Морфологические основы полового диморфизма ядер гипоталамуса человека (морфометрическое и иммуногистохимическое исследование) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.25, кандидат медицинских наук Ишунина, Татьяна Александровна

• Ишунина, Татьяна Александровна
• кандидат медицинских наук
• 2003

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Ишунина, Татьяна Александровна

ВВЕДЕНИЕ з

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1.Влияние половых гормонов на дифференцировку и развитие мозга.

1.2.Генетические аспекты половой дифференцировки человека. 10 1.3 .Супраоптическое ядро гипоталамуса человека: микроанатомия и филэмбриогенез.

1.4.Паравентрикулярное ядро гипоталамуса человека: микроанатомия.

1.3.Регуляция синтеза вазопрессина.

1.6.Функциональное значение вазопрессина.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ.

2.1 .Общая характеристика материала исследования.

2.2.Методы исследования.

2.2.1.Иммуноцитохимические исследования.

2.2.2.Гибридизация in situ мРНК вазопрессина.

2.2.3. Методы морфометрического исследования и статистической обработки.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ.

ЗЛ.Морфометрический анализ вазопрессиновых (ВП) и оксито-циновых (ОТ) нейронов в супраоптическом и паравентрикуляр-ном ядрах гипоталамуса человека.

3.2 .Результаты In situ гибридизации мРНК ВП.

3.3.Результаты исследования низкоаффинного нейротрофинового рецептора Р75 в ВП нейронах СОЯ.

3.4.Распределение эстрогеновых рецепторов ос и Р в ВП нейронах СОЯ человека.

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ, ИССЛЕДОВАНИЯ.

ВЫВОДЫ.

УКАЗАТЕЛЬ ЛИТЕРАТУРЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфологические основы полового диморфизма ядер гипоталамуса человека (морфометрическое и иммуногистохимическое исследование)»

Подобно млекопитающим половая дифференцировка мозга человека происходит при непосредственном участии половых стероидов на определенных стадиях развития, приводя к специфическим изменениям в строении, организации (структурный половой диморфизм) и функции (функциональный половой диморфизм) областей-мишеней мозга у взрослых индивидуумов. Таким образом у животных появляются разнообразные структурные половые различия в мозге, за счет которых происходит контроль и проявление пол-специфичных репродуктивных поведений. С другой стороны, гормон-опосредрованная дифференцировка приводит к возникновению различий, не связанных с репродуктивным поведением, например, в восприятии обучения и воспитания (преимущественное изучение точных или гуманитарных наук), зрительно-пространственных особенностей и т.д. (Butler S, 1984; Swaab D.F., Hofman М.А., 1995).

Результаты клинических исследований подтверждают необходимость изучения половых различий в человеческом мозге. Так, было показано, что некоторые неврологические и психические заболевания наблюдаются чаще у представителей одного пола (аутизм, шизофрения и т.д.). Данные литературы, касающиеся изучения полового диморфизма мозга человека и гипоталамуса в частности, весьма немногочисленны и часто противоречивы. Тем не менее, исследование полового диморфизма гипоталамических структур человека может не только раскрыть механизм репродуктивного поведения и половой ориентации, НО и предоставить весьма важные клинические данные о половых различиях, затрагивающих риск и течение некоторых заболеваний. Гипоталамус является не только центром регуляции многих эндокринных желез, но и частью центральной нервной системы. Подобное многообразие функций и специфическая организация ядер гипоталамической области представляет несомненный интерес для морфологических, физиологических и, конечно же, клинических исследований.

Процессы старения оказывают значительное влияние на строение и функцию нейронов и мозга в целом. Следовательно, они способны изменять выраженность возможных половых различий и, конечно же, риск возникновения, течение и исход патологических состояний и заболеваний, затрагивающих те или иные образования мозга и гипоталамус в частности. При этом детального изучения возрастных изменений нейросекреторных нейронов гипоталамуса человека не проводилось.

Цель и задачи исследования

Целью настоящего исследования стало морфометрическое и иммуноци-тохимическое исследование половых и возрастных различий в нейросекреторных ядрах гипоталамуса человека.

Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи: 1. Провести морфометрическое изучение параметров цитосом и ядер, а также размеры аппарата Гольджи нейросекретерных ядер гипоталамуса человека с учетом пола и возраста.

2» Выполнить сравнительное иммуноцитохимическое исследование вазопрес-еин- и окситоцин продуцирующих нейронов в указанных ядрах и оценить уровень и особенности экспрессии гена ВП у лиц мужского и женского пола в двух возрастных группах, условно разделенных с учетом среднего возраста (50 лет) менопаузы у женщин и начала андропаузы у мужчин.

3. Установить роль эстрогенов и их рецепторов в регуляции активности ВП нейронов СОЯ и ПВЯ человека.

4. Определить значение нейротрофинов и их низкоаффинных рецпторов Р75 в проявлении половых и возрастных различий метаболической активности нейросекретерных нейронов СОЯ и ПВЯ.

Научная новизна полученных результатов

Впервые с помощью имуноцитохимических, in situ гибридизации и мор-фометрических методов были описаны половые и возрастные различия в ВП нейронах СОЯ и ПВЯ человека.

Впервые метаболическая активность ВП нейронов комплексно оценивалась на морфологическом уровне с определением параметров перикарионов, размеров комплекса Гольджи и уровня экспрессии гена ВП в нейронах СОЯ и ПВЯ человека.

Впервые установлен ингибирующий эффект эстрогенов на метаболическую активность ВП нейронов СОЯ и ПВЯ, который осуществляется через ЭР р. Наглядно показана возможность активирующих воздействий эстрогенов на ВП нейроны посредством ЭР а.

Выявлено дополнительное влияние низкоаффинного нейротрофинового рецептора Р75 на функциональную активность ВП нейронов, осуществляемое, скорее всего, при взаимодействии с эстрогенами и их рецепторами.

Впервые наличие и количество многоядерных ВП нейронов СОЯ было связано с легочной патологией.

Теоретическая и практическая значимость работы

Полученные данные расширяют представления о структурном и функциональном половом диморфизме, а также возрастных изменениях в гипоталамусе человека.

Результаты работы раскрывают ингибирующий эффект эстрогенов на функциональную активность (секреция ВП) ВП нейронов человека и могут быть использованы для объяснения различий в частоте возникновения, например, сердечно-сосудистых заболеваний и язвенной болезни, в патогенезе которых была отчётливо показана роль вазопрессина.

