Морфологическое и функциональное обоснование регенераторной активности клеточных продуктов разных типов на модели травматического повреждения роговицы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.01, кандидат наук Вологжанина, Наталья Владимировна

• Вологжанина, Наталья Владимировна
• кандидат наук
• 2017

Оглавление диссертации кандидат наук Вологжанина, Наталья Владимировна

Оглавление

ВЕДЕНИЕ

ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Мезенхимные стволовые клетки

Стромально-васкулярная фракция

СТВОЛОВЫЕ КЛЕТКИ ЛИМБА

СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Материал и методы исследования

РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ

Морфологические и морфометрические характеристики роговицы ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА КРОЛИКА В КОНТРОЛЕ

2. Клинические и морфологические особенности заживления

РОГОВИЦЫ ГЛАЗА У ЖИВОТНЫХ КОНТРОЛЬНОЙ ГРУППЫ (САМОПРОИЗВОЛЬНОЕ ЗАЖИВЛЕНИЕ)

2.1. Клиническая картина

2.2. РЕЗУЛЬТАТЫ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЯ

3. ЗАЖИВЛЕНИЕ РОГОВИЦЫ ГЛАЗА КРОЛИКА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ

АЛЛОГЕННЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЛИМБА

(ЛИМБАЛЬНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК - ЛСК)

3.1. Клиническая картина

3.2. РЕЗУЛЬТАТЫ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

4. ЗАЖИВЛЕНИЕ РОГОВИЦЫ ГЛАЗА КРОЛИКА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ АЛЛОГЕННЫХ МЕЗЕНХИМНЫХ СТВОЛОВЫХ КЛЕТОК ЖИРОВОЙ ТКАНИ (ММСК)

4.1. Клиническая картина

4.2. РЕЗУЛЬТАТЫ МОРФОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

5. РЕЗУЛЬТАТЫ ПРИМЕНЕНИЯ СТРОМАЛЬНО-ВАСКУЛЯРНОЙ ФРАКЦИИ

5.1. Клиническая картина

5.2. РЕЗУЛЬТАТЫ МИКРОСКОПИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Клиническая апробация

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ

СВЕДЕНИЯ О ПРАКТИЧЕСКОМ ИСПОЛЬЗОВАНИИ РЕЗУЛЬТАТОВ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ:

82

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфологическое и функциональное обоснование регенераторной активности клеточных продуктов разных типов на модели травматического повреждения роговицы»

ВЕДЕНИЕ Актуальность проблемы

В последние десятилетия неуклонно растет число животных, страдающих офтальмопатиями различного генеза [42]. Среди них особое место занимают длительно незаживающие и рецидивирующие язвы роговицы [101]. Данная патология может иметь травматическую этиологию, а также может быть вызвана снижением трофики роговицы, анатомическим лагофтальмом, ожогами и многими другими факторами, приводящими к повреждению эпителия и более глубоких слоёв роговицы.

Одним из направлений в регенеративной медицине является использование клеточных продуктов различного происхождения с целью замещения дефекта в поврежденном органе. В медицине человека при тяжелых повреждениях роговицы клеточная терапия показывает обнадеживающие результаты, как в эксперименте, так и на практике, что отражено во многих современных источниках [5, 6, 9, 10, 12-14, 19, 20, 23, 25].

Вместе с тем, большинство подобных методов находится на стадии лабораторных и клинических испытаний, но некоторые из них уже завоевали свое место в клинической практике. Как известно, стволовые клетки обладают способностью оптимизировать цитокиновый статус в клеточном микроокружении после их локальной трансплантации в органы или ткани [12, 19].

Лечение животных с заболеваниями и повреждениями роговицы глаза при выраженной несостоятельности процессов регенерации, приводящей в исходе к значительному снижению остроты зрения и слепоте, остается актуальной проблемой ветеринарной офтальмологии [24].

В настоящее время, ведется поиск эффективных способов, которые позволили бы успешно лечить пациентов с повреждениями роговицы и

конъюнктивы, фиброзирующими кератоконъюнктивитами, незаживающими язвами роговицы, тяжелыми формами синдрома сухого глаза.

Для лечения животных с подобными состояниями используют, как известно, комплексную терапию, включающую в себя применение антибиотиков, противовоспалительных, противовирусных лекарственных средств, а также препаратов, стимулирующих репаративные процессы в повреждённом эпителии роговицы.

Методом этиотропной терапии является использование кератопротекторов - препаратов, стимулирующих регенеративные потенции роговицы. Однако, при поражениях роговицы, затрагивающих более глубокие слои стромы, эффективность кератопротекторов не всегда высока, ввиду их непосредственного контакта с дегенерировавшими тканями роговицы в зоне дефекта, что приводит, к последующему рецидивированию патологического процесса. Это влечет за собой ряд сложных хирургических операций, вплоть до пересадки роговицы, однако тактика её проведения требует достаточно глубокого наркоза, который часто противопоказан животным гериатрического периода онтогенеза, а также имеющим врождённые и приобретённые системные патологии [42].

Одной из новейших методик, представляющих альтернативу кератопротекторам, является использование клеточных технологий. Вместе с тем, многие сведения в данной области медицины являются фрагментарными и противоречивыми. Следует подчеркнуть, что в ветеринарной офтальмологии клеточные технологии до настоящего времени используют только в клинических исследованиях, не имеющих экспериментального обоснования, о чем свидетельствует проведенный нами анализ отечественной и зарубежной литературы [75, 76, 82, 84, 94, 98, 103, 104, 118, 123, 124, 127].

Исходя из вышеизложенного, нами на моделях травматического повреждения роговицы у кролика было предпринято исследование по оценке

возможности применения стромально-васкулярной фракции клеток, мезенхимных стволовых клеток жировой ткани и лимбальных стволовых клеток в регенеративной медицине, путём введения их суспензированной взвеси субконъюнктивально.

Цель настоящего экспериментального исследования - установить закономерности и особенности заживления моделированного повреждения роговицы у кролика при использовании разных типов клеточных продуктов.

Для достижения поставленной цели было необходимо решение ряда конкретных задач:

1. В условиях моделированного повреждения роговицы у кролика выявить пролиферативный потенциал клеточных продуктов следующих типов: стромально-васкулярной фракции; аллогенных стволовых клеток лимба; аллогенных стволовых клеток жировой ткани.

