Культивирование овариальных фолликулов млекопитающих с целью получения зрелых ооцитов тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.05, кандидат наук Филатов Максим Алексеевич

• Филатов Максим Алексеевич
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Филатов Максим Алексеевич

Оглавление

1. ВВЕДЕНИЕ

1.1. Актуальность проблемы

1.2. Степень разработанности темы

1.3. Цели и задачи исследования

1.4. Объект и предмет исследования

1.5. Научная новизна

1.6. Практическая и теоретическая значимость

1.7. Методология и методы исследования

1.8. Личный вклад соискателя

1.9. Положения, выносимые на защиту

1.10. Степень достоверности результатов

1.11. Апробация диссертации

1.12. Публикации по теме диссертации

1.13. Структура и объем диссертации

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. Современные подходы к сохранению фертильности у женщин

2.1.1. Основные методики, позволяющие осуществить процедуры по сохранению фертильности

2.1.2. Заболевания, при которых необходимы процедуры по сохранению фертильности

2.2. Современные методы работы с овариальной тканью в контексте сохранения фертильности

2.2.1. Строение яичника и фолликулогенез у млекопитающих

2.2.2. Способы выделения овариальной ткани

2.2.3. Методы криоконсервации и ретрансплантации ткани яичника

2.2.4. Эффективность криоконсервации овариальной ткани

2.3. Культивирование ткани яичника in vitro

2.3.1. Технологии культивирования овариальной ткани in vitro

2.3.2. Механические свойства микроокружения фолликула и воссоздание кортикально-медуллярной структуры яичника in vitro

2.3.3. Состав сред для культивирования фолликулов

2.3.5. Окислительный стресс и антиоксиданты в контексте культивирования фолликулов

2.3.6. Использование методик сокультивирования

2.3.7. Эффективность систем культивирования яичниковой ткани in vitro

2.4. Сравнение технологий сохранения женской фертильности: культивирование овариальной ткани in vitro или её криоконсервация

2.5. Регуляторные процессы на молекулярном уровне при фолликуло- и оогенезе

2.5.1. Базовые молекулярные механизмы, обеспечивающие поддержание блока мейоза на стадии профазы I в ооците в ходе фолликулогенеза

2.5.2. Базовые молекулярные механизмы, обеспечивающие инициацию разрушения зародышевого пузырька в ооците при мейозе

2.5.3. Мейотическая компетентность ооцита

2.5.4. Регуляция транскрипции и трансляции при мейотическом созревании ооцита

2.6. Способы оценки эффективности систем культивирования овариальных фолликулов in vitro

2.6.1. Уровни экспрессий генов в фолликулах и ооцитах при культивировании in vitro

2.6.2. Выбор оптимальных референсных генов для исследования генных экспрессий в ооцитах методом количественной ПЦР

3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

3.1. Список реактивов и оборудования, использованных в работе

3.2. Лабораторные животные

3.3. Получение биоматериала для эксперимента

3.3.1. Получение овариальных фолликулов

3.3.2. Получение GV ооцитов in vivo

3.3.3. Получение сперматозоидов для ЭКО

3.4. Постановка экспериментов

3.4.1. Выделение и культивирование фолликулов

3.4.2. Работа с ооцитами

3.5. Анализ данных, полученных при проведении экспериментов

3.5.1. Статистическая обработка данных

3.5.2. Молекулярно-биологический анализ образцов

3.5.3. Анализ стабильности экспрессии референсных генов в образцах

3.5.4. Цейтраферная микрофотосъёмка

3.5.5. Анализ объектов методами электронной микроскопии

4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

4.1. Анализ состояния овариальных фолликулов, выделенных механическим способом

4.2. Выбор сред для культивирования овариальных фолликулов in vitro

4.3. Культивирование овариальных фолликулов в альгинатном гидрогеле

4.4. Оплодотворение ооцитов, полученных после культивирования, и развитие эмбрионов

4.5. Оценка степени ядерной зрелости ооцитов и эмбрионов, полученных после культивирования овариальных фолликулов in vitro в альгинатном гидрогеле

4.6. Динамика протекания мейотического деления и морфология ооцитов, выделенных из фолликулов, культивированных in vitro, в сравнении с контрольными ооцитами

4.7. Молекулярно-биологический анализ ооцитов

4.7.1. Выбор оптимальных референсных генов для GV-ооцитов мыши

4.7.2. Изучение уровней экспрессии целевых генов в различных ооцитах

5. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

6. ВЫВОДЫ

7. СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

8. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Культивирование овариальных фолликулов млекопитающих с целью получения зрелых ооцитов»

Вопрос сохранения женской фертильности является одним из наиболее актуальных вопросов современных репродуктивных технологий. На сегодняшний день пациенткам, страдающим от различных видов злокачественных новообразований и многих аутоиммунных заболеваний (например, васкулитов), в качестве лечения предлагается агрессивная терапия, которая негативно влияет на состояние половых клеток. Например, при лечении рака молочной железы выполняют овариоэктомию с целью снижения прогностически негативного влияния на опухоль гормонов, вырабатываемых яичниками (Di Leva et al., 2013). Также при лечении других видов рака применяют лучевую и химиотерапию, которые негативно сказываются на состоянии яичника. Было показано, что большинство алкилирующих агентов являются гонадотоксичными (Bokemeyer et al., 1994; Thomson et al., 2002). Применение алкилирующих агентов приводит к атрофии фолликулов и ооцитов (Oktem, Oktay, 2007a; Familiari et al., 1993), а также способствует образованию фиброза в тканях яичника (Behringer et al., 2005; Meirow 1999a). Под действием химиотерапевтических агентов клетки яичника гибнут путём апоптоза, причём этот процесс затрагивает как строму яичника, так и собственно фолликулярную систему (Verga Falzacappa et al., 2012). Это приводит к уменьшению численности фолликулов, в том числе и примордиальных, а, следовательно, ведёт к снижению овариального резерва и развитию бесплодия (Oktem, Oktay 2007b; Киселева с соавт, 2010а).

Использование лучевой терапии особенно сильно влияет на репродуктивную функцию у женщин старше 30 лет. Это связано с тем, что эффективная стерилизующая доза облучения при лучевой терапии уменьшается с возрастом женщины (Wallace et al., 2005). В то же время риск возникновения злокачественных новообразований повышается с возрастом (Xu et al., 2014). Принимая во внимание оба эти факта, использование агрессивных методов

противоопухолевой терапии среди женщин старше 30 лет должно сопровождаться проведением мероприятий по сохранению фертильности. Также было показано, что у пациенток репродуктивного возраста до проведения комплексного лечения по поводу рака в 47% случаев овариальный резерв уже снижен за счет гонадотоксичного действия опухоли. Также была продемонстрирована четкая корреляция между стадией опухолевого процесса и показателями овариального резерва (Киселева с соавт, 2010b).

Сегодня вопрос возможности сохранения фертильности актуален и для женщин, откладывающих наступление беременности. С возрастом количество фолликулов в яичниках уменьшается (Wallace, Kelsey, 2010), происходит ухудшение общего репродуктивного здоровья и снижается вероятность наступления и успешного протекания беременности. Поэтому создание систем, позволяющих сохранить фертильность, могло бы помочь этим женщинам получить здоровое потомство.

На сегодняшний день женщинам, которым требуется проведение процедур по сохранению фертильности, традиционно предлагают провести гормональную стимуляцию для получения ооцитов с их последующим замораживанием (Sigismondi et al., 2015; Cardozo et al., 2015). Однако данный протокол невозможно применить для пациенток препубертатного возраста, а также женщин, страдающих от гормон-зависимых видов опухолей. Возможной альтернативой является криоконсервация овариальной ткани с последующей обратной пересадкой пациентке (Meirow et al., 2007). Однако данный подход также имеет ряд ограничений. Обратная пересадка овариальной ткани невозможна в том случае, если состояние пациентки не позволяет провести данную операцию или если формирование злокачественных новообразований происходило непосредственно в яичнике.

Одним из актуальных подходов к решению этой проблемы является культивирование in vitro овариальной ткани или единичных фолликулов в целях получения зрелых и компетентных к оплодотворению и дальнейшему развитию

ооцитов. Применение данного подхода не требует проведения процедур по обратной пересадке овариальной ткани пациентке, а позволяет получить зрелую яйцеклетку вне тела женщины. Полученные таким образом ооциты могут быть оплодотворены и криоконсервированы или перенесены в матку суррогатной матери в том случае, если пациентка по каким-либо причинам не может выносить ребёнка самостоятельно (Filatov et al., 2015; Filatov et al., 2016).

Основной целью, достижение которой преследуют исследователи при культивировании овариальной ткани in vitro, является получение зрелых ооцитов, способных к оплодотворению (Filatov et al., 2015). Таким образом, исследуемая в настоящей работе проблема, посвящённая изучению состояния ооцитов, имеет не только прикладное, но также важное фундаментальное значение в контексте приобретения ооцитами компетентности к оплодотворению и дальнейшему развитию.

1.2. Степень разработанности темы

Первые работы, посвящённые культивированию in vitro яичников и овариальных фолликулов млекопитающих были проведены более 50 лет назад (Fainstat, 1968; Grob, 1969). С тех пор данное направление приобрело значительное развитие. Так, была показана возможность получения в результате культивирования овариальных фолликулов in vitro ооцитов, способных к оплодотворению (Xu et al., 2006; Jin et al., 2010). Однако статус ооцитов, получаемых в результате культивирования овариальных фолликулов in vitro, остаётся малоизученным. Так, имеются лишь единичные работы, посвящённые изучению уровней экспрессии непосредственно в ооцитах, полученных после культивирования овариальных фолликулов in vitro (Sánchez et al., 2012; Jiao, Woodruff, 2013). Таким образом, изучение состояния ооцитов в контексте культивирования овариальных фолликулов in vitro является одной из ключевых задач современной репродуктивной биологии.

Цель исследования - разработать систему культивирования вторичных преантральных овариальных фолликулов in vitro, способную обеспечить рост фолликулов и получение зрелых ооцитов, а также разработать систему оценки качества ооцитов.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Подобрать оптимальные условия культивирования овариальных фолликулов мыши in vitro в условиях альгинатного гидрогеля.

2. Оценить морфологическое и функциональное состояние ооцитов, полученных в результате культивирования овариальных фолликулов in vitro.

3. Изучить динамику протекания мейоза в ооцитах, полученных от мышей различных возрастов in vivo, а также в результате культивирования овариальных фолликулов in vitro.

4. Определить стабильно экспрессирующиеся в ооцитах мыши гены сравнения (референсные гены).

5. Сравнить уровни экспрессии генов, отвечающих за протекание деления в ооцитах мыши, полученных из овариальных фолликулов культивированных in vitro, с уровнями экспрессии в ооцитах, полученных in vivo.

1.4. Объект и предмет исследования

В качестве объектов исследования в настоящей работе были использованы овариальные фолликулы и ооциты мышей различных возрастов линии C57B1/6J. Предметом изучения являлось протекание процессов фолликулогенеза и оогенеза на морфологическом и молекулярном уровнях.

На сегодняшний день существует несколько методик оценки эффективности культивирования овариальных фолликулов in vitro. Так, наиболее распространёнными являются методики, основанные на подсчёте числа ооцитов, успешно прошедших мейотическое созревание (Xu et al., 2009; Jin et al., 2010; Dunning et al., 2011; Shikanov et al., 2009), оценке гормонального статуса культивированного фолликула (Skory et al., 2015), а также молекулярно-генетических методов диагностики, позволяющих оценить уровень экспрессии ряда генов в культивированных фолликулах (Jiao et al., 2013). Однако применяемые подходы не позволяют в должной мере оценить качество получаемых ооцитов, поскольку способность ооцита к завершению мейотического деления ещё не свидетельствует о наличии у него компетенции к нормальному развитию в дальнейшем после оплодотворения. Экспрессия ряда генов в фолликулярных клетках на уровнях аналогичных экспрессии данных генов in vivo и поддержание нормального гормонального статуса фолликула свидетельствуют лишь о нормальном функционировании фолликулярных клеток, что может лишь косвенно свидетельствовать о нормальном состоянии ооцита, но не может являться безусловным критерием, позволяющем оценить качество культуральной системы, так как ключевой целью подобных систем является получение после культивирования овариальных фолликулов зрелых, способных к оплодотворению и дальнейшему нормальному развитию ооцитов, а не нормально развивающихся фолликулярных клеток.

В рамках настоящей работы была разработана система культивирования, позволяющая осуществлять эффективное культивирование овариальных фолликулов мыши в условиях трёхмерного микроокружения в альгинатном гидрогеле, и позволяющая получать зрелые, способные к оплодотворению ооциты. Также были разработаны новые подходы, позволяющие оценить эффективность культивирования овариальных фолликулов в системах in vitro.

Так, впервые в ооцитах, полученных в результате культивирования овариальных фолликулов in vitro, были изучены уровни экспрессии ряда ключевых генов, отвечающих за формирование и активную работу MPF-комплекса, а также некоторых элементов MAP-киназного пути. Также впервые были исследованы уровни экспрессии гена Epab, который играет важную роль в регуляции процессов трансляции в ооцитах млекопитающих.

Более того, с использованием различных современных математических подходов были получены новые данные об оптимальных генах сравнения (референсных генах) в ооцитах млекопитающих, что позволило получить достоверные молекулярно-биологические данные об уровнях экспрессии ряда исследованных целевых генов.

Впервые был использован метод цейтраферной микрофотосъемки для анализа изменения морфологического статуса ооцитов, полученных в результате культивирования овариальных фолликулов in vitro.

1.6. Практическая и теоретическая значимость

В результате наших исследований было показано, что разработанная система культивирования овариальных фолликулов в условиях трёхмерного альгинатного гидрогеля, является адекватной для получения зрелых ооцитов, находящихся на стадии М11 мейотического деления. Эта система может быть применена в качестве тест-системы для анализа воздействия различных веществ, в том числе лекарственных препаратов, на процессы фолликулогенеза и оогенеза у млекопитающих. Применение подобной тест-системы позволит снизить количество используемых в экспериментах животных по тестированию действия препаратов на оогенез и фолликулогенез. Разработка протоколов и методов анализа качества культивирования in vitro может служить основой для дальнейших разработок по созданию более эффективных культуральных систем овариальной ткани или овариальных фолликулов in vitro для млекопитающих, в

том числе и человека. Использованная нами оценка состояния ооцита методом ПЦР анализа в режиме реального времени дала возможность непосредственно оценить эффективность системы культивирования овариальных фолликулов в условиях трёхмерного альгинатного гидрогеля in vitro.

Подобранный для этой работы комплекс референсных генов имеет ключевое значение для дальнейшего использования в исследованиях, посвящённых изучению уровней экспрессии различных генов интереса в ооцитах.

1.7. Методология и методы исследования

В настоящей работе были использованы современные методы биологии развития, клеточной и молекулярной биологии, а также различных методов математического и статистического анализа. Так, была разработана трёхмерная мультикомпонентная система культивирования овариальных фолликулов мыши in vitro. Для оценки эффективности культивирования овариальных фолликулов in vitro использовали метод количественной ПЦР в режиме реального времени для определения уровней экспрессии ряда генов в ооцитах.

Изучение состояния фолликулов и ооцитов также производили, базируясь на их морфологических характеристиках. В том числе морфологическое состояние ооцитов определяли с использованием цейтраферной микрофотосъёмки. Морфологическое состояние овариальных фолликулов оценивали с использованием методов световой, а также электронной трансмиссионной и растровой микроскопии.

Анализ локализации нуклеиновых кислот и белков в фолликулах и ооцитах проводили с помощью иммуноцитохимического окрашивания клеток с последующим анализом с помощью методов флуоресцентной и конфокальной электронной микроскопии.

Соискатель самостоятельно проводил анализ актуальной научной литературы, планировал и проводил эксперименты, осуществлял обработку и интерпретацию полученных данных, самостоятельно представлял результаты исследований на конференциях и принимал участие в подготовке публикаций результатов.

1.9. Положения, выносимые на защиту

1. При культивировании in vitro морфологический статус овариального фолликула не является однозначным индикатором состояния ооцита, заключенного в данном фолликуле.

2. Система культивирования in vitro преантральных овариальных фолликулов мыши на основе альгинатного гидрогеля, позволяет получать зрелые ооциты.

3. Динамика протекания мейотического созревания различается среди ооцитов, полученных in vivo и in vitro.

4. Уровни экспрессии ряда генов отличаются в группах ооцитов, полученных in vivo и in vitro.

1.10. Степень достоверности результатов

Представленные результаты были получены с использованием современного оборудования. Достоверность данных подтверждена их воспроизводимостью при проведении нескольких независимых экспериментов, в том числе с использованием положительных и отрицательных контрольных групп.

Материалы и результаты настоящей работы были доложены на конференциях:

1) Филатов М.А. Применение многоступенчатых систем культивирования овариальных фолликулов мыши в альгинатном гидрогеле in vitro. XXIV Международная научная конференция студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов-2017». Секция "Биология", Москва, Россия, 10-14 апреля 2017.

2) Филатов М.А., Семенова М.Л. Изучение воздействия факторов культуральной среды и механического микроокружения на рост фолликулов яичника и созревания ооцитов мыши in vitro. Репродуктивные технологии в онкологии, Обнинск, Россия, 22-23 мая 2015.

3) Семенова М.Л., Филатов М.А., Малинова И.В., Комарова Е.В., Киселева М.В. Эксплантационное культивирование овариальной ткани. Репродуктивные технологии в онкологии, Обнинск, Россия, 22-23 мая 2015.

4) Храмова Ю.В., Никишин Д.А., Багаева Т.С., Филатов М.А., Семенова М.Л. Новые экспериментальные подходы к реконструированию соматического окружения овариальных фолликулов и изучению взаимодействия между клеточными элементами in vitro. 19 международная пущинская школа-конференция молодых ученых «Биология - наука XXI века», г. Пущино, Россия, 20-24 апреля 2015.

5) Филатов М.А. Влияние механического микроокружения и факторов культуральной среды на рост овариальных фолликулов и созревание ооцитов мыши в альгинатном гидрогеле в условиях in vitro. XXII Международная научная конференция студентов, аспирантов и молодых ученых "Ломоносов-2015", Москва, Россия, 13-17 апреля 2015.

6) Khramova Y.V., Filatov M., Lebedeva T., Semenova M. Ovarian follicle culture in 2D and 3D systems. FEBS EMBO 2014 Conference, Paris, France, 2014.

По материалам работы было опубликовано 16 работ, из них 10 - статьи, 7 из которых опубликованы в отечественных и международных журналах и сборниках, соответствующих Перечню ВАК, 6 - тезисы докладов всероссийских и международных конференций.

Публикации в журналах:

1) Filatov M.A., Khramova Y.V., Semenova M.L. In Vitro Mouse Ovarian Follicle Growth and Maturation in Alginate Hydrogel: Current State of the Art. // Acta Naturae. - 2015. - V.7. - №2. - P.48-56.

