Морфо-функциональное исследование влияния гипоталамических нонапептидных нейрогормонов (вазотоцина и окситоцина) и адреналина на щитовидную и интерреналовую железу у осетровых рыб в условиях in vitro тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.11, кандидат биологических наук Платик, Марина Муратовна

• Платик, Марина Муратовна
• кандидат биологических наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Платик, Марина Муратовна

Общая характеристика работы.

Глава 1. Обзор литературы.9

1.1 Вазотоцин- и окситоцинергические нейросекреторные клетки гипоталамуса рыб.

1.2 Щитовидная железа низших позвоночных.

1.2.1 Морфология и функция щитовидной железы.

1.2.2 Влияние аденогипофизарных гормонов на функцию щитовидной железы.

1.2.3 Влияние гипоталамических нейрогормонов на функцию тиротропоцитов.19.

1.2.4 Эффект непосредственного воздействия вазопрессина/вазотоцина и окситоцина на функцию щитовидной железы.

1.3 Интерреналовая железа.

1.3.1 Морфология и функция интерреналовой железы.

1.3.2 Влияние АКТГ на функцию интерреналовой железы.

1.3.3 Влияние гипоталамических нейрогормонов на функцию кортикотропоцитов.

1.3.4 Эффект непосредственного воздействия вазопрессина/вазотоцина и окситоцина на функцию интерреналовой железы.

1.4. Морфология и функция супрареналовой железы.

1.4.1 Действие катехоламинов на функцию щитовидной и интерреналовой желез.

1.5. Сочетанное воздействие катехоламиновых и нонапептидных нейрогормонов на функцию щитовидной и интерреналовой (коры надпочечника у Mammalia) железы.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Морфо-функциональное исследование влияния гипоталамических нонапептидных нейрогормонов (вазотоцина и окситоцина) и адреналина на щитовидную и интерреналовую железу у осетровых рыб в условиях in vitro»

В настоящее время в связи с ухудшающимися как экологической, так и социальной ситуациями, проблема стресса продолжает оставаться актуальной. Многие системы в организме немедленно реагируют на стрессорное воздействие. Среди систем, вовлеченных в обеспечение процесса адаптации, важная роль принадлежит нейроэндокринному гипоталамо-гипофизарному комплексу и периферическим нейрогормонам - гормонам хромаффинной ткани. Результаты экспериментальных исследований как на млекопитающих, так и на низших позвоночных свидетельствуют о том, что стресс провоцирует повышение в крови уровня катехоламиновых и нонапептидных нейрогормонов. Известна роль нейрогормонов в регуляции многих функций организма, но особый интерес представляет изучение их влияния на периферические эндокринные железы, в частности, на щитовидную и кору надпочечника (интерреналовую железу у Submammalia), гормоны которых участвуют во многих метаболических процессах организма, в том числе при адаптации организма к различным стрессорным ситуациям (Pierson, 1995; Fontaine, 1963).

Функция гипоталамических нейрогормонов у позвоночных, направлена на регуляцию секреции тройных гормонов аденогипофиза - центрального эндокринного органа. Аденогипофиз - это сравнительно молодое в филогенетическом смысле образование, что убедительно доказано в фило- и онтогенетических исследованиях, где показано, что аденогипофиз формируется и начинает функционировать позже нейросекреторых клеток гипоталамуса и периферических эндокринных желез (Яковлева, 1977). Гормоны аденогипофиза у позвоночных, в свою очередь, осуществляют регуляцию периферических эндокринных органов.

Но, известно, что при стрессорных и патологических ситуациях ярко проявляется непосредственное влияние пептидных гипоталамических нейрогормонов на периферические эндокринные железы (Поленов, 1983). Это доказано в многочисленных экспериментальных исследованиях на амфибиях и млекопитающих, где выявлены рецепторы к различным пептидным нейрогормонам (вазотоцину/вазопрессину и окситоцину и др.) в клетках щитовидной железы и коры надпочечника (интерреналовой железы у низших позвоночных) (Lärche et al., 1992; Макина и соавт., 1997).

Эволюционный аспект проблемы исследован пока недостаточно. В этом плане особенно актуальны исследования на хрящевых ганоидах, как на древних представителях животного мира. Опыты на интактных и гипофизэктомированных осетровых рыбах и амфибиях до настоящего времени позволяли лишь предполагать участие нейропептидных и катехоламиновых нейрогормонов в прямой регуляции функций периферических эндокринных желез, поскольку в условиях целостного организма на железу влияют множество нервных и гормональных факторов, то невозможно говорить о воздействии какого-либо одного из них в условиях in vivo. Поэтому вполне целесообразно в экспериментах in vitro моделировать определенные звенья нейроэндокринной реакции на стрессорную ситуацию и исследовать в этих условиях функции щитовидной и интерреналовой желез.

Актуальность предполагаемого исследования заключается в выявлении филогенетически древних механизмов регуляции периферических эндокринных желез, наиболее четко проявляющихся в условиях стресса и паталогии у позвоночных (Орбели, 1959; Поленов, 1983).

Целью настоящей работы является изучение возможности непосредственной нейрогормональной регуляции функций периферических эндокринных желез при стрессе у осетровых рыб.

Для этого были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать in vitro непосредственное влияние гипоталамических нонапептидов (вазотоцина и окситоцина) на функцию щитовидной и интерреналовой желез стерляди и осетра.

2. Изучить непосредственное влияние адреналина на функцию изолированных щитовидной и интерреналовой желез стерляди и осетра.

3. Исследовать эффект сочетанного воздействия гипоталамических нейрогормонов (вазотоцина или окситоцина) с адреналином на функцию щитовидной и интерреналовой желез в условиях in vitro.

4. Выявить тип адренорецепторов на стероидогенных клетках интерреналовой железы осетра.

Научная новизна результатов исследования.

Впервые в экспериментах in vitro на осетровых рыбах показано: 1) прямое влияние гипоталамических и катехоламиновых нейрогормонов на щитовидную и интерреналовую железы осетровых рыб, полученные результаты свидетельствуют о непосредственном активирующем действии вазотоцина и окситоцина на функцию щитовидной и интерреналовой желез; 2) под действием адреналина, напротив, наблюдалось снижение функциональной активности обеих желез; 3) адреналин подавляет стимулирующий эффект вазотоцина или окситоцина на щитовидную и интерреналовую железы; 4) выявлено, что адреналин оказывает тормозное влияние на стимуляцию вазотоцином стероидогенных клеток интерреналовой железы через бета-адреноцепторы. Теоретическая и практическая значимость.

Результаты настоящей работы важны для понимания становления регуляции функций щитовидной и интерреналовой желез в ходе филогенеза.

