Оценка живой реассортантной гриппозной вакцины по индукции В - и Т- клеточной иммунологической памяти тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.36, кандидат медицинских наук Кореньков, Даниил Анатольевич

• Кореньков, Даниил Анатольевич
• кандидат медицинских наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Кореньков, Даниил Анатольевич

Оглавление

Список сокращений.

ВВЕДЕНИЕ.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1 Теория иммунологической памяти.

1.1.1. Формирование и гомеостаз Т-клеток иммунологической памяти.

1.1.2. Формирование и гомеостаз В-клеток иммунологической памяти.

1.2. Иммунологическая память при гриппозной инфекции.

1.2.1. Т-клеточная иммунологическая память.

1.2.2. В-клеточная иммунологическая память.

1.3. Иммунологическая память при противогриппозной вакцинации.

1.3.1. Т-клеточная иммунологическая память.

1.3.2. В-клеточная иммунологическая память.

1.4. Методы оценки иммунологической памяти.

1.4.1. Т-клеточная иммунологическая память.

1.4.2. В-клеточная иммунологическая память.

2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.

2.1. Животные.

2.2. Модель экспериментальной гриппозной инфекции и вакцинации.

2.3. Вакцинируемые контингента и вакцинные штаммы.

2.4. Выделение и приготовление суспензии лимфоцитов НАЛТ мышей.

2.5. Выделение и приготовление суспензии лимфоцитов мононуклеаров периферической крови (МПК) людей.

2.6. Сорбция антигена на полистироловых планшетах для проведения 39 иммуноферментного анализа и тестов авидности.

2.7. IgA-антитела в секретах верхних дыхательных путей.

2.8. Определение авидности секреторных IgA-антител в тесте с мочевиной.

2.9. Определение авидности секреторных IgA-антител в динамическом варианте ИФА.

2.10. Антигемагглютинирующие сывороточные антитела.

2.11. Фенотипирование лимфоцитов МПК человека.

2.12. Вирусспецифические клетки в периферической крови людей.

2.13. Вирусспецифические Т-клетки в HAJTT мышей.

2.14. Статистический анализ данных.

3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

3.1. Оценка у людей В-клеточной иммунологической памяти по критерию авидитета локальных IgA-антител.

3.1.1. Адаптация методов оценки авидности локальных IgA на материале обследования не прививавшихся ЖГВ людей 18 — 20 лет.

3.1.2. Оценка авидности локальных IgA-антител у добровольцев 18 — 20 лет иммунизированных вакцинными штаммами для ЖГВ.

3.2. Оценка у людей Т-клеточной иммунологической памяти по выявлению в крови общих Т-лимфоцитов с мембранным фенотипом CD45RO+.

3.2.1. Т-лимфоциты иммунологической памяти, несущие мембранные маркеры CD45RO+, CD4+CD45RO+ и CD8+ CD45RO+.

3.2.2. Наивные Т-лимфоциты, несущие мембранные маркеры CD4+CD45RA+ и CD8+CD45RA+.

3.3. Оценка у людей и животных иммунологической памяти по тестированию вирусспецифических Т- и В-лимфоцитов.

3.3.1. Адаптация TRAP для оценки у людей вирусспецифической иммунологической памяти.

3.3.2. Специфические к вирусу гриппа A (H1N1) клетки иммунологической памяти людей, привитых ЖГВ.

3.3.3. Специфические к вирусу гриппа А (H1N1) клетки иммунологической памяти при экспериментальной гриппозной инфекции и вакцинации мышей.

4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Оценка живой реассортантной гриппозной вакцины по индукции В - и Т- клеточной иммунологической памяти»

Актуальность проблемы. Грипп, наряду с вирусными гепатитами и ВИЧ-инфекцией, является одной из главных вирусологических проблем. Мировой научной общественностью уделяется огромное внимание разработке методов предотвращения именно этих заболеваний. В настоящее время к самым эффективным способам борьбы с гриппом относят вакцинопрофилактику [66].

Качество противогриппозных вакцин, как и других вакцинных препаратов, оценивают по трем главным критериям: эпидемиологическая эффективность, безвредность и иммуногенность. До сих пор4 об иммуногенности гриппозных вакцин судят только по их способности стимулировать продукцию сывороточных антигемагглютинирующих антител. В последнее время развернута дискуссия о достаточности такой оценки [114].

Принцип вакцинации основан на создании у людей иммунологической памяти к возбудителю инфекции. За счет вакцинации организм при последующей встрече с патогеном отвечает ускоренной и усиленной мобилизацией факторов иммунной защиты. Поэтому совершенно логично, что главная задача вакцинальной иммунологии должна быть связана именно с оценкой препаратов по индукции иммунологической памяти [6, 72, 164]. В последние годы это направление активно развивается за рубежом [62, 72, 95, 140, 156]. В России подобные исследования не проводились.

Настоящая работа является первой попыткой комплексной оценки эффективности вакцинации людей по стимуляции В- и Т-клеточной памяти живыми реассортантными вакцинными штаммами, входящими в состав отечественной живой гриппозной вакцины (ЖГВ).

Цель исследования: изучить способность ЖГВ стимулировать В- и Т-клеточную иммунологическую память.

Задачи исследования:

1. Разработать методические приемы оценки иммунологической памяти у людей.

2. На материале обследования добровольцев 18 - 20 лет, привитых ЖГВ и не прививавшихся этой вакциной, а также в экспериментальном исследовании in vivo изучить:

- локальную В-клеточную память по критерию авидитета секреторных IgA-антител к вирусам гриппа;

- Т-клеточную память по выявлению общих циркулирующих лимфоцитов с мембранными маркерами CD45RO"1";

- Т-клеточную иммунологическую память по определению уровней вирусспецифических циркулирующих лимфоцитов.

Научная новизна работы.

1. Впервые осуществлено исследование у людей В-клеточной иммунологической памяти к вирусам гриппа А и В по критерию авидитета локальных IgA-антител, включающее оценку количественных характеристик скорости, интенсивности и прочности образования иммунных комплексов. Показано, что иммунизация ЖГВ повышает эти показатели, т.е. увеличивает продукцию высокоавидных антител в верхнем отделе респираторного тракта.

2. Впервые проведена оценка ЖГВ по индукции у людей общих циркулирующих Т-лимфоцитов иммунологической памяти фенотипов CD4+CD45RO+ и CD8+CD45RO+. Установлено, что введение ЖГВ вызывает увеличение уровня этих клеток в периферической крови.

3. Разработана модификация метода TRAP (T-cell recognition of antigen presenting cells by protein capture) для количественного определения у людей и животных специфических к вирусу гриппа А Т-клеток иммунологической памяти. С помощью данной методики показано, что вакцинация ЖГВ индуцирует продукцию этих клеток, отраженную в поствакцинальном увеличении их уровня в периферической крови.

4. Впервые осуществлено сравнение активности индукции на локальном уровне (назоассоциированная лимфоидная ткань мышей) вирусспецифических Т-клеток памяти при экспериментальной гриппозной инфекции и вакцинации животных живым реассортантным вирусом гриппа. Отмечено, что как при инфекции, так и при вакцинации происходит увеличение уровней вирусоспецифических CD8+CD44hl Т-лимфоцитов памяти в этой лимфоидной ткани.

Практическая значимость работы.

1. Разработан метод количественного измерения в иммуноферментном анализе авидности IgA-антител1 к вирусам гриппа А и В в секретах верхних дыхательных путей. Метод дает возможность характеризовать эти иммуноглобулины одновременно по трем параметрам: (i) титры антител; авидность антител с точки зрения (и) скорости и интенсивности соединения с антигеном, (iii) прочности соединения с антигеном.

2. Разработана модификация ТЯАР'для количественного выявления у людей циркулирующих в крови Т-клеток, специфических к вирусу гриппа А.

3. Эти методы могут быть использованы для оценки индукции В- и Т-клеточной иммунологической памяти у людей, привитых различными гриппозными вакцинами.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Однократная прививка ЖГВ взрослых лиц, уже контактировавших ранее с возбудителями гриппа, вызывает стимуляцию В- и Т-клеточной иммунологической памяти.

2. Даже люди практически одного возраста (18-20 лет) весьма гетерогенны по показателям предвакцинального состояния иммунологической памяти к вакцинному штамму вируса гриппа А, входящему в состав ЖГВ.

3. Обнаружена обратная зависимость между предвакцинальными значениями изученных параметров В- и Т-клеточной иммунологической памяти и их поствакцинальными изменениями.

4. Имеются значительные расхождения между данными оценки иммунологических свойств ЖГВ по конверсии титров сывороточных антител в реакции торможения гемагглютинации, с одной стороны, и по тестированию поствакцинальных изменений уровней вирусспецифических Т-клеток памяти, с другой.

Апробация работы. Материалы диссертации доложены на X Всероссийском Научном Форуме с международным участием им. акад. В.И. Йоффе «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге» (Санкт-Петербург, 29 мая - 1 июня 2006 г.); Объединенном Иммунологическом Форуме (Санкт-Петербург, 30 июня — 5 июля 2008 г.); The Third European Influenza Conference (Vilamoura, Portugal, September 14 - 17, 2008); Школе-Конференции для молодых ученых «Методы культивирования клеток» (Санкт-Петербург, 6 -10 октября 2008 г.).

Диссертационная работа апробирована на совместной научной конференции отделов иммунологии и вирусологи НИИЭМ СЗО РАМН «9» апреля 2009 г.

Публикации. По теме диссертации опубликовано 9 печатных работ, в том числе 3 статьи и 6 тезисов.

Структура и объем диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов, изложения результатов исследования и их обсуждения, выводов и списка цитируемых литературных источников. Работа изложена на 135 страницах текста, включающего 20 таблиц и 15 рисунков. Список цитируемой литературы содержит 175 источников, в том числе 20 отечественных и 155 иностранных.

