Морфологическая оценка функциональной способности гамет и эмбрионов человека после криоконсервации тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.04, кандидат наук Иванова Ольга Викторовна

• Иванова Ольга Викторовна
• кандидат наук
• 2020

Оглавление диссертации кандидат наук Иванова Ольга Викторовна

ОГЛАВЛЕНИЕ

С.

Введение

Глава 1. Обзор литературы

Современные представления о строении и развитии гамет и эмбрионов человека раннего преимплантационного периода развития in vitro и способах их замораживания

1.1 Фундаментальные основы криобиологии /общие представления/. Вклад криобиологии и криомедицины в развитие вспомогательных

репродуктивных технологий

1.2 Развитие эмбрионов человека in vitro. Системы оценки качества эмбрионов

1.3 Среды, протоколы и носители для криоконсервации гамет и эмбрионов. Выживаемость гамет и эмбрионов

1.4 Криоконсервация и преимплантационный генетический скрининг эмбрионов

Глава 2. Материалы и методы

Глава 3. Результаты собственных исследований. Морфологическая оценка функциональной способности гамет и эмбрионов человека раннего преимплантационного периода развития, технологии криоконсервации, применение дополнительных методов исследования

3.1 Система оценки качества эмбрионов человека на этапах культивирования

in vitro

3.2 Оценка выживаемости гамет и их функциональной способности после криоконсервации

3.3 Оценка выживаемости эмбрионов человека разных стадий преимплантационного развития и их функциональной способности после криоконсервации

3.4 Сравнительный анализ показателей выживаемости и клинической эффективности при использовании прямого и опосредованного контакта эмбрионов с жидким азотом во время криоконсервации

3.5 Анализ влияния компетенции ооцитов, генетического скрининга и витрификации на частоту выживаемости эмбрионов и клинические показатели у

пациентов

Глава 4. Обсуждение полученных результатов

Заключение

Выводы

Практические рекомендации

Список сокращений

Список использованной литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфологическая оценка функциональной способности гамет и эмбрионов человека после криоконсервации»

Введение. Актуальность темы. Изучение цитофизиологии гамет и эмбрионов, влияние криоконсервации на процессы их жизнедеятельности является одним из наиболее актуальных направлений исследований биологии и медицины [Kasai M., 2004; Cobo A., 2011; Johnson M.H., 2011; Rienzi L. et al., 2017; Sztein J.M. et al., 2018; Ernstad E.G.et al., 2019; Grynberg M., 2019]. Замораживание клеток временно приостанавливает протекающие биологические процессы с последующим восстановлением их структуры и функции после оттаивания. Сохранение способности гамет и эмбрионов к развитию зародыша и плода после криоконсервации позволяет реализовать репродуктивный потенциал у пациентов с бесплодием. По оценкам ВОЗ, бесплодием страдают 5% населения земного шара, что составляет 48,5 млн. пар, численность которых растет с каждым годом [Mascarenhas M.N. et al., 2012]. Несмотря на имеющиеся успехи в области его лечения, менее 50% начатых циклов вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) приводят к беременности [Assisted Reproductive Technology, 2012; ART in Europe, 2015; Ferraretti A. P. et al., 2017]. Тем не менее, по данным регистров ВРТ, частота наступления беременности после криоконсервации с каждым годом становится выше, в сравнении с переносами в «свежих» циклах экстракорпорального оплодотворения (ЭКО) [Assisted Reproductive Technology Surveillance, 2019; ВРТ в России Корсак В.С. и др., 2019; Bai F. et al., 2020]. В связи с чем представляется принципиально важным определение оптимальной для криоконсервации эмбрионов стадии их развития. Селекция эмбрионов для замораживания позволит достичь высокого уровня их выживаемости при оттаивании, а следовательно, и увеличит шансы пациентов на наступление беременности и рождение ребенка.

Очевиден и другой, социальный аспект проблемы сохранения репродуктивного здоровья человека. Демографическая проблема прироста населения является актуальной для большинства стран мира. С помощью репродуктивных технологий ежегодно рождается до 2% детей во всем мире [Faddy et al., 2018].

В настоящее время для криоконсервации гамет и эмбрионов используется технология сверхбыстрого замораживания - витрификация. В данном случае используются высокие концентрации криопротекторов, которые замещают собой молекулы воды в клетках и не позволяют образовываться кристаллам льда. Межклеточная жидкость мгновенно переходит в стекловидное состояние, что позволяет сохранять целостность клеток в процессе оттаивания [Kuwayama M. et al., 2005; 2007; Best, 2015; Elliott et al., 2017]. Получение первых беременностей после успешной витрификации ооцитов и эмбрионов человека позволило включить эту технологию в практику большинства эмбриологических лабораторий [Palermo et al., 1992; Mazur et al., 2004; Lieberman, Tucker 2006; Li et al., 2014]. Однако, данное направление нельзя считать исчерпанным, поскольку наличие широкого круга нерешенных проблем ещё требует дополнительных исследований. Крайне актуальным остается вопрос выживаемости эмбрионов и их функциональной способности при использования различных видов носителей для хранения замороженного биологического материала (прямой и опосредованный контакт с жидким азотом).

Криоконсервация гамет является единственным способом сохранения репродуктивной функции у пациентов с онкологической патологией, которым предстоит хирургическое, химиотерапевтическое или радиологическое лечение, а также для пациентов с системными заболеваниями, тяжелой эндокринной патологией. Данные специальной литературы о преимуществе использования нативного материала (ооцитов, сперматозоидов) в практике эмбриологических лабораторий по сравнению с замороженным, достаточно противоречивы [Matson et al., 1997; Kuwayama et al., 2005; Kuwayama, 2007; Cobo et al., 2016]. В связи с чем весьма востребованным представляется проведение сравнительного анализа использования нативных и замороженных гамет для реализации их способности к развитию эмбрионов и наступлению беременности.

Генетический скрининг эмбрионов 5-6-х суток развития на наличие анеуплоидий по данным отдельных авторов позволяет более быстро достичь беременности при переносе в полость матки эуплоидной бластоцисты [McArthur 2008, Zegers-Hochschild, 2009; Schoolcraft, 2010; Ernstad et al., 2019]. Однако, данная тактика имеет свои ограничения, поскольку любые дополнительные манипуляции (криоконсервация, биопсия) повышают риск повреждения эмбриона и могут привести к остановке его развития. В этом отношении представляется важным определить, является ли криоконсервация после предварительно проведенной биопсии фактором, ограничивающим ее использование в случае генетического скрининга.

Таким образом, наличие спорных вопросов о морфологических критериях, используемых для селекции эмбрионов доимплантационного развития, оптимальных стадиях развития бластоцист для криоконсервации, преимуществах и недостатках использования нативного и замороженного биоматериала, влияния на выживаемость разных способов контакта с жидким азотом, предварительно проведенной биопсии, не позволяют иметь целостное представление о функциональной способности гамет и эмбрионов после оттаивания. Изучение этих проблем имеет важное значение не только для развития фундаментальной, но и для практической медицины.

Целью работы явилось определение выживаемости и функциональной способности гамет, эмбрионов 5-6-х суток эмбрионального развития в зависимости от их структуры, а также при прямом и опосредованном контакте биологического материала с жидким азотом; предварительной проведенной биопсии.

Задачи исследования:

1. Определить морфологические критерии эмбрионов 5-6-х суток эмбрионального развития для отбора с целью их криоконсервации, последующего размораживания и переноса в полость матки.

2. Оценить выживаемость гамет после размораживания и сравнить их функциональную способность к оплодотворению, развитию эмбрионов и

вероятности наступления беременности при использовании свежего (нативного) и размороженного донорского материала (ооцитов и сперматозоидов).

