Механизмы участия токоферола в адаптивных преобразованиях на холоде тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, доктор биологических наук Колосова, Наталия Гориславовна
Колосова, Наталия Гориславовна
доктор биологических наук
2000
- Специальность ВАК РФ03.00.13
- Количество страниц 276
Оглавление диссертации доктор биологических наук Колосова, Наталия Гориславовна
Список сокращений.
Введение.
Глава 1. Обзор литературы.
1.1. Генерация активных форм кислорода и процессы перекисного окисления липидов как модификаторы структурно-функционального состояния биологических мембран.
1.2.Процессы перекисного окисления липидов и факторы антиоксидантной защиты при стрессе и адаптации.
1.2.1.Являются ли процессы ПОЛ коррелятами стресса?.
1.2.2.Механизмы активации антиоксидантных систем при неблагоприятных воздействиях среды.
1.3 .Механизмы защитных эффектов токоферола.
1.3.1.Токоферол как универсальный антиоксидант и регулятор функций биологических мембран.
1.3.2.Влияние токоферола на состояние генетического аппарата.
1.3.3.Антиоксиданты и центральные механизмы регуляции.
1.3.4. Токоферол и нейроэндокринные механизмы регуляции.
1.3.5. Токоферол и некоторые показатели активности системы мононуклеарных фагоцитов.
1.3.6.Токоферол и реакция организма на холод.
Глава 2. Материалы и методы исследования.
2.1. Животные и методы воздействия на них.
2.1.1.Длительная адаптация к холоду.
2.1.2.Ускоренная адаптация к холоду.
2.2. Методики исследования.
2.2.1.Определение продуктов ПОЛ и токоферола.
2.2.2.Выделение и полярографические исследования митохондрий печени.
2.2.2.Измерение трансмембранных электрических потенциалов тимоцитов, лейкоцитов и митохондий печени.
2.2.4.Определение вязкости липидов мембран и состояния в них белок-липидных взаимодействий.
2.2.5.Получение тимоцитов и лейкоцитов крови.
2.2.6.Выделение микросом и оценка их функционального состояния.
2.2.7.Содержание восстановленного глутатиона, активность НАДФН-зависимых глутатионредуктазы, глутатионпероксидазы и супероксиддисмутазы.
2.2.8. Исследования кортикостероидов.
2.2.9.Выделение ядер, фракций хроматина и ядерного матриксаиз печени.
2.3 .Реактивы.
2.4.Статистическая обработка результатов.
Глава 3. Токоферол в процессах длительной адаптации к холоду.
3.1 .Температура тела животных.*.
3.2.Содержание кортикостерона в плазме крови животных.
3.3. Изменения массы тела, бурой жировой ткани и тимуса животных.
3.4.Активность перекисного окисления липидов и факторы антиоксидантной защиты при длительном воздействии холода.
3.4.¡.Содержание продуктов ПОЛ в тканях.
3.4.2. С о держание токоферола в тканях животных.
3.4.3.Показатели активности глутатионзависимых факторов антиоксидантной защиты.
3.5. Токоферол и структурно-функциональные перестройки мембран при длительном воздействии холода.
3.5.1. Структурно-функциональное состояние микросом печени при длительном воздействии холода.
3.5.2. Функциональные характеристики митохондрий при длительном воздействии холода.
3.5.3.Физико-химическое состояние мембран митохондрий печени.
3.5.4.0бсуждение раздела 3.5.
3.6.Трансмембранный потенциал и физико-химические характеристики мембран тимоцитов и лейкоцитов как маркеры адаптивных перестроек при действии холода.
3.6.1.Сравнение изменений трансмембранных потенциалов тимоцитов, лейкоцитов и митохондрий печени в различные сроки пребывания на холоде.
3.6.2.Исследование физико-химических характеристик мембран тимоцитов.
Резюме главы 3.
Глава 4. Токоферол и процессы перекисного окисления липидов при ускоренной адаптации к холоду.
4.1.Температура тела животных и содержание кортикостерона в крови крыс при ускоренной адаптации к холоду.
4.2. Токоферол и процессы перекисного окисления липидов в мозге и периферических тканях крыс при ускоренной адаптации к холоду.
4.3. Структурно-функциональные характеристики мембран тимоцитов крыс при ускоренной адаптации к холоду.
4.4.Анализ связи между активностью коры надпочечников, эффективностью формирования адаптивных навыков и показателями активности процессов ПОЛ при ускоренной адаптации к холоду.
4.5. Токоферол, активность ПОЛ и физико-химические характеристики мембран тимоцитов при действии холода в условиях воздействия на бензодиазепинэргическую систему.
4.5.1. Влияние диазепама на состояние процессов ПОЛ в мозге и прериферических тканях крыс в условиях воздействия холода.
4.5.2.Влияние диазепама на структурно-функциональные характеристики мембран тимоцитов в условиях воздействия холода.
Резюме главы 4.
Глава 5. Исследование участия кортикостероидов и адреналина в регуляции процессов ПОЛ.
5.1. Анализ связи между показателями активности ПОЛ и уровнем глюкокортикоидов в крови людей в экстремальных ситуациях, связанных с воздействием холода.
5.1.1.Обследование пловцов - участников соревнований Ассоциации зимнего плавания.
5.1.2. Обследования участников трансарктического перехода.
5.1.3. Связь между суточными и сезонными колебаниями уровней продуктов ПОЛ и глюкокортикоидов у жителей Заполярья.
5.2. Исследование роли глюкокортикоидов и адреналина в стрессорной мобилизации факторов антиоксидантной защиты.
5.2.1. Влияние адреналина на содержание продуктов ПОЛ и токоферола в тканях контрольных и получавших токоферол крыс.
5.2.2. Влияние дексаметазона на содержание продуктов ПОЛ и токоферола в тканях контрольных и получавших токоферол крыс.
5.2.3. Активация ПОЛ как одна из причин нарушений структуры мембран и снижения стресс-устойчивости при адреналэктомии и их коррекция с помощью токоферола.
Резюме главы 5.!.
Глава 6. Исследование некоторых механизмов влияния токоферола на процесс адаптации к холоду.
6.1. Влияние токоферола на устойчивость контрольных и адаптированных к холоду крыс к острому охлаждению.
6.2. Влияние токоферола на активность перекисного окисления липидов и некоторые физико-химические характеристики мембран крыс в условиях длительного воздействия холода.
6.3. Влияние токоферола на структурно-функциональное состояние мембран митохондрий печени и тимоцитов крыс при действии холода.
6.4. Влияние токоферола на адренокортикальную реакцию при действии холода.
6.5. Влияние токоферола на метаболическую реакцию печени крыс на глюкокортикоиды.
6.6. Распределение токоферола по фракциям хроматина в ядрах клеток печени крыс.
Резюме главы 6.
Птва 7. Обсуждение.
7.1. Токоферол, перекисное окисление липидов и адаптивные перестройки структурно-функциональных характеристик мембран при действии холода
7.2. Возможные пути влияния токоферола на терморегуляторную функцию.
7.3. Влияние токоферола на состояние и реактивность коры надпочечников.
Выводы.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК
Биохимические механизмы антистрессорного эффекта α-токоферола1999 год, доктор биологических наук Сабурова, Анна Мухаммадиевна
Физиологические аспекты клеточно-молекулярных закономерностей адаптации животных организмов к экстремальным ситуациям2013 год, доктор биологических наук Черкесова, Дилара Улубиевна
Морфофункциональное состояние и свободнорадикальный гомеостаз щитовидной железы и надпочечников половозрелых и неполовозрелых самцов крыс при адаптации к периодическому охлаждению2009 год, кандидат биологических наук Яковенкова, Людмила Александровна
Физиологический уровень перекисного окисления липидов в гипоталамусе, больших полушариях мозга, печени и его модификация стресс-индуцирующими агентами и α-токоферолом2000 год, кандидат биологических наук Мажитова, Марина Владимировна
Исследование физиологических механизмов гипотермических состояний у млекопитающих2004 год, доктор биологических наук Мейланов, Иззет Сиражудинович
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Механизмы участия токоферола в адаптивных преобразованиях на холоде»
Актуальность проблемы. Приспособление человека и животных к температурным условиям окружающей среды - одна из важнейших проблем экологической физиологии. Её решение возможно только на основе глубокого понимания естественных механизмов резистентности к охлаждению, среди которых - адаптивные преобразования физико-химических характеристик мембран, в том числе - необходимее в условиях воздействия низких температур повышение устойчивости липидов мембран к повреждающему действию кислородных радикалов.
Биологические мембраны теплокровных, в нормальных условиях не встречающиеся с температурными сдвигами, реагируют на снижение температуры так же, как и клетки пойкилотермов - повышением непредельности липидов мембран (Крепе, 1981; Kuroshima, 1986). Такие изменения на фоне происходящей на холоде интенсификации окислительных процессов и связанного с этим усиления л генерации активированных форм кислорода (АФК: О-, Н202, НО, N0) существенно повышают вероятность активации процессов перекисного окисления липидов (ПОЛ) (Куликов и др., 1988; Buzadzic, 1992-1998; Barja de Quiroga,1992).
Активации ПОЛ на сегодня отводится роль одного из фундаментальных молекулярных механизмов патогенеза (Владимиров, Арчаков, 1972; Меерсон, 1981, 1986; Vladimirov, 1986; Floyd, 1997 и др.). Её рассматривают как неизменный атрибут и основное патогенетическое звено стресса (Меерсон, 1981,1986; Kretzschmar, 1993; Liu et al., 1996; Reinheckel et al.,1997), а продукты ПОЛ - как его корреляты (Гуляева, 1988-1991) и даже первичные медиаторы (Брехман и др., 1974, Барабой и др., 1992). Нормализацию уровня продуктов ПОЛ активно используют в качестве необходимого и достаточного критерия эффективности адаптивных преобразований (Гуляева и др., 1988; Барабой и др.,1992; Эмирбеков и др., 1998; Толстухина и др.,1999 и др.). Вместе с тем накапливается все больше фактов, свидетельствующих о том, что увеличение продуктов ПОЛ не всегда отражает развитие деструктивных изменений, так же как и слабая активация ПОЛ не всегда свидетельствует о защищенности мембранных структур (Сазонтова, Архипенко, 1997; Mataix et al., 1998). Являясь одним из естественных механизмов модификации липидного состава клеточных мембран, процессы ПОЛ участвуют в срочных адаптивных реакциях организма (Бурлакова, 1975-1998; Аврова, 1999; Suzuki et al.,1997). Постулирован свободнорадикальный механизм регуляции клеточного метаболизма мембранами, согласно которому в систему регуляции ПОЛ входят такие важнейшие свойства биологических мембран, как жирнокислотный состав, вязкость липидов, проницаемость, трансмембранные потенциалы (Бурлакова,1975-1998; Пынзарь, Пальмина,1998; 0'Brrein,1987) параметры, составляющие основу адаптивных .перестроек на холоде (Хочачка, Сомеро,1988). Изменяя их, ПОЛ опосредованно участвует в регуляции функций мембран: активности мембраносвязанных ферментов, состояния рецепторного аппарата клетки. Однако если механизму превращения ПОЛ в патогенетическое звено стресса уделяется большое внимание, вопрос о значимости для организма адаптивных, физиологических колебаний активности этих процессов разработан в меньшей степени, а проблема их связи с эффективностью терморегуляторных преобразований на холоде ранее не поднималась.
Холод традиционно рассматривается как прооксидантный фактор (Ломакина, Шугалей, 1980; Семенюк и др., 1983; Куликов и др.,1988; Kawabata, Hata,1993; Borodin et al.,1997; Теплый и др.,1997; Эмирбеков, 1998). Однако даже при действии экстремально низких температур одновременно с усилением ПОЛ происходит и активация факторов антиоксидантной защиты (Куликов и др., 1980; Capel et al.,1983; Buzadzic et al.,1992; 1997, 1998; Spasic et al., 1993; Kovacs et al., 1996; Эмирбеков и др.,1998). Механизм реализации такой активации окончательно не выяснен, но, как правило, его связывают с повышением генерации АФК и накоплением продуктов ПОЛ (Бурлакова и др., 1975; Владимиров и др., 1991; Меньшикова, Зенков, 1994). Если для изолированных клеток такой механизм очевиден, то, как показывает анализ литературы, на уровне организма прослеживается мобилизующий эффект неспецифической адаптивной реакции.
В природных адаптациях к холоду важную роль играет основной жирорастворимый антиоксидант - витамин Е, наиболее активным компонентом которого является а-токоферол. Его содержание у обитающих в холодных условиях видов и популяций животных высоко и растет с' увеличением непредельности липидов мембран (Калабухов, 1969; Ахременко, 1999). На сегодня очевидно, что роль токоферола в организме не .ограничивается предупреждением активации свободнорадикальных процессов. Модулируя физико-химические характеристики мембран, он может влиять на чувствительность клеток к регуляторным воздействиям и метаболический ответ на них (Бурлакова, 19751998). Показано влияние токоферола на генетический аппарат (Fazzio et al., 1997; Okamoto et al.,1998), на процессы пролиферации (Murelli,1989) и дифферецировки (Sohal et al., 1988), участие в функциях митохондрий (Infante, 1999), синтезе арахидоновой кислоты и простагландинов, в метаболизме нуклеиновых кислот, белков, липидов, продукции половых гормонов и др. (Thakur, Srivastava, 1996; Brigelius-Flone,1999). Токоферол обладает и свойствами, позволяющими ему оказывать непосредственное влияние на ' процесс теплообразования в митохондриях, предотвращая вызываемое различными факторами разобщение окисления и фосфорилирования (Донченко, 1983; 1988; Куница и др.,1993; Scholz et al., 1994; Lass et al., 1998) - основной источник дополнительной теплопродукции на холоде. Как подчеркивает Е.Б.Бурлакова (1998), один из ведущих специалистов в области исследования антиоксидантов, проявления биологической активности токоферола настолько разнообразны, что до сих пор окончательно не выяснены механизмы его участия в метаболизме клетки и тем более - организма.
Подобно другим антиоксидантам, токоферол рассматривают как протектор центрального действия, ограничивающий развитие стресс-реакции (Петрова и др.,1985; Меерсон, 1986; Меерсон, Пшенникова, 1988; Барабой и др.,1992). Есть свидетельства влияния токоферола на центральные регуляторные системы, на процессы обучения, памяти, когнитивную деятельность мозга (Tripathi et al.,1996;Yehuda et al., 1996). Одним из наименее ясных оказался вопрос, связанный с подавлением антиоксидантами адренокортикальной реакции при воздействии физических стрессоров, когда мобилизационные эффекты неспецифической адаптивной реакции обеспечивают сохранение гомеостаза в острой фазе воздействия и формирование долговременных механизмов адаптации. Между устойчивостью к холоду, эффективностью адаптивных преобразований при длительном его воздействии и стресс-реактивностью существует тесная связь (Мошкин, 1992). Предупреждая метаболическую. реакцию на холод (Калабухов, 1964), токоферол, по данным одних авторов, повышает устойчивость к холоду (Белогубова, Курочкина, 1974; Куликов, 1988), по данным других - не изменяет её (Обухова, 1998).
