Морфофункциональные показатели и этиологическая структура возбудителей сальмонеллеза птиц в республике Вьетнам тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.01, кандидат наук Фан Ван Кхай

• Фан Ван Кхай
• кандидат наук
• 2021

Оглавление диссертации кандидат наук Фан Ван Кхай

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Циркуляция сальмонелл в природе, источники и факторы передачи возбудителей сальмонеллеза

1.2. Чувствительность сальмонелл к антибактериальным препаратам

1.3. Влияние антибактериальных препаратов на формирование биопленок и популяционную изменчивость микроорганизмов

1.4. Дифференциальная диагностика сальмонеллеза птиц

1.5. Организация мероприятий по борьбе и профилактике сальмонеллеза

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

2.1. Объект и материалы исследований

2.2. Эпизоотологические методы исследований

2.3. Клинические и морфологические методы исследований

2.4. Бактериологические методы исследований

2.5. Методы статической обработки результатов исследований

Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Результаты эпизоотологических исследований

3.2. Результаты исследований особенностей течения сальмонеллеза птиц

3.3. Результаты исследований динамики развития патологических процессов при диссеминации сальмонелл в ткани и органы птиц

3.4. Этиологическая структура возбудителей сальмонеллеза птиц

3.4.1. Индикация и идентификация возбудителей сальмонеллеза птиц

3.4.2. Результаты серологической идентификации Salmonella spp

3.4.3. Серологическая идентификация и патогенные свойства изолятов Salmonella spp., выделенных при контаминации пищевого сырья

3.5. Результаты исследований влияния антибактериальных и дезинфицирующих препаратов на формирование биопленок сальмонелл

3.5.1. Результаты изучения чувствительности к антибактериальным препаратам изолятов Salmonella spp., выделенных из патматериала птиц

3.5.2. Морфометрические и денситометрические показатели биопленок сальмонелл при воздействии антибактериальных и дезинфицирующих препаратов

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфофункциональные показатели и этиологическая структура возбудителей сальмонеллеза птиц в республике Вьетнам»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. «При содержании на ограниченных площадях, искусственный микроклимат, поточная система выращивания птицы обусловливают развитие и распространение инфекционных болезней, частота регистрации сальмонеллезов может достигать 45,6-94,3 %» [Бессарабов Б. Ф. и др., 2007; Ленев С. В., 2016; Пименов Н. В., 2017, 2019; Пирожков М. К. и др., 2017; Джавадов Э. Д., 2020; Кузьмин В. А., 2020; Сухинин А. А., 2020].

Совокупность процессов циркуляции и резервации микроорганизмов в почвенных и водных биоценозах является экологической основой возникновения энзоотий, а также формирования очагов и распространения возбудителей инфекционных заболеваний на новые территории или акватории [Макаров В. В., 2017].

Контаминация бактериями Salmonella spp. пищевого сырья достигает 8,369,7 % [Ленченко Е.М., 2017; Прунтова О.В., Шадрова Н.Б., 2017; Козак С.С. и др., 2018; Чугунова Е.О., 2020]. Тенденция статистически достоверного возрастания эпидемиологических показателей распространения сальмонеллезов наблюдается во всем мире [WHO, 2019, 2020]. В республике Вьетнам заболеваемость сальмонеллезом в 2019 г. составила 2,06 на 100 тыс. населения, а за аналогичный период 2020 года - 2,53 [«Ministry of health Vietnam», 2020]. Методические руководства по вопросам внедрения и соблюдения норм гигиены и безопасности продукции птицеводства в мелких и средних инкубаторах и племенных птицеводческих хозяйствах в республике не разработаны в соответствии с программой «Food and Agriculture Organization of the United Nations» (http://http://www.fao.org/home/en/2020; дата обращения 11.01.2021].

Степень разработанности темы. При воздействии химиотерапевтических и дезинфицирующих препаратов наблюдается селекция антибиотикорезистентных штаммов [Субботин В. В. и др., 2017; Плешакова В. И. и др., 2018; Ирза В. Н., 2019; Забровская А. В., 2019; Пименов Н. В. и др., 2019; Пронин В. В. и др., 2019; Карташова О. Л. и др., 2020; Lenchenko E. M., Vatnikov Yu. A. et al., 2019, 2020]. Патогенез синдрома избыточного роста микроорганизмов обеспечивается

наличием различных диссоциативных вариантов, дисперсией некультивируемых клеток бактерий, получающих преимущества при гиперагрегации архитектоники гетерогенных биопленок [Ленченко Е. М. и др., 2014, 2017; Kim J. H. et al., 2018; Macklaffey R. et al., 2020]. Для разработки эффективных диагностических и противоэпизоотических мероприятий приоритетным направлением научных изысканий является исследование этиологической структуры возбудителей и морфофункциональных закономерностей развития инфекционного процесса при диссеминации сальмонелл в ткани и органы птиц, что и обусловило актуальность темы диссертационной работы.

Цель исследований - изучить особенности течения и динамику изменений морфофункциональных показателей, этиологическую структуру возбудителей при сальмонеллезе птиц в республике Вьетнам

Задачи исследований:

1) изучить динамику развития патологических процессов при диссеминации сальмонелл в ткани и органы птиц;

2) изучить напряженность эпизоотического процесса, факторы риска распространения сальмонеллеза птиц в республике Вьетнам;

3) изучить этиологическую структуру возбудителей сальмонеллеза птиц, выделенных из репрезентативной выборки птицеводческих объектов;

4) оценить профили резистентности сальмонелл, изолированных из патматериала птиц;

5) изучить влияние антибактериальных и дезинфицирующих препаратов на формирование биопленок сальмонелл.

Научная новизна. В птицеводческих хозяйствах Вьетнама этиологическая структура возбудителей сальмонеллеза цыплят представлена S. albany - 67,69 %, S. typhimurium - 13,08 %, S. enteritidis - 7,69 %, S. agona - 4,62 %, S. hadar -3,08 %, S. schalkwijk - 1,54 %, S. derby - 0,77 %, другие серовары - 1,54 %; сальмонеллеза перепелов - S. enteritidis - 29,63 % штаммов, S. thompson -18,52 %, S. typhimurium - 14,81 %, S. heidelberg - 11,11 %, S. hadar и S. agona -7,41 %, S. mbandaka и S. havana - 3,70 %, другие серовары - 3,70 %;

сальмонеллеза утят: S. typhimurium - 68,92 % штамма, S. enteritidis - 9,46 %, S. hadar - 6,76 %, S. indiana - 5,41 %, S. give и S. mbandaka - 2,70 %, другие серовары

- 4,05 %. Исследование гетерогенной структуры популяции, без нарушения естественной архитектоники биопленок сальмонелл, а также при воздействии антибактериальных и дезинфицирующих препаратов выявило прямые коррелятивные зависимости (r = 0,89) между морфометрическими (>90 % поля зрения) и денситометрическими показателями (ODs). При сальмонеллезе птиц наблюдается повышение количества эозинофилов, псевдоэозинофилов, лимфоцитов, моноцитов; снижение общего белка; глюкозы; повышение мочевины, аспартатаминотрансферазы, щелочной фосфатазы; содержания калия; натрия; магния; снижение фагоцитарной активности лейкоцитов, лизоцимной и бактерицидной активности сыворотки крови птиц.

Теоретическая и практическая значимость работы. Апробирован алгоритм определения профилей чувствительности к антибиотикам, установлена резистентность к препаратам группы у#-лактамов; аминогликозидов; сульфаниламидов; тетрациклинов изолятов: S. typhimurium - 60,91 %, S. enteritidis

- 61,33 %, S. hadar - 58,0 %, S. albany - 56,0 %, S. agona - 53,33 %, выделенных из патматериала птиц. Апробированы и подобраны эффективные способы исследований биопленок сальмонелл при воздействии антибактериальных и дезинфицирующих препаратов. Результаты этиологической структуры возбудителей и динамики изменений морфофункциональных показателей расширяют теоретические познания общей и частной патологии птиц для усовершенствования диагностических и противоэпизоотических мероприятий.

Методология и методы исследования. Методологические подходы основаны на анализе результатов репрезентативных выборок птицеводческих объектов, соблюдая принципы рандомизации, учитывали критерии, имеющие эпизоотологическое значение, временные и географические границы распространения сальмонеллеза птиц. С применением многоуровневых алгоритмов диагностики выявляли динамику изменений гематологических, биохимических и иммунологических показателей при сальмонеллезе птиц.

Степень достоверности. Результаты работы были получены при использовании сертифицированного оборудования и приборов, прошедших поверку средств измерений, согласно ГОСТ 8.513-84, и определяются достаточным количеством проведенных исследований. Микробиологические исследования биоматериала проводились на базе лицензированной и аккредитованной лаборатории. Полученные экспериментальные данные определяются достаточным количеством проведенных микробиологических и клинических исследований на большой выборке животных. Результаты исследований обработаны методом статистического анализа.

Апробация материалов диссертации. Основные результаты диссертационной работы доложены и одобрены на заседаниях департамента ветеринарной медицины Аграрно-тхнологического института, ФГАОУ ВО «РУДН» (2016-2019); Международной научно-практической конференции «Теоретические и прикладные проблемы современной науки и образования» ФГБОУ ВО «МГУПП», Москва (2017); XII Международной научно-практической конференции «Актуальные вопросы в науке и практике», Москва (2018); Национальная научно-практическая конференция преподавателей, аспирантов и студентов: «Диагностика, терапия и профилактика заразных болезней животных опасных для здоровья человека» ФГБОУ ВО «МГУПП», Москва (2020).

Публикация результатов исследований. По материалам диссертационной работы опубликовано 8 научных работ, в т. ч. 3 в журналах, рекомендованных Scopus, 4 - в журналах, рекомендованных ВАК Минобрнауки РФ.

Личный вклад автора. Диссертационная работа выполнена автором самостоятельно. Автору принадлежат организация и непосредственное осуществление эпизоотологических, микробиологических, клинических, морфологических, гематологических исследований; апробация алгоритма определения профилей чувствительности к антибиотикам изолятов Salmonella spp., выделенных из патматериала птиц; апробация и подбор эффективных способов исследований биопленок сальмонелл при воздействии

антибактериальных и дезинфицирующих препаратов; анализ результатов исследований и обработка полученных данных.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследований, результатов собственных исследований, обсуждения результатов, выводов, библиографии, приложений; изложена на 166 страницах компьютерного текста, содержит 28 таблиц, 23 рисунков. Библиографический список включает 219 источников, из них 70 -иностранных авторов.

Основные положения, выносимые на защиту:

- результаты изучения морфофункциональных показателей, этиологической структуры возбудителей, факторов риска, временных и географических границ распространения сальмонеллеза птиц в республике Вьетнам;

- результаты изучения профилей антибиотикорезистентности изолятов, влияния антибактериальных и дезинфицирующих препаратов на формирование биопленок сальмонелл;

- оценка эффективности диагностических и противоэпизоотических мероприятий, направленных на предупреждение распространения возбудителей сальмонеллеза среди восприимчивых видов, объектов внешней среды, пищевого сырья.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Циркуляция сальмонелл в природе, источники и факторы передачи

возбудителей сальмонеллеза

При промышленном содержании птиц наблюдается снижение показателей естественной резистентности организма, нарушение состава эволюционно-сложившихся микробиоценозов кожи и слизистых оболочек полостных органов дыхательной, пищеварительной и мочеполовой системы сопровождается увеличением числа и спектра патогенных микроорганизмов, что способствует распространению инфекционной патологии [Салимов В. А., 2016; Шкиль Н. Н. и др., 2011]. Ретроспективный анализ с 1982 года выявил функционирование 51 паразитарной системы 11 нозологических единиц заразной патологии, по количеству эпизоотических очагов и заболевших животных доминирующим является, в том числе, и сальмонеллез птиц [Сочнев В. В. и др., 2020].

Популяция птицы является носителем возбудителей микоплазмоза, колибактериоза, пастереллеза, псевдомоноза, пуллороза, сальмонеллеза, стафилококкоза, болезни Ньюкасла, аспергиллеза [Журавлев Д. А. и др., 2007]. Из числа энтеробактерий, выделенных из патматериала птиц, доминирующими видами являлись Escherichia coli - 46,0 %, Proteus vulgaris - 12,0 %, Citrobacter freundii - 5,5 %, S. enteritidis - 3,0 %. Культуры Escherichia coli, Proteus vulgaris, Citrobacter freundii изолированы из сердца, легких и печени, Klebsiella pneumoniae выделяли из легких и носового экссудата, что свидетельствует о распространенности инфекционного процесса, вызываемого указанными возбудителями у птиц [Сухинин А. А. и др., 2007].

