Характеристика постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра Acipenser baerii тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.06, кандидат биологических наук Щелкунова, Юлия Петровна

• Щелкунова, Юлия Петровна
• кандидат биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Щелкунова, Юлия Петровна

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ.

1 ВВЕДЕНИЕ.

1.1 Актуальность темы.

1.2 Цель и задачи исследования.

1.3 Научная новизна.

1.4 Практическая значимость результатов.

1.5 Основные положения, выносимые на защиту.

1.6 Апробация результатов работы.

1.7 Публикация результатов.

1.8 Личный вклад.

2 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

2.1 История изучения вопроса.

2.2 Культуры клеток рыб, депонированные в национальных коллекциях разных стран.

2.3 Получение перевиваемых линий клеток осетровых рыб.

2.4 Способы культивирования клеточных линий.

2.5 Характеристика клеточных линий.

2.5.1 Цитоморфологическая характеристика.

2.5.2 Параметры культивирования.

2.5.3 Клонообразование.

2.5.4 Кариологический анализ и его особенности у осетровых рыб.

2.5.5 Подтверждение видовой специфичности.

2.5.6 Чувствительность к вирусам.

2.5.7 Оценка микробной контаминации культур клеток.

2.6 Криоконсервация.

2.7 Применение постоянных линий клеток.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Характеристика постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра Acipenser baerii»

В настоящее время культуры клеток стали одним из основных инструментов биотехнологии, вирусологии, цитологии, генетики, иммунологии и других бурно развивающихся сегодня биологических наук. Клеточные культуры являются важным объектом в изучении механизмов канцерогенеза и дифференцировки клеток. Именно метод культуры клеток привел в свое время к бурному развитию вирусологии и до сих пор остается одним из ее "золотых стандартов".

Первые попытки выращивания вирусов в культивируемых клетках были предприняты в 1913 г. Е. Steinhardt с соавторами, которые показали, что вирус вакцины может переживать в течение ряда недель в тканевом эксплантате роговицы [226]. После открытия J.F. Enders способности вируса полиомиелита размножаться и вызывать цитопатический эффект в культивируемых соматических клетках животного, теоретические изыскания в комплексе с практическими разработками привели к революционным изменениям в диагностике вирусных инфекций, выделении и идентификации вирусов [126].

Первый вирус рыб - возбудитель инфекционного некроза поджелудочной железы - был выделен также благодаря разработке метода получения первичной культуры клеток из плавников радужной форели [254]. Вскоре после этого была получена первая постоянная клеточная линия из гонад радужной форели RTG-2 [247]. С тех пор количество получаемых постоянных клеточных линий стало быстро увеличиваться и на сегодняшний день известно уже более 450 линий клеток морских, проходных и пресноводных видов рыб, из которых от осетровых получено немногим более 20. Такую немногочисленность осетровых постоянных культур можно объяснить тем, что интерес к разведению этих рыб в мировой аквакультуре возник сравнительно недавно - примерно 30 лет назад.

Промышленному выращиванию осетровых рыб в последние годы уделяется повышенное внимание, что обусловлено угрозой исчезновения некоторых ценных видов осетровых и увеличением спроса на икру и мясо этих рыб. Одновременно с интенсификацией осетроводства появляются новые вирусные болезни, которые представляют серьезную угрозу и наносят ощутимый ущерб аквакультуре осетровых в мире [61]. Для своевременного выявления возбудителей необходимо иметь набор клеточных линий, чувствительных к широкому спектру вирусов.

Большинство известных в настоящее время культур клеток осетровых рыб, получены в США. Среди них наиболее распространены культуры клеток белого осетра, чувствительные к таким опасным вирусным агентам, как иридовирус белого осетра (\¥81У) [98], герпесвирусы белого осетра первого и второго типов (\¥8НУ-1, \¥8НУ-2) [97, 98] и др. В нашей стране постоянные клеточные линии осетровых рыб были впервые получены в 1995 г. во ВНИИ пресноводного рыбного ■ хозяйства [23], однако* не все из этих линий клеток на сегодня охарактеризованы. Это касается и постоянной линии клеток Б80-3 пула почки, печени и селезенки сеголетков сибирского осетра. В то же время, лишь всесторонняя характеристика культуры предоставляет возможность сравнить ее с другими клеточными линиями, позволяя сделать обоснованный выбор в пользу той или иной линии, наиболее полно отвечающий целям и задачам планируемых работ. В" конечном итоге только исчерпывающая характеристика линии клеток дает ей шанс на депонирование в специализированных национальных и международных депозитариях — коллекциях клеточных культур. Поэтому изучение и описание свойств полученных клеточных линий являются высоко актуальными.

Заключение диссертации по теме «Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)», Щелкунова, Юлия Петровна

5 ВЫВОДЫ

1. Изучены морфологические особенности постоянной линии клеток SSO-3 пула паренхиматозных органов сибирского осетра. Установлено, что клетки линии - эпителиоподобные, имеют однородную полигональную форму, отросчатые в молодой культуре и кубические в плотном монослое. Ядра крупные, округлой или овальной формы с 1-3 ядрышками. Размер клеток - 21-26 мкм, ядер - 16-19 мкм, ядрышек 1,3-1,9 мкм.

2. Количество хромосом в клетках линии SSO-3 варьирует в широком диапазоне значений (168-392); не менее половины из них являются микрохромосомами, модальное число не выражено. Хромосомные наборы клеток представлены двумя кластерами, в один из которых входят клетки с меньшим, а в другой с большим числом хромосом, чем у клеток донорского вида (248±5). Значение модальной классовой варианты - 196 хромосом, величина модального класса составляет 59%.

3. Оптимальными параметрами культивирования клеточной линии SSO-3 являются: диспергирующая смесь из растворов трипсина (0,25%) и версена (0,02%) в соотношении 1:2, посевная концентрация клеток 160-270 тыс.кл./см3 (коэффициент субкультивирования 1:5-1:8), среда роста из 95% питательной среды Игла MEM с двойным набором аминокислот и витаминов и 5-10% СПК, температура инкубации 15-20°С, способ культивирования -стационарный.

4. Установлено, что клеточная линия SSO-3 происходит от сибирского осетра, что подтверждено ПЦР-амплификацией видоспецифических участков D-петли митохондриальной ДНК размером 138 и 215 п.н. Способности к колониеобразованию у клеток данной линии не обнаружено.

5. Монослойная культура клеток SSO-3 хорошо сохраняется в диапазоне температур 4-25°С (до месяца и более). Жизнеспособность клеток после криоконсервирования составляет 70-80%.

6. Клеточная линия SSO-3 чувствительна к широкому спектру вирусов. Ее чувствительность к 8 из 10 испытанных вирусов рыб пяти разных семейств (осетровые, карповые, лососевые, щуковые, угревые) сопоставима с таковыми для референсных линий клеток. Клетки Б80-3 не снижают репродуцирующей активности в отношении вируса ЭУСУ на протяжении 4 недель с момента посева. Роллерное культивирование инокулированной культуры повышает титр вирусов в 1,8-10 раз.

7. Толерантность к большому диапазону температур, широкий спектр чувствительности к вирусам рыб и успешное использование клеточной линии Б 8 0-3 для выделения и серологической идентификации полевых изолятов вирусов карповых и осетровых рыб, а также для титрования вируснейтрализующих антител в карповых и кроличьих антисыворотках позволяет заключить, что данная линия клеток должна стать полезным инструментом в диагностических и экспериментальных работах с ихтиовиру сами.

6 ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Разработаны и предложены "Методические указания по культивированию и использованию постоянной клеточной линии пула органов сибирского осетра 880-3", утвержденные директором ФГУП "ВНИИПРХ" 3 декабря 2009 г.

