Получение и применение моноклональных антител и рекомбинантных белков для иммунодиагностики опасных инфекций человека тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, доктор биологических наук Казачинская, Елена Ивановна

• Казачинская, Елена Ивановна
• доктор биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации доктор биологических наук Казачинская, Елена Ивановна

Список использованных сокращений.

ВВЕДЕНИЕ.

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.18

1.1. Иммунодиагностика инфекционных заболеваний.

1.2. Технология получения гибридомных клеток - продуцентов моноклональных антител (МКА).

1.3. Применение МКА для изучения и выявления патогенов разной природы.

1.4. Характеристика исследуемых вирусов и вызываемых ими заболеваний у людей, методов выявления, коллекций специфических МКА.

1.4.1. Филовирусы Марбург и Эбола.

1.4.2. Флавивирус Западного'Нила.

1.4.3. Вирус герпеса человека 5 типа (цитомегаловирус человека).

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Получение и применение моноклональных антител и рекомбинантных белков для иммунодиагностики опасных инфекций человека»

Актуальность исследования

Проблема быстрой и точной диагностики инфекционных болезней имеет чрезвычайно важное значение для современного общества. Многие инфекционные заболевания представляют угрозу для жизни и здоровья не только для конкретного индивидуума, но для всего общества. Быстрое и не контролируемое распространение инфекционных заболеваний может привести к развитию эпидемии или даже пандемии в течение весьма короткого периода времени. В последние годы вспышки короновирусной инфекции, птичьего гриппа, пандемического вируса гриппа H1N1 подтверждают крайне высокую значимость борьбы с инфекционными заболеваниями в современном мире (Кущ A.A. и др., 2008; Che X.Y. et al., 2004; He Q.et al., 2007).

Важнейшей составляющей борьбы с инфекционными заболеваниями является своевременная их диагностика. В настоящее время развиваются два основных подхода в диагностике инфекционных заболеваний. Генетическая диагностика, основанная на выявлении нуклеиновой кислоты возбудителя, и иммунодиагностика, базирующаяся на выявлении специфических антигенов и антител, являются взаимодополняющими методическими подходами. Следовательно, крайне важно развивать оба эти направления исследований. Сложность проблемы состоит в том, что в настоящее время известны тысячи опасных инфекционных заболеваний, которые могут поражать сельскохозяйственные растения, домашних животных и человека. Кроме того, постоянно возникают новые, неизвестные инфекционные заболевания. По данным Международного таксономического вирусологического комитета только в последние годы зарегистрировано несколько сотен вновь открытых вирусных агентов. Открытие каждого нового возбудителя требует разработки методов их диагностики, причем эпидемическая значимость некоторых из них требует проведения этих исследований в самые кратчайшие сроки. Проблема усложняется тем, что постоянно возникают лекарственно устойчивые варианты возбудителей, многие агенты чрезвычайно быстро изменяются. Высокая патогенность многих вирусов также чрезвычайно усложняет экспериментальные работы по созданию новых методов диагностики. Вследствие этого, необходимо постоянное развитие и совершенствование биотехнологической базы для точной и своевременной диагностики инфекционных заболеваний.

Для совершенствования иммунодиагностики инфекций используют два основных подхода. Это технологии получения моноклональных антител (МКА) и рекомбинантных антигенов. Гибридомная технология позволяет создать уникальную биотехнологическую базу в виде препаратов МКА для исследования вирусных и бактериальных патогенов, опухолевых маркеров, гормонов, цитокинов, интерлейкинов, прионов, токсинов, аллергенов.

В настоящее время МКА применяются в повседневной практике научных лабораторий, активно используются для конструирования и производства высокоспецифичных тест-систем и все шире применяются в практической медицине. Использование рекомбинантных антигенов также позволяет совершенствовать иммунодиагностику.

Важно заметить, что обе эти технологии позволяют фактически прекратить использование высокопатогенных инфекционных агентов при производстве тест систем. Другим важнейшим преимуществом данных технологий является стандартизация качества новых иммунодиагностических систем и обеспечение производства иммунодиагностических тест систем необходимыми биологическими компонентами (антителами и антигенами) в течение неопределенно длительного времени.

Высокопатогенные филовирусы Марбург и Эбола чрезвычайно опасны для человека и общества, так как могут использоваться с террористическими целями. Эпидемическая важность этих агентов основана на их способности распространяться через прямой контакт с биологическими жидкостями и воздушно-капельным путем (Пьянков О.В. и др., 1993; Луб М.Ю. и др., 1995; Johson Е. et al., 1995). В настоящее время в России нет коммерчески доступных ИФА тест-систем для быстрого выявления антител и антигенов филовирусов. Характерной особенностью филовирусных инфекций является раннее появление вирусных антигенов в тканях, выделениях и сыворотке крови инфицированных животных и заболевших людей (Кизимов Н.В. и др., 1993; Мерзликин Н.В. и др., 1995; Rowe А.К., 1999; Чепурнова Т.С. и др., 2000). Эта особенность развития заболевания делает высокоэффективными методы иммунологической диагностики, основанные на раннем выявлении вирусных антигенов в биологических жидкостях человека и животных. Препараты очищенных МКА могут служить основой ИФА тест-системы самостоятельно или как подтверждающий тест к ПЦР-диагностике (Towner J.S. et al., 2004).

Вспышка 1999 г. в Волгоградской, Астраханской областях и Краснодарском крае лихорадки Западного Нила (ЛЗН), которая считалась эндемичной для тропических и субтропических стран, привлекла внимание к проблеме диагностики этой инфекции и потребовала быстрейшей ее разработки в нашей стране (Львов Д.К. и др., 2000). Тем более, чго позднее появились сообщения о циркуляции вируса Западного Нила (ВЗН) в птицах, комарах и клещах от Белоруссии до Приморского края, в Закавказье, бассейне Каспийского моря, республиках средней Азии, в Сибири (Львов Д.К., 2000; Терновой В.А. и др., 2004; Терновой В.А. и др., 2006). ВЗН передается теплокровным (людям, лошадям, птицам) через укус комаров, клещей и москитов. В США зафиксированы случаи, когда ЛЗН развивалась у 9 реципиентов после переливания крови (Harrington Т., 2003). J13H особенно опасна для пожилых людей, у которых может развиться миокардит, менингит и менингоэнцефалит, что приводит к 10 %-ной летальности среди заболевших (Flatau Е. et al., 1981). События 2010 г. на юге России, где снова возникла большая вспышка лихорадки Западного Нила, подтвердили значимость настоящего исследования и практическое использование разработанных тест систем обеспечило необходимые условия для борьбы с этой инфекцией в России.

Цитомегаловирусная инфекция (ЦМВИ), вызываемая вирусом герпеса человека 5 типа (ВГЧ-5) - широко распространенное заболевание повсеместно во всех географических зонах, странах и социально-экономических группах (Alford С.А. et al., 1981). Главной биологической особенностью ВГЧ-5 является его пожизненное персистирование в организме человека и реактивация при снижении иммунитета. Заражение происходит разными путями: воздушно - капельным и при тесном контакте (в том числе и половом) через биологические жидкости, трансплацентарно (от матери к плоду) и интранатально во время родов при прохождении плода через инфицированные родовые пути женщины, при кормлении ребенка грудным молоком (Alford С.А. et al., 1990). Подтверждены факты инфицирования людей при трансплантации органов (почек, печени и костного мозга) (Chou S., 1986; Meijer E.et al., 2003; Razonable R.R., 2008). ВГЧ-5 вызывает генерализованную инфекцию у больных СПИД, что является причиной их гибели (Nigro G. et al., 1996). Сложность диагностики связана с проблемами персистирования этого вируса в клетках организма и необходимостью выявления вирусных антигенов именно в инфицированных клетках. В настоящее время за рубежом присутствие на мембранах периферических лейкоцитов матрикспого фосфопротеина рр65 и секреторного р72 ВГЧ-5 принято считать одним из основных критериев острой ЦМВИ. Получение отечественной панели МКА, специфичных к белку рр65, помогло бы улучшить ситуацию с диагностированием острой ЦМВИ у инфицированных людей. Цель и задачи исследования

Цель работы: разработка биотехнологической базы для совершенствования иммунодиагностики инфекций, вызываемых вирусами Марбург, Эбола, Западного Нила и герпесом человека 5 типа (цитомегаловирусом).

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи: 1. Получить представительные коллекции гибридом, продуцирующих моноклональные антитела (МКА), специфичные к белкам филовирусов Марбург и Эбола, вируса

Западного Нила (ВЗН) и вируса герпеса человека 5 типа (ВГЧ-5).

2. Исследовать иммунохимические свойства МКА, специфичных к структурным белкам вирусов Марбург, Эбола, ВЗН и ВГЧ-5 и оценить возможность их использования для конструирования иммунодиагностических тест систем. 3. Сконструировать рекомбинантные плазмиды, кодирующие полноразмерные гены нуклеопротеина вируса Эбола и матриксных белков УР40 вирусов Марбург и Эбола и получить полноразмерные рекомбинантные белки.

4. Исследовать антигенную структуру природных и рекомбинантных белков вирусов Марбург и Эбола с помощью панелей противовирусных поликлональных антител и гибридомных МКА с целью оценки возможности использования рекомбинантных антигенов для разработки иммунодиагностических тест систем.

5. С использованием полученных МКА и рекомбинантных антигенов сконструировать новое поколение иммуноферментных систем для детекции антигенов вирусов Эбола и Марбург в биологических пробах.

6. С использованием МКА, специфичных к белку Е вируса Западного Нила, сконструировать лабораторный вариант экспериментальной ИФА тест-системы для выявления вирусного антигена, оценить ее специфичность и чувствительность. Организовать коммерческий выпуск новой тест системы на основе МКА для широкого апробирования на практике.

7. Исследовать возможность использования МКА, специфичных к рекомбинантному белку рр65 ВГЧ-5, для диагностики острой и персистентной цитомегаловирусной инфекции на культурах клеток.

Научная новизна

Получены оригинальные и представительные коллекции гибридных клеток -продуцентов МКА и панели МКА, специфичных к антигенам вирусов Марбург, Эбола, ВЗН и ВГЧ-5.

Исследование иммунохимических свойств панели гибридомных МКА показало, что они могут быть использованы для научных исследований и для конструирования нового поколения иммунодиагностических тест систем на основе этих антител.

Получены оригинальные рекомбинантные белки гликопротеин (СР), нуклеопротеин (ЫР), УР40, УР35, УР24 вируса Марбург и белки ИР, УР40, УР35 вируса Эбола. Исследование антигенных свойств рекомбинантных белков показало иммунохимическую полноценность препаратов, что позволяет использовать их при конструировании диагностических тест систем на филовирусные инфекции.

В результате проведенных исследований, с использованием оригинальных препаратов МКА, а также рекомбинантных антигенов филовирусов, сконструированы новые

11 диагностические лабораторные тест системы для выявления антигенов вирусов Марбург и Эбола. Новизна и приоритет данной разработки подтверждена получением четырех патентов РФ (патенты № 2395575, № 2393220, № 2395576, № 2395577)

Исследование панели вируснейтрализующих МКА, специфичных к белку Е вируса Западного Нила (LEIV-VLG99-27889-human), позволило обнаружить два вида MICA (9Е2 и 5Н6), пригодных для конструирования иммуноферментной тест системы для детекции антигена в биологических пробах.

Показана способность различных видов МКА, полученных к рекомбинантному белку рр65 ВГЧ-5, выявлять в иммуноблоттинге вирусный белок рр65. Иммуноцитохимическим методом показана способность МКА, специфичных к рекомбинантному белку рр65, выявлять вирусный белок рр65 в монослое клеток Vero, персистентно инфицированных цитомегаловирусом человека.

Практическая ценность работы

С использованием созданных панелей моноклональных антител, специфичных к различным вирусным патогенам, в том числе высокопатогенным вирусам Марбург и Эбола, и препаратов рекомбинантных белков созданы новые лабораторные образцы иммунодиагностических наборов. Это наборы для выявления белка VP40 вируса Марбург методом двухцентрового ИФА с использованием двух типов неконкурирующих МКА (7D8 и

7Н10); наборы для выявления белка VP35 вируса Марбург при помощи иммуноферментного анализа на основе одного типа МКА 3F9; наборы для выявления нуклеопротеина вируса

Эбола методом двухцентрового ИФА с использованием двух типов оригинальных МКА 1В2 мышиного происхождения) и 7В11 (крысиного происхождения); наборы для выявления белка VP40 вируса Эбола на основе двухцентрового ИФА и двух типов оригинальных МКА

4А2 и ICI). Каждая из четырех разработанных конструкций тест-системы защищена патентом РФ (№ 2393220, № 2395575, № 2395576, № 2395577).

Сконструированы рекомбинантные плазмиды, кодирующие полноразмерные гены нуклеопротеина вируса Эбола и матриксных белков VP40 вирусов Марбург и Эбола, что позволяет нарабатывать соответствующие рекомбинантные антигены филовирусов для практического использования, конструирования различных типов иммунобиологических препаратов. Данные белки могут также использоваться для конструирования вакцин, исследования иммунологии и патогенеза филовирусных инфекций. Важно отметить, что предложенный биотехнологический подход позволяет получать антигены филовирусов без использования лаборатории BSL-4 уровня и высокопатогенных вирусов Марбург и Эбола.

Практическая ценность оригинальной коллекции из 24 мышиных гибридом, секретирующих МКА к вирусу Западного Нила (российский штамм LEIV-VLG99-27889

12 human) состоит в том, что МКА, секретируемые этими клетками - продуцентами, обладают вируснейтрализующей активностью в отношении различных штаммов ВЗН. Это позволяет использовать данные МКА для конструирования нового поколения иммунотерапевтических препаратов для лечения лихорадки Западного Нила. Это возможность была продемонстрирована в создании нового метода генной терапии лихорадки Западного Нила с использованием гена МКА 9Е2 (Pereboev A.V. et al., 2007).

Разработанная лабораторная тест-система ИФА в формате "сэндвич" на основе пары МКА (9Е2 и 5Н6) позволила создать экспериментальную тест-систему ИФА "ВектоНил-антиген" для выявления антигена вируса Западного Нила в полевых материалах (ЗАО "Вектор-Бест" совместно с ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор") и организовать ее производство. Данная система успешно производится более четырех лет и используется в практическом здравоохранении. В настоящее время на основе этих же МКА 9Е2, используемых в качестве "подложки" для антигена, ЗАО "Вектор-Бест" также выпускает тест-систему ИФА для выявления специфических антител класса IgG против вируса Западного Нила ("ВектоНил-IgG") и тест-систему ИФА для определения индекса авидности антител класса IgG, специфичных к вирусу Западного Нила (ВектоНил-^С-авидность").

Получены 11 оригинальных мышиных гибридных клеточных линий, продуцирующих МКА, специфичные к рекомбинантному белку рр65 ВГЧ-5. Очищенные МКА, специфичные к рекомбинантному белку рр65 ВГЧ-5, были успешно использованы для выявления вирусного белка рр65 - маркера острой цитомегаловирусной инфекции. Штамм гибридных клеток животного Mus Musculus L. 5F10, используемый для получения высокоспецифичных МКА 5F10, защищен патентом РФ № 2393219. Одноименные МКА могут стать основой для совершенствования диагностики этой инфекции у человека, что чрезвычайно важно в практическом здравоохранении.

Получение панелей МКА и набора рекомбинантных антигенов в рамках настоящей работы позволяет говорить, что удалось создать биотехнологическую базу для совершенствования иммунодиагностики инфекций, вызываемых вирусами Марбург, Эбола, Западного Нила и герпесом человека 5 типа. Помимо использования этих иммунобиологических препаратов для разработки нового поколения иммунодиагностических тест систем возможно их использование для исследовательских целей. Важно подчеркнуть, что рекомбинантные антигены и МКА представляют собой стандартные препараты, которые могут храниться очень долго. Плазмиды и гибридные клетки могут обеспечивать наработку этих биореагентов в необходимых количествах на протяжении неограниченного времени без использования патогенных и высокопатогенных вирусных агентов.

В представляемой диссертационной работе на защиту выносятся следующие положения:

1. Панель МКА (мышиного происхождения), специфичных к внутренним структурным белкам вириона вируса Марбург (штамм Popp) - к кофактору вирусной полимеразы (белку VP35) - 3 вида, к нуклеопротеину - 3 вида, к матриксному белку VP40 - 9 видов, для одного вида МКА линейные эпитопы не определяются.

2. Панель МКА (мышиного происхождения), специфичных к внутренним структурным белкам вириона вируса Эбола-Заир (штамм Mayinga) - к белку VP35 (2 вида), к нуклеопротеину (9 видов мышиного происхождения и 1 вид крысиного происхождения), остальные 9 видов МКА специфичны к матриксному белку VP40.

3. Рекомбинантные белки GP, VP24, NP, VP40 и VP35 филовирусов, полученные в экспрессионной системе E.coli, сохранили антигенную структуру, характерную для аналогичных вирусных белков, и в связи с этим, они могут быть успешно использованы для иммунодиагностики филовирусных инфекций.

4 Способ выявления белка VP40 вируса Марбург методом двухцентрового ИФА с использованием двух типов неконкурирующих МКА 7D8 и 7Н10.

5. Способ выявления белка VP35 вируса Марбург при помощи иммуноферментного анализа на основе одного типа МКА 3F9, которые можно одновременно использовать как в качестве "захватывающих антиген", так и в качестве "индикаторных" антител.

6. Способ выявления нуклеопротеина вируса Эбола методом двухцентрового ИФА с использованием двух типов оригинальных МКА 1В2 (мышиного происхождения) и 7В11 (крысиного происхождения).

7. Метод выявления белка VP40 вируса Эбола на основе двухцентрового ИФА и двух типов оригинальных МКА 4А2 и ICI.

8. Панель из 15-ти МКА (мышиного происхождения), специфичных к российскому штамму вируса Западного Нила (штамм LEIV-VLG99-27889-human). Гибридную клеточную линию 9Е2 и одноименные высокоактивные вируснейтрализующие МКА широкой специфичности против семи штаммов ВЗН. Возможность использования МКА 9Е2 и 5Н6 в тест системе "ВектоНил-антиген".

9. Коллекция из 11 -ти оригинальных мышиных гибридных клеточных линий, продуцирующих МКА, специфичные к рекомбинантному белку рр65 вируса герпеса человека 5 типа. МКА, специфичные к рекомбинантному белку рр65, способны высокоэффективно выявлять вирусный матриксный белок рр65 - маркер острой цитомегаловирусной инфекции человека в различных типах клеток (в чувствительной L68 и персистентно инфекцированных Vero и RH).

Конкретное участие автора в получении результатов

Экспериментальные данные, представленные в диссертации, получены лично диссертантом и в соавторстве с д.б.н. И.А. Разумовым, д.б.н. В.Б. Локтевым, к.б.н. A.B. Качко, н.с. A.B. Ивановой, к.б.н. E.J1. Субботиной, к.б.н. A.B. Перебоевым, д.б.н. A.A. Чепурновым, к.б.н. Е.Ф. Белановым, к.б.н. В.А. Терновым, н.с. A.B. Сорокиным, д.б.н. C.B.

Нетесовым, д.м.н. [Суслопаровым М.А.|, зав. лаб. ЗАО "Вектор-Бест" В.В. Распопиным. Апробация работы

Махериалы диссертационной работы были представлены на следующих конференциях: Xlh International Congress of Virology, Jerusalem 1996 г.; Russian-german colloquium on filoviruses: the modern state of problem. Koltsovo, Novosibirsk region, Russia. 1997 г.; 6th Biological Medical Defence Conference. München 1999 г.; Inauguration of the Swedish Containment Laboratories. Stocgolm 2000 г.; IX Международная конференция: новые информационные технологии в медицине и экологии. Крым, Гурзуф 2001 г.; VI Международная конференция РФФИ. Результаты фундаментальных исследований для инвестиций. Московская обл., г. Пущино 2001 г.; Digest reports of the IV th ISTC scientific advisory committee seminar on "Basic science in ISTC activities", Novosibirsk, 2001 г.; II Научная конференция с международным участием. Проблемы инфекционной патологии в регионах Сибири, Дальнего Востока и Крайнего Севера. Новосибирск, 2002 г.; Всероссийская научно-практическая конференция "Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке", Томск, 2006 г.; XIV International Congress of Virology, 2008 г., Istanbul; Научная конференция "Медицинская геномика и протеомика", 2009 г., Новосибирск; Международная научно-практическая конференция "Современные проблемы инфекционной патологии человека", г. Минск, Республика Беларусь, 2009 г. Связь выполненной работы с планами научных исследований

Работа выполнена в ГНЦ ВБ "Вектор" за период 1998-2010 гг. в рамках научных тем, выполняемых по Программе Центра по приоритетному направлению "Изучение структурно функциональной организации и молекулярной эволюции геномов особо опасных вирусов человека и животных". Исследования были поддержаны государственной программой

Новейшие методы биоинженерии", "Исследования и разработки по приоритетным направлениям науки и техники, подраздел: Защита от патогенов", контракт № 43.035.11.1529 рук. д.б.н. A.A. Чепурнов); проектом по государственному контракту № 02.512.11.2004

Биосенсоры на базе полимерных микрочастиц - жидких микрочипов для иммунодетекции инфекционных заболеваний, в том числе и особо опасных вирусных инфекций" (рук. зав. лаб. ИХКГ СО РАН д.ф.-м.н., профессор В.П. Мальцев); проектом Международного научнотехнического центра (МНТЦ) ISNC № 2087 (рук. д.б.н., профессор В.Б. Локтев); проектами

15

Российского фонда фундаментальных исследований (РФФИ) № 97-04-49697-а (рук. д.б.н. И.А. Разумов), № 98-04-49439-а (рук. д.б.н., профессор C.B. Нетесов), № 01-04-49877-а (рук. к.б.н. A.B. Качко), № 01-04-48972-а (рук. д.б.н. И.А. Разумов); №09-0400450 а (рук. д.б.н., профессор В.Б. Локтев); грантом Президента Российской Федерации для государственной поддержки ведущих научных школ "Научная школа НШ-387.2008.4" (рук. д.б.н., профессор C.B. Нетесов); контрактами, выполняемыми в 2009 г. по заказу ФГУЗ РосНИИПЧИ "Микроб" и ФГУН ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии в рамках ФЦП "Национальная система химической и биологической безопасности Российской Федерации (2009-2013 гг.): № 6/ф/09 "Создание научно-технической основы для разработки новых методических и инструментальных подходов к индикации возбудителей особо опасных инфекций, с помощью высокочувствительных биосенсоров" (рук. к.б.н. А.Г1. Агафонов); № 127-Д/1 "Разработка методов получения антигенов и антител для использования в микроэррей технологии (рук. д.б.н., профессор В.Б. Локтев). Публикации

По материалам диссертации опубликовано 13 статей (в реферируемых журналах, входящих в список ВАК), 20 тезисов, получено 7 патентов РФ на изобретение. Структура работы

Диссертация состоит из введения, главы литературного обзора, главы материалы и методы, 3-х глав результатов собственных исследований и их обсуждения, заключения, выводов и приложений. Работа изложена на 338 стр., включая 28 таблиц и 53 рисунка. Список литературы состоит из 753 источников, включая 132 отечественных работ. Благодарности

Заключение диссертации по теме «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», Казачинская, Елена Ивановна

выводы

1. Создана оригинальная панель моноклональных антител (МКА), специфичных к вирусу Марбург (штамм Popp). Получены очищенные препараты, специфичные к внутренним структурным белкам вириона - к кофактору вирусной полимеразы (белку VP35) - 3 вида, к нуклеопротеину - 3 вида, к матриксному белку VP40 - 9 видов, для одного вида МКА линейные эпитопы не определяются.