Установленная связь между наличием и количеством многоядерных ВП нейронов и легочной патологией позволяет рекомендовать этот феномен в качестве характерного патологоанатомического признака при заболеваниях легких.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту

1. Функциональная активность нейросекреторных нейронов СОЯ и ПВЯ человека зависш- от пола и возраста.

2. Метаболическая активность ВП нейронов человека может быть оценена морфометрическими параметрами.

3. Пол- и возраст- зависимые различия ВП нейронов СОЯ и ПВЯ человека являются результатом ингибирующего (через ЭР (3) и активирующего (через ЭР а) воздействий эстрогенов.

4. Низкоаффинный нейротрофиновый рецептор Р75 в СОЯ человека участвует в регуляции метаболической активности ВП нейронов и зависит от концентрации эстрогенов.

Апробация работы

Материалы исследования докладывались на итоговых научных конференциях Курского государственного медицинского университета 1994, 1995, 1996, 1997; IV Всероссийской конференции "Нейроэндокринология-95" в Санкт-Петербурге, 1995; I международном Научном Конгрессе в Ижевске, 1996; 20-м Международном Научном Конгрессе студентов-медиков в г. Охрид (Македония), 1996; Научной конференции "Ядерные рецепторы в мозге: потенциальные мишени для лекарственных средств", Лейден (Нидерланды), 2000; VI Международной конференции по проблемам изучения гормонов, мозга и поведения в Мадриде (Испания), 2000.

Публикация результатов исследования Основные положения работы изложены в 20 научных публикациях, из которых 6 - в местной, 4 - в центральной, 10 - в международной печати.

Объем и структура диссертации Дисертация изложена на 102 страницах[ машинописного текста и состоит из введения, обзора литератур, главы результатов собственных исследований, включающей 4 подглавы, обсуждения полученных результатов, выводов и ука

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, клеточная биология», Ишунина, Татьяна Александровна

ВЫВОДЫ.

1. Вазопресеиновые нейроны супраоптического и паравентрикулярного ядер гипоталамуса человека проявляют свойства функционального полового диморфизма. Размеры аппарата Гольджи и перикарионов вазопрессиновых нейронов супраоптического и паравентрикулярного ядер, а также уровень выработки мРНК вазопрессина больше у мужчин по сравнению с женщинами в возрасте от 20 до 50 лет.

2. Эстрогены угнетают секреторную функцию вазопрессиновых нейронов гипоталамуса человека. Об этом свидетельствует значительное увеличение размеров аппарата Гольджи, перикарионов вазопрессиновых нейронов и повышение выработки мРНК вазопрессина в супраоптическом и паравентри-кулярном ядрах гипоталамуса женщин после менопаузы (50-94 лет) по сравнению с молодыми женщинами (20-50 лет).

3. Ингибирующий эффект эстрогенов на выработку вазопрессиновыми нейронами супраотического и паравентрикулярного ядер гипоталамуса человека осуществляется через эстрогеновый рецептор р, экспрессия которого максимальна у молодых женщин от 29 до 50 лет и практически отсутствует или минимальна у пожилых женщин и мужчин. Активирующий эффект эстрогенов опосредуется через ЭР а, экспрессия которого снижена у молодых женщин, а у пожилых женщин и мужчин наблюдается на достаточно высоком уровне.

4. Низкоаффинный нейротрофиновый рецептор р75 вовлечен в регуляцию метаболической активности вазопрессиновых нейронов в тесной связи с эстрогенами и эстрогеновыми рецепторами. На это указывает повышение содержания нейротрофинового рецептора р75 в вазопрессиновых нейронах супра-оптического ядра пожилых женщин (50-94 лет) по сравнению с молодыми женщинами (29-50 лет) и его отчётливая положительная корреляция с размерами вазопрессиновых нейронов.

5. Половые и возрастные различия метаболической активности вазопрессиновых нейронов супраотического и паравентрикулярного ядер гипоталамуса человека обусловлены сочетанными изменениями в экспрессии эстрогено-вых рецепторов аир, нейротрофинового рецептора р75, а также концентрации циркулирующих эстрогенов.

6. Количество вазопрессиновых нейронов с двумя и более ядрами увеличено в группе пациентов с легочной патологией.

7. Использование различных параметров (диаметры, площадь и объем перика-рионов, размеры аппарата Гольджи и уровень экспрессии мРНК вазопресси-на) в равной степени подходит для оценки метаболической активности вазопрессиновых нейронов.

Благодарности

Иммуноцитохимическое окрашивание и in situ гибридизация были проведены Т.А.Ишуниной в лаборатории профессора D.F. Swaab (Нидерландский институт исследования мозга, Амстердам, Нидерланды). Материал мозга человека был предоставлен Нидерландским банком мозга (координатор - Dr. R. Ravid). Автор выражает глубокую признательность к.м.н., доцентам Г.Г.Язевой и

Курский государственный медицинский университет) за помощь ie советы при проведении начальных этапов работы. шшшвшя

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Ишунина, Татьяна Александровна, 2003 год

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. М-.: Медицина, 1990 384 с.

2. Акмаев И.Г. Структурные основы механизмов гипоталамической регуляции эндокринных функций. М.: Наука. 1979.227с.

3. Акмаев И.Г., Горбатюк О.С. Половой диморфизм в реакции крупноклеточных нейронов паравентрикулярных ядер гипоталамуса крыс на водноселевую нагрузку и обезвоживание // Архив патол., 1991, т. 53, с. 13-75.

4. Акмаев И.Г., Калимуллина Л.Б. Миндалевидный комплекс мозга: функциональная морфология и нейроэндокринология. М.-: Наука, 1993.

5. Алешин Б.В. Гистофизиология гипоталамо-гипофизной системы. -М.: Медицина, 1973,440 с.

6. Блинков С.М., Глезер И.И. Мозг человека в цифрах и таблицах. Л-.: Медицина, 1964.

7. Боголепова И.Н. Строение и развитие гипоталамуса человека. Л.: Медицина. 1968. 168с.

8. Борисова Е.А. О функциональной морфологии дополнительных нейросек-реторных клеток гипоталамуса кошки // Бюлл. эксперим. биол. мед., 1978, т. 86, с. 604-607.

9. Войткевич И.И., Дедов И.И. Ультраструктурные основы гипоталамической нейросекреции. М.: Медицина. 1972. 240с.

10. Горбатюк О.С. Половая зависимость структурно-функциональной организации паравентрикулярных ядер гипоталамуса крыс в перинатальном онтогенезе. Автореф. дис. канд. мед. наук, М., 1991.

