Научно-теоретические основы методов глубокого замораживания репродуктивных клеток ценных видов рыб для восстановления численности популяций тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Фирсова Ангелина Валерьевна

• Фирсова Ангелина Валерьевна
• кандидат наук
• 2023

Оглавление диссертации кандидат наук Фирсова Ангелина Валерьевна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1 АНАЛИЗ ЛИТЕРАТУРНЫХ СВЕДЕНИЙ ПО

КРИОКОНСЕРВАЦИИ РЕПРОДУКТИВНЫХ КЛЕТОК

1.1 Криоконсервация генетического материала: история, проблемы и задачи

1.2. Вещества, обладающие криопротекторными свойствами, и их роль при криоконсервации

1.3. Влияние скоростных режимов глубокого замораживания на

криоповреждения клеток

ГЛАВА 2 МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

ГЛАВА 3. ОЦЕНКА ВЛИЯНИЯ ВОДЫ И ЕЕ КРИСТАЛЛИЗАЦИИ ПРИ КРИОКОНСЕРВАЦИИ НА КЛЕТКИ

3.1 Действие воды на нативные яйцеклетки различных видов рыб

3.2 Кристаллизация различных водных растворов, протоплазмы и

клеточных структур яйцеклеток рыб

ГЛАВА 4 ИССЛЕДОВАНИЕ ВЛИЯНИЯ ЗАЩИТНЫХ СВОЙСТВ КРИОПРОТЕКТОРОВ РАЗЛИЧНЫХ ТИПОВ И СКОРОСТИ ЗАМОРАЖИВАНИЯ НА ЯЙЦЕКЛЕТКИ РЫБ ПРИ ИХ КРИОКОНСЕРВАЦИИ

4.1 Действие классических проникающих и непроникающих протекторов на яйцеклетки рыб при их глубоком замораживании

4.2 Действие обволакивающих криопротекторов и влияние их плотности на яйцеклетки рыб при криоконсервации

4.3 Использование эфирных масел в качестве компонентов криопротекторов при глубоком замораживании яйцеклеток осетровых рыб

4.4 Оценка влияния скорости замораживания на яйцеклетки рыб при их

криоконсервации

ГЛАВА 5 ОПТИМИЗАЦИЯ МЕТОДОВ КРИОКОНСЕРВАЦИИ СПЕРМЫ

РЫБ И ОЦЕНКА ЕЕ ФЕРТИЛИЗАЦИИ

5.1 Акустико-механическое воздействие на сперму рыб с применением

пьезоактуаторов

5.2 Влияние синтетических аналогов витамина Е на показатели активности спермы рыб и оценка ее фертильности

5.3 Возможности повышения репродуктивного эффекта путём оптимизации соотношения нативная икра - криоконсервированная сперма при

оплодотворении

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

ПЕРСПЕКТИВЫ ДАЛЬНЕЙШЕЙ РАЗРАБОТКИ ТЕМЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Научно-теоретические основы методов глубокого замораживания репродуктивных клеток ценных видов рыб для восстановления численности популяций»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования. Сложившаяся в настоящее время экологическая ситуация оказывает неблагоприятное влияние на существование животных и рыб. На сегодняшний день более 40% всех живых видов на нашей планете находится под угрозой исчезновения. Поэтому, одной из важнейших задач настоящего времени является восстановление и сохранение биоразнообразия, в том числе водных экосистем, и в первую очередь рыб. Наглядным примером не только снижения разнообразия, но и численности является стремительное сокращение запасов осетровых рыб в Каспийском море. Экосистема Каспия в последние 60 лет находится под существенным давлением антропогенных факторов (зарегулирование крупных рек, браконьерство, загрязнение среды и др.), которые ставят под угрозу исчезновения каспийских популяций осетровых рыб, а также эндемика - белорыбицы (Матишов и др., 2010; Шишанова, 2009; Васильева, 2012, 2014; Васильева и др., 2012; Лепилина и др., 2010).

В сложившейся ситуации восстановление многих популяций ценных видов рыб только лишь за счёт естественного воспроизводства уже становится невозможным. Только искусственное воспроизводство может остановить реальную угрозу исчезновения редких видов рыб (Костюничев и др., 2015), восстановить биоразнообразие гидробионтов, в том числе исчезающих видов, занесенных в «Красную Книгу» (Гусева, 2016). Но, вместе с тем, воспроизводство только части популяции может изменить её генетическую структуру, привести к снижению генетического разнообразия. Одним из эффективных методов поддержания разнообразия и сохранения генофонда животных является криоконсервация репродуктивных клеток (Ананьев, 1997; Матишов и др., 2012; Никаноров и др., 2005; Егоров, 2004; Ротт, 1996). Так, например, в сельском хозяйстве широко используют метод глубокого замораживания и длительного хранения спермы быков (Курбатов и др., 1988; Паныпин, 2003; Коростелева, Плешаков, 2003; Никитина, Шапиев, 2010; Ляшенко, 2014; Murphy et al., 2018a,b). В рыбном хозяйстве, аквакультуре данный метод также нашел применение

(Савушкина, 2013; Цветкова и др., 2014; Шишанова и др., 2012). Для редких, исчезающих и культивируемых видов рыб в России еще в 90-х годах ХХ века были заложены теоретические основы криобанков с коллекциями спермы рыб (Манохина, Ананьев, 2008). Основной проблемой при создании криобанка спермы животных является разработка успешного протокола замораживания (Iaffaldano et al., 2021). Кроме того продолжает оставаться в центре внимания при криобанкировании спермы рыб, т.е. актуальной, улучшение выживаемости сперматозоидов после криоконсервации, а также повышение фертильности при искусственном оплодотворении замороженно-размороженной спермой (Agarwal, 2011; Paventietal., 2022).

До сих пор остаётся неразрешимой к настоящему времени проблема криоконсервации яйцеклеток, эмбрионов и личинок рыб, хотя острая необходимость сохранения генетического материала не только самцов, но и самок необходима для восстановления генетического разнообразия редких и исчезающих видов рыб. Глубоко замороженные яйцеклетки, эмбрионы и личинки позволяют, кроме формирования полноценных генофондных коллекций, вести работы по организации страховых фондов посадочного материала для случаев природных и антропогенных катастроф, эпизоотий (Ананьев, Манохина, 2007; 2015). Из-за морфологических и функциональных особенностей яйцеклеток рыб существующие способы глубокого замораживания яйцеклеток теплокровных животных неэффективны.

Степень разработанности темы. За последнее десятилетие достигнут значительный прогресс в процессе криоконсервации спермы рыб, и, как следствие, оплодотворяемости. Прогресс был связан с использованием новых методов криоконсервации, в том числе поиском новых составов протекторов (Niu et al., 2022; Maulida et al., 2021) и скоростных режимов замораживания (Krasilnikova, Tikhomirov, 2014; Li et al., 2019).Также, для повышения качества замораживаемого материала при криоконсервации ученые применяют различные воздействия на клетки: механические, химические или физические (Hezavehei et al., 2018). Все это приводит к лучшей крио-выживаемости сперматозоидов.

Несмотря на достигнутые успехи в криоконсервации репродуктивных клеток самцов рыб, полученные результаты часто невоспроизводимы и не всегда обеспечивают высокий процент выживаемости дефростированных сперматозоидов. Это связано с тем, что на процесс криоконсервации оказывает влияние большое количество факторов: видовая принадлежность, физиологическое состояние производителей, качество репродуктивных клеток, индивидуальные особенности рыб разных популяций, физические факторы и т.д. (Богатырева, 2010; Красильникова, 2015). В связи с этим, актуальным направлением исследований является адаптирование имеющихся технологий криоконсервации спермы для условий нашей страны, а также повышения качества замораживаемого материала при криоконсервации с использованием дополнительных методов предохранения клеток от криоповреждений.

Проблема глубокого замораживания и хранения яйцеклеток и эмбрионов рыб находится в стадии экспериментальных разработок. Методы криоконсервации спермы рыб не подходят для яйцеклеток, так как их строениекардинально отличается (Детдаф и др., 1981).

Используемые в практике животноводства и репродуктивной медицины технологии криоконсервации неприменимы для клеток рыб из-за особенностей биологии рыб, среды обитания и строения репродуктивных клеток (Ананьев, Манохина, 2015). Создание методов, а в дальнейшем криотехнологий для яйцеклеток, эмбрионов и личинок рыб - сложнейшая криобиологическая проблема, которая должна решаться для видов с различиями репродуктивных системами.

По последним данным в 2017 году группа американских ученых успешно разморозила после криоконсервации эмбрионы данио-рерио (Вате гвпо). Ученые сообщают, что первую активность через сутки после разморозки наблюдали лишь у 10 процентов эмбрионов. Тем не менее, это большой шаг на пути к решению проблемы криоконсерации подобных типов клеток (Khosla et а1., 2017; Пономарева и др., 2017)

Ананьев В.И. и Манохина М.С. (2015) считают, что создание криотехнологий для яйцеклеток, эмбрионов и предличинок рыб в ближайшие годы может стать реальным. Вместе с тем, полученные положительные результаты по криоконсервации яйцеклеток и эмбрионов рыб всё еще носят характер поисковых исследований и требуют дальнейшего развития и подтверждения.

Цель и задачи исследования. Целью работы явилась разработка научно -экспериментального обоснования новых подходов к возможности глубокого замораживания репродуктивных клеток ценных видов рыб и повышение оплодотворяющей способности размороженной спермы для восстановления численности популяций.

Поставленная цель определила решение следующих задач:

- изучить реакции нативных яйцеклеток различных видов рыб на внешнее воздействие воды;

- исследовать процессы кристаллизации водных растворов, протоплазмы и клеточных структур яйцеклеток рыб при глубоком замораживании;

- оценить защитные свойства криопротекторов различных типов и влияние скоростных режимов охлаждения на яйцеклетки рыб при криоконсервации;

- оптимизировать методику криоконсервации спермиев рыб с использованием акустико-механического воздействия во время эквилибрации и применения антиоксидантов в качестве криопротекторов;

- выявить оптимальное соотношение криоконсервированных сперматозоидов и нативной икры для повышения репродуктивного эффекта.

