Морфологические и нейроиммунные взаимодействия в Пейеровой бляшке тонкой кишки крыс тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, кандидат биологических наук Штылик, Анастасия Владимировна

• Штылик, Анастасия Владимировна
• кандидат биологических наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Штылик, Анастасия Владимировна

Оглавление

Список сокращений

Введение

Научная значимость и новизна работы

Глава I. Структура нервного аппарата Пейеровой бляшки

1.1. Иннервация лимфоидных органов

1.2. Строение и функции лимфоидного органа тонкой

кишки - Пейеровой бляшки

1.3. Метасимпатическая нервная система, ее энтеральный

отдел

1.4. Материал и методы исследования

1.5. Результаты и их обсуждение

Глава II. Связи нервных элементов в пределах Пейеровых бляшек

тонкой кишки Крыс

• * £ г"»* •* *

2.1. Методы, использующие ретроградный аксональный,'

транспорт, в изучении центральной и периферической нервной системы

2.2. Установление связей нервных элементов в пределах

Пейеровой бляшки с помощью ретроградного флюоресцентного маркера примулина.

Материал и методы исследования

2.3. Результаты исследований и их обсуждение

Глава Ш. Влияние ацетилхолина на иммуноглобулинсекретирующую функцию Пейеровых бляшек

3.1. Взаимодействия нервной и иммунной систем

3.2. Влияние ацетилхолина на секрецию иммуноглобулинов

Пейеровыми бляшками интактных и

иммунизированных крыс

3.3. Материал и методы исследования

3.4. Результаты и обсуждение

Глава IV. Влияние ацетилхолина на миграцию лимфоцитов

в слизистой оболочке тонкой кишки и участие в этом процессе

тучных клеток

4.1. Интраэпителиальные лимфоциты

4.2. Собственная пластинка слизистой оболочки

(lamina propria)

4.3. Пути миграции лимфоцитов пищеварительного тракта

4.4. Влияние ацетилхолина на миграцию лимфоцитов

в слизистой оболочке тонкой кишки

4.4.1 .Материал и методы исследования

4.4.2. Результаты и обсуждение

4.5. Участие тучных клеток в холинергической регуляции

миграции лимфоцитов в слизистой оболочке

тонкой кишки

4.5.1 .Материал и методы исследования

4.5.2.Результаты и обсуждение

Общее заключение

Выводы

Литература

Список сокращений АКТГ - адренокортикотропный гормон АОК - антител ообразующ ие клетки Атр - атропин АХ - ацегилхолин БОК - бляшкобразующие клетки ВПСП - возбуждающий постсинаптический потенциал ГАМ К - гамма-аминомасляная кислота ЖКТ - желудочно-кишечный тракт ИЛ - интерлейкин ИФ - интерферон

МНС - метасимпатическая нервная система

ПБ - Пейерова бляшка

РОК - розеткообразующие клетки

ФАЭ - фолликул-ассоциированный эпителий

ФНО - фактор некроза опухолей

ДНС - центральная нервная система

AChE - ацегилхолинэстераза

BS А - бычий сывороточный альбумин

ССК - холецистокинин

CGRP - кальцитонин-ген-связанный пептид

clg - цитоплазматический иммуноглобулин

CRH - кортикотропин-рилизнг-гормон

GALT - (gut-associated lymphoid tissue) лимфоидная ткань, связанная со

слизистой оболочкой желудочно-кишечного тракта

GHRH - соматолиберин

GRP - гастрин-связанный пептид

IEL -интраэпителиальные лимфоциты

IFN - интерферон

EL - интерлейкин

Ig - иммуноглобулин

MALT - (mucosal-associated lymphoid tissue) лимфоидная ткань, связанная со слизистыми оболочками

МНС - главный комплекс гистосовместимости

NA - норадреналин

NGF - фактор роста нервов

NPY - нейропептид Y

NT - нейротензин

OVA - овальбумин

РШ - пептид гистидин-изолейцин

Pg - простагландин

РОМС - проопиомеланокортин

slg - секреторный иммуноглобулин

sP - субстанция Р, вещество Р

SST - соматостатин

TGF - трансформирующий фактор роста

TNF - фактор некроза опухолей

VIP - вазоинтестинальный полипептид

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфологические и нейроиммунные взаимодействия в Пейеровой бляшке тонкой кишки крыс»

Введение

К числу новых научных направлений, интенсивно развивающихся в мире, относится иммунофизиология. В последние годы она получила новый толчок к развитию. В настоящее время получены многочисленные доказательства функционального взаимодейств ия нервной и иммунной систем (Castro, 1989; Jankovic, 1989; Javed et al, 1992; McKay et al, 1994; Wood, 1994). Сложные двусторонние взаимоотношения этих двух интегративных образований организма опосредуются гормональными и паракринными сигналами, а также прямыми контактами между нервными окончаниями и клетками лимфоидной природы (Гордон и соавт., 1982; Feiten et al, 1985; Javed et al, 1992). Известно, что тимус, селезенка, лимфатические узлы и другие лимфоидные органы иннервируются холинергическими, адренергическими и пептидергическими волокнами (Гордон и соавг, 1982; Feiten et al, 1985; Ackerman et al, 1986, Banovska et al, 1994). В ткани лимфатических узлов обнаруживали даже собственные нервные ганглии (Feiten et al, 1985). Как известно, нервные окончания и нейромедиаторы оказывают влияние на различные функции иммунных клеток: их пролиферацию, дифференцировку, цитотоксическую и секреторную активность и прочие функции (Landberg et al, 1985; Feiten et al, 1985; Ackerman et al, 1986; Kendal et al, 1988; Jankovic, 1989, Madden et al, 1989).

Слизистая оболочка органов пищеварения испытывает сложные и разнообразные воздействия внешней среды, подвергаясь влиянию огромного числа получаемых с пищей антигенов. С этим влиянием связывают тот факт, что слизистая оболочка, а также подслизисгый слой органов пищеварения, наряду с разветвленной сетью лимфатических капилляров, имеют и собственные лимфоидные образования (Сапин, 1987; Сапроненков, 1987). Лимфоидные органы желудочно-кишечного тракта (небные миндалины, Пейеровы бляшки и отдельные лимфоидные фолликулы тонкой кишки, аппендикс и иммунная система толстой кишки) занимают в ряду лимфоидных органов особое место. Они находятся "на переднем крае" защиты организма от различных антигенов, токсинов, вирусов и бактерий, попадающих в желудочно-кишечный тракт с пищей. Часто эти органы рассматривают как

аналог фабрициевой сумки птиц, поскольку они осуществляют ту же функцию - антигензависимую дифференцировку B-лимфоцитов и формирование клонов клеток иммунной памяти (MacDonald, Spenser, 1994).

Иннервация пищеварительного тракта также сильно отличается от других органов. Функции желудка и кишки регулируются собственной интрамуральной (метасимпатической) нервной системой, которая является относительно независимой от центральной и осуществляет довольно сложные местные висцеральные рефлексы, поскольку имеет в своем составе различные типы нейронов, необходимые для получения, обработки информации и отдачи команды эффектору (Ноздрачев, 1980, 1987, 1988, 1989, 1996; Gershen, Erde, 1981). Находящиеся в стенке желудочно-кишечного тракта интрамуральные нервные ганглии, клетки и их отростки рассматриваются в настоящее время как энтеральная часть метасимпатической нервной системы, работающая относительно независимо от остальной части автономной нервной системы (Ноздрачев, 1987, 1988, 1989, 1996). Энтеральная часть автономной нервной системы, насчитывающая такое же число нервных клеток, как весь спинной мозг, является интегративной системой низшего уровня, максимально приближенной к эффектору. Ансамбли нейронов интрамуральных ганглиев составляют нервные цепи, способные самостоятельно получать и обрабатывать информацию, программировать довольно сложные паттерны «поведения» данного органа и таким образом осуществлять местные рефлексы без вмешательства вышележащих нервных центров.

Наличие в желудочно-кишечном тракте двух таких сложных интегративных систем - нервной и иммунной - делают его удобной моделью и объектом для изучения взаимодействия этих систем. Включение энтеральной части метасимпатической нервной системы в регуляцию иммунной системы желудочно-кишечного тракта изучено лишь частично, хотя мощная иммунная система, несомненно, нуждается в строгой регуляции, в частности, и нервной. В организации регуляции иммунологических и воспалительных реакций, происходящих в желудочно-кишечном тракте, как было установлено в ряде исследований, нервные окончания играют немалую роль (Cooke, 1994).

Желудочно-кишечный тракт как объект и модель изучения нейро-иммунных взаимодействий ныне используется в работах исследователей

довольно широко (Castro, 1989; Cooke, 1994; McKay et al, 1994; Payan et al, 1987; Wood, 1993, 1994), так как, помимо самостоятельного фундаментального значения, изучение нейроиммунных взаимодействий может иметь применение в клинике. Однако исследователи предпочитали находить нейроиммунные связи при иммунном ответе в слизистой оболочке кишки, не затрагивая при этом оформленного лимфоидного органа тонкой кишки - Пейерову бляшку, играющую большую роль в местном (локальном) энтеральном иммунном ответе, как первичном, так и вторичном. К тому же, хотя и существуют сведения об иннервации иммунных органов пищеварительного тракта, таких как небные миндалины и аппендикс (Гордон и соавт., 1973, 1982), тем не менее, физиологическое значение и функции нервных окончаний в них во многом не ясны. Хотя в литературе имеются отдельные сведения о топографической связи Пейеровой бляшки с подслизистым нервным сплетением, конкретные механизмы взаимодействия нервных волокон и эффекторных структур лимфоидного органа тонкой кишки остаются невыясненными. По этой причине знание морфологических связей энтеральной нервной системы и клеток иммунной системы в составе Пейеровой бляшки имеет базовое значение.

В литературе были обнаружены сведения о наличии в Пейеровых бляшках богатой ацетилхолинэстеразной (AChE) активности нервного происхождения (Feiten et al, 1985). А ацетилхолин, как было показано множеством экспериментов (Фролов, 1975; Забродский, 1996 и др.), имеет иммуномодулирующее влияние на организм человека и животных.

