Особенности перфузии у детей с массой тела до 5 кг тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.01.20, кандидат медицинских наук Аверина, Татьяна Борисовна

• Аверина, Татьяна Борисовна
• кандидат медицинских наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Аверина, Татьяна Борисовна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Возрастные особенности новорожденных и младенцев и 14 существующие подходы к проведению искусственного кровообращения у данной категории пациентов

1.2. Синдром системного воспалительно-коагуляционного ответа 24 организма на искусственное кровообращение как определяющий фактор развития постперфузионных осложнений у новорожденных и младенцев

1.3. Значение различных методов ультрафильтрации для 3 5 оптимизации перфузионного обеспечения у детей первого года жизни

1.4. Практический опыт и обоснование применения 49 биосовместимых покрытий экстракорпорального контура для профилактики постперфузионных осложнений у детей

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Клиническая характеристика пациентов

2.2. Анестезиологическое пособие

2.3. Искусственное кровообращение

2.4. Методика проведения ультрафильтрации

2.5. Использование оксигенаторов и ЭК-контуров с 70 биосовместимым покрытием «Phisio»

2.6. Методы и этапы исследования

2.7. Методы статистической обработки данных

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ

3.1. Оценка адекватности искусственного кровообращения при операциях анатомической и гемодинамической коррекции транспозиции магистральных артерий у детей с массой тела до 5 кг

3.2. Комбинированная ультрафильтрация как компонент 89 перфузионного обеспечения операций коррекции транспозиции магистральных артерий у детей с массой тела до 5 кг

3.3. Оценка эффективности применения экстракорпоральных 101 контуров и оксигенаторов с покрытием «Phisio» у детй с массой тела до 5 кг.

Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ

4.1. Сравнительная оценка адекватности перфузии у детей с 121 анатомической и гемодинамической коррекцией ТМА

4.2. Обоснование применения комбинированной 131 ультрафильтрации как компонента перфузионного обеспечения операций коррекции транспозиции магистральных артерий

4.3. Оценка эффективности применения ЭК-контуров и 143 оксигенаторов с биосовместимым покрытием «Phisio»

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Особенности перфузии у детей с массой тела до 5 кг»

В течение последних лет радикальная коррекция врожденных пороков сердца (ВПС) в периоде новорожденное™ и младенчества является тенденцией мировой и отечественной кардиохирургии. По данным обзора перфузионных технологий Северной Америки, в 2004 году 57% открытых процедур было выполнено у детей в возрасте до 1 года жизни; 20% всех операций были проведены у новорожденных пациентов. По результатам такого же опроса, в 1994 году эти показатели составляли 46 и 18% соответственно [137, 138]. В России также увеличивается доля открытых вмешательств, выполняемых на первом году жизни. Если в 2000 году только 12,2% операций с искусственным кровообращением (ИК) по поводу ВПС проводилось в периоде новорожденности и младенчества, то в 2007году этот показатель составил 27,9 % от общего количества [3].

В НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН в последнее время выполняется более 2500 открытых коррекций ВПС в год, что составляет 34,7% от подобных вмешательств, выполняемых ежегодно в РФ. Доля новорожденных и детей первого года жизни в структуре операций также значительно возросла и составила 31,3 % [3].

На первом году жизни самое большое количество хирургических вмешательств с ИК выполняется по поводу коррекции септальных дефектов, тетрады Фалло (ТФ) и транспозиции магистральных артерий (ТМА). Если коррекция ДМПП, ДМЖП и ТФ как правило не проводится в периоде новорожденности, то анатомическая и гемодинамическая коррекция ТМА выполняется в самые ранние сроки. 8,4% всех вмешательств на первом году жизни составляют различные этапы коррекции ТМА, причем 89,1 % - в условиях ИК [3]. Пациентами в основном являются новорожденные и младенцы с массой тела до 5 кг.

Несмотря на достижения экстракорпоральных технологий и перфузионного обеспечения, дети первого года жизни, остаются самой уязвимой категорией больных относительно риска развития постперфузионных осложнений. Это обусловлено:

1) морфофункциональной незрелостью организма [28, 75, 125, 127, 183, 191,256, 280,282];

2) малым весом и, соответственно, малым объемом циркулирующей крови (ОЦК) (соотношение «ОЦК - первичный объем заполнения экстракорпорального контура» < или =1);

3) характером корригируемой патологии, требующим определенных, часто нефизиологичных режимов перфузии [24, 137, 138, 282].

Самой важной проблемой, как и на заре развития кардиохирургии, является необходимость дальнейшего сокращения первичного объема заполнения ЭК-контура и снижение соотношения ОЦК/прайм. Зная об опасности чрезмерной гемодилюции с одной стороны и об осложнениях массивной гемотрансфузии с другой, большинство кардиохирургических центров, оперирующих детей, стремятся к уменьшению ЭК-контуров [24, 68, 126, 203]. Для оптимизации метаболического и электролитного составов первичного объема заполнения применяются ультрафильтрация, обработка донорских эритроцитов в гемосепараторе, лейкодеплеция [137, 282].

Нефизиологичность ИК определяется такими факторами, как глубокая гипотермия, циркуляторный арест, массивная гемотрансфузия и т. д., которые часто неизбежны при коррекции сложных ВПС в этом возрасте. Для минимизации негативного влияния ИК предлагается много методик ведения перфузионного периода, каждая из которых имеет свои положительные и отрицательные эффекты [137]. Оптимальное их сочетание в одном протоколе требует четкого представления о возможных патофизиологических взаимодействиях и последствиях для организма ребенка.

Согласно современным представлениям, осложнения после операций на сердце связывают с развитием синдрома системного воспалительно-коагуляционного ответа (СВКО) на комплекс воздействий при кардиохирургическом вмешательстве [72].

Воспалительный ответ у детей имеет свои особенности. Считается, что он наиболее выражен у новорожденных и младенцев по сравнению с более старшими детьми и взрослыми [79, 91, 256]. Физиологическая незрелость тканей и органных функции в первые несколько месяцев жизни, огромная разница между площадью чужеродной поверхности ЭК-контура и малым ОЦК, воздействие работы отсосов, гемодилюция, гипотермия, часто с остановкой кровообращения (циркуляторным арестом), массивная гемотрансфузия [15, 26, 28, 114, 138, 174] являются достаточными факторами для развития выраженной воспалительной реакции, которая сопровождается образованием медиаторов воспаления, компонентов комплемента, вазоактивных аминов, активацией нейтрофилов. ФНО-а, гистамин, СЗа, С5а компоненты комплемента, протеолитические ферменты лейкоцитов повышают капиллярную проницаемость, приводя к формированию богатого белком тканевого отека. Новорожденные, со свойственной им гидрофильностью и быстрым перемещением жидкости из внутрисосудистого во внесосудистое русло, являются контингентом риска развития отека в результате белковой утечки [72, 79,91,256].

Много методов было разработано для предотвращения этих осложнений, включая использование мочегонных средств, перитонеального диализа, гемосепарации и ультрафильтрации (УФ) [137, 282]. На сегодняшний день различные способы УФ применяются для предупреждения постперфузионных осложнений, связанных с избыточной гидратацией. Несмотря на то, что ультрафильтрация в педиатрической практике давно стала традиционной процедурой, она до сих пор является предметом исследований. В литературе обсуждаются две проблемы:

- какие возможности есть у существующих методов УФ для лимитирования СВО и что оказывает большее влияние на клинический результат - снижение концентраций медиаторов воспаления или редукция интерстициальных отеков [35, 59, 60, 90, 91, 92, 170, 171, 187, 233, 277, 300];

- какая методика или сочетание методик предпочтительно для достижения лучших клинических результатов [60, 91, 92, 170, 171, 187]?

Анализируя данные многочисленных исследований, можно сделать вывод, что приоритетной стратегией является комбинация методов ультрафильтрации.

Для предотвращения СВКО и его последствий также существует много подходов. Так как ранняя фаза СВКО связана с контактом с чужеродной поверхностью, то снижение ее активации за счет повышения биосовместимости применяемых материалов кажется логичным подходом для решения этой проблемы. Благодаря усилиям производителей оборудования для сердечнососудистой хирургии, на сегодняшний день существует достаточно большое количество покрытий ЭК-контура, среди которых необходимо выделить покрытие на основе фосфорилхолина («Phisio», PC), которое является интересной альтернативой гепариновым контурам. Подражая внешней поверхности биологических мембран клетки («биомембранная мимикрия»), фосфорилхолин является аналогом сосудистой стенки. Эксперименты in vitro и на животных показали выдающуюся тромборезистентность и минимальную адгезию плазменных белков [292, 293]. На данный момент накоплен некоторый практический опыт применения систем с РС-покрытием [100, 101, 144, 211, 230, 231].

Оценивая клиническое течение послеоперационного периода, большинство исследователей не нашли достоверных преимуществ от применения PC-покрытых ЭК-контуров. В доступной нам литературе удалось обнаружить только одно исследование, оценивающее использование РС-покрытия «Phisio» у новорожденных и младенцев [100]. Оценивая полученные результаты, F. De Somer и соавторы [100] предположили, что сохранность тромбоцитов и меньшая активация комплемента должны внести положительный вклад в течение послеоперационного периода.

Проблема предотвращения контактной активации СВКО более актуальна для самых маленьких пациентов с большой неэндотелизированной поверхностью ЭК-контура. Если у взрослых пациентов, в связи с разработкой минисистем [(290), появилась дополнительная возможность сокращения чужеродной поверхности и ограничения попадания раневого тканевого фактора в системную циркуляцию (за счет использования гемосепаратора) , то у младенцев в ближайшие годы единственным решением будет использование биосовместимых поверхностно-модифицированных материалов.

Таким образом, перфузионное обеспечение у новорожденных и младенцев по-прежнему остается одним из факторов риска развития послеоперационных осложнений. Самое нефизиологичное ИК имеет место именно у этой категории пациентов, поэтому еще долгие годы будут актуальны попытки его усовершенствования.