11. Гоуфман E.H. Клеточная организация паравентрикулярного ядра гипоталамуса крысы// Архив анат. гистол. эмбриол., 1990, т. 98, С. 46-52.

12. Гриневич В.В. Крупноклеточный гипоталамус (главные и добавочные ядра): эволюционный, молекулярно-биологический и морфофункциональный аспекты //Усп. физиол. наук. 1997. Т.28. С. 242-260.

13. Гриневич В.В. Роль нового гипоталамического пептида РАСАР в регуляции эндокринных функций // Усп. физиол. наук. 1997. Т. 28. С. 47-52.

14. Гриневич В.В., Ишунина Т.А., Язева Г.Г. Роль окситоцина и вазопрессина в регуляции размножения млекопитающих // Морфология. 1997. Т.110. С. 17-27.

15. Гриневич В.В., Поленов A.J1. Эволюция нонапептидергических нейросек-реторных центров гипоталамуса у позвоночных животных // Журн. эвол. био-хим. физиол. 1996. Т.ЗО. С.270-292

16. Гриневич В.В., Поскребышева Е.А., Савелов H.A., Абрамова H.A., Акма-ев И.Г. Иерархические взаимоотношения между органами гипоталамо-гипофизарно- адреналовой системы (ГТАС) при воспалении // Усп. физиол. наук. 1999. Т.ЗО. С. 50-66

17. Данилова O.A., Христич М., Черниговская Е.В. Морфометрическая характеристика развития нейросекреторных центров у крыс в ходе постнатально-го онтогенеза // Архив анат. гистол. эмбриол., 1982, т. 82, с. 5-10.

18. Дедов И.И., Дедов В.И., Гипоталамические рилизинг-гормоны // Усп. со-времен. биол., т. 89, с. 141-157.

19. Дедов И.И., Дедов В.И., Гипоталамические рилизинг-гормоны // Усп. со-времен. биол., т. 89, с. 266-282.fr, 80 i

20. Зурнаджи Ю.Н. Эндокринный гипоталамус // Архив патол. т. 53, с. 3-8.

21. Кесарев B.C. Особенности структурной организации гипоталамуса человека и некоторых приматов (шимпанзе, макаки) // Ж. невропатол. псих. им. С.С.

22. Корсакова, 1965. т. 65. с. 696-702.

23. Красновская И.А., Кузик В.В. Гомориположительные элементы гипота-ламо-гипофизной нейросекреторной системы крысы (иммуногистохимическое исследование) // Архив анат. гистол. эмбриол., 1985, т. 89, с. 38-44.

24. Мищенко А.Ф. Особенности развития нейрокапиллярных взаимоотношений в ядрах переднего отдела гипоталамуса человека в онтогенезе // Архиванат. гистол. эмбриол., 1978, с. 17-23.

25. Поленов A.JI. Гипоталамическая нейросекреция. JL: Наука. 1968. 159с.

26. Поленов A.JI. О жизненном пути и секреторном цикле нейросекреторных клеток гипоталамуса // Архив анат. гистол. эмбриол., 1974, т. 67, с. 5-19.

27. Поленов A.JI., Гринцевич И.И., Федорова Л.А. К вопросу о некоторых особенностях топографии нейросекреторных формаций гипоталамуса человека // Архив анат. гистол. эмбриол., 1973, т. 65, с. 51-55.

28. Соловьева E.H. К строению и возрастным изменениям гипоталамической области собаки // Архив анат. гистол. эмбриол., 1968, т. 54, с. 53-62.

29. Соловьева E.H. Строение и некоторые возрастные изменения гипоталамуса человека и лабораторных животных // Автореф. докт. мед. наук. Ярославль. 1975.

30. Тараканов Е.И., Еськов М.Н. О методике изучения нейросекреции гипоталамуса человека // Архив анат. гистол. эмбриол., 1968, т. 54, с. 97-99.

31. Угрюмое М.В. Нейроэндокринная регуляция в онтогенезе. М-: Наука, 1989,247с.

32. Akmayev Ю. Morphological aspects of the hypothalamic-hypophyseal system. I. Fibers terminating in the neurohypophysis of mammals // Z. Zellforsch. 1969. V. 96. P. 609-624.

33. Allen L.S., Gorski R.A. Sexual dimorphism of the anterior commisure and massa intermedia of the human brain // J. Сотр. Neurol. 1991. V.312. P.97-104.

34. Allen L.S., Hines M., Shryne J.E., Gorski R.A. Two sexually dimorphic cell groups in the human brain // J. Neurosci. 1989. V.9. P.497-506.

35. Amara JF., Dannies PS. 17|3-Estradiol has a biphasic effect on GH growth // Endocrinology. 1983. V. 112. P. 1141-1149.

36. Arnold A.P. Genetically triggered sexual differentiation of brain and behavior //Horm. Behav. 1996. V.30. P. 495-505.

37. Arnold A.P., Gorski R.A. Gonadal steroid induction of structural sex differences in the central nervous system // Ann. Rev. Neurosci. 1984. V. 7. P. 143.

38. Ashack R., Farber M.O., Weinberger M.H., Robertson G.L., Fineberg N.S., Manfredi F. Renal and hormonal responses to acute hypoxia in normal individuals // J. Lab. Clin. Med. 1985. V. 106. P. 12-16.

39. Baker J.W., Yerger S., Segar W.E. Elevated plasma antidiuretic hormone levels in status asthmaticus//Mayo. Clin. Proc. 1976. V. 51. P. 31-34.

40. Barbacid M. Nerve growth factor: A tale of two receptors // Oncogene. 1993. V. 8. P. 2033-2042.

41. Barrett GL., Bartlett PF. The p75 nerve growth factor receptor mediates survival and death depending on the stage of sensory neuron development // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. V. 91. P. 6501-6505.

42. Bartter F.C., Schwartz W.B. The syndrome of inappropriate secretion of antidiuretic hormone // Am. J. Med. 1967. V. 42. P. 790-806.

43. Benbow C.P., Benbow R.M. Biological corellates of high mathematical reasoning ability // Progr. Brain Res. 1984. V. 61. P. 469-489.

44. Bernstein HG., Jarvinen M., Pollanen R., Schirpke H., Knofel B., Rinne R. Cystatin C. containing neurons in human postmortem hypothalamus // Neurosci. Lett.1988. V. 88. P. 131-134.