Заключение диссертации по теме «Аллергология и иммулология», Кореньков, Даниил Анатольевич

ВЫВОДЫ

1. Однократная вакцинация ЖГВ лиц 18-20 лет вызывает стимуляцию:

- В-клеточной иммунологической памяти в верхнем отделе респираторного тракта в виде повышения продукции В-лимфоцитами высокоавидных локальных IgA-антител;

Т-клеточной иммунологической памяти в виде увеличения в периферической крови уровня общих лимфоцитов памяти фенотипов CD4 CD45RO и CD8 CD45RO , а также специфических к вирусу гриппа СБ4+-лимфоцитов памяти.

2. Лица 18-20 лет могут значительно различаться по показателям предвакцинального состояния В- и Т-клеточной иммунологической памяти к вакцинному штамму вируса гриппа А: по авидитету локальных IgA-антител и по количеству циркулирующих вирусспецифических CD4+ Т-лимфоцитов памяти.

3. Предвакцинальные значения показателей авидности локальных IgA-антител и уровней циркулирующих вирусоспецифических CD4+-лимфоцитов< влияют на интенсивность их поствакцинального изменения (обратная корреляционная зависимость).

4. Часть вакцинированных ЖГВ отвечают достоверным увеличением в периферической крови уровня изученных субпопуляций Т-клеток памяти без наличия зафиксированного в РТГА системного гуморального иммунного ответа. Доля таких лиц составляет 40 - 60%.

5. Вакцинация мышей живым реассортантным вирусом гриппа A (H1N1) не уступает гриппозной инфекции, вызванной патогенным вирусом гриппа А того же сероподтипа, в активности стиуляции CD8+CD44hl Т-лимфоцитов памяти во входных воротах инфекции — назоассоциированной лимфоидной ткани (НАЛТ). Вакцинация инактивированным вирусом гриппа A (H1N1) практически не индуцирует эти клетки в НАЛТ. Специфичные к вирусу гриппа A (H1N1) CD8+CD44hl Т-лимфоциты сохраняются после вакцинации не менее двух месяцев — срок наблюдения. 1

Заключение

В настоящей главе приведены приоритетные данные о формировании у людей и животных Т-клеточной иммунологической памяти к вирусу гриппа A (H1N1). Разработана модификация TRAP, пригодная для исследования периферической крови людей. На базе этой модификации оценены количественные показатели концентрации двух популяций вирусспецифических клеток иммунологической памяти (пула Т- и В-лимфоцитов памяти и CD4+ Т-клеток памяти) у условно здоровых людей 18-20 лет, ранее не прививавшихся ЖГВ. Отмечен весьма низкий уровень обеих субпопуляций клеток в периферической крови и широкий размах индивидуальных показателей. Изучена поствакцинальная индукция этих клеток у лиц того же возраста, привитых вакцинным штаммом для ЖГВ. Предложены критерии достоверности полученных в TRAP результатов. Показано, что однократная прививка ЖГВ активно стимулирует у людей накопление в периферической крови специфических к вирусу гриппа A(H1N1) клеток памяти (пула Т-и В-лимфоцитов и CD4+ Т-клеток). Отмечено наличие такого ответа как у лиц, с фиксированным в РТГА накоплением сывороточных антител, так и у людей без такого ответа на прививку. У последних интенсивность прироста изучаемых популяций клеток памяти была менее выражена. Установлено существование обратной зависимости между исходными уровнями изучаемых клеток памяти перед прививкой с одной стороны, интенсивностью их поствакцинального накопления, а также выраженностью системного гуморального иммунного ответа на прививку, с другой. Проведено изучение у мышей индукции CD8+CD44hl-KneTOK памяти при экспериментальной гриппозной инфекции и экспериментальной вакцинации ЖГВ и ИГВ. И инфекция, и вакцинация ЖГВ вызывала активный рост числа этих клеток памяти на локальном уровне - в HAJ1T мышей. При этом высокая концентрация этих клеток (11 — 16%) сохранялась в НАЛТ до шестидесятого дня (срок наблюдения). Экспериментальная вакцинация ИГВ практически не индуцировала изученную субпопуляцию клеток иммунологической памяти в НАЛТ.

4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Изучение иммунологической памяти должно являться одним из главных направлений развития вакцинальной иммунологии [6, 15, 72, 164]. В последние годы это направление активно развивается за рубежом. В России такие исследования не проводились.

Настоящая работа — первая в мировой практике попытка получения комплексной информации о формировании В- и Т-клеточной иммунологической памяти у людей, привитых отечественной ЖГВ.

Если рассматривать выполненное диссертационное исследование в целом, то оно посвящено поиску ответов.на два главных вопроса:

1«. Какие методы, являются приемлемыми с точки зрения простоты и доступности для количественного измерения у людей В- и Т-клеточной иммунологической памяти к вирусам гриппа? 2. Изменяются1 ли количественные характеристики иммунологической памяти после иммунизации ЖГВ*>у контактировавших ранее с вирусом гриппа взрослых людей, w если да, то каковьь количественные характеристики этого процесса, и как это сочетается с результатами общепринятого метода оценки иммуногенности гриппозных вакцин -определением титров антител в РТГА?

Первый раздел (3:1) посвящен оценке у людей 18 - 20 лет локальной В-клеточной иммунологической памяти к вирусам гриппа А и. В по критерию авидитета локальных (мукозальных) IgA-антител. В целом вопрос о формировании иммунологической памяти во входных воротах инфекции носит дискуссионный характер [20, 140, 156]. Это относится и к локальным В-клеткам' памяти. Существует несколько методов оценки В-клеточной памяти: (i) по количественному определению в ELISPOT плазматических клеток, секретирующих антитела различных изотипов; (ii) по выявляемому в проточной цитометрии уровню В-клеток, несущих мембранные маркеры памяти CD27, CD38, IgD-, Bcl-2; (iii) по повышению авидности продуцируемых антител при повторных контактах организма с возбудителем. Нами был выбран последний метод, поскольку, во-первых, он более прост, во-вторых, отражает функциональное состояние В-клеточной памяти, в-третьих, не требует выделения клеток, что представляет определенную трудность в отношении сепарации у людей локальных В-лимфоцитов. Кроме того, сведения об авидитете локальных антител в литературе отсутствовали.

Нами использованы два метода количественной оценки в ИФА авидности локальных антител к вирусам гриппа А и В, ранее применявшиеся только для изучения авидитета сывороточных иммуноглобулинов -динамический тест и тест с мочевиной [9, 127, 151]. Эти тесты неравнозначны по своей* сути, поскольку первый измеряет авидитет с позиции скорости реагирования антитела с антигеном' (время достижения максимального титра)1 и интенсивности иммунной реакции (частное от деления максимального титра на минимальный), тогда как второй оценивает авидитет с точки зрения прочности соединения антигена с антителом на основании количественных данных о разрыве слабоавидных связей под действием^ мочевины.

На первом этапе (подраздел» 3.1.1) был отработан ряд необходимых параметров; которые позволили адаптировать методы для количественного тестирования авидности локальных антител в СВДП.

Ранее установлено существование хорошо выраженной прямой зависимости величиньктитров сывороточных антител от времени их контакта с антигенами вирусов» гриппа [11]. Аналогичная зависимость обнаружена нами в тех же временных интервалах и в отношении секреторных IgA-антител (табл. 2). Эти данные явились основой для разработки динамического теста определения авидности секреторных антител. Анализ материалов, представленных в таблице 5, свидетельствовал о достаточности применения для расчета ИА этих антител результатов измерения их титров в диапазоне временного контакта с антигеном в пределах 0,25 - 1,0 часа.

У обследованных лиц наблюдались два типа динамических изменений концентрации IgA-антител в СВДП (табл. 3): первый (наиболее часто встречающийся, 71-85% случаев) — титры антител возрастали по мере увеличения времени контакта антител с антигеном, второй - титры антител не изменялись в пределах исследуемых временных интервалов (плато). По-видимому, выход на плато уже через 15 минут контакта реагентов свидетельствует об очень высокой авидности локальных иммуноглобулинов, но приь одном условии — если их концентрации достаточно высокие. При очень низких (титры не более 1:16) или неопределяемых титрах (менее 1:8) концентрациях плато не могло рассматриваться как полноценное отражение авидитета. Поэтому для*, таких случаев в использовавшейся» формуле была введена корректировка для расчета авидности данных иммуноглобулинов (см. раздел «Материалы-и методы»).

Как в динамическом тесте, так и в тесте с мочевиной мы наблюдали довольно широкий диапазон разброса индивидуальных значений ИА локальных антител у непривитых волонтеров (рис. 1). Эти данные позволили произвести группировку величин ИА по низким, средним и высоким значениям: В целом прослеживалось наличие прямой зависимости между авидитетом IgA-антител и величиной'их титров (табл. 6). Данный феномен, по-видимому, объясняется преобладанием у людей с высокими титрами IgA-антител высокоавидных иммуноглобулинов этого класса (недавний контакт с вирусом), тогда как по мере отдаленности такого контакта (низкие титры антител) доля высокоавидных антител должна снижаться.

Может возникнуть вопрос, необходимо ли вообще измерения авидитета антител, если их титры отражают эту качественную характеристику? Оказалось, что далеко не у всех людей авидность секреторных IgA-антител совпадает с их концентрациями (титры) в СВДП1 (табл. 6). У части лиц (30 - 50%) обнаруживались высокие титры слабоавидных секреторных антител, и, наоборот, низкие титры высокоавидных антител (до 15% случаев). Близкие по значению результаты получены при сопоставлении величин титров и ИА сывороточных противогриппозных антител, выявленных в динамическом тесте [4].

Обнаруженные довольно существенные расхождения в этих двух характеристиках локальных IgA-антител (титры и ИА), на наш взгляд свидетельствуют о том, что данные характеристики отражают различные параметры гуморального иммунного ответа у людей и могут быть использованы совместно для получения более полной информации об иммунногенных свойствах вакцинных препаратов.

