Научное обоснование системы управления сорным компонентом агрофитоценоза на сельскохозяйственных угодьях в разных агроклиматических регионах тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.01.01, доктор наук Заргар Мейсам

• Заргар Мейсам
• доктор наук
• 2022

Оглавление диссертации доктор наук Заргар Мейсам

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Научная идея эволюции флоры сорных растений в системе выращивания сельскохозяйственных культур

1.2 Изучение сорных растений, их видового состава и динамики в сельскохяйственных системах

1.3 Потеря урожая из-за различных сорных растений

1.4 Эффективность методов защиты в уменьшении обилия сорняков на посевных площадях

1.5 Подходы, направленные на предотвращение толерантности сорняков к гербицидам

1.6 Контроль сорняков рода Cyperus rotundus с использованием плёночной мульчи

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1 Применение довсходовых и послевсходовых гербицидов для борьбы с сытью круглой (Cyperus rotundus) с помощью мульчирования плёнкой урожая томатов в Иране

2.2 Применение адъювантов для улучшения эффективности глифосата в воде и снижения уровня засолённости почв

2.3 Реакция кукурузы, устойчивой к циклоксидиму, на химические методы борьбы с сорняками в Иране

2.4 Изучение эффективности довсходовых и послевсходовых гербицидов на примере трёх сортов нута

2.5 Исследование эффективности влияния покровной культурой (мульчирование) ржи на сорняки и урожайность кукурузы (Zea mays L.)

2.6 Определение эффективных норм внесения послевсходовых гербицидов нового поколения (POST) в борьбе с доминирующими видами сорняков на юге России

2.6.1 Применение послевходовых гербицидов на пшенице мягкой (Triticum aestivum) для борьбы с бодяком полевым (Cirsium arvense L.)

2.6.2 Программы по применению послевсходовых гербицидов с использованием трибенурона для борьбы с подмаренником цепким (Galium aparine L.) на примере сортов озимой пшеницы

2.6.3 Применение послевсходовых гербицидов для борьбы с амарантом запрокинутым (Amaranthus retroflexus L.) на озимой пшенице на юге России

2.6.4 Эффективность схем контроля мари белой (Chenopodium album L.) на юге России

2.7 Оценка обеспечения желательной стратегии химической борьбы с ядовитым многолетним сорняком вьюнком полевым (Convolvulus arvensis): реакция на программы применения баковых смесей гербицидов в Московской области

2.8 Эффективность применения сниженных доз гербицидов и биологических компонентов на озимой пшенице при различных технологиях выращивания

2.8.1 Характеристики полевых экспериментов

2.8.2 Разнообразие сорных растений на экспериментальном поле

2.9 Биологическая и экономическая эффективность гербицидов в сочетании с биологическими агентами

2.10 Определение оптимальной нормы гербицида для подавления доминирующих сорняков на озимой пшенице в Московской области

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

3.1 Изучение эффективности гербицидов до и после высадки растений для устойчивого контроля над сытью круглой (Cyperus rotundus) в системе выращивания томатов в плёночной культуре в Иране (Карадж )

3.1.1 Количество сыти круглой, обработанной гербицидами в томатах плёночной культуре в Иране(Карадж)

3.2 Визуальные повреждения плодов томатов по пленочной культуре, вызванные обработкой гербицидами в районе Карадж

3.3 Эффективность влияния довсxодовыx и послевсxодовыx гербицидов на урожайность томатов плёночной культуры в районе Карадж

3.4 Повышение эффективности глифосата с использованием адъювантов для борьбы с бассией веничной (Kochia scoparia L.) при засолении воды и почвы

3.4.1 Исследование реакции бассии на концентрацию глифосата

3.5 Оценка влияния нескольких адъювантов на эффективность глифосата в борьбе с бассией при засолении почвы

3.6 Оценка влияния нескольких адъювантов на эффективность глифосата в борьбе с бассией в условиях засоления вод

3.7 Исследование программ химической борьбы с сорняками для кукурузы, устойчивой к циклоксидиму (СТМ) в восточном Иране (Мешхед)

3.7.1 Доминирующее сообщество сорняков на экспериментальной территории во время исследований

3.7.2 Плотность сорняков и биомасса сорняков через 15, 30 и 45 дней после экспериментальных обработок

3.7.3 Урожайность зерна и биомасса кукурузы под влиянием применения экспериментальных обработок

3.8. Оценка влияния довсходовых (PRE) и послевсходовых (POST) гербицидов на особенности роста, популяцию и фиксацию азота трех сортов нута (Cicer aritinium L)

3.8.1 Изучение влияния различных действующих веществ довсходовых и послевсходовых гербицидов на проявление морфологических характеристик, содержание азота в побегах и корнях трех сортов нута

3.8.2 Реакция трех сортов нута С482, Hashem и Kaka) на программы предварительного и последующего применения гербицидов

3.9 Стратегия мульчирования для борьбы с сорняками: биологическое обоснование подавления сорняков и улучшении в системе земледелия

3.9.1 Производство биомассы ржи для подавления сорняков на кукурузных полях

3.9.2 Производство урожая кукурузы под влиянием "мульчирования" покровной культурой ржи

3.10. Изучение видового состава сорняков пшеницы с целью определения эффективных норм применения послевсходовых гербицидов нового поколения для подавления доминирующих видов сорняков на юге России

3.10.1 Анализ результатов проведения гербицидной обработки яровой пшеницы(Triticum aestivum) на юге России для контроля роста бодяка полевого (Cirsium arvense L.)

3.10.2 Подавление бодяка полевого и реакция пшеницы яровой («Мягкий фаворит») по программе послевсходовых гербицидов в Центральной равнинной зоне Дагестана

3.10.3 Подавление бодяка полевого и реакция пшеницы яровой («Л503») по программе послевсходовых гербицидов в Центральной равнинной зоне Дагестана

3.10.4 Программы анализа послевсходовых гербицидов на основе Трибенурона для истребления подмаренника цепкого (Galium aparine L.) в посевах различных сортов озимой пшеницы

3.10.5 Влияние послевсходовых гербицидов на засоренность подмаренником цепким (Galium aparine), на посевах пщеницы сортов "Краснодар 99" и "Герда" в Южной и Центральной равнинных зонах Дагестана

3.10.6 Влияние баковых смесей послевсходовых гербицидов на урожайность зерна пшеницы в Южной (сорт пшеницы «Краснодар 99») и Центральной (сорт пшеницы «Герда») равнинных зонах Дагестана

3.10.7 Влияние послевсходовых гербицидов на популяцию амаранты запрокинутой (Amaranthus retroflexus L.) на озимой пшенице в Южной равнинной зоне Дагестана

3.10.8 Реакция озимой пшеницы и паслена обыкновенного (Chenopodium album L.) на применение некоторых активных ингредиентов сульфонилмочевины

3.11. Улучшение борьбы с вьюнком полевым (Convolvulus arvensis) в Московской области на посевах пшеницы

3.11.1 Реакция полевого вьюнка (Convolvulus arvensis) и урожайности зерна пшеницы на применение баковых смесей послевсходовых гербицидов

3.12. Эффективность гербицидов на озимой пшенице при различных технологиях возделывания в условиях Московской области

3.12.1 Доминирующие сорняки, более всего подвергшиеся действию экспериментальных обработок биологическими препаратами в сочетании с уменьшенными дозами гербицидов

3.12.2 Реакция пшеницы, ее компонентов урожайности и свойств на применение сниженных доз гербицидов в сочетании с биологическим препаратом

3.12.3 Биологическая эффективность применения гербицидов в сочетании с биологическими препаратами на опытном поле с посевами озимой пшеницы

3.12.4 Реакция сорняков на различные дозы гербицидов при контролируемых условиях

3.12.5 Биологическая эффективность гербицида "Вердикт" в сочетании с биологическими компонентами на озимой пшенице

3.12.6 Оценка биологической, хозяйственной и энергетической эффективности гербицида в зависимости от применяемых доз

3.12.7 Сравнительная оценка эффективности изученных гербицидов при различных технологиях возделывания

3.12.8 Экономическая эффективность использования различных норм расхода гербицида Вердикт в комплексе с биопрепаратами

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Научное обоснование системы управления сорным компонентом агрофитоценоза на сельскохозяйственных угодьях в разных агроклиматических регионах»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность исследований. В настоящее время потери при производстве продукции сельскохозяйственных культур от сорняков превосходят совокупные потери от болезней и вредителей вместе взятые и составляют около 20-25% на зерновых, более 50% на пропашных и овощных культурах. Ежегодно засоренность основных культур в РФ возрастает, к наиболее вредоносным относятся щирица запрокинутая (Amaranthus retroflexus L.), пастушья сумка (Capsella bursa-pastoris), подмаренник цепкий (Galium apparine L.), гречишка вьюнковая (Fallopia convolvulus), овсюг обыкновенный (Avena fatua L.), вьюнок полевой (Convulvolus arvensis). Ухудшение фитосанитарной обстановки в агрофитоценозах вызвано рядом причин, среди которых увеличение площади пустующих полей, отсутствие севооборотов, неправильная обработка почвы.

Традиционная система защиты растений, основанная на чередовании культур в севообороте в комплексе с другими агротехническими приемами, часто бывает недостаточна эффективна в силу многих экономических, экологических и социальных причин. В настоящее время в качестве основного метода борьбы с сорными растениями предпочтение отдаётся химическим методам, которые имеют целый ряд негативных последствий. Следовательно, использование нехимических стратегий в системах возделывания сельскохозяйственных культур абсолютно неоходимо.

Исходя из всего этого, представляется необходимым усовершенствовать подходы и методы снижения численности наиболее инвазивных, а также обычных сорных растений на основных сельскохозяйственных культурах в различных природно-экономических регионах. Решение данной задачи для различных агроэкологических зон

Ирана, Южной и Нечерноземной зон России является основой данного исследования и определяет его актуальность.

Степень разработанности проблемы. Многочисленные исследования по изучению наиболее опасных сорняков на посевах сельхозкультур указывают на слабую эффективность защитных мероприятий. Исследованиями вредоносности сорняков и болезней на пропашных и овощных культурах занимались Zakharenko V.A.; Strizhkov N. I.; Dudkin I.V.; Dolzhenko V.I.; Spiridonov Yu.Ya.; Ogariova и др.

Наиболее полный обзор видового разнообразия сорных растений в различные периоды представлен в работах A.I. Maltsev (1936), V.V. Nikitin (1983), T.N. Ulyanova (2005). В разное время в условиях Поволжья этим вопросом занимались S.A. Cott (1961), B.M. Smirnov (1989), L.V. Bagmet (1995), V.I. Morozov (1999), V.B. Lebedev (2007), N.N. Haircuts (2007).

Исследования показали, что видовое разнообразие и вредоносность сорных растений сильно варьирует по регионам России в зависимости от различий в почвенном покрове, климатических, хозяйственных и экономических условий. На юге нечерноземной зоны были проведены наиболее значимые исследования такими учеными, как I.I. Sprygin, P.K. Kuzmin, R.M. Balabaeva, A.V. Ivoilov, T.F. Zaychikova и др. В большинстве остальных работах исследование засоренности агрофитоценозов носило фрагментарный характер и зачастую являлось лишь составной частью других широкомасштабных исследований. В то же время требуется более детальное изучение видового разнообразия и вредоносности сорных растений и разработка мер эффективного контроля. Таким образом, на сегодняшний день нет научно-обоснованной оценки антропогенного воздействия на агрофитоценозы в части динамики видового и количественного разнообразия сорных растений. Недостаток информации по сорнякам формировался годами. Не много можно встретить исследований об использовании паров в системе защитных мероприятий. Слабо изучены вопросы аллелопатии,

химического состава и порога вредоносности доминирующих сорных растений. Многие методы интегрированной защиты сельскохозяйственных культур от наиболее вредоносных сорняков требуют прояснения и совершенствования.

Цель исследования - совершенствование элементов системы контроля сорных растений в посевах сельскохозяйственных культур и обоснование возможности биологизации и экологизации мер борьбы с ними в разных агроклиматических зонах Ирана и России. Задачи исследования.

-проанализировать ассортимент используемых гербицидов; -определить вредоносность многолетних инвазивных сорняков (подмаренники, бодяк полевой, вьюнок полевой, сыть круглая) и оценить эффективность фитоцинотических и химических методов контроля;

- определить биологическую эффективность гербицидов в борьбе с сорной растительностью (Stelaria media, Viola arvensis и Poaceae);

- изучить влияние обработок на непатогенные объекты;

- изучить видовой состав доминирующих сорняков на посевах озимой пшеницы и кукурузе для определения наиболее эффективных норм расхода гербицидов нового поколения;

- изучить эффективность различных технологий возделывания, таких как базовая, интенсивная, высокоинтенсивная с различными уровнями применения удобрений и средств защиты и определить их влияние на урожайность озимой пшеницы и экономическую эффективность выращивания культуры;

- подобрать научно-обоснованный ассортимент гербицидов и разработать схемы использования их в пониженных дозах в сочетании с прилипателями;

- определить вредоносность различных видов сорных растений и разработать комплекс фитоцинотических, агротехнических и химических мер по снижению их вредоносности в посевах озимой пшеницы и кукурузы;

- определить фитотоксичность и биологическую эффективность некоторых довсходовых и послевсходовых гербицидов, их влияние на биометрические показатели, клубнеобразование;

- определить эффективность существующих мер контроля наиболее опасных многолетних сорняков (Canada thistle, Cleavers и Field bindweed), а также степень устойчивости различных сортов яровой и озимой пшеницы к обработке баковыми смесями послевсходовых гербицидов;

- оценить эффект различных добавок к применяемому глифосату для контроля бассии веничной (Kochia scoparia L.), одного из наиболее опасных сорняков на полях Ирана (Машхад) в условиях засоления;

- определить оптимальную норму высева и время уборки озимой ржи, используемой в качестве покровной культуры для подавления сорняков и повышения урожайности кукурузы при применении мульчи в системе защитных мероприятий;

- изучить возможность снижения норм расхода гербицида Вердикт и его влияние на количественные и качественные показатели урожая озимой пшеницы;

- определить экономическую эффективность систем контроля сорных растений в посевах озимой пшеницы;

- подобрать комбинацию довсходовых и послевсходовых гербицидов для эффективного контроля сыти при выращивании томатов с использованием полиэтиленовой мульчи.

