Механизмы организации движения у крыс в условиях моделирования спинальной травмы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Балтин Максим Эдуардович

• Балтин Максим Эдуардович
• кандидат наук
• 2024

Оглавление диссертации кандидат наук Балтин Максим Эдуардович

ВВЕДЕНИЕ

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Клиническая картина после травмы спинного мозга

1.2 Патогенез травматической болезни спинного мозга

1.3 Проводящие пути спинного мозга и их модуляция

1.4 Глюкокортикоиды, как средства терапии

1.5Использование полимерных систем как способа доставки глюкокортикоидов 37 1.6 Метод оценки локомоции при помощи видеоанализа движения

2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2. 1 Объект исследования и биоэтические нормы

2.2 Хирургические процедуры

2.2.1 Модель травмы спинного мозга

2.2.2 Нанесение геля в декомпрессионное окно после ламинэктомии

2.2.3 Введение метилпреднизолона

2.2.4 Имплантация электродов

2.3 Методы исследования

2.3.1 Оценка двигательной функции в открытом поле с помощью шкалы Бассо, Битти и Бреснахан

2.3.2 Метод видеоанализа движения на платформе У1ШП

2.3.3 Электромиографическое тестирование

2.3.3.1 Регистрация вызванных мышечных ответов при стимуляции седалищного нерва

2.3.3.2 Регистрация вызванных мышечных ответов при эпидуральной стимуляции спинного мозга

2.3.4 Гистологические методы

2.3.4.1 Оценка количества родамина 123, доставленного в спинной мозг

2.3.4.2 Гистологическая оценка структур спинного мозга

2.3.5 Оценка количества метилпреднизолона в тканях спинного мозга методом Масс-спектрометрии

2.4 Организация эксперимента и экспериментальные группы

2.4.1 Эксперимент

2.4.2 Эксперимент

2.5 Статистические методы

3 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

3.1 Анализ двигательной активности по системе скрининга БББ

3.2 Параметры моторного (М-) и рефлекторного (Н-) ответов икроножной мышцы крысы в условиях моделирования спинальной травмы при внутривенном введении метилпреднизолона

3.3 Оценка доставки модельного флуорофора (родамина 123) в неповрежденные ткани спинного мозга у крысы

3.4 Оценка содержания метилпреднизолона в тканях спинного мозга

3.5 Оценка состояния серого и белого вещества поясничного (L2) сегмента спинного мозга после контузии на уровне Th8 при локальной аппликации метилпреднизолона в комплексе с сополимером у крыс

3.6 Изменение параметров вызванных ответов мышц задней конечности на

эпидуральную стимуляцию спинного мозга у крыс

3.8 Оценка локомоции в системе Vicon

4 ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

ПРИЛОЖЕНИЕ А

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

В настоящей диссертационной работе применяются следующие сокращения и обозначения:

АТФ - аденозинтрифосфат

БББ - оценка движения задних конечностей крысы по шкале Бассо, Битти и Бреснахан (англ. D.M. Basso, M.S. Beattie, J.C. Bresnahan)

ВПСП - возбуждающий постсинаптический потенциал

ВЭЖХ-МС/МС - Высокоэффективная жидкостная хроматография электрораспылительной ионизации в сочетании с тандемной масс-спектрометрией

ГЭ - гематоксилина и эозина раствор, краситель

ДЕ - двигательная единица

ДМСО - диметилсульфоксид

ИМ - икроножная мышца

КМ - камбаловидная мышца

ЛП - латентный период

ЛСКМ - лазерная сканирующая конфокальная микроскопия

МВО - моторные вызванные ответы мышц на эпидуральную стимуляцию спинного мозга

МП - метилпреднизолон

МПС - метилпреднизолона натрия сукцинат

НАДФН-оксидаза - Никотинмидадениндинуклеотидфосфат - оксидаза, NOX, с англ. nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase

НЧ - наночастицы

ПО - пропиленоксид

ПОЛ - перекисное окисление липидов ПЦО - положение центра объема СМ - спинной мозг ТР - двигательная тренировка ТСМ - травма спинного мозга ЦНС - центральная нервная система ЦОГ-2 - циклооксигеназа-2 ЭМГ - электромиография ЭО - этиленоксид

ЭР - эндоплазматический ретикулум

ЭЭС - эпидуральная электрическая стимуляция

PLGA - полимолочная со-гликолевая кислота, с англ. poly(lactic-co-glycolic) acid

RIPK - протеинкиназа, с англ. receptor-interacting protein kinase

TNFR - рецептор фактора некроза опухоли, с англ. tumor necrosis factor receptor

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Механизмы организации движения у крыс в условиях моделирования спинальной травмы»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы исследования и степень ее разработанности.

Пояснично-крестцовый отдел спинного мозга содержит нервные цепи, которые могут генерировать активность, запускающую локомоцию нижних конечностей у различных видов животных [гашйгуеую & а!., 1998; Каёеаи & а!., 2010]. Схема спинного мозга, которая контролирует передвижение, включает генераторы ритма для каждой конечности, расположенные в пределах левой и правой половин поясничного и шейного отделов спинного мозга. Эти генераторы ритма работают под контролем супраспинальных входов и сенсорной обратной связи и определяют чередующуюся активность сгибателей и разгибателей каждой конечности ^уЬак & а!., 2015; Юекп, 2016]. Анализ локомоторной активности важен для понимания организации и работы спинальных цепей и их нисходящего контроля как в нормальных условиях, так и после двигательных расстройств и травм ^ИераЫ & а!., 2021]. Способность центральной нервной системы (ЦНС) трансформироваться в процессе развития и адаптироваться после нервного повреждения еще полностью не изучена и не оценена количественно [Sadowsky, Бауепко, 2022].

Спинальные нейроны получают активирующие сигналы от мозга и способны создавать ритмы и модели передвижения, которые передаются мотонейронам, а затем мышцам туловища и мышцам конечностей, как впервые было показано Томасом Грэмом Брауном более 100 лет назад на кошке [Brown, 1911]. Несколько российских научных групп изучает локомоции на моделях позвоночных животных, расширяя наше понимание организации спинальных локомоторных сетей у млекопитающих [Богачева и др., 2012; Ляховецкий и др., 2016; Павлова и др., 2019; Вещицкий и др., 2022; Шевченко и др., 2023; Мш1епко & а!., 2012; 2014; 2022; Ыашоу & а!., 2017; Баёееу & а!., 2021; Ыашоу & а!., 2022], в том числе и в Казанском университете [Алатырев и др., 1982; Плещинский, Алексеева, 1996; Еремеев и др., 2001; Балтина и др., 2005; Яфарова и др., 2008; Еремеев и др., 2011].

Моделирование травмы спинного мозга (ТСМ) на животных интересны для изучения механизмов нейронной пластичности и используются при оценке двигательных функций [Alizadeh et al., 2019; Brown, Martinez, 2019; Streeter et al., 2020]. Наиболее часто используемым методом повреждения при моделировании ТСМ является полное пересечение [Onifer et al., 2007]. Однако, считается, что именно контузионная травма, вызванная ударом ускоряющегося стержня по спинному мозгу, имеет клиническое значение, поскольку довольно точно моделирует часто встречаемые травмы спинного мозга у человека [Metz et al., 2000]. Крыса остается ключевым экспериментальным животным в исследованиях спинного мозга, так как у крыс развиваются симптомы, подобные тем, которые наблюдаются у людей после ТСМ [Kjell, Olson, 2016; Mattucci et al., 2021; Liu et al., 2022]. Большинство видов способны к частичному или полному восстановлению двигательной активности после ТСМ, демонстрируя присущую спинным сенсомоторным сетям способность организовывать локомоции даже при отсутствии части или всех нисходящих команд и нейромодуляции [Rossignol et al., 1996; Merlet et al., 2021]. Известно, что пластичность может запускаться спонтанно у животных и человека, ей могут способствовать нейромодуляции спинного мозга (СМ) и различные тренировки [Герасименко и др., 2017; Гришин и др., 2020; Шапкова и др., 2021; Городничев и др., 2021; Мошонкина и др., 2023; Martinez et al., 2013; Kakuta et al., 2019; Stolbkov, Gerasimenko, 2023]. Однако, механизмы, ответственные за изменение активности нейронных цепей спинного мозга ниже очага поражения, остаются неясными [Brown, Martinez, 2019].

Много усилий направлено и на разработку методов анализа движения. 21-балльная шкала восстановления движений задних конечностей Бассо, Битти и Бреснахана (БББ) [Basso et al., 1995] является наиболее широко используемым тестом, и признана надежным способом оценки двигательной функции после ТСМ у крыс. В то же время, БББ и подобные измерения учитывают несколько основных двигательных характеристик, при этом им не хватает чувствительности к локомоторной изменчивости [Metz et al., 2000]. С появлением и развитием компьютерных технологий использование инструментального анализа походки

крыс в исследовательских целях стало широко распространенным [Islam et al., 2019]. Однако методы оценки движения, чтобы охарактеризовать локомоцию и обеспечить надежную меру изменения и восстановления движения крыс малочисленные.

ТСМ вызывает прямое механическое повреждение тканей (первичное повреждение) и биохимические изменения, которые вызывают прогрессирующую потерю клеток (вторичная травма). Тяжесть первоначального повреждения зависит от характера травмы и не может контролироваться, тяжесть вторичного повреждения может быть модулирована с помощью фармакологических агентов, таких как, например, метилпреднизолон (МП), как правило в форме водорастворимого производного метилпреднизолона сукцината (МПС) [Baptiste et al., 2006]. Введение высоких доз МП, ранее рекомендованное по данным NASCIS [Bracken, 1997], является средством нейропротекции в течение восьми часов после ТСМ. Высокие дозы МП показали нейропротекторную эффективность в исследованиях по уменьшению и ограничению места травмы при ТСМ [Druschel et al., 2013; Yu et al., 2020; Zhang et al., 2022]. МП действует как ингибитор каскада вторичного повреждения, проявляя антиоксидантную, противоотечную и противовоспалительную активность [Chen et al., 2012]. МП также может ингибировать апоптоз в олигодендроцитах и стабилизировать мембраны [Ban et al., 2019]. Тем не менее, проведено большое количество обсуждений, которые рекомендовали не использовать предлагаемый протокол терапии МП. МП в терапевтической дозе может вызывать несколько побочных эффектов, таких как пневмония, язва желудка, лейкоз, инфекция и невропатия, на фоне которых наблюдаются небольшие улучшения в неврологическом восстановлении [Fehlings et al2017b; Karabey-Akyurek et al., 2017]. Это связывают с недостаточной эффективностью доставки МП посредством системного (внутривенного) введения, вследствие короткого периода полувыведения (2,5-3 часа) [Hazra et al., 2007], которое, в частности, опосредовано удалением МП из клеток и тканей спинного мозга с участием мембранного Р-гликопротеина [Koszdin et al., 2000].

Перспективным решением этой проблемы является использование переносчиков МП на основе полимерных биоматериалов [Karabey-Akyurek et al., 2017; Lin et al., 2019]. Среди них особый интерес представляют амфифильные полимеры, такие как сополимеры этиленоксида (ЭО) и пропиленоксида (ПО) [Kamalov et al., 2016; Nie et al., 2021], способные обратимо изменять конформацию и активность липидных мембран и мембранных транспортеров [Anasua, 2020; Lv et al., 2022]. Полимеры, по существу, способствуют расширению времени действия лекарств и обеспечивают доставку биологических активных веществ на локальный участок. В водной среде амфифильные сополимеры способны спонтанно ассоциировать с образованием полимерных мицелл, в состав которых могут включаться лекарственные средства [Amirmahani et al., 2017; Aziz et al., 2017; Kamalov et al., 2018]. Мы предположили, что большинство побочных эффектов терапии МП определяются высокой дозой и связанной с ней токсичностью, и что относительно скромные неврологические улучшения являются отражением неэффективного дозирования МП в месте повреждения. Применение МП в форме мицелл с сополимерами ЭО и ПО, может стать актуальным решением проблемы в повышении эффективности и безопасности терапии ТСМ. Наше понимание того, как молекулярная и клеточная пластичность влияет на физиологию системы и, следовательно, на двигательное поведение, ограничено у животных и у людей [Côté et al., 2017].

Цель и задачи исследования

Цель настоящего исследования оценить функциональное состояние центров поясничного отдела спинного мозга и двигательную активность задних конечностей у крыс при двигательной тренировке и ингибировании каскада вторичного повреждения метилпреднизолоном в условиях моделирования травмы спинного мозга нижнегрудного отдела.

В соответствие с целью поставлены задачи:

1. Оценить общую двигательную функцию задних конечностей у крыс при двигательной тренировке, ингибировании каскада вторичного повреждения

метилпреднизолоном и их комбинации в условиях экспериментальной травмы спинного мозга на уровне ^8.

2. Определить изменения возбудимости спинальных двигательных центров икроножной мышцы крысы при двигательной тренировке, ингибировании каскада вторичного повреждения и их комбинации в условиях экспериментальной травмы спинного мозга на уровне ^8.

3. На основе видеозахвата движения задних конечностей крыс разработать методику объективного количественного и качественного анализа двигательной активности и ее регуляциии.

4. Оценить эффективность доставки сополимером этиленоксида и пропиленоксида модельного флуорофора (родамина 123) в неповрежденные ткани спинного мозга.

5. Провести анализ содержания метилпреднизолона в тканях спинного мозга при различных способах доставки в условиях экспериментальной травмы спинного мозга на уровне ^8.

6. Оценить сохранность серого и белого вещества поясничного (Ь2) сегмента спинного мозга после экспериментальной спинальной травмы на уровне ^8 у крыс в различных условиях.

7. Выявить изменение функционального состояния нейронов двигательных центров спинного мозга икроножной и камбаловидной мышц у крыс в условиях моделирования травмы спинного мозга на уровне ^8 в различных условиях модуляции.

8. Оценить биомеханические характеристики локомоции крыс в норме и в условиях моделирования травмы спинного мозга и выявить участие спинальных и стволовых механизмов контроля движения.

Научная новизна

Получены новые данные об изменении возбудимости спинальных двигательных центров икроножной и камбаловидной мышц методом тестирования моносинаптических и полисинаптических ответов мышц задней конечности крысы

при эпидуральной стимуляции спинного мозга в условиях моделирования контузионной спинальной травмы. Описаны особенности изменения параметров вызванных ответов мышц голени крысы в различных периодах после нарушения супраспинального контроля и в условиях ингибирования каскадов вторичного повреждения нервной ткани метилпреднизолоном в композиции с сополимером этиленоксида и пропиленоксида.

Используя видеофиксацию движения крыс, разработан метод количественной и качественной оценки визуально наблюдаемых изменений биомеханики походки, кинематики суставов и адаптацию и/или восстановление движения задней конечности у крысы в норме и при моделировании спинальной травмы. Этот метод оценки позволил выявить особенности восстановления локомоций с поддержкой веса тела, контроля направления движения, способности сохранять равновесие, а также конфигурации позы тела при ходьбе у крыс в условиях моделирования травмы спинного мозга и определить вовлечение проприоспинальных и стволовых структур ЦНС.

Разработан новый подход для локальной и устойчивой доставки метилпреднизолона на поврежденную ткань спинного мозга в композиции с сополимером этиленоксида и пропиленоксида. Впервые показано, что местная аппликация метилпреднизолона в композиции с сополимером этиленоксида и пропиленоксида после моделирования спинальной травмы изменяет возбудимость нейронов спинного мозга и улучшает функциональное восстановление двигательных функций. Использование метилпреднизолона в композиции с сополимером этиленоксида и пропиленоксида может быть методом терапии, направленного на восстановления СМ в месте повреждения и предотвращения вторичного повреждения тканей для регенерации и/или восстановления функций человека и на моделях травмы спинного мозга у животных.

Научно-практическая значимость работы

Проведенное диссертационное исследование расширяет представления о механизмах регуляции движений на уровне спинного мозга у крыс в условиях

нарушения супраспинального контроля. Многофакторный анализ ранних изменений параметров электрических ответов мышц, такие как латентный период, амплитуда и пороги в различные временные промежутки после травмы позволяют определить индикаторы временных и функциональных изменений в нейронах и проводящих путях спинного мозга в условиях ограничения супраспинального контроля. Показанные механизмы организации баланса при ходьбе у крыс демонстрируют единую систему управления сенсомоторных функций, связь двигательных и постуральных нейронных сетей. Установлено, что, нервная система обладает пластичностью благодаря согласованной работе между нейронными сетями ствола и спинного мозга, что обеспечивает восстановление моторного управления при ограничении супраспинального контроля.

