Мутантные копии митохондриальной ДНК в тканях и плазме крови мышей, подвергнутых радиационному воздействию тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.01, кандидат биологических наук Абдуллаев, Серажутдин Абдуллаевич
- Специальность ВАК РФ03.01.01
- Количество страниц 107
Оглавление диссертации кандидат биологических наук Абдуллаев, Серажутдин Абдуллаевич
СПИСОК ПРИНЯТЫХ В РАБОТЕ СОКРАЩЕНИЙ.
ВВЕДЕНИЕ.
Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1. Структурно-функциональная характеристика мтДНК.
2. Повреждение мтДНК эндогенными и экзогенными агентами.
3. Репарация повреждений и формирование мутаций мтДНК.
4. Внеклеточная мтДНК-потенциальный маркер оценки радиационного поражения.
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ.
2.1. Животные.
2.2. Радиационная обработка.
2.3. Основные химические реактивы.
2.4. Выделение ДНК фенольным методом.
2.5. Выделение внеклеточной ДНК из плазмы с использованием магнитных сорбентов.
2.6. Определение содержания ДНК.
2.7. Получение CEL -I эндонуклеазы.
2.8. ПЦР-амплификация участков ДНК.
2.9. Выявление мутаций мтДНК методом гель-электрофореза ДНК при временном градиенте температуры (temporal temperature gradient gel electrophoresis-TTGE).
2.10. Выявление мутаций мтДНК с использованием CEL-I эндонуклеазы.
2.11. Определение количества копий мтДНК методом ПЦР в реальном времени (ПЦР-РВ).
2.12. Статистическая обработка данных.
Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ.
3.1. Выбор и адаптация чувствительного метода для скрининга радиационно-индуцированных мутаций мтДНК.
3.2. Исследование уровня мутантных копий мтДНК и общего количества копий мтДНК в тканях головного мозга и селезенки облученных мышей.
3.3. Изменения количества внеклеточных мутантных копий и общего содержания копий мтДНК в плазме крови облученных мышей в пострадиационный период.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Радиобиология», 03.01.01 шифр ВАК
Основные белки митохондрий и их роль в сохранении митохондриальной ДНК2007 год, кандидат биологических наук Гуляева, Наталья Александровна
Пострадиационные механизмы функционирования и стабилизации митохондриального генома2023 год, доктор наук Абдуллаев Серажутдин Абдуллаевич
Исследование процессов репликации и транскрипции митохондриальной ДНК клеток крови мышей при рентгеновском облучении2009 год, кандидат биологических наук Евдокимовский, Эдуард Владимирович
Функционирование митохондриальной ДНК при действии генотоксических агентов2006 год, кандидат биологических наук Патрушев, Максим Владимирович
Исследование изменения количества копий и формирования делеций митохондриальной ДНК в клетках тканей мышей после воздействия ионизирующей радиации2011 год, кандидат биологических наук Антипова, Валерия Николаевна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Мутантные копии митохондриальной ДНК в тканях и плазме крови мышей, подвергнутых радиационному воздействию»
о
Исследование структурно-функциональных нарушений генома в клетках человека и животных, подвергнутых воздействию ионизирующими излучениями (ИИ) остается актуальной проблемой как для определения риска генетических и канцерогенных последствий, так для разработки чувствительных маркеров оценки генотоксического груза и профилактических мер развития патологий, инициируемых радиацией. Многие основополагающие исследования по данной проблеме проводились и проводятся, ориентируясь на важнейшую мишень радиационного поражения — ядерную ДНК (яДНК). Однако, хорошо известно также, что в каждой соматической клетке млекопитающих, кроме ядерного генома, содержатся тысячи копий молекул митохондриальной ДНК (мтДНК). В последнее время, с появлением новых молекулярных методов, активно развиваются исследования- по изучению повреждения, репарации- и мутагенеза мтДНК в* клетках. В? настоящее время можно полагать, что мтДНК является* более уязвимой-мишенью клетки, по сравнению с яДНК, для эндогенных и экзогенных повреждающих агентов [LeDoux, Wilson, 2005; Wallace etal'., 2010]. МтДНК имеет ряд особенностей, отличных от я ДНК, в структурной* организации- и функционировании^. Так, мтДНК в соматических клетках животных и человека представлена множеством (от нескольких сот до нескольких тысяч) копий ковалентно замкнутых молекул размером* около 16,5 т.