Рабочая гипотеза заключалась в возможности разработки различных агротехнологических, фитосанитарных, химических и биологических методов борьбы с целью снизить засоренность, повысить урожайность зерновых, зернобобовых и овощных культур с применением пониженных норм химических препаратов в разных агроэкологических зонах России и Ирана.

Научная новизна исследований.

S Доказана биологическая эффективность сниженных доз серии гербицидов для контроля фиалки полевой ( Viola arvensis), звездчатки средней (Stelaria media) и сорных растений семейства Мятликовые (Poaceae) в разных почвенно-климатических зонах. На основе этого разработаны рекомендации по эффективному и безопасному применению биологических методов защиты сельскохозяйственных культур от сорняков.

S Усовершенствован приём мульчирования, как экологически безопасный метод подавления сорной растительности в посевах зерновых культур. Определена оптимальная норма высева ржи, используемой в качестве мульчи при производстве зерновых культур, а также установлены оптимальные сроки запашки ржи для эффективного мульчирования посевов.

S Впервые было изучено действие гербицидов нового поколения на нецелевые сорные растения. Проиллюстрированы эффективные схемы сочетания пониженных норм химических гербицидов с биологическими средствами защиты посевов от сорных растений.

S Впервые была проверена эффективность комбинирования активных ингредиентов с уменьшенными дозами на устойчивой к циклоксидиму кукурузе (CTM) для борьбы с сорняками в Иране, в окрестностях Мешхеда. В этом регионе кукуруза является приоритетной зерновой культурой, производство которой затрудняется большим количеством встречающихся в ее посевах сорных растений.

S Было оценено влияние нескольких добавок на эффективность глифосата в устойчивом контроле распространения бассии при засолении воды и почвы в системах земледелия в Иране. Бассия веничная (Kochia scoparia L.) является широко распространенным, доминирующим сорняком, она считается серьезным врагом сельскохозяйственных культур в паровой части систем выращивания зерновых культур в Иране.

S С помощью комплекса показателей была определена опасность наиболее распространенных сорных растений; были рассчитаны

экономические параметры ущерба. Определены наиболее эффективные методы защиты сельскохозяйственных культур от чаще всего встречающихся вредных сорняков, установлена их биоэнергетическая и экономическая эффективность.

S Определено сочетание до- и послевсходовых гербицидов из различных химических классов с разными механизмами действия для совершенствования системы контроля устойчивой к гербицидам сыти круглой (Purple nutsedge), на пленочных посадках томат в условиях Ирана.

Практическая и теоретическая ценность исследований заключается в том, что рекомендованные методы применения гербицидов приводит к экологизации производства за счёт использования пониженных норм расхода препаратов в системе защитных мероприятий и комбинированного применения гербицидов и биологических агентов для защиты посевов от сорняков.

Теоретическая значимость исследований обоснована тем фактом, что: была доказана возможность экологизации ассортимента средств защиты растений от сорной растительности за счет снижения темпов применения с добавлением поверхностно-активных веществ.

Разработана концепция фитосанитарной оптимизации агрофитоценозов, основанная на совершенствовании защитных мероприятий для контроля сорной растительности.

Результаты исследований внедрены на 15 гектарах в СХК «Анчихский» Ахвахского района Республики Дагестан, на 25 гектарах на опытном поле ФИЦ «Немчиновка» Московской области и на опытных полях компании «Дахак» Караджского района Республики Иран.

Основные положения, выносимые на защиту:

- эффективность до и послевсходовых гербецидов в борьбе с сытью круглой в системе выращивания томатов в пленочной культуре (Иран,

Карадж);

- роль адьювантов в улучшении эффективности глифосата в воде и снижении уровня засоленности почв (Иран, Мешхед);

- влияние химических методов борьбы с сорняками на урожайность кукурузы, устойчивой к циклоксидиму;

- оценка влияния довсходовых и послевсходовых гербицидов на особенности роста, модуляцию и фиксацию азота сортами нута;

- влияние мульчирования покровной культурой ржи на сорняки и урожайность кукурузы (Иран, Карадж);

- эффективные нормы внесения баковых смесей послевсходовых гербицидов нового поколения в борьбе с доминирующими видами сорняков на посевах пшеницы (Юг России);

- применение боковых смесей гербицидов против многолетнего сорняка вьюнка полевого (Московская область);

- эффективность гербицидов на озимой пшенице при различных технологиях возделывания в условиях Московской области;

- биологическая, хозяйственная и энергетическая эффективность гербицидов в зависимости от применяемых доз, технологий возделывания и в комплексе с биопрепаратами.

Личный вклад соискателя. Автор саостоятельно разработал направление и программу научных исследований, обобщил научную литературу по теме диссертации, сформулировал научную новизну, положения выносимые на защиту, теоретическую и практическую ценность работы. Непосредственно провел анализ, обобщение и публикацию экспериментального материала. Исследования по применению гербицидов и биологических средств против сорняков в посевах озимой пшеницы выполнены при финансовой поддержке Министерства образования и науки Российской Федерации по программе повышения конкурентоспособности РУДН среди ведущих мировых научно-образовательных центров в период 2016-2020 гг.

Доля личного участия автора в получении и обобщении результатов исследований составляет 90%.

Обьектами исследований являлись видовое разнообразие и вредоносность наиболее опасных сорняков в разных агроэкологических зонах России и Ирана, различающихся почвенным, климатическими и экономическими условиями, а также различные агроэкологические, фитоцинотические и химические меры снижения засоренности и повышения урожайности пшеницы, нута, кукурузы и томатов.

Методология и методы исследований. При планировании программы и задач исследований использовались результаты ранее проведённых исследований, научные публикации, комплекс лабораторных и полевых исследований. При выполнении исследований применялся системный подход путём использования современных методов планирования и проведения опытов, а также экспериментального подтверждения достоверности полученных данных методами дисперсионного, корреляционного и регрессионного анализов.

Степень достоверности результатов исследований подтверждается анализом патентной и научной информации, использованием современных методов исследований и статистического анализа данных, а также результатами производственных испытаний.

Агробация результатов исследований. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на международных научных конференциях: «По ведению и управлению лесным хозяйством» (Прага, 2019); «По сельскому хозяйству и животноводству ICAAA» (Москва, 2013); «6-я конференция по сельскому хозяйству и животноводству в Азии» (о. Чеджудо, Корея, 2016); «По наукам о земле и геологии» (Вена, 2016); «По сельскому хозяйству и окружающей среде» (Стамбул, 2017); «По сельскохозяйственным и биологическим наукам» (Осака, 2017); «По исследованиям в области здравоохранения и естественных наук» (Куала-

Лампур, 2018); «10-я конференция по патологии растений» (Пекин, 2013); «Национальный конгресс по сельскому хозяйству на период до 2025 г» (Решт, Иран, 2010); «Национальная конференция по реформированию структуры потребления в сельском хозяйстве и природных ресурсах» (Керманшах, Иран, 2008); «3-й Иранский научный конгресс по сорнякам» (Баболсар, Иран, 2009); «1-й национальный симпозиум по сельскому хозяйству и устойчивому развитию» (Шираз, Иран, 2010); «Национальная конференция по водным ресурсам, почвоведению, растениеводству и механизации сельского хозяйства» (Даздфул, Иран, 2010); «4-й Иранский научный конгресс по сорнякам» (Бабалсав, Иран, 2012); «По сельскохозяйственным и биологическим наукам» (Барселона, 2019); «Агрохимическое обесспечение цифрового сельского хозяйства» (Москва, 2019); «По защите растений» (Хайдарабад, Индия, 2019); «Инженерия ESENIAS и DIAS и 10-й семинар ESENIAS, Восточная и Южная Европа» (Турция, Болгария, 2021); «Конференция РУДН по сельскохозяйственным наукам» (Москва, 2013).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 58 научных работ, в том числе в международных базах данных Scopus и Web of Science 33 статей; в изданиях из перечня ВАК - 5 статей; в материалах научных конференций и конгрессов - 16 статей; 1 монография и 3 учебных пособия.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 435 страницах компьютерного текста, состоит из введения, обзора литературы, главы материалы и методы исследований, 12 разделов с результатами исследований, заключения, предложений производству. Содержит 88 таблиц, 29 рисунка. 5 приложений.

Список использованной литературы включает 698 источников.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Научная идея эволюции флоры сорных растений в системе выыращивания сельскохозяйственных культур

Согласно тому, что население мира, по прогнозам, достигнет девяти миллиардов к 2050 году, продовольственная безопасность стала важнейшей глобальной проблемой 21 века. Было подсчитано, что производство зерновых должно увеличиться на 50% к 2030 году (Прогноз: The Future of Food and Farming, 2011). Пшеница является основной зерновой культурой, выращиваемой в странах, и в глобальном масштабе одной из трех наиболее важных культур для питания людей и корма для домашнего скота (Shewry, 2009). Следовательно, повышение урожайности пшеницы в настоящее время является одной из выжнейщих приоритетных задач в сельскохозяйственных исследованиях (Science and the sustainable intensification of global agriculture, 2009).

Сорные растения являются наиболее опасными вредителями в системах выращивания сельскохозяйственных культур, и, по оценкам, ежегодный глобальный ущерб составляет около 40 миллиардов (Монако и др., 2002). Только в Австралии и США затраты на борьбу с сорняками превышают 30 миллиардов долларов в год (Лоз и Уоллес, 2008). Таким образом, более 60% пестицидов во всем мире приходится на гербициды против сорных растений (Монако и др., 2002). С другой стороны, Багестани и др. (2007) также отмечают, что сорные растения являются наиболее важным фактором

снижения урожайности пшеницы. Другими словами, сорные растения являются наиболее важными препятствиями в увеличении потенциального производства пшеницы мягкой (Triticum aestivum). Только 15-20% иранских фермеров, выращивающих пшеницу, пытаются контролировать вред сорных растений, в то время как эти растения могут снизить урожайность пшеницы на 25%, если их не контролировать (Абди и др., 2007). Конкуренция сорняков может снизить урожайность отдельных культур на 10-100% (Эштон и Монако, 1991). Сорняки также могут скрывать насекомых, болезни и вредителей-нематод, которые значительно поражают посевы (Дерр, 2004). Найяр и др. (1994) по их данны сорняки могут снизить урожайность пшеницы на 25-30%, а результаты исследований показали, что урожайность пшеницы может быть увеличена на 37%, если сорняки будут должным образом контролироваться. Следовательно, сорняки обычно признаются нежелательными растениями, поскольку они представляют повсеместную угрозу для сельскохозяйственной промышленности. Более того, они могут представлять собой укрытия для переносчиков болезней, а также конкурировать с хозяйственными культурами за влагу, питательные вещества и свет. С другой стороны, сорняки значительно влияют на здоровье человека в результате аллергических реакций, раздражения кожи, механических травм или внутреннего отравления (Зиска, 2001). Таким образом, сорняки являются основным фактором, способствующим потере урожая из-за конкуренции за воду, свет и питательные вещества. Интенсивное развитие семян большинства сорных растений также увеличивает их общее количество, что способствует возникновению проблем в последующие годы, снижает качество урожая и повышает затраты, связанные с уборкой урожая и очисткой семян. Более того, сорняки могут укрывать насекомых, болезни и вредителей-нематод, которые значительно поражают посевы (Дерр, 2004). Сорняки являются наиболее опасными вредителями, которые мешают посевам из-за конкуренции и процесса аллелопатии, что приводит к прямым

потерям количества и качества продукции растениеводства и косвенно увеличивает производственные затраты (Гупта, 2004). Помимо этого, сорняки также повышают вероятность пожаров, снижают стоимость имущества, отравляют домашних животных и снижают качество молока и мяса, препятствуют перемещению животных, ставят под угрозу местную растительность, мешают орошению, вызывают аллергию, повышают вероятность заболеваемости людей, животных и сельскохозяйственных культур, скрывая переносчиков возбудителей болезней, и способны затруднить доступ на рынок из-за строгой практики карантина (Каллини, 2005).

Некоторые исследователи изучили различные морфологические и физиологические особенности сортов пшеницы мягкой (Triticum aestivum) и их конкурентоспособность с сорными растениями. В экспериментах в качестве характеристик, обычно определяющиx повышение конкурентоспособности сельскохозяйственных культур, включают быстрое прорастание и развитие корней, более высокую биомассу при кущении, раннюю энергию (например, скорость прорастания), площадь флаговых листьев, вертикальное распределение площади листьев и больший индекс урожая (Суфизаде и др., 2007).

При исследовании проблемы заражения сорными растениями было применено множество подходов. Таким образом, для борьбы с сорными растениями используются несколько стратегий управления сельскохозяйственными растениями, включая культурные (нормы высева, севооборот, время посева), обработку почвы, химические и биологические средства. Тем не менее, отдается большое предпочтение химическим гербицидам в качестве основного метода борьбы с сорными растениями, в особенности перед ежегодной обработкой почв в большинстве регионов. В последнее время методы защиты растений стали объектом более тщательного изучения из-за экологических проблем, связанных со сносом распылений,

химическими остатками в почве, воде и продуктах питания, а также развитием устойчивых к гербицидам сорняков (Рюгг и Зошке, 2007).

В методах биологической борьбы с сорными растениями исследования эффективности биологических средств часто сосредоточены на субъективной оценке (Кроули, 1989), на эффективности средств биоконтроля и на эффектах на уровне растительности (Макклай 1995). Таким образом, применение рекомендованных альтернативных биологических средств по борьбе с сорными растениями вместо гербицидов предоставляет новые экологические варианты инструментов по борьбе с сорными растениями (Бойечко, 2005 и Бейли и др., 2006). Кроме того, стратегия по борьбе, способная повысить конкурентоспособность сельскохозяйственных культур против сорных растений, может быть важной составляющей интегрированных систем по борьбе с сорными растениями (Блэкшоу и др. 2007; Молер 2001). Основными методами борьбы с сорняками, как правило, являются профилактика, уничтожение и контроль (Мак и др., 2000; Монако и др., 2002; Каллини, 2005).

