Одновременное определение полярных пестицидов различных классов в водах и почвах методом капиллярного электрофореза тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 02.00.02, кандидат химических наук Большаков, Дмитрий Сергеевич

• Большаков, Дмитрий Сергеевич
• кандидат химических наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат химических наук Большаков, Дмитрий Сергеевич

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ПРИМЕНЕНИЕ КАПИЛЛЯРНОГО ЭЛЕКТРОФОРЕЗА ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПЕСТИЦИДОВ В ОБЪЕКТАХ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ И ПРОДУКТАХ ПИТАНИЯ обзор литературы).

1.1. Способы пробоподготовки при определении пестицидов методом КЭ.

1.1.1. Способы off-line извлечения и концентрирования.

1.1.2. Способы on-line концентрирования.

1.2. Способы разделения.

1.2.1. Капиллярный зонный электрофорез.

1.2.2. Мицеллярная электрокинетическая хроматография.

1.2.3. Капиллярная электрохроматография.

1.2.4. Другие способы разделения.

1.3. Способы детектирования.

1.3.1. Детектирование в УФ- и видимой части спектра.

1.3.2. Масс-спектрометрическое детектирование.

1.3.3. Детектирование с лазерно-индуцированной флуоресценцией.

1.3.4. Другие способы детектирования.

1.4. Преимущества и недостатки КЭ при определении пестицидов.

ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ.

ГЛАВА 3. ВЫБОР УСЛОВИЙ ЭЛЕКТРОФОРЕТИЧЕСКОГО РАЗДЕЛЕНИЯ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ ПЕСТИЦИДОВ И ИХ

КОМБИНАЦИЙ.

3.1. Производные феноксикарбоновых кислот.

3.2. Ош-триазины.

3.3. Производные триазинона и хлорацетамиды.

3.4. Производные мочевины.

3.5. Неоникотиноиды.

3.6. Производные триазола.

3.7. Производные имидазола и карбаматы.

3.8. Производные бензимидазола.

3.9. Фосфорорганические соединения.

3.10. Глифосат, глуфосинат и аминометилфосфоновая кислота.

3.11. Разделение смеси пестицидов различных классов.

3.12. Общие закономерности выбора условий электрофоретического разделения полярных пестицидов.

3.13. Выводы к главе 3.

ГЛАВА 4. ПРОБОПОДГОТОВКА ПРИ ОПРЕДЕЛЕНИИ ПЕСТИЦИДОВ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ В ВОДЕ И ПОЧВЕ.

4.1. Подготовка проб природных, питьевых и грунтовых вод.

4.1.1. Твердофазная экстракция при определении смеси гербицидов, фунгицидов и инсектицидов различных классов.

4.1.2. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция при определении смеси гербицидов, фунгицидов и инсектицидов различных классов.

4.1.3. Дисперсионная жидкостно-жидкостная микроэкстракция при определении гербицидов и их метаболитов с on-line концентрированием.'

4.2. Подготовка проб почвы с использованием метода QuEChERS.

4.3. Выводы к главе 4.

ГЛАВА 5. ПРАКТИЧЕСКОЕ ПРИМЕНЕНИЕ КАПИЛЛЯРНОГО ЭЛЕКТРОФОРЕЗА ДЛЯ ОДНОВРЕМЕННОГО ОПРЕДЕЛЕНИЯ

ПЕСТИЦИДОВ РАЗЛИЧНЫХ КЛАССОВ.

5.1. Определение пестицидов в природных, питьевых и грунтовых водах методом капиллярного электрофореза.

5.1.1. Определение отдельных классов полярных пестицидов в природных водах с применением твердофазной экстракции.

5.1.2. Определение 30-ти полярных пестицидов в природных водах с применением твердофазной экстракции и дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции.

5.1.3. Определение 17-ти гербицидов и их метаболитов в природных водах с применением дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции.

5.2. Определение пестицидов в почвах.

5.3. Выводы к главе 5.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Одновременное определение полярных пестицидов различных классов в водах и почвах методом капиллярного электрофореза»

Актуальность работы. Наряду с использованием единичных пестицидов в сельском хозяйстве часто применяются их различные смеси. Комбинированные пестициды позволяют одновременно уничтожать сорняки, вредителей и болезни, и являются важным резервом повышения биологической и экономической эффективности химических средств защиты растений. Известно, что применение комбинаций небольших доз двух или более пестицидов может обеспечить такую же биологическую эффективность и длительность действия, как и обработка большой дозой более токсичного препарата. Однако, расширение одновременного использования пестицидов различных классов приводит к заметному загрязнению почвы, грунтовых, поверхностных, питьевых вод и сельскохозяйственной продукции.

Для определения остаточных количеств пестицидов в объектах окружающей среды используют в основном газовую и высокоэффективную жидкостную хроматографию. Эти методы требуют длительной подготовки проб с использованием токсичных растворителей и характеризуются сложностью и, в большинстве случаев, высокой ценой применяемой аппаратуры.

Более доступным и экспрессным методом определения пестицидов в последнее время стал метод капиллярного электрофореза (КЭ), основанный на различии в скоростях движения ионов в электрическом поле в зависимости от величины заряда и ионного радиуса. В сравнении с хроматографическими методами его отличает высокая эффективность, высокое разрешение, малый объем пробы, возможность автоматизации, низкая себестоимость и экологичность анализа. Анализ публикаций показывает, что обычно разрабатывают методики определения либо единичных пестицидов, либо пестицидов одного класса и недостаточно изучается их взаимное влияние на разделение и определение при совместном присутствии в объекте, а также безопасным способам их извлечения и концентрйрования.

Целью данной работы явилась разработка подходов одновременного определения полярных пестицидов различных классов в объектах окружающей среды методом капиллярного электрофореза в сочетании с твердофазной экстракцией, дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракцией и методом QuEChERS.

Достижение поставленной цели предусматривало решение следующих задач:

• установление возможности определения и оптимизация условий электрофоретического разделения основных классов полярных пестицидов;

• выбор оптимальных условий электрофоретического разделения смеси гербицидов, фунгицидов и инсектицидов при совместном присутствии;

• изучение влияния состава и концентрации ведущего электролита, наличия модификаторов электроосмотического потока (ЭОП) на электрофоретическое поведение пестицидов;

• оптимизация условий твердофазной экстракции (ТФЭ) и дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции (ДЖЖМЭ) для извлечения и концентрирования пестицидов из питьевых, природных и грунтовых вод;

• оптимизация условий подготовки проб по методу QuEChERS (Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged and Safe - быстрый, простой, дешевый, эффективный, точный и надежный) для извлечения, концентрирования пестицидов и очистки экстрактов почв.

Научная новизна. Исследовано электрофоретическое поведение основных классов пестицидов (феноксикарбоновых кислот (ФКК), сим-триазинов, триазинонов, хлорацетамидов, карбаматов, неоникотиноидов, фосфорорганических соединений (ФОС), производных триазола, производных мочевины, производных бензимидазола, производных имидазола), используемых в различных коммерческих препаратах.

