Морфологические изменения кости нижней челюсти в условиях местного воздействия на ее регенерацию при моделировании экспериментального дефекта тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.03.01, кандидат наук Дровосеков, Михаил Николаевич

• Дровосеков, Михаил Николаевич
• кандидат наук
• 2014

Оглавление диссертации кандидат наук Дровосеков, Михаил Николаевич

ОГЛАВЛЕНИЕ

стр.

Оглавление

Введение

Глава 1. Обзор литературы

- Изменения строения костей скелета в результате использования клеточных технологий

- Морфология костной ткани в условиях применения фибрина

- Биодеградируемые полимеры и их влияние

на структурную организацию различных тканей

- Микроанатомическая организация и основные функции лимфатических узлов

Глава 2. Материал и методы исследования

Глава 3. Структурная организация костной ткани

при естественной регенерации ее дефекта

Глава 4. Морфологические изменения в дефекте костной ткани

в условиях использования фибринового сгустка

Глава 5. Восстановление строения костной ткани после введения

в участок дефекта мезенхимальных стволовых клеток

Глава 6. Кость нижней челюсти после имплантации

в ее дефект биодеградируемого полимера

Глава 7. Сравнительная морфология костной ткани после воздействия различными

способами на репарацию ее дефекта

Глава 8. Обсуждение полученных результатов

Выводы

Практические рекомендации

Список литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфологические изменения кости нижней челюсти в условиях местного воздействия на ее регенерацию при моделировании экспериментального дефекта»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы исследования:

Достаточно полное восстановление структуры дефектов костной ткани зависит от процессов регенерации. Прогресс репаративной биологии и медицины дал возможность воздействия на регенераторные процессы, это, несомненно, актуально и важно из-за постоянного возрастания количества пациентов с костными дефектами в последние годы. Проблемы восстановления костной ткани до сих пор не решены достаточно полно. Исследование причин неудовлетворительного лечения подобных больных указывает на то, что пути достижения хорошего результата зависят как от улучшения технологического процесса самого хирургического вмешательства, так и от создания необходимых условий для нормального восстановления строения костных тканей.

Было найдено ускорение репарации тканей костей (экспериментальный дефект кости) при использовании плазмы, богатой тромбоцитами (Anitua Е., 2001, 2006; Sanchez М. et al., 2003; Hokugo A. et al, 2005; Anitua E. et al., 2005, 20066). Фибриновый клей, богатый тромбоцитами, был успешно применен для лечения периимплантитов в эксперименте и для сокращения сроков приживления имплантов в клинике. После применения фибринового сгустка, богатого тромбоцитами, в процессе дентальной имплантации, относительно обычных методов, становится меньше степень повреждения тканей и микробная обсеме-ненность и, соответственно, степень выраженности воспалительного процесса: инфильтрация нейтрофилами и лимфостаз. При использовании фибрина происходит более прочная фиксация стоматологических имплантовтке (Anitua Е., 1999; Колесников И.С., 2006; Lee H.J. et al., 2007; You T.M. et al., 2007a, 20076; Майбородин И.В. и др., 2007a, 20086, 20096).

Использование богатого тромбоцитами фибринового сгустка в процессе лечения больных с острым периодонтальным абсцессом способствовало тому, что раньше появились рентгенанатомические признаки репаративных процессов в десне. Этот способ лечения не приводил к ухудшению регенерации дест-

руктивной области в периодоите заинтересованного зуба (Рагимова Т.М., 2009).

Применение фибринового сгустка с тромбоцитами приводит к уменьшению численности послеоперационных хирургических осложнений вследствие высокого содержания биологически активных веществ (TNF-alpha, IL-1-beta, IL-4, IL-6, VEGF), сокращению сроков заживления и восстановления микроциркуляции в тканях (Choukroun J. et al., 20066; Dohan D.M. et al., 2006в).

Хотя существует множество рекомендаций хирургов, стоматологов и травматологов, все равно остается нерешенной проблема полного восстановление анатомической целостности костных тканей, так как обширные дефекты без дополнительных вмешательств самостоятельно не могут регенерировать. Применение клеточных технологий привлекает все более широкое внимание врачей и исследователей в надежде создать воспроизводимые способы репарации дефектов тканей в тех случаях, когда нет возможности эффективного воздействия способами современной хирургии (Panetta N.J. et al., 2009; Kastrinaki M.C., Papadaki H.A., 2009; David J.P. et al., 2009; Dehne T. et al., 2009; Koelling S., Miosge N., 2009; Tamer el M.K., Reis R.L., 2009; Clines G.A., 2010; Chanda D. et al., 2010; Galle J. et al., 2010).

В красном костном мозге присутствуют мезенхимальные стволовые клетки (МСК), с потенцией к дифференцировке в клетки хряща, кости и прочие клеточные элементы. В связи с этим появилась возможность широкого использования МСК для ускорения репарации костей (Chanda D. et al., 2010; Hong D. et al., 2010; Goldschlager T. et al., 2010; Peppo de G.M. et al., 2010; Goepfert C. et al., 2010).

Костный матрикс в чистом виде или с аутологичными МСК костномозгового происхождения (АМСККП ) имплантировали в дефект черепа крыс линии Wistar-Kyoto. Использование АМСККП способствовало ускорению остеогенеза с полной регенерацией кости (Кругляков П.В. и др., 2005).

А.И. Воложин с соавт. (2010) исследовали процессы восстановления костной ткани с использованием аутологичных и аллогенных МСК в эксперименте на кроликах. Дефект кости в области угла нижней челюсти прикрывали Гап-

колом (остеопластический материал) с МСК, выделенными из жировой ткани. Достигнутые результаты ускорения репаративных процессов подтверждены гистологией, сканирующей электронной микроскопией и цифровой микрофокусной рентгенографией.

Через 8 недель после использования МСК у мышей для ускорения репарации переломов лучевой кости эластичность молодой кости не отличалась от исходных данных. Восстановленная кость имела меньший объем при большей минеральной плотности. Прочность костей, восстановленных с применением МСК, спустя 10 и 35 недель была выше в 1,5-2 раза, относительно интактных костей с другой стороны (Kallai I. et al., 2010).

Плотность костей на фоне применения МСК в эксперименте с дистракци-онным остеосинтезом была выше, костная ткань образуется раньше, хотя в контроле еще имеются обширные участки хряща (Shao Z. et al., 2007; Jiang X. et al., 2010).

Множество биополимеров в настоящее время применяется как стимуляторы остеогенеза. Среди них важную роль играют полигидроксиалканоаты (ПГА), которые, согласно литературным данным, являются биодеградируемы-ми. Это полимеры гидроксипроизводных алкановых (масляной, валериановой и др.) кислот, их с 80-х годов XX века активно изучают для определения возможности применения их как материалов для имплантов в хирургии, создания новых органов и биоискусственных тканей. ПГА обладают механической прочностью, медленной биодеградацией и высокой биосовместимостью и, в связи с этим, имеют большие перспективы для применения в клинической медицины. Не исключено, что в качестве матриц для формирования Зх-мерных структур с целью воздействия на остеосинтез лучше всего соответствуют биодеградируе-мые полимеры на основе ПГА, что дает возможность создания любых объемных форм, не отторгающихся живыми тканями и имеющих очень глубокие и разветвленные поры.

Сейчас уже имеется очень болыпа экспериментальная база, показывающая такие важные свойства ПГА, как биосовместимость, термопластичность, и,

самое важное, биодеградируемость (Dawes Е.А., 1990; Brandl Н. et al., 1990; Amass W. et al., 1998).

Полигидроксибутират из всех известных в данный момент ПГА считается наиболее соответствующим медицинским целям, в связи с тем, что наиболее полно соответствует требованиям, предъявляемым к материалам биомедицинского назначения. Этот полимер, был синтезирован в 1926 году, но только в настоящее время интерес к нему и другим полимерам этого класса сильно возрос (Ребров A.B. и др., 2002; Дубинский В.А. и др., 2004; Boskhomdzhiev А.Р. et al., 2010).

Получены результаты, что полигидроксибутират, среди известных ПГА, имеет наилучшие характеристиками по тромборезистентности и биосовместимости (Chen G.Q., Wu Q., 2005; Федоров М.Б. и др., 2007; Яковлев A.B. и др. 2010; Волова Т.Г. и др., 2010). В экспериментальных работах по исследованию репаративного остеогенеза обнаружили, что импланты из отдельных ПГА, тот же полигидроксибутират, имеют выраженные способности в отношении стимуляции остеопластических процессов (Шишацкая Е.И. и др., 2008в).

Степень разработанности темы исследования:

В доступной литературе имеется немало данных об эффективности использования препаратов фибрина, клеточных технологий и биодеградируемых полимерных материалов в стоматологии, травматологии и хирургии. Однако, несмотря на многочисленные рекомендации о применении каждого способа воздействия на восстановление структуры костной ткани, в литературе полностью отсутствуют сведения по оценке сравнительной эффективности этих методов. Кроме того, нет результатов исследований морфологических изменениий лимфатических узлов после указанных способов воздействия на репаративную регенерацию, тогда как именно эти органы являются маркером выраженности воспалительного процесса в регионе, по их изменениям можно точно оценивать результативность проведения тех или иных лечебных мероприятий, предвидеть возможность развития осложнений, а, значит, и успешно принимать меры по их

профилактике.

Дель исследования:

Выявить закономерности изменений структурной организации костной ткани в условиях местного воздействия на ее регенерацию на модели искусственно созданного дефекта в нижней челюсти.

Задачи исследования:

1. Методами световой микроскопии и рентгеновской денситометрии изучить изменения структурной организации костной ткани на модели искусственно созданного дефекта кости нижней челюсти крыс и детальное строение регионарных (субмандибулярных) лимфатических узлов.

2. Определить особенности перестройки костной ткани и изменения лимфатических узлов при внесении в дефект кости богатого тромбоцитами фибрино-вого сгустка (БТФС).

3. Установить микроанатомические особенности кости нижней челюсти и субмандибулярных лимфатических узлов после введения суспензии аутологич-ных мезенхимальных стромальных клеток костномозгового происхождения в культуральной среде.

4. Определить основные этапы морфологических изменений костной ткани и регионарных лимфатических узлов после имплантации в дефект кости ПГА.

5. Сравнить эффективность различных способов воздействия на структурно-клеточные взаимоотношения в дефекте костной ткани и лимфатических узлах, выбрать наиболее целесообразный метод.

6. Установить положительные и отрицательные стороны каждого способа влияния на морфологию дефекта кости нижней челюсти и изменения регионарных лимфатических узлов.

7. Оценить возможные осложнения использования разных методов воздействия на восстановление микроанатомической организации костной ткани в ее дефекте.

Научная новизна:

Впервые проведено сравнительное исследование структурной организации костной ткани при ее регенерации на модели искусственно созданного дефекта в нижней челюсти и структурно-клеточных взаимоотношений в регионарных (субмандибулярных) лимфатических узлах крыс при естественном заживлении, после применения БТФС, на фоне введения суспензии АМСККП и после имплантации ПГА.

Впервые показано, что после моделирования дефекта кости нижней челюсти у крыс и естественном ходе регенерации в субмандибулярных лимфатических узлах расширяется корковое плато, увеличивается относительный объем лимфоидных фолликулов и мозговых синусов. Во всех структурных отделах лимфатических узлов сначала возрастает число иммуно- и плазмобластов, делящихся клеток и клеточных элементов с признаками деструктивных изменений, к концу наблюдения увеличивается содержание ретикулярных клеток и макрофагов.

Впервые установлено, что начало восстановления структуры кости после применения БТФС проходит интенсивнее, чем при спонтанном заживлении, дефект раньше заполняется островками костной ткани.

Впервые получены свидетельства, что после заполнения искусственно созданного дефекта костной ткани суспензией АМСККП в культуральной среде происходит резкое ускорение процессов, способствующих быстрому (к 2 неделе) восстановлению структур красного костного мозга.

Впервые доказано, что отличия в строении регионарных лимфатических узлов при естественном заживлении дефекта кости нижней челюсти и репарации на фоне применения БТФС или АМСККП заключаются в большей сохранности структурной организации данных органов.

Впервые продемонстрировано, что после применения матриксов из ПГА на все сроки наблюдения сохраняется неизменным дефект костной ткани, где находился сам полимер. Признаков консолидации ПГА с краем дефекта ни в одном случае нет. Свидетельства деградации искусственного материала на все

сроки эксперимента отсутствуют, также нет признаков формирования гигантских клеток инородных тел по краю матрикса. Полученные данные указывают не на биодеградируемость, а на выраженную биоинертность используемого полимера. Прочность тканей после применения ПГА не только не восстанавливается, а остается сниженной за счет развития соединительной ткани между полимером и краем кости.

Впервые получены данные, что на имплантацию ПГА в дефект кости нижней челюсти регионарные лимфатические узлы отвечают вначале гипертрофией структур, точно также как и при естественном ходе репаративной регенерации, однако, начиная с 4 недели, преобладают склеротические процессы с нарушением микроанатомического строения этих органов, уменьшением количества иммунокомпетентных клеток, снижением митотической активности и быстрым развитием соединительной ткани во всех зонах.

Теоретическое и практическое значение работы:

Получены новые знания об особенностях структурного восстановления в дефектах костной ткани в различных условиях. Важное значение для практической медицины имеет выявление значительно более интенсивного, чем при спонтанном заживлении, восстановления структурной организации кости при применении БТФС и ускорения восстановления структур красного костного мозга после введения АМСККП. После использования фибрина, как и при применении стволовых клеток закономерным является большая сохранность структуры регионарных лимфатических узлов. Применение ПГА и материалов на их основе для воздействия на дефекты костных тканей нецелесообразно. Имплантация ПГА не только не ускоряет репарацию дефекта кости нижней челюсти, но препятствует процессам заживления, в регионарных лимфатических узлах снижается количество иммунокомпетентных клеток и прогрессирует склеротическая трансформация. Прочность тканей в дефекте после применения ПГА не только не восстанавливается, а остается сниженной за счет соединительнотканной капсулы между полимером и краем кости.

Методология и методы исследования:

В работе использованы современные методы сбора и обработки исходной информации. Диссертация основана на результатах сравнительного морфологического исследования изменений микро- и рентгенанатомической организации дефекта костной ткани и состояния регионарных лимфатических узлов 234 крыс-самцов инбредной линии Wag в разные сроки при различных способах воздействия на репарацию костной ткани.

На защиту выносятся следующие основные положения:

1. Восстановление структурной организации костной ткани в ее дефекте при использовании БТФС в эксперименте проходит значительно интенсивнее, чем при спонтанном заживлении, дефект раньше и быстрее заполняется островками кости, которые раньше сливаются и формируют молодую костную ткань.

2. После введения в дефект костной ткани суспензии АМСККП в культураль-ной среде происходит быстрое восстановление структур красного костного мозга.

3. Особенности структурной организации субмандибулярных лимфатических узлов крыс при естественным ходе регенерации дефекта кости нижней челюсти и после заполнения отверстия БТФС или АМСККП заключаются в большей сохранности структуры и цитоархитектоники регионарных лимфатических узлов.

4. После имплантации матриксов из ПГА в дефект кости свидетельств деградации искусственного материала или его консолидации с костной тканью на все сроки наблюдения нет.

