Механизмы и регуляция нутриент-зависимого транспорта натрия через апикальную мембрану энтероцитов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, Метельский, С.Т.

• Метельский, С.Т.
• 1985

Оглавление диссертации Метельский, С.Т.

Список сокращений и обозначений.

ВВЕДЕНИЕ.

ЧАСТЬ 1. СОПРГГЖК"' ТРАНСПОРТ ВОДОРАСТВОРИМЫХ ВЕЩЕСТВ

Литературные данные)

1.1. Распространенность и значение сопряженных транспортных процессов

1.2. Транспортная характеристика эпителия и эпителиоцитов.

1.3. Транспорт нутриентов через щеточную кайму.

1.3.1. Транспорт Сахаров

1.3.2. Транспорт аминокислот

1.3.3. Взаимное ингибирование транспорта Сахаров и аминокислот

1.3.4. Транспорт натрия через эпителиоциты и через апикальную мембрану

1.4. Молекулярные механизмы сопряженного транспорта нутриентов.

1.4.1. Гипотетические механизмы облегченного транспорта глюкозы через плазматические мембраны.

1.4.2. Гипотетические механизмы натрий-зависимого переноса.

1.5. Гидролиз-зависимый транспорт дисахаридов

1.5.1. Связь мезду пищеварительными и транспортными процессами

1.5.2. Изучение феномена гидролиз-зависимого транспорта дисахаридов.

1.5.3 • Ьерментативно-транспортный ансамбль

1.6. Регуляция транспортных процессов

1.6.1. Регуляция несопряженных натриевых каналов плотных эпителиев

1.6.2. Регуляция процесса абсорбции ионов энтероцитом.

1.7• Методы изучения транспорта натрия в эпителиоците

1.7.1. Изотопный метод

1.7.2. Электрофизиологические методы

1.7.2.1. Метод фиксации потенциала, ток короткого замыкания.

1.7.2.2. Метод измерения переходных характеристик

1.7.2.3. Анализ шумов.

1.7.2Л. Метод микроотведения.

1.7.3. Неполяризованный препарат

1.7Л- Методы фракционирования.

1.7.5. Фармакологический анализ.

1.8. Выбор метода исследования.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Механизмы и регуляция нутриент-зависимого транспорта натрия через апикальную мембрану энтероцитов»

Актуальность исследования. Сопряженные с натрием транспортные процессы чрезвычайно широко распространены в природе-субкле-точные органеллы (ядра и митохондрии), одиночные клетки (лейкоциты, бактерии, эритроциты, фибробласты и т.д.), неэпителиальные ткани ( буровая жировая, кость, хрящ, мозг, печень, поперечно-полосатые мышцы, надпочечники и т.д.) и эпителиальные ткани (кожа, желудочно-кишечный тракт, почки и т.д.). С теоретической и практической точек зрения наибольший интерес представляют процессы натрий зависимого всасывания различных питательных веществ (нутри-ентов), происходящие в тонком кишечнике. Решение проблемы сопряженного транспорта имеет прямое отношение к выяснению причин таких метаболических болезней как малабсорбция Сахаров и аминокислот, глюкозурия и т.д. Разработка вопросов лечебного питания, создание идеального и синтетического рационов также невозможны без понимания механизмов активного всасывания нутриенов, протекающего натрий-зависимым образом.

В настоящее время известны две основные модели ( или теории) сопряженного котранспортера - модель мобильного переносчика и модель общего канала. При этом считается, что для переноса моносахаридов и аминокислот существуют две различные категории ко-транспортеров, способных, однако, конкурировать за энергетические источники клетки. Обе модели в определенной степени противоречат друг другу. В рамках указанных моделей не получают удовлетворительного объяснения такие факты как существование не целых коэффициентов стехиометрии переноса натрия и нутриентов и противоречивость данных о порядке связывания натрия и нутриента с котранс-портером.

Известно, что дисахариды также как и моносахариды (глюкоза, галактоза) абсорбируются активным натрий-зависимым образом. Для

- И объяснения механизма гидролазно-зависимого транспорта дисахари-дов предложена модель ферментативно-транспортного ансамбля. Однако, неясным остается соотношение между ферментативно-транс-портным ансамблем и сопряженным котранспортером для моносахарида ГЛЮК08Ы.

Важным аспектом проблемы является регуляция процесса нутри-ент-зависимого транспорта натрия через апикальную мембрану эн-тероцита. Изучение регуляции, особенно в условиях ин витро существенно для понимания фармакологической регуляции ^йгнкциони-рования энтероцита. В настоящее время почти отсутствуют специфические вещества, влияющие на сопряженный транспортер и поэтому создание моделей для поиска таких веществ представляет большой научный и практический интерес для гастроэнтерологической фармакологии .

Связь между транспортом натрия и нутриента является двусторонней. При добавлении натрия в мукозный раствор возрастает трансэпителиальный транспорт нутриента, а при добавлении соответствующего нутриента в мукозный раствор имеет место увеличение скорости трансэпителиального транспорта натрия в том же направлении. Развитие работ по исследованию нутриент-зависимого транспорта черев апикальную мембрану энтероцитов до сих пор ограничивается методическими трудностями. Одним из наиболее удобных и пригодных для этих целей методов является метод измерения тока короткого замыкания (ТКЗ) как он описан для тонкой кишки кролика. Складывается однако впечатление, что возможности метода используются не полностью. Из нескольких возможных параметров,характеризующих ответ ТКЗ на добавление нутриента в настоящий момент используется только один - величина ответа - и совсем не обращается внимание на информацию, содержащуюся в динамике развития ответа. Метод ТКЗ с применением камеры Уссинга разработан для тонкой кишки кролика, но в литературе отсутствует описание метода для ТКЗ для тонкой кишки крысы, отличающейся некоторыми анатомическими и морфологическими особенностями (более деликатная ткань, меньший размер, другая организация кровоснабжения).

Цель и задачи исследования. Целью исследования является выяснение механизма сопряженного транспорта натрия и нутриенов (Сахаров и глицина) через апикальную мембрану щеточной каймы энтероцитов.

Конкретно решались следующие задачи:

1) проведение теоретического анализа измерения ТКЗ через стенку тонкой кишки методом фиксации потенциала;

2) разработка адекватной модификации метода ТКЗ, пригодной для измерения транспорта натрия через стенку тонкой кишки мелких лабораторных животных;

3) разработка математической модели явления стимуляции ТКЗ в ответ на добавление нутриентов и упрощение и ускорение способа оценки влияния вещества на транспорт натрия, заключающегося в определении кинетических параметров, и повышение информативности метода ТКЗ за счет определения толщины неперемешиваемого слоя жидкости около препарата ;

4) изучение влияния на ТКЗ Сахаров и глицина в нормальных и измененных условиях (варьирование температуры, анаэробиоз);

5) исследование влияния на ТКЗ (как в отсутствие, так и в присутствии нутриентов) классических ингибиторов (амилорида, уабаина, флорицина, фтористого натрия), нейро-эндокринных факторов (катехоламины, ацетилхолин) и некоторых других агентов;

6) разработка на основании полученных результатов мульти-канальной параллельной модели сопряженного котранспортара для натрия и нутриентов.

Основным методическим подходом при решении поставленных задач является регулярное систематическое сравнение результатов по влиянию нутриентов на ТКЗ с данными (собственными и литературными) по прямому определению транспорта этих нутриентов.

Научная новизна работы. Показано, что существующие модели сопряженных котранспортеров (модели мобильного переносчика и общего канала) не объясняют обнаруженного нами феномена разобщения активного транспорта и стимулирующего эффекта глюкозы на транспорт натрия. Предложен и доказан принципиально новый механизм сопряжения транспорта натрия и нутриентов (глюкозы) - согласно новой модели мультиканального параллельного котранспор-тера в апикальной мембране существует комплекс из двух расположенных рядом каналов для натрия и глюкозы и воротного белка. Аналогичным образом при соединении глицинового канала с натриевым каналом образуется сопряженный котранспортер для глицина. Выдвинута концепция о натриевом канале как универсальном энер-гизаторе вторичного активного транспорта органических растворенных веществ.

Практическое значение работы.

Разработана адекватная модификация метода ТКЗ для изучения транспорта натрия через тонкую кишку мелких лабораторных животных.

Разработана модель для детерминированного скриннинга веществ, влияющих на нутриент-зависимый транспорт натрия с диффе-ренцировкой их влияния на несопряженный транспорт натрия.

Разработан способ определения кинетических параметров, характеризующих влияние веществ на транспорт натрия, по одиночному ответу ТКЗ на добавление этого вещества в омывающий раствор.

Разработан способ определения толщины неперемешиваемого слоя жидкости около поверхности тонкой кишки по одиночному ответу ТКЗ на добавление нутриента в омывающий раствор.

Показана ограниченная применимость метода изучения натрий-зависимого транспорта нутриентов по ответам ТКЗ на добавление соответствующих нутриентов в омывающий раствор.

- 15

Заключение диссертации по теме «Другие cпециальности», Метельский, С.Т.

вывода

1. Предложен и доказан новый механизм сопряженного транспорта натрия и глюкозы - модель параллельного мультиканального котранспортера. Согласно модели, котранспортер состоит из расположенных рядом взаимодействующих каналов для натрия и глюкозы и поверхностного воротного белка, связывающего глюкозу на входе в транспортную систему. Основанием для выдвижения новой модели явилось открытие нами феномена разобщения активного транспорта и стимулирующего эффекта глюкозы на транспорт натрия.

2. Транспорт дисахаридов (мальтозы) сопряжен с транспортом натрия и осуществляется при помощи параллельного мультиканального котранспортера, воротный белок которого обладает способностью гидролизовать дисахариды. Отдельный котранспортер для свободной глюкозы отсутствует ; транспорт и свободной и освобождающейся в результате гидролиза дисахарида глюкозы осуществляет один и тот же механизм - параллельный мультиканальный котранспортер.

3. Глицин транспортируется при помощи параллельного мультиканального котранспортера, состоящего из натриевого и глицинового каналов и воротного белка, связывающего глицин на входе в транспортную систему.

4. Глюкозный и глициновый каналы объединены вокруг одного и того же натриевого канала и образуют один параллельный мультиканальный котранспортер. При объединении натриевого канала в комплекс с несколькими каналами для нутриентов образуется параллельный мультиканальный котранспортер с различной специфичностью. Натриевый канал является универсальным блоком-энерги-затором молекулярных машин, активно транспортирующих нутриенты.

5. Электрогенный транспорт натрия через мембрану щеточной каймы осуществляется двумя различными типами натриевых каналов - каналами, функционирующими в отсутствие нутриентов и нутриент-за

- 405 висимыми каналами, у обоих типов каналов нейро-эндокринная регуляция отсутствует.

6. Существенно усовершенствован метод тока короткого замыкания применительно к изучению активного транспорта натрия через стенку тонкой кишки мелких лабораторных животных. Изучение проводится в адекватных условиях: оптимальная скорость перфузии раствора, организованной по открытому циклу, наличие пространственной фиксации потенциала. Разработан физиологический способ устранения влияния подэпителиальных тканей на полученные результаты. Благодаря понижению температуры до 26° время жизни препарата в камере увеличивается более чем в 20 раз.

