Наностержни золота и их нанокомпозиты для определения катехоламинов методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 02.00.02, кандидат наук Горбунова Мария Владимировна

• Горбунова Мария Владимировна
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Горбунова Мария Владимировна

ВВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Глава 1. Общие сведения о методах синтеза и оптических свойствах наностержней золота и их нанокомпозитов

1.1. Поверхностный плазмонный резонанс наночастиц

1.2. Методы синтеза наностержней золота

1.3. Виды нанокомпозитов на основе наностержней золота и методы их синтеза

Глава 2. Применение наностержней золота и их нанокомпозитов в химическом анализе

2.1. Применение коллоидных растворов наностержней золота в химическом анализе

2.2. Применение нанокомпозитов на основе наностержней золота в химическом анализе

Глава 3. Катехоламины и спектроскопические методы их определения

3.1. Общие сведения о катехоламинах и основных методах их определения

3.2. Спектроскопические методы определения катехоламинов

Глава 4. ОБЪЕКТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ, РЕАГЕНТЫ, АППАРАТУРА И МЕТОДИКИ ЭКСПЕРИМЕНТОВ

4.1. Объекты исследования и реагенты

4.2. Аппаратура

4.3. Методики экспериментов

РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Глава 5. Синтез и характеристики наностержней золота

5.1. Синтез наностержней золота

5.2. Характеристики наностержней золота

Глава 6. Взаимодействие катехоламинов с ионами серебра в присутствии наностержней золота

6.1. Особенности и механизм взаимодействия

6.2. Выбор спектрального параметра для контроля степени протекания взаимодействия

6.3. Влияние различных факторов на взаимодействие

6.4. Сравнение аналитических характеристик определения катехоламинов с использованием различных наносистем

2

Глава 7. Синтез и характеристики нанокомпозитов на основе пенополиуретана и наностержней золота

7.1. Сорбционное модифицирование пенополиуретана наностержнями золота как способ получения их нанокомпозитов

7.2. Характеристики полученных нанокомпозитов

Глава 8. Взаимодействие нанокомпозитов на основе пенополиуретана и наностержней золота, модифицированных нитратом серебра, с катехоламинами

8.1. Особенности и механизм взаимодействия

8.2. Выбор спектрального параметра для контроля степени протекания взаимодействия

8.3. Влияние различных факторов на взаимодействие

8.4. Сравнение аналитических характеристик определения катехоламинов с использованием различных нанокомпозитов

Глава 9. Аналитическое применение наностержней золота и их нанокомпозитов на основе пенополиуретана для определения катехоламинов методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения

9.1. Определение индивидуальных катехоламинов с использованием наностержней золота и их нанокомпозитов

9.2. Определение суммарного содержания катехоламинов с использованием наностержней золота и их нанокомпозитов

9.3. Определение суммарного содержания катехоламинов в биологических жидкостях с использованием наностержней золота и нанокомпозитов на их основе

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

БЛАГОДАРНОСТИ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ИСПОЛЬЗОВАННЫЕ В РАБОТЕ СОКРАЩЕНИЯ

сшш - предел обнаружения; А - адреналин;

АТФ - аденозинтрифосфорная кислота;

БСА - бычий сывороточный альбумин;

ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография;

ГП - геометрические параметры НСт;

ДА - дофамин;

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота; ДОС - диапазон определяемых содержаний; ИФА - иммуноферментный анализ; КА - катехоламин;

миРНК - малые интерферирующие РНК;

НА - норадреналин;

НСт - наностержни;

НСф - наносферы;

НЧ - наночастицы;

ОФ - обращенно-фазовый;

ПАВ - поверхностно-активное вещество;

ППР - поверхностный плазмонный резонанс;

ПРЭМ - просвечивающая растровая электронная микроскопия;

ПЭМ - просвечивающая электронная микроскопия;

РНК - рибонуклеиновая кислота;

СДО - спектроскопия диффузного отражения;

ССПС - сверхсшитый полистирол;

СФ - спектрофотометрия;

УЗ - ультразвук;

УФ - ультрафиолетовый;

ЦТМА - бромид цетилтриметиламмония;

ЦДТА - циклогексилен-1,2-динитрилотетрауксусная кислота;

Э/Х - электрохимический метод;

ЭДТА - этилендиаминтетраацетат натрия

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Наностержни золота и их нанокомпозиты для определения катехоламинов методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность работы. Благодаря особым оптическим свойствам, обусловленным поверхностным плазмонным резонансом (ППР) и проявляющимся в возникновении интенсивного поглощения в видимой области спектра, наночастицы золота находят широкое применение в химическом анализе для спектрофотометрического и визуально-колориметрического определения различных соединений. Наличие корреляции между спектром поверхностного плазмонного резонанса наночастиц и их состоянием обеспечивает возможность определения соединений, способных прямым или косвенным образом влиять на наночастицы. В настоящее время все большее внимание исследователей привлекают несферические наночастицы, например, наностержни золота (НСт). Отличительной особенностью НСт по сравнению с классическими сферическими наночастицами является наличие двух полос поверхностного плазмонного резонанса в видимой области спектра. Аналитическим сигналом в данном случае может служить не только изменение интенсивности полосы ППР, но также взаимное расположение максимумов и соотношение их интенсивностей. Помимо этого, положение длинноволнового максимума НСт зачастую оказывается более чувствительным к составу раствора по сравнению с полосой ППР сферических наночастиц. Всё это открывает возможность расширения круга определяемых соединений и повышения чувствительности методик анализа. Большинство известных методик основано на агрегации или изменении формы НСт. Другие возможности использования НСт, например, включающие формирование наночастиц типа «ядро - оболочка», также приводящее к существенным спектральным изменениям, изучены мало.

Наряду с наночастицами, актуальным представляется создание и изучение нанокомпозитных материалов, которые в ряде случаев выгодно отличаются по своим аналитическим и эксплуатационным характеристикам. Хорошо зарекомендовал себя в качестве матрицы нанокомпозитов для целей оптической аналитической спектроскопии такой полимерный сорбент как пенополиуретан (ППУ). Его отличают монолитность, отсутствие собственной окраски, химическая устойчивость, механическая прочность, легкость отделения от раствора, невысокая стоимость и широкая доступность. Сочетание особых оптических свойств НСт и достоинств ППУ можно удачно использовать для определения соединений методом спектроскопии диффузного отражения. Однако таких исследований в литературе не описано.

В свете современных задач аналитической химии, наиболее актуальным представляется изучение аналитических возможностей наночастиц при определении биологически важных соединений - гормонов, маркеров заболеваний, лекарственных веществ, токсикантов и других. В частности, большой интерес для клинического и фармацевтического анализа представляет разработка доступных, экспрессных и недорогих способов определения катехоламинов. Соединения этого класса являются нейротрансмиттерами и играют ключевую роль в организме, что требует контроля их содержания в биологических жидкостях и фармацевтических препаратах.

Цель диссертационной работы заключалась в изучении возможностей применения наностержней золота и их нанокомпозитов на основе пенополиуретана для определения катехоламинов методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения.

Достижение поставленной цели предполагало решение следующих задач:

1. Осуществить синтез НСт для спектрофотометрического определения катехоламинов, охарактеризовать их морфологию и спектральные характеристики.

2. Изучить особенности взаимодействия катехоламинов с нитратом серебра в присутствии НСт, приводящего к формированию наночастиц типа «ядро -оболочка». Изучить спектральные изменения в ходе этого взаимодействия. Выбрать спектральный параметр для оценки степени его протекания. Выявить влияние состава раствора, рН, времени и ряда других факторов на данное взаимодействие.

3. Разработать способ получения нанокомпозитов НСт и ППУ в качестве твердофазных реагентов для спектроскопии диффузного отражения. Охарактеризовать морфологию и спектральные характеристики полученных материалов.

4. Изучить особенности взаимодействия катехоламинов с нанокомпозитами на основе НСт и ППУ, модифицированными нитратом серебра. Выявить влияние различных факторов на это взаимодействие.

5. Оценить аналитические возможности НСт и их нанокомпозитов с ППУ для определения различных катехоламинов методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения.

6. Разработать способы определения индивидуальных катехоламинов и их суммарного содержания с использованием НСт и их нанокомпозитов с ППУ методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения.

Научная новизна работы. Обоснована возможность использования взаимодействия катехоламинов с нитратом серебра в присутствии НСт для спектрофотометрического определения катехоламинов. Показано, что оно приводит к образованию наностержней типа «ядро - оболочка» на основе золота и серебра, что сопровождается гипсохромным сдвигом полос ППР НСт в спектре поглощения.

Охарактеризовано влияние природы катехоламина и условий (степени очистки НСт от избытка стабилизатора, времени, кислотности среды, природы буферного раствора, концентрации НСт и нитрата серебра, температуры) на взаимодействие катехоламинов с нитратом серебра в присутствии НСт. На основании полученных данных разработан способ спектрофотометрического определения катехоламинов с использованием растворов НСт.

Разработан способ получения нанокомпозитов НСт и ППУ путем сорбционного модифицирования поверхности полимера в водном растворе НСт. Выявлено влияние различных факторов на сорбцию НСт на ППУ. Охарактеризованы оптические свойства НСт в матрице ППУ.

Показана возможность модифицирования нанокомпозитов НСт и ППУ нитратом серебра с целью последующего использования для определения катехоламинов. Изучено влияние различных факторов на взаимодействие катехоламинов с нанокомпозитами НСт и ППУ, модифицированными нитратом серебра. Обосновано использование этого взаимодействия для определения катехоламинов. Разработан способ определения катехоламинов с использованием нанокомпозитов НСт и ППУ методом спектроскопии диффузного отражения.

Установлена возможность сочетания динамического сорбционного концентрирования катехоламинов при анализе биологических жидкостей (сыворотка крови, моча) на сверхсшитом полистироле с последующим определением в элюате с помощью НСт и их нанокомпозитов с ППУ.

Практическая значимость работы. Предложена сорбционная методика синтеза нанокомпозитов на основе НСт и ППУ в качестве твердофазных аналитических реагентов для спектроскопии диффузного отражения.

Разработаны способы спектрофотометрического и твердофазно-спектроскопического определения индивидуальных катехоламинов (дофамина, норадреналина, адреналина и добутамина) и их суммарного содержания в медицинских препаратах и биологических жидкостях (сыворотка крови, моча) с использованием коллоидных растворов НСт и их нанокомпозитов с ППУ.

Разработана методика сорбционного концентрирования катехоламинов из биологических жидкостей на сверхсшитом полистироле перед их определением с помощью НСт и нанокомпозитов НСт с ППУ.

На защиту выносятся:

✓ Результаты исследования взаимодействия катехоламинов с нитратом серебра в присутствии НСт, выявленные особенности взаимодействия и данные о влиянии на него различных факторов. Взаимодействие приводит к формированию наночастиц типа «ядро - оболочка» на основе золота и серебра и сопровождается спектральными изменениями, которые можно использовать для спектрофотометрического определения катехоламинов.

✓ Данные об особенностях сорбции НСт на ППУ из водных растворов, которая приводит к образованию нанокомпозитов на основе этого полимера и НСт. Результаты изучения характеристик полученных нанокомпозитов.

✓ Результаты исследования взаимодействия нанокомпозитов, модифицированных нитратом серебра, с катехоламинами, выявленные особенности взаимодействия и данные о влиянии на него различных факторов. Взаимодействие сопровождается изменением спектральных характеристик нанокомпозитов, что может быть положено в основу определения катехоламинов методом спектроскопии диффузного отражения.

✓ Разработанные способы определения катехоламинов методами спектрофотометрии и спектроскопии диффузного отражения и их применение для анализа медицинских препаратов («Адреналина гидрохлорид», «Допмин»), модельных смесей, имитирующих состав препаратов «Норадреналин Агетан», «Добутамин Адмеда», и биологических жидкостей (сыворотка крови, моча).

Достоверность полученных результатов подтверждается применением комплекса современных инструментальных методов (просвечивающая и сканирующая электронная микроскопия, спектрофотометрия, спектроскопия диффузного отражения, высокоэффективная жидкостная хроматография), осуществлением обработки полученных результатов методами математической статистики, хорошей воспроизводимостью и правильностью результатов, их согласованностью с данными независимого метода анализа.

