"Молекулярно-генетические и иммунобиологические свойства возбудителя лейкоза крупного рогатого скота в зависимости от географических вариаций" тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, доктор наук Петропавловский Максим Валерьевич

• Петропавловский Максим Валерьевич
• доктор наук
• 2022

Оглавление диссертации доктор наук Петропавловский Максим Валерьевич

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 История открытия, таксономия возбудителя

1.2 Основные стадии течения лейкозного процесса

1.3 Основные биохимические, гематологические изменения при лейкозе крупного рогатого скота

1.4 Основные иммунологические изменения при лейкозе крупного рогатого скота

1.5 Строение вируса лейкоза крупного рогатого скота, особенности морфологии и строения генома

1.6 Современные исследования по изучению генотипирования и характеристике географической филогенетики вируса лейкоза крупного рогатого скота в мире

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 Материалы и методы исследований

2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1 Современная оценка эпизоотологической ситуации и распространения вируса лейкоза крупного рогатого скота в мире

и Российской Федерации

2.2.1.1 Распространение лейкоза крупного рогатого скота в мире

2.2.1.2 Распространение вируса лейкоза крупного рогатого скота на территории Уральского региона

2.2.2 Сравнительная оценка методов диагностики лейкоза

2.2.2.1 Изучение влияния колострального иммунитета новорожденных телят на эффективность выявления вируса лейкоза крупного рогатого скота серологическими методами

2.2.2.2 Определение эффективности ИФА в дополнительном выявлении инфицированных животных на последнем этапе оздоровления предприятий от лейкоза

2.2.2.3 Технология ранней диагностики лейкоза крупного рогатого скота на основе синцитиального теста

2.2.3 Изучение структурной организации генома возбудителя лейкоза путем проведения генотипирования (RFLP), ДНК-секвенирования коротких участков гена епу BLV; проведение филогенетического и сравнительного аминокислотного анализа участков выделенных образцов

2.2.3.1 Географическая вариация штаммов возбудителей лейкоза в Российской Федерации и мире

2.2.3.2 Изучение структурной организации генома возбудителя лейкоза путем проведения генотипирования (RFLP)

2.2.3.3 Результаты ДНК-секвенирования, филогенетическая оценка коротких участков гена епу BLV

2.2.3.4 Сравнительный анализ аминокислотных последовательностей выделенных штаммов вируса лейкоза крупного рогатого скота

2.2.4 Изучение особенностей иммунологических и гематологических показателей животных в зависимости от носителей разных генетических групп

2.2.5 Разработка методологии ускоренного оздоровления предприятий от вируса лейкоза крупного рогатого скота на основе ранней диагностики

2.2.5.1 Эффективность оздоровления при ранней диагностике лейкоза крупного рогатого скота

2.2.5.2 Методологии ускоренного оздоровления предприятий от вируса лейкоза крупного рогатого скота на основе ранней

диагностики

2.2.5.3 Экономическая эффективность мероприятий

3. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

3.1 Обсуждение полученных результатов

3.2 ВЫВОДЫ

3.3 Предложения производству

Список сокращений и условных обозначений

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

ПРИЛОЖЕНИЕ

ПРИЛОЖЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «"Молекулярно-генетические и иммунобиологические свойства возбудителя лейкоза крупного рогатого скота в зависимости от географических вариаций"»

Актуальность темы исследования

Лейкоз крупного рогатого скота - злокачественное лимфопролиферативное заболевание, этиологическим фактором которого является вирус лейкоза (BLV), относящийся к семейству Retroviridae, роду Deltaretrovirus. Возбудитель широко распространен во всем мире, включая Российскую Федерацию (А.Ф. Валихов, 2018; М.И. Гулюкин с соавт., 2018, 2019; И.М. Донник с соавт., 2017, 2019, 2020). Экономический ущерб от заболевания животных BLV обусловлен снижением качественных и количественных показателей продуктивности, преждевременной выбраковкой высокопродуктивных особей, нарушением селекционно-племенной работы и потерей генофонда ценных пород, затратами на выполнение требований действующих ветеринарных правил (И.М. Донник 2015; Т.В. Кузнецова, 2015; Г.А. Симонян, 2016; Т.В. Степанова, 2016; Г.М Свириденко, 2017; П.Н. Смирнов 2020, В.В. Разумовская 2021, В.С. Власенко 2021).

Главным признаком заболевания у инфицированных животных является злокачественное разрастание клеток кроветворных органов с нарушением их созревания. В пораженном лейкозом организме отмечаются развивающиеся количественные и качественные нарушения гемопоэтической, иммунной систем. (Н.Т. Васильев, 1975; Г.А. Симонян, 1995, Y. Aida et al., 2013, S. Suzuki et al., 2013, M.C. Frie, P.M. Coussens, 2015).

Многими исследователями отмечено, что вирус лейкоза обладает определенной изменчивостью, а разные его штаммы, с конкретными аминокислотными заменами в регуляторных генах, также имеют характерные различия в инфекционных свойствах (S. Dube et al., 2000; M.R. Auerbach et al., 2003; M. Rola-Luszczak et al., 2013; M. Polat, S.N. Takeshima, Y. Aida, 2017; A. de Brogniez et al., 2015, 2016; A. Pluta et al., 2017, 2018; A. Suzuki, 2020).

Ведущая роль в быстрой и успешной ликвидации и профилактике лейкоза принадлежит современным эффективным методам диагностики заболевания. Разработка и усовершенствование методов выявления вируса лейкоза существенно

снижает вероятность неполной идентификации инфицированных животных, что положительным образом влияет на сроки выполнения оздоровительных программ.

Проблемы диагностики BLV связаны, в том числе, и с влиянием генетической вариабельности отдельных изолятов вируса на специфичность исследований, поэтому изучение генетического разнообразия BLV является важной задачей (H. Fechner, 1997; M. Polat et al., 2017). Анализ генотипов BLV в основном основан на изучении env гена, основные биологические функции которого заключаются в кодировании белков гликопротеида и капсида вируса, которые индуцируют экспрессию специфических иммуноглобулинов у инфицированных животных и играют важную роль в распознавании и связывании с поверхностными клеточными рецепторами и приводят к слиянию оболочки вируса и клеточных мембран (X. Zhao, 2007).

Исследования генетического разнообразия BLV и его воздействия на макроорганизм животных, определение биологических свойств возбудителя представляют интерес не только для ветеринарной науки (изучение патогенности и вирулентности, способов диагностики и вакцинопрофилактики), но также для медицины, с целью изучения и прогнозирования возможностей передачи вируса другим видам, включая человека (G. Mesa et al., G. Buehring et al., 2003-2019, А.Д. Забережный).

Степень разработанности темы

Фундаментальные исследования по изучению патогенеза, морфологии, а также иммунологических, гематологических, эпизоотологических, диагностических особенностей вируса лейкоза крупного рогатого скота были подробно описаны многими отечественными и зарубежными авторами (А.Ф. Валихов, Г.А. Надточей, 1974-1976; J. Calafat et al. 1974 г.; Г.А. Симонян, 1975; З.Н. Меньшикова, 1979; J. Miller et al., 1988;.В.А. Бусол, 1988; П.Н. Смирнов, 1988; М.И. Гулюкин, 1993; И.М. Донник, 1997, 1998, 1999; Л.К. Эрнст, 1996, 1998; Y. Aida et al., 1989, 2013 и другие). Для диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота в разное время был разработан целый комплекс методик, как серологических (РИД, ИФА), так и молекулярно-генетических (ПЦР), однако,

несмотря на их достаточно высокую эффективность, остается вероятность получения ложноотрицательных результатов исследований.

Корреляция между генетической принадлежностью вирусов и их географическим расположением была продемонстрирована для многих ретровирусов, включая BLV. Согласно многочисленным данным авторов, для возбудителя характерна генетическая изменчивость и неоднородное географическое распространение отдельных генетических вариантов (J. Kuzmak et al., 2013, 2017, 2021).

В последние годы разработано и активно используется несколько методов генотипирования BLV, включающих как RFLP (полиморфизм длин рестрикционных фрагментов), так и фрагментарное и полногеномное секвенирование. При изучении генетического полиморфизма BLV все известные выделенные штаммы были сгруппированы в несколько различных кластеров согласно географическому признаку. Филогенетической кластеризацией участка гена env известных изолятов BLV было сформировано до 11 различных генетических групп (M. Camargos et al., 2007; S. Rodriguez et al., 2007; M. Ababneh et al., 2012; M. Rola-Luszczak et al., 2013; E. Lee et al., 2015; Y. Yang et al. 2016; A. Pluta et al., 2017; M. Wang et al., 2018; R. Hamada et al., 2020). Предполагается, что установленные точечные мутации в геноме возбудителя указывают на приспособительные особенности вируса в процессе эволюции. Однако проведенные исследования, посвященные генетической характеристике и классификации изолятов BLV из Восточной Европы и России, не являются всеобъемлющими (M. Rola-Luszczak et al., 2013) и требуют дальнейшего изучения.

Цель исследований. Дать характеристику молекулярно-генетических и иммунобиологических свойств возбудителя лейкоза крупного рогатого скота в зависимости от их географического распространения с целью повышения эффективности диагностических и оздоровительных мероприятий.

Задачи исследований:

1. Провести современную оценку эпизоотической ситуации по лейкозу крупного рогатого скота (инфекции ВЛ КРС) и географической вариации штаммов возбудителей в РФ и мире.

2. Дать характеристику современной системе диагностики лейкоза и изучить возможность использования клеточных методов для раннего обнаружения возбудителя.

3. Изучить структурную организацию генома возбудителя лейкоза путем проведения генотипирования (КРЬР), ДНК-секвенирования коротких участков гена еду BLV и провести филогенетический и сравнительный аминокислотный анализ участков выделенных образцов.

4. Изучить особенности иммунологических и гематологических показателей животных в зависимости от носителей разных генетических групп и стадии инфекционного процесса.

5. Разработать методологию ранней диагностики лейкоза, позволяющую повысить эффективность оздоровительных мероприятий в сельскохозяйственных организациях.

Научная новизна

Впервые проведено изучение молекулярно-генетических,

эпизоотологических, иммунологических свойств различных географических вариантов вируса лейкоза крупного рогатого скота на территории Российской Федерации.

Определены основные генетические (БМР) мутации выделенных штаммов и установлена динамика распределения антигенного пейзажа вируса лейкоза на изучаемых географических локациях.

Получены экспериментальные данные по влиянию колострального иммунитета на результативность серологических и молекулярно-генетических методов раннего выявления вирусоносителей среди молодняка крупного рогатого скота, была показана эффективность диагностики молодняка крупного рогатого

скота методом ИФА на заключительном этапе оздоровления крупного рогатого скота предприятий от заболевания лейкозом.

На основе полученных данных разработана технология комплексной ранней идентификации вируса лейкоза крупного рогатого скота, позволяющая ускорять сроки оздоровления предприятий от лейкоза в среднем на 20 %.

Научная новизна подтверждена 3 патентами: РФ № 2566071 - «Способ подготовки биоматериала для ПЦР диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛ КРС)»; РФ № 2013619060 - «Программа для предприятий разных форм хозяйствования при оздоровлении от лейкоза животных»; РФ № 2741239 С1 -«Способ диагностики лейкоза крупного рогатого скота».

Теоретическая и практическая значимость работы.

Выполненная работа относится к области фундаментальных и прикладных исследований. Полученные в ходе проведения экспериментов данные дополняют созданную теоретическую базу по изучению молекулярно-генетических и иммунобиологических, эпизоотологических особенностей возбудителя лейкоза. Полученные результаты позволяют оценить вектор (БМР) мутаций генома возбудителя, эпизоотические особенности географического доминирования отдельных вариаций вируса лейкоза, характер иммунологического и гематологического воздействия доминирующих генотипов на восприимчивый организм и характер морфофункциональных нарушений макроорганизма. Выявленные закономерности имеют значение для отрасли сельскохозяйственной промышленности, биологии и медицины, так как позволят определять риски распространения «агрессивных» штаммов, прогнозировать возможность межвидовой передачи возбудителя лейкоза и конструировать новые современные подходы к мерам профилактики и борьбы с патогеном.

Полученные результаты (протоколы исследований, испытание и применение российских компонентов, приборов и расходных материалов) могут служить основой для создания более эффективных и специфичных тест-систем для ПЦР.

Запатентованную технологию, базирующуюся на культивировании чувствительных к BLV клеток СС81, можно использовать как способ подготовки

материала для полимеразной цепной реакции, что позволяет повысить ее эффективность. Данный способ может быть широко применим в фундаментальных и прикладных научных исследованиях.

Проведенные научные исследования по изучению современных методов диагностики заболевания явились основой для разработки методологии ранней диагностики лейкоза, позволяющей в 2-3 раза ускорять сроки оздоровления предприятий. Были разработаны и внедрены протоколы проведения оздоровительных противолейкозных программ в зависимости от уровня инфицированности сельскохозяйственных предприятий возбудителем лейкоза.

Практическая значимость работы подтверждена актами внедрения, методическими указаниями, научными рекомендациями, учебным пособием, а также экономической эффективностью.

Методология и методы исследований. Методологической основой проведенных исследований послужили труды и разработки по ветеринарной вирусологии, эпизоотологии, вирусологии, молекулярной генетике.

Для достижения цели и поставленных задач в работе использовали ретроспективный и оперативный анализ сведений ветеринарной отчетности и статистики, международных баз данных, комплексных лабораторно-диагностических исследований, включающих клинические, серологические, молекулярно-генетические, иммунологические, гематологические, культуральные методы, ДНК-секвенирование, генотипирование. Полученные результаты обработаны при помощи ряда биоинформатических программ, а также с помощью пакета статистического анализа «Microsoft Office».

Положения, выносимые на защиту

- Заболевание лейкозом широко распространено среди крупного рогатого скота во всем мире, включая Российскую Федерацию. Выделенные в настоящее время и опубликованные в NCBI Gen Bank изоляты ВЛ КРС из РФ классифицированы в G4, G7 и G8 генетических группах;

- В качестве пермиссивной клеточной культуры для диагностики инфекции вируса лейкоза применима клеточная линия СС81. Данная методика используется для накопления вируса и последующего анализа генома возбудителя;

- В популяциях крупного рогатого скота обследуемых географических зон бельгийский генотип G4 ВЛ КРС доминирует над австралийским генотипом G7. Выделенные фрагменты генома BLV при филогенетической оценке соответствуют генотипам G4, G4D, G7A групп;

- Аминокислотные замены в белках гликопротеидной оболочки «доминирующего генотипа» могут влиять на усиление патогенных и вирулентных свойств возбудителя;

- Гематологические и иммунологические изменения у выявленных инфицированных G4 генотипом BLV животных в обследованных популяциях обусловлены нарушениями функций кроветворения, иммунной системы, а также ускоренным переходом заболевания в стадию гематологических изменений;

- Индивидуальное планирование, комплексный диагностический мониторинг и применение современных диагностических методик раннего выявления инфицированных вирусом лейкоза животных повысило эффективность оздоровительных противолейкозных мероприятий.

Степень достоверности и апробация результатов

Достоверность результатов диссертационной работы подтверждается объемом проведенных исследований, в том числе биоинформатических, а также апробацией основных результатов исследований на практике.