Природа сорных растений и то, как они взаимодействуют с деятельностью человека, составляют основу дисциплины Науки о сорных растениях (Монако и др., 2002). Эту тему можно рассматривать как модель, которой следует следовать при интеграции многочисленных дисциплин, используя системный подход для решения практических задач (Фернандес-Кинтанилья и др., 2008). Области исследований варьируются от экологических и агрономических исследований до разработки практических методов борьбы с сорняками в окружающей среде. Ученые, изучающие сорные растения занимаются широким кругом научных вопросов с общей целью: найти методы, необходимые для эффективного и ответственного управления видами сорняков (Джордан и др., 1993, 2002). Наука о сорных растениях достигла больших успехов в разработке эффективных, относительно дешевых и безопасных технологий борьбы с сорными растениями в большом

разнообразии сельскохозяйственных культур. Хотя во многом этот успех обусловлен низкой стоимостью и чрезвычайно эффективными гербицидами, различные физические, культурные и биологические технологии также были разработаны и внедрены на коммерческой основе в результате совместной эволюции с потребностями общества в более экологически безопасных системах управления растениеводством (Фернандес-Кинтанилья и др., 2008; Кристофферсен и др., 2004). Основной целью борьбы с сорняками является предоставление наиболее подходящих методов для обеспечения устойчивой экосистемы и минимального влияния вредоносных растений в различных ситуациях. Основной целью исследований сорняков должно быть улучшение нашего понимания взаимосвязи между сорняками и сельскохозяйственными культурами с целью улучшения управления сорняками и борьбы с ними (Moss, 2008). По данным Эрке (2006), хотя сорняки являются причиной наибольших потенциальных потерь урожая (-34%), в настоящее время сорные растения часто недооцениваются, поскольку больше внимания уделяется насекомым-вредителям (18% потерь) или патогенам (16% потерь). Методы, используемые для борьбы с сорными растениями, различаются в зависимости от ситуации, имеющейся исследовательской информации, инструментов, экономики и опыта сельхозпроизводителей. Борьба с сорняками — это процесс снижения роста сорняков до допустимого уровня.

Борьба с сорными растениями была определена как "рациональное внедрение всех доступных технологий для обеспечения систематического решения проблем с сорными растениями во всех ситуациях" (Fryer, 1985). Основываясь на этом определении, борьбу с сорными растениями можно рассматривать как системный подход к минимизации воздействия сорняков и оптимизации землепользования, сочетающий профилактику и контроль (Олдрич, 1984). Растущий спрос на продовольствие постепенно изменил методы ведения сельского хозяйства с интенсивной физической работы на методы, включающие меньше физического труда и больше ископаемого

топлива (Уоррен, 1998; Вейбулл и др., 2003).

Сельское хозяйство можно рассматривать как управление наземными экосистемами с целью направления их производственного потенциала на удовлетворение потребностей человека (Millennium Ecosystem Assessment, 2005). Агроэкосистемы как таковые, обеспечивают выгоды для человечества, т.е. "экосистемные услуги", главным образом в форме первичного производства, такого как продукты питания, корма, древесина, волокна и другие натуральные продукты. Недавние исследования показали, что часто существует фундаментальный конфликт между растущими потребностями сельского хозяйства и поддержанием услуг, отличных от основного производства. Зависимость от химических веществ оказывает хорошо известное воздействие на качество почвы и подземных вод (Ариас-Эстевес и др., 2008). Существует также множество свидетельств о том, как изменения в сельском хозяйстве создают угрозу биоразнообразию в сельскохозяйственных ландшафтах (Пети и др.,2001) и влияют на видовое богатство и обилие таксонов (Бентон и др., 2003; Чарнтке и др., 2005), а также консенсус в отношении того, что давление интенсификации сельского хозяйства на биоразнообразие действует в разных пространственных масштабах, т.е. на почвенный покров, управление ландшафтом и управление растениеводством (Фирбанк и др., 2008). Также становится очевидным, что потеря некоторых организмов, в свою очередь, имеет последствия для сельского хозяйства, например, в результате потери естественных врагов вредителей сельскохозяйственных культур или опылителей (Айзекс и др., 2009) или в результате потери микроорганизмов, которые жизненно важны для поддержания здоровья почвы (Кибблуайт и др., 2008).

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Заргар Мейсам, 2022 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Abbas, H. K. and C. D. Boyette. 2000. Solid substrate formulations of the mycoherbicide Colletotrichum truncatum for hemp sesbania (Sesbania exaltata) control. Biocontrol Sci. Technol. 10:291-300.

2. Abdi, M., Rahimian Mashhadi, H and bazoobandi, M. 2007. Evaluating Feral Rye competition with wheat. Iranian journal of weed research. 2, 105117

3. Aebische N.J. (1991). Twenty years of monitoring invertebrates and weeds in cereal fields in Sussex. L. G. Firbank, N. Carter, J. F. Darbyshire & G. R. Potts (Eds.), The Ecology of Temperate Cereal Fields (pp. 305-331). London, UK: Blackwell Scientific Publications.

4. Akin, D. S. and D. R. Shaw. 2001. Purple nutsedge (Cyperus rotundus) and yellow nutsedge (Cyperus esculentus) control in glyphosate tolerant soybean (Glycine max). Weed Technol.15:564-570.

5. Alsaadawi IS, Salih NMM (2009) Allelopathic potential of Cyperus rotundus L. I. Interference with crops. Allelopathy J 23:297-304 DOI: 10.3327/jnst.35.928

6. Al-Shahwan, I.M., Abdalla, O.A., Al-Saleh, M.A., Amer, M.A., 2016. Detection of new viruses in alfalfa, weeds and cultivated plants growing adjacent to alfalfa fields in Saudi Arabia. Saudi J. Biol. Sci.

7. Adcock, C. W., W. G. Foshee III., G. R. Wehtje, and C. H. Gilliam. 2008. Herbicide combinations in tomato to prevent nutsedge (Cyperus esculentus) punctures in plastic mulch for multi-cropping systems. Weed Technol. 22:136-141.

8. Alignier A., Meiss H., Petit S., Reboud X. (2008) Variation of postdispersal weed seed predation according to weed species, space and time, J. Plant. Dis. Prot. 21, 221-226.

9. Altieri M.A. (1995) Agroecology: the science of sustainable agriculture, Westview Press, Boulder.

10.Altieri M.A. (1999) The ecological role of biodiversity in agroecosystems. Agr. Ecosyst. Environ. 74, 19-31.

11.Abouziema, H. F., M. F. El-Karmany, M. Singh, and S. D. Sharma. 2007. Effect of nitrogen rates and weed control treatments on maize yield and associated weeds in sandy soils. Weed Technol. 21:1049-1053.

12.Agaev, M.G. 1988. Main agricultural weeds in crops of the Leningrad region. Catalogue of VIR world collection. Issue 468, Leningrad: VIR, p.19-21 (in Russian).

13.Agnonin, C., Caussanel, J.-P. and Meynard, J.-M. (1996) Competition between winter wheat and Veronica hederifolia: influence of weed density and the amount and timing of nitrogen application. Weed Research 36, 175187.

14.Alkamper, J. 1976. Influence of weed infestation on effect of fertilizer dressings. Pflanzen.-Nachr. Bayer. 29: 191-235. ALDRICH, R.J., 1984. Weed-Crop Ecology: Principles in Weed Management. Breton Publishers, North Scituate, MA.

15.Altman, J., Neate, S. and Rovira, A.D. 1990. Herbicide pathogens interaction and mycoherbicides as alternative strategies for weed control. In: Microbes and Microbial Products as Herbicides (ed. by Hoagland R.E.). ACS Symposium Series 439. American Chemical Society, Washington DC, 240-259.

16.Ampong-Nyarko, K. and S. K. de Datta. 1993. Effects of nitrogen applicationon growth, nitrogen use efficiency and rice-weed interaction. Weed Res. 33: 269-276.

17.Anonymous (2008) Ecophyto 2018. Ministère de l'Agriculture et de la Pêche, 10 septembre 2008, 20 p.

18.Anderson, R.L. 2000. A cultural system approach can eliminate herbicide need in semiarid proso millet (Panicum miliaceum). Weed Technol. 14, 602607.

19.Andreasen C., Stryhn H., Streibig J.C. (1996) Decline of flora in Danish arable fields, J. Appl. Ecol. 33, 619 626.

20.Andreasen, C., A. S. Litz, and J. C. Streibig. 2006. Growth response of six weed species and spring barley (Hordeum vulgare) to increasing levels of nitrogen and phosphorus. Weed Res. 46:503-512.

21.Andersen, C., Streibig, J.C., Haas, H., 1991. Soil properties affecting the distribution of 37 weed species in Danish fields. Weed Research 31, 181187.

22.Anonymous. 2009. National council for scientific research. Arab journal of plant protection.

23.Artohin, K.S. 2004. Atlas of weed plants. Rostov-na-Donu,144p. in Russian).

24.Ashton, F.M. and Monaco, T.J. 1991. Biological control. In: Weed Science, Principles and Practices (ed. by Ashton F.M. and Monaco T.J.). A Wiley-Interscience Publication, New York, 48-56.

25.Auld, B.A. and Morin, L. 1995. Constraints in the development of bioherbicides. Weed Technol. 9, 638-652.

26.Auskalnis, A., and A. Kadzys. 2006. Effect of timing and dosage in herbicide application on weed biomass in spring wheat. Agronomy Research 4:133-136.

27.Anonymous. 2015. Agricultural statistics (Year book) Ministry of Agriculture Jihad. Deputy of Planning and Finance. Information Technology and Communication Center. Vol (1), Crop Production, Growing Season, 2012-2013 (In Persian). 156 Pp.

28.Aladesanwa, R.D., Oladimeji, M.O., 2005. Optimizing herbicidal efficacy of glyphosate isopropylamine salt through ammonium sulphate as surfactant in oil palm (Elaeis guineensis) plantation in a rainforest area of Nigeria. Crop prot. 24, 1068-1073.

29.Abendroth JA, Martin AR, Roeth FW. 2006. Plant response to combinations of mesotrione and photosystem II inhibitors. Weed Technol. 20: 267-274

30.Al-Thahabi SA, Yasin IZ, Abu-Irmaileh BE, Haddad NI, Saxena MC. 1994. Effect of weed removal on productivity of chickpea (Cicer arietinum L.) and lentil (Lens culinaris Med.) in a Mediterranean environment. J. Agron. Crop Sci. 172: 333-341

31.Arias-Estevez M., Lopez-Periago E., Martinez-Carballo E. (2008) The mobility and degradation of pesticides in soils and the pollution of groundwater resources, Agr. Ecosyst. Environ. 123, 247-260.

32.Asadi, G., R. Ghorbani, J. Karimi, A. Bagheri, and H.M. Schaerer. 2013. Host impact and specificity of Tortoise Beetle (Cassida rubiginosa) on Canada thistle (Cirsium arvense) in Iran. Weed Technol. 27:405-411.

33.Anonymous (2007). Crop production statistics. http://www.faostat.fao.org. Accessed: May 9, 2010.

34.Anonymous (2010). International survey of herbicide resistant weeds. http://www.weedscience.org. Accessed: Apr. 18, 2010.

35.Altieri, M.A., 1999. The ecological role of biodiversity in agroecosystem. Agriculture, Ecosystem, and Environment 74, 19-31.

36.Adcock CW, Foshee WG III, Wehtje GR, Gilliam CH (2008) Herbicide combinations in tomato to prevent nutsedge (Cyperus esculentus) punctures in plastic mulch for multicropping systems. Weed Technol 22:136-141

37.Anonymous (1991) United States Standards for Grades of Fresh Tomatoes. https://www.ams.usda.gov/sites/default/files/media/Tomato_Standard%5B1 % 5D.pdf. Accessed: October 22, 2017

38.Bangarwa SK, Norsworthy JK, Gbur EE (2009) Cover crop and herbicide combinations for weed control in polyethylene-mulched bell pepper. HortTechnology 19:405-410

39.Bayat, M., Kavhiza, N., Orujov, E., Zargar, M., Akhrarov, M. and Temewei, A. G. (2019). Integrated weed control methods utilizing planting pattern in sugar beet. Res. On Crops 20: 413-18.

40.Blum RR, Isgrigg J 2nd, Yelverton FH (2000) Purple (Cyperus rotundus) and yellow nutsedge (C. esculentus) control in bermudagrass (Cynodon dactylon) turf. Weed Sci 14:357-365

41.Boyd N.S. 2016. Pre- and Postemergence Herbicides for Row Middle Weed Control in Vegetable Plasticulture Production Systems. Weed Technol. 30:949-957.

42.Boyd NS (2015) Evaluation of preemergence herbicides for purple nutsedge (Cyperus rotundus) control in tomato. Weed Technol 29:480-487

43.Boyd NS, Dittmar P (2018) Evaluation of Postemergence-Directed Herbicides for Purple Nutsedge (Cyperus rotundus) Control in Fresh-Market Tomato. Weed Technol 32:260-266. doi: 10.1017/ wet.2018.10

44.Buckelew JK, Monks DW, Jennings KM, Hoyt GD, Walls RF (2006) Eastern black nightshade (Solanum ptycanthum) reproduction and interference in transplanted plasticulture tomato. Weed Sci 54:490-495

45.Buker RS, Rathinasabapathi B, Stall WM, MacDonald G, Olson SM (2004) Physiological basis for differential tolerance of tomato and pepper to rimsulfuron and halosulfuron: site of action study. Weed Sci 52:201-205.

46.Barnes, J. P., A. R. Putnam, B. A. Burke and A. J. Aasen (1987). Isolation and characterization of allelochemicals in rye herbage. Phytochemistry 26:1385-1390.

47.Brecke, B. J., D. O. Stephenson, IV, and J. B. Unruh. 2005. Control of purple nutsedge (Cyperus rotundus) with herbicides and mowing. Weed Technol. 19:809-814.

48.Baumgartner, K., K. L. Steenwerth and L. Vielleux (2008). Cover-crop affect weed communities in a California vineyard. Weed Sci. 56:596-605.