На примере двух видов осетровых рыб, нами показано, что у низших позвоночных гипоталамические нонапептиды могут осуществлять непосредственную неспецифическую стимуляцию щитовидной и интерреналовой желез. Адреналин оказывает в условиях in vitro неспецифическое ингибирующее влияние на функцию щитовидной и интерреналовой железы осетровых рыб и снижает стимулирующий эффект нонапептидов. Таким образом, в нейрогормональной регуляции функций периферических эндокринных желез осетровых в условиях стресса важную роль играет взаимодействие нонапептидных нейрогормонов и адреналина, причем влияние адреналина осуществляется через бета-адренорецепторы.

Практическое значение этих исследований заключается в выявлении возможности разработки мероприятий, уменьшающих последствия стрессорных воздействий при выращивании осетровых в условиях рыбоводных заводов. Результаты этой работы включены в курсы лекций по нейроэндокринологии в Санкт-Петербургском Университете, в Астраханском Университете. Основные положения, выносимые на защиту.

1. Вазотоцин и окситоцин при непосредственном воздействии стимулируют функцию щитовидной и интерреналовой желез осетровых рыб.

2. Адреналин (100 нг/мл) в опытах in vitro снижает функциональную активность щитовидной и интерреналовой желез.

3. При сочетанном действии гипоталамических нейрогормонов (вазотоцина или окситоцина) с адреналином достоверно тормозится стумулирующий эффект вазотоцина на функции как щитовидной, так и интерреналовой желез обоих видов осетровых.

4. Адреналин через бета-адренорецепторы снижает функциональную активность стероидогенных клеток интерреналовой железы осетра.

Апробация работы, публикации. Материалы диссертации были доложены и обсуждены на конференциях студентов и аспирантов (1996, 1997, 1998), на заседании общества физиологов г.С.-Петербурга в 1997 и 1998 г., на международном Конгрессе сравнительных эндокринологов (Испания, 1997). По материалам диссертации опубликовано 7 работ, из них 2 статьи и 5 тезисов, одни из которых зарубежом. Структура диссертации. Диссертация состоит из введения, обзора литературы (Глава 1), описания материалов и методов (Глава 2), результатов собственных исследований (Глава 3), обсуждения, заключения и выводов.

Заключение диссертации по теме «Эмбриология, гистология и цитология», Платик, Марина Муратовна

Выводы.

1. В экспериментах in vitro на фрагментах щитовидной и интерреналовой желез двух видов осетровых рыб (стерляди и осетра) показано непосредственное стимулирующее влияние гипоталамических нонапептидов (вазотоцина, окситоцина) в концентрациях, наблюдаемых в крови при стрессе. Это действие подобно эффекту соответствующих аденогипофизарных гормонов.

2. В хромаффинных клетках супрареналовой железы, локализованных в стенках почечных вен, выявлено наличие тирозин-гидроксилазы, доказывающее, что эти клетки вырабатывают катехоламины.

3. Инкубация в среде, содержащей адреналин в концентрации, соответствующей повышению его уровня в крови рыб при стрессе, достоверно снизила функциональную активность как щитовидной, так и интерреналовой железы.

4. При сочетанном воздействии адреналина и гипоталамических нейрогормонов (вазотоцина или окситоцина) или соответствующих аденогипофизарных гормонов (тиротропина и адренокортикотропина) адреналин блокирует стимулирующий эффект этих гормонов как на щитовидную, так и на интерреналовую железу осетровых рыб.

5. При помощи блокаторов альфа- и бета-адренорецепторов, добавляемых в инкубационную среду одновременно с вазотоцином и адреналином, показано, что адреналин через бета-адренорецепторы подавляет активацию стероидогенных клеток интерреналовой железы, вызванную действием вазотоцина.

6. Полученные результаты подтверждают гипотезу профессора А.Л.Поленова о прямом двойном нейрогормональном (нонапептидными и катехоламиновыми нейрогормонами) контроле функций периферических эндокринных желез при стрессе.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Платик, Марина Муратовна, 1999 год

1. Алешин Б.В. Гистофизиология гипоталамо-гипофизарной системы. М.: "Медицина". 1971.

2. Алешин Б.В., Губский В.И. Гипоталамус и щитовидная железа. М.: "Медицина". 1983.

3. Баранникова И.А. Функциональные основы миграции рыб. М.: Наука, 1975. С.206.

4. Баранникова И.А., Васильева Е.В., Тренклер И.В., Цепелован П.Г. Интерреналовая железа в жизненном цикле проходных осетровых.// Вопросы ихтиологии. 1978. Т.8. N4.C.719-734.

5. Баранникова И.А., Васильева Е.В. Ультраструктура клеток интерреналовой ткани осетра и ее сравнительный анализ у самок до и после нереста. // Цитология. 1978. Т.20. N3. С.263-268.

6. Бойко Н. Е., Чихачев А. С. Динамика тироксина в раннем онтогенезе русского осетра. // В кн. "Экологические и морфофункциональные основы адаптации гидробионтов". Тез. докл. симпоз., посвящ. 90-летию со дня рожд. проф. Н.Л.Гербильского. Л. 1990. С.30.

7. Васильева Е.В., Баранникова И.А. Ультраструктура клеток интерреналовой ткани осетра и ее сравнительный анализ у самок до и после нереста. // Цитология. Т.20. N3. 1978. С.263-268.

8. Глазова М.В., Красновская И.А., Черниговская Е.В., Поленов A.JI. Влияние тироидных гормонов на нейросекреторные клетки супраоптического и паравентрикулярного ядер гипоталамуса крыс в условиях in vitro. // Бюлл.эксперим.биол. и мед. 1996.

9. Дитятева Г.В., Красновская И.А., Скопичева В.И. Эффект аргинин-вазопрессина на щитовидную железу крысы in vitro. // Бюлл.эксп.биол.мед. 1990. N10. С.423-425.

10. Елифанов A.B., Беленький М.А., Кузик В.В., Поленов A.JI. Морфофункциональное исследование интерреналовой железы травяной лягушки Rana temporaria L. после введения аргинин-вазотоцина. //Ж. эвол. биохим. и физиол. 1988. Т.24. N5. С.740-744.

11. Елифанов A.B., Беленький М.А., Кузик В.В., Поленов A.JI. Реакция интерреналовой железы стерляди Acipenser ruthenus L. на гипофизэктомию и введение аргинин-вазотоцина. // Ж. эвол. биохим. и физиол. 1989. Т.25. N1. С.45-51.

12. Зубова С. Изменения в щитовидной железе у молоди волжской стерляди после гипофизэктомии. // В кн."Экологическая пластичность половых циклов и размножения рыб. Л.: 1978. С. 140-145.

