Получение трансгенных растений табака с геном белка CspD из Bacillus thuringiensis и изучение элиситорных свойств бактериальных белков холодового шока тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.11, кандидат биологических наук Кромина, Ксения Андреевна

• Кромина, Ксения Андреевна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Кромина, Ксения Андреевна

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. Обзор литературы.

Терминология.

1.1. Устойчивость растений к болезням.

1.2. Индуцированная устойчивость растений, ее виды.

1.2.1. Системная приобретенная устойчивость.

1.2.2. Системная устойчивость, индуцируемая ризосферными бактериями.

1.2.3. Спектр генов арабидопсиса, экспрессируемых при активации защитных ответов на некрозообразующий патоген, салициловую кислоту, метилжасмонат и этилен.

1.3. Элиситоры устойчивости растений к болезням.

1.3.1. Элиситоры общих защитных отетов растений.

1.3.1.1. Флагеллин.

1.3.1.2. Бактериальный фактор элонгации.

1.3.1.3. Бактериальные белки холодового шока.

1.3.1.4. Консервативная область трансглютаминаз видов рода РЪугорЫЪога - пептид Рер-13.

1.3.1.5. Липополисахариды.

1.3.1.6. Петидил-пролил цистрансизомераза из бактерии Р. АиогеясепБ.

1.3.1.7. Хитин и хигозаны.

1.3.2. Элиситоры устойчивости растений, участвующие в процессе взаимодействия растение - патоген.

1.3.2.1. Факторы авирулентности.

1.3.2.2. Харпины.

1.4. Механизмы распознавания растением химических детерминант микроорганизмов.

1.4.1. Молекулярные детерминанты патогена, РАМРв.

1.4.2. Распознавание РАМРв у животных и растений.

1.4.3. Распознавание растением факторов авирулентности патогена.

1.4.4. Доступность РАМРб для растений.

1.5. Практическое применение индуцированной устойчивости растений для их защиты от болезней.

1.5.1. Обработка растений ицдукторами устойчивости.

1.5.2. Создание трансгенных растений, устойчивых к фитопатогенам.

1.5.2.1. Экспрессия в трансгенных растениях генов антимикробных веществ.

1.5.2.2. Экспрессия в растениях Я-генов близкородственных растений.

1.5.2.3. Экспрессия в растениях генов элиситоров, вызывающих реакцию СВЧ.

Глава 2. Материалы и методы исследований.

2.1. Материалы.

2.1.1. Химические реактивы и ферменты, использованные в работе.

2.1.2. Бактериальные штаммы.

2.1.3. Плазмиды.

2.1.4. Фитопатогенные микроорганизмы.

2.1.5. neimwcspl5.

2.1.6. Суспензионная культура клеток табака.

2.2. Методы.

2.2.1. Трансформация табака методом «листовых дисков».

2.2.2. Генетический анализ трансгенных растений поколения Т1.

2.2.3. Выделение растительной геномной ДНК.

2.2.4. Полимеразная цепная реакция.

2.2.5. Выделение тотальной РНК.

2.2.6. Анализ экспрессии CspD гена на уровне синтеза мРНК с помощью обратной транскрипции с последующей ПЦР.

2.2.7. Определение уровня экспрессии целевого гена с помощью ПЦР в реальном времени.

2.2.8. Выращивание трансгенных растений табака в климатической камере.

2.2.9. Культивирование гриба Alternaría longipes (Ellis & Everh.).

2.2.10. Оценка трансгенных растений табака на устойчивость к патогенному грибу A. longipes.

2.2.11. Оценка трансгенных растений табака на устойчивость к вирусу табачной мозаики.

2.2.12. Оценка активности пептида cspl5 в системе табак - ВТМ.

2.2.13. Изучение скорости СВЧ реакции в тканях картофеля при несовместимом взаимодействии после обработки пептидом cspl5.

2.2.14. Изучение влияния пептида cspl5 на прорастание спор гриба Stagonospora nodorum.

2.2.15. Проверка активности пептида cspl5 с использованием пары пшеница - возбудитель септориоза (5. nodorum).

2.2.16. Инфильтрация пептида cspl5 в межклеточное пространство листьев табака.

2.2.17. Определение содержания салициловой кислоты в тканях картофеля, обработанных пептидом cspl5.

2.2.18. Измерение защелачивания питательной среды в суспензионной культуре клеток табака после обработки элиситором.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ.

Глава 3. Анализ нуклеотидной и аминокислотной последовательностей гена и белка MF2 (CspD, номер в GenBank AY272058).

3.1. Анализ первичной структуры нуклеотидной и аминокислотной последовательностей гена и белка MF2.

3.2. Анализ нуклеотидной последовательности гена CspD с целью определения возможности его эффективной экспрессии в растениях табака.

Глава 4. Получение трансгенных растений табака с геном CspD. Биотесты с трансгенными растениями.

4.1. Конструирование бинарного вектора pBilt7, несущего бактериальный ген CspD, для трансформации растений.

4.2. Агробактериальная трансформация.

4.3. Молекулярный анализ трансгенных растений.

4.4. Сравнение уровня экспрессии в трансгенных линиях табака с помощью ПЦР в реальном времени.

4.5. Определение числа локусов в геноме растений, в которые произошла вставка Т-ДНК. Наследование вставки в поколении Т1.

4.6. Оценка устойчивости трансгенных растений табака.

4.6.1. Оценка трансгенных растений табака на устойчивость к патогенному грибу A. longipes.

4.6.2. Оценка трансгенных растений табака на устойчивость к вирусу табачной мозаики.

Глава 5. Изучение элиситорных свойств пептида cspl5.

5.1. Исследование способности пептида cspl5 индуцировать устойчивость в системах растение-хозяин - патоген.

5.1.1. Оценка активности пептида csp 15 в системе табак - ВТМ.

5.1.2. Изучение скорости СВЧ реакции в тканях картофеля при несовместимом взаимодействии с патогеном после обработки пептидом csp 15.

5.1.3. Изучение влияния пептида cspl5 на прорастание спор S. nodorum.

5.1.4. Проверка защитной активности пептида cspl5 в паре пшеница - S. nodorum.

5.2. Изучение защитных реакций растения в ответ на обработку пептидом cspl5.

