Определение состава экстрактов "расторопши пятнистой" хроматографическими методами тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 02.00.02, кандидат химических наук Никитченко, Наталья Викторовна

• Никитченко, Наталья Викторовна
• кандидат химических наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат химических наук Никитченко, Наталья Викторовна

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Газовая экстракция

1.2. Микроволновая экстракция

1.3. Ультразвуковая экстракция

1.4. Сверхкритическая флюидная экстракция

1.5. Ускоренная экстракция растворителем

1.6. Экстракция субкритической водой 46 1.6.1. Факторы, влияющие на экстракцию субкритической водой

1.6.1.1. Температура

1.6.1.2. Давление

1.6.1.3. Добавление органических растворителей и поверхностно-активных веществ

Глава 2. Газохроматографический способ идентификации лекарственного растения «расторопша пятнистая» и препаратов на его основе

2.1. Исследования равновесной газовой фазы лекарственного растения «расторопша пятнистая» и препаратов на его основе

2.1.1. Результаты экспериментальных исследований равновесной газовой фазы лекарственного растения и препаратов на его основе

2.2. Твердофазная микроэкстракция летучих компонентов из газовой фазы лекарственного растения

2.2.1. Методика изготовления микроколонок для динамической твердофазной микроэкстракции и подготовка лекарственного растительного сырья для концентрирования летучих органических соединений

2.2.2. Результаты экспериментальных исследований летучих компонентов лекарственного растительного сырья с использованием твёрдофазной микроэкстракции

Глава 3. Определение молекулярной массы и температуры кипения неизвестных летучих органических соединений лекарственного растительного сырья хромато-распределительным методом

3.1. Результаты экспериментальных исследований по определению молекулярной массы и температуры кипения неизвестных летучих органических соединений лекарственного растительного сырья

Глава 4. Жидкостная экстракция под давлением и сверхкритическая флюидная экстракция биологически активных веществ из лекарственного растения «расторопша пятнистая»

4.1.Экспериментальные исследования по извлечению биологически активных веществ из лекарственного сырья сверхкритическим диоксидом углерода и жидкостной экстракцией под давлением

4.1.1. Установка для экстракции сверхкритическим диоксидом углерода

4.1.2. Установка для жидкостной экстракции под давлением

4.1.3. Проведение качественного и количественного анализа экстрактов

4.1.4. Результаты экспериментального изучения сверхкритической флюидной экстракции

4.1.5. Результаты экспериментального изучения процесса жидкостной экстракции под давлением

4.1.6. Сопоставление эффективности различных способов экстрагирования биологически активных веществ из «расторопши пятнистой»

Выводы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Определение состава экстрактов "расторопши пятнистой" хроматографическими методами»

Актуальность. В последнее время особое внимание учёных уделяется исследованию фенольных и полифенольных соединений растительного происхождения. Данные соединения обладают широким спектром биологической активности: антиоксидантной, противовирусной, капилляроукрепляющей, гепатопротекторной и др. Поэтому важной задачей является выбор метода и условий извлечения данных соединений из анализируемых объектов. Традиционные методы извлечения фенольных и полифенольных соединений из лекарственных растений, как правило, связаны с использованием токсичных органических растворителей, а также требуют больших затрат времени. Альтернативным подходом может служить использование экологически безопасных растворителей, таких как вода и диоксид углерода, находящихся в суб- и сверхкритических состояниях.

Индивидуальная и групповая идентификация компонентов сложных объектов, в том числе и объектов растительного происхождения, является актуальной задачей аналитической химии. Кроме того, руководствуясь совокупностью характеристических физико-химических признаков, полученных во время хроматографического анализа, можно проводить распознавание образа сложного объекта по так называемым хроматографическим «отпечаткам пальцев» (хроматографическим профилям, фингерпринтам). Особую актуальность данный подход находит при анализе лекарственных растений, поскольку в большинстве случаев их идентификация проводится визуальным способом, а содержание компонентов, определяющих их качество - полуколичественными методами

Целью данной диссертационной работы являлась разработка экспрессных и эффективных способов и методик анализа «расторопши пятнистой» экстракционно-хроматографическими методами.

Для достижения поставленной цели решались следующие задачи: 1. Разработать способ экспрессной идентификации лекарственного растения «расторопша пятнистая» и препаратов на его основе по совокупности интерполяционных величин удерживания при газохроматографическом (ГХ) анализе равновесной газовой фазы.

2. Изучить возможность применения сверхсшитых полистирольных сорбентов для концентрирования летучих органических соединений (ЛОС) из паровой фазы лекарственного растения «расторопша пятнистая» методом твердофазной микроэкстракции (ТФМЭ) с последующей термодесорбцией.

3. Применить хромато-распределительный метод, основанный на комплексной ГХ информации для определения молекулярной массы и температуры кипения неизвестных ЛОС лекарственного растения «расторопша пятнистая».

4. Экспериментально изучить возможность использования диоксида углерода, находящегося в неидеальном состоянии, для экстракции биологически активных веществ (БАВ) из «расторопши пятнистой» при различных температурах и давлениях.

5. Провести экспериментальные исследования по извлечению БАВ из «расторопши пятнистой» этанолом, субкритической водой и водно-этанольными смесями в статических и динамических режимах при различных температурах и давлениях.

1. Разработать методику количественного определения БАВ из «расторопши пятнистой», включающую извлечение БАВ жидкостной экстракцией под давлением и последующий анализ экстракта методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ).

Научная новизна.

Впервые предложен, разработан и экспериментально изучен способ экспрессной идентификации лекарственного растения «расторопша пятнистая» и препаратов на его основе по совокупности интерполяционных величин удерживания при ГХ анализе равновесной газовой фазы.

Для повышения информативности ГХ анализа лекарственного растения «расторопша пятнистая» впервые предложено концентрирование летучих компонентов из паровой фазы сырья на сверхсшитые полимерные сорбенты.

Предложена методика определения молекулярной массы и температуры кипения неизвестных летучих компонентов «расторопши пятнистой» хромато-распределительным методом.

Впервые для извлечения основных полифенольных соединений «расторопши пятнистой» предложено использование диоксида углерода, находящегося в неидеальном состоянии, а также жидкостной экстракции под давлением с использованием этанола, субкритической воды и водно-этанольных смесей.

Практическая значимость. Представленные в работе новые инструментальные и методические решения экспрессной идентификации и анализа лекарственного растения «расторопша пятнистая» внедрены в практику работы следующих предприятий Самарской области: ООО «ОЗОН» (г. Жигулёвск), ГУЗ «Центр контроля качества лекарственных средств Самарской области» (г. Самара), ООО «Пранафарм» (г. Самара), ООО «Центр-Аналитика» (г. Самара), ООО «СайКлан» (г. Самара), ФГБОУ ВПО «Самарский государственный технический университет» (г. Самара), ФГБОУ ВПО «Самарский государственный медицинский университет» (г. Самара).

На защиту выносятся следующие положения:

1. Способ экспресс-идентификации лекарственного растения «расторопша пятнистая» и препаратов на его основе, основанный на газовой экстракции летучих органических соединений с последующим газохроматографическим анализом.

2. Методика определения молекулярной массы и температуры кипения неизвестных летучих органических соединений «расторопши пятнистой» хромато-распределительным методом, основанным на равновесном распределении анализируемых компонентов в гетерофазных системах и определении интерполяционных характеристик удерживания при газохроматографическом анализе.

3. Способы динамического и статического извлечения биологически активных веществ из «расторопши пятнистой» экстрагентами органического и неорганического происхождения в суб- и сверхкритическом состояниях при различных температурах и давлениях.

4. Методика количественного определения биологически активных веществ в «расторопше пятнистой», включающая извлечение биологически активных веществ жидкостной экстракцией под давлением и последующий анализ экстракта методом ВЭЖХ.

Заключение диссертации по теме «Аналитическая химия», Никитченко, Наталья Викторовна

Выводы

1) Разработан способ экспрессной идентификации лекарственного растения «расторопша пятнистая» и препаратов на его основе по совокупности интерполяционных величин удерживания при ГХ анализе равновесной газовой фазы.

2) Показано, что использование твердофазной микроэкстракции увеличивает число регистрируемых летучих соединений при газохроматографическом анализе паровой фазы над образцами «расторопши пятнистой», что повышает информативность и достоверность анализа исследуемых образцов.

3) Показано, что хромато-распределительный метод применим для определения молекулярной массы и температуры кипения неизвестных ДОС лекарственного растения «расторопша пятнистая».

4) Проведена сравнительная оценка количественного извлечения флаволигнанов из «расторопши пятнистой» сверхкритическим СОг, этанолом, субкритической водой и водно-этанольными смесями. Установлено, что экстрагирование БАВ из плодов «расторопши пятнистой» сверхкритическим СО2 при изученных параметрах оказалось малоэффективным, наиболее полное извлечение достигается при проведении экстрагирования этанолом в динамическом режиме при температуре 150°С и давлении 12.5 МПа. Кроме того показано, что результаты, полученные при экстрагировании субкритической водой в диапазоне температур от 200 до 250°С сопоставимы с экспериментальными данными, полученными при использовании этилового спирта при Т=105°С; водно-этанольных смесей в соотношениях 90:10 и 50:50 при Т=200°С и Т=105°С, соответственно.