Результаты исследования легли в основу разрабатанных программ для организации фазового анализа ходьбы (свидетельство о государственной регистрации ПЭВМ № 2020662382, 13.10.2020 и ПЭВМ № 2022619793, 26.05.20220). Предложены новые пераметры оценки движения задних конечностей, позволяющих описать перемещение тела и его отдельных звеньев в пространстве и определить уровень организации двигательного контроля. Метод применялся в данной работе и может быть рекомендован к использованию в научных исследованиях.

Важность полученных результатов для медицины, общества и экономики определяется актуальностью проблемы посттравматического паралича пациентов с травмой спинного мозга. Полученные результаты могут иметь значение для разработки оптимальной оценки эффективности терапии, протоколов лечения и реабилитации в клинических и экспериментальных условиях, направленных на посттравматическое восстановление и регенерацию спинного мозга.

Основные положения, выносимые на защиту

1) У крыс восстановление шаговых движений в сагиттальной плоскости характеризует активацию и/или восстановление проприоспинальных связей в поясничном отделе спинного мозга в условиях ограничения супраспинального

контроля. Латеральная стабильность, то есть способность ставить стопы в правильное положение в боковой плоскости относительно тела у крыс свидетельствует о восстановлении связей между стволом и спинным мозгом. Восстановление двигательной активности обеспечивается поддержанием возбудимости нейронов спинного мозга.

2) Разработанный метод автоматического анализа движения крыс по данным видеофиксации может использоваться для объективного количественного анализа баланса при ходьбе у крыс, организации спинального и супраспинального контроля.

3) Локальная аппликация метилпреднизолона в композиции с сополимером этиленоксида и пропиленоксида обеспечивает местное и длительное высвобождение метилпреднизолона в поврежденный спинной мозг у крысы и может использоваться для ингибирования вторичного каскада травматического повреждения и сохранения серого и белого вещества спинного мозга.

Степень достоверности и апробация результатов

Материалы диссертации доложены и обсуждены на VIII Всероссийской с международным участием конференции с элементами научной школы по физиологии мышц и мышечной деятельности «Новые подходы к изучению классических проблем» (Москва, 2015), на VI Всероссийской конференции по управлению движениями «Motor Control-2016» (Казань, 2016), на XVI Конференции по космической биологии и медицине с международным участием, (Москва, 2016), на XXIII Съезде Физиологического общества им. И. П. Павлова (Воронеж, 2017), на 52-ой ежегодная научной конференции Европейского общества клинических исследований (Барселона, Испания, 2018), на Международном научно-практическом конгрессе Европейского общества генной и клеточной терапии (Лозанна, Швейцария, 2018), на XIV Международной научной конференции "Адаптация развивающегося организма" (Казань, Россия, 2018), на Всероссийской конференции с международным участием: Интегративная физиология (Санкт-Петербург 2022).

Личный вклад диссертанта в исследования

Содержание диссертации и все представленные в ней результаты получены лично автором в НИЛ OpenLab «Двигательная нейрореабилитация» Института фундаментальной медицины и биологии Казанского (Приволжского) федерального университета. Автором совместно с научным руководителем сформирована гипотеза, поставлена цель и задачи исследования, разработан план экспериментальных исследований, выбраны методы исследований, а также проведена статистическая обработка, анализ и обсуждение полученных результатов и подготовка публикаций.

Публикации

По материалам диссертации опубликовано 15 печатных работ, из них 6 статей в рецензируемых журналах (из списка ВАК, Scopus и Web of Scince), 2 Программы ЭВМ.

Конкурсная поддержка работы

Исследование выполнено в НИЛ OpenLab «Двигательная нейрореабилитация» ИФМиБ КФУ, организованной при финансовой поддержке гранта Правительства Российской Федерации в рамках программы повышения конкурентоспособности Казанского федерального университета; РФФИ в рамках научного проекта № 18-315-00267 (программа «Мой первый грант») и частично выполнена в рамках государственного задания, проект FZSM-2022-0020 (получение мицеллярной формулировки метилпреднизолона).

Структура и объем диссертации

Диссертация состоит из списка сокращений, введения, обзора литературы, описания материалов и методики исследования, результатов собственных исследований, обсуждения результатов, заключения, выводов, списка литературы, включающего 361 источник (22 из которых отечественных авторов) и приложения. Диссертация изложена на 153 страницах, содержит 32 рисунка.

1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Клиническая картина после травмы спинного мозга

Травма спинного мозга (ТСМ) — это неврологическое состояние с социально-экономическими последствиями для людей и для системы здравоохранения. По данным Национального центра статистики травм спинного мозга, в Северной Америке ежегодно происходит 12 500 новых случаев ТСМ [Hachem et al., 2017]. Более 90% случаев ТСМ связаны с дорожно-транспортными происшествиями, насилием, спортом или падениями. Соотношение между женщинами и мужчинами составляет 1:2, подобные травмы чаще встречается у взрослых по сравнению с детьми. Демографически мужчины чаще всего страдают в раннем и позднем взрослом возрасте, в то время как женщины подвергаются более высокому риску в подростковом возрасте и в возрасте старше 70 лет. Распределение по возрасту является бимодальным, с первым пиком с участием молодых людей и вторым пиком с участием взрослых старше 60 лет [Stein et al., 2015]. Взрослые старше 60 лет, страдающие ТСМ, имеют значительное ухудшение здоровья, чем более молодые пациенты, и их травмы обычно возникают в результате падений и возрастных изменений в костях [Hachem et al., 2017].

На сегодняшний день хроническая ТСМ неизлечима. Есть только минимально эффективные фармакологические и хирургические процедуры для ее лечения [Ron et al., 2022]. После несчастного случая пострадавший, как правило, отправляется в экстренном порядке в специализированный центр. Целью операции является декомпрессия спинного мозга, закрытие открытых ран и стабилизация позвоночника в адекватном положении. Хирургическое воссоединение или ушивание нервных контуров разорванного спинного мозга в настоящее время невозможно. Таким образом, медицинское обслуживание необходимо для предотвращения и лечения последующих заболеваний и повреждений, в частности нестабильности кровотока, тромбоза, пневмонии, эшара, инфекции мочевыводящих путей, непроходимости кишечника, жесткости

суставов, мышечной атрофии, остеопороза и депрессии. Первые реабилитационные действия начинаются как можно раньше, чтобы поддержать и восстановить максимум функций, связанных с профессиональной и социальной интеграцией.

Однако даже после этих мероприятий продолжительностью от шести до двенадцати месяцев более половины пострадавших продолжают пользоваться инвалидной коляской всю оставшуюся жизнь, и значительное число пациентов, с менее тяжелой травмой, страдают от серьезных двигательных нарушений [Van den Brand et al., 2015]. Первичной целью для людей с параличом нижних конечностей - восстановить контроль над своим телом. К сожалению, существующие методы терапии предлагают только ограниченные решения для восстановления моторного контроля, и очень немногие центры предлагают восстанавливать физическую активность всего тела, включая парализованные конечности. Тем не менее, появляются многочисленные новые терапевтические подходы в трех направлениях исследований: имплантация клеток или стволовых клеток (взрослые нервные стволовые клетки, клетки и нервный трансплантат [Filli, Schwab, 2012]; интратекальные инъекции аутологичных мезенхимальных стволовых клеток костного мозга [Satti et al., 2016], доставка нейротрансмиттеров [Musienko et al., 2012]; разрушения рубца и ускорения роста с использованием хондроитиназы [Raspa et al., 2018] или блокирование белка NoGo и чрескожная или эпидуральная электростимуляция [Gorodnichev et al., 2010]. Все эти разнообразные подходы имеют общую цель - направить восстановление аксонов в центральной нервной системе через место поражения. В то время как некоторые подходы требуют больше времени и научных исследований для ассоциирования в медицинскую практику, электрическая стимуляция для повторной активации «спящих» позвоночных сетей представляется многообещающей [AuYong, Lu, 2014].

Клинический исход после ТСМ зависит от тяжести и места поражения и может включать частичную или полную потерю сенсорной и/или моторной функции ниже уровня повреждения. Повреждения на нижне-грудном уровне могут вызвать параплегию, тогда как поражения на шейном уровне приводят к

тетраплегии [Wilson et al., 2012]. 50% травм происходят на уровне шейного отдела спинного мозга, при этом наиболее распространенным является уровень C5, грудной уровень - 35% и поясничную область - 11% [Hachem et al., 2017]. Благодаря последним достижениям в области медицинских процедур и ухода за пациентами, пациенты с ТСМ часто переживают травматические повреждения и живут в течение десятилетий после первоначальной травмы. Например, отчеты о клинических исходах пациентов, перенесших ТСМ в период с 1955 по 2006 год в Австралии, продемонстрировали, что показатели выживаемости для пациентов, страдающих тетраплегией и параплегией, составляют 91,2% и 95,9% соответственно [Middleton et al., 2012]. Ожидаемая продолжительность жизни пациентов с ТСМ сильно зависит от уровня травмы и сохраненных функций. Например, пациенты со степенью повреждения D по шкале ASIA (ISNC SCI), которым требуется ежедневный уход и инвалидная коляска, имеют 75% продолжительности жизни, в то время как пациенты, которым не требуется инвалидная коляска и катетеризация, могут иметь более высокую продолжительность жизни, до 90% [Shavelle et al., 2017]. Сегодня предполагаемая стоимость содержания пациента составляет 2,35 млн. долларов США [Hachem et al., 2017]. Поэтому очень важно раскрыть клеточные и молекулярные механизмы ТСМ и разработать новые эффективные методы лечения.

Функциональная классификация ТСМ была разработана для создания систем оценки, с помощью которой тяжесть может быть измерена, сравнена и соотнесена с клиническими исходами [Fehlings et al., 2012]. Как правило, ТСМ можно классифицировать как полная ТСМ или неполная ТСМ. При полной ТСМ неврологическая оценка не показывает никаких моторных или сенсорных функций ниже уровня травмы [Middleton et al., 2012].

В зависимости от уровня ТСМ у пациентов формируется параплегия или тетраплегия. Параплегия определяется как нарушение сенсорной или моторной функции нижних конечностей [Brown et al., 1991; Waters et al., 1994]. У пациентов с неполной параплегией, как правило, имеется хороший прогноз на восстановление двигательной функции (~76% пациентов) в течение года [Waters

et al., 1994]. У пациентов с полной параплегией вероятность восстановления составляет всего 4%, и только у половины из них восстанавливается контроль над мочевым пузырем и кишечником [Waters et al., 1992]. Тетраплегия определяется как частичная или полная потеря сенсорной или моторной функции во всех четырех конечностях. Пациенты с неполной тетраплегией имеют больше шансов на восстановление, чем полная тетра - и параплегия [Ditunno et al., 1987]. Пациенты обычно достигают максимального восстановления в течение 9-12 месяцев после травмы. Восстановление некоторых двигательных функций в течение первого месяца после травмы, связано с улучшением неврологических функций [Fehlings et al., 2012]. Кроме того, появление мышечного тетануса (серии локальных непроизвольных сокращений мышц) в нижних конечностях тесно связано с восстановлением функции [Folman, el Masri, 1989]. Важно отметить, что исходная мышечная сила является важным аспектом функционального восстановления у этих пациентов [Fisher et al., 2005; Lee et al., 2023]. У пациентов с тетраплегией можно восстановить функцию антигравитационных мышц в 27% случаев, когда их первоначальная сила мышц составляет 0 баллов по 5-балльной шкале [Fawcett et al., 2007]. Однако скорость восстановления антигравитационной мышечной силы на одном каудальном уровне ниже травмы возрастает до 97% при исходной мышечной силе 1-2 по 5-балльной шкале [Kirshblum et al., 1998].

1.2 Патогенез травматической болезни спинного мозга

В целом ТСМ классифицируется на первичную и вторичную травму [Anwar et al., 2016]. Первичная ТСМ в основном включает механическое повреждение спинного мозга, вызванное травмой, и/или повреждение кровеносных сосудов и нервов, которые являются необратимыми повреждениями [Ahuja et al., 2017a; Ahuja et al., 2017b; Rouanet et al., 2017].

Вторичное повреждение ТСМ вызвано кровоизлиянием в спинной мозг, отеком, иммунодефицитом, воспалительной реакцией, реперфузией ишемией, апоптозом, окислительным стрессом и перекисным окислением липидов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Балтин Максим Эдуардович, 2024 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ ИСТОЧНИКОВ

1. Абдуллин Т. И. Средство доставки биологически активных веществ в клетки и ткани организма и способ его применения: пат. 2637633 РФ: МПК А61К 31/00, А61К 47/34 / Абдуллин Т. И., Камалов М. И., Ергешов А. А., Сираева З. Ю., Лавров И. А., Радыгина А. А., Салахиева Д. В; заявитель и патентообладатель Казанский (Приволжский) федеральный университет. № 2015144417; заявл. 15.10.2015; опубл. 05.12.2017, Бюл. № 34.

2. Алатырев, В.И. Постишемические изменения функций спинного мозга/

B.И. Алатырев, Н.В. Звёздочкина, Л.Н. Зефиров. - Издательство Казанского университета, 1982. - 94 с.

3. Балтина, Т.В. Состояние контрлатерального нейромоторного аппарата крысы в условиях односторонней тенотомии / Т.В. Балтина, А.А. Еремеев, И.Н. Плещинский // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. -2005. - Т. 91, № 5. - С. 481-487.

4. Балтина, Т.В. Эффекты локальной гипотермии при травме спинного мозга у крыс/ Т.В. Балтина, Д.И. Силантьева, Е.Ю. Лобан, М.В. Раимова, И.А. Лавров // Учен. зап. Казан. ун-та. Сер. Естеств. науки. - 2018. - Т. 160, кн. 4. - С. 630-644.

5. Бикмуллина, Р.Х. Тормозные системы спинного мозга в контроле взаимодействий функционально сопряженных мышц/ Р.Х. Бикмуллина, А.Н. Розенталь, И.Н. Плещинский// Физиология человека. - 2007. - Т. 33, №1. -

C.119-130.

6. Богачева, И. Н. Анализ локомоторной активности у децеребрированных кошек при электромагнитной и эпидуральной электрической стимуляции спинного мозга / И. Н. Богачева, П. Е. Мусиенко, Н. А. Щербакова [и др.] // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 2012. - Т. 98, № 9. - С. 1079-1093.

7. Вещицкий, А. А. Что может рассказать двунаправленная ходьба о центральных генераторах паттерна? / А. А. Вещицкий, В. А. Ляховецкий, О. В.

Горский [и др.] // Журнал высшей нервной деятельности им. И.П. Павлова. - 2022. - Т. 72, № 2. - С. 259-273.

8. Герасименко, Ю. П. Спинальная и сенсорная нейромодуляция спинальных нейронных сетей человека / Ю. П. Герасименко, З. Б. Маккинней, Д. Г. Саенко [и др.] // Физиология человека. - 2017. - Т. 43, № 5. - С. 6-16.

9. Городничев, Р. М. Регуляция фаз шагательного цикла при неинвазивной электрической стимуляции спинного мозга / Р. М. Городничев, А. М. Пухов, С. А. Моисеев [и др.] // Физиология человека. - 2021. - Т. 47, № 1. - С. 73-83.

10. Гришин, А. А. Система детектирования фаз шагательного цикла и стимуляции спинного мозга как инструмент управления локомоцией человека / А.А. Гришин, Е. В. Боброва, В. В. Решетникова [и др.] // Медицинская техника. -2020. - № 5(323). - С. 10-14.

11. Доценко, В.И. Компьютерный видеоанализ движений в спортивной медицине и нейрореабилитации/В. И. Доценко, А. В. Воронов, Н. Ю. Титаренко, К. Е. Титаренко // Медицинский алфавит. - 2005. - Т. 3, №41. - С. 12-14.

12. Еремеев, А.А. Влияние односторонней травмы седалищного нерва на характеристики моторных и рефлекторных ответов парных икроножных мышц крысы / А.А. Еремеев, И.Н. Плещинский, Т.В. Бабынина // Российский Физиол. Журн. им. И.М.Сеченова. - 2001. - Т. 87, №12. - С. 1673-1679.

13. Еремеев, А.А. Состояние контралатерального двигательного центра икроножной мышцы крысы при одностороннем повреждении седалищного нерва / А.А. Еремеев, И.Н. Плещинский, Т.В. Балтина, А.М. Еремеев // Российский Физиол. Журн. им. И.М.Сеченова. - 2011. - Т.97, №3. - С. 308—315.