Целью данного исследования являлась оптимизация перфузионного обеспечения кардиохирургических операций у детей с массой тела до 5 кг, для достижения которой решались следующие задачи:

1. Сравнить выраженность расстройств гомеостаза во время ИК и в постперфузионном периоде у детей с массой тела до 5 кг в зависимости от возраста и характера вмешательства (анатомическая, гемодинамическая коррекция ТМА).

2. Обосновать необходимость комбинированного использования методов ультрафильтрации для оптимизации состава первичного объема заполнения ЭК-контура, гемоконцентрации и коррекции гемогидробаланса в интра- и постперфузионном периоде.

3. Проанализировать динамику провоспалительных цитокинов и противовоспалительных агентов при операциях коррекции ТМА;

4. Оценить клиническую эффективность применения биосовместимого покрытия ЭК-контура на основе фосфорилхолина («Phisio»).

Научная новизна

На основании анализа многочисленных литературных данных систематизированы существующие подходы к тактике перфузионного обеспечения хирургической коррекции ВПС у новорожденных и младенцев. На примере большой (п=76), однородной группы пациентов с массой тела до 5 кг., которым выполнялась анатомическая или гемодинамическая коррекция самого распространенного сложного ВПС, устраняемого на первом году жизни, проведен всесторонний анализ адекватности искусственного кровообращения по традиционным признакам его оценки. Для данного контингента пациентов оптимизированы методики ультрафильтрации; доказана необходимость ее комплексного использования (комбинированная ультрафильтрация) с целью обработки первичного объема заполнения экстракорпорального контура, гемоконцентрации и сокращения гемогидробаланса в интра- и постперфузионном периоде. На основании всестороннего исследования интра-и послеоперационного периода, включающего анализ динамики системного воспалительного ответа, впервые установлены клинические преимущества при использовании у новорожденных и младенцев ЭК-контуров с биосовместимым покрытием «Phisio». Подобные результаты не описаны в отечественной и зарубежной литературе.

Теоретическая и практическая значимость В работе представлены преимущества и недостатки применяемого протокола перфузионного обеспечения у детей с массой тела до 5 кг. Даны конкретные рекомендации, включающие в себя принципы оценки адекватности ИК и мероприятия, направленные на ее повышение. Подробно описано использование всех возможностей ультрафильтрации (комбинированная УФ) при перфузионном обеспечении операций на открытом сердце у детей с массой тела до 5 кг. Путем всесторонней оценки течения перфузионного и послеоперационного периода, включая анализ динамики маркеров системного воспаления, обоснована необходимость применения ЭК-контуров и оксигенаторов (D-901, Dideco, Mirandola) с биосовместимым покрытием «Phisio», особенно у новорожденных.

Положения, выносимые на защиту

Увеличение длительности перфузии и глубины гипотермии при коррекции ТМА у детей с массой тела до 5 кг сопровождаются нарушением параметров гомеостаза. Критическими факторами являются возраст и масса тела пациента.

Применение комбинированной УФ у детей с массой тела до 5 кг способствует оптимизации состава первичного объема заполнения ЭК-контура, своевременной гемоконцентрации, редукции интерстициальных отеков в постперфузионном периоде и максимальному использованию резидуального объема ЭК-контура.

Клинические преимушества использования ЭК-контуров с биосовместимым покрытием на основе фосфорилхолина («Phisio») у детей с массой тела до 5 кг связаны с менее выраженным и более сбалансированным системным воспалительным ответом и меньшей степенью интраоперационного тканевого повреждения.

Хочу выразить глубокую благодарность моему научному руководителю, директору Научного центра сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н.Бакулева РАМН, лауреату Ленинской и Государственной премий, академику РАМН, профессору Лео Антоновичу Бокерия за неоценимую поддержку, мудрые советы и долготерпение, благодаря которым была завершена эта работа.

Особую признательность и сердечную благодарность выражаю доктору биологических наук Саму иловой Дание Шавкетовне за практическую помощь, моральную поддержку и веру в мои возможности.

Благодарю всех руководителей отделений Научного Центра: доктора медицинских наук, профессора, академика РАМН Подзолкова Владимира Петровича, доктора медицинских наук, профессора Туманян М.Р., доктора медицинских наук, профессора Ким А.И., доктора медицинских наук, профессора Лобачеву Г.В., кандидата медицинских наук Серегина К.О. за стимуляцию моей научной активности и готовность помочь во всех начинаниях.

Я хочу поблагодарить замечательный коллектив лаборатории искусственного кровообращения за то, что своим пониманием и практической помощью, он помог мне завершить эту работу.

Заключение диссертации по теме «Анестезиология и реаниматология», Аверина, Татьяна Борисовна

выводы

1. Искусственное кровообращение при гемодинамической коррекции ТМА у детей с массой тела до 5 кг, отличающееся от такового при анатомической коррекции меньшей продолжительностью (96,19±28,51 по сравнению с 170,1 ±36,49 мин) и глубиной гипотермии (25,06±0,99 по сравнению с 22,64±0,93°С), является более адекватным по метаболическим и органным признакам и сопровождается меньшей задержкой жидкости в организме: а) адекватность по метаболическим признакам выражается в меньшем количестве расстройств КОС, компонентом которых во время согревания (84,51 и 44,4% соответственно) и окончания перфузии (76,6 и 31,3% соответственно) является метаболический лактат-ацидоз, и большем количестве пациентов, не имеющих нарушений КОС на этих этапах (10,9 и 27,7% ; 17 и 31,3% соответственно). б) попадание кардиоплегического раствора «Кустодиол» в ЭК-контур сопровождается дилюционным ацидозом (рН=7,3±0,01; ВЕ=-8,7±2,4), который, при своевременной коррекции бикарбонатом натрия, не сопровождается метаболическими расстройствами к моменту окончания перфузии (рН=7,43±0,04, ВЕ=-2,11±1,87); в) адекватность по органным признакам характеризуется лучшей защитой миокарда, выражающейся в меньшей длительности реперфузионного периода (31,52±10,51 и 53,74±15,21), необходимой исключительно для согревания пациента (R между минимальной температурой и временем реперфузии миокарда - -0,71, р<0,05), и меньшей потребностью в инотропных препаратах (р<0,05); г) степень задержки жидкости в организме зависит от длительности перфузии (R=0,4, р<0,05), возраста (R=-0,23, р<0,05) и массы тела пациента (R=-0,25, р<0,05); на нее не оказывают достоверного влияния такие показатели, как минимальный гематокрит, среднее перфузионное давление, уровень исходной гипоксемии, объем диуреза и ультрафильтрации во время ИК (р<0,05).

2. Все стадии комбинированной ультрафильтрации эффективны на соответствующих этапах: а) ультрафильтрация первичного объема заполнения ЭК-контура устраняет метаболические и электролитные несовершенства перфузионной среды, приводя к достоверному снижению концентрации Na+ (со 166,3±9,08 до 149,4±6,93 ммоль/л), К+ (с 5,23±1,19 до 4,37±0,58 ммоль/л), глюкозы (с 10,99±3,94 до 5,67±2,4 ммоль/л), лактата (с 7,86±4,0 до 4,24±2,06 ммоль/л) и оптимизации рН перфузата (с 7,26±0,14 до 7,31±0,15) за счет выветривания углекислоты в результате рециркуляции прайма; б) классическая ультрафильтрация своевременно редуцирует интраоперационную гемодилюцию, за счет чего на момент окончания ИК достигается необходимый уровень концентрации гемоглобина (102,78±13,44, 103,78±9,9 и 99,3±11,39 в подгруппах анатомической и группе гемодинамической коррекции соответственно); в) МУФ максимально снижает постперфузионный гемогидробаланс (на 31,2±24,19%) у пациентов с наиболее выраженной задержкой жидкости (до 71,88±37,9% ОЦК в подгруппе анатомической коррекции), проявляя при этом наибольшую эффективность в отношении гемодинамических параметров (повышение АД на фоне снижения ЦВД и Длп) и сокращения потребности в инотропных препаратах (р<0,05); г) МУФ способствует дальнейшей гемоконцентрации за счет использования резидуального объема экстракорпорального контура; применение видоизмененной схемы с дополнительной магистралью позволяет максимально использовать оставшийся перфузат (96,15±6,15 по сравнению с 35,13±7,96 и 33,52±6,06 мл), а также сокращать суммарное применение компонентов донорской крови (р<0,05).

3. Системная воспалительная реакция при коррекции ТМА характеризуется активацией про- и противовоспалительных агентов, что проявляется повышением ФНО-а до 121,5%, ИЛ-8 - до 783%, ИЛ-10 - до 1411 %, НЭ - в 1,4 раза, al-AT -в 1,14 раза; преобладающим является противовоспалительный ответ. Спустя сутки после операции сохраняется остаточная про- и противовоспалительная активность, выражающаяся в увеличенных концентрациях ИЛ-8 ИЛ-10 (р<0,05).

4. Новорожденные являются наиболее восприимчивым контингентом в отношении контактной активации системного воспаления, что проявляется в большей активности НЭ и неадекватной ингибирующей способностью al-AT на постперфузионных этапах (р<0,05).

5. Применение ЭК-контуров с покрытием «Phisio» сопровождается менее выраженным и более сбалансированным системным воспалительным ответом (сохранение остаточной противовоспалительной активности к окончанию первых суток после ИК), меньшей степенью интраоперационного тканевого повреждения (на основании динамики ACT Е/л в течение трех суток после операции), а также с меньшей задержкой жидкости в организме (92±65,34 по сравнению с 171,83±75,24 мл, р<0,05) и большей сохранностью тромбоцитов (43,7±12,86 по сравнению с 32,13±13,1; р<0,05).

6. Клиническое преимущество использования биосовместимого покрытия на основе фосфорилхолина выражается в меньшем количестве послеоперационных инфекционных осложнений (11% по сравнению с 75%) и менее сложной структурой неинфекционной патологии.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

1. Для своевременного предотвращения метаболических расстройств, нарушений КОС и газового состава крови во время гипотермического ИК у новорожденных и младенцев необходимо иметь возможность непрерывного «on-line» контроля широкого спектра показателей и стремиться к сокращению времени перфузии и глубины гипотермии.