п.н., содержащих гены, кодирующие 13 белков системы дыхательной цепи [Shadel and Clayton, 1997;. Falkenberg et al., 2007]. Митохондриальный геном наследуется по материнской линии [Giles et al., 1980]. Для него характерна повышенная мутабельность благодаря повреждениям, индуцируемым активными формами кислорода (АФК), генерируемыми в самих митохондриях и ошибками репликативного синтеза с участием ДНК-полимеразы гамма [Graziewicz et al., 2006; Larsson, 2010]. В тканях (в том числе постмитотических тканях мозга, сердца, скелетных мышц), в популяциях клеток, независимо от их пролиферативной активности, мтДНК, в отличие от яДНК, может реплицироваться независимо от клеточного цикла в течение всей жизни организма [Wallace 2005; Falkenberg et al., 2007]. Результаты многих исследований показывают, что в мтДНК возникают в 3-50 раз больше повреждений (в зависимости от повреждающего агента), чем в соразмерном фрагменте яДНК, при действии на клетки ИИ, химических мутагенов, противоопухолевых и противовирусных препаратов [Marcelino., Thilly, 1999; Газиев, Шайхаев, 2008]. Процессы репарации ДНК в митохондриях клеток функционируют недостаточно эффективно, по сравнению с таковыми в ядрах [Газиев, Подлуцкий, 2003; Stuart., Brown, 2006; Gredilla et al., 2010]. Если репликация поврежденной я ДНК блокируется индуцибельной системой контроля точек хода клеточного цикла (cell' cycle checkpoint) до завершения ее репарации, то» эта система не блокирует репликацию поврежденной мтДНК в митохондриях [Oleaver ,1992; Lallev et al., 1993; Kulawiec et al., 2009]. В отличие от я ДНК, мтДНК Hev ассоциирована с гистонами и не содержит некодируемые последовательности (за исключением участка D-loop), транскрибируется как единый полицистронный блок, и любые нарушения в ней могут быть > патогенетическими. Возможно, что именно по этим причинам-в мтДНК наблюдается накопление мутаций с более высокой частотой, чем в яДНК [Khrapko, Vijg, 2009] и для митохондрий характерно явление гетероплазмии (одновременное присутствие мутантных и нормальных копий в одной клетке). Когда количество1 мутантных молекул мтДНК превышает определенный порог (повышенный уровень гетероплазмии), возникает митохондриальная дисфункция, с которой связаны развитие «митохондриальных» болезней, клеточная гибель, нестабильность-, генома [Skulachev, 2006; Wang, Youle, 2009; Norberg et al., 2010].
Вместе с тем, хотя в радиобиологических исследованиях много внимания уделяется радиационному нарушению энергетического метаболизма, сведения по радиационному мутагенезу мтДНК в клетках человека или животных, подвергшихся воздействию ИИ на уровне целого организма,, в литературе ограничены и противоречивы. Так, в ряде исследовании показано изменения количества копий мтДНК и формирование делеций мтДНК в клетках млекопитающих, подвергнутых радиационному воздействию [Malakhova et al., 2005; Murphy et al., 2005; Nugent et al., 2007; Wang et al., 2007]. Повышенная частота точечных мутаций мтДНК наблюдали в клетках периферической крови людей, проживающих на территории с повышенным радиационным фоном [Forster et al., 2002]. Высокая частота делеций в мтДНК, чем в яДНК, регистрируется у пациентов после сеансов радио-химиотерапии опухолей [Wardell et al., 2003]. Однако не удалось выявить существенного увеличения частоты мутаций мтДНК у полевок, обитающих в зоне аварии Чернобыльской АЭС [Wickliffe et al., 2002]. Не был зарегистрирован повышенный уровень мутаций мтДНК в клетках крови- людей в отдаленные сроки после хронического воздействия на них радиации в условиях ядерного производства [Wilding et al., 2006] и испытаний^ ядерного оружия на- Семипалатинском полигоне [Hamada et ai., 2003].