2. Установить сравнительные морфологические показатели динамики репаративной регенерации поврежденного эпителия роговицы при использовании клеточных продуктов указанных типов;

3. На основании клинико-морфологических данных, определить тип клеточного продукта, оптимальный по регенераторным свойствам;

4. Выявить источники репаративного морфогенеза роговицы в условиях экспериментального повреждения и обосновать применение стволовых клеток как индуктора клеточного пролиферативного потенциала ткани роговицы при замещении ее дефекта;

5. Провести клиническую апробацию терапевтической эффективности стволовых клеток при лечении животных с повреждениями роговицы и установить целесообразность и эффективность применения их трансплантации при данной патологии.

Научная новизна

Обоснована и экспериментально подтверждена возможность использования клеточных продуктов разных типов в ветеринарной офтальмологии для восстановления анатомической целостности роговицы, что подтверждается установленными у подопытных животных ее морфологическими характеристиками.

Впервые оценено влияние стромально-васкулярной фракции на регенерацию роговицы при ее повреждениях у экспериментальных животных.

Результаты гистологического исследования позволяют заключить, что скорость и качество заживления дефекта роговицы глаза у животных после применения клеточных продуктов превосходят таковые у животных при спонтанном заживлении, что может свидетельствовать о пролиферативных потенциях стволовых клеток.

Теоретическая и практическая значимость исследования

Установлено, что изучаемые типы клеточных продуктов после их трансплантации экспериментальным животным восстанавливают анатомическую целостность и функциональную состоятельность тканей роговицы в области повреждения. Оценено влияние клеточных продуктов и разработаны критерии оценки течения репаративного процесса.

На основании данных микроморфометрии выявлены морфологические показатели, подтверждающие, что клеточные продукты могут выступать в качестве индуктора репаративной регенерации повреждённых тканей глаза.

Установлены закономерности и особенности регенераторного потенциала тканей роговицы в условиях моделированного повреждения с последующей трансплантацией клеточных продуктов.

Сравнительный анализ регенераторного влияния изученных нами разных типов стволовых клеток показал, что эпителизация зоны дефекта роговицы у животных после введения лимбальных стволовых клеток происходила активнее в сравнении с животными, которым вводили другие клеточные продукты.

Представлено научное обоснование терапевтической эффективности клеточных продуктов различных типов при повреждениях роговицы различной этиологии.

Методология и методы исследования

Использовали современный методологический подход, направленный на установление закономерностей репаративной регенерации поврежденных тканей в области индуцированной травмы.

Полученные результаты эксперимента по применению стволовых клеток в ветеринарной офтальмологии являются базовыми для использования в практической ветеринарной медицине при регенеративной терапии повреждений роговицы глаза и могут быть использованы в клинической регенеративной медицине при восстановлении анатомической целостности роговицы в условиях ее повреждений.

Положения, выносимые на защиту:

1. Закономерности и особенности репаративного гистогенеза ткани роговицы в условиях моделирования ее повреждения.

2. Морфологические показатели динамики репаративной регенерации поврежденного эпителия роговицы в сравнительной оценке восстановительных свойств.

3. Клеточные продукты, как индуктор пролиферативного потенциала тканей роговицы при замещении ее дефекта.

4. Клиническая апробация трансплантации стволовых клеток и установление их терапевтической эффективности у животных при повреждениях роговицы.

Степень достоверности, апробация и публикация результатов

исследования

Объектом исследования являлись 55 кроликов (110 глаз) породы Серый великан, массой 2,5 - 3,0 кг, в возрасте от 8 до 10 месяцев, подобранных по принципу аналогов. Животных предварительно карантинировали в течение 7 дней, проводили ежедневный клинический осмотр. Для проведения исследований было сформированно по принципу аналогов 5 групп животных.

В работе использован комплексный методический подход, включающий экспериментальное моделирование повреждения роговицы, офтальмическое обследование зоны повреждения, гематологические, морфологические методы исследования и статистический анализ полученных цифровых данных.

Материалы исследований представлены на XIX Московском международном ветеринарном конгрессе в рамках секции студентов, аспирантов и молодых ученых (Москва, 2011); III Международной Научно-практической конференции «Научно-техническое творчество молодежи -

путь к обществу, основанному на знаниях» в рамках XI Всероссийской выставки научно-технического творчества молодежи НТТМ-2011, 30й-Международной Гаванской выставке-ярмарке «FIHAV» (Куба, Гавана, 2012), Ежегодной научно-практической конференции МГАВМиБ имени К.И. Скрябина «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, зоотехнии и биотехнологии», проводимой в рамках Всероссийского фестиваля науки (Москва, 2012), Всероссийском конкурсе на лучшую научную работу среди студентов, аспирантов и молодых ученых высших учебных заведений Минсельхоза России в номинации «Ветеринарные науки» - первое место, (Москва, 2013), Международной выставке Salon L'Etudiant (Франция, Париж, 2014); Ежегодной научно-практической конференции МГАВМиБ имени К.И. Скрябина «Актуальные проблемы ветеринарной медицины, зоотехнии и биотехнологии», проводимой в рамках Всероссийского фестиваля науки (Москва, 2015), XXIV Московском международном ветеринарном конгрессе в рамках секции студентов, аспирантов и молодых ученых (Москва, 2015); Санкт-Петербургской ветеринарной офтальмологической конференции (Санкт-Петербург, 2015), Конференции «Outlook of Stem cells application in veterinary ophthalmology» (Перу, Лима, 2016).

По результатам исследования опубликовано 4 научных статьи, из них 3 - в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Объем и структура диссертации

Рукопись диссертации изложена на 99 страницах машинописного текста (без учета приложений), иллюстрирована 28 рисунками, 8 таблицами, состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов собственных исследований и их обсуждения, заключения, рекомендаций по использованию научных выводов, сведений о практическом использовании результатов. Список литературы включает 134 источников, из них 45 отечественных и 89 зарубежных.

Заключение диссертации по теме «Разведение, селекция, генетика и воспроизводство сельскохозяйственных животных», Вологжанина, Наталья Владимировна

Заключение

1. На основании проведенных исследований экспериментально обоснована возможность использования разных типов клеточных продуктов в ветеринарной офтальмологии для лечебной коррекции повреждений роговицы, что подтверждается установленными нами ее клинико-морфологическими характеристиками у животных.