2. Дилюционный ацидоз, возникающий в результате попадания кардиоплегического раствора «Кустодиол» в ЭК-контур необходимо корригировать путем введения дополнительного количества бикарбоната натрия.

3. Для устранения метаболических и электролитных несовершенств прайма, основными компонентами которого являются продукты донорской крови, целесообразно проводить изоволемическую ультрафильтрацию.

4. МУФ целесообразно применять у всех детей с массой тела до 5 кг, вне зависимости от степени задержки жидкости. Предпочтение следует отдавать схеме МУФ с дополнительной магистралью.

5. Для проведения длительной перфузии у детей с массой тела до 5 кг, особенно у новорожденных, целесообразно использовать ЭК-контуры с биосовместимым покрытием «Phisio».

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Аверина, Татьяна Борисовна, 2010 год

1. Абрамян М. А. Модифицированная ультрафильтрация в ближайшем постперфузионном периоде у новорожденных и грудных детей: Автореф. дис. канд. мед. наук. М., 2000;

2. Авдеева М. Г., Шубин М. Г. // Клинич. лаб. Диагн. 2003;6: 3-9;

3. Бокерия Л. А., Гудкова Р. Г. Сердечно-сосудстая хирургия — 2007. Болезни и врожденные аномалии системы кровообращения. — М.: НЦССХ им. А. Н. Бакулева РАМН, 2007 144 е.;

4. Бокерия Л. А., Мовсесян Р. Р., Мусина Р. А. Актуальные вопросы интраоперационной защиты миокарда (кардиоплегия) Грудная и серд.-сосуд. Хир. 1998: 5; 63-70;

5. Борисов В. И. Состояние микроциркуляторного сосудистого русла в условиях искусственного кровообращения по данным бульбарной микроангиоскопии. Дис. канд. мед. наук., М., - 1977. - 133 с.

6. Борисов В. И. Пособие, регламентирующее проведение искусственного кровообращения. М.: Издательство НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН, - 16с

7. Галетти П. М., Бричер Г. А. Основы и техника экстракорпорального кровообращения. М.: «Медицина», 1966 - 295 е.;

8. Дементьева Г. М., Кушнарева М. В., Грачева JI. В., Малашина О. А. Система протеиназы-ингибиторы протеиназ и ее роль в респираторной патологии новорожденных. Педиатрия. — 1994;4: 105-109; /ЦТ 1-4

9. Дементьева И. И., Чарная М. А., Морозов Ю. А. Применение трасилола в кардиохирургии: Методические рекомендации. -М.,-2003.-31с.

10. Загвоздкин В. И. К вопросу о взаимосвязи гемодинамики, транспорта и потребления кислорода во время искусственного кровообращения. Автореферат дис. канд. мед. наук. М., - 1973 - 21 е.;

11. Зильбер А. П. Клинико-физиологические основы кровопотери и гемотрансфузии. В кн.: Сборник докладов Всероссийского научно-практического симпозиума с международным участием «Бескровная хирургия итоги и перспективы». М. - 2002, 22-33;

12. Ильин В. Н. Комбинированный метод глубокой гипотермии для коррекции пороков сердца у детей раннего возраста. Дис. канд. мед. наук. М., 1978;

13. Кламмер М. Е. Аспекты методики, гемодинамики и потребления кислорода при искусственном кровообращении. Авторефератдиссертации на соискание ученой степени доктора медицинских наук., М.- 1974-46 е.;

14. Кламмер М. Е. Глубокая гипотермия при операциях на открытом сердце. Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата медицинских наук., М. 1965 - 21 е.;

15. Кобахидзе Э. А. Некоторые вопросы методики и клинического применения искусственного кровообращения без донорской крови. Дис. канд. мед. наук. 1975 - 130с.;

16. Козинец Г. И., Бирюкова JI. С., Горбунова Н. А. и др. Иммунологические основы трансфузионной терапии. В кн.: Практическая трансфузиология. -М., 1997; 73-150;

17. Колударов В. В. Искусственное кровообращение в условиях гипотермии у детей до трех лет с ВПС. Дис. канд. мед. наук. М., 1987;

18. Локшин Л. С., Лурье Г. О., Дементьева И. И. Искусственное и вспомогательное кровообращение в сердечно-сосудистой хирургии. -Москва, 1998,-212 с.;

19. Меньшугин И. Н. Искусственное кровообращение у детей в условиях ганглионарной блокады и пульсирующего потока. Руководство для врачей. СПб: «Специальная литература» 1998. - 127 с.

20. Морган-мл. Дж. Э., Михаил М. С. Инфузионно-трансфузионная терапия.В кн.: Клиническая анестезиология: книга 2-я. Пер. с англ. -М. - СПб.: Изд. БИНОМ - Невский Диалект, 2000. 272-291;

21. Осипов В. П. Основы искусственного кровообращения. М., 1976 -320с.;

22. Румянцев А. Г., Аграненко В. А. Возрастные особенности детского организма и гемотрансфузий. В кн.: Гемотрансфузионная терапия в педиатрии и неонатологии: Руководство для врачей. М.: МАКС Пресс, 2002. 14-19;

23. Самуилова Д. Ш. Диагностическая и прогностическая информативность функционального состояния нейтрофилов и гуморального иммунитета у пациентов кардиохирургического стационара. Дис. д-ра биол. наук. -М., 1999;

24. Струнин О. В., Третьякова Е. А., Шунькин А. В. Князькова Л. Г. и др. Показатели клеточного иммунитета у детей до года после кардиохирургических операций в условиях ИК. Бюллетень НЦССХ им. А.Н. Бакулева РАМН. Сердечно-сосудистые заболевания. Приложение.

25. X Всероссийский съезд сердечно-сосудистых хирургов.Т. 5, № 11, М., -2004: ;

26. Шебаев Г. А. Защита миокарда новорожденных и детей первого года жизни при хирургическом лечении врожденных пороков сердца. Дисс. канд. мед. наук. М., 2003.

27. Шипулин В. М., Мерунко А.А. Ультрафильтрация крови в детской кардиохирургии. Томск: STT, 2002, - 136 е.; 3

28. Яровая Г. А., Блохина Т Б., Пешкова Е. А. Механизмы активации контактной системы. Новые факты и концепции. Тромбоз, гемостаз, и реология 2003; 4: 16-24;

29. Яровая Г. А., Блохина Т Б., Пешкова Е.А. Новые представления о механизмах активации и биорегулирующих функциях Биохимия. 2002. -Т. 67. - Вып. 1: 16-29;

30. Ярустовский М. Б., Григорьянц Р. Г., Тимохов В. С., Абрамян М. В и др. Оценка эффективности постоянной почечной заместительной терапии у больных в критическом состоянии после операций на сердце и сосудах. Анестезиология и реаниматология 1997; 6: 40-46;

31. Adrian К, Mellgren К, Skogby М, et al. The effect of albumin priming solution on platelet activation during experimental long-term perfusion. Perfusion 1998;13:187-91;

32. Alcaraz AJ, Sancho L, Manzano L et al. Newborn patients exhibit an unusual pattern of interleukin 10 and interferon serum levels in response to cardiac surgery J Thorac Cardiovasc Surg 2002;123:451-458;

33. Allen BS, Illbawi MN. Hypoxia, reoxygenation and the role of systemic leukodepletion in pediatric heart surgery. Perfussion 2001; 16 (suppl): 19-29;

34. Allen BS. The role of leukodepletion in limiting ischemia/reperfusion damage in the heart, lung and lover extremity. Perfussion 2002; 17: 11-22;

35. AlonsoA, WhittenCW, Hill CE. Pump prime only aprotinin inhibits cardiopulmonary bypass-induced neutrophil CD lib upregulation. Ann Thorac Surg 1999; 67: 392-395;

36. Amiji M, Park H, Park K. Study on the prevention of surface-induced platelet activation by albumin coating. J Biomater Sci Polym Ed. 1992; 3: 375-88;

37. Anand KJ, Hensen DD, Hickey PR. Hormonal metabolic stress responses in neonates undergoing cardiac surgery. Anesthesiology 1990; 73: 661-670;

38. Ankersmit KJ, Tugulea S, et al. Activation-induced T-cell death and immune dysfunction after implantation of leffventricular assist dervice. Lancet 1999; 354: 550-555;

39. Aoki M, Nomura F, Stromski ME, et al. Effects of pH on brain energetics after hypothermic circulatory arrest. Ann Thorac Surg 1993; 55:1093-103 Abstract.;

40. Ashraf S, Tian Y, Cowan D et al. Release of proinflammatory cytokines during pediatric cardiopulmonary bypass: Heparin-bondet versus nonbondet oxygenators. Ibid 1997; 64: 1790-1794;

41. Ashraf S, Tian Y, Cowan D, et al. Low-dose" aprotinin modifes hemostasis but not proinflammantory cytokines release.Ann Thorac Surg 1997; 63: 6873;

42. Ashraf S, Tian Y, Zacharrias S, et al. Effects of cardiopulmonary bypass on neonatal and paediatric inflammatory profiles. Eur J Cardiothorac Surg 1997; 12: 862-868;

43. Asimakopoulos G, Thompson R, Nourshargh S, et al. An anti-inflammatory property of aprotinin detected at the level of leukocyte extravasation. J Thorac Cardiovasc Surg 2000; 120: 361-369;

44. Asimakopoulos G. Mechanisms of the systemic inflammatory response. Perfusion 1999; 14: 269-77.

45. Asimakopoulos G. The inflammatory response to СРВ: the role of leukocyte filtration. Perfusion 2002; 17: 7-10;

46. Auer C. Pediatric perfusion: weaning from cardiopulmonary bypass in neonates and infants with pulmonary hypertension. E-Jornal of Perfusion Technology 2002 ;

47. Auten RL. Neonatal and infant physiology impact of cardiopulmonary bypass in the developing patient. Cardiol Young 1993; 3: 394-406;

48. Azab SR., Rosseel PM., Lange JJ, et al. Dexamethasone decreases the pro- to anti-inflammatory cytokine ratio during cardiac surgery. Britisch J of Anaesth 2002; 88: 496-501;

49. Bando K, Turrentine MW, Palaniswamy V. et al. Effect of modified ultrafiltration in high-risk patients undergoing operations for congenital heart disease. Ann Thorac Surg 1998; 66:821-8;

50. Bando K, Vijay P, Turrentine MW. et al. Dilutional and modified ultrafiltration reduces pulmonary hypertension after operations for congenitalheart disease: a prospective randomized study. J Thorac Cardiovasc Surg 1998:115:361-9.