13. Кацнельсон З.С., Стабровский Е.М. Гистология и биохимия хромаффинной ткани надпочечников. // М.:"Медицина", 1975.

14. Конки Д., Эрба Э., Фрешни Р., Гриффите Б., Хэй Р., Ласшитски И.,

15. Маурер Г., Мораска Л., Вилсон Э. // Культура животных клеток. Методы.М.: Мир, 1989. С.333.

16. Константинова М.С.,Наточин Ю.В. Гормоны нейрогипофиза вазопрессин и окситоцин.// Физиология эндокринной системы. Л.: Наука, 1979. С.90-119.

17. Красновская И.А., Воропанова JI.C., Поленов A.JL Блокирующее влияние адреналина на тиростимулирующий эффект у крыс. // Бюлл. эксперим.биолог.и мед. 1993. Т.115. N2. С.142-144.

18. Красновская И.А., Глазова М.В., Макина Д.М., Воропанова J1.C. Взаимодействие между окситоцинергическими клетками крупноклеточных центров гипоталамуса и щитовидной железой у крыс. // Ж.эвол.биохимии и физиологии. 1997. N2.

19. Лукьяненко Е.О., Беленький М.А., Поленов А.Л. Влияние вазотоцина, мезотоцина и адреналина на интерреналовую железу лягушки Rana temporaria в условиях in vitro. // Ж. эвол. физиол. и биохим.1992. Т.28. N5. С.

20. Макина Д.М., Красновская И.А., Глазова М.В., Поленов А.Л. Стимулирующий эффект вазопрессина у крыс осуществляется через У2-рецепторы.

21. Макина Д.М., Красновская И.А. Морфо-функциональная характеристика щитовидной железы у крыс при сочетанном воздействии окситоцина и адреналина. // Морфология. 1998. N6. С. 58-62.

22. Межнин Ф.И. Интерреналовые тельца и хромаффинная ткань осетровых. // Биология внутр. вод. 1973. N19. С.37-44.

23. Межнин Ф.И. Гистологическое и гистохимическое исследование адреналовой железы пеляди и тиляпии. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1974. T.L15. N1. С.57-62.

24. Межнин Ф.И. Интерреналовая и супрареналовая железы в онтогенезе белуги Huso huso (L.). // Труды инс-та биологии внутр. вод АН СССР. 1976, вып.31. С.164-169.

25. Межнин Ф.И. Гистологическое строение интерреналовой и супрареналовой желез лучистого ската Raja radiata. // Бюлл.Внутр.Вод. 1980. N45. С.37-41.

26. Наточин Ю. В., Лукьяненко В. И., Шахматова Е. И., Лаврова Е. А.,

27. Металлов Г. Ф. Двадцатилетний мониторинг (70-90-е годы) физико- химических параметров сыворотки крови у русского осетра Acipencer gueldenstaedti. // Вопросыихтиологии. 1995. Т. 35. № 2. С. 253-257.

28. Орбели Л.А. Основные задачи и методы эволюционной физиологии эволюция функции нервной системы. // Л.: Медгиз. 1959. С. 35-60.

29. Пенькова Е.А. Интерреналовая система севрюги Acipenser stellatus Pal. и ее функциональная связь с гипофизом. // Докл. АН СССР. 1972. Т.206. N5. С. 1256-1259.

30. Плисецкая Э.М. Гормональная регуляция углеводного обмена у низших позвоночных. Изд-во "Наука". Л-д, 1975.

31. Плисецкая Э.М., Прозоровская М.П. Катехоламины в крови и сердечной мышце миноги Lampetra fluviatilis при инсулиновой гипогликемии. // Ж. эвол. биохим. и физиол. 1971. Т.7. С. 12-24.

32. Поленов А.Л. Гипоталамическая нейросекреция. // Изд-во "Наука" Ленинградское отделение, Л.: 1968.

33. Поленов А.Л. Роль гомориположительной гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы в регуляции размножения (сравнительный морфологический и эколого-гистофизиологический анализ).//Ж.эвол.биохим. и физиол. 1986. Т.22. N4. С.137-139.

34. Поленов А.Л., Константинова М.С., Гарлов П.Е. Гипоталамо-гипофизарный нейроэндокринный комплекс.// "Нейроэндокринология" Кн.1 ч.1 С.-Петербург, 1993. С. 133-139.

35. Поленов A.JL, Кулаковский Э.Е. Происхождение и эволюция нейроэндокринных клеток в нейрогормональной регуляции у Metazoa. // " Нейроэндокринология" Кн.1, 4.1. С.- Петербург, 1993. С. 3-13.

36. Романова И.В., Поленов А.Л., Беленький М.А., Кузик В.В. Реакция щитовидной железы лягушки Rana temporaria на введение аргинин-вазотоцина. // Ж. эвол. биохим. и физиол. 1991. Т.27. N2. С.239-248.

37. Смиттен H.A. Симпато-адреналовая система в фило- и онтогенезе позвоночных. Изд. "Наука". М„ 1972.

38. Стабровский Е.М. Распределение адреналина и норадреналина в органах балтийской миноги L.fluviatilis в норме и при различных функциональных нагрузках. // Ж. эвол. биохим. и физиол. Т.З. N3. 1967. С.216-221.

39. Стабровский Е.М. Адреналин и норадреналин в органах хрящевых и костистых рыб Черного моря. // Ж. эвол. биохим. и физиол. 1969. Т.5. N1. С.38-41.

40. Степанов А.М. Реакция интерреналовой и щитовидной желез гипофизэктомированной стерляди на изменение солености воды.// В кн."Экологическая физиология и биохимия рыб". Тез.докл.б-й Всесоюз.конф. Вильнюс, 1985. С.435-436.

41. Цимдинь П. Морфологическая характеристика речной миноги L.fluviatilis (L.) в р.Салаца. // В кн."Биоценотическая структура малых рек. Бассейн р.Салаца. Рига, 1989. С. 154-162.

42. Чернышева М.П. Гормоны животных. Введение в физиологическую эндокринологию // С.-Петербург, 1995. Изд.'Тлаголъ".

43. Шейбак Т.В. Морфо-функциональный анализ нейрогипофиза, щитовидной железы и коры надпочечников у гипофизэктомированных крыс при стрессе и введении гипоталамических нонапептидов. // Автореферат на соиск. Кбн. JL: 1988.

44. Шейбак Т.В., Красновская М.А. Щитовидная железа крысы при воздействии иммобилизационного стресса и введении нонапептидных нейрогормонов гипоталамуса. // Тезисы докл. 3 Всесоюзн. Конф. по нейроэндокр. Харьков, 1988. С.265.

45. Яковлева И.В., Фехмин A.A., Борисов Е.А. Количественная оценка активности щитовидной железы осетровых (Acipenseriformes) на гистологическом препарате. // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, JL: т.65. N 10, 1973.

