosen. Ber. Dtsch. Bot. Ges, 1889, 7. P. 332-346.

204. Frankenberger W.T. Arshad M. Phytohormones in soils: production and function. Marcel Dekker, Inc. N.Y. 1995. 503 p.

205. Franken P. and Requena N. (2001) Analysis of gene expression in arbuscular mycorrhizas: new approaches and challenges. Research Review // New Phytolo-gist, 2001. Vol. 150. P. 517-523.

206. Fred E.B, Baldwin I.L, McCoy E. (1932) Root nodule bacteria and leguminous plants. Univ. Wisconsin Studies in Sciences, N 5. Univ. Wisconsin Press, Madison.

207. Frey B, Schuepp H (1993). Acquisition of nitrogen by external hyphae of Arbuscular mycorrhizal fungi associated with Zea mays L. New Phytol. 124: 221230.

208. Gentili, F. and Jumpponen, A. 2006. Potential and possible uses of bacterial and fungal biofertilizers. In Handbook of Microbial Biofertilizers. Ed. Rai, M.K. and Basra, A. Haworth, New York. Pp. 1-28.

209. Gibson A.H., Curnow B.C., Bergersen F.J., Brockwell J., Robinson A.C. (1975) Soil Biol. Biochem. V. 7. P. 95-102.

210. Gibson A.H., Date R.A., Ireland J.A., Brockwell J. (1976) Soil Biol. Biochem. V. 8. P. 395-401.

211. Gianinazzi S., Schiiepp H., Haselwandter K., Barea J.M. Mycorrhizal technology in agriculture: from genes to bioproducts. Basel: Birkhauser. 2002. 340 p.

212. Giovannetti M., Sbrana C., Citernesi A.S., Avio L. Analysis of factors involved in fungal recognition responses to host-derived signals by arbuscular mycorrhizal fungi // New Phytologist. 1996. Vol. 133. P. 65-71.

213. Giovannetti M., Sbrana C., Sitemesi A.S., Logi C. Differential hyphal morphogenesis in arbuscular mycorrhizal fungi during pre-infection stages // New Phytologist. 1993. Vol. 125. P. 587-593.

214. Glenn A. R., Dilworth M. J. The life of root nodule bacteria in the acidic underground//FEMS Microbiol. Lett. 1994. Vol. 123. P. 1-10.

215. Glick, B.R. 1995. The enhancement of plant growth by free-living bacteria. Can. J. Microbiol. 41: 109-117.

216. Gnanamanickam S.S. (Ed.). Plant-Associated Bacteria. Springer, Berlin Heidelberg N.Y. 2006. IX. 724 p.

217. Gonzalez-Chavez M.C., Carrillo-Gonzalez R., Wright S.F., Nichols K. 2004. The role of glomalin, protein produced by arbuscular mycorrhizal fungi in sequestering potentially toxic elements. Environmental Pollution 130: 317-323.

218. Graham P.H. (1985) Proc. Ill World Soybean Conf. (Ames). R. Shibles (ed.). P. 951-959.

219. Graham P.H. 1981. Some problems of nodulation in symbiotic nitrogen fixation in Phaseolus vulgaris L.: A review. Field Crops Res. №4. C 93-112.

220. Grimes H.D. Influence of Pseudomonas putida on nodulation of Phaseolus vulgaris / H.D. Grimes, M.S. Mount // Soil Biol. Biochem, 1984. Vol. 16. P. 27-30.

221. Guar Y.D, Lowther W.L. (1980) J. Agric. Res. V. 23. P. 529-532.

222. Gulden R.H, Vessey K. Low concentration of ammonium inhibit specific nodulation (nodule number g"1 root DW) in soybean (Glycine max L. Merr.). //Plant and Soil, 1998, No 198. P. 127-136.

223. Gunn C.R, Wiersema J.H., Ritchie C.A., Kirkbride J.H. (1992) US Department of Agriculture, Technical Bulletin No. 1796.

224. Ham G.E. (1978) In: ADV. Legume Sci. R.J. Summerfield, A.H. Bunting (eds.) Royal Botanic Gardens, Kew. P. 289-296.

225. Hardarson G, Danso SKA and Zapata F. 1987. Biological nitrogen fixation in field crops. In Handbook of Plant Science in Agriculture ED. B R Christie P. 165 — 192. CRC Press Inc., Boca Raton, FL.

226. Hardy R.W, Holsten R.D, Jeckson E.K, Burns R.C. The acetylene reduction assay for N2 fixation. //Plant Physiology, 1968, V. 43. P. 1185-1207.