2. Создана оригинальная панель МКА, специфичных к вирусу Эбола-Заир (штамм Mayinga). Получены очищенные препараты, специфичные к белку VP35 (2 вида), к нуклеопротеину (10 видов), к матриксному белку VP40 - 9 видов.

3. Показано, что рекомбинантные белки GP, VP24, NP, VP40 и VP35 филовирусов сохранили антигенную структуру, характерную для аналогичных вирусных белков, и в связи с этим, они могут быть успешно использованы для иммунодиагностики филовирусных инфекций.

4. Установлено, что использование комбинации рекомбинантных белков GP, NP, VP35 и VP40 в качестве антигена повышает чувствительность твердофазного иммуноферментного анализа по сравнению с применением в качестве антигена инактивированного очищенного вируса Марбург.

5. Показано, что полученные МКА и рекомбинантные белки NP, VP40 и VP35 могут быть успешно использованы для совершенствования иммунодиагностики заболеваний, вызываемых вирусами Марбург и Эбола.

Это позволило:

- предложить новый способ выявления белка VP40 вируса Марбург методом двухцентрового ИФА с использованием двух типов неконкурирующих МКА 7D8 и 7Н10.

- разработать новый способ выявления белка VP35 вируса Марбург при помощи иммуноферментного анализа на основе одного типа МКА 3F9, которые можно одновременно использовать как в качестве "захватывающих антиген", так и в качестве "индикаторных" антител.

- создать оригинальный способ выявления нуклеопротеина вируса Эбола методом двухцентрового ИФА с использованием двух типов МКА 1В2 (мышиного происхождения) и 7В11 (крысиного происхождения).

- разработать метод выявления белка VP40 вируса Эбола на основе двухцентрового ИФА и двух типов оригинальных МКА 4А2 и 1С1.

6. Создана оригинальная панель из 15-ти очищенных препаратов МКА, специфичных к российскому штамму вируса Западного Нила (штамм LEIV-YLG99-27889-human).

237

Сконструирована лабораторная тест-система ИФА на основе двух типов МКА 9Е2 и 5Н6, для выявления антигена вируса Западного Нила. Гибридная клеточная линия 9Е2, продуцирующая одноименные высокоактивные вируснейтрализующие МКА широкой специфичности (против семи штаммов ВЗН), защищена патентом РФ № 2265658.

7. На основе лабораторной тест-системы ИФА совместно ЗАО "Вектор-Бест" разработана и начато производство экспериментальной тест-системы "ВектоНил-антиген". Показано ее высокая эффективность для эпидемиологического исследования циркуляции вируса Западного Нила в природных очагах этой инфекции.

8. Создана оригинальная коллекция из 11 мышиных гибридных клеточных линий, продуцирующих МКА, специфичные к рекомбинантному белку рр65 вируса герпеса человека 5 типа (цитомегаловируса человека). Показана способность МКА, специфичных к рекомбинантному белку рр65, высокоэффективно выявлять вирусный матриксный белок рр65 - маркер острой цитомегаловирусной инфекции человека в различных типах клеток.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Целью настоящего изучения было исследование иммунохимических свойств рекомбинантных филовирусных белков и моноклональных антител, специфичных к особо опасным вирусам Марбург и Эбола, природно-очаговому вирусу Западного Нила и цитомегаловирусу (имеющему отношение к репродуктивному здоровью человека), на возможность конструирования на их основе диагностических тест-систем для выявления вирусных антигенов.

Исследование антигенного состава любого патогена необходимо для разработки дифференцирующей диагностики на специфические маркеры, а также для разработки эффективных вакцин и противовирусных препаратов. В связи с этим, на первом этапе работы методами ТИФА и иммуноблоттинга с помощью поликлональных антител человека, переболевшего лихорадкой Марбург и животных, иммунизированных инактивированными и инфекционными препаратами вирусов Марбург и Эбола были выявлены иммунодоминантные белки вирусов Марбург и Эбола, это внутренние структурные белки вириона - нуклеопротеин (ЫР), матриксный УР40 и кофактор вирусной полимеразы (белок УР35). Было обнаружено, что поликлональные антитела инфицированных и иммунизированных животных, а так же антитела реконвалесцента имеют перекрестную активность с гетерологичными антигенами в ТИФА. Возможно, что при инактивации вирионов открылись гомологичные аминокислотные последовательности филовирусных белков. Поэтому для исключения неспецифического взаимодействия противовирусных антител с гетерологичными вирусными белками далее в исследовании мы использовали аффинно-очищенные рекомбинантные филовирусные белки, полученные в результате экспрессии полноразмерных генов в клетках Е.соИ.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Казачинская, Елена Ивановна, 2010 год

1. Агафонов А.П. Изучение иммуногенных и протективных свойств препаратов вируса Марбург. / Автореф. дисс. .канд. биол. наук. Кольцово. Кольцово, 1996 - 21 с.

2. Агафонова O.A., Вязунов С.А., Жуков В.А. и др. О взаимосвязи уровня специфических антител с исходом заболевания у обезьян Cercopithecus aethiops при экспериментальной инфекции вирусом Марбург. // Вопросы вирусол. 1997. - № 3. - С. 109111.

3. Андерсон Р., Мэй Р. Инфекционные болезни человека. Динамика и контроль. // М.: Мир, 2004. С. 779.

4. Алексеева Л.П., Сальникова О.И., Мазрухо Б.Л. и др. Моноклональные антитела к липополисахариду Vibrio cholera 0139. // Биотехнология. 2002. - № 2. - С. 79-84.

5. Алямовская Г.А., Кешищан Е.С., Адуева С.М. и др. Выявление прямых маркеров цитомегаловируса и противовирусных антител у детей раннего возраста. // Вопросы вирусол.- 2005. -№ 1. С. 14-19.

6. Ашмарин И.П., Воробьев A.A. Статистические методы в микробиологических исследованиях. // Ленинград: Государственное издательство медицинской литературы, 1962.- 180 с.

7. Бажутин Н.Б., Беланов Е.Ф., Спиридонов В.А. и др. Влияние способов экспериментального заражения вирусом Марбург на особенности протекания болезни у зеленых мартышек. // Вопросы вирусол. № 3. - 1992. - С. 153-156.

8. Баринский И.Ф., Шубладзе А.К, Каспаров A.A., Гребешок В.Н. Герпес. Этиология, диагностика, лечение. // М.: Медицина, 1986. 267 с.

9. Берзовски Д., Берковер Д. Взаимодействие антиген антитело. // Иммунология (под ред У.Пол). М: Мир, 1989. - Том 3. - С. 5-89.

10. Борисевич И.В., Михайлов В.В., Краснянский Б.П. и др. Разработка и изучение свойств иммуноглобулинов против лихорадки Эбола. // Вопросы вирусол. 1996. - № 6. - С. 270-273.

11. Борисевич И.В., Потрываева Н.В., Мельников С.А. и др. Получение иммуноглобулина к вирусу Марбург на основе сыворотки крови лошадей. // Вопросы вирус. 2008.- №1. - С. 39-41.

12. Букреев A.A., Скрипченко A.A., Гусев Ю.М. и др. Перспективный метод препаративной наработки и очистки вируса Марбург. // Вопросы вирусол. 1995. - № 4. - С. 161-165.

13. Вершигора А.Е. Общая иммунология. // Киев: 1990. 735 с.

14. Виноград И.А., Белецкая Г.В., Чумаченко С.С. Экологические аспекты изучения арбовирусов в Украинской ССР. // Экология вирусов и очаги арбовирусных инфекций. Москва, 1989.-С. 21-27.

15. Виноградская Г.Р., Новикова Л.Н., Башмакова М.А. Оптимизация ПЦР для обнаружения цитомегаловируса в моче новорожденных. // Вопросы вирусол. 1994. - № 4. -С. 171-174.

16. Владыко A.C., Чепурнов A.A. Быстрова С.И. и др. Выявление антигена вируса Марбург методом твердофазного иммуноферментного анализа. // Вопросы вирусол. 1991. -№ 5. - С. 419-421.

17. Врублевская В.В., Мусиенко B.C., Скарга Ю.Ю., Моренков О.С. Иммунологическая характеристика гликопротеина D вируса болезни Ауески. // Вопросы вирусол. 2007. - № 3. -С. 33-37.

18. Гражданцева A.A., Кочнева Г.Н., Сиволобова Г.Ф. и др. Исследование сывороток больных сифилисом методом иммуноферментного анализа с использованием рекомбинантных антигенов. // Иммунология. 1998. - № 4. - С. 20-23.

19. Гришаев М.П. Цитомегаловирусная инфекция и ее лабораторная диагностика. // Новости "Вектор-Бест" № 2, 1996. http://www;vector-best.ru/publ/index.php?page=nvb

20. Гончар Н.И., Пшеничнов В.А., Походяев В.А. и др. Чувствительность к вирусу Марбург различных экспериментальных животных. // Вопросы вирусол. 1991. - № 5. - С. 435-437.

21. Громашевский B.JL, Скворцова Т.М., Никифоров Л.П., Курбанов М. Изоляция некоторых арбовирусов на территории Туркмении и Азербайджана. // Экология вирусов. Москва, 1975. Выпуск 3. С. 91-94.

22. Дадаева A.A., Сизикова Л.П., Жуков В.А., Чепурнов A.A. Динамика иммунологических показателей у морских свинок при введении различных препаратов вируса Эбола. // Вопросы вирусол. 1998, - № 4. - С.163-169.

23. Дебабов Д.В. Гетерологичная секреция в системе Escherichia coli. II Мол. Биология. -1994.-№3.-С. 496-505.

24. Деев С.М., Поляновский О.Л. Моноклональные антитела для диагностики и терапии. // Биотехнология. № 2. - 2008. - С. 3-13.

25. Доклад ВОЗ № 784. Применение синтетических антигенов для диагностики инфекционных болезней. //-Женева, 1991. Том. 1. - 235 с.

26. Дрыга С.А, Святченко В.А., Микрюкова Т.П. и др. Получение и исследование рекомбинантных штаммов вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей, экспрессирующих ген preS2-S гепатита В. // Вопросы вирусол. 1996. - № 3. - С. 100-102.

27. Егоров A.M., Осипов А.П., Дзантиев Б.Б. Теория и практика иммуноферментного анализа. // М.: Высшая школа, 1991. - 287 с.

28. Захарова Т.Л.,Заднова С.П., Ливанова Л.Ф. и др. Создание многокомпонентной диагностической иммуноферментной тест-системы для оценки экспрессии основных генов вирулентности и иммуногенности у холерных вибрионов. // Биотехнология. 2007. - № 2 - С. 88-96.

29. Злобин В.И. Клещевой энцефалит в Российской Федерации: современное состояние проблемы и стратегия профилактики. // Вопросы вирусол. 2005. - № 3. - С. 26-32.

30. Ивченко С.Н., Суслопаров И.М., Масычева В.И. и др. Конструирование жидкой панели сывороток, содержащих и не содержащих антитела класса IgG к цитомегаловирусу человека. // Вестник Российской академии медицинских наук. 2004. -№ 8. - С. 37-39.

31. Ивченко С.Н., Суслопаров И.М., Масычева В.И. и др. Разработка иммуноферментной тест-системы для определения антител в сыворотке крови к цитомегаловирусу человека. // Сибирский медицинский журнал. 2005. - № 2. - Том 20 - С. 53-55.

32. Ивченко С.Н. Разработка стандартной панели сывороток, содержащих и не содержащих IgG к цитомегаловирусу человека. // Автореф. дисс. .канд. биол. наук. Кольцово. 2008. -24 с.

33. Игнатьев Г.М., Агафонов А.П., Стрельцова М.А. и др. Сравнительное изучение некоторых иммунологических показателей при введении инактивированного вируса Марбург морским свинкам. // Вопросы вирусол. 1991. - №2. - С. 421-423.

34. Игнатьев Г.М., Стрельцова М.А., Кашенцева ЕА. Индукция вирусом Марбург медиаторов иммунитета в культуре мононуклеаров человека. // Вопросы вирусол. 1998. - № 4. - С. 169-173.

35. Казачинская Е.И., Перебоев A.B., Чепурнов A.A. и др. Моноклональные антитела к вирусу Эбола: получение, характеризация и изучение перекрестной реактивности с вирусом Марбург. // Вопросы вирусол. 2000. - № 3. - С. 40-44.

36. Казачинская Е.И. Получение и применение моноклональных антител для изучения белков вирусов Марбург и Эбола. // Автореф. дисс. канд. наук. Кольцово. 2002. - 26 с.

37. Казачинская Е.И., Терновой В.А., Рудзевич Т.Н. и др. Исследование антигенной структуры белка VP35 вируса Эбола. // Вопросы вирусол. 2001. - № 5. - С. 25-31.

38. Кандрушина М.П., Гришаев М.П., Загоруйко Т.Ю. Новая иммуноферментная тест-система для дифференциальной диагностики генитального герпеса. // Новости "Вектор-Бест" № 4(34). Декабрь 2004. http://www.vector-best.ru/publ/index.php?page=nvb

39. Канев А.Н., Бондарчук В.Б., Матвеев Л.Э. и др. Получение и отбор моноклональных антител для выявления поверхностного антигена вируса гепатита В в сыворотках крови. // Вопросы вирусол. 2002. - № 1. - С. 15-21.

40. Качко A.B., Чеусова Т.Б., Сорокин A.B., Казачинская Е.И. и др. Сравнительное изучение морфологии и антигенных свойств рекомбинантных аналогов нуклеопротеина вируса Марбург. // Мол. Биология. 2001. - № 3 - С. 492-499.

41. Кизимов Н.В. Луб М.Ю., Черный Н.Б. и др. Использование иммуноферментного анализа (ИФА) для обнаружения антигена вируса Марбург. // Межведомственная конференция "Изучение и профилактика особо опасных вирусных инфекций". Кольцово, 7-8 апреля 1993. С. 54

42. Кистенева Л.Б., Мартынов К.А., Хижнякова Т.М. и др. Цитомегаловирусная инфекция у беременных. Диагностика, трактовка результатов обследования. // Вопросы вирусол. -2003,-№6.-С. 4-8.

43. Коровина Н.А, Заплатников А.Л., Чебуркин A.B. Пособие для врачей. // М: Медицина, 1999. С. 27-32.

44. Краснянский В.П., Михайлов В.В., Борисевич И.В. и др. Получение гипериммунной лошадиной сыворотки против вируса Эбола. // Вопросы вирусол. 1994. - № 2. - С. 91-92.

45. Краснова Е.М., Львов Д.К., Жуков А.Н. и др. Эпидемиологический мониторинг лихорадки Западного Нила в Волгоградской области. // Вопросы вирусол. 2001. - № 4 - С. 27-31.

46. Костюков М.А., Гордеева З.Е., Бухачев В.П. и др. Rana ridibunda, один из хозяев кровососущих комаров в Таджикистане, как резервуар вируса Западного Нила. // Мед. паразитол. 1985. - № 3 - С. 49-53.

47. Котелкин А.Т. Поиск и изучение иммунологических маркеров Opisthorchis Felineus и исследование возможности их использования для иммунодиагностики опистархоза. / Автореф. дисс. канд. биол. наук. Кольцово. -2000. 20 с.

48. Котов А.Н. / Культивирование клеток на микроносителях в качестве субстрата для накопления вируса Эбола. / Автореф. дисс.канд.биол.наук. Кольцово. 1996. - 30 с.

49. Кущ A.A., Климов P.P., Масалова О.В. и др. Получение и свойства моноклональных антител к высокопатогенному штамму вируса гриппа птиц A(H5N1), выделенного на территории Российской Федерации. // Вопросы вирусол. 2008. - № 5. - С. 9-14.

50. Кэтти Д. Антитела. Методы: в 2-х томах. / М.: Мир, 1991. 287 с.

51. Ларичев В.Ф., Манзенюк И.Н., Найденова Е.В. и др. ИФА и ПЦР- тест-системы, предназначенные для детекции вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки. // Вопросы вирусол. 2007. - № 4 - С. 43-46.

52. Лебеденко E.H., Баландин Т.Г., Эдельвейс Э.Ф. и др. Визуализация раковых клеток с помощью флуоресцентного белка EGFP-барназа. // ДАН (Биохимия, Биофизика, Молекулярная биология). 2007. - Т. 414. - С. 408-411.

53. Леннет Э., Н.Шмидт. Лабораторная диагностика вирусных и риккетсиозных заболеваний. // М.: Медицина, 1974. - С. 44 - 95.

54. Локтев В.Б. Изучение антигенной структуры альфавирусов при помощи моноклональных антител. / Автореф. дисс. доктора биол. наук. 1993. - 60 с.

55. Луб М.Ю., Сергеев А.Н., Пьянкова О.Г.и др. Клинико-вирусологические характеристики заболевания морских свинок, аэрогенно инфицированных вирусом Марбург. //Вопросы вирусол. 1995. -№ 3. - С. 119-121.

56. Луб М.Ю., Сергеев А.Н., Пьянков О.В. и др. Некоторые патогенетические характеристики заболевания обезьян, аэрогенно инфицированных вирусом Марбург. // Вопросы вирусол. 1995. -№ 4. - С. 158-161.

57. Львов Д.К., Клименко С.М., Гайдамович С.Я. Арбовирусы и арбовирусные инфекции. // М.: Медицина, 1989.-335 с.

58. Львов Д.К. Лихорадка Западного Нила. // Вопросы вирусол. 2000. - № 2. - С. 4-9.

59. Ляпина О. В., Громашевский В.Л., Прилипов А.Г. Организация генома вируса Карши (штамм LEIV-2247 UZ) и его филогенетические взаимоотношения с представителями рода Flavivirus. // Вопросы вирусол. 2006. - № 4. - С. 35-39.

60. Макарова Н.Е., Кущ A.A., Иванова Л.А. и др. Получение моноклональных антител к сверхранним белкам цитомегаловируса человека и их применение для выявления инфицированных клеток. // Вопросы вирусол. 1996. - № 1. - С. 28-32.

61. Макарова Н.Е. Получение моноклональных антител к цитомегаловирусу человека и их применение для изучения цитомегаловирусной инфекции. / Автореф. дисс. канд. наук. -Москва, 1995. 25 с.

62. Маренникова С.С., Жукова O.A., Нагиева Ф.Г. и др. Разработка и применение тест-систнмы ИФА для выявления и видовой идентификациивируса оспы обезьян. // Микробиология, эпидемиология, иммунобиология. 1991. - № 2. - С. 60-63.

63. Масалова О.В., Вишневская Т.В., Шкурко Т.В. и др. Сравнительный анализ соге-белка вируса гепатита С в образцах плазмы и сыворотки крови ВГС-инфицированных доноров и больных гепатитом С. // Вопросы вирусол. 2007. - № 4. - С. 11-17.

64. Мейхи Б. Вирусология. Методы. // Москва: Мир, 1988. 344 с.

65. Мелехова Н.Ю., Иванян A.M., Осадчев В.Б. и др. Лечение цитомегаловирусной инфекции. // Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2006. - № 3. - С. 56-59.

66. Мерзликин Н.В. Иммуноферментные тест-системы для изучения лихорадки Эбола. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Кольцово. 1995. - 28 с.

67. Мерзликин Н.В., Чепурнов A.A., Истомина H.H. и др. Разработка и применение иммуноферментных тест-систем для диагностики лихорадки Эбола. // Вопросы вирусол. -1995.-№ 1,-С. 31-35.

68. Мертвецов Н.П., Беклемишев А.Б. Савич И.М. Современные подходы "к конструированию молекулярных вакцин. // Новосибирск: Наука, 1987. 208 с.

69. Мирзабеков А.Д. Биочипы в биологии и медицине XXI века. // Вестник Российской Академии Наук. 2003. - Том. 73. - С. 412-423.

70. Морозова В.В. Получение и характеризация рекомбинатных антител человека против ортопоксвирусов. // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Кольцово. 2005. - 20 с.

71. Никифоров В.В., Туровской Ю.И, Калинин П.П. и др. Случай лабораторного заражения лихорадкой Марбург. // Микробиология. 1994. - № 3. - С. 104-110.

72. Новохатский A.C. Моноклональные антитела к антигенным детерминатнам возбудителей инфекционных заболеваний. // Итоги науки и техники, 1984. Том 17. - 139 с.

73. Онищенко Г.Г., Пальцев М.А., Зверев В.В. и др. Биологическая безопасность. // М.: Медицина, 2006. 304 с.

74. Остерман A.A. Методы исследования белков и нуклеиновых кислот. Электрофорез и ультрацентрифугирование. // Москва, 1981. С. 37-64.

75. Писарев В.Б., Бутенко A.M., Петров В.А. и др. Морфологические и иммунологические изменения в ткани легких, миокарда и почек при экспериментальной лихорадке Западного Нила. // Вопросы вирусол. 2005. - № 2. - С. 37-38.