2) Filatov M.A., Khramova Y.V., Kiseleva M.V., Malinova I.V., Komarova E.V., Semenova M.L. Female fertility preservation strategies: cryopreservation and ovarian tissue in vitro culture, current state of the art and future perspectives. // Zygote. - 2016. - V.24. - №5. - P.635-653.

3) Filatov M., Khramova Y., Parshina E., Bagaeva T., Semenova M. Influence of gonadotropins on ovarian follicle growth and development in vivo and in vitro. // Zygote. - 2017. - V.25. - №3. - P.235-243.

4) Filatov M., Khramova Y., Semenova M. Molecular Mechanisms of Prophase I Meiotic Arrest Maintenance and Meiotic Resumption in Mammalian Oocytes. // Reprod. Sci. - 2018. doi: 10.1177/1933719118765974

5) Nikishin D.A., Filatov M.A., Kiseleva M.V., Bagaeva T.S., Konduktorova V.V., Khramova Y.V., Malinova I.V., Komarova E.V., Semenova M.L. Selection of stable expressed reference genes in native and vitrified/thawed human ovarian tissue for analysis by qRT-PCR and Western blot. // J. Assist. Reprod. Genet. -2018. - V.35. - №10. - P.1851-1860.

6) Il'ina I.V., Khramova Y.V., Filatov M.A., Sitnikov D.S. Femtosecond laser is effective tool for zona pellucida engraving and tagging of preimplantation mammalian embryos. // J. Assist. Reprod. Genet. - 2019. - V.36. - №6. - P. 12511261.

Публикации в сборниках:

1) Реконструирование соматического окружения овариальных фолликулов в системе in vitro. Храмова Ю.В., Никишин Д.А., Багаева Т.С., Филатов М.А., Семенова М.Л. Research'n Practical Medicine Journal. 2015; с. 48-48.

2) Ovarian follicle culture in 2D and 3D systems. Khramova Y.V., Filatov M., Lebedeva T., Semenova M. FEBS Journal Special Issue: FEBS EMBO 2014 Conference, 2014; том 281, с. 332-332.

3) Культивирование овариальных фолликулов мыши в средах различного состава. Храмова Ю.В., Филатов М.А., Лебедева Т.С., Семенова М.Л. Труды XVIII Международного Форума по проблемам науки, техники и образования. 2014, с. 81 -83

1.13. Структура и объем диссертации

Настоящая работа изложена на 255 страницах, содержит 16 таблиц, 38 рисунков и состоит из следующих разделов: введения, обзора литературы, материалов и методов, результатов и обсуждения, заключения, выводов, списка литературы, включающего 488 источника (8 русскоязычных и 480 англоязычных).

Заключение диссертации по теме «Биология развития, эмбриология», Филатов Максим Алексеевич

6. ВЫВОДЫ

1. Разработан трёхступенчатый протокол культивирования ранних преантральных овариальных фолликулов мыши в альгинатном гидрогеле in vitro, при использовании которого в полученных ооцитах инициация мейоза наступает в 74% случаев, а выделение первого РТ наблюдается в 45% случаев.

2. Предложено использование пимобендана (35 мкг/мл) для ингибирования наступления стадии GVBD в ооцитах, получаемых в результате стимуляции овуляции воздействием ХГЧ на фолликулы, культивируемые in vitro.

3. Ооциты, выделенные из фолликулов после культивирования, и ооциты, полученные от неполовозрелых мышей, имеют меньший диаметр и пониженную способность к созреванию по сравнению с ооцитами, полученными от половозрелых мышей.

4. Определены референсные гены для ооцитов мыши на стадии GV: Gapdh, H2afz, Rpl4.

5. Уровни экспрессии генов, кодирующих белки MPF-комплекса (Cdkl, Ccnb), а также Wee2, не различаются в ооцитах, выделенных из фолликулов, культивированных in vitro, и в ооцитах, полученных из яичников половозрелых и неполовозрелых мышей.

6. Уровни экспрессии генов Epab и Ccnh в ооцитах, выделенных из фолликулов, культивированных in vitro, достоверно ниже таковых в ооцитах, выделенных из яичников от половозрелых и неполовозрелых мышей.

7. Уровни экспрессии гена Mos, ответственного за протекание мейоза и митоза, достоверно ниже в ооцитах, полученных от неполовозрелых мышей, по сравнению с половозрелыми.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Филатов Максим Алексеевич, 2019 год

8. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Белоусов Л.В. Основы общей эмбриологии // Издательство «Наука». - 2005. -С.58-59.

2. Быстрова О.В., Диникина Ю.В., Тапильская Н.И., Лисянская А.С., Манихас Г.М. Криоконсервация овариальной ткани у пациенток со злокачественными и доброкачественными новообразованиями органов репродуктивной системы // Журнал акушерства и женских болезней. - 2006. - Т.4. - С. 63-69.

3. Быстрова О.В., Лапина Е.Н., Лисянская А.С., Калугина А.С., Татищева Ю.А., Манихас Г.М., Тапильская Н.И. Случай восстановления репродуктивной функции с использованием метода криоконсервации и аутотрансплантации ткани яичника у пациентки с диагнозом лимфомы Ходжкина // Вопросы онкологии. - 2016. - Т. 62. - С. 150-153.

4. Киселева М.В., Карпейкина М.М. Изменения репродуктивной функции, связанные со специфическим лечением рака молочной железы у молодых женщин // Материалы IV Международного конгресса по репродуктивной медицине - М. -2010a - С.291-292.

5. Киселева М.В., Карпейкина М.М., Денисов М.С., Минаева Н.Г. Оценка овариального резерва у больных лимфомой Ходжкина в репродуктивном возрасте // Материалы научно-практической конференции «Актуальные вопросы диагностики и лечения лимфомы Ходжкина (по результатам лечебных программ 1998-2008гг.) - 2010b. - С.26-28.

6. Киселева М.В., Малинова И.В., Комарова Е.В. Витрификация овариальной ткани как способ сохранения фертильности у онкологических больных // Тезисы конференции «Актуальные вопросы женского здоровья». - М. - 2014. - С.31.

7. Киселева М.В., Малинова И.В., Комарова Е.В., Шведова Т.И., Денисов М.С., Каприн А.Д. Первая в России беременность после ортотопической трансплантации витрифицированной овариальной ткани. // Исследования и практика в медицине. - 2015. - Т.2. - С.24.

8. Филатов М.А. Культивирование фолликулов яичников млекопитающих с использованием альгинатного субстрата. // Дипломная работа. - МГУ им. М.В.Ломоносова. - 2014.

9. Abbey-Hosch S.E., Cody A.N., Potter L.R. Sphingosine-1-phosphate inhibits C-type natriuretic peptide activation of guanylyl cyclase B (GC-B/NPR-B). // Hypertension. -2004. - V.43. - P.1103-1109.

10.Abbey-Hosch S.E., Smirnov D., Potter L.R. Differential regulation of NPR-B/GC-B by protein kinase c and calcium. // Biochem Pharmacol. - 2005. - V.70. - P.686-694.

11.Abedellhafez F.F., Desai N., Abou-Setta A.M., Falcone T., Goldfarb J. Slow freezing, vitrification and ultra-rapid freezing of human embryos; a systematic review and meta-analysis. // Reprod. Biomed. Online. - 2010. - V.2. - P.209-222.

12.Abir R., Fisch B., Nitke S., Okon E., Raz A., Ben Rafael Z. Morphological study of fully and partially isolated early human follicles. // Fertil. Steril. - 2001. - V.75. -P.141-146.

13.Abir R., Franks S., Mobberley M.A., Moore P.A., Margara R.A., Winston R.M. Mechanical isolation and in vitro growth of preantral and small antral human follicles. // Fertil. Steril. - 1997. - V.68. - P.682-688.

14.Abir R., Roizman P., Fisch B., Nitke S., Okon E., Orvieto R., Ben Rafael Z. Pilot study of isolated early human follicles cultured in collagen gels for 24 hours. // Hum. Reprod. - 1999. - V.14. - P.1299-1301.

15. Abrieu A., Brassac T., Galas S., Fisher D., Labbé J.C., Dorée M. The Polo-like kinase Plx1 is a component of the MPF amplification loop at the G2/M-phase transition of the cell cycle in Xenopus eggs. // J. Cell Sci. - 1998. - V.111. - P.1751-1757.

16.Adam A.A., Takahashi Y., Katagiri S., Nagano M. Effects of oxygen tension in the gas atmosphere during in vitro maturation, in vitro fertilization and in vitro culture on the efficiency of in vitro production of mouse embryos // Jpn. J. Vet. Res. - 2004. - V.52. -P.77-84.

17.Adhikari D., Zheng W., Shen Y., Gorre N., Ning Y., Halet G., Kaldis P., Liu K. Cdk1, but not Cdk2, is the sole Cdk that is essential and sufficient to drive resumption of meiosis in mouse oocytes. // Hum. Mol. Genet. - 2012. - V.21. - P.2476-2484.

18. Akoulitchev S., Chuikov S., Reinberg D. TFIIH is negatively regulated by cdk8-containing mediator complexes. // Nature. - 2000. - V.407. - P.102-106.

19.Amorim C.A., David A., Van Langendonckt A., Dolmans M.M., Donnez J. Vitrification of human ovarian tissue: effect of different solutions and procedures. // Fertil. Steril. -2011. - V.95. - P.1094-1097.

20.Amorim C.A., Van Langendonckt A., David A., Dolmans M.M., Donnez J. Survival of human pre-antral follicles after cryopreservation of ovarian tissue, follicular isolation and in vitro culture in a calcium alginate matrix. // Hum. Reprod. - 2009. - V.24. -P.92-99.

21.Amoushahi M., Salehnia M., Mowla S.J., Ghorbanmehr N. Morphological and molecular aspects of in vitro culture of preantral follicles derived from vitrified ovarian. // Cell J. - 2017. - V.19. - №3. - P.332-342.

22.Amsterdam A., Koch Y., Lieberman M.E., Lindner H.R. Distribution of binding sites for human chorionic gonadotropin in the preovulatory follicle of the rat. // J. Cell Biol. -1975. - V.67. - P.894-900.

23.Andersen C., Silber S., Berghold S., Jorgensen J., Ernst E. Long-term duration of function of ovarian tissue transplants: case reports. // Reprod. Biomed. Online. - 2012. -V.25. - P. 128-132.

24.Andersen C.L., Jensen J.L., 0rntoft T.F. Normalization of real-time quantitative reverse transcription-PCR data: a model-based variance estimation approach to identify genes suited for normalization, applied to bladder and colon cancer data sets. // Cancer Res. -2004. - V.64. - P.5245-5250.

25.Andersen C.Y., Lossl K. Increased intrafollicular androgen levels affect human granulosa cell secretion of anti-Mullerian hormone and inhibin-B. // Fertil. Steril. -2008. - V.89. - №6. - P.1760-1765.

26.Andersen C.Y., Rosendahl M., Byskov A.G., Loft A., Ottosen C., Dueholm M., Schmidt K.L., Andersen A.N., Ernst E. Two successful pregnancies following autotransplantation of frozen/thawed ovarian tissue. // Hum. Reprod. - 2008. - V.23. -P.2266-2272.

27.Anderson R.A., Robinson L.L., Brooks J., Spears N. Neurotropins and their receptors are expressed in the human fetal ovary. // J. Clin. Endocrinol. Metabol. - 2002. - V.87. - P.890-897.

28.Andric N., Ascoli M. A delayed gonadotropin-dependent and growth factor-mediated activation of the extracellular signal-regulated kinase 1/2 cascade negatively regulates aromatase expression in granulosa cells. // Mol. Endocrinol. - 2006. -V.20. - P.3308-3320.

29.Ascoli M., Fanelli F., Segaloff D.L. The lutropin/choriogonadotropin receptor, a 2002 perspective. // Endocr. Rev. - 2002. - V.23. - P.141-174.

30.Ashkenazi H., Cao X., Motola S., Popliker M., Conti M., Tsafriri A. Epidermal growth factor family members: endogenous mediators of the ovulatory response. // Endocrinology. - 2005. - V.146. - P.77-84.

31.Aubard Y., Teissier M.P., Baudet J.H. Cryopreservation of the ovary and ovarian tissue. // Rev. Fr. Gynecol. Obstet. - 1994. - V.89. - P.192-197.

32.Ball C.B., Rodriguez K.F., Stumpo D.J., Ribeiro-Neto F., Korach K.S., Blackshear P.J., Birnbaumer L., Ramos S.B. The RNA-binding protein, ZFP36L2, influences ovulation and oocyte maturation. // PLoS One. - 2014. - V.9. - P.e97324.

33.Baloh R.H., Tansey M.G., Johnson E.M. Jr., Milbrandt J. Functional mapping of receptor specificity domains of glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) family ligands and production of GFRalpha1 RET-specific agonists. // J. Biol. Chem. -2000. - V.275. - P.3412-3420.

34.Banwell K.M., Lane M., Russell D.L., Kind K.L., Thompson J.G. Oxygen concentration during mouse oocyte in vitro maturation affects embryo and fetal development // Hum. Reprod. - 2007. - V.22. -Р.2768-2775.

35.Barros V.R.P., Monte A.P.O., Lins T.L.B.G., Santos J.M., Menezes V.G., Cavalcante A.Y.P., Araujo V.R., Gouveia B.B., Matos M.H.T. In vitro survival, growth, and maturation of sheep oocytes from secondary follicles cultured in serum-free conditions: impact of a constant or a sequential medium containing recombinant human FSH. // Domest. Anim. Endocrinol. - 2018. - принято в печать.

36.Behringer K., Breuer K., Reineke T., May M., Nogova L., Klimm B., Schmitz T., Wildt L., Diehl V., Engert A. Secondary amenorrhea after Hodgkin's lymphoma is influenced by age at treatment, stage of disease, chemotherapy regimen, and the use of oral contraceptives during therapy: a report from the German Hodgkin's Lymphoma Study Group. // J. Clin. Oncol. - 2005. - V.23. - P.7555-7564.

37.Berthet C., Aleem E., Coppola V., Tessarollo L., Kaldis P. Cdk2 knockout mice are viable. // Curr. Biol. - 2003. - V.13. - P.1775-1785.

38.Bibel M., Barde Y.A. Neurotrophins: key regulators of cell fate and cell shape in the vertebrate nervous system. // Gen. Dev. - 2000. - V.14. - P.2919-2937.

39.Bizarro-Silva C., Santos M.M., Gerez J.R., González S.M., Lisboa L.A., Seneda M.M. Influence of follicle-stimulating hormone concentrations on the integrity and development of bovine follicles cultured in vitro. // Zygote. - 2018. - V.26. - №5. -P.417-423.

40.Blaha M., Nemcova L., Prochazka R. Cyclic guanosine monophosphate does not inhibit gonadotropin-induced activation of mitogen-activated protein kinase 3/1 in pig cumulus-oocyte complexes. // Reprod. Biol. Endocrinol. - 2015. - V.13. - P.1-12.

41.Blobel C.P., Carpenter G., Freeman M. The role of protease activity in ErbB biology. // Exp. Cell Res. - 2009. - V.315. - P.671-682.

42.Bokemeyer C., Schmoll H.J., van Rhee J., Kuczyk M., Schuppert F., Poliwoda H. Long-term gonadal toxicity after therapy for Hodgkin's and non-Hodgkin's lymphoma. // Ann. Hematol. - 1994. - V.68. - P.105-110.

43.Bolla D., Deseö N., Sturm A., Schöning A., Leimgruber C. Minilaparotomy a good option in specific cases: a case report of bilateral ovarian germ cell tumor. // Case Rep. Obstet. Gynecol. - 2012. - V.2012. - P.589568.

44.Bornslaeger E.A., Wilde M.W., Schultz R.M. Regulation of mouse oocyte maturation: involvement of cyclic AMP phosphodiesterase and calmodulin. // Dev Biol. - 1984. -V.105. - P.488-499.

45.Bosma G.C., Custer R.P., Bosma M.J. A severe combined immunodeficiency mutation in the mouse. // Nature. - 1983. - V.301. - P.527-530.

46.Bu S., Xia G., Tao Y., Lei L., Zhou B. Dual effects of nitric oxide on meiotic maturation of mouse cumulus cell-enclosed oocytes in vitro. // Mol. Cell Endocrinol. -2003. - V.207. - P.21-30.

47.Callejo J., Salvador C., Gonzalez-Nunez S., Almeida L., Rodriguez L., Marqués L., Valls A., Lailla J.M. Live birth in a woman without ovaries after autograft of frozen-thawed ovarian tissue combined with growth factors. // J. Ovarian Res. - 2013. - V.6. -P.33-38.

48.Callejo J., Salvador C., Miralles A., Vilaseca S., Lailla J.M., Balasch J. Long-term ovarian function evaluation after autografting by implantation with fresh and frozen-thawed human ovarian tissue. // J. Clin. Endocrinol Metab. - 2001. - V.86. - P.4489-4494.

49.Cameron M.R., Foster J.S., Bukovsky A., Wimalasena J. Activation of mitogen-activated protein kinases by gonadotropins and cyclic adenosine 5'-monophosphates in porcine granulosa cells. // Biol. Reprod. - 1996. - V.55. - P.111-119.

50.Camps M., Nichols A., Gillieron C., Antonsson B., Muda M., Chabert C., Boschert U., Arkinstall S. Catalytic activation of the phosphatase MKP-3 by ERK2 mitogen-activated protein kinase. // Science. - 1998. - V.280. - P.1262-1265.

51.Cardozo E.R., Thomson A.P., Karmon A.E., Dickinson K.A., Wright D.L., Sabatini M.E. Ovarian stimulation and in-vitro fertilization outcomes of cancer patients undergoing fertility preservation compared to age matched controls: a 17-year experience. // J. Assist. Reprod. Genet. - 2015. - V.32. - P.587-596.

52.Carpintero N.L., Suarez O.A., Mangas C.C., Varea C.G., Rioja R.G. Follicular steroid hormones as markers of oocyte quality and oocyte development potential. // J. Hum. Reprod. Sci. - 2014. - V.7. - №3. - P. 187-193.

53.Caunt C.J., Armstrong S.P., Rivers C.A., Norman M.R., McArdle C.A. Spatiotemporal regulation of ERK2 by dual specificity phosphatases. // J. Biol. Chem. - 2008. - V.283. -P.26612-26623.

54.Chalupnikova K., Solc P., Sulimenko V., Sedlacek R., Svoboda P. An oocyte-specific ELAVL2 isoform is a translational repressor ablated from meiotically competent antral oocytes. // Cell Cycle. - 2014. - V.13. - P.1187-1200.

55.Chang W., Pratt S., Chen T.H., Nemeth E., Huang Z., Shoback D. Coupling of calcium receptors to inositol phosphate and cyclic AMP generation in mammalian cells and Xenopus laevis oocytes and immunodetection of receptor protein by region-specific antipeptide antisera. // J. Bone Miner. Res. - 1998. - V.13. - P.570-580.