«Сероварианты Salmonella Enteritidis и Salmonella Typhimurium являются доминирующими возбудителями у птиц разных видов, в т.ч. птиц промышленного содержания: кур (S. Enteritidis 31,2-51,2 %, S. Typhimurium 9,528,2 %; доля S. Gallinarum pullorum 21,0-38,4 %, в основном, приходится на

эмбриональную смертность и заболеваемость цыплят первой недели жизни), уток, гусей и других водоплавающих птиц (S. Typhimurium 97,7 %, S. Enteritidis 0,8 %), перепелов, индеек, фазанов (S. Typhimurium 87,5 %, S. Enteritidis 3,8 %)» [Пименов Н. В., 2012].

В Узбекистане с 2012 г. удельный вес S. Enteritidis постепенно возрастал и к концу наблюдения почти сравнялся с лидирующим ранее сероваром S. Typhimurium, 42,0 % и 39,5 %, соответственно. По г. Ташкенту смена сероваров происходила более интенсивно: 2012 г. регистрировали повышение частоты встречаемости S. Enteritidis с 18,0 % до 39,0 %. К 2017 г. этот серовар изолировали от больных с ОКИ в три раза чаще, чем S. Typhimurium, 60,5 % и 19,2 %, соответственно. Изоляты S. Enteritidis (80,0) -100,0 % штаммов S. Enteritidis были чувствительны к цефтриаксон-сульбактаму, имипенему, меропенему, ципрофлоксацину, нетилмицину, доксициклину и хлорамфениколу. К эртапенему и азтреонаму более половины изученных изолятов были резистентными [Алматов Б. И. и др., 2018].

Микроорганизмы S. Enteritidis, изолированные из проб мяса птицы, были чувствительны (100,0 %) к ципрофлоксацину и цефтриаксону. Отмечали высокую устойчивость (100,0 %) к амоксициллину, тикарциллину / клавуланату, гентамицину, цефтазидиму, цефепиму, ампициллину и доксициклину - 80,0 % [Зенкина О. А., 2019]. При исследовании 200 различных образцов из 7 птицефабрик серовариант S. Enteritidis выявлен в 54 образцах, S. Typhimurium 33 образцах, а серовариант S. Infantis в 32 образцах. Среди популяции птиц циркулируют S. Enteritidis - 85,0 %, S. Typhimurium - 12,0 %, S. Infantis - 10,0 % и другие - 6,0 % [Семина А. Н., 2019].

Этиологическая структура сальмонеллеза кур в Дагестане представлена S. Enteritidis - 71,3 % от общего количества исследованных проб, S. Gallinarum -22,2 %; S. Pullorum - 6,5 % [Цахаева Р. и др., 2020]. «Куры родительского стада и цыплята-бройлеры кроссов «Ross 308» и «Hubbard F-15» трех птицефабрик характеризовались низким уровнем инфицированности птицы сальмонеллами -менее 5,0 % по клоакальным смывам и отсутствие, выделения сальмонелл из

пищевой продукции. Две птицефабрики отличались высоким уровнем инфицированности сальмонеллами - инфицированность птицы по клоакальным смывам более 10,0 % и выделение изолятов сальмонелл из пищевой продукции. Птицефабрики с низким уровнем инфицированности сальмонеллами характеризовались наличием Lactobacterium reuteri в качестве компонента микрофлоры кишечника и обладали более высокой антагонистической активностью в отношении большего числа культур сальмонелл - отношение рисков (OR - 17,33, CI 95% = 5,990-50,077)» [Афонюшкин В. Н. и др., 2020]

При экспериментальном воспроизведении инфекционного процесса цыплят кросса «Хайсекс Браун», 2 сут. (n = 300) внутрибрюшинное введение S. Enteritidis в концентрации 150 млн. К0Е/05 мл. Антибактериальные препараты перорально в течение 5 суток в концентрации 200 мг/л воды. За период нааблюдений (20 суток после заражения) ципрофлоксацин задерживал развитие сальмонелл в концентрациях 0,01-0,25 мкг/мл, энрофлоксацин - 0,04-0,1 мкг/мл. МПК пефлоксацина составила 0,16-0,32 мкг/мл, МПК доксициклина - 0,32-1,25 мкг/мл. Терапевтический эффект при применении энрофлоксацина - 92,0 %, пефлоксацина - 76,0 % [Скворцов В. Н. и др., 2019].

«При исследовании 503 образцов продукции птицеводства выделено 42 изолята микроорганизмов рода Salmonella, что составило 8,35 % от числа исследованных проб. Изучение чувствительности к препаратам показало, что 42,0 % изолятов были резистентны к препаратам тетрациклинового ряда и лишь 5,0-16,0 % - к антибиотикам II поколения фторхинолонов (ципрофлоксацин, норфлоксацин) и III поколения цефалоспоринов (цефотаксим, цефокситин, цефтриаксон). Выявлено изменение чувствительности в сторону резистентности к цефепиму, ципрофлоксацину и амоксициллину у вторичных изолятов S. virhow» [Тимофеева М. А. и др., 2019].

«При исследовании 1204 образцов сырья животного происхождения выделено 45 изолятов Salmonella spp. Наибольшее количество изолятов сальмонелл (56,0 %) было выделено из мяса птицы. Изоляты сальмонелл относились к серогруппам О7, О9, О5, О4. Частота выделения сальмонелл группы

В составила 8,9 %, группы С - 51,1 %, группы Д - 40,0 %. Среди сальмонелл группы В чаще встречались S. derby (4,4 %) и S. typhimurium (2,2 %); группы С -S. infantis (29,0 %), S. virchow (17,8 %); группы Д - S. enteritidis (40,0 %). Отмечены единичные случаи выявления S. reading (2,2 %) и S. оranienburg (4,4 %). Изоляты проявили чувствительность к ципрофлоксацину, левомицетину, амоксициллину, амикацину, азитромицину, меропенему, гентамицину, цефтриаксону, канамицину; были менее чувствительны к цефотаксиму, ампициллину, левофлоксацину и слабочувствительны к налидиксовой кислоте, доксициклину, стрептомицину, тетрациклину. Проявление полирезистентности характерно для 44,4 % выделенных изолятов» [Шмайхель С.Е. и др., 2019].

Эпидемиологическое распределение сальмонелл на территории Сингапура в период 2012-2016 гг. S. enteritidis являлся преобладающим сероваром, выделенным из изолятов курицы и продуктов переработки - 28,5 %, яиц и яичных продуктов - 61,5 %. S. typhimurium (35,2 %) и S. derby (18,8 %) преобладали в пробах свинины, S. weltevreden -морепродуктов (19,2 %) [Aung K.T. et al., 2020].

В 2017 году на территории Мексики количество зарегистрированных случаев вспышек сальмонеллёза, вызванного S. Enterica, было в 2,7 раз выше, чем количество зарегистрированных случаев S. typhi и S. paratyphi A. Заболеваемость сальмоннелёзом была выше в регионах Мексики с более низким социально-экономическим статусом. В 2017 году оценочная частота случаев пищевых отравлений, вызванных S. enterica в 49,0 раз выше, по сравнению с S. typhi и S. paratyphi A. Наиболее часто выявляющимся сероваром сальмонелл в пробах мяса являлся S. enterica (60,7-67,6 %), характеризующимся множественной лекарственной устойчивостью. Серовар S. Typhimurium наиболее часто выделяли из проб продуктов питания (52,1-53,0 %) [Godinez-Oviedo A. et al., 2020]. При идентификации микроорганизмов из проб feces цыплят-бройлеров в Канаде, частота встречаемости S. Heidelberg составила 23,5 % при средней бактериальной концентрации 3,579 log КОЕ/г. Вакцинирование цыплят-бройлеров существенно снизило концентрацию бактерий перед убоем [Collineau L. et al., 2020].

В РФ и странах СНГ заболеваемость сальмонеллёзом птицы возросла в 7 раз, по данным Росптицесоюза, распространенность сальмонеллеза птиц достигает 0,23 % от общего числа регистрируемых болезней [Фисинин В. И., 2017; Джавадов Э. Д., 2014]. «Из числа исследованных проб пищевого сырья и продуктов животного происхождения 21,6 % не соответствовало установленным нормам, превышение КМАФАнМ - 45,4 %; контаминация бактериями группы кишечной палочки (БГКП) - 10,2 %» [Ленченко Е. М. и др., 2020].

При исследовании 558 проб с объектов производственных помещений 165 птицефабрик на северо-западе Нигерии распространенность Salmonella spp. составила 47,9 %. Идентифицировали 23 серотипа, из которых S. Kentucky и S. Isangi составляли 32,9 % и 11,0 %, соответственно [Jibril A.H. et al., 2020]. При исследовании 70 проб комбикормов для птиц 25 (35,71 %) являлись контаминированы спорами патогенных грибов родов Aspergillum - 87,5 %, Penicillium - 100,0 %, Fusarium - 80,0 %. Пробы, загрязненные спорами грибов, в 72,0 % случаев оказывались токсичными, частота выявления токсичности проб кормов для птиц составила 72,0 % [Виноходов Д. О. и др., 2009].

При разработке модели для описания взаимосвязи метеорологических факторов и наличием Salmonella spp. в птицеводческих хозяйствах в качестве прогнозируемых переменных были определены 83 метеорологических фактора. Модель определила влажность как наиболее значимую переменную, связанную с распространением сальмонелл, в то время как скорость порывов ветра и средняя температура были определены как вторичные переменные. Разработанная модель является достоверно прогнозируемой, со значениями кривой достоверности 0,884-0,872 ЕД [Hwang D. et al., 2020].

При изучении устойчивости к антибактериальным препаратам 51 изолята сальмонелл, выделенных из 379 проб из окружающей среды на птицефермах в Уганде, серовар Salmonella enterica 32/51 (62,7 %) был устойчив к одному антибактериальному препарату, 10/51 (19,6 %) изолятов демонстрировали множественную лекарственную устойчивость. С помощью ПЦР было идентифицировано пять плазмид вирулентности, включая IncFIIS 17/51 (33,3 %),

IncIla 12/51 (23,5 %), IncP 8/51 (15,7 %), IncX1 8/51 (15,7 %) и IncX2 1/51 (2,0 %) [Ball T. et al., 2020].

Микроорганизмы enteritidis, изолированные из проб свиных отходов свинокомплексов (n = 87), проявляли устойчивость к сульфаметоксазолу: в сырых отходах было обнаружено 40/87 (46,0 %) устойчивых изолятов, в пробах сточных вод 34/47 (85,0 %) изолятов. Микроорганизмы обладали устойчивостью к сульфаметоксазолу - 5/84 (6,0 %) изолятов, хлорамфениколу - 29/87 (33,0 %); ампициллину - 26/87 (20,0 %) изолятов [Casanova L. M. et al., 2020].

Исследование распространения антибиотикорезистентности патогенных микроорганизмов, выделенных от павшей птицы, выявило наличие генов антибиотикорезистентности в образцах с праймером TetA (антибиотики тетрациклиновой группы): E.coli, Pseudomonas aeruginosa, Salmonella enteritidis, Staphylococcus aureus; с праймером FloR (флорфеникол): E.coli, Staphylococcus aureus; с праймером Catl (хлорамфеникол): E.coli, Staphylococcus aureus; с праймером qnrA (энрофлоксацин): Pseudomonas aeruginosa [Джавадов Э.Д. и др., 2017].

При исследовании вакцины против сальмонеллёза, на основе белков внешней мембраны Salmonella enterica (OMP) и белков флагеллина, продукция макрофагов через 11 дней после заражения была выше (P <0,05) в группе птиц при введении через желудочный зонд 500 мкг вакцины, по сравнению с группой, получавшей физиологический раствор. На 14-й день бройлеры вакцинированной птицы при 1000 мкг имели более высокие (P <0,05) уровни сывороточных антител (IgG, IgA), мРНК IL-1P и IL-10 в лимфоузлах слепой кишки. Бактериальная нагрузка S. enteritidis в содержимом слепой кишки через 2 дня после заражения снизилась (P <0,05) на 65,9 % у вакцинированных (1000 мкг) птиц, по сравнению с контролем [Acevedo-Villanueva K.Y. et al., 2020].