51. Barratt-Boyes BG, Simpson M, Neutze JM et al. Intracardiac surgery in neonates and infants using deep hypothermia with surface cooling and limited cardiopulmonary bypass. Circulation 1971; 43: 125-30;

52. Bar-Shavit R, Kahn A, Mudd MD, et al. Localization of a chemotactic domain in human thrombin. Biochemistry 1985; 23: 397;

53. Bar-Shavit R, Kahn A, Wilner G D. Monocyte chemotaxis: stimulation by specific exosite region in thrombin Science 1983;. 728;

54. Beattie HW, Evans G., Garnet ES, et al. Albumin and water fluxes during cardiopulmonary bypass. J Cardiovasc Surg 1974; 67: 926-931;

55. Berezina TL, Zaets SB, Morgan C, et al. Influence of storage on red cell rheological properties. Surg Res 2002; 102: 6-12;

56. Birk-Sorensen L,, Euglsang J, Sorensen HB, et al. Aprotinin attenuates platelet accumulation in ischemia-reperfusion-ijured porcine skeletal muscle Blood Coagul Fibrinolysis 1999; 10: 157-165;

57. Boettcher W, Merkle F, Koster A, Hiibler M, et al. Safe minimization of cardiopulmonary bypass circuit volume for complex cardiac surgery in a 3.7 kg neonate. Perfussion; 2003; 18: 377-379;

58. Boisclair MD, Lane DA, Philippou ,. et al. //Blood 1993; 82: 3350-3357;

59. Bokesch PM, Kapural MB, Mossad EB, et al. Mechanisms of thrombin generation during surgery and cardiopulmonary bypass.Ann Thorac Surg 2000; 70: 639-643;

60. Boldt J, Zickmann B, Fedderson B, et al. Six different hemofiltration devices for blood conservation in cardiac surgery. Ann Thorac Surg 1991; 51: 747;

61. Borhetti V, Piccin С, Luciani GB et al. Postperfusionssyndrom. In: Extrakorporale Zirkulation in Theorie und Praxis. RJ Tschaut (Ed.). — Lengerich; Berlin; Dtisseldorf; Leipzig; Riga; Scottdale (USA); Wien; Zagreb: Pabst, 1999; 467-488;

62. Bottger PF. Hypotermie. In: Extrakorporale Zirkulation in Theorie und Praxis. RJ Tschaut (Ed.). Lengerich; Berlin; Dtisseldorf; Leipzig; Riga; Scottdale (USA); Wien; Zagreb: Pabst, 1999; 238-248;

63. Bove EL, Lloyd TR. Staged reconstruction for hypoplastic left heart syndrome. Ann Surg. 1996;224:387-395;

64. Brans YW, Dweck HS, Havis HB, Park GVS, Bailey PE, Kirklin JW, Cassady G. Effect of open heart surgery on body composition of infants and young children. PediatrRes 1981;15: 1024-1028;

65. Brawn WJ. Challenges in paediatric perfusion. Perfusion 2002; 17: 291-293;

66. Brix-Christensen V, Petersen TK, Ravn HB, et al. Cardiopulmonary bypass elicits a pro- and antiinflammatory cytokine response and impaired chemotaxis in neonatal pigs. Acta Anaesthesiol Scand 2001; 45: 407-413;

67. Brix-Christensen. The systemic inflammatory response after cardiac surgery with cardiopulmonary bypass in children. Acta Anaesthesiol Scand 2001; 45: 671-679;

68. Bronicki RA, Backer CL, Baden HP, et al. Dexamethasone reduces the inflammatory response to cardiopulmonary bypass in children. Ann Thorac Surg 2000; 69: 1490-1495;

69. Busto R, Globus M, Dietrich W, et al. Effect of mild hypothermia on ischemia-induced release of neurotransmitters and free fatty acids in rat brain. Stroke 1989; 20: 904-10 Abstract. ;

70. Butler J, Baigrie BJ, Parker D, et al. Systemic inflammatory responses to cardiopulmonary bypass: a pilot study of the effects of pentoxifylline. Respir Med 1993; 87: 285-288;

71. Butler J, Pathi VL, Paton RD, et al. Acute-phase responses to cardiopulmonary bypass in children weighing less than 10 kilograms. Ann Thorac Surg. 1996;62: 538-542;

72. Butler J, Rocker GM, Westaby S. Inflammatory response to cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1993; 55:552-559.

73. Calvert KS, Gustafson RA, Rosen DA. A simple technique of pH-stat strategy for infants undergoing deep hypotermic circulatory arrest. E-Jornal of Perfussion Technology. 2002;

74. Chang AC, Hanley FL, Lock JE, et al. Management and outcome of low birth weight neonates with congenital heart disease. J Pediatr. 1994; 124: 461-466;

75. Chapman D, Charles S. A coat of many lipids: In the clinic. Chem in Brit 1992;3:253-256; 2-19

76. Chenoweth DE, Cooper SW, Hugli ТЕ, et al. Complement activation during cardiopulmonary bypass. Evidence for generation of C3a and C5a anaphylotoxins. N Engl J Med. 1981; 304: 497-453;

77. Chenoweth DE, Hugli ТЕ. Demonstration of specific C5f receptor on intact human polymorphonuclear leukocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978; 75: 3943-3947;

78. Chew M, Brix-Christensen V, Ravn HB et al. Effect of modified ultrafiltration on the inflammatory response in paediatric open-heart surgery: a prospective, randomized study. Perfusion 2002; 17: 327-333;

79. Chew M, Branslund I, Brix-Christensen V, et al. Tissue injury and Inflammatory Response to pediatric cardiopulmonary Bypass. Anesthesiology 2001; 94: 745-753;

80. Clar A, Larson DF. Haemofiltration: Determinants of drag loss and concentration. Extra-Corporeal Technology. 1995; 27: 158-163; 10:8

81. Cooley DA, Burnett CM. Considerations in the Surgical Treatment of Congenital Heart Disease in Children of Jehovah's Witnesses. Texas Hert Institute Jornal 1992; VI9; 3: 156-159;

82. Corman RC, Ziats NP., Rao AK. et al. Surface-bonded heparin fails to reduce thrombin formation during clinical cardiopulmonary bypass. J Thorac Cardiovasc Surg 1996; 111: 1-12;

83. Cremer JM, Redl H, et al. Systemic inflammatory response syndrome after cardiac operations. Ann Thorac Surg 1996; 61: 1714;

84. Darling E, Nanry K, Shearer I, et al. Techniques of paediatric modified ultrafiltration. Perfusion 1998; 13: 93;

85. Davie EW, Fumicawa K, Kisiel W. The coagulation cascade initiation, maintenance and regulation. Biochemistry 1991; 30: 10363- 10370;

86. Davies MJ, Nguyen K, Gaynor JW, Elliott MJ. Modified ultrafiltration improves left ventricular systolic function in infants after cardiopulmonary bypass. J Thorac Cardiovasc Surg 1998; 115: 361-70;

87. De Somer F, Francois K, van Oeveren W, et al. Phosphorylcholine coating of extracorporeal protection against blood activation by the material surface. Eur J of Cardio-thoracic Surg 2000; 18: 602-606;

88. De Somer F, van Belleghem Y, Caes F, et al. Phosphorylcholine coating offers natural platelet preservation during cardiopulmonary bypass. Perfusion 2002; 17: 39-44;

89. Dexter F, Kern FH, Hindman В J, Greeley WJ. The brain uses mostly dissolved oxygen during profoundly hypothermic cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1997; 63: 1725-29;

90. Dietrich W, Busto R, Alonso O, et al. Intraischemic but not postischemic brain hypothermia protects chronically following global forebrain ischemia in rats. J Cereb Blood Flow Metab 1993; 13: 541-9;

91. Doughty LA, Kaplan SS, Carcillo JA. Inflammatory cytokine and nitric oxide responses in pediatric sepsis and organ failure. Crit Care Med 1996; 24:1137-1143;

92. Downing SW, Edmunds LH Jr. Release of vasoactive substances during cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1992; 54: 1236-43;

93. Draisma AM, Hazekamp MG, Frank M, Anes N, Schoof PH, Huysmans HA. Modified ultrafiltration after cardiopulmonary bypass in pediatric cardiac surgery. Ann Thorac Surg 1997; 64: 521-25.