56.Chao L., Jiang A.F., Deng X.H., Yu H.L., Zhen J.H. Capability of oocyte maturation in human cryopreserved ovarian tissue following xenografting. // Zhongguo Yi Xue Ke Xue Yuan Xue Bao. - 2008. - V.30. - P.583-588.

57.Chapman J.R., Waldenstrom J. With Reference to Reference Genes: A Systematic Review of Endogenous Controls in Gene Expression Studies. // PLoS One. - 2015. -V.10. - P.e0141853.

58.Chattopadhyay A., Vecchi M., Ji Q., Mernaugh R., Carpenter G. The role of individual SH2 domains in mediating association of phospholipase C-y1 with the activated EGF receptor. // J. Biol. Chem. - 1999. - V.274. - P.26091-26097.

59.Chen J., Melton C., Suh N., Oh J.S., Horner K., Xie F., Sette C., Blelloch R., Conti M. Genome-wide analysis of translation reveals a critical role for deleted in azoospermia-like (Dazl) at the oocyte-to-zygote transition. // Genes. Dev. - 2011. - V.25. - P.755-766.

60.Chen Q., Zhang W., Ran H., Feng L., Yan H., Mu X., Han Y., Liu W., Xia G., Wang C. PKC5 and 0 possibly mediate FSH-induced mouse oocyte maturation via NOX-ROS-TACE cascade signaling pathway. // PLoS One. - 2014. - V.9. - P.e111423.

61. Choi J.K., Agarwal P., He X. In vitro culture of early secondary preantral follicles in hanging drop of ovarian cell-conditioned medium to obtain MII oocytes from outbred deer mice. // Tissue Eng. Part. A. - 2013a. - V.19. - P.2626-2637.

62.Choi J.K., Agarwal P., Huang H., Zhao S., He X. The crucial role of mechanical heterogeneity in regulating follicle development and ovulation with engineered ovarian microtissue. // Biomaterials. - 2014. - V.35. - P.5122-5128.

63.Choi J.Y., Kang J.T., Park S.J., Kim S.J., Moon J.H., Saadeldin I.M., Jang G,. Lee B.C. Effect of 7,8-dihydroxyflavone as an antioxidant on in vitro maturation of oocytes and development of parthenogenetic embryos in pigs. // J. Reprod. Dev. - 2013b. - V.59. -P.450-456.

64.Choi T., Rulong S., Resau J., Fukasawa K., Matten W., Kuriyama R., Mansour S., Ahn N., Vande Woude G.F. Mos/mitogen-activated protein kinase can induce early meiotic phenotypes in the absence of maturation-promoting factor: a novel system for analyzing spindle formation during meiosis I. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1996. - V.93. -P.4730-4735.

65.Choi-Lundberg D.L., Bohn M.C. Ontogeny and distribution of glial cell line-derived neurotrophic factor (GDNF) mRNA in rat. // Brain Res. Dev. Brain Res. - 1995. -V.85.

- P.80-88.

66.Chrisman T.D., Perkins D.T., Garbers D.L. Identification of a potent serum factor that causes desensitization of the receptor for C-type natriuretic peptide. // Cell Commun. Signal. - 2003. - V.1. - P.4-13.

67.Cobo A., Domingo J., Perez S., Crespo J., Remohi J., Pellicer A. Vitrification: an effective new approach to oocyte banking and preserving fertility in cancer patients. // Clin. Transl. Oncol. - 2009. - V.5. - P.268-273.

68.Cobo A., Meseguer M., Remohi J., Pellicer A. Use of cryo-banked oocytes in an ovum donation program: a prospective randomized, controlled, clinical trial. // Hum. Reprod.

- 2010. - V.9. - P.2239-2246.

69.Conti M., Andersen C.B., Richard F., Mehats C., Chun S.Y., Horner K., Jin C., Tsafriri A. Role of cyclic nucleotide signaling in oocyte maturation. // Mol. Cell Endocrinol. -2002. - V.187. - P.153-159.

70.Conti M., Hsieh M., Park J.Y., Su Y.Q. Role of the epidermal growth factor network in ovarian follicles. // Mol. Endocrinol. - 2006. - V.20. - P.715-723.

71.Coticchio G., Albertini D.F., De Santis L. Oogenesis. London., 2013. P.171-182.

72.Courbiere B., Caquant L., Mazoyer C., Franck M., Lornage J., Salle B. Difficulties improving ovarian functional recovery by microvascular transplantation and whole ovary vitrification. // Fertil. Steril. - 2009. - V.91. - P.2697-2706.

73.De Castro F.C., Cruz M.H.C., Leal C.L.V. Role of Growth Differentiation Factor 9 and Bone Morphogenetic Protein 15 in Ovarian Function and Their Importance in

Mammalian Female Fertility — A Review. // Asian. Australas. J. Anim. Sci. - 2016. -V.29. - P.1065-1074.

74.de Vantéry C., Stutz A., Vassalli J.D., Schorderet-Slatkine S. Acquisition of meiotic competence in growing mouse oocytes is controlled at both translational and posttranslational levels. // Dev. Biol. - 1997. - V.187. - P.43-54.

75.Dell'Aquila M.E., De Santis T., Cho Y.S., Reshkin S.J., Caroli A.M., Maritato F., Minoia P., Casavola V. Localization and quantitative expression of the calcium-sensing receptor protein in human oocytes. // Fertil. Steril. - 2006. - V.85. - P.1240-1247.

76.Demeestere I., Simon P., Buxant F., Robin V., Fernandez S.A., Centner J., Delbaere A., Englert Y. Ovarian function and spontaneous pregnancy after combined heterotopic and orthotopic cryopreserved ovarian tissue transplantation in a patient previously treated with bone marrow transplantation: case report. // Hum. Reprod. - 2006. - V.21. -P.2010-2014.

77.Demeestere I., Simon P., Emiliani S., Delbaere A., Englert Y. Fertility preservation: successful transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a young patient previously treated for Hodgkin's disease. // Oncologist. - 2007. - V. 12. - P. 1437-1442.

78.Demeestere I., Simon P., Moffa F., Delbaere A., Englert Y. Birth of a second healthy girl more than 3 years after cryopreserved ovarian graft. // Hum. Reprod. - 2010. -V.25. - P.1590-1591.

79.Desai N., Alex A., AbdelHafez F., Calabro A., Goldfarb J., Fleischman A., Falcone T. Three-dimensional in vitro follicle growth: overview of culture models, biomaterials, design parameters and future directions. // Reprod. Biol. Endocrinol. - 2010. - V.14. -№8. - P.119.

80.Dessev G., Iovcheva-Dessev C., Bischoff J.R., Beach D., Goldman R. A complex containing p34cdc2 and cyclin B phosphorylates the nuclear lamin and disassembles nuclei of clam oocytes in vitro. // J. Cell Biol. - 1991. - V.112. - P.523-533.

81.Di Leva Gianpiero, Claudia Piovan, Pierluigi Gasparini, Apollinaire Ngankeu, Cristian Taccioli, Daniel Briskin, Douglas G. Cheung, Brad Bolon, Laura Anderlucci, Hansjuerg Alder, Gerard Nuovo, Meng Li, Marilena V. Iorio, Marco Galasso, Santhanam

Ramasamy, Guido Marcucci, Danilo Perrotti, Kimerly A. Powell, Anna Bratasz, Michela Garofalo, Kenneth P. Nephew, Carlo M. Croce. Estrogen Mediated-Activation of miR-191/425 Cluster Modulates Tumorigenicity of Breast Cancer Cells Depending on Estrogen Receptor Status. // PLoS Genet. - 2013. - V.9. - P.e1003311.

82.DiLuigi A., Weitzman V.N., Pace M.C., Siano L.J., Maier D., Mehlmann L.M. Meiotic arrest in human oocytes is maintained by a G s signaling pathway. // Biol. Reprod. -2008. - V.78. - P.667-672.

83.Dissen G.A., Hirshfield A.N., Malamed S., Ojeda S.R. Expression of neurotrophins and their receptors in the mammalian ovary is developmentally regulated: changes at the time of folliculogenesis. // Endocrinology. - 1995. - V.136. - P.4681-4692.

84.Dittrich R., Hackl J., Lotz L., Hoffmann I., Beckmann M.W. Pregnancies and live births after 20 transplantations of cryopreserved ovarian tissue in a single center. // Fertil. Steril. - 2015. - V.103. - P.462-468.

85.Dong J., Albertini D.F., Nishimori K., Kumar T.R., Lu N., Matzuk M.M. Growth differentiation factor-9 is required during early ovarian folliculogenesis. // Nature. -1996. - V.383. - P.531-535.

86.Donnez J., Dolmans M.M. Fertility preservation in women. // Nat. Rev. Endocrinol. -2013. - V.9. - P.735-749.

87.Donnez J., Dolmans M.M., Demylle D., Jadoul P., Pirard C., Squifflet J., Martinez-Madrid B., van Langendonckt A. Livebirth after orthotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue. // Lancet. - 2004. - V.364. - P.1405-1410.

88.Donnez J., Dolmans M.M., Demylle D., Jadoul P., Pirard C., Squifflet J., Martinez-Madrid B., Van Langendonckt A. Restoration of ovarian function after orthotopic (intraovarian and periovarian) transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a woman treated by bone marrow transplantation for sickle cell anaemia: case report. // Hum. Reprod. - 2006b. - V.21. - P.183-188.

89.Donnez J., Dolmans M.M., Pellicer A., Diaz-Garcia C., Sanchez Serrano M., Schmidt K.T., Ernst E., Luyckx V., Andersen C.Y. Restoration of ovarian activity and pregnancy

after transplantation of cryopreserved ovarian tissue: a review of 60 cases of reimplantation. // Fertil. Steril. - 2013b. - V.99. - P.1503-1513.

90.Donnez J., Jadoul P., Pirard C., Hutchings G., Demylle D., Squifflet J., Smitz J., Dolmans M.M. Live birth after transplantation of frozen-thawed ovarian tissue after bilateral oophorectomy for benign disease. // Fertil. Steril. // 2012. - V.98. - P.720-725.

91.Donnez J., Jadoul P., Squifflet J., Van Langendonckt A., Donnez O., Van Eyck A.S., Marinescu C., Dolmans M.M. Ovarian tissue cryopreservation and transplantation in cancer patients. // Best. Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. - 2010. - V.24. - P.87-100.

92.Donnez J., Martinez-Madrid B., Jadoul P., Van Langendonckt A., Demylle D., Dolmans M.M. Ovarian tissue cryopreservation and transplantation: a review. // Hum. Reprod. Update. - 2006a. - V.12. - P.519-535.

93.Donnez J., Silber S., Andersen C.Y., Demeestere I., Piver P., Meirow D., Pellicer A., Dolmans M.M. Children born after autotransplantation of cryopreserved ovarian tissue. a review of 13 live births. // Ann. Med. - 2011a. - V.43. - P.437-450.

94.Donnez J., Squifflet J., Dolmans M.M., Martinez-Madrid B., Jadoul P., van Langendonckt A. Orthotopic transplantation of fresh ovarian cortex: a report of two cases. // Fertil. Steril. - 2005. - V.84. - P. 1018.

95.Donnez J., Squifflet J., Jadoul P., Demylle D., Cheron A.C., Van Langendonckt A., Dolmans M.M. Pregnancy and live birth after autotransplantation of frozen-thawed ovarian tissue in a patient with metastatic disease undergoing chemotherapy and hematopoietic stem cell transplantation. // Fertil. Steril. - 2011b. - V.95. - P.1787.e1-4.

96.Downs S.M., Cottom J., Hunzicker-Dunn M. Protein kinase C and meiotic regulation in isolated mouse oocytes. // Mol. Reprod. Dev. - 2001. - V.58. - P.101-115.

97.Downs S.M., Eppig J.J. Induction of mouse oocyte maturation in vivo by perturbants of purine metabolism. // Biol. Reprod. - 1987. - V.36. - P.431-437.

98.Downs S.M., Mosey J.L., Klinger J. Fatty acid oxidation and meiotic resumption in mouse oocytes. // Mol. Reprod. Dev. - 2009. - V.76. - P.844-853.

99.Duncan F.E., Moss S.B., Williams C.J. Knockdown of the cAMP-dependent protein kinase (PKA) Type Ialpha regulatory subunit in mouse oocytes disrupts meiotic arrest and results in meiotic spindle defects. // Dev. Dyn. - 2006. - V.235. - P.2961-2968.

100. Dunning K.R., Akison L.K., Russell D.L., Norman R.J., Robker R.L. Increased beta-oxidation and improved oocyte developmental competence in response to l-carnitine during ovarian in vitro follicle development in mice. // Biol. Reprod. - 2011. -V.85. - P.548-555.

101. Dunning K.R., Cashman K., Russell D.L., Thompson J.G., Norman R.J., Robker R.L. Beta-oxidation is essential for mouse oocyte developmental competence and early embryo development. // Biol. Reprod. - 2010. - V.83. - P.909-918.

102. Edgar D.H., Gook D.A. A critical appraisal of cryopreservation (slow cooling versus vitrification) of human oocytes and embryos. // Hum. Reprod. Update. - 2012. -V.18. - P.536-554.

103. Edson M.A., Nagaraja A.K., Matzuk M.M. The mammalian ovary from genesis to revelation. // Endocr. Rev. - 2009. - V.30. - P.624-712.

104. Emori C., Sugiura K. Role of oocyte-derived paracrine factors in follicular development. // Anim. Sci. J. - 2014. - V.85. - P.627-633.

105. Erickson G.F., Magoffin D.A., Dyer C.A., Hofeditz C. The ovarian androgen producing cells: a review of structure/function relationships. // Endocr. Rev. - 1985. -V.6. - P.371-399.

106. Ernst E., Bergholdt S., J0rgensen J.S., Andersen C.Y. The first woman to give birth to two children following transplantation of frozen/thawed ovarian tissue. // Hum. Reprod. - 2010. - V.25. - P.1280-1281.

107. Fahy G., Lilley T.H., Linsdell H., Douglas M.S., Meryman H.T. Cryoprotectant toxicity and cryoprotectant toxicity reduction: in search of molecular mechanisms. // Cryobiology. - 1990. - V.3. - P.247-268.

108. Fahy G.M., MacFarlane D.R., Angell C.A., Meryman H.T. Vitrification as an approach to cryopreservation. // Cryobiology. - 1984. - V.21. - P.407-426.

109. Fainstat T. Organ culture of postnatal rat ovaries in chemically defined medium. // Fertil. Steril. - 1968. - V.19. - P.317-338.

110. Familiari G., Caggiati A., Nottola S.A., Ermini M., Di Benedetto M.R., Motta P.M. Ultrastructure of human ovarian primordial follicles after combination chemotherapy for Hodgkin's disease. // Hum. Reprod. - 1993. - V.8. - P.2080-2087.

111. Fauque P., Ben Amor A., Joanne C., Agnani G., Bresson J.L., Roux C. Use of trypan blue staining to assess the quality of ovarian cryopreservation. // Fertil. Steril. -2007. -V.87. - P.1200-1207.

112. Fernig D.G., Gallagher J.T. Fibroblast growth factors and their receptors: an information network controlling tissue growth, morphogenesis and repair. // Prog. Growth Facto. Res. - 1994. - V.5. - P.353-377.

113. Ferreira M., Bos-Mikich A., Frantz N., Rodrigues J.L., Brunetto A.L., Schwartsmann G. The effects of sample size on the outcome of ovarian tissue cryopreservation. // Reprod. Domest. Anim. - 2010. - V.45. - P.99-102.

114. Fesquet D., Labbé J.C., Derancourt J., Capony J.P., Galas S., Girard F., Lorca T., Shuttleworth J., Dorée M., Cavadore J.C. The MO15 gene encodes the catalytic subunit of a protein kinase that activates cdc2 and other cyclin-dependent kinases (CDKs) through phosphorylation of Thr161 and its homologues. // EMBO J. - 1993. - V.12. -P.3111-3121.

115. Figueiredo J.R., Hulshof S.C., Van den Hurk R., Ectors F.J., Fontes R.S., Nusgens B., Bevers M.M., Beckers J.F. Development of a combined new mechanical and enzymatic method for the isolation of intact preantral follicles from fetal, calf and adult bovine ovaries. // Theriogenology. - 1993. - V.40. - P.789-799.

116. Filatov M., Nikishin D., Khramova Y., Semenova M. Reference genes selection for real-time quantitative PCR analysis in mouse GV oocytes. // Zygote. - 2019. -принято в печать.

117. Filatov M., Khramova Y., Parshina E., Bagaeva T., Semenova M. Influence of gonadotropins on ovarian follicle growth and development in vivo and in vitro. // Zygote. - 2017. - V.25. - №3. - P.235-243.

118. Filatov M., Khramova Y., Semenova M. Molecular Mechanisms of Prophase I Meiotic Arrest Maintenance and Meiotic Resumption in Mammalian Oocytes. // Reprod. Sci. - 2018.

119. Filatov M.A., Khramova Y.V., Kiseleva M.V., Malinova I.V., Komarova E.V., Semenova M.L. Female fertility preservation strategies: cryopreservation and ovarian tissue in vitro culture, current state of the art and future perspectives. // Zygote. - 2016.

- V.24. - №5. - P.635-653.

120. Filatov M.A., Khramova Y.V., Semenova M.L. In Vitro Mouse Ovarian Follicle Growth and Maturation in Alginate Hydrogel: Current State of the Art. // Acta Naturae.

- 2015. - V.7. - P.48-56.

121. Fisher R.P. Secrets of a double agent: CDK7 in cell-cycle control and transcription. // J. Cell Science. - 2005. - V.118. - P.5171-5180.

122. Fiume R., Ramazzotti G., Teti G., Chiarini F., Faenza I., Mazzotti G., Billi A.M., Cocco L. Involvement of nuclear PLCbeta1 in lamin B1 phosphorylation and G2/M cell cycle progression. // FASEB J. - 2009. - V.23. - P.957-966.

123. Franzen P., ten Dijke P., Ichijo H., Yamashita H., Schulz P., Heldin C.H., Miyazono K. Cloning of a TGF beta type I receptor that forms a heteromeric complex with the TGF beta type II receptor. // Cell. - 1993. - V.75. - P.681-692.

124. Fu H., Subramanian R.R., Masters S.C. 14-3-3 proteins: structure, function, and regulation. // Annu Rev. Pharmacol. Toxicol. - 2000. - V.40. - P.617-647.

125. Fu Z., Malureanu L., Huang J., Wang W., Li H., van Deursen J.M., Tindall D.J., Chen J. Plk1-dependent phosphorylation of FoxM1 regulates a transcriptional programme required for mitotic progression. // Nat. Cell Biol. - 2008. - V.10. -P.1076-1082.

126. Fujihara M., Comizzoli P., Wildt D.E., Songsasen N. Cat and dog primordial follicles enclosed in ovarian cortex sustain viability after in vitro culture on agarose gel in a protein-free medium. // Reprod. Domest. Anim. - 2012. - V.47. - P.102-108.

