Клинико-патогенетические особенности векторных инфекций у собак в пренатальный период тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, кандидат наук Вольвак, Андрей Олегович

• Вольвак, Андрей Олегович
• кандидат наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат наук Вольвак, Андрей Олегович

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Историческая справка

1.2. Токсономическое положение и свойства возбудителей риккетсиозов

1.3. Заболевания, вызываемые риккетсиями

1.4. Распространение, векторы и природные резервуары возбудителей риккетсиозов собак

1.5. Особенности клинического течения риккетсиозов

1.6. Диагностика риккетсиозов

1.7. Лечение инфекций вызванных риккетсиями

1.8. Профилактические меры

1.9. Заключение

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал и методы исследований

2.2. Распространение векторных инфекций собак в Ростовской области

2.3. Разработка диагностических наборов для выявления и идентификации векторных инфекций

2.4. Клинико-патогенетические особенности векторных инфекций у собак

2.5. Сравнительная эффективность методов лечения собак, больных эрлихиозом и анаплазмозом

4. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

5. ВЫВОДЫ

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

7. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Клинико-патогенетические особенности векторных инфекций у собак в пренатальный период»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Векторные инфекции собак, передающиеся иксодовыми клещами, встречаются во многих регионах России (S.R. Telford III, 2002; Э.И. Коренберг, 2002). Ростовская область является активным природным очагом векторных инфекций и бабезиоза собак (М.А. Раевская, 2011). Однако распространенность этих нозологий среди собак разных половозрастных групп, многолетняя и сезонная динамика заболеваемости, а также их клиническая характеристика и лабораторная диагностика остаются недостаточно изученными.

В течение последних 10-15 лет на территории многих стран Европы, а также в России, были зарегистрированы новые природно-очаговые инфекционные заболевания, ассоциированные с иксодовыми клещами -эрлихиоз и анаплазмоз собак (J.S. Dumler, 2001; Ogden, 2002; B.B. Малеев, 2004; A.A. Нафеев, 2007). Наличие их в Ростовской области подтверждено работами отечественных ученых в 2010 году (С.Н. Карташов, 2010, М.А. Раевская, 2011). В связи с чем, представляется актуальным изучить эрлихиоз, анаплазмоз собак и векторные микст-инфекции с их участием в структуре природно-очаговых трансмиссивных заболеваний популяции собак, выяснить особенности их клинического течения, динамику патогенетических изменений и лабораторной диагностики.

Степень разработанности проблемы. Вопросам диагностики и терапии векторных инфекций у собак посвящены работы ряда авторов (С.Н. Карташов, 2010, М.А. Раевская, 2011), однако, представленные данные, отражающие спектр клинико-патогенетических изменений при векторных микст-инфекциях у собак в перинатальном периоде скудны. Это не позволяет выделить диагностические параметры подтверждения диагноза, установления тяжести течения заболевания и назначения адекватной терапии, что и послужило целью для нашего исследования.

Цель работы. Изучить структуру векторных инфекций популяции собак в Ростовской области, выяснить клинико-патогенетические особенности векторных инфекций у собак в разном физиологическом состоянии, разработать способ диагностики, оценки тяжести и терапию собак с данной патологией.

Достижение намеченной цели осуществлялось решением следующих

задач:

1. выяснить структуру векторных инфекций в популяции собак Ростовской области, уточнить инцидентность векторных инфекций у собак в перинатальный период;

2. разработать диагностический набор для выявления векторных микст-инфекций у собак;

3. выяснить клинико-патогенетические особенности микст-инфекций у собак с учетом физиологического состояния животного;

4. выяснить степени тяжести векторных инфекций в зависимости от физиологического состояния животного;

5. на основании полученных данных разработать схему терапии собак больных векторными микст-инфекциями в разном физиологическом состоянии.

Научная новизна. Наши исследования позволили дополнить этиологическую структуру природно-очаговых векторных инфекций у собак в Ростовской области. Она представлена бабезиозами и новыми для собак в Ростовской области эрлихиозом и анаплазмозом, выявлены различные варианты микст-инфекций более чем у 30% собак. Уточнены клинические особенности эрлихиоза, анаплазмоза и различных вариантов векторных микст-инфекций у собак в перинатальном периоде. Заболевание протекает преимущественно в виде гемморагического и гепатопривного синдромов.

Впервые представлена клинико-лабораторная характеристика векторных микст-инфекций (эрлихиоз, анаплазмоз и бабезиоз), изучены

клинико-лабораторные изменения при микст-инфекциях у собак в перинатальном периде. Определены критерии тяжелого течения заболевания и выздоровления животных.

Теоретическая и практическая значимость. Разработана тактика клинико-лабораторной диагностики всего спектра векторных инфекций у собак. Создан алгоритм последовательности дифференциально-диагностических действий при векторных инфекциях у собак, что позволит ветеринарному врачу, аргументировано поставить диагноз на эрлихиоз, анаплазмоз, бабезиоз и их сочетанное течение. Предложены диагностические параметры купирования инфекционного процесса векторных микст-инфекций у собак в разном физиологическом состоянии. Разработаны патогенетически обоснованные схемы комплексной терапии собак, больных векторными микст-инфекциями.

Степень достоверности и апробация работы. Достоверность полученных данных обоснована значительным объемом исследований, использованием современных методов, в том числе вариационной статистики по программе Statistica for Windows.

Основные результаты диссертационной работы доложены и одобрены на заседаниях ученого совета ГНУ СКЗНИВИ; на IV Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины», г. Ростов-на-Дону, 2011; Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные аспекты паразитарных заболеваний в современный период» г. Ростов-на-Дону, 2011; Всероссийской научно-практической конференции «Научное обеспечение инновационного развития отечественного животноводства» г. Новочеркасск, 2011; Международной научно-практической конференции «Пути интенсификации производства и переработки продуктов животноводства», г. Черкесск, 2011; Всероссийской научно-практической конференции «Научные проблемы и современные тенденции развития отечественного животноводства в условиях ВТО» г. Новочеркасск, 2013.

Личный вклад автора. Автору принадлежит ведущая роль в выборе направления диссертационного исследования. Планирование работы, поиск и анализ литературы по теме диссертации, подбор животных для исследования, клиническое обследование больных животных, формирование базы данных, статистическая обработка, обобщение и анализ полученных результатов, формулировка выводов, написание статей и диссертации выполнены лично автором. Методы исследования (ПЦР диагностика, биохимические исследования) освоены диссертантом и проведены им самостоятельно. Вклад автора является определяющим и заключается в непосредственном участии на всех этапах исследования.

Реализация результатов исследований. Проведено внедрение результатов исследования в практическую работу ветеринарных клиник Ростовской области, внедрен алгоритм диагностического поиска и распознавания векторных микст-инфекций у собак, внедрены новые схемы лечения векторных инфекций. В работу ГБУ РО Ростоблветлаборатории в отделе донозологической и клинической диагностики, лаборатории функциональной диагностики болезней животных ГНУ СКЗНИВИ Россельхозакадемии, внедрены тест-системы для ПЦР диагностики векторных инфекций у собак.

Практические предложения реализуются в учебном процессе при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий на кафедре внутренних незаразных болезней и патофизиологии Дон ГАУ по курсу «Болезни мелких домашних животных».

Публикации. По теме диссертации издано 10 работ, из них 4 в журналах, рекомендованных ВАК.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 127 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, результатов собственных исследований, заключения, выводов и указателя литературы, включающего 83 отечественных и 114 зарубежных источника. Диссертация иллюстрирована 24 таблицами, 19 рисунками.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Этиологическая структура векторных инфекций у собак в Ростовской области.

2. Клинико-диагностический алгоритм векторных инфекций у собак, основные клининико-лабораторные критерии тяжести течения заболевания у собак в зависимости от состава микст-инфекции и физиологического состояния животного.

3. Основные терапевтические схемы при векторных микст-инфекциях у

собак.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Историческая справка

Риккетсиозы собак представляют собой группу инфекционных заболеваний животных семейства псовых, в том числе домашних собак, широко распространенные во всём мире [1, 27, 64].

Несмотря на несколько случаев заболеваний, сопровождающихся моноцитарным синдромом, описанных на японском языке в 1950-х, эрлихиоз действительно приобрел значение в гуманитарной медицине в последние десять лет, после первого случая установления диагноза в США и постоянно растущих описаний случаев заболевания людей во всем мире. Между тем, эрлихиоз хорошо известное заболевание в ветеринарной медицине в течение почти столетия. Впервые он был описан у жвачных животных. В то время как риккетсиозы у собак были обнаружены за 25 лет до переименования их в эрлихиоз [9, 88, 123, 142, 187].

Массовое диагностирование у животных и у человека риккетсиозов, в том числе обнаружение новых возбудителей может быть связано с неблагоприятными эпидемиологическими условиями, а также и с совершенствованием методов и инструментов диагностики [23, 96, 154].

В настоящее время моноцитарный эрлихиоз собак, вероятно, является наиболее распространенным и лучше изученным у собак. При этом диагностировать его не так легко и, следовательно, ветеринарный врач играет важную роль в раннем выявлении этого заболевания. Что касается риккетсий, молекулярная диагностика имеет решающее значение, несколько альтернативных методов доступны для практиков, но их специфичность ниже, а чтобы обеспечить высокую производительность необходимы надежные инструменты [42, 136, 197].

Моноцитарный эрлихиоз собак вызывается возбудителем Ehrlichia canis, который имеет тропизм для одноядерных клеток. Он был обнаружен в 1935 году в Алжире и был назван Rickettsia Canis [125]. Родовое имя Ehrlichia

было дано ему 10 лет спустя в честь Пауля Эр лиха [63]. Эрлихиоз собак позже был описан в других странах по всему миру [28, 100, 147, 193]. Особое значение эрлихиоз приобрел во время войн в Корее и Вьетнаме, когда эрлихиоз обусловил гибель многих собак армии США. При этом в течении 5-ти лет погибло около 300 собак, и кроме того, все собаки погибли от тяжелой панцитопении [9, 43, 146, 178]. Впоследствии моноцитарный эрлихиоз собак вызвал интерес в 1987 году, когда Е. chaffeensis, был идентифицирован как возбудитель моноцитарного эрлихиоза человека. В 1996 году было доказано, что заражение собак Е. chaffeensis вызывает у них признаки, идентичные заражению Е. canis [1, 41, 62, 84,170].