7. Разработан экспресс-метод измерения кинетических параметров веществ, влияющих на транспорт натрия,и толщины неперемешивае-мого слоя жидкости около поверхности препарата по одиночным ответам тока короткого замыкания на данное вещество.

8. Метод тока короткого замыкания пригоден не только для исследования клеточных механизмов транспорта, но и состояния околоклеточных транспортных путей, образованных плотным контактом и латеральным межклеточным пространством. Обнаружено два состояния плотного контакта - в одном контакт открыт, при этом его селективность низка, а потоки воды через него велики, в другом состоянии контакт закрыт, при этом его селективность высока, а поток воды через него мал.

Список литературы диссертационного исследования Метельский, С.Т., 1985 год

1. Болдырев А.А., Твердислов В.А. "Молекулярная организация и механизм функционирования Na -насоса". ВИНИТИ» М.» 1978.

2. Бреслер В.М., Никифоров А.А. "Транспорт органических кислот через плазматические мембраны". JI., Наука, 1981, с. 8.

3. Гусев B.M., Груздков А.А., Уголев A.M. Неперемешиваемые примембранные слои. Физиологический журнал, 1983, т. 29, № 5, с. 515-525.б • Диксон М •, Уэбб 3. Ферменты. М., Мир, 1982, т. 1, с. 385.

4. Елецкий Ю.К., Цибулевский А .К). Ультраструктурные и молекулярные основы транспорта веществ через щеточную кайму энте-роцита тонкой кишки. Успехи совр. биол. 1979, т. 87,с. 304-320.

5. Ивков В.Г., Берестовский Г«Н« "Липидный бислой биологических мембран". М., Наука, 1982.

6. Клесов А.А. Ферментативный катализ. Ч,П.МГУ, 1984, с. 38.

7. Климов П.К- "Пептиды и пищеварительная система: гормональная регуляция функций органов пищеварительной системы". Л., Наука, 1983, с. 272.

8. И. Корниш-Боуден 3. Основы ферментативной кинетики. М., Мир, 1979, с. 80.

9. Котик А., Яначек К. Мембранный транспорт. Междисциплинарный подход. М.» Мир, 1980, с. 239.

10. Куффлер Ф., Николе Дж. В кн.: От нейрона к мозгу". М., Мир, 1970, с. 142.

11. Кушак Р.И. "Пищеварительно-транспортная система энтероци-тов". Рига, "Зинатне", 1983, с. 70-77.

12. Ленинджер А. Биохимия, М., Мир, 1976, с. 702.

13. Максимов А.П., Мулкадзе Р.К., Чемерис Н-К. "Вопросы стабилизации напряжений и токов на клеточных мембранах". В сб.: Приборы и методы для микроэлектродных исследований клеток". Пущино (1975), с. 149-161.

14. Наточин Ю-В. "Методы исследований транспорта ионов и воды: почечные канальцы, кожа, мочевой пузырь". Л., Наука (1976).

15. Никольский Н.Н. "Всасывание воды и одновалентных ионов" "Физиология всасывания" п/р A.M. Уголева, Л•, Наука, (1977)с. 122-151.

16. Никольский Н.Н. "Всасывание Сахаров" В кн.: "Физиология всасывания" п/р A.M. Уголева Л., Наука, (1977), с. 249-284.

17. Парсонс Д.С. "Мультимембранные системы: функция мембран и энергетика эпителия слизистой оболочки кишечника" В кн.: "Биологические мембраны" п/р Д.С. Парсонса, М., Атомиздат, (1978), с. 195-216.

18. Смирнов К.В., '/голев A.M. "Космическая гастроэнтерология. Трофологические очерки", М., Наука, 1981.

19. Уголев A.M. "0 существовании пристеночного (контактного) пищеварения" Бюл. эксперим. биологии и медицины1960), т. 49, ^ 1, с. 12-17.

20. Уголев А-М. "Физиология и патология пристеночного пищеварения" Л-, Наука, (1967).

21. Уголев A.M. "Мембранное пищеварение" Л., Наука, (1972).

22. Уголев A.M. "Структурная и функциональная интеграция процессов мембранного гидролиза и транспорта (гипотеза "пер-меома") йизиол• журн. СССР (1977), т. 63, $2, с. 181-190.

23. Уголев A.M. "Эволюция пищеварения и принципы эволюции функций. Элементы современного функционализма" Л., Наука, (1985).

24. Уголев A.M., Жигуре Д.Р., Нуркс Е.Е- "Аккумулирующий препарат слизистой новый метод исследования начальных этапов переноса веществ через кишечную стенку" йизиол. журн. СССР (1970), т. 56, № 11, с. 1638-1641.

25. Уголев A.M., Митюшова Н.М», Гозите И.К. "Методика изоляции эпителиальных клеток слизистой тонкой кишки" Дизиол. ж. СССР (1969), т. 55, с. 1513-1517.

26. Уголев A.M., Рощина Г.М. "Новые данные о механизмах транспорта глюкозы в тонкой кишке, основанные на анализе роли- 410 серозно-мукозных потоков" Физиол. журн. СССР им. И.М. Сеченова (1982), т. 68, й 7, с. 935-947.

27. Ходоров В.И. "Общая физиология возбудимых мембран" М-, Наука, (1975), с. 112.

28. Чен И. "Анализ шумов кинетических систем и его применение при изучении мембранных каналов" В кн.: "Мембраны: ионные каналы" п/р Ю.А. Чизмаджева, М., Мир, (1981), с. 284-318.

29. Aceve s J., Erll j D. Sodium transport across the Isolated epithelium of the frog skin. J.Physiol. (1971), v. 212,pp.195--210.

30. Active transport of lysine, ornithine, arginine, and cystine by the^intestine. Hagihira H., Lin E.G., Samity A.H. et al.,- Biochim. Biophys.Acta, (1961), v.4, pp. 478-481.

31. Agar W.T., Hird F.J.R. , Sidbu G.S. The active absorbtion of amino acids by the intestine. J.Physiol., (1953), v/121, pp. 255-263.

32. A hydrolase-related transport system is not required to expla-ne the intestinal uptake of glucose liberated from phlorizin. Warden D.A., Fannin P.P., Evans J.O., et al. Biochim. Biophys. Acta, (1Я80), v.599, pp. 664-672.

33. Alanine and sodium fluxes across mucosal border of rabbit ileum.- Schultz S.G., Curran F.F., Chez R.A., et al. J.Gen.Physiol. , (1967), v. 50, pp. 1241-1260.

34. Aimers W., Stirling G. Distribution of transport proteins over animal cell membranee. J.Membrane Biol., (1984), v.77, No.3, pp. 169-186.

35. Alteration of frog gastric mucosa voltage transients due to the presence of SON . Tarrin J.Т., Helms И.А., Pirkle J.A., et al.- Biophys. J., (1979), v.25, pp 30a.

36. Alvarado P. Transport of sugars and amino acids in the intestine: site of inhibition by D-galaktose. Science, (1966),v. 151, pp. 1010-1013.

37. Alvarado P. Hypothesis for the interaction of phlorizin and phloretin with membrane carriers for sugars. Biochim. Bioohya. Acta, (1967,, v.135, No.3, pp. 483-495.

38. Alvarado F. Amino acid transport in hamster ал)а11 intestine: site of inhibition by D-galaktose. Nature, (1968), v. 219, pp. 276-277.

39. Alvarado F. Sodium-driven transport. A re-evaluation of the sodium-gradient hypothesis. In: Intestinal ion transport. Robinson G.W.K. (ed.). MTP, (1976), pp. 117-152.

40. Alvarado F. , Robinson G.Vt'.K. A kinetic study of the interactions between amino acides and monosaccharides at the intestinal brush-border membrane. J. Physiol. (1979), v. 295,pp. 487-475.

41. Alvarez W.C. An Introduction to Gastroenterology. 3 rd ed., Heinemann, 1979.

42. Alvarez a. , Sas J. f> galaktosidase changes in the developing intestinal tract of the rat. - Nature, (1961), v.190, pp. 826-827.

43. Amphiphilic pig intestinal microvillus maltose/glucoamylose. Structure and specifity. Srensen S.H., Norin 0., SJttsti^bm H., et al. 3ur.J.Biochem., (1982), v.126, No.3, pp.559-568.

44. Amiloride-sensitive epithelial Na+ channels reconstituted into planar lipid bilayer mambranes. Sariban-Sohraby S. , Latorre R. , Berg M., et al. Nature, (1984), v.308, po.80-82.

45. Annegers J.H. Intestinal absorbtlon of hexoses in the :lop. -Am.J.Physiol., (1964), v.206, pp. 109567. Atkins G.L., Nimrno J. A comparison of seven methods for fitting Michael!s-Menten equation. Biocbem.J., (1975), v. 149, No.3, pp. 775-777.

46. Balabsn R.S., Mandel L.J., Benos D.J. On the cross-reactivity of arailoride and 2, 4, 6 triaminopyrimidine (TAP) for the cellular entry and tight junctional cation permation pathways in epithelia. J.Membrane Biol., (1979), v.49, No.4, pp.363-390.

47. Bannai 5., Christensen H.N. et al. Amino ecid transport systems. Nature, (1984), v. 311, No.5984, p. 308.

48. Barium inhibition of sodium ion transport in toad bladder, Ramsay A.G., Gallagher D.L., Shoemaker R.L., et al. Biochem. Biophys. Acta, (1976), v. 436, No.3, pp. 617-627.

49. Barry B.A., Matthews J., Smyth D.H. Transfer of glucose and fluid by different parts of small intestine of the rat. -J.Physiol. (1961), v. 157, No.2, pp. 279-288.

50. Barry R.J.C., Smyth D.H., Wright 3.M. Short-circuit current and jejunal transfer of fluid and solute in vitro. J.Physiol., (1963), v.168, No.2, pp. 5061P.

51. Barry R.J.C., Smyth D.H., Wright E.M. Short-circuit current and solute transfer by rat jejunum. J.Physiol., (1965), v.181, No.2, pp. 410-413.

52. Benos D.J., Mandel L.J., Balaban R.S. O.n the mechanism of the amiloride-sodium entry site interaction in anuran slin epithelia. J.Gen.Physiol., (1979), v.73, pp. 307-326.

53. Biber T.U.L., Mullen T.L. Effect of external cation and anion substitutions on sodium transport in isolated frog skin.

54. J.Membrane Biol., (1980), v. 52, No.2, pp. 121-132.

55. Bihler I., Sawh P.O. The role of energy metabolism in the interaction between amino acid and sugar transport in the small intestine. Can.J.Phisiol. Pharmacol., (197?), v.51,pp.378-382.

56. Blocking by 2,4,6-triaminopirimidine of increased tight junction permeability induced by acetylcholine in the pancreas. Jansen J.W.M., Fleuren-Jacobs A.M.M., De Pant G.G., et al. Biochim. Biophys. Acta, (1980), v.598, pp. 115-126.

57. Bonfils S. Hormonal receptors in the cell regulation of digestive functions. In: Adv.Physiol. Sci., v.12, Gati T. (ed)., 1980, pp.1-7.

58. Boyd C.A.R. Amino acid inhibition on the exit of monosaccharides from the intestinal epithelium. J. Physiol., (1977), v. 271, pp. 48-49P.

59. Boyd C.A.R. Studies on amino acid inhibition of monosaccharides exit from anurail small intrstine epithelium. J.Physiol., (1979), v.294, pp.195-210.