Стабильность и сохранение митохондриального генома, изменение количества копий мтДНК (дозы генов мтДНК) в клетках играют важную роль в адаптации человека к различным- условиям внешней* среды. С нарушениями мтДНК ассоциируются широкий спектр дегенеративных заболеваний, ослабление функций тканей, нарушения иммунной системы, развитие опухолевых патологий, старения [Schapira, 2006; Jou et al., 2009;. Koene, Smeitink, 2009; Tsutsui et al., 2009; Wallace, Fan,. 2009; Krishnan, Turnbull, 2010; Tuppen et al., 2010; Baines, 2010; Shutt, Shadel, 2010]. Статус митохондрий клетки и мтДНК оказывают влияние на развитие различных клеточных ответов на действие физических и химических агентов.
Поэтому, дальнейшие комплексное исследование возникновения, аккумуляции мутантных копий мтДНК и изменения количественного содержания' копий мтДНК в клетках тканей организма млекопитающих, подвергнутых воздействию ИИ, представляется актуальным и востребованным.
Целью исследования
Цель исследования состояла в определении изменения уровня мутантных копий мтДНК и общего содержания копий мтДНК в тканях и в плазме крови мышей, подвергнутых воздействию ионизирующего излучения.
В задачи работы входило:
1. Выбор и адаптация чувствительного метода для скрининга радиационно-индуцированных мутаций мтДНК тканей мышей.
2. Исследование уровня мутантных копий мтДНК и общего количества копий мтДНК в тканях головного мозга и селезенки облученных мышей в пострадиационный период.
3. Определениел динамики изменения количества внеклеточных мутантных копий- и общего содержания копий» мтДНК, относительно ядерной ДНК, в плазме крови мышей в пострадиационный период.
Научная новизна работы.
Адаптирован и впервые применен метод, основанный на использовании CEL-I эндонуклеазы, специфически расщепляющей ДНК с неспаренными основаниями, для выявления неизвестных мутаций мтДНК, индуцируемых ИИ in vivo. Сравнение результатов, получаемых CEL- I эндонуклеазным методом и TTGE-методом (temporal temperature gradient gel electrophoresis -метод) показало, что первый метод более чувствителен, он позволяет анализировать большое количество образцов, дает воспроизводимые результаты и экономичен.
В работе впервые установлено, что. в клетках тканей (головной мозг, селезенка) мышей, подвергнутых воздействию рентгеновского излучения, резко возрастает уровень мутантных копий мтДНК (повышение гетероплазмии мтДНК), с максимумом на 8-й день после облучения и последующим снижением их содержания к 28-у дню пострадиационного времени.
Мутагенез мтДНК в тканях головного мозга и селезенки облученных мышей, как и мутагенез ядерных генов, имеет линейную зависимость от дозы рентгеновского излучения (в пределах 1-5 Гр). Результаты сравнительных анализов мутантных копий мтДНК головного мозга (постмитотической ткани) и селезенки (митотически активной ткани) облученных мышей показывают снижение количества мутантных копий мтДНК в пострадиационный период. В ткани селезенки этот процесс происходит более активно, чем в ткани головного мозга.
Вместе с тем, общее количество копий мтДНК в тканях головного мозга и селезенки облученных мышей, определяемое относительно гена яДНЕС методом ПНР в реальном времени- (ПЦР-РВ), остается' в течение всего пострадиационного времени (8-28 дней) без изменения, хотя. и. ниже на 25-40% данных контрольной группы (при дозе облучения 5 Гр).
В данном исследовании впервые установлено, что в кровоток облученных мышей в течение длительного пострадиационного времени поступает большое количество циркулирующей вк-мтДНК, существенная часть которой представлена мутантными- копиями. Уровень вк-мтДНК« с мутациями в плазме крови мышей зависит от дозы их облучения. Динамика изменения общего содержания циркулирующей вк-мтДНК и уровня.ее мутантных копий в плазме облученных мышей (в пострадиационный период) отличается от таковой в тканях селезенки и мозга этих же животных. Увеличение содержания мутантных копий вк-мтДНК в плазме облученных мышей совпадает со снижением их уровня в тканях этих же животных. Повышенное содержание мутированных вк-мтДНК в плазме крови облученных мышей свидетельствует об их активной элиминации из клеток тканей в пострадиационный период.