5. На присутствие в дефекте кости нижней челюсти недеградируемого ПГА регионарные лимфатические узлы сначала отвечают гипертрофией структур, однако, начиная с 4 недели, резко нарушается строение этих органов, что заключается в уменьшении численности иммунокомпетентных клеток, снижении митотической активности и прогрессивном развитии соединительной

ткани во всех зонах.

Степень достоверности и апробация результатов диссертации:

Все использованные методические приемы и способы статистической обработки соответствуют поставленным цели и задачам и позволяют получить достоверные и доступные анализу результаты. Диссертация выполнена на достаточном экспериментальном материале с использованием сертифицированного оборудования, современных высокоинформативных методов исследования и анализа результатов. Сформулированные научные положения, выводы и практические рекомендации основаны на результатах собственных исследований, не носят характера умозрительных заключения и вытекают из результатов работы.

Основные положения диссертации доложены на Всероссийской конференции «Регенеративная биология и медицина» (Москва, 2011), международной научной конференции «Фундаментальные и прикладные аспекты воспаления» (Минск, 2011), научной конференции «Фундаментальные науки - медицине» (Новосибирск, 2012), научно-практической конференции, посвященной 65-летию кафедры детской хирургии ВГМА им. H.H. Бурденко «Новые технологии в детской хирургии, травматологии и ортопедии» (Воронеж, 2013) и на заседании научного персонала лабораторий стволовой клетки, восстановительной медицины и персонализованной медицины Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН (Новосибирск, 2012).

Внедрение результатов исследования в практику:

Результаты диссертационной работы внедрены в научно-исследовательскую работу «Центра новых медицинских технологий» Института химической биологии и фундаментальной медицины СО РАН, лечебную практику ООО «Дентал-Сервис» и стоматологическую клинику «Дента», МУЗ детскую клиническую больницу скорой помощи № 3 г. Новосибирска, МБУЗ Новосибирска стоматологическую поликлинику №3, на кафедрах ортопедиче-

ской стоматологии, факультетской хирургической стоматологии и стоматологической имплантации Государственного бюджетного образовательного учреждения высшего профессионального образования «Новосибирский государственный медицинский университет» Минздрава России и могут быть использованы при разработке новых методов восстановительной медицины, оказывающих влияние на регенерацию костной ткани, а также при изучении клинических дисциплин, стоматологии, хирургии и травматологии.

Публикации:

По теме диссертации опубликованы 29 печатных работ, из них 22 - в ведущих научных изданиях, рекомендованных ВАК для публикации результатов диссертационных исследований

Структура и объем диссертации:

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, собственных результатов, обсуждения полученных результатов, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Работа изложена на 461 странице компьютерного текста, содержит 55 таблиц, иллюстрирована 103 многокомпонентными комбинированными рисунками. Список литературы включает 586 источников (126 отечественных и 460 иностранных).

Автор искренне благодарен научному консультанту д.м.н., профессору И.В. Майбородину за научно-методическую помощь, ценные замечания и консультации в ходе выполнения работы.

ГЛАВА 1.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Изменения строения костей скелета в результате использования клеточных технологий

Только в США каждый год происходит около 6,5 млн. травм, сопровождающихся костными переломами, регенерация примерно 15 % из них осложняется различными патологиями, которые в настоящее время невозможно эффективно корригировать (Gazit D. et al., 1999).

Регенерация переломов является сложным быстроидущим процессом, в котором активно участвуют многие клетки и цитокины. Процессы восстановления костей окончательно не изучены и выступают объектом постоянных исследований в последние годы (Phillips A.M., 2005).

Костные дефекты часто возникают в качестве осложнениями переломов и других процессов. Несмотря на прогресс в лечении, полное заживление больших дефектов часто является невозможным, так как они не могут самостоятельно регенерировать. Клеточные технологии - это регенеративная медицина, которая все более развивается и дает надежду на эффективное лечение обширных повреждений (Panetta N.J. et al., 2009; Kastrinaki M.C., Papadaki H.A., 2009; Dehne T. et al., 2009; Tamer el M.K., Reis R.L., 2009; David J.P. et al., 2009; Koelling S., Miosge N., 2009; Clines G.A., 2010; Chanda D. et al., 2010; Galle J. et al., 2010).

1.1.1. Характеристика мезенхимальных клеток и их источники

Мезенхимальные стромальные (стволовые) клетки формируют строму костного мозга, а гемопоэтические стволовые клетки участвуют в регенерации красного костного мозга. Поэтому не происходит образования костного мозга при введении только гемопоэтических клеток в различные участки тела (Patt Н.М., Maloney M.А., 1975). Однако, в последнее время появились данные о возможности трансдифференцировки гематопоэтических клеток костного мозга в тканеспецифичные стволовые клетки и обратно (Ratajczak M.Z. et al., 2004).

Красный костный мозг содержит прогениторные клетки (мезенхимальные стволовые клетки), способные к дифференцировке в кость, хрящ, сухожилия и другие виды соединительной ткани. Это позволяет широко применять такие клетки для ускорения регенерации костной ткани (Rosenbaum A.J. et al., 2008; Miljkovic N.D. et al., 2008; Kim S.E. et al., 2008; Centeno C.J. et al., 2008; Tai K. et al., 2008; Kessler M.W. et al., 2008; Hong D. et al., 2010; Chanda D. et al., 2010; Goldschlager T. et al., 2010; Goepfert C. et al., 2010; Peppo de G.M. et al., 2010).

Подобными остеогенными свойствами обладают и МСК, выделенные из жировой ткани (Тарр H. et al., 2009; Lee S.W. et al., 2009; Grewal N.S. et al., 2009; Xie L.W. et al., 2009; Diederichs S. et al., 2009; Estes B.T. et al., 2010; An C. et al., 2010; Niemeyer P. et al., 2010a; Shoji T. et al., 2010; Lee S.J. et al., 2010), крови сосудов пупочного канатика (Ciavarella S. et al., 2009; Martins A.A. et al., 2009; Jâger M. et al., 20096; Kang J.M. et al., 2010; Schneider R.K. et al., 2010; Liu G. et al., 2010; Zhao L. et al., 2010a, 20106; Xu H.H. et al., 2010), его межклеточного вещества (Hsieh J.Y. et al., 2010), периферической крови (Wan С. et al., 2006; Peterbauer-Scherb A. et al., 2010), волосяных фолликулов (Wu G. et al., 2009); надкостницы (Wakitani S., Yamamoto T., 2002; Hayashi O. et al., 2008; Zhang X. et al., 2008), различных синовиальных структур, причем количество их возрастает на ранних стадиях остеоартрита (Nimura A. et al., 2008; Morito T. et al., 2008; Jones E.A. et al., 2008; Steinwachs M.R. et al., 2008; Kanamoto T. et al., 2008; Pei M. et al., 2009; Fan J. et al., 2009; Shi X. et al., 2009; Wang Y. et al., 2010), суб-хондральной кости (Neumann К. et al., 2008), костей свода черепа (Steenhuis P. et al., 2009), связок и сухожилий (Cheng M.T. et al., 2009), нервной ткани (Chung I.H. et al., 2009), слизистой оболочки полости рта (Tomar G.B. et al., 2010), и эмбриональные стволовые клетки (Jukes J.M. et al., 2008a, 20086; Hwang N.S. et al., 2008; Arpornmaeklong P. et al., 2009; Ji Y.H. et al., 2010; Hu J. et al., 2010), в том числе - амниотические (Wei J.P. et al., 2009; Sun H. et al., 2010) и зубных зачатков (Yamada Y. et al., 2010).

По некоторым данным МСК из костного мозга и надкостницы по их ос-теогенной активности имеют преимущество перед клетками жировой ткани

(Hayashi О. et al., 2008; Niemeyer P. et al., 2010a) и перед клетками периферической крови, так как костномозговые клетки содержат больше клеточных элементов CD105+, CD34+ и CD 14+ (Smiler D. et al., 2008).

Выделенные у собак МСК в смеси с фибриновым клеем и recombinant human morphogenetic protein-2 инъецировали под кожу голым мышам. Образование кости было обнаружено на 12 неделе. Гистоморфометрический анализ показал, что подкожные узелки содержат 26,9% вновь сформированной костной ткани после применения МСК костномозгового происхождения (МСККМП), 41,1% костной ткани после использования МСК из альвеолярной кости и 58,2% - после введения периоссальных МСК (Zhu S.J. et al., 2006).

МСККМП от молодых и пожилых пациентов и экспериментальных животных не отличаются по своим свойствам и характеристикам, но с возрастом количество таких клеток снижается (Cei S. et al., 2006). Однако, по другим данным, с возрастом резко снижается пролиферативная активность МСК, что может быть связано с их микроокружением, повреждениями генома, оксидатив-ным стрессом и включениями механизмов супрессии ростовых факторов (снижение риска развития опухолей) (Beausejour С., 2007; Scharstuhl A. et al., 2007; Roobrouck V.D. et al., 2008; Quarto N. et al., 2010).

У пожилых людей может различаться способность МСК к репарации тканей в зависимости от источника клеток. МСККМП пожилых пациентов (средний возраст 64,6 года) продемонстрировали более высокий потенциал к диффе-ренцировке в хондрогенном направлении, по сравнению с МСК, полученными из трабекулярной кости (Coipeau P. et al., 2009).

Эстрогены дозозависимо влияют на дифференцирование МСК человека в остеогенном или адипогенном направлениях. Таким образом, возможны различия как результатов использования МСК у пациентов мужского и женского пола, так и эффективности применения клеток, выделенных от доноров различного пола (Crisostomo P.R. et al., 2006; Hong L. et al., 2006, 2009; Varkey M. et al., 2007; Strube P.etal., 2009).

МСК имеют различную морфологию, что зависит, в первую очередь, от

способов их получения и культивирования. Поэтому перед применением необходимо проведение теста на возможность дифференцировки в заданном направлении (Tallheden T. et al., 2003).

Морфологически МСККМП характеризуются как крупные, фибробласто-подобные, D7-FIB+ клетки. Они являются позитивными по CD 105, CD73, LNGFR, HLA-DR, CD10, CD13, CD90, STRO-1 и негативными по CD14, CD34, CD45, CD117 и CD 133. При культивировании только такие клетки образуют монослой и способны к хондрогенной, остеогенной и адипогенной дифферен-цировке (Jones Е.А. et al., 2002; Chamberlain G. et al., 2007).

МСККМП взрослого человека, фетального костного мозга и пупочной крови оказались одинаковыми по визуальной морфологии и следующим показателям: позитивными по CD29, CD44, CD59, CD90, CD 105, CD 166 и негативными по CDlla, CD 14, CD28, CD33, CD34, CD45, HLA-DR, B7-1(CD80), B7-2 (CD86), CD40, CD40L (Zhou D.H. et al., 2003; Martins A.A. et al., 2009).

Выделенные из периферической крови и костного мозга МСККМП имеют сходные антигенные показатели: они положительные по CD44, CD 13, CD29, CD90 и CD 105, негативные по CD45, CD14, DR, CD34, CD19, CDla, CD38 и CD25. В крови здоровых доноров таких клеток содержится 0,0078±0,0044%, при ожогах в остром периоде этот показатель возрастает до 0,1643±0,115; Р<0,001 (Mansilla Е. et al., 2006).

МСК, выделенные из трабекул кости человека (остеобласты), морфологически сходны с МСККМП и по системе антигенов являются CD73+, STRO-1+, CD105+, CD34-, CD45-, CD144- (Tuli R. et al., 2003; Coipeau P. et al., 2009; Berner A. et al., 2010). Подобные клетки были обнаружены в остеофитах - разрастаниях костной ткани при остеоартритах. Эти клетки имели общие лейкоцитарные маркеры (CD34+, CD45+), экспрессировали белки адгезии (CD29+, CD166+, CD44+) и антигены МСК (CD90+, CD105+, CD73+) (Singh S. et al., 2008). По данным H. Mayer (2004) недифференцированные МСК, выделенные из кости пожилых женщин, характеризуются как CD 13+, CD44+, CD90+, CD147+, CD 14-, CD34-, CD45- и CD144-. После травматических повреждений

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Дровосеков, Михаил Николаевич, 2014 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абрамов М.Г. Гематологический атлас. М.: Медицина. 1985. 344 с.

2. Автандилов Г.Г. Морфометрия в патологии. М. Медицина, 1973. 248 с.

3. Автандилов Г.Г. Введение в количественную патологическую морфологию. -М.: Медицина, 1980. 216 с.

4. Автандилов Г.Г., Яблучанский Н.И., Губенко В.Г. Системная стереометрия в изучении патологического процесса. М.: Медицина, 1981. 192 с.

5. Автандилов Г.Г., Невзоров В.П., Невзорова О.Ф. Системный стереометрический анализ ультраструктур клеток. Кишинев: Штиница, 1984. 168 с.

6. Автандилов Г.Г. Введение в количественную патологическую морфологию. -М.: Медицина, 2002. 238 с.

7. Алексеев A.A., Буянов В.М., Радзиховский А.П. и др. Лимфогенная детокси-кация. Киев: Наукова Думка, 1988. 228 с.

8. Баранцева Г.А., Мышкина В.Л., Николаева Д.А и др. Биодеградация поли-ß-оксибутирата в модельных условиях почвенного сообщества: влияние условий среды на скорость процесса и физико-химические характеристики полимера. // Микробиология. - 2002. - Т.71. - № 2. - С. 258-263.

9. Беликов П.П. Процессы фибринообразования и фибринолиза в физиологии и патологии пародонта. // Стоматол. - 1986. - Т. 65. - № 2. - С. 88-90.

10. Бернет Ф.М. Клеточная иммунология. М.: Мир, 1971. 542 с.

11. Бородин Ю.И., Томчик Г.В. Динамика формирования окольного венозного русла и транспортные возможности подколенных лимфатических узлов после перевязки бедренной вены у собак. // Коллатеральное кровообращение. -Ивано-Франковск, 1967. - С. 330-332.

12. Бородин Ю.И. Анатомо-экспериментальное исследование лимфатических путей и вен в нормальных условиях гемодинамики и при венозном застое: Дисс. ... докт. мед. наук. Новосибирск, 1969.

13. Бородин Ю.И., Томчик Г.В. Морфофункциональные параллели между структурой, ангиоархитектоникой и транспортными возможностями лимфа-

тических узлов в эксперименте. // Тезис, докл. 9 Международ, контр, анат, гистол. и эмбриол. - JI, 1970. - С. 25.

14. Бородин Ю.И, Выренков Ю.Е, Зедгенидзе Г. А. и др. Фундаментальные ис-ледования в лимфологии и их внедрение в клиническую практику. М, 1985. 252 с.

15. Бородин Ю.И, Григорьев В.Н. Лимфатический узел при циркуляторных нарушениях. Новосибирск: Наука, 1986. 272 с.

16. Бородин Ю.И. Проблемы экологической лимфологии. //Арх. анатом, гистол. и эмбриол. - 1989. - T. XCVI. - № 6. - С. 5-14.

17. Бородин Ю.И, Сапин М.Р, Этинген А.Е. и др. Общая анатомия лимфатической системы. Новосибирск: Наука, 1990. 243 с.