Исследование эффективности инактивированной трехвалентной вакцины против Salmonella enterica, содержащей серовары S. enteritidis (O: 9, серогруппа D) и S. typhimurium (O: 4, серогруппа B), серовар S. infantis (O: 7, серогруппа C1) и адъювант (гидроксид алюминия) проводили на 10229 бройлерах. Птиц

вакцинировали в возрасте 10 и 17 недель внутримышечно в грудную мышцу. При заражении птиц S. hadar (O: 8, серогруппа C2) 1 * 106 КОЕ/г выявлено увеличение серовар-специфических антител (34,4 %), обнаруживающихся до 56-недельного возраста [Crouch C.F. et al., 2020].

«Премедикация цыплят препаратами фоспренил и АСД-2 стимулировала нормальную резистентность цыплят до 13,24±0,99 и до 20,25±5,04 условных единиц резистентности, что на 75,0 % и 164,0±47 % соответственно, выше, чем в контроле. При превентивной терапии поствакцинальных осложнений после применения вирусвакцины из штамма Ла-Сота у цыплят, предварительно премедицированных солвимином, препаратом АСД-2 и аллокином альфа установлено увеличение резистентности к экспериментальной E. coli инфекции до 10,71±0,30 и 11,22±0,64, что превышает профилактическое действие солвимина per se на 42,0±6,5 % и 49,0±2,5%, соответственно» [Сухинин А. А., Виноходова М. В., 2014].

Препарат Лактофторхин при алиментарном инфицировании цыплят в возрасте 7 дней в дозе от 103 до 106 КОЕ/мл с питьевой водой в течение 5 дней предотвращает клинические проявления сальмонеллёза и формирование бактерионосительства. «При заражающих дозах от 106 до 3х108 микробных клеток S. enteritidis препарат предупреждает клиническое проявление болезни, обеспечивает 94,0-96,0%-ю сохранность, снижает степень контаминации внутренних органов» [Макавчик С. А., 2006].

При изучении генетических маркеров производственных вакцинных штаммов 8544 и VC-03 птиц установлено, что штаммы вируса индуцировали острую форму инфекции и накапливались при неоптимальных температурах культивирования в высоких титрах: штамм 8544 - 5,5±0,2 lg ТЦД50, штамм VC03 - 6,5±0,25 lg ТЦД50, при 34 °С и при 400 °С 5,8±0,15 lg ТЦД50, 6,5±0,05 lg ТЦД50 соответственно. Наибольшую активность интерферона отмечали через 72-96 часов культивирования [Трефилов Б. Б. и др., 2015].

В исследовании использовали настольную систему непрерывной обработки озоном с диапазоном концентраций O3 (7,15-132,46 мг/л). При воздействии от 15

до 90 минут на подстилку для кур концентрация 7,15 мг/л не оказывало влияния на количество S. Typhimurium в течение 90 мин, однако, воздействие концентраций O3 в количестве 43,26-132,46 мг/л снижало количество бактерий. При более высоком содержании влаги для уменьшения количества патогенов требовались высокие концентрации O3 (132,46 мг/л). Было обнаружено, что содержание влаги 30% или ниже более эффективно для контроля уровня патогенов в подстилке домашней птицы [Chang R. et al., 2020].

Изоляты Salmonella, выделенные из проб мяса птицы (S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Kentucky, S. Heidelberg, S. Livingstone, S. Mbandaka) тестировали на устойчивость к воздействию pH, перекиси водорода, NaCl, нагреванию и УФ-излучению. Установлена вариабельность устойчивости бактерий к факторам стресса, разница в сопротивлении была ниже в 3,3 раза. Исследуемые изоляты демонстрировали более низкую устойчивость к кислотам и NaCl, высокую термолабильность, устойчивость к окислению и УФ-излучению, по сравнению с S. Enteritidis (г> 0,85; p <0,01). Значительная взаимосвязь была обнаружена по устойчивости к кислоте и термолабильности (p <0,10) [Guillén S. et al., 2020].

В птицехозяйствах Ленинградской области выявлены стационарные эпизоотические очаги, обусловленные S. ententidis, S. typhfmuhum, S. derby, S. infantis. Из числа 16 дифференцированных серовариантов сальмонелл превалировали S. ententidis (14,56 %) и S. typhimurium (10,88 %). «Аэрозольное и аэрозольно-пероральное применение сальмонеллезных бактериофагов в птицехозяйствах повысило сохранность цыплят 1-20-дневного возраста, в случае использования поливалентного сальмонеллезного бактериофага (АВСОЕ) - на 5,4 %, бактериофага сальмонеплезного жидкого - на 2,25 %, использование данных разновидностей бактериофагов снижало число сальмонелл на 25,05 и 36,7 %, соответственно» [Фогель Л. С. и др., 2015].

«Бактериофаги S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Paratyphi A, S. San Diego и S. Typhi проявили широкую литическую активность, устойчивость к нагреванию и pH, латентные периоды от 5 до 30 минут. Кроме того, частицы фага адсорбировались в 100,0 % в течение 18-40 минут» [Kim J. H. et al., 2020].

Количество жизнеспособных клеток бактерий снижалось в пробах мяса кур (P < 0,05) при совместном воздействии бактериофагов при 4 °C в течение 7 дней (множественность инфекции составляла от 104 до 106) [Kim J. H. et al., 2020]. Штаммы Lactobacillus spр. проявляли антагонистическую активность к 96,0 % изолятов Salmonella spр., выделенным из проб объектов окружающей среды птицеперерабатывающих предприятий [Kowalska J. D. et al., 2020].

Установлена эффективность введения в рацион цыплят-бройлеров препарата «Аргобифилак», содержащего в составе продукты метаболизма лакто-и бифидобактерий, экстракт прополиса, наночастицы и коллоидные частицы серебра и меди, обладающие антагонистической активностью в отношении широкого спектра патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, включая Salmonella spp. Препарат способствовал увеличению живой массы на 14,0 -15,0 %, среднесуточного прироста на 13,12 %, повышению сохранности на 7,24 % и снижению падежа птиц до 2,48 % [Карпенко Л. Ю. и др., 2020].

Сочетанное применение йодида калия и ампициллина in vitro и на экспериментально зараженных колибактериозом цыплятах выявило синергидное действие препаратов, добавление йодида калия в концентрации 150 мкг/мл к антибиотику снижало МПК ампициллина до 3,1 мкг/мл. Схема сочетанного

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Фан Ван Кхай, 2021 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Алматов, Б. И. Острые кишечные инфекции в Узбекистане. Динамика выявляемости основных сероваров сальмонелл и их резистентность к антибиотикам / Б.И. Алматов, Х.И. Исхакова, И.Х. Маматкулов, А.О. Абдулаев, Л.Т. Ли // Бактериология. - 2018. - № 3(3). - С. 14-18.

2. Антигенные формулы сероваров сальмонелл / Под ред. П.А.Д. Гримонт, Ф.-Кс. Вейль, 9-е издание - Тверь: ООО издательство «Триада». - 2012. - 148с.

3. Антонова, А. Н. Этиологическая структура сальмонеллеза и эшерихиоза телят : автореф. дис. ... канд. вет. наук : 06.02.02 / Антонова Алина Николаевна. -Москва, 2017.

4. Афиногенова, А. Г. Пробиотические средства для поверхностей как возможная альтернатива традиционным дезинфектантам / А.Г. Афиногенова, Л.А. Краева, Г.Е. Афиногенов, В.В. Веретенников // Инфекция и иммунитет. - 2017. Т. 7. - № 4. - С. 419-424 // DOI: 10.15789/2220-7619-2017-4-419-424

5. Афонюшкин, В. Н. Зависимость уровня инфицированности сальмонеллами в популяциях кур от антагонистической активности Lactobacillaceae и Enterococcaceae в отношении Salmonella enterica / В.Н. Афонюшкин, Н.В. Давыдова, И.Н. Троменшлегер, О.В. Мишукова, Ю.Н. Козлова, В.С. Черепушкина, Т.Е. Миронова, И.Ю. Клемешова // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). - 2020. - № 1(54). - С. 48-55.

6. Батраков, А. Я. Определение антибиотикочувствительности при терапии больных маститом коров / А.Я. Батраков, В.Н. Виденин, Л.В. Темникова, Е.Е. Зуева // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. -2014. - № 3 - С. 87-90.

7. Бессарабов, Б. Ф. Инфекционные болезни животных / Б.Ф. Бессарабов, А.А. Вашутин, Е.С. Воронин [и др.]; под ред. А.А. Сидорчука. - М.: КолосС, -2007. -671 с.

8. Бессарабов, Б. Ф. Пробиотики эффективны и безвредны / Б.Ф. Бессарабов, А. Крыканов, И. Мельникова, JI. Гонцова // АгроРынок. - 2007. - № 1. - 3233 с.

9. Бокарев, А. В. Кинетика распространения фармакологических препаратов в тканях дистальных отделов конечностей собак при внутривенном ретроградном введении. / А.В.Бокарев // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. - 2011. -№ 4 (12) - С. 36-46.

10. Борисенкова, А. Н. Система контроля бактериальных болезней птиц -основа эпизоотологического благополучия птицехозяйства / А.Н. Борисенкова, Т.И. Рождественская // Животноводство России. - 2007. - № 12. - С. 24-25.

11. Борисенкова, А. Н. Эффективность применения новых антибактериальных средств в промышленном птицеводстве / А.Н. Борисенкова, О.Б. Новикова, А.В. Варюхин // Ветеринария. - 2011. - № 6. - С. 18-19.

12. Борхунова, Е. Н. Сравнительная характеристика развития четырёхглавой мышцы бедра в эмбриогенезе у кур мясного и яичного направлений продуктивности / Борхунова Е.Н., Титов В.Ю., Кондратов Г.В. // Морфология. -2014. - № 3 - С. 36.

13. Бурлаков, С. В. Особенности использование пуллорного эритроцитарного антигена: специфичность реакции // С.В. Бурлаков, А.В. Капустин, А.И. Лаишевцев // RJOAS. - 2017. - № 9(69). - С. 282-287.

14. Виноходов, Д. О. Исследование обсемененности спорами патогенных грибов и общей токсичности кормов для птиц / Д.О. Виноходов, А.А. Сухинин, М.В. Виноходова, Е.А. Смирнова, В.О. Виноходов, С.О. Тяминова, К. Герасименко // Международный вестник ветеринарии. - 2011. - № 2. - С. 61-63.

15. Виноходова, М. В. Определение интегральной резистентности организма методом коли-клиренса : дис. ... канд. вет. наук : 06.02.02 / Виноходова, Мария Владимировна. - Санкт-Петербург, 2015.

16. Ву, Ван Там. Управление промышленным птицеводством: на примере Российской Федерации и Республики Вьетнам: Дис. ... канд. экон. наук: 08.00.14: Москва. - 2002. - 185 с.

17. Герасимчик, В. А. [и др.] Болезни мелких животных и птиц / В. А. Герасимчик [и др.]. - Минск : РИПО, 2012. - 160 с.

18. Груздев, К. Н. Ветеринарные проблемы в промышленном птицеводстве России// Матлы 1-го Междунар. Ветеринарного конгресса по птицеводству 18-22 апреля 2005 г. в г. Москве. М., - 2005. - С. 1-5.

19. Гусева, В. А. Технология "Плазмолифтинг - энимал" в ветеринарной медицине / В.А. Гусева, Б.С. Семёнов, Р.Р. Ахмеров, Т.Ш. Кузнецова // Биотехнология. взгляд в будущее. - 2015. - № 1 - С. 31-37.

20. Гущин, В. В. Безопасность пищевой продукции и лекарственных средств / В.В. Гущин // Материалы Международного ветеринарного конгресса: актуальные ветеринарные проблемы в промышленном птицеводстве». - М., - 2013. - С. 4042.

21. Давыдова, В. Н. Мукоадгезивные системы на основе хитозана как матрицы для включения активной субстанции эхинохром / В.Н. Давыдова, А.В. Володько, Н.П. Мищенко, И.М. Ермак // Прикладная Биохимия И Микробиология. - 2018. -№ 5(54). - С. 477-482.