Знание механизмов включения токоферола в адаптивные преобразования на холоде наряду с фундаментальным значением имеет и прикладное: использование антиоксидантов, в том числе токоферол, в коррекции и профилактике дезадаптивных состояний, сопровождающихся активацией ПОЛ, широко распространено в практике современной медицины.
В связи с этим целью работы явился анализ роли токоферола в регуляции активности ПОЛ и в адаптивных перестройках структуры и функций мембран на холоде, их связи с эффективностью терморегуляторных преобразований и активностью коры надпочечников. В соответствии с этой целью были поставлены следующие задачи:
1. Сопоставить изменения процессов ПОЛ и содержания токоферола в тканях организма при длительной и ускоренной адаптации к холоду с эффективностью терморегуляторных преобразований.
2. На модели длительной адаптации к холоду выяснить, существует ли связь между изменениями активности ПОЛ, содержания токоферола и адаптивными преобразованиями структуры и функций мембран митохондрий и микросом печени.
3. Установить зависимость активации реакций ПОЛ от выраженности адренокортикальной реакции и эффективности формирования, адаптивных навыков при действии холода.
4. Изучить участие гормонов - адреналина и глюкокортикоидов - в мобилизации токоферола в организме.
5. .Исследовать влияние токоферола на состояние и реактивность коры надпочечников в норме и при действии холода.
6. По изменению содержания гликогена и активности тирозинаминотрансферазы выяснить возможную роль токоферола в изменении метаболической реакции клеток печени на глюкокортикоиды в условиях длительного воздействия холода.
Основные положения, выносимые на защиту
1. Оперативное перераспределение токоферола с преимущественным его накоплением в органах, вовлеченных в процесс адаптации, происходит с участием адреналина и глюкокортикоидов, обеспечивает эффективность срочной реакции на холод и адаптивных преобразований при длительной и ускоренной адаптации.
2. При длительном воздействии холода избирательное накопление токоферола в митохондриях и микросомах клеток печени сопровождает усиление их функциональной активности: активацию микросомальной монооксигеназной системы и повышение энергизации митохондрий.
3. Токоферол дозозависимо влияет на состояние коры надпочечников, увеличивает её функциональные резервы. Его предварительный прием сокращает фазу повышенной секреции глюкокортикоидов на начальном этапе воздействия, поддерживая повышенную чувствительность надпочечников к АКТГ на протяжении всего периода пребывания животных на холоде. Подобно длительной адаптации к холоду, токоферол модифицирует реакцию печени на глюкокортикоиды, сокращая период реализации метаболического ответа -активации тирозинаминотрансферазы и накопления гликогена.
4. Глюкокортикоиды оказывают постоянное модулирующее влияние на уровень продуктов ПОЛ в тканях организма за счет прямых и опосредованных факторами антиоксидантной защиты эффектов, которое усиливается в условиях напряжения адаптивных механизмов на холоде. Результатом успешных преобразований метаболизма становится формирование отрицательной связи между уровнями глюкокортикоидов и продуктов ПОЛ в крови.
Диссертация выполнена в соответствии с планом научно-исследовательских работ НИИ биохимии СО РАМН (тема: "Изучить роль адениннуклеотидтранслоказы и сывороточных липопротеинов в регуляции энергетического обмена в печени при адаптации к холоду", № гос. регистрации
01.9.10 049382) и в НИИ физиологии СО РАМН (тема: "Роль стресса и привыкания в механизмах прямой и перекрестной адаптации к холоду", № гос. регистрации 01.9.40 0 03122).
НАУЧНАЯ НОВИЗНА
Впервые установлено существование в организме механизмов оперативного перераспределения токоферола с его преимущественным накоплением в вовлеченных в адаптивную реакцию органах. Показано, что первоначальная реакция на холод характеризуется снижением содержания продуктов ПОЛ в тканях и мобилизацией факторов антиоксидантной защиты - перераспределением эндогенных запасов токоферола и активацией НАДФН-зависимых ферментов -глутатионпероксидазы и глутатионредуктазы, которая реализуется механизмами неспецифической адаптивной реакции и происходит с участием основных адаптивных гормонов - адреналина и глюкокортикоидов. Она не отменяется снижением активности ПОЛ в тканях в результате дополнительного приема токоферола.
Установлено, что периоды активации процессов ПОЛ при длительном воздействии умеренно низких температур в тех или иных органах не совпадают по времени, наблюдаются в переходный период адаптивных преобразований и связаны с напряжением метаболизма. Анализ результатов обследования людей в условиях воздействия холода и ускоренной адаптации животных показал, что накопление продуктов ПОЛ не отражает выраженность стресс-реакции, но появление отрицательной корреляционной связи между уровнями кортикостерона и продуктов ПОЛ в крови является признаком эффективных адаптивных преобразований.
Получены новые данные о том, что обеспеченность токоферолом существенно влияет на способность организма поддерживать температуру тела при длительном воздействии и эффективность формирования адаптивных' навыков при ускоренной адаптации к холоду. Токоферол вовлечен в срочные адаптивные преобразования организма на холоде: его содержание в БЖТ. возрастает с первых часов долговременной и в результате ускоренной адаптации к холоду. При ускоренной адаптации эффективность формирования терморегуляторных навыков зависит от содержания токоферола в мозге и надпочечниках животных.
Получены новые факты, показывающие, что при длительном воздействии холода колебания активности ПОЛ играют роль фактора модуляции вязкости липидов мембран митохондрий, но не микросом печени, вязкость которых определяется белковой компонентой. Результатом длительной адаптации становится снижение вязкости липидов мембран митохондрий и содержания в них продуктов ПОЛ. Впервые обнаружена возможность разнонаправленных изменений содержания токоферола в различных структурах клетки. Установлено, что рост содержания токоферола в микросомах печени на 10-15 сутки длительного воздействия холода сопровождает активацию монооксигеназной системы и усиление детоксикационной функции печени, а накопление его в митохондриях через 5-7 недель коррелирует с увеличением энергазации (ростом дыхательного контроля, и повышением трансмембранного потенциала).
Получены новые данные о зависимости изменений трансмембранных электрических потенциалов (ДТ) тимоцитов, лейкоцитов крови, митохондрий печени, дыхательного контроля в митохондрях печени от изменений температуры тела животных при длительном воздействии холода. При ускоренной адаптации к холоду снижение Д^Р тимоцитов регистрируется как следовый эффект первого охлаждения и отменяется диазепамом, препятствующим формированию терморегуляторных навыков.
Установлено, что в условиях дополнительного включения токоферола в рацион накопление его в тканях животных на холоде выше, чем в условиях температурного комфорта. Токоферол предупреждает снижение температуры тела животных при действии умеренного холода и усиливает эффект длительной адаптации к нему (7 недель при +5°С), повышая выживаемость при остром охлаждении (-27°С). Прием витамина в условиях температурного комфорта на выживаемость при экстремально низких температурах не влияет.
Получены новые данные о влиянии токоферола на гипофизарно-надпочечниковую систему. Установлено, что непродолжительный прием антиоксиданта (1-7 дней) повышает концентрацию кортикостерона в плазме крови, не изменяя секрецию гормона надпочечниками. В результате цри холодовом воздействии токоферол сокращает стадию активации коры надпочечников, сохраняя их повышенную способность синтезировать стероиды в ответ на АКТГ. Длительный прием токоферола (49 дней) снижает синтез кортикостерона надпочечниками контрольных и пребывающих на холоде крыс при неизменном уровне гормона в крови и повышенной чувствительности к АКТГ. Установлено, что токоферол, подобно длительной адаптации к холоду, модифицирует реакцию печени на глюкокортикоиды, ускоряя реализацию метаболического ответа -повышение запасов гликогена и активацию тирозинаминотрансферазы. Впервые проведено исследование токоферола во фракциях хроматина и ядерном матриксе и обнаружена максимальная его концентрация в транскрипционно активном хроматине
НАУЧНО-ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ
Настоящая работа вносит вклад в понимание механизмов участия токоферола в адаптивных преобразованиях организма на холоде. Проведенные комплексные исследования продемонстрировали, что эффекты токоферола не ограничиваются предотвращением активации свободнорадикальных процессов, а существенно влияют на адаптивные преобразования функций - на уровне мембран, органов, организма.
Полученные результаты могут быть полезны при разработке способов использования токоферола и других антиоксидантов в качестве стресс-протекторов при острых воздействиях экстремально низких температур, в том числе - в клинической практике при использовании гипотермии. Установлено, что потребность организма в токофероле на холоде возрастает. Его прием в условиях воздействия умеренно низких температур повышает эффективность терморегуляторных преобразований, в том числе - при остром охлаждении, однако длительный предварительный приём антиоксиданта в условиях температурного комфорта в случае воздействия экстремально низких температур оказывается не эффективным. Данные о способности токоферола повышать уровень циркулирующих стероидов следует учитывать при использовании токоферола в качестве стресс-протектора.
Результаты исследований, выявившие сильную корреляционную связь между изменениями температуры тела животных, дыхательного контроля и Л^ митохондрий печени, с одной стороны, и изменениями ДЧ' тимоцитов и лейкоцитов крови, с другой, позволяют рекомендовать использование этих клеток для контроля адаптивных преобразований энергетических процессов на холоде. Разработанная модификация метода оценки трансмембранного электирческого потенциала - ДЧ' митохондрий печени с помощью флюоресцентного зонда-катиона ДСМ, которая позволила при исследовании адаптивных преобразований энергетических процессов на холоде выявить сопряженные с другими функциональными характеристиками митохондрий изменения показателя, может быть рекомендована как достаточно чувствительный и нетоксичный способ оценки ДЧ' митохондрий.
АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ Материалы диссертации представлены и доложены: на Всесоюзной конференции "Адаптация человека к различным географическим, климатическим и производственным условиям", Владивосток, 1978; 4, 7 и 8 Международных конгрессах по приполярной медицине: Новосибирск, 1978; США,1986; Канада 1990; на Всесоюзных симпозиумах "Биологические проблемы Севера": Петрозаводск, 1976; Кировск, 1979; Магадан, 1983; Якутск, 1986; 6 Всесоюзной конференции по экологической физиологии, Сыктывкар, 1982; 3 Всесоюзной конференции "Адаптация человека в различных климато-географических условиях", Ашхабад, 1982; "Важнейшие теоретические и практические проблемы терморегуляции", Новосибирск, 1982; Всесоюзном симпозиуме по физиологическим проблемам адаптации, Таллин, 1984; на 2-4 Всесоюзных конференциях "Биоантиоксидант", Москва, 1986, 1989, 1992; 4 Всесоюзной конференции "Адаптация человека к климато-географическим условиям и первичная профилактика", Новосибирск,1986; школе-семинаре Надежность биологических систем, Чернигов, 1985; 4 Всесоюзной конференции по патологии клетки, Москва, 1987; Всесоюзной конференции "Биохимия -медицине", Ленинград, 1988; 5 Всесоюзном симпозиуме "Эколого-физиологические проблемы адаптации", Москва, 1988; 4 Всесоюзном съезде патофизиологов,
Кишинев, 1989; X Всесоюзном симпозиуме "Структура и функции клеточного ядра", Гродно, 1990; Всесоюзной конференции памяти А.Д.Слонима "Система терморегуляции при адаптации организма к факторам среды", Новосибирск, 1990; Организационном Международном конгрессе по патологической физиологии, Москва, 1991; Республиканском симпозиуме "Монооксигеназная система. Теоретические и прикладные аспекты", Ташкент, 1992; 5 Европейской конференции ISSX, Франция, 1993; III Всемирном конгрессе международного общества адаптивной медицины, Япония, 1993; 7 Всероссийском симпозиуме "Эколого-физиологические проблемы адаптации",. Москва, 1994; 7th biennial Scientific meeting of the International Society for Free Radical Research, Австралия, 1994; 7 Всероссийском симпозиуме "Эколого-физиологические проблемы адаптации", Москва,' 1994; 2 (1995) и 3 (1997) съездах физиологов Сибири и Дальнего Востока, Новосибирск; 1 Российском Конгрессе по патофизиологии с международным участием, Москва, 1996; Airst. Regional Meeting on Medical Sciences: "The roles of free radicals in health and disease" Jerusalem and Amman, 1998; Международной конференции "Oxygen Radicals", Ярославль, 1998; Международной конференции "Рецепция и внутриклеточная сигнализация", Пущино, 1998; Всероссийском съезде физиологов, Ростов-на-Дону, 1998; Europien Meeting Sosiety for free radical research, Германия, 1999.
ПУБЛИКАЦИИ
По материалам диссертации опубликовано более 80 работ, в том числе 41 статья.
Считаю своим долгом выразить искреннюю благодарность за участие в проведении совместных экспериментов коллегам, сотрудникам СО РАМН П.Е.Влощинскому, О.А.Громовой, А.Р.Колпакову, В.Г.Селятицкой, И.Г.Шабалиной.
Похожие диссертационные работы по специальности «Физиология», 03.00.13 шифр ВАК
Изменения прооксидантно-антиоксидантного равновесия в ответных эколого-биохимических реакциях организма животных и человека на действие холода2007 год, кандидат биологических наук Николаев, Вячеслав Михайлович
Биохимические изменения в мембранах млекопитающих при зимней спячке и гипотермии2005 год, доктор биологических наук Кличханов, Нисред Кадирович
Экспериментальное исследование ферментных антиоксидантных систем при адаптации к длительному воздействию холода и дефицита токоферола2001 год, кандидат биологических наук Скурятина, Юлия Владимировна
Особенности функционирования гипоталамо-гипофизарно-репродуктивной системы на этапах онтогенеза и в условиях применения геропротекторов2010 год, доктор биологических наук Козак, Михаил Владимирович
Метаболические реакции митохондрий печени крыс при адаптации к высокой внешней температуре1984 год, Иванова, О.И.
Заключение диссертации по теме «Физиология», Колосова, Наталия Гориславовна
ВЫВОДЫ
1. Обеспеченность токоферолом влияет на способность организма поддерживать температуру тела при длительном воздействии и эффективность формирования адаптивных навыков при ускоренной адаптации к холоду. Токоферол вовлечен в срочные адаптивные преобразования на холоде: его содержание возрастает в БЖТ и надпочечниках при долговременной и в результате ускоренной адаптации к холоду. При ускоренной адаптации эффективность формирования терморегуляторных навыков зависит от содержания токоферола в мозге и надпочечниках животных.