Постоянная линия клеток 880-3 используется в практической работе ФГУП "ВНИИПРХ" и ГНУ ВНИИВВиМ для диагностики вирусных болезней осетровых и других видов рыб и в экспериментальных вирусологических работах.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Щелкунова, Юлия Петровна, 2010 год

1. Архангельский, Д.С. Получение первичных культур клеток из гонад судака для вирусологических исследований/ Д.С. Архангельский, О.В. Полякова// Биол. основы рыбных хозяйств, водоемов Средней Азии, Казахстана. Фрунзе, 1978. - С. 244-245.

2. Архангельский, Д.С. Вирусные болезни рыб/ Д.С. Архангельский, О.В. Полякова//Тр. ин-та микробиологии и вирусологии АН КазССР. 1982. -Т. 28.-С. 111-134.

3. Биотехнология / И.В. Тихонов и др.: под ред. акад. РАСХН Е.С. Воронина. СПб.: ГИОРД, 2005. - 792с.

4. Бучацкий, Л.П. Лимфосаркома щук Киевского водохранилища/ Л.П. Бучацкий// Ветеринарная медицина Украины. 2000. - №11. - С. 14-15.

5. Бучацкий, Л.П. Лимфосаркома судака (Stizostedion lucioperca) Киевского водохранилища/ Л.П. Бучацкий, К. Галахин, О. Ногарев// Ветеринарная медицина Украины. 2004. - №8. - С. 13-14.

6. Васильев, В.П. Эволюционная кариология рыб / В.П. Васильев. М.: Наука, 1985. -300 с.

7. Бахтин, Ю.Б. Генетика соматических клеток/Ю.Б. Бахтин. Л., 1974. -256 с.

8. Вирусовыделение возбудителя инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых/ Л.Ю. Апасова и др.// Вет. Медицина. -2008.-Вып. 90. -С. 38-46.

9. Выделение вируса инфекционного некроза поджелудочной железы/ Т.Д. Пичугина и др. // Ветеринария. 2005. - № 1. - С. 31-32.

10. Выделение вируса от белого толстолобика с синдромом краснухи/ И.С. Щелкунов и др.//Экспресс-информация ЦНИИТЭИРХ. 1984. - №4. -С. 3-7.

11. Головин, П.П. Проблемы охраны здоровья рыб/ П.П. Головин, H.A. Головина// Тезисы научн.-практ. конф. М.: Россельхозакадемия, 2000. - С. 50-51.

12. Голубев, Д.Б. Руководство по применению клеточных культур в вирусологии/ Д.Б. Голубев, A.A. Соминина, М.Н. Медведева. JL: Медицина, 1976. - 224 с.

13. Гончаров, Г.Д. Однослойная клеточная культура почечной ткани леща/ Г.Д. Гончаров, JI.A. Зубкова, М.И. Степанова// Биология внутренних водоемов: Информ. бюл. 1970. - Т. 6. - С. 60-64.

14. Горчаков, В.В. К эпизоотологии оспы карпа/ В.В. Горчаков// Тезисы докладов V Всесоюзного симпозиума по инфекционным болезням рыб. М., 1986.-С. 24-25.

15. Животная клетка в культуре (Методы и применение в биотехнологии)/ под общ. ред. Л.П. Дьяконова. М.: Изд-во "Спутник+", 2009. - 656 с.

16. Завьялова, Е.А. Получение и цитоморфологическая характеристика трех линий клеток из плавниковой ткани сибирского осетра/Е.А. Завьялова // Сб. науч. тр. ВИЭВ. М., 2009. - Т. 75. - С. 249-252.

17. Зубкова, Л.А. Однослойная клеточная культура из гонад самок сома/ Л.А. Зубкова// Биол. внутренних водоемов: Информ. бюл. 1971. - Т. 11.-С. 63-65.

18. Зубкова, Л.А. Выявление цитопатогенного агента от сомов с "кожной неоплазией" на однолеточных гонадных культурах// Докл. АНСССР. 1974. - Т. 218, № 4. - С. 960.

19. Зубкова, Л.А. К вопросу о папилломе кожи сома/ Л.А. Зубкова// Рыбное хозяйство. 1976. - № 1. - С. 26.

20. Карасева, Т.А. Болезни искусственно выращенной горбуши Oncorhynchus gorbuscha (Wald)/ Т.А. Карасева, A.B. Альтов, В.В. Донецков//

21. Паразиты и болезни морских и пресноводных рыб Северного бассейна: сб.научн.тр. ПИНРО. Мурманск, 1998. - С. 103-104.

22. Каталог российской коллекции клеточных культур. — Санкт-Петербург, Омск: Изд-во ОмГПУ, 1999. 226 с.

23. Клеточные линии из тканей сибирского осетра/ Т.И. Щелкунова и др. //Первый конгресс ихтиологов России: тез. докл. Астрахань, 1997. - С. 302-303.

24. Кулешов, К.В. Видовая идентификация клеточных культур: разработка новых подходов основанных на полимеразной цепной реакции с детекцией продукта в реальном времени (ПЦР-РВ)/ К.В. Кулешов// Ветеринарная патология. — 2008. Том. 26, № 3. - С 40-45.

25. Кулешов, К.В. Разработка молекулярно-генетических методов идентификации клеточных культур/ К.В. Кулешов// Цитология. 2008 а. -Том. 50, №9.-С. 812-813.

26. Кулешов, К.В. Определение видовой принадлежности клеточных культур методами молекулярно-генетического анализа: автореф. дис. канд. биол. наук/ К.В. Кулешов. Щелково, 2009. - 24 с.

27. Культура животных клеток. Методы/ Д. Конки и др.: под ред. Р.И. Фрешни, перевод с англ.; под ред. М.А. Панова. М.: Мир, 1989. - 333с.

28. Лабораторный практикум по болезням рыб/ под ред. В.А. Мусселиус. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. - 296с.

29. Лакин, Г.Ф. Биометрия / Г.Ф. Лакин М.: Высшая школа. - 1990.352 с.

30. Ларцева, Л.В. Дерматофибросаркома судака рек Волги и Урала/Л.В. Ларцева// Экологические проблемы р. Урал и пути их решения: сб. докл. Всес. межведомствен, научно-практич. конфер. Гурьев, 1989. - Ч. 2. - С. 15-17.

31. Лярски, 3. Диагностика вирусных болезней животных/ 3. Лярски. -М.: Колос, 1980.-400с.

32. Мамыш, Т.И. Жаберная болезнь рыб в Белоруссии (Распространение, этиология, диагностика): автореф. дис. канд. биол. наук/ Т.И. Мамыш. -Минск, 1975. 19 с.

33. Маниатис, Т. Молекулярное клонирование /Т. Мантатис, Фрич Э., Сэмбрук Дж. М.: Мир, 1984. - 480 с.

34. Марченко, A.M. Обнаружение вирусоподобного агента в поражениях роговицы каспийской кумжи / A.M. Марченко, И.С. Щелкунов, Ю.П. Кадошников // Научно-тех. проблемы марикультуры в стране: тез. докл. конф. Владивосток, 1989. - С. 177-178.

35. Методические указания по идентификации и лабораторной диагностике вирусных болезней рыб. Вирусные болезни/ Сб. инструкций по борьбе с болезнями рыб. М.: Отдел маркетинга АМБ-агро, 1998. - 4.1. - С. 60-113.

36. Методические рекомендации по диагностике герпесвирусной болезни сибирского осетра/ И.С. Щелкунов и др.: утвежд. Россельхозакадемией 21.09.2009. 12 с.

37. Методы культивирования клеток: сб. науч. трудов/ под ред. Т.П. Пинаева Л.: Наука, 1988. - 320с.

38. Методы культивирования клеток: сб. науч. трудов/ под ред. Г.П. Пинаева, М.С. Богдановой. СПб.: Политех, ун-т, 2008. -278с.

39. Михайлова, Г.Р. Методические рекомендации по способу выявления микоплазм в культурах перевиваемых клеток/ Г.Р. Михайлова, A.C. Новохатский, М.А. Родова. М., 1983. - 8 с.