Изучены возможности мицеллярной электрокинетической хроматографии (МЭКХ) при разделении полярных пестицидов и их смесей: 1) сгш-триазинов, МЦПА, диурона, метолахлора, линурона; 2) триазинонов, хлорацетамидов, хлоридазона; 3) производных мочевины, хлоридазона, симазина, атразина, цимоксанила, дикамбы, прометрина, прохлораза; 4) неоникотиноидов, 6-хлорникотиновой кислоты; 5) производных триазола, тиабендазола, тирама, имазалила, прохлораза; 6) имидазолов; 7) карбаматов; 8) бензимидазолов, тирама, тебуконазола; 9) фосфорорганических пестицидов.

Показана возможность электрофоретического разделения смеси гербицидов, фунгицидов и инсектицидов (метамитрона, имидаклопирда, пиразона, симазина, триасульфурона, тиофанат-метила, тиабендазола, имазетапира, метсульфурон-метила, трибенурон-метила, имазапира, атразина, десметрина, дикамбы, 2,4-Д, флуометурона, карбарила, флутриафола, хлортолурона, 6-хлорникотиновой кислоты, малатиона, триадименола, диурона, тидиазурона, триадимефона, тритиконазола, линурона, ципроконазола, хлорбромурона, диазинона, пропиконазола, имазалила, эпоксиконазола, тебуконазола, пенконазола, пиримифос-метила, прохлораза, диниконазола и дифеноконазола) методом МЭКХ.

Оценено влияние различных факторов на эффективность электрофоретического разделения пестицидов: состав и концентрация ВЭ, наличие модификаторов ЭОП и их природа. Установлено значительное увеличение селективности разделения аналитов в МЭКХ при введении в состав ведущего электролита ион-парного реагента фосфата тетрабутиламмония (ТБА). Исследованы возможности поверхностно-активных веществ различной природы, формирующих мицеллярную «псевдостационарную» фазу, и их смесей при разделении пестицидов в режиме электрокинетической хроматографии.

Предложен вариант on-line концентрирования 17-ти гербицидов и их метаболитов (бромацила, галоксифопа, флуазифопа, МЦПБ, 2,4-ДМ, 2-(4-хлорфенокси)-2-метилпропионовой кислоты, 2,4,5-Т, фенопропа, мекопропа, дихлорпропа, триклопира, МЦПА, 2,4-Д, бентазона, пиклорама, дикамбы, клопиралида) в режиме капиллярного зонного электрофореза (КЗЭ) с использованием стэкинга с большим объемом пробы и переключением полярности.

Установлена возможность применения ДЖЖМЭ для извлечения и концентрирования полярных пестицидов различных классов при совместном присутствии из природных, питьевых и грунтовых вод с использованием трихлорметана в качестве экстрагирующего растворителя.

Установлена возможность применения метода QuEChERS для извлечения пестицидов различных классов из почвы с последующим электрофоретическим разделением.

Изучена зависимость времен миграции пестицидов в вариантах КЗЭ и МЭКХ от констант кислотности рКа, растворимости в воде и основных органических растворителях. Установлено решающее значение кислотно-основных и гидрофобных свойств аналитов при их разделении с использованием электрофореза в свободном растворе и мицеллярной «псевдостационарной» фазы соответственно.

Практическая значимость. Разработаны методики определения:

• основных классов пестицидов (ФКК, сгш-триазинов, триазинонов, хлорацетамидов, карбаматов, неоникотиноидов, ФОС, производных триазола, производных мочевины, производных бензимидазола и имидазола) и их смесей методом капиллярного электрофореза в сочетании с ТФЭ в природных, питьевых и грунтовых водах;

• 30-ти полярных пестицидов различных классов при их совместном присутствии в природных водах методом МЭКХ в сочетании с ТФЭ и ДЖЖМЭ;

• 17-ти гербицидов и их метаболитов в природных водах методом КЗЭ в сочетании с ДЖЖМЭ и on-line концентрированием;

• 27-ми пестицидов (метамитрона, имидаклопирда, пиразона, симазина, тиабендазола, имазапира, атразина, десметрина, дикамбы, 2,4-Д, флуометурона, карбарила, флутриафола, малатиона, триадименола, тидиазурона, диурона, тритиконазола, линурона, ципроконазола, диазинона, имазалила, тебуконазола, пенконазола, прохлораза, диниконазола, дифеноконазола) в почве методом МЭКХ в сочетании с подготовкой проб по методу QuEChERS.

На защиту выносятся:

• особенности электрофоретического разделения пестицидов различных классов и их смесей;

• данные по оптимизации условий экстракции, концентрирования и очистки экстрактов проб природных вод методами ТФЭ, ДЖЖМЭ при определении полярных пестицидов;

• данные по оптимизации условий экстракции, концентрирования и очистки экстрактов проб почв методом QuEChERS при определении полярных пестицидов;

• условия и результаты определения полярных пестицидов в питьевых, природных, грунтовых водах и почвах.

Личный вклад автора заключался в разработке подходов и проведении экспериментальных исследований сорбционных и электрохроматографических процессов, участии в разработке методик анализа, интерпретации и обработке результатов эксперимента, формулировании научных положений и выводов.

Апробация работы. Основные результаты работы доложены на VIII региональной студенческой научной конференции с международным участием «Фундаментальные науки - специалисту нового века» (Иваново, 2010), Всероссийской конференции «Аналитическая хроматография и капиллярный электрофорез» (Краснодар, 2010), международных конференциях студентов и аспирантов по фундаментальным наукам «Ломоносов — 2011», «Ломоносов — 2012», «Ломоносов - 2013» (Москва, МГУ), XIX Менделеевском съезде по общей и прикладной химии (Волгоград, 2011), III Всероссийском симпозиуме «Разделение и концентрирование в аналитической химии и радиохимии» (Краснодар, 2011), Всероссийских конференциях молодых ученых, аспирантов и студентов с международным участием «Менделеев-2011», «Менделеев-2012» (Санкт-Петербург, СПбГУ), конференции «Методы анализа и контроля качества воды» (Москва, 2012), «36th International Symposium on Capillary th

Chromatography» (Riva del Garda, Italy, 2012), «7 European Conference on Pesticides and Related Organic Micropollutants in the Environment» and the «13th Symposium on Chemistry and Fate of Modern Pesticides» (Porto, Portugal, 2012), «Annual MGPR Meeting 2012 and the International Conference on Food Health Safety» (Belgrade, Serbia, 2012).

Публикации. По теме диссертационной работы опубликовано 18 работ: 5 статей в центральной печати и 13 тезисов докладов.

Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на 217 страницах, включая введение, 5 глав, выводы, список литературы (246 источников) и три приложения. Работа содержит 48 рисунков и 46 таблиц.

Заключение диссертации по теме «Аналитическая химия», Большаков, Дмитрий Сергеевич

ВЫВОДЫ

1. Проведено электрофоретическое разделение основных классов полярных пестицидов (феноксикарбоновых кислот, сим-триазинов, триазинонов, хлорацетамидов, производных мочевины, триазола, имидазола (имидазолинона), бензимидазола, карбаминовой кислоты (карбаматов), неоникотиноидов, фосфорорганических соединений) и смеси пестицидов различных классов при их совместном присутствии методом КЭ. Высокая эффективность разделения и чувствительность определения достигается оптимизацией состава ведущего электролита, в том числе наличием модификаторов ЭОП (ион-парных, макроциклических реагентов, органических растворителей), его концентрации, используемой температуры, внутреннего диаметра и эффективной длины капилляра.