5.2.1. Инфильтрация пептида csp 15 в межклеточное пространство листьев табака для обнаружения его способности вызывать реакцию СВЧ.

5.2.2. Анализ содержания салициловой кислоты в тканях картофеля, обработанных пептидом csp 15.

5.2.3. Оптимизация методики тестирования ранних защитных ответов растения в суспензионной культуре клеток табака. Проверка активности пептида csp 15 в культуре клеток табака.

ВЫВОДЫ.

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Получение трансгенных растений табака с геном белка CspD из Bacillus thuringiensis и изучение элиситорных свойств бактериальных белков холодового шока»

Защитные механизмы растений развивались в процессе длительной эволюции и, следовательно, способны обеспечить надежное противостояние фитопатогенам. Поэтому наиболее привлекательным в защите растений от болезней является использование естественного защитного потенциала самих растений. Такой подход является более безопасным, чем применение ксенобиотиков, поскольку в этом случае в окружающую среду не вносятся вещества, оказывающее негативное влияние на биосферу. Поскольку одним из механизмов фитоиммунитета, обеспечивающих устойчивость растения к патогенам, является индуцированная устойчивость, в настоящее время активно исследуется возможность использования данного типа устойчивости в сельском хозяйстве. Это, в свою очередь, требует изучения тех процессов, которые происходят в растении в ответ на внедрение патогенов и распознавание их метаболитов (элиситоров), что, в конечном счете, и приводит к возникновению устойчивости.

В середине 1990-х годов во ВНИИ фитопатологии был выделен низко молекулярный (7,2 кДа) термостабильный белок из Bacillus thiiringiensis, получивший название - Microbial Factor 2 (MF2). Было показано, что МБ2-белок способен индуцировать устойчивость растений в следующих парах патоген - хозяин: вирус табачной мозаики - табак, Х-вирус картофеля - табак, Phytophthora infestons - картофель и Magnaporthe grisea - рис. Ген, кодирующий MF2 белок, был клонирован и секвенирован (Djavakhia et al., 2000). Поскольку в ходе дальнейшего анализа оказалось, что белок MF2 относится к классу белков холодового шока, он был переименован в Cold shock protein D (CspD). Было решено исследовать возможность переноса гена CspD в геном растений, чтобы выяснить возможность индукции устойчивости трансгенных растений при экспрессии этого гена. В качестве объекта для получения трансгенных растений был выбран табак, так как это растение легко поддается агробактериальной трансформации и продуцирует большое количество семян, что является важным при изучении наследования признаков.

Цели и задачи исследований.

Одной целью наших исследований было получение трансгенных растений табака, экспрессирующих ген неспецифического элиситора CspD, выделенного из бактерии В. thuringiensis, с последующей их оценкой на устойчивость к грибному и вирусному фитопатогенам. Другой целью нашей работы было изучение элиситорных свойств пептида cspl5, представляющего собой консенсусную последовательность активного центра элиситоров из группы бактериальных белков холодового шока. Исходя из целей работы, были поставлены следующие задачи:

1. создание генно-инженерных конструкций для экспрессии бактериального белка CspD в растении;

2. создание трансгенных растений;

3. анализ устойчивости трансгенных растений к фитопатогенам;

4. оценка способности пептида cspl5 индуцировать устойчивость растений в системах растение-хозяин - патоген.

Научная новизна исследований.

1. Впервые были созданы трансгенные растения табака с геном белкового элиситора неспецифической устойчивости растений CspD, выделенного из Bacillus thuringiensis, и показана их устойчивость к грибному и вирусному фитопатогенам.

2. Впервые показана способность пептида cpsl5, представляющего собой консенсусную последовательность активного центра бактериальных белков холодового шока, индуцировать устойчивость в естественных системах растение-хозяин - патоген у двудольных растений: табак (сорт Xanthi) - вирус табачной мозаики (ВТМ), картофель - Phylophlhora infestons.

3. Впервые показана элиситорная активность пептида cpsl5 по отношению к однодольному растению в паре пшеница (сорт Мироновская 808) - возбудитель септориоза (Stagonospora nodorum).

Практическая значимость работы.

1. Показано, что по сравнению с исходными растениями трансгенные растения табака, несущие ген CspD, обладают повышенной устойчивостью к вирусу табачной мозаики и к грибному фитопатогену Alternaría longipes. Данный факт позволяет начать исследования по созданию трансгенных растений сельскохозяйственных культур с целью их дальнейшего использования в селекционном процессе для создания сортов с широким спектром устойчивости к фитопатогенам.

2. Оптимизирована методика оценки трансгенных растений на наличие и экспрессию гена CspD с помощью молекулярных методов.

3. Оптимизирована методика оценки устойчивости табака к некротрофному грибу A. longipes.

4. Показано, что консенсусная последовательность бактериальных белков холодового шока (пептид cspl5) способна индуцировать устойчивость к грибному фитопатогену у однодольного растения - пшеницы, к оомицету у картофеля и к ВТМ у табака. Такие результаты позволяют начать работу по созданию высокоэффективных биопестицидов широкого спектра действия.

5. Оптимизирована методика для оценки раннего защитного ответа в суспензионной культуре клеток табака на воздействие элиситоров.

Апробация работы и публикации.

Материалы диссертации были представлены на международной научно-практической конференции «Биотехнология овощных, бахчевых, цветочных и малораспространенных культур», проходившей во ВНИИ Овощеводства в марте 2004 г; на международном семинаре "The International Joint Workshop on PR-Proteins and Induced Resistance" 5-9 мая 2004 г в Дании; III Съезде ВОГИС «Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития», 6-12 июня 2004 г в Москве; на третьем московском международном конгрессе «Биотехнология: состояние и перспективы развития», 14-18 марта 2005 г в Москве.

По материалам диссертации опубликованоработ.

Структура и объем работы.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, экспериментальной части (2-5 главы), выводов и списка литературы. Материал изложен на 124 страницах машинописного текста, содержит 8 таблиц, 22 рисункаа и 3 приложения. Список литературы включает 180 работ, из которых 176 на иностранном языке.

Заключение диссертации по теме «Защита растений», Кромина, Ксения Андреевна

выводы

1. Созданы генно-инженерные конструкции для экспрессии бактериального белка CspD в растении.