Практическая ценность работы.
Результаты исследования радиационного мутагенеза мтДНК и изменения уровня мутантных копий мтДНК в тканях облученных животных в пострадиационной период существенно дополняют знания о молекулярных механизмах развития лучевой реакции организма. Полученные результаты и использованные в работе методические подходы могут быть применены в дальнейших экспериментальных исследованиях и в клинической практике при радиотерапии опухолей.
Важным результатом, ориентированным на практическое использование, является обнаружение повышенного уровня мутантных копий вк-мтДНК и увеличения содержания общей мтДНК в плазме облученных животных. Поскольку мтДНК является более уязвимой мишенью (чем яДНК) для ИИ" и других генотоксических агентов, то повышенное содержание вк-мтДНК с мутациями- в плазме крови мышей после радиационного воздействия можно рассматривать как потенциальный биомаркер для: оценки радиационного поражения и наличия генотоксического груза.
Апробация работы.
Материалы диссертации были представлены^ на школах-конференциях молодых ученых «Биология - наука 21-го века» (Пущино, 2007, 2008, 2009, 2010 гг.); на Российской' научной конференции «Медико-биологические проблемы! токсикологии» (Санкт-Петербург, 2008 г.); на конференции «Актуальные вопросы генетики, радиобиологии и радиоэкологии» (Дубна, 2009 г.); на XVI Международной научной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «ЛОМОНОСОВ» (Москва, 2009 г.); на Симпозиуме «Пространственно-временные эффекты в радиационной биологии (Испания, Сант Фелиу де Гишолс, 2009); на 37-ой годичной* конференции Европейского общества по радиационным исследованиям (Прага, 2009); на III Евразийском конгрессе по медицинской физике «Фундаментальные и прикладные аспекты медицинской физики и инженерии» (Москва, 2010); на 38-ой годичной конференции Европейского общества по радиационным исследованиям (Стокгольм, 2010).
Публикации.
По материалам диссертации опубликовано 20 печатных работ, в том числе 5 статей в журналах из списка ВАК РФ.
Структура и объем диссертации.
Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов исследования и их обсуждения, заключения, выводов и списка литературы. Работа изложена на 107 страницах, иллюстрирована 2 таблицами и 22 рисунками. Библиографический указатель содержит 221 источников литературы.
Похожие диссертационные работы по специальности «Радиобиология», 03.01.01 шифр ВАК
Радиозащитные свойства ряда пуриновых соединений2012 год, кандидат биологических наук Асадуллина, Нелли Рустамовна
Генные мутации в соматических клетках человека IN VIVO: радиобиологические закономерности2003 год, доктор биологических наук Замулаева, Ирина Александровна
Регуляторные гены, опосредующие генетическую стабильность и радиочувствительность дрожжей Saccharomyces cerevisiae2006 год, доктор биологических наук Колтовая, Наталия Алексеевна
Частота клеток с мутациями в локусе Т-клеточного рецептора и радиационно-индуцированный апоптоз лимфоцитов как возможные показатели повышенного канцерогенного риска2002 год, кандидат биологических наук Орлова, Нина Владимировна
Последствия повреждения генетического аппарата клеток при воздействии на организм экстремальных факторов2004 год, кандидат биологических наук Костюкова, Светлана Владиленовна
Заключение диссертации по теме «Радиобиология», Абдуллаев, Серажутдин Абдуллаевич
ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
Итак, можно констатировать, что в мтДНК возникают больше повреждений; чем в соразмерном' фрагменте яДНК, не только в результате действия АФК, генерируемых в самих митохондриях, но и при действии на клетки ИИ,' УФ-света, противоопухолевых и противовирусных препаратов.