49.Bayat M, Kavhiza N, Orujov E, Zargar M, Akhrarov M, Temewei AG. 2019. Integrated weed control methods utilizing planting pattern in sugar beet. Res. on Crops 20 (2): 413-418

50.Blackshaw, R. E. and J. R. Moyer (2001). Yellow sweetclover, green manure, and its residues effectively suppress weeds during fallow. Weed Sci. 49:406-413.

51.Bastiaans L , Kropff M.J., Goudriaanb J., van Laar H.H. (2000) Design of weed management systems with a reduced reliance on herbicides poses new challenges and prerequisites for modeling crop-weed interactions, Field Crop. Res. 67, 161-179.

52.Blanco, H. and R. Lal (2008). Principles of soil conservation and management. US., Springer.

53.Burgos, N. R. and R. E. Talbert (2000). Differential activity of allelochemicals from Secale cereale in seedling bioassays. Weed Sci. 48:302-310.

54.Boydston RA, Nelson H, Chaves-Cordoba B. 2018. Tolerance of chickpeas to postemergence broadleaf herbicides. Weed Technol. 32: 190-194

55.Bngido C, Alexandre A, Laranjo M, Oliveira S. 2007. Moderately acidophilic mesorhizobia isolated from chickpea. Lett. Appl. Microbiol. 44: 168-174

56.Bayat M, Kavhiza N, Orujov E, Zargar M, Akhrarov M, Temewei AG. 2019. Integrated weed control methods utilizing planting pattern in sugar beet. Res. on Crops. 20 (2): 413-418

57.Baessler C., Klotz S. (2006) Effects of changes in agricultural land use on landscape structure and arable weed vegetation in the last 50 years, Agr. Ecosyst. Environ. 115, 43-50.

58.Beevers L, Cooper JP. 1964. Influence of temperature on growth and metabolism of ryegrass seedlings. Crop Sci. 4: 139-143

59.Bell JL, Burke LC, Prather TS. 2011. Uptake, translocation and metabolism of aminocyclopyrachlor in prickly lettuce, rush skeltonweed and yellow starthistle. Pest Manag. Sci. 67: 1338-1348

60.Bernards, M.L., Thelen, K.D., Penne, D., 2005. Glyphosate efficacy is antagonized by manganese. Weed Technol. 19, 27-34.

61.Baghestani, M.A.; Zand, E.; Soufizadeh, S.; Bagherin, N.; Deihimfard, R. Weed control and wheat (Triticum aestivum L.) yield under application of 2,4 - D plus carfentrazoneethyl and florasulam plus flumetsulam: evaluation of the efficacy. Crop Protection, v.26, n.12, p.1759-1764, 2007.

62.Bailey K. L. and E. K. Mupondwa. 2006. Developing microbial weed control products: commercial, biological, and technological considerations. Pages 431-473 In: H. P. Singh, D. R. Batish, and R. K. Kohli (eds.), Handbook of Sustainable Weed Management. The Haworth Press Inc., Binghamton, NY.

63.Barros, J.F.C., Basch, G., De Carvalho, M., 2005. Effect of reduced doses of a post-emergence graminicide mixture to control Lolium rigidum G. in winter wheat under direct drilling in Mediterranean environment. Crop Prot. 24, 880-887.

64.Barros, J.F.C.; Basch, G.; Carvalho, M. Effect of reduced doses of a post-emergence herbicide to control grass and broadleaf weeds in no-till wheat under Mediterranean conditions. Crop Protection, v.26, n.10, p.1538-1545, 2007.

65.Barros, J.F.C.; Basch, G.; Carvalho, M. Effect of reduced doses of a post-emergence graminicide to control Avena sterilis L. and Lolium rigidum G. in no-till wheat under Mediterranean environment. Crop Protection, v.27, n.6, p.1031-1037, 2008.

66.Bastaans, L., Paolini, R., Baumann, D.T., 2008. Focus on ecological weed management: what is hindering adoption? Weed Research 48, 481-491.

67.Barberi P, Silvestri N & Bonari E (1997) Weed communities of winter wheat as influenced by input level and rotation. Weed Research 37, 301-313.

68.Barroso, J., D. Ruiz, C. Escribano, L. Barrios, and C. FernandezQuintanilla. 2009. Comparison of three chemical controlstrategies for Avena sterlis ssp. ludoviciana. Crop Protection 28:393-400.

69.Barreto, R., Charudattan, R., Pomella, A. and Hanada, R. 2000. Biological control of neotropical aquatic weeds with fungi. Crop Prot. 19, 697- 703.

70.Bauer,T.A.,Mortensen,D.A.,Wicks,G.A.,Hayden,T.A.,& Martin,A. R. (1991). Environmental variability associated with economic thresholds for soybeans. Weed Science, 39, 564-9.

71.Bazdurev, G.I., Zotov L.I., Polin V.D. 2004. Weed plants and their control in modern agriculture, Moscow, MSKHA, 288p. (in Russian).

72.Belles, D.S.; Thill, D.C.; Shafi, B. PP-604 rate and Avena fatua density effects on seed production and viability in Hordeum vulgare. Weed Science, v.48, n.3, p.378-384, 2000.

73.Berkowitz, A. R. (1988). Competition for resources in weed-crop mixtures. In Weed Management in Agroecosystems: Ecological Approaches, ed.M.A.Altieri & M. Liebman, pp. 89-120. Boca Raton, FL: CRC Press.

74.Berner, D.K. and Bruckart, W.L. (2005). A decision tree for evaluation of exotic plant pathogens for biological control of introduced invasive weeds. Biological Control 34, 222-232.

75.Blackshaw, R.E., O'Donovan, J.T., Harker, K.N., Clayton, G.W., Stugard, R.N., 2006. Reduced herbicide doses in field crops: A review. Weed Biol. Manag. 6, 10-17.

76.Blackshaw, R. E., L. J. Molnar, and H. H. Janzen. 2004. Nitrogen fertilizer timing and application method affect weed growth and competition with spring wheat.

77.Blackshaw, R. E., G. Semach, and H. H. Janzen. 2002. Fertilizer application method affects nitrogen uptake in weeds and wheat. Weed Sci. 50:634-641.

78.Blackshaw, R. E., R. N. Brandt, H. H. Janzen, C. A. Grant, and D. A. Derksen. 2003. Differential response of weed species to added nitrogen. Weed Sci. 51:532-539.

79.Blackshaw, R. E., R. L. Anderson, and D. Lemerle. 2007. Cultural weed management. Pages 35-47 in M. K. Upadhyaya and R. E. Blackshaw, eds. Non-chemical Weed Management: Principles, Concepts and Technology. Oxfordfordshire, UK: CABI.

80.Backman J.P.C., Tiainen J. (2002) Habitat quality of field margins in a Finnish farmland area for bumblebees (Hymenoptera: Bombus and Psithyrus), Agr. Ecosyst. Environ. 88, 53-68.

81.Bostrom U., Fogelfors H., 2002. Response of weeds and crop yield to herbicide dose decision - support guidelines. Weed Sci 50, 186-195.

82.Boyetchko, S. M. 2005. Biological herbicides in the future. Pages 29-47 In: J. A. Ivany (ed). Weed Management in Transition. Topics in Canadian Weed Science (Vol. 2). Sainte-Anne-de-Bellevue, Quebec. Canadian Weed Science Society - Societe canadienne de malherbologie.

83.Boyette, C.D., Abbas, H.K. and Connick, W.J. Jr. 1993. Evaluation of Fusarium oxysporum as a potential bioherbicide for sicklepod (Cassia obtusifolia), coffe senna (C. occidentalis), and hemp sesbania (Sesbania exaltata). Weed Sci. 41, 678-681.

84.Boyette C.D. 2000. The bioherbicide approach: using phytopathogens to control weeds. In: Herbicides and their Mechanisms of Action (ed. by Cobb A.H. and Kirkwood R.C.). Sheffield Academic Press, Sheffield, UK, 134152.

85.Brian, P., Wilson, B.J., Wright, K.J., Seavers, G.P., Caseley, J.C., 1999. Modelling the effect of crop and weed on herbicide efficacy in wheat. Weed Res 39, 21-35.

86.Brie,re, S. C., A. K. Watson, and S. G. Hallett. 2000. Oxalic acid production and mycelial biomass yield of Sclerotinia minor for the formulation

enhancement of a granular turf bioherbicide. Biocontrol Sci. Technol. 10:281-289.

87.Bostrom, U., and H. Fogelfors. 2002. Response of weeds and crop yield to herbicide dose decision-support guidelines. Weed Science 50:186-195.

88.Boatman ND, Bence SL & Jarvis P (1999) Management and costs of conservation headlands on heavy soil. Aspects of Applied Biology 54, 147154.

89.Burton J.D., J.W. Gronwald, D.A. Somers, J.A. Conelly, B.G. Gengenbach, D.L. Wyse, 1987 Inhibition of plant acetyl-Coenzyme A carboxylase by the herbicides sethoxydim and haloxyfop. Biochem. Biophys. Res. Commun. 148: 1039-1041.

90.Blackshaw, R. E. (1993). Safflower (Carthamus tinctorius) density and row spacing effects on competition with green foxtail (Setaria viridis). Weed Science, 41, 403-8.

91.Blackshaw, R.E., R.N. Brandt, H.H. Janzen, and T. Entz. 2004. Weed species response to phosphorus fertilization. Weed Sci. 52:406-412.

92.Bostrom, U. and Fogelfors, H. (2002) Response of weeds and crop yield to herbicide dose decision-support guidelines. Weed Science 50, 186-195.

93.Brie,re, S. C., A. K. Watson, and S. G. Hallett. 2000. Oxalic acid production and mycelial biomass yield of Sclerotinia minor for the formulation enhancement of a granular turf bioherbicide. Biocontrol Sci. Technol. 10:281-289.

94.Bruce, J.A., Boyd, J., Penner, D., Kells, J.J., 1996. Effect of growth stage and environment of foliar absorption, translocation, metabolism, and activity of nicosulfuron in quackgrass (Elytrigia repens). Weed Sci. 44, 447-454.

95.Beckie H.J., Harker K.N. 2017. Our top 10 herbicide-resistant weed management practices. Pest Management Science 73: 1045-1052.

96.BLOM, C.W.P.M., 1988. The realism of models on plant demography. Acta Botanica Neerlandica 37, 421-438.

97.Baker, H.G., 1974. The evolution of weeds. Annu. Rev. Ecol. Syst., 1-24.

98.Bohan D.A., Hawes C., Haughton A.J., Denholm I., Champion G.T., Perry J.N., Clark S.J. (2007) Statistical models to evaluate invertebrate-plant trophic interactions in arable systems, Bull. Entomol. Res. 97, 265-280.

99.Beres B.L., Harker K.N., Clayton G.W., Bremer E., Blackshaw R.E., Graf R.J. 2010. Weed competitive ability of spring and winter cereals in the Northern Great Plains. Weed Technology 24: 108-116.

100. Blackshaw R.E. 1993. Downy brome (Bromus tectorum) density and relative time of emergence affects interference in winter wheat (Triticum aestivum). Weed Science 41: 551-556.

101. Beckie HJ, Warwick SI, Sauder CA, Kelln GM, Lozinski C. 2012. Acetolactate Synthase Inhibitor-Resistant False Cleavers (Galium spurium) in Western Canada. Weed Technol. 26:151-155.

102. Beres BL, Harker KN, Clayton GW, Bremer E, Blackshaw RE, Graf RJ. 2010. Weed competitive ability of spring and winter cereals in the Northern Great Plains. Weed Technol. 24:108-116.

103. Blackshaw RE. 1993. Downy brome (Bromus tectorum) density and relative time of emergence affects interference in winter wheat (Triticum aestivum). Weed Sci. 41:551-556.

104. Beckie, HJ., Harker K.N. (2017). Our top 10 herbicide-resistant weed management practices. Pest Management Science. 73: 1045-1052.

105. Bhatti, M. A., A. S. Felsot, R. Parker, and G. Mink. 1998. Leaf photosynthesis, stomatal resistance, and growth of wine grapes (Vitis vinifera L.) after exposure to simulated chlorsulfuron drift. J. Environ. Sci. Health, B 33:67-81.

106. Beckett, TH., Stoller, EW., Wax, LM. (1988). Interference of four annual weeds in corn (Zea mays). Weed Sci. 36:764-769.

107. Boutn, C., Baril, A., Martin, P.A., 2008. Plant diversity in crop fields and weedy hedge rows of organic and conventional farms in contrasting landscape. Agriculture, Ecosystems, and Environments 123, 185-193.

108. Booth, B.D., Swanton, C.J., 2002. Assembly theory applied to weed communities. Weed Science 50, 2-13.

109. Boyd NS, Reed T (2016) Strawberry tolerance to bed-top and drip-applied preemergence herbicides. Weed Technol 30:492-498

110. Boyd NS (2015) Evaluation of preemergence herbicides for purple nutsedge (Cyperus rotundus) control in tomato. Weed Technol 29:480-487

111. Boyd NS, Kanissery R, Dittmar PJ (2019) Weed Management in Tomato https://edis.ifas.ufl.edu/pdffiles/WG/WG04000.pdf (Accessed August 8, 2019)

112. Boyd NS (2015) Evaluation of preemergence herbicides for purple nutsedge (Cyperus rotundus) control in tomato. Weed Technol 29:480-487

113. Buker RS, Rathinasabapathi B, Stall WM, MacDonald G, Olson SM (2004) Physiological basis for differential tolerance of tomato and pepper to rimsulfuron and halosulfuron: site of action study. Weed Sci 52:201-205

114. Curran, B., Sprague, C., Stachler, J., Loux, M. (2007). Biology and management of common lambsquarters. Glyphosate, weeds, and crops. Purdue Extension Education. GWC-11.

115. Challaiah RE, Burnside OC, Wicks GA, Johnson VA. 1986. Competition between winter wheat (Triticum aestivum) cultivars and Downy brome (Bromus tectorum). Weed Sci. 34:689-693.

116. Curran WS, Wallace JM, Mirsky S, Crockett B. 2015. Effectiveness of Herbicides for Control of Hairy Vetch (Vicia villosa) in Winter Wheat. Weed Technol. 29: 509-518.