22. Данилевская, Н. В. Новое в антибиотикотерапии: антибиотикорезистентность - угроза реальна / Н.В. Данилевская, Н.В. Пименов // Новейшие разработки в ветеринарии. Клеточная терапия: Мат-лы совм. конф. -М.: ГУ РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, - 2006. - С. 16-22.

23. Джавадов, Э. Д. Диагностика и профилактика новых инфекционных болезней птиц / Джавадов Э.Д. // Научно-практический журнал Птицеводство. -2013. - № 2. - С. 69-75.

24. Джавадов, Э. Д. Изучение эффективности препарата теотропин Р+ в отношении основных возбудителей бактериальных болезней птиц / Э.Д. Джавадов, О.Ф. Хохлачев, О.Б. Новикова, Н.В. Тарлавин, В.В. Веретенников // Международный вестник ветеринарии. - 2020. - №. 3. - с. 76-82.

25. Джавадов, Э. Д. Мониторинг генов антибиотикорезистентности патогенных микроорганизмов, выделенных от сельскохозяйственной птицы / Э.Д. Джавадов, М.Д. Кононина, В.П. Терлецкий, С.В. Щепеткина, О.Б. Новикова //

Актуальные вопросы сельскохозяйственной биологии. - 2017. - № 4 (6). - С. 2429.

26. Джавадов, Э. Д. Современное представление о функционировании специфических факторов иммунной системы птицы / Э.Д. Джавадов, И.Н. Вихрева, Н.И. Прокофьева, М.Э. Джавадов, Н.В. Тарлавин // Актуальные вопросы сельскохозяйственной биологии. - 2017. - № 1 (3) - С. 3-6.

27. Джавадов, Э. Д. Текущая эпизоотическая ситуация по болезням птиц в РФ / Э.Д. Джавадов // Материалы Международного Ветеринарного конгресса: «Актуальные ветеринарные проблемы в промышленном птицеводстве». - Казань. - 2014.

28. Джупина, С. И. Различие контроля над эпизоотическим процессом пастереллёза и геморрагической септицемией / Джупина С.И. // Ветеринария сегодня. - 2015. - № 1 (12). - С. 53-58.

29. Джупина, С. И. Роль L-Формы бактерий в эпизоотическом процессе болезней продуктивных животных / С.И. Джупина // Ветеринарная патология. -2016. - № 57(3). - C. 5-11.

30. Джупина, С. И. Эпизоотический процесс и его контроль при факторных инфекционных болезнях / С. И. Джупина. - М., 2002. - С. 70.

31. Егоров, И. А. Возрастные изменения биохимических показателей крови у мясных цыплят (Gallus gallus L.) / И.А. Егоров, А.А. Грозина, В.Г. Вертипрахов, Т.Н. Ленкова, В.А. Манукян, Т.А. Егорова, М.В. Кощеева // Сельскохозяйственная Биология. - 2018. - № 4(83). - С. 820-830.

32. Егоров, И. А. Замещение кормовых антибиотиков в рационах. Микробиота кишечника и продуктивность мясных кур (Gallus gallus L.) На фоне энтеросорбента с фито- и пробиотическими свойствами // И.А. Егоров, Т.Н. Ленкова, В.А. Манукян, Т.А. Егорова, И.Н. Никонов, Л.А. Ильина, Г.Ю. Лаптев // Сельскохозяйственная биология. - 2019. - № 2. - С. 280-290.

33. Ежков, В. О. Клинико-морфологические особенности нарушения метаболизма у сельскохозяйственных и экзотических птиц и коррекция его

кормовыми добавками у кур: дис. ... канд. вет. наук / В.О. Ежков // Казань - 2008.

- 270 с.

34. Журавлев, Д. А. Основные параметры измерения эпизоотической опасности отдельных болезней сельскохозяйственных животных / Д.А. Журавлев, А.А. Алиев, В.В. Сочнев, Д.А. Мамлеева, Е.В. Медова, И.Л. Прошкина, А.З. Журавлева, Л.С. Фогель, Н.С. Смирнова // Ветеринарная практика. - 2007. - № 1.

- С. 7-12.

35. Забровская, А. В. Пространственная визуализация данных по выделению и чувствительности к антимикробным препаратам штаммов сальмонелл / А.В.Забровская, И.А.Хахаев, В.А.Кузьмин, Л.А.Кафтырева // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2018. - №1. - С.43-45.

36. Забровская, А. В. Эпизоотологический анализ распространения антибиотикорезистентных штаммов возбудителей инфекционных болезней сельскохозяйственных животных в Северо-Западном федеральном округе Российской Федерации: автореферат дис. ... д-ра вет. наук: 06.02.02 / Анна Владленовна Забровская [Место защиты: С.-Петерб. гос. акад. вет. медицины]. -Санкт-Петербург, 2019. - 41 с.

37. Зайнуллин, Л. И. Электрофосфоретические и антигенные свойства полипептидов сальмонелл и идентификация их геномов ПЦР: дис. ... канд. биол. наук. - Казань, 2003. - 157 с.

38. Захарова, Ю. В. Изучение in vitro влияния ДНК пробиотического штамма Bifidobacterium bifidum на количественный уровень и колонизационные свойства кишечных микросимбионтов / Ю.В. Захарова, А.С. Сухих, Л.А. Леванова, Е.Ю. Плотникова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. -2020. - № 97(5). - DOI 10.36233/0372-9311-2020-97-5-5

39. Зеленевский, Н. В. Международная ветеринарная анатомическая номенклатура на латинском и русском языках. 5-я редакция: Справочник / Перевод и русская терминология проф. Н. В. Зеленевского. — Санкт-Петербург: Издательство "Лань", 2013. — 400 с.

40. Зенкина, О. А. Сравнительный анализ антибиотикорезистентности и антибиотикочувствительности штаммов сальмонелл, выделенных от людей и сельскохозяйственных животных в Тульском регионе / О.А. Зенкина, А.А. Руднева // В сборнике: студенческие научные достижения. сборник статей VI Международного научно-исследовательского конкурса. - 2019. - С. 210-214.

41. Ибрагимова, К. А. Морфологическая характеристика иммунной системы птиц при заражении токсигенными бактериями Yersinia pseudotuberculosis : дис. ... канд. вет. наук: 06.02.02 / Ибрагимова, Карина Ахмедовна. - Москва, 2013. -112 с.

42. Ирза, В. Н. Синдром большой печени и селезенки — новая вирусная болезнь кур в России / В.Н. Ирза, А.В. Спрыгин // С.-х. биол. - 2012. - № 4. - С. 73-77.

43. Карпенко, Л. Ю. Применение биологически активных добавок для повышения продуктивности сельскохозяйственной птицы / Л.Ю. Карпенко, С.А. Гласкович М.А. Гласкович, В.В. Юркевич, А.О. Вертинская-Филипенко, М.И. Папсуева // Сб.: Материалы 2-й Международной научно-практической конференции: Молекулярно-генетические технологии для анализа экспрессии генов продуктивности и устойчивости к заболеваниям животных. - М., 2020. - С. 209-225.

44. Клетикова, Л. В. Влияние пробиотических препаратов «лактур» и «бифитрилак» на яичную продуктивность и обмен веществ у кур: дис. ... канд. биол. наук / Л.В. Клетикова // Саранск, - 2012. - 318 с.

45. Козак, С. С. Влияние факторов технологического процесса переработки цыплят-бройлеров на микробиологические показатели тушек / С.С. Козак, И.И. Маковеев, А.В. Исаенко, Н.Л Догадова // Птица и птицепродукты. - 2018. - №2 -С. 57-59.

46. Козак, С. С. Научное обоснование обеспечения микробиологической безопасности продукции птицеводства / С.С. Козак // Автореф... д-ра биол. наук. -2013. - 40 с.

47. Козак, С. С. Научные аспекты обеспечения микробиологической безопасности в птицеводстве и переработке птицы / С.С. Козак, И.В. Мокшанцева, Ю.А. Козак // Ветеринария и кормление. - 2018. - №2. - С. 55-58.

48. Костенко, Ю. Г. Проблема пищевого сальмонеллеза и пути ее решения / Ю.Г. Костенко, М.В. Храмов, А.Д. Давлеев // Ветеринария. - 2016. - №2. - с.9-12.

49. Кочиш, И. И. Птицеводство / И.И. Кочиш, М.Г. Петраш, С.Б. Смирнов. -М.: - КолосС, - 2015. - 407 с.

50. Куриленко, А. Н. Специфическая профилактика сальмонеллеза кур / А.Н. Куриленко, Н.В. Пименов, С.В. Ленев, М.А. Толпыгин // Ветеринарная медицина. - 2002. - № 2. - С. 29-30.

51. Кхай, Фан Ван. Морфофункциональные и иммунобиологические показатели при желудочно-кишечных болезнях утят // Кхай Фан Ван, Ю. А Ватников, Е.М. Ленченко // Теоретические и прикладные проблемы агропромышленного комплекса. - 2012. - № 1 (47). - С. 60-64.

52. Лаишевцев, А. И. Микробный профиль пищеварительного канала птиц рода Melopsittacus вида волнистый попугай / А.И. Лаишевцев, Н.В. Пименов, А.В. Капустин, Э.А. Якимова/ / Russian Journal of Agricultural and Socio -Economic Sciences. - 2016. - № 5 (53). - С. 76-82.

53. Лайшев, К. А. Прогностическое моделирование эпизоотической ситуации с применением нечетких множеств / К.А. Лайшев, А.В. Прокудин, А.В. Спесивцев // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. - 2016. - № 3(19). - С. 87-92.

54. Ленёв, C. B. Вакцинопрофилактика сальмонеллеза кур. Эффективность применения инактивированных и живых вакцин, в том числе сальмо-фагаэнтеритидис (сухая живая вакцина и бактериофаг) / С.В. Ленёв, Н.А. Дрогалина, С.А. Бугаев // III Международный ветеринарный конгресс по птицеводству. - 2007. - С. 201-216.

55. Ленёв, С. В. Антибиотикорезистентность музейных штаммов бактерий рода Klebsiella spp. // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2016. - № 5. - С. 38-45.

56. Ленёв, С. В. Совершенствование выделения и идентификации бактерий Salmonella enterica подвида arizonae / С.В. Ленев, А.И. Лаишевцев, Н.В. Пименов // RJOAS. - 2016. - №.2(50). - С. 14-23.

57. Ленкова, Т. Н. Микробиота кишечника и продуктивные качества бройлеров при использовании фитазы для повышения усвояемости фосфора и питательных веществ из комбикормов / Т.Н. Ленкова, И.А. Егоров, Т.А. Егорова, В.А. Манукян, В.Г. Вертипрахов, А.А. Грозина, И.Н. Никонов, В.А. Филиппова, Е.А. Йылдырым, Л.А. Ильина, В.А. Дубровин, Г.Ю. Лаптев // Сельскохозяйственная биология. - 2020. - № 2(55). - С. 406-416.

58. Ленченко, Е. М. Гистохимическая характеристика иммунной системы птиц при эшерихиозе / Е. М. Ленченко, Е.М. Плотникова // Ветеринария. - 2014. - № 8. - С. 25-28.

59. Ленченко, Е. М. Изучение биопленок энтеробактерий, образующихся при болезнях органов пищеварения животных / Е.М. Ленченко, Д.А. Блюменкранц // Ветеринария. - 2020. - № 1. D0I:10.30896/0042-4846.2019.23.12.25-29.

60. Ленченко, Е. М. Изучение чувствительности сальмонелл к антибактериальным препаратам / Е.М. Ленченко, Кхай Фан Ван, Ю. А. Ватников [и др.] // Международный вестник ветеринарии. - 2019. - № 2. - С. 55-61.

61. Ленченко, Е. М. Индикация факторов вирулентности энтеробактерий / E.M. Ленченко, А.Н. Антонова // Ветеринария. - 2015. - № 10. - С. 26-30.

62. Ленченко, Е. М. Исследование формирования биопленок энтеробактерий, выделенных при болезнях органов пищеварения животных / Е. М. Ленченко, Л. Б. Хабибулина // Аллея науки. - 2018. - Т. 2, № 6. - С. 382-387.

63. Ленченко, Е. М. Количественный учет и дифференциальные свойства патогенных бактерий, выделенных из пищевого сырья / Е.М. Ленченко, Д.В. Степанов // РЖ «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии», -2020. - № 2(34). - С. 228-235.