2. Установлена и охарактеризована зависимость времен миграции пестицидов различных классов и их смесей от кислотно-основных и гидрофобных свойств при разделении методами КЗЭ и МЭКХ. Для МЭКХ полученные экспериментальные данные согласуются с рассчитанными значениями упрощенного критерия гидрофобности.

3. Установлена возможность использования и выбраны оптимальные условия дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции и метода РиЕСЫЖБ для извлечения и концентрирования смесей наиболее распространенных полярных пестицидов из поверхностных, питьевых, грунтовых вод и почв. Изучено влияние основных параметров подготовки проб на степени извлечения аналитов.

4. Предложены методики одновременного определения 30-ти полярных пестицидов (метамитрона, имидаклоприда, пиразона, симазина, имазетапира, тиабендазола, имазапира, атразина, десметрина, дикамбы, 2,4-Д, флуометурона, карбарила, флутриафола, хлортолурона, малатиона, триадименола, тидиазурона, диурона, тритиконазола, линурона, ципроконазола, хлорбромурона, диазинона, имазалила, тебуконазола, пенконазола, прохлораза, диниконазола, дифеноконазола) в поверхностных и грунтовых водах после концентрирования их методом дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции и твердофазной экстракции на концентрирующих патронах Oasis® HLB Зсс/60 mg с последующим разделением методом МЭКХ. Пределы определения (объем пробы - 10 мл) варьируются от 0,8 до 20 мкг/л при использовании ТФЭ и от 2 до 22 мкг/л при использовании ДЖЖМЭ. Коэффициенты концентрирования составили от 42 до 112 и от 45 до 92 при использовании ТФЭ и ДЖЖМЭ соответственно. Проведено сравнение используемых методов экстракции по затратам реагентов, времени и материалов.

5. Разработана методика определения 17-ти гербицидов и их метаболитов (бентазона, бромацила, 2-(4-хлорофенокси)-2-метилпропионовой кислоты, клопиралида, 2,4-Д, 2,4-ДМ, дикамбы, дихлорпропа, фенопропа, флуазифопа, галоксифопа, МЦПА, МЦПБ, мекопропа, пиклорама, 2,4,5-Т и триклопира) в природных водах, сочетающая использование жидкостно-жидкостной микроэкстракции с диспергированием растворителя и стэкинга с большим объемом пробы, переключением полярности и КЗЭ-разделением. Пределы определения (объем пробы - 10 мл) варьируются от 0,5 до 3,0 мкг/л при использовании внутрикапиллярного концентрирования. Коэффициенты концентрирования аналитов составили от 67 до 129.

6. Предложена методика определения 27-ми полярных пестицидов при их совместном присутствии в почве после извлечения, концентрирования и очистки экстрактов по методу QuEChERS. Пределы определения (масса пробы - 10,0 г) пестицидов составили от 0,01 до 0,42 мг/кг. Степень извлечения пестицидов 31-104 %.

Список литературы диссертационного исследования кандидат химических наук Большаков, Дмитрий Сергеевич, 2013 год

1. Meiring H.D., den Engelsman G., de Jong A.P.J.M. Determination of polar pesticides by phase-transfer catalysed derivatization and negative-ion chemical ionization gas chromatography-mass spectrometry // J. Chromatogr. 1993. V. 644. P. 357-365.

2. Ortelli D., Edder P., Corvi C. Multiresidue analysis of 74 pesticides in fruits and vegetables by liquid chromatography-electrospray-tandem mass spectrometry // Anal. Chim. Acta. 2004. V. 520. P. 33-45.

3. Van der Hoff G. R., Van Zoonen P. Trace analysis of pesticides by gas chromatography // J. Chromatogr. A. 1999. V. 843. P. 301-322.

4. Hogendoorn E., Van Zoonen P. Recent and future developments of liquid chromatography in pesticide trace analysis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 892. P. 435-453.

5. Simo C., Barbas C., Cifiientes A. Capillary electrophoresis-mass spectrometry in food analysis // Electrophoresis. 2005. V. 26. P. 1306-1318.

6. Eash D.T., Bushway RJ. Herbicide and plant growth regulator analysis by capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 880. P. 281-294

7. Kumar A., Malik A.K., Pico Y. Sample preparation methods for the determination of pesticides in foods using CE-UV/MS // Electrophoresis. 2010. V. 31. P. 2115-2125.

8. Комарова H.B., Каменцев Я.С. Практическое руководство по использованию систем капиллярного электрофореза «Капель». СПб. ООО «Веда». 2006. 212 с.

9. Беленький Б.Г., Белов Ю.В., Касалайнен Г.Е. Высокоэффективный капиллярный электрофорез в экологическом мониторинге // Журн. аналит. химии. 1996. Т. 51. № 8. С. 817-834.

10. Руководство по капиллярному электрофорезу / под ред. A.M. Волошука; Научный совет РАН по хроматографии. М., 1996. 111 с

11. Руденко Б.А. Высокоэффективные хроматографические процессы / Б.А. Руденко, Г.И. Руденко. В 2-х томах. М.: Наука, 2003. 287 С.

12. Москвин JI.H. Методы разделения и концентрирования в аналитической химии / JI.H. Москвин, Л.Г. Царицына. Л.: Химия, 1991. 256 С.

13. Kaltsonoudis C.K., Lamari F.N., Prousalis K.P., Karamanos N.K., Tsegenidis T. Analysis of carbendazim and thiabendazole in lemons by CE-DAD // Chromatographic 2003. V. 57. P. 181-184.

14. Penmetsa K.V., Leidy R.B., Shea D. Analysis of primisulfuron and triasulfuron in water and soil samples by micellar electrokinetic capillary chromatography // J. Chromatogr. A. 1997. V. 766. P. 225-231.

15. Malik A.K., Seidel B.S., Faubel W. Capillary electrophoretic determination of ferric dime-thyldithiocarbamate as iron(III) chelate of EDTA // J. Chromatogr. A. 1999. V. 857. P. 365-368.

16. Goodwin L., Startin J.R., Keely B.J., Goodall D.M. A nalysis of glyphosate and glufosinate by capillary electrophoresis mass spectrometry utilising a sheathless microelectrospray interface // J. Chromatogr. A. 2003. V. 1004. P. 107-119.

17. Chang S.Y., Tseng W.L., Mallipattu S., Chang H.T. Determination of small phosphorus-containing compounds by capillary electrophoresis // Talanta. 2005. V. 66. P. 411-421.

18. Klein C., Schneider R.J., Meyer M.T., Aga D.S. Enantiomeric separation of metolachlor and its metabolites using LC-MS and CZE // Chemosphere. 2006. V. 62. P. 1591-1599.

19. Perez-Ruiz T., Martínez-Lozano C., Sanz A., Bravo E. Determination of organophosphorus pesticides in water, vegetables and grain by automated SPE and MEKC // Chromatographia. 2005. V. 61. P. 493-498.

20. Boyce M. Determination of additives and organic contaminants in food by CE and CEC // Electrophoresis. 2007. V. 28. P. 4046-4062.