У человека эрлихиоз был впервые диагностирован в 1986 году в США путем обнаружения эрлихий в крови. В 1990 была проведена генетическая экспертиза возбудителя изолированного из крови человека, и он был назван Е. chaffeensis [42, 63, 70].

В Японии возбудители эрлихиоза были впервые выделены в 1950 г., но при этом первоначально их относили к риккетсиям и лишь в 1984 г. возбудитель идентифицирован как Ehrlichia sennetsu. Заболевание, получившее название «лихорадка сеннетцу», наблюдалось в ограниченном регионе Японии. Всего с 1953 по 1978 гг. наблюдалось 46 случаев. В различных штатах США заболеваемость колеблется в пределах 3, 3—5, 3 на 100 000 населения в год [41, 63, 64, 70].

Эрлихиозы и анаплазмозы являются типичными трансмиссивными природно-очаговыми зоонозами. Клещи родов Dermacentor, Rhipicephalus, Amblyomma являются основными переносчиками заболеваний у животных, у человека основным переносчиком являются клещи рода Ixodes. Наибольшее патогенное значение для человека имеют виды Ehrlichia chaffeensis, E.muris и Anaplasma phagocytophilum [27, 120, 189]. Возбудители эрлихиозов собак, такие как E.canis и E.ewingii в единичных случаях описаны как возбудители заболевания у человека [28, 90, 163].

Определенный интерес представляет я группа не связанных с клещами эрлихий, относящихся к роду ЫеопскеА^а [23, 42, 160], переносчиками которых являются гельминты, а заражение происходит алиментарным путем. Заражение человека происходит при употреблении недостаточно обработанной рыбы, пораженной инфицированными трематодами [1, 43, 63, 129].

Тяжелые заболевания лошадей и собак вызывает ТЧ.(Е.) тйси локализующаяся в трематодах, паразитирующих в улитках и различных водных насекомых. Заражение первых происходит при поедании травы с зараженными улитками, или с водой из открытых водоемов [28, 42, 63, 86].

1.2. Токсономическое положение и свойства возбудителей риккетсиозов

Риккетсиозы - заболевания многих видов животных и человека, обусловленные внутриклеточными паразитами, передающиеся преимущественно трансмиссивно, проявляющиеся абортами и послеродовыми эндометритами, лихорадками, пневмониями, ринитами, поражением лимфатической системы и форменных элементов крови [1, 81, 144, 186].

Первое сообщение об одном из возбудителей эрлихиоза, вызывающего пятнистую лихорадку Скалистых гор было сделано в 1909 году Говардом Тейлором Риккетсом, который погиб при ее исследовании и в честь которого был назван возбудитель [21, 71, 87, 153].

Риккетсии представлены как патогенными, так и непатогенными видами, в природе обитают преимущественно в организме насекомых, грызунов, диких и сельскохозяйственных животных [4, 60, 81, 103, 188].

Систематика эрлихиозов в настоящее время претерпела капитальную перестройку после разработки в биологии инструментов молекулярной диагностики и непрекращающимся открытием новых штаммов и видов [162].

Некоторые возбудители были переименованы, и кроме того при систематизации возбудителей в разное время использовались различные подходы [139].

Эрлихии - это небольшие облигатные внутриклеточные бактерии, которые заражают клетки крови многих млекопитающих и людей [97, 172]. Грамотрицательные, но, как и риккетсии, они отличается от большинства из этих грамотрицательных бактерий отсутствием производства эндотоксина и их основным вектором передачи [107]. Согласно определителя бактерий Берджи (1984; 1994), риккетсии классифицировались следующим образом: царство Procariotae, отдел Gracilicutes, секция 9 - Rickettsii et Chlamydii, порядок Rickettsiales [42, 64, 109], который включал три семейства: Rickettsiaceae, Bartonellaceae и Anaplasmataceae, которые паразитируют на фагоцитах и эритроцитах [54, 172]. В семейство Rickettsiaceae входили следующие роды Rickettsia, Rochalimaea, Coxiella, Ehrlichia, Cowdria, Neorickettsia, Wolbachia и Rickettsiella. В семейства Bartonellaceae два рода: Bartonella и Grahamella. В семейство Anaplasmataceae четыре рода: Anaplasma, Aegyptianella, Haemobartonella, Eperhytrozoon [1, 61, 127]. Порядок Rickettsiales первоначально включал все строгие внутриклеточные бактерии, однако в настоящее время хламидиоз был вторично отделен от этого порядка. В семействе Rickettsiaceae первыми были установлены роды и виды на основе фенотипических критериев: их экология, эпидемиология, серологическое типирование патогенности для человека и животных, и реакция Вейля (серологическая реакция с различными серотипами бактерий рода Proteus sp.) [169]. Эти критерии были использованы для определения трех родов - Rickettiseae, Wolbachieae и Ehrlichieae - последний, в составе родов Ehrlichia и Cowdria Neorickettsia [155]. Они располагаются в паразитофорной вакуоли клетки-хозяина, в то время как элементы рода Rickettsieae (кроме Coxiella burnetii) свободно располагаются в цитоплазме [155, 177].

Филогенетическая (молекулярно-генетическая) классификация. Инструменты молекулярной филогении широко используемые, начиная со второй половины 90-х годов прошлого века, полностью изменили фенотипическую классификацию. Среди Rickettsiales, несколько генов доступны для выделения и изучения, и это в первую очередь гены РНК 16S, белок теплового шока GroESL. Основываясь на этих молекулярных исследованиях, в настоящее время распространилась мнение о разделении риккетсий на три различные подгруппы Proteobacteria (альфа 1, альфа 2 и гамма), которые ясно демонстрируют свои филогенетические различия [110, 172]. Эти исследования, определившие новую классификацию и новую номенклатуру, были предложены командой под руководством Durnler [110]. Авторы предполагают, что роды Ehrlichieae и Wolbachieae должны быть переданы в семейства Anaplasmataceae, оставив только Rickettsieae в семействе Rickettsiaceae. Таким образом, Ehrlichieae являются частью альфа подгруппы Proteobacteria 1, порядка Rickettsiales семейства Anaplasmataceae. Они идентичны на 84-96 % с ДНК 16S. Среди этих Ehrlichieae, можно было бы определить геногруппы [169, 172], а их членов переименовать позже. Выделили четыре геногруппы рода Ehrlichia: Anaplasma и Neorickettsia и Wolbachia pipientis [110]. Группа 1 или Группа Ehrlichia - существует, как минимум, 97, 7 % сходства между членами этой группы [110]. Она включает в себя: Ehrlichia canis, возбудитель моноцитарного эрлихиоза собак, Ehrlichia chaffeensis, возбудитель человеческого моноцитарного эрлихиоза, Ehrlichia ewingii, возбудитель собачьего гранулоцитарного эрлихиоза, Cowdria ruminantium, Ehrlichia ruminantium недавно переименованный возбудитель лихорадки крупного рогатого скота в Африке и Карибском бассейне, Ehrlichia Muris выделен в Японии у диких видов мышей и из культуры, полученной от Ixodes ovatus в Японии, и Венесуэле [63, 114].

Группа 2 или группа Anaplasma. Эта группа очень близка к группе 1, с 94, 9 % гомологии в последовательности гена 16S рРНК [110, 172]. К ним относятся: Ehrlichia phagocytophila, возбудитель клещевой лихорадки у

жвачных животных, возбудитель человеческого гранулоцитарного эрлихиоза. Так же во вторую группу входят: Ehrlichia Platys, Anaplasma Platys вызывающая тромбоцитопению у собак Ehrlichia bovi, Anaplasma bovi, Anaplasma marginale [169].

Группа 3 или группа Neorickettsia - это более отличающаяся от двух предыдущих групп (сходство только 88,3 %), и это группа наиболее генетически разнородна, по крайней мере, 94, 9% сходства между ее членами [110] включает: Ehrlichia sennetsu, или Neorickettsia sennetsu, Neorickettsia helminthoeca, возбудитель инфекции у собак США, Neorickettsia elokominica, возбудитель Stellantchasmus falcatus (SF агент), изолированный из метацеркарий осумкованных трематод на кефали в Японии [132,196].

Группа Wolbachia включает в себя только одного возбудителя Wolbachia pipientis, который является симбионтом многих насекомых, гельминтов и ракообразных [110, 172]. Эта классификация не только академическая, но также поддерживается биологическими и антигенными характеристиками [110, 134, 166,179, 181,197].

Строение риккетсий аналогично строению других бактерий. У риккетсий выделяют оболочку, цитоплазму и зернистые включения [4, 68, 71]. Эрлихии окружены двумя тонкими мембранами, внутренней и внешней, образующих липидный би-слой. Они содержат ДНК и рибосомы, но с геномом в четыре раза меньше, чем у кишечной палочки [172]. Микроскопически они визуализируются в виде небольших кокков -примерно 0, 5 мкм - грамотрицательные, называемые элементарными тельцами, присутствующими в цитоплазме клетки-хозяина. По Романовскому окрашиваются в темно-фиолетовый цвет и красные со светло-голубыми базофильными включениями при окрашивании по Macchiavello. Эти бактерии обычно округлые, либо эллипсоидные, нередко отмечаются плеоморфные формы [97, 118, 172, 180]. Rikihisa Н. удалось продемонстрировать способность A. phagocytophilum ингибировать быстрое и стабильное производство реактивного кислорода в пробирке [106].

Цикл развития схож с таковым у Chlamydia. Есть несколько стадий развития, что наиболее доступно показал Nyindo с соавт., изучая E.canis в 1971 году [124]. Цикл идентичен хламидийному, однако, не был продемонстрирован [172].

Элементарные частицы проникают в клетку путем фагоцитоза и отделяются паразитофорной мембраной от плазматической мембраны клетки хозяин. После 3-5 дней, формируются плеоморфные кластеры, именуемые начальные органы. В течение недели развивается стадия морулы - 4 мкм диаметром - это специфическая группа, которая состоит из микро- колоний включающих до 100 элементарных телец (от 20 до 40 в среднем). Затем происходит разрыв камеры и посредством экзоцитоза, освобождаются элементарные тельца [99].