46. Яковлева И.В., Борисова Е.А. Щитовидная железа до и после нереста и при содержании рыб в гипертоническом растворе хлористого натрия. // Ж.эвол.биохим. и физиол. 1973. Т.9. N6. С.65-69.

47. Яковлева И.В., Ефимова Н.А. Биологическое определение тиреотропной активности гипофизов осетра Acipenser gueldenstadti В. в раннем онтогенезе. // Физиология и биохимия онтогенеза. 1977. С. 104-108.

48. Abelli L., Gallo V.P., Civinini A., Mastrolia L. Immunohistochemical and ultrastructural evidence of adrenal chromaffin cell subtypes in sea bass (Dicentrarchus labrax L.). // Gen. Сотр. Endocrinol. 1996. V.102. P.l 13-122.

49. Abrahamsson Т., Johnsson A.C., Nilsson S. Catecholamine sinthesis in the African lungfish, Protopterus aethiopicus. //Acta.Physiol.Scand. 1979. V.107. P. 149-151.

50. Abrahamsson T. Axonal transport of adrenaline, noradrenaline and phenolthanolamine-N-metil transferase (PNMT) in sympathetic neurons of the cod Cadus morhua. // Acta Physiol.Scand. 1979. V.105. P.316-325.

51. Acher R. Molecular evolution of fish neurohypophysial hormones: neutral and selective evolutionary mechanism. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1996. V.102. N2. P.157-172.

52. Adan R.A., Cox J.J., van Kats J.P., Burbach J.P. Thyroid hormone regulates the oxytocin gen. // J.Biol.Chem. 1992. V.267. N6. P.3771-3777.

53. Adan R.A., Cox J.J., Beishlag T.V., Burbach J.P. A composite hormone response element mediates the transactivation of the rat oxytocin gene by different classes of nuclear hormone receptors. // Mol. Endocrinol. 1993. V.7. N1. P. 47-57.

54. Amer S., Brown J.A. Glomerular actions of arginine vasotocin in the in sity perfused trout kidney. // Am. J.Phisiol. 1995. V.269. N Pt 2. R775-R780.

55. Armour K.J., O'Toole L.B., Hazon N. Mechanisms of ACTH- and angiotensin 2-stimulated 1 alpha-hydroxycorticosterone secretion in the dogfish Scyliorhinus canicula. // J.Mol.Endocrinol. 1993. V.10.N3. P.235-244.

56. Arnold-Reed D.E., Balment R.J. Peptid hormones influence in vitro interrenal secretion of Cortisol in the trout, Oncorhynchus mykiss. // Gen. Comp. Endocrinol. 1994. V.96. N1. P.85-91.

57. Baker B.I. Direct actin of thyroxine on the trout pituitary in vitro. // Nature. 1965. V.208. P. 1234-1235.

58. Baker B.I. The respons of Teleost pituitary thyrotrophs to thyroxin in vitro a histological study. // Gen.Comp.Endocrinol. 1969. V.12. P.427-437.

59. Baker B.I., Bird D.J., Buckingham J.C. In the trout, CRH and AVT synergize to stimulate ACTH release. // Regul.Pept. 1996. V.67. N3. P.207-210.

60. Ball J.N., Olivereau M., Kallman K.D. Secretion of thyrotrophic hormone by pituitary transplants in a teleost fish. //Nature. 1963. V.199. P.618-620.

61. Balm P.H., Lambert J.D., Wendelaar B.S.E. Corticosteroid biosynthesis in the interrenal cells of the teleost fish, Oreochromis mossambicus. // Gen.Comp.Endocrinol. 1989. V.76. P.59-62.

62. Bandyopadhyay S., Bhattacharya S. Purification and properties of Indian major carp (Cirrhinus mrigala, Ham.) pituitary thyrotropin. // Gen. Comp. Endocrinol. 1993. V.90. N2. P. 192-204.

63. Barrington E. The endostyle and thyroid gland. // The biology of Lampeys. Vol.2. London-New-York, 1972. P. 105-134.

64. Batten T.F. Ultrastructural characterization of neurosecretory fibres immunoreactive for vasotocin, isotocin, somatostatin, LHRH and CRH in the pituitary of a teleost fish, Poecilia latipinna. // Cell Tissue Res. 1986. V.244. N3. P.661-672.

65. Batten T.F., Moons L., Cambre M.L., Vandersande E., Seki T., Suzuki M. Thyrotropin-releasing hormone immunoreactive system in the sea bass (Dicentrarchus labrax, Teleostei). // Gen. Comp. Endocrinol. 1990. V.79. P.385-392.

66. Butler D.G. Structure and function of the adrenal gland of fishes. // Amer.Zool. 1973. V.13. P.839-879.

67. Belurkar B.R., Belsare D.K. Effect of hydrocortisone acetate on interrenal cells in the normal and hypophysectomized catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch.). // Anat.Anz. 1976. V.139. N4. P.363-368.

68. Berg O., Gorbman A. Normal and altered thyroidal function in domesticated goldfish, Carassius auratus. // Proc.Soc.Expte.Biol.Med. 1954. V.86. P.156-159.

69. Berg O., Gorbman A., Kobayashi H. Thyroid hormones in lower vertebrates and invertebrates. // In "Comparative Endocrinilogy" (Gorbman A., ed.) 1959. John Wiley, New York. P.302-319.

70. Berman M.I., Jerdack G., Thomas C.G. Jr., Nayfeh S.N. Alpha 1-adrenergic regulation of TSH-stimulated cyclic AMP accumulation in rat thyroid cells. // Arch. Biochem. Biophys. 1987. 15. V.253. N1. P.249-256.

71. Bradford C.S., Fitzpatick M.S., Schreck C.B. Evidence for ultra-short-loop feedback in ACTH-induced interrenal steroidogenesis in coho salmon: acut selfsuppression of Cortisol secretion in vitro. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1992. V.87. N2. P.292-299.

72. Bres O., Eales J.G. High-affinity, limited-capacity triiodothyronine-binding sites in nuclei from various tissues of the rainbow trout (Salmo gairdneri). // Gen.Comp. Endocrinol. 1987. V.69. P.71-79.

73. Bres O., Eales J.G. Saturable triiodthyronine-binding sites in the pituitary nuclei of salmonid teleost fish. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1990. T.77. N1. P.23-28.

74. Brown C.L., Stetson M.H. Prolactin-thyroid interaction in Fundulus heteroclitus. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1983. T.50. N2. P.167-171.

75. Brown C.L., Grau E.G., Stetson M.H. Functional specificity of gonadotropin and thyrotropin in Fundulus heteroclitus. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1985. T.58. N2. P.252-258.

