Морфофункциональная характеристика механизмов никотиновой холинергической регуляции нейрон-глиальных взаимодействий и метаболической активности в симпатическом ганглии тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.25, доктор биологических наук Гореликов, Петр Леонидович

• Гореликов, Петр Леонидович
• доктор биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации доктор биологических наук Гореликов, Петр Леонидович

Введение.

Глава 1. Обзор литературы.

1.1. Никотиновый холинергический синапс.

1.1.1. Функциональное значение.

1.1.2. Структурно-молекулярная организация и механизмы ингибирования.

1.2. Современные представления о модулирующей роли синапсов в метаболизме нейрона.

1.2.1. Связь синаптической активности с экспрессией белков.

1.2.2. Компартментализация синтеза белка в нейронах. Связь синаптической активности с локальным синтезом белка

1.3. Представления о внутриклеточных регуляторных каскадах, индуцированных транссинаптической передачей

1.3.1. Транссинаптическая регуляция белкового синтеза

1.3.2. Са2+сигнал.

1.4. Участие синапсов в кооперативном взаимодействии нейронов и глиальных клеток.

1.4.1. Современные представления о нейрон-глиальном взаимодействии.

1.4.2. Современные представления о морфо-функциональной организации синапса. Концепция трехстороннего синапса

1.4.3. Гипотеза АМ^БН. Участие синапсов в энергетическом взаимодействии нейронов и глиоцитов.

1.5. Функциональное значение исследуемых параметров

1.5.1. Связь рРНК с пластическим обменом нейронов и глиоцитов.

1.5.2. Ферментативная система ЛДГ.

1.5.3. Аденилатные макроэрги.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфофункциональная характеристика механизмов никотиновой холинергической регуляции нейрон-глиальных взаимодействий и метаболической активности в симпатическом ганглии»

Фундаментальной проблемой нейробиологии является выяснение механизмов, обеспечивающих функционирование тканевых элементов нервной системы. Во многом ее решение зависит от знания синаптических процессов - важнейшего звена, обеспечивающего интегративную деятельность нервной системы. В ряду нейротрансмиттерных систем особую роль играют никотиновые холинергические синапсы паравертебральных симпатических ганглиев, образованные преганглионарными волокнами. Никотиновые холино-рецепторы в указанных синапсах представляют ключевое функциональное звено, через которое осуществляется передача информации в ганглиях и происходит активизация автономной нервной системы (Ноздрачев А.Д., Фатеев М.М., 2002; De Biassi M. et al., 2000; De Biassi M., 2002).

Важным интегративно-координационным центром автономной регуляции является краниальный шейный ганглий, через никотиновые холино-рецепторы которого осуществляется контроль общего сосудистого тонуса и гемодинамических показателей, обеспечивается деятельность эпифиза и регуляция многих других жизненно важных висцеральных функций (Ноздрачев А.Д., Пушкарев Ю.П., 1980; Skok V., 2002; Wang N. et al., 2004; Asamoto К., 2005).

Правомерно в связи с этим предполагать, что столь значимая функциональная роль никотиновых холинорецепторов в информационном обеспечении краниального шейного, равно как и других экстрамуральных симпатических ганглиев, должна определенным образом проявиться и в участии этих рецепторов в молекулярно-клеточных механизмах непосредственно организующих деятельность самих симпатических ганглиев. Такая постановка вопроса представляет вполне понятный теоретический и практический интерес, как с точки зрения выяснения общих принципов организации работы периферических ганглиев, так и в плане изучения последствий модуляции активности периферических никотиновых холинорецепторов, как объекта воздействия наркотических субстанций и лекарственных препаратов.

Объективной основой для проведения исследования в обозначенном направлении служит значительное число экспериментальных данных последних лет, полученных в отношении других отделов нервной системы, которые показывают, что роль синаптических процессов не ограничивается обеспечением только лишь информационной связи между нейронами. Напротив, эти данные позволяют рассматривать соответствующие синапсы в качестве биохимически самоорганизующихся систем, которые располагают собственными механизмами контроля за всеми этапами белкового синтеза в постсинаптических нейронах (Tiedge Н., 2005; Hirokawa N., 2006; Pfeiffer В., Huber К., 2006) и непосредственно участвуют в таком специфическом клеточном механизме, как нейрон-глиальное взаимодействие (Fellin Т., Carmig-noto G., 2004; Hertz L., 2004; Magistretti P., 2006). Вместе с тем нейротро-фическая роль синаптического сигнала через никотиновые холинорецепторы в регуляторных механизмах симпатических ганглиев не изучена.

Цель исследования

Установить морфофункциональные закономерности метаболического ответа краниального шейного симпатического ганглия и входящих в его состав нейронов и сателлитных глиоцитов на экспериментально вызванные изменения в численности свободно функционирующих никотиновых холинер-гических рецепторов.

Задачи исследования

1. Установить закономерности в изменениях содержания рРНК в симпатических нейронах и окружающих нейроны сателлитных глиоцитах при применении разных доз ганглиоблокатора, вызывающих блокирование относительно небольшого, значительного числа никотиновых холинорецепторов и полное блокирование никотиновых холинорецепторов, а также в ходе последующего восстановления численности функционирующих никотиновых холинорецепторов после применения разных моделей блокады.

2. Провести сравнительный анализ модуляций в содержании рРНК в симпатических нейронах и окружающих сателлитных глиоцитах при разной численности блокированных никотиновых холинорецепторов.

3. Определить изоферментный состав и спектр ферментативной системы лактатдегидрогеназы (ЛДГ) на уровне интактного симпатического ганглия и на клеточном уровне - в симпатических нейронах и сателлитных глиоцитах.

4. Выявить закономерности в изменениях активности ферментативной системы ЛДГ при частичном и полном блокировании никотиновых холинорецепторов в симпатическом ганглии, а также в симпатических нейронах и сателлитных глиоцитах.

5. Определить основные закономерности в изменениях содержания аде-нилатных макроэргов (АТФ, АДФ, АМФ) в симпатическом ганглии, связанные с частичным и полным блокированием никотиновых холинорецепторов, а также динамику этих показателей в процессе последующего восстановления после прекращения действия блокады.

6. Провести комплексный анализ полученных динамических изменений метаболических показателей при экспериментально вызванных флук-туациях численности свободно функционирующих никотиновых холинер-гических рецепторов. Определить роль никотиновых холинергических рецепторов в регуляции метаболического статуса симпатического ганглия и межклеточном взаимодействии между симпатическими нейронами и сателлитными глиоцитами и вероятный механизм, лежащий в основе этой регуляции.

Основные положения, выносимые на защиту

На основании анализа динамики метаболических процессов при модуляциях синаптического холинергического сигнала разработана функционально-информационная модель регуляции краниального шейного симпатического ганглия. Синаптический сигнал, поступающий через никотиновые холинорецепторы в синапсах симпатических нейронов, является для симпатического ганглия системообразующим фактором, который трансформирует и направляет метаболизм и создает специфическую клеточную интеграцию в ганглии для выполнения этим органом адекватной функции.

В рамках представленной модели установлено следующее.

Синаптический сигнал, через никотиновые холинорецепторы симпатических нейронов: управляет метаболическим статусом симпатического ганглия, осуществляя регуляцию базового уровня энергетического гомеостаза и изменяя активность белок-синтезирующей системы нейронов и саттелитных глио-цитов; потенцирует формирование специфической межклеточной интегратив-ной единицы, связывая симпатические нейроны и соседние сателлитные глиоциты в единую функционально - метаболическую систему.

В отсутствие холинергического синаптического сигнала в симпатическом ганглии оказываются задействованными механизмы, поддерживающие только его системы жизнеобеспечения, а симпатические нейроны и сателлитные глиоциты представляют собой метаболически обособленные друг от друга клеточные системы.

На клеточном уровне показано, что синаптический сигнал через никотиновые холинергические рецепторы: индуктивно воздействует на метаболическую активность симпатических нейронов, вызывая в них повышение уровня активности белок - синтезирующей системы; модулирует в нейронах активность белок - синтезирующей системы; обеспечивает энергетический гомеостаз в нейронах, по крайней мере, на уровне регуляции активности ферментативной системы ЛДГ; обеспечивает синхронизацию процессов синтеза белка в нейронах и соседних сателлитных глиоцитах на уровне трансляции, и детерминирует анаэробную направленность изоферментного профиля ЛДГ в сателлитных глиоцитах.

Научная новизна

Установлены раннее неизвестные принципы морфофункциональной организации симпатического ганглия, которые базируются на том, что синап-тические сигналы, поступающие через никотиновые холинорецепторы симпатических нейронов, управляют метаболическими процессами и мобилизуют специфические клеточные механизмы в симпатическом ганглии, выступая в качестве системообразующего фактора, обеспечивающего его активную деятельность.

Впервые показано, что в симпатическом ганглии нейроны и окружающие нейроны сателлитные глиоциты при определенных условиях образуют единую функционально - метаболическую систему. Выявлены ранее неизвестные условия и характер взаимодействия между этими типами клеток, которые заключаются в том, что нейроны и сателлитные глиоциты в симпатическом ганглии вступают в метаболическое взаимодействие только при наличии синаптического сигнала, поступающего через никотиновые холинорецепторы симпатических нейронов. При этом метаболическая активность и энергетические механизмы сателлитных глиоцитов регулируются функциональным состоянием нейронов, которые через ионотропные никотиновые холинорецепторы осуществляют интеграцию своего собственного метаболизма с метаболизмом окружающих сателлитных глиоцитов.

В эксперименте впервые показано, что в симпатическом ганглии создаются условия для энергетического взаимодействия между симпатическими нейронами и сателлитными глиоцитами и существует высокая вероятность реализации в краниальном шейном ганглии механизма энергетического гомеостаза на основе клеточной интеграции, описываемого гипотезой ANLSH (astrocyte-neuron lactate shuttle hypothesis) для головного мозга, которая предполагает существование между глиоцитами (астроцитами) и нейронами лактатного челночного механизма.

Впервые определен изоферментный спектр ЛДГ для краниального шейного ганглия и изоферментный профиль ЛДГ для симпатических нейронов и сателлитных глиоцитов.

Научно-практическая значимость

Разработанная в работе функционально-информационная модель регуляции краниального шейного симпатического ганглия представляет теоретический и практический интерес с позиций понимания специфических механизмов и общих принципов, лежащих в основе морфофункциональной организации периферических ганглиев и в целом симпатического отдела нервной системы.

Показанное в работе нейротрофическое значение холинергического сигнала через никотиновые холинорецепторы указывает на необходимость учета и оценки последствий модуляций активности периферических никотиновых холинорецепторов в краниальном шейном симпатическом ганглии, как объекта воздействия наркотических субстанций и лекарственных препаратов. Вместе с этим ключевая роль синаптических процессов с участием никотиновых холинорецепторов в организации контроля метаболизма и клеточного взаимодействия в краниальном шейном симпатическом ганглии указывает на возможность адресного, направленного на периферические никотиновые холинорецепторы, фармакологического контроля и коррекции симпатических функций.

13

Описанные в работе динамика энергетических и метаболических показателей и происходящие изменения в нейрон-глиальном взаимодействии расширяют фактологическую базу для расшифровки молекулярно-клеточных механизмов патогенеза заболеваний, связанных с нарушением синаптической функции холинергической передачи через никотиновые рецепторы.

Выявленный эффект применяемого в работе ганглиолитика, относящегося к группе бис-катионных аммониевых соединений, на динамику метаболических сдвигов в симпатическом ганглии и входящих в его состав нейронов и сателлитных глиоцитов восполняет существующий пробел в представлениях о молекулярно-клеточных механизмах действия этой группы неконкурентных холинолитиков в самом объекте блокады - краниальном шейном симпатическом ганглии.

Заключение диссертации по теме «Гистология, цитология, клеточная биология», Гореликов, Петр Леонидович

238 ВЫВОДЫ

1. Основополагающий принцип морфофункциональной организации симпатического ганглия заключается в сопряжении синаптических сигналов поступающих через никотиновые холинорецепторы симпатических нейронов с метаболическими процессами в симпатическом ганглии.

