Исследование захвата и высвобождения катехоламинов органами животных в условиях охлаждения, замораживания и отогрева тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.22, кандидат биологических наук Губина, Нина Федоровна

• Губина, Нина Федоровна
• кандидат биологических наук
• 1984

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Губина, Нина Федоровна

ВВЕДЕНИЕ

РАЗДЕЛ ПЕРВЫЙ. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

ГЛАВА I. СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ О РОЛИ ПРОЦЕССОВ

ВЫСВОБОЖДЕНИЯ И ЗАХВАТА КАТЕХОЛАМИНОВ В

АДРЕНЕРГИЧЕСКОЙ РЕГУЛЯЦИИ

1.1. Высвобождение катехоламинов адренореак -тивными структурами. . . II

1.2. Захват адренергических гормонов-медиаторов адренореактивными структурами

1.3. Температурная зависимость процессов захвата и высвобождения адренергических rojb монов-медиаторов

РАЗДЕЛ ВТОРОЙ. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ

ОБСУЖДЕНИЕ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Препаративные методы

2.2. Аналитические методы исследования

2.3. Техника и режимы замораживания.

2.4. Характеристика использованных реактивов и препаратов.

ГЛАВА 3. ВЛИЯНИЕ ОХЛАЖДЕНИЯ,ЗАМОРАЖИВАНИЯ И ОТОГРЕВА НА

ЗАХВАТ ГОРМОНОВ-МЕДИАТОРОВ АДРЕНОРЕАКТИВНЫМИ

СТРУКТУРАМИ

3.1. Характеристика процесса поглощения гормонов-медиаторов семявыносящим протоком крыс после охлаждения,замораживания и отогрева .'.

3.2. Захват [н3]-норадреналина и [н3]-адреналина предсердиями крыс после предварительного охлаждения,замораживания и отогрева

3.3. Исследование захвата катехоламинов срезами предсердий быка после температурных воздействий

ЗА. Исследование захвата адренергических гормонов-медиаторов щитовидной железой быка после температурных воздействий

ШВА 4. ВЫСВОБОЖДЕНИЕ НОР АДРЕНАЛИНА АДРЕНОРЕАКГИВНЫМИ

СТРУКТУРАМИ ПОСЛЕ ИХ ПРЕДВАРИТЕЛЬНОГО ОХЛАВДЕНИЯ,

ЗАМОРА1ИВАНИЯ И ОТОГРЕВА.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование захвата и высвобождения катехоламинов органами животных в условиях охлаждения, замораживания и отогрева»

В настоящее время накопился достаточно обширный фактичес кий материал, посвященный раскрытию механизмов криоповревдений и криозащиты на различных уровнях биологической организации. В частности, на клеточном уровне было установлено значение повреждения мембранных структур клеток ГЗ.б,?] и каталитических систем 2 7 в восстановлении их структурно-функциональной полно ценности после замораживания-отогрева. Это позволило использо вать полученные данные при разработке методов криоконсервации и, трансплантации тканей и органов [44,5,241, в том числе эндокринных тканей [46,47j, а также решить ряд вопросов, связанных с защитой биоматериалов от повреждающего действия холода. Однако, в случае пересадок криоконсервированннх тканей весьма важным является сохранение функциональной полноценности механизмов их регуляции и ауторегуляции 5 5 обладающих высо кой чувствительностью к температурным воздействиям. Способность биологических объектов к адаптивным перестрой ь кам метаболизма в условиях охлаждения организма регулируется гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системой при непосредственном участии адренергических механизмов регуляции. Взаимодействие адренергических гормонов-медиаторов с клеткой представляет собой многоступенчатый процесс; высвобождение (секреция) гормона-ме диатора, образование гормон-рецепторного комплекса и передача гормонального сигнала через мембрану,обратный захват гормона медиатора,ферментативное превращение его.Нарушение любого из этих звеньев приводит к рассогласованию функционирования симпатоадреналовой системы,среди которых наиболее существенным является нарушение основных этапов адренергического медиаторного процесса высвобождения, рецепции и захвата катехоламинов 4 Состояние адренергических механизмов регуляции в условиях охлаждения, замораживания и отогрева до настоящего времени практически не изучено. В единичных работах показана высокая чувствительность процессов захвата и высвобождения катехоламинов, а также адренорецепторов к понижению температуры в зоне положительных значений [ЗО, Н О 147,79,139]. Недостаточная изученность влияния холода на адренергические регуляторные механизмы препятствует более полной оценке механизмов криоповреждений и функциональной жизнеспособности тканей и органов,а также поиску оптимальных способов их криоконсервации. Захват (активный процесс связывания и транспорта через биолигическую мембрану) и высвобождение катехоламинов тесно связаны с функционированием мембран Tl4,92,1821 липидный бислой которых претерпевает фазово-структурные переходы уже при физиологических температурах Гб,7, 200|. Если при этом учесть, что фазово-структурные перестройки липидов вызывают вертикальную и горизонтальную транслокацию белков, в том числе и гормон-чувствительных белков, участвующих в связывании и транспорте гормоновмедиаторов Г20, 2б,195,1бз], то становится также достаточно очевидным реальность изменения этих структур в условиях охлаждения, замораживания и отогрева. В связи с изложенным, представляется весьма актуальным изучение адаптивных регуляторных факторов на клеточном и тканевом уровнях как после действия пониженных положительных температур, так и после низкотемпературного замораживания биологических объектов Целью настоящей работы явилось изучение процессов захвата и высвобождения катехоламинов различными тканями животных, отличающимися типами адренергической иннервации и адренорецепторов