21. Garcia-Canas V., Cifuentes A. Recent advances in the application of capillary electromigration methods for food analysis // Electrophoresis. 2008. V. 29. P. 210-2125.

22. Acedo-Valenzuela M.I., Galeano-Diazl T., Mora-Diez N., Silva-Rodriguez A. Determination of neutral and cationic herbicides in water by micellar electrokinetic capillary chromatography // Anal. Chim. Acta. 2004. V. 519. P. 65-71.

23. Frías S., Sanchez M.J., Rodriguez M.A. Determination of triazine compounds in ground water samples by micellar electrokinetic capillary chromatography // Anal. Chim. Acta. 2004. V. 503. P. 271-278.

24. Hinsmann P., Arce L., Rios A., Valcarcel M. Determination of pesticides in waters by automatic on-line solid-phase extraction capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 866. P. 137-146.

25. Nunez O., Moyano E., Galceran M.T. Solid-phase extraction and sample stacking-capillary electrophoresis for the determination of quaternary ammonium herbicides in q drinking water // J. Chromatogr. A. 2002. V. 946. P. 275-282.

26. He Y., Lee H.K. Combination of solid-phase extraction and field-amplified concentration for trace analysis of organonitrogen pesticides by micellar electrokinetic chromatography // Electrophoresis. 1997. V. 18. P. 2016-2041.

27. Corbera M., Hidalgo M., Salvado V., Wieczorek P.P. Determination of glyphosate and aminomethylphosphonic acid in natural water using the capillary electrophoresis combined with enrichment step // Anal. Chim. Acta. 2005. V. 540. P. 3-7.

28. Cikalo M.G., Goodall D.M., Matthews W. Analysis of glyphosate using capillary electrophoresis with indirect detection // J. Chromatogr. A. 1996. V. 745. P. 189-200.

29. Cabala R., Frank H. Polypyrrole-coated capillaries for capillary zone electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2005. Y. 1079. P. 344-348.

30. Juan-Garcia F., Font G., Pico Y. Quantitative analysis of six pesticides in fruits by capillary electrophoresis-electrospray-mass-spectrometry // Electrophoresis. 2005. V. 26. P. 1550-1561.

31. Комарова H.B., Карцова JI.A. Оптимизация условий разделения гербицидов класса хлорфеноксикарбоновых кислот в природных и питьевых водах методом капиллярного зонного электрофореза // Журн. аналит. химии. 2002. Т. 57. №7. С. 766.

32. Komarova N.V., Kartsova L.A. Determination of herbicides of the chlorophenoxycarboxylic acid type in natural and drinking water by capillary zone electrophoresis // Russian J. Applied Chem. 2003. V. 76. P. 238-243.

33. Pico Y., Rodnrguez R., Manes J. Capillary electrophoresis for the determination of pesticide residues// Trends Anal. Chem. 2003. V. 22. P. 133-151.

34. Da Silva C.L., de Lima E.C., Tavares M.F.M. Investigation of preconcentration strategies for the trace analysis of multi-residue pesticides in real samples by capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2003. V. 1014. P. 10-116.

35. Juan-García A., Pico Y., Font G. Capillary electrophoresis for analyzing pesticides in fruits and vegetables using solid-phase extraction and stir-bar sorptive extraction // J. Chromatogr. A. 2005. V. 1073. P. 229-236.

36. Khrolenko M., Dzygiel P., Wieczorek P. Determination of glyphosate in water samples with the combination of cation-exchange chromatography and capillary electrophoresis // Ars Separatoria Acta. 2003. V. 2. P. 56-63.

37. Hinsmanna P., Arceb L., Riosb A., Valcarcelb M. Determination of pesticides in waters by automatic on-line solid-phase extraction capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 866. P. 137-146.

38. Крылов B.A., Крылов A.B., Мосягин П.В., Маткивская Ю.О. Жидкофазное микроэкстракционное концентрирование примесей // Журн. аналит. химии. 2011. Т. 66. №4. С. 341-360.

39. Lambropoulou D.A., Albanis Т.А. Liquid-phase micro-extraction techniques in pesticide residue analysis // J. Biochem. Biophys. Methods. 2007. V. 70. P. 195228.

40. Xie H.Y., He Y.Z., Gan W.E., Fu G.N., Li L., Han F., Gao Y. On-column liquid-liquid-liquid microextraction coupled with base stacking as a dual preconcentration method for capillary zone electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2009. V. 1216. P. 3353-3359.

41. Dzygiel P., Wieczorek P. Extraction of glyphosate by a supported liquid membrane technique // J. Chromatogr. A. 2000. V. 889. P. 93-98.

42. Almeda S., Nozal L., Arce L., Valcarcel M. Direct determination of chlorophenols present in liquid samples by using a supported liquid membrane coupled in-line with capillary electrophoresis equipment // Anal. Chim. Acta. 2007. V. 587. P. 97-103.

43. Hernandez-Borges J., Frias-Garcia S., Cifiientes A., Rodríguez-Delgado M.A. Pesticide analysis by capillary electrophoresis // J. Sep. Sei. 2004. V. 27. P. 947963.

44. Eisert R., Pawliszyn J. Automated in-tube solid-phase microextraction coupled to high-performance liquid chromatography // Anal. Chem. 1997. V. 69. P. 3140-3147

45. Lord H., Pawliszyn J. Evolution of solid-phase microextraction technology // J. Chromatogr. A. 2000. V. 885. P. 153-193.

46. Gou Y., Eisert R., Pawliszyn J. Automated in-tube solid-phase microextraction-high-performance liquid chromatography for carbamate pesticide analysis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 873. P. 137-147.

47. Kataoka H., Lord H.L., Pawliszyn J. Applications of solid-phase microextraction in food analysis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 880 P. 35-62

48. Ravelo-Perez L.M., Hernandez-Borges J., Borges-Miquel T.M., Rodríguez-Delgado M.A. Pesticide analysis in tomatoes by solid-phase microextraction and micellar electrokinetic chromatography // J. Chromatogr. A. 2008. V. 1185. P. 151-154.

49. Frias-Garcia S., Sanchez M.J., Rodriguez-Delgado M.A. Optimization of a solid-phase microextraction procedure for the determination of herbicides by micellar electrokinetic chromatography // J. Sep. Sci. 2004. V. 27. P. 660-666.

50. Rodriguez R., Manes J., Pico Y. Off-line solid-phase microextraction and capillary electrophoresis mass spectrometry to determine acidic pesticides in fruits // Anal. Chem. 2003. V. 75. P. 452-459.

51. Nemoto S., Lehotay S.J. Analysis of multiple herbicides in soybeans using pressurized liquid extraction and capillary electrophoresis // J. Agrie. Food Chem. 1998. V. 46. P. 2190-2199.

52. Lanças F.M., Rissato S.R., Galhiane M.S. Off-line SFE-CZE analysis of carbamates residues in tobacco samples // Chromatographia. 1996. V. 42. P. 323-328.

53. Paleólogos E.K., Giokas D.L., Karayannis M.I. Micelle-mediated separation and cloud-point extraction // Trends Anal. Chem. 2005. V. 24 (5). P. 426-436.