Мускариновые холинергические рецепторы были обнаружены на лимфоцитах мышей (Gordon et al, 1978). На Т-лимфоцитах также есть холинергические рецепторы (Hadden, 1987). Активация холинорецепторов может приводить к усилению пролиферации лимфоцитов. Цитотоксичность и секреторная активность Т-клеток также регулируется (увеличивается) с участием холинорецепторов. В эпителиальных клетках тимуса человека также обнаруживалась мРНК рецептора к ацетилхолину (Wakkach et al, 1996).

Помимо приведенных фактов, есть и другие доказательства влияния ацетилхолина на функции иммунных клеток. Однако исследования, проведенные в культуре клеток селезенки, давали весьма противоречивые

результаты (Абрамов, 1988, 1991), хотя и нет никаких сомнений, что ацетилхолин оказывает модулирующее влияние на иммунные процессы, происходящие в организме. При этом необходимо отметить, что задачи иммунной системы кишки и иммунные процессы, проиходящие в слизистой оболочке кишечной стенки, весьма своеобразны и отличаются от системных иммунных ответов. Поэтому вполне вероятны и различия в регуляции этих процессов.

Ацетилхолин является одним из основных, наиболее распространенных нейромедиаторов в метасимпатической нервной системе кишки (Gershen,Erde, 1981), он активирует деятельность гладких мышц кишечника и его концентрация повышается в кишке в процессе пищеварения. При этом давно известно, что при пищеварении в слизистой оболочке кишки увеличивается число лимфоцитов, они даже выходят в просвет (Сапин и др. 1978), а также происходит разрыхление слизистой оболочки и ее отек, появляется ярко выраженная лейкоцитарная инфильтрация, т.е. налицо все признаки воспаления, которое, однако, вполне физиологично и было названо «пищеварительным» (Успенский, 1982). Следовательно, процесс пищеварения тесно связан с миграцией лимфоцитов и лейкоцитов в слизистую оболочку кишки и желудка.

Пейерова бляшка, выполняя свою основную функцию в стенке кишки и иммунной защите организма, осуществляет антигензависимую дифференцировку лимфоцитов. После антигенной стимуляции, следом за активацией и дифференциацией фракции В- и Т-лимфоцитов из Пейеровой бляшки мигрируют в собственную пластинку остальной части кишки (Cebra et al, 1974; Guy-Grand et al, 1978). Сигнальные же процессы, вызывающие эту миграцию, пока остаются мало понятными. Вполне вероятно, что на лимфоцит и его миграционную способность, а также на пропускную способность эндотелия могут воздействовать большое количество самых разнообразных факторов, часть из них может быть эндокринной или нейрональной природы.

В организации регуляции иммунологических и воспалительных реакций, происходящих в желудочно-кишечном тракте, как было установлено в ряде исследований, нервные окончания играют немалую роль (Wood, 1992,

1993, 1994; Cooke, 1994). С другой стороны, тучные клетки, относящиеся к иммунной системе, в стенке кишки могут оказывать влияние не только на иммунные, но и на многие другие процессы, как то: ионный транспорт, сокращение гладких мышц слизистой оболочки, .микроциркуляция, секреция эпителиальных клеток, выделение слизи мукоцитами (Cooke, 1994; Payan et al, 1987). Отмечено также влияние тучных клеток и биологически активных веществ их везикул на нейрональную активность ганглиев и сплетений кишки (Wood, 1992, 1993, 1994). В ряде исследований обнаружилась тесная связь -тучных клеток слизистой оболочки с нервными волокнами и терминалями (Stead et al, 1987; Cooke, 1994 и др.).

Многими исследователями тучные клетки и их основной медиатор гистамин считаются основным звеном, обеспечивающим нейроиммунные взаимодействия, особенно в слизистой оболочке кишки (Wood, 1992, 1993, 1994; Cooke, 1994). Поэтому следующей целью нашего исследования стало изучение и определение роли тучных клеток, а точнее, их основного медиатора гистамина в опосредовании ацетилхолинергических влияний на миграцию лимфоидных клеток в слизистой оболочке кишки.

В связи с вышеизложенным основная цель настоящей работы заключалась в изучении структурно-функциональных характеристик взаимодействия между элементами метасимпатической нервной системы (МНС) и иммунокомпетентных клеток в пределах стенки тонкой кишки, включая ее лимфоидный орган - Пейерову бляшку, причем предполагалось исследовать эти взимодействия, с одной стороны как морфологическую, анатомическую связь, а с другой - как функциональное нейроиммунное взаимодействие.

В работе ставились следующие задачи:

1. Выявление непосредственных анатомических нейроиммунных связей в пределах Пейеровой бляшки тонкой кишки.

2. Установление наличия связей МНС в пределах Пейеровой бляшки с другими отделами автономной нервной системы: с МНС остальной части кишки, а

также вышележащими автономными центрами, экстрамуральными ганглиями.

3. Изучение влияния ацетилхолина на интенсивность секреции иммуноглобулинов в Пейеровых бляшках интактных крыс и животных, подверженных парентеральной и оральной иммунизации.

4. Изучение влияния ацетилхолина на миграцию лимфоцитов в слизистой оболочке Пейеровой бляшки и за ее пределами.

5. Определение роли основного медиатора тучных клеток гистамина в опосредовании ацетилхолинергических влияний на миграцию лимфоидных клеток в слизистой оболочке кишки.

Научная значимость и новизна работы

Научная новизна работы. Хотя в последние годы исследователи посвящают большое количество научных работ изучению нейроиммунных взаимодействий (Wood, 1993, 1994; Cooke, 1994 и др.), в частности, в слизистой оболочке желудочно-кишечного тракта, однако лимфоидный орган кишки -Пейерова бляшка - до сих пор оставался за пределами их поля зрения, хотя нет никаких сомнений в чрезвычайной важности этого лимфоидного органа в организации локального иммунного ответа слизистой оболочки и связи иммунной системы кишки с иммунокомпетентными клетками и органами остального организма. В данной работе впервые основное внимание было уделено нейроиммунным взаимоотношениям именно в Пейеровой бляшке.

Впервые было проведено комплексное исследование взаимоотношений элементов нервной системы и иммунокомпетентных клеток в пределах лимфоидного органа кишки, включающее и морфологические исследования, дающие анатомическую базу для понимания механизмов осуществления локальных нейроиммунных взаимодействий, и изучение функциональных связей нервной и иммунной систем в процессах регуляции двух важных компонентов защитной функции слизистой оболочки - миграции лимфоцитов и других иммунокомпетентных клеток и продукции антител В-клегками Пейеровой бляшки.

Хотя в литературе и существовали данные о влиянии ацетилхолина на миграцию лимфоцитов и гранулоцитов из селезенки, причем этот эффект блокируется атропином (Sandberg, 1994), все же нельзя забывать о своеобразии функционирования и регуляции иммунной системы слизистой оболочки кишки. Нами впервые показано влияние введения ацетилхолина (а также опосредование его эффектов через М-холинорецепторы) на .миграцию лимфоцитов, гранулоцитов и тучных клеток в пределах слизистой оболочки тонкой кишки.

Следует подчеркнуть, что в большинстве работ, посвященных влиянию нейро медиаторов на иммунный ответ, основное внимание уделялось модуляции веществами нейрональной природы начальных этапов становления иммунного ответа, скорости его возникновения и интенсивности. В нашей

работе главным образом рассматривалось влияние нейромедиатора ацетилхолина на продуктивную фазу иммунного ответа, и, кроме того, были обнаружены и изучались быстрые, в течение нескольких десятков минут, ответы на воздействие. При этом проводилось сравнение эффектов действия нейромедиатора на продукцию антител В-лимфоцитами Пейеровой бляшки при различных способах иммунизации: оральной и системной. Впервые показано, что регуляция локального иммунного ответа слизистой оболочки кишки может зависеть и от способа иммунизации - если после оральной иммунизации введение ацетилхолина изменяло продукцию антител, то после парентеральной иммунизации, как и у интактных животных, ацетилхолин не влиял на фоновое значение продукции иммуноглобулинов.

Одни исследователи нейроиммунных взаимодействий в качестве моделей использовали влияние нейромедаторов на интенсивность и характер иммунного ответа у иммунизированных экспериментальных животных (мышей или крыс) (Фролов, 1975, Забродский, 1996 и др.). С развитием методических подходов ученые стали использовать клеточные культуры и инкубацию популяций клеток иммунизированных животных и регистрировать более тонкие процессы на клеточном и даже генетическом уровне. Мы же применили метод инкубации изолированных органов - Пейеровых бляшек и участков кишки - in vitro, что позволило избежать многозначности и сложностей в интерпретации результатов, присущих первому подходу, и в то же время дало возможность изучить влияние нейромедиатора не на отдельную клеточную популяцию, а на орган в целом, учитывая внутренние межклеточные локальные взаимодействия в заданных условиях. Следующим шагом в изучении данного процесса может стать расшифровка этих взаимодействий, детальное изучение каждого звена цепи, приведшей к полученному результату, и первые шаги на этом пути нами уже сделаны. Так, сведения, полученные нами о включении гистамина, медиатора тучных клеток, в эффекторную часть нервной регуляции миграции лейкоцитов в стенке кишки может стать начальным этапом работы по изучению роли тучных клеток и других элементов иммунной и эндокринной систем в нервной регуляции функций организма и в особенности регуляции иммунной системы, причем эта роль, это участие может обнаружиться не только на эффекторной, но и на афферентной стадии процесса регуляции.

Теоретическая значимость работы. Представленные в работе экспериментальные данные вносят существенный вклад в понимание механизмов холинергической регуляции иммунных процессов в слизистой оболочке кишки. Кроме того, полученные результаты свидетельствуют о наличии различий в регуляции иммунного ответа в зависимости от формы предъявления антигена, и они могут быть использованы для лучшего понимания организации защитной реакции иммунной системы на определенную форму антигенного воздействия.