60. Brasi.tus Th.A. Protein-lipid interactions and lipid dynamics in rat enterocyte plasma membranes. In: Interstinal Transport: Fundamental and comparative aspects. Gilles-Ballien M., Gilles R. (eds), Springer-Verlag, Berlin e.a., 1983, pp.188-197.

61. Brenneke R.B., Lindemann B. Desigh of a fast voltage clamp for biological mrmbranes, using discontinuous feedback. Rev.Sci Instrum., (1974)* v.45, pp.656-659.

62. Briggs C.A., Cooper J.R. Cholinergic modulation of the release of (H )-acetylcholine from synaptosomes of the myenteric plexus. J.Neurochem., (1982), v. 38, pp. 501-508.

63. Brot-Laroche S., Alvarado F. Mechanisms of sugar transport across the intestinal brush-border membrane. In: Intest.transport: fundam. and сотр. aspects. Gilles-Bsllier M., Gilles Я. (sds)., Berlin e.a., (1982), pp. 147-169.

64. Cala P.M., Cogswell N., Mandel L.J. Binding of (H°) ouabain to split frog skin. The rols of the Ma, K-ATPase in the generation of short circuit current. J.Gen.Physiol., (1978), v. 71, No.4, pp.347-567.

65. Carter-Su C., Kiramich G.A. Effect of the membrane potential on Na+- dependent sugar- transport by ATP-depleted intestinal cells. Am.J.Physiol., (1980), v.238, pp.C73-80.

66. Chang E.B., Field M., Miller R.J. 063"adrenergic receptor regulation of ion transport in rabbit ileum. Am.J.Physiol., (1982), v.242, pp.G237-G242.

67. Charney A.N., Donowitz M. Prevention and reversal of cholera enterotoxin-induced intestinal secretion by methylprednisolone induction of N+, K+-ATPase. J.Clin.Invest., (1976); v. 57, pp. 1590-1599.

68. Chase H.S., Al-Awqati Q. Removal of ambient, K+ inhibits net Na+ transport in toad bladder by reducing Na+ permeability of the luminal border. Nature, (1979), v.281, No.5731, pp.494-495.

69. Chase H.S., Al-*iwqati Q. Regulation of the sodium permeability at the luminal border of toad bladder by intracellular sodium and calcium. J.Gen.Physiol. (1981), v.77, N0.6, pp.693-712.

70. Chez R.A., Schults S.G., Curran P.F. Effect of sugars on transport of alanine in intestine. Science, (1966), v.153, pp. 1012-3013.

71. Christensen H.N. Relation in the transport at p -alanine and the oC -amino acids in the Erlich cell. J.Biol.Chem.,(1964) v.239, pp.3584-3589.- 416

72. Christinsen H.N., Handlogten M.S., Thomas E.I. Na-facilitgted reactions of neutral amino acids with s cationic amino acid transport system. Proc.Natl.Acad.Sci.USA, (1969), v.63,pp. 948-955.

73. Civan M.M., Bookman R.J. Transepithelial Na+ transport and the intracellular fluids: a computer study. J. Membrane Biol., (1982), v.65, No.1-2, pp. 63-80.

74. Clarkson T.W., Gross A.C., Toole S. Dependence on substrate ©f the electrical potential across the isolated gut. Nature, (1961), v. 191, pp. 501-502.

75. Clarkson T.'JV., Gross A. C. , Toole S. Electrical potentials across isolated small intestine of the rat. Am.J.Physiol. , (1961), v.200, pp. 1233-1235.

76. Clarkson T.'N. , Toole S. R. Measurement of short-circuit current and ion transport across the ileum. Am.J.Physiol., (1964), v.206, No.3, pp.658-658.

77. Claude P., Grodenough D.A. The ultrastructure of zonulaoccludense in tight and leaky epithelia. J.Cell Biol.,(1972), v. 55, No. 2, Pt.2, p. 46a.

78. Co- and counter-transport mechanisms in brush border membranes and basal-lateral membranes of intestine and kidney. Murer H., Ahearn G., Biber J., et al. J. exp.Biol., (1983), v. 106, pp. 163-180.

79. Cook G.C. Impairment of glycine absorbtion by glucose and galactose in man. J.Physiol., (1971), v.217, pp.61-70.

80. Cook G.C. Comparison of intestinal absorbtion rate of glycine and glycilglycine in man and the effect of glucose in the perfusing fluid. Clin.Sci., (1972), v.43, pp.443-453.

81. Cook G.S. Intestinal absorbtion of L-methionine in man and the effect of glucose in the perfusing fluid.- J.Physiol.,(1972)v.221, pp. 707-716.

82. Cooperstein I.L., Hogben C.A.M. Ionic transfer across the Isolated frog large Intestine. J.Gen.Physiol., (1959), v.42, Ко.3, pp.461-473.

83. Crane R.K. Hypothesis for mechanism of intestinal active transport of sugars. Federation Proc., (1962), v.21, pp.891--895.

84. Crane R.K. Na+-dependent transport in the intestine and other animal tissues. Federation Proc., (1965), v.24, pp.1000--1005.

85. Crane R.K., Forstner G., Eicholz A. Studies on the mochanism of the intestinal absorbtion of sugars. An effect of Na+on the apparent Michaelis constant for intestinal sugar transport in vitro. Biochim. Biophys. Acts, (1965),v.109, pp 467-477.

86. Crane R.K. Absorbtion of sugars. In: Handbook of physioligy. Code C.F. (ed.), Sect.6: Alimentary canal, v.3: Intestinal absorbtion. Am.Physiol.Soc., Washington,1963, pp.1323-1351.

87. Crane R.K. Digestion and absorbtion: water-soluble organics. -In: Gastrointestinal Physiology, Int.Rev.Physiology. II, v. 12. Crane R.K. (ed.)., 1977, University Park Press, Baltimore,pp. 325-365.

88. Crank J. The mathematics of diffusion. Oxford, Clarendon Press, 1956, p.45.

89. Csaky T.Z. Effect of cardioactive steroids on the active transport of non-electrolytes. Biochim. Biophys. Acta, (1963), v.74, pp.160-162.

90. Csaky T.Z. A possible link between active transport of electfo-lytes and non-electrolytes. Federation Proc., (1963), v.22, pp.3-7.

91. Csaky T.Z., Ilartzog II.G., Fernald G.W. Effect of digitalis on active Intestinal sugar transport. Am.J.Physiol.,(1961), v.200, pp. 459-460.

92. Curran P.F., Gill J.R. The effect of calcium on sodium transport by frog skin. J.Gen.Pbysiol., (1962), v.45,pp. 625-641.

93. Cuthbert A.W. Importance of guanldinium groups for blocking sodium channels In epithelia. Molecular. Pharmacol.,(1976), v.12, pp.945-957.

94. Cuthbert A.W., Shurn W.K. Estimation of the lifespan of amllo-ride binding sites In the membrane of toad bladder epithelial cells. J.Physiol. (1976), v.255, pp.605-618.

95. Cuthbert A.HV. , Shum W.K. Interdependence of the two borderin a sodium transporting epithelium. Possible regulation by the transport pool. J.Membrane Biol., (1978). Spec Issue: Epitbel. as Hornone and Drug Recept. pp.221-245.

96. Dahl G., Azarnia R., Werner R. Induction of cell-cell channel formation by mRNA. Nature (L), (1981), v.289, No.5799,pp. 683-685.

97. Dahlquist A. Method for assay of Intestinal disaccharides. -Analyt.Biochem., (1964), v.7, pp.18-25.

98. Dantzler W.H., Silbernage S. Renal tubular reabsorbtlon of taurine, К -aminobutyric acid and fi -alanine studied by continuous microperfusion. Fflttgers Arch. (1976),v.367,pp.123-128

99. Davidson R.E., Leese H.J. Sucrose absorbtion by the rat small intestine in vivo and in vitro. J.Physiol., (1977), v. 267, pp. 237-248.

100. Dawson D.C., Curran p.p. Sodium transport by the colon of

101. Bufo merinus: Na uptake across the mucosal border. J.Membrane Biol., (1976), v. 28, pp. 295-307.

102. Decker R.A., Jackson M.J., Tal У.-H. Cellular mechanisms of ion transport associated with osmotic gradients in rat small intestine. J.Physiol. (Gr.Brit.), (1981), v.318, pp.385-394.

103. De Jesus H., Smith M.W. Sodium transport by the small intestine of newborn and suckling pigs. J.Physiol., (1974),v.243, No.2, pp.211-224.

104. Deves R., Krupka R.M. Testing transport models with subctra-tes and reversible inhibitors. Biochim.Biophys.Acta, (1978), v.513, pp. 156-172.

105. DeWeer P., Rakowski R.F. Current generated by backward-running electrogenic Na pump in squid giant axons. Nature, (1984), v.309, No. 5967, pp. 450-452.

106. Diamond J.M. A rapid method for determining voltage-concentration relation across membranes. J.Physiol., (1966),v.183, pp. 83-100.

107. Dibona D.R., Mills J.W. Distribution of Na+-pump sites in transporting epithelia. Fed.Proc., (1978), v.38, No.2, pp. 134-143.

108. Dicarboxylic amino acid influx across brush border of rabbit ileum. Schultz S.G., Yu-Tu L., Alvarez 0.0., et al.,- J.Gen. Physiol., (1970), v.56, pp.621-639.

109. Dietschy J.M. Water and solute movement across the wall of- 420 everted rabbit gall-bladder. Gastroenterology, (1964), v. 47, No.4, pp. 395-408.

110. Diamond J.M. The mechanism of water transpor by the gall bladder. J.Physiol., (1962), v.161, No.3, pp.503-527.

111. Dobson J.G.Jr., Kidder G.W. Ill Edge damage effect in in vitro frog skin preparations. Am.J.Physiol., (1968),v.214, pp.719-724.

112. Dolman D., Edmonds C.J. The effect of aldosterone and the renin angiotensin system on sodium, potassium, and chloride transport by proximal and distal rat colon in vivo. -J.Physiol., (1975), v. 250, pn. 597-611.2+ .

113. Donowitz M. Ca in the control of active intestinal Na end

114. CI" transport: involvement, in neurohumoral action. Am. J. Physiol., (1983), v.245, No.2, pp.G165-G177.

115. Dzieniszewski P., Kilbinger H. Muscarinic modulation of acetilcholine release evoked by dimethylphenylpiperazinium and high potassium from guinea-pig myenteric plexus. Eur.J. Pharmacol., (1978), v.50, pp.385-391.

116. Eaton D.C., Prace a.M., Silverthorn A.M. Active and. passive Na + fluxes across the basolateral membrane of rabbit urinary bladder. J.Membrane Biol., (1982), v.67, No.3, pp.219-229.

117. Effect amiloride and some of its analogues on cation transport in isolated frog skin and thin lipid membranes. Benos D.J., Simon S.A., Mandel L.J. et al. J.Gen.Physiol., (1976),v.63, pp. 43-63.

118. Effect of adh on Na-channel parameters in toad urinary bladdor. Li J.H.-Y., Palmer L.G., Edelman I.S., st al. Pflflgers Arch., (1979), v.382, Suppl., p.13.