2. Впервые получены трансгениые растеиия табака с геном белкового элиситора неспецифической устойчивости растеиий CspD из Bacillus thuringiensis.

3. Показана повышенная устойчивость полученных трансгепных растений табака к грибному и вирусному фитопатогенам.

4. Оптимизированы условия проведения оценки устойчивости табака к Aliernaria longipes на изолированных листьях.

5. Впервые показана возможность фрагмента бактериального белка холодового шока -пептида cpsl5, индуцировать устойчивость в системах растение-хозяин - патоген, для следующих пар: табак - вирус табачной мозаики, картофель (сорт Истринский) -Phytophíhora infestans и пшеница (сорт Мироновская 808) - Stagonospora nodorum (возбудитель септориоза).

6. Оптимизирована методика проведения опыта для определения активации механизмов индуцированной устойчивости на изолированных листьях пшеницы в паре пшеница -Stagonospora nodorum.

1. Впервые показана способность пептида cspl5 индуцировать синтез салициловой кислоты в тканях клубней картофеля.

8. Оптимизирована система для изучения раннего защитного ответа растений -утечки/поглощения ионов К+/Н+ - в суспензионной культуре клеток табака.

СПИСОК ОПУБЛИКОВАННЫХ РАБОТ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Шумилина Д.В., Кромина К.А., Рогожин И.А., Воинова Т.М., Джавахия В.Г. Создание трансгеиных растений табака, несущих вставку гена MF2 белка из Bacillus thuringiensis, и испытание их на устойчивость к вирусным патогенам. Трансгенпые растения - новое направление в биологической защите растений, Краснодар 2003, стр. 180-186.

2. Кромина К.А., Шумилина Д.В., Рогожин И.А., Войнова Т.М., Шольце П., Рихтер К., Крэмер Р., Клоке Э., Шуман Г., Джавахия В.Г. Создание трансгенных растений табака и рапса с геном mf2 белка из Bacillus thuringiensis, индуцирующего неспецифическую устойчивость к фитопатогенам. Современные системы защиты растений от болезней и перспективы использования достижений биотехнологии и генной инженерии, Голицыно, 2003, стр. 201 - 203.

3. Кромина К. А., Рогожин И. А., Воинова Т. М., Батчикова Н. А., Корпела Т., Хомутов Р. М., Джавахия В. Г. Трансгенные растения табака с геном CspD белка из Bacilllus thuringiensis устойчивы к фитопатогенам. Биотехнология овощных, бахчевых, цветочных и малораспространенных культур: Сборник научных трудов международной научно-практической конференции. Вып. 1. - М.: ГНУ ВНИИО РАСХН, 2004, - С. 90-93.

4. Kromina К. A., Voinova Т. М., Rogozhine I. A., Battchikova N. A., Korpela Т., Khomutov R.M., Dzhavakhiya V. G. Transgenic plants bearing CspD gene from bacillus thuringiensis are more resistant to plant pathogens. The International Joint Workshop on PR-Proteins and Induced Resistance, Denmark May 5-9, 2004, p. 61.

5. Kromina K. A., and V. G. Dzhavakhiya. Peptide cspl5, which represents consensus sequence of RNA-binding motif RNP-1 of bacterial cold shock proteins, induces nonspecific resistance of plants to viral and fungal pathogens. The International Joint Workshop on PR-Proteins and Induced Resistance, Denmark May 5-9, 2004, p. 144.

6. Кромина К. А., Воинова Т. М., Батчикова Н. А., Корпела Т., Хомутов Р. М., Джавахия В.Г. Изучение элиеиторной активности пептида cspl5 представляющего собой консенсусную последовательность РНК-связывающего мотива RNP-1 бактериальных белков холодового шока на разных парах растение-патоген. III Съезд ВОГИС, Генетика в XXI веке: современное состояние и перспективы развития, 6-12 июня 2004 г, Москва, том 2, с. 335.

7. Кромина К. А. и Джавахия В. Г. Экспрессия бактериального гена CspD в растениях табака приводит к их повышенной устойчивости к грибным и вирусным фитопатогенам. Молекулярная генетика, вирусология и микробиология, 2006, №1, стр. 31-34.

8. Джавахия В.Г. и Кромина К.А. Белок холодового шока (БХШ), выделенный из Bacillus thuringiensis индуцирует устойчивость растений к вирусным, грибным и оомицетным патогенам, трансгенные растения табака, несущие ген CspD более устойчивы к патогенам чем соответствующие нетрансгенные растения. Третий московский международный конгресс «Биотехнология: состояние и перспективы развития», 14-18 марта, 2005, Москва (в печати).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Кромина, Ксения Андреевна, 2006 год

1. Дорохов Д.Б., и Клоке Е. Быстрая и экономичная технология RAPD анализа растительных геномов. // Генетика. 1997. - т. 33. -№ 4 - С. 476-483.

2. Дьяков Ю. Т., Озерецковская О. Л., Джавахия В. Г. и Багирова С. Ф. Общая и молекулярная фитопатология. Учеб. пособие. М. - Общество фитопатологов. - 2001. -302 с.

3. Пыжикова Г.В., Санина А.А., Супрун Л.М., Курахтанова Т.Н., Гогаева Т.Н., Мепаришвили С.У., Анциферова Л.В., Кузнецов Н.С., Игнатов А.Н., Кузьмичев А.А. Методы оценки устойчивости селекционного материала и сортов пшеницы к септориозу. М. - 1989. - 44 С.

4. Abramovitch R.B., Kim Y.-J, Chen S., Dickman M.B. and Martin G.B. Pseudomonas type III effector AvrPtoB induces plant disease susceptibility by inhibition of host programmed cell death // The EMBO Journal. 2003. - V. 22. - P. 60-69.

5. Aderem A., Ulevitch R. Toll-like receptors in the induction of the innate immune response // Nature. 2000. - V. 406. - P. 782-787.

6. Alfano J. and Collmer A The type III (Hrp) secretion pathway of plant pathogenic bacteria: trafficking harpins, Avr proteins, and death // J Bacteriol. 1997. - V. 179. - P. 5655-5662.