227. Harrison M. Development of the arbuscular mycorrhizal symbiosis // Curr. Opin. Plant Biol. 1998. Vol. 1. P. 360-365.

228. Harrison M. Molecular and cellular aspects of the arbuscular mycorrhizal symbiosis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Molec. Biol. 1999. Vol. 50. P. 361-389.

229. Hirsch AM (1992) Developmental biology of legume nodulation // New Phytol 122: P. 211-237.

230. Iruthayathas E.E. Effect of combined inoculation of Azospirillum and Rhi-zobium on nodulation and N2-fixation of winged bean and soybean / E.E. Iruthayathas, S. Gunnasekaran, K. Vlassak// Scientia Horticulture. Vol. 20. 1983. P. 231-240.

231. Jacobi L., Yurkov A., Provorov A. et al. Influence of arbuscular-mycorrhizal fungi on the perennial legume grasses at the high phosphorus level in soil // Xl-th Int. Cong. On Molecular Plant-Microbe Interaction / St.-P. Russia. 2003. P. 338.

232. Jacobi L.M., Petrova O.S., Tsyganov V.E., Borisov A.Y., Tikhonovich I.A. 2003a. Effect of mutations in the pea genes Sym33 and Sym40.1. Arbuscular my-corrhiza formation and function. // Mycorrhiza. 2003. V. 13. P. 3-7.

233. Jarvis B.D.W., van Berkum P., Chen W.X., Nour S.M., Fernandez M.P., Cleyet-Mavel J.C., Gilíes M. (1997) Intern. J. Syst. Bacteriol. V. 47. P. 895-898.

234. Jeffries, P. Use of mycorrhizae in agriculture / P. Jeffries // CRC Crit. Rev. Bio-technol, 1987. Vol. 5. № 4. P. 124-132.

235. Johansen A., Jakobsen I., Jensen. 1992. Hyphal transport of 15N-labelled nitrogen by a vesicular-arbuscular mycorrhizal fungus and its effect on depletion of inorganic soil N. New Phytologist 122: 281-288.

236. Johansen A., Jakobsen I., Jensen. 1993. External hyphae of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi associated with Trifolium subterraneum L. 3. Hyphal transport of 32P and 15N. New Phytologist 124: 61-68.

237. Johansen A., Jensen E.S. 1996. Transfer of N and P to barley interconnected by an arbuscular mycorrhizal fungus. Soil Biology and Biochemistry 28: 7381.

238. Jose, M. Propagation of vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi on moong (Vigna radiate L.) through nutrient film technique (NFT) / M. Jose, B.N. Johari // Curr. Sci. (India), 1988. Vol. 57. № 3. P. 217-223.

239. Kawai, Y, Yamamoto Y. Increase in the Formation and Nitrogen Fixation of Soybean Nodules by Vesicurar-Arbuscular Mycorrhiza // Plant Cell Physiol, 1986, vol. 27(3). P. 399-405.

240. Kersters K, De Ley J. (1984) Genus III, Agrobacterium. In: N.R. Krieg, J.G. Hoi (eds.), Bergey's Manual of Sytematic Bacteriology, Williams & Wilkins, Baltimore. P. 244-254.

241. Kjoller R, Rosendahl S. The presence of the arbuscular mycorrhizal fungus Glomus intraradices influences enzymatic activities of the root pathogen Aphano-myces euteiches in pea roots. // Mycorrhiza. 1996. V. 6. P. 487-491.

242. Koske R.E. Gigaspora gigantean: observation of spore germination of VA-mycorrhizal fungus // Mycologia. 1981. Vol. 73. P. 288-300.

243. Laguerre G, Nour S. M, Macheret V. et al. Classification of rhizobia based on nodC and nifH gene analysis reveals a close phylogenetic relationship among Phaseolus vulgaris symbionts // Microbiology, 2001. Vol. 147. P. 981-993.

244. Lamber B, Joos H. 1989. Fundamental aspects of rhizobacterial plant growth promotion research. Trends in Biotech, 7: 215-219.

245. Linderman R.G. Part I. Role of VAM Fungi in Biocontrol. // Mycorrhizae and Plant Health. St. Paul: APS Press. 1994. P. 310-345.