3. Выявить взаимосвязи между особенностями структуры бластоцист и их выживаемостью, вероятностью наступления беременности после криоконсервации.

4. Изучить особенности выживаемости эмбрионов и их функциональную способность при прямом и опосредованном контакте с жидким азотом во время криоконсервации.

5. Оценить функциональный потенциал бластоцист 5-6-х суток эмбрионального развития и вероятность наступления беременности после предварительно проведенных биопсии и криоконсервации.

Научная новизна. Впервые в рамках проведенного исследования показано, что система оценки строения гамет и бластоцист 5-6-х суток эмбрионального развития позволяет осуществлять их качественную селекцию для замораживания, гарантируя высокий уровень выживаемости после оттаивания.

В работе показано, что процедура криоконсервации и оттаивания гамет позволяет сохранить их функциональную способность. То есть давать развитие компетентным эмбрионам и не снижать вероятность наступления беременности, по сравнению с использованием нативного материала.

Крайне важными являются сведения, что степень дифференцировки трофобласта и эмбриобласта бластоцисты коррелирует с уровнем их выживаемости: чем он выше, тем более высокий уровень выживаемости у эмбрионов.

Новым следует признать факт, что стадия хетчинга (вылупления) бластоцист, по полученным нами данным, может быть расценена как своеобразный критический период для эмбрионов доимплантационного развития.

В рамках исследования доказано отсутствие негативного эффекта на развивающиеся эмбрионы сочетания процедур биопсии и замораживания при грамотном отборе бластоцист 5-6-х суток по морфологическим критериям.

Практическая и теоретическая значимость

Полученные в работе сведения об особенностях криоконсервации гамет и эмбрионов in vitro существенно расширяют имеющиеся представления о возможностях сохранения репродуктивного потенциала конкретного пациента и популяции человека в целом, а также о возможностях применения криоконсервации в рутинной практике эмбриологических лабораторий.

Приведенные данные убедительно доказывают, что ранжирование эмбрионов 5-6-х суток преимплантационного развития на основании их морфологической оценки позволяет отобрать эмбрионы отличного и хорошего качества для криоконсервации, сохранив их функциональные компетенции.

Детальный анализ выживаемости эмбрионов различных морфологических стадий развития позволил определить наиболее благоприятные для витрификации стадии эмбрионального развития in vitro. Такой дифференцированный подход к ранжированию бластоцист 5-6-х суток может быть использован как стандартная практика для эмбриологических лабораторий.

Впервые установлено, что система замораживания при прямом контакте с жидким азотом демонстрирует более высокие показатели выживаемости и наступления клинической беременности.

Использование нативного и криоконсервированного биологического материала (ооцитов, сперматозоидов) позволяют заключить, что витрификация позволяет сохранить их компетенции и достигать сопоставимые показатели частоты наступления беременности.

Высокий уровень функциональной способности гамет и эмбрионов позволяет оценить технологию криоконсервации как весьма эффективную и

использовать ее при различных клинических ситуациях, в том числе при проведении биопсии и генетического тестирования.

Методология и методы исследования

Методология работы заключается в системном подходе и комплексном анализе результатов исследования гамет и эмбрионов человека с последующим выполнением статистического анализа полученных данных. В рамках данной научной работы был проведен анализ российских и зарубежных исследований по теме воздействие криоконсервации на развитие и морфологическую организацию эмбрионов и гамет. В соответствии с полученными данными была разработана концепция, цель и задачи исследования. При использовании в нашем исследовании сперматозоидов, ооцитов и эмбрионов человека соблюдались все международные, правовые и этические нормы [ст. 18 Конвенции Совета Европы о защите прав человека и достоинства человеческого существа при использовании достижений биологии и медицины, 1997]. Проведение клинического исследования одобрено Комитетом по биоэтике при ФГБОУ ВО «Самарском государственном медицинском университете» (выписка из протокола №116 от 3 октября 2018 года).

Степень достоверности и апробация работы

Достоверность результатов обеспечивается последовательным и логичным изложением задач исследования и их решением, использованием комплекса современных морфологических методов, достаточным объемом данных для каждой модели исследования, адекватным применением статистического анализа, критической оценкой полученных результатов при сравнение с данными современной литературы.

Основные положения работы доложены на научных конференциях (2018-2019 гг.): XXVIII Ежегодной Международной конференции РАРЧ «Репродуктивные технологии сегодня и завтра» (2018), XIII Международного конгресса по репродуктивной медицине (2018), Международной конференции КАРМ (2018), XXIX Ежегодной

Международной конференции РАРЧ «Репродуктивные технологии сегодня и завтра» (2019), научной конференции «Актуальные проблемы морфологии: эмбриональный и репаративный гистогенез, филогистогенез», посвященной 105-летию со дня рождения чл.-кор. АМН СССР проф. А. Г. Кнорре (2019), IV Международной морфологической научно-практической конкурс-конференции студентов и молодых ученых «Морфологические науки -фундаментальная основа медицины» (2019).

Личное участие автора заключалось в сборе информации, планировании исследования, обработке статистических данных, их анализе и кампиляции, формировании выводов, подготовке публикаций, научных статей и написании диссертационного исследования.

Внедрение результатов исследования в практику

Результаты исследования используются в учебном процессе на кафедрах гистологии и эмбриологии, репродуктивной медицины, клинической эмбриологии и генетики, акушерства и гинекологии ФГБОУ ВО «Самарский' государственный' медицинский' университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации.

Также результаты исследования внедрены и используются в практической работе эмбриологических лабораторий ЗАО Медицинская компания ИДК. На основании нашего исследования были составлены и стандартизированы протоколы процедур, применяемых в работе с гаметами и эмбрионами человека для их использования при лечении бесплодия в рамках программ ВРТ.

Положение, выносимое на защиту:

Выживаемость гамет и эмбрионов доимплантационного развития после предварительно проведенной криоконсервации определяется их морфологической характеристикой. Замораживание позволяет сохранить функциональную способность и достигнуть сопоставимых с использованием нативного биологического материала клинических показателей (частота наступления беременности).

Публикации

Материалы диссертации нашли отражение в 14 научных публикациях, пять из которых входят в Перечень рецензируемых научных изданий ВАК и изданиях, индексируемых базой данных SCOPUS, семь тезисных работ представленных на различных зарубежных и всероссийских конференциях.

Структура и объем квалификационной работы

Работа изложена в традиционной форме. Состоит из оглавления, списка принятых сокращений, введения, обзора литературы, 5 глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов, выводов и списка литературы. Работа представлена на 115 страницах, иллюстрирована 32 рисунками, 9 таблицами.

Библиографический указатель включает 164 научные работы.

Заключение диссертации по теме «Клеточная биология, цитология, гистология», Иванова Ольга Викторовна

Выводы:

1. Морфологическими критериями эмбрионов 5-6-х суток эмбрионального развития отличного и хорошего качества являются бластоцисты с эмбриобластом и трофобластом категории А и В, криоконсервация и размораживание которых обеспечивает высокий уровень их выживаемости и сохранение функционального потенциала. .

2. Криоконсервация гамет человека не снижает их функциональной активности (при витрификации ооцитов только показатель дробления имеет статистически значимую разницу со свежими яйцеклетками) и позволяет достигать сопоставимой частоты наступления беременности по сравнению с использованием нативного биологического материала.

3. Выживаемость эмбрионов раннего преимплантационного развития имеет широкий диапазон (от 75% до 100%). Самый низкий уровень выживаемости демонстрируют вылупившиеся бластоцисты, что связано с отсутствием оболочки оплодотворения и возможным цитотоксичным влиянием криопротекторов на клетки трофобласта. Размер бластоцисты, степень сформированности внутренней клеточной массы и трофобласта влияют на частоту наступления беременности. Чем выше степень дифференцировки трофобласта и эмбриобласта у бластоцисты, тем более высокие клинические показатели у пациентов.

