Применение электрохимически активированных растворов натрия хлорида в технологическом процессе переработки птицы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.06, кандидат ветеринарных наук Царукян, Сона Степановна

• Царукян, Сона Степановна
• кандидат ветеринарных наук
• 2005

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Царукян, Сона Степановна

Введение.

Обзор литературы.

Глава 1. Ветеринарная санитария в убойных цехах птицеперерабатывающей промышленности.

Глава 2. Технические средства и технология получения электрохимически активированных растворов.

2.1 Факторы определяющие физико-химическую активность ^ ЭХА растворов.

2.2 Токсикологическая характеристика ЭХА растворов.

2.3 Свойства анолита и его действие на микроорганизмы.

Глава 3. Применение ЭХА растворов в практических условиях.

Собственные исследования

Глава 4. Материалы и методы.

4.1 Установки для получения анолита АНК и технология их ^ применения.

4.2 Методы изучения бактерицидных и вирулицидных свойств ^ анолита АНК.

4.3 Санитарно-микробиологические методы исследований.

4.3.1 Изучение поверхностей и оборудования цеха убоя птицы.

4.3.2 Исследование тушек птиц в технологическом процессе их ^ переработки.

4.3.3 Программа комиссионной проверки эффективности ^ применения нейтрального анолита АНК.

4.3.4 Оценка качественных показателей и безопасности тушек ^ птицы после обработки их анолитом АНК.

Результаты исследований

Глава 5. Определение биоцидных свойств нейтрального анолита АНК в лабораторных условиях.

5.1 Бактерицидные свойства нейтрального анолита АНК.

5.2 Вирулицидные свойств нейтрального анолита АНК.

Глава 6. Исследования по разработке режимов дезинфекции ^ различных поверхностей.

6.1 Режимы влажной дезинфекции.

6.2 Режимы аэрозольной дезинфекции.

Глава 7. Исследование по разработке режимов и технологии ^ санитарной обработки поверхностей потрошеных тушек птиц

Глава 8. Проведение производственных испытаний.

8.1 Санитарно-микробиологические показатели цехов убоя и ^ бактериальной обсемененности тушек птиц.

8.2 Применение анолита АНК для дезинфекции поверхностей ^ оборудования цеха убоя птицы.

8.3 Применение анолита АНК при санитарной обработке тушек ^ птиц.

8.4 Изучение качественных показателей тушек птицы, ^ обработанных анолитом АНК.

8.4.1 Определение наличия остатков оксидантов в смывных водах ^ с поверхности тушек и в пробах мяса.

8.4.2 Биологическая проба на безвредность мяса.

8.4.3 Органолептические показатели мяса.

8.4.4 Физико-химические показатели мяса.

Глава 9. Технико-экономическая оценка применения анолита АНК.

Обсуждение результатов.

Выводы.

Предложения для практики.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Применение электрохимически активированных растворов натрия хлорида в технологическом процессе переработки птицы»

Актуальность темы. Поиск новых эффективных экологически безопасных дезсредств остается актуальным для ветеринарной науки и практики.

Современные цеха убоя птицы представляют собой, как правило, высокомеханизированные предприятия, насыщенные техническими и технологическими средствами, сложными механизмами, измерительной аппаратурой и инструментами, поверхность которых часто чувствительны к коррозионному и деструктивному действию некоторых дезинфицирующих растворов. Кроме того, поверхность оборудования, воздух помещений, технологическая вода имеют тесный контакт с пищевыми продуктами. В наличие имеют место техногенные загрязнители (кровь, жир и пр.) оборудования. Сказанное и определяет собой строгие требования к дезинфицирующим раствором для указанных ветеринарных объектов. Главными из этих требований являются: слабая токсичность, широкий спектр антимикробного действия, отсутствие запаха и маркости, способность быстро разрушатся во внешней среде (Поляков A.A., 1964; Бошьян Г.М., 1968; Тржецецкая Т.А., 1970; Иванова В.И., 1975; Закомырдин A.A., 1981 и др.).

Для практического применения предложен широкий арсенал традиционных и новых химических дезсредств (гидрооксиды, кислоты, альдегиды, хлорсодержащие и пр.), однако большинство из них мало пригодны для дезинфекции объектов, имеющих контакт с пищевыми продуктами.

Перспективным направлением в поиске доступных санирующих препаратов является использование биоцидов, которые созданы на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов: анолит кислый (АК), анолит нейтральный (АН), анолит нейтральный катодный (АНК), а также щелочной католит (К). Эти электролиты синтезируются в проточных электрохимических реакторах ПЭМ-3 (Бахир В.М., Задорожний Ю.Г., 1982; Бахир В.М., Задорожний Ю.Г., Леонов В.И., Прилуцкий В.И.,

Паничева С.И., 1990). Эти технические системы электрохимического синтеза активированных растворов разработаны Бахир В.М. и другими (1978).

Установлено, что электрохимически активированные анолиты обладают высокой окислительной, бактерицидной, вирулицидной и фунгицидной активностью (Вахидов В.В, 1978; Бахир В.М, 1978; Алехин С.А., 1978).

Применительно к практике ветеринарной санитарии первые исследования ЭХА растворов, практически одновременно (1982-1983 гг.) были начаты во ВНИИВСГЭ (Ваннер Н.Э.) и ВНИИТИП (Богатова О.В.). В настоящее время ЭХА растворы применяются в целом ряде отраслей народного хозяйства. Так, растворы нейтрального анолита АНК официально разрешены Минздравом РФ для применения в качестве моющих, дезинфицирующих и стерилизующих средств на объектах здравоохранения. В 1997 г. ВНИИМП (Костенко Ю.Г.) разработал нормативный документ по применению АНК для дезинфекции мясного оборудования. Вместе с тем, многие аспекты применения анолита АНК на объектах ветеринарного надзора, в том числе на мясоперерабатывающих предприятиях, нуждаются в дополнительных исследованиях; актуальной проблемой для этих предприятий остается санация кожного покрова потрошеных тушек кур, а также дезинфекции оборудования цехов убоя птицы.

Целью исследований является научное обоснование и разработка эффективных режимов и технологии санации тушек птицы (на примере возбудителей сальмонеллеза птиц) и обеззараживания оборудования цехов их переработки с применением нейтрального анолита АНК, электрохимически синтезированного на установках типа СТЭЛ и Аквахлор.