2. Синаптический сигнал через никотиновые холинергические рецепторы формирует в симпатическом ганглии временную межклеточную интегра-тивную систему, состоящую из метаболически взаимодействующих между собой симпатических нейронов и окружающих нейроны сателлитных глиоцитов. В отсутствие такого сигнала симпатические нейроны и сателлитные глиоциты представляют собой метаболически самостоятельные, независящие друг от друга клеточные системы.

3. Индуцируемое холинергическим синаптическим сигналом нейрон - гли-альное взаимодействие проявляется в синхронизации процессов синтеза белка в симпатических нейронах и сателлитных глиоцитах в ответ на изменения синаптической активности.

4. В обусловленном синаптическим сигналом межклеточном взаимодействии ведущая роль принадлежит симпатическим нейронам, которые через никотиновые холинергические рецепторы осуществляют контроль за процессами синтеза белка на уровне трансляции в соседних с ними сателлитных глиоцитах и детерминируют в сателлитных глиоцитах специфический изофермент-ный профиль ЛДГ, определяющий в этих клетках анаэробную направленность энергетических процессов.

5. Энергетические процессы в симпатических нейронах и сателлитных глиоцитах существенно различаются. В симпатических нейронах ферментативная система ЛДГ ориентирована на обеспечение доминирования аэробной фазы энергопродукции. В сателлитных глиоцитах изоферментный профиль ЛДГ, напротив, функционально обеспечивает доминирование анаэробной фазы и связанной с ней интенсивной продукцией лактата.

6. Синаптические никотиновые холинорецепторы являются необходимым функциональным звеном, через которое в ответ на изменения синаптической активности холинергических синапсов осуществляется активизация процессов трансляции белка в симпатических нейронах. При этом синаптический сигнал, поступающий через никотиновые холинорецепторы, оказывает модулирующее влияние на процессы трансляции белка в нейронах, детерминируя относительную быстроту и интенсивность наступающего цитохимического ответа.

7. Сателлитные глиоциты краниального шейного симпатического ганглия в ответ на изменение синаптической активности проявляют высокую метаболическую лабильность, которая выражается в модуляциях содержания рРНК и изменениях изоферментного профиля ферментативной системы ЛДГ в этих клетках. В то же время метаболическая реакция сателлитных глиоцитов существенно отличается от реакции симпатических нейронов.

8. Ферментативная система ЛДГ в краниальном шейном симпатическом ганглии кроликов представлена в норме пятью основными изоформами: ЛДГ-1, -2, -3, -4 и -5. Наиболее активны анодные фракции ЛДГ-1 и ЛДГ-2. Относительная активность изоферментов в спектре ЛДГ последовательно убывает от ЛДГ-1 к ЛДГ-5.

9. Через синаптическое взаимодействие с никотиновыми холинорецепторами обеспечивается необходимый для нормальной функциональной деятельности симпатического ганглия изоферментный состав и уровень активности каждого из изоферментов ЛДГ, устанавливаются базовые параметры аденилатного пула макроэргов.

10. Полученные результаты по изучению динамических изменений энергетических и метаболических параметров дают основания заключить, что синаптический сигнал через никотиновые холинорецепторы управляет энергетическим и метаболическим статусом симпатического ганглия в условиях его нормальной функциональной деятельности.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

Установленные в работе морфофункциональные принципы синаптиче-ского управления молекулярно-клеточными механизмами в симпатическом ганглии могут быть экстраполированы на имеющие холинергическую регуляцию отделы головного мозга и ганглии автономной нервной системы, поскольку краниальный шейный симпатический ганглий во многом аналогичен другим периферическим ганглиям и, вместе с этим, по многим параметрам своей структурно - функциональной организации может рассматриваться в качестве естественной модели вышележащих отделов ЦНС.

Установленный в работе в нейрон-глиальном метаболическом взаимодействии закономерный контроль со стороны нейронов за функцией глиоцитов, необходимый для реализации нормальной функциональной деятельности, следует учитывать при исследовании патогенеза нервных расстройств и при анализе причин патологий, в основе которых лежит аномальное поведение глиоцитов в соответствующих отделах нервной системы.

Описанные в работе морфофункциональные изменения в молекулярных и клеточных механизмах при экспериментально вызванных модуляциях активных никотиновых холинорецепторов могут служить объективной основой при разработке средств фармакологического контроля функций симпатического отдела и препаратов синаптического действия.

Выявленное в работе нейротрофическое значение информационной нагрузки связанной с синаптической передачей в никотинчувствительных хо-линергических синапсах симпатического ганглия необходимо учитывать при разработке средств профилактики и коррекции нарушений автономных функций.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Гореликов, Петр Леонидович, 2008 год

1.Агроскин Л.С., Папаян Г.В. Цитофотометрия. Л.: Наука.- 1977.- 295 с.

2. Алексидзе Н.Г. О передаче метаболических сигналов в системе нейрон-нейроглия. В кн.: Функции нейроглии. П/р А.И.Ройтбака. Тбилиси: Мецниереба.- 1987.- С. 6 14.

3. Алексидзе Н.Г. Молекулярные и клеточные механизмы интегративной деятельности головного мозга. Тбилиси.: Тбилисский ун-т.- 1988.- 180 с.

4. Баранов М.Н. Изменения фосфорного обмена верхнего шейного симпатического и узловатого ганглиев при некоторых их функциональных состояниях. //Биохимия.- I960.- Т.25, № 5.- С. 781 786.

5. Беллер Н.Н., Болондинский В.К., Бусыгин И.И., Матросова О.Г., Ониско

6. B.А., Пастухов В.А., Пушкарев Ю.П. Холинэргические механизмы регуляции висцеральных функций. Л.: Наука.-1986.- 134 с.

7. Бродский В.Я. Трофика клетки. М.: Наука.- 1966.- 356 с.

8. Брумберг В.А., Певзнер Л.З. Нейрохимия изоферментов.Л.: Наука.-1975.-124 с.

9. Бужурина И.М., Панов М.А., Черная Н.Г. Скорость синтеза рРНК как отражение уровня метаболизма в клетках. //Мол. биол.- 1995.- Т.29, № 6.-С. 1336- 1340.

10. Булыгин И.А. Новые принципы структурно-функциональной организации симпатических ганглиев. Минск.: Наука и техника.-1979.-232 с.

11. Высоцкая Н.Б. Влияние ганглиолитиков на содержание фосфорных фракций в верхнем шейном ганглии. //Фармакол. токсикол.-1957.- Т.20, № 2,-С. 12-15.

12. Высоцкая H.Б. Влияние ганглиоблокирующих веществ на гликолити-ческие процессы в верхнем шейном ганглии. //Фармакол. токсикол.- 1960.-Т.23, № 2.- С. 155- 158.

13. Высоцкая Н.Б. Влияние ганглиоблокирующих веществ на напряжение кислорода в ткани верхнего шейного ганглия. //Фармакол. токсикол.-1961.-Т.24, № 6.- С. 687 689.

14. Высоцкая Н.Б. Влияние ганглиоблокирующих веществ на дыхание ткани верхнего шейного ганглия. //Фармакол. токсикол.- 1962,- Т.25, № 2.-С. 160-163.

15. Гайцхоки B.C. Информационные РНК клеток животных. М.: Медицина.-1980.- 200 с.

16. Герштейн JI.M., Сергутина A.B., Худоерков P.M. Морфо-химическая характеристика мозга крыс, генетически предрасположенных (Август) и устойчивых (Вистар) к эмоциональному стрессу. //Нейрохимия.- 2000.- Т.17, №2.- С. 135- 139.

17. Гейнисман Ю.Я. Структурные и метаболические проявления функции нейрона. М.: Наука.- 1974.- 207 с.

18. Гилъмиярова Ф.Н., Радомская В.М., Баишева Г.М., Кретова И.Г., Клейман М.С., Первова Ю.В. Роль гиперлактатдегидрогеназемии в индукции метаболических нарушений в организме. //Вопр.мед.хим.- 2001.-Т.47, № 5.-С. 469-476.

19. Глазко В.И. Генетика изоферментов сельскохозяйственных жи-вотных. //Сб. "Итоги науки и техники". М.: ВИНИТИ. Сер. "Общая генетика". Т.Ю.-С. 1-212.

20. Глебов Р.Н., Крыжановский Г.Н. Функциональная биохимия синапсов. М.: Медицина.-1978.- 328 с.

21. Гмиро В.Е., Бровцына Н.Б., Горбунова О.Б., Сердюк С.Е., Лукомская Н.Я. Топография участка связывания бис-катионных ганглиоблокаторов в ионном канале нейронального никотинового холинорецептора. //Докл. Росс. Акад. наук.- 1995.- Т. 341, № 5.-С. 699 705.

22. Голиков С.Н., Долго-Сабуров В.Б., Елаев Н.Р., Кулешов В.И. Холинэргическая регуляция биохимических систем клетки. М.: Медицина.-1985.- 224 с.

23. Горбунова A.B. Содержание РНК в мотонейронах спинного мозга при гипокинезии. //Цитология.-1971.- Т. 13, № 1.- С. 83 87.

24. Горбунова A.B. Вегетативная нервная система и устойчивость сердечнососудистых функций при эмоциональном стрессе. //Нейрохимия.- 2000.-Т.17, № 3.- С. 163-184.

25. Горбунова О.Б. Исследование строения участка ионного канала нейронального никотинового холинорецептора. Автореф. дисс.на соиск. канд. биол. наук. Спб.: Ин-т эвол. физиол. биохим. РАН.-1996.- 20 с.

26. Горбунова О.Б. Роль никотиновых холинорецепторов в формировании совместной зависимости от никотина и этанола. I. Никотиновый холинорецептор и эффекты никотина. //Усп. совр. биол.-2004.- Т. 124, № 6.-С. 570-580.

27. Гордон Р.Я. Исследование генерализованного метаболического ответа нервных клеток на смену функционального состояния и на действие повреждающих факторов. Автореф. дисс.на соиск. докт. биол.наук. Пущино.: ин-т медико-биол. проблем.- 2000.- 45 с.

28. Гореликов П.Л. Применение микроскопа ОРИМ-1 для определения толщины парафиновых срезов. //Цитология.- 1975.- Т. 17, № 11.- С. 1341 1344.

29. Гореликов ПЛ. Влияние фиксации в жидкости Карнуа на содержание нуклеиновых кислот и белка в верхнем шейном симпатическом ганглии кролика. //Цитология.- 1977.- Т. 19, № 1.- С. 90 94.

30. Гореликов П.Л. Влияние гистологической обработки на содержание нуклеиновых кислот, свободных нуклеотидов и белка в краниальном шейном симпатическом ганглии. //Цитология.- 1979.- Т.21, № 2.- С. 222 224.

31. Гореликов П.Л. Методы количественной цитохимии. М.: Моск. вет.акад,-1980.-24 с.

32. Гореликов П.Л. Теоретические и практические возможности метода цито-фотометрии. М.: Моск.вет.акад.-1982.-32 с.

33. Гореликов П.Л., Лебедев Э.А. Применение пленки КН-3 в сложных случаях фотографической фотометрии. //Сб. "Проблемы молекулярной биологии и патологии". М.: Моск.вет.акад.- 1977.- Т. 93.- С. 52 57.

34. Грешен А.Г. Структура и гистохимическая характеристика некоторых симпатических ганглиев. Автореф. дисс.на соиск докт. биол.наук. Саратов.: Саратовский гос.мед.ин-т.-1965.- 25 с.

35. Гринкевич Л.Н., Васильев Г.В. Возможные молекулярно генетические механизмы регуляции экспрессии генов при обучении. //Российск. физиол.ж.-1999.-Т.85, № 1.- С. 48-66.

36. Гублер Е.В., Генкин A.A. Применение непараметрических критериев статистики в медико-биологических исследованиях. JL: Медицина.-1973 .-142 с.

37. Дамбинова С.А., Арутюнян A.B. Успехи функциональной нейрохимии. СПб.-2003.-516 с.