1.3. Заболевания, вызываемые риккетсиями

Различные виды реккетсий поражают разные типы лейкоцитов, что обусловливает названия передаваемых ими болезней: A. phagocytophilum и E.ewingi - гранулоциты, в основном, нейтрофилы (гранулоцитарный анаплазмоз собак и гранулоцитарный эрлихиоз собак), E.chaffeensis, E.muris, E.canis - моноциты (моноцитарный эрлихиоз собак) [1, 22, 43, 147, 156].

Анаплазмоз, вызываемый Anaplasma Platys или инфекционная тромбоцитопения. Заражение Ehrlichia Platys собак, недавно переименованный в Anaplasma Platys [110], впервые был описано в Соединенных Штатах в 1978 году [151]. При этом его распространенность была весьма обширной и сопоставлялась с распространенностью моноцитарного эрлихиоза собак [152]. А. Platys была описана во многих других странах в Европе и Азии: Германия [104], Италия [94], Греция [94, 161], Франция [94, 153], Израиль [154], Таиланд [179], Китай [128, 195], Корея [105], Тайвань [156], Япония [135, 137, 156]. Он также регулярно наблюдается в Испании как включение тромбоцитов, без четкой корреляции

с появлением клинических признаков и без какой-либо конкретной этиологической диагностики [173]. Совсем недавно A. Platys или возбудитель очень близкий (99, 7 на 100% гомологии по 345 б.п. I6S рРНК) был описан у бродячих собак из центральной Австралии. Это было вывлено методом ПЦР у 10-и собак и 2-х клещей рода Rhipicephalus sanguineus [98]. Тем не менее, это первое описание эрлихиоза в этой стране, несмотря на радикальные меры пограничного контроля. Благоприятные эпидемиологические условия -наличие большого поголовья собак и распространенность R. sanguineus по всей стране - вызывают опасения в плане потенциальной установки эндемичных зон в Австралии [162]. Собакам A. Platys передается в основном, предположительно через коричневого клеща Rhipicephalus sanguineus [133]. A.platys часто диагностируется совместно с Е. canis [102, 128, 173, 191]. А. Platys также недавно была обнаружена у клещей рода Dermacentor снятых с собак во Вьетнаме [164]. Передача через переливание крови [124] также возможно в теории. Мелкие грызуны могут служить в качестве резервуара для заболевания, в Корее ДНК A. Platys был выделен у 62 полевок рода Apodemus agrarius [105]. A. Platys, предположительно имеет распространение во всем мире [107], и заболеваемость отмечается более высокая летом и в начале осени в странах с умеренным климатом [108], это также соответствует максимальной активности основного потенциального вектора.

Гранулоцитарный эрлихиоз собак, возбудителем которого является Ehrlichia ewingii был описан в США в некоторых штатах: Вирджиния, Миссисипи, Миссури, Оклахома, Теннесси, Арканзас, Калифорния, Северная Каролина, Миннесота, Висконсин [95, 115]. При этом Е. ewingii положительно идентифицирован с помощью ПЦР в Вирджинии, Северной Каролине, Оклахоме, Миссури, а в последнее время в штате Нью-Йорк [116]. Несмотря на сильное сходство и наличие перекрестных реакций между двумя бактериями, инфекции Е. ewingii не обеспечивает защиту от заражения другими возбудителями эрлихиоза [89]. Заболевание обычно диагностируется в весенне-летний период [107], хотя он может наблюдаться

и зимой, с декабря по февраль [115, 116]. Amblyomma americanum является, вектором передачи [141], хотя в случае менингита связанного с массовым заражением Dermacentor variabilis был описан возбудитель, однако он не был выделен ни от собак, ни от клещей [175]. Совсем недавно, Е. ewingii была обнаружена методом ПЦР в клещах рода Dermacentor variabilis и Rhipicephalus sanguineus [116]. Наличие данного типа эрлихиоза недавно было доказано в Миссури и Оклахоме [89, 101]. Предполагается, что Е. ewingii распространен на всей территории Соединенных Штатах, где он именуется как гранулоцитарный эрлихиоз собак, некоторые иногда называют "Тик лихорадка" [97], и в настоящее время классифицируется как Anaplasma [110]. Однако, в военных лагерях в Корее, был выделен фрагмент ДНК с помощью ПЦР у 10% собранных грызунов, преимущественно полевок [105]. Вполне вероятно, что эта болезнь была импортирована в эту страну и грызуны являются резервуаром. Е. ewingii [186].

Виды Е. equi, E.phagocytophila и возбудитель гранулоцитарного эрлихиоза собак на данный момент объединены в один вид А. phagocytophilum [17]. Моноцитарный эрлихиоз собак, вызываемый E.chafteensis, впервые описан в 1986 г., возбудитель выделен в 1991 г. Встречается преимущественно на юго-востоке и в центре США. Основным переносчиком E.chaffeensis является клещ Amblyomma americanum, реже -Dermacentor variabilis. Зараженность имаго A. americanum колеблется от 2 до 17% [2, 27, 112, 190]. В 1986 г. была впервые диагностирована инфекция в США у человека. С помощью рибосомной ДНК-пробы и путем сравнения нуклеотидных последовательностей рДНК 16S, был описан другой вид инфекции, при котором были поражены только гранулоцитарные кроветворные клетки. Он, по-видимому, передается теми же клещами, что и болезнь Лайма - Ixodes scapularis [4, 26, 105].

Гранулоцитарный эрлихиоз у человека проявляется острым, иногда летальным, лихорадочным синдромом, обычно сопровождаемым

лейкопенией, тромбоцитопенией и повышением активности аминотрансфераз в сыворотке [22, 42, 49, 121].

В настоящее время человеческий эрлихиоз встречается все чаще из-за постоянных перемещений восприимчивых людей в места, где они встречаются с клещами-переносчиками [51, 148]. Два вида инфекций, вызываемых микроорганизмами Е. chaffeensis и вариантами Е. equi и Е. phagocytophila являются клинически идентичными. Это заболевание сильно напоминает пятнистую лихорадку Скалистых Гор, но манифестируется без появления пятен. У больных обычно отмечается лихорадочное состояние, головная боль, общее недомогание в течение месяца после контакта с клещом. При острой инфекции имеют место лейко- и тромбоцитопения, обычно сопровождаемые гепатитом в легкой форме [147, 149, 160]. Могут развивается почечная и легочная недостаточность, поражается центральная нервная система. У пожилых и ослабленных людей вероятность тяжелой инфекции и летального исхода выше, смертность достигает 5% [88, 90, 111].

Е. canis преимущественно переносится клещом Rhipicephalus sanguineus, в экспериментальных условиях вектором передачи может служить клещ Dermacentor variabilis. Распространение эрлихий внутри популяции клещей Rhipicephalus sanguineus происходит также при передаче возбудителя между поколениями трансовариально, а также имеются данные, что эрлихии сохраняются в клещах и при переходе их из одной стадии развития в другую. Различные возрастные формы клеща заражаются, при питании кровью собак с заболеванием в острой стадии [89, 123, 131, 142].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Вольвак, Андрей Олегович, 2013 год

7. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абуладзе К.И. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных/ К.И. Абуладзе, Н.В. Демидов, A.A. Непоклонов// Под ред. К.И. Абуладзе. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Агропромиздат. -1990. - С. 358-362.

2. Абусалимов Н.С. Иксодовые клещи и распространяемые ими заболевания сельскохозяйственных животных в Азербайджанской ССР / Н.С. Абусалимов // Проблемы инфекционных и инвазионных болезней в животноводстве на современном этапе - Сборник научных трудов МГАВМ и Б им. К.И. Скрябина. -1999,- С. 279-280.

3. Авроров В.Н. Электронно-микроскопические исследования при риккетсиозе крупного рогатого скота / В.Н. Авроров, В.А. Черванев // Ветеринария. -1991. -№ 10. - С. 29-31.

4. Адо А.Д. Вопросы общей нозологии. /А.Д. Адо. - М.: Медицина.- 2000. -281с.

5. Алексеев А.Н. Система клещ-возбудитель и ее эмерджентные свойства / А.Н. Алексеев. // СПб: ЗИН РАН. - 1993. - С. 204.

6. Алексеев А.Н. Многообразие способов циркуляции возбудителя необходимое условие существования очагов природных инфекций / А.Н Алексеев // Актуал. вопр. мед. паразитол. Тез. докл. научн. конф., посвящ. 110-летию со дня рожд. акад. E.H. Павловского. 23-24 марта 1994 г. С.-Петербург. - С. 5.

7. Алексеев А.Н. Геном фенотипы кровососущих клещей Ixodes persulcatus Schulze (Acariña, Ixodidae) различных популяций: встречаемость, зараженность патогенами бактериальной природы (боррелиями и эрлихиями) / А.Н. Алексеев, Е.В. Дубинина, A.B. Семенов, и др. // Роль кровососущих насекомых и клещей в лесных экосистемах России. Сб. науч. Работ по матер. Республик, конф. 3-5

октября 2000 г./ Под. ред. А.К. Юзбекова и В.Г. Федоровой. Великий Новгород: НовГУ им. Ярослава Мудрого. - С. 70-75.

8. Аллеи В.Э. Полный курс акушерства и гинекологии собак /В.Э. Аллен -М.: Аквариум, 1999.-446 с.

9. Анохин П.К. Очерки физиологии функциональных систем. /П.К. Анохин. - М.: Медицина, 2002. - 448 с.

10. Антыкова JT.B. Фауна кровососущих членистоногих и переносчиков трансмиссивных инфекций на территории Санкт-Петербурга / Л.П. Антыкова, Л.В. Пызина, Т.О. Смыслова и др. // Паразитологические проблемы больших городов. 2-е совещ. по теме «Окружающая среда и проблемы паразитарного загрязнения». С.-Петербург, 3-5 апреля 1996 г. Тез. докл. СПб: ЗИН РАН. - С. 7-8.

11. Арумова Е.А. Первые сведения об эрлихиозах в Московской области / Е.А. Арумова // РЭТ-инфо. -2006, № 2. - С. 50.