Практическая значимость работы. Показанные изменения функций Пейеровых бляшек под воздействием введения ацетилхолина и частичное опосредование его эффекта М-холинорецепторами могут служить эксперименальной моделью состояния активации холинергческой системы, имеющего место, например, в процессе активного пищеварения, а также в клинике, в постоперационном периоде после ваготомии в процессе лечения язвенной болезни. Эти состояния, как оказалось, отражаются, помимо всего прочего, и на эффективности и направленности иммунных процессов в ЖКТ.

Заключение диссертации по теме «Физиология», Штылик, Анастасия Владимировна

Выводы

1. На всех уровнях поперечника кишечной стенки - от серозной до слизистой оболочки - в пределах Пейеровой бляшки присутствуют: нервные клетки, тела которых объединены в интрамуральные ганглии; толстые нервные пучки, мелковетвящиеся нервные отростки, часть из которых имеет варикозные расширения, т.е. все элементы метасимпатической нервной системы, обеспечивающие возможность ее автономного функционирования.

2. Главенствующую роль в осуществлении иннервации Пейеровой бляшки играет подслизистое нервное сплетение, тесно связанное с энтеральной частью метасимпатической нервной системы остальной кишки. В Пейерову бляшку посылают свои отростки не только нейроны подслизистого сплетения, но и клетки ганглиев межмышечного сплетения. Кроме того, обнаруживается также прямая иннервация Пейеровой бляшки со стороны экстрамуральных автономных центров.

3. Ацетилхолин через 40 минут после начала воздействия приводит к уменьшению секреции иммуноглобулинов в Пейеровых бляшках орально иммунизированных, но не интактных и не парентерально иммунизированных крыс. При этом блокатор М-холинорецепторов атропин предупреждает этот эффект лишь частично.

4. Ацетилхолин, как один из основных нейромедиаторов метасимпатической нервной системы, оказывает регулирующее (в основном стимулирующее) влияние на миграцию лимфоцитов, гранулоцитов и тучных клеток в слизистой оболочке кишки. Его эффекты различаются в разных отделах тонкой кишки и проявляются по-разному при введении со стороны серозной и со стороны слизистой оболочки. При этом регуляция миграции лимфоцитов холинергическими волокнами опосредуется в основном М-холинорецепторами, тогда как регуляция миграции гранулоцитов (базофилов, нейтрофилов, эозинофилов) опосредуется М-холинорецепторами лишь частично, а при регуляции миграции тучных клеток М-холинорецепторный механизм практически совсем не используется.

5. В осуществлении холинергической регуляции миграции лимфоцитов значительную роль играет гнетамин: при блокировании гистаминовых рецепторов усиление миграции лимфоцитов под воздействием прозерина носит значительно менее выраженный характер, чем при воздействии одного прозерина. В случае миграции гранулоцитов тучные клетки и их медиатор гистамин включаются в холинергическую регуляцию лишь в некоторых случаях и не играют решающей роли. Однако в холинергической регуляции миграции тучных клеток гистамин практически не участвует.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Штылик, Анастасия Владимировна, 1999 год

Литература

1. Абдуллаева З А., Клименко В.М. Реакции подкорковых структур мозга при формировании иммунного ответа на антигены различной степени иммуногенности // Взаимодйствие нервной и иммунной систем. Тез.докл. V Всес.симп. Л.-Ростов-на-Дону. 1990. С.5.

2. Абрамов В.В. Взаимодействие иммунной и нервной систем. Новосибирск. Наука, Сиб. отд-е. 1988.

3. Абрамов В.В. Интеграция иммунной и нервной систем. Новосибирск. Наука, Сиб. отд-е. 1991.

4. Адо А.Д., Алексеева Т.О. О влиянии холина на Е-РОК лимфоцитов у мышей//Бюлл. экспер. биол. мед. 1983. N7. С.75-79.

5. Адыширин-Заде Э.А., Е.Н.Васина, В.И.Кошев. Структурно-функциональная организация микроциркуляторного русла лимфоидных узелков (фолликулов) кишечника млекопитающих в норме и эксперименте // Функциональная морфология лимфоидных узлов и других органов иммунной системы и их роль в иммунных процессах (Тез. докл. Всес.научн. конф. 22-23 дек. 1983г.) М., 1983 С.4-5.

6. Багаев В. А., Макаров Ф.Н. Доросальное моторное ядро блуждающего нерва и иннервация пищеварительного тракта // Морфология. 1997. Т. 111. N1. С.7-14.

7. Багаев В.А., Макаров Ф.Н., Рыбаков В.Л и др. Локализация нейронов в дорсальном моторном ядре блуждающего нерва, иннервирующих верхнюю часть двенадцатиперстной кишки // Физиологический журнал СССР. 1991. Т.77. N1. С.45-52.

8. Багаев В.А., Ноздрачев А.Д., Пантелеев С.С. Ваго-вагальная рефлекторная дуга. Элементы структурно-функциональной организации. С-Пб, изд-во СПбГУ, 1997. 204 с.

9. Белокрылов Г А. Иммунонейромодулирующие свойства пептидов и составляющих аминокислот // Нейроиммунология на пороге XXI века/Мат. симп. с междунар. участием. 27-28.05.93. Спб, 1993. С.7-9.

Ю.Буларина Т.В. Выделение // Практикум по биохимии: Учебное пособие / п/ред. С.Е.Северина, Г.А.Соловьевой. М.Изд-воМГУ. 1989. С.306-326.

11.Бычков Е.Р. Реакции моноамииергичееких систем гипоталамуса на введение антигена у крыс // Взаимодйствие нервной и иммунной систем. Тез.докл. V Всес.симп. Л.-Ростов-на-Дону. 1990. С.7.

12.Вековищева О.Ю., Огурцов Р.П., Полевщиков A.B. Социальный статус самцов крыс как иммунизирующий фактор // Нейроиммунология на пороге XXI века/Маг. симп. с междунар. участием. 27-28.05.93. Спб, 1993. С. 19-21.

13.Гордон Д.С., Сергеева В.Е. Структура и иннервация лимфоидных фолликулов // Мезенхима и ее тканевые производные в эволюции и онтогенезе. Пермь, 1973. с.32-33.

14.Гордон Д.С., Сергеева В.Е., Зеленова И Г. Нейромедиаторы лимфоидных органов (функциональная морфология). JI, Наука, Ленингр. отд-е, 1982. 128 с.

15.Гусейнов Т.С. Особенности лимфатического русла фолликулов тонкой кишки в сравнительно-анатомическом плане // Функциональная морфология лимфоидных узлов и других органов иммунной системы и их роль в иммунных процессах (Тез. докл. Всес.научн. конф. 22-23 дек. 1983г.) М., 1983 С.55-56.

16.Гущин Г.В. Об участии в розеткообразовании антител, синтезируемых в культуре//Бюлл. экспер. биол. мед. 1976. Т.82. N9. С. 1090-1092.

17.Денисенко П.П., Чередниченко Р.П. М-холинореактивные биохимические системы и образование сывороточных антител//Бюлл. экспер. биол. мед. 1972. Т.34. N4. С.65-68.

18.3абродский П.Ф. Иммунологические механизмы повышения радиорезистентности под влиянием холиномиметиков // Бюлл. экспер. биол. мед. 1996. N5. С.541-543.

19.Захарова Л.А., Р.В.Петров. Медиаторы нейроиммунного взаимодействия // Нейроиммунология: молекулярные и клинические аспекты/ Итоги науки и техники, сер. Иммунология. Т.25. М, 1990. С.6-47.

20.Зозуля A.A., С.Ф.Пшеничкин. Опиоиды и иммунитет // Нейроиммунология: молекулярные и клинические аспекты/ Итоги науки и техники, сер. Иммунология. Т.25. М, 1990. С.48-120.

21.Клименко В.М., О.Е.Зубарева Механизмы действия цитокинов в мозге // XVII съезд физиологов России. Ростов-на-Дону. 1998. С.371.

22.Корнева Е.А. Иммунофизиология как новая научная дисциплина // Физиол.ж. им.Сеченова. 1994. Т.80. N6. С. 116-124.

23.Корнева А.Е., Шекоян В.А. Регуляция защитных функций организма. Л., Наука, 1982. 139 с.

24.Корнева Е.А., Шхинек Э.К. Гормоны и иммунная система. Л., Наука, 1988. 251с.

25.Кузнецов В.П. Интерфероны как средство иммуномодуляции//Иммунология. 1987. N4. С.30-34.

26.Лаврентьев Б.И. Теория строения вегетативной нервной системы. М., Медицина, 1983. 256 с.

27.(Langley J.N.) Ленгли Дж.Н. Автономная нервная система. М.-Л.: ГИЗ. 1925. 4.1 70с.

28.Мельман Е.П. Функциональная морфология иннервации органов пищеварения. Изд-во Мед-на. М., 1970. 327с.

29.Меркулов Г А. Курс патогистологической техники. Медгиз, Лен.отд., 1961

30.Ноздрачев А.Д. Некотрые элементы построения теории метасимпатической нервной системы // Физиологический журнал СССР. 1987. Т.73. N2. С. 190201.

31.Ноздрачев А.Д. О структурно-функциональной организации вегетативной (автономной) нервной системы // Физиологический журнал СССР. 1980. Т.66. N7. С.937-961.

32.Ноздрачев А.Д. Химическая структура периферического автономного (висцерального) рефлекса // Успехи физиологических наук. 1996. Т.27. N2. С.28-60.

33.Ноздрачев А.Д., В.А.Отеллин, Л.В.Ряховская, А.И.Адамацкий. Структура инициальной части симпатических входов в ганглии ободочной кишки и мочевого пузыря // Физиол.журн.СССР, 1988. Т.76. N5. С.661-670.

34.Ноздрачев А.Д., Гнетов A.B., Качалов Ю.П., Санин Г.Ю. Влияние метиленового голубого на передачу возбуждения в периферическом вегетативном синапсе//Физиол. ж. СССР. 1976. Т.62. N.12. С. 1300-1309.

