Изучение меж- и внутривидовых различий по устойчивости к действию фтора у сибирских видов лиственниц методом культуры in vitro тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Шмаков, Владимир Николаевич

• Шмаков, Владимир Николаевич
• кандидат биологических наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Шмаков, Владимир Николаевич

ВВЕДЕНИЕ.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.и

1. Действие промышленных загрязнителей на физиологобиохимические процессы у высших растений.

1.1. Действие газообразных промышленных загрязнителей на растения. Фтор как загрязнитель и токсикант.

1.2. Влияние промышленных загрязнителей на метаболические процессы у растений.

1.3. Изучение действия промышленных загрязнителей на физиолого-биохимические процессы у растений с использованием культуры in vitro.

2. Различия растительных организмов по их устойчивости к действию промышленных эмиссий.

3. Культура клеток, органов и тканей растений.

3.1. Культура клеток высших растений.

3.2. Культура клеток, органов и тканей хвойных.

3.3. Исследования культуры in vitro у представителей рода Larix.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Изучение меж- и внутривидовых различий по устойчивости к действию фтора у сибирских видов лиственниц методом культуры in vitro»

Актуальность проблемы. Антропогенная деятельность сопровождается образованием огромного количества твердых, жидких, газообразных отходов, включающих токсические соединения, среди которых к числу наиболее агрессивных загрязнителей относятся производные фтора. В результате этого происходит деградация веками складывающихся биогеоценозов и появляется реальная угроза серьезных нарушений в биосфере. Загрязнение атмосферы имеет особенно губительное действие на лесные экосистемы. При этом наиболее подвержены воздействию токсикантов хвойные леса, и, в первую очередь, представители семейства Pinaceae (Рожков и Михайлова, 1989; Бельчинская, 2000; Осколков и Воронин, 2003). Наблюдаются усыхание и гибель хвойных, наиболее выраженные в промышленно развитых регионах. Столь критическая ситуация объясняет значительный интерес, проявляемый к изучению влияния промышленных выбросов на представителей видов хвойных и образуемые ими биоценозы, исследования механизмов устойчивости к токсикантам, поиску и созданию форм, толерантных к загрязнителям. К настоящему моменту накопился большой объем информации в области экологических и физиолого-биохимических исследований действия промышленных выбросов, а также механизмов устойчивости к загрязнителям, начиная с уровня растительных сообществ, и заканчивая уровнем целого организма или отдельных его частей и органов. Значительная часть этих исследований посвящена изучению действия фторсодержащих соединений (Тарчевский, 1964; Негруцкая, 1970; Соков и Рожков, 1975; Bücher-Wallin, 1976; Keller, 1976; Braun, 1977; Соков, 1979; Рожков и Михайлова, 1989; Бабушкина и др., 1993; Воробейчик и Хантемирова, 1994; Третьякова и Бажина, 1994; Ярмишко и др., 1995; Харук и др., 1996; Pukacki, 1998; Михайлова и др., 1998; Mikhailova, 2000; Михайлова и Бережная, 2002;

Осколков и Воронин, 2003). Только использование комплексного подхода с привлечением различных методов исследования на всех уровнях организации биологической системы позволяет получить исчерпывающую информацию о состоянии лесных экосистем и выработать способы разрешения сложившейся негативной ситуации (Mikhailova, 2000). В этой связи большие перспективы открываются при использовании, в дополнение к традиционно применяемым приемам, методов культуры клеток, органов и тканей in vitro. Такой подход позволяет достаточно детально изучить действие какого-либо конкретного фактора или агента, в частности токсиканта, на растительную клетку и ее реакции на это воздействие, в строго контролируемых условиях, максимально устраняя влияние других сопутствующих факторов. Кроме того, используя эти методы, можно четко разделить устойчивость и адаптацию растений на уровне организма и клеточный уровень устойчивости; на основе клеточной селекции отобрать устойчивые к токсиканту клоны или линии, а далее и целые растения. Применение генно-инженерных подходов позволяет получить растения с повышенной устойчивостью к негативному фактору. Методы культуры клеток, тканей и органов успешно используются для изучения влияния тяжелых металлов (Гуральчук, 1994), гербицидов (Diaz-Cacho et al., 1999; Encina, 2001), солевого стресса и стресса обезвоживания (Костюк и др., 1994) на растительные клетки и получения или отбора организмов устойчивых к засолению, затоплению, засухе, тяжелым металлам и экстремальным температурам (Tyagi et al., 1981; Sumaryati et al., 1992; Харинарайн и др., 1996; Winicov, 1996; Samantaray et al., 1999; Rout et al., 1999; Сергеева, 20006, 2000в). Подавляющее большинство исследований в данной области проводилось на культуре in vitro травянистых растений, и ни в одном случае не использовался растительный материал хвойных. Кроме того, до настоящего момента не изучалась реакция культивируемых растительных клеток на действие таких высоко агрессивных и повсеместно распространенных промышленных загрязнителей, какими являются производные фтора. С учетом недостаточной изученности действия фторсодержащих соединений на физиолого-биохимические процессы у представителей хвойных пород значительную актуальность представляет использование для этих целей современных методов клеточной биологии и биохимии растений.

Цели и задачи исследования. Цель настоящей работы заключалась в оценке возможности меж- и внутривидовой дифференциации лиственницы сибирской (Larix sibirica Ledeb.) и лиственницы Гмелина {Larix gmelinii (Rupr.) Rupr.) по их устойчивости к фтору на основе каллусной культуры in vitro.

Для этого необходимо было решить следующие задачи:

1. Подобрать исходный растительный материал и оптимальные условия культивирования для получения и стабильного поддержания долгоживущей каллусной культуры лиственницы сибирской и лиственницы Гмелина. Исследовать характеристики каллусогенеза у лиственниц.

2. Изучить возможность использования характеристик каллусогенеза для оценки генотипического разнообразия у двух видов лиственниц.

3. Оценить действие различных концентраций фторида натрия на рост каллусной культуры лиственницы сибирской и лиственницы Гмелина in vitro.

4. Исследовать возможность использования характеристик каллусогенеза для оценки устойчивости каллусной культуры лиственниц к фтору в условиях in vitro.

5. Изучить возможность дифференциации видов и экотипов лиственницы сибирской и лиственницы Гмелина по устойчивости к фтору с использованием каллусной культуры in vitro.

Научная новизна. В результате проведенных исследований разработана модельная система, позволяющая оценить реакцию растительных клеток лиственниц на действие фтора в условиях in vitro. Впервые показано, что долгоживущая каллусная культура позволяет эффективно дифференцировать генотипы сибирских видов лиственниц по признаку фторустойчивости in vitro. Изучение реакции каллусных штаммов на присутствие различных концентраций фтора в среде культивирования по изменению ростовой активности культур позволило провести их классификацию по степени устойчивости к галогену.

Научная и практическая ценность работы. На основе долгоживущей каллусной культуры лиственниц разработана система клеточной селекции генотипов у разных видов хвойных на устойчивость к фтору в условиях in vitro. Такие характеристики каллусогенеза, как ростовая активность культуры, сроки появления первых участков некротизации и степень некротизации каллуса на фторсодержащих средах в учетные даты эксперимента зависят от генотипа исходного растения. Отбор наиболее устойчивых к действию фтора в условиях in vitro каллусных штаммов позволяет получить растительный материал для изучения конкретных механизмов фторустойчивости на уровне клетки. Применение методов микроклонального размножения, генной и клеточной инженерии в сумме с данными по изучению механизмов фторустойчивости позволит в будущем получить растительные формы с повышенной устойчивостью к токсиканту для целей их использования в программах лесовосстановления и создания санитарно-защитных насаждений вокруг промышленных предприятий.

Защищаемые положения.

I. Долгоживущая каллусная культура, поддерживаемая на содержащих фторид натрия средах, позволяет эффективно дифференцировать генотипы сибирских видов лиственниц по устойчивости к действию фтора in vitro.

2. Исследуемые каллусные штаммы L. sibirica и L. gmelinii по их устойчивости к действию фтора in vitro подразделяются на 5 классов: высокоустойчивые, устойчивые, среднеустойчивые, слабоустойчивые, неустойчивые.

3. Каллусные штаммы лиственниц с повышенной устойчивостью к действию фтора in vitro характеризуются более низким уровнем перекисного окисления липидов.

Апробация работы. Основные материалы диссертации были представлены и докладывались на следующих региональных, всероссийских и международных конференциях: Международная конференция "Состояние и перспективы развития биотехнологии растений" (Алматы, 1997), Научно-практическая конференция "Проблемы экологии". Чтения памяти профессора М.М. Кожова" (Иркутск, 1997), Межотраслевой симпозиум IUFRO «Larix-98: World Resources of Breeding, Resistance and Utilization» (Красноярск, 1998), I международная конференция «Biodiversity and Dynamics of Ecosystems in North Eurasia» (BDENE-2000) (Новосибирск, 2000), 6 международная конференция «Acid rain 2000» (Tsukuba, Japan, 2000), I международное рабочее совещание "Биоразнообразие и динамика экосистем Северной Евразии: информационные технологии и моделирование" (WITA-2001) (Новосибирск, 2001), XI международная конференция IBFRA «Boreal forests and environment: local, regional and global scales» (Красноярск, 2002), V съезд Общества физиологов растений «Физиология растений — основа фитобиотехнологии» (Пенза, 2003), Всероссийская научно-практическая конференция «Развитие физико-химической биологии и биотехнологии на современном этапе» (Иркутск, 2003).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 11 работ.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследования, результатов

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Шмаков, Владимир Николаевич

выводы

1. Экспланты, полученные из ауксибластов Larix sibirica и Larix gmelinii, по характеристикам каллусогенеза не уступают растительному материалу ювенильного происхождения (зародыши, проростки семян) и являются наиболее подходящими для получения и стабильного поддержания долгоживущей каллусной культуры взрослых деревьев двух видов лиственниц.