Основные материалы диссертационной работы представлены, обсуждены и одобрены на международных и всероссийских научно-практических конференциях, семинарах и форумах: «Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов для АПК» (2012 г., Екатеринбург); «Рациональное использование природных и биологических ресурсов в сельском хозяйстве» (2013 г., Екатеринбург); «Эколого-биологические проблемы использования природных ресурсов в сельском хозяйстве» (20142018 гг., Екатеринбург); «Симбиоз-Россия 2015» (2015 г., Новосибирск);

«Молекулярная биология, иммунология, цитометрия в сельском хозяйстве и ветеринарии» (2016 г., Новосибирск); «УралВетМед: актуальные вопросы профилактики и лечения заболеваний, передающихся от животных к человеку» (2017 г., Челябинск); «6th Animal Breeding Scientific Day in Gödöllö» (2017 г., Университет Святого Иштвана, Геделле, Венгрия); «Биотехнология в растениеводстве, животноводстве и ветеринарии» (2018 г., Москва); «Достижения ветеринарной науки: от теории к практике» (2018 г., Екатеринбург); «LX. Georgikon Napok 60th Georgikon Scientific Conference» (2018 г., Кестхей, Венгрия); «Foodconf. Science, technology and innovation» (2018 г., Будапешт, Венгрия); «7th scientific day of animal Breeding in Gödöllö» (2019 г. Университет Святого Иштвана, Геделле, Венгрия); «Новейшие разработки в изучении иммунобиологических и молекулярно-генетических свойств, межвидовой передачи, создании средств защиты крупного рогатого скота от вируса лейкоза» (2019 г., Вако, Цукуба, Саппоро, Япония); «Новые вызовы: Эмерджентные и возвращающиеся инфекции в XXI веке. Обеспечение продовольственной безопасности в условиях пандемии COVID-19» (2021 г., в рамках реализации научных программ международного биотехнологического кластера «Урал-Евразия», г. Бишкек, Кыргызская Республика); «24-я ежегодная конференция Европейского общества репродукции домашних животных» (ESDAR) (2021, Салоники, Греция); на заседаниях ученого совета УрНИВИ УрФАНИЦ УрО РАН.

Личное участие диссертанта в получении научных результатов, изложенных в работе. Личный вклад автора в получение научных результатов, изложенных в диссертации, заключается в формулировании основных положений, цели и задач диссертационной работы, разработке моделей и основных методологических подходов экспериментов, отборе материала и проведении лабораторных исследований, анализе результатов, формулировании выводов и предложений производству.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 60 научных работ, в том числе 22 в изданиях, рекомендованных ВАК РФ, 8 в изданиях,

индексируемых базами данных Web of Science Core Collection и Scopus, 3 научно-методические рекомендации, 1 учебное пособие, 3 патента Российской Федерации.

Благодарности. Выражаем благодарность всему коллективу ФГБНУ «Уральский федеральный аграрный научно-исследовательский центр УрО РАН», и коллективу Уральского научно-исследовательского ветеринарного института во главе с членом-корреспондентом РАН, профессором, доктором ветеринарных наук И.А. Шкуратовой. За весомый вклад и помощь в выполнении исследовательских работ: кандидату ветеринарных наук А.Т. Татарчуку; доктору ветеринарных наук, профессору Tadeusz Wijaszka; доктору ветеринарных наук, профессору Jacek Kuzmak, доктору наук Marzena Rola-Luszczak, а также всему коллективу отдела биохимии ПНИВИ (г. Пулавы, Польша); доктору ветеринарных наук Н.А. Верещак; доктору биологических наук А.П. Порываевой; кандидатам ветеринарных наук А.В. Лысову, Н.А. Безбородовой, Л.В. Халтуриной, кандидату технических наук А.С. Романовой, старшему научному сотруднику, кандидату ветеринарных наук О.Ю. Опариной, а также всему коллективу лабораторий лейкоза, вирусных болезней животных, иммунологии и патобиохимии, микробиологических и молекулярно-генетических исследований УрФАНИЦ УрО РАН. Особую благодарность выражаем академику РАН, доктору биологических наук, профессору И.М. Донник.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 История открытия, таксономия возбудителя

Вирус лейкоза крупного рогатого скота (BLV) - РНК-содержащий онкогенный вирус, который вызывает злокачественные лимфопролиферативные изменения у животных. В соответствии с классификацией Международного комитета по таксономии вирусов (ICTV) относится к семейству Retroviridae (2 подсемейства, 7 родов), подсемейству Orthoretrovirinae, роду Deltaretrovirus, к которому также относятся и Т-лимфотропные вирусы приматов (PTLV) - человека и обезьян (HTLV и STLV) [94, 109, 144, 200, 327].

Одним из основоположников учения о «лейкемии» или белокровии был известный немецкий ученый Rudolf Virchow, который впервые описал основные ее формы проявления у человека в 1845-1853 гг. [246]. Впервые опухолевидные формы лейкоза описал Schreiber в 1854 году. Позднее различные формы лейкемии у человека описывали Г.Г. Вайденбаум, 1859 г., В.А. Галийинский, 1861 г., А. Томарова, 1862 г. Так, миелоидную форму лейкоза, характеризующуюся основными изменениями в костном мозге человека, отмечал E. Neumann в 1868 году [164], а J. Cohnheim, 1865 г., и К. Славянский, 1868 г., описывали «псевдолейкемию», протекающую с характерными для лейкоза изменениями, но при нормальных показателях крови [283].

Впервые лейкемия у животных была описана в 1858 году. Патологоанатом Дрезденского ветеринарного института T. Leisering [128] описал ее у лошадей и свиней. Затем в 1871 году О. Зидамгродский, O. Bollinger [28] показали лейкемию у собак, кошек и у мышей [58]. Лейкоз у крупного рогатого скота в 1876-1877 гг. впервые описал Зидамгродский, затем Johne в 1879 г. [284]. При этом болезнь характеризовалась преимущественным поражением лимфоидной ткани (лимфоидный лейкоз). Позднее в своих трудах лейкоз описывали многие ученые [111], J. Dobberstein отмечал, что лейкозом болеют 29 видов животных и 15 видов птиц [52].

Инфекционную природу лейкоза впервые показали на подопытных курах V. Ellerman и O. Bung в 1908 г [59]. V. Ellerman впервые предложил заменить термины «белокровие» и «лейкемия» на определение «лейкоз». Новый термин более полно отражал сущность заболевания и полностью характеризовал патологический процесс, развивающийся в кроветворной ткани независимо от изменений, наблюдаемых в периферической крови [334].

Позднее разными учеными в качестве экспериментальных биологических объектов были использованы телята, кролики, мелкий рогатый скот. Для успешного воспроизведения вируса лейкоза у подопытных животных были использованы различные биологические материалы, включая опухоли и лейкоцитарную взвесь из крови инфицированного животного [25, 79, 173, 174, 278, 294, 297, 303].

В дальнейшем, с использованием метода электронной микроскопии (в 1969 г.), вирус лейкоза крупного рогатого скота был описан группой ученых из США [151]. После внесения в клеточные культуры материала из лимфатических узлов от больного лейкозом крупного рогатого скота были обнаружены вирусные частицы. Таким образом исследователями впервые была установлена репликация вируса на пермиссивных клеточных линиях [57, 64, 67, 151, 172, 173, 178, 220, 240, 263, 340].

Инфекционный процесс впоследствии воспроизведен не только на опытных телятах [152], но и показано экспериментальное заражение приматов [145].

Морфология и морфогенез вируса были подробно изучены советскими и зарубежными учеными: А.Ф. Валиховым и Г.А. Надточеем (1974-1976 гг.) [179], З.Н. Меньшиковой (1979 г.), J. Calafatetal (1974 г.).

1.2 Основные стадии течения лейкозного процесса

Впоследствии, на основе экспериментального заражения крупного рогатого скота вирусом лейкоза, в развитии патогенеза данного заболевания были

определены стадии течения болезни: инкубационная, субклиническая (гематологическая), клиническая (опухолевая) [53, 156].

Длительность инкубационной стадии была зафиксирована от трех дней до четырех недель. Субклиническую стадию авторы описывали повышением количества лейкоцитов периферической крови от 20 до 100 тыс. в 1 мм3, реже отмечали уменьшение эритроцитов и лейкоцитов. Продолжительность данной стадии варьировала от 2 до 5 лет. Основные изменения клеточного состава периферической крови на этой стадии характеризованы замещением нормальных форм лейкоцитов «незрелыми» мононуклеарами (пролимфоцитами, миелоцитами, промиелоцитами, лимфобластами, гемоцитобластами, миелобластами, тканевыми гистиоцитами и ретикулярными клетками). При следующей за субклинической -опухолевой форме лейкоза было отмечено уменьшение количества лейкоцитов до нормативных показателей, снижение количества эритроцитов и гемоглобина ниже нормативных показателей. Образование опухолей гемопоэтических органов и лимфатических узлов, по данным различных авторов, было отмечено у 6-30 % коров с сублейкемической стадией в течение года [284, 142].

Позднее авторами (G. Rosenberger, E. Wiesner, 1961) была показана алейкемическая стадия лейкоза у животных. Алейкемическая картина крови, которую устанавливают по процентному содержанию лимфоцитов в гемограмме, проявлялась без изменений общего количества лейкоцитов в единице объема крови. Эту фазу гематологической стадии устанавливали у 12-15 % молодых животных в возрасте до 2-2,5 лет [203].

Г.А. Симонян в своих исследованиях подробно описывал стадии лейкозного процесса. Инкубационную (или скрытую) стадию характеризовал как период с момента инфицирования животного до появления первых гематологических проявлений болезни или первых лейкемических клеток (от 112 до 530 дней), предлейкозную стадию - как относительный и незначительно абсолютный лимфоцитоз (до 14 тыс/мкл) в крови при отсутствии других патологических изменений (по «лейкозному ключу» данное состояние характерно для подозрительных в заболевании лейкозом животных). Начальную

(гематологическую) стадию автор характеризовал увеличением количества лейкоцитов от 15-40 тыс./мкл (сублейкемический уровень) с отсутствием характерных клинических симптомов болезни, количество эритроцитов и гемоглобина при этом находилось в пределах физиологической нормы. Длительность данного периода достигала 6-8 лет и дальнейший переход от сублейкемического уровня к лейкемическому не был одинаков и не зависел от продолжительности болезни, а основные изменения костного мозга выражались в умеренном подавлении эритробластического или миелобластического ростков и увеличении количества пролимфоцитов, лимфоцитов, лимфобластов или ретикулярных клеток. Развернутую (клинико-гематологическую) стадию исследователь характеризовал: увеличением лейкоцитов до лейкемического уровня (выше 40 тыс/мкл); увеличением количества молодых, недифференцированных или атипичных опухолевых клеток в лейкоцитарной формуле (свыше 5 %), независимо от количества лейкоцитов; умеренной или сильной лимфоидной метаплазией костного мозга; повышением процента недифференцированных или опухолевых клеток (более 10-20 %) в миелограмме, спленограмме, аденограмме или гепатограмме; появлением первых специфических клинических симптомов лейкоза. При этом клинико-гематологический лейкоз всегда подтверждали патоморфологическими исследованиями.

Продолжительность данного периода в развитии лейкозного процесса составляла 1-2, реже 3 года, количество лейкоцитов - 40-100 тыс./мкл (редко 500 тыс. и более). Повышение лейкоцитоза происходило в основном за счет лимфоцитов и молодых клеток (лимфобластов, пролимфоцитов и др.). При гематосаркомах количество лейкоцитов часто оставалось на сублейкемическом уровне или снижалось до пределов нормы. В мазках крови обнаруживали ретикулярные и атипичные клеточные элементы, содержание которых нарастало по мере прогрессирования лейкозного процесса. Отмечено, что показатели количества эритроцитов и содержания гемоглобина в клинико-гематологической стадии заболевания снижались за счет аплазии кроветворения и подавления эритробластического ростка костного мозга. Степень данного снижения зависела от давности характера

течения лейкозного процесса. Отмечались также значительные цитоморфологические изменения в кроветворных органах, характер которых зависел от формы заболевания. Конечную (терминальную), или стадию клинико-патологоанатомическую, Г.А. Симонян описывал: увеличением поверхностных или доступных ректальному обследованию внутренних лимфатических узлов и селезенки; наличием опухолей и (или) пучеглазием; появлением симптомов и патологических изменений кроветворных и других внутренних органов за несколько недель и месяцев до гибели животного, развивающихся в зависимости от локализации и степени тяжести патологического процесса. Клинические изменения проявлялись неодинаково при разном течении лейкозного процесса. Максимальное проявление признаков отмечено преимущественно у высокопродуктивных животных до отела или через 2 месяца после него ввиду максимального напряжения организма в этот период и понижению его устойчивости. Конечную стадию характеризовали гематологическими и глубокими цитоморфологическими изменениями, животные имели алейкемический, сублейкемический и лейкемический состав крови. Отмечено, что при переходе лейкозного процесса из клинико-гематологической стадии, у одних животных количество лейкоцитов увеличивалось до лейкемического уровня, у других - оставалось на сублейкемическом уровне, а у третьих - снижалось до алейкемического. Сублейкемический и лейкемический состав крови всегда сопровождался лимфоцитозом или наличием малодифференцированных клеток в лейкоформуле. При алейкемическом варианте, наряду с уменьшением ранее повышенного количества лейкоцитов, изменялось процентное соотношение клеточных элементов в лейкоцитарной формуле. Так, у одних животных наблюдался лимфоцитоз, у других - нейтрофилия, моноцитоз или эозинофилия. Часто отмечали увеличение процента ретикулярных клеток, так как алейкемическая форма наблюдалась в основном при гематосаркомах. В зависимости от формы лейкоза, поражения паренхимы или ретикулярной стромы органа наблюдалось увеличение количества того или иного вида клеточных элементов [369, 370, 371, 372].

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Петропавловский Максим Валерьевич, 2022 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Ababneh, M.M. Detection and molecular characterization of bovine leukemia viruses from Jordan / M.M. Ababneh, R.K. Al-Rukibat, W.M. Hananeh et al. // Arch Virol. - 2012. - Vol. 157. - P. 2343-2348.

2. Aguilar, H.C. N-glycans on Nipah virus fusion protein protect against neutralization but reduce membrane fusion and viral entry / H.C. Aguilar, K.A. Matreyek, C.M. Filone et al. // J. Virol. - 2006. - Vol. 80. - P. 4878-4889.

3. Aida, Y. Mechanisms of pathogenesis induced by bovine leukemia virus as a model for human Tcell leukemia virus / Y. Aida, H. Murakami, M. Takahashi et al. // Front Microbiol. - 2013. - Vol. 4. - P. 328.

4. Alhabbab, R.Y. Precipitation and Agglutination Reactions. In, Basic Serological Testing. Techniques in Life Science and Biomedicine for the Non-Expert // Cham, Springer, 2018.

5. Alkan, F. Characterisation of env and gag gene fragments of bovine leukemia viruses (BLVs) from cattle in turkey / F. Alkan, T.C. Oguzoglu, M.O. Timurkan et al. // Arch Virol. - 2011. - Vol. 156. - P. 1891-1896.