38. Есакова Т.В., Иванов М.В. Взаимодействие лактатдегидрогеназы и мембран саркоплазматического ретикулума. //Биохимия.- 1992.-Т.57, № 2.-С. 253-267.

39. Жаботинский Ю.М. Нормальная и патологическая морфология вегетативных ганглиев. М.: АМН СССР.- 1953.- 292 с.

40. Жаботинский Ю.М. Нормальная и патологическая морфология нейрона. Л.: Медицина.- 1965.- 324 с.

41. Зандриттер В., Кифер Г., Рик В. Галлоцианин-хромовые квасцы. В кн.: Введение в количественную цитохимию. П/р. В.Я.Бродского и Н.И. Полякова. М.: Мир.-1969.- С. 240 264.

42. Зенгбуш П. Молекулярная и клеточная биология. М.:Мир.-1982.-Т1.-368 с.

43. Зимин Ю.В., Сяткин С.П., Березов Т.Т. Надмолекулярная регуляция активности некоторых оксидоредуктаз клетки в норме и патологии. //Вопр.мед.хим.- 2001.- Т. 47, № 3.- С. 279 287.

44. ИостХ. Физиология клетки. М.: Мир.-1975.- 864 с.

45. Карпов Ф.Ф. Фотографический метод для фотометрического определения содержания веществ в негомогенных структурах клеток и тканей. Автореф. дисс.на соиск. канд. биол.наук. М.: 2-ой МОЛГМИ.-1973. 28 с.

46. Ковальский Г.Б. Количественная гистохимия дегидрогеназ. В кн.: Введение в количественную гистохимию ферментов. П/р. Т.Б. Журавлевой и Р.А.Прочуханова. М.: Медицина. -1978.- С. 58 114.

47. Костюк П.Г. Ионы кальция и пластичность нервной системы. //Российск. физиол. ж.- 2001.- Т.87, № 8.- С. 1017 1025.

48. Крстич Р.В. Иллюстрированная энциклопедия по гистологии человека. СПб.: Сотис.- 2001.- 531 с.

49. Кудряшов КЕ. Глутаматергические ионотропные рецепторы и потенциал-зависимые дендритные каналы в гиппокампе: их взаимодействие в пластических процессах. //Нейрохимия.- 2003.- Т. 20, № 2.- С. 85 92.

50. Кудряшова КВ. Синаптическая пластичность на разных стадиях обучения: зависимость от величины и локализации кальциевого сигнала. //Нейрохимия.- 2002.- Т.19, № 2.- С.85 89.

51. Кудряшова КВ. Участие ферментов энергетического метаболизма в пластических процессах в гиппокампе при обучении. //Нейрохимия,- 2003.- Т.20, № 1.- С. 5-11.

52. Куффлер С., Николе Дж. От нейрона к мозгу. М.: Мир.-1979.- 439 с.

53. ЛакинГ.Ф. Биометрия. М.: Высш. школа.-1980.-293 с.

54. Левкова Н.А., Туманский В.А., Скуба Н.Д. Современные представления о структуре и функциональном значении "темных" клеток. //Архив патол.-1973.- Т. 35, №8.- С. 82-87.

55. Ленинджер А. Биохимия. М.: Мир.- 1976.- 958 с.

56. Ли В.В. Участие АТФ рецепторов в восприятии клетками неспецифических физических и химических воздействий. Автореф. дисс.на соиск. канд. биол.наук. Пущино.: ин-т медико-биол. проблем. 2005.- 20 с.

57. Лукомская Н.Я., Гмиро В.Е. Ганглиоблокирующее действие несимметричных бис-катионных соединений. //Докл. АН СССР.- 1982.- Т.265, № 3.-С. 743 747.

58. Лукьянова Л.Д., Дудченко A.M. Параметры аденилатного пула как предикторы нарушений энергетического обмена в гепатоцитах при гипоксии. //Бюлл. экспер. биол. мед.- 2003.- Т. 136, № 7.- С. 41 44.

59. Лукьянова Л.Д., Дудченко A.M., Цыбина Т.А., Германова Э.Л. Регуляторная роль митохондриальной дисфункции при гипоксии и ее взаимодействие с транскрипционной активностью. //Вестн. РАМН.-2007.- № 2.-С. 3-13.

60. ЛуппаХ. Основы гистохимии. М.: Мир.- 1980.- 343 с.

61. Лущак В.И. Характеристика связанной с микросомами лактатдегидро-геназы из белых мышц скота. //Биохимия.-1991.-Т.56, № 12.- С. 2173 2180.

62. Маркелов И.М. Определение изоферментов ЛДГ. //Лаб.дело.-1966.- № 12.-С. 707-710.

63. Мац В.Н. Нейро-глиальные соотношения в неокортексе при обучении. М.: Наука.- 1994.- 93 с.

64. Меерсон Ф.З. Общий механизм адаптации и профилактики. М.: Медицина." 1973.-360 с.

65. Меерсон Ф.З. Адаптация, стресс и профилактика. М.: Наука.-1981.-278 с.

66. Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессовым ситуациям и физическим нагрузкам. М.: Медицина.-1988.-253 с.

67. Мендельсон М. Абсорбционная цитофотометрия: сравнение различных методов исследования структурированных объектов и двухволновой метод. П/р. В.Я.Бродского и Н.И. Полякова. М.: Мир.-1969.- С. 167 177.

68. Меркулова О.С., Даринский Ю.А. Реакция нейронов на длительную стимуляцию. Л.: Наука.- 1982.- 171 с.

69. Мосевицкий М.И. Значительный прогресс биохимических исследований мозга еще не привел к пониманию сути мыслительного процесса. //Нейро-химия.- 2003.-Т.20, № 4.- Р. 299 315.

70. Немечек С., Лодин 3., Волъфф И., Выскочил Ф., Байгар И. Введение в нейробиологию. Прага.: Avicenum.- 1978.- 413 с.

71. Ноздрачев А.Д., Пушкарее Ю.П. Характеристика медиаторных превращений. Л.: Наука.- 1980.- 230 с.

72. Ноздрачев А.Д., Фатеев М.М. Звездчатый ганглий. Спб.: Наука.- 2002.238 с.

73. Панавене Д.П. К методике разделения изоферментов лактатдегидро-геназы на полиакриламидном геле. //Лаб. дело.- 1974, № 9.- С. 542 544.

74. Панин JI.E. Биохимические механизмы стресса. Новоссибирск.: Наука.-1983.-234 с.

75. Певзнер Л.З. Функциональная биохимия нейроглии. Л.: Наука.- 1972.198 с.

76. Першин Г.И. Димеколин. В кн.: Новые лекарственные средства. П/р. Г.И. Першина. М.: Медицина.- 1966.-Вып. 10.- С. 72 100.

77. Попова Э.Н., Лапин С.К., Кривицкая Г.Н. Морфология приспособительных изменений нервных структур. М.: Медицина.- 1976.- 264 с.

78. Проссер Л. Центральная нервная система. В кн.: Сравнительная физиология животных. М.- 1978.- Т.З.- С. 5 163.

79. Прочуханов P.A. Принципы количественной гистохимии ферментов. В кн.: Введение в количественную гистохимию ферментов. П/р.Т.Б. Журавлевой и P.A. Прочуханова. М.: Медицина. 1978.- С. 7- 13.

80. Райдер К, Тейлор К. Изоферменты. М.: Мир.- 1983.- 106 с.

81. Ройтбак А.И. Глия и ее роль в нервной деятельности. СПб.: Наука.-1993.-352 с.

82. Самохин В.Т., Обривкова Е.И., Бащев АД. Определение адениловых нуклеотидов в цельной крови. //Ветеринария.-1981, №7.-С. 65-66.

83. Саркисов Д.С., Гельфанд В.Б., Туманов В.П. Нервная система. В кн.: Структурные основы адаптации и компенсации нарушенных функций. П/р. Д.С. Саркисова. М.: Медицина.- 1987.- С. 343 364.

84. Свифт X. Количественная цитохимия рибонуклеиновых кислот. В кн.: Введение в количественную цитохимию. П/р. В.Я.Бродского и Н.И. Полякова. М.: Мир.-1969.- С. 288 313.

85. Селиванова АЛ., Голиков С.Н. Холинэргические механизмы высшей нервной деятельности. JL: Медицина.-1975.-183 с.

86. Скок В.И., Селянко A.A., Деркач В.А. Нейрональные холинорецепторы. М.: Наука.-1987.- 344 с.

87. Тасбулатова Р.Д. К возрастной морфологии краниального шейного симпатического узла и нижнего узла блуждающего нерва. Автореф. дисс.на соиск.канд. биол.наук. Караганда.: Караган-динский гос.мед.ин-т.-1968.- 11 с.

88. Тихонов Д.Б. Исследование строения и механизмов блокады ионных каналов никотиновых холинорецепторов и глутаматных рецепторов. Автореф. дисс.на соиск. докт. биол.наук. Спб.: Ин-т эвол. физиол. биохим. РАН.-2004.-42 с.

89. Унжаков А.Р. Изоферментные спектры ЛДГ в тканях норок (Musterla vison Sehr.) и песцов (Alopex lagopus L.) как индикаторы их физиологического состояния. Автореф. дисс. на соиск. канд. биол. наук.СПб.: Гос. Акад. вет. мед.-1997.- 17 с.

90. УрбахВ.Ю. Биометрические методы. М.: Наука.- 1964.- 416 с.

91. Уткин Ю.Н., Цетлин В.И., Хухо Ф. Структурная организация никотиновых холинергических рецепторов. //Биол.мембраны,- 1999.- Т.16, № 2.-С. 118-135.

92. ШадеДж., Форд Д. Основы неврологии. М.: Мир.- 1976.- 350 с.

93. Федин Л.А., Барский И.Я. Микрофотография. Л.: Наука.-1971.- 220 с.

94. Флеров М.А., Толстухина Т.Н., Герасимова Л.А. Процессы свободно-радикального окисления липидов в нейронах и нейроглии коры больших полушарий при судорогах. //Бюлл.экспер.биол.и мед.- 2004,- Т. 13 8, № 10.-С. 385-387.

95. Фокин В.Ф., Пономарева Н.В. Энергетическая физиология мозга. М.: Антидер.-2003 .-288 с.

96. Харди Р. Гомеостаз. М.: Мир.-1986.- 81 с.

97. Хочачка П., Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации. М.: Мир.-1977.-398 с.

98. Хочачка П., Сомеро Дж. Биохимическая адаптация.М.: Мир.- 1988.-568 с.

99. Хруст Ю.Р., Литинская Л.Л., Чепцов С.А., Зайделъ КН., Мацигура С.А. Новый метод цитофотометрии метод логарифмического экрана. //Цитология.- 1975.- Т. 17, № 8.- С. 997 - 1000.

100. Хруст Ю.Р., Литинская Л.Л., Козлов ДА. Использование методов нелинейного преобразования изображений в цитофотометрической аппаратуре. //Цитология.- 1976.- Т. 18, № 5.- С. 644 646.

101. Худоерков P.M. Цитохимия белков в раскрытии закономерностей структурной и функциональной организации мозга. //Вестник РАМН.- 2001.- № 4.-С. 43-48.

102. Хухо Ф. Нейрохимия. Основы и принципы. М.: Мир.- 1990.- 384 с.

103. Чехонин В.П., Давыдовская М.В., Лебедев С.В., Демина Т.Л., Дмитриева Т.Е., Гусев Е.И. Нейробиологические основы ремиелинизации в ЦНС. //Вестник РАМН.-2003.- № 8.-С. 43-51.

104. Шарапов K.M. К фармакологии производных пипередин-карбоновых кислот. //Фармакол. и токсикол.- 1961.- Т.24.- № 6.- С. 700 706.

105. Шарапов K.M. К фармакологии димеколина нового ганглиоблокиру-ющего средства. //Фармакол. и токсикол.- 1962.- Т.25 - № 5.- С. 533 - 538.

106. Шеперд Г. Нейробиология. М.: Мир.- 1987.- Т.1.- 454 с.