Научная новизна. В работе впервые обосновано, что при криоконсервации яйцеклеток рыб использовать протекторы, основанные на водных растворах, невозможно, из-за воды, которая попадая внутрь, провоцирует перестройку органелл внутри клеток.

Предложен новый подход к криоконсервации яйцеклеток рыб с применением нетрадиционного протектора обволакивающего действия,

основанный на экспериментально обоснованном предположении отсутствия свободной воды в протоплазме клеток.

Обосновано применение смеси триглицеридов как компонента криозащитной среды, позволившее получать результаты с высоким процентом сохранности целостности оболочек яйцеклеток рыб. Впервые доказана возможность использования эфирных масел в качестве компонентов криопротекторов при криоконсервации икры осетровых рыб.

Показано положительное влияние на способность к оплодотворению синтетических аналогов витамина Е - липофильного ионола и водорастворимого тролокса, а также использование акустическо механического воздействия на сперму рыб в период эквилибрации при глубоком замораживании.

Теоретическая и практическая значимость работы. Полученные результаты экспериментов по особенностям кристаллизации воды и водных растворов, протоплазмы и клеточных структур яйцеклеток рыб, а также защитных свойств разных типов криопротекторов и скорости замораживания яйцеклеток вносят дополнительный вклад в теорию понимания механизмов их криоповреждения. На этой основе имеется возможность построения биофизической/математической модели, описывающие реакцию клеток на изменение окружающей среды в процессе криоконсервации, и использование её для разработки оптимальных процедур/устройств для долгосрочной криоконсервации живых клеток, предотвращающих криоповреждения.

Результаты экспериментов по введению в методы криоконсервации акустико-механического воздействия на сперму рыб с применением пьезоактуаторов и синтетических антиоксидантов и оптимизация соотношения нативная икра и криоконсервированная сперма при оплодотворении дают возможность улучшать рыбоводно-биологические показатели при воспроизводстве ценных видов рыб, что позволяет рекомендовать их использование в практике.

Материалы исследования используются при чтении лекций преподавателями кафедры «Аквакультура и водные биоресурсы» АГТУ по теме: воспроизводство ценных, редких и исчезающих видов рыб.

Методология и методы исследования.

Методология исследований базируется на постановке экспериментов с применением общепринятых в криобиологии методиках. В работе применены биофизические, биохимические и ихтиологические методы исследований, направленные на оценку глубокого замораживания репродуктивных клеток рыб, оценку качества и фертильности дефростированных клеток. Результаты практических исследований подвергались статистической обработке с использованием программного пакета М8Бхее1 2010.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Обоснование невозможности использования для яйцеклеток рыб классических протекторов на основе водных растворов, провоцирующих активацию перестройки органелл внутри клеток и нарушающих их целостность при глубоком замораживании.

2. Возможность применения нетрадиционного протектора обволакивающего действия для криоконсервации яйцеклеток рыб, состоящих из смеси триглицеридов с меньшей плотностью, для снижения давления на клетки при их замораживании, основанное на наличии в яйцеклетках рыб биологической суспензии, не содержащей свободной воды и способной стекловаться при быстром замораживании.

3. Повышение фертильности криоконсервированных сперметазоидов путем применения синтетических антиоксидантов и использования акустико -механического воздействия на сперму рыб в период эквилибрации при глубоком замораживании.

4. Увеличение фертилизации путем оптимизации соотношения икра-сперма.

Степень достоверности и апробация результатов. При выполнении научно-квалификационной работы были применены современные методы исследований, использованы общепринятые и рекомендованные методики.

Достоверность результатов и выводов, содержащихся в данной работе, подтверждается их согласованностью с известными теоретическими и экспериментальными данными, обеспечивается значительным объемом используемого материала и статистической обработкой полученных данных.

Основные материалы научно-квалификационной работы были представлены и получили положительную оценку на Научно-практической конференции с международным участием «Интенсивная аквакультура на современном этапе развития» (г. Махачкала, 2013); Международных научных конференциях: «Рациональное использование и сохранение водных биоресурсов» (г. Ростов-на-Дону, 2014); 64-той студенческой конференции, посвященной 20-летию Астраханского государственного технического университета (Астрахань, 2014); «Теоретические и практические аспекты современной криобиологии» (Сыктывкар, 2014); «Актуальные вопросы рыбного хозяйства и аквакультуры бассейнов южных морей России» (г.Ростов-на-Дону, 2014); «Сохранение биологических ресурсов Каспия» (г.Астрахань, 2014); «World aquaculture 2015» (г. Чеджу, Корея, 2015); «Aquaculture Europe 2016» (г.Эдинбург, Шотландия, 2016); «Aquaculture America 2017» (г. Сан-Антонио, США, 2017); «Aquaculture America 2018» (г. Лас-Вегас, США, 2018); «Закономерности формирования и воздействия морских, атмосферных опасных явлений и катастроф на прибрежную зону РФ в условиях глобальных климатических и индустриальных вызовов» («Опасные явления») (г.Ростов-на-Дону, 2019); конференции, посвященной 90-летию Донского государственного технического университета (Ростовского-на-Дону института сельхозмашиностроения) (г.Ростов-на-Дону, 2020); «Развитие и современные проблемы аквакультуры» (Конференция «Аквакультура 2022») (с.Дивноморское, 2022); конференциях научно-педагогических работников Астраханского государственного технического университета (г. Астрахань, 20152017, 2020, 2022); Ежегодных научных конференциях студентов и аспирантов

базовых кафедр Южного научного центра РАН (г. Ростов-на-Дону 2014-2015, 2017-2018); Ежегодных молодежных научных конференциях «Наука Юга России: достижения и перспективы» (г.Ростов-на-Дону, 2019-2023); II Всероссийской молодежной конференции «Рыбохозяйственные исследования на внутренних водоемах» (г. Санкт-Петербург, 2016); Всероссийской научно-практической конференции «Континентальная аквакультура: ответ вызовам времени» (г.Москва, 2016); на Международных форумах «Современное состояние и перспективы развития аквакультуры в прикаспийском регионе» (г. Махачкала, 2016) и «Фундаментальные исследования, инновационные технологии и передовые разработки в интересах долгосрочного развития Юга России» (г.Ростов-на-Дону, 2023); Всероссийских конференциях: «Аквакультура: мировой опыт и российские разработки» (г. Ростов-на-Дону, 2017), «Роп1шЕихтш 2017» (г. Севастополь, 2017), "Наука и практика - 2020" и "Наука и практика - 2022" (г.Астрахань, 2020, 2022); VII национальной научно-практической конференции «Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации» (Петропавловск-Камчатский 2022); III Всероссийской (национальной) научно-практической конференции, посвященной 70-летию Красноярского государственного аграрного университета «Ресурсы дичи и рыбы: использование и воспроизводство» (г.Красноярск, 2022).

Исследования проведены в рамках Программы базового бюджетного финансирования ЮНЦ РАН по темам «Оценка современного состояния, анализ процессов формирования водных биоресурсов южных морей России в условиях антропогенного стресса и разработка научных основ технологии реставрации ихтиофауны, сохранения и восстановления хозяйственных видов рыб» (№ госрегистрации 01201354245) и «Анализ современного состояния, процессов формирования ихтиофауны южных морей России в условиях антропогенного стресса, глобальных изменений климата и разработка научных основ технологий сохранения и восстановления популяций хозяйственно-ценных видов рыб» (№ госрегистрации 1220201003328-1); Соглашения №14.604.21.0129 по теме «Разработка методов и технологий мониторинга, управления и сохранения

биологического разнообразия водных экосистем южных регионов России» (№ госрегистрации 114111940059, уникальный идентификатор проекта КРМЕЕ160414X0129) и Соглашения №14.607.21.0163 (№ госрегистрации АААА-А16-116122810226-2 уникальный идентификатор ПНИЭР RFMEFI60716X0163) «Разработка технических средств, биотехнологий выращивания нетрадиционных видов рыб и беспозвоночных для прогресса аквакультуры южного и северозападного федеральных округов России» в рамках ФЦП «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса на 2014-2020 годы»; Гранта РНФ №22-16-00095 «Повышение криоустойчивости репродуктивных клеток рыб при низкотемпературном консервировании модифицированием криосреды антиоксидантами нового поколения»; гранта РФФИ №19-016-00208 «Методология, принципы и критерии сохранения репродуктивных клеток представителей ихтиофауны с использованием криотехнологий для восстановления популяций рыб и развития аквакультуры».

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 124 страницах компьютерного текста. Состоит из введения, 5 глав, выводов, практических рекомендаций и перспектив дальнейшей разработки темы. Иллюстрирована 58 рисунками и включает 8 таблиц. Список литературы содержит 204 наименований, из них 123 опубликованы в зарубежных изданиях.

ГЛАВА 1 АНАЛИЗ ЛИТЕРАТУРНЫХ СВЕДЕНИЙ ПО КРИОКОНСЕРВАЦИИ РЕПРОДУКТИВНЫХ КЛЕТОК 1.1 Криоконсервация генетического материала: история, проблемы и

задачи

Криоконсервация — одна из технологий глубокого замораживания и сохранения репродуктивного живого материала, которая может занять центральное место в коллекциях естествознания во всем мире. На протяжении более 65 лет криоконсервация была важным инструментом сохранения биологического разнообразия (Polge et al., 1949; Вепринцев, Пилиев, 1989; Пономарева и др., 2009, 2016); область криотехнологий продолжает развиваться как практическая и передовая наука (Murray, Gibson, 2022). Для криоконсервации клетки воду извлекают и впоследствии заменяют криопротектором или антифризом (Копейка, 1986). Частично обезвоженная клетка может затем выдерживать чрезвычайный стресс от воздействия сверхнизких температур (около -196 °C) в состоянии анабиоза (Mazur, 1970; Mazur, 1997). Клетки, которые правильно заморожены и помещены в банк, могут оставаться жизнеспособными в течение многих лет без повреждения ДНК и, таким образом, обеспечивают средства для потенциальной защиты всех существующих видов и их генетического разнообразия.