18. Бородин Ю.И. Проблемы экологической лимфологии //Проблемы клинической и экспериментальной лимфологии: Мат. научн. конф. - Новосибирск: РИПЭЛ, 1992. - С.4-6.

19. Бородин Ю.И, Любарский М.С, Летягин А.Ю, Величко Я.И, Колосов Н.Г, Ефремов A.B., Смагин A.A., Нимаев В.В. Сорбционно-аппликационные и лимфотропные методы в комплексном лечении ожогов. Новосибирск: Изд-во СибВО, 1995. 143 с.

20. Бородин Ю.И, Труфакин В.А, Любарский М.С, Летягин А.Ю, Габитов В.Х, Акрамов Э.Х, Васильева О.И. Сорбционно-лимфатический дренаж в гнойно-септической хирургии. Бишкек, Новосибирск: Илим, 1996. 346 с.

21. Бородин Ю.И, Любарский М.С, Ефремов A.B., Смагин A.A., Величко Я.И, Морозов В.В. Патогенетические подходы к лимфокоррекции в клинике. Новосибирск: Изд-во СибВО, 1997. 185 с.

22. Бородин Ю.И, Любарский М.С, Шевела А.И, Майбородин И.В, Нимаев В.В, Титова Л.В, Шумков O.A., Шкурин М.А, Поспелов П.В. Морфологические изменения лимфатической системы у больных с лимфедемой нижних конечностей. //Клипчна xipypm. - 2000. - № 5 (687). - С. 25-28.

23. Босхомджиев А.П. Изучение биодеструкции и биосовместимости полимерных систем на основе полиоксиалканоатов. Автореферат дис. ... канд. биол.

наук. М., 2010. 28 с.

24. Бояндин А.Н., Калачева Г.С., Роднчева Э.К., Волова Т.Г. Синтез резервных полигидроксиалканоатов светящимися бактериями. // Микробиология. -2008. - Т. 77. - № 3. - С. 364-369.

25. Буянов В.М. Метод определения степени обсемененности гнойной раны с помощью прямой фазово-контрастной микроскопии. // Сов. мед. - 1987. - № 12.-С. 40.

26. Буянов В.М., Алексеев A.A. Лимфология эндотоксикоза. М.: Медицина, 1990. 272 с.

27. Васильев Н.В. Цитологическая характеристика реакций лимфоидной ткани на антигенный стимул. // Очерки о роли кроветворной ткани в антителообра-зовании. - Томск, 1975. - С. 128-153.

28. Вейбель Э.Р. Морфометрия легких человека. М.: Медицина, 1970. 176 с.

29. Виноградов В.В., Воробьева П.Ф. Роль тучных клеток в структуре микро-циркуляторного русла // Морфология и развитие сердечно-сосудистой системы в норме и эксперименте. - М.: Медицина, 1982. - С. 144-146.

30. Войнов H.A., Волова Т.Г. Кинетические и продукционные характеристики культуры Ralstonia eutropha, аккумулирующей полигидроксиалканоаты на продуктах переработки углей. // Прикладная биохимия и микробиология. -2004. - Т. 40. - № 3. - С. 249-252.

31. Войнова О.Н., Калачева Г.С., Гродницкая И.Д., Волова Т.Г. Микробные полимеры в качестве разрушаемой основы для доставки пестицидов. // Прикладная биохимия и микробиология. - 2009. - Т. 45. - № 4. - С. 427-432.

32. Волова Т.Г., Шишацкая Е.И., Жемчугова A.B. Исследование биоразрушаю-щихся полигидроксиалканоатов в качестве носителя противоопухолевых препаратов. // Антибиотики и химиотерапия. - 2005. - № 2-3. - С. 4-7.

33. Волова Т.Г., Войнов H.A., Муратов B.C. и др. Опытное производство био-разрушаемых полимеров. // Биотехнология. - 2006. - № 6. - С. 28-34.

34. Волова Т.Г., Шишацкая Е.И., Гордеев С.А. Характеристика ультратонких волокон, полученных электростатическим формованием термопластичного

полиэфира [поли[гидроксибутирата/гидросивалерата)]. // Перспективные материалы. - 2006. - № 3. - С. 25-29.

35. Волова Т. Г., Шишацкая Е.И, Шишацкий О. Биосовместимые полимеры. // Наука в России. - 2010. - № 1. - С. 4-8.

36. Воложин А.И, Васильев А.Ю, Мальгинов H.H., Буланова И.М, Григорьян A.C., Киселева Е.В, Черняев С.Е, Тарасенко И.В. Использование мезенхи-мальных стволовых клеток для активизации репаративных процессов костной ткани челюсти в эксперименте. // Стоматология. - 2010. - Т. 89. - № 1. — С. 10-14.

37. Выренков Ю.Е. Актуальные проблемы лимфологии. // Клиническая лимфо-логия. -М., 1986.-С. 10-17.

38. Гареев P.A., Ким Т.Д., Лучинин Ю.С. Факторы лимфооттока. Алма-Ата: Наука, 1982. 128 с.

39. Глаголев A.A. Геометрические методы количественного анализа агрегатов под микроскопом. Львов: Госгеолитиздат, 1941. 263 с.

40. Горчаков В.Н. Морфологические методы исследования сосудистого русла. Новосибирск: СО РАМН, 1997. 440 с.

41. Григорьев В.Н, Умбетов Т.Ж. Структурное обеспечение процессов гемато-лимфатического обмена в лимфатических узлах при циркуляторных нарушениях: Метод, рекомендации. Новосибирск, 1988. 20 с.

42. Гусейнов Г.С. Этюды лимфологии.. Махачкала, 1987. 88 с.

43. Джумабаев С.У, Буянов В.М, Данилов К.Ю. Экспериментальное и клиническое обоснование лимфотропной антибиотикотерапии в хирургии. // Клин, хирургия. - 1987. - № 7. - С. 14-17.

44. Джумабаев С.У. Проблемы и перспективы внедрения методов лимфотропной терапии в практическое здравоохранение. // Тез. докл. 1 межобл. научн.-практич. конф. - Андижан, Наманган, 1989. - С. 3-7.

45. Домников A.B. Патоморфология ангиогенеза и восстановления микроциркуляции в кожно-мышечном лоскуте после его трансплантации: Дисс. ... докт. мед. наук. Новосибирск, 2006. 341 с.

46. Дубинский В.А., Ребров A.B., Ungar G., Антипов Е.М. Обратимые изменения структуры в высококристаллических волокнах полигидроксиалканоатов, возникающие при деформации. // Высокомолек. соед. - 2004. - Т. Б46. - № 10. - С. 1784.

47. Дурихин К.В., Леви М.И. Некоторые видовые особенности плазмоцитарной реакции у животных при иммунизации растворимым антигеном. // Ж. микро-биол. - 1970.-Т. 8.-С. 16-20.

48. Елисеев В.Г., Субботин М.Я., Афанасьев Ю.И., Котовский Е.Ф. Основы гистологии и гистологической техники. М.: Медицина, 1967. 268 с.

49. Жданов Д.А. Общая анатомия и физиология лимфатической системы. Л.: Медгиз, 1952. 336 с.

50. Западнюк И.П., Западнюк В.И., Захария Е.А., Западнюк Б.В. Лабораторные животные. Киев: Вица школа, 1983. 383 с.

51. Зербино Д.Д. Клиническая хирургия лимфатической системы. // Клин, хирургия. -1971. - № 7. - С. 80-85.

52. Зербино Д.Д. Общая патология лимфатической системы. Киев: Здоров'я, 1974. 160 с.

53. Катинас Г.С., Полонский Ю.З. К методике анализа количественных показателей в цитологии. // Цитология. - 1970. - Т. 12. - № 3. - С. 399-403.

54. Ковалевский К.П. Реваскуляризация трансплантированных сложных комплексов тканей: Дисс. ... канд. мед. наук. Новосибирск, 2001. 180 с.

55. Коваленко А.Е., Любарский М.С., Карпов A.B. и др. Нарушения регионарного лимфатического оттока и коррекция его при сорбционной терапии гнойно-септических заболеваний // Значение гнойно-септических процессов в хирургии: Матер. Пленума проблем, комиссии по хирургии. -1991. - С. 3032.

56. Ковынцев А.Н. Мезенхимальные стволовые клетки и регионарный лимфатический узел в процессе восстановления костной ткани нижней челюсти в эксперименте: Дисс. ... канд. мед. наук. Новосибирск, 2011. 178 с.

57. Ковынцев Д.Н. Регенерация поврежденной кости нижней челюсти и струк-

турно-клеточные изменения субмандибулярных лимфатических узлов крыс при использовании аутологичного фибринового сгустка: Дисс. ... канд. мед. наук. Новосибирск, 2010. 169 с.

58. Колесников И.С. Морфологические изменения десны при дентальной имплантации с применением обогащенного тромбоцитами фибринового сгустка: Дисс. ... канд. мед. наук. Новосибирск, 2006. 178 с.

59. Кругляков П.В, Соколова И.Б, Зинькова H.H., Вийде С.В, Чередниченко H.H., Кислякова Т.В, Полынцев Д.Г. Влияние сингенных мезенхимных стволовых клеток на восстановление костной ткани у крыс при имплантации деминерализованного костного матрикса. // Цитология. - 2005. - Т. 47. - № 6. -С. 466-477.

60. Крылов B.C., Миланов Н.О, Абалмасов К.Г и др. Эндолимфатическое давление в оценке состояния периферического лимфооттока в конечностях. // Хирургия. 1991. - № 6. - С. 63-69.

61. Кузин М.И, Костюченок Б.М. Раны и раневая инфекция. М.:, Медицина, 1990. 591 с.

62. Куприянов В.В, Бородин Ю.И, Караганов Я.Л. и др. Микролимфология. М.: Медицина, 1983. 287 с.

63. Левин Ю.М, Зедгенидзе Г.А, Комаров Б.Д. и др. Практическая лимфоло-гия. Баку: Маариф, 1982. 304 с.

64. Левин Ю.М. Основы лечебной лимфологии. М.: Медицина, 1986. 287 с.

65. Лейн-Петтер У. Обеспечение научных исследований лабораторными животными. М: Медицина, 1964. 194 с.

66. Лившиц В.А, Бонарцев А.П, Иорданский А.Л. и др. Микросферы из поли-3-гидроксибутирата для пролонгированного высвобождения лекарственных веществ. // Высокомолекулярные соединения. - Серия А. - 2009. - Т. 51. - № 7.-С. 1-9.

67. Лилли Р. Патогистологическая техника и практическая гистохимия. М.: Мир, 1969. 648 с.

68. Лохвицкий С.В, Шептунов Ю.М. Эндолимфатическая терапия при гнойно-

воспалительных заболеваниях конечностей и таза. // Хирургия. - 1984. - № 11.-С. 129-132.

69. Лохвицкий C.B., Шептунов Ю.М., Климова Н.В. Лимфатический дренаж тканей при хирургической инфекции и коррекция его нарушений. // Проблемы клинической и экспериментальной лимфологии: Мат. научн. конф. - Новосибирск: РИПЭЛ, 1992. - С. 100-101.

70. Любарский М.С., Летягин А.Ю., Габитов В.Х. Сочетанная лимфотропная и сорбционная терапия гнойных ран. Бишкек, Новосибирск, 1995. 134 с.

71. Любарский М.С., Летягин А.Ю., Габитов В.Х., Еркович A.A., Акрамов Э.Х., Васильева О.И. Сорбционно-лимфатический дренаж в лечении гнойно-септических процессов забрюшинного пространства. Бишкек, Новосибирск: Илим, 1997. 128 с.

72. Майбородин И.В., Домников A.B., Ковалевский К.П. Количество тучных клеток как индикатор ангиогенеза в аутотрансплантированных тканях. // Морфология. - 2003. - Т. 124. - № 6. - С. 66-70.

73. Майбородин И.В., Колесников И.С., Шеплев Б.В., Рагимова Т.М., Шевела А.И., Ковынцев А.Н., Колмакова И.А., Притчина И.А., Козлова Е.В., Войтович А.Б., Ковынцев Д.Н. Гранулематозное воспаление после применения препаратов фибрина. // Морфологические ведомости. - 2007. - № 3-4. - С. 116-118.

74. Майбородин И.В., Стрункин Д.Н., Майбородина В.И., Куликова О.В., Лебедев A.A., Зарубенков O.A., Черенкова М.М. Изменения групповых лимфоид-ных узежов и брыжеечных лимфатических узлов крыс после введения комплекса химиотерапевтических препаратов: сходство и различия реакции. // Морфология. - 2007. - Т. 132. - № 5. - С. 68-73.

75. Майбородин И.В., Егоров Д.В., Стрельцова Е.И., Шевела А.И. Лимфатические узлы крыс при остром воспалении и воздействии интерлейкина-2. // Морфологические ведомости. - 2008. - № 3-4. - С. 44-48.

76. Майбородин И.В., Колесников И.С., Шеплев Б.В., Рагимова Т.М. Применение фибрина и его препаратов в стоматологии. // Стоматология. - 2008. — Т.

87.-№6.-С. 75-77.

77. Майбородин И.В, Гаврилова В.В, Колмакова И.А, Притчина И.А, Козлова Е.В, Войтович А.Б, Ковынцев А.Н, Шевела А.И, Колесников И.С, Шеплев Б.В, Рагимова Т.М, Ковынцев Д.Н. Возрастно-половые особенности тканей десны в норме и при хроническом верхушечном периодонтите. // Стоматология. - 2009. - Т. 88. - № 2. - С. 29-33.

78. Майбородин И.В, Колесников И.С, Шеплев Б.В, Рагимова Т.М, Ковынцев

A.Н, Ковынцев Д.Н, Шевела А.И. Морфология подлежащих тканей десны после дентальной имплантации с применением препаратов фибрина. // Стоматология. - 2009. - Т. 88. - № 1. - С. 9-13.

79. Майбородин И.В, Колесников И.С, Козодий Д.М, Выборное М.С, Дровосеков М.Н. Субмандибулярные лимфатические узлы крыс с артериальной гипертензией после повреждения кости нижней челюсти. // Стоматология. -2010.-Т. 89.-№5.-С. 11-14.

80. Майбородин И.В, Шевела А.И, Шеплев Б.В, Колесников И.С, Матвеева

B.А, Дровосеков М.Н, Шевела A.A., Козодий Д.М, Выборнов М.С. Применение биодеградируемых полигидроксиалканоатов после повреждения кости нижней челюсти в эксперименте. // Клиническая стоматология. - 2010. - № 4. - С. 54-57.

81. Майбородин И.В, Якимова Н.В, Матвеева В.А, Майбородина Е.'И, Ткачук O.K. Ангиогенез в рубце миометрия крыс после введения аутологичных ме-зенхимальных стволовых клеток костномозгового происхождения. // Молекулярная медицина и биобезопасность: Сб. мат. VII международ, конференции. М.: Изд-во «МДВ», 2010. - С. 122-123.