Этот повышенный уровень повреждений ■ в>мтДНК, по сравнению с яДНК, облученных клеток, можно полагать, обусловлен сочетанным действием АФК, генерируемых митохондриях и индуцируемых ИИ. Было^ показано, что радиационное нарушение ЦПЭ в митохондриях может привести к. увеличению АФК и усилению окислительного * стресса [УовЫск е! а1., 2000]. Что-касается высокой частоты повреждений; мтДНК, по сравнению' с яДНК, в клетках обработанных различными, химическими агентами, то это является, скорее всего, результатом более активного проникновения' этих соединений« из цитоплазмы в митохондрии.
Таким образом, мтДНК в отличие от яДНК, является более уязвимой мишенью для эндогенных АФК и экзогенных повреждающих агентов.
С другой стороны анализ многих данных, посвященных исследованию репарации мтДНК, позволяет заключить, что в митохондриях клеток млекопитающих полностью функционируют только те репарационные системы, которые имеют ограниченный набор ферментов [Газиев, Подлуцкий, 2003; Stuart, Brown, 2006, Gredilla et al., 2010]. Так, доказано, что механизмы ЭРН не функционируют в митохондриях [Clayton, et al., 1974]. Однако показано, что в митохондриях клеток млекопитающих реализуется система ЭРО с короткими заплатками [Bohr, 2002]. Кроме ЭРО в митохондриях млекопитающих выявлены и другие системы антимутагенной репарации ДНК [Gredilla et al., 2010]. Вместе с тем, как признано многими исследователями, в целом, процессы репарации мтДНК в митохондриях клеток млекопитающих функционируют недостаточно эффективно.
О низкой эффективности функционирования систем репарации в митохондриях млекопитающих свидетельствует множество данных, указывающих на накопление нерепарированных повреждений и на повышение частоты спонтанных мутаций в мтДНК, по сравнению с яДНК, с возрастом организма. И один из современных постулатов1 о механизмах старения связан с накоплением структурных изменений в мтДНК клеток тканей с возрастом [Wallace et al., 2010; Baines, 2010; Krishnan, Turnbull, 2010; Larsson, 2010].
В тканях (головного мозга, сердца, скелетных мышц), в. популяциях клеток, независимо от их пролиферативной активности и клеточного цикла, мтДНК, в отличие от яДНК, может реплицироваться в течение всей жизни [Clayton, 2003; Falkenberg et al., 2007]. Более того, если репликация поврежденной яДНК блокируется индуцибельной системой контроля хода клеточного цикла (cell cycle checkpoint)'до завершения ее репарации, то, как указывает ряд данных, в митохондриях не происходит блокировки репликации мтДНК, поврежденной ИИ [Cleaver, 1992; Lallev et al., 1993; Chung et al., 2001].
При этом, можно полагать, что репликативный синтез может протекать не только на неповрежденных копиях мтДНК-матриц, но и на мутированных или поврежденных матрицах. Очевидно, спонтанные и индуцированные (не репарированные или ошибочно репарированные) повреждения мтДНК в последующих кругах репликации будут реализовываться в мутации и делеции митохондриального генома.
Скорее всего, именно по этим причинам в мтДНК тканей организма, возможно, возникновение мутаций с более высокой частотой, чем в яДНК, после радиационного воздействия. Согласно данным разных авторов, частота спонтанных и индуцированных мутаций в генах мтДНК в 10-100 раз выше, чем в я ДНК [Beckman, Ames, 1998; Marcelino, Thilly, 1999; Khrapko, Vijg 2009; Singh, Kulawiec, 2009; Milone, Massie, 2010].
Увеличение частоты повреждений и мутаций в мтДНК тканей мозга, сердца и скелетных мышц, отражается на функциях этих тканей, а также играет значительную роль в развитии дегенеративных процессов и различных патологий [Wallace, 2005; Wallace et al., 2010; Baines, 2010; Krishnan, Turnbull, 2010; Larsson, 2010]. Когда количество мутантных молекул мтДНК превышает определенный порог, (повышенный уровень гетероплазмии),. возникает митохондриальная дисфункция, с которой ассоциируется развитие множества патологий.