7. Allard H.A. The mosaic disease of tobacco // USDA Bull. 1914. - P. 40.

8. Altschul S.F., Madden T.L., Schaffer A.A., Zhang J., Zhang Z., Miller W., Lipman D.J. Gapped BLAST and PSI-BLAST: a new generation of protein database search programs // Nucleic Acids Res. 1997. - V. 25. - № 17. - P. 3389-3402.

9. Atkinson M.M., Huang J.-S., and Knopp J. A. The hypersensitive reaction of tobacco to Pseudomonas syringae pv. pisi II Plant Physiol. 1985. - V. 79. - N. 3. - P. 843-847.

10. Axtell M.J., Staskawicz B.J. Initiation of RPS2- specified disease resistance in Arabidopsis is coupled to the AvrRpt2-directed elimination of RIN4 // Cell. 2003. - V. 112. - P. 369-377.

11. Bae W., Xia B., Inouye M., Severinov K. Escherichia coli CspA-family RNA chaperones are transcription antiterminators // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. - V. 5. - № 97 (14). - P. 7784-7789.

12. Bairoch A., Bucher P., Hofmann K. The PROSITE database, its status in 1997 // Nucleic Acids Res. 1997. - V. 25. - No. 1. - P. 217-221.

13. Baker B., Zambryski P., Staskawicz B. and Dinesh-Kumar S.P. Signaling in plant-microbe interactions // Science. 1997. - V. 276. - P. 726-733.

14. Bauer D.W., Zumoff, C.H., Theisen T.M., Bogdanove A.J. and Beer S.V. Optimized production of Erwinia amylovora harpin and its use to control plant disease and enhance plant growth // Phytopathology. 1997. - V. 87. - P. S7.

15. Bhat S.R., Srinivasan Molecular and genetic analyses of transgenic plants: considerations and approaches // Plant Science. 2002. - V. - 163. - P. 673-681.

16. Bevan M. Binary Agrobacterium vectors for plant transformation // Nucl. Acids Res. 1984. -V.12.-No. 22.-P. 8711-8721.

17. Bonas U., Lahaye T. Plant disease resistance triggered by pathogen-derived molecules: refined models of specific recognition // Curr Opin Microbiol. 2002. - V. 5. - P. 44-50.

18. Broekaert W.F., Terras F.R., Cammue B.P., Osborn R.W. Plant defensins: novel antimicrobial peptides as components of the host defense system // Plant Physiol. 1995. - 108 (4). - P. 1353-1358.

19. Brunner F., Rosahl S., Lee J., Rudd J.J., Geiler C., Kauppinen S., Rasmussen G., Scheel D., Nürnberger T. Pep-13, a plant defense inducing pathogen-associated pattern from Phytophthora transglutaminases // EMBO J. 2002. - V. 21. - P.6681-6688.

20. Chakrabarti A., Ganapathi T.R., Mukherjee P.K., Bapat V.A. MSI-99, a magainin analogue, imparts enhanced disease resistance in transgenic tobacco and banana // Planta. 2002. - V. 216.-No. 4.-P. 587-596.

21. Cohn J., Sessa G., Martin G.B. Innate immunity in plants // Curr Opin Immunol. 2001. - V. 13.-P. 55-62.

22. De Barjac H., Bonnefoi A. A classification of strains of Bacillus thuringiensis Berliner with a key to their differentiation//J. Invertebr. Pathol. 1967.-No. 11.-P. 335-347.

23. De Frammond A.J., Barton K.A., Chilton M.-D. Mini-Ti-: a new vector strategy for plant genetic engineering // Bio/Technology. 1983. - V. 5. - P. 262-269.

24. De Groot M.J., Bundock P., Hooykaas P.J., Beijersbergen A.G. Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of filamentous fungi // Nat. Biotechnol. 1998. - V. 16. - P. 839842.

25. Deroles S.C., Gardner R.C. Expression and inheritance of kanamycin resistance in a large number of transgenic petunias generated by Agrobacterium-mediated transformation // Plant Mol Biol. 1988a. - V. 11. - P.355-364.

26. De la Riva G. A., Gonzalez-Cabrera J., Vazquez-Padron R., Ayra-Pardo C. Agrobacterium tumefaciens: a natural tool for plant transformation// EJB Electronic Journal of Biotechnology. 1998. V.l, No.3. P.l-16.

27. Deroles S.C., Gardner R.C. Analysis of the T-DNA structure in a large number of transgenic petunias generated by Agrobacterium-mediated transformation // Plant Mol Biol. 1988b.- V. 11.-P. 365-377.

28. Dhingra O.D., Sinclair J.B. Basic Plant Pathology Methods // CRC Press, Inc. Boca Raton, Florida 1986.

29. Diehn S.H., Chiu W.L., De Rocher E.J., Green P.J. Premature polyadenylation at multiple sites within a Bacillus thuringiensis toxin gene-coding region // Plant Physiol. 1998. - V. 117.-№4.-P. 1433-1443.

30. Dong H., Delaney T.P., Bauer D.W. and Beer S.V. Harpin induces disease resistance in Arabidopsis through the systemic acquired resistance pathway mediated by salicylic acid and the NIM1 gene // The Plant Journal. 1999. - V. 20. - № 2. - P. 207.

31. Donnelly M.A., Steiner T.S. Two nonadjacent regions in enteroaggregative Escherichia coli flagellin are required for activation of toll-like receptor 5 // J. Biol Chem. 2002. - V. 277. -P. 40456-40461.

32. Dorokhov D.B. and Klocke E. A rapid and economic technique for RAPD analysis of plant genomes // Russian Journal of Genetics. 1997. - V. 33. - No. 4. - P. 358-365.

33. Dow J.M., Osbourn A.E., Wilson T.J.G., Daniels M.J. A locus determining pathogenicity of Xanihomonas campestris is involved in lipopolysaccharide biosynthesis // Mol. Plant-Microbe Interact. 1995. - V. 8. - P. 768-777.

34. Duclohier H. // Anion pores from magainins and related defensive peptides. Toxicology. -1994.-V. 87.-P. 175-188.

35. Erickson F.L, Holzberg S., Calderon-Urrea A., Handley V., Axtell M., Corr C., Baker B. The helicase domain of the TMV replicase proteins induces the N-mediated defence response in tobacco // Plant J. 1999. - V. 18. - № 1. - P. 67-75.