Апробация работы. Основные результаты диссертационного исследования представлены на международных и всероссийских конференциях: XXII - XXVI Международных научных конференциях студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (РФ, Москва, 2015 - 2019 гг.), 9th International Conference on Instrumental Methods of Analysis: Modern Trends and Applications "IMA 2015" (Греция, Каламата, 2015 г.), II Всероссийской конференции по аналитической спектроскопии с международным участием (РФ, Краснодар, 2015 г.), Х Всероссийской конференции по анализу объектов окружающей среды «Экоаналитика-2016» (РФ, Углич, 2016 г.), 7th Szeged International Workshop on Advances in Nanoscience "SIWAN7" (Венгрия, Сегед, 2016 г.), 14th International Conference on Molecular Spectroscopy (Польша, Краков, 2017 г.), Четвертом междисциплинарном научном форуме с международным участием «Новые материалы и перспективные технологии» (РФ, Москва, 2018 г.).

Гранты. Диссертационная работа выполнена в рамках следующих проектов: гранты РФФИ № 13-03-00100, 15-33-70002, 18-53-00014, РНФ № 14-23-00012, 18-7310001, гранты Президента РФ № НШ-1724.2014.3, 14.W02.16.7283-Hm.

Публикации. Основное содержание диссертационной работы опубликовано в 5 статьях в научных изданиях, индексируемых в базах данных Web of Science, Scopus, RSCI, изданиях из перечня, рекомендованных Минобрнауки РФ, и 11 тезисах докладов на международных и российских конференциях.

Личный вклад автора заключается в поиске, систематизации и анализе литературных данных по теме работы, постановке цели и задач исследования, непосредственном проведении экспериментальной работы, обработке и интерпретации полученных данных, подготовке к публикации результатов проведенных исследований, формулировании научных положений, выносимых на защиту, и выводов.

Структура и объем диссертации. Представленная диссертационная работа изложена на 195 страницах машинописного текста, включает 32 таблицы и 68 рисунков. Состоит из введения, 3 глав обзора литературы, 6 глав, представляющих результаты исследований и их обсуждение, выводов, списка цитируемой литературы, включающего 280 источников.

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Глава 1. Общие сведения о методах синтеза и оптических свойствах наностержней золота и их нанокомпозитов

1.1. Поверхностный плазмонный резонанс наночастиц

Насыщенный цвет золей благородных металлов обусловлен наличием полосы поверхностного плазмонного резонанса (ППР). Широкая полоса поглощения в видимой области спектра возникает из-за коллективных колебаний электронов на поверхности наночастиц (НЧ) под воздействием внешнего электромагнитного поля облучающего света. Поскольку плазмонные колебания локализованы вблизи поверхности НЧ металлов (локальный или локализованный ППР, ЛППР), на положение, интенсивность и форму полосы ППР оказывают влияние факторы, изменяющие свойства поверхности, главными из которых являются материал и состав поверхностного слоя, размер и форма частиц, а также локальная диэлектрическая проницаемость среды [1 - 4].

Если сферическим НЧ теория Ми приписывает существование одной полосы поглощения [5], то для эллипсоидов в 1912 году Гансом было предсказано расщепление моды ППР на две отдельные моды [6]. Полученные в дальнейшем экспериментальные данные подтвердили теорию Ганса [7 - 12]. В статье [13], посвященной обзору методов синтеза несферических НЧ золота, представлена информация о характерном положении полосы ППР для наиболее распространенных видов НЧ (рис. 1).

Рис. 1. Положение полосы ППР в зависимости от формы НЧ [13].

Как можно видеть, наличие двух полос ППР - характерная особенность наностержней золота (НСт). Изучение зависимости положения полос ППР от соотношения длины и ширины (формфактора) НСт показало, что положение коротковолнового максимума, отвечающего поперечным плазмонным колебаниям, практически не зависит от соотношения геометрических размеров НСт; при этом увеличение формфактора вызывает батохромный сдвиг полосы ППР, обусловленной продольными плазмонными колебаниями [8, 14 - 15], и визуально наблюдается в изменении окраски растворов (рис. 2) [16].

Важное влияние на геометрические размеры НСт и их оптические характеристики оказывает способ синтеза.

1.2. Методы синтеза наностержней золота

Образование несферических наночастиц в изотропной среде - нетипичное явление, которое может быть, например, связано со спонтанной агрегацией почти сферических зародышей. Чтобы целенаправленно получить несферические коллоидные металлические частицы, необходимо создать искусственно анизотропные условия роста. В настоящее время существует три основных группы методов синтеза НСт:

✓ На жестких матрицах

✓ Электрохимический метод

✓ Зародышевый рост в мицеллярных средах.

Рассмотрим эти методы подробнее.

Рис. 2. Растворы НСт с разными геометрическими характеристиками: 1, 2, 9 - золотые НСт с полосой продольного ППР при 670, 700, 780 нм соответственно; 7, 8 - смеси золотых НСт и наносфер; 3, 4, 6 - серебряно-золотые НСт с полосой продольного ППР при 620, 600, 580 нм соответственно; 5 - серебряные наносферы [16].

Синтез НСт на жестких матрицах впервые был предложен в 90-х годах ХХ века научной группой Ч.Р. Мартина [17 - 19]. Метод основан на электрохимическом замещении материала нанопористой поликарбонатной [3], силикатной [20] или корундовой [7, 10] мембраны золотом. Полученный нанокомпозит Au/Al2Oз является оптически прозрачным в видимой области спектра, а изменение формфактора НСт приводит к изменению цвета материала.

Впоследствии для получения свободных НСт было предложено осуществлять селективное растворение матрицы и редиспергирование НСт в воде [3]. Для получения раствора НСт в органической фазе проводят растворение матрицы органическим растворителем, сопровождаемое стабилизацией НСт за счет введения полимера [7, 21, 22]. Диаметр полученных таким образом НСт определяется диаметром пор жесткой матрицы, длину НСт можно контролировать количеством введенного золота [23, 24].

Основным недостатком данного метода является малый выход целевых НСт: необходимо контролировать формирование монослоя, получение даже малых количеств НСт требует длительного времени.

Электрохимический метод синтеза НСт впервые был представлен научной группой Ванга в конце 90-х годов прошлого века [25, 26], их подход расширил группу существовавших ранее электрохимических методов синтеза частиц переходных металлов [27]. Данный метод обеспечивает получение больших выходов целевых НСт.

Синтез проводится в двухэлектродной электрохимической ячейке. Золотая пластинка служит анодом, катодом является платиновый электрод. Оба электрода погружены в раствор, содержащий катионное поверхностно-активное вещество бромид цетилтриметиламмония (ЦТМА) и небольшое количество более гидрофобного бромида тетрадодециламмония, способствующего образованию вытянутых мицелл. При этом ЦТМА выступает не только как электролит, но и как стабилизатор НСт, предотвращающий их агрегацию. В электролитическую ячейку также вводят ацетон и циклогексан. Ацетон необходим для разупрочнения структуры мицелл ЦТМА и облегчения включения в их состав бромида тетрадодециламмония, циклогексан способствует образованию вытянутых мицелл. Электролитическую ячейку, содержащую все реагенты, помещают в ультразвуковую баню.

В ходе электролиза происходит растворение золотого анода с образованием ионов AuBr4-. Эти ионы встраиваются в мицеллы ПАВ и мигрируют к катоду, где происходит электровосстановление. Для отделения полученных НСт от поверхности электрода применяют ультразвуковое воздействие.

Установлено, что на длину получаемых таким методом НСт влияет концентрация ионов серебра в электролитическом растворе: в электролитическую ванну помещали серебряную пластинку, в результате окислительно -восстановительной реакции между ионами золота, образовавшимися на аноде, и поверхностью серебряной пластинки происходило образование ионов серебра, присутствие которых в растворе влияло на длину получаемых НСт. На данный момент механизм этого процесса достоверно не установлен [3].

Достоинством данного метода синтеза золотых НСт является большой выход целевых НСт, как недостаток стоит отметить длительность процедуры.

Зародышевый рост НСт в мицеллярных средах. Получение несферических НСт в мицеллярных средах (растворах ионных ПАВ) с использованием раствора затравок является, пожалуй, самым старым, а потому и самым проработанным на данный момент. Поскольку в определенных условиях водные растворы ПАВ способны образовывать несферические мицеллы, они могут служить матрицами для получения несферических НЧ. Наиболее популярным ПАВ, используемым для этой цели, является ЦТМА [10]. Выбирая определенным образом условия синтеза, можно получать НСт с различными геометрическими параметрами.

Такой вариант синтеза предложен научной группой К. Дж. Мерфи, он заключается в предварительном получении раствора затравок путем восстановления золотохлористоводородной кислоты борогидридом натрия в присутствии цитрата натрия, стабилизирующего затравки, и последующем введении полученных затравок в раствор, содержащий золотохлористоводородную кислоту, ЦТМА и аскорбиновую кислоту [10, 28]. Механизм роста НСт до конца не ясен. Одно из возможных объяснений состоит в том, что зародышевые частицы после добавления к ростовому раствору адсорбируют молекулы ПАВ и включаются в анизотропные мицеллы, размеры которых зависят от концентрации ПАВ и ионной силы раствора; восстановление золотохлористоводородной кислоты на зародышах приводит к формированию НСт с геометрией, определяемой анизотропией мицеллы. Согласно другому предположению, молекулы ПАВ преимущественно адсорбируются на боковых гранях растущих НСт с образованием бислоя, в результате чего диффузионный рост возможен только со стороны торцов, этот механизм получил название "zipping" mechanism (рис. 3) [1, 29, 30].

Рис. 3. Схематическое представление формирования НСт по механизму "zipping" [10].

Также существует предположение, что стержнеобразный рост наночастиц обусловлен тем, что мицеллы ПАВ, содержащие в себе ионы золотохлористоводородной кислоты, сталкиваются с мицеллами, содержащими затравки, преимущественно торцами вследствие неравномерного распределения заряда на поверхности мицелл (большая плотность отрицательного заряда в случае мицелл первого типа и положительного у мицелл второго типа сконцентрирована на торцах), что подтверждается теоретическими расчетами градиента потенциала для эллипсоида [3].

Изменяя определенным образом условия роста НСт, возможно получать НСт с различным соотношением длина/ширина. Исследователями из научной группы К. Дж. Мерфи было отмечено, что в ходе многостадийного синтеза, включающего в себя последовательное введение аликвот НСт в новые ростовые растворы в качестве затравок, образуются НСт с большим значением формфактора [10]. Научной группой Эль-Сайеда предложено использовать ЦТМА в качестве стабилизатора НЧ, а также вводить в реакционную смесь определенную концентрацию нитрата серебра, что позволяет повысить выход целевых НСт и снизить долю побочных сферических НЧ до < 1% [31]. Исследовано влияние длины углеводородного хвоста ПАВ на длину и выход НСт. Показано, что использование ПАВ с короткими углеводородными хвостами приводит к получению НСт меньшей длины, увеличение же углеводородной части ПАВ способствует образованию более длинных НСт, и с большим выходом [3]. Авторами статьи [30] получены интересные данные по влиянию ионной силы ростового раствора на параметры образующихся НЧ: вследствие высаливания ПАВ, стабилизирующего НСт, ослабляется электростатическое отталкивание между НСт и происходит их агрегация, но при этом агрегаты НСт имеют форму цепочек.

Авторы статьи [32] детально изучили влияние различных факторов на процесс роста НСт и резюмировали полученные данные следующими пунктами:

✓ Чем выше стабильность частиц-затравок, тем больше выход целевых НСт, при этом ЦТМА выступает в роли лучшего стабилизатора.

✓ Увеличение ионной силы раствора за счет добавления №0, NaNOз или NaBr приводит к уменьшению выхода НСт.

✓ Увеличение количества введенных затравок приводит к уменьшению значения формфактора НСт.

✓ Оптимальное соотношение ЦТМА/HAuCl4 находится в очень узком диапазоне, т.к. при значениях меньше 10/1 происходит выпадение осадка ЦТМА-HAuQ4. Этого можно избежать путем повышения температуры, однако при этом уменьшается выход НСт [33]. При высоких концентрациях ЦТМА наблюдается уменьшение значения формфактора, что обусловлено повышением содержания бромид-ионов в растворе.

✓ Присутствие ЦТМА влияет не только на характер роста НСт, но и на скорость: чем выше содержание ПАВ, тем быстрее происходит рост НСт. Выяснено, что присутствие нитрата серебра в реакционной смеси сильно

влияет на выход и значение формфактора получаемых НСт [34], в связи с чем целесообразно рассмотреть синтез НСт в присутствии AgNOз отдельно. Основоположниками этого метода синтеза являются ученые из группы Эль-Сайеда, в их работах детально изучено влияние нитрата серебра на формирование НСт [8, 9, 31].