Для скрининга спонтанных и индуцированных ИИ точечных мутаций, в последовательностях ДНК или отдельных генах млекопитающих на уровне целого организма первостепенное значение- приобретает выбор чувствительного и экономичного-метода. На основании* анализа-литературы мы выбрали два наиболее адекватных метода для возможного их использования при определении мутаций в большом количестве образцов ДНК, получаемых из тканей мышей, подвергнутых радиационному воздействию. Эти были - «CEL-I эндонуклеазный метод», основанный на использовании CEL-I эндонуклеазы, специфически расщепляющей участки ДНК с неспаренными основаниями, и метод гель электрофореза при временном градиенте температуры (temporal temperature gradient gel electrophoresis - TTGE). Сравнение результатов, получаемых обоими методами, позволило заключить, что CEL- I эндонуклеазный метод дает более качественные результаты, чем TTGE-метод.
Более того, GEL-1 эндонуклеазный метод более чувствителен, по сравнению с TTGE-методом. GEL-I эндонуклеазный метод позволяет одновременно проводить анализ большого количества образцов ДНК, получать воспроизводимые результаты, не требует сложного оборудования и экономичен. Важнейшим этапом при выявлении мутаций, индуцируемых ИИ, методом CEL-I эндонуклеазы является получение: гетеродуплексов путем гибридизации ПЦР-ампликонов участков мтДНК облученных и контрольных животных. Эта процедура дает существенное преимущество для более четкого воспроизводства результатов в; параллельных анализах и является необходимым при выявлении мутаций ДНК. CEL-I эндонуклеазный метод является достаточно чувствительным инструментом для выявления мутации в последовательностях ДНК, индуцируемых ИИ. С помощьк»этого метода может быть выявлена, одна, мутантная; молекула; среди; 30-35 нормальных (диких) молекул размером около; 500т 1000; п.н. [Bannwarth et al., 2008; Tsuji, Niida, 2008]. Для. анализа мутаций; мтДНК, индуцируемых; ИИ в дозах 1-5 Fp, этим методом мы, использовали? гетеродуплексы; ИЦР-ампликоновштДНК- размером 437-1092: п.н: Что касается; определения, мутаций мтДНК, возникающих при малых дозах облучения, животных, то для. этого требуется: получение гетеродуплексов!ЩР-ампликонов,участков ДНК большего размера (2000-5000 п.н.):. Таким?: образом; метод определения« мутаций; с использованием, GEL-I эндонуклеазы, позволяет достичь необходимой чувствительности.
Прежде, чем начать основные эксперименты;, с использованием этого метода, мы определяли расщепление «эталонного» гетеродуплекса, полученного из ПЦР-ампликонов, заранее подобранных фрагментов дикого и мутантного типов гена р53, GEL-эндоиуклеазой. Результаты наших экспериментов i показали; что4 метод может, быть , использован для выявления неизвестных мутаций в тканях млекопитающих, индуцируемых ионизирующей радиацией. Полученные нами результаты по определению мутаций мтДНК в тканях и в составе, циркулирующей ДНК облученных мышей, с использованием CEL-I эндонуклеазы, не позволяют представить расчетные величины по реальной частоте мутаций мтДНК, индуцируемых ИИ. Однако эти данные позволяют характеризовать степень гетероплазмии (одновременное присутствие мутантных и диких копий) мтДНК в тканях и в плазме животных, подвергнутых радиационному воздействию.
Доля мутантных копий мтДНК (или гетероплазмия) в тканях головного мозга и селезенки облученных мышей, увеличивается- в зависимости от дозы рентгеновского излучения. Здесь мы наблюдаем, подобную линейную зависимость, которая была выявлена при определении частоты мутаций в составе яДНК тканей головного мозга И' селезенки мышей, облученных разными дозами» рентгеновского излучения [Nakamura. et al., 2000; Ono et al., 2003]. Результаты-наших- экспериментов показали, что уровень гетероплазмии мтДНК в клетках тканей организма, после радиационного воздействия, существенно- повышается, и это- может оказывать, влияние, на- многие молекулярные и клеточные процессы, связанные: с развитием лучевойфеакции организма.