117. Curran W.S., Wallace J.M., Mirsky S., Crockett B. 2015. Effectiveness of Herbicides for Control of Hairy Vetch (Vicia villosa) in Winter Wheat. Weed Technology 29: 509-518.

118. Carlson, H. L. and J. E. Hill. 1985. Wild oat (Avena fatua) competition with spring wheat: effects of nitrogen fertilization. Weed Sci. 34:29- 33.

119. Clements, D.R., Weise, S.F., Swanton, C.J., 1994. Integrated weed management and weed species diversity. Phytoprotection 75, 1-18.

120. Camara, K. M., W. A. Payne, and P. E. Rasmussen. 2003. Long-term effects of tillage, nitrogen, and rainfall on winter wheat yields in the Pacific Northwest. Agron. J. 95:828-835.

121. Cardina, J. (1995) Biological weed management. In A.E. Smith (ed.), Handbook of Weed Management Systems, Marcel Dekker Inc., New York, pp. 279-341.

122. Campiglia, E., Paolini, R., Colla, G., Mancinelli, R., 2009. The effect of cover cropping on yield and weed control of potato in a transitional system. Field Crop Research 112, 16-23.

123. Carlson, H. L. and J. E. Hill. 1985. Wild oat (Avena fatua) competition with spring wheat: effects of nitrogen fertilization. Weed Sci. 34:29-33.

124. Chaudhari S, Katherine M. Jennings, David W. Monks, David L. Jordan, Christopher C. Gunter, and Frank J. Louws. 2015. Response of Grafted Tomato (Solanum lycopersicum) to Herbicides. Weed Technol. 29:800-809.

125. Csinos, A. S., D. R. Sumner, W. C. Johnson, III, A. W. Johnson, R. M. McPherson, and C. C. Dowler. 2000. Methyl bromide alternatives in tobacco, tomato, and pepper transplant production. Crop Prot. 19:39-49. Culpepper, A. S., A. L. Davis, and T. M. Webster. 2006. Methyl bromide alternatives being identified in Georgia. Pages 65-1-65-4 in Proceedings of the Annual International Research Conference on Methyl Bromide Alternatives and Emissions Reduction, Orlando, FL, November 6-9, 2006. Methyl Bromide Alternatives Outreach in cooperation with Crop Protection

126. Coalition, US Environmental Protection Agency, and US Department of Agriculture. Available at: http://mbao.org/2006/06Proceedings/ 065CulpepperSMB2006-conferenceabstract.pdf. Accessed Febuary 15, 2012.

127. Cathcart, R. J. and C. J. Swanton. 2004. Nitrogen management will influence threshold values of green foxtail (Setaria viridis) in corn. Weed Sci. 51:975-986.

128. Charudattan, R., 1991. The Mycoherbicide approach with plant pathogens. In: Microbial control of weeds. Te Beest, D. O. (Ed.), Chapman and Hall, New York, pp: 24-57.

129. Charudattan, R&Dinoor A (2000) Biological control of weeds using plant pathogens: accomplishments and limitations. Crop Protection 19, 691695.

130. Charudattan R. 2001. Biological control of weeds by means of plant pathogens: significance for integrated weed management in moderagro-ecology. BioControl 46, 229-260.

131. Charudattan R. 2005. Ecological, practical, and political inputs into selection of weed targets: what makes a good biological control target? Biol. Control 35, 183-196.

132. Cheema ZA, Khaliq A. 2000. Use of sorghum allelopathic properties to control weeds in irrigated wheat in a semi-arid region of Punjab. Agriculture Ecosystems and Environment 79, 105-112.

133. Chikoye, D.,Weise, S. F., & Swanton, C. J. (1995). Influence of common ragweed (Ambrosia artemisiifolia) time of emergence and density on white bean (Phaseolus vulgaris). Weed Science, 43, 375-80.

134. Chou, C.H. 1995. Allelopathic compounds as naturally occurring herbicides. In: Proceedings of the 15th Asia-Pacific Weed Science Society (Tsukuba, Japan, 24-28 July 1995). The Asia-Pacific Weed Science Society, Tsukuba, Japan, 154-159.

135. Ciotola, M., A. K. Watson, and S. G. Hallett. 1996. Discovery of an isolate of Fusarium oxysporum with potential to control Striga hermonthica in Africa. Weed Res. 35:303-309.

136. Cock, M.J.W., Ellison, C.A., Evans, H.C. and Ooi, P.A.C. 1999. Can failure be turned into success for biological control of mile-a-minute weed (Mikania micrantha)? In: Spencer N., Noweierski R., eds. Abstracts of the 10th International Symposium on Biological Control of Weeds (Bozeman, MT, USA, 4-9 July 1999). Montana State University, Bozeman, MT, USA, 29.

137. CLEMENTS, D.R., WEISE, S.F., SWANTON, C.J., 1994. Integrated weed management and weed species diversity. Phytoprotection 75, 1-18.

138. Connick, W. J., Jr., C. D. Boyette, and W. R. Nickle. 1992. New pesta granular formulations containing mycoherbicides and entomogenous nematodes. Abstr. Pap. Am. Chem. Soc. 203:105.

139. Cooke R J. (1988). Biological control and holistic plant-health care in agriculture. American Journal of Alternative Agriculture 3 (2/3), 51-62.

140. Coombs, E.M., J.K. Clark, G.L. Piper, and A.F. Cofrancesco, Jr. 2004. Biological Control of Invasive Plants in the United States. Oregon State Univ. Press. Corvallis, OR. 467 pp.

141. Cousens, R. (1985).A simple model relating crop yield loss to weed density. Annals of Applied Biology, 107, 239-52.

142. Crawley, M. J. 1989. The success and failures of weed biocontrol using insects. Biocontrol News Inf. 10:213-223.

143. Culliney, T. W. (2005). Benefits of classical biological control for managing invasive plants, Critical Reviews in Plant Science, 24, 131-150.

144. Carvalho L.B., Bianco S., Pitelli R.A. and Bianco M.S. 2007. Comparative study of dry mass accumulation and macronutrients by corn plants cult. BR-106 and Brachiaria plantaginea. Planta Daninha 25, 293301.

145. Cavalieri S.D., Oliveira Junior R.S., Constantin J., Biffe D.F., Rios F.A. and Franchini L.H.M. 2008. Tolerance of corn hybrids to nicosulfuron herbicide. Planta Daninha 26, 203-214.

146. Chahal, G.S., Jordan, D.L., Burton, J.D., Danehower, D., York, A.C., Eure, P.M., Clewis, B., 2012. Influence of water quality and coapplied agrochemicals on efficacy of glyphosate. Weed Technol. 26, 167-176.

147. Chaudhari S, Jennings KM, Monks DW, Jordan DL (2016a) Response of eggplant (Solanum melongena) grafted onto tomato (Solanum lycopersicum) rootstock to herbicides. Weed Technol 30:207-216

148. Chaudhari S, Jennings KM, Monks DW, Jordan DL, Gunter CC, McGowen SJ, Louws FJ (2016). Critical period for weed control in grafted and nongrafted fresh market tomato, Weed Sci 64:523-530

149. Cardina, J, Hartwig, N, Lukezic FL. 1986. Herbicidal effects on crownvetch rhizobia and nodule activity. Weed Sci. 34: 338-343

150. Chaudhari S, Jennings KM, Monks DW, Jordan DL, Gunter CC, McGowen SJ, Louws FJ (2016). Critical period for weed control in grafted and nongrafted fresh market tomato, Weed Sci 64:523-530

151. Chivinge O (1985) Allelopathic effects of purple nutsedge (Cyperus rotundus) on the growth and development of cotton, maize and soya beans. Zimbabwe Agri J 82:151-152

152. Coombs EM, Clark JK, Piper GL, Cofrancesco JR. 2004. Biological Control of Invasive Plants in the United States. Oregon State University Press, Corvallis, OR, 151 pp

153. CARDINA J, HERMS CP & DOOHAN DJ (2002) Crop rotation and tillage system effects on weed seedbanks. Weed Science 50, 448-460.

154. Carlson, S.J., and W.W. Donald. 1988. Fall-applied glyphosate for Canada thistle (Cirsium arvense) control in spring wheat (Triticum aestivum). Weed Technol. 2:445-455.

155. Chapin, F. S. III., C.H.S. Walter, and D. T. Clarkson. 1988. Growth response of barley and tomato to nitrogen stress and its control by abscisic acid, water relations and photosynthesis. Planta 173:352-366.

156. Csinos, A. S., J. E. Laska, and S. Childers. 2002. Dye injection for predicting pesticide movement in micro-irrigated polyethylene film mulch beds. Pest Manag. Sci. 58:381-384.

157. Dale, M.R.T., Thomas, A.G., John, E.A., 1992. Environmental factors including management practices as correlates of weed community composition in spring seeded crops. Canadian Journal of Botany 70, 19311939.

158. Damalas, C.A. 2004. Herbicide tank mixtures: common interactions. Int. J. Agric Biol. 1:209-2012.

159. Davis, S., J. Mangold, F. Menalled, N. Orloff, Z. Miller, and E. Lehnhoff. 2017. A meta-analysis of Canada Thistle (Cirsium arvense) Management. Weed Sci. 66:548-557.

160. Dale, M.R.T., Thomas, A.G., John, E.A., 1992. Environmental factors including management practices as correlates of weed community composition in spring seeded crops. Canadian Journal of Botany 70, 19311939.

161. DiTomaso, J.M. 2000. Invasive weeds in rangelands: species, impacts, and management. Weed Sci. 48:255-265.

162. Donald, W.W., and T. Prato. 1992. Efficiency and economics of herbicides for Canada thistle (Cirsium arvense) control in no-till spring wheat (Triticum aestivum). Weed Sci. 40:233-240.

163. Donald, W.W., and M. Khan. 1996. Canada thistle (Cirsium arvense) effects on yield components of spring wheat (Triticum aestivum). Weed Sci. 44:114-121

164. Drost DC, Doll JD (1980) The allelopathic effect of yellow nutsedge (Cyperus esculentus) on corn (Zea mays) and soybeans (Glycine max). Weed Sci 28:229-233

165. Donald W.W. 1990. Management and control of Canada thistle (Cirsium arvense). Rev. Weed Sci. 5:193-250.

166. Datta A, Sindel BM, Kristiansen P, Jessop RS, Felton WL. 2009. Effect of isoxaflutole on the growth, nodulation and nitrogen fixation of chickpea (Cicer arietinum L.). Crop Protect. 28: 923-927

167. Dittmar PJ (2013) Weed Control Strategies in Tomato. The Florida Tomato Proceedings. p 24. http://swfrec.ifas.ufl.edu/ docs /pdf /veg-hor t /tomato- ins t itute/proceedings / ti13_proceedings.pdf. Accessed June 2014

168. Dittmar PJ, Monks DW, Jennings KM, Booker FL (2012) Tolerance of tomato to herbicides applied through drip irrigation. Weed Technol 26:684-690

169. Duy L, Chon NM, Mann RK, Kumar RVN, Morell MA. 2018. Efficacy of RinskorTM (florpyrauxifen-benzyl ester) on herbicide resistant barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) in rice fields of Mekong Delta, Vietnam. J. Crop Sci. Biotech. 21 (1): 75-81

170. Dogan, M.N., Ogut 1, D.,Dotray PA, Keeling JW, Grichar WJ, Prostko EP, Lemon RG, Everrit JD (2003) Peanut Response to Ethalfluralin, Pendimethalin, and Trifluralin Preplant Incorporated. Peanut Science, 30: 34-37.

171. Dotray, P.A., Marshall, L.C., Parker, W.B., Wyse, D.L., Somers, D.A. and Gengenbach, B.G. 1993. Herbicide tolerance and weed control in sethoxydim-tolerant corn (Zea mays), Weed Science, 41: 213-217.

172. Delfosse, E. S. (2004). Introduction. In Biological Control of Invasive Plants in the United States, ed. E. M. Coombs, J. K. Clark, G. L. Piper and A. F. Cofrancesco, Jr. Corrallis, OR: Oregon State University Press, pp. 111.

173. Devlin, D.L., Long J.H., Maddux L.D., 1991. Using reduced rates of postemergence herbicides in soybean (Glycine max). Weed Technol 5, 834840.

174. Derr, J.F. 2004. The status of weed science at universities and experiment stations in the northeastern United States. Weed Technol. 18, 1150-1156.

175. Dhima, K. V. and I. G. Eleftherohorinos. 2001. Influence of nitrogen on competition between winter cereals and sterile oat. Weed Sci. 49:77-82.

176. DiTomaso, J. M. 1995. Approaches for improving crop competitiveness through the manipulation of fertilization strategies. Weed Sci. 43:491-497.

177. Domaradzki, K., Rola H., 2000. Effectivity of lowered doses usage in cereals. Pam. Pul., 120(1): 53-64. (In Polish).

178. Doreete, M. and K. Jurgen, 2005. The potential of Ulocladium botrytis for biological control of Orobanche sp. Biol. Control, 33: 301-306.

179. Dusky, J.A., J.W. Shrefler, D.G. Shilling, B.J. Brecke, D.L. Colvin, C.A. Sanchez and W.M. Stall. 1996. Influence of phosphorus fertility on competition between lettuce and Amaranthus spinosus L. In: Proceeding of the 2nd International Weed Control Congress, Denmark, pp. 141-145.

180. Duke, J.A., 1983. Handbook of Energy Crops.

181. Damalas C.A. 2004. Herbicide tank mixtures: common interactions. International Journal of Agriculture and Biology 1: 209-2012.

182. Defelice MS. 2002. Catchweed bedstraw or cleavers, Galium aparine L. a very "sticky" subject. Weed Technol. 16:467-472.

183. Derksen DA, Kirkland KJ, McLennan BR, Hunter JH, Loeppky HA, Bowren KE. 1989. Influence of fall and spring herbicide application on winter wheat (Triticum aestivum L. 'Norstar'). Can J Plant Sci. 69:881-888.

184. DeGreeff, RD., Varanasi, AV., Dille, JA., Peterson, DE., Jugulam, M. (2018). Influence of Plant Growth Stage and Temperature on Glyphosate

Efficacy in Common Lambsquarters (Chenopodium album). Weed Technoloy. 32:448-453.