2. Длительное (до 60 мес.) культивирование каллусных штаммов лиственницы сибирской и лиственницы Гмелина возможно на среде, содержащей 0,5 нормы минеральных солей по Мурасиге и Скугу, 20 г/л сахарозы, 1 мг/л тиамина, 80 мг/л инозита, 1 мг/л 1-нафтилуксусной кислоты, 0,2 мг/л 6-бензиладенина, 7 г/л агара.

3. Выявление межиндивидуальных различий у деревьев двух видов лиственниц in vitro можно проводить с использованием следующих параметров каллусогенеза: (1) частота и (2) сроки образования каллуса на эксплантах, (3) ростовая активность каллуса в процессе культивирования, (4) время появления некротических участков и (5) длительность культивирования штаммов до момента необратимой остановки роста каллуса.

4. Фторид натрия, вносимый в среду культивирования, угнетает рост каллусных штаммов двух видов лиственниц в концентрациях от 0,25 до 2,5 шМ. При концентрациях выше 2,5 шМ он вызывает остановку роста каллусов и гибель растительных клеток.

5. Использование фторида натрия в среде культивирования в концентрациях от 0,25 до 0,75 шМ позволяет эффективно проводить внутривидовую дифференциацию каллусных штаммов, полученных от различных генотипов Larix sibirica и Larix gmelinii.

6. Каллусные штаммы лиственницы Гмелина проявляют более высокую вариабельность по устойчивости к действию фтора in vitro, чем штаммы лиственницы сибирской. При этом все каллусы лиственницы сибирской относятся к культурам с относительно низкой устойчивостью к фтору в условиях in vitro. Клетки каллусных штаммов Larix gmelinii с повышенной устойчивостью к действию фтора in vitro характеризуются достоверным снижением уровня перекисного окисления мембранных липидов, что предполагает наличие в них более мощной системы антиоксидантной защиты, препятствующей развитию окислительного стресса и вызываемых им нарушений клеточного метаболизма.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Как показали результаты работы по подбору оптимальных типов эксплантов для получения каллусной культуры лиственницы сибирской и лиственницы Гмелина (Шмаков, Константинов, Васильева, 1998), значимых различий в частоте инициации каллусогенеза на эксплантах, взятых от ювенильного материала и тканей взрослых деревьев, выявлено не было. В то же время установлено, что варьирование по характеристикам каллусогенеза в большей степени выражено внутри каждого типа эксплантов и связано либо с генотипом растения - донора, либо с естественным расположением экспланта в структуре органа или образования, из которого он выделен. На основании проведенных исследований в качестве эксплантов для получения каллусной культуры лиственниц, наиболее отвечающих требованиям дальнейшей работы, были отобраны поперечные диски средней части ауксибластов.

На основании результатов экспериментальной работы по оптимизации питательной среды для поддержания каллусных культур Ьапх БШпса и Ь. gmelinii (Константинов, Шмаков, 1998; Коп81аШтоу е1 а1., 1998) был подобран следующий состав питательной среды: 0,5 нормы минеральных солей по Мурасиге и Скугу, 20 г/л сахарозы, 1 мг/л тиамина, 80 мг/л инозита, 1 мг/л НУК, 0,2 мг/л БАЛ, 7 г/л агара.

Нами установлена возможность использования каллусообразующей способности у Ьапх ягЫпса и Ь. %теИпи в качестве характеристики генотипа (Ко1Шап1:тоу, 8Ьшакоу, УегкИоШгоу, 2000). Анализ полученных результатов позволяет сделать вывод, что такие характеристики каллусогенеза, как частота и сроки образования каллуса на эксплантах, ростовая активность каллуса в процессе культивирования, время появления некротических участков в культуре и длительность культивирования штаммов до момента необратимой остановки роста каллуса и гибели основной массы клеток могут служить достаточно информативными параметрами для дифференциации генотипов хвойных.

На основании результатов экспериментальной работы по подбору исходного растительного материала, оптимизации условий получения каллусных культур и их длительного поддержания в условиях in vitro, оценки возможности использования различных характеристик каллусогенеза для дифференциации отдельных генотипов - доноров каллусных штаммов лиственницы сибирской и лиственницы Гмелина разработана система для изучения устойчивости хвойных к фтору в условиях in vitro и исследовано варьирование данного признака между штаммами, полученными от разных генотипов. Данный подход основан на выявлении различий в реакции каллусных штаммов двух видов лиственниц на действие нескольких концентраций фторида натрия, вносимого в среду культивирования.

В отношении фторида натрия было установлено, что его негативное действие на рост каллусных культур Larix sibirica и L. gmelinii проявляется уже в присутствии NaF в концентрации 0,25 шМ. С увеличением содержания фторида натрия в питательной среде его отрицательный эффект на состояние каллусов возрастает. В присутствии NaF в концентрации 0,75 шМ ростовая активность подавляющего большинства используемых штаммов снижалась более чем на 60%, а на среде, содержащей 7,5 шМ фторида натрия, рост всех каллусных культур прекращался полностью, ткань некротизировала и погибала в течение двух недель от начала инкубации.

Показано, что использование NaF в концентрациях от 0,25 до 0,75 шМ позволяет достаточно четко дифференцировать культуры, полученные от различных генотипов двух видов лиственниц, по их ростовой активности (Konstantinov, Shmakov, Mikhailova, Verkhoturov, 2000; Konstantinov et al., 2001; Konstantinov et al., 2002; Шмаков, Рудиковская, Константинов, 2003). Использование более высоких концентраций фторида натрия (выше 0,75 mM) приводит к исчезновению различий в действии фтора на ростовую активность отдельных штаммов обоих видов.

На основании результатов кластеризации и данных, полученных с использованием t-критерия Стьюдента, все штаммы были разделены на 5 хорошо дифференцируемых классов по реакции культур на присутствие в среде культивирования фторида натрия. Установлено, что ростовая активность каллусных штаммов L. sibirica и L. gmelinii, культивируемых на фторсодержащих средах, существенно различается. Все исследованные штаммы L. sibirica были отнесены к трем классам, отличающимся относительно низкой устойчивостью к фтору in vitro (среднеустойчивые, слабоустойчивые, неустойчивые). В то же время, каллусные культуры L. gmelinii проявляли весь спектр характеристик в соответствии с предложенной нами классификацией и, таким образом, демонстрировали более высокую по сравнению с L. sibirica вариабельность ростовой активности в присутствии используемых концентраций фторида натрия.

Исследование активности перекисного окисления липидов в каллусных культурах с различной реакцией на действие фторида натрия в среде культивирования показало, что проявление устойчивости к фтору в клетках лиственницы in vitro отрицательно коррелирует с уровнем ПОЛ. Предполагается, что повышенная устойчивость каллусных клеток лиственницы к действию фтора in vitro и, вероятно, in vivo обеспечивается, в том числе, и наличием мощной антиоксидантной системы, отражением работы которой является низкий уровень продуктов ПОЛ в клетках устойчивой каллусной культуры (Шмаков, Рудиковская, Константинов, 2003; Шмаков, Константинов, 2004).

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Шмаков, Владимир Николаевич, 2004 год

1. Абрамашвилли Г.Г. Влияние загрязнений атмосферного воздуха на хвойные насаждения // Гигиена и санитария. 1957. - № 4. - С. 67-69.

2. Айала Ф., Кайгер Дж., Современная генетика, 3 т., Т. 3 М.: Мир, 1988.-335 с.

3. Антипов В.Г. Устойчивость видов сосны к промышленным газам // Ботаника: Исследования, № 17. Минск: Наука и техника, 1975. - С. 215-221.

4. Антипов В.Г. Устойчивость видов ели к промышленным газам // Ботаника: Исследования, № 18. Минск: Наука и техника, 1976. - С. 204-208.

5. Антипов В.Г. Устойчивость видов лжетсуги, тсуги и лиственницы к промышленным газам // Ботаника: Исследования, № 20. Минск: Наука и техника, 1978. - С. 224-228.

6. Антипов В.Г., Болотов H.A. Отношение видов пихты к загрязнению воздуха промышленными газами // Защитное лесоразведение и лесные культуры, Вып. 4. Воронеж: Изд-во Воронежского университета, 1977. -С. 15-21.

7. Бабаева Ж.А., Бутенко Р.Г., Строгонов Б.П. Влияние засоления питательной среды на рост изолированных тканей моркови // Физиология растений. 1968. - Т. 15, № 1. - С. 93-102.

8. Бабушкина Л.Г., Зуева Г.В., Луганский H.A. и др. Экологическое состояние лесных насаждений в зоне фторсодержащих промышленных выбросов // Экология. 1993. - № 1. - С. 26-35.

9. Белозерова Л.С. Влияние фтористого натрия на фотосинтез, дыхание и превращение органических кислот у суккулентов на свету // Вести Ленинградского университета, Серия биологическая. 1964. - Вып. 4, № 21. -С. 116- 121.

10. Ю.Бельчинская Л.И. Биоиндикация промышленных токсикантов древесными растениями. Воронеж: Из-во Воронежской государственной лесотехнической академии, 2000. - 93 с.

11. Бессонова В.П. Состояние пыльцы как показатель загрязнения среды тяжелыми металлами // Экология. 1992. - № 4. - С. 45-50.

12. Биотехнология растений: культура клеток / Ред. Бутенко Р.Г. М.: Агропромиздат, 1989. - 280 с.

13. Бретшнайдер Б., Курфюрст И. Охрана воздушного бассейна от загрязнений / Пер. с англ. Ред. Туболкина А.Ф. Л.: Химия, 1989. - 288 с.