4. Выживаемость эмбрионов и частота наступления беременности имеют более высокие показатели в группе, в которой осуществлялся прямой контакт эмбриона с жидким азотом во время криоконсервации в сопоставлении с группой, где происходил опосредованный контакт бластоцисты с жидким азотом, и эта разница статистически значима.

5. Криоконсервация позволяет проводить биопсию и генетический скрининг эмбрионов 5-х и 6-х суток эмбрионального развития, демонстрируя высокий уровень выживаемости при размораживании, тем самым обеспечивая наиболее высокие показатели частоты наступления беременности при

переносе в полость матки эуплоидного эмбриона, сопоставимые с использованием донорского материала (ооцита).

6. Криоконсервация гамет и эмбрионов может быть эффективным инструментом для резервации их биологической компетенции и применяться для сохранения репродуктивного потенциала в будущем.

Практические рекомендации:

1. Предложенная в рамках исследования система оценки качества эмбрионов позволяет по совокупности морфологических критериев оценить и ранжировать эмбрионы 5-х и 6-х суток эмбрионального развития для переноса и/или криоконсервации, что может быть использовано в рутинной практике лаборатории ВРТ

2. Криоконсервация гамет, особенно донорских, позволяет использовать их в рамках донорских программ без рисков передачи гемоконтактных инфекций реципиентам и снижения показателей клинической беременности, в том числе создавая банки собственных и донорских ооцитов для реализации репродуктивной функции в будущем.

3. Проведение витрификации бластоцист 5-6-х суток эмбрионального развития позволяет осуществлять биопсию трофобласта и генетический скрининг, в результате повышая частоту наступления беременности при переносе эуплоидного эмбриона до уровня, сопоставимого с программой использования донорских ооцитов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Иванова Ольга Викторовна, 2020 год

Список использованной литературы:

1. Брусиловский, И.А. Морфологическая оценка эмбрионов человека. «Коллеги, давайте договоримся!» / И.А.Брусиловский, И.В.Лившиц // Проблемы репродукции. - 2018. - №.2. - С. 63-68.

2. Грищенко, В.И. Достижения и перспективы развития криобиологии и криомедицины в Украине / В.И. Грищенко // Проблемы криобиологии. — 2005. — Т. 15. - № 3. — С. 231-240.

3. Жмакин, А.И. Физические основы криобиологии / А.И. Жмакин // Успехи физических наук. - 2008. - Т. 178. - № 3. - С.243-266

4. Иванова, О.В. Оценка эффективности криоконсервации гамет и эмбрионов человека в программах вспомогательных репродуктивных технологий / О.В. Иванова, О.В. Шурыгина, Д.Ю. Русаков, Т.В. Быкова, А.А. Петрова, С.Н. Юхимец, О.В. Кулакова, С.З. Юлдашев // Морфологические ведомости - Morphological Newsletter. - 2019, Том 27 Выпуск 3.- С. 46-50.

5. Иванова, О.В. Показатели выживаемости и клинической эффективности витрифицированных бластоцист человека в практике эмбриологических лабораторий / О.В. Иванова, О.В. Шурыгина, А.А. Петрова, С.Н. Юхимец, О.В. Кулакова, Д.Ю. Русаков, Н.Н. Демидова // Журнал анатомии и гистопатологии. - 2020. - Т 10, №2. - С. 70-73.

6. Иванова, О.В. Криоконсервация гамет как способ сохранения репродуктивного потенциала человека / О.В. Иванова, О.В. Шурыгина, Д.Ю. Русаков, Т.В. Быкова, О.В. Кулакова // Материалы докладов научной конференции «АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ МОРФОЛОГИИ: ЭМБРИОНАЛЬНЫЙ И РЕПАРАТИВНЫЙ ГИСТОГЕНЕЗ, ФИЛОГИСТОГЕНЕЗ», посвященной 105-летию со дня рождения чл.-кор. АМН СССР проф. А. Г. Кнорре. - Санкт-Петербург, 2019 -Морфология. - 2019. - Т 156, №6. - С. 98.

7. Иванова, О.В. Витрификация ооцитов человека как инструмент продления репродуктивного потенциала / О.В. Иванова, О.О. Попова,

A.Ю. Петрова // Материалы IV Международной морфологической научно-практической конкурс-конференции студентов и молодых ученых «МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ НАУКИ - ФУНДАМЕНТАЛЬНАЯ ОСНОВА МЕДИЦИНЫ», посвященной 80-летию со дня рождения профессора В.Д. Новикова - Новосибирск, 2019. - С. 94-97.

8. Корсак, В.С. К вопросу о роли эндометрия в имплантации эмбрионов /

B.С. Корсак // Проблемы репродукции. - 2016. - Т. 22. - № 2. - С. 3336.

9. Корсак, В.С. ВРТ в России. Регистр ВРТ РАРЧ. Отчет за 2017 год /Корсак В.С., Смирнова А.А., Шурыгина О.В. //С-Петербург, 2019. -71с.

10. Никитин, А.И. Влияние вредных факторов среды на репродуктивную, эндокринную системы и эпигеном / А.И. Никитин, О.В. Сергеев, А.Н. Суворов // ИОГен РАН - Москва: Акварель. - 2016. - 348 с.

11. Никитин, А.И. Экологически зависимые нарушения репродуктивной функции / А.И. Никитин // Репродуктивная медицина. - 2013. - Т.4. -№.3. - С. 17-20.

12. Попова, О.О. Эффективность применения среды с повышенным содержанием гиалуроновой кислоты для переноса эмбрионов человека / О.О. Попова, О.В. Иванова, А.А. Петрова, Д.Ю. Русаков // Материалы IV Международной морфологической научно-практической конкурс-конференции студентов и молодых ученых «МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ НАУКИ - ФУНДАМЕНТАЛЬНАЯ ОСНОВА МЕДИЦИНЫ», посвященной 80-летию со дня рождения профессора В.Д. Новикова -Новосибирск, 2019. - С. 210-212.

13.Приказ Министерства здравоохранения России №107н от 30.08.12 «О порядке использования вспомогательных репродуктивных технологий,

противопоказаниях и ограничениях к их применению». Доступно по: http://base.garant.ru/70318364/

14.Рожкова, И.Н. Оболочки преимплантационных зародышей млекопитающих как мишень репродуктивных технологий / И.Н.Рожкова, Е.Ю.Брусенцев, С.Я.Амстиславский // Онтогенез. -2012. - Т.43. - № 5. - С. 1-11.

15.Шурыгина О.В., Руководство по клинической эмбриологии /Шурыгина О.В., Пекарев В.А., Кодылева Т.А., Булдина О.Н., Тугушев// Самара, Издательство «АСГАРД», 2015. 407 с.

16.Шурыгина, О.В. Витрификация гамет и эмбрионов - эффективный инструмент повышения результативности программ вспомогательных репродуктивных технологий (ВРТ) / О.В. Шурыгина, Н.В. Сараева, М.Т. Тугушев, А.А. Байзарова // Современные проблемы науки и образования. - 2016. - №4. - С.54

17.Шурыгина, О.В. Ретроспективный анализ 563 эмбриологических протоколов криоциклов: влияние компетенции ооцитов и генетического скрининга эмбрионов человека на результаты витрификации / О.В. Шурыгина, О.В. Иванова, С.Н. Юхимец, С.З. Юлдашева, Д.Ю. Русаков, О.В. Кулакова // Морфологические ведомости - Morphological Newsletter. - 2020, Том 28 Выпуск 1.- С. 5156.