127. Fujii W., Nishimura T., Kano K., Sugiura K., Naito K. CDK7 and CCNH are components of CDK-activating kinase and are required for meiotic progression of pig oocytes. // Biol. Reprod. - 2011. - V.85. - P.1124-1132.

128. Fuller B., Paynter S. Fundamentals of cryobiology in reproductive medicine. // Reprod. Biomed. Online. - 2004. - V.9. - P.680-691.

129. Galloway S.M., McNatty K.P., Cambridge L.M., Laitinen M.P., Juengel J.L., Jokiranta T.S., McLaren R.J., Luiro K., Dodds K.G., Montgomery G.W., Beattie A.E., Davis G.H., Ritvos O. Mutations in an oocyte-derived growth factor gene (BMP15) cause increased ovulation rate and infertility in a dosage-sensitive manner. // Nat. Genet. - 2000. - V.25. - P.279-283.

130. Gandolfi F., Paffoni A., Papasso Brambilla E., Bonetti S., Brevini T.A., Ragni G. Efficiency of equilibrium cooling and vitrification procedures for the cryopreservation of ovarian tissue: comparative analysis between human and animal models. // Fertil. Steril. -2006. - V.85. - P.1150-1156.

131. Gautier J., Minshull J., Lohka M., Glotzer M., Hunt T., Maller J.L. Cyclin is a component of maturation-promoting factor from Xenopus. // Cell. - 1990. - V.60. -P.487-494.

132. Gebauer F., Richter J.D. Mouse cytoplasmic polyadenylylation elementbinding protein: an evolutionarily conserved protein that interacts with the cytoplasmicpolyadenylylation elements of c-mos mRNA. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1996. - V.93. - P.14602-14607.

133. Gharbi-Ayachi A., Labbe J.C., Burgess A., Vigneron S., Strub J.M., Brioudes E., Van-Dorsselaer A., Castro A., Lorca T. The substrate of Greatwall kinase, Arpp19, controls mitosis by inhibiting protein phosphatase 2A. // Science. - 2010. - V. 17. -P.1673-1677.

134. Gilchrist R.B., Lane M., Thompson J.G. Oocytesecreted factors: Regulators of cumulus cell function and oocyte quality. // Hum. Reprod. Update. - 2008. - V.14. -P.159-177.

135. Gill M.E., Hu Y.C., Lin Y., Page D.C. Licensing of gametogenesis, dependent on RNA binding protein DAZL, as a gateway to sexual differentiation of fetal germ cells. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2011. - V.108. - P.7443-7448.

136. Golden J.P., DeMaro J.A., Osborne P.A., Milbrandt J., Johnson E.M. Jr. Expression of neurturin, GDNF, and GDNF family-receptor mRNA in the developing and mature mouse. // Exp. Neurol. - 1999. - V.158. - P.504-528.

137. Goldrat O., Van Den Steen G., Gonzalez-Merino E., Dechene J., Gervy C., Delbaere A., Devreker F., De Maertelaer V., Demeestere I. Letrozole-associated controlled ovarian hyperstimulation in breast cancer patients versus conventional controlled ovarian hyperstimulation in infertile patients: assessment of oocyte quality related biomarkers. // Reprod. Biol. Endocrinol. - 2019. - V.17. - №1. - P.3.

138. Gook D.A., Edgar D.H., Borg J., Archer J., McBain J.C. Diagnostic assessment of the developmental potential of human cryopreserved ovarian tissue from multiple patients using xenografting. // Hum. Reprod. - 2005. - V.20. - P.72-78.

139. Gook D.A., Edgar D.H., Lewis K., Sheedy J.R., Gardner D.K. Impact of oxygen concentration on adult murine pre-antral follicle development in vitro and the corresponding metabolic profile. // Mol. Hum. Reprod. - 2014. - V.20. - P.31-41.

140. Gook D.A., Edgar D.H., Stern C. Effect of cooling rate and dehydration regimen on the histological appearance of human ovarian cortex following cryopreservation in 1, 2-propanediol. // Hum. Reprod. - 1999. - V. 14. - P.2061-2068.

141. Gordo A.C., He C.L., Smith S., Fissore R.A. Mitogen activated protein kinase plays a significant role in metaphase II arrest, spindle morphology, and maintenance of maturation promoting factor activity in bovine oocytes. // Mol. Reprod. Dev. - 2001. -V.59. - P.106-114.

142. Grob HS. Growth and endocrine function of isolated ovarian follicles cultivated in vivo. // Biol. Reprod. - 1969. - V.1. - P.320-323.

143. Grynberg M., Poulain M., Sebag-Peyrelevade S., le Parco S., Fanchin R., Frydman N. Ovarian tissue and follicle transplantation as an option for fertility preservation. // Fertil. Steril. - 2012. - V.97. - P.1260-1268.

144. Gudermann T., Birnbaumer M., Birnbaumer L. Evidence for dual coupling of the murine luteinizing hormone receptor to adenylyl cyclase and phosphoinositide breakdown and Ca mobilization. Studies with the cloned murine luteinizing hormone receptor expressed in L cells. // J. Biol. Chem. - 1992. - V.267. - P.4479-4488.

145. Gumus E., Sari I., Yilmaz M., Cetin A. Investigation of LAMTOR1 gene and protein expressions in germinal vesicle and metaphase II oocytes and embryos from 1-cell to blastocyst stage in a mouse model. // Gene Expr. Patterns. - 2018.

146. Guzel Y., Nur §ahin G., Sekeroglu M., Deniz A. Recombinant activin A enhances the growth and survival of isolated preantral follicles cultured three-dimensionally in extracellular basement matrix protein (matrigel) under serum-free conditions. // Gynecol. Endocrinol. - 2014. - V.30. - P.388-391.

147. Guzeloglu-Kayisli O., Lalioti M.D., Aydiner F., Sasson I., Ilbay O., Sakkas D., Lowther K.M., Mehlmann L.M., Seli E. Embryonic poly(A)-binding protein (EPAB) is required for oocyte maturation and female fertility in mice. // Biochem. J. - 2012. - V. 446. - P.47-58.

148. Guzeloglu-Kayisli O., Pauli S.A., Demir H., Lalioti M.D., Sakkas D., Seli E. Identification and characterization of human embryonic poly(A) binding protein (ePAB). // Mol. Hum. Reprod. - 2008. - V.14. - P.581-588.

149. Hake L.E., Richter J.D. CPEB is a specificity factor that mediates cytoplasmic polyadenylation during Xenopus oocyte maturation. // Cell. - 1994. - V.79. - P.617-627.

150. Hambleton R., Krall J., Tikishvili E., Honeggar M., Ahmad F., Manganiello V.C., Movsesian M.A. Isoforms of cyclic nucleotide phosphodiesterase PDE3 and their contribution to cAMP hydrolytic activity in subcellular fractions of human myocardium. // J. Biol. Chem. - 2005. - V.280. - P.39168-39174.

151. Hampl A., Eppig J.J. Translational regulation of the gradual increase in histone H1 kinase activity in maturing mouse oocytes. // Mol. Reprod. Dev. - 1995. - V.40. -P.9-15.

152. Han S.J., Chen R., Paronetto M.P., Conti M. Wee1B is an oocyte-specific kinase involved in the control of meiotic arrest in the mouse. // Curr. Biol. - 2005. - V.18. -P.1670-1676.

153. Hanna C.B., Yao S., Patta M.C., Jensen J.T., Wu X. WEE2 is an oocyte-specific meiosis inhibitor in Rhesus Macaque monkeys. // Biol. Reprod. - 2010. - V.82. -P.1190-1197.

154. Hanrahan J.P., Gregan S.M., Mulsant P., Mullen M., Davis G.H., Powell R., Galloway S.M. Mutations in the genes for oocyte-derived growth factors GDF9 and BMP15 are associated with both increased ovulation rate and sterility in Cambridge and Belclare sheep (Ovis aries). // Biol. Reprod. - 2004. - V.70. - P.900-909.

155. Hao X., Wang Y., Kong N., Zhang Y., Zhao Y., Xia G., Zhang M. Epidermal Growth Factor-Mobilized Intracellular Calcium of Cumulus Cells Decreases Natriuretic Peptide Receptor 2 Affinity for Natriuretic Peptide Type C and Induces Oocyte Meiotic Resumption in the Mouse. // Biol. Reprod. - 2016. - V.95. - P.45.

156. Harel S., Ferme C., Poirot C. Management of fertility in patients treated for Hodgkin's lymphoma. // Haematologica. - 2011. - V.96. - P.1692-1699.

157. Harp R., Leibach J., Black J., Keldahl C., Karow A. Cryopreservation of murine ovarian tissue. // Cryobiology. - 1994. - V.31. - P.336-343.

158. Harper J.W., Elledge S.J., Keyomarsi K., Dynlacht B., Tsai L.H., Zhang P., Dobrowolski S., Bai C., Connell-Crowley L., Swindell E. Inhibition of cyclin-dependent kinases by p21. // Mol. Biol. Cell. - 1995. - V.6. - P.387-400.

159. Hasegawa A., Mochida N., Ogasawara T., Koyama K. Pup birth from mouse oocytes in preantral follicles derived from vitrified and warmed ovaries followed by in vitro growth, in vitro maturation, and in vitro fertilization. // Fertil. Steril. - 2006. -V.86. - P. 1182-1192.

160. Hatanaka Y., Shimizu N., Nishikawa S., Tokoro M., Shin S.W., Nishihara T., Amano T., Anzai M., Kato H., Mitani T., Hosoi Y., Kishigami S., Matsumoto K. GSE is a maternal factor involved in active DNA demethylation in zygotes. // PLoS One. -2013. - V.8. - №4. - P.e60205.

161. He X., Toth T.L. In vitro culture of ovarian follicles from Peromyscus. // Semin. Cell Dev. Biol. - 2017. - V.61. - P.140-149.

162. Heikinheimo O., Gibbons W.E. The molecular mechanisms of oocyte maturation and early embryonic development are unveiling new insights into reproductive medicine. // Mol. Hum. Reprod. - 1998. - V.4. - P.745-756.

163. Herta A.C., Lolicato. F., Smitz J.E.J. In vitro follicle culture in the context of IVF. // Reproduction. - 2018. - V.156. - №1. - P.F59-F73.

164. Hilders C.G., Baranski A.G., Peters L., Ramkhelawan A., Trimbos J.B. Successful human ovarian autotransplantation to the upper arm. // Cancer. - 2004. -V.101. - P.2771-2778.

165. Hinckley M., Vaccari S., Horner K., Chen R., Conti M. The G-protein-coupled receptors GPR3 and GPR12 are involved in cAMP signaling and maintenance of meiotic arrest in rodent oocytes. // Dev. Biol. - 2005. - V.287. - P.249-261.

166. Hirao Y. Isolation of ovarian components essential for growth and development of mammalian oocytes in vitro. // J. Reprod. Dev. - 2012. - V.58. - P.167-174.

167. Hirao Y., Tsuji Y., Miyano T., Okano A., Miyake M., Kato S., Moor R.M. Association between p34cdc2 levels and meiotic arrest in pig oocytes during early growth. // Zygote. - 1995. - V.3. - P.325-332.

168. Hogan B., Beddington R., Costantini F., Lacy E. Manipulation the Mouse Embryo. A laboratory manual. Second edition. //Cold Spring Harbor Laboratory Press, -1994.-P.136-145.

169. Holt J.E., Tran S.M., Stewart J.L., Minahan K., García-Higuera I., Moreno S., Jones K.T. The APC/C activator FZR1 coordinates the timing of meiotic resumption during prophase I arrest in mammalian oocytes. // Development. - 2011. - V.138. -P.905-913.

170. Holzenspies J.J., Stoorvogel W., Colenbrander B., Roelen B.A., Gutknecht D.R., van Haeften T. CDC2/SPDY transiently associates with endoplasmic reticulum exit sites during oocyte maturation. // BMC Dev. Biol. - 2009. - V.9. - P.8-24.

171. Homer H., Gui L., Carroll J.. A spindle assembly checkpoint protein functions in prophase I arrest and prometaphase progression. // Science. - 2009. - V.326. - P.991-994.

172. Horner K., Livera G., Hinckley M., Trinh K., Storm D., Conti M. Rodent oocytes express an active adenylyl cyclase required for meiotic arrest. // Dev. Biol. - 2003. -V.258. - P.385-396.

173. Hornick J.E., Duncan F.E., Shea L.D., Woodruff T.K. Isolated primate primordial follicles require a rigid physical environment to survive and grow in vitro. // Hum. Reprod. - 2012. - V.27. - P.1801-1810.

174. Hornick J.E., Duncan F.E., Shea L.D., Woodruff T.K. Multiple follicle culture supports primary follicle growth through paracrine-acting signals. // Reproduction. -2013. - V.145. - P.19-32.

175. Hovatta O. Methods for cryopreservation of human ovarian tissue. // Reprod. Biomed. Online. - 2005. - V. 10. - P.729-734.

176. Hovatta O., Silye R., Abir R., Krausz T., Winston R.M. Extracellular matrix improves survival of both stored and fresh human primordial and primary ovarian follicles in long-term culture. // Hum. Reprod. - 1997. - V.12. - P.1032-1036.

177. Hovatta O., Silye R., Krausz T., Abir R., Margara R., Trew G., Lass A, Winston R.M. Cryopreservation of human ovarian tissue using dimethylsulphoxide and propanediol-sucrose as cryoprotectants. // Hum. Reprod. - 1996. - V.11. - P.1268-1272.

178. Hovatta O., Silye R., Krausz T., Abir R., Margara R., Trew G., Lass A., Winston R.M. Cryopreservation of human ovarian tissue using dimethylsulphoxide and propanediol-sucrose as cryoprotectants. // Hum. Reprod. - 1996. - V.11. - P.1268-1272.

179. Hu Y., Betzendahl I., Cortvrindt R., Smitz J., Eichenlaub-Ritter U. Effects of low O2 and ageing on spindles and chromosomes in mouse oocytes from pre-antral follicle culture. // Hum. Reprod. - 2001. - V.16. - P.737-748.

180. Huang C., Hujer K.M., Wu Z., Miller R.T. The Ca2^-sensing receptor couples to Galpha12/13 to activate phospholipase D in Madin-Darby canine kidney cells. // Am. J. Physiol. Cell Physiol. - 2004. - V.286. - P.22-30.

181. Huang H., Acuff C.G., Steinhelper M.E. Isolation, mapping, and regulated expression of the gene encoding mouse C-type natriuretic peptide. // Am. J. Physiol. -1996. - V.271. - P.1565-1575.

182. Huang Q.A., Cheung P., Zhang Y., Huang H.F., Auersperg N., Leung P.C.K. Effects of growth differentiation factor 9 on cell cycle regulators and ERK42/44 in human granulosa cell proliferation. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. - 2009. -V.296. - P.1344-1353.

183. Il'ina I.V., Khramova Y.V., Filatov M.A., Sitnikov D.S. Femtosecond laser is effective tool for zona pellucida engraving and tagging of preimplantation mammalian embryos. // J. Assist. Reprod. Genet. - 2019. - принято в печать.

184. Imhof M., Bergmeister H., Lipovac M., Rudas M., Hofstetter G., Huber J. Orthotopic microvascular reanastomosis of whole cryopreserved ovine ovaries resulting in pregnancy and live birth. // Fertil. Steril. - 2006. - V.85. - P.1208-1215.

185. Isachenko E., Isachenko V., Rahimi G., Nawroth F. Cryopreservation of human ovarian tissue by direct plunging into liquid nitrogen. // Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. - 2003. - V. 108. - P.186-193.

186. Isachenko V., Isachenko E., Reinsberg J., Montag M., van der Ven K., Dorn C., Roesing B., van der Ven H. Cryopreservation of human ovarian tissue: comparison of rapid and conventional freezing. // Cryobiology. - 2007. - V.55. - P.261-268.

187. Itami S., Yasuda K., Yoshida Y., Matsui C., Hashiura S., Sakai A., Tamotsu S. Co-culturing of follicles with interstitial cells in collagen gel reproduce follicular development accompanied with theca cell layer formation. // Reprod. Biol. Endocrinol.

- 2011. - V.9. - P.159.

188. Jadoul P., Guilmain A., Squifflet J., Luyckx M., Votino R., Wyns C., Dolmans M.M. Efficacy of ovarian tissue cryopreservation for fertility preservation: lessons learned from 545 cases. // Hum. Reprod. - 2017. - V.32. - №5. - P.1046-1054.

189. Jiao Z.X., Woodruff T.K. Follicle microenvironment-associated alterations in gene expression in the mouse oocyte and its polar body. // Fertil. Steril. - 2013. - V.99.

- Р.1453-1459.

190. Jin S.Y., Lei L., Shikanov A., Shea L.D., Woodruff T.K. A novel two-step strategy for in vitro culture of early-stage ovarian follicles in the mouse. // Fertil. Steril.

- 2010. - V.93. - Р.2633-2639.

191. Jing S., Wen D., Yu Y., Holst P.L., Luo Y., Fang M., Tamir R., Antonio L., Hu Z., Cupples R., Louis J.C., Hu S., Altrock B.W., Fox G.M. GDNF-induced activation of the ret protein tyrosine kinase is mediated by GDNFR-alpha, a novel receptor for GDNF. // Cell. - 1996. - V.85. - P.1113-1124.

192. Jones A.S.K., Shikanov A. Follicle development as an orchestrated signaling network in a 3D organoid. // J. Biol. Eng. - 2019. - V.13. - P.2.

193. Juengel J.L., McNatty K.P. The role of proteins of the transforming growth factor-ß superfamily in the intraovarian regulation of follicular development. // Hum. Reprod. Update. - 2005. - V.11. - P.144-161.

194. Kagawa N., Silber S., Kuwayama M. Successful vitrification of bovine and human ovarian tissue. // Reprod .Biomed. Online. - 2009. - V.18. - P.568-577.

195. Kakizuka A., Sebastian B., Borgmeyer U., Hermans-Borgmeyer I., Bolado J., Hunter T., Hoekstra M.F., Evans R.M. A mouse cdc25 homolog is differentially and developmentally expressed. // Genes Dev. - 1992. - V.6. - P.578-590.

196. Kalous J., Solc P., Baran V., Kubelka M., Schultz R.M., Motlik J. PKB/AKT is involved in resumption of meiosis in mouse oocytes. // Biol. Cell. - 2006. - V.98. -P.111-123.

197. Kanatsu-Shinohara M., Schultz R.M., Kopf G.S. Acquisition of meiotic competence in mouse oocytes: absolute amounts of p34(cdc2), cyclin B1, cdc25C, and wee1 in meiotically incompetent and competent oocytes. // Biol. Reprod. - 2000. -V.63. - P.1610-1616.

198. Kanayama N., Miyano T., Lee J. Acquisition of meiotic competence in growing pig oocytes correlates with their ability to activate Cdc2 kinase and MAP kinase. // Zygote. - 2002. - V.10. - P.261-270.