82. Майбородин И.В, Якимова Н.В, Матвеева В.А, Пекарев О.Г, Майбородина Е.И, Пекарева Е.О, Ткачук O.K. Морфологический анализ результатов введения аутологичных стволовых стромальных клеток костномозгового происхождения в рубец матки крыс. // Морфология. - 2010. - Т. 138. - № 6. -

C. 47-55.

83. Майбородин И.В, Якимова Н.В, Матвеева В.А, Пекарев О.Г, Майбороди-

на Е.И., Пекарева Е.О. Ангиогенез в рубце матки крыс после введения ауто-логичных мезенхимальных стволовых клеток костномозгового происхождения. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2010. - Т. 150. -№12.-С. 705-711.

84. Мамуровский А.Т. Микроскопические исследования движения лимфы и растройства его при пассивной гипотермии и воспалении. М.: Медицина, 1986.

85. Мышкина B.JL, Иванов Е.А., Николаева Д.А. и др. Биосинтез сополимера поли-З-гидрооксибутирата-З-гидроксивалериата штаммом Azotobakter chroococcum 7Б. // Прикладная биохим. и микробиол. - 2010. - Т. 46. - № 3. -С. 315-323.

86. Непомнящих JI.M., Лушникова Е.Л., Непомнящих Г.И. Морфометрия и сте-реология гипертрофии сердца. - Новосибирск: Наука, 1986. 303 с.

87. Панченков Р.Т., Выренков Ю.Е., Ярема И.В. и др. Эндолимфатическая ан-тибиотикотерапия. М.: Медицина, 1984. 240 с.

88. Панченков Р.Т., Ярема И.В., Сильманович Н.Н. Лимфостимуляция. М.: Медицина, 1986. 240 с.

89. Пирс Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. М.: Изд-во иностр. лит., 1962. 964 с.

90. Плохинский Н.А. Биометрия. М.: Изд-во Московского ун-та, 1970. 368 с.

91. Поликар А. Физиология и патология лимфоидной системы. М.: Медицина, 1965.210 с.

92. Потапов А.Г., Пармон В.Н. Биоразлагаемые полимеры - вперед в будущее. // Экология и пром-сть России. - 2010. - № 5: Спецвып. - С. 4-8.

93. Прокофьев В. Ф. Лимфоузлы при артериальной ишемии. // Лимфатические и кровеносные пути. - Новосибирск, 1976. - С. 143-144.

94. Путалова И.Н. Региональный лимфатический аппарат сердца при инфаркте миокарда и асептическом экзоперикардите (экспериментальное исследование). Дисс.... док. мед. наук. Новосибирск, 1995.

95. Рагимова Т.М. Структура десны и периодонта при лечении острого гнойно-

го периостита челюсти одонтогенного генеза с применением фибринового сгустка: Дисс. ... канд. мед. наук. Новосибирск, 2009. 171 с.

96. Ребров A.B., Дубинский В.А, Некрасов Ю.П, Бонарцева Г.А, Stamm М, Антипов Е.М. Биодеструкция поли-р-гидроксибутирата микроскопическими грибами: испытания полимера на грибостойкость и фунгицидные свойства. // Микология и фитопатология. - 2002. - Т. 36. - № 5. - С. 59-63.

97. Русина А.К. Изменения конструкции и клеточного состава подколенных лимфатических узлов крыс в условиях асептического воспаления // Арх. анатом, гистол. иэмбриол. - 1973. - Т. 65. - Вып. 11. - С. 96-102.

98. Русина А.К. Изменения конструкции и клеточного состава лимфатических узлов крыс в условиях инфицированного воспаления // Арх. анатом, гистол. и эмбриол. - 1974. - Т. 66. - Вып. 6. - С. 5-9.

99. Русньяк И, Фёльди М, Сабо Д. Физиология и патология лимфообращения. Будапешт, 1957. 856 с.

100. Сапин М.Р, Юрина H.A., Этинген JI.E. Лимфатический узел. М.: Медицина, 1978. 272 с.

101. Сапин М.Р, Борзяк Э.И. Внеорганные пути транспорта лимфы. М.: Медицина, 1982. 264 с.

102. Саркисов Д.С, Перов Ю.Л. Микроскопическая техника: Руководство для врачей и лаборантов. М.: Медицина, 1996. 544 с.

103. Сахаров П.П, Метелкин А.И, Гудкова Е.И. Лабораторные животные. М: Медгиз, 1952. 316 с.

104. Спиженко Ю.П. Лимфатическая система в условиях воспаления и хирургической агрессии. //Клин, хирургия. - 1990. - № 6. - С. 44-46.

105. Томчик Г.В, Шурина A.M. К вопросу о транспортной функции лимфатического узла в условиях асептического воспаления в области его лимфосбора // Лимфатические узлы: Сб. научн. тр. НГМИ под ред. чл.-корр. АМН СССР проф. Ю.И.Бородина. - Новосибирск, 1978. - С. 47-49.

106. Труфакин В.А, Субботин М.Я, Дудин В.Г. О роли тучных клеток тимуса в развитии аутоиммунных процессов у мышей. // Мат. 4 Всесоюз. симп. по

проблеме гистофизиол. соединительной ткани. - Новосибирск, 1972. Т 2. - С. 40-42.

107. Фатхудинов Т.Х, Гольдпггейн Д.В, Пулин A.A., Шаменков Д.А, Ржани-нова A.A., Горностаева С.А, Григорьян A.C., Кулаков A.A. Особенности ре-паративного остеогенеза при трансплантации мезенхимальных стволовых клеток. // Бюлл. эксп. биол. и мед.- 2005. - Т. 140. - № 7. - С. -109-113.

108. Федоров М.Б, Вихорева Г.А, Мохова О.Н и др. Антимикробная активность хирургических нитей, модифицированных полигидроксибутиратом, со структурой ядро-оболочка. // Прикл. биохим. и микробиол. - 2007. - Т. 43. -№ 6. - С. 685-690.

109. Хлопина И.Д, Михалочкина В.И. К вопросу о реактивных изменениях структуры лимфатических узлов при атеросклерозе человека. // Сб. науч. трудов Витебского мед. ин-та. - 1964. - Т. 2. - С. 35-40.

110. Христолюбова Н.Б, Шилов А.Г. Возможности применения стереологиче-ского анализа в изучении структурной организации клеток и тканей. // Применение стереологическнх методов в цитологии. - Новосибирск, 1974. - С. 54-62.

111. Цыб А.Ф, Мухамеджанов И.Х, Дергачев А.И. Лимфатические сосуды и узлы нижних конечностей в рентгеноскопическом изображении. // Вестн. рентген, и радиологии. - 1980. - № 6. - С. 58-62.

112. Чернух A.M. Воспаление. М.: Медицина, 1979. 448 с.

113. Чернух A.M., Фролов Е.П. Кожа. М.: Медицина, 1982.

114. Шахламов В.А. Ультраструктура артериального и венозного отделов капилляров. // Арх. анатом, гистол. и эмбриол. - 1967. - Т. 52. - № 1. - С. 24-31.

115. Шурина A.M. Количественные характеристики реакции регионарного лимфатического узла на неспецифическое воспаление в связи с его дренажной функцией. // Лимфатические и кровеносные пути (микроциркуляция в эксперименте и клинике): Сб. науч. тр. НГМИ под ред. чл.-корр. АМН СССР проф. Ю.И.Бородина. - Новосибирск, 1976. - С. 208-209.

116. Шишацкая Е.И, Волова Т.Г, Гордеев С.А. и др. Биодеградация шовных

нитей на основе иолиоксиалканоатов в биологических средах. // Перспективные материалы. - 2002. - № 2. — С. 56-62.

117. Шишацкая Е.И. Клеточные матриксы из резорбируемых полигидроксиал-каноатов. // Клет. транспл. и ткан, инжен. - 2007. - Т. 2 - № 2. - С. 68-75.

118. Шишацкая Е.И., Волова Т. Г., Маркелова Н. М. и др. Первые результаты применения биодеградируемого шовного материала на основе линейного полиэфира 3-гидроксимасляной кислоты. // Успехи современного естествознания. - 2008. - № 9. - С. 106-109.

119. Шишацкая Е.И., Горева A.B., Войнова О.Н., Инжеваткин Е.В., Хлебопрос Р.Г., Волова Т.Г. Оценка противоопухолевой эффективности рубомицина, депонированного в резорбируемые полимерные микрочастицы. // Бюлл. эксп. биол. мед. - 2008. - Т. 145. - № 3. - С. 333-336.

120. Шишацкая Е.И., Камендов И.В., Старосветский С.И., Волова Т.Г. Исследование остеопластических свойств матриксов из резорбируемого полиэфира гидроксимасляной кислоты. // Клет. транспл. и ткан, инжен. - 2008. - Т. 3. -№4.-С. 41-47.

121. Шишацкая Е.И., Горева A.B., Войнова О.Н. и др. Распределение и резорбция полимерных микрочастиц в тканях внутренних органов лабораторных животных при внутривенном введении. // Бюлл. эксп. биол. мед. - 2009. - Т. 147. -№11. -С. 542-546.

122. Шурина A.M. Морфометрическая характеристика структурных элементов лимфатического узла при реактивном отклике его на асептическое воспаление. // Лимфатические узлы: Сб. науч. тр. НГМИ. - Новосибирск, 1978. - С. 43-47.

123. Юрина H.A. Механизмы ранних изменений в системе крови после ал-л©трансплантации и введения антигена. // Ранние проявления тканевой несовместимости. -М., 1976. - С. 103-104.

124. Ярошенко И.Ф., Стаценко Ю.В., Ерошенко В.Ф., Темкин Е.С., Пупышева Г.И. Роль лимфатических узлов в генерализации процесса при экспериментальном верхушечном периодонтите. // Acta Univ. Palacki Olomuc Fac. Med. -

1987.-Vol. 117.-P. 403-407.

125. Ярошенко И.Ф, Темкин Е.С, Пупышева Г.И. Коагулирующая система лимфы и крови при экспериментальном верхушечном периодонтите. // Сто-матол. - 1987. - Т. 66. - № 1. - С. 18-19.

126. Яковлев А.В, Винник Ю.С, Шишацкая Е.И. и др. Лечение паховых грыж с использованием полипропиленовых сетчатых эндопротезов и протезов с покрытием на основе полигидроксиалканоатов. // Сибирское медицинское обозрение. - 2010. - № 2. - С. 76-80.

127. Abukawa H, Zhang W, Young C.S, Asrican R, Vacanti J.P, Kaban L.B, Troulis M.J, Yelick P.C. Reconstructing mandibular defects using autologous tissue-engineered tooth and bone constructs. // J. Oral Maxillofac. Surg. - 2009. -Vol. 67.-№2.-P. 335-347.

128. Ahmed T, Maral H, Lawless M. et al. Polyhydroxybutyrate and its copolymer with polyhydroxyvalerate as biomaterials: influence on progression of stem cell cycle. // Biomacromolecules. - 2010. - Vol. 11. - № 10. - P. 2707-2715.

129. Akita S, Fukui M, Nakagawa H, Fujii T, Akino K. Cranial bone defect healing is accelerated by mesenchymal stem cells induced by coadministration of bone morphogenetic protein-2 and basic fibroblast growth factor. // Wound Repair Regen. - 2004. - Vol. 12. - № 2. - P. 252-259.

130. Alge D.L, Zhou D, Adams L.L, Wyss B.K, Shadday M.D, Woods E.J, Gabriel Chu T.M, Goebel W.S. Donor-matched comparison of dental pulp stem cells and bone marrow-derived mesenchymal stem cells in a rat model. // J. Tissue Eng. Regen. Med. - 2010. - Vol. 4. - № 1. - P. 73-81.

131. Amass W, Amass A, Tighe B. A. review of biodegradale polymers: uses, current developments in the synthesis and characterization of biodegradable polyesters, blends of biodegradable polymers and recent advances in biodégradation studies. // Polym. Int. - 1998. - Vol. 47. - P. 89-144.

132. An C, Cheng Y, Yuan Q, Li J. IGF-1 and BMP-2 induces differentiation of adipose-derived mesenchymal stem cells into chondrocytes-like cells. // Ann. Bio-med. Eng. - 2010. - Vol. 38. - № 4. - P. 1647-1654.

133. Anitua E. Plasma rich in growth factors: preliminary results of use in the preparation of future sites for implants. // Int. J. Oral Maxillofac. Implants. - 1999. - Vol. 14.-№4.-P. 529-535.

134. Anitua E. The use of plasma-rich growth factors (PRGF) in oral surgery. // Pract. Proced. Aesthet. Dent. - 2001. - Vol. 13. - № 6. - P. 487-493.

135. Anitua E., Andia I., Ardanza B., Nurden P., Nurden A.T. Autologous platelets as a source of proteins for healing and tissue regeneration. // Thromb. Haemost. -2004.-Vol. 91.-№1.-P. 4-15.

136. Anitua E., Andia I., Sanchez M., Azofra J., Zalduendo del Mar M., Fuente de la M., Nurden P., Nurden A.T. Autologous preparations rich in growth factors promote proliferation and induce VEGF and HGF production by human tendon cells in culture. // J. Orthop. Res. - 2005. - Vol. 23. - № 2. - P. 281-286.

137. Anitua E. Enhancement of osseointegration by generating a dynamic implant surface. // J. Oral. Implantol. - 2006. - Vol. 32. - № 2. - P. 72-76.

138. Anitua E., Sanchez M., Nurden A.T., Nurden P., Orive G., Andia I. New insights into and novel applications for platelet-rich fibrin therapies. // Trends Biotechnol. - 2006. - Vol. 24. - № 5. - P. 227-234.

139. Anitua E., Sanchez M., Nurden A.T., Zalduendo M., Fuente de la M., Orive G., Azofra J., Andia I. Autologous fibrin matrices: a potential source of biological mediators that modulate tendon cell activities. // J. Biomed. Mater. Res. A. - 2006. -Vol. 77.-№2.-P. 285-293.

140. Anitua E., Sanchez M., Orive G., Andia I. The potential impact of the preparation rich in growth factors (PRGF) in different medical fields. // Biomaterials. -2007. - Vol. 28. - № 31. - P. 4551-4560.

141. Arinzeh T.L., Peter S.J., Archambault M.P., Bos van den C., Gordon S., Kraus K., Smith A., Kadiyala S. Allogeneic mesenchymal stem cells regenerate bone in a critical-sized canine segmental defect. // J. Bone Joint Surg. Am. - 2003. - Vol. 85-A.-№10.-P. 1927-1935.

142. Arpornmaeklong P., Brown S.E., Wang Z., Krebsbach P.H. Phenotypic characterization, osteoblastic differentiation, and bone regeneration capacity of human

embryonic stem cell-derived mesenchymal stem cells. // Stem Cells Dev. - 2009. -Vol. 18.-№7. -P. 955-968.

143. Avila A, Warshawski F, Sibbald W, Finley R, Wells G, Holliday R. Peripheral lymph flow in sheep with bacterial peritonitis: evidence for increased peripheral microvascular permeability accompanying systemic sepsis. // Surgery. - 1985. -Vol. 97.-№6.-P. 685-695.

144. Beausejour C. Bone marrow-derived cells: the influence of aging and cellular senescence. //Handb. Exp. Pharmacol. - 2007. - № 180. - P. 67-88.

145. Becker W. Fibrin sealants in implant and periodontal treatment: case presentations. // Compend. Contin. Educ. Dent. - 2005. - Vol. 26. - № 8. - P. 539-545.