Криоконсервация позволяет: 1 - сохранять и защищать генофонды сокращающихся популяций, даже «воскресить» вымершие виды; 2 - легкая и недорогая транспортировка генетического материала среди живых популяций; 3 -доступ к качественным биоматериалам для научных исследований; 4 - бесценные возможности для сохранения индивидуальных геномов редких видов; и, что наиболее важно, 5 - сохранение и распространение генетического разнообразия. Тем не менее, технология криоконсервации воспринимается в узком смысле как компетенция биологов-рыбоводов, предоставляющих сперму для оплодотворения коммерчески ценных видов (Tiersch, Green, 2011), или биологов-охранителей, базирующихся в зоопарках, для поддержания живых популяций различных видов,

таких как гигантская панда, черноногий хорек или большой, хищные кошки (Wildt, et al., 1997; Comizzoli et al., 2012).

Несмотря на огромную научную ценность криоконсервации, живые криоконсервированные клетки не хранятся в музеях естествознания. Эти клетки и их функционально сохраненная диплоидная/соматическая ДНК необходимы для успешного повторного возникновения видов. Отсутствие этих коллекций частично связано с отсутствием установленных и стандартизированных протоколов сбора и сохранения многих клеток диких животных. Тем не менее, технология криоконсервации клеток рыб активно развивается (Hagedorn et al., 2018; Huang et al., 2021; Aramli, Nazari, 2014; Iaffaldano et al., 2016; Di lorio et al., 2019; Hossen et al., 2021; Yusoff et al., 2018; Bozkurt et al., 2019; Hossen et al., 2022).

Криоконсервация является способом, который позволяет хранить живые клетки и ткани без изменений в течение долгого времени, на протяжении тысячелетий (Igna et al., 2022; Chen, Liu, 2007; Zhmakin, 2009). Возможность хранить как женские, так и мужские репродуктивные клетки, является надежным источником генетического материала рыб для сохранения генетического биоразнообразия, а также для работ по аквакультуре (Tsai, Lin, 2012; Di Iorio et al., 2023; Martínez-Páramo et al., 2017; Asturiano et al., 2017; Mayer, 2019; Bolton et al., 2022).

Начало развитию криобиологии было положено Бахметьевым П.И. в XIX веке при исследовании переохлаждения у насекомых и анабиоза у летучих мышей. Позже Г. Рам и П. Беккерель установили, что беспозвоночные организмы, семена и споры в высушенном виде способны выдерживать температуру до минус 271°С (Лозина-Лозинский, 1972).

Спаланцани в 1776 году впервые сообщил о том, что сперматозоиды сохраняют подвижность после их глубокого замораживания и оттаивания (Sztein et al., 2018). В середине 19го века была высказана идея о хранении сперматозоидов, которые используют для размножения скота. Первые работы по замораживанию репродуктивных клеток самцов сельскохозяйственных животных были проведены русским биологом И.И.Ивановым. В 1907 году ученый показал,

что сперматозоиды жеребца способны к оплодотворению после охлаждения до минус 15°С. Серьезная разработка методики криоконсервации спермы была начата в первой половине XX в. В 1947 г. учеными было получено потомство от самки кролика после ее оплодотворения размороженной спермой, которая хранилась при температуре минус 78°С (температура твердой углекислоты). В 1949 году Милованов В. К. и Смирнов И.В. разработали метод криоконсервации спермиев быка, имеющий огромное значение для расширения селекционно-племенной работы и практики сельского хозяйства (Соколовская, 2003).

Открытие криопротективных свойств глицерина стало поворотным моментом в криобиологии (Polge et al., 1949; Polge, Smith, 1950).

В 1949 г. Polge, Parks и Smith сообщили о «случайном» открытии криозащитной функции глицерина во время их усилий по сохранению птичьих сперматозоидов в замороженном состоянии. В следующем году Smith2 расширил эти наблюдения, успешно криоконсервировав эритроциты человека (эритроциты) в глицерине. В этих двух отчетах определены ключевые элементы, которые сыграют решающую роль в развитии области биоконсервации, включая потребность в криозащитном агенте (CPA), процесс, с помощью которого клетки могут успешно подвергаться воздействию проникающего криопротектора, и способ замораживания и оттаивания. В 1959 году Lovelock J.E. и Bishop M.W. впервые описали использование диметилсульфоксида в качестве CPA с его преимуществом повышенной проницаемости по сравнению с глицерином для многих типов клеток. В последующие десятилетия были достигнуты дополнительные успехи, направленные на изменение и изучение сред-носителей, содержащих CPA, а также механизмов криоповреждения клеток и криоконсервации. Наиболее заметным было исследование P. Mazur с соавторами в 1972 г., в котором была выдвинута «двухфакторная гипотеза» для описания взаимосвязи между скоростью охлаждения и выживаемостью под влиянием либо токсического «эффекта растворения», проявляющегося при субоптимальных медленных скоростях охлаждения, либо смертельного внутриклеточного льда, присутствующего при высоких скоростях охлаждения (Mazur et al., 1972). По

сути, эти исследования заложили биофизическую основу, на которой эксперименты по криоконсервации основывались почти четыре десятилетия. Другими заметными событиями стали открытия, сделанные G. Fahy, а также W.F. Rail и G. Fahy в середине 1980-х гг. (Fahy, 1986; Rail, Fahy, 1958) Эта группа сообщила о новой стратегии витрификации для сохранения клеток, при которой высокие концентрации (приблизительно 8 молярных) смеси криопротекторов можно титровать по градиенту концентрации для создания среды, которая при «замораживании» не содержит льда даже при хранении в жидком азоте. Начиная с 1998 года серия исследований показала, что нарушения в протеоме и геноме клетки во время и после процесса криоконсервации могут значительно повлиять на выживаемость. Этот эффект наблюдался независимо от используемого протокола криоконсервации, «оптимизированного» или иного (Baust et al., 2014).

Вскоре, в 1954 году, появилось первое сообщение об успешном оплодотворении и индукции беременности человека с помощью криоконсервированных сперматозоидов (Bunge et al., 1954).

Сообщения об успешном замораживании жизнеспособных яйцеклеток радужной форели до минус 55°C (Zell, 1978) или до минус 20°C (Erdahl, Graham, 1980) впоследствии были интерпретированы как переохлаждение (Harvey, 1982). Успешное вылупление из замороженных эмбрионов получено у морского окуня и японской камбалы (Chen, Tian, 2005). Однако, опыт Chen и Tian не был признан удачным для эмбрионов японской камбалы (Edashige et al., 2006), хотя были достигнуты некоторые успехи в инкубации личинок, но имелся лишь малый процент выживаемости. Замораживание эмбрионов палтуса (Robles et al., 2007) и леща Красного моря также не привело к получению жизнеспособных личинок (Ding et al., 2007).

Криоконсервация ооцитов, эмбрионов и сперматозоидов представляет собой замораживание образцов, которые обработаны специальными средами, позволяющими веществами-криопротекторами связать воду. При температуре жидкого азота (минус 196°С) замедляются или прекращаются все биохимические процессы в клетке, лежащие в основе ее гибели. Минимизация количества

содержащейся воды в образце способствует исключению образования кристаллов льда, разрушающих клетки в процессе замораживания и оттаивания.

Для исчезающих, редких и культивируемых видов рыб в настоящее время разработаны и достаточно успешно применяются различные методы криоконсервации спермы. Еще в 80-х годах ХХ века в России были заложены основы криобанков с генофондными коллекциями спермы во ВНИИПРХ, в Камчатском НИИ рыбного хозяйства, а также начали формироваться дублирующие и экспериментальные коллекции спермы рыб в НТГБ Института биофизики РАН (г.Пущино), в г.Санкт-Петербург «Центральная лаборатория по воспроизводству рыбных запасов» коллекции спермы осетровых рыб (Манохина, Ананьев, 2008).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Фирсова Ангелина Валерьевна, 2023 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Ананьев, В.И. Концепция сохранения и устойчивого использования биоразнообразия с применением методов криоконсервации геномов гидробионтов / В.И. Ананьев // Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. Информпакет. ВНИЭРХ, 1997. - Вып. 1. - С. 1-36.

2. Ананьев, В.И. К вопросу о создании национальной системы генофондных коллекций рыб и других гидробионтов России для аквакультуры и сохранения редких и исчезающих видов: правовые и нормативно-методологические аспекты / В.И. Ананьев, М.С. Манохина // Ветеринарная патология. — 2007. — № 1. — С. 19-24.

3. Ананьев, В. И. Состояние разработок криотехнологий для яйцеклеток, эмбрионов и предличинок рыб / В. И. Ананьев, М.С. Манохина // Аквакультура сегодня. Доклады Всероссийской научно-практической конференции. - Изд-во: Всероссийский научно-исследовательский институт ирригационного рыбоводства Россельхозакадемии (Воровского). — 2015. — С. 19-41.

4. Андреев, А.А. Замерзание растворов анти-фризных веществ рыб и ракооборазных / А.А. Андреев, Н.Н. Петропавлов // Биофизика живой клетки. Криоконсервация генетических ресурсов в проблеме сохранения биоразнообразия. — Пущино, 1994. — Т. 6. - С 65-67.

5. Андреев, А.А. Кристаллизация криозащитных растворов и выживание спермиев рыб при криоконсервации / А.А. Андреев, Д.Г. Садикова, Э.Н.Гахова, Т.Н.Пашкович, А..М.Тихомиров // Биофизика. — 2006. — С. 35-48.

6. Андреев, А.А. Сыворотка крови зимнеспящих животных (суслика) как возможный компонент криозащитной среды / А.А. Андреев, Л.А. Андреева // В сб. Биофизика живой клетки. Консервация генетических ресурсов. — 2008. — Т. 9. — С 19-20.

7. Андреев, А.А. Формирование микрочастиц льда в криозащитных растворах / А.А. Андреев, Д.Г. Садикова, Н.А. Ивличева, А.В. Борода // Биофизика. — 2017. — Т. 62. — Вып. 2. — С. 213-220.

8. Белоус, А.М. Замораживание и криопротекция. Биохимия мембран, кн. 3 (под ред А.А. Болдырева) / А.М. Белоус, Е.А. Гордиенко, Л.Ф. Розанов. — М.: Высшая школа, 1987. — 325 с.

9. Белоус, А.М. Криобиология / А.М. Белоус, В.И. Грищенко. — Киев: Наук. думка, 1994. — 432 с.