14. Команцев, В.Н. Методические основы клинической электронейромиографии/ В.Н. Команцев, В.А. Заболотных// Руководство для врачей. - СПб: Издательство «Лань», 2001. - 218с.

15. Ляховецкий, В. А. Математичежая модель управления задними конечностями кошки при ходьбе назад / В. А. Ляховецкий, Н. С. Меркульева, А. А. Вещицкий [и др.] // Биофизика. - 2016. - Т. 61, № 5. - С. 1001-1009.

16. Мошонкина, Т. Р Новая технология восстановления локомоции у пациентов после инсульта / Т. Р. Мошонкина, Е. Н. Жарова, С. С. Ананьев [и др.] // Доклады Российской академии наук. Науки о жизни. - 2023. - Т. 508, № 1. - С. 14-18.

17. Павлова, Н. В. Восстановление двигательных функций у спинализированных крыс при электрической стимуляции спинного мозга и локомоторной тренировке / Н. В. Павлова, И. Н. Богачева, Е. Ю. Баженова [и др.] // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 2019. - Т. 105, № 5. - С. 565-577.

18. Плещинский И.Н. Спинной мозг: афферентные взаимодействия / И.Н. Плещинский, Н. Л. Алексеева // Физиология человека. - 1996. - Т. 22, № 1. -С. 123-130.

19. Силантьева, Д.И. Эффекты хронического воздействия мицеллярного комплекса метилпреднизолона на локомоторную активность виноградной улитки / Д. И. Силантьева, И. Б. Дерябина, М.Э. Балтин, М. И. Камалов, М. В. Моисеева, В. В. Андрианов, Т.В. Балтина, Х.Л. Гайнутдинов //Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2020. - Т. 170, № 7. - С. 9-14.

20. Шапкова, Е. Ю. Сенсомоторные и локомоторные перестройки при хроническом посттравматическом поражении взрослого спинного мозга человека как свидетельство активность-зависимой нейропластичности / Е. Ю. Шапкова, Д.

B. Емельянников, Ю. Е. Ларионова // Физиология человека. - 2021. - Т. 47, № 4. -

C. 5-16.

21. Шевченко, Р.В. Транстравматическая эпидуральная электростимуляция спинного мозга в модели на свиньях / Р. В. Шевченко, Ф. О. Фадеев, А. А. Измайлов [и др.] // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2023. -Т. 175, № 1. - С. 10-15.

22. Яфарова, Г.Г. Функциональное состояние двигательных центров спинного мозга в условиях его травматического повреждения/ Г. Г. Яфарова, Т. В. Балтина, И. Н. Плещинский. - Казань: Новое знание, 2008. - 67с.

23. Aceves, M. An Analysis of Variability in "CatWalk" Locomotor Measurements to Aid Experimental Design and Interpretation / M. Aceves, V. A. Dietz,

J. N. Dulin, U. Jeffery, N. D. Jeffery // eNeuro. - 2020. - V. 7, No 4. - Art. ENEURO.0092-20.2020. - DOI: 10.1523/ENEURO.0092-20.2020.

24. Ackery, A. Inhibition of Fas-mediated apoptosis through administration of soluble Fas receptor improves functional outcome and reduces posttraumatic axonal degeneration after acute spinal cord injury/A. Ackery, S. Robins, M.G. Fehlings // J. Neurotrauma. - 2006. - V. 23. - P. 604-616.

25. Adamczyk, P.G. Redirection of center-of-mass velocity during the step-to-step transition of human walking/ P.G. Adamczyk, A.D. Kuo//J. Exp Biol. - 2019. -V. 212. - P. 2668-2678.

26. Agrawal, S. Mechanisms of secondary injury to spinal cord axons in virto: role of Na+, Na+-K+-ATPase, the Na(+)-H+ exchanger, and the Na(+)-Ca2+ exchanger/ S. Agrawal, M. Fehlings // J. Neurosci. - 1996. - V. 16. - P. 545-552.

27. Ahuja, C.S. Recent advances in managing a spinal cord injury secondary to trauma / C.S. Ahuja, A.R. Martin, M. Fehlings // F1000Research. - 2016. - V.5. -F1000 Faculty Rev-1017. - D0I:10.12688/f1000research.7586.1.

28. Ahuja, C.S. Traumatic spinal cord injury/C.S. Ahuja, J.R. Wilson, S. Nori, M.R. Kotter, C. Druschel, A. Curt // Nat. Rev. Dis. Primers. - 2017b. - V. 3. - Art. 17018. - DOI: 10.1038/nrdp.2017.18.

29. Ahuja, C.S. Traumatic Spinal Cord Injury-Repair and Regeneration / C.S. Ahuja, S. Nori, L. Tetreault, J. Wilson, B. Kwon, J. Harrop// Neurosurgery. -2017a. - V. 80. - P. 9-22.

30. Akhtaruzzaman, M. Gait analysis: Systems, technologies, and importance / M. Akhtaruzzaman, A. Shafie, M.R. Khan // Journal of Mechanics in Medicine and Biology. - 2016. - V.16. - Art.1630003. - DOI: 10.1142/S0219519416300039.

31. Alizadeh, A. Microenvironmental regulation of oligodendrocyte replacement and remyelination in spinal cord injury/A. Alizadeh, S. Karimi-Abdolrezaee//J. Physiol. - 2016. - V. 594. - P. 3539-3552.

32. Alizadeh, A. Myelin damage and repair in pathologic CNS: challenges and prospects/A. Alizadeh, S.M. Dyck, S. Karimi-Abdolrezaee // Front. Mol. Neurosci. -2015. - V. 8. - Art. No 35. - DOI: 10.3389/fnmol.2015.00035.

33. Alizadeh, A. Traumatic Spinal Cord Injury: An Overview of Pathophysiology, Models and Acute Injury Mechanisms/A. Alizadeh, S.M. Dyck, Karimi-Abdolrezaee // Front Neurol. - 2019 - V. 10. - DOI: 10.3389/fneur.2019.00282.

34. Al-Izki, S. Electrophysiological actions of the rubrospinal tract in the anaesthetised rat / S. Al-Izki, P. A. Kirkwood, R. N. Lemon, M. Enriquez Denton // Experimental Neurology. - 2008. - V.212, No1. - P.118-131.

35. Allen A.R. Surgery of experimental lesion of spinal cord equivalent to crush injury of fractured is location of spinal column/ A.R. Allen //JAMA. - 1911. - V. 57. -P. 878-880.

36. Almad, A. Oligodendrocyte fate after spinal cord injury/A. Almad, F.R. Sahinkaya, D.M. McTigue//Neurotherapeutics. - 2011. - V. 8. - P. 262-273.

37. Amemiya, S. Anti-apoptotic and neuroprotective effects of edaravone following transient focal ischemia in rats/ S. Amemiya, T. Kamiya, C. Nito, T. Inaba, K. Kato, M. Ueda // Eur. J. Pharmacol. - 2005. - V. 516. - P. 125-130.

38. Amirmahani, N. Advances in nanomi-celles for sustained drug delivery / N. Amirmahani, N.O. Mahmoodi, M.M. Galangash, A. J. Ghavidast // Ind. Eng. Chem. - 2017. - V. 55. - P. 21-34.

39. Anasua, M. Neat Ionic liquid and a-Chymotrypsin-Polymer Surfactant Conjugate-Based Biocatalytic Solvent /M. Anasua, S. Dharmendra, S. Kamendra // Biomacromolecules. - 2020. - V. 21. - P. 867-877.

40. Andriacchi, T.P. Studies of human locomotion: past, present and future / T.P. Andriacchi, E.J. Alexander // J. Biomech. - 2000. - V. 33, №10. - P. 1217-1224.

41. Angeli, C.A. Altering spinal cord excitability enables voluntary movements after chronic complete paralysis in humans / C.A. Angeli, V.R. Edgerton, YP. Gerasimenko, S.J. Harkema // Brain. - 2014. - V. 137. - P. 1394-1409.

42. Anjum, A. Spinal Cord Injury: Pathophysiology, Multimolecular Interactions, and Underlying Recovery Mechanisms / A. Anjum, M. D. Yazid, M. Fauzi Daud, J. Idris, A. M. H. Ng [et al.] // International journal of molecular sciences. - 2020. -V.21, No 20. - Art. 7533. - D0I:10.3390/ijms21207533.

43. Annane, D. Corticosteroids for treating severe sepsis and septic shock: a systematic review and meta-analysis / D. Annane, E. Bellissant, P.E. Bollaert, J. Briegel, D. Keh, Y Kupfer// BMJ (Clinical research ed.). - 2004. - V. 329, No7464. - Art. 480.

- DOI:10.1136/bmj.38181.482222.55.

44. Antal, E.J. Influence of route of administration on the pharmacokinetics of methylprednisolone / E. J. Antal, C.E. Wright, W.R. Gillespie, K.S. Albert // J. Pharmacokinet. Biopharm. - 1983. - V.11. - P. 561-576.

45. Antel, J. P. Oligodendrocyte lysis by CD4+ T cells independent of tumor necrosis factor/J.P. Antel, K. Williams, M. Blain, E. McRea, J. McLaurin//Ann Neurol.

- 1994. - V. 35. - P. 341-348.

46. Anwar, M.A. Inflammogenesis of Secondary Spinal Cord Injury/M.A. Anwar, T.S. Shehabi, A.H. Eid //Front. Cell Neurosci. - 2016. - V. 10. - Art. No 98. - DOI: 10.3389/fncel.2016.00098.

47. AuYong, N. Neuromodulation of the Lumbar Spinal Locomotor Circuit / N. AuYong, D.C. Lu// Eurosurgery Clinics of North America. - 2014. - V 25. - P. 15-23.

48. Aziz, Z.A.B.A. Recent Advances in Drug Delivery of Polymeric Nano-Micelles / Z.A.B.A. Aziz, A. Ahmad, S.H. Mohd-Setapar, H. Hassan, D. Lokhat, M.A. Kamal, G.M. Ashraf // Curr. Drug Metab. - 2017. - V. 18. - P. 16-29.

49. Bains, M. Antioxidant therapies in traumatic brain and spinal cord injury / M. Bains, E.D. Hall//Biochim. Biophys. Acta. - 2012 - V. 1822. - P. 675-684.

50. Baker, R. The history of gait analysis before the advent of modern computers / R. Baker // Gait Posture. - 2007. - V. 26. - P. 331-342.

51. Ban, J. Glia in amyotrophic lateral sclerosis and spinal cord injury: common therapeutic targets / J. Ban, C. Samano, M. Mladinic, I. Munitic //Croat. Med. J. - 2019.

- V.60, No2. - P. 109-120.

52. Baptiste, D.C. Pharmacological approaches to repair the injured spinal cord/ D.C Baptiste., M.G. Fehlings // J. Neurotrauma. - 2006. - V.23. - P. 318-334.

53. Bareyre, F.M. The injured spinal cord spontaneously forms a new intraspinal circuit in adult rats / F.M. Bareyre, M. Kerschensteiner, O. Raineteau, T.C. Mettenleiter, O. Weinmann, M.E. Schwab // Nat. Neurosci. - 2004. - V. 7. - P. 269-277.

54. Bartholdi D. Methylprednisolone inhibits early inflammatory processes but not ischemic cell death after experimental spinal cord lesion in the rat / D. Bartholdi, M.E. Schwab//Brain Res. - 1995. - V. 672. - P. 177-186.

55. Barut, S. Lipid peroxidation in experimental spinal cord injury: time -level relationship/S. Barut, A. Canbolat, T. Bilge, Y Aydin, B. Cokneseli, U. Kaya // Neurosurg. Rev. - 1993. - V. 16. - P. 53-59.

56. Basso, D.M. A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats / D.M. Basso, M.S. Beattie, J.C. Bresnahan//J. Neurotrauma. - 1995. -V.12, No1. - P. 1-21.

57. Batrakova, E.V.; Li, S.; Alakhov, V.Y.; Miller, D.W.; Kabanov, A.V. Optimal structure requirements for pluronic block copolymers in modifying P-glycoprotein drug efflux transporter activity in bovine brain microvessel endothelial cells / E.V. Batrakova, S. Li, V.Y. Alakhov, D.W. Miller, A.V. Kabanov // J. Pharmacol. Exp. Ther. 2003. -V.304. - P. 845-854.

58. Bauman, J.M. High-speed X-ray video demonstrates significant skin movement errors with standard optical kinematics during rat locomotion / J.M. Bauman, YH. Chang // J. Neurosci. Methods. - 2010. - V. 186. - P. 18-24.

59. Bauman, J.M. High-speed X-ray video demonstrates significant skin movement errors with standard optical kinematics during rat locomotion / J.M. Bauman, YH. Chang // J. Neurosci. Methods. - 2010. - V. 186. - P. 18-24.

60. Beattie, M.S. Cell death in models of spinal cord injury / M.S. Beattie, G.E. Hermann, R.C. Rogers, J.C. Bresnahan // Prog. Brain Res. - 2002. - V 137. - P. 37-47.

61. Beattie, M.S. Review of current evidence for apoptosis after spinal cord injury / M.S. Beattie, A.A. Farooqui, J.C. Bresnahan//J. Neurotrauma. - 2000. - V. 17. -P. 915-925.

62. Beaumont, E. Passive exercise and fetal spinal cord transplant both help to restore motoneuronal properties after spinal cord transection in rats / E. Beaumont, J.D. Houle, C.A. Peterson, P.F. Gardiner // Muscle Nerve. - 2004. - V. 29. - P. 234-242.

63. Berridge, M. J. Calcium microdomains: organization and function / M.J. Berridge // Cell calcium. - 2006. - V. 40, No 5-6. - P. 405-412.

64. Bodratti, A. M. Adsorption of poly(ethylene oxide)-containing amphiphilic polymers on solid-liquid interfaces: Fundamentals and applications / A. M. Bodratti,

B. Sarkar, P. Alexandridis // Advances in colloid and interface science. - 2017. - V. 244. - P. 132-163.

65. Bodratti, A. M. Formulation of Poloxamers for Drug Delivery / A.M. Bodratti, P. Alexandridis // Journal of functional biomaterials. - 2018. - V. 9, No1.

- Art. 11. - DOI:10.3390/jfb9010011.

66. Bonizzato, M. Multi-pronged neuromodulation intervention engages the residual motor circuitry to facilitate walking in a rat model of spinal cord injury / M. Bonizzato, N. D. James, G. Pidpruzhnykova, N. Pavlova, P. Shkorbatova, L. Baud,

C. Martinez-Gonzalez, J. W. Squair, J. DiGiovanna, Q. Barraud, S. Micera, G. Courtine // Nature communications. - 2021. - V. 12, No 1. - Art. 1925. - DOI:10.1038/s41467-021-22137-9.

67. Borton, D. Personalized neuroprosthetics / D. Borton, S. Micera, R. Millan Jdel, G. Courtine // Science translational medicine. - 2013. - V. 5, No 210. - Art. 210rv2. - DOI: 10.1126/scitranslmed.3005968.

68. Bose, P. Morphological changes of the soleus motoneuron pool in chronic midthoracic contused rats / P. Bose, R. Parmer, P.J. Reier, F.J. Thompson // Exp. Neurol.

- 2005. - V. 191. - P. 13-23.

69. Bowers, C.A. Methylprednisolone for acute spinal cord injury: An increasingly philosophical Debate / C.A. Bowers, B. Kundu, G.W. Hawryluk // Neural Regen. Res. - 2016. - V. 11. - P. 882-885.

70. Bracken, M.B. A randomized, controlled trial of methylprednisolone or naloxone in the treatment of acute spinal-cord injury. Results of the Second National Acute Spinal Cord Injury Study / M.B. Bracken, M.J. Shepard, W.F. Collins, T.R. Holford, W. Young [et al.] // N. Engl. J. Med. - 1990. - V. 322. - P. 1405-1411.

71. Bracken, M.B. Administration of methylprednisolone for 24 or 48 hours or tirilazad mesylate for 48 hours in the treatment of acute spinal cord injury. Results of the Third National Acute Spinal Cord Injury Randomized Controlled Trial. National Acute

Spinal Cord Injury Study/ M.B. Bracken, M.J. Shepard, T.R. Holford [et al.] // JAMA. -1997. - V.277, №20. - P.1597-1604.

72. Bronstein, A.M. Clinical disorders of balance, posture and gait / A.M. Bronstein, T. Brandt, M. H. Woollacott, J. G. Mutt - London: Arnold Publishers, 2nd edition, 2004. - 466p.