2. Первоначальная реакция на холод . характеризуется мобилизацией антиоксидантных механизмов: активацией ферментов - глутатионредуктазы и глутатионпероксидазы и перераспределением эндогенных запасов токоферола между тканями, которая снижает уровень продуктов ПОЛ или предупреждает их накопление. Установлено, что периоды активации ПОЛ в отдельных тканях животных наблюдаются до 15 суток непрерывного воздействия холода, не совпадают по времени и связаны с адаптивными преобразованиями метаболизма.
3. Результатом длительной адаптации (4-7 недель) к холоду становится стабилизация ПОЛ на исходном или пониженном уровне на фоне роста содержания токоферола в тканях. Способность организма накапливать токоферол на холоде возрастает: при включении дополнительного токоферола в рацион его содержание в тканях животных в условиях воздействия низких температур возрастает в большей степени, чем в условиях температурного комфорта.
4. При длительном воздействии холода изменения содержания токоферола в митохондриях и микросомах печени животных не совпадают по времени и направленности. Установлено, что рост содержания Т.Ф в микросомах печени на 10-15 сутки длительного воздействия холода сопровождает активацию монооксигеназной системы и усиление детоксикационной функции печени, а накопление его в митохондриях через 5-7 недель коррелирует с увеличением энергизации - ростом дыхательного контроля и повышением трансмембранного электрического потенциала (Л^).
5. При длительной адаптации к холоду выявлены фазовые изменения Д^Р тимоцитов, лейкоцитов крови и митохондрий печени, а также дыхательного контроля митохондрий, обусловленные изменениями температуры тела животных. При ускоренной адаптации снижение ЛЧР тимоцитов регистрируется как следовый эффект первого охлаждения и отменяется диазепамом, препятствующим формированию терморегуляторных навыков.
6. Колебания активности ПОЛ играют роль фактора модуляции вязкости липидов мембран при действии холода. Результатом длительной адаптации становится снижение вязкости липидов мембран митохондрий, а также тимоцитов животных. При ускоренной адаптации вязкость липидов мембран тимоцитов и содержание продуктов ПОЛ в них повышается.
7. Включение токоферола в рацион (7 дней по 4 мг) не изменяет функциональное состояние митохондрий печени в условиях температурного комфорта, но предупреждает терморегуляторное разобщение митохондрий при действии умеренного холода, предотвращая одновременно снижение температуры тела животных. Токоферол усиливает эффект длительной адаптации к холоду (7 недель при +5°С), повышая способность животных удерживать температуру и выживаемость при остром охлаждении (-27°С), в то время как прием витамина в условиях температурного комфорта на выживаемость при экстремально низких температурах не влияет.
8. Токоферол дозозависимо влияет на адренокортикальную реакцию организма. Непродолжительный (1-7-дневный) его прием повышает концентрацию кортикостерона в плазме крови, не изменяя секрецию гормона надпочечниками.
В результате при действии холода токоферол сокращает стадию активации коры надпочечников, сохраняя их повышенную способность синтезировать стероиды в ответ на АКТГ. Длительный прием токоферола (49 дней) снижает синтез кортикостерона надпочечниками контрольных и пребывающих на холоде крыс при неизменном уровне гормона в крови и повышенной чувствительности надпочечников к АКТГ.
9. Токоферол, подобно длительной адаптации к холоду, модифицирует реакцию печени на глюкокортикоиды, ускоряя реализацию метаболического ответа -повышение запасов гликогена и активацию тирозинаминотрансферазы. ,
10. Адреналин и глюкокортикоиды участвуют в стрессорной мобилизации факторов антиоксидантной защиты. Их введение приводит к. перераспределению токоферола в организме, адреналин активирует также ферменты антиоксидантной защиты - глутатионредуктазу и глутатионпероксидазу. Эти эффекты не зависят от фоновой активности процессов ПОЛ в тканях и содержания в них токоферола, так как предварительное включение токоферола в рацион не изменяет реакцию на введение гормонов.
11. При обследовании людей и в опытах на животных установлено, что глюкокортикоиды оказывают модулирующее влияние на уровень продуктов ПОЛ в тканях организма за счет прямых и опосредованных факторами антиоксидантной защиты эффектов. Их роль в регуляции ПОЛ возрастает в условиях напряжения адаптивных механизмов, в случае адекватной реакции органйзма на действующий фактор формируется отрицательная связь между уровнями глюкокортикоидов и продуктов ПОЛ в крови.
Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Колосова, Наталия Гориславовна, 2000 год
1. Александровский Ю.А., Поюровский М.В., Незнамов Г.Г. Неврозы и перекисное окисление липидов. М.: Наука 1991. - 325 с.
2. Але.сенко A.B. Функциональная роль сфингозина в индукции пролиферации и гибели клеток // Биохимия. -1998. Т. 63, вып. 1.- С. 75-82.
3. Алесенко A.B., Пальмина Н.П. Рс»ль липидов в функциональной активности и биосинтезе ДНК в нормальных и опухолевых клетках //В кн.: Биоантиоксислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука. -1982. -С. 84-99.
4. Андрейчик Н.И., Круглова Е.Г., Новоселова В.П. механизм противовоспалительной активности антиоксидантов при легочном туберкулезе // Проблемы туберкулеза. 1994. - № 2. - С. 49-53.
5. Архипенко Ю.В., Белкина Л.М., Сазонтова Т.Г. Зависимость свободнорадикального ответа ткани от режима адаптации к гипоксии // Тез. I Российского конгр. патофиз.-М.-1996.-С. 221.
6. Архипенко Ю.В., Джапаридзе Л.М., Гуткин Д.В. Сравнитльная оценка влияния недостаточности витамина Е на перекисное окисление и транспорт Са++ в сердечной и скелетной мышцах // Вопр. мед. химии. 1987. - Т. 33. - № 3. - С. 122-127.
7. Архипенко Ю.В., Шимкович М.В. Участие перекисного окисления липидов в регрессии гипертрофированного сердца // Бюл. экспер. биол. -1989. -Т. 108,- № 11.- 556-568.
8. Ахременко А.К. Зимняя спячка и гипобиотические состояния у млекопитающих экстраконтинентального климата// Автореферат докт. дис. М.- 1999. - 36 с.
9. Ю.Барабой В.А., Брехман И.И., Голотин В.Г., Кудряшов Ю.Б. Перекисное окисление и стресс // С.-Пб.: Наука. 1992. - 148 с.
10. П.Баренбойм Г.М., Маленков А.Г. биологически активные вещества. Новые принципы поиска // М. : Наука. 1986. - 364 с.
11. Белогубова Е.Г., Курочкина Н.И. Токофероловая зависимость процесса холодовой адаптации у крыс // Тез. докл. IV симпоз. "Биологические проблемы Севера". Вып.1. - Якутск, 1974. - С. 177-179.
12. Белоконева О.С., Зайцев C.B. Роль мембранных липидов в регуляции функционирования рецепторов нейромедиаторо© // Биохимия. 1993. - Т. 58. - № П.-С. 1685-1708.
13. Н.Белоусова Г.П., Кузьмина Г.И., Пшедецкая А.Д., и др. Двигательные механизмы защиты организма от холода / JL: Из-во ЛГУ. -1988. 188 с.
14. Бокеева Л.Е., Брустовецкий H.H. Межмитохондриальные септированные контакты в клетках печени суслика Citellus undulatus при зимней спячке // Биол. мембр. -1993. -Т. 10. № 1. - С. 36-43.
15. Большаков В.Н. Пути приспособления мелких млекопитающих к горным условиям // М.: Наука. 1972. - 200 с.
16. Брехман А.И., Голотин В.Г., Дардымов И.В. Метаболиты, образующиеся при стрессе (стрессины) // Проблемы общей патологии. Новосибирск. - 1974. - Т. 1. - С. 74.
17. Бурлакова Е.Б., Архипова Г.В., Голощапов А.Н., Молочкина Е.М., Хохлов А.П. Мембранные липиды как переносчики информации // В кн.: Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: Наука. -1982. - С. 74-83.
18. Бурлакова Е.Б., Гвачария В.О., Глущенко H.H., Дюпин А. Роль микровязкости липидной фазы мембран в регуляции ферментативной активности глюкозо-6-фосфотазы при модификации микросом in vivo и in vitro // Биохимия. 1980. - T.45.-№3.-С. 387-391.
19. Бурлакова Е.Б., Греченко Т.Н., Соколов E.H., Терехова С.Ф. Влияние ингибиторов свободнорадикального окисления липидов на электрическую активность изолированных медленных нейронов // Биофиз. 1986. -Т. 31, в. 5. -С. 921-923.
20. Бурлакова Е.Б., Губарева А.Е., Архипова Г.В., Рогинский В.А. Модуляция перекисного окисления липидов биогенными аминами в модельных системах // Вопр. мед. химии.-1992а.-Т. 38. № 2.- С.17-20.
21. Бурлакова Е.Б., Кайран Ч.Б., Молочкина Е.М., Хохлов А.П. Изменения липидов наружной мембраны митохондрий печени мышей и кинетические параметры мембраносвязанной моноаминоксидазы in vivo и in vitro // Вопр. мед. химии. -1984.-Т. 30.- № 1,-С. 66-72.
22. Бурлакова Е.Б., Крашаков С.А., Храпова Н.Г. Роль токоферолов в пероксидном окислении липидов биомембран // Биологич. мембр.-1998. Т. 15. - № 2. - С. 137167.
23. Бурлакова Е.Б., Крашков С.А., Храпова Н.Г. Кинетические особенности токоферолов как антиоксидантов. Черноголовка,-19926,- 56 с.
24. Бурлакова Е.Б., Кухтина E.H., Сарычева И.К., Храпова Н.Г., Аристархова С.А. Влияние латеральной подвижности токоферола на реакции свободнорадикального окисления в липидых // Биохимия. 1982. - Т. 47. № 6.- С. 987-992.
25. Бурлакова Е.Б.,Алесенко A.B., Пальмина Н.П., Молочкина Е.М., Храпова Н.Г. Биоантиоксиданты в лучевом поражении и злокачественном росте // М.: Наука. -1975.-221 с.
26. Владимиров Ю.А. Роль нарушений свойств липидного слоя мембран в развитии патологических процессов // Патол. физиол. и экспер. мед. -1989. № 4. -С. 7-19.
27. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы и антиоксиданты // Вестник РАМН. -1998,-№7. С. 43-51. /
28. Владимиров Ю.А., Азизова O.A., Деев А.И., Козлов A.B., Осипов А.Н., Рощупкин Д.И. Свободные радикалы в живых системах // Итоги науки и техники, серия Биофизика. -1991.- Т.29.- С. 1-252.
29. Владимиров Ю.А., Арчаков А.И. Перекисное окисление липидов биологических мембран / М.: Наука. 1972. - 252 с.
30. Гизатуллина 3.3., Гагельганс А.И., Мохова E.H., Орынбаева З.С. Влияние тиреоидных гормонов на энергетику тимоцитов //Биолог. Мембр. 1992. -Т. 9. - № 10-11. -С.1161-1163.
31. Гизатуллина 3.3., Сукачева O.A., Гагельганс А.И. Дозозависимый характер влияния гидрокортизона на энергетический метаболизм // Биохимия. 1996. - Т. 61.-№3.-С. 445-450.
32. Гилинский М.А. Механизмы эмоциогенной регуляции адаптационных процессов. Роль миндалевидного комлекса мозга // Докторская диссертация. -Новосибирск. -1994. 290 с.
33. Гилинский М.А., Колосова Н.Г., Петракова Г.М. Влияние стресса и стресс-протективных факторов на холодовую устойчивость и эффективность адаптации крыс к холоду II Вестник РАМН. 1998. - № 10. - С. 22-25.
34. Голиков П.П., Давыдов Б.В., Матвеев C.B. Механизмы активации перекисного окисления липидов и мобилизации эндогенного антиоксиданта альфа-токоферола при стрессе // Вопр. мед. химии. 1987. - Т. 33. - № 1. - С. 47-50.
35. Голубев А.Г. Катехоламины, стероиды и старение нервной и эндокринной систем // Успехи совр. биол. 1989. - Т. 108. - № 3 (6). - С. 414 - 428.
36. Гончаренко E.H., Кудряшов Ю.Б. Гипотеза эндогенного фона радиорезистентности / М.: Из-во МГУ. 1980. -176 с.
37. Горбань E.H. Влияние антиоксиданта дибунола на функцию коры .надпочечников и аденогипофиза взрослых и старых крыс // Бюл. экспер. биол.1985.-№ 12. С. 643-644.
38. Громов Л.А., Середи П.И., Сыроватская Л.П., Овинова Г.В., Филоненко М.А Свободнорадикальный механизмы ^ токсических нарушений памяти и способы лечения // Патол. физиол. и экспер. терапия. 1993. - N 4. - С. 24-26.
39. Гукасов В.М., Сергеев П.В., Сейфулла Р.Д., Владимиров Ю.А. Об антиоксидантиом действии стероидных гормонов на перекисное окисление липидов мембран митохондрий in vivo и in vitro // Бюл. эксп. биол. 1974. - № 11. -С. 54.
40. Гуляева Н.В. Ингибирование процессов свободорадикального окисления липидов в механизмах срочной и длительной адаптации к стрессу // Биол. науки.- 1989.-№4.-С. 5-14.
41. Гуляева Н"В., Левшина И.П., Обидин А.Б. Показатели свободнорадикального окисления липидов и антирадикальной защиты мозга нейрохимические корреляты развития общего адаптационного синдрома // Журн. высш. нервн. деят. - 1988,- Т. 38, в 4. - С. 731-737.
42. Гуляева Н.В., Левшина И.П., Обидин А.Б. Стадия ингибирования свободнорадикального окисления липидов предшествует стадии его активации при стрессе // Докл. АН СССР. 1988. -Т. 300. - №. 3. - С. 748-752.
43. Гуляева Н.В., Степаничев М.Ю. биохимические корреляты индивидуально-типологических особенностей поведения крыс // Журн. высш. нервн. деят.- 1997.Т. 27.-N4.-С. 462-469.
44. Гурин В.Н. Обмен липидов при гипотермии, гипертермии и лихорадке / Минск.- 1986.- 298 с.
45. Гурин В.Н. Симпатическая нервная система и регуляция температуры тела у эндотермных животных //Успехи физиол. наук. 1989. - N. 20. - № 2. - С. 3-25.