10. Богатырева, М.М. Подбор криопротекторов для криоконсервации спермы русского осетра волжской популяции / М.М. Богатырева, Н.В.Болонина, Е.Н. Пономарева, А.М. Тихомиров, М.Н. Сорокина // В сб. Биология - наука ХХ1 века. Международая пущинская школа-конференция молодых ученых 29 октября - 2 ноября 2007 года. — Пущино, 2007. — С. 182.

11. Богатырева, Мария Михайловна. Оптимизация методов криоконсервации спермы для сохранения генофонда осетровых рыб : диссертация ... кандидата биологических наук : 03.02.06 / Богатырева Мария Михайловна; [Место защиты: Астрахан. гос. техн. ун-т]. — Астрахань, 2010. — 126 с.

12. Васильева, Л.М. Современное состояние водных биоресурсов ВолгоКаспийского бассейна / Л.М. Васильева // Вестник Воронежского государственного университета инженерных технологий. — 2012. — № 1. — С. 83-86.

13. Васильева, Л.М. К вопросу сохранения и восстановления запасов осетровых рыб в Волго-Каспийском бассейне / Л.М. Васильева, Н.В. Смирнова,

A.З. Юсупова // Юг России: экология, развитие. — 2012. — № 1. — С. 73-76.

14. Васильева, Т.В. Современное состояние водных биоресурсов в Каспийском бассейное / Т.В. Васильева // Сохранение биологических ресурсов Каспия. Международная научно-практическая конференция. Астрахань, 18-19 109 сентября 2014 года: материалы и доклады. — Астрахань: Изд-во АГТУ, 2014. — С. 29-37.

15. Вепринцев, В.Н. Сохранить генофонд рыб и водных беспозвоночных /

B.Н. Вепринцев, С.А. Пилиев // Рыбное хозяйство. - 1989. - № 6. - С. 29-32.

16. Вода и водные растворы при температурах ниже 0°С. Пер. с англ. / Под ред. Ф. Франкса. — Киев: Наукова думка, 1985. — 388 с.

17. Габуда, С.П. Связанная вода. Факты и гипотезы / С.П. Габуда. — Новосибирск: Наука, 1982. — 159 с.

18. Гинзбург, А.С. Оплодотворение у рыб и проблема полиспермии / А.С. Гинзбург. - М.: Наука, 1968. - 150 с

19. Гинзбург, А.С. Развитие осетровых рыб: Созревание яиц, оплодотворение и эмбриогенез / А. С. Гинзбург, Т. А. Детлаф. — М.: Наука, 1969. — 133 с.

20. Гинзбург, А.С. Теплофизические характеристики пищевых продуктов. Справочник / А.С. Гинзбург, М.А. Громов, Г.И. Красовская. — М.: Пищевая промышленность, 1980. — 288 с.

21. Гусева, Ю. А. Искусственное воспроизводство рыб: краткий курс лекций для студентов III курса направления подготовки 35.03.08 Водные биоресурсы и аквакультура / Ю. А. Гусева. — Саратов: ФГБОУ ВО «Саратовский ГАУ», 2016. — 97 с.

22. Детлаф, Т.А. Развитие осетровых рыб / Т.А. Детлаф, А.Г. Гинзбург, О.И. Шмальгаузен. — М.: изд-во Академии наук СССР, 1981. — 224 с.

23. Егоров, М.А. О создании международного криобанка генофонда флоры и фауны Каспийского бассейна // Цитология. — СПб.: Наука. — 2004. — Т. 46. — № 9. — С. 791-792.

24. Ершов, А.В. Некоторые наблюдения над икрой севрюги в связи с методикой её искусственного оплодотворения / А.В. Ершов // Рыбное хозяйство СССР. — 1936. — № 2. — С.55-58.

25. Жмакин, А.И. Физические основы криобиологии / А.И. Жмакин // Успехи физических наук. - 2008. - Т. 178. - № 3.- С. 243-266

26. Земков, Г.В. К биотехнологии криоконсервации репродуктивных клеток рыб / Г.В. Земков, А.М. Тихомиров, Т.И. Акимочкина // Ветеринарная патология. — 2007. — С. 214-215.

27. Каранова, М.В. Антифризные свойства низкомолекулярных глик-протеинов из крови полярных рыб / М.В. Каранова // Биофизика живой клетки: сб.

науч. тр. Криоконсервация генетических ресурсов в проблеме сохранения биоразнообразия. — Пущино: ИБК РАН. — 1994. — Т. 6. — С. 65-67.

28. Каранова, М.В. О возможных криопротекторах пресноводной рыбы Dallia pectoralis / М.В. Каранова, A.A. Андреев, H.H. Петропавлов, В.И. Нестеров // Биофизика живой клетки. — 2003. — Т.7. — С. 34-37.

29. Копейка, Е.Ф. Инструкция по низкотемпературной консервации спермы карпа / Е.Ф. Копейка. - М.: Изд-во ВНИПРХ, 1986. - 11 с

30. Коростелёва, Н. И. Биологические показатели глубокозамороженной спермы разного срока хранения быков чёрно-пёстрой породы / Н. И. Коростелёва, В. А. Плешаков // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. — 2003. — № 2. — С. 238-241.

31. Костюничев, В.В. Искусственное воспроизводство рыб на Северо-Западе России / В.В. Костюничев, В.А. Богданова, А.К. Шумилина, И.Н. Остроумова // Труды ВНИРО. — 2015. — Т. 153. — С.26-41.

32. Красильникова, Александра Андриановна. Совершенствование процесса криоконсервации репродуктивных клеток самцов рыб: дис. канд. биол. наук / А. А. Красильникова. — Астрахань, 2015. — 149 с.

33. Крыжановский, С.Г. Экологические группы и закономерности их развития / С.Г. Крыжановский // Изв.ТИНРО. — 1948. — Т.27. — С. 3-114.

34. Курбатов, Д.А. Криоконсервация спермы сельскохозяйственных животных / А.Д. Курбатов, Е.М. Платонов, Н.В. Корбан. — Л.: Агропромиздат, 1988. — 256 с.

35. Кучко, Т.Ю. Методы получения половых продуктов от производителей рыб: учебное пособие для студентов эколого-биологического и агротехнического факультетов / Т.Ю. Кучко. — Петрозаводск: Издательство ПетрГУ, 2015. — 63 с.

36. Лепилина, И.Н. Состояние запасов каспийских осетровых в многолетнем аспекте (литературный обзор) / И.Н. Лепилина, Т.В. Васильева, А.С. Абдусамадов // Юг России: экология, развитие. - 2010. - № 3. - С. 57-65.

37. Линник, Т.Н. Механизм транспорта проникающих криопротекторов (диолы, амиды) через мембраны эритроцитов животных / Т.Н. Линник, Г.В. Коваленко, И.Ф. Коваленко // Биофизика живой клетки. Консервация генетических ресурсов. — Пущино: ИБК РАН. — 2008. — Т. 9. — С. 80-81.

38. Лозина-Лозинский, Л.К. Очерки по криобиологии. Адаптация и устойчивость организмов и клеток к низким и сверхнизким температурам / Л.К.Лозина-Лозинский. — Л.: Наука, 1972. — 288с.

39. Ляшенко, А.А. Биологические показатели размороженной спермы быков разного срока хранения в жидком азоте / А.А. Ляшенко // Вестник АГАУ.

— 2014. — №8 (118). — С. 89-93.

40. Манохина, М.С. Криоконсервация эмбрионов и личинок гидробионтов. Проблемы и перспективы / М.С. Манохина, В.И.Ананьев // Биофизика живой клетки. — 2008. — Т.9. — С.88-89.

41. Матишов, Г.Г. Белорыбица и кумжа Каспийского бассейна / Г.Г. Матишов, В.П. Иванов, Г.М. Магомедов, С.В. Пономарев, Е.Н. Пономарева, П.А. Балыкин. - Ростов-на-Дону: Изд-во ЮНЦ РАН, 2010. - 84 с.

42. Матишов, Г.Г. Сохранение генетического разнообразия рыб методами низкотемпературного консервирования / Г.Г. Матишов, Е.Н. Пономарева, М.М. Белая // Рыбное хозяйство. - 2012. - № 3. - С. 59-62.

43. Мильштейн, В.В. Осетроводство / В.В. Мильштейн // М.: Легкая и пищевая пр-сть, 1982. — 152 с.

44. Неваленный, А.Н. Биологические основы рыбоводства: учебник для вузов / А.Н. Неваленный, Е.Н. Пономарева, М.Н. Сорокина. — М.: Изд-во Моркнига, 2016. — 434 с.

45. Невзоров, А.Н. О внутреннем механизме кристаллизации метастабильной жидкой воды и об его эффектах, влияющих на внутриоблачные процессы / А.Н. Невзоров // Изв. АН РАН. Физ. Атм. и Океана. — 2006. — Т. 42.

— № 6. — С. 830-838.

46. Невзоров, А.Н. Свойства метастабильных форм воды: новая интерпретация эксперимента / А.Н. Невзоров // Мир измерений. - № 8. - 2009. -С. 38-45.

47. Никаноров, С.И. Низкотемпературные генетические банки, коллекционные рыбоводные хозяйства как необходимые компоненты сохранения биоразнообразия ихтиофауны России / С.И. Никаноров, В.И. Ананьев, В.Д. Артемов // Прудовое хозяйство. 2005. - № 2. - С. 19-22.

48. Никиткина, Е.В. Использование спермы быков с низкой концентрацией и активностью сперматозоидов для криоконсервации / Е. В. Никиткина, И. Ш. Шапиев // Достижения науки и техники АПК. — 2010. — №7. — С. 49-51.

49. Овсянников, С.Е. Влияние проникающих криопротекторов на интенсивность перекисного окисления липидов мембран спермиев птиц при гипотермии / С.Е. Овсянников, И.Н. Мартынюк, Ю.В. Никитченко, Т.П. Линник // Биофизика живой клетки. Консервация генетических ресурсов. — Пущино, 2008. — Т. 9. — С. 99.

50. Осецкий, А.И. Закономерности образования криоколлоидных фракций в водных растворах криопротекторных веществ и связанные с этим механизмы повреждения охлаждаемых объектов / А.И. Осецкий // Биофизика живой клетки. Консервация генетических ресурсов. — Пущино, 2008. — Т. 9. — С. 100.