76. Писарев В.Б., Львов Д.К., Смирнов A.B. и др. Морфологические изменения в продолговатом мозге мышей при экспериментальном заражении вирусом Западного Нила (штамм 986). // Вопросы вирусол. 2007. - № 3 - С. 23-25.

77. Порываева В.А, Аборнева И.В., Бормотов Н.И. и др. Получение и характеризация панели моноклональных антител, специфичных к антигенам Toxoplasma gondii. // Мол. генетика микробиология и вирусология. 2003. - № 4. - С. 20-24.

78. Походаев В.А., Гончар Н.И., Пшеничнов В.А. Экспериментальное изучение контактной передачи вируса Марбург. // Вопросы вирусол. 1991. - № 6. - С. 506-508.

79. Покровский В.И, Пак С.Г., Брико Н.И. // Инфекционные болезни и эпидемиология. / М.: Медицина, 2002. 383 с.

80. Прайс-лист "Вектор-Бест". http://www.medinst.ru/VectorBest.htm

81. Прайс-лист МБС. http://21540.ru.all-biz.info/cat.php

82. Протопопова Е.В. Поиск и выделение клеточного рецептора для вируса клещевого энцефалита при помощи антиидиотипических антител. // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Кольцово. 1998.-26 с.

83. Плясунов И.В,, Суслопаров М.А., Суслопаров И.М. и др. Получение рекомбинантного антигена р 100 герпесвируса человека 6-го типа. // Биотехнология. 2004. - № 6 - С. 83-88.

84. Разумов И.А. Моноклональные антитела в изучении структурных белков патогенных для человека. // Автореф. дисс. доктора биол. наук. Кольцово. 2009. - 50 с.

85. Разумов И.А., Васильева М.А., Серова O.A. и др. Изучение нейтрализующей активности и перекрестного реагирования моноклональных антител к вирусу эктромелии с патогенными для человека ортопоксвирусами. // Вестник РАМ. 2004. - Том 8. - С. 19-22.

86. Разумов И.А., Беланов Е.Ф., Букреев A.A., Казачинская Е.И. Моноклональные антитела к белкам вируса Марбург и их иммунохимическая характеризация. // Вопросы вирусол. -1998. -№ 6.-С. 274-279.

87. Распопин В.В., Разумов И.А., Казачинская Е.И. и др. Индекс авидности специфических IgG в диагностике заболеваний, вызванных вирусами Западного Нила и клещевого энцефалита. // Клиническая лабораторная диагностика. 2007. - № 4. - С. 29-32.

88. Ручко C.B., Лебедев В.Н., Пащенко Ю.И. и др. Получение и изучение гибридом, продуцирующих моноклональные антитела к структурному гликопротеину вируса Марбург. // Вопросы вирусол. 2001. - № 6. - С. 21-24.

89. Рябчикова Е.И. Морфофункциональные аспекты патогенеза филовирусных геморрагических лихорадок. / Автореф. дисс. доктора биол. наук. Кольцово. 1997. - 37 с.

90. Редакционная заметка. Рекомбинантные белки, синтезированные в бактериях: применение в диагностике вирусных заболеваний. // Вопросы вирусол. 1989. - № 6 - С. 765-767.

91. Ройт И. Иммунология. // М.: Мир, 2000. 581 с.

92. Ряскина С.С., Бояркин A.B., Быстревская В.Б. Экспрессия вирусных антигенов в клетках, инфицированных эндотелиотропным или фибробластотропным штаммами цитомегаловируса человека. // Вопросы вирусол. 2006. - № 1. - С. 15-19.

93. Скрипченко A.A., Шестопалов A.M., Ярославцева О.Я. Сравнительное изучение взаимодействия вируса Марбург с макрофагами различных видов животных in vitro. // Вопросы вирусол. 1991. - № 6. - С. 503-506.

94. Скрипченко A.A., Рябчикова Е.И., Воронцова JI.A. и др. Вирус Марбург и мононуклеарные фагоциты: изучение взаимодействия. // Вопросы вирусол. 1994. - № 5. -С.214-218.

95. Сорокин A.B., Казачинская Е.И., Качко A.B. и др. Сравнительное исследование антигенных и иммуногенных свойств природного и рекомбинантного белков VP35 вируса Марбург. // Вопросы вирусол. 1999. - № 5. - С. 206-213.

96. Стрельцова М.А. Иммунобиологическая характеристика живого и инактивированного вируса Марбург. // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Кольцово. 1998. - 30 с.

97. Стрельцова М.А., Агафонов А.П., Игнатьев Г.М. Чувствительность культур клеток различных линий к вирусу Марбург. / Вопросы вирусол. 1991. - № 5. - С. 437-438.

98. Суслопаров И.М., Плясунов И.В., Сафронов П.Ф. и др. Разработка и получение рекомбинантного антигена gD вируса простого герпеса 1-го типа (HSV-1). // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2001. - № 2. - С. 34-37.

99. Суслопаров И.М., Суслопаров М.А., Жукова A.B. и др. Конструирование рекомбинантного антигена gE вируса ветряной оспы и опоясывающего лишая и исследование его иммунохимических свойств. // Биотехнология. 2004.- № 4. - С. 83-89.

100. Суслопаров М.А., Суслопаров И.М., Плясунов И.В. и др. Конструирование рекомбинантных антигенов вируса Эпштейна-Барра и исследование их иммунохимических свойств. // Биотехнология. 2004. - № 5. - С. 87-94.

101. Суслопаров М.А., Суслопаров И.М., Махова Н.М. и др. Исследование маркеров герпесвирусных инфекций при ишемической болезни сердца. // Молекулярная генетика и вирусология. 2005. - № 4 - С. 36-40.

102. Суслопаров И.М., Суслопаров М.А., Ивченко С.Н. и др. Конструирование рекомбинантного антигена рр65 цитомегаловируса человека и исследование егоиммунохимических свойств. // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. -2005. -№ 4. С. 36-40.

103. Суслопаров М.А. Конструирование рекомбинантных антигенов и выявление генеищеских маркеров для диагностики герпесвирусных инфекций человека. // Автореф. дисс. доктора биол. наук. Кольцово. 2009. - 57 с.

104. Терновой В.А., Протопопова Е.В., Сурмач С.Г и др. Генотипирование вируса Западного Нила, выявленного у птиц на юге Приморского края в течение 2002-2004 гг. // Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2006. - № 4. - С. 30-34.

105. Тишкевич О.А., Шахгильдян В.И., Морозова С.В. и др. Системный цитомегаловирусный васкулит ВИЧ-инфицированного больного. // Эпидемиол. и инфекц. болезни. 2001. - № 1 - С. 31 -36.

106. Ш.Турьянов М.Х., Царегородцев А.Д., Лобзин Ю.В. Инфекционные болезни. / М: ГЭОТАР Медицина, 1998. 319 с.

107. Федорова В.А., Самелия З.Г., Девдариани З.Л., Шведун Г.П. Моноклональные антитела для изучения антигенов белкового происхождения для серотипирования Yersinia pseudotuberculosis. // Мол. генетика, микробиология и вирусология. 2001. - № 3. - С. 28-35.

108. Федорова В.А., Адуева С.М.Б., Меджидова М.Г. Подавление цитомегаловирусной инфекции в клеточной системе аминокислотными производными фуллерена. // Вопросы вирусол. 2002. - № 1 - С. 30-34.

109. Федорова Н.Е., Меджидова М.Г., Воронцова О.Н. и др. Количественные лабораторные методы для диагностики цитомегаловирусной инфекции у недоношенных новорожденных детей. // Вопросы вирусол. 2005. - № 1 - С. 9-14.

110. Федюк Н.В. Выявление антигенов вируса иммунодефицита человека 1- и 2-го типов. // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Кольцово. 1997.-20 с.

111. Федякина И.Т., Бурцева Е.И., Исаева Е.И. и др. Получение и свойства моноклональных антител к высокопатогенному штамму вируса гриппа птиц A(H5N1), выделенного на территории Российской Федерации. // Вопросы вирусол. 2008. - № 5 - С. 9-14.

112. Фримель X. Основы иммунологии. // М.: Мир, 1986. 251 с.

113. Фримель Г. Иммунологические методы. // М.: "Медицина", 1987. 472 с.

114. Чепурнова Т.С., Писанко В.А., Бакулина Л.Ф. и др. Определение содержания вируса Марбург в крови и выделениях экспериментально инфицированных животных. // Вопросы вирусол. 2000. - № 2. - С. 18-20.

115. Чепурнов A.A., Чернухин И.В., Терновой В.А. и др. Попытка получения вакцины против лихорадки Эбола. / Вопросы вирусол. 1995. - № 6. - С. 257-260.

116. Чепурнов A.A. Федосова Н.И, Егоричева И.Н. и др. Разработка метода экспресс-выявления антител и антигена вируса Эбола. // Вопросы вирусол. 2007. - № 3. - С. 41-43.

117. Чепурнов A.A., Кудоярова-Зубовичине Н.М., Дедкова Л.М. Разработка методов получения специфических иммуноглобулинов для экстренной профилактики лихорадки Эбола и изучение их свойств. // Вестник РАМЫ. 1998. - № 4 - С. 24-29.

118. Чепурнов A.A., Мерзликин Н.В., Рябчикова Е.И. и др. Получение очищенного вируса Эбола. // Вопросы вирусол. 1994. - № 6 - С. 254-257.

119. Чепурнов A.A., Мерзликин Н.В., Чепурнова Т.С, Воробьева М.С. Получение кроличьих антисывороток к вирусу Эбола. // Вопросы вирусол. 1994. - № 6. - С. 286-288.

120. Шахгильдян В.И., Шипулина О.Ю., Каражас Н.В. и др. Лабораторная диагностика цитомегаловирусной инфекции у ВИЧ-инфицированных пациентов. // Эпидемиол. и инфекц. болезни. -2001. -№ 1. С. 36-40.

121. Шевченко Л.А., Бичуль O.K., Мишанькин Б.Н. сАМР-связывающий белок возбудителя чумы: изучение свойств с помощью полученных к нему моноклональных антител. // Биотехнология. 1996. - № 4 - С. 42-46.

122. Шипулина О.Ю., Шахгильдян В.И., Шипулин Г.А. и др. Полимеразная цепная реакция в диагностике цитомегаловирусной инфекции у ВИЧ-инфицированных пациентов. // Вопросы вирусол. 1998. - №2. - С. 91-95.

123. Шувалова Е.П., Антонов М.М., Беляева Т.В. и др. Тропические болезни. // М.: Медицина, 1999. 656 с.

124. Шувалова Е.П. Инфекционные болезни. // М.: Медицина, 1995. 543 с.

125. Эмралидзе J1.K., Ведунова C.JL, Мальцева Н.Н. и др. Иммуноферментная тест-система для выявления низкоавидных IgG-антител к цитомегаловирусу человека ("ЦМВ-диагност"). // Вопросы вирусол. 2005. - № 6. - С. 41-44.

126. Abebe М., Kumar V., Rajan S. et al. Detection of recombinant Alt al in a two-site, IgM based, sandwich ELISA opens up possibilities of developing alternative assays for the allergen. // Immunol. Methods. 2006. - Vol. 312. - № 1. - P. 111-117.

127. Acosta C., Baluja I., Amores I. et al. Monoclonal antibodies against hepatitis В s antigen: production, characterization, and use for diagnosis. // Hybridoma. 2000. - Vol. 19. - № 3. - P. 259-262.

128. Adam E., Nasz I., Lengyel A. et al. Detection of adenovirus hexon using monoclonal antibodies for antigen capture in ELISA. // Acta Microbiol Hung. 1986. - Vol. 33. № 4. - P. 317324.

129. Adams S.C., Broom A.K., Sammels L.M. et al. Glycosylation and antigenic variation among ICunjin virus isolates. // Virology. 1995. - Vol. 206. № 1. - P. 49-56.

130. Albrecht Т., Nachtigal M., St Jeor S.C. et al. Induction of cellular DNA synthesis and increased mitotic activity in Syrian hamster embryo cells abortively infected with human cytomegalovirus. // Gen Virol. 1976. - Vol. 30. - № 2. - P. 167-177.

131. Alford C.A., Pass R.F. Epidemiology of chronic congenital and perinatal infections of man. // Clin Perinatol. 1981. - Vol. 8. - № 3. - P. 397-414.

132. Alford C.A., Stagno S., Pass R.F. et al. Congenital and perinatal cytomegalovirus infections. //Rev.lnfect. Dis. 1990. -Vol. 12,- №7.-P. 745-753.

133. Alvarez C.P., Lasala F., Carrillo J. et al. C-type lectins DC-SIGN and L-SIGN mediate cellular entry by Ebola virus in cis and in trans. // Virology. 2002. - Vol. 76. - № 13. - P. 68416844.

134. Aman M., Bosio C.M., Panchal R.G. et al. Molecular mechanisms of filovirus cellular trafficking. // Microbes Infect. 2003. - Vol. 5. - № 7. - P. 639-649.

135. Anderson J.F., AndreadisT.G., Vossbrinck C.R. et al. Isolation of West Nile Virus from Mosquitoes, Crows, and a Cooper's Hawk in Connecticut. // Science. 1999. - Vol. 286 - № 5448. - P. 2331 -2333.

136. Aoyagi K., Ohue C., Iida K. et al. Development of a simple and highly sensitive enzyme immunoassay for hepatitis C virus core antigen. // Clin Microbiol. 1999. - Vol. 37. - № 6. - P. 1802-1808.

137. Arilla M.C., Gonzälez-Rioja R., Ibarrola I. et al. A sensitive monoclonal antibody-based enzyme-linked immunosorbent assay to quantify Parietaria judaica major allergens, Par j 1 and Par j 2. // Clin Exp Allergy. 2006. - Vol. 36. - № 1. - P. 87-93.

138. Baccard-Longere M., Freymuth F., Cointe D. et al. Multicenter evaluation of a rapid and convenient method for determination of cytomegalovirus immunoglobulin G avidity. // Clin Diagn Lab Immunol. 2001. - Vol. 8. - № 2. - P. 429-431.

139. Baize S., Leroy E.M., Georges-Courbot M.C. et al. Defective humoral responses and extensive intravascular apoptosis are associated with fatal outcome in Ebola virus-infected patients. //Nat Med. 1999. - Vol. 5. - № 4. - P. 423-426.

140. Baize S., Leroy E.M., Mavoungou E. et al. Apoptosis in fatal Ebola infection. Does the virus toll the bell for immune system? // Apoptosis. 2000. - Vol. 5. - № 1. - P. 5-7.

141. Bakonyi T., Ivanics E., Erdelyi K. et al. Lineage 1 and 2 strains of encephalitic West Nile virus, central Europe. // Emerg Infect Dis. 2006. - Vol. 12. -№ 4. - P. 618-623.

142. Baldanti F., Lilleri D., Gerna G. Monitoring human cytomegalovirus infection in transplant recipients. // Clin Virol. -2008. -Vol. 41. № 3. - P. 237-241.

143. Ball H.J., Mackie D.P., Finlay D. et al. An antigen capture ELISA test using monoclonal antibodies for the detection of Mycoplasma californicum in milk. // Vet Immunol Immunopathol. -1990. Vol. 25. - № 3. - P. 269-278.

144. Barbi M., Binda S., Caroppo S. et al. A wider role for congenital cytomegalovirus infection in sensorineural hearing loss. // Pediatr Infect Dis. 2003. - Vol. 22. - № 1. - P. 39-42.

145. Baron R.C., McCormick J.B., Zubeir O.A. Ebola virus disease in southern Sudan. Hospital dissemination and intrafamilial spread. //Bull WHO. 1983. - Vol. 61. - № 6. - P. 997-1003.

146. Baskerville A., Bowen E.T., Platt G.S. et al. The pathology of experimental Ebola virus infection in monkeys.//Pathol. 1978. -Vol. 125. -№3.~ P. 131-138.

147. Basler C.F., Wang X., Muhlberger E. et al. The Ebola virus VP35 protein function as a type I interferon antagonist. // Simposium on Marburg and Ebola viruses. Marburg, Germany. 2000. Abstract. P. 17.

148. Bausch D.G., Feldmann Ii., Geisbert T.W. Outbreaks of filovirus hemorrhagic fever: time to refocus on the patient. // Infect Dis. 2007. - Vol. 196. - № 2. - P. 136-141.

149. Bavari S., Bosio C.M., Wiegand E. et al. Lipid raft microdomains: a gateway for compartmentalized trafficking of Ebola and Marburg viruses. // Exp.Med. 2002. - Vol. 195. - № 5.-P. 593-602.

150. Bayer E.A., Wilchek M. The use of the avidin-biotin complex as a tool in molecular biology. // Methods Biochem.Anal. 1980. - № 26. - P. 1-45.

151. Bazin H., Malache I.M., Nisol F. et al. Rat hybridomas and rat monoclonal antibodies. // Ed. H. Bazin. CRC Press, Florida. - 1990. - P. 165-201.

152. Beasley D.W., Barrett A.D. Identification of neutralizing epitopes within structural domain III of the West Nile virus envelope protein. // Virol. 2002. - Vol. 76. - № 24. - P. 13097-13100.

153. Becker S., Feldmann H., Will C. et al. Evidence for occurrence of filovirus antibodies in humans and imported monkeys: do subclinical filovirus infections occur worldwide? // Med Microbiol Immunol. 1992. - Vol. 181. - № 1. - P. 43-55.

154. Becker S., Huppertz S., Klenlc H.D. et al. The nucleoprotein of Marburg virus is posphorylated. // Gen.Virol. 1994. - Vol. 75. - № 4. - P. 809-818.

155. Becker Y. Retrovirus and filovirus «immunosuppressive motif» and the evolution of virus pathogenicity in HIV-1, HIV-2, and Ebola viruses. // Virus Genes. 1995. - Vol. 11. - № 2-3. - P. 191-195.

156. Bente D.,.Gren J., Strong J.E., Feldmann H. Disease modeling for Ebola and Marburg viruses. // Dis.Model.Mech. 2009. - Vol.2. - № 1-2. - P. 12-17.

157. Bernard K.A., Maffei J.G., Jones S.A. West Nile infection in birds and mosquitoes, New York State, 2000. // Emerg.Infect.Dis. 2001. - Vol. 7. - № 4. - P. 679-685.

158. Berthet F.X., Zeller H.G., Drouet M.T. et al. Extensive nucleotide changes and deletions within the envelope glycoprotein gene of Euro-African West Nile viruses. // Gen.Virol. 1997. -Vol. 78. - № 9. - P. 2293-2297.

159. Besselaar T.G., Blackburn N.K. Antigenic analyses of West Nile virus strain using monoclonal antibodies. // Arch Virol. 1988. - Vol. 99. - № 1-2. - P. 75-88.

160. Bevan I.S., Daw R.A., Day P.J. et al. Polymerase chain reaction for detection of human cytomegalovirus infection in a blood donor population. // Br. J. Hematol. 1991. - Vol. 78. - № 1. -P. 94-99.

161. Bhardwaj S., Holbrook M., Shope R.E. et al. Biophysical characterization and vector-specific antagonist activity of domain III of the tick-borne flavivirus envelope protein. // Virol. 2001. -Vol. 75. - № 8. - P. 4002-4007.

162. Biggerstaff B.J., Petersen L.R. Estimated risk of transmission of the West Nile virus through blood transfusion in the US, 2002. // Transfusion. 2003. - Vol. 43. - № 8. - P. 1007-1017.

163. Blackburn N.K., Besselaar T.G., Schoub B.D. et al. Differentiation of primary cytomegalovirus infection from reactivation using the urea denaturation test for measuring antibody avidity. // Med.Virol. 1991. - Vol. 33. - № 1. - P. 6-9.

164. Boeckh M., Huang M., Ferrenberg J. et al. Optimization of quantitative detection of cytomegalovirus DNA in plasma by real-time PCR. // Clin. Microbiol. 2004. - Vol. 42. - № 3. -P. 1142-1148.

165. Boeckh M., Boivin G. Quantitation of Cytomegalovirus: Methodologic Aspects and Clinical Applications. // Clin.Microbial. reviews. 1998. - Vol. 11. - № 3. - P. 533-554.

166. Bogen S.A., Sompuram S.R. Recent trends and advances in immunodiagnostics of solid tumors. // BioDrugs. 2004. - Vol.18. - № 6. - P. 98-114.

167. Bosio C.M., Aman M.J., Grogan C. et al. Ebola and Marburg viruses replicate in monocyte-derived dendritic cells without inducing the production of cytokines and full maturation. // Infect. Dis.-2003. Vol. 188. -№ 11.-P. 1630-1638.

168. Bowen R.A., Nemeth N.M. Experimental infections with West Nile virus. // Curr.Opin.Infect.Dis. 2007. - Vol. 20. - № 3. - P. 293-297.

169. Bowen E.T., Lloyd G., Plarris W.J. et al. Viral haemorrhagic Fever in southern Sudan and northern Zaire. Preliminary studies on the aetiological agent. / Lancet. 1977. - Vol. 1. - № 8011. -P. 571-573.

170. Bray M., Hatfill S., Hensley L. et al. Haematological, biochemical and coagulation changes in mice, guinea-pigs and monkeys infected with a mouse-adapted variant of Ebola Zaire virus. // Comp.Pathol. 2001. - Vol. 125. - № 4. - P. 243-253.

171. Briese T., Jia X.Y., Huang C. et al. Identification of Kunji/West-Nile-like flavivirus in brains of patients with New York encephalitis. // Lancet. 1999. - Vol. 354. - № 9186 - P. 1261-1262.

172. Brinton MA. Host factors involved in West Nile virus replication. // Ann N Y Acad Sei. -2001. -№951.-P. 207-219.

173. Britt W.J., Mach M. Human cytomegalovirus glycoproteins. // Intervirology. 1996. - Vol. 39.-№ 5-6.-P. 401-412.

174. Britton W.J., Hellqvist L., Garsia R.J. et al. Dominant cell wall proteins of Mycobacterium leprae recognized by monoclonal antibodies. // Clin.Exp.Immunol. 1987. - Vol. 67. - № 1. - 3142.