На данный момент существует три основных теории, объясняющих влияние нитрата серебра на формирование золотых наностержней. Согласно одной из них, механизм роста НСт в присутствии AgNOз связан с повышением потенциала восстановления серебра на поверхности золота. Анизотропия роста обусловлена тем, что формальный потенциал пары Ag+-НСтAu/Ag0-НСтAu для боковых граней больше, нежели чем для торцевых, что приводит к преимущественному восстановлению серебра на боковых гранях зародыша, последующему связыванию с ними молекул ПАВ и ингибированию диффузионного роста частиц в этом направлении, при этом рост происходит с торцов [34 - 36]. Второй вариант описания механизма реакции аналогичен первому, отличие состоит лишь в том, что предполагается преимущественное осаждение комплексов бромида серебра на боковых гранях НСт, а

не свободных ионов Ag+. Согласно третьему механизму, Ag+ участвует в формировании вытянутых мицелл ЦТМА при концентрации ЦТМА выше критической концентрации мицеллообразования, стабилизируя тем самым мицеллы [37].

На значение формфактора НСт, синтезируемых в присутствии AgNOз, влияют те же факторы, что и в случае НСт, полученных в отсутствие AgNOз [1, 3]. При этом появляется еще один важный фактор: величина мольного отношения серебра к золоту [38 - 40]. С ростом доли серебра происходит увеличение длины НСт, но при значениях мольного отношения Ag/Au более 1/6 формфактор НСт уменьшается, при дальнейшем увеличении доли серебра наблюдаются попеременно то гипсохромный, то батохромный сдвиг длинноволнового максимума в спектре ППР [40]. Вероятно, это связано с конкуренцией двух факторов, влияющих на положение максимума: доли серебра в составе НСт и их длины. Варьирование количества серебра при синтезе позволяет получить целый спектр растворов серебряно-золотых НСт [41]. Интересно, что увеличение концентрации ионов серебра выше некоторого предела приводит к формированию «звездообразных» частиц [38, 42].

Более детально влияние нитрата серебра, а также некоторых других факторов исследовано в научной группе Мерфи [37]. Показано, что наблюдается линейная зависимость положения длинноволнового максимума и величины формфактора наностержней от введенного количества AgNOз (рис. 4).

Установлено, что, помимо нитрата серебра, на характер получаемых НСт оказывает влияние количество введенных затравок, содержание аскорбиновой кислоты и температура синтеза. Так, увеличение вводимого объема затравок приводит к формированию наностержней, длинноволновый максимум которых в спектре ППР смещен в область больших длин волн. При увеличении содержания аскорбиновой кислоты или повышении температуры синтеза образующиеся НСт характеризуются смещением длинноволнового максимума в область коротких длин волн. Также в исследовании [37] отмечено, что совместное изменение сразу нескольких факторов может приводить как к синергетическому эффекту (увеличение гипсохромного сдвига при увеличении содержания аскорбиновой кислоты при повышении концентрации AgNOз), так и к отличному от ожидаемого действию (батохромный сдвиг при повышении температуры и увеличении содержания аскорбиновой кислоты).

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Горбунова Мария Владимировна, 2019 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Дыкман Л.А., Богатырев В.А., Щеголев С.Ю., Хлебцов Н.Г. Золотые наночастицы: синтез, свойства, биомедицинское применение. М.: Наука, 2008. 319 с.

2. Daniel M.-C., Astruc D. Gold nanoparticles: assembly, supramolecular chemistry, quantum-size-related properties, and applications toward biology, catalysis, and nanotechnology. // Chem. Rev. 2004. V. 104. P. 293 - 346.

3. Pérez-Juste J., Pastoriza-Santos I., Liz-Marzán L., Mulvaney P. Gold nanorods: synthesis, characterization and applications. // Coord. Chem. Rev. 2005. V. 249. P. 1870 - 1901.

4. Gorodkiewicz E., Lukaszewski Z. Recent progress in surface plasmon resonance. // Biosens. 2018. V. 8. DOI: 10.3390/bios8040132.

5. Mie G. Beiträge zur Optik trüber Medien. // Ann. D. Phys. 1908. V. 3. P. 25 - 445.

6. Gans R. Über die Form ultrarmikroskopischer Goldteilchen. // Ann. D. Phys. 1912. V. 37. P. 881 - 900.

7. Zande B.M.L., Böhmer M.R., Fokkink L.G.J., Schönenberger C. Aqueous gold sols of rod-shaped particles. // J. Phys. Chem. B. 1997. V. 101. P. 852 - 854.

8. Link S., MohamedM.B., El-SayedM.A. Simulation of the optical absorption spectra of gold nanorods as a function of their aspect ratio and the effect of the medium dielectric constant. // J. Phys. Chem. B. 1999. V. 103. P. 3073 - 3077.

9. Link S., El-Sayed M.A. Spectral properties and relaxation dynamics of surface plasmon electronic oscillations in gold and silver nanodots and nanorods. // J. Phys. Chem. B. 1999. V. 103. P. 8410 - 8426.

10. Jana N.R., Gearheart L., Murphy C.J. Wet chemical synthesis of high aspect ratio cylindrical gold nanorods. // J. Phys. Chem. B. 2001. V. 105. P. 4065 - 4067.

11. Zhao P., Li N., Astruc D. State of the art in gold nanoparticle synthesis. // Coord. Chem. Rev. 2013. V. 257. P. 638 - 665.

12. Li W., Xu J., Zhou Q., Wang S., Feng Z., Hu D., Li X., Cao Y. Bidirectional plasmonic coloration with gold nanoparticles by wavelength-switched photoredox reaction. // Nanoscale. 2018. V. 10. P. 21910 - 21917.

13. Tréguer-DelapierreM., Majimel J., MornetS., DuguetE., Ravaine S. Synthesis of non-spherical gold nanoparticles. // Gold Bull. 2008. V. 41. No. 2. P. 195 - 207.

14. Alekseeva A.V., Bogatyrev V.A., Dykman L.A., Khlebtsov B.N., Trachuk L.A., Melnikov A.G., Khlebtsov N.G. Preparation and optical scattering characterization of gold

nanorods and their application to a dot-immunogold assay. // Appl. Opt. 2005. V. 44. No. 29. P. 6285 - 6295.

15. Brioude A., Jiang X.C., Pileni M.P. Optical properties of gold nanorods: DDA simulations supported by experiments. // J. Phys. Chem. B. 2005. V. 109. P. 13138 - 13142.

16. Liu M., Guyot-Sionnest P. Synthesis and optical characterization of Au/Ag core/shell nanorods. // J. Phys. Chem. B. 2004. V. 108. P. 5882 - 5888.

17. Foss C.A., Hornyak G.L., Stockert J.A., Martin C.R. Template-synthesized nanoscopic gold particles: optical spectra and the effects of particle size and shape. // J. Phys. Chem. 1994. V. 98. P. 2963 - 2971.

18. Martin C.R. Nanomaterials: a membrane-based synthetic approach. // Science. 1994. V. 266. P. 1961 - 1966.

19. Martin C.R. Membrane-based synthesis of nanomaterials. // Chem. Mater. 1996. V. 8. P. 1739 - 1746.

20. Chen W., Cai W., ZhangL., Wang G., Zhang L. Sonochemical processes and formation of gold nanoparticles within pores of mesoporous silica. // J. Colloid Interface Sci. 2001. V. 238. P. 291 - 295.

21. Zande B.M.L., BöhmerM.R., FokkinkL.G.J., Schönenberger C. Colloidal dispersions of gold rods: synthesis and optical properties. // Langmuir. 2000. V. 16. P. 451 - 458.

22. Cepak V.M., Martin C.R. Preparation and stability of template-synthesized metal nanorod sols in organic solvents. // J. Phys. Chem. B. 1998. V. 102. P. 9985 - 9990.

23. Hulteen J.C., Martin C.R. A general template-based method for the preparation of nanomaterials. // J. Mater. Chem. 1997. V. 7. P. 1075 - 1087.

24. Jirage K.B., Hulteen J.C., Martin C.R. Nanotubule-based molecular-filtration membranes. // Science. 1997. V. 278. P. 655 - 658.

25. Chang S.-S., Shih C.-W., Chen C.-D., Lai W.-C., Wang C.R.C. The shape transition of gold nanorods. // Langmuir. 1999. V. 15. P. 701 - 709.

26. Yu Y.-Y., Chang S.-S., Lee C.-L., Wang C.R.C. Gold nanorods: electrochemical synthesis and optical properties. // J. Phys. Chem. B. 1997. V. 101. No. 34. P. 6661 - 6664.

27. Reetz M.T., Helbig W. Size-selective synthesis of nanostructured transition metal clusters. // J. Am. Chem. Soc. 1994. V. 116. P. 1401 - 1402.

28. Busbee B.D., Obare S.O., Murphy C.J. An improved synthesis of high-aspect-ratio gold nanorods. // Adv. Mater. 2003. V. 15. No. 5. P. 414 - 416.

29. Gao J., Bender C.M., Murphy C.J. Dependence of the gold nanorod aspect ratio on the nature of the directing surfactant in aqueous solution. // Langmuir. 2003. V. 19. P. 9065 - 9070.

30. Johnson C.J., Dujardin E., Davis S.A., Murphy C.J., Mann S. Growth and form of gold nanorods prepared by seed-mediated, surfactant-directed synthesis. // J. Mater. Chem. 2002. V. 12. P. 1765 - 1770.

31. Nikoobakht B., El-Sayed M.A. Preparation and growth mechanism of gold nanorods (NRs) using seed-mediated growth method. // Chem. Mater. 2003. V. 15. P. 1957 - 1962.

32. Pérez-Juste J., Liz-Marzán L., Carnie S., Chan D.Y.C., Mulvaney P. Electric-field-directed growth of gold nanorods in aqueous surfactant solutions. // Adv. Funct. Mater. 2004. V. 14. No. 6. P. 571 - 579.

33. KangS.K., Chah S., Yun C.Y., Yi J. Aspect ratio controlled synthesis of gold nanorods. // Korean J. Chem. Eng. 2003. V. 20. No. 6. P. 1145 - 1148.

34. Grzelczak M., Pérez-Juste J., Mulvaney P., Liz-Marzán L. Shape control in gold nanoparticle synthesis. // Chem. Soc. Rev. 2008. V. 37. P. 1783 - 1791.

35. Orendorff C.J., Murphy C.J. Quantitation of metal content in the silver-assisted growth of gold nanorods. // J. Phys. Chem. B. 2006. V. 110. P. 3990 - 3994.

36. Liu M., Guyot-Sionnest P. Mechanism of silver(I)-assisted growth of gold nanorods and bipyramids. // J. Phys. Chem. B. 2005. V. 109. P. 22192 - 22200.

37. Burrows N.D., Harvey S., Idesis F.A., Murphy C.J. Understanding the seed-mediated growth of gold nanorods through a fractional factorial design of experiments. // Langmuir. 2017. V. 33. P. 1891 - 1907.

38. Nehl C.L., Liao H., Hafner J.H. Optical properties of star-shaped gold nanoparticles. // Nano Lett. 2006. V. 6. No. 4. P. 683 - 688.

39. Ah C.S., Hong S.D., Jang D-J. Preparation of AucoreAgshell nanorods and characterization of their surface plasmon resonances. // J. Phys. Chem. B. 2001. V. 105. No. 33. P. 7871 - 7873.

40. Liu J.-M., Wang X.-X., Cui M.-L., Lin L.-P., Jiang S.-L., Jiao L., Zhang L.-H. A promising non-aggregation colorimetric sensor of AuNRs-Ag+ for determination of dopamine. // Sens. Actuat. B-Chem. 2013. V. 176. P. 97 - 102.

41. Becker J., Zins I., Jakab A., Khalavka Y., Schubert O., Sonnichsen C. Plasmonic focusing reduces ensemble linewidth of silver-coated gold nanorods. // Nano Lett. 2008. V. 8. No. 6. P. 1719 - 1723.

42. Chen H.M., Peng H.-C., Liu R.-S., Asakura K., Lee C.-L., Lee J.-F., Hu S.-F. Controlling the length and shape of gold nanorods. // J. Phys. Chem. B. 2005. V. 109. No. 42. P. 19553 - 19555.

43. Huang C.-C., Yang Z., Chang H.-T. Synthesis of dumbbell-shaped Au-Ag core-shell nanorods by seed-mediated growth under alkaline conditions. // Langmuir. 2004. V. 20. P. 6089 - 6092.

44. Xu S., Dong X., Chen S., Zhao Y., Shan G., Sun Y., Chen Y., Liu Y. The preparation of high-index facet Au/Cu NRs and their application for colorimetric determination ascorbic acid. // Sens. Actuat. B-Chem. 2019. V. 281. P. 375 - 382.