185. Devkota P, Norsworthy JK, Rainey R (2013) Efficacy and economics of herbicide programs compared to methyl bromide for weed control in polyethylene-mulched tomato. Weed Technol 27:580-589

186. Dittmar PJ (2013) Weed control strategies in tomato. Page 24 in The Florida Tomato Proceedings. http: //swfrec.ifas. ufl .edu/docs/pdf/ve g-hort/tomatoinstitute/ proceedings/ti13_proceedings.pdf. Accessed: June 2014

187. Devkota P, Norsworthy JK, Rainey R (2013) Efficacy and economics of herbicide programs compared to methyl bromide for weed control in polyethylene-mulched tomato. Weed Technol 27:580-589

188. Dittmar PJ (2013) Weed control strategies in tomato. The Florida Tomato Proceedings. P 24. http: //swfrec. ifas .ufl .edu/docs/pdf/ve ghort/tomatoinstitute/proceedings/ti 1 3_proceedings. pdf. Accessed June 2014.

189. Dittmar P, David W. Monks, and Katherine M. Jennings. 2012. Effect of Drip-Applied Herbicides on Yellow Nutsedge (Cyperus esculentus) in Plasticulture. Weed Technol. 26:243-247.

190. Dittmar, P. J., K. M. Jennings, and D. W. Monks. 2010. Response of diploid watermelon to imazosulfuron POST. Weed Technol. 24:127-129.

191. Freeman JH, Vallad GE, Dittmar PJ (2016) Vegetable Production Handbook of Florida 2016-2017. Gainesville, FL: University of Florida, Vance Publishing

192. EFSA (European Food Safety Authority). Reasoned opinion on the modification of the existing maximum residue level for aminopyralid in maize. EFSA J. 2016. 14:4497.

193. Evans SP, Knezevic SZ, Lindquist JL, Shapiro CA, Blankenship EE. 2003. Nitrogen application influences the critical period for weed control in corn. Weed Sci. 51:408-417.

194. Evans S.P., Knezevic S.Z., Lindquist J.L., Shapiro C.A. Blankenship E.E. 2003. Nitrogen application influences the critical period for weed control in corn. Weed Science 51: 408-417.

195. Emam, Y. and Moaied, G. R. 2000. Effect of Planting Density and Chlormequat Chloride on Morphological and Physiological Characteristics of Winter Barley (Hordeum vulgareL.) Cultivar Valfajr. J. Agric. Sci. Tech., 2: 75-83.

196. Epstein, A.H. and Hill, J.H. 1995. The biology of rose rosette disease: a mite-associated disease of uncertain etiology. J. Phytopathol. 143, 353360.

197. El-Sheikh, M.A., 2013. Weed vegetation ecology of arable land in Salalah, Southern Oman. Saudi J. Biol. Sci. 20, 291-304.

198. EGLI M., S. LUTZ, D. SOMERS, B. GENGENBACH, 1994 Identification and mapping of maize acetyl-CoA carboxylase genes. Maize Genet. Newsletters 68: 92-93

199. Evans, S. P., S. Z. Knezevic, J. L. Lindquist, C. A. Shapiro, and E. E. Blankenship. 2003. Nitrogen application influences the critical period for weed control in corn. Weed Sci. 51:408-417.

200. Enloe SF, Nissen SJ, Westra P. 1999. Absorption fate and soil activity of quinclorac in field bindweed (Convolvulus arvensis). Weed Sci. 47: 136142

201. Eure PM, Culpepper AS (2017) Bell pepper and weed response to dimethyl disulfide plus chloropicrin and herbicide systems. Weed Technol 31:1-7

202. EFSA (European Food Safety Authority). Reasoned opinion on the modification of the existing maximum residue level for aminopyralid in maize. EFSA J. 2016. 14, 4497.

203. Fantroussi, S., Verschuere, L., Verstraete, W. and Top E.M. 1999. Effect of phenylurea herbicides on soil microbial communities estimated by analysis of 16S rRNA gene fingerprints and community-level physiological profiles. Appl. Environ. Microbiol. 65, 982-988.

204. Fares, C.N., 1997. Growth and yield of wheat plants as affected by biofertilization with associative symbiotic N-fixers and endomycorohizae in the presence of different P fertilizers. Annals Agric. Sci. Cairo, 42(1): 5160.

205. FRANKE AC, LOTZ LAP, VAN DER BURG WJ & VAN OVERBEEK L (2009) The role of arable weed seeds for agroecosystem functioning. Weed Research 49, 131-141.

206. Fernandez-Quintanilla C., Barroso J., Recasens J., Sans X., Torner C., Sanchez Del Arco M.J., 1998. Demography of Lolium rigidum in winter barley crops: analysis of recruitment, survival and reproduction. Weed Res 40, 281-291.

207. Fernandez-Quintanilla, C.; Barroso, J.; Recasens, J.; Sans, X.; Torner, C.; Sánchez Del Arco, M.J. Demography of Lolium rigidum in winter barley crops: analysis of recruitment, survival and reproduction. Weed Research, v.40, n.3, p.281.291, 2000.

208. FERNANDEZ-QUINTANILLA, C., QUADRANTI, M., KUDSK, P., BARBERI, P., 2008. Which future for weed science? Weed Research 48, 297-301.

209. Fogelfors, H., 1990. Different doses of herbicide for control of weeds in cereals-final report from the long-term series. In: 31st Swed. Crop Prot. Confer. Weeds and Weed control, Reports, pp. 139-151.

210. Foresight (2011) The Future of Food and Farming, Final Project Report. London: The Government Office for Science.

211. Frantz, J.M., D. Pinnock, S. Klassen and B. Bugbee, 2004. Characterizing the environmental response of gibberellic acid-deficient rice for use as a model crop. Agronomy J., 96: 1172-1181.

212. Frantzen, J (1994) an epidemiological study of Puccinia punctiformis (Str.) Ro " hl as a stepping-stone to the biological control of Cirsium arvense (L.) Scop. New Phytologist 127, 147-154.

213. Franke A.C., Lotz L.A.P., Van der Burg W.J., Van Overbeek L. (2009) The role of arable weed seeds for agroecosystem functioning,Weed Res. 49, 131-141.

214. Frantzen, J&Van der Zweerde W (1994) Quantitative resistance of Cirsium arvense to root bud infection by Puccinia punctiformis. Biocontrol Science and Technology 4, 223-228.

215. Fravel, D. R., J. J. Marios, and W. J. Connick, Jr. 1984. Encapsulation of potential biocontrol agents in sodium alginate aggregates. Phytopathology 74:756.

216. FRYER, J.D., 1985. Recent research on weed management: new light on an old practice. Chap. 9, in W.W. Fletcher (Ed.) Recent advances in Weed Research. The Gresham Press, Old Working, Surrey, U.K.

217. Fried G., Petit S., Dessaint F., Reboud X. (2009) Arable weed decline n Northern France: Crop edges as refugia for weed conservation? Biol. Conserv. 142, 238-243.

218. Froud-Williams RJ (1997) Varrn gp selection for weed suppression. Aspects of Applied Biology 50, Optimising cereal inputs: its scientific basis 355-360.

219. Fernandes TCC, Maria DEC, Marin-Morales A. 2007. Mechanism of micronuclei formation in polyploidizated cells of Allium cepa exposed to trifluralin herbicide. Pestic. BIochem. Phys. 88 (3): 252-259

220. Francischini A.C., Constantin J., Oliveira J.r., R.S. 2014. Resistance of Amaranthus retroflexus to acetolactate synthase inhibitor herbicides in Brazil. Planta Daninha 32 (2): 437-446.

221. Ferguson G.M., Hamill A.S., Tardif F.J. 2001. ALS-inhibitor resistance in populations of Amaranthus powellii and Amaranthus retroflexus. Weed Science 9: 448-453

222. Fogelfors, H. 1979. Changes in the Flora of Farmland" Swed. Univ. Agric. Sci. Dept, Ecol. Environ. Res. Rep. No. 5, Uppsala. pp 66

223. FERRARO PJ (2001) Global habitat protection: Limitations of development interventions and a role for conservation performance payments. Conservation Biology 15, 990- 1000.

224. Fogelfors, H. 1979. Changes in the Flora of Farmland" Swed. Univ. Agric. Sci. Dept, Ecol. Environ. Res. Rep. No. 5, Uppsala. pp 66

225. Ferhatoglu Y, Barrett M. 2006. Studies of clomazone mode of action. Pestic Biochem Physiol. 85:7-14.

226. Galon L, David FA, Forte CT, Juniro FWR, Radunz AL, Kujawinski R, Radunz LL, Castoldi CT, Perin GF, Mossi AJ. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biol. Manag. 18:26-40.

227. Glazunova JA, Bezgina DV, Ustymov LV, Maznitsyna OV. 2015. Modern herbicides in winter wheat crops and their influence on crop yield N.N. Agriculture and Crop Production. 9:29-31. In Russian.

228. Gomaa, N.H., 2012. Composition and diversity of weed communities in Al-Jouf province, northern Saudi Arabia. Saudi J. Biol. Sci. 19, 369-376.

229. Grossman K. 2000. The mode of action of auxin herbicides: a new ending to a long, drawn out story. Trends Plant Sci. 5:506-508.

230. GABRIEL D & TSCHARNTKE T (2006) Insect pollinated plants benefit from organic farming. Agriculture, Ecosystems & Environment 118, 43-48.

231. Galon, L., F.A. David, C.T. Forte, F.W.R. Juniro, A.L. Radunz, R. Kujawinski, L.L. Radunz, C.T. Castoldi, G.F. Perin, and A.J. Mossi. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biol. Manag. 18:26— 40.

232. Gianessi, L.P. 2013. The increasing importance of herbicides in worldwide crop production. Pest Manag Sci. 69:1099-1105.

233. Grichar WJ (1992) Yellow nutsedge (Cyperus esculentus) control in peanuts (Arachis hypogaea). Weed Technol 6:108-112

234. Graglia, E., B. Melander, and R.K. Jensen. 2006. Mechanical and cultural strategies to control Cirsium arvense in organic arable cropping systems. Weed Res. 46:304-312.

235. Grekul, C.W., and E.W. Bork. 2007. Fertilization augments Canada thistle (Cirsium arvense L. Scop) control in temperate pastures with herbicides. Crop Protect. 26:668-676.

236. Galon, L., F.A. David, C.T. Forte, F.W.R. Juniro, A.L. Radunz, R. Kujawinski, L.L. Radunz, C.T. Castoldi, G.F. Perin, and A.J. Moss. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biol. Manag. 17:2241.

237. Garvey PV, Meyers SL, Monks DW, Coble HD (2013) Influence of Palmer amaranth (Amaranthus palmeri) on the critical period for weed control in plasticulture-grown tomato. Weed Technol 27:165-170

238. Grichar WJ, Besler BA, Brewer KD (2003) Purple nutsedge control and potato (Solanum tuberosum) tolerance to sulfentrazone and halosulfuron. Weed Technol 17:485-490

239. Haar MJ, Fennimore SA, McGiffen ME, Lanini WT, Bell CE (2002) Evaluation of preemergence herbicides in vegetable crops. Horttechnology 12:95-99

240. Hatzios, K.K, and D. Penner. 1985. Interactions of herbicides with other agrochemicals in higher plants. Rev. Weed Sci. 1:1-63.

241. HALD AB (1999) The impact of changing the season in which cereals are sown on the diversity of the weed flora in rotational fields in Denmark. Journal of Applied Ecology 36, 24-32.

242. Hanft, J.M. and R.D. Wych. 1982. Visual indicators of physiological maturity of hard red spring wheat. Crop Sci. 22:584-587.

243. Galon, L., F.A. David, C.T. Forte, F.W.R. Juniro, A.L. Radunz, R. Kujawinski, L.L. Radunz, C.T. Castoldi, G.F. Perin, and A.J. Mossi. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biol. Manag. 18:2640.

244. Gianessi, L.P. 2013. The increasing importance of herbicides in worldwide crop production. Pest Manag Sci. 69:1099-1105.

245. Graglia, E., B. Melander, and R.K. Jensen. 2006. Mechanical and cultural strategies to control Cirsium arvense in organic arable cropping systems. Weed Res. 46:304-312.

246. Grekul, C.W., and E.W. Bork. 2007. Fertilization augments Canada thistle (Cirsium arvense L. Scop) control in temperate pastures with herbicides. Crop Protect. 26:668-676.

247. Ghaibi, M.A., Asadi, F. and Tehrani, M.M. 2014. Integrated Soil Fertility Management and Nutrition Management Corn Guide. 55 P.

248. Gibbons D.W., Bohan D.A., Rothery P. (2006) Weed seed resources for birds in fields with contrasting conventional and genetically modified herbicide-tolerant crops, Philos. Trans. R. Soc. Lond. B 273, 1921-1928.

249. Gonzalez Ponce, R. 1998. Competition between barley and Lolium rigidum for nitrate. Weed Res. 38:453-460.

250. Ghosheh, H. Z. 2005. Constraints in implementing biological weed control: A review. Weed biology and management. 5, 83-92.

251. Green, S, Bailey KL & Tewari JP (2001) The infection process of Alternaria cirsinoxia on Canada thistle (Cirsium arvense) and host structural defence responses. Mycological Research 105, 344-351.

252. Gupta, O.P. 2004. Modern weed management. 2nd ed. p. 18-23. Agrobios, Jodhpur, India.

253. Galon L, David FA, Forte CT, Juniro FWR, Radunz AL, Kujawinski R, Radunz LL, Castoldi CT, Perin GF, Mossi AJ. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biol. Manag. 18:26-40.

254. Galon L, David A, Radunz A, Kujawinski R, Radunz L, Mossi A. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biol. Manag. 18: 26-40

255. Grey TL, Bridges DS. 2003. Alternatives to diclofop for the control of Italian ryegrass in winter wheat. Weed Technol. 17: 219-223

256. Grey TL, Cutts GS, Sosnoskie L, Culpepper AS. 2012. Italian ryegrass (Lolium perenne) control and winter wheat response to POST herbicides. Weed Technol. 26: 644-648

257. Grossmann K. 2010. Auxin herbicides: current status of mechanism and mode of action. Pest Manag. Sci. 66: 113-120

258. Galon L., David F.A., Forte C.T., Juniro F.W.R., Radunz A.L., Kujawinski R., Radunz L.L., Castoldi C.T., Perin G.F., Mossi A.J. 2018. Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biology and Management 18: 26-40.