Заключение диссертации по теме «Криобиология», Губина, Нина Федоровна

- 105 -ВЫВОДЫ

1. Экспозиция изолированных тканей животных, отличающихся типами адренергической иннервации и адренорецепторов при 20°С вызывает угнетение механизмов активного транспорта катехоламинов через нейрональную мембрану.

2. Наиболее благоприятной температурой для кратковременного хранения адренергических структур является 0°С, после которой не изменяется способность тканей крыс и быка к захвату катехоламинов.

3. Эффективность реакции поглощения [н3]-норадреналина остается стабильной после экспозиции срезов предсердий и щитовидной железы быка при околонулевых температурах за счет одновременного изменения основных кинетических параметров реакции. Быстрое замораживание тканей до -19б°С вызывает снижение эффективности реакции поглощения [н3]-норадреналина тканями животных.

4. Понижение температуры предварительной экспозиции тканей животных в направлении 37°С—?20°С—*4оС-^0°С сопровождается уменьшением количества высвобождающегося норадреналина, индуцированного К4*. Быстрое замораживание тканей крыс и быка до -196°С приводит к значительному угнетению процесса секреции норадреналина.

5. Медленное двухэтапное замораживание тканей животных до -19б°С оказывает менее выраженное повреждающее действие на активный транспорт [н3]-норадреналина в адренергические терминали, чем быстрое одноэтапное.

6. Криопротекторы ПЭО-400, глицерин и ДМСО в концентрациях 5-10$ не изменяют характера поглощения [н3]-норадреналина адре-нергическими терминалями тканей крыс и быка. Быстрое замораживание семявынооящего протока крыс до -19б°С под защитой 5$-ного ПЭО-400 позволяет сохранить способность к захвату норадреналина

- 105 до 80$, медленное двухэтапное замораживание до -196°С с 10$ ДМСО обеспечивает сохранность нейронального захвата [н3]-норадреналина срезами щитовидной железы быка до 98$.

7. Полученные экспериментальные данные свидетельствуют о влиянии холода на качественные и количественные характеристики адренергических реакций и соответствующие адренергические механизмы. Повышение их сохранности в процессе криоконсервации тканей и органов может быть достигнуто выбором режимов замораживания и соответствующих криопротекторов.

- 107

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Изучение влияния предварительного охлаждения, замораживания и отогрева на захват и высвобождение адренергических гормо-новчдедиаторов срезами предсердий и щитовидной железы быка, предсердиями и семявыносящим протоком крыс позволило выявить ряд закономерностей. Кратковременная экспозиция тканей при неадекватных температурах вызывает нарушения в системах, обеспечивающих первые этапы взаимодействия между клетками и адренерги -ческими гормонами-медиаторами. Захват катехоламинов угнетается после экспозиции срезов щитовидной железы и предсердий быка,пред^ сердий и семявыносящего протока крыс при +20°С в течение I часа. Экспозиция исследованных тканей при +4°С и 0°С в течение такого же времени оказывает менее выраженное ингибирующее действие или не оказывает его совсем. Высвобождение [н3]-норадреналина тканями крыс и быка., вызванное добавлением К4", более чувствительно к околонулевым и низким температурам. Замораживание-отогрев тканей животных приводит к существенному угнетению механизмов, лежащих в основе активного транспорта катехоламинов, однако, некоторая частичная, большая или меньшая в зависимости от объектов и условий, способность связывать и транспортировать адреналин и нор -адреналин сохраняется и в тканях, подвергнутых экспозиции при -19б°С.

Опыты с мелипрамином, ингибирующим обратный или нейрональ -ный захват норадреналина, показали, что процесс активного связывания и транспорта [н3] -норадреналина в адренергические нейроны также сохраняется после температурных воздействий. Медленное двухэтапное замораживание до -19б°С угнетает нейрональный захват [н3] -норадреналина всеми исследованными структурами на 50$, быстрое одноэтапное замораживание до тех же температур оказывает

- 100 более выраженное повреждающее действие - на 70$.

Сложным для объяснения является результат действия резерпина на захват [н3]-норадреналина срезами предсердий быка. Резер -пин является специфическим блокатором везикулярного захвата норадреналина,: собственно нейрональный захват медиатора в этих ус -ловиях нарушаться не должен.- В данном случае резерпин угнетает нейрональный захват [h3J-норадреналина более значительно, чем специфический ингибитор нейронального захвата норадреналина мелипрамин.' Можно предположить, что меченый норадреналин проходит в окончания симпатических нейронов, но не проникает р блокирован -ные резерпином везикулы и подвергается действию нейрональной моноаминоксидазы, причем несущие метку продукты окисления легко отмываются из срезов.' Поскольку опыты с мелипрамином показали, что при действии гипотермических и криогенных факторов страдают механизмы нейронального захвата норадреналина в целом, ингибиро-вание механизмов везикулярного захвата может быть в этих условиях (охлаждение, замораживание, отогрев) вторичным.

Процессы захвата и высвобождения катехоламинов чувствительны к снижению температуры предварительной экспозиции тканей крыс и быка от физиологических значений до +20°С, при которой осуществляются структурно-фазовые переходы липидов биологических мембран, что сопровождается изменением активности ферментов, ассо -циированных с мембранами и ответственными, в частности, за мембранный транспорт и секрецию медиаторов. Очевидно, температура +20°С является критической или близкой к критической для исследованных регуляторных процессов.'

Характерным является снижение максимальной скорости реакции поглощения [н3]-норадреналина после экспозиции срезов предсердий и щитовидной железы быка при 20° и 4°С, после экспозиции при 0°С

- XO'I параметры реакции поглощения норадреналина уменьшаются только в препаратах щитовидной железы. Константа Михаелиса менее чувствительна к снижению температуры экспозиции тканей до околонулевых температур. Быстрое и медленное двухэтапное замораживание до *19б°С обоих тканей приводит к значительному снижению кинетических параметров реакции захвата [н3]-норадреналина. Одновременное изменение параметров реакции обеспечивает стабильность реакции поглощения [н3]*норадреналина тканями крыс и быка после температурных воздействий.

Таким образом, механизм, обеспечивающий нейрональный захват норадреналина, сохраняется как после предварительного охлаждения тканей, так и после их замораживания.- Зависимость интенсивности накопления норадреналина от предварительного охлаждения тканей носит криволинейный характер с четко выраженными фазами угнетения и восстановления нейронального захвата. Так, после экспозиции срезов предсердий и щитовидной железы быка, предсердий и семявы-носящего протока крыс при 20°С в течение I часа ингибируется захват адреналина и норадреналина, после 4°С угнетается только способность предсердий крыс и быка к поглощению катехоламинов. Экспозиция исследованных тканей при 0°С сопровождается восстановлением интенсивности захвата £н3]-норадреналина после возврата их в физиологические условия. Следует отметить также существенное отличие тканей и органов в способности накапливать экзогенные адреналин и норадреналин: предсердия и семявыносящий проток крыс характеризуются более интенсивным накоплением катехоламинов,чем предсердия и щитовидная железа быка (примерно в 10 раз)/ В предсердии и семявыносящем протоке крыс адренергическими терминалями захватывается около 75$ всего поглощенного [н3]-норадреналина, в предсердии быка около 50$, в щитовидной железе - до 40$. 102

Причинами снижения интенсивности захвата медиатора исследованными тканями животных может быть уменьшение количества норадрена -линазапасающих гранул и изменение состояния нейрональной и везикулярной мембран после температурных воздействий.

На основании исследований конкурентных взаимоотношений между немеченым и меченым медиатором в срезах предсердий и щитовидной железы быка можно заключить, что процесс захвата адренерги -ческих гормонов-медиаторов этими тканями претерпевает снижение функциональной активности и чувствительности к регуляторам как после экспозиции их при пониженных положительных температурах, так и после замораживания-отогрева, причем щитовидная железа характеризуется определенной криоусгойчивостью. Кроме того, на предсердии быка установлена температурная зависимость способности норадреналйна вытеснять адреналин из мест накопления.Быстрое замораживание до -19б°С угнетает способность предсердий быка сохранять конкурентные взаимоотношения мезду адреналином и нор -адреналином.

Использование криопротектороя позволяет увеличить сохран -ность исследуемого регуляторного процесса. Применение в качестве криопротекгора ПЭО-400 (5-10$) позволяет сохранить процесс захвата норадреналйна семявыносящим протоком практически полностью при быстром замораживании до -196°С. Медленное двухэтапное замораживание (1-2°/мин до ^70°С с последующим погружением в жидкий азот) срезов щитовидной железы позволяет обеспечить почти полную сохранность процесса нейронального захвата норадреналйна при использовании в качестве криопротектора 10$ раствора димексида.

Показано,что сами криопротекторы также оказывают влияние на транспорт гормонов-медиаторов, причем преимущественно в случае применения их в больших концентрациях. ПЭ0-400 в концентрации

- 103

5 и 10$ практически не изменяет захват норадреналина семявынося-щим протоком крыс, 15$-ная концентрация значительно снижает захват (до 50$). Глицерин в тех же концентрациях угнетает поглоще -ние норадреналина семявыносящим протоком соответственно на 14,18, 16$. Применение ПЭ0-400 в качестве криопротектора (в небольших концентрациях) при криоконсервировании семявыносящего протока более оправдано, поскольку отпадает необходимость в последующей отмывке от криопротектора, ДМСО в концентрациях 3; 5; 7,5; 10; 15$ практически не изменяет способности щитовидной железы быка к поглощению [н3] -норадреналина.'

Подводя итог обсуждению данных о чувствительности процесса обратного нейронального захвата норадреналина адренореактивными структурами после действия пониженных температур, следует отме -тить высокую криоустойчивость щитовидной железы быка по сравне -нию с другими исследованными объектами. Нейрональный захват норадреналина снижается после медленного двухэтапного замораживания щитовидной железы быка на 37$, в то время как в предсердиях крыс и быка - на 49 и 55$. Быстрое замораживание сопровождается более выраженным снижением интенсивности нейронального захвата (6075$).

Высвобождение норадреналина, индуцированное калием и зави -симое от кальция, также чувствительно к температурным воздейст -виям. Установлено, что в предсердиях быка кальцийнезависимое высвобождение, индуцированное тирамином, менее чувствительно к предварительному выдерживанию тканей при пониженных положительных температурах, чем кальцийзависимое калийстимулированное.Угнетение кальцийзависимого высвобождения после температурных воздействий характерно для всех исследованных тканей, но чувствитель -ность как кальцийзависимого, так и кальцийнезависимого высвобож

104 дения различна. Эти различия свидетельствуют о специфичности механизмов адренергической регуляции в органах и тканях разных животных. Поэтому поиск оптимальной программы криоконсервирова -ния должен вестись с учетом обнаруженных особенностей."