46. Давиташвили Н.Г., Прилипко Л.Л. Механизм стабилизации синаптосом токоферолом // Биохимия. -1986. Т.51. - № 3. - С. 472-477.
47. Дегтярев И.А., Бузуков A.A., Леонова Е.Ю., Зайков Г.Е. // Хим. фарм. журн. -1989.-№4. -С. 398-403.
48. Демин О.В., Вестерхофф Х.В., Холокенко Б.Н. Математическое моделирование процессов генерации супероксида del комплексом митохондрий // Биохимия. -1998. -Т. 63. № 6. - С. 755-772.
49. Дмитриев Л.Ф., Довлетшииа Л.Н., Иванов И.И., Рубин А.Б. Взаимосвязь окислительного фосфорилирования и перекисного окисления липидов // Биол. мембр. 1985. -Т. 2. - № 8. -С. 795-799.
50. Добрецов Г.Е. Флуоресцентные зонды в исследовании клеток, мембран и . липопротеинов / М. : Наука. 1989. - 277 с.
51. Донченко Г.В. Биохимия убихинона (Q). Киев: Наукова думка. 1988. - 240 с.
52. Донченко Г.В. Витамин Е и процессы биологического окисления //В кн.: Витамины VIII.- 1975. Киев: Наукова думка. - С. 43-60. .
53. Донченко Г.В., Петрова Г.В., Капралов A.A. Влияние а-токоферола и ядерного токоферолсвязывающего белка на активность ДНК-полимеразы в изолированных ядрах и ядерном матриксе // Укр. биохим. журн.-1996. -Т.68(6). С.18-23.
54. Евстигнеева Р.П., Волков И.М., Чудинова В.В. Витамин Е как универсальный антиоксидант и стабилизатор биологических мембран // Биол. мембраны. 1998. -Т. 15,-№2.-С. 119-136.
55. Ерин А.Н., Спирин М.М., Табидзе Л.В., Каган В.Е. Образование комплексов а-токоферола с жирными кислотами. Возможный механизм стабилизации биомембран витамином Е //Биохимия. -1983. -Т. 48. № 11. - С. 1855-1861.
56. Жигачева И.В., Каплан Е.Я. Жирнокислотн'ый состав и энергетика митохондрий печени при введении антиоксидантов ионолового ряда // Биохим. 1985. - Т. 50. -№ 10.-С. 1582-1586.
57. Жигачева И.В., Мохова Е,Н., Скулачев В.П. Активация внешнего пути свободного окисления в митохондриях печени при охлаждении крыс // ДАН СССР. 1976. - Т. 227. - № 2. - С. 493-496.
58. Жигачева И.В., Мохова E.H. Концентрация цитохрома в печени на разных стадиях адаптации к холоду // Биофиз. 1978. - Т. 23. - № 2. - С. 285-289.
59. Журавлев А.Н. Развитие идей Б.Н.Тарусова о роли цепных процессов в биологии // В кн.: Биоантиокислители в регуляции метаболизма в норме и патологии. М.: - Наука. -1982. -С. 3-36.
60. Ибраимова Г.И. Следовые эффекты после гипоксических и гипотермических стимулов // Очерки по экологической физиологии. Новосиб. - Из-во СО РАМН. -1999.-С. 164-173.
61. Каган В.Е., Орлов О.Н., Прилипко Л.Л. Проблема анализа эндогенных продуктов перекисного окисления липидов / Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР. Серия Биофизика. -1986. - Т. 18. - 136 с.
62. Каган В.Е., Смирнов A.B., Савов В.М., Горкин В.З. Перекисное окисление липидов митохондриальных мембран, индуцированное ферментативным дезаминированием биогенных аминов // Вопр. мед. химии. 1984. - № 1. - С. 112119.
63. Казначеев В.П., Шорин Ю.П. Роль эндокринных факторов в процессах адаптации к экстремальным условиям высоких широт // Вестн. АМН СССР. -1980.-№ 7.-С. 76-85.
64. Калабухов Н.И. Влияние витаминов Е (токоферол) и С (аскорбиновой кислоты) на грызунов, впадающих в спячку // Бюлл. Моск. о-ва исп. природы. Сер. биол. 1964. -Т.69. N 4.- С.15-28.
65. Калабухов Н.И. Периодические (сезонные и годичные) изменения в организме грызунов // Л.: Наука. -1969.- 248 с.
66. Калабухов Н.И. Спячка млекопитающих как сочетание энергетического баланса организма и естественного отбора // В сб.: Эволюционные- аспекты гипобиоза и зимней спячки. Л.: Наука. - 1986. - С. 6 - 17.
67. Капралов A.A., Донченко Г.В., Петрова Г.В. Токоферол-связывающие белки хроматина // Украин. биохим. журнал. 1994. - Т. 66. - № 1. - С.83-9.
68. Кашкаров К.П., Васильева Е.В., Рууге Э.К. Генерация супероксидных радикалов дыхательной цепью митохондрий изолированных кардиомиоцитов // Биохимия. -.1994. -Т. 59,-№6.-С. 813-818.
69. Керимов P.E., Голощапов А.Н., Бурлакова Е.Б., Джафаров А.И. Эффектфункциональных групп молекул токоферола на вязкость митохондриальных липидов//Бюл. эксп. биол. 1987.-Т. 103. -№ 5. - С. 612-615.
70. Клименко JI.JI., Коломина JI.H., Фомин В.Р. Связь параметров перекисного окисления липидов с уровнем постоянного потенциала головного мозга крыс // Биофиз. -1987. -Т. 32. № 4. -С. 689-690.
71. Когтева Г.С., Безуглов В.В. Неэстерифицированные жирные кислоты как эндогенные биорегуляторы // Биохимия. -1998.-Т. 63. № 1.- С. 6-15.
72. Колесниченко JI.C. Влияние эмоционально-болевого стресса, гипоксии и адаптации на активность ферментов метаболизма глутатиона// Вопр." мед. химии.1994.-№5.-С. 10-12.
73. Колесниченко JI.C., Манторова Н.С., Шапиро Л.А., Ольховский И.А., Барон A.B., Кулинский В.И. Влияние эмоционального стресса на активность ферментов метаболизма глутатиона // Вопр. мед. химии. 1987. Т. 33. - N 3. С. 85-88.
74. Колосова Н.Г., Душкин М.И., Долгов A.B., Панин Л.Е. Влияние токоферола на функциональные резервы фагоцитов // Бюлл. эксперим. биол. 1991. N 6. С. 591592.
75. Колосова Н.Г., Колпаков А.Р. Измерение трансмембранного электрического потенциала митохондрий с помощью флуоресцентного зонда ДСМ // Биофизика. 1991. - Т. 36. - № 5. -с. 802-804.
76. Колосова Н.Г., Колпаков А.Р., Добронравова О.В. Изменения содержания, структуры и заряда липопротеидов крови при адаптации к холоду // Биофизика,1995.-Т. 40. № 2.-С. 422-427.
77. Колосова Н.Г., Куликов В.Ю. Влияние адреналина на реакции перекисного окисления липидов у интактных и получавших токоферол крыс //Бюлл. Сибирского отделения АМН СССР.-1985.- N 6. -С.29 31.
78. Колосова Н.Г., Куликов В.Ю. Механизмы защитных эффектов токоферола // Всб.: Нарушение механизмов регуляции и их коррекция. М.: 1989. - Тез. докл. 4 Всес. съезда патофизиологов. - Кишинев. - 1989. - Т.2.М. 1989.С.67.
79. Колосова Н.Г., Матаев Р.Н., Куликов В.Ю. Гормоноподобные эффекты токоферола // Тез.2 Всес. конференции Биоантиоксидант. Черноголовка. - 1986. - Т.2. - С. 22.
80. Колосова Н.Г., Шорин Ю.П., Куликов В.Ю. Реакции перекисного окисления липидов в печени и легких крыс при долговременной адаптации к холоду // Бюл. .экспер. биол.- 1981. № 4. - С.436-437.
81. Колосова Н.Г., Шорин Ю.П., Селятицкая В.Г., Куликов В.Ю. Механизм повышения надежности организма с помощью антиоксидантов биологи // В кн.: Надежность и гомеостаз биологических систем. Киев: Наукова думка. - 1987. -С. 162- 168.
82. Колосова Н.Г., Куликов В.Ю., Колесникова Л.И. Реакции перекисного окисления липидов при перелете животных в Заполярье // Тез. докл. 4 Между нар. симп. по приполярной медицине. Новосибирск. - 1978. - Т. 1.- С. 129-130.
83. Колпаков А.Р., Колпаков М.А., Панин Л.Е. Фармакокинетика антипирина и изониозида у крыс в динамике адаптации к холоду // Бюлл. эксперим. Биологии. -1994. Т. 118.-№ 9. - С. 279-280.
84. Кондрашова М.Н., Григоренко Е.В., Бабский А.М., Хазанов В.А. Гомеостазирование физиологических функций на уровне митохондрий // В кн.: Молекулярные механизмы клеточного гомеостаза. Новосибирск: Наука. - 1987. - С. 40-64.
85. Коношенко Г .И., Мохова E.H. Характеристика митохондрий тимоцитов // Биохимия.-1983.-Т. 48.-№ 4. с. 652-656.
86. Косников В.В. Методы измерения трансмембранных электрических потенциалов в клетке // Укр. биохим. журн. 1990. - Т. 62. - № 1. - С. 3-16.
87. Коста Э., Тарабукки М. Эндорфины // М.: Мир. -1981. 387 с.
88. Краковский М.Э. Активность узловых окислительно-востановительных ферментов у кроликов с разными типологическими особенностями // Журн. высш. нервн. деят. -1987.- Т.37. N 3. - С. 457-463.
89. Краковский М.Э., Каменецкая Ц.Л. ОсЬбенности некоторых биохимических процессов в печени крыс с различными типами поведения в открытом поле // Журн. высш. нервн. деят., 1989. - Т.39.- 3. -С. 506-511.
90. Крепе Е.И. Липиды клеточных мембран // Л.: Наука. 1981. - 339 с.
91. Куликов В.Ю. Северная экология и проблемы адаптации человека // В кн.: Медико-экологические аспекты адаптации жителей тропиков в Арктике (по материалам советско-индийской экспедиции). Ч. I. - Новосибирск. - 1994. - с. 924.
92. Куликов В.Ю., Семенюк A.B., Колесникова Л.И. Перекисное окисление липидов и холодовой фактор // Новосибирск. Наука. - 1988. - 192 с. ЮО.Куница Н.И., Кузьменко И.В., Алексеев С.М., Захарова Е.И., Донченко Г.В.
93. Участие токоферола и его аналогов в процессах перекисного окисления липидов и транспорта электоронов в митохондриях печени in vivo //Биохимия. 1993. - Т. 58, в. 11.-С. 1709-1713.
94. Ю2.Левшина И.П., Гуляева Н.В. Зависимость влияния острого стресса на латерализацию продуктов перекисного окисления липидов в мозге от типологических особенностей поведения крыс // Бюл. экспер. биол. 1991. - Т.- .2. С. 568-569.
95. ЮЗ.Либе М.Л., Богданова Е.Д, Розенберг А.Е., Прилипко Л.Л. Связывание ЗН-серотонина, ЗН-диазепама и перекисное окисление липидов в мембранах мозга // Бюл. экспер. биол. -1981. № 11. - С. 552-554.
96. Ломакина Л.В. Влияние низкой температуры на перекисное окисление липидов и интенсивность протеолиза в тканях мозга и печени крыс // Укр. биох. журнал. -1980. Т. 52. - № з. - С. 305-306.
97. Юб.Львова С.П., Горбунова Т.Ф., Абаева Е.М. Влияние гипотермии и даларгина на перекисное окисление липидов в тканях крыс // Вопр. мед. химии. -1993. Т. 39. -№ 3. - С.21-24.
98. Ю7.Малышев И.Ю., Манухина Е.Б. Стресс, адаптация и оксид азота // Биохимия. -1998. Т. 63.-№ 7.-С. 992-1006.
99. Мальцева Е.Л., Бурлакова Е.Б. Различие в ответе мембран клеток мозга и печени на действие in vivo и in vitro антиоксиданта и жирной кислоты (по изменению активности циклаз и вязкости) //Биол. мембраны. -1986,- Т.З. № 8. -С. 773-780.
100. Ш.Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование // М.: Мир. 1987. - 332 с.
101. Маркин A.A., Журавлева O.A. Перекисное окисление липидов и состояние системы антиоксидантной защиты у крыс после 14-дневного полета на космическом корабле "Космос-2044" \\ Авиокосм. эколог, мед. 1993. - Т. 27. - № 1. - С. 47-50.
102. ПЗ.Меерсон Ф.З. Адаптационная медицина: мехнизмы и защитные эффекты адаптации. М. - 1993. - 298.
103. П.Меньшикова Е.Б., Зенков Н.К., Шергин С.М. Биохимия окислительного стресса// Новосибирск. 1994. - 203 с.
104. Мертвецов Н.П., Зеленин С.М., Морозов И.В., Мишин В.П., Чесноков В.Н., Вишнивецкий С.Н. Структура и гормональная регуляция экспресии гена тирозинаминотрансферазы у млекопитающих //Пробл. эндокринол. 1990. - Т. 36,-№4.-С. 42-51.
105. Молодавкин Г.М., Поюровский М.В. Влияние антиоксиданта дибунола в комбинации с феназепамом на поведение крыс в конфликтных ситуациях // Бюл. экспер. биол. 1985.-Т. 100.-№ 7.-С. 36-38.
106. Маянский Д.Н., Воронина Н.П. Изменение функционального состояния макрофагов после дозированной физической нагрузки // Пат. физиол. и эксп. терапия. 1989. - № 3. - С. 56-59.
107. Нейфах Е.А. Активация глюкозой НАДФ-зависимого перекисного окисления липидов, сопряженная с поглощением клетками токоферола // Тез. II Всесоюзн. конф. "Биоантиоксидант". 1986. - Т. И. - С. 215.
108. Николаев В.И., Денисенко Н.П., Николаева Р.В. Изменение перекисного окисления липидов в зависимости от длительности электрической стимуляции дорзомедиального ядра гипоталамуса // Вопр. мед. хим. 1995. -Т. 41. - № 6. - С. 33-36.
109. Никушин E.B. Перекисное окисление липидов в центральной нервной системе в норме и патологии // Нейрохимия. 1989 - Т. 8. - № 1. - С. 124-145.
110. Новгородов С.А., Грузь Т.И., Кушнарев Ю.Е. и др. Механизм индукции неспецифической проницаемости внутренней мембраны митохондрий гидроперикисями // Биолог, мембр. -1990. Т.7. -N 9. - С. 945-950.