76. Brown C.L., Stetson M.H. Photoperiod-dependent negative feedback effects of thyroid hormones in Fundulus heteroclitus. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1985. T.58. N2. P. 186-191.

77. Buckingham J.C., Hodges J.B. The use of corticotropin production by adenohypophysial tissue in vitro for the detection and estimation of potential corticotrophin releasing factors. // J.Endocrinol. 1977. V.72. P. 187-193.

78. Bugnon C., Cardon J., Gouget A., Fellmann D. Demonstration of a neuronal peptide system reactive with anti-CRF-41 immune serum, in fresh water and marine teleosts. // C.R.Seances Acad. Sci. 3 1983. V.296. N15. P.711-716.

79. Burt D.R., Ajah M.A. TRH receptors in fish. // Gen. Comp. Endocrinol. 1984. V.53. P.135-142.

80. Butler D.G. Structure and function of the adrenal gland of fishes. // Amer. Zool. 1973. V.13. P.839-879.

81. Chavin W. Thyroid distribution and function in the goldfish. // J.Exptl.Zool. 1956. V.133. P.259-279.

82. Chavin W., Bouwman B. Metabolism of iodine and thyroid hormone synthesis in the goldfish, Carassius auratus L. // Gen.Comp.Endocrinol. 1965. V.5. P.493-503.

83. Coupland R.E. The chromaffin system. // Handb.Exp.Farmac. 1972. V.33. P.16-45.

84. Coupland R.E. Catecholamines. // In "Hormones and Evolution" (E.J.W.Barrington, ed.). London and New York, Academic Press. 1979. V.l. P. 309-340.

85. Dalmaz Y., Peyrin J.C. Occurrence of dopamine in the chromaffin tissue of a cartilaginous selachian fish, Scyliorhynus canicula. // Comp.Biochem.Physiol. 1978. V.59C. P.135-143.

86. Dasmahapatra A.K., Stabani De., Medda A.K. Demonstration of putative thyroid hormone receptor in the brain nuclei of Singi fish, Heteropneustes fossilis (Bloch.). // Gen. Comp. Endocrinol. 1991. V.82. N1. P.60-68.

87. Dasmahapatra A.K., Ray A.K., Medda A.K. In vitro demonstration of putative nuclear 3,5,3-triiodthyronine receptors in isolated liver nuclei of Signi fish, Heteropneustes fossilis (B.). // Horm. Metab. Res. 1990. T.22. N4. P.221-224.

88. Denver R.J. Several hypotalamic peptides stimulate in vitro thyrotropin secretion by pituitaries of anuran amphibians. // Gen.Comp.Endocrinol. 1988. V.72. N3. P.383-393.

89. De Roos R., de Roos C.C. Presence of corticotropin activity in the pituitary gland of chondrichtyean fish. // Gen. Comp. Endocrinol. 1967. V.9. P.267-275.

90. De-S., Ray A.K., Medda A.K. Nuclear activation by thyroid hormone in liver of Signifish: changes in different ion-specific adenosin triphosphatases activities. // Horm. Metab. Res. 1987. T.19.N8. P. 367-370.

91. De-S., Ray A.K., Medda A.K. Demonstration of hepatic cytosolic malic enzym activity as a thyroid hormone sensitive physiologic parameter in a teleost, Heteropneustes fossilis (B.). // Horm. Metab. Res. 1988. T.20. N4. P.213-217.

92. Diacomini E. Contribute alla conoscenza delle capsule surrenali dei Ganoidi e particolarmente sull'esistenza della loro sostanza midollare. // Monitore Zoologico Italiano. 1904. V.15.N15. P.19-32.

93. Dixit V.P. Histophysiological studies on the interrenal gland in Ciarias batrachus L. // Acta Anat. 1970. V.73. P.310-318.

94. Dodd J.M., Ferguson K.M., Dodd M.H., Hunter R.B. The comparative biology of thyrotropin secretion. // In "Thyrotropin" (S.C.Werner, ed.). 1963. Thomas, Springfield, Illinois. P.3-27.

95. Dores R.M., Kaneco D.J., Sandoval F. An anatomical and biochemical study of the pituitary proopiomelanocortin systems in the polypteriform fish Calamoichthys calabaricus. // Gen. Comp. Endocrinol. 1993. V.90. N1. P. 87-99.

96. Eales J.G., Himick B.A. The effect of TRH on plasma thyroid hormone levels of rainbow trout (Salmo gairdneri) and arctic charr (Salvelinus alpinus). // Gen. Comp. Endocrinol. 1988. V.72. N3. P.333-339.

97. Estivariz F.E., Itirriza F.C. An investigation on pro-opiomelanocortin and processed peptides from the teleost fish Prochilodus plateisis. // Peptides. 1985. V.6. N5. P.817-824.

98. Fabbri E., Gambarotta A., Moon T.W. Adrenergic signaling and second messenger production in hepatocytes of two fish species. // Gen.Comp.Endocrinol. 1995. V.99. N1. P.114-124.

99. Fellmann D., Bugnon C., Bresson J.L., Gouget A., Cardot J., Clavequin M.C., Hadjiyiassemis M. The CRF neuron: immunocytochemical study. // Peptides. 1984. 5 Suppl 1. P.19-33.

100. Fontaine M., Leloup J., Olivereau M. Etude histologique et biochimique et la glande thyroide de l'Anguille hypophysectomisee. // Compt.Rend.Soc.Biol. 1953. V.143. P.255-257.

101. Fontaine M., Mazeaud M.M., Mazeaud F. L'adrenaline du Salmo salar L. a quelques etapes de son cycle vital et de ses migrations. // C.R.Hebd.Seanc.Acad.Sci.Paris. 1963. V.256. P.4562-4565.

102. Fortune P.Y. An inactive thyroid gland in Carassius auratus. // Nature. 1956. V.178. P.98.

103. Fryer J.N., Peter R.E. Hypotalamic control of ACTH secretion in goldfish. Corticotrophin releasing factor activity in teleost brain tissue extracts. // Gen.Comp.Endocrinol. 1977. V.33. P. 196-201.

104. Fryer J.N., Peter R.E. Hypotalamic control of ACTH secretion in goldfish. Hypothalamic lesioning studies. // Gen. Comp. Endocrinol. 1977. Y.33. P.202-214.

105. Gannon B.J., Campbell G.D., Satchell G.H. Monoamine storage in relation to cardiac regulation in the Port Jackson shark Heterodontus portusjacksoni. // Z.Zellforsh.microsk.Anat. 1972. V. 13l.P. 437-450.

106. Gillies G., Lowry P.J. The relationship between vasopressin and corticotropin-releasing factor. // In "Interaction with the Brain-Pituitary-Adrenocortical System" (M.T.Jones, ed.). 1979. London and New York: Academic Press. P.51-61.