146. Beer T.W, Baldwin H.C, Goddard J.R, Gallagher P.J, Wright D.H. Angiogen-esis in pathological and surgical scars. // Hum. Pathol. - 1998. - Vol. 29. - № 11. -P. 1273-1278.

147. Behnia H, Khojasteh A, Soleimani M, Tehranchi A, Khoshzaban A, Keshel S.H, Atashi R. Secondary repair of alveolar clefts using human mesenchymal stem cells. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2009. - Vol. 108. -№ 2. - P. el-e6.

148. Ben-Ari A, Rivkin R, Frishman M, Gaberman E, Levdansky L, Gorodetsky R. Isolation and implantation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells with fibrin micro beads to repair a critical-size bone defect in mice. // Tissue. Eng. Part A. - 2009. - Vol. 15. - № 9. - P. 2537-2546.

149. Berner A, Siebenlist S, Reichert J.C, Hendrich C, Noth U. Reconstruction of osteochondral defects with a stem cell-based cartilage-polymer construct in a small animal model. //Z. Orthop. Unfall. - 2010. - Vol. 148. - № 1. - P. 31-38.

150. Biancone L, Martino A.D, Orlandi V, Conaldi P.G, Toniolo A, Camussi G. Development of inflammatory angiogenesis by local stimulation of Fas in vivo. // J. Exp. Med. - 1997. - Vol. 186. - № 1. - P. 147-152.

151. Bischoff D.S, Zhu J.H, Makhijani N.S, Kumar A, Yamaguchi D.T. Angiogenic CXC chemokine expression during differentiation of human mesenchymal stem cells towards the osteoblastic lineage. // J. Cell. Biochem. -

2008. - Vol. 103. - № 3. - P. 812-824.

152. Bjerke K., Brandtzaeg P. Immunoglobulin- and J chain-producing cells associated with lymphoid follicles in the human appendix, colon and ileum, including Peyer's patches. // Clin. Exp. Immunol. - 1986. - Vol. 64. - № 2. - P. 432-441.

153. Blair R.J., Meng H., Marchese M.J., Ren S., Schwartz L.B., Tonnesen M.G., Gruber B.L. Human mast cells stimulate vascular tube formation. Tryptase is a novel, potent angiogenic factor. // J. Clin. Invest. - 1997. - Vol. 99. - № 11. - P. 2691-2700.

154. Blob U., Linden C. Experiences with fibrin adhesive in dental surgery. // Zahnarztl. Prax. - 1982. - Vol. 33. - № 1. - P. 18-22.

155. Bo B., Wang C.Y., Guo X.M. Repair of cranial defects with bone marrow derived mesenchymal stem cells and beta-TCP scaffold in rabbits. // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. - 2003. - Vol. 17. - № 4. - P. 335-338.

156. Boesiger J., Tsai M., Maurer M., Yamaguchi M., Brown L.F., Claffey K.P., Dvorak H.F., Galli S.J. Mast cells can secrete vascular permeability factor/ vascular endothelial cell growth factor and exhibit enhanced release after immunoglobulin E-dependent upregulation of fc epsilon receptor I expression. // J. Exp. Med. -1998.-Vol. 188.-№6.-P. 1135-1145.

157. Boskhomdzhiev A.P., Bonartsev A.P., Makhina T.K. et al. Biodégradation Kinetics of poly(3-hydroxybutyrate)-Based Biopolymer systems. // Biochem. (Moscow) Supplement Series B: Biomed. Chemistry. - 2010. - Vol. 4. - № 2. - P. 177183.

158. Bourin P., Gadelorge M. The hopes of the mesenchymal stem cells in regenerative medicine. //Transfus. Clin. Biol. - 2007. - Vol. 14. - № 1. - P. 120-126.

159. Brandi H., Gross R.A., Lenz R.W., Fuller R.C. Plastics from bacteria and for bacteria: poly(beta-hydroxyalkanoates) as natural, biocompatible, and biodegradable polyesters. //Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. -1990. - Vol. 41. - P. 77-93.

160. Brandtzaeg P., Bjerke K. Human Peyer's patches: lympho-epithelial relationships and characteristics of immunoglobulin-producing cells. // Immunol. Invest. -1989. - Vol. 18. - № 1-4. - P. 29-45.

161. Brandtzaeg P. Review article: Homing of mucosal immune cells - a possible connection between intestinal and articular inflammation. // Aliment. Pharmacol. Ther. - 1997. - Vol. 11.- Suppl 3. - P. 24-37; discussion 37-39.

162. Breitbart E.A, Meade S, Azad V, Yeh S, Al-Zube L, Lee Y.S, Benevenia J, Arinzeh T.L, Lin S.S. Mesenchymal stem cells accelerate bone allograft incorporation in the presence of diabetes mellitus. // J. Orthop. Res. - 2010. - Vol. 28. - № 7.-P. 942-949.

163. Browse N.L. The diagnosis and management of primary lymphedema. // J. Vase. Surg. - 1986. - Vol. 3. -№ 1. - P. 181-184.

164. Bueno D.F, Kerkis I, Costa A.M., Martins M.T., Kobayashi G.S, Zucconi E, Fanganiello R.D, Salles F.T, Almeida A.B, Amaral do C.E, Alonso N, Passos-Bueno M.R. New source of muscle-derived stem cells with potential for alveolar bone reconstruction in cleft lip and/or palate patients. // Tissue Eng. Part A. - 2009. -Vol. 15.-№2.-P. 427-435.

165. Cabanillas-Saez A, Schalper J.A, Nicovani S.M, Rudolph M.I. Characterization of mast cells according to their content of tryptase and chymase in normal and neoplastic human uterine cervix. // Int. J. Gynecol. Cancer. - 2002. - Vol. 12. - № l.-P. 92-98.

166. Cancedda R, Mastrogiacomo M, Bianchi G, Derubeis A, Muraglia A, Quarto R. Bone marrow stromal cells and their use in regenerating bone. // Novartis Found Symp. - 2003. - Vol. 249. - P. 133-143; discussion 143-147, 170-174, 239-241.

167. Cao T., Heng B.C., Ye C.P, Liu H„ Toh W.S, Robson P, Li P, Hong Y.H., Stanton L.W. Osteogenic differentiation within intact human embryoid bodies result in a marked increase in osteocalcin secretion after 12 days of in vitro culture, and formation of morphologically distinct nodule-like structures. // Tissue Cell. -2005. - Vol. 37. - № 4. - P. 325-334.

168. Caplan A.I. Adult mesenchymal stem cells for tissue engineering versus regenerative medicine. // J. Cell. Physiol. - 2007. - Vol. 213. - № 2. - P. 341-347.

169. Caplan A.I. New era of cell-based orthopedic therapies. // Tissue Eng. Part B Rev. - 2009. - Vol. 15. - № 2. - P. 195-200.

170. Carmagnola D., Berglundh T., Araujo M., Albrektsson T., Lindhe J. Bone healing around implants placed in a jaw defect augmented with Bio-Oss. An experimental study in dogs. // J. Clin. Periodontol. - 2000. - Vol. 27. - № 11. - P. 799805.

171. Caroli-Bosc F.X., Conio M., Maes B., Chevallier P., Hastier P., Delmont J.P. Abdominal tuberculosis involving hepatic hilar lymph nodes. A cause of portal vein thrombosis and portal hypertension. // J. Clin. Gastroenterol. - 1997. - Vol. 25. - № 3. - P. 541-543.

172. Carter G., Goss A.N., Lloyd J., Tocchetti R. Local haemostasis with autologous fibrin glue following surgical enucleation of a large cystic lesion in a therapeutically anticoagulated patient. // Br. J. Oral Maxillofac. Surg. - 2003. - Vol. 41. - № 4. -P. 275-276.

173. Carter G., Goss A., Lloyd J., Tocchetti R. Tranexamic acid mouthwash versus autologous fibrin glue in patients taking warfarin undergoing dental extractions: a randomized prospective clinical study. // J. Oral Maxillofac. Surg. - 2003. - Vol. 61.-№12.-P. 1432-1435.

174. Casley-Smith J.R. The lymphatic system in inflammation. // The inflammatory process, 2nd ed., vol. 2, 1973. - P. 161-204.

175. Casley-Smith J. The structure and Functioning of the Blood vessels, Interstitial tissues and Lymphatics. // Lymphangiology. - Stuttgart, New York: Schattauer, 1983.-Ch. 2.-P. 27-143.

176. Cei S., Kandler B., Fugl A., Gabriele M., Hollinger J.O., Watzek G., Gruber R. Bone marrow stromal cells of young and adult rats respond similarly to platelet-released supernatant and bone morphogenetic protein-6 in vitro. // J. Periodontol. -2006. - Vol. 77. - № 4. - P. 699-706.

177. Centeno C.J., Busse D., Kisiday J., Keohan C., Freeman M., Karli D. Regeneration of meniscus cartilage in a knee treated with percutaneously implanted autologous mesenchymal stem cells. // Med. Hypotheses. - 2008. - Vol. 71. - № 6. - P. 900-908.

178. Chai G., Zhang Y., Hu X.J., Wang M., Liu W., Cui L., Cao Y.L. Repair alveolar

cleft bone defects with bone marrow stromal cells. // Zhonghua Zheng Xing Wai Ke Za Zhi. - 2006. - Vol. 22. - № 6. - P. 409-411.

179. Chamberlain G, Fox J, Ashton B, Middleton J. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. // Stem Cells. - 2007. - Vol. 25. - № 11. - P. 2739-2749.

180. Chanda D, Kumar S, Ponnazhagan S. Therapeutic potential of adult bone marrow-derived mesenchymal stem cells in diseases of the skeleton. // J. Cell. Biochem. - 2010. - Vol. 111. - № 2. - P. 249-257.

181. Chang S.C., Wei F.C, Chuang H, Chen Y.R, Chen J.K., Lee K.C, Chen P.K, Tai C.L, Lou J. Ex vivo gene therapy in autologous critical-size craniofacial bone regeneration. //Plast. Reconstr. Surg. - 2003. - Vol. 112. -№ 7. - P. 1841-1850.

182. Chang S.H., Tung K.Y., Wang Y.J, Tsao Y.P, Ni T.S, Liu H.K. Fabrication of vascularized bone grafts of predetermined shape with hydroxyapatite-collagen gel beads and autogenous mesenchymal stem cell composites. // Plast. Reconstr. Surg. - 2010. - Vol. 125. - № 5. - P. 1393-1402.

183. Charbord P. Bone marrow mesenchymal stem cells: historical overview and concepts. // Hum. Gene Ther. - 2010. - Vol. 21. - № 9. - P. 1045-1056.

184. Chen G.Q, Wu Q. The application of polyhydroxyalkanoates as tissue engineering materials. //Biomaterials. - 2005. - Vol. 26. - P. 6565-6578.

185. Chen Y.L., Chen P.K, Jeng L.B, Huang C.S, Yang L.C, Chung H.Y., Chang S.C. Periodontal regeneration using ex vivo autologous stem cells engineered to express the BMP-2 gene: an alternative to alveolaplasty. // Gene Ther. - 2008. -Vol. 15. - № 22. - P. 1469-1477.

186. Cheng M.T, Yang H.W, Chen T.H, Lee O.K. Isolation and characterization of multipotent stem cells from human cruciate ligaments. // Cell. Prolif. - 2009. - Vol. 42. - № 4. - P. 448-460.

187. Chetta A, Zanini A, Foresi A, DTppolito R, Tipa A, Castagnaro A, Baraldo S, Neri M, Saetta M, Olivieri D. Vascular endothelial growth factor up-regulation and bronchial wall remodeling in asthma. // Clin. Exp. Allergy. - 2005. -Vol. 35.-№11.-P. 1437-1442.

188. Choi B.H., Zhu S.J., Jung J.H., Lee S.H., Huh J.Y. The use of autologous fibrin glue for closing sinus membrane perforations during inus lifts. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2006. - Vol. 101. - № 2. - P. 150-154.

189. Choukroun J., Diss A., Simonpieri A., Girard M.O., Schoeffler C., Dohan S.L., Dohan A.J, Mouhyi J., Dohan D.M. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part IV: clinical effects on tissue healing. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2006. - Vol. 101. - № 3. - P. e56-e60.

190. Choukroun J., Diss A., Simonpieri A., Girard M.O., Schoeffler C., Dohan S.L., Dohan A.J., Mouhyi J., Dohan D.M. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part V: histologic evaluations of PRF effects on bone allograft maturation in sinus lift. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2006. - Vol. 101. - № 3. - P. 299-303.

191. Chuang C.K., Lin K.J., Lin C.Y., Chang Y.H., Yen T.C., Hwang S.M., Sung L.Y., Chen H.C., Hu Y.C. Xenotransplantation of human mesenchymal stem cells into immunocompetent rats for calvarial bone repair. // Tissue Eng. Part A. - 2010. -Vol. 16.-№2.-P. 479-488.

192. Chuansumrit A. Treatment of haemophilia in the developing countries. // Haemophilia. - 2003. - Vol. 9. - № 4. - P. 387-390.

193. Chung I.H., Yamaza T., Zhao H., Choung P.H., Shi S., Chai Y. Stem cell property of postmigratory cranial neural crest cells and their utility in alveolar bone regeneration and tooth development. // Stem Cells. - 2009. - Vol. 27. - № 4. - P. 866877.

194. Chung S.I., Lee S.Y., Ryogin U., Kamemitsu K. Affects of F XIII in wound-healing - Fibrin stability in tissues and cross linking of angiogenesis modulator, osteonectin to fibrin. // Rinsho Byori. - 1997. - Suppl. - Vol. 104. - P. 50.

195. Chyczewska E., Chyczewski L., Barczyk M., Kowal E. Morphology of mast cells in experimental pulmonary fibrosis induced with bleomysin. // Pneumonol. Alergol. Pol. - 1995. - Vol. 63. - Suppl 2. - P. 87-92.

196. Ciavarella S., Dammacco F., Matteo de M., Loverro G., Silvestris F. Umbilical cord mesenchymal stem cells: role of regulatory genes in their differentiation to os-

teoblasts. // Stem Cells Dev. - 2009. - Vol. 18. - № 8. - P. 1211-1220.

197. Ciesielski S, Pokoj T, Klimiuk E. Molecular insight into activated sludge producing polyhydroxyalkanoates under aerobic-anaerobic conditions. // J. Ind. Microbiol. Biotechnol. - 2008. - Vol. 35. - № 8. - P. 805-814.

198. Cimpeanu L, Castiniu M. Morphological changes of the periartic lymph glands in atherosclerotic lesions of the aged. // Internat. Conf. Gerontol. - Budapest, 1966. -P. 147-154.

199. Clines G.A. Prospects for osteoprogenitor stem cells in fracture repair and osteoporosis. // Curr. Opin. Organ. Transplant. - 2010. - Vol. 15. - № 1. - P. 73-78.

200. Coipeau P, Rosset P, Langonne A, Gaillard J., Delorme B, Rico A, Domenech J, Charbord P, Sensebe L. Impaired differentiation potential of human trabecular bone mesenchymal stromal cells from elderly patients. // Cytotherapy. -2009. - Vol. 11. - № 5. - P. 584-594.

