Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота в племенных хозяйствах Среднего Урала и оптимизация системы противоэпизоотических мероприятий тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, доктор ветеринарных наук Петрова, Ольга Григорьевна

• Петрова, Ольга Григорьевна
• доктор ветеринарных наук
• 2002

Оглавление диссертации доктор ветеринарных наук Петрова, Ольга Григорьевна

Введение

Обзор литературы

1.1 .Инфекционный ринотрахеитинфекционный пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота (характеристика)

1.2.Роль быков-производителей в эпизоотологии инфекционного ринотрахеита-инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота.

1.3.Генетические аномалии у крупного рогатого скота при ОРВИ в племенных хозяйствах.

1.4.Иммунокоррекция при инфекционном ринотрахеите-инфекционном пустулезном вульвовагините крупного рогатого скота.

1.5.Меры профилактики и борьбы с инфекционным ринотрахеитом-инфекционным пустулезным вульвовагинитом крупного рогатого скота.

1 .б.Диагностика инфекционного ринотрахеита-инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота.

1.7.Вирусная диарея-болезнь слизистых крупного рогатого скота (характеристика).

1.8.Парагрипп типа 3 крупного рогатого скота (характеристика)

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота в племенных хозяйствах Среднего Урала и оптимизация системы противоэпизоотических мероприятий»

АКТУАЛЬНОСТЬ ТЕМЫ. Респираторные болезни крупного рогатого скота распространены практически во всех странах мира. Они наносят серьезный экономический ущерб скотоводству, связанный с потерей живой массы скота, снижением молочной продуктивности, нарушением воспроизводства и гибелью молодняка. Концентрация животноводства приводит к увеличению риска вспышек респираторных инфекций. По данным Н.И. Закутского и соавт. (1998) вспышки ОРВИ крупного рогатого скота на протяжении последних лет регистрировались во многих регионах России, что свидетельствует о напряженной эпизоотической ситуации, и представляют постоянную эпизоотическую угрозу (Н.Н. Крюков, 1980, О.И. Сухарев, 1983, И.А. Бакулов 1998).

Изменения структуры и технологии ведения животноводства, возникающие на фоне экономической реформы народного хозяйства, экономическое давление на сельскохозяйственное производство, наложили отпечаток нестабильности на эпизоотическую ситуацию, требующую от животных определенного адаптивного периода, когда приходит в равновесие взаимоотношение их организма с условиями содержания. Эти периоды, сопровождающиеся временным снижением резистентности, являются наиболее благоприятными для развития инфекционных болезней, которые при традиционных режимах содержания животных, как правило, не возникают или протекают в латентной форме. За последние годы в племенных хозяйствах Свердловской области, при вирусологических исследованиях, выявляются животные в сыворотке крови которых обнаруживаются антитела к вирусам ИРТ-ИПВ (инфекционный ринотрахеит 8 инфекционный пустулезный вульвовагинит), ВД-БС (вирусной диареи-болезни слизистых), что связано с латентным вирусоносительством. До сих пор ветеринарные специалисты не вооружены надежными способами оперативного выявления латентной формы ИРТ-ИПВ. (P.P. Pastoret et al, 1982).

Феномен латенции при ИРТ крупного рогатого скота приводит к неконтролируемому распространению возбудителя инфекции . Особенно опасны в этом плане быки-производители, у которых болезнь чаще протекает в латентной форме (О.С. Straub , 1977 в; Е.В. Андреев, 1984, Г.Э. Фарботко и соавт. 1994, Van. Shchaik , 1998).

Характер течения латентной формы ИРТ, ВД-БС крупного рогатого скота у животных в России практически не изучен, недостаточно выявлены особенности проявления эпизоотического процесса заболеваний по племпредприятиям и племенным хозяйствам. Нет однозначной оценки методов контроля продаваемых племенных животных и спермы быков-производителей, недостаточно отработаны способы применения специфических препаратов в зависимости от наличия латентной формы инфекции у животных. Ранняя диагностика, а также своевременное выявление скрытых вирусоносителей являются важным фактором в оздоровлении племенных хозяйств от ОРВИ крупного рогатого скота и недопущения распространения инфекции.

В связи с этим применение новых методов диагностики, способных выявить латентных вирусоносителей в племенных хозяйствах является весьма актуальной (М.А. Dorman et al, 1985; В.М. Чекишев, 1983, Г.Ф. Коромыслов 1998, Е.С. Воронин, 1998). Имеется необходимость совершенствования системы противовирусных мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота с учетом экологических особенностей Среднего Урала и 9 эпизоотической ситуации. Предварительные исследования, проведенные отделом эпизоотологии ГУ СНИВС, показали, что в сложных экологических условиях в качестве этиологических факторов все чаще выступают вирусные ассоциации с превалированием той или иной составляющей в разных хозяйствах области. В то же время распространение инфекций, вызванных вирусами ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3 ежегодно увеличивается, частичное подавление иммунной реакции организма на один из возбудителей, обусловлено конкуренцией иммунологических стереотипов, включающей иммуносупрессивное действие вируса ВД-БС, интерфероногенную активность вируса ИРТ-ИПВ и многие другие факторы. Поэтому знание иммунного фона поголовья животных является необходимым, что позволит подобрать комплекс профилактических и лечебных мероприятий. Неблагоприятное влияние окружающей среды отрицательно сказывается и на генетические характеристики животных. Снижение резистентности организма и хромосомные абберации связаны между собой и взаимно обуславливают друг друга. В связи с этим становится очевидным необходимость комплексных исследований , включающих изучение вирусной этиологической структуры заболеваний крупного рогатого скота, микробной составляющей вирусно-бактериологических ассоциаций, которые значительно осложняют течение болезни, а в некоторых случаях является основной причиной заболеваний иммунологического фона поголовья крупного рогатого скота, цитогенетические исследования, выявляющие хромосомные абберации, указывающие на генетическую предрасположенность к различным заболеваниям. Неблагополучие Среднего Урала по ОРВИ крупного рогатого скота,

10 высокий риск возникновения эпизоотических очагов болезней в настоящий период определили выбор темы.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ. Изучить распространение ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3 крупного рогатого скота на Среднем Урале и разработать эффективную систему оздоровительных мероприятий. ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЙ :

- изучить этиологию ОРВИ крупного рогатого скота, особенности и закономерности проявления эпизоотических процессов при них в племенных хозяйствах Урала;

- изучить роль вирусов ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3 в этиологии массовых респираторных и гинекологических заболеваний животных на Урале;

- изучить распространение ИРТ-ИПВ (методом молекулярной гибридизаци), ВД-БС КРС на головных племпредприятиях Урала, характер проявления латентной формы инфекции у быков-производителей, выявить некоторые особенности эпизоотического процесса заболеваний в современных условиях;

- разработать и усовершенствовать научно-обоснованные схемы специфической профилактики и ветеринарно-профилактических мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота ;

- определить схемы применения иммуностимуляторов с целью повышения естественной резистентности организма телят.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Установлены особенности распространения ОРВИ крупного рогатого скота в племенных хозяйствах, в которых этиологическую роль играют ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3 в ассоциации с энтеропатогенными E.coli , сальмонеллами, хламидиями, микоплазмами, рота-коронавирусами, кокковой микрофлорой в различных сочетаниях. Изучена роль вируса ИРТ-ИПВ в этиологии массовых вспышек острых респираторных и гинекологических

11 заболеваний животных в племенных хозяйствах и среди животных частного сектора.

Эпизоотический процесс ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3 в племенных хозяйствах характеризуется длительным стационарным течением болезни, после вспышек, широким распространением вирусоносительства и относительной устойчивостью телят к ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3, полученных от иммунных коров-матерей.

Впервые на Урале установлено наличие ИРТ-ИПВ (метод молекулярной гибридизации), ВД-БС на головных племпредприятиях Урала, изучен характер течения латентной формы инфекций у быков-производителей, дана оценка эффективности применения «Инактивированной вакцины против ИРТ-ИПВ КРС» для их иммунизации, определена степень контаминации вирусом ИРТ-ИПВ банка спермы, полученного от выбракованных в различные годы инфицированных быков. Выявлены хромосомные абберации, которые указывают на генетическую предрасположенность к инфекционным заболеваниям КРС.

Усовершенствованы схемы специфической профилактики ОРВИ крупного рогатого скота в связи с особенностями их распространения. Разработана новая схема вакцинации коров и телят против ОРВИ живой сухой ассоциированной вирусвакциной «Тривак»; комбинированной жидкой инактивированной вакциной «Комбовак», против ИРТ-ИПВ КРС. Разработана комплексная система контроля ассоциированных эпизоотических процессов ОРВИ, включающая усовершенствованные схемы специфической профилактики, диагностических исследований, применения санирующих препаратов. Обоснованы эффективные схемы применения с целью повышения неспецифической резистентности и

12 специфического иммунитета иммуномодуляторов: миксоферон, виватон, иммунофан.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ. Доказано, что эпизоотический процесс при ИРТ-ИПВ, ВД-БС, ПГ-3 крупного рогатого скота в племенных хозяйствах - процесс управляемый.

Определены роль и место специфической профилактики в системе мероприятий при ОРВИ крупного рогатого скота на Среднем Урале.

Результаты выполненных исследований могут быть использованы для углубленного изучения эпизоотических процессов ОРВИ крупного рогатого скота и при разработке методов и средств их контроля.

Выдвинутые на основании многолетних исследований положения явились основой для создания научно-обоснованной системы по управлению эпизоотическим процессом ОРВИ крупного рогатого скота на Среднем Урале и вошли в специальные издания : «Диагностика, меры борьбы и профилактики вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота в хозяйствах Свердловской области» (1985, 1987), одобренные Управлением сельского хозяйства и администрации Свердловской области ; «Профилактика инфекционного ринотрахеита - инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота в хозяйства Свердловской области (1990), одобренные Свердловским областным правлением НТО сельского хозяйства, «Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота. Диагностика, профилактика, лечение.» (1995), одобренные Свердловским и Курганским областным правлением НТО сельского хозяйства, ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко ; «Усовершенствовать меры борьбы и профилактики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого

13 скота в Свердловской области (1994),одобренное Министерством сельского зяйства и Продовольствия Российской Федерации; «Инфекционный ринотрахеит -[фекционный пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота» (Основы [агностики и специфической профилактики (1999 -2000 год ), одобренная МСХ юрдловской области ,в плане специальных ветеринарных мероприятий по профилак-ке и оздоровлению от ОРВИ крупного рогатого скота в Курганской области дмуртии, «Вирусные заболевания крупного рогатого скота в Сибири и на Урале», комендации. Утверждены Ученым Советом ГНУ ИЭВС и ДВ СО РАСХН ,2001 г. ота - коронавирусы крупного рогатого скота (основы диагностики и специфической офилактики)».Рекомендации.Утверждены Ученым Советом ГУ СНИВС lCXH,одобрены ГУВ Минсельхоза области ,2001 год. ШОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ: юбенности этиологической структуры и распространения ОРВИ КРС в условиях еменных хозяйств Среднего Урала; оль и место специфической профилактики в системе противовирусных мероприятий и ОРВИ КРС в племенных хозяйствах; гтодология комплексного построения оздоровительных и профилактических роприятий при ОРВИ КРС.

ТИ РЕАЛИЗАЦИИ И ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ. двинутые на основании многолетних исследований положения явились основой я разработки научно-обоснованной системы оздоровительных мероприятий по равлению эпизоотическим процессом при ИРТ-ИПВ,ВД-БС,ПГ-3 КРС в змеиных хозяйствах Среднего Урала.Обоснованные исследованиями предложе-я по комплексной системе мер борьбы и профилактики массовых ОРВИ КРС [роко используются в практике племенных и товарных хозяйств,при подготовке еринарных специалистов.

СРОБАЦИЯ РАБОТЫ.Материалы диссертации доложены и обсуждены на лшо-производственных конференциях :»По актуальным вопросам ветеринарии Ъький, 1984),»Профилактика и лечение заболеваний с/х животных

14

Нечерноземной зоне РСФСР» (Горький, 1985), «Профилактика и лечение болезней сельскохозяйственных животных» (Вологда, 1986), «Достижения ветеринарной науки и передового опыта -животноводству Нечерноземной зоны РСФСР (Горький, 1998), «Достижения ветеринарной науки и передового опыта животноводству» (Москва, ВДНХ, 1990), на совещании «О перспективах развития животноводства и ветеринарии в XIII пятилетке (Ленинград - Пушкин, 1990), на семинарах руководителей агропромышленного комплекса, ветеринарных специалистов и научных работников по совершенствованию мероприятий по профилактике ОРВИ крупного рогатого скота (Екатеринбург 19852001 гг, Тюмень, 1986, Курган 1998, 1999 , Ижевск 1998, Далматово Курганской области, 1996, Пермь 2001 г., Краснодар, 2001 г.), на заседаниях Ученого Совета Свердловской НИВС (1985-2001). «Профилактика инфекционных болезней крупного рогатого скота», «Разработка и освоение производства ветеринарных противовирусных иммуностимулирующих препаратов на основе рекомбинантных белков» - Москва - 1999- 2001 год, 18 Международный симпозиум по ветеринарной эпидемиологии и экономике (Париж, 1997), «Болезни сельскохозяйственных животных с вирусной и другой этиологии и меры борьбы с ними» (Иркутск, 2001 г.), «Перспективы развития животноводства в Северо-Западном регионе» (Калининград, 2001 г.).

Материалы диссертации опубликованы в научных статьях, рекомендациях, методических указаниях, научных отчетах, имеется авторское свидетельство.

ВНЕДРЕНИЕ. Результаты исследований в 1985 - 2001 гг под авторским надзором с положительным эффектом внедрены в хозяйствах Свердловской, Челябинской, Курганской Пермской

15 областях, Удмуртии. Подготовлены, рассмотрены и утверждены НТС изданы рекомендации : «Диагностика, меры борьбы и профилактики вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота в хозяйствах Свердловской области (1985), «Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота» (1986), «Диагностика, меры борьбы и профилактики вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота хозяйствах Свердловской области (1987), «Профилактика инфекционного ринотрахеита - инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота в хозяйствах Свердловской области» (1990), «Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатого скота. Диагностика, профилактика, лечение.» (1995), «Усовершенствовать меры борьбы и профилактики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Свердловской области» , (1994), «Инфекционный ринотрахеит - инфекционный пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота (Основы диагностики и специфической профилактики)» (1999-2001 гг). «Рота-коронавирусы крупного рогатого скота. (Основы диагностики и специфической профилактики» 2001 г. Материалы исследований изложенные в диссертации экспонировались на ВДНХ СССР (1990). ОБЪЕМ РАБОТЫ. Работа состоит из введения, обзора литературы, собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов, рекомендаций производству, библиографического указателя использованной литературы. Диссертация изложена на 386 страницах, и иллюстрирована 62 таблицами , 12 рисунками. Список использованной литературы включает 444 источника, из них 341 иностранных авторов.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Петрова, Ольга Григорьевна

выводы

1 .В племенных хозяйствах Среднего Урала расшифрована этиологическая структура ОРВИ КРС .Эпизоотологическими вирусологическими серологическими бактериологическими ,молекулярными и другими методами исследований показано ,что ведущим звеном в эпизоотологическом процессе массовых острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота являются вирусы ИРТ-ИПВ,ВД-БС,ПГ-3 КРС в ассоциации с сальмонеллами, пастереллами ,кокковыми инфекциями ,микоплазмами ,хламидиями в различных сочетаниях.