175. Browne E.P., Shenk T. Human cytomegalovirus UL83-coded pp65 virion protein inhibits antiviral gene expression in infected cells. // Proc Natl Acad Sei USA. 2003. - Vol. 100. - № 20. -P. 11439-11444.

176. Bukreyev A.A. Characteristics of Filoviridae: Marburg and Ebola Viruses. / Naturwissenschaften. 1999. - № 86. - P. 8-17.

177. Bukreyev A.A., Volchkov V.E., Blinov V.M. et al. The VP35 and VP40 proteins of filoviruses. Homology between Mar burg and Ebola viruses. // FEBS Lett. 1993. - Vol. 322. -№ l.-P. 41-46.

178. Bukreyev A.A., Volchkov V.E., Blinov V.M. et al. The complete nucleotide sequence of the Popp (1967) strain of Marburg virus: a comparison with the Musoke (1980) strain. // Arch Virol. -1995. Vol. 140. -№9.-P. 1589-1600.

179. Bukreyev A.A., Rollin P.E., Tate M.K. et al. Successful topical respiratory tract immunization of primates against Ebola virus. // Virol. 2007. - Vol. 81. - № 12. - P. 6379-6388.

180. Burke D.S., Monath T.P. // Filds Virology, 4th Ed. Philadelphia. 2001. Eds Knipe D.M., Howley P.M.

181. Bunning M.L., Bowen R.A., Cropp C.B. et al. Experimental infection of horses with West Nile virus. // Emerg.Infect.Dis. 2002. - Vol. 8. - № 4. - P. 380-386.

182. Burkhalter K.L., Lindsay R., Anderson R. et al. Evaluation of commercial assays for detecting West Nile virus antigen. //Am Mosq.Control. Assoc. 2006. - Vol. 22. - № I. - P. 6469.

183. Bussow K., Cahill D., Nietfeld W. et al. A method for global protein expression and antibody screening on high-density filters of an arrayed Cdna Library. // Nucleic Acids Res. -1998. Vol. 26. - № 21. - P. 5007-5008.

184. Butler J.E., Peterman J.H., Suter M. et al. The immunochemistry of solid-phase sandwich enzyme-linked immunosorbent assays. / Fed Proc. 1987. - Vol. 46. - № 8. - P. 2548-2556.

185. Caceda E.R., Kochel T.J. / Application of modified shell vial culture procedure for arbovirus detection. // PLoS One. 2007. - Vol. 2. - № 10. - P. el034.

186. Cammack N., Gould E.A. Antigenic analysis of yellow fever virus glycoproteins: use of monoclonal antibodies in enzyme-linked'immunosorbent assays. // Virol Methods. 1986. - Vol. 13.-№ 2.-P. 135-142.

187. Cano- H., Candela M.J., Lozano M.L. et al. Application of a new enzyme-linked immunosorbent assay for detection of total hepatitis C virus core antigen in blood donors. // Transfus. Med. 2003. - Vol. 13. - № 5. - P. 259-266.

188. CDC report. USA, Atlanta. 1999. - Vol.48. - P. 944-955.

189. CDC report. Update: detection of West Nile virus in blood donations. USA, Atlanta. 2003. Vol. 52. - P. 916-919.

190. CDC report. West Nile virus activity USA, Atlanta. - January 1 - December 31, 2005. -Vol. 54.-P. 1253-1256.

191. CDC report. Update: outbreak of Ebola viral hemorrhagic fever Zaire, 1995. / Morb Mortal Wkly Rep. 1995. - Vol. 44. - P. 468-475.

192. Cervino C., Weber E., ICnopp D. et al. Comparison of hybridoma screening methods for the efficient detection of high-affinity hapten-specific monoclonal antibodies. // Immunol. Methods. -2008.-Vol. 329.-№ 1-2.-P. 184-193.

193. Ceccaldi P.E., Lucas M., Despres P. New insights on the neuropathology of West Nile virus. // FEMS Microbiol. Lett. 2004. - Vol. 233. - № 1. - P. 1-6.

194. Chan S.Y., Speck R.F., Goldsmith M.A. Distinct mechanisms of entry by envelope glycoproteins of Marburg and Ebola (Zaire) viruses. // Virol. 2000. - Vol. 74. - № 10. - P. 4933-4937.

195. Chang G.J., Kuno G., Purdy D.E. et al. Recent advancement in flavivirus vaccine development. // Expert Rev Vaccines. 2004. - Vol. 3. - № 2. - P. 199-220.

196. Chanteau S., Rasolofo V., Rasolonavalona T. et al. 45/47 kilodalton (APA) antigen capture and antibody detection assays for the diagnosis of tuberculosis. // Int. J. Tuberc. Lung. Dis, -2000. Vol. 4. - № 4. - P. 377-383.

197. Chappell K.J., Stoermer M.J., Fairlie D.P. et al. West Nile Virus NS2B/NS3 protease as an antiviral target. // Curr. Med. Chem. 2008. - Vol. 15. - № 27. - P. 2771-2784.

198. Chee M.S., Bankier A.T., Beck S., et al. Analysis of the protein-coding content of the sequence of human cytomegalovirus strain AD169. // Curr Top Microbiol Immunol. 1990. - № 154.-P. 125-169.

199. Chen D.H., Jiang H., Lee M., et al. Three-dimensional visualization of tegument/capsid interactions in the intact human cytomegalovirus. // Virology. — 1999. Vol. 260. - № 1. — P. 1016.

200. Chen C.C., Li W.Y., Zhang C.J. et al. Preparation and characterization of a monoclonal antibody against human SOCS3. // Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 2007. - Vol. 27. - № 11. -P. 1778-1780.

201. Chen W.J. Serological and virological diagnosis for dengue infection. // Gaoxiong Yi Xue Ke Xue ZaZhi. 1989. - Vol. 5. - № l.-P. 66-71.

202. Chen Z.C., Yang J.J., Liu R. et al. Preparation and identification of monoclonal antibody against Homo sapiens hemoglobin alpha 2 (HBA2). // Zhongguo Shi Yan Xue Ye Xue Za Zhi. -2007. Vol. 15. -№4.-P. 823-826.

203. Chiao D.J., Wey J.J., Tang S.S. Monoclonal antibody-based enzyme immunoassay for detection of botulinum neurotoxin type A. // Hybridoma. 2008. - Vol. 27. - № 1. - 43-47.

204. Chou S. Acquisition of donor strains of cytomegalovirus by renal-transplant recipients. // N Engl J. Med. 1986. - Vol. 314. -№22. - P. 1418-1423.

205. Chu J.H., Chiang C.C., Ng M.L. Immunization of flavivirus West Nile recombinant envelope domain III protein induced specific immune response and protection against West Nile virus infection. // Immunol. 2007. - Vol. 178. - № 5. - P. 2699-2705.

206. Chu J.J., Rajamanonmani R., Li J. et al. Inhibition of West Nile virus entry by using a recombinant domain III from the envelope glycoprotein. // Gen Virol. 2005. - Vol. 86. - № 2. -P. 405-412.

207. Chu J.J., Ng M.L. Interaction of West Nile virus with alpha v beta 3 integrin mediates virus entry into cells. // Biol Chem. 2004. - Vol. 279. - № 52. P. 54533-54541.

208. Chua K.B. Evaluating the sensitivity of a commercial dengue NS1 antigen-capture ELISA for early diagnosis of acute dengue virus infection. // Singapore Med J. 2007. - Vol. 48. - № 7. -P. 669-673.

209. Chua K.E., Ramos J.D., Cheong N. Production of monoclonal antibody by DNA immunization with electroporation. // Methods Mol Biol. 2008. - № 423. - P. 509-520.

210. Chung K.M., Liszewski M.K., Nybakken G. et al. West Nile virus nonstructural protein NS1 inhibits complement activation by binding the regulatory protein factor H. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006. - Vol. 103. -№50. - P. 19111-19116.

211. Clayton A.L., Albert Z.I., Chantler S.M. The selection and performance of monoclonal and polyclonal anti-respiratory syncytial virus (RS) antibodies in capture ELISAs for antigen detection. // Virol Methods. 1987. - Vol. 17. - № 3-4. - P. 247-261.

212. Collins J.K., Butcher A.C., Teramoto Y.A. et al. Rapid detection of bovine herpesvirus type 1 antigens in nasal swab specimens with an antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay. // Clin Microbiol. 1985. - Vol. 21. - № 3. - P. 375-380.

213. Collins J.K., Ayers V.K., Carman J. Evaluation of an antigen-capture ELISA for the detection of bovine herpesvirus type 1 shedding from feedlot cattle. // Vet. Microbiol. 1988. -Vol. 16.-№ 2.-P. 101-107.

214. Connolly B.M., Steele K.E., Davis K.J. et al. Pathogenesis of experimental Ebola virus infection in guinea pigs.//J. Infect. Dis. 1999.-Vol. 179.- № 1. - P. 203-217.

215. Cornel A.J., Jupp P.G., Blackburn N.K. Environmental temperature on the vector competence of Culex univittatus (Diptera: Culicidae) for West Nile virus. // Med Entomol. -1993. Vol. 30. - № 2. -P. 449-456.

216. Kovacs A.A., Churchill M.A., Wood D., Mascola L., Zaia J.A. Molecular and epidemiologic evaluations of a cluster of cases of Menetrier's disease associated with cytomegalovirus. // Pediatr Infect Dis J. 1993. - Vol. 12. - № 12. - P. 1011-1014.

217. Craighead J.E., Kanich R.E., Almeida J.D. Nonviral microbodies with viral antigenicity produced in cytomegalovirus-infected cells. // Virol. 1972. - Vol. 10. - № 4. - P. 766-775.

218. Cretich M., Damin F., Pirri G. et al. Protein and peptide arrays: Recent trends and new directions. // Biomolecular Engineering. 2006. - Vol. 23. — P. 77-88.

219. Crouch C.F., Raybould T.J., Acres S.D. Monoclonal antibody capture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of bovine enteric coronavirus. // Clin. Microbiol. 1984. -Vol. 19. -№ 3. — P. 388-393.

220. Cui X., Meza B.P., Adler S.P. et al. Cytomegalovirus vaccines fail to induce epithelial entry neutralizing antibodies comparable to natural infection. // Vaccine. 2008. - Vol. 26. - № 45. -5760-6.

221. Czerny C.P., Meyer H., Mahnel H. Establishment of an ELISA for the detection of orthopox viruses based on neutralizing monoclonal and polyclonal antibodies. // Zentralbl Veterinarmed B. 1989. - Vol. 36. - № 7. - P. 537-546.

222. Czerny C.P., Eichhorn W. Characterization of monoclonal and polyclonal antibodies to bovine enteric coronavirus: establishment of an efficient ELISA for antigen detection in feces. // Vet. Microbiol. 1989.-Vol. 20.-№2.-P. 111-122.

223. Czerny C.P., Mahnel H. Structural and functional analysis of orthopoxvirus epitopes with neutralizing monoclonal antibodies. // Gen. Virol. 1990. - Vol. 71. - № 10. - P. 2341-2352.

224. Czerny C.P., Johann S., Holzle L. et al. Epitope detection in the envelope of intracellular naked orthopox viruses and identification of encoding genes. // Virology. 1994. - Vol. 200. - № 2.-P. 764-777.

225. Czerny C.P., Wagner K., Gessler K. et al. A monoclonal blocking-ELISA for detection of orthopoxvirus antibodies in feline sera. // Vet. Microbiol. 1996. - Vol. 52. - № 3-4. - P. 185-200.

226. Czerny C.P., Waldmann R., Biittner M. Recent developments in the diagnosis of parapoxviruses. // Tierarztl Prax. 1994. - Vol. 22. - № 3. - P. 230-233.

227. Darman J., Backovic S., Dike S. et al. Viral-induced spinal motor neuron death is non-cell-autonomous and involves glutamate excitotoxicity. // Neurosci. 2004. - Vol. 24. - № 34. - P. 7566-7575.

228. Despres P., Dietrich J., Girard M. et al. Recombinant baculoviruses expressing yellow fever virus E and NS1 proteins elicit protective immunity in mice. // Gen. Virol. 1991. - Vol. 72. - № 11.-P. 2811-2816.

229. Dessen A, Volchkov V, Dolnilc O et al. Crystal structure of the matrix protein VP40 from Ebola virus. // EMBO. 2000. - Vol. 19. - № 16. - P. 4228-4236.

230. Deyev S.M., Polanovsky O.L. Expression of chimeric immunoglobulin genes in mammalian cells. // Methods Mol. Boil. 1995. - № 51. - P. 251-263.

231. Deyev S.M., Waibel R., Lebedenko E.N. et al. Design of multivalent complexes using the barnase*barstar module. //Nat Biotechnol. 2003. - Vol. 21. - № 12. - P. 1486-1492.

232. Dhinakar R.G., Sivakumar S., Matheswaran K. et al. Detection of egg drop syndrome virus antigen or genome by enzyme-linked immunosorbent assay or polymerase chain reaction. // Avian Pathol. 2003. - Vol. 32. - № 5. - P. 545-550.

233. Diamond M.S., Shrestha B., Mehlhop E. et al. Innate and adaptive immune responses determine protection against disseminated infection by West Nile encephalitis virus. // Viral. Immunol. 2003. - Vol. 16. - № 3. - P. 259-278.

234. Distefano A.L., Alonso A., Martin F. et al. Human cytomegalovirus: detection of congenital and perinatal infection in Argentina. // BMC Pediatr. 2004. - 10.1186/1471-2431. - P. 4-11.

235. Dmitriev D.A., Massino Y.S., Segal O.L. Kinetic analysis of interactions between bispecific monoclonal antibodies and immobilized antigens using a resonant mirror biosensor. // Immunol. Methods. 2003. - Vol. 280. - № 1-2. - P. 183-202.

236. Doljak B., Obermajer N., Jamnik P. et al. Monoclonal antibody to cytokeratin VKIALEVEIATY sequence motif reduces plasminogen activation in breast tumour cells. // Cancer Lett. 2008. - Vol. 267. - № 1. - P. 75-84.

237. Domen R.E., Nelson K. A. Results of a survey of infectious disease testing practices by organ procurement organizations in the United States. // Transplantation. 1997. - Vol. 63. - № 12. - P. 1790-1794.

238. Du Clos T.W., Rubin R.L., Tan E.M. Monoclonal antibody for DNA measurement in biological fluids. // Immunol Methods. 1986. - Vol. 88. - № 2. - P. 185-192.

239. Duan T., Wang X.F., Xiao S.Y. et al. Recombinant human IgG antibodies against human cytomegalovirus. // Biomed Environ Sci. 2008. - Vol. 21. - № 5. - P. 372-380.

240. Eckert D., Kim P. Mechanisms of viral membrane fusion and its inhibition. // Annu Rev Biochem. -2001. -№70.-P. 777-810.

241. Edmondson M.A., Givens M.D., Walz P.H. et al. Comparison of tests for detection of bovine viral diarrhea virus in diagnostic samples. // Vet Diagn Invest. 2007. - Vol. 19. - № 4. — P. 376381.

242. Egbe-Nwiyi T.N , Antia R.E. Use of monoclonal antibodies for detecting T brucei brucei infection in splenectomised dogs. // Small Anim Pract. 1995. - Vol. 36. - № 5. - P. 229-232.

243. Ellis A.E., Mead D.G., Allison A.B. et al. Pathology and epidemiology of natural West Nile viral infection of raptors in Georgia. // Wildl Dis. 2007. - Vol. 43. - № 2. - 214-223.

244. Ellis D.S., Simpson I.H., Francis D.P. et al. Ultrastructure of Ebola virus particles in human liver. // Clin. Pathol. 1978. - Vol. 31. - № 3. - P. 201-208.

245. Elliott L.H., Kiley M.P., McCormick J.B. Descriptive analysis of Ebola virus protein. // Virology. 1985.-Vol. 147. -№ 1. - P. 169-176.

246. Elliott L.H., McCormick J.B., Johnson K.M. Inactivation of Lassa, Marburg, and Ebola viruses by gamma irradiation. // Clin Microbiol. 1982. - Vol. 16. - № 4. - P. 704-708.

247. Enders G., Knotek F. Rubella IgG total antibody avidity and IgG subclass-specific antibody avidity assay and their role in the differentiation between primary rubella and rubella reinfection. // Infection. 1989. - Vol. 17. - № 4. - P. 218-226.

248. Fanquet C. Taxonomy and classification. // General. Encyclopedia of Virology. 1994. / EdsWebster RG, Granoff A. - London. - Vol. 3. - P. 1396-1410.

249. Feinstein S., Akov Y., Lachmi B.E. et al. Determination of human IgG and IgM class antibodies to West Nile virus by enzyme linked immunosorbent assay (ELISA). // Med Virol. -1985. Vol. 17. -№ l.-P. 63-72.

250. Feldmann H., Killey M. Classification, structure, and replication of filoviruses. // Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1999. - № 235. - P. 1-21.

251. Feldmann H., Will C., Schikore M. et al. Glycosylation and oligomcrization of the spike protein of Marburg virus. //Virology. 1991. - Vol. 182. -№ l.-P. 353-356.

252. Feldmann Ii., Nichol S.T., Klenk H.D. et al. Characterization of filoviruses based on differences in structure and antigenicity of the virion glycoprotein. // Virology. 1994. - Vol. 199: №2.-P. 469-473.

253. Feldmann H., Slenczka W., Klenk H.D. Emerging and reemerging of filoviruses. // Arch. Virol. Supp. 1996.-№ 11.-P. 77-100.

254. Feldmann H., Feldmann H., Klenk H.-D. Molecular biology and evolution of filoviruses. // Arch. Virol. 1993. - Vol. 7 (suppl):81-100.

255. Feng X., Xu R., Gao Y. et al. Generation and identification of natural monoclonal antibodies against low-density lipoprotein. // Hybridoma. 2008. - Vol. 27. - № 1. - P. 54-58.

256. Fenner B.J., Du Q., Goh W. et al. Detection of betanodavirus in juvenile barramundi, Lates calcarifer (Bloch), by antigen capture ELISA. // Fish Dis. 2006. - Vol. 29. - № 7. - P. 423-432.

257. Fisher H.S., Platt G.S., Neild G.H. et al. Simpson DI. Pathophysiology of shockand hemorrhage in a fulminating viral infection (Ebola). // Infect Dis. 1985. - Vol. 152. - № 5. - P. 887-894.

258. Fisher Hoch H.S., Brammer T.L., Trappier S.G. et al. Pathogenic potential of filoviruses: role of geographic origin of primate host and virus strain. // Infect. Dis. - 1992. — Vol. 166. - № 4. - 753-763.

259. Flatau E., Kohn D., Daher O. et al. Nile fever encephalitis. // Israel Med. Sei. 1981. - Vol. 17. -№ 11.-P. 1057-1063.

260. Fonseca B.A., Pincus S., Shope R.E. et al. Recombinant vaccinia viruses co-expressing dengue-1 glycoproteins prM and E induce neutralizing antibodies in mice. // Vaccine. 1994. -Vol. 12. -№3.-P. 279-285.

261. Fortunato E.A., Spector D.H. Regulation of human cytomegalovirus gene expression. // Adv. Virus Res. 1999. - № 54. - P. 61-128.

262. Frank R. The SPOT- synthesis technique. Synthetic peptide arrays on membrane supports -principles and applications. // Immunol. Meth. 2002. - Vol. 267. - № 1. - P. 13-26.

263. Francisci D., Tosti A., Baldelli F. et al. The pp65 antigenaemia test as a predictor of cytomegalovirus-induced end-organ disease in patients with AIDS. // AIDS. 1997. - Vol. 11. -№ 11.-P. 1341-1345.

264. Fujita S., Hashimoto T. Detection of serum Candida antigens by enzyme-linked immunosorbent assay and a latex agglutination test with anti-Candida albicans and anti-Candida krusei antibodies. // Clin Microbiol. 1992. - Vol. 30. - № 12. - P. 3132-3137.

265. Funaro A., Gribaudo G., Luganini A. et al. Generation of potent neutralizing human monoclonal antibodies against cytomegalovirus infection from immune В cells. // BMC Biotechnol. 2008. - 10.1186/1472-6750-8-85.

266. Gach J.S., Quendler H., Weik R. et al. Partial humanization and characterization of an antiidiotypic antibody against monoclonal antibody 2F5, a potential HIV vaccine? // AIDS Res Hum Retroviruses. 2007. - Vol. 23. -№ 11.-P. 1405-1415.

267. Gao Q., Tharavanij S., Khusmith S. et al. Two-site pan-species monoclonal antibody ELISA for detection of blood stage malaria antigen. // Southeast Asian J Trop Med Public Health. 1992. -Vol. 23. -№4.-P. 740-744.

268. Garcia-Tapia D., Loiacono C.M., Kleiboeker S.B. Replication of West Nile virus in equine peripheral blood mononuclear cells. // Vet. Immunol Immunopathol. 2006. - Vol. 110. - № 3-4. - P. 229-244.

269. Gassmann C., Bauer G. Avidity determination of IgG directed against tick-borne encephalitis virus improves detection of current infections. // Med Virol. 1997. - Vol. 51. - № 3. -P. 242-251.

270. Gavrovic-Jankulovie M., Spasic M., Cirkovic Velickovic T. et al. Quantification of the thaumatin-like kiwi allergen by a monoclonal antibody-based ELISA. // Мої Nutr Food Res. .2008. Vol. 52. - № 6. - P. 701-707.

271. Gaytant M.A., Steegers E.A., Semmekrot B.A. et al. Congenital cytomegalovirus infection: review of the epidemiology and outcome. // Obstet. Gynecol. Surv. 2002. - Vol. 57. - № 4. - P. 245-256.

272. Gea-Banacloche J., Johnson R.T., Bagic A. et al. West Nile virus: pathogenesis and therapeutic options. // Ann Intern Med. 2004. - Vol. 140. - № 7. - P. 545-553.

273. Gear J.H. Hemorrhagic fevers, with special reference to recent outbreaks in southern Africa. //Rev. Infect. Dis. 1979.-Vol. l.-№4.-P. 571-591.

274. Gefter M.L., Margulies D.H., Scharff M.D. A simple method for polyethylene glycol promoted hybridization of mouse myeloma cells. // Somat Cell Genet. 1977. - Vol. 3. - № 2. - P. 231-236.