119. Albus H., Groot J.A., Siegerbeek J., van Henkelom J. Effects of glucose and ouabain on transepithelial electrical resistance and cell volume in stripped and unstripped gold-fish intestine. Pltigers Arch., (1979), v.383, pp. 55-66.

120. Effect of pentagastrin, secretin, and cholecystokinin on intestinal water and sodium absorbtion in the rat. Pansu D., Bosaherd a., Dechelette K.A., et al. Digestion, (1980),v. 20, pp. 201-206.

121. Effect of sugar on ion fluxes in intenstine. Taylor A. E. , Wright E.M., Schultz 3.G., et al. Am.J.Physiol., (1968), v.214, No.4, pp. 836-842.

122. Ehrenfeld J., Nelson P.J., Ii.ndemann B. Volume change of epithelial cell of frog skin on impalement with a microolectrode. Pflttgers Arch., (1976), v. 365, p. R127.

123. Eldrup E., Mollgard K., Bindslev N. Possible epithelial sodium channels visualized by freeze fracture. Biochim.Biophys. Acta, (1980), v. 596, pp. 152-157.

124. Electrical nature of sodium transport across the isolated turtle bladder. Gonzalez C.F., Shamoo Y.2., ftyssbrod TT. R. , ot al.- Am. J.Physiol., (1967), v. 213, TIo.2, pp. 333-340.

125. Electrical potentials associated with intestinal sugar transfer. Barry R.J.C., Diksteln S., Matthews J., et el. J.Physiol., (1964), v.171, No.2, pp.336-338.

126. Electrical potentials in the isolated intestine. Barry R.J.C., Dikstein S., Matthews J., et al. J.Physiol., (1961), v.155, pp.17-18.

127. Electrical properties and active solute transport in rat small intestine. I. Potential profile changes associated with sugar and amino acid transport. Okada Т., Tsuchiya W., Iriamjjri A., et al. J.Membrane Biol., (1977), v.31, pp.205-219.

128. Erlij D., Martinez-Palomo A. Opening of tight junction in frog skin by hypertonic urea solutions. J.Membrane Biol., (1972), v. 9, No.3, pp.229-240.

129. Ernst S.A., Mills J.W. Autoradiographic localization of tri-tiated ouabain-sens5tlve sodium pump sites in ion transporting epithelia. J.Histochem. and Cytochem., (1980), v. 28, No.l, pp. 72-77.

130. Evidence that translocation of the glucose transport activity is the major mechanism of insulin action on glucose transport in fat cells. Kono Т., Robinson F.W. , Blevins T.L., et al.- 0.Biol.Chem., (1982), v. 257, No.13, pp.10942-10947.

131. Experimental modulation of occluding junctions in the cultured transporting epithelium. Martinez-Palomo A., Meza I., Beaty G., et al. J.Cell.Biol., (1980), v.87, pp.736-745.

132. Fonestil D.D., Vaughn D.A. Inhibition of short-circuit current by triaminopyrimidine in isolated toad urinary bladder. -Am.J.Physiol., (1979), v.236, No.5, pp.C221-C224.

133. Farquhar M. G., Pelade G.E. Junctional complexes in various epithelia. J.Cell.Biol., (1963), v.17, pp.375-412.

134. Faust R.G. The effect of anoxia and lithium ions on the absorbtion of D-glucose by the rat jejunum in vitro. -Biochim. Biophys.Acta, (1962), v.60, No.3, pp.604-614.

135. Ferreirs K.T.G., Guerreiro M.M., Svenson W.M. Mechanism of action of Cu2+ on the frog skin. Biochim.Biophys.Acta,(1979), v.552, Wo.2, pp.341-345.

136. Field M. Ion transport in rabbit ileal mucosa. II. Effect of cyclic 3' 5'-AMP. Am.J.Physiol., (1971),v.221,No.4,pp.992-997.

137. Field M. Regulation of small intestinal ion transport by cyclic nucleotides and calcium. In; Secretary Diarrhea. Field M., Fordtran J. S. , Schultz S.G. (eds.), 1980, Bethesda MD, American Phys.Soc., pp. 21-30.

138. Field M., Fromm D., McGoll I. Ion transport in rabbit ileal mucosa. I. Na and CI fluxes and short circuit current. Am.J. Physiol., (1971), v.220, No.5, pp. 1380-1396.

139. Field M., McGoll I. Ion transport in rabbit iloal mucosa. III. Effects of catecholamines. Am.J.Physiol., (1973),v.225, No.4, pp.852-857.

140. Field M., Plotkin G.R. , Silen V». Effect of vasopressin, theophylline and cyclic adenosine monophosohate on short-circuit across isolated rabbit Ileal mucosa. Nature, (1968), v.217, pp.469-470.

141. Finch L.R., Hird F.J.R. The uptake of amino acids by isolated segments of rat intestine. II. A survey of affinity for uptake from rates of uptake and competition for uptake. -Biochim. Biophys. Acta, (1860), v.43, pp. 278-287.

142. Fisher R. B. , Parsons D.S. Glucose abaorbtion from surviving rat small intenstine. J.Physiol., (1949),v.110, pp.281-293.

143. Fisher R.B., Parsons D.S. Glucoso movements across the wall of the rat small intestine. J.Physiol. (Lond.), (1953),v,119, No.2-3, pp. 210-223.- 424

144. Forte J.G., Machen 1.3. Transport and electical phenomena in resting and secreting piglet gastric mucosa. J.Physiol., (1975), v.244, pp. 33-51.

145. Frizzel R.A., Schultz S.G. Distinction between galactose and phenylalanine effect on alanine transport in rabbit ileum. -3iochim.Biophvs.Acta, (1971), v. 235, pp.485-488.

146. Frizzel R.A., Schultz S.G. Ionic conductance of extracellular shunt pathway in rabbit ileum. Influence of shunt on transmural sodium trasport and electical potential differences.

147. J.Gen.Physiol., (1972), v.59, pp.318-346.

148. Frizzel R.A., Schultz S.G. Effect of aldosterone on ion transport by rabbit colon in vitro. J.Membrane Biol., (1978),v.39, pp. 1-26.

149. FrBmter E., Diamond J. Route of passive ion permeation in epithelia. Nature, (1972), v.235, No.53, pp. 9-13.

150. FrBmter S., Gebler B. Electrical properties of amphibian urinary bladder epithelia. III. The cell membrane resi.stances end the effect of amiloride. Pflttgers Arch., (1977), v.371, No.1-2 pp. 99-103.

151. Fuchc V7. , Larsen 3.-I-, Lindemann B. Current-voltage curve of sodium channels and concentration dependence of sodium permeability in frog skin. J.pbysJol. (Gr.Brit.), (1877), v.267, No.1, pp. 137-166.

152. Gaginella T.S., Rimele T.J., Yiietecha K. Studies on rat Intestinal epithelial cell receptors for serotonin and opiates. -J.Physiol., (1983), v.335, pp.101-111.- 425

153. Garcia-Disz J.F. , Corcia A. Electrical changes in isolated rat jejunimi induced Ъу hypertonicity. Biochim.Biophys.Acta, (1977), v. 468, No.2, pp.177-187.

154. Gervey T. Q. , Hyman P.E., Isselbacher K.J. !( -glutamyl transpeptidase of rat intestine: localization and possible role in amino acid transport. Gastroenterology, (1976),v.71,pp.778--785.

155. Generalized kinetic analysis of ion-driven cotransport systems: a unified Interpretation of selective ionic effects on Michae-lis Parameters. Sanders D., Hensen U.-P., Gradmann D., et al.- J.Membrane Biol., (1984), v.77, pp. 123-152.

156. Gibb L.E. , Eddy A.A. An electrogenic sodium pump as a possible factor leading to the concentracion of amino acid by mouse ascites tumor cells with reversed sodium ion concentration gradients. Biochem.J., (1972), v.129, pp.979-981.

157. Gilles-Ballien M. Several compartments invovled in intestinal transport. In; Intestinal Transport: Fundamental and comparative aspects. Gilles-Ballien M., Gilles R. (eds.), Springer--Verlag, Berlin e.a., 1983, pp.103-119.

158. Glenner G.G., Burtner H.J., Brown G.W. The histochemical demonstration of monoamine oxidase activity by tetrazolium saltes. J.Histochem.Oytochem., (1957), v.5, pp.591-599.

159. Goldner A.M., Schultz S.G. , Curran P.P. Sodium and sugar fluxes across the mucosal border of rabbit ileum. J.Gen. Physiol., (1969), v.53, No.3, pp.362-383.

160. Gonzalez-Marl seal L., DeRamirez B.C., Cereijido M. Effect of temperature on the occluding junctions of monolayers of epithelioid cells (MDCK.) . J.Membrane Biol., (1984), v.79, No.2, pp.175-184.

161. Greengard P. Cyclic nucleotides, phosphorylated proteins, and drug action in the central nervous system. Adv.Pharmacol. Tbeurap- Stoglet J.C. (ed.), Pergamon Tress, Oxford,1979, No. 3, pp. 231-252.

162. Grinstein S., Candle 0., Srlij D. Nonhormonal mechanisms for the regulation of transepithelial sodium transport: the roles of surface potential and cell calcium. J.Membrane Biol., (1978) Spec.Issue: "Eplthel.as Hormone and Drug Recept.pp. 261-280.

163. Gunter R.D., Wright E.M. Na+, Li+ and Cl" transport by brush border membranes from rabbit jejunum. J.Membrane Biol., (1983), v.74, pp.

164. Gunter-Smith P.J., Grasset E., Schultz S.G. Sodium-coupled amino acid and sugar transport by Necturus small intexstine: An equivalent electrical circuit analysis of a rheogenic co- transport system. J.Membrane Biol. (1982), v. 66, pp.2fr-.39.

165. Gupta B.L., Hall T.A., Naftalin R.J. Microprobe measurement of Na, К and Cl concentracion profiles in epithelial cells and intracellular spaces of rabbit ileum.- Nature, (1978), v.'272, No.5648, pp. 70-73.

166. Fagihira П., Wilson Т.Н., Lin E.C.C. Intestinal transport of certain N-substituted amino acid. Am.J.Physiol., (1962), v.203, pp. 637-640.

167. Hajjar J.J. Effect of IVn2+ on permeability properties of frog skin. Pflflgsrs Arch., (1975), v.359, pp. 57-67.

168. Hair-ill 0.?., Sakmann B.A. A cell-free method for recording single-channel currents from biological membranes. J.Physiol., (Gr. Brit. ) , (1981). v. 312, pp.I'41-F42.

169. Hanke D.W., Diedrich D.F. Fate of the hydrolized glucose moieties from phlorizin in hamster jejunum. Fed.Proc.,(1974),v.33, pp. 271

170. Hays R.M., Singer В., Malamed S. The effect of calcium withdrawal on the structure and function of the toad bladder.

171. J.Cell Biol., (1965), v.25, Suppl. , pp.195-208.

172. Heckmann K. Singlo file diffusion. Biomembrenes, (1972), v.3. Kreuzer F., Siegers J.F.G* (eels.), Plenum Press, New York, pp. 127-153.

173. Helrocm 3.1., Fisbar R.3. Microsloctrode studies of ths active transport pc'th-лау of frog skin. J. Gen. Physiol., (1977), v. 59, No.5, po. 571-504.