45. Boer GJ., Van Rheenen-Verberg CMH., Uylings HBM. Impaired brain development of the diabetes insipidus Brattleboro rat // Dev. Brain. Res. 1982. V. 3. P. 557-575.

46. Borson S., Schatteman G., Claude P., Bothwell M. Neurotrophins in the developing and adult primate adenohypophysis: a new pituitary hormone system? // Neu-roendocrinology. 1994. V. 59. P. 466-476.

47. Bouras C., Magistretti PJ., Morrison JH. An immunohistochemical study of six biologically active peptides in the human brain // Hum. Neurobiol. 1986. V. 5. P. 213226.

48. Brownstein MJ,, Russell JT., Gainer H. Synthesis, transport and release of posterior pituitaiy hormones // Science. 1980. V. 207. P. 373-378.

49. Butenandt O., Bidlingmaier F., Knorr D. Genesis of sexual dimorphism in man: from chromosomes to pubertal hormones // 1988. Cambridge University Press. Cambridge. P. 161-169.

50. Butler S. Sex differences in human cerebral function // Progr. Brain Res. 1984. V.61.P. 443-455.

51. Butler WB., Kirkland WL., Gargala TL., Goran N., Kelsey W., Berlinski PJ. Steroid stimulation of plasminogen activated production in a human breast cancer cell line (MCF-1) // Cancer. Res. 1983. V. 43. P. 1637-1648.

52. Caldwell J.D., Prange A.F., Pedersen C.A. Oxytocin facilitates the sexual receptivity of estrogen-treated female rats //Neuropeptides. 1986. V. 7. P. 175-189.

53. Cantau B., Keppens S., De Wulf H., Jard S. Vasopressin binding to isolated rat hepatocytes and liver membranes: regulation by GTP and regulation to glycogen phosphorylase activation // J. Recept. Res. 1980. V.l. P. 137- 168.

54. Carmichael M.S., Humbert R., Dixen J., Palmisano G., Greenleaf W., Davidson J.M. Plasma oxytocin increases in the human sexual response // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1987. V. 64. P. 27-31.

55. Chai SY., McKenzie JS., McKinley MJ., Mendelsohn FAO. Angiotensin converting enzyme in the human basal forebrain and midbrain visualized by in vitro autoradiography // J. Comp. Neurol. 1990. V. 291. P. 179-194.

56. Chakravarti S.s Collins WP., Newton JR., Oram DH., Studd JWW. Endocrine changes and symptomatology after oophorectomy in premenopausal women // Br. J. Obstet. Gynaecol. 1977. V. 84. P. 769-775.

57. Coulson J.M., Fiskerstrand C.E., Woll P.J., Quinn J.P. Arginine vasopressin promoter regulation is mediated by a neuron-restrictive silencer element in small cell lung cancer // Cancer Res. 1999. V. 59. P. 5123-5127.

58. Crofton JT., Baer PG., Share L., Brooks DP. Vasopressin release in male and female rats: effects of gonadectomy and treatment with gonadal steroid hormones // Endocrinology. 1985. V. 117. P. 1195-1200.

59. Crofton JT., Share L., Brooks DP. Pressor responsiveness to and secretion of vasopressin during the estrous cycle // Am. J. Physiol. 1988. V. 255. P. R1041-1048.

60. Cui L-N., Jolley CJ., Dyball REJ. Electrophysiological evidence for retinal projections to the hypothalamic supraoptic nucleus and its perinuclear zone // J. Neuro-endocrinol. 1997. V. 9. P. 347-353.

61. De Lacoste-Utamsing C., Holloway R.L. Sexual dimorphism in the human corpus callosum // Science. 1982. V.216. P. 1431-1432.

62. De Wied D., Gaffori O., Van Ree JM., De Jong W. Central target for the behavioral effects of vasopressin neuropeptide //Nature. 1984. V. 308. P. 276-278.

63. Dechant G., Barde Y-A. Signalling through the neurotropin receptor p75NTR// Curr. Opin. Neurobiol. 1997. V.7. P. 413-418.

64. Dechant G., Rodriguez-Tebar A., Barde Y-A. Neurotrophin receptors // Prog. Neurobiol. 1994. V. 42. P. 347-352.xT, ifa.sl&L f i

65. Delville Y., Koh ET., Ferris CF. Sexual differences in the magnocellular vaso-pressinergic system in golden hamsters // Brain. Res. Bui. 1994. V. 33. P. 535-540.

66. Diepen R. Handbuch der mikroskopischen Anatomie des Menschen. Bd. 4, Nervensystem. 1962. V. 7. Der Hypothalamus. Berlin-Göttingen-Heidelberg.

67. Dierickx K., Vandesande F. Immunocytochemical localization of the vaso-pressinergic and the oxytocinergic neurons in the human hypothalamus // Cell. Tiss. Res. 1977. V. 184. P. 15-27.

68. Du Souich P., Saunier C., Hartemann D., Sautegeau A., Ong H., Larose P., Babini R. Effects of moderate hypoxemia on atrial natriuretic factor and arginine vasopressin in normal man // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1987. V. 148. P. 906-912.

69. Dustan HP. Gender differences in hypertension // J. Hum. Hypertens. 1996. V. 10. P. 337-340.

70. Evans D.A.P., Burbach J.P.H., Swaab D.F., Van Leeuwen F.W. Mutant vasopressin precursors in the human hypothalamus: evidence for neuronal somatic mutations in man //Neuroscience. 1996. V. 71. P. 1025-1030.

71. Fahrbach S.E., Morell J.I., Pfaff D.W. Possible role of endogenous oxytocin in estrogen-facilitated maternal behavior in rats // Neuroendocrinology. 1985. V. 40. P. 526-532.

72. Fehm-Wohlsdorf G., Born J., Voigt K.H., Fehm H.L. Human memory and neurohypophyseal hormone: opposite effects of vasopressin and oxytocin // Psychoneu-roendocrinology. V. 9. P. 285-292.1

73. Ferlito A., Rinaldo A., Devaney K.O. Syndrome of inappropriate antidiuretic hormone secretion associated with head and neck cancers: review of the literature // Ann. Otol. Rhinol. Laryngol. 1997. V. 106. P. 878-883.

74. Fitzsimmons M.D., Robert M.M., Robinson A.G. Control of posterior pituitary vasopressin content: implications for the regulation of vasopressin gene // Endocrinology. 1994. V. 134. P. 1874-1878.