5) Предложена методика количественного определения БАВ из «расторопши пятнистой», основанная на извлечении флаволигнанов (таксифолина, силикристина, силидианина и силибина) субкритической водой в динамических условиях при программировании температуры экстракции от 150°С до 250°С при давлении 12.5 МПа с последующим анализом экстракта методом ОФ ВЭЖХ.

Список литературы диссертационного исследования кандидат химических наук Никитченко, Наталья Викторовна, 2012 год

1. Li L., Zhao J. Determination of the Volatile Composition of Rhodobryum giganteum (Schwaegr.) Par. (Bryaceae) Using Solid-Phase Microextraction and Gas Chromatography/Mass Spectrometry (GC/MS) // Molecules. 2009. V.14. P. 2195-2201.

2. Витенберг А.Г., Иоффе Б.В. Газовая экстракция в хроматографическом анализе. Л.: Химия, 1982. 280 с.

3. Зеленин К.Н. Органические вещества атмосферы // Соросовский образовательный журнал. 1998. №4. С. 39-44.

4. Charalambous G. Analysis of Food and Beverages. Head-space Techniques. N.Y.: Academic Press, 1978. 394 p.

5. Головня P.B. Проблемы исследования запаха пищевых продуктов и создания имитаторов // Усп. хим. 1976. Т.45. №10. С. 1895-1916.

6. Головня Р.В. Исследование компонентов запаха некоторых пищевых продуктов: автореферат диссертации . доктора химических наук/ ИНЭОС. - Москва, 1973. - 51 с.

7. Jeltes R.J. Fingerprinting techniques as aids in the analysis of composite chemical pollutants in the environment // J. Chromatography Sci. 1974. V.12. №10. P. 599-605.

8. Politzer I.R., Dowty B.J., Laseter J.L. Use of gas chromatography and mass spectrometry to analyze underivatized volatile human or animal constituents of clinical interest // Clin. Chem. 1976. V.22. P. 1775-1788.

9. Hood L.V.S., Barry G.T. Headspace volatiles of marihuana and hashish: Gas chromatographic analysis of samples of different geographic origin // J. Chromatogr. 1978. V.166. P. 499-506.

10. Bonadio F., Margot P., Delémont О., Esseiva P. Headspace solid-phase microextraction (HS-SPME) and liquid-liquid extraction (LLE): Comparison of the performance in classification of ecstasy tablets (Part 2) // Forensic Sci. Int. 2008. V.182. P.52-56.

11. Cartier J., Gueniat O., Cole M.D. Headspace analysis of solvents in cocaine and heroin samples // Sci. Justice. 1997. V.37. P. 175-181.

12. Bicchi С., Corderoa С., Libertoa E., Sgorbinia В., Rubioloa P. Headspace sampling of the volatile fraction of vegetable matrices // J. Chromatogr. A. 2008. V.1184. P.220-233.

13. Bertsch W., Chang R.C., Zlatkis A. The determination of organic volatiles in air pollution studies: characterization of profiles // J. Chromatogr. Sci. 1974. V.12. №4. P. 175-182.

14. Melcher R.G., Caldecourf V.J. Delayed injection-preconcentration gas chromatographic technique for parts-per-billion determination of organic compounds in air and water // Anal. Chem. 1980. V.52. №6. P.875-881.

15. Russell J.W., Shadoff L.A. The sampling and determination of halocarbons in ambient air using concentration on porous polymer // J. Chromatogr. A. 1977. V.134. №2. P.375-384.

16. Taraka T. Chromatographic characterization of porous polymer adsorbents in a trapping column for trace organic vapor pollutants in air // J. Chromatogr. 1978. V.153. P.7-13.

17. Harsch D.E. Evaluation of a versatile gas sampling container design // Atmos. Environ. 1980. V.14. №9. P.l 105-1109.

18. Altshuller A.P., Clemons C.A. Gas chromatographic analyses of aromatic hydrocarbons at atmospheric concentrations using flame ionization detection // Anal. Chem. 1962. V.34. №4. P.466-472.

19. Bellar Т., Sigsby J.E., Clemons C.A., Altshuller A.P. Direct application of gas chromatography to atmospheric pollutants // Anal. Chem. 1962. V.34. №3. P.763-765.

20. Другов Ю.С., Берёзкин В.Г. Газохроматографический анализ загрязненного воздуха. М.: Химия, 1981. 256 с.

21. William P.S., Harry L.R. Preparation of gas cylinder standards for the measurement of trace levels of benzene and tetrachloroethylene // Anal. Chem. 1983. V.55.№2. P.290-294.

22. Saltzman B.E., Coleman A.I., Clemons C.A. Halogenated compounds as gaseous meteorological tracers // Anal. Chem. 1966. V.38. №6. P.753-758.

23. Naganowska-Nowak A., Konieczka P., Przyjazny A., Namiesnik J. Development of techniques of generation of gaseous standard mixtures // Crit. Rev. Anal. Chem. 2005. V.35. №1. P.31-35.

24. McKinley J., Majors R.E. The preparation of calibration standarts for volatile organic compounds a question of traceability // LC-GC Europe. 2000. V.18. №12. P. 892-901.

25. Другов Ю.С. Экологическая аналитическая химия. М.: Изд-во «Анатолия», 2000. - 432 с.

26. Яшин Я.И., Яшин А.Я. Миниатюризация газохроматографической аппаратуры // Журн. аналит. хим. 2001. Т. 56. №9. С.902-914.

27. Баскин 3.J1. Промышленный газохроматографический эколого-аналитический контроль // РЖХО им. Д.И. Менделеева. 2002. Т. 56. №4. С.93-99.

28. Ioffe B.V., Kostkina M.I., Vitenberg A.G. Preparation of standard vapor-gas mixtures for gas chromatography: giscontinuous gas extraction. // Anal. Chem. 1984. V.56. P. 2500-2503.

29. Мариничев A.H., Виттенберг А.Г. Закономерности многоступенчатой газовой экстракции растворов // Журн. прикл. химии. 1990. Т.63. №10. С.2385-2388.

30. Витенберг А.Г., Косткина М.И. Статический способ приготовления парогазовых смесей с известным содержанием органических веществ при использовании равновесия жидкость пар // Журн. аналит. химии. 1980. Т.35. №3. С.539-546.

31. Витенберг А.Г., Бутаева И.Л., Димитрова З.С. Дозирование в хроматограф равновесного с жидкостью газа// Зав. лаб. 1975. Т.41. С.931.

32. Vitenberg A.G., Kostkina M.I., Ioffe B.V. Preparation of standard vapor-gas mixtures for gas chromatography: continuous gas extraction // Anal. Chem. 1984. V.56. P.2496-2500.

33. Витенберг А.Г., Ефимова O.B., Котов Г.Н. Методы приготовления парогазовых смесей с постоянным микросодержанием летучих веществ наоснове буферного эффекта гетерогенных систем // Журн. прикл. химии. 2002. Т.75. №1. С. 39-46.

34. Scarano Е., Gay G., Forina М. Hydrogen chloride partial pressure of dilute hydrogen chloride-concentrated lithium chloride aqueous solution // Anal. Chem. 1971. V.43.P.206-211.

35. Scarano E., Forina M., Gay G. Hydrochloric acid and ammonia gaseous standard solutions //Anal. Chem. 1971. V.43. P. 1310-1312.

36. Берёзкин В.Г., Платонов И.А., Лепский M.B., Исмагилов Д.Р., Онучак Л.А. Динамический способ получения парогазовых потоков летучих органических соединений в инертном газе // Вестник СамГУ. Естественнонаучная серия. Специальный выпуск. 2002. С.115-123.

37. Платонов И.А., Исмагилов Д.Р., Кудряшов С.Ю., Смыгина И.Н., Онучак Л.А., Берёзкин В.Г. Получение газовых потоков с постоянноймикроконцентрацией сероводорода // Журн. аналит. химии. 2006. Т.61. №1. С.59-64.

38. Платонов И.А. Многоступенчатые барботажные способы и устройства для получения газовых смесей с постоянной концентраций // Сорбционные и хроматографические процессы. 2006. Т.6. №5. С.833- 843.

39. Берёзкин В.Г., Платонов И.А., Онучак Л.А., Лепский М.В. Способ получения постоянных микроконцентраций летучих соединений в потоке газа. Патент 2213958 (2001) РФ // Бюл. изобр. 2003. №28.

40. Берёзкин В.Г., Арутюнов Ю.И., Платонов И.А., Кудряшов С.Ю., Исмагилов Д.Р., Устюгов B.C., Милочкин Д.А. Устройство получения постоянных концентраций веществ в газе. Патент 2312335 (2004) РФ // Бюл. изобр. 2007. №34.