6. Altreuther, G. Morphologic and functional changes in bovine monocytes infected in vitro with the bovine leukaemia virus / G. Altreuther, L. Llames, S. Neuenschwander et al. // J. Immunol. - 2001. - Vol. 54. - P. 459-469.

7. Amills, M. Reduced IL-2 and IL-4 mRNA expression in CD4+ T cells from bovine leukemia virus-infected cows with persistent lymphocytosis / M. Amills, V. Ramiya, J. Norimine et al. // Virology. - 2002. - Vol. 304. - P. 1-9.

8. Asfaw, Y. Distribution and superinfection of bovine leukemia virus genotypes in Japan / Y. Asfaw, S. Tsuduku, M. Konishi et al. // Arch Virol. - 2005. -Vol. 150. - P. 493-505.

9. Auerbach, M.R. Functional characterization of a portion of the Moloney murine leukemia virus gag gene by genetic footprinting / M.R. Auerbach, C. Shu, A. Kaplan et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2003. - Vol. 100. - P. 139-159.

10. Bai, L. Identification and characterization of common B cell epitope in

bovine leukemia virus via high-throughput peptide screening system in infected cattle / L. Bai, H. Otsuki, H. Sato et al. // Retrovirology. - 2015. - Vol. 12 - P. 106.

11. Bai, L. Mapping of CD4+ T-cell epitopes in bovine leukemia virus from five cattle with differential susceptibilities to bovine leukemia virus disease progression / L. Bai, Sn. Takeshima, M. Sato et al. // Virol. J. -2019. - Vol. 16. - P. 157.

12. Bai, L. Novel CD8+ cytotoxic T cell epitopes in bovine leukemia virus with cattle / L. Bai, S. Takeshima, E. Isogai et al. // Vaccine. - 2015. - Vol. 33 - P. 71947202.

13. Balic, D. Identification of a new genotype of bovine leukemia virus / D. Balic, I. Lojkic, M. Periskic et al. // Arch. Virol. - 2012. - Vol. 157. - P.1281-1290.

14. Baltzell, K.A. Bovine leukemia virus linked to breast cancer but not coinfection with human papillomavirus: Case-control study of women in Texas. / K.A. Baltzell, H.M. Shen, S. Krishnamurthy et al. // Cancer. - 2018 - Vol. 124. - №7. - P. 1342-1349.

15. Ban, J. Mapping of sequential epitopes recognized by monoclonal antibodies on the bovine leukaemia virus external glycoproteins expressed in Escherichia coli by means of antipeptide antibodies / J. Ban, S. Czene, C. Altaner et al. // J. Gen. Virol. -1992. - Vol. 73. - P. 2457-2461.

16. Bao, Y. The immune potential and immunopathology of cytokine-producing B cell subsets: a comprehensive review / Y. Bao, X. Cao // J. Autoimmun. - 2014. - Vol. 55. - P. 10-23.

17. Bartlett, P. C. Current developments in the epidemiology and control of enzootic bovine leukosis as caused by bovine leukemia virus / P. C. Bartlett, V. J. Ruggiero, B. Norby et al. // Pathogens. - 2020. - Vol. 9. - №12. - P. 1-13.

18. Bartlett, P.C. Bovine leukemia virus and cow longevity in Michigan dairy herds / P.C. Bartlett, B. Norby, T.M. Byrem et al. //J. Dairy Sci. - 2013. - Vol. 96. - P. 1591-1597.

19. Bartlett, P.C. Options for the control of bovine leukemia virus in dairy cattle / P.C. Bartlett, L.M. Sordillo, T.M. Byrem // J. Am. Vet. Med. Assoc. - 2014. - Vol. 244. - P. 914-922.

20. Bateneva, N. V. Features of the regional structure of the BLV provirus / N. V. Bateneva, P. N. Smirnov, S. H. Vyshegurov et al. // Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences. - 2016. - Vol. 7. - №4. - P. 20252032.

21. Bauermann, F.V. Bovine leukemia virus seroprevalence among cattle presented for slaughter in the United States / F.V. Bauermann, J.F. Ridpath, D.A. Dargatz et al. // J. Vet. Diagn. Investig. - 2017. - Vol. 29 - P. 704-706.

22. Baust, J.M. Best practices in cell culture: an overview / J.M. Baust, G.C. Buehring, L. Campbell et al. // In Vitro Cell Dev Biol Anim. - 2017. - Vol. 53. - №8. -P. 669-672.

23. Beaufils, P. The (YXXL/I) 2 signalling motif found in the cytoplasmic segments of the bovine leukaemia virus envelope protein and Epstein-Barr virus latent membrane protein 2A can elicit early and late lymphocyte activation events / P. Beaufils, D. Choquet, R.Z. Mamoun et al. // EMBO J. - 1993. - Vol. 12. - P. 5105-5112.

24. Beier, D. Identification of different BLV provirus isolates by PCR RFLPA and DNA sequencing / D. Beier, P. Blankenstain, O. Marquard et al. - 2001. - Vol. 114.

- P. 252-256.

25. Bendixen, H. Leukosis Enzootica bovis / H. Bendixen. - 1963.

26. Blazhko, N. Genotypes diversity of env gene of Bovine leukemia virus in Western Siberia / N. Blazhko, S. Vyshegurov, A. Donchenko et al. // BMC Genet. - 2020.

- Vol. 21. - No Suppl. 1. - P. 70.

27. Bojarojc-Nosowicz, B. Polymorphism and expression of the tumour necrosis factor-alpha (TNF-alpha) gene in non-infected cows and in cows naturally infected with the bovine leukaemia virus (BLV) / B. Bojarojc-Nosowicz, P. Brym, E. Kaczmarczyk // Veterinarni Medicina. - 2016. - №61. - P. 1-9.

28. Bollinger, O Uber Leukamie bei den Haustieren. Virchows Arch. - 1874 -Vol. 59. - P. 341.

29. Bruck, C. Biologically active epitopes of bovine leukemia virus glycoprotein gp51: Their dependence on protein glycosylation and genetic variability / C. Bruck, N. Rensonnet, D. Portetelle // Virology. - 1984. - Vol. 136. - P. 20-31.

30. Bruck, C. Topographical analysis by monoclonal antibodies of BLV-gp51 epitopes involved in viral functions / C. Bruck, D. Portetelle, A. Burny et al. // Virology. - 1982. - Vol. 122. - P. 353-362.

31. Buehring, G.C. Bovine leukemia virus discovered in human blood / G.C. Buehring, A. DeLaney, H. Shen et al. // BMC Infect Dis. - 2019. - Vol. 19. №1. - P. 297.

32. Buehring, G.C. Bovine leukemia virus DNA in human breast tissue / G.C. Buehring, D. Sun, G. Nuovo et al. // Emerg Infect Dis. - 2014. - Vol. 20. - №.5 - P. 77282.

33. Buehring, G.C. Bovine leukemia virus linked to breast cancer in Australian women and identified before breast cancer development / G.C. Buehring, H. Shen, D.A. Schwartz et al. // PLoS One. - 2017. - Vol. 12. - №.6. - P. 0179367.

34. Buehring, G.C. Breast Cancer Gone Viral? Review of Possible Role of Bovine Leukemia Virus in Breast Cancer, and Related Opportunities for Cancer Prevention / G.C. Buehring, Sans H.M. // Int J Environ Res Public Health. - 2019. - Vol. 17. - №1. - P. 209.

35. Buehring, G.C. Exposure to Bovine Leukemia Virus Is Associated with Breast Cancer: A Case-Control Study / G.C. Buehring, H.M. Shen, H.M. Jensen et al. // PLoS One. - 2015. - Vol. 10. - №.9. - P. 0134304.

36. Buehring, G.C. Response to "Lack of association between bovine leukemia virus and breast cancer in Chinese patients" // Breast Cancer Res. - 2017. - Vol. 19. -№1. - P. 24.

37. Burny, A. Bovine leukaemia: facts and hypotheses derived from the study of an infectious cancer / A Burny, Y. Cleuter, R. Kettmann et al. // Cancer Surv - 1987. -Vol. 6. - P. 139-159.

38. Callebaut, I. Mapping of B-neutralizing and T-helper cell epitopes on the bovine leukemia virus external glycoprotein gp51 / I. Callebaut, V. Voneche, A. Mager et al. // J. Virol. - 1993. - Vol. 67. - P. 5321-5327.

39. Camargos, M.F. Molecular characterization of the env gene from Brazilian field isolates of bovine leukemia virus / M.F. Camargos, A. Pereda, D. Stancek et al. // Vir. Gen. - 2007. - Vol. 34. - P. 343-350.

40. Carsetti, R Peripheral development of B cells in mouse and man / R. Carsetti, M.M. Rosado, H. Wardmann et al. // Immunol. - 2004. - Vol. 197. - P. 179-191.

41. Coffin, J.M. Retroviridae: The viruses and their replication / J.M. Coffin, B. N. Fields, D. M. Knipe et al. // Fields Virology, Philadelphia, PA. - 1996. - P.1767-1848.

42. Copeland, T.D. Complete amino acid sequence of the nucleic acid-binding protein of bovine leukemia virus / T.D. Copeland, M.A. Morgan, S. Oroszlan et al. // FEBS Lett. -1983. - Vol. 156. - P. 37-40.

43. Cornefert-Jensen, F. Detection of a bovine virus associated with syncytial formation in mixed cell cultures / F. Cornefert-Jensen, N.D. Stock, R.R. Marshak // Bibl. Haematol. - 1969. - Vol. 36. - P. 453-464.

44. Cornefert-Jensen, F. Studies on bovine lymphosarcoma: formation of syncitia and detection of virus particles in mixed-cell culture / F. Cornefert- Jensen, W.C.D. Hare, N.D. Stock // Int. J. Cancer. - 1969. - Vol. 4. - P. 507-519.

45. Coulston, J. Molecular cloning and sequencing of an Australian isolate of proviral bovine leukaemia virus DNA: comparison with other isolates / J. Coulston, H. Naif, R. Brandon et al. // Gen. Virology. - 1990. - Vol. 71. - P. 1737-1746.

46. De Brogniez, A. Determinants of the bovine leukemia virus envelope glycoproteins involved in infectivity, replication and pathogenesis / A. De Brogniez, J. Mast, L. Willems et al. // Viruses. - 2016 - Vol. 8. - P. 88.

47. De Brogniez, A. Mutation of a Single Envelope N-Linked Glycosylation Site Enhances the Pathogenicity of Bovine Leukemia Virus / A. De Brogniez, A.B. Bouzar, J.R. Jacques et al. // J. Virology. - 2015. - №89 (17). - P. 8945-8956.

48. Debacq, C. Increased cell proliferation, but not reduced cell death, induces lymphocytosis in bovine leukemia virus-infected sheep / C. Debacq, B. Asquith, P. Kerkhofs et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. - 2002. - Vol. 99. - P. 10048-10053.

49. Debacq, C. Reduced cell turnover in bovine leukemia virus-infected, persistently lymphocytotic cattle / C. Debacq, B. Asquith, M. Reichert et al. // J. Virol. -2003. - Vol. 77. - P. 13073-13083.

50. Derse, D. Nucleotide sequence and structure of integrated bovine leukemia virus long terminal repeats / D. Derse, A.J. Diniak, J.W. Casey et al. // Virology. - 1985.

- Vol. 141. - P. 162-166.

51. Diglio, C.A. An improved syncytia infectivity assay for the bovine leukemia virus / C.A. Diglio, C.E. Piper, J.F. Ferrer // In Vitro. - 1978. - Vol. 14. - P. 502-505.

52. Dobberstein, J. Die sogenannte Lymphadenose des Rindes (Rinderleukose) / J. Dobberstein, E. Paarmann // Inf. Krkh. Haust. - 1934. - № 46.

53. Dobberstein, J. Über eine übertragbare Anämie des Rinders ünd ihre Beweisungen zur Rinderleukose / J. Dobberstein, K. Piening // Berl tierärztl. Wschr. -1934. - № 27.

54. Donnik, I.M. Revisiting the Issue of the Molecular-genetic Structure of the causative agent of the Bovine Leukemia virus in the Russian Federation / I.M. Donnik, A.S. Krivonogova, I.A. Shkuratova et al. // Indian Journal of Science and Technology. -2016. - №. 9(42). - P. 104253.

55. Dube, S. The complete genomic sequence of a BLV strain from a Holstein cow from Argentina / S. Dube, G. Dolcini, L. Abbott et al. // Virology. - 2000. - Vol. 277. - P. 379-386.

56. Dube, S. The complete genomic sequence of an in vivo low replicating BLV strain et al. / S. Dube, L. Abbott, D.K. Dube // Virol. J. - 2009. - Vol. 6. - P. 120.

57. Dutta, S. Isolation of C-type virus particles from leukemic and lymphocytotic cattle /. S. Dutta, V. Larson, D. Sorensen // Bibl Haematol. - 1970. - №. 36. - P. 548-554.

58. Eberth, C.J. Leukämie der Maus / C.J. Eberth // Arch. Path. Anat. - 1878. -№72. - P. 108-109.

59. Ellerman, V. Bang. Experimentelle Leukamie bei Huhnern / V. Ellerman // Zbl. f. Bakt. - 1908. - Vol. 46. - P. 595.

60. Emanuelson, U. Relationships between herd bovine leukemia-virus infection status and reproduction, disease incidence, and productivity in swedish dairy herds. Prev / U. Emanuelson, K. Scherling, H. Pettersson // Vet. Med. - 1992. - Vol. 12. - P. 121131.

61. Erskine, R.J. Bovine leukemia virus infection in dairy cattle: effect on serological response to immunization against J5 Escherichia coli bacterin / R.J. Erskine,

P.C. Bartlett, K.M. Sabo // Vet. Med. Int. [Electronic resource] - 2011. URL: https://www.hindawi.com/journals/vmi/2011/915747/

62. Erskine, R.J. Effect of infection with bovine leukosis virus on lymphocyte proliferation and apoptosis in dairy cattle / R.J. Erskine, C.M. Corl, J.C. Gandy // Am. J. Vet. Res. - 2011. - Vol. 72. - P. 1059-1064.

63. Esmailnejad, A. Molecular and serological evaluation of bovine leukemia virus in water buffaloes of southern Iran / A. Esmailnejad, H. Najafi, Y. Torfi // Iran J Vet Med. - 2020. - Vol. 14. - № 1. - P. 37-44.

64. Estes, P. The detection of virus particles by cell culture and electron microscopic studies of a case of bovine lymphosarcoma / P. Estes et al. // Vet. -1970. -№ 60(4). - P. 640-654.

65. Fechner, H. Provirus variants of the bovine leukemia virus and their relation to the serological status of naturally infected cattle // H. Fechner, P. Blankenstein, A.C. Looman et al. // Virology. - 1997. - Vol. 237. - P. 261-269.

66. Felmer, R. Molecular analysis of a 444 bp fragment of the bovine leukaemia virus gp51 env gene reveals a high frequency of non-silent point mutations and suggests the presence of two subgroups of BLV in Chile / R. Felmer, G. Munoz, J. Zuniga et al. // Vet Microbiol - 2005. - Vol. 108. - P. 39-47.