75. Fitzsimmons M.D., Roberts M.M., Sherman T.G., Robinson A.G. Models of neurohypophyseal homeostasis // Am. J. Physiol. 1992. V. 262. P. R1121-1130.

76. Fliers E., Swaab DF., Pool CW., Verwer RWH. The vasopressin and oxytocin neurons in the human supraoptic and paraventricular nucleus; changes with aging and in senile dementie // Brain. Res. 1985. V. 342. P. 45-53.

77. Friedman A.S., Malott K.A., Memoli V.A., Pais S.I., Yu X.M., North W.G. Products of vasopressin gene expression in small cell carcinoma of the lung // Br. J. Cancer 1994. V. 69. P. 260-263.

78. Frolkis V.V., Golovchenko S.F., Medved V.I., Frolkis R.A. Vasopressin and cardiovascular system in aging // Gerontology. 1982. V. 28. P. 290-302.

79. Gabre&s BAThF., Swaab DF., Seidah NG., Van Duijnhoven HLP., Martens GJM., Van Leeuwen FW. Differential expression of the neuroendocrine polypeptide 7B2 in hypothalami of Prader-(Labhart)-Willi syndrome patients // Brain. Res. 1994. V. 657. P. 281-293.

80. Gai WP., Geffen LB., Blessing WW. Galanin immunoreactive neurons in the human hypothalamus: colocalization with vasopressin-containing neurons // J. Comp. Neurol. 1990. V, 298. P. 265-280.k

81. Gibbs RB.} Pfaff DW. Effects of estrogen and fimbria/fornix transection on p75NTR and ChAT expression in the medial septum and diagonal band of Broca //

82. Exp. Neurol. 1992. V. 116. P. 23-39.

83. Givalois L., Grinevich V., Li S., Garsia-de-Yebenes E., Pelletier G. The octa-decaneuropeptide-induced response of corticotropin-releasing hormone messenger RNA levels is mediated by GABAa receptors and modulated by endogenous steroids

84. Neuroscience. 1998. V. 85. P. 557-567.

85. Glass DJ., Yancopoulos GD. The neurotrophic and their receptors // Trends.

86. Cell. Biol. 1993.V.3.P. 262-268.

87. Goudsmit E., Fliers E., Swaab DF. Vasopressin and oxytocin excretion in the

88. Brown-Norway rat in relation to aging, water metabolism and testosterone // Mech.

89. Aging. Dev. 1988. V. 44. P. 241-252.

90. Goudsmit E., Hofman MA., Fliers E., Swaab DF. The supraoptic and paraventricular nuclei of the human hypothalamus ir -elation to sex, age and Alzheimers disease//Neurobiol. Aging. 1990. V. 11. P. 529-536.

91. Gregoretti L. Contribution à l'étude du noyau supraoptique accessoire del'homme // Acta. Neuroveget. 1954. V. 10. P. 1-20.

92. Gustafsson J-A. Estrogen receptor p a new dimension in estrogen mechanismof action // J, Endocrinol. 1999. V. 163. P. 379-383.

93. Hempstead BL. Strategies for modulating trk receptor activity // Exp. Neurol.1993. V. 124. P. 31-35.

94. Hempstead BL., Martin-Zanca D., Kaplan OR., Parada LF., Chao MV. High-affinity NGF binding requires coexpression of the trk proto-oncogene and thelow-affinity NGF receptor // Nature. 1991. V. 350. P. 678-683.

95. Heumann R. Neurotrophin signalling // Curr. Opin. Neurobiol. 1994. V. 4. P.668.679.

96. Hofman M.A., Swaab D.F. The sexual dimorphic nucleus of the preoptic area in the human brain: a comparative morphometic study // J. Anat. 1989. V.164. P.55.72.

97. Hofman MA., Goudsmit E., Purba JS., Swaab DF. Morphometric analysis of the supraoptic nucleus in the human brain // J. Anat. 1990. V. 172. P. 259-270.

98. Hoogendijk JE., Fliers E., Swaab DF., Verwer RWH. Activation of vasopressin neurons in the human supraoptic and paraventricular nucleus in senescence and seniledementia // J. Neurol. Sci. 1985. V. 69. P. 291-299.

99. Hrabovszky E., Kallo I., Hajszan T., Shughrue PJ., Merchenthaler I., Liposits

100. Z. Expression of estrogen receptor-p messenger ribonucleic acid in oxytocin and vasopressin neurons of the rat supraoptic and paraventricular nuclei // Endocrinology.1998. V. 139. P. 2600-2604.

101. Insel T.R. A neurobiological basis of social attachment // Am. J. Psychiatry. V.154. P. 726-735.

102. Ishunina TA, Swaab DF. Vasopressin and oxytocin neurons of the human supraoptic and paraventricular nucleus; size changes in relation to age and sex // J. Clin.

103. Endocrinol. Metab. 1999. V. 84. P. 4637-4644.

104. Ishunina TA., Kruijver FPM., Balesar R., Swaab DF. Differential expression ofestrogen receptor a and (J immunoreactivity in the human supraoptic nucleus in relation to sex and aging // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2000. V. 85: P. 3283-3291.

105. Ishunina TA., Salehi A., Hofman MA., Swaab DF. Activity of vasopressinergic neurones of the human supraoptic nucleus is age- and sex-dependent // J. Neuroendocrine. 1999. V. 11. P. 251-258.

106. Ishunina TA., Salehi A., Swaab DF. Sex- and age-related p75 neurotrophin receptor expression in the human supraoptic nucleus // Neuroendocrinology.2000. V.71.P. 243-251.

107. Ishunina TA., Unmehopa UA., Dolzhikov AA., Swaab DF. Multinucleated arginine-vasopressin neurons in the human supraoptic nucleus: a hallmark of pulmonary pathology // Neuroendocrinology. 2000. V.72. P. 318-326.

108. Jay P., Sahly I., Goze C., Taviaux S., Poulat F., Couly G., Abitbol M., Berta P. SOX 22 is a new member of the sox gene family, mainly expressed in human nervous tissue // Hum. Mol. Gen. 1997. V. 67. P. 1069-1077.

109. Kawata M. Roles of steroid hormones and their receptors in structural organization in the nervous system // Neurosci. Res. 1995. V. 24. P. 1-46.

110. Kimura D., Harshman R. Sex differences in brain organization for verbal andnon-verbal functions // Progr. Brain Res. 1984. V. 61. P. 423-441.