275. Geibert T.W., Jahrling P.B. Differentiation of filoviruses by electron microscopy. // Virus Res. 1995. - Vol. 39. -№2-3.-P. 129-150.

276. Geisbert T.W., Hensley L.E., Larsen T. et al. Pathogenesis of Ebola hemorrhagic fever in cynomolgus macaques: evidence that dendritic cells are early and sustained targets of infection. // Am J. Pathol. 2003. - Vol. 163. - № 6. - P. 2347-2370.

277. Geisbert T.W., Daddario-Dicaprio K.M., Lewis M.G. et al. Vesicular stomatitis virus-based ebola vaccine is well-tolerated and protects immunocompromised nonhuman primates. // PLoS Pathog. 2008. - Vol. 4. - № 11. - el000225.

278. George S., Lesbordes J.L., Georges-Gourbot M. Fatal hepatitis from West Nile virus. // Ann. Inst.Pasteur Virol. 1987. - Vol.138. - P. 237-244.

279. Georges-Courbot M.C., Lu C.Y., Lansoud-Soukate J. et al. Isolation and partial molecular characterisation of a strain of Ebola virus during a recent epidemic of viral haemorrhagic fever in Gabon. // Lancet. 1997. - Vol. 349. - № 9046. - P. 181-184.

280. Gibson W. Structural and nonstructural proteins of strain Colburn cytomegalovirus. // Virology. -1981.- Vol. 111. № 2. - P. 516-537.

281. Gibson W. Structure and assembly of the virion. // Intervirology. 1996. - Vol. 39. - № 5-6. -P. 389-400.

282. Gleaves C.A, Hursh D.A., Meyers J.D. Detection of human cytomegalovirus in clinical specimens by centrifugation culture with a nonhuman cell line. // Clin Microbiol. 1992. - Vol. 30.-№4.-P. 1045-1048.

283. Glinka E.M., Edelweiss E.F., Deyev S.M. Eukaryotic expression vectors and immunoconjugates for cancer therapy. // Biochemistry (Mosc). 2006. - Vol. 71. - № 6. - P. -597-606.

284. Gomes-Solecki M.J., Savitt A.G., Rowehl R. et al. LcrV capture enzyme-linked immunosorbent assay for detection of Yersinia pestis from human samples. // Clin Diagn Lab Immunol. 2005. - Vol. 12. - № 2. - P. 339-346.

285. Gonzalez JP, Nakoune E, Slenczka W et al. Ebola and Marburg virus antibody prevalence in selected populations of the Central African Republic. // Microbes Infect. 2000. - Vol. 2. - № 1. -P. 39-44.

286. Gould E.A., Buckley A., Higgs S. et al. Antigenicity of flaviviruses. // Arch. Virol. 1990. -Suppl. 1. - P. 137-152.

287. Gould L.Ii., Sui J., Foellmer H. et al. Protective and therapeutic capacity of human single-chain Fv-Fc fusion proteins against West Nile virus. // Virol. 2005. - Vol. 79. - № 23. - P. 14606-14613.

288. Greiser-Wilke I.M., Moennig V., Kaaden O.R. et al. Detection of alphaviruses in a genus-specific antigen capture enzyme immunoassay using monoclonal antibodies. // Clin Microbiol. -1991,-Vol. 29.-№ l.-P. 131-137.

289. Gretch D.R., Kari B., Rasmussen L. et al. Identification and characterization of three distinct families of glycoprotein complexes in the envelopes of human cytomegalovirus. // Virol. 1988. -Vol. 62. -№3.-P. 875-881.

290. Gritsun T.S., Lashkevich V.A., Gould E.A. Tick-borne encephalitis. // Antiviral. Res. 2003. -Vol. 57. -№ 1-2.-P. 129-146.

291. Godhardt J.A., Beheler K., O'Connor M.J. et al. Evaluation of antigen-capture ELISA and innunohistochemical methods for avian surveillance of West Nile virus. // Vet. Diann. Invest. -2006. Vol. 18. -№ l.-P. 85-89.

292. Guarner J., Shieh W.J., Hunter S. et al. Clinicopathologic study and laboratory diagnosis of 23 cases with West Nile virus encephalomyelitis. // Hum. Pathol. 2004. - Vol. 35. - № 8. - P. 983-990.

293. Gupta Y., Joshi Y.K., Tandon B.N. An enzyme-linked immunoassay for the possible detection of non-A, non-B viral antigen in patients with epidemic viral hepatitis. // Liver. 1988. -Vol. 8. - № 2. — P. 111-115.

294. Haas R., Maas I., Muller I. et al. Marburg virus disease. // Berlin. 1971. - P.136-143.

295. Hall R.A., Khromykh A.A. West Nile virus vaccines. // Expert Opin Biol. Ther. 2004. -Vol. 4. -№ 8.-P. 1295-1305.

296. Hall R.A., Burgess G.W., Kay B.H. et al. Monoclonal antibodies to Kunjin and Kokobera viruses. // Immunol Cell Biol. 1991. - Vol. 69. - № 1. - P. - 47-49.

297. Hayes C.G., Burans J.P., Ksiazek T.G. et al. Outbreak of fatal illness amoug captive macaques in the Pilippines caused by an Ebola-related filovirus. // Am J. Trop Med Hyg. 1992. -Vol. 46. -№6.-P. 664-671.

298. Harris E., Holden K.L., Edgil-D. et al. Molecular biology of flaviviruses. //Novartis Found Symp. 2006. - № 277. - P. 23-39.

299. Harrington T., Kuehnert M.J., Kamel H. et al. West Nile virus infection transmitted by blood transfusion. // Transfusion. 2003. - Vol. 43. - № 8. - P. 1018-1022.

300. Hartlieb B., Muziol T., Weissenhorn W., Becker S. Crystal structure of the C-terminal domain of Ebola virus VP30 reveals a role in transcription and nucleocapsid association. // Proc Natl Acad Sei USA. 2007. - Vol. 104. - № 2. - P. 624-629.

301. Hartlieb B., Muziol T., Weissenhorn W. et al. Crystal structure of the C-terminal domain of Ebola virus VP30 reveals a role in transcription and nucleocapsid association. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 2007. - Vol. 104. - № 2. - P. 624-629.

302. Hayes E.B., Sejvar J.J., Zalci S.R. et al. Virology, Pathology and clinical manifestations of West Nile virus disease. // Emerging Infections Diseases. 2005. - Vol. 11. - № 8. - P. 1-8.

303. Hayes C.G. West Nile fever. The Arboviruses: Epidemiology and Ecology. // Ed. Monath TP. Boca Raton. - 1989. - Vol. 5. - P. 59-69.

304. Heinz F.X., Colltt N.S., Purcell R.H. et al. Virus taxonomy; 7th International Committee for Taxonomy of viruses. // Eds. Regenmortel MH et al. SanDiego. 2000. - P. 859-878.

305. He Q., Velumani S., Du Q. et al. Detection of H5 avian influenza viruses by antigen-capture enzyme-linked immunosorbent assay using H5-specific monoclonal antibody. // Clin Vaccine Immunol. 2007. - Vol. 14. - № 5. - P. 617-623.

306. Heller M., Berthold E., Pfutzner H. et al. Antigen capture ELISA using a monoclonal antibody for the detection of Mycoplasma bovis in milk. // Vet. Microbiol. 1993. - Vol. 37. - № 1-2.-P. 127-133.

307. Heo S.A., Nannapaneni R., Story R.P. et al. Characterization of new hybridoma clones producing monoclonal antibodies reactive against both live and heat-killed Listeria monocytogenes. // Food Sci. 2007. - Vol. 72. - № 1. - P. 8-15.

308. Herzog D.P. Emerging trends in lab automation and instrumentation. // IVDT. 2006. - № 5. -P. 44-47.

309. Hevey M., Negley D., Geisbert J. et al. Antigenicity and vaccine potential of Marburg virus glycoprotein. // Virology. 1997. - Vol. 239. - № 1. - P. 206-216.

310. Hevey M., Negley D., Schmaljohn A. Characterization of monoclonal antibodies to Marburg virus (strain Musoke) glycoprotein and identification of two protective epitopes. // Virology.2003. Vol. 314. - № 1. - P. 350-357.

311. Ho M. Cytomegalovirus: Biology and Infection, 2nd ed. //New York: Plenum. 1991.

312. Holzmann H., Vorobyova M.S., Ladyzhenskaya I.P. et al. Molecular epidemiology of tickborne encephalitis virus: cross-protection between European and Far Eastern subtypes. // Vaccine. 1992. - Vol. 10. - № 5. - P. 345-349.

313. Hoogenboom H.R. Selecting and screening recombinant antibody libraries. // Nat Biotechnol. 2005. - Vol. 23. - № 9. - P. 1105-1116.

314. Holliger P., Hudson P.J. Engineered antibody fragments and the rise of single domains. // Nat Biotechnol. 2005. - Vol. 23. - № 9. - P. 1126-1136.

315. Honess R.W., Roizman B. Regulation of herpesvirus macromolecular synthesis. I. Cascade regulation of the synthesis of three groups of viral proteins. // Virol. 1974. - Vol. 14. - № 1. - P. 8-19.

316. Horacek J., Brucek P., Otova B. Detection of nuclear cytomegalovirus antigen in cell culture as compared to classical virus isolation. // Acta Virol. 1991. - Vol. 35. - № 2. - P. 187-189.

317. Hljzanek I., Dostalova V., Korec E. et al. Monoclonal antibodies to hepatitis B surface antigen: production and characterization. // Folia Biol (Praha). 1986. - Vol. 32. - № 3. - P. 167177.

318. Huang Y., Xu L., Sun Y. et al. The assembly of Ebola virus nucleocapsid requires virion-associated proteins 35 and 24 and posttranslational modification of nucleoprotein. // Mol Cell. -2002. Vol. 10. -№2.-P. 307-316.

319. Hundekar S.L., Thakare J.P., Gokhale M.D. et al. Development of monoclonal antibody based antigen capture ELISA to detect chikungunya virus antigen in mosquitoes. // Indian J. Med Res. 2002. - № 115. - P. 144-148.

320. Hunt A.F., Allen D.L., Brown R.L. et al. Comparative trial of six methods for the detection of CMV antibody in blood donors. // Clin Pathol. 1984. - Vol. 37. - № 1. - 95-97.

321. Hunt A.R., Hall R.A., Kerst A.J. et al. Detection of West Nile virus antigen in mosquitoes and avian tissues by a monoclonal antibody-based capture enzyme immunoassay. // Clin Microbiol. 2002. - Vol. 40. - № 6. - P. 2023-2030.

322. Ichihashi Y., Takahashi T., Oie M. Identification of a vaccinia virus penetration protein. // Virology. 1994. - Vol. 202. - № 2. - P. 834-843.

323. Ichihashi Y., Oie M. Epitope mosaic on the surface proteins of orthopoxviruses. // Virology. 1988.-Vol. 163. -№1. -P. 133-144.

324. Igarashi A, Tanaka M, Morita K et al. Detection of west Nile and Japanese encephalitis viral genome sequences in cerebrospinal fluid from acute encephalitis cases in Karachi, Pakistan. // Microbiol Immunol. 1994. - Vol. 38. - № 10. - P. 827-830.

325. Ignat'ev G.M., Agafonov A.P., Strelsova M.A. et al. Inactivated Marburg virus elicits a nonprotective immune response in Rhesus monkeys. // Biotechnology. 1996. - № 44. - P. 111118.

326. Ikegami T., Niikura M., Saijo M. et al. Antigen capture enzyme-linked immunosorbent assay for specific detection of Reston Ebola virus nucleoprotein. // Clin Diagn Lab Immunol. — 2003. -Vol. 10.-№ 4.-P. 552-557.

327. Ilkal M.A., Prasanna Y., Jacob P.G. et al. Experimental studies on the susceptibility of domestic pigs to West Nile virus followed by Japanese encephalitis virus infection and vice versa. //Acta Virol. 1994. - Vol. 38. -№3.-P. 157-161.

328. Inouye S., Hasegawa A., Matsuno S. et al. Changes in antibody avidity after virus infections: detection by an immunosorbent assay in which a mild protein-denaturing agent is employed. // Clin Microbiol. 1984. - Vol. 20. - № 3. - P. 525-529.

329. Ito H., Watanabe S., Talcada A. et al. Ebola virus glycoprotein: proteolytic processing, acylation, cell tropism, and detection of neutralizing antibodies. // Virol. 2001. - Vol. 75. - № 3. -P. 1576-1580.

330. Jahan M., Nabassum S., Islam M.N. Comparison of CMV pp65 antigen and IgM antibody detection for early recognition of CMV primary infection and reactivation. // Mymensing Med J. -2008.-Vol. 17.-№ 1,-P. 28-31.

331. Jährling P.B., Geisbert T.W., Jaax N.K. et al. Experimental infection of cynomolgus macaques with Ebola-Reston filoviruses from the 1989-1990 epizootic. // Arch Virol Suppl. -1996. № 11.-P. 115-134.

332. Jährling P.B., Geisbert T.W., Geisbert J.B. et al. Evaluation of immune globulin and recombinant interferon-alpha 2b for treatment of experimental Ebola virus infections. // Infect Dis. 1999. - Vol. 179. - № 1. - P. 224-234.

333. Jährling P.B., Geisbert T.W., Dalgard D.W. et al. Preliminary report: Isolation of Ebola virus from monkeys imported to USA. // Lancet. 1990. - № 335. - P. 502-505.

334. Jasenosky L.D., Neumann G., Lukashevich I. et al. Ebola virus VP40-induced particle formation and association with the lipid bilayer. // Virol. 2001. - Vol. 75. - № 11. - P. 52055214.

335. Jones T.C. The value of animal models. // Am J. Pathol. 1980. - Vol. 101. - № 3. - P. 3-9.

336. Johann S., Czerny C.P. A rapid antigen capture ELISA for the detection of orthopox viruses. // Zentralbl Veterinarmed B. 1993. - Vol. 40. - № 8. - P. 569-581.

337. Johnson E., Jaax N., White J. et al. Lethal experimental infection of rhesus monkeys by aerosolized Ebola virus. // Int J. Exp Pathol. 1995. - Vol. 76. - № 4. - P. 227-236.

338. Johnson K.M., Lange J.V., Webb P.A. et al. Isolation and partial characterisation of a new virus causing acute haemorrhagic fever in Zaire. // Lancet. 1977. - № 1. - P. 569-571.

339. Johnson E.D., Johnson B.K., Silverstein D. et al. Characterization of new Marburg virus isolated from a 1987 fatal case in Kenya.//Arch Virol Suppl. 1996.-№ 11.-P. 101-114.

340. Johnson B.K., Lange J.V., Webb P.A. et al. Isolation and partial characterization of a new virus causing acute haemorrhagic fever in Zaire. // Lancet. 1977. -№ 1. - P. 569-571.

341. Johnson R., Bell P., Harty R.N. Effect of Ebola virus proteins GP, NP and VP35 on VP40 VLP morphology. //Virol. 2006. - 10.1186/1743-422X-3-31.

342. Johnson R., McCarthy S.E., Godlewski P.J., Harty R.N. Ebola virus VP35-VP40 interaction is sufficient for packaging 3E-5E minigenome RNA into virus-like particles. // Virol. 2006. -Vol. 80. -№ 11.-P. 5135-5144.

343. Joshi A.M., Walimbe A.M., Banerjee K. Potency testing of inactivated tissue culture vaccine against Japanese encephalitis using antigen capture ELISA. // Acta Virol. 1997. - Vol. 41. - № 3. -P. 157-159.

344. Jupp P.G., Mcintosh B.M. Quantitative experiments on the vector capability of Culex (Culex) pipiens fatigans Wiedemann with West Nile and Sindbis viruses. // Med Entomol. 1970. -Vol. 7.-№3.-P. 353-356.

345. Juronen E.I., Viikmaa M.H., Mikelsaar A.V. Rapid, simple and sensitive antigen capture ELISA for the quantitation of myoglobin using monoclonal antibodies. // Immunol Methods. -1988.-Vol. 111. № 1. — P. 109-115.

346. Kaistrom G., Warfield K.L., Swenson D.L. et al. Analysis of Ebola virus and VLP release using an immunocapture assay. // Virological Methods. 2005. - Vol. 127. - № 1. - P. 1-9.

347. Kapoor H., Signs K., Somsel P. et al. Persistence of West Nile Virus (WNV) IgM antibodies in cerebrospinal fluid from patients with CNS disease. // Clin Virol. 2004. - Vol. 31. - № 4. - P. 289-291.

348. Karabatsos N. International Catalogue of Arboviruses including Certain other viruses of Vertebrates. // San-Antonio, 1985.

349. Kari В., Goertz R., Gehrz R. Characterization of cytomegalovirus glycoproteins in a family of complexes designated gC-II with murine monoclonal antibodies. // Arch Virol. 1990. - Vol. 112.-№ 1-2.-P. 55-65.

350. Kartalov E.P. High-throughput multi-antigen microfluidic fluorescence immunoassays. // BioTechnique. 2006. - Vol. 40. - № 1. - P. 85-90.

351. Kawasaki E., Eisenbarth G.S. High-throughput radioassays for autoantibodies to recombinant autoantigens. // Frontiers in Bioscience. 2000. - Vol. 5. - P. 181-190.

352. Kenny G.E., Dunsmoor C.L. Principles, problems, and strategies in the use of antigenic mixtures for the enzyme-linked immunosorbent assay. // Clin Microbiol. 1983. - Vol. 17. - № 4. -P. 655-665.

353. Kennett R.H., McKearn T.G., Bechtol K.B. Monoclonal antibodies hybridomas: a new dimension in biological analyses. // M.: Медицина, 1983. Перевод с англ. под редакцией Петрова Р.В. 416 с.

354. Kerr S., Ball H.J., Mackie D.P. et al. Diagnostic application of monoclonal antibodies to outer membrane protein for rapid detection of Salmonella. // Appl Bacteriol. 1992. - Vol. 72. -№4.-P. 302-308.

355. Kido K., Edakuni K., Morinaga O. et al. An enzyme-linked immunosorbent assay for aconitine-type alkaloids using an anti-aconitine monoclonal antibody. // Anal Chim Acta. 2008. -Vol. 616.-№ l.-P. 109-114.

356. Kiley M.P., Cox N.J., Elliot L.H. et al. Physicochemical properties of Marburg virus: evidence for three virus strains and their relationship to Ebola virus. // Gen Virol. 1988. - Vol. 69. -№ 8.-P. 1557-1567.

357. Kiley M.P., Bowen E.T., Eddy G.A. et al. Filoviridae: taxonomic home for Marburg and Ebola viruses? // Intervirology. 1982. - Vol. 18. - № 1-2. - P. 24-32.

358. Kimura-Kuroda J., Yasui K. Antigenic comparison of envelope protein E between Japanese encephalitis virus and some other flaviviruses using monoclonal antibodies. // Gen Virol. 1986. -Vol. 67. - № 12. - P. 2663-2672.

359. Kitamoto N., Kobayashi Т., Kato Y. et al. Preparation of monoclonal antibodies cross-reactive with orthopoxviruses and their application for direct immunofluorescence test. // Microbiol Immunol. -2005. Vol. 49. - № 3. - P. 219-225.

360. Kitamoto N., Goto E., Tanimoto S. et al. Cross-reactivity between cowpox and vaccinia viruses with monoclonal antibodies. Brief report. // Arch Virol. 1984. - Vol. 82. - № 1-2. - P. 129-136.

361. Kitamoto N., Tanimoto S., Hiroi K. et al. Polypeptide analysis with monoclonal antibodies of A type inclusion bodies induced by cowpox virus. // Arch Virol. 1986. - Vol. 89. - № 1-4. - P. 15-28.

362. Kitamoto N., Tanimoto S., Hiroi K. et al. Monoclonal antibodies to cowpox virus: polypeptide analysis of several major antigens. // Gen Virol. 1987. - Vol. 68. - № 1. - P. 239246.

363. Knowles D.P. Jr, Gorham J.R. Advances in the diagnosis of some parasitic diseases by monoclonal antibody-based enzyme-linked immunosorbent assays. // Rev Sci Tech. 1993. - Vol. 12. №2. - P. 425-433.

364. Kramer L.D., Bernard K.A. West Nile virus infection in birds and mammals. // Ann N Y Acad Sci. -2001. -№951.-P. 84-93.

365. Krishhan V.V., Khan I.H., Luciw P.A. Multiplexed microbead immunoassays by flow cytometry for molecular profiling: Basic concepts and proteomics applications. // Crit Rev Biotechnol. 2009. - Vol. 29. - № 1. - P. 29-43.

366. Ksiazek T.G., West C.P., Rollin P.E. et al. ELISA for the detection of antibodies to Ebola viruses. // Infect Dis. 1999. - Vol. 179. - № 1. - P. 192-198.

367. Ksiazek T.G., Rollin P.E., Jahring P.B. et al. Enzyme immunosorbent assay for Ebola virus in tissues og infected primates. // Clinical Microbiology. 1992. - Vol. 30. - № 4. - P. 947-950.

368. Kodihalli S., Sivanandan V., Nagaraja K.V. et al. Antigen-capture enzyme immunoassay for detection of avian influenza virus in turkeys. // Am J. Vet Res. 1993. - Vol. 54. - № 9. - P. 13851390.

369. Kohler G., Milstein C. Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity. //Nature. 1975. - P. 256, 495.

370. Komar N., Langevin S., Hinten S. et al. Experimental infection of North American birds with the New York 1999 strain of West Nile virus. // Emerg Infect Dis. 2003. - Vol. 9. - № 3. -P. 311-322.

371. Koprowski H., Gerhard W., Croce C.M. Production of antibodies against influenza virus by somatic cell hybrids between mouse myeloma and primed spleen cells. // Proc Natl Acad Sei USA. 1977. - Vol. 74. - № 7. - P. 2985-2988.

372. Kovacs A.A., Churchill M.A., Wood D. et al. Molecular and epidemiologic evaluations of a cluster of cases of Menetrier's disease associated with cytomegalovirus. // Pediatr Infect Dis J. -1993. Vol. 12. -№ 12. - P. 1011-1014.

373. Kumar S., Tuteja U., Batra H.V. Generation and characterization of murine monoclonal antibodies to genus-specific 31-kilodalton recombinant cell surface protein of Brucella abortus. // Hybridoma. 2007. - Vol. 26. - № 4. - P. 211-216.