67. Ferrer, J. Relationship between lymphosarcoma and persistent lymphocytosis in cattle: a review / J. Ferrer, R. Marshak, D. Abt et al. // J. Am Vet Med Assoc. - 1979. - № 175 (7) - P. 705-708.

68. Ferrer, J.F. Use of a feline cell line in the syncytia infectivity assay for the detection of bovine leukemia virus infection / J.F. Ferrer, C. Cabradilla, P. Gupta // Amer. J. Vet. Res. - 1981. - № 42(1). - P. 9-14.

69. Ferrer, J.P. Detection of replicating type C virus in continious cell cultures established from cows with leukemia: effect of the culture medium / J.P. Ferrer, N.D. Stock, P.S. Zin // J. Natl. Cancer Inst. - 1971. - Vol. 47. - P. 613-621.

70. Florins, A. Emphasis on cell turnover in two hosts infected by bovine leukemia virus: a rationale for host susceptibility to disease / A. Florins, M. Boxus, F. Vandermeers et al. // Vet. Immunol. Immunopathol. - 2008. - Vol. 125. - P. 1-7.

71. Florins, A. Even attenuated bovine leukemia virus proviruses can be pathogenic in sheep / A. Florins, N. Gillet, M. Boxus et al. // J Virol. - 2007. - Vol. 81. - P. 10195-200.

72. Frie, M.C. Bovine leukemia virus: a major silent threat to proper immune responses in cattle / M.C. Frie, P.M. Coussens // Vet Immunol Immunopathol. - 2015. -№ 163(3-4). - P. 103-114.

73. Gatot, J.S. Bovine Leukemia Virus SU Protein Interacts with Zinc, and Mutations within Two Interacting Regions Dierently Aect Viral Fusion and Infectivity In Vivo / J.S. Gatot, I. Callebaut, C. Van Lint et al. // J. Virol. - 2002. - Vol. 76. - P. 79567967.

74. Gatot, J.S. Conservative mutations in the immunosuppressive region of the bovine leukemia virus transmembrane protein affect fusion but not infectivity in vivo / J.S. Gatot, I. Callebaut, J.P. Mornon et al. // J. Biol. Chem. - 1998. - Vol. 273. - P. 1287012880.

75. Gillet, N. Mechanisms of leukemogenesis induced by bovine leukemia virus: prospects for novel anti-retroviral therapies in human / N. Gillet, A. Florins, M. Boxus et al. // Retrovirology J. - 2007. - Vol. 4. - P. 18-50.

76. Gillet, N.A. Bovine leukemia virus small noncoding RNAs are functional elements that regulate replication and contribute to Oncogenesisin vivo / N.A. Gillet, M. Hamaidia, A. de Brogniez // PLoS Pathog. - 2016. - № 12.

77. Gorbatenko, S.K. Dimethyl sulfoxide as the stimulant antigen producing activity of the cell culture FLK-BLV / S. K. Gorbatenko, M. Yu. Stegniy, A. N. Korneykov et al. // Journal for Veterinary Medicine, Biotechnology and Biosafety. -2017. - Vol. 3. - № 1. - P. 17-20.

78. Götze, R. Die Leukose des Rinders, ihre hamatologische und klinische Diagnose / R. Götze // Mh. Veter. - 1954. - № 9.

79. Gotze, R. Uber Ursachen und Bekampfung der Rinderleukose. IV. Ubertragungswege und Bekampfungsvorschlag / R. Gotze, G. Rosenberger, G. Zigenhangen // Deut. tierarztl. Wschr. - 1961. - № 63. - P. 13-14.

80. Granzow, H. Electron microscopic investigation on the fine structure of the

virus of enzootic bovine leucosis (BLV) / H. Granzow, P. Solisch, W. Wittmann // Arch. Geschwulstforsch. - 1985. - Vol. 55. - № 3. - P. 153-159.

81. Gregory, L. Nested polymerase chain reaction validated for sensitive detection of bovine leukemia virus in blood samples from Brazilian cattle herds: Comparison with conventional ELISA and agar gel immunodiffusion methods / L. Gregory, P.S. Carneiro, E.H. Birgel Junior et al. // Arq Inst Biol. - 2004. - Vol. 71. - № 3. - P. 303-308.

82. Gulyukin, M.I. Detection of specific antibodies of classes G and M to bovine leukemia virus in the blood serum / M.I. Gulyukin, O.V. Kapustina, I. Yu et al. // Problems of Virology Russian journal. - 2019. - № 64(4). - P. 173-177.

83. Gulyukin, M.I. Genetic polymorphism of the bovine leukemia virus in the Russian federation / M.I. Gulyukin, N.G. Kozyreva, L.A. Ivanova et al. // Russ. Agricult. Sci. - 2016. - Vol. 42. - P. 472-475.

84. Gutiérrez, G. Vaccination against 5-retroviruses: The bovine leukemia virus paradigm / G. Gutiérrez, S.M. Rodríguez, A. De Brogniez et al. // Viruses. - 2014. - Vol. 6. - P. 2416-2417.

85. Haghparast, A. Prevalence of bovine leukemia virus (BLV) antibodies in bulk tank milk of dairy cattle herds of Mashhad area, North-East of Iran / A. Haghparast, E. Tabatabaiezadeh, G. Mohammadi // J Anim Vet Adv. - 2012. - Vol. 11. - № 2. - P. 276-280.

86. Hamada, R. Detection and Molecular Characterization of Bovine Leukemia Virus in Egyptian Dairy Cattle / R. Hamada, S. Metwally, M. Polat // Front Vet Sci. -2020. - № 7: - P. 608.

87. Hamard-Peron, E. Retroviral matrix and lipids, the intimate interaction. / E. Hamard-Peron, D. Muriaux // Retrovirology. - 2011. - Vol. 8 - P. 15.

88. Heeney, J. L. Evidence for bovine leukemia virus infection of peripheral blood monocytes and limited antigen expression in bovine lymphoid tissue / J. L. Heeney et al. // Lab. Invest. - 1992. - Vol. 66 - P. 608-617.

89. Ikebuchi, R. Increase of cells expressing PD-L1 in bovine leukemia virus infection and enhancement of anti-viral immune responses in vitro via PD-L1 blockade /

R. Ikebuchi, S. Konnai, T. Shirai et al. // Vet. Res - 2011. - Vol. 42. - P. 103.

90. Inabe, K. The YXXL sequences of a transmembrane protein of bovine leukemia virus are required for viral entry and incorporation of viral envelope protein into virions / K. Inabe, M. Nishizawa, S. Tajima et al. // J. Virol. - 1999. - Vol. 73. - P. 12931301.

91. Inoue, E. Genetic heterogeneity among bovine leukemia viruses in Japan and their relationship to leukemogenicity / E. Inoue, K. Matsumura, K. Maekawa // Arch Virol. - 2011. - Vol. 156. - P. 1137-1141.

92. Isaacson, J.A. Increased MHC class II and CD25 expression on lymphocytes in the absence of persistent lymphocytosis in cattle experimentally infected with bovine leukemia virus / J.A. Isaacson, K.P. Flaming, J.A. Roth // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1998. - Vol. 64. - P. 235-248.

93. Jaworski, J.P. Interlaboratory comparison of six real-time PCR assays for detection of bovine leukemia virus proviral DNA / J.P. Jaworski, A. Pluta, M. Rola-Luszczak // Clin Microbiol. - 2018. - Vol. 56. - № 7. - P 00304-18.

94. Jern, P. Use of endogenous retroviral sequences (ERVs) and structural markers for retroviral phylogenetic inference and taxonomy / P. Jern, G.O. Perber, J. Blomberg // Retrovirology. - 2005. - № 2(50). - P. 12.

95. Jewell, NA. The beginning: genome recognition, RNA encapsidation and the initiation of complex retrovirus assembly / N.A. Jewell, L.M. Mansky // J Gen Virol. -2000. - Vol. 81. - P.1889-1899.

96. Jimba, M. BLV-CoCoMo-qPCR: quantitation of bovine leukemia virus proviral load using the CoCoMo algorithm / M. Jimba, S.N. Takeshima, K. Matoba // Retrovirology. - 2010. - № 7. - P. 91.

97. Johnston, E.R. Envelope Proteins Containing Single Amino Acid Substitutions Support a Structural Model of the Receptor-Binding Domain of Bovine Leukemia Virus Surface Protein / E.R. Johnston, L.M. Albritton, K. Radke // J. Virol. -2002. - № 76. - P. 10861-10872.

98. Johnston, E.R. The SU and TM envelope protein subunits of bovine leukemia virus are linked by disulfide bonds, both in cells and in virions / E.R. Johnston,

K.J. Radke // Virol. - 2000. - № 74(6). - P. 2930-2935

99. Juliarena, M.A. Bovine leukemia virus: Current perspectives / M.A. Juliarena, C.N. Barrios, C.M. Lützelschwab et al. // Virus Adapt Treat. - 2017. - № 9. -P. 13- 26.

100. Juliarena, M.A. Determination of proviral load in bovine leukemia virus-infected cattle with and without lymphocytosis / M.A. Juliarena, S.E. Gutierrez, C. Ceriani // Am. J. Vet. Res. - 2007. - № 68. - P. 1220-1225.

101. Katoh, I. Bovine leukemia virus RNA sequences involved in dimerization and specific gag protein binding: close relation to the packaging sites of avian, murine, and human retroviruses / I. Katoh, T. Yasunaga, Y. Yoshinaka / J. Virol. - 1993. - № 67.

- P.1830-1839.

102. Kazemimanesh, M. Detection and molecular characterization of bovine leukemia virus in various regions of Iran / M. Kazemimanesh, O. Madadgar, F. Steinbach // The Journal of General Virology. - 2019. - № 100(9). - P.1315-1327.

103. Kenyon, S. J. Cellular basis of persistent lymphocytosis in cattle infected with bovine leukemia virus / S.J. Kenyon, C.E. Piper / Infection and Immunity. - 1977.

- № 16. - P. 891-897.

104. Kettmann, R. Chromosome integration domain for bovine leukemia provirus in tumors / R. Kettmann, J. Deschamps, D. Couez et al. // Journal of Virology. - 1983. -Vol. 47. - P. 146-150.

105. Kettmann, R. Genomic integration of bovine leukemia provirus: comparison of persistent lymphocytosis with lymph node tumor form of enzootic bovine leukosis / R. Kettmann, Y. Cleuter, M. Mammerickx et al. // Proceedings of the National Academy of Sciences, U.S.A. - 1980. - Vol. 77. - P. 2577-2581.

106. Kettmann, R. Leukemogenesis by bovine leukemia virus: proviral DNA integration and lack of RNA expression of viral long terminal repeat and Y proximate cellular sequences / R. Kettmann, J. Deschamps, Y. Cleuter et al. // Proceedings of the National Academy of Sciences, U.S.A. - 1982. - Vol. 79. - P. 2465-2469.

107. Kettmann, R. Restriction endonuclease mapping of linear unintegrated proviral DNA of bovine leukemia virus / R. Kettmann, D. Couez, A. Burny // J. Virol. -

1981. - № 38. - P. 27-33.

108. Kincaid, R.P. RNA virus microRNA that mimics a B-cell oncomiR / R.P. Kincaid, J.M. Burke, C.S. Sullivan et al. // Proc Natl Acad Sci USA. - 2012. - Vol. 109.

- P. 3077-3082.

109. King, A. MQ. Virus Taxonomy: Ninth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / A. MQ. King, M.J. Adams, E.B. Carstens et al // Elsevier Ac. Press., London, Waltham, San Diego. - 2012. - P. 481-495.

110. Klener, P. Insights into gene expression changes impacting B-cell transformation: cross-species microarray analysis of bovine leukemia virus tax-responsive genes in ovine B cells / P. Klener, M. Szynal, Y. Cleuter et al. // J. Virol. -2006. - Vol. 80. - P. 1922-1938.

111. Knuth, P.O. Volkmann Untersushunhen über die Lymphozymatose des Rindes. Zschr. Inf. Krnkh. Haust., 17, I. Mitteilung. - 1916.

112. Kobayashi, S. The role of neighboring infected cattle in bovine leukemia virus transmission risk / S. Kobayashi, T. Tsutsui, T. Yamamoto et al. // J. Vet. Med. Sci.

- 2015. - №77(7). - P. 861-863.

113. Kobayashi, S. Risk factors associated with within-herd transmission of bovine leukemia virus on dairy farms in Japan / S. Kobayashi, T. Tsutsui, T. Yamamoto et al. // BMC Vet Res. - 2010. - Vol. 6. - P.1.

114. Konishi, M. Simultaneous evaluation of diagnostic marker utility for enzootic bovine leucosis / M. Konishi, S. Kobayashi, T. Tokunaga et al. // BMC Vet Res.

- № 15 (1). - P. 406, 2019.

115. Konnai, S. Enhanced expression of LAG-3 on lymphocyte subpopulations from persistently lymphocytotic cattle infected with bovine leukemia virus / S. Konnai, S. Suzuki, T. Shirai et al. // Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. - 2013. - № 36. - P. 63-69.

116. Kovalenko, A. Development of approaches to the diagnosis of cattle leukemia in the system of antiepizootic measures in the Belgorod Region / A. Kovalenko, I. Donnik, A. Dorofeev et al. // BIO Web of Conferences: II International Symposium "Innovations in Life Sciences", Belgorod, 2020. - ^e3-ronnc: EDP Sciences, 2021. - P.

06002.

117. Kuckleburg, C.J. Detection of bovine leukemia virus in blood and milk by nested and real-time polymerase chain reactions / C.J. Kuckleburg, C.C. Chase, E.A. Nelson et al. // Vet Diagn Invest. - 2003. - № 15. - P.72-76.

118. Kuczewski, A. Economic evaluation of 4 bovine leukemia virus control strategies for Alberta dairy farms / A. Kuczewski, H. Hogeveen, K. Orsel et al. // J Dairy Sci. - 2019. - № 102 (3). - P. 2578-2592.

119. Kuczewski, A. Short communication: Evaluation of 5 different ELISA for the detection of bovine leukemia virus antibodies / A. Kuczewski, K. Orsel, D. Kelton et al. // Journal of Dairy Science. - 2018. - Vol. 101 (3). - P. 2433-2437.

120. Kuzhebaeva, U. Zh. Nitric oxide as an indicator for assessing the resistance and susceptibility of cattle to leukemia / U. Zh. Kuzhebaeva, I.M. Donnik, M.V. Petropavlovskiy, S.G. Kanatbaev, B.E. Nurgaliev // Agrarian Bulletin of the Urals. -2021. - № 10 (213). - P. 48-54.

121. Kuzmin, V. Spread dynamics of leucosis in cattle in livestock farms of the russian federation for 2000-2018 / V. Kuzmin, M. Gulyukin, A. Metlin et al. // International scientific and practical conference "Agrosmart - smart solutions for agriculture". - Tyumen, 2019. - P. 666-673.

122. LaDronka, R. Impact of bovine leukemia virus on herd level production indicators on U.S. dairy farms / R. LaDronka // In: 97th Annual Meeting of the Conference of Research Workers in Animal Diseases. Chicago, IL. - 2016. - № 89 (6).