2. В экспериментальный период наблюдений у животных, подвергшихся регенеративной терапии клеточными продуктами, воспалительная реакция на травму была менее выражена, чем в контроле, в поврежденных тканях активно протекали пролиферативные процессы, что косвенно указывает на индукцию их заживления стволовыми клетками.

3. Результаты гистологического исследования позволяют заключить, что скорость и качество заживления дефекта роговицы глаза у подопытных животных превосходили таковые у контрольных, что согласуется с морфологическими линейными показателями его эпителизации у экспериментальных животных на 14 сутки наблюдений (от 6,1±0,3 в подопытной группе против 4,5±1,5 мм в контрольной), что может свидетельствовать о пролиферативных потенциях стволовых клеток.

4. Сравнительный анализ регенераторного влияния разных типов стволовых клеток показал что эпителизация зоны дефекта роговицы у животных после введения лимбальных СК происходила активнее и в более короткие сроки в сравнении с животными, которым вводили другие клеточные продукты. Лидером по количественному представительству эпителиальных слоёв явились особи, которым вводили стромально-васкулярную фракцию (5 слоев клеток в центральной части роговицы, при анатомической норме - 6 слоев), а по толщине роговицы в зоне

повреждения - стволовые клетки лимба (345±12,97 в опыте и 379±17,15 у интактных животных).

5. Клиническое наблюдение животных в динамике позволило установить, что после введения стволовых клеток лимба было более интенсивное развитие воспалительной реакции, раннее созревание грануляционной ткани, быстрая трансформациея ее в соединительную, активизация процесса эпителизации дефекта, формирование органоспецифического регенерата и сокращение общих сроков заживления.

6. Установлено, что после трансплантации стромально-васкулярной фракции экспериментальным животным восполняют полнослойный дефект роговицы с восстановлением ее структурной полноценности. В области индуцированного повреждения при трансплантации стволовых клеток по сравнению с самопроизвольным заживлением, уменьшается степень выраженности воспалительной реакции, ускоряется процесс восстановления поврежденных тканей и прозрачности роговицы. Наилучший результат по степени прозрачности роговицы после ее восстановления выявлен у животных с локальной трансплантацией стволовых клеток лимба ( от 0 до 4 баллов по шкале Войно-Ясенецкого).

7. Клиническая апробация терапевтической эффективности клеточных продуктов на пяти собаках с поверхностными повреждениями роговицы подтверждает эффективность применения стволовых клеток лимбальной и жировой ткани.

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ

Полученные данные об особенностях морфологического и морфометрического строения роговицы кролика вносят вклад в сравнительную межвидовую морфологию животных и могут быть использованы в учебном процессе на кафедрах анатомии, гистологии, звероводства, биологии и патологии мелких домашних, лабораторных и экзотических животных, ветеринарной хирургии, а так же при написании соответствующих разделов учебников, учебных пособий и монографий.

Полученные результаты эксперимента по применению стволовых клеток разных типов являются базовыми для использования в практической ветеринарной медицине при терапии повреждений роговицы глаза.

Трансплантация клеточных продуктов может быть показана животным, при состояниях, сопровождающихся синдромом лимбальной недостаточности, а так же при кератопластике высокого риска с целью улучшения приживления трансплантата за счет улучшения пролиферации и миграции собственных стволовых клеток роговицы из их биологического пула.

СВЕДЕНИЯ О ПРАКТИЧЕСКОМ ИСПОЛЬЗОВАНИИ РЕЗУЛЬТАТОВ

Результаты научных исследований используются в учебном процессе (при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий) и научно-исследовательской работе на кафедрах анатомии и гистологии имени профессора А.Ф. Климова ФБГОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина; анатомии и хирургии Воронежского государственного аграрного университета имени Петра I, морфологии, физиологии и патологии Оренбурского аграрного университета, анатомии, акушерства и хирургии Самарской государственной сельскохозяйственной академии, анатомии и ветеринарной хирургии Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана.

Полученные результаты исследований внедрены в лечебный процесс отделения офтальмологии Инновационного ветеринарного центра Московской ветеринарной академии.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ

1. Вологжанина Н.В. Перспективы применения стволовых клеток различных типов в ветеринарной офтальмологии (Экспериментальное исследование) / Слесаренко Н.А., Ставицкий С.Б., Еремин И.И. // Естественные и технические науки. - 2013. - №3. - С. 105

2. Вологжанина Н.В. Морфологическое обоснование применения стволовых клеток разных типов в условиях моделированного дефекта роговицы глаза у кролика // Морфология. - 2016. - №3. - С. 52

3. Вологжанина Н.В. Морфологическая и функциональная характеристика регенерации роговицы после применения аутологичной стромально-васкулярной фракции. Экспериментальное исследование. // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2017. - №4. - С. 6

4. Вологжанина Н.В. Клеточные технологии в ветеринарной офтальмологии // Р^Совет. - 2017. - №2. -С. 17

5. Вологжанина Н.В. Аутотрансплантация лимба при унилатеральном симблефароне у кошек /Н.А. Слесаренко, Н.В. Вологжанина // Сборник трудов VI всероссийской межвузовской конференции по ветеринарной хирургии 2016 г. ФГБОУ ВО МГАВМиБ-МВА имени К.И. Скрябина. -2016.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Вологжанина, Наталья Владимировна, 2017 год

Список использованной литературы:

1. Аветисов С.Э., Суббот А.М., Антохин А.И. и др. Персонализированная клеточная терапия в офтальмологии. I. Метод получения и цитофенотип аутогенного клеточного продукта //Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2011. - Т. YI, №2. - С. 3842.

2. Аветисов С.Э., Суббот А.М., Антохин А.И. и др. Персонализированная клеточная терапия в офтальмологии. II. Цитокиновый профиль аутогенного клеточного материала //Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2012. - Т. YII, №1. - С. 49-53.

3. Александрова М.А. Нейротрансплантация для терапии мозга? // Природа. - 2007. - №10. - С. 18-23.

4. Александрова М.А., Сухих Г.Т., Чайлахян Р.К. и др. Сравнительный анализ дифференцировки и поведения нейральных и мезенхимальных стволовых клеток человека in vitro и in vivo // Клеточные технологии в биологии и медицине. - 2006. - №1. - С. 44-52.