94. Duebener LF, Hagino I, Sakamoto T, et al. Effects of pH management during deep hypothermic bypass on cerebral microcirculation: Alpha-Stat versus pH-Stat. Circulation 2002; 106 (suppl I): I-103-I-108;

95. Duebener LF, Sakamoto T, Hatsuoka S, et al. Effects of hematocrit on cerebral microcirculation and tissue oxygenation during deep hypothermic bypass. Circulation 2001; 104: 1260-64;

96. Duval ELIM, Kavelaars A, Veenhuisen L,et al: Pro- and anti-inflammatory cytokine patterns during and after cardiac surgery in young children. Eur J Pediatr 1999; 158: 387-93;

97. Ekroth R, Thompson RJ, Lincoln C, et al. Elective deep hypothermia with total circulatory arrest: changes in plasma creatine kinase BB, blood glucose, and clinical variables. Thorac Cardiovasc Surg 1989; 97: 30-35;

98. El Habbal MH, Carter H, Smith LJ, et al. Neutrophil activation in paediatric extracorporeal circuits: effect of circulation and temperature variation. Cardiovasc Res 1995; 29: 102-107;

99. Elliott MJ. Ultrafiltration and modified ultrafiltration in pediatric open heart operations. Ann Thorac Surg 1993;556: 1518-22;

100. Elton D, Billingsley AM, Laks H, Chang P. Effect of PC02-adjusted pH on the neonatal heart during hypothermic perfusion and ischemia. J Thorac Cardiovasc Surg 1990; 100: 902-909 Abstract.;

101. Engelman DT, Watanabe M, Engelman RM Constitutive nitric oxide release is impaired after ischemia and reperfusion. J Thorac Cardiovasc Surg 1995; 110: 1047-1053;

102. Englberger L, Kipfer B, Berdat PA, et al. Aprotinin in Coronary Operation With cardiopulmonary bypass: Does "Low-Dose" Aprotinin Inhibit the Inflammatory Response? Ann Thorac Surg 2002; 73; 1897-1904;

103. Fang WC, Helm RE, Krieger KH, et al. Impact of minimum haematocrit during cardiopulmonary bypass on mortality in patients undergoing coronary artery surgery. Circulation 1997; 96: 194 II 199II;

104. Finkel MS, Oddis CV, Jacob TD,et al. Negative inotropic effects of cytokines on the heart mediated by nitric oxide. Science. 1992; 257: 387-389;

105. Finn A, Naik S, Klein N,et al. Interleukin-8 release and neutrophil degranulation after pediatric cardiopulmonary bypass. J Thorac Cardiovasc Surg 1993; 105:234-41;

106. Fisher AR, Baker M, Buff in M, et al. Normal and abnormal trans-oxygenator pressure gradients during cardiopulmonary bypass. Perfusion 2003; 18:25-30;

107. FisherAR. The incidence and cause of emergency oxygenator changeover. Perfusion 1999; 14: 207-12;

108. FitzGerald DJ, Cecere G. Hemofiltration and inflomantory mediators. Perfusion 2002; 17: 23-28;

109. Flanagan MF, Fugii AM, Colan SD, Lock JE. Inhibitory effects on myocardial perfusion in pressure overload hypertrophy in immature lambs. PediatrRes. 1988;23:218. Abstract;

110. Forest RJ, Groom RC, Quinn R, et al. Repair of hypoplastic left heart syndrome of a 4.25-kg Jehovah's witness. Perfusion 2002; 17: 221-225;

111. Friedman WF. The intrinsic physiologic properties of the developing heart. Prog Cardiovasc Dis. 1972;15:87-111;

112. Gilliland HE, Armstrong MA, McMurray TJ: The inflammatory response to pediatric cardiac surgery: Correlation of granulocyte adhesion molecule expression with postoperative oxygenation. Anesth Analg 1999; 89:11881191;

113. Gillinov AM, Redmond JM, Zehr KJ, et al. Inhibition of neutrophil adhesion during cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1994; 57: 126-133;

114. Glasmacher B, Sellin L. Werkstoffkunde. In: Extrakorporale Zirkulation in Theorie und Praxis. R. J. Tschaut (Ed.). Lengerich; Berlin; Dtisseldorf; Leipzig; Riga; Scottdale (USA); Wien; Zagreb: Pabst, 1999: 251-263;

115. Gott JP, Cooper WA, Schmidt FE, et al. Modibyng risk for extracorporeal circulation: trial of four anti-inflammatory strategies. Ann Thorac Surg; 1998; 66: 747-753;

116. Gourlay T, Samartzis I, Taylor KM. The effect of haemodilution on blood-biomaterial contact-mediated CD lib expression on neutrophils: ez vivo studies. Perfussion 2003; 18: 87-93;

117. Gourlay T. Biomaterial development for cardiopulmonary bypass. Perfusion 2001; 16: 381-390;

118. Gravlee GP. Heparin-coated cardiopulmonary bypass circuits. J Cardiothorac Vase Anesth 1994; 8: 213;

119. Groom RC, Froebe S, Martin J, et al. Update on Pediatric Perfusion Practice in North America: 2005 Survey. JECT. 2005;37: 343-350;

120. Groom RC, Hill AG, Kurusz M, et al. Paediatric perfusion practice in North America: an update. Perfusion. 1995; 10: 393-401;

121. Groom RG. High or low haematocrits during cardiopulmonary bypass for patients undergoing coronary artery bypass graft surgery? An evidence-based approach to the question. Perfusion 2001; 16: 339-343;

122. Grunenfelder J, Zund G, Schoeberlein A et al. Modified ultrafiltration lowers adhesion molecule and cytokine levels after cardiopulmonary bypass without clinical relevance in adults. Eur J Cardiothorac Surg 2000; 17: 77-83.

123. Gu J, Mariani MA., Boonstra PW et al. Complement activation in coronary artery bypass grafting patients without cardiopulmonary bypass. Chest 1999; 116:892-898;

124. Gu YJ, Boonstra PW, Rijnsburger A A et al. Cardiopulmonary bypass circuit treated with surface modifying additives: a clinical evaluation of blood compatibility. Ann Thorac Surg 1998; 65: 1342-1347;

125. Gu YJ, van Akkerman W, Boonstra C, et al. Heparin-coated circuts reduce the inflammatory response to cardiopulmonary bypass.Ann Thorac Surg 1993; 55: 917-922;

126. Gunaidin S. Clinical significance of coated extracorporeal circuits: a revuew of novel technologies; Perfusion 2004: 33-41;

127. Gurjar Y, Bowman J. Prevention of platelet adhesion to extracorporeal surfaces, J Extra Corp Tech 1984;16:104-107;

128. Habib KM, Zacharias A, Schwann ТА, et al. Adverse effects of low haematocrit during cardiopulmonary bypass in the adult: should current practice be changed? J Thorac Cardiovasc Surg 2003; 125: 1438-1450;

129. Hansen PR, Svendsen JH, Hoyer S, et all. Tumor necrosis factor-alpha increases myocardial microvascular transport in vivo. Am J Physiol 1994; 266: 60-67;

130. Hardy JF, Perrault J, Trernblay N, et al. The stratification of cardiac surgical procedures according to use of blood products: a retrospective analysis of 1480 cases. Can J Anaesth 1991; 38: 511-517; |

131. Harig F, Feyrer R, Mahmound FO, et al. Reducing the post-pump syndrome by using heparin-cjated circuits, steroids, or aprotinin. J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 47:111-118;

132. HarkerLA, Malpass TW, Branson H,et al. Mechanism of abnormal bleeding in patients undergoing cardiopulmonary bypass: a equired transient platetet disfunction associated with selective alpha-granule release.Blood 1980; 56: 824-834;

133. Hennein HA, Kiseltepe U, Barst S,et al. Venovenous modified ultrafiltration after cardiopulmonary bypass in children: A prospective randomised study. J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117: 496-505;

134. High KM, Williams DR, Kurusz M. Cardiopulmonary bypass circuits and design. In: A practical approach to cardiac anesthesia Hensley FA Jr,, Martin DE (Ed), 2nd Ed.Boston: Little, Brown, 1995: 46;

135. Hill GE, Alonso A, Spurzem JR Aprotinin and methylprednisolone equally blunt cardiopulmonary bypass -induced inflammation in humans Ibid 1995; 110: 1658-1662;

136. Hill GE, Diego RP, Stammers AH. et al. Aprotinin enchanges the endogenous release of interleukin-lo after cardiac operations. Ann Thorac Surg; 1998; 65: 66-69;

137. Hill GE, Prohoreck IR, Alonso A, et al. Aprotinin reduces Interleukin-8 production and lung neutrophil accumulation after cardiopulmonary bypass.Anesth Analg 1996; 83: 696-700;

138. Hindman B, Dexter F, Cutkomp J,et al. pH stat management reduces the cerebral metabolic rate for oxygen during profound hypothermia (17° C). Anesthesia 1995; 82: 983-995;

139. Hiramatsu T, Miura T, Forbess JM, et al. pH strategy and cerebral energetics before and after circulatory arrest. J Thorac Cardiovasc Surg 1995; 109: 94858. Abstract.;

140. Hirsch R, Dent CL, Wood MK, et al. Patterns and potential value of cardiac troponin I elevations after pediatric cardiac operations. Ann Thorac Surg. 1998; 65: 1394-9 Abstract.;

141. Hovels-Gurich HH, Jaime F, Vazquez-Jimenez et al. Production of proinflamantory cytokines and myocardial dysfunction after arterial switch operation in neonates with transposition of the great arteries. J Thorac Cardiovasc Surg 2002; 124: 811-820;

142. Hsu L. Heparin-coated cardiopulmonary bypass circuits: Current status. Perfusion 2001; 16: 417-428;

143. Hunt В J, Parzatt RN, Segal HC, et al. Activation of coagulation and fibrinolysis during, cardiothoracic operations. Ann Thorac Surg 1998; 65; 712-718;

144. Huyzen RJ, van OeveerenW, Wei F, et al. In vivo effect of hemodilution or ACT and high-dose thrombin time during cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1996; 83:459-65;

145. Ishihara K, Nakabayashi N. Hemocompatible cellulose dialysis membranes modified with phospholipid polymers. Artif Organs 1995; 19(12): 1215-1221;

146. Ivey CL, Williams FM, Collins PD. et al. Neutrophil chemoactractants generated in two phases during reperfusion of ischemic myocardium in the rabbit: evidence for a role for C5a and interleukin-8. J Clin Invest 1995; 95: 2720-2728;

147. Jacques A M van Son, Hovaguimian H, Ivatury M. Rao, et al. Strategies for Repair of Congenital Heart Defects in Infants Without the Use of Blood. Ann Thorac Surg 1995; 59: 384-388;

148. Janvier G, Baquey C, Roth C, et al. Extracorporeal circulation, hemocompatibility, and biomaterials. Ann Thorac Surg 1996; 62: 1926-34; 1-1,

149. Jenkins E (Ed.) Protocols and guidelines for pediatric perfusion. The Regents of the University of Michigan., 1998 220;

150. Jensen E, Andreasson S, Bengtsoon A, et al. Influence of TWO Different Perfusion Systems on Inflammatory Response in Pediatric Hear Surgery. Ann Thorac Surg 2003; 75: 919- 925.