41. Берёзкин В.Г., Платонов И.А., Арутюнов Ю.И., Исмагилов Д.Р., Устюгов B.C., Милочкин Д.А. Способ получения постоянных концентраций веществ в потоке газа и устройство для его осуществления. Патент 2279672 (2004) РФ // Бюл. изобр. 2006. №19.

42. Берёзкин В.Г., Платонов И.А., Арутюнов Ю.И., Смыгина И.Н. Способ получения газового потока с постоянными концентрациями летучих веществ и устройство для его осуществления. Патент 2302629 (2005) РФ // Бюл. изобр.-2007. №19.

43. Берёзкин В.Г., Платонов И.А., Смыгина И.Н. Хромато-десорбционный способ получения потока газа, содержащего микропримеси летучих соединений // Известия ВУЗов. Химия и химическая технология. 2007. Т.50. В.8. С. 22-25.

44. Moskvin L.N., Rodinkov O.V. Continuous chromatomembrane headspace analysis // J. Chromatogr. A. 1996. V.725. P.351-359.

45. Москвин JI.H., Родинков О.В., Катрузов А.Н. Непрерывное выделение газообразных и легколетучих примесей из водных растворов с использованием хроматомембранного метода // Журн. аналит. химии. 1996. Т.51. №2. С.215-217.

46. Москвин J1.H., Родинков О.В., Катрузов А.Н. Хроматомембранный метод разделения и его аналитические возможности // Журн. аналит. химии. 1996. Т.51. №8. С.835-843.

47. Москвин JI.H., Родинков О.В. Хроматомембранный парофазный анализ водных растворов // Журн. эколог, химии. 1995. Т.4. №2. С.112-116.

48. Москвин А.Л., Москвин JI.H., Родинков О.В. Хроматомембранные методы новый принцип функционирования устройств для пробоподготовки в аналитических приборах // Научное приборостроение. 1999. Т.9. №4. С.62-72.

49. Родинков О.В., Москвин Л.Н., Майорова H.A., Зеймаль А.Е. Газохроматографическое определение алкилацетатов в водных растворах с хроматомембранной газовой экстракцией // Журн. аналит. химии. 2003. Т.58. №6. С.617-622.

50. Москвин Л.Н., Родинков О.В. Газохроматографическое определение газообразных углеводородов в водных растворах с хроматомембранной газовой экстракцией // Журн. аналит. химии. 2003. Т.58. №1. С.82-87.

51. Москвин Л.Н. Хроматомембранный метод разделения веществ // Докл. АН. 1994. Т.334. №5. С.599-601.

52. Москвин Л.Н., Родинков О.В., Григорьев Г.Л. Непрерывное хроматомембранное выделение летучих примесей из водных растворов для последующего газохроматографического анализа // Журн. аналит. химии. 1996. Т.51. №11. С. 1130-1132.

53. Родинков О.В., Москвин Л.Н., Папсуева А.Г., Григорьев Г.Л. Условия осуществления хроматомембранного процесса в системах жидкость -жидкость и жидкость газ // Журн. физ. химии. 1999. Т.73. №9. С.1638—1640.

54. Москвин JI.H. Хроматомембранный метод и его аналитические возможности для концентрирования веществ из жидкой и газовой фазы // Журн. аналит. химии. 1996. Т.51. №11. С. 1125-1129.

55. Родинков О.В. Жидкостно-газовая хроматография и хроматомембранный массообменный процесс в системе жидкость газ: автореферат диссертации . доктора химических наук / СПбГУ. - С.-Петербург, 2004. - 32 с.

56. Родинков О.В., Москвин Л.Н. Закономерности противоточной хроматомембранной газовой экстракции // Журн. аналит. химии. 2003. Т.58. №6. С.611-616.

57. Родинков О.В. Закономерности непрерывной хроматомембранной газовой экстракции при движении фаз в одном направлении // Вестник СПбГУ. 2001. №.3. С.68-74.

58. Родинков О.В., Москвин Л.Н. Физико-химическая модель хроматомембранной жидкостной хемосорбции микропримесей из газовой фазы // Журн. физ. химии. 2001. Т.75. №2. С.329-332.

59. Родинков О.В., Москвин Л.Н. Непрерывная двухмерная хроматомембранная газовая экстракция. Тарелочная модель и ее практические следствия // Журн. аналит. химии. 2000. Т.55. №9. С.950-955.

60. Родинков О.В., Рачковский И.Н., Москвин Л.Н. Хроматомембранное газоэкстракционное генерирование стандартных газовых смесей с применением композиционных угольно-фторопластовых матриц // Журн. аналит. химии. 2008. Т.63. №9. С.941-947.

61. Kaufmann В., Christen P. Recent Extraction Techniques for Natural Products: Microwave-assisted Extraction and Pressurised Solvent Extraction // Phytochem. Anal. 2002. V.13. P. 105-113.

62. Abu-Samra A., Morris J.S., Koirtyohann S.R. Wet ashing of some biological samples in a microwave oven // Anal. Chem. 1975. V.47. P.1475-1477.

63. Camel V. Recent extraction techniques for solid matrices-supercritical fluid extraction, pressurized fluid extraction and microwave-assisted extraction: their potential and pitfalls // Analyst. 2001. V.126. P.l 182-1193.

64. Thuery J. Microwaves and matter in Microwaves: Industrial, Scientific and Medical Applications, Part 1. London: Artech House, 1992. P.83-125.

65. Demesmay C.,0 lie M. Utilisation des micro-ondes dans les laboratoires d'analyse // Spectra Analyse. 1993. V.175. P.27-32.

66. Sinquin A., Gorner Т., Dellacherie E. L'utilisation des micro-ondes en chimie analytique // Analusis. 1993. V.21. P. 1-10.

67. Ganzler K., Szinai I., Salgo A. Effective sample preparation method for extracting biologically active compounds from different matrixes by a microwave technique // J. Chromatogr. 1990. V.520. P.257-262.

68. Barnabas I.J., Dean J.R., Fowlis I.A., Owen S.P. Extraction of polycyclic aromatic hydrocarbons from highly contaminated soils using microwave energy // Analyst. 1995. V.120. P. 1897-1904.

69. Onuska F.I., Terry K.A. Microwave extraction in analytical chemistry of pollutants: polychlorinated biphenyls // J. High Resol. Chromatogr. 1995. V.18. P.417-421.

70. Jassie L., Revesz R., Kierstead T. Microwave-assisted solvent extraction. In Microwave-Enhanced Chemistry. Fundamentals, Sample Preparation, and Applications. Washington, DC: Am. Chem. Soc., 1997. - P.569-609.

71. Kingston H.M., Haswell S.J. Microwave Enhanced Chemistry: Fundamentals, Sample Preparation and Applications. Washington, DC: Am. Chem. Soc., 1997. - P.124-138.

72. Nuchter N., Ondruschka В., Bonrath W. Microwave assisted synthesis a critical technology overview // Green Chem. 2004. V.6. P. 128-141.

73. Lew A., Krutzik P.O., Hart M.E., Chamberlin A.R. Increasing rates of reaction: microwave-assisted organic synthesis for combinatorial chemistry // J. Comb. Chem. 2002. V.4. P.95-105.

74. Кубракова И.В. Микроволновое излучение в аналитической химии: возможности и перспективы использования // Усп. хим. 2002. Т.71. №4. С.327-340.

75. Кубракова И.В., Мясоедова Г.В., Еремин С.А., Плетнёв И.В., Моходоева О.Б., Морозова В.А., Хачатрян К.С. Подготовка проб в условияхмикроволнового нагрева // Методы и объекты химического анализа. 2006. Т.1. №1. С.27-34.

76. Ganzler К., Salgo A., Valko К. Microwave extraction. A novel sample preparation method for chromatography // J. Chromatogr. 1986. V.371. P.299-306.

77. Ganzler K., Salgo A. Microwave-extraction a new method superseding traditional Soxhlet extraction // Z. Lebensm. Unters. Forsch. 1987. V.184. P.274-276.

78. Kingston H.M., Jassie L.B. Introduction to Microwave Sample Preparation: Theory and Practice. Washington, DC: Am. Chem. Soc., 1988.

79. Кубракова И.В., Кузьмин H.M. Микроволновая пробоподготовка в неорганическом элементном анализе (обзор) // Журн. завод, лаб. 1992. Т.58. №8. С.1-5.

80. Jin Q., Liang F., Zhang H., Zhao L., Huan Y., Song D. Application of microwave techniques in analytical chemistry // Trends Anal. Chem. 1999. V.18. P.479-484.

81. Pare J., Belanger J., Stafford S. Microwave-assisted process (MAP™): a new tool for the analytical laboratory // Trends Anal. Chem. 1994. V.13. P. 176-184.