2.Установлена широкая циркуляция вирусов ИРТ-ИПВ, ВД-БС,ПГ-3 ,сальмонелл (S. tiphymurium , S.Dublin ),с охватом от 7,6 до 60% обследованного поголовья телят .Ассоциации вирусно-бактериальных заболеваний обнаружены в 83 % хозяйств, в т.ч. 9,2% ПГ-3 и ИРТ-ИПВ ,в 2,1 %-ПГ-З и ВД-БС ,в 39,8% -ПГ-3,ИРТ-ИПВ ,ВД-БС , в 1,9 %-ИРТ-ИПВ и сальмонеллез, в 4,3 % -ВД-БС,ПГ-3 и сальмонеллез и других сочетаниях.

3.Определена этиологическая роль вирусов ИРТ-ИПВ ,ВД-БС крупного рогатого скота в возникновении гинекологических и респираторных болезней животных в племенных хозяйствах и у животных принадлежащих частным владельцам.

4.Выявлен ряд особенностей эпизоотического процесса ИРТ-ИПВ крупного рогатого скот а :

-основным источником возбудителя инфекций являются быки -производители ,больные и инфицированные животные ,у которых заболевание протекает в латентной форме без проявления клинических признаков ;

-острые вспышки с манифестацией клинических признаков ОРВИ обычно регистрируются среди молодняка крупного рогатого скота; -симптомы острого течения ИРТ-ИПВ КРС у коров встречаются редко характеризуются длительными ремиссиями и краткими рецидивами ,часто имеет место латентная форма инфекции.

5. ИРТ-ИПВ КРС установлен на всех обследованных головных племпредприятиях Урала. Показатели инфицированности животных варьируют от 20 до 90,1%,что вызвано завозом инфицированных быков из-за рубежа,длительным нахождением их в стаде слабой эффективностью диагностических профилактических и оздоровительных мероприятий.

6.Метод ом молекулярной гибридизации установлено ,что у инфицированных быков - производителей вирус ИРТ-ИПВ периодически выделялся со спермой .

7.Установлено,что контаминация вирусами хранящейся на головном племпредприятии в условиях глубокой заморозки спермы,полученной от выбракованных в различное время быков-вирусоносителей достигает от 20% до 90,1%.С помощью метода молекулярной гибридизации дается оценка такой спермы на наличие в ней ДНК вируса на ИРТ-ИПВ КРС и решается вопрос о ее пригодности к использованию.

8.Ретроспективные серологические исследования подтверждают широкое распространение смешанных вирусных инфекций .У телят,серологически положительных к вирусу ПГ-3 КРС одновременно выявлены антитела к вирусу ИРТ-ИПВ и ВД-БС КРС .

9.ВД-БС КРС широко распространена на территории Среднего Урала (61%).

303

Уровень заболеваемости крупного рогатого скота в племенных хозяйствах составляет : в Свердловской ,Пермской ,Челябинской ,Курганской областях 92 50 , 35 , 67 % соответственно. Антитела к вирусу ВД-БС в титре ниже 1:8 выявлены у 29 % телят , в титре 1: 16 и выше у 71 % .У телят ,рожденных от привитых коров против ИРТ-ИПВ ,ВД-БС ,ПГ-3 КРС ,каких - либо клинических признаков заболевания характерных для ВД-БС не наблюдали. 10. Разработанная и внедренная в племенные хозяйства Среднего Урала научно-обоснованная схема специфической профилактики ОРВИ КРС в комплексе с ветеринарно- профилактическими обработками диагностическими исследованиями,обеспечивает эффективный контроль эпизоотических процессов ОРВИ КРС. 11 .В основу формирования научно -обоснованной схемы специфической профилактики положен принцип создания у восприимчивых животных постоянной напряженной иммунной защиты против циркулирующих в популяции возбудителей ОРВИ КРС ,и на базе этой защиты со временем вытеснение эпизоотических штаммов вирусов ОРВИ КРС в неблагополучных хозяйствах . Эффективная схема вакцинаций крупного рогатого скота против ОРВИ поливалентной сухой ассоциированной вакциной «Тривак» ,инактивированной комбинированной жидкой вакциной «Комбовак « в племенных хозяйствах Среднего Урала обеспечивает снижение заболеваемости более чем в 37 раз ,падеж - в 56,7 раз ,санитарный брак -в 8,7 раз ,вынужденный убой - в 9,8 раз (коэффициент корреляции составил - 0,61 ).

12.Иммуностимуляторы иммунофан ,виватон, миксоферон оказывают выраженное влияние на стимуляцию специфического ответа на

304 вакцинацию против ОРВИ КРС , повышают протективную способность вакцин на 14,1-15,6 %,тем самым увеличивают сохранность молодняка на 17 ,6 % ,средний прирост массы тела на 14,8-15% (р< 0,03 ) ,что дает основание для их применения в племенных хозяйствах.

Практические предложения производству.

На основании проведенной работы разработаны и предложены для практики рекомендации производству.

1. Диагностика, меры борьбы и профилактики вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота в хозяйствах Свердловской области. Рекомендации (Утверждены НТС СНИВС, одобрены ГУВ АПК Свердловской области, 1984г).

2. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота. Рекомендации. (Утверждены секцией ветеринарии ОП НТО АПК Свердловской области, 1986 г).

3. Диагностика, меры борьбы и профилактики вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота в хозяйствах Свердловской области. Рекомендации. (Утверждены секцией ветеринарии ОП НТО АПК Свердловской области, 1987 г)

4. Профилактика инфекционного ринотрахеита - инфекционного пустулезного вульвовагинита крупного рогатого скота в хозяйствах Свердловской области. Рекомендации. (Утверждены Свердловским областным правлением НТО сельского хозяйства, НТО Свердловской НИВС одобрен АПК Свердловской области 1990 г).

5. Острые респираторные вирусные инфекции крупного рогатогго скота. Диагностика, профилактика, лечение. Рекомендации. (Утверждены НТС Свердловской НИВС, одобрены ГУВ Министерства сельского хозяйства и ' продовольствия Свердловской области, 1995 г).

307

6. Инфекционный ринотрахеит - инфекционный пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота. Диагностика, меры борьбы и профилактики. Рекомендации. (Утверждены НТС Свердловской НИВС, одобрены ГУВ Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области, 2000 г).

7. Вирусные заболевания крупного рогатого скота в Сибири и на Урале. Рекомендации. (Утверждены Ученым Советом ГНУ и ЭВС и ДВСО РАСХН, 2001 г).

8. Временное наставление по применению препарата «Виватон» для лечения и профилактики болезней животных в Свердловской области» (Утверждено НТС Свердловской НИВС, одобрены ГУВ Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области, 1998 г).

9. Временное наставление по применению термовозгоночных шашек для санации воздушной среды, дезодорации помещений, профилактики и лечения острых респираторных заболеваний крупного рогатого скота (Утверждены НТС Свердловской НИВС, одобрен ГУВ Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области, 2000 г).

Ю.Временное наставление по применению препарата «Миксоферон» в хозяйствах Свердловской области (Утверждены НТС Свердловской НИВС, одобрены ГУВ Министерства сельского хозяйства и продовольствия Свердловской области, 1995 г.).

11. Рота-коронавирусы крупного рогатого скота (основы диагностики и специфической профилактики). Методические рекомендации. Утверждены УС НИВС. Одобрены ГУВ Минсельхоза области, 2001 г.

309

Список литературы диссертационного исследования доктор ветеринарных наук Петрова, Ольга Григорьевна, 2002 год

1. Аавер Э., Фомин Ю.В., Кумар Ю.К. К эпизоотологии инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в Эстонской ССР// Тезисы докл. Всесоюзн. межвуз. научной конф. по ветер. Вирусологии, тарту.-1973.-ч.1.-41 с.

2. Аавер Э., Кумар Ю. О наличии вирусных заболеваний у крупного рогатого скота в Эстонии// Теоретические и практические вопросы ветеринарии, Тарту.-1974.-е. 93-95.

3. Айала Ф., Кайгер Дж. Современная генетика., Т.1., М., 1987. 296 е., Т.2 М., 1988, 368 с.

4. Алирбеков М.А. и др. Ветеринария, 1985, 1 с.38.

5. Андреев Е.В. Вирусные инфекции слизистых оболочек крупного рогатого скота// Сб.Ветеринария К.- 1974.-№ 38.- с. 37 38.

6. Андреев Е.В. 1нфикцшний ринотрахегг-пустулозний вульвовагинит// Урожай, Киев 1975.-е.

7. Андреев Е.В., Чечеткина Н.П., Дудник О.Л., Фурсова И.А., семерина И.А., Костенок А.А. Вирусные заболевания телят// Владимир.-1976.-Ч.1. с.244-245.

8. Андреев Е.В., Чечеткина Н.П., Дудник О.В., Добролюбова Н.И., Фурсова А.И., Костенко А.А. Герпетическая инфекция быков-производителей// Ветеринария.-1977.-№ 9.-е. 56-57.

9. Андреев Е.В., Драгомир А.В. Инфекционный ринотрахеит-пустулезный вульвовагинит// В кн. Острые респираторные заболевания крупного рогатого скота, Кишинев-1979.-е. 6- 83.

10. Ю.Андреев Е.В. Ассоциированное воздействие на организм вируса и условно-патогенных бактерий// Ветеринария.-1984.- № с- 25-27.

11. Артемов Б.Т. и др., ЦЧЗ, Воронеж, 1984, 5, с.8.

12. Атамась В.А. и др. Сб.инф. и инваз. бол. с.-х. жив. и птиц, Одесса, 1983.310

13. Баринский И.Ф., Шубладзе А.К., Каспаров А.А., Гребенюк В.Н. Герпес. Этиология, диагностика, лечение. М:Медицина.-1986.-269 с.16. .Бобрович В.Г. и др. Ветер. Наука-производству. Минск, 1984, 22 с. 58.

14. Бучнев К.Н. К этиологии вирусных заболеваний крупного рогатого скота с поражением слизистых в Казахстане// Вестник с.-х. Науки.-1969. № 3, -с.34.

15. Вишняков И.Ф. Диагностика вирозов в эпизоотологическом мониторинге// актуальные проблемы ветеринарной медицины в России : Сб.науч.тр., посвящ. 100-летию науки в России и 30-летию СО РАСХН/РАСХН. Сиб.Отд-ние.-Новосибирск, 1998.-С.121-131.

16. Гизитдинов Н.Н. и др. Ветеринария , 1976, 12 с. 29.

17. Горский В.В. Методика подсчета клеток в однослойной культуре ткани// Вопросы вирусологии.- 1967.-№ 1.—с. 107-110.

18. Грязин В.Н. Вирусные респираторные заболевания телят и меры борьбы с ними: автореф.диссерт. канд.вет.наук.-Новосибирск, 1983.

19. Гудков В.Г. и др. А.С. №4123722/14. Опубл.Бюлл № 23, 1991.311

20. Гуненков В.В., Сухарев О.И. Болезни, вызываемые герпесвирусами// Инфекционные болезни животных. Справочник. М.: Агропромиздат.-1987.-97 с.

21. Гуненков В.В., Сухарев О.И. Инфекционный ринотрахеит-пустулезный вульвовагинит// Инфекционные болезни животных. Справочник. М. Агропромиздат.-1087. -98 е., Девритов Д.А., Ветеринария, 1985, 3 с. 67.

22. Джупина С.И., Иванов Ю.А. Опыт эпизоотического анализа заболеваемости телят в Воронежском комплексе// Бюлл.ВИЭВ.-1975.-Вып.22-с.22-26.

23. Джупина С.И. Методы эпизоотологического исследования и теория эпизоотического процесса. Новосибирск, 1991, 135 с.

24. Дьяконов Л.П., Глухов В.Ф., Поздняков А.А., Денисенко Г.Ф., Калмыкова Т.П. Культивирование клеток и тканей животных // Учебно-методическое пособие (часть 1).-Ставрополь, 1986.-96с.

25. Захаров И.А. Генетические карты Южных организмов. Л. 1979, 158 с. Дубинин Н.П. Потенциальные изменения в ДНК и мутации. Молекулярная цитогенетика. М., 1978, 244 с.

26. Иванов B.C. и др. Мат.н-произ. Конф., ВНИИТНБП, 1996.

27. Изотова Н.В., Балашов Н.Г. Фарботко Г.Э. Выделение вируса ИРТ-ИПВ из спермы племенных быков// Биологические препараты против инфекционных болезней животных.-М., 1981.- с. 98-101.

28. Зуев В.А. Лабораторная диагностика латентных и медленных инфекций// М.: Медицина.-1979-с. 184.

29. Калинина О.С. и др. Вестник с/х науки, 1983, 1 с.91.

30. Кашкинбаев К.А. Патоморфология и вопросы патогенеза инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота: Автореф дисс. Канд.вет.наук. М.-1978.

31. Коннов Н.М. Инфекционный ринотрахеит баланопостит у откормочных бычков// Научные труды КВИ. - 1980.-133.-е. 9-12.

32. Коннов Н.М. Нигматулин М.К. Проявление абортов и дерматита у крупного рогатого скота, вызванных вирусом инфекционного ринотрахеита// Диагн., проф/. и мет.борьбы с туберкулезом животных.-Казань, 1985.-е. 53-56.

33. Крюков Н.Н. Некоторые воп|росы методики исследования малоизученных вирусных болезней// Бюлл.ВИЭВ.-1970.-Вып. 8.-е. 42-47.

34. Крюков Н.Н. Герпесвирусы и их роль в инфекционной патологии// Бюлл.ВИЭВ.-1971.-Вып.11. с.7-10.

35. Крюков Н.Н. Инфекционный ринотрахеит (пустулезный вульвовагинит) крупного рогатого скотаЛ Бюлл. ВИЭВ.-1972.-Вып. 37.-е. 146-149.