246. Lindstrom K, Lipsanen P, Kaijalanen S. (1990) Appl. Environ. Microbiol. V. 56. P. 444-450.

247. Lugtenberg B.J.J, Bloemberg G.V, Bolwerk A. et al. Microbial control oftomato foot and root rot // Biology of Plant-Microbe Interactions. Vol. 4 (Proc. 11-th146

248. Lugtenberg B.J.J., Dekkers L., Bloemberg G. Molecular determinants of rhizosphere colonization by Pseudomonas // Annu. Rev. Phytopathol. 2001. Vol. 39. P. 461-490.

249. Lugtenberg B.J.J., Dekkers L.C. What makes Pseudomonas bacteria rhizosphere competent? // Environ. Microbiol. 1999. Vol. 1. P. 9-13.

250. Lum, M.R, and Hirsch, A.M. 2003. Roots and their symbiotic microbes: strategies to obtain nitrogen and phosphorous in a nutrient-limiting environment. J. Plant Growth Regul. 21:368-382.

251. Madsen E. A receptor kinase gene of the LysM type is involved in legume perception of rhizo-bial signals / E. Madsen et al. // Nature. 2003. Vol. 425. P. 637640.

252. Maltseva N.N., Nadkernichnaya E.V., Kanivets N.A. Association of nitrogen-fixing bacteria with winter rye // In Abstract Vol. of 10th Int. Congr. on Nitrogen Fixation. St.-Petersburg. May 28-June 3. 1995. P. 614.

253. Marsh JF, Schultze M. 2001. Analysis of arbuscular mycorrhizas using symbiosis-defective plant mutants. New Phytologist 150: 525-532.

254. McDermott T.R., Graham P.H., Brandwein D.H. (1987) Arch. Microbiol. V. 148. P. 100-106.

255. Metzler M.C., Laine M.J., Boer S.H., de, 1997. The status of molecular biological research on the plant pathogenic genus Clavibacter II FEMS Microbiol. Lett. V. 150. № l.P. 1-8.

256. Meyer, J.R. Response of subterranean clover to dual inoculation with vesi-cular-arbuscular mycorrhizal fungi and a plant growth-promoting bacterium, Pseudomonas putida / J.R. Meyer, R.G. Linderman 11 Soil Biol. Biochem. 1986. V. 18. №2. P. 185-190.

257. Michiels J, Dombrecht B, Vermeiren N, Xi G, Luyte E, Vanderleyden J. (1998) Phaseolus vulgaris is a non-selective host for nodulation. FEMS Microbiol. Ecology 26. P. 193-205.

258. Miyazaki H, Kato H, Nakazawa T, Tsuda M. A positive regulatory gene, pvdS, for expression of pyoverdin biosynthetic genes in Pseudomonas aeruginosa PAO // Mol. Gen. Genet. 1995. Vol. 248. N 1. P. 17-24.

259. Newsham K.K, Fitter A.H, Watkinson A.R. Arbuscular mycorrhiza protect an annual grass from root pathogenic fungi in the field. // J. Ecol. 1995. V. 83. P. 991-1000.

260. Nielsen, F. Á, Hansen, L. K, and Balslev, D. (2004). Mining for associations between text and brain activation in a functional neuroimaging database. Neu-roinformatics 2, P. 369-380

261. Olubayi O, Ford T.M, Nevra-estens S.A. Growth response of several grass species to inoculation with A.brasilense strain Cd // In: 9th Int. Congr. on Nitrogen Fixation. 6-11 Dec, 1992. Mexico. 1992. P.727.

262. O'Toole G.A, Kolter R. Initiation of biofilm formation by Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signaling pathways: a genetic analysis // Mol. Microbiol. 1998. Vol. 28. P. 449-461.

263. Paradi I, Bratek Z, Lang F. Influence of arbuscular mycorrhiza and phosphorus supply on polyamine content, growth and photosynthesis of Plantago lanceo-lata. // Biologia Plantarum. 2003. V. 46, N 4. P. 563-569.

264. Parniske M (2008); Arbuscular mycorrhiza: the mother of plant root endo-symbioses. Nat Rev Microbiol, 2008 Oct; 6(10):763-75.

265. Piha M.J, Munns D.N. 1987. Nitrogen Fixation Capacity of Field-Grown Bean Compared to other Grain Legumes. Agronomy Journal. Vol. 79. №4. P. 690696.

266. Polhill R.M., Raven P.H., Stirton C.H. (1981) In: Polhill R.M., Raven P.H. (eds.). ADV. Legume Syst. Royal Botanic Gardens, Kew, England, P. 1-26.