82. Camel V. Microwave-assisted solvent extraction of environmental samples // Trends Anal. Chem. 2000. V.19. P.229-248.

83. Smith F.E., Arsenault E.A. Microwave-assisted sample preparation in analytical chemistry//Talanta. 1996. V.43 P.1207-1268.

84. Chakraborty R., Das A.K., Cervera M.L., de la Guardia M. Literature study of microwave-assisted digestion using electrothermal atomic absorption spectrometry // Fresenius J. Anal. Chem. 1996. V.355. №2. P.99-111.

85. Kingston H.M. In Inductively Coupled Plasma Mass Spectrometry. New York: Wiley-VCH, 1998.-P. 33.

86. Лукьянчук И.И., Калинин Л.Г., Тучный В.П. Микроволновые технологии в народном хозяйстве. Проблемы. Перспективы. Киев: Издательство Бартенева, 2000. - 242 с.

87. Лукьянчук И.И. Микроволновая экстракция биологически-активных соединений из растительного сырья // Микроволновые технологии в народном хозяйстве. 2009. Т.7-8. С.61-65.

88. Ерёмин А.Д., Ракитин А.Н., Лузгин В.Г. Экстракция с использованием электрофизических методов. Таганрог. 1999. - 135 с.

89. Renoe B.W. Microwave assisted extraction // Am. Lab. 1994. №26. P.34-40.

90. Pare J.R.J. Patent 90250286.3 (1990). US. Microwave extraction of volatile oils and apparatus therefore.

91. Pare J.R.J. Patent 519,588 (1991). US. Microwave-assisted natural products extraction.

92. Chen S.S., Spiro M. Study of microwave extraction of essential oil constituents from plant materials // J. Microw. Electromagn. Energy. 1994. V.29. P.231-241.

93. Romele L., Polesello S. How to minimize the use of solvents // Laboratorio 2000. 1997. V.l 1. P.102-110.

94. Majors R.E. Sample preparation perspectives. New approaches to sample preparation // LC-GC Int. 1998. V.8. P. 128-133.

95. Budzinski H., Baumard P., Papineau A., Wise S., Garrigues P. Focused microwave assisted extraction of polycyclic aromatic compounds from standard reference materials, sediments and biological tissues // Arom. Сотр. 1996. V.9. P.225-232.

96. Лукьянчук И.И., Калинин Л.Г., Тучный В.П. Микроволновые технологии в фармации // Микроволновые технологии в народном хозяйстве. 2000. Т.2-3. -174 с.

97. Chen L.G., Jin H.Y., Ding L., Zhang H.R., Li J., Qu C.L., Zhang H.Q. Dynamic microwave-assisted extraction of flavonoids from Herba Epimedii // Sep. Pur. Tech. 2008. V.59. P.50-57.

98. Ganzler K., Bati J., Valko K. A new method for the extraction and highperformance liquid chromatographic determination of vicine and convicine in faba beans // Chromatography. 1986. V.84. P.435-442.

99. Carro N., Garcia C.M., Cela R. Microwave-assisted extraction of monoterpenols in must samples // Analyst. 1997. V.122. P.325-329.

100. Pare J.R.J. Patent 29,358 (1994). US. Microwave extraction of volatile oils.

101. Collin G.J., Lord D., Allaire J., Gagnon D. Huiles essentielles et extraits "microondes" // Parfums, Cosmet., Aromes. 1991. V.97. P. 105-112.

102. Craveiro A.A., Matos F.J.A., Alencar J.W., Plumel M.M. Microwave oven extraction of an essential oil // Flavour Fragr. J. 1989. V.4. P.43-44.

103. Young J.C. Microwave-assisted extraction of the fungal metabolite ergosterol and total fatty acids // J. Agric. Food Chem. 1995. V.43. P.2904-2910.

104. Kaufmann В., Christen P. Parameters affecting microwave-assisted extraction of withanolides // Phytochem. Anal. 2001. V.12. P.327-331.

105. Brachet A., Christen P., Veuthey J.L. Focused microwave-assisted extraction of cocaine and benzoylecgonine from coca leaves // Phytochem. Anal. 2002. V.12. P. 162-169.

106. Bicchi C., Bellardo F., Rubbiolo P. Estrazione di alcaloidi da specie di Senecio II Laboratorio 2000. 1992. V.6. P.36-38.

107. Бергман Jl.M. Ультразвук и его применение в науке и технике. М.: Изд-во ИЛ, 1956.-726 с.

108. Молчанов Г.И. Ультразвук в фармации. М.: Медицина, 1980. - С. 176.

109. Брук М.М. Получение лекарственных препаратов из растительного и животного сырья под действием ультразвука. Ультразвук в физиологии и медицине. Т.1. Ростов-на-Дону. 1972. - С.115-116.

110. Агранат Б.А. Ультразвуковая технология. М.: Металлургия, 1974. - С. 12-16.

111. Физика и техника мощного ультразвука, том II. Мощные ультразвуковые поля. Под ред. Розенберга Л.Д. М.: Наука, 1968, 268 с.

112. Пономарёв В.Д. Экстрагирование лекарственного сырья. М.: Медицина, 1976. -204 с.

113. Fang Q., Yeung H.W., Leung H.W., Huie C.W. Micelle-mediated extraction and preconcentration of ginsenosides from Chinese herbal medicine // J. Chromatogr. A. 2000. V.904. P.47-55.

114. Kadkhodaee R., Hemmati-Kakhki A. Ultrasonic Extraction of Active Compounds from Saffron 11 Acta Horticulturae. 2007. V.739. P.417-426.

115. Alupului A., Calinescu I., Lavric V. Ultrasonic vs. Microwave Extraction Intensification of Active Principles from Medicinal Plants // AIDIC Conference Series. 2009. V.9. P.l-8.

116. Kobus Z. Studies upon the ultrasonic extraction process on an example of dry matter extraction from dried carrots // Kom. Mot. Energ. Roln. 2006. V.6. P.101-114.

117. Pena A., Ruano F., Mingorance M. D. Ultrasound-assisted extraction of pesticides from olive branches: a multifactorial approach to method development // Anal. Bioanal. Chem. 2006. V.385. P.918-925.

118. Tang D.S., Tian Y.J., He Y.Z., Li L., Hu S.Q., Li B. Optimisation of Ultrasonic-assisted Protein Extraction from Brewer's Spent Grain // Czech J. Food Sci. 2010. V.28. P.9-17.

119. Valachovic P., Pechova A., Mason T.J. Towards the industrial production of medicinal tincture by ultrasound assisted extraction // Ultrason. Sonochem. 2001. V.8. 111-117.

120. Hromadkova Z., Ebringerova A., Valachovic P. Comparison of classical and ultrasound-assisted extraction of polysaccharides from Salvia officinalis L. // Ultrason. Sonochem. 1999. V.5. P. 163-168.

121. Hromadkova Z., Ebringerova A., Valachovic P. Ultrasound-assisted extraction of water-soluble polysaccharides from the roots of valerian (Valeriana officinalis L.) // Ultrason. Sonochem. 2002. V.9. P.37-44.

122. Ebringerova A., Hromadkova Z. Effect of ultrasound on the extractibility of corn bran hemicelluloses // Ultrason. Sonochem. 2002. V.9. P.225-229.

123. Chang Y-H., Yang J-C. Molecular mass distribution and degradation rate of xylan sonicated in acid and alkaline media // Food Hydrocolloid. 2006. V.20. P.348-356.

124. Hromadkova Z., Kovacikova J., Ebringerova A. Study of the classical and ultrasound-assisted extraction of the corn cob xylan // Ind. Crop. Prod. 1999. V.9. P. 101-109.

125. Li J.W., Ding S.D., Ding X.L. Optimization of the ultrasonically assisted extraction of polysaccharides from Zizyphus jujuba cv. jinsixiaozao II J. Food Eng. 2007. V.80 P.176-183.

126. Ebringerova A., Hromadkova Z., Hirsch J. An Immunomodulatory Xylan-Phenolic Complex from the Seed Hulls of Buckwheat (Fagopyrum esculetum Moench) // Chem. Pap. 2005. V.59. P.223-224.

127. Hromadkova Z., Ebringerova A. Ultrasonic extraction of plant materials— investigation of hemicellulose release from buckwheat hulls // Ultrason. Sonochem. 2003. V.10. P.127-133.

128. Ebringerova A., Hromadkova Z., Kost'alova Z., Sasinkova V. Chemical valorization of agricultural by-products: Isolation and characterization of xylan-based antioxidants from almond shell biomass // BioResources. 2008. V.3. №1. P.60-70.

129. Hromadkova Z., Kost'alova Z., Ebringerova A. Comparison of conventional and ultrasound-assisted extraction of phenolics-rich heteroxylans from wheat bra // Ultrason. Sonochem. 2008. V.15. P.1062-1068.

130. Sun R.C., Tomkinson J. Characterization of hemicelluloses obtained by classical and ultrasonically assisted extractions from wheat straw // Carbohydr. Polym. 2002. V.50.P.263-271.