111. Knepper M.A. Molecular physiology of urinary concentrating mechanism:regulation of aquaporin water channels by vasopressin // Am. J. Physiol. 1997. V. 272. P. F3-12.

112. Koller E.A., Buhrer A., Felder L., Schopen M., Vallotton M.B. Altitude diuresis: endocrine and renal responses to acute hypoxia of acclimatized and non-acclimatized subjects // Eur. J. Appl. Physiol. 1991. V. 62. P. 228-234.

113. Kolliker A. Handbuch der Gewebelehre des Menschen. 1896. V. 2. Nervensystem, 6th ed. Leipzig: Englemann.

114. Koopman P., Gubbay J., Vivian N. Goodfellow P., Lovell-Badge R. Maledevelopment of chromosomally female mice transgenic for SRY // Nature. 1991. V. 351. P. 117-121.

115. Koopman P., Munsterberg A., Capel B., Vivian N. Lovell-Badge R. Expression of a candidate sex-determining gene during mouse testis differentiation // Nature. 1990. V. 348. P. 450-452.

116. Kuiper GGJM., Enmark E., Pelto-Huikko M., Nilsson S., Gustafsson J-A.

117. Cloning of a novel estrogen receptor expressed in rat prostate and ovary // Proc. Natl.

118. Acad. Sci. USA. 1996. V. 93. P. 5925-5930.

119. Lahr G., Maxson S., Mayer A., Just W., Pilgrim C., Reisert I. Transcription of the Y chromosome gene, SRY, in adult mouse brain // Mol. Brain Res. 1995. V. 33. P. 179-182.

120. Lederis K., Pittman QJ., Kasting NW., Veale W., Cooper KE. Central neuro-modulatory role of vasopressin in antipyresis and in febrile convulsions // Biomed. Res. 1982. V. 3. P. 1-5.

121. Li X., Schwartz P., Rissman E. Distribution of estrogen receptor-p-like im-munoreactivity in rat forebrain // Neuroendocrinology. 1997. V. 66. P. 63-67.

122. Lindsay RM., Wiegand SJ., Alter CA., DiStefano PS. Neurotrophic factors: From molecule to man // Trends Neurosci. 1994. V. 17. P. 182-190.

123. Luboshitzky R., Dharan M., Goldman D., Herer P., Hiss Y., Lavie P. Seasonal variation of gonadotropins and gonadal steroid receptors in the human pineal gland // Brain. Res. Bull. 1997. V. 44. P. 665-670.

124. Lucassen PJ., Salehi A., Pool CW., Gonatas NK., Swaab DF. Activation of vasopressin neurons in aging and Alzheimer's disease // J. Neuroendocrinol. 1994. V. 6. P. 673-679.11?. Lucassen PJ., Van Heerikhuize JJ., Guldenaar SEF., Pool CW., Hofinan MA.,

125. Swaab DF. Unchanged amounts of vasopressin mRNA in the supraoptic and paraven-■.

126. Maclusky N.J, Naftolin F. Sexual differentiation of the central nervous system // Science. 1981. V. 211. P. 1294-1302.

127. Madeira MD., Sousa N., Cadete-Leite A., Lieberman AR., Paula-Barbosa MM. The supraoptic nucleus of the adult rat hypothalamus displays marked sexual dimorphism which is dependent on body weight // Neuroscience. 1993. V. 52. P. 497-513.

128. McCarthy M.M. Molecular aspects of the rodent brain // Psychoneuroendo-crinology. 1994. P. 415-427.

129. McEwen B.S., Davis P., Parson B., Pfaff D.W. The brain: target for steroid hormone action // Ann. Rev. Neurosci. 1979. V. 2. P. 65.

130. McGlone J. Sex differences in functional brain asymmetry // Cortex. 1978. V. 14. P. 122-128.

131. Mengod G., Charli J.L., Palacios J.M. The use of in situ hybridization histochemistry for the study of neuropeptide gene expression in the human brain // Cell. Mol. Neurobiol. 1990. V. 10. P. 113-126.

132. Mengod G., Goudsmit E., Probst A., Palacios J.M. In situ hybridization histochemistry in the human hypothalamus // Prog. Brain Res. 1992. V. 93. P. 45-55.

133. Meynert T. In: Handbuch der Lehre von den Geweben des Menschen und der Tiere. 1872. Bd. 2. Leipzig, P. 694-808.' ' «^ to

134. Miranda RC., Sohrabji F., Toran-Allerand D. Interactions of estrogen with the neurotrophins and their receptors during neural development // Horm. Behav. 1994. V. 28. P. 367-375.

135. Moga MM., Duong T. P75 neurotrophin receptor immunoreactivity in the aged human hypothalamus // Neurosci Lett. 1997. V. 231. P. 9-12.

136. Mohr E., Hillers M., Ivell R., Haulica I.D., Richter D. Expression of the vasopressin and oxytocin genes in human hypothalami // FEBS. Lett. 1985. V. 93. P. 1216.

137. Monroe SE., Jaffe RB., Midgley JAR. Regulation of human gonadotropins. XIII. Changes in serum gonadotropins in menstruating women in response to oophorectomy // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1972. V. 34. P. 420-442.

138. Morton A. A quantitative analysis of the normal neuron population of the hypothalamic magnocellular nuclei in man and of their projections to the neurohypophysis // J. Comp. Neurol. 1961. V. 136. P. 143-158.

139. Mosselman S., Polman J., Dijkema R. ER-p. Identification and characterization of a novel human estrogen receptor // FEBS. Lett. 1996. V. 92. P. 49-53.

140. Murphy MR., Seckl JR., Burton S., Checkley SA., Lightman SL. Changes in oxytocin and vasopressin secretion during sexual activity in men // J. Clin. Endocrin. Metab. 1987. V. 65. P. 738-741.

141. Paech K., Webb P., Kuiper GGJM., Nilsson S., Gustafsson JA., Kushner PJ., Scanlan TS. Differential ligand activation of estrogen receptors ERa and ERP at API sites // Science. 1997. V. 277. P. 1508-1510.

142. Panzica GC., Aste N. Viglietti-Panzica C., Ottinger MA. Structural sex differences in the brain: influence of gonadal steroids and behavioral correlates // J. Endocrinol. Invest. 1995. V. 18. P. 232-252.

143. Paula-Barbosa MM., SousaN., Madeira MM. Ultrastructural evidence of sexual dimorphism in supraoptic nucleus: a morphometric study // J. Neurocytol. 1993. V.22.P. 697-706.