51. Паныпин, С.С. Усовершенствование метода глубокого замораживания семени быка с использованием комплексонатов, аминокислот и витаминов: автореф. дис. ...канд. биол. наук: 03.00.13. / С.С. Паныпин. — Дубровицы, 2003. — 26 с.

52. Патент 246084 Способ криоконсервации яйцеклеток осетровых рыб / А.М. Тихомиров; патентообладатель А.М. Тихомиров. — № 2010142589/13; заявл.18.10.2010; опубл. 10.09.2012,Бюл. №23. — 3 с.

53. Петропавлов, Н.Н. Кристаллографические аспекты криоконсервации генетических ресурсов / Н.Н. Петропавлов, А.А. Андреев, М.В. Каранова //

Биофизика живой клетки. Криоконсервация генетических ресурсов в проблеме сохранения биоразнообразия. — Пущино, 1994. — Т. 6. — С 62-65.

54. Подушка, С.Б. Прижизненное получение икры у осетровых рыб / С.Б. Подушка // Тез. докл. Всерос. конф. Биологические ресурсы и проблемы развития аквакультуры на водоёмах Урала и Западной Сибири. - Тюмень: Сибрыбниипроект, 1996. — С.115-116.

55. Полянская, В. Установлен механизм действия «белков-антифризов» [Электронный ресурс] / В. Полянская. - Электрон. текстовые дан. - Биомолекула, 2007. — Режим доступа: https://biomolecula.ru/articles/ustanovlen-mekhanizm-ёе1в1^па-Ье1к0У-ап11Й170У.

56. Пономарева, Е.Н. Результаты оплодотворения икры русского осетра и севрюги дефростированной спермой / Е.Н. Пономарева, А.М. Тихомиров, М.М. Богатырева, Н.В. Болонина // Мат. международной научно-практической конф. «Актуальные проблемы биологии воспроизводства животных» 25-26 октября 2007 г. Дубровицы-Быково. — ВНИИЖ. — 2007. — С 478-479.

57. Пономарева, Е. Н. Роль криобанка репродуктивного материала гидробионтов для поддержания биологического разнообразия и развития морских территорий: препринт-рекомендации / Е. Н. Пономарева, М.М. Богатырева, А.М. Тихомиров, Е.С. Джаригазов. - Ростов-на-Дону: Изд-во ЮНЦ РАН, 2009. - 44 с.

58. Пономарева, Е. Н. Новые биотехнологические методы криоконсервации репродуктивных клеток осетровых видов рыб / Е. Н. Пономарева, А. А. Красильникова, А. М. Тихомиров, А. В. Фирсова // Юг России: экология, развитие. — 2016. — Том 11. — № 1. — С. 59-68.

59. Пономарева, Е.Н. Криоконсервация репродуктивных клеток рыб: история и перспективы / Е.Н. Пономарева, А.А. Красильникова, А.В. Фирсова, М.М. Белая // Рыбное хозяйство. — 2017. — №4. - С. 85-88.

60. Пушкарь, Н.Е. Введение в криобиологию / Н.Е. Пушкарь, А.М. Белоус. - Киев: Наукова Думка, 1975. - 342 с.

61. Ротт, Н. Н. Создание генетических криобанков и использование методов биологии развития как способ сохранения редких видов животных.

Получение и криоконсервация зародышей диких млекопитающих / Н. Н. Ротт // Онтогенез. — 1996. — Том 27. — № 4. — С. 245-255.

62. Садикова, Д.Г. Криоконсервация спермиев белорыбицы без использование криопротекторов / Д.Г. Садикова, Ф.И. Шинтимирова, А.М. Тихомиров, А.А. Андреев // Биология наука XXI века. — Пущино, 2006. — С 118119.

63. Савушкина, С.И. Искусственное воспроизводство осетровых рыб с использованием криотехнологий / С.И. Савушкина // Состояние и перспективы развития пресноводной аквакультуры: доклады Международной научнопрактической конференции (Москва, ВВЦ, 5-6 февраля 2013 г.). - М.: Изд-во РГАУ МСХА им. К.А. Тимирязева, 2013. - С. 429-440.

64. Соколовская, И. И. Метод искусственного осеменения животных / И.И. Соколовская // Зоотехния. — 2003. — № 11. — С. 28-31.

65. Тихомиров, А.М. Некоторые итоги по разработке биотехнологии криоконсервации половых клеток рыб / А.М. Тихомиров, Г.В. Земков // Мат. междунар. конф. «Животные в антропогенном ландшафте. — Астрахань: АГУ, 2003. — С. 62-66.

66. Тихомиров, А.М. Возможность краткосрочного хранения спермы осетровых рыб при низких температурах / А.М. Тихомиров // Мат. межд. конф. Сохранение генетических ресурсов. — М., 2006. — С. 27.

67. Тихомиров, А.М. Влияние скоростей замораживания и оттаивания на качество спермы русского осетра / А.М. Тихомиров, М.М. Богатырева, Е.С. Джаригазов // В сб. «Рациональное использование пресноводных экосистем -перспективное направление реализации национального проекта «Развитие АПК». Мат. Межд. Научно-практической конференции. — М., 2007. — С. 308-310.

68. Тихомиров, А.М. Теоретические и экспериментальные основы криоконсервации геномов редких и исчезающих видов животных. Курс лекций по дисциплине «Криобология» / А.М. Тихомиров, М.М. Богатырева. — Астрахань: АГТУ, 2008. — 172 с.

69. Тихомиров, А.М. Основы криобиологии. Курс лекций / А.М. Тихомиров. - Германия: Изд-во Lambert, 2014. — 354 c.

70. Тихомиров, А.М. Криоконсервация половых клеток рыб / А.М. Тихомиров. - Германия: Изд-во Lambert, 2015. — 295 с.

71. Усс, А.Л. Криоконсервирование клеток человека / А.Л. Усс, П.Б. Мицкевич, И.Л. Завгородняя // Медицинская панорама. — 2003. — №2(27). — С.38.

72. Фирсов, Н.Н. Микробиология: словарь терминов / Н.Н. Фирсов. — М: Дрофа, 2006. — 216 с.

73. Хочачка, П. Биохимическая адаптация (Перевод с англ.) / П. Хочачка, Дж. Сомеро. — Москва: Мир, 1988. — С. 26.

74. Цветкова, Л.И. Использование антифризных гликопротеинов при криоконсеврации спермы рыб / Л.И. Цветкова, Н.Д. Пронина, О.Б. Докина, М.В. Каранова // Вестник Российской академии сельско-хозяйственных наук. - 2009. -№ 2. - С. 57-59.

75. Цветкова, Л.И. Криобанк спермы рыб / Л.И. Цветкова, Н.Д. Пронина, О.Б. Докина, А.В. Рекубратский, К.В. Ковалев // Биофизика живой клетки. - 2014. - Т. 10. - С. 212-214.

76. Чебанов, М.С. Галич Е.В., Руководство по осетроводству. Технический документ ФАО по рыболовству и аквакультуре / М.С. Чебанов, Е.В. Галич. — Анкара: ФАО, 2013. — 325 с.

77. Шейко, Л. М. Практикум по медицинской и биологической физике. Раздел «Биологическая физика»: Методы биофизических исследований / Л. М. Шейко, С. Б. Бокуть. — Минск: МГЭУ им. А. Д. Сахарова, 2011. — 64 с.

78. Шинтимирова, Ф.И. Скорость охлаждения кардинально влияет на выживаемость спермиев осетра / Ф.И. Шинтимирова, Д.Г. Садикова, А.А. Андреев, А.М. Тихомиров // Биология наука XXI века. — Пущино, 2006. — С. 123.

79. Шишанова, Е.И. Проблемы сохранения и эксплуатации популяций осетровых рыб каспийского бассейна / Е.И. Шишанова // Известия Самарского

научного центра Российской академии наук. — 2009. — Т. 11. — №1(2). — С.188-192.

80. Шишанова, Е. И. Влияние криоконсервации спермы на выживаемость и генетический полиморфизм личинок русского осетра / Е. И. Шишанова, И.В. Тренклер, А.С. Мамонова // Вестник Астраханского государственного технического университета. Серия: Рыбное хозяйство. — 2012. — № 2. — Р. 105111.

81. Юрченко, Т.Н., Влияние криопротекторов на биологические системы / Т.Н. Юрченко, В.Ф. Козлова, Б. А. Скорняков, В.И. Строна, Н.В. Репин. — Киев: Наук. думка, 1989. — 289 с.

82. Afonin, S.M. Structural-parametric models of electromagnetoelastic actuators for nano- and micromanipulators of mechatronic systems / S.M. Afonin // Journal of Mechanics. — 2016 . — Vol. 1. — No. 2 .— Р. 64-80 .

83. Agarwal, N. Cryopreservation of Fish Semen. / N. Agarwal // In book: Himalayan Aquatic Biodiversity Conservation & New Tools in Biotechnology Edition: First edition. — 2011. — Chapter: 8. — Р. 104-127.

84. Ahn, J.Y. Effects of different diluents, cryoprotective agents, and freezing rates on sperm cryopreservation in Epinephelus akaara / J.Y. Ahn, J.Y. Park, H.K. Lim // Cryobiology. — 2018. — № 83. — Р. 60-64.

85. Alvarenga, M.A. Advances in Stallion Semen Cryopreservation / M.A. Alvarenga, F.O. Papa, C. R. Neto // Veterinary Clinics of North America: Equine Practice. — 2016. — Vol. 32 (3). — P. 521-530.

86. Amidi, F. The role of antioxidants in sperm freezing: a review / F. Amidi, A. Pazhohan, M. Shabani Nashtaei, M. Khodarahmian, S. Nekoonam // Cell Tissue Bank. 2016. —№ 17(4). — Р. 745-756.

87. Anil, S. Studies on cryoprotectant toxicity to zebrafsh (Danio rerio) ovarian tissue fragment / S. Anil, F. Ghafari, T. Zampolla, D.M. Rawson, T. Zhang // Cryo Letters. — 2010. — V. 61. — P. 384-385.

88. Asturiano, J.F. Progress, challenges and perspectives on fish gamete cryopreservation: A mini-review / J.F. Asturiano, E. Cabrita, A. Horvath // Gen Comp Endocrinol. — 2017. — № 245. — P. 69-76.