107. ЭкклсДж. Физиология синапсов. М.: Мир.-1966.-396 с.

108. Ярыгин В.Н. О двухъядерных нервных клетках в верхнем шейном симпатическом узле кролика. //Арх. анат. гист. и эмбриол.- 1964.- Т. 47, № 12.-С. 77 82.

109. Ярыгин В.Н., Доронин П.П., Родионов K.M., Гибер Л.М. Цитохимический и элетронномикроскопический анализ симпатических нервных клеток с явлениями локального хроматолиза. //Арх.анат.гист.и эмбриол.-1974.-Т. 66, №3.- С. 76-80.

110. Ярыгин Н.Е., Ярыгин В.Н. Патологические и приспособительные изменения нейрона. М.: Медицина.- 1973.- 190 с.

111. Aguado F., Espinosa-Parrilla J., Carmona M, Soriano E. Neuronal activity regulates correlated network properties of spontaneous calcium transients in astrocytes in situ. //J. Neurosci.-2002.-V.22.- P. 9430 9444.

112. Alkadhi K., Alzoubi K., Aleisa A. Plasticity of synaptic transmission in autonomic ganglia. //Prog. Neurobiol.- 2005.- V.75, N 2.- P. 83 108.

113. Ames A. 3rd. CNS energy metabolism as related to function. // Brain Res.Rev.-2000.- V.34, N 1-2.-P. 42 -68.

114. Araque A., Carmignoto G., Haydon P. Dynamic signaling between astrocytes and neurons. //Ann. Rev. Physiol.-2001.-V.63.- P. 795 813.

115. Araque A., Li N., Doile R. Т., Haydon P. SNARE protein-dependent glutamate release from astrocytes. //J. Neurosci.-2000.-V.20.-P. 666 673.

116. Araque A., Martin E., Perea G., Arellano J., Buno W. Synaptically released acetylcholine evokes Ca elevations in astrocytes in hippocampal slices.

117. J. Neurosci.-2002.-V.22, N 7.- P. 2443 2450.

118. Araque A., Parpura V., Sanzgiri R., Haydon P. Tripartite synapses: glia, the unacknowledged partner. //Trends Neurosci.-1999.-V.22, N 5.- P. 208 215.

119. Asamoto K. Network of the sympathetic nervous system: focus on the input and output of cervical sympathetic ganglion. //Anat. Sci. Int.- 2005.-V.80, N 3.-P. 132-140.

120. Ashroft S., Ashroft F. Properties and functions of ATP-sensitive K-channels. //Cell Signal.-1990.-V.2.- P. 197 214.

121. Ataullakhanov FI., Vitvitsky VM. What determines the intracellular ATP concentration. //Biosci. Rep.-2002.-V22, N 5-6.-P.501 511.

122. Atkinson D. The energy charge of the adenylate pool as regulatory parameter. Interaction with feedback modifiers. //Biochem.- 1968.-V.7, N11.-P. 4030 4034.

123. Atwell D., Laughlin S. An energy budget for signaling in the grey matter of brain. //J. Cereb. Flow Metab.- 2001.- V.21, N 10.- P. 1133 1145.

124. Aubert A., Costalat R. Interaction between astrocytes and neurons studied using a mathematical model of compartmentalized energy metabolism. //J. Cereb. Flow Metab.- 2005.-V.25, N 11 .-P. 1476-1490.

125. Aubert A., Costalat R., Magistretti P., Pellerin L. Brain lactate kinetics: modeling evidence for neuronal lactate uptake upon activation.

126. Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2005.-V.102, N 45.-P. 16448 16453.

127. Auld D., Colomar A., Belair EL., Castonguay A., Pinard A., Rousse I., Thomas S., Robitaille R. Modulation of neurotransmission by reciprocal synapse-glial interactions at the neuromuscular junction. //J. Neurocytol.- 2003.-V.32, N5-8.-P. 1003- 1015.

128. Auld D., Robitaille R. Perisynaptic Schwann cells at the neuromuscular junction: nerve-and activity-dependent contributions to synaptic efficacy, plasticity, and reinnervation. //Neuroscientist.- 2003.-V.9, N 2.-P. 144 157.

129. Auld D., Robitaille R. Glial cells and neurotransmission: an inclusive view of synaptic function. //Neuron.-2003a.-V.40, N 2.- P. 389 400.

130. Boding H. Transcription-dependent neuronal plasticity. The nuclear calcium hypothesis. //Eur. J. Biochem.- 2000.- V.267, N 17.- P. 5280 5283.

131. Banco JL., Hou L., Klann E. NMDA receptor activation results in PKA-and ERK-dependent Mnkl activation and increased elF4E phosphorilation in hippocampal area CA1. //J. Neurochem.- 2004.- V.91, N 2.- P. 462 470.

132. Barnes BR., Zierath JR. Role of AMP activated protein kinase in control of glucose homeostasis. //Curr. Mol. Med.-2005.-V.5, N 3.-P. 341 -348.

133. Barsotti C., Ipata P. Metabolic regulation of ATP breakdown of adenosine production in rat brain extracts. //Int. Biochem. Cell. Biol.- 2004.- V.36, N 11.-P. 2214-2225.

134. Bassell G., Twiss J. RNA exodus to Israel: RNA controlling function in the far reaches of the neuron. //EMBO reports.- 2006.- V.7, N 1.- P. 31 35.

135. Beeckman S., Kanasek E. Organ Cell Metabolism: Proc. NATO Alv. Res.Work-Shop, Hensthelis.- New York-London.- 1996.- P. 199 208.

136. Berridge M. Neuronal calcium signaling. //Neuron.- 1998,- V.21, N 1,-P. 13-26.

137. Berridge M., Bootman M., Roderick L. Calcium signaling: dynamics, homeostasis and remodeling. //Nat. Rev. Mol. Cell Biol.-2003.-V.4, N 7.- P. 517 529.

138. Biguet N., Rittenhouse A., Mallet J., Zigmond R. Preganglionic nerve stimulation increases mRNA levels for tyrosine hydroxylase in the rat superior cervical ganglion. //Neurosci. Lett.- 1989.-V.104, N 1-2.-P. 189 194.

139. Bittar PCharnay ¥., Pellerin L., Bouras C., Magistretti P. Selective distribution of lactate degydrogenase isoenzymes in neurons and astrocytes of human brain. //J.Cereb.Blood Flow Metab.- 1996.- V.16, N 6.- P. 1079 1089.

140. Boehm S. Signaling via nucleotide receptors in sympathetic nervous system. //Drug News Perspect.- 2003.- V.16, N 3.- P. 141 148.

141. Bouzier-Sore A., Serres S., Canioni P., Merle M. Lactate involvement in1 ^neuron-glia metabolic interaction: C-NMR spectroscopy contribution. //Biochimie.-2003.-V.85, N 9.-P. 841 848.

142. Braitenberg V., Schuz A. Cortex: Statistics and Geometry of Neuronal Connectivity. New York: Springer.-1998.- 610 p.

143. Briggs C.A., McAfee.D.A., McCaman R.E. Long-term regulation of synaptic acetylcholine release and nicotinic transmission: the role of cAMP. //Br.J.Pharmacol.- 1998.-V.93.- P. 399 -411.

144. Brooks G. Lactate shuttles in nature. //Biochem. Soc. Trans.- 2002.- V.30, N2.- P. 258-264.

145. Broun N., Zhu Y., Kriglstein J., Culmsee C., Zimmermann H. Upregulation of the enzyme chain hydrolyzing extracellular ATP after transient forebrain ischemia in the rat. //J. Neurosci.- 1998.- V.18.- P. 4891 4900.

146. Brown DA., Filippov AK., Barnard EA. Inhibition of potassium and calcium currents in neurons by molecularly-defined P2Y receptors. //J. Auton. Nerv. Syst.-2000.-V.81, N 1-3.-P. 31 -36.

147. Brown E., Schreiber S. A signaling pathway to translation control. //Cell.-1996.- V.86.- P. 517-520.

148. Brown N., Dale P. Spike-independent release of ATP from Xenopus spinal neurons evoked by activation of glutamate receptors. //J. Physiol. (London).-2002.-V.540.- P. 851 -860.

149. Burdakov D., Ashcroft F. Shedding new light on brain metabolism and glial function. //J. Phisiol.- 2003.- V.546, N 2.- P. 334.

150. Burnstock G. Noradrenaline and ATP: cotransmitters and neuromodulators. //J. Physiol. Pharmacol.-1995.-V.46, N 4.-P. 365 384.

151. Burnstock G. The past, present and future of purine nucleotides as signaling molecules. //Neuropharmacology.- 1997.-V.36.- P. 1127 1139.

152. Buzhurina IM., Chernay NG., Panov MA. Glucose strongly stimulates rate of the RNA synthesis in Ehrlich ascites carcinoma cells. //Cell. Biol. Int.- 1994.-V.18, N 6,- P. 673-675.

153. Carling D. The AMP activated protein kinase cascade - a unifying system for energy control. //Trends Biochem. Sci.- 2004.- V.29, N l.-P. 18-24.

154. Carling D. AMP activated protein kinase: balancing in scales. //Biochimie.- 2005.- V.87, N 1.- P. 87 - 91.

155. Chalazonitis A., Zigmond R. Effects of synaptic and antidromic stimulation on tyrosine hydroxylase activity in the rat superior cervical ganglion. //J. Physiol.-1980.- V.300.-P. 525-538.

156. Chang K., Berg D. Voltage-gated channels block nicotinic regulation of CREB phosphorylation and gene expression in neurons. //Neuron.- 2001.- V.32, N5.- P. 855-865.

157. Charles A. Glial intercellular waves. //Sci. STKE.- 2005.-V.290.- Tr.19.

158. Cheng H., Wei S., Wei L., Verkhratsky A. Calcium signaling in physiology and phatophysiology. //Acta pharmacologica sinica.- 2006.- V. 27, N 7.-P. 767 772.

159. Clementi F., Fornasari D., Gotti C. Neuronal nicotinic receptors, important new players in brain function. //Eur. J. Pharmacol.-2000.-V.393, N 1-3.- P. 3 10.

160. Colomar A., Robitaille R. Glial modulation of synaptic transmission at the neuromuscular junction. //Glia.- 2004.-V.47, N 3.-P. 284 289.

161. Cooper M. Intercellular signaling in neuronal-glial networks. //Biosystems.-1995.-V.34, N 1-3.- P. 65-85.

162. Corfas G., Velardez M., Ko C.-P., Ratner N., Peles E. Mechanisms and roles of axon Schwann cell interactions. //J. Neurosci.- 2004,- V.24, N 42.-P. 9250-9260.

163. Cragg B. What is the signal for chromatolysis? IIBrain Res.- 1970.- V.23, Nl.-P. 1-21.

164. Cuevas J., Roth A., Berg D. Two distinct classes of functional a7-containing nicotinic receptor on rat superior cervical ganglion neurons. //J. Physiol.-2000.-V.525, Pt. 3.- P. 735-746.

165. Cunha R., Ribeiro J. ATP as presynaptic modulator. //Life Sci.-2000.-V.68.-P. 119-137.

166. DaiX., Lercher L., Clinton P., Du Y., Livingston D., Vieira C., Yang Lu., Shen M., Dreyfus C. The trophic role of oligodendrocytes in the basal forebrain. //J. Neurosci.- 2003.- V.23, N 13.- P. 5846 5853.

167. Dajas-Bailador F., Wonnacott S. Nicotinic acetylcholine receptors and regulation of neuronal signaling. //Trends Pharmacol. Sci.- 2004.- V.25, N 6.-P. 317-324.

168. Dani J. Overview of nicotinic receptors and their roles in the central nervous system. //Biol. Psychiatry.- 2001.- V.49, N 3.- P. 166 174.

169. De Biasi M. Nicotinic mechanisms in the autonomic control of organ systems. //J. Neurobiol.- 2002.- V.53, N 4.- P. 568 579.

170. De Biasi M., Nigro F., Xu W. Nicotinic acetylcholine receptors in the autonomic control of bladder. //Eur. J. Pharmacol.- 2000.- V.393, N 1-3.- P. 137 140.