45. Ahmed W., BhattiA. S., Ruitenbeek J. M. Efficient seed-mediated method for the large-scale synthesis of Au nanorods. // J. Nanopart. Res. 2017. V. 19. No. 3. DOI: 10.1007/s11051-017-3815-9.

46. Chang H.-H., Murphy C. J. Mini gold nanorods with tunable plasmonic peaks beyond 1000 nm. // Chem. Mater. 2018. V. 30. No. 4. P. 1427 - 1435.

47. Huang H, Li H, Wang H., Li J., Li P., Chen Q., Chen Y., Chu P.K., Li B., Yu X.-F. Morphological control of gold nanorods via thermally driven bisurfactant growth and application for detection of heavy metal ions. // Nanotechnology. 2018. V. 29. No. 33. DOI: 10.1088/1361-6528/aac6b2.

48. Li M., Lu S., Liu D., Yang Y., Yang P. Effect of pH on Au nanorods in Ag ion-assisted seed-mediated growth. // J. Nanosci. Nanotechnol. 2017. V. 17. P. 1225 - 1232.

49. Leng Y., YinX., Hu F., Zou Y., XingX., Li B., Guo Y., Ye L., Lu Z. High-yield synthesis and fine-tuning aspect ratio of (200) faceted gold nanorods by the pH-adjusting method. // RSC Adv. 2017. V. 7. P. 25469 - 25474.

50. Sanchooli A., Karimipour M., Molaei M. Room temperature synthesis of AuNR@Ag2S and AuNR@Ag2S/CdS core-shells using a facile photochemical approach. // Physica E. 2009. V. 109. P. 133 - 139.

51. WilliamsM.G., Boyne D.A., GriepM.H. Rapid synthesis of high purity gold nanorods via microwave irradiation. // Mater. Res. Express. 2017. V. 4. DOI: 10.1088/2053-1591/aa66de.

52. Li J.-J., Li T., Zhu J., Zhao J.-W. Reversible tuning the aspect ratio and plasmonic shift of gold nanorods in alkaline environment: growth, etching and rebuilding. // Plasmonics. 2018. V. 13. No. 4. P. 1433 - 1439.

53. Leontidis E., Kleitou K., Kyprianidou-Leodidou T., Bekiari V., Lianos P. Gold colloids from cationic surfactant solutions. 1. Mechanisms that control particle morphology. // Langmuir. 2002. V. 18. P. 3659 - 3668.

54. Allen J.M., Xu J., Blahove M., Canonico-May S.A., Santaloci T.J., Braselton M.E., Blahove M., Stone J.W. Synthesis of less toxic gold nanorods by using dodecylethyldimethylammonium bromide as an alternative growth-directing surfactant. // J. Colloid. Interf. Sci. 2017. V. 505. P. 1172 - 1176.

55. Zhou J., Gu Y., Deng Z., Miao L., Su H., Wang P. Shi J. The dispersion of Au nanorods decorated on graphene oxide nanosheets for solar steam generation. // Sustainable Materials and Technologies. 2019. V. 19. DOI: 10.1016/j.susmat.2018.e00090.

56. Alekseeva A.V., Bogatyrev V.A., Khlebtsov B.N., Mel'nikov A.G., Dykman L.A., KhlebtsovN.G. Gold nanorods: synthesis and optical properties. // Colloid J. 2006. V. 68. No. 6. P. 661 - 678.

57. Cheng X., Huang Y., Yuan C., Dai K., Jiang H., Ma J. Colorimetric detection of a-glucosidase activity based on the etching of gold nanorods and its application to screen anti-diabetic drugs. // Sens. Actuat. B-Chem. 2019. V. 282. P. 838 - 843.

58. Li T., Bi J., Ren H., Ling R., Zhang C., Wu Z., Qin W., Jiao P. A gold nanorod-based plasmonic platform for multi-logic operation and detection. // Nanotechnology. 2018. V. 30. No. 5. DOI: 10.1088/1361-6528/aaf043.

59. Nunes A.M., Silva K.R.M., Calado C.M.S., Saraiva K.L.A., Figueiredo R.C.B.Q., LeiteA.C.R., Meneghetti M.R. Evaluation of gold nanorods toxicity on isolated mitochondria. // Toxicology. 2019. V. 413. P. 24 - 32.

60. Wang C., Jiang T., Zhao K., Deng A., Li J. A novel electrochemiluminescent immunoassay for diclofenac using conductive polymer functionalized graphene oxide as labels and gold nanorods as signal enhancers. // Talanta. 2019. V. 193. P. 184 - 191.

61. Khanal B.P., Zubarev E.R. Gram scale synthesis of isolated monodisperse gold nanorods. // Chem.-Eur. J. 2019. V. 25. No. 6. P. 1595 - 1600.

62. Li P., Wu Y., Li D., Su X., Luo C, Wang Y., Hu J., Li G., Jiang H, Zhang W. Seed-mediated synthesis of tunable-aspect-ratio gold nanorods for near-infrared photoacoustic imaging. // Nanoscale Res. Lett. 2018. V. 13. DOI: 10.1186/s11671-018-2734-8.

63. Xu Y., Chen L., Ye X., Wang X., Yu J., Zhao Y., Cao M., Xia Z., Sun B., Zhang Q. Cooperative interactions among CTA+, Br- and Ag+ during seeded growth of gold nanorods. // Nano. Res. 2017. V. 10. No. 6. P. 2146 - 2155.

64. Kim F, Song J.H., Yang P. Photochemical synthesis of gold nanorods. // J. Am. Chem. Soc. 2002. V. 124. P. 14316 - 14317.

65. Zijlstra P., Bullen C., Chon J.W.M., Gu M. High-temperature seedless synthesis of gold nanorods. // J. Phys. Chem. B. 2006. V. 110. P. 19315 - 19318.

66. Li M., Wei L., ZhangX., Yu X. High temperature seedless synthesis of Au NRs using BDAC/CTAB co-surfactant. // Chinese J. Chem. Phys. 2018. V. 21. No. 5. P. 467 - 480.

67. Kaur P., Chudasama B. Seedless co-surfactant-based dimensional and optical tunability of gold nanorods with simultaneous pH regulation. // J. Mater. Sci. 2017. V. 52. P.11675 - 11687.

68. Roach L., Ye S., Moorcroft S.C.T., Critchley K., Coletta P.L., Evans S.D. Morphological control of seedlessly-synthesized gold nanorods using binary surfactants. // Nanotechnology. 2018. V. 29. P. 359501.

69. Li M., Qian L., Han C. Seedless synthesis of gold nanorods with longitudinal surface plasmon resonance wavelength of 1200 nm. // Spectrosc. Lett. 2017. V. 50. No. 10. P. 585 - 590.

70. Requejo K.I., Liopo A.V., Zubarev E.R. Synthesis of gold nanorods using poly(vinylpyrrolidone) of different molecular weights as an additive. // ChemistrySelect. 2018. V. 3. P. 12192 - 12197.

71. Requejo K.I., Liopo A.V., Derry P.J., Zubarev E.R. Accelerating gold nanorods synthesis with nanomolar concentrations of poly(vinylpyrrolidone). // Langmuir. 2017. V. 33. No. 44. P. 12681 - 12688.

72. Li J., Wang W., Zhang X., Yao H., Wei Z., Li X., Mu X., Jiang J., Zhang H. Seedless preparation of Au nanorods by hydroquinone assistant and red blood cell membrane camouflage. // RSC Adv. 2018. V. 8. P. 21316 - 21325.

73. Liu K., Bu Y., Zheng Y., Jiang X., Yu A., Wang H. Seedless synthesis of monodispersed gold nanorods with remarkably high yield: synergistic effect of template modification and growth kinetics regulation. // Chem. Eur. J. 2017. V. 23. P. 3291 - 3299.

74. Wang W., Li J., Lan S., RongL., Liu Y., Sheng Y., ZhangH., YangB. Seedless synthesis of gold nanorods using resveratrol as a reductant. // Nanotechnology. 2016. V. 27. DOI: 10.1088/0957-4484/27/16/165601.

75. Li J., Yao H., Wei Z., Li X., Mu X., Wu L., Liu Y., Jiang J. Seedless synthesis of gold nanorods with (+)-catechin-assisted and red blood cell membranes coating as a biomimetic photothermal agents. // Mater. Technol. 2018. DOI: 10.1080/10667857.2018.1515285.

76. Liopo A., WangS., Derry P.J., OraevskyA.A., ZubarevE.R. Seedless synthesis of gold nanorods using dopamine as a reducing agent. // RSC Adv. 2015. DOI: 10.1039/C5RA19817H.

77. Xu X., Zhao Y., Xue X., Huo S., Chen F., Zou G., LiangX.-J. Seedless synthesis of high aspect ratio gold nanorods with high yield. // J. Mater. Chem. A. 2013. DOI: 10.1039/C3TA13905K.

78. Biswal J., Ramnani S.P. Seedless synthesis of gold nanorods employing isopropyl radicals generated using gamma radiolysis technique. // Int. J. Nanotechnol. 2010. V. 7. P. 907 - 918.

79. Shafeev G.A., Rakov 1.1., Ayyyzhy K.O., Mikhailova G.N., Troitskii A. V., Uvarov O.V. Generation of Au nanorods by laser ablation in liquid and their further elongation in external magnetic field. // Appl. Surf. Sci. 2019. V. 466. P. 477 - 482.

80. Niidome Y., Nishioka K., Kawasaki H., Yamada S. Rapid synthesis of gold nanorods by the combination of chemical reduction and photoirradiation processes; morphological changes depending on the growing processes. // Chem. Commun. 2003. P. 2376 - 2377.

81. Taub N., Krichevski O., Markovich G. Growth of gold nanorods on surfaces. // J. Phys. Chem. B. 2003. V. 107. P. 11579 - 11582.

82. Wei Z., Mieszawska A.J., Zamborini F.P. Synthesis and manipulation of high aspect ratio gold nanorods grown directly on surfaces. // Langmuir. 2004. V. 20. P. 4322 - 4326.

83. Wei Z., Zamborini F.P. Directly monitoring the growth of gold nanoparticle seeds into gold nanorods. // Langmuir. 2004. V. 20. P. 11301 - 11304.

84. Cao J.-T., Yang J.-J., Zhao L.-Z., Wang Y.-L., WangH., Liu Y.-M., MaS.-H. Graphene oxide@gold nanorods-based multiple-assisted electrochemiluminescence signal amplification strategy for sensitive detection of prostate specific antigen. // Biosens. Bioelectron. V. 99. P. 92 - 98.

85. Vinoth V., D'Rozario T.M., Wu J.J., Anandan S., AshokkumarM. Graphene quantum dots anchored gold nanorods for electrochemical detection of glutathione. // ChemistrySelect. 2017. V. 2. No. 17. P. 4744 - 4752.

86. Zhao Y., Qin J., Xu H., Gao S., Jiang T., Zhang S., Jin J. Gold nanorods decorated with graphene oxide and multi-walled carbon nanotubes for trace level voltammetric determination of ascorbic acid. // Microchim. Acta. 2019. V. 186. No. 1. DOI: 10.1007/s00604-018-3138-2.

87. Vianna P.G., Grasseschi D., Domingues S.H., de Matos C.J.S. Real-time optofluidic surface-enhanced Raman spectroscopy based on a graphene oxide/gold nanorod nanocomposite. // Opt. Express. 2018. V. 26. No. 18. P. 22698 - 22708.

88. Truppi A., Luna M., Petronella F., Falcicchio A., Giannini C., Comparelli R., Mosquera M.J. Photocatalytic activity of TiO2/AuNRs-SiO2 nanocomposites applied to building materials. // Coatings. 2018. V. 8. No. 9. DOI: 10.3390/coatings8090296.

89. Wang Z., Zong S., Yang J., Li J., Cui Y. Dual-mode probe based on mesoporous silica coated gold nanorods for targeting cancer cells. // Biosens. Bioelectron. 2011. V. 26. P. 2883 - 2889.

90. Duan Y., Wang J., Gao F., Wang J., Li Y., WangX., Nie G. Mesoporous silica-coating of gold nanorods by a templated method. // Ceram. Int. 2014. V. 40. P. 15083 - 15088.

91. Li N., Niu D., Jia X., He J., Jiang Y., Gu J., Li Z., Xua S., Li Y. Multiple gold nanorods@hierarchically porous silica nanospheres for efficient multi-drug delivery and photothermal therapy. // J. Mater. Chem. B. 2017. V. 5. P. 1642 - 1649.