35.Ноздрачев А.Д., Чернышева М П. Висцеральные рефлексы. Л., 1989. 166 с. Зб.Огурцов Р.П., И.Д.Столяров, Б.И.Клементьев, Одес Л.Н., Ивашкова ЕВ.

Сравнительная оценка иммунореактивности при право- и левосторонней

фокальной ишемии мозга крысы // Нейроиммунолошя на пороге XXI века/Маг. симп. с междунар. участием. 27-28.05.93. Спб, 1993. С. 127-130.

37.Потапнев М П. B-лимфоциты. Цигокинобразующая функция // Иммунология. 1994. N4. С.4-8.

38.Пугач П.. В. Строение лимфоидных бляшек тонкой кишки крыс в антенатальном и раннем постнатальном периодах онтогенеза (экспериментально-морфологическое исследование) // Автореф. дисс. на соиск. уч. степ. канд. мед. н. Л., 1990.

39.Сапин М.Р. Иммунные структуры пищеварительной системы (Функциональная анатомия) М., Медицина, 1987. 224 с.

40.Сапин М.Р., H.A. Юрина, Л.Е.Этинген. Лимфатический узел. (Структура и функции). М.,Мед. 1987

41.Сапроненков П.М. Иммунология желудочно-кишечного тракта. Л., Наука, Ленингр. отд-е, 1987. 159 с.

42.Соколов В В., Ю.В.Матвеев. Особенности кровоснабжения одиночных и групповых лимфатических фолликулов тонкой кишки, как периферических органов иммунной системы // Функциональная морфология лимфоидных узлов и других органов иммунной системы и их роль в иммунных процессах (Тез. докл. Всес.научн. конф. 22-23 дек. 1983г.) М., 1983 С.157-158.

43.Сорокин A.M., Л.С.Сеславина, И.П.Дишкант. Значение интерферона в экспериментальной иммунологии // Иммунология. 1981. N3. С.79-81.

44.Тимофеев Н.В., В.П.Кузнецов, Т.Г.Орлова. Антипролиферативная активность человеческих лейкоцитарных интерферонов // Иммунология. 1981. N3. С.81-84.

45.Тугаева З.С., Р.М.Тотоев, НП.Кадаев. Ангиоархитектоника лимфоидных образований тонкой кишки // Функциональная морфология лимфоидных узлов и других органов иммунной системы и их роль в иммунных процессах (Тез. докл. Всес.научн. конф. 22-23 дек. 1983г.) М., 1983 С. 173-174.

46.Успенский В.М. «Пищеварительное воспаление» и механизм его регуляции // Физологич. Журн. СССР. 1982. Т.63. N5. С.688.

47.Фокин В.Ф., Н.В.Пономарева, Т.П.Секирина и др.Взаимосвязи между деятельностью головного мозга и иммунной системой у человека // Физиология человека. 1995. Т.21. N2. С.15-23.

48.Фролов Е.П. Некоторые эфферентные механизмы регуляции иммунологических процессов // Нейроиммунология в клинике и эксперименте/Труды Моск. научно-исслед. ин-та психиатрии. Т.69. М., 1975. С.259-265.

49.Чейдо М.А., Г.В.Идова. дофаминергические механизмы в иммуностимулирующем эффекте мю-опиоидных рецепторов // Бюлл. экспер. биол. мед. 1996. N4. С.373-375.

50.Ackerman K.D, Felten S.Y., Bellinger D.L., Livnat S., Felten D.L. Noradrenergic sympathetic innervation of spleen and lymph nodes in relation to spcific cellular compartments // Progress in immunology VI. Eds.: Cinader В., Miller R.G. Academic Press, Orlando. 1986. P.588-600.

51.Akoev G.N., L.V.Filippova, N.O.Sherman. Meiators of mast cells excite the afferentes of small intestine // Neuroimmuno interactions and environment (ICONE'95), 1995. P.87.

52.Albuquerque A.A.C., J.H.Leal-Cardoso, D,Weinreich. Role of mast cell- and nonmast cell-derived inflammatory mediators in immunologic induction of synaptic plasticity // Brasilian J. of medical and biological research. 1997. V.30. N7. P.909-912.

53.Allan C.H., Mendrick D.L., J.S.Trier. Rat intestinal M cells contain acidic endosomal-lysosomal compartments and express Class II major histocompatibility complex determinants//Gastroenterology. 1993. V.104. P.698-707.

54. Aloe L. The effect of nerve growth factor and its antibody on mast cells in vivo // J.Neuroimmunol. 1988. V.18. P. 1-12.

55.Angeletti R.H., W.F.Hickey. Neuroendocrine cells within immune tissues // Acta Endocrinologica. 1976. V.83. suppl.206. P.78-84.

56.Arbones M L., D.C.Ord, K.Ley et al. Lymphocyte homing and leucocyte rolling and migration are impaired in L-selectin-deficient mice // Immunity. 1994. V.l. N4. P.247-260.

57.Arizono N., S.Matsuda, T.Hattori, et.al. Anatomical variation in mast cell nerve associations in the rat small intestine, heart, lung, and skin, similarities of distances between neural processes and mast cells, eosinophils or plasma cells in the jejunal lamina propria // Laboratory investigation. 1990. V.62. P.626-634.

58.Aschoff A., Hollander H. Fluorescent compounds as retrograde tracers compared with horseradish peroxidase (HRP). 1. A parametric study in the central visual system of the albino rat // J.Neurosci.Methods. 1982. N.6. P. 179-197.

59.Aversa G., B.G.Cocks, J.Punnonen, J.M.Carballido, J.E. de Vries. Contact-mediated signals and cytokines involved in B cell activation and isotype switching in pre-B and mature B cells // Res. In Immunology. 1994. V.145. N3. P.222-225.

60.Bandeira, A T., T.Mota-Santos, S.ltohara, S.Degermann, C.Heusser, S.Tonegawa, A.Coutinho. Localization of gamma/delta T cells to the intestinal epithelium is independent of normal microbal colonization // J. Exp. Med. 1990/ V. 172. P.239-244.

61.Banovska E., Schmidtova K., Kocisova M., Paulikova E. The distribution of acetylcholinesterase (ACHE) - positive nerve fibres in mesenteric lymph nodes in rat after whole body irradiation // Functional and Developmental Morphology. 1994. v.4. N.3. P.121-122.

62.Bell E.B., S.M.Sparshott, A Ager. Migration pathways of CD4 T cell subsets in vivo: the CD45RC-subset enters the thymus via alpha 4 integrin-VCAM-1 interaction//Int. Immunol. 1995. V.7. N11. P. 1861-1871.

63.Bellinger D.L., D.Lorton, T.D.Romano, J.A.Olschowka, S.Y.Felten, D.L.Felten. Neuropeptide innervation of lymphoid organs // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis/ Eds.: M.S.O'Dorisio, A Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P. 17-33.

64.Berg, M., Y.Murakawa, D.Camerini, S.P.James. Lamina propria lymphocytes are derived from circulation cells that lack the Leu-8 lymph node homing receptor // Gastroenterology. 1991. V.101. P.90-99.

65.Berkenbosch F., J.Van Oers, A.del Rey, F.Tilders, H.Besedovsky. Corticotropin-releasing factor-producing neurons in the rat activated by interleukin-1 // Science. 1987. V.238. P.524-526.

66.Bernton E.W., J.E.Beach, J.W.Holaday, R.C.Smallridge, H.G.Fein. Release of multiple hormones by a direct action of interleukin-1 on pituitary cells // Science. 1987. V.2. P.519-521.

67.Bishop, A.E., G.L.Ferri, L.Probert, S.R.Bloom, J.M.Polak. Peptidergic nerves // Basic Sci. Gastroenterology: Structure Gut. 1982. P.221-237.

68.Bjerke K , P.Brandtzaeg, O.Fausa. T-cell destibution is different in follicle-associated epithelium of human Peyer's patches and villous epithelium // Clinical and Experimental Immunology. 1988. V.74. P.270-275.

69.Bjerke K., P.Brandtzaeg. Immunoglobulin- and J chain-producing cells associated with lymphoid follicles in the human appendix, colon and ileum, including Peyer's patches // Clinical and Experimental Immunology. 1986. V.64. P.432-441.

70.Bjerke K, P.Brandtzaeg. Lack of relation between expression of HLA-DR and secretory component (SC) in follicle-associated epithelium of human Peyer's patches // Clinical and Experimental Immunology. 1988. V.71. P.502-507.

71.Bjerknes M., H.Cheng, C.A.Ottaway. Dynamics of lymphocyte endothelial interactions in vivo // Science. 1986. V.231. P.402-405.

72.Blaschke V., B.Micheel, R.Pabst, J.Westermann. Lymphocyte traffic through lymph nodes and Peyer's patches of the rat: B- and T-cell-specific migration patterns within the tissue, and their dependence on splenic tissue // Cell Tissue Res. 1995. V.282. N3. P.377-386.

73.Boyle M.D.P., M.J.P.Lawman, A.P.Gee, M.Young. Nerve growth factor: a chemotactic factor for polymorphonuclear leucocytes in vivo // J.Immunol. 1985. V. 134. P.564-568.

74.Braegger CP., Spencer J, T.T.MacDonald. The mucosal immune response: ontogenic aspects // International J. Clin. And Laboratory Research. 1992. V.22. P. 1-4.

75.Brandtzaeg P. History of oral tolerance and mucosal immunity // Ann. NY Acad. Sci. 1996. V.778. P. 1-27.

76.Brandtzaeg P., Bosnes V., Halstensen T.S., Scott H, Sollid L.M., Valnes K.N. T lymphocytes in human gut epithelium express preferentially the a/p antigen receptor and are often CD45/UCHL1-positive // Scandinavian Journal of Immunology. 1989. V.30. P.123-128.

77.Brandtzaeg P., K.Bjerke. Immunomorphological characteristics of human Peyer's patches// Gigestion. 1990. V.46 (suppl.2). P.262-273.

78.Bulloch K. Neuroanatomy of lymphoid tissue: a review // Neural modulation of immunity. NY: Raven Press. 1985. P. 111-140.