151. Jonas RA. Hypothermia, circulatory arrest, and the pediatric brain. J Cardiothorac Vase Anesth. 1996; 10:66-74;

152. Journois D, Israel-Biet D, Pouard P, et al. High-volume, zero-balanded hemofiltration to reduce delayed inflammatory response to cardiopulmonary bypass in children. Anestesiology 1996; 85: 965-976;

153. Journois D, Pouard P, Greeley WJ, et al: Hemotiltration during cardiopulmonary bypass in pediatric cardiac surgery: Effects on hemostasis, cytokines and complement components. Anesthesiology 1994; 81: 11811189;

154. Kalter RD, et al. Cardiopulmonary bypass associated hemostatic abnormalities. J Thorac Cardiovasc Surg 1997; 77: 427 435;

155. Kawata H, Fackler JC, Aoki M et al. Recovery of cerebral blood flow and energy state in piglets after hypothermic circulatory arrest versus recovery after low-flow bypass. Thorac Cardiovasc Surg 1993; 106: 671-85;

156. Kern FH, Jonas RA, Mayer JE et al. Temperature monitoring during СРВ in infants: does it predict efficient brain cooling? Ann Thorac Surg 1992; 54: 749-54;

157. Kern FH, Morana NJ, Sears JJ, et al. Coagulation defects in neonates during cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1992;54:541-46;

158. Kirklin JK, Blackstone EH, Kirklin JW, et al. Intracardiac surgery in infants under age 3 months: incremental risk factors for hospital mortality. Am J Cardiol 1981;48:500-506;

159. Kirklin JK, Blackstone EH, Kirklin JW. Cardiopulmonary bypass: studies on its damaging effects. Blood Purif 1987; 5: 168-78;

160. Kirklin JK, Westaby S, Blackstone EH,et al. Complement and the damaging effects of cardiopulmonary bypass. Thorac Cardiovasc Surg 1983; 86: 845857;

161. Kirklin JK. Prospects for understanding and elimination the deleterious effects of cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1991; 51: 529-534;

162. Kirshbom PM, Skaryak LA, DiBeraardo LR et al. Effects of aortopulmonary collaterals on cerebral cooling and cerebral metabolic recovery after circulatory arrest. Circulation 1995; 92: 11490-94;

163. Kirshbom PM, Skaryak LR, DiBernardo LR et al. pH-stat cooling improves cerebral metabolic recovery after circulatory arrest in a piglet model of aortopulmonary collaterals. Thorac Cardiovasc Surg 1996; 111: 147-55;

164. Kurth CD, O'Rourke MM, O'Hara IB. Comparison of pH-stat and alpha-stat cardiopulmonary bypass on cerebral oxygenation and blood flow in relation to hypothermic circulatory arrest in piglets. Anesthesiology 1998; 89: 11018;

165. Lacour- Gayet F, Nicolas F, Coll J, et al. Continuous perfusion without hemodilution in neonates the experience at the Marie Lannelongue Hospital. Cardiol Young 1993; 3: 340-346;

166. Larson DF, Bowers M, Schechner H. Neutrophil activation during cardiopulmonary bypass in paediatric and adult patients. Perfusion 1996; 11: 21-27;

167. Lee JH, Lee HB. Platelet adhesion on to wettability gradient surfaces in the absence and presence of plasma proteins. Biomed Mater Res 1998; 41; 304311 3-14,

168. Lentsch AB, Jordan JA, Cierman BJ, et al. . Inhibition of NF-kappa В activation and augmentation of Ikappa Beta by secretory leukocyte protease inhibitor during lung inflammation. Amer J Pathol 1999; 154: 239-247;

169. Limperopoulos C, Majnemer A, Shevell MI et al. Predictors of developmental disabilities after open heart surgery in young children with congenital heart defects. J Pediatr 2002; 141: 51-58;

170. Limperopoulos C, Majnemer A, Shevell MI, et al. Neurodevelopmental status of newborns and infants with congenital heart defects before and after open heart surgery. J Pediatr 2000; 137: 638-45; HO-6

171. Lindon JN, McManama G, Kushner L, et al. Does the conformation of adsorbed fibrinogen dictate platelet interactions with artificial surfaces? Blood 1986; 68: 355-362; 7-9,

172. Maehara T, Novak I, Wyse RKH, Eliott MJ. Perioperative monitoring of total body water by bio-electrical impedance in children undergoing open-heart surgery. Eur J Cardiothorac Surg 1991;5:258-65.

173. Mahoney CB. Heparin-bonded circuits: clinical outcome and costs. Perfusion 1998;13:1892;

174. Mangano CM. Cardiac surgery and central nervous system injury: the importance of hypothermia during cardiopulmonary bypass. In Blanck TJJ ed. Neuroprotection. Baltimore, MD: Williams and Wilkins, 1997: 197-237;

175. Marie C, Fitting C, Muret J. Interleurin-8 production in whole assays: Is interleukin-10 responsible for the downregulation observed in sepsis? Cytocine 2000; 12: 55-61;

176. Massoudy P, Zahler S, Barankay A, et al. Sodium nitroprusside during coronary artery bypass grafting evidence for an antiinflammantory action Ann Thorac Surg 1999; 67: 1059-1064;

177. Massoudy P, Zahler S, Becker BF, et al. Significant leukocyte and platelet retention during pulmonary passage after declamping of the aorta in CABG patients. Eur J Med Res 1999; 4:178-82;

178. Massoudy P, Zahler S, Freyholdt T, et al. Sodium nitroprusside in patient with compromised left ventricular function undergoing coronary bypass: reduction of cardiac proinflammatiry substances J Thorac Cardiovasc Surg 2000; 119: 566-574;

179. Mayumi H, ZhangQW, Nakashima A, et al. Synergetic immunosupression caused by high-dose methylprednisolone and cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1997; 63: 129-137;

180. McBride WT, Armstron MA, Gilliland H, McMurray TJ: The balance of pro-and anti-inflammatory cytokines in plasma and bronchoalveolar lavage (BAL) atpaedietric cardiac surgery. Cytokine 1996; 8: 724-729;

181. McGowan FX, Ikegami M, del Nido PJ, et al. Cardiopulmonary bypass significantly reduces surfactant activity in children. J Thorac Cardiovasc Surg 1993; 106: 968-977;

182. Menasche P, Haydar S, Peynet J, et al. A potential mechanism of vasodilation after warm heart surgery. J Thorac Cardiovasc Surg. 1994; 107: 293-299;

183. Merkle F, Boettcher W, Schulz F, et al. Perfusion technique for nonhaemic cardiopulmonary bypass prime in neonates and infants under 6 kg body weight. Perfusion 2004; 19: 229-237;

184. Mezrow CK, Sadeghi AM, Gandsas A et al. Cerebral effects of low-flow cardiopulmonary bypass and hypothermic circulatory arrest. Ann Thorac Surg 1994; 57: 532-39; HO-36

185. Millar AB, Armstrong L, van der Linden J et al. Cytokin production and hemofiltration in children undergoing cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1993; 56: 1499-502;

186. Miller BE, Levy JH. The Inflammatory response to cardiopulmonary bypass. J Cardiothorac Vase Anesth 1997; 11: 355;

187. Mitchel BA. A search for the lowest infant prime volume. E-Jornal of Perfusion Technology 2002;

188. Mitchell IM, Pollack JCS, Jamieson MPG. The effects of congenital heart disease and cardiac surgery on liver blood flow in children. Perfusion 1996; 10: 210-218;

189. Miyaji K, Miyamoto T, Kohira S, Nakashima К et al. Miniaturized cardiopulmonary bypass system in neonates and small infants. Interactive Cardiovascular and Thoracic Surgery 2007; 7: 75-79;

190. Mottaghy K, Oedekoven B, Poppel K, et al. Heparin-coated versus non-coated surfaces for extracorporeal circulation. Int J Artif Organs. 1991;14:721-728;

191. Myers GJ, Johnstone DR, Swyer WJ et al. Evaluation of Mimesis Phosphorylcholine (PC)-Coated Oxygenators during Cardiopulmonary Bypass in Adults. JECT. 2003; 35: 6-12; 2

192. Myers GJ. A comparative review of crystalloid, albumin, pentastarch, and hetastarch as perfusates for cardiopulmonary bypass. J Extra Corp Tech. 1997; 29: 30-35;

193. Myunga RJ, Kirshboma PM, Petkoa M. Modified ultrafiltration may not improve neurologic outcome following deep hypothermic circulatory arrest. Eur J Cardiothorac Surg 2003; 24: 243-248;

194. Naik S, Elliott MJ. Ultrafiltration. In: Jonas RA, Elliott MJ, eds. Cardiopulmonary bypass in neonates, infants and young children. 1st ed. Oxford: Butterworth-Heinemann, 1994:150-72.

195. Naik SK, Elliot MJ. Ultrafiltration and paediatric cardiopulmonary baypass. Perfusion 1993; 8: 101-112;

196. Naik SK, Elliott MJ. A successful modification of ultrafiltration for cardiopulmonary bypass in children. Perfusion 1991; 6: 41-50;

197. Naik SK, Knight A, Elliott MJ. A prospective randomized study of a modified technique of ultrafiltration during pediatric open-heart surgery. Circulation 1991; 84(Suppl 3): 422-31;

198. Nakamura Y, Masuda M, Toshima Y, et al. Comporative study of cell saver and ultrafiltration nontransfusion in cardiac surgery. Ann Thorac Surg 1990; 49: 973-978;

199. Nishida N, Aomi S, Tomizawa Y. Comparative study of biocompatibility between the open circuit and closed circuit in cardiopulmonary bypass. Artif Organs 1999; 23: 547-551;

200. Nollert G, Nagashima M, Bucerius J et al. Oxygenation strategy and neurologic damage after deep hypothermic circulatory arrest. II. Hypoxic versus free radical injury. Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117: 1172-79.