107. Ghosh R.K., De-S., Ghosh N., Ray A.K., Medda A.K. Induction of hepatic mitochondrial alpha-glycerophosphate deghydrogenase by L-triiodthyronine in Signi fish (Heteropneustes fossilis Bloch).// Acta. Physiol. Hung. 1987. T.70. N1. P.51-60.

108. Gorbman A., Creaser C.W. Accumulation of radioactive iodine by the endostyle of larval lampreys and the problem of homology of the thyroid. // J.Expl.Zool. 1942. V.89. P.391-401.

109. Gorbman A. Thyroid function and its control in fish. // In "Fish physiology".

110. Gfell B., Kloas W., Hanke W. Neuroendocrine effects on adrenal hormone secretion in carp (Cyprinus carpio). // Gen. Comp. Endocrinol. 1997. V.106. N3. P.310-319.

111. Gracia-Navarro F., Lamacz M., Tonon M.C., Vaudry H. Pituitary adenilate cyclase-activating polypeptide stimulates calcium mobilization in amphibian pituitary cells. // Endocrinology. 1992. V.131. N3. P.1069-1074.

112. Grau E.G., Brown C.L., Stetson M.H. Photoperiodic regulation of thyroid responsiveness to TSH in Fundulus heteroclitus. // J. Exp. Zool. 1985. T.234. N2. P.199-205.

113. Grau E.G., Helms L.M., Shimoda S.K., Ford C.A., Le Grand J., Yamauchi K. The thyroid gland of the Hawaiian parrotfish and its use an in vitro model system. // Gen. Comp. Endocrinol. 1986. V.61. N1. P.100-108.

114. Gupta O.P., Hanke W. Regulation of interrenal secretion in the axolotl, Ambystoma mexicanum. // Exp.Clin.Endocrinol. 1994. V.102. N4. P.299-306.

115. Hamano K., Inoue F., Yangisawa T. Immunohistochemical localization of thyrotropin releasing hormone in the brain of the carp Cyprinus carpio. // Gen. Comp. Endocrinol. 1990. V.80. P.85-92.

116. Hanke W., Chester Jones.I. Histological and histochemical studies on the adrenal cortex and the corpuscles of Stannius of the european eel (Anguilla anguilla L.). // Gen. Comp. Endocrinol. 1966. V.7. P.164-175.

117. Hardisty M., Baker B.I. Endocrinolody of lampreys. // In book: The biology of lampreys. Vol.4b. London. 1982. P.l-115.

118. Haruta K., Yamashita T., Kawachima S. Changes is arginin-vasotocin content in the pituitary of the Medaka (Orizias latipes) during osmotic stress.

119. Hausmann H., Meyerhof W., Zwiers H., Lederis K., Richter D. Teleost isotocin receptor: structure, functional expression, mRNA distribution and philogeny.// FEBS Lett. 1995 Aug.21. V.21.N3. P.227-230.

120. Heldwein K.A., Redick D.L., Rittenberg M.B., Claucomb W.C., Stenzel-Poore M.P. Corticotropin-releasing hormone receptop expression and functional coupling in neonatal cardiac myocytes and AT-1 cells. // Endocrinology. 1996. V.137. N9. P.3631-3639.

121. Ilan Z., Yaron Z. Suppression by organochlorines of the response to adrenocorticotrophin of the interrenal tissue in Sarotherodon aureus (Teleostei). // J.Endocrinol. 1980. V.87. N2. P. 185193.

122. Ichikawa T., McMaster D., Lederis K., Kobayashi H. Isolation and amino sequence of urotensin 1, a vasoactive and ACTH-releasing neuropeptide, from the carp (Cyprinus carpio) urophysis. //Peptides. 1982. V.3. N5. P.859-867.

123. Inui Y., Tagawa M., Miwa S., Hirano T. Effekts of bovin TSH on the tissue thyroxine level and metamorphosis in prometamorphic flounder larvae. // Gen. Comp. Endocrinol. 1989. T.74. N3. P.408-410.

124. Ito Y., Takabatake E., Ui H. Researches on the fish pituitary. Adrenocorticotropic activity of fish pituitary gland. // J.Pharmaceutical Soc. Japan. 1952. V.72. P.1029-1033.

125. Ito M., Koide Y., Takamatsu N., Kawauchi H., Shiba T. cDNA cloning of the beta subunit of teleost thyrotropin. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. V.90. N13. P.6052-6055.

126. Jackson I.M.D. and Reichlin S. Thyrotropin-releasing hormone (TRH): distribution in hypotalamic and exstra hipotalamic brain tissues of mammalian and submammalian chondrates. //Endocrinology. 1974. V.95. P. 351-354.

127. John H.Yonson. Find structure of granulated cells in the posterior cardinal and renal viens of Amia calva L. // Can.J.Zool. 1976. V.54. N6. P.843-851.

128. John T.M., George J.C., Brown G.M. Effects of exogenous arginin vasotocin on circulating levels of thyroid hormones and melatonin in the pigeon, Columbia livia. // Comp. Biochem. Physiol.C Pharmacol. Toxicol. Endocrinol. 1995. V.112. N3. P.345-351.

129. Kloas W., Hanke W. Neurohypophysial hormones and steroidogenesis in the interrenals of Xenopus laevis. // Gen. Comp. Endocrinol. 1990. V.80. N2. P.321-330.

130. Krasnovskaya I. A., Sheibak T.V. Thyroid stimulating effect of exogenous vasopressin and oxytocin in hypophysectomized rats during immobilization stress. // Biull.Exsp. Biol.Med. 1990. V.109.N1. P.301-303.

131. Krasnovskaya I.A., Yoropanova L.S., Polenov A.L. The blocking effect of adrenaline on the thyroid-stimulating effect of vasopressin in rats. // Biull.Exsp. Biol.Med. 1993. V.115. N2. P.142-144.

132. Kreider M.S., Kight P., Winokur A., Kreider N.R. TRH concentration in rat olfactory bulb is undimished by deafferentation. // Brain Res. 1982. V.241. P. 351-354.

133. Larche A., Delarue C., Idres S., Vaudry H. Interactions between vasotocin and other corticotropic factor on the frog adrenal gland. // J.Steroid.Biochem.Mol.Biol. 1992. V.41. N3-8. P.795-798.

134. Larche A., Delarue C., Homo-Delarche F., Kikuyama S., Kupryszewski G., Vaudry H. Parmacological characterization of vasotocin stimulation of phosphonoinositide turnover in frog adrenal gland. // Endocrinology. 1992. V.130. N1. P.475-483.