73. Brown, A. R. From cortex to cord: motor circuit plasticity after spinal cord injury / A. R. Brown, M. Martinez // Neural regeneration research. - 2019. - Vol. 14, No12. - P. 2054-2062.

74. Brown, P.J. The 72-hour examination as a predictor of recovery in motor complete quadriplegia / P.J. Brown, R.J. Marino, G.J. Herbison, J.F. Ditunno// Arch. Phys. Med. Rehabil. - 1991. - V. 72. - P. 546-548.

75. Brown, T. G. The intrinsic factors in the act of progression in the mammal / T.G. Brown // Proc. R. Soc. Lond. B. - 1911. - V.84. - P. 308-319.

76. Capogrosso, M. A computational model for epidural electrical stimulation of spinal sensorimotor circuits / M. Capogrosso, N. Wenger, S. Raspopovic, P. Musienko, J. Beauparlant, L. Bassi Luciani, G. Courtine, S. Micera // The Journal of neuroscience. - 2013. - V. 33, No 49. - P. 19326-19340.

77. Casha, S. FAS deficiency reduces apoptosis, spares axons and improves function after spinal cord injury/S. Casha, W.R. Yu, M.G. Fehlings //Exp. Neurol. -2005. - V. 196. - P. 390-400.

78. Casha, S. Oligodendroglial apoptosis occurs along degenerating axons and is associated with FAS and p75 expression following spinal cord injury in the rat/S. Casha, W.R. Yu, M.G. Fehlings//Neuroscience. - 2001. - V. 103. - P. 203-218.

79. Chau, T. A review of analytical techniques for gait data. part 1: fuzzy, statistical and fractal methods / T. Chau // Gait Posture. - 2001a. - V. 13, No 1. - P. 4966.

80. Chau, T. A review of analytical techniques for gait data. part 2: neural network and wavelet methods / T. Chau // Gait Posture. - 2001b. - V. 13, No 2. -P. 102-120.

81. Chen, B. Reactivation of Dormant Relay Pathways in Injured Spinal Cord by KCC2 Manipulations / B. Chen, Y Li, B. Yu, Z. Zhang, B. Brommer, P.R. Williams, Y Liu [et al.] // Cell. - 2018. - V. 174. - P. 521-535.

82. Chen, C. Bioinspired Hydrogel Electrospun Fibers for Spinal Cord Regeneration /C. Chen, J. Tang, Y. Gu, L. Liu, X. Liu, L. Deng, C. Martins,

B.Sarmento, W. Cui, L. Chen // Adv. Mater. - 2019. - V. 29, No 4. - Art. 1806899. -DOI: 10.1002/adfm.201806899.

83. Chen, C.C. TNF-alpha-induced cyclooxygenase-2 expression in human lung epithelial cells: involvement of the phospholipase C-gamma 2, protein kinase C-alpha, tyrosine kinase, NF-kappa B-inducing kinase, and I-kappa B kinase 1/2 pathway /

C.C. Chen, Y.T. Sun, J.J. Chen, K.T. Chiu // J. Immunol. - 2000. - V.165, No5. -P. 2719-2728.

84. Chen, H.C. Autophagy is activated in injured neurons and inhibited by methylprednisolone after experimental spinal cord injury / H.C. Chen, T.H. Fong,

A.W. Lee, W.T. Chiu // Spine. - 2012. - V.37. - P. 470-475.

85. Chen, J. Increased oligodendrogenesis by humanin promotes axonal remyelination and neurological recovery in hypoxic/ischemic brains/J. Chen, M. Sun, X. Zhang, Z. Miao,

B.H. Chua, R.C. Hamdy//Hippocampus. - 2015. - V 25. - P. 62-71.

86. Cheung, K.M. Shape-from-silhouette across time part II: Applications to human modeling and markerless motion tracking/ K.M. Cheung, S. Baker, T. Kanade //International Journal of Computer Vision. - 2005. - V. 63. - P. 225-245.

87. Chiappetta, D. A. Poly(ethylene oxide)-poly(propylene oxide) block copolymer micelles as drug delivery agents: improved hydrosolubility, stability and bioavailability of drugs / D. A. Chiappetta, A. Sosnik, European journal of pharmaceutics and biopharmaceutics. - 2007. - V.66, No3. - P. 303-317.

88. Cho, H. Thermosensitive poly-(d,l-lactide-co-glycolide)-block-poly(ethylene glycol)-block-poly-(d,l-lactide-co-glycolide) hydrogels for multi-drug delivery / H. Cho, G. S. Kwon // Journal of drug targeting. - 2014. - V. 22, No 7. - P. 669-677.

89. Choi, S.H. Incidence of acute spinal cord injury and associated complications of methylprednisolone therapy: A national population-based study in South Korea / S.H. Choi, C.H. Sung, D.R. Heo, S.Y Jeong, C.N. Kang // Spinal Cord. - 2020. - V. 58. - P. 232-237.

90. Christie, S.D. Duration of lipid peroxidation after acute spinal cord injury in rats and the effect of methylprednisolone/S.D. Christie, B. Comeau, T. Myers, D. Sadi, M. Purdy, I. Mendez//Neurosurg. Focus. - 2008. - V. 25, No 5. - Art. E5. - DOI: 10.3171/FOC.2008.25.11. E5.

91. Chvatal, S. A. Spatial distribution and acute anti-inflammatory effects of Methylprednisolone after sustained local delivery to the contused spinal cord / S.A. Chvatal, Y T. Kim, A. M. Bratt-Leal, H. Lee, R. V. Bellamkonda // Biomaterialsro

- 2008. - V. 29, No 12. - P. 1967-1975.

92. Corazza, S. A markerless motion capture system to study musculoskeletal biomechanics: visual hull and simulated annealing approach / S. Corazza, L. Mundermann, A.M. Chaudhari, T. Demattio, C. Cobelli // Ann. Biomed. Eng. - 2006.

- V.34. - P. 1019-1029.

93. Côté, M.P. Rehabilitation Strategies after Spinal Cord Injury: Inquiry into the Mechanisms of Success and Failure / M.P., Côté, M. Murray, M.A. Lemay // J. Neurotrauma. - 2017. - V. 34, No 10. - P. 1841-1857.

94. Couillard-Despres, S. Pathophysiology of traumatic spinal cord injury/ S. Couillard-Despres, M. Vogl, L. Bieler/ In: Neurological Aspects of Spinal Cord Injury/N. Weidner, R. Rupp, K. Tansey (eds). - Switzerland: Springer International Publishing, 2017. - P. 503-528.

95. Courtine, G. Recovery of supraspinal control of stepping via indirect propriospinal relay connections after spinal cord injury / G. Courtine, B. Song, R.R. Roy, H. Zhong, J. E. Herrmann, Y, Qi, J. Ao, V. R. Edgerton, M. V. Sofroniew // Nature medicine. - 2008. - V. 14, No 1. - P. 69-74.

96. Couto, P.A. A comparison of two-dimensional and three-dimensional techniques for the determination of hindlimb kinematics during treadmill locomotion in rats following spinal cord injury / P.A. Couto, V.t.M. Filipe, L.G. Magalhäes,

J.E. Pereira, L.M. Costa, P. MeloPinto, J. Bulas-Cruz, A.C. Mauricio, S. Geuna, A.S.P. Varejao // J. Neurosci. Methods. - 2008. - V. 173. - P. 193-200.

97. Crowe, M.J. Apoptosis and delayed degeneration after spinal cord injury in rats and monkeys / M.J. Crowe, J.C. Bresnahan, S.L. Shuman, J.N. Masters, M.S. Beattie // Nat. Med. - 1997. - V. 3. - P73-76.

98. Cuzzocrea, S. Antioxidant therapy: a new pharmacological approach in shock, inflammation, and ischemia/reperfusion injury / S. Cuzzocrea, D.P. Riley, A.P. Caputi, D. Salvemini // Pharmacol. Rev. - 2001. - V. 53. - P. 135-159.

99. Danner, S.M. Human spinal locomotor control is based on flexibly organized burst generators / S.M. Danner, U.S. Hofstoetter, B. Freundl, H. Binder, W. Mayr,

F. Rattay, K. Minassian // Brain. - 2015. - V. 138. - P. 577-588.

100. Davis, A.R. FasL, Fas, and death-inducing signaling complex (DISC) proteins are recruited to membrane rafts after spinal cord injury / A.R. Davis, G. Lotocki, A.E. Marcillo, W.D. Dietrich, R.W. Keane // J. Neurotrauma. - 2007 - V 24. - P. 823-834.

101. De Beau, A. Neurotransmitter phenotypes of descending systems in the rat lumbar spinal cord / A. De Beau, S. Shakya Shrestha, B. A. Bannatyne, S. M. Jalicy, S. Linnen, D. J. Maxwell // Neuroscience. - 2012. - V.227. - P. 67-79.

102. Dienes, J. Comprehensive dynamic and kinematic analysis of the rodent hindlimb during over ground walking / J. Dienes, B. Hicks, C. Slater, K. D. Janson,

G. J. Christ, S. D. Russell // Scientific reports. - 2022. - V. 12, No 1. - Art. 19725. -DOI: 10.1038/s41598-022-20288-3.

103. Dimitrijevic, M. R.; Gerasimenko, Y.; Pinter, M. M. Evidence for a spinal central pattern generator in humans / M. R. Dimitrijevic, Y. Gerasimenko, M. M. Pinter // Annals of the New York Academy of Sciences^ - 1998. - V. 860. - P. 360-376.

104. Dingledine, R. The glutamate receptor ion channels / R. Dingledine, K. Borges, D. Bowie, S.F. Traynelis // Pharmacol. Rev. - 1999. - V. 51. - P. 7-61.

105. Diogo, C. C. Kinematic and kinetic gait analysis to evaluate functional recovery in thoracic spinal cord injured rats / C. C. Diogo, L. M. da Costa, J. E. Pereira, V. Filipe, P. A. Couto, S. Geuna, P. A. Armada-da-Silva, A. C. Mauricio, A.S.P. Varejao // Neuroscience and biobehavioral reviews. - 2019. - V. 98. - P. 18-28.

106. Directive 2010/63/UE on the protection of animals used of scientific purposes // Official Journal of the European Union. - 2010. - V.53. - P.33-79.

107. Ditunno, J.F. Wrist extensor recovery in traumatic quadriplegia / J.F. Ditunno, M.L. Sipski, E.A. Posuniak, YT. Chen, W.E. Staas, G.J. Herbison // Arch. Phys. Med. Rehabil. - 1987. - V. 68. - P. 287-290.

108. Ditzian-Kadanoff, R. How safe is it? High dose intravenous methylprednisolone / R. Ditzian-Kadanoff, M.H. Ellman // IMJ Ill. Med J. - 1987. -V. 172, No 6. - P. 432-434.

109. Druschel, C. Current practice of methylprednisolone administration for acute spinal cord injury in Germany: a national survey / C. Druschel, K.D. Schaser, J.M. Schwab // Spine. - 2013. - V.38. - P.669-677.

110. Duchen, M.R. Mitochondria in health and disease: perspectives on a new mitochondrial biology/ M.R. Duchen//Mol. Aspects Med. - 2004. - V. 25. - P. 365-451.

111. Duchen, M.R. Mitochondria, calcium-dependent neuronal death and neurodegenerative disease/M.R. Duchen // Pflugers Arch. - 2012. - V. 464. - P. 111121.

112. Dumont, C. M. Aligned hydrogel tubes guide regeneration following spinal cord injury / C. M. Dumont, M. A. Carlson, M. K. Munsell, A. J. Ciciriello, K. Strnadova, J. Park, B. J. Cummings, A. J. Anderson, L. D. Shea // Acta biomaterialia. - 2019. - V. 86. - P. 312-322.

113. Dumont, R.J. Acute spinal cord injury, part I: pathophysiologic mechanisms / R.J. Dumont, D.O. Okonkwo, S. Verma, R.J. Hurlbert, P.T. Boulos, D.B. Ellegala // Clin. Neuropharmacol. - 2001. - V. 24. - P. 254-264.

114. Dunai, Z. Necroptosis: biochemical, physiological and pathological aspects / Z. Dunai, P.I. Bauer, R. Mihalik // Pathol. Oncol. Res. - 2011. - V. 17. - P. 791-800.

115. Duysens, J. The flexion synergy, mother of all synergies and father of new models of gait / J. Duysens, F. De Groote, I. Jonkers // Frontiers in computational neuroscience. - 2013. - V. 7. - D0I:10.3389/fncom.2013.00014.

116. Dyck, S. LAR and PTPsigma receptors are negative regulators of oligodendrogenesis and oligodendrocyte integrity in spinal cord injury / S. Dyck,

H. Kataria, K. Akbari-Kelachayeh, J. Silver, S. Karimi-Abdolrezaee // Glia. - 2019. -V.67. - P. 125-145.

117. Dyck, S.M. Chondroitin sulfate proteoglycans: key modulators in the developing and pathologic central nervous system/S.M. Dyck, S. Karimi-Abdolrezaee // Exp. Neurol. - 2015. - V. 269. - P. 169-187.

118. Elmore, S. Apoptosis: a review of programmed cell death/S.Elmore//Toxicol. Pathol. - 2007. - V. 35. - P. 495-516.

119. Escoter-Torres L. Fighting the Fire: Mechanisms of Inflammatory Gene Regulation by the Glucocorticoid Receptor / L. Escoter-Torres, G. Caratti, A. Mechtidou, J. Tuckermann, N. Uhlenhaut, S. Vettorazzi // Front Immunol. - 2021. -V. 10. - Art. 1859. - doi: 10.3389/fimmu.2019.01859.

120. Fadeev, F. Combination of epidural electrical stimulation with ex vivo triple gene therapy for spinal cord injury: A proof of principle study / F. Fadeev, F. Bashirov, V. Markosyan, A. Izmailov, T. Povysheva, M. Sokolov, M. Kuznetsov, A. Eremeev, I. Salafutdinov, A. Rizvanov, H. Lee, R. Islamov // Neural Regeneration Research. - 2021. - V.16, No 3. - P.550-560.

121. Fawcett, J.W. Guidelines for the conduct of clinical trials for spinal cord injury as developed by the ICCP panel: spontaneous recovery after spinal cord injury and statistical power needed for therapeutic clinical trials/J.W. Fawcett, A. Curt, J.D. Steeves, W.P. Coleman, M.H. Tuszynski, D. Lammertse//Spinal Cord. - 2007. -V.45. - P. 190-205.

122. Fehlings, M.G. A Clinical Practice Guideline for the Management of Patients with Acute Spinal Cord Injury: Recommendations on the Use of Methylprednisolone Sodium Succinate/ M.G. Fehlings, J.R. Wilson, L.A. Tetreault B. Aarabi, P. Anderson, P.M. Arnold, D.S. Brodke [et al.] //Global Spine J. - 2017b. - V.7, No3. - P. 203-211.

123. Fehlings, M.G. Efficacy and Safety of Methylprednisolone Sodium Succinate in Acute Spinal Cord Injury: A Systematic Review/ M.G. Fehlings, J.R. Wilson, J.S. Harrop, B.K. Kwon, L.A. Tetreault, P.M. Arnold, J.M. Singh, G. Hawryluk, J.R. Dettori // Global Spine J. - 2017a. - V.7, No 3. - P. 116-137.

124. Fehlings, M.G. Riluzole for the treatment of acute traumatic spinal cord injury: rationale for and design of the NACTN Phase I clinical trial / M.G. Fehlings, J.R. Wilson, R.F. Frankowski, E.G. Toups, B. Aarabi, J.S. Harrop // J. Neurosurg Spine.

- 2012. - V. 17. - P. 151-156.

125. Fernandez-Gonzalez, P. Reliability of Kinovea Software and Agreement with a Three-Dimensional Motion System for Gait Analysis in Healthy Subjects / P. Fernandez-Gonzalez, A. Koutsou, A. Cuesta-Gomez, M. Carratala-Tejada, J.C. Miangolarra-Pageand, F. Molina-Rueda // Sensors. - 2020. - V. 20. - Art. 3154.

126. Figueiredo, J. Automatic recognition of gait patterns in human motor disorders using machine learning: A review / J. Figueiredo, C.P. Santos, J.C. Moreno // Med Eng Phys. - 2018. - V.53. - P. 1-12.

127. Filli, L. The rocky road to translation in spinal cord repair / L. Filli, M.E. Schwab // Annals of Neurology. - 2012. - V. 72. - P. 491-501.