36. Крюков Н.Н. Некоторый итоги изучения вирусных болезней сельскохозяйственных животных// Труды ВИЭВ.- 1972.-4-. с. 27-52.

37. Крюков Н.Н. , Белкина Н.М. Семенихин A.JI. Получение модифицированного вируса ИРТ и испытание его иммуногенных свойств// Бюлл. ВИЭВ.- 1972. вып. 14.-е. 5-8.

38. Крюков Н.Н. Инфекционный ринотрахеит-пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скотаЛ В кн.: Инфекционные болезни крупного рогатого скота.- М.: Колос. 1974.- с. 83-94.

39. Крюков Н.Н., Зудилина 3-Ф. Евдокимов С.И. Вирусные респираторные болезни крупного рогатого скотаЛ Ветеринария.- 1976.- № 6.- с. 111 113.

40. Крюков Н.Н. Инфекционный ринотрахеит -пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота// Итоги науки и техники/ Животноводство и ветеринария.- М., 1980.-е. 32-113.

41. Крюков Н.Н., Зудилина З.Ф., Шуляк А.Ф., Вечеркин А.С. Сухая ассоциированная вирусвакцина против парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скотаЛ Бюлл. ВИЭВ.-1982.-Вып. 14.-е. 1521.

42. Крюков Н.Н., Сологуб В.К., Шуляк А.Ф. Гемагглютинирующие свойства вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Ветеринарния.-1982. № 1.- с. 26-28.314

43. Крюков Н.Н., Шуляк А.Ф., Сологуб В.К. Методические рекомендации по приготовлению гемагглютинирующего антигена вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота и постановке реакции торможения гемагглютинации. М., 1983.-16 с.

44. Крюков Н.Н., Семенюта А.Т., Шегидевич Э.А. Микробный пейзаж и иммунологическая реактивность у телят, выращиваемых в условиях промышленной технологии// Труды ВИЭВ. 1984. - Вып. 60. - с. 15-23.

45. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа. - 1968.- 343 с.

46. Майборода А.Д., Крюков Н.Н. Выделение штамма вируса инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота// Вторая Всесоюзная конференция молодых ученых по ветеринарии./ Тез.докл. М., 1971. - с. 43-45.

47. Майборода А.Д., Кашкинбаев К.А. Выделение вируса и клинико-морфологические особенности ИРТ у телят раннего возраста// Ветеринария, 1977, № 3. С. 54-55.

48. Мак Кечер Д.Г. Вирусы и проблема воспроизводства крупного рогатого скота// Сельское хозяйство за рубежом. 1970. - № 7. - с. 31-32.

49. Мартынов Ю.В. и др. Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных., Новосибирск, 1984. С. 100.

50. Муравьев В.Н. и др. Сб. Проблемы вет.биол., М., 1984. С . 15.

51. Панина Г.Ф. Биотехнология клеток животных. М., 1989.

52. Петров Р.В. Иммунология. М.: Медицина. - 1983. - 234 с.

53. Петрова О.Г., Глотов А.Г. Инфекционный ринотрахеит-инфекционный пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота. Екатеринбург, 2000. С. 43.

54. Погуляева JI.B. и др. Инф.бол.с.-х. жив., Новосибирск, 1984, с. 102.

55. Подкопаев В.М. и др. Инф. и инваз. бол. мол. КРС., М, Рос. с/х изд., 1985, с.ЮЗ.

56. Пономаренко Ф.М. Инфекционный катар верхних дыхательных путей крупного рогатого скотаII Советская ветеринария. 1940. - № 12.-е. 1-4.

57. Пономаренко Ф.М. Инфекционный катар верхних дыхательных путей// Тр. Киевского ветер.ин-та. 1950. - вып. 10.-е. 19-25.

58. Радченков В.П., Стоянов В.К. Возможность передачи инфекций со спермой быков// Зоотехния. 1992. - № 5 - 6. - с. 35 - 37.

59. Семенченко О.Г. (Петрова О.Г.) Диагностика, меры борьбы и профилактики вирусных респираторных заболеваний крупного рогатого скота в хозяйствах Свердлрвской области. Екатеринбург, 1985, с 14.

60. Сергеев В. А. Профилактика ИРТ КРС сывороткой крови реконвалесцентов// Информационный листок № 150. Тамбов, 1972.

61. Сергеев В.А. Орлянкин Б.Г. Структура и биология вирусов.// М.:Колос.-1983.-336 с.

62. Сибиде Шарль Эмиль Калилу. Канд.дисс. MB А., 1985.

63. Соловьев Б.В., Фомин /Ю.В., Иванова Г.А. Изучение антигенной активности инактивированной вакцины против ИРТ КРС: Сб.тр. ВГНКИ ветпрепаратов. 1975. - 22. - с. 60 - 66.

64. Сухарев О.И. Гладченко Н.Р. Диссеминация и персистирование вирусов ИРТ, Пг-3, ВД-БС в организме телят при экспериментальном заражении// Биол.препараты против инфекц.бол.жив-х. М., 1981. - с. 87 - 92.

65. Сухарев О.И. Гуненков В.В., Сюрин В.В. Особенности проявления инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скотаII Вест.с.-х.науки. -М., 1981,-№6.-с. 110-114.316

66. Сухарев О.И. Особенности эпизоотического процесса в хозяйствах стационарно неблагополучных по инфекционному ринотрахеиту// Актуальные вопросы эпизоотологии. // Тез.докл. Всес.науч.конф.по проблемам эпизоотологии. Казань, 1983. - с. 42- 43.

67. Сюрин В.Н., Петрова И А., Сухарев О.И. Применение роллерной культуры клеток для выращивания вируса инфекционного ринотрахеита: Сб.науч.тр. МВА// Проблемы молекулярной биологии и патологии сельскохозяйственных животных. 1980.-Т. 113 - с 75-77

68. Сюрин В.Н. и др. Диагн. вир.бол.жив., М. Агропромиздат., 1991 528.

69. Третьяков А.Д., Крюков Н.Н., Картушин С.И. Эпизоотическая ситуация в мире по ИРТ-ИПВ КРС// Ветеринария. 1975. - № с. 103-110.

70. Трефилов В.Н. Диагностика генитальной формы инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота: Сб.тр. Свердловского и Кировского с.-х. Институтов. 1979. - № 56. - с. 24 - 27.

71. Усова Н.Ф. Клиническая картина патологоанатомические изменения при инфекционном ринотрахеите крупного рогатого скота: Межвуз. Сб.науч.статей. Кишинев, 1980. - с. 24-26.

72. Файзулина С.И. и др. Изв.Ан.Кир 2. ССР, 1977, 5 с. 60.

73. Фарботко Г.Э. Разработка метода контроля спермы быков на контаминацию вирусом инфекционного ринотрахеита: Автор.дисс. канд. ветер.наук. -М., 1989. 19с.

74. Фарботко Г.Э. , Кондрахина К.Н., Павлова Л.Д. Эпизоотическая обстановка по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота на племпредприятии// Ветеринария. 1994. - № . - с. 27-30.

75. Фельдман И.И. Теория и практика эффективной профилактики диареи и энзоотической бронхопневмонии телят разрывом эпизоотической цепи//317

76. Болезни телят и меры борьбы с ними: Сб.нач.трудов/ВАСХНИЛ, Сиб. Отделение. Новосибирск, 1983.-е. 17-24.

77. Фукс Б.Б., Кучерявенко А.А. Исследование РНК метафазных хромосом клеток НЕ LA и клеток почки теленка. Вестник АМИ СССР, 1976, № 20, с. 70-75

78. Харламбиев X. Ринотрахеитии ензоотии при импортировании крови и телета, съпроведени с конъюнктивита аборти крави и енцефалитию//Ветер. Сбирка. 1974.-Т. 72, № 10.- с. 17-20

79. Харламбиев X. Иммунитет и иммунопрофилактика вирусных респираторных болезней телят в условиях промышленного содержания. София, 1977.-е. 1-62

80. Чекишев В.М., Кабанцев А.И. Профилактика респираторных заболеваний телят на крупных фермах// Профилактика болезней молодняка на животноводческих комплексах. Воронеж, 1981. - с. 35.

81. Чекишев В.М., Кабанцев А.И. Профилактика респираторных заболеваний на крупных фермах// Ветеринария. 1983 - № 4. - с. 14-16.

82. Чечеткина Н.П., Лиховидов Г.Д. , Хвостова Л.В. Серотерапия вирусных респираторных болезней телят// Ветеринария. 1980.- № 12. - С. 35-36.

83. Шевцова И.Н. Респираторные болезни телят, их профилактика и лечение, с.-х. за рубежом, 8 с. 59.

84. Шесточенко М.А. Проф.инф.бол.мол., М., 1983., с 44.

85. Штрауб О.Х. Инфекции крупного рогатого скота, вызываемые герпесвирусами. М.: Колос. -1981.-е. 43-112.

86. Шубин В.А. , Зудилина З.Ф., Крюков Н.Н. Патологическая морфология при ринотрахеите телят. Ветеринария, М.: 1972, № 12, с . 5860

87. Юров К.П., Шуляк А.Ф. Герпесвирусы крупного рогатого скота// Ветеринария. 1999. - № 4. - с. 34-38.

88. Яковлев А.Ф., Блавин В.Г., Носач А.К., Трофимова Л.В. Репродукция хромосом в течение S периода - XXXIII ежегодная конференция318

89. Европейской ассоциации по животноводству (16-19 августа 1982 г.) JL, 1982, с 1-11

90. Яковлев А.Ф. Цитогенетическая оценка племенных животных. : М., 1985,256 с.

91. Abinanti F., Plummer G.J. The isolation of infectious bovine rhinotracheites virus from cattle affected with conjunctivitis observation on the experimental infection. Am. J. Vet. Res. 22, 1961, 13- 17.

92. Abshagen H. et al. Intersuchungen zur Inferction mit dem virus des Blaschenauss chalages des Rindes (IBR - IPV - Virus) Mh. Vet. Med. 28, 1973, 579-582.

93. Ackerman M., Wyler R. The DNA of an IPV strein of bovid herpesvirus 1 in sacral ganglia during latency after intravaginal infection// Vet. Microbiol. -1984.- Feb. Vol. 9 (№ 1).-P. 53-63.

94. Ackerman M., Muller H.K. , Bruckner L., Riggen bach c., Kihm U. The control of infections rom 1978 to 1988// Schweiz Arch Tierheilkd.- 1990.- Vol. 13 (№7).-P. 397-407

95. Ackerman M., Peterhans E., Wyler R. DNA of bovina herpesvirus type 1 in the trigeminal ganglia of latency infected calves// Am. J. Vet. Res. 1982, 43, (№ 1), P. 36-40.

96. Akkermans J.P., Pomper W.M. De diagnostick vand Ziekme van Aujiszky bij net rund. T. Dierdenlesk. 99, 1974, 809-814.319

97. Alemius S. et al. Sven Veter., 1992, Vol. 44, № 2, p. 51.

98. Anon Bull. Alad. Ver. Fr., 1990, Vol. 63, № 4, p. 391.

99. Antoin H. Ann. Med. Vet. 1986, Vol. 130, p.393.

100. Archbald L. E. et al. Theriogenology, 1979, Vol 11, p. 81.

101. Arora A.K. et al. Bacteriologic and vaccination studies in a field epizootic of infectious bovine Keratocojunctivitis in calves. Amer. J. Vet. Res. Vol. 37, 1976, p. 803-805.

102. AssafR. et al. Can. J. Сотр. Med., 1983, Vol. 57, № 2, p. 140.

103. Babiuk L.A. et al. Immune interferon production by lymphoid cells: Role in the inhibition of herpesviruses. Infect Immun. Vol. 13, 1975, p. 1567- 1578.

104. Backer J.C. Rev. Scient te eh of Intern Epizoot., 1990, 91, 25.

105. Baczynsky Z. et al. Med. Vet. 1980, 36, 4, 196.

106. Bagust T.J., Clark L. Pathogenesis of meningoencephalitis produced in calves by infectious bovine rhinotracheitis herpesvirus J. Сотр. Path. 82, 1972, 375 — 383.

107. Baker J.A. et al. Effects of infectious bovine rhinotracheitis infectious pustular vulvovaginitis (IBR- IPV) virus on newborn calves. Cornell. Vet. 50, 1960, p. 156-170.

108. Baker J.A. New virus causes pneumonia in calves Hoards dairyman, 1985, Vol. 130, p. 3, p. 129.

109. Bar-Eli, Mercola K., Slamon D Naurizson N. Insertion of drug resistence genes in animals. Cell. Phisiol. 1982, Suppl, Vol. 1963, p. 725-728

110. Barenfus M. et al. Isolation of the infectious bovine rhinotracheitis virus from calves with meningoencephalitis. J. Armer. Vet. Med. Ass., 143, 1963, 725 -728.320

111. Bartha A. Immunization of cattle with an tenuated IBR vaccine// Develop biol Standart. 1973 Vol. 26 - p. 5-7

112. Bartha A. Respiratory disease of cattle// BuJ Off. Internat. Epizoot. 197. -Vol. 88.-p. 113

113. Bartha A. KomplexeBekampfungsmabnahmen gegen virusbedingte Erkrankungen der Atmungs und Verdauum sorgane der Rinder in der VR Ungarn// Mh. Vet-med. 1977.- Vol 32,- p. 28-32

114. Barren B.L., Vales N. Biologia molecular de la pathogenesis por herpesvirus// Rev. Latinoamer.Microbiol. 1990.- Vol. 33 (№1). - p. 77-85

115. Belak S., Linn Т., Magyar G., Harrach В., Benco M., Klingeborn В., Klinteval K., Bartha A. Bovine Herpesvirus 1: Rapid iagnosis of infection by direct filter hybridization// Mol.Cell. Probes. 1981. Jun. - Vol. 2 (№ 2). - p. 147-156

116. Bergmann H. et al. Mh. Vet. Med., 1989, Vol. 44, № 11, p. 365.

117. Bindrich H. Untersuchungen uber das virus des Blaschenausschlagesdes Rindes (Exanthema coitall Vesiculosum bovis). Arch. Exp. Vet.-Med. Vol. 14, 1960, p. 656-675.

118. Binkhorst G.L. et al. Vet. CI., 1983, Vol. 5, p. 145.

119. Bitsch V. Persistence of infection with infectious bovine hinotracheitis virus in Danish cattle herds// Nord.Veter. Me. 1978.- Vol. 30 (№ 4/5). - p. 178-185

120. Bitsch V. Infectious bovine rhinotracheitis virus infection in bulls with special reference to preputial infrction. Appl. Microbiol. Vol. 26, 1973, p. 337 343.