201. Nollert G, Nagashima M, Bucerius J, Shin'oka T, Jonas RA. Oxygenation strategy and neurologic damage after deep hypothermic circulatory arrest. I. Gaseous microemboli. J Thorac Cardiovasc Surg. 1999;117: 1166-71;

202. Nomura F, Aoki M, Forbess JM, Mayer JE Jr. Effects of hypercarbic acidotic reperfiision on recovery of myocardial function after cardioplegic ischemia in neonatal lambs. Circulation 1994; 90 (Suppl): II 321-327;

203. Norwood WI, Ingwall IS, Norwood CR. Developmental changes in creatine kinase metabolism in rat brain. Am J Physiol 1983; 244:224. of novel technologies; Perfusion 2004: 33-41;

204. Oku K, Kuboyama K, Safar P et al. Cerebral and systemic arteriovenous oxygen monitoring after cardiac arrest. Inadequate cerebral oxygen delivery. Resuscitation 1994; 27: 141-52; HO-11

205. Oyama J, ShimokawaH, Motii H, et al. Role of nitric oxid and peroxynitrite in the cytocine-induced sustained myocardial dysfunction in dogs in vivo.J Clin Invest 1998; 101: 2207-2214;

206. Ozawa T, Yoshihara K, Koyama N. Clinical efficacy of heparin-bonded bypass circuits related to cytokine responses in children. Ann Thorac Surg 2000; 69: 584-590;

207. Palanzo DA, Manley NJ, Montesano RM, et al. Potential problem when using the new lower-prime hollow-fibre membrane oxygenators with uncoated stainless steel heat exchangers. Perfusion 1996; 11: 481-485;

208. Palanzo DA. Zarro DL., Manley NJ, et al. Effect of carmeda bioactive surface coating versus trillium biopassive surface coating of the oxygenator on circulating platelet count drop during cardiopulmonary bypass. Perfusion 2001;16:279-283;

209. Pappalardo F, Delia Valle P, Crescenzi G, et al. Phosphorylcholine coating may limit trombin formation during high-risk cardiac surgery: a randomized controlled trial. Ann Thorac Surg 2006; 81: 886-891;

210. Pawade A, Waterson K, Laussen P, Karl TR. Cardiopulmonary bypass in neonates weighing less than 2.5 kg; analysis of the risk factors for early and late mortality.J Card Surg. 1993;8:1-8;

211. Pearl JM, Manning PB, McNamara JL, et al. Effect of modified ultrafiltration on plasma thromboxane B2, leukotriene B4, endothelin-1 in infants undergoing cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1999; 68: 1369-75;

212. Pearl JM, Thomas DW, Grist G, Duffy JY, et al. Hyperoxia for management of acid-base status during deep hypothermia with circulatory arrest. Ann Thorac Surg 2000; 70: 751-55;

213. Picca S, Principato F, Mazzera E, et al. Risks of acute renal failure after cardiopulmonary bypass surgery in children: a retrospective 10-year case-control study. Nephrol Dial Transplant 1995: 10: 630-636;

214. Plaut M, Lichtenstein LM. Cellular and chemical basis of the allergic inflammation, response: Component parts and control mechanisms. In: Allergy: Principles and Practice. Ed. E Midleton, CE Reed, EF Ellis. 1978: 115-138;

215. Plotz FB, van Oeveren W, Bartlett RH, Wildevuur CR. Blood activation during neonatal extracorporeal life support. Thorac Cardiovasc Surg 1993; 105: 823-832;

216. Proost P, Wuyts A, Van Damme J. The role of chemokines in inflammation. Int J Clin Lab Res 1996; 26: 211-223.

217. Quing M, Vazquez-Jimenez JF, Klosterhalfen В et "al. Influence of temperature during cardiopulmonary bypass on leukocyte activation, cytokine balance, and postoperative organ damage. Shock 2001; 15: 372377;

218. Ramamoorthy C, Lynn AM. Con: the use of modified ultrafiltration during pediatric cardiovascular surgery is not a benefit. J Cardiothorac Vase Anesth 1998; 12:483-485;

219. Ranucci M, Mozzucco A, Pessotto R, et al. Heparin-coated circuits for high-risk patients: a multi-center prospective randomized trial. Ann Thorac Surg 1999;67:994.

220. Rinder CS, 'Bonac JL, Rinder HM. et al. Cardiopulmonary bypass induced leukocyte-platelet adgesion. Blood 1992; 79: 1201-1205;

221. Rinder CS., Bohnert J, Rinder HM et al. Platelet activation and aggregation during cardiopulmonary bypass Anesthesiology 1991; 75: 388-393;

222. Robillard JE, Nakamura KT. Hormonal regulation of renal function during development. Biol Neonate 1988; 53: 201-211;

223. Rossi AF, Seiden HS, Sadeghi AM. The outcome of cardiac operations in infants weighing two kilograms or less. J Thorac Cardiovasc Surg. 1998; 116: 28-32;

224. Rot A. Chemotactic potency of recombinant human neutrophil attractant/activation protein-1 (interleukin-8) for polymorphonuclear leukocytes of different species. Cytokine 1991; 3: 21-27;

225. Royston DI. Systemic inflammatory responses to surgery with cardiopulmonary bypass. Perfusion 1996; 11: 177-189;

226. Ruck K, Wendt G. Filtertechnik in der exstrakorporalen Zirkulation. In: Extrakorporale Zirkulation in Theorie und Praxis. RJ Tschaut (Ed.). -Lengerich; Berlin; Diisseldorf; Leipzig; Riga; Scottdale (USA); Wien; Zagreb: Pabst, 1999; 331-341;

227. Sandstrom K, Nilsson K, Andreasson S, et al. Jugular bulb temperature compared with noninvasive temperatures and cerebral arteriovenous oxygen saturation differences during open heart surgery. Paediatr Anaesth 1999; 9: 123-28;

228. Sato H, Zhao ZQ, Todd JC, et al. Basal nitric oxide expresses endogenous cardioprotection during reperfusion by inhibition of neutrophil-mediated damage after surgical revascularization. J Thorac Cardiovasc. Surg 1997; 113:399- 409;

229. Scallan MJH. Cerebral injury during paediatric heart surgery: perfusion issues. Perfusion 2004; 19: 221-228;

230. Schetz M. Removal of cytokines in septic patients using continuous veno-venous hemofiltration. Crit Care Med 1994; 22: 715-716; A-14

231. Schmartz D, Tabardel Y, Preiser J et al. Does aprotinin influence the inflammatory response to cardiopulmonary bypass in patients. J Thorac Cardiovasc Surg 2003; 125: 184-190;

232. Schmitz C. Kinderherzhirurgie. In: Extrakorporale Zirkulation in Theorie und Praxis. RJ Tschaut (Ed.). Lengerich; Berlin; Dtisseldorf; Leipzig; Riga; Scottdale (USA); Wien; Zagreb: Pabst, 1999; 607 - 632;

233. Seghaye M, Duchateau J, Bruniaux J, et al. Interleukin-10 release related to cardiopulmonary bypass in infants undergoing cardiac operations. Thorac Cardiovasc Surg 1996; 111: 545-553;

234. Seghaye M. Grabitz RG, Duchateau J, et al. Inflammatory reaction and capillary' leak syndrome related to cardiopulmonary bypass in neonates undergoing cardiac operations. J Thorac Cardiovasc Surg 1996; 112: 687-97;

235. Seghaye MC, Duchateau J, Grabitz RG, et al. Complement activation during cardiopulmonary bypass in infants and children. Thorac Cardiovasc Surg 1993; 106: 978-987;

236. Seghaye M-C, Duchateau J, Grabitz RG, et al. Complement, leukocytes, and leukocyte elastase in full-term neonates undergoing cardiac operation. Thorac Cardiovasc Surg 1994; 108: 29-36;

237. Seghaye MC, Huffmeier U, Duchateau J,et al. Cytokine balance related to cardiac operation in infants with preoperative cyanosis or heart failure Cardiol Young 1999; (suppl 2): 7;

238. Sekido N, Mukaida N, Harada A et al. Prevention of lung repergusion injury in rabbits by a monoclonal antibody against interleukin-8. Nature 1993; 365: 654-657;

239. Sheppard S. The therapeutic potential of leucocyte depletion in combination with extracorporeal circulation technology and ceneral medical treatment. In:

240. Procedings of the 10th European Congress on Extra-Corporeal Circulation Technology. Madeira, Portugal. June 2003. Buckingham ТА, Steenbrink J, Wijers-Hille MJ, de Jong DS (Ed). Bratislava: 291-301;

241. Shore-Lesserson L. Pro: heparin-bonded circuits represents a desirable option for cardiopulmonary bypass. J Cardiothorac Vase Anesth 1998; 12: 705;

242. Shottelius A, Mayo MW, Sartor RB . Interleukin-10 signalis blocks inhibitor of kB kinase activity and nuclear factor kB DNA binding. J. Biol Chem 1999; 274: 31868-31874;

243. Sinci V, Kalayciuglu S, Gunaydin S etal. Evaluation of heparin-coated circuits with full heparin dose strategy. Ann Thorac Cardiovasc Surg 1999; 5: 156-63;

244. Skaryak L, Kirshbom PM, DiBernardo LR, et al. Modified ultrafiltration improves cerebral metabolic recovery after circulatory arrest. J Thorac Cardiovasc Surg 1995; 109: 744-752;

245. Sonntag J, Dahnert I, Stiller B, et al. Complement and contact activation during cardiovascular operations in infants. Ann Thorac Surg 1998; 65: 525531;

246. Sower LE, Froelich CJ., Carney DH et, al. Thrombin induces IL-6 production in fibroblasts and epithelial cells. Evidence for the involvement of the seven transmembrance domein (STD) receptor for alfha-thrombin. J Immunol 1995; 155: 895-901;

247. Stein Jl, Gombotz H, Rigler B, et al. Open heart surgery in children of Jehovah's Witnesses: extreme hemodilution on cardiopulmonary bypass. Pediatr Cardiol 1991;12:170-4;