18.Шурыгина, О.В. Сочетание TIME-LAPSE технологии и преимплантационного генетического скрининга эмбрионов в практике лаборатории вспомогательных репродуктивных технологий / О.В. Шурыгина, М.Т. Тугушев, А.А. Чудинова, А.А. Байзарова // Морфология. - 2016. - Т. 149. - №3. - С. 244.

19. Шурыгина, О.В. Ретроспективный анализ эффективности витрификации бластоцист человека в практике эмбриологических лабораторий / О.В. Шурыгина, А.А. Петрова, О.В. Иванова, Т.В. Быкова, О.В. Кулакова //Репродуктивная медицина (журнал

Казахстанской Ассоциации репродуктивной медицины) - 2019, №4 (41). - С. 44-49.

20.Шурыгина, О.В. Новые возможности культивирования эмбрионов человека in vitro / О.В. Шурыгина, В.К. Беляков, Г.Б. Немковский, А.Б. Кузнецов, О.В. Иванова, М.Т. Тугушев, О.В. Кулакова // Морфология. - 2020. - Т 157, №1. - С. 75-78.

21. Шурыгина, О.В. Возможности современной оценки качества спермы / О.В. Шурыгина, Т.В. Быкова, А.А. Петрова, О.В. Иванова, С.З. Юлдашева // Сборник тезисов XXVIII Ежегодной Международной конференции РАРЧ «Репродуктивные технологии сегодня и завтра». -Уфа, 2018. - С. 123-124.

22.Шурыгина, О.В. Настоящее и будущее клинической эмбриологии / Шурыгина О.В., Иванова О.В., Кулакова О.В., Юлдашева С.З. // Тезисы Международной конференции КАРМ в журнале «Репродуктивная медицина» - Алматы, 2018. - №4 - С.38.

23.Шурыгина, О.В. Эффективность различного типа носителей для замораживания эмбрионов в программах ВРТ / О.В. Шурыгина, Н.В. Сараева, М.Т. Тугушев, О.В. Иванова // Материалы XIII Международного конгресса по репродуктивной медицине. - Москва, 2019. - С. 394-395.

24. Шурыгина, О.В. Ключевые параметры эффективности криопрограмм и их корреляция с качеством эмбрионов (ретроспективный анализ) / О.В. Шурыгина, Т.В. Быкова, О.В. Иванова, А.А. Петрова// Сборник тезисов XXIX Ежегодной Международной конференции РАРЧ «Репродуктивные технологии сегодня и завтра». - Ростов-на-Дону, 2019 - С. 111-112.

25.Abdelhafez, F. Techniques for cryopreservation of individual or small numbers of human spermatozoa: a systematic review / F.Abdelhafez, M. Bedaiwy, S. A. El-Nashar et al. // Human Reproduction Update. - 2009. -Vol.15. - №2. - P.153-164.

26.Ainsworth A.J. Fresh versus frozen embryo transfer has no effect on childhood weight / Ainsworth A.J., Wyatt M. A., Shenoy C.C., Hathcock M. et al. // Fertil Steril. - 2019. - Vol.112. - №5. - P. 684-690.

27.Arav, A. Cryopreservation of oocytes and embryos / A. Arav // Theriogenology. - 2014. - Vol. 81. - №1. - P. 96-102.

28.Assisted Reproductive Technology, Fertility Clinic Success Rates Report, 2012, http://www.cdc.gov/art/pdf/2012-report/national-summary/art_2012_national_summary_report.pdf

29. Assisted Reproductive Technology Surveillance — United States, 2016 /Saswati Sunderam, Dmitry M. Kissin, Yujia Zhang, Suzanne G. Folger, Sheree L. Boulet, Lee Warner, William M. Callaghan, Wanda D. Barfield //Surveillance Summaries -April 26, 2019 / 68(4); 1-23,

30. Behrman, S. J. Heterologous and homologous inseminations with human semen frozen and stored in a liquid-nitrogen refrigerator / S. J. Behrman, Y. Sawada // Fertility and Sterility. - 1966. - Vol.17. - №4. - P.457-466.

31.Benagiano, G. The new Italian IVF legislation / G. Benagiano, L.Gianaroli // Reprod Biomed Online. - 2004. - Vol.9. - №2. - P. 117-125.

32.Bernard, A. Cryopreservation of human oocytes: current problems and perspectives / A. Bernard, B.J.Fuller // Hum Reprod. - 1996. - Vol.2. -P.193-207.

33.Best, B.P. Cryoprotectant toxicity: facts, issues, and questions / B.P. Best // Rejuvenation Res. - 2015 - Vol.8. - №5. - P.422-436

34.Blockeel, C. Should we still perform fresh embryo transfers in ART? / Blockeel C., Campbell A., Coticchio G., Esler J. et al. // Hum Reprod. -2019. - Vol. 34. - №12. - P.2319-2329.

35.Bourdon, M. Day 5 versus Day 6 blastocyst transfers: a systematic review and meta-analysis of clinical outcomes / Bourdon M., Pocate-Cheriet K., de Bantel A. F., Grzegorczyk-Martin V. et al. // Hum. Reprod. - 2019. -Vol. 34. - №10. - P.1948-1964.

36.Braude, P. Human gene expression first occurs between the four- and eight-cell stages of preimplantation development / P.Braude, V.Bolton, S.Moore // Nature. - 1988. - Vol.332. - P.459-461.

37.Brooks, A. Cryopreservation of human semen," in Handbook of the Laboratory Diagnosis and Treatment of Infertility / A.Brooks., W.Webster // CRC Press, USA - 1990. - 448 p.

38.Buster, J.E. Biologic and morphologic development of donated human ova recovered by nonsurgical uterine lavage / Buster J.E., Bustillo M., Rodi I.A. et al. // Am. J. Obstet Gynecol.- 1985. - Vol. 2. - P.211-217.

39.Carrasquillo, R.J. Advanced paternal age does not affect embryo aneuploidy following blastocyst biopsy in egg donor cycles / Carrasquillo R.J., Kohn T. P., Cinnioglu C., Rubio C. et al. // J Assist Reprod Genet. - 2019. - Vol.36. - №3. - P.2039-2045.

40. Cenariu, M. Evaluation of bovine embryo biopsy techniques according to their ability to preserve embryo viability / Cenariu M., Pall E., Cernea C., Groza I. // J Biomed Biotechnol. - 2012. - Vol. 2012. - Article ID 541384.

41.Chen, C. Pregnancy after human oocyte cryopreservation / C. Chen // Lancet. - 1986. - №1. - P.884-886.

42.Ciepiela, P. Oocyte matched follicular fluid anti-Mullerian hormone is an excellent predictor of live birth after fresh single embryo transfer / P. Ciepiela, Duleba A. J., Kario A., Chelstowski K. et al. // Hum Reprod. -2019. - Vol. 34. - №11. - P.2244-2253.

43.Cobo, A. Clinical application of oocyte vitrification: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials / A. Cobo and C.Diaz // Fertil Steril. - 2011. - Vol.96. - №2. - P.277-285.

44.Cobo, A. Comparison of concomitant outcome achieved with fresh and cryopreserved donor oocytes vitrified by the Cryotop method / A. Cobo, M. Kuwayama, S. Perez et al. // Fertil Steril. - 2008. - Vol. 89- №.6. - P.1657-1664.

45.Cobo, A. Use of cryo-banked oocytes in an ovum donation programme: a prospective, randomized, controlled, clinical trial / A. Cobo, M. Meseguer, J. Remoh et al. // Hum Reprod. - 2010. - Vol.25. - №9. - P.2239-2246.