131. Sun R.C., Tomkinson J. Separation and characterization of cellulose from wheat straw // Sep. Sci. Technol. 2004. V.39. P.391-411.

132. Sun R.C., Sun X.F., Ma X.H. Effect of ultrasound on the structural and physiochemical properties of organosolv soluble hemicelluloses from wheat straw//Ultrason. Sonochem. 2002. V.9. P.95-101.

133. Sun J.X., Sun R.C., Sun X.F., Su Y.Q. Fractional and physico-chemical characterization of hemicelluloses from ultrasonic irradiated sugarcane bagasse // Carbohydr. Res. 2004. V.339. №2. P.291-300.

134. Sun J.X., Sun X.F., Zhao H., Sun R.C. Isolation and characterization of cellulose from sugarcane bagasse // Polym. Degrad. Stab. 2004. V.84. P.331-339.

135. Yang B., Jiang Y., Zha M., Shi J., Wang L. Effects of ultrasonic extraction on the physical and chemical properties of polysaccharides from longan fruit pericarp // Polym. Degrad. Stab. 2008. V.93. P.268-272.

136. Chen X.Q., Zhang Y. Ultrasonic-associated extraction of water soluble polysaccharides from defatted Korean pine kernel // J. Forest. Res. 2007. V.18. №2. P.133-135.

137. Caili F., Haijun T., Quanhong L., Tongyi C., Wenjuan D. Ultrasound-assisted extraction of xyloglucan from apple pomace // Ultrason. Sonochem. 2006. V.13. P.511-516.

138. Panchev I.N., Kirtchev N.A., Kratchanov G. Improving pectin technology: II. Extraction using ultrasonic treatment // Int. J. Food Sci. Tech. 1988. V.23. P.37-341.

139. Panchev I.N., Kirtchev N.A., Kratchanov C.G. On the production of low esterified pectins by acid maceration of pectic raw materials with ultrasound treatment // Food Hydrocolloid. 1994. V.8. P.9-17.

140. Sriroth К., Chollakup R., Chotineeranat S., Piyachomkwan K., Oates C.G. Processing of cassava waste for improved biomass utilization // Bioresource Technol. 2000. V.71. P.63-69.

141. A. c. SU 1286232 A1 В 01 D 11/02. Способ экстрагирования из твёрдого тела / Долинский А.А., Мудриков В.Н., Корчинский Р.Н. (СССР). -№3936068/31-26; Опубл. 08.08.1985, Б.И. № 22.

142. Гершал Д.А., Фридман В.М. Ультразвуковая аппаратура. М.: Энергия, 1967.-300 с.

143. Новицкий Б.Г. Применение акустических колебаний в химико-технологических процессах. -М.: Химия, 1983. 192 с.

144. Жарова Е.Я. Применение ультразвука при кристаллизации глюкозы.- М.: Центр НИИИиТЭИ пищ.пр-сти, 1974. 32 с.

145. Коган В.Б. Гетерогенные равновесия. JL: Химия. 1968. - С.431.

146. Anklam Е., Berg Н., Mathiasson L., Sharman М., Ulberth F. Supercritical fluid extraction (SFE) in food analysis // Food Additives & Contaminants: Part A.1998. V. 15. №6. P.729-750.

147. Del Valle J.M., Aguilera J.M. High pressure CO2 extraction. Fundamentals and applications in the food industry // Food Science & Technology International.1999. V.5. P.l-24.

148. Raventos M., Duarte S., Alarcon R. Application and Possibilities of Supercritical CO2 Extraction in Food Processing Industry: An Overview // Food Science & Technology International. 2002. V.8. P.269-284.

149. Гумеров Ф.М., Сабирзянов A.H., Гумеров Г.И. Суб- и сверхкритические флюиды в процессах переработки полимеров. Казань: «ФЭН», 2007. -С.12-13.

150. Lang, Q., Wai С.М. Supercritical fluid extraction in herbal and natural product studies // Talanta. 2001. V.53. P.771-782.

151. Bondar E., Koel M. Application of supercritical fluid extraction to organic geochemical studies of oil shales // Fuel. 1998. V.77. P.211-213.

152. Bernardo-Gil G., Onetto C., Antunes P., Rodrigues M.F., Empis J.M. Extraction of lipids from cherry seed oil using supercritical carbon dioxide // Eur. Food Res. Tecnol. 2001. V.211. P. 170-174.

153. Fratianni A., Caboni M.F., Irano M., Panfili G. A critical comparison between traditional methods and supercritical carbon dioxide extraction for the determination of tocochromanols in cereals // Eur. Food Res. Tecnol. 2002. V.215. P.353-358.

154. Kohler M., Haerdi W., Christen P., Veuthey J.-L. Extraction of artemisinin and artemisinic acid from Artemicia annua L. using supercritical carbon dioxide // J. Chromatogr. A. 1997. V.785. P.353-360.

155. Le Floch F., Tena M.T., Rios A., Valcárcel M. Supercritical fluid extraction of phenol compounds from olive leaves // Talanta. 1998. V.46. P.1123-1130.

156. Lin M.C., Tsai M.J., Wen K.C. Supercritical fluid extraction of flavonoids from Scutellariae Radix II J. Chromatogr A. 1999. V.830. P.387-395.

157. Ramos L., Hernández L.M., González M.J. Study of the distribution of the polychlorinated biphenyls in the milk fat globule by supercritical fluid extruction // Chemosphere. 2000. V.41. P.881-888.

158. Bravi M., Bubbico R., Manna F., Verdone N. Process optimisation in sunflower oil extraction by supercritical C02 // Chem. Eng. Sci. 2002. V.57. P.2753-2764.

159. Залепугин Д.Ю., Тилькунова Н.А., Чернышова И.В., Полякова B.C. Развитие технологий, основанных на использовании сверхкритических флюидов // Сверхкритические флюиды: Теория и практика. 2006. Т.1. №.1. С.27-51.

160. Engwicht A., Girreses U., Muller B.W. Characterization of co-polymers of lactic and glycolic acid for supercritical fluid processing // Biomaterials. 2000. V.21. P.1587-1593.

161. Каныгина Э.Л., Бедрин A.K. Патент 95109015 (1997). РФ. Способ извлечения органических веществ.

162. Mendes R.L., Nobre B.R., Cardoso М.Т., Pereira A.P., Palavra A.F. Supercritical carbon dioxide extraction of compounds with pharmaceutical importance from microalgae // Inorg. Chim. Acta. 2003. V.356. P.328-334.

163. Goto M., Sato M., Kodama A., Hirose T. Application of supercritical fluid technology to citrus oil processing // Physica B. 1997. V.239. P. 167-170.

164. González-Vila F.G., Bautista J.M., Gutiérrez A., Del Rio J.C., González A.G., Supercritical carbon dioxide extraction of lipids from Eucalyptus globulus wood // J. Biochem. Biophys. Meth. 2000. V.43. P.345-351.

165. Хроматографические продукты для анализа и очистки. M.: SUPELCO, 2004. - С. 672.

166. Heaton D.M., Bartle K.D., Rayner R.M., Clifford A.A. Application of supercritical fluid extraction and supercritical fluid chromatography to the production of taxanes as anti-cancer drugs // J. High Resol. Chromatogr. 1993. V.16. P.666-670.

167. Su Sh., Wang T., Chen T., Duan J., Yu L., Tang Y. Cytotoxicity activity of extracts and compounds from Commiphora myrrha resin against human gynecologic cancer cells // J. of Medicinal Plants Research. 2011. V.5. P. 1382-1389.

168. Lui B., Lockwood G.B., Gifford L.A. Supercritical fluid extraction of diosgenin from tubers of Dioscorea nipponicall J. Chromatogr. A. 1995. V.690. P.250 253.

169. Chun M.K., Shin H.W., Lee H. Supercritical fluid extraction of taxol and baccatin III from needles of Taxus cuspidatall Biotechnol. Tech. 1994. V.8. P.547-550

170. Smith R.M., Burford M.D. GLC of supercritical fluid extracts of essential oils from the medicinal herbs, Feverfew, Tansy, and German chamomile // J. Chromatogr. Sci. 1994. V.32. P.265-269.

171. Lopez-Avila V., Benedicto J. Supercritical fluid extraction of oxindole alkaloids from Uncaria tormentosa II J. High Resol. Chromatogr. 1997. V.20. №4. P.231-236.

172. Lopez-Avila V., Benedicto J. Supercritical fluid extraction of kava lactones from Piper methysticum (kava) herb // J. High Resol. Chromatogr. 1997. V.20. №10. P.555-559.

173. Lienert D., Anklam E., Panne U. Gas chromatography-mass spectral analysis of roots of Echinacea species and classification by multivariate data analysis // Phytochem. Anal. 1998. V.9. P.88-98.

174. Dean J.R., Liu B., Price R. Extraction of Tanshinone IIA from Salvia miltiorrhiza bunge using supercritical fluid extraction and a new extraction technique, phytosol solvent extraction // J. Chromatogr. A. 1998. V.799. P.343-348.