Для достижения цели на разрешение были поставлены следующие задачи: 1. Изучение бактерицидных свойств нейтрального анолита АНК с различными физико-химическими показателями (Сах, рН, ОВП) на примере возбудителей сальмонеллеза и колибактериоза а также вирулицидности в отношении вируса ньюкаслской болезни птиц.

2. Разработка эффективных режимов влажной дезинфекции различных поверхностей, контаминированных возбудителями сальмонеллеза и колибактериоза, раствором нейтрального анолита АНК, получаемого на установках СТЭЛ-60-03 АНК и СТЭЛ-1 ОН-120-01 и Аквахлор.

3. Разработка режима аэрозольной дезинфекции помещений с применением аэрозольного генератора ЦАГ-«Джет» и нейтрального анолита АНК, получаемого на установке СТЭЛ-60-03-АНК.

4. Разработка режима и технологии санитарной обработки наружных и внутренних поверхностей потрошеных тушек птицы с применением растворов нейтрального анолита АНК, получаемых на установках СТЭЛ-60-03 АНК, СТЭЛ-1 ОН-120-01 и Аквахлор.

5. Изучить санитарно-микробиологические показатели цехов убоя и бактериальной обсемененности тушек птиц в технологическом процессе их переработки.

6. Проведение производственных испытаний по применению нейтрального анолита АНК для дезинфекции поверхностей оборудования цеха убоя и при санитарной обработке тушек птицы.

7. Изучение качественных показателей тушек птиц обработанных нейтральным анолитом АНК.

8. Провести технико-экономическую оценку применения анолита АНК и разработать рекомендации по использованию ЭХА растворов в птицеперерабатывающей промышленности.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Глава 1. Ветеринарная санитария в убойных цехах птицеперерабатывающей промышленности.

Современные задачи производства продуктов питания для человека требуют широкого внедрения высокоэффективных средств ветеринарно-санитарной обработки на предприятиях птицеперерабатывающей промышленности. Согласно данным литературы, для обеззараживания объектов мясоперерабатывающих предприятий используют различные химические препараты - щелочи, кислоты, органические соединения, и физические препараты - температура, свет, ультрафиолет, озон и др.

Убой птицы производят, как правило, на механизированных предприятиях, насыщенных техническими и технологическими средствами, сложными механизмами, поверхность которых часто чувствительны к коррозионному и деструктивному действию некоторых дезинфицирующих растворов. Кроме того, поверхность оборудования, воздух помещений, технологическая вода имеют тесный контакт с пищевыми продуктами. В наличие имеют место техногенные загрязнители (кровь, жир и пр.) оборудования. Сказанное и определяет собой строгие требования к дезинфицирующим раствором для указанных ветеринарных объектов. Главными из этих требований являются: слабая токсичность, широкий спектр антимикробного действия, отсутствие запаха и маркости, способность быстро разрушатся во внешней среде (Поляков A.A., 1964; Закомырдин A.A., 1981).

Дезинфекция убойных цехов преследует две главные цели -предотвращение возможного распространения инфекционного начала и получения мяса птицы высокого санитарного качества. Практически повседневную угрозу предприятиям представляют такие инфекции, как колибактериозы, сальмонеллезы, микозы и некоторые другие (Онегов А.П. 1978; Бессарабов Б.Ф., 1983; Ярных B.C., 1987 и пр.).

Ветеринарная практика располагает широким арсеналом традиционных и новых химических дезсредств (гидрооксиды, кислоты, альдегиды, хлорсодержащие и пр.), однако большинство из них мало пригодны для дезинфекции объектов, имеющих контакт с пищевыми продуктами. Наиболее пригодными в этом плане являются растворы перекиси водорода, некоторые надперекисные и хлороксидные соединения, которые быстро разрушаются во внешней среде, но для практики они пока малодоступны (Дудницкий И.А., 1982; Бутко М.П., 1984 и др.). В частности, для дезинфекции убойного зала, холодильников и пр. применяются 2% горячий раствор едкого натрия, 4% горячий раствор капоцида, осветленный раствор хлорной извести или гипохлор, содержащий 2% активного хлора; 0,5% раствор трихлоризоциануровой кислоты (Лукашев В.В. 1991).

Мясо птицы - полноценный пищевой продукт, который занимает достойное место в меню человека. Мясо птицы содержит биологически полноценные белки, витамины и другие компоненты, обладает хорошими вкусовыми достоинствами.

При переработке и хранении пищевого сырья может происходить его контаминирование патогенными микроорганизмами. Наличие микроорганизмов приводит к изминению физико-химических показателей, а иногда и к порче продуктов, что может вызвать пищевые отравления.

В течение последних несколько лет постоянно возрастал интерес к микробиологическому качеству, содержанию дезинфицирующих средств, гормональных стимуляторов роста и др. компонентов в мясе птицы. (Смирнов A.M., 2003) Это можно объяснить тем, что употребление в пищу мяса птицы нередко приводит к заболеваниям. (Marenzi Ch., 1983).

Сальмонеллы остаются наиболее распространенными микроорганизмами, вызывающие пищевые токсикоинфекции. Чаще всего они передаются от животных человеку. Основным источником сальмонелл является больная птица, а также продукт (мясо, яйца, меланж) и сырье (пух, перо).

Современные технологические процессы в птицеперерабатывающей промышленности не могут исключить загрязнения тушек птиц и оборудование от сальмонелл и других микроорганизмов.

Для предотвращения преждевременной порчи и сохранения пищевой ценности продуктов питания необходимо прекратить или замедлить жизнедеятельность микроорганизмов.

Микробную обсеменненость тушек птицы в процессе их обработки можно уменьшить несколькими методами - физическими (ионизирующее, УФЛ, гамма облучение) и химическими (водные растворы ПАВ, полифосфаты, сорбат калия, углекислый газ, ацетат натрия,, хлорированная вода, озон, сода, перекись водорода, молочная, уксусная, надуксусная, аскорбиновая кислоты) (Козак С.С., Гусев A.A. и др. 1992).

Одним из перспективных направлений в поиске новых санирующих препаратов является использование биоцидов, которые созданы на основе униполярной электрохимической активации (ЭХА) водных растворов хлоридов: анолит кислый (АК), анолит нейтральный (АН), анолит нейтральный катодный (АНК), а также щелочной католит (К). Эти электролиты синтезируются в проточных электрохимических реакторах ПЭМ-3 установок СТЭЛ, и реакторах ПЭМ-7 установок Аквахлор (Бахир В.М., Леонов В.И., Задорожний Ю.Г., Паничева С.И. 1990; Бахир В.М. 2004).