В итоге; изучение ряда технических условий постановки двух тестов показало их хорошую воспроизводимость-для-решения поставленной задачи- количественного измерения, авидности локальных IgA к вирусам гриппа А и В.

Второй; этап (подраздел 3:1.2) был посвящен оценке способности вакцинных штаммов^ для ЖГВ индуцировать локальную В-клеточную память, опосредованную авидитетом локальных IgA-антител к вирусам гриппа А и В.

Данные, представленные на рисунках 2 и 3, на наш взгляд, убедительно демонстрируют феномен обновления' локальной гуморальной иммунологической памяти под влиянием вакцинации, поскольку подавляющее большинство случаев достоверного повышения авидности секреторных IgA-антител фиксировалось в группе привитых, ответивших повышением их титров. Однако, обращает на себя внимание и» то, что по данным теста с мочевиной, у некоторых лиц в»группе привитых, не давших приросты титров этих антител к вирусу гриппа А и В, авидитет антител увеличился. Это свидетельствует в пользу существования' на первый взгляд парадоксального феномена - повышение авидности» антител без значительного увеличения их количества. Но такой же феномен был отмечен при сравнении авидности и титров сывороточных антител у больных гриппом людей и лиц, иммунизированных гриппозными вакцинами, в том числе и ЖГВ [4]. Чем же это можно объяснить?

Точно ответить на этот вопрос невозможно, поскольку объем знаний о тонких молекулярных механизмах иммунологических переключений, вызывающих продукцию высокоавидных антител после антигенного стимула, пока ещё недостаточен. Нельзя исключить, что у части людей возникает ситуация, когда происходит увеличение выработки высокоавидных антител на фоне незначительного повышения их концентрации, не обнаруживаемой в использовавшейся, измерительной системе — титры в ИФА или РТГА. Другими словами, возможно, есть люди, которые активно реагируют на встречу с возбудителем повышением авидности- антител без существенного увеличения* их продукции, которую можно фиксировать при «шаговом» разведении исследуемого материала в 2 или 10 раз.

При измерении индивидуальной авидности- антител у конкретного вакцинируемого человека важно зафиксировать не только изменения данного показателя под влиянием вакцинации, но и установить величины достоверности такого изменения, так как нельзя исключить, что в каких-то пределах значения ИА антител могут быть подвержены не связанным с вакцинацией неспецифическим колебаниям в промежуток между отбором проб СВДП.

Мы попытались установить подобные величины для обоих тестов (табл. 8 и 9). При выработке данных критериев опирались на наиболее надежный биологический принцип достоверности — отсутствие увеличения измеряемого признака в контрольной группе, получавшей препарат плацебо. В результате такие критерии достоверности были выработаны для обоих тестов.

Ранее отмечено существование' обратной зависимости между исходными показателями авидитета,циркулирующих сывороточных антител перед противогриппозной вакцинацией и выраженностью последующих изменений этого показателя в поствакцинальный период [4, 11]. Точно такую же зависимость мы наблюдали и в отношении авидности локальных IgA (табл. 10).

Как нам представляется, это очень важные сведения с позиции успешности противогриппозной иммунизации ЖГВ, а именно: во-первых, выраженность повышения авидности локальных IgA ограничена предвакцинальными показателями, во-вторых, прививаемость вакцинных штаммов в верхнем отделе дыхательного тракта может быть снижена у лиц с высокими показателями авидности антител даже при низких концентрациях. К сожалению, в настоящее время противогриппозная вакцинация осуществляется без учета особенностей иммунного статуса индивидуума. По-видимому, индивидуализация прививок (в последнее время активно развиваемая зарубежом) должна опираться, в первую очередь, на результаты-оценки предвакцинального состояния локальной В- и Т-клеточной памяти.

Таким образом, проведенные исследования (раздел 3.1) с теоретических позиций показали способность ЖГВ повышать у взрослых людей авидитет локальных IgA-антител к вирусам гриппа А и В, а с точки зрения практики - разработать простые и доступные методы измерения авидности этих антител.

Второй раздел работы (3.2) был посвящен оценке у людей 18 - 20 лет Т-клеточной иммунологической памяти к вирусу гриппа А. На примере вакцинации ЖГВ мы попытались получить ответ на главный вопрос теоретического характера: происходит ли при интраназальном. введении взрослым людям аттенуированных реассортантных вирусов гриппа активация периферических CD45RO+ Т-лимфоцитов памяти и если да, то какова количественная характеристика этого процесса? Практический аспект работы лежал в плоскости поиска сравнительно простого метода оценки поствакцинальных изменений Т-клеточной иммунологической памяти.

Первая часть раздела (подраздел 3.2.1) касалась количественного измерения в периферической крови людей уровней CD4+ и CD8+ Т-лимфоцитов, несущих мембранный маркер иммунологической памяти

CD45RO и маркер наивных лимфоцитов CD45RA. При этом мы не вычленяли среди пула этих клеток лимфоциты с двойной меткой CD45RO+CD45RA+, поскольку их доля весьма незначительна [110].

Обследование невакцинированных людей показало наличие значительных колебаний индивидуальных уровней этих клеток (табл. 12). В количественном отношении CD4+CD45RO+-лимфoциты преобладали над CD8+CD45RO+-лимфoцитaми. Число наивных лимфоцитов тех же фенотипов существенно не отличалось (рис. 6). В пуле измеряемых клеток доля наивных лимфоцитов- была в 2 раза выше по сравнению с лимфоцитами памяти CD45RO+. В целом, полученные нами; результаты близки к данным I исследования тех же клеток американскими авторами [110].

Далее мы проследили изменения в периферической крови людей 18 -20 лет уровней перечисленных выше субпопуляций лимфоцитов после вакцинацииОКГВ.

Использование усредненных показателей увеличения уровня клеток памяти в поствакцинальный- период оказалось не очень убедительно, поскольку величины таких приростов были весьма' скромными (табл. 13). Такие же результаты получили американские исследователи при использовании аналогичного подхода к оценке способности ИГВ стимулировать у людей CD45RO+ Т-клетки памяти [110]. Всё это в совокупности побудило нас прибегнуть к другому методу анализа - по кратности' изменения уровней изучаемых субпопуляций клеток в поствакцинальный период.

Кратность прироста и доля лиц с увеличением уровня клеток памяти оказались самыми высокими, у волонтеров с гуморальным ответом в РТГА на вакцинацию>и существенно меньше.у вакцинированных добровольцев без такового ответа (табл. 14). Самые низкие значения отмечены у людей из контрольной группы. Обращает на себя внимание тот факт, что у части лиц наблюдалось снижение уровня изученных субпопуляций CD45RO+-лимфoцитoв, произошедшее в период между отбором образцов крови. При этом в контрольной группе волонтеров частота таких снижений была намного выше, чем в группе иммунизированных.

Рассмотрение индивидуальных показателей кратности поствакцинального прироста уровней клеток памяти у каждого отдельного добровольца, в сравнении с аналогичными показателями у лиц контрольной группы, позволило установить границы достоверности получаемых результатов - увеличение уровня клеток в 1,5 и более раз (рис. 4). Доля этих лиц среди привитых РТГА-положительных волонтеров-составила 36 - 57%, среди привитых РТГА-отрицательных - от 11 до 22%, тогда как у людей из контрольной группы не наблюдалось ни одного такого случая.

Таким образом, анализ кратности изменения у волонтеров, уровней CD45RO+, CD4+CD45RO+ и CD8+CD45RO+ Т-лимфоцитов в периферической крови в поствакцинальный период показал активное влияние прививки на изменение состояния иммунологической памяти: (i) достоверный прирост количества перечисленных клеток не только у РТГА-положительных лиц, но и у добровольцев, не давших конверсий антител в РТГА на прививку; (ii) менее выраженную кратность снижения- уровней этих клеток у вакцинированных лиц ш> сравнению с лицами, получавшими препарат плацебо.

Данные, приведенные в таблице 15, могут служить доказательством очены высокой сочетаемости результатов> оценки иммунологической памяти по трем изученным маркерам (CD45RO+, CD4+CD45RO+ и CD8+CD45RO+). Это свидетельствует, что, в принципе, факт поствакцинальной активации Т-клеточной иммунологической, памяти можно фиксировать, используя любую из этих трех меток.

Мы обнаружили достоверное поствакцинальное увеличение у волонтеров не только Т-клеточной иммунологической- памяти, но и наивных CD4+CD45RA+- и СВ8+СБ45ЫА+-лимфоцитов (рис. 7). При парентеральной иммунизации ИГВ такого феномена не наблюдалось [110]. Вполне возможно, что индукция этих клеток является особенностью мукозальной вакцинации

ЖГВ. С другой стороны, недавно обнаружена реэкспрессия молекул CD45RA на активированных Т-клетках памяти при инфекциях людей,, вызванных вирусом Эпштейна-Барр [53] и цитомегаловирусом [167]. Такие клетки были устойчивы, к апоптозу. На основании этих данных авторы отнесли их к особому фенотипу клеток памяти. Не исключено, что после вакцинации отчасти мы.фиксировали прирост именно этих клеток.

Нами показано существование обратной зависимости между исходными уровнями клеток памяти перед вакцинацией и выраженностью поствакцинальных изменений доли этих клеток (табл. 16). Аналогичную зависимость наблюдали1 другие авторы, изучавшие у людей влияние вакцинации американским вариантом ЖГВ - на- индукцию специфических клеток памяти [76, 78].