121. Bolin S.K Amer. J. Vet. Res., 1985, 46, 4, 884.

122. Bolin S.R. et al. Am. J. Vet., Res., 1990, Vol 51, p 703.

123. Bolin S.R. et al. Arch. Virol., 1988, 99, 117.

124. Bolin S.R. et al. Rev. Sci. Tech. Of Int. Epizoot., 1990, Vol. 9, 173.

125. Bommeli W., Kihm U. The IBR contol programme in Switzerland// Proceedingsl2 World congress on deseases of cattle. (Amsterdam. 07.10.09). -1982. Vol. l.-p. 153-155

126. Bottcher R., Makler R. Untersuchungen iiber die Persistenz des IBR IPV Virus des Rindes in Samen naturlich infizierter Bullen. Dtsch. Tierarztl. Wsch. Vol.77, 1970, p. 421-424.

127. Bowes N.D. et al. Experimental production of bovine infectious rhinoracheitis Gac. Vet., 1970, Vol. 30, p. 181 186.

128. Brown A.2. et al. The relationship of nasal discharge to infection with infectious bovine rhinotracheitis virus. Amer. J. Vet. Res. Vol. 20, 1959, p. 958 -988.

129. Brownlie J. et al. Anns Rech. Vet., 1987, 18, 157.

130. Brownlie J. et al. Arch. Virol., 1991, Suppl., Vol. 3, 79.

131. BRSV vaccine. Agri practice, 1985, V. 6, № 2, p. 26 - 44.

132. Bryson D., Nulty P., Logan E. Respiratory syncytial virus pneumonia in young calves: Clinical and pathologic findings. Am. J. Veter. Res. 1983, Vol. 44, 9, p. 1648-1654.

133. Buczek J. et al. Roniencia Krow Spowodowane przer virus Zakarnego Zapalenia posa I tchawicy oraz otretu obydta (IPR IPV) - nowsi veter., 1981, 37, 7, 426-429322

134. Bush C.E., Pritchett R.F. A comparison of genomes of bovine herpesvirus type 1 and pseudorabies herpesvirus 1 P. 2.// J. Gen. Virol. 1985 a. - Aug. Vol. 66 (№8). p-. 1811-1817

135. Bush C.E., Pritchett R.F. A comparison of genomes of bovine herpesvirus 1 and suid herpesvirus 1 P. 2.// J. Gen. Virol. 1985 b. - Nov. Vol. 69 (№11). p -. 1134-1139

136. Bwangamoi O., Kaminjolo J.S. Isolation of IPR/IPV virus from the semen and skin lesions from bulls at Kabete, Kenya, Zbl. Vet. Med., Vol. 18, 1971, p. 262 269.

137. Castrucci G., Frigeri F., Ferrari M., Cilli V., Donneli G., Chicchini U., Bordoni E. A study of a herpesvirus isolated from dairy cattle with a history of reproductive disorders// Сотр. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 1986. - Vol. 9 ( № l).-p. 13-21

138. Chapman M. Survival of infectious bovine hinotracheitis virus in stored bovine semen.// Veter. Sc.Communic. 1979. - Vol. 3. - p. 137-139

139. Charles J., Thillert M. Dans les elevages de reproducteurs L ' IBR est une Maladie polymorphe dans zaquelle les troubles respiratories ne sont pas toujours dominants. Bull. Soc. Prat., 1982, Vol. 66, № 7, p. 479 - 486.

140. Christensen L. Preliminxrt forsog med profylaktisk medicinering at kalve pecoralt med Ravamicin Vet. Modlungeliadelsez. Dansk Veterinartid -sskrift, 1984, Vol.67, № 2, p. 50-53.

141. Collings D.F. et al. Concurrent respiratory and genital disease associated with infectious bovine rhinotracheitis /infectious pustular vulvovaginitis (IBR/IPV) virus in a dairy herd in the United Kingdom. Veter. Rec. Vol. 91, 1972, p. 214 -219.

142. Combination vaccines. Beef, 1984, V. 21, № 1, p. 30.

143. Combined bovine vaccine. Vet. Rec. 1982, V. 111, № 23, p. 518.

144. Comez Z. et al. Rev. cub. Science Vet., 1980, 11, 1, 53.

145. Conradi T. et al. Untersuchungen und Beobachtungen zum Blaschenausschlag des Rindes. Berl. Miinch. Tierarztl. Wschr. Vol. 73, 1960, p. 46 52.

146. Conzales R. et al. Encuesta serologica en bovinas jovenes у adultos para determinar la frecuencia de anticuerpos contra los antigenos PI-3 у la rinotraqueitis infecciosa bovina (IBR). Rev. Cub. Ciens. Vet. 1983, v. 14, № l,p. 35-48.

147. Copari W.V. et al. J. Virol, 1988, Vol. 62, p. 2823.

148. Cummins J., Rosenquist B. Effect of hydrocortisone on the interferon response of calves infected with infectious bovine rhinotracheitis vius.// Ann. J. Veter. Res. 1977. - Vol. 38 (№ 8) - p. 1163-1166

149. Dahme E. IBR IPV - Infectionen des Z 1, Tierarztl. Umschau, 1984, 39, № 5, p. 375-376.

150. Darbyschire J.H., Shanles P.L. The isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus in Scotland. Vet. Rec. 75, 1983, 897 899.

151. Darcel C. Le Q., Dorward W.J. Recovery of infectious bovine rhinotracheitis virus following corticosteroid treatment of vaccinated animals. Canad. Vet. J., 1975, Vol 16, p. 87-88.

152. Davies D. et al. The pathogenesis of recurrent infectious with infectious bovine rhinotracheitis virus induced in calves by treatment with corticosteroids Cornell vet. Vol. 64, 1974, p. 340-366.

153. Delhon G., Jones C. Identification of DNA sequences in the latency related promoted promoter of bovine herpesvirus 1 which are bond by neuronal specific factors.// Virus res. 1997. - Sep. Vol. 51 (№ 1). - p. 93-103

154. Donic C.R.O. et al. J. Gen. Virol., 1988, № 69, p. 77.

155. Dorman M.A., Blair C.D., Collins J.K., Beaty B.I. Detection of Bovid herpesvirus 1 DNA immobilized on nitrocellulose by hybridization with324biotinylated DNA probes.// J. Of Clinical Microb. 1985. - Vol. 22. - p. 990995

156. Douflas F.A. J.Am. Vet. Med., Ass., 1962, Vol. 181, № Ю, p. 1005.

157. Drew T.W., Hewitt Taylor C., Watson L., Edwards S. Effect of storage conditions and culture technique on the isolation of infectious bovine rhinotracheitis vius from bovine semen.// Vet eC. - 1987. Dec. Vol. (№ 121). -p. 547-548

158. Dreze G. et al. Arch. Virol., 1991, Vol. 3, p. 239.

159. Duffel S.J. et al. Vet. Res., 1985, Vol. 17, p. 240.

160. Duffell S.L. et al., Vet. Res. 1985, Vol. 17, p. 240.

161. Edington N. et al. Meningoencephalitis in two gnotobiotic calves infected intranasally and orally with infectious bovine rhinotracheitis virus. Res. Vet. Sci. Vol. 13, 1972, p. 292-293.

162. Edwards S. IBR Infectious bovine Rhinotracheitis, - The British Fresian J., 1983, Vol. 65, № 5, p. 392-393.

163. Elashary M. A. , Silima A., Frechtette J.L. Prevalence of antibodies to some bovine viruses in the caribow (Rangifer tarandus caribow) in Quebec , Canada.// Acta. Zool. Fenn. 1983. - Vol. 117, № 3. - p. 107-108

164. Engels M., Steck F., Wyler R. Comparison с the genomes of Infctions Bovine Herpesvirus and Infectious Bovine Vulvovaginitis virus strains by restriction endonucease analysis// Archives of Virology. 1981. Vol. 67.- p. 169-174

165. Engels M., Loepfe E., Wild P., Schraner E., Wyler R. The genome of caprine herpesvirus 1: genome structure and relatedness to bovine herpesvirus 1.// J. Gen. Virol. 1987. - Jul. Vol. 68 ( № 7) - p. 2019-2023

166. Euguster A. Isolation of IBR virus from stil-burn and neonatal piglets.// Am.Ass. Vet.Labor.Diagn.Ann.Proceed. 1972.- Vol. 21, JVb 1., - p. 1-4325

167. Ernst P.B. et.al. BVD: an update compend Ed., 1983, Vol. 5, p. 581

168. Espinasse J. et al. Differents aspects de la rhinotracheite infectieuse bovine (IBR/IPV) dans un troupe, aulaitier du sud ouest de la France. Rev. Med. Vet. 1974, Vol. 125, p. 1441-1452.

169. Fastier L.B. , Smith B.P. IBR-IPV: virus isolation and vaccination studies// The New Zealand Vet. Jounal. 1962. - Vol. 10 (№ 1). - p. 11-17

170. Fastier L.B., Hansen N.F. The occurrence of antibodies to bovine virus diarrhoea infectious bovine rhinotracheitis and parainfluenza 3 viruses in sera from New Zealand cattle. N.Z. Vet. J., Vol. 14, 1969, p. 27 32.

171. Fedida M., Coudert M., Perrin M., Dannacher G., Martel J.L. La rhinotracheite bovine infecteuse en France: situation, epidemiologiue et vaccination a I , aibe de vaccins inactives.// Dull. Office. Int. Epizoot. 1977. - Vol. 88. - p. 41-46

172. Fenton A. et al. Arch, virol., 1991, Vol, 3, p. 169.

173. Fernelins A.L. Arch, des virus forch. 1969, Vol. 27, № 1, p. 1.

174. Frey M. Bovine respiratory syncytial virus acute respiratory distress syndrome in cattle. Irish Veter. News, 1984, November, p. 27 - 33.

175. Galik P.K., van Santen V.L., Stringfellow D.A., Brd R.C. Wright J.C., Smith P.C. Development of a DNA prob for indentification of bovine herpesvius 4.// Am. J. Vet. Res. 1993. May. Vol. 54 (№ 5). - p. 653-659

176. Gellespie J.H. et al. Comparison of infectious pustular vulvovaginitis virus with infectious bovine rhinotracheitis virus. Cornell. Vet. Vol. 49, 1959, p. 288 -297.326

177. Ghergarin S. et al. Essais therapeutiques avec l'aspirinedans les Maladies respirators du vean. Rec. Med. Veter. 1982, V. 158, № 4, p. 355 - 362.

178. Gibbs E.P.J, and Rweyemamu M.M. Bovine Herpesviruses. Part 1. Bovine Herpesviruses 1.// Veterinar Bulletin, Weybridge. 1977. - Vol. 47. - p. 317343

179. Gimeno E.J. Ibargoyen G., Belak K., Sanguinett H.R. Immunohistokemikst pavisande av bovinit herpesvirus typ 1 i snitt fran nervvavnad// Sven. Veterinartin. 1990- Vol. 42, № 15. - p. 653-655

180. Goffaux M., Harlay Т., Allietta M. Studies on the IBR-IPV virus in the semen of insemination bulls.// DTW Dtsch Tierarztl Wochenschr. 1975. - Dec 5, Vol. 83 (№ 12).-p. 544-547

181. Gonda M.A. et al. Pro. vat. Acad. USA, 1986, 4007.

182. Gonzalez R. et al. Rev. cub. Science, Vet., 1983, Vol. 14, № 1, p. 35.

183. Goossens A. et al. Sensibilite des virus de la rhinotracheite infectieuse bovine (Bovine herpesvirus-1) et delamaladie d'Aujeszky a l'interferon human product par des bacteries. Ann. Med. Vet., 1983, v. 127, № 2, p. 135 - 139.

184. Gottscholk E.E. et al. J. Vet. Med. B, 1992, Vol. 39, № 6, p. 467.

185. Gourlly R.W. et al. Isolation of Mycoplasma agalactiae var bovis and infectious bovine rhinotracheitis virus from an outbreak of mastitis in France. Vet. Rec. Vol.95, 1974, p. 534-535.

186. Greig A.S., Bannister G.L. Infection of the bovine udder with bovine herpes virus. CanadJ. Сотр. Med. Vol. 29, 1965, p. 57 62.

187. Hackness J.W. Ann. Rech. Vet., 1987, Vol. 181, p. 167.

188. Hage J J. , Schukken Y.N., Bakema H.W., Benedctus G., Rijsewijk F.A., Wentunk G.H. Population dynamics of bovine herpesvirus 1 infection in a dairy herd.// Vet. Microbiol. 1996.- Nov. Vol. 53 (№ 1-2) -p. 1690-1180

189. Hammerschmidt W. Ludwig H., Buhk H.J. Short repeats cause heterogeniti at genomic terminus of bovine herpesvirus 1// J. Virol. 1986. - Vol. 58. - p. 4349327

190. Harada К., Busse R. The Chromosomes of tukey embryos during of parthenogentics development early stages of partenogenetics. Genetics, 1981, Vol. 98, p. 335-345

191. Harkness J.W. Ann. Rech. vet. 1987, Vol. 181, p. 167.

192. Henry C. Shipping fever pneumonia: a new look at an old enemy. VM/SAC, 1984, V. 79, № 9, p. 1200 - 1201.

193. Hertig C. et al. Vet. Microbiol., 1991, Vol. 2b, p. 65.

194. Homan E.J., Easterday B.C. Futher studies of naturaiiy occurring latent bovine herpesvirus infecyion// Am. J. Vet. Res. 1981.- Vol. 42, № Ю. P 1811-1813

195. Hossain A., Schang L.M., Jones C. Indentification of gene products encoded by the latencyrelated gene of bovine herpesvirus 1.// J. Virol. 1995. Sep. Vol. 69 (№9)-p. 5345-5352

196. Houe Hans Dan Vet., 1992, vol. 75, № 8, p. 313.

197. Howard C.J. et al. Rev. Scient techn. of inter. Epizoot., 1990, vol. 9, № 1, p. 95.

198. Howard С J. J. vet. Microb., 1989, vol. 19, p. 195.

199. Howbet J. Vet. Med. A all. Anim. Clin. 1984, vol. 76, № 12, p. 719.

200. Huck R.A. et al. Border disease of sheep. Comparison of the results of serological testing using complement fixation immunodiffusion, neutralization and immunofluorescent techniques. Brit. Vet. J. 1975, vol. 131, p. 427 435.

201. Huck R.A. et al. Infectious bovine rhinotracheitis infection in the United Kingdom. Bull. off. Int. Epiz. Vol. 84, 1975, p. 3 8.

202. Huck R.A. et al. Penoposthitis associated with infectious bovine rhinotracheitis (infectious pustular vulvovaginitis (IBR/IPV) virus in a stud of bulls. Vet. Rec. Vol.88, 1971, p. 292-297.