40. Наставление по применению тест-системы "МИК-КОМ" для диагностики микоплазмоза методом полимеразной цепной реакции:утверждена Деп. ветеринарии Минсельхозпрод России 17 августа 1998 г. -11с.

41. Никольский, H.H. Биология клетки в культуре / H.H. Никольский, Ю.Б. Бахтин, Т.Н. Игнатова: под ред. A.C. Трошина. JL: Наука, 1984. -280с.

42. Общая вирусология: Руководство/ под ред. В.М. Жданова, С .Я. Гайдамович; АМН СССР. М.: Медицина, 1982. - Том 1. - 496с.

43. Осадчая, Е.Ф. Выделение цитопатогепных агентов от карпов при острой форме краснухи/ Е.Ф. Осадчая // Ветеринария. 1964. - № 9. - С. 29.

44. Осадчая, Е.Ф. О применении полусинтетической питательной среды для культивирования почечных клеток рыб in vitro / Е.Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1969. - Вып. 7. - С. 22-26.

45. Осадчая, Е.Ф. Методика культивирования однослойных клеточных культур из недозрелых гонад самок карпа/ Е.Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1969а. - Вып. 9. - С. 88-92.

46. Осадчая, Е.Ф. Рабдовирусы, выделенные от больных краснухой карпов, и некоторые их свойства/ Е.Ф. Осадчая // Рыбное хозяйство. 1977. -№ 5. - С. 36-39.

47. Осадчая, Е.Ф. Rhabdovirus salmonis возбудителя новой болезни форели Salmo gairneri Richardson и его основные свойства/ Е.Ф. Осадчая, М.Г. Наконечная// Вопросы ихтиологии. - 1981. - Т. 21, Вып. 3. - С. 547-555.

48. Пичугина, Т.Д. Сравнительное изучение в реакции нейтрализации изолятов возбудителя весенней вирусной болезни рыб/ Т.Д. Пичугина// Труды Всесоюзного института экспериментальной ветеринарии. 1983. - Т. 57.-С. 141-143.

49. Попкова, Т.И. Выделение вируса от карпов, больных жаберным некрозом/ Т.И. Попкова, И.С. Щелкунов// Рыбное хозяйство. 1978. - №4. -С.4-38.

50. Пат. RU 2 332 463. Набор олигонуклеотидных праймеров для определения видовой принадлежности осетровых рыб и продукции из них/

51. Н.С.Мюге, А.Е. Барминцева (Россия). № 2 332 463; заявлено 25.01.2007; опубл. 27.08.2008, Бюл. № 24. - 11с.

52. Rhabdovirus anguilla у угря в СССР и его патогенность для рыб/ И.С. Щелкунов и др. //Вопросы вирусологии. 1989. - №1. - С. 81-84.

53. Рудиков, Н.И. Выделение вируса от карпов/Н.И. Рудиков// Сборник тезисов Первого всесоюз. симпозиума по инфекц. болезням рыб. М., 1972. -С. 62-65.

54. Темниханов, Ю.Д. Некоторые данные о заболевании большеротого буффало, вызванного рабдовирусом/ Ю.Д. Темниханов// Внедрение интенсивных форм ведения рыбного хозяйства внутренних водоемов УССР -Киев, 1982.-С. 69-70.

55. Темниханов, Ю.Д. Опыт лечения смешанной инфекции у молоди канального сомика, выращенного на теплых водах/ Ю.Д. Темниханов, JI.A. Горчаренко, JI.O. Лаврентьева// Рыбное хозяйство: межведомственный сборниик. 1983. -Вып. 37.-С. 59-61.

56. Тец, В.И. Получение культуры тканей карпа и ее применение при изучении этиологии краснухи рыб/ В.И. Тец, Г.С. Яковлева// Научно-технический бюллютень ГОСНИОРХ. 1962. - Т. 15. - С. 73-77.

57. Хлопин, Н.Г. О культивировании in vitro соединительнотканных элементов у рыб/ Н.Г. Хлопин // Известия Биол. НИИ Биол. Станции Пермском Гос. Университете. 1925. - Т. IV, Вып. 2. - С. 20-23.

58. Щелкунов, А.И. Биологические, физико-химические и молекулярно-генетические свойства герпесвируса сибирского осетра: автореф. на соискание уч. степ, кандидата биол. наук: 03.02.02 / Щелкунов Артем Игоревич.- Покров, 2010. 25с.

59. Щелкунов, И.С. Вирусные инфекции у осетровых рыб/ И.С. Щелкунов // Рыбное хозяйство. Аналитическая реферативная информация. Серия: Болезни гидробионтов в аквакультуре. М.: ВНИИЭРХ, 2000. - Вып. 1.-С. 3-16.

60. Щелкунов, И.С. Эпизоотическая ситуация по вирусным болезням культивируемых рыб/ И.С. Щелкунов // Ветеринария. 2006. - № 4. - С. 22-25

61. Щелкунов, И.С. Rhabdovirus carpió у растительноядных рыб (выделение, идентификация, патогенность)/ И.С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова// Сб. науч. тр. ВНИИПРХ. 1987. - Т. 50. - С. 3-11.

62. Щелкунов, И.С. Необычный случай осеннего выделения Rhabdovirus carpió от карпа/ И.С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова// Тез. IX Всесоюз. сов. по паразитам и болезням рыб. Ленинград, 1990. - С. 149-150.

63. Щелкунов, И.С. Карповые гипериммунные антисыворотки для идентификации возбудителя весенней виремии карпа/ И.С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова // Экспресс-информ. ВНИИЭРХ. 1991а. - Вып. 1. - С. 1-6.

64. Щелкунов, И.С. Зависимость чувствительности метода детектирования SVCV- нейтрализующих антител в сыворотках рыб от вида используемой культуры клеток/ И.С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова // Экспресс-информ. ВНИИЭРХ. 19916. - Вып. 63. - С. 23-26.

65. Щелкунов, И.С. Получение постоянных клеточных линий рыб: практические советы/ И.С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова // Актуальные вопросы пресноводной аквакультуры. М.: ВНИИПРХ, 2002. - Вып. 78. - С. 179-187.

66. Щелкунов, И.С. История, теория и практика получения постоянных линий клеток рыб/ И.С. Щелкунов, Т.И. Щелкунова// Методы культивирования клеток/ под ред. Г.П. Пинаева, М.С. Богдановой. СПб.: Политех, ун-т, 2008. - С. 135-156.

67. Щелкунова, Т.И. Получение, характеристика и применение постоянной клеточной линии ICO яичников неполовозрелого карпа, Cyprinus carpio/ Т.И. Щелкунова, И.С. Щелкунов //Клеточные культуры. Информационный бюллетень. 2010. - Вып. 25. - С.24-36.

68. Щербина, М.А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре / М.А. Щербина, Е.А. Гамыгин М.: ВНИРО, 2006. - 360 с.

69. Юрков, С.Г. О перекрестной контаминации перевиваемых культур клеток / С.Г. Юрков // Вопросы вирусологии. 1995.- №5. - С. 255-227.

70. A cell line derived from the fin of Japanase flounder, Paralichthys olivaceusiY. Meguro et al.// Fish Pathol. 1991. - Vol. 26. - P. 69-75.

71. A herpesvirus associated with mass mortality of juvenile and adult koi, a strain of a common carp/ R.P. Hedrick et al. // J. Aquat. Anim. Health. 2000. -Vol. 12.-P. 44-57.

72. A herpesvirus isolated from carp papilloma in Japan/ T. Sano et al.// Fish and Shellfish pathology; Ed.: Ellis. London: Academic Press, 1985 6. - P. 307-311.

73. Ahne, W. A rhabdovirus isolated from grass carp (Ctenopharyngodon idella Val.y W. Ahne // Arch. Virology. 1975.-Vol. 48. - P. 181-185.