174. Hicks I., Turnberg L.A. Influence of glucagon on the human jejunum. Gastroenterology, (1974), v.67, pp.1114-1118.

175. Hilly&rd S.D., Gonick H.C. Effect of Cd++ on short-circuit current across epithelial ruombranes. I. Interactions i-Дth Gn+"1' and vasopressin on f co& sklxi. J.Kembrsna Biol. , (1973),v. 2-1, pp. 10 6-119.

176. Hi nameгз H.J.Т., Filby 0., Wiseman G. Effect о С amino ecids on sugar pbsorbtion. J.Physiol., (1966), v.186, pp.166-174.

177. Holm an G.D. -in allosteric > ire model for sugar transport In human erythrocytes. Blochim.Blophys.Acta, (1980), v. 599, Ко. 1, pp. 202-21-3.

178. Hopfer IT. Isolated membrane vesicles as tools for апч1уз1а of epithelial transport. Am. J.Physiol. , (1977), v. 235, No. 6, pp. 3445-3449.

179. Insulin-induced translocation of intracellular glucose transporters in the isolated rat adipose cell. Cushman S.V7. , Ward-zala L.J., Simpson I.A., et al. Federation Proc., (1984), v.43, pp. 2251-2255.

180. Intestinal dipeptide transport in normal and cystinuric subjects. Hellier N.D., Holsworth C.D., Perret D., et al. -Clin.Sci., (1972), v.43, op. 659-668.

181. In vitro behavior of human intestinal mucosa: the influence of acetylcholine on ion transport. Isaacs P.E.T., Corbert C.L., Riley A.K., et al. J.Clin.Invest., (1976), v.58, pp.535-542.

182. Brunner J., Graham D.3., Hanser H., Semenza G. Ion and sugar permeabilities of lecithin bilayars: comparison of curved and planar bilayers. J.Membrane Biol., (1980), v.57, No.8, pp. 133-141.

183. Isaacs P.E.T., Turnberg L.A. Failure of glucagon to influence ion transport across human jejunal and ileal mucosa in vitro. Gut, (1977), v.13, pp.1059-1061.- 429

184. Jacquez J.A., Scbafer J.A. Na+ and K+ electrochemical properties and the transport of L -amino isobutyric acid in Erlich ascites tumor cells. Biochim.Biophys.Acta, (1969), v. 193, pp. 368-383.

185. James P.S., Smith M.W. A preparation of intestinal villi suitable for recording membrane potentials in entericytes taken at different stages of differentiation. J.Physiol., (1981), v.319, pp. P6-P7.

186. Janscek R. Regulation of sodium transport in epithelial cells. Biomembranes: Structure and Function, FEBS, Budapest, Academi-ai Kiado, 1975, pp. 215-230.

187. Janacek K., Rybova R. Nonpolarized frog bladder preparation. The effect of oxytocin. Pflflge.rs Arch., (1970), v. 318,pp. 294-304.

188. Kahn A.M., Stsplock E.D., Weiman E.J. Effect of dibutyryl cyclic AMP on glucose transport In Isolated brush border membrane vesicles from the rat kidney. Pflttgers Arch., (1984), v.400, No.1, pp.109-111.

189. Kessler M., Semenza G. The small-intestinal Na+, D-glucose c-otransporter: an asymetric gated channel (or pore) responsive to ^H1. J.Membrane Biol., (1983), v. 76, No. I, pp. 27-56.

190. Kimmich G.A. Active sugar accumulation by isolated intestinal epithelial cells: a new model for sodium-dependent metabolite transport. Biochemistry, (1970), v.9, pp. 3669-3677.

191. Kimmich G.A. Coupling between Na+ and sugar transport in small inteatine. Biochim.Biophys.Acta, (1973), v.300,pp.31-78.

192. Kimmich G.A. Intestinal absorbtion of sugar. In: Physiology of the Gastrointestinal Tract. Johnson L. R. (ed.), Reven Press, New York, 1981, pp.1035-1061.

193. Kiirmich G. Coupling stoichiometry and the energetics adequacy question. In: Intestinal Transport: Fundamental and comparative aspects. Cilles-Ballien M., Gilles R. (eds.), Springer--Verlag, Berlin e.a., 1983, pp.87-102.

194. Kimmich G.A., Randies J. Interaction between Na+-dependent transport systems for sugars and amino acids. Evidence against a role for sodium gradient. J.Membrane Biol., (1973), v.12, pp. 47-68.

195. Kimmich G.A., Randies J. Energy coupling to Nadependent transport systems: evidence for an energy input in addition to transmembrane ion gradient. Proc.Fed.Eur.Biochem.Soc. (Budapest), (1975), v.9, pp.117-130.

196. Kinetic relations of the Na-ami.no acid interaction at the mucosal border of intestine. Curran P.F., Schultz S.G., Chez R.A., et al. J.Gen.Physiol., (1967), v. 50, No.5, pp.1261-1236.

197. Kinne R., Kinne-Saffran E. Differentiation of cell faces in epitbelia. In: Molecular specialization and Symmetry in membrane function, Solomon A.K., Karnowsky M. (eds.), Harvard Univ.Press, Cambrige, 1978, pp.272-293.

198. Kinter W.B., Wilson Т.Н. Autoradiographic study of sugar and amino acid absorbtion by everted sacs of hamster intestine. -J.Cell.Biol., (1965), v.25, pp.19-39.

199. Klingenberg SI. Membrane protein oHgorneric structure and transport function. Natur©, (1981), v.290, No.5806, pp.449--454.

200. Kohn P.G., Smyth D.K., Wright 3.;:. Effect of amino acides, dipeptides and disaccharides on the electric potential across rat small intestine. J.Physiol, (bond.), (1968), v.196, No.?, pp.723-746.

201. Kono Т. Translocation hypothesis of insulin action on glucose transport. Fed.Proc., (1984), v.43, pp.2256-2257.

202. Koopman W., Schultz S.G. The effect of sugars and amino acid on mucosal Na+ and K+ concentration in rabbit ileum. Biochim. Biophys.Acta, (1969), v. 173, pp.338-340.

203. Kottra G., Frffmter E. Functional properties of the paracellu-lar pathway in some leaky epithelia. J.exy.Biol., (1983),v.106, pp.217-229.

204. Krieger D. Brain peptides: what, where end why? Science, (1983), v.222, pp. 975-985.

205. Lacaz V.F. , Nunes II.A., Cury L. Permeability pt-rs-meters of the toad isolated stratum corneum. J. Membrane- Ficl., (1976;, v.27, nc.3, dp.251-254.

206. Lagerspetz. K.Y., SkyttK M. Temperature compensation of sodium transport and ATPase activity in frog skin. Acta Physiol. Scand., (1979), v.106, Ко.2, pp. 151-158.

207. Lamers J.m.J. Some characteristics of monocarboxylic acid transfer across the cell membrane of epithelial ceils from rat small intestine. Biochim.Biophys.Acts, (1975), v.413, No.2, pp.265-276.

208. Larsen E.H. Effect of amiloride, cyanide, and ouabain on the active transport in toad skin. In: Transport mechanism in epithelia. Ussing H.H., Thorn N.A. (eds.), Menkgaard, Copenhagen & Acad.Press, New York, 1973, pp. 131-147.

209. Larsson I, Studies on the extrinsic neural control of serotonin release from the small intestine. Acta Physiol.Scand., Sup pi., (1981), v.499, pp. 1-43.

210. LMuger P. Kinetic properties of ion carriers and channels. -J.Membrane Biol., (1980) , v. 57, No.:?, pp. 163-178.- 432 "

211. Laurie С-.1"., Lsbland С.P. What is known of the production of basement membrane components. J.Histochem. & Cytochem., (1983), v.31, IA, pp.159-163.

212. Lee C.O., Armstrong W.McD. Activities of sodium and potassium ions in epithelial cell of small intestine. Science,(1972), v.175, pp. 1261-1264.

213. Leek Б.F. Enteroreceptors. In: Handbook of sensory physiology. Neil E. (ed.), Springer-Verlag, Berlin, 1972, v.IIl/l,pp.114-160

214. LeFevre P.G., LeFevre M.E. The mechanism of glucose transfer into and out of the human red cell. J.Gen.Physiol., (1952), v.35, pp.391-906.

215. LeFever P.G. A comparison of recent suggestions for the functional, organisation of red-cell. Sugar transport sites based on kinetic observations. Ann.NY Acad.Sci., (1975), v. 264, pp.398-413.

216. Lerner J., Burril P. Multiple neutral amino acid transport systems in chicken small intestine; evidence for a separate proline transfer agency. Experentia, (1971), v.27, No.6, pp.660-661.

217. Levens N.R., Munday K.A., Stewart C.P. The effect of noradrenaline and angiotensin upon intestinal fluid transport in vivo in the rat. J.Physiol., (1977), v. 2.70, pp. 77-78.

218. Levin R.J. Transmural potentials across the small and large intestine of the bullfrog (Rana catesbeiana). Proc.Soc.Exptl. Biol.Med., (1966), v.121, No.4, pp.1033-1038.

219. Levin R.J. Fundamental concepts of structure and function of the intestinal epithelium. In; Scientific basis of Gastroenterology. Duthie H.L., Wormsley K.G. (eds.), Edinburg, Churchhil., Livingstone, 1979, pp.308-337.

220. Levine R.J., Sjverdsma A. Monoamine oxidase activity in human tissues and intestinal biopsy specimens. Proc.Soc.Exp. Biol.Med., (1962), v.109, pp.225-227.

221. Levitt D.G. The mechanism of the sodium pump. Biochim. Biophys.Acta, (1980), v.604, No.3-4, pp.321-345.

222. Lewis S.A., Diamond J.M. Na+ transport by rabbit urinary bladder, a tight epithelium. J.Membrane Biol., (1976), v.28, pp. 1-40.

223. Lewis S.A. Control of Na+ and water absorbtion across vertebrate "tight" epithelia by ADH and aldosterone. J.exp.Biol., (1983), v.106, pp.9-24.

224. Lieb W.R., Stein W.D. Quantitative predictions of a noncar-rier model for glucose transport across the human red cell membrane. Biophys.J., (1970), v.10, pp.585-609.

225. Lifson N., Hakim A.A., Lender E.J. Effect of cholera toxin on intestinal permeability and transport interactions. -Am.J. Physiol., (1972), v. 222, pp. 1479-1487.

226. Lindemann B. The mechanism of Na-uptake by the epithelium of from skin. Bioeloctrochem. and Bioenerg., (1976), v.3, No.3-4, pp. 365-369.

227. Lindemann E. The beginning of fluctuation analysis of epithelial ion transport, J.Membrane Bio., (1980), v.54,pp.1-11.

228. Lindemann В., Solomon A.K. Permeability of luminal surface of intestinal mucosal cells. J.GenPhysiol., (1962), v.45, pp. 801-810.

229. Lindemann В., Van Dreissche VV. The mechanism of Na uptake through Na-selective channels in the epithelium of from skin. In: Membrane Trasport Processes, v.1, Hoffman J.F. (ed.), Raven Press, New York, 1978, pp.155-178.

230. Liquid nitrogen preservation of organic and inorganic solute transport in renal and intestinal vesicles. Stevens B.R., Wright S.H., Hirayama В., et al. Membr.Biochem., (1982), v.4, pp. 271-282.

231. L6ffelholz K. Release induced by nicotinic agents. In: The release of catecholamines from adrenergic neurons. Paton D.M. (ed.) Pergamon, New York, 1979, pp. 275-301.