46.Cohen, J. Removal of 2 cells from cleavage stage embryos is likely to reduce the efficacy of chromosomal tests that are used to enhance implantation rates / Cohen J, Wells D, Munne S. // Fertil Steril. - 2007. -Vol. 3. - P. 496-503.

47.Dokras, A. Trophoderm biopsy in human blastocysts / Dokras A., Sargent I.L., Ross C. et al. // Hum. Reprod. - 1990. - Vol. 5. - P. 821-825

48.Dyban, A.P. Experimental cytogenetics of preimplantation development / Dyban A.P. // Preimplantation Genetics. - 1991. - P. 15-23.

49. Edgar D.H. A quantitative analysis of the impact of cryopreservation on the implantation potential of human early cleavage stage embryos / Edgar D.H., Bourne H., Speirs A.L., McBain J.C. // Hum Reprod. - 2000. - Vol.15. -Issue 1. - P.175-179.

50.Elliott, G.D. Cryoprotectants: a review of the actions and applications of cryoprotective solutes that modulate cell recovery from ultra-low temperatures / G.D. Elliott, S. Wang, B.J. Fuller // Cryobiology. - 2017. -Vol.76. - P. 74-91

51.Ernstad, E.G. Perinatal and maternal outcome after vitrification of blastocysts: a Nordic study in singletons from the CoNARTaS group / Ernstad E.G., Spangmose A. L., Opdahl S., Romundstad L. B. et el. // Hum Reprod. - 2019. - Vol. 34. - №11. - P.2282-2289.

52.Fabbri, R. Tecniche di crioconservazione riproduttiva / R.Fabbri, P.Ciotti, B. Di Tommaso et al. // Rivista Italiana di Ostetricia e Ginecologia. - 2004. -Vol.3. - P. 33-41.

53.Faddy, M.J. A demographic projection of the contribution of assisted reproductive technologies to world population growth / M.J. Faddy, M.D. Gosden, R.G. Gosden, // Reprod. BioMed. - 2018. - Vol. 36. - №4. -P.544-458.

54.Farfalli, V.I. Role of aneuploidy on embryo implantation / V.I. Farfalli, M.C. Magli, A.P. Ferraretti et al. // Gynecol Obstet Invest. - 2007. - Vol. 64. - №3. - P.161-165.

55. Ferraretti A. P. et al. Trends over 15 years in ART in Europe: an analysis of 6 million cycles //Human reproduction open. - 2017. - T. 2017. - №. 2.

56.Fuller, B.J. The Permeability of unfertilised oocytes to 1,2-propanediol: a comparison of mouse and human cells. / B.J. Fuller, J.E. Hunter, A.G. Bernard et al. // Cryo Lett. - 1992. - Vol.13. - P.287-292.

57.Gardner, D.K. Culture and transfer of human blastocysts / Gardner D.K., Schoolcraft W.B. // Curr Opin Obstet Gynecol. - 1999. - Vol.11. P.307-311.

58.Gardner, D.K. In vitro culture of human blastocysts / Gardner D.K., Schoolcraft W.B. // Toward Reproductive Certainty: Fertility and Genetics Beyond. - 1999. - P. 378-388.

59.Gardner, R.L. Control of the sex ratio at full term in the rabbit by transferring sexed blastocysts / Gardner R.L., Edwards R.G. // Nature. -1968. - Vol. 218. - P. 346-349.

58. Geyter, C. De. The European IVF-monitoring Consortium (EIM) for the

European Society of Human Reproduction and Embryology (ESHRE) ART in

Europe, 2015: results generated from European registries by ESHRE /C. De

Geyter, C. Calhaz-Jorge, M.S. Kupka, C. Wyns, E. Mocanu, T. Motrenko, G.

Scaravelli, J. Smeenk, S. Vidakovic, and V. Goossens //Human Reproduction

Open, pp. 1-17, 2020 doi.org/10.1093/hropen/hoz038.

60.Gianaroli, L. Preimplantation diagnosis for aneuploidies in patients undergoing in vitro fertilization with a poor prognosis: identification of the categories for which it should be proposed / Gianaroli L., Magli M.C., Ferraretti A.P. et al. // Fertil Steril. - 1999. - Vol. 5. - P. 837-844.

61.Gianaroli, L. The beneficial effects of preimplantation genetic diagnosis for aneuploidy support extensive clinical application / Gianaroli L., Magli M.C.,

Ferraretti A.P. et al. // Reprod Biomed Online. - 2005. Vol. 10. - P.633-640.

62.Giorgetti, C. Embryo score to predict implantation after in-vitro fertilization: based on 957 single embryo transfers / Giorgetti C., Terriou P., Auquier P. et al. // Hum Reprod. - 1995. - Vol.10. - P.2427-2431.

63.Goossens, V., Diagnostic efficiency, embryonic development and clinical outcome after the biopsy of one or two blastomeres for preimplantation genetic diagnosis / Goossens V., De Rycke M., De Vos A. et al // Hum Reprod. - 2008. - Vol. 23. - P.481-492.

64.Griffin, D.K . Fluorescent in-situ hybridization to interphase nuclei of human preimplantation embryos with X and Y chromosome specific probes / Griffin D.K., Handyside A.H., Penketh R.J. et al. // Hum Reprod. - 1991. -Vol. 6. - P.101-105.

65.Grifo, J.A. Delivery rate using cryopreserved oocytes is comparable to conventional in vitro fertilization using fresh oocytes: potential fertility preservation for female cancer patients / J.A. Grifo, N. Noyes // Fertil Steril. - 2010. - Vol.93. - №2. - P.391-396.

66.Grynberg, M. Fertility preservation: should we reconsider the terminology? / Grynberg M., Sermondade N. // Hum. Reprod. - 2019. - Vol. 34. - №10. -P.1855-1857.

67.Hammoud, I. How viable are zygotes in which the PN are still intact at 25 h? Impact on the choice of embryo for transfer / Hammoud I., Vialard F., Casasnovas P. et al. // Fertil Steril. - 2008. - Vol. 90. - P. 551-556.

68.Handyside, A.H. Birth of a normal girl after in vitro fertilization and preimplantation diagnostic testing for cystic fibrosis / Handyside A.H., Lesko J.G., Tarin J.J. et al. // N Engl J Med. - 1992. - Vol. 13. - P.905-909.

69.Handyside, A.H. Pregnancies from human preimplantation embryos sexed by Y-specific DNA amplification / Handyside A.H., Kontogianni E.H., Hardy K. et al. // Nature - 1990. - Vol. 344. - P. 768-770.

70.Harper, J.C. Preimplantation diagnosis of inherited diseases by embryo biopsy: an update of the world figures / Harper J.C. // J. Assist. Reprod. Genet. -1996. - Vol. 11. - P. 132-143.

71.Hashimoto S, Morimoto N, Yamanaka M, Matsumoto H, Yamochi T, Goto H et al. Quantitative and qualitative changes of mitochondria in human preimplantation embryos / S. Hashimoto, N. Morimoto, M.Yamanaka et al. // J Assist Reprod Genet. - 2017. - Vol. 34. - №5. - P. 573-580.

72.He, H.S. Neonatal outcomes of live births after blastocyst biopsy in preimplantation genetic testing cycles: a follow-up of 1,721 children / He H., Jing S., Fu Lu C., Qiu Tan Y., Li Luo K. et al. // Fertil Steril. - 2019. -Vol.112. - №1. - P.82- 88.

73.Hertig, A. On the preimplantation stages of the human ovum: a description of four normal and four abnormal specimens ranging from the second to the fifth day of development / A.Hertig, , J.Rock, , E Adams et al. // Contrib. Embryol. - 1954. - Vol.35. - P.119-220.

74.Hoffman, D. Cryopreserved embryos in the United States and their availability for research / D.Hoffman, G.Zellman, C. Fair, J.Mayer et al. // Fertil. Steril. - 2003. - Vol.79. - P. 1063-1069.