5. Берсенев А.В. Клеточная трансплантология - история, современное состояние и перспективы // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2005. - №1. - С. 32-33.

6. Борзенок С. А., Малюгин Б. Э., Измайлова С. Б. Изучение биосовместимости полимерных материалов (полиметилметакрилат и бисфенол-А-диглицидилметакрилат) на модели культуры клеток стромы роговицы // Офтальмохирургия: Теоретический и научно-практический журнал. 2016. № 4. С. 16-19.

7. Борзенок С. А., Тонаева Х. Д., Онищенко Н. А. Индукция локальной иммунной толерантности с помощью лимбальной сотрансплантации при кератопластике высокого риска (обзор литературы) // Офтальмохирургия: Теоретический и научно-практический журнал. 2011. № 2. С. 85-88.

8. Борзенок С.А., Тонаева Х.Д., Комах Ю.А., Мороз З.И., Ковшун Е.В. Оценка клинической эффективности сотрансплантации аллогенных лимбальных трансплантатов с супрессивными свойствами при кератопластике высокого риска // Федоровские чтения-2012: 10-я Всеросс.науч. конф. с международ.участием: Сб. тез. М., 2012. С. 132133.

9. Борзенок С.А., Тонаева Х.Д., Онищенко Н.А., Мороз З.И., Малюгин Б.Э., Крашенинников М.Е., Комах Ю.А., Ролик О.И. Перспективы использования культивированных лимбальных стволовых/прогениторных клеток с иммуносупрессивными свойствами при кератопластике высокого риска // Федоровские чтения-2009: 8-я Всеросс. науч. конф. С международ. участием: Сб. тез. М., 2009. С. 536-537.

10.Борисов К. Стволовые клетки. Правда и мифы. М.: Наука и техника, 2006. С. 275.

11.Викторов И.В., Сухих Г.Т. Медико-биологические аспекты применения стволовых клеток. - Вестник РАМН. - 2002. - №4. - С. 24-30.

12.Войно-Ясенецкий В.В. Разрастание и изменчивость тканей глаза при его заболеваниях и травмах. Киев - Вища школа, 1979. С. 224.

13.Гундорова Р.А., Бордюгова Г.Г., Южаков А.М. Лечение и профилактика осложнений ожогов органа зрения: Метод. рекоменд. М., 1982. С.11.

14. Деев Р.В. Научное наследие Александра Максимова и современность // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2005. - №1. - С. 4-8.

15. Деев Р.В. Трансплантация фоторецепторных клеток для коррекции слепоты в эксперименте // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2007. - Т. II, №1. - С. 13-14.

16.Деев Р.В. Профессор Александр Александрович Максимов: эволюция идей // Гены & клетки. Т. IX. № 2. 2014. С. 2-14.

17. Дерябин Д. Г. Функциональная морфология клетки. М.: КДУ, 2005. С. 320.

18.Дронов М.М. О роговичных трансплантатах. Офтальмохирургия и терапия. Т. 2. СП6, 2002.

19.Дыгай А.М., Зюзьков Г.Н. Клеточная терапия: новые подходы // Наука в России - Москва: Изд-во «Наука», 2009. - Т. 169. - №1. - С. 4-8.

20. Калиновский А. А. Актуальные проблемы применения мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток в современной ветеринарной медицине // Журнал "Ветеринария Кубани". 2011. № 3. С. 28-31.

21.Котенко К.В., Еремин И.И., Мороз Б.Б., Бушманов А.Ю., Надежина Н.М., Галстян И.А., Гринаковская О.С., Аксененко А.В., Дешевой Ю.Б., Лебедев В.Г., Слободина Т.С., Жгутов Ю.А., Лаук-Дубицкий С.Е., Еремин П.С. Клеточные технологии в лечении радиационных ожогов: опыт ФМБЦ им.Бурназяна // КТТИ. 2012. № VII(2). С. 97-110.

22.Краснова М. Стволовые клетки. За и против. СПб.: Диля, 2006. С. 8990.

23.Кухарчук А.Л., Радченко В.В., Сирман В.М. Регенеративная медицина: Направления, достижения, проблемы и перспективы развития. Часть II: Стволовые пространства // Украшский медичний часопис. 2004. № 3 (41). C. 99-107.

24.Лагарькова С.В., Шилов А.Г., Губанова Н.И. и др. Гистогенез эмбриональных стволовых клеток человека in vitro в компоненты сетчатки глаза // Клеточные технологии в биологии и медицине. - 2011. - №4. - С. 203-206.

25.Либман Е.С., Кремкова Е.В., Иофан К.Л. Эпидемиология ожогов глаз и инвалидности вследствие ожоговой болезни // Новое в лечении ожогов глаз: Тез. докл. симпоз. с участием иностранных специалистов. М., 1989. С. 76-77.

26.Лопатина Т.В., Калинина Н.И., Ревищин А.В. и др. Индукции нейральной дифференцировки стромальных клеток жировой ткани // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2008. - Т. IY, №3. - С. 50-54.

27.Макаров П.В., Гундорова Р.А., Ходжабекян Г.В. и др. Трансплантация аллогенных культивированных клеток в лечении экспериментальных глубоких ожоговых дефектов роговицы у кроликов. Британско-российское совещание о сотрудничестве с Европейской Комиссией «Стволовые клетки: законодательство, исследования и инновации. Международные перспективы сотрудничества» (М., 15 марта 2007): Тез. Докл. - Интернет-журнал «Коммерческая биотехнология» http://www.cbio.ru/. - С. 123.

28.Малюгин Ю. Э., Борзенок С. А., Мушкова И. А. Морфологическое исследование биосовместимости интракорнеальных полимерных линз с роговицей человека в эксперименте in vitro // Офтальмохирургия: Теоретический и научно-практический журнал. 2016. № 4. С. 51-60.

29.Масгутов Р.Ф., Салафутдинов И.И., Масгутова Г.А. и др. Аутогенные мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки из жировой ткани при лечении дефектов мягких тканей: результаты клинического исследования фазы I // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2010. - Т. V., №3. - С. 40.