144. Ps£v6 I., Morschl E., Szepes Z., Kiss J., Boda K., Vetro G., Varga C., Laszlo FA., Laszlo F. Vasopressin deficiency decreases the frequency of gastroduodenal ulceration in humans // J. Physiol. 2000. V. 94. P. 63-66.

145. Pelletier G., Guy J., Desy L., Li S., Eberle AN., Vaudry H. Melanin-concentrating hormone (MCH) is colocalized with a-melanocyte-stimulating hormone (a-MSH) in the rat but not in the human hypothalamus // Brain. Res. 1987. V. 423. P. 247-253.

146. Pilgrim Ch., Reisert I. Differences between male and female brains developmental mechanisms and implications // Horm. Metab. Res. 1992. V. 24. P. 353359.

147. Pittman QJ., Lawrence D., McLean L. Central effects of arginine vasopressin on blood pressure in rats // Endocrinology. 1982. V. 110. P. 1058-1060.

148. Poulat F., Girard E., Chevron M.P., Goze C., Rebillard X., Calas B., Lamb N., Berta P. Nuclear localization of the Testis Determining Gene Product SRY // J. Cell. Biol 1995. V. 128. P. 737-748.•a

149. Prelevic GM., Jacobs HS. Menopause and post-menopause // Bailliere's Clinical Endocrinology and Metabolism. 1997. V. 11. P. 311 -340.

150. Price JF., Fowkes FG. Risk factors and the sex difference in coronary artery disease // Epidemiology. 1997. V. 8. P. 584-591.

151. Rao M., Eid N., Herrod L., Parekh A., Steiner P. Antidiuretic hormone response in children with bronchopulmonary dysplasia during episodes of acute respiratory distress // Am. J. Dis. Child. 1986. V. 140. P. 825-828.

152. Rasmussen JE., Torres-Alemán I., MacLusky NJ., Naftolin F., Robbins RJ. The effect of estradiol on the growth patterns of estrogen receptor positive hypothalamic cell lines // Endocrinology. 1990. V. 126. P. 235-240.

153. Ravid R., Fliers E., Swaab DF., Zürcher C. Changes in vasopressin and testosterone in the senescent Brown-Norway (BN/BiRij) rat // Gerontology. 1987. V. 33. P. 87-98.

154. Reichenbach A. Glia : neuron index: review and hypothesis to account for different values in various mammals // Glia. 1989. V. 2. P. 71-77.

155. Reihman D.H., Farber M.O., Weinberger M.H., Henry D.P., Fineberg N.S., Dowdeswell I.R., Burt R.W., Manfredi F. Effect of hypoxemia on sodium and water excretion in chronic obstructive lung disease // Am. J. Med. 1985. V. 78. P. 87-94.

156. Robertson J.L. Posterior pituitary. In: Felig P, Baxter JD, Frohman LA, eds. Endocrinology and Metabolism New York: McGraw-Hill, Inc., 1995. pp. 385-432.

157. Rosenow E.C., Segar W.E., Zehr J.E. Inappropriate antidiuretic hormone secretion in pneumonia // Mayo. Clin. Proc. 1972. V. 47. P. 169-174.1., t* '96

158. Sangruchi T., Kowall NW. NADPH diaphorase histochemistry of the human hypothalamus //Neuroscience. 1991. V. 40. P. 713-724.

159. Saper CB. Hypothalamus. In: The Human Nervous System, Paxinos G. (Ed), Academic Press, Inc., San Diego. 1990. P. 389-413.

160. Sarrieau A., Najimi M., Chigr F., Kopp N., Jordan D., Rostene W. Localization and developmental pattern of vasoactive intestinal polypeptide binding sites in the human hypothalamus // Synapse. 1994. V. 17. P. 129-140.

161. Scharrer E., Gaupp R. Neure befunde am Nucleus supraopticus and Nucleus paraventricularis des Menschen // Z. ges. Neurol. Psychiat. 1933. V. 148. P. 766-772.

162. Scharrer E., Scharrer B. The hypothalamus and central levels of autonomic function//Fitel. 1940. V. 202. P. 170-194.

163. Segar W.E., Moore W.W. Hyponatremia: increased antidiuretic hormone and "inappropriate" thirst in a patient with bronchogenic carcinoma // Minn. Med. 1968. V. 51. P. 625-629.

164. Seidman SN., Walsh BT. Testosterone and depression in aging men // Am. J. Geriatr. Psychiatry. 1999. V. 7. P. 18-33.

165. Shalhoub R.J., Antoniou L.D. The mechanism of hyponatremia in pulmonaiy tuberculosis I I Ann. Intern. Med. 1969. V. 70. P. 943-962.

166. Share L., Crofton JT. Interactions between the gonadal steroid hormones and vasopressin and oxytocin // Ann. Acad. Sci. 1993. V. 689. P. 438-454.

167. Share L., Crofton JT., Ouchi Y. Vasopressin: sexual dimorphism in secretion, cardiovascular actions and hypertension /7 Am. J. Med. Sci. 1988. V. 295. P. 314-319.

168. Shughrue PJ., Lane MV., Merchenthaler I. Comparative distribution of estrogen receptor-a and -p mRNA in the rat central nervous system // J. Comp. Neurol. 1997. V. 388. P. 507-525.

169. Sladen A., Laver M.B., Pontoppidan H. Pulmonary complications and water retension in prolonged mechanical ventilation // N. Engl. J. Med. 1968. V. 279. P. 448-453.

170. Sohrabji F., Greene LA., Miranda RC., Toran-Allerand CD. Reciprocal regulation of estrogen and NGF receptors by their ligands in PC 12 cells // J. Neurobiol. 1994. V. 25. P. 974-988.

171. Sohrabji F., Miranda RC., Toran-Allerand CD. Estrogen differentially regulates estrogen and nerve growth factor receptor mRNAs in adult sensory neurons // J. Neurosci. 1994. V. 14. P. 459-471.

172. Striker E.M., Verbalis J.G. Interaction of osmotic and volume stimuli in regulation of neurohypophyseal secretion in rats // Am. J. Physiol. 1986. V. 250. P. R267-275.

173. Sukhov RR., Walker LC., Ranee NE., Price DL., Scott Young III W. Opioid precursor gene expression in the human hypothalamus // J. Comp. Neural. 1995. V. 353. P. 604-622.