135. Larche A., Lamacz M., Delarue C., Vaudry H. Effect of vasotocin on cytosolic free calcium concentration in frog adrenocortical cells in primary culture.// Endocrinology. 1992. V.131. N3. P.1087-1093.

136. Lam T.J., Lou G.L. Effect of L-thyroxine on ovarian development and gestation in viviparous guppy, Poecilia reticulata.// Gen. Comp. Endocrinol. 1985. T.60. N 2. P.324-330.

137. Lederis K., Letter A., McMaster D., Moore G., Schlesinger D. Complete amino acid secuence of urotensinl, a hypotensive and corticotropin-releasing neuropeptide from Catostomus. // Science. 1982. V.218. N4568. P.162-165.

138. Lederis K., Fryer J.N., Yulis C.R. The fish neuropeptide urotensin-1: its physiology and pharmacology. //Peptides. 1985. 6 Suppl. N3. P.353-361.

139. Leloup J. Action des antithyroidiens sur la fixation de l"iode et la synthese de la thyroxine dans la thyroide d"un selacien Scyllium canicula. // Copmt.Rend. 1952. V.234. P.2485-2487.

140. Leloup J. Metabolisme de T'iode et fonctionnement endostylaire chez l"ammocoete de Lampetraplaneri. // J.Physiol.(Paris) 1955. V.47. P.671-677.

141. Leloup J., Fontaine M. Iodine metabolism in lower vertebrates. // Ann.N.Y.Sci. 1960. V.86. P.316-353.

142. Lumpkin M.D., Samson W.K., McCann S.M. Arginin-vasopressin as a thyrotropin-releasing hormone. // Science. 1987. V.235. N4792. P.1070-1073.

143. MacKenzie D.S., Sokolowska M., Peter R.E., Breton B. Increased gonadotropin levels in goldfish do not result in alterations in circulating thyroid hormone levels. // Gen.Comp.Endocrinol. 1987. V.67. N2. P.202-213.

144. Malagon M.M., Ruiz-Navarro A., Torronteras R., Gracia-Navarro F. Effect of ovin CRF on amphibian pituitary ACTH and TSH cells in vivo: a quantitative ultrastructural study. // Gen.Comp.Endocrinol. 1991. V.83.N3. P.487.

145. Masur S.K. Fine structure of the autotransplanted pituitary in the red eft Notophthalmus viridescens. // Gen. Comp. Endocrinol. 1969. V.12. P. 12-32.

146. Melander A., Sundler F., Westgren U. Sympathetic innervation of the thyroid: variation with spesies and with age. // Endocrinology. 1975. V.96. N1. P.4-9.

147. Michel G., Chauvet J., Chauvet M.T., Clarke C., Bern H., Acher R. Chemical identification of the mammalian oxytocin in a holocephalian fish, the ratfish (Hydrolagus colliei). // Gen.Comp.Endocrinol. 1993. V.92. N2. P.260-268.

148. Miwa S., Tagawa M., Inui Y., Hirano T. Thyroxin surge in metamorphosing flounder larvae.// Gen. Comp. Endocrinol. 1988. T.70. N 1. P.158-163.

149. Miwa S., Inui Y. Effect of various doses of thyroxine and triiodthyronine on the metamorphosis of flounder (Paralichthys olivaceus).// Gen. Comp. Endocrinol. 1987. T.67. N3. P. 356-363.

150. Morra M., Leboulenger F., Vaudry H. Dopamin ingibits corticosteroid secretion from frog adrenal gland in vitro. // Endocrinilogy. 1990. V.127. N1. P.218-226.

151. Morra M., Leboulenger F., Vaudry H. Characterization of dopamine receptors associated with secretion in frog adrenalocortical cells. // J.Mol.Endocrinil. 1992. V.8. N1. P.43-52.

152. Moons L., Cambre M., Batten T.F., Vandesande F. Autoradiographic localization of binding sites for vasotocin in brain and pituitary of the sea bass (Dicentrarchus labrax).// Neurosci.Lett. 1989. 22. V.100. N1-3. P.l 1-16.

153. Nandi J., Bern H.A. Corticosteroid production by interrenal tissue of teleost fish. // Endocrinol. 1960. V.66. P.295-303.

154. Nandi J. The structure of the interrenal gland in teleost fishes.// Unit.Calit.Publ.Zool. 1962. V.65. P.129-212.

155. Nandi J., Bern H.A. Chromatography of corticosteroids from teleost fishes.// Gen.Comp.Endocrinol. 1965.V.5.P. 1-15.

156. Netchitailo P., Lihrmann I., Perroteau I., Delarue C., Leboulenger F., Vaudry H. Involment of cycloheximide-sensitive mediators in the steroidogenic action of adrenocorticotropin and angiotensin 2. // J.Steroid Biochem. 1986. V.25. N1. P.59-64.

157. Olivereau M. Hypophys et gland thyroid chez les poissons. Edude histophysiologique de quelques correlations endocriniennes en particulier chez Salmo salar. // Ann.Inst.Oceanog. 1954. V.29. N1. P.95-296.

158. Olivereau M. Endostyle de P'ammocoete (Lampetra planeri) et hormone thyreotrope. // Comp.Rend.Assoc.Anat. 1956. V.96. P.636-657.

159. Olivereau M., Olivereau J. Localization of CRF-like immunoreactiviti in the brain and pituitary of teleost fish. // Peptides. 1988. V.9. N1. P.13-21.

160. Olivereau M., Ollevier F., Vandesande F., Yerdonck W. Immunocytochemical identification of CRF-like and SRIF-like peptides in the brain and the pituitary of cyprinid fish. // Cell Tissue Res. 1984. V.237. N2. P.379-382.

161. Onstott D., Elde R. Immunohistochemical localization of urotensin-1/corticotropin-releasing factor immunoreactivity in neurosecretory neurons in the caudal spinal cord of fish. // Neuroendocrinology. 1984. V.39. N6. P.503-509.

162. Onstott D., Elde R. Coexistence of urotensin-1/corticotropin-releasing factor and urotensin teleost and an elasmobranch fish. // Gen. Comp. Endocrinol. 1986. V.63. N2. P.295-300.

163. Pandey A.C., Haider S. Histochemical and experimental study on the adrenal of the freshwater catfish, Ompok bimaculatus (Bloch.). // Arch.Anat.Histol.Embriol. 1982. V.65. P.lll-119.

164. Pierson P.M., Guibbolini M.E., Mayer-Gostan N., Lahlou B. ELISA measurements of vasotocin and isotocin in plasma and pituitary of the rainbow trout: effect of salinity. // Peptides. 1995. V.16. N5. P.859-865.

165. Pierson P.M., Guibbolini M.E., Lahlou B. A VI-type receptor for mediating the neurohypophysial hormone-induced ACTH release in trout pituitary. // J.Endocrinol. 1996. V.149. N1. P.109-115.