232. Loeschke K., Bentzel C.J., Csaky T. Z. Assimetry of oemctic flow in frog intestine: functional and structural correlation, -/an. J.Physiol. , (1970), v. 218, No. 6, pp. 1723-1731.

233. Luger A., Turnbeim K. Modification of cation permeability of rabbit descending colon by sulfhydryl reagents. J.Physiol., (1981), v.317, pp.49-66.

234. Lyon I., Crane R.K. Studies of transmural potentials In vitro in relation to intestinal absorbtion. I. Apparent Michselis constant for Na+-dependent sugar transport. Biochim.Biophys. Acta, (1966), v.112, pp.278-291.

235. Kachen Т.Н., Diamond J.TV". An estimate of the salt concentration in the lateral interacellular spaces of rabbit gall bladder during maximal fluid transport. J.Membrane Biol., (1969), v.l, pp. 194.

236. Mecknight A.D.C., Dibona D.R., Leaf A. Sodium transport across toad urinary bladder: a model "tight" epithelium. -Physiol.Rev., (1980), v.60, No.3, pp.615-715.

237. Macknight A.D.C., Leaf A. The sodium transport pool. Am.J. Physiol., (1978), v. 234, No.L, pp. FI-F9.

238. Manber I., Gershon M.D. A reciprocal adrenergic-cholinergic axos.xomic synapse in the mammalian gut. Am. J.Physiol., (1979) , v. 256, pp. 3738-15795.

239. Man del I. G. Actions of oxternsl hypertonic urea, лШ, and theophylline on transcellular and extracellular solute penoe-sMlities in frog skin. J.Gen.Physiol., (1975) ,v. 65, on. 593-615.

240. Mandel L.J., Curran P.P. Response of frog skin to steqdy--state voltpge clamping. II. The active pathway. J.Gen.Physiol. , (1973), v.62, No.I, pp. 1-24.

241. Manning A.S., McMullan J.M., Svered D.F. The influence of calcium ions on the uptake of sugars by rat small intestine in vitro. Biochem.Soc.Trans., (1978), v.6, No.5, pp.914-915.

242. Matteson D.R., Dentsch С. К channels in T lymphocytes: a patch clamp study using monoclonal antibody adhesion. Nature, (1984), v.307, pp.468-471.

243. McMichael H.B., Webb Y., Dawson A.M. The absorbtion of maltose and lactose in man. Clin.Sci., (1967), v.33, pp.135-145.

244. Means G.P., Feeney R.3. Chemical modification of proteins. -(1971), Eolden-Day, Inc.San-Francisco.

245. Membrane potentials of differentiating enterocytes. Crempschi D James P.S., Meyer G. et al. Biochim.Biophys.Acts, (1982),v.683, pp.271-274.

246. Methods in Membrane Biology. K.orn Е.Э. (ed.), New York-London, Plenum Press, v.5, 1975.

247. Miller D. , Crane R.K,. The digestive function of the epithelium of the small intestine. I. An interaction locus of disec-charide and sugar phosphate ester hydrolysis. Biochim.Biophys.Acta, (1961), v.52, pp.281-293.

248. Modligliani R., Mary J.Y., Bernier J.J. Effect of synthetic human gastrin I on movement of water, electrolytes and glucose across the human small intestine.- Gastroenterology, (1976), v.71, pp.978-984.

249. Monosaccharide absorbtion and water secretion during disaooha-ride perfusion of the human jejunum. Sandle G.I., Lobley R.Vi. , Warwick R. , et al. Digestion, (1983), v.26, No.2, pp.53-60.

250. Moran A., Handler J.S., Turner R.J. Nfi+-dependent hexose transport in vesicles from cultured renal epithelial cell line.-Am.J.Physiol., (1982), v.243, pp. C293-C298.

251. Moreno J.II. Blockage of gall-bladder tight junction cation-selective channels by 2,4,6-triaminopyrimidinium. J.Gen.Physiol., (1975), v.66, pp.97-115.

252. Morris A.I., Turnberg L.A. The influences of s parasympathetic against and antagonist on human intestinal transport in vivo. -Gastroenterology, (1980), v.79, pp.861-866.

253. Morris A.I., Turnberg L.A. Influence of isoproterenol and prooranolol on human intestinal transport in vivo. Gastroenterology, (1981), v.81, pp.1076-1079.

254. Muflich 1.7/., Widdas W.F. Sugars and sugar derivatives which inhibit the short-circuit current of the everted small intestine of the rat. J.Physiol., (1976), v. 263. pp.101-114.

255. Munck B.G. Amino acid transport by the small intestine of the rat. Effect of glucose on transintesting 1 transport of proline and valine. Biochim.Biophys.Acta, (1968),v.150, pp. 82^91.

256. Munck B.G. The number and specifitles of transport mediators for intestinal transport of amino acid: structural and methodological aspects. In: Transport across the intestine.

257. Bur land VV. L. , Samuel P.D. (eds.), 1972, Chuchill. Livingstone, Edinburg, pp. 169-185.

258. Munck B.G. Effect of sugar and amino acid transport on trans' epithelial fluxes of sodium and chloride of short-circuited rat jejunum. J.Physiol., (1972), v.225, No.3, pp.699-717.

259. Munck B.G. Transport of sugars and amino acids across guinea pig small intestine. Blochim.Biophys.Acta, (1980), v.597, pp. 411-417.

260. Munck B.G. Intestinal absorbtion of amino acids. In: Physiology of the Gastrointestinal Tract. Johnson L.R. (ed.), Raven Press, New York, 1981, pp. 1097-1122.

261. Munck B.G., Schultz S.G. Interactions between leucine and lysine transport in rabbit ileum. Biochim.Biophys.Acta, (1969), v.183, pp.182-193.

262. Munck B.G., Schultz S.G. Lysine transport across Isolated rabbit ileum. J.Gen.Physiol., (1969), v.153, pp.157-182.

263. Murer H., Sigriyt-Kelson K., Hopfer U. On the mechanism of sugar and amino acid interaction in intestinal transport. J. Biol.Chem. , (.1975), v. 250, pp. 7592-7396.

264. Naftalin R.J. A model for sugar transport across red cell membranes withoi it с6Г8* 31 о• Biophys• Ac, i 1970) 9 v.211, pp.65-78.

265. Naftalin R.J,, Kleinzellr A. Sugar absorbtion and secretion by winter flounder intestine. Am.J.Physiol., (1981), v.240, No.5, pp.G39 2-G400.

266. Naftalin R.J., Simons N.L. The effects of theophylline and choleragen on sodium and chloride ion movement v.ithin Isolated rabbit ileum. J.Physiol., (1979), v.290, pp. 331-350.

267. Naftalin R.J., Smith P.M. Comparison of serosal-mucosal sulphate flux in rabbit and v-inter flounder (P. pmericanua) intestine. J.Physiol., (1984), v."51, pp. P32.

268. SOI. Neftalin R.J., Tripsthi S. Determination of the hydraulicconductivity of the pathways for osmotic and bulk flow across the mucosal and serosal surfaces of isolated rabbit ileum,. -J.Physiol., (Gr.Brit.), (1932), v.329, pp.P69.

269. Naftalin R.J., Tripathi S. A high resolution method for contl-nuos measurement of transepithelial water movements across isolated rabbit ileum. J.Physiol., (1982), v.326, pp. 3-4,

270. Charney A.M., Kinsey M.D., Myers L. Na+- K+-activated triphosphatase end intestinal electrolyte secretion. Effectof adrenal steroids. J.Clin.Invest., (1975),v.56, pp.653-630.

271. Neame K.D., Wiseman G. Тгап rumination of glutamic acid during ebsorbtion by the small intestine of the dog. J.Physiol., (1957), v.135, pp.442-450.

272. Nellans H.W., Kimbert 3.V. Cellular and paracellular calcium transport in rat ileum. Effects of dietary calcium. Am.J. Physiol., (1978), v.235, pp.Etl6-E727.

273. Nelson N. a photometric adaptation of the Somogyi method for the determination of glucose. J.Biol.Chem., (1944), v.153, No.2, pp.375-380.

274. Newsy IT., Parsons B.J., Smyth D.E. The site of action of phlorizin in epithelial cell in relation to carabohydrate absorbti-on. J.Physiol., (1959), v.148, pp.83-92.

275. Newey H., Smyth D.H. Cellular mechanisms in intestinal transfer of amino acids. J.Physiol., (1962), v.164, No.3,pp.527--551.

276. Newey H., Smyth D.H. Effects of sugars on Intestinal transfer of amino acids. Nature, (1964), v.202, pp.400-401. 311. Newey H. , Smyth D. II. The transfer system for neutral aminoacids in the rat small intestine. J.Physiol., (1964), v.170, pp.328-343.

277. Nicholls T.J., Leese H.J., Bronk J.R. Transport and. metabolism of glucose by rat smal. intestine. Biochem. «Т., (1983), v. 212, No.l, pp. 183-187.

278. Nystatin as a probe for investigating the electrical properties of a tight epithelium. Lewis S.A., Eaton D.C., Clausen C-, et al. J. Gen. Phya.iol., (1977), v. 70, No. 4, pp. 427-440.

279. Okada Y. Solute transport process in intestinal epithelial cells. Membrane Biochemistry, (1979), v.2, No.3-4,pp.339-365.

280. Okada Y. , Sato Т., Inouye A. Effect of potassium ions and sodium Ions on membrane potential of epithelial cells In rat duodenum. Biochim.Biophys.Acta, (1975),v.413, pp.104-115.

281. Armstrong W.Md., Byrd B.J., Cohan 2.S. Osmotically induced electrical changes In isolated bullfrog intestion. -Bichim.Biophys.Acta, (1975), v.401, No.l, pp.137-151.

282. Osterhout W.J.V., Kamerllng S.3., Stanly W.M. Kinetics of penetration versus Ionic transport. J.Gen.Physiol., (1934), v. 17, pp.469-488.

283. Palmer L. G. Ion selectivity of the apical membrane Na channel in the toad urinary bladder. J.Membrane Biol., (1982), v.67, No.2, pp.91-98.

284. Palmer L.G., Century T.J., Civan M.M. Activity coefficients of Intracellular Na+ and K+ during development of frog oocytes. J.Membrane Biol., (1978), v.40, No.l, pp.25-38.

285. Palmer L.G., Edelman J.S., Lindemann B. Current-voltage analysis of apical sodium transport in toad urinary bladder: effect of Inhibitors of transport and metabolism. J.Membrane Biol., (1980), v.57, No.l, pp.59-71.

286. Parseglan A. Energy of ion crossing alone dielectric membrane; solutions to four relevant electostatic problems. Nature, (1969), v.221, No.5183, pp.844-846.

287. Parsons D.S. "Suirmary". In: Transport across the intestine.

288. A C-laxo symposium, Bur land W.L. , Samuel P.D. (eds.), Churchill Livingstone, Edinburg & London, 1972, pp.253-278.323» Parsons D.S. "Closing summary". In: Intestinal Ion Transport. Robinson J.W.L. (ed.), MTP, Press, England, 1976, po.407-430.

289. Parsons D.S., Prichard J.S. Hydrolysis of disaccharidas during absorbtion by the perfused small intestine of amphibia.-Mature, (1965), v.208, No.501G, pp.1097-1093.