54. Carabias-Martinez R., Rodríguez-Gonzalo E., Domínguez-Alvarez J., Hernandez-Mendez J. Cloud point extraction as a preconcentration step prior to capillary electrophoresis // J. Anal. Chem. 1999. V. 71. P. 2468-2474.

55. Карцова JI.A., Бессонова E.A. Методы концентрирования в капиллярном электрофорезе // Журн. аналит. химии. 2009. Т. 64. № 4. С. 340-351.

56. Simpson S.L., Quirino J.P., Terabe S. On-line sample preconcentration in capillary electrophoresis fundamentals and applications // J. Chromatogr. A. 2008. V. 1184. P. 504-541.

57. Quirino J.P., Terabe S. Sample stacking of cationic and anionic analytes in capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2000. V. 902. P. 119-135.

58. Kim J.B., Terabe S. On-line sample preconcentration techniques in micellar electrokinetic chromatography // J. Pharm. Biomed. Analysis. 2003. V. 30. P. 1625-1643.

59. Qin W., Li S.F.Y. Determination of chlorophenoxy acid herbicides by capillary electrophoresis with integrated potential gradient detection // Electrophoresis. 2003. V. 24. P. 2174-2179.

60. Kruaysawat J., Marriott P.J., Hughes J., Trenerry C. Large-volume stacking with polarity switching and sweeping for chlorophenols and chlorophenoxy acids in capillary electrophoresis // Electrophoresis. 2003. V. 24. P. 2174-2179.

61. Quesada-Molina C., Olmo-Iruela M., Garcia-Campana A.M. Trace determination of sulfonylurea herbicides in water and grape samples by capillary zone electrophoresis using large volume sample stacking // J. Anal. Bioanal. Chem. 2010. V. 397. P. 2593-2601.

62. Turiel E., Fernandez P., Perez-Conde C., Camara C. On-line concentration in micellar electrokinetic chromatography for triazine determination in water samples: evaluation of three different stacking modes // J. Analyst. 2000. V. 125. P. 1725-1731.

63. Ravelo-Perez L.M., Hernandez-Borges J., Cifuentes A., Rodríguez-Delgado M.A. MEKC combined with SPE and sample stacking for multiple analysis of pesticides in water samples at the ng/1 level // Electrophoresis. 2007. V. 28. V. 1805-1814.

64. Juan-Garcia A., Pico G.Y. On-line preconcentration strategies for analyzing pesticides in fruits and vegetables by micellar electrokinetic chromatography // J. Chromatogr. A. 2007. V. 1153. P. 104-113.

65. Quirino J.P., Inoue N., Terabe S. Reversed migration micellar electrokinetic chromatography with off-line and on-line concentration analysis of phenylurea herbicides // J. Chromatogr. A. 2000. V. 892. P. 187-194.

66. Hernandez-Borges J., Rodríguez-Delgado M., Garcia-Montelongo F .J., Cifuentes A. Analysis of pesticides in soy milk combining solid-phase extraction and capillary electrophoresis mass spectrometry // J. Sep. Sci. 2005. V. 28. P. 948-956

67. Susse H., Muller H. Pesticide analysis by micellar electrokinetic capillary chromatography // J. Chromatogr. A. 1996. V. 730. P. 337-343

68. Lin C.E., Liu Y.C., Yang T.Y., Wang T.Z., Yang C.C. On-line concentration of s-triazine herbicides in micellar electrokinetic chromatography using a cationic surfactant//J. Chromatogr. A. 2001. V. 916. 239-245.

69. Ibrahim W.A.W., Alam S.M.M., Sulaiman A. Harnessing electro driven separation technique for the separation of selected agrochemicals // Malaysian J. Anal. Sci. 2008. V. 12. P. 39-45.

70. ГОСТ P 52730-2007 Вода питьевая. Методы определения содержания 2,4-Д.

71. Spagone С., D'Orazio С., Rossi M., Rotilio D. Separàtion of chlorophenoxy acid herbicides by capillary zone electrophoresis // J. High Resol. Chromatogr. 1996. V. 19. P. 647-650.

72. Aguilar M., Farran A., Marti V. Analysis of phenoxyalkyl acid herbicides and chlorophenols by capillary zone electrophoresis // J. Sci. Total. Envir. 1993. V. 132. P. 133-140.

73. Shinji T., Hiroya H.,Musaru M., Masaharu E., Minoru T. Separation of phenoxy acid herbicides by capillary electrophoresis using a mixture of hexakis(2,3-di-0-methyl)- and sulfopropyletuer-a-cyclodextrins // J. Analyt. Sci. 2000. V. 16. P. 991-993.

74. Santilio A., Cataldi L., Dommarco R. Development of a capillary zone electrophoresis method to determine 2-methyl-4-chlorophenoxyacetic acid in a plant protection product// Int. J. Envir. Health. 2009. V. 3. № 2. P. 214-223.

75. Farran A., Serra C., Sepaniak M. J. Three different approaches for the separation of MCPA and 2,4-D by capillary electrophoresis// J. Chromatogr. A. 1999. V. 835. P. 209-215.

76. Cserhati T., Forgacs E. Phenoxyacetic acids: separation and quantitative determination (Review) // J. Chromatogr. B. 1998. V. 717. P. 157-178.

77. Nielen M.W.F. Enantio-separation of phenoxy acid herbicides using capillary zone electrophoresis // Chromatographia. 1993. V. 637. V. 81-90.

78. Garrison A.W., Schmitt P., Kettrup A. Separation of phenoxy acid herbicides and their enantiomers by high-performance capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 1994. V. 688. P. 317-327.

79. Schmitt Ph., Garrison A.W., Freitag D., Kettrup A. Separation of s-triazine herbicides and their metabolites by capillary zone electrophoresis as a function of pH // J. Chromatogr. A. 1996. V. 723. P. 169-177.

80. Lin C.E., Wang T.Z., Huang H.C., Hsueh C.C., Liu Y.C. Capillary zone electrophoretic separation of neutral species of chloro-s-triazines in the presence of cationic surfactant monomers // J. Chromatogr. A. 2000. V. 878. P. 137-145.

81. Karcher A., Rassi Z.E. Capillary electrophoresis and electrochromatography of pesticides and metabolites // Electrophoresis. 1999. V. 20. P. 3280-3296.

82. Galceran M.T., Carneiro M.C., Diez M., Puignou L. Separation of quaternary ammonium herbicides by capillary electrophoresis with indirect UV detection // J. Chromatogr. A. 1997. V. 782. P. 289-295.

83. Wu Y.S., Lee H.K., Li S.F. High-performance chiral separation of fourteen triazole fungicides by sulfated beta-cyclodextrin-mediated capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 2001. V. 912. P. 171-179.

84. Chicharro M., Moreno M., Bermejo E., Ongay S., Zapardiel A. Determination of amitrole and urazole in water samples by capillary zone electrophoresis using simultaneous UV and amperometrical detection // J. Chromatogr. A. 2005. V. 1099. P. 191-197.

85. Chicharro M., Zapardiel A., Bermejo E., Moreno M. Determination of 3-amino-1,2,4-triazole (amitrole) in environmental waters by capillary electrophoresis // Talanta. 2003. V. 59. P. 37-45.