12. Балагула Т.В. Эпизоотология бабезиоза собак в условиях г.Москвы и Московской области / Т.В. Балагула, В.Т. Заблоцкий, М.Ш. Акбаев // Сборник научных трудов МГУПБ. -1999,- С. 29-31.

13. Белов А.Д. Болезни собак. / А.Д.Белов, Е.П. Данилов, И.И. Дикур. - М.: Агропромиздат, 2001. - 290 с.

14. Братюха С. И. Болезни собак и кошек. Справ. Пособие 3-е изд., перераб. и доп. / С. И. Братюха, И. С, Нагорный, И. П. Ревенко. К.: Вшца школа. Головное изд-во, 2001. — 255 с.

15. Бурмистров С. Ю. Пироплазмоз / С.Ю. Бурмистров // Друг. -2001. - №9. -С. 9.

16. Бутенков А.И. Особенности клинического течения векторных инфекций у собак в перинатальный период/ А.И. Бутенков, А.О. Вольвак, С.Н. Карташов, A.B. Корсунов // Ветеринарная патология, 2013 -N 4 - С. 13-15.

17. Бутенков А.И. Патоморфологические изменения у собак при векторных инфекциях в перинатальный период/ А.И. Бутенков, А.О. Вольвак, С.Н. Карташов, A.B. Корсунов // Ветеринария Кубани, 2013 - N 5 - С. 22-25.

18. Васильев И.К. Бабезиоз собак - новый подход к лечению / И.К. Васильев, И.М. Фурман, И.А. Шелапутина и др. // Ветеринарная клиника. - 2003. - №5 (12). - С. 6-9.

19. Водянов A.A. Морфологические изменения при бабезиозе собак /A.A. Водянов, С.Н. Гаджиев И.М. Новгородцева / Анализ причин распространения бабезиоза собак в Новгородской области // Паразитологические проблемы больших городов: Тез. Докл. СП-б,-1996.-С.29.

20. Водянов A.A. Эпизоотическая ситуация по пироплазмозу собак в г. Ставрополе и его окрестностях / A.A. Водянов, С.Н. Луцук, Ю.П. Овсянникова, JI.3. Золотухина // Вестник ветеринарии. -1996. - №1 (1/1996). - С. 32-35.

21. Гласкович A.A. Практикум по частной микробиологии / A.A. Гласкович // - Мн.: Ураджай, 2000. - С. 250.

22. Динченко О.С. Пироплазмоз собак, профилактика и меры борьбы / О.С. Динченко // Ветеринарная газета. -1996. - С. 7-14.

23. Дроздов В.М. Ошибки диагностики и дифференциальный диагноз клещевых инфекций в Западной Сибири / В.М. Дроздов, A.C. Оберт, Н.В. Рудаков и др. // Современная ситуация и борьба с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск -2006. - С. 50-51.

24. Дубинина Е.В. Синергизм и антагонизм возбудителей болезней и их переносчиков / Е.В. Дубинина // Проблемы и перспективы паразитоценологии. Матер. V конф. паразитоценол. Украины. 29-30 окт. 1997 г. Харьков-Луганск. -1998. - С. 11-12.

25. Дьяконов Л.П. Роль неспецифических хозяев в поддержании пироплазмидозных очагов / Л.П. Дьяконов // Бюлл-ВИЭВ.-М. -1974.-№ 18.-С. 15-18.

26. Жукова Т.Г. Эпидемиологичесая обстановка и актуальность проблемы клещевых инфекций для Томской области. Сиб. консилиум. Мед.-фармац. журн. / Т.Г. Жукова, A.B. Шихин, A.B. Полторацкая и др. // -2006. - № 4. - С. 44 - 49.

27. Злобин В.И. Актуальные вопросы эпидемиологии и современные подходы к профилактике в Российской федерации / В. И. Злобин, Д.К. Львов, A.A. Иванова // Дальневост. журн. инфекц. пат. -2007. -№11.-С. 109.

28. Казанова А.Б. Паразитарные заболевания / А.Б. Казанова // Нива. -1995. - С. 300.

29. Казарина Е.В. Эпизоотическая ситуация по пироплазмозу собак в г, Ставрополе / Е.В. Казарина, О.В. Дьяченко, С. Н. Лунук // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: Сб. науч. Тр. Ставроа ГСХА-Ставрополь. -2000. - С. 78- 81.

30. Казарина Е.В. Пироплазмидозы собак городской популяции (эпизоотическая ситуация, некоторые аспекты патогенеза, диагностика и лечение) / Е.В. Казарина Автореф. Дис., канд. вет. наук, - Ставрополь. -2003. - С. 24.

31. Карпов В. А. Акушерство и гинекология мелких домашних животных./ В.А. Карпов - М.: Росагропромиздат, 2003. - 288 с.

32. Карташов, С.Н. Применение антибактериальных препаратов при септических состояниях у собак (рекомендации). / С.Н. Карташов, В.Н. Василенко, Т.П. Федорова, Л.Н. Федоров, Н.В. Ярошенко, Е.В. Карташова, А.И. Бутенков, А.М. Ермаков // Новочеркасск, «ЮРГТУ», 2005. - 15 с.

33. Карташов С.Н. Глюкозо-инсулин-калиевая смесь при терапии пироплазмоза собак. /Е.В. Карташова, М.В. Пазыныч// Ж. «Известия высших учебных заведений. Северо-Кавказский регион. Естественные науки», №10. 2006. -с. 144-147.

34. Карташов С.Н. Диагностическое значение цитологического исследования клеток печени при пироплазмозе у собак / С.Н. Карташов, М.С. Кривко, Л.П. Славинская // Вестник Саратовского госагроуниверситета им. Н.И. Вавилова. №6. -2008. - С.28-30.

35. Карташов С.Н. Оценка адаптационных возможностей организма животных. Прогнозирование тяжести течения инфекционных и инвазионных заболеваний (методическое пособие). / С.Н. Карташов, Л.П. Миронова, А.И. Клименко, A.A. Миронова, Е.В. Карташова, А.Г. Ключников // п.Рассвет, типография ГНУ ДЗНИИСХ Россельхозакадемии, 2010. - 78 с.

36. Карташов С.Н. Морфологические и биохимические исследования крови у собак при эрлихиозе /С.Н. Карташов, A.A. Миронова, М.А. Приходько// Материалы Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы производства и переработки продуктов животноводства», Нижний Архыз, 2010, С. 468-472.

37. Карташов С.Н. Морфофункциональные аспекты эрлихиоза собак / С.Н. Карташов, A.A. Миронова, М.А. Приходько // Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения Российского животноводства», Новочеркасск, 2010, С. 96-100.

38. Карташов С.Н. Поражение гепатобилиарной системы при эрлихиозе / С.Н. Карташов, И.В. Ромашевский, М.А. Приходько // Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения Российского животноводства», Новочеркасск, 2010, С. 100-106.

39. Карташов С.Н. Патоморфологические параллели кардиопатии при бабезиозе у собак и КРС. / С.Н. Карташов, А.И. Бутенков, А.О. Вольвак, A.B. Корсунов // «Научные проблемы и современные тенденции развития отечественного животноводства в условиях ВТО».

Материалы Всероссийской научно-практической конференции 20-21 июня 2013, г. Новочеркасск, 2013 - С. 57-59.

40. Козлова И.В. Методология дифференциальной экспресс-диагностики трансмиссивных клещевых инфекций / Й.В. Козлова, М.М. Верхозина, М.А. Хаспатиков и др. // Современные ситуации и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в ХХГвеке. - Томск. -2006. - С. 69-70.

41. Комаров Ф.И. Биохимические исследования в клинике. /Ф.И. Комаров, Б.Ф. Коровкин, В.В. Меньшиков. - Элиста: АЛЛ Джангар, 2005. - С. 202.

42. Конопаткин A.A. Тропические болезни животных / A.A. Конопаткин, A.B. Степанов, Г.И. Забалуев и др.; Под ред. A.A. Конопаткина // - М.: Агропромиздат. -1990. - С. 99-104, 160-165.

43. Коренберг Э.И. Эрлихиозы - новая для России проблема инфекционной патологии / Э.И. Коренберг // Мед. Паразитол. -1999. № 4, - С. 10-16.

44. Кривко, М.С. Гепатопривный синдром при пироплазмозе у собак (диагностика и лечение) / М.С. Кривко, A.A. Миронова, Е.В. Карташова, Н.В. Ярошенко//Сборник научных трудов «Актуальные проблемы научного обеспечения устойчивого развития животноводства Южного Федерального округа».- Новочеркасск, 2006.-С.91-93.

45. Ливанова H.H. Разнообразие паразитарных систем с участием мелких млекопитающих и Ixodes persulcatus Shculze на Северном Урале / H.H. Ливанова, В.А. Pap, С.Г. Ливанов // Сиб. эколог, журн. -2005. Т. 10. № 5. - С. 1079 - 1084.

46. Лочкарев В.А. Лечение при риккетсиозе глаз у крупного рогатого скота / В.А. Лочкарев, В.А. Дмитриев // Ветеринария. - 1990. - № 6. - С. 47.

47. Луцук С.Н. Иксодофауна города Ставрополя / С.Н. Луцук, Ю.В. Дьяченко, Е. В. Казарина // II Материалы IV Межрегиональной конференции "Актуальные проблемы ветеринарной медицины мелких

домашних животных и лошадей на Северном Кавказе" (31 мая 2001 г.Ставрополь). - Ставрополь. -2001, - С. 55-56.

48. Луцук С.Н. Испытание новых препаративных форм ивермектина и диминазена при паразитозах плотоядных / С.Н. Луцук, Ю.В. Дьяченко, H.H. Пожарова, М.И. Кравченко // Актуальные проблемы охраны здоровья животных.-Ставрополь. -2004.-С. 165-169.

49. Мерзлова Н.Б. «Клещевые инфекции» у детей Пермского края в эпидсезон 2006 года / Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева, М.Н. Самаров // Здоровье и образование в 21-м веке: материалы VII международной науч.-практ. конф. -М. -2006. - С. 341.

50. Мерзлова Н.Б. Поражение гепатобилиарной системы у детей при новых «клещевых» инфекциях в Пермском крае / Н.Б. Мерзлова, М.Н. Самаров // Актуальные проблемы абдоминальной патологии у детей: материалы XVI Конгресса детских гастроэнтерологов России и стран СНГ. - М. -2009. - С. 263- 265.