199. Kang J.T., Kwon D.K., Park S.J., Kim S.J., Moon J.H., Koo O.J., Jang G., Lee B.C. Quercetin improves the in vitro development of porcine oocytes by decreasing reactive oxygen species levels. // J. Vet. Sci. - 2013. - V.14. -P.15-20.

200. Kawamura K., Cheng Y., Suzuki N., Deguchi M., Sato Y., Takae S., Ho C.H., Kawamura N., Tamura M., Hashimoto S., Sugishita Y., Morimoto Y., Hosoi Y., Yoshioka N., Ishizuka B., Hsueh A.J. Hippo signaling disruption and Akt stimulation of

ovarian follicles for infertility treatment. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2013. - V.110. - P.17474-17479.

201. Kawamura K., Ye Y., Kawamura N., Jing L., Groenen P., Gelpke M.S., Rauch R., Hsueh A.J., Tanaka T. Completion of Meiosis I of preovulatory oocytes and facilitation of preimplantation embryo development by glial cell line-derived neurotrophic factor. // Dev. Biol. - 2008. - V.315. - P.189-202.

202. Kere M., Siriboon C., Lo N.W., Nguyen N.T., Ju J.C. Ascorbic acid improves the developmental competence of porcine oocytes after parthenogenetic activation and somatic cell nuclear transplantation. // J. Reprod. Dev. - 2013. - V.59. - P.78-84.

203. Keros V., Xella S., Hultenby K., Pettersson K., Sheikhi M., Volpe A., Hreinsson J., Hovatta O. Vitrification versus controlled-rate freezing in cryopreservation of human ovarian tissue. // Hum. Reprod. - 2009. - V.24. - P.1670-1683.

204. Kifor O., Diaz R., Butters R., Brown E.M. The Ca2p-sensing receptor (CaR) activates phospholipases C, A2, and D in bovine parathyroid and CaRtransfected, human embryonic kidney (HEK293) cells. // J. Bone Miner. Res. - 1997. - V.12. -P.715-725.

205. Kim E.J., Lee J., Youm H.W., Kim S.K., Lee J.R., Suh C.S., Kim S.H. Comparison of Follicle Isolation Methods for Mouse Ovarian Follicle Culture In Vitro. // Reprod. Sci. - 2018 - V.25. - №8. - P. 1270-1278.

206. Kim J.M., McGaughy J.T., Bogle R.K., Ravnik S.E. Meiotic expression of the cyclinH/Cdk7 complex in male germ cells of the mouse. // Biol. Reprod. - 2001a. -V.64. - P.1400-1408.

207. Kim S., Jee K., Kim D., Koh H., Chung J. Cyclic AMP inhibits Akt activity by blocking the membrane localization of PDK1. // J. Biol. Chem. - 2001b. - V.276. -P.12864-12870.

208. Kim S., Lee Y., Lee S., Kim T. Ovarian tissue cryopreservation and transplantation in patients with cancer. // Obstet. Gynecol. Sci. - 2018. - V.61. - №4. -P.431-442.

209. Kim S.S., Lee W.S., Chung M.K., Lee H.C., Lee H.H., Hill D. Long-term ovarian function and fertility after heterotopic autotransplantation of cryobanked human ovarian tissue: 8-year experience in cancer patients. // Fertil. Steril. - 2009. - V.91. - P.2349.

210. Kirschner L.S., Yin Z., Jones G.N., Mahoney E. Mouse models of altered protein kinase A signaling. // Endocr. Relat. Cancer. - 2009. - V.16. - P.773-793.

211. Kiseleva M., Malinova I., Komarova E., Shvedova T., Chudakov K. The Russian experience of autotransplantation of vitrified ovarian tissue to cancer patient. // Ginecol. Endocrinol. - 2014. - V.30. - P.30-31.

212. Klein R., Nanduri V., Jing S.A., Lamballe F., Tapley P., Bryant S., Cordon-Cardo C., Jones K.R., Reichardt L.F., Barbacid M. The trkB tyrosine protein kinase is a receptor for brain-derived neurotrophic factor and neurotrophin-3. // Cell. - 1991. -V.66. - №2. - P.395-403.

213. Kong B.Y., Bernhardt M.L., Kim A.M., O'Halloran T.V., Woodruff T.K. Zinc maintains prophase I arrest in mouse oocytes through regulation of the MOS-MAPK pathway. // Biol. Reprod. - 2012. - V.87. - P.1-12.

214. Kozera B., Rapacz M. Reference genes in real-time PCR. // J. Appl. Genet. -2013. - V.54. - P.391-406.

215. Kreeger P.K., Deck J.W., Woodruff T.K., Shea LD. The in vitro regulation of ovarian follicle development using alginate-extracellular matrix gels. // Biomaterials. -2006. - V.27. - №5. - P.714-723.

216. Kuijk E.W., du Puy L., van Tol H.T., Haagsman H.P., Colenbrander B., Roelen, B.A. Validation of reference genes for quantitative RT-PCR studies in porcine oocytes and preimplantation embryos. // BMC Dev. Biol. - 2007. - V.7. - P.58.

217. Kumagai A., Dunphy W.G. Purification and molecular cloning of Plx1, a Cdc25-regulatory kinase from Xenopus egg extracts. // Science. - 1996. - V.273. - P.1377-1380.

218. Kumar P., Yadav P., Verma A., Singh D., De S., Datta T.K. Identification of stable reference genes for gene expression studies using quantitative real time PCR in buffalo oocytes and embryos. // Reprod. Domest. Anim. - 2012. - V.47. - P.e88-91.

219. Kume S., Endo T., Nishimura Y., Kano K., Naito K. Porcine SPDYA2 (RINGO A2) stimulates CDC2 activity and accelerates meiotic maturation of porcine oocytes. // Biol. Reprod. - 2007. - V.76. - P.440-447.

220. Kuwayama M., Vajta G., Kato O., Leibo S.P. Highly efficient vitrification method for cryopreservation ofhuman oocytes. // Reprod. Biomed. Online. - 2005. -V.3. - P.300-308.

221. Lai W.S., Carballo E., Thorn J.M., Kennington E.A., Blackshear P.J. Interactions of CCCH zinc finger proteins with mRNA. Binding of tristetraprolin-related zinc finger proteins to Au-rich elements and destabilization of mRNA. // J. Biol. Chem. - 2000. -V.275. - P.17827-17837.

222. Lan C., Xiao W., Xiao-Hui D., Chun-Yan H., Hong-Ling Y. Tissue culture beforetransplantation of frozen-thawed human fetal ovarian tissue into immunodeficient mice. // Fertil. Steril. - 2010. - V.93. - №3. - P.913-919.

223. Lapolt P.S., Leung K., Ishimaru R., Tafoya M.A., Chen J.Y. Roles of cyclic GMP in modulating ovarian functions. // Reprod. Biomed. Online. - 2002. - V.6. - P.15-23.

224. Ledent C., Demeestere I., Blum D., Petermans J., Hamalamen T., Smits G., Vassart G. Premature ovarian aging in mice deficient for Gpr3. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2005. - V.102. - №25. - P.8922-8926.

225. Lee H.S., Kim E.Y., Kim K.H., Moon J., Park K.S., Kim K.S., Lee K.A. Obox4 critically regulates cAMP-dependent meiotic arrest and MI-MII transition in oocytes. // FASEB J. - 2010. - V.24. - №7. - P.2314-2324.

226. Lee H.S., Kim K.H., Kim E.Y., Lee S.Y., Ko J.J., Lee K.A. Obox4-silencing-activated STAT3 and MPF/MAPK signaling accelerate nuclear membrane breakdown in mouse oocytes. // Reproduction. - 2016. - V.151. - P.369-378.

227. Lee K.B., Zhang M., Sugiura K., Wigglesworth K., Uliasz T., Jaffe L.A., Eppig J.J. Hormonal coordination of natriuretic peptide type C and natriuretic peptide receptor 3 expression in mouse granulosa cells. // Biol. Reprod. - 2013. - V.88. - №2. - P.42.

228. Leporrier M., von Theobald P., Roffe J.L., Muller G. A new technique to protect ovarian function before pelvic irradiation. Heterotopic ovarian autotransplantation. // Cancer. - 1987. - V.60. - P.2201-2204.

229. Leung P.C., Steele G.L. Intracellular signaling in the gonads. // Endocr. Rev. -1992. - V.13. - P.476-498.

230. Li Q., Rajanahally S., Edson M.A., Matzuk M.M. Stable expression and characterization of N-terminal tagged recombinant human bone morphogenetic protein 15. // Mol. Hum. Reprod. - 2009. - V.15. - P.779-788.

231. Li Y.H., Kang H., Xu Y.N., Heo Y.T., Cui X.S., Kim N.H., Oh J.S. Greatwall kinase is required for meiotic maturation in porcine oocytes. // Biol. Reprod. - 2013. -V.89. - №3. - P.53.

232. Lin Y., Page D.C. Dazl deficiency leads to embryonic arrest of germ cell development in XY C57BL/6 mice. // Dev. Biol. - 2005. - V.288. - P.309-316.

233. Linher K., Wu D., Li J. Glial cell line-derived neurotrophic factor: an intraovarian factor that enhances oocyte developmental competence in vitro. // Endocrinology. -2007. - V.148. - P.4292-4301.

234. Linher-Melville K., Li J. The roles of glial cell line-derived neurotrophic factor, brain-derived neurotrophic factor and nerve growth factor during the final stage of folliculogenesis: a focus on oocyte maturation. // Reproduction. - 2013. - V.145. -P.43-54.

235. Liu C., Wu G.Q,. Fu X.W., Mo X.H., Zhao L.H., Hu H.M., Zhu S.E., Hou Y.P. The Extracellular Calcium-Sensing Receptor (CASR) Regulates Gonadotropins-Induced Meiotic Maturation of Porcine Oocytes. // Biol. Reprod. - 2015. - V.93. - №6. - P.131.

236. Liu J., Linher K., Li J. Porcine DAZL messenger RNA: its expression and regulation during oocyte maturation. // Mol. Cell Endocrinol. - 2009. - V.311. - P.101-108.

237. Lo B.K.M., Sheikh S., Williams S.A. In vitro and in vivo mouse follicle development in ovaries and reaggregated ovaries. // Reproduction. - 2019. - V.157. -№2. - P.135-148.

238. Lobjois V., Jullien D., Bouché J.P., Ducommun B. The polo-like kinase 1 regulates CDC25B-dependent mitosis entry. // Biochim. Biophys. Acta. - 2009. -V.1793. - P.462-468.

239. Lolli G., Lowe E.D., Brown N.R., Johnson L.N. The crystal structure of human CDK7 and its protein recognition properties. // Structure. - 2004. - V.12. - P.2067-2079.

240. Lowther K.M., Mehlmann L.M. Embryonic Poly(A)-Binding Protein Is Required During Early Stages of Mouse Oocyte Development for Chromatin Organization, Transcriptional Silencing, and Meiotic Competence. // Biol. Reprod. - 2015. - V.93. -P.1-9.

241. Lu B., Pang P.T., Woo N.H. The yin and yang of neurotrophin action. // Nat. Rev. Neuroscience. - 2005. - V.6. - P.603-614.

242. Lundgren K., Walworth N., Dembski M., Kirschner M., Beach D. mik1 and wee1 cooperate in the inhibitory tyrosine phosphorylation of cdc2. // Cell. - 1991. - V.64. -P.1111-1122.

243. Luo Y.B., Kim N.H. PLK4 is essential for meiotic resumption in mouse oocytes. // Biol. Reprod. - 2015. - V.92. - P.1-8.

244. Ma J.Y., Ou-Yang Y.C., Luo Y.B., Wang Z.B., Hou Y., Han Z.M., Liu Z., Schatten H., Sun Q.Y. Cyclin O regulates germinal vesicle breakdown in mouse oocytes. // Biol. Reprod. - 2013. - V.88. - №5. - P.110.

245. Macabelli C.H., Ferreira R.M., Gimenes L.U., de Carvalho N.A., Soares J.G., Ayres H., Ferraz M.L., Watanabe Y.F., Watanabe O.Y., Sangalli J.R., Smith L.C., Baruselli P.S., Meirelles F.V., Chiaratti M.R. Reference gene selection for gene expression analysis of oocytes collected from dairy cattle and buffaloes during winter and summer. // PLoS One. - 2014. - V.9. - №3. - P.e93287.

246. Maclean K.N., McKay I.A., Bustin S.A. Differential effects of sodium butyrate on the transcription of the human TIS11 family of early-response genes in colorectal cancer cells. // Br. J. Biomed. Sci. - 1998. - V.55. - P.184-191.

247. Mahajan N. Fertility preservation in female cancer patients: An overview. // J. Hum. Reprod. Sci. - 2015. - V.8. - №1. - P.3-13.

248. Mai Z., Lei M., Yu B., Du H., Liu J. The effects of cigarette smoke extract on ovulation, oocyte morphology and ovarian gene expression in mice. // PLoS One. -2014. - V.9. - №4. - P.e95945.

249. Mainigi M.A., Ord T., Schultz R.M. Meiotic and developmental competence in mice are compromised following follicle development in vitro using an alginate-based culture system // Biol Reprod. - 2011. - V.85. - №2. - P. 269-276.

250. Makanji Y., Tagler D., Pahnke J., Shea L.D., Woodruff T.K. Hypoxia-mediated carbohydrate metabolism and transport promote early-stage murine follicle growth and survival. // Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. - 2014. - V.15. - №306. - P.E893-903.

251. Mamo S., Gal A.B., Bodo S., Dinnyes A. Quantitative evaluation and selection of reference genes in mouse oocytes and embryos cultured in vivo and in vitro. // B.M.C Dev. Biol. - 2007. - V.7. - P. 14.

252. Mamo S., Gal A.B., Polgar Z., Dinnyes A. Expression profiles of the pluripotency marker gene POU5F1 and validation of reference genes in rabbit oocytes and preimplantation stage embryos. // BMC Mol. Biol. - 2008. - V.9. - P.67.

253. Marangos P., Verschuren E.W., Chen R., Jackson P.K., Carroll J. Prophase I arrest and progression to metaphase I in mouse oocytes are controlled by Emi1-dependent regulation of APC(Cdh1). // J. Cell. Biol. - 2007. - V.176. - P.65-75.

254. Martinez-Madrid B., Dolmans M.M., van Langendonckt A., Defrere S., Donnez J. Freeze thawing intact human ovary with its vascular pedicle with a passive cooling device. // Fertil. Steril. - 2004. - V.82. - P.1390-1394.

255. Masui Y., Markert C.L. Cytoplasmic control of nuclear behavior during meiotic maturation of frog oocytes. // J. Exp. Zool. - 1971. - V.177. - P.129-145.

256. Matthews L.M., Evans J.P. a-endosulfine (ENSA) regulates exit from prophase I arrest in mouse oocytes. // Cell Cycle. - 2014. - V.13. - P.1639-1649.

257. Max M.C., Bizarro-Silva C., Búfalo I., González S.M., Lindquist A.G., Gomes R.G., Barreiros T.R.R., Lisboa L.A., Morotti F., Seneda M.M. In vitro culture supplementation of EGF for improving the survival of equine preantral follicles. // In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. - 2018. - V.54. - №10. - P.687-691.

258. Mazerbourg S., Hsueh A.J. Genomic analyses facilitate identification of receptors and signalling pathways for growth differentiation factor 9 and related orphan bone morphogenetic protein/growth differentiation factor ligands. // Hum. Reprod. Update. -2006. - V.12. - P.373-383.

259. Mazerbourg S., Klein C., Roh J., Kaivo-Oja N., Mottershead D.G., Korchynskyi O., Ritvos O., Hsueh A.J. Growth differentiation factor-9 signaling is mediated by the type I receptor, activin receptor-like kinase 5. // Mol. Endocrinol. - 2004. - V.18. - №3. - P.653-665.

260. McNatty K.P., Heath D.A., Lundy T., Fidler A.E., Quirke L., O'Connell A., Smith P., Groome N., Tisdall D.J. Control of early ovarian follicular development. // J. Reprod. Fertil. Suppl. - 1999. - V.54. - P.3-16.

261. McNatty K.P., Moore L.G., Hudson N.L., Quirke L.D., Lawrence S.B., Reader K., Hanrahan J.P., Smith P., Groome N.P., Laitinen M., Ritvos O., Juengel J.L. The oocyte and its role in regulating ovulation rate: a new paradigm in reproductive biology. // Reproduction. - 2004. - V.128. - №4. - P.379-386.

262. Medvedev S., Pan H., Schultz R.M. Absence of MSY2 in mouse oocytes perturbs oocyte growth and maturation, RNA stability, and the transcriptome. // Biol. Reprod. -2011. - V.85. - P.575-583.

263. Medvedev S., Yang J., Hecht N.B., Schultz R.M. CDC2A (CDK1)-mediated phosphorylation of MSY2 triggers maternal mRNA degradation during mouse oocyte maturation. // Dev. Biol. - 2008. - V.321. - P.205-215.

264. Mehlmann L.M. Losing mom's message: requirement for DCP1A and DCP2 in the degradation of maternal transcripts during oocyte maturation. // Biol. Reprod. -2013. - V.88. - №1. - P.10.

265. Mehlmann L.M., Saeki Y., Tanaka S., Brennan T.J., Evsikov A.V., Pendola F.L., Knowles B.B., Eppig J.J., Jaffe L.A. The Gs-linked receptor GPR3 maintains meiotic arrest in mammalian oocytes. // Science. - 2004. - V.306. - №5703. - P.1947-1950.

266. Meirow D. Ovarian injury and modern options to preserve fertility in female cancer patients treated with high dose radio-chemotherapy for hemato-oncological neoplasias and other cancers. // Leuk. Lymphoma. - 1999a. - V.33. - №1-2. - P.65-76.

267. Meirow D., Baum M., Yaron R., Levron J., Hardan I., Schiff E., Nagler A., Yehuda D.B., Raanani H., Hourvitz A., Dor J. Ovarian tissue cryopreservation in

hematologic malignancy: ten years' experience. // Leuk. Lymphoma. - 2007. - V.48. -№8. - P.1569-1576.

268. Meirow D., Fasouliotis S.J., Nugent D., Schenker J.G., Gosden R.G., Rutherford A.J. A laparoscopic technique for obtaining ovarian cortical biopsy specimens for fertility conservation in patients with cancer. // Fertil. Steril. - 1999b. - V.71. - №5. -P.948-951.

269. Meirow D., Levron J., Eldar-Geva T., Hardan I., Fridman E., Zalel Y., Schiff E., Dor J. Pregnancy after transplantation of cryopreserved ovarian tissue in a patient with ovarian failure after chemotherapy. // N. Engl. J. Med. - 2005. - V.353. - №3. - P.318-321.

270. Meng J., Cui C., Liu Y., Jin M., Wu D., Liu C., Wang E., Yu B. The role of 14-3-3s interaction with phosphorylated Cdc25B at its Ser321 in the release of the mouse oocyte from prophase I arrest. // PLoS One. - 2013. - V.8. - №1. - P.e53633.