Ранее было- показано, что ИИ вызывает in1 vivo больше повреждений в мтДНК, чем в соразмерном фрагменте яДНК. Также было установлено, что ИИ индуцирует синтез мтДНК и.биогенез, митохондрий в клетках тканей животных в, течение 2-5 часов, после их облучения мышей, [Malakhova. et al., 2005; Патрушев и-др., 2006; Евдокимовский и др., 2007; Nugent'et al., 2007; Zhang et al., 2007]. Хотя, механизмы усиления;биогенеза митохондрий и синтеза мтДНК после* действия ИИ' не достаточно ясны, индукция! этих процессов ассоциируется с развитием компенсаторной реакции в клетках в; связи с повреждением мтДНК и снижением'энергообеспечения клеток [Lee, Wei, 2005; Газиев, Шайхаев, 2008]. Можно полагать,.что значительное количество вновь синтезируемых копий мтДНК на- поврежденных матрицах будут содержать мутации. Это может привести к возникновению повышенной гетероплазмии в клетках тканей облученных животных в пострадиационный период. В течение от 8 до 28 дней пострадиационного периода, мы обнаружили снижение уровня общего количества копий мтДНК в тканях головного мозга и селезенки мышей, облученных в дозе 3-5 Гр. Увеличение мутантных копий и снижение общего содержания копий мтДНК в тканях мышей в течение длительного пострадиационного периода свидетельствует о нарушении энергетического метаболизма и возникновении дисфункции митохондрий в тканях облученного организма. Такая ситуация в свою очередь может приводить к усилению продукции АФК в митохондриях и последующему увеличению повреждений, с которыми, в определенной мере, связана последующая нестабильность генома облученных клеток [Miller et al., 2008;,Wallace et al., 2010]. Как установлено в настоящее время, клетки разных тканей, для их нормального функционирования, требуют определенный-уровень содержания копий. мтДНК [Clay et al., 2009; Krishnan et al., 2010].
Результаты наших экспериментов показывают, что высокий уровень гетероплазмии (мутантных. копий мтДНК) в тканях мышей, наблюдаемый, на 8 день,после их облучения, постепенно снижается ^ 28 дню пострадиационного, периода. С другой стороны, содержание общего количества мтДНК (из. расчета на яДНК) в тканях мышей фактически, остается на одинаковом уровне во все сроки исследования после облучения в дозах 1-5 Гр. Заметим, что снижение доли мутантных молекул мтДНК происходит быстрее в селезенке, клетки которой более активно подвержены- радиационной гибели, чем клетки головного мозга. Такая- динамика снижения» мутаций не характерна для яДНК. Как показывают ранее полученные данные Оно и соавторов [Ono et al., 2003], уровень частоты соматических мутаций; выявляемых в составе яДНК тканей головного мозга и. селезенки мышей, подвергнутых воздействию рентгеновским излучением, сохраняется без изменения в течение четырех месяцев.
Одновременно со снижением мутантных копий мтДНК в тканях, мы регистрируем резкое увеличение их доли, со сдвигом максимума на 14 день после облучения, в составе циркулирующей вк-ДНК плазмы этих же мышей. Известно, что соматические клетки с нерепарированными или летальными повреждениями я ДНК могут подвергаться гибели разными путями. В нормальных физиологических условиях в плазме крови животных и человека всегда содержится определенное количество циркулирующей вк-ДНК. При массовой гибели клеток в тканях организма в результате радиационного поражения или при иной патологии, возможно, выявление, значительного повышения уровня вк-ДНК в плазме (сыворотке) крови и других N биологических жидкостях [Umansky, Tomei, 2006; Tsang; Lo, 2007; Тамкович и др. 2008; Holdenrieder, Stieber, 2009]. Усиление гибели клеток, при проведении радиотерапии опухолей, сопровождается увеличением содержания вк-ДНК в плазме и в, других биологических жидкостях у пациентов, [Cheng et al., 2009]. Увеличение содержания- общей циркулирующей ДНК в» плазме- крыс, подвергнутых радиационному воздействию, было показано в, работе Владимирова с сотрудниками [Vladimirov et al., 1992]. Результаты наших анализов показывают, что в плазме мышей доля мутантных» копий вк-мтДНК на 14 день после облученияувеличиваетсяв, 15 раз (при;дозе 5 Гр) по сравнению с контролем, тогда как общее содержание вк-мтДНК увеличивается в 4 раза (рис. 21, 22).