74. Ahne, W. Persistent infection in CHSE-214 cells with IPN virus isolated from pike (Esox lucius)/ W. Ahne //Bull. Off. Int. Epizoot. 1977. - Vol. 87. - P. 415-416.

75. Ahne, W. Fish cell culture: a fibroblast line (PG) from ovaries of juvenile pike {Esox lucius)/ W. Ahne // In Vitro. 1979. - Vol. 15. - P. 839-840.

76. Ahne, W. Serological techniques currently used in fish virology/ W. Ahne // Sérodiagnostics and vaccines: proceedings of internat, sympos. on fish biolog. West Virginia, 26-30 April 1981. - P. 3-27.

77. Ahne, W. Comparative studies on the stability of four fish-pathogenic viruses (VHSV, PFR, SVCV, IPNV)/ W. Ahne// Zentralbl. Veterinarmed. B. -1982.-Vol. 29. P. 457-476.

78. Ahne, W. Studies on the use of fish tissue cultures for toxicity tests in order to reduce and replace the fish tests/ W. Ahne// Zbl. Bakt. Hyg., Abt. Orig. B. 1985.-Vol. 180.-P. 480-504.

79. Ahne, W. Egtved virus: occurrence of strains not clearly identifiable by means of virus neutralization tests/ W. Ahne, P.E.V. Jorgensen, N.J. Olesen // J. Appl. Ichthyol.- 1986.-V. 2.-P. 187-189.

80. Ahne, W. A new virus isolated from cultured grass carp Ctenopharyngodon idella / W. Ahne, Y. Jiang, J. Thomson// Dis. Aquat. Org. -1987.-Vol.3. P. 181-185.

81. An Mxl promoter-reporter system to study interferon pathway sin rainbow trout/ B. Collet et al.// Dev. Comp. Immunol. 2004. - Vol. 28. - P. 793-801.

82. A rhabdovirus isolated from brown trout {Salmo trutta m. lacustris L.) with lesions in parenchymatous organs/ P. Koski et al. // Bull. EAFP. 1992. -Vol. 12, N. 5. — P. 177-180.

83. Arnold, J. Ueber Theilungsvorgange an den Wanderzellen ihre progressiven und retrogressiven Metamorphosen / J. Arnold // Arch. mikr. Anat. -1887.-B. 30. -S. 205.

84. Babini, A. Coltivazione in vitro in monostratodi tessuti di pesci (Monolayer fish cell cultures in vitro)/ A. Babini, P. Ghittino // Atti. Soc. Ital. Sci. Vet. 1961. - Vol. 15. - P. 456-462.

85. Bejar, J. A continuous cell line from the cultured marine fish gilt-head seabream (<Sparus aurata L.)/ J. Bejar, J.J. Borrego, M.C. Alvarez// Aquacultrure. 1997.-Vol. 150.-P. 143-153.

86. Bejar, J. The piscine SAF-1 cell line: genetic stability and labeling/ J. Bejar, J. Porta, J. Borrego// Marine Biotechnology. 2005. - Vol. 7. - P. 389-395.

87. Bergmann, S.M. First detection, confirmation and isolation of koi herpesvirus (KHV) in cultured common carp (Cyprinus carpio L.) in Poland/ S.M. Bergmann, J. Kempter, J. Sadowski // Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 2006. - Vol. 26.-P. 97-104.

88. Blohm, U. Rainbow trout (Oncorhyncus my kiss) slgM-leukocytes secrete an interleukin-2 like growth factor after mitogenic stimulation in vitro/ U. Blohm, E. Siegl, B. Kollner// Fish Shellfish Immunol. 2003. - Vol. 14, Iss. 5. - P. 449465.

89. Bowser, P.R. Fish cell lines: establishment of a line from ovaries of channel catfish/ P.R. Bowser, J.A. Plumb// In Vitro 1980. - Vol. 16. - P. 365368.

90. Calle, P.P. Herpesvirus associated cutaneous papillomas in koi carp {Cyprinus carpio)/ P.P. Calle, T.S. McNamara, Y. Kress// Intern. Ass. Aquat. Animal Med. Proceedings. 1995. - Vol. 26. - P. 81-82.

91. Castric, J. A viral disease of hatchery- reared turbot Scophthalmus maximus L/J. Castric, F. Baudin-Laurencin, M.F. Coustans //2nd Intern. Colloq. Pathol. Marine Aquae. 7-11 Sept. 1986 Porto (Portugal), 1986. - P. 27.

92. Characteristics and pathogenicity of a novel herpesvirus isolated from adult and sub adult white sturgeon Acipenser transmontanus! L.R. Watson et al. //Dis. Aquat. Org. 1995. - Vol. 22. - P. 199-210.

93. Characteristics of two viruses isolated from white sturgeon, Acipenser transmontanus/ R.P. Hedrick et al. // Proceedings Second Intern. Symp. Virus. Lower Verteb. Ed.: J.L. Fryer -Corvallis, OR: Oregon State Univer. Press, 1991. -P. 165-174.

94. Characterization of cell cultures derived from Fugu, the Japanese pufferfish/ C.S. Bradford et al.// Mol. Mar. Biol. Biotechnol. 1997. - Vol. 6. -P. 279-288.

95. Characterization of the cell culture replicated Japanese flounder Lymphocystis disease virus/ H. Kasai et al. // Program and Abst. 5th Intern. Symp. Virus. Lower Vertebr., Seattle, Washington, 2002, P.46.

96. Chen, S.L. Establishment of a pluripotent embryonic cell line from sea perch {Lateolabrax japonicus) embryo/ S.L. Chen, Z.X. Sha, H.Q. Ye // Aquaculture. 2003. - Vol. 218. - P. 141 -151.

97. Chen, S.N. A cell line derived from Japanese eel (Anguilla japonica) kidney/ S.N. Chen, Y. Ueno, G.H. Kou // Proc. Nutl. Sci. Counc. R.O.C. 1982. -N. 6.-P. 93-100.

98. Cheng, L. Development of cell cultures derived from lake trout liver and kidney in a hormone-supplemented, serum-reduced medium/ L. Cheng, P.R. Bowser, J.M. Spitsbergen // J. Aquat. Anim. Health. 1993. - N. 5. - P. 119-126.

99. Chlopin, N.G. Studien über Gewebeskuturen im artfremden Blutplasma. I. Allgemeints. II. Das Bindegewebe der Wirbeltiere/ N.G. Chlopin // Z. Mikroskop. Anat. Forsch. 1925. - N. 2. - S. 324-365.

100. Chlopin, N.G. Gewebskultur niederer Vertebraten/ N.G. Chlopin // Arch. Exptl. Zellforsch. Gewebezucht. 1928. - B. 6. - S. 97-102.

101. Clem, L.W. Studies with cells from marine fish in tissue culture/ L.W. Clem, L. Moewus, M.M. Sigel // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1961. - Vol.108. -P. 762-766.

102. Clem, L.W. An orphan virus isolated in marine fish cell tissue culture/ L.W. Clem, M.M. Sigel, R.R. Friis // Ann. N.Y. Acad. Sei. 1965. - Vol. 126. -P. 343-361.

103. Cloning of the fish cell line SSN-1 for piscine nodaviruses/ T. Iwamoto et al. // Dis. Aquat. Org. 2000. - Vol. 43. - P. 81-89.

104. Coll, J.M. The glycoprotein G of rhabdoviruses/ J.M. Coll// Arch. Virology. 1995. - Vol. 140. -P. 827-851.

105. Culture of cells from zebrafish {Brachydanio rerio) embryo and adult tissues/P. Collodi et al. // Cell Biol. Tox. 1992. - Vol. 8. - P. 43-61.

106. Dale, O.B. Outbreak of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) in seawater-farmed rainbow trout in Norway caused by VHS virus Genotype III/ O.B. Dale, I. Orpetveit, T.M. Lyngstad // Dis. Aquat. Org. 2009. - Vol. 85. - P. 93103.