92. Lamarre J-M., Billard F., Kerboua C.H., Lequime M., Roorda S., Martinu L. Anisotropic nonlinear optical absorption of gold nanorods in a silica matrix. // Opt. Commun. 2008. V. 281. P. 331 - 340.

93. Zhang N., Xu X., Zhang X., Qu D., Xue L., Mo R., Zhang C. Nanocomposite hydrogel incorporating gold nanorods and paclitaxel-loaded chitosan micelles for combination photothermal-chemotherapy. // Int. J. Pharm. 2016. V. 497. P. 210 - 221.

94. Wang Y., Wang L., Yan M., Cai A., Dong S., Hao J. Plasmonic microgels of Au nanorods: Self-assembly and applications in chemophotothermo-synergistic cancer therapy. // J. Colloid Interf. Sci. 2019. V. 536. P. 728 - 736.

95. Fallah 1ri Sofla S., AbbasianM., MirzaeiM. A novel gold nanorods-based pH-sensitive thiolended triblock copolymer for chemo-photothermo therapy of cancer cells. // J. Biomat. Sci.-Polym. E. 2019. V. 30. No. 1. P. 12 - 33.

96. Ferhan A.R., Huang Y., Dandapat A., Kim D.-H. Surface-floating gold nanorod superaggregates with macroscopic uniformity. // Nano Res. 2018. V. 11. No. 5. P. 2379 - 2391.

97. Yao Y., Hoang P.T., Liu T. Laser stimulated shape memory polymer with inclusion of gold nanorod - effect of aspect ratio and critical role of on-resonance irradiation. // J. Mater. Sci. Technol. 2017. V. 33. No. 8. P. 869 - 873.

98. ZhangC.-L, Cao F.-H, Wang J.-L., Yu Z.-L, Ge J., Lu Y., WangZ.-H., Yu S.-H. A highly stimuli-responsive Au nanorods/poly(nisopropylacrylamide) (PNIPAM) composite hydrogel for smart switch. // ACS Appl. Mater. Inter. 2017. V. 9. No. 29. P. 24857 - 24863.

99. Abdelrasoul G.N., Pignatelli F., Liakos 1., Cingolani R., Athanassiou A. Plasmonic polyaniline/gold nanorods hybrid composites for selective NIR photodetection: synthesis and characterization. // Compos. Part B-Eng. 2018. V. 149. P. 178 - 187.

100. Yang N., You T.-T., Gao Y.-K., Zhang C.-M., Yin P.-G. Rapid fabrication of flexible and transparent gold nanorods/poly(methylmethacrylate) membrane substrate for SERS nanosensor application. // Spectrochim. Acta A. 2018. V. 202. P. 376 - 381.

101. Boyne D.A., Savage A.M., Griep M.H., Beyer F.L., Orlicki J.A. Process induced alignment of gold nanorods (GNRs) in thermoplastic polymer composites with tailored optical properties. // Polymer. 2017. V. 110. P. 250 - 259.

102. Wang J., Zhu C., Han J., Han N., Xi J., Fan L., Guo R. Controllable synthesis of gold nanorod/conducting polymer core/shell hybrids towards in vitro and in vivo near-infrared photothermal therapy. // ACS Appl. Mater. Inter. 2018. V. 10. No. 15. P. 12323 - 12330.

103. Mochizuki C., Shinmori H. Light-triggered assembly of gold nanorods based on photoisomerization of spiropyrans. // Chem. Lett. 2017. V. 46. No. 4. P. 469 - 472.

104. Garavand A., Tehrani A.D. New organic-inorganic hybrid material based on functional cellulosenanowhisker, polypseudorotaxane and Au nanorods. // Carbohydr. Polym. 2016. V. 152. P. 196 - 206.

105. Son L., Zhou X., Dai X., Wang R., Cheng G., Zhao N., Xu F.-J. Self-destructible polysaccharide nanocomposites with unlockable Au nanorods for high-performance photothermal therapy. // NPG Asia Mater. 2018. V. 10. P. 509 - 521.

106. Chuang C.-C., Cheng C.-C., Chen P.-Y., Lo C., Chen Y.-N. ShihM.-H., Chang C.-W. Gold nanorod-encapsulated biodegradable polymeric matrix for combined photothermal and chemo-cancer therapy. // Int. J. Nanomed. 2019. V. 14. P. 181 - 193.

107. Lang Q., Han L., Hou C., Wang F., Liu A. A sensitive acetylcholinesterase biosensor based on gold nanorods modified electrode for detection of organophosphate pesticide. // Talanta. 2016. V. 156 - 157. P. 34 - 41.

108. Arvand M., Dehsaraei M.Amperometric determination of diazinon by gold nanorods/ds-DNA/graphene oxide sandwich-modified electrode. // Ionics. 2018. V. 24. No. 8. P. 2445 - 2454.

109. Roushani M., Ghanbari K. A novel aptasensor based on gold nanorods/ZnS QDs-modified electrode for evaluation of streptomycin antibiotic. // Anal. Methods-UK. 2018. V. 10. No. 43. P. 5197 - 5204.

110. Zhang Y., Chen M., Li H., Yan F., Pang P., WangH., Wu Z., Yang W. A molybdenum disulfide/gold nanorod composite-based electrochemical immunosensor for sensitive and quantitative detection of Microcystin-LR in environmental samples. // Sens. Actuat. B-Chem. 2017. V. 244. P. 606 - 615.

111. Liu W., Wu X., Li X. Gold nanorods on three-dimensional nickel foam: a non-enzymatic glucose sensor with enhanced electro-catalytic performance. // RSC Adv. 2017. V. 7. No. 58. P. 36744 - 36749.

112. Tao G.Q., Wang J. Gold nanorod@nanoparticle seed-SERSnanotags/graphene oxide plasmonic superstructured nanocomposities as an "on-off" SERS aptasensor. // Carbon. 2018. V. 133. P. 209 - 217.

113. Wang H., Lim J.W., Quan L.N., Chung K., Jang Y.J., Ma Y., Kim D.H. Perovskite-gold nanorod hybrid photodetector with high responsivity and low driving voltage. // Adv. Opt. Mater. 2018. V. 6. No. 13. DOI: 10.1002/adom.201701397.

114. She P., Xu K., Shang Y., He Q., Zeng S., Yin S., Lu G., Liang S., Sun H., Liu Z. ZnO nanodisks decorated with Au nanorods for enhanced photocurrent generation and photocatalytic activity. // New J. Chem. 2018. V. 42. No. 5. P. 3315 - 3321.

115. Truppi A., Petronella F., Placido T., Margiotta V., Lasorella G., Giotta L., Giannini C., Sibillano T., Murgolo S., Mascolo G., Agostiano A., Curri M.L., Comparelli R. Gram-scale synthesis of UV-vis light active plasmonic photocatalytic

nanocomposite based on TiO2/Au nanorods for degradation of pollutants in water. // Appl. Catal. B-Environ. 2019. V. 243. P. 604 - 613.

116. Govindasamy M., Manavalan S., Chen S.-M., Rajaji U., Chen T.-W., Al-HemaidF.M.A., Ali M.A., Elshikh M.S. Determination of neurotransmitter in biological and drug samples using gold nanorods decorated f-MWCNTs modified electrode. // J. Electrochem. Soc. 2018. V. 165. No. 9. P. B370 - B377.

117. Sun B., Wu J., Cui S., Zhu H, An W., Fu Q., Shao C, Yao A., Chen B., Shi D. In situ synthesis of graphene oxide/gold nanorods theranostic hybrids for efficient tumor computed tomography imaging and photothermal therapy. // Nano Res. 2017. V. 10. No. 1. P. 37 - 48.

118. Lee D., Jeong S. H., Kang E. Nanodiamond/gold nanorod nanocomposites with tunable light-absorptive and local plasmonic properties. // J. Ind. Eng. Chem. 2018. V. 65. P. 205 - 212.

119. Li Y., Li Z., Ye W., Zhao S., Yang Q., Ma S., Xiao G., Liu G., Wang Y., Yue Z. // Gold nanorods and graphene oxide enhanced BSA-AgInS2 quantum dot-based photoelectrochemical sensors for detection of dopamine. // Electrochim. Acta. 2019. V. 295. P. 1006 - 1016.

120. Srivastava M., Nirala N.R., Srivastava S.K., Prakash R. A comparative study of aptasensor vs immunosensor for label-free PSA cancer detection on GQDsAuNRs modified screen-printed electrodes. // Sci. Rep.-UK. 2018. V. 8. DOI: 10.1038/s41598-018-19733-z.

121. Cho S.K., Su L.-J., Mao C, Wolenski C.D., Flaig T.W., Park W. Multifunctional nanoclusters of NaYF4:Yb3+,Er3+ upconversion nanoparticle and gold nanorod for simultaneous imaging and targeted chemotherapy of bladder cancer. // Mat. Sci. Eng. C-Mater. 2019. V. 97. P. 784 - 792.

122. Qin L., Yan P., Xie C., Huang J., Ren Z., Li X., Best S., Cai X., Hana G. Gold nanorods-assembled ZnGa2O4:Cr nanofibers for LED-amplified gene silencing in cancer cells. // Nanoscale. 2018. V. 10. No. 28. P. 13432 - 13442.

123. Liu J., Jiao L., Lin L., CuiM., WangX., ZhangL., ZhengZ., JiangS. Non-aggregation based label free colorimetric sensor for the detection of Cu2+ based on catalyzing etching of gold nanorods by dissolve oxygen. // Talanta. 2013. V. 117. P. 425 - 430.

124. Chen S., Zhao Q., Zhang L., Wang L., Zeng Y., Huang H. Successive detection of glucose and bio-copper in human serum based on a multiplex biosensor of gold nanorods. // Analytical Methods. 2015. V. 7. P. 1018 - 1025.

125. Lu S., Zhang X., Chen L., Yang P. Colorimetric determination of ferrous ion via morphology transition of gold nanorods. // Microchim. Acta. 2018. V. 185. No. 1. DOI: 10.1007/s00604-017-2602-8.

126. Liu J.-M., Wang X.-X., Jiao L., Cui M.-L., Lin L.-P., Zhang L.-H., Jiang S.-L. Ultrasensitive non-aggregation colorimetric sensor for detection of iron based on the signal amplification effect of Fe3+ catalyzing H2O2 oxidize gold nanorods. // Talanta. 2013. V. 116. P. 199 - 204.

127. Alex S.A., Chandrasekaran N., Mukherjee A. Using gold nanorod-based colorimetric sensor for determining chromium in biological samples. // J. Mol. Liq. 2018. V. 264. P. 119 - 126.

128. Liu J., Jiao L., Cui M., Lin L., WangX., Zheng Z., ZhangL., Jiang S. A highly sensitive non-aggregation colorimetric sensor for the determination of I- based on its catalytic effect on Fe3+ etching gold nanorods. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2013. V. 188. P. 644 - 650.

129. Zhang Z., Chen Z., Cheng F., Zhang Y., Chen L. Iodine-mediated etching of gold nanorods for plasmonic sensing of dissolved oxygen and salt iodine. // Analyst. 2016. V. 141. P. 2955 - 2961.

130. Lee S, Nam Y., Choi S. Lee Y., Lee K. Highly sensitive photometric determination of cyanide based on selective etching of gold nanorods. // Microchim. Acta. 2016. V. 183. P. 3035 - 3041.

131. Ma Y., Zhu Y., Liu B., Quan G., Cui L. Colorimetric determination of hypochlorite based on the oxidative leaching of gold nanorods. // Materials. 2018. V. 11. No. 9. DOI: 10.3390/ma11091629.

132. Wang X., Dong L., Li J., Shan G., Chen Y., Liu Y. A glucose biosensor based on detecting longitudinal surface plasmon resonance of gold nanorods. // J. Nanosci. Nanotechnol. 2016. V. 16. P. 6925 - 6929.

133. Zhong Q., Chen Y., Qin X., Wang Y., Yuan C., Xu Y. Colorimetric enzymatic determination of glucose based on etching of gold nanorods by iodine and using carbon quantum dots as peroxidase mimics. // Microchim. Acta. 2019. V. 186. No. 3. DOI: 10.1007/s00604-019-3291-2.

134. Lin Y., Zhao M., Guo Y., Ma X., Luo F., Guo L., Qiu B., Chen G., Lin Z. Multicolor colorimetric biosensor for the determination of glucose based on the etching of gold nanorods. // Scientific reports. 2016. V. 6. P. 37879.

135. Yu X., Lin Y., WangX., Xu L., Wang Z., Fu F.F. // Exonuclease-assisted multicolor aptasensor for visual detection of ochratoxin A based on G-quadruplex-hemin DNAzyme-mediated etching of gold nanorod. // Microchim. Acta. 2018. V. 185. No. 5. DOI: 10.1007/s00604-018-2811-9.