111. Пальмина Н.П., Мальцева Е.Л., Курнакова Н.В., Бурлакова Е.Б. Влияние а-токоферола в широком спектре концентраций (Ю-2 . ю-17м) на активность протеинкиназы С. Связь с пролиферацией и опухолевым ростом // Биохимия. -1994. -Т. 59. №. 2. - С.1 93-200.
112. Панин Л.Е. Энергетические аспекты адаптации / Л.: Медицина. 1978. - 191 с.
113. Панин Л.Е. Биохимические механизмы стресса // Новосибирск: Наука. 1983. -234 с.
114. Панин Л.Е., Колпаков А.Р., Потеряева О.Н., Добронравова О.В. Влияние длительного охлаждения на содержание апопротеинов А-1, В и Е в сыворотке крови крыс // Росс, физиол. журн. 1999. - Т. 85. - № 2. - С. 263-267.
115. Панин Л.Е., Поляков Л.М., Кузьменко А.П., Потеряева О.Н., Скрыль Г.Щ. Обнаружение апопротеин A-1-иммунореактивности в хроматине ядер гепатоцитов крыс // Биохимия.-1992,- Т. 57.- N 6.- С. 826-831.
116. Панин Л.Е., Усынин И.Ф., Трубицина О.М., Харьковский A.B., Соколова М.В., Останина Л.С. Роль гепатоцитов, купферовских и эндотелиальных клеток печени в обмене липопротеидов крови // Биохимия.- 1994.- Т. 59.- N 3.- С. 353359.
117. З.Панов A.B. Регуляция специфической и неспецифической ионных проводимостей митохондрий переносчиком адениннуклеотидов // Биохимия. -1992.-Т. 57.-№ 4.-С. 483-493.
118. Панов A.B., Филлипова С.Н., Ляхович В.В. Механизм нефосфорилирующего влияния АДФ на митохондриальные функции // Биохимия. -1979. Т. 44. - С. 1738-1746.
119. Паранич A.B. Сезонные изменения содержания витамина Е в организме белых крыс разного возраста // Физиол. журн. 1984. - Т. - 30. - № 2. - С. 217-222.
120. Пастухов Ю.Ф. Некоторые особенности длительной и ускоренной адаптации к холоду // Тр. Северо-Восточного комплексн. и-та Дальневост. центра АН СССР. -Магадан. 1971. - Вып. 42. - С. 110-138.
121. Пастухов Ю.Ф. Несократительный термогенез и симпатическая регуляция теплопродукции при адаптации организма к холоду // Экологическая физиология животных. Ч. 3. Руководство по физиологии. Л.: Наука, 1982. - С. 84-92.
122. Пастухов Ю.Ф. Физиология адаптации к холоду. Сравнительные и методологические аспекты // В кн.: Проблемы терморегуляции и температурной адаптации. Новосиб. - 1992. - С. 158-172.
123. Пастухов Ю.Ф., Хаскин В.В. Адренергический контроль термогенеза при экспериментальной и природной адаптации к холоду //Успехи физиол. наук. -1979.-Т. 10.-№ 1.-С. 121-142.
124. НО.Петрова В.А., Малышев В.В., Манухин Б.Н., Меерсон Ф.З. Ограничение стрессорной активации адренергической и • гипофизарно-надпочечниковой системы токоферолом //Вопр. мед. химии. 1985. - Т. 31. - № 6. - С. 115-118.
125. Плецитный К.Д. Витамин Е: иммунокоррегирующий эффект у больных бронхиальной астмой // Вопр. мед. химии. 1995. - Т. 41. - № 4. - С.33-36.
126. Подвигин А.Н., Воронин А.Ю., Зенков Н.К., Меньшикова Е.Б., Колосова Н.Г. Влияние токоферола на функциональную активность альвеолярных макрофагов //В сб.: Механизмы повреждения и регуляции восстановительных процессов. -Новосибирск. 1988. - С. 11 - 12.
127. НЗ.Подвигина Т.Т. Закономерности реагирования гипофизарноадренокортикальной системы на повторные стрессорные раздражители // Успехи физиол. наук.-1998. Т. 29. - № 1. - С. 11-22.
128. Проссер Л., Браун Ф. Сравнительная физиология животных. М.: Мир. 1967. -766 с.
129. Протасова Т.Н. Гормональная регуляция активности ферментов. М.: Медицина.-1975. - 239 с.
130. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В. Механизмы кардиопротекторного действия пролиненасыщенных жирных кислот класса п-3 // Пат. физиол. эксперим. терапия. 1997. - № 2. - С. 41-46.
131. Саркисова К.Ю. Связь между типом поведения, особенностями окислительного метаболизма мозга и устойчивостью к патогенным воздействиям // Автореф. докт. дисс. М. - 1997. -36 с.
132. Скакун Н.П., Высоцкий И.Ю. Сезонные особенности желчеобразования и перекисного окисления липидов у белых крыс //Физиол. журн. 1988. - Т. 34. - № 2. - С. 89-94.
133. Скулачев В.П. Нефосфорилирующее дыхание как механизм,предотвращающий образование активных форм кислорода // Молекул, биол. -1995. -Т. 29. -В. 6. С. 1199-1209.
134. Скулачев В.П. Трансформация энергии в биомембранах // М.:Наука. 1981.199 с.
135. Скулачев В.П. Энергетика биологическуих мембран. М.: Наука.- 1989. 556 с.
136. Слоним А.Д. Физиология терморегуляции. М.: Наука. 1981. - С. 378 - 440.
137. Сокирченко И.А., Шкурупий В.А. Влияние а-токоферола на структурную организацию печени крыс // Бюл. экспер. биол. 1989. - Рук. ДеПон. ВИНИТИ 06.06.89, № 3720-В89. - 11 с.
138. Тарусов Б.Н. Авторегуляторная роль антиоксидантов при адаптации организма к факторам внешней среды // Биофизика. 1970. -Т. 15. - № 2. - С. 324334.
139. Теплый Д.Л., Горст H.A., Нестеров Ю.В. Активность суфрактанта и перекисное окисление липидов при воздействии холодом и после введения -токоферола // Росс, физиол. журн. 1997. - Т. 83. - № 10. - С. 63-67.
140. Терновой В.А., Шиницина В.В., Яковлев В.М. Изменения содержания холестерина и фосфолипидов различных типов в тканях крыс при холодовой акклимации//Журн. эволюц. биох. и физиол. -1989. Т. 25. - N 1. - С. 15-19.
141. Тигранян P.A. Гормонально-метаболический . статус организма при экстремальных воздействиях. М.: Наука, 1990. 288 с.
142. Толстухина Т.И., Ракицкая В.В., Флеров М.А. Перекисное окисление липидов в гиппокампе крыс после введения кортизола в условиях стресса // Россиск. физиол. журнал. -1999. Т. 85. - №3.- С. 436-441.
143. Тюрин В.А., Тюрина Ю.Ю., Соколова Т.В., Ардуни А. Участие пальмитиновой кислоты в репарации мембран синаптосом при окислительном стрессе. Роль пальмитоилкарнитина в механизме адаптации // Журн. эволюц. биох. и физиол.-1998.-Т. 34.-№1.-С. 3-10.
144. Усков Ф.Н. К вопросу о противосудорожной активности а-токоферола // Фармакология и токсикология. -1965. -Т. 28. № 4. - С. 422-424.
145. Федотова И.Б., Семехина А.Ф., Архипова Г.В., Бурлакова Е.Б. Возможность коррекции некоторых комплексных поведенческие реакции у крыс линии КМ с помощью антиоксидантов // Журн. высш. нервн. деят. -1990. Т. 40. - № 2. - С. 318-325.
146. Хаскин В.В. Основные изменения энергетики теплообразования при адатации к холоду // В кн.: Физиология терморегуляции. Д.: Наука. - 1984. - С. 243-266.
147. Храпова Н.Г. Биохимия липидов и её роль в обмене веществ. М.: Наука, 1981. -С. 147-154.
148. Шабалина И.Г., Колпаков А.Р., Соловьев В.Н., Панов A.B., Панин JI.E. Роль переносчика адениннуклеотидов в регуляции энергетического состояния и проницаемости митохондрий печени крыс при действии холода // Биохимия. -1995. Т. 60. - № 3. - С. 317-322.
149. Швецова Е.И. Следовые эффекты длительных и кратковременных охлаждений и их значение в адаптации к холоду // Физиол. журн. СССР. 1977. - Т. 83. - № 11.-С. 1715-1720.
150. Якименко М.А. Длительная адаптация организма человека и животных к холоду // В кн.: Физиология терморегуляции. JL: Наука, 1984. - С. 223-236.
151. Яхнина Д.Н. Патобиохимические аспекты защитного действия а-токоферола при гипоксии // Автореф. докт. дисс. М.- 1980. - 42 с.
152. Adachi К., Miki М., Tamai Н., Tokuda М., Mino М. Adipose tissues and vitamin E // J. Nutr. Sei. Vitaminol. (Tokyo). 1990. - V. 36. - N 4. - P. 327-237.
153. Ahmed S.P., Ahmad M., Ahmed S.I., Najam R., Khurshid S.J. Effect of some psychoactive drugs on stress induced alteration in plasma corticosterone level // JPMA J. Pak. Med. Assoc. 1995,- V. 45. N 6. - P. 153-155.
154. Ahmed S.S., Napoli K.L., Strobel H.W. Oxygen radical formation duringcytochrome P450-catalyzed cyclosporine metabolism in rat and human liver microsomes at varying hydrogen ion concentrations // Mol. Cell Biochem. -1995. V. 151(2). P.131-140.
155. Akerboom T.P., Sies H. Assay of glutathione, glutathione disulphide, and glutathione mixed disulphides in biological samples // Methods Enzymol. 1981. - V. 77.-P. 373-382.
156. Andreev A.Yu., Bondareva T.O., Dedukhova V.N., Mokhova E.N., Skulachev V.P., Volkov N.I. Carboxyatractylate inhibits the uncoupling effect of free fatty acids // FABS Lett. -1988. -V. 226. N 2. -P. 265-269. •
157. Angelico R., Cavina Y., D'Anton A., Giocoli Y. Fractionation and determination of the lipid and steroid // J. Chromatogr. 1965. - V.l 8. - P.57.
158. Arai H. Molecular mechanism of vitamin E transport in the Body // Nippon Rinsho. -1999. V. 57. - N10. - P.2276-2283.
159. Arita M., Sato Y., Miyata A., Tanabe T., Takahashi E., Kayden H.J., Arai H, Inoue K. Human alpha-tocopherol transfer protein: cDNA cloning, expression and chromosomal localization // Biochem. J . 1995. - V.306. - N 2. - P. 437-43.
160. Azhar S., Cao L., Reaven E. Alteration of the adrenal antioxidant defense system during aging in rats // J. Clin Invest. 1995. - V.96. - N 3. - P. 1414-1424.
161. Azzi A., Boscoboinik D., Fazzio A., Marilley D., Maroni P., Ozer N.K., Spycher S., Tasinato A. RRR-alpha-tocopherol regulation of gene transcription in response to the cell oxidant status // Z. Ernahrungswiss. 1998. - V. 37. - N 1. - P.21-28.
162. Baba A., Lee E., Ohta A., Aatsuno T., Iwata H. Activation of adenilate cyclase of ratbrain by lipid peroxidation // J. Biol. Chem. -1981. -V. 256. N 8. -P. 3679-3684.
163. Bahr V., Mobius K., Redmann A., Oelkers W. Ascorbate and alpha-tocopherol depletion inhibit aldosterone stimulation by sodium deficiency in the guinea pig // Endocr. Res. 1996. - V. 22. - N 4. - P. 595-600.
164. Bains J.S., Shaw C.A. Neurodegenerative disorders in humans: the role of glutathione in oxidative stress-mediated neuronal death // Brain Res. Rev. 1997. -V.25. - N 3. - P.335-358.
165. Bakker H.D., Scholte H.R., Jeneson J.A. Vitamin E in a mitochondrial myopathy with proliferating mitochondria //Lancet. 1993. - V. 342 (8864). - P.175-176.
166. Banerjee P. Role of lipids in receptor mediated signal transduction // Indian J. Biochem. Biophys. 1993. - V. 30. - N 6. - P. 358-369.
167. Bangur C.S., Howland J.L., Katyare S.S. Thyroid hormone treatment alters phospholipid composition and membrane fluidity of rat brain mitochondria // Biochem. J. -1995. -V. 305, Part 1. P. 29-32.
168. Baoutina A., Dean R.T., Jessup W. Alpha-tocopherol supplementation of macrophages does not influence their ability to oxidize LDL // J. Lipid Res. 1998. -V.39. -N. 1. P.114-130.
169. Barja de Quiroga G. Brown fat thermogenesis and exercise: two examples of physiological oxidative stress? // Free Radic. Biol. Med. 1992. - V.13. - N 4. - P.325-340.
170. Barja de Quiroga G., Lopez-Torres M., Perez-Campo R., Abelenda M., Paz Nava M., Puerta M.L. Effect of cold acclimation on GSH, antioxidant enzymes and lipid peroxidation in brown adipose tissue // Biochem. J. 1991. -V. 277. - N 1. - P.289-292.
171. Barja G., Cadenas S., Rojas C. Effect of dietary vitamin E levels on fatty acid profiles and nonenzymatic lipid peroxidation in the guinea pig liver // Lipids -. -V. 31. -N 9.- P. 963-970.
172. Bartus R.T. Short-term memory in the rhesus monkey: effects of dopamine blockade via acute haloperidol administration // Pharmacol. Biochem. Behav. -1978. V.9. - N.3. - P.353-357.
173. Baxter J.D., Forshman P.H. Tissue effects of glucocorticoids // Amer. J. Med. -1972. -V.53. N 5. - P.573-589.
174. Bindoli A.L. Lipid peroxidation in mitohondria // Free Radic. Biol. Med. 1988. -V.5.-N 1. - P.247- 261.
175. Bjorneboe A., Hagen B., Kveseth N., Drevon C. Transport and distribution of a-tocopherol in limph, serum and liver cells in rats // Biochim. Biophys. Acta: Mol. Cell Res. 1986. -V. 889 (CI6). - N 3. - P. 310-315.
176. BlobeI G., Potter V.R. Nuclei from rat liver: isolation method that combines purity with high Yield // Science. 1966. -V. 154 (757). - P. 1662-1665.
177. Borodin A., Dorovskih V.A., Tselyuko S.S. Low temperature as a pro-oxidant factor: prolonged cold exposure activates lipid peroxidation in rat tissues //J. Circumpolar health. 1997. -V. 56. -N 1-2. - P.49-53.