89. Arakawa, T. Basis for toxicity of certain cryoprotectants: a hypothesis / T. Arakawa, J.F. Carpenter, Y.A. Kita, J.H. Crowe // Cryobiology. — 1990. — V. 27. — Iss. 4. — P. 401-415.

90. Aramli, M.S. Motility and fertility of cryopreserved semen in Persian sturgeon, Acipenser persicus, stored for 30-60 min after thawing / M.S. Aramli, R.M. Nazari // Cryobiology. — 2014. — 69(3). — 500-502.

91. Bai, T. Expansion of primitive human hematopoietic stem cells by culture in a zwitterionic hydrogel / T. Bai, J. Li, A. Sinclair et al. // Nat Med. — 2019. — №25. — P. 1566-1575.

92. Baust, J.G. Cryopreservation: An emerging paradigm change / D. Gao, J.M. Baust // Organogenesis. — 2009. — № 5(3). — P. 90-96.

93. Betsy, C. J. Cryopreservation and Its Application in Aquaculture / C.J. Betsy, C. Siva, K.S. Sampath // Animal Reproduction. — 2021. — P. 180.

94. Bissoyi, A. Targeting Cryopreservation-Induced Cell Death: A Review / A. Bissoyi, B. Nayak, K. Pramanik, S.K. Sarangi // Biopreserv. Biobanking. — 2014. — № 12. — P. 23.

95. Bolton, R.L. Resurrecting biodiversity: advanced assisted reproductive technologies and biobanking / R.L. Bolton, A. Mooney, M.T. Pettit, A.E. Bolton, L. Morgan, G.J. Drake, R. Appeltant, S.L. Walker, J.D. Gillis, C. Hvilsom // Reproduction & fertility. — 2022. — № 3(3). — P. 121-146.

96. Bozkurt, Y. Effect of Different Cryoprotectants (Glycerol, Methanol and Dimethyl Sulfoxide) on Post-thaw Quality, Viability, Fertilization Ability and DNA Damage of Cryopreserved Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) Spermatozoa / Y. Bozkurt, I. Yava§, M.N. Bucak, D. Yeni // Cryo Letters. — 2019. — № 40(1). — P. 11-17.

97. Bozkurt, Y. Cryoprotective Effect of Vitamin E Supplementation of Different Extenders on Quality and Fertilizing Ability of Frozen-Thawed Brown Trout

Sperm / Y. Bozkurt, í. Yava§, M.N. Bucak, T.R. Kiran, A. Gül // Biopreserv Biobank. — 2021. — M 19(3). — Р. 171-177.

98. Bruggeller, P. Complete vitrification in pure liquid water and dilute aqueous solutions / P. Bruggeller, E.Mayer // Nature. — 1980. — M 288. — 569-571.

99. Bunge, R.G. Frozen human semen / R.G. Bunge, J.K. Sherman // Fertil Steril. — 1954. — Vol. 5. — M 2. — P. 193-194.

100. Cabrita, E. Cryopreservation of fish sperm: applications and perspectives / E. Cabrita, C. Sarasquete, S. Martínez-Páramo, V. Robles, J. Beiräo, S. Pérez-Cerezales, MP. Hemíez // Journal of Applied Ichthyology. — 2010. — M26. — Р. 623-635.

101. Cabrita E., Factors enhancing fish sperm quality and emerging tools for sperm analysis / E. Cabrita, S. Martínez-Páramo, P.J Gavaia, M.F. Riesco, D.G. Valcarce, C. Sarasquete, M.P. Hercáez, V. Robles // Aquaculture. — 2014. — V. 432. — P. 389-40.

102. Chang, T. Ice Inhibition for Cryopreservation: Materials, Strategies,and Challenges / T. Chang, G. Zhao // Adv. Sci. — 2021. — M 8. — 2002425.

103. Chen, S.L. Cryopreservation of flounder (Paralichthys olivaceus) embryos by vitrification / S.L. Chen, Y.S. Tian // Theriogenology. — 2005. — M 63. — Р. 1207.

104. Chen, Y. Cryopreservation of spermatozoa/ Y. Chen, R.Z. Liu // Zhonghua Nan Ke Xue. — 2007. — M 13(8). — Р. 734-738.

105. Choi, S-B. Piezoelectric actuators: control applications of smart materials / S-B. Choi, Yo-M. Han // CRC Press. — 2010. — Р. 77-81.

106. Comizzoli, P. Comparative cryobiological traits and requirements for gametes and gonadal tissues collected from wildlife species / P. Comizzoli, Songsasen N., M. Hagedorn, D.E. Wildt // Teriogenology. — 2012. — M 78. — Р. 1666-1681.

107. Cosson, J. Studying sperm motility in marine fish: an overview on the state of the art / J. Cosson, A.L. Groison, M. Suquet, C. Fauvel, C. Dreanno, R. Billard // J. Appl. Ichthyol. — 2008. —M24. — Р. 460-486.

108. Davies, P.L. Structure and function of antifreeze proteins / P.L. Davies, J. Baardsnes, M.J. Kuiper, V.K. Walker // Philos. Trans. R. Soc. London. Ser. B. - 2002. -V. 357. - P. 927-935.

109. Deng, Q. Migration of Water in Litopenaeus Vannamei Muscle Following Freezing and Thawing / Q. Deng, Y. Wang, L. Sun, J. Li, Z. Fang, R. Gooneratne // J. Food Sci. — 2018. — № 83. — Р. 1810-1815.

110. Di Iorio, M. Semen cryopreservation for the Mediterranean brown trout of the Biferno River (Molise-Italy): comparative study on the effects of basic extenders and cryoprotectants / M. Di Iorio, S. Esposito, G. Rusco et al. // Sci Rep. — 2019. — № 9(1). — 9703.

111. Di Iorio, M. The role of semen cryobanks for protecting endangered native salmonids: Advantages and perspectives as outlined by the LIFE Nat.Sal.Mo. Project on Mediterranean brown trout (Molise region - Italy) / M. Di Iorio, G. Rusco, E. Stefano, M. D'Andrea, A. Roncarati, N. Iaffaldano // Frontiers in Marine Science. — 2023. — № 9. — 1075498.

112. Ding, F. H. Preliminary studies on the vitrification of red sea bream. (Pagrus major) embryos / F.H. Ding, Z.Z. Xiao, J. Li // Theriogenology. — 2007. — V. 68. — Р. 702-708.

113. Dodaran, H.V. Effect of ethanol induced mild stress on post-thawed bull sperm quality / H.V. Dodaran, M. Zhandi, M. Sharaf, E. Nejati-Amiri, A. Nejati-Javaremi, A. Mohammadi Sangcheshmeh, M.A. Shehab-El-Deen, M. Shakeri,// Cryobiology. — 2015. — № 71. — Р. 12-17.

114. Douglas, P. Cold hardiness and winter survival in the bird flea, Ceratophyllus idius / P. Douglas, А. Schelhaas, Omer R. Larson // J. Insect Physiology. — 2005. — Vol. 35. — № 2. — Р. 149-153.

115. Duman, J. G. Antifreeze and ice nucleator proteins in terrestrial arthropods / J. G. Duman // Annual review of physiology. — 2001. — №63. — Р. 327-357.

116. Duman, J. G. Antifreeze proteins in Alaskan insects and spiders / J. G. Duman, V. Bennett, T. Sformo, R. Hochstrasser, B. M. Barnes // Journal of insect physiology. — 2004. — № 50(4). — Р. 259-266.

117. Duman, J. G. Animal ice-binding (antifreeze) proteins and glycolipids: an overview with emphasis on physiological function / J. G. Duman // The Journal of experimental biology. — 2015. — № 218. — Р. 1846-1855.

118. Edashige, K. Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) embryos are difficult to cryopreserve by vitrification / K. Edashige, De. M.Valdez; T.Hara; N.Saida, S.Seki; M. Kasai // Cryobiology. — 2006. — V: 53. — Р.96-106.

119. Ekpo, M.D. Antifreeze Proteins: Novel Applications and Navigation towards Their Clinical Application in Cryobanking / M.D. Ekpo, J. Xie, Y. Hu, X. Liu,

F. Liu, J. Xiang, R. Zhao, B. Wang, S. Tan // Int. J. Mol. Sci. —2022. — № 23(5). — 2639.

120. Erdahl, D.A. Preservation of gametes for freshwater fish / D.A. Erdahl, E.F. Graham // Int. Congr. Anim. Reprod. Artif. Insem. (Proceedings). — 1980. — P. 317-326.

121. Fahy, G. The relevance of cryoprotectant toxicity to cryobiology / G. Fahy // Cryobiology. — 1986. — № 23. — Р. 65.

122. Fernandes, G.H. The effect of low-level laser irradiation on sperm motility, and integrity of the plasma membrane and acrosome in cryopreserved bovine sperm /

G.H. Fernandes, T. De Carvalho Pde, A.J. Serra, A.M. Crespilho, J.P. Peron, C. Rossato, E.C. Leal-Junior, R. Albertini // PLoS ONE. — 2015. — №10. — e0121487.

123. Figueroa, E. Effects of cryopreservation on mitochondrial function and sperm quality in fish / E. Figueroa, M. Lee-Estevez, I. Valdebenito, I. Watanabe, R. Oliveira, J. Romero // Aquaculture. — 2019. — V. 511. — P. 634190.

124. Gao, D. Mechanisms of Cryoinjury in Living Cells / D. Gao, J.K. Critser // ILAR Journal. — 2000. — Vol. 41(4). — P. 187-196.

125. Greer, N. Freezing under pressure: A new method for cryopreservation / N. Greer // Cryobiology. — 2015. — Vol. 70(1). — P. 66-70.

126. Guenther, J.F. Extra- and intra-cellular ice formation in Stage I and II Xenopus laevis oocytes / J.F. Guenther, S. Seki, F.W. Kleinhans, K. Edashige, D.M. Roberts, P. Mazur // Cryobiology. — 2006. — V. 52. — P. 401-416.

127. Hagedorn, M.M. Cryopreservation of Fish Spermatogonial Cells: The Future of Natural History Collections / M.M. Hagedorn, J.P. Daly, V.L. Carter et al. // Sci Rep. — 2018. — №8. — 6149.