14. Булгаков В.П., Журавлев Ю.Н. Культуры трансформированных клеток растений как новый источник получения продуктов вторичного метаболизма // Успехи современной биологии. 1992. - Т. 112, Вып. 3. - С. 342-350.

15. Бутенко Р.Г. Культура изолированных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. - 272 с.

16. Быченкова Э.А. Исследование каллусообразования у некоторых древесных и кустарниковых пород методом культуры ткани in vitro II Доклады АН СССР. 1963. - Т. 151, № 3. - С. 732-736.

17. Власюк П. А. Биохимические элементы в жизнедеятельности растений. Киев: Наукова Думка, 1969. - 409 с.

18. Власюк П.А., Мицко В.Н. Влияние фторидов на активность некоторых ферментов гороха // Микроэлементы в сельском хозяйстве и медицине, Вып. 3. Киев: Наукова Думка, 1967. - С. 46-49.

19. Воробейчик Е.Л., Хантемирова Е.В. Реакция лесных фитоценозов на техногенное загрязнение: зависимость доза эффект // Экология. - 1994. -№3.-С. 31-43.

20. Гамбург К.З., Рекославская Н.И., Швецов С.Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. Новосибирск: Наука, 1990. - 243 с.

21. Гарник Е.Ю., Константинов Ю.М., Шмаков В.Н. Различная реакция каллусных линий лиственницы на окислительный стресс, индуцируемый паракватом // Биополимеры и клетка. 2003. - Т. 19, № 3. - С. 247-251.

22. Гетко Н.В., Кулагин Ю.З., Яфаев Э.М. О газопоглотительной способности хвойных // Экология хвойных. Уфа: Изд-во БФАН СССР, 1978. -С. 112-120.

23. Глотов Н.В., Животовский Л.А., Хованов Н.В., Хромов-Борисов H.H. Биометрия. Л.: Изд-во Ленинградского университета, 1982. - 264 с.

24. Грешта Я. Влияние промышленной загрязненности воздуха на сосновые и еловые древостой // Растительность и промышленные загрязнения. Свердловск: Изд-во УФАН СССР, 1970. - С. 20-25.

25. Гришко В.Н., Сыщиков Д.В. Перекисное окисление липидов и функционирование некоторых антиоксидантных ферментных систем у кукурузы и овса при остром поражении фтористым водородом // Украинский ботанический журнал. 1999а. - Т. 71, №3. - С. 51-57.

26. Гришко В.Н., Сыщиков Д.В. Влияние фтористого водорода на активность ферментного цикла глутатиона в листьях некоторых древесных растений // Доп. Нац. АН Украши. 2000. - № 12. - С. 178-184.

27. Гуральчук Ж.З. Механизмы устойчивости растений к тяжелым металлам И Физиология и биохимия культурных растений. 1994. - Т. 26, № 2.-С. 107-117.

28. Дерябин А.Н., Орешников A.B., Юрьева Н.О., Бутенко Р.Г. Рост столонов и индукция микроклубней картофеля in vitro при разных типах культивирования // Доклады РАН. 1997. - Т. 355, № 6. - С. 841-843.

29. Диксон М., Уэбб Э. Ферменты, 3 т. М.: Мир, 1982. - 1120 с.

30. Добровольский В.В. География микроэлементов. М.: Мысль, 1983. -272 с.

31. Железнов A.B. О селекции растений на устойчивость к «загрязнителям» окружающей среды // Вестник ВОГиС. 1999. - № 8. -С. 7-9.

32. Жиров В.К., Мерзляк М.Н., Кузнецов JI.B. Перекисное окисление мембранных липидов холодоустойчивых растений при повреждении отрицательными температурами // Физиология растений. 1988. - Т. 29, № 6. -С. 1045-1053.

33. Жук Е.Е., Харин Ю.С. Устойчивость в кластер-анализе многомерных наблюдений. Минск: Изд-во Белгосуниверситета, 1998. - 240 с.

34. Илькун Г.М. Газоустойчивость растений. Киев: Наукова Думка, 1971а.-С.1-135.

35. Илькун Г.М. Влияние токсических газов на растения // Физиология и биохимия культурных растений. Т. 3, № 1. - 19716. - С. 87-92.

36. Илькун Г.М., Буколова Т.П. Изменение структуры хвои под действием фтора и хлора // Украинский ботанический журнал. 1974. - Т. 31, № 5. - С. 624-629.

37. Илькун Г.М., Миронова A.C., Михайленко JI.A. Повреждение тканей листьев токсическими газами // Украинский ботанический журнал. 1969. -Т. 26, № 1.-С. 72 -77.

38. Костюк А.Н., Остаплюк А.Н., Левенко Б.А. Ответная реакция растений на солевой стресс // Физиология и биохимия культурных растений. 1994. - Т. 26, № 6. - С. 525-545.

39. Красинский Н.П. Значение изучения дымо- и газоустойчивости растений для озеленения промышленных площадок и населенных пунктов // Дымоустойчивость растений и дымоустойчивые ассортименты. Москва-Горький, 1950.-С. 14-20.

40. Кривохарченко A.C., Черняк Н.Д., Носов A.M. Криосохранение суспензионных культур клеток растений с использованием метода замораживания эмбрионов млекопитающих // Физиология растений. 1999. -Т. 46, № 6. - С. 945-949.

41. Кудзин Ю.К., Пашова В.Т. О содержании фтора в почвах и растениях при длительном применении удобрений // Почвоведение. 1970. - № 2. - С. 74-79.

42. Кунах В.А. Геномная изменчивость соматических клеток растений. 3. Каллусообразование in vitro II Биополимеры и клетка. 1997. - Т. 13, № 5. - С. 362-371.

43. Кучеренко JI.A., Маддумаге Р.П., Гужев Ю.Л. К методике определения массы каллусных тканей в процессе культивирования // Сельскохозяйственная биология. 1991. - № 3. - С. 68-75.

44. Кучеренко JI.А. Морфологическая разнокачественность каллусных тканей риса и ее связь с регенерационной способностью // Физиология растений. 1993. - Т. 40, № 5. - С. 797-801.

45. Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высш. школа, 1980. - 293 с.

46. Лутова Л.А., Забелина Е.К. Каллусо- и побегообразование у различных форм гороха Pisum sativum L. в условиях in vitro II Генетика. -1988. Т. 24, № 9. - С. 1632-1640.

47. Михайленко В.Г. Неоднозначность резистентности организмов // Успехи современной биологии. 2002. - Т. 122, № 4. - С. 334-341.

48. Михайлова Т.А., Бережная Н.С. Динамика состояния сосновых лесов при изменениях эмиссионной нагрузки // Сибирский экологический журнал. -2002.-Т. 9,№ 1.-С. 113-120.

49. Мишарина Е.А., Оводова Р.Г., Бушнева O.A., Оводов Ю.С. Каллусообразование Silene vulgaris (Moench) Garcke in vitro. II Растительные ресурсы. 1999. - № 2. - С. 88-95.

50. Мокроносов А.Т., Купцова Е.С., Попов A.C., Кузнецов В.В. Генетическая коллекция как способ сохранения биоресурсов планеты // Вест. РАН. 1994. - № 11. - С. 991-1001.

51. Момот Т.С. Способность к органогенезу листовой ткани лиственницы даурской (Larix dahurica Turcz.) в культуре in vitro II Лесной журнал. 1976. - № 5. - С. 27-29.

52. Момот Т.С. Культура in vitro изолированных корней лиственницы сибирской и даурской (Larix sibirica Maxim., L. dahurica Turcz.) // Лесной журнал. 1977. - № 2. - С. 35-37.

53. Мурашко Л.Н., Фадеева Т.С. Изучение характера регенерации у различных форм гороха // Вестник ЛГУ. 1973. - № 15. - С. 132.

54. Негруцкая Г.М. Физико-биохимические процессы у сосны при воздействии вредных газов // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Киев, 1970. -23 с.

55. Никифорова В.Я. К механизму мутагенного действия фтора // Цитология и генетика. 1982. - Т. 16, № 6. - С. 40-41.

56. Николаевский В.С. Современное состояние проблемы газоустойчивости растений // Газоустойчивость растений, Вып. 1. Пермь, 1969.-С. 5-33.

57. Николаевский В.С. Лес и промышленные выбросы // Лесное хозяйство. 1987. - № 10. - С. 62-65.

58. Ниязбекова Б.С., Мальцева И.М., Потатуева Ю.А. и др. Экологические аспекты производства и применения фосфорных удобрений. -М.: НИИТЭХИМ, 1990. Вып. 4. - 80 с.

59. Осколков В.А., Воронин В.И. Репродуктивный процесс сосны обыкновенной в Верхнем Приангарье при техногенном загрязнении. -Иркутск: Изд-во Иркутского Госуниверситета, 2003. 137 с.

60. Орлов П.А. Взаимодействие ядерных и цитоплазматических генов в детерминации развития растений. Минск: ЮНИПАК, 2001. - 170 с.

61. Павлов И.Н. Изучение сорбции фтора в листьях древесных растений // Химия растительного сырья. 1998. - № 2. - С. 37-43.

62. Пашова В.Т. Фтор в почвах и растениях // Агрохимия. 1980. - № 10. -С. 165-171.

63. Пешкова Г.А. Растительность Сибири: Предбайкалье и Забайкалье. -Новосибирск: Наука, 1985. 144 с.

64. Поздняков Л.К. Даурская лиственница. М.: Наука, 1975. - 312 с.

65. Помазкина Л.В., Котова Л.Г., Раднаев А.Б.-Д., Соколова H.A. Влияние уровней загрязнения почв фторидами на циклы азота в агроэкосистемах Прибайкалья // Агрохимия. 2000. - № 12. - С. 62-70.

66. Растения в экстремальных условиях минерального питания // Ред. Школьник М.Я., Алексеева-Попова Н.В. Л.: Наука, 1983. - 176 с.