30.Некрасов Е.Д., Лебедева О.С., Васина Е.М. и др. Платформа для изучения болезни Гентингтона на основе индуцированных плюрипотентных стволовых клеток // Анналы клин. И эксп. Неврол. -2012. - Т. 6., №4. - С. 30-35.

31.Пальцев М.А., Терских В.В., Васильев А.В. Что есть стволовая клетка // Биология стволовых клеток и клеточные технологии. / Под ред. М.А. Пальцева. Т. 1. М.: Медицина, Шико, 2009. С. 13-31.

32.Парфенова Е.В., Трактуев Д. О., Цоколаева З.И. и др. Стромальные клетки жировой ткани - ангиогенные свойства и терапевтический

потенциал. Британско-российское совещание о сотрудничестве с Европейской комиссией «Стволовые клетки: законодательство, исследования и инновации. Международные перспективы сотрудничества» (М., 15 марта 2007): Тез. Докл. - Интернет-журнал « Коммерческая биотехнология» http://www.cbio.ru/. - С. 140-141.

33.Поздеева Н. А., Тонаева Х. Д., Борзенок С. А. Аллолимбальная трансплантация в лечении пациентов с недостаточностью лимбальных стволовых клеток при врожденной аниридии // Медицинский альманах: рецензируемый медицинский научно-практический журнал. 2014. № 1. С. 74-77.

34.Репин В.С., Сабурина И.Н. Обратимые эпителио-мезенхимальные трансформации клеток в эмбриогенезе и постнатальном обновлении тканей // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2008. -Т. III., №3. - 64-73.

35.Ричардсон Л. Смит Р. Стволовые клетки в ветеринарии - попытки стимуляции регенерации сухожилий у лошадей после травмы / Отдел ветеринарных клинических наук, Королевского колледжа ветеринарии, Лондонский университет, Хартфордшир АЛ9 7TA, Великобритания // [Электронный ресурс] URL: http://www.PubMed.com.

36. Румянцев А.Г., Масчан А. А. Трансплантация гемопоэтических стволовых клеток у детей. М.: «МИА», 2003. 910 с.

37.Семченко В.В., Ерениев С.И., Степанов С.С. и др. Регенеративная биология и медицина. Книга I. Генные технологии и клонировании / Под ред. В.П. Пузырева, К.Н. Ярыгина, В.Н. Ярыгина, В.В. Семченко. - Омск-Москва-Томск: Омская областная типография, 2012. - 296 с.

38.Смолянинов А.Б., Жаров Е.В., Мовчан К.Н. и соавт. Клеточные и генные технологии в трансплантационной тканевой инженерии. // АГ-инфо (Информационный журнал по акушерству и гинекологии). 2008. № 4. С. 11-19.

39. Тонаева Х.Д., Борзенок С.А., Онищенко Н.А., Крашенинников М.Е., Комах Ю.А., Мороз З.И., Ковшун Е.В., Волкова О.С., Ролик О.И., Шипунова А.В. Способ выделения и органного культивирования аллогенных лимбальных мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток глаза с иммуносупрессивными свойствами // Актуальные вопросы тканевой и клеточной трансплантологии: Сб. тез. симпозиума. СПб., 2010. С. 129-130.

40.Ченцова Е.В. Система патогенетически обоснованного лечения ожоговой травмы глаз. Дис. Е д-ра мед. наук. М., 1996. С. 40.

41.Шаманская Т.В., Астрелина Т.А., Подколзина Э.А. и др. Инспользование пуповинной крови при проведении аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток у детей (опыт работы Московского банка стволовых клеток) // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия. - 2010. Т. V., №2. - С. 29-35.

42.Шилкин А.Г. Новые технологии в микрохирургии глаза мелких домашних животных // Материалы восьмого международного конгресса по проблемам ветеринарной медицины мелких домашних животных. М., 2000. С. 127-129.

43.Шумаков В.И., Онищенко Н.А., Крашенинников М.Е. и др. Костный мозг как источник получения мезенхимальных клеток для восстановительной терапии поврежденных органов // Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2002. № 4. С. 7-11.

44.Ярыгин В.Н. Тканевые клеточные системы - основа биомедицинских клеточных технологий нового поколения: контуры идеологии // Вестник РАМН. - 2004. - №9. - С. 12-19.

45.Ярыгин К.Н. Роль резидентных и циркулирующих стволовых клеток в физиологической и репаративной регенерации // Патол. Физиол. Эксп. Тер. - 2008. - №1 - С. 2-8.

46.Adel N., Gabr H. Stem cell therapy of acute spinal cord injury in dogs. Third World Congress of Renerative Medicine // Regen Med. 2007. No. 2 (5). P. 523.

47.Agung M., Ochi M., Yanada S., Adachi N., Izuta Y., Yamasaki T., Toda K. Mobilization of bone marrow-derived mesenchymal stem cells into the injured tissues after intraarticular injection and their contribution to tissue regeneration // Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2006. No. 14. P. 1307-1314.

48.Alhadlaq A, Mao J.J. Mesenchymal stem cells: isolation and therapeutics // Stem Cells Dev. 2004. No. 13(4). P. 436-448.

49.Alwan W.H., Carter S.D., Bennett D., Edwards G.B. Glycosaminoglycans in horses withosteoarthritis // Equine Vet J. 1991. No. 23. P. 44-47.

50.Arends B., Spee B., Schotanus B.A., Roskams T., van den Ingh T.S., Penning L.C., Rothuizen J. (2009) In vitro differentiation of liver progenitor cells derived from healthy dog livers // Stem Cells Dev. 2009. No. 18. P. 351-358.

51.Arends B., Vankelecom H., Vander B.S., Roskams T., Penning L.C., Rothuizen J., Spee B. The dog liver contains a "side population" of cells with hepatic progenitor-like characteristics // Stem Cells Dev. 2009. No. 18. P. 343-350.

52.Barry F.P. Biology and clinical applications of mesenchymal stem cells // Birth Defects Res C Embryo Today. 2003. No. 69(3). P. 250-256.

53.Barry F.P., Murphy J.M. Mesenchymal stem cells: clinical applications and biological characterization // Int J Biochem Cell Biol. 2004. No. 36(4). P. 568-584.