201. Colm S.J. The use of a fibrin sealant to control intraoperative bleeding during a Le Fort I osteotomy: report of a case. // J. Oral Maxillofac. Surg. - 1996. - Vol. 54. - № 8. - P. 1014-1016.

202. Corrente G, Abundo R, Cardaropoli G, Martuscelli G, Trisi P. Supracrestal bone regeneration around dental implants using a calcium carbonate and a fibrin-fibronectin sealing system: clinical and histologic evidence. // Int. J. Periodontics Restorative Dent. - 1997. - Vol. 17. - № 2. - P. 170-181.

203. Cortellini P, DeSanctis M, Pini Prato G, Baldi C, Clauser C. Guided tissue regeneration procedure using a fibrin-flbronectin system in surgically induced recession in dogs. // Int. J. Periodontics Restorative Dent. -1991. - Vol. 11. - № 2. - P. 150-163.

204. Cortellini P, Pini Prato G.P, Tonetti M.S. No detrimental effect of fibrin glue on the regeneration of intrabony defects. A controlled clinical trial. // J. Clin. Periodontol. - 1995. - Vol. 22. - № 9. - P. 697-702.

205. Costa-Noble da R, Soustre E.C., Cadot S, Lauverjat Y., Lefebvre F, Rabaud M. Evaluation of bioabsorbable elastin-fibrin matrix as a barrier in surgical periodontal treatment. // J. Periodontol. - 1996. - Vol. 67. - № 9. - P. 927-934.

206. Coussens L.M., Raymond W.W., Bergers G., Laig-Webster M., Behrendtsen O., Werb Z., Caughey G.H., Hanahan D.. Inflammatory mast cells up-regulate angio-genesis during squamous epithelial carcinogenesis. // Genes Dev. - 1999. - Vol. 13. -№ 11.-P. 1382-1397.

207. Crisostomo P.R., Wang M., Herring C.M., Morrell E.D., Seshadri P., Meldrum K.K., Meldrum D.R. Sex dimorphisms in activated mesenchymal stem cell function. // Shock. - 2006. - Vol. 26. - № 6. - P. 571-574.

208. Crivellato E., Beltrami C.A., Mallardi F., Ribatti D. The mast cell: an active participant or an innocent bystander? // Histol. Histopathol. - 2004. - Vol. 19. - № 1. -P. 259-270.

209. Crivellato E., Ribatti D. Involvement of mast cells in angiogenesis and chronic inflammation. // Curr. Drug Targets Inflamm. Allergy. - 2005. - Vol. 4. - № 1. - P. 9-11.

210. David J.P., Zwerina J., Schett G. Mesenchymal stem cells in arthritis. // Z. Rheumatol. - 2009. - Vol. 68. - № 3. - P. 228-233.

211. Dawes E.A. Novel biodegradable microbial polymers. \ Kluwer Academic, Dordrecht E.A. Dawes. Netherlands, 1990. 287 p.

212. Dehne T., Tschirschmann M., Lauster R., Sittinger M. Regenerative potential of human adult precursor cells: cell therapy - an option for treating cartilage defects? // Z. Rheumatol. - 2009. - Vol. 68. - № 3. - P. 234-238.

213. Deliargyris E.N., Upadhya B., Sane D.C., Dehmer G.J., Pye J., Smith S.C. Jr., Boucher W.S., Theoharides T.C. Mast cell tryptase: a new biomarker in patients with stable coronary artery disease. // Atherosclerosis. - 2005. - Vol. 178. - № 2. -P. 381-386.

214. Deng Y., Zhao K., Zhang X.F., Hu P., Chen G.Q. Study on the three-dimensional proliferation of rabbit articular cartilage-derived chondrocytes on polyhydroxyalkanoate scaffolds. // Biomaterials. - 2002. - Vol. 23. - P. 40494056.

215. Detmar M., Brown L.F., Schon M.P., Elicker B.M., Velasco P., Richard L., Fukumura D., Monsky W., Claffey K.P., Jain R.K. Increased microvascular densi-

ty and enhanced leukocyte rolling and adhesion in the skin of VEGF transgenic mice. I I J. Invest. Dermatol. - 1998. - Vol. 111. - № 1. - P. 1-6.

216. Diederichs S, Roker S, Marten D, Peterbauer A, Scheper T, Griensven van M, Kasper C. Dynamic cultivation of human mesenchymal stem cells in a rotating bed bioreactor system based on the Z RP platform. // Biotechnol. Prog. - 2009. -Vol. 25.-№6.-P. 1762-1771.

217. Dines K.C, Powell H.C. Mast cell interactions with the nervous system: relationship to mechanisms of disease. // J. Neuropathol. Exp. Neurol. - 1997. - Vol. 56. - № 6. - P. 627-640.

218. Doggrell S.A, Wanstall J.C. Vascular chymase: pathophysiological role and therapeutic potential of inhibition. // Cardiovasc. Res. - 2004. - Vol. 61. - № 4. - P. 653-662.

219. Dohan D.M, Choukroun J, Diss A, Dohan S.L, Dohan A J, Mouhyi J, Gogly B. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part I: technological concepts and evolution. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2006. - Vol. 101. - № 3. - P.e37-e44.

220. Dohan D.M, Choukroun J, Diss A, Dohan S.L, Dohan A.J, Mouhyi J, Gogly B. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part II: platelet-related biologic features. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2006. - Vol. 101. - № 3. - P. e45-e50.

221. Dohan D.M, Choukroun J, Diss A, Dohan S.L, Dohan A.J, Mouhyi J, Gogly B. Platelet-rich fibrin (PRF): a second-generation platelet concentrate. Part III: leucocyte activation: a new feature for platelet concentrates? // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2006. - Vol. 101. - № 3. - P. e51-e55.

222. Dong Y, Li P, Chen C.B. et al. The improvement of fibroblast growth on hydrophobic biopolyesters by coating with polyhydroxyalkanoate granule binding protein PhaP fused with cell adhesion motif RGD. // Biomaterials. - 2010. -Vol.31. -№ 34.-P. 8921-8930.

223. Duan B, Wang M. Customized Ca-P/PHBV nanocomposite scaffolds for bone tissue engineering: design, fabrication, surface modification and sustained release

of growth factor. // J. R. Soc. Interface. - 2010. - Vol. 6, 7. - Suppl. 5. - P. 615-629.

224. Duan B., Wang M., Zhou W.Y., Cheung W.L., Li Z.Y., Lu W.W. Three-dimensional nanocomposite scaffolds fabricated via selective laser sintering for bone tissue engineering. // Acta Biomater. - 2010. - Vol. 6. - № 12. - P. 44954505.

225. Duncan J.I., Brown F.I., McKinnon A., Long W.F., Williamson F.B., Thompson W.D. Patterns of angiogenic response to mast cell granule constituents. // Int. J. Microcirc. Clin. Exp. - 1992. - Vol. 11. - № 1. - P. 21-33.

226. Dvorak H.F., Galli S.J., Dvorak A.M. Cellular and vascular manifestations of cell-mediated immunity. // Hum. Pathol. - 1986. - Vol. 17. - № 2. - P. 122-137.

227. El-Hakim I.E. The effect of fibrin stabilizing factor (F.XIII) on healing of bone defects in normal and uncontrolled diabetic rats. // Int. J. Oral Maxillofac. Surg. -1999. - Vol. 28. - № 4. - P. 304-308.

228. Elias R.M., Johnston M.G., Hayashi A. et al. Decreased lymphatic pumping after intravenosus endotoxin administration in sheep. // Amer. J. Physiol. - 1987. -Vol. 253.-№6.-P. 1349- 1357.

229. Espitalier F., Vinatier C., Lerouxel E., Guicheux J., Pilet P., Moreau F., Daculsi G., Weiss P., Malard O. A comparison between bone reconstruction following the use of mesenchymal stem cells and total bone marrow in association with calcium phosphate scaffold in irradiated bone. // Biomaterials. - 2009. - Vol. 30. - № 5. - P. 763-769.

230. Estes B.T., Diekman B.O., Gimble J.M., Guilak F. Isolation of adipose-derived stem cells and their induction to a chondrogenic phenotype. // Nat. Protoc. - 2010. -Vol. 5. - № 7. - P. 1294-1311.

231. Fabris G., Trombelli L., Schincaglia G.P., Cavallini R., Calura G., del Senno L. Effects of a fibrin-fibronectin sealing system on proliferation and type I collagen synthesis of human PDL fibroblasts in vitro. // J. Clin. Periodontol. - 1998. - Vol. 25. - № 1. - P. 11-14.

232. Farstad I.N., Carlsen H., Morton H.C., Brandtzaeg P. Immunoglobulin A cell distribution in the human small intestine: phenotypic and functional characteristics.

// Immunology. - 2000. - Vol. 101. - № 3. - P. 354-363.

233. Fajardo I, Pejler G. Human mast cell beta-tryptase is a gelatinase. // J. Immunol. - 2003. - Vol. 171. - № 3. - P. 1493-1499.

234. Fan J, Varshney R.R, Ren L, Cai D, Wang D.A. Synovium-derived mesenchymal stem cells: a new cell source for musculoskeletal regeneration. // Tissue Eng. Part B Rev. - 2009. - Vol. 15. - № 1. - P. 75-86.

235. Fang K.C, Wolters P.J, Steinhoff M, Bidgol A, Blount J.L, Caughey G.H. Mast cell expression of gelatinases A and B is regulated by kit ligand and TGF-beta. // J. Immunol. - 1999. - Vol. 162. - № 9. - P. 5528-5535.

236. Farstad I.N, Carlsen H, Morton H.C, Brandtzaeg P. Immunoglobulin A cell distribution in the human small intestine: phenotypic and functional characteristics. // Immunology. - 2000. - Vol. 101. - № 3. - P. 354-363.

237. Federici A.B, Sacco R, Stabile F, Carpenedo M, Zingaro E, Mannucci P.M. Optimising local therapy during oral surgery in patients with von Willebrand disease: effective results from a retrospective analysis of 63 cases. // Haemophilia. -2000.-Vol. 6.-№2.-P. 71-77.

238. Feng F, Akiyama K, Liu Y, Yamaza T, Wang T.M, Chen J.H, Wang B.B, Huang G.T, Wang S, Shi S. Utility of PDL progenitors for in vivo tissue regeneration: a report of 3 cases. // Oral Dis. - 2010. - Vol. 16. - № 1. - P. 20-28.

239. Foldi M. Diseases of lymphatics and lymph circulation. Thomas, Springfield, lie, 1969.

240. Frangogiannis N.G, Entman M.L. Identification of mast cells in the cellular response to myocardial infarction. // Methods Mol. Biol. - 2006. - Vol. 315. - P. 91101.

241. Freier T, Kunze C, Nischan C, Kramer S, Sternberg K, Sass M, Hopt U.T, Schmitz K.P. In vitro and in vivo degradation studies for development of a biodegradable patch based on poly(3-hydroxybutyrate). // Biomaterials. - 2002. - Vol. 23.-№13.-P. 2649-2657.

242. Freitas I, Baronzio G.F, Bertone V, Grifflni P, Gerzeli G, Pontiggia P, Stoward P.J. Stroma formation in Ehrlich carcinoma. I. Oedema phase. A mitosis

burst as an index of physiological reoxygenation? // Anticancer Res. - 1991. - Vol. 11.-№2.-P. 569-578.

243. Froum S.J., Wallace S.S., Tarnow D.P., Cho S.C. Effect of platelet-rich plasma on bone growth and osseointegration in human maxillary sinus grafts: three bilateral case reports. // Int. J. Periodontics Restorative Dent. - 2002. - Vol. 22. - № 1. -P. 45-53.

244. Fu K., Xu Q., Czernuszka J., McKenna C.E., Ebetino F.H., Russell R.G., Triffitt J.T., Xia Z. Prolonged osteogenesis from human mesenchymal stem cells implanted in immunodeficient mice by using coralline hydroxyapatite incorporating rhBMP2 microspheres. // J. Biomed. Mater. Res. A. - 2010. - Vol. 92. - № 4. - P. 1256-1264.

245. Fu X., Li H. Mesenchymal stem cells and skin wound repair and regeneration: possibilities and questions. // Cell and Tissue Research. - 2008. - Vol. 335. - № 2. -P. 317-321.

246. Fuerst G., Gruber R., Tangl S., Sanroman F., Watzek G. Effects of fibrin sealant protein concentrate with and without platelet-released growth factors on bony healing of cortical mandibular defects. An experimental study in minipigs. // Clin. Oral Implants Res. - 2004. - Vol. 15. - № 3. - P. 301-307.

247. Fukui M., Akita S., Akino K. Ectopic bone formation facilitated by human mesenchymal stem cells and osteogenic cytokines via nutrient vessel injection in a nude rat model. // Wound Repair Regen. - 2005. - Vol. 13. - № 3. - P. 332-340.

248. Fyfe N.C., Rutt D.L., Edwards J.M., Kinmonth J.B. Intralymphatic steroid therapy for lymphoedema: preliminary studies. // Lymphology. - 1982. - Vol. 15. - № l.-P. 23-28.

249. Galle J., Bader A., Hepp P., Grill W., Fuchs B., Kas J.A., Krinner A., MarquaB B., Mtiller K., Schiller J., Schulz R.M., Buttlar von M., Burg von der E., Zscharnack M., Loffler M. Mesenchymal stem cells in cartilage repair: state of the art and methods to monitor cell growth, differentiation and cartilage regeneration. // Curr. Med. Chem. - 2010. - Vol. 17. - № 21. - P. 2274-2291.

250. Galli S.J., Gordon J.R., Wershil B.K. Cytokine production by mast cells and ba-

sophils. // Curr. Opin. Immunol. -1991. - Vol. 3. - № 6. - P. 865-872.

251. Galli S.J. Mast cells and basophils. //Curr. Opin. Hematol. - 2000. - Vol. 7. - № l.-P. 32-39.

252. Gazit D, Turgeman G, Kelley P, Wang E, Jalenak M, Zilberman Y, Moutsatsos I. Engineered pluripotent mesenchymal cells integrate and differentiate in regenerating bone: a novel cell-mediated gene therapy. // J. Gene Med. - 1999. -Vol. 1. - № 2. - P. 121-133.

253. Ge Z, Baguenard S, Lim L.Y, Wee A, Khor E. Hydroxyapatite-chitin materials as potential tissue engineered bone substitutes. // Biomaterials. - 2004. - Vol. 25.-№6.-P. 1049-1058.

254. Gillitzer R, Toksoy A., Voss A. Role of chemokines in human skin wound healing. // Zentralbl. Chir. - 2000. - Vol. 125. - Suppl. l.-P. 56-59.

255. Goepfert C, Slobodianski A, Schilling A.F, Adamietz P., Partner R. Cartilage engineering from mesenchymal stem cells. // Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. -2010.-Vol. 123.-P. 163-200.

256. Goldschlager T, Jenkin G, Ghosh P, Zannettino A, Rosenfeld J.V. Potential applications for using stem cells in spine surgery. // Curr. Stem Cell. Res. Ther. -2010. - Vol. 5. - № 4. - P. 345-355.