36. Erbs G., Newman M.-A. The role of lipopolysaccharides in induction of plant defence responses // Mol. Plant Pathol. 2003. - V. 4. - №. 5. - P. 421^25.

37. Felix G. and Boiler T. The highly conserved RNA-binding motif RNP-1 of bacterial cold shock proteins is recognized as an elicitor signal in tobacco // J. Biol. Chem. 2003. - V. 278. -P. 6201-6208.

38. Felix G., Duran J.D., Volko S., Boiler T. Plants have a sensitive perception system for the most conserved domain of bacterial flagellin // Plant J. 1999. - V. 18. - P. 265-276.

39. Felix G. and Meins F. Jr. Ethylene regulation of B-1,3 glucanase in tobacco // Planta. -1987.-V. 172.-P. 386-392.

40. Fields K.A., Hackstadt T. Evidence for the secretion of Chlamydia trachomatis CopN by a type III secretion mechanism//Mol. Microbiol. -2000. V. 38.-№ 5.-P. 1048-1060.

41. Finlay B.B., Falkow S. Common themes in microbial pathogenicity revisited // Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1997. - V. 61. - P. 136-169.

42. Flor H. Current status of the gene-for-gene concept // Ann. Rev. Phytopathol. 1971. - V. 9. - P. 275-296.

43. Franza T., Sauvage C., Expert D. Iron regulation and pathogenicity in Erwinia chrysanihemi 3937: role of the Fur repressor protein // Mol. Plant Microbe Int. 1999. - V. 12. - № 2. - P. 119-128.

44. Gaffney T., Friedrich L., Vernooij B., Negrotto D., Nye G., Uknes S., Ward E., Kessman H. and Ryals J. Requirement of saiicylic acid for the induction of systemic acquired resistance // Science. 1993. - V. 261. - P. 754-756.

45. Gomez-Gomez L. Plant perception systems for pathogen recognition and defence // Mol Immunol.-2004.-V. 41. -№ 11.-P. 1055-1062.

46. Gomez-Gomez L., Bauer Z., Boiler T. Both the extracellular leucine rich repeat domain and ® the kinase activity of FLS2 are required for flagellin binding and signalling in Arabidopsis II

47. Plant Cell.-2001.-V. 13.-P. 1155-1163.

48. Gomez-Gomez L., Boiler T. FLS2: an LRR receptor-like kinase involved in the perception of the bacterial elicitor flagellin in Arabidopsis //Uo\ Cell.-2000.-V. 5.-P. 1003-1011.

49. Gomez-Gomez L. and Boiler T. Flagellin perception: a paradigm for innate immunity // Trends Plant Sci. 2002. - V. 7. - Issue 6. - P. 251 -256.

50. Gómez-Gómez L., Felix G., Boiler T. A single locus determines sensitivity to bacterial ^ flagellin in Arabidopsis thaliana II Plant J. 1999. - V. 18. - №. 3. - P. 277-284.

51. Gouy M. and Gautier C. Codon usage in bacteria: correlation with gene expressivity // Nucleic Acids Res. 1982. - V. 10. - № 22. - P. 7055-7074.

52. Grant M.R., et al. Structure of the Arabidopsis RPM1 gene enabling dual specificity disease resistance // Science. 1995. - V. 269. - P. 843-846.

53. Microbiol. 2000. - V. 3. - P. 261-227.

54. Hayashi F., Smith K.D., Ozinsky A., Hawn T.R., Yi E.C., Goodlett D.R., Eng J.K., Akira S., Underhill D.M., Aderem A. The innate immune response to bacterial flagellin is mediated by Toll-like receptor 5 // Nature. 2001. - V. 410. - P. 1099-1103.

55. He S.Y., Huang H.C. and Collmer A. Pseudomonas syringae pv. syringae harpinpss: a protein that is secreted via the Hrp pathway and elicits the hypersensitive response in plants // Cell. -1993.-V. 73.-P. 1255-1266.

56. Hellens R., Mullineaux P. A guide to Agrobacterium binary Ti vectors // Trends Plant Sei. -2000. V. 5. - № 10. P. 446-451.

57. Hoch H.C., Staples R.C., Whitehead B., Comeau J., Wolf E.D. // Signalling for growth orientation and cell differentiation by surface topography in Uromyces. Science. - 1987. -V. 235.-P. 1659-1662.

58. Hoekema A., Hirsh P.R., Hooykaas P.J.J., Schilperoort R.A. A binary plant vector strategy based on separation of vir-and T-region of the Agrobacterium tumefaciens Ti-plasmid // Nature.- 1983.-V. 303.-P. 179-180.

59. Höfte M. Classes of microbial siderophores // "Iron chelation in plants and soil microorganisms" edited by L.L. Barton and B.C. Hemming. Academic Press, San Diego, Calif. 1993.-P. 3-26.

60. Holmes F.O. Inheritance of resistance to tobacco mosaic disease in tobacco // Phytopathol. -1938.-V. 28.-P. 553-561.

61. Holt B.F., Hubert D.A., Dangl J.L. Resistance gene signalling in plants complex similarities to animal innate immunity // Curr Opin Immunol. - 2003. - V. 15. - P. 20-25.

62. Horsch R.B., Fry J.E., Hoffmann N.L., Wallroth M., Eichholtz D., Rogers S.G. and Fraley R.T. A simple and general method for transferring genes into plants // Science. 1985. - V. 227.-P. 1229-1231.

63. Jennings D.B., Daub M.E., Pharr D.M. and Williamson J.D. Constitutive expression of a celery mannitol dehydrogenase in tobacco enhances resistance to the mannitol-secreting fungal pathogen Alternaría altérnala II Plant J. 2002. - No. 32. - P. 41-49.

64. Jia Y., McAdams S.A., Bryan G.T., Hershey H.P., Valent B. Direct interaction of resistance gene and avirulence gene products confers rice blast resistance // EMBO J. 2000. - V. 19. -P. 4004-4014.

65. Jones D.A., Thomas C.M., Hammond-Kosack K.E., Balint-Kurti P.J., Jones J.D.G. Isolation of the tomato Cf-9 gene for resistance to Cladosporium fulvum by transposon tagging // Science. 1994. - V. 266. - P. 789-793.