290. Parsons D.S. , Prichard J.S. Properties of soino мо.ЗеЭ systems for trgnsceliular active transport. Biochim.Biophys.Acta, (1966), v.126, No.3, pp.471-491.

291. Parsons D.S., Prichard J.S. Relationship between disaccharide hydrolysis and sugar transport in amphibian email intestine, J.Physiol. (Lond.), (1971), v.212, No.2, pp.299-319

292. Paterson J.Y.F., Sepulveda F.V., Smith M.W. Stoichiometry versus coupling ratio in the cotransport of Na and different amino acid. Biochim.Biophys.Acta, (1980), v.603, No.2,pp. 288-297.

293. Paterson J.Y.F., Sepulveda F.V., Smith M.W. Distinguishing transport systems having overlapping specificities for neutral and basic amino acid in the rabbit ileum. J.Physiol.,(1981), v.519, pp.5-354.

294. E29. Petlak C.S. Contributions to the theory of active transport. Bull.Math.Biophys., (1956), v.18, pp.271-315.

295. Patlak G.S. Contributions to the theory of active, transport. II. The gate t^pe non-carrier inecha.nisin end generatizations concerning, tracer f lov», eff i cl ency, ?nd Measurement of energy expenditure. Bull.Жеtb.Biophys., (1957), v.19, pp.209-235.

296. Phillips S.F. Functions of the large bowel: an overview. In: Basic Sci. in Gastroenterology. Physiol, of the Gut. Polsk J.M. e. a. (eds.), Glaxo, England, 1984, pp.283-294.

297. Pidot A.L. , Diamond J.M. Streaming potentials in a biological membrane, Nature (London), 1964, v.201, No.7920, pp. 701-702.

298. Poat J.A., Pasons B.J., Munday K.A. Effect of angiotensin on transporting epithelia. J.Endocrinol., (1976), v.68, pp. 2-3.

299. Potasbner S.J., Johnstone R. №. Cation gradients, ATP, end amino acid accumulation in E.rlich ascites tumor cells. -Bicochim.Biophys.Acta, (1971), v.233, pp.91-103.

300. Powell D. W. , Fan Q.Q. Calcium regulation of intestinal Na and CI transport in rabbit ileum. In: Intestinal Transport: Fundamental and comparative aspects. Gilles-Ballien M., Gillies R. (eds.), Springer-Verlag, Berlin e.a., 1S83, pp.215-226.

301. Prichard J.S. Role of the intestinal microvilli and glycoca-lix in the ebsorbtion of disaccharides. Nature, (1969),v.221, pp.369-371.- 443

302. Proline and glycine uptake by renal brush border membrane ves^icles. McNamera P.D., Ozegovic В., Pepe L.M. et al. -Froc.Natl.Acad.Sci.USA, (1976), v.73, pp.4521-4525.

303. Pumplin D.W., Fambrough D.M. Annu.Rev.Physiol., 1982, v.44, pp.319-322.

304. Purves P.D. B'unction of mescarinic and nicotinic receptots.-Nature, (1976), v.261, pp.149-151.

305. Quay J.F. , Armstrong Vv.McD. Ionic fluxes in isolated bullfrog intestine. Physiologist, (1967), v.10, No.3. pp.286

306. Quay J.F. , Armstrong W.McD. Sodium and chloride transport byisolated bullfrog small intestine. Am.J.Physiol., (1969),v.217, No.3, pp.694-702. it

307. Ramaswamy K. , Ma.lathi P., Grane R.K. Demonstration of hydro-lase-related glucose transport in brush border membrane vesicles prepared from guinea pig small intestine. Biochim.Biophys. Acta. (1976), v.68, No.l, pp.162-168.

308. Regulation of protein ohosohorylation and sodium transport in toad bladder. Walton K.G. , DeLorenzo P.J.,Curran ?. FJet olrJ. Gen. Physiol., (1975), v.65, pp.153-177.

309. Reiser 3., Christiansen P.A. Intestinal transport of amino acids studied with L-valine. Am.J.Physiol., (1965), v.208, No.5, pp. 914-921.

310. Reiser S., Christiansen P.A. Intestinal transport of amino acids as affected by sugars. Am.J.Physiol., (1969), v. 216, pp. 915-924.

311. Release of iinrtunoreactive serotonin into the lumen of the fell n e gut in response to vaga 1 nerve stirnuleti on. Ahlman T-T. , De Iv!fa;-;istl s L. , Zlnnor К. , et al. Science, (1981), v.213, pp. 125-1-1255.

312. Riklis E. , Quastel J.H. Effects of cations on sugpr absorbtion by isolated surviving guinea pig intestine. Can.J.Bio-chem.Physiol., (1958), v.36, pp.347-362.

313. Robinson J.W.L., VanMelle G. Kinetics of the sodium/ p -methyl. -D-glucoside co-transport system in the guinea-pig small intestine. J.Physiol., (1985), v.344, pp.177-187.

314. Role of cyclic nucleotides in the regulation of intestinal ion transport. Field M. , Br©situs T.A. , Slieerin H.E. , et al.1.: Intestinal ion transport. Robinson J.w.k. (ed.), MTP Press Ltd, England, 1Э76, pp.233-245.

315. Rose R.C., Schultz 3.S. Studies on the electrical potential profile across rabbit ileum. Effect of sugars aild amino acids on transmural and transmucosal electrical potential differences. J. Gen.Physiol., (1971), v.57, pp.659-663.

316. Rothe C.P., Quay J.P., Armstrong W.McD. Measurement of epithelial electrical characteristics vti th on automatic voltage clamp device with compensation for solute resistance. IEEE Trans. BIomed.Eng., (19S9), BME-lo, No.2, pp.160-164.

317. Riibery-Schweer M. , Karger W. The effect of nitrozepam, lora-zepam and diazepam on ionic transport through isolated frog skin preparations. Pfliigers Arch., (1375), v. 355, p. 1272

318. Sakmann В., Neher E. Single с*'*п<з11 recording;. 1383, Plenum Press, New York.

319. Sgndle G.I., Lobley R.'iT., Holmes R. Maltose hydrolysis and absorbtion in the human jejunum. Digestion, (1982), v.24, "o.3, pp.137-145.

320. Schachter D., Shinitzky M. Fluorescence polarization studies of rat intestinal microvillus membranes. Clin.Invest.,(1977), v. 59, pp.536-548.

321. Schell R.E. , Stevens B.R., Wright E.M. Kinotics of sodium-dependent solute transport by rabbit renal and jejunal brush-border vesicles using a fluorescent dye. J.Physiol.,(1983), v.335, pp.307-318.

322. Sehultz S.G. Intestinal Permeation. Kramer F., Lauterbach F. (eds.), Exerpta Medica, Amsterdam, v.4, pp.162.

323. Sehultz S.G. Sodium-coupled solute transport by small intestine: a status report. Am.J.Physiol., (1977), v.233, No.3,pp. E249-E254.

324. Sehultz S.G. Salt and water absorbtion by mammalian small intestine. In: Physiology of the Gastrointestinal Tract. Johnson L.R. (ed.), Raven Press, New York, 1981, pp.983-989.

325. Sehultz A.G., Curran P.F. Coupled transport of sodium and organic solutes. Physiol.Rev.,(1970), v.50, No.4,pp.637-718.

326. Sehultz S.C., Frizzell R.A., Nellans H.N. Ion transport by mammalian small intestine. Ann. Rev. Physiol., (-1974), v.36, pp.51-91.

327. Sehultz S.G., Fuisz R.E., Curran P.F. Amino acid and sugar transport in rabbit ileum. J.Gen»Physiol., (1966), v.49, No.5, pp.849-866.

328. Sehultz S.G., Strecker C.K. Fructose influx across the brush border of rabbit ileum. Biochim.Biophys.Acta, (1970), v.211,pp.586.

329. Schultz S.G., Zalusky R. Ion transport In Isolated rabbit Ileum. I. Short-circuit current and sodium flux. J.Gen. Physiol., (1964), v.47, pp.567-534.

330. Schultz S.G., Zalusky R. Ion transport in isolated rabbit ileum. II. The interaction between active sodium and avtive sugar transport. J.Gen.Physiol., (1964), v.47, pp.1043-1059.

331. Schultz S.G., Zalusky R. Interaction between sodium transport and active amino acid transport in isolated rabbit ileum. Nature, (1965), v.205, No.205, No.4968, pp.292-294.

332. Sedar A.W., Forte J.G. Effects of calcium depletion on the junctional complex between oxyntic cell of gsctric glands. -J.Cell.Biol., (1964), v.22, pp.173-188.

333. Sellin J.H., Field M. Physiologic and pharmacologic effects of glucocorticoids on ion transport across rabbit ileal mucosa in vitro. J.Clin.Invest., (1981), v.67, pp.770-778.

334. Semenza G. On the mechanism of mutual inhibition among sodium dependent transport systems in the small intestine. A hypothesis. Biochim.Biophys.Acta, (1971), v.241, pp.638-649.

335. Sepulveda F.V., Burton K.A. Relation between sodium-coupled amino acid and sugar transport and sodium/potassium pump activity in isolated intestinal epithelial cells. J.Cell.Physiol., (1982), v.III, No.3, pp.305-308.

336. Shehata А.Т., Lerner J., Miller D.S. Development of brusb--border membrane hexose transport system in chick jejunum. -Am.J.Physiol., (1981), v.240, No.2, pp.G102-G108.

337. Sigrist-Nelson K., Hopfer U. A distinct D-glucose transport system in isolated brush-border membrane. Biochim.Biophys. Acta, (1974), v. 367, pp.247-254.

338. ZQ4, Simons N.L., Naftslin R.J. Bidirectional sodium ion movements via the paracellular end transcellul&r routes across short-circiuted rabbit ileum. Biochim.Biophys.Acta, (1976), v.443, No.3, pp.426-450.

339. Simultaneous release of 5-HT, substance P, and motilin into the lumen of the isolated cat jejunum. (Abstract). Zinner IvI.J., DeMagistris L., Ahlman J., et al. Gastroenterology, (1982), v.82, p.1218.

340. Singer S.J. Lipld-protein interactions in membranes. Сошра-ratitive Biochemistry and Physiology of transport. Bolis L. st el. (eds.), North-Holland Publishing Co., Amsterdam, 1974, ■op. 95-101.

341. Single channel recordings of calcium-activated potassium channels in the apical membrane of rabbit cortical collecting tubules. Hunter M., Lopes A.G., Boulpsep E.L. , et el. -Proc.Natl.Acad.Sci.USA, (1984), v.81, No.13, pp.4237-4239.

342. Smith M.'A. Sodium-glucose interactions in the goldfish intestine. J.Physiol., (1966), v.182, No.3, pp.559-573.

343. Smytn D.H. Methods of studing intestinal absorbtion. In: Biomembrariea. v. 4Л, Intestinal absorbtion. Smyth D.H. (ed.), 1974.

344. Smyth D.F., Taylor 0.3. Transfer of vaster and solutes by an In vitro Intestinal preparation. J.Physiol., (1957), v.136,pp.632-548.

345. Smyth D.Ii,, ".'right E.I.'. Streaming .jotentJ »ls in the ret згоч11 intestine. J.Physiol. (Lo:nd.), (1994), v.172, Ho. 2,pp. 61E-62P.•397. Smyth D.E., "Aright Stre&ming potentials in the rat smallintestine. J.Physiol., (1966), v.132, pp.591-602.