128. Filous, A.R. Determinants of Axon Growth, Plasticity, and Regeneration in the Context of Spinal Cord Injury / A.R. Filous, J.M. Schwab // Am. J. Pathol. - 2018.

- V. 188. - P. 53-62.

129. Fisher, C. G. Motor recovery, functional status, and health-related quality of life in patients with complete spinal cord injuries / C. G. Fisher, V K. Noonan, D.E. Smith, P.C. Wing, M. F. Dvorak, B. K. Kwon // Spine. - 2005. - V 30, No19. - P. 2200-2207.

130. Folman, Y Spinal cord injury: prognostic indicators / Y Folman, W. el Masri // Injury. - 1989. - V. 20, No2. - P. 92-93.

131. Fujikawa, D.G. Kainic acid-induced seizures produce necrotic, not apoptotic, neurons with internucleosomal DNA cleavage: implications for programmed cell death mechanisms / D.G. Fujikawa, S.S. Shinmei, B. Cai // Neuroscience. - 2000. -V. 98. - P. 41-53.

132. Galluzzi, L. Molecular definitions of cell death subroutines: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death / L. Galluzzi, I. Vitale, J.M. Abrams, E.S. Alnemri, E.H. Baehrecke, M.V. Blagosklonny // Cell Death Differ. -2012. - V.19. - P. 107-120.

133. Gazula, V.R. Effects of limb exercise after spinal cord injury on motor neuron dendrite structure / V.R. Gazula, M. Roberts, C. Luzzio, A.F. Jawad, R.G.Kalb // J. Comp. Neurol. - 2004. - V. 476. - P. 130-145.

134. Gerasimenko, YP. Spinal cord reflexes induced by epidural spinal cord stimulation in normal awake rats / Y.P. Gerasimenko, I.A. Lavrov, G. Courtine, R. Ichiyama, C. J. Dy, H. Zhong, R.R. Roy, V.R. Edgerton // J. of Neuroscience Methods. - 2006. - V. 157, No 2 - P. 253-263.

135. Gilerovich, E. G. Morphofunctional study of injured spinal cord of rats after activation of serotonergic receptors and motor load / E. G. Gilerovich, T.R. Moshonkina, N. V. Pavlova, V. A. Otellin, Y. P. Gerasimenko // Doklady biological sciences: proceedings of the Academy of Sciences of the USSR, Biological sciences sections. - 2009. - V. 428. - P. 412-415.

136. Gong, C. Thermosensitive polymeric hydrogels as drug delivery system / C. Gong, T. Qi, X. Wei, Y Qu, Q. Wu, F. Luo, Z. Qian // Current medicinal chemistry. -2013. - V. 20, No 1. - P. 79-94.

137. Gorodnichev, R.M. Novel method for activation of the locomotor circuitry in human / R.M. Gorodnichev, E.N. Machueva, E.A. Pivovarova, D.V. Semenov, S.M. Ivanov, A.A. Savokhin, R. Edgerton, I.P. Gerasimenko // Fiziologiia Cheloveka. -2010. - V. 36. - P. 95-103.

138. Gottlieb M. Expression of ionotropic glutamate receptor subunits in glial cells of the hippocampal CA1 area following transient forebrain ischemia / M. Gottlieb, C. Matute // J. Cereb. Blood Flow. Metab. - 1997. - V. 17. - P. 290-300.

139. Gouveia, D. Approach to Small Animal Neurorehabilitation by Locomotor Training: An Update / D. Gouveia, A. Cardoso, C. Carvalho, A. Almeida, O. Gamboa, A. Ferreira, A. Martins // Animals. - 2022. - V. 12, No24. - 3582. -DOI: 10.3390/ani12243582.

140. Gudz, T.I. Glutamate stimulates oligodendrocyte progenitor migration mediated via an alphav integrin/myelin proteolipid protein complex / T.I. Gudz, H. Komuro, W.B. Macklin // J. Neurosci. - 2006. - V. 26. - P. 2458-2466.

141. Guest, J.D. Demyelination and Schwann cell responses adjacent to injury epicenter cavities following chronic human spinal cord injury / J.D. Guest, E.D. Hiester, R.P. Bunge // Exp. Neurol. - 2005. - V. 192. - P. 384-393.

142. Hachem, L.D. Assessment and management of acute spinal cord injury: from point of injury to rehabilitation/L.D. Hachem, C.S. Ahuja, M.G. Fehlings// J. Spinal Cord. Med. - 2017. - V. 40 - P. 665-675.

143. Hall, E.D. Antioxidant therapies for acute spinal cord injury / E.D. Hall // Neurotherapeutics. - 2011. - V. 8. - P. 152-167.

144. Hall, E.D. Chapter 6: The contributing role of lipid peroxidation and protein oxidation in the course of CNS injury neurodegeneration and neuroprotection: an overview/E.D. Hall / In F. H. Kobeissy (Ed.), Brain Neurotrauma: Molecular, Neuropsychological, and Rehabilitation Aspects. - FL: CRC Press; Taylor & Francis, 2015. - P. 49-60.

145. Hamers, F.P. Catwalk-assisted gait analysis in the assessment of spinal cord injury / F.P. Hamers, G.C. Koopmans, E.A. Joosten // J. Neurotrauma. - 2006. - V. 23. -P.537-548.

146. Hamilton, L. Quantification of deficits in lateral paw positioning after spinal cord injury in dogs / L. Hamilton, R.J. Franklin, N.D. Jeffery // BMC Vet. Res. - 2008. - V. 4. - Art. 47. - DOI: 10.1186/1746-6148-4-47.

147. Hansen, C.N. Elevated MMP-9 in the lumbar cord early after thoracic spinal cord injury impedes motor relearning in mice / C.N. Hansen, L.C. Fisher, R.J. Deibert, L.B. Jakeman, H. Zhang // J. Neurosci. - 2013. - V.33, No32. - P. 13101-13111.

148. Hanwen W. A computer-vision method to estimate joint angles and L5/S1 moments during lifting tasks through a single camera / W. Hanwen, X. Ziyang, L. Lu, L. Li, X. Xu // Biomech. - 2021. - V. 129. - Art. 110860. - DOI: 10.1016/j.jbiomech.2021.110860.

149. Hassanzadeh, S. More attention on glial cells to have better recovery after spinal cord injury/ S. Hassanzadeh, M. Jalessi, S. B. Jameie, M. Khanmohammadi, Z. Bagher, Z. Namjoo, S. M. Davachi // Biochem. Biophys. Rep. - 2021 - V. 25. - Art. 100905. - DOI: 10.1016/j.bbrep.2020.100905.

150. Hayashi, N. Simultaneous measurement of local blood flow and tissue oxygen in rat spinal cord / N. Hayashi, B.A. Green, J. Mora, M. Gonzalez-Carvajal, R.P. Veraa // Neurol Res. - 1983. - V. 5. - P. 49-58.

151. Hazra, A. Pharmacokinetics of methylprednisolone after intravenous and intramuscular administration in rats / A. Hazra, N. Pyszczynski, D. C. DuBois, R.R. Almon, W. J. Jusko // Biopharmaceutics & drug disposition. - 2007. - V. 28, No6. - P. 263-273.

152. He M. Autophagy induction stabilizes microtubules and promotes axon regeneration after spinal cord injury/M. He, Y Ding, C. Chu, J. Tang, Q. Xiao, Z.G. Luo // Proc. Natl. Acad. Sci USA. - 2016. - V. 113. - P. 11324-11329.

153. Hejcl, A. Biocompatible hydrogels in spinal cord injury repair / A. Hejcl, P. Lesny, M. Pradny, J. Michalek, P. Jendelova, J. Stulik, E. Sykova, // Physiological research. - 2008. - V. 57, Suppl 3. - P. S121-S132.

154. Heo, J.Y An Injectable Click-Crosslinked Hydrogel that Prolongs Dexamethasone Release from Dexamethasone-Loaded Microspheres / J.Y. Heo, J.H. Noh, S.H. Park, Y.B. Ji, H.J. Ju, D.Y Kim, B. Lee, M.S. Kim // Pharmaceutics. -2019. - V. 11. - Art. 438. - Doi:10.3390/pharmaceutics11090438.

155. Herbin, M. Gait parameters of treadmill versus overground locomotion in mouse/ M. Herbin, R. Hackert, J.P. Gasc, S. Renous // Behav. Brain Res. - 2007. -V. 181. - P. 173-179.

156. Herzberger, J. Polymerization of Ethylene Oxide, Propylene Oxide, and Other Alkylene Oxides: Synthesis, Novel Polymer Architectures, and Bioconjugation / J. Herzberger, K. Niederer, H. Pohlit, J. Seiwert, M. Worm, F.R. Wurm, H. Frey // Chem Rev. - 2016. - V. 116, No 4. - P. 2170-2243.

157. Hoffmann, P. Über die Beziehungen der Sehnenreflexe zur willkürlichen Bewegung und zum Tonus / P. Hoffmann // Z. Biol. - 1918. - V. 68. - P. 351-370.

158. Hoffmann, P. Untersuchungen uber die Eigenreflexe (Sehnenreflexe) menschlicher Muskeln / P. Hoffmann. - Berlin: Springer, 1922. - 106 S.

159. Hofstoetter, U.S. Periodic modulation of repetitively elicited monosynaptic reflexes of the human lumbosacral spinal cord / U.S. Hofstoetter, S.M. Danner,

B. Freundl, H. Binder, W. Mayr, F. Rattay, K. Minassian // J. Neurophysiol. - 2015. -V. 114. - P. 400-410.

160. Hurd, C. Anatomical correlates of recovery in single pellet reaching in spinal cord injured rats / C. Hurd, N. Weishaupt, K. Fouad // Exp. Neurol. - 2013. - V. 247. -P. 605-614.

161. Ilik, K. The effects of steroids in traumatic thoracolumbar junction patients on neurological outcome. Travmatik torakolomber bile§ke yaralanmali hastalarda steroidin nörolojik sonu?lar üzerine etkisi / K. Ilik, F. Keskin, M.F. Erdi, B. Y. Kaya, Karata§, E. Kalkan // Ulus. Travma Ve Acil Cerrahi Derg. Turk. J. Trauma Emerg. Surg. TJTES. - 2019. - V.25. - P. 484-488.

162. Islam, R. Multifactorial motor behavior assessment for real-time evaluation of emerging therapeutics to treat neurologic impairments / R. Islam, C.A. Cuellar, B. Felmlee, T. Riccelli, J. Silvernail, S.L. Boschen, P. Grahn, I. Lavrov // Sci. Rep. - 2019.

- 9. - Art. No 16503. - DOI: 10.1038/s41598-019-52806-1.

163. Islamov, R. New therapy for spinal cord injury: Autologous genetically-enriched leucoconcentrate integrated with epidural electrical stimulation / R. Islamov, F. Bashirov, A. Izmailov [et al.] // Cells. - 2022. - V. 11, No. 1. - DOI: 10.3390/cells11010144.

164. Islamov, R.R. Evaluation of direct and cell-mediated triple-gene therapy in spinal cord injury in rats / R.R. Islamov, A.A. Izmailov, M.E. Sokolov, P.O. Fadeev, F.V. Bashirov, A.A. Eremeev, G.F. Shaymardanova, M.M. Shmarov, B.S. Naroditskiy, Y.A. Chelyshev, I.A. Lavrov, A. Palotas // Brain Research Bulletin. - 2017. - V.132. - P. 4452.

165. Jana, A. Oxidative stress kills human primary oligodendrocytes via neutral sphingomyelinase: implications for multiple sclerosis/A. Jana, K. Pahan // J. Neuroimmune Pharmacol. - 2007. - V. 2. - P. 184-193.

166. Jialin, Y Polymeric Drug Delivery System Based on Pluronics for Cancer Treatment / Y Jialin, Q. Huayu, Y. Shouchun, W. Hebin, L. Yang // Molecules. - 2021.

- V. 26, No12. - Art. 3610. - DOI: 10.3390/molecules26123610.

167. Jiang, S. AIT-082 and methylprednisolone singly, but not in combination, enhance functional and histological improvement after acute spinal cord injury in rats / S. Jiang, M.I. Khan, P.J. Middlemiss, Y Lu, E.S. Werstiuk, C.E. Crocker, R. Ciccarelli, F. Caciagli, M.P. Rathbone // Int. J. Immunopathol. Pharmacol. - 2004. - V. 17. - P. 353-366.

168. Ju, Y. Application of advances in endocytosis and membrane trafficking to drug delivery / Y. Ju, H. Guo, M. Edman, S. F. Hamm-Alvarez // Advanced drug delivery reviews. - 2020. - V. 157. - P. 118-141.

169. Juliet, P.A. Toxic effect of blood components on perinatal rat subventricular zone cells and oligodendrocyte precursor cell proliferation, differentiation and migration in culture/P.A. Juliet, E.E. Frost, J. Balasubramaniam, M.R. Del Bigio // J. Neurochem.

- 2009. - V. 109. - P. 1285-1299.

170. Kabanov, A.V. Pluronic block copolymers: Novel functional molecules for gene therapy / A.V. Kabanov, P. Lemieux, S. Vinogradov, V. Alakhov // Adv. Drug Deliv. Rev. - 2002. - V. 54. - P. 223-233.

171. Kakuta, Y Spontaneous functional full recovery from motor and sensory deficits in adult mice after mild spinal cord injury / Y Kakuta, A. Adachi, M. Yokohama, T. Horii, T. Mieda, Y Iizuka, K. Takagishi, H. Chikuda, H. Iizuka, K. Nakamura // Heliyon. -2019. - V. 5. - e01847. Doi: 10.1016/j.heliyon. 2019.e01847.

172. Kamalov, M. Non-invasive topical drug delivery to spinal cord with carboxyl-modified trifunctional copolymer of ethylene oxide and propylene oxide/ M. Kamalov, I. Lavrov, A. Ergashev, Z. Siraeva, M. Baltin; A. Rizvanov, S. Kuznetcova, N. Petrova, I. Savina//Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. - 2016. -V. 140, No 1. - P. 196-203.

173. Kamalov, M.I. Self-assembled nanoformulation of methylprednisolone succinate with carboxylated blockcopolymer for local glucocorticoid therapy/ M.I. Kamalov, T. Dang, N.V. Petrova, A.V. Laikov, D. Luong, R.A. Akhmadishina, A.N. Lukashkin, T.I. Abdullin//Colloid and Surfaces B: Biointerfaces. - 2018. - V.164.

- P.78-88.

174. Karabey-Akyurek, Y Localized delivery of methylprednisolone sodium succinate with polymeric nanoparticles in experimental injured spinal cord model / Y Karabey-Akyurek, A.G. Gurcay, O. Gurcan, O.F. Turkoglu, S. Yabanoglu-Ciftci, H. Eroglu [et al.] // Pharm. Dev. Technol. - 2017. - V.22. - P. 972-981.

175. Karadottir, R. Neurotransmitter receptors in the life and death of oligodendrocytes/R. Karadottir, D. Attwell//Neuroscience. - 2007. - V. 145, No 4. -P. 1426-1438.

176. Kerkman, J. N. Body Weight Control Is a Key Element of Motor Control for Toddlers' Walking / J. N. Kerkman, C. S. Zandvoort, A. Daffertshofer, N. Dominici // Frontiers in network physiology. - 2022. - V. 2. - Art. 844607. -DOI: 10.33 89/fnetp.2022.844607.

177. Kiehn O. Decoding the organization of spinal circuits that control locomotion / O. Kiehn // Nature reviews. Neuroscience. - 2016. - V17, No4. - P. 224-238.

178. Kiehn, O. Locomotor circuits in the mammalian spinal cord / O. Kiehn // Annu. Rev. Neurosci. - 2006. - V. 29. - P. 279-306.

179. Kikkert, S. Finger somatotopy is preserved after tetraplegia but deteriorates over time / S. Kikkert, D. Pfyffer, M. Verling, P. Freund, N. Wenderoth // eLife. - 2021. - V. 10. - Art. e67713. - DOI:10.7554/eLife.67713.

180. Kilkenny, C. Improving bioscience research reporting: the ARRIVE guidelines for reporting animal research / C. Kilkenny, W. J. Browne, I. Cuthi, M. Emerson, D. G. Altman // Veterinary clinical pathology. - 2012. - V. 41, No 1. - P. 27-31.

181. Kim, Y T., Caldwell, J. M., & Bellamkonda, R. V. Nanoparticle-mediated local delivery of Methylprednisolone after spinal cord injury / Y T. Kim, J.M. Caldwell, R. V. Bellamkonda // Biomaterials. - 2009. - V. 30, No13. - P. 2582-2590.