203. Hunges D.E., Pugh G.W. Jr (1970): A five-year study of infectious bovine Keratoconjunktivitis in a beef perd. J.Amer. Vet. Med. Ass. 157, 1970, 443 -451.

204. Hussain A. et al. Leykocyte midration inhibition and Leukoajme aggregation response. Zbl. Veter. Med., 1984, vol. 31, p. 3.328

205. Hyland S.L. et al., Develop. Boil. Standart, vol. 28, 1975, p. 510 525.

206. IBR vaccine. Vet. Rec., 1981, V. 109, № 9, p. 170.

207. Jericho K.W.F. et al. Prevention of experimental bovine pneumonic pasteurellosis by exposure to IBR virus. Canad. Vet. J., vol. 17, 1976, p. 194 -195.

208. Jericho K.W.T., Lejeune A., Tiffin G.B. Bovineherpesvirus 1 and Pateurella haemolitica: aerobiology in experimentally infected calves.// am. J. Of vet. Res. - 1986. - vol. 47 (№ 2). - p. 205-210

209. Jorna T. Prevention and control of IBR in the Netherlands// Reports and summaries. 11 International congress on diseases of cattle. (Tel-Aviv. 20-23. 1980)- 1980.-p. 274-280

210. Jounguc A. Bovine respiratory syncytial disease (BRSD). Etlik Vet. Vikrd. Enst., 1983, № 5, V. 4 - 5, p. 186 - 190.

211. Kaaden O.R. Persistierende virusinfectionen mechanismen und konsequenzen.// Biol. Tiermed. - 1992.- vol. 9, № 4., p. 135-136

212. Kahrs R.F. Infections bovine hinotracheitis T A review and update.// J. Am. Vet. Med. Assoc. 1973.-vol. 171 - p. 1055-1064

213. Kaminjolo J.S., Nyaga P.N., Omuse J.K., Mutiga E.R. Infectious bovine rhinotracheitis infectious pustular vulvovaginitis viral isolated from cattle with tus epididymits and vaginitis. Amer. J. Vet. Res. Jan. Vol. 36 (№ 1) , 1975, p. 123- 125.

214. Katz J.B. et al. Jap. J. Vet. Sci., 1984, vol. 46, p. 669.

215. Katz J.B. et al. Vet. Microbiol., 1987, vol. 13, p. 153.

216. Kendrick J.W. et al. A controlled field trial of a vaccine for infectious bovine rhinotracheitis Proc. U.S. Livestock Sanitary Assoc., 60th Annual Meeting, 1956, p. 155 158.329

217. Kharalambiev Kh. Et al. Virus neutralizing activity of semen, from bulls that have been affected with infectious rhinotracheitis balanoposthitis C.R. Acad. Agric. G. Dimitrov . vol. 7, 1974, p. 75 - 77.

218. Kita J. et al. Zbl. Veterinar med., 1983, vol. 1330, № 7, p. 502.

219. Kohler H. et al. Zur virologie, Serologic und Pathomorphologie des mannlichen Genitale nach natiirlicher und experimenteller Infektion mit dem IBR-IPV-virus Dtsch. tierarztl. wschr, vol. 79, 1972, p. 122 124.

220. Kokles R. Die Infectiose und das Coitalexanthem des Rindes: In: H. Rohrer «Hondbuch der Virusinfektionen bei Tieren», BD. 11. VEB Gustav Fischer Verlaf, Jena, 1967., p. 901 -960

221. Kokles R. et al. Untersuchunden zur Infektion mit dem virus des Blaschenausschlages des Rindes (IBR-IPV-virus) 2 Mitt: Uber die Verbreitung des Virus in Rinderbostan den durch die Kiinstliche Besamung. Mh. Vet.-Med. V. 27, P. 502-506. 1972

222. Kokles R. Virologische Untersuchunden zur Infektionen des Rindes mit dem virus des Blaschenausschlages (IBR-IPV-virus) Mh. Vet.-Med. Vol. 26, 1971, p. 641 -643.

223. Kolar J.R. et al. Use in cattle of formalin Killed polyvalent vaccine with ajvant against infectious bovine rhinotracheitis bovine viral diarrhoea and parainfluenzes-viruses. Amer. J. Vet. Res. 33, 1972, p. 1415 1420.

224. Kolb E. Mh. Vet. Med. 1975, vol. 30, № 2, p. 73.

225. Koves B. et al. Acta Acad. Scient Hung, 1982, vol. 30, № 13, p. 45.

226. Koves B. et al. Magylar allatori Lahfa, 1983, vol. 38, № 1, p. 14.

227. Kretzchmar C. et al. Untersuchungen tiber Vorkommen, verbreitung und Epizootologie der infektiosen pustulosen Vulvovaginitis (Blaschenausschlag) des Rindes im Bezirk Magdeburg. Fortphl. Hst. Vol. 2, 1966, p. 337 357.

228. Kretzschman C. Uber die beeinflussungder nach natiirlicher IBR/IPV infection Verbleibenden virustatenz durch anschliebende immunisierumgen mit der Riemser IBR/IPV Lebendvakzine. Arch. Exper. Veter. Med., 1981, vol. 35, №4, p. 535-546.330

229. Kryukov NN. IBR-IPV of cattle// Bull. Off Int. Epizoot. 1975. - vol. 84. - p. 141-148

230. Kryukov N.N. Bovine infectious rhinotracheitis and pustular vulvovaginitis. Trudy vses. Inst. Eksp. Vet. 37, 146 149, 1970: Zit nach. Vet. Bull. 1971, 41, 544 (nr. 3346).

231. Kuara C.J. et al. The testing of an experimental bovine respiratory syncytial virus vaccine. Vet. Med. Small Animal Clinic., 1983, V. 78, № 10, p. 1599 -1604.

232. Kubin G. Intermittierender Nach Wies des Blaschenausschlagvirus (IPV) Bei einem naturlich infizierten Stier. Wien. tieraztl. Msch. V. 56, 1969, p. 336 -337.

233. Kubin G. Reflexions sur l'infection par le virus IBR-IPV du boeuf en Autriche. Bull. off. Int. Epiz. Vol. 84, 1975, 111-118.

234. Kucera C.J., White R.G. , Beckenhauer W.H. Elevation on the safety and efficacy of an intranasal vaccine containing a teperature-sensitive stran of IBR vim// Am. J. Vet. Res. 1978. - vol. 39 (№ 4). - p. 607-610

235. Kupferschmild H.U. Isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus from seronegative bulls.// Mh. Vet.Med. 1986.- Vol. 10, № 4. - p. 1123-1126

236. Kutish G., Mainprize Т., Rock D. Characterization of the latency-related transcriptionalli active region о the bovine herpesvirus 1 genome.// J. Virol. -1990.- Dec. Vol. 64 (№ 12). p. 5730-5737

237. Lang H. Tierarztl. Umsch. 1980, 35, 2, 86.

238. Langford E.V., Dorward W.J. A mycoplasma isolated from cattle with infectious bovine Keratoconjunktivitis. Canad. J. Сотр. Med. Vol. 33, 1969, p. 275-279.331

239. Larsson В. et al. Arch. Virol, 1991, vol. 32, p. 143.

240. Leconte G. et al. Veter. Microbiol., 1990, vol. 23, № 4, p. 193.

241. Liess B. Berl. Und munch. Tierarztl. W. Schr., 1985, p. 98.

242. Littlegohns S.R. Washington St. Univ. Press Publishing, 1985, p. 179.

243. Lobmann M. et al. Am. J. Vet. Res., 1984, vol. 45, № 12, p. 2498.

244. Lohrbrach W. et al. Vergleichsuntersuchungen mit einer attenuierten und inaktivierten IBR/IPV Vakzine in Milchvilhbestanden inter Feldbedingungen. -Tierartzl. Umsch, 1984, BD 39, H. 9, S. 664 674.

245. Lomba F. et al. IBR virus and occurrence of metritis at parturition in the bovine Belgian Blue White breed Brit. Vet., J. Vol. 132, 1976a, p. 178 181.

246. Loretu K. et al. Virus isolations from cases of infectious bovine pusulovulvovaginitis and posthitis (IBR/IPV) in in cattle in Tanzania. Bulletinn of Animal Health and Production. Vol. 22, 1974, p. 303 310.

247. Ludovic B. et al. Stability of infectious bovine rhinotracheitis monovalent vaccine (Ri-vak) and infectious bovine rhinotracheitis and parainfluenza-3-bivalent vaccine (Ripavak). Veter. Arch. 1984, V. 54, № 4, p. 183 - 188.

248. Ludovic В., Cventic S. Use of indirect Hemagglutination (IHA) in serum antibody titration of infectious bovine rhinotracheitis. Proc. Of the Internat. Symposium of vet. labor., 1983, V. 1, p. 41 - 45.

249. Ludwig H. et al. Studies on the relatedness of herpesviruses through DNA -DNA hidridization. Virology, vol. 49, 1972, p. 95 101.

250. Lugwig H., Storz J. Activation of herpesvirus from normal bovine fetal spleen cells after prolonged cultivation. Med. Microbiolog. Immunol., vol. 158, 1973, p. 209-217.

251. Luttig J. et al. Erfahrungen beim Auftreten einer Infektion mit dem Virus des Blaschenausschlages des Rihdes (IBR-IPV-Virus) bei Bullen liner Besammungsstation. Mh. Vet.-Med. Vol. 31, 1976, p. 201 -205.

252. Madin S.H., Jork C.J. et al. Isolation of the infectious bovine rhinotracheitis virus, Science, vol. 126, № 6 , 1956, p. 721 722.332

253. Mann D. et al. Efficacy of aerosol, intranasal and intramuscular vaccination against selected bovine viral diseases. Cornell. Veter., 1983, V. 73, № 4, p. 375 -379.

254. Marinov P. et al. Izoliramie na virusi ot spermia na govezhdi bitsi I tyakhnoto vliyanie v'rhknu bezplodieto po Kravite. Vet. Science (Sophia) vol. 11, 1974, p. 26-33.

255. Marschall R. Am. J. Vet. Res., 1981, vol. 42, № 6, p. 907.

256. Martel J. Frequence de 1 ' infection par le virus de la rhinotracheite infectiuse bovine (IBR-IPV) en France.// Rev. Med.Veter. 1976- vol. 152, № 12 - p. 829-834

257. Masri S.A., Olson W., Nguyen P.T., Prins S., Deregt D. // Rapid detection of bovine herpesvirus 1 in the semen of infected bulls by a nested polymerase chain reacton assay./ Can.J. Vet.Res. -1996.- Apr. Vol. 60 (№ 2). p. 100-107

258. Matsuoka Т., Folkerts T.M., Gale C. Evaluation on calves of an inactivated bovine rhinotracheitis and parainfluenzal vaccine combined with pasteurella bacteria. J. Amer. Vet. Med. Ass. Vol. 160, 1972, p. 333 337.

259. Matthaeus W., Straub O.C. The immune response of normal and leukotic cattle to IBR IPV - virus. Proceedings 3rd Intern Workshop on Bovine Leucosis, Rhode - St Genese, Belgium, 1976, p. 271 - 287.

260. Mayr A. et al. Systematisierung und Differenzierung der Pockenviren. Zbl. Vet. Med. В., vol. 19, 1972, p. 69 88.

261. Mayr A. Fortschritte in der Prophylaxe von viruskrankheiten des Kalbes. Der Praktische Tierarztl., 1981, BD. 62, s. 47 - 50.

262. Mayr A. Wesen und Wirksamkeit funktionell synergistischer Kombinationsvakzinen. - Wien Tierartzl. Mschr., 1984, BD 71, H. 11, S. 305 -311.

263. McClurfin A.W. Probable role of viruses in calf hood disease. J. Dairy, Sc., 1977, V. 60, №2, p. 278.

264. McClurkin A.W. et al. J. Am. Vet. Med. 1985, p. 86.333

265. Mecorcher D.J. et al. Recent development on upper respiratory disease of cattle. Proc. 59th Annual US Livestock Sanitary Assoc., 1955, p. 151 167.

266. Mekercher D.G. et al. Effects of the infectious bovine rhinotracheitis virus on the central nervous system of cattle. J. Amer. vet. med. Ass. Vol. 156, 1970, p. 1460-1467.

267. Mekercher D.G., Straub O.C. et al. Comparative studies if the etiological agents of infectious bovine rhinotracheitis and infectious pustular vulvovaginitis . Canad. J. Сотр. Med. 23, 1959b, p. 320 328.

268. Mensik J. et al. Activation of latent infectious bovine rhinotracheitis after experimental infection with parainfluenza, 3, virus in young calves. Zbl. Vet.-Med., vol. 23, 1973, p. 854-864.

269. Meyling A. et al. Rev. Scienttechn. Intern. Epizoot., 1990, vol. 91, p. 75.

270. Miedema P. Presentation from the symposium of June 22, 1995 The Notherlands on the road to IRB free status. IBR, an underestimated problem./ Tijschr. Diergeneeskd. - 1995- Sep. 1, vol. 120 (№ 17). - p 496-497

271. Miksehr D. Preconditioning programs for fieder cattle. Modern Vet. Practice, 1984, vol. 65, p. 341 -344.

272. Miller J.M. , Van Der Maaten M.J. Effect о primary and recurrent bovine herpesvirus infection o; the bovine ovary.// Amer. J. Vet. Res. - 1985. Vol. 46, №7.-p. 1434-1437

273. Miller J.M., Van Der Maaten M.J. Experimentally induced infectious bovin rhinotracheitis virus infection during early pregnancy Effect on the bovine corpus luteum and conceptus.// Am. J. Vet. Res. JL986. - vol. 47, № 2. - p. 223-228

274. Miller N.J. Infections necrotic rhinotracheitis of cattle.// J. Am. Vet. Med. Asoc. 1955.- vol. 126. - p. 463-467

275. Mitchell D. An outbreak of abortion in a dairy herd following inoculation with an intramuscular infectious bovine rhinotracheitis virus vaccine. Canad. Vet. J. Vol. 15 (№5), 1974, p. 148- 151.