259. Glazunova J.A., Bezgina D.V., Ustymov L.V., Maznitsyna O.V. 2015. Modern herbicides in winter wheat crops and their influence on crop yield N.N. Agriculture and Crop Production 9, 29-31. In Russian.

260. Galon, L., David, FA., Forte, CT., Juniro, FWR., Radunz, AL., Kujawinski, R., Radunz, LL., Castoldi, CT., Perin, GF., Mossi, AJ. (2018). Chemical management of weeds in corn hybrids. Weed Biology and Management. 18: 26-40.

261. GOODMAN, D., 1975. The theory of diversity-stability relationship in ecology. Q. Rev. Biol. 50, 237- 266.

262. Creamer, N. G., M. A. Bennett, B. R. Stinner, J. Cardina and E. E. Regnier (1996). Mechanisms of weed suppression in cover crop-based production systems. Hortscience 31:410- Haramoto, E. R. and E. R. Gallandt (2005). Brassica cover cropping: I. effects on weed and crop establishment. Weed Sci. 53:695-701.

263. Haar MJ, Fennimore SA, McGiffen ME, Lanini WT, Bell CE (2002) Evaluation of preemergence herbicides in vegetable crops. Horttechnology 12:95-99

264. Hartwig, N. L. and H. U. Ammon (2002). Cover crops and living mulches. Weed Sci. 50:688-699.

265. Heap, I. and H. LeBaron (2001). Introduction and overview of resistance. In: Herbicide resistance and world grains, CRC Press pp.1-22.

266. Helm, J. L. and R. K. Zollinger (1991). Weed control with winter rye. http://www.ag.ndsu.edu. Accessed Aug. 27, 2008.

267. Hite, GA., King, SR., Hagood, ES., Holtzman, GI. (2008). Differential response of a Virginia common lambsquarters (Chenopodium album) collection to glyphosate. Weed Sci 56: 203-209.

268. Huang Z., Huang H., Chen J., Chen J., Wei S., Zhang C. 2019. Nicosulfuron-resistant Amaranthus retroflexus L. in Northeast China. Crop Protestation 122: 79-83.

269. Heap I. 2018. The International Survey of Herbicide Resistant Weeds. http://www. Weed science.com.

270. Heap I. 2019. The International Survey of Herbicide Resistant Weeds. Available. http://www.weedscience.org. Assessed: May 11:2019.

271. Haas, H. and J.C. Streibig, 1982. Changing patterns of weed distribution as a result of herbicide use and other agronomic factors. In: Herbicide Resistance in Plants. (Eds.: H.M. LeBaron and J. Gressel). John Wiley and Sons, New York. pp. 57-79.

272. Hawes C., Haughton A.J., Bohan D.A., Squire G.R. (2009) Functional approaches for assessing plant and invertebrate abundance patterns in arable systems, Basic Appl. Ecol. 10, 34-42.

273. Hawes C., Haughton A.J., Osborne J.L., Roy D.B., Clark S.J., Perry J.N., Rothery P., Bohan D.A., Brooks D.R., Champion G.T., Dewar A.M., Heard M.S.,Woiwod I.P., Daniels R.E., Young M.W., Parish A.M., Scott R.J., Firbank L.G., Squire G.R. (2003) Responses of plants and invertebrate trophic groups to contrasting herbicide regimes in the Farm Scale Evaluations of genetically modified herbicide-tolerant crops, Philos. Trans. R. Soc. Lond. B 358, 1899- 1913.

274. Hallet, S. G. 2005. Where are the bioherbicides? Weed science. 53:404-415.

275. Hamill, A.S., Zhang, J., 1995. Herbicide reduction in metribuzin based weed control programs in corn. Can J Plant Sci 75, 927-933.

276. Hamill A.S., Weaver S.E., Sikkema P.H., Swanton C.J., Tardif F.J., Ferguson G.M., 2004. Benefits and risks of economic vs. efficacious approaches to weed management in corn and soybean. Weed Technol 18, 723-732.

277. Hans, S. R. and W. G. Johnson. 2002. Influence of shattercane [Sorghum bicolor (L.) Moench.] interference on corn (Zea mays L.) yield and nitrogen accumulation. Weed Technol. 16:787-791.

278. Hasan, S & Ayres PG (1990) The control of weeds through fungi: principles and prospects. New Phytologist 115, 201- 222.

279. Heap I. 2019. The International Survey of Herbicide Resistant Weeds. Available. http://www.weedscience.org. Assessed: March 2:2019.

280. Hubner T, Fykse H, Hurle K, Klemsdal SS. 2003. Morphological differences, molecularcharacterization, and herbicide sensitivity of Catchweed bedstraw (Galium aparine) populations. Weed Sci. 51:214-225.

281. Hatzios, K.K, and D. Penner. 1985. Interactions of herbicides with other agrochemicals in higher plants. Rev. Weed Sci. 1:1-63.

282. Hanft, J.M. and R.D. Wych. 1982. Visual indicators of physiological maturity of hard red spring wheat. Crop Sci. 22:584-587.

283. HOWARD J.L., S.M. RIDLEY, 1990 Acetyl-CoA carboxylase: a rapid novel assay procedure used in conjuction with the preparation of enzyme from maize leaves. FEBS Lett. 261: 261-264.

284. Heap, I. 2007. The International Survey of Herbicide Resistant Weeds [Online] 02 April 2007. Herbicide Resistance Action Committee (HRAC), North American Herbicide Resistance Action Committee (NAHRAC), and Weed Science Society of America (WSSA), Corvallis, Oregon, USA. Available at http:// www.weedscience.com (accessed 2 February 2007).

285. HOLST, N., RASMUSSEN, I.A., BASTIAANS, L., 2007. Field weed population dynamics: a review of model approaches and populations. Weed Research 47, 1-14

286. Holm, L., 1997. World Weeds: Natural Histories and Distribution. John Wiley & Sons.

287. Holm, L.G., Plucknett, D.L., Pancho, J.V., Herberger, J.P., 1977. The World's Worst Weeds. University Press.

288. Heiny, D.K., Mintz, A.S., Weidemann, G.J., 1992. Redisposition of Aposphaeria amaranth in Microsphaeropsis. Mycotaxon 44, 137-154.

289. Henson, I. E. and C. S. Little. 1969. Penetration of polyethylene film by the shoots of Cyperus rotundus. PANS Pest Artic. News Summ. 15:6466.

290. Henson, J. F. and L. S. Jordan. 1982. Wild oat (Avena fatua) competition with wheat (Triticum aestivum and T. turgidum durum) for nitrate. Weed Sci. 30:297-300.

291. Hoagland R.E. 2001. Microbial allelochemicals and pathogens as bioherbicidal agents. Weed Technol. 15, 835-857.

292. Holcomb, G.E. 1982. Evaluation of Alternaría alternantherae as a control for alligatorweed. In: Biological Control of Weeds with Plant Pathogens (ed. by Charudattan R. and Walker H.L.). John Wiley & Sons, New York, 239.

293. Hooper D.U., Solan M., Symstad A., Diaz, S., Gessner M.O., Buchmann N., Degrange V., Grime P., Hulot F., Mermillod-Bondin F., Roy J., Spehn E., Van Peer L. (2002) Species diversity, functional diversity, and ecosystem functioning in: Loreau M., Naeem S., Inchausti P. (Eds.), Biodiversity and ecosystem functioning: Synthesis and perspectives. Oxford University Press, Oxford, pp. 195-281.

294. Hume, L. 1982. The long-term effects of fertilizer application and three rotations on weed communities in wheat (after 21years at Indian Head, Saskatchewan). Can. J. Plant Sci. 62: 741-750.

295. Hall, L.M., Beckie, H.J., Low, R., Shirriff, S.W., Blackshaw, R.E., Kimmel, N., Neeser, C., 2014. Survey of glyphosate-resistant kochia (Kochia scoparia L. Schrad.) in Alberta. Can. J. of Plant Sci. 94, 127-130.

296. Hartzler, B., 2001. Glyphosate- A Review. Iowa State University Weed Science Online: http: //www.weeds.iastate.edu/mgmt/2001/glyphosate%20review.htm, 7pp.

297. Hyvonen T., Huusela-Veistola E. (2008) Arable weeds as indicators of agricultural intensity - a case study from Finland, Biol. Conserv. 141, 28572864.

298. Hess F. 2000. Light-dependent herbicides: an overview. Weed Sci. 48: 160-170

299. Johnson EN, Wang Z, Geddes CM, Coles K, Hamman B, Beres BL. 2018. Pyroxasulfone is effective for management of Bromus spp. in winter wheat in western Canada. Weed Technol. 32: 739-748

300. Irani M, Das TK, Kumar A, Sarkar B, Sharma KK. 2015. Behavior and bioefficacy of tribenuron-methyl in wheat (Triticum astevum L.) under irrigated agro-ecosystem in India. Environ Monit Assess. 187: 1-9.

301. Isaacs R., Tuell J., Fiedler A., Gardiner M., Landis D. (2009) Maximizing arthropod-mediated ecosystem services in agricultural landscapes: the role of native plants, Front. Ecol. Environ. 7, 196-203.

302. Johnson, EN., Wang Z, Geddes CM, Coles K, Hamman B, Beres BL. 2017. Pyroxasulfone Is Effective for Management of Bromus spp. in Winter Wheat in Western Canada. Weed Technol. 32:739-748.

303. Jaleel, C.A., R. Gopi and R. Panneerselvam, 2007.Alterations in lipid peroxidation, electrolyte leakageand proline metabolism in Catharanthus roseus undertreatment with triadimefon, a systemic fungicide. Comptes Rendus Biologies, 330(12): 905-912.

304. Jackson L.E., Pascual U., Hodgkin T. (2007) Utilizing and conserving agrobiodiversity in agricultural landscapes, Agr. Ecosyst. Environ. 121, 196-210.

305. Jacoby TP (2012) Evaluation of the Long Term Sustainability of Methyl Bromide Alternatives in Tomato (Solanum lycopersicum Mill.) and pepper (Capsicum annuum L.). M.S. thesis. Gainesville, FL: University of Florida. 89 p

306. Jaleel, C.A., R. Gopi and R. Panneerselvam, 2008. Growth and photosynthetic pigments responses of two varieties of< i> Catharanthus roseus</i> totriadimefon treatment. Comptes Rendus Biologies, 331(4): 272-277.

307. Jennings KM (2010) Tolerance of fresh-market tomato to postemergencedirected imazosulfuron, halosulfuron and trifloxysulfuron. Weed Technol

308. 24:117-120

309. Johnson, D.R., Wyse, D.L. and Jones, K.J. 1996. Controlling weeds with phytopathogenic bacteria. Weed Technol. 10, 621-624.

310. Johnson, W.C. III. 2004. The non-chemical weed control research program in Georgia: the good, the bad, the ugly. In: Dotray P.A., ed.

Proceedings of the Southern Weed Science Society (Memphis, TN, USA, 26- 28 January 2004). The Southern Weed Science Society, Memphis, TN, USA, 376.

311. J0rnsgard, B., K. Rasmussen, J. Hill, and J. L. Christensen. 1996. Influence of nitrogen on competition between cereals and their natural weed populations. Weed Res. 36:461-470.

312. Johnson, W.G., Bradley, P.R., Hart, S.E., Buesinger, M.L. and Massey, R.E. 2000. Efficacy and Economics of Weed Management in Glyphosate-Resistant Corn (Zea mays L.). Weed technology, 14: 57-65.

313. Johnson, W. C. III. and B. G. Mullinix Jr.. 2008. Cultural control of yellow nutsedge (Cyperus esculentus) in transplanted cantaloupe (Cucumis melo) by varying application timing and type of thin-film mulches. Crop Prot. 27:735-739.

314. JORDAN, N., 1993. Prospects for weed-control through crop interference. Ecol. Appl. 3,84-91.

315. JORDAN, N., GUNSOLUS, J., BECKER, R., WHITE, S., 2002. Public scholarship - linking weed science with public work. Weed Science 50, 547-554.

316. Jurado-Expósito M, López-Granados F, González- Andújar JL, García-Torres L. 2004. Spatial and temporal analysis of Convolvulus arvensis L. populations over four growing seasons. Eur. J. Agron. 21: 287-296

317. Jefferies ML, Willenborg CJ, Tar'an B. 2016. Response of chickpea cultivars to imidazolinone herbicide applied at different growth stages. Weed Technol. 30: 664-676

318. Jacob H.S., Minkey D.M., Gallagher R.S., Borger C.P. (2006) Variation in postdispersal weed seed predation in a crop field, Weed Sci. 54, 148-155.

319. Johnson E.N., Wang Z., Geddes C.M., Coles K., Hamman B., Beres B.L. 2017. Pyroxasulfone Is Effective for Management of Bromus spp. in Winter Wheat in Western Canada. Weed Technology 32: 739-748.

320. Johnson G.W., V.M. Davis, G.R. Kruger. and S.C. Weller. 2009. Influence of glyphosate-resistant cropping systems on weed species shifts and glyphosate-resistant weed populations. European J. Agron. 31:162-172.

321. Johnson, EN., Wang, Z., Geddes, CM., Coles, K., Hamman, B., Beres, BL. (2017). Pyroxasulfone Is Effective for Management of Bromus spp. in Winter Wheat in Western Canada. Weed Technology. 32: 739-748.

322. Johnson, A. M. and G. D. Hoyt (1999). Changes to the soil environment under conservation tillage. HortTechnology 9:380-392.

323. Jennings KM (2010) Tolerance of fresh-market tomato to postemergence directed imazosulfuron, halosulfuron and trifloxysulfuron. Weed Res. 24:117-120

324. Jadidi M., M.S. Sabuni, M. Homayounifar, A. Mohammadi. 2012. Assessment of energy use pattern for tomato production in Iran: A case study from the Marand region. Res. Agr. Eng. 2: 50-56

325. KNOP E, KLEIJN D, HERZOG F & SCHMID B (2006) Effectiveness of the Swiss agrienvironment scheme in promoting biodiversity. Ecology 43, 120-127.