86. Castelnovo P., Albanesi C. Separation of the four stereoisomers of Z11556A, intermediate in the synthesis of triazole antimycotics, by capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 1996. V. 741. P. 123-130.

87. Wu Y.S., Lee H.K., Li S.F. Simultaneous chiral separation of triadimefon and triadimenol by sulfated beta-cyclodextrin-mediated capillary electrophoresis // Electrophoresis. 2000. V. 21(8). P. 1611-1619.

88. Komada S., Saito Y., Chinaka S., Yamamoto A., Hayakawa K. Chiral capillary electrophoresis of agrochemicals in real samples // J. Health Sci. 2006. V. 52. P. 489-494.

89. Hickes H., Watrous M. Multiresidue method for determination of sulfonylurea herbicides in water by liquid chromatography with confirmation by capillary electrophoresis // J. AOAC Int. 1999. V. 82. P. 1523-1533.

90. Menne H.J., Janowitz K., Berger B.M. Comparison of capillary electrophoresis and liquid chromatography for determination of sulfonylurea herbicides in soil // J. AOAC Int. 1999. V. 82. P. 1534-1541.

91. Berger B.M., Wolfe N.L. Multiresidue determination of sulfonylurea herbicides by capillary electrophoresis for hydrolysis studies in water and sediments // Fresenius. J. Anal. Chem. 1996. V. 356. P. 508-511.

92. Chen Z.L., Kookana R.S., Naidu R. Determination of sulfonylurea herbicides in soil extracts by solid-phase extraction and capillary zone electrophoresis // Chromatographia. 2000. V. 52. P. 142-146.

93. Dinelli G., Vicari A., Catizone P. Use of capillary electrophoresis for detection of metsulfii-ron and chlorsulfuron in tap water // J. Agric. Food Chemi. 1993. V. 41. P. 742-746.'

94. Krynitsky A.J., Swineford D.M. Determination of sulfonylurea herbicides in grains by capil-lary electrophoresis // J. AOAC Int. 1995. V. 78. P. 1091-1096.

95. Chang S.Y., Wei M.-Y. Simultaneous determination of glyphosate, glufosinate, and aminomethylphosphonic acid by capillary electrophoresis after 9-fluorenylmethyl chloroformate derivatization // J. Chinese Chem. Soc. 2005. V. 52. P. 785-792.

96. Tomita M., Okuyama T., Nigo Y., Uno B., Kawai S. Determination of glyphosate and its metabolite, (aminomethyl)phosphonic acid, in serum using capillary electrophoresis //J. Chromatogr. 1991. V. 571. P. 324-330.

97. Safarpour H., Asiaie R. Determination of glyphosate as cross-contaminant in a commercial herbicide by capillary electrophoresis-electrospray ionization-mass spectrometry // Electrophoresis. 2005. V. 26. P. 1562-1566.

98. Goodwin L., Hanna M., Startin J.R., Keelya B.J., Goodall D.M. Isotachophoretic separation of glyphosate, glufosinate, AMPA and MPP with contactless conductivity detection // J. Analyst. 2002. V. 127. P. 204-206.

99. Wuilloudl R.G., Shah M., Kannamkumarath S.S., Altamiranol J.C. The potential of inductively coupled plasma-mass spectrometric detection for capillary electrophoretic analysis of pesticides // Electrophoresis. 2005. V. 26. 1598-1605.

100. Orejuela E., Silva M. Rapid and sensitive determination of phosphoruscontaining amino acid herbicides in soil samples by capillary zone electrophoresis with diode laser-induced fluorescence detection // Electrophoresis. 2005. V. 26. 4478-4485.

101. Chiu H.Y., Lin Z.Y., Tu H.L., Whang C.W. Analysis of glyphosate and aminomethylphosphonic acid by capillary electrophoresis with electrochemiluminescence detection // J. Chromatogr. A. 2008. V. 1177. P. 195198.

102. Shen J., Tong J., Jiang H., Rao Q., Li N., Guo L., Ding S. Simultaneous determination of five benzimidazoles in feeds using high-performance capillary electrophoresis // J. AOAC Int. 2009. V. 92(4). P. 1009-1015.

103. Rodriguez R., Boyer I., Font G., Pico Y. Capillary zone electrophoresis for the determination of thiabendazole, prochloraz and procymidone in grapes // Analyst. 2001. V. 126. P. 2134-2138.

104. Rodriguez R., Pico Y., Font G., Manes J. Analysis of thiabendazole and procymidone in fruits and vegetables by capillary electrophoresis-electrospray mass spectrometry // J. Chromatogr. A. 2002. V. 949. P. 359-366.

105. Kodama S., Yamamoto A., Ohura T., Matsunaga A., Kanbe T. Enantioseparation of imazalil residue in orange by capillary electrophoresis with 2-Hydroxypropyl-P-cyclodextrin as a chiral selector // J. Agric. Food Chem. 2003. V. 51 (21). P. 6128-6131.

106. Eash D.T., Bushway R.J. Determination of thiabendazole in fruits and vegetables by capil-lary electrophoresis // J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2000. V. 23. P. 261-272.

107. Safarpour H., Asiaie R., Katz S. Quantitative analysis of imazamox herbicide in environmental water samples by capillary electrophoresis electrospray ionization mass spectrometry // J. Chromatogr. A. 2004. V. 1036. P. 217-222.

108. Lanças F.M., Rissato S.R., Galhiane M.S. Analysis of carbaryl and carbofuran in tobacco samples by HRGC, HPLC, and CZE // J. High Resol. Chromatogr. 1996. V. 19. P. 200-206.

109. Yu L., Qin W., Li S.F.Y. Ionic liquids as additives for separation of benzoic acid and chlorophenoxy acid herbicides by capillary electrophoresis // Anal. Chim. Acta. 2005. V. 547. P. 165-171.

110. Song X., Budde W.L. Determination of chlorinated acid herbicides and related compounds in water by capillary electrophoresis-electrospray negative ion mass spectrometry // J. Chromatogr. A. 1998. V. 829. P. 327-340.

111. Pappas T.J., Gayton-Ely M., Holland L.A. Recent advances in micellar electrokinetic chromatography // Electrophoresis. 2005. V. 26. P. 719-734.

112. Lucio M., Schmitt-Kopplin P. Modeling the binding of triazine herbicides to humic substances using capillary electrophoresis // J. Environ. Chem. Lett. 2006. V. 4. P. 15-21.

113. Komarova N.V., Kartsova L. A. Determination of s-triazine herbicides by micellar electrokinetic chromatography using sodium dodecyl sulfate // J. Analyt. Chem. 2002. V. 58. № 8. P. 785-789.

114. Freitag D., Schmitt-Kopplin P., Simon R., Kaune A., Kettrup A. Interactions of hydroxy-s-triazines with sodium dodecyl sulfate-micelles investigated by micellar capillary electrophoresis // Electrophoresis. 1999. V. 20 (7). P. 15681577.

115. Dinelli G., Vicari A., Bonetti A., Catizone P. Comparison of capillary electrophoresis, HPLC, and enzyme immunoassay for terbuthylazine detection in water // J. Agrie. Food Chem. 1995. V. 43 (4). P. 951-955.