107. Dannevig, B.H. Isolation of the causal virus of infectious salmon anaemia (ISA) in a long-term cell line from Atlantic salmon head kidney/ B.H. Dannevig, K. Falk, E. Namork // J. Gen. Virol. 1995. - Vol. 76. - P. 1353-1359.

108. Davidse, A. The elimination of Acholeplasma laidlawii from a chinook salmo embryo (CHSE-214) cell line/ A. Davidse, E.A. Ter Laak, J.M.A. Brinkhof// Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1996. - Vol. 16, N. 6. - P. 211-213.

109. Dederer, P.H. The behavior of cells in tissue of Fundulus heteroclitus with special reference to the ectoderm/ P.H. Dederer// Biol. Bull. 1921. - Vol. 41. -P. 221-240.

110. Deng, C.X. Studies of cloning techniques in fish cells/ C.X. Deng, X.Q. Yang, H.Z. Chen // Acta Hydrobiolog. Sinica. 1985. - Vol. 9. - P. 194.

111. Deng, C.X. Susceptibility to grass carp reovirus (GCRV) of several fish cell lines/ C.X. Deng, X.Q. Yang, H.Z. Chen // Acta Hydrobiolog. Sinica. -1985b.-Vol. 9(4).-P. 351-358.

112. Development and characterization of a continuous embryonic cell line from turbot (Scophthalmus maximus)/ S.L. Chen et al. // Aquaculture 2005. -Vol. 249, Iss. 1-4.-P. 63-68.

113. Development and characterization of cell lines from heart, liver, spleen and head kidney of sea perch Lateolabrax japonicus/ H.Q. Ye et al. // J. Fish Biology. 2006. - Vol. 69. - P. 115-126.

114. Development and characterization of channel catfish long term B cell lines/ N.W. Miller et al. // J. Immunol. 1994. - Vol. 152. - P. 2180-2189.

115. Development of a cell line from primary cultures of rainbow trout, Onkorhynchus mykiss, gills/ N.C. Bols et al. // J. Fish Dis. 1994. - Vol. 17. - P. 601-611.

116. Development of a tropical marine fish cell line from Asian sea bass {Lates calcarifer) for virus isolation/ S.F. Chang et al. // Aquaculture. 2001. -Vol. 192.-P. 133-145.

117. Emmenegger, E.J. Genetic diversity and epidemiology of infectious hematopoietic necrosis virus in Alaska/ E.J. Emmenegger, T.R. Meyers, T.O. Burton // Dis. Aquat. Org. 2000. - Vol. 40. - P. 163-176.

118. Enders, J.F. Cultivation of the Lansing strain of poliomyelitis virus in cultures of varioushuman embryonic tissues / J.F. Enders, T.H. Weller, F.C. Robbins // Science. 1949. - Vol. 109. - P. 85 - 87.

119. Establishment and characterization of a pronephric stromal cell line (TPS) from rainbow trout, Oncorhynchus mykiss W/ M.L. Diago et al. // Fish Shellfish Immun. 1995. - Vol. 5. - P. 441-457.

120. Establishment and characterization of two new cell lines derived from flounder, Paralichthys olivaceus (Temminck & Schlegel)/ M.S. Kang et al. // J. Fish Dis. 2003. - Vol. 26, Iss. 11-12. - P. 657-665.

121. Establishment of a continuous embryonic cell line from Japanese flounder Paralichthys olivaceus for virus isolation/ S.L. Chen et al. // Dis. Aquat. Org. 2004. - Vol. 60. - P. 241-246.

122. Establishment of cell lines from a tropical grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), and their susceptibility to grouper irido- and nodaviruses/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2003. - Vol. 26. - P. 31-42.

123. European Collection of Cell Cultures/ Catalogue of Cell Lines, Products & Servises. 2005/06. - 330 p.

124. Faisal, M. Spring viraemia of carp (SVCV): comparision of immunoperoxidase, fluorescent antibody and cell culture isolation techniques for detection of antigen/ M. Faisal, W. Ahne // J. Fish Dis. 1984. -Vol. 7. - P. 57-64.

125. Fernandez, R.D. Characterization of three continuous cell lines from marine fish/ R.D. Fernandez et al. // J. Aquat. Animal Health. 1993. - N. 5. - P. 127-136.

126. Fijan, N. Vaccination of carp against spring viraemia: comparison of intraperitoneal and peroral application of live virus to fish kept in ponds/ N. Fijan, Z. Petrinec, Z. Stand //Bull. Off. Int. Epizoot. 1977. - Vol. 87. - P. 439-440.

127. Fish cell culture: characteristics of a continuous fibroblastic cell line from walleye (Stizostedion vitreum vitreum)/ R.K. Kelly et al. // Can. J. Fish. Aquat. Sci.- 1980.-Vol. 37. P. 1070-1075.

128. Fish cell culture: two newly developed cell lines from atlantic sturgeon, (Acipenser oxyrhynchus) and guppy (Poecilia reticulata )/ M.F. Li et al. // Canad. J. Zool. 1985. - Vol. 63. - P. 2867-2874.

129. Fontana, F. Cytogenetic characterization of cell lines from three sturgeon species / F. Fontana, R. Rossi, M. Lanfredi// Caryologia. 1997. - Vol. 50, N. 1.-P. 91-95.

130. Frerichs, G.N. Ulcerative disease rhabdovirus: cell-line susceptibility and serological comparison with other fish rhabdoviruses/ G.N. Frerichs, B.J. Hill, K. Way //J. Fish Dis. 1989. - Vol. 12, N. 1. - P. 51-56.

131. Fryer, J.L. Methods for the in vitro cultivation of cells from the tissues of salmonid fishes/ J.L. Fryer // Doctoral dissertation, Oregon State University.1964.- 195p.

132. Fryer, J.L. The in vitro cultivation of tissue and cells of Pacific salmon and steelhead trout/ J.L. Fryer, A. Yusha, K.S. Pilcher // Ann. N.Y. Acad. Sci.1965. Vol. 126 (Art. 1).-P. 566-586.

133. Fryer, J.L. Three decades of fish cell culture: a current listing of cell lines derived from fishes/ J.L. Fryer, C.N. Lannan // J. Tissue Cult. Method. -1994.-Vol.16.-P. 87-94.

134. Ganassin, R.C. Effect of purine supplementation on the growth of salmonid cell lines in different mammalian sera/ R.C. Ganassin, N.C. Bols// Cytotechnol. 1992. - Vol. 8. - P. 21-29.

135. Ganassin, R.C. Development of a monocyte/macrophage-like cell line, RTS11, from rainbow trout spleen/ R.C. Ganassin, N.C. Bols // Fish Shellfish Immunol. 1998. - Vol. 8. - P. 457-476.

136. Gey, G.O. Tissue culture studies of the proliferative capacity of cervical carcinoma and normal epithelium / G.O. Gey, W.D. Coffman, M.T. Kubicek // Cancer Res. 1952. - Vol.12. - P. 264-265.

137. Gold, J.R. Cytogenetics/ J.R. Gold // Fish Physiology. 1979. - Vol. VIII.-P. 353-405.

138. Gravell, M. A permanent cell line from the fathead minnow {Pimephales prometas)/ M. Gravell, R.C. Malsberger // Ann. N.Y. Acad. Sei. -1965,- Vol. 126.-P. 555-565.

139. Grützner, L. Versuche zur Züchtung des gewebes von Macropodus opercularis (Linne) und Lebistes reticulates (Peters) in vitro! L. Grützner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. 1956. - B. 165. - S. 8-24.

140. Grützner, L. In vitro — Züchtung des Leber und Nierengewebes von Tinea vulgaris Cuv. (Schleic) in trypsinierten Einschichtgewebekulturen/ L. Grützner // Zentr. Bacteriol., Parasitenk. Abt. I. Orig. 1958. - B. 173. - S. 195202.