174. Swaab D.F., Fliers E. A sexually dimorphic nucleus in the human brain // Science. 1985. V. 228. P. 1112-1115.

175. Swaab D.F., Hofman M.A. An enlarged suprachiasmatic nucleus in homosexual men//Brain Res. 1990. V.537. P. 141-148.

176. Swaab D.F., Hofman M.A. Sexual differentiation of the human brain, a historical perspective // Progr. Brain Res. 1984. V. 61. P. 361-374.

177. Swaab D.F., Zhou J.N., Ehlhart T., Hofman M.A. Development of vasoactive intestinal polypeptide (VIP) neurons in the human suprachiasmatic nucleus (SCN) in relation to birth and sex // Dev. Brain Res. 1994. V. 79. P. 249-259.

178. Swaab D.F., Zhou J.-N., Fodor M., Hotman M.A. Sexual differentation of the human brain // Biomed. Rev. 1997. V. 7. P. 17-32.

179. Swaab DF. The human hypothalamo-neurohypophyseal system in health and disease // Prog. Brain. Res. 1998. V. 119. P. 577-618.

180. Swaab DF., Gooren LJG., Hofman MA. The human hypothalamus in relation to gender and sexual orientation // Prog. Brain. Res. 1992. V. 93. P. 205-217.

181. Swaab DF., Goudsmit E., Kremer HPH., Hofman MA., Ravid R. The human hypothalamus in development, sexual differentiation, aging and Alzheimer's disease // Prog. Brain. Res. 1992. V. 91. P. 465-472.f "»J ^

182. Swaab DF., Hofinan MA. Sexual differentiation of the human hypothalamus in relation to gender and sexual orientation // Trends. Neurosci. 1995. V. 18. P. 264270.

183. Swaab D.F., Purba J.S., Hofinan M.A. Alterations in the hypothalamic paraventricular nucleus and its oxytocin neuron (putative satiety cells) in Prader-Willy Syndrome: a study of five cases // J. Clin. Endocrinol. Metab. 1995. V. 80. P. 573579.

184. Swaab DF., Jongkind JF. Influence of gonadotropic hormones on the hypothalamic neurosecretory activity in the rat // Neuroendocrinology. 1971. V. 8. P. 36-47.

185. Swaab DF., Jongkind JF. The hypothalamic neurosecretory activity during the oestrous cycle, pregnancy, parturition, lactation, and after gonadectomy, in the rat // Neuroendocrinology. 1970. V. 6. P. 133-145.

186. Takahashi K., Mouri T., Sone M., Murakami O., Itoi K., Imai Y., Ohneda M., Yoshinaga K., Sasano N. Calcitonin gene-related peptide in the human hypothalamus //Endocrinol. Jpn. 1989. V. 36. P. 409-415.

187. Vallet PG., Charnay Y., Bouras C. Distribution and colocalization of delta sleep-inducing peptide and luteinizing hormone-releasing hormone in the aged human brain: an immunohistochemical study // J. Chem. Neuroanat. 1990. V. 3. P. 207-214.

188. Van Londen L., Goekoop JG., Van Kempen GMJ., Frankhuijsen-Sierevogel AC., Wiegant VM., Van der Velde EA., De Wied D. Plasma levels of arginine vasopressin elevated in patients with major depression // Neuropsychopharmacology. 1997. V. 17. P. 284-292.

189. Verbalis J.G. Escape from vasopressin-induced antidiuresis: insights at the molecular level //News Physiol Sei. 1999. V. 14. P. 221-222.

190. Voisin DL., Simonian SX., Herbison AE. Identification of estrogen receptor-containing neurons projecting to the rat supraoptic nucleus // Neuroscience. 1997. V. 78. P. 215-229.

191. Wang YX., Crofton JT., Liu H., Sato K., Brooks DP., Share L. Effects of go-nadectomy on sexually dimorphic antidiuretic action of vasopressin in conscious rats //Am. J. Physiol. 1994. V. 267. P. R536-541.1. J?* t1. M-l V 4 1

192. Wang Y-X., Crofton JT., Liu H., Sato K., Brooks DP., Share L. Estradiol attenuates the antidiuretic action of vasopressin in ovariectomized rats // Am. J. Physiol. 1995. V. 268. P. R951-957.

193. Wang Y-X., Edwards RM., Nambi P., Stack EJ., Pullen M., Share L., Crofton JT., Brooks DP. Sex difference in the antidiuretic activity of vasopressin in the rat // Am. J. Physiol. 1993. V. 265. P. R1284-1290.

194. Wang Z., Young L.J., De Vries G.J., Insel T.R. Voles and vasopressin: a review of molecular, cellular, and behavioral studies of pair bonding and paternal behaviors // Prog. Brain. Res. 1998. V. 119. P. 483-499.

195. Wells T. Vesicular osmometers, vasopressin secretion and aquaporin-4: a new mechanism for osmoreception? // Mol.Cell. Endocrinol. 1998. V. 136. P. 103107.

196. White R.J., Woodings D.F. Impaired water handling in chronic obstructive airways diseases // Br. Med. J. 1971. V. 2. P. 561-563.

197. Whitfield L.S., Lovell-Baclge R., Goodfellow P.N. Rapid sequence evolution of the mammalian sex-determing gene SRY //Nature. 1993. V. 364. P. 713-715.

198. Wierda M., Goudsmit E., Van der Woude P.F., Purba J.S., Hofman M.A., Bogte H., Swaab D.F. Oxytocin cell number in the human paraventricular nucleus remains constant with aging and in Alzheimer's disease // Neurobiol. Aging. 1991. V.12. P. 511-516.

199. Xi D., Kusano K., Gainer H. Quantitative analysis of oxytocin and vasopressin messenger ribonucleic acids in single magnocellular neurons isolated fromsupraoptic nucleus of rat hypothalamus // Endocrinology. 1999. V.140. P. 4677-4682.

200. Yan Q., Johnson EM Jr. Immunohistochemical localization and biochemical characterization of nerve growth factor receptor in adult rat brain // J. Comp. Neurol. 1989. V. 290. P.585-598.

201. Young W.S.III Expression of the oxytocin and vasopressin genes. // J Neuro-endocrinol. 1992. V. 4. P. 527-540.

202. Zhang X., Hense HW., Riegger GA., Schunkert H. Association of arginine vasopressin and arterial blood pressure in a population-based sample // J. Hypertens. 1999. V. 17. P. 319-324.

203. Zhou J.N., Hofinan M.A., Swaab D.F. VIP neurons in the human SCN in relation to sex, age and Alzheimer's disease // Neurobiol. Aging. 1995. V. 16. P. 571576.