116. Desiderio C., Fanali S. Atrazine and simazine determination in river water samples by micellar electrokinetic capillary chromatography // Elecrophoresis. 1992. V. 13. P. 698-700.

117. Kang S.H., Shin D.H., Chang Y.S. Quantitative analysis of seven triazine herbicides by on-line micellar electrokinetic chromatography-electrospray ionization mass spectrometry // J. Bull. Korean Chem. Soc. 2003. V. 24. No. 9. P. 1319-1323.

118. Frias S., Sanchez M.J., Rodriguez M.A. Determination of triazine compounds in ground water samples by micellar electrokinetic capillary chromatography // J. Anal. Chim. Acta. 2004. V. 503. P. 271-278.

119. Wu Q., Claessens H.A., Cramers C.A. The separation of herbicides by micellar electrokinetic capillary chromatography // Chromatographia. 1992. V. 34. P. 25-30.

120. Penmetsa K.V., Leidy R.B., Shea D. Herbicide analysis by micellar electrokinetic capillary chromatography // J. Chromatogr. A. 1996. V. 745. P. 201-208.

121. Jung I. M., Brumley W.C. Trace analysis of fluorescein-derivatized phenoxy acid herbicides by micellar electrokinetic chromatography with laser-induced fluorescence detection // J. Chromatogr. A. 1995. V. 717. P. 299-308.

122. Dinelli G., Vicaria A., Brandolinib V. Detection and quantitation of sulfonylurea herbicides in soil at the ppb level by capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 1995. V. 700. P. 201-207.

123. Dinelli G., Vicari A., Bonetti A. Separation of sulfonylurea metabolites in water by capillary electrophoresis // J. Chromatogr. A. 1995. V. 700. P. 195-200.

124. Rodriguez R., Picy Y., Font G., Maces J. Determination of urea-derived pesticides in fruits and vegetables bysolid-phase preconcentration and capillary electrophoresis //Electrophoresis. 2001 V. 22. P. 2010-2016.

125. Wu Y.Sh., Lee H.K., Li S.F.Y. A fluorescence detection scheme for capillary electrophoresis of N-methylcarbamates with on-column thermal decomposition and derivatization // Anal. Chem. 2000. V. 72. P. 1441-1447.

126. Ibrahim W.A.W., Alam S.M. M., Sulaiman A. Separation of organophosphorus pesticides using micellar electrokinetic chromatography // J. Teknologi. 2003. V. 38. P. 51-60.

127. Tao Y., Wang Y., Ye L., Li H., Wang Q. Simultaneous determination of omethoate and dichlorvos by capillary electrophoresis // J. Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2008. V. 81. P. 210-215.

128. Chen Q., Fung Y. Capillary electrophoresis with immobilized quantum dot fluorescence detection for rapid determination of organophosphorus pesticides in vegetables // Electrophoresis. 2010. V. 31. P. 3107-3114.

129. Liu C.M., Tong C.S., Tzeng Y.M. Quantitetive analysis of biological and chemical insecticide mixture by capillary electrophoresis // J. Liq. Chrom. Rel. Technol. 2002. V. 25. P. 3213-3225.

130. Liu C.M., Tzeng Y.M. Quantitative analysis of thuringiensin by micellar electrokinetic capillary chromatography // J. Chromatogr. A. 1998. V. 809. P. 258-263.

131. Schmitt P., Garrison A.W., Freitag D., Kettrup A. Application of cyclodextrin-modified micellar electrokinetic chromatography to the separations of selected neutral pesticides and their enantiomers // J. Chromatogr. A. 1997. V. 792. P. 419-429.

132. Wu Y.S., Lee H.K., Li S.F. Simultaneous chiral separation of triadimefon and triadimenol by sulfated beta-cyclodextrin-mediated capillary electrophoresis // Electrophoresis. 2000. V. 21(8). P. 1611-1619

133. Ibrahim W.A.W., Hermawan D., Sanadi M.M., Aboul-Enein H.Y. Cycdodextrin-modified MEKC for enantioseparation of hexaconazole, penconazole, and myclobutanil // J. Sep. Sci. 2009. V. 32 (3). P. 466-471.

134. Ibrahim W.A.W., Hermawan D., Sanadi M.M. On-line preconcentration and chiral separation of propiconazole by cyclodextrin-modifid micellar electrokinetic chromatography // J. Chromatogr. A. 2007. V. 1170. P. 107-113.

135. Zhang W., Zhu Ch. Separation of uniconazole by enantiomers capillary electrophoresis with dual cyclodextrin systems // Canadian J. Anal. Sci. Spectr. 2004. P. 277-281.

136. Molina M., Silva M. In-capillary derivatization and analysis of amino acids, amino phosphonic acid-herbicides and biogenic amines by capillary electrophoresis with laser-induced fluorescence detection // Electrophoresis. 2002. V. 23. P. 2333-2340.

137. Jiang J., Lucy C.A. Determination of glyphosate using off-line ion exchange preconcentration and capillary electrophoresis-laser induced fluorescence detection // Talanta. 2007. V. 72. P. 113-118.

138. Wu Y.S., Lee H.K, Li S.F.Y. Determination of carbendazim residues in grains by solid-phase extraction and micellar electrokinetic chromatography with ultraviolet detection // J. Chromatogr. Sci. 1997. V. 35. P. 513-518.

139. Wu Y.S., Lee H.K., Liz S.F.Y. Rapid estimation of octanol-water partition coefficients of pesticides by micellar electrokinetic chromatography // Electrophoresis. 1998. V. 19. P. 1719-1727.

140. Juan-Garcia A., Pico Y., Font G. Capillary electrophoresis for analyzing pesticides in fruits and vegetables using solid-phase extraction and stir-bar sorptive extraction // J. Chromatogr. A. 2005. V. 1073. P. 229-236.

141. Bagheri H., Saraji M., Barcelo D. Evaluation of polyaniline as a sorbent for SPE of a variety of polar pesticides from water followed by CD-MEKC-DAD // Chromatographia. 2004. V. 59. P. 283-289.

142. Pretorius V., Hopkins B.J., Schieke J.D. Electroosmosis: A new concept for high-speed liquid chromatography // Chromatographia. 1974. V. 99. P. 23-30.

143. Хмельницкий И.К., Карцова JI.A. Капиллярная электрохроматография (обзор) // Сорбц. и хроматогр. процессы. 2007. Т. 7. С. 917-925.

144. Wu W., Wu Y., Zheng M., Yang L., Wu X., Lin X., Xie Z. Pressurized capillary electrochromatography with indirect amperometric detection for analysis of organophosphorus pesticide residues // J. Analyst. 2010. V. 135. P. 2150-2156.

145. De Rossi A., Desiderio C. Application of reversed phase short end-capillary electrochromatography to herbicides residues analysis // Chromatographia. 2005. V. 61. P. 271-275.

146. Yang C., Rassi Z.E. Electrically driven microseparation methods for pesticides and metabolites. II. On-line and off-line preconcentration of urea herbicides in capillary electrochromatography // Electrophoresis. 1999. V. 20. P. 2337-2342.