141. Hansen, L.A. Ciprofloxacin treatment eliminates mycoplasma in contaminated channel catfish ovary cells/ L.A. Hansen, R.L. Thune // J. Aquat. Animal Health. 1994. - N.6. - P. 82-84.

142. Hayasaka, K. Transfection of cultured fish cells RBCF-1 with exogenous oncogene and their resístanse to malignant transformation/ K. Hayasaka, M. Sato, H. Mitani // Comp. Biochem. Physiol. 1990. - Vol. 96B. - P. 349-354.

143. Heartwell, C.M. Immune response and antibody characterization of the channel catfish (Ictalurus punctatus) to a naturally pathogenic bacterium and virus/ C.M. Heartwell// U.S. Fish Wildl. Serv., Tech. Paper 85. 1975. 56p.

144. Hedrick, R.P. Serological relationships of five herpesviruses isolated from salmonid fishes/ R.P. Hedrick, T. McDowell, W.D. Eaton // J. Appl. Ichthyol. 1987.-Vol. 3.-P. 87-92.

145. Hightower, L.H. Recent applications of fish cell culture to biomedical research/ L.H. Hightower, J.L. Renfro // J. Exp. Zool. 1988. - Vol. 248. - P. 290-302.

146. Hochachka, P.W. Biochemistry and molecular biology of fishes/ P.W. Hochachka, T.P. Mommsen// Elsevier Science B.V., 1994. Vol. 3. - 260p.

147. Huang, X. Characterization of two grouper Epinephelus akaara cell lines: application to studies of Singapore grouper iridovirus (SGIV) propagationand virus-host interaction/ X. Huang, Y. Huang, J. Han// Aquaculture. 2009. -Vol. 292.-P. 172-179.

148. Immortalization of cells with oncogene transfection/ T. Tamai et al. // Techniques in Fish Immunology; Eds: J.S. Stolen, T.C. Fletcher, A.F. Rowley, D.P. Anderson, S.L. Kaattari, J.T. Zelikoff, S.A. Smith, 1994. Vol. 3. - P. 5360.

149. Interference of the life cycle of fish nodavirus with fish retrovirus/ S.C. Chi et al. // 4th Intern. Sym. Aquat. Animal Health., 1-5 Sept. 2002, New Orleans; Louisiana USA. - 2002. - P. 200.

150. Isa, K. Transfection and stable expression of a dominant selective marker Ecogpt in a cultured cell line of the fish, Carassius auratus! K. Isa, A. Shima // J. Cell Science. 1987. - Vol. 88. - P. 219-224.

151. Isolation and characterization of the Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) lymphocystis disease virus/ R. Iwamoto et al. // J. Aqut. Anim. Health. 2002. - Vol. 14. - P. 114-123.

152. Isolation of a aquareovirus from common carp (Cyprinus carpio) in the P.R. China/ Y. Jiang et al. // Second Intern. Symp. Virus. Low. Verteb., Oregon State Univers. Corvallis, Oregon USA, 1991. P. 287-292.

153. Isolation of spring viraemia of carp virus (SVCV) from cultured koi {Cyprinus carpio koi) and common carp (C. carpio carpio) in P.R. China/ H. Liu et al. // Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2004. - Vol. 24, N. 4. - P. 194-202.

154. Jensen, M.H. Preparation of fish tissue cultures for virus research/ M.H. Jensen// Bull. Off. Intern. Epizoot. 1963. - Vol. 59. - P. 131-134.

155. Jiang, Y. Some properties of the etiological agent of the hemorrhagic disease of grass carp and black carp/ Y. Jiang, Ahne W. // Viruses Lower Verteb. Eds.: W. Ahne & Kurstak. Springer Verlag Berlin Heidelberg, 1989. - P. 227240.

156. Jung, S.J. Herpesviral haematopoietic necrosis of goldfish, Carassius auratus (L.)/ S.J. Jung, T. Miyazaki// Dis. Aqut. Org. 1995. - Vol.18. - P. 211220.

157. Kasai, H. Establishment of two Japanese flounder embryo cell lines/ H. Kasai, M. Yoshimizu // Bull. Fish. Sei. Hokkaido Univ. 2001. - Vol. 52. - P. 67-70.

158. Kölbl, O. Die Schwimmblasenentzundung des Karpfens: Nachweis eines intrazytoplasmatisch wachsenden Einzellers mittels Gewebekultur/ O. Kölbl// Zsterreichs Fischerei. 1989. - B. 42. - S. 54-60.

159. Kunst, L. Kultura bubreznih stanica sarana (Culture of carp kidney cells)/L. Kunst// Vet. Arhiv. 1962. - Vol. 32. - P.121-126.

160. Kunst, L. Preparation of primary monolayer cell cultures of carp ovary/ L. Kunst, N. Fijan// Vet. Archiv. 1966. - Vol. 36. - P. 235-238.

161. Lanfredi, M. Cytogenetic characterization of cell lines from six sturgeon species/ M. Lanfredi et al. // 3rd Intern. Symposium on Sturgeon-Piacenza, Italy, 1997, El -P.

162. Lannan, C.N. Fish cell lines: establishment and characterization of nine cell lines from salmonids/ C.N. Lannan, J.R. Winton, J.L. Fryer // In Vitro. 1984. -Vol. 20.-P. 671-676.

163. Law, W.M. Fish cell culture: properties of a cell line from the sheepshead, Archosargus probatocephalus! W.M. Law, R.D. Eilender, J.H. Wharton//J. Fish. Res. Board Can. 1978. - Vol. 35. - P. 470-473.

164. Lee, L.E. Culture conditions for arresting and stimulating the proliferation of a rainbow trout fibroblast cell line, RTG-2/ L.E. Lee, J.A. Martinez, N.S. Bols //In vitro cell. Devel. Biol. 1998. - Vol. 24. - P. 795-802.

165. Levan, A. Role of chromosomes in carcerogenesis as studied in serial tissue culture of mammalian cells/ A. Levan, J. Biesele// Ann. N. Y. Acad. Sei. -1985.-Vol. 71.-P. 1022-1055.

166. Lewis, D.H. Micricultures of Sarotherodon mossambicus (Peters) cells: their use in detecting fish viruses/ D.H. Lewis, J.E. Marks // J. Fish Dis. 1985. -Vol. 8. - P. 477-478.

167. Lidgerding, B.C. Fish cell lines: establishment of the first suspension culture/ B.C. Lidgerding, C.L. Schultz // In Vitro. 1979. - Vol. 15. - P. 216.

168. Lidgerding, B.C. Fish cell lines: Characterization by isozyme analysis/ B.C. Lidgerding, S.R. Phelps, W.B. Schill // In Vitro, Tissue Culture Association, Inc. 1984. Vol. 20, N. 3 (Part 1) - P. - 167-171.

169. Long-term primary culture epithelia cells from rainbow trout (iOncorhynchus mykiss) liver/ G.K. Ostrander et al.// In Vitro Cell. Dev. Biol. Anim. 1995. - Vol. 31. - P. 367-378.

170. Lorenzen, N. Production and characterization of monoclonal antibodies to four Egtved virus structural proteins/ N. Lorenzen, N.J.Olesen, P.E.Vestergard Jorgensen // Dis. Aquat. Org. 1988. - Vol. 4. - P. 35-42.

171. Lumsden, J.S. Mortality event in freshwater drum Aplodinotus grunniens from Lake Ontario, Canada, associated with viral haemorrhagic septicemia virus, Type IV/ J.S. Lumsden, B. Morrison, C.Yason // Dis. Aquat. Org. Vol. 2007. - Vol. 76. - P. 99-111.

172. Matsuyama, H. Compatibilities of antibody and complement among different fish species/ H. Matsuyama, M. Nakao, T. Yano //Nippon Suisan Gakkaishi.-1988.-Vol. 54.-P. 1993-1996.