271. Mhatre P., Mhatre J., Magotra R. Ovarian transplant: a new frontier. // Transplant. Proc. - 2005. - V.37. - P.1396-1398.

272. Mitra J., Schultz R.M. Regulation of the acquisition of meiotic competence in the mouse: changes in the subcellular localization of cdc2, cyclin B1, cdcd25C and wee1, and in the concentration of these proteins and their transcripts. // J. Cell Sci. - 1996. -V.109. - P.2407-2415.

273. Miyazawa K., Shinozaki M., Hara T., Furuya T., Miyazono K. Two major Smad pathways in TGF-P superfamily signalling. // Genes Cells. - 2002. - V.7. - P. 11911204.

274. Mochida N., Akatani-Hasegawa A., Saka K., Ogino M., Hosoda Y., Wada R., Sawai H., Shibahara H. Live births from isolated primary/early secondary follicles following a multistep culture without organ culture in mice. // Reproduction. - 2013. -V.146. - №1. - P.37-47.

275. Mochida S., Maslen S.L., Skehel M., Hunt T. Greatwall phosphorylates an inhibitor of protein phosphatase 2A that is essential for mitosis. // Science. - 2010. -V.330. - P.1670-1673.

276. Montjean D., Entezami F., Lichtblau I., Belloc S., Gurgan T., Menezo Y. Carnitine content in the follicular fluid and expression of the enzymes involved in beta oxidation in oocytes and cumulus cells. // J. Assist. Reprod. Genet. - 2012. - V.29. -№11. - P.1221-1225.

277. Moore R.K., Otsuka F., Shimasaki S. Molecular basis of bone morphogenetic protein-15 signaling in granulosa cells. // J. Biol. Chem. - 2003. - V.278. - P.304-310.

278. Morgan D.O. The Cell Cycle: Principles of Control. London., 2007.

279. Mueller P.R., Coleman T.R., Kumagai A., Dunphy W.G. Myt1: a membrane-associated inhibitory kinase that phosphorylates Cdc2 on both threonine-14 and tyrosine-15. // Science. - 1995. - V.270. - P.86-90.

280. Nagata A., Igarashi M., Jinno S., Suto K., Okayama H. An additional homolog of the fission yeast cdc25+ gene occurs in humans and is highly expressed in some cancer cells. // New Biol. - 1991. - V.10. - P.959-968.

281. Nakajima H., Toyoshima-Morimoto F., Taniguchi E., Nishida E. Identification of a consensus motif for Plk (Polo-like kinase) phosphorylation reveals Myt1 as a Plk1 substrate. // J. Biol. Chem. - 2003. - V.278. - P.25277-25280.

282. Nakamura Y., Yamagata Y., Sugino N., Takayama H., Kato H. Nitric oxide inhibits oocyte meiotic maturation. // Biol. Reprod. - 2002. - V.67. - P.1588-1592.

283. Nayudu P.L., Wu J., Michelmann H.W. In vitro development of marmoset monkey oocytes by pre-antral follicle culture. // Reprod. Domest. Anim. - 2003. - V.38. - P.90-96.

284. Newton H., Aubard Y., Rutherford A., Sharma V., Gosden R. Low temperature storage and grafting of human ovarian tissue. // Hum. Reprod. - 1996. - V.11. -P.1487-1491.

285. Newton H., Fisher J., Arnold J.R., Pegg D.E., Faddy M.J., Gosden R.G. Permeation of human ovarian tissue with cryoprotective agents in preparation for cryopreservation. // Hum. Reprod. - 1998. - V.13. - P.376-380.

286. Nie X.F., Maclean K.N., Kumar V., McKay I.A., Bustin S.A. ERF-2, the human homologue of the murine Tislld early response gene. // Gene. - 1995. - V.152. -P.285-286.

287. Nielsen T.K., H0jgaard M., Andersen J.T., Poulsen H.E., Lykkesfeldt J., Mikines K.J. Elimination of ascorbic acid after high-dose infusion in prostate cancer patients: a pharmacokinetic evaluation. // Basic Clin. Pharmacol. Toxicol. - 2015. - V.116. - №4.

- P.343-348.

288. Nikishin D.A., Filatov M.A., Kiseleva M.V., Bagaeva T.S., Konduktorova V.V., Khramova Y.V., Malinova I.V., Komarova E.V., Semenova M.L. Selection of stable expressed reference genes in native and vitrified/thawed human ovarian tissue for analysis by qRT-PCR and Western blot. // J. Assist. Reprod. Genet. - 2018.

289. Nishimura R., Kato Y., Chen D., Harris S.E., Mundy G.R., Yoneda T. Smad5 and DPC4 are key molecules in mediating BMP-2-induced osteoblastic differentiation of the pluripotent mesenchymal precursor cell line C2C12. // J. Biol. Chem. - 1998. - V.273.

- P.1872-1879.

290. Norris R.P., Freudzon M., Mehlmann L.M., Cowan A.E., Simon A.M., Paul D.L., Lampe P.D., Jaffe L.A. Luteinizing hormone causes MAP kinase-dependent phosphorylation and closure of connexin 43 gap junctions in mouse ovarian follicles: one of two paths to meiotic resumption. // Development. - 2008. - V.135. - №19. -P.3229-3238.

291. Norris R.P., Freudzon M., Nikolaev V.O., Jaffe L.A. Epidermal growth factor receptor kinase activity is required for gap junction closure and for part of the decrease in ovarian follicle cGMP in response to LH. // Reproduction. - 2010. - V.140. - P.655-662.

292. Norris R.P., Ratzan W.J., Freudzon M., Mehlmann L.M., Krall J., Movsesian M.A., Wang H., Ke H., Nikolaev V.O., Jaffe L.A. Cyclic GMP from the surrounding somatic cells regulates cyclic AMP and meiosis in the mouse oocyte. // Development. -2009. - V.136. - №11. - P.1869-1878.

293. Noubani A., Farookhi R., Gutkowska J. B-type natriuretic peptide receptor expression and activity are hormonally regulated in rat ovarian cells. // Endocrinology.

- 2000. - V.141. - P.551-559.

294. O'Connor T., Wilmut I., Taylor J. Quantitative evaluation of reference genes for real-time PCR during in vitro maturation of ovine oocytes. // Reprod. Domest. Anim. -2013. - V.48. - P.477-83.

295. Ogushi S., Palmieri C., Fulka H., Saitou M., Miyano T., Fulka J. Jr. The maternal nucleolus is essential for early embryonic development in mammals. // Science. - 2008.

- V.319. - №5863. - P.613-616.

296. Oh J.S., Han S.J., Conti M. Wee1B, Myt1, and Cdc25 function in distinct compartments of the mouse oocyte to control meiotic resumption. // J. Cell. Biol. -2010. - V.188. - P.199-207.

297. Okano-Uchida T., Okumura E., Iwashita M., Yoshida H., Tachibana K., Kishimoto T. Distinct regulators for Plk1 activation in starfish meiotic and early embryonic cycles. // EMBO J. - 2003. - V.22. - P.5633-5642.

298. Oktay K., Economos K., Kan M., Rucinski J., Veek L., Rosenwaks Z. Endocrine function and oocyte retrieval after autologous transplantation of ovarian cortical strips to the forearm. // JAMA. - 2001. - V.286. - P. 1490-1493.

299. Oktay K., Karlikaya G. Ovarian function after transplantation of frozen, banked autologous ovarian tissue. // N. Engl. J. Med. - 2000. - V.342. - P.1919.

300. Oktay K., Nugent D., Newton H., Salha O., Chatterjee P., Gosden RG. Isolation and characterization of primordial follicles from fresh and cryopreserved human ovarian tissue. // Fertil. Steril. - 1997. - V.67. - P.481-486.

301. Oktem O., Buyuk E., Oktay K. Preantral follicle growth is regulated by c-Jun-N-terminal kinase (JNK) pathway. // Reprod. Sci. - 2011. - V.18. - №3. - P.269-276.

302. Oktem O., Oktay K. A novel ovarian xenografting model to characterize the impact of chemotherapy agents on human primordial follicle reserve. // Cancer Res. -2007b. - V.67. - №21. - P.10159-10162.

303. Oktem O., Oktay K. Quantitative assessment of the impact of chemotherapy on ovarian follicle reserve and stromal function. // Cancer. -2007a. - V.110. - №10. -P.2222-2229.

304. Oktem O., Oktay K. The role of extracellular matrix and activin-A in in vitro growth and survival of murine preantral follicles. // Reprod. Sci. - 2007c. - V. 14. -P.358-366.

305. Ortega S., Prieto I., Odajima J., Martin A., Dubus P., Sotillo R., Barbero J.L., Malumbres M., Barbacid M. Cyclin-dependent kinase 2 is essential for meiosis but not for mitotic cell division in mice. // Nat. Genet. - 2003. - V.35. - №1. - P.25-31.

306. Otoi T., Fujii M., Tanaka M., Ooka A., Suzuki T. Oocyte diameter in relation to meiotic competence and sperm penetration. // Theriogenology. - 2000. - V.54. - P.535-542.

307. Ozturk S., Guzeloglu-Kayisli O., Demir N., Sozen B., Ilbay O., Lalioti M.D., Seli E. Epab and Pabpc1 are differentially expressed during male germ cell development. // Reprod. Sci. - 2012. - V.19. - №9. - P.911-922.

308. Ozturk S., Uysal F. Poly(A)-binding proteins are required for translational regulation in vertebrate oocytes and early embryos. // Reprod. Fertil Dev. - 2017. -V.29. - №10. - P.1890-1901.

309. Padmanabhan K., Richter J.D. Regulated Pumilio-2 binding controls RINGO/Spy mRNA translation and CPEB activation. // Genes Dev. - 2006. - V.20. -P.199-209.

310. Pangas S.A., Jorgez C.J., Matzuk M.M. Growth differentiation factor 9 regulates expression of the bone morphogenetic protein antagonist gremlin. // J. Biol. Chem. -2004. - V.279. - P.32281-32286.

311. Paredes A., Romero C., Dissen G.A., DeChiara T.M., Reichardt L., Cornea A., Ojeda S.R., Xu B. TrkB receptors are required for follicular growth and oocyte survival in the mammalian ovary. // Dev. Biol. - 2004. - V.267. - №2. - P.430-449.

312. Park J.Y., Su Y.Q., Ariga M., Law E., Jin S.L., Conti M. EGF-like growth factors as mediators of LH action in the ovulatory follicle. // Science. - 2004. - V.303. -P.682-684.

313. Parker L.L., Piwnica-Worms H. Inactivation of the p34cdc2-Cyclin B complex by the human WEE 1 tyrosine kinase. // Science. - 1992. - V.257. - P.1955-1957.

314. Parrish E.M., Siletz A., Xu M., Woodruff T.K., Shea L.D. Gene expression in mouse ovarian follicle development in vivo versus an ex vivo alginate culture system. // Reproduction. - 2011. - V.142. - №2. - P.309-318.

315. Pedersen T., Peters H. Proposal for a classification of oocytes and follicles in the mouse ovary. // J. Reprod. Fertil. - 1968. - V.17. - P.555-557.

316. Peng J., Li Q., Wigglesworth K., Rangarajan A., Kattamuri C., Peterson R.T., Eppig J.J., Thompson T.B., Matzuk M.M. Growth differentiation factor 9:bone morphogenetic protein 15 heterodimers are potent regulators of ovarian functions. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2013. - V.110. - №8. - P.E776-785.

317. Peng X.R., Hsueh A.J., LaPolt P.S., Bjersing L., Ny T. Localization of luteinizing hormone receptor messenger ribonucleic acid expression in ovarian cell types during follicle development and ovulation. // Endocrinology. - 1991. - V.129. - P.3200-3207.

318. Peter M., Sanghera J.S., Pelech S.L., Nigg E.A. Mitogen-activated protein kinases phosphorylate nuclear lamins and display sequence specificity overlapping that of mitotic protein kinase p34cdc2. // Eur. J. Biochem. - 1992. - V.205. - P.287-294.

319. Pfaffl M.W., Tichopad A., Prgomet C., Neuvians T.P. Determination of stable housekeeping genes, differentially regulated target genes and sample integrity: BestKeeper--Excel-based tool using pair-wise correlations. // Biotechnol. Lett. - 2004. - V.26. - P.509-515.

320. Piontkewitz Y., Dekel N. Heptanol, an alkanol that blocks gap junctions, induces oocyte maturation. // Endocrine J. - 1993. - V.1. - P.365-372.

321. Pirino G., Wescott M.P., Donovan P.J. Protein kinase A regulates resumption of meiosis by phosphorylation of Cdc25B in mammalian oocytes. // Cell Cycle. - 2009. -V.8. - P.665-670.

322. Pogrmic-Majkic K., Samardzija D., Stojkov-Mimic N., Vukosavljevic J., Trninic-Pjevic A., Kopitovic V., Andric N. Atrazine suppresses FSH-induced steroidogenesis and LH-dependent expression of ovulatory genes through PDE-cAMP signaling pathway in human cumulus granulosa cells. // Mol. Cell Endocrinol. - 2018. - V.461. -P.79-88.

323. Polanski Z., Ledan E., Brunet S., Louvet S., Verlhac M.H., Kubiak J.Z., Maro B. Cyclin synthesis controls the progression of meiotic maturation in mouse oocytes. // Development. - 1998. - 125. - №24. - P.4989-4997.

324. Posada J., Yew N., Ahn N.G., Vande Woude G.F., Cooper J.A. Mos stimulates MAP kinase in Xenopus oocytes and activates a MAP kinase kinase in vitro. // Mol. Cell. Biol. - 1993. - V.13. - P.2546-2553.

325. Potter L.R. Guanylyl cyclase structure, function and regulation. // Cell Signal. -2011. - V.23. - P.1921-1926.

326. Potter L.R., Hunter T. Activation of PKC stimulates the dephosphorylation of natriuretic peptide receptor-B at a single serine residue: a possible mechanism of heterologous desensitization. // J. Biol. Chem. - 2000. - V.275. - P.31099-31106.

327. Pretty C.G., Le Compte A., Penning S., Fisk L., Shaw G.M., Desaive T., Chase J.G. Interstitial insulin kinetic parameters for a 2-compartment insulin model with saturable clearance. // Comput. Methods Programs Biomed. - 2014. - V.114. - №3. -P.e39-45.

328. Qian Y.W., Erikson E., Taieb F.E., Maller J.L. The polo-like kinase Plx1 is required for activation of the phosphatase Cdc25C and cyclin B-Cdc2 in Xenopus oocytes. // Mol. Biol. Cell. - 2001. - V.12. - P.1791-1799.

329. Racki W.J., Richter J.D. CPEB controls oocyte growth and follicle development in the mouse. // Development. - 2006. - V.133. - P.4527-4537.

330. Radford H.E., Meijer H.A., de Moor C.H. Translational control by cytoplasmic polyadenylation in Xenopus oocytes. // Biochim. Biophys. Acta. - 2008. - V.1779. -P.217-229.

331. Radford J.A., Lieberman B.A., Brison D.R., Smith A.R., Critchlow J.D., Russell S.A., Watson A.J., Clayton J.A., Harris M., Gosden R.G., Shalet S.M. Orthotopic

reimplantation of cryopreserved ovarian cortical strips after high-dose chemotherapy for Hodgkin's lymphoma. // Lancet. - 2001. - V.357. - №9263. - P. 1172-1175.

332. Rajareddy, S. Studies of phosphatidylinositol 3 kinase (PI3K) signaling pathway in mammalian ovarian follicle activation and development. // Doctoral thesis. - Umea University. - 2007.

333. Ramos S.B. Characterization of DeltaN-Zfp36l2 mutant associated with arrest of early embryonic development and female infertility. // J. Biol. Chem. - 2012. - V.287. -P.13116-13127.

334. Reader K.L., Heath D.A., Lun S., McIntosh C.J., Western A.H., Littlejohn R.P., McNatty K.P., Juengel J.L. Signalling pathways involved in the cooperative effects of ovine and murine GDF9+BMP15-stimulated thymidine uptake by rat granulosa cells. // Reproduction. - 2011. - V.142. - №1. - P.123-131.

335. Reis A., Chang H.Y., Levasseur M., Jones K.T. APCcdh1 activity in mouse oocytes prevents entry into the first meiotic division. // Nat. Cell Biol. - 2006. - V.8. -P.539-540.

336. Revel A., Laufer N., Ben Meir A., Lebovich M., Mitrani E. Micro-organ ovarian transplantation enables pregnancy: a case report. // Hum. Reprod. - 2011. - V.26. - №5. - P.1097-1103.

337. Revel A., Revel-Vilk S., Aizenman E., Porat-Katz A., Safran A., Ben-Meir A., Weintraub M., Shapira M., Achache H., Laufer N. At what age can human oocytes be obtained? // Fertil. Steril. - 2009. - V.92. - №2. - P.458-463.

338. Revel A., Schenker J. Ovarian tissue banking for cancer patients: is ovarian cortex cryopreservation presently justified? // Hum. Reprod. - 2004. - V. 19. - №1. -P.14-19.

339. Revelli A., Marchino G., Dolfin E., Molinari E., Delle Piane L., Salvagno F., Benedetto C. Live birth after orthotopic grafting of autologous cryopreserved ovarian tissue and spontaneous conception in Italy. // Fertil. Steril. - 2013. - V.99. - №1. -P.227-230.

340. Reynolds N., Collier B., Bingham V., Gray N.K., Cooke H.J. Translation of the synaptonemal complex component Sycp3 is enhanced in vivo by the germ cell specific regulator Dazl. // RNA. - 2007. - V.13. - P.974-981.

341. Richard F.J., Tsafriri A., Conti M. Role of phosphodiesterase type 3A in rat oocyte maturation. // Biol. Reprod. - 2001. - V.65. - P.1444-1451.

342. Robinson J.W., Zhang M., Shuhaibar L.C., Norris R.P., Geerts A., Wunder F., Eppig J.J., Potter L.R., Jaffe L.A. Luteinizing hormone reduces the activity of the NPR2 guanylyl cyclase in mouse ovarian follicles, contributing to the cyclic GMP decrease that promotes resumption of meiosis in oocytes. // Dev. Biol. - 2012. - V.366. - №2. -P.308-316.

343. Rodriguez-Wallberg K.A., Karlström P.O., Rezapour M., Castellanos E., Hreinsson J., Rasmussen C., Sheikhi M., Ouvrier B., Bozóky B., Olofsson J.I., Lundqvist M., Hovatta O. Full-term newborn after repeated ovarian tissue transplants in a patient treated for Ewing sarcoma by sterilizing pelvic irradiation and chemotherapy. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. - 2015. - V.94. - №3. - P.324-328.

344. Rosendahl M., Andersen C.Y., Ernst E., Westergaard L.G., Rasmussen P.E., Loft A, Andersen A.N. Ovarian function after removal of an entire ovary for cryopreservation of pieces of cortex prior to gonadotoxic treatment: a follow-up study. // Hum. Reprod. - 2008. - V.23. - P.2475-2483.