276. Mogar R. et al. Can. J. Vet. Res., 1988, vol. 52, p. 42.334

277. Mohanty S., Lillie S.M.G., Corelling N.A., Beck J.E. Natural infectious bovine rhinotracheitis virus in goats.// J.A.V.M.A. 1983. - vol. 160. № 6. - p. 879880

278. Monky D. The control of IBR-IPV virus in bovine semen// J.A.V.M.A. 1984. -vol. 5 p. 635-639

279. Mozaffari-NezhadH.etal.Pol. Arch. Vet., 1980, vol. 21, №4, p. 473.

280. Msolla P.H., Allan E.M., Selmon A.E., Wiseman A. Reactivation and shedding of bonine herpesvirus 1 following Dictiocaulus viviparous infection//J. Сотр. Pathol. 1983.- vol. 93 - p. 271-274

281. Muller K. Feldversuch mit einem Weiteren Interferon Inducer. - Tierarztl. Umschau, 1982, vol. 31, № 1, p. 31-35.

282. Muller K. Tierarztl. Umsch., 1982, vol. 39, № 1, p. 31.

283. Muscoplat C.C. et al. Am. J. Vet. Res., 1973, vol. 3, № 4, p. 1101.

284. Narita M. et al. J. сотр. Pathol., 1982, vol. 92, p. 41.

285. Narita M. et al. Trideminal ganglionitis and encephalitis in calves intranasally inoculated withinfectious bovine rhinotracheitis virus. J. Сотр. Path. Vol. 86, 1976, p. 93 100.

286. Narita M. , Inui S., Mukarami Y. Neural changes in reccurent infection of infectious bovine rhinotracheitis virus in calves treated with olexamethasone// Am. J. Vet. Res. 1978.- vol. 39, № 9, - p. 1399-1403

287. Nasamune J.P. Vet. Economies, 1983, December- 10, p. 1543.

288. Nelson R.D. Effects of infectious bovine rhinotracheitis virus on bovine tracheal epithelium: a scanning electron microscopic study. Amer. J. Vet. Res. Vol. 35, 1974, p. 831 -833.

289. Nettleton P. et al. Infectious bovine rhinotracheitis (IBR) Bovine herpesvirus -1. Moredun Research Institute. - Report and account., 1981 - 1982, p. 38 -40.

290. Nienwstadt A. et al. Aspecten van epizootiologie van infecties met het infectienze bovine Rhinotracheitis virus op meekveebedrijven. Tijdschr. Diergeneskd. 1983, V.108, № 10, p. 383 - 391.

291. Nieuwstadt van A.P. Enting van runderen tegen luchtw eginfecties veroorzaakt door virussen. Tijdschr. Diergeneesk., 1980, vol. 105, p. 16.

292. Onstad O., Saxegaard F. Vaginitis and balanitis with IRR infection in swine//Nord. Vet. Med. 1967. vol. 19, № 1. - p. 43-57

293. Osorio F.A., Reed D.E., Van der Maaten M.J., Metz C.A. Comparison of the herpesvirus of cattle by NA rebtriction endonuclease analysis and seologic analysis// Am. J. Vet. Res. 1985, - Oct. 10 - p. 2104-2109

294. Olafson P. et al. Cornell Vet., 1946, vol. 36, p. 205.

295. Osburn B.J. Arch. Virol., 1991, vol. 3, p. 71.

296. Ovejero J. Aportation al estudio de la incidencia serologica del virus de la rintraqueitis innecciosa bovina en Espania// An. Inst. Nac. Investing. Agr. Ser.: Hyg. Sanid.Anim. 1974. - vol. 1 - p. 35.- 47

297. Ovist P. et al. Arch. Virol., 1991, № 3, p. 165.

298. Pappons A.C. , Dimitriadis J., Poilas S., Katajas G. Дельтион эллиникис ктиниятрикис этериасю. 1982. P. 336-341

299. Parsonson I.M. and Snowdon W.A. The effect of natural and artificial breeding using bulls infected with or semen contamined with, infectious bovine rhinotracheitis virus. Aust. Vet. J. Vol. 51, 1975, p. 365 369.

300. Pastoret P.-P, Jetteur A., Aguilar-Setien A., Leroy P., Schwers A., Godart M., Schoenaers T. Mesure de la reexcretion du virus de la rhinotracheite infectieuse bovine apres injection de dexamethasone.// An.Med.Vet. 1978.- vol. 122, № 5. p. 449-456

301. Pastoret P.-P., Babiuk L.A., Misra V., Griebel P. Reactvation of temperature -sensitive and non temperature - sensitive infectionus bovine rhinotracheitis vaccine with dexamethasone.// Infect. Immun. - 1980 b. - vol. 29, № 2, - p. 483-489

302. Pastoret P.-P., Thiry E., Vindevogel H. Problems lies a la latence lors de vaccination contre le virus de la rhinotracheite infectieuse bovine (Bovid Heфesvirus).//Develop.Biol.Standart. 1982. Vol. 52. - p. 455-461

303. Pastoret P.-P. , Thiry E., Brochier В., Derboven G. Bovid herpesvirus 1 infection in cattle: pathogenesis, cnsequences of latency.//Ann.Rech.Vet. -1982. - Vol. 13, № 3. - p. 221-236

304. Pastoret P.-P., Thiry E. Diagnostis and prophilaxis of infectious bovine rhinotracheitis; The role of virus latency.//CoTp. Immunol. Microbiol.Infect.Dis.- 1885.- vol. 8 , № 1., p. 35042

305. Personson J.M. , Snowdon W.A. Thr effect of natural and artifical breeding using bulls infectec with, or semen contaminated with, infectious bovine rhinotracheitis virus// Aust. Vet. J. 1964. - Vol. 5 (№ 18) - p. 365-369

306. Peters A.R., Pery C.T. Seroligical survey on the prevalence of bovine herpesvirus 1 antibodies in pedigree beef bulls// Vet. Rec. 1983.- Vol. 113, № 11-p. 685-687

307. Philip J. Ph. D thesis University of London, 1973.

308. Potter M.L. et al. Am. J. Vet. Res., 1984, vol. 45, p. 1778.

309. Pritchard D. Current research on Calf pneumonia. The veterinary Annual, 1980, vol.20, p. 189-203.

310. Pritchard W.R. et al. In ADV. vet. Acad. Press, N.Y., 1963.

311. Pugh G.W. et al. Bovine infectious Keratoconjunktivitis. Interactions of Moraxella bovis and infectious bovine rhinotracheitis virus. Amer. J. Vet. Res. Vol. 31, 1970, p. 653-662.

312. Radostits O.M. et al., Corn. Vet. J., 1980, 29, 513.

313. Ramsey F.K. et al. North Amer. Vet., 1953, 34, 629.

314. Rebham W.C. et al. J. Vet. Med., 1989, 3, 42.

315. Reed D.E. et al. Infectious bovine rhinotracheitis virus induced abortion rapid diagnosis by fluorescent antibody technique. Amer. J. Vet. Res. Vol. 32, 1971, p. 1423 - 1426.

316. Revell S.G. et al. Vet. Res., 1988, vol. 123, p. 122.

317. Rhim J.S. Glucocorticoids enchance viral transformation of mammalian cells// Proc.Soc.Exp.Biol and Med. 1983. - vol. 174, № 2. - p. 217-223

318. Riggenbach C. Beggenbach von IBR/IPV in der Schweiz// Tierzuchter. 1985. -vol. 37. №7.-p. 297-298

319. Roberts P.C. et al. Vet. Micribiol., 1988, 18,3/4, 209.

320. Roc D.L., Beam S.L., Mayfield J.E. Mapping bovine herpesvirus type 1 latency related RNA in trigminal ganglia of latency infeted rabbits// J.Virol. - 1987. -vol.61 (№ 12).-p. 3827-3831

321. Rocha M.A. , Barbosa E.F., Guimaraes S.E., Neto E.D., Gouveia A.M. A high sensitivity-nested PCR assay for BHV 1 detection in semen of naturelly infected bulls.// Vet. Microbiol. -1998. - vol. 28 (№ 1) - p. 1-11

322. Rocjahn A. Desinfektionen, insbesondere IBR/IPV lin Problem der staatlichen Tiersukhebekampfung?//. Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. Vol. 89, 1976, p. 269-272.

323. Roizman B. , Tognon M. Restriction en 2 analysis of herpesvirus DNA: Stability of restrict endonuclease patterns// Lancet. 1973.- vol. P. - 167-217

324. Rossi C.R., Kinsel G.K., Rumph P. Association bitween route inoculation with infectious bovine rhinotracheitis virus and site of recrudescecen after dexamethasone treament//Am.J.Vet. Res. 1982 a. vol. 43, № 8. - p. 14401442

325. Rossi C.R., Kinsel G.K. Effect of infections bovine rhinotracheitis virus immunixation on viral shedding in challenge-exposed calves treated with dexamethasone// Am.J.Vet. Res. 1982 a. vol. 43, № 8. - p. 1576-1579

326. Rweyemamli M.M. The development of a vaccine for bovine herpes mammilitis. Res. Vet. Sci. Vol. 10, 1969, p. 419 427.339

327. Santurdi G., Da Silva N., Villres R., Tabares E., Solana A., Bautista J.M. Castro J.M. Raoid and high sensitivity test for direct detection of bovine herpesvirus 1 genome in clinical samples.// Vet. Microbiol. 1996. - vol. 49 (№ 1-2). - p. 81-92

328. Saunders J.R. et al. Efficacy of an intramuscular infectious bovine rhinotracheitis vaccine against abortion due to the virus. Canad. vet. J., vol. 13, 1972, p. 273-278.

329. Saxegaard F. et al. Isolation and identification of IBR-IPV virus from cases of vaginitis and balanitis in swine and from healthy swine. Nord. Vet.-Med. Vol. 19, 1967, p. 54-57.

330. Schibuta H. et al. Inf. Imm., 1983, vol. 4, p. 780.

331. Schirmeir H. Mh. Vet. Med., 1980, vol. 30, p. 35.

332. Shang L.M., Jones C. Analysis of bovine herpesvirus 1 transcripts during a primary infection of trigeminal ganglia of cattle.// J. Virol. 1997. Sep. Vol. 71 (№9).-p. 6786-6795

333. Schroeder R.J., Moys D.M. An acute respiratory infection of dairy cattle.// Am. J. Vet. Ved. Assoc. 1954.- vol. 125, № 3., -p. 471-472.

334. Schroder C., Keil G.M. Bovine herpesvirus 1 requires glycoprotein H for infectivity and direct spreading and glycoproteins gH (W450) and gB for glycoproteinD-independent cell-to-cell sparead.// J.Gen. Virol/ 199.- Jan.Vol. 80 (№1).-p. 57-61

335. Sheffy B.E. et al. Infectious bovine rhinotracheitis virus in extended bovine semen, 77th Ann. Meet. Animal Health. Ass. 1974, vol. 77, p. 131 137.

336. Shimizu M. et al. Jap. J. Vet. Sci., 1989, vol. 51,p. 157.

337. SieraP.L. Agricultura, 1984, vol. 53, № 624, p. 563.

338. Singh E.L. et al. Rev. Sci tech. of int. Epiz., 1985, vol. 4, p. 867.

339. Snowdon W.A. Infectious bovine rhinotracheitis and infectious pustular vulvovaginitis in Australian cattle. Aust. Vet. J. Vol. 40, 1964, p. 277 288.

340. Soulebot J.P., Guillemin F., Bun A., Dubjurget Ph., Espinasse J., Terre J. Infectious bovine rhinotracheitis: study on the experimentally induced disease and its prevention using an inactivated

341. Spire M.F. J. Am. VA Med. Ass., 1982, vol. 181, № 11, p. 1158.

342. Spradbrow P.B. The isolation of infectious bovine rhinotracheitis virus from bovine semen. Aust. Vet. J. 44, 1968, p. 410 412.

343. St. George T.D. Keratoconjunktivitis associated with infectious bovine rhinotracheitis infection in Victorian cattle. Aust. Vet. J., 41, 1965, p. 222 -223.

344. Steck F et al. Apparation et diagnostic de la rhinitracheite infecteuse bovine et de la vulvovaginite pustuleuse (IBR-IPV) et lutte contre ces maladies en Suisse. Bull. off. int. Epiz. 84, 1975b, p. 71 82.

345. Steck F et al. Aultreten, Diagnostik und Bekampflung der Infektiosen Rhinotracheitis und Pustulosen vulvovaginitis (IBR/IPV) in der Schweiz. Schweiz. Arch. Tierheilk, 117, 1975a, p. 439 451.

346. Steok F. et al. Control of transmission of IBR-IPV-virus by frozen bovine semen VIII th Intern. Congress on Animal Reproduction and Artificial Insemination, Krakow, 1976.

347. Straub O.C. Die abwechselungsweise verwendung von inaktiviertem und attenuiertem Impfstoff zur Bekampfung der infektiosen Balaoposthitis (IBR) bei Besa mangsbullen. Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. 90, 1977b, p. 67 69.

348. Straub O.C. Die abwechselungsweise Verwendung von inaktivierten und attenuiertem Impfstoff zur Bekampfung der infektiozen Bulaoposthitis (IBR) bei Besamungsbullen. Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. 90, 1977(b), p.273 276.

349. Straub O.C. et al. Seuchenhaftes Aufreten von IBR-IPV-virus Aborten. -Tierartzl. Umsch., 1982, 37, 9, p. 613 - 617.

350. Straub O.C. et. al. Erfahrungen bei der Bekampfund der Infektiosen Bovinen Rhinotracheitis (IBR) und der Infektiosen Pustulosen Vulvovaginitis (IPV). Tierartzl. Umsch. Vol. 32, 1977a, p. 107 112.341

351. Straub O.C. Moglichkeiten des Cinsatres von Impfstoffen gegen IBR/IPV Dtsch. tierarztl. Wschr. Vol. 83, 1976, p. 270-273.

352. Straub O.C. Vaccination programs for cattle. In: Report Sec. Int. Symp. Inf. Diseases varna 1973; puble. in veterinary Science, Sophia vol. 12, 1975b, p. 67 -69.

353. Straub O.C., Bohm H.O. Untersuchungen tiber die Lokalisation und des Blaschenausschlages in experimentelle infizierten Rindern. Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. Vol. 77, 1964, p. 458 462.

354. Straub O.C., Bohm H.O. Zur Epidemiologie der infektiosen Rhinitracheitis (IBR) und des Blaschenausschlages (IPV) beim Rind. KongreBbericht 17. Welttierarztekongreb Hannover, vol 1, 1965, p. 455-458.

355. Straub O.C., Bohm H.O. Zwei Ausbriiche von Blaschenausschlag bei Rindern in Suddeutschlang. Dtsch. Tierarztl. Wschr. Vol. 69, 1962, p. 616 617.

356. Straub O.C., Kielwein G. Experimentelle Mastitiden durch Blaschenausschlagvirus des Rindes. Berl. Munch. Tierarztl. Wschr. Vol. 79, 1966, p. 310-312.

357. Straub O.C., Wagner K. Die Sanierung einer Resamungsstation von IBR-IPV Virusausscheidern durch de Einsatz von IBR-IPV Lebendimhfstofh. Dtsch. tierartzl. Wschr. Vol. 84, 1977, p. 259 - 261.