67. Рожков A.C., Михайлова Т.А. Действие фторсодержащих эмиссий на хвойные деревья. Новосибирск: Наука. Сиб. отд-ние, 1989. - 159 с.

68. Садилова М.С. Промышленные выбросы криолитового завода и их влияние на внешнюю среду // Охрана природы на Урале, Вып. 4. -Свердловск: Изд-во УФАН СССР, 1964. С. 43-48.

69. Серазетдинова Л.Д., Полимбетова Н.С., Лесова Ж.Т. и др. Действие хлорида натрия и полиэтиленгликоля в различных концентрациях на рост суспензионной культуры клеток пшеницы // Физиология и биохимия культурных растений. 2000. - Т. 32, № 4. - С. 302-308.

70. Сергеева Л.Е. Определение токсичности парафинов в системе in vitro II Физиология и биохимия культурных растений. 2000а. - Т. 32, № 4. -С. 325-328.

71. Сергеева Л.Е. Отбор и изучение клеточных линий табака, устойчивых к ванадию // Физиология и биохимия культурных растений 20006. - Т. 32, №5.-С. 369-371.

72. Сергеева Л.Е. Изучение комплексной устойчивости ванадий-вольфрамустойчивых клеточных линий табака // Физиология и биохимия культурных растений. 2000в. - Т. 32, № 6. - С. 490-493.

73. Скрипаченко В.В. Выращивание in vitro тканей проростков трех видов сосны // Физиология растений. 1982. - Т. 29, № 1. - С. 205-211.

74. Смитт М.В., Моисеева H.A. Капсулирование соматических эмбрионов и регенерация растений // Биология культивируемых клеток и биотехнология растений / Ред. Бутенко Р.Г. М.: Наука, 1991. - С. 186-189.

75. Современные методы в биохимии / Ред. Орехович В.Н. М.: Медицина, 1977. - 392 с.

76. Сокал P.P. Кластер-анализ и классификация: предпосылки и .основные направления // Классификация и кластер / Ред. Дж. Вэн Райзин.-М.: Мир, 1980.-С. 7-19.

77. Соков М.К., Габиб-заде J1.A. Внутривидовые различия в газоустойчивости сосны // Физиолого-биохимические и экологические аспекты устойчивости растений к неблагоприятным факторам внешней среды. Иркутск: СИФИБР СО АН СССР, 1977,- С. 213-220.

78. Соков М.К. Влияние фтористых выбросов алюминиевых заводов на состояние хвойных лесов // Автореф. дисс. канд. биол. наук. Красноярск: Институт леса и древесины им. В.Н. Сукачева СО АН СССР, 1979. - 24 с.

79. Тарчевский В.В. Влияние дымо-газовых выделений промышленных предприятий Урала на растительность // Растения и промышленная среда. -Свердловск, 1964. С. 5-69.

80. Торгашева Э.Г. Ультраструктуральные изменения хлоропластов мезофилла листа Morus alba (Moraceae) в условиях алюминиевого завода // Ботанический журнал. 1984. - Т. 69, № 7. - С. 921-925.

81. Третьякова И.Н., Бажина Е.В. Жизнеспособность пыльцы пихты сибирской в нарушенных лесных экосистемах гор Южной Сибири // Экология. 1994. - № 6. - С. 20-28.

82. Уоринг Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка. М.: Мир, 1984.-512 с.

83. Фарафонтов М.Г. Биоиндикаторные свойства хлорофилла в условиях воздействия загрязнений неопределенного состава // Экология. 1991. - № 5. - С. 76-79.

84. Федоров Е.А., Мартюшов В.З., Смирнов Е.Г. и др. Накопление 90Sr и 137Cs растительностью естественных сенокосов и пастбищ лесостепной зоны // Экология. 1989. - № 5. - С. 79-83.

85. Харинарайн Р.П., Долгих Ю.И., Гужов Ю.Л. Перспективы использования биотехнологических методов в селекции сахарного тростника Saccharum officinarum L. на устойчивость к гипоксии // Изв. РАН. Серия биологическая. 1996. - № 4. - С. 411-421.

86. Харук В.И., Винтербергер К., Цибульский Г.М. и др. Техногенное повреждение притундровых лесов Норильской долины // Экология. 1996. -№ 6. - С. 424-429.

87. ЮО.Хомина А.Б., Журавлев Ю.Н. Культура клеток растений как источник протобербериновых алкалоидов // Растительные ресурсы. 1996. -Т. 32, № 1/2.-С. 134-151.

88. Чуб В.В., Власова Т.А., Бутенко Р.Г. Каллусогенез и морфогенез в культуре генеративных органов весеннецветущих видов Crocus L. // Физиология растений. 1994. - Т. 41, № 6. - С. 815-820.

89. Школьник М.Я. Микроэлементы в жизни растений. Л.: Наука, 1974.-324 с.

90. Шмаков В.Н., Константинов Ю.М., Васильева O.A. Клеточные технологии как основа изучения генетического разнообразия хвойных Прибайкалья // Конференция "Проблемы экологии", Иркутск, 28-30 октября, 1997, Материалы. Новосибирск: Наука, 1998. - С. 193-195.

91. Юб.Ярмишко В.Т., Деева Н.М., Мазная Е.А., Леина Г.Д. Влияние промышленных выбросов на ассимиляционный аппарат Pinus sylvestris L. и Viccinium myrtillus L. на Европейском севере России // Растительные ресурсы. 1995. - Т. 31, Вып. 3. - С. 36-51.

92. Abdul Rahman N.N., Diner A.M., Skilling D.D., Karnosky D.F. In vitro responses of conifer adventitious shoots and calli inoculated with Gremmeniella abietina // For. Science. 1987. - V. 33. - P. 1047-1053.

93. Aderkas P. von, Bonga J.M., Nagmani R. Promotion of embryogenesis in cultured megagametophytes of Larix decidua // Can. J. Forest. Research. 1987. -V. 17.-P. 1293-1296.

94. Aderkas P. von, Bonga J.M. Morphological definition of phenocritical period of initiation of haploid embryogenesis tissue from explants of Larix decidua II Somatic cell genetics of woody plants / Ed. Ahuja M.R. Dordrecht: Kluwer, 1988a. - P. 29-38.

95. Aderkas P. von, Bonga J.M. Formation of haploid embryoids of Larix decidua: early embryogenesis // American J. Botany. 19886. - V. 75. - P.690-700.

96. Aderkas P. von. Embryogenesis from protoplasts of haploid European larch // Can. J. Forest. Research. 1992. - V. 22. - P. 297-402.

97. Aderkas P. von, Bonga J.M. Plants from haploid tissue culture of Larix decidua H Theor. Apl. Genet. 1993. - V. 87. - P. 225-228.

98. M.Applegate H.G., Adams D.F., Carriker R.C. Effect of aqueous fluoride solutions on respiration of intact bush bean seedlings. I. Inhibition and stimulation of oxygen uptake // American J. Botany. 1960. - V. 47. - P. 339-345.

99. Arnold S. von, Woodward S. Organogenesis and embryogenesis in mature zygotic embryos of Picea sitchensis II Tree Physiology. 1988. - V. 4. - P. 291-300.

100. Aronen T.S., Krajnakova J., Haggman H.M., Ryynanen L.A. Genetic fidelity of cryopreserved embryogenic cultures of open-pollinated Abies cephalonica II Plant Science. 1999. - V. 142. - P. 163-172.

101. Arzani A., Mirodjagh S.-Sh. Response of durum wheat cultivars to immature embryo culture, callus induction and in vitro salt stress // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1999. - V. 58. - P. 67-72.

102. Attree S.M., Bekkaoui F., Dunstan D., Fowke L.C. Regeneration of protoplasts from an embryogenic suspension culture of white spruce (Picea glauca) // Plant Cell Reports. 1987. - V. 6. - P. 480-483.

103. Attree S.M., Dunstan D.I., Fowke L.C. Plantlet regeneration from embryogenic protoplasts of white spruce (Picea glauca) // Biotechnology. 1989. -V. 7.-P. 1060-1062.

104. Barcelo J., Poschenrieder Ch. Plant water relations as affected by heavy metal stress: a review // J. Plant Nutrition. 1990. - V. 13. - P. 1-37.

105. Barnes R.L., Naylor A.W. Culture of pine root callus and the use of Pinus clausa callus in preliminary metabolic studies // Bot. Gaz. 1958. - V. 120. -P. 63-66.

106. Baryla A., Laborde C., Montillet J.-L. et al. Evaluation of lipid peroxidation as a toxicity bioassay for plants exposed to copper // Environmental Pollution. 2000. - V. 109.-P. 131-135.

107. Baur P.R., Walkinshaw C.H. Fine structure of tannin accumulation in callus culture of Pinus elliotti (slash pine) // Can. J. Botany. 1974. - V. 52. -P. 615-619.

108. Bekkaoui F., Pilon M., Laine E. et al. Transient gene expression in elektroporated Picea glauca protoplasts // Plant Cell Reports. 1988. - V. 7. -P. 481-484.

109. Berlyn G.P., Beck R.C., Renfroe M.N. Tissue culture and the propagation and genetic improvement of conifers: problems and possibilities // Tree Physiology. 1986. - V. 1. - P. 227-240.

110. Berlyn G.P., Anoruo A.O., Beck R.C., Cheng J.P. DNA content polymorphism and tissue culture regeneration in Caribbean pine // Can. J. Botany. 1987.-V. 65.-P. 954-961.

111. Berlyn G.P., Kohls S.J., Anoruo A.O. Caribbean pine (Pinus caribaea Morelet) // Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol. 16. Trees III / Ed. Bajaj Y.P.S. Berlin, Heidelberg: Springer, 1991. - P. 254-268.