374. Kumar A., Singh S., Salhan S. et al. Evaluation of a developed species-specific monoclonal antibody for detecting Chlamydia trachomatis infections in endocervical specimens from female patients. // Hybridoma. 2007. - Vol. 26. - № 5. - P. 333-337.

375. Kumarasamy V., Chua S.K., Hassan Z. et al. Evaluating the sensitivity of a commercial dengue NS1 antigen-capture ELISA for early diagnosis of acute dengue virus infection. // Singapore Med J. 2007. - Vol. 48. - № 7. - P. 669-673.

376. Kimura-Kuroda J., Yasui K. Antigenic comparison of envelope protein E between Japanese encephalitis virus and some other flaviviruses using monoclonal antibodies. // Gen Virol. 1986. - Vol. 67. - № 12. - P. 2663-2672.

377. Kuno G., Gubler D.J. et al. Santiago de Weil N.S. Antigen capture ELISA for the identification of dengue viruses. // Virol Methods. 1985. - Vol. 12. - № 1-2. - P. 93-103.

378. Kuno G, Chang GJ, Tsuchiya ICR. Phylogeny of genus Flavivirus. // Virol. 1998. - Vol. 72. -№ l.-P. 73-83.

379. Kuzuhara T., Kise D., Shirakawa Y. et al. Generation of mouse monoclonal antibody against (-)-epigallocatechin gallate. // Biol Pharm Bull. 2008. - Vol. 31. - № 5. - P. 816-819.

380. Lai C.F., Gong S.C., Esteban M. The purified 14-kilodalton envelope protein of vaccinia virus produced in Escherichia coli induces virus immunity in animals. // Virol. 1991. - Vol. 65. -№ 10. - P. 5631-5635.

381. Landry M.L., Ferguson D. Comparison of quantitative cytomegalovirus antigenemia assay with culture methods and correlation with clinical disease. // Clin Microbiol. 1993. - Vol. 31. -№ 11.-P. 2851-2856.

382. Landolfo S., Gariglio M., Gribaudo G. et al. The human cytomegalovirus. // Pharmacol Ther. 2003. - Vol. 98. - № 3. p. 269-297.

383. Lazzarotto T., Ripalti A., Bergamini G. et al. Development of a New Cytomegalovirus (CMV) Immunoglobulin M (IgM) Immunoblot for Detection of CMV-Specific IgM. // Clin Microbiol. Nov. 1998.-Vol. 36.-№ 11. -P. 3337-3341.

384. Lazzarotto T., Varani S., Guerra B. et al. Prenatal indicators of congenital cytomegalovirus infection. // Pediatr. 2000. - Vol. 137. - № 1. - P. 90-95.

385. Le Guenno B., Formenty P., Wyers M. et al. Isolation and partial characterisation of a new strain of Ebola virus. //Lancet. 1995. - Vol. 345. -№ 8960.-P. 1271-1274.

386. Leake C.J., Ussery M.A., Nisalak A. et al. Virus isolations from mosquitoes collected during the 1982 Japanese encephalitis epidemic in northern Thailand. // Trans R Soc Trop Med Hyg. -1986. Vol. 80. - № 5. - P. 831-837.

387. Lee J.Y., Irmiere A., Gibson W. Primate cytomegalovirus assembly: Evidence that DNA packaging occurs subsequent to B capsid assembly. // Virology. — 1988. № 167. - P. 87-96.

388. Lee D.H., Mathew J., Pfahler W. et al. Individual donor nucleic acid amplification testing for detection of West Nile virus. // Clin Microbiol. 2005. - Vol. 43. - № 10. - P. 5111-5116.

389. Lee B.W., Bey R.F., Baarsch M.J. et al. ELISA method for detection ofinfluenza A infection in swine. // Vet Diagn Invest. 1993. - Vol. 5. - № 4. - P. 510-515.

390. LeGoff J., Mayaud P., Gresenguet G. et al. ANRS 12-12 Study Group. Performance of HerpeSelect and Kalon assays in detection of antibodies to herpes simplex virus type 2. // Clin Microbiol. 2008. - Vol. 46. - № 6. - P. 1914-1918.

391. Lechtzier V., Hutoran M., Levy T. et al. Sodium dodecyl sulphate treated proteins as ligands in ELISA. // Immunol. Meth. - 2002. - Vol. 270. - № 1. - P. 19-26.

392. Leis A.A., Stokic D.S. Neuromuscular Manifestations of Human West Nile Virus Infection. // Curr Treat Options Neurol. 2005. - Vol. 7. - № 1. - P. 15-22.

393. Leroy E.M., Epelboin A., Mondonge V. et al. Human ebola outbreak resulting from direct exposure to fruit bats in luebo, democratic republic of congo, 2007. // Vector Borne Zoonotic Dis. 2009. - Vol. 9. - № 6. - P. 723-728.

394. Li Y.Q., Yang J., Zhang L. et al. Preparation and characterization of monoclonal antibodies against M2 protein of avian influenza virus. // Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 2008. -Vol. 24. -№5.-P. 475-478.

395. Li L., Barrett A.D., Beasley D.W. Differential expression of domain III neutralizing epitopes on the envelope proteins of West Nile virus strains. // Virology. 2005. - Vol. 335. - № 1. - P. 99105.

396. Li F.Q., Yang A.L., Miao J.W. et al. Preparation and characterization of the monoclonal antibody against human sperm protein 17. // Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 2006. -Vol. 22. -№5.-P. 638-640.

397. Li Y., Ning Y.S., Wang Y.D. et al. Prodaction of mouse monoclonal antibodies against Helicobacter pylori Catalase and mapping the antigenic epitope by phage display library. // Vaccine. 2007. - Vol. 26. - № 9. - P. 1263-1269.

398. Licata J., Johnson R.F., Han Z. et al. Contribution of ebola virus glycoprotein, nucleoprotein, and VP24 to budding of VP40 virus-like particles. // Virol. 2004. - Vol. 78. - № 14. - P. 73447351.

399. Lieberman M.M., Clements D.E., Ogata S. et al. Preparation and immunogenic properties of a recombinant West Nile subunit vaccine. // Vaccine. 2007. - Vol. 25. - № 3. - P. 414-423.

400. Liu M.K., Pearson T.W. Detection of circulating trypanosomal antigens by double antibody ELISA using antibodies to procyclic trypanosomes. // Parasitology. 1987. - Vol. 95. - № 2. - P. 277-290.

401. Liu W., Wang Y.T., Tian D.S. et al. Detection of white spot syndrome virus (WSSV) of shrimp by means of monoclonal antibodies (MAbs) specific to an envelope protein (28 kDa). // Dis Aquat Organ. 2002. - Vol. 49. - № 1. - p. 11-18.

402. Liu Z.G., Hsu H., Goeddel D.V. et al. Dissection of TNF receptor 1 effector functions: JNK activation is not linked to apoptosis while NF-kappaB activation prevents cell death. // Cell. -1996. Vol. 87. - № 3. - P. 565-576.

403. Lim P.K., Mak J.W., Yong H.S. Detection of circulating plasmodial antigens in human sera by sandwich ELISA with monoclonal antibodies. // Southeast Asian J. Trop Med Public Health. -1992. Vol. 23. - № 4. - P. 735-739.

404. Lotfering B., Modrof J., Moritz C. et al. Phosphorylation of Marburg virus structural proteins. // Symposium on Marburg and Ebola viruses. Marburg, Germany. 2000. Abstract. P. 9.

405. Lu Z., Roche M.I., Hui J.H. et al. Generation and characterization of hybridoma antibodies for immunotherapy of tularemia. // Immunol Lett. 2007. - Vol. 112. - № 2. - P. 92-103.

406. Lucht A., Formenty P., Feldmann H. et al. et al. Development of an immunofiltration-based antigen-detection assay for rapid diagnosis of Ebola virus infection. // Infect Dis. 2007. - Vol. 196. - №2.-P. 184-192.

407. Lucht A., Otterbein C., Moller P. et al. Prodution of monoclonal antibodies to Ebola-Zaire virus. // Symposium on Marburg and Ebola viruses. Marburg, Germany 2000. 1-4 October. - P. 5.

408. Luch A., Grunov R., Moller P. et al. Development, characterization and use of monoclonal VP40-antibodies for the detection of Ebola virus. // Virological Methods. 2003. - № 111. - P. 21-28.

409. Luch A., Grunov R., Otterbein C. et al. Production of monoclonal antibolies and development of an antigen capture ELISA directed against envelope glycoprotein GP of Ebola virus. // Med Microbiol Immunol. 2004. - № 193. - P. 181-187.

410. Lupton H.W., Lambert R.D., Bumgardner D.L. et al. Inactivated vaccine for Ebola virus efficacious in guinea pig model. // Lancet. 1980. - № 2. - P. 1294-1295.

411. Mackay A.J., Roy A., Yates M.M. et al. West Nile virus detection in mosquitoes in East Baton Rouge Parish, Louisiana, from November 2002 to oktober 2004. // Am Mosq Control Assoc. 2007. - Vol. 24. - № 1. - P. 28-35.

412. Maleewong W., Intapan P.M., Wongkham C. et al. Detection of Paragonimus heterotremus in experimentally infected cat feces by antigen capture-ELISA and by DNA hybridization. / Parasitol. 1997. - Vol. 83. - № 6. - P. 1075-1078.

413. Malinger G., Lev D., Zahalka N. et al. Fetal cytomegalovirus infection of the brain: the spectrum of sonographic findings. // AJNR Am J. Neuroradiol. 2003. - Vol. 24. - № 1. - P. 2832.

414. Marennikova S.S., Nagieva F.G., Matsevich G.R. et al. Monoclonal antibodies to monkey pox virus: preparation and application. // Acta Virol. 1988. - Vol. 32. - № 1. - P. 19-26.

415. Marsh S., Kaplan M., Asano Y. et al. Development and application of IiIiV-6 antigen capture assay for the detection of HHV-6 infections. // Virol Methods. 1996. - Vol. 61. - № 1-2. -P. 103-112.

416. Martin D.A., Biggerstaff B.J., Allen B. et al. Use of immunoglobulin m cross-reactions in differential diagnosis of human flaviviral encephalitis infections in the United States. // Clin Diagn Lab Immunol. 2002. - Vol. 9. - № 3. - P. 544-549.

417. Martin D.A., Muth D.A., Brown T. et al. Standardization of immunoglobulin M capture enzyme-linked immunosorbent assays for routine diagnosis of arboviral infections. // J. Clin Microbiol. 2000. - Vol. 38.-№5. p. 1823-1826.

418. Maruyama T., Rodriguez L.L., Jahrling P.B. et al. Ebola virus can be effectively neutralized by antibody produced in natural human infection. // Virology. 1999. - Vol. 73. - №7. - P. 60246030.

419. Mason PW, Shustov AV, Frolov I. Production and characterization of vaccines based on flaviviruses defective in replication. // Virology. 2006. - Vol. 351. - № 2. - P. 432-443.

420. Mathiot C.C., Georges A.J., Deubel V. Comparative analysis of West Nile virus strains isolated from human and animal hosts using monoclonal antibodies and cDNA restriction digest profiles. // Res Virol. 1990. - Vol. 141. - № 5. - P. 533-543.

421. Matheus S., Deparis X., Labeau B. et al. Discrimination between primary and secondary dengue virus infection by an immunoglobulin G avidity test using a single acute-phase serum sample. // Clin Microbiol. 2005. - Vol. 43. - № 6. - P. 2793-2797.

422. McCormick J.K., Bauer S.P., Elliott L.H. et al. Biologic Differences between strains of Ebola virus from Zaire and Sudan. // Infect Dis. 1983. - Vol. 147. - № 2. - P. 264-267.

423. McGavran M.H., Smith M.G. Ultrastructural, cytochemical, and microchemical observations on cytomegalovirus (salivary gland virus) infection of human cells in tissue culture. // Exp Mol Pathol. 1965. -№76.-P. 1-10.

424. McKeating J.A., Stagno S., Stirk P.R. et al. Detection of cytomegalovirus in urine samples by enzyme-linked immunosorbent assay. // Med Virol. 1985. - Vol. 16. - № 4. - P. 367-373.

425. Meijer E., Boland G.J., Verdonck L.F. Prevention of cytomegalovirus disease in recipients of allogeneic stem cell transplants. // Clin Microbiol Rev. 2003. - Vol. 16. - № 4. - P. 647-657.

426. Meng S., Li X., Yin H., Li D.F. Establishment of detection test for hepatitis C virus antigen. // Zhonghua Shi Yan He Lin Chuang Bing Du Xue Za Zhi. -2001,- Vol. 15. № 3. - P. 287-290.

427. Meyer J.D., Ljungman P., Fisher L.D. Cytomegalovirus excretion as a predictor of cytomegalovirus disease after marrow transplantation: importance of cytomegalovirus viremia. // Infect Dis. 1990. - Vol. 162. - P. 373-380.

428. Meyer H., Osterrieder N., Czerny C.P. Identification of binding sites for neutralizing monoclonal antibodies on the 14-kDa fusion protein of orthopox viruses. // Virology. 1994. -Vol. 200. -№2.-P. 778-783.

429. Mi J.B., Yan J., Ding X.J. et al, Production and characterization of monoclonal antibody against recombinant human erythropoietin. // Biomed Environ Sci. 2007. - Vol. 20. - № 3. - P. 84-88.

430. Minke J.M., Siger L., Karaca K. et al. Recombinant canarypoxvirus vaccine carrying the prM/E genes of West Nile virus protects horses against a West Nile virus-mosquito challenge. // Arch Virol Suppl. 2004. - № 18. - P. 221-230.

431. Miranda M.E., Ksiazek T.G., Retuya T.J. et al. Epidemiology of Ebola (subtype Reston) virus in the Philippines, 1996.//Infect Dis. 1999.-Vol. 179.- № l.-P. 115-119.

432. Mitchel SW, McCormick J.B. Phisicochemical inactivation of Lassa, Ebola and Marburg viruses and effect on clinical laboratory analyses. // Clin Microbiol. 1984. - Vol. 20. - № 3. - P. 486-489.

433. Moi M.L., Lim C.K., Takasaki T., Kurane I. Involvement of the Fc{gamma} receptor IIA cytoplasmic domain in antibody dependent enhancement of dengue virus infection. // Gen Virol. — 2009,- Vol. 91.-№ l.-P. 103-111.

434. Mocarski E., Courcelle C.T. Cytomegalovirus and their replication. // In* book: Fields Virology Ed. by Knipe D, Howley P. -2001. P. 2629-2673.

435. Mocarski E.S. Cytomegalovirus: biology and replication. // In book: The human herpesviruses. Ed. by Roizman B, Whitley RJ, Lopez C. New York. 1993. - P. 173-226.

436. Mocarski E.S., Liu A.C., Spaete R.R. Structure and variability of the a sequence in the genome of human cytomegalovirus (Towne strain). // Gen Virol. 1987. - № 8. - P. 2223-2230.

437. Mocarski E.S. Cytomegalovirus biology and replication. In: Roizman B, Whitley R, Lopez C, eds. The Human Herpesviruses. // New York: Raven Press. 1993. - P. 173-226.

438. Monath T Prospects for development of a vaccine against the West Nile virus. // Ann N Y Acad Sci. -2001. -№951.-P. 1-12.

439. Monath T.P. Ecology of Marburg and Ebola viruses: speculations and direction for future research. // Infect Dis. 1999. - № 179. - P. 127-138.

440. Monath T.P., Nystrom R.R. Detection of yellow fever virus in serum by enzyme immunoaasay. //Am J. Trop Med Hyg. 1984.-Vol. 33.-№l.-P. 151-157.

441. Monath T.P., Tsai T.F. Flaviviruses. / Clinical Virology. Eds.Richman DD et al. New York. 1977.- P. 1133-1186.

442. Mourton C., Bearzotti M., Piechaczyk M. et al. Antigen-capture ELISA for viral haemorrhagic septicaemia virus serotype I. // Virol Methods. 1990. - Vol. 29. - № 3. - P. 325333.

443. Moore J.P., Sattentau Q.J., Clapham P.R. Enhancement of soluble CD4-mediated HIV neutralization and gp 120 binding by CD4 autoantibodies and monoclonal antibodies. // AIDS Res Hum Retroviruses. 1990.-Vol. 6.-№ ll.-P. 1273-1279.

444. Moore J.P., McCutchan F.E., Poon S.W. et al. Exploration of antigenic variation in gpl20 from clades A through F of human immunodeficiency virus type 1 by using monoclonal antibodies. // Virol. 1994. - Vol. 68. - № 12. - P. 8350-8364.

445. Morens D.M., Larsen L.K., Halstead S.B. Study of the distribution of antibody dependent enhancement determinants on dengue 2 isolates using dengue 2-derived monoclonal antibodies. // Med Virol. 1987. - Vol. 22. -№2.-P. 163-167.

446. Morrey J.D., Taro B.S., Siddharthan V. et al. Efficacy of orally administered T-705 pyrazine analog on lethal West Nile infection in rodents. // Antiviral Res. 2008. - Vol. 80. - № 3. - P. 377-379.

447. Morvan J., Besselaar T., Fontenille D. et al. Antigenic variations in West Nile virus strains isolated in Madagascar since 1978.//Res Virol. 1990.-Vol. 141. -№ 6. - P. 667-676.

448. Mourton C., Romestand B., de Kinkelin P. et al. Highly sensitive immunoassay for direct diagnosis of viral hemorrhagic septicemia which uses antinucleocapsid monoclonal antibodies. // Clin Microbiol. 1992. - Vol. 30. - № 9. - P. 2338-2345.

449. Mulvaney S.P., Cole C.L., Kniller M.D. et al. Rapid, femtomolar bioassays in complex matrices combining microfluidics and magnetoelectronics. // Biosens Bioelectron. 2007. - Vol. 23. -№2.-P. 191-200.

450. Murphy F.A., van der Groen G., Whitfield S.G. et al. Ebola and Marburg virus morphology and taxonomy. In: Pattyn SR (ed) Ebola virus haemorrhagic fever. // Elsevier North-Holland. -1978. -Amsterdam. P. 61-68.

451. Murphy F.A., Simpson D.I., Whitfield S.G. et al. Marburg virus infection in monkeys. Ultrastructural studies. // Lab Invest. 1971. - Vol. 24. - № 4. - P. 279-291.

452. Nasci R.S., White D.J., Stirling H. et al. West Nile virus isolates from mosquitoes in New York and New Jersey, 1999. // Emerg Infect Dis. 2001. - Vol. 7. - № 4. - P. 626-630.

453. Ndayimirije N., Kindhauser M.K. Marburg hemorrhagic fever in Angola—fighting fear and a lethal pathogen. //N Engl J. Med. -2005. Vol. 352.-№ 21. - P. 2155-2157.

454. Nemeth N., Gould D., Bowen R. et al. Natural and experimental West Nile virus infection in five raptor species. // Wildl Dis. 2006. - Vol. 42. - № 1. - P. 1-13.

455. Nichols B.J., Kenworthy A.K., Polishchuk R.S. et al. Rapid cycling of lipid rait markers between the cell surface and Golgi complex. // Cell Biol. 2001. - Vol. 153. - № 3. - P. 529-541.

456. Niikura M., Ikegami T., Saijo M. et al. Detection of Ebola viral antigen by enzyme-linked immunosorbent assay using a novel monoclonal antibody to nucleoprotein. // Clinical Microbiol. -2001. Vol. 39. - № 9. - P. 3267-3271.

457. Nigro G., Krzysztofiak A., Gattinara G. Rapid progression of HIV disease in children with cytomegalovirus DNAemia. // AIDS. 1996. - Vol. 10. - № 10. - P. 1127-1133.

458. Nikulina V.A., Kizim E.A., Massino Y.S. et al. Synergistic effects in antigen capture ELISA using three monoclonal antibodies directed at different epitopes of the same antigen. // Clin Chim Acta. 2000. - Vol. 299. - № 1-2. - P. 25-44.

459. Ning B.F., Zhu H.M., Zhou X. et al. Prokaryotic expression, purification of prM of JEV and preparation of monoclonal antibody. // Zhonghua Shi Yan He Lin Chuang Bing Du Xue Za Zhi. -2008. Vol. 22. - № 1. - P. 65-67.

460. Nissinen A.E., Makela S.M., Vuoristo J.T. et al. Immunological detection of in vitro formed phosphatidylethanol~an alcohol biomarker-with monoclonal antibodies. // Alcohol Clin Exp Res. 2008. - Vol. 32. - № 6. - P. 921-928.

461. Noda T., Sagara H, Suzuki E et al. Ebola virus VP40 drives the formation of virus-like filamentous particles along with GP. // Virol. 2002. - Vol. 76. - № 10. - P. 4855-4865.

462. Noda T., Watanabe S., Sagara H. et al. Mapping of the VP40-binding regions of the nucleoprotein of Ebola virus. // Virol. 2007. - Vol. 81. - № 7. - P. 3554-3562.

463. Novotny J., Rigoutsos I., Coleman D. et al. In silico structural and functional analysis of the human cytomegalovirus (HIIV5) genome. // Mol Biol. 2001. - Vol. 310. - № 5. - P. 1151-1166.

464. Nybakken G.E., Oliphant T., Johnson S. et al. Structural basis of West Nile virus neutralization by a therapeutic antibody. //Nature. 2005. - Vol. 437. - № 7059. - P. 764-769.

465. Obert G., Beyer C. An enzyme-linked immunosorbent assay using monoclonal antibodies for the detection of respiratory syncytial virus in clinical specimens. // Arch Virol. — 1988. Vol. 100. -№ 1-2.-P. 7-49.

466. Oh W.K., Song J. Hsp70 functions as a negative regulator of West Nile virus capsid protein through direct interaction. // Biochem Biophys Res Commun. 2006. - Vol. 347. - № 4. - P. 9941000.

467. Oie M., Ichihashi Y. Modification of vaccinia virus penetration proteins analyzed by monoclonal antibodies. // Virology. 1987. - Vol. 157. - № 2. - P. 449-459.

468. Omidfar K., Kashanian S., Paknejad M. et al. Production and characterization of monoclonal antibody against human serum albumin. // Hybridoma. 2007. - Vol. 26. - № 4. - P. 217-222.