267. Polonenko D.R. Effects of root colonizing bacteria on nodulation of soybean roots by Bradyrhizobium japonicum / D.R. Polonenko, F.M. Scher, J.W. Klopper et al. // Can. J. Microbiol, 1987. Vol. 33. P. 498-503.

268. Porcel R, Barea JM, Ruiz-Lozano JM. 2003. Antioxidant activities in my-corrhizal soybean plants under drought stress and their possible relationship to the process of nodule senescence. New Phytologist 157, 135-143.

269. Powell C.V. Development of mycorrhiza infection from Endogone spores and infected root fragments // Trans Brit. Mycol. Soc. 1976. Vol. 66. P. 439-445.

270. Raupach, M. R., J. J. Finnigan, and Y. Brunet. 1996: Coherent eddies and turbulence in vegetation canopies: The mixing-layer analogy, Boundary-Layer Mete-orol, 78, 351-382.

271. Read D.J. An ecological point of view on arbuscular mycorrhiza research. / In: Mycorrhizal Technology in Agriculture. From Genes to Bioproducts. Eds. S. Gia-ninazzi, H. Schüepp, J.M. Barea, K. Haselwandter. Basel: Birkhauser Verlag. 2002. P. 129-137.

272. Rodriguez H., Fraga R. Phosphate solubilizing bacteria and their role in plant growth promotion // Biotechnology Advances. 1999. V. 17. P. 319-39.

273. Rose S., Parker M., Punja Z.K. Efficacy of biological and chemical treatments for control of Fusarium root and stem rot on greenhouse cucumber // Plant Disease. 2003. 87 (12). P. 1462-1470.

274. Rosendahl S. 2008. Communities, populations and individuals of arbuscular mycorrhizal fungi. New Phytologist 178: 253-266.

275. Roughley R.J., Gemell L.G., Thompson J.A., Brockwell J. (1993) Soil Biol. Biochem. V. 25. P. 1453-1458.

276. Ruiz-Lozano J.M, Azcon R. Mycorrhizal colonization and drought stress as factors affecting nitrate reductase activity in lettuce plants. // Agric. Ecosyst. Environ. 1996. V. 60. P. 175-181.

277. Ryu C.-M, Farag M.A, Hu C.-H, Reddy M.S. et al. Bacterial volatiles promote growth in Arabidopsis // The Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 2003. V. 100. P. 4927-4932.

278. Sanders I.R, Clapp J.P, Wiemken A. The genetic diversity of arbuscular mycorrhizal fungi in natural ecosystems a key for understanding the ecology and functioning of the mycorrhizal symbiosis // New Phytologist. 1996. Vol. 133. P. 123134.

279. Sannazzaro A, Ruiz O.A, Alberto E and Menendeza A. 2006. Lotus gla-ber salt stress alleviation by Glomus intraradices. Plant and Soil, 285, 279-287.

280. Sarig S. Effect of Azospirillum inoculation on nitrogen fixation and growth of several winter legumes / S. Sarig, Y. Kapulnik, Y. Okon // Plant and Soil. 1986. Vol. 90. P. 335-342.

281. Schardl C.L, Leuchtmann A, Spiering M.J, 2004. Symbioses of grasses with seedborne fungal endophytes // Annu. Rev. Plant Biol. V. 55. P. 315-340.

282. Schmidt W. Influence of Azospirillum brasilense on nodulation of legumes / W. Schmidt, P. Martin, S.H. Omay, F. Bangerth // Azospirillum IV. Genetics, Physiology, Ecology (Ed. W. Klingmiiller). Springer-Verlag Berlin Heidelberg, 1988. P. 92-99.

283. Schortemeyer M, Hartwig U.A, Hendrey G.R, Sadowsky M.J. (1996) Soil Biol. Biochem. V. 28. P. 1717-1724.

284. Schuyler A, Schwarzott D, Walker C A new fungal phylum, the Glomero-mycota: phylogeny and evolution // Mycol Res. 2001. Vol. 105. P. 1413-1421.

285. Sheng M, Tang M, Chen H, Yang B, Zhang F, Huang Y. Influence of arbuscular mycorrhizae on photosynthesis and water status of maize plants under salt stress. // Mycorrhiza. 2008. V. 18. P. 287-296.

286. Siddiqui Z.A. (Ed.). PGPR: Biocontrol and Biofertilization. Springer, Berlin Heidelberg N.Y. 2005. XIII. 318 p.

287. Singh C.S. Associative effect of Azospirillum brasilense with Rh. japoni-cum on nodulation and yield of soybean (Glycine max.) / C.S. Singh, N.S. Subba Rao //Plant and Soil. 1979. Vol. 53, №3. P. 387-392.