ЭХА представляет собой совместное электрохимическое и электрофизическое воздействие на воду или водо-солевые растворы в двойном электрохимическом слое поляризованного электрода электрохимической системы (Бахир В.М., 1982).

Глава 2. Технические средства и технология получения электрохимически активированных растворов

Из истории развития науки по созданию технических средств для электрохимической активации (ЭХА), известны сведения об использовании трех типов диафрагменных электролизеров: статических, погружных и проточных (СредАзНИИГаз, 1980). По техническим, технологическим и функциональным показателям наибольшее признание получили проточные аппараты. Начало широким работам в области электрохимической активации было положено в 1972 году исследованиями инженера Бахира В.М. в Ташкентском НИИ Природного Газа Министерства Газовой Промышленности СССР (СредАзНИИГаз). После первых успешных испытаний электрохимических методов регулирования свойств буровых растворов и воды в технологических процессах бурения нефтяных и газовых скважин В.М.Бахиром и инженером Ю.Г.Задорожним были созданы лабораторные и промышленные установки для электрохимической анодной и катодной (униполярной) обработки воды и водных растворов. За период с 1973 по 1981 годы коллективом исследователей из СредАзНИИГаза было получено более 200 авторских свидетельств на изобретения в области электрохимической активации. Результаты исследований привлекли к этим работам внимание многих исследователей из различных отраслей.

Первые установки для электрохимической активации воды (УЭВ-6), промышленный выпуск которых в 1978г. освоил Кокандский (Узбекистан) завод «Большевик» Мингазпрома СССР, имели максимальную производительность 20000 л/ч при потребляемой электрической мощности 30 кВА. Диапазон минерализации составлял от 5 до 50 г/л. Разработанная В.М.Задорожним установка ЭЛХА-003 имела производительность до 1000 л/ч и могла обеспечивать эффективную униполярную электрохимическую обработку воды и водных растворов с минерализацией от 0,3 до 300 г/л. Потребляемая установкой электрическая мощность составляла 1 кВА.

Уменьшение производительности установок с одновременным повышением их экономичности было обусловлено тем, что широкое практическое применение технологии электрохимической активации (ЭХА) возможно только при наличии технических электрохимических систем с малым удельным расходом электроэнергии, обеспечивающих максимальную степень метастабильности растворов в результате униполярного электрохимического воздействия, допускающих работу в разнообразных гидравлических системах без конструктивных изменений и имеющих значительный ресурс непрерывной работы.

Усовершенствование электрохимических устройств шло по линии создания долговечных, экономичных, экологически чистых, токсикологи чески безопасных, удобных в эксплуатации реакторов стационарного и проточного типа, позволяющих включать их без каких-либо сложных промежуточных согласующих систем в современные различные технологические процессы. Такие системы в виде проточных электрохимических модульных элементов ПЭМ были созданы В.М.Бахиром и Ю.Г.Задорожним во ВМНИИМТ в 1989г. На их основе были разработаны проточные электрохимические реакторы РПЭ, использованные в первых опытных образцах установок СТЭЛ для синтеза электрохимически активированных стерилизующих, дезинфицирующих и моющих растворов. При обработке водных сред в модуле ПЭМ все продукты электрохимических реакций, включая высокозаряженные метастабильные частицы, полностью поступают в протекающую водную среду и насыщают ее, равномерно распределяясь по всему объему. В результате из анодной и катодной камер выходят раздельно анолит и католит с физико-химическими характеристиками, определяемыми величиной тока, объемной подачей водной среды и ее минеральным составом. К настоящему времени разработаны четыре модификации элемента ПЭМ (ПЭМ-1, ПЭМ-2, ПЭМ-3, ПЭМ-4).

Установки типа СТЭЛ для электрохимического синтеза дезинфицирующих средств из слабых и концентрированных растворов поваренной соли выпускают ряд предприятий:

• ОАО «НПО «Экран», ВНИИИМТ МЗ РФ - разработали и изготовляют СТЭЛ-1 ОН-120-01 (базовая модель) и типо-размерный ряд СТЭЛ с производительностью от 20 до 1000 л/ч, а также установки «Аквахлор

I 50», «Аквахлор-100» и «Аквахлор-500»;

• АООТ НПО «Химавтоматика» изготовляет СТЭЛ-60-03-АНК и «Аквабиоцид»- автоматизированные установки;

• ООО «Экомед» изготовляет установки СТЭЛ-1 ОН-120-01 - универсальные (производят АНК, АК,К).

Ф Все установки СТЭЛ сертифицированы Госсанэпидемнадзором МЗ

России по линии применения их в здравохранении; установки СТЭЛ, производящие анолит кислый и католит рекомендованы для ветеринарной # практики Департаментом ветеринарии МСХ РФ (Закомырдин А.А., 1999).

Ф 2.1 Факторы, определяющие физико-химическую активность электрохимически активированных сред

На основании экспериментов ряда авторов (Бахир В.М., Задорожний * Ю.Г., Прилуцкий В.И., Панина С.И., Лиакумович А.Г., Огаджанян С.И. и др.)

• по ЭХА сделаны некоторые обобщения относительно свойств электрохимически активированных растворов. Выделены группы факторов, обусловливающих их физико-химическую активность (по Бахиру В.М., 1998):

1) стабильные продукты электрохимических реакций, стабильные кислоты, ^ основания и т.д.;

2) высокоактивные неустойчивые продукты электрохимических реакций с периодом существования до десятков часов (в том числе свободные радикалы);

• 3) долгоживущие квазиустойчивые структуры, сформированные в области объемного заряда у поверхности электрода, как в виде свободных структурных комплексов, так и гидратированных оболочек ионов, молекул, радикалов, атомов.

Факторы первой группы определяют в основном кислотные и щелочные свойства ЭХА-сред. Факторы второй группы усиливают окислительные (электроноакцепторные) свойства анолита, а также восстановительные (электронодонорные) свойства католита, обуславливающие аномальные характеристики окислительно-восстановительного потенциала (ОВП). Факторы третьей группы придают ЭХА-средам каталитические (в том числе биокаталитические) свойства.

Факторы 2-й и 3-й групп могут быть получены только в условиях электрохимического синтеза. Имитация их иным путем невозможна, т.к. они возникают у поверхности электродов в электрическом поле напряженностью до нескольких миллионов вольт на сантиметр.