54.Black L.L., Gaynor J., Adams C., Dhupa S., Sams A.E., Taylor R., Harman S., Gingerich D.A., Harman R. Effect of intraarticular injection of autologous adipose-derived mesenchymal stem and regenerative cells on clinical signs of chronic osteoarthritis of the elbow joint in dogs // Vet Ther. 2008. No. 9(3). P. 192-200.

55.Black L.L., Gaynor J., Gahring D., Adams C., Aron D., Harman S., Gingerich D.A., Harman R. Effect of adipose-derived mesenchymal stem and regenerative cells on lameness in dogs with chronic osteoarthritis of the coxofemoral joints: a randomized, double-blinded, multicenter, controlled trial // Vet Ther. 2007. No. 8(4). P. 272-284.

56.Bosnakovski D., Mizuno M., Kim G., Takagi S., Okumura M., Fujinaga T. Isolation andmultilineage differentiation of bovine bone marrow mesenchymal stem cells // Cell Tissue Res. 2005. No. 319. P. 243-253.

57.Brehm W. Equine mesenchymal stem cells for the treatment of tendinous lesions in the horse - cellular, clinical and histologic features // In: International Bone-Tissue-Engineering Congress. bone-tec, 2008.

58.Brehm W. Stammzellen, Stammzelltherapie - Begriffserklarung, Zusammenhange und mo'gliche klinische Anwendungen // Pferdeheilkunde. 2006. No. 22. P. 259-267.

59.Bruder S.P., Kraus K.H., Goldberg V.M., Kadiyala S. The effect of implants loaded withautologous mesenchymal stem cells on the healing of canine segmental bone defects // J Bone Joint Surg Am. 1998. No. 80. P. 985-996.

60.Caplan A.I., Dennis J.E. // Cell Biochem. 2006. No. 98(5). P. 1076-1084.

61.Cavazzana-Calvo M., Lagresle C., Andre-Schmutz I., Hacein-Bey-Abina S. The bone marrow: a reserve of stem cells able to repair various tissues? // Ann Biol Clin (Paris). 2004. No. 62(2). P. 131-138.

62.Conrad S., Nufer F., Mundle K., Ihring J., Seid K., Walliser U., Skutella T. MesenchymaleStammzellen aus dem Fettgewebe des Pferdes Isolation, Expansion und Charakterisierung. 18. // Tagung uber Pferdekrankheiten im Rahmen der Equitana. 119. 2009, 20-3-2009.

63.Crovace A., Staffieri F., Rossi G., Francioso E. Implantation of autologous bone marrowmononuclear cells as a minimal invasive therapy of Legg-Calve'-Perthes' disease in the dog. // World Conference on Regenerative Medicine. Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6 (Suppl. 2).

64.Csaki C., Matis U., Mobasheri A., Ye H., Shakibaei M. Chondrogenesis, osteogenesis and adipogenesis of canine mesenchymal stem cells: a biochemical, morphological and ultrastructural study // Histochem Cell Biol. 2007. No. 128. P. 507-520.

65.Dahlgren L.A. Fat-derived mesenchymal stem cells for equine tendon repair. In: WorldConference on Regenerative Medicine // Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6 (Suppl. 2).

66.Dasari V.R., Spomar D.G., Gondi C.S., Sloffer C.A., Saving K.L., Gujrati M., Rao J.S., Dinh D.H. Axonal remyelination by cord blood stem cells after spinal cord injury // J Neurotrauma. 2007. No. 24. P. 391-410.

67.Di Nicola M., Carlo-Stella C., Magni M., Milanesi M., Longoni P.D., Matteucci P., Grisanti S., Gianni A.M. Human bone marrow stromal cells suppress T-lymphocyte proliferation induced by cellular or nonspecific mitogenic stimuli // Blood. 2002. No. 99. P. 3838-3843.

68.Durgam S.S., Stewart A.A., Caporali E.H., Karlin W.M., Stewart M.C. Effect of tendonderivedprogenitor cells on a collagenase-induced model of tendinitis in horses. In: World Conference on Regenerative Medicine // Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6 (Suppl.2), Nov 2009.

69.El Tamer M.K, Reis R.L. Progenitor and stem cells for bone and cartilage regeneration // J Tissue Eng Regen Med. 2009. No. 3. P. 327-337.

70.Ferris D et al. Clinical evaluation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells innaturally occurring joint disease. // World Conference on Regenerative Medicine. Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6 (Suppl.2).

71.Fortier L.A. Stem cells: classifications, controversies, and clinical applications. // Vet Surg. 2005. No. 34. P. 415-423.

72.Fortier L.A., Nixon A.J., Williams J., Cable C.S. Isolation and chondrocytic differentiation of equine bone marrow-derived mesenchymal stem cells // Am J Vet Res. 1998. No. 59. P. 1182-1187.

73.Gelatt K., Samuelson D. Recurrent corneal erosions and epithelial dystrophy in the Boxer dog // J Am Anim Hosp Assoc. 1982. P. 453-460.

74.Giovannini S., Brehm W., Mainil-Varlet P., Nesic D. Multilineage differentiation potential of equine blood-derived fibroblast-like cells. // Differentiation. 2008. No. 76. P. 118-129.

75.Goldberg MF, Bron A.J. Limbal palisades of Vogt // Trans Am Ophthalmol Soc. 1982. No. 80. P. 155-171.

76.Goodwin J., Bankhurst A., Messner R. Suppression of human T-cell mitogenesis by prostaglandin. Existence of a prostaglandin producing suppressor cell // J. Exp. Med. 1977. No. 146. P. 1719-1734.

77.Guest D.J., Smith M.R., Allen W.R. Monitoring the fate of autologous and allogeneicmesenchymal progenitor cells injected into the superficial digital flexor tendon of horses: preliminary study // Equine Vet. 2008. No. 40. P. 178-181.

78.Hardy S.A., Maltman D.J., Przyborski S.A. Mesenchymal stem cells as mediators of neural differentiation // Curr. Stem Cell Res. Ther. 2008. No. 3(1). P. 43-52.

79.Hoynowski S.M., Fry M.M., Gardner B.M., Leming M.T., Tucker J.R., Black L., Sand T., Mitchell K.E. Characterization and differentiation of equine umbilical cord-derived matrix cells // Biochem Biophys Res Commun. 2007. No. 362. P. 347-353.