166. Portanova R., Eastman J.T. Preparation of enriched populations of corticotrophs from goldfish rostral pars distalis. // Gen. Comp. Endocrinol. 1983. V.49. N1. P.81-89.

167. Purrot R.J., Sage M. In vitro assay of ACTH using mouse adrenals. // J.Endocrinol. 1967. V.38. P.16-17.

168. Redgate E.S. Neural control of pituitary adrenal activity in Cyprinus carpio. // Gen. Comp .Endocrinol. 1974. V.22. P.35-41.

169. Reid S.D., Moon T.W., Perry S.F. Rainbow trout hepatocyte beta-adrenoreceptors, catecholamine responsiveness, and effects of Cortisol. // Am.J.Physiol. 1992. V.262(5 Pb.2). R.794-799.

170. Reid S.G., Fritsche R., Jonsson A.C. Immunohistochemical localization of bioactive peptides and amines associated with the chromaffin tissue of five species of fish. // Cell Tissue Res. 1995. V.280. N3. P.499-512.

171. Reid S.G., Vijayan M.M., Perry S.F. Modulation of catecholamine storage and release by the pituitary-interrenal axis in the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. // J.Comp.Phisiol.(B). 1996. V.165. N8. P.665-676.

172. Roy B.P. Distribution of neurohypophysial hormones in some elasmobranch spesies. // Gen. Comp. Endocrinol. 1969. V.12. P.326-338.

173. Sage M., Purrot R.J. The control of teleost ACTH cells. // Z.vergl.Physiol. 1969. V.63. P.85-90.

174. Salmon C., Marchelidon J., Fontaine Y.A., Huet J.C., Querat B. // Cloning and sequence of thyrotropin beta subunit of a teleost fish: the eel. // C.R.Acad.Sci. 3 1993. V.316. N8. P.749-753.

175. Sampter J.P., Dye H.M., Benfey T.J. The effects of stress on plasma ACTH, alpha-MSH, and Cortisol levels in salmonid fishes. // Gen. Comp. Endocrinol. 1986. V.62. N3. P.377-385.

176. Sangalang G.B., Weisbart M., Idler D.R. Steroids of a chondrostean corticosteroids and testosterone in the plasma of the American atlantic sturgeon, Acipenser oxyrhynchus Mitchill. // J.Endocrinol. 1971. V.50. P.413-421.

177. Siegmund I., Troncoso S., Caonsi C.E., Gonzalez C.B. Identification and distribution of the cell types in the pituitary gland of Austromenidia laticlavia (Teleostei, Atherinidae). // Gen. Comp. Endocrinol. 1987. V.67. N3. P.348-355.

178. Scheuermann D.W. Comparative morphology, cytochemistry and innervation of chromaffin tissue in vertebrates. // J.Anat. 1993. V.183. N2. P.327-342.

179. Schwartzentruber S.R., Omeljaniuk R.J. Thyrotropin-releasing hormone receptors in the pituitary of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). // Gen. Comp. Endocrinol. 1995. V.97. P. 209-219.

180. Specker J.L., Richman N.H. Enviromental salinity and thyroidal response to thyrotropin in juvenil coho salmon (Oncorhynchus kisutch). // J. Exp. Zool. 1984. T.230. N2. P. 329-333.

181. Stahl A., Leray C. The relationship between diencephalic neurosecretion and the adenohypophysis in teleost fishes. // Mem.Soc.Endocrinol. 1962. N11. P. 149-163.

182. Sternberger L.A., Joseph S.A. The unlabeled antibody method: contrasting color staining of paired pituitary hormones without antibody removal. // J. Histochem.Cytochem., 1979. V.27. N2. P. 1424-1429.

183. Sukumar P., Munro A.D., Mok E.Y., Subburaju S., Lam T.J. Hypotalamic regulation of the pituitary-thyroid axis un the tilapia Oreochromis mossambicus. // Gen.Comp.Endocrinol. 1997. V.106. N1. P.73-81.

184. Stenzel P., Kesterson R., Yeung W., Cone R.D., Rittenberg M.B., Stenzel-Poore M.P.Identification of a novel murine receptor for corticotropin-releasing hormone expressed in the heard. // Mol.Endocrinol. 1995. V.9. N5. P. 637-645.

185. Sumpter J.P., Dye H.M., Benfey T.J. The effects of stress on plasma ACTH, alpha-MSH, and Cortisol levels in salmonid fishes. // Gen.Comp.Endocrinol. 1986. V.62. N3. P.377-385.

186. Tagawa M., Hirano T. Presence of thyroxine in eggs and chenges in its content duiring early development of chum salmon, Oncorhinchus keta. // Gen. Comop. Endocrinol. 1987. T.68. N 1. P. 129-135.

187. Tcitsma C.A., Bailhache T., Tujaque M., Balment R.J., Ducouret B., Kah O. Distribution and expressiou of glucocorticoid receptor mRNA in the forebrain of the rainbow trout. // Neuroendocrinology. 1997. V.66. N4. P.294-304.

188. Vallarino M., Delbende С., Bunel D.I., Ottonello I., Vaudry H. Proopiomelanocortin (POMC) related peptides in the brain of the rainbow trout, Salmo gairdneri. // Peptides. 1989. V.10. N6. P.1223-1230.

189. Vissio P.G., Paz D.A., Maggese C. The adenohypophisis of the swamp eel, Synbranchus marmoratus, an immunocytochemical analysis. // Biocell. 1996. V.20. N2. P.155-161.

190. Warne J.M., Hazon N., Rankun J.C., Balment R.J. A radioimmunoassay for the determination of arginin vasotocin (AVT): plasma and pituitary concentration in fresh- and seawater fish. // Gen. Сотр. Endocrinol. 1994. V.96. N3. P.438-444.

191. Withers Ph.C., Hillman S.S., Kimmel P.B. Effect of activity, hemmorrhage, and dehydration on plasma catecholamine levels in the marine toad (Bufo marinus). // Gen. Сотр. Endocrinol. 1988. N.12. N1. P.63-71.

192. Waterman A., Gorbman А. Биология щитовидной железы у миксин.// В кн.: 9 Междунар. конгресс анатомов. Тез. докладов. JI.: 1970. С.189.

193. Yoshie S., Honma Y. Experimental demonstration of the cell types in the adenohypophysis of the gobiid fish, Rhinogobius brunneus. // Arsh.Histol.Jpn. 1978. V.41. N2. P. 129-140.

194. Zhang J., Desilets M., Moon T.W. Evidece for the modulation of cell calcium by epinephrine in fish hepatocytes. // Am. J. Physiol. 1992. V.263. P.512-519.