- P. 785-798.

123. LaDronka, R.M. Prevalence of Bovine Leukemia Virus Antibodies in US Dairy Cattle / R.M. LaDronka, S. Ainsworth, M.J. Wilkins et al. // Vet. Med. Int. - 2018.

- № 8.

124. Lagarias, D. M. Transcriptional activation of bovine leukemia virus in blood cells from experimentally infected, asymptomatic sheep with latent infections / D.M. Lagarias, K. Radke // J. Virol. - 1989. - Vol. 63. - P. 2099-2107.

125. Lavanya, M. Cell surface expression of the bovine leukemia virus-binding receptor on B and T lymphocytes is induced by receptor engagement / M. Lavanya, S.

Kinet, A. Montel-Hagen et al. // J. Immunol. - 2008. - Vol. 181. - P. 891-898.

126. Lee, E. Molecular epidemiological and serological studies of bovine leukemia virus (BLV) infection in Thailand cattle / E. Lee, E.J. Kim, J. Ratthanophart et al. // Infect Genet Evol. - 2016. - Vol. 41. - P. 245-254.

127. Lee, E. Sequencing and phylogenetic analysis of the gp51 gene from Korean bovine leukemia virus isolates / E. Lee, E.J. Kim, H.K. Joung et al. // Virol J. - 2015. -Vol. 12. - P. 64.

128. Leisering. Leukamie beim Pferd. Ber. Vet. Wes. Kgr. Sachsen, 1858.

129. Licursi, M. Provirus variants of bovine leukemia virus in naturally infected cattle from Argentina and Japan / M. Licursi, Y. Inoshima, D. Wu et al. // Vet Microbiol.

- 2003 - Vol. 96. - P. 17-23.

130. Licursi, M. Genetic heterogeneity among bovine leukemia virus genotypes and its relation to humoral responses in hosts. Virus Research / M. Licursi et al. - 2002.

- Vol. 86. - P. 101-110.

131. Llames, L. Cellular distribution of bovine leukemia virus proteins gp51SU, Pr72env, and Pr66gag-pro in persistently infected cells / L. Llames, J. Goyache, A. Domenech et al. // Virus Res. - 2001. - Vol. 79. - P. 47-57.

132. Lojkic, I. Eradication of bovine leukosis virus on a dairy farm through improved virus detection / I. Lojkic, D. Balic, N. Rudan et al. // Vet Arhiv. - 2013. - № 83 (6). - P. 581-591.

133. Lorin, A. Determination of the minimal fusion peptide of bovine leukemia virus gp30 / A. Lorin, L. Lins, V. Stroobant et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. -2007. - Vol. 355. - P. 649-653.

134. Lundberg, P. Gamma delta + T-lymphocyte cytotoxicity against envelope-expressing target cells is unique to the alymphocytic state of bovine leukemia virus infection in the natural host / P. Lundberg, G.A. Splitter // J. Virol. - 2000. - Vol. 74. -P. 8299-8306.

135. Mager, A. T cell proliferative response to bovine leukaemia virus (BLV): identification of T cell epitopes on the major core protein (p24) in BLV-infected cattle with normal haematological values / A. Mager, R. Masengo, M. Mammerickx et al. // J

Gen Virol. - 1994. - Vol. 75. - P. 2223-2231.

136. Mamoun, R.Z. Sequence variability of bovine leukemia virus env gene and its relevance to the structure and antigenicity of the glycoproteins / R.Z. Mamoun, M. Morisson, N. Rebeyrotte et al. // J. Virol. - 1990. - Vol. 64. - P. 4180-4188.

137. Mansky, L.M., Temin, H.M. Lower mutation rate of bovine leukemia virus relative to that of spleen necrosis virus / L.M. Mansky, H.M. Temin // J. Virol. - 1994. -Vol. 68. - P. 494-499.

138. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (2021) [Electronic resource] - URL: https://www.oie.int/en/what-we-do/standards/codes-and-manuals/terrestrial-manual-online-access. pdf.

139. Marawan, M. A. Phylogenetic analysis of env gene of bovine leukemia virus strains spread in Miyazaki prefecture, Japan / M. A. Marawan, T. Hayashi, S. Sekiguchi et al. // Journal of Veterinary Medical Science. - 2017. - Vol. 79. - № 5. - P. 912-916.

140. Marawan, M.A. Bovine Leukaemia Virus: Current Epidemiological Circumstance and Future Prospective / M.A. Marawan, A. Alouffi, S. El Tokhy // Viruses.

- 2021. - № 13. - P. 2167.

141. Maresca, C. Enzootic bovine leukosis: Report of eradication and surveillance measures in Italy over an 8-year period (2005-2012) / C. Maresca, S. Costarelli, A. Dettori et al. // Prev Vet Med. - 2015. - № 119 (3- 4). - P. 222-226.

142. Marschak, R. Clinical and hematologic investigation of a high incidence of lymphosarcoma in a herd cattle / R. Marschak, O. Schalm, V. Gilmore // Am. J. vet. Res.

- 1961. - № 23.

143. Matsumura, K. Molecular epidemiology of bovine leukemia virus associated with enzootic bovine leukosis in Japan / K. Matsumura, E. Inoue, Y. Osawa et al. // Virus Res. - 2011. - Vol. 155. - P. 343-348.

144. Maxieux, R. New human retroviruses: HTLV-3 and HTLV-4 / R. Maxieux, A. Gessain N // Pathol Biol (Paris). - 2009. - № 57(2). - P. 161-6.

145. McClure, H.M. Erythroleukemia in two infant chimpanzees fed milk from cows naturally infected with the bovine C-type virus / H.M. McClure, M.E. Kuling, R.P. Custer // Cancer Res. - 1974. - Vol. 34. - P.2745-2757.

146. Meirom, R. BLV-infected lymphocytes exhibit two patterns of expression as determined by Ig and CD5 markers / R. Meirom, J. Brenner, Z. Trainin. // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1993. - Vol. 36. - P. 179-186.

147. Meirom, R. Bovine leukemia virus-gp51 antigen expression is associated with CD5 and IgM markers on infected lymphocytes / R. Meirom, S. Moss, J. Brenner // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1997. - Vol. 59. - P. 113-119.

148. Meiron, R. Humoral and cellular responses in calves experimentally infected with bovine leukemia virus (BLV) / R. Meiron, J. Brenner, A. Gluckman et al. // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1985. - № 9. - P. 105-114.

149. Mekata, H. Horizontal transmission and phylogenetic analysis of bovine leukemia virus in two districts of Miyazaki, Japan / H. Mekata, S. Sekiguchi, S. Konnai et al. // J Vet Med Sci. - 2015. - № 77 (9). - P. 1115-1120.

150. Mesa, G. Bovine Leukemia Virus Gene Segment Detected in Human Breast Tissue / G. Mesa, J.C. Ulloa, A.M. Uribe // Open Journal of Medical Microbiology. -2013. - № 3. - P. 84-90.

151. Miller, J. Virus - Like particles in phytogemagglutin-stimulated lymphocyte culters with reference to bovine lymphosarcoma / J. Miller et al. // J. Nat. Cancer Inst. -1969. - № 43(6). - P. 1297-305.

152. Miller, L. Innoculation of calves with particles resembling C-type virus from cultures of bovine lymphosarcoma / L. Miller et al. // J. Nat. Cancer Inst. - 1972. - № 48(2). - P. 423 - 428.

153. Mirsky, M.L. The prevalence of proviral bovine leukemia virus in peripheral blood mononuclear cells at two subclinical stages of infection / M.L. Mirsky, C.A. Olmstead, Y. Da et al. // J. Virol. - 1996. - Vol. 70. - P. 2178-2183.

154. Moe, K.K. New evidence of bovine leukemia virus circulating in Myanmar cattle through epidemiological and molecular characterization / K.K. Moe, M. Polat, L. Borjigin et al. // PLoS One. - 2020. - № 15(2).

155. Molteni, E. Molecular characterization of a variant of proviral bovine leukaemia virus (BLV) / E. Molteni, A. Agresti, R. Meneveri et al. // Zentralbl Veterinarmed. - 1996. - Vol. 43. - P. 201-211.

156. Montemagno, F. Primer consuntivo de aldunas investigations experimentales en relation al studio de la etiologia virica de la leucosio linfatica de los bovidos / 16 Congresso Mundial Vet., Madrid. - 1959.

157. Monti, G. Genetic diversity and spread of Bovine leukaemia virus isolates in Argentine dairy cattle / G. Monti, R. Schrijver, D. Beier // Arch Virol. - 2005. - Vol. 150. - p. 443-458.

158. Moratorio, G. Adetailed molecular analysis of complete bovine leukemia virus genomes isolated from B-cell lymphosarcomas / G. Moratorio, S. Fischer, S. Bianchi et al. // Vet. Res. - 2013. - Vol. 44. - P. 19.

159. Moratorio, G. Phylogenetic analysis of bovine leukemia viruses isolated in South America reveals diversification in seven distinct genotypes / G. Moratorio, G. Obal, A. Dubra et al. // Arch Virol. - 2010. - Vol. 155. - P. 481-489.

160. Mosmann, T.R. Two types of murine helper T cell clone. I. Definition according to profiles of lymphokine activities and secreted proteins / T.R. Mosmann, H. Cherwinski, M.W. Bond et al. // J. Immunol. - 1986. - Vol. 136. - P. 2348-2357.

161. Murakami, K. The recent prevalence of bovine leukemia virus (BLV) infection among Japanese cattle / K. Murakami, S. Kobayashi, M. Konishi et al. // Vet. Microbiol. - 2011. - Vol. 148. - P. 84-88.

162. Nakada, S. Estimation of economic loss by carcass weight reduction of Japanese dairy cows due to infection with bovine leukemia virus / S. Nakada, Y. Fujimoto, J. Kohara et al. // Prev Vet Med. - 2022. - № 198. - P. 105528.

163. Nekouei, O. Lifetime effects of infection with bovine leukemia virus on longevity and milk production of dairy cows / O. Nekouei, J. VanLeeuwen, H. Stryhn et al. // Prev Vet Med. - 2016. - Vol. 133. - P. 1-9.

164. Neumann, E. Ein Fall von Leukemie mit Erkrankung des Knochemarkes. Arh Heilkunde, 1870, XI, 1

165. Nishimori, A. Direct polymerase chain reaction from blood and tissue samples for rapid diagnosis of bovine leukemia virus infection / A. Nishimori, S. Konnai, R. Ikebuchi // J Vet Med Sci. - 2016. - № 78 (5). - P. 791-796.

166. Nuotio, L. Eradication of enzootic bovine leukosis from Finland / L. Nuotio,

H. Rusanen, L. Sihvonen et al. // Prev Vet Med. - 2003. - № 59 (1-2). - P. 43-49.

167. Ochirkhuu, N. Detection of bovine leukemia virus and identification of its genotype in Mongolian cattle / N. Ochirkhuu, S. Konnai, R. Odbileg et al. // Arch Virol.

- 2016. - Vol. 161. - P. 985-991.

168. OIE World Organization for Animal Health. Enzootic Bovine Leukosis. World Anim Heal Inf Database, Dis information, List Ctries by Sanit Situat. Available at: [Electronic resource] - 2021. URL: http: //www.oie.int/wahis_2/public/wahid.php/Diseaseinformation/statuslist.

169. Okagawa, T. Increased bovine Tim-3 and its ligand expressions during bovine leukemia virus infection / T. Okagawa, S. Konnai, R. Ikebuchi et al. // Vet. Res.

- 2012. - Vol. 43. - P. 45.

170. Olaya-Galán, N.N. Bovine leukaemia virus DNA in fresh milk and raw beef for human consumption. / N.N. Olaya-Galán, A.P. Corredor-Figueroa, T.C. Guzmán-Garzón et al. // Epidemiol Infect. - 2017. - № 145 (15). - P. 3125-3130.

171. Olaya-Galán, N.N. Risk factor for breast cancer development under exposure to bovine leukemia virus in Colombian women: A case-control study / N.N. Olaya-Galán, S.P. Salas-Cárdenas, J.L. Rodriguez-Sarmiento et al. // PLoS One. - 2021. - № 16 (9). -P. 0257492.

172. Olson, C. Demonstration of C-type virus and nuclear projections in lymphocyte cultures of bovine leukemia / C. Olson, J. Miller, L. Miller et al. // Dtsch Tierarztl Wochenschr. - 1970. - № 77 (13) - P. 297-299.

173. Olson, C. Transmission of lymphosarcoma / C. Olson // J. Nat. Cancer Inst.

- 1972. - Vol. 49. - P. 1453.

174. Olson, H. Studen uber das Aufteren und die Verbreitung der Rinderleukose in Schweden / H. Olson // Acta Vet. Scand. - 1961. - Vol. 2. - Suppl. 2.

175. Onuma, M. Integration of bovine leukemia virus DNA in the genomes of bovine lymphosarcoma cells / M. Onuma, N. Sagata, K. Okada et al. // Microbiology and Immunology. - 1982. - № 26. - P. 813-820.

176. Ott, S.L. Association between bovine-leukosis virus seroprevalence and herd-level productivity on US dairy farms / S.L. Ott, R. Johnson, S.J. Wells // Prev Vet

Med. - 2003. - Vol. 61. - P. 249-262.

177. Panei, C. J. Estimation of bovine leukemia virus (BLV) proviral load harbored by lymphocyte subpopulations in BLV-infected cattle at the subclinical stage of enzootic bovine leucosis using BLV-CoCoMo-qPCR // C.J. Panei, S.N. Takeshima, T. Omori et al. - 2013. - № 9 (95).

178. Paul, P.S. Evidence for the replication of bovine leukemia virus in B lymphocytes / P.S. Paul, K.A. Pomeroy, D.W. Johnson et al. // American Journal of Veterinary Research. - 1977. - Vol. 38. - P. 873-876.

179. Pestka, S. Interleukin-10 and related cytokines and receptors. Annu / S. Pestka, C.D. Krause, D. Sarkar et al. // Rev. Immunol. - 2004. - Vol. 22. - P. 929-979.

180. Petropavlovskiy, M. Comparative evaluation of amino acid composition of colostrum from BLV-infected and seronegative cows / M. Petropavlovskiy, A. Poryvaeva, A. Lysov, N. Dudkina, L. Khalturina // Reproduction in domestic animals. -2021. - P. 86.

181. Petropavlovskiy, M.V. Detection and immunobiological charcterizations of bovine leukeima virus in Russian Federation territory in dependence on geographical variations / M.V. Petropavlovskiy, I.M. Donnik, N.A. Bezborodova, A.S. Krivonogova // Journal of Integrated OMICS. - 2019. - Vol. 9. - № 1. - P. 23-27.

182. Petropavlovskiy, M.V. Epizootiological and genetic characterization of the bovine leukemia virus in the Russian Federation-evaluation of bovine leukemia virus in Russia / M. V. Petropavlovskiy, I. Donnik, N. Bezborodova // Veterinarski Arhiv. - 2019. - Vol. 89. - № 6. - P. 785-798.