112. Bhojwani S.S., Razdan M.K. Plant tissue culture: Theory and practice, a revised edition. Amsterdam: Elsevier, 1996. - 767 p.

113. Bonga J.M. Shoot formation in callus from the stalks of young female strobili of Larix decidua II Can. J. Botany. 1982. - V. 60. - P. 1357-1359.

114. Bonga J.M. Adventitious shoot formation in cultures of immature female strobili Larix decidua II Phisiol. Plantarum. 1984a. - V. 62. - P. 416-421.

115. Bonga J.M. Adventitious root and shoot formation in tissue cultures of mature Larix decidua II Proc. Int. Symp. Recent Advances in Forest Biotechnology. Traverse City, 19846. - P. 64-68.

116. Bonga J.M., Aderkas P. von. Attempt to micropropagate mature Larix decidua Mill. // Somatic cell genetics of woody plants / Ed. Ahuja M.R. -Dordrecht: Kluwer, 1988. P. 155-168.

117. Bonga J.M., Pond S.E. Adventitious shoot formation in cultures of 30-year-old Larix decidua, L. leptolepis, L. euroleois and L. laricina trees // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1991. - V. 26. - P. 45-51.

118. Bonga J.M. Frozen storage stimulates the formation of embryo-like structures and elongating shoots in explants from mature Larix decidua and Larix x eurolepis trees //Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1996. - V. 46. - P. 91101.

119. Braun G. Über die Ursachen und Kriterien der Immissionsresistenz bei Fichte, Picea abies (L.) Karst. II. Reflektorische Immissionsresistenz II Europ. J. Forest Pathol. 1977. -V.l.- P. 129-152.

120. Brennan E., Rhoads A.F. The response of woody species to air pollutants in an urban environment // J. Arboriculture. 1976. - V. 2. - P. 1-5.

121. Bueno P., Piqueras A. Effect of transition metals on stress, lipid peroxidation and antioxidant enzyme activities in tobacco cell cultures // Plant Growth Regulation. 2002. - V. 36. - P. 161-167.

122. Bücher-Wallin I. Zur Beenflussung des physiologischen Blattalters von Waldbäumen durch Fluor-Immissionen, Mitteilungen Eidgenossiche Anstalt für das Forstliche Versuchswesen, V. 52. Schweiz., 1976. - P. 101-158.

123. Campbell R.A., Durzan D.J. Induction of multiple buds and needles in tissue cultures of Picea glauca II Can. J. Botany. 1975. - V.53.- P. 1652-1657.

124. Chalupa V. Micropropagation of conifer and broadleaved forest trees // Commun Inst. For. Czech. 1983. - V. 13. - P. 7-39.

125. Chalupa V. In vitro propagation of Larix, Picea, Pinus, Quvercus, Fagus and other species using adenine-type cytokinins and thidiazuron // Commun Inst. For. Czech. 1985. - V. 14. - P. 65-90.

126. Chalupa V. Micropropagation of Larix decidua Mill, and Pinus sylvestris L. // Biol. Plantarum. 1989. - V. 31. - P. 40-407.

127. Chalupa V. Larch {Larix decidua Mill.) // Biotechnology in agriculture and forestry, V. 16, Trees III / Ed. Bajaj Y.P.S. Berlin, Heidelberg: Springer, 1991.-P. 446-470.

128. Chang C.W. Effect of fluoride on nucleotides and ribonucleic acid in germinating corn seedling roots // Plant Physiology. 1968. - V. 43. - P. 669 -674.

129. Chang C.W. Effect of fluoride on ribosomes from corn roots. Changes with growth retardation // Physiol. Plantarum. 1970a. - V. 23. - P. 536-543.

130. Chang C.W. Effect of fluoride on ribosomes and ribonuclease from corn roots // Can. J. Biochemistry. 19706. - V. 48. - P. 450-454.

131. Chang C.W., Thompson C.R. Site of fluoride accumulation in navel orange leaves // Plant Physiology. 1966. - V. 41. - P. 211-213.

132. Cho U., Park J. Mercury-induced oxidative stress in tomato seedlings // Plant Science. 2000. - V.156. - P. 1-9.

133. Christiansen H. On the germination of pollen of Larix and Pseudotsuga on artificial substrate, and on viability tests of pollen of coniferous forest trees // Silvae Genet. 1969. - V. 18. - P. 104-107.

134. David A., David H. Influence de diverses conditions de nutrition sur le développement d'extremites de jeunes raciness de Pinus pinaster Sol. en culture in vitro //CR Acad Sei Paris. 1975. - V. 281. - P. 1373-1376.

135. David A., David H., Mateille T. Evaluation of parameters affecting the yield, variability and cell division of Pinus pinaster protoplasts // Physol. Plantarum. 1982. - V. 56. - P. 108-113.

136. Dazzler H.-G., Ranft H., Rahn K.-H. Zur Widerstandsfähigkeit von Gehölzen gegenüber Fluorverbindungen und Schwefeldioxid // Flora. 1972. -Bd. 161.-S. 289-302.

137. De Vos R.H.C., Schat H., Voojis R., Ernst W.H.O. Copper-induced damage to the permeability barrier in roots of Silene cucubalus II J. Plant Physiology. 1989. - V. 135. - P. 164-169.

138. Diaz-Cacho P., Molar R., Encina A. et al. Cell wall modifications in bean (Phaseolus vulgaris ) callus cultures tolerant to isoxaben // Physiol. Plantarum. -1999.-V. 107.-P. 54-59.

139. Diner A.M., Strickler A., Karnosky D.F. Initiation, elongation, and remultiplication of Larix decidua micropropagules // NZ J. Forest. Science. -1986.-V. 16.-P. 306-318.

140. Diner A.M., Karnosky D.F. Potential of genetic engineering in Larix I I Research and Development Conference, Atlanta, 1986, Abstr. Atlanta: TAPPI,1986.-P. 93-94.

141. Diner A.M., Karnosky D.F. Differential responses of two conifers to in vitro inoculation with Agrobacterium rhizogenes // Eur. J. Forest. Pathology.1987.-V. 17.-P. 211-216.

142. Dixit V., Pandey V., Shyam R. Differential antioxidative responses to cadmium in roots and leaves of pea (Pisum sativum L. cv. Azard) // J. Experimental Botany. 2001. - V. 52. - P. 1101-1109.

143. Dixit V., Pandey V., Shyam R. Chromium ions inactivate electron transport and enhance superoxide generation in vivo in pea (Pisum sativum L. cv. Azard) root mitochondria // Plant, Cell and Environment. 2002. - V. 25. - P. 687693.

144. Dumont-BeBoux N., Anholt B.R., von Aderkas P. In vitro germination of western larch pollen // Can. J. Forest. Research. 2000. - V. 30. - P. 329-332.

145. Durzan D.J. Somatic embryogenesis and sphaeroblasts in conifer cell suspensions // Plant tissue culture / Ed. Fujiwara A. Maruzen, Tokyo, 1982. - P. 113-114.

146. Durzan D.J., Chalupa V. Growth and metabolism of cell and tissue of jack pine (Pinus banksiana) II Can. J. Botany. 1976. - V. 54. - P. 456-506.

147. Durzan D.J., Gupta P.K. Somatic embryogenesis and polyembryogenesis in Douglas fir cell suspension cultures // Plant Science. 1987. - V. 52. - P. 229235.

148. Durzan D.J., Stevard F.C. Cell and tissue culture of white spruce and jack pine // Dep. First Can. Bi-m. Res. Notes. 1968. - V. 24. - P. 30.

149. Ellis D., Bilderback D. Multiple bud formation by cultured embryos of Pinus ponderosa II J. Plant Physiology. 1984. - V. 115. - P. 201-204.

150. Encina A.E., Molar R.M., Acebes J.L., Alvarez J. M. Characterization of cell wall in bean (Phaseolus vulgaris L.) callus cultures tolerant to dichlobenil // Plant Science. 2001. - V. 160. - P. 331-339.

151. Facanha A.R., de Meis L. Inhibition of maize root H^-ATPase by fluoride and fluoroaluminate complexes // Plant Physiology. 1995. - V. 108. -P. 241-246.

152. Facanha A.R., Okorokova-Facanha A.L. Inhibition of Phosphate uptake in corn roots by aluminum-fluoride complexes // Plant Physiology. 2002. -V. 129.-P. 1763-1772.

153. Faye M., David A. Isolation and culture of gymnosperm root protoplasts (Pinus pinaster) II Physiol. Plantarum. 1983. - V. 59. - P. 359-362.

154. Flinn S.B., Webb D.T., Newcomb W. Morphometric analysis or reserve substance and ultrastructural changes during caulogenic determination of eastern white pine {Pinus strobus L.) // Can. J. Botany. 1989. - V. 67. - P. 779-789.

155. Fornasiero R.B. Phytotoxic effects of fluorides // Plant Science. 2000. -V. 161.-P. 979-985.

156. Fornazier R.F., Ferreira R.R., Pereira G.J.G. et al. Cadmium stress in sugar cane callus cultures: Effects on antioxidant enzymes // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2002. - V. 71. - P. 125-131.

157. Fortin J.A., Piche Y. Cultivation of Pinus strobus root-hypocotyl expiants for synthesis of ectomycorrhizae // New Physiology. 1979. - V. 83. - P. 109-119.

158. Foy C.D., Chaney R.L., White M.C. Physiology of metal toxicity in plants // Annu. Rev. Plant Physiology. 1978. - V. 29. - P. 511-566.

159. Garcia A., Baquedano F.J., Navarro P., Castillo F.J. Oxidative stress induced by copper in sunflower plants // Free Radie Res. 1999. - V. 31 Suppl. -P. S45-S50.