248. Strieter RM, Koch AE, Antony VB. et al. The immunopatholjgy of chemotactic cytokines the role of interleukin-8 and monocyte chemoattractant protein-1. J Clin Med 1994; 123: 183-197;

249. Struova SM, Dugina T N, Khgatian SV et al. Thrombin-mediated events implicated in mast cell activation Semin. Thromb. Hemost. 1996; 22;

250. Sugita T, Watarida S, Katsuyama K, Nakajima N. Interleukin-10 release related to cardiopulmonary bypass infants undergoing cardiac operations. J Thorac Cardiovasc Surg. 1996; 112: 1127;

251. Swain JA, McDonald TJ Jr, Griffith PK, et al. Low-flow hypothermic cardiopulmonary bypass protects the brain. / Thorac Cardiovasc Surg 1991; 102: 76-83;

252. Taggart DP, Hadjinikolas L, Hooper J, et al. Effects of age and ischemic times on biochemical evidence of myocardial injury after pediatric cardiac operations. J Thorac Cardiovasc Surg. 1997;113:728-35J Thorac Cardiovasc Surg. 1997; 113: 728-35;

253. Taggart DP, Sundaram S, McCartne, et al. Endotoxemia, complement and weit blood cell activation in cardiac surgery: a randomised trial of laxatives andpulsative perfusion. Ann Thorac Surg 1994; 57: 376-382;

254. Tarnok A, Hambsch J, Schneider P. Cardiopulmonary bypass induced increase of serum interleukin-10 levels in children. J Thorac Cardiovasc Surg 1998; 115:475-477;

255. Tarnok A, Hambsch J, Emmrich F, et al. Complement activation, cytokines, and adhesion molecules in children undergoing cardiac surgery with or without cardiopulmonary bypass. Pediatr Cardiol 1999; 20: 113-125;

256. Tassani P, Barankay M, Haas F et al. Cardiac surgery with deep hypothermic circulatory arrest produces less systemic inflammatory response than low-flow cardiopulmonary bypass in newborns. J Thorac Cardiovasc Surg 2002; 123: 648-654;

257. Taylor KM. SIRS The systemic inflammantory response syndrome after cardiac operations. Ann Thorac Surg 1996; 61: 1607-1614;

258. Taylor RH, Burrows FA, Bissonnette B. Cerebral pressure-flow velocity relationship during hypothermic cardiopulmonary bypass in neonates and infants. Anesth Analg 1992; 74: 636-42;

259. Teitel DF, Sidi D, Chin T, et al. Developmental changes in myocardial contractile reserve in the lamb. Pediatr Res 19(9):948, 1985;

260. Tirrel DJ, Home AP, Holne KR et al. Heparin in inflammation potential therapeutic applications boycod anticoagulation. Adv Pharmacol 1999; 46: 151-208;

261. Ungureanu-Longrois D, Balligand JL, Kelly RA, Smith TW. Myocardial contractile dysfunction in the systemic inflammatory response syndrome: role of a cytokine-inducible nitric oxide synthase in cardiac myocytes. J Mol Cell Cardiol. 1995; 27: 155-167;

262. Utley JR, Wachtel C, Cain RB,et al. Effects of hypothermia, hemodilution, and pump oxygenation on organ water content, blood flow and oxygen delivery, and renal function. Ann Thorac Surg 1981; 31: 121-33;

263. Van Dissel JT, van Langevelde P, Westendorp RGJ, et al. Antiinflammatory cytokine profile and mortality in febrile patients. Lancet 1998;351:950-953;

264. Vannucci R, Towfighi J, Heitjan D, Brucklacher R. Carbon dioxide protects the perinatal brain from hypoxic-ischemic damage: an experimental study in the immature rat. Pediatrics 1995; 95: 868-74 Abstract.;

265. Vazquez-Jimenez JF, Qing M, Hermanns B, et al. Moderate hypothermia during cardiopulmonary bypass reduces myocardial cell damage and myocardial cell death related to cardiac surgery. J Am Coll Cardiol. 2001; 38: 1216-23;

266. Videm V, Mollnes ТЕ, Bergh K, et al. / Heparin-coated cardiopulmonary bypass equipment. II Mechanism for reduced complement activation in vivo J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117: 803-809;

267. Videm V, Mollnes ТЕ, Fosse E, et al. Heparin-coated cardiopulmonary bypass equipment: I. Biocompatability markers and development of complications in a high risk population. J Thorac Cardiovasc Surg 1999; 117:794;

268. Vogel M, Liebig F. Der Einsatz in der leikozytendepletierender Filter in der Herz-Thorax-Chirurgie. Kardiotechnik 1994; 3: 22-25;

269. Von Segesser LK, Weiss BM, Dasic M, et al. Risk and benefit of low systemic heparinization during open heart operations. Ann Thorac Surg 1994; 58: 391;

270. Von Segesser LK, Olah A, Leskosek B, et al. Coagulation patterns in bovine left heart bypass with phospholipid versus heparin surface coating. ASAIO J 1993; 39:43-46;

271. Von Segesser LK, Tonz M, Leskosek B, et al. Evaluation of phospholipidic surface coating ex vivo. Int J Artif Organs 1994; 17: 294-299;

272. Wahba A, Philipp A, Behr R, et al. Heparin-coated equipment reduces the risk of oxygenator failure. Ann Thorac Surg. 1998; 86: 668-669; 2-17

273. Wahba A, Black G, Koksch M, et al. Effects of extracorporeal circulation and heparin on the phenotype of platelet surface antigens following heart surgery. Thromb Haemost 1996; 75: 844-848;

274. Wahba A, Rothe G, Lodes H, et al. Aprotinin has no effect on platelet activation and adhesion during cardiopulmonary bypass. Thromb Res 2000; 97: 379-386;

275. Wan S, LeClere JL, Vincent JL. Inflammatory response to cardiopulmonary bypass: mechanisms involved and possible therapeutic strategies. Chest. 1997; 112: 676-692;

276. Wang M, Chiu I, Hsu C, Wang C, et al. Efficacy of ultrafiltration in removing inflammatory mediators during pediatric cardiac operations. Ann Thorac Surg 1996; 61:651-656;

277. Wang W, Huand HM, Zhu DM, Chen H, Su ZK, Ding WX. Modified ultrafiltration in pediatric cardiopulmonary bypass. Perfusion 1998; 13: 304310.

278. Weerasinghe A, Taylor KM The platelet in cardiopulmonary bypass. Ann Thorac Surg 1998; 66: 2145-2152;

279. WegnerRK, Lukasiewiez H, Mikuta BS, et al. Loss of platetet fibrinogen receptors during cardiopulmonary bypass. J Cardiovasc Surg 1989; 97: 301;

280. Weinstein S, Gaynor W, Bridges ND. Early Survival of Infants Weighing 2.5 Kilograms or Less Undergoing First-Stage Reconstruction for Hypoplastic Left Heart Syndrome. Circulation 1999;100suppl II.:II-167—11-170.);

281. Wendel HP, Ziemer G. Coating techniques to improve hemocompatibility of artificial devices used for extracorporeal circulation. Eur J Cardiothorac Surg 1999; 16:342-50;

282. Wendel HP. Heparinbeschichtete Systeme. In: Extrakorporale Zirkulation in Theorie und Praxis. RJ Tschaut (Ed.). Lengerich; Berlin; Diisseldorf; Leipzig; Riga; Scottdale (USA); Wien; Zagreb: Pabst, 1999; 675-692;

283. Wernovsky G, Wypij D, Jonas RA, et al. Postoperative course and hemodynamic profile after the arterial switch operation in neonates andinfants: a comparison of low-flow cardiopulmonary bypass and circulatory arrest. Circulation. 1995; 92: 2226-35;

284. Weyrich AS, Ma XY, Lefer DJ, et al. In vivo neutralization of P-selectin protects feline heart and endothelium in myocardial ischemia and reperfusion injury. J Clin Invest 1993; 91: 2620-2629;

285. Whitaker DC, Stygall J, Newman SP. Neuroprotection during cardiac ■ surgery: strategies to reduce cognitive decline. Perfusion 2002; 17: 69-75;

286. Willcox TW. Vacuum-assisted venous drainage: to air or not to air, that is the question. Has the bubble burst? J Extra Corpor Technol 2002; 34: 24-28;

287. Williams WG, McCrindle BW, Ashburn DA, et al. Congenital Heart Surgeon's Society. Outcomes of 829 neonates with complete transposition of the great arteries 12-17 years after repair. Eur J Cardiothorac Surg 2003; 24: 1-9; discussion 9-10;

288. Winn RK, Liggitt D, Vedder NB, et al. Anti-P-selectin monoclonal antibody attenuates reperfusion injury to the rabbit ear J Clin Invest 1993;92; 20422047;

289. Wolk K, Docke WD, et al. Imparied antigen presentation by human monocytes during endotoxin tolerance. Blood 2000; 96: 218-223;

290. Worrall NK, Chang K, Lejeunne WS, et al. TNF-a causes reversible in vivo systemic vascular barritr disfunction via NO-dependent and -independent mechanisms. Amer J Physiol 1997; 273: 2565-2574;

291. Yager JY, Brucklacher RM, Mujsce DJ et al. The relationship between intelligence and duration of circulatory arrest with deep hypothermia. Thorac Cardiovasc Surg 1995; 110: 786-92;

292. Yianni JP. Making PVC more compatible. Med Dev Techn 1995; 20-29;

293. Yianni YP. Biocompatible surfaces based upon biomembrane mimicry. In Quinn PJ, Cherry RJ eds. Structural and dynamic properties of lipids and membranes. London: Portland Press, 1992: 182-217;

294. Zahler S, Massoudy P, Hard C, et al. Acute cardiac inflammatory response to postischemic reperfusion during cardiopulmonary bypass. Cardiovasc Res 1999;41:722-730;

295. Zedler S, Bone RC, et al. . T-cell reactivity, and its predictive role in immunosuhhression after burns Crit Care Med 1999; 27: 66-72;

296. Zwaal RFA, Hemker HC. Blood cell membranes and haemostasis. Haemostasis 1982; 11: 12-39;Г