171. Deitmer JW. Glial strategy for metabolic shuttling and neuronal function. //Bioessays.-2000.-V.22, N 8.- P. 747 752.

172. Deitmer JW. Strategies for metabolic exchange between glial cells and neurons. //Respir. Phisiol.- 2001.-V.129, N 1-2.- P. 71 81.

173. Dienel GA., Cruz NF. Astrocyte activation in working brain: energy supplied by minor substrates. //Neurochem. Int.-2006.-V.48, N 6-7.-P. 586 595.

174. Dietz A., Lubrano T., Rubinstein H. Disc electrophoresis of lactate degydro-genase isoenzymes. //Clin. Chim. Acta.- 1970.- V.27, N 2.- P. 225 232.

175. Dolivo M. Metabolism of mammalian sympathetic ganglia. //Fed. Proc.-1974.-V.33, N 4.-P. 1043 1048.

176. Dresios J., Chappel SA., Zhou W., Mauro VP. An mRNA- rRNA base-pairing mechanism for translation initiation in eukaryotes. //Nat. Struct. Mol.Biol.- 2006.-V.13, N 1.- P. 30-34.

177. Dreyfus C. The trophic role of oligodendrocytes in the basal forebrain. //J. Neurosci.- 2003.-V.23, N 13.- P. 5846 5853.

178. Dunckley 71, Lukas R. Nicotine modulates the expression of a diverse set of genes in the neuronal SH-SY5Y cell line. //J. Biol. Chem.- 2003. V.278, N 18.-P. 15633- 15640.

179. Dunn PM., Gever J., Ruan HZ., Burnstock G. Developmental changes in heteromeric P2X(2/3) receptor expression in rat sympathetic ganglion neurons. //Dev. Din.-2005.-V.234, N 3.- P. 505 511.

180. Dunwiddie T., Diao L., Proctor W. Adenine nucleotides undergo rapid, quantitative conversion to adenosine in the extracellular space in rat hippocampus. //J. Neurosci.- 1997.-V.17.- P. 7673 7682.

181. Dunwiddie T., Masino S. The role and regulation of adenosine in central nervous system. //Ann. Rev.Neurosci.-2001.-V.24.-P. 31-55.

182. During M, Spencer D. Adenosine: a potential mediator of seizure arrest and postictal refractoriness. //Annl. Neurol.- 1993.- V.32.- P. 618 624.

183. Dwoskin L., Crooks. Competitive neuronal nicotinic receptor antagonist: a new direction for drug discovery. //J. Pharmacol. Exp.Ther.- 2001.- V.298, N 2.-P. 395-402.

184. Dzeja P., Terzic A. Phosphotransfer reactions in the regulation of ATP-sensitive K+ channels. //FASEB J.- 1998.-V.12.- P. 523 529.

185. Dzeja P., Terzic A. Phosphotransfer networks and cellular energetics. //J.Exp.Biol.- 2003.- V.206.- P. 2039 2047.

186. Dzeja P., Zeleznikar R., Goldberg N. Adenylate kinase: kinetic behavior in intact cells indicates it is integral to multiple cellular processes. //Mol. Cell. Biochem.- 1998.- V.184, N 1-2.- P. 169 182.

187. Einarson L., Krogh E. Variation in the basophilia of nerve cells associated with increased cell activity and functional stress. //J. Neurol. Neurosurg. Psychiat.-1955.-V.18.-P. 1-12.

188. Erecinska M., Silver I. Ions and energy in mammalian brain. //Prog. Neurobiol.- 1994.-V.43, N 1.- P. 37 71.

189. Etherington L., Frenguelli B. Endogenous adenosine modulates epileptiform activity in rat hippocampus in receptor subtypedependent manner. //Eur. J. Neurosci.-2004.-V.19.- P. 2539 2550.

190. Fellin T., Carmignoto G. Neurone-to-astrocyte signaling in the brain represents a distinct multifunctional unit. //J. Phisiol.- 2004.- V. 559, N 1.- P. 3 -15.

191. Feng Z., Koirala S., Ko C-P. Synapse-glia interactions at the vertebrate neuromuscular junction. //Neuroscientist.- 2005.-V.l 1, N 5.- P. 503 513.

192. Finkbeiner S. Glial calcium. //Glia.- 1993.- V.9, N2.- P. 83 104.

193. Foufelle F., Ferre P. Role of adenosine monophosphate- activated protein kinase in the control of energy homeostasis. //Curr.Opin.Clin.Nutr.Metab.Care.-2005.-V.8, N 4.-P. 355 360.

194. Fowler J. Purine release and inhibition of synaptic transmission during hypoxia and hypoglycemia in rat hippocampal slices. //Neurosci. Lett.-1993,-V.157.- P. 83 -86.

195. Fucile S. Ca(2+) permeability of nicotinic acetylcholine receptors. //Cell Calcium.-2004.- V.35, N 1.- P. 1 8.

196. Fucile S., Renzi M., Lax P., Eusebi F. Fractional Ca(2+) current through human neuronal alpha7 nicotinic acetylcholine receptors. //Cell Calcium.-2003.-V.34, N 2.- P. 295-209.

197. Fujii S. ATP- and adenosine-mediated signaling in the central nervous system: the role of extracellular ATP in hippocampal long-term potentiation. //Pharmacol. Sci.- 2004.-V.94, N 2.- P. 103 106.

198. Galzi J., Changeux J. Neuronal nicotinic receptors: molecular organization and regulations. //NeuropharmacoL- 1995.- V.34, N 6.- P. 563 582.

199. Ge S., Dani J. Nicotinic acetylcholine receptors at glutamate synapses facilitate long-term depression or potentiation. //J. Neurosci.- 2005.- V.25, N 26.-P. 6084-6091.

200. Georgiou J., Robitaille R., Trimble WS., Charlton MP. Synaptic regulation of glial protein expression in vivo. //Neuron.- 1994.- V.l2, N 2.- P. 443 455.

201. Georgiou J., Robitaille R.t Charlton MP. Muscarinic control of cytoskeleton in perisynaptic glia. //J. Neurosci.- 1999.- V.19, N 10,- P. 3836 3846.

202. Gerebtzoff M.A. Detection histochimique d' isoenzymes de la lactate deshy-drogenase dans le nerf et le ganglion spinal. //Compt. rend. Soc. Biol.- 1966.-V.160, N 6.- P. 1323- 1325.

203. Gerebtzoff M.A. Contribution histochimique a l'etude de la lactate deshydro-genase et de ses isoenzymes. //Path. Biol.- 1968.- V.16, N 11 12/13 - 14.-P. 601 -608.

204. Ginty D., Bading H., Greenberg M. Trans synaptic regulation of gene expression. //Curr.Opin. NeurobioL- 1992.-V.2, N 3.- P. 312 - 316.

205. Gisiger V. Triggering of RNA synthesis by acetylcholine stimulation of the postsynaptic membrane in mammalian sympathetic ganglion. //Brain Res.- 1971.-V.33, N 1.- P. 139-146.

206. Gisiger V. Role of hyperpolarisation generated by Na+ K+ pump in the trans-synaptic induction of RNA synthesis in sympathetic neurons. //J. Physiol (Paris).- 1988-89.- V. 83, N 3.- P. 148 - 163.

207. Gisiger V. Regulation of gene expression by trans-synaptic activity: a role for the transcription factor NF-kappa B. //J. Physiol (Paris).- 1998.- V.92, N 3-4.-P. 163-166.

208. Gisiger V., Dunant Y., Huguenin AC., Dolivo M. Incorporation of tritiated uridine into ribonucleic acid by the rat sympathetic ganglion incubated in vitro. //Helv. Physiol. Pharmacol. Acta.- 1967.- V. 25, N 4.- CR415.

209. Goddard P., Grigor P. Lactate dehydrogenase quantification and isoenzyme distribution in physiological response to stress in red deer (Cervus elaphus). //Res. Vet. Sci.- 1997.- V.63, N 2.- P. 119 122.

210. Goelet P., Castellucci V., Schacher S., Kandel E. The long and the short-term memor a molecular framework. // Nature.- 1986.- V.322, N 6078.- P. 419 - 422.

211. Gorbunova AV. Autonomic ganglionic neurons in rabbits with differing resistant to emotional stress. //Stress.- 2000.- V.3, N 4.- P. 309 318.

212. Gotti G, Clementi F. Neuronal nicotinic receptors: from structure to pathology. //Prog. Neurobiol.- 2004.- V.74, N 6.- P. 363 396.

213. Granneman S., Baserga SJ. Ribosome biogenesis: of knobs and RNA processing. IIExp. Cell. Res.- 2004.- V.296, N 1.- P. 43 50.

214. Greenberg M., ZiffE., Greene L. Stimulation of neuronal acetylcholine receptors induced rapid gene transcription. //Science.-1986.- V.234, N 4772.- P. 80-83.

215. Gueorguiev V., Zeman R., Meyer E., Sabban E. Involvement of alpha7 nicotinic acetylcholine receptors in activation tyrosine hydroxylase and dopamine beta-hydroxylase gene expression in PC12 cells. //J. Neurochem.- 2000.- V.75, N 5.-P. 1997-2005.

216. GuerriniL., BlasiF., Denis-Donini S. Synaptic activation of NF-kB by glutamate in cerebellar granule neurons in vitro. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 1995,- V.92.-P. 9077-9081.

217. Guntinas-Lichius O., Neiss W., Schulte E., Stennert E. Quantitative image analysis of the chromatolysis in rat facial and hypoglossal motoneurons following axotomy with and without reinnervation. //Cell. Tissue. Res.- 1996,- V.286, N 3.-P. 537-541.

218. Guntinas-Lichius O., Schulte E., Stennert E., Neiss W. The use of texture analysis to study the time course of chromatolysis. //J. Neurosci. Methods.- 1997.-V.78,N 1-2.- P. 1 -6.

219. Hansen A. Effect of anoxia on ion distribution in the brain. //Physiol. Rev.-1985.-V.65.-P. 101-148.

220. Hans son E., Ronnback L. Glial neuronal signaling in the central nervous system. //FASEB J.- 2003.- V.17, N 3.- P. 341 348.

221. Hardie G. The AMP-activated protein kinase cascade: the key sensor of cellular energy status. //Endocrinology.- 2003.- V.144, N 12.-P. 5179 5183.

222. Hardie G. The AMP-activated protein kinase pathway new plaers upstream and downstream. //J. Cell Science.- 2004.- V. 117.- P. 5479-5487.

223. Harhonen M., Passonen J., Lowry O. Relationships between energy reserves and function in rat superior cervical ganglion. //J.Neurochem.-1969.-V.16, N 10.-P. 1439-1450.

224. Hatton G. Dynamic neuronal- glial interactions: an overview 20 years later. // Peptides.-2004.-V.25, N 3.- P.403 -411.

225. Haydon P. Glia: listening and talking to the synapse. //Nat. Rev. Neurosci.-2001.- V.2, N 3.- P. 185- 193.

226. Hazama H, Uchimura H. Lactate degydrogenase isoenzyme pattern contained in neurons resolved by microdisc electrophoresis. //Brain Res.-1970a.-V.23, N 2.- P. 288 292.

227. Hazama H, Uchimura H. Separation of lactate degydrogenase isoenzymes of nerve cells in the central nervous system by micro-disc electrophoresis on polya-crylamide gels. //Biochim. Biophys. Acta.- 1970.- V.200, N 2.- P. 414 417.

228. Heinova D., Rosival I., Avidar Y, Bogin E. Lactate dehydrogenase isoenzyme distribution and patterns in chicken organs. //Res. Vet. Sci.- 1999,- V.67, N 3.-P. 309-312.

229. Hertz L. Intercellular metabolic compartmentation in the brain: past, present and future. //Neurochemistry International.- 2004.- V.45, N 2-3.- P. 285 296.

230. Hertz L., Code W., Sykova E. Ions, water, and energy in brain cells: a synopsis of interrelations. //Can. J. Phisiol. Pharmacol.-V.70, Suppl.-S. 100 106.