469. Okware S.I., Omaswa F.G., Zaramba S. et al. An outbreak of Ebola in Uganda. // Trop Med Int Health. 2002. - Vol. 7. -№ 12.-P. 1068-1075.

470. Onyango C.O., Opolca M.L., Ksiazek T.G. et al. Laboratory diagnosis of Ebola hemorrhagic fever during an outbreak in Yambio, Sudan, 2004. // Infect Dis. 2007. - Vol. 196. - № 2. - P. 193-198.

471. Oladepo D.K., Klapper P.E., Marsden H.S. Peptide based enzyme-linked immunoassays for detection of anti-HSV-2 IgG in human sera. // Virol Methods. 2000. - Vol. 87. - № 1-2. - P. 6370.

472. Oliphant T., Engle M., Nybakken G.E. et al. Development of a humanized monoclonal antibody with therapeutic potential against West Nile virus. // Nat Med. 2005. - Vol. 11. - № 5. -P. 522-530.

473. Pantier R., Hannoun C., Dudar J. et al. Isolation of the West Nile virus in a Camargue horse stricken with encephalomyelitis. // Press med. 1966. - Vol. 74. - P. 2495.

474. Parida M., Posadas G., Inoue S. et al. Real-time reverse transcription loop-mediated isothermal amplification for rapid detection of West Nile virus. // Clin Microbiol. 2004. - Vol. 42. -№ l.-P. 257-263.

475. Pass R.F., Britt W.J., Stagno S. Cytomegalovirus. // In: Lennette EH, Lennette DA, Lennette ET, eds. Diagnostic Procedures for Viral, Rickettsial and Chlamydial Infections, 7th ed. Washington, DC: APHA. 1995. - P. 253-271.

476. Pattyn S., van der Groen G., Courteille G. et al. Isolation of Marburg-like virus from a case of haemorrhagic fever in Zaire. // Lancet. 1977. № l.-P. 573-574.

477. Pawlotsky J.M. Use and interpretation of hepatitis C virus diagnostic assays. // Clin Liver Dis. -2003. -№ 7.-P. 27-37.

478. Peiris J.S.M., Amerasighe F.P. West Nile frver. // Handbook of Zoonoses. 1994. Ed. Beran J. Boca Raton, Sect B. - P. 139-148.

479. Peiris J.S., Porterfield J.S., Roehrig J.T. Monoclonal antibodies against the flavivirus West Nile. // Gen Virol. 1982. - Vol. 58. - № 2. - P. 283-289.

480. Pereboev A., Borisevich V., Tsuladzea G., et al., Kazachinskaia E. et al. Genetically delivered antibody protects against West Nile virus. // Antivirol Research. 2008. - Vol. 77. - № l.-P. 6-13.

481. Perelman A., Stern J. Acute pancreatitis in West Nile Fever. // Am J. Trop Med Hyg. 1974. -Vol. 23.-№6.-P. 1150-1152.

482. Peters C.J., Sanchez A., Rollin P.E. et al. Filoviridae: Marburg and Ebola Viruses. // Fields Virology. 1996.-Vol. 39. - P. 1161-1176.

483. Petersen L.R., Roehrig J.T. West Nile virus: a reemerging global pathogen. // Emerg Infect Dis. 2001. - Vol. 7. - № 4. - P. 611-614.

484. Phelan M.L., Nock S. Generation of bioreagents for protein chips. // Proteomics. 2003. -Vol. 3.-№ 11.-P. 2123-2134.

485. Pletnev A.G., Karganova G.G., Dzhivanyan T.I. et al. Chimeric Langat/Dengue viruses protect mice from heterologous challenge with the highly virulent strains of tick-borne encephalitis virus. // Virology. 2000. - Vol. 274. - № 1. - P. 26-31.

486. Plummer G. Cytomegaloviruses of man and animals. // Prog Med Virol. 1973. - № 15. - P. 92-125.

487. Popow-Kraupp T., Kunz C. Detection of cytomegalovirus in clinical specimens by virus isolation and by a monoclonal antibody against the early nuclear antigen. // Med Virol. 1988. -Vol. 24. -№3. -P. 275-282.

488. Porterfield J.S. Encephalitis viruses and related viruses causing hemorrhagic disease. // Encyclopedia of Virology. 1994. Eds Webster RG, Granoff A. - Vol. 1. - P. 361-367.

489. Prehaud C., Hellebrand E., Coudrier D.et al. Recombinant Ebola virus nucleoprotein and glycoprotein (Gabon 94 strain) provide new tools for the detection of human infections. // Gen Virol. 1998. Vol. 79. - № 11. - P. 2565-2572.

490. Pringle Cr. The order Mononegavirales. // Arch Virol. 1991. - № 117. - P. 137-140.

491. Pujol F.H., Rodriguez I., Liprandi F. Production and characterization of monoclonal antibodies directed against the hepatitis B surface antigen. // Acta Cient Venez. 1992. - Vol. 43. - № 4. - P. 235-239.

492. Pujol F.H., Rodriguez I, Devesa M et al. A double sandwich monoclonal enzyme immunoassay for detection of hepatitis B surface antigen. // Immunoassay. 1993. - Vol. 14. - № 1-2.-P. 21-31.

493. Pupo-Antunez M., Rodriguez R., Alvarez M. et al. Development of a monoclonal antibody specific to a recombinant envelope protein from dengue virus type 4 expressed in Pichia pastoris. //Hybridoma.-2001. Vol. 20. - № l.-P. 35-41.

494. Rao R.S., Visuri S.R., McBride M.T. et al. Comparison of multiplexed techniques for detection of bacterial and viral proteins. // Proteome Res. 2004. - Vol. 3. - № 4. - P. 736-742.

495. Razonable R.R. Cytomegalovirus infection after liver transplantation: current concepts and challenges. // World J. Gastroenterol. 2008. - Vol. 14. - № 31. - P. 4849-4860.

496. Razumov I.A., Kazachinskaia E.I., Ternovoi V.A. et al. Neutralizing monoclonal antibodies aganst Russian strain of the West Nile virus. // Viral Immunology. 2005. - Vol. 18. - № 3. - P. 558-568.

497. Rawlinson W.D., Zeng F., Farrell H.E. et al. The murine cytomegalovirus (MCMV) homolog of the HCMV phosphotransferase (UL97(pk)) gene. // Virology. 1997. - Vol. 233. - № 2.-P. 358-363.

498. Reap E.A., Morris J., Dryga S.A. et al. Development and preclinical evaluation- of an alphavirus replicon particle vaccine for cytomegalovirus. // Vaccine. 2007. - Vol. 25. - № 42. -P. 7441-7449.

499. Regnery R.L., Johnson K.M., Kiley M.P. Virion nucleic acid of Ebola virus. // Virol. 1980. - № 36. - P. 465-469.

500. Rey F.A., Heinz F.X., Mandl C. et al. The envelope glycoprotein from tick-borne encephalitis virus at 2 A resolution. // Nature. 1995. - Vol. 375. - № 6529. - P. 291-298.

501. Revello M.G., Gerna G. Diagnosis and management of human cytomegalovirus infection in the mother, fetus, and newborn infant. // Clin Microbiol Rev. 2002. - Vol. 15. - № 4. - P. 680715.

502. Rios M., Daniel S., Dayton A.I. et al. In vitro evaluation of the protective role of human antibodies to West Nile virus (WNV) produced during natural WNV infection. // Infect Dis. -2008. Vol. 198. № 9. - P. 1300-1308.

503. Rios M., Zhang M.J., Grinev A. et al. Monocytes-macrophages are a potential target in human infection with West Nile virus through blood transfusion. // Transfusion. 2006. - Vol. 46. -№4. - P. 659-667.

504. Robertson W.R., Lambert A., Loveridge N. The role of modern bioassays in clinical endocrinology. / Clinical Endocrinology. 1987. - Vol. 27. - № 2. - P. 259-278.

505. Roizman B., Carmichael L.E., Deinhardt F. et al. Herpesviridae. Definition, provisional nomenclature, and taxonomy. The Herpesvirus Study Group, the International Committee on Taxonomy of Viruses. // Intervirology. 1981. - № 16. - P. 201-217.

506. Roehring J., Mathews J., Trent D. Identification of epitopes on the glycoprotein of Saint Louis encephalitis virus using monoclonal antibodies. // Virology. 1983. - Vol. 128. - № 1. - P. 118-126.

507. Roehrig J.T., Nash D., Maldin B. et al. Persistence of virus-reactive serum immunoglobulin m antibody in confirmed west nile virus encephalitis cases. // Emerg Infect Dis. 2003. - Vol. 9. -№ 3. - P. 376-379.

508. Roizman B., Sear A.E. Herpes simplex viruses and their replication. // In book: Virology, Ed. by Fielda BN, Knipe DM, Chanock RM E et al. // New York. 1990. - P. 1795-1841.

509. Rondini S., Pingle M.R., Das S. et al. Development of multiplex PCR-ligase detection reaction assay for detection of West Nile virus. // Clin Microbiol. 2008. - Vol. 46. - № 7. - P. 2269-2279.

510. Rodrigues JA, Höfling JF, Azevedo RA et al. Production of monoclonal antibodies for detection of a secreted aspartyl proteinase from Candida spp. in biologic specimens. // I-Iybridoma. 2007. - Vol. 26. - № 4. - P. 201-210.

511. Ryabchikova E., Strelets L., Kolesnikova L. et al. Respiratory Marburg virus infection in guinea pigs. // Arch Virol. 1996. - Vol. 141. - № 11. - P. 2177-2190.

512. Roehrig J.T., Nash D., Maldin B. et al. Persistence of virus-reactive serum immunoglobulin m antibody in confirmed west nile virus encephalitis cases. // Emerg Infect Dis. 2003. - Vol. 9. -№ 3. - P. 376-379.

513. Sagedal S., Nordal K.P., Hartmann A. et al. A prospective study of the natural course of cytomegalovirus infection and disease in renal allograft recipients. // Transplantation. 2000. -Vol. 70. № 8.-P. 1166-1174.

514. Saijo M., Niikura M., Maeda A. et al. Characterization of monoclonal antibodies to Marburg virus nucleoprotein (NP) that can be used for NP-capture enzyme linked immunosorbent assay. //Med Virol. - 2005. - Vol. 76.-№ 1.-P. 111-118.

515. Saijo M., Ogino T., Taguchi F. et al. Recombinant nucleocapsid protein-based IgG enzyme-linked immunosorbent assay for the serological diagnosis of SARS. // Virol Methods. 2005. -Vol. 125. -№2.-P. 181-186.

516. Saij o M., Tang Q., Shimayi B. et al. Antigen-capture enzyme-linked immunosorbent assay for the diagnosis of crimean-congo hemorrhagic fever using a novel monoclonal antibody. // Med Virol. 2005. - Vol. 77. - № 1. - P. 83-88.

517. Saijo M, Niikura M, Morikawa S et al. Enzyme-linked immunosorbent asseys for detection of antibodies to Ebola and Marburg viruses using recombinant nucleoproteins. // Clin Microbiol. -2001. Vol. 39. - № l.-P. 1-7.

518. Salah F., Demerdash Z., Shaker Z. et al. A monoclonal antibody against Schistosoma haematobium soluble egg antigen: efficacy for diagnosis and monitoring of cure of S. haematobium infection. // Parasitol Res. 2000. - Vol. 86. - № 1. - P. 74-80.

519. Samina I, Margalit J, Peleg J. Isolation of viruses from mosquitoes of the Negev, Israel. // Trans R Soc Trap Med Hyg. 1986. - Vol. 80. - № 3. - P. 471-472.

520. Samina I., Margalit J., Peleg J. Isolation of viruses from mosquitoes of the Negev, Israel. // Trans R Soc Trap Med Hyg. 1986. - Vol. 80. - № 3. - P. 471-472.

521. Samuel M.A., Diamond M.S. Alpha/beta interferon protects against lethal West Nile virus infection by restricting cellular tropism and enhancing neuronal survival. // Virol. 2005. - Vol. 79.-№21.-P. 13350-13361.

522. Sanger F., Donelson A.R., Coulson H.K. et al. Use of DNA polymerase I primed by a synthetic oligonucleotide to determine a nucleotide sequence in phage fl DNA. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1973. - Vol. 70. - № 4. - P. 1209 - 1213.

523. Sanger F., Nicklen S and Coulson A. R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977. - Vol. 74. - № 12. - P. 5463 - 5467.

524. Sanchez A., Killey M.P., Holloway B.P. et al. Sequence analysis of the Ebola virus genom: organization, genetic elemets, and comparison with the genom of Marburg virus. // Virus Res. -1993.-№29.-P. 215-240.

525. Sanchez A., Trappier S.G., Many B.W. et al. The virion glycoproteins of Ebola viruses are encoded in two readieng frames and are expressed through transcriptional editing. // Proc Natl Acad Sci USA. 1996. - № 93. - P. 3602-3607.

526. Sanchez A., Geisbert T.W., Feldmann H. Marburg and Ebola viruses. In Fields Virology 5th edn, (ed. Knipe DM, Howley PM, editors). 2007. - Vol. l.-P. 1409-1448.

527. Sandvik T., Krogsrud J. Evaluation of an antigen-capture ELISA for detection of bovine viral diarrhea virus in cattle blood samples. // Vet Diagn Invest. 1995. - Vol. 7. - № l.-P. 6571.

528. Sánchez M.D., Pierson T.C., McAllister D. et al. Characterization of neutralizing antibodies to West Nile virus. // Virology. 2005. - Vol. 336. - № 1. - P. 70-82.

529. Sanchez A., Killey M.P., Holloway B.P. et al. Sequence analysis of the Ebola virus genom: organization, genetic elemets, and comparison with the genom of Marburg virus. // Virus Res. -1993. -№29.-P. 215-240.

530. Sansonno D., Lauletta G., Dammacco F. Detection and quantitation of HCV core protein in single hepatocytes by means of laser capture microdissection and enzyme-linked immunosorbent assay. // Viral Hepat. 2004. - Vol. 11. - № 1. - P. 27-32.

531. Sanna P.P., Williamson R.A., De Logu A. et al. Directed selection of recombinant human monoclonal antibodies to herpes simplex virus glycoproteins from phage display libraries. // Proc Natl Acad Sci USA. 1995. - Vol. 92. - № 14. - P. 6439-6443.

532. Sarov I., Abady I. The morphogenesis of human cytomegalovirus. Isolation and polypeptide characterization of cytomegalovirions and dense bodies. // Virology. 1975. - № 66. - P. 464473.

533. Science Daily, 9 января, 2005. // Ebola virus: from Wildlife to dogs.

534. Sciense News, Aug.31, 2005. Poaching, logging and outbreaks of Ebola threaten central African gorillas and chimpanzees.

535. Scianimanico S., Schoehn G., Timmins J. et al. Membrane association induces a conformational change in the Ebola virus matrix protein. // EMBO. 2000. - Vol. 19. - № 24. - P. 6732-6741.

536. Scherret J.H., Poidinger M., Mackenzie J.S. et al. The relationships between West Nile and ICunjin viruses. / Emerg Infect Dis. 2001. - Vol. 7. - № 4. - P. 697-705.

537. Scheppo-Bergling J. Diffusion influenced binary reactive processes in membranes involving identical particles: a Monte Carlo study. // Biophys Chem. 1995. - Vol. 56. - № 3. - P. 227-239.

538. Schafer P., Tenschert W., Cremaschi L. et al. Area under the viraemia curve versus absolute viral load: utility for predicting symptomatic cytomegalovirus infections in kidney transplant patients. // Med. Virol. 2001. - № 65. - P. 85-89.

539. Schepp-Berglind J., Luo M., Wang D. et al. Complex adenovirus-mediated expression of West Nile virus С, PreM, E, and NS1 proteins induces both humoral and cellular immune responses. // Clin Vaccine Immunol. 2007. - Vol. 14. - № 9. - P. 1117-1126.

540. Schirm J., Timmerije W., van der Bij W. et al. Rapid detection of infectious cytomegalovirus in blood with the aid of monoclonal antibodies. // Med Virol. 1987. - Vol. 23. - № 1. - P. 31-40.285

541. Schlesinger J.J., Foltzer M., Chapman S. The Fc portion of antibody to yellow fever virus NS1 is a determinant of protection against YF encephalitis in mice. // Virology. 1993. - Vol. 192. -№ l.-P. 132-141.

542. Schleiss M.R. Comparison of vaccine strategies against congenital CMV infection in the guinea pig model. // Clin Virol. 2008. - Vol. 41. - № 3. - P. 224-230.

543. Schnittler H.J., Maimer F., Drenckhahn D. et al. Replication of Marburg virus in human endothelial cells. A possible mechanism for development of viral hemorrhagic disease. // Clin Invest. 1993. -№91.-P. 1301-1309.

544. Schnittler H.J., Mahner F., Drenckhahn D. et al. Replication of Marburg virus in human endothelial cells. Apossible mechanism for the development of viral hemorragic disease. // Clin Invest. 1993. - Vol. 91. - № 4. - P. 1301-1309.

545. Schmaljolm C., Cui Y., Kerby S. et al. Production and characterization of human monoclonal antibody Fab fragments to vaccinia virus from a phage-display combinatorial library. //Virology. 1999.-Vol. 258.-№ l.-P. 189-200.

546. Schmidt J.R., Elmansoury H.K. Natural and experimental infection of egyptian equines with West Nile virus. // Ann Trop Med Parasitol. 1963. - № 57. - P. 415-427.

547. Scott G.M., Ng H.L., Morton C.J. et al. Murine cytomegalovirus resistant to antivirals has genetic correlates with human cytomegalovirus. // Gen Virol. 2005, - Vol. 86. - № 8. - P. 21412151.

548. Sehr P., Zumbach K., Pawlita M. A generic capture ELISA for recombinant proteins fused to glutathione S-transferase: validation for HPV serology. // Immunol. Meth. 2001. - Vol. 253. P. 153-162.

549. Sellrie F., Schenk J.A., Behrsing O. et al. Cloning and characterization of a single chain antibody to glucose oxidase from a murine hybridoma. // J. Biochem Мої Biol. 2007. - Vol. 40. -№6.-P. 875-880.

550. Seme K., Poljak M., Babic D.Z. et al. The role of core antigen detection in management of hepatitis C: a critical review. // Clin Virol. 2005. - Vol. 32. - № 2. - P. 92-101.

551. Seong S.Y., Choi C.Y. Current status of protein chip development in terms of fabrication and application. // Proteomics. 2003. - Vol. 3. - № 11. - P. 2176-2189.

552. Shah RA, Joseph MC, Butchaiah G et al. Detection of rinderpest virus using N-protein monoclonal antibodies. // Trop Anim Health Prod. 2004. - Vol. 36. - № 1. - P. 11-25.

553. Shahhosseini S., Das D., Qiu X. et al. Production and characterization of monoclonal antibodies against different epitopes of Ebola virus antigens. // J. Virol Methods. 2007. - Vol. 143. -№ l.-P. 29-37.

554. Shannon A.D., Richards S.G.,. Kirkland P.D. et al. An antigen-capture ELISA detects pestivirus antigens in blood and tissues of immunotolerant carrier cattle. // Virol Methods. 1991. -Vol. 34.-№ l.-P. 1-12.

555. Shen C., Chang S., Yang S. et al. Cytomegalovirus is present in semen from a population of men seeking fertility evaluation. // Infectious Diseases. 1994. - Vol. 169. - № 1. - P. 222-223.

556. Shi C., Wei Q., Gin K.Y., Lam T.J. Production and characterization of monoclonal antibodies to a grouper iridovirus. // Virol Methods. 2003. - Vol. 107. - № 2. - P. 147-154.

557. Shich JR, Chi SC. Production of monoclonal antibodies against grouper nervous necrosis virus (GNNV) and development of an antigen capture ELISA. // Dis Aquat Organ. 2005. - Vol. 63. -№1.-P. 53-60.

558. Shim WB, Choi JG, Kim JY et al. Production of monoclonal antibody against Listeria monocytogenes and its application to immunochromatography strip test. // Microbiol Biotechnol. -2007. Vol. 17. -№7.-P. 1152-1161.

559. Shyu H.F., Chiao D.J., Liu H.W. et al. Monoclonal antibody-based enzyme immunoassay for detection of ricin. // Hybrid Hybridomics. 2002. - Vol. 21. - № 1. - P. 69-73.

560. Siegert R., Shu H.L., Slenczka W. et al. On the etiology of an unknown human infection originating from monkeys. // Dtsch Med Wochenschr. 1967. - Vol. 92. - № 51. - P. 2341-2343.

561. Siegert R., Shu H.L., Slenzcka W. et al. Zur Aetiologie einer unbekannet, von Affen ausgegangenen menschlichen Infektionskrankheit. // Dtssch Med Wochensch. 1972. - № 92. -P. 2341-2343.

562. Stephens J.C., Larkins A., James R.F., Rathbone B.J. Production of a monoclonal antibody against the 128 kDa (CagA) protein of Helicobacter pylori. // Immunol Methods. 1996. - Vol. 190. -№2.-P. 163-169.

563. Simpson D.I., Zlotnik I., Rutter D.A. Vervet monkey disease. Experiment infection of guinea pigs and monkeys with the causative agent. // Br J. Exp Pathol. 1968. - Vol. 49. - № 5. - P. 458464.

564. Simons K., Toomre D. Lipid rafts and signal transduction. // Nat Rev Mol Cell Biol. 2000. -Vol. 1. -№ l.-P. 31-9.

565. Stewart B.J., Houghton R.L., Morrow W.J.W. et al. Desing considerations for immunodiagnostics. // IVDT. 2006. - № 4. - P. 40-51.

566. Sinzger C., Jahn G. Human cytomegalovirus cell tropism and pathogenesis. // Intervirology. -№39.-P. 302-319.

567. Singh B.K., Ahuja S., Gulati B.R. Development of a neutralizing monoclonal antibody-based blocking ELISA for detection of equine herpesvirus 1 antibodies. // Vet Res Commun. 2004. -Vol. 28. - № 5. - P. 437-446.

568. Sithiprasasna R., Strickman D., Innis B.L. et al. ELISA for detecting dengue and Japanese encephalitis viral antigen in mosquitoes. // Ann Trop Med Parasitol. 1994. - Vol. 88. - № 4. - P. 397-404.