160. Gautheret R. La culture des tissus végétaux. Paris, 1959. - 864 p.

161. Gonzalez J.M., Friero E., Jouve N. Influence of genotype and culture medium on callus formation and plant regeneration from immature embryos of Triticum turgidum Desf. cultivars // Plant Breeding. 2001. - V. 120. - P. 513-517.

162. Gossett D.R., Millhollon E.P., Lucas M.C. Antioxidant response to NaCl stress in salt-tolerant and salt-sensitive cultivars of cotton // Crop Sci. 1994. -V. 34.-P. 706-714.

163. Gould J.H., Zhou Y., Padmanabhan V. et al. Transformation and regeneration of loblolly pine: shoot apex inoculation with Agrobacterium II Molecular Breeding. 2002. - V. 10. - P. 131-141.

164. Guevin T.G., Micah V., Kirby E.G. Somatic embryogenesis in cultured mature zygotic embryos of Abies balsamea II Plant Cell Tissue and Organ Culture. 1994.-V.27.-P. 205-208.

165. Guevin T.G., Kirby E.G. Induction of embryogenesis in cultured mature zygotic embryos of Abies fraseri (Pursh) Poir // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1997. - V. 49. - P. 219-222.

166. Gupta P.K., Durzan D.J. Isolation and cell regeneration of protoplasts from sugar pine (Pinus lambertiana) II Plant Cell Reports. 1986a. - V. 5. - P. 346348.

167. Gupta P.K., Durzan D.J. Somatic polyembryogenesis from callus of mature sugar pine embryos // Biotechnology. 19866. - V. 4. - P. 643-645

168. Gupta P.K., Durzan D.J. Plantlet regeneration via somatic embryogenesis from subcultured callus of mature embryos of Picea abies (Norway spruce) // In vitro Cell Dev. Biology. 1986b. - V. 22. - P. 685-688.

169. Gupta P.K., Durzan D.J. Somatic embryos from protoplasts of loblolly pine proembryonal cells // Biotechnology. 1987a. - V. 5. - P. 710-712.

170. Gupta P.K., Durzan D.J. Biotechnology of somatic embryogenesis in loblolly pine // Biotechnology. 19876. - V. 5. - P. 147-151.

171. Gupta P.K., Durzan D.J. Somatic polyembryogenesis in embryonal cell masses of Picea abies, Pinus taeda after freezing in liquid N3 // Can. J. Forest. Research. 1987b.-V. 17.-P. 1130-1132.

172. Gupta P.K., Dandekar A.M., Durzan D.J. Somatic proembryo formation and transient gene expression of a luciferase gene in Douglas fir and loblolly pine protoplasts // Plant Science. 1988. - V. 58. - P. 85-92.

173. Haissing B.E., Nelson N.D., Kidd G.H. Trends in the use of tissue culture in forest improvement // Biotechnology. 1987. - V. 5. - P. 52-59.

174. Hakman I., Arnold S. von. Isolation and growth of protoplasts from cell suspensions of Pinus contorta Doug, ex Loud. // Plant Cell Reports. 1983. - V. 2. - P. 92-94.

175. Hakman I., Arnold S. von. Plantlet regeneration through somatic embryogenesis in Picea abies (Norway spruce) // J. Plant Physiology. 1985. -V. 121.-P. 1439-158.

176. Hanson J.B. Impairment of respiration, ion accumulation and ion retention in root tissue treated with ribonuclease and ethylenediamine tetra-acetic acid // Plant Physiology. 1960. - V. 35. - P. 372-379.

177. Harvey A.E. Tissue culture of Pinus montícola on a chemically defined medium // Can. J. Botany. 1967. - V. 45. - P. 1783-1787.

178. Harvey A.E., Grasham J.L. Procedures and media for obtaining tissue cultures of 12 conifer species // Canadian J. Botany. 1969. - V. 47. - P. 547-549.

179. Horntvedt R., Robak H. Relative susceptibility of eleven conifer species to fluoride air pollution // Medd. Norsk inst. Skogforsk. 1975. - V. 305. - P. 189206.

180. Hotberichts F.A., Orzaez D., van der Pías L.H.W., Woltering E.J. Changes in gene expression during programmed cell death in tomato cell suspensions // Plant Mol. Biology. 2001. - V. 45. - P. 641-654.

181. Hrib J., Rypacek V. In vitro testing for the resistance of conifers to the fungus Phaeolus schweinitzii (Fr.) Pat. on callus cultures // Eur. J. Forest. Pathology. 1983. - V. 13. - P. 86-91.m

182. Karnosky D.F., Diner A.M. A cotyledon culture system for cloning Larix. decidua and Pinus banksiana II Research and Development Conference, Atlanta, 1984, Abstr. Atlanta: TAPPI, 1984. - P. 13-15.

183. Karnosky D.F. Micropropagation of Larches {Larix spp.) //

184. Biotechnology in agriculture and forestry, V. 18, High-Tech, and

185. Micropropagation II / Ed. Bajaj Y.P.S. Berlin, Heidelberg: Springer, 1992. -P. 123-135.

186. Kartha K.K., Fowke L.C., Leung N.L. et al. Induction of somatic embryogenesis and plantlets from cryopreservated cell cultures of white spruce {Picea glauca) H J. Plant Physiology. 1988. - V. 132. - P. 529-539.

187. Kassem M., Mosekilde L., Eriksen E.F. Effects of fluoride on human9bone cells in vitro: differences in responsiveness between stromal osteoblast precursors and mature osteoblasts // Eur. J. Endocrinol. 1994. - V. 130. - P. 381386.

188. Kaul K. Establishment of long-term callus cultures from mature white pine {Pinus strobus, Pinaceae) // Amer. J. Botany. 1986. - V. 73. - P. 242-245.

189. Keller H. Histologische und physiologische Untersuchungen an Forstpflanzer in einem Fluorschadensgebiet // Ber. Eidgen. Anstalt Forstl. Versuchswesen. 1976. - Bd. 154. - S. 1-82.

190. Kirby E.G., Chang P.Y. Colony formation from protoplasts derived from Douglas-fir cotyledons // Plant Sei. Letter. 1979. - V. 14. - P. 145-154.

191. Kim Y.W., Youn Y., Noh E.R., Kim J.Ch. Somatic embryogenesis and plant regeneration from immature zygotic embryos of Japanese larch {Larix letolepis) // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1999. - V. 55. - P. 95-101.

192. Kinraide T.B. Reconsidering the rhyzotoxicity of hydroxyl, sulphate, and fluoride complexes of aluminum // J. Experimental Botany. 1997. - V. 48. -P. 1115-1124.

193. Klimaszewska K. Plantlet development from immature zygotic embryos of hybrid larch through somatic embryogenesis // Plant Science. 1989a. - V. 63. -P. 95-103.

194. Klimaszewska K. Recovery of somatic embryos and plantlets from protoplast cultures of Larix x eurolepis II Plant. Cell Reports. 19896. - V. 8. -P. 440-444.

195. Klimaszewska К., Ward С., Cheliak W.M. Cryopresirvation and plant regeneration from embryogenic cultures of larch (Larix x eurolepis ) and Black spruce ( Picea mariana) // J. Experimental Botany. 1992. - V. 43. - P. 73-79.

196. Klimaszewska K., Devantier Y., Lachance D. et al. Larix laricina (tamarack): somatic embryogenesis and genetic transformation // Can. J. Forest. Research. 1997. - V. 27. - P. 538-550.

197. Knabe W. Luftverunreinigungen und Forstwirtschaft // Forstarchiv. -1975.-Bd. 46.-S. 59-62.

198. Konschuh M.N., Thorpe T.A. Metabolism of 14C-aspartate during shoot bud formation in cultured cotyledon explants of radiata pine // Physiol. Plantarum. 1997.-V. 99.-P. 31-38.

199. Kopp J.B., Robey P.G. Sodium fluoride does not increase human bone cell proliferation or protein synthesis in vitro II Calcif. Tissue Int. 1990. - V. 47. -P. 221-229.

200. Krogstrup P., Eriksen E.N., Moller J.D., Roulund H. Somatic embryogenesis in Sitka spruce (Picea sitchensis (Bong.) Carr. // Plant Cell Reports. 1988. - V. 7. - P. 594-597.

201. Laine E., David H., David A. Callus formation from cotyledon protoplasts of Pinus oocarpa and Pinus patula II Physol. Plantarum. 1988. -V. 72. - P. 374-378.

202. Laine E., David H. Somatic embryogenesis in immature embryos and protoplasts of Pinus caribaea II Plant Science. 1990. - V. 69. - P. 215-224.

203. Laliberte S., Lalonde M. Sustained organogenesis in callus cultures of L. x eurolepis initiated from short shoot buds of a 12-year-old tree // American J. Botany. 1988. - V. 75. - P. 767-777.

204. Lang, H., Kohlenbach H.W. Protoplast culture from Fagus, Ulmus and Abies II NATO ASI series, series A: Life Sciences, Vol. 210, Woody Plant Biotechnology / Ed. Ahuja M.R. New York: Plenum Press, 1991. - P. 339-340.

205. Laseter J.L., Lawler G.C., Walkinshaw C.H., Weete J.D. Fatty acid of Pinus elliotti tissues // Phytochemistry. 1973a. - V. 12. - P. 817-821.

206. Laseter J.L., Weete J.D., Baur P.S., Walkinshaw C.H. Lipid composition slash pine tissue cultures grown with lunar and earth soils // Space Life Science. -19736.-V. 4.-P. 353-356.

207. Lau Y.L., Sheld H.W., Cowles J.R. Phenylalanine ammonia-lyase activity in callus cultures of Pinus elliotti II Physiol. Plantarum. 1980. - V. 49. -P. 299-303.

208. Laukkanen H., Soini H., Kontunen-Soppela S. et al. A mycobacterium isolated from tissue cultures of mature Pinus sylvestris interferes with growth of Scots pine seedlings // Tree Physiology. 2000. - Vol. 20. - P. 915-920.