231. Heus R., Diegenbach P. The use of texture analysis for the discrimination of Nissl substance in neurons. //J. Neurosci. Methods.- 1992.- V.44, N 2-3.-P.209 -215.

232. Hirokawa N. mRNA transport in dendrites: RNA granules, motors, and tracks. //J. Neurosci.-2006.-V.26, N 27.- P. 7139 7142.

233. Hochachka P. The metabolic implications of intracellular circulation. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 1999. V.96, N 22. P. 12233 12239.

234. Hochachka P. Oxygen, homeostasis, and metabolic regulation. //Adv. Exp. Med. Biol.- 2000.- V.475.- P. 311 335.

235. Hochachka P. Intracellular convection, homeostasis and metabolic regulation. //J. Exp. Biol.- 2003.-V.206.- P. 2001 2009.

236. Hochachka P., McClelland G. Cellular metabolic homeostasis during large-scale change in ATP turnover rates in muscles. //J. Exp. Biol.- 1997.- V.200.-P. 381 -386.

237. Hogan Y.N., Florent G., Hussain T., Alkadhi K. Cyclic AMP antagonizes adenosine-induced inhibition of ganglionic transmission. //Brain Res.- 1998a.-V.787.- P. 242-247.

238. Hogan Y.N., Hawkins R., Alkadhi K. Adenosine A1 receptor activations inhibits LTP in sympathetic ganglia. //Brain Res.- 1998b.- V.807.- P. 19 28.

239. Horton A., Ehlers M. Neuronal polarity and trafficking. //Neuron.- 2003.-V.40, N 10.- P. 277-295.

240. Huber K., Kayser M., Bear MF. Role for rapid dendritic protein synthesis in hippocampal mGluR dependent LTD. //Science.-2000.-V.288, N 5469.1. P. 1254- 1257.

241. Hyden H. RNA in brain cells. In.: The Nerosciences. Quarton G.,Melnechuk T., Schmitt F. (Eds). New York.: The Rockfeller University Press.- 1967.-P. 248-266.

242. Hyden H., Lange P. A genetic stimulation with production of adenic-uracil rich RNA in neurons and glia in learning. The question of transfer of RNA from glia to neurons. //Naturwissenschaften.- 1966.- V. 53, N 3.- P. 64 70.

243. Hyder F., Rothman D., Shulman R. Total neuroenergetics support localized brain activity: implications for the interpretation of fMRI. //Proc. Natl. Acad. Sci.-2002.-V.99.- P. 10771 10776.

244. Inoue I, Tsutsui I., Abbott NJ., Brown ER. Ionic currents in isolated and in situ squid Scwann cells. //J. Phisiol.- 2002.- V.541, Pt 3.- P. 769 778.

245. Iunquiera L., Carneiro J. Basic Histology. 8th Englewood Clifts.: Prentice Hall.-1995.

246. Jahromi B., Robitaille R., Charlton M. Transmitter release increases intracellular calcium in perisynaptic Schwann cells in situ. //Neuron.-1992.-V. 8, N 6.-P. 1069-1077.

247. Jeneson J., Wiseman R., Westerhoff H, Kushmerick M. The signal transduction function for oxidative phosphoiylaton is at least second order in ADP.

248. J. Biol. Chem.- 1996.-V.271, N 45.- P. 27995 27998.

249. Jensen A., Frolund B., Liljefors T., Krogsgaard P. Neuronal nicotinic acetylcholine receptors: structural revelation, target identifications, and therapeutic inspiration. //J. Med. Chem.- 2005.-V.48, N 15.- P. 4705 4745.

250. Jessen K. Glial cells. //Int. J. Biochem. Cell Biol.- 2004.- V.36.-P. 1861 -1867.

251. Johnson I., Pullen A., Sears T. Target dependence of Nissl body ultrastructure in cat thoracic motoneurons. //Neurosci. Lett.- 1985.- V.61, N 1-2.- P. 201 205.

252. Johnson I., Sears T. Organelle changes in cat thoracic alpha- and gamma-motoneurons following axotomy. //Brain Res. 1989.- V.489, N 2.- P. 400 - 405.

253. Juranyi Z., Sperlagh B., Vizi E. Involvement of P2 purinoceptors and the nitric oxide pathway in 3H1purin outflow evoked by short-term hypoxia and hypoglycemia in rat hippocampal slices. //Brain Res.- 1999.- V.823.-P. 183 -190.

254. Kadekaro M., Crane A., Sokoloff L. Differential effects of electrical stimulation of sciatic nerve on metabolic activity in spinal cord and dorsal root ganglion in the rat. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 1985.-V.82, N 17.- P. 6010 6013.

255. Kahlert S., Reiser G. Glial perspectives of metabolic states during cerebral hipoxia calcium regulation and metabolic energy. //Cell Calcium.-2004.- V.36, N3-4.-P. 295-302.

256. Kaltschmidt C., Kaltschmidt B., Baeuerle P. Stimulation of ionotropic glutamate receptors activates transcription factor NF-kB in primary neurons. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 1995.-V.92.- P. 9618 9622.

257. Kammermeier H. High energy phosphate of the myocardium: concentration versus of free energy change. //Basic Res.Cardiol.- 1987.-V.82, S 2.- P. 31 36.

258. Kammermeier H. Meaning of energetic parameters. //Basic. Res.Cardiol.-1993.-V.88, N 5.- P. 380-384.

259. Kang H., Schuman E. A requirement for local protein synthesis in neuro-trophin-induced hippocampal synaptic plasticity. //Science.- 1996.- V.273, N5280.- P. 1402- 1406.

260. Karachot L., Shirai Y., Vigot R., Yamamory T., Ito M. Induction of long-term depression in cerebellar Purkinje cells requires a rapidly turned over protein. //J. Neurophysiol.- 2001.- V.86, N 1,- P. 280 289.

261. Kasischke K., Vishwasrao H, Fisher P., Zipfel W., Webb W. Neural activity triggers neuronal oxidative metabolism followed by astrocytic glycolysis. //Science.- 2004.-V.305, N 5680.- P. 99 103.

262. Kelleher R.III, Govindarajan A., Tonegava S. Translational regulatory mechanisms in persistent forms of synaptic plasticity. //Neuron.- 2004a.- V.44, N 1.-P. 59-73.

263. Kelleher R.III, Govindarajan A., Jung HY., Kang H., Tonegava S. Translation control by MAPK signaling in long-term synaptic plasticity and memory. //Cell-20046.-V. 116, N 3.-P. 467 479.

264. Kernell D., Peterson R. The effect of spike activity versus synaptic activation on the metabolism of ribonucleic acid in molluscan giant neuron. //J. Neurochem.-1970.-V.17.-P. 1087-1094.

265. Kertser S., Bobryshev A., Voitenko S., Gmiro V., Brovtsyna N., Skok V. Dimensions of neuronal nicotinic acetylcholine receptors channel as estimated from the analysis of the channel-blocking effects. //J. Membr. Biol.-1998.-V. 163, N2.-P. 111-118.

266. Kettenmann H. Membrane conductance of oligodendrocytes is dominated by K+ channels. В кн.: Функции нейроглии. П/р А.И.Ройтбака. Тбилиси.: Мецни-ереба.- 1987.- С. 72-80.

267. Kimelberg НК. The role of hypotheses in current research, illustrated by hypotheses on possible role of astrocytes in energy metabolism and cerebral blood flow: from Newton to now. //J. Cereb. Flow Metab.- 2004.- V.24, N 11.-P. 1235- 1239.

268. Kindler S., Wang H., Richter D., Hedge H. RNA transport and local control of translation. //Annu. Rev. Cell Dev. Biol.- 2005.- V.21.- P. 223 -245.

269. Klann E., Dever T. Biochemical mechanisms for translational regulation in synaptic plasticity. //Nat. Rev. Neurosci.- 2004.- V.5, N 12.- P. 931 942.

270. Klimaschewski L., Kummer W., Heyrn C. Localisation, regulation and functions of neurotransmitters and neuromodulators in cervical sympathetic ganglia. //Microscopy Res. Technique.- 1996.- V.35, N 1.- P. 44 68.

271. Koirala S., Ко C.-P. Synapse-glia interactions at the vertebrate neuromuscular junction. //Neuroscientist.- 2005.-V.il, N 5.-P. 503 513.

272. Kruk P., Кот H., Faber D. The effects of geometrical parameters on synaptic transmission: a Monte Carlo simulation study. //Biophys. J.- 1997.-V.73, N 6.-P. 2874-2890.

273. Kubrusly R., da Cunha M., Reis R., Soares H., Ventura A., Kurtenbach E., de Mello M, de Mello F. Expression of functional receptors and transmitter enzymes in cultured Muller cells. //Brain Res.- 2005.- V.1038, N 2.- P. 141 149.

274. Kumer S., Vrana K. Intricate regulation of tyrosine hydroxylase activity and gene expression. //J. Neurochem.- 1996.- V.67.- P. 443 462.

275. Lanahan A., Worley P. Immediate-early genes and synaptic function. //Neurobiol. Learn. Mem.- 1998.-V.70, N 1-2.- P. 37 43.

276. Larkum M, Warren D., Benett M. Calcium concentration changes in the calyciform nerve terminal of the avian ciliary ganglion after tetanic stimulation. //J. Auton. Nerv. Syst.- 1994.- V.46.- P. 175 188.

277. Laughton J., Charnay Y., Belloir B., Pellerin L., Magistretti P., Bouras C. Differential messenger RNA distribution of lactate dehydrogenase LDH-1 and LDH-5 isoforms in the rat brain. //Neuroscience.- 2000.- V.96, N 3.- P. 619 625.

278. Lazdunski M. ATP-sensitive potassium channels: an overview. //J. Cardiovasc. Pharmacol.- 1994.- V.24.- SI S5.

279. Lieberman A. The axon reaction: a review of the principal features of peri-karial responses to axon injury. //Int. Rev. Neurobiol.- 1971.- V.l4.- P. 49 124.

280. Lilienbaum A., Israel A. From calcium to NF-kappa В signaling pathways in neurons. //Мої. Cell. Biol.- 2003.- V.23, N 8.- P. 2680 2698.

281. Lin YQ., Brain K., Bennett M. Calcium in sympathetic boutons of rat superior cervical ganglion during facilitation, augmentation and potentiation. //J. Auton. Nerv. Sist.- 1998.- V.73, N 1.- P. 26 37.

282. Lopez-Cardozo M., Larsson OM., Schousboe A. Acetoacetate and glucose as lipid precursors and energy substrates in primary cultures of astrocytes and neurons from mouse cerebral cortex. //J. Neurochem.- 1986.- V.46, N 3.-P. 773 778.

283. Madshus Y. Regulation of intracellular pH in eukaryotic cells. //Biochem.-1988.-V.250.-P. 1-8.

284. Magistretti P. Neuron-glia metabolic coupling and plasticity. //J Exp Biol.-2006.- V.209, N 12.- P. 2304 2311.

285. Magistretti P., Pellerin L. Cellular mechanisms of brain energy metabolism and their relevance to functional brain imaging. //Philos. Trans. R. Soc. Lond. В Biol. Sci.- 1999,- V.354.- P. 1155 1163.

286. Malenka R., Nicoll R. Long-term potentiation a decade of progress? //Science.- 1999.- V.285, N 5435.- P. 1870 - 1874.

287. Mangia S., Giove F., Bianciardi M, Di Salle F., Gareffa G., Maraviglia B. Issues concerning the construction of a metabolic model for neuronal activation. // J. Neurosci. Res.- 2003.- V.71, N 4.- P. 463 467.

288. Mansvelder H., van Aerde K., Couey J., Brussard A. Nicotinic modulation of neuronal networks: from receptors to cognition. //Psychopharmacology.- 2006.-V.184.- P. 292-305.

289. Martin D. Synthesis and release of neuroactive substances by glial cells. //Glia.- 1992.- V.5, N 2.- P. 81 94.

290. Martin ED., Buno W. Stabilizing effects of extracellular ATP on synaptic efficacy and plasticity in hippocampal pyramidal neurons. //Eur. J. Neurosci.-2005.-V.21, N 4.- P. 936 944.