183. Petropavlovskiy, M.V. Immuno-biological evaluation of individual genetic variants of bovine leukemia virus in the conditions of the Ural region / M. V. Petropavlovsky, N. A. Vereshchak, N. A. Bezborodova, O. Yu. Oparina // Digital agriculture - development strategy: Proceedings of the International Scientific and Practical Conference. - Ekaterinburg, 2019. - P. 372-377.

184. Petropavlovskiy, M.V. The role of colostral immunity in the effectiveness of serological detection of BLV / M. V. Petropavlovskiy, A. V. Lysov, N. A. Bezborodova // E3S Web of Conferences: International Conference "Ensuring Food Security in the

Context of the COVID-19 Pandemic" (EFSC2021), Doushanbe, Republic of Tadjikistan, 2021. - Doushanbe, Republic of Tadjikistan: E3S Web of Conferences, 2021. - P. 06006.

185. Pikora, C.A. Glycosylation of the ENV spike of primate immunodeficiency viruses and antibody neutralization. - 2004. - № 2. - P. 243-254.

186. Pluta, A. Analysis of Nucleotide Sequence of Tax, miRNA and LTR of Bovine Leukemia Virus in Cattle with Different Levels of Persistent Lymphocytosis in Russia / A. Pluta, N.V. Blazhko, C. Ngirande et al. // Pathogens. - 2021. - Vol. 10 (2). -P. 246.

187. Pluta, A. Computational analysis of envelope glycoproteins from diverse geographical isolates of bovine leukemia virus identifies highly conserved peptide motifs / A. Pluta, L.M. Albritton, M. Rola-Luszczak et al. // Retrovirology. - 2018. - Vol. 15.

188. Pluta, A. Molecular characterization of bovine leukemia virus from Moldovan dairy cattle / A. Pluta, M. Rola-Luszczak, P. Kubis et al. // J. Arch. Virol. -2017. - Vol. 162. - P. 1563-1576.

189. Polat, M. A new genotype of bovine leukemia virus in South America identified by NGS-based whole genome sequencing and molecular evolutionary genetic analysis / M. Polat et al. // Retrovirology. - 2016. - № 13 (4).

190. Polat, M. Detection and molecular characterization of bovine leukemia virus in Philippine cattle / M. Polat, A. Ohno, S.N. Takeshima // Arch. Virol. - 2015. - Vol. 160. - P. 285-296.

191. Polat, M. Epidemiology and genetic diversity of bovine leukemia virus / M. Polat, S.N. Takeshima, Y. Aida // Virol J. - 2017. - № 14 (1). - P. 209.

192. Polat, M. The molecular epidemiological study of bovine leukemia virus infection in Myanmar cattle // M. Polat, H.H. Moe, T. Shimogiri et al. // Arch Virol. -2017. - № 162 (2). - P. 425 - 437.

193. Porta, N.G. Experimental infection of sheep with Bovine leukemia virus (BLV): Minimum dose of BLV-FLK cells and cell-free BLV and neutralization activity of natural antibodies / N.G. Porta, I. Alvarez, G. Suarez Archilla et al. // Rev Argent Microbiol. - 2019. - № 51 (4). - P. 316-323.

194. Portetelle, D. Recombinant vaccinia virus expression of the bovine leukaemia virus envelope gene and protection of immunized sheep against infection / D. Portetelle et al. // Vaccine. - 1991. - № 9. - P. 194-200.

195. Pyeon, D. Interleukin-12 p40 mRNA expression in bovine leukemia virus-infected animals: increase in alymphocytosis but decrease in persistent lymphocytosis / D. Pyeon, G.A. Splitter // J. Virol. - 1998. - Vol. 72. - P. 6917-6921.

196. Reichert, M. Role of the proline-rich motif of bovine leukemia virus transmembrane protein gp30 in viral load and pathogenicity in sheep / M. Reichert, A. Winnicka, L. Willems // J. Virol. - 2001. - Vol. 75. - P. 8082-8089.

197. Rice, N.R. The gag and pol genes of bovine leukemia virus: Nucleotide sequence and analysis / N.R. Rice, R.M. Stephens et al. // Virology. - 1985. - Vol. 142.

- P. 357-377.

198. Rice, N.R. The nucleotide sequence of the env gene and the post-env region of bovine leukemia virus / N.R. Rice, R.M. Stephens, D. Couez et al. // Virology. - 1984.

- № 138. - P. 82-93.

199. Rodriguez, S.M. Bovine leukemia virus can be classified into seven genotypes: Evidence for the existence of two novel clades / S.M. Rodriguez, M.D. Golemba, R.H. Campos et al. // J. Gen. Virol. - 2009. - Vol. 90. - P. 2788-2797.

200. Rodriguez, S.M. Preventive and therapeutic strategies for bovine leukemia virus: Lessons for HTLV. Viruses / S.M. Rodriguez et al. - 2011. - № 3. - P. 1210-1248.

201. Rola, M. Reactivity of serum from cattle suspected of bovine leukaemia virus infection to peptides representing mutated epitopes on envelope glycoprotein gp51/ M. Rola, M. Materniak-Kornas, J. Kuzmak // Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy. - 2008. - № 52 (3). - P. 325-329.

202. Rola-Luszczak, M. The Molecular Characterization of Bovine Leukaemia Virus Isolates from Eastern Europe and Siberia and Its Impact on Phylogeny / M. Rola-Luszczak, A. Pluta, M. Olech, I. Donnik, M. Petropavlovskiy // PLoS One. - 2013. - Vol. 8. - Issue 3.

203. Rosenberger G. Studies on bovine leukose in Germany: transmission experiments / G. Rosenberger // WHO Conference on compative studies in leukcaemies.

- Philadelphia, 1961.

204. Rosewick, N. Deep sequencing reveals abundant noncanonical retroviral microRNAs in B-cell leukemia/lymphoma / N. Rosewick, M. Momont, K. Durkin et al. // Proc Natl Acad Sci USA - 2013. - Vol. 110. - P. 2306-2311.

205. Ruggiero, V.J. Controlling bovine leukemia virus in dairy herds by identifying and removing cows with the highest proviral load and lymphocyte counts / V.J. Ruggiero, B. Norby, O.J. Benitez et al. // J Dairy Sci. - 2019. - № 102 (10). - P. 9165-9175.

206. Rusenova, N. Comparison between four laboratory tests for routine diagnosis of enzootic bovine leukosis / N. Rusenova, M. Chervenkov, I. Sirakov // Kafkas Univ Vet Fak Derg. - 2022. - № 28 (1). -P. 97-104.

207. Sagata, N. Complete nucleotide sequence of the genome of bovine leukemia virus: its evolutionary relationship to other retroviruses / N. Sagata, T. Yasunaga, J. Tsuzuku-Kawamura et al. // Proc Natl Acad Sci USA. - 1985. - Vol. 82. - P. 677-681.

208. Saitou, N. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees / N. Saitou, M. Nei // Mol. Biol. Evol. -1987. - Vol. - 4. - P. 406425.

209. Sandev, N. Influence of enzootic bovine leukosisvirus upon the incidence of subclinical mastitis in cows at a different stage of infection / N. Sandev, M. Koleva, R. Binev, D. Ilieva // Veterinarski Archiv. - 2004. - Vol. 76. - P. 411-416.

210. Sandev, N. Prevalence of enzootic bovine leucosis in Bulgaria / N. Sandev, D. Ilieva, N. Rusenova // Bull Univ Agric Sci Vet Med. - 2015. - № 72 (1). - P. 43- 46,

211. Sato, H. A sensitive luminescence syncytium induction assay (LuSIA) based on a reporter plasmid containing a mutation in the glucocorticoid response element in the long terminal repeat U3 region of bovine leukemia virus / H. Sato, S. Watanuki, L. Bai et al. // Virol. J. - 2019. - Vol. 16(1).

212. Sato, H. Overexpression of bovine leukemia virus receptor SLC7A1/CAT1 enhances cellular susceptibility to BLV infection on luminescence syncytium induction assay (LuSIA) / H. Sato, L. Bai, L. Borjigin et al. // Virol. J. - 2020. - Vol. 17 (1).

213. Schwartz, I. In vivo leukocyte tropism of bovine leukemia virus in sheep and

cattle / I. Schwartz, A. Bensaid, B. Polack // J. Virol. - 1994. - Vol. 68. - P. 4589-4596.

214. Schwartz, I. Pathobiology of bovine leukemia virus / I. Schwartz, D. Levy // Vet. Res. - 1994. - Vol. 25. - P. 521-536.

215. Selim, A. Seroprevalence of bovine leukemia virus in cattle, buffalo, and camel in Egypt / A. Selim, M.A. Marawan, A.F. Ali et al. // Trop Anim Health Prod. -2020. - Vol. 52. - P. 1207-1210.

216. Shirai, T. Molecular cloning of bovine lymphocyte activation gene-3 and its expression characteristics in bovine leukemia virus-infected cattle / T. Shirai et al. // Vet. Immunol. Immunopathol. - 2011. - Vol. 144. - P. 462-467.

217. Solovjov, D.A. Distinct roles for the alpha and beta subunits in the functions of integrin alphaMbeta2 / D.A. Solovjov, E. Pluskota, E.F. Plow // J. Biol. Chem.- 2005.

- Vol. 280. - P. 1336-1345.

218. Somura, Y. Comparison of the copy numbers of bovine leukemia virus in the lymph nodes of cattle with enzootic bovine leukosis and cattle with latent infection // Y. Somura, E. Sugiyama, H. Fujikawa, K. Murakami // Arch. Virol. - 2014. - № 159 (10).

- P. 2693-2697.

219. Sordillo, L.M. Altered interleukin-2 production by lymphocyte populations from bovine leukemia virusinfected cattle / L.M. Sordillo, C.R. Hicks, G.M. Pighetti // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. Soc. Exp. Biol. Med.- 1994. - Vol. 207. - P. 268-273.

220. Stock, N. Replicating C-type virus in phytohemagglutinin-treated buffy-coat cultures of bovine origin / N. Stock, J. Ferrer // J Natl Cancer Inst.- 1972. - № 48 (4). -P. 985-996.

221. Stone, D.M. CD4 T lymphocyte activation in BLV-induced persistent B lymphocytosis in cattle / D.M. Stone, L.K. Norton, J.C. Chambers // Clin. Immunol. -2000. - Vol. 96. - P. 280-288.

222. Stone, D.M. Up-regulation of IL-2 receptor alpha and MHC class II expression on lymphocyte subpopulations from bovine leukemia virus infected lymphocytotic cows / D.M. Stone, A.J. Hof, W.C. Davis // Vet. Immunol. Immunopathol.

- 1995. - Vol. 48. - P. 65-76.

223. Stott, M.L. Integrated bovine leukosis proviral DNA in T helper and T

cytotoxic/suppressor lymphocytes / M.L. Stott, M.C. Thurmond, S.J. Dunn // J. Gen. Virol. - 1991. - Vol. 72. - P. 307-315.

224. Suzuki, A. Phylogenetic Analysis of South African Bovine Leukaemia Virus (BLV) Isolates / A. Suzuki et al. // Viruses. - 2020. - № 12 (8). - P. 898.

225. Suzuki, S. Expression analysis of Foxp3 in T cells from bovine leukemia virus infected cattle / S. Suzuki, S. Konnai, T. Okagawa // Microbiol. Immunol. - 2013.

- Vol. 57. - P. 600-604.

226. Tajima, S. A mutant form of the tax protein of bovine leukemia virus (BLV), with enhanced transactivation activity, increases expression and propagation of BLV in vitro but not in vivo / S. Tajima, M. Takahashi, S.N. Takeshima // J. Virol. - 2003. - Vol. 77. - P. 1894-1903.

227. Tajima, S. Mutant tax protein from bovine leukemia virus with enhanced ability to activate the expression of c-fos / S. Tajima, Y. Aida // J. Virol. - 2002. - Vol. 76. - P. 2557-2562.

228. Takahashi, M. Ex vivo survival of peripheral blood mononuclear cells in sheep induced by bovine leukemia virus (BLV) mainly occurs in CD5- B cells that express BLV / M. Takahashi, S. Tajima, S.N. Takeshima // Microbes Infect. - 2004. - № 6. - P. 584-595.

229. Takahashi, M. Involvement of bovine leukemia virus in induction and inhibition of apoptosis / M. Takahashi, S. Tajima, K. Okada // Microbes Infect. - 2005. -№ 7. - P. 19-28.

230. Teutsch, M.R. Aberrant expression of immunoglobulin mRNA in bovine leukemia virus-infected cattle / M.R. Teutsch, H.A. Lewin // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1996. - № 53. - P. 87-94.

231. Thompson-Crispi, K.A. Incidence rates of clinical mastitis among Canadian Holsteins classified as high, average, or low immune responders / K.A. Thompson-Crispi, F. Miglior, B.A. Mallard // Clin. Vaccine Immunol. - 2013. - Vol. 20. - P. 106-112.

232. Tîrziu, E. Performance assessment of three tests applied in enzootic bovine leukosis diagnosis / E. Tîrziu, C. Cumpänäsoiu, I. Nichita et al. // Rom Biotechnol Lett.

- 2014. - № 19 (5). - P. 9666-9677.

233. Trainin, Z. Detrimental effect of bovine leukemia virus (BLV) on the immunological state of cattle / Z. Trainin, J. Brenner, R. Meirom // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1996. - Vol. 54. - P. 293-302.

234. Trainin, Z. IgG and IgM antibodies in normal and leukaemic cattle / Z. Trainin, H. Ungar-Waron, R. Meirom // J. Comp. Pathol. - 1976. - Vol. 86. - P. 571580.

235. Trono, K.G. Seroprevalence of bovine leukemia virus in dairy cattle in Argentina: Comparison of sensitivity and specificity of dierent detection methods / K.G. Trono, D.M. Perez-Filgueira, S. Duy et al. // Vet. Microbiol. - 2001. - Vol. 83. - P. 235248.

236. Trueblood, E.S. B-lymphocyte proliferation during bovine leukemia virus-induced persistent lymphocytosis is enhanced by Tlymphocyte - derived interleukin-2 / E.S. Trueblood, W.C. Brown, G.H. Palmer // J. Virol. - 1998. - Vol. 72. - P. 3169-3177.

237. Van den Broeke, A. Cytotoxic responses to BLV tax oncoprotein do not prevent leukemogenesis in sheep / A. Van den Broeke, M. Oumouna, T. Beskorwayne et al. // Leuk Res. - 2010. - № 34(12). - P. 1663-1669. Van den Broeke, A. Cytotoxic responses to BLV tax oncoprotein do not prevent leukemogenesis in sheep / A. Van den Broeke, M. Oumouna, T. Beskorwayne et al. // Leuk. Res. - 2010. - Vol. 34. - P. 16631669.

238. Van den Broeke, A. Even transcriptionally competent proviruses are silent in bovine leukemia virus-induced sheep tumor cells / A. Van den Broeke, Y. Cleuter, G. Chen // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. - 1988. - Vol. 85. - P. 9263-9267.

239. Van Der Maaten, M. Replicating type-C virus particles in monolayer cell cultures of tissues from cattle with lymphosarcoma / M. Van Der Maaten, J. Miller, A. Boothe // J. Natl Cancer Inst.- 1974. - № 52 (2). - P. 491-497.