И наконец, вполне резонен вопрос, что собой представляют определяемые нами CD45RO+ клетки памяти и почему наблюдается рост их уровня после вакцинации? Конечно, в пуле этих клеток присутствуют специфические к вирусам гриппа Т-лимфоциты памяти, но доля> их очень низка (см. данные раздела- 3.3). Основную массу представляют клетки памяти, образовавшиеся при контакте с другими антигенами. В последние годы накопились данные, свидетельствующие о поликлональной активации таких клеток памяти гетерологичными антигенами даже вирусной природы [98; 112, 135]. По-видимому, этот феномен является частью наблюдаемой при введении различных вирусов гетерологичной защиты [98, 135]. Стимуляция-клеток памяти к вакцинным штаммам-может носить позитивный характер, поскольку повышает не только гомологичную, но и гетерологичную защиту против других инфекционных агентов. С другой стороньг, практически- ничего не известно о гетерологичной индукции вакцинами Т-клеток- памяти к аллергенам и аутоантигенам. Этот вопрос требует отдельного детального изучения.

Последняя часть работы (раздел 33) была посвящена оценке у людей 18 — 20 лет и животных иммунологической памяти по количественному определению клеток, специфических к вирусу гриппа*А. Как уже упоминалось, главным фактором постинфекционного и поствакцинального адаптивного иммунитета к острым инфекциям является формирование иммунологической памяти в виде специфических к возбудителю Т- и В-клеток [58, 88, 136, 137, 165]. Только в последние годы вопрос об индукции специфических клеток памяти перешел в плоскость практического изучения в-связи с разработкой методик тестирования таких клеток [32, 65, 72, 122, 128].

Существует два подхода к оценке формирования специфической иммунологической памяти в, ответ на введение антигена — определение уровней антигенспецифических клеток, имеющих соответствующий клеткам памяти фенотип, и/или тестирование количества антигенспецифических клеток на отдаленный срок после введения патогена.

До недавнего времени в мировой практике для количественного определения- ex vivo антигенспецифических Т-клеток использовались два метода: тетрамерный и определение внутриклеточной продукции цитокинов.

Тетрамерный метод основан на специфическом* реагировании TCR Т-лимфоцита с мультимерным (чаще всего тетрамерным) комплексом;, представляющим собой молекулу МНС, связанную с конкретным пептидом того» или иного вирусного белка [65, 122]-. Несмотря на высокую-специфичность, метод имеет несколько недостатков, в частности - сложность рекомбинантной технологии получения комплекса МНС-пептид. Кроме того, метод выявляет популяцию Т-клеток, специфичных только к этому пептиду, и не дает полного представления о суммарном Т-клеточном ответе на все антигенные эпитопы.

Второй метод, основан на выявлении^ антигенактивированных Т-лимфоцитов по внутриклеточной продукции-Th-l иЛЪ-2 цитокинов [128]. Он более прост и дешев, по сравнению' с тетрамерной технологией, и используется^ гораздо* шире. Однако цитокиновый метод не является витальным тестом (см. ниже) и требует достаточно длительной стимуляции клеток антигеном для формирования полноценного цитокинового ответа.

На сегодняшний день альтернативой перечисленным двум тестам является TRAP, базирующийся на недавно открытом феномене трогоцитоза — обмена участками клеточных мембран между АПК и Т-лимфоцитом в процессе презентации антигена [27, 86]. Подробное описание TRAP представлено в разделе «Материалы и методы». Выбор нами этого метода связан с тем, что он имеет ряд существенных преимуществ по сравнению с двумя первыми тестами [27, 47, 86, 129]:

- TRAP более прост, менее дорогостоящ, более быстр (результат можно получить в течение 24 часов);

- В' отличие от тетрамерной, технологии он, не требует специальных знаний о гаплотипе МНС и особенностях презентации антигена.

- Позволяет осуществлять определение активированных Т- и В-клеток в одной пробе;

- в. отличие от метода определения внутриклеточных цитокинов он является витальным тестом, то есть исследуемые клетки можно, не подвергая фиксации, использовать для дальнейших исследований;

- выявляет межклеточные реакции уже на раннем этапе взаимодействия АПК с"лимфоцитом, поскольку трогоцитоз начинается через несколько минут после контакта этих клеток.

Важно, что информация, полученная в TRAP, хорошо коррелирует с результатами тетрамерного и цитокинового методов [129].

Как уже упоминалось, ранее TRAP использовался только в условиях in vitro [129; 131] и совсем недавно - in vivo в эксперименте на мышах [27]. Поэтому первой задачей настоящего' раздела работы являлась адаптация данной методики для; тестирования специфических к вирусу гриппа клеток памяти у людей (подраздел 3.3.1). В сущности, разработанная нами модификация TRAP в значительной мере отличалась от модификации, использовавшейся разработчиками теста (рис. 8, табл. 17).

Испытания нашей модификации TRAP при исследовании образцов периферической- крови невакцинированных добровольцев 18-20 лет показало, во-первых,, наличие значительных колебаний индивидуальных показателей содержания клеток памяти, специфических к вакцинному штамму (как пула Т- и В-клеток, так и CD4+ Т-лимфоцитов), во-вторых, довольно низкие значения» их уровней (рис. 10, 11). Данные значения оказались практически идентичны результатам, полученным американскими авторами в цитокиновом методе [79; 90].

На следующем этапе работы (подраздел 3.3.2) мы провели испытания разработанной модификации TRAP при исследовании периферической крови людей 18— 20^eT до и спустя 1 месяц после прививки вакцинным штаммом. Контрольной-группойхлужили лица, получившие препарат плацебо.

Выбор интервала между двумя отборами проб крови (1 месяц) был сделан последующим причинам:

- во-первых, он гарантировал тестирование во второй пробе именно клеток памяти, поскольку у людей элиминация вируса после прививки отечественной ЖГВ происходит не позднее 7 дня*с момента введения, этого препарата [1];

- во-вторых, отбор второй пробы, крови в более отдаленные сроки мог привести к тому, что он совпал бы с эпидемией^ когда трудно отдифференцировать причину индукции клеток памяти - собственно вакцинация или гриппозная инфекция (в нашем наблюдении вторая проба отбиралась в предэпидемический сезон).

Нами показано, что вакцинация приводила к очень значительному увеличению (в 15 — 40 раз) как пула вирусспецифических Т- и В-клеток памяти, так и уровней вирусспецифических CD4+ клеток памяти (рис. 12). По данным американских авторов [77, 79], при тестировании в цитокиновом методе периферической крови детей 5-9 лет, привитых американским вариантом ЖГВГ и ИГВ, также отмечено хорошо выраженное увеличение CD4+ Т-лимфоцитов после введения ЖГВ (в 10 и более раз). Аналогичный показатель для* ИГВ,оказался значительно скромнее. Авторы сделали вывод о преимуществе ЖГВ перед ИГВ в стимуляции Т-клеток памяти.

Поскольку по нашим данным в контрольной группе людей, получивших препарат плацебо, в отдельных случаях наблюдались приросты (хотя и- незначительные) уровней изучаемых клеток памяти (рис. 13), необходимо было установить границу достоверности получаемых при вакцинации данных TRAP. Такими границами для пула вирусспецифических Т- и В-клеток и для CD4+ клеток^ памяти было выбрано увеличение уровней определяемых клеток после вакцинации соответственно в-5 и более раз и в 10* и более раз (рис. 13 и 14). По мнению [90] аналогичный показатель должен• быть, меньше — прирост в 2. и более раз. Однако этот вывод сделан, на материале обследования- в цитокиновом методе только ■ привитых лиц без введения контрольной группьц что, на наш взгляд, понижает корректность такого вывода.

Нами установлено,, что у 40 - 60% иммунизированных лиц без фиксированного в РТГА накопления сывороточных антител наблюдалось достоверное увеличение уровня вирусспецифических клеток памяти* (рис. 14). Аналогичные повышения имели* место у привитых РТГА-отрицательных лиц в отношении CD45RO-KJieTOK памяти (рис. 5) и у ИФА-отрицательных лиц, в отношении авидности локальных IgA-антител (рис. 2, 3).

Нами показано существование обратной зависимости между исходными (до вакцинации) уровнями' изученных вирусспецифических, клеток памяти, в периферической, крови и интенсивностью (кратностью) их накопления после иммунизации вакцинным штаммом (табл. 20):. Точно такая же зависимость недавно обнаружена американскими авторами, изучавшими в. цитокиновом методе изменения концентраций в периферической.' крови людей специфических к вирусу гриппа. A GD4+ Т-клеток памяти после прививки американской ЖГВ [78]. Авторы заключают, что базовый, уровень этих клеток перед вакцинацией может служить одним из главных биологических маркеров успешности противогриппозной иммунизации на индивидуальном уровне. С этим выводом мы не можем не согласиться.

Обращает на себя внимание другой обнаруженный нами факт. Если сравнивать предвакцинальные уровни вирусспецифических клеток памяти в группах РТГА-положительных и РТГА-отрицательных людей, то их средние значения во второй группе оказались во много раз выше (рис. 12). Это свидетельствует в пользу того, что. предвакцинальные концентрации вирусспецифических клеток памяти влияют не только на интенсивность их увеличения после прививки, но и на выраженность системного гуморального иммунного ответа на введение ЖГВ.

Приведенные выше данные- касались количественного определения клеток иммунологической памяти в. периферической крови людей-, которая является единственным доступным объектом изучения у них клеточного иммунитета. Однако» соответствующие циркулирующие в крови клетки хотя и отражают в целом- состояние вирусспецифической иммунологической памяти-, но не дают представления об этом процессе на органном уровне.

В этой связи на- заключительном этапе работы были проведены экспериментальные исследования, касающиеся t индукции у мышей специфических к вирусу гриппа A(H1N1) клеток памяти на локальном уровне (рис. 15). Сравнивали уровни CD8+CD44hl Т-лимфоцитов в НАЛТ на 60-й день после гриппозной инфекции, и вакцинации (интраназальное введение аттенуированного реассортантного вируса или- парентеральное введение инактивированного). Выбор HAJIT был связан с тем, что этот лимфоидный орган наиболее часто используется, для изучения локального иммунитета в экспериментах на грызунах [157]. Однако исследования локальной* Т-клеточной памяти ранее не проводились.