51. Никитин В.Я. Роль риккетсий в заболеваемости коров послеродовым метритом / В.Я. Никитин, Л.Д. Тимченко // Ветеринария. - 1994. - № 10. - С. 44-45.

52. Приходько М.А. Эрлихиоз собак в Ростовской области /М.А. Приходько// Материалы Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения Российского животноводства», Новочеркасск, 2010, С. 93-96.

53. Приходько М.А. Некоторые особенности клинического течения эрлихиоза у собак /М.А. Приходько// Материалы Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы производства и переработки продуктов животноводства», Нижний Архыз, 2010, С. 509-512.

54. Радчук, H.A. Ветеринарная микробиология и иммунология/ H.A. Радчук, Г.В. Дунаев, Н.М. Колычев и др. // Под ред. H.A. Радчука. -М.: Агропромиздат. -1991. - С. 312-322.

55. Раевская М.А. Морфофункциональные аспекты векторных заболеваний у собак / М.А. Раевская // Инновационные процессы в АПК. Сборник статей III Международной научно-практической конференции преподавателей, молодых учёных, аспирантов и студентов факультета РУДН - Москва, 2011 - С. 347-349.

56. Раевская М.А. Некоторые особенности диагностики рикетсиозных инфекций у собак. / М.А. Раевская // «Научное обеспечение инновационного развития отечественного животноводства». Материалы Всероссийской научно-практической конференции ГНУ СКЗНИВИ, г. Новочеркасск, 2011 - С. 213-216.

57. Раевская М.А. Изменение показателей крови при эрлихиозе у собак / М.А. Раевская // Ветеринарная патология, № 1-2 (36), 2011. - С.58-61.

58. Раевская М.А. Особенности клинического течения риккетсиозов у собак в Ростовской области / М.А. Раевская, И.С. Майборода // Материал IV Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины», Ростов-на-Дону, 2011, С. 125-126.

59. Раевская М.А. Особенности клинического течения эрлихиоза у собак / М.А. Раевская // Материалы Международной научно-практической конференции «Пути интенсификации производства и переработки продуктов животноводства», Черкесск, 2011, С. 204-206.

60. Pap В.А. Изучение генетического разнообразия анаплазм и эрлихий в паразитарных системах юга Западной Сибири и Урала / В.А. Pap, H.H. Ливанова, В.В. Панов и др. // Бюлл. сиб. Мед. -2006. 5(1). - С. 116-120.

61. Pap В.А. Изучение генетического разнообразия анаплазм и эрлихий в паразитарных системах Западной Сибири и Урала / В.А. Pap, H.H. Ливанова, В.В. Панов и др. // Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инекциями. - Томск. -2006. - С. 110-112.

62. Pap В.А. Выявление антител к возбудителям гранулоцитарного анаплазмоза и моноцитарного эрлихиоза в крови пациентов из

Новосибирской области / В.А. Pap, H.B. Фоменко, O.B. Мельникова и др. //Бюлл. сиб. мед. -2008. №7, Прил. 1.- С. 73-77.

63. Рудаков Н.В. Современные представления о клещевом риккетсиозе / Н.В. Рудаков, И.Е. Самойленко, Г.А. Решетникова // Журн. инфекц. пат. - 1996. - № 4. - С. 64-69.

64. Рудаков Н.В. Современные подходы к изучению Rickettsiales / Н.В. Рудаков, С.Н. Шпанов, И.Е. Самойленко и др. // Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск. -2006.-С. 117-119.

65. Самаров М.Н. Особенности клинического течения заболеваний, передающихся иксодовыми клещами / М.Н. Самаров // Здоровье ребенка - здоровье нации: сб. науч. работ. - Киров. -2006. - С. 225 - 226.

66. Самаров М.Н. Трансмиссивные инфекционные природно-очаговые заболевания у детей в Пермском крае / М.Н. Самаров // Пермской краевой детской клинической больнице 50 лет. Этапы, итоги, перспективы: юбилейная науч.-практ. конф. - Пермь. -2007. -С. 19.

67. Самаров М.Н. Новые «клещевые» инфекции - моноцитарный эрлихиоз человека и гранулоцитарный анаплазмоз человека у детей Пермского края / М.Н. Самаров, Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева // Вестн. Рос. гос. мед. ун-та (специальный выпуск). - М. -2008. - Т. 63. - №4. - С. 74.

68. Семенов A.B. Выявление генотипической неоднородности популяции Ixodes persulcatus Shculze (Acari: Ixodidae) северо-запада России и особенности распределения клещевых патогенов-возбудителей болезни Лайма и эрлихиозов в различ-ных генотипах / A.B. Семенов, А.Н. Алексеев, Е.В. Дубинина и др. // Мед. паразитология. -2001. Т. 3. - С. 11-15.

69. Сидельников Ю.Н. Первый случай гранулоцитарного эрлихиоза на Дальнем Востоке Российской Федерации / Ю.Н. Сидельников, О.Ю. Медянников, Л.И. Иванов, Н.И. Здановская // Клинич. медицина. -2003. Т. 81. - С. 67-68.

70. Смирнова Н.И. Ветеринарная микробиология: Уч. пособие для ветеринарных ВУЗов. Н.И. Смирнова И - Мн.: Вышэйшая школа. -1979.-С. 198-200.

71. Субботин A.B. Особенности структуры клещевых заболеваний с поражением нервной системы / A.B. Субботин, В.А. Семенов, H.A. Короткевич и др. // Сиб. консилиум. Мед.-фармац. журн. - 2006. - № 4. -С. 121-123.

72. Телфорд С.Р. Выявление в России природных очагов бабезиоза и гранулоцитарного эрлихиоза / С.Р. Телфорд, Э.И. Коренберг, Х.К. Гойберт и др. // Журн. микробиологии. -2002. № 6. - С. 21-25.

73. Топычканова Н.Г. Выявление серологических маркеров инфекций, передаваемых клещами, у пациентов, поступивших в клиники Томска с подозрением на клещевой энцефалит в 2004 г. / Н.Г. Топычканова, Н.Г. Жукова, И.Н. Кувшинова и др. // Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск. -2006. - С. 136137.

74. Фоменко В.А. Выявление антител к возбудителям гранулоцитарного анаплазмоза и моноцитарного эрлихиоза в крови пациентов из Новосибирской области / В.А. Фоменко // Бюлл. сиб. мед. -2008. №7, Прил. 1. -С. 73-77.

75. Фоменко Н.В. Молекулярно-генетический анализ инфекций, переносимых клещами, у больных Новосибирской области / Н.В. Фоменко, В.А. Pap, E.B. Романова и др. // Молекуляр. ме-дицина. -2005. Т. 4. - С. 48-52.

76. Черногор Л.И. Клинико-лабораторная характеристика иксодового боррелиоза в Прибайкалье / Л.И. Черногор, Е.В. Арбатская, Г.А. Данчинова и др. // Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск. -2006. - С. 145- 147.

77. Шатекаури С.А. Выявление новых клинических форм клещевых инфекций в Красноярском крае / С.А. Шатекаури, И.А. Ольховский,

Н.А. Шакина // Современные тенденции и борьба с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск. -2006. - С. 150-152.

78. Ill ны но в С.Н. Новые данные о выявлении эрлихий и анаплазм в иксодовых клещах в России и Казахстане. / С.Н. Шпынов, Н.В.Рудаков,

B.К. Ястребов и др. //Мед. Паразитол. -2004. № 2, - С. 10-14.

79. Шпынов С.Н. Первое молекулярно-биологическое подтверждение клещевого риккетсиоза, вызываемого Rickettsia sibirica sensu stricto /

C.Н. Шпынов, Н.В. Рудаков, В.В. Гранитов и др. // Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. -Томск. -2006. - С. 157-159.

80. Шутова Н.А. Изучение актуальной проблемы эрлихиозов в Томской области / Н.А. Шутова, Е.М. Волкова, М.И. Кузьмиченко и др. // Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск.- 2006. - С. 159-160.

81. Юров Н.П. Инфекционные болезни лошадей / Н.П. Юров // М.: Росагропромиздат. -1991. - С. 153-157.

82. Ярошенко, Н.В. Дифференциальная диагностика пироплазмоза и синдрома системной воспалительной реакции при пиометре у собак / Н.В. Ярошенко, С.Н. Карташов// «Научная мысль Кавказа».-Северо-Кавказский научный центр высшей школы.-№8, 2005.-С. 148-150.

83. Ярошенко, Н.В. Проведение инфузионной терапии при пироплазмозе у собак/ Н.В. Ярошенко, Л.П. Славинская, М.С. Кривко //Материалы Всероссийской научно-практической конференции 15-16 марта 2007 года «Актуальные проблемы функциональной и морфофункциональной диагностики болезней животных». -«Новочеркасск».-2007.-С. 139-140.

84. Alleman, R., A., McSherry, L., J., Barbet, A., F., Breitschwerdt, E., В., Sorenson, H., L., Bowie, M., V., Belanger, M., Recombinant Major Antigenic Protein 2 of Ehrlichia canis: a potential diagnostic tool. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(7): p. 2494-2499.

85. Allsopp, M., T., E., P., Allsopp, B., A., Novel Ehrlichia genotype detected in dogs in South Africa. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(11): p. 4204-4207.

86. Arnez, M., Petrovec, M., Lotric-Furlan, S., Zupanc, T., A., Strle, F., First european pediatric case of human granulocytic ehrlichiosis. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(12): p. 4591-4592.

87. Arraga-Alvarado, C., Palmar, M., Parra, O., Salas, P., Fine structural characterisation of a Rickettsia-like organism in human platelets from patients with symptoms of ehrlichiosis. J Med Microbiol, 1999. 48(11): p. 991-7.

88. Arraga-Alvarado, C., Palmar, M., Parra, O., Salas, P., Ehrlichia platys (Anaplasma platys) in dogs from Maracaibo, Venezuela: an ultrastructural study of experimental and natural infections. Vet Pathol, 2003. 40(2): p. 149-56.

89. Asiya, G., A., Buller, R., S., Storch, G., A., Huycke, M., M., Machado, L., J., Slater, L., N.s Stockham, S., L., Massung, R., F., Identification of a p28 gene in Ehrlichia ewingii: Evaluation of gene for use as a target for a species-specific PCR diagnostic assay. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(11): p. 3871-3876.

90. Baneth, G., Breitschwerdt, E. B., Hegarty, B. C., Pappalardo, B., Ryan, J., A survey of tick-borne bacteria and protozoa in naturally exposed dogs from Israel. Vet Parasitol, 1998. 74(2-4): p. 133-42.

91. Barr, S.C., Ehrlichiosis, in The 5-Minutes Veterinary Consult - 2nd ED., F.W.K. Smith-Jr., Editor. 2000, Lippincott Williams & Wilkins: Philadelphia, Pennsylvania, p. 644-645.

92. Batmaz, H., Nevo, E., Waner, T., Senturk, S., Yilmaz, Z., Harrus, S., Seroprevalence of Ehrlichia canis antibodies among dogs in Turkey. Vet.Rec, 2001. 148(21): p. 665-666.

93. Beaufils, J.-P., Breitschwerdt, E., B., Hancock, S., I., Hegarty, B., C., Martin-Granel, J., Jumelle, Ph., Barbault-Jumelle, M., Blavier, A.,

Ehrlichiose féline: identification génétique de l'agent chez deux chats. Prat.Med.Chir.Anim.Comp., 2002. 37: p. 235-238.

94. Belanger, M., Sorenson, H. L., France, M. K., Bowie, M. V., Barbet, A. F., Breitschwerdt, E. B., Alleman, A. R., Comparison of serological detection methods for diagnosis of Ehrlichia canis infections in dogs. J Clin Microbiol, 2002. 40(9): p. 3506-8.

95. Breitschwerdt, E., B., Hegarty, B., C., Hancock, S., T., Sequential evaluation of dogs naturally infected with Ehrlichia canis, Ehrlichia chaffeensis, Ehrlichia equi, Ehrlichia ewingii and Bartonella vinsonii. J.Clin.Microbiol., 1998. 36(9): p. 2645-2651.

96. Bown, K.J., Begon, M., Benett, M., Woldehiwet, Z., Ogden, N. H., Seasonal dynamics of Anaplasma phagocytophila in a rodent-tick (Ixodes trianguliceps) system, United Kingdom. Emerg Infect Dis, 2003. 9(1): p. 6370.

97. Brouqui, P., Ehrlichiosis in Europe, in Rickettsiae and rickettsial diseases at the turn of the third millenium, P.Brouqui, Editor. 1999, Elsevier: Paris, p. 220-232.

98. Brown, G., K., Martin, A., R., Roberts, T., K., Aitken, R., J, Detection of Ehrlichia platys in dogs in Australia. Aust.Vet.J., 2001. 79(8): p. 554-558.

99. Brown, W.C., Brayton, K. A., Styer, C. M., Palmer, G. H., The hypervariable region of Anaplasma marginale major surface protein 2 (MSP2) contains multiple immunodominant CD4+ T lymphocyte epitopes that elicit variant-specific proliferative and IFN-gamma responses in MSP2 vaccinates. J Immunol, 2003. 170(7): p. 3790-8.

100. Buitrago, M.I., Ijdo, J. W., Rinaudo, P., Simon, H., Copel, J., Gadbow, J., Heimer, R., Fikrig, E., Bia, F. J., Human granulocytic ehrlichiosis during pregnancy treated successfully with rifampin. Clin Infect Dis, 1998. 27(1): p. 213-5.

101. Buller, R., S., Arens, M., Hmiel, S., P., Paddock, C., D„ Sumner, J., W., Rikihisa, Y., Unver, A., Gauderault-Keener, M., Manian, F., A., Liddell, A.,

M., Schmulewitz, N., Storch, G., A., Ehrlichia ewingii, a newly recognized agent of human ehrlichiosis. N.Eng.J.Med., 1999. 341: p. 148-155.

102. Bunnell, I.E., Trigiani, E. R., Srinivas, S. R., Dumler, J. S., Development and distribution of pathologic lesions are related to immune status and tissue deposition of human granulocytic ehrlichiosis agent-infected cells in a murine model system. J Infect Dis, 1999. 180(2): p. 546-50.

103. Cao, W.C., Gao, Y. M., Zhang, P. H., Zhang, X. T., Dai, Q. H., Dumler, J. S., Fang, L. Q., Yang, H., Identification of Ehrlichia chaffeensis by nested PCR in ticks from Southern China. J Clin Microbiol, 2000. 38(7): p. 277880.

104. Chabanne, L., Ferrand, G., Ledieu, D., Trumel, C., Diquelou, A., Troubles de l'hémostase primaire, in Encyclopédie vétérinaire. 2003, Elsevier SAS: Paris (tous droits réservés) - Biologie clinique, 0500, 2003,16p.

105. Chae, J.S., Kim, C. M., Kim, E. H., Hur, E. J., Klein, T. A., Kang, T. K., Lee, H. C., Song, J. W., Molecular epidemiological study for tick-borne disease (Ehrlichia and Anaplasma spp.) surveillance at selected U.S. military training sites/installations in Korea. Ann N Y Acad Sei, 2003. 990: p. 11825.

106. Choi, K.S., Dumler, J. S., Early induction and late abrogation of respiratory burst in A. phagocytophilum-infected neutrophils. Ann N Y Acad Sei, 2003. 990: p. 488-93.

107. Cohn, L.A., Ehrlichiosis and related infections. Vet.Clin.North.Am.Small.Anim.Pract., 2003. 33: p. 863-884.

108. Das, S., Deponte, K., Marcantonio, N. L., Ijdo, J. W., Hodzic, E., Katavolos, P., Bathold, S. W., Telford, S. R., 3rd, Kantor, F. S., Fikrig, E., Granulocytic ehrlichiosis in tick-immune guinea pigs. Infect Immun, 1998. 66(4): p. 18035.

109. Davoust, B., Parzy, D., Boni, M., Essai d'un test d'immunomigration rapide en vue du dépistage de l'ehrlichiose canine. Bull.Vet.Bimens.Soc.Vet.Prat.Fr, 2000. 84(3): p. 189-97.

110. Dumler, J., S., Barbet, A., F., Dasch, G., A., Palmer, G., H., Ray, S., C., Rikihisa, Y., Rurangirwa, F., R., Reorganization of generas in the family Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Riekettsiales: unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and "HGE agent" as subjective synonyms of Ehrlichia phagocytophila. Int.J.Syst.Evol.Microbiol., 2001. 51(6): p. 2145-2165.

111. Dumler, J.S., Asanovich, K. M., Bakken, J. S., Analysis of genetic identity of North American Anaplasma phagocytophilum strains by pulsed-field gel electrophoresis. J Clin Microbiol, 2003. 41(7): p. 3392-4.

112. Fernandez-Soto, P., Perez-Sanchez, R., Encinas-Grandes, A., Molecular detection of Ehrlichia phagocytophilum genogroup organisms in larvae of Neotrombicula automnalis (Acari: Trombiculidae) captured in Spain. J Parasitol, 2001. 87(6): p. 1482-3.

113. Frank, J., R„ BREITSCHWERDT, E., B„ A retrospective study of ehrlichiosis in 62 dogs from North Carolina and Virginia. J.Vet.Int.Med., 1999. 13: p. 194-201.

114. Goethert, H.K., Telford, S. R., 3rd, Enzootic transmission of the agent of human granulocytic ehrlichiosis among cottontail rabbits. Am J Trop Med Hyg, 2003. 68(6): p. 633-7.

115. Goldman, E., E., Breitschwerdt, E., B., Grindem, C., B., Hegarty, B., C., Walls, J., J., Dumler, J., S., Granulocytic ehrlichiosis in dogs from North Carolina and Virginia. J.Vet.Int.Med., 1998. 12: p. 61-70.

116. Goodman, R.A., Hawkins, E.C., Olby, W.J., Grindem, C.B., Hegaty, B., Breitschwerdt, E.B., Molecular identification of Ehrlichia ewingii infection in dogs: 15 cases (1997-2001). J.Am.Vet.Med.Assoc, 2003. 222(8): p. 11021107.

117. Gusa, A., A., Buller, R., S., Storch, G., A., Huycke, M., M., Machado, L., J., Slater, L., N., Stockham, S., L., Massung, R., F., Identification of a p28 gene

in Ehrlichia ewingii: Evaluation of gene for use as a target for a species-specific PCR diagnostic assay. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(11): p. 3871-3876.

118. Hancock, S.I., Breitschwerdt, E. B., Pitulle, C., Differentiation of Ehrlichia platys and E. equi infections in dogs by using 16S ribosomal DNA-based PCR. J Clin Microbiol, 2001. 39(12): p. 4577-8.

119. Harrus, S., Waner, T., Aizenberg, I., Bark, H., Therapeutic effect of doxycyline in experimental subclinical canine monocytic ehrlichiosis: Evaluation of a 6- week course. J.Clin.Micobiol., 1998. 36(7): p. 2140-2142.

120. Harrus, S., Waner, T., Keysary, A., Aroch, 1., Voet, H., Bark, H., Investigation of splenic functions in canine monocytic ehrlichiosis. Vet.Immun.and Immunopath., 1998. 62: p. 15-27.

121. Harrus, S., Waner, T., Strauss-Ayali, D., Bark, H., Jongejan, F., Hecht, G., Baneth, G., Dynamics of IgGl and IgG2 subclass response in dogs naturally and experimentally infected with Ehrlichia canis. Vet. Parasitol., 2001. 99(1): p. 63-71.

122. Harrus, S., Day, M., J., Waner, T., Bark, H., Presence of immune-complexes, and absence of antinuclear antibodies, in sera of dogs naturally and experimentally infected with Ehrlichia canis. Vet Microbiol, 2001. 83(4): p. 343-349.

123. Harrus, S., Alleman, A., R., Bark, H., Mahan, S., M., Waner, T., Comparison of three enzyme-linked immunosorbant assays with the indirect immunofluorescent antibody test for the diagnosis of canine infection with Ehrlichia canis. Vet Microbiol, 2002. 86(4): p. 361-368.

124. Heimer, R., Tisdale, D., Dawson, J.E., A single culture system for the propagation of the agents of the human ehrlichioses. Am.J.Trop.Med.Hyg., 1998. 58: p. 812-815.

125. Hinrichsen, V., L., Whitworth, U., G., Breitschwerdt, E., B., Hegarty, B., C., Mather, T., N., Assessing the association between the geographic distribution of deer ticks and seropositivity rates to various tick-transmitted

disease organism in dogs. J.Am.Vet.Med.Assoc, 2001. 218(7): p. 10921097.

126. Hodzic, E., Fish, D., Maretzki, C., M., De Silva, A., M., Feng, S., Barthold, S., W., Acquisition and transmission of the agent of human granulocytic ehrlichiosis by Ixodes scapularis ticks. J.Clin.Micobiol., 1998. 36: p. 35743578.

127. Hodzic, E, Ijdo, J. W., Feng, S., Katavolos, P., Sun, W., Maretzki, C. H., Fish, D., Fikrig, E., Telford, S. R., 3rd, Bathold, S. W., Granulocytic ehrlichiosis in the laboratory mouse. J Infect Dis, 1998. 177(3): p. 737-45.

128. Hua, P., Yuhai, M., Shide, T., Yang, S., Bohai, W., Xiangrui, C., Canine ehrlichiosis caused simultaneously by Ehrlichia canis and Ehrlichia platys. Microbiol.lmmunol., 2000. 44(9): p. 737-739.

129. Huguier, M., Flahault, A., L'évaluation diagnostique, in Biostatistiques au quotidien, A. Flahault, Editor. 2000, Elsevier: Paris. Tous droits réservés, p. 97-116.

130. Ijdo, J.W., Zhang, Y., Anderson, M. L., Goldberg, D., Fikrig, E., Heat shock protein 70 of the agent of human granulocytic ehrlichiosis binds to Borrelia burgdorferi antibodies. Clin Diagn Lab Immunol, 1998. 5(1): p. 118-20.

131. Ijdo, J.W., Sun, W., Zhang, Y., Magnarelli, L. A., Fikrig, E., Cloning of the gene encoding the 44-kilodalton antigen of the agent of human granulocytic ehrlichiosis and characterization of the humoral response. Infect Immun, 1998. 66(7): p. 3264-9.

132. Ijdo, J.W., Wu, C., Telford, S. R., 3rd, Fikrig, E., Differential expression of the p44 gene family in the agent of human granulocytic ehrlichiosis. Infect Immun, 2002. 70(9): p. 5295-8.

133. Inokuma, H., Raoult, D., Brouqui, P., Detection of Ehrlichia platys DNA in brown dog ticks (Rhipicephalus sanguineus) in Okinawa Island, Japan. J Clin Microbiol, 2000. 38(11): p. 4219-21.

134. Inokuma, H., Brouqui, P., Drancourt, M., Raoult, D., Citrate synthetase gene sequence: a new tool for phylogenetic analysis and identification of Ehrlichia. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(9): p. 3031-3039.

135. Inokuma, H., Ohno, K., Onishi, T., Raoult, D., Brouqui, P., Detection of ehrlichial infection by PCR in dogs from Yamagushi and Okinawa Prefectures, Japan. J.Vet.Med.Sci, 2001. 63(7): p. 815-817.

136. inokuma, H., Fujii, K., Okuda, M. Onishi, T., Beaufils, J. P., Raoult, D., Brouqui, P., Determination of the nucleotide sequences of heat shock operon groESL and the citrate synthase gene (gltA) of Anaplasma (Ehrlichia) platys for phylogenetic and diagnostic studies. Clin Diagn Lab Immunol, 2002. 9(5): p. 1132-6.

137. Inokuma, H., Fujii, K., Matsumoto, K., Okuda, M., Nakagome, K., Kosugi, R., Hirakawa, M., Onishi, T., Demonstration of Anaplasma (Ehrlichia) platys inclusions in peripheral blood platelets of a dog in Japan. Vet Parasitol, 2002. 110(1-2): p. 145-52.

138. Johnson, E.M., Ewing, S. A., Barker, R. W., Fox, J. C., Crow, D. W., Kocan, K. M., Experimental transmission of Ehrlichia canis (Rickettsiales: Ehrlichieae) by Dermacentor variabilis (Acari: Ixodidae). Vet Parasitol, 1998. 74(2-4): p. 277-88.

139. Kakoma, I., Sainz, A., Tesouro, M., Amusategui, I., Kim, C., H., Biggerstaff, J., McPeak, J., Levy, M., G., Standardization of the diagnosis criteria for canine ehrlichiosis. Towards a universal case definition. Ann.N.Y.Acad.Sci., 2000. 916: p. 396-403.

140. Keysary, A., Waner, T., Strenger, C., Harrus, S., Cultivation of Ehrlichia canis in a continuous BALB/C mouse macrophage cell culture line. J.Vet.Diag.Invest., 2001. 13(6): p. 521-523.

141. Kordick, S., K., Breitschwerdt, E., B., Hegarty, B., C., Southwick, K., L., Colitz, C., M., Hancock, S., I., Bradley, J., M., Rumbough, R., Mcpherson, J., T., Mccormack, J., N., Coinfection with multiple Tick-borne pathogens in

a Walker Hound kennel in North Carolina. J.Clin.Micobiol., 1999. 37(8): p. 2631-2638.

142. La Scola, B., Raoult, D., Serological diagnosis of rickettsiosis., in Rickettsiae and rickettsial diseases at the turn of the third millenium, P.B.

D.Raoult, Editor. 1999, Elsevier: Paris, p. 320-329.

143. Leutenegger, C.M., Pusterla, N., Wicki, R., Lutz, H., New molecular tools in the diagnosis of tick-borne diseases. European Journal of Companion Animal Practice, 2003. 13(2): p. 189-91.

144. Madigan, J.E., Pusterla, N., Ehrlichial diseases. Vet Clin North Am Equine Pract, 2000. 16(3): p. 487-99.

145. Madigan, J.E., Pusterla, N., Johnson, E., Chae, J. S., Pusterla, J. B., Derock,

E., and S.P. LAWLER, Transmission of Ehrlichia risticii, the agent of Potomac horse fever, using naturally infected aquatic insects and helminth vectors: preliminary report. Equine Vet J, 2000. 32(4): p. 275-9.

146. Magnarelli, L., A., Ijdo, J., W., Van Andel, A., E., Wu, C., Fikrig, E., Evaluation of a polyvalent enzyme-linked immunosorbent assay incorporating a recombinant p44 antigen for diagnosis of granulocytic ehrlichiosis in dogs and horses. Am.J.Vet.Res., 2001. 62(1): p. 29-32.

147. Magnarelli, L., A., Ijdo, J., W., Van Andel, A., E., Wu, C., Oliver Jr, J., H., Fikrig, E., Reactivity of serum samples of dogs and horses tested by use of classspecific recombinant-based enzyme-linked immunosorbent assays for detection of granulocytic ehrlichiosis. Am.J.Vet.Res., 2001. 62(9): p. 13651370.

148. Martin, M.E., Caspernsen, K., Dumler, J. S., Immunopathology and ehrlichial propagation are regulated by interferon-gamma and interleukin-10 in a murine model of human granulocytic ehrlichiosis. Am J Pathol, 2001. 158(5): p. 1881-8.

149. Mason, R., J., Lee, J., M., Curran, J., M., Moss, A., Van Der Heide, B., Daniels, P., W., Serological survey for Ehrlichia canis in urban dogs from

the major population centres of northern Australia. Aust.Vet.J., 2001. 79(8): p. 559-562.

150. Massung, R.F., Slater, K. G., Comparison of PCR assays for detection of the agent of human granulocytic ehrlichiosis, Anaplasma phagocytophilum. J Clin Microbiol, 2003. 41(2): p. 717-22.

151. Mathew, J., S., Ewing, S., A., Malayer, J., R., Fox, J., C., Kocan, K., M., Efficacy of a modified polymerase chain reaction assay for detection of Ehrlichia canis infection. J.Vet.Diag.Invest., 2000. 12(5): p. 456-459.

152. Maurin, M., Bakken, J.S., Dumler, J.S., Antibiotic susceptibilities of Anaplasma (Ehrlichia) phagocytophilum strains from various geographies aeras in the United States. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 2003. 47(1): p. 413-415.

153. McBride, J., W., Yu, X., J., Walker, D., H., Molecular cloning of the gene for a conserved major immunoreactive 28-kilodalton protein of Ehrlichia canis:a potential sérodiagnostic antigen. Clin.Diag.Lab.lmmun., 1999. 6(3): p. 392-399.

154. McBride, J., W., Yu, X., J., Walker, D., H., A conserved, transcriptionally active p28 multigene locus of Ehrlichia canis. Gene, 2000. 254(1-2): p. 245252.

155. McBride, J., W., Corstvet, R., E., Breitschwerdt, E., B., Walker, D., H., Immunodiagnosis of Ehrlichia canis infection with recombinant proteins. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(1): p. 315-322.

156. Motoi, Y., Satoh, H., Inokuma, H., Kiyuuna, T., Muramatsu, Y., Ueno, H., Morita, C., First detection of Ehrlichia platys in dogs and ticks in Okinawa, Japan. Microbiol Immunol, 2001. 45(1): p. 89-91.

157. Mylonakis, M.E., et al., Evaluation of cytology in the diagnosis of acute canine monocytic ehrlichiosis (Ehrlichia canis): a comparison between five methods. Vet Microbiol, 2003. 91(2-3): p. 197-204.

158. Neer, T, M., Eddlestone, S., M., Gaunt, S., D., Corstvet, R., E., Efficacy of enrofloxacine for the treatment of experimentally induced Ehrlichia canis infection. J.Vetlnt.Med., 1999. 13(5): p. 501-504.

159. Neer, T.M., et al., Consensus statement on ehrlichial disease of small animals from the infectious disease study group of the ACVIM. American College of Veterinary Internal Medicine. J Vet Intern Med, 2002. 16(3): p. 309-15.

160. Ogden, N.H., Brown, K., Horrocks, B.K., Woldehivet, Z., Bennett, M., Granulocytic Ehrlichia infection in ixodid ticks and mammals in Woodlands and Uplands of the UK. Med.Vet.Entomol., 1998. 12: p. 423-429.