240. Van Der Maaten, M.J. Induction of lymphoid tumors in sheep with cell-free preparations of bovine leukemia virus / M.J. Van Der Maaten, J.M. Miller // Bibliotheca haematologica. - 1975. - Vol. 43. - P. 377-379.

241. Van Der Maaten, M.J. Replication of bovine leukemia virus in monolayer cell cultures / M.J. Van Der Maaten, J.M. Miller // Bibl Haematol. - 1975. - № 43. - P. 360-362.

242. Van Driessche, B. Characterization of new RNA polymerase III and RNA polymerase II transcriptional promoters in the bovine leukemia virus genome / B. Van Driessche, A. Rodari, N. Delacourt // Sci Rep.- 2016. - № 6. - P. 31125.

243. Veri, M.C. Monoclonal antibodies capable of discriminating the human inhibitory Fcgamma-receptor IIB (CD32B) from the activating Fcgamma-receptor IIA (CD32A): biochemical, biological and functional characterization / M.C. Veri, S. Gorlatov, H. Li // Immunology. - 2007. - Vol. 121. - P. 392-404.

244. Villalobos-Cortés, A. Nested polymerase chain reaction (nPCR) based diagnosis of bovine leukemia virus in Panama / A. Villalobos-Cortés, S. Franco, R. Gonzalez et al. // Afr J Biotechnol. - 2017. - № 16 (11). P. 528-535.

245. Virchow R. Weisses Blut. Frorieps Notiz. Nov., 1845. [https://catalogue.bnf.fr/ark:/12148/cb 12206686f].

246. Vlasenko, V.S. Assessment of the impact of betulin on the immune status of cows with leukemia-associated infection / V.S. Vlasenko, V.I. Pleshakova, S.T. Bayseitov, N.A. Lescheva // KnE Life Sciences: DonAgro: International Research Conference on Challenges and Advances in Farming, Food Manufacturing, Agricultural Research and Education, Rostov-on-Don, 17-19 июня 2020 года. - Dubai, UAE: Knowledge E, 2021. - P. 693-700.

247. Vlasenko, V.S. Changes in blood chemistry values of the cattle with associative course of leukemia and brucellosis / V.S. Vlasenko, S.T. Baiseitov, V.I. Pleshakova, I.G. Alekseeva // Bio web of conferences: International Scientific-Practical Conference "Agriculture and Food Security: Technology, Innovation, Markets, Human Resources". - Kazan: EDP Sciences, 2020. - P. 00137.

248. Von, V.M. N-linked glycans with similar location in the fusion protein head modulate paramyxovirus fusion / V.M. Von, R.J. Cattaneo // Virol. - 2003. - Vol. 77. -P. 10202-10212.

249. Voneche, V. Fusogenic segments of bovine leukemia virus and simian

immunodeficiency virus are interchangeable and mediate fusion by means of oblique insertion in the lipid bilayer of their target cells / V. Voneche, D. Portetelle, R. Kettmann et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1992. - Vol. 89. - P. 3810-3814.

250. Walsh, R.B. Evaluation of enzymelinked immunosorbent assays performed on milk and serum samples for detection of neosporosis and leukosis in lactating dairy cows / R.B. Walsh, D.F. Kelton, S.K. Hietala et al. // Can Vet J. - 2013. - № 54 (4). - P. 347-52.

251. Wang, M. Molecular epidemiology and characterization of bovine leukemia virus in domestic yaks (Bos grunniens on the Qinghai-Tibet Plateau) / M. Wang, Y. Wang, A.R. Baloch et al. // China. Arch. Virol. - 2018. - Vol. 163. - P. 659-670.

252. Watanuki, S. Visualizing bovine leukemia virus (BLV)-infected cells and measuring BLV proviral loads in the milk of BLV seropositive dams / S. Watanuki, Sn. Takeshima, L. Borjigin et al. // Vet Res. - 2019. - № 50 (1).

253. Wei, X. Antibody neutralization and escape by HIV-1 / X. Wei, J.M. Decker, S. Wang et al. // Nature. - 2003. - Vol. 422. - P. 307-312.

254. Werling, D. Analysis of the phenotype and phagocytic activity of monocytes/macrophages from cattle infected with the bovine leukaemia virus / D. Werling, C.J. Howard, E. Niederer // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1998. - Vol. 62. -P. 185-195.

255. Willems, L. Attenuation of bovine leukemia virus by deletion of R3 and G4 open reading frames / L. Willems, P. Kerkhofs, F. Dequiedt // Proc Natl Acad Sci USA. - 1994. - Vol. 91. - P. 11532-11536.

256. Willems, L. Bovine leukemia virus, an animal model for the study of intrastrain variability / L. Willems, E. Thienpont, P. Kerkhofs et al. // J. Virol. - 1993. -Vol. 67. - P. 1086-1089.

257. Willems, L. In vivo infection of sheep by bovine leukemia virus mutants / L. Willems, R. Kettmann, F. Dequiedt // J. Virol. - 1993. - Vol. 67. - P. 4078-4085.

258. Willems, L. Phosphorylation of bovine leukemia virus Tax protein is required for in vitro transformation but not for transactivation / L. Willems, C. Grimonpont, P. Kerkhofs et al. // Oncogene. - 1998. - Vol. 16. - P. 2165-2176.

259. Willems, L. The major homology region of bovine leukaemia virus p24gag is required for virus infectivity in vivo / L. Willems, P. Kerkhofs, L. Attenelle // J. Gen Virol. - 1997. - Vol. 78. - P. 637-640.

260. Willems, L. The YXXL signalling motifs of the bovine leukemia virus transmembrane protein are required for in vivo infection and maintenance of high viral loads / L. Willems, J.S. Gatot, M. Mammerickx et al. // J. Virol. - 1995. - Vol. 69. - P. 4137-4141.

261. Williams, D.L. Molecular studies of T-lymphocytes from cattle infected with bovine leukemia virus / D.L. Williams, O. Barta, G.F. Amborski // Vet. Immunol. Immunopathol. - 1988. - Vol. 19. - P. 307-323.

262. Wittmann, W. Type C virus particles in phytohemagglutinin-stimulated spleen cell cultures from a cow with leucosis / W. Wittmann, P. Solisch // Arch Exp Veterinarmed. - 1972. - № 26 (1). - P. 111-114.

263. Wo, D. In vivo transcription of bovine leukemia virus and bovine immunodeficiency-like virus / D. Wo, K. Murakami et al. // Virus Research - 2003 - Vol. 7 - P. 81.

264. Yang, Y. First Molecular Characterization of Bovine Leukemia Virus Infections in the Caribbean / Y. Yang, P.J. Kelly, J. Bai, R. Zhang, C. Wang // PLoS One. - 2016. - № 11 (12).

265. Yoshinaka, Y. Bovine leukemia virus protease: Purification, chemical analysis, and in vitro processing of gag precursor polyproteins / Y. Yoshinaka, I. Katoh, T.D. Copeland // J. Virol. - 1986. - Vol. 57. - P. 826-832.

266. Yu, C. Genotyping bovine leukemia virus in dairy cattle of Heilongjiang, northeastern China / C. Yu, X. Wang, Y. Zhou // BMC Vet. Res. - 2019. - Vol. 15. - P. 179.

267. Zarkik, S. Comparative processing of bovine leukemia virus envelope glycoprotein gp72 by subtilisin/kexin-like mammalian convertases / S. Zarkik, E. Decroly, R. Wattiez // FEBS Lett. - 1997. - Vol. 406. - P. 205-210.

268. Zarkik, S. Fusion of bovine leukemia virus with target cells monitored by R18 fluorescence and PCR assays / S. Zarkik, F. Defrise-Quertain, D. Portetelle // J. Virol.

- 1997. - Vol. 71. - P. 738-740.

269. Zavorotinskaya, T. Suppression of a fusion defect by second site mutations in the ecotropic murine leukemia virus surface protein / T. Zavorotinskaya, L.M. Albritton // J Virol. - 1999. - Vol. 73. - P. 5034-5042.

270. Zhao, X. Natural genetic variations in bovine leukemia virus envelope gene: possible effects of selection and escape / X. Zhao, G.C. Buehring // Virology. - 2007. -Vol. 366. - P. 150-165.

271. Абакин, С. С. Новые подходы в диагностике и оздоровлении стад от вирусов лейкоза и иммунодефицита крупного рогатого скота / С. С. Абакин, С. В. Криворучко // Ветеринарная патология. - 2013. - № 1(43). - С. 36-39.

272. Алипер, Т.И. Актуальные инфекционные болезни крупного рогатого скота: Руководство / Т.И. Алипер, L. Saif, А.Н. Панин и др. - Москва: ЗооВетКнига, 2021. - 832 с.

273. Байсеитов, С.Т. Сравнительная оценка диагностической эффективности РИД, ИФА и РНИФ при лейкозе крупного рогатого скота / С.Т. Байсеитов, Н.Н. Новикова, В.С. Власенко и др. // Вестник Омского государственного аграрного университета. - 2020. - № 1 (37). - С. 97-102.

274. Безбородова, Н.А. Полимеразная цепная реакция в диагностике латентных, бессимптомных и хронических форм инфекционных заболеваний крупного рогатого скота / Н.А. Безбородова, В.В. Кожуховская, М.В. Петропавловский, О.Г. Томских // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - № 4. - 2019. - C. 30-34.

275. Бурба, Л.Г. Диагностика лейкозов сельскохозяйственных животных / Л.Г. Бурба, А.А. Кунаков. - М.: Колос. - 1983 - 190 с.

276. Бурба, Л.Г. Лейкозы и злокачественные опухоли животных / Л.Г. Бурба, А.Ф. Вахилов, В.А. Горбатов. - М.: Агропромиздат. - 1988. - 399 с.

277. Бусол В.А. Лейкоз сельскохозяйственных животных / В.А. Бусол [и др.]. - К.: Урожай, 1988. - 264 с.

278. Валихов А.Ф. Лейкоз крупного рогатого скота: контроль и профилактика болезни / А.Ф. Валихов // Молочная промышленность, 2018. - № 9.

- С. 74-77.

279. Вангели, С.В. Методы диагностики лейкоза крупного рогатого скота / С.В. Вангели // Wschodnioeuropejskie Czasopismo Naukowe (East European Scientific Journal). Nauki veterinarni. - 2016. - № 8. - С. 91-94.

280. Вангели, С.В. Сравнительная ультраструктурная характеристика культур клеток, хронически инфицированных вирусом лейкоза крупного рогатого скота: автореф. дис. ... канд. вет. наук: 06.02.02 / С.В. Вангели. - 2015 - 121 с.

281. Васильев, Д.А. Вирусология: курс лекций для студентов факультета ветеринарной медицины и биотехнологии направления подготовки 36.03.01 (111900.62) - ВСЭ [Электронный ресурс] / Д. А. Васильев, В. Ю. Луговцев, Н. И. Молофеева. - Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2016. - 189 с. - URL: http://lib.ugsha.ru:8080/handle/123456789/205 (дата обращения 10.12.2020).

282. Васильев, Н.И. Лейкозы сельскохозяйственных животных / Н.И. Васильев, Н.В. Румянцев. - Москва: Колос. - 1975. - 304 с.

283. Васильев, Н.И. Лейкозы сельскохозяйственных животных / Н.И. Васильев, Н.В. Румянцев, В.З. Черных. - Москва: Колос. - 1966. - 302 с.

284. Ветеринарные правила осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов лейкоза крупного рогатого скота (утв. МСХ РФ 24.03.2021, .№ 156. Зарегистрировано в Минюсте РФ 29 апреля 2021 г. .№63300). [Электронный ресурс] - URL: https://docs.cntd.ru/document/603433105

285. Виноградова, И.В. Геногеографические исследования вируса лейкоза крупного рогатого скота / И.В. Виноградова, Е.А. Гладырь, Н.В. Ковалюк, М.В. Петропавловский и др. // Достижения науки и техники АПК. - 2011. - № 10. - С. 34-37.

286. Власенко, В.С. Методы диагностики и оценки предрасположенности молодняка крупного рогатого скота к инфицированию вирусом лейкоза: Методические рекомендации / В.С. Власенко, Е.А. Вишневский, Н.Н. Новикова и др.- Омск, 2021. - 22 с.

287. Власенко, В.С. Эпизоотическое районирование территории Омской области по распространенности лейкоза крупного рогатого скота / В.С. Власенко, Е.С. Борисов, Е.А. Вишневский, Т.С. Дудоладова // Вестник Омского государственного аграрного университета. - 2020. - № 2(38). - С. 131-137.

288. Генджиев, А. Я. Молекулярно-генетический контроль при лейкозе крупного рогатого скота в системе оздоровительных мероприятий скотоводческих хозяйств Калмыкии: автореф. дис. ... канд. вет. наук: 06.02.02 / А.Я. Генджиев. -2019. - 26 с.

289. Гильманов, Х.Х. Генотипическая принадлежность изолятов вируса бычьего лейкоза, циркулирующих в популяциях крупного рогатого скота Республики Татарстан / Х.Х. Гильманов, Р.Р. Вафин, А.Ю. Шаева и др. // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. - 2018. - Т. 235. - № 3. - С. 34-40.

290. Глазунов, Ю.В. Система мероприятий при лейкозе крупного рогатого скота в Тюменской области: Методические указания / Ю.В. Глазунов, С.В. Деркач, И.М. Донник и др. - Тюмень: ООО «Делс», 2008. - 45 с.

291. Гулюкин, М. И. Распространение лейкоза крупного рогатого скота и генетические варианты возбудителя на территории животноводческих хозяйств Центрального федерального округа Российской Федерации / М. И. Гулюкин, Н. Г. Козырева // Ветеринария Кубани. - 2017. - № 6. - С. 4-9.

292. Гулюкин, М.И Система мероприятий оздоровления крупного рогатого скота от лейкоза в Уральском Федеральном Округе: Научные рекомендации. / М.И. Гулюкин, С.В. Деркач, И.М. Донник и др. - Екатеринбург. - Уральское издательство, 2008. - 66 с.

293. Гулюкин, М.И. Алиментарное заражение кроликов вирусом лейкоза крупного рогатого скота / М.И. Гулюкин, Н.Г. Козырева, Л.А. Иванова и др. // Материалы международного агробиотехнологического симпозиума, посвященного 80-летию члена-корреспондента РАН, заслуженного деятеля науки РФ Сочнева В.В. - 2016. - С. 19-25.

294. Гулюкин, М.И. Генетический полиморфизм вируса лейкоза крупного

рогатого скота на территории Российской Федерации / М.И. Гулюкин и др. // Российская сельскохозяйственная наука. - 2016. - № 5. - С. 56-59.

295. Гулюкин, М.И. Кинетические и вирусологические аспекты лимфолейкоза крупного рогатого скота: автореф. дис. ... д-ра вет. наук: 16.00.03 / М.И. Гулюкин. - 1993. - 50 с.

296. Гулюкин, М.И. Межвидовая передача вируса лейкоза крупного рогатого скота в эксперименте / М.И. Гулюкин, Н.Г. Козырева, Л.А. Иванова и др. // Вопросы вирусологии. - 2015. - Т. 60. - № 5. - С. 32-37.