257. Graziano A, d'Aquino R, Laino G, Papaccio G. Dental pulp stem cells: a promising tool for bone regeneration. // Stem Cell Rev. - 2008. - Vol. 4. - № 1. - P. 21-26.

258. Gregory E.W, Schaberg S.J. Experimental use of fibrin sealant for skin graft fixation in mandibular vestibuloplasty. // J. Oral Maxillofac. Surg. - 1986. - Vol. 44.-№3.-P. 171-176.

259. Grewal N.S, Gabbay J.S, Ashley R.K, Wasson K.L, Bradley J.P., Zuk P.A. BMP-2 does not influence the osteogenic fate of human adipose-derived stem cells. // Plast. Reconstr. Surg. - 2009. - Vol. 123. - № 2. - Suppl. - P. 158S-165S.

260. Guehennec le L, Goyenvalle E, Aguado E, Pilet P, Bagot D'Arc M, Bilban M, Spaethe R, Daculsi G. MBCP biphasic calcium phosphate granules and tissucol fibrin sealant in rabbit femoral defects: the effect of fibrin on bone in-

growth. // J. Mater. Sci. Mater. Med. - 2005. - Vol. 16. - № 1. - P. 29-35.

261. Gurevitch O., Kurkalli B.G., Prigozhina T., Kasir J., Gaft A., Slavin S. Reconstruction of cartilage, bone, and hematopoietic microenvironment with demineral-ized bone matrix and bone marrow cells. // Stem Cells. - 2003. - Vol. 21. - № 5. -P. 588-597.

262. Guyton A.C., Taylor A.C., Granger H.J. Dynamics and control of the body fluids circulatory physiology. Philadelphia: NASA, 1975. 396 p.

263. Halfpenny W., Fraser J.S., Adlam D.M. Comparison of 2 hemostatic agents for the prevention of postextraction hemorrhage in patients on anticoagulants. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2001. - Vol. 92. - № 3. - P. 257-259.

264. Hallman M., Nordin T. Sinus floor augmentation with bovine hydroxyapatite mixed with fibrin glue and later placement of nonsubmerged implants: a retrospective study in 50 patients. // Int. J. Oral Maxillofac. Implants. - 2004. - Vol. 19. - № 2.-P. 222-227.

265. Hallman M., Zetterqvist L. A 5-year prospective follow-up study of implant-supported fixed prostheses in patients subjected to maxillary sinus floor augmentation with an 80:20 mixture of bovine hydroxyapatite and autogenous bone. // Clin. Implant. Dent. Relat. Res. - 2004. - Vol. 6. - № 2. - P. 82-89.

266. Hamidouche Z., Fromigue O., Ringe J., Haupl T., Vaudin P., Pages J.C., Srouji S., Livne E., Marie P.J. Priming integrin alpha5 promotes human mesenchymal stromal cell osteoblast differentiation and osteogenesis. // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 2009. - Vol. 106. - № 44. - P. 18587-18591.

267. Hamidouche Z., Fromigue O., Nuber U., Vaudin P., Pages J.C., Ebert R., Jakob F., Miraoui H., Marie P.J. Autocrine fibroblast growth factor 18 mediates dexame-thasone-induced osteogenic differentiation of murine mesenchymal stem cells. // J. Cell. Physiol. - 2010. - Vol. 224. - № 2. - P. 509-515.

268. Haroon Z.A., Hettasch J.M., Lai T.S., Dewhirst M.W., Greenberg C.S. Tissue transglutaminase is expressed, active, and directly involved in rat dermal wound healing and angiogenesis. // FASEB J. - 1999. - Vol. 13. - № 13. - P. 1787-1795.

269. Harris C.T, Cooper L.F. Comparison of bone graft matrices for human mesenchymal stem cell-directed osteogenesis. // J. Biomed. Mater. Res. A. - 2004. -Vol. 68.-№4.-P. 747-755.

270. Hatai B, Hashimoto T, Ishizuka H. The role of mast cells upon the hemorrhage in lymph sinus of immunized germ free rats. // 10th Internat. Congr. Anatomists. -Tokyo, 1975.-P. 25-30.

271. Hayashi A, Johnston M.G, Nelson W. et al. Increased intrinsic pumping of intestinal lymphatics following hemorrhage in anesthetized sheep. // Circulât. Res. -1987. - Vol. 60. - № 2. - P. 265 - 272.

272. Hayashi O, Katsube Y, Hirose M, Ohgushi H, Ito H. Comparison of osteogenic ability of rat mesenchymal stem cells from bone marrow, periosteum, and adipose tissue. // Calcif. Tissue Int. - 2008. - Vol. 82. - № 3. - P. 238-247.

273. Head J.R, Seeling L.L. Jr. Lymphatic vessels in the uterine endometrium of virgin rats. // J. Reprod. Immunol. - 1984. - Vol. 6. - № 3. - P. 157-166.

274. Hellem S, Astrand P, Stenstrom B. et al. Implant treatment in combination with lateral augmentation of the alveolar process: a 3-year prospective study. // Clin. Implant. Dent. Relat. Res. - 2003. - Vol. 5. - № 4. - P. 233-240.

275. Heng B.C., Liu H, Cao T. Transplanted human embryonic stem cells as biological "catalysts" for tissue repair and regeneration. // Med. Hypotheses. - 2005. -Vol. 64.-№6.-P. 1085-1088.

276. Heng B.C., Liu H, Cao T. Utilising human embryonic stem cells as "catalysts" for biological repair and regeneration. Challenges and some possible strategies. // Clin. Exp. Med. - 2005. - Vol. 5. - № 1. - P. 37-39.

277. Herr H.W. Complications of pelvic lymphadenectomy and retropubic prostatic 1251 implantation. // Urology. - 1979. - Vol. 14. - № 3. - P. 226-229.

278. Hibi H, Yamada Y, Kagami H, Ueda M. Distraction osteogenesis assisted by tissue engineering in an irradiated mandible: a case report. // Int. J. Oral Maxillofac. Implants. - 2006. - Vol. 21. - № 1. - p. 141-147.

279. Hokugo A, Ozeki M, Kawakami O, Sugimoto K., Mushimoto K, Morita S., Tabata Y. Augmented bone regeneration activity of platelet-rich plasma by biode-

gradable gelatin hydrogel. // Tissue Eng. - 2005. - Vol. 11. - № 7-8. - P. 12241233.

280. Hong D., Chen H.X., Ge R., Li JC. Genetically engineered mesenchymal stem cells: The ongoing research for bone tissue engineering. // Anat. Rec. (Hoboken). -2010. - Vol. 293. -№ 3. - P. 531-537.

281. Hong L., Colpan A., Peptan I.A. Modulations of 17-beta estradiol on osteogenic and adipogenic differentiations of human mesenchymal stem cells. // Tissue Eng. -

2006. - Vol. 12. - № 10. - P. 2747-2753.

282. Hong L., Sultana H., Paulius K., Zhang G. Steroid regulation of proliferation and osteogenic differentiation of bone marrow stromal cells: a gender difference. // J. Steroid Biochem. Mol. Biol. - 2009. - Vol. 114. - № 3-5. - P. 180-185.

283. Hoshi K., Amizuka N., Kurokawa T., Nakamura K., Shiro R., Ozawa H. Histopathological characterization of melorheostosis. // Orthopedics. - 2001. - Vol. 24. - № 3. - P. 273-277.

284. Hou R., Mao T., Yang Y., Gao Z., Cheng X., Chen S., Chen F. Experimental study on repair of critical-sized cranial defect by tissue engineered bone. // Zhongguo Xiu Fu Chong Jian Wai Ke Za Zhi. - 2005. - Vol. 19. - № 10. - P. 818821.

285. Hsieh J.Y., Fu Y.S., Chang S.J., Tsuang Y.H., Wang H.W. Functional module analysis reveals differential osteogenic and sternness potentials in human mesenchymal stem cells from bone marrow and Wharton's jelly of umbilical cord. // Stem Cells Dev. - 2010. - Vol. 19. - № 12. - P. 1895-1910.

286. Hu J., Qi M.C., Zou S.J., Li J.H., Luo E. Callus formation enhanced by BMP-7 ex vivo gene therapy during distraction osteogenesis in rats. // J. Orthop. Res. -

2007. - Vol. 25. - № 2. - P. 241-251.

287. Hu J., Smith L.A., Feng K., Liu X., Sun H., Ma P.X. Response of human embryonic stem cells derived mesenchymal stem cells to osteogenic factors and architectures of materials during in vitro osteogenesis. // Tissue Eng. Part A. - 2010. -Vol. 16. -№ 11. .p. 3507-3514.

288. Huang G.T., Gronthos S., Shi S. Mesenchymal stem cells derived from dental

tissues vs. those from other sources: their biology and role in regenerative medicine. I I J. Dent. Res. - 2009. - Vol. 88. - № 9. - P. 792-806.

289. Hwang N.S., Varghese S, Lee H.J, Zhang Z, Ye Z, Bae J, Cheng L, Elisseeff J. In vivo commitment and functional tissue regeneration using human embryonic stem cell-derived mesenchymal cells. // Proc. Natl. Acad. Sei. U. S. A. - 2008. -Vol. 105. - № 52. - P. 20641-20646.

290. Imada A, Shijubo N, Kojima H, Abe S. Mast cells correlate with angiogenesis and poor outcome in stage I lung adenocarcinoma. // Eur. Respir. J. - 2000. - Vol. 15.-№6.-P. 1087-1093.

291. Ito K, Yamada Y, Naiki T, Ueda M. Simultaneous implant placement and bone regeneration around dental implants using tissue-engineered bone with fibrin glue, mesenchymal stem cells and platelet-rich plasma. // Clin. Oral Implants Res. - 2006. - Vol. 17. - № 5. - P. 579-586.

292. Iyer S.S., Rojas M. Anti-inflammatory effects of mesenchymal stem cells: novel concept for future therapies. // Expert. Opin. Biol. Ther. - 2008. - Vol. 8. - № 5. -P. 569-581.

293. Izumi T, Yamada K, Inoue H, Watanabe K, Nishigawa Y. Fibrinogen/fibrin and fibronectin in the dentin-pulp complex after cavity preparation in rat molars. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 1998. - Vol. 86. - № 5. -P. 587-591.

294. Jackson M.R. Fibrin sealants in surgical practice: An overview. // Am. J. Surg. -2001. - Vol. 182. - № 2. - Suppl. - P. 1S-7S.

295. Jacquel N, Tajima K, Nakamura N. et al. Nucleation mechanism of polyhydroxybutyrate and poly(hydroxybutyrate-co-hydroxyhexanoate) crystallized by orotic acid as a nucleating agent. // Journal of Applied Polymer Science. -2001. - Vol. 115. - Is. 2.-P. 709-715.

296. Jäger M, Degistirici O, Knipper A, Fischer J, Sager M, Krauspe R. Bone healing and migration of cord blood-derived stem cells into a critical size femoral defect after xenotransplantation. // J. Bone Miner. Res. - 2007. - Vol. 22. - № 8. -P. 1224-1233.

297. Jäger M., Krauspe R. Antigen expression of cord blood derived stem cells under osteogenic stimulation in vitro. // Cell. Biol. Int. - 2007. - Vol. 31. - № 9. - P. 950957.

298. Jäger M., Jelinek E.M., Wess K.M., Scharfstädt A., Jacobson M., Kevy S.V., Krauspe R. Bone marrow concentrate: a novel strategy for bone defect treatment. // Curr. Stem Cell. Res. Ther. - 2009. - Vol. 4. - № 1. - P. 34-43.

299. Jäger M., Zilkens C., Bittersohl B., Krauspe R. Cord blood - an alternative source for bone regeneration. // Stem Cell. Rev. - 2009. - Vol. 5. - № 3. - P. 266277.

300. Jakobsson A., Sorbo J., Norrby K. Protamine and mast-cell-mediated angiogen-esis in the rat. // J. Exp. Pathol. (Oxford). - 1990. - Vol. 71. - № 2. - P. 209-217.

301. Jegoux F., Goyenvalle E., Bagot D'arc M., Aguado E., Daculsi G. In vivo biological performance of composites combining micro-macroporous biphasic calcium phosphate granules and fibrin sealant. // Arch. Orthop. Trauma Surg. - 2005. -Vol. 125.-№3.-P. 153-159.

302. Ji Y.H., Ji J.L., Sun F.Y., Zeng Y.Y., He X.H., Zhao J.X., Yu Y., Yu S.H., Wu W. Quantitative proteomics analysis of chondrogenic differentiation of C3H10T1/2 mesenchymal stem cells by iTRAQ labeling coupled with on-line two-dimensional LC/MS/MS. // Mol. Cell. Proteomics. - 2010. - Vol. 9. - № 3. - P. 550-564.

303. Jiang X., Zou S., Ye B., Zhu S., Liu Y., Hu J. bFGF-Modified BMMSCs enhance bone regeneration following distraction osteogenesis in rabbits. // Bone. -2010. - Vol. 46. -№4. - P. 1156-1161.

304. Johnston M., Hayashi A., Elias R. Quantitative approaches to the study of lymphatic contractille activity in vitro and in vivo: Potential role of this dynamic "Lymph-pump" in the re-expansion of the vascular space following hemorhade. // Lymphology. - 1986. - Vol. 19. - № 2. - P. 45-55.

305. Johnston M., Elias R. The regulation of lymphatic pumping. // Lymphology. -1987. - Vol. 20. - № 4. - P. 215-218.

306. Jones E.A., Kinsey S.E., English A., Jones R.A., Straszynski L., Meredith D.M.,

Markham A.F, Jack A, Emery P, McGonagle D. Isolation and characterization of bone marrow multipotential mesenchymal progenitor cells. // Arthritis Rheum. -2002. - Vol. 46. - № 12. - P. 3349-3360.

307. Jones E.A, Crawford A, English A, Henshaw K, Mundy J, Corscadden D, Chapman T, Emery P, Hatton P, McGonagle D. Synovial fluid mesenchymal stem cells in health and early osteoarthritis: detection and functional evaluation at the single-cell level. // Arthritis Rheum. - 2008. - Vol. 58. - № 6. - P. 1731-1740.

308. Joseph-Silverstein J, Rifkin D.B. Endothelial cell growth factors and the vessel wall. // Semin. Thromb. Hemost. - 1987. - Vol. 13. - № 4. - P. 504-513.

309. Jukes J.M, Both S.K, Blitterswijk van C.A, Boer de J. Potential of embryonic stem cells for in vivo bone regeneration. // Regen. Med. - 2008. - Vol. 3. - № 6. -P. 783-785.

310. Jukes J.M, Both S.K, Leusink A, Sterk L.M, Blitterswijk van C.A, Boer de J. Endochondral bone tissue engineering using embryonic stem cells. // Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. - 2008. - Vol. 105. - № 19. - P. 6840-6845.

311. Kaijzel E.L, Koolwijk P, Erck van M.G, Hinsbergh van V.W, Maat de M.P. Molecular weight fibrinogen variants determine angiogenesis rate in a fibrin matrix in vitro and in vivo. // J. Thromb. Haemost. - 2006. - Vol. 4. - № 9. - P. 1975-1981.