80.Huss R., Lange C., Weissinger E.M., Kolb H.J., Thalmeier K. Evidence of peripheral blood-derived, plastic-adherent CD34(-low) hematopoietic stem cell clones with mesenchymal stem cell characteristics // Stem Cells. 2000. No. 18. P. 252-260.

81.Jiang Y., Vaessen B., Lenvik T., Blackstad M., Reyes M., Verfaillie C.M. Multipotent progenitor cells can be isolated from postnatal murine bone marrow, muscle, and brain // Exp Hematol. 2002. No. 30. P. 896-904.

82.Jorgensen C., Djouad F., Apparailly F. et al. Engineering mesenchymal stem cells for immunotherapy // Gene Ther. 2003. No. 10. P. 928-931.

83.Kadiyala S., Young R.G., Thiede M.A., Bruder S.P. Culture expanded canine mesenchymal stem cells possess osteochondrogenic potential in vivo and in vitro // Cell Transplant. 1997. No. 6. P. 125-134.

84.Kemp K., Gordon D., Wraith D.C. et al. Fusion between human mesenchymal stem cells and rodent cerebellar Purkinje cells. Neuropathol // Appl. Neurobiol. 2011. No. 37(2). P. 166-178.

85.Kirschner S. Persistent Corneal Ulcers: What to do when ulcers wont heal? // Vet Clin N Am. 1990. [Электронный ресурс] URL: http://www.PubMed.com.

86.Koch T.G., Berg L.C., Betts D.H. Concepts for the clinical use of stem cells in equine medicine // Can Vet J. 2008. No. 49. P. 1009-1017.

87.Koch T.G., Heerkens T., Thomsen P.D., Betts D.H. Isolation of mesenchymal stem cells from equine umbilical cord blood // BMC Biotechnol. 2007. No. 7. P. 26.

88.Koerner J., Nesic D., Romero J.D., Brehm W., Mainil-Varlet P., Grogan S.P. Equine peripheral blood-derived progenitors in comparison to bone marrow-derived mesenchymal stem cells // Stem Cells. 2006. No. 24. P. 1613-1619.

89.Kon E. et al. Autologous bone marrow stromal cells loaded onto porous hydroxyapatiteceramic accelerate bone repair in critical-size defects of sheep long bones // J Biomed Mater Res. 2000. No. 49. P. 328-337.

90.Krampera M., Glennie S., Dyson J., Scott D., Laylor R., Simpson E., Dazzi F. Bone marrow mesenchymal stem cells inhibit the response of naive and memory antigen-specific T cells to their cognate peptide // Blood. 2003. No.101. P. 3722-3729.

91.Kulterer B., Friedl G., Jandrositz A., Sanchez-Cabo F., Prokesch A., Paar C., Scheideler M., Windhager R., Preisegger K.H., Trajanoski Z. Gene expression profiling of human mesenchymal stem cells derived from bone marrow during expansion and osteoblast differentiation // BMC Genomics. 2007. No. 8. P. 70.

92.Kuroda R., Usas A., Kubo S., Corsi K., Peng H., Rose T., Cummins J., Fu F.H., Huard J. Cartilage repair using bone morphogenetic protein 4 and muscle-derived stem cells // Arthritis Rheum. 2006. No.54. P. 433-442.

93.Lim J.H., Byeon Y.E., Ryu H.H., Jeong Y.H., Lee Y.W., Kim W.H., Kang K.S., Kweon O.K. Transplantation of canine umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells in experimentallyinduced spinal cord injured dogs // J Vet Sci. 2007. No.8. P. 275-282.

94.Marshman E., Booth C., Potten C.S., The intestinal epithelial cells // BioEssays. 2002. No. 24. P. 91-98.

95.Martin D.R., Cox N.R., Hathcock T.L., Niemeyer G.P., Baker H.J. Isolation and characterization of multipotential mesenchymal stem cells from feline bone marrow // Exp Hematol. 2002. No. 30. P. 879-886.

96.Matsubara M., Zieske J.D., Fini M.E. Mechanism of basement membrane dissolution preceding corneal ulceration // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1991. No. 32. P. 3221-3237.

97.McDuffee L. Osteoprogenitors in bone repair. In: World Conference on RegenerativeMedicine // Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6.

98.Minakuchi R., Wacholtz M., Davis L. et al. Delineation of the mechanism of inhibition of human T cell activation by PGE2 // J. Immunol. 1990. No. 145. P. 2616-2625.

99.Moore M.A. Cytokine and chemokine networks influencing stem cell proliferation, differentiation, and marrow homing // J Cell Biochem Suppl. 2002. No. 38. P. 29-38.

100. Morgan R., Abrams K. A comparison of six different therapies for persistent corneal erosions in dogs and cats // Vet Comp Ophthalmol. 1994 P. 38-43.

101. Murphy C.J., Marfurt C.F., McDermott A., et al. Spontaneous chronic corneal epithelial defects in dogs: Clinical features, innervation,and effect of topical SP, with or without IGF-1 // Invest Ophthalmol Vis Sci. 2001.

102. Nakahata T. Cytokine regulation of hemopoietic stem cell proliferation // Gan To Kagaku Ryoho. 1991. No. 18(8). P. 1235-1242.

103. New Technique May Create Embryonic Stem Cells Without Using Embryos // Wall Street Journal. 2001.P. 710-719.

104. Newman, L., Transplanted Stem Cells May Aid AMD Patients // Ophthalmology Times. 2001. P. 387-395.

105. O'Malley D.P., Kim Y.S., Perkins S.L. et al. Morphologic and immunohistochemical evaluation of splenic hematopoietic proliferations in neoplastic and benign disorders // Mod. Pathol. 2005. No. 18. P. 1550-1561.

106. Pacini S., Spinabella S., Trombi L., Fazzi R., Galimberti S., Dini F., Carlucci F., Petrini M. Suspension of bone marrow-derived undifferentiated mesenchymal stromal cells for repair of superficial digital flexor tendon in race horses // Tissue Eng. 2007. No. 13. P. 2949-2955.

107. Passeri S. et al. Isolation and expansion of equine umbilical cord-derived matrix cells (EUCMCs) // Cell Biol Int. 2009. No. 33. P. 100-105.

108. Pittenger M.F., Mackay A.M., Beck S.C., Jaiswal R.K., Douglas R., Mosca J.D., Moorman M.A., Simonetti D.W., Craig S., Marshak D.R. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells // Science. 1999. No. 284. P. 143-147.