569. Smiley ML, Mar EC, Huang ES. Cytomegalovirus infection and viral-induced transformation of human endothelial cells. // Med Virol. 1988. - Vol. 25. - № 2. - P. 213-226.

570. Smith J.D., de Harven E. Herpes simplex virus and human cytomegalovirus replication in WI-38 cells. II. An ultrastructural study of viral penetration. // Virol. 1974. - Vol. 14. - № 4. - P. 945-956.

571. Smith D.H., Johnson B.K., Isaacson M. et al. Marburg virus disease in Kenya. // Lancet. -1982. -№ l.-P. 816-820.

572. Smith C.E., Simpson D.I., Bowen E.T. Fatal human disease form vervet monkeys. // Lancet. 1967. -№2.-P. 1119-1121.

573. Smithburn K., Huges T.P., Burke A.W. et al. A neurotropic virus isolated from the blood of a native of Uganda. // Am J. Trop. Med. 1940. - Vol. 20. - P. 471-492.

574. Spaete R.R., Gehrz R.C., Landini M.P. Human cytomegalovirus structural proteins. // Gen Virol. 1994. - Vol. 75. - № 12. - P. 3287-3308.

575. Spaete R.R., Mocarski E.S. The alpha sequence of the cytomegalovirus genome functions as a cleavage/packaging signal for herpes simplex virus defective genomes. // Virol. 1985. - Vol. 54.-№3.-P. 817-824.

576. Spaete R.R., Gehrz R.C., Landini M.P. Human cytomegalovirus structural proteins. // Gen Virol. 1994. - Vol. 75. - № 12. - P. 3287-3308.

577. Splettstoesser W.D., Rahalison L., Grunow R. et al. / Evaluation of a standardized F1 capsular antigen capture ELISA test kit for the rapid diagnosis of plague. / FEMS Immunol Med Microbiol. 2004. - Vol. 41. - № 2. - P. 149-155.

578. Staczek J. Animal cytomegaloviruses. // Microbiol Rev. 1990. - № 54. - P. 247-265.

579. Stewart B.J., Houghton R.L., Morrow W.J.W. et al. Desing considerations for immunodiagnostics. // IVDT. 2006. - № 4. - P. 40-41.

580. Stibbs H.H. Monoclonal antibody-based enzyme immunoassay for Giardia lamblia antigen in human stool. // Clin Microbiol. 1989. - Vol. 27. - № 11. - P. 2582-2588.

581. Stirk P.R., Griffiths P.D. Use of monoclonal antibodies for the diagnosis of cytomegalovirus infection by the detection of early antigen fluorescent foci (DEAFF) in cell culture. // Med Virol. -1987. Vol. 21. - № 4. - P. 329-337.

582. Surtherland G.L., Nasci R.S. Detection of West Nile virus in large pools of mosquitoes. // J. Am Mosq Control Assos. 2007. - Vol. 23. - № 4. - P. 389-395.

583. Suter M., Butler J.E., Peterman J.H. The immunochemistry of sandwich ELISAs~III. The stoichiometry and efficacy of the protein-avidin-biotin capture (PABC) system. // Mol Immunol. -1989. Vol. 26. - № 3. - P. 221-230.

584. Suter M., Butler J.E. The immunochemistry of sandwich ELISAs. II. A novel system prevents the denaturation of capture antibodies. // Immunol Lett. 1986. - Vol. 13. - № 6. - P. 313-316.

585. Sutherland G.L., Nasci R.S. Detection of West Nile virus in large pools of mosquitoes. // J. Am Mosq Control Assoc. 2007. - Vol. 23. - № 4. - P. 389-395.

586. Swanepoel R., Leman P.A., Burt F.J. et al. Experimental inoculation of plants and animals with Ebola virus. // J. Emerg Infect Dis. 1996. - Vol. 2. - № 4. - P. 321-325.

587. Swenson D., Warfield K.L., Larsen T. et al. Monovalent virus-like particle vaccine protects guinea pigs and nonhuman primates aganst infection with multiple Marburg viruses. // Expert Rev Vaccines. 2008. - Vol. 7. - № 4. - P. 417-429.

588. Swenson D., Wang D., Luo M. et al. Complete protection of nonhuman primates against multistrain Ebola and Marburg virus infections. // Clin Vaccine Immunol. 2008. - Vol. 15. - № 3.-P. 460-467.

589. Tahori A.S., Sterk V.V., Goldblum N. Studies on the dynamics of experimental transmission of West Nile virus by Culex molestus. // Am J. Trop Med Hyg. 1955. - Vol. 4. - № 6. - P. 1015-1027.

590. Takada A., Watanabe S., Ito H. et al. Ebola virus glycoproteins. / Simposium on Marburg and Ebola viruses. Marburg, Germany. 2000. - Abstract. - P. 14.

591. Takada A., Watanabe S., Okazaki K. et al. Infectivity-Enhancing Antibodies to Ebola virus glycoprotein. // J. Virology. 2001. - Vol. 75. - № 5. - P. 2324-2330.

592. Tang Y., Ismail M.M., Saif Y.M. Development of antigen-capture enzyme-linked immunosorbent assay and RT-PCR for detection of turkey astroviruses. // Avian Dis. 2005. -Vol. 49. -№ 2. -P. 182-188.

593. Tanikawa T., Kurohane K., Imai Y. Production and characterization of IgA monoclonal antibody against ovalbumin. // Hybridoma. 2007. - Vol. 26. - № 5. - P. 328-332.

594. Tardei G., Ruta S., Chitu V. et al. Evaluation of immunoglobulin M (IgM) and IgG enzyme immunoassays in serologic diagnosis of West Nile Virus infection. // Clin Microbiol. 2000. -Vol. 38. -№6. - P. 2232-2239.

595. Taylor D.W., Voller A. The development and validation of a simple antigen detection ELISA for Plasmodium falciparum malaria. // Trans R Soc Trop Med Hyg. 1993. - Vol. 87. - № l.-P. 29-31.

596. Taylor C., Simmons R., Smith I. Development of immunoglobulin M capture enzyme-linked immunosorbent assay to differentiate human flavivirus infections occurring in Australia. // Clin Diagn Lab Immunol. 2005. - Vol. 12. - № 3. p. 371-374.

597. Theiler R.N., Compton T. Characterization of the signal peptide processing and membrane association of human cytomegalovirus glycoprotein O. // Biol Chem. 2001. - Vol. 276. - № 42. -P. 39226-39231.

598. Thiele G.M., Bicak M.S., Young A. et al. Rapid detection of cytomegalovirus by tissue culture, centrifugation, and immunofluorescence with a monoclonal antibody to an early nuclear antigen. // Virol Methods. 1987. - Vol. 16. - № 4. - P. 327-338.

599. Throsby M., Geuijen C., Goudsmit J. et al. Isolation and characterization of human monoclonal antibodies from individuals infected with West Nile Virus. // Virol. 2006. - Vol. 80. - № 14. - P. 6982-6992.

600. Tilson M.D., Ozsvath K.J., Hirose H. et al. A novel hypothesis to explain the hemorrhagic and connective tissue manifestations of Ebola virus infection. 11 Clinical immunology and immunopathology. 1996. - Vol. 81. - № 3. - P. 303-306.

601. Timmins J., Scianimanico S., Schoehn G. et al. Vesicular release of Ebola Virus matrix protein VP40. // Virology. 2001. - Vol. 283. - № 1. -P. 1-6.

602. Toedter G., Pearlman S., Hofheinz D. et al. Development of a monoclonal antibody-based p24 capsid antigen detection assay for HTLV-I, HTLV-II, and STLV-I infection. // AIDS Res Hum Retroviruses. 1992. - Vol. 8. - № 4. - P. 527-532.

603. Tomizuka K., Yoshida H., Uejima H. et al. Functional expression and germline transmission of a human chromosome fragment in chimaeric mice. // Nat Genet. 1997. - Vol. 16. - № 2. - P. 133-143.

604. Topilko A., Michelson S. Morphological and cytochemical analysis of human cytomegalovirus inoculum: correlation of free particles in inoculum with counterparts in infected cells. // Res Virol. 1994. - Vol. 145. - № 2. - P. 65-73.

605. Towbin H., Staekelin T., Gordon J. Electrohporetic transfer of proteins from Polyacrylamide gels tonitrocellulose sheets: Procedure and some applications. // Proc Natl Acad Sei USA. 1979. - Vol. 76. - № 9. - P. 4350-4354.

606. Towner J.S., Sealy T.K., Khristova M.L. et al. Newly discovered ebola virus associated with -hemorrhagic fever outbreak in Uganda. // PLoS Pathog. 2008. - Vol. 4. - № 11. - P. el000212.

607. Towner J.S., Rollin P.E., Bausch D.G. et al. Rapid diagnosis of Ebola fever by reverse transcription-PCR in an outbreak setting and assessment of patient viral load as a predictor of outcome. // Virol. 2004. - Vol 78. - № 8. - P. 4330-4341.

608. Towner J.S., Khristova M.L., Sealy T.K. et al. Marburgvirus genomics and association with a large hemorrhagic fever outbreak in Angola. // Virol. 2006. - Vol. 80. - № 13. - P. 64976516.

609. Towner J.S., Pourrut X., Albarino C.G. et al. Marburg virus infection detected in a common African bat. // PLoS One. 2007. - Vol. 2. - № 1. - P. e764.

610. Tsai T.F., Popovici F., Cernescu C. et al. West Nile encephalitis epidemic in southeastern Romania. // Lancet. 1998. - Vol. 352. - № 9130. - P. 767-771.

611. Turell M.J., Bressler D.S., Rossi C.A. Short report: lack of virus replication in arthropods after intrathoracic inoculation of Ebola Reston virus. // American J. Trop Med Hyg. 1996. - № 55. - P.89-90.

612. Tuteja U., Kumar S., Shukla J. et al. Simultaneous direct detection of toxigenic and non-toxigenic Vibrio cholerae from rectal swabs and environmental samples by sandwich ELISA. // Med Microbiol. 2007. - Vol. 56. - № 10. - P. 1340-1345.

613. Urdaneta H., Rangel A., Martins M.S. et al. Entamoeba histolytica: fecal antigen capture immunoassay for the diagnosis of enteric amebiasis by a monoclonal antibody. // Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 1996.-Vol. 38. - № 1.-P. 39-44.

614. Van der Groen G., Elliot L.H. Use of betapropionolactone inactivated Ebola, Marburg and Lassa intracellular antigens in immunofluorescent antibody assay. // Ann Soc Belg Med Trop. -1982. Vol. 62. - № 1. - P. 49-54.

615. Velumani S., Du Q., Fenner B.J. et al. Development of an antigen-capture ELISA for detection of H7 subtype avian influenza from experimentally infected chickens. // Virol Methods. 2008. - Vol. 147. - № 2. - P. 219-225.

616. Vinayak V.K., Dutt P., Mehta S. Uses and limitations of monoclonal antibodies to Giardia lamblia-specific 66-kDa copro-antigen in copro-immunodiagnosis of giardiasis. // FEMS Immunol Med Microbiol. 1993. - Vol. 6. - № 1. - P. 37-44.

617. Volchkov V.E., Chepurnov A.A., Volchkova V.A. et al. Molecular characterization of guinea pig adapted variants of Ebola virus. // Virology. - 2000. - Vol. 277. -№ 1. - P.147-155.

618. Volchkov V.E., Volchkova V.A., Muhlberger E. et al. Expression strategy of the Ebola virus GP gene: implication of the transcriptional RNA editing. // Marburg. 2000. - Symposium on Marburg and Ebola viruses. - Abstract. - P. 4.

619. Volchkov V.E., Becker S., Volchkova V.A. et al. GP mRNA of Ebola virus is edited by the Ebola virus polymerase and by T7 and vaccinia virus polymerases. // Virology. 1995. - Vol. 214 -№ 2. - P. 421-430.

620. Volchkov V.E., Blinov V.M., Netesov S.V. The envelope glycoprotein of Ebola virus contains an immunosuppressive-like domain similar to oncogenic retroviruses. // FEBS Lett. -1992. Vol. 305.-№ 3. - P. 181-184.

621. Volchkov V.E., Feldmann H., Volchkova V.A. et al. Processing of the Ebola virus glycoprotein convertase fürin. // Proc Natl Acad Sei USA. 1998. - Vol. 95. - № 10. - P. 57625767.

622. Volchkov V.E., Volchkova V.A., Slenczka W. et al. Release of viral glycoproteins during Ebola virus infection.//Virology. 1998. - Vol. 245.-№ l.-P. 110-119.

623. Volchkov V.E., Blinov V.M., Netesov S.V. The envelope glycoprotein of Ebola virus contains an immunosuppressive-like domain similar to oncogenic retroviruses. // FEBS Lett. -1992.-Vol. 305. -№3. P. 181-184.

624. Wang D., Hevey M., Juompan L.Y. et al. Complex adenovirus-vectored vaccine protects guinea pigs from three strains of Marburg virus challenges. // Virology. 2006. - Vol. 353. - № 2. - P. 324-332.

625. Wang T., Town T., Alexopoulou L. et al. Toll-like receptor 3 mediates West Nile virus entry into the brain causing lethal encephalitis. // Nat Med. 2004. - Vol. 10. - № 12. - P. 1366-1373.

626. Wang T., Anderson J.F., Magnarelli L.A. et al. Immunization of mice against West Nile virus with,recombinant envelope protein. // Immunol. 2001. - Vol. 167. - № 9. - P. 5273-5277.

627. Wang T., Magnarelli L.A., Anderson J.F. et al. A recombinant envelope protein-based enzyme-linked immunosorbent assay for West Nile virus serodiagnosis. // Vector Borne Zoonotic Dis. 2002. - Vol. 2. - № 2. - P. 105-109.

628. Wang J., Lin Z., Qiao C.X. et al. Characterization of a novel anti-DR5 monoclonal antibody WD1 with the potential to induce tumor cell apoptosis. // Cell Mol Immunol. 2008. - Vol. 5. - № l.-P. 55-60.

629. Wang T., Magnarelli L.A., Anderson J.F. et al. A recombinant envelope protein-based enzyme-linked immunosorbent assay for West Nile virus serodiagnosis. // Vector Borne Zoonotic Dis. 2002. - Vol. 2. - № 2. - P. 105-109.

630. Wang W., Yang J.J., Liu L. et al. Generation and characterization of monoclonal antibody against HSD11B1. // Xi Bao Yu Fen Zi Mian Yi Xue Za Zhi. 2008. - Vol. 24. - № 1. - P. 38-40.

631. Warfield K.L., Posten N.A., Swenson D.L. et al. Filovirus-like particles produced in insect cells: immunogenicity and protection in rodents. // Infect Dis. 2007. - Vol. 196. - № 2. - P. 421429.

632. Warfield K.L., Swenson D.L., Olinger G.G. et al. Ebola virus-like particle-based vaccine protects nonhuman primates against lethal Ebola virus challenge. // Infect Dis. 2007. - Vol. 196. - № 2. - P. 430-437.

633. Warfield K.L., Alves D.A., Bradfute S.B. et al. Development of a model for marburgvirus based on severe-combined immunodeficiency mice. // Virol. 2007. - № 4. - P. 108-112.

634. Watanabe S., Nöda T., Kawaoka Y. Functional mapping of nucleoprotein of Ebola virus. // Virol. -2006. Vol. 80. -№ 8.-P. 3743-3751.

635. Weber B., Fall E.M., Berger A., Doerr H.W. Screening of blood donors for human cytomegalovirus (HCMV) IgG antibody with an enzyme immunoassay using recombinant antigens.//Clin Virol. 1999. - Vol. 14. -№3.-P. 173-181.

636. Webley S.D., Francis R.J., Pedley R.B. et al. Measurement of the critical DNA lesions produced by antibody-directed enzyme prodrug therapy (ADEPT) in vitro, in vivo and in clinical material. // Br J. Cancer. 2001. - Vol. 84. - № 12. - P. 1671-1676.

637. Weidmann M., Mühiberger E., Hufert F.T. Rapid detection protocol for filoviruses. // Clin Virol. 2004. - Vol. 30. - № 1. - P. 94-9.

638. Weissenhorn W., Carfi A., Lee K.H. et al. Crystal structure of the Ebola virus membrane fusion subunit, GP2, from the envelope glycoprotein ectodomain. // Mol Cell. 1998. - Vol. 2. -№5.-P. 605-616.

639. West K., Bogdan J., Hamel A. et al. A comparison of diagnostic methods for the detection of bovine respiratory syncytial virus in experimental clinical specimens. // Can J. Vet Res. 1998. -Vol. 62. - № 4. - P. 245-250.

640. WHO report 2007. // Outbreak news. Marburg haemorrhagic fever, Uganda.

641. WHO Report 1978. International Commission to Sudan. Ebola hemorrhagic fever in Sudan. // № 56. P. 247-270.

642. WHO Report, 29 January 2009. // Ebola Reston virus detected pigs in the Philippines.

643. WHO repots 1995-2007 of Ebola haemorragic fever.

644. Will C., Muhlberger E., Linder D. et al. Marburg virus gene 4 encodes the virion membrane protein, a type I transmembrane glycoprotein. // Virol. 1993. - № 67. - P. 1203-1210.

645. Wilson J.A., Hevey M., Bakken R. et al. Epitopes involved in antibody-mediated protection from Ebola virus. // Science. 2000. - Vol. 287. - № 5458. - P. 1664-1666.

646. Williamson RA, Lazzarotto T, Sanna PP et al. Use of recombinant human antibody fragments for detection of cytomegalovirus antigenemia. // Clin Microbiol. 1997. - Vol. 35. -№ 8. - P. 2047-2050.

647. Wilson J.A., Hart M.K. Protection from Ebola virus mediated by cytotoxic T lymphocytes specific for the viral nucleoprotein. // Virol. 2001. - Vol. 75. - № 6. - P. 2660-2664.

648. Wirgart B.Z., Grillner L. Early detection of cytomegalovirus in cell culture by a monoclonal antibody. //Virol Methods. 1986. - Vol. 14. - № 1. - P. 65-69.

649. Wolf D.G., Spector S.A. Early diagnosis of human cytomegalovirus disease in transplant recipients by DNA amplification in plasma. // Transplantation. 1993. - Vol. 56. - № 2. - P. 330o o .j

650. Woolf N.K., Jaquish D.V., Koelirn F.J. Transplacental murine cytomegalovirus infection in the brain of SCID mice. // Virol. 2007. - 10.1186/1743-422X-4-26.

651. Wright H.T.Jr., Goodheart C.R., Lielausis A. Human cytomegalovirus. Morphology by negative staining. // Virology. 1964. - № 23. - P. 419-424.

652. Wu A.M., Senter P.D. Arming antibodies: prospects and challenges for immunoconjugates. //NatBiotechnol. -2005.- Vol. 23.-№ 9.-P. 1137-1146.

653. Xu G., Weber P., Hu Q. et al. / A simple sandwich ELISA (WELYSSA) for the detection of lyssavirus nucleocapsid in rabies suspected specimens using mouse monoclonal antibodies. / Biologicals. 2007. - Vol. 35. - № 4. - P. 297-302.

654. Xu G.L., Yan J.X., Larrous F. et al. Application of McAbs against rabies nucleocapsid in diagnosis of rabies street virus. // Zhonghua Liu Xing Bing Xue Za Zhi. 2005. - Vol. 26. - № 2. -P.113-115.

655. Yan K.T., Ellis W.A., Montgomery J.M. et al. Development of an immunomagnetic antigen capture system for detecting leptospires in bovine urine. // Res Vet Sei. 1998. - Vol. 64. - № 2. — P. 119-124.

656. Yang Z., Delgado R., Xu. L et al. Distinct cellular interactions of secreted and transmembrane Ebola virus glycoproteins. // Science. 1998. - № 279. - P. 1034-1037.

657. Yang M., Berhane Y., Salo T. et al. Development and application of monoclonal antibodies against avian influenza virus nucleoprotein. // Virol Methods. 2008. - Vol. 147. - № 2. - P. 265274.

658. Yang J., Wang H., Jiang Y. et al. Development of an enzyme-linked immune-sorbent assay (ELISA) method for carbofuran residues. // Molecules. 2008. - Vol. 13. - № 4. - P. 871-881.

659. Yue Y., Barry P.A. Rhesus cytomegalovirus a nonhuman primate model for the study of human cytomegalovirus. // Adv Virus Res. 2008. - № 72. - P. 207-226.

660. Yucel F., Manav A., Ba§alp A. Production and characterization of monoclonal antibodies against hepatitis B viruses and application of a quick sandwich ELISA. // Hybrid Hybridomics. -2003. Vol. 22. - № 3. - P. 173-7.

661. Zeitlin L., Olmsted S.S., Moench T.R. et al. A humanized monoclonal antibody produced in transgenic plants for immunoprotection of the vagina against genital herpes. // Nat Biotechnol. -1998. Vol. 16. -№ 13.-P. 1361-4.

662. Zhai J., Palacios G., Towner J.S. et al. Rapid molecular strategy for filovirus detection and characterization. // Clin Microbiol. 2007. - Vol. 45. - № 1. - P. 224-226.

663. Zhao Z.J., Liu X.M. Preparation of monoclonal antibody and development of enzyme-linked immunosorbent assay specific for Escherichia coli 0157 in foods. // Biomed Environ Sci. 2005. -Vol. 18. -№ 4. -P. 254-259.

664. Zhou G.Z., Gui L., Li Z.Q. et al. Generation and characterization of monoclonal antibodies against the flounder Paralichthys olivaceus rhabdovirus. // Virol Methods. 2008. - Vol. 148. - № 1-2.-P. 205-210.

665. Zhu X., Xu L., Lou Y. et al. Preparation of specific monoclonal antibodies (MAbs) against heavy metals: MAbs that recognize chelated cadmium ions. // Agric Food Chem. 2007. - Vol. 55. -№ 19.-P. 7648-7653.

666. Zweygberg Wirgart B., Landqvist M., Hokeberg I. et al. Early detection of cytomegalovirus in cell culture by a new monoclonal antibody, CCH2. // Virol Methods. 1990. - Vol. 27. - № 2. -P. 211-219.m1. РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ1. U9)