178. Boscoboinik D.O., Chatelain E., Bartoli G.M, Stauble B., Azzi A. Inhibition of protein kinase C activity and vascular smooth muscle cell growth by d-alpha-tocopherol // Biochim. Biophys. Acta. 1994. - V. 1224. - N 3. P.418-426.
179. Bosterling B., Trudell J.R., Trevor A.J., Bendix M. Lipid-protein interactions as determinants of activation or inhibition by cytochrome b5 of cytochrome P-450-mediated oxidations // J. Biol. Chem. 1982. - V.257. - N 8. - 4375-4380.
180. Brigelius-Flone R., Traber M.G. Vitamin E: function and metabolism // FASEB J. -1999.-V.13.-N 10 . P.l 145-1155.
181. Buck R., Gorse J. Lipids in the cell nucleus // Postepy Hig. Med. Dosw. 1997. -V.51. - N 3. - P.319-328.
182. Bunting J., Phan T., Kamali E., Dowber R. Fluorescent cationic probes of mitohondria. Metrics and mechanism of interection // Biophis. J. 1989. - V. 56. - P. 979-993.
183. Burbenskaya N.M., Nartsissov Y.R., Tsofina L.M., Komissarova I.A. Theuncoupling effect of some psychotropic drugs on oxidative phosphorylation in rat liver mitochondria // Biochem. Mol. Biol. Int. 1998. - V.45. - N 2. - P. 261- 268.
184. Burgin R., Weizman R., Gavish M. Repeated swim stress and peripheral-type benzodiazepine receptors //Neuropsychobiol.-1996.-V.33.- N 1.- P. 28-31.
185. Burgin R., Weizman R., Gavish M. Repeated swim stress and peripheral-type Repeated swim stress and peripheral-type benzodiazepine receptors // Neuropsychobiology. 1996. - V. 33. -N 1. - P. 28-31.
186. Burlakova Ye.B., Pal'mina N.P., Mal'tseva Ye.L. Membrane Lipid Oxidation III // Ed. Vigo-Pelfrey C. Boca Ration: CRC Press, 1991. - P.209-239.
187. Capel I., Dorrel H., Smollwood A. The influence of cold-restraint stress on some components of the antioxidant defenence system in the tissues of rats of various ages // J. Toxicol. And Environ. Health. 1983. -V. 11. - P.425-436.
188. Carayon P., Portier M., Dussossoy D. et al. Involvement of peripheral benzodiazepine receptors in the protection of hematopoietic cells against oxygen radical .damage // Blood. 1996.- V. 87.- N 8.- P. 3170-3178.
189. Cardoso SM, Pereira C, Oliveira R Mitochondrial function is differentially affected upon oxidative stress // Free Radic. Biol. Med. 1999. - V. 26(1-2). - P.3-13.
190. Chan W. Cellular interactions of vitamin E cytokines and growth factors // Nutr.
191. Research. 1996. - V. 16. - №: 3. - P. 427-434.
192. Chance B., Wilims G.R. Respiratory enzymes in oxidativ phosphorylation. III.The stady-state //J. Biol.Chem. 1955. - V.217. - P.411-418.
193. Chen H.W., Lii C.K., Sung W.C., Ko Y.J. Effect of vitamin E on rat hepatic cytochrome P-450 activity // Nutr. Cancer. 1998. - V. 31. - N. 3. - P. 178-83.
194. Chow C.K., Ibrahim W., Wei Z., Chan A.C. Vitamin E regulates mitochondrial hydrogen peroxide generation // Free Radic. Biol. Med. 1999. - V. 27(5-6). - P. 580587.
195. Chugh Y., Saha N., Sankaranarayanan A., Sharma P.L. Possible mechanism of haloperidol-induced enhancement of memory retrieval // Methods Find Exp. Clin. Pharmacol. 1991.- V. - 13. - N 3. - P. 161-164.
196. Cohen A.J., Bartlik B. Ginkgo biloba for antidepressant-induced sexual dysfunction // J. Sex Marital Ther. 1998. - V. 24. - N 2. - P.139-143.
197. Constantinescu A., Maguire J.J., Packer L. Interactions between ubiquinones and vitamins in membranes and cells //Mol. Aspects Med . -1994. -V. 15. P. S57-S65.
198. Daniels W.M.L., Vanresburg S.J., Vanzyl J.M. Free radical scevengering effects of melatonin and serotonin: Possible mechanism // Neuroprot. -1996. -V. 7. N 10. - P. 1593-1596.
199. Das S., Patnaik B.K. Effect of age and partial water deprivation on lipid peroxidation in the brain of male garden lizard // Comparative Biochemistry and
200. Physiology B Biochemistry & Molecular Biology. - 1996. - V. 114.- N. - 4. - P. 361365.
201. Deliconstantinos G., Villiotou V., Stavrides J.C. Modulation of particulate nitric oxide synthase activity and peroxynitrite synthesis in cholester enriched endothelial cell membranes // Biochemical Pharmacology. 1995. - V. 49. - N 11. - P. 1589-1600.
202. Diamondstone T.Y. Assey of tyrosine transaminase activity by conversion of p-hydroxyphenilpyruvate to p-hydroxybensaldehyde // Anal. Biochem. 1966. - V.16. -N 3. - P.395-401.
203. Diplock A.T. Will the 'good fairies' please prove to us that vitamin E lessens human degenerative disease? // Free Radic. Res. 1997. - V.26. - N 6. P. 565-583.
204. Dobashi K., Pahan K., Chahal A., Singh I. Modulation of endogenous antioxidant enzymes by nitric oxide in rat C6 glial cells // J. Neurochem. 1997. - V. 68.- N 5. -P.1896-1903.
205. Duncombe W.G. The colorimetric micro-determination of non-esterified fatty acids in plasma // Clin. Chim.Acta. 1969. -V. 9. - N 2. - P. 122-125.
206. Dutta-Roy A.K. Molecular mechanism of cellular uptake and intracellular translocation of alpha-tocopherol: role of tocopherol-binding proteins // Food Chem.
207. Toxicol. 1999. - V. 37(9-10). - P. 967-971.
208. Eggleton P., Gargan R., Fisher D. Rapid method for the isoletion of neutrophils in high yield without the use of dextran or density gradient polymers // J. Immunol. Methods. 1989.-V. 121.-P. 105-113.
209. Engelke M., Bojarski P., Diehl H.A., Kubicki A. Protein-dependent reduction of the pyrene excimer formation in membranes // J. Membr. Biol.- 1996. V.153. - N 2. -P.117-123.
210. Esposito L.A., Melov S., Panov A., Cottrell B.A., Wallace D.C. Mitochondrial disease in mouse results in increased oxidative stress // Proc. Nat. Acad. Sci. U- S A . -1999. V.96. - N 9. - P.4820-4825.
211. Fazzio A., Marilley D., Azzi A. The effect of alpha-tocopherol and beta-tocopherol on proliferation, protein kinase C activity and gene expression in different cell lines // Biochem. Mol. Biol. Int. 1997. - V.41. - N 1. - P. 93-101.
212. Feingold I.B., Colby H.D. Sex differences in adrenal and hepatic alpha-tocopherol concentrations in rats // Pharmacology. 1992. - V.44. - N 2. - P. 113-116.
213. Feingold I.B., Longhurst P.A., Colby H.D. Effects of adrenocorticotropic hormone and dexamethasone on adrenal and hepatic alpha-tocopherol concentrations // Free Radic. Biol. 1999. - V.26. - N 5-6. - P.633-638.
214. Feingold I.B., Longhurst P.A., Colby H.D.Regulation of adrenal and hepatic alpha-tocopherol content by androgens and estrogens // Biochim. Biophys. Acta. 1993. -V.l 176. - N 1. - P.192-196.
215. Fletcher B.L., Dilard C.J., Tappel A.L. Measurement of fluorescent lipid peroxidation prodacts in biological sistems and tissues. Analit. Biohem. - 1973. - V. 52.-N 1.-P. 1-9.
216. Flohe L. Glutation: chemical, biohemical and medical aspects. Pt A: Coenzymes and cofactors/ Eds Dolphin D. Et al. N.Y.: J. Wiley and sons. 1989. - V. 3. - P. 643-679.
217. Florian V., Schonfeld P. Alteration of the ADP/ATP translocase isoform pattern improves ATPexpenditure in developing rat liver mitochondria // FEBS Lett. 1998. -V. 433.-N3.-P. 261-264.
218. Floyd R.A. The effect of peroxides and free radicals on body tissues // J. Am. Dent
219. Assoc.- 1997.-V. 128. P.37S-40S.
220. Forsmarkandree P., Lee C.P., Dallner G., Ernster L. Lipid peroxidation and changes in the ubiquinone content and the respiratory chain enzymes of submitochondrial particles // Free Radical Biology and Medicine. 1997. - V. 22. - N 3. - P. 391-400.
221. Fredriks W.M., Bosh K.S. Localization of superoxide dismutase axtivity in rat tissues // Free Radic. Biol. Med. -1997. V. 22. - № 1-2. r P. 241 - 248.
222. Fridovich I. Superoxide dismutases //Ann. Rev. Biochem. 1975. - V. 44. - P. 147159.
223. Gironcalle J., Zvizinski C.W., Shmid H.H.O. Peroxidaitiv damage to cardiac mitochondria.2. Immunoglobulin analisis of modifaied adenin nukleotide translocase // Arch. Biochem. Biophys. 1994. - V. 315. - P. 1-7.
224. Girotti A.W. Lipid hydroperoxide generation, turnover, and effector action in biological systems // J. Lipid Res. 1998. - V.39. - N 8. - P. 1529-42.
225. Qoebei g ? Dietrich M., Jarry H., Wuttke W. Indirect evidence to suggest that prolactin mediates the adrenal action of haloperidol to stimulate aldosterone and corticosterone secretion in rats // Endocrinology. 1992. - V. 130. - N 2. - P. 914-919.
226. Goncalves T.M., Fernandes L., Olivera C.R. Influence of membrane lipid peroxidation on neurotransmitter relise // J. Neurochem. -1989. -V.52. -N 1. -P. 204.
227. Goodman Y., Bruce A.J., Cheng B., Mattson M.P. Estrogens attenuate and corticosterone exacerbates excitotoxicity, oxidative injury, and amyloid beta-peptide toxicity in hippocampal neurons // Pharmazie. 1996. - V. 51. - N 1. - P. 51-53.
228. Gordon C.J., Rowsey P.J. Poisons and fever // Clin. Exp. Pharmacol Physiol. 1998. - V. 25. - N 2. - P.145-149.
229. Gorgani M.N., Pour-Rahimi F., Meisami E. Arrhenius plots of membrane-bound enzymes of mitochondria and microsomes in the brain cortex of developing and old rats//Mech. Ageing Dev. 1986. - V.35. - N1. - P.l-15.
230. Gottesfeld J.M., Bagi G., Berg B., Bonner J. Sequence composition of the template-active fraction of rat liver Chromatin // Biochemistry. 1976. - V. 15. - N 11. - P. 2472-2483.
231. Goubern M., Capey M.F., Portet R. Time-course variations of effective proton conductance and GDP binding in brawn adipose tissue mitochondria of rats prolonged cold exposure // Comp. Biochem. Physiol. 1991. - V. 100b. -N 4. -P. 727-732.
232. Green D.R., Reed J.C. Mitochondria and apoptosis // Science. 1998. - V. 281(5381). -P.1309-1312.
233. Grimble R.F. Effect of antioxidative vitamins on immune function with clinical applications // Int. J. Vitam. Nutr. Res. 1997. - V.67. - N 5. - P. 312-320.
234. Gromov L.A., Portniagina V.A., Sereda P.I., Bobkova L.S. Pharmacologic analysis of the free radical mechanism of poisoning-induced memory disorders // Exp. Neurol. -1994. V. 125. - N1. - P. 15-21.
235. Gudz T., Eriksson O., Kushnareva Y., Saris N.E., Novgorodov S. Effect of butylhydroxytoluene and related compounds on permeability of the inner mitochondrial membrane // Arch. Biochem. Biophys. 1997. - V. 342. - N 1. - P.143-156.
236. Habara Y, Kuroshima A Enhanced formation of cyclic AMP after cold acclimation in the rat//Jpn. J Physiol. 1987. - V.37. - N 6. - P. 1051-1056.
237. Halgberg F. Chronobiological glossary // Intern. J. Chronobiol. 1973. - V. 2. - N 1. -P.31-63.
238. Hart J.S. Insulative and metabolic adaptation to cold in vertebrates // Symp. Soc.Exp. Biol.-V. 18,-P.31-48.
239. Hart J.S., Jansky L. Thermogenesis due to exposure and cold in warm- and cold-acclimated rats //Can. J. Biochem. Physiol. -1963.- V.41.- P.629-636.
240. Hatanaka Y., Fujii J., Fukutomi T., Watanabe T., Che W., Sanada Y., Igarashi Y.,
241. Taniguchi N. Reactive oxygen species enhances the induction of inducible nitric oxide synthase by sphingomyelinase in RAW264.7 cells // Biochim. Biophys. Acta. 1998. -V.1393. - N 1. - P. 203-210.
242. Hazel J.R. Adaptation to temperature: phospholipid synthesis in hepatocytes of rainbow trout //Am. J. Physiol 1990.-V. 258.-N 6, Pt. 2. - P. R1495-501.
243. Hening B., Chow C.K. Lipid peroxidation and endotelial cell injury: Implications in aterosklerosis. review // Free Radical. Biol. Med. -1988. -V. 4. -P. 99-105.
244. Hermesh O., Kalderon B., Bar-Tana J. Mitochondria uncoupling by a long chain fatty acyl analogue //J. Biol. Chem. 1998. - V. 273. - N 7. - P. 3937-3942.
245. Herox O. Physiological adjustments responsible for metabolic cold adaptation and posible deleterious consequences // Rev. Can. Biol. -1974. V. 33. - N 3. -P. 209-222.
246. Hidalgo J., Gasull T., Garcia A., Blanquez A., Armario A. Role of glucocorticoids and catecholamines on hepatic thiobarbituric acid reactants in basal and stress conditions in the rat // Horm. Metab. Res. 1991. - V.23. - N 3. - P.104-109.
247. Hilbert J., Mohsenin V. Adaptation of lung antioxidants to cigarette smoking in humans//Chest.- 1996. V.l 10.-N 4. - P. 916-920.
248. Hirahara F. Trend of vitamin E // Nippon Rinsho. 1999. - V.57. -N 10. - P. 22362241.
249. Hochgraf E., Mokady S., Cogan U.Dietary oxidized linoleic acid modifies lipid composition of rat liver microsomes and increases their fluidity // J. Nutr. 1997. -V.127.-N5.-P. 681-686.