136. Zhang Z., Chen Z., Wang S., Cheng F., Chen L. Iodine-mediated etching of gold nanorods for plasmonic ELISA based on colorimetric detection of alkaline phosphatase. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2015. V. 7. P. 27639 - 27645.

137. Jayabal S., Sathiyamurthi R., Ramaraj R. Selective sensing of Hg2+ ions by optical and colorimetric methods using gold nanorods embedded in a functionalized silicate solgel matrix. // J. Mater. Chem. A. 2014. V. 2. P. 8918 - 8925.

138. Bi N., Chen Y., Qi H., Zheng X., Chen Y., Liao X., Zhang H., Tian Y. A sensitive localized surface plasmon resonance sensor for determining mercury(II) ion using noble metal nanoparticles as probe. // Spectrochim. Acta A. 2012. V. 95. P. 276 - 281.

139. Martín-Alonso M., Pena-Pereira F., Lavilla I., Bendicho C. Gold nanorods for indrop colorimetric determination of thiomersal after photochemical decomposition. // Microchim. Acta. 2018. V. 185. No. 4. DOI: 10.1007/s00604-018-2760-3.

140. Chen S., Zhao Q., Zhang L., Wang L., Zeng Y., Huang H. Combined detection of breast cancer biomarkers based on plasmonic sensor of gold nanorods. // Sens. Actuat. B-Chem. 2015. V. 221. P. 1391 - 1397.

141. Zhang Z., Chena Z., Cheng F., Zhang Y., Chen L. Highly sensitive on-site detection of glucose in human urine with naked eye based on enzymatic-like reaction mediated etching of gold nanorods. // Biosens. Bioelectron. 2017. V. 82. P. 932 - 936.

142. Fahimi-Kashani N., Shadabipour P., Hormozi-Nezhad R. Colorimetric detection of glutathione based on transverse overgrowth of high aspect ratio gold nanorods investigated by MCR-ALS. // RSC Adv. 2015. V. 5. P. 82906 - 82915.

143. Wang X., Liu J. Jiang S., Jiao L., Lin L., Cui M., Zhang X., Zhang L., Zheng Z. Non-aggregation colorimetric sensor for detecting vitamin C based on surface plasmon resonance of gold nanorods. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2013. V. 182. P. 205 - 210.

144. Wang Y., Zeng Y., Fu W., Zhang P., Li L., Ye C., Yu L., Zhu X., Zhao S. Seed-mediated growth of Au@Ag core-shell nanorods for the detection of ellagic acid in whitening cosmetics. // Anal. Chim. Acta. 2018. V. 1002. P. 97 - 104.

145. Lin J., Huang Y., Liu Z., Lin C., Ma X., Liu J. Design of an ultra-sensitive gold nanorod colorimetric sensor and its application based on formaldehyde reducing Ag. // RSC Adv. 2015. V. 5. P. 99944 - 99950.

146. Chen L., Lu L., Wang S., Xia Y. Valence states modulation strategy for picomole level assay of Hg2+ in drinking and environmental water by directional self-assembly of gold nanorods. // ACS Sensor. 2017. V. 2. No. 6. P. 781 - 788.

147. Cai H., Lin D., Wang J., Yang P., Cai J. Controlled side-by-side assembly of gold nanorods: A strategy for lead detection. // Sens. Actuat. B-Chem. 2014. V. 196. P. 252 - 259.

148. Ge K., Liu J., Fang G., Wang P., Zhang D., Wang S. A colorimetric probe based on functionalized gold nanorods for sensitive and selective detection of As(III) ions. // Sensors. 2018. V. 18. No. 7. DOI: 10.3390/s18072372.

149. Teo P.S., Rameshkumar P., Pandikumar A., JiangZ.-T., AltarawnehM., HuangN.M. Colorimetric and visual dopamine assay based on the use of gold nanorods. // Microchim. Acta. 2017. V. 184. No. 10. P. 4125 - 4132.

150. Wang J., Zhang P., Li J.Y., Chen L.Q., Huang C.Z., Li Y.F. Adenosine-aptamer recognition-induced assembly of gold nanorods and a highly sensitive plasmon resonance coupling assay of adenosine in the brain of model SD rat. // Analyst. 2010. V. 135. P. 2826 - 2831.

151. Liao Y., Shiang Y., Chen L., Hsu C., Huang C., Chang H. Detection of adenosine triphosphate through polymerization-induced aggregation of actin-conjugated gold/silver nanorods. // Nanotechnology. 2013. V. 24. No. 44. DOI: 10.1088/09574484/24/44/444003.

152. Shajaria D., Bahari A., Gillc P. Fast and simple detection of bovine serum albumin concentration by studying its interaction with gold nanorods. // Colloid. Surface. A. 2018. V. 543. P. 118 - 125.

153. Wang Y., ZhouX., Xu C., Jin Y., Li B. Gold nanorods as visual sensing platform for chiral recognition with naked eyes. // Sci. Rep.-UK. 2018. V. 8. DOI: 10.1038/s41598-018-23674-y.

154. Miranda-Andrades J.R., Perez-Gramatges A., Pandoli O., Romani E.C., Aucelio R.Q., da Silva A.R. Spherical gold nanoparticles and gold nanorods for the determination of gentamicin. // Spectrochim. Acta, A. 2016. V.172. P. 126 - 134.

155. Bi N., Hu M., Xu J., Jia L. Colorimetric determination of mercury(II) based on the inhibition of the aggregation of gold nanorods coated with 6-mercaptopurine. // Microchim. Acta. 2017. V. 184. P. 3961 - 3967.

156. Liang G., Wang L., Zhang H., Han Z., Wu X. A colorimetric probe for the rapid and selective determination of mercury(II) based on the disassembly of gold nanorods. // Microchim. Acta. 2012. V. 179. P. 345 - 350.

157. Bi N., Chen Y., Qi H., Zheng X., Chen Y., Liao X., Zhang H., Tian Y. Spectrophotometry determination of mercury(II) ion using gold nanorod as probe. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2013. V. 166. P. 766 - 771.

158. Huang Y., Lin Y., Chang H. Control of the surface charges of Au-Ag nanorods: selective detection of iron in the presence of poly(sodium 4-styrenesulfonate). // Langmuir. 2007. V. 23. P. 12777 - 12781.

159. Xu X., Liu X., Li Y., Ying Y. A simple and rapid optical biosensor for detection of aflatoxin B1 based on competitive dispersion of gold nanorods. // Biosens. Bioelectron. 2013. V. 47. P. 361 - 367.

160. Xu X., Xu C., Ying Y. Aptasensor for the simple detection of ochratoxin A based on side-by-side assembly of gold nanorods. // RSC Adv. 2016. V. 6. P. 50437 - 50443.

161. Xu C., Lan L., Yao Y., Ping J., Li Y., Ying Y. An unmodified gold nanorods-based DNA colorimetric biosensor with enzyme-free hybridization chain reaction amplification. // Sensor. Actuator. B-Chem. 2018. V. 273. P. 642 - 648.

162. Placido T. Aragay G., Pons J., Comparelli R., Curri M.L., Merkog 1.A. Ion-directed assembly of gold nanorods: a strategy for mercury detection. // ACS Appl. Mater. Interfaces. 2013. V. 5. P. 1084 - 1092.

163. Guan J., Wang Y., Gunasekaran S. Using L-arginine-functionalized gold nanorods for visible detection of mercury(II) ions. // J. Food Sci. 2015. V. 80. P. 828 - 833.

164. Zhang Z., Chen Z., Qu C., Chen L. Highly sensitive visual detection of copper ions based on the shape-dependent LSPR spectroscopy of gold nanorods. // Langmuir. 2014. V. 30. P. 3625 - 3630.

165. Liu Y., Zhao Y., Wang Y., Li C.M. Polyamine-capped gold nanorod as a localized surface plasmon resonance probe for rapid and sensitive copper(II) ion detection. // J. Colloid Interface Sci. 2015. V. 439. P. 7 - 11.

166. Wang X., Chen L., Chen L. Colorimetric determination of copper ions based on the catalytic leaching of silver from the shell of silver-coated gold nanorods. // Microchim. Acta. 2014. V. 181. P. 105 - 110.

167. Xiong Y., Pei K., Wu Y., Duan H., Lai W., Xiong Y. Plasmonic ELISA based on enzyme-assisted etching of Au nanorods for the highly sensitive detection of aflatoxin B1 in corn samples. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2018. V. 267. P. 320 - 327.

168. Liu Y., Lv B., Liu A., Liang G., Yin L., Pu Y., Wei W., Gou S., Liu S. Multicolor sensor for organophosphorus pesticides determination based on the bi-enzyme catalytic etching of gold nanorods. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2018. V. 265. P. 675 - 681.

169. Wu S., Li D., Gao Z., Wang J. Controlled etching of gold nanorods by the Au(III)-CTAB complex, and its application to semi-quantitative visual determination of organophosphorus pesticides. // Microchim. Acta. 2017. V. 184. No. 11. P. 4383 - 4391.

170. Liu J., Jiao L., Zhang L., Zheng Z., Wang X., Lin L., Jiang S. Design of highly sensitive non-aggregation colorimetric sensor and its application based on inhibiting vitamin C reducing Hg2+. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2013. V. 188. P. 613 - 620.

171. Wang J., Wu H., Huang C. Investigations on the amalgamation of gold nanorods by iodine and the detection of tetracycline. // Sci. China Ser. B. 2008. V. 52. P. 188 - 195.

172. He Y., Tian J., Zhang J., Chen S., Jiang Y., Hu K., Zhao Y., Zhao S. DNAzyme self-assembled gold nanorods-based FRET or polarization assay for ultrasensitive and selective detection of copper(II) ion. // Biosens. Bioelectron. 2014. V. 55. P. 285 - 288.

173. Dai S., Wu S., Duan N., Wang Z. A luminescence resonance energy transfer based aptasensor for the mycotoxin ochratoxin A using upconversion nanoparticles and gold nanorods. // Microchim. Acta. 2016. V. 183. P. 1909 - 1916.

174. Liu J.J., Yuan D., Zhang H.Z., Lu Y.D., Wang N., Zou H.Y., Wang J. Rapid detection of heparin by gold nanorods and near-infrared fluorophore ensemble based platform via nanometal surface energy transfer. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2018. V. 274. P. 318 - 323.

175. Kim E.J., Kim E.B., Lee S.W., Cheon S.A., Kim H.-J., Lee J., Lee M.-K., Ko S., Park T.J. An easy and sensitive sandwich assay for detection of Mycobacterium tuberculosis Ag85B antigen using quantum dots and gold nanorods. // Biosens. Bioelectron. 2017. V. 87. P. 150 - 156.

176. Selbes Y.S., Caglayan M.G., Eryilmaz M., Boyaci 1.H., Saglam N., Basaran A.A., Tamer U. Surface-enhanced Raman probe for rapid nanoextraction and detection of erythropoietin in urine. // Anal. Bioanal. Chem. 2016. V. 408. P. 8447 - 8456.

177. Quyen T.T.B., Chang C.-C, Su W.-N, Uen Y.-H, Pan C.-J, Liu J.-Y, Rick J., Lin K.-Y., Hwang B.-J. Self-focusing Au@SiO2 nanorods with rhodamine 6G as highly sensitive SERS substrate for carcinoembryonic antigen detection. // J. Mater. Chem. B. 2014. V. 2. P. 629 - 636.

178. CaglayanM.G., Kasap E., Cetin D., Suludere Z., Tamer U. Fabrication of SERS active gold nanorods using benzalkonium chloride, and their application to an immunoassay for potato virus X. // Microchim. Acta. 2017. V. 184. No. 4. P. 1059 - 1067.

179. Zhu Y., Xu L., Ma W., Xu Z., Kuang H., Wang L., Xu C. A one-step homogeneous plasmonic circular dichroism detection of aqueous mercury ions using nucleic acid functionalized gold nanorods. // Chem. Commun. 2012. V. 48. P. 11889 - 11891.

180. ZhuF., LiX., Li Y., YanM., Liu S. Enantioselective circular dichroism sensing of cysteine and glutathione with gold nanorods. // Anal. Chem. 2015. V. 87. No. 1. P. 357 - 361.

181. Wen G., Liang X, Liang A., Jiang Z. Gold nanorod resonance Rayleigh scattering-energy transfer spectral determination of trace formaldehyde with 4-amino-3-hydrazino-5-mercap- 1,2,4-triazole. // Plasmonics. 2015. V. 10. P. 1081 - 1088.