173. McCain, B.B. Antigenic relationships in a group of three viruses of salmonid fish by cross neutralization/ B.B. McCain, J.L. Fryer, K.S. Pilcher // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1971. - Vol. 137. - P. 1042-1046.

174. Merchant, D.J. Handbook of cell and organ culture/ DJ. Merchant, R.H. Kahn, W.H.Jr. Murphy// Burgess Publ. Co., Minneapolis, Minn. 1964. -273p.

175. Miller, N.W. Development of leukocyte cell lines from the channel catfish (Ictalurus punctstus)/ N.W. Miller, V.G. Chinchar, L.W. Clem // J. Tissue Cult. Method. 1994 a. - Vol. 16. - P. 117-123.

176. Molecular characterization of sea bream (Spams aurata) transforming growth factor p 1/ C. Tafalla et al. // Fish Shellfish Immunol. 2003. - Vol. 14, Iss. 5. - P. 405-421.

177. Nelson-Rees, W.A. Cross-contamination of cells in culture / W.A. Nelson-Rees, D.W. Daniels, R.R. Flandermeyer // Science. 1981. - Vol. 212, N. 4493.-P. 446-452.

178. Neukirch, M. Isolation of a virus from koi with altered gills/ M. Neukirch, K. Bottcher, S. Bunnajirakul. // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1999. -Vol. 19, N. 5.-P. 221-224.

179. Neukirch, M. Isolation and preliminary characterization of several viruses from koi (Cyprinus carpió) suffering gill necrosis and mortality/ M. Neukirch, U. Kunz // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 2001. - Vol. 21, N. 4. - P. 125135.

180. Nias, A.H. Clone size analysis: a parameter in the study of cell population kinetics/ A.H. Nias // Cell Tissue Kinet. 1968. - Vol. 1. - P. 153-165.

181. Nicholson, B.L. An established cell line from the Atlantic salmon (Salmo salar)! B.L. Nicholson, C. Byrne // J. Fish Res. Board Can. 1973. - Vol. 30.-P. 913-916.

182. Nicholson, B.L. Growth of fish cell lines on micro carriers / B.L. Nicholson // Appl. Environ. Microbiol. 1980. - Vol. 39, N. 2. - P. 394-397.

183. Nims, L. Studies of replication of four selected viruses in two cell lines derived from salmonids fish/ L. Nims, J.L. Fryer, K.S. Pilcher // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1970. - Vol. 135. - P. 6-12.

184. Nishizawa, T. Genetic relatedness among Japanese, American and European isolates of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) based on partial G and P genes/ T. Nishizawa, H. Iida, R.Takano //Dis. Aquat. Org. 2002. -Vol. 48.-P. 143-148.

185. Noga, E J. Studies on channel catfish virus passaged in cell cultures of the walking catfish/ E.J. Noga// M.S. thesis. Florida Atlantic University, Boca Raton, 1977a. 53 pp.

186. Noga, E.J. Establishment of cell lines from the walking catfish (Clarias batrachus L.) and their infection with channel catfish virus/ E.J. Noga, J.X. Hartmann // In Vitro. 1977. - Vol. 13. - P. 160.

187. Okamoto, N. The mechanism of interference with fish viral infection in the RTG-2 cell line/ N. Okamoto, T. Shirakura, Y. Nagakura// Fish Pathology. -1983.- Vol. 18, N. l.-P. 7-12.

188. Olesen N.J. Detection of neutralizing antybody to Egtved virus in rainbow trout (Salmo gairdneri) by plaque neutralization test with complement addition/ N.J. Olesen, P.E.V. Jorgensen // J. Appl, Ichthyol. 1986. - Vol. - P. 3341.

189. Olesen, N.J. Serological differences among isolates of viral haemorrhagic septicaemia virus detected by neutralizing monoclonal and polyclonal antibodies/ N.J. Olesen, N. Lorenzen, P.E.V. Jorgensen // Dis. Aquat. Org. 1993. - V. 16. - P. 163-170.

190. Osowski, H. Über active Zellbewequnq im explantat von Wirbeitierembryonen/ H. Osowski //Arch. Entuicklunqsmech. Orqan. 1914. - B. 38.-S. 547-583.

191. Parkinson, C. A cell line the tilapia Oreochromis spilurus Gunther/ C. Parkinson, C. Agius // J. Fish Biol. 1987. - Supplement A. - P. 239-240.

192. Perry, G.M.L. Characterization of rainbow trout cell lines using microsatellite DNA profiling/ G.M.L. Perry, G.J. McDonald, M.M. Ferguson// Cytotechnology.-2001.-Vol. 37.-P. 143-151.

193. Pfitzner, I. In vitro-Züchtung des Gonaden- und Schwimmblasengewebes von Tinea vulgaris Cuv. (Schleie) in trypsinierten Einschichtgewenbekulturen/ I. Pfitzner, L. Grützner // Zentr. Bakteriol., Parasitenk., Abt. I. Orig. 1964. - B. 191. - S. 474-485.

194. Plumb, J.A. Quantitative comparison of RTG-2 cell grouwth at 5-25°C/ J.A. Plumb, K. Wolf// In Vitro. 1971. - Vol. 7, N. 1. - P. 42-45.

195. Plumb, J. A. Neutralization of channel catfish virus by serum of channel catfish / J.A. Plumb// J. Wildl. Dis. 1973. - Vol. 9. - P. 324-330.

196. Propagation of yellow grouper nervous virus (YGNNV) in a new nodavirus-susceptible cell line yellow grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), brain tissue/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2001. - Vol. 24. - P. 299309.

197. Puck, T.T. Clonal growth of mammalian cells in vitro. Growth characteristics of clones from single HeLa cells with and without a feeder layer/T.T. Puck, P.I. Marcus, S.J. Cieciura // J. Exp. Med. (USA). 1956. - Vol. 103.-P. 273-284.

198. Purification and characterization of interferon-like antiviral protein derived from flatfish (Paralichthys olivaceus) lymphocytes immortalized by oncogenes/T. Tamai et al. //Cytotechnol. 1993. - Vol. 11. - P. 121-131.

199. Ristow, S.S. Susceptibility of four new salmonids cell lines to infectious hematopoietic necrosis virus/ S.S. Ristow, J. de Avila// J. Aquat. Anim. Health. 1994. - Vol. 6. - P. 260-265.

200. Roux, W. Beitrage zur Entwicklungsmechanik des Embryo / W. Roux //Z.Biol.- 1885.- Vol. 21.-P. 411.

201. Sakai, D.K. Heat inactivation of complement and immune hemolysis reaction in rainbow trout, masu salmon, coho salmon, goldfish and tilapia / D.K. Sakai // Bull. Japan. Soc. Sci. Fish. 1981. - Vol. 47. - P. 565-571.

202. Sano, T. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa //Abstracts International Simposium of Fish Pathology. Tokyo, 1984. - P. 55-56.

203. Sano, T. Herpesvirus cyprini: biological and oncogenic properties/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa // Fish Pathology. 1985. - Vol. 20(2/3). - P. 381388.

204. Sano, T. A herpesvirus isolated from carp papilloma in Japan/ T. Sano, H. Fukuda, M. Furukawa, M. Hosoya, Y. Moriya// Fish and Shellfish pathology; Ed.: Ellis. London: Academic Press, 1985a. - P. 307-311.

205. Sano, T. A preliminary report on pathogenicity and oncogenicity of cyprinid herpesvirus/ T. Sano, N. Morita, N. Shima // Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. -1990. Vol. 10, N 1. — P. 11-13.

206. Sano, M. First detection of koi herpesvirus in cultured common carp Cyprinus carpio in Japan/ M. Sano, Ito T., Kurita J. // Fish Pathol. 2004. - Vol. 39.-P. 165-167.

207. Schmale, M.C. A virus-like agent associated with neurofiromatosis in damselfish/ M.C. Schmale, P.D. Gibbs, C.E. Campbell // Dis. Aquat. Org. 2002. -Vol. 49.-P. 107-115.