182. Kirshblum, S.C. Predicting neurologic recovery in traumatic cervical spinal cord injury / S.C. Kirshblum, K.C. O'Connor // Arch. Phys. Med. Rehabil. - 1998. -V. 79. - P. 1456-1466.

183. Kjell, J. Rat models of spinal cord injury: from pathology to potential therapies / J. Kjell, L. Olson // Dis. Model Mech. - 2016. - V.9, No 10. - P. 1125-1137.

184. Kloos, A.D. Stepwise motor and all-or-none sensory recovery is associated with nonlinear sparing after incremental spinal cord injury in rats / A.D. Kloos, L.C. Fisher, M.R. Detloff, D.L. Hassenzahl, D.M. Basso//Exp. Neurol. - 2005. - V.191. - P. 251-265.

185. Kong, X. B. Polyethylene glycol as a promising synthetic material for repair of spinal cord injury / X. B. Kong, Q. Y. Tang, X. Y Y ChenTu, S. Z. Sun, Z. L. Sun // Neural Regen. Res. - 2017. - V. 12, No 6. - P. 1003-1008.

186. Koszdin, K.L. Spinal cord bioavailability of methylprednisolone after intravenous and intrathecal administration: the role of P-glycoprotein/K.L. Koszdin, D.D. Shen, C.M. Bernards //Anesthesiology. - 2000. - V. 92, No1. - P. 156-163.

187. Koyanagi, I. Silicone rubber microangiography of acute spinal cord injury in the rat/I. Koyanagi, C.H. Tator, E. Theriault//Neurosurgery. - 1993. - V. 32. - P. 260-268.

188. Kozuka, Y. Changes in synaptic transmission of substantia gelatinosa neurons after spinal cord hemisection revealed by analysis using in vivo patch-clamp recording / Y Kozuka, M. Kawamata, H. Furue, T. Ishida, S. Tanaka, A. Namiki, M. Yamakage // Mol. Pain. - 2016. - V. 12. - Art. 1744806916665827. -Doi:10.1177/1744806916665827.

189. Laurentini, A. The visual hull concept for silhouette-based image understanding/ A. Laurentini // IEEE Transactions on Pattern Analysis and Machine Intelligence. - 1994. - V.16. - P.150-162.

190. Lavrov, I. Plasticity of spinal cord reflexes after a complete transection in adult rats: relationship to stepping ability / I. Lavrov, YP. Gerasimenko, R.M. Ichiyama, G. Courtine, H. Zhong, R.R. Roy, V.R. Edgerton // J. Neurophysiol. - 2006. - V. 96. -P. 1699-1710.

191. Leden, R.E. Central nervous system injury and nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase: oxidative stress and therapeutic targets / R.E. Leden, YJ. Yauger, G. Khayrullina, K.R. Byrnes // J. Neurotrauma. - 2017. - V 34. - P. 755-764.

192. Lee, B.H. Effects of Methylprednisolone on the Neural Conduction of the Motor Evoked Potentials in Spinal Cord Injured Rats / B.H. Lee, K.H. Lee, D.H. Yoon,

U.J. Kim, Y.S. Hwang, S.K. Park, J.U. Choi, Y.G. Park // J. Korean Med. Sci. - 2005. -V.20, №1. - P. 132-138.

193. Lee, B.J. Review: Steroid Use in Patients With Acute Spinal Cord Injury and Guideline Update / B.J. Lee, J.H. Jeong // Korean J. Neurotrauma. - 2022. - V. 18. - P. 22-30.

194. Lee, R. C. Surfactant-induced sealing of electropermeabilized skeletal muscle membranes in vivo / R. C. Lee, L. P. River, F. S. Pan, L. Ji, R. L. Wollmann // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. -1992. - V. 89, No 10. - P. 4524-4528.

195. Lee, S. W. Concordance between the international standards for neurological classification of spinal cord injury motor examination and needle electromyography findings in muscles with a motor power grade of zero or trace / S. W. Lee, K. B. Lim, J. Kim, H. Lee, H. S. Kim, J. Yoo // The journal of spinal cord medicine. - 2023. -V. 46, No3. - P. 433-440.

196. Leroy, T. Automated gait analysis in the open-field test for laboratory mice/ T. Leroy, M. Silva, R. D'Hooge, J.M. Aerts, D. Berckmans // Behav. Res. Methods. -2009. - V. 41. - P. 148-153.

197. Levine, A. J. Identification of a cellular node for motor control pathways / A.J. Levine, C. A. Hinckley, K. L. Hilde, S. P. Driscoll, T. H. Poon, J. M. Montgomery, S. L. Pfaff, // Nature neuroscience. - 2014. - V. 17, No4. - P. 586-593.

198. Li S. Mechanisms of ionotropic glutamate receptor-mediated excitotoxicity in isolated spinal cord white matter/S. Li, P.K. Stys//J. Neurosci. - 2000. - V. 20. -P. 1190-1198.

199. Li, S. Construction of rat spinal cord injury model based on Allen's animal model / S. Li, J. Zhou, J. Zhang, D. Wang, J. Ma // Saudi J. Biol. Sci. - 2019. - V. 26. -P. 2122-2126.

200. Li, S. Na(+)-K(+)-ATPase inhibition and depolarization induce glutamate release via reverse Na(+)-dependent transport in spinal cord white matter / S. Li, P.K. Stys // Neuroscience. - 2001. - V. 107. - P. 675-683.

201. Li, W. High drug-loaded microspheres enabled by controlled in-droplet precipitation promote functional recovery after spinal cord injury / W. Li, J. Chen, S. Zhao, T. Huang, H. Ying, C. Trujillo, G. Molinaro [et al.] // Nature communications.

- 2022. - V. 13, No 1. -Art. 1262. - DOI:10.1038/s41467-022-28787-7.

202. Li, Y. 3D printable Sodium alginate-Matrigel (SA-MA) hydrogel facilitated ectomesenchymal stem cells (EMSCs) neuron differentiation / Y Li, X. Cao, W. Deng, Q. Yu, C. [et al.]// J. Biomater. Appl. - 2021. - V. 35, No 6. - P. 709-719.

203. Lin, Y. NEP1-40-modified human serum albumin nanoparticles enhance the therapeutic effect of methylprednisolone against spinal cord injury/ Y Lin, C. Li, J. Li, R. Deng, J. Huang, Q. Zhang, J. Lyu, N. Hao, Z. Zhong//J. Nanobiotechnology. - 2019.

- V.17, No1. - Art No12. - DOI: 10.1186/s12951-019-0449-3.

204. Lipinski, C. A. Drug-like properties and the causes of poor solubility and poor permeability / C. A. Lipinski // Journal of pharmacological and toxicological methods. - 2000. - V. 44, No 1. - P. 235-249.

205. Liu, C. Mitochondrial regulatory mechanisms in spinal cord injury: A narrative review / C. Liu, Y. Liu, B. Ma, M. Zhou, X. Zhao, X. Fu, S. Kan, W. Hu, R. Zhu // Medicine. - 2022. - V. 101, No 46. - Art. No e31930. DOI: 10.1097/MD.000000000003193.

206. Liu, F. Models of Spinal Cord Injury: From Pathology to Application / F. Liu, Y. Huang, H. Wang // Neurochem. Res. - 2022. - V. 48, No2. - P. 340-361.

207. Liu, J. Nitric oxide interacts with caveolin-1 to facilitate autophagy-lysosome-mediated claudin-5 degradation in oxygen-glucose deprivation-treated endothelial cells /J. Liu, J. Weaver, X. Jin, Y. Zhang, J. Xu, K.J. Liu//Mol. Neurobiol. -2016. - V. 53. - P. 5935-5947.

208. Liu, M. Necroptosis, a novel type of programmed cell death, contributes to early neural cells damage after spinal cord injury in adult mice / M. Liu, W. Wu, H. Li, S. Li, L.T. Huang, YQ. Yang // J. Spinal. Cord Med. - 2015. - V. 38. - P. 745-753.

209. Liu, S. Lysosomal damage after spinal cord injury causes accumulation of RIPK1 and RIPK3 proteins and potentiation of necroptosis / S. Liu, Y Li, H.M.C. Choi, C. Sarkar, E.Y. Koh, J. Wu, M.M. Lipinski // Cell Death Dis. - 2018. - V. 9. - P. 476.

210. Liu, W. Thermo-sensitive electroactive hydrogel combined with electrical stimulation for repair of spinal cord injury / W. Liu, Y. Luo, C. Ning, W. Zhang, Q. Zhang, H. Zou, C. Fu // J. Nanobiotechnologyro - 2021. - V. 19, No 1. - Art. 286. -doi: 10.1186/s 12951 -021 -01031 -y.

211. Liu, X.Z. Neuronal and glial apoptosis after traumatic spinal cord injury / X.Z. Liu, X.M. Xu, R. Hu, C. Du, S.X. Zhang, J.W. McDonald, H.X. Dong, YJ. Wu, G.S. Fan, M.F. Jacquin, C.Y Hsu, D.W. Choi // J. Neurosci. - 1997. - V. 17, No 14. -P. 5395-5406.

212. Liu, Y. Autosis and autophagic cell death: the dark side of autophagy/Y. Liu, B. Levine//Cell Death Differ. - 2015. - V. 22. - P. 367-376.

213. Liu, Z. High-dose methylprednisolone for acute traumatic spinal cord injury: A meta-analysis / Z. Liu, Y. Yang, L. He, M. Pang, C. Luo, B. Liu, L. Rong // Neurology. -2019. - V 93, No 9. - Art. e841-e850. - DOI: 10.1212/WNL.0000000000007998.

214. Liu-Snyder, P. Neuroprotection from secondary injury by polyethylene glycol requires its internalization / P. Liu-Snyder, M.P. Logan, R. Shi, D.T. Smith, R.B. Borgens // J. Exp. Biol. - 2007. - V. 210, Pt 8. - P. 1455-1462.

215. London, M. Dendritic computation / M. London, M. Häusser // Annu. Rev. Neurosci. - 2005 - V. 28. - P. 503-532.

216. Lou, J. Apoptosis as a mechanism of neuronal cell death following acute experimental spinal cord injury / J. Lou, L.G. Lenke, F.J. Ludwig, M.F. O'Brien // Spinal Cord. - 1998. - V. 36. - P. 683-690.

217. Lu, Y. Strategies to improve micelle stability for drug delivery / Y. Lu, E. Zhang, J. Yang, Z. Cao // Nano research. - 2018. - V. 11, No10. - P. 4985-4998.

218. Luo, Y. An injectable, self-healing, electroconductive extracellular matrix-based hydrogel for enhancing tissue repair after traumatic spinal cord injury / Y. Luo, L. Fan, C. Liu, H. Wen, S. Wang, P. Guan, D. Chen, C. Ning, L. Zhou, G. Tan // Bioactive materials. - 2021. - V. 7. - P. 98-111.

219. Lv, Z. Hydrogels in Spinal Cord Injury Repair: A Review / Z. Lv, C. Dong, T. Zhang, S. Zhang // Frontiers in bioengineering and biotechnology. - 2022. - V. 10. -Art. No 931800. - DOI:10.3389/fbioe.2022.931800.

220. Lynskey, J.V. Activity-dependent plasticity in spinal cord injury / J.V Lynskey, A. Belanger, R. Jung // J. Rehabil. Res. Dev. - 2008. - V 45. - P. 229-240.

221. Madigan, N. N. Comparison of cellular architecture, axonal growth, and blood vessel formation through cell-loaded polymer scaffolds in the transected rat spinal cord / N. N. Madigan, B. K. Chen, A. M. Knight, G. E. Rooney, E. Sweeney, L. Kinnavane, M.J. Yaszemski, P. Dockery, T. O'Brien, S. S. McMahon, A.J. Windebank // Tissue engineering. - 2014. - Part A, V. 20, No 21-22. - P. 2985-2997.

222. Magladery J.W. Electrophysiological studies of nerve and reflex activity in normal man. I. Identification of certain reflexes in the electromyogram and the conduction velocity of peripheral nerve fibers/J.W. Magladery, D.B. McDougal// Johns Hopkins Hosp.- 1950. - V. 86. - P. 265-290.

223. Marchini, A. Multifunctionalized hydrogels foster hNSC maturation in 3D cultures and neural regeneration in spinal cord injuries / A. Marchini, A. Raspa, R. Pugliese, M. A. El Malek, V. Pastori, M. Lecchi, A. L. Vescovi, F. Gelain // Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. -2019. - V. 116, No 15. - P. 7483-7492.

224. Marret S. Pathophysiology of cerebral palsy / S. Marret, C. Vanhulle, A. Laquerriere // Handbook Clinical Neurol. - 2013. - V. 111. - P. 169-176.

225. Martinez, M. Treadmill training promotes spinal changes leading to locomotor recovery after partial spinal cord injury in cats / M. Martinez, H. Delivet-Mongrain, S. Rossignol // J. Neurophysiol. - 2013. - V.109. - P. 2909-2922.

226. Mathian, A. Regulatory T Cell Responses to High-Dose Methylprednisolone in Active Systemic Lupus Erythematosus / A. Mathian, R. Jouenne, D. Chader, F. Cohen-Aubart, J. Haroche, J. Fadlallah, L. Claer, L. Musset, G. Gorochov, Z. Amoura, M. Miyara // PLoS ONE. - 2015. - V. 10, No12. - Art. e0143689. - DOI: 10.1371/journal.pone.0143689.

227. Mattucci, S. Temporal Progression of Acute Spinal Cord Injury Mechanisms in a Rat Model: Contusion, Dislocation, and Distraction / S. Mattucci, J. Speidel, J. Liu, W. Tetzlaff, T.R. Oxland // J. Neurotrauma. - 2021. - Vol.38, No15. - P. 2103-2121.

228. Matute, C. P2X (7) receptor blockade prevents ATP excitotoxicity in oligodendrocytes and ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis / C. Matute, I. Torre, F. Perez-Cerda, A. Perez-Samartin, E. Alberdi, E. Etxebarria // J. Neurosci. - 2007. - V. 27 - P. 9525-9533.

229. McAdoo, D.J. The effect of glutamate receptor blockers on glutamate release following spinal cord injury. Lack of evidence for an ongoing feedback cascade of damage -> glutamate release -> damage -> glutamate release -> etc./D.J. McAdoo, M.G. Hughes, L. Nie, B. Shah, C. Clifton, S. Fullwood, C.E. Hulsebosch//Brain Res. -2005. - V. 1038. - P. 92-99.

230. McGinley P.A. Determination of methylprednisolone in central nervous tissue and plasma using normalphase high-performance liquid chromatography / P.A. McGinley, J.M. Braughler, E.D. Hall // J. Chromatogr B Biomed Sci Appl. - 1982. - V.230. - P.29-35.

231. McKenzie, M. Hydrogel-Based Drug Delivery Systems for Poorly Water-Soluble Drugs / M. McKenzie, D. Betts, A. Suh, K. Bui, L. D. Kim, H. Cho // Molecules (Basel, Switzerland). - 2015. - V. 20, No 11. - P. 20397-20408.

232. McTigue, D.M. Proliferation of NG2-positive cells and altered oligodendrocyte numbers in the contused rat spinal cord / D.M. McTigue, P. Wei, B.T. Stokes // J. Neurosci. - 2001. - V. 21. - P. 3392-3400.

233. Merlet, A. N. Inhibition and facilitation of the spinal locomotor central pattern generator and reflex circuits by somatosensory feedback from the lumbar and perineal regions after spinal cord injury / A. N. Merlet, J. Harnie, A. Frigon // Front. Neurosci. - 2021. - V.15. - Art. No 720542. - D0I:10.3389/fnins.2021.720542.

234. Metz, G.A. Efficient testing of motor function in spinal cord injured rats / G.A. Metz, D. Merkler, V. Dietz, M.E. Schwab, K. Fouad // Brain Res. - 2000. -V. 883. - P. 165-177.

235. Middleton, J.W. Life expectancy after spinal cord injury: a 50-year study / J.W. Middleton, A. Dayton, J. Walsh, S.B. Rutkowski, G Leong, S. Duong // Spinal Cord. - 2012. - V. 50. - P. 803-811.

236. Miller, S. M. Methylprednisolone in acute spinal cord injury: a tarnished standard // Journal of neurosurgical anesthesiology. - 2008. - V. 20, No2. - P. 140-142.