250. Hollander D., Dadufalza V. Lymphatic and portal absorption of vitamin E in aging rats//Dig. Dis. Sci. 1989. - V.34. - N 5. - P.768-772.
251. Hrycay E.G., Jonen H.G., Lu A.Y.Y., Levin W. Reconstitution of the reduced nicotinamide adenine dinucleotide-peroxidase activities from solubilised components of rat liver // Arch. Biochem. Biophys. -1975. -V. 166. P. 145-151:
252. Jansky L. Nonshivering thermogenesis //Ed. Jansky L. Prague: Academia, 1971. -• P.159-172.
253. Jezek P., Engstova H., Zackova M., Vercesi A.E., Costa A.D., Arruda P., Garlid K.D. Fatty acid cycling mechanism and mitochondrial uncoupling proteins // Biochim. Biophys. Acta. 1998. - V. 1365.-N 1-2. - P.319-327.
254. Jezek P., Garlid K.D. Mammalian mitochondrial uncoupling proteins // Int. J.
255. Biochem. Cell. Biol. 1998. - V. 30. - N11. - P.l 163-1168.
256. Joseph-Liauzun E., Delmas P., Shire D., Ferrara P. Topological analysis of the peripheral benzodiazepine receptor in yeast mitochondrial membranes supports a flve-transmembrane structure // J. Biol. Chem. 1998. - V. 273. - N 4. - P. 2146-2152.
257. Kagan V.E., Serbinova E.A, Stoyanovsky D.A., Khwaja S., Packer L. Assay of ubiquinones and ubiquinols as antioxidants Oxygen Radicals in Biological Systems, Pt D / Series: Methods in Enzymology. 1994. - V. 234. - P. 343-354.
258. Kalabukhov N.I. Effect of vitamin E (tocopherol) and vitamin C (ascorbic acid) on hibernating rodents // Fed. Proc. Transl. Suppl. 1965. - V. 24. - N 5. - P. 851-857.
259. Kanno T., Utsumi T., Takehara Y., Ide A., Akiyama J., Yoshioka T., Horton A.A., Utsumi K. Inhibition of neutrophil-superoxide generation by alpha-tocopherol and coenzyme Q // Source Free Rad. Research . 1996. - V. 24. - N 4. - P. 281-289.
260. Kanter M. Free radicals, exercise and antioxidant supplementation // Proc. Nutr. Soc. 1998.-V.57.-N 1.-P.9-13.
261. Kawabata A., Hata T. Possible involvement of oxygen-derived free radicals in .abnormal hemostasis induced by SART stress (repeated cold stress) in laboratory animals //Thromb. Res. 1993. - V. 72. -N 4. - P.321-331.
262. Kawasaki T. Antioxidant function of coenzyme Q // J. Nutr. Sci. Vitaminol. (Tokyo). 1992. - Spec No. - P.552-555.
263. Kim J.D., McCarter R.J., Yu B.P. Influence of age, exercise, and dietary restriction on oxidative stress in rats // Aging (Milano). 1996. - V. 8. - N 2. - P.123-129.
264. Korshunov S.S., Korkina O.V., Ruuge E.K., Skulachev V.P., Starkov A.A. Fatty acids as natural uncouplers preventing generation of O^. and H2O2 by mitochondria in the resting state //FEBS Lett.-1998. V.435. -N 2-3. - P.215-218.
265. Korshunov S.S., Skulachev V.P., Starkov A.A. High protonic potential actuates a mechanism of production of reactive oxygen species in mitochondria // FEBS Lett. -1997. -V. 416. -N 1.-P.15-18.
266. Kovacs P., Juranek I., Stankovicova T., Svec P. Lipid peroxidation during acute stress//Pharmazie. 1996 - V. 51-N 1. - P. 51-53.
267. Kowaltowski A.J., Vercesi A.E. Mitochondrial damage induced by conditions of oxidative stress // Free Radic. Biol. Med.- 1999. V. 26. - N 3-4. - P. 463-71.
268. Kreinhoff U., Elmadfa I., Salomon F., Weidler B. Antioxidant status after surgical stress \\ Infusionstherapie. 1990. - V. 17. - N 5. - P.261-267.
269. Kretzschmar M., Muller D. Aging, training and exercise. A review of effects on plasma glutathione and lipid peroxides // Sports Med. 1993. - V. 15. - N 3. - P. 196209.
270. Krueger K.E. Molecular and functional properties of mitochondrial benzodiazepine receptors // Biomembranes. 1995. - V. 1241.-P. 3-11.
271. Kuroshima A., Doi K., Yahata T. Impruved cold tolerance and its mechanism in cold-acclimatid rats by high fat diet feeding // Can. J. Physiol. Pharmacol. 1977. - V. 55.-N4.-P. 943-950.
272. Kuroshima A., Haraba Y., Uehara A., Murazumi K., Yahata T., Ohno T. Cross • adaptation betveen stress and cold in rars // Pflugers Arch. 1984. - V. 402. - P.402-408.
273. Lande M.B., Donovan J.M., Zeidel M.L. The relationship between membrane fluidity and permeabilities to water, solutes, ammonia, and protons // J. General Physiol. 1995. -V. 106. - N 1. - P. 67-84.
274. Lass A., Sohal R.S. Electron transport-linked ubiquinone-dependent recycling of alpha-tocopherol inhibits autooxidation of mitochondrial membranes // Arch. Biochem. Biophys. 1998. - V. 352. - N 2. - P.229-236.
275. Laval J. Role of DNA repair enzymes in the cellular resistance to oxidative stress // Pathol. Biol. (Paris). 1996. - V.44. - N 1. - P.14-24.
276. LeBlanc J. Adaptation to cold in three hours //Amer. J Physiol. 1967, - V. 212. - P. 530-541.
277. LeBlanc J. Stress and interstress adaptation // Federat. Proc. 1969. - 28. -V. 28. - N 3. - P. 996-1000.
278. Leeuwenbrugh C., Ji L.L. Glutathione depletion in rasted and exercised mice: biochemical consequence and adaptation // Archives Bioch. Biophys. 1995. - V. 316. -N2.-P. 941-949.
279. Lester D.S. In vitro linoleic acid activation of protein kinase C // Biochim. Biophys. Acta. 1990. - V. 1054. - N 3. - P. 297-303.
280. Lester D.S., Bramham C.R. Persistent, membrane-associated protein kinase C: from model membranes to synaptic long-term potentiation // Cell. Signal. 1993. - V. 5. - N 6.-P. 695-708 .
281. Li R.K., Cowan, Mickle D.A.G., Weisel R.D., Burton G.W. Effect of vitamin E on human glutathione peroxidase (GSH-Pxl) expression in cardiomyocytes // Free Rad. Biol. Med. -1996. V. 21. - N 4. - P. 419-426. .
282. Lii C.K., Sung W.C., Ko Y.J., Chen H.W. alpha-Tocopherol acetate supplementation enhances rat hepatic cytochrome PROD activity in the presence of phenobarbital induction // Nutr. Cancer. 1998. - V.32. - N 1. - P.37-42.
283. Lipid Peroxides in Biology and Medicine /Ed. Yagi K. N.Y.: Acad. Press. 1982. -355 p.
284. Liu J., Wang X, Shigenaga M.K., Yeo H.C., Mori A., Ames B.N. Immobilization stress causes oxidative damage to lipid, protein, and DNA in the brain-of rats // FASEB J. 1996. - V.10 (13). - P.1532-1538.
285. Liverini G., Goglia F., Lanni A., Iossa S., Barletta A. Elevated hepatic mitochondrialoxidatiove capacities in cold exposured rats //Comp.Biochem. Physiol. -B: Comp. Biochem. 1990. - V. 97. - N.2. - P. 327-331.
286. Lowry O.N., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein mezurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. - V. 193. - N 1. -P. 265-275.
287. Lucas D.T., Szweda L.I. Cardiac reperfusion injury: aging, lipid peroxidation, and mitochondrial dysfunction // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1998. V. 95. - N 2. -P.510-514.
288. Luz J., Griggio M.A. The effect of benzodiazepine on the increase of oxygen consumption in cold exposed rats // Comp. Biochem. Physiol. 1988. - V. 90. - N 1. -P. 151-153.
289. Maes M., Weeckx S., Wauters A., Neels H., Scharpe S., Verkerk R., Demedts P., Desnyder R. Biological variability in serum vitamin E concentrations: relation to serum lipids// Clin. Chem. 1996. - V.42. - N 11. - P. 1824-1831.
290. Mak I.T., Shrago E., Elson C.E. Modification of liver mitochondrial lipids and adenin nucleotide translocase and oxidativ phosphorilation by cold adaptation // Biochem. Biophys. Acta. 1983. - V.722. -N. 2. -P.302-309.
291. Marchetti P., Hirsch T., Zamzami N., Castedo M., De.caudin D., Susin S.A., Masse B., Kroemer G. Mitochondrial permeability transition triggers lymphocyte apoptosis // J. Immunol. 1996,-V. 157.-N 11.-P. 4830-4836.
292. Marin R.H., Arce A., Martijena I.D. Recruitment of peripheral-type benzodiazepine membranes receptors after acute stress in chick forebrain: Action of Triton X-100 // Neurochemistry International. 1996. - V.28. - N 4. - P. 425-429.
293. Marmunti M., Catala A. Non-enzymatic lipid peroxidation of rat liver nuclei and chromatin fractions // Int. J. Biochem. Cell Biol. 1998. - V.9. -.P.967-972.
294. Mataix J., Quiles J.L., Huertas J.R., Battino M., Manas M. Tissue specificinteractions of exercise, dietary fatty acids, and vitamin E in lipid peroxidation // Free Radic. Biol. Med. 1998. - V.24. - N 4. - P. 511-521.
295. Maurer I., Moller H.J. Inhibition of complex I by neuroleptics in normal human brain cortex parallels the extrapyramidal toxicity of neuroleptics // Mol. Cell Biochem. -1997 -V. 174. N 1-2. - P. 255-259.
296. Medvedev A.E., Gorkin V.Z. Endogenous stimulation of lipid peroxidation in brain increases proteolytic inactivation of mitochondrial monoamine oxidases // Int. J. Dev. Neurosci.- 1994. V. 12. - N 2. - P.151-155.
297. Medvedev A., Kirkel A., Kamyshanskaya N., Gorkin V. Lipid peroxidation affects catalytic properties of rat liver mitochondrial monoamine oxidases and their sensitivity to proteolysis // Int. Biochem. 1993. - V. 25. - N 12. - P.1791-1799.
298. Mennini T., Ceci A., Caccia S., Garattini S., Masturzo P., Salmona M. Diazepam increases membrane fluidity of rat hippocampus synaptosomes // FEBS Lett. 1984. -V. 23. - N 173. - N 1. - P. 255-258.
299. Meydani M., Meisler J.G. A closer look at vitamin E. Can this antioxidant prevent chronic diseases? // Postgrad. Med. 1997. - V.102. - N 2. - P.199-201.
300. Meydani S.N., Santos M.S., Wu D., Hayek M.G. Antioxidant modulation of cytokines and their biologic function in the aged // Z. Ernahrungswiss. 1998. - V.37. -N 1.-P. 35-42.
301. Miura T., Muraoka S., Ogiso T. Inhibition of lipid peroxidation by estradiol and 2-hydroxyestradiol // Steroids. -1996. -V. 61. N 6 .- P. 379-383 .
302. Miura T., Muraoka S.,Ogiso T. Inhibition of lipid peroxidation by estradiol and 2
303. Hydroxyestradiol //Steroids. -1996. -V.61. N 6. - P. 379-383.
304. Mori Y., Hatamochi A., Takeda K., Ueki H. Effects of tretinoin tocoferil on gene expression of the extracellular matrix components in human dermal fibroblasts in vitro // J. Dermatol. Sci. 1994. - V. 8. - N 3. - P. 233-238.
305. Murray C.A., Lynch M.A. Dietary supplementation with vitamin E reverses the age-related deficit in long term potentiation in dentate gyrus // J. Biol. Chem. 1998. - V. 273.-N20.-P. 12161-8.
306. Nagashima T., Ohinata H., Kuroshima A. Involvement of nitric oxide in oradrenaline-induced increase in blood flow through brown adipose tissue // Life Sci. -1994.- V. 54. N1. - P.17-25.
307. Naito J., Hartung E., Schramm E., Inselmann G. Heat stress produces an early phase of protection against oxidative damage in human muscle // Acta Anaesthesiol. Scand. -1999,-V. 43.-N. 1.-P. 77-81.
308. Nakamura H., Takada S., Shimabuku R., Matsio T., ObaraH. Effect of vitamin E on the response of lung antioxidant enzymes in young rats exposed to hyperoxia // Kobe J.Med Sci. 1987. -V. 33.- P.53-63.
309. Negre-Salvayre A., Hirtz C., Carrera G., Cazenave R., Troly M., Salvayre R., Penicaud L., Casteilla L. A role for uncoupling protein-2 as a regulator of mitochondrial hydrogen peroxide generation // FASEB J. 1997. - V. 11. - N 10. - P. 809-815.
310. Neuzil J., Svensson I., Weber T., Weber C., Brunk U.T. alpha-tocopheryl succinate-induced apoptosis in Jurkat T cells involves caspase-3 activation and both lisosomsl and mitochondrial destabilisation // FABS Lett. -1999. V. 445. -N 2-3. - P. 295-300.
311. Nilova N.S., Polezhaeva L.N. Peroxidative oxidation of lipids in slices of olfactory cortex of the rat brain during long-term potentiation // Neurosci. Behav. Physiol. -1996.-V. 26. N 1. - P. 14-23.
312. Noack H., Kube U, Augustin W Relations between tocopherol depletion andcoenzyme Q during lipid peroxidation in rat liver mitochondria // Free Radic. Res. -1994.-V. 20. -N6. -P. 375-386.
313. Pandit M., Pramanik M., Banerjee A. Antistress activity of P-GABA in experimental animals // Indian J. Exp. Biol. 1996. - V.34. - N.l. - P.37-40.
314. Panin L.E., Shabalina I.G., Kolpakov A.R., Kolosova N.G., Solovyov V.N. Effect of the long-term cold exposure on energetics of rat liver mitochondria // Phisico-Chemical Biol.and Med. 1996. - V.2. - N 1. - P. 27-35.
315. Panin L.E., Kuzmenko D.I., Kolpakov A.R., Dobronravova O.V., Kolosova N.G. Influence of apoproteins of serum lipoproteins on bioenergetic functions of liver mitochondria // Physico-Chemical Biol, and Medicine. 1995. - V.2. - N 1. P.27-.35.