358. Straub O.S. Zur Seuchesituation bei der infektiosen Rhinotracheitis und dem Blaschenausschlag der Rinder in Mittelluropa. Berl. Much. Tieraztl. Wschr. 1962, p. 272-273.

359. Taguchi M. et al. J. Jap. Vet. Med. Ass., 1991, vol. 43, № 6, p. 413.

360. Tajiima M. et al. J. Vcet. Med. Ass. 1992, vol. 39, № 8, p. 616.

361. Tanyi J., Varga J. Guidelines for the eradication of infectious bovine rhinotracheitis in Hungary//Acta Vet. Hung. 1992.- vol. 3 - p. 165-169

362. The Danish Veterinary Service, 1984, p. 11 42.

363. Theil K. et al. Affect of poly J: С on infectious bovine rhinotracheitis virus infection in calves. Proc. Soc. Exp. Biol. Vol. 137, 1971, p. 1176 1179.

364. Theilen G.H. et al. Bovine hematology leucocyte response to acute bovine mastitis. J. Amer. Vet. Med. Ass. Vol. 135, 1959, p. 481 -485.

365. Theodoridis A. Preliminary characterization of viruses isolated from cases of epididymitis and vaginitis in cattle.// Onderstepoort Journal Veterinary Research. 1978.-vol. 45.-p. 187-195

366. Theodoridis A. Stusies herpesviruses. Part 1. Isolation on bovine and characterization of viruses isolated from the genital tract of cattle.// Onderstepoort Journal Veterinary Research. 1985.- vol. 52, № 4. - p. 239-254

367. Thiry E., Brochier B.,Salike J. Excretion and reexcretion of thermosensitive and wild-type strains of infectious bovine rhinotracheitis virus after со-infection of two successive infections.// Vete. Microbiol. 1985. - vol. 4. - p. 371-380

368. Thiry E.,Bublot M., Van Bressmen M.F., Lequare A.S., Lomonte P., Vanderplasschen A., Pastoret P.-P. Molecular biology of bovine herpesvirus type 4.// Vet. Microbiol. 1992.- vol. 33 (№ 1-4) - p. 79-92

369. Thomas P.C. et al. Vet. Med., 1986, vol. 81, p. 974.

370. Todd J.D. et al. Intranasal vaccination against infectious bovine rhinotracheitis: studies on early onset of protection and use of the vaccine in pregnant cows. J. Amer. Vet. Med. Ass. 159, 1972, 1370.

371. Tolari F., White H., Nixon P. Isolation and reactivation of bovid herpesvirus 1 in goats. 1990. - vol. 13. № 1.- p. 67-71

372. Tornquist M. Aktuella vacciner for notkreatar. Svensk Veterinartidning, 1983, vol. 35, №5, p. 305-306.

373. Truit R.L. et al. Arch. Qesvirusforsch., 1973, 42, 78.

374. Ulbrich F. , Haase H. Zur latenten Infektion mit dem virus der Infektiosen Bovinen Rhinotracheitis (Infektiosen Pustulosen vulvovaginitis) (IBR)(IPV) bei Bullen. Mh. Vet.- Med. Vol. 23, 1974, p. 459 462.

375. Ulbrich F., Haase H. Zur latenten Infektion mit dem virus der Infektiosen Bovinen Rhinotracheitis (Infektiosen Pustulosen vulvovaginitis) (IBR),(IPV) bei Bullen. Mh. Vet.-Med. Vol. 30, 1975, p. 887 890.

376. Urbaneck D. et al. Zur effektivetat des Impfstoffeinsatzes. Mh. Veter. Med., 1983, BD 38, № 13, S. 481 - 486.

377. Urbaneck D. Infektiose Bovine Rhinotracheitis (IBR): Agra, 1981, S. 19 - 42.

378. Van Oischot J.T. Bovine herpesvirus in semen of bulls and the risk of transmission: a bfief review. Vet. Q. 1995, a. Mar. 17, (№ 1) p. 29 - 33.

379. Van Oischot J.T. , Straver P.J., Van Lieshout J.A., Quak J., Westenbrink F., Excel A.C. A subclinical infection of bulls with bovine herpesvirus type 1 at an artificial insemination center. Vet. Rec. 1993, vol. 132, (№ 2), p. 32 - 35.

380. Van Shaik G. Introduction of BHV- on dairy farms. Risk asrssment by cattle farmers and veterinarias// Tijdschr. Diergeneeskd. 1998. Vol. 15, № 123 (6). -p. 180-183

381. Veber H. et al. Pract. Tieraztl, 1975, vol. 56. № 3, p. 142

382. Vonk Noorgraaf A. An epidemiological an < economical simulation model to evaluate the spread an < control of infectious bovine rhinotracheitis in the Netherlands Prev. Vet. Med. 1998. - Sep. 1, vol. 3 (№3) - p. 219-238

383. Wagne K. Becker W., Zettl K. Infectios * Bovine Rhinotracheitis Infectiose Pustulose Vulvovaginitis (IBR/IPV). Tierartzl. Praxis, 1982, vol. 10, № 3, p. 329-328.

384. Wayne Roberts A., Carter G.R. Infectious bovine rhinotracheitis virus recovered from the milk of a cow with mastitis. J. Amer. Vet. Med. Ass. Vol. 164, 1974, p. 413.

385. Weiben R. , Kreutz L.C., Canabarro T.F., Schuch L.F., Rebellato M.C. Isolation of bovine herpesvirus 1 from preputial swabs and semen of bulls with balanopostitis// J. Vet. Diagn. Infest. 1992. - vol. 4 (№ 3). - p. 341-343

386. Wellemane G. et al. Kouze van cer methode voor het aantonen van IBR IPV antistoffen Vlaams diergeneesk. Vol. 37, 1968, p. 344 - 350.

387. Wentink G.H. et al. World Conf. on diseases of cattle, 14, Dublin, Ireland.

388. Whetstone C., Miller J., Bortner D., Van der Maaten M. Changes in the bovine herpesvirus 1 genome during acute infection, after reactivation from latency; and after superinfection in the host animal// Arch. Virol. 1989. - vol. 106. № 3-4.-p. 261-279

389. Whetstone C.A., Miller J. Two different strains of an alphaherpesvirus can establish latency in the same tissue of the host animal: evidence from bovine herpesvirus 1// Arch. Virol. 1989. - vol 107. - p. 27-34

390. Wiedmann M., Brendon R., Wagner P., Dubovi E.J., Batt C.A. Detection of bovine herpesvirus 1 in bovine semen by a nested PCR assay// Am. J. Vet. Res. 1994.-vol. 55 (№9)-p. 1206-1212

391. Wiseman A. The financial burden of infection rhinotracheitis// Vet. Rec. -1979. vol. 105. № 20. - p. 469

392. Wiseman A. Infection bovine rhinotracheitis//Veter. Ann.Bristol. 1980. - vol. 20 - p. 204-208

393. Wisemann A., Allan E.M., Selman I.E. A study of the respiratory diseases of adult cattle in Britain. 4. Infection bovine rhinotracheitis // Irish. Veter. Journal., 1984, vol. 38, № 9, p. 145 151.

394. Wolbug G. , De Witt C. The evidence of the IBR-IPV// J. Bacteriol. 1969. -vol. 3. - p. 730-732

395. Woods G.T. et al. Serologic response of lambs to live virus vaccines containing infectious bovine rhinotracheitis, bovine virus diarrhoea and bovine myxovirus parainfluenza 3. Vet. Med. Stall. Animal. Clinician. Vol. 70, 1975, p. 451 — 454.

396. Wray C. et al. Res. Vet. Sci., 1987, vol. 42, p. 21.

397. Yates W. D.L.A review of IBR, shipping fiver pneumonia and viral-bacterial in respiratory disease of cattle// Can. J. CoTp.Med. 1982. - vol. 46, № 3. - p. 225-263

398. Yates W.D.G. Inferaction between viruses and bacteria in bovine respiratory disease// Canad. Veter. J. 1984. - № 25 . - p. 37-41

399. Цветков П. Върху иммунопрофилактиката на заразния ринотрахеит по говедатаю Вет. Мед. Наукию 1977. Т. 14 (№ 8). - с. 8-13

400. Zuffa А. , Branuik A., Cernic К., Salaj J. Protection against experimental infection on calves vaccinated intranasally by three attnuated strains, IBR virus//Zbl.Vet. -1982. vol. 29 (№ 6) - p. 413-425

401. Zuffa A., Feketeova N. Protection of cattle vaccinated with inactivated oil-adjuvant IBR-vaccine against experimental infection. Zbl. Vet. Med., 1980, Bd 27, №9/10, P. 725-733.

402. Zugraich N. et al. Ann. Med. Vet., 1983, vol. 121, № 1, p. 23.

403. Zygraich N. et al. Replication of a temperature sensitive mutant of infectious bovine rhinotracheitis virus in the tissues of inoculated calves. Zbl. Vet.-Med. B, 21, 1974b, p. 138- 147.

404. Zygraich N., Lobman B. "In vivo" and "in vitro" properties of a temperture sensitive mutant of IBR virus//Res.Vet.Sci. 1974. - vol. 16 (№ 3). - p. 328335348

405. Особа? роль в этом направлении принадлежит различным бактерицидным средствам, применяемым в виде аэрозолей, возгогаси в очагах инфекции в присутствии животных.

406. Высокоэффективными препаратами такого действия являются термовоз-гоночные шашки "Домбай", "Креохин".

407. Шашки "Домбай" предназначены идя получения термического аэрозоля пихтового масла и представляют собой экзотермическую смесь, в состав которой входит пихтовое масло 25%, и термовозгоночная основа - 75%.

408. Препараты прошли производственное испытание в 19 неблагополучным по острым вирусным болезням хозяйствах, на 1100 животных.

409. Неблагоприятных последствий от применения препаратов не отмечено.3491. МЕТОДИКА ПРИМЕНЕНИЯ.

410. Расход препарата "Креохин" 0,01 мя/мз помещения. (Обрабатывают еженедельно в присутствии животных 3 дня подряд (экспозиция 20 мин.). После каждой обработки помещение проветривают.

411. Препараты "Домбай". "Креохюг прошли регистрацию в комиссии по канцерогенным факторам за Кя 1-30а / 1997 от 09.10.1997, не проявляют канцерогенной активности/'.

412. Прмененке указанных шашек проводится с соблюдением санитарных j травил личной гигиены. После обработки тщательно моют руки.

413. Зав. отделом "Эпизоотологии1. О.Г.Петрова

414. Виватон (жизненный тонус) это принципиально новый метод интенсивной терапии без применения химических медикаментозных средств.

415. Виватон это экстракт из лекарственных растений. Он одобрен и рекомендован к практическому применению Ветфармсоветом СССР от 30 декабря 1987г. (ТУ 10.07.593-88).

416. Наиболее ярко проявляются следующие свойства Виватона:- противовоспалительные- иммуномодулирующие- успокаивающие

417. Особенно эффективен препарат при лечении вялотекущих хронических инфекций, таких как инфекционный ринотрахеит-инфекционный пустулезный вульвовагинит крупного рогатого скота,1. ПОКАЗАНИЯ К ПРИМЕНЕНИЮ

418. Инфекционный ринотрахеит-инФекционный пустулезный вульвовагкн

419. Пневмоэнтериты телят инфекционной этиологии

420. При воспалении суставов Биватон вводят подкожно в дозе 0,1-0;2 мл на I кг живой массы утром и "вечером, в течение 5-7 дней.

421. Папилломатоз, дерматиты, отиты животных

422. При папилломатозе лечение проводят ежедневным смазыванием Виватоном папиллом 2 раза в день, в течение 10-15 дней. После смазывания накладывают на папилломы любую жировую основу /вазилин, глицерин, растительное масло/.

423. Препарат применяется также при клинических проявлениях зкссу-дативного и катарального отита по 2 капле в уши утром и вечером в течение 10-15 дней.1. ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ

424. Виватон не оказывает общего и местного неблагоприятного воздействия на организм животных.1. ХРАНЕНИЕ ПРЕПАРАТА

425. Хранить при температуре от 4 до 8°СС

426. Зав.отделом эпизоотологии, канд. вет.наук1. Петрова 0.Г,1. АКТ.испытание вакцины «Тривак» поливатентной сухой ассоциированной и инактивированной вакцины прошв инфекционного ринотрахеита, цустулеэного вульвовагинита крупного рогатого скота.

427. В свердловской области сотрудниками отдела эпизоотологии НИВС установлено широкое, практически повсеместное распространение ИРТ-ИПВ. ВД-БС среди крупного рогатого скота в племенных хозяйствах.

428. С учетом анализа подученных результатов составлена схема иммунопрофшнктики ОРВИкрупнош рогатого скота в 22 пламенных хозяйствах области вакцины ТРИВАК и инааштированной вакиины против ИРТ-ИПВ.

429. Согласно схемы, коров прививали вакциной ТРИВАК согласно наставлению по ее применению, телят, рожденных от привитых коров обрабатывали инактивированнои вакциной против ИРТ-ИПВ, в шести хозяйствах телят прививали вакщйЖйВАК.

430. Разработанная схема применяется в племенных хозяйствах области в течение одного года При этом удаюсь сократить заболеваемость и гибель телят в 6,3 раза, вынужденный убой в 3,9 раза, санитарный брак в 2,1 раза (табл.).

431. Применение вакиины против ОРВИ благоприятно сказывалось на течении болезни: оно было более гладким, легко купирующимся обострениями инфекции при уменьшении количества применяемых лекарственных средств.

432. Оценка иммунологических показателей у привитых телят выявила ряд особенностей. Анализ титров антител у телят проводили раздельно в группах с исходно низкими и высокими их значениями. У животных с исходно низким уровнем антител происходило356

433. Препарат "миксоферон" регистрирован в Р* за № 10,07,41-J3 0Б$й от 16,04,93г., производитель АО "&осагроген", ti*l "Технобик" г.косква.

434. Благодаря широкому спектру заидатного действия препарат можно применять при первых клинических признаках заболевания, еще до установления окончательного диагноза*1. Составитель

435. Завотделом опизоотодогии Свердловский ЬнЬС,к#ь«н«1.TP0EA О.Г.

436. РОС с: И И С К А Я А КАЛ Е м и я СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫX НАУК

437. СВЕРДЛОВСКАЯ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКАЯ В ЕТЕ РИ11А РИА Я СТА II НИ Я

438. ИНСТИТУТ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ ВЕТЕРИНАРИИ СИБИРИ И ДАЛЬНЕГО ВОСТОКА

439. ПЕТРОВА О. Г. ГЛОТОВ А. Г.