237. Mitchell, M. J. Engineering precision nanoparticles for drug delivery. Nature reviews / M. J. Mitchell, M. M. Billingsley, R. M. Haley, M. E. Wechsler, N. A. Peppas, R. Langer // Drug discovery. - 2021. - V. 20, No 2. - P. 101-124.

238. Mizuno, Y. Apoptosis in neurodegenerative disorders / Y Mizuno, H. Mochizuki, Y Sugita, K. Goto // Intern. Med. - 1998. - V. 37. - P. 192-193.

239. Mizushima, N. Autophagy: process and function / N. Mizushima // Genes Dev. - 2007. - V. 21. - P. 2861-2873.

240. Mizushima, N. Autophagy: renovation of cells and tissues / N. Mizushima, M. Komatsu//Cell. - 2011. - V. 147. - P. 728-741.

241. Moraud, E. M. Mechanisms Underlying the Neuromodulation of Spinal Circuits for Correcting Gait and Balance Deficits after Spinal Cord Injury / E.M. Moraud, M. Capogrosso, E. Formento, N. Wenger, J. DiGiovanna, G. Courtine, S. Micera // Neuronw - 2016. - V. 89, No 4. - P. 814-828.

242. Muir, G.D. Ground reaction forces in locomoting hemi-parkinsonian rats: A definitive test for impairments and compensations / G.D. Muir, I.Q. Whishaw // Exp. Brain Res. - 1999. - V. 126. - P. 307-314.

243. Mundermann, L. The evolution of methods for the capture of human movement leading to markerless motion capture for biomechanical applications / L. Mundermann, S. Corazza, T.P. Andriacchi // J. Neuroeng Rehabil. - 2006. - V.3. -Art. 6. - doi: 10.1186/1743-0003-3-6.

244. Munteanu, C. Main Cations and Cellular Biology of Traumatic Spinal Cord Injury / C. Munteanu, M. Rotariu, M. Turnea, A. M. Ionescu, C. Popescu, A. Spinu, E. V. Ionescu, C. Oprea, R. E. Tucmeanu, L. G. Tataranu, S. C. Silisteanu, G. Onose // Cells. - 2022. - V. 11, No16. - Art. 2503. - DOI:10.3390/cells11162503.

245. Muro-de-la Herran, A. Gait analysis methods: An overview of wearable and non-wearable systems, highlighting clinical applications / A. Muro-de-la Herran, B. Garcia-Zapirain, A. Mendez-Zorrilla // Sensors. - 2014. - V. 14, No 2. - P. 33623394.

246. Murphy, A. D. Poloxamer 188 protects against ischemia-reperfusion injury in a murine hind-limb model / A. D. Murphy, M. C. McCormack, D. A. Bichara, J.T. Nguyen, M. A. Randolph, M. T. Watkins, R. C. Lee, W. G. Austen // Plastic and reconstructive surgeryro - 2010. - V. 125, No6. - P. 1651-1660.

247. Musienko, P.E. Limb and trunk mechanisms for balance control during locomotion in quadrupeds / P.E. Musienko, T.G. Deliagina, Y.P. Gerasimenko, G.N. Orlovsky, P.V. Zelenin // J. Neurosci. - 2014. - V.34, No 16. - P. 5704-5716.

248. Musienko, P. Multisystem neurorehabilitative strategies to restore motor functions following severe spinal cord injury / P. Musienko, J. Heutschi, L. Friedli, R. van den Brand, G. Courtine // Experimental Neurology - 2012. - V. 235, No1. -P. 100-109.

249. Musienko, P. E. Activity of Spinal Interneurons during Forward and Backward Locomotion / P.E. Musienko, V. F. Lyalka, O. V. Gorskii, P. V. Zelenin, T. G. Deliagina // The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. - 2022. - V. 42, No 17. - P. 3570-3586.

250. Musienko, P.E. Spinal and supraspinal control of the direction of stepping during locomotion / P.E. Musienko, P.V. Zelenin, V.F. Lyalka, Y.P. Gerasimenko, G.N. Orlovsky, T.G. Deliagina // J. Neurosci. - 2012. - V.32, No 48. - P. 17442-17453.

251. Nadeau, S. Spontaneous motor rhythms of the back and legs in a patient with a complete spinal cord transection / S. Nadeau, G. Jacquemin, C. Fournier, Y. Lamarre, S. Rossignol // Neurorehabilitation and neural repair. - 2010. - V. 24, No 4. - P. 377383.

252. Nagoshi, N. Riluzole as a neuroprotective drug for spinal cord injury: from bench to bedside / N. Nagoshi, H. Nakashima, M.G. Fehlings // Molecules. - 2015. -V. 20. - P. 7775-7789.

253. Naharros-Molinero, A. Direct and Reverse Pluronic Micelles: Design and Characterization of Promising Drug Delivery Nanosystems / A. Naharros-Molinero, M. Á. Caballo-González, F. J. de la Mata, S. García-Gallego // Pharmaceutics. - 2022. -V. 14, No 12. - Art. 2628. - D0I:10.3390/pharmaceutics14122628.

254. Nessler, J. A. Robotic gait analysis of bipedal treadmill stepping by spinal contused rats: characterization of intrinsic recovery and comparison with BBB / J.A. Nessler, R. D. De Leon, K. Sharp, E. Kwak, K. Minakata, D. J. Reinkensmeyer // Journal of neurotrauma. - 2006. - V. 23, No 6. - P. 882-896.

255. Nguyen, M. K. Injectable biodegradable hydrogels / M. K. Nguyen, D.S. Lee // Macromolecular bioscience. - 2010. - V. 10, No 6. - P. 563-579.

256. Nie, S. Zonisamide-loaded triblock copolymer nanomicelle as a controlled drug release platform for the treatment of oxidative stress-induced spinal cord neuronal damage / S. Nie, J. Lu, Y. Huang, Q.-a. Li // J. Mol. Liq. - 2021. - V. 326. - Art. 115233. - DOI: 10.1016/j.molliq.2020.115233.

257. Ocejo, A. Methylprednisolone/A. Ocejo, R. Correa. - In: StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2023 - PMID: 31335060.

258. Ogata, M. Autophagy is activated for cell survival after endoplasmic reticulum stress / M. Ogata, S. Hino, A. Saito, K. Morikawa, S. Kondo, S. Kanemoto, T. Murakami, M. Taniguchi, I. Tanii, K. Yoshinaga, S. Shiosaka, J.A. Hammarback, F. Urano, K. Imaizumi//Mol. Cell. Biol. - 2006. - V. 26. - P. 9220-9231.

259. Onifer, S.M. Rat models of traumatic spinal cord injury to assess motor recovery / S.M. Onifer, A.G. Rabchevsky, S.W. Scheff // ILAR J. - 2007. - V. 48, No 4.

- P. 385-395.

260. Oyinbo, C.A. Secondary injury mechanisms in traumatic spinal cord injury: a nugget of this multiply cascade / C.A. Oyinbo // Acta Neurobiol. Exp. - 2011. - V. 71.

- P. 281-299.

261. Pandya, J. D. Concentration dependent effect of calcium on brain mitochondrial bioenergetics and oxidative stress parameters / J.D. Pandya, V.N. Nukala, P.G. Sullivan // Front Neuroenergetics. - 2013. - V. 5. - Art. 10. -DOI: 10.3389/fnene.2013.00010.

262. Panter S.S. Alteration in extracellular amino acids after traumatic spinal cord injury / S.S. Panter, S.W. Yum, A.I. Faden // Ann. Neurol. - 1990. - V. 27. - P. 96-99.

263. Parker, D. The lesioned spinal cord is a "new" spinal cord: Evidence from functional changes after spinal injury in Lamprey / D. Parker //Front. Neural Circuits. -2017. - V.11. - Art. 84. - DOI:10.3389/fncir.2017.00084.

264. Peng H. Research progress of hydrogels as delivery systems and scaffolds in the treatment of secondary spinal cord injury / H. Peng, Y. Liu, F. Xiao, L. Zhang, W. Li, B. Wang, Z. Weng, Y. Liu, G. Chen // Front. Bioeng. Biotechnol. - 2023. - V.11. - Art. 1111882. - DOI: 10.3389/fbioe.2023.1111882.

265. Pereira, J.E. Methylprednisolone fails to improve functional and histological outcome following spinal cord injury in Rats / J.E. Pereira, L.M. Costa, A.M. Cabrita, P.A. Couto, V.M. Filipe [et al.] // Exp. Neurol. - 2009. - V. 220. - P. 71-81.

266. Pierrot-Deseilligny, E. The Circuitry of the Human Spinal Cord: Its Role in Motor Control and Movement Disorders/ E. Pierrot-Deseilligny, D. Burke. -Cambridge, UK: Cambridge University Press, 2005. - 642p.

267. Pierrot-Deseilligny, E. The monosynaptic reflex: a tool to investigate motor control in humans. Interest and limits/E. Pierrot-Deseilligny, D. Mazevet// Neurophysiol. Clin. - 2000. -V. 30. - P. 67-80.

268. Pivovarova, N.B. Calcium-dependent mitochondrial function and dysfunction in neurons / N.B. Pivovarova, S.B. Andrews // FEBS J. - 2010. - V. 277. -P. 3622-3636.

269. Pruss, H. Non-resolving aspects of acute inflammation after spinal cord injury (SCI): indices and resolution plateau/H. Pruss, M.A. Kopp, B. Brommer, N. Gatzemeier, I. Laginha, U. Dirnagl, J.M. Schwab//Brain. Pathol. - 2011. - V. 21. -P. 652-660.

270. Raimondo, G.D. Inertial Sensor-to-Segment Calibration for Accurate 3D Joint Angle Calculation for Use in OpenSim / G.D. Raimondo, B. Vanwanseele, A. Have, J. Emmerzaa, M. Willems, B.A. Killen, I. Jonkers // Sensors - 2022. - V. 22, No 9. - Art. 3259. - DOI: 10.3390/s22093259.

271. Raspa, A. Feasible stabilization of chondroitinase abc enables reduced astrogliosis in a chronic model of spinal cord injury/A. Raspa, E. Bolla, C. Cuscona, F. Gelain //CNS Neuroscience & Therapeutics. - 2018. - V. 25, No1. - P. 86-100.

272. Rattay, F. Epidural electrical stimulation of posterior structures of the human lumbosacral cord: 2. quantitative analysis by computer modeling / F. Rattay, K. Minassian, M.R. Dimitrijevic // Spinal Cord. - 2000. - V. 38. - P. 473-489.

273. Regan, R.F. Glutamate neurotoxicity in spinal cord cell culture/R.F. Regan, D.W. Choi//Neuroscience. - 1991. - V. 43. - P. 585-591.

274. Reginald, A. Surgery of experimental lesion of spinal cord equivalent to crush injury of fracture dislocation of spinal column / A. Reginald // JAMA. - 1911. -V. 57. - P. 878-880.

275. Rhen, T. Antiinflammatory action of glucocorticoids - new mechanisms for old drugs / T. Rhen, J.A. Cidlowski // N. Engl. J. Med. - 2005. - V 353. - P. 1711-1723.

276. Ristroph, L. Automated hull reconstruction motion tracking (HRMT) applied to sideways maneuvers of free-flying insects/ L. Ristroph, G.J. Berman, A.J. Bergou, Z.J. Wang, I. Cohen//J. Exp. Biol. - 2009. - V.212. - P. 1324-1335.

277. Rivlin, A.S. Regional spinal cord blood flow in rats after severe cord trauma/ A.S. Rivlin, C.H. Tator//J. Neurosurg. - 1978. - V. 49. - P. 844-853.

278. Robins-Steele, S. The delayed post-injury administration of soluble fas receptor attenuates post-traumatic neural degeneration and enhances functional recovery after traumatic cervical spinal cord injury / S. Robins-Steele, D.H. Nguyen, M.G. Fehlings//J. Neurotrauma. - 2012. - V. 29. - P. 1586-1599.

279. Ron G Established and Emerging Therapies in Acute Spinal Cord Injury / G. Ron, S. David, P. Marc, K. Joey, F. Alfonso, R. Alexander // J. Neurospine. - 2022. -V. 2. - P.283-296.

280. Rossignol S. Locomotor capacities after complete and partial lesions of the spinal cord / S. Rossignol, C. Chau, E. Brustein, M. Bélanger, H. Barbeau, T. Drew // Acta Neurobiol. Exp. - 1996. - V. 56. - P. 449-463.

281. Rouanet, C. Traumatic spinal cord injury: current concepts and treatment update/C. Rouanet, D. Reges, E. Rocha, V. Gagliardi, G.S. Silva//Arq. Neuropsiquiatr. -2017. - V. 75, No6. - P. 387-393.

282. Roy, F. D. Effect of percutaneous stimulation at different spinal levels on the activation of sensory and motor roots/F. D. Roy, G. Gibson, R. B. Stein//Exp. Brain Res. - 2012. - V. 223. - P. 281-289.

283. Royo Sanchez, A.C. Development of a new calibration procedure and its experimental validation applied to a human motion capture system/A.C. Royo Sanchez, J.J. Aguilar Martin, J. Santolaria Mazo//J. Biomech. Eng. - 2014. - V. 136, No 12. -P. 124-127.

284. Rybak, I. A. Organization of the Mammalian Locomotor CPG: Review of Computational Model and Circuit Architectures Based on Genetically Identified Spinal Interneurons / I. A. Rybak, K. J. Dougherty, N. A. Shevtsova // eNeuro. - 2015. - V. 2, No 5 - ENEURO.0069-15.2015. - DOI:10.1523/ENEURO.0069-15.2015.

285. Sadowsky, C.L. Editorial: Harnessing Neuroplasticity in the Injured Central Nervous System Using Spinal Neuromodulation / C.L. Sadowsky, D. G. Sayenko // Front. Rehabilit. Sci. - 2022. - V.3. - Art. 841014. - DOI: 10.3389/fresc.2022.841014.

286. Sandrow-Feinberg, H. R. Exercise after spinal cord injury as an agent for neuroprotection, regeneration and rehabilitation / H. R.Sandrow-Feinberg, J. D. Houle // Brain Research. — 2015. — V. 1619. — P. 12-21.

287. Satkunendrarajah, K. Riluzole promotes motor and respiratory recovery associated with enhanced neuronal survival and function following high cervical spinal hemisection / K. Satkunendrarajah, F. Nassiri, S.K. Karadimas, A. Lip, G. Yao, M.G. Fehlings // Exp. Neurol. - 2016. - V. 276. - P. 59-71.

288. Satti, H. S. Autologous mesenchymal stromal cell transplantation for spinal cord injury: A Phase I pilot study / H.S. Satti, A. Waheed, P. Ahmed, K. Ahmed, Z. Akram, T. Aziz, T.M. Satti, N. Shahbaz, M.A. Khan, S.A. Malik // Cytotherapy. -2016. - V. 18. - P. 518-522.

289. Sayenko, D. G. Spinal segment-specific transcutaneous stimulation differentially shapes activation pattern among motor pools in humans/D. G. Sayenko, D. A. Atkinson, C. J. Dy, K. M. Gurley, V. L. Smith, C. Angeli et al.//J. Appl. Physiol. -2015. - V. 118. - P. 1364-1374.

290. Sayenko, D. G. Vestibulospinal and Corticospinal Modulation of Lumbosacral Network Excitability in Human Subjects / D. G. Sayenko, D. A. Atkinson, A.M. Mink, K.M. Gurley, V.R. Edgerton, S.J. Harkema, YP. Gerasimenko // Front. Physiol. - 2018. - V.6, No9. - Art.01746. - DOI: 10.3389/fphys. 2018.01746.

291. Sayenko, D.G. Neuromodulation of evoked muscle potentials induced by epidural spinal-cord stimulation in paralyzed individuals/D.G. Sayenko, C. Angeli, S.J. Harkema, V.R. Edgerton, Y.P. Gerasimenko//J. Neurophysiol. - 2014. - V.111. -P. 1088-1099.

292. Scheinman, R.I. Role of transcriptional activation of I kappa B alpha in mediation of immunosuppression by glucocorticoids/R.I. Scheinman, P.C. Cogswell,

A.K. Lofquist, A.S. Baldwin//Science. - 1995. - V. 270. - P. 283-286

293. Schröter, A. High-dose corticosteroids after spinal cord injury reduce neural progenitor cell proliferation / A. Schröter, R.M. Lustenberger, F.J. Obermair, M. Thallmair // Neuroscience. - 2009. - V. 161. - P. 753-763.

294. Sekhon, L.H. Epidemiology, demographics, and pathophysiology of acute spinal cord injury/ L.H. Sekhon, M.G. Fehlings //Spine. - 2001. - V.26. - P. 2-12.