64. Ленченко, Е. М. Морфофункциональные свойства и популяционная изменчивость иерсиний, поражающих сельскохозяйственных животных, в

зависимости от температурного фактора // Сельскохозяйственная биология. -1996. - № 6. - С. 88-95.

65. Ленченко, Е. М. Оценка эффективности схем бактериологического исследования на наличие сальмонелл / Е. М. Ленченко, Кхай Фан Ван, Ю. А. Ватников // Российский ветеринарный журнал. - 2017. - № 4. - С. 13-15.

66. Ленченко, Е. М. Сравнительная оценка методов контроля производства и выделения патогенных бактерий из мяса птицы / E.M. Ленченко, С.С. Козак, Д.И. Скородумов, О.Д. Скляров, Д. Диксон, Б. Шелдон // Материалы IV Международного ветеринарного конгресса по птицеводству, Москва. 8-11 апреля 2008. - С. 76-83.

67. Ленченко, Е. М. Характеристика токсигенности энтеробактерий, выделенных при желудочно-кишечных болезнях сельскохозяйственных животных / Е.М. Ленченко, Е.А. Мансурова, А.В. Моторыгин // Сельскохозяйственная биология. - 2014. - № 2. - С. 94-104.

68. Ленченко, Е. М. Этиологическая структура и дифференциальная диагностика сальмонеллеза птиц / Е. М. Ленченко, Кхай Фан Ван, Ю. А. Ватников [и др.] // Вестник РУДН. Серия: Агрономия и животноводство. - 2017. - № 12 (4). - С. 359-367.

69. Ломова, Ю. В. Исследование биопленок и некультивируемых микроорганизмов при болезнях органов пищеварения птиц / Ю.В. Ломова, Л.Б. Байбикова, Е.М. Ленченко // Сб.: Современные вызовы для АПК и инновационные пути их решения: Материалы 71-й / Международной науч.-практ. конф. - Рязань: ФГБОУ ВО РГАТУ. - 2020. - С. 88-101

70. Макаров, В. В. Доказательная эпизоотология (Evidence based epizootology) / В.В. Макаров, В.В. Недосеков // Ветеринарна биотехнология. - 2010. - № 17. - С. 143-150.

71. Макаров, В. В. Факторные болезни // Российский ветеринарный журнал. -2017. - № 4. - С. 22-27.

72. Макаров, В. В. Эпизоотологический метод исследования / В.В. Макаров, А.В. Святковский, В.А. Кузьмин, О.И. Сухарев. - СПб.: Лань, - 2009. - 221с.

73. Маннапова, Р. Т. Staphylococcus aureus в пищеварительном тракте при кандидамикозах гусей / Р.Т. Маннапова, Н.П. Сачивкина, Р.Р. Шайхулов // Сборник научных статей по итогам работы Международного научного форума, 19.04.2019 г. Наука и инновации - современные концепции. - Москва. - 2019. - № 2. - С. 66-71.

74. Маннапова, Р. Т. Лимфатические узлы при кандидозе гусей и на фоне энзимотерапии / Р.Т. Маннапова, Р.Р. Шайхулов - Материалы УШ сьезда НМО АГЭ, г. Воронеж, май, 2019 г // Морфология, - 2019. - № 2(155). - С.187- 188.

75. Мансурова, Е. А. Бактериологическая диагностика и морфологическая характеристика тканей и органов перепелов при экспериментальном эшерихиозе : дис. ... канд. вет. наук : 06.02.02 / Мансурова Екатерина Анатольевна. - Москва 2013. : - 131 с.

76. Масимов, Н. А. Инфекционные болезни животных : учебник / Н. А. Масимов, В. Л. Крупальник, Б. Ф. Бессарабов [и др.]. - М. : Инфра-М, 2017. -960 с.

77. Матюшев, В. В. Использование белково-витаминного коагулята в производстве экструдированных комбикормов для цыплят-бройлеров / В.В. Матюшев, И.А. Чаплыгина, А.В. Семенов // Вестник КрасГАУ. - 2020. - № 9. - С. 171-176.

78. Методические указания МУ 4.2.2723-10 "Лабораторная диагностика сальмонеллезов, обнаружение сальмонелл в пищевых продуктах и объектах окружающей среды" (утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 13 августа 2010 г.)

79. Орлова, С. Т. Международной ветеринарной ассоциации мелких домашних животных (The World Small Animal Veterinary Association, WSAVA) / С.Т. Орлова,

A.А. Сидорчук // Российский ветеринарный журнал. - 2019. - № 1. - С. 6-8.

80. Патент РФ № 2006137178/13, 23.10.2006. Средство для лечения заболеваний желудочно-кишечного тракта цыплят // Патент России № 2122745. 1998. Бюл. № 33. / Макавчик С.А., Сухинин А.А., Вербицкая Н.Б., Виноходов

B.О.

81. Пименов, Н. В. Методические рекомендации по профилактике и ликвидации сальмонеллезов сельскохозяйственных животных, в том числе птиц / Н.В. Пименов, Е.А. Тинаева, А.И. Лаишевцев, Ю.Н. Колесникова // - М.: ФГБОУ ВО МГАВМиБ - МВА имени К.И. Скрябина. - 2016. - 155 с.

82. Пименов, Н. В. Особенности аризоноза индеек. Идентификация сальмонелла-инфекции в инкубационном яйце и продуктах индейководства / Н.В. Пименов, А.И. Лаишевцев, В.В. Пименова // RJOAS. - 2015. - №10(46). - С. 1017.

83. Пименов, Н. В. Профилактика сальмонеллеза сельскохозяйственных животных и птиц: основные направления и средства / Н.В. Пименов, А.И. Лаишевцев, Ю.Н. Колесникова // Russian Journal of Agricultural and SocioEconomic Sciences. - 2016, - № 12(60). - P. 247-254.

84. Пименов, Н. В. Разработка средств и совершенствование методов лечения и профилактики сальмонеллеза птиц: дис. ... д-ра биол. наук : 03.01.06, 06.02.02 / Пименов Николай Васильевич. - Москва, 2012. - 421 с.

85. Пименов, Н. В. Современные аспекты борьбы с сальмонеллезной инфекцией в птицеводстве: Монография / Н.В. Пименов, А.И. Лаишевцев // - М.: Издательство «Старая Басманная». - 2017. - 172 с.

86. Пименов, Н. В. Современные методы эпизоотического и эпидемического мониторинга в птицеводческой отрасли на примере сальмонеллезной инфекции / НВ. Пименов, А.И. Лаишевцев // Russian Journal of Agricultural and SocioEconomic Sciences. - 2017. - № 4(64). - P. 257-269.

87. Пименов, Н. В. Специфическая борьба с сальмонеллой в условиях птицеводства / Н.В. Пименов // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences: ISSUE. - 2013. - № 11(23). - P. 16-23.

88. Пименов, Н. В. Сравнительные испытания бактериофага против сальмонелл полученных различными способами культивирования / Н.В. Пименов, А.В. Капустин, В.А. Петров // В сборнике: Актуальные вопросы биологии, биотехнологии, ветеринарии, зоотехнии, товароведения и переработки сырья

животного и растительного происхождения. Материалы национальной научно-практической конференции. - 2019. - С. 58-59.

89. Пименов, Н. В. Эффективность применения бивалентного бактериофага против сальмонеллы для обезвреживания продуктов убоя в птицеводстве / Н.В. Пименов, С.В. Редькин, Ю.В. Амбражеевич // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. - 2014. - № 1. - С. 31-35.

90. Пирожков, М. К. Диагностика, специфическая профилактика и лечение при бактериальных болезнях животных / М.К. Пирожков, С.В. Ленев, Е.В. Викторова, С.А. Стрельченко, Л.И. Тихонов, О.Д. Скляров // Ветеринария. - 2011. - № 1. - С. 24-28.

91. Пирожков, М. К. Иммунобиологические лекарственные для лечения и профилактики эшерихиоза животных / М.К. Пирожков, Е.В. Сусский, С.Н. Ярцев // Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов для АПК. - 2016. - С. 199-204.

92. Плешакова, В. И. Лечение сальмонеллёза цыплят с применением бактериофагов и наносеребра / В. И. Плешакова, В. С. Власенко, В. Г. Пугачёв, Н. А. Лещёва, Д. Н. Степанов // Птицеводство. - 2017. - № 4. - С. 43-49.

93. Плитов, И. С. Этиологическая структура сальмонеллеза и эшерихиоза птиц : дис. ... канд. вет. наук : 06.02.02 / Плитов Иван Сергеевич. - Москва 2012. -142 с.

94. Плотникова, Е. М. Индикация факторов вирулентности энтеробактерий, дифференциальная диагностика эшерихиоза птиц : дис. ... канд. вет. наук : 06.02.02 / Плотникова Елена Михайловна. - Москва 2014

95. Поломошнов, Н. А. Эпизоотический процесс сальмонеллёза кур в Ростовской области (эпизоотология, профилактика, меры борьбы): Автореф. дис. канд. вет. наук: 06.02.02. - пос. Персиановский. - 2012. - 23 с.

96. Полюдова, Т. В. Бактериальная адгезия и образование биопленок в присутствии хитозана и его производных / Т.В. Полюдова, Б.Ц. Шагдарова, В.П. Коробов. В.П. Варламов // Микробиология. - 2019. - № 2 (88). - С. 129-136.

97. Пронин, В. В. Морфофункциональная оценка тимуса уток пекинской породы при введении в рацион селеноорганической добавки ДАФС-25к / В.В. Пронин, Е.О. Анисимова, М.С. Дюмин, С.П. Фисенко // Журн. «Ветеринария сегодня». - 2018. - № 26(3). - С. 40-45.

98. Пронин, В. В. Топография органов иммунной системы у уток пекинской породы / В.В. Пронин, Е.Э. Алексеенкова, Е.О. Анисимова, Л.В. Клетикова, М.С. Дюмин, С.П. Фисенко // Журн. «Морфология». - 2019. - № 2(155). - С. 236

99. Прунтова, О. В. Антигенная активность бактерий Salmonella ^o^mes^s и Pasteurella multocida в ассоциированной вакцине при инактивации димером этиленимина / О.В. Прунтова, В.С. Русалеев, В.М. Гневашев, В.В. Селиверстов, А.В. Потехин, Т.Г. Колотилова // Сельскохозяйственная биология. - 2003. - № 6 (38). - С. 94-99.

100. Прунтова, О. В. Современные методы определения микробиологической порчи пищевых продуктов и сырья / О.В. Прунтова, Н.Б. Шадрова // «Ветеринария сегодня». - 2017. - № 2. - С. 27-33.

101. Прусаков, А. В. Гистологические закономерности строения основных источников кровоснабжения головного мозга курицы домашней / А.В. Прусаков, Н.В. Зеленевский // Сб.: Материалы национальной научной конференции профессорско-преподавательского состава, научных сотрудников и аспирантов СПБГУВМ. - М.: Санкт-Петербург, 2021. - С. 79-81.

102. Прусаков, А. В. Ультраструктура гематоэнцефалического барьера курицы / А.В. Прусаков, Н.В. Зеленевский, М.В. Щипакин, К.В. Племяшов, Д.С. Былинская // Ветеринария. - 2019. - № 8 - С. 45-48 // DOI: 10.30896/00424846.2019.22.8.45-48

103. Рождественская, Т. Н. Оспа птиц / Т.Н. Рождественская, И.П. Николаева, Н.В. Крон, Н.Л. Крохин, Е.В. Кононенко // Ветеринария. - 2015. - № 7. - С. 16-19.

104. Рождественская, Т. Н. Профилактика сальмонеллеза птиц / Т.Н. Рождественская, С.С. Яковлев, Е.В. Кононенко // Vetpharma Farm animals. - 2012. - № 1. - С. 54-56.

105. Салаутин, В. В. Видовые особенности строения волос у домашних и диких животных / В.В. Салаутин, С.Е. Салаутина // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2015. - № 3. - С. 159-162.

106. Салаутин, В. В. Патоморфология и дифференциальная диагностика сальмонеллеза птиц, вызванного различными серовариантами возбудителя: дис. д-ра вет. наук. - Саратов. - 2004. - 443 с.

107. Салимов, В. А. Атлас. Патология и дифференциальная диагностика факторных болезней молодняка сельскохозяйственных животных / В.А. Салимов. - СПб: [Лань] 2016. - 384 с.