128. Harvey, D.M.R. Freeze substitution / D.M.R. Harvey // Microscopy. — 1982. — № 127. — P. 209-221.

129. Hezavehei, M. Shahverdi Sperm cryopreservation: A review on current molecular cryobiology and advanced approaches / M. Hezavehei, M. Sharafi, K.H. Mohseni, R. Henkel, A. Agarwal, V. Esmaeili, A. // Reproductive BioMedicine Online. — 2018. — Vol. 37(3). — P. 327-339.

130. Horvath, A. Stress preconditioning of semen before cryopreservation improves fertility and increases the number of offspring born: A prospective randomized study using a porcine model / A. Horvath, O. Szenci, K. Nagy, L. Vegh, C. Pribenszky // Reprod. Fertil. Dev. — 2016 — № 28. — P. 475-481.

131. Hossen, S. Vital Analysis of Cryopreserved Sperm of Marbled Flounder, Pseudopleuronectes yokohamae / S. Hossen, S.C. Kim, Y. Cho, K.H. Kho // Front Physiol. —2021. — № 12. — 696737.

132. Hossen, S. Antioxidant Activity and Oxidative Stress-Oriented Apoptosis Pathway in Saccharides Supplemented Cryopreserved Sperm of Pacific Abalone, Haliotis discus hannai / S. Hossen, Z.P. Sukhan, Y. Cho, W.K. Lee, K.H. Kho // Antioxidants (Basel). — 2022. — 11(7). — 1303.

133. Huang, X. Effects of Cryopreservation on Acrosin Activity and DNA Damage of Russian Sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) Semen / X. Huang, T. Zhang, F. Zhao et al. // Cryo Letters. —2021. — № 42(3). — P. 129-136.

134. Iaffaldano, N. Italian semen cryobank of autochthonous chicken and turkey breeds: A tool for preserving genetic biodiversity / N. Iaffaldano, M. Di Iorio, G. Rusco, E. Antenucci, L. Zaniboni, M. Madedu, S. Marelli, A. Schiavone, D. Soglia, A. Buccioni // Ital. J. Anim. sci. — 2021. — № 20. — P. 2022-2033.

135. Iaffaldano, N. Effective freezing rate for semen cryopreservation in endangered Mediterranean brown trout (Salmo trutta macrostigma) inhabiting the Biferno river (South Italy) / N. Iaffaldano, M. Di Iorio, A. Manchisi, S. Esposito, P.P. Gibertoni // Zygote. — 2016. — № 24(5). — P. 668-675.

136. Igna, V. Evaluation of Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) Semen Quality and Semen Cryopreservation / V. Igna, A. Telea, T. Florea, R. Popp, A. Grozea // Animals (Basel). — 2022. — № 12(16). — Р. 2153.

137. Kelley, J.L. Functional diversification and evolution of antifreeze proteins in the antarctic fish Lycodichthys dearborni / J.L. Kelley, J.E. Aagaard, M.J. MacCoss, W.J. Swanson // Journal of Molecular Evolut ion. - 2010. - V. 71. - Iss. 2. - P. 111118.

138. Khlebovich, V. V. On various types of antifreezes in active and resting stages oforganisms / V.V. Khlebovich // Hydrobiologia. — 1996. — 320(1-3). — Р. 81-82.

139. Khosla, K. Gold Nanorod Induced Warming of Embryos from the Cryogenic State Enhances Viability / K. Khosla, Yi. Wang, M. Hagedorn, Zh. Qin, J. Bischof // ACS Nano. — 2017. — №11 (8). — Р. 7869-7878.

140. Kim, H.J. Marine Antifreeze Proteins: Structure, Function, and Application to Cryopreservation as a Potential Cryoprotectant / H. J. Kim, J. H. Lee, Y. B. Hur, C. W. Lee, S. H. Park, B. W. Koo // Marine drugs. — 2017. — № 15(2). — Р. 27.

141. Kim, Y.H. Printing ferromagnetic domains for untethered fast-transforming soft materials / Y.H. Kim, H. Yuk, R. Zhao, S. A. Chester, X. Zhao // Nature. — 2018. — № 558. — Р. 274-279.

142. Kime, D.E. Computer-assisted sperm analysis (CASA) as a tool for monitoring sperm quality in fish / D. E. Kime, K.J.W. Van Look, B.G. McAllister, G. Huyskens, E. Rurangwa, F. Ollevier // Comp. Biochem. Physiol. C, Comp. Pharmacol. Toxicol. — 2001. — №130. — Р. 425-433.

143. Klaiwattana, P. Effect of cryopreservation on lipid composition and antioxidant enzyme activity of seabass (Lates calcarifer) sperm / P. Klaiwattana, K. Srisook, E. Srisook, V. Vuthiphandchai, J. Neumvonk // J Iranian Journal of Fisheries Sciences. — 2016. — V. 15. — P. 157-169.

144. Kolyada, M.N. Use of cryoprotectors and antioxidants in sturgeon semen cryopreservation / M.N. Kolyada, V.P. Osipova, N.T. Berberova // Cryobiology. 2023. — № 111. — Р. 30-39.

145. Koop, T. Water activity as the determinant for homogeneous ice nucleation in aqueous solutions / T. Koop, B. Luo, A. Tsias, T. Peter // Nature. — 2000. — Vol. 406. — P. 611-614.

146. Krasilnikova, A.A. Alternative methods of preparation of fish sperm to freeze at ultra-high values of cooling rate / A.A. Krasilnikova, A.M. Tikhomirov // Vestnik of Astrakhan state technical university. Series: Fishing industry. — 2014. — P. 72-78.

147. Kristiansen, E. The mechanism by which fish antifreeze proteins cause thermal hysteresis / E. Kristiansen, K.E. Zachariassen // Cryobiology. — 2005. — № 51(3). — P. 262-280.

148. Kuleshova, L.L. Sugars exert a major influence on the vitrification properties of ethylene glycol-based solutions and have low toxicity to embryos and oocytes / L.L. Kuleshova, D.R. MacFarlane, A.O. Trounson, J.M. Shaw // Cryobiology. — 1999. — № 38. — P. 119-130.

149. Labbe, C. Cryopreservation of gametes for aquaculture and alternative cell sources for genome preservation / C. Labbe, V. France, M. Robles, P. Herraez // In book: Advances in Aquaculture Hatchery Technology. — 2012. — P. 76-116.

150. Lee, S.H. and Effect of magnetized extender on sperm membrane integrity and development of oocytes in vitro fertilized with liquid storage boar semen / S.H. Lee, C.K. Park // Anim. Reprod. Sci. — 2015. — №154. — P. 86-94.

151. Li, X. Effect of Storage Temperatures on the Moisture Migration and Microstructure of Beef / X. Li, H. Wang, W. Mehmood, S. Qian, Z. Sun, C. Zhang, C. Blecker // J. Food Qual. — 2018. — 3873179.

152. Li, Y.-X. Vitrification and conventional freezing methods in sperm cryopreservation: A systematic review and meta-analysis / Y.-X. Li, L. Zhou, M. Lv, P. Ge, Y. Liu, D. Zhou // European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology. — 2019. — Vol. 233. — P. 84-92.

153. Lovelock, J.E. Prevention of freezing damage to living cells by dimethyl sulphoxide / J.E. Lovelock, M.W. Bishop // Nature. — 1959. — № 183(4672). — 13941395.

154. Martinez-Paramo, S. Cryobanking of aquatic species / S. Martinez-Paramo, A. Horvath, C. Labbe, T. Zhang, V. Robles, P. Herraez, M. Suquet, S. Adams, A. Viveiros, T.R. Tiersch, E. Cabrita // Aquaculture. — 2017. — № 472. — Р. 156-177.

155. Maulida, S. Effect of cryoprotectant on the motility, viability, fertilization, and DNA integrity of naleh fish Barbonymus sp. (Cyprinidae) sperm / S. Maulida, K. Eriani, F.M. Nur, N. Fadli, A.S. Batubara, A.A. Muhammadar, M. N. Siti-Azizah, M. Wilkes, Z.A. Muchlisin // Brazilian Journal of Veterinary Research and Animal Science. — 2021. — № 58. — e168702.

156. Mazur, P. Kinetics of water loss from cells at subzero temperatures and the likelihood of intraocular freezing / P. Mazur // J Gen Physiol. — 1963. — № 47. — Р. 347-369.

157. Mazur, P. Cryobiology: Te freezing of biological systems / P. Mazur // Science. — 1970. — № 168. — Р. 939-949.

158. Mazur, P. A two-factor hypothesis of freezing injury. Evidence from Chinese hamster tissue-culture cells / P. Mazur, S. P. Leibo, E. H. Chu // Experimental cell research. — 1972. — № 71(2). — Р. 345-355.

159. Mazur, P. Equilibrium quasi-equilibrium, and nonequilibrium freezing of mammalian embryos / P. Mazur // Cell Biophys. — 1990. — № 17. — Р. 53-92.

160. Mazur, P. Te role of intracellular freezing in the death of cells cooled at supraoptimal rates / P. Mazur // Cryobiology. — 1997. — № 14. — Р. 251-272.

161. Mazur, P. Is intracellular ice formation the cause of death of mouse sperm frozen at high cooling rates? / P. Mazur, C. Koshimoto // Biol. Reprod. — 2002. — V. 66. — № 5. — P. 1485-1490.

162. Meryman, H.T. Freezing injury from "solution effect" and its prevention by natural or artificial cryoprotectant / H.T. Meryman, R.T. Williams, M.S.J. Douglas // Cryobiology. — 1977. — № 14(3). — Р. 287-302.

163. Mayer, I. The Role of Reproductive Sciences in the Preservation and Breeding of Commercial and Threatened Teleost Fishes / I. Mayer, // Advances in experimental medicine and biology. — 2019— № 1200. — Р.187-224.

164. Minkel, J.R. Antifreeze proteins observed at work / J.R. Minkel // Scientific American, 2007. - URL: https://www.scientificamerican.com/article/ antifreeze-proteins-obser/

165. Murphy, E.M. Comparison of plant- and egg yolk-based semen diluents on in vitro sperm kinematics and in vivo fertility of frozen-thawed bull semen / E.M. Murphy, C. O'Meara, B. Eivers, P. Lonergan, S. Fair // Anim Reprod Sci. — 2018a. — № 191. — P. 70-75.