В упрощенной форме основные процессы, происходящие при получении ЭХА растворов можно представить следующим образом (по В.М. Бахиру):

1. Процесс электрохимической обработки в реакторе РПЭ (элемент ПЭМ) в катодной камере протекает следующим образом: 2Н20 + 2Ыа+ + 2е 2ЫаОН + Н2 2Н20 + 2е —> Н2 + 20Н" Н20 + 0Н'~Н202' 02 + е —> 02"

02" + ьГ но2

02 + Н20 + 2е —> Н02"

02 + 2Н2 + 2е —> Н202 + 20Н"

Ы + е ^ Н*

Н* + Н'-> Н2

Н* + Н20-> ОН' + Н2

0Н' + 0Нв-^Н202

Н202<-*Н^ + Н02" Н202+0Н"->Н02"+Н20 0Н' + Н02'^022' + Н20 022" + Н202 -» 02" + ОН- + он он + н2о2-*н2о

2. В дальнейшем происходит образование нейтрального анолита АНК в анодной камере следующим образом (Практически анолит получают из ф католита):

2СГ - 2е С12 2Н20 - 4е ^ 4Н+ + 02 ф С12+Н2О^НСЮ + НС1

НС1 + ЫаОН^ЫаС1 + Н2 ф СГ + 20Н' - 2е СЮ" + Н20

ЗОН- - 2е НО2- + Н20 НО?" - е —» НО? ОН" - е ОН* т ОН*+ОН* Н202 нею + Н202 -> НС1 + 02 + Н20 * СЮ" + Н202 -> 'О? + СГ + Н20

Схематически это можно представить на рисунке 1. АНК - электрохимический активированный анолит нейтральный (рН -7,2+0,5 ед.; ОВП+250 . + 1000 мВ,; Ст- 100-500 мг/л (0,01-0,05%)). Активные 0 компоненты: НС10 (хлорноватистая кислота), СЮ" (гипохлорид-ион), НО?" (пероксид анион), Н02 (супероксид водорода), ОН* (гидроксил радикал), Н202 (перекись водорода), '02 (синглетный кислород), Оз (озон), С1" (хлор радикал).

Рис. 1. Схема синтеза нейтрального анолита АНК

Примечание:

1. Состав анолита АНК: НСЮ, СЮ", Н02" , Н02, Н202, о3, '02,С1*,0Н*

2. рН получаемого анолита 7,2±0,5 3. Нейтральность анолита обеспечивается за счет сопряженности кислых (НСЮ) и щелочных (СЮ", Н02") фракций 4. На поверхностях происходит самопроизвольная нейтрализация анолита в течение от 30 до 120 мин 5. Концентрация компонентов анолита АНК: хлорактивныех (НСЮ, СЮ", СГ) - 80-95%; гидропероксидных (Н02, Н202, 03, '02) - 20-5%. Как видно из представленных данных, процент активного хлора в получаемом растворе анолита АНК, ничтожно мал. Согласно ГОСТу 2874-82 ПДК хлоридов (СГ) в воде должно быть не более 350 мг/л. Несмотря на то, что хлорноватистая кислота является наиболее сильным окислителем в ряду СЮ"

Католит

ХАЛ зкатолит

С12<НС10, наибольшей окислительной активностью обладают растворы активного хлора со значениями рН ~ 7,3 . 7,8. Это объясняется тем, что при таких значениях рН концентрации НС10 и СЮ" примерно одинаковы, так как они являются сопряженными кислотой и основанием. Кроме того, реакции, протекающие в средах близких к нейтральным, катализируются ионами ОН" и Н4", т.е. все реакции протекающие в растворах активного хлора в среде с рН ~ 7,3 . 7,8, являются катализируемыми.

Наличие в анолите достаточного количества сильных окислителей и свободных радикалов превращает его в раствор с сильно выраженными бактерицидными свойствами. При изучении химического состава анолита АНК установлено, что при концентрации оксидантов 100-500 мг/л содержание хлорактивныех компонентов (НС10, СЮ", СЮ2, С1") составляет 80-95%; гидропероксидных компонентов (Н02, Н202, 03, '02) составляет 20-5% (Бахир В.М. и др., 2001).

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза», Царукян, Сона Степановна

ВЫВОДЫ

1. Бактериальная обсемененность поверхностей оборудования и тушек птиц механизированного убойного цеха птицефабрики, оборудованного голландской линией фирмы «Stork» в процессе технологического цикла составляет:

• На поверхностях различного технологического оборудования (линия, столы и др.): по S. enteritidis - от 2 до б КОЕ/см , Е. coli -от 10 до

8,2-103 КОЕ/см2;

• На наружных поверхностях тушек бройлеров: S. enteritidis - от 2 до 4 КОЕ/см2; Е. coli - от 8 до 3,02-103 КОЕ/см2.

2. Установлено, что критическими контрольными точками (ККТ) по уровню бактериальной обсемененности оборудования и тушек птиц в технологическом процессе первичной переработки являются точки навески живой птицы, процесс нутровки, отделения потрохов от кишечника и ванна охлаждения, что следует учитывать при ветеринарно-санитарном контроле процесса убоя и переработки птицы.

3. Определено, что нейтральный анолит АНК, получаемый на установках СТЭЛ, в суспензионном тесте инактивирует:

• при Сах 200 мг/л (без белковой защиты): S. enteritidis (полевой штамм) и S. dublin, Е. coli (шт. 1257), St. aureus (шт. 209-Р), Pr. vulgaris в течение 3 мин.; при наличии белковой защиты S. enteritidis и S. dublin, Е. coli, Pr. Vulgaris - 10 мин., St. aureus - 15 мин.;

• при Сдх 500 мг/л (с белковой защитой): S. enteritidis, Е. coli - 3 мин., St. aureus - 5 мин., Вас. cereus - 180 мин.;

• при Сах 200-500 мг/л: вирус болезни Ньюкасла (штаммы - вакцинный «Ла-Сота» и полевой) - 30 мин.

4. Растворы оксидантов, получаемые на установках Аквахлор-50, -100, -500:

• при Сах 2000 мг/л инактивируют споры Вас. cereus в течение 30 мин.;

• при Сах 2000-3500 мг/л, после хранения в течение 23 суток (срок наблюдения) могут быть использованы в различных разведениях, сохраняя бактерицидные свойства в отношении вегетативной микрофлоры (на примере сальмонелл и стафилококков).