175. Da Costa C.T., Margolis S.A., Benner B.A.J., Horton D. Comparison of methods for extraction of flavanones and xanthones from the root bark of the Osage orange tree using liquid chromatography. // J. Chromatogr. A. 1999. V.831. P.167-178.

176. Friedrich J.P., List G.R., Heakin A.J. Petroleum-free extraction of oil from soybeans with supercritical C02 // J. Am. Oil Chemists' Society. 1982. V.59. №7. P.288-292.

177. Cocero M.J., Calvo L. Supercritical fluid extraction of sunflower seed oil with C02-ethanol mixtures // J. Am. Oil Chemists' Society. 1996. V.73. №11. P.1573-1578.

178. Perakis C., Louli V., Magoulas K. Supercritical fluid extraction of black pepper oil // J. Food Eng. 2004. V.71. №4. P.386-393.

179. Porta G.D., Porcedda S., Morongiu B., Reverchon E. Isolation of eucalyptus oil by supercritical fluid extraction // Flavour and Fragr J. 1999. V.14. P.214-218.

180. Taniguchi M., Nomura R., Kijima I., Kobayashi T. Preparation of defatted mustard by extraction with supercritical carbon dioxide // Agricul. Biolog. Chem. 1987. V.51. P.413-417.

181. Ronyai E., Simandi B., Tomoskozi S., Deak A., Vigh L., Weinbrenner Z. Supercritical fluid extraction of corn germ with carbon dioxide-ethyl alcohol mixture // J. Supercrit. Fluids. 1998. V.14. №1. P.75-81.

182. Friedrich J.P., Pryde E.H. Supercritical C02 extraction of lipid-bearing materials and characterization of products // J. Am. Oil Chemists' Society. 1984. V.61. P.223-228.

183. Sovova H., Komers R., Kucera J., Jez J. Supercritical carbon dioxide extraction of caraway essential oil // Chem. Eng. Sci. 1994. V.49. P.2499-2505.

184. Gopalakrishnan N., Narayanan C.S. Supercritical carbon dioxide extraction of cardamom//J. Agric. Food Chem. 1991. V.39. P. 1976-1978.

185. Ge Y., Yan H., Hui B., Ni Y., Wang S., Cai T. Extraction of natural vitamin E from wheat germ by supercritical carbon dioxide // J. Agric. Food Chem. 2002. V.50. P.686-689.

186. Poiana M., Fresa R., Mincione B. Supercritical carbon dioxide extraction of bergamot peels: extraction kinetics of oil and its components // Flavour Fragr. J. 1999. V.14. P.358-366.

187. Dunford N.T., Temelli F. Extraction and fractionation of canola phospholipids with supercritical carbon dioxide and ethanol mixture // J. Am. Oil Chemists' Society. 1995. V.70. P.1009-1015.

188. Favati F., King J.W., Friedrich J.P., Eskins K. Supercritical C02 extraction of carotene and lutein from leaf protein concentrate // J. Food Sci.1988. V.53. №5. P.1532-1536.

189. Chao R.R., Mulvaney S.J., Swanson D.R., Hsieh F., Tempesta M.S. Supercritical C02 extraction of annatto (Bixa orellana) pigments and some characteristics of the color extracts // J. Food Sci.1991. V.56. P.80-83.

190. Favati F., King J.W., Mazzati M. Supercritical carbon dioxide extraction of evening primrose oil //J. Am. Oil Chemists' Society. 1991. V.68. №6. P.422-427.

191. Spanos G., Chen H., Schwartz S. Supercritical C02 extraction of carotene from sweet potatoes//J. Food Sci.1993. V.58. P.817-820.

192. Vega P.J., Balaban M., Sims C.A., O'Keefe S.F., Cornell J.A. Supercritical carbon dioxide extraction efficiency for carotenes from carrots by RSM // J. Food Sci.1996. V.61. P.757-759.

193. Franca L.F., Meireles M.A.A. Modeling the extraction of carotene and lipids from pressed palm oil (Elaes guineensis) fiber using supercritical C02 // J. Supercrit. Fluids. 2000. V.18. P.35-47.

194. Cadoni E., De Giorgi M.R., Medda E., Poma G. Supercritical C02 extraction of lycopene and (3-carotene from ripe tomatoes // Dyes and Pigments. 2000. V.44. №1. P.27-32.

195. Barton P., Hughes R.E., Hussein M.M. Supercritical carbon dioxide extraction of peppermint and spearmint // J. Supercrit. Fluids. 1992. V.5. №3. P. 157-162.

196. Anitescu G., Doneanu C., Radulescu V. Isolation of coriander oil: comparison between steam distillation and supercritical C02 extraction // Flavour Fragr. J. 1997. V.12. P. 173-176.

197. Luengthanaphol S., Mongkholkhajornsilp D., Douglas S., Douglas P.L., Pengsopa L.I., Pongamphai S. Extraction of antioxidants from sweet Thai tamarind seed coat: preliminary experiments // J. Food Eng. 2004. V.63. №3. P.247-252.

198. Lee W.Y., Cho Y.J., Oh S.L., Park J.H., Cha W.S., Jung J.Y., Choi Y.H. Extraction of grape seed oil by supercritical CO2 and ethanol modifier // Food Sci. Biotech. 2000. V.9. P. 174-178.

199. Pandey R., Ahmad Z., Sharma S., Khuller G.K. Nano-encapsulation of azole antifungals: Potential applications to improve oral drug delivery // Int. J. Pharm. 2005. V.301. P.268-276.

200. Huang Z., Sun G. В., Chiew Y. C., Kawi S. Formation of ultrafine aspirin particles through rapid expansion of supercritical solutions (RESS) // Powder Technol. 2005. V.160. P.127-134.

201. Richter B.E., Jones B.A., Ezzell J.L., Porter N.L., Avdalovic N., Pohl C. Accelerated solvent extraction: A technique for sample preparation //Anal. Chem. 1996. V.68. P.1033-1039.

202. ASE 200, Accelerated Solvent Extractor Operator's Manual // U.S.A.: Dionex Corp., Document No.031149, Revision 03, Sunnyvale, 1997.

203. Pawliszyn J. Kinetic model of supercritical fluid extraction // J. Chromatogr. Sci. 1993. №31. P.31-37.

204. Benthin B., Danz H., Hamburger M. Pressurized liquid extraction of medicinal plants // J. Chromatogr. A. 1999. V.837. №1-2. P.211-219.

205. Hofler F., Richter B., Felix D., Accelerated Solvent Extraction // U.S.A.: Dionex Corp., LPN0639-01 20 M 8/95.

206. Lide D.R. Handbook of chemistry and physics. Florida: CRC Press, 1993. 2475 p.

207. Xianwen L., Janssen H.G., Cramers C.A. Parameters Affecting the Accelerated Solvent Extraction of Polymeric Samples // Anal. Chem. 1997. V.69. №8. P.1598-1603.

208. Jiang Y., Li P., Li S.P., Wang, Y.T., Tu P.F. Optimization of pressurized liquid extraction of five major flavanoids from Lysimachia clethroide II J. Pharm. Biomed. Anal. 2007. V.43. P.341-345.

209. Hang Y., Li S.H., Wu X.W. Pressurized liquid extraction of flavonoids from Houttuynia cordata Thunb. // Sep. Pur. Tech. 2008. V.58. P.305-310.

210. Howard L., Pandjaitan N. Pressurized liquid extraction of flavonoids from spinach // J. Food Sci. 2008. V.73. P.151-157.

211. Soltoft M., Christensen J.H., Nielsen J., Knuthsen P. Pressurised liquid extraction of flavonoids in onions. Method development and validation // Talanta. 2009. V.80. P.269-278.

212. Kawamura F., Kikuchi Y., Ohira T., Yatagai M. Accelerated solvent extraction of paclitaxel and related compounds from the bark of Taxus cuspidate II J. Nat. Prod. 1999. V.62. P.244-247.

213. Morf S., Debrunner B., Meier B., Kurth H. Automatische Probenvorbereitung von Pflanzlichen Arzneimittel // Labor Praxis. 1998. V.22. P.56-62.

214. Brachet A., Rudaz S., Mateus L., Christen P., Veuthey J.L. Optimisation of accelerated solvent extraction of cocaine and benzoylecgonine from coca leaves //J. Sep. Sci. 2001. V.24. P.865-873.

215. Kaufmann B., Christen P., Veuthey J.L. Study of factors influencing pressurised solvent extraction of polar steroids from plant material // Chromatographia. 2001. V.54. P.394-398.

216. Andersson T. Parameters Affecting the Extraction of Polycyclic Aromatic Hydrocarbons with Pressurised Hot Water: Academic Dissertation. -Helsinki, 2007.

217. Uematsu M., Franck E.U. Static Dielectric Constant of Water and Steam // J. Phys. Chem. Ref. Data. 1980. V.9. №4. P.1291-1306.