166. Murphy, E.M. Effect of storage temperature, nitrogen gassing and sperm concentration on the in vitro semen quality and in vivo fertility of liquid bull semen stored in INRA96 / E.M. Murphy, B. Eivers, C. O'Meara, P. Lonergan, S. Fair // Theriogenology. — 2018. — № 108. — P. 223-228.

167. Murray, K.A. Chemical approaches to cryopreservation / K.A. Murray, M.I. Gibson // Nat Rev Chem. — 2022. — № 6(8). — P. 579-593.

168. Nevzorov, A.N. Internal mechanism of metastable liquid water crystallization and its effects on intracloud processes / A.N. Nevzorov // Izvestiya. Atm. and Ocean Phys. — 2006. — V. 42. — № 6. — P. 765-772.

169. Niu, J. Effects of Cryopreservation on Sperm with Cryodiluent in Viviparous Black Rockfish (Sebastes schlegelii) / J. Niu, X. Wang, P. Liu, H. Liu, R. Li, Z. Li, Y. He, J. Qi // Int. J. Mol. Sci. — 2022. — № 23. — 3392.

170. Omitogun, O.G. Cryopreservation of the Sperm of the African Catfish for the Thriving Aquaculture Industry in Nigeria / O.G. Omitogun, O. Ilori, O. Olaniyan, P. Amupitan, T. Oresanya, S. Aladele, W. Odofin // Current Frontiers in Cryopreservation, Prof. Igor Katkov (Ed.). — 2012. — P. 305-330.

171. Paventi, G. The Effect of Semen. Cryopreservation Process on Metabolomic Profiles of Turkey Sperm as Assessed by NMR Analysis / G. Paventi, M. Di Iorio, G. Jessica Richard Rusco, A. P. Sobolev, S. Cerolini, E. Antenucci, M. Spano, L. Mannina, N. Iaffaldano // Biology. — 2022. — № 11. — P. 42.

172. Polge, C. Revival of spermatozoa after vitrification and dehydration at low temperatures / C. Polge, A.U. Smith, A.S. Parks // Nature. — 1949. — № 164. — P. 666.

173. Polge, C. Survival of spermatozoa at low temperatures / C. Polge, A.U. Smith // Nature. — 1950. — №166 (4225). — Р. 668-669.

174. Ponomareva, E.N. Influence of acoustic-mechanical impact on the reproductive qualities of sturgeon sperm during cryopreservation / E.N. Ponomareva M.M. Belaya, A.V. Firsova, A.A. Krasilnikova // Doklady Biochemistry and Biophysics. — 2022. — Т. 505. — № 1. — С. 170-172.

175. Prentice, J.R. Cryopreservation of Mammalian Oocyte for Conservation of Animal Genetics / J.R. Prentice, M. Anzar // Vet. Med. Int. — 2011. — 146405.

176. Rabin, Y. Fracture formation in vitried thin lms of cryoprotectants / Y. Rabin, P.S. Steif, K.C. Hess, J.L. Jimenez-Rios, M.C. Palastro // Cryobiology. — 2006a. — №53. — Р. 75-95.

177. Rabin, Y. Solid mechanics aspect of cryobiology, In: Advances in Biopreservation (Baust, J.G., and Baust J.M., Eds.) / Y. Rabin, P.S. Steif // CRC Taylor & Francis. — 2006b. — Chap. 13. — Р. 359-382.

178. Rahman, M.B. Oocyte quality determines bovine embryo development after fertilization with hydrogen peroxide-stressed spermatozoa / M.B. Rahman, L. Vandaele, , T. Rijsselaere, M. Zhandi, D. Maes, M. Shamsuddin, A. Van Soom // Reprod. Fertil. Dev. — 2012. — № 24. — Р. 608-618.

179. Rall, W. Depression of the ice Unucleation temperature of rapidly cooled mouse embryos by glycerol and dimethylsofoxide / W. Rall, P. Mazur, J. McGrath // Biophys. — 1983. — №41. — Р. 61.

180. Rall, W.F. Ice-free cryopreservation of mouse embryos at -196°C by vitrification / W.F. Rall, G.M. Fahy // Nature. — 1985. — №313. — Р. 573-575.

181. Raml0v, H. Antifreeze glycoproteins from the antarctic fish Dissostichus mawsoni studied by differential scanning calorimetry (DSC) in combination with nanolitre osmometry / H. Raml0v, A.L. DeVries, P.W. Wilson // Cryo letters. — 2005. — № 26(2). — Р. 73-84.

182. Robles, V. The antifreeze protein type I (AFP I) increases seabream. (Sparus aurata) embryos tolerance to low temperatures / V. Robles, V. Barbosa, M.P.

Herráez, S. Martínez-Páramo, M.L. Cancela // Theriogenology. — 2007. — V. 68. — Iss. 2. — P. 284-289.

183. Rurangwa, E. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish / E. Rurangwa, D.E. Kime, F. Ollevier, J.P. Nash // Aquaculture. — 2004. — 234(1-4). — Р. 1-28.

184. Saragusty, J. Do physical forces contribute to cryodamage? / J. Saragusty, H. Gacitua, I. Rozenboim, A. Arav // Biotechnol. Bioeng. — 2009. — № 104. —Р. 719.

185. Shevtsov, S.N. Piezoelectric Actuators and Generators for Energy Harvesting / S.N. Shevtsov, A.N. Soloviev, I.A. Parinov, A.V. Cherpakov, V.A. Chebanenko // Springer. — 2018. — Р. 151-154.

186. Sun, Q. The comparison of ultrasound-assisted immersion freezing, air freezing and immersion freezing on the muscle quality and physicochemical properties of common carp (Cyprinus carpio) during freezing storage / Q. Sun, F. Sun, X. Xia, H. Xu, B. Kong // Ultrason. Sonochem. — 2019. — № 51. — Р. 281-291.

187. Sztein, J.M. History of cryobiology, with special emphasis in evolution of mouse sperm cryopreservation / J.M. Sztein, T. Takeo, N. Nakagata // Cryobiology. — 2018. — № 82. — Р. 57-63.

188. Takamatsu, H. Contribution of extracellular ice formation and the solution effects to the freezing injury of PC-3 cells suspended in NaCl solutions / H.Takamatsu, S. Zawlodska // Cryobiology. — 2006. — Vol. 53(1). — P. 1-11.

189. Tiersch, T.R. In Cryopreservation in Aquatic Species / T.R. Tiersch (eds T.R. Tiersch & C.C. Green) // World Aquaculture Society. —2011. — Р. 1-17.

190. Tsai, S. Advantages and Applications of Cryopreservation in Fisheries Science / S. Tsai, C. Lin // Brazilian Archives of Biology and Technology. — 2012. — № 55. — Р. 425-434.

191. Yusoff, M. Successful sperm cryopreservation of the brown-marbled grouper, Epinephelus fuscoguttatus using propylene glycol as cryoprotectant / M. Yusoff, B.N. Hassan, M. Ikhwanuddin, S.M. Sheriff, F. Hashim, S. Mustafa, I.C.C. Koh // Cryobiology. — 2018. — № 81. — Р. 168-173.

192. Wang, X.-Y. Water dynamics and microbial communities of bigeye tuna (Thunnus obesus) during simulated cold chain logistics / X.-Y. Wang, J. Xie // J. Food Saf. — 2020. — № 40. — e12766.

193. Watson, P. F. Cold shock injury in animal cells / P.F. Watson, G.J. Morris // Symp. Soc. Exp. Biol. — 1987. — № 41. — Р. 311-340.

194. Watson, P.F. Principles of Cryopreservation Gametes, Embryos / P.F. Watson, B.J. Fuller // Cryobanking the genetic resource. Wildlife conservation for the future. P. F. Watson, W. V. Holt (Eds), Taylor and Francis, London. — 2001. — Р. 2246.

195. Wildt, D. Genome resource banks: 'Living collections' for biodiversity conservation / D. Wildt, W. F. Rall, J. Critser, , S. Monfort, U. Seal // BioScience. — 1997. — № 47. — Р. 689-698.

196. Wöhrmann, A. Gefrierschutzproteine aus Fischen: Struktur, Wirkungsweise und mögliche Anwendungen [Antifreeze glycoproteins in fishes: structure, mode of action and possible applications] / A. Wöhrmann // Tierarztliche Praxis. — 1996. — № 24(1). — Р. 1-9.

197. Wolfw, J. Cryobiology and anhydrobiology of cells / J. Wolfw, G.Bryant. -Sidney. — 2004. — P.143-156.

198. Yeste, M. Recent Advances in Boar Sperm Cryopreservation: State of the Art and Current Perspectives / M. Yeste // Reprod Dom Anim. — 2015. — № 50. — Р. 71-79.

199. Zell, S.R. Cryopreservation of gametes and embryos of salmonid fishes / S.R. Zell // Ann. Biol. Anim. Biochem. Biophys. — 1978. — № 18. — P. 1089-1099.

200. Zhang, T. Low-temperature preservation of fish gonad cells and oocytes. In: Badin PJ, Cerda J, Lubzens E. (ed.) The fish oocytes: from basic studies to biotechnological applications / T. Zhang, D.M. Rawson, I. Pekarsky, I. Blais, E. Lubzens // New York: Springer. — 2007. — P.411-436.

201. Zhang, W. Application of antioxidants and centrifugation for cryopreservation of boar spermatozoa / W. Zhang, K. Yi, C. Chen, X. Hou, X. Zhou // Anim Reprod Sci. — 2012. — № 132(3-4). — Р. 123-8.

202. Zhang, X. Magnetothermal heating facilitates the cryogenic recovery of stem cell-laden alginate-Fe3O4 nanocomposite hydrogels / X. Zhang, G. Zhao, Y. Cao, Z. Haider, M. Wang, J. Fu // Biomaterials Science. — 2018. — № 6. — Р. 3139.

203. Zhao, X. Bioinspired ultra-stretchable and anti-freezing conductive hydrogel fibers with ordered and reversible polymer chain alignment / X. Zhao, F. Chen, Y. Li, et al. // Nat Commun. — 2018. — № 9. — Р. 3579.

204. Zhmakin, A.I. Fundamentals of cryobiology / A.I. Zhmakin. — Verlag Berlin Heidelberg: Springer, 2009. —278 p.