147. Cacho C., Schweitz L., Turiel E., Perez-Conde C. Molecularly imprinted capillary electrochromatography for selective determination of thiabendazole in citrus samples // J. Chromatogr. A. 2008. V. 1179. P. 216-223.

148. Wu X., Wang L., Xie Z., Lu J., Yan C., Yang P., Chen G. Rapid separation and determination of carbamate insecticides using isocratic elution pressurized capillary electrochromatography // Electrophoresis. 2006. V. 27.'P. 768-777.

149. Ye F., Xie Z., Wu X., Lin X. Determination of pyrethroid pesticide residues in vegetables by pressurized capillary electrochromatography // Talanta. 2006. V. 69. P. 97-102.

150. Sannino A., Bandini M., Bolzoni L. Determination of pyrethroid pesticide residues in processed fruits and vegetables by gas chromatography with electron capture and mass spectrometric detection // J. AO AC Int. 2003. V. 86 (1). P. 101-108.

151. Niewiadowska A., Kiljanek T., Semeniuk S., Zmudzki J. Determination of pyrethroid residues in meat by gas chromatography with electron capture detection // Bull. Vet. Inst. Pulawy. 2010. V. 54. P. 595-599.

152. Sahota R.S., Khaledl M.G. Nonaqueous capillary electrophoresis // J. Anal. Chem. 1994. V. 66. 1141-1146.

153. Liu H, Song J, Han P, Li Y, Zhang S, Liu H, Wu Y. Source separation and determination of 2,4-D, dicamba and 2,4,5-T in tobacco by nonaqueous capillary electrophoresis // J. Sep. Sci. 2006. V. 29 (7). P. 1038-1044.

154. Luong J.H.T., Hilmi A., Nguyen A.L. Nonaqueous capillary electrophoresis equipped with amperometric detection for analysis of chlorinated phenolic compounds // J. Chromatogr. A. 1999. V. 864. P. 323-333.

155. Карцова JI.А., Ганжа O.B., Хмельницкий И.К. Факторы, влияющие на разделение полифенолов, стероидных гормонов и витаминов в режиме микроэмульсионной электрокинетической хроматографии // Сорбц. и хроматогр. процессы. 2009. Т. 9. Вып. 1. С. 33-41.

156. Watarai H., Ogawa К., Abe M., Monta T., Takahashi I. Capillary electrophoresis with O/W microemulsions water/SDS/l-butanol/heptane // Analyt. Sci. 1991. V. 7. P. 245-248.

157. Klotz W.L., Schure M.R., Foley J.P. Determination of octanol-water partition coefficients of pesticides by microemulsion electrokinetic chromatography // J. Chromatogr. A. 2001. V. 930. P. 145-154.

158. Walker P.A., Shaver J.M., Morris M.D. Identification of cationic herbicides in deionized water, municipal tap water, and river water by capillary isotachophoresis/on-line raman spectroscopy // Appliad Spectroscopy. 1997. V. 51 (9). P. 1394-1399.

159. Simonet B.M., Rios A., Valcarcel M. Enhancing sensitivity in capillary electrophoresis // Trends Anal. Chem. 2003. V. 22 (10). P. 605-614.

160. Font G., Ruiz M.J., Fernandez M., Pico Y. Application of capillary electrophoresis-mass spectrometry for determining organic food contaminants and residues // Electrophoresis. 2008. V. 29. P. 2059-2078.

161. Gassman E., Kuo J.E., Zare R.N. Electrokinetic Separation of Chiral Compounds // Science. 1985. V. 230. P. 813-814.

162. Справочник по пестицидам /Н.Н. Мельников, К.В. Новожилов, С.Р. Белан, Т.Н. Пылова. М.: Химия, 1985. 352 с.

163. ГОСТ 30710-2001. «Плоды, овощи и продукты их переработки. Методы определения остаточных количеств фосфорогранических пестицидов».

164. Проблемы аналитической химии. Методы анализа пестицидов. М.: Наука, 1972. Т. 2. 135 с.

165. Баранников В.Д., Кириллов Н.К. Экологическая безопасность сельскохозяйственной продукции. М.: Колос, 2005. 352 с.

166. Аврамова Ю. Б., Васильев К. Р. Определение глифосата и аминометилфосфоновой кислоты в воде методом высокоэффективной жидкостной хроматографии // Журн. аналит. химии. 1992. Т. 47. С. 388391.

167. Карцова JI.A., Сидорова А.А., Ганжа О.В. Определение катехоламинов и их метаболитов в различных режимах капиллярного электрофореза с использованием макроциклических и ион-парных реагентов // Сорбц. и хроматогр. процессы. 2008. Т. 8. Вып. 1. С. 75-82.

168. Nishi Н., Terabe S. Micellar electrokinetic chromatography. Perspectives in drug analysi // J. Chromatogr. A. 1996. V. 735. P. 3-27.

169. Карцова JI.A., Ганжа О.В. Новые возможности мицеллярной и микроэмульсионной электрокинетической хроматографии при определении катехинов и катехоламинов в природных объектах // Журн. аналит. хим. 2010. Т. 65. № 3. С. 285-291.

170. Шатц В.Д. Высокоэффективная жидкостная хроматография: Основы теории. Методология. Применение в лекарственной химии / В.Д. Шатц, О.В. Сахартова. Рига. «Зинатне». 1988. 390 с.

171. Другов Ю.С. Пробоподготовка в экологическом анализе / Ю.С. Другов, А.А. Родин. Санкт-Петербург. «Анатолия». 2002. 755 с.

172. Hennion М.С. Solid-phase extraction: method development, sorbents, and coupling with liquid chromatography // J. Chromatogr. A. 1999. V. 856. P. 3-54.

173. Asensio-Ramos M., Ravelo-Perez L.M., Gonzalez-Curbelo M.A., Hernandez-Borges J. Liquid phase microextraction applications in food analysis // J. Chromatogr. A. 2011. V. 1218. P. 7415-7437.

174. Rezaee M., Yamini Y., Faraji M. Evolution of dispersive liquid-liquid microextraction method//J. Chromatogr. A. 2010. V. 1217. P. 2342-2357.

175. Schenck F.J., Hobbs J.E. Evaluation of the Quick, Easy, Cheap, Effective, Rugged, and Safe (QuEChERS) Approach to Pesticide Residue Analysis // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 2004. V. 73. № 1. P. 24-30.

176. Wilkowska A., Biziuk M. Determination of pesticide residues in food matrices using the QuEChERS methodology // Food Chem. 2011. V. 125. P. 803-812.

177. Фомин Г.С. Вода. Контроль химической, бактериальной и радиационной безопасности по международным стандартам. М.: Протектор, 2000. 848 с.

178. Loos R., Locoro G., Contini S. Occurrence of polar organic contaminants in the dissolved water phase of the Danube River and its major tributaries using SPE-LC-MS2 analysis // Water Res. 2010. V. 44. P. 2325.

179. Клисенко M.A., Калинина А.А., Новикова К.Ф., Хохолькова Г.A. // Методы определения микроколичеств пестицидов в продуктах питания, кормах и внешней среде. М.: Колос, 1992. Т.2. 567 с.

180. ГН 1.2.2701-10 «Гигиенические нормативы содержания пестицидов в объектах окружающей среды (перечень)».