75.Hunter, J.E. Plasma membrane water permeabilities of human oocytes: the temperature dependence of water movement in individual cells. / J.E. Hunter, A. Bernard, B.J. Fuller et al. // J Cell Physiol. - 1992. - Vol.150. -№1. - P.175-179.

76.Hwang, S.S. Health outcomes for Massachusetts infants after fresh versus frozen embryo transfer / Hwang S.S., Dukhovny D., Gopal D., Cabral H. et al. // Fertil Steril. - 2019. - Vol.112. - №5. - P.900-907.

77.Jesus, A.R. Reproductive success of assisted reproductive technology in couples with chromosomal abnormalities / Jesus A.R., Silva-Soares S., Silva J., Severo M. et al. // J Assist Reprod Genet. - 2019. - Vol.36. - №7. -P.1471-1479.

78.Joaquim, D.C. Risk of contamination of gametes and embryos during cryopreservation and measures to prevent cross-contamination / D.C. Joaquim, E.D. Borges, I.G.R. Viana et al. // Biomed. Res. Int. - 2017. -Vol.10. - P. 1-11.

79.Johnson, M.H. Robert Edwards: the path to IVF / M.H. Johnson // Reprod. BioMed. - 2011. - Vol.23. - №2. - P. 245-262.

80.Kasai, M. Cryopreservation of animal and human embryos by vitrification / M.Kasai, T.Mukaida // Reprod. Biomed. - 2004. - Vol.9. - № 2. - P.164-170.

81.Kieslinger, D.C. Embryo selection using time-lapse analysis (Early Embryo Viability Assessment) in conjunction with standard morphology: a prospective two-center pilot study / D.C.Kieslinger, S.De Gheselle, C.B.Lambalk et al. // Human Reproduction. - 2016. - Vol.31. - №11. - P. 2450-2457.

82.Kovacic, B. Developmental capacity of different morphological types of day 5 human morulae and blastocysts / Kovacic B., Vlaisavljevic V., Reljic M., Cizek-Sajko M. // Reprod Biomed Online. - 2004. - Vol. 8. - P. 687-694.

83.Kuleshova, L. Birth following vitrification of a small number of human oocytes: case report / L. Kuleshova, L. Gianaroli, C. Magli et al. // Human Reproduction. - 1999. - Vol.14. - №12. - P.3077-3079.

84.Kuleshova, L.L. Sugars exert a major influence on the vitrification properties of ethylene glycol-based solutions and have low toxicity to embryos and oocytes / L.L. Kuleshova, D.R. MacFarlane, A.O. Trounson et al. // Cryobiology. - Vol.38. -№2. - P. 119-130

85.Kuwayama, M. Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: the Cryotop method / M. Kuwayama // Theriogenology. - 2007. - Vol.67. - №1. - P. 73-80.

86.Kuwayama, M. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes / M. Kuwayama, G. Vajta, O. Kato et al. // Reprod Biomed Online. - 2005. - Vol.11. - №3. - P.300-308.

87.Lemmen, J.G. Kinetic markers of human embryo quality using time-lapse recordings of IVF/ICSI-fertilized oocytes / Lemmen J.G., Agerholm I., Ziebe S. // Reprod Biomed Online. - 2008. - Vol.17. - P. 385-391.

88.Li, Z. Clinical outcomes following cryopreservation of blastocysts by vitrification or slow freezing: a population-based cohort study / Z. Li, Y.A. Wang, W. Ledger et al. // Hum Reprod. - 2014. - Vol.29. - №12. - P.2794-2801.

89.Liebermann, J. Comparison of vitrification and conventional cryopreservation of day 5 and day 6 blastocysts during clinical application / J.Liebermann, M.J.Tucker// Fertil Steril. - 2006. - Vol.86. - №1. - P.20-26.

90.Loutradi, K.E. Cryopreservation of human embryos by vitrification or slow freezing: a systematic review and meta-analysis / K.E. Loutradi, E.M. Kolibianakis, C.A. Venetis et al. // Fertil Steril. - 2008. - Vol.90. - №1. -P.186-193.

91.Magli, M.C. Atlas on Human Embryology: from oocytes to preimplantation embryos / M.C. Magli et al. // Human reproduction. - 2012. - Vol. 27. - i1p.

92.Magli, M.C. Cryopreservation of biopsied embryos at the blastocyst stage / M.C. Magli, L. Gianaroli, N. Grieco et al. // Hum. Reprod. - 2006. - Vol. 21. - №10. - P. 2656-2660.

93.Magli, M.C. Impact of blastomere biopsy and cryopreservation techniques on human embryo viability / Magli M.C., Gianaroli L., Fortini D. et al. // Hum Reprod. - 1999. - Vol.14. - P. 770-773.

94. Mascarenhas MN, Flaxman SR, Boerma T, Vanderpoel S, Stevens GA. National, regional, and global trends in infertility prevalence since 1990: a systematic analysis of 277 health surveys. Plos One. 2012;9(12):e1001356. doi: 10.1371/journal.pmed.1001356.

95.Mazur, P. Cryobiology: the freezing of biological systems / P. Mazur // Science. -1970.- Vol.168. - № 3934. - P.939-949

96.Mazur, P. Principles of cryobiology / P.Mazur, B.Fuller, N.Lane et al. // Life in Frozen State. - CRC Press. NY, USA. - 2004. - P.3-67.

97.Mazur, P. Survival of mouse embryos frozen to -196°C and -269°C / P.Mazur, D.G.Whittingham, S.P.Leibo, // Science. - 1972. - Vol.178. -№4059. - P. 411-414.

98.McArthur, S.J. Blastocyst trophectoderm biopsy and preimplantation genetic diagnosis for familial monogenic disorders and chromosomal translocations / McArthur S.J., Leigh D., Marshall J.T. et al. // Prenat.Diagn. - 2008. -Vol. 5. - P.434-442.

99.McArthur, S.J. Pregnancies and live births after trophectoderm biopsy and preimplantation genetic testing of human blastocysts / McArthur S.J., Leigh D., Marshall J.T. et al. // Fertil Steril. - 2005. - Vol. 6. - P.1628-1636.

100. Modlinski, J. A method for visualizing the chromosomes of the 2nd Polar body of the mouse egg / Modlinski J. and Mclaren A. // J Embryol Exp Morphol. - 1980. - Vol. 60. - P. 93-97.

101. Monk, M. Sexing of preimplantation mouse embryos by measurement of X-linked gene dosage in a single blastomere / Monk M., Handyside A.H. // J Reprod Fertil. - 1988. - Vol. 82. - P.365-368.

102. Mukaida, T. Vitrification of oocytes, embryos and blastocysts / T. Mukaida, C.Oka // Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. - 2012. - Vol. 26. - №6. - P.789-803

103. Mullen, S.F. The science of cryobiology / S.F. Mullen, J.K. Critser // Cancer Treat Res. - 2007. - Vol.138. - P. 83-109.

104. Munne, S. Improved implantation after preimplantation genetic diagnosis of aneuploidy / Munne S., Sandalinas M., Escudero T. et al. // Reprod Biomed Online. - 2003. - Vol. 7. - № 1. - P.91-97.

105. Munne, S. Outcome of preimplantation genetic diagnosis of translocations / Munne S., Sandalinas M., Escudero T. et al // Fertil Steril. -2000. - Vol. 73 - №6. - P.1209-1218.

106. Munne, S. Positive outcome after preimplantation diagnosis of aneuploidy in human embryos / S.Munne, C.Magli, Cohen J. et al. // Hum Reprod. - 1999. - Vol. 14. - P.2191-2199.