312. Kalia P, Blunn G.W, Miller J, Bhalla A, Wiseman M, Coathup M.J. Do autologous mesenchymal stem cells augment bone growth and contact to massive bone tumor implants? // Tissue Eng. - 2006. - Vol. 12. - № 6. - P. 1617-1626.

313. Kallai I, Lenthe van G.H, Ruffoni D, Zilberman Y, Miiller R, Pelled G, Gazit D. Quantitative, structural, and image-based mechanical analysis of nonunion fracture repaired by genetically engineered mesenchymal stem cells. // J. Biomech. - 2010. - Vol. 43. - № 12. - P. 2315-2320.

314. Kanamoto T, Nakamura N, Nakata K, Yoshikawa H. Articular cartilage regeneration using stem cells. // Clin. Calcium. - 2008. - Vol. 18. - № 12. - P. 17441749.

315. Kang J.M, Kang S.W, La W.G, Yang Y.S, Kim B.S. Enhancement of in vivo bone regeneration efficacy of osteogenically undifferentiated human cord blood

mesenchymal stem cells. // J. Biomed. Mater. Res. A. - 2010. - Vol. 93. - № 2. - P. 666-672.

316. Kastrinaki M.C., Papadaki H.A. Mesenchymal stromal cells in rheumatoid arthritis: biological properties and clinical applications. // Curr. Stem Cell. Res. Ther.

- 2009. - Vol. 4. - № 1. - P. 61-69.

317. Kawaguchi H., Hirachi A., Hasegawa N., Iwata T., Hamaguchi H., Shiba H., Takata T., Kato Y., Kurihara H. Enhancement of periodontal tissue regeneration by transplantation of bone marrow mesenchymal stem cells. // J. Periodontol. - 2004. -Vol. 75.-№9.-P. 1281-1287.

318. Kawaguchi H., Hayashi H., Mizuno N., Fujita T., Hasegawa N., Shiba H., Nakamura S., Hino T., Yoshino H., Kurihara H., Tanaka H., Kimura A., Tsuji K., Kato Y. Cell transplantation for periodontal diseases. A novel periodontal tissue regenerative therapy using bone marrow mesenchymal stem cells. // Clin. Calcium.

- 2005. - Vol. 15. - № 7. - P. 99-104.

319. Kawaguchi H., Kurihara H. Clinical trial of periodontal tissue regeneration. // Nippon Rinsho. - 2008. - Vol. 66. - № 5. - P. 948-954.

320. Kawase T., Okuda K., Wolff L.F., Yoshie H. Platelet-rich plasma-derived fibrin clot formation stimulates collagen synthesis in periodontal ligament and osteoblastic cells in vitro. // J. Periodontol. - 2003. - Vol. 74. - № 6. - P. 858-864.

321. Kawase T., Okuda K., Saito Y., Amizuka N., Suzuki H., Yoshie H. Platelet-rich plasma provides nucleus for mineralization in cultures of partially differentiated periodontal ligament cells. // In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. - 2005. - Vol. 41. - № 5.-P. 171-176.

322. Kawase T., Okuda K., Saito Y., Yoshie H. In vitro evidence that the biological effects of platelet-rich plasma on periodontal ligament cells is not mediated solely by constituent transforming-growth factor-beta or platelet-derived growth factor. // J. Periodontol. - 2005. - Vol. 76. - № 5. - P. 760-767.

323. Kawate K., Yajima H., Ohgushi H., Kotobuki N., Sugimoto K., Ohmura T., Kobata Y., Shigematsu K., Kawamura K., Tamai K., Takakura Y. Tissue-engineered approach for the treatment of steroid-induced osteonecrosis of the fem-

oral head: transplantation of autologous mesenchymal stem cells cultured with be-ta-tricalcium phosphate ceramics and free vascularized fibula. // Artif. Organs. -2006. - Vol. 30. - № 12. - P. 960-962.

324. Ke Y., Wang Y., Ren L. Surface modification of PHBV scaffolds via UV polymerization to improve hydrophilicity. // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. - 2010. -Vol. 21. -№ 12.-P. 1589-1602.

325. Ke Y„ Wang Y.J., Ren L, Zhao Q.C, Huang W. Modified PHBV scaffolds by in situ UV polymerization: structural characteristic, mechanical properties and bone mesenchymal stem cell compatibility. // Acta Biomater. - 2010. - Vol. 6. - № 4.-P. 1329-1336.

326. Kellouche S, Mourah S, Bonnefoy A, Schoevaert D, Podgorniak M.P, Calvo F, Hoylaerts M.F, Legrand C, Dosquet C. Platelets, thrombospondin-1 and human dermal fibroblasts cooperate for stimulation of endothelial cell tubulogenesis through VEGF and PAI-1 regulation. // Exp. Cell. Res. - 2007. - Vol. 313. - № 3. -P. 486-499.

327. Kessler M.W, Ackerman G, Dines J.S, Grande D. Emerging technologies and fourth generation issues in cartilage repair. // Sports Med. Arthrosc. - 2008. - Vol. 16.-№4.-P. 246-254.

328. Khare V.K, Albino A.P, Reed J.A. The neuropeptide/mast cell secretagogue substance P is expressed in cutaneous melanocytic lesions. // J. Cutan. Pathol. -1998.-Vol. 25.-№1.-P. 2-10.

329. Kim E.S, Park E.J, Choung P.H. Platelet concentration and its effect on bone formation in calvarial defects: an experimental study in rabbits. // J. Prosthet. Dent. - 2001. - Vol. 86. - № 4. - P. 428-433.

330. Kim S.E, Jeon O, Lee J.B, Bae M.S., Chun H.J, Moon S.H, Kwon I.K. Enhancement of ectopic bone formation by bone morphogenetic protein-2 delivery using heparin-conjugated PLGA nanoparticles with transplantation of bone marrow-derived mesenchymal stem cells. // J. Biomed. Sci. - 2008. - Vol. 15. - № 6. -P. 771-777.

331.Kinmonth J.B, Wolfe J.H. Fibrosis in the lymph nodes in primary

lymphoedema. Histological and clinical studies in 74 patients with lower-limb oedema. // Ann. R. Coll. Surg. Engl. - 1980. - Vol. 62. - № 5. - P. 344-354.

332. Kinoshita K., Hibi H,, Yamada Y., Ueda M. Promoted new bone formation in maxillary distraction osteogenesis using a tissue-engineered osteogenic material. // J. Craniofac. Surg. - 2008. - Vol. 19. - № 1. - P. 80-87.

333. Kitoh H., Kitakoji T., Tsuchiya H., Mitsuyama H., Nakamura H., Katoh M., Ishiguro N. Transplantation of marrow-derived mesenchymal stem cells and platelet-rich plasma during distraction osteogenesis - a preliminary result of three cases. // Bone. - 2004. - Vol. 35. - № 4. - P. 892-898.

334. Koelling S., Miosge N. Stem cell therapy for cartilage regeneration in osteoarthritis. //Expert. Opin. Biol. Ther. - 2009. - Vol. 9. - № 11. - P. 1399-1405.

335. Kogire M., Nishida O., Kobayashi H., Shimogou T., Izumi F., Sugiyama A., Ida J., Mori A., Tamura J., Koumoto M., Baba N., Ogawa H., Sakanashi S. Splenectomy for en bloc node dissection in gastric cancer: a possible cause of portal vein thrombosis. // Nippon Geka Hokan. - 1996. - Vol. 65. - № 2. - P. 49-53.

336. Kok de I.J., Peter S.J., Archambault M., Bos van den C., Kadiyala S., Aukhil I., Cooper L.F. Investigation of allogeneic mesenchymal stem cell-based alveolar bone formation: preliminary findings. // Clin. Oral. Implants Res. - 2003. - Vol. 14. - № 4. - P. 481-489.

337. Kok de I.J., Drapeau S.J., Young R., Cooper L.F. Evaluation of mesenchymal stem cells following implantation in alveolar sockets: a canine safety study. // Int. J. Oral Maxillofac. Implants. - 2005. - Vol. 20. - № 4. - P. 511-518.

338. Komatsu F., Yoshida S. Utility and quality of autologous fresh frozen plasma and autologous fibrin glue for surgical patients. // Transfus. Sci. - 1999. - Vol. 21. -№2.-P. 105-109.

339. Komatsu F., Yoshida S. Large volume apheresis of autologous plasma and preparation of autologous fibrin glue from the plasma. // Ther. Apher. - 2001. - Vol. 5. -№ 1. - P. 12-16.

340. Korecki C.L., Taboas J.M., Tuan R.S., Iatridis J.C. Notochordal cell conditioned medium stimulates mesenchymal stem cell differentiation toward a young nucleus

pulposus phenotype. // Stem Cell. Res. Ther. - 2010. - Vol. 1. - № 2. - P. 18.

341.Kotobuki N, Hirose M, Machida H, Katou Y, Muraki K, Takakura Y, Ohgushi H. Viability and osteogenic potential of cryopreserved human bone marrow-derived mesenchymal cells. // Tissue Eng. - 2005. - Vol. 11. - № 5-6. - P. 66373.

342. Kotobuki N, Katsube Y, Katou Y, Tadokoro M, Hirose M, Ohgushi H. In vivo survival and osteogenic differentiation of allogeneic rat bone marrow mesenchymal stem cells (MSCs). // Cell. Transplant. - 2008. - Vol. 17. - № 6. - P. 705-712.

343. Kovacs B, Kerenyi G. Bioplast fibrin coagulum in large cystic defects of the jaw. // Int. J. Oral Surg. - 1976. - Vol. 5. - № 3. - P. 111-116.

344. Kumar S, Nagy T.R, Ponnazhagan S. Therapeutic potential of genetically modified adult stem cells for osteopenia. // Gene Ther. - 2010. - Vol. 17. - № 1. - P. 105-116.

345. Laidmae I, McCormick M.E, Herod J.L, Pastore J.J, Salum T, Sawyer E.S, Janmey P.A, Uibo R. Stability, sterility, coagulation, and immunologic studies of salmon coagulation proteins with potential use for mammalian wound healing and cell engineering. // Biomaterials. - 2006. - Vol. 27. - № 34. - P. 5771-5779.

346. Laino G, Graziano A, d'Aquino R, Pirozzi G, Lanza V, Valiante S, Rosa de A, Naro F, Vivarelli E, Papaccio G. An approachable human adult stem cell source for hard-tissue engineering. // J. Cell. Physiol. - 2006. - Vol. 206. - № 3. - P. 693-701.

347. Laurens N, Koolwijk P, Maat de M.P. Fibrin structure and wound healing. // J. Thromb. Haemost. - 2006. - Vol. 4. - № 5. - P. 932-939.

348. Lee H.J, Choi B.H, Jung J.H, Zhu S.J, Lee S.H, Huh J.Y, You T.M., Li J. Maxillary sinus floor augmentation using autogenous bone grafts and platelet-enriched fibrin glue with simultaneous implant placement. // Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. - 2007. - Vol. 103. - № 3. - P. 329-333.

349. Lee O.K., Coathup M.J, Goodship A.E, Blunn G.W. Use of mesenchymal stem cells to facilitate bone regeneration in normal and chemotherapy-treated rats. //

Tissue Eng. - 2005. - Vol. 11. - № 11-12. - P. 1727-1735.

350. Lee S.J, Kang S.W, Do H.J, Han I, Shin D.A, Kim J.H, Lee S.H. Enhancement of bone regeneration by gene delivery of BMP2/Runx2 bicistronic vector into adipose-derived stromal cells. // Biomaterials. - 2010. - Vol. 31. - № 21. - P. 56525659.

351. Lee S.W, Padmanabhan P, Ray P, Gambhir S.S, Doyle T, Contag C, Goodman S.B, Biswal S. Stem cell-mediated accelerated bone healing observed with in vivo molecular and small animal imaging technologies in a model of skeletal injury. // J. Orthop. Res. - 2009. - Vol. 27. - № 3. - P. 295-302.

352. Lee S.Y, Miwa M, Sakai Y, Kuroda R, Matsumoto T, Iwakura T, Fujioka H, Doita M, Kurosaka M. In vitro multipotentiality and characterization of human unfractured traumatic hemarthrosis-derived progenitor cells: A potential cell source for tissue repair. // J. Cell. Physiol. - 2007. - Vol. 210. - № 3. - P. 561-566.

353. Leer van C, Stutz M, Haeberli A, Geiser T. Urokinase plasminogen activator released by alveolar epithelial cells modulates alveolar epithelial repair in vitro. // Thromb. Haemost. - 2005. - Vol. 94. - № 6. - P. 1257-1264.

354. Lekovic V, Camargo P.M., Weinlaender M, Vasilic N, Djordjevic M, Kenney E.B. The use of bovine porous bone mineral in combination with enamel matrix proteins or with an autologous fibrinogen/fibronectin system in the treatment of intrabony periodontal defects in humans. // J. Periodontol. - 2001. - Vol. 72. - № 9. -P. 1157-1163.

355. Li H, Yan F, Lei L, Li Y, Xiao Y. Application of autologous cryopreserved bone marrow mesenchymal stem cells for periodontal regeneration in dogs. // Cells Tissues Organs. - 2009. - Vol. 190. - № 2. - P. 94-101.

356. Li H, Zhai W, Chang J. Effects of wollastonite on proliferation and differentiation of human bone marrow-derived stromal cells in PHBV/wollastonite composite scaffolds. // J. Biomater. Appl. - 2009. - Vol. 24. - № 3. - P. 231-246.

357. Lin N.H, Menicanin D, Mrozik K, Gronthos S, Bartold P.M. Putative stem cells in regenerating human periodontium. // J. Periodontal. Res. - 2008. - Vol. 43. -№5.-P. 514-523.

358. Lin T.J., Issekutz T.B., Marshall J.S. Sdf-1 induces il-8 production and transendothelial migration of human cord blood-derived mast cells. // Int. Arch. Allergy Immunol. - 2001. - Vol. 124. - № 1-3. - P. 142-145.

359. Lindroos B., Maenpaa K., Ylikomi T., Oja H., Suuronen R., Miettinen S. Characterisation of human dental stem cells and buccal mucosa fibroblasts. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2008. - Vol. 368. - № 2. - P. 329-335.

360. Lindskog S., Lilja E. Fibrinogen and IgG in the hyaline zone in man after orthodontic movement. // Scand. J. Dent. Res. - 1983. - Vol. 91. - № 2. - P. 156-158.

361. Liu G., Li Y., Sun J., Zhou H., Zhang W., Cui L., Cao Y. In vitro and in vivo evaluation of osteogenesis of human umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells on partially demineralized bone matrix. // Tissue Eng. Part A. - 2010. -Vol. 16. -№3.-P. 971-982.

362. Liu H., Kemeny D.M., Heng B.C., Ouyang H.W., Melendez A.J., Cao T. The immunogenicity and immunomodulatory function of osteogenic cells differentiated from mesenchymal stem cells. // J. Immunol. - 2006. - Vol. 176. - № 5. - P. 28642871.

363. Liu J., Zhao Z., Li J., Zou L., Shuler C., Zou Y., Huang X., Li M., Wang J. Hydrostatic pressures promote initial osteodifferentiation with ERK1/2 not p38 MAPK signaling involved. // J. Cell. Biochem. - 2009. - Vol. 107. - № 2. - P. 224232.