440. ИНФЕКЦИОННЫЙ РИНОТРАХЕИТ—ИНФЕКЦИОННЫЙ ПУСТУЛЕЗНЫЙ ВУЛЬВОВАГИНИТ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТАоспоны диагностики и специфической профилактики)г. ЕКАТЕРИНБУРГ 2000 г.1 ВВЕДЕНИЕ

441. РАСПРОСТРАНЕНИЕ ИРТ-ИПВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА.1. ЭКОНОМИЧЕСКИЙ УЩЕРБ.

442. В|Щвенцарии регистрируют широкое распространение болезни; среди племенных животных. В Венгрии установлено

443. Menu тампон извлекают за свободным конец нити и помотаю обратно но флакон, накрыв (.го пробкой. Нитка обрезается у уоста соодпнсппя с тампоном.

444. Тампоны немедленно помещают и морозилку бытового холодильника или и смог мри минусовом температуре.

445. От вынужденно убитых и павших животных отбирают: кусочки легких (на границе здоровом и пораженной ткани), кусочки слизистой носа, трахеи, легочных лимфоузлов размером 2 см.

446. От абортплодов отбирают пробы легких, печени, селезенки, а также кусочки котиледонов плаценты (2 см).

447. От быков па нлемпреднрпнтинх отбирают пробы спермы |ме менее 2 .i гранул). Отобранные пробы немедленно замораживают и доставляют в лабораторию в термосе со льдом.

448. Следует помнить, что материал, отобранный у животного позднее, чем 2 часа после вынужденного убоя или гибели, не наем дли вирусологических исследований.

449. От взрослых животных пробы сыворотки крови отбирают *однократно.

450. Следует отметить, что латентную форму болезни обычными вирусологическими методами выявить не возможно, noj этому для ее диагностики применяется метод молекулярной гибридизации в сочетании с исследованием пробы сыворотки34

451. После экспериментального воспроизведения этого заболевания у выживших животных титры вируснейтрализующих антител в сыворотке оказываются в среднем выше, чем после переболивания рииотрахеитом или пузырьковой сыпью.

452. При ИРТ ИПВ (гепнтальпая форма) коровам вводят ви-иатоп подкожно в дозе 0,02—0,03 мл на 1 кг живой массы п в полость матки с помощью шприца-катетера 2—3 раза в день по 50—100 мл в зависимости от тяжести заболевания.

453. В Свердловской области разработана схема мероприятии при возникновении ИРТ крупного рогатого скота, которая представлена в таблице № 1.1. ДИАГНОСТИКА ЗАБОЛЕВАНИЯ

454. Инактивироваиная вакцина «Triangle-З» защищает скот одновременно от трех основных вирусных возбудителей: ИРТ—ИПВ, ВД—БС, ПГ—3. Вакцину вводят на любой стадии стельности.

455. Для успешной защиты от инфекции в разных странах разработаны программы вакцинации молочного и откормочного скота. В США н Канаде откормочный скот вакцинируют против ИРТ- ИПВ, ВД—ВС, ПГ.3 перед постановкой на откорм.

456. В Канаде скот вакцинируют за 3 недели до покрытия или до поступления на площадку — вакцину вводят в течение 24 часов после прибытия. Если телят прививают в 2—4-месячном возрасте, то повторные прививки проводят в возрасте 6—7 месяцев.

457. Препарат выдвинут па соискание премии Правительства РФ и области науки и техники за 1999 год.

458. С 1981 года национальное предприятие «Бпоиота.Митра»

459. Чехословакия) выпускает комплексный препарат пмутпл, который представляет собой смесь 10%-пого раствора иммуноглобулинов с 4%-пым раствором тплозииа. Препарат вво301. Габ.'шцл I.

460. НА ОТКОРМОЧНЫХ ПЛОЩАДКАХ ФРАНЦИИ ВАКЦИНУ ПРИМЕНЯЮТ ПО СЛЕДУЮЩЕЙ СХЕМЕ:1. Возраст жинитншо1. И;м<цш!а1. Ренкния-ДШ'ВНЫН1—2 недели (на. откорме)6—8 недель 10- 12 недель1. Virobov1. Го же1. Го же

461. Немедленная песнепифическая, при повторных вакцинациях специфическая1. То же

462. Bn:iuiuict длительный иммунитет против ИРТ.

463. ИНФЕКЦИОННЬМ РИНОТРАХЕИТ ПУСТУЛЕЗНЫЙ ВУЛЬВОВАГИНИТ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

464. Характеристика заболевания.

465. Возбудитель ДНК-содержащий вирус, относящийся к ^ семейству герпесвирусов и обозначенный как герпесвирус КРС 1 - го типа. Распространение его происходит чаше контактным н аэрогенным путем, возможна механическая передача.

466. В естественных условиях болеет КРС всех пород и возрастов. Заболеваемость неиммунного скота может достигать 100%, летальность колеблется от 2 до 10% и вынужденный убой до 15%. Тяжелее всего болеет молодняк в возрасте от нескольких дней до 12-15 месяцев.

467. Инактивированные вакцины применяют для иммунизации быков ' производителей на станциях искусственного осеменения, племпредприятиях и иммунизации маточного поголовья (а также молодняка) в племенных хозяйствах.

468. При этом схемы применения вакцин могут несколько различаться в зависимости от эпизоотической ситуации в конкретном хозяйстве.

469. В некоторых случаях (по специальным показаниям) выраженным эффектом обладают поливалентные инактивированные вакцины, полученные из штаммов микроорганизмов, выделенных от больных телят на конкретной ферме конкретного зозяйства.

470. Баланопоститы характеризуются появлением на препуции и пенисе пустул и язв, отечностью и болезненностью.

471. У телят до 6-месячного возраста может развиваться менингоэнцефалит. При этом наблюдается повышение температуры тела, конъюнктивит, • манежные движения, тремор мышц, возбуждение. Животные погибают на 4-5-е сутки.

472. При конъюнктивальном синдроме наблюдают гиперемию, отечность слизистой оболочки, серозные, серозно-слизистые , а при осложнении- гнойные выделения.

473. При половой форме заболевания наблюдается гиперемия слизистой влагалища, единичные сливные пустулы, очаги некроза. У быков аналогичные признаки развиваются на пенисе и препуции.

474. Особенности эпизоотической ситуации по ИРТ-ИПВ в Сибири и на Урале

475. Вирус ПГ-3 и диплококк 20 1

476. Коронавирус и сальмонелла 20 11. Вирус ИРТ и ПГ-3 300 151. Вирус ИРТ и ВД-БС 240 12

477. Вирус ИРТ, ПГ-3 и . ВД-БС 160 8i В" связд с изложенным выше при планировании

478. Основа мероприятий по профилактике и борьбе с вирусными респираторными заболеваниями регламентируется Законом о 5:|;<; ветеринарии РФ и ветеринарным законодательством.

479. Комплектовать хозяйства животными из закрепленных за ними репродуктивных ферм, благополучных по инфекционным

480. Анализ результатов исследований показал, что ИРТ КРС имеет место на всех обследованных Головных племпредприятиях в разной степени. Показатель инфицированности варьировал от 11% до 66%.

481. В связи с тем, что процент инфицированности быков-производителей на Головных племпредприятиях Урала и Сибири высок, значительно возрастает угроза распространения ИРТ КРС в регионе.

482. Кроме того, от телят 1-6 месячного возраста изолировали культуры стрептококков (25%), стафилококков. (20%), а также вирус парагриппа 3 (14%), аденовирусы (3%), вирус ВД-БС КРС (7,6 %), коронавирус (9 %).

483. Отмечали различные ассоциации вирусов и бактерий. Чаще всего ИРТ КРС протекал совместно с парагриппом 3 КРС (особенно у телят 1-4 месяцев), аденовирусной инфекцией и инфекцией, вызванной вирусом ВД-БС.

484. В 1988 г. от больных острой формой ИРТ КРС телят откормочного комплекса «Пайвинский» Маслянинского района Новосибирской области был выделен цитопатический агент, типированный нами, как вирус ИРТ КРС.

485. В последующие годы в этой и других областях от больных животных, включая телят, коров, и быков-производителей, изолировали еще 12 штаммов вируса.12.1. Роль инфицированных быков-производителей в эпизоотологии ИРТ-ИПВ КРС

486. На протяжении длительного периода изучали связь межф* введением контаминированной вирусом спермы в хозяйства репродукторного типа и возникновением в них гинекологической патологии у коров и респираторных болезней у телят.

487. Отмечено, что при осеменении коров инфицированной спермой в стаде через 1-2 года возникали массовые заболевания половых органов,

488. Правила отбора проб биологического материала I для исследования

489. Флаконы немедленно помещают в морозилку бытового холодильника или в снег при минусовой температуре.

490. От вынужденно убитых с диагностической целью и павших животных отбирают : кусочки легких ( на границе пораженной и здоровой ткани), кусочки слизистой носа, трахеи, легочных лимфоузлов размером 2x2 см2.

491. В случае проявления нервной формы ИРТ КРС у животныхявлялся механический перенос возбудителя инфекции работниками животноводческих ферм, а также осеменение частных коров инфицированной спермой частных и общественных быков.

492. ВИРУСНАЯ ДИАРЕЯ-БОЛЕЗНЬ СЛИЗИСТОЙ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА (ВД-БС КРС)

493. Характеристика заболевания

494. Возбудитель РНК-содержащий вирус, относящийся к семейству тогавирусов и обладающий иммуносупрессивным действием на организм животного.

495. Источником возбудителя инфекции являются больные и -<J переболевшие животные вирусоносители, которые выделяют вирус во внешнюю среду. Проникновение вируса в организм восприимчевых животных происходит в основном аэрогенно и контактно.

496. Заболевание часто регистрируется осенью и зимой. Заболеваемость животных достигается иногда 90 100%, летальность - 60%.

497. Вирус может преодолевать плацентарный барьер и вызывать гибель плода.

498. На вскрытии телят, убитых в острой стадии болезни, обнаруживают узелковые эрозии на носовом зеркале, в ротовой полости, застойную гиперемию слизистой носовых ходов и перегородок, гиперплазию лимфатических узлов, отек лоханки и

499. КРС. Болеет чаще молодняк КРС в возрасте до года обычно до 5 6 -месяцев, т.к. на восприимчивость животных к вирусу большое влияние оказывает зрелость иммунной системы. „^

500. У телят старше шести месяцев клинических проявлений заболевания практически не регистрируют, а у взрослых животных оно протекает латентно без клинических признаков, не причиняя при этом вреда организму.

501. Особенности эпизоотической ситуации в Сибири и I; на Урале

502. Особенности патогенеза вирусных респираторных инфекций в аспекте болезней молодняка крупного рогатого скота

503. Генеральный; директор ЗАО "Тепличное" Миронов В,И«,. 199 г

504. СОГЛАСОВАНО : -Начальник Управления ветеринарии г о Екатеринбург абузанова Л.С.19?£г.

505. МЕРОПРИЯТИЯ оздоровления от инфекционного ринотрах^ита, вирусной диареи, парагриппа крупного рогатого скота на молочном комплекс? 3/10 "Тепличное" на 199 > Я Я г г1. Мероприятияроки Исполнитель2о

506. I месячного возраста всего поголовья на инфекционный ринотрахеит, вирусную диарею, парагриппо

507. Исследования на напряженность иммунитетачерез I месяц после вакцинации»20$ от по-ГОЛОВЬЯо

508. Профилактические мероприятия Вакцинация всего поголовья инактивированной вакциной против инфекционного ринотрахеит а с X месячного возраста (согласно инструкции) 1 Последующая ревакцинация через 5-6 месяцев»

509. По вирусной диареи,и парагриппу распоряжения по вакцинации с Облветуправ5ления согласно схем вакцинации./Уу А ио •-д-ц.ач -J. некого j.u/.u«<a. .^Зщ^'-л'Р оо^хиг-ки^ел;-.;i •. i ^Jпо оздоровлению СТЛАЛ W осп-puxop:; ы.x

510. ШЩЖЫШ МЕРОПРИЯТИЯ НО ОЗДОРОШЕРШЮ ОКТЖВШСКОЙ Ш Л 6 К-ЗА IUЛ. СВЕРДЛОВА ОТ ИРТ-ИПВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА1.A ISG8 ГОД

511. Провести серологнческо.:- исследование дюнного о гада на ИТ НС; ИРТ HIS, f ЖГС ^-i-; квартал IS;OS годэ

512. После излучения результатов исследования, положительно реагирующих лскеотных i:a HPT IШ перевести на 1.Ш & I.

513. Телефон 22-43-04, 22-17-87

514. Начальник Управления ветерина1. ММКм и1. АКТо применении диагностики инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота методом молекулярного зондирования с использованием гибридизационнои тест-системы

515. Результаты гибридизационного анализа спермы 10-ти быков-производителей выявили одного положительно реагирующего, а результаты вирусовыделения в кулькуре клеток во зсех случаях были отрицательными.

516. Исследование 25-ти проб носовых истечений от телят, больных респираторными заболеваниями, методом гибридизационного анализа выявлено 12 положительно реагирующих животных, вирусовыделение а культуре клеток 3.

517. Исходя из полученных данных считаем, что гибридизационная тесч система для диагностики HFT-HILi крупного рогатого скота является высокочувствительным и специфичным методом, простым по технике выюстики КРТ-ИПЬ*1. А.ТДатарчук О.Г.Петрова

518. Зав.отделом эпизоотологии,к.в.н

519. Ст.научн, сотрудник отдела эпизоотологии " |1. Н.Л.Райкова386

520. ПСК "Шкловский1 г. Ьерёзовскийс»1. МЕРОПРИЯТИЯоздоровления хозяйства от ОРВИ

521. Плановое исследование на ИРТЛПВ, В.Д.га/ непарные от коров-матерей не менее 5% -40б/ парныепробы сыворотки от телят неменее Щ проб.

522. Коров сухостойной группы за 30 дней до отёла, телят

523. С особенно при перегруппировках в переходный период) обрабатывать согласно действующих инструкций препаратами серии "Вива~

524. Помещения, где содержатся коровы, телята, содержать в сан.порядке (производись побелку, дезин<?екщию с применением 2,5$ раствора формалина, дерратизация летом - 2 раза в месяц, зимой - I раз в месяц).

525. Дегазация помещений с применением однохлористого йода * согласно наставления.

526. В летний период родильное отделение, группу сухостоя, телят - выводить в летний лагерь на 3 месяца, проводить ремонт помещений, дезинфекцию, побелку,

527. В зимний период коровы, тёлки - ежедневные прогулки, активный моцион.

528. Телок перед продажей исследовать на ОРВИ, продавать сероотрицательных животных.тон".