218. Wagner W., PruB A. The IAPWS formulation 1995 for the thermodynamic properties of ordinary water substance for general and scientific use // J. Phys. Chem. Ref. Data. 2002. V.31. №2. P.387-535.

219. García-Marino M., Rivas-Gonalo J.C., Ibáñez E., García-Moreno C. Recovery of catechins and proanthocyanidins from winery by-products using subcritical water extraction // Anal. Chim. Acta. 2006. V.563 P.44-50.

220. Marshall W.L. Ion product of water substance, 0-1000D, 1-10,000 bars; New international formulation and its background // J. Phys. Chem. Ref. Data. 1981. V.10. P.295-304.

221. Khajavi H.S., Ota S., Kimura Y., Adachi S. Kinetics of maltooligosaccharide hydrolysis in subcritical water // J. Agric. Food Chem. 2006. V.54. P.3663-3667.

222. Rogalinski T., Herrmann S., Brunner G. Production of amino acid from bovine serum albumin by continuous subcritical water hydrolysis // J. Supercrit. Fluids. 2005. V.36. P.49-58.

223. Sasaki M., Fang Z., Fukushima Y., Adschiri T., Arai K. Dissolution and hydrolysis of cellulose in subcritical and supercritical water // Ind. Eng. Chem. Res. 2000. V.39. P.2883-2890.

224. Bjorklund E., Nilsson T., Bowadt S. Pressurised liquid extraction of persistent organic pollutants in environmental analysis // Trends Anal. Chem. 2000. V.19. P.434-441.

225. Lou X., Janssen H., Cramers C.A. Parameters Affecting the Accelerated Solvent Extraction of Polymeric Samples // Anal. Chem. 1997. V.69. №8. P.1598-1603.

226. Kronholm J., Hartonen K., Riekkola M. Analytical extractions with water at elevated temperatures and pressures // Trends Anal. Chem. 2007. V.26. P.396-412.

227. Lamoolphak W., Goto M., Sasaki M., Suphantharika M., Muangnapoh C., Prommuag C., Shotipruk A. Hydrothermal decomposition of yeast cells for production of proteins and amino acids // J. Hazard. Mater. 2006. V.137. №3. 1643-1648.

228. Wiboonsirikul J., Adachi S. Extraction of functional substances from agricultural products or by-products by subcritical water treatment // Food Sci. Technol. Res. 2008. V.14.№4.P.319.

229. Hawthorne S.B., Yang Y., Miller D.J. Extraction of Organic Pollutants from Environmental Solids with Sub- and Supercritical Water // Anal. Chem. 1994. V.66. P.2912-2920.

230. Karasek P., Planeta J., Roth M. Solubility of solid polycyclic aromatic hydrocarbons in pressurized hot water at temperatures from 313 K to the melting point // J. Chem. Eng. Data. 2006. V.51. P.616-622.r

231. Herrero M., Martin-Alvarez P.J., Senorans F.J., Cifiientes A, Ibanez E. Optimization of accelerated solvent extraction of antioxidants from Spirulina platensis microalga II Food Chem. 2005. V.93. P.417-423.

232. Wiboonsirikul J., Kimura Y., Kadota M., Morita H., Tsuno T., Adachi S. Properties of extracts from defatted rice bran by its subcritical water treatment // J. Agric. Food Chem. 2007. V.55. P.8759-8765.

233. Hata S., Wiboonsirikul J., Maeda A., Kimura Y., Adachi S. Extraction of defatted rice bran by subcritical water treatment // Biochem. Eng. J. 2008. V.40. P.44-53.

234. Richter B.E., Jones B.A., Ezzell J.L., Porter N.L., Avdalovic N., Pohl C. Accelerated solvent extraction: A technique for sample preparation //Anal. Chem. 1996. V.68. №6. P.1033-1039.

235. Liithje K. On-line coupling of pressurised hot water extraction and microporous membrane --liquid-liquid-- extraction---with- chromatography-- in- analysis of environmental samples. Doctoral thesis, University of Helsinki, Helsinki, 2004,47 p.

236. Kubatova A., Miller D.J., Hawthorne S.B. Comparison of subcritical water and organic solvents for extracting kava lactones from kava root // J. Chromatogr. 2001. V.923. P.187-192.

237. Shotipruk A., Kiatsongserm J., Pavasant P., Goto M., Sasaki M. Pressurized hot water extraction of anthraquinones from the roots of Morinda citrifolia II Biotechnol. Prog. 2004. V.20. P. 1872-1880.

238. Choi M.P.K., Chan K.K.C., Leung H.W., Huie C.W. Pressurized liquid extraction of active ingredients (ginsenosides) from medicinal plants using non-ionic surfactant solutions // J. Chromatogr. A. 2003. V.983. P. 153-162.

239. Palma M., Pineiro Z., Barroso C.G. In-line pressurized-fluid extraction-solid-phase extraction for determining phenolic compounds in grapes // J. Chromatogr. A. 2002. V.968. P. 1-7.

240. Pineiro Z., Palma M., Barroso C.G. Determination of catechins by means of extraction with pressurized liquids // J. Chromatogr. A. 2004. V.1026. P. 1-29.

241. Ju Z.Y., Howard L.R. Effects of solvent and temperature on pressurized liquid extraction of anthocyanins and total phenolics from dried red grape skin // J. Agric. Food Chem. 2003. V.51. P.5207-5212.

242. Eller F.J., Taylor S.L. Pressurized fluids for extraction of cedarwood oil from Juniperus virginianna II J. Agric. Food Chem. 2004. V.52. P.2335-2340.

243. Fernandez-Perez V., Jimenez-Carmona M.M., de Castro L.M.D. An approach to the static-dynamic subcritical water extraction of laurel essential oil: comparison with conventional techniques // Analyst. 2000. V.125. №3. P.481-485.

244. Jimenez-Carmona M.M., Ubera J.L., de Castro L.M.D. Comparison of continuous subcritical water extraction and hydrodistillation of marjoram essential oil // J. Chromatogr. A. 1999. V.855. P.625-632.

245. Chen P.Y., Tu Y.X., Wu C.T., Jong T.T., Chang C.M.J. Continuous hot pressurized solvent extraction of l,l-diphenyl-2-picrylhydrazyl free radical scavenging compounds from Taiwan Yams (Dioscorea alata) // J. Agric. Food Chem. 2004. V.52. P.1945-1950.

246. Basile A., Jimenez-Carmona M.M., Clifford A.A. Extraction of rosemary by superheated water//J. Agric. Food Chem. 1998. V.46. №12. P.5205-2509.

247. Lamm L.J., Yang Y. Off-line coupling of subcritical water extraction with subcritical water chromatography via a sorbent trap and thermal desorption // Anal. Chem. 2003. V.75. №10. P.2237-2242.

248. Ong E.S., Len S.M. Pressurized hot water extraction of berberine, baicalein and glycyrrhizin in medicinal plants // Anal. Chim. Acta. 2003. V.482. №1. P.81-89.

249. Ong E.S., Len S.M. Evaluation of pressurized liquid extraction and pressurized hot water extraction for Tanshinone I and IIA in Salvia miltiorrhiza using LC and LC-ESI-MS // J. Chromatogr. Sci. 2004. V.42. P.211-217.

250. Ozel M.Z., Kaymaz H. Superheated water extraction, steam distillation and Soxhlet extraction of essential oils of Origanum onites II Anal. Bioanal. Chem. 2004. V.379.P.1127-1132.

251. Gogus F., Ozel M.Z., Lewis A.C. Superheated water extraction of essential oils of Origanum micranthum // J. Chromatogr. Sci. 2005. V.43. P.87-92.

252. Ju Z.Y., Howard L.R. Subcritical water and sulfured water extraction of anthocyanins and other phenolics from dried red grape skin // J. Food Sci. 2005. V.70. P.270-276.

253. Mannila M., Wai C.M. Pressurized water extraction of naphtodianthrones in St. John's wort (Hypericum perforatum L.) // Green Chem. 2003. V.5. №4. P.387-391.

254. Lang Q., Wai C.M. Pressurized water extraction (PWE) of terpene trilactones from Ginkgo biloba leaves // Green Chem. 2003. V.5. P.415-421.

255. Smith R.M., Burgess R.J. Superheated Water as an Eluent for Reversed-Phase HighPerformance Liquid Chromatography // J. Chromatogr. 1997. V.785. P.49-55.

256. Rovio S., Hartonen K., Holm Y., Hiltunen R., Riekkola M.-L. Extraction of clove using pressurized hot water // Flavour Fragr. J. 1999. V.14. P.399-404.

257. Eikani M. H., Golmohammad F., Mirza M., Rowshanzamir S. Extraction of volatile oil from cumin (Cuminum cyminum L.) with superheated water // J. Food Process Eng. 2007. V.30. P.255-266.