109. Prockop D.J., Oh J.Y. Mesenchymal stem/stromal cells (MSCs): role as guardians of inflammation // Mol. Ther. 2012. No. 20(1). P. 14-20.

110. Prosper F., Verfaillie C.M. Regulation of hematopoiesis through adhesion receptors // J Leukoc Biol. 2001. No. 69(3). P. 307-316.

111. Quesenberry P., Habibian H., Dooner M., McAuliffe C., Lambert J.F., Colvin G., Miller C., Frimberger A., Becker P. Physical and physiological plasticity of hematopoietic stem cells // Blood Cells Mol Dis. 2001. No. 27(5). P. 934-937.

112. Reed S.A., Johnson S.E. Equine umbilical cord blood contains a population of stem cells that express Oct4 and differentiate into mesodermal and endodermal cell types // J Cell Physiol. 2008. No. 215. P. 329-336.

113. Reich C.M., Raabe O., Wenisch S., Bridger P.S., Kramer M., Arnhold S. Comparison of canine adipose and bone marrow-derived mesenchymal stem cells // World Conference on Regenerative Medicine. Regen Med Suppl. 2009. Vol.4. No. 6 (Suppl. 2).

114. Richards M., Huibregtse B.A., Caplan A.I., Goulet J.A., Goldstein S.A. Marrow-derivedprogenitor cell injections enhance new bone formation during distraction // J Orthop Res. 1999. No. 17. P. 900-908.

115. Richardson L.E., Dudhia J., Clegg P.D., Smith R. Stem cells in veterinary medicine-attempts at regenerating equine tendon after injury // Trends Biotechnol. 2007. No. 25. P. 409-416.

116. Russo F.P., Alison M.R., Bigger B.W., Amofah E., Florou A., Amin F., Bou-Gharios G., Jeffery R., Iredale J.P., Forbes S.J. The bone marrow functionally contributes to liver fibrosis // Gastroenterology. 2006. No.130. P. 1807-1821.

117. Ryan J.M., Barry F.P., Murphy J.M., Mahon B.P. Mesenchymal stem cells avoid allogeneicrejection // J Inflamm (Lond). 2005. No. 2. P. 8.

118. Salazar-Onfray F., Lopez M.N., Mendoza-Naranjo A. Paradoxical effects of cytokines in tumor immune surveillance and tumor immune escape // Cytokine Growth Factor Rev. 2007. No. 18. P. 171-182.

119. Salgado A.J., Reis R.L., Sousa N. et al. Adipose tissue derived stem cells secretome: soluble factors and their roles in regenerative medicine. // Curr. Stem Cell Res. Ther. 2010. No. 5(2). P. 103-110.

120. Schofield R. The relationship between the spleen colony-forming cell and the haemopoietic stem cell // Blood Cells. 1978. No. 4. P. 7-25.

121. Shih C.C., DiGiusto D., Forman S.J.. Ex vivo expansion of transplantable human hematopoietic stem cells: where do we stand in the year // J Hematother Stem Cell Res. 2000. No. 9(5). P. 621-628.

122. Smith R.K. Mesenchymal stem cell therapy for equine tendinopathy // Disabil Rehabil. 2008. No. 30. P. 1752-1758.

123. Song Y.H., Pinkernell K., Alt E. Stem cell induced cardiac regeneration: fusion/mitochondrial exchange and/or transdifferentiation? // Cell Cycle. 2011. No. 10(14). P. 2281-2286.

124. Spees J.L., Olson S.D., Ylostalo J. et al. Differentiation, cell fusion, and nuclear fusion during ex vivo repair of epithelium by human adult stem cells from bone marrow stroma // PNAS USA. 2003. No. 100(5). P. 23972402.

125. Staszyk C., Mensing N., Hambruch N., Hager J-D, Pfarrer C., Gasse H. Equine periodontal ligament: a source of mesenchymal stem cells for regenerative therapies in the horse? // World Conference on Regenerative Medicine. Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6.

126. Stewart A., Chen Y.J., Caporali E.H., Stewart A. Isolation and chondrogenic differentiation of cells isolated from equine synovial fluid. // World Conference on Regenerative Medicine. Regen Med Suppl. 2009. Vol. 4. No. 6 (Suppl. 2).

127. Thomas P.B., Liu Y.H., Zhuang F.F., Selvam S., Song S.W., Smith R.E., Trousdale M.D., Yiu S.C. (2007). Identification of Notch-1 expression in the limbal basal epithelium // Mol. Vis. 2007. No. 13. P. 337-344.

128. Toma J.G., Akhavan M., Fernandes K.J., Barnabe-Heider F., Sadikot A., Kaplan D.R., Miller F.D. Isolation of multipotent adult stem cells from the dermis of mammalian skin // Nat Cell Biol. 2001. No. 3. P. 778-784.

129. Tse W.T., Pendleton J.D., Beyer W.M., Egalka M.C., Guinan E.C. Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells: implications in transplantation // Transplantation. 2003. No. 75. P. 389-397.

130. Vidal M.A., Kilroy G.E., Johnson J.R., Lopez M.J., Moore R.M., Gimble J.M. Cell growthcharacteristics and differentiation frequency of adherent equine bone marrow-derived mesenchymalstromal cells: adipogenic and osteogenic capacity // Vet Surg. 2006. No. 35. P. 601-610.

131. Weiss L. A. Scanning electron microscopic study of the spleen // Blood. 1974. No. 43. P. 665-691.

132. Wognum A.W., Eaves A.C., Thomas T.E. Identification and isolation of hematopoietic stem cells // Arch Med Res. 2003. No. 34(6) P. 461-475.

133. Worster A.A., Nixon A.J., Brower-Toland B.D., Williams J. Effect of transforming growth factor beta1 on chondrogenic differentiation of cultured equine mesenchymal stem cells // Am J Vet Res. 2000. No.61. P. 10031010.

134. Yoshimura H., Muneta T., Nimura A., Yokoyama A., Koga H., Sekiya I. Comparison of rat mesenchymal stem cells derived from bone marrow, synovium, periosteum, adipose tissue, and muscle // Cell Tissue Res. 2007. No.327. P. 449-462.