66. Joosten M.H.A.J. and De Wit P.J.G.M. The tomato-Cladosporium fulvum interaction: a versatile experimental system to study plant-pathogen interactions // Annu. Rev. Phytopathol.- 1999.-V. 37.-P. 335-367.

67. Keen N.T. Gene-for-gene complementarity in plant-pathogen interactions // Ann. Rev. Genet.- 1990. V. 24.-P. 421-440.

68. Keller H., Pamboukdjian N., Ponehet M., Poupet A., Delon R. // Pathogen-induced elicitin production in transgenic tobacco generates a hypersensitive response and nonspecific disease resistance. The Plant Cell. 1999. - V. 11. - P. 223-235.

69. Kim M.-G, da-Cunha L., McFall A., Belkhadir Y., Dangl J.L., Mackey D. Two Pseudomonas syringae type III effectors inhibit RIN4-regulated basal defense in Arabidopsis // Cell. 2005. -V. 121.-P. 749-759.

70. Klarzynski O., Plesse B., Joubert J.-M., Yvin J.-C., Kopp M., Kloareg B., Fritig B. Linear-1,3 glucans are elicitors of defense responses in tobacco // Plant Physiol. 2000. - V. 124. - P. 1027-1038.

71. Kooman-Gersmann M., Honee G., Bonnema G., De Wit P.J.G.M. A high-affinity binding site for the AVR9 peptide elicitor of Cladosporium fulvum is present on plasma membranes of tomato and other solanaceous plants // Plant Cell. 1996. - V. 8. - P. 929-938.

72. Krieg A. A taxonomic study of Bacillus thuringiensis Berliner // J. Invertebr. Pathol. 1968. -No. 12, P. 366-378.

73. Kuc J. Induced immunity to plant diseases // Bioscience. 1982. - V. 32. - P. 854-860.

74. Kuc J. Systemic plant immunization // Tagungsbericht Akad Landw Wiss DDR. 1984. V. -222.-P. 189-198.

75. Kunik T., Tzfira T., Kapulnik Y., Gafni Y., Dingwall C., Citovsky V. Genetic transformation of HeLa cells by Agrobaclerium II Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 2001. - V. 98. - P. 1871— 1876.

76. Kunze G., Zipfel C., Robatzek S., Niehaus K., Boller T., Felix G. The N terminus of bacterial elongation factor Tu elicits innate immunity in Arabidopsis plants // Plant Cell. 2004. - V. 16.-P. 3496-3507.

77. Lawton K.A., Weymann K., Friedrich L., Vernooij E., Uknes S. and Ryals J. Systemic acquired resistance in Arabidopsis requires salicylic acid but not ethylene // MOI. Plant-Microbe Interact. 1995. - V. 8. - P. 863-870.

78. Lazo G.R., Stein P.A., Ludwig R.A. A DNA transformation-competent Arabidopsis genomic library in Agrobacterium II Bio/Technology. 1991. - V. 9. - P.963-967.

79. Leeman M., Van Pelt J.A., Den Ouden F.M., Heinsbroek M., Bakker P.A.H.M., Schippers B. Induction of systemic resistance against fusarium wilt of radish by lipopolysaccharides of Pseudomonas fluorescens II Phytopathology. 1995. - V. 85. - P. 1021-1027.

80. Leptosphaeria nodorum // C.M.I. Descriptions of Pathogenic Fungi and Bacteria. London: The Eastern Press, Ltd. - 1966. - Set 9. - No. 86.

81. Li Q., Lawrence C.B., Xing H.-Y., Babbitt R.A., Bass W.T., Maiti I.B., Everett N.P. // Enhanced disease resistance conferred by expression of an antimicrobial magainin analog in transgenic tobacco. Planta. - 2001. - V. 212. - P. 653-639.

82. Lugtenberg B.J.J., Chin-A-Woeng T.F.C., Bloemberg G.V. Microbe-plant interactions: principles and mechanisms // Antonie van Leeuwenhoek. 2002. - V. 81. - P. 373-383.

83. Lynch J.M. and Whipps J.M. Substrate flow in the rhizosphere // In: Keister DL and Cregan PB (eds) The Rhizosphere and Plant Growth, Kluwer, Dordrecht. 1991. - P. 15-24.

84. Mackey D., Holt B.F., Wiig A., Dangl J.L. RIN4 interacts with Pseudomonas syringae type III effector molecules and is required for RPM1- mediated resistance in Arabidopsis II Cell. -2002.-V. 108.-P. 1-20.

85. Martin G.B., et al. Map-based cloning of a protein kinase gene confering disease resistance in tomato // Science. 1993. - V. 262. - P. 1432-1436.

86. Matthysse A.G., Yarnall H., Boles S.B., McMahan S. A region of the Agrobacterium tumefaciens chromosome containing genes required for virulence and attachment to host cells// Biochimica et Biophysica Acta. 2000.- V. 1490.- P. 208-212.

87. McGuinness D.H., Dehal P.K., Pleass R.J. Pattern recognition molecules and innate immunity to parasites//Trends Parasitol.-2003. -V. 19.-P. 312-319.

88. Medzhitov R., Janeway C. Innate immunity: the virtues of a nonclonal system of recognition // Cell. 1997. - V. 91. - P. 295-298.

89. Medzhitov R., Janeway C. Decoding the patterns of self and nonself by the innate immune system // Science. 2002. - V. 296. - P. 298-300.

90. Metraux J.-P. Systemic acquired resistance and salicylic acid: current state of knowledge // European Journal of Plant Pathology.- 2001. -V. 107.-P. 13-18.

91. Meuwly P. and Metraux J.-P. Ortho-anisic acid as internal standard for the simultaneous quantitation of salicylic acid and its putative biosynthetic precursors in cucumber leaves //Anal, biochemistry. 1993. - V. 214. - P. 500-505.

92. Miki B. Transgene expression and control // In Vitro Cell. Dev. Biol. 2002. - Plant 38. - P. 139-145.

93. Molina A., Mena M., Carbonero P., Garcia-Olmedo F. Differential expression of pathogen-responsive genes encoding two types of glycine-rich proteins in barley // Plant Mol. Biol. -1997.-V. 33.-P. 803-810.

94. Morris E.R., Walker J.C. Receptor-like protein kinases: the keys to response // Curr Opin Plant Biol. 2003. - V. 6. - P. 339-342.

95. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. - V. 15. - P. 473-497.

96. Nürnberger T. and Brunner F. Innate immunity in plants and animals: emerging parallels between the recognition of general elicitors and pathogen-associated molecular patterns // Curr Opin Plant Biol. 2002. - V. 5. - P. 1-7.

97. Nürnberger T., Brunner F., Kemmerling B., Piater L. Innate immunity in plants and animals: striking similarities and obvious differences // Immunological Reviews. 2004. - V. 198. - P. 249-266.

98. Oostendorp M., Kunz W., Dietrich B. and Staub T. Induced disease resistance in plants by chemicals // European Journal of Plant Pathology. 2001. - V. 107. - P. 19-28.

99. Ozinsky A, et al. The repertoire for pattern recognition of pathogens by the innate immune system is defined by cooperation between toll-like receptors // Proc Natl Acad Sci USA. -2000.-V. 97.-P. 13766-13771.

100. Parker J.E. Plant recognition of microbial patterns // Trends in Plant Science. 2003. - V. 8. №6.-P. 245-247.

101. Perlak F.J., Fuchs R.L., Dean D.A., McPherson S.L., Fischhoff D.A. Modification of the coding sequence enhances plant expression of insect control protein genes // Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 1991., - V. 88(8). - P. 3324-3328.

102. Pieterse C.M.J, and Van Loon L.C. Salicylic acid-independent plant defence pathways // Trends in Plant Sci. 1999. - № 4. - P. 52-58.

103. Prieto-Samsonov D.L., Vazquez-Padron R.I., Ayra-Pardo C., Gonzalez-Cabrera J. and de la Riva G.A. Bacillus thuringiensis: from biodiversity to biotechnology // Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology. 1997. - V. 19. - P. 202-219.

104. Rabea E.I., Badawy M.E.-T., Stevens C.V., Smagghe G., Steurbaut W. Chitosan as Antimicrobial Agent: Applications and Mode of Action // Biomacromolecules. 2003. - V. 4. - № 6. - P. 1457-1462.

105. Ramamoorthy V., Viswanathan R., Raguchander T., Prakasam V., Samiyappan R. Induction of systemic resistance by plant growth promoting rhizobacteria in crop plants against pests and diseases // Crop Protection. 2001. - V. 20. - P. 1-11.

106. Riely B.K., Ane J.M., Penmetsa R.V., Cook D.R. Genetic and genomic analysis in model legumes bring Nod-factor signaling to center stage // Curr Opin Plant Biol. 2004. - V. 7. — P. 408-413.

107. Roden J.A., Belt B., Ross J.B., Tachibana T., Vargas J., Mudgett M.B. A genetic screen to isolate type III effectors translocated into pepper cells during Xanthomonas infection // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2004. V. 101. - № 47. - P. 16624-16629.

108. Ronald P.C., Salmerón J.M., Carland F.M., Staskawicz B.J. The cloned avirulence gene avrPto induces disease resistance in tomato cultivars containing the Pío resistance gene // J. Bacteriol. 1992. - V. 174. - P. 1604- 1611.

109. Ross A.F. Systemic effects of local lesion formation // Beemster ABR and Dijkstra J (eds) Viruses of plants. North-Holland Publishing, Amsterdam. 1966. - P. 127-150.

110. Sachetto-Martins G., Franco L.O., de Oliveira D.E. Plant glycine-rich proteins: a family or just proteins with a common motif? // Biochimica et Biophysica Acta. 2000. - V. 1492. - P. 1-14.

111. Samatey F.A., Imada K., Nagashima S., Vonderviszt F., Kumasaka T., Yamamoto M., Namba K. Structure of the bacterial flagellar protofilament and implications for a switch for supercoiling // Nature. 2001. - V. 410. - P. 331-337.

112. Sambrook J., Fritsch E.F. and Maniatis T. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Ed., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY, 1989.

113. Sambrook J., Russell D.W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, the third edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 2001.

114. Samuel G. Some experiments on inoculating methods with plant viruses, and on local lesions // Ann. Appl. Biol. 1931. - V. 18. - P. 494-507.

115. Samuel M.A., Hall H., Krzymowska M., Drzewiecka K., Hennig J., Ellis B.E. SIPK signaling controls multiple components of harpin-induced cell death in tobacco // Plant J. 2005. - V. 42.-No3.-P. 406-416.

116. Schenk P.M., Kazan K., Wilson I., Anderson J.P., Richmond T., Somerville S.C. and Manners J.M. Coordinated plant defense responses in Arabidopsis revealed by microarray analysis // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. - V. 97. - № 21. - P. 11655-11660.

117. Sheng O.J. and Citovsky V. Agrobacterium-plant cell DNA transport: have virulence poteins will travel // Plant Cell. 1996. - V. 8. - P. 1699-1710.

118. Song W.Y., Wang G.L., Chen L.L., Kim H.S., Pi L.Y., Holsten T., Gardner J., Wang B., Zhai W.X., Zhu L.H., Fauquet C., Ronald P. A receptor kinase-like protein encoded by the rice disease resistance geneXa21 II Science. 1995. - V. 270. - P. 1804-1806.

119. Szurek B., Rossier O., Hause G., Bonas U. Type Ill-dependent translocation of the Xanthomonas AvrBs3 protein into the plant cell // Mol. Microbiol. 2002. - V. 46. - № 1. -P. 13-23.

120. Tabaeizadeh Z., Agharbaoui Z., Harrak H., Poysa V. Transgenic tomato plants expressing a Lycopersicon chilense chitinase gene demonstrate improved resistance to Verticillium dahliae race 2 // Plant Cell Reports. 1999. - V. 19. - No. 2. - P. 197 - 202.

121. Takakura Y., Inoue Y., Kuwata S., Tsutsumi F., Ishida Y. // Disease-resistant plants and method of constructing the same. US Patent Application 20040073970. - 2004. -PCT/JP01/07785.

122. Takken F.L.W., Joosten M.H.A.J. Plant resistance genes: their structure, function and evolution // Eur J Plant Pathol. 2000. - V. 106. - P. 699-713.

123. Tans-Kersten J., Huang H., Allen C. Ralstonia solanacearum needs motility for invasive virulence on tomato // J. Bacteriol. 2001. - V. 183. - P. 3597-3605.