258. Eikani M. H., Golmohammad F., Rowshanzamir S. Subcritical water extraction of essential oils from coriander seeds (Coriandrum sativum L.) // J. Food Eng. 2007. V.80. №2. P.735-740.

259. Li-Hsun C., Ya-Chuan C., Chieh-Ming C. Extracting and purifying isolavones from defatted soybean lakes using superheated water at elevated pressures // Food Chem. 2004. V.84. P.279-285.

260. Sereewatthanawut S., Prapintip S., Watchiraruji K., Goto M., Sasaki M., Shotipruk A. Extraction of protein and amino acids from deoiled rice bran by subcritical water hydrolysis // Bioresour. Technol. 2008. V.99. №3. P.555-561.

261. Jimenez-Carmona M. M., de Castro L.M. D. Isolation of eucalyptus essential oil for GC-MS analysis by extraction with subcritical water // Chromatographia. 1999. V.50. P.578-582.

262. Ho C.H.L., Cacace J.E., Mazza G. Extraction of lignans, proteins and carbohydrates from flaxseed meal with pressurized low polarity water // LWT-Food Sci. Technol. 2007. V.40. P.1637-1647.

263. Anekpankul T., Goto M., Sasaki M., Pavasant P., Shotipruk A. Extraction of anti-cancer damnacanthal from roots of Morinda citrifolia by subcritical water // Sep. Pur. Tech. 2007. V.55. P.343-349.

264. Kubatova A., Lagadec A.J.M., Miller D.J., Miller S.B. Selective extraction of oxygenates from savory and peppermint using subcritical water // Flavour Fragr. J. 2001. V.16. P.64-75.

265. Moldoveanu S.C., David V. Solvent Extraction in Sample Preparation in Chromatography. Amsterdam: Elsevier, 2002. - P.322-327.

266. Hartonen K., Meissner G., Kesala T. Pressurized Hot Water Extraction (PHWE) of n-Alkanes and Polyaromatic Hydrocarbons (PAHs): Comparison for PAHs with Supercritical Fluid Extraction // J. Microcolumn Sep. 2000. V.12. P.412-418.

267. Yang Y., Bowadt S., Hawthorne S.B. Subcritical Water Extraction of Polychlorinated Biphenyls from Soil and Sediment // Anal. Chem. 1995. V.67. P.4571-4576.

268. Curren, M.S.S., King, J.W. Solubility of triazine pesticides in pure and modified subcritical water// Anal. Chem. 2001. V.73. P.740-745.

269. Herrero M., Cifuentes A. Sub- and supercritical fluid extraction of functional ingredients from different natural sources: plants, food by-products, algae and microalgae // Food Chem. 2006. V.98. P.136-148.

270. Тимофеев Н.П. Достижения и проблемы в области изучения, использования и прогнозирования биологической активности экдистероидов // Бутлеровские сообщения. 2006. Т.8. №2. С.7-35.

271. Ong E.S., Cheong J.S.H., Goh D. Pressurized hot water extraction of bioactive or marker compounds in botanicals and medicinal plant materials // J. Chromatogr. A. 2006. V.1112. №1-2. P.92-102.

272. Куркин B.A. Фармакогнозия. // Учебник для студентов фармацевтических вузов (факультетов). 2-е издание. Самара: Изд-во ООО «Форт», 2007. -1239 С.

273. Другов Ю.С., Зенкевич И.Г., Родин А.А. Газохроматографическая идентификация загрязнений воздуха, воды, почвы и биосред.// Практическое руководство. 2-ое издание перераб. и дополн. М.: Бином. Лаборатория знаний, 2005. - С. 12-34.

274. Столяров Б.В., Савинов Н.М., Витенберг А.Г. и др. // Практическая газовая и жидкостная хроматография. / Учебное пособие.- СПб: Изд-во С.Петербург. ун-та, 1998 С. 232-253.

275. Зенкевич И.Г. Нетрадиционные критерии хроматографической и хромато-масс-спектрометрической идентификации органических соединений. // Журн. аналит. химии, 1998. Т. 53. №8. - С. 828-835.

276. Gazcia М.А., Sanz J. Analysis of origanum vulgare by direct thermal desorption coupled to gas chromatography mass spectrometry. // J. Cromatogr. A., 2001. 918. P. 189-194.

277. Карасек Ф., Клемент Р. Введение в хромато-масс-спектрометрию. Пер. с англ. М: Мир, 1993. - 237 С.

278. ЗМ.Баффингтон Р. Применение атомно-эмиссионной спектроскопии в высокочастотном разряде для газовой хроматографии. Пер. с англ. М.: Мир, 1994.-78 С.

279. Гольберт K.A., Вигдергауз M.C. Введение в газовую хроматографию. М.: Химия, 1990.-352 с.

280. Высокоэффективная газовая хроматография/ Под ред. К. Хайвер. М.: Мир, 1993.-288 с.

281. Колб Б. Газовая хроматография с примерами и иллюстрациями / пер. с нем. под ред. J1.A. Онучак, 2-е изд., перераб. и доп. Самара: изд-во «Самарский университет», 2007. - 247 с.

282. Яшин Я.И., Яшин Е.Я., Яшин А.Я. Газовая хроматография. М.: Изд-во «ТрансЛит», 2009. 528 с.

283. Арутюнов Ю.И., Вигдергауз М.С. Аппаратурно-методическая реализация некоторых специфических особенностей хроматографии // Журн. аналит. химии, 1994. Т.49. №8. С.796-803.

284. Арутюнов Ю.И., Курбатова С.В., Платонов И.А., Кудряшов С.Ю., Медведева М.Э. Способ определения мольных коэффициентов чувствительности детекторов по теплопроводности и ионизации пламени. Патент РФ № 2137123 от 10.09.1999.

285. Арутюнов Ю.И., Онучак Л.А., Кудряшов С.Ю., Гузенко О.Г. Хроматографический способ определения молекулярной массы. Патент РФ № 2145709 от 20.02.2000.

286. Арутюнов Ю.И., Онучак Л.А., Кудряшов С.Ю. Газохроматографическнй анализ смесей, содержащих неизвестные компоненты. Определение молекулярной массы // Журн. аналит. химии, 2004. Т.59. №4. С.1-9.

287. Арутюнов Ю.И., Кудряшов С.Ю., Онучак Л.А. Газохроматографическнй анализ смесей, содержащих неизвестные компоненты. Определение температуры кипения // Сорбционные и хроматографические процессы, 2005. Т.5. №4. С.578-589.

288. Берёзкин В.Г., Лощилова В.Д., Панков А.Г., Ягодовский В.Д. Хромато-распределительный метод. М.: Наука, 1976. - 112 с.

289. Рабинович В.А., Хавин З.Я. Краткий химический справочник. Изд-е 2-ое, испр. и доп. М.: Химия, 1978. - 392 с.

290. Мс Reynolds W.O. Gas chromatographic retention Data. Evanston. PRESTON Technical organic compounds. Eds. Pacokova V., Felte L. Ellis Harwood, Ltd., 1992.-285 p.

291. Вигдергауз М.С., Семенченко Л.В., Езрец В.А., Богословский Ю.Н. Качественный газохроматографический анализ. M.: «Наука», 1978. -244 с.

292. Кочетова М.В., Семенистая E.H., Ларионов О.Г., Ревина A.A. Определение биологически активных фенолов и полифенолов в различных объектах методами хроматографии // Успехи химии, 2007. Т.76. Вып. 1. С.88-100.

293. Зилфикаров И.Н., Челомбитько В.А., Алиев A.M. Обработка лекарственного растительного сырья сжиженными газами и сверхкритическими флюидами. Пятигорск, 2006. - 243 с.

294. Волоцуева A.B. Фитохимическое исследование по созданию гепатопротекторных лекарственных средств на основе плодов расторопши пятнистой: атореферат диссертации .кандидата фармацевтических наук / СамГМУ Самара, 2004. - 22 с.

295. Государственная фармакопея СССР. XI издание. Москва: Медицина, 1991. Выпуск 2. С. 147-148.

296. Куркин В.А., Лебедев A.A., Авдеева Е.В. Спопосб получения экстракта расторопши пятнистой. Патент РФ №2102999 от 07.09.1996. // Бюл. изобр. №10 от 27.01.1998.

297. G. Tittel, H. Wagner. Hochleistungsflüssigchromatographie von Silymarinen. II. Quantitative Bestimmung von Silymarin aus Silybum marianum durch Hochleistungsflüssigchromatographie // J. Chromatogr. 1978. Vol. 158. P. 227-232.

298. Минахметов P.A., Онучак Л.А., Куркин B.A., Авдеева E.B., Волоцуева A.B. Анализ флавоноидов в плодах Silybum marianum методом высокоэффективной жидкостной хроматографии // Химия природных соединений. 2001. Т. 37. №4. С. 318-321.

299. Дёрффель К. Статистика в аналитической химии / Пер. с нем. М.: Мир, 1994.

300. ГОСТ Р ИСО 5725-2002 Точность (правильность и прецизионность) методов и результатов измерений.