108. Санитарные правила. СП 3.1.086-96. Ветеринарные правила. ВП 13.4.1318-96. Профилактика и борьба с заразными болезнями, общими для человека и животных. 3. Сальмонеллёз. (утверждены Госкомсанэпиднадзором РФ от 31 мая 1996 года N 11, Минсельхозпродом РФ от 18 июня 1996 года N 23).

109. Светоч, Э. А. Антибиотикорезистентность культур ЕПешсоссш spp., выделенных от промышленной птицы в 2013-2016 гг. в хозяйствах российской федерации, и детекция у них генов резистентности к ванкомицину / Э.А. Светоч, М.Г. Теймуразов, О.И. Тазина, А.А. Абаимова и соавт.// Альманах клинической медицины. - 2017. - №2(45). - С. 138-146.

110. Селезнев, С. Б. Основные принципы структурной организации иммунной системы перепелов / С.Б. Селезнев, Е.А. Кротова, Г.А. Ветошкина, Е.В. Куликов, Л.П. Бурыкина // Вестник РУДН. Серия: Агрономия и животноводство, - 2015. -№ 4. - С. 66-73.

111. Семина, А. Н. Спектр циркулирующих серовариантов сальмонелл в птицеводческих хозяйствах / А.Н. Семина // Международный вестник ветеринарии. - 2019. - № 4. - С. 9-13.

112. Сидоров, М. А. Определитель зоопатогенных микроорганизмов / М.А. Сидоров, Д.И. Скородумов, В.Б. Федотов // - М.: Колос. - 1995. - 319 с.

113. Сидорчук, А. А. Вакцинация собак и кошек: спорных вопросов по-прежнему достаточно много. Международной ветеринарной ассоциации мелких

домашних животных (The World Small Animal Veterinary Association, WSAVA) / А.А. Сидорчук, С.Т. Орлова, // Российский ветеринарный журнал. - 2019. - № 1. -С. 6-8.

114. Сидорчук, А. А. Современные представления о зоонозах / А.А. Сидорчук // Российский ветеринарный журнал «Сельскохозяйственные животные». - 2012.

- № 4. - С. 7-11.

115. Сидорчук, А. А. Инфекционные болезни животных: учебник / под ред. А.А. Сидорчука, Н.А. Масимов, В.Л. Крупальник [и др.]. - 2-е изд., перераб. и доп. - М.: ИНФРА-М, - 2016. - 954 с.

116. Сизенцов, А. Антибиотики и химиотерапевтические препараты : учебник /

A. Сизенцов, И. А. Мисетов, И.Ф. Каримов. - Оренбург : Оренбургский государственный университет, 2012. - 489 с.

117. Скворцов, В. Н. Эффективность антибактериальных препаратов при экспериментальном заражении цыплят Salmonella enteritidis / В.Н. Скворцов, Д.В. Юрин, А.А. Присный, А.А. Моисеева // Международный вестник ветеринарии. -2019. - № 1. - С. 87-90.

118. Сковородин, Е. Н. Использование селенсо-держащих препаратов при выращивании мускусных уток в зоне с недостатком селена / Е.Н. Сковородин,

B.Д. Давлетова // Вестник АПК Ставрополья. - 2017. - № 4(28). - С. 40-43.

119. Сковородин, Е. Н. Анатомо-топогрефические особенности и рост печени перепелов в постэмбриональном онтогенезе / Е.Н. Сковородин // Вестник Башкирского ГАУ. - 2018. - № 1(45). - С. 253-253.

120. Скородумов, Д. И. Роль бактериальных биопленок в инфекционной патологии животных и пищевых производствах / Д.И. Скородумов, Ю.А. Ярикова, Е.В. Павлова // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2012. -№ 4. - С. 4-7.

121. Смирнов Д. Н. Инактивированные вакцины против сальмонеллеза птиц / Д.Н. Смирнов, Т.Н. Рождественская, Е.В. Кононенко, Э. Светоч // Птицеводство.

- 2011. - № 8. - С. 35-38.

122. Смирнов, A. M. Практикум по клинической диагностике внутренних незаразных болезней сельскохозяйственных животных / A.M. Смирнов, Г.Л. Дугин, B.C. Кондратьев и др. // Л.: Колос. - 1978. - 272 с.

123. Сочнев, В. В. Цифровизация доказательной эпизоотологии при изучении нозологического профиля заразной патологии животных / В.В. Сочнев, Ю.В. Пашкина, В.М. Авилов, Н.В. Морозов, П.В. Дурандин, В.С. Горелова, Н.Ю. Григорьев, В.В. Шейко, В.Н. Тиханов, О.В. Козыренко, А.С. Колисниченко // Евразийское научное объединение. - 2020. - № 9-3 (67). - С. 250-254.

124. Степанович, К. С. Разработка режимов использования современных моющих средств в птицеперерабатывающей промышленности / К.С. Степанович, Д.Н. Леонидовна, И.А. Викторовна, К.Ю. Александровна / Птица и птицепродукты. - 2020. - № 3. - С. 14-17.

125. Субботин, В. В. Сальмонеллёзы - актуальная проблема ветеринарной медицины / В.В. Субботин, М.Н. Лощинин, Н.А. Соколова, С.А. Коломьщев // Журнал «Ветеринария и кормление». - 2013. - № 4. - С.59-61.

126. Сулейманов, С. М. Структурная организация печени в раннем постнатальном онтогенезе у клинически здоровых телят и поросят / С.М. Сулейманов, О.Б. Павленко, В.С. Слободяник, Л.П. Миронова // Ветеринария. -2019. - С. 182-185.

127. Сухинин, А. А. Изучение энтеробактерий у птиц с использованием новой питательной среды для быстрого выделения и экспресс-идентификации / Сухинин А.А., В.О. Виноходов, С.А. Макавчик // Ветеринарная патология. - 2007. - №1. -С. 169-173.

128. Сухинин, А. А. Метод коли-клиренса (собщение 1). Измерение естественной резистентности организма / А. А. Сухинин, М. В. Виноходова // Вопросы норматично-правового регулирования в ветеринарии. - 2014. - № 3. -С. 214-219.

129. Сухинин, А. А. Метод коли-клиренса (сообщение 2). Измерение степени иммуносупрессии организма / Сухинин А.А., Виноходова М.В. // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2014. - № 3. - С. 219-224.

130. Сухинин, А. А. Метод коли-клиренса (сообщение 3). Измерение стимулирующего действия иммунотропных препаратов / Сухинин А.А., Виноходова М.В. // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2014. - № 4. - С. 47-53.

131. Татарникова, Н. А. Циркуляция различных серотипов сальмонелл в популяциях животных и птиц Пермского края / Н.А. Татарникова, Е.О. Чугунова // Ветеринария. - 2016. - С. 26-30.

132. Тимофеева, М. А. Биологические свойства и чувствительность к антибиотикам бактерий рода Salmonella, изолированных из продукции птицеводства / М.А. Тимофеева, О.Н. Ларина, Н.А. Шкиль // Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). - 2019. - № 3 (52). - С. 112-119.

133. Третьякова, А. Д. Ветеринарное законодательство. Ветеринарный устав Союза ССР, положения, указания, инструкции, наставления и правила по ветеринарному делу / Под общ. ред. А.Д. Третьякова. - М.: Колос, - 1972. - Т. 1-2. - 696 с.

134. Трефилов, Б. Б. Генетические маркеры вакцинных штаммов метапневмовируса птиц / Б.Б. Трефилов, Н.В. Никитина, В.С. Бочкарев, М.С. Борисова // Успехи современного естествознания. - 2015. - № 3. - С. 137-140.

135. Туварджиев, А. В. Аэрозольный метод профилактики и терапии колибактериоза птиц йодидом калия, его сочетанием с ампициллином / А.В. Туварджиев, С.П. Ковалев // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии - 2020. - № 1 - С. 63-65.

136. Урбан, В. П. Проблема сальмонеллёзов в современном мире / В.П. Урбан, В.А. Кузьмин // Сальмонеллёз птиц (современная научная концепция этиологии, диагностики и профилактики в промышленном птицеводстве) - СПб. : Ломоносов, 2000. - С. 7-10.

137. Ушакова, Т.М. Фармакокоррекция уровня естественной резистентности у цыплят-бройлеров при гепатозе / Т.М. Ушакова, Т.Н. Дерезина // Актуальные проблемы инновационного развития животноводства. - 2020. - № 1 - С. 124-128.

138. Федоров, Ю. Н. Иммунодефициты животных: характеристика, диагностика и иммунокоррекция / Ю.Н. Федоров, В.И. Клюкина, О.А. Богомолова, М.Н. Романенко // В сборнике: Новые подходы к разработке технологий производства и переработки сельскохозяйственной продукции. Материалы Международной научно-практической конференции. Под общ. ред. И.Ф. Горлова. - 2018. - С. 144-150.

139. Федоров, Ю. Н. Иммунологический мониторинг: стратегия и алгоритмы / Ю.Н. Федоров, В.И. Клюкина, О.А. Богомолова, М.Н. Романенко, К.Н. Царькова // В сборнике: Инновационное развитие аграрно-пищевых технологий. Материалы Международной научно-практической конференции. Под общей редакцией И.Ф. Горлова. - 2020. - С. 115-120.

140. Федоров, Ю. Н. Макрорхабдоз - оппортунистическая инфекция птиц: диагностика и лечение / Ю.Н. Федоров, В.И. Герунов, В.Э. Велькер // Ветеринарная патология. - 2020. - № 2 (72). - С. 76-84.

141. Фисинин, В. И. Биопрепарат на основе штамма Lactobacillus plantarum L-211 для животноводства / В.И. Фисинин, Е.А. Артемьева, И.И. Чеботарев и др. // Сельскохозяйственная биология. - 2017. - № 2. - С. 418-424.

142. Фисинин, В. И. Обеспечение биобезопасности в птицеводстве / В.И. Фисинин // Сфера: Птицепром. - 2017. - № 1. - С. 58-60.

143. Фогель, Л. С. Сальмонеллезные бактериофаги в системе противоэпизоотических мероприятий в промышленном птицеводстве / Фогель Л.С., Кузьмин В.А., Кудрявцева А.В. // Сборник научных трудов всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства. - 2015. - № 8, Т. 1. - С. 448-450.

144. Цахаева, Р. Ситуация по сальмонеллезу кур в Республике Дагестан / Р. Цахаева, Д. Мусиев, З. Джамбулатов, М. Магомедов, Г. Азаев, Р. Абдурагимова // Ветеринария сельскохозяйственных животных. - 2020. - № 1. - С. 18-22.

145. Чугунова, Е. О. Изучение свойств протейных бактериофагов и применение их в бактериологических исследованиях мяса птицы / Е.О. Чугунова // В сборнике: актуальные вопросы ветеринарии. Материалы Международной

научно-практической конференции, посвященной 100-летию кафедры ветеринарной микробиологии, инфекционных и инвазионных болезней факультета ветеринарной медицины ИВМиБ. Омск, - 2020. - С. 227-232.

146. Чугунова, Е. О. Характеристика серологических вариантов сальмонелл, выделенных из патологического материала от животных и мясных продуктов // Е.О. Чугунова, Н. А. Татарникова // Агротехнологии XXI века. Сборник материалов международной научной конференции. - Пермь. - 2018. - С. 258-263.

147. Швец, О. М. Бактериологическое исследование мяса и мясных продуктов на наличие микроорганизмов из рода Salmonella / О.М. Швец, Т.И. Михалева, М.А. Коноплина // В сборнике: Актуальные проблемы молодежной науки в развитии АПК. Материалы Всероссийской (национальной) научно-практической конференции. - 2020. - С. 343-347.

148. Шмайхель, С. Е. Серологические свойства и антибиотикорезистентность изолятов бактерий рода Salmonella, выделенных из сырья животного происхождения / С.Е. Шмайхель, Н.Б. Шадрова, Е.С. Ерофеева, С.И. Данильченко // Ветеринария сегодня. - 2019. - № 4. - С. 25-30.

149. Шустер, Б. Ю. Сальмонеллезы у животных / Б.Ю. Шустер // Инфекционные болезни животных: Справочник / Под ред. Д.Ф. Осидзе. - М.: Агропромиздат. - 1987. - С. 195-203.