Полученные результаты свидетельствуют, с одной' стороны, об отсутствии существенных отличий в индукции долгоживущих CD8+ Т-клеток памяти в НАЛТ при гриппозной инфекции- и иммунизации реассортантным вакцинным штаммом, с другой, о наличии явного преимущества в стимуляции этих клеток последним по сравнению с парентеральным введением инактивированного вируса.

Существуют наблюдения, которые косвенно подтверждают наши данные об активной стимуляции вирусами гриппа локальной иммунологической памяти. Так, голландские исследователи сообщили об обнаружении в тетрамерной методике в легочных смывах доноров большого количества CD8+CD27+CD45RA- клеток памяти, специфических к Ml и NP-белкам вируса гриппа A (H1N1) [48]. То же самое отметили английские авторы в отношении локальных В-клеток памяти в HAJIT после первичной инфекции мышей патогенным вирусом A (H3N2) [99].

Резюмируя результаты обследования волонтеров и даные экспериментальных исследований, можно отметить следующее.

В разработанной нами модификации TRAP после прививки вакцинным штаммом для ЖГВ весьма четко фиксировалось значительное увеличение уровней изучаемых клеток иммунологической памяти как на системном (периферическая кровь людей), так и на органном (HAJIT мышей) уровнях.

Эта модификация TRAP может быть использована для оценки уровней специфических к вирусу гриппа А Т-клеток в периферической крови людей. Наличие двойного контроля в методе (учет фонового трогоцитоза в каждой пробе и сравнение с данными, полученными при обследовании контрольной группы), а также совпадение наших результатов TRAP с показателями эталонного цитокинового метода в работах других авторов [79, 90], позволяет говорить о полной объективности полученных нами данных о вирусспецифическом Т-клеточном иммунном ответе.

Если рассматривать в совокупности результаты изучения иммунологической памяти, в* трех использовавшихся методах (авидность антител, общие СВ45ЫО*-клетки/ и< вирусспецифические клетки), то в них обнаруживается^ ряд общих закономерностей. При этом следует учитывать, что каждый метод испытывался на материале, полученном в разных коллективах людей практически одного возраста (1820 лет). Данные закономерности можно свести к следующему:

1. Во всех случаях наблюдался широкий разброс индивидуальных показателей среди непривитых лиц, что свидетельствует о гетерогенности этой возрастной популяции в отношении количественных показателей состояния иммунологической памяти к вирусу гриппа.

2. По данным всех трех методов поствакцинальное увеличение количественных характеристик иммунологической памяти находилось в обратной зависимости от фоновых (предвакцинальных) показателей.

По1 нашему мнению, эти две закономерности дают основание высказать предположения, во-первых, о существенном влиянии ряда факторов (время^ после предшествующего контакта организма с возбудителем, тяжесть инфекции, тип ранее использовавшейся-вакцинации) на состояние иммунологической? памяти к- вирусу гриппа, во-вторых, о важности информации о ее предвакцинальном статусе, ибо это может существенно влиять на успешность вакцинации на индивидуальном уровне. Тем- более, что в последние годы главной тенденцией в вакцинопрофилактике является ее индивидуализация, то-есть разработка новых подходов как к вопросу о необходимости вакцинации, так и к методам оценки ее эффективности для каждого конкретного человека [6].

3. Во всех тестах у привитых людей отмечено увеличение изученных показателей иммунологической памяти не только при наличии гуморального иммунного ответа, фиксируемого в РТГА, но и без такового: Это; с одной стороны, подтверждает тезис о расхождении данных, о гуморальном и клеточном противогриппозном иммунитете [120,- 92], с другой, свидетельствует в пользу того, что принятая на сегодняшний день оценка иммуногенности ЖГВ только по конверсиям циркулирующих антител дает далеко не полное представление о поствакцинальной иммунологической перестройке организма в отношении накопления других протективных факторов противовирусного иммунитета.

4. Данные, полученные всеми методами, показали наличие лиц со снижением уровня иммунологической памяти в период между заборами крови среди привитых и, особенно, в контрольной группе. С большой долей вероятности можно утверждать, что данный феномен отражает ежегодно наблюдаемое падение уровня коллективного иммунитета населения в предэпидемический осенний период [16]. В нашем случае отбор до- и поствакцинальных образцов крови происходил именно в этот период (октябрь — ноябрь). Кроме того, интересно, что вакцинация уменьшала степень выраженности такого снижения.

И наконец, заключительный вопрос. Хорошо известно, что в абсолютном большинстве случаев антигенный профиль вакцинного и эпидемических штаммов вирусов гриппа А полностью не совпадает из-за антигенного дрейфа последнего. Тогда могут возникнуть сомнения, может ли поствакцинальная Т-клеточная иммунологическая память защитить людей при последующей встрече с эпидемическим вирусом. Установлена способность живых вирусов гриппа A(H1N1) и A (H3N2) активно стимулировать перекрестнореагирующие Т-клетки памяти к разным штаммам в пределах одного или даже нескольких сероподтипов [98, 135, 159]. Однако, по-видимому, срок сохранения в активном виде таких перекрестнореагирующих клеток памяти не превышает 2 — 3 месяцев [157]. По нашему мнению, если после иммунизации организм контактирует с дрейфовым вариантом «дикого» вируса в пределах данного временного промежутка, можно ожидать высокий уровень протекции, если же нет - то уровень защиты будет значительно снижен.

115

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Кореньков, Даниил Анатольевич, 2009 год

1. Александрова Г.И., Климов А.И. Живая вакцина против гриппа. СПб: Наука, 1994.- 151 с.

2. Бунин К.В., Фирсанов В.И. и др. Изучение авидности специфических антител в сыворотках крови больных холерой и вибрионосителей // ЖМЭИ 1976. - №9 - С. 70 - 74.

3. Донина С.А., Найхин А.Н., Руденко Л.Г. Функциональная активность антител при естественной гриппозной инфекции и иммунизации гриппозными вакцинами // Аллергология и иммунология. 2000. - №1. -С.114

4. Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А., Западнюк Б.В. Лабораторные животные. Разведение, содержание, использование в эксперименте. — Киев.: «Вища школа». — 1983. — 383 с.

5. Медуницин Н.В. Вакцинология. — М.: Триада-Х, 2004. 448 с.

6. Методические указания «Методы определения показателей качества иммунобиологических препаратов для профилактики и диагностики гриппа», МУ 3.3.2.175803 (утв. главным государственным санитарным врачом РФ 28.09.2003 г.)

7. Методические указания «Организация и проведение лабораторной диагностики заболеваний, вызванных высоковирулентными штаммами вируса гриппа птиц типа А (ВГПА), у людей», МУК 4.2.2136-06 (утв. главным государственным санитарным врачом РФ 09.11.2006 г.)

8. Найхин А.Н., Артемьева СА., Босак JI.B., Каторгина Л.Г. Значение функциональной активности антител в противогриппозном иммунитете // Вестник РАМН. 1995. - № 9. - С. 32 - 36.

9. Ю.Найхин А.Н., Артемьева С. А., Выборных Е.Н. и др. Роль функциональной активности антител в защищенности людей от гриппа //Вопросы вирусологии. 1991. — № 3. — С. 194 — 197.

10. Найхин А.Н., Артемьева С.А., Ермаченко Т.А. и др. Функциональная активность антител при иммунизации гриппозными вакцинами // Вопросы вирусологии. 1993. -№ 5. - С.204 - 207.

11. Найхин А.Н., Денисов Г.М., Исмагулов А.Т. и др. Характеристика состояния популяционного иммунитета в эпидемию гриппа 1977-78 гг. //ЖМЭИ. 1980. - № 6. - С. 92-95.

12. Найхин А.Н., Донина С.А., Кустикова Ю.Г. и др. Моноклональная иммуноферментная тест-система для оценки секреторного иммунитета' к вирусам гриппа А и В // Вопр. вирусологии. 1997. - № 5 - С. 212 -215.

13. Найхин А.Н., Кореньков Д.А., Петухова Г.Д. и др. Оценка Т-клеточной иммунологической памяти по экспрессии молекул CD45 у людей, привитых живой реассортантной гриппозной вакциной // Медицинская иммунология.-2008.-Т. 10.-№6.-С. 535-542.

14. Найхин А.Н., Каторгина Л.Г., Царицына И.М. и др. Показатели коллективного иммунитета к гриппу в зависимости от группы крови и пола обследуемого населения // Вопросы вирусологии. 1989. - №4. -С. 419-423.

15. Найхин А.Н., Топурия Н.В., Исмагулов А.Т. и др. Комплекс изучения популяционного иммунитета к трем антигенам вируса гриппа А // ЖМЭИ. 1981. - №2. - С. 77-81

16. Найхин А.Н., Рекстин А.Р., Баранцева И.Б. и др. Иммунный ответ на живую гриппозную вакцину // Вестник РАМН. 2002. - № 12. - С. 24 -28.

17. Черкасов В.JI:, Еровиченков А.А., Рубцов И.В. Определение авидности сывороточных антител в сопоставлении с инфекционной О-антигенемией у больных паратифом // ЖМЭИ 1987 - №5 - С. 61 - 64.

18. Ярилин А.А. Основы иммунологии. Москва: Медицина, 1999. - 608 с.

19. Adamopoulou Е., Diekmann J., Tolosa Е. et al. Human CD4+ T cells displaying viral epitopes elicit a functional virus-specific memory CD8+ T cell response // The Journal of Immunology.- 2007.- Vol.178.- №9.- P. 5465 5472.