326. Kniss, AR., Miller, SD., Westra, PH., Wilson, RG. (2007). Glyphosate susceptibility in common lambsquarters (Chenopodium album) is influenced by parental exposure. Weed Sci 55:572-577.

327. Kantar F, Hafeez FY, Shivkumar BG, Sundaram SP, Tejera NA, Aslam A, Raja P. 2007. Chickpea: rhizobium management and nitrogen fixation. In SS Yadav, RJ Redden, W Chen, B Sharma B, eds., Chickpea

Breeding and Management. Wallingford, UK, CAB International, pp 179192

328. Kaur K, Kaur J, Grewal SK, Singh S. 2017. Herbicide induced physiological changes in chickpea (Cicer arietinum L.) genotypes. J. Food Legumes 30(3): 20-26

329. Klute A, Dirksen C. 1986. Hydraulic conductivity and diffusivity: laboratory methods. In: Methods of Soil Analysis, Part 1, Physical and Mineralogical Methods, A Klute, Ed, 2nd ed. American Society of Agronomy. Madison, WI, USA

330. KuKorelli, G., Reisinger, P. and Kazinczi, G. 2012. Results of the study of cross-resistance and effect of herbicide on crops in the production of cycloxydim-tolerant maize (Zea mays L). Maydica, 57:188-193.

331. Kukorelli, G., Reisinger, P. and Pinke, G. 2013. ACCase inhibitor herbicides-selectivity, weed resistance and fitness cost: a review. International Journal of Pest Management, 59 (3): 165-173. DOI: 10.1080\09670874.2013.821212.

332. Kahramanoglu, I., and F.N. Uygur. 2010. The effects of reduced doses and application timing of metribuzin on redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.) and wild mustard (Sinapis arvensis L.). Turkish Journal of Agriculture and Forestry 34:467-474.

333. Ke, S.Y., Wei, T.B., Xue, S.J., Duan, L.P and Li, J.Z., 2005. Indian J Chem, 44B, 1957.

334. Kempenaar, C. and Scheepens, P.C. 1999. Dutch case studies showing the success and limitations of biological weed control. In: Pallet K., ed. The 1999 Brighton Conference on Weeds (Brighton, UK, 15-18 November 1999). The British Crop Protection Council, Brighton, UK, 297-302.

335. Khaliq, A., Matloob, A., Tanveer, A., Areeb, A., Aslam, F. and Abbas, N. Chilean journal of Agricultural Research, 2011, 71 (3) 424-429.

336. Khan, I.A., Ullah, Z., Hassan, G., Marwat, K.B., Jan, A., Shah, S.M. A., Khan, S.A., 2011a. Impact of different mulches on weed flora and yield of maize. Pak. J. Bot. 43, 1601-1602.

337. Kluth, S, Kruess A&Tscharntke T (2001) Interactions between the rust fungus Puccinia punctiformis and ectophagous and endophagous insects on creeping thistle. Journal of Applied Ecology 38, 548-556.

338. Kluth, S, Kruess A&Tscharntke T (2003) Influence of mechanical cutting and pathogen application on the performance and nutrient storage of Cirsium arvense. Journal of Applied Ecology 40, 334-343.

339. Knezevic, S. Z.,Weise, S. F., & Swanton, C. J. (1994). Interference of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus) in corn (Zea mays).Weed Science, 42, 568-73.

340. Kromp B. (1999) Carabid beetles in sustainable agriculture: a review on pest control efficacy, cultivation impacts and enhancement, Agr. Ecosyst. Environ. 74, 187-228.

341. Kremer, R.J. and Souissi, T. 2001. Cyanide production by rhizobacteria and potential for suppression of weed seedling growth. Curr. Microbiol. 43, 182-186.

342. Kremer, R. 2005. The role of bioherbicides in weed management. Biopesticides. International. 1(3,4): 127-141.

343. Kropff, M. J., Lotz, L.A. P.,&Weaver, S. E. (1993). Practical applications. In Modelling Crop-Weed Interactions, ed.M. J.Kropff & H.H. van Laar, pp. 149-67.Wallingford, UK: CAB International.

344. KRISTOFFERSEN, P., LARSEN, S.V., M0LLER, J., HELS, T., 2004. Factors affecting the phase-out pesticide use in public areas in Denmark. Pest Management Science 60, 605-612.

345. Kudsk P, Mathiassen SK. 2004. Joint action of amino acid biosynthesis inhibiting herbicides. Weed Res. 44: 313-322

346. Kuk YI, Burgos NR, Talbert RE. 2008. Cross- and multiple resistance of diclofop resistant Lolium spp. Weed Sci. 48: 412-419

347. LIEBMAN, M., GALLANDT, E.R., 1997. Many little hammers: ecological management of crop-weed interactions. In: Ecology in Agriculture (Eds L.E. Jackson), Oralndo, F.L., Academic Press.

348. Lamont, W. J. Jr. 1993. Plastic mulches for the production of vegetable crops. Horttechnology 3:35-39.

349. Liebman, M., C. L. Mohler and C. P. Staver (2004). Ecological management of agricultural weeds. Cambridge, UK., Cambridge University Press.

350. LIEBMAN M (2001) Weed Management: a need for ecological approaches. M. Liebman, C. L. Mohler & C. P. Staver (Eds.), Ecological Management of Agricultural Weeds (pp. 532 p). Cambridge, UK: Cambridge University Press.

351. Lynge, E. (1998). Cancer incidence in Danish phenoxy herbicide workers, 1947-1993. Environmental Health Perspectives 106:683-688.

352. Lauridson TC, Wilson RG, Haderlie LC. 1983. Effect of moisture stress on Canada thistle (Cirsium arvense) control, absorption, and translocation of herbicide. Weed Sci. 31: 674-680

353. Lawes, R., A. and Wallace, J., F., 2008. Monitoring an invasive perennial at the landscape scale with remote sensing. Ecological management & Restoration, 9(1), pp. 53-59.

354. Lemerle D, Verbeek B&Orchard B (2001) Ranking the ability of wheat varieties to compete with Lolium rigidum. Weed Research 41, 197209.

355. Liebman, M., Mohler, C. L & Staver, C. P. 2004. Ecological Management of Agricultural Weeds. Cambridge University Press.

356. Lindquist, J. L.,Mortensen,D.A., Clay, S.A., Schemnk, R., Kells, J. J.,Howatt, K., & Westra, P. (1996). Stability of coefficients in the corn yield

loss-velvetleaf density relationship across the north central US.Weed Science, 44, 309-13.

357. Landes, M., Walter, H., Gerber, M. and Auxier, B. 1996. New possibilities for postemergence grass weed control with cycloxydim and sethoxydim in herbicide tolerant corn hybrids. In Brown, H. (ed.), Objavljeno u Proceedings of the Second International Weed Control Congress. Department of Weed Control and Pesticide Ecology, Copenhagen, Denmark. pp 869-874.

358. Liebman, M. and R. J. Janke. 1990. Sustainable weed management practices. Pages 111 -143 in C. A. Francis, C. B. Flora, and L. D. King, eds. Sustainable Agriculture in Temperate Zones. New York: John Wiley and Sons.

359. Lintell-Smith, G., J. M. Baylis, and A. R. Watkinson. 1992. The effects of reduced nitrogen and weed competition on the yield of winter wheat. Asp. Appl. Biol. 30:367-372.

360. Lewis, D.W., Gulden, R.H. 2014. Effect of Kochia (Kochia scoparia) Interference on Sunflower (Helianthus annuus) Yield. Weed Sci. 62, 158165

361. LATACZ-LOHMANN U & SCHILIZZI S (2007) Quantifying the benefits of conservation auctions. EuroChoices 6, 32-39.

362. Li, P., He, S., Tang, T., Qian, K., Ni, H., Cao, Y. 2012. Evaluation of the efficacy of glyphosate plus urea phosphate in the greenhouse and the field Pingliang. Pest Manag Sci. 68, 170-177.

363. Lindenmayer RB, Nissen SJ, Westra PP, Shaner DL, Brunk, G. 2013. Aminocyclopyrachlor absorption, translocation and metabolism in field bindweed (Convolvulus arvensis). Weed Sci. 61: 63-67

364. Lees B. 2004. Weed control in chickpea, an Alberta perspective. http://ssca.usask. ca/conference/2000proceedings/Lees.html. Accessed: February 1, 2000

365. Lindsay WL, Norvell WA. 1978. Development of a DTPA soil test for zinc, iron, manganese, and copper. Soil Sci. Soc. Am. J. 42: 421-428

366. Luchinskiy, A.S., S.I. Luchinskiy, V.A. Kalashnikov, and A.V. Makoveev. 2017. Suppression of field thistle - Cirsium arvense in sunflower crops. Nauch. zhurn. KubGAU. 33:1-10. In Russian.

367. Mafakheri, S., M. Zargar, and K. Fakhri. 2012. The best application time and dose of herbicide for optimum weed management in two red bean cultivars. Indian J. Sci. and Technol. 5:1848-50.

368. Mantle P.G., Shaw S. (1977) A Case Study of the Aetiology of Ergot Disease of Cereals and Grasses, Plant Pathol. 26, 121-126.

369. Manning GR, Fennimore SA (2001) Evaluation of low-rate herbicides to supplement methyl bromide alternative fumigants to control weeds in strawberry. HortTechnol 11:603-609

370. Miller M.R., and Peter J. Dittmar. 2014. Effect of PRE and POST-Directed Herbicides for Season-Long Nutsedge (Cyperus spp.) Control in Bell Pepper. Weed Res. 28:518-526.

371. McNaughton, K.E., L.R. Brown, and P.H. Sikkema. 2014. Tolerance of winter wheat (Triticum aestivum L.) and under seeded red clover (Trifolium pretense L.) to fall applied postemergence broadleaf herbicides. Am J Plant Sci. 5:1265-1271.

372. McNeely J.A., Scherr S.J. (2003) Ecoagriculture.Washington, Island Press.

373. Manson R.H., Stiles E.W. (1998) Links between microhabitat preferences and seed predation by small mammals in old fields, Oikos 82, 37- 50.

374. Miller, T.W. 2016. Integrated strategies for management of perennial weeds. Invasive Plant Sci Manag. 9:148-158.

375. Morishita, D.W. 1999. Canada thistle. Pages 162-174 in Sheley RL, Petroff JK, eds. Biology and Management of Noxious Rangeland Weeds. Corvallis OR: Oregon State University Press.

376. MOSS, S.R., 2008. Weed Research: is it delivering what it should? Weed Research 48, 389-393.

377. Mafakheri S, Zargar M, Fakhri K. 2012. The best application time and dose of herbicide for optimum weed management in two red bean cultivars. Ind. J Sci. Technol. 5: 1848-50

378. Malik, M. S., J. K. Norsworthy, A. S. Culpepper, M. B. Riley and W. Bridges, Jr (2008). Use of wild radish (Raphanus raphanistrum) and rye cover crops for weed suppression in sweet corn. Weed Sci. 56:588-595.

379. Martin, C. K. and D. K. Cassel (1992). Soil loss and silage yield for 3 tillage management systems. Production Agriculture 5:581-586.

380. Menalled, F. D., R. G. Smith, J. T. Dauer and T. B. Fox (2007). Impact of agricultural management on carabid communities and weed seed predation. Agriculture, Ecosystems and Environment 118:49-54.

381. Mochizuki, M. J., H. M. Van Es and T. Bjorkman (2008). Rye mulch management affects short-term indicators of soil quality in the transition to conservation tillage for cabbage. Hortscience 43 (3):862-867.

382. MONACO, T.J., WELLER, S.C., ASHTON, F.M., 2002. Weed Science - Principles and Practices, 4th Edn John Wiley & Sons, Inc., New York.

383. Mohler, C. L. (1996). Ecological bases for the cultural control of annual weeds. Production Agriculture 9:468-474.

384. Monaco, T. J., S. C. Weller and F. M. Ashton (2002). Weed science (4th ed) - principles and practices. New York, US., John Wiley and Sons

385. Mallik MAB, Tesfai K. 1985. Pesticidal effect on soybean-rhizobia symbiosis. Plant Soil 85: 33-41

386. Mohammadi G, Javanshir A, Khooie FR, Mohammadi SA. 2005. Critical period of weed interference in chickpea. Weed Res. 45: 57-63

387. Marshall E.J.P., Brown V.K., Boatman N.D., Lutman P.J.W., Squire G.R., Ward L.K. (2003) The role of weeds in supporting biological diversity within crop fields, Weed Res. 43, 77-89.

388. McAvoy T, Freeman JH (2013) Yellow nutsedge (Cyperus esculentus) control with reduced rates of dimethyl disulfide in combination with totally impermeable film. Weed Technol 27:515-519

389. Miller MR, Dittmar PJ (2014) Effect of PRE and POSTdirected herbicides for season-long nutsedge control in bell pepper. Weed Technol 28:518-526

390. Mafakheri S., Zargar M., Fakhri K. 2012. The best application time and dose of herbicide for optimum weed management in two red bean cultivars. Ind. J. Sci. Technol. 5: 1848-50

391. Mithila J, Hall JC, Johnson WG, Kelley KB, Riechers DE. 2011. Evolution of resistance to auxinic herbicides: historical perspectives, mechanisms of resistance, and implications for broadleaf weed management in agronomic crops. Weed Sci. 59: 445-457

392. Ma, B. L. and Smith, D. L. 1992. Growth Regulator Effects on Above Ground Dry Matter Partitioning during Grain Fill of Spring Barely. Crop Sci, 32: 741-746.

393. Malidza, G. and Orbovic, B. 2004. Control of Sorghum halepense from rhizome in cycloxydim tolerant maize. Acta Biologica Yugoslavica-serija G: Acta Herbologica, 13: 475-482.

394. Malidza, G., Bekavac, G. and Orbovic, B. 2007. Reaction of cycloxydim-tolerant corn depending on herbicide dose and application date. Acta Biologica Yugoslavica-serija G: Acta Herbologica, 16:127-136.