291. Martin S., Moris R. New life in an old idea: the synaptic plasticity and memory hypothesis revisited. //Hippocampyus.- 2002.- N 12.- P. 609 636.

292. Masino S., Dulla C. Adenosine, glutamate and pH: interactions and implications. //Neurological. Res.- 2005.-V.27, N 2.- P. 149 152.

293. McBride W., Klingman J. Effects of excitation of the metabolism of simple neuronal system: the mammalian sympathetic ganglion. //Prog. Neurobiol.-1975.-V.3.-P. 253-287.

294. McCaman M., McAfee D. Effects of synaptic activity on the metabolism and release of purines in the rat superior cervical ganglion. //Cell Мої. Neurobiol.-1986.-V.6. N 4. P. 349 -362.

295. McGaugh J. Memory: a century of consolidation. //Science.- 2000.- V. 287.-P. 248-251.

296. McKenna M., Tildon J., Stevenson J., Boatright R., Huang S. Regulation energy metabolism in synaptic terminals and cultured rat brain astrocytes: differences revealed using aminooxyacetate. //Dev. Neurosci.- 1993.- V.15, N 3-5.-P. 320-329.

297. Meberg P., Kinney W., Valcourt E., Routtenberg A. Gene expression of the transcription factor NF-kappa В in hippocampus: regulation by synaptic activity. //Brain Res. Мої. Brain Res.- 1996.-V.38, N 2.- P. 179 190.

298. Meffert M., Chang J., Wiltgen B., Fanselow M., Baltimore D. NF-kappa В function in synaptic signaling and behavior. //Nat. Neurosci.- 2003.- V.6, N 10.-P. 1072-1078.2661. OA

299. Meldolesi J. Rapidly exchanging Ca stores: ubiquitous partners of surface channels in neurons. //News Physiol. Sci.- 2002.- V.17.- P. 144 149.

300. Mitterauer B. Imbalance of glial-neuronal interaction in synapses: a possible mechanism of the pathophysiology of bipolar disorder. //Neuroscientist.- 2004.-V.10, N 3.- P. 199-206.

301. Moss T. At the crossroad of growth control; making ribosomal RNA. //Curr. Opin. Genet. Dev.- 2004.- V.14, N 2.- P. 210 217.

302. Nakamura S., Todo Т., Motoi Y., Haga S., Aizawa Т., Ueki A., Ikeda K. Glial expression of fibroblast factor-9 in rat central nervous system. //Glia.- 1999.-V.28, N1,- P. 53-65.

303. Neumann D., Schlattner U., Wallimann T. A molecular approach to the concerted action of kinases involved in energy homeostasis. //Biochem. Soc. Trans.-2003.-V.31.- P. 169- 174.

304. Newman E., Volterra A. Glial control of synaptic function. //Glia.-2004.-V.47, N 3.- P. 207-208.

305. Newman E., Zahs R. Modulation of neuronal activity by glial cells in the retina. //J. Neurosci. Res.- 1998.- V. 18, N 11.- P. 4022 4028.

306. Nguen P., Abel Т., Kandel E. Requirement of critical period of transcription for induction of a late phase of LTP. //Science.- 1994.- V.265, N 5175.-P. 1104-1107.

307. Norenberg M.D., Martinez-Hernandez A. Fine structural localization of glutamine synthetase in astrocytes of rat brain. //Brain Res.- 1977.- V.161.-P. 303-310.

308. Novere N., Corringer P., Changeia J. The diversity of subunit composition in nAChRs: Evolutionary origins, physiologic and pharmacologic consequences. //J. Neurobiol.- 2002.- V.53, N 4.- P. 447 456.

309. Oikawa H., Nakamichi N., Kambe Y, Ogura M., Yoneda Y An increase in intracellular free calcium ions by nicotinic acetylcholine receptors in a single cultured rat cortical astrocyte. //J. Neurosci. Res.- 2005.-V.79, N 4.- P. 535 544.

310. OKane E., Stone T. Characterization of ATP-induced facilitation of transmission in rat hippocampus. //Eur. J. Pharmacol.- 2000.- V.409.- P. 159 166.

311. Okuno H., Takemoto-Kimura S., Ohmae S., Okamura M., Ishihara N., Bito H. Synaptic activity-dependent regulation of neuronal gene expression. // Tan-pakushitsu Kakusan Koso.- 2004.- V.49, Suppl 3.- P. 411 418.

312. Palevic V., Burnstock G. Receptors for purines and pyrimidines. //Pharmacol. Rev.- 1998.-V.50, N 3.- P. 413 492.

313. Pannese E. Neurocytology. Stuttgart.: Thyeme.- 1994.- 450 p.

314. Parkinson F., Sinchlar C., Othman T., Hayghey N., Geyger J. Differences between rat primary cortical neurons and astrocytes in purine release evoked by ischemic conditions. //Neuropharmacology.- 2002.-V.43.- P. 836 846.

315. Pelto-Huikko M., Dagerlind A., Kononen J., Lundberg J., Villar M., Koisti-naho J,, Bravo R., Hokfelt T. Neuronal regulation of c-fos, c-jun, and jun B immediate-early genes in rat adrenal medulla. //J. Neurosci.- 1995.- V.15, 3 Ptl.-P. 1854- 1868.

316. Peppiatt C., Attwell D. Neurobiology: feeding the brain. //Nature.- 2004.-V.431, N 7005.- P. 137-142.

317. Perrone-Capano C., Crispino M., Menchini E., Kaplan BB., Giuditta A. Ribosomal RNAs synthesized by isolated squid nerves and ganglia differ from native ribosomal RNAs. //J. Neurochem.- 1999.- V.72, N 3.- P. 910-918.

318. Peters A., Schweiger U., Pellerin L., Hubold C., Oltmanns KM., Conrad M., Schultes B., Born J., Fehrn HL. The selfish brain: competition for energy resources. //Neirosci. Biobehav. Rev.-2004.-V.28, N 2.-P. 143- 180.

319. Peters A., Sethares C. Oligodendrocytes, their progenitors and other neuroglial cells in the aging primate cerebral cortex. //Cerebral Cortex.- 2004.- V. 14.-P. 995-1007.

320. Petersen O., Michalak M, Verkhratsky A. Calcium signaling: past, present and future. //Cell Calcium.- 2005.- V.38, N 3-4.- P. 161 169.

321. Pfeiffer B., Huber K. Current advances in local protein synthesis and synaptic plasticity. //J. Neurosci.- 2006.-V.26, N 27.- P. 7147 7150.

322. Pfrieger E., Barres B. New views on synapse-glia interactions. //Curr. Opin. Neurobiol.- 1996.- V.6, N 5.- P. 615 -621.

323. Phillis J., O'Regan M., Estevez A., Song D., VanderHiede S. Cerebral energy metabolism during severe ischemia of varying duration and following reperfusion. //J. Neurochem.- 1996.-V.67.- P. 1525 1561.

324. Philp A., Macdonald A., Watt P. Lactate a signal coordinating cell and systemic function. //J. Exp. Biol.- 2005.- V.208.- P. 4561 - 4571.

325. Pierre K., Pellerin L. Monocarboxylate transporters in the central nervous system: distribution, regulation and function. //J. Neurochem.- 2005.- V.94, N 1.-P. 1 -14.

326. Poitry-Yamate C, Poitry C., Tsacopoulos M. Lactate released by Muller cells is metabolized by photoreceptors from mammalian retina. //J. Neurosci.-1995.-V.15.-P. 5179-5191.

327. Popanda O., Fox G., Thielmann H.W. Modulation of DNA polymerases a, 5 and s by lactate dehydrogenase and 3-phosphoglycerate kinase. //Bio-cim.Biophys. Acta.- 1998.- V.1397, N 1.- P. 102 117.

328. Porter J., McCarthy. K. Astrocytic neurotransmitter receptors in situ and in vivo. //Prog. Neurobiol.- 1997.- V.51.- P. 439 455.

329. Prasad R., Singh L. LDH and succcinate dehydrogenase activités in relation to species and muscle types. //Indian J. Anim.Sci.- 1992.- V.62, N 7.- P. 622- 624.

330. Pullen A. Morphometric evidence from C-synapses for phase Nissl body response in alpha-motoneurones retrogradely intoxicated with diphtheria toxin. //Brain Res.- 1990.- V.509, N1.- P. 8 16.

331. Raichle M. Functional brain imaging and human brain function. //J. Neurosci.- 2003.- V.23.- P. 3959 3962.

332. Raichle M, Gusnard D. Appraising the brain's energy budget. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 2002.- V.99.- P. 10237 10239.

333. Rathouz M., Berg D. Synaptic-type acetylcholine receptors raise intracellular calcium levels in neurons by two mechanisms. //J. Neurosci.-1994.- V.14, 11 Pt.2.-P. 6935 6945.

334. Rathouz M., Vijayaraghavan S., Berg D. Elevation of intracellular calcium levels in neurons by nicotinic acetylcholine receptors. //Mol. Neurobiol.- 1996.-V.12, N 2.- P. 117-131.

335. Rizzuto R. Intracellular Ca(2+) pools in neuronal signaling. //Curr. Opin. Neurobiol.-2001.- V.l 1, N 3.- P. 306- 311.

336. RichterJ. Think globally, translate locally: What mitotic spindles and neuronal synapses have in common. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2001.- V.98, N 13.-P. 7069-7071.

337. Rochon D., Rousse I., Robitaille R. Synapse-glia interactions at the mammalian neuromuscular junction. //J. Neurosci.- 2001.-V.21, N 11.- P. 3819 3829.

338. Rosenberg M., Blitzblau R., Olsen D., Jacob M. Regulatory mechanisms that govern nicotinic synapse formation in neurons. //J. Neurobiol.- 2002.- V.53, N 4.-P. 542-555.

339. Sargent P. The diversity of neuronal nicotinic acetylcholine receptors. //Annu. Rev. Neurosci.- 1993.- V.16.- P. 403 443.

340. SatchelI D. Purinergic nerves and purinoceptors: early perspectives. //J. Auton. Nerv. Syst- 2000.- V.81, N 1-3.- P. 212 217.

341. Scheetz A., Nairn A., Constantine-Paton M. NMDA receptor-mediated control of protein synthesis at developing synapses. //Nat. Neurosci.- 2000,- V.3, N 3.-P. 211 -216.

342. Schipke CG., Kettenmann H. Astrocyte responses to neuronal activity. //Glia.- 2004.-V.47, N 3.- P. 226 232.

343. Schuman E., Dynes J., Steward O. »Synaptic regulation of translation of dendritic mRNAs. //J. Neurosci.- 2006.- V.26, N 27.- P. 7143 7146.

344. SchurrA. Lactate: the ultimate cerebral oxidative energy substrate. //J. Cereb. Blood Flow Metab.- 2006.- V.26, N 1.- P. 142 152.

345. Serres S., Bouyer J-J., Bezancon E., Canioni P., Merle M. Involvement of brain lactate in neuronal metabolism. //NMR Biomed.- 2003.- V.l6.- P. 430 439.

346. Serres S., Bezancon E., Franconi J.M., Merle M. Ex vivo NMR study of lactate metabolism in rat brain under various depressed states. //J. Neurosci. res.-2005.- V.79, N 1-2,- P. 19-25.

347. Shank R.P., Bennet G., Freytag S., Campbell G. Pyruvate carboxylase: an astrocyte-specific enzyme implicated in the replenishment of amino acid neurotransmitter pools. //Brain Res.- 1985.- V.329.- P. 364 367.

348. Sharma G., Vijayaraghavan S. Nicotinic cholinergic signaling in hippocampal astrocytes involves calcium-induced calcium release from intracellular stores. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2001.- V.98, N 7.- P. 4148 4153.

349. Sharma G., Vijayaraghavan S. Nicotinic receptor signaling in nonexcitable cells. //J. Neurobiol.- 2002.- V.53, N 4.-P. 524 534.