297. Гулюкин, М.И. Методологическая система оздоровительных мероприятий при лейкозе крупного рогатого скота: Научно-практические рекомендации / М.И. Гулюкин, И.М. Донник, А.Т. Татарчук и др. -Екатеринбург.

- Уральское издательство, 2007. - 224 с.

298. Гулюкин, М.И. Морфологическая и функциональная характеристика лимфоцитов крови здорового и больного гемобластозами крупного рогатого скота: автореф. дис. ... канд. вет. наук: 16.00.02 / М.И. Гулюкин. - М., 1978. - 15 с.

299. Гулюкин, М.И. Научно-обоснованная модель противоэпизоотических мероприятий при лейкозе крупного рогатого скота / М.И. Гулюкин, А.Д. Забережный, К.П. Юров и др. // Ветеринария и кормление. - 2018. - № 1. - С. 4-7.

300. Гулюкин, М.И. Распространение и меры борьбы с лейкозом крупного рогатого скота в центральном федеральном округе / М.И. Гулюкин, Т.В. Степанова, Л.А. Иванова и др. // Ветеринария и кормление. - 2019. - № 6. - С. 8 - 14

301. Гулюкин, М.И. Система организации противолейкозных мероприятий на Среднем Урале / Гулюкин М.И., Красноперов В.А. Донник И.М. // Современные молекулярно-генетические и иммуно-физиологические подходы к ликвидации гемобластозов животных. Сборник трудов ученых. - Екатеринбург. - Уральское изд-во, 2014. - С. 98 - 108.

302. Гулюкин, М.И. Состояние и перспективы борьбы с лейкозом крупного рогатого скота / М.И. Гулюкин, Н.В. Замораева, В.А. Абрамов и др. // Ветеринария.

- 1999. - № 12. - С. 3 - 8.

303. Гуськова, Т. В. Состояние клеточного иммунитета при лейкозе

крупного рогатого скота / Т. В. Гуськова, С. Г. Лапшанков, Н. Н. Гугушвили и др. // Научное обеспечение агропромышленного комплекса. Сборник статей по материалам Х Всероссийской конференции молодых ученых, посвященной 120 -летию И. С. Косенко - Краснодар: Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина, 2017. - С. 177-178.

304. Двоеглазов, Н. Г. Сравнительный анализ антигенов при выявлении антител к вирусу лейкоза методом иммуноферментного анализа у инфицированного крупного рогатого скота / Н. Г. Двоеглазов, Ю. В. Туманов, В. В. Храмцов // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. - 2007. - № 8 (176). -С. 91-94.

305. Донник, И. М. Ликвидация лейкоза крупного рогатого скота в условиях промышленного производства / И. М. Донник, О. И. Пономарева, Р. А. Кривонос и др. // Ветеринария Кубани. - 2021. - № 2. - С. 3-8.

306. Донник, И. М. Синцитиальный метод при ранней идентификации вируса лейкоза крупного рогатого скота / И. М. Донник, М.В. Петропавловский // Ветеринария Кубани. - 2015. - № 4. - С. 8-10.

307. Донник, И. М. Характеристика молекулярно-генетической структуры вируса лейкоза, циркулирующего в популяции крупного рогатого скота в разных регионах РФ / И.М. Донник // Аграрный вестник Урала. - 2012. - № 10-2(105). - С. 14-17.

308. Донник, И.М. Биологические особенности и устойчивость к лейкозу крупного рогатого скота в различных экологических условиях Урала: дисс. ... д-ра биол. наук: 06.02.01, 16.00.03 / Ирина Михайловна Донник. - Екатеринбург, 1997. - 382 с.

309. Донник, И.М. Биологические особенности и устойчивость к лейкозу крупного рогатого скота в различных экологических условиях Урала: автореферат дис. ... д-ра биол. наук: 06.02.01, 16.00.03 / И.М. Донник. - Свердловская НИВС. -Новосибирск, 1997. - 48 с.

310. Донник, И.М. Генотипическое разнообразие вируса лейкоза крупного рогатого скота, циркулирующего в популяции животных из разных регионов

России / И.М. Донник, А.Т. Татарчук, М.В. Петропавловский // Сборник материалов Всероссийской научно-практической конференции молодых ученых и специалистов. - Уральское издательство, Екатеринбург, 2013. - С. 54 - 59.

311. Донник, И.М. Изучение селективных подходов к созданию резистентного к вирусу лейкоза крупного рогатого скота стада / И.М. Донник, А.Т. Татарчук, А.В. Лысов // Современные молекулярно-генетические и иммуно-физиологические подходы к ликвидации гемобластозов животных. Сборник трудов ученых. - Екатеринбург. -Уральское изд-во, 2014. - С. 138-142.

312. Донник, И.М. Инновационные разработки ФГБНУ Уральский НИВИ в контексте поиска наиболее эффективных подходов при ранней диагностике вируса лейкоза крупного рогатого скота / И.М. Донник, А.Т. Татарчук, М.В. Петропавловский // Эколого-биологические проблемы использования природных ресурсов в сельском хозяйстве: Сборник материалов Международной научно-практической конференции молодых ученых и специалистов. -Екатеринбург, Уральское издательство. - 2015. - 319 с. - С. 222-226.

313. Донник, И.М. К вопросу вакцинопрофилактики лейкоза крупного рогатого скота / И.М. Донник, М.И. Гулюкин, А.С. Кривоногова, М.В. Петропавловский, А.Г. Исаева, А.М. Коваленко // Ветеринария Кубани. - 2020. -№ 1. - С. 3-6.

314. Донник, И.М. Качественная характеристика молозива здорового и инфицированного вирусом лейкоза поголовья коров / И.М. Донник, М.В. Петропавловский // Ветеринария Кубани. - 2015. - № 2. - С. 15-16.

315. Донник, И.М. Лейкоз крупного рогатого скота в Курганской области, анализ ситуации и причины распространения / И.М. Донник, А.Т. Татарчук, Л.В. Халтурина, М.В. Петропавловский / Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2015. - №2. - С. 39-42.

316. Донник, И.М. Методы лабораторной диагностики лейкоза: Учебное пособие / И.М. Донник, И.А. Шкуратова, А.С. Кривоногова, М.В. Петропавловский и др. - Екатеринбург: Уральский государственный аграрный университет, 2015. -48 с.

317. Донник, И.М. Оценка эффективности реализации Уральской системы противолейкозных мероприятий в Тюменской области / И.М. Донник, М.В. Петропавловский, А.В. Лысов, С.Ю. Палагин, А.Г. Исаева А.С. Кривоногова, А.С. Романова // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - № 4. - 2019. - С. 34-40.

318. Донник, И.М. Результативность комплексных мероприятий борьбы с лейкозом крупного рогатого скота на Среднем Урале / И.М. Донник, И.А. Шкуратова, А.Т. Татарчук, А.В. Лысов, М.В. Петропавловский, В.А. Красноперов // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2015. - № 2. -С. 42-46.

319. Донник, И.М. Сравнительная оценка эффективности синцитиального метода диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота / И.М. Донник, М.В. Петропавловский, И.В. Рябухин // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2016. - № 3. - С. 63-68.

320. Донник, И.М. Тест-система для ПЦР-диагностики лейкоза крупного рогатого скота: Методические указания / И.М. Донник, А.Ю. Маркарян, И.А. Шкуратова и др. - Екатеринбург. - Уральское издательство, 2013. - 13 с.

321. Донник, И.М. Технология ранней диагностики лейкоза крупного рогатого скота на основе синцитиального теста / И.М. Донник, М.В. Петропавловский, Ю.Я. Хрунык и др. // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2016. - № 4. - С. 57-61.

322. Донник, И.М. Уральская система оздоровительных противолейкозных мероприятий / И.М. Донник, А.Т. Татарчук, В.А. Красноперов. - Екатеринбург: Издательство «Екатеринбург», 1996. - 52 с.

323. Донник, И.М. Цитогенетические и протеомные подходы к поиску маркеров лейкоза крупного рогатого скота / И.М. Донник, О.В. Трофимов, И.В. Пак и др. // Ветеринария. - 2012. - № 2. - С. 26 - 29.

324. Донник, И.М. Экспериментальные данные по эффективности диагностических исследований на ранних стадиях вирусоносительства вируса лейкоза крупного крупного рогатого скота: Научные рекомендации / И. М. Донник,

И.А. Шкуратова, А.Т. Татарчук, А.Ю. Маркарян, А.В. Лысов, М.В. Петропавловский, М.П. Михеев, Ю.Я. Хрунык - Екатеринбург. -Уральское издательство, 2011. - 26 с.

325. Донник, И.М. Эффективная система мер борьбы с лейкозом крупного рогатого скота на Среднем Урале / И.М. Донник, И.А. Шкуратова, А.Т. Татарчук, А.В. Лысов, М.В. Петропавловский // Ветеринария. - Москва. - 2014. - № 10. - С. 7-12.

326. Забережный, А.Д. Современная таксономия вирусов / А.Д. Забережный, Л.В. Костина, А.Г. Южаков и др. // Ветеринария и кормление. - 2017. - № 1. - С. 4.

327. Коваленко, А.М. Ранняя диагностика инфицированных вирусом лейкоза крупного рогатого скота животных - залог успешного оздоровления хозяйства / А.М. Коваленко, Н.В. Явников, М.В. Петропавловский и др. // Ветеринария Кубани. - 2020. - № 6. - С. 8-12.

328. Козлов, Н.А. Изменения в печени крупного рогатого скота при разных формах лейкоза / Н.А. Козлов // Ветеринария. - 1968. - С. 30-32.

329. Козырева, Н.Г. Мониторинг эпизоотической ситуации и применение молекулярно-генетической диагностики в оздоровительных мероприятиях при лейкозе крупного рогатого скота / Н.Г. Козырева, Л.А. Иванова, Т.В. Степанова, М.И. Гулюкин // Животноводство и кормопроизводство, 2014. - № 1. - С. 47-51.

330. Коромыслов, Г.Ф. Биохимическая характеристика патогенеза лейкозов крупного рогатого скота: автореф. дис. ... д-ра биол. наук: 03.00.04 / Г.Ф. Коромыслов - М., 1975. - 44 с.

331. Кривоногова, А.С. Динамика оздоровления популяции крупного рогатого скота от ВЛ КРС в агроценозах контаминированных тяжелыми металлами и радионуклидами / А.С. Кривоногова, А.Г. Исаева, М.В. Петропавловский, Е.Н. Беспамятных // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. -2018. - № 4. - С. 82-85.

332. Кривоногова, А.С. Теоретическое обоснование и разработка системы получения качественной продукции молочного животноводства в регионе с

комбинированным техногенным загрязнением: дисс. . д-ра биол. наук: 06.02.05 / Анна Сергеевна Кривоногова. - Москва, 2017. - 247 с.

333. Кудрявцева, Т.П. Лейкоз животных / Т.П. Кудрявцева. - Москва: Россельхозиздат, 1980. - 158 с.

334. Кужебаева, У.Ж. Эпизоотическое районирование Западно-Казахстанской области по инфицированности лейкозом крупного рогатого скота / У.Ж. Кужебаева, В.С. Власенко, Ж.К. Кошеметов и др. // Фундаментальные и прикладные аспекты ветеринарной медицины на границе веков: Сборник материалов международной конференции, посвященной 100-летию СибНИВИ-ВНИИБТЖ. - Омск, 2021. - С. 230-237.

335. Кузнецова, Т. В. Технический регламент ТС "О безопасности молока и молочной продукции" и экономические аспекты его реализации молочнымитоваропроизводителями России / Т. В. Кузнецова, А. А. Кузнецов, С. В. Кириллова // Агропродовольственная политика России. - 2015. - № 12 (48). - С. 3538.

336. Лысов, А.В. Система индивидуальных ветеринарных и зоотехнических мероприятий по оздоровлению неблагополучных хозяйств от лейкоза крупного рогатого скота на примере Тюменской области / А.В Лысов, М.В. Петропавловский, А.С. Кривоногова, И.М. Донник // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2017. - № 3. - С. 40-43.

337. Львов, Д.К. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Руководство по вирусологии / Д.К. Львов, К.П. Алексеев, Л.М. Алимбарова и др. -Москва: Издательство "Медицинское информационное агентство", 2013. - 1200 с.

338. Магер, С.Н. Лейкоз крупного рогатого скота / С.Н. Магер, В.В. Храмцов, П.Н. Смирнов, В.В. Смирнова, В.В. Разумовская, О.Н. Паршина. -Новосибирск: Издательство НГАУ. ГНУ ИЭСВСиДВ, 2005. - 160 с.

339. Макаров, В.В. Лейкоз крупного рогатого скота / В. В. Макаров // Российский ветеринарный журнал. - 2020. - № 2 (6). - С. 18-26.

340. Мищенко, В.А. Проблема лейкоза у крупного рогатого скота в Российской Федерации / В. А. Мищенко, О. Н. Петрова, А. К. Караулов, А. В.

Мищенко // БИО. - 2018. - № 3 (210). - С. 26-31.

341. Никитин, И. Н. Организация и экономика ветеринарного дела : учебник [Электронный ресурс] / И. Н. Никитин // 2014. - URL: https://e.lanbook.com/book/44760 (дата обращения: 09.8.2021).

342. Никитин, М. А. Циркулирующие иммунные комплексы с провирусной ДНК при лейкозе коров / М. А. Никитин, Ф. Ф. Зиннатов, Т. Р. Якупов // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2020. - № 4. - С. 47-49.

343. Петропавловский, М.В. Актуальность поиска методологических подходов ранней диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота /М.В. Петропавловский, И.М. Донник // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. - 2016. - № 4. - С. 62-65.

344. Петропавловский, М.В. Идентификация вирусоносителей лейкоза крупного рогатого скота комплексными методами диагностики на оздоровленных сельскохозяйственных предприятиях / М.В. Петропавловский // Эколого-биологические проблемы использования природных ресурсов в сельском хозяйстве: Матер. Междунар. научно-практ. конф. молодых ученых и специалистов. ФГБНУ "Уральский научно-исследовательский ветеринарный институт", ФГБНУ "Уральский научно-исследовательский институт сельского хозяйства". - 2017. - С. 308-312.

345. Петропавловский, М.В. Изучение диагностической ценности синцитиального метода при идентификации возбудителя ВЛКРС на ранних этапах инфицирования / М.В. Петропавловский // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. -2015. - № 2. - С. 60-63.

346. Петропавловский, М.В. Лейкоз крупного рогатого скота / М.В. Петропавловский, Н.В. Батенева, В.Н. Афонюшкин, А.В. Лысов // БИО. - № 6 (225). - 2019. - С. 30-33.

347. Петропавловский, М.В. Опыт применения полимеразной цепной реакции при диагностике вируса лейкоза крупного рогатого скота и ее эффективность на разных этапах проведения оздоровительных мероприятий / М.В. Петропавловский, Н.А. Безбородова, А.С. Романова и др. // Аграрный вестник

Урала. - 2019. - № 12 (191). - С. 52-59.

348. Петропавловский, М.В. Особенности динамики лейкоза крупного рогатого скота в Курганской области / М.В. Петропавловский, Л.В. Халтурина // Труды Всероссийского НИИ экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко.