Комплексная переработка клубней топинамбура с получением фруктанов и пробиотического продукта для животных тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат наук Кареткин, Борис Алексеевич

• Кареткин, Борис Алексеевич
• кандидат наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат наук Кареткин, Борис Алексеевич

СОДЕРЖАНИЕ

Введение

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Характеристика инулина, фруктоолигосахаридов и их источников

1.1.1. Строение и физико-химические свойства фруктанов

1.1.2 .Современные методы анализа инулина и ФОС

1Л .3. Источники инулина и ФОС и способы их выделения

1.1.4. Применение инулина и ФОС

1.2. Характеристика, состав и применение топинамбура

1.2.1. Характеристика топинамбура

1.2.2. Химический состав топинамбура

1.2.3. Возделывание и хранение топинамбура

1.2.4. Использование топинамбура в питании

1.2.5. Использование топинамбура в кормовых целях

1.2.6. Использование топинамбура в биотехнологии

1.3. Концепция пробиотиков и пребиотиков

1.3.1. Характеристика и значение пробиотиков

1.3.2. Применение пробиотиков в животноводстве

1.3.3. Характеристика и значение пребиотиков

1.3.4. Повышение стабильности микроорганизмов в пробиотических продуктах

1.4. Применение ультразвука для выделения биологически активных веществ из растительного сырья

Экспериментальная часть

Глава 2. Материалы и методы исследования

2.1. Объекты исследования

2.2. Биохимические и физико-химические методы анализа

2.3.Микробиологические методы

2.4.Проведение ультразвуковой экстракции

2.5. Проведение обработки сорбентами

2.6. Проведение ультрафильтрации

Результаты и обсуждение

Глава 3. Исследование кинетики и определение оптимальных значений параметров ультразвуковой экстракции фруктанов из клубней топинамбура

3.1. Выбор оптимального гидромодуля

3.2. Выбор оптимальной температуры экстракции

3.3. Подбор оптимального рН экстрагента

3.4.Влияние степени измельчения на эффективность ультразвуковой экстракции

Глава 4. Очистка экстракта от пигментных примесей и анализ полученных фруктанов с помощью ЯМР-спектроскопии

4.1. Сорбционные методы очистки экстракта

4.1.1. Применение активированных углей для удаления пигментных примесей

4.1.2. Применение ионообменных смол для удаления пигментных примесей

4.2. Мембранные методы очистки экстракта

4.3. Анализ полученных фруктанов с помощью ЯМР-спектроскопии

Глава 5. Культивирование молочнокислых бактерий на жоме клубней топинамбура и исследование свойств получаемого продукта

5.1. Анализ химического состава жома

5.2. Исследование роста молочнокислых бактерий в глубинной культуре в присутствии жома топинамбура

5.2.1. Подбор штамма молочнокислых бактерий с высокой продуктивностью

5.2.2.Обоснование степени измельчения жома

5.2.3.Определение оптимального содержания источника азота

5.3.Исследование стабильности МКБ при хранении

5.4. Исследование стабильности МКБ при воздействии различных температур

5.5. Лиофильное высушивание биосуспензии МКБ и исследование стабильности сухой биомассы

5.5. Изучение влияния алкилоксибензолов на стабильность молочнокислых бактерий

5.5.1. Влияние алкилоксибензолов на стабильность молочнокислых бактерий при хранении

5.5.2. Влияние алкилоксибензолов на устойчивость молочнокислых бактерий к воздействию различных температур

5.6.Получение пробиотического продукта в ферментере

5.7. Технологическая схема комплексной переработки клубней топинамбура с получением фруктанов и пробиотического продукта для животных

Выводы

Список литературы

Приложения

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Комплексная переработка клубней топинамбура с получением фруктанов и пробиотического продукта для животных»

ВВЕДЕНИЕ

Концепция «функционального питания» с каждым годом приобретает все большее распространение. В России рынок продуктов этой группы постоянно растет. Основным его сегментом являются кисломолочные продукты, введение в которые компонентов, относящихся к группе пребиотиков, усиливает положительный эффект на здоровье человека и коммерческую привлекательность продукции. Однако производство данных компонентов в нашей стране развито в недостаточной степени.

Среди ряда других веществ к группе пребиотиков относят фруктаны -инулин и фруктоолигосахариды (ФОС) [1], которые входят в состав таких растений как девясил, цикорий, топинамбур, чеснок, эхинацея и ряд других, в основном, относящихся к семейству Сложноцветных [2, 3]. В нашей стране имеется богатый опыт по выращиванию топинамбура. Получены сорта топинамбура с высокой урожайностью в нечерноземной полосе, например в условиях Верхневолжья сорт «Скороспелка» дает урожай до 35 т/га [4]. Урожай клубней в южной полосе России может составлять до 50 т/га [5]. Клубни топинамбура при сборе урожая в конце сентября - начале октября содержат до 20 % инулина и ФОС.

Распоряжением правительства Российской Федерации от 31 июля 2013 г. № 1356-р одобрен проект Программы Союзного государства «Инновационное развитие производства картофеля и топинамбура», предусматривающей в том числе разработку инновационных технологий производства топинамбура, а также технологий и оборудования для получения продуктов питания, инулина, топливных добавок и кормов из него. Особый интерес представляла бы технология комплексной переработки топинамбура с получением и инулина, и продукта для животноводства. При этом в качестве альтернативного способа выделения фруктанов может быть изучена экстракция ультразвуком, использование которой для выделения БАВ из растительного сырья в

последнее время получило широкое распространение [6 с. 185, 7].

Одной из проблем, возникающих при переработке растительного сырья, является отсутствие возможности полного извлечения БАВ за одну ступень экстракции. Уникальность топинамбура состоит в том, что образующийся после экстракции твердый отход (жом) содержит фруктаны, стимулирующие рост и повышающие стабильность пробиотических микроорганизмов, благодаря чему они могут быть использованы в качестве основного компонента при производстве пробиотиков для животноводства. Известно, что пробиотики оказывают сильнейшее позитивное воздействие на здоровье и продуктивность сельскохозяйственных животных и птиц, особенно при введении в рацион с первых дней жизни [8]. Поэтому производство продукта для животных, содержащий пробиотические микроорганизмы, будет иметь большую коммерческую привлекательность по сравнению с традиционными кормами.

Цель настоящей работы: разработать малоотходную технологию комплексной переработки топинамбура с получением фруктанов и пробиотического продукта для животных.

Для выполнения цели были сформулированы следующие задачи исследования:

- изучить кинетику экстракции фруктанов из клубней топинамбура путем непрямого ультразвукового воздействия и определить оптимальные значения гидромодуля, температуры и кислотности экстрагента;

- определить оптимальные условия удаления пигментных примесей из экстракта с помощью сорбентов (активированного угля различных марок и ионообменных смол), а также мембранных методов (ультрафильтрации);

- предложить оптимальную схему очистки экстракта и проанализировать состав получаемого продукта с помощью физико-

химических методов анализа (ЯМР-спектроскопии);

- подтвердить возможность глубинного гетерофазного культивирования молочнокислых бактерий (МКБ) на питательной среде, содержащей в качестве основного компонента твердый остаток после экстракции (жом);

- провести скрининг штаммов лактобактерий, а также обосновать оптимальный для получения пробиотического продукта состав питательной среды, содержащей жом клубней топинамбура, и условия культивирования;

- исследовать влияние жома в качестве компонента питательной среды на стабильность культуры МКБ при хранении и стрессовых воздействиях;

- рассмотреть влияние различных бактериальных ауторегуляторов -алкилоксибензолов (АОБ) - на стабильность МКБ, полученных путем глубинного гетерофазного культивирования в присутствии жома клубней топинамбура;

- провести технико-экономическую оценку предлагаемой технологии.

Научная новизна. Изучено влияние гидромодуля, температуры и рН

экстрагента на выход фруктанов при водной экстракции из клубней топинамбура с помощью непрямого ультразвукового воздействия, а также кинетика экстракции при всех значениях рассмотренных параметров.

Впервые изучены различные методы (ультрафильтрационные и сорбционные) очистки от пигментных примесей экстракта, полученного из клубней топинамбура с помощью ультразвуковой экстракции, и представлено научное обоснование оптимального способа их удаления, позволяющего получить неокрашенный продукт. Структура фруктанов была подтверждена методом ЯМР-спектроскопии.

Впервые показано, что внесение в питательную среду для глубинного гетерофазного культивирования МКБ твердой фазы в виде жома,

образующегося после первой ступени экстракции фруктанов из клубней топинамбура, повышает стабильность жизнеспособных клеток при длительном хранении (8 недель, 5 °С), а также их устойчивость к стрессовым воздействиям (прогрев 50°С, 15 мин; замораживание-оттаивание). Установлено, что при внесении АОБ, в особенности С-12 АОБ, в суспензии МКБ, полученные на питательной среде, содержащей жом, устойчивость клеток к воздействию указанных факторов увеличивается.

Практическая значимость. Разработана комплексная малоотходная технология переработки клубней топинамбура в условиях лаборатории. Даны практические рекомендации по созданию опытно-промышленной установки, позволяющей получить фруктаны, а также пробиотический продукт для животных с высоким содержанием живых клеток МКБ.

Установлено, что применение ультразвука для экстракции фруктанов из клубней топинамбура позволяет снизить температуру экстракции на 10-15 °С и сократить продолжительность процесса до 15 мин. Предложен способ, позволяющий полностью удалить пигментные примеси из полученного экстракта, путем его фильтрации через полисульфонамидную мембрану с порогом удержания 20 кДа с последующей обработкой активированным углем марки ОУ-А.

Подобраны оптимальные условия глубинного гетерофазного культивирования МКБ на питательной среде, содержащей жом клубней топинамбура. Получены лабораторные образцы пробкотического продукта для животных на основе культуры Lactobacillus plantanun, содержащие не менее 1,0х 109 КОЕ/мл клеток МКБ.

На основании полученных результатов проведена технико-экономическая оценка предлагаемой технологии исходя из расчетной мощности производства 2 ООО тонн/год по перерабатываемому сырью.

Глава 1. Обзор литературы

1.1. Характеристика инулина, фруктоолигосахаридов и их источников 1.1.1. Строение и физико-химические свойства фруктанов

Фруктаны - группа углеводов, наиболее распространенными представителями которых считают инулин и фруктоолигосахариды (ФОС), накапливаемые растениями в качестве запасных веществ. Инулин - это полисахарид, содержащий до 65 остатков D-фруктофуранозы (F), соединенных 2—> 1 -(3-гликозидными связями, для гидролиза которых требуется отсутствующий у человека фермент - инулиназа, и концевым остатком D-глюкопиранозы (G), образующей с остатком фруктозы 1 —»2-а-гликозидную связь (см. рис. 1). Имеются сведения, что инулин цикория и георгина также содержит небольшое количество 2—>6-(3-гликозидных связей [2, 9]. Количество таких ответвлений в полимерной цепи не превышает 2% [10]. Инулин впервые был выделен немецким химиком Валентином Розе-мл. из девясила (Inula helenum), о чем сообщалось в опубликованной в 1804 г работе [11].

Рис. 1.1. Структурная формула инулина (по [16]).

ФОС состоят из 2 и более остатков фруктозы, организованных аналогичным образом. При этом концевая молекула глюкозы может отсутствовать, т.е. возможен как вариант ОРп, так и РРП [9]. Иногда, в качестве

синонима ФОС используют термин «олигофруктоза» [12] и «инулоолигосахарид» [13]. Наименьшим гомологом ФОС со степенью полимеризации (СП) 2, фактически, является сахароза (вР). Также к ним относятся кестоза (ОР2) и нистоза (вРз) и др. К не содержащим остаток глюкозы ФОС может быть отнесена инулобиоза (Р2) [2, 13]. Считается, что ФОС могут образовываться в растениях, содержащих инулин, под действием эндогликозидаз [14].

Молекулярная масса фруктанов в зависимости от СП может колебаться в пределах от 340 до 4620 г/моль [15]. По другим данным инулин может иметь молекулярный вес до 5000-6000 [16].

Фруктаны, выделяемые из природных источников, фактически являются смесью ФОС и инулина разной СП, в зависимости от того из какого растения он был получен и от технологии выделения. СП влияет не только физико-химические, но и органолептические свойства. Как инулин, так и ФОС представляют собой в высушенном состоянии белые кристаллические порошки [17]. Инулин не обладает выраженным вкусом и запахом [18]. Тот факт, что коммерчески доступные продукты могут обладать слабо сладким вкусом [19], можно связать с наличием в них ФОС с низкой степенью полимеризации [15].

Инулин характеризуется средней растворимостью в холодной воде, причем растворимость снижается с увеличением СП. Например, растворимость высокомолекулярной фракции инулина из цикория со средней СП 25 при температуре 25°С составляет 25 г/л, не фракционированного инулина со средней СП 12 - 120 г/л, в то время как ФОС со средней СП 4 (максимальная СП 7) - более 750 г/л [20]. Растворимость в воде высокомолекулярной фракции инулина из артишока при комнатной температуре не превышает 5% [18]. При температуре воды от 60°С растворимость высокомолекулярных фракций инулина возрастает [16, 21]. Угол удельного вращения растворов инулина и ФОС может составлять от -17 до -40° в зависимости от фракции. Высокомолекулярные гомологи инулина характеризуется удельным вращением

от-33 до-40° [11].

Фруктаны осаждаются органическими растворителями, такими как ацетон, метанол и этанол, причем последний является наиболее эффективным. Увеличение концентрации этанола приводит к осаждению фракций инулина с меньшей СП. Например, при осаждении инулиноподобных фруктанов, выделенных из корней эхинацеи 80%-ным этанолом, средняя СП продукта составляла 35, при использовании 60%-ного раствора этанола - 44, а 40%-ного -55 [2, 10].

Фруктаны не являются редуцирующим веществом, а также интактны по отношению к пищеварительной системе человека [9, 13]. Заметное разложение высокомолекулярных фракций инулина (до 20 %) начинается при температурах выше 135°С, а при температуре 190°С в течение 60 мин происходит его полное разрушение. При этом образуются и дегидратированные производные [22].

Устойчивость фруктанов к действию кислоты снижается с увеличением температуры при рН от 4 и ниже, однако при кислотности среды выше 5 они устойчивы к температурному воздействию до 100 °С [21, 23].

Гидролиз фруктанов может проходить под действием ферментов, продуцируемых представителями различных групп организмов, что будет подробно освещено ниже.

1.1.2 .Современныеметоды анализа инулина и ФОС

Поскольку обычно, как указывалось выше, анализируемые образцы фруктанов представляют смесь гомологов с различной СП, для получения наиболее полной информации об их строении необходимо подтвердить качественный состав и определить СП. Поэтому в настоящие время применение нашли следующие группы методов, позволяющие получить требуемую информацию с той или иной степенью достоверности: ферментный анализ, хроматографические методы и спектрометрические методы.

Определение СП основано на расчете соотношения фруктоза/глюкоза + 1,

11

получаемого при полном гидролизе инулина. При этом исходят из предположения, что из-за способа биосинтеза инулина его молекула содержит только один остаток глюкозы с редуцирующего конца. Для определения СП используют специальные ферментные наборы или химический гидролиз инулина с последующим разделением Сахаров путем ВЭЖХ или ГХ с детектированием пламенной спектроскопией или масс-спектрометрией [10, 18, 20, 22].

Метод, представленный на рис. 1.2, предполагает последовательную обработку образца амилоглюкозидазами и инулиназами, причем свободные сахара определяют до гидролиза и после каждого его этапа, например, методом ионообменной хроматографии. Описанный метод признан Официальной Ассоциацией химиков-аналитиков (Association of Official Analytical Chemists, АО АС) общепринятым интернациональным методом определения фруктанов в продуктах питания (АОАС 997.08)[20].

Sample

± 1 g fructan

Y

Extraction Dissolution

boiling water; pH 6-5-80 10 min, 85°C > 100 g

-► Sugar analysis 1*

у

Hydrolysis by amyloglucosidase

15 g extract and 15 g buffer pH 4-5

Amyloglucosidase

30 min, 60°C

-► Sugar analysis 2*

▼

Hydrolysis by inulinase

Fructozyme (inulinase) 30 min, 60°C

-► Sugar analysis 3*

* by ion exchange chromatography

Рисунок 1.2. Схема определения инулина и ФОС в продуктах питания (по

[20]).

Авторами [22] проведен сравнительный анализ двух коммерческих наборов для определения инулина производства r-biopharm (Германия) и Megazyme International (Ирландия) с использованием различных марок инулина из цикория и топинамбура. Исследование с использованием набора Megazyme основано на ферментативном гидролизе сахарозы, крахмала и мальтоолигосахаридов, присутствующих в образце, смешанным действием смеси ферментов (инвертазы, пуллуланазы, мальтазы и р-амилазы), за которым следует восстановление углеводов в соответствующий полиол, путем обработки боргидридами щелочных металлов. После чего инулин гидролизуется до глюкозы и фруктозы фруктаназами (экзоинулиназами), а

13

образовавшиеся сахара определяются фотометрически после превращения в присутствии гидразида п-гидроксибензойной кислоты. При анализе с использованием набора г-ЬюрИагт содержание инулина в каждом образце рассчитывается по общему числу глюкозы и фруктозы после кислотного гидролиза, который проводят в присутствии НСЮ4 (0,3 моль/л) при 80 °С в течение 45 мин. Фруктозу и глюкозу определяют, используя гексокиназу, глюкозо-6-фосфатдегидрогеназу и фосфоглюкоизомеразу. Образование восстановленной формы НАДФН измеряют фотометрически. Авторы указывают, что комбинация этих методов, основанная на использовании набора М^агуте с более специфичным энзиматическим определением глюкозы и фруктозы с помощью набора г-ЬюрИагт, является наиболее информативным методом.

Использование газовой хроматографии с масс-спектрометрическим детектированием (ГХ-МС) позволяет определить среднюю СП фруктанов после предварительного гидролиза в кислой среде при нагревании. При этом для расчетов СП используют то же соотношение, что и в случае применения ферментного анализа. Поскольку углеводы в нативной форме не могут быть определены посредством ГХ, получают подвижные производные углеводов. В качестве носителя обычно используют гелий. Например, гидролиз проводят муравьиной кислотой, растворив образцы в безводном метаноле, после чего получают триметилсилиловые производные [18]. В другом варианте метода проводят метилирование фруктанов, используя иодметан, в ДМСО, после чего осуществляют гидролиз в трифторуксусной кислоте [2].

Описано также использование ГХ с пламенно-ионизационным детектором для определения ФОС со СП не более 8 без предварительного гидролиза. В этом случае получают оксим-триметилсилиловые производные [24].

Метод ВЭЖХ применяется для определения инулина и фруктанов достаточно давно. В более ранних исследованиях использовали силикогелевую

14

колонку и ацетонитрил-водную (3:1) подвижную фазу. На выходе определяли редуцирующие сахара. Метод применяли для отделения как концентрации инулина, так и его СП, что требовало предварительного гидролиза в слабокислых условиях. Данный вариант метода позволяет определить суммарное содержание инулина и ФОС, и предполагает отдельное определение свободных глюкозы и фруктозы, отдельное определение глюкозы и фруктозы в составе сахарозы после ферментативного гидролиза и отдельное определение указанных моносахаридов в гидролизате инулина для каждого образца [25].

В последнее время разработан и широко используется для анализа олигофруктанов и инулина метод высокоэффективной анионообменной хроматографии с пульсационным амперометрическим детектированием (Highperformance anion-exchange chromatography coupled with pulsed amperometric detection, HPAEC-PAD). Этот метод позволяет анализировать инулин в растворе без какой либо предварительной обработки и с учетом наличия примесных Сахаров, например глюкозы, фруктозы и сахарозы [3, 14, 22]. Пример хроматограмм коммерческих продуктов ФОС (Raftilose Sinergy) и инулина (Raftilin HP) приведен на рис. 3. Как видно, по хроматограмме можно определить содержание каждого гомолога фруктанов.

Рисунок 1.3. Хроматограмма ФОС (11аШ1о8е 8тег§у) и инулина (ЯайШп НР), полученная методом НРАЕС-РАЭ (по [14]).

Для оценки такого важного показателя как пребиотическая активность инулина может быть применен метод, основанный на его сбраживании чистыми или фекальными культурами микрофлоры кишечника и анализа состава короткоцепочных жирных кислот, который проводится путем капиллярного электрофореза с непрямым УФ детектированием с участием подвижного электролита. Данные оптимизированные методы, как указывают авторы, дают хорошие результаты и просты в исполнении [14].

Среди спектральных методов анализа для подтверждения структуры фруктанов нашли широкое применение ИК-Фурье и ЯМР- спектроскопия. РЖ спектры с преобразованием Фурье позволяют подтвердить соответствие исследуемого и стандартного образца. Пример ИК спектров инулина из цикория и артишока приведен на рис. 1.4. Отмечено, что для ОН-группы инулина характерно возмущение при волновом числе 3353 см"1, а для

карбонильных связей - 1745 см"1 [18].

88 4

«00 3500 3000 2Ш 2000 1900 «X» Я»

(Ь) \Л/ауепитЬеге (ст"1)

Рисунок 1.4. ИК спектры коммерческого инулина из цикория (а) и артишока (Ъ) (по [18]).

Эффективным способом анализа инулина и фруктанов является

1 13

применение Н- и С-ЯМР, а также 2Т> ЯМР-спектроскопии, которые позволяют получить значительные сведения о структуре молекулы [2, 26]. При анализе спектров учитывают, что у поли- и олигосахаридов химические сдвиги атомов углерода мономеров, находящихся «внутри» полимерной цепи, и

атомов терминальных мономеров различаются. Таким образом, зная положения химических сдвигов для этих атомов, можно определить преобладание в

1 Ч ______

образце высокомолекулярного инулина или ФОС. С-ЯМР спектроскопия была успешно применена для определения СП фруктанов из эхинацеи. СП определяли по соотношению интенсивности сигналов атомов углерода в глюкозе и фруктозе. Как указывают авторы, полученный результат хорошо коррелировался с данными ГХ-МС, однако использование метода требует большего количества образца [2].

С целью определения молекулярной массы инулина может быть применен метод гель-хроматографии. Для проведения хроматографии использовали сорбент Сефадекс 0-50, в качестве элюэнта - дистиллированную воду, в качестве стандартов - полиэтиленгликоли: ПЭГ-100, 2000, 3000 и 6000. Проводили рефрактометрическое детектирование. Определенная по данному методу молекулярная масса инулина из клубней топинамбура составляла около 5200. Авторы отмечают, что применение аппаратурно простых хроматографических методов в совокупности со стандартными химическими методами позволяет эффективно контролировать качество сырья и готовой продукции с использованием топинамбура и фруктозно-глюкозных сиропов в виде добавок в функциональные продукты питания с заданными пребиотическими свойствами [27]. Однако необходимо отметить, что данный метод не дает возможности провести идентификацию фруктанов.

В настоящее время исследования ведутся и в области оптимизации классических методов определения фруктанов, основанных на цветных химических реакциях. Определены оптимальные условия проведения колориметрической реакции инулина с резорцином. Показано влияние состава реакционной смеси (соотношение этанол: соляная кислота: вода), времени нагрева и температуры на интенсивность оптической плотности. Для стабилизации аналитического сигнала предложено введение тиомочевины. Установлено, что предварительная экстракция корневищ и корней девясила

высокого 95%-ным этанолом способствует максимальному удалению свободных углеводов, что повышает точность определения [28].

Следует отметить, что последний метод и подобные ему являются менее информативными, чем описанные выше, но, с другой стороны они не требуют использования дорогостоящего оборудования, являются менее трудоемкими, поэтому могут применяться в случаях, когда требуется проведение большого количества определений в короткий срок, например при оптимизации процесса выделения фруктанов.

1,1.3. Источники инулина и ФОС и способы их выделения

Фруктаны, в том числе инулин, служат запасными углеводами более чем в 36 тысяч различных растений, главным образом семейства Сложноцветных [29], а также Лилейных, Злаковых и некоторых других [2, 11, 18, 26].

Активным поиском источников инулина занялись еще в первой половине XX века. Например, инулин был выделен из корней камасы, дикого чеснока и бальзамового корня (ВаЬатоггЫга sagittata), причем первые два принадлежат к семейству Лилейных, в то время как последний - к Сложноцветным [11].

Фруктаны различной степени полимеризации содержатся в цикории и топинамбуре [3], спарже, чесноке и эхинацее [2], одуванчике и артишоке [18], агаве [30] и ряде других растений. Из дикорастущих растений России содержание инулина установлено, в частности, для мать-и-мачехи, маральего корня, лопуха (до 45 %), одуванчика (до 24%), цикория (до 49 %) [31].

В связи с недавно установленной высокой ценностью фруктанов как пребиотиков внимание исследователей привлекают продукты питания растительного происхождения, которые регулярно употребляются в пищу человеком и могут служить непосредственным источником инулина и ФОС. Например, исследование продуктов питания растительного происхождения, обычно употребляемых в Испании, показало, что из 13 растительных продуктов инулин содержали чеснок (13,54 % от СВ), лук (1,39 % от СВ) и артишок

(0,48% от СВ). Интересно, что в эндиве (салатном цикории) инулин обнаружен не был, а преобладали фруктоза и неперевариваемые олигосахариды, которые, впрочем, авторы не идентифицировали как ФОС [32].

Некоторые авторы показывают, что в корнях цикория преобладает именно высокомолекулярный инулин, СП которого достигает 60-65 [12], в то время как остальные растения содержат смесь инулина и ФОС в том или ином соотношении. С другой стороны, в исследовании [18] установлено, что инулин производства Sigma из топинамбура имеет СП 26, а из цикория - 24.

В табл. 1.1 перечислены наиболее широко известные источники инулина и содержание в них этого полисахарида.

Таблица 1.1.

Общеизвестные источники инулина (по [19]).

Источник Артишок Корень спаржи Бананы

Корень цикория Клубни георгина Одуванчик

Большой лопух (корень) Чеснок

Иерусалимский артишок (топинамбур)

Лук-порей

Лук

Содержание инулина, %

2-6

10-15 0,3

15-20 15-20 15-20 16

Рожь

Козлобородник

Пшеница

Якон

15-25 15-20 10-15 2-6 0,7

15-20 0,4

15-20

Инулиноподобные фруктаны из корней эхинацеи выделяли путем экстракции теплой водой и осаждали этанолом различной концентрации (40, 60, 80% об.). Установлено, что данные фруктаны в основном неразветвленные, хотя присутствует некоторое количество 2,6-связей и ветвлений. Установлено, что более низкой концентрацией этанола осаждалась фракция фруктанов с более высокой средней степенью полимеризации: 35 для 80%-ного этанола, 44 - для 60%-ного, 55 для 40%-ного [2].

Еще один представитель Сложноцветных, использованный для выделения инулиноподобных фруктанов — ромашка Matricaria maritima.

1 1Ч

Сочетание Н- и С-ЯМР спектроскопии для фруктанов, полученных из порошка лиофилизированной наземной части растения водно-спиртовой экстракцией с последующей очисткой ультрафильтрацией и ионообменом, позволило определить структуру молекул. Путем осаждения этанолом была выделена фракция со средней степенью полимеризации 20 - 22, определенной по соотношению фруктоза/глюкоза, полученного с использованием ВЭЖХ. По данным ЯМР для этой фракции характерно наличие 1,2-гликозидных связей в подавляющем количестве. Высказано предположение, что инулиноподобные фруктаны у данного вида растений выполняют защитную функцию, предохраняя их от солевого стресса [26].

Высокомолекулярный инулин был выделен из сельскохозяйственных отходов переработки артишока (Cynara scolymus L.) - его прицветника, путем водной экстракции. Экстракт подвергали фильтрации, ультрафильтрации и ионообмену, осаждению захолаживанием и отделению осадка инулина, который лиофилизировали. Средняя степень полимеризации инулина, определенная ферментным анализом составляла 46, что больше, чем у инулина топинамбура и цикория. Газовая хроматография в сочетании с масс-спектрометрическим детектированием показала, что основным моносахаридом инулина была фруктоза, а ферментный анализ установил доминирование 0-1,2-гликозидных связей. Таким образом, полученный из прицветников артишока

инулин, как утверждают авторы, может быть использован в различных пищевых продуктах [18].

Путем водной экстракции при температуре 80-99°С с последующей очисткой активированным углем и ионообменной хроматографией была получена фракция фруктанов из листьев и стеблей агавы (Agave tequilana Weber var. azul). В опытах с фекальными культурами показано, что фруктаны агавы обладают выраженными пребиотическими свойствами, сопоставимыми с коммерческими препаратами. Авторы также указывают, что агава является древнейшим источником пребиотических веществ в Северной Америке, история потребления которого насчитывает около 10 тыс. лет [30].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Кареткин, Борис Алексеевич, 2013 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Gibson G., Roberfroid M.B. Dietary modulation of the human colonic microflora - introducing the concept of prebiotics//J. Nutr. 1995. V. 125. P. 1402-1412.

2. Wack M., Blaschek W. Determination of the structure and degree of polymerisation of fructans from Echinacea purpurea roots//Carbohydrate Research. 2006. V. 341. № 9. P. 1147-1153.

3. Lingyun W., Jianhua W., Xiaodong Zh., Da Т., Yalin Y., Chenggang C., Tianhua F., Fan Zh. Studies on the extractingtechnicalconditions of inulin from Jerusalem artichoke tubers //Journal of Food Engineering. Vol. 79, № 3, 2007, P. 1087-1093.

4. Королёва Ю. С. Удобрение топинамбура при многолетнем использовании плантаций: автореф. дисс.... канд. с.-х. наук. - Тверь. 2009. - 24 с.

5. Голубев В. Н. , Волкова И.В., Кушалаков Х.М. Топинамбур. Состав, свойства, способы переработки, области применения. - М:Б.и., 1995. - 81 с.

6. Акопян В.Б., Ершов Ю.А. Основы взаимодействия ультразвука с биологическими объектами. - М.: Изд-во МГТУ им. Н.Э. Баумана. 2005. -224 с.

7. Мартинсон Е. А. Технология комплексной переработки плодов шиповника: дис. ... канд. тех. наук. -М., 2005. - 138 с.

8. Пышманцева Н. А. Новые способы использования пробиотиков в животноводстве: автореф. дис. ... докт. сельскохоз. наук. - Краснодар, 2012.-41 с.

9. Роберфруа М. Роль пребиотиков и здоровье человека// Пища и пищевые добавки. Роль БАД в профилактике заболеваний: Пер. с англ. / Под ред. Ренсли Дж., Доннелли Дж., Рида Н. - М.: Мир, 2004. - с. 209-221.

10. Moerman F.T., Van Leeuwen М.В., Delcour J. A.Enrichment of Higher

Molecular Weight Fractions in Inulin// J. Agric. Food Chem. 2004. V. 52. № 12. P. 3780-3783.

11. Yanovsky E., Kingsbury R.M. New Sources Of Inulin //Journal of the American Chemical Society. 1931. V. 53. №4. P. 1597-1601.

12. Kelly G. Inulin-type prebiotics - a review: Part 1//Altern. Med. Rev. 2008. V. 13. P. 315-329.

13. Ronkart S.N., Blecker C.S., Fourmanoir H., Fougnies C., Deroanne C., Van Herck J.-C., Paquot M. Isolation and identification of inulooligosaccharides resulting from inulin hydrolysis //Analytica Chimica Acta. 2007.V. 604. № l.P. 81-87

14. C. Corradini, F. Bianchi, D. Matteuzzi, A. Amoretti, M. Rossi, S. Zanoni. Highperformance anion-exchange chromatography coupled with pulsed amperometric detection and capillary zone electrophoresis with indirect ultra violet detection as powerful tools to evaluate prebiotic properties of fructooligosaccharides and inulin //Journal of Chromatography. 2004. V. 1054. P. 165-173.

15. de Gennaro S., Birch G.G., Parke S.A., Stancher B. Studies on the physicochemical properties of inulin and inulin oligomers //Food Chemistry. 2000. V. 68, №2, P. 179-183.

16. Shakir I., Panfilov V., Kulinenkov D., Manakov M. Inulin recerving during Jerusalem Artichoke complex processing //ISEB-99 Meeting Biopolimers, 25.03.1999, Leipzig, Germany. P. 38-39.

17. Ronkart S.N., Paquot M., Fougnies C., Deroanne C., Van Herck J.-C., Blecker C. Determination of total water content in inulin using the volumetric Karl Fischer titration//Talanta. 2006. V. 70. № 5. P. 1006-1010

18. Lopez-Molina D., Navarro-Martinez M.D., Melgarejo F. R., Hiner A.N.P., Chazarra S., Rodriguez-Lopez J. N. Molecular properties and prebiotic effect of inulin obtained from artichoke (Cynara scolymus L.)//Phytochemistry. 2005. V. 66. № 12. P. 1476-1484.

19. Евразийский патент № 004104. Новые фракции инулина, способы их получения, пищевые продукты и гранулированные заменители сахара, содержащие указанные фракции. Сильвер Барнард Стюарт. Заявл. 27.08.2001; опубл. 25.12.2003, Бюл. № 6.

20. Franck A. Technological functionality of inulin and oligofructose // British Journal of Nutrition. 2002, V/ 87, № 2, P. 287-291.

21. Акопян Ю.Р. Разработка технологии получения фруктозного сиропа из топинамбура. Автореферат дис. ... канд. техн. наук - М.: МГАПП, 1994. -19 с.

22. Bohm A., Kaiser I., Trebstein A., Henle Т. Heat-induced degradation of inulin //Eur. Food Res. Technol. 2005. V. 220. P. 466^171.

23. P. Glibowski, Anna Bukowska. The effect of pH, temperature and heating time on inulin chemical stability //Acta Scientiarum Polonorum, Technol. Aliment. 2011 V. 10. №2, P. 189-196.

24. Makras L., Van Acker G., De Vuyst L. Lactobacillus paracasei subsp. paracasei 8700:2 Degrades Inulin-Type Fructans Exhibiting Different Degrees of Polymerization// J. of Applied and Environmental Microbiology. 2005, V. 71. № 11. P. 6531-6537.

25. Wight A.W., van Niekerk P.J. Determination of Reducing Sugars, Sucrose, and Inulin in Chicory Root by High-Performance Liquid Chromatography. //J. Agric. Food Chem. 1983. V. 31. P.282-285.

26. Cerantola S., Kervarec N., Pichon R., Magne C., Bessieresa M.-A., Deslandes E. NMR characterisation of inulin-type fructooligosaccharides as the major water-soluble carbohydrates from Matricaria maritima (L.).// Carbohydrate Research. 2004. V. 339. P. 2445-2449.

27. Гасанова E.C., Яровой C.A., Котов B.B., Полянский К.К. Исследование продуктов комплексной переработки топинамбура методом гельпроникающей и тонкослойной хроматографии //Сорбционные и хроматографические процессы. 2010. Т. 10. №. 6. С. 916-922.

179

28. Олейников Д.Н., Танхаева JI.M. Исследование колориметрической реакции инулина с резорцином в зависимости от условий ее проведения //Химия растительного сырья. 2008. №1. С. 87-93.

29. Soja G., Haunold Е., Praznik W.Translocation of 14C-assimilates in Jerusalem Artichoke (Helianthus tuberosus L.)// Journal of Plant Physiology. 1989. V. 134, № 2, P. 218-223

30. Gomez E., Tuohy K.M., Gibson G.R., Klinder A., Costabile A. In vitro evaluation of the fermentation properties and potential prebiotic activity of Agave fructans// Journal of Applied Microbiology. 2010. V. 108. P. 2114-2121.

31. Атлас лекарственных растений СССР. Под ред. акад. Н.Н. Цицина - М.: Гос. изд-во медицинской литературы, 1962. - 711 с.

32. Espinosa-Martos I., Rico Е., Ruperez P. Low Molecular Weight Carbohydrates in Foods Usually Consumed in Spain. Note//Food Science and Technology International. 2006. V. 12. № 6. P. 171-175.

33. Миронова JI.H., Пупыкина K.A., Денисова С.Г., Файзуллина P.P. Результаты сравнительного изучения химического состава подземных органов георгины и топинамбура //Вестник Оренбургского государственного университета. 2009. №6. С. 234-236.

34. Kowalski, R., Wiercinski, J. Evaluation of some Silphium species as alternative inulin raw materials // Annales Universitatis Mariae Curie-Sklodowska. Sectio E Agricultura. 2004. V. 59. № 1. P. 189-195.

35. Мяцку Я., Крейча И. Атлас лекарственных растений. Пер. со словац. -Братислава: Изд-во Славацкой Академии наук, 1970. - 462 с.

36. А.с. СССР 1214104. Способ получения инулина. В.В.Зинченко, П.П.Хворост, Н.Ф.Комиссаренко, Н.Е.Воробьев, Г.В.Оболенцева, В.А.Бирюк, В.А.Мдгварели и С.И.Бакай. Заявл. 20.08.84; опубл. 28.02.86, Бюл. № 8.

37. Матасова С. А., Митина Н. А., Рыжова Г. Л., Жуганов Д. О., Дычко К. А. Получение сухого экстракта из коней девясила высокого и изучение его

химического состава. //Химия растительного сырья. 1999. №2, с. 119-123.

38. Патент России 2178708. Способ получения инулина. Трубников A.A., Фурса Н.С., Литвиненко В.И., Аммосов A.C., Попова Т.П., Лучкин A.A. Заявл. 03.12.1999; опубл. 27.01.2002, Бюл. № 3.

39. А. с. СССР 487118. Способ получения инулина. Федоткин И.М., Герасименко A.A., Бобровник Л.Д., Шапошникова З.Б., Дыченко A.C., Зелинский В.В. Заявл. 05.03.73; опубл. 05.10.75, Бюл. № 37.

40. Патент России 2066965. Способ получения инулина из инулинсодержащего сырья. Голубев В.Н., Волкова И.В.. Заявл. 27.07.1995; опубл. 27.09.1996. Бюл. № 28.

41. Патент России 2001621. Способ получения инулина. Борисенко В.Г., Королев В.Д., Педанов Ф.Р., Кондратенко В.И., Пасько Н.М. Заявл. 29.05.92; опубл. 30.10.93, Бюл. № 39-40.

42. Патент России 2121848. Способ получения инулина. Чепурной И.П., Кунижев С.М., Швецов Э.Н., Гейко В.Н. Заявл. 02.12.1993; опубл. 20.11.1998, Бюл. №32.

43. Патент России 2131252. Способ получения инулина из клубней топинамбура для медицинских и пищевых целей (варианты). Самокиш И.И., Зяблицева Н.С., Компанцев В.А. Заявл. 23.07.1996; опубл. 10.06.1999, Бюл. № 16.

44. Патент России 2148588. Способ получения инулина из клубней топинамбура. Манешин В.В., Артемьев В.Д., Васильева Ю.П. Заявл. 20.08.1998; опубл. 10.05.2000, Бюл. № 13.

45. Патент России 2175239. Способ получения инулина и других фруктаносодержащих продуктов из топинамбура и другого инулинсодержащего сырья. Аравина Л.А., Городецкий Г.Б., Иванова Н.Я., Комаров Е.В., Момот H.H., Черкасова М.А. Заявл. 31.03.1999; опубл. 27.10.2001, Бюл. №30.

46. Патент России 2281291. Способ получения инулинсодержащего раствора

181

из топинамбура. Манешин В.В., Артемьев В.Д., Васильева Ю.П. Чеботарева Т.И. Заявл. 24.11.2004; опубл. 10.08.2006, Бюл. № 22.

47. Патент России 2385643. Способ комплексной переработки топинамбура. Шаззо Р.И., Квасенков О.И., Кондратенко В.В., Купин Г.А. Заявл. 06.04.2009; опубл. 10.04.2010, Бюл. № 10.

48. Шаззо Р.И., Кондратенко В.В., Купин Г.А., Шаззо P.C., Екутеч Р.И. Технологические аспекты производства инулинсодержащего концентрата из подземной биомассы топинамбура //Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. 2010. № 2. С. 49-51.

49. Патент России 2 400 491. Способ получения инулинсодержащего раствора из топинамбура. Шаззо Р.И., Квасенков О.И., Кондратенко В.В., Купин Г.А., Екутеч Р.И., Бойко В.И. Заявл. 06.04.2009; опубл. 27.09.2010, Бюл. № 27.

50. Патент России 2167198. Способ производства фруктозного сиропа из топинамбура. Кантере В.М., Винаров А.Ю., Мухамеджанова Т.Г., Ипатова Т.В., Еремин В.А., Сидоренко Т.Е. Заявл. 22.06.2000; опубл. 20.05.2001.

51. Kleiderer Е.С., Englis D.T. Hydrolysis of Inulin under Pressure // Industrial and engeneering chemistry. 1931. V. 23. P. 332 - 334.

52. Тертычная Т.Н. Исследование биосинтеза и некоторых физико-химических свойств инулиназы Aspergillus awamori ВКПМ-2250. Автореферат дис. ... канд. биол. наук - Воронеж.: ВГТА, 1994. - 24 с.

53. Рутковская Т.Р., Шуваева Г.П., Корнеева О.С. Инулиназа дрожжей Sacharomyces cerevisiae ВГШ-2. Препаративное получение и некоторые физико-химические свойства // Фундаментальные исследования. Биологические науки. 2010. № 10. С. 17-24.

54. Грачева И.М. Технология ферментных препаратов: Учебник для студентов ВУЗов. - М.; Агропромиздат, 1987 - 335 с.

55. Мещерякова O.JL, Корнеева О.С., Шуваева Г.П. Сравнительная характеристика свойств свободной и иммобилизованной ß-

182

фруктофуранозидазы // Современные проблемы науки и образования. 2012. №2. С. 356-363.

56. Патент России 2383625. Способ ферментативного гидролиза инулина в молочно-растительном экстракте якона. Мельникова Е.И., Рудниченко Е.С., Богданова Е.В., Коренман Я.И., Нифталиев С.И., Корнеева М.М. Заявл. 29.10.2008; опубл. 10.03.2010, Бюл. № 7.

57. Патент России 2486257. Способ ферментативного гидролиза инулина в молочно-растительном экстракте скорцонеры. Мельникова Е.И., Богданова Е.В., Самойлова М.А. Заявл. 26.04.2012; опубл. 27.06.2013 Бюл. № 18.

58. Blecker С., Fougnies С., van Herck J.-С., Chevalier J.-P., Paquot M. Kinetic Study of the Acid Hydrolysis of Various Oligofructose Samples. // J. Agric. Food Chem. 2002. V. 50. P. 1602-1607

59. Патент России 2118369. Способ получения фруктозосодержащего продукта из топинамбура. Самокиш И.И., Зяблицева Н.С., Компанцев В.А. Заявл. 27.01.1997; опубл. 27.08.1998.

60. Патент России 2218061. Способ переработки клубней топинамбура. Голубев В.Н., Беглов С.Ю., Кочнев Н.К., Карачун Ю.П., Воробейчиков Д.В. Заявл. 14.03.2002; опубл. 10.12.2003.

61. Food Polysaccharides and Their Applications / Edited by Stephen A.M., Phillips G.O., Williams P.A. - Boca Raton-London-New York: CRC Press Taylor & Francis Group, 2006 - 712 p.

62. British Pharmacopoeia 2009. Volume I & II. Monographs: Medicinal and Pharmaceutical Substances. Inulin. Crown Copyright. 2008.

63. Физиология человека. В 3-х томах. Том 3. Пер. с англ. / Под ред. Шмидта Р., Тевса Г. - М.: Мир, 1996 - 198 с.

64. Nolin T.D., Colaizzi I.V., Palevsky P.M., Matzke G.R., Frye R.F. Rapid microtiter plate assay for determination of inulin in human plasma and dialysate //Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 2002. V. 28. P. 209-215.

65. Furlan L.T. R., Lecot J., Padilla A. P., Campderros M.E., Zaritzky N.E.

183

Calorimetric study of inulin as cryo- and lyoprotector of bovine plasma proteins// Applications of calorimetry in a wide context - differential scanning calorimetry, isothermal titration calorimetry and microcalorimetry/ Edited by Amal Ali Elkordy - InTech, 2013. - P. 197-218. / [электронный ресурс] //http://www.intechopen.com^ooks/applications-of-calorimetry-in-a-wide-context-differential-scanning-calorimetry-isothermal-titration-calorimetry-and-microcalorimetry.

66. de Jonge J., Amorij J.-P., Hinrichs W.L.J., Wilschut J., Huckriede A., Frijlink H. W. Inulin sugar glasses preserve the structural integrity and biological activity of influenza virosomes during freeze-drying and storage //European Journal of Pharmaceutical Sciences. 2007. V. 32. № 1. P. 33^14.

67. Savini M., Cecchini C., Verdenelli M.C., Silvi S., Orpianesi C., Cresci A. Pilot-scale production and viability analysis of freeze-dried probiotic bacteria using different protective agents //Nutrients. 2010. V 2. № 3. P. 330-339.

68. Nestor J., Esquena J., Solans C., Luckham P.F., Musoke M., Levecke В., Booten K., Tadros T.F. Interaction forces between particles stabilized by a hydrophobically modified inulin surfactant //Journal of Colloid and Interface Science. 2007. V. 311. № 2. P. 430-437

69. Stevens C.V., Meriggi A., Peristeropoulou M., Christov P.P., Booten K., Levecke В., Vandamme A., Pittevils N., Tadros T.F. Polymeric surfactants based on inulin, a polysaccharide extracted from chicory. 1. Synthesis and interfacial properties // Biomacromolecules. 2001. V.2. № 4. P.1256-1259.

70. Mavredaki E., Stathoulopoulou A., Neofotistou E., Demadis K.D. Environmentally benign chemical additives in the treatment and chemical cleaning of process water systems: Implications for green chemical technology // Desalination. 2007. V. 210. P. 257-265

71. Ярошевич М.И., Вечер H.H. Топинамбур (Helianthus tuberosus L.) -перспективная культура многоцелевого использования //Труды БГУ. 2010, Т. 4, №2. С. 1-12

72. Решетник Л.А., Прокопьева О.В., Кочнев Н.К. Диетическое и лечебное назначение топинамбура // Сибирский медицинский журнал. 1997. Т. 11. №4. С. 11-15.

73. Светашова Л. А. Совершенствование технологии возделывания топинамбура в ЦЧР: автореф. дис. ... канд. сельскохоз. наук. - Рамонь, 2000.-24 с.

74. Кочнев Н.К., Калиничева М.В. Топинамбур - биоэнергетическая культура XXI века - M.: «Apec», 2002. - 76 с.

75. Татрова М.Т. Влияние удобрений на урожайность и качество продукции топинамбура на дерново-глеевой оподзоленной почве РСО-Алания: автореф. дис. ... канд. сельскохоз. наук. - Владикавказ, 2009. - 24 с.

76. Аникисенко Т.И. Научное и практическое обоснование использования высокоэнергетических кормов из топинамбура в рационах коров юга Восточной Сибири: автореф. дисс. ... докт. сельскохоз. наук. - Барнаул, 2009-37 с.

77. Байбакова Ю.В. Влияние доз и соотношений элементов минерального питания на продуктивность топинамбура и качество урожая: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Тверь, 2005 - 28 с.

78. Николаев П.В. Продуктивность топинамбура при разных технологиях возделывания в условиях Верхневолжья: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Тверь, 2011 - 20 с.

79. Усанова 3. И., Кузнецов П. Н., Осербаев А. К., Рула Е. С. Исследование приемов обработки почвы и уровня минерального питания при возделывании топинамбура сорта Скороспелка //Современные проблемы науки и образования. Сельскохозяйственные науки. 2012. № 3. [электронный ресурс]: URL: www.science-education.ru/103-6164. Дата обращения: 05.10.2013

80. Абрамчук A.B., Лаптев В.Р. Продуктивность топинамбура в зависимости от сроков посадки //Аграрный вестник Урала. 2009. № 12. С. 39-40.

81. Гасанова Е.С., Сорокин A.C., Котов В.В. Влияние агротехнических приемов при выращивании топинамбура на содержание и свойства в нем инулина// Вестник Мичуринского ГАУ. 2011. № 1.4. 1. С 93-96.

82. [электронный ресурс]: http://topinarnbur.net/price/harakteristika poroshok uluch.html. Дата обращения: 10.10.2013

83. Патент России 2218061. Способ получения инулино-пектинового концентрата в порошке для медицинских и пищевых целей из свежего сырья. Самокиш И.И., Зяблицева Н.С., Компанцев В.А. Заявл. 06.05.1997; опубл. 27.01.2000, Бюл. №3.

84. Патент России 2218061. Способ получения инулино-пектинового концентрата в порошке для медицинских и пищевых целей из высушенного сырья. Самокиш И.И., Зяблицева Н.С., Компанцев В.А. Заявл. 19.04.1999; опубл. 20.06.2001, Бюл. №17.

85. Сафронова Т.Н., Ермош Л.Г., Березовикова И.П. Новый вид продукта переработки топинамбура// Вестник КрасГАУ. 2010. № 9. С. 168-174.

86. Казакова О.Н., Мезенова О.Я. Оптимизация рецептуры песочного печенья для диабетиков с растительными добавками //Известия Высших учебных заведений. Пищевая технология. 2012. Т. 325. № 1. С. 53-56.

87. Патент России 2409966. Способ получения молочно-растительного экстракта топинамбура. Мельникова Е.И., Нифталиев С.И., Фисенко М.О. Заявл. 25.05.2009; опубл. 27.01.2011, Бюл. № 3.

88. Патент России 2378940. Биологически активная добавка к пище. Горлов И.Ф., Божкова С.Е., Сложенкина М.И., Струк А.Н., Солонин A.B., Соловьянова Н.В., Мирошникова H.H., Фелик С.В., Бараников В.А. Заявл. 28.03.2008; опубл. 27.09.2010, Бюл. № 27.

89. Патент России 2 400 107. Биологически активная добавка к пище. Горлов И.Ф., Мосолов A.A., Божкова С.Е., Юрина Е.С., Абдрозякова Е.В., Балышев A.B. Заявл. 28.01.2009; опубл. 27.09.2010, Бюл. № 27.

90. Патент России 2379349. Способ производства ароматизированного светлого пива. Квасенков О.И. Заявл. 04.05.2009; опубл. 20.01.2010 Бюл. № 2.

91. Патент России 2384276. Способ производства ароматизированного кофейного напитка "Днепровский". Квасенков О.И. Заявл. 31.10.2008; опубл. 20.03.2010 Бюл. № 8.

92. Егорова Т.С. Эффективность использования новых биологически активных добавок при производстве говядины: автореф. дисс. ... канд. биол. наук -Волгоград, 2010 - 22 с.

93. Федорова В.В., Крыштоп Е.А., Грибцова Т.В. Эффективность применения биологически активных добавок «Топинамбур» и «ВитаСелен» при откорме молодняка свиней //Научный журнал КубГАУ. 2012. №80(06). С. 1-11. [электронный ресурс]: http://ej.kubagro.ru/2012/06/pdf/41.pdf. Дата обращения: 15.10.2013.

94. Кыонг Ф.А.. Получение белка одноклеточных из растительного сырья по малоотходной и энергосберегающей технологии: Автореф. дисс. ... канд. тех. наук. - М.,1998. - 22 с.

95. Шуваева Г.П., Корнеева О.С., Божко О.Ю. Производство дрожжей с использованием экстрактов топинамбура Helianthus tuberosus // Биотехнология. 2012. № 3. С.67-68.

96. Пикозина М.А., Чупрова Н.А., Рязанова Т.В. Культивирование грибов рода Trichoderma на вегетативной части топинамбура //Химия растительного сырья. 2013. № 1. С. 77-81.

97. Barthomeuf С., Regerat F., Pourrat H. High-yield ethanol production from Jerusalem artichoke tubers //World Journal of Microbiology and Biotechnology. 1991.V. 7, №4, P. 490-493.

98. Патент России 2 281330. Способ производства этилового спирта из инулинсодержащего сырья. Вагабов М.В., Корнеева О.С., Керимова З.М., Мальцева Т.В., Мангуева З.М. Заявл. 20.12.2004; опубл. 10.08.2006 Бюл. №

99. Чупрова Н.А., Рязанова Т.В. Получение биоэтанола из вегетативной части топинамбура// Химия растительного сырья. 2010. №2. С. 49-52.

100. Leahy S.C., Higgins D.G., Fitzgerald G.H., van Sinderen D. Getting better with bifidobacteria //Journal of Applied Microbiology. 2005. V. 98. № 6. P. 13031315.

101. Ленцнер А.А., Ленцнер Х.П. Актуальные проблемы микроэкологии человека. //Республиканский сборник научных трудов «Аутофлора человека в норме и патологии и ее коррекция»/ Под ред. Блохиной И.Н., Соколовой К.Я. - Горький: ГГМИ, 1988. - С. 10-14

102. Шендеров Б.А., Манвелова М.А. Функциональное питание и пробиотики - микроэкологические аспекты. - М.: Агар, 1997. - 24 с.

103. Report of a Joint FAO/WHO expert consultation on evaluation of health and nutritional properties of probiotics in food. - Cordoba, 2001. - 34 p. [электронный ресурс]:

http://www.who.int/foodsafetv/publications/fs_management/en/probiotics.pdf Дата обращения: 8.10.2013.

104. Weichselbaum Е. Probiotics and health: a review of the evidence //Nutrition Bulletin. 2009. V. 34. № 4. P. 340-373.

105. Гончарова Г.И. Бифидофлора человека, ее защитная роль организма и обоснование сфер применения препарата бифидумбактерин: автореф. дис. ... докт. биол. наук. - М. 1982. - 38 с.

106. Гончарова Г.И., Семенова Л.П., Хаймович И.В., Власенко А.П., Гумерова О.П. Бифидумбактерин и сфера его применения. //Республиканский сборник научных трудов «Аутофлора человека в норме и патологии и ее коррекция»/ Под ред. Блохиной И.Н., Соколовой К.Я. - Горький: ГГМИ, 1988. - С.80-85.

107. Селиванова Н.Н., Пугачев В.Ф. Новый продукт лечебного питания на основе овощных соков, заквашенных лактобацилами, и его применение в

188

онкологической клинике./УРеспубликанский сборник научных трудов «Аутофлора человека в норме и патологии и ее коррекция»/ Под ред. Блохиной И.Н., Соколовой К.Я. - Горький: ГГМИ, 1988. - С 92-96.

108. Григорьев А. В. Общие принципы формирования кишечного микробиоценоза человека //Медичний всесвгг. 2002. Т. 2, № 1-2. С. 168173.

109. Левков Л.А. Цитадгезия лактобацилл в условиях смешанных популяций //Республиканский сборник научных трудов «Аутофлора человека в норме и патологии и ее коррекция»/ Под ред. Блохиной И.Н., Соколовой К.Я. - Горький: ГГМИ, 1988. - С. 64-70.

110. Далин М.В., Фиш Н.Г. Адгезины микроорганизмов. //Итоги науки и техники. Серия «Микробиология». Т. 16. Под ред. Огаркова В.И. -М.1985.- 106 с.

111. Bibiloni R., Perez P.F., Garrote G.L., Disalno E.A., De Antoni G.L.. Surface Characterization and Adhesive Properites of Bifidobacteria// Methods in enzymology. 2001. V. 316. P. 411-427.

112. Sharon N., Eshdat Y., Silverblatt F.J., Ofek I. Bacterial adherence to cell surface sugars.// Adhesion and microorganism pathogenieity. - London, 1981. -P. 119-142.

113. Rolf Freter. Mechanisms of association of bacteria with mucosal surfaces. //Adhesion and microorganism pathogenieity. - London, 1981. - P. 36-55

114. Perez P.F., Minnaard Y., Disalvo E.A., De Antoni G.L. Surface Properties of Bifidobacterial Strains of Human Origin//Appl. and Envir. Microbiology. 1998. V. 64. № 1. P. 21-26.

115. Горская E.M. Механизмы развития микроэкологических нарушений в кишечнике и новые подходы к их коррекции: Автореф. дисс. ... докт. мед. наук.-М., 1992-53 с.

116. MacFarlane S., MacFarlane G. Т. Composition and Metabolic Activities of Bacterial Biofilms Colonizing Food Residues in the Human Gut//J. of Applied

189

and Environmental Microbiology. 2006. V. 72. № 9. P. 6204-6211.

117. Weichselbaum E. Probiotics and health: a review of the evidence //Nutr. Bull. 2009. V. 34. №4. P. 340-373.

118. Зитаре И.К. Бактериальная флора кишечника здоровых и больных колибактериозом телят и ее нормализация бифидумбактерином: Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. вет. наук: - Тарту, 1983. - 16 с.

119. Бурнышева Н.В. Эффективность применения пробиотиков при выращивании телят в молочный период в условиях пермского края: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Киров-Пермь, 2007 - 20 с.

120. Мухамадьярова A.JI. Эффективность использования пробиотика Реалак при выращивании телят молочного периода: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Саранск, 2004 - 19 с.

121. Шумский В.А. Влияние пробиотиков в комплексе с адсорбентом на физиологический статус телят, их рост и развитие: автореф. дисс. ... канд. биолог, наук. - Белгород, 2005 - 19 с.

122. Ашихмин Д.С. Особенности пищеварения и обмена веществ у молодняка свиней при включении в рацион пробиотика «Проваген»: автореф. дисс. ... канд. биолог, наук. - Орел, 2012-21 с.

123. Соковых О.В. Изучение биологических свойств штамма бактерий Bacillus subtilis В-8130 и эффективность использования пробиотиков на его основе при откорме свиней: автореф. дисс. ... канд. биолог, наук. -Дубровицы, 2006 - 29 с.

124. Черненок Ю.Н. Особенности обмена веществ и продуктивность у свиноматок и их потомства при скармливании пробиотиков: автореф. дисс. ... канд. биолог, наук. - Боровск, 2009 - 22 с.

125. Шинкаревич Е.Д. Эффективность использования пробиотика «Мультибактерин» в рационах поросят-отъёмышей: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Великий Новгород, 2009 - 18 с.

126. Григорьева Е.В. Морфофункциональная оценка влияния пробиотика олин

на организм цыплят-бройлеров: автореф. дисс. ... канд. биолог, наук. -Саранск, 2013-21 с.

127. Димитриева А.И. Влияние пробиотиков «Продам» и «Моноспорин» на естественную резистентность, продуктивность и качество мяса молодняка кур: автореф. дисс. ... канд. ветеринар, наук. - Чебоксары, 2012 - 22 с.

128. Ишимов В.А. Влияние пробиотических препаратов на продуктивность цыплят-бройлеров: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Курган, 2012- 19с.

129. Назарова Е.А. Физиолого-биохимический статус и продуктивные качества цыплят-бройлеров при комплексном использовании лактоамиловорина и селенита натрия: автореф. дисс. ... канд. биолог, наук. - Боровск, 2012 - 20 с.