182. Jayabal S., Ramaraj R. Synthesis of core/shell Au/Ag nanorods embedded in functionalized silicate sol-gel matrix and their applications in electrochemical sensors. // Electrochim. Acta. 2013. V. 88. P. 51 - 58.

183. Zhu W.-L., Zhou Y., Zhang J.-R. Direct electrochemistry and electrocatalysis of myoglobin based on silica-coated gold nanorods/room temperature ionic liquid/silica solgel composite film. // Talanta. 2009. V. 80. P. 224 - 230.

184. WangM.-D., Han Y.-T., LiuX.-X., Nie Z., Deng C.-Y, GuoM.-L., Yao S.-Z. Assembly of layer-by-layer films of superoxide dismutase and gold nanorods: A third generation biosensor for superoxide anion. // Sci. Chin. Chem. 2011. V. 54. No. 8. P. 1284 - 1291.

185. Pang P., Yang Z., Xiao S., Xie J., Zhang Y., Gao Y. Nonenzymatic amperometric determination of hydrogen peroxide by graphene and gold nanorods nanocomposite modified electrode. // J. Electroanal. Chem. 2014. V. 727. P. 27 - 33.

186. YangX., Wang Y., Liu Y., JiangX. A sensitive hydrogen peroxide and glucose biosensor based on gold/silver core-shell nanorods. // Electrochim. Acta. 2013. V. 108. P. 39 - 44.

187. Wang D., Guo L., Huang R., Qiu B., Lin Z., Chen G. Surface enhanced electrochemiluminescence for ultrasensitive detection of Hg2+. // Electrochim. Acta. 2014. V. 150. P. 123 - 128.

188. Chemnasiri W., Hernandez F.E. Gold nanorod-based mercury sensor using functionalized glass substrates. // Sens. Actuat. B-Chem. 2012. V. 173. P. 322 - 328.

189. HeiderE.C., TrieuK., Moore A.F.T., CampigliaA.D. Portable mercury sensor for tap water using surface plasmon resonance of immobilized gold nanorods. // Talanta. 2012. V. 99. P. 180 - 185.

190. Han X., Fang X., Shi A., Wang J., Zhang Y. An electrochemical DNA biosensor based on gold nanorods decorated graphene oxide sheets for sensing platform. // Anal. Biochem. 2013. V. 443. P. 117 - 123.

191. Congur G., Sayar F., Erdem A., Piskin E. Voltammetric and impedimetric DNA detection at single-use graphite electrodes modified with gold nanorods. // Colloids Surf. B. 2013. V. 112. P. 61 - 66.

192. Shi A., Wang J., Han X., Fang X., Xhang Y. A sensitive electrochemical DNA biosensor based on gold nanomaterial and graphene amplified signal. // Sens. Actuat. B-Chem. 2014. V. 100. P. 206 - 212.

193. Huang H., Bai W., Dong C., Guo R., Liu Z. An ultrasensitive electrochemical DNA biosensor based on graphene / Au nanorod / polythionine for human papillomavirus DNA detection. // Biosens. Bioelectron. 2015. V. 68. P. 442 - 446.

194. Li L., Lu H., Deng L. A sensitive NADH and ethanol biosensor based on graphene-Au nanorods nanocomposites. // Talanta. 2013. V. 113. P. 1 - 6.

195. Zhu Y., Qiu D., Yang G., WangM., Zhang Q., Wang P., Ming H., Zhang D., Yu Y., Zou G., Badugu R., Lakowicz J.R. Selective and sensitive detection of miRNA-21 based on gold-nanorod functionalized polydiacetylene microtube waveguide. // Biosens. Bioelectron. 2016. V. 85. P. 198 - 204.

196. Ma L., Ning D., Zhang H., Zheng J. Au@Ag nanorods based electrochemical immunoassay for immunoglobulin G with signal enhancement using carbon nanofibers -polyamidoamine dendrimer nanocomposite. // Biosens. Bioelectron. 2015. V. 68. P. 175 - 180.

197. Zhang H., Song D., Gao S., Zhang H., Zhang J., Sun Y. Enhanced wavelength modulation SPR biosensor based on gold nanorods for immunoglobulin detection. // Talanta. 2013. V. 115. P. 857 - 862.

198. Zhang H., Sun Y., Wang J., Zhang J., Zhang H., Zhou H., Song D. Preparation and application of novel nanocomposites of magnetic-Au nanorod in SPR biosensor. // Biosens. Bioelectron. 2012. V. 34. P. 137 - 143.

199. Zhang J.-J., Liu Y.-G., Jiang L.-P., Zhu J.-J. Synthesis, characterizations of silica-coated gold nanorods and its applications in electroanalysis of hemoglobin. // Electrochem. Comm. 2008. V. 10. P. 355 - 358.

200. Nirala N.R., Abraham S., Kumar V., Pandey S.A., Yadav U., Srivastava M., Srivastava S.K., Singh V.N., Kayastha A.M., Srivastava A., Saxena P.S. Partially reduced graphene oxide-gold nanorods composite based bioelectrode of improved sensing performance. // Talanta. 2015. V. 144. P. 745 - 754.

201. Li Y., Wang F., Huang F., Li Y., Feng S. Direct electrochemistry of glucose oxidase and its biosensing to glucose based on the Chit-MWCNTs-AuNRs modified gold electrode. // J. Electroanal. Chem. 2012. V. 685. P. 86 - 90.

202. Du D., Wang J., Lu D., Dohnalkova A., Lin Y. Multiplexed electrochemical immunoassay of phosphorylated proteins based on enzyme-functionalized gold nanorod labels and electric field-driven acceleration. // Anal. Chem. 2011. V. 83. P. 6580 - 6585.

203. Guo J., Han X., Wang J., Zhao J., Guo Z., Zhang Y. Horseradish peroxidase functionalized gold nanorods as a label for sensitive electrochemical detection of alpha-fetoprotein antigen. // Anal. Biochem. 2015. V. 491. P. 58 - 64.

204. Fateixa S., Pinheiro P.C., Nogueira H.1.S., Trindade T. Composite blends of gold nanorods and poly(t-butylacrylate) beads as new substrates for SERS. // Spectrochim. Acta A. 2013. V. 113. P. 100 - 106.

205. Zhu W., Liu W., Li T., Yue X., Liu T., Zhang W., Yu S., Zhang D., Wang J. Facile green synthesis of graphene-Au nanorod nanoassembly for online extraction and sensitive stripping analysis of methyl parathion. // Electrochim. Acta. 2014. V. 146. P. 419 - 428.

206. Arvand M., Gholizadeh T.M. Gold nanorods-graphene oxide nanocomposite incorporated carbon nanotube paste modified glassy carbon electrode for voltammetric determination of indomethacin. // Sens. Actuat. B-Chem. 2013. V. 186. P. 622 - 632.

207. Vianna P.G., Grasseshi D., Costa G.K.B., Carvalho 1.C.S., Domindues S.H., Fontana J., Matos C.J.S. Graphene oxide/gold nanorod nanocomposite for stable surface-enhanced Raman spectroscopy. // Amer. Chem. Soc. 2016. V. 3. No. 6. P. 1027 - 1035.

208. Southwick S.M., Paige S., Morgan C.A., Bremner J.D., Krystal J.H., Charney D.S. Neurotransmitter alterations in PTSD: catecholamines and serotonin. // Semin. Clin. Neuropsychiatry. 1999. V. 4. P. 242 - 248.

209. MohammedM.K., SeikhM.A., Lee S.H. Spectrofluorometric estimation of norepinephrine using ethylendiamine condensation method. // J. Fluoresc. 2007. V. 17. P. 427 - 436.

210. Secor K.E., Glass T.E. Selective amine recognition: development of a chemosensor for dopamine and norepinephrine. // Org. Lett. 2004. V. 6. No. 21. P. 3728 - 3730.

211. Whiting M.J., Doogue M.P. Advances in biochemical screening for pheochromocytoma using biogenic amines. // Clin. Biochem. Rev. 2009. V. 30. P. 3 - 17.

212. Веселова И.А., СергееваЕ.А., МакедонскаяМ.И., Еремина О.Е., Калмыков С.Н., Шеховцова Т.Н. Методы определения маркеров нейромедиаторного обмена в целях клинической диагностики. // Журн. аналит. химии. 2016. Т. 71. № 12. С. 1235 - 1249.

213. Pussard E., Neveux M., Guigueno N. Reference intervals for urinary catecholamines and metabolites from birth to adulthood. // Clin. Biochem. 2009. V. 42. P. 536 - 539.

214. Кулинский В.И., Колесниченко Л.С. Катехоламины: Биохимия, Фармакология, Физиология, Клиника. // Вопросы медицинской химии. 2002. Т. 48. № 1. С. 44 - 67.

215. Tsunoda M. Recent advances in methods for the analysis of catecholamines and their metabolites. // Anal. Bioanal. Chem. 2006. V. 386. P. 506 - 514.

216. Gardner D.G., ShobackD. Greenspan's Basic & Clinical Endocrinology. 9th edition. McGraw-Hill Education. Medical: New York, 2011. 897 p.

217. Bergquist J., Sciubisz A., Kaczor A., Silberring J. Catecholamines and methods for their identification and quantitation in biological tissues and fluids. // J. Neurosci. Methods. 2002. V. 113. P. 1 - 13.

218. Montaseria H., Khajehsharifi H., Yousefinejad S. UV determination of epinephrine, uric acid, and acetaminophen in pharmaceutical formulations and some human body fluids using multivariate calibration. // Quim. Nova. 2014. V. 37. P. 1404 - 1409.

219. Sorouraddin M.H., Manzoori J.L., Kargarzadeh E., Shabani A.M.H. Spectrophotometry determination of some catecholamine drugs using sodium bismuthate. // J. Pharm. Biomed. Anal. 1998. V. 18. P. 877 - 881.

220. Kothari Y.K., Srinivasulu K. A new spectrophotometry determination of adrenaline with CDTA. // Asian J. Chem. 1989. V. 1. P. 42 - 46.

221. Al-Ameri S.A.H. Spectrophotometry determination of adrenaline in pharmaceutical preparations. // Arab. J. Chem. 2011. V. 9. P. 1000 - 1004.

222. Salem F.B. Spectrophotometry and titrimetric determination of catecholamines. // Talanta. 1987. V. 34. P. 810 - 812.

223. Vieira H.J., Fatibello-Filho O. Flow injection spectrophotometry determination of adrenaline using a solid-phase reactor containing triiodide ions immobilized in an anion-exchange resin. // Eclet. Quim. 2004. V. 29. P. 79 - 84.

224. Berzas Nevado J.J., Lemus Gallego J.M., Buitrago Laguna P. Flow-injection spectrophotometry determination of adrenaline and dopamine with sodium hydroxide. // J. Pharm. Biomed. Anal. 1995. V. 17. P. 571 - 577.

225. Rivas G.A., Ortiz S.L., Calatayud J.M. Simultaneous determination of adrenaline and noradrenaline by first derivative spectrophotometry in a fia assembly. // Anal. Lett. 1996. V. 29. P. 2115 - 2124.

226. Al - Da'amy M.A. FI-Spectrophotometric determination of adrenaline in pharmaceutical formulations via oxidative coupling reaction with tyramine and potassium metaperiodate. // N. J. C. 2008. V. 31. P. 394 - 399.

227. Abdulrahman L.K., Al-Abachi A.M., Al-Qaissy M.H. Flow injection-spectrophotometric determination of some catecholamine drugs in pharmaceutical preparations via oxidative coupling reaction with p-toluidine and sodium periodate. Anal. Chim. Acta. 2005. V. 538. P. 331 - 335.

228. Al-Abachi M.Q., Al-Da'amy M.A. FI-Spectrophotometric determination of catechol amine drugs in pharmaceutical preparations via oxidative coupling reaction with 4-amino antipyrine and sodium hydroxide. // N. J. C. 2005. V. 19. P. 352 - 365.

229. Ghosh N.C., Deb C., Banerjee S. Colorimetric determination of epinephrine in blood and adrenal gland. // J. Biol. Chem. 1950. V. 192. P. 867 - 874.

230. Nagaraja P., Shrestha A.K., Shivakumar A., Al-Tayar N.G.S., Gowda A.K. Spectrophotometric determination of catecholamine using vanadium and eriochrome cyanine r. // Quim. Nova. 2011. V. 34. P. 373 - 376.

231. Hamzah M.J., Mahood A.B.M., Abid S.A. Spectrophotometry determination of adrenaline in pharmaceutical preparations using Prussian blue reaction. // J. Kerbala Univ. 2009. V. 7. P. 9 - 14.