5. Установлено, что поверхности тест-объектов (дерево, оцинкованное железо, бетон и др.), контаминированные Б. етегШсИэ (с белковой защитой), обработанные раствором нейтрального анолита АНК обеззараживаются: у

• при применении анолита с Сах 200 мг/л из расчета 600-800 мл/м" (двукратно, по 300-400 мл с интервалом 20 мин) и экспозиции 60 мин при контроле по сальмонеллам - на 100% и по естественному уровню микрофлоры - кишечной палочке на 62,0-100%;

• при применении анолита с С^ 500 мг/л при прочих равных условиях, но при экспозиции 90 мин, при контроле по сальмонеллам и кишечной палочке - на 100%.

6. Поверхности оборудования (конвейерная линия, столы и пр.) убойного цеха, по завершении технологического цикла, обработанные раствором нейтрального анолита АНК с С^ 200 мг/л, двукратно (с интервалом 30 у мин, половинной дозой и общем расходе анолита 800 мл/м ), а сильно зажиреные, загрязненные белковой массой объекты (машина для потрошения, ванна охлаждения) трехкратно (1/3 частью дозы 800 мл/м при каждом нанесении раствора), обеззараживаются при экспозиции 2 часа после последнего нанесения при контроле по сальмонеллам - на 100% и кишечной палочке - 90,0-98,0%).

При обработке нейтральным анолитом АНК с Сах 500 мг/л, однократно в дозе 600-800 мл/м , а сильно зажиреные объекты- двукратно (половинной дозой с интервалом 30 мин) последние обеззараживаются при экспозиции 2 часа после последнего нанесения при контроле по сальмонеллам - на 100% и кишечной палочке - 91,0-99,0%).

7. Обработка поверхностей помещения для содержания птицы и оборудования аэрозолями нейтрального анолита АНК (С^ 500 мг/л) при расходе раствора 100 мл/м3 и экспозиции 90 мин обеспечивает их обеззараживание при контроле по сальмонеллам и кишечной палочке -на 100%.

8. Поверхности потрошеных тушек птиц (бройлеров), контаминированные S. enteritidis, обеззараживаются путем погружения их в раствор нейтрального анолита АНК с Сах 200 мг/л в течение 30 мин при контроле по сальмонеллам - на 100% и кишечной палочке - 98,8%; при аналогичной обработке тушек анолитом АНК с С^ 500 мг/л обеззараживание достигается в течение 15 мин - по сальмонеллам - на 100% и по кишечной палочке - 99,9%.

В производственных условиях обработка тушек птицы анолитом АНК (Сах 500 мг/л) в ванне охлаждения в течение 15 мин обеспечивает обеззараживание их поверхности и раствора воды при контроле по сальмонеллам на 100% и кишечной палочке соответственно - 100 и 99,9%.

9. Установлено, что тушки птиц, обработанные анолитом АНК (С^ 500 мг/л), по органолептическим и физико-химическим показателям сохраняются без изменений, оставаясь свежими в течение 24 часов хранения при температуре воздуха +18°С.

Мясо тушек птиц, обработанных по указанному режиму анолитом АНК в опытах с применением тест-организмов тетрахимена пириформис и при постановке биологической пробы на белых мышах, было безвредным.

10. Проведенной технико-экономической оценкой затрат на синтез анолита АНК и его применения установлено, что стоимость получения 1л анолита на установках СТЭЛ с учетом материальных и трудовых затрат составляет 13 коп, а стоимость дезинфекции 1м" объекта - 0,09 руб., что в десятки раз дешевле в сравнении с другими дезинфектантами (Септодор, Гигасепт-Ф, Хлорамин, Аламинол и др.)

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ДЛЯ ПРАКТИКИ

Технология и режимы применения электрохимически активированных растворов натрия хлорида в птицеперерабатывающей промышленности включены:

• по пп. 3.1.1, 3.2.3 в «Методические рекомендации по применению электрохимически активированных растворов в мясоперерабатывающей промышленности» (Утв. ВНИИВСГЭ 10.05.2002 и согласованы с ОАО НПО «Экран» 09.05.2002).

• по пп. 4, 5, 11 в «Инструкции по применению электрохимически активированных растворов натрия хлорида анолита (АНК) и католита, получаемых на установках типа СТЭЛ, для мойки и дезинфекции объектов ветеринарного надзора» (одобрены Отделением ветеринарной медицины Россельхозакадемии 1 июня 2005г. и представлены в Федеральную службу по ветеринарному и фитосанитарному надзору РФ 19.10.2005г., № 1-7/459).

• по п. 12 в «Инструкцию по санитарной обработке технологического оборудования и производственных помещений на предприятиях птицеперерабатывающей промышленности», которая представлена для утверждения в Федеральную службу по ветеринарному и фитосанитарному надзору РФ 13.10.2005г., №34/548.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Царукян, Сона Степановна, 2005 год

1. Абрамов K.M. Санитарная обработка оборудования в цехах переработки мяса птицы // Тез. докл. Всеросс. конф. молодых ученых и аспирантов по птицеводству, Сергиев Посад. 1999. - С.35-36.

2. Акатов А.К, Зуева B.C. Стафилококки // М.: Медицина, 1983.

3. Актуальные проблемы патологии животных и человека // Матер.научно-практ. конф., Барнаул 1996.

4. Алехин С.А. Опыт использования методов электрохимической активации бурового раствора // Реф. сб. ВНИИГП, 1981. вып.З.

5. Алехин С.А. Применение электроактивированных водных растворов в народном хозяйстве // Матер. Всесоюз. семинара-конференции. Ташкент, 1991. -С.25-26.

6. Аминев В.А., Пылаева С.И., Куприянов В.А., Городинская H.A. Применение растворов анолита, полученных на установках СТЭЛ, при лечении ожогов у детей // Тез докл. «Первый международный симпозиум по электрохимической активации». Москва. - 1997. - С.96-97.

7. Ашмарин И.П., Воробьев A.A. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.:Медгиз, 1962.

8. Банникова Д.А., Семенова Е.А., Павлова И.Б., Закомырдин A.A. Влияние электроактивированных растворов на популяции некоторых патогенных бактерий (электронномикроскопическое исследование). // Сб.научн.тр. ВННИВСГЭ. 2003. - т. 115 - ст. 68-78.

9. Бахир В.М. Электрохимическая активация. М.: ВНИИМТ, 1992. - 4.2. -С.200-221.