107. Munne, S. Preimplantation genetic analysis of translocations: case-specific probes for interphase cell analysis / Munne S., Fung J., Cassel M.J. et al. // Hum Genet. - 1998. - Vol. 6. - P.663-674.

108. Nakagata, N. Cryopreservation of mouse spermatozoa / N.Nakagata // Mamm Genome. - 2000. - Vol.11. - P.572-576.

109. Niakan, K.K. Human pre-implantation embryo development. / K.K.Niakan, J.Han, R.A. Pedersen et al. // Development. - 2012. - Vol.139.

- P.829-841.

110. Oktay, K. Efficiency of oocyte cryopreservation: a meta-analysis / K. Oktay, A.P. Cil, H.Bang // Fertil Steril. - 2006. - Vol. 86. - №1. - P.70-80.

111. Palermo, G. Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte / G.Palermo, H.Joris, P.Devroey et al. // Lancet. - 1992. - Vol.340. - P.17-18.

112. Patrat, C. Optimal timing for oocyte denudation and intracytoplasmic

sperm injection / C. Patrat, A. Kaffel, L. Delaroche et al. // Obstet. Gynecol.

- 2012. - Vol.5 - P. 18-25.

113. Paulson, R.J. Outcome of in vitro fertilization cycles with preimplantation genetic testing for aneuploidies: let's be honest with one another / Paulson R.J. // Fertil Steril. - 2019. - Vol.112. - №6. - P.1013-1014.

114. Paynter, S.J. Permeability characteristics of human oocytes in the presence of the cryoprotectant dimethylsulphoxide. / S.J. Paynter, A. Cooper, L.Gregory et al. // Hum Reprod. - 1999. - Vol.14. - №9. - P.2338-2342.

115. Pegg, D. In memoriam Peter Mazur-cryobiologist / D. Pegg, F. Kleinhans // Cryobiology. - 2016. - Vol.72. - №2. - P.83-85.

116. Pegg, D.E. The history and principles of cryopreservation / D.E. Pegg // Semin. Reprod. Med. - 2002. - Vol.20. - №1. - P. 5-13.

117. Pickering, S.J. The influence of cooling on the organization of the meiotic spindle of the mouse oocyte / S.J. Pickering, M.H.Johnson // Hum Reprod. - 1987. - Vol.2. - №3. - P.207-216.

118. Pickering, S.J. Transient cooling to room-temperature can cause irreversible disruption of the meiotic spindle in the human oocyte / S.J. Pickering, P.R. Braude, M.H. Johnson et al. // Fertil Steril. - 1990. - Vol.54.

- №1. - P.102-108.

119. Porcu, E. Birth of a healthy female after intracytoplasmic sperm injection of cryopreserved human oocytes / E. Porcu, R. Fabbri, R. Seracchioli et al. // Fertil Steril. - 1997. - Vol.68. - №4. - P.724-726.

120. Puga-Torres,T. Blastocyst classification systems used in Latin America: is a consensus possible? / T.Puga-Torres, X.Blum-Rojas, M.Blum-Narvaez // JBRA Assisted Reproduction. - 2017. - Vol.21. - №3. - P.222-229.

121. Racowsky, C. Standardization of grading embryo morphology / C.Racowsky, M.Vernon, J.Mayer et al. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. - 2010. - Vol.27. - P. 437-439.

122. Rienzi, L. Embryo development of fresh 'versus' vitrified metaphase II oocytes after ICSI: a prospective randomized sibling-oocyte study / L. Rienzi, S. Romano, L. Albricci et al. // HumReprod. - 2010. - Vol.2. - №5.

- P.66-73.

123. Rienzi, L. Oocyte, embryo and blastocyst cryopreservation in ART: systematic review and meta-analysis comparing slow-freezing versus vitrification to produce evidence for the development of global guidance / L. Rienzi, C. Gracia, R. Maggiulli et al. // Hum Reprod Update. - 2017. -Vol.23. - №2. - P. 139-155.

124. Roque, M. Freeze-all policy: is it time for that? / Roque M. // J. Assist Reprod Genet. - 2015. - Vol. 32. - P. 171-176.

125. Sacchi, M. Preimplantation Genetic Testing for Aneuploidy Improves Clinical, Gestational, and Neonatal Outcomes in Advanced Maternal Age

Patients Without Compromising Cumulative Live-Birth Rate / Sacchi M. , Albani E., Cesana A., Smeraldi A. et al. // J Assist Reprod Genet. - 2019. -Vol.36. - №12. - P.2493-2504.

126. Saraeva, N.V. Experience of using time lapse microscopy in the IVF program in patients with good ovarian reserve / N.V. Saraeva, N.V. Spiridonova, M.T. Tugushev, O.V. Shurygina, S.I. Arabadzhyan, O.V. Ivanova // Text : direct // Gynecological Endocrinology. - Volume 35, Published online: 18 Sep 2019. - Issue supl : Implantation - Molecular, Biological and Clinical Aspects - P. 15-17. - URL: https://www.tandfonline.com/doi/full/10.1080/09513590.2019.1632090

127. Saragusty J, Arav A. Current progress in oocyte and embryo cryopreservation by slow freezing and vitrification / J. Saragusty, A. Arav // Reproduction. - 2011. - Vol. 141. - №1. - P.1-19.

128. Scaravelli, G.P. Contribution of cryopreservation to the cumulative live birth rate: a large multicentric cycle-based data analysis from the Italian National Registry / Scaravelli G., Levi-Setti P. E., Livi C., La Sala G. et al. // J Assist Reprod Genet. - 2019. -Vol.36. - №11. - P.2287-2295.

129. Schoolcraft, W.B. Clinical application of comprehensive chromosomal screening at the blastocyst stage / Schoolcraft W.B., Fragouli E., Stevens J. et al. // Fertil Steril. - 2010. - Vol. 94. - №5. - P. 1700-1706.

130. Sciorio, R. Cryopreservation of human embryos and oocytes for fertility preservation in cancer and non cancer patients: a mini review / R. Sciorio // Gynecol Endocrinol. - 2020. - №1. - P.1-8.

131. Sciorio, R. Single blastocyst transfer (SET) and pregnancy outcome of day 5 and day 6 human blastocysts vitrified using a closed device / R.Sciorio, K.J.Thong, S.J.Pickering // Cryobiology. - 2018. - Vol.84. -P.40-45

132. Scott Jr., R.T. Cleavage-stage biopsy significantly impairs human embryonic implantation potential while blastocyst biopsy does not: a

randomized and paired clinical trial / Scott Jr. R.T., Upham K.M., Forman E.J. et al. // Fertil Steril. - 2013. - Vol.100. - P.624-630.

133. Scott, R.T. Jr. Comprehensive chromosome screening is highly predictive of the reproductive potential of human embryos: a prospective, blinded, nonselection study / R.T. Scott Jr., K. Ferry, J. Su et al. // Fertil. Steril. - 2012. - Vol. 97. - №4. - P. 870-875.

134. Shafei, R.A. Blastocyst hatching in humans / R.A.Shafei, A.G. Syrkasheva, A.Yu Romanov, N.P. Makarova et al.// Russian Journal of Developmental Biology. - 2017. - Vol. 48. - № 1. - P.5-15.

135. Shapiro, B.S. Evidence of impaired endometrial receptivity after ovarian stimulation for in vitro fertilization: a prospective randomized trial comparing fresh and frozen-thawed embryo transfer in high responders / Shapiro B.S., Daneshmand S.T., Garner F.C.. et al. // Fertil Steril. - 2011. -Vol. 96. - P. 516-518.

136. Sherman, J.K. Improved methods of preservation of human spermatozoa by freezing and freeze-drying / J.K. Sherman // Fertil. Steril. -1963. Vol.14. - P. 49-64.