150. Acevedo-Villanueva K.Y. Efficacy of chitosan-based nanoparticle vaccine administered to broiler birds challenged with Salmonella / K.Y. Acevedo-Villanueva, B. Lester, S. Renu, Y. Han, R. Shanmugasundaram, R. Gourapura, R. Selvaraj // PLoS One. - 2020. - Vol. 15(4): e0231998.

151. Anh Dao H.T. Study of Salmonella, Campylobacter, and Escherichia coli contamination in raw food available in factories, schools, and hospital canteens in Hanoi, Vietnam / H.T. Anh Dao, P.T. Yen // Ann N Y Acad Sci. - 2006. - Vol. 84. - P. 262-265.

152. Anh Nguyen D.T. Prevalence, antibiotic resistance, and extended-spectrum and AmpC P-lactamase productivity of Salmonella isolates from raw meat and seafood samples in Ho Chi Minh City, Vietnam / D.T. Anh Nguyen, M. Kanki, P.D. Nguyen,

H.T. Le, P.T. Ngo, D.N. Tran, N.H. Le, C.V. Dang, T. Kawai, R. Kawahara, S. Yonogi, Y. Hirai, M. Jinnai, S. Yamasaki, Y. Kumeda, Y. Yamamoto // International Journal of Food Microbiology. - 2016. - Vol. 236. - P. 115-122

153. Aung K.T. Distribution of Salmonella Serovars in Humans, Foods, Farm Animals and Environment, Companion and Wildlife Animals in Singapore / K.T. Aung, W.C. Khor, S. Octavia, A. Ye, J. Leo, P.P. Chan, G. Lim, W.K. Wong, B.Z.Y. Tan, J. Schlundt, A. Dalsgaard, L.C. Ng, Y.N. Lin // Int J Environ Res Public Health. - 2020. -Vol. 17(16):5774. doi: 10.3390/ijerph17165774.

154. Ball T. International lineages of Salmonella enterica serovars isolated from chicken farms, Wakiso District, Uganda / T. Ball, D. Monte, A. Aidara-Kane, J. Matheu, H. Ru, S. Thakur, F. Ejobi, P. Fedorka-Cray // PLoS One. - 2020. - Vol. 15(1): e0220484.

155. Barrow P.A. Pullorum disease and fowl typhoid-new thoughts on old diseases: a review / P.A. Barrow, O.C. Freitas Neto // Avian Pathol. - 2011. - Vol. 40. - P. 1-13.

156. Becerra S.C. An optimized staining technique for the detection of Gram positive and Gramnegative bacteria within tissue / S.C. Becerra, D.C. Roy, C.J. Sanchez, R.J. Christy, D.M. Burmeister // BMC research notes. - 2016. - Vol. 216 (9). 10. http://dx.doi.org/10.1186/s13104-016-1902-0.

157. Casanova L.M. Antibiotic-resistant Salmonella in swine wastes and farm surface waters / L.M. Casanova, V.R. Hill, M.D. Sobsey // Lett Appl Microbiol. - 2020. - Vol. 71(1). - P. 117-123.

158. Chang R. Assessment of gaseous ozone treatment on Salmonella Typhimurium and Escherichia coli O157:H7 reductions in poultry litter / Chang R, Pandey P, Li Y, Venkitasamy C, Chen Z, Gallardo R, Weimer B, Jay-Russell M, Weimer B. // Waste Manag. - 2020. - Vol. 117. - P. 42-47.

159. Collineau L. A within-flock model of Salmonella Heidelberg transmission in broiler chickens / L. Collineau, C. Phillips, B. Chapman, A. Agunos, C. Carson, A. Fazil, R.J. Reid-Smith, B.A. Smith // Prev Vet Med. - 2020. - Vol. 174:104823.

160. Crouch C.F. Safety and efficacy of a novel inactivated trivalent Salmonella enterica vaccine in chickens / C.F. Crouch, T. Nell, M. Reijnders, T. Donkers, C. Pugh,

A. Patel, P. Davis, M.C.W. Hulten, S.P.W. Vries // Vaccine. - 2020. - Vol. 38(43). - P. 6741-6750.

161. Dang X.S. Quantitative risk assessment of human salmonellosis in the smallholder pig value chains in urban of Vietnam / X.S Dang , V.H. Nguyen, F. Unger, D.P. Pham, D. Grace, T.N. Tran, M. Barot, T.N. Pham, K. Makita // Int J Public Health. - 2017. - Vol. 62. - P. 93-102.

162. Dang Xuan S. Risk factors associated with Salmonella spp. prevalence along smallholder pig value chains in Vietnam / S. Dang Xuan, H. Nguyen Viet, P. Pham Duc, F. Unger, N. Chan Thi, D. Grace, K. Makita // Int J Food Microbiol. - 2019. -Vol. 290. - P. 105-115. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2018.09.030. Epub 2018 Oct 6.

163. Djeffal S. Prevalence and risk factors for Salmonella spp. contamination in broiler chicken farms and slaughterhouses in the northeast of Algeria / S. Djeffal, B. Mamache, R. Elgroud, S. Hireche, O. Bouaziz // Veterinary World. - 2018. - Vol. 11(8). - P. 1102-1108.

164. Drauch V. In-vitro testing of bacteriostatic and bactericidal efficacy of commercial disinfectants against Salmonella Infantis reveals substantial differences between products and bacterial strains / Drauch V, Ibesich C, Vogl C, Hess M, Hess C. // Int J Food Microbiol. - 2020. - Vol. 328:108660. doi: 10.1016/j.ijfoodmicro.2020.108660. Epub 2020 May 14.

165. El Allaoui A. Contamination of broiler turkey farms by Salmonella spp. in Morocco: prevalence, antimicrobial resistance and associated risk factors / A. El Allaoui, F. Rhazi Filali, N. Ameur, B. Bouchrif // Rev Sci Tech. - 2017. - Vol. 36(3). -P. 935-946.

166. Frye J.G. Genetic mechanisms of antimicrobial resistance identified in Salmonella enterica, Escherichia coli, and Enteroccocus spp. isolated from U.S. food animals / J.G. Frye, C.R. Jackson / Front Microbiol. - 2013. - Vol. 4:135. doi: 10.3389/fmicb.2013.00135. eCollection 2013.

167. Godinez-Oviedo A. Salmonella enterica in Mexico 2000-2017: Epidemiology, Antimicrobial Resistance, and Prevalence in Food / A. Godinez-Oviedo, M.L. Tamplin,

J.P. Bowma, M. Hernández-Iturriaga // Foodborne Pathog Dis. - 2020. - Vol. 17(2). -P. 98-118.

168. Guillén S. Stress resistance of emerging poultry-associated Salmonella serovars / S. Guillén, M. Marcén, I. Álvarez, P. Mañas, G. Cebrián // Int J Food Microbiol. -2020. - Vol. 15; 335:108884.

169. Huang K. Dynamics and Outcome of Macrophage Interaction Between Salmonella Gallinarum, Salmonella Typhimurium, and Salmonella Dublin and Macrophages From Chicken and Cattle / K. Huang, A.H. Fresno, S. Skov, J.E. Olsen // Front Cell Infect Microbiol. - 2020. - Vol. 10; 9:420.

170. Huong L.Q. Survival of Salmonella spp. and fecal indicator bacteria in Vietnamese biogas digesters receiving pig slurry / Huong L.Q, Forslund A, Madsen H, Dalsgaard A // Int J Hyg Environ Health. - 2014. - Vol. 217. - N. 7. - P. 785-795.

171. Hwang D. Predicting Salmonella prevalence associated with meteorological factors in pastured poultry farms in southeastern United States / D. Hwang, M.J. Rothrock, H. Pang, M. Guo, A. Mishra // Sci Total Environ. - 2020. - Vol. 713:136359.

172. Hyobi K. Prevalence and antimicrobial resistance of Salmonella spp. and Escherichia coli isolated from ducks in Korea / K. Hyobi, L. Jiyoung, J. Yangho, C. Byungjoon, K. Aeran, C. Nonghoon // Korean Journal of Veterinary Research. - 2016. - Vol. 56(2). - P. 91-95.

173. Jamali H. Prevalence and antimicrobial resistance of Listeria, Salmonella, and Yersinia species isolates in ducks and geese / H. Jamali, B. Radmehr, S. Ismail // Poult Sci. - 2014. - Vol. 93(4). - P. 1023-1030.

174. Jibril A.H. Prevalence and risk factors of Salmonella in commercial poultry farms in Nigeria / A.H. Jibril, I.N. Okeke, A. Dalsgaard, E. Kudirkiene, O.C. Akinlabi, M.B. Bello, J.E. Olsen // PLoS One. - 2020. - Vol. 15(9):e0238190.

175. Kim J.H. Characterization of Salmonella spp.-specific bacteriophages and their biocontrol application in chicken breast meat / J.H. Kim, S.J. Jung, M.F.R. Mizan, S.H. Park, S.D. Ha // J Food Sci. - 2020. - Vol. 85(3). - P. 526-534.

176. Kowalska J.D. Anti-Salmonella Potential of New Lactobacillus Strains with the Application in the Poultry Industry / J.D. Kowalska, A. Nowak, K. Slizewska, M. Stanczyk, M. Lukasiak, J. Dastych // Pol J Microbiol. - 2020. - Vol. 69(1):5-18.

177. Kumar S. Efficacy of peroxy acetic acid in reducing Salmonella and Campylobacter spp. populations on chicken breast fillets / S. Kumar, M. Singh, D.E. Cosby, N.A. Cox, H. Thippareddi // Poult Sci. - 2020. - Vol. 99(5). - P. 2655-2661.

178. Kumar T. Epidemiology of fowl typhoid in Haryana, India / T. Kumar, N.K. Mahajan, N.K. Rakha // World Poult Sci J. - 2010. - Vol. 66. - P. 503-510.

179. Lan T.T.Q. Distribution of Virulence Genes among Salmonella Serotypes Isolated from Pigs in Southern Vietnam / T.T.Q. Lan, M.L. Gaucher, N.T.M. Nhan, A. Letellier, S. Quessy // J Food Prot. - 2018. - Vol. 81(9). - P. 1459-1466.

180. Lettini A.A. Distribution of Salmonella Serovars and Antimicrobial Susceptibility from Poultry and Swine Farms in Central Vietnam / A.A. Lettini, T.T. Vo, E. Marafin, A. Longo, K. Antonello, P. Zavagnin, L. Boat, M. Mancin, V. Cibin, M. Morini, T.S.M. Dang, T.T. Nguyen, T.H. Pham, L. Le, D.T. Nguyen, A. Ricci // Zoonoses Public Health. - 2016. - Vol. 63(7). - P. 569-576.

181. Li B. Prevalence and etiologic agent of Salmonella in livestock and poultry meats in Huai'an City during 2015-2016 / B. Li, C. Liu, L. Liu, S. Li, N. Fan, H. Hou, J. Jin, Y. Xing // Wei Sheng Yan Jiu. - 2018. - Vol. 47(2). - P. 260-300.

182. Li Q. rOmpF and OMVs as efficient subunit vaccines against Salmonella enterica serovar Enteritidis infections in poultry farms / Q. Li, J. Ren, H. Xian, C. Yin, Y. Yuan, Y. Li, R. Ji, C. Chu, Z. Qiao, X. Jiao // Vaccine. - 2020. - Vol. 38(45). - P. 7094-7099.

183. Li Y. Prevalence and antimicrobial susceptibility of Salmonella in the commercial eggs in China / Y. Li, X. Yang, H. Zhang, H. Jia, X. Liu, B. Yu, Y. Zeng, Y. Zhang, X. Pei, D. Yang / Int J Food Microbiol. - 2020. - Vol. 325:108623.

184. Luu Q.H. Prevalence of Salmonella in retail chicken meat in Hanoi, Vietnam / Q.H. Luu, R. Fries, P. Padungtod, T.H. Tran, M.N. Kyule, M.P. Baumann, K.H. Zessin // Ann N Y Acad Sci. - 2006. - Vol. 1081. - P. 257-261.

185. Luvsansharav U.O. Salmonella Serotypes: A Novel Measure of Association with Foodborne Transmission / U.O. Luvsansharav, A. Vieira, S. Bennett, J. Huang, J.M. Healy, R.M. Hoekstra, B.B. Bruce, D. Cole // Foodborne Pathog Dis. - 2020. -Vol. 17(2). - P. 151-155.