79.Burnstock G. Neurotransmitters and trophic factors in the autonomic system // J.Physiol. 1981. V.313. P. 1-35.

80.Burnstock G. Purinergic mechanisms broaden their sphere of influence // Trends Neurosci. 1985. V.8. N.l. P.5-6.

81. Castro G.A. Intestinal neuroimmune interactions. // Nerves and gastrointestinal tract / Eds.: Singer M.V., Goebell H. Kluwer, Lancaster, 1989. P.287-297.

82.Castro G.A., Y.Harari, D.Russell. Mediators of anaphylaxis-induced ion transport changes in small intestine // Amer. J. Physiol. 1987. V.253. (Gastroinest. Liver Physiol. 16). P.G540-548.

83.Cebra J.J., P.J.Gearhart, R.Kamat, et.al. Origin and differentiation of lymphocyte involved in the secretory IgA response // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 1974. V.41. P.201-215.

84.Chin Y.H., J.Cai, K.Johnson. Lymphocyte adhesion to cultured Peyer's patch high endothelial venules cells is mediated by organ specific homing receptor and can be regulated by citokines // J. Immunology. 1990. V.145. P.3669-3677.

85.Choy, M-Y., Richman P.I., Walker-Smith J.A., Mac-Donald T.T. Differential expression of CD25 on lamina propria T cells and macrophages in the intestinal lesions in Crohn's desease and ulcerative colitis // Gut. 1990. V.31. P. 1365-1370.

86.Cooke H.J. Neurobiology of the intestine mucosa // Gastroenterology. 1986. V.90. N3. P.1057-1081.

87.Cooke R., Burnstock G. The ultrastructure of Auerbach's plexus in the guinea pig. I. Neuronal elements//J.Neurocytol. 1976. V.5. P. 171-194.

88.Cooke, H.J. Neuroimmune signaling in regulation of intestinal ion transport // Amer. J. Physiol. 1994. v.266. N.2. pt.l. P.G167-G178.

89.Costa M. and J.B.Furness. The origin, pathways and terminations of neurons with VIP-like immunoreactivity in the guinea-pig small intestine // Neuroscience. 1983. V.8. N4. P.665-676.

90.Cummins A G., F.M.Thompson. Postnatal changes in mucosal immune response. A physiological perspective of breast feeding and weaning // Immunol.Cell Biol. 1997. V.75. P.419-429.

91.Dalsgaard C.-J., Lundberg J.M. Evidence for a spinal afferent innervation of the guenea-pig lower respiratory tract as studied by horseradish peroxidase technic // Neuroscience Letters. 1984. V.45. N1. P. 117-122.

92.Daniel E.E., M.Costa, J.B.Furness, J.R.Keast. Peptide neurons in the canine small intestine // The J. of the Comparative Neurology. 1985. V.237. P.227-238.

93 .Dhabhar F.S., A H.Miller, B.S.McEwen, R.L.Spencer. Effects of stress on immune cell distribution. Dynamics and hormonal mechanisms // J Immunol. 1995. V. 154. N10. P.5511-5527.

94.Dreufus C.F., Bornstein M B., Gershon M.D. Synthesis of serotonin by neurons of of the myenteric plexus in situ in organotypic tissue culture // Brain Res. 1977 V. 128 P. 125-139.

95.Ebert, EC. Intra-epithelial lymphocytes: interferon gamma production and supressoi/cytotoxic activities // Clin. Exp. Immunol. 1990. V.82. P.81-85.

96.Ebert, E C. Proliferative response of human intraepithelial lymphocytes to virious T cell stimuli//Gastroenterology. 1989. V.97. P.1372-1381.

97.Elisson J.P., Clark G.M. Retrograde axonal transport of horseradish peroxidase in peripheral autonomic nerves // J.Comp.Neurol. 1975. V. 161. N. 1. P. 103-114.

98.Elmquist J.K., C.B.Saper. Activation of neurons projecting to the paraventricular hypothalamic nucleus by intravenous lipopolyszccharide // J.of Comparative Neurology. 1996. V.374. N3. P.315-331.

99.Enders G.A., S.Ballhaus, W.Brendel. The influence of Peyer's patches on the organ-specific distribution oflgA plasma cells// Immunology. 1988. V.63. N3. P.411-414.

100.Erde S.M., D.Sherman, M.D.Gershon. Morphology and serotoninergic innervation of physiologically identified cells of the guinea pig's myenteric plexus // J.of Neuroscience. 1985. V.5. N3. P.617-633.

101.Fantozzi R., E.Maseni, P.Blandina. Cholinergic histamine release, evidence of muscarinic receptors in rat mast cells // Agents Actions. 1979. V.9. N1. P57-58.

102.Feher E., G.Burnstock, I.M.Varndell, J.M.Polak. Calcitonin-gen-related peptide-immunoreactive nerve fibres in the small intestine of the guinea-pig: electron-microscopic immunohistochemistry // Cell and Tissue Research. 1986. V.245. N2. P.353-358.

103.Felten D.L., S.Y.Felten, D.L.Bellinger, S.L.Carlson, K.D.Ackerman, K.S.Madden, J.A.Olschowka, S.Livnat. Noradrenergic sympathetic neural interactions with immune system: structure and function // Immunol.Rev. 1987. V.100. P.225-260.

104. Felt en D.L., S.Y.Felten, S.L.Carlson, J.A.Olschowka, S.Livrât. Noradrenergic and peptidergic innervation of lymphoid tissue // J.Immunology. 1985. V.135. N2. P.755s-765s.

105.Frieling, T., H.J.Cooke, J.D.Wood. In vitro distention activates submucosal reflex pathways to drive chloride secretion in guinea-pig distal colon // Gastroenterology. 1990 (suppl.) v.98. N.5. P.A352.

106.Fryscak T., Zenker W., Kanter D. Afferent and efferent innervation of the rat esophagus. A tracing study with horseradish peroxidase and nuclear yellow // Anat.Embryol. 1984. V.170. P.63-70.

107.Furness J.B., Costa M. Types of nerves in the enteric nervous system // Neuroscience. 1980. V.5. P. 1-20.

lOS.Gershen, M.D., S.M.Erde. The nervous system of the gut // Gustroenterology. 1981. v.80. P.1571-1594.

109.Goetzl E.J., T.Grotmol, R.W.Van Dyke, C.W.Turck, B.Wershil, S.J.Galli, S.P.Sreedharan Generation and recognition of vasoactive intestinal peptide by cells of the immune system // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis/ Eds.. M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P.34-44.

110.Gonzalez-Ariki S., A.J.Husband. The role of sympathetic innervation of the gut in regulating mucosal immune responses // Brain Behav. Immun. 1998. V. 12. N1. P53-63.

111.Gordon M.A., Cohen J.J., Wilson IB. Muscarine cholinergic receptors in murine lymphocytes: demonstration by direct binding // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1978. Y.75. N6. P.2902-2904.

112.Gowans, J., E.Knight, the route of recirculation of lymphocytes in the rat // Proceedings of the Royal Society (B). 1964. V.59. P.257-281.

113 .Groh V., Porcelli S., Fabbi M. Human lymphocytes bearing the T cell receptor y/8 are phenotypically diverse and evenly distributed throughout the lymphoid system // Journal of Experiments Medicine. 1989. V.169. P. 1277-1294.

114. Guy-Grand D., C.Griscelli, P.Vassali. The mouse gut T lymphocyte, a novel type of T cell. Nature, origin and traffic in mice in normal and graft-versus-host conditions//J. Exp. Med. 1978. V.148. P. 1661-1667,

115.Gwyn D.G., T.C.Ritchie, J.D.Coulter. The central distribution of vagal catecholaminergic neurons whitch project into the abdomen in the rat // Brain Research. 1985. V.328. P. 139-144.

116.Hadden J.W. Neuroendocrine modulation of the thymus-dependent immune system. Agonists and mechanisms // Neuroimmune interactions: proceedings of the second international workshop on neuroimmunomodulation. Eds. B.D.Jancovic, S.M.Markovic, N.H.Spector. The NY Acad Sci, NY, V.496. 1987. P.39-48.

117.Hadden J.W., Hadden E.M., Middleton E.J Lymphocyte blast transformation Demonstration of adrenergic receptors in human peripheral lymphocytes // Cell. Immunol. 1970. V.l. P.583-595.

118.Halstensen,T.S., I.N. Farstad, H. Scott, O Fausa, P. Brandtzaeg. Intraepithelial TcR a/p+ lymphocytes express CD45R0 more often then the TcR y8+ counterparts in coeliac desease // Immunology. 1990. V.71. P.460-466.

119.Halstensen,T.S., P. Brandtzaeg. Activated t cells in the celiac lesion: nonproliferative activation (CD25) of CD4+ aP cells in the lamina propria but proliferation (Ki-67) of aP and yS cells in the epithelium // European J. of Immunol. 1993. V.23. P.505-510.

120.Hamman A., D.P.Andrew, D.Jablonski-Westrich et al. Role of alpha-4-integrins in lymphocyte homing to mucosal tissues in vivo // J. Immunol. 1994. V. 152. N.7. P.3282-3293.

121.Harlan J.M., N.B.Vedder, R.K.Winn, C.L.Rice. Mechanisms and consequences of leukocyte-endothelial interaction//West. J. Med. 1991. V.155. P.365-369.

122.Hiddinga H.J., D.D.Isaak, R.V.Lewis. Enkephalin-containing peptides processed from proenkephalin significanly enhance the antibody-forming cell responses to antigens// J. oflmmonol. 1994. V.152. N8. P.3748-3759.

123.Hokari R., S.Miura, H.Fujimori et al. Nitric oxide modulates T-lymphocyte migration in Peyer's patches and villous submucosa of rat small intestine // Gastroenterology. 1998. V.l 15. N3. P.618-627.

124.Hopkins D.A., Armour J.A. Localization of sympathetic postganglionic neurons which innervate different regions of the dog heart // J.Compar.Neurology. 1984. V.229. N2. P.186-198.

125.Hopkins D.A., Gootman P.M., Gootman N. et al. Brainstem cells of origin of the cervical vagus and cardiopulmonary nerves in the neonatal pig (sus scrofa) // Brain Res. 1984. V.36. P.63-72.

126.Hornquist C.E., L.Ekman, K.D.Gardic, K.Schon, N.Y.Lycke. Paradoxical IgA immunity in CD4-deficient mice // J. of Immunology. 1995. V.155. N6. P.2877-2887.

127.Hua X.-Y., S.M.Back, E.K.Tam. Substance P enhances electrical field stimulation-induced mast cell degranulation in rat trachea U APStracts. 1996. 3:0016L.

128.Hunt S.P., Ku"nzle H. Bidirectional movement of label and transmuronal phenomen after injection of 3H-adenosine into the central nervous system // Brain Res. 1976. v. 112. N.l. P.127-132.

129.Husby S., J.Mestecky, Z.Moldoveanu, S.Holland, Ch.O.Elson. Oral tolerance in humans T cell byt not B cell tolerance after antigen feeding //J. of Immunology 1994. V.152. N9. P.4663-4670.

130.111ert M., N.Fritz, A.Aschoff, H.Holla"nder. Fluorescent compounds as retrograde tracers compared with horseradish peroxidase (HRP). II. A parametric study in the peripheral motor system of the cat // J.Neurosci.Methods. 1982. N.6. P. 199-218.

131.James S.P., W.C.Kwan, M.C.Sneller. T cells in inductive and effector compartment of the intestinal mucosal immune system of nonhumane primates differ in lymphokine mRNA expression, lymphokine utilization and regulatory function // J. Immunol. 1990. V.144. P. 1251-1256.

132.Jankovic B.D. Neuroimmunomodulation: facts and dilemmas // Immunol Lett. 1989. V.21. P. 101-118.

133.Janossy, G., Tidman N., Selby W.S. et. al. Human T lymphocytes of inducer and suppressor type occupy different microinvironments // Nature. 1980. V.288. P.81-84.

134.Jarry, A., Cerf-Bensussan N., Brousse N., Selz F., Guy-Grand D. Subsets of CD3+ T cell receptor (aP or y8 and CD3-lymphocytes isolated from normal human gut epithelium display phenotypical features different from their counterparts in peripheral blood //European Journal of Immunology. 1990. V.20. P. 1097-1104.

135.Jarry, A., MRobaszkiewicz, N.Brousse, F.Potet. Immune cells associated with M cells in the follicle-associated epithelium of Peyer's patches in the rat. An electron-and immuno-electron-microscopic study // Cell Tissue Res. 1989. V.255. P.293-298.

136.Javed, N.H., Y.-Z.Wang, HJ.Cooke. Neuroimmune interactions: role for cholinergic neurons in intestinal anaphylaxis // Amer. J. Physiol. 1992. v.263 (Gastrointest. Liver Physiol. 26). P.G847-G851.

137.Jessen K.R. GAB A and the enteric nervous system // Molecular and cellular biochemistry. 1981. V.38. P.69-76.

138.Jeurissen F., A.Kavelaars, M.Korstjens, D.Broeke, RA.Franklin, E.N.Gelfand, C.J.Hejnen. Monocytes express a non-neurokinin substance P receptor that is functionally coupled to MAP kinase // J. of Immunology. 1994. V.152. N6. P.2987-2994.

139.Kagnoff M.F. Effects of antigen-feeding on intestinal and systemic immune responses. II. Suppresion of delayed-type hypersensitivity reactions // J. of Immunology. 1978. V.120. N5. P.1509-1513.

140.Kagnoff M.F. Immunology of the digestive system // Physiology of the Gasrtointestinal tract/Ed. L.RJohnson. Raven Press, NY. 1987. P. 1699-1728.

Hl.Kalia M., Mesulam M M. Brain stem projections of sensory and motor components of the vagus complex in the cat. II. Larengeal, tracheobronchial, pulmonary, cardiac and gastrointestinal branches // Comp.Neurol. 1980. V.194. P.467-508.

142.Kato T., T.Kokuho, T.Tanura, H.Nariuchi. Mechanisms of T cell contact-dependent B cell activation // The J. of Immunology. 1994. V.152. N5. P.2130-2138.

143.Katz, H.R., R.L.Stevens, K.Frank Austen. Heterogeneity of mammalian masr cells differentiated in vivo and in vitro // J. Allergy Clin.Immunol. 1985. V.76. P.250-259.

144.Kawanishi H., J.M.Ihle. In vitro induction and characterization of mast cells from murine Peyer's patches // Scand. J. Immunol. 1987. V.25. P. 109-120.

145.Kelley K.W. The role of growth hormone in modulation of the immune response // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis/ Eds.. M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P.95-103.

146.Kendall M.D., Al Shawaf A., Zaidi S.A. The cholinergic and adrenergic innervation of the rat thymus // Ad v. Exp. Med. Biol. 1988. V.237. P.255-261.

147.Keren D.F., P.S.Holt, H.H.Collins, P.Gemski, S.B.Formal. The role of Peyer's patches in the local immune response of rabbit ileum to live bacteria // J.of Immunology. 1987. V.120. N6. P. 1892-1896.

148.Khan M M. Regulation of IL-4 and 1L-5 secretion by histamine and PgE2 // Immunobiology of proteins and peptides VIII Manipulation or modulation of the immune response / Eds. M.Zonhair, G.S.Atassi, Jr.Bixler. Advances in experimentalmedicine and biology. V.383. Plenum Press, NY, London. 1995. P.35-42.

149.Kioni C., K.Abell, J.P.McGillis, S.L.Carlson. Catecholamines inhibite lymphocyte binding to endothelial cells // /Society for neuroscience. Abstracts. V.19. pt.2. 23 RD Annual meeting. Washington, DC. Nov.7-12 1993. P.946.

150.Klein, J.R., M.F. KagnofF. Non-specific recruitment of cytotoxic effector cells in the intestinal mucosa of anyigen-primed mice // J. Exp. Med. 1984. V. 160. P. 19311936.

151.Kouassi E., Y.S.Li, J.-P.Revillard. Catecholamine regulation of mouse B cell activation. Functional dichotomy between LPS and anti-immunoglobuline antibody responses // Neuropeptides and immunopeptides. messenger in a neuroimmune axis/ Eds.: M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P.391-392.

152.Krammer H.-J., Kuhnel W. Topography of the enteric nervous system in Peyer's patches of the porcine small intestine // Cell Tissue Res. 1993. V.272. P.267-272.

153.Kristensson K. Retrograde transport of macromolecules in axons // Ann.Rev.Pharmacol.Toxicol. 1978. V.18. P.97-110.

154.Kristensson K. Transport of fluorescent protein tracers in peripheral nerves // Acta Neuropath. Berlin. 1970. V.16. P.293-300.

155.Krukoff T.L., J.Ciriello, F.R.Calaresu. a. Segmental distribution of peptide- and 5HT-like immunoreactivity in nerve terminls and fibers of the thoracolumbar sympathetic nuclei of the cat //J. of Comparative Neurology. 1985. V.240. P. 103116.

156.Krukoff T.L., J.Ciriello, F.R.Calaresu. b. Segmental distribution of peptide-like immunoreactivity in cell bodies of the thoracolumbar sympathetic nuclei of the cat // J. of Comparative Neurology. 1985. V.240. P.90-102.

157.Kubes P., S.Kanvar. Histamine induces leukocyte rolling in post-capillary venules. A P-selectin-mediatd event // J. of Immunology. 1994. V.152. N7. P.3570-3577.

158.Kuhnlein P., J.-H. Park, Th.Herrmann, A.Elle, Th.Hunig. Identification and characterization of rat y/8 T lymphocytes in peripheral lymphoid organs, small intestine, and skin with monoclonal antibody to a constant determinant of the y/8 T cell receptors // 3. Immunol. 1994. V. 153 (3). P.979-986.

159.La Vail J .H., La Vail M. Retrograde axonal transport in the central nervous system // Science. 1972. V.176. P.1416-1417.

160.Landberg J.M., Anggard A., Pernow J., Hokfelt T. Neuropeptide Y-, substance P-and VIP-immunoreactive nerves in cat spleen in relation to autonomic vascular and volume control // Cell Tissue Res. 1985. V.239. P.9-18.

161.Leff A.R., N.P.Stimber, N.M.Munoz, T.Shioya et.al. Augmentation of respiratory mast cell secretion of histamine caused by vagus nerve stimulation during antigen challange // J. Immunol. 1986. V.136. N3. P.1066-1073.

162.Leibson H.J., M.Gefter, A.Zlotnin et al. Role of gamma-interferon in antibody producing responses//Nature. 1984. V.309. N597. P.799-801.

163.Leite De Moraes M.C., Touraine P., M.C.Garnerault et al. Prolactin receptors and the immune system // Ann. Endocrinol. (Paris). 1995. V.56. N6. P.567-570.

164.Leon A., A.Buriani, R.Dal Toso, M.Fabris, S.Romanello, L.Aloe, R.Levi-Montalcini. Mast cells synthesize, store and release nerve growth factor // Proc.Natl.Acad.Sci USA. 1994. V.91. P.3739-3743.

165.Livnat, S., S.Y.Felten, S.L.Carlson, D.L.Bellinger, D.L.Felten. Involvement of peripheral and central catecholamine systems in neural immune interactions // J/Neuroimmunol. 1985. V.10. P.5-30.

166.MacDonald, T.T., J.O.Spenser. Lymphoid cells and tissues of the gastrountestinal tract // Gastrointestinal and hepatic immunology. Eds. R.V.Heatley. Cambridge University Press, 1994. P. 1-23.

167.Madden K.S., Ackerman K.D., Livnat S., Felten S.Y., Felten D.L. Patterns of noradrenergic innervation of lymphoid organs and immunological consequence of

denervation // Neuroimniune networks: physiology and deseases/ Eds.: Goetzl E.J., Spector N.H. Academic press, Liss, New York. 1989. P. 1-8.

168.Marsh M.N. Studies of intestinal lymphoid tissue. I. Electron microscopic evidence of «blast tranformation» in epithelial lymphocytes of mouse small intestine mucosa // Gut. 1975. V.16. P.665-674.

169.Marsh M.N. Studies of intestinal lymphoid tissue. II. Aspects of proliferation and migration of epithelial lymphocytes in the small intestine in mice // Gut. 1975. V.16. P.674-682.

170.Marsh M.N. Studies of intestinal lymphoid tissue. V. Functional and structural aspects of the epithelial lymphocyte, with implications for coeliac disease and tropical sprue// Scandinavian J. of Gastroenterology. 1985. V.20 (Suppl.114). P.55-75.

171.Mauske J.M., E.L.Sullivan, S.M.Anderson. Substance P mediated stimulation of cytokine levels in cultured murine bone marrow stromal cells // Immunology of proteins and peptides VIII. Manipulation or modulation of the murine response/Eds.. M.Zouhair Atassi, G.S.Bixler, Jr. Advances in experimental medicine and biology. V.383. Plenum Press, NY, London, 1995. P.53-64.

172.McClugage S.G., F.N.Low, M.L.Zimmy. Porosity of the basement membrane overlying Peyer's patches in rats and monkeys // Gastroenterology. 1986. V.91. P.1128-1133.

173.McGillis J.P., M.Mitsuhashi, D.GPayan. Immunomodulation by tachykinin neuropeptides // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis/ Eds.: M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990, P.85-94.

174.McKay DM, Djuric V.J., Perdue M.H., Bienenstock J. Regulation factors affecting gut mucosal defence // Gastrointestinal and hepatic immunology. Eds. R.V.Heatley. Cambridge University Press, 1994. P.48-75.

175.Miura S., H.Serizawa, Y.Tsuzuki et.al. Vasoactive intestinal peptide modulatea T lymphocyte migration in Peyer's patches of rat small intestine // APStracts. 3:0155G. 1996.

176.Miura S., Y.Tsuzuki, D.Fukumura et al. Intravital demonstration of sequential migration process of lymphocyte subpopulations in rat Peyer's patches // Gastroenterology. 1995. V.109. N4. P 1113-1123.

177.Miura S., Y.Tsuzuki, l.Kurosa et al. Endotoxin stimulates lymphocyte-endothelial interactions in rat intestinal peyer's patches and villus mucosa // APStracts. 1996. 3:0035G. P.G346-355.

178.Muretto P. Lymphoid follicles in extranodal sites: an immunohistochemical study // European J. of Histochemistry. 1994. V.38. N 3. P.219-228.

179.Nauss K M., T.M.Pavlina, V.Kumar, P.M Newberne. Functional characteristics of lymphocytes isolated from the rat large intestine // Gastroenterology. 1984 V 86. P.468-475.

180.Neutra M R., A.Frey, J.-P.Kraehenbuhl. Epithelial M cells, gateways for mucosal infection and immunization//Cell. 1996. V.86. P.345-348.

181.0ates E.L., G.P.Allaway, G.R.Armstrong, et.al. Human lymphocytes produce proopiomelanocortin gene-related transcripts // J. of Biological Chemistry. 1988. V.263. N21. P. 10041-10044.

182.0htani O., T.Murakami. Organization of the lymphatic vessels and their relationships to blood vessels in rabbit Peyer's patches // Arch. Histol. Cytol. 1990 V.53. Suppl. P. 155-164.

183.0phenheimer-Marks N., A.F.Kavanaugh, P.E.Lipsly. Inhibition of the transendothelial migration of human T lymphocytes by prostaglandin E2 // J. of Immunology. 1994. V.152. N12. P.5703-5713.

184.0ttaway C.A. Dynamic aspects of lymphoid cell migration // In Migration and Homing of Lymphoid cells. 1988. V II. ed. A.J.Husband. Boca Raton:CRC Press. P.167-194.

185.0ttaway C.A. Lymphocyte migration to the gut mucosa // Gastrointestinal and hepatic immunology. Eds. R.V.Heatley. Cambridge University Press, 1994. P.24-47.

186.0ttaway C.A., G.R.Greenberg. Interactions of vasoactive intestinal peptide with mouse lymphocytes, specific binding and the modulation of mitogen responses // J of Immunol. 1984. V.132. N1. P.417-423.

187.0wen R.L. Sequential uptake of horseradish peroxidase by lymphoid follicle epithelium in rat Peyer's patches in normal unobstructed mouse intestine, an ultrastructural study// Gastroenterology. 1977. V.72. P.440-451.

188.Owen R.L., R.T.Apple, D.K.Bhalla. Morphometric and cytochemical analysis of lysosomes in rat Peyer's patch follicle epithelium, their reduction in volume fraction

and acid phosphatase content in M cells compared toadjacent enterocytes // Anatomical Records. 1986. V.216 P52I-527.

189.Owen, R.L., A.L.Jones. Epithelial cell specialization within human Peyer's patches an ultrastructural study of intestinal lymphoid follicles // Gastroenterology. 1974. v.66. N.2. P. 189-203.

190.Pabst R. Lymphocyte migration // Immunology Today. 1988. V.9. P.43-45.

191.Pabst R., H.J.Rothkotter. Lymphocyte migration: an essential step in understanding the effects of vaccination // Behring. Inst. Mitt. 1997. V.98. P. 56-62.

192.Palvi P., D.A.Hume, E.Van de Pol, W.F.Doe. Dendritic cells, the major antigen presenting cells of the human colonic lamina propria // Immunology. 1993. V.78. P.132-141.

193.Payan, D.G., J.P.McGillis, F.K.Renold, M.Mitsuhashi, E.J.Goetzl. Neuropeptide modulation of leukocyte function // Neuroimmune interactions. Proceedings of the second international workshop on neuroimmunomodulation. Ann. NY Acad.Sci. 1987. v.496./ Eds.: B.D.Jankovic, B.M.Markovic, N.H.Spector. P. 182-191.

194.Pearson J.T. Vasoactive intestinal peptide (VlP)-immunoreactive neurones of the isolated submucous plexus of guinea-pig ileum // J. of Physiology. 1986. V 378. P. 100P.

195.Regoli M., Ch.Borghesi, E.Bertelli, L.Comparini. Arrangement of the small intestine lymphatic network in the Peyer's patches of the mouse. A light and transmission electron microscopic study // Annals of Anatomy. 1995. V.177. N3. P.229-235.

196.Regoli M., Ch.Borghesi, E.Bertelli, C.Nicoletti. A morphological study of the lymphocyte traffic in Peyer's patches after an in vivo antigenic stimulation // Anat. Rec. 1994. V.239. N1. P.47-54.

197.Rioux, K.P., J.L.Wallace. Mast cell activation augments gastric mucosal injury through a leukotriene-dependent mechanism // Amer. J. Physiol. V.266. (Gastrointest. Liver Physiol. 29). 1994. P.G863-G869.

198.Ron Y., J.P.Dangherty, C M.Duff et al. The effect of febrile temperatures on biologic of interferons//J. Immunol. 1984. V.133. N4. P.2037-2042.

199,Saffrey M.J., N.Marcus, K.R.Jessen, G.Burnstock. Distribution of neurons with high-affinity uptake sites for GABA in the myenteric plexus of the guinea-pig, rat and chicken//Cell Tissue Res. 1983. V.234. N.l. P.231-235.

200.Salmi, M., S. Jalkanen. Regulation of lymphocyte traffic to mucosa-associated lymphatic tissues // Gastroenterology Clinics of North America. 1991. V.20. P.495-510.

201.Sandberg G. Leucocyte mobilization from the guinea pig spleen by muscarinic cholinergic stimulation//Experientia. 1994. V.50. N1. P.40-43.

202.Sapolsky R, C.Rivier, G.Yamamoto, P.Plotsky, W.Vale. Interleukin-1 stimulates the secretion of hypothalamic corticotropin-releasing factor // Science. 1987. V.238. P.522-524.

203.Scheuermann, W.Stach. A simultaneous demonstration of particular enteric neuronal cell types with the NADH: Nitro BT-dehydrogenase reaction and of nerve fibres containing enkefalin-like immunoreactivity in the myenteric plexus of the pocrine small intestine // Histochemistry. 1985. V.82. P.268-273.

204.Scheuerman, D.W., W.Stach, S.-P.Timmermans. Scanning electron microscopy (SEM) of plexus Submucosus internus (Meissner) in the porcine small intestine // Scanning. 1984. v.6. N.2. P.96-102.

205. Schieferdecker H.L., R.Ullrich, A.J.Weiss-Breckwldt et.al. 1990. J. Immunol.V. 144. P.2541-2549.

206.Schmidtova K., E.Banovska, M.Kocisova, A.Gombos. Effect of irradiation on distribution of the acetylcholinesterase(ACHE)-positive nerve fibres in the spleen of the rats // Functional and developmental morphology. 1994. V.4 N4. P.261-262.

207.Schrader J.W., R.Scollay, F.Battye. Intramucosal lymphocytes of the gut. Lyt-2 and Thy-1 phenotype of the granulated cells and evidence for the presence of both T cells and mast cells precursors // J.Immunol. 1983. V. 130. P.558-564.

208.Serf-Bensussan N., E.E.Schneeberger, A.K.Bhan. lmmunohistologic and immunoelectron microscopic characterization of the mucosal lymphocytes of human small intestine by the use of monoclonal antibodies // J. Immunol. 1983. V.130. P.2615-2622.

209.Serf-Bensussan N., Guy-Grand D., C.Griscelli. Intraepithelial lymphocytes of human gut: Isolation, characterisation and study of natural killer activity // Gut. 1985. V.26. P.81-88.

210.Serf-Bensussan N., Jarry A., N.Brousse, B.Lisowska-Grospierre, Guy-Grand D., C.Griscelli. A monoclonal antibody (HML1) defining a novel membrane molecule

present on human intestinal lymphocyte 11 Europ. J. Immunol. 1987. V. 17. P. 12791285.