161. Ohashi, N, Rikihisa, Y., Unver, A., Analysis of transcriptionally active gene clusters of major outer membrane protein multigene family in Ehrlichia canis andE. chaffeensis. Infect.Immun., 2001. 69(4): p. 2083-2091.

162. Okada, H., Usuda, H., Tajima, T., Distribution of Ehrlichiae in Tissues as Determined by In-situ Hybridization. J Comp Pathol, 2003. 128(2-3): p. 182-7.

163. Park, J., Choi, K., Major surface protein 2 of Anaplasma phagocytophilum facilitates adherence to granulocytes. Infect Immun, 2003. 71(7): p. 4018-25.

164. Parola, P., Cornet, J. P., Sanongo, Y. O., Miller, R. S., Detection of Ehrlichia spp., Anaplasma spp., Rickettsia spp., and other eubacteria in ticks from the Thai-Myanmar border and Vietnam. J Clin Microbiol, 2003. 41(4): p. 16008.

165. Pretorius, A.M., Kelly, P. J., Serological survey for antibodies reactive with Ehrlichia canis and E. chaffeensis in dogs from the Bloemfontein area, South Africa. J S Afr Vet Assoc, 1998. 69(4): p. 126-8.

166. Preziosi, D., E., Leah, A., C., The increasingly complicated story of Ehrlichia. Comp.Cont.Ed.Pract.Vet., 2002. 24(4): p. 277-288.

167. Pusterla, N., Deplazes, P., Braun, U., Lutz, H., Serological evidence of infection with Ehrlichia spp. in red foxes (Vulpes vulpes) in Switzerland. J Clin Microbiol, 1999. 37(4): p. 1168-9.

168. Pusterla, N., Huder, J. B., Leutenegger, C. M., Braun, U., Quantitative realtime PCR for detection of members of the Ehrlichia phagocytophila genogroup in host animals and Ixodes ricinus ticks. J Clin Microbiol, 1999. 37(5); p. 1329-31.

169. Raoult, D., Brouqui, P., Ehrlichia. Ehrlichioses, in Les rickettsioses, Elsevier, Editor. 1998, Encyclopédie Médico Chirurgicale: Paris, France, p. 117-140.

170. Reddy, G., R., Streck, C., P., Variability in the 28-kDa surface antigen protein multigene locus of isolates of the emerging disease agent Ehrlichia chaffeensis suggests that it plays a role in immune evasion. Moll.Cell.Biol.Res.Commun., 1999. 1(3): p. 167-175.

171. Reubel, G., H., Barlough, J., E., Madigan, J., E., Production and characterization of Ehrlichia risticii, the agent of Potomac horse fever, from snails (Pleuroceridae: Juga spp.) in aquarium culture and genetic comparison to equine strains. J.Clin.Micobiol., 1998. 36: p. 1501-1511.

172. Rikihisa, Y., Ehrlichiae of veterinary importance., in Rickettsiae and rickettsial diseases at the turn of the third millenium., P.Brouqui, Editor. 1999, Elsevier: Paris, p. 393-405.

173. Sainz, A., Amusategui, I., Tesouro, M. A., Ehrlichia platys infection and disease in dogs in Spain. J Vet Diagn Invest, 1999. 11(4): p. 382-4.

174. Sainz, A., Tesuro, M.A., Amousategui, 1., Rodriguez, F., Mazzuccelli, F., Rodriguez, M., Prospective comparative study of three treatment protocols using doxycyline or imidocarb dipropionate in dogs with naturally occuring ehrlichiosis. J Vet Intern Med, 2000. 14: p. 134-139.

175. Shaw, S., Kenny, M., Day, M., Birtles, R., Holden, D., German, A., Craven, M., Chandler, M., Garosi, L., Canine granulocytic ehrlichiosis in the UK. Vet Rec, 2001. 148(23): p. 727-8.

176. Shimada, T., et al., Monitoring C-reactive protein in beagle dogs experimentally inoculated with Ehrlichia canis. Vet Res Commun, 2002. 26(3): p. 171-7.

177. Sidel'nikov Iu, N., Mediannikov, OIu, Ivanov, L. I., Zdanovskaia, N. I., [The first case of granulocytic ehrlichiosis in the Far East of the Russian Federation], Klin Med (Mosk), 2003. 81(2): p. 67-8.

178. Suksawat, J., Hegarty, B., C., Breitschwerdt, E., B., Seroprevalence of Ehrlichia canis, Ehrlichia equi and Ehrlichia risticii in sick dogs from North Carolina and Virginia. J. Vet.Intern.Med., 2000. 14: p. 50-55.

179. Suksawat, J., Xuejie, Y., Hancock, S., I., Hegarty, B., C., Nilkumhang, P., Breitschwerdt, E., B., Serologic and molecular evidence of coinfection with multiple vector-borne pathogens in dogs from Thailand. J.Vet.lnt.Med., 2001. 15(5): p. 453-462.

180. Suksawat, J., Pitulle, C., Arraga-Alvarado, C., Madrigal, K., Hancock, S. I., Breitschwerdt, E. B., Coinfection with three Ehrlichia species in dogs from Thailand and Venezuela with emphasis on consideration of 16S ribosomal DNA secondary structure. J Clin Microbiol, 2001. 39(1): p. 90-3.

181. Sumner, J., W., Storch, G., A., Buller, R., S., Lidell, A., M., Stockham, S., L., Rikihisa, Y., Messenger, S., Paddock, C., D., PCR amplification and phylogenetic analysis of groESL operon sequences from Ehrlilichia ewingii and Ehrlichia muris. J.Clin.Microbiol., 2000. 38: p. 2746-2749.

182. Suto, Y., Suto, A., Inokuma, H., Obayashi, H., Hayashi, T., First confirmed canine case of Ehrlichia canis infection in Japan. Vet.Rec, 2001. 148(26): p. 809-811.

183. Trotz-Williams, L.A., Trees, A. J., Systematic review of the distribution of the major vector-borne parasitic infections in dogs and cats in Europe. Vet Rec, 2003. 152(4): p. 97-105.

184. Unver, A., Perez, M., Orenalla, N., Huang, H., Rikihisa, Y., Molecular and antigenic comparison of Ehrlichia canis isolates from dogs, ticks, and a human in Venezuela. J.Clin.Micobiol., 2001. 39(8): p. 2788-2793.

185. Unver, A., Felek, S., Paddock, C. D., Zhi, N., Horowitz, H. W., Wormser, G. P., Cullman, L. C., Rikihisa, Y., Western blot analysis of sera reactive to

human monocytic ehrlichiosis and human granulocytic ehrlichiosis agents. J Clin Microbiol, 2001. 39(11): p. 3982-6.

186. Unver, A., Ohashi, N., Tajima, T., Stich, R., W., Grover, D., Rikihisa, Y., Transcriptional analysis of p30 major outer membrane multigene family of Ehrlichia canis in dogs, ticks, and cell cultures at different temperatures. Infectimmun., 2001. 69(10): p. 6172-6178.

187. Unver, A., Rikihisa, Y., Kawahara, M., Yamamoto, S., Analysis of 16S rRNA gene sequences of Ehrlichia canis, Anaplasma platys, and Wolbachia species from canine blood in Japan. Ann N Y Acad Sci, 2003. 990: p. 692-8.

188. Voldoire, E., Giraud, N., Vassallo, N., Alogninouwa, T., Un cas d'ehrlichiose bovine en region Rhone-Alpes. Point.Vet., 2002. 33(228): p. 68-71.

189. Waner, T., Strenger, C., Keysary, A., Harrus, S., Kinetics of serologic cross-reactions between Ehrlichia canis and the Ehrlichia phagocytophyla genogroups in experimental E. canis infection in dogs. Vet.Immun.and Immunopath., 1998. 66: p. 237- 243.

190. Waner, T., Baneth, G., Strenger, C., Keysary, A., King, R., Harrus, S., Antibodies reactive with Ehrlichia canis, Ehrlichia phagocytophila genogroup antigens and the spotted fever group rickettsial antigens, in freeranging jackals (Canis aureus syriacus) from Israel. Vet Parasitol, 1999. 82(2): p. 121-8.

191. Waner, T., Leykin, I., Shinitsky, M., Sharabani, E., Buch, H., Keysary, A., Bark, H., Harrus, S., Detection of platelet-bound antibodies in Beagle dogs after artificial infection with Ehrlichia canis. Vet.lmmun.lmmunopathol., 2000. 77(1-2): p. 145-150.

192. Waner, T., Strenger, C., Keysary, A., Comparison of a clinic-based ELISA test kit with the immunofluorescence test for the assay of Ehrlichia canis antibodies in dogs. J.Vet.Diag.Invest., 2000. 12(3): p. 240-244.

193. Waner, T., Harrus, S., Jongegan, F., Bark, H., Keysary, A., Cornelissen, A., W.C.A., Significance of serological testing for ehrlichial diseases in dogs

with special emphasis on the diagnosis of canine monocytic ehrlichiosis caused by Ehrlichia canis. Vet. Parasitol., 2001. 95: p. 1-15.

194. Webster, P., Ijdo, J.W., Chicoine, L. M., Fikrig, E., The agent of Human Granulocytic Ehrlichiosis resides in an endosomal compartment. J Clin Invest, 1998. 101(9): p. 1932-41.

195. Wen, B., Cao, W., Pan, H., Ehrlichiae and ehrlichial diseases in China. Ann N Y Acad Sci, 2003. 990: p. 45-53.

196. Whist, S.K., Storset, A. K., Johansen, G. M., Larsen, H. J., Modulation of leukocyte populations and immune responses in sheep experimentally infected with Anaplasma (formerly Ehrlichia) phagocytophilum. Vet Immunol Immunopathol, 2003. 94(3-4): p. 163-75.

197. Yu, X., J., Zhang, X., F., McBride, J., W., Zhang, Y„ Walker, D., H., Phylogenetic relationships of Anaplasma marginale and Ehrlichia platys to other Ehrlichia species determined by GroEL amino acid sequences. Int.J.Syst.Evol.Microbiol., 2001. 51(3): p. 1143-1146.