345. Roshak A.K., Capper E.A., Imburgia C., Fornwald J., Scott G., Marshall L.A. The human polo-like kinase, PLK, regulates cdc2/cyclin B through phosphorylation and activation of the cdc25C phosphatase. // Cell Signal. - 2000. - V.12. - P.405-411.

346. Rouillier P., Matton P., Sirard M.A., Guilbault L.A. Follicle-stimulating hormone-induced estradiol and progesterone production by bovine antral and mural granulosa cells cultured in vitro in a completely defined medium. // J. Anim. Sci. -1996. - V.74. - P.3012-3019.

347. Roux C., Amiot C., Agnani G., Aubard Y., Rohrlich P.S., Piver P. Live birth after ovarian tissue autograft in a patient with sickle cell disease treated by allogeneic bone marrow transplantation. // Fertil. Steril. - 2010. - V.93. - №7. - P.2413.e15-9.

348. Roy S.K., Treacy B.J. Isolation and long-term culture of human preantral follicles. // Fertil. Steril. - 1993. - V.59. - P.783-790.

349. Ruggiu M., Speed R., Taggart M., McKay S.J., Kilanowski F., Saunders P., Dorin J., Cooke H.J. The mouse Dazla gene encodes a cytoplasmic protein essential for gametogenesis. // Nature. - 1997. - V.389. - №6646. - P.73-77.

350. Sadhu K., Reed S.I., Richardson H., Russell P. Human homolog of fission yeast cdc25 mitotic inducer is predominantly expressed in G2. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1990. - V.87. - P.5139-5143.

351. Sánchez F., Romero S., Albuz F.K., Smitz J. In vitro follicle growth under nonattachment conditions and decreased FSH levels reduces Lhcgr expression in cumulus cells and promotes oocyte developmental competence. // J. Assist. Reprod. Genet. -2012. - V.29. - №2. - P.141-152.

352. Sanchez M., Novella-Maestre E., Teruel J., Ortiz E., Pellicer A. The Valencia programme for fertility preservation. // Clin. Transl. Oncol. - 2008. - V.10. - P.433-438.

353. Sánchez-Serrano M., Crespo J., Mirabet V., Cobo A.C., Escribá M.J., Simón C., Pellicer A. Twins born after transplantation of ovarian cortical tissue and oocyte vitrification. // Fertil. Steril. - 2010. - V.93. - №1. - P.268.e11-3.

354. Sasseville M., Ritter L.J., Nguyen T.M., Liu F., Mottershead D.G., Russell D.L., Gilchrist R.B. Growth differentiation factor 9 signaling requires ERK1/2 activity in mouse granulosa and cumulus cells. // J. Cell Sci. - 2010. - V.123. - №18. - P.3166-3176.

355. Schindler K. Protein kinases and protein phosphatases that regulate meiotic maturation in mouse oocytes. // Results Probl. Cell Differ. - 2011. - V.53. - P.309-341.

356. Schindler K., Schultz R.M. CDC14B acts through FZR1 (CDH1) to prevent meiotic maturation of mouse oocytes. // Biol. Reprod. - 2009. - V.80. - P.795-803.

357. Schmidt K.L., Andersen C.Y., Loft A., Byskov A.G., Ernst E., Andersen A. Followup of ovarian function post chemotherapy following ovarian cryopreservation and transplantation. // Hum. Reprod. - 2005. - V.20. - P.3539-3546.

358. Schmidt K.L., Byskov A.G., Nyboe Andersen A., Müller J., Yding Andersen C. Density and distribution of primordial follicles in single pieces of cortex from 21 patients and in individual pieces of cortex from three entire human ovaries. // Hum. Reprod. - 2003. - V.18. - №6. - P.1158-1164.

359. Schmidt K.T., Rosendahl M., Ernst E., Loft A., Andersen A.N., Dueholm M., Ottosen C., Andersen C.Y. Autotransplantation of cryopreserved ovarian tissue in 12 women with chemotherapy-induced premature ovarian failure: the Danish experience. // Fertil. Steril. - 2011. - V.95. - №2. - P.695-701.

360. Schultz R.M. Oogenesis and the control of meiotic maturation. // Exp. App. Mammal. Embr. Dev. - 1986. - P.195-237.

361. Sebastian B., Kakizuka A., Hunter T. Cdc25 M2 activation of cyclin-dependent kinases by dephosphorylation of threonine-14 and tyrosine-15. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1993. - V.90. - P.3521-3524.

362. Sela-Abramovich S., Chorev E., Galiani D., Dekel N. Mitogen-activated protein kinase mediates luteinizing hormone-induced breakdown of communication and oocyte maturation in rat ovarian follicles. // Endocrinology. - 2005. - V.146. - P.1236-1244.

363. Sela-Abramovich S., Edry I., Galiani D., Nevo N., Dekel N. Disruption of gap junctional communication within the ovarian follicle induces oocyte maturation. // Endocrinology. - 2006. - V.147. - P.2280-2286.

364. Seli E., Lalioti M.D., Flaherty S.M., Sakkas D., Terzi N., Steitz J.A. An embryonic poly(A)-binding protein (ePAB) is expressed in mouse oocytes and early preimplantation embryos. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2005. - V.102. - P.367-372.

365. Seli E., Tangir J. Fertility preservation options for female patients with malignancies. // Curr. Opin. Obstet. Gynecol. - 2005. - V.17. - P.299-308.

366. Selvey S., Thompson E.W., Matthaei K., Lea R.A., Irving M.G., Griffiths L.R. Beta-actin--an unsuitable internal control for RT-PCR. // Mol. Cell Probes. - 2001. -V.15. - P.307-311.

367. Sha Q.Q., Dai X.X., Dang Y., Tang F., Liu J., Zhang Y.L., Fan H.Y. A MAPK cascade couples maternal mRNA translation and degradation to meiotic cell cycle progression in mouse oocytes. // Development. - 2017. - V.144. - №3. - P.452-463.

368. Sharma G.T., Dubey P.K., Meur S.K. Survival and developmental competence of buffalo preantral follicles using three-dimensional collagen gel culture system. // Anim. Reprod. Sci. - 2009. - V. 114. - №1-3. - P. 115-124.

369. Shen W., Ahmad F., Hockman S., Ma J., Omi H., Raghavachari N., Manganiello V. Female infertility in PDE3A(-/-) mice: polo-like kinase 1 (Plk1) may be a target of protein kinase A (PKA) and involved in meiotic arrest of oocytes from PDE3A(-/-) mice. // Cell Cycle. - 2010. - V.9. - №23. - P.4720-4734.

370. Shibuya E.K., Ruderman J.V. Mos induces the in vitro activation of mitogen-activated protein kinases in lysates of frog oocytes and mammalian somatic cells. // Mol. Biol. Cell. - 1993. - V.4. - P.781-790.

371. Shikanov A., Xu M., Woodruff T.K., Shea L.D. A method for ovarian follicle encapsulation and culture in a proteolytically degradable 3 dimensional system. // J. Vis. Exp. - 2011. - V.15. - №49. - P.2695.

372. Shikanov A., Xu M., Woodruff T.K., Shea L.D. Interpenetrating fibrin-alginate matrices for in vitro ovarian follicle development. // Biomaterials. - 2009. - V.30. -№29. - P.5476-5485.

373. Shim Y.J., Seol A., Lee D., Kim S.K., Lee J.R., Jee B.C., Suh C.S., Kim S.H. The serum estradiol/oocyte ratio in patients with breast cancer undergoing ovarian stimulation with letrozole and gonadotropins. // Obstet. Gynecol. Sci. - 2018. - V.61. -№2. - P.242-246.

374. Shimada M., Hernandez-Gonzalez I., Gonzalez-Robayna I., Richards J.S. Paracrine and autocrine regulation of epidermal growth factor-like factors in cumulus oocyte complexes and granulosa cells: key roles for prostaglandin synthase 2 and progesterone receptor. // Mol. Endocrinol. - 2006. - V.20. - P.1352-1365.

375. Shimasaki S., Moore R.K., Otsuka F., Erickson G.F. The bone morphogenetic protein system in mammalian reproduction. // Endocr. Rev. - 2004. - V.25. - P.72-101.

376. Shitsukawa K., Andersen C.B., Richard F.J., Horner A.K., Wiersma A., van Duin M., Conti M. Cloning and characterization of the cyclic guanosine monophosphate-inhibited phosphodiesterase PDE3A expressed in mouse oocyte. // Biol. Reprod. -2001. - V.65. - №1. - P.188-196.

377. Shuhaibar L.C., Egbert J.R., Edmund A.B., Uliasz T.F., Dickey D.M., Yee S.P., Potter L.R., Jaffe L.A. Dephosphorylation of juxtamembrane serines and threonines of the NPR2 guanylyl cyclase is required for rapid resumption of oocyte meiosis in response to luteinizing hormone. // Dev. Biol. - 2016. - V.409. - №1. - P.194-201.

378. Shuhaibar L.C., Egbert J.R., Norris R.P., Lampe P.D., Nikolaev V.O., Thunemann M., Wen L., Feil R., Jaffe L.A. Intercellular signaling via cyclic GMP diffusion through gap junctions restarts meiosis in mouse ovarian follicles. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2015. - V.112. - №17. - P.5527-5532.

379. Sigismondi C., Papaleo E., Vigano P., Vailati S., Candiani M., Ottolina J., Di Mattei V.E., Mangili G. Fertility preservation in female cancer patients: a single center experience. // Chin. J. Cancer. - 2015. - V.34. - №1. - P.56-60.

380. Silber S. Ovary cryopreservation and transplantation for fertility preservation. // Mol. Hum. Reprod. - 2011. - V.18. - P.59-67.

381. Silber S., Barbey N. Scientific molecular basis for treatment of reproductive failure in the human: an insight into the future. // Biochim. Biophys. Acta. - 2012. -V.1822. - P.1981-1996.

382. Silber S.J., DeRosa M., Pineda J., Lenahan K., Grenia D., Gorman K., Gosden R.G. A series of monozygotic twins discordant for ovarian failure: ovary transplantation (cortical versus microvascular) and cryopreservation. // Hum. Reprod. - 2008a. - V.23. - №7. - P.1531-1537.

383. Silber S.J., Grudzinskas G., Gosden R.G. Successful pregnancy after microsurgical transplantation of an intact ovary. // N. Engl. J. Med. - 2008b. - V.359. -P.2617-2618.

384. Silber S.J., Lenahan K.M., Levine D.J., Pineda J.A., Gorman K.S., Friez M.J., Crawford E.C., Gosden R.G. Ovarian transplantation between monozygotic twins

discordant for premature ovarian failure. // N. Engl. J. Med. - 2005. - V.353. - №1. -P.58-63.

385. Silva A.E., Rodriguez P., Cavalcante L.F., Rodrigues B.A., Rodrigues J.L. The influence of oxygen tension on cumulus cell viability of canine COCs matured in high-glucose medium. // Reprod. Domest. Anim. - 2009. - V.44. - P.259-262.

386. Simon A.M., Goodenough D.A., Li E., Paul D.L. Female infertility in mice lacking connexin 37. // Nature. - 1997. - V.385. - P.525-529.

387. Skory R.M., Xu Y., Shea L.D., Woodruff T.K. Engineering the ovarian cycle using in vitro follicle culture. // Hum. Reprod. - 2015. - V.30. - №6. - P. 1386-1395.

388. Smith G.D., Sadhu A., Mathies S., Wolf D.P. Characterization of protein phosphatases in mouse oocytes. // Dev. Biol. - 1998. - V.204. - P.537-549.

389. Solomon M.J., Harper J.W., Shuttleworth J. CAK, the p34cdc2 activating kinase, contains a protein identical or closely related to p40MO15. // EMBO J. - 1993. - V.12. - P.3133-3142.

390. Son Y.J., Lee S.E, Hyun H., Shin M.Y., Park Y.G., Jeong S.G., Kim E.Y., Park S.P. Fibroblast growth factor 10 markedly improves in vitro maturation of porcine cumulus-oocyte complexes. // Mol. Reprod. Dev. - 2017. - V.84. - №1. - P.67-75.

391. Sonmezer M., Oktay K. Fertility preservation in female patients. // Hum. Reprod. Update. - 2004. - V.10. - P.251-266.

392. Sorensen R.A., Wassarman P.M. Relationship between growth and meiotic maturation of the mouse oocyte. // Dev. Biol. - 1976. - V.50. - P.531-536.

393. Sousa Martins J.P., Liu X., Oke A., Arora R., Franciosi F., Viville S., Laird D.J., Fung J.C., Conti M. DAZL and CPEB1 regulate mRNA translation synergistically during oocyte maturation. // J. Cell Sci. - 2016. - V.129. - №6. - P.1271-1282.

394. Stern C.J., Gook D., Hale L.G., Agresta F., Oldham J., Rozen G., Jobling T. First reported clinical pregnancy following heterotopic grafting of cryopreserved ovarian tissue in a woman after a bilateral oophorectomy. // Hum. Reprod. - 2013. - V.28. -№11. - P.2996-2999.

395. Strassburger D., Friedler S., Raziel A., Kasterstein E., Schachter M., Ron-El R. The outcome of ICSI of immature MI oocytes and rescued in vitro matured MII oocytes. // Hum. Reprod. - 2004. - V.19. - №7. - P. 1587-1590.

396. Streets A.M, Huang Y. Microfluidics for biological measurements with single-molecule resolution. // Curr. Opin. Biotechnol. - 2014. - №25. - P.69-77.

397. Su Y.Q., Eppig J.J. Evidence that multifunctional calcium/calmodulindependent protein kinase II (CaM KII) participates in the meiotic maturation of mouse oocytes. // Mol. Reprod. Dev. - 2002. - V.61. - P.560-569.

398. Su Y.Q., Sugiura K., Li Q., Wigglesworth K., Matzuk M.M., Eppig J.J. Mouse oocytes enable LH-induced maturation of the cumulus-oocyte complex via promoting EGF receptor-dependent signaling. // Mol. Endocrinol. - 2010. - V.24. - P.1230-1239.

399. Su Y.Q., Sugiura K., Wigglesworth K., O'Brien M.J., Affourtit J.P., Pangas S.A., Matzuk M.M., Eppig J.J. Oocyte regulation of metabolic cooperativity between mouse cumulus cells and oocytes: BMP15 and GDF9 control cholesterol biosynthesis in cumulus cells. // Development. - 2008. - V.135. - №1. - P.111-121.

400. Su Y.Q., Wu X., O'Brien M.J., Pendola F.L., Denegre J.N., Matzuk M.M., Eppig J.J. Synergistic roles of BMP15 and GDF9 in the development and function of the oocyte-cumulus cell complex in mice: genetic evidence for an oocyte-granulosa cell regulatory loop. // Dev. Biol. - 2004. - V.276. - №1. - P.64-73.

401. Su Y.Q., Xia G.L., Byskov A.G., Fu G.D., Yang C.R. Protein kinase C and intracellular calcium are involved in follicle-stimulating hormonemediated meiotic resumption of cumulus cell-enclosed porcine oocytes in hypoxanthine-supplemented medium. // Mol. Reprod. Dev. - 1999. - V.53. - P.51-58.

402. Sugiura K., Naito K., Tojo H. Cdk2 activity is essential for the first to second meiosis transition in porcine oocytes. // J. Reprod. Dev. - 2005. - V.51. - P.143-149.

403. Suzuki N., Hashimoto S., Igarashi S., Takae S., Yamanaka M., Yamochi T., Takenoshita M., Hosoi Y., Morimoto Y., Ishizuka B. Assessment of long-term function of heterotopic transplants of vitrified ovarian tissue in cynomolgus monkeys. // Hum. Reprod. - 2012. - V.27. - №8. - P.2420-2429.

404. Szybek K. In vitro maturation of oocytes from sexually immature mice. // J. Endocrinol. - 1972. - V.54. - P.527-528.

405. Tagler D., Makanji Y., Tu T., Bernabé B.P., Lee R., Zhu J., Kniazeva E., Hornick J.E., Woodruff T.K., Shea L.D. Promoting extracellular matrix remodeling via ascorbic acid enhances the survival of primary ovarian follicles encapsulated in alginate hydrogels. // Biotechnol. Bioeng. - 2014. - V.111. - №7. - Р.1417-1429.

406. Tagler D., Tu T., Smith R.M., Anderson N.R., Tingen C.M., Woodruff T.K., Shea L.D. Embryonic fibroblasts enable the culture of primary ovarian follicles within alginate hydrogels. // Tissue Eng. Part. A. - 2012. - V.18. - №11-12. - Р.1229-1238.

407. Takahashi M. The GDNF/RET signaling pathway and human diseases. // Cytokine Growth Factor Rev. - 2001. - V.12. - P.361-373.

408. Takeo T., Fukumoto K., Kondo T., Haruguchi Y., Takeshita Y., Nakamuta Y., Tsuchiyama S., Yoshimoto H., Shimizu N., Li M.W., Kinchen K., Vallelunga J., Lloyd K.C., Nakagata N. Investigations of motility and fertilization potential in thawed cryopreserved mouse sperm from cold-stored epididymides. // Cryobiology. - 2014. -68. - №1. - P.12-17.

409. Tao Y., Fu Z., Zhang M.J., Lei L., Bu S.M., Xia G.L. Nitric oxide influences the meiotic maturation of porcine oocytes cultured in hypoxanthinesupplemented medium. // J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. (Berl). - 2005. - V.89. - P.38-44.

410. Tay J., Hodgman R., Richter J.D. The control of cyclin B1 mRNA translation during mouse oocyte maturation. // Dev. Biol. - 2000. - V.221. - P.1-9.

411. Tay J., Richter J.D. Germ cell differentiation and synaptonemal complex formation are disrupted in CPEB knockout mice. // Dev. Cell. - 2001. - V.1. - P.201-213.

412. Telfer E.E. Future developments: In vitro growth (IVG) of human ovarian follicles. // Acta Obstet. Gynecol. Scand. - 2019. - принято в печать.

413. Tetsuka M., Hillier S.G. Differential regulation of aromatase and androgen receptor in granulosa cells. // J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. - 1997. - V.61. - №3-6. -P.233-239.

414. Thomsen A.R., Hvidtfeldt M., Brauner-Osborne H. Biased agonism of the calcium-sensing receptor. // Cell Calcium. - 2012. - V.51. - P.107-116.

415. Thomson A.B., Critchley H.O., Wallace W.H. Fertility and progeny. // Eur. J. Cancer. - 2002. - V.38. - №12. - P. 1634-1644.

416. Tian X., Diaz F.J. Zinc Depletion Causes Multiple Defects in Ovarian Function during the Periovulatory Period in Mice. // Endocrinology. - 2012. - V.153. - P.873-886.

417. Tischer T., Schuh M. The Phosphatase Dusp7 Drives Meiotic Resumption and Chromosome Alignment in Mouse Oocytes. // Cell Rep. - 2016. - V.17. - P.1426-1437.

418. Toms D., Tsoi S., Dobrinsky J., Dyck M.K., Li J. The effects of glial cell line-derived neurotrophic factor on the in vitro matured porcine oocyte transcriptome. // Mol. Reprod. Dev. - 2014. - V.81. - P.217-229.