295. Sharma, P. Multi-Site Spinal Cord Transcutaneous Stimulation Facilitates Upper Limb Sensory and Motor Recovery in Severe Cervical Spinal Cord Injury: A Case Study / P. Sharma, T. Panta, B. Ugiliweneza, R. J. Bert, Y. Gerasimenko, G. Forrest, S. Harkema // Journal of clinical medicine. - 2023. - V. 12, No 13. - Art. 4416. - DOI: 10.3390/jcm12134416.

296. Shavelle, R.M. Mobility, continence, and life expectancy in persons with Asia Impairment Scale Grade D spinal cord injuries/R.M. Shavelle, D.R. Paculdo, L.M. Tran, D.J. Strauss, J.C. Brooks, M.J. DeVivo//Am. J. Phys. Med. Rehabil. - 2015. - V. 94. - P. 180-191.

297. Shaw, W.A. Gluconeogenesis from glycerol at rest and during exercise in normal, diabetic, and methylprednisolone-treated dogs/W.A. Shaw, T.B. Issekutz,

B. Issekutz //Metab. Clin. Exp. - 1976. - V. 25, №3. - P. 329-339.

298. Shepard, C. T. Silencing long ascending propriospinal neurons after spinal cord injury improves hindlimb stepping in the adult rat / C. T. Shepard, A. M. Pocratsky,

B. L. Brown, M. A. Van Rijswijck, R. M. Zalla, D. A. Burke, J. R. Morehouse,

A. S. Riegler, S. R. Whittemore, D. S. Magnuson // eLife. - 2021. - V.10. - Art. e70058. - DOI: 10.7554/eLife.70058.

299. Shimizu, E.N. Prophylactic riluzole attenuates oxidative stress damage in spinal cord distraction / E.N. Shimizu, J.L. Seifert, K.J. Johnson, M.I. Romero-Ortega // J. Neurotrauma. - 2018. - V. 35. - P. 1319-1328.

300. Short, D.J. High dose methylprednisolone in the management of acute spinal cord injury - a systematic review from a clinical perspective/D.J. Short, W.S. El Masry, P.W. Jones//Spinal Cord. - 2000. - V. 38. - P. 273-286.

301. Shumway-Cook, A. Motor control: translating research into clinical practice / A. Shumway-Cook, M.H. Woollacott. - Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins, 2011. - 641p.

302. Simöes, S. Modular Hydrogels for Drug Delivery / S. Simöes, A. Figueiras, F. Veiga // Journal of Biomaterials and Nanobiotechnology. - 2012. - V. 3. - P. 185199.

303. Springer, J.E. 4-hydroxynonenal, a lipid peroxidation product, rapidly accumulates following traumatic spinal cord injury and inhibits glutamate uptake / J.E. Springer, R.D. Azbill, R.J. Mark, J.G. Begley, G. Waeg, M.P. Mattson // J. Neurochem. - 1997. - V. 68. - P. 2469-2476.

304. Starkov, A.A. Mitochondrial calcium and oxidative stress as mediators of ischemic brain injury/A.A. Starkov, C. Chinopoulos, G. Fiskum//Cell Calcium. - 2004. - V. 36. - P. 257-264.

305. Stefanie K. A human stem cell-derived test system for agents modifying neuronal N-methyl-D-aspartate-type glutamate receptor Ca2+-signalling / K. Stefanie,

B. Markus, S. Anna-Sophie, S. Ilinca, F. Tjalda, S. Jens, W. Tanja, K. Christiaan, L. Marcel// Arch Toxicol. - 2021. -V. 95, No 5. - P. 1703-1722.

306. Stein, D.M. Emergency neurological life support: traumatic spine injury / D.M. Stein, J.A. Pineda, V.T. Roddy, W.A. Knight//Neurocrit. Care. - 2015. - V.23 -P. 155-164.

307. Stolbkov, YK. Plastic Changes Induced by Motor Activity in Spinal Cord Injury / Y.K. Stolbkov, YP. Gerasimenko // Neurosci Behav Physi. - 2023. - V. 53. -P. 399-408.

308. Streeter, K. A. Mid-cervical interneuron networks following high cervical spinal cord injury / K. A. Streeter, M. D. Sunshine, S. R. Patel, E. J. Gonzalez-Rothi, P. J. Reier, D. M. Baekey, D. D. Fuller // Respiratory physiology & neurobiology. -2020. - V. 271. - Art. No103305. - DOI: 10.1016/j.resp.2019.103305.

309. Stys, P.K. Ionic mechanisms of anoxic injury in mammalian CNS white matter: role of Na+ channels and Na(+)-Ca2+ exchanger/P.K. Stys, S.G. Waxman, B.R. Ransom//Neurosci J. - 1992. - V. 12. - P. 430-439.

310. Sultan, I. The safety and efficacy of steroid treatment for acute spinal cord injury: A Systematic Review and meta-analysis / I. Sultan, N. Lamba, A. Liew, P. Doung, I. Tewarie, J.J. Amamoo, L. Gannu, S. Chawla, J. Doucette [et al.] // Heliyon. - 2020. - V. 6. - Art. e03414. - DOI: 10.1016/j.heliyon. 2020.e03414.

311. Sutherland D.H. The evolution of clinical gait analysis part III--kinetics and energy assessment / D.H. Sutherland //Gait Posture. - 2005. - V.21, No4. - P. 447-461.

312. Sutherland D.H. The evolution of clinical gait analysis. Part II kinematics / D.H. Sutherland // Gait Posture. - 2002. - V. 16, No 2. - P. 159-179.

313. Sutherland, D.H. The evolution of clinical gait analysis part l: kinesiological EMG / D.H. Sutherland // Gait Posture. - 2001. - V. 14. - P. 61-70.

314. Takahashi, J.L. Interleukin-1beta promotes oligodendrocyte death through glutamate excitotoxicity/J.L. Takahashi, F. Giuliani, C. Power, Y Imai, V.W. Yong //Ann Neurol. - 2003. - V. 53, No5. - P. 588-595.

315. Takakusaki, K. Functional Neuroanatomy for Posture and Gait Control / K. Takakusaki // Journal of movement disorders^ - 2017. - V. 10, No 1. - P. 1-17.

316. Tanbour, R. Drug Delivery Systems Based on Polymeric Micelles and Ultrasound: A Review / R. Tanbour, A. M. Martins, W. G. Pitt, G. A. Husseini // Current pharmaceutical design. - 2016. - V. 22, No19. - P. 2796-2807.

317. Tao, W. Gait analysis using wearable sensors / W. Tao, T. Liu, R. Zheng, H. Feng //Sensors (Basel). - 2012. - V. 12, №2. - P. 2255-2283.

318. Taoka, Y. Methylprednisolone reduces spinal cord injury in rats without affecting tumor necrosis factor-alpha production / Y Taoka, K. Okajima, M. Uchiba, M. Johno // J. Neurotrauma. - 2001. - V. 18. - P. 533-543.

319. Tator, C.H. Vascular mechanisms in the pathophysiology of human spinal cord injury/C.H. Tator, I. Koyanagi//J. Neurosurg. - 1997. - V. 86. - P. 483-492.

320. Thorburne, S.K. Low glutathione and high iron govern the susceptibility of oligodendroglial precursors to oxidative stress/S.K. Thorburne, B.H. Juurlink // J. Neurochem. - 1996. - V. 67. - P. 1014-1022.

321. Timotius I. Dynamic footprint-based locomotion sway assessment in a-synucleinopathic mice using Fast Fourier Transform and Low Pass Filter /I. Timotius, F. Canneva, G. Minakaki, C. Pasluosta, S. Moceri, N. Casadei, O. Riess, J. Winkler, J. Klucken, S. Hörsten, B. Eskofier//Journal of Neuroscience Methods. - 2018. - V. 296. - P. 1-11.

322. Tiwari A.P. Chapter 2—Synthesis and bioconjugation of hybrid nanostructures for biomedical applications / A.P. Tiwari, S.S. Rohiwal // In: Hybrid Nanostructures for Cancer Theranostics/ A.R. Bohara, N. Thorat, editors. - Amsterdam, The Netherlands: Elsevier, 2019. - P. 17-41.

323. Tran. A.P. The biology of regeneration failure and success after spinal cord injury/A.P. Tran, P.M. Warren, J. Silver//Physiol. Rev. - 2018. - V. 98. - P. 881-917.

324. Tresch, M. C. Coordination and localization in spinal motor systems / M. C. Tresch, P. Saltiel, A. d'Avella, Bizzi, E. //Brain research. Brain research reviews. -2002. - V.40, No 1-3. - P. 66-79.

325. Turnbull, I.M. Microvasculature of the human spinal cord/I.M. Turnbull // J. Neurosurg. - 1971. - V. 35. - P. 141-147.

326. Van den Brand, R. Neuroprosthetic technologies to augment the impact of neurorehabilitation after spinal cord injury/R. Van den Brand, J.-B. Mignardot, J. von Zitzewitz, C. Le Goff, N. Fumeaux, F. Wagner, M. Capogrosso, E. Martin Moraud, S. Micera, B. Schurch, A. Curt, S. Carda, J. Bloch, G. Courtine//Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. - 2015. - V. 58. - P. 232-237.

327. Verkhratsky A. Calcium ions and integration in neural circuits / A. Verkhratsky // Acta Physiol (Oxf). - 2006. - V.187, No 3. - P. 357-369.

328. Verkhratsky, A. Endoplasmic reticulum Ca (2+) homeostasis and neuronal death /A. Verkhratsky, E.C. Toescu//J. Cell Mol. Med. - 2003. - V. 7. - P. 351-361.

329. Verkhratsky, A. Ion channels in glial cells / A. Verkhratsky, C. Steinhauser // Brain Res. Rev. - 2000. - V. 32, No2-3. - P. 380-412.

330. Vernengo, J. Evaluation of novel injectable hydrogels for nucleus pulposus replacement / J. Vernengo, G. W. Fussell, N. G. Smith, A. M. Lowman // J. Biomed. Mater Res. B Appl. Biomater. - 2008. - V. 84, No 1. - P. 64-69.

331. Villamar, Z. Short-latency stretch reflexes depend on the balance of activity in agonist and antagonist muscles during ballistic elbow movements / Z. Villamar, D. Ludvig, E. J. Perreault // Journal of neurophysiology. - 2023. - V. 129, No 1. - P. 7-16.

332. Vogelaar, C. F. Experimental Spinal Cord Injury Models in Rodents: Anatomical Correlations and Assessment of Motor Recovery/ C. F. Vogelaar, V. Estrada // InTech. - 2016. - DOI: 10.5772/62947.

333. Wada, S. Apoptosis following spinal cord injury in rats and preventative effect of N-methyl-D-aspartate receptor antagonist/S. Wada, K. Yone, Y. Ishidou, T. Nagamine, S. Nakahara, T. Niiyama, T. Sakou//J. Neurosurg. - 1999. - V. 91. - P. 98104.

334. Wang Z. C/EBP homologous protein (CHOP) mediates neuronal apoptosis in rats with spinal cord injury/Z. Wang, C. Zhang, Z. Hong, H. Chen, W. Chen, G. Chen // Exp. Ther. Med. - 2013. - V. 5. - P. 107-111.

335. Wang, Y Multimodal therapy strategies based on hydrogels for the repair of spinal cord injury / Y. Wang, H.Q. Lv, X. Chao, W.X. Xu, Y. Liu, G.X. Ling, P. Zhang // Mil. Med. Res. - 2022. - V. 9. - Art. 16. - DOI: 10.1186/s40779-022-00376-1.

336. Wang, Y. Effective improvement of the neuroprotective activity after spinal cord injury by synergistic effect of glucocorticoid with biodegradable amphipathic nanomicelles/Y Wang, M. Wu, L. Gu, X. Li, J. He, L. Zhou, A. Tong, J. Shi, H. Zhu, J. Xu, G. Guo//Drug Deliv. - 2017. - V. 24. - P. 391-401.

337. Waters, R.L. Motor and sensory recovery following incomplete tetraplegia / R.L. Waters, R.H. Adkins, J.S. Yakura, I. Sie//Arch. Phys. Med. Rehabil. - 1994. -V. 75. - P. 306-311.

338. Waters, R.L. Recovery following complete paraplegia / R.L. Waters, J.S. Yakura, R.H. Adkins, I. Sie//Arch. Phys. Med. Rehabil. - 1992. - V. 73. - P. 784-789.

339. Watson, C. Projections from the brain to the spinal cord / C. Watson, A.R. Harvey // The spinal cord /C. Watson, G. Paxinos, G. Kayalioglu, eds. - A Christopher and Dana Reeve Foundation Text and Atlas. San Diego: Elsevier Academic Press, 2009. - P. 168-179.

340. Watson, C. The Location of the Major Ascending and Descending Spinal Cord Tracts in all Spinal Cord Segments in the Mouse: Actual and Extrapolated /

C. Watson, M. Harrison // The Anatomical Record: Advances in Integrative Anatomy and Evolutionary Biology. — 2012. —V. 295, No10. — P. 1692-1697.

341. Wenger, N. Closed-loop neuromodulation of spinal sensorimotor circuits controls refined locomotion after complete spinal cord injury / N. Wenger, E.M. Moraud, S. Raspopovic, M. Bonizzato, J. DiGiovanna, P. Musienko, M. Morari, S. Micera, G. Courtine // Sci. Transl. Med. - 2014. - V. 6. - Art.255ra133. - DOI: 10.1126/scitranslmed.3008325.

342. White-Schenk, D. Nanomedicine strategies for treatment of secondary spinal cord injury / D. White-Schenk, R. Shi, J.F. Leary // Int. J. Nanomed. - 2015. - V. 10. -P. 923-938.

343. Wilson, J.R. Clinical predictors of neurological outcome, functional status, and survival after traumatic spinal cord injury: a systematic review / J.R. Wilson,

D.W. Cadotte, M.G. Fehlings //J. Neurosurg. Spine. - 2012. - V. 17 - P. 11-26.

344. Wong, J.K. Steward O. A straight alley version of the BBB locomotor scale / J.K Wong, K. Sharp // Exp Neurol. - 2009. - V.217, No2. - P. 417-420.

345. Xie, Y. Hydrogels for exosome delivery in biomedical applications / Y Xie, Q. Guan, J. Guo, Y. Chen, Y. Yin, X. Han // Gels. - 2022. - V. 8, No 6. - Art. 328. -DOI: 10.3390/gels8060328.

346. Xu, G.Y Concentrations of glutamate released following spinal cord injury kill oligodendrocytes in the spinal cord / G.Y Xu, M.G. Hughes, Z. Ye,

C.E. Hulsebosch, D.J. McAdoo // Exp. Neurol. - 2004. - V. 187 - P. 329-336.

347. Xu, G.Y Glutamate-induced losses of oligodendrocytes and neurons and activation of caspase-3 in the rat spinal cord/G.Y. Xu, S. Liu, M.G. Hughes,

D.J. McAdoo//Neuroscience - 2008. - V. 153. - P. 1034-1047.

348. Xu, Y Active autophagy in the tumor microenvironment: a novel mechanism for cancer metastasis/Y Xu, X. Xia, H. Pan//Oncol. Lett. - 2013. - V. 5. - P. 411-416.

349. Yang, L. Y Exerting the Appropriate Application of Methylprednisolone in Acute Spinal Cord Injury Based on Time Course Transcriptomics Analysis / L. Y Yang, M. Y Tsai, S. H. Juan, S. F. Chang, C. R. Yu [et al.] // International journal of molecular sciences. - 2021. - V. 22, No23. - Art. 13024. - DOI:10.3390/ijms222313024.

350. Yu, D. Induction of neuronal mitophagy in acute spinal cord injury in rats / D. Yu, M. Li, B. Ni, J. Kong, Z. Zhang//Neurotox. Res. - 2013. - V. 24. - P. 512-522.

351. Yu, H. Alkaline-phosphatase triggered self-assemblies enhances the antiinflammatory property of methylprednisolone in spinal cord injury / H. Yu, P. Zhang, W. Zhou, Z. Zhong, D. Qu // Journal of applied biomaterials & functional materials. -

2020. - V. 18. - DOI: 10.1177/2280800020978505.

352. Yu, J. Polymeric Drug Delivery System Based on Pluronics for Cancer Treatment / J. Yu, H. Qiu, S. Yin, H. Wang, Y. Li // Molecules (Basel, Switzerland). -

2021. - V. 26. No 12. - Art. 3610. - DOI:10.3390/molecules26123610.