130. Цебоева Ю.С. Хозяйственно-биологические особенности цыплят-бройлеров при добавках в рационы пробиотика и препаратов антиоксидантов: автореф. дисс. ... канд. сельскохоз. наук. - Владикавказ, 2011 -23 с.

131. Патент России 2084233. Способ получения пробиотика для ветеринарии. Ивановский А.А., Вепрева Н.С., Зимирева В.В., Лагунова О.Н. Заявл. 15.07.1994; опубл. 20.07.1997

132. Патент России 2031937. Штамм Bifidobacterium globosum, используемый для приготовления пробиотического препарата для ветеринарии. Панин А.Н., Серых Н.И., Малик Е.В., Вершинина И.Ю. Заявл. 17.10.1991; опубл. 27.03.1995, Бюл№ 9

133. Патент России 2209630. Способ производства пробиотической добавки. Грунская В.А., Борисова Г.В., Березина Г.Ю., Щекотуров В.Л. Заявл. 16.07.2001; опубл. 10.08.2003, Бюл № 22.

134. Патент России 2146935. Сухой имунопробиотический препарат для птицеводства. Зинченко В.Б., Зинченко Е.В., Панин А.Н., Сандин М.М., Черепанов П.А. Заявл. 24.04.1996; опубл. 27.03.2000, Бюл № 9.

135. Патент России 2412604. Сыворотка молочная, обогащенная лактатами (варианты). Бабкин Г.А., Забережный А.Д., Коваленко О.В. Заявл. 19.06.2009; опубл. 27.02.2011, Бюл. № 6.

136. [электронный ресурс]: http://www.lactiv.ru/ Дата обращения: 8.10.2013

137. Патент России 2018313. Способ получения пробиотика для животных и птиц. Эрвольдер Т.М., Суслов Н. В. Заявл. 06.05.1992; опубл. 30.08.1994.

138. Патент России 2180851. Биологический препарат для профилактики и лечения желудочно-кишечных заболеваний у молодняка животных. Щербаков П.Н., Караваев Ю.Д., Юров К.П., Щербакова Т.Б. Заявл. 04.08.2000; опубл. 27.03.2002, Бюл. № 9.

139. Патент России 2102075. Способ получения бактерийного препарата «Биосан». Варганов А.И., Опекунов К.А. Заявл. 15.02.1991; опубл. 20.01.1998

140. Патент России 2119796. Комплексный пробиотический препарат для животных «Бифитрилак». Дзявго Л.А., Маслов Д.В., Панкратова Т.М., Ширяев С.П. Заявл. 28.01.1997; опубл. 10.10.1998

141. [электронный ресурс]: http://www.gks■ru/wps/wcm/connect/rosstat_main/rosstat/ru/statistics/enteфris е/есопоту/# Дата обращения: 9.10.2013.

142. Шендеров Б.А. Функциональное питание и его роль в профилактике метаболического синдрома. - М.: ДелиПринт, 2008 - 319 с.

143. Roberfroid М. Prebiotics: The Concept Revisited //The Journal of Nutrition. 2007. V. 137. P. 830S-837S.

144. Bach Knudsen К. E., Hessov I. Recovery of inulin from Jerusalem artichoke (Helianthus tuberosus L.) in the small intestine of man //British Journal of Nutrition. 1995. V. 74. P. 101-113.

145. Rossi M., Corradini C., Amaretti A., Nicolini M., Pompei A., Zanoni S., Matteuzzi D. Fermentation of Fructooligosaccharides and Inulin by Bifidobacteria: a Comparative Study of Pure and Fecal Cultures// J. of Applied

192

and Environmental Microbiology. 2005, V. 71, № 10, P. 6150-6158.

146. Makras L., Van Acker G., De Vuyst L. Lactobacillus paracasei subsp. paracasei 8700:2 degrades inulin-type fructans exhibiting different degrees of polymerization // J. of Applied and Environmental Microbiology. 2005. V. 71. № 11. P. 6531-6537.

147. Gomez E., Tuohy K.M., Gibson G.R., Klinder A., Costabile A. In vitro evaluation of the fermentation properties and potential prebiotic activity of Agave fructans // Journal of Applied Microbiology. 2010. V. 108. P. 2114— 2121

148. Hoentjen F, Welling GW, Harmsen HJ, Zhang X, Snart J, Tannock GW, Lien K, Churchill ТА, Lupicki M, Dieleman LA. Reduction of colitis by prebiotics in HLA-B27 transgenic rats is associated with microflora changes and immunomodulation // Inflammatory Bowel Dis. 2005. V. 11. № 11. P.977-985.

149. Osman N., Adawi D., Molin G., Ahrne S., Berggren A., Jeppsson B. Bifidobacterium infantis strains with and without a combination of Oligofructose and Inulin (OFI) attenuate inflammation in DSS-induced colitis in rats //BMC Gastroenterology. 2006. V. 6. № 31. [электронный ресурс]: http://link.springer.eom/content/pdf/10.l 186%2F1471-230X-6-31 .pdf Дата обращения: 11.08.2013.

150. Geier MS, Butler RN, Giffard PM, Howarth GS. Prebiotic and synbiotic fructooligosaccharide administration fails to reduce the severity of experimental colitis in rats. // Diseases of the Colon and Rectum. 2007. V. 50. №. 7. P. 1061-1069

151. Coudray C., Rambeau M., Feillet-Coudray C., Tressol J.C., Demigne C., Gueux E., Mazur A., Rayssiguier Y. Dietary inulin intake and age can significantly affect intestinal absorption of calcium and magnesium in rats: a stable isotope approach// Nutrition Journal. 2005. V. 4. № 29. [электронный ресурс]: http://www.nutritioni.com/content/pdf/1475-2891-4-29.pdf Дата обращения: 11.08.2013.

152. Coudray C., Feillet-Coudray C., Gueux E., Mazur A., Rayssiguier Y. Dietary Inulin Intake and Age Can Affect Intestinal Absorption of Zinc and Copper in Rats // The Journal of Nutrition. 2006. V. 136. P. 117-122.

153. Roberfroid M.B., Cumps J., Devogelaer J.P. dietary chicory inulin increases whole-body bone mineral densityin growing male rats // The Journal of Nutrition. 2002. V. 132. P. 3599-3602.

154. Abrams S.A., Griffin I.J., Hawthorne K.M., Liang L., Gunn S.K., Darlington G., Ellis K.J. A combination of prebiotic short- and long-chain inulin-type fructans enhances calcium absorption and bone mineralization in young adolescents //The American journal of clinical nutrition. 2005. V. 82. № 2. P. 471-476.

155. Femia A.P., Luceri C., Dolara P., Giannini A., Biggeri A., Salvadori M., Clune Y., Collins K.J., Paglierani M., Caderni G. Antitumorigenic activity of the prebiotic inulin enriched with oligofiructose in combination with the probiotics Lactobacillus rhamnosus and Bifidobacterium lactis on azoxymethane-induced colon carcinogenesis in rats // Carcinogenesis. 2002. V. 23. № 11. P. 19531960.

156. Clark M.J., Robien K., Slavin J.L. Effect of prebiotics on biomarkers of colorectal cancer in humans: a systematic review // Nutrition reviews. 2012. V. 70. № 8. P. 436-443

157. Di Criscio T., Fratianni A., Mignogna R., Cinquanta L., Coppola R., Sorrentino E., Panfili G. Production of functional probiotic, prebiotic, and synbiotic ice creams // J. Dairy Science. 2010. V. 93. № 10. P. 4555-4564.

158. Allgeyer L.C., Miller M.J., Lee S.-Y. Drivers of liking for yogurt drinks with prebiotics and probiotics // Journal of Food Science. 2010. V. 75. № 4. P. 212219.

159. Alves L.L., Richards N.S.P.S., Mattanna P., Andrade D.F., Rezer A.P.S., Milani L.I.G., Cruz A.G., Faria J.A.F. Cream cheese as a symbiotic food carrier using Bifidobacterium animalis Bb-12 and Lactobacillus acidophilus

194

La-5 and inulin //International Journal of Dairy Technology. V. 66. № 1. P. 63-69

160. Hempel S., Jacob A., Rohm H. Influence of inulin modification and flour type on the sensory quality of prebiotic wafer crackers // European Food Research and Technology. 2007. V. 224. № 3, P. 335-341

161. Lamsal B.P. Production, health aspects and potential food uses of dairy prebiotic galactooligosaccharides //Journal of the science of food and agriculture. 2012. V. 92. № 10. P. 2020-2028

162. Macfarlane G.T., Steed H., Macfarlane S. Bacterial metabolism and health-related effects of galacto-oligosaccharides and other prebiotics. Review // Journal of Applied Microbiology. 2008. V. 104. P. 305-344

163. Tzortzis G., Goulas A.K., Gibson G.R. Synthesis of prebiotic galactooligosaccharides using whole cells of a novel strain, Bifidobacterium bifidum NCIMB 41171 //Applied microbiology and biotechnology. 2005. V. 68. №3. P. 412-416

164. Osborn D.A., Sinn J.K.H. Prebiotics in infants for prevention of allergic disease and food hypersensitivity. - JohnWiley & Sons, Ltd, 2009 - 33 p.

165. Bode L. Human milk oligosaccharides: prebiotics and beyond. Review // Nutrition Reviews. Vol. 67. № 2. P. 183-191

166. Божко О.Ю., Шуваева Г.П., Корнеева О.С. Изучение пребиотических свойств заменителя сахара изомальтулозы в условиях in vitro // Современные проблемы науки и образования. 2011. Т. 37. № 5. С. 1-7. [электронный ресурс]: http://www.science-education.ru/pdfy2011/5/119.pdf Дата обращения: 11.08.2013.