232. Hormozi-Nezhad M.R., Tashkhourianc J., Khodaveisic J.Sensitive spectrophotometric detection of dopamine, levodopa and adrenaline using surface plasmon resonance band of silver nanoparticles. // J. Iran. Chem. Soc. 2010. V. 7. P. 83 - 91.

233. Lin Y., Chen C., Wang C., Pu W., Ren J., Qu X. Silver nanoprobe for sensitive and selective colorimetric detection of dopamine via robust Ag-catechol interaction. // Chem. Commun. 2011. V. 47. P. 1181 - 1183.

234. Navarro J., Galban J., Marcos S. A label-free platform for dopamine biosensing. // Bioanalysis. 2018. V. 10. No. 1. P. 11 - 21.

235. Chen Z., Zhang C., Zhou T., Ma H. Gold nanoparticle based colorimetric probe for dopamine detection based on the interaction between dopamine and melamine. // MCA. 2015. V. 182. P. 1003 - 1008.

236. Annersten S., Geonwall A., Koiw E. Determination of adrenaline in blood plasma by the fluorescence method. // Nature. 1949. V. 163. P. 136 - 137.

237. Hahn Z. Centrifugal microfiltration: a simple way to enhance the sensitivity of the classical aluminium oxide adsorption method of fluorimetric catecholamine determination. // J. Biochem. Bioph. Methods. 1980. V. 2. P. 163 - 169.

238. Silva L., Duarte K., Freitas A.C., Panteleitchouk T.S.L., Rocha-Santos T.A.P., Pereiraa M.E., Duarte A.C. A fluorescence-based optical fiber analyzer for catecholamine determination. // Anal. Methods. 2012. V. 4. P. 2300 - 2306.

239. Fonseca B.M., Rodrigues M., Cristovaoa A.C., Goncalves D., Fortuna A., Bernardinoa L., Falcaoc A., Alves G. Determination of catecholamines and endogenous related compounds in rat brain tissue exploring their native fluorescence and liquid chromatography. // J. Chromatogr. B. 2017. V. 1049 - 1050. P. 51 - 59.

240. Brunjes S., Wybenga D. Differential fluorometry in catecholamine determination: a simplified method of calculation. // Clin. Chem. 1963. V. 9. No. 5. P. 626 - 630.

241. Hormozi-NezhadM.R., Moslehipour A., Bigdeli A. Simple and rapid detection of L-dopa based on in situ formation of polylevodopa nanoparticles. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2017. V. 243. P. 715 - 720.

242. Wei X., Zhang Z., Wang Z. A simple dopamine detection method based on fluorescence analysis and dopamine polymerization. // Microchem. J. 2019. V. 145. P. 55 - 58.

243. MakedonskayaM.I., VeselovaI.A., Kalmykov S.N., Shekhovtsova T.N. Novel biosensing system for the simultaneous multiplex fluorescent determination of catecholamines and their metabolites in biological liquids. // J. Pharmaceut. Biomed. 2018. V. 156. P. 133 - 141.

244. Makedonskaya M.I., Mikhailova A.M., Veselova I.A., Fukuda J., Shekhovtsova T.N. Fluorescent ternary complexes of some biogenic amines and their metabolites with europium and oxytetracycline for applications in the chemical analysis. // Mendeleev Commun. 2018. V. 28. P. 553 - 555.

245. Lian N., Tang J., He X., Li W., Zhang G. Sensitive detection of dopamine using micelle-enhanced and terbium-sensitized fluorescence. // J. Anal. Chem. 2016. V. 71. No. 7. P. 653 - 659.

246. Nedeljko P., Turela M., Lobnika A. Assay for optical determination of biogenic amines using microtiterplates. // Optical Sensors. 2013. V. 8774. P. 1 - 7.

247. Zhao B., Li Y. Facile synthesis of near-infrared-excited NaYF4:Yb3+, Tm3+ nanoparticles for label-free detection of dopamine in biological fluids. // Talanta. 2018. V. 179. P. 478 - 484.

248. Pourghobadi Z., Mirahmadpour P., Zare H. Fluorescent biosensor for the selective determination of dopamine by TGAcapped CdTe quantum dots in human plasma samples. // Opt. Mater. 2018. V. 84. P. 757 - 762.

249. Ghasemi F., Hormozi-NezhadM.R., Mahmoudi M. Identification of catecholamine neurotransmitters using fluorescence sensor. // Anal. Chim. Acta. 2016. V. 917. P. 85 - 92.

250. Huang H., Gao Y., Shi F., Wang G., Shah S.M., Su X. Determination of catecholamine in human serum by a fluorescent quenching method based on a water-soluble fluorescent conjugated polymer-enzyme hybrid system. // Analyst. 2012. V. 137. P. 1481 - 1486.

251. Niu S., Fang Y., Zhang K., Sun J., Wan J. Determination of dopamine using the fluorescence quenching of 2,3-diaminophenazine. // Instrum. Sci. Technol. 2017. V. 45. No. 1. P. 101 - 110.

252. WangH., Fang G., Wang K., Wu Z., Yao Q. Determination of dopamine using 2-(4-boronophenyl)quinoline-4-carboxylic acids as fluorescent probes. // Anal. Lett. 2019. V. 52. No. 4. P. 713 - 727.

253. Devi J.S.A., Anulekshmi A.H., Salini S., Aparna R.S., George S. Boronic acid functionalized nitrogen doped carbon dots for fluorescent turn-on detection of dopamine. // Microchim. Acta. 2017. V. 184. No. 10. P. 4081 - 4090.

254. Sun C., Yuan F., Li H., Wu X. A specific fluorescent nanoprobe for dopamine based on the synergistic action of citrate and gold nanoparticles on Tb(III) luminescence. // Microchim. Acta. 2018. V. 185. No. 7. DOI: 10.1007/s00604-018-2844-0.

255. Wotyniec E., Niedz wiedzka U., Kojlo A. Flow-injection chemiluminescence determination of catecholamines. // Instrum. Sci. Technol. 2007. V. 35. P. 219 - 231.

256. Lee J.S., Lim H.B. Determination of epinephrine using sodium iodate in chemiluminescence. // Bull. Korean Chem. Soc. 2007. V. 28. No. 12. P. 2315 - 2318.

257. Nozaki O., Kawamoto H., Moriyama H. Total free catecholamines assay by identifcation of its two functional groups and micro-flow injection chemiluminescence. // Luminescence. 1999. V. 14. P. 369 - 374.

258. Zhang C., Huang J., Zhang Z., Aizawa M. Flow injection chemiluminescence determination of catecholamines with electrogenerated hypochlorite. // Anal. Chim. Acta. 1998. V. 374. P. 105 - 110.

259. Amjadi M., Hallaj T., Manzoori J.L., Shahbazsaghir T. An amplified chemiluminescence system based on Si-doped carbon dots for detection of catecholamines. // Spectrochim. Acta. A. 2018. V. 201. P. 223 - 228.

260. Chaichi M.J., Khajvand T., Mehrzad J., Asghari S., Qandalee M.Indirect chemiluminescence-based determination of catecholamines in pharmaceutical formulations by furandicarboxylate derivative as a novel blue fluorescer in peroxyoxalate-H2O2 system. // Anal. Sci. 2013. V. 29. P. 815 - 821.

261. Ciubuc J.D., Bennet K.E., Qiu C., Alonzo M., Durrer W.G., Manciu F.S. Raman computational and experimental studies of dopamine detection. // Biosens. 2017. V. 7. No. 43. DOI: 10.3390/bios7040043.

262. Shi C.-X., Chen Z.-P., Chen Y., Liu Q., Yu R.-Q. Quantification of dopamine in biological samples by surface-enhanced Raman spectroscopy: Comparison of different calibration models. // Chemometr. Intell. Lab. Syst. 2017. V. 169. P. 87 - 93. DOI: 10.1016/j.chemolab.2017.09.006.

263. Li P., Zhou B., Cao X., TangX., YangL., Hu L., Liu J. Functionalized acupuncture needle as surface-enhanced resonance Raman spectroscopy sensor for rapid and sensitive detection of dopamine in serum and cerebrospinal fluid. // Chem. Eur. J. 2017. V. 23. P. 14278 - 14285.

264. Moody A.S., Baghernejad P.C., Webb K.R., Sharma B. Surface enhanced spatially offset Raman spectroscopy detection of neurochemicals through the skull. // Anal. Chem. 2017. V. 89. P. 5689 - 5693.

265. Phung V.-D., Jung W.-S., Kim J.-H., Lee S.-W. Gold nanostructures electrodeposited on graphene oxide-modified indium tin oxide glass as a surface-enhanced Raman scattering-active substrate for ultrasensitive detection of dopamine neurotransmitter. // Jpn. J. Appl. Phys. 2018. V. 57. DOI: 10.7567/JJAP.57.08PF02.

266. CaoX., QinM., Li P., Zhou B., TangX., Ge M., YangL., Liu J. Probing catecholamine neurotransmitters based on iron-coordination surface-enhanced resonance Raman spectroscopy label. // Sensor. Actuat. B-Chem. 2018. V. 268. P. 350 - 358.

267. Rahaman M.S., Morris M.D. Determination of adrenaline and noradrenaline by resonance Raman spectrometry. // Talanta. 1976. V. 23. P. 65 - 66.

268. Zheng L., Liu L., Li J., Li Q. Determination of adrenaline by atomic absorption spectrometry using copper as probe reagent in pharmaceutical and serum samples. // J. Chin. Chem. Soc. 2011. V. 58. P. 925 - 929.

269. Sanchis-Mallols J.M., Villanueva-Camanas R.M., Ramis-Ramos G. Determination of unconjugated catecholamine in urine as dopamine by thermal lens spectrometry. // Analyst. 1992. V. 117. P. 1367 - 1371.

270. Villanueva-Camañas R.M., Sanchis-Mallols J.M., Simó-Alfonso E.F., Ramis-Ramos G. Thermal lens spectrometric detection of catecholamines after oxidation to aminochromes. // Anal. Lett. 1992. V. 25. No. 8. P. 1425 - 1445.

271. Лурье Ю.Ю. Справочник по аналитической химии. М.: «Химия», 1971. 456 с.

272. Zweifel D.A., Wei A. Sulfide-arrested growth of gold nanorods. // Chem. Mater. 2005. V. 17. P. 4256 - 4261.

273. Дмитриенко С.Г., Апяри В.В. Пенополиуретаны: сорбционные свойства и применение в химическом анализе. М.: Красанд, 2010. 264 с.

274. Фурлетов А.А., Апяри В.В., Гаршев А.В., Волков П.А., Толмачева В.В., Дмитриенко С.Г. Сорбция треугольных нанопластинок серебра на пенополиуретане. // Журн. аналит. химии. 2018. Т. 92. № 2. С. 318 - 322.

275. Моногарова О.В., Осколок К.В., Апяри В.В. Цветометрия в химическом анализе. // Журн. аналит. химии. 2018. Т. 73. № 11. С. 857 - 867.

276. Дмитриенко С.Г., Тихомирова Т.И., Апяри В.В., Толмачева В.В., Кочук Е.В., Золотое Ю.А. Применение сверхсшитых полистиролов для концентрирования и разделения органических соединений и ионов элементов. // Журн. аналит. химии. 2018. Т. 73. № 11. С. 830 - 842.

277. Попов А.Ю., Блинникова З.К., Цюрупа М.П., Даванков В.А. Синтез и адсорбционные свойства сорбентов ограниченного доступа на базе сверхсшитого полистирола. // Сорб. и хром. процессы. 2017. Т. 17. № 2. С. 183 - 190.

278. Tolmacheva V.V., Yarykin D.I., Serdiuk O.N. Apyari V.V., Dmitrienko S.G., Zolotov Y.A. Adsorption of catecholamines from their aqueous solutions on hypercrosslinked polystyrene. // React. Funct. Polym. 2018. V. 131. P. 56 - 63.

279. Дмитриенко С.Г., Андреева Е.Ю., Толмачева В.В., Золотов Ю.А. Концентрирование метилксантинов на сверхсшитом полистироле и их последующее определение методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. // Журн. аналит. химии. 2013. Т. 68. № 2. С. 108 - 112.

280. Удалова А.Ю., Дмитриенко С.Г., Натчук С.В., Апяри В.В., Золотов Ю.А. Концентрирование антибиотиков тетрациклиновой группы на сверхсшитом полистироле и их определение в водах методом высокоэффективной жидкостной хроматографии. // Журн. аналит. химии. 2015. Т. 70. № 3. С. 273 - 278.