208. Shchelkunov, I.S. Atlantic salmon papillomatosis: visualization of herpesvirus-Iike particles in skin growths of affected fish/ I.S. Shchelkunov, T.A. Karaseva, Y.P. Kadoshnikov //Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 1992. - Vol. 12, N1. -P. 28-31.

209. Shchelkunov, I.S. Two continuous cell lines from carp, Cyprinus carpio L.I I.S. Shchelkunov, T.I. Shchelkunova, O. A. Kupinskaya// Diseases Fish and Shellfish: abstract Vllth Intern. Conf. EAFP. Palma de Mallorca, 1995. - P. 49.

210. Shchelkunova, T.I. Enhanced neutralization of spring viraemia of carp virus by fish antibodies in presence of complement/ T.I. Shchelkunova, I.S. Shchelkunov // Diseases Fish and Shellfish: abstract Vth Intern. Conf. EAFP. -Budapest, 1991.-P. 95.

211. Some properties of the Epithelioma papillosum cyprini (EPC) cell line from carp Cyprinus carpio! N. Fijan et al. // Ann. Virol. (Inst. Pasteur). 1983. -Vol. 134 E.- P. 207-220.

212. Sorimachi, M. Susceptibility of fish cell lines to eel viruses/ M. Sorimachi// Fish Pathol. 1982. - Vol. 9, N. 17(2). - P. 119-123.

213. Sonstegard, R.A. Establishment of a cell line from lymphosarcoma of the muskellunge (Esox masquinongy)/ R.A. Sonstegard, K.S. Sonstegard // In Vitro. 1973.-8. - P. 410.

214. Splenic cell line from sea bass, Lates calcarifer. establishment and characterization/ V. Parameswaran et al. // Aquaculture. 2006. - Vol. 261. - P. 43-53.

215. Spontaneously productive C-tipe retrovirus infection of fish cell lines/ G.N. Frerichs et al. // J. Gen. Virol. 1991. - Vol. 72. - P. 2537-2539.

216. Steinhardt, E. Studies on the cultivation of the virus of vaccinia / E. Steinhardt, C. Israeli and R. Lambert // J. infect. Dis. 1913. - Vol. 13. - P. 294.

217. The costs of using unauthenticated, over-passaged cell lines: how much more data do we need?/ P. Hughes et al.// Bio Techniques. 2007. - Vol. 43, N. 5.-P. 575-583.

218. The emergence of koi herpesvirus and its significance to European aquaculture / O.L.M. Haenen et al.// Bull. Eur. Ass. Fish Path. 2004. - Vol. 24, N. 6. - P. 293-307.

219. Thiery, R. Phylogenetic analysis of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) isolates from France (1971-1999)/ R. Thiery, C.de Boisseson, J. Jeffroy// Dis. Aquat. Org. 2002. - Vol. 52. - P. 29-37.

220. TNF induces the growth of thymocytes in rainbow trout/ K. Hino et al. // Develop. Comp. Immunol. 2006. -Vol. 30, Iss. 7. - P. 639-647.

221. Two iridovirus-susceptible cells established from kidney and liver of grouper, Epinephelus awoara (Temminck& Schlegel), and partial characterization of grouper iridovirus/ Y.S. Lai et al. // J. Fish Dis. 2000. - Vol. 23. - P. 379388.

222. Townsley, P.M. Marine fish tissue culture/ P.M. Townsley, H.G. Wight, M.A. Scott// J. Fish. Res. Board Can. 1966. - Vol. 20. - P. 679-684.

223. Tung, L.C. Three cell lines derived from spleen and kidney of black porgy (Acanthopagrus schlegeli)/ L.C. Tung, S.N. Chen, G.H. Kou // Fish. Pathol. 1991.-Vol. 26.-P. 109-117.

224. Two cell lines from white sturgeon/ R.P. Hedrick et al. // Trans. Am. Fish Soc.- 1991 a.-Vol. 120. P. 528-534.

225. Vestergaard Jorgensen, P.E. Serological identification of Egtved virus (virus of viral haemorrhagic septicaemia of rainbow trout). A preliminary report/ P.E. Vestergaard Jorgensen // Bull. Off. Int. Epizoot. 1968. - Vol. 69. - P. 985989.

226. Vestergaard Jorgensen, P.E. Egtved virus: demonstration of neutralizing antibodies in serum from artificially infected rainbow trout (Salmo gairdneri)! P.E. Vestergaard Jorgensen // J. Fish. Res. Board Can. 1971. - Vol. 28.-P. 875-877.

227. Vestergaard Jorgensen, P.E. Experimental VHS-vaccine in Field trials/ P.E. Vestergaard Jorgensen // Bull. Eur. Assoc. Fish Patholog. 1981. - Vol. 1. -P. 13-14.

228. Walker, D.P. Studies on the culture, assay of infectivity and some in vitro properties of Lymphocystis virus/ D.P. Walker, B.J. Hill // J. Gen. Virol. -1980.-Vol. 51.-P. 385-395.

229. Wergeland, H.I. A salmonids cell line (TO) for production of infectious salmon anemia virus (ISAV) / H. I. Wergeland, R.A. Jakobsen // Dis. Aquat. Organ. 2001 - Vol. 44. - P. 183-190.

230. Wolf, K. Fish Viruses and Fish Viral Diseases/K. Wolf// Ithaca and London: Cornell University Press, 1988. - 476 p.

231. Wolf, K. Fish cell culture/ K. Wolf, W. Ahne// Advances in Cell Culture. 1982. - Vol. 2. - P. 305-328.

232. Wolf, K. Cultivation of adult teleost tissues in vitro! K. Wolf, C.E. Dunbar // Proc. Soc. Exptl. Biol. Med. 1957. - Vol. 95. - P. 455-458.

233. Wolf, K. Poikilotherm vertebrate cell lines and viruses: a current listing for fishes/ K. Wolf, J.A. Mann // In Vitro. 1980. - Vol. 16, N 2. - P. 168-179.

234. Wolf, K. Established eurythermic line of fish cells in vitro! K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1962. - Vol. 135. - P. 1065-1066.

235. Wolf, K. Lymphocystis virus: isolation and propagation in centrarchid fish cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby // Science. 1966. - Vol. 151. - P. 10041005.

236. Wolf, K. Fish cell and tissue culture/ K. Wolf, M.C. Quimby// Fish Physiology Eds.: W.S. Hoar and D.J. Randall. N.Y. Acad. Press, 1969. - Vol. 3. -P. 253-305.

237. Wolf, K. Infectious pancreatic necrosis: clinical and immune response of adult trouts to inoculation with live virus/ K. Wolf, M.C. Quimby//J. Fish. Board Can. 1969 a. - Vol. 26. - P. 2511 -2516.

238. Wolf, K. Primary monolayer culture of fish cells initiated from minced tissues/ K. Wolf, M.C. Quimby// TCA Manual. 1976. - Vol. 2. - P. 445-448.

239. Wolf, K. Procedures for subculturing fish cells and propagating fish cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby// TCA Manual. 1976 6. - Vol. 2. - P. 471-474.

240. Wolf, K. Systematic management of animal cell lines/ K. Wolf, M.C. Quimby// TCA Manual. 1978. - Vol. 4. - P. 741-744.

241. Wolf, K. Infectious pancreatic necrosis in trout. A tissue culture study/ K. Wolf, M.C. Quimby, S.F. Snieszko // Prog. Fish. Cult. 1960. - Vol. 22. - P. 64-68.

242. Yoshimizu, M. Viral diseases of freshwater fishes in Hokkaido/ M.Yoshimizu// Sci. Rep. Hokkaido Fish Hatchery. 1994. - Vol. 48. - P. 15-24.

243. Zhao, Z. Establishment and characterization of two cell lines from bluefin trevally Caranx melampygus/ Z. Zhao, Lu Yu. // DAO. 2006. - Vol. 68, N. 2. - P. 91-100.