209. Le V.Q., Belles-Isles J., Dusabenyagasani M., Tremblay M. An improved procedure for production of white spruce (Picea glauca) transgenic plants using Agrobacterium tumefaciens II J. Experimental Botany. 2001. - V. 52. - P. 20892095.

210. Legriffoul A., Mocquot B., Mench M., Vangronsveld J. Cadmium toxicity effects on growth, mineral and chlorophyll contents, and activities of stress related enzymes in young maize plants (Zea mays L.) // Plant and Soil. 1998. -V. 200.-P. 241-250.

211. Lelu M.-A., Boulay M., Arnaud Y. Obtention de calls embryiogènes à partir de cotylédons de Picea abies (L.) Karst. prélevés sur de jeunes plantes âgées de 3 à 7 jours après germination II C.R. Acad. Sci. Paris. 1987. - V. 305. - P. 105109.

212. Lelu M.-A., Klimaszewska K., Charest P.G. Somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos and from cotyledons and needles of somatic plantlets of Larix II Can. J. Forest. Research. 1993. - V. 24. - P. 100-106.

213. Leonard C., Graves H. Effect of Fluoride Air Pollution on Florida Citrus // Fluoride. 1972. - V. 5. - P.145-163.

214. Lesney M.S. Growth responses and lignin production in cell suspensions of Pinus elliotti "elicited" by chitin, chitosan or mycelium of Cronatium quercum f. sp.fusiforme II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1989. - V. 19. - P. 23-31.

215. Liang L. L., Fleming N. Aluminum fluoride inhibition of cabbage phospholipase D by a phosphate-mimicking mechanism // FEBS Letters. 1999. -V. 461.-P. 1-5.

216. Liu T., van Staden J. Selection and characterization of sodium chloridetolerant callus of Glycine max (L.) Mer cv. Acme // Plant Growth Regulation. -2000.-V. 31.-P. 195-207.

217. Liu T., van Staden J. Growth rate, water relations and ion accumulation of soybean callus lines differing in salinity tolerance under salinity stress and its subsequent relief// Plant Growth Regulation. 2001. - V. 34. - P. 277-285.

218. Lowenberg J.R., Skoog F. Pine tissue culture // Physiol. Plantarum. -1952.-V. 5.-P. 33-36.

219. Lu C.-Y., Thopre T.A. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in cultured immature embryos of Picea glauca II J. Plant, Physiology. 1987. -V. 128.-P. 297-302.

220. Lu C.Y., Torpe T.A. Soot-bud regeneration in subcultured callus Engelmann spruce II In vitro Cell Dev. Biology. 1988. - V. 24. - P. 239-242.

221. Lunardi J., Dupuis A., Garin J. et al. Inhibition of H+-transporting ATPase by formation of a tight nucleoside diphosphate fluoroaluminate complex at the catalytic site II Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988. - V. 85. - P. 8958-8962.

222. Machaliñski B., Zejmo M., Stecewicz I. et al. The influence of sodium fluoride on the clonogenecity of human hematopoietic progenitor cells: preliminary reports // Fluoride. 2000. - V. 33. - P. 168-173.

223. Magyar G.M., Stout R.G., Callis P.R., Williams S.A. Tonoplast ATPase proton pumps in wheat roots // Plant Science. 1989. - V. 65. - P. 153-160.

224. McNulty I.B., Newman D.W. The effect of a lime spray on the respiration rate and chlorophyll content of leaves exposed to atmospheric fluorides // Proc. Utah. Acad. Sci. 1956. - V. 33. - P. 73-79.

225. Miernyk J.A., Randall D.D. Some properties of pea mitochondrial phospho-pyruvate dehydrogenase-phosphatase // Plant Physiology. 1987. - V. 83. - P. 311-315.

226. Mikhailova T.A. The physiological condition of pine trees in the Pribaikalia (East Siberian) // Forest Pathology. 2000. - V. 30. - P. 345-359.

227. Miller G.W., Yu M.H., Psenak M. Presence of fluoroorganic compounds in higher plants // Fluoride. 1973. - V. 6. - P. 203-214.

228. Missiaen L., Wuytack F., Desmedt H. et al. AIF4" reversibly inhibits P-type cation-transport ATPases, possibly by interacting with the phosphate-binding site of the ATPase // Biochem. J. 1988. - V. 235. - P. 872-833.

229. Mochamed A.N., Applegate H.G., Smith J.D. Cytological reactions induced by sodium fluoride in Allium cepa root tip chromosomes // Can. J. Genet. Cytology. 1966. - V. 8. - P. 241-244.

230. Mochamed A.N. Cytogenetic effects of hydrogen-fluoride on plants // Fluoride. 1969. - V. 2. - P. 76-84.

231. Mochamed A.N. Chromosomal changes in maize induced by hydrogen fluoride gas // Can. J. Genet. Cytology. 1970. - V. 12. - P. 241-244.

232. Munnik T., Meijer H.J.G., ter Riet B. et al. Hyperosmotic stress stimulates phospholipase D activity elevates the levels of phosphatidic acid and diacylglycerol pyrophosphate // Plant J. 2000. - V. 22. - P. 147-154.

233. Murashige T., Scoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plantarum. 1962. - V. 15. -P. 473-497.

234. Nagmani R., Bonga J.M. Embryogenesis in subcultured callus of Larix decidua//Can. J. Forest. Research. 1985. - V. 15. - P. 1088-1091.

235. Niemi K., Haggman H. Pisolithus tinctorius promotes germination and forms mycorrhizal structures in Scots pine somatic embryos in vitro II Mycorrhiza. -2002.-V. 12.-P. 263-267.

236. Niemi K., Haggman H., Sarjala T. Effects of exogenous diamines on the interaction between ectomycorrhizal fungi and adventitious root formation in Scots pine in vitro 11 Tree Physiology. 2002a. - V. 22. - P. 373-381.

237. Niemi K., Vuorinen T., Ernstsen A., Haggman H. Ectomycorrhizal fungi and exogenous auxins influence root and mycorrhiza formation of Scots pine hypocotyl cuttings in vitro II Tree Physiology. 20026. - V. 22. - P. 1231-1239.

238. N0rgaard J.V., Krogstrup P. Cytokinin-induced somatic embryogenesis from immature embryos of Abies nordmanniana II Plant Cell Reports. 1991. -V. 9.-P. 509-513.

239. Palet K.R., Thorpe T.A. In vitro regeneration of plantlets from embryogenic and seedling explants of Engelmann spruces (Picea engelmanii) Parry. //Three Physiology. 1986. - V. 1. - P. 289-301.

240. Pandolfmi T., Gabbrielli R., Comparini C. Nickel toxicity and peroxidase activity in seedlings of Triticum aestivum L. // Plant, Cell and Environmental. -1992.-V. 15.-P. 719-725.

241. Patalakh 1.1., Grishko V.N. Estimation of plant cuticle water retention in ecotoxicological analysis // Доп. Нац. АН Украши. 2000. - № 9. - С. 185-190.

242. Patel K.R., Shekhawat N.S., Berlyn G.P., Thorpe Т.A. Isolation and culture of protoplasts from cotyledons of Pinus coulteri D. Don. // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1984. - V. 3. - P. 85-90.

243. Pattanavibool R., Aderkas P. von, Hanhijiirvi A. Diploidization in megagametophyte-derived cultures of the gymnosperm Larix decidua II Theor. Apl. Genet. 1995. - V. 90. - P. 671-674.

244. Patnaik J., Debata B.K. In vitro selection of NaCl tolerant callus lines of Cymbopogon martini (Roxb.) Wats // Plant Science. 1997. - V. 124. - P. 203-210.

245. Piola F., von Aderkas P. Controlled mycorrhyzal initiation as a means to improve root development in somatic embryo plantlets of hybrid larch (Larix x eurolepis) // Physiol. Plantarum. 1995. - V. 95. - P. 575-580.

246. Pirttila A.M., Laukkanen H., Hohtola A. Chitinase production in pine callus (Pinus sylvestris L.): a defense reaction against endophytes? // Planta. -2002,-V. 214.-P. 848-852.

247. Phillips G.C., Gladfelter H.J. Eldarica pine, Afghan pine {Pinus eldarica Medw.) 11 Biotechnology in agriculture and forestry, Vol. 16, Trees III / Ed. Bajaj Y.P.S. Berlin, Heidelberg: Springer, 1991. - P. 269-287.

248. Randall D.D., Williams M., Rapp B.J. Phosphorylation-dephosphorylation pyruvate dehydrogenase complex from pea leaf mitochondria // Arch. Biochem. Biophys. 1981. - V. 207. - P. 437-444.

249. Rauncillac M. Multiplication végétative in vitro et synthèse mycorrhizienne: Pin maritime Hébélome, Pisolithe // Les mycorhizes: biologie et utilization, Vol. 13. - INRA Publ., 1982. - P. 351-357.

250. Rauncillac M., Faye M., David A. In vitro rooting of cloned shoots in Pinus pinaster II Physiol. Plantarum. 1982. - V. 56. - P. 97-101.

251. Reinert J., White P.R. The cultivation in vitro of tumor tissues and normal tissues of Picea glauca II Physiol. Plantarum. 1956. - V. 9. - P. 177-189.

252. Rey M., Gonzalez M.V., Ordes R.J. et al. Factors affecting transient gene expression in cultured radiata pine cotyledons following particle bombardment // Physiol. Plantarum. 1996a. - V. 96. - P. 630-636.

253. Robertson D., Weissinger A.K., Ackley R. et al. Genetic transformation of Norway spruce (Picea abies (L.) Karst) using somatic embryo expiants by microprojectile bombardment. //Plant Mol. Biology. 1992. - V. 19. - P. 925-935.