186. Lv Q.Y. Seroprevalence, Risk Factors, and Genotypes of Toxoplasma gondii in Free-Range Chickens Intended for Human Consumption in China / Q.Y. Lv, M.X. Quan, H.L. Tang, X.T. Wu, G.H. Liu, F. Li, S.F. Hu // Foodborne Pathog Dis. - 2020.

187. Magdy O.S. Genetic diversity of Salmonella enterica recovered from chickens farms and its potential transmission to human / O.S. Magdy, M.I. Moussa, H.A. Hussein, M.D. El-Hariri, A. Ghareeb, H.A. Hemeg, K.S. Al-Maary, A.S. Mubarak, W.K. Alwarhi, J.K. Eljakee, S.A. Kabli // J Infect Public Health. - 2020. - Vol. 13(4). -P. 571-576.

188. Manh L.H. Benefits of bacterial Insulin In salt in meat and Baltic salon of Ben Tre city / L.H. Manh, T.X. Bao, N.N.X. Dung, B.T.L. Minh // Can Tho School of Science and Technology. - 2016. - Vol. 2. - P. 56-60.

189. Meerburg B.G. Role of rodents in transmission of Salmonella and Campylobacter / B.G. Meerburg, A. Kijlstra // J Sci Food Agric. - 2007. - Vol. 81. - P. 2774-2781.

190. Mendonfa B.S. Research Note: The use of ammonia gas for Salmonella control in poultry litters / Mendonfa BS, de Oliveira WR, Pereira RS, Santos LR, Rodrigues LB, Dickel EL, Daroit L, Pilotto F. // Poult Sci. - 2021. - Vol. 100(1). - P. 314-318.

191. Minh D.K. Prevalence and genomic characterization of Salmonella Weltevreden in commercial pig feed / D.K. Minh, Y.M.G. Hounmanou, H.B.T. Mai, J.E. Olsen, A. Dalsgaard // Vet Microbiol. - 2020. 246:108725.

192. Moreira Filho, A. L. Intra-Amnionic Threonine Administered to Chicken Embryos Reduces Salmonella Enteritidis Cecal Counts and Improves Posthatch Intestinal Development / Moreira Filho A. L., C. J. B. Oliveira, O. C. Freitas Neto, C. M. C. G. de Leon, M. M. S. Saraiva, M. F. S. Andrade, B. White, P. E. N. Givisiez // Journal of Immunology Research. - 2018. - Vol. 2018. - P. 9 // DOI: https://doi.org/10.1155/2018/9795829

193. Nghiem M.N. Antimicrobial resistance gene expression associated with multidrug resistant Salmonella spp. isolated from retail meat in Hanoi, Vietnam / M.N Nghiem, V.T Nguyen, T.T.H Nguyen, T.D Nguyen, T.T.B Vo // Int Microbiol. - 2017. - Vol. 20. - N. 2. - P. 85-93.

194. Ngoc P.T. The prevalence of Salmonella in chicken meat production chain in several districts of the Hanoi city / P.T. Ngoc, T.T. Quy Duong, T.T. Huong Giang, L.T.H. Quynh, T.T. Nhat, D.T. Thanh Son, L.V. Ba // Journal of Engineering Science and Veterinary Medicine. - 2016. - Vol. 5. - P. 32-41.

195. Nguyen K.T. The importance of wild gecko as a source of human Salmonella infection / K.T. Nguyen, M. Hasegawa, T.T. Nguyen, T.M.T. Vo, T.H.T. Tran, T.L.K. Ly, T. Taniguchi, H. Hayashidani // J Vet Med Sci. - 2018. - Vol. 80(8). - P. 13451347.

196. Nhung N.T. Antimicrobial residues and resistance against critically important antimicrobials in non-typhoidal Salmonella from meat sold at wet markets and supermarkets in Vietnam / N.T. Nhung, N.T.B. Van, N.V. Cuong, T.T.Q. Duong, T.T. Nhat, T.T.T. Hang, N.T.H. Nhi, B.T. Kiet, V.B. Hien, P.T. Ngoc, J. Campbella, G. Thwaites, J. Carrique-Mas // International Journal of Food Microbiology. - 2018. - Vol. 266. - P. 301-309.

197. Parisi A. The role of animals as a source of antimicrobial resistant nontyphoidal Salmonella causing invasive and non-invasive human disease in Vietnam / A. Parisi, T.L.T. Phuong, A.E. Mather, T. Jombart, H.T. Tuyen, N.P.H. Lan, N.H.T. Trang, J. Carrique-Mas, J.I. Campbell, N.V. Trung, K. Glass, M.D. Kirk, S. Baker // Infect Genet Evo. - 2020. - Vol. 85:104534.

198. Procura F. Prevalence, antimicrobial resistance profile and comparison of methods for the isolation of salmonella in chicken liver from Argentina // F. Procura, D.J. Bueno, S.B. Bruno, A.D. Rogé // Food Res Int. - 2019. - Vol. 119. - P. 541-546.

199. Qamar A. Prevalence and antibiotic resistance of Salmonella spp. in South Punjab-Pakistan / A. Qamar, T. Ismail, S. Akhtar // PLoS One. - 2020. - Vol. 15(11):e0232382.

200. Quadros C.L. Antimicrobial and disinfectant susceptibility of salmonella serotypes isolated from swine slaughterhouses / C.L. Quadros, L. Manto, E. Mistura, B. Webber, G.A. Ritterbusch, K.A. Borges, T.Q. Furian, L.B. Rodrigues, L.R. Dos Santos / Curr Microbiol. - 2020. - Vol. 77(6). - P. 1035-1042.

201. Redweik G.A.J. Protection against avian pathogenic Escherichia coli and Salmonella Kentucky exhibited in chickens given both probiotics and live Salmonella vaccine / Redweik GAJ, Stromberg ZR, Van Goor A, Mellata M. // Poult Sci. - 2020. -Vol. 99(2). - P. 752-762.

202. Renu S. Chitosan-adjuvanted Salmonella subunit nanoparticle vaccine for poultry delivered through drinking water and feed / S. Renu, Y. Han, S. Dhakal, Y.S. Lakshmanappa, S. Ghimire, N. Feliciano-Ruiz, S. Senapati, B. Narasimhan, R. Selvaraj, G.J. Renukaradhya // Carbohydr Polym. - 2020. - Vol.243:116434. doi: 10.1016/j.carbpol.2020.116434. Epub 2020 May 19.

203. Sánchez-Salazar E. Antibiotic resistance of Salmonella strains from layer poultry farms in central Ecuador / E. Sánchez-Salazar, M.E. Gudiño, G. Sevillano, J. Zurita, R. Guerrero-López, K. Jaramillo, W. Calero-Cáceres / J Appl Microbiol. - 2020. - Vol. 128(5). - P. 1347-1354.

204. Santos P.D.M. PCR-based detection and serovar identification of Salmonella in retail meat collected from wet markets in Metro Manila, Philippines / P.D.M. Santos, K.W. Widmer, W.L. Rivera // PLoS One. - 2020. - Vol. 15(9): e0239457.

205. Shimojima Y. Salmonella Serovars Isolated from Retail Meats in Tokyo, Japan and Their Antimicrobial Susceptibility / Y. Shimojima, Y. Nishino, R. Fukui, S. Kuroda, J. Suzuki, K. Sadamasu // Shokuhin Eiseigaku Zasshi. - 2020. - Vol. 61(6). -P. 211-217.

206. Shivaprasad H.L. Fowl typhoid and pullorum disease / H.L. Shivaprasad // Rev Sci Tech. - 2000. - Vol. 19(2). - P. 405-424.

207. Shivaprasad H.L. Fowl typhoid and pullorum disease / H.L. Shivaprasad // Rev Sci Tech. - 2000. - Vol. 19(2). - P. 405-424.

208. Siriken B. Prevalence and Antibiotic Resistance of Salmonella Enteritidis and Salmonella Typhimurium in Ground Beef and Meatball Samples in Samsun, Turkey / B. Siriken, G. Al, I. Erol // Microb Drug Resist. - 2020. - Vol. 26(2). - P. 136-144.

209. Skovorodin E. Antioxidant influence on poultry liver morphology and hepatocyte ultrastructure / E. Skovorodin, G. Bronnikova, G. Bazekin, O. Dyudbin, R. Khokhlov // Veterinary World. - 2019. - Vol. 12(11). - P. 1716-1728.

210. Sorge, N. M. Penetration and activation of brain endothelium by Salmonella enterica serovar Typhimurium / N. M. van Sorge, P.A. Zialcita, S.H. Browne, D. Quach, D.G. Guiney, K.S. Doran // The Journal of infectious diseases. - 2011. - № 203 (3) - P.401-405 // DOI: https://doi.org/10.1093/infdis/jiq048

211. Sun H. The Epidemiology of Monophasic Salmonella Typhimurium / H. Sun, Y. Wan, P. Du, L. Bai // Foodborne Pathog Dis. - 2020. - Vol. 17(2). - P. 87-97.

212. Takaya A. Humoral Immunity vs. Salmonella / A. Takaya, T. Yamamoto, K. Tokoyoda // Front Immunol. - 2020. - Vol. 10:3155. doi: 10.3389/fimmu.2019.03155. eCollection 2019.

213. Topalcengiz Z. Survival of Salmonella in Various Wild Animal Feces That May Contaminate Produce / Z. Topalcengiz, P.M. Spanninger, S. Jeamsripong, A.K. Persad, R.L. Buchanan, J. Saha, J. Lejeune, M.T. Jay-Russell, K.E. Kniel, M.D. Danyluk // J Food Prot. - 2020. - Vol. 83(4). - P. 651-660.

214. Trung N.V. Non-Typhoidal Salmonella Colonization in Chickens and Humans in the Mekong Delta of Vietnam / N.V. Trung, J.J. Carrique, N.H. Nghia, L.T.P. Tu, H.H. Mai, H.T. Tuyen, J. Campbell, N.T. Nhung, H.N. Nhung, P.V. Minh, T.T.B. Chieu, T.Q. Hieu, N.T.N. Mai, S. Baker, J.A. Wagenaar N.T. Hoa, C. Schultsz // Zoonoses Public Health. - 2017. - Vol. 64(2). - P. 94-99.

215. Tu L.T. High levels of contamination and antimicrobial-resistant non-typhoidal Salmonella serovars on pig and poultry farms in the Mekong Delta of Vietnam / L.T Tu, N.V Hoang, N.V Cuong, Campbell J, Bryant J.E, United N.T, B.T Kiet, Thompson C, D.T Duy, V.V Phat, V.B Hien, Thwaites G, Baker S, Carrique-Mas J.J // Epidemiol Infect. - 2015. - Vol. 143. - N. 14. - P. 3074-3086.

216. Van T.T. Detection of Salmonella spp. in retail raw food samples from Vietnam and characterization of their antibiotic resistance / TT Van, G Moutafis, T Istivan, LT Tran, PJ. Coloe // Appl Environ Microbiol. - 2007. - Vol. 73(21). - P. 6885-6890.

217. Wilsmann D.E. Electrochemically-Activated Water Presents Bactericidal Effect Against Salmonella Heidelberg Isolated from Poultry Origin / Wilsmann DE, Carvalho D, Zottis Chitolina G, Apellanis Borges K, Quedi Furian T, Carvalho Martins A, Webber B, Pinheiro do Nascimento V. // Foodborne Pathog Dis. - 2020. - Vol. 17(3). -P. 228-233.

218. Yang J. Prevalence and Characterization of Antimicrobial Resistance in Salmonella enterica Isolates from Retail Foods in Shanghai, China / J. Yang, Z. Zhang, X. Zhou, Y. Cui, C. Shi, X. Shi // Foodborne Pathog Dis. - 2020. - Vol. 17(1). - P. 3543.

219. Zhu Y. Antimicrobial resistance and resistance genes in Salmonella strains isolated from broiler chickens along the slaughtering process in China / Y. Zhu, H. Lai, L. Zou, S. Yin, C. Wang, X. Han, X. Xia, K. Hu, L. He, K. Zhou, S. Chen, X. Ao, S. Liu // Intern. J. of Food Microbiology. - 2017. - Vol. 259. - P. 43-51.

ПРИЛОЖЕНИЕ А

Рисунок А.1 - Грамота