20. Asanuma H., Thompson A.H., Iwasaki T. et al. Isolation and characterization of mouse nasal-associated lymphoid tissue // J. Immunol. Meth.- 1997.-Vol. 202.-P. 123-131

21. Baccard-Longere M., Freymuth F., Cointe D.et al. Multicenter evaluation of a rapid and convenient method for determination of cytomegalovirus immunoglobulin G avidity // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2001. - Vol.8. -P.429-431.

22. Bachmann M.F., Odermatt В., Hengartner H., Zinkernagel R.M. Induction of long-lived germinal centers associated with persisting antigen after viral infection // The Journal of Experimental Medicine.- 1996.- Vol.183.- №5.-P. 2259-2269.

23. Baron V, Bouneaud С, Cumano A. et al. The repertoires of circulating human CD8(+) central and, effector memory T cell subsets are largely distinct // Immunity. 2003. - Vol. 18. - P. 193-204

24. Beadling C., Slifka M.K. Quantifying viable virus-specific T cells without a priori knowledge of fine epitope specificity // Nat Med. 2006. - Vol.12. -№10- P. 1208-1212.

25. Belshe RB, Edwards KM, Vesikari T, et al. Live attenuated versus-inactivated influenza vaccine in infants and young children // N Engl J Med. 2007. - Vol.356. - № 7. - P.685-696

26. Belshe, R. В., Gruber W. C., Mendelman P. M. et al. Correlates of immune protection induced by live, attenuated, cold-adapted, trivalent, intranasal influenza virus vaccine. // J. Infect. Dis. 2000. - Vol.181. - P. 1133-1137.

27. Bernasconi N., Onai N, Lanzavacchia A. A role for Toll-like receptors in acquired immunity: upregulation of TLR9 by BCR triggering in naive В cells and constitutive expression in memory В cells // Blood 2003. -Vol.101.-P. 4500-4504

28. Bernasconi N., Traggiai E., Lanzavacchia A. Maintenance of serological memory by polyclonal activation of human memory В cells // Science. -2002. Vol.298. - 2199-2202

29. Betts M.R., Brenchley J.M., Price D.A. et al. Sensitive and viable identification of- antigen-specific CD8+ T cells by a flow cytometric assay for degranulatiom // J Immunol Methods. 2003. - Vol.281. - № 1-2. -P.65-78

30. Blackburn N.K-., Besselaar T.G., Schoub B.D., O'Connell K.F. Differentiation of primary cytomegalovirus infection from reactivation usingthe urea denaturation test for measuring antibody avidity // J. Med. Virol. -1991.-Vol.33.-P. 6-9

31. Blink E.J., Light A., Rallies A. et al. Early appearance of germinal center-derived memory В cells and plasma cells in blood after primary immunization // The Journal of Experimental Medicine. 2005. - Vol.201.- №4. P. 545-554.

32. Brokstad K.A., Cox R.J., Major D., Wood J.M., Haaheim L.R. Cross-reaction but no avidity change of the serum antibody response after influenza vaccination // Vaccine. 1995. - Vol.13. - №16. - P. 1522-1528.

33. Callard RE, Herbert J, Smith SH, et al. CD40 cross-linking inhibits specific antibody production by human В cells // Int Immunol. 1995. - Vol.7. — №11. -P.1809-1815

34. Cassese G, Arce S, Hauser A et al. Plasma cell survival is mediated by synersistic effects of cytokines and adhesion-dependent signals // J Immunol- 2003. Vol. 171. - P.1684-1690

35. Champagne P, Ogg G.S., King A.S. et al Skewed maturation of memory HIV-specific CD8 T lymphocytes // Nature. -2001. Vol.410. - P. 106-111

36. Chappell C.P., Jacob J. Germinal-center-derived B-cell memory // Adv. Exp. Med. Biol. 2007. - Vol.590. - P. 139-148.

37. Chen X, Jensen PE. Cutting Edge: Primary В Lymphocytes Preferentially Expand Allogeneic FoxP3 + CD4 T Cells // J. Immunol. 2007. - Vol.179. P.2046—2050

38. Cox R.J., Brokstad K.A., Zuckerman M.A. et al. An early humoral immune response in peripheral blood following parenteral inactivated influenza vaccination // Vaccine. 1994. - Vol.12. - P.993-999.

39. Crotty S., Aubert R.D., Glidewell J., Ahmed R. Tracking human antigen-specific memory В cells: a sensitive and generalized ELISPOT system. // J. Immunol. Methods. 2004. - Vol.286. - P. 111-122.

40. Current Protocols in Immunology / Ed. John E. Coligan, Ada M. Kruisbeek, David H. Margulies. Wiley press., 2004. P.4476.

41. Danke NA, Kwok WW. HLA class II-restricted CD4+ T cell responses directed against influenza viral antigens postinfluenza vaccination // J Immunol. 2003. - Vol. 171. - № 6. - P.3163-3169

42. Diebold S, Kaisho T, Hemmi H et al. Innate antiviral responses by means of TLR&-mediated recognition of single-stranded RNA // Science. 2004. -Vol.303. -P.1529-1531

43. Dorner T, Radbruch'A. Selecting В cells and plasma cells to memory // J. Exp. Medi 2005. - Vol.201. - P. 497-499

44. Dorner Т., Radbruch A. Antibodies and В cell memory in viral immunity // Immunity. 2007. - Vol.27. - №3. - P.384-392

45. Dunne P.J., Faint J.M., Gudgeon N.H. et al. Epstein-Barr virus-specific CD8+ T cells that re-express CD45RA are apoptosis-resistant memory cells that retain replicative potential // Blood. 2002. - Vol.100. - № 3. - p.933-940

46. Edwards.K.M., Dupont W.D., Westrich M.K. et al. A randomized controlled trial of, coldadapted and inactivated vaccines for the prevention of influenza A disease//J. Infect, Dis. -1994. Vol.169. - P.68-76

47. Enders, G., Knotel F. Rubella IgG total antibody avidity and IgG subclass-specific antibody avidity assay and their role in the differentiation; between primary rubella and'rubella reinfection // Infection. 1989. -Vol.4. - P:218-226

48. EsserМЛ7.,. Marchese R.D., Kierstead, L.S. et al. Memory T cells and vaccines // Vaccine. 2003. - Vol.21. - №5-6. - P. 419-430.

49. Fecteau J.F., Cote G., Neron, S. A New Memory CD27-IgG+ В Cell Population in Peripheral Blood Expressing VH Genes with Low Frequency of Somatic Mutation // J. Immunol. 2006. - Vol. 177. - P.3728-3736

50. Flynn K.J., Belz G.T., Altman J.D. et al. Virus-specific CD8+ T cells in primary and secondary influenza pneumonia // Immunity. 1998. —Vol.8. -№6.- P. 683-691

51. Fu Y-X, Huang G, Wang Y, Chaplin DD. В I .ymphocytes Induce the Formation of Follicular Dendritic.Cell Clusters in a Lymphotoxin alpha -dependent Fashion // J. Exp. Med. 1998. -Vol.187.- P. 1009-1018

52. Galli G, Medini D, Borgogni E et al. Adjuvanted H5N1 vaccine induces early CD4+ T cell response that .predicts long-term persistence of protective antibody levels // Proc. Natl. Acad. Sci: U S A. 2009. - Vol.106. №10. -P.3877-3882

53. Ganguly R., Waldman R.H. T- and B-cell memory on mucosal surfaces // Ann. N. Y. Acad. Sci. 1983. - Vol.409. - P. 603-611.

54. Geginat J., Lanzavecchia A., Sallusto F. Proliferation and differentiation potential of human CD8+. memory T-cell subsets, in response to antigen or homeostatic cytokines // Blood. 2003. - Vol. 101. - P.4260-^1266

55. Gillanders W.E., Hanson H.L., Rubocki R.J et al. Class I-restricted cytotoxic T cell'recognition of split peptide ligands // Int. Immunol. 1997. - Vol.9. -№1. -P.81-89

56. Global pandemic influenza action.plan to increase vaccine supply / Geneva: WHO Press., 2006. P66>

57. Gonzalez M, Mackay F, Browning J.L., et al. The Sequential Role of Lymphotoxin and B1 Cells in the Development of Splenic Follicles // J. Exp: Med. 1998. - Vol. 187. - P.997-1007

58. Goronzy J.J., Fulbright J.W., Crowson C.S. et al. Value of immunological markers in predicting responsiveness to influenza vaccination in elderly individuals // J. Virol. 2001. - Vol: 75. - № 24. - P. 12182-12187

59. Gray D:, Skarvall H. B-cell memory is short-livedln the absence of antigen // Nature. 1988. - Vol:336. - P.70-73

60. Gulati U., Keitel W.A., Air G.M. Increased antibodies against unfolded viral antigens in the elderly after influenza vaccination // Influenza. Other Respir. Viruses. 2007. - Vol. 1. - №4. - P. 147-156.

61. Gurunathan S, Prussin C, Sacks D.L. et al. Vaccine requirements for sustained cellular immunity to an intracellular parasitic infection // Nat Med. 1998. - Vol. 4. -P.1409-1415

62. Halwani R., Doroudchi M., Yassine-Diab В., et al. Generation and maintenance of human memory cells during viral infection // Springer Semin Immunopathol. 2006. - Vol-.28. - № 3. - P. 197-208

63. Harada Y., Muramatsu M., Shibata Т., et al. Unmutated Immunoglobulin M-Can Protect Mice from Death by Influenza Virus Infection // J. Exp. Med. -2003. Vol. 197. - P. 1779-1785

64. Harbertson J., Biederman E., Bennett K.E. et al. Withdrawal of Stimulation May Initiate the Transition of Effector to Memory CD4 Cells // The Journal of Immunology. 2002. - Vol.168. - №3. - P. 1095-1102

65. Hazenberg M.D., Otto S.A., Hamann D. et al. Depletion of naive CD4 T cells by CXCR4-using HIV-1 variants occurs mainly through increased'T-cell death and activation//Aids.-2003.-Vol.17. 1419-1424

66. He X., Holmes Т., Mahmood K. et al. Phenotypic Changes in Influenza A Specific CD8+ T Cells after Immunization of Children and Adults with Influenza Vaccines // The Journal of Infectious Diseases. 2008. - Vol.197. - №6. - P. 803-811

67. He X.S., Draghi M;, Mahmood K. et al.T cell-dependent production of IFN-gamma by NK cells in response to influenza A virus // J Clin. Invest. 2004. -Vol.114.-№12.-P.1812-1819

68. Hedman K., Lappalainen M., Soderlund M.,. and Hedman L. Avidity of IgG in serodiagnosis of infectious diseases // Rev. Med. Microbiol. 1993. -Vol.4.-P. 123-129.