419. Törnell J., Billig H., Hillensjö T. Resumption of rat oocyte meiosis is paralleled by a decrease in guanosine 3',5' -cyclic monophosphate (cGMP) and is inhibited by microinjection of cGMP. // Acta Physiol. Scand. - 1990. - V.139. - P.511-517.

420. Toyoshima-Morimoto F., Taniguchi E., Nishida E. Plk1 promotes nuclear translocation of human Cdc25C during prophase. // EMBO Rep. - 2002. - V.3. - P.341-348.

421. Trupp M., Ryden M., Jörnvall H., Funakoshi H., Timmusk T., Arenas E., Ibanez C.F. Peripheral expression and biological activities of GDNF, a new neurotrophic factor for avian and mammalian peripheral neurons. // J. Cell. Biol. - 1995. - V.130. - №1. -P.137-148.

422. Tsafriri A., Dekel N., Bar-Ami S. The role of oocyte maturation inhibitor in follicular regulation of oocyte maturation. // J. Reprod. Fert. - 1982. - V.64. - P.541-551.

423. Tsai A.G., Friesenecker B., Mazzoni M.C., Kerger H., Buerk D.G., Johnson P.C., Intaglietta M. Microvascular and tissue oxygen gradients in the rat mesentery. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1998. - V.95. - P.6590-6595.

424. Tsuji T., Kiyosu C., Akiyama K., Kunieda T. CNP/NPR2 signaling maintains oocyte meiotic arrest in early antral follicles and is suppressed by EGFR-mediated signaling in preovulatory follicles. // Mol. Reprod. Dev. - 2012. - V.79. - P.795-802.

425. Uysal F., Ozturk S. Embryonic poly(A)-binding protein is differently expressed and interacts with the messenger RNAs in the mouse oocytes and early embryos. // J. Cell. Biochem. - 2019. - V.120. - №3. - P.4694-4709.

426. Vaccari S., Horner K., Mehlmann L.M., Conti M. Generation of mouse oocytes defective in cAMP synthesis and degradation: endogenous cyclic AMP is essential for meiotic arrest. // Dev. Biol. - 2008. - V.316. - P.124-134.

427. Vaccari S., Weeks 2nd J.L., Hsieh M., Menniti F.S., Conti M. Cyclic GMP signaling is involved in the luteinizing hormone-dependent meiotic maturation of mouse oocytes. // Biol. Reprod. - 2009. - V.81. - P.595-604.

428. Valleh M.V., Rasmussen M.A., Hyttel P. Combination effects of epidermal growth factor and glial cell line-derived neurotrophic factor on the in vitro developmental potential of porcine oocytes. // Zygote. - 2016. - V.24. - P.465-476.

429. van de Wiel D.F., Bar-Ami S., Tsafriri A., de Jong F.H. Oocyte maturation inhibitor, inhibin and steroid concentrations in porcine follicular fluid at various stages of the oestrous cycle. // J. Reprod. Fertil. - 1983. - V.68. - P.247-252.

430. Vanderhyden B.C., Cohen J.N., Morley P. Mouse oocytes regulate granulosa cell steroidogenesis. // Endocrinology. - 1993. - V.133. - P.423-426.

431. Vanderhyden B.C., Macdonald E.A. Mouse oocytes regulate granulosa cell steroidogenesis throughout follicular development. // Biol. Reprod. - 1998. - V.59. -P.1296-1301.

432. Vandesompele J., De Preter K., Pattyn F., Poppe B., Van Roy N., De Paepe A., Speleman F.. Accurate normalization of real-time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes. // Genome Biol. - 2002. -V.3. -P.RESEARCH0034.

433. Varnum B.C., Ma Q.F., Chi T.H., Fletcher B., Herschman H.R. The TIS11 primary response gene is a member of a gene family that encodes proteins with a highly

conserved sequence containing an unusual Cys-His repeat. // Mol. Cell. Biol. - 1991. -V.11. - P.1754-1758.

434. Vasudevan S., Seli E., Steitz J.A. Metazoan oocyte and early embryodevelopment program: a progression through translation regulatory cascades. // Genes Dev. - 2006. -V.20. - P.138-146.

435. Veldhuis J.D. Mechanisms subserving hormone action in the ovary: role of calcium ions as assessed by steady state calcium exchange in cultured swine granulosa cells. // Endocrinology. - 1987. - V.120. - P.445-449.

436. Verga Falzacappa C., Timperi E., Bucci B., Amendola D., Piergrossi P., D'Amico D., Santaguida M.G., Centanni M., Misiti S. T(3) preserves ovarian granulosa cells from chemotherapy-induced apoptosis. // J. Endocrinol. - 2012. - V.215. - №2. -P.281-289.

437. Verlhac M.H., Kubiak J.Z., Weber M., Geraud G., Colledge W.H., Evans M.J., Maro B. Mos is required for MAP kinase activation and is involved in microtubule organization during meiotic maturation in the mouse. // Development. - 1996. - V.122.

- №3. - P.815-822.

438. Verlhac M.H., Lefebvre C., Kubiak J.Z., Umbhauer M., Rassinier P., Colledge W., Maro B. Mos activates MAP kinase in mouse oocytes through two opposite pathways. // EMBO J. - 2000. - V.19. - №22. - P.6065-6074.

439. Vitt U.A., Mazerbourg S., Klein C., Hsueh A.J.W. Bone morphogenetic protein receptor type II is a receptor for growth differentiation factor-9. // Biol. Reprod. - 2002.

- V.67. - P.473-480.

440. Vitt U.A., McGee E.A., Hayashi M., Hsueh A.J.W. In vivo treatment with GDF-9 stimulates primordial and primary follicle progression and theca cell marker CYP17 in ovaries of immature rats. // Endocrinology. - 2000. - V.141. - P.3814-3820.

441. Voeltz G.K., Ongkasuwan J., Standart N., Steitz J.A. A novel embryonic poly(A) binding protein, ePAB, regulates mRNA deadenylation in Xenopus egg extracts. // Genes Dev. - 2001. - V.15. - P.774-788.

442. Wallace W.H., Anderson R.A., Irvine D.S. Fertility preservation for young patients with cancer: who is at risk and what can be offered? // The Lancet Oncology. -2005. - V.6. - №4. - P.209-218.

443. Wallace W.H., Kelsey T.W. Human ovarian reserve from conception to the menopause. // PLoS One. - 2010. - V.5. - №1. - P.e8772.

444. Wang S., Ning G., Chen X., Yang J., Ouyang H., Zhang H., Tai P., Mu X., Zhou B., Zhang M., Xia G. PDE5 modulates oocyte spontaneous maturation via cGMP-cAMP but not cGMP-PKG signaling. // Front. Biosci. - 2008. - V.13. - P.7087-7095.

445. Wang X., Swain J.E., Bollen M., Liu X.T., Ohl D.A., Smith G.D. Endogenous regulators of protein phosphatase-1 during mouse oocyte development and meiosis. // Reproduction. - 2004. - V.128. - P.493-502.

446. Wang Y., Kong N., Li N., Hao X., Wei K., Xiang X., Xia G., Zhang M. Epidermal growth factor receptor signaling-dependent calcium elevation in cumulus cells is required for NPR2 inhibition and meiotic resumption in mouse oocytes. // Endocrinology. - 2013. - V.154. - №9. - P.3401-3409.

447. Wang Z., Chen H., Yin H., Kim S.S., Lin Tan S., Gosden R.G. Fertility after intact ovary transplantation. // Nature. - 2002. - V.415. - P.385.

448. Wang Z., Fan M., Candas D., Zhang T.Q., Qin L., Eldridge A., Wachsmann-Hogiu S., Ahmed K.M., Chromy B.A., Nantajit D., Duru N., He F., Chen M., Finkel T., Weinstein L.S., Li J.J. Cyclin B1/Cdk1 coordinates mitochondrial respiration for cell-cycle G2/M progression. // Dev. Cell. - 2014. - V.29. - №2. - P.217-232.

449. Wang Y.K., Li X., Song Z.Q., Yang C.X. Methods of RNA preparation affect mRNA abundance quantification of reference genes in pig maturing oocytes. // Reprod. Domest. Anim. - 2017. - V.52. - P.722-730.

450. Wells N.J., Watanabe N., Tokusumi T., Jiang W., Verdecia M.A., Hunter T. The C-terminal domain of the Cdc2 inhibitory kinase Myt1 interacts with Cdc2 complexes and is required for inhibition of G2/M progression. // J. Cell Sci. - 1999. - V.112. -P.3361-3371.

451. West E.R., Xu M., Woodruff T.K., Shea L.D. Physical properties of alginate hydrogels and their effects on in vitro follicle development. // Biomaterials. - 2007. -V.28. - №30. - P.4439-4448.

452. West-Farrell E.R., Xu M., Gomberg M.A., Chow Y.H., Woodruff T.K., Shea L.D. The mouse follicle microenvironment regulates antrum formation and steroid production: alterations in gene expression profiles. // Biol. Reprod. - 2009. - V.80. -№3. - P.432-439.

453. Widenfalk J., Parvinen M., Lindqvist E., Olson L. Neurturin, RET, GFRa-1 and GFRa-2, but not GFRa-3, mRNA are expressed in mice gonads. // Cell Tis. Res. 2000. -V.299. - P.409-415.

454. Wilkie G.S., Gautier P., Lawson D., Gray N.K. Embryonic poly(A)-binding protein stimulates translation in germ cells. // Mol. Cell Biol. - 2005. - V.25. - P.2060-2071.

455. Winston N.J. Stability of cyclin B protein during meiotic maturation and the first mitotic cell division in mouse oocytes. // Biol. Cell. - 1997. - V.89. - P.211-219.

456. Xi G., An L., Jia Z., Tan K., Zhang J., Wang Z., Zhang C., Miao K., Wu Z., Tian J. Natriuretic peptide receptor 2 (NPR2) localized in bovine oocyte underlies a unique mechanism for C-type natriuretic peptide (CNP)-induced meiotic arrest. // Theriogenology. - 2018. - V.106. - P.198-209.

457. Xu J., Bernuci M.P., Lawson M.S., Yeoman R.R., Fisher T.E., Zelinski M.B., Stouffer R.L. Survival, growth, and maturation of secondary follicles from prepubertal, young and older adult, rhesus monkeys during encapsulated three-dimensional (3D) culture: effects of gonadotropins and insulin. // Reproduction. - 2010. - V.140. -P.685-697.

458. Xu J., Lawson M.S., Yeoman R.R., Molskness T.A., Ting A.Y., Stouffer R.L., Zelinski M.B. Fibrin promotes development and function of macaque primary follicles during encapsulated three-dimensional culture. // Hum. Reprod. - 2013. - V.28. - №8. - P.2187-2200.

459. Xu J., Lawson M.S., Yeoman R.R., Pau K.Y., Barrett S.L., Zelinski M.B., Stouffer R.L. Secondary follicle growth and oocyte maturation during encapsulated three-dimensional culture in rhesus monkeys: effects of gonadotrophins, oxygen and fetuin. // Hum. Reprod. - 2011a. - V.26. - №5. - P.1061-1072.

460. Xu M., Banc A., Woodruff T.K., Shea L.D. Secondary follicle growth and oocyte maturation by culture in alginate hydrogel following cryopreservation of the ovary or individual follicles. // Biotechnol. Bioeng. - 2009a. - V.103. - №2. - P.378-386.

461. Xu M., Barrett S.L., West-Farrell E., Kondapalli L.A., Kiesewetter S.E., Shea L.D., Woodruff T.K. In vitro grown human ovarian follicles from cancer patients support oocyte growth. // Hum. Reprod. - 2009b. - V.24. - №10. - P.2531-2540.

462. Xu M., Fazleabas A.T., Shikanov A., Jackson E., Barrett S.L., Hirshfeld-Cytron J., Kiesewetter S.E., Shea L.D., Woodruff T.K. In vitro oocyte maturation and preantral follicle culture from the luteal-phase baboon ovary produce mature oocytes. // Biol. Reprod. - 2011b. - V.84. - №4. - P.689-697.

463. Xu M., Kreeger P.K., Shea L.D., Woodruff T.K. Tissue-engineered follicles produce live, fertile offspring. // Tissue Eng. - 2006b. - V.12. - №10. - P.2739-2746.

464. Xu M., West E., Shea L.D., Woodruff T.K. Identification of a stage-specific permissive in vitro culture environment for follicle growth and oocyte development. // Biol. Reprod. - 2006a. - V.75. - №6. - P.916-923.

465. Xu Z., Taylor J.A. Genome-wide age-related DNA methylation changes in blood and other tissues relate to histone modification, expression and cancer. // Carcinogenesis. - 2014. - V.35. - №2. - P.356-364.

466. Yamamoto K., Otoi T., Koyama N., Horikita N., Tachikawa S., Miyano T: Development to live young from bovine small oocytes after growth, maturation and fertilization in vitro. // Theriogenology. - 1999. - V.52. - P.81-89.

467. Yamamuro T., Kano K., Naito K. Functions of FZR1 and CDC20, activators of the anaphase-promoting complex, during meiotic maturation of swine oocytes. // Biol. Reprod. - 2008. - V.79. - P.1202-1209.

468. Yan C., Wang P., DeMayo J., DeMayo F.J., Elvin J.A., Carino C., Prasad S.V., Skinner S.S., Dunbar B.S., Dube J.L., Celeste A.J., Matzuk M.M. Synergistic roles of bone morphogenetic protein 15 and growth differentiation factor 9 in ovarian function. // Mol. Endocrinol. - 2001. - V.15. - №6. - P.854-866.

469. Yang J., Medvedev S., Yu J., Tang L.C., Agno J.E., Matzuk M.M., Schultz R.M., Hecht N.B. Absence of the DNA-/RNA-binding protein MSY2 results in male and female infertility. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2005. - V.102. - №16. - P.5755-5760.

470. Yang L., Wei Q., Ge J., Zhao X., Ma B. MAPK3/1 is conducive to luteinizing hormone-mediated C-type natriuretic peptide decrease in bovine granulosa cells. // J. Reprod. Dev. - 2016. - V.62. - P.137-142.

471. Yoshino O., McMahon H.E., Sharma S., Shimasaki S. A unique preovulatory expression pattern plays a key role in the physiological functions of BMP-15 in the mouse. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 2006. - V.103. - P.10678-10683.

472. Yu J., Deng M., Medvedev S., Yang J., Hecht N.B., Schultz R.M. Transgenic RNAi-mediated reduction of MSY2 in mouse oocytes results in reduced fertility. // Dev. Biol. - 2004. - V.268. - P.195-206.

473. Yu J., Hecht N.B., Schultz R.M. Expression of MSY2 in mouse oocytes and preimplantation embryos. // Biol. Reprod. - 2001. - V.65. - P.1260-1270.

474. Yu J., Hecht N.B., Schultz R.M. RNA-binding properties and translation repression in vitro by germ cell-specific MSY2 protein. // Biol. Reprod. - 2002. - V.67. - P.1093-1098.

475. Zare Z., Abouhamzeh B., Masteri Farahani R., Salehi M., Mohammadi M. Supplementation of L-carnitine during in vitro maturation of mouse oocytes affects expression of genes involved in oocyte and embryo competence: An experimental study. // Int. J. Reprod. Biomed. (Yazd). - 2017. - V.15. - №12. - P.779-786.

476. Zhang G.M., Gu C.H., Zhang Y.L., Sun H.Y., Qian W.P., Zhou Z.R., Wan Y.J., Jia R.X., Wang L.Z., Wang F. Age-associated changes in gene expression of goat oocytes. // Theriogenology. - 2013. - V.80. - №4. - P.328-336.

477. Zhang K., Hansen P.J., Ealy A.D. Fibroblast growth factor 10 enhances bovine oocyte maturation and developmental competence in vitro. // Reproduction. - 2010c. -V.140. - P.815-826.

478. Zhang L., Liang Y., Liu Y., Xiong C.L. The role of brain-derived neurotrophic factor in mouse oocyte maturation in vitro involves activation of protein kinase B. // Theriogenology. - 2010b. - V.73. - P.1096-1103.

479. Zhang M., Ouyang H., Xia G. The signal pathway of gonadotrophins-induced mammalian oocyte meiotic resumption. // Mol. Hum. Reprod. - 2009. - V.15. - P.399-409.

480. Zhang M., Su Y.Q., Sugiura K., Wigglesworth K., Xia G., Eppig J.J. Estradiol promotes and maintains cumulus cell expression of natriuretic peptide receptor 2 (NPR2) and meiotic arrest in mouse oocytes in vitro. // Endocrinology. - 2011. - V.152. - P.4377-4385.

481. Zhang M., Su Y.Q., Sugiura K., Xia G., Eppig J.J. Granulosa cell ligand NPPC and its receptor NPR2 maintain meiotic arrest in mouse oocytes. // Science. 2010a. -V.330. - P.366-369.

482. Zhang M., Tao Y., Zhou B., Xie H., Wang F., Lei L., Huo L., Sun Q., Xia G. Atrial natriuretic peptide inhibits the actions of FSH and forskolin in meiotic maturation of pig oocytes via different signalling pathways. // J. Mol. Endocrinol. - 2005. - V.34. -№2. - P.459-472.

483. Zhang Y., Zhang Z., Xu X.Y., Li X.S., Yu M., Yu A.M., Zong Z.H., Yu B.Z. Protein kinase A modulates Cdc25B activity during meiotic resumption of mouse oocytes. // Dev. Dyn. - 2008. - V.237. - №12. - P.3777-3786.

484. Zhao H., Qin Y., Kovanci E., Simpson J.L., Chen Z.J., Rajkovic A. Analyses of GDF9 mutation in 100 Chinese women with premature ovarian failure. // Fertil. Steril. -2007. - V.88. - P.1474-1476.

485. Zhao P., Qiao J., Huang S., Zhang Y., Liu S., Yan L.Y., Hsueh A.J., Duan E.K. Gonadotrophin-induced paracrine regulation of human oocyte maturation by BDNF and GDNF secreted by granulosa cells. // Hum. Reprod. - 2011. - V.26. - №3. - P.695-702.

486. Zhao X., Yu D., Feng C., Deng X., Wu D., Jin M., Wang E., Wang X., Yu B. Role of Greatwall kinase in release of mouse oocytes from diplotene arrest. // Dev. Growth. Differ. - 2014. - V.56. - №9. - P.669-678.

487. Zheng L.P., Huang J., Zhang D.L., Xu L.Q., Li F., Wu L., Liu Z.Y., Zheng Y.H. c-erbB2 and c-myb induce mouse oocyte maturation involving activation of maturation promoting factor. // DNA Cell Biol. - 2012. - V.31. - №2. - P.164-170.

488. Zhong H., Simons J.W. Direct comparison of GAPDH, b-actin, cyclophilin, and 28S rRNA as internal standards for quantifying RNA levels under hypoxia. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1999. - V.259. - P.523-526.