10. Ю.Бахир В.М. Химический состав и свойства электрохимически активированных растворов. -М.: Гиперокс, 1990. С.11.

11. Бахир В.М., Задорожний Ю.Г. Электрохимические реакторы РПЭ // М.: Гиперокс. 1991.вып.4. - 35с.

12. Бахир В.М., Кирпичников П.А., Лиакумович А.Г., Спектор Л.Е., Мамаджанов У.Д. Механизм изменения реакционной способности активированных веществ // Изв. АН УзССР, 1982. №4. - С.70.

13. П.Бахир В.М., Лиакумович А.Г., Кирпичников П.А., Спектор А.Е., Мамаджанов У.Д. Физическая природа явлений активации веществ // Изв. АН УзССР, №1, 1983. С.60.

14. М.Бахир В.М., Мамаджанов У.Д. Поверхностные явления в дисперсных системах в условиях униполярного элетрохимического воздействия // Тез. докл. VII Всесоюзн. конф. по коллоидной химии. Минск, 1977.

15. Бахир и др. Способ униполярной электрообработки жидкости и устройство для его осуществления // А.С.№ 904394 СССР, 1981.

16. Бахир В.М., Спектор Л.Е., Мирзакаримова Г.Р., Мамаджанов У.Д. Активация в биологии // Техника и наука. 1982. - №12.

17. Бахир В.М. Регулирование физико-химических свойств технических водных растворов униполярным электрохимическим воздействием // Дисс. канд. техн. наук, Казань. 1985.

18. Белая Ю.А., Белая О.Ф. Вирулентность энтеробактерий и иммунитет // Ж. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1996. - №4. - С.108-112.

19. Белдырев А.И. Физическая и коллоидная химия М.: Высшая школа. -1974.-С.75.

20. Бердников П.П., Зайцева И.Г. Стабильность электоактивированных растворов при различных условиях хранения. // Болезни с/х животных имеры борьбы с ними на Дальнем Востоке и в Забайкалье.- Благовещенск -1996(1997).

21. Болдырев А.И. Физическая и коллоидная химия // М.: Высшая школа. -1974.

22. Бондаренко В.М. Общий анализ представлений о патогенных и условно-патогенных бактериях // Ж. микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 1997. - №4. - С.20-26.

23. Бутко М.П. Ветеринарная санитария на ранспорте. М., 1988.

24. Вашков В.И. Средства и методы стерилизации, применяемые в медицине. М.: Медицина, 1973. - С.5.

25. Возная Н.Ф. Химия воды и микробиология. М.: Высшая школа. - 1979. -341с.

26. Галаев Ю.В. Патогенные ферменты бактерий. М.: Медицина, 1968.

27. Герловин И.Л. Основы единой теории всех взаимодействий в веществе. -Л.: Энергоатомиздат, 1990.

28. Голубева И.В., Килессо В.А., Киселева Б.С. и др. Энтеробактерии: руководство для врачей. М.: Медицина. - 1985. - 321с.

29. Григорьева Л.В. Действие химических факторов в воде на сохранение адгезивности энтеропатогенных бактерий // Химия и технология воды. -1991. 13. -№6. - С.570-574.

30. Девятов В.А., Петров С.Б. Активированная вода и ее применение в хирургической клинике // Изобретатель и рационализатор. 1988. - №5.

31. Джупина С.И. Факторы, благоприятно влияющие на содержание животных в экстремальных условиях // Профилактика болезней молодняка: Сб. научн. тр./ВАСХНИЛ. Сиб. отделение ИЭВС и ДВ. Новосибирск, 1990.- С.4-10.

32. Дорофеев В.И. Влияние электроактивированной воды на микроорганизмы // Сб. научн. тр. Ставропольской ГСХА, Ставрополь. 1996.

33. Дорофеев В.И. Влияние электроактивированной воды на микроорганизмы и практическое использование ее в ветеринарной медицине // Автореф. дисс.докт. вет. наук Ставрополь: СГСХА. - 1997.

34. Дорофеев В.И. Ионизированная вода эффективное средство для лечения и профилактики токсической диспепсии телят // Морфофункциональные показатели продуктивности животных. Сб. научн.тр. Ставропольской ГСХА.- 1993. -С.101-104.

35. Дудницкий И.А. Санитарно-бактериологическая характеристика и разработка технологии профилактической дезинфекции помещений для содержания свиней в хозяйствах промышленного типа // Дисс. канд. наук. -Москва, 1974.

36. Егоров Н.С. Метаболизм микробов // М., МГУ, 1986.

37. Езепчук Ю.В. Патогенность как функция биомолекул. М., 1985. - 240с.

38. Езерсая Н.В. Распространение и длительность носительства патогенных бактерий семейства Enterobacteriaceae // Меры борьбы с болезнями сельскохозяйственных животных. Сб. научн. тр. Харьковского ГСХИ. -Т. 169. С.87-90.

39. Закомырдин A.A. Моющие и дезинфицирующие средства на основе униполярной активации растворов хлоридов // Сб. научн. тр. ВНРШВСГЭ. 1994. - Т.95. - 4.1. - С.22-26.

40. Закомырдин A.A. Электрохимически активированные растворы в ветеринарии. // Ветеринарный консультант 2002- №8 - с. 8.

41. Закомырдин A.A. Экологически безопасные растворы на основе электрохимии. // ж. Ветеринария 2002- №11 - с. 12-14.

42. Закомырдин A.A., Бурдов Г.Н., Марасинская Е.И., Фадеева О.В. Разработка технологии применения ЭХА растворов хлорида натрия для дезинфекции мясо-контрольных станций. // Сб. научн. тр. ВНИИВСГЭ. -1998.-т. 104-с. 89-91.

43. Измеров Н.Ф., Санацкий И.В., Сидоров К.К. Параметры токсикометрии промышленных ядов при однократном воздействии (справочник). М.: Медицина, 1977.-С. 197.

44. Инструкция по дезинфекции на предприятиях по производству говядины на промышленной основе. // Утверж. гл. упр. ветеринарии МСХ СССР 17.07.1975. МСХ СССР, Гл. упр. ветеринарии., М., Колос, 1981.

45. Инструкция по мойке и профилактической дезинфекции на предприятиях мясной и птицеперерабатывающей промышленности. // Утв. Зам. министра мясной и молочной промышленности СССР 15.01.1985.

46. Каврук J1.C. Кишечная палочка // Ветеринарная энциклопедия. 1972. -Т.З. - С.384-387.