316. Papa S., Skulachev V.P. Reactive oxygen species, mitochondria, apoptosis and agig. Molec. Cell. Biochem. - 1997. - V. 174. - P.305-319.
317. Patnaik R.N. Localization of alpha-tocopherol in hepatic chromatin from rats maintained on a tocopherol-deficient diet // Int. J. Biochem. 1981. - V. 13. - N 10. -P.1087-1094.
318. Patnaik R.N., Nair P.P. Binding of D-alpha-tocopherol to rat liver nuclear components // Experientia. 1975. - V. 31. - N 9. - P.1023-1024.
319. Patnaik R.N., Nair P.P. Studies on the binding of d-alpha-tocopherol to rat liver nuclei // Arch. Biochem. Biophys. 1977. - V.178. - N 2. - P. 333-341.
320. Patton J.F., Platner W.S.Cold acclimation and thyroid effect on liver fatty acids // Amer. J. Physiol. 1970. - V. 218. - P. 1417-1422.
321. Perillo M.A., Garcia D.A., Arce A. Partitioning of 1,4-benzodiazepines into natural membranes // Mol. Membr. Biol. 1995. - V. 12., N 2. P. 217-224.
322. Petrovic V.M., Gudz T., Saicic Z. Selectiv effect of noradrenaline on superoxide dismutase activity in brown adipose tissue and liver of rat // Experimentia. -1981. V. 37.-N l.-P. 14.
323. Polla B.S., Kantengwa S., Francois D. Mitochondria are selective targets for the protective effects of heat shock against oxidative injury // Proc. National Acad. Sciences of USA. 1996. - V. 93. - N 13. - P. 6458-6463.
324. Popova N.K., Naumenko E.V., Lobacheva II., Maslova L.N. Serotonin in different kinds of stress // Progr. In: Neuroendocrinology. Ed. Parvez H., Parves S., Gupta D. -Utrecht: VNU Sci. Press. - 1985. - P. 235-260.
325. Pryor W.A. Free radical reactions in reactions in biology: Initiation of lipid autoxidation by ozone and nitrogen dioxide // Environ. Health Perspect. -1976. -V. 16. -N l.-P. 180-181.
326. Raber J., Bast A. Changes in receptor response by the effect of disease on membrane fluidity // Med. Hypotheses. 1989. - V. 28. - N 3. - P.169-171.
327. Rafael J., Nicholls D.G. Mitochondrial membrane potential monitored in situ within isolated guinea pig brown adipocytes by a styryl pyridinium fluorescent indicator // FEBS Let. 1984. -V. 170. - N1. - P. 181-185.
328. Rauen U., Polzar B., Stephan H., Mannherz H.G., de Groot H. Cold-inducedapoptosis in cultured hepatocytes and liver endothelial cells: mediation by reactive oxygen species//FASEB J. 1999.- V. 13. -N 1. - P.l55-168.
329. Reddy K.V., Kumar T.C., Prasad M., Reddanna P. Pulmonary lipid peroxidation and antioxidant defenses during exhaustive physical exercise: the role of vitamin E and selenium // Nutrition. 1998. - V. 14. - N 5. - P. 448-451.
330. Reed H.L., Silverman E.D., Shakir K.M.M., Dons R., Burman K.D., O'Brain J.T. Changes in serumtriiodtironin (T3) kinetiks after prolonged Antarctic residence: the polar T3 syndrome // J. Clin. Endocrinol. Netab. 1990. -V. 70. -N 4. - P. 965-974.
331. Rego A.C., Oliveira C.R.Influence of lipid peroxidation on 3H.ketanserin binding to 5-HT2 prefrontal cortex receptors // Neurochem. Int. 1995. - V. 27. - N 6. - P. 489496.
332. Reinheckel T., Wiswedel I., Augustin W. Short-term impairment of energy production in isolated rat liver mitochondria by hypoxia/reoxygenation: involvement of oxidative protein modification // Biochem. J. 1997. - V. 328 ( Pt. 1). - P. 205-210.
333. Richter C., Gogvadze V., Laffranchee R. Et al. //Biochim. Et biophys. Acta. 1995. -V. 1271.-P. 67-74.
334. Rottenberg H., Wu S.Quantitative assay by flow cytometry of the mitochondrial membrane potential in intact cells // Biochim. Biophys. Acta. 1998. - V. 1404. - N 3. - P.393-404.
335. Rouser C.Y., Scott W.H., Griffith O.W. et al. Glutathione effect on lipid peroxidation and phagocytizing peritoneal macrophages // J. Biol. Chem. 1982. - V. 5. -N4.-P. 2002-2008.
336. Rubbo H., Darleyusmar V., Freeman B.A. Nitric oxide regulation of tissue free radical injury // Chemical. Research, in Toxicology. 1996. - V. 9. - N 5. - P. 809820.
337. Ryter S.W., Tyrrell R.M. Singlet molecular oxygen ((1)02): a possible effector of eukaryotic gene expression // Free Radic. Biol. Med. 1998. - V. 24. - N 9. - P. 15201534.
338. Scholz R.W., Saini A.K., Reddy P.C., Reddy C.C. Dietary vitamin E and selenium effects on resistance to oxidative stress in rat liver mitochondria // Biochem. Mol. Biol. Int. 1994. - V. 34. - N 6. - P. 1215-1225.
339. Scholz RW, Saini AK, Reddy PC, Reddy CC Dietary vitamin E and selenium effects on resistance to oxidative stress in rat liver mitochondria. // Biochem. Mol. Biol. Int. -1994. V. 34. - N 6. - P. 1215-1225.
340. Seifter S., Dayton S., Novic B. The estimation of glycogen with the antron reagent //
341. Arch. Biochem. 1950. -V. 17. - N 2. - P. 217-222.
342. Sen C.K., Atalay M., Agren J., Laaksonen D.E., Roy S., Hanninen O. Fish oil and vitamin E supplementation in oxidative stress at rest and after physical exercise // J. Appl. Physiol. 1997. - V. 83. - N 1. - P. 189-195.
343. Sigounas G., Anagnostou A., Steiner M. dl-alpha-tocopherol induces apoptosis in erythroleukemia, prostate, and breast cancer cells // Nutr. Cancer. 1997. - V. 28. - N 1. -P. 30-35.
344. Simonyan R.A., Skulachev V.P. Thermoregulatory uncoupling in heart muscle . mitochondria: involvement of the ATP/ADP antiporter and uncoupling protein // FEBS1.tt. 1998. - V.436. - N 1. - P. 81-84.
345. Skulachev V.P. Membrane-linked systems preventing superoxide formation // Biosci. Rep. 1997. -V. 17. - N 3. - P. 347-366.
346. Skulachev V.P. Uncoupling: new approaches to an old problem of bioenergetics // Biochim. Biophys. Acta. 1998. - V.1363. - N 2. - P. 100-124.
347. Slater A.F., Nobel C.S., Orrenius S. The role of intracellular oxidants in apoptosis // Biochim. Biophys. Acta. 1995. - V. 1271. -N 1. - P. 59-62.
348. Sohal R.S., Svensson I., Sohal B.N., Bruk U.T. Superoxide anion radical produktion ' in different animal species // Mechanisms of Aging and Devel. 1989. -V. 49. - P. 129135.
349. Suzuki Y.J., Forman H.L., Sevanian A. Oxidanys as stimulators ofsignaltransduction//Free Radical. Biol. Med. 1997. -V. 22. -N 1. - P. 269-285.
350. Talan M.I., Engel B.T., Whitaker J.R. Age related decline in cold tolerance can be retarded by brain stimulation // Physiol. And Benav. 1984. -V. 33. - N 6. - P. 969-973.
351. Taniguchi H., Imai Y., Sato R. // Protein-protein and lipid-protein interactions in a reconstituted cytochrome P-450 dependent microsomal monooxygenase // Biochemistry 1987.-V. 26(22). P.7084-7090.
352. Tappel A.L. Biological antioxidant protection against lipid peroxidation damage // Am. J. Clin. Nutr. 1970.-V. 23.-N8. -P. 1137-1139.
353. Tata J.R. Preperation and propeties of microsomal fraction from animal eels // Subcellular Component // Eds Burnie G.D., Fox S.M. London. - Butterworth. -1969. -P. 83-107.
354. Teylor S.L., Lamden M., Tappel A.L.Seneitive fluorometric method for tissue tocopherol analisis // Lipids. -1976. V.l 1. - N 7. - P. 530-538.
355. Toleikis P.M., Godin D.V. Alteration of antioxidant status following sympathectomy: differential effects of modified plasma levels of adrenaline and noradrenaline // Mol. Cell. Biochem. 1995. - V. 152. - N 1. - P. 39-49.
356. Tomas S., Gebiski J., Dean R. Radical initiated a-tocopherol depletion and lipid peroxidation in mitochondrial membranes // Bioch. Biophys. Acta. 1989. - V. 1002. -P. 189-197.
357. Traber M.G. Utilization of vitamin E // Biofactors. 1999. - V.10 (2-3). - P. 115-20.
358. Traber M.G., Arai H. Molecular mechanisms of vitamin E transport // Annu. Rev. Nutr.- 1999.- V.19.-P.343-355.
359. Tretter L., Adamvizi V. Early events in free radical-mediated damage of isolated nerve terminals: Effects of peroxides on membrane potential and intracellular Na+ and Ca+ concentrations Source // J. Neurochemistry. -1996. -V.66. -N 5. P. 2057-2066.
360. Tripathi Y.B., Chaurasia S., Tripathi E., Upadhyay A., Dubey G.P. Bacopa monniera Linn, as an antioxidant: mechanism of action. Learning and brain membrane fluidity // Indian J. Exp. Biol. -1996. V.34. - N 6. - P.523-526.
361. Trumper L., Noack H., Augustin W. Verhalten des glutathionsystems under
362. Fe2/ascorbat-induzirter peroxidation von rattenlebermitochondrien // Wiss. Z. Humbolt-Univ. Berlin. 1989. -V. 38. - № 1. - P. 64-68.
363. Tyurina Y.Y., Tyurin V.A., Avrova N.F. Ganglioside GM1 protects cAMP 3'5': phosphodiesterase from inactivation caused by lipid peroxidation in brain synaptosomes of rats // Mol. Chem. Neuropathol. 1993 . -V. 19. -N 3. - P. 205-217.
364. Vedder H., Anthes N., Stumm G., Würz C., Behl C., Krieg J.C. Estrogen hormones reduce lipid peroxidation in cells and tissues of the central nervous system // J. Neurochem.- 1999.-V.72. N 6. - P. 2531-2538.
365. Vladimirov Yu.A., Olenev V.l., Suslova T.B., Cheremisina Z.P. Lipid peroxidation in mitochondrial membrane // Adv. Lipid. Res. 1980. - V. 17. - P. 173-249.
366. Vladimirov Yu.A. Free radical peroxidation in biomembranes: mechanism, regulation and biological consequences // In: Free radicals, aging and degenerative disease. N.Y. - London: Alan r. Lissinc. - 1986. - P. 141-195.
367. Walther F.J., David-Cu R., Mehta E.I., et al. Higher lung antioxidant enzyme activity persists after single dose of corticosteroids in preterm lambs // Am. J. Physiol. -1996,-V. 271,-N2, Pt 1.-P.L187-L191.
368. Wang J.F., Spitzer J.J. Alcohol-induced thymocyte apoptosis is accompanied by impaired mitochondrial function // Alcohol. 1997. - V. 14. - N 1. - P. 99-105 .
369. Wang J.F., Jerrells T.R., Spitzer J.J. Decreased production of reactive oxygen intermediates is an early event during in vitro apoptosis of rat thymocytes // Free Radic. Biol. Med. 1996. - V.20. - N 4. - P. 533-542.
370. Wei Q., Yeung M., Jurma O.P., Andersen J.K. Genetic elevation of monoamineoxidase levels in dopaminergic PC 12 cells results in increased free radical damage and sensitivity to MPTP // J. Neuroscience Research. 1996. -V. 46. N 6. - P. 666-673.
371. Wei Y.H. Oxidative stress and mitochondrial.DNA mutations in human aging // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1998. - V. 217. -N 1. - P. 53-63.
372. Weinbach E.C. A procedure for isolating stable mitochondria from rat liver and kindey//Anal. Biochem.-1961. V.2.-N 4.-P. 335-343.
373. White A.C., Maloney E.K., Boustani M.R., Hassoun P.M., Fanburg B.L. Nitric oxide increases cellular glutathione levels in rat lung fibroblasts // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 1995.- V. 13.-N 4.-P. 442-448.
374. Whiting K.P., Brain P.F., Restall C J. Steroid hormone.induced effects on membrane fluidity // Biochem. Soc. Trans. 1995. - V. 23. - N 3. P. 438S.
375. Woods M.J., Williams D.C. Multiple forms and locations for the peripheral-type benzodiazepine receptor // Biochem. Pharmacol. 1996. - V. 52. - N 12. - P. 18051814.
376. Wortwein G., Stackman R.W., Walsh T.J. Vitamin E prevents the place learning deficit and the cholinergic hypofunction induced by AF64A // Brain Res. 1993. - V. 604.-N 1-2.-P. 173-179.
377. Xie Z., Sastry B.R. Induction of hippocampal long-term potentiation by alpha-tocopherol//Brain Res. 1993,- V. 604.-N 1-2. - P. 173-179.
378. Yang N.J., Desai I.Glutathione peroxidase and vitamin E interreletionsip // In: Tocopherol, oxigen and biomembranes. Norton-Holland Biomed. Press. 1978. -P.233244.
379. Yehuda S., Brandys Y., Blumenfeld A., Mostofsky D.I. Essential fatty acid preparation reduces cholesterol and fatty acids in rat cortex // Int. J. Neurosci. 1996. -.V. 86.-N 3-4.-P. 249-256.
380. Ying W. Deleterious network hypothesis of aging // Med. Hypotheses. 1997. - V. 48. -N 2. - P.143-148.
381. Zakim D., Kavecansky J., Scarlata S. Are membrane enzymes regulated by the viscosity of the membrane environment? //Biochemistry. 1992. - V. 31(46). -P.11589-11594.
382. Zilz A., Li H., Castello R., Papadopoulos V., Widmaier E.P. Developmental expression of the peripheral-type benzodiazepine receptor and the advent of steroidogenesis in rat adrenal glands // Endocrinology. 1999. - V. 140. - N 2. - P. 859864 .
383. Zorov D.B.Mitochondrial damage as a source of diseases and aging: a strategy of how to fight these // Biochim. Biophys. Acta. 1996. - V.1275. - N 1-2. - P. 10-15.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.