137. Shinar, S. Timing embryo biopsy for PGD - before or after cryopreservation? / Shinar S., Kornecki N., Schwartz T., Mey-Raz N. et al. Gynecol Endocrinol. - 2016. - Vol. 32. - №9. - P.1-3.

138. Shurygina, O.V. Assessment of survival of vitrified embryos depending on the stage of development / O.V. Shurygina, S.Z. Yuldasheva, O.V. Ivanova, N.N. Demidova // Journal of Biomimetrics, Biomaterials and Biomedical Engineering. - Volume 45, 4th issue, Published online: Jun 2020. - Paper ID. 22-27.

139. Suwinska, A. Early mammalian development: from basic research to the clinic / A. Suwinska, A.Ajduk // Int J Dev Biol. - 2019. - Vol.63. - №4. - P.73-75.

140. Sztein, J.M. History of cryobiology, with special emphasis in evolution of mouse sperm cryopreservation / J.M. Sztein, T.Takeo, N.Nakagata // Cryobiology. - 2018. - Vol.82. - P. 57-63.

141. Terminologia embryologica Международные термины по эмбриологии

человека с официальным списком русских эквивалентов / под ред. Л.Л.

Колесникова, Н.Н. Шевлюка, Л.М.Ерофеевой Российская

эмбриологическая номенклатурная комис. // Москва: ГЭОТАР-Медиа,

2014- - XIII, [1], 417 с. : табл.; 30 см.; ISBN 978-5-9704-3080-4

142. Terminologia histologica. Международные термины по цитологии и гистологии человека с официальным списком русских эквивалентов под ред. В. В. Банина, В. Л. Быкова ; Federative international committee on anatomical terminology (FICAT)/ Российская гистологическая номенклатурная комис., Российское мед. науч. о-во анатомов, гистологов и эмбриологов // Москва: ГЭОТАР-Медиа, 2009.

- 272 с.: табл.; 29 см.; ISBN 978-5-9704-1443-9

143. The Istanbul consensus workshop on embryo assessment: proceedings of an expert meeting. Alpha Scientists in Reproductive Medicine and ESHRE Special Interest Group of Embryology // Human Reproduction. -2011. - Vol. 26. - №6. - P.1270-1280.

144. The Vienna consensus: report of an expert meeting on the development of ART Laboratory perfomans indicators, ESHRE Special Interest Group of embryology and Alpha Scientists in Reproductive Medicine //Reproductive BioMedicine Online. - 2017. - Vol. 35. - P. 494 -510.

145. Van Royen E. Characterization of a top quality embryo, a step towards single-embryo transfer / Van Royen E., Mangelschots K., De Neubourg D. et al. // Hum Reprod. - 1999. - Vol. 14. - P. 2345-2349.

146. van Uem, J.F. Birth after cryopreservation of unfertilized oocytes / J.F.van Uem, E.R. Siebzehnrubl, B. Schuh et al. // Lancet. - 1987. - Vol.28.

- P. 752-753.

147. Verlinsky Y, Kuliev A (2005) PGD and it role in ART. In: Brisden P (ed) Textbook of IVF and assisted preproduction. Parthenon Publishing Group, London

148. Verlinsky, Y, An Atlas of Preimplantation Genetic Diagnosis / Verlinsky Y, Kuliev A. // New York: The Parthenon Publishing Group. -2000. 174 p.

149. Verlinsky, Y. Preimplantation diagnosis of common aneuploidies by the first- and secondpolar body FISH analysis / Verlinsky Y., Cieslak J., Ivakhnenko V. et al., // J. Assist. Reprod. Genet. - 1998. - Vol. 15. - P. 285-289.

150. Verlinsky, Y. Analysis of the first polar body: preconception genetic diagnosis / Verlinsky Y., Ginsberg, N., Lifchez, A., et al. // Hum. Reprod. -1990. - Vol. 5. - P. 826-829.

151. Verlinsky, Y. Pregnancies following pre-conception diagnosis of common aneuploidies by fluorescent in-situ hybridization / Verlinsky Y., Cieslak J., Freidine M. et al. // Hum Reprod. - 1995. - Vol.10. - №7. -P.1923-1927.

152. Verlinsky, Y. Preimplantation testing for chromosomal disorders improves reproductive outcome of poor-prognosis patients / Verlinsky Y., Tur-Kaspa I., Cieslak J. et al. // Reprod Biomed . - 2005. - Vol. 11. - №2. -P. 219-225.

153. Vinals Gonzalez, X. Euploid blastocysts implant irrespective of their morphology after NGS-(PGT-A) testing in advanced maternal age patients / Vinals Gonzalez X., Odia R., Naja R., Serhal P. et al. // J Assist Reprod Genet. - 2019. - Vol.36. - №8. - P.1623-1629.

154. _Vincent, C. Solvent effects on cytoskeletal organization and in-vivo survival after freezing of rabbit oocytes / C. Vincent, V. Garnier, Y. Heyman et al. // J Reprod Fertil. - 1989. - Vol.87. - №2. - P.809-820.

155. Vincent, C. The hardening effect dimethylsulphoxide on the mouse zona pellucida requires the presence an oocyte and is associated with a

reduction in the number cortical granules present / C.Vincent, S.J. Pickering, M.H.Johnson // J.Reprod Fertil. - 1990. - Vol.89. - №1. - P.253-259.

156. Wilmut, I. Experiments on the low temperature preservation of cow embryos / I.Wilmut, L.E.Rowson // Veterinary Record. - 1973. - Vol. 92. -№26. - P. 686-690.

157. Wilmut, I. The effect of cooling rate, warming rate, cryoprotective agent and stage of development of survival of mouse embryos during freezing and thawing / I. Wilmut // Life Sciences 2: Biochemistry, General and Molecular Biology. - 1972. - Vol.11. - №22. - P.1071-1079.

158. Wong, K.M. Fresh versus frozen embryo transfers in assisted reproduction. Cochrane database / Wong, K.M, Van Wely M., Mol F, et al. // Syst rev. - 2017. - Vol.3. - P. ;3:cd011184.

159. Wong,C. (2010). Non-invasive imaging of human embryos before embryonic genome activation predicts development to the blastocyst stage / C.Wong, K.Loewke, N.Bossert et.al. // Nat. Biotechnol. - 2010. - Vol.28. -P.1115-1121.

160. Yang, X. Association between the number of oocytes retrieved and neonatal outcomes after freeze-all IVF cycles / Yang X., Zhang J., Wu J. et al. // Hum. Reprod. - 2019. - Vol.34. -№10. - P.1937-1947.

161. Zech, N. Vitrification of hatching and hatched human blastocysts: effect of an opening in the zona pellucida before vitrification / Zech N., Lejeune B., Vanderzwalmen P. // Reprod Biomed Online. - 2005. - Vol.11.

- P.355-361.

162. Zegers-Hochschild, F. International Committee for Monitoring Assisted Reproductive Technology (ICMART) and the World Health Organization (WHO) revised glossary of ART terminology / Zegers-Hochschild F., Adamson G.D., de Mouzon J. et al. // Human Reproduction.

- 2009. - Vol.24. - №11. - P. 2683-2687.

163. Zhang, W.Y. Maternal and neonatal outcomes associated with trophectoderm biopsy / Zhang W.Y., von Versen-Höynck F., Kapphahn K.I.,

Fleischmann R.R. et al. // Fertil Steril. - 2019. - Vol.112. - №2. - P.283-290.

164. Ziebe, S. Embryo morphology or cleavage stage: how to select the best embryos for transfer after in-vitro fertilization / Ziebe S., Petersen K., Lindenberg S. et al. // Hum Reprod. - 1997. - Vol.12. - P. 1545-1549.