69. Hogan R.J., Usherwood E.J., Zhong W. Activated Antigen-Specific CD8+ T Cells Persist in- the Lungs Following Recovery from Respiratory Virus Infections // The Journal of Immunology. 2001. - Vol.166. - №3. -P.1813-1822

70. Hogan R.J., Zhong W., Usherwood E.J. et al. Protection from Respiratory Virus. Infections Can Be.Mediated by Antigen-specific CD4+ T Cells That Persist in the Lungs // The Journal of Experimental Medicine. 2001. -Vol.193.-№8.-P. 981-986.

71. Johnson P. R., Feldman S., Thompson J.M. et al. — Comparison of long-term systemic and secretory antibody responses in children given live, attenuated, or inactivated influenza A vaccine // J. Med. Virol. 1985. - Vol.17. -P.325-335.

72. Joly E., Hudrisier D. What is trogocytosis and what is its purpose? // Nat. Immunol. 2003. - Vol.4. - №9. - P. 815

73. Jones P, Ada G. Persistence of influenza virus-specific antibody-secreting cells and B-cell memory after primary murine influenza virus infection //4

74. Cell Immunol. 1987. - Vol.109. - P.53-64

75. Kaech S.M., Wherry E.J. Heterogeneity and cell-fate decisions in effector and memory CD8+ T cell differentiation during viral infection // Immunity — 2007. Vol.27. - №3. - P. 393-405.

76. Kaech S.M., Wherry E.J., Ahmed4 R. Effector and memory T cell differentiation: implications for vaccine development // Nat Rev Immunol. — 2002.- Vol.2. -P.251-262

77. Kang I., Hong M.S., Nolasco H., et al. Age-associated change in the frequency of memory CD4+ T cells impairs long term CD4+ T cell responses to influenza vaccine // J Immunol. 2004. - Vol.173. - № 1. — P.673-681

78. Kennedy MK, Glaccum M, Brown SN et al Reversible defects in natural killer and memory CD8 T cell lineages in interleukin 15-deficient mice // J Exp Med. 2000. - Vol.191. - P.771-780

79. Kosor Krnic E, Gagro A, Kozaric-Kovacic D. et al. Outcome of influenza vaccination in combat-related post-traumatic stress disorder (PTSD) patients // Clin Exp Immunol. 2007. - Vol.149. № 2. - P.303-310

80. Lane P. Development of B-cell memory and effector function // Curr. Opin. Immunol. 1996. - Vol.8. - №3. - P. 331-335.

81. Langenkamp A, Nagata K, Murphy К et al. Kinetics and expression patterns of chemokine receptors in human CD4+ T lymphocytes primed by myeloid or plasmacytoid dendritic cells // Eur J Immunol. 2003. - Vol.33 — P.474-482

82. Lanzavecchia A, Sallusto F. Understanding the generation and function of memory T cell subsets // Curr Opin Immunol. — 2005. Vol.17. - №3. -P.326-332

83. Lanzavecchia A., Bernasconi N., Traggiai E. et al. Understanding and making use of human memory В cells // Immunol Rev 2006. - Vol.211. -303-309

84. Lee LY, Ha do LA, Simmons C, et al. Memory T cells established by seasonal human influenza A infection cross-react with avian influenza A (H5N1) in healthy individuals // J Clin Invest. 2008 Vol.118. № 10. -P.3478-3490

85. Liang B, Hyland L, Hou S. Nasal-associated lymphoid tissue is a site of long-term virus-specific antibody production following respiratory virus infection of mice // J Virol. 2001. - Vol.75. - № 11. - P.5416-5420

86. Lin Y.L., Askonas B.A. Biological properties of an influenza A virus-specific killer T cell clone. Inhibition of virus replication in vivo andinduction of delayed-type hypersensitivity reactions // J Exp. Med. 1981. -Vol. 154. - №2. - P. 225-234

87. Lodolce JP, Boone DL, Chai S et al. IL-15 receptor maintains lymphoid homeostasis by supporting lymphocyte homing and proliferation // Immunity 1998. - Vol. 9. - P.669-676

88. Lohning M., Hegazy A.N., Pinschewer D.D. et al. Long-lived virus-reactive memory T cells generated from purified cytokine-secreting T helper type 1 and type 2 effectors // The Journal of Experimental Medicine. 2008. -Vol.205.-№1.-P. 53-61.

89. Lucas M., Day C.L., Wyer J.R. et al. Ex vivo phenotype and frequency of influenza virus-specific CD4 memory T cells // J Virol. 2004. - Vol.78.-P.7284-7287

90. Lund J., Alexopoulou L., Sato A. et al. Recognition of single-stranded RNA viruses by Toll-like receptor 7 // Proc Natl Acad Sci USA. 2004.-Vol.101. -P. 5598-5603

91. Manz R.A., Lohning M., Cassese G., Thiel A., Radbruch A. Survival of long-lived plasma cells is independent of antigen In Process Citation. // International Immunology. 1998. - Vol.10. - №11. - P. 1703-1711.

92. Manz R.A., Thiel A., Radbruch A. Lifetime of plasma cells in the bone marrow // Nature. 1997. - Vol. 388. - P. 133-134

93. Maraskovsky E., O'Reilly L.A., Teepe M. et al Bcl-2 can rescue T lymphocyte development in interleukin-7 receptordeficient mice but not in mutant rag-1-/- mice // Cell. 1997. - Vol.89. -P. 1011-1019

94. Maruyama M., Lam M., Rajewsky K. Memory B-cell persistence is independent of persisting immunizing antigen // Nature. 2000. - Vol. 407. -P.636-642

95. McCaughan G.W., Adams E., Basten A. Human antigen-specific IgA responses in blood and secondary lymphoid tissue: an analysis of help and suppression // J Immunol. 1984. - Vol.132. -№3. - P.l 190-1196.

96. McElhaney J.E., Pinkoski M.J., Meneilly G.S. Changes in CD45 isoform expression vary according to the duration of T-cell memory after vaccination // Clin Diagn Lab Immunol. 1995. - Vol.2. - №1. - P.73-81

97. McHeyzer-Williams L.J., McHeyzer-Williams M.G. Antigen-specific memory В cell development // Annu. Rev Immunol. 2005. - Vol.23. -P.487-513.

98. McKinstry K.K., Strutt T.M., Swain S.L. The effector to memory transition of CD4 T cells // Immunol Res. 2008. - Vol.40. - №2. - P.l 14127

99. McMichael A.J., Gotch F.M., Noble G.R., Beare P.A. Cytotoxic T-cell immunity to influenza // N. Engl. J Med. 1983. - Vol.309. - №1.- p. 13-17

100. Meeting report: FDA/NIH/WHO public workshop on immune correlates of protection against influenza A viruses in support of pandemic vaccine development // Vaccine. -2008. Vol.26. - P.4299^1303

101. Meurman, O., Waris M., and Hedman K. Immunoglobulin G antibody avidity in patients with respiratory syncytial virus infection // J. Clin. Microbiol. 1992. - Vol.30. - P. 1479-1484.

102. Minges Wols H., Underhill G:, Kansas G. et al. The role of bone marrow-derived stromal cells in the maintenance of plasma cell longevity // J Immunol. 2002. - Vol.169. - P.4213-4221

103. Mittler J.N., Lee W.T. Antigen-specific CD4 T cell clonal expansion and differentiation in the aged lymphoid microenvironment. II. The memory T cell response is diminished // Mech. Ageing Dev. 2004. - Vol.125. -№1. - P. 59-68.

104. Moyron-Quiroz J, Rangel-Moreno J, Hartson L et al. Persistence and responsiveness of immunologic memory in the absence of secondary lymphoid organs // Immunity. 2006 - Vol.25. - P. 643-654

105. Moyron-Quiroz J, Rangel-Moreno J, Kusser К et al. Role of inducible bronchus associated lymphoid tissue (iBALT) in respiratory immunity // Nat Med. 2004. - Vol. 10. - P.927-934

106. Murasko D.M., Bernstein E.D., Gardner E.M. et al. Role of humoral and cell-mediated immunity in protection from influenza disease after immunization of healthy elderly // Exp Gerontol. 2002. - Vol.37. - №2 -3. -P.427-39

107. Ngo V.N., Cornall R.J., Cyster J.G. Splenic T zone development is В cell dependent. The Journal Of Experimental Medicine. 2001. - Vol.194. -P. 1649-1660

108. Novak E.J., Liu A.W., Nepom G.T., Kwok W.W. MHC class II tetramers identify peptide-specific human CD4(+) T cells proliferating in response to influenza A antigen // J Clin Invest. 1999. - Vol.104. -№12. -P.63-67.

109. Obukhanych Т., Nussenzweig M. T-independent type II immune responses generate memory В cells // J Exp Med 2006. — Vol. 203 - 305310

110. Park S.O., Han Y.W., Aleyas A.G. Low-dose antigen-experienced CD4+ T cells display reduced clonal expansion but facilitate an effective memory pool in response to secondary exposure // Immunology. 2008. -Vol.123.-№3.-P. 426-437.