211 .Shanahan, F., J.A.Denborg, J.Fox, j.Bienenstock, D.Befus. Mast cell heterogeneity: effeats of neuroenteric peptides on histamine release ,'/ 5 Immunology. 1985. V.135.N.2. P.1331-1337.

212.Sheuermann, W.Stach. External adrenergic innervation of the three neuron types o) Dogel in the plexus myentericus and the plexus submucosus externus of the porcine small intestine // Histochemistry. 1983. V.77. P.303-311.

213.Sicinski P., J.Rovinski, J.B.Warchol et al. Poliovirus type 1 enter«? the- V»«-». • through intestinal M cells // Gastroenterology. 1990. V.98. P.56-58.

214.Spencer J., T.Finn, P.G.Isaacson Expression of HLA-DR antigens on epithelium associated with lymphoid tissue in the human gastrointestinal tract // Gut. 1986. V.27. P. 153-157.

215.Spencer J., T.Finn, P.G.Isaacson. Human Peyer's patches, an immunohistochemical study // Gut. 1986. V.27. P.405-410.

216.Spencer J.O., MacDonald, T.T., Diss, T.C., Walker-Smith, J.A., Ciclitira P I Isaacson P.G. Changes in intraepithelial lymphocyte sub-population h< disease and enteropathy assosiated T cell lymphoma (malignant Jit':' intestine)//Gut. 1989. V.30. P.339-346.

217.Stead R.H., J.Bienenstock,A.M.Stanisz. Neuropeptide regulation of muui immunity // lmmunol.Rev. 1987. V.100. P.333-360.

218.Stead R.H., M.Tomioka, G.Quinonez, G.T.Simon, S.Y.Felten, J.Bienenstock. Intestinal mucosal mast cells in normal and nematode-infected rat intestines contact with peptidergic nerves // Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 1987. V.84. N9. P.2975-2979.

219.Stober, W., W.Brown. The mucosal immune system// In Immunological ik:^«'« V.l. 1988. Little, Brown and Co. Boston. P.70-139.

220.Strom T.B. The parallel, time-dependent, bimodal change in lymphocyte cholinergic binding activity and cholinergic influence upon lymphocyte-mediate-| cytotoxicity after lymphocyte activatioii//J. Immunology. 1981. V.127. N7 5s 710.

221.Sundler F , R.Hakanson, E.Ekblad, R.Uddman, C.Wahlestedt. Neuropeptide Y in the peripheral adrenergic and enteric nervous systems // International review of cytology. 1986. V.102. P.243-269.

222,Sydora B.C., Jamieson B.D., Ahmed R., Kronenberg M. Intestinal intraepithelial lymphocytes resbond to systemic lymphocytic choriomeningitis virus infection // Cell Immunol. 1996. V.167. N2. P. 161-169.

223.Tagliabue, A., A.D.Beftis, D.A.Clark, J.Bienenstock. Characteristics of natural killer cells in the murine intestinal epithelium and lamina propria // J. Exp. Med. 1982. V. 155. PI785-1796.

224.Taguchi T., W.K.Aicher, J.Mega, K.Fujihashi et.al.CD3+, CD8+ intraepithelial lymphocytes produce both IL-5 and IL-6 // FASEB J. 1990. A2037.

225.Tang ML., D.A.Steeber, X.Q.Zhang, T.F.Tedder. Intrinsic differences in L-selectin expression levels affect T and B lymphocyte subset-specific recircutstion pathways//J. Immunol. 1998. V.160. N10. P.5113-5121.

226.Targan, S.R. The lamina propria: a dynamic, complex mucosal compartment // in Neuro-Immuno-Physiology of the Gastrointestinal mucosa. Annala NY Acad. Sci. 1992. V.664. P.61-68.

227.Teschemacher H., G.Koch, H.Scheffler, A.Hildebrand, V.Brantl. Opioid peptides -immunological significances // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis / Eds.: M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P.66-77.

228.Theoharides T.C., C.Spanos, X.Pang et al. Stress-induces intracranial mast cell degranulation: a corticotropin-releasing hormone-mediated effect // Endocrinology. 1995. V.136. P.5745-5750.

229.Thorpe L.W., T.R jerrels, J.R.Peerez-Polo. Mechanisms of lymphocyte activation by nerve growth factor // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis/ Eds.: M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P.78-84.

230.Trier J.S. Structure and function of intestinal M cells // Gastroenterology Clinics of North America. 1991. V.20. P.531-548.

231.Tsuzuki Y., S.Miura, I.Kurose et al. Enhanced lymphocyte interaction in postcapillary venules of Peyer's patches during fat absorption in rats // Official J. Amer. Gastroenterological Association. 1997. V.112. N3. P.813.

232.Tsuzuki Y , S.Miura, M.Suematsu et al. Alfa 4 integrin plays a critical role in early stages of T lymphocyte migration in Peyer's patches of rats // Int. Immunol. 1996 V.8. N.3. P.287-295.

233.Vriend C.Y , W.Wan, A.H.Greenberg, D.M Nance. Cutting the splenic nerve differentially affects catecholamine and neuropeptide levels in the spleen // Society for neuroscience. Abstracts. V. 19. pt.2. 23 RD Annual meeting. Washington, DC. Nov.7-12 1993. P.945

234.Wakkach A., T.Guyon, C.Bruand, S.Tzartos et al. Expression of acetylcholine receptor genes in human thymic epithelial cells // J. of Immunology. 1996. V. 157 N8. P.3752-3760.

235.Wang X.Y., W.C.Wong, E.A.Ling. Ultrastructural localization of substance P, vasoactive intestinal peptide and somatostatin immunoreactivities in the submucous plexus of guinea pig ileum // J.Anatomy. 1995. V. 186. ptl. P.187-196.

236.Wang Y.-Z., H.J.Cooke, H.C.Su, R.Fertel. Histamine augments colonic secretion in guinea pig distal colon // Amer. J. Physiology. 1990. V.258. (Gastrointest. Liver Physiol. 21). P.G432-G439.

237.Wang Y.-Z., J.M.Palmer, H.J.Cooke.Neuroimmune regulation of colonic secretion in guinea pig // Amer. J. Physol. 1991. V.260. (Gastrointest. Liver Physiol. 23). P.G307-G314.

238.Wasserman S.J., K.E.Barrett, P.A.Huott, G.Beuerlein, M.Kagnoff, K.Dharmsathaphorn. Immune-related intestinal Cl secretion. I. Effect of histamine on the T84 cell line // Amer. J. Physiol. 1988. V.254. (Cell Physiol. 23). P.C53-C62.

239.Watson S R., C.Fennie, L.A.Lasky. Neutrophil influx into an inflammatory site inhibited by a soluble homing receptor-IgG chimaera // Nature. 1991. V.349. P. 164.

240.Weigent D.A., D.J.J.Carr, J.E.Blalock. Bidirectional communications between the neuroendocrine and immune systems. Common hormones and hormone receptors // A decade of neuropeptides: past, present, and future/ Eds.: G.F.Koob, C.A.Sandman, L.F.Strand. Annals of the NY Acad. Sci. NY, NY, 1990. P. 17-27.

241.Wenger G.D., M.S.O'Dorisio, E.J.Goetzl. Vasoactive intestinal peptide. Messenger in a neuroimmune axis // Neuropeptides and immunopeptides: messenger in a neuroimmune axis/ Eds.: M.S.O'Dorisio, A.Panerai. (Ann. NY Acad. Sci. V.594) NY Acad Sci, 1990. P. 104-119.

242.Williams M B., E.C.Butcher. Homing of naive and memory T lymphocyte subsets to Peyer's patches, lymph nodes and spleen // J.Immunol. 1997. V.159. N4. P.1746-1752.

243.Winer J.A. A review of the status of the horseradish peroxidase method in neuroanatomy//Behav.Rev. 1977. V.l. P.45-54.

244.Wolf J.L., D.H Rubin, R Finberg et al. Intestinal M cells, a pathway for entry of reovirus into host // Science. 1981. V.212. P.471-472.

245.Wong M.-L., J.Lienio. Localization and cellular distribution of interleukin-1 receptor antagonist mRNA in rat brain // Society for neuroscience. Abstracts. V. 19. pt.2. 23 RD Annual meeting. Washington, DC. Nov.7-12 1993. P. 1685.

246.Wood J.D. Electrical and synaptic behavior of enteric neurons // Handbook of Physiology. The Gastrointestinal System. Motility and Circulation. 1989. V.l. Sect.6. P.465-517.

247.Wood, J.D. Enteric neuroimmune interactions // Immunophysiology of the gut. Acad, press, 1993. P.207-227.

248.Wood, J.D. Gastrointestinal neuroimmune interactions // Advances in the innervation of the gastrointestinal tract /Ed. G.E.Holle, Co-ed. J.D.Wood. Excerpta medica, Amsterdam, London, New York, Tokyo, 1992. p. 607-615.

249.Wood, J.D. Intestinal immuno-neuro-physiology // Innervation of the gut (pathophysiological implications)/ Eds.: Y.Tashe, D.L.Wingate, T.F.Burks. 1994. P.290-305.

250.Yoshikawa H., Lambert E.H., Walser-Kuntz D.R. et al. A 17-mer self-peptide of acetylcholine receptor binds to B cell MHC class II, activates helper T cells, and stimulates autoantibody production and electrophysiologic signs of myasthenia // J. of Immunology. 1997. V.159. N15. P.1570-1577.

251.Youngman K.R., C.Fiocchi, C.S.Kaetzel. Inhibition of IFN-y activity in supernatants from stimulated human intestinal mononuclear cells presents up-regulation of the polymetric Ig receptor in an intestinal epithelial cell line // J. of Immunology. 1994. V.l53. N2. P.675-681.

252.Zalcman S., J.Green-Johnson, L.Murray, W.Wan, D.M.Nance, A.H.Greenberg. Interleukin-2-induced potentiation of immune function is mediated by the

sympathetin nervous system // Society for neuroscience. Abstracts. V. 19. pt 2. 23 RD Annual meeting Washington, DC. Nov.7-12 1993. P.945.