167. Божко О.Ю., Шуваева Г.П., Корнеева О.С., Михайлова Н.А. Исследование пребиотических свойств изомальтулозы в условиях in vivo // Фундаментальные исследования. Биологические науки. 2012. №10. С. 376-379

168. Патент России 2017486. Способ получения комплексного бактерийного

195

'1 ' »Vi^i'

препарата. Григорьев А.В., Знаменский В.А., Клевцов В.Н. Заявл. 02.12.1991; опубл. 15.08.1994.

169. Патент России 2159624. Средство для коррекции микробиоценоза Григорьев А. В., Егорова С. М., Григорьева Т.А. Заявл. 18.03.1999; опубл. 27.11.2000, Бюл. № 33

170. Патент России 2317089. Комплексный препарат-пробиотик в иммобилизованной и лиофилизированной форме и способ его получения. Молокеев А.В., Ильина P.M., Яцентюк P.M., Молокеева Н.В., Зыкова Н.А., Карих Т.Д., Байбаков В.И., Соколова Т.В., Никулин Л.Г., Куслий А.Г., Мироненко В.В., Ясудис Г.В., Гусева И.А. Заявл. 10.01.2006; опубл. 20.07.2007, Бюл. № 5

171. Muthukumarasamy Р, Allan W.P., Holley R.A. Stability of Lactobacillus reuteri in Different Types of Microcapsules// Journal of Food Science. 2006. V. 71. № l.P. 20-24.

172. Lee J. S., Cha D. S., Park H. J. Survival of Freeze-Dried Lactobacillus bulgaricus KFRI 673 in Chitosan-Coated Calcium Alginate Microparticles// J. Agric. Food Chem. 2004.V.52. № 24. P. 7300-7305.

173. Canh L.-T., Millette M., Mateescu M. A., Lacroix M. Modified alginate and chitosan for lactic acid bacteria immobilization// J. Biotechnol. Appl. Biochem. 2004. V. 39. P. 347-354.

174. Song S.-H., Cho Y.-H., Park J. Microencapsulation of Lactobacillus casei YIT 9018 using a microporous glass membrane emulsification system // J. of Food Science. 2003. V. 68. № l.P. 195-200

175. Liserre A. M., Re M. I., Franco B. Microencapsulation of Bifidobacterium animalis subsp. lactis in modified alginate-chitosan beads and evaluation of survival in simulated gastrointestinal conditions // J. of Food Biotechnology. 2007. V 21, № 1, P.l-16.

176. Bajaj P. R., Survase S. A., Bule M. V., Singhal R. S. Studies on Viability of Lactobacillus fermentum by Microencapsulation Using Extrusion

196

Spheronization// J. of Food Biotechnology. 2010. V. 24. № 2. P. 150-164.

177. US Patent 2005/0266069. Stable probiotic microsphere compositions and their methods of preparation. Simmons D., Moslemy P., Paquette G., Guerin D., Joly M.-H. Filed: 05.09.2003; Pub. date 01.12.2005

178. Guergoletto K. B., Magnani M., San Martin J., de Jesus Andrade C. G. T., Garcia S. Survival of Lactobacillus casei (LC-1) adhered to prebiotic vegetal fibers // Innovative Food Science and Emerging Technologies. 2010. V. 11. № 2. P. 415^121

179. Doherty S.B., Gee V.L., Ross R.P., Stanton C., Fitzgerald G.F., Brodkorb A. Development and characterisation of whey protein micro-beads as potential matrices for probiotic protection // Food Hydrocolloidsio. 2011. V. 25. № 6. P. 1604-1617

180. Heidebach T., Forst P., Kulozik U. Microencapsulation of probiotic cells by means of rennet-gelation of milk proteins // Food Hydrocolloids. 2009. V. 23. №7. P. 1670-1677

181. Takemura N., Hagio M., Ishizuka S., Ito H., Morita T., Sonoyama K. Inulin Prolongs Survival of Intragastrically Administered Lactobacillus plantarum No. 14 in the Gut of Mice Fed A High-Fat Diet// J. of Nutrition. 2010. V. 140. № 11. P. 1963-1969

182. Ananta E., Volkert M., Knorr D. Cellular injuries and storage stability of spray-dried Lactobacillus rhamnosus GG // International Dairy Journal. 2005. V. 15. №4. P. 399^409

183. Golowczyc M.A., Gerez C.L., Silva J., Abraham A.G., De Antoni G.L., Teixeira P. Survival of spray-dried Lactobacillus kefir is affected by different protectants and storage conditions // Biotechnology letters. 2011. V. 33. №4. P. 681-686.

184. Su P., Henriksson A., Mitchel H. Prebiotics enhance survival and prolong the retention period of specific probiotic inocula in an in vivo murine model// J. of Applied Microbiology. 2007. V. 103. 2392-2400.

197

185. Эль-Регистан Г.И., Мулюкин A.JL, Николаев Ю.А., Сузина Н.Е., Гальчеико В.Ф., Дуда В.И. Адаптогенные функции внеклеточных ауторегуляторов микроорганизмов// Микробиология. 2006. Т. 75. №4. С. 446-456.

186. Голод Н.А., Лойко Н.Г., Лобанов К.В., Миронов А.С., Воейкова Т.А., Гальченко В.Ф., Эль-Регистан Г.И. Роль микробных ауторегуляторов -алкилоксибензолов, в контроле экспрессии стрессовых регулонов// Микробиология. 2009. Т. 78. № 6. С. 731-741.

187. Мейсон Т., Линдли Дж, Дэвидсон Р. Лоример Дж., Гудвин Т. Химия и ультразвук. Пер с англ. /Под. ред. Мейсона Т. - М.: Мир, 1993. - 191 с.

188. Фридман В.М. Исследования интенсификации физических процессов систем жидкость-жидкость и жидкость-твердое вещество при воздействии акустических колебаний и разработка акустической химико-технологической аппаратуры; автореф. дис. . докт. техн. наук. -М., 1975. -31 с.

189. Рыжова Г. Л., Матасова С.А., Башуров С.Г. Получение сухого экстракта из плодов рябины сибирской и изучение его химического состава //Химия растительного сырья. 1997. Т. 1. №2, с.37-41.

190. Jacques R.A., dos Santos Freitas L., Pérez V. F., Dariva C., de Oliveira A.P., de Oliveira J.V., Caramao E. B. The use of ultrasound in the extraction of Ilex paraguariensis leaves: A comparison with maceration//Ultrasonics Sonochemistry. 2007. V. 14. P. 6-12.

191. Mecozzi M., Acquistucci R., Amici M., Cardarilli D. Improvement of an ultrasound assisted method for the analysis of total carbohydrate in environmental and food samples. //Ultrasonics Sonochemistry. 2002. V. 9. P. 219-22

192. Hromadkova Z., Ebringerova A. Ultrasonic extraction of plant materials investigation of hemicellulose release from buckwheat hulls. //Ultrasonics Sonochemistry. 2003. V. 10. P. 127-133.

198

193. Ebringerova A., Hromadkova Z. Effect of ultrasound on the extractibility of corn bran hemicelluloses. //Ultrasonics Sonochemistry. 2002. V. 9. P. 225-229.

194. Sun R.C., Tomkinson J. Characterization of hemicelluloses isolated with tetraacetylethylenediamine activated peroxide from ultrasound irradiated and alkali pre-treated wheat straw. //European Polymer Journal. 2003. V. 39. P. 751-759

195. Sun R.C., Tomkinson J. Comparative study of lignins isolated by alkali and ultrasound-assisted alkali extractions from wheat straw. //Ultrasound Sonochemistry. 2002. V. 9. P. 85 - 93

196. Pappas C., Tarantilis P. A., Daliani I., Mavromoustakos Т., Polissiou M. Comparison of classical and ultrasound-assisted isolation procedures of cellulose from kenaf (Hibiscus cannabinus L.) and eucalyptus (Eucalyptus rodustrus Sm.). //Ultrasonics Sonochemistry. 2002. V. 9. P. 19-23

197. Патент России 2358983. Способ получения полисахаридов льна. Ожимкова Е.В., Сульман М.Г., Сидоров А.И. Заявл. 09.01.2008; опубл. 20.06.2009, Бюл. № 17.

198. Патент России 2373956. Способ получения полисахаридного комплекса из цветов липы сердцевидной. Ожимкова Е.В., Сидоров А.И., Сульман М.Г. Заявл. 02.10.2008; опубл. 27.11.2009, Бюл. № 33.

199. Fu С., Tian Н., Li Q., Cai Т., Du W. Ultrasound-assisted extraction of xyloglucan from apple pomace //Ultrason Sonochem. 2006. V. 13. № 6. P. 511-516.

200. Патент России 2446852. Способ получения экстрактов. Матросов Н.А., Заярский Д.А., Портнов С.А. Заявл. 27.09.2010; опубл. 10.04.2012, Бюл. № 10.

201. Шакир И.В., Красноштанова А.А., Парфенова Е.В., Суясов Н.А., Бабусенко Е.С., Смирнова В.Д. Общая биотехнология. Лабораторный практикум: учебное пособие / М.: РХТУ им. Д.И. Менделеева, 2008. - 120 с.

202. ГОСТ 26226-95 Корма, комбикорма, комбикормовое сырье. Методы определения сырой золы

203. Методы биохимического исследования растений/Под. ред. Ермаков А.И. -Л.: Колос, 1972.-455 с.

204. Постникова Е.А., Ефимов Б.А., Володин H.H., Кафарская Л.И. Поиск перспективных штаммов бифидобактерий и лактобацилл для разработки новых биопрепаратов // Журн. микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2004. - №2. - С.64-69

205. Дытнерский Ю.И. Процессы и аппараты химической технологии. Учебник для вузов. Изд. 2-е. В 2-х кн. Часть 2. Массообменные процессы и аппараты/ М.: Химия, 1995. - 400 с.

206. Панфилов В.И. Биотехнологическая конверсия углеводсодержащего растительного сырья для получения продуктов пищевого и кормового назначения: дисс. ... докт. техн. наук. -М., 2004 - 359 с.

207. Перт С.Дж. Основы культивирования микроорганизмов и клеток Пер. с англ. - М.: Мир, 1978. - 331 с.