111. Prussin C, Metcalfe D.D. Detection of intracytoplasmic cytokine using flow cytometry and directly conjugated anti-cytokine antibodies // J Immunol Methods. 1995. - Vol.188. -№1. - P. 117-128

112. Puaux A.L., Campanaud J., Salles A. et al. A very rapid and simple assay based on trogocytosis to detect and measure specific T and В cell reactivity by flow cytometry // Eur. J. Immunol. 2006. - Vol.36. - №3. — P. 779-788.

113. Ravkov E.V., Myrick C.M., Altman J.D. Immediate early effector functions of virus-specific CD8+CCR7+ memory cells in humans defined by HLA and CC chemokine ligand 19 tetramers // J Immunol. 2003. -Vol.170.-P.2461-2468

114. Rechavi O., Goldstein I., Vernitsky H. et al. Intercellular Transfer of Oncogenic H-Ras at the Immunological Synapse // PLoS ONE. 2007. -Vol.2.-№11.-P. el204.

115. Reichardt P., Dornbach В., Rong S. et al. Naive B-cells generate regulatory T-cells in the presence of a mature immunological synapse // Blood. 2007. - Vol. 110. - №2. - P. 1519-1529.

116. Remarque E.J., Nijhuis E.W., Hinloopen B. et al. Correlation between the antibody response to influenza vaccine and helper T cell subsets in healthy aging // Vaccine. 1996. - Vol.14. - №2. - P. 127-130.

117. Rogers P.R., Song J., Gramaglia I. et al. 0X40 promotes BclxL and Bcl-2 expression and is essential for long-term survival of CD4 T cells. Immunity. 2001. - Vol. 15. - P.445-455

118. Roti M., Yang J., Berger D. et al. Healthy human subjects have CD4+ T cells directed against H5N1 influenza virus // J Immunol. 2008. -Vol.180. -№3. - P.1758-1768.

119. Sallusto F., Lenig D., Forster R. et al Two subsets of memory T lymphocytes with distinct homing potentials and effector functions // Nature. 1999. - Vol. 401. - P.708-712

120. Sallusto F., Geginat J., Lanzavecchia A. Central Memory and Effector Memory T Cell Subsets: Function, Generation, and Maintenance // Annual Review of Immunology. 2004. - Vol.22. - №1. - P. 745-763.

121. Sallusto F., Lanzavecchia A. Exploring pathways for memory T cell generation // J. Clin. Invest. 2001. - Vol.108. - P.805-806.

122. Sangster M, Riberdy J, Gonzalez M et al. An early CD4+ T cell-dependent immunoglobulin A response to influenza infection in the absence of key cognate T-B interactions // J Exp Med. 2003. - Vol.198. - P.1011-1021

123. Sanz I, Wei C, Lee FE, Anolik J. Phenotypic and functional heterogeneity of human memory В cells // Semin Immunol. 2008. — Vol.20. - №1. — P.67-82

124. Schluns K.S., Kieper W.C., Jameson S.C. et al. Interleukin-7 mediates the homeostasis of naive and memory CD8 T cells in vivo // Nat Immunol. -2000.-Vol.1.-P.426-432

125. Sealy R., Surman S., Hurwitz J. et al. Antibody response to influenza infection of mice: different patterns for glycoprotein and nucleocapsid antigens // Immunology. 2003. - Vol.108. - P. 431-439

126. Seddon B, Tomlinson P, Zamoyska R Interleukin 7 and T cell receptor signals regulate homeostasis of CD4 memory cells // Nat Immunol. 2003. -Vol.4.-P.680-686

127. Seder R.A., Ahmed R. Similarities and differences in CD4+ and CD8+ effector and memory T cell generation // Nat Immuno. 2003. -Vol.4.-P.835-842

128. Shen C.H., Ge Q., Talay O. et al. Loss of IL-7R and IL-15R Expression Is Associated with Disappearance of Memory T Cells in Respiratory Tract following Influenza Infection // The Journal of Immunology. 2008.-Vol.180.-№1.-P. 171-178.

129. Shimoda M., Nakamura Т., Takahashi Y. et al. Isotype-specific Selection of High Affinity Memory В Cells in Nasal-associated Lymphoid Tissue // The Journal of Experimental Medicine. 2001. - Vol.194. - №11. -P. 1597-1608.

130. Slifka M.K., Antia R., Whitmire J.K., Ahmed R. Humoral Immunity Due to Long-Lived Plasma Cells // Immunity. 1998. - Vol.8. - P.363-372

131. Soderlund, M., Brown C. S., Cohen B. J., and Hedman K. Accurate serodiagnosis of В19 parvovirus infections by measurement of IgG avidity // J. Infect. Dis.- 1995. Vol.171. -P.710-713.

132. Souza V.A., Fernandes S., Araujo E.S. et al. Use of an immunoglobulin G avidity test to discriminate between primary and secondary dengue virus infections // J'Clin. Microbiol. 2004. - Vol.42. -№4.-P. 1782-1784.

133. Souza V. A., Pannuti C. S., Sumita L. M., Andrade H. F. Enzyme-linked immunosorbent assay-IgG antibody avidity test for single sample serologic evaluation of measles vaccines // J. Med. Virol. 1997. - Vol.52. - P.275-279.

134. Stemberger C., Neuenhahn M., Buchholz V.R., Busch D.H. Origin of CD8+ effector and memory T cell subsets // Cell Mol. Immunol. 2007. -Vol.4. - №6. - P. 399-405.

135. SunJ.C., Williams M.A., Bevan M.J. CD4+ T cells are required for the maintenance, not programming, of memory CD8+ T cells after acute infection // Nat Immunol. 2004. - Vol.5. - P.927-933

136. Surh C., Boyman O., Purton J. et al. Homeostasis of memory T cells // Immunol Rev 2006. - Vol. 211. - P. 154-163

137. Takahashi Y. Memory В cells in systemic and- mucosal immune response: implications, for successful' vaccination // Biosci Biotechnol Biochem. 2007. - Vol.71. - № 10.- - P.23 58-66

138. Tamura- S., Tanimoto Т., Kurata T. Mechanisms of broad cross-protection provided by influenza virus infection and their application to vaccines // Jpn. J Infect. Dis. -2005. Vol.58. - №4. - P. 195-207

139. Tan J:T., Ernst В., Kieper W.C. et al- Interleukin (IL)-15 and IL-7 jointly regulate homeostatic proliferation of memory phenotype CD8+ cells but are not required for- memory phenotype CD4+ cells • // J Exp Med. -2002. Vol.195. - P.1523-1532

140. Throsby M., van1,den.Brink E., Jongeneelen M. et al. Heterosubtypic neutralizing monoclonal antibodies cross-protective against H5N1 and H1N1 recovered from human IgM+ memory В cells // PLoS ONE. -2008. -Vol.3.- №12. -P.e3942

141. Tuokko H. Detection-of acute measles infections by indirect and mu-capture enzyme immunoassays for immunoglobulin M antibodies and measles immunoglobulin G antibody avidity enzyme immunoassay // J. Med Virol. 1995. - Vol.45. - P.306-311.

142. Unsoeld H, Krautwald S, Voehringer D et al. Cutting edge: CCR7+ and CCR7- memory T cells do not differ in immediate effector cell function // J Immunol. 2002. - Vol. 169. - P.63 8-641

143. Wei C, Anolik J, Cappione A. et al. A New Population of Cells Lacking Expression of CD27 Represents a Notable Component of the В Cell Memory Compartment in Systemic Lupus Erythematosus // J Immunol. -2007. Vol.178. - P.6624-6633

144. Welsh R.M., Selin L.K., Szomolanyi-Tsuda E. Immunological memory to viral infections // Annu. Rev. Immunol. — 2004. — Vol.22. — № P. 711-743.

145. Wills M.R., Carmichuel A.J., Weekes M.P. et al. Human virus-specific CD8+ CTL clones revert from CD45ROhigh to CD45RAhigh in vivo: CD45RAhigh CD8+ T cells comprise both naive and memory cells // J. Immunol. 1999. - Vol.162. - P.7080-7087

146. Wirths S., Lanzavecchia A. ABCB1 transporter discriminates human resting naive В cells from cycling transitional and memory В cells // European Journal of Immunology. 2005. - V.35. -№12. -P.3433-3441

147. Yap K.L., Ada G.L., McKenzie I.F. Transfer of specific cytotoxic T lymphocytes protects mice inoculated with influenza virus // Nature. 1978. - Vol.273. - №5659. - P. 238-239

148. Yarchoan R, Barrow LA, Kurman C. et al. Human peripheral blood mononuclear cells produce IgA anti-influenza virus antibody in a secondary in vitro antibody response // J Immunol. 1985. - Vol.135. - №2. - P.1033-1039.

149. Yarchoan, R., Murphy BrR., Strobe R. W. et al. In vitro production of anti-influenza virus antibody after intranasal inoculation with cold-adapted influenza virus. J. Immunol. 1981. - Vol.127. - P.1958-1963.

150. Yu X., Tsibane Т., McGraw P.A. et al. Neutralizing antibodies derived from the В cells of 1918 influenza pandemic survivors // Nature. — 2008. — Vol. 455.-P. 532-536

151. Zeman A.M., Holmes Т.Н., Stamatis S. et al. Humoral and cellular immune responses in children given annual immunization with trivalent inactivated influenza vaccine // Pediatr Infect Dis J. — 2007. Vol.26. -№2. — P.107-15

152. Zheng N.-Y., Wilson K., Wang X. et al. Human immunoglobulin selection associated with class switch and possible tolerogenic origins for С {delta} class-switched В cells // J. Clin. Invest 2004. - Vol.113. -P.l 188-1201

153. Zhong X., Gao W., Deqauque N. et al. Reciprocal generation of Thl/Thl7 and Treg by B1 and B2 В cells // European Journal of Immunology. 2007. - Vol.37. - №9. - P. 2400-2404 Xuemei Z., Terry BS, Thomas LR.