47. Каврук J1.C., Зиборова Е.А. Эффективность применения нейтрального анолита при смешанной кишечной инфекции новорожденных телят. // Доклады и краткие сообщения III междунар. симпозиума

48. Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности», Москва. 2001 - с. 154-156.

49. Кац JT.H. Субмикроскопическая структура микроорганизмов с дефектной клеточной стенкой//Успехи микробиологии. 1980.-Вып. - 5. - С. 180195.

50. Козак С.С., Гусев A.A., Лищук А.П., Берлова Г.А. Профилактика сальмонеллеза в птицеперерабатывающей промышленности. М., 1992.

51. Крученок Т.Б. Перспективы развития исследований по механизму действия дезинфицирующих средств. // Теория и практика дезинфекции и стерилизации : Сб. научн. тр. ВНИИДиС, 1983. С.8-11.

52. Кульский Л.А. Обезвреживание и очистка воды хлором. М.: Издательство министерства коммунального хозяйства, 1947. - 420с.

53. Леонов Б.И., Прилуцкий В.И., Бахир В.М. Физико-химические аспекты биологического действия электрохимически активированной воды // М.: ВНИИМТ. 1999. - С.3-12,196-200, 244-250.

54. Лилич Л.С., Хрипун М.К. Окислительно-восстановительные донорно-акцепторные реакции в растворах // Ленинград: ЛГУ. 1978. - С.З.

55. Лопаткин H.A., Лопухин Ю.М. Эфферентные методы в медицине // М.: Медгиз. 1989. - С.320-338.

56. Лужников Е.А. Клиническая токсикология. // М.: Медицина. 1982. -С.168, 205.

57. Лукашов В.В. В кн. Новые методы дезинфекции и стерилизации в медицине // Дагомыс. 1991. - С.9-10.

58. Мальгинов C.B., Мельникова В.М. и др. Применение раствора гипохлорита в травматологии и ортопедии // Матер. 2 Всеросс. конф. «Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине». ВНИИМТ, Москва. 1993.- С.15-17

59. Мамаджанов У.Д., Бахир В.М., Алехин P.A., Теригулов A.A. Электрохимическая активация химических реагентов и буровых растворов //Газовая промышленность. 1981.-№10.-С.10

60. Медицинская микробиология. -М.:ГОЭТАР Медицина, 1999.-1200с.: ил.

61. Мурцева Г.Б., Батомункоева Р.Д., Цыдыпова Б.Б. Идентификация микробов семейства Энтеробактериацеа // Сб. тр. Бурятского с.-х. института. 1994. - С.52-54.

62. Основные методы лабораторных исследований в клинической бактериологии. ВОЗ: Женева, 1994.

63. Павлова И.Б., Куликовский A.B., Ботвинко И.В., Джентемирова E.H., Дроздова Т.Д. Электронно-микроскопическое исследование бактерий в колониях. Морфология колоний бактерий // ЖМЭИ. 1990. - № 9. - С.15-20.

64. Павлова И.Б., Куликовский A.B., Джентемирова E.H., Дроздова Т.Д. Экология бактерий в популяции // Вестник сельскохозяйственной науки.- 1990, № 2, ст.75-78.

65. Пантелеева Л.Г. с соавт. Дезинфицирующие свойства нейтральных анолитов, вырабатываемых в установках СТЭЛ-МТ-1 и СТЭЛ-4Н // Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине : Матер. Всерос. конф. -М., 1992., ст.74-75.

66. Поляков A.A. Ветеринарная дезинфекция. М.: Колос, 1964. - С.59-80.

67. Поляков A.A., Закомырдин A.A. Дезинфицирующие свойства электролитов поваренной соли // Сб. научн. тр. ВНИИДИС. 1978.

68. Правила ветеринарного смотраубойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов. // Москва, ВО, Агропромиздат 1988. ст 50-52, 56-57.

69. Прозоровский C.B., Кац Л.Н., Каган Т.Я. L-формы бактерий. М.: Медицина, 1981.

70. Пухлякова Г.Л. Экология сальмонелл на объектах ветеринарно-санитарного надзора. // Тр. ВНИИВСГЭ Проблемы ветеринарной санитарии и экологии - Т. 93, ч. 2 - 1994, с.48.

71. Рамкова Н.В., Евтикова Л.В. Применение для стерилизации растворов, получаемых электрохимическим путем // Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине : Матер. Всерос. конф. М., 1992. - С.76-77.

72. Ровинская В.Б., Сухова О.И. Опыт применения электрохимически активированных растворов многопрофильном стационаре // Тез докл. «Первого международного симпозиума по электрохимической активации». -Москва, 1997г.-С. 70-71.

73. Родионова В.Б., Бурлакова В.А, Костенко Т.С. и др. Роль разных видов микроорганизмов в возникновении респираторно-кишечных заболеваний телят // Инфекционные болезни молодняка с.-х. животных: Всерос. научн. конф. М, 1996. - С.82-83.

74. Сент-Дьерди А. Биоэлектроника//М.: Мир. 1971.-С.11-13.

75. Сергиенко В.И. Сообщение на клинической конференции Центрального института травматологии и ортопедии. Москва. - 1993.

76. Спирина С.И. Электроактивированная вода в птицеводстве // Мат. конф. «Современные вопросы интенсификации кормления, содержания животных и улучшения качества продуктов животноводства». М. - 1999. -С.154-155.

77. Спирина С.И. Санитарная обработка оборудования в цехах переработки мяса птицы. // Мат. конф. «Современные вопросы интенсификации кормления, содержания животных и улучшения качества продуктов животноводства». М., 1999-с. 152-154.

78. Спирина С.И., Востряков Г.В., Карасева Е.А. Использование электроактивированной воды в птицеводстве. // ж. Зоотехния 2001- № 2, ст. 26-30.

79. Спирина С.И., Шоль В.Г., Филоненко В.И., Салеева И.П. Использование электроактивированного солевого раствора в птицеводстве // Проблемы экологической безопасности агропромышленного комплекса. Сергиев Посад. - 1996. - вып.2. - С. 144-145.

80. Ставцева Л.Я., Девришов В.А., Федорова М.К., Гизатулина С.С. Энтеротоксигенность условно-патогенных энтеробактерий // Вестник с-х науки.-М.: Агропромиздат. 1992.-№ 2.-С.149-152.