288. Singleton P.W, Tavares J.W. (1986) Appl. Environ. Microbiol. V. 51. P. 1013-1018.

289. Skerman V.B.D, McGowan V, Sneath P.H.A. (1980) Int. J. Syst. Bacte-riol. V. 30. P. 225-420.

290. Smith R.S. (1992) Can. J. Microbiol. V. 38. P. 485-492.

291. Smith R.S, del Rio Escurra G.A. (1982) J. Agric. Univ. P.R. V. 66. P. 241249.

292. Smith R.S, Ellis M.A, Smith R.E. (1981) Agron. J. V. 73. P. 505-508.

293. Smith S.E, Read D.J. Mycorrhizal Symbiosis (second edition). San Diego, London, New York, Boston, Sydney, Tokyo, Toronto: Academic Press, 1997. 590 p.

294. Somasegaran P, Hoben H.J. (1994) Handbook for Rhizobia. Springer, NY. P. 450.

295. Spaepen S, Vanderleyden J, Remans R. Indole-3-acetic acid in microbial and microorganism-plant signaling // FEMS Microbiology Reviews, 2007. V. 31. P. 425-448.

296. Sprent J.I. Nodulation in Legumes. Kew, Royal Botanical Gardens: Cromwell Press Ltd. 2001.

297. Sutton W.D. (1983) In: W.J. Broughton (ed.) Nitrogen Fixation. V. 3. Legumes. Oxford Univ. Press, NY. P. 144-212.

298. Tian, S, K. Nakamura and H. Kayahara, 2004. Analysis of phenolic compounds in white rice brown rice and germinated brown rice. J. Agric. Food Chem, 52: 4808-4813.

299. Torrey J.G. Kinetin as a trigger for mitosis in mature endomitotic plant cells // Expl. Cell Res. 1961. Vol. 23. P. 281-299.

300. Tsimilli-Michael M., Strasser R.J. Mycorrhization as a stress adaptation procedure. / In: Mycorrhizal Technology in Agriculture. From Genes to Bioproducts. Basel: Birkhauser Verlag. 2002. P. 199-210.

301. Turnau K., Henriques, F. S., Anielska T., Renker C., Buscot F. (2007) Metal uptake and detoxification in Erica andevalensis growing in a pyrite mine tailing. Environm. Exp. Botany 61:117-123.

302. Umali-Garcia M. Association of Azospirillum with grass roots / M. Umali-Garcia, D. H. Hubbell, M.H. Gaskins, F.B. Dazzo // Appl. Environ. Microbiol. 1980. Vol. 39. P. 219-226.

303. Vance, C.P. Symbiotic nitrogen fixation and phosphorus acquisition. Plant nutrition in a world of declining renewable resources /C.P. Vance // Plant Physiology. 2001. V. 127. P. 390-397.

304. Vassyuk L.F., Popova T.A., Kozhemyakov A.P., Tchebotar V.K. Fungistatic action of bacterial preparation Flavobacterin after application of the cereal, potato and veneylands // Eroupen J of Plant Pathology. 1995. P. 1310

305. Vejsadova, H. Effect of the VAM fungus Glomus sp. On the growth and yield of soybean inoculated with Bradyrhizobium japonicum / H. Vejsadova, D. Sib-likova, H. Hrselova, V. Vancura // Plant Soil. 1992. Vol. 140. P. 121-125.

306. Vessey J.K. Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers // Plant and Soil, 2003. V. 255. P. 571-586.

307. Vincent J.M. (1970) A manual for the practical study of root-nodule bacteria. IBP Handbook No 15, Blackwell Scientific Publ. Oxford. P. 164.

308. Whipps J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // J. Exper. Botany. 2001. Vol. 1. P. 9-13.

309. Wilson J.K. (1944) Soil Sci. V. 58. P. 61-69.

310. Yahalom E. Azospirillum effects on susceptibility to Rhizobium nodulation and nitrogen fixation of several forage legumes / E. Yahalom, Y. Okon, A. Dovrat // Can. J. Microbiol. 1987. Vol. 33. P. 510-514.

311. Young J.P.W, Haukka K.E. (1996) New Phytol. V. 133. P. 87-94.

312. FAOSTAT, 2010 Электронный ресурс. /http://faostat.fao.org/DesktopDefault.aspx?PageID=567#ancor.501. Контроль1. РизоторфиннО