346. Spencer R.D., Brody K.R. Intestinal transport of cyclic and noncyclic aminoacids. Biochim.Biophys.Acta, (1964), v. 88, pp. 400 - 40 6.

347. Spooner P.M., Edelman I.S. Stimulation of Ns+-transport across the toad urinary bladder by p-chloromercuribenzene sulfonate. Biochim.Biophys.Acta, (1976), v.455, Wo.1, pp.272-276.

348. Stein W.0. Intraprotein interactions across a fluid membrane as a model for biological transport. J.Gen.Physiol. (1969), v.54, No.1, pp.315-845.

349. Stevens C.F. Studying just one molecule: single channel recording. Trends Pharmacol.Sci., (1984), v.5, No.4, pp.131-134.

350. Stirling C.E. High-resolution radioautography of phlorizln3

351. H in rings of hamster Intestine. J.Cell.Biol., (1967), v.35,pp. 605-613.

352. Storelli C., Vogeli H., Semenza G. Reconstruction of a suc-rosemediated sugar transport system in lipid membranes. FEBS Letters, (1972), v.24, pp.287-292.

353. Bobrycki V.A. , Mills J.'.V. , Macknight A.D.C.,

354. Structural responces to voltage-clamping in the toad urinarybladder. I.The principal role of granular cells in the active transport of sodium. J.Membrane Biol.,(1981), v.50,No.I,pp.21-33.

355. Studies on the transport of glucose from disaccharides by hamster small intenstine in vitro. 1. Evidence for disaccharide--relsted transport system. Ma lathi P., Ramaswamy K., Caspary li'.F et al. Biochim.Biphys.Acta, (1973), v.307, No.2,pp.613-626.

356. Syme G., Levin R.J. Effect of altered thyroid status induced by thyroid hormones, goitrogens and diet on intestinal electro-genic valine trasfer. Proc.R.Soc.Lond.B., (1976), v. 194,pp.121-139.

357. Tai Y.-H., Decker R.A. Mechanism of electrolyte transportin rat ileum. Am.J.Physiol., (1930),v.238,No.3, pp.G2Q8-G212.

358. Tai Y.-H., Tai C.-Y. The conventional short-circuiting technique under short-circuits most epithelia. J.Membrane Biol., (1981), v.59, pp.173-177.

359. Tapper E.J. Local modulation of intestinal ion transport by enteric neurons. Am.J.Physiol., (1983), v.244, pp.G457-G458.

360. Tapper E.J., Bloom A.S., Levtand D.L. Endogenous norepinephrine release induced by tyramine modulates intestinpl ion transport. Am.J.Physiol., (1981), v.241, pp. G264-G269.

361. Tapper E.J., Lewand D.L. Action of a nicotinic agonist, DMPP, on intestinal ion transport in vivo. Life Sci,, (1980), v.28, pp.155-162.

362. Tapper 3.J., Powell D.W., Morris S.M. Cholinergic-adrenergic interactions on intestinal ion transport. Am.J.Physiol., (1978), v.235, pp. E402-E409.- 451

363. Taylor A., Windhager 3.E. Possible role of cytosolic calcium and Na-Ca exchange in the regulation of transepithelial sodium transport. Am.J.Physiol., (1979), v.236, No.6,pp.F505-F512.

364. Teorell T. 'What does rnicroelectrodes "redd" in biological objects? Rapp.Tngenjorsretenskapsakad. (1980),v.182,pp.150-152.

365. The effects of sodium substitution and ouabain on ion transport by dog tracheal epithelium. Widdicombe J.H., Ueki L.F., Bruder-man I., et al. Am.Rev.Respirat.Disease, (1979), v.120, No.2, pp.383-392.

366. Thomson A.B.R. Kinetic constants for intestinal transport of four monosaccharides determined under conditions of variable effective resistance of unstirred water layer. J.Membrane Biol., (1979), v,50, pp.141-163.

367. Thomson A.B»R. Kinetics of uptake of glucose in rabbit jejunum influence of so<3ium, unstirred layers, and passive permeation. Can.J.Physiol.Pharmacol., (1983), v.10, pp.1129-1137.

368. Thomson A. B. ?. , Diet shy J.M. Experimental demonstration of the effect of the unstirred water layer on the kinetic constants of the membrane transport of D-glueose in rabbit jejunum.-J.Membrane Biol., (1980), v.54, pp.221-229.

369. Ti&ball C.S. Active chloride transport during Intestinal secretion. Am.J.Physiol., (1961), v.200, pp.509-312.

370. Turnberg L.A. Neuro hormonal control of «ntest.J.nsl transport. in: Intestinal Transport-; F>m<Jpn>entvl end comparative pspocts. Gilles-Ballien M. , Gilles R. (eds.), Springer-Verlag, Berlin e.a., 1983, рр.Р,<Ю—248*

371. Turner R.J., Мог an A. Stoichiometric studies of the renal-outer cortical of brush-border швыЬгвпе D-glucose transporter. -J.Membrane Biol., (1982), v.67, No.l, pp.73-80.

372. Turnheim Jf. Role of cell sodium in regulation of transepithe-lial sodium transport. In: Intestinal 'Transport: Fundamental and comparative aspects. Gilles-Ballien M., Gilles R. (eds.), Springer Ve.rlag, Berlin e.a., 1983, pp. 200-214.

373. Turnover membrane insertion and degradation of sodium channelsin rabbit urinary bladder. Loo D.D.F., Lewis S.A., Ifshin H.S, et al. Science, (1983), v.221, Ho.4617, pp.1283-1290.

374. Ultrastructure evidence for an innervation of epithelial entero chromaffin cells in the guinea, pig duodenum, Lundberg J.M., Dahstrom A., Byldck A. et al. Acta Physiol.Scand., (1978), v.104, pp.3-12.

375. Ussing H.H. The distinction by means of tracers between active transport and diffusion. Acta Physiol.Scand., (1950), v,19, pp.43.

376. Ussing H.H. The interpretation of tracer fluxes in terms of active and passive transport. Physiol.viglt., (1971), v.9, Wo.I, pp.1-9.

377. Ussing H.H. Physiology of transport regulation. J.Membrane Biol,, (1978), Spec.Issue: Spithel. as Hormone end Drug Recept. pp.5-14.

378. Ussing H.H. Epithelial transport of water and electrolytes.-Contribs. Nephrol., (1980), v.21, pp.15-50.

379. Ussing H.H., Andersen B. The relation between solvent drugrdand active trasport of ions. Proc. 3 Int.Cong.Biochem., Brusseles, 1956, Academic Press, New York, pp.434-440.

380. Ussing H.H., Erlij D., Lassen V. Transport pathways in biological membranes. Annu.Rev.Physiol., (1974),v.36, pp.17-49,

381. Ussing H.H., Windhager E.E. Nature of shunt path and active sodium trasport path through frog skin epithelium. Acta Physiol. Scand., (1964), v.61, pp.484-506.

382. Ussing H.H., Zerahn K. Active transport of sodium as the source of electric current in the short-circuited, isolated frog skin. Acta Physiol. Scand., (.1951), v.23, pp.110.

383. Van Driessche W., Borghyraef R. Analysis of voltage responce of frog skin to small step currents. Pflflgers Arch., (1975), v.355, p.R70.

384. Van Drlessche W., Lindemann B. Fluctuations of Na-current through the Na-selective membrane of frog akin. Pflttgers Arch., (1976), v.362, p.R109.

385. Vidaver G.a« Inhibition of par9Uel flux and augmentation of counter-flux shown by transport models not involving a mobile carrier. J.Theor.Biol., (1966) , v. 10, "Wo,2, pp. 301-306.

386. TBTalser M. Role of edge damage in sodium permeability of toad bladder and s means of avoiding it. Am.J.Physiol., (1970), v,219, No.1, pp.252-255.

387. Wedner H.J., Diamond J.M. Contributions of unstirred-layer effect to apparent electrokinetic phenomena in the gall bladder. J.Membrane Biol., (1969), v.1, pp.92-108.

388. Weidner G. Method to detect volume flows in the nancsliter range. Rev.Sci.Instrum., (1976), v.47, pp.775-776.44.7, Weigensberg A.m., Lohnstone R.m., Blostein R. Reversal of

389. Na+-dependent glycine transport in 3heep reticulocyte membrane vesicles. J.Bioenerg. and. Biomembr., (1982) ,v. 14,No.6-6, pp. 334-345.

390. White J.F. , Armstrong V.'.McD. Effect of transported solutes on membrane potentials in bullfrog small intestine. Am.£. Physiol., (1971), v.221, No.l, pp.194-201.

391. Widdas W.F. Inability of diffusion to account for placental glucose transfer in the sheep and consideration of the kinetic of a possible carrier transfer. J.Physiol., (Lond.), (1952), v.118, pp.23-39.

392. WlddasW.F. Facilitated transfer of hexoses across the human erythrocyte membrane. J.Physiol., (1954), v.125, pp.163-100.

393. Wight E.M., Smulders A.P., Tormey J.McD. The role of the lateral intracellular spaces and solute polarization effect in the passive flow of water across the rabbit gallbladder.

394. J.Membrane Biol., (1972), v. 7, No.2, pp.198.

395. Wilson F.A., Dietschy J.M. The intestinal unstirred layer, its surface area and the effect on active transport kinetics. -Biochim.Biophys.Acta, (1974), v.363, pp.112-126.

396. Wilson Т.Н., A'iseman G. The use of sacs of everted small intestine for the study of transference of substances from the mucosal to the serosal surface. J.Physiol., (1954), v.123, No.l, pp. 116-125.

397. Winne D. Unstirred layer, source of biased Michael! s constant in membrane transport. Bioohim.Biophys.Acta, (1973), v.298, pp. 27-31.

398. Winne D., Kopf 3., TJUosr Г. -L. Hole of unstirred layer in Intestinal absorbtion of phenylalanine in vivo. Bi.ochim, Bio-phys.Acta, (1979), v.550, No.l, pp.120-130.

399. Wisemann G. .Absorbtion of amino acids. In: Handbook of Physiology. Heldel W. (ed.). Axner. Physiol. Soc., !Va shington. Sect. 6,

400. Wolf D-, Sssig A. Kinetic of Mdi recti on al active sodium fluxes in the toad bladder. Biochim.Biophys.Acts, (1977), v.4S8, pp.271-281.

401. Zeiske 'Л'. The influence of 2,4,6-triaminopirimidine on Ha-transport in frog skin. Pflflgers Arch., (1975), v.559,p. R127.

402. Zeiske W. The stimulation of Na+ uptake in frog skin by ura-nyl ions. Biochim.Biophys.Acta, (1978),v.509, "o.2,pp.213--229.

403. Zeiske W., Lindemann B. Chemical stimulation of Ne+ current through the outer surface of frog sVin epithelium. Bloehln'. Eiophys. Acta, (1974), v.?52, pp. 523-526.

404. Sylber E.A., Rotumo С.Д., Cereijido M. Ionic fluxes in isolated epithelial cells of the abdominal skin of the frog Lep-t-odactylus ocellatus. J. Membrane Biol., (1975), v. 22, No. 3-4, pp.265-284.- oOo