Как известно, гибель клеток тканей, облученных животных может происходить различными путями в течение длительного времени и зависит от дозы облучения. При этом, максимум активной гибели различных клеток приходится на 6-10 часы после облучения животных сублетальными дозами радиации [Maruyama, Feola, 1987; Nomura et al., 1992]° Полученные нами данные, указывающие на увеличение содержания внеклеточной мтДНК с мутациями В' плазме крови мышей в- течение 28 дней после их облучения, нельзя связывать с максимумом активной фазы апоптоза клеток тканей этих животных. Скорее всего, повышенный уровень мтДНК с мутациями в плазме облученных мышей, можно предполагать, связан с отсроченной гибелью клеток и селективной элиминацией поврежденных и мутантных копий мтДНК из клеток.
Известно, что в отдаленные сроки пострадиационного времени количество гибнущих клеток существенно снижается, но гибель клеток связанная с индуцированной нестабильностью генома, может продолжаться. Одним из характерных признаков индуцированной нестабильности генома является отсроченная гибель клеток в течение длительного пострадиационного времени [Morgan et al., 1996; Zhivotovsky, Kroemer, 2004]. Возможно, увеличение количества мутантных копий мтДНК приводит к усилению продукции АФК и последующему увеличению- повреждений митохондриального генома и митохондриальной:дисфункции, которые оказывают влияние на радиационную индукцию нестабильности генома в облученных клетках [Kulkarni et al., 2009; Park et al., 2009; Anoopkumar-Dukie et al., 2009; Bianchi, 2010]. Следовательно; развитие каскада этих взаимосвязанных процессов; может, приводить к продолжению отстроченной» клеточной гибели [Morgan: et al., 1996; Zhivotovsky, Kroemer, 2004] и, соответственно, к; выбросу большого количества вк-ДНК в кровоток облученных животных. Можно предполагать, что повышенный уровень вк-мгДНК с мутациями в- плазме крови облученных мышей в отдаленные пострадиационные сроки (8-28 дни) * обусловлен, также, и селективной элиминацией копий. мтДНК с. мутациями из клеток тканей [Alexeyev et al., 2008]. Элиминация 'мтДНК с мутациями из; клеток может происходить, в результате митофагии митохондрий, несущих поврежденные и мутантные копий ДНК [Не, Klionsky, 2009]. Очевидно, пусковым; механизмом митофагии является повреждение макромолекул в митохондриях атаками-АФК [Tolkovsky,.2009]. Высвобождаемые в результате митофагии фрагменты мтДНК могут поступать в цитозоль [Patrushev et al., 2006] и затем в кровоток. Митофагия и постоянный; синтез мтДНК способствует обеспечению митохондриального гомеостаза, необходимого для выживания клеток [Не, КИопэку, 2009; ТоИсоувку, 2009].
Таким образом, результаты нашего исследования позволяют полагать, что мутагенез мтДНК в тканях головного мозга и селезенки облученных мышей, так же как, и мутагенез ядерных генов, имеет линейную зависимость от дозы ИИ. В отличие от мутантных ядерных генов, большая часть мутантных копий мтДНК элиминируется из тканей мозга и селезенки, при сохранении в них на одинаковом уровне общего содержания мтДНЕС, в течение 28 дневного пострадиационного периода. Результаты показывают, что в течение указанного пострадиационного времени в плазме облученных мышей сохраняется высокий уровень вк-мтДНК с мутациями, с максимумом на 14 день, в составе циркулирующей ДНК. Одновременно мы регистрируем существенное повышение содержания общей вк-мтДНК в плазме облученных мышей. Повышенное содержание вк-мтДНК с мутациями в плазме крови после радиационного воздействия можно рассматривать как потенциальный биомаркер для оценки радиационного поражения организма животных и человека, а также действия других генотоксических агентов. Однако для этого требуется продолжение исследований в условиях клиники.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.