254. Rout G.R., Samantaray S., Das P. In vitro selection and biochemical characterization of zinc and manganese adapted callus lines in Brassica spp. // Plant Science. 1999. - V. 137. - P. 89-100.

255. Salajova T., Salaj J., Kormutak A. Initiation of embryogenic tissue and plantlet regeneration from somatic embryos of Pinus nigra Arn. // Plant Science. -1999.-V.145.-P. 33-40.

256. Samantaray S., Rout G.R., Das P. In vitro selection and regeneration of zinc tolerant calli from Setaria italica L. // Plant Science. 1999. - V. 143. -P. 201-209.

257. Sandalio L.M., Dalurzo H.C., Gomez M. et al. Cadmium-induced changes in the growth and oxidative metabolism of pea plants // J. Experimental Botany. 2001. - V. 52. - P. 2115-2126.

258. Sauter M., Hager A. The mycorrhizal fungus Amanita muscaria induces chitinase activity in root and in suspension-cultured cells of its host Picea abies II Planta. 1989. - V. 179. - P. 61-66.

259. Schenk R.U., Hildebrandt A.C. Medium for induction and growth of monocotyledonous and dicotyledonous plant cell cultures // Can. J. Botany. 1972. - V. 50.-P. 199-205.

260. Schuller A., Reuther G., Geier T. Somatic embryogenesis from seed explants of Abies alba II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1989. - V. 17. -P. 53-58.

261. Schtiitzendubel A., Polle A. Plant responses to abiotic stresses: heavy metal-induced oxidative stress and protection by mycorrhization // J. Experimental Botany. 2002. - V. 53. - P. 1351-1365.

262. Schween G., Schwenkel H.-G. Effect of genotype on callus induction, shoot regeneration, and phenotypic stability of regenerated plants in the greenhouse of Primula ssp. II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2003. -V. 72.-P. 53-61.

263. Sederoff R., Stomp A.M., Chilton W.C., Moore L.W. Gene transfer into loblolly pine by Agrobacterium tumefaciens II Biotechnology. 1986. - V. 4. -P. 647-649.

264. Shin D.-J., Podila G.K., Karnosky D.F. Transgenic larch expressing genes for herbicide and insect resistance // Can. J. Forestry Research. 1984. -V. 24. - P. 2059-2067.r

265. Sinha S., Gupta M., Chandra P. Oxidative stress induced by iron in Hydrilla verticillata (l.f.) Royle: response of antioxidants // Ecotoxicol. Environ. Saf. -1997. V. 38. - P. 286-291.

266. Soikkeli S. The types of ulrastructural injuries in conifer needles of northern industrial environments // Silva Fenn. 1981. - V. 15. - P. 339-404.

267. Sterling G. Preliminary attempts in larch embryo culture // Bot. Gaz. -1949.-V. 111.-P. 90-94.

268. Stevens D.P., McLaughlin M.J., Alston A.M. Phytotoxicity of the aluminiume-fluoride complexes and their uptake from solution culture by Avena sativa and Lycopersicon esculentum II Plant and Soil. 1997. - V. 192. - P. 81-93.

269. Stevens D.P., McLaughlin M.J., Alston A.M. Phytotoxicity of the fluoride ion and its uptake from solution culture by Avena sativa and Lycopersicon esculentum II Plant and Soil. 1998a. - V. 200. - P. 119-129.

270. O.Stevens D.P., McLaughlin M.J., Alston A.M. Phytotoxicity of hydrogen fluoride and fluoroborate and their uptake from solution culture by Lycopersicon esculentum and Avena sativa II Plant and Soil. 19986. - V. 200. - P. 175-184.

271. Stomp A.-M., Loopstra C., Sederoff R. et al. Development of DNA transfer system for pines // Genetic manipulation of woody plants / Eds. Hanover J.W., Keatlhley D.E. New York: Plenum Press, 1988. - P. 231-241.

272. Struglics A., Fredlund K.M., Konstantinov Y.M. et al. Protein phosphorylation / dephosporylation in the inner membrane of potato tuber mitochondria // FEBS Letter. 2000. - V. 475. - P. 213-217.

273. Sumaryati S., Negrutiu J., Jacobs M. Characterization and regeneration of salt- and water-stress mutants from protoplast culture of Nicotiana plumbaginifolia (Viviami) // Theor. And Appl. Genet. 1992. - V. 83. - P. 613-619.

274. Tabor C.A., Barnett N.M. An experimental system for studying interrelationships between the embryo and megagametophyte of Pinus strobus during seed germination // Can. J. Botany. 1987. - V. 65. - P. 1212-1217.

275. Taesdale R.D., Rugini E. High yield preparation of viable protoplasts from suspension cultured loblolly pine {Pinus taeda) and subsequent regeneration to callus // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1983. - V. 2. - P. 253-261.

276. Tang W., Sederoff R., Whetten R. Regeneration of transgenic loblolly pine (Pinus taeda L.) from zygotic embryos transformed with Agrobacterium tumefaciens II Planta. 2001. - V. 213. - P. 981-989.

277. Tautorus T.E., Bekkaoui F., Pilon M. et al. Factors affecting transient gene expression in electroporated black spruce (Picea mariana) and jack pine {Pinus banksiana ) protoplasts // Theor. Apll. Genet. 1989. - V. 78. - P. 531-536.

278. Tautorus T.E., Attree S.M., Fowke L.C., Dunstan D.I. Somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos, and embryo regeneration from protoplasts in black spruce {Picea mariana Mill.) // Plant Science. 1990. - V. 67. - P. 115-124.

279. Thompson R.G., von Aderkas P. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from immature embryos of western larch // Plant Cell Reports. 1992. -V. 11.-P. 379-385.

280. Tramblay F.M. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from embryos isolated from stored seed of Picea glauca II Can. J. Botany. 1990. -V. 68. - P. 236-242.

281. Trouller A., Girardet J.L., Dupont Y. Fluoroaluminate complexes are Afunctional analogs of phosphate in sarcoplasmic-reticulum Ca -ATPase // J. Biological Chemistry. 1992. - V. 267. - P. 22821-22829.

282. Tyagi A.K., Rashid A., Maheshwari S.C. Sodium chloride resistant cell line from haploid Datura innoxia Mill. A resistance trait carried from cell to plantlet and vice versa in vitro II Protoplasma. 1981. - V. 105. - P. 327-332.

283. Van Assche F., Clijsters H. Effects of metals on enzyme activity in plants // Plant, Cell and Environmental. 1990. - V. 13. - P. 195-206.

284. Vera-Estrella R., Barkla B.J., Bohnert H.J., Pantoja O. Salt stress in Mesembryanthemum crystallinum L. cell suspensions activates adaptive mechanisms similar to / those observed in the whole plant // Planta. 1999. -V. 207. - P. 426-435.

285. Vike E., Habjorg A. Variation in fluoride content and leaf injury on plants associated with three fluoride smelters in Norway // The Science of the Total Environment. 1995. - V. 163. - P. 25-34.

286. Walkinshaw C.H., Jewell F.F., Walker N.W. Callus culture of Fusiform rust-infected slash pine // Plant Dis. Reports. 1965. - V. 49. - P. 616-618.

287. Walter C., Grace L.J., Donaldson S.S. et al. An efficient Biolistic® transformation protocol for Pcea abies embryogenic tissue and regeneration of transgenic plants // Can. J. Forest. Research. 1999. - V. 29. - P. 1539-1546.

288. Ward P.F.V. Metabolism of fluoroacetate by Lettuce // Fluoride. 1973. -V. 6.-P. 194-202.

289. Wentzel K.F. Empfindlichkeit und Resistenzunterschiede der Pflansen gegenüber Luftverunreinigung // Forstarchiv. 1968. - Bd. 39. - S. 189-195.

290. Werner A., Zadworny M., Idzikowska K. Interaction between Laccaria laccata and Trichoderma virens in co-culture and in the rhizosphere of Pinus sylvestris grown in vitro II Mycorrhiza. 2002. - V. 12. - P. 139-145.

291. Werner A., Zadworny M. In vitro evidence of mycoparasitism of the ectomycorrhizal fungus Laccaria laccata against Mucor hiemalis in the rhizosphere of Pinus sylvestris II Mycorrhiza. 2003. - V. 13. - P. 41-47.

292. Wernicke W., Milkovits L. Development gradients in wheat leaves — Response of leaf segments in different genotypes cultured in vitro II J. Plant

293. Physiology. 1984. - V. 115. - P. 49-58.

294. Wilde L.G., Yu M. Effect of fluoride on superoxide dismutase (SOD) activity in germinating mung bean seedlings // Fluoride. 1998. - V. 31. - P. 81-88.

295. Wilson S.M., Thorpe T.A., Moloney M.M. PEG-mediated expression of GUS and CAT genes in protoplasts from embryogenic suspension cultures of Picea glauca II Plant Cell Reports. 1989. - V. 7. - P. 704-707.

296. Winicov I. Characterization of rice (Oryza sativa L.) plants regeneratedfrom salt-tolerant cell lines // Plant Science. 1996. - V. 113. - P. 105-111.

297. Yang Q., Laliberte S. Cell division and microcolony formation in protoplasts from mature material of hybrid larch (Larix x eurolepis Henry) // Plant Science. 1996. - V. 117. - P. 159-165.

298. Xu Ch.Ch., Jeon Ah.Y., Hwang H.J., Lee Ch.-H. Suppression of zeaxanthin epoxidation by chloroplast phosphatase inhibitors in rice leaves // Plant Science. 1999. - V. 146. - P. 27-34.

299. Zhu Ch-H., Huang Y., Oberley L.W., Domann F.E. A family of AP-2 proteins down-regulate manganese superoxide dismutase expression // J. Biological Chemistry. 2001. - V. 276. - P. 14407-14413.