350. Shashoua VE. RNA metabolism in the brain. //Int. Rev. Neurobiol.- 1974.-V.16.-P. 183-231.

351. Sibson N., Dhankhar A., Mason G., Rothman D., Behar K., Shulman R. Stoichiometric coupling of brain glucose metabolism and glutamatergic neuronal activity. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 1998.- V.95.-P. 316 321.

352. Silver I., Deas J., Erecinska M. Ion homeostasis in brain cells: differences in intracellular ion responses to energy limitation between cultured neurons glial cells. //Neuroscience.- 1997.- V.78, N 2.- P. 589 601.

353. Skok VI. Molecular mechanisms of open-channel blockade in nicotinic acetylcholine receptors of autonomic ganglia neurons. //Can. J. Physiol. Pharmacol.- 1992.-V.70.- S78-85.

354. Skok VI. Nicotinic acetylcholine receptors in autonomic ganglia. //Auton. Neurosci.- 2002.- V.97, N 1.- P. 1 11.

355. Skok VI., Voitenko SV, Brovtsyna NB, Kurenniy D., Gmiro VE., Kertser SL. The ionic channel of neuronal nicotinic acetylcholine receptors is funnelshaped. //Neuroscience.- 1995.- V.67, N 4.-P. 933 939.

356. Smith R. Moving molecules: mRNA trafficking in mammalian oligodendrocytes and neurons. //Neuroscientist.- 2004.- V.10, N 6.- P. 495 500.

357. SokoloffL. Energetics of functional activation in neural tissues. //Neurochem. Res.- 1999.-V.24, N 2.- P. 321 329.

358. Sokoloff L. Functional-related changes in energy metabolism in the nervous system: localization and mechanisms. //Keio J. Med.- 1993.- V.42, N3.1. P. 95- 103.

359. Sokoloff L., Takahashi S., Gotoh J., Driscoll B., Law M. Contribution of astroglia to functionally activated energy metabolism. //Dev. Neurosci.- 1996.-V.18, N 5-6.- P. 344-352.

360. Sontheimer H. Voltage-depend ion channels in glial cells. //Glia.-1994.-V.l 1, N2.-P. 156- 172.

361. Stefani G., Fraser C., Darnell J., Darnell R. Fragile X mental retardation protein is associated with translating polyribosomes in neuronal cells. //J. Neurosci.- 2004.- V.24, N 33.- P. 7272 7276.

362. Steward O., Levy WB. Preferential localization of polyribosomes under the base of dendritic spines in granule cells of the dentate gyrus. //J. Neurosci.- 1982.-V.2.-P. 284-291.

363. Steward O., Schuman E. Protein synthesis at synaptic sites on dendrites. //Annu. Rev. Neurosci.- 2001.- V.24.- P. 299 325.

364. Steward O., Schuman E. Compartmentalized synthesis and degradation of proteins in neurons. //Neuron.- 2003.- V.40, N 2.- P. 347 359.

365. Steward O., Worley PF. A cellular mechanism for targeting newly synthesis mRNA to synaptic sites on dendrites. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2001.- V.98, N13.-P. 7062-7068.

366. Stone T., O'Kane E., Nikbakht M., Ross F. Presynaptic P2 receptors? //J. Auton. Nerv. Syst.- 2000.- V.81, N 1-3.- P. 244 248.

367. Takei N., Kawamura M, Hara K, Yonezawa K, Nawa H. Brain-derived neurotrophic factor enhances neuronal translation by activating multiple initiation processes: comparison with the effect of insulin. //J. Biol. Chem.- 2001.- V.276, N46. P. 42818-42825.

368. Tang S., Reis G., Kang H., Gingras A.C., Sonenberg N„ Schuman E. A rapamicin-sensetiv signaling pathway contributes to long-term synaptic plasticity in hippocampyus. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 2002.- V.99, N 1.- P. 467 472.

369. Temburni M., Jacob M. New functions for glia in the brain. //Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 2001.- V.98, N 7.- P. 3631 3635.

370. Thomas S., Fell DA. A control analysis exploration of the role of ATP utilization in glycolytic-flux control and glycolytic-metabolite-concentration regulation. //Eur. J. Biochem.- 1998.- V.258, N 3.- P. 956 967.

371. Thompson K., Otis K., Chen D., Zhao Y., ODell T., Martin K. Synapse to nucleus signaling during long-term synaptic plasticity: a role for the classical active nuclear import pathway. //Neuron.- 2004.- V.44, N 6.- P. 997 1009.

372. TiedgeH. RNA reigns in neurons. //Neuron.- 2005.- V.48.- P. 13-16.

373. Todd KJ., Robitaille R. Neuron-glia interactions at the neuromuscular synapse. //Novartis Found. Symp.- 2006.- V.276.- P. 222 229.

374. Tolbert L., Oland L., Tucker E., Gibson N., Higgins M., Lipscomb B. Bidirectional influences between neurons and glial cells in the developing olfactory system. //Prog. Neurobiol.- 2004.- V.73, N 2.- P. 73 105.

375. Triller A., Choquet D. Surface trafficking of receptors between synaptic and extra synaptic membranes: and yet they do move! //Trends Neurosci.- 2005.-V.28, N3.-P. 133- 139.

376. Trouslard J., Marsh S., Brown D. Calcium entry through nicotinic receptor channels and calcium channels in cultured rat superior cervical ganglion cells. //J. Physiol.- 1993.- V.468, N 1.- P. 53 71.

377. Ullian E., Sapperstein S., Christopherson K., Barres B. Control of synapse number by glia. //Science.- 2001.- V.291, N 5504.- P. 657 661.

378. Valero E., Varon R., Garcia-Carmona F. Kinetics of a self-amplifying substrate cycle: ADP-ATP cycling assay. //Biochem J.- 2000.-V.350, Pt 1.- P. 237-243.

379. Vega C., Martiel J-L., Drouhault D., Burckhart M-F., Coles J. Uptake of locally applied deoxyglucose, glucose and lactate by axons and Schwann cells of rat vagus nerve. //J. Phisiol.- 2003.- V.546, N 2.- P. 551 564.

380. Verkhratsky A. Physiology and pathophysiology of the calcium store in the endoplasmic reticulum of neurons. //Physiol Rev.- 2005.-V.85, N 1.- P. 201 279.

381. Verkhratsky A. Glial calcium signaling in physiology and pathophysiology. //Acta Pharmacol. Sin.- 2006.- V.27, N 7.- P. 773 780.

382. Verkhratsky A., Orkand R., Kettenmann H. Glial calcium: homeostasis and signaling function. //Physiol. Rev.- 1998.- V.78, N 1.- P. 99 141.

383. Volterra A., Magistretti P., Haydon P. The Tripartite Synapse: Glia in Synaptic Transmission. Oxford.: Oxford University Press.- 2002.

384. Vraa-Jensen J. On the correlation between the function and structure of nerve cells. //Acta psychiat. Scand.- 1956.- V.109.- P. 9 88.

385. Wakade A., Wakade A., Maholtra R. Restoration of catecholamine content of previously depleted adrenal medulla in vitro: importance of synthesis in maintaining the catecholamine stores. //J. Neurochem.- 1988,- V.51.- P. 820 829.

386. Walz W. Role of astrocytes in the clearance of excess extracellular potassium. //Neurochem. Int.- 2000.- V.36.- P. 291 300.

387. Wang N., Orr-Urtreger A., Chapman J., Rabinowitz R., Korczyn A. Deficiency of nicotinic acetylcholine receptor (34 subunit causes autonomic cardiac and intestinal dysfunction. //Mol. Pharmacol.- 2003.-V.63, N 3.- P. 574 580.

388. Wang N., Orr-Urtreger A., Korczyn A. The role of nicotinic acetylcholine receptor subunits in autonomic ganglia: lessons from knockout mice. //Prog. Neurobiol.- 2002.- V.68, N 5.- P. 341 360.

389. Wang H., Tiedge H. Translation control at the synapse. //Neuroscientist.-2004.- V. 10, N 5.- P. 456 466.

390. Wells D. RNA-binding proteins: a lesson in repression. //J. Neurosci.- 2006.-V.26,N 27.-P. 7135-7138.

391. West A., Griffith E., Greenberg M. Regulation of transcription factors by neuronal activity. //Nature Rev. Neurosci.- 2002.- V.3, N 12.- P. 921 931.

392. Westwall D., Todorov L., Mihalova- Todorova S. ATP as co-transmitter in sympathetic nerves and its inactivation by releasable enzymes. //J. Pharmacol. Exp. Ther.- 2002.-V.303, N 2.- P. 439 444.

393. Wilkins A., Chandran S., Compston A. A role for oligodendrocyte-derived IGF-1 in trophic support of cortical neurons. //Glia.- 2001.- V.36, N 1.- P.48 57.

394. Winkler BS., Arnold MJ., Brassell., Puro DG. Energy metabolism in human retinal Muller cells. //Invest. Ophthalmol. Vis. Sci.- 2000.-V.41, N 10.-P.3183-3190.

395. Wolf G. Application of microdisc electrophoresis. //Acta Histochem. Suppl.-1975.-V.15.- P. 79-82.

396. Wonnacott S., Sidhpura N., Balfour D. Nicotin: from molecular mechanisms to behavior. //Curr. Opin. Pharmacol.- 2005.- V.5, N 1.- P. 53 59.

397. YaoL., Wang G., Yang K., Wei C., WangX., WangS., Yao W., Huang K, Luo J., Wu C., Liu J., Zhog Z., Cheng H. Ca2+ sparks and Ca2+ glows in superior cervical ganglion neurons. //Acta Pharmacol. Sinica.- 2006.-V.27, N 7.- P. 848 852.

398. Yarowsky P., Crane A., Sokoloff L. Metabolic activation of specific postsynaptic elements in superior cervical ganglion by antidromic stimulation of external carotid nerve. //Brain Res.- 1985.-V.334, N 2.- P. 330 -334.

399. Yarowsky P., Ingvar D. Symposium summary. Neuronal activity and energy metabolism. //Fed. Proc.- 1981.-V.40, N 9.- P. 2353 2362.

400. Yarowsky P., Kadekaro M., Sokoloff L. Frequency-dependent activation of glucose utilization in the rat superior cervical ganglion by electrical stimulation of cervical sympathetic trunk. //Proc. Natl. Acad. Sci.- 1983.-V.80, N 13.-P. 4179-4183.

401. Yawo H., Chuhma N. Preferential inhibition of omega-conotoxin-sensetiv presynaptic Ca2+ channels by adenosine autoreceptors. //Nature.- 1993.- V.365.-P. 256-258.276

402. Yoshino M., Yamamoto C., Murakami K., Katsumata Y., Mori S. Stabilization of the adenilate energy charge in erythrocytes of rats and humans at high altitude hypoxia. //Comp. Biochem. Physiol. A.- 1992.-V.101, N 1.- P. 65 68.

403. Yu A.C.H., Drejer J., Herz L., Schousboe A. Pyruvate carboxylase activity in primary cultures of astrocytes and neurons. //J. Neurochem.- 1983.- V.41.-P. 1484-1487.

404. Zalfa F., Giorgi M., Primerano B., Moro A., Penta Di., Reis S., Oostra B., Bagni C. The fragile X syndrom protein FMRP associates with BC1 RNA and regulates the translation of specific mRNAs at synapses. //Cell.- 2003.- V.l 12.-P. 317-327.

405. Zalfa F., Lindholm D., Castren E., Hartikka J., Thoenen H. Regulation of brain -derived neurotrophic factor and nerve growth factor mRNA in primary cultures of hippocampal neurons and astrocytes. //J. Neurosci.- 1992.- V.12.-P. 4793-4799.

406. ZhongJ., Zhang T., Bloch L. Dendritic mRNAs encode diversified functionalities in hippocampal pyramidal neurons. //BMC Neuroscience.- 2006.- V. 7, N17.-P. 1-12.

407. Zhou Y, Deneris E., Zigmond R. Differential regulation of levels of nicotinic receptor subunit transcripts in adult sympathetic neurons after axotomy. //J. Neurobiol.- 1998.- V.34, N 2,- P. 164 178.