81. Стайер Л. Биохимия // М.: Мир. Т.2. - 1985. - С. 72-74.

82. Тец В.В., Рыбальченко О.В., Савкова Г.А. Контакты между клетками в бактериальных колониях // ЖМЭИ. 1991. - №2. - С.7-13.

83. Фисинин В.М., Филоненко В.И., Спирина С.К. и др. Электроактивированная вода в птицеводстве //Аграрная наука. — 1999. -№8 С.18-19.

84. Филоненко В.И. Санитарная обработка оборудования в цехах переработки мяса птицы. // Тез. докладов второй международной конференции «Электрохимическая активация». М. 1999, часть 1, ст. 200201.

85. Франклин Т., Сноу Дж. Биохимия антимикробного действия. Пер. с англ. -М.: Мир, 1984, 237с.

86. Цетлин В.М., Вилькович В.А. Физико-химические факторы дезинфекции. М.: Медицина. - 1969. - 288с.

87. Шапиро Дж. А. Бактерии как многоклеточные организмы. В мире науки. - 1998. - №8. - С.46-54.

88. Шеламова С.А., Рассадкина Е.А., Ильина Н.М., Говорова Т.А. Изучение санитарно- гигиенических вводно-контактного охлаждения тушек птицы. // Депонированная рукопись, Воронеж 1989, 8с. Рукопись деп. В Arpo НИИТЭИ мясопром 20.06.1989.

89. Шпат A.A. Применение продуктов электролиза раствора поваренной соли в сельском хозяйстве // Аналитич. обзор, Рига. 1990.

90. Шпат A.A. Опыт использования аппаратов СТЭЛ в Латвии // Матер. 2 Всеросс. конф. «Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине». ВНИИМТ, Москва. 1993. -С. 13-14.

91. Эрдеи-Груз Т. Явления переноса в водных растворах // М.: Мир. 1976. -С.222-243, 516-577.

92. Ющенко A.A., Юшин М.Ю., Итурганова O.A. Влияние электрохимически активированных растворов на жизнеспособность бактерий // Матер. 2 Всеросс. конф. «Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине», ВНИИМТ. Москва, 1992. - С. 24-26.

93. Brient Е. The control of humidity by saturated salt solutions. // J. sei. instrum. 1968.-Vol.25-№78.

94. Bowmann R.L., Helson f. // Journal Science. 1966. - Vol. 154. - № 3755.-P.1454.

95. Characterization and Quantitation of Immunogens in Veterinary Biologies: Special Issue // Vet. microbiol.: Elsevier S. P.B.V. 1983. - Vol.37.

96. Dietz R.N., Pruzinaski J., Smith J.D. // Analytical Chemistry. 1973. -Vol.45.-№2.-P.402.

97. Ducluzeau R. Composition and role de la flore du tube digestif de Phomme et des animaux domestiques // C. r. Acad. agr. Fr. 1997. - 83, №1. - C.71-80.

98. Evans D.J., Evans D.G. Classification of pathogenic Escherichia coli according to serotype and the production of virulence factors, with special reference of colonization factor antigents // Per. Infect. Dis. - 1983. - Vol.5. -№4. -P.692-701.

99. Farlow N. Physic-chemical system for wateraerosol measurement. J. of Colloid Science. Vol. 11, 1968.

100. Harri E.G. Surface disinfecting of poultry building by formaldehyde and Sulfur Dioxide. Vet. Rec. Vol. 73, №21, 1961.

101. Harri E.G. Disinfectants in disease prevention. Poultry world, Vol. 116, №42, 1965.

102. Hidemitsu Hayashi. Welcome to Microwater! Nisshin Building, 2-5-10 Shinjiku, Shinjiku-ku, Tokyo, Japan 160.

103. Jelev W., Karadchov J„ Angelov A. «Zbl. Vet. Med.», 1969, B, 16. №8 -P.725-730.

104. Kleanhammer T.R. Bacteriocins of lactic acid bacteria // Biochimie. 1988. - Vol.70.-P.337.

105. Koulikovskii A.V., Pavlova I.B., Kosianenko A.I. Ecology of some foodborne pathogens in the environment // 3-rd World congress Foodborne Infections and intoxications. Berlin, Germany. - 1992. - P.462-466.

106. Lotts T.M. Redox Shock. Water quality association and exhibition. March. 1994. Phoenix. Arisona. p. 20.

107. Lundquist J.T. Electrochemical system graduated porous bed section // US Patent. 3.919.062. Nov. 11. 1975.

108. Ma L., Yang Z., Li Y., Griffis C. Microbial, chemical and physical changes in chill water treated with electrochemical method. // J. Food Process Engg. -2000- vol. 23, №1, p. 57-72.

109. Malchevsky P.S., Horiuchi T., Emura M., Nose Y. Aggregation of macromolecules in therapeutics temperature effect and membrane plasma filtration // Flocculation in biotechnology and separation system. Ed. Yaattia. Amsterdam. 1987. -P.481-498.

110. Opdenbsch E., de Kegel D., Strobbe R., Wellemans G. Session General du Comite de I.O.J.E. Paris/ 21-26 mai 1979, Rapport №100 25p.

111. Parker D.S. and Armstrong D.G. Proceedings of the Nutrition Society. 1987.- Vol.46.-P.415-421.

112. Quigley J.D., Welborn M.G. // J. Dairy Sci. 1996. - Vol.79. - №5.

113. Rao A.V. and Koo M.M. International Journal of Food Science and Nutrition.- 1992. №43. - P.9 - 17.

114. Rowland I.R. Metabolic interactions in the gut // Probiotics (Fuller R.) Chapman & Hall. London, 1992. - P.29 - 54.

115. Sedlak J., Rische H. Enterobacteriaceae Infektionen // Veb Georg Theieme, Leipzig.- 1968.

116. Smith H.W. and Huggins M.B. Journal of General Microbiology. 1983. -Vol. 129. - P.2659-2675.

117. Spengler B.D. Microbiological Reviews. 1992. - №56. - P.622-247.

118. Varel V.H., Pond W.G., Pecas J.C. and Yen J.T. Applied and Environmental Microbiology. 1982. - №44. - P. 107-112.

119. Williams J. Can POU offer protection from pathogens? // Water technology. 1994. Vol.17. - №12. - P.60-63.

120. Wolfaardt G., Lawrence J., Roberts R. et al. Multicellular organization in a5degrative biofilm community // Appl. Glycosci. 1994. - 41. - 2. - P.283.