124. Terakawa T., Takaya N., Horiuchi H., Koike M., Takagi M. A fungal chitinase gene from Rhizopus oligosporus confers antifungal activity to transgenic tobacco // Plant Cell Reports. 1997.-V. 16.-No. 7.-P. 439-443.

125. The shorter Bergey's manual of determinative bacteriology // Baltimore: The Williams and Wilkins Company, Ed. by Holt. 1980. - 495 p.

126. Thordal-Christensen H. Fresh insights into processes of nonhost resistance // Curr Opin Plant Biol. 2003. - V. 6. - № 4. - P. 351-357.

127. Tinland B.The integration of T-DNA into plant genomes // Trends Plant Sci. 1996. - V. 1. -№6.-P. 178-183.

128. Tisdale W.B., Wadkins R.F. // Phytopathology. 1931. -V. 21. - P. 641-660.

129. Ton J., Davison S., Van Loon L.C. and Pieterse C.M.J. Heritability of rhizobacteria-mediated induced systemic resistance and basal resistance in Arabidopsis // European Journal of Plant Pathology.-2001.-V. 107. P. 63-68.

130. Ton J., Jakab G., Toquin V., Flors V., Iavicoli A., Maeder M.N., Metraux J.-P., Mauch-Mani, B. Dissecting the P-aminobutyric acid-induced priming phenomenon in Arabidopsis II Plant Cell. 2005. - V. 17. - P. 987-999.

131. Topfer R., Schell J., Steinbiss H.H. Versatile cloning vectors for transient gene expression and direct gene transfer in plant cells // Nucl. Acids Res. 1988. - V. 16 (17). - P. 8725.

132. Underhill D.M., Ozinsky A. Toll-like receptors: key mediators of microbe detection // Curr Opin Immunol.-2002.-V. 14.-P. 103-110.

133. Van Aarssen R., Soetaert P., Stam M., Dockx J., Gossele V., Seurinck J., Reynaerts A., Cornelissen M. cry IA(b) transcript formation in tobacco is inefficient // Plant Mol Biol. -1995. -V. 28. No. 3. - P. 513-524.

134. Van der Biezen E.A., Jones J.D.G. Plant disease resistance proteins and the gene-for-gene concept // Trends Biochem Sci. 1998. - V. 23. - P. 454-456.

135. Van der Hoorn R.A., De Wit P.J., Joosten M.H. Balancing selection favors guarding resistance proteins // Trends Plant Sci. 2002. - V. 7. - P. 67-71.

136. Van Gijsegem F., Vasse J., Camus J.C., Marenda M. and Boucher C. Ralstonia solanacearum produces hrp-dependent pili that are required for PopA secretion but not for attachment of bacteria to plant cells // Mol. Microbiol. 2000. - V. 36. - P. 249-260.

137. Van Loon L.C. Induced resistance in plants and the role of pathogenesis-related proteins // European Journal of Plant Pathology. 1997. - V. - 103. - P. 753-765.

138. Van Loon L.C., Bakker P.A.H.M., Pieterse C.M.J. Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria // Ann. Rev. Phytopathol. 1998. - V. 36. - P. 453-483.

139. Van Loon L.C. and Van Strien E.A. The families of pathogenesis-related proteins, their activities, and comparative analysis of PR-1 type proteins // Physiological and Molecular Plant Pathology. 1999. - V. 55. - P. 85-97.

140. Van Peer R., Schippers B. Lipopolysaccharides of plant-growth promoting Pseudomonas sp. strain WCS417r induce resistance in carnation to fusarium wilt // Neth. J. Plant Pathol. -1992.-V. 98.-P. 129-139.

141. Van Wees S.C., Glazebrook J. Loss of non-host resistance of Arabidopsis NahG to Pseudomonas syringae pv. phaseolicola is due to degradation products of salicylic acid // Plant J. 2003. - V. 33. - № 4. - P. 733-742.

142. Van Wees S.C.M., Pieterse C.M.J., Trijssenaar A., Van't Westende Y.A.M., Hartog F., van Loon L.C. Differential induction of systemic resistance in Arabidopsis by biocontrol bacteria // Mol. Plant-Microbe Interact. 1997. - V. 10. - P. 716-724.

143. Vazquez-Laslop N., Lee H., Hu R., Neyfakh A.A. Molecular sieve mechanism of selective release of cytoplasmic proteins by osmotically shocked Escherichia coli II Journal of Bacteriology. -2001. -V. 183. № 8. - P. 2399-2404.

144. Viard M.-P., Martin F., Pugin A., Ricci P., and Blein J.-P. Protein phosphorylation is induced in tobacco cells by the elicitor cryptogein // Plant Physiol. 1994. - V. 104. - P. 1245-1249.

145. Whitham S., Dinesh-Kumar S.P., Choi D., Hehl R„ Corr C. and Baker B. The product of the tobacco mosaic virus resistance gene N: similarity to toll and the interleukin-1 receptor // Cell. -1994. V.-78.-P. 1101-1115.

146. Wei Z.-M. and Beer S.V. Harpin from Erwinia amylovora induces plant resistance // Acta Hortic. 1996. -V. 411. - P. 223-225.

147. Wei Z.U., Laby R.J., Zumoff C.H., Bauer D.W., He S.Y., Collmer A. and Beer S.V. Harpin, elicitor of the hypersensitive response produced by the plant pathogen Erwinia amylovora // Science. 1992. - V. 257. - P. 85-88.

148. Wei Z.-M., Qiu D., Kropp M.J. and Schading R.L. Harpin, an HR elicitor, actives both defense and growth systems in many commercially important crops // Phytopathology. — 1998.-V. 88.-P. 96.

149. Wiame I. Irreversible heat inactivation of DNasel without RNA degradation // BioTechniques. -2000.-V. 29.-P. 252-256.

150. Yamanaka K, Fang L., Inouye M. The CspA family in Escherichia coli: multiple gene duplication for stress adaptation // Molecular Microbiology. 1998. - V. 27. - № 2. - P. 247254.

151. Zehnder G.W., Murphy J.F., Sikora E.J. and Kloepper J.W. Application of rhizobacteria for induced resistance // European Journal of Plant Pathology. 2001. - V. 107. - P. 39-50.