Таким образом, проведенные исследования позволяют дать некоторую общую характеристику криолабильности и криостабильности рассматриваемых процессов захвата и высвобождения адренергичес -ких гормонов-медиаторов. Эти процессы лежат в основе механизмов нейрогуморальной регуляции, а поэтому при действии различных температур происходят неадекватные изменения параметров, причем нередко эти изменения являются необратимыми. В особенности это касается программ низкотемпературного замораживания. Масштабы необратимых изменений определяются чувствительностью, а соответ -ственно и общим объемом нейронального захвата и высвобождения адренергических гормонов-медиаторов к процедурам, обусловленным действием различных температур и химических реагентов на изолированные органы и ткани в процессе криоконсервирования.*

Таким образом, по уровню адренергических процессов можно осуществлять контроль состояния регуляторных механизмов в тканях, подвергнутых криоконсервации. Функциональное состояние адренергических звеньев (высвобождения и захвата гормонов-медиаторов) может иметь существенное значение для прогноза способности восстановления функций трансплантатов.'

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Губина, Нина Федоровна, 1984 год

1.' Авакян О.М. Семявыносящий проток крысы как тест-объект для отбора симпатолитических соединений. -Биол.журнал Армении, 1968, 6, с.8-17.

2. Авакян О.М. Зависимость мевду интенсивностью флуоресценции сосудистых нервных волокон и концентрацией норадреналина в перфузируемой среде. -Биол.журнал Армении, 1969а, 22, 2, с.; 65-71.

3. Авакян О.М. Фармакологическая регуляция высвобождения и захвата норадреналина. -Ереван:Изд-во АН АрмССР,1973. -306 с.

4. Авакян О.М. Симпато-адреналовая система. Методы исследования высвобождения, рецепции и захвата катехоламинов. -Л.: Наука, 1977. -184 с.

5. Актуальные проблемы криобиологии / Под общ.ред.Н.С.Пушкаря и А.М.Белоуса. Киев: Наукова думка, 1981. -608 с.

6. Белоус А.М.,Бондаренко В.А. Механизмы развития холодового повреждения мембран клеток.' В сб.:Криобиология и криомеди-цина.Киев: Наукова думка, 1981, вып.9, с.3-17.

7. Белоус A.M.,Бондаренко В.А. Структурные изменения биологи -ческих мембран при охлаждении. -Киев: Наукова думка, 1982. -254 е.*

8. Болдырев А.А.,Твердислов В.А. Молекулярная организация и механизм функционирования Л'а-насоса.- М.:ВИНИТИ,1978.-148 с.

9. Болдырев А.А. Об интепретации графиков Аррениуса ^а,К-АТ$-азы. -Биохимия, 1980, 45, 10, е.1913-1917.

10. Бондаренко В.А.,Бондаренко Т.П.,Белоус A.M. Взаимодействие полиэтиленоксидов с искусственными фосфолипидными и мито -хондриальными мембранами. -В сб.:Криобиология и криомедици-на. Киев: Наукова думка, Х978, вып.4, с.7-9.- 108

11. Волина Е.В.,Манухин Б.Н. Некоторые закономерности синтезаи захвата катехоламинов^!3 изолированным семявыносящим про-' током крысы. -§изиол.журнал СССР Л975,61,7, с.1016-1022.

12. Волина Е.В. Дурбанова Г.Д. Активность Жа+-К*"-АТФазы при блокаде адренорецепторов. В кн.:1Х Всес.конф.по биохимии нервной системы: Тез.научн.сообщ.Ереван, 2-5 ноября 1983, Ереван.:Изд-во АН АрмССР, 1983, с.187-188.

13. Глебов Р.Н.Дрыжановский Г.Н. §ункциональная биохимия синапсов. М.!:Медицина, 1978. -325 с.

14. Глебов Р.Н.,Крыжановский Г.Н. Свойства и функции АТ#азы мембран секреторных гранул. -Успехи совр.биол.,1983, 95, 2, с.225-241.

15. Гусева Н.Р. Изменение АТФазной активности мембран эритроцитов при действии низких температур. -В кн.Современные вопросы криобиологии. Киев:Наукова. думка Д976, с.61-65.

16. Жегунов Г.§. Влияние замораживания-отогрева и криопротекго-ров на структурно-функциональное состояние Са^-транспортирую-щей системы мембран саркоплазматического ретикулума: Авто -реф.дис. . канд.биол.наук.- Харьков,1979. -24 с.

17. Жоров Б.С. Топография активного центра переносчика норадреналина через нейрональную мембрану по данным теоретического конформационного анализа ингибиторов нейронального захвата катехоламинов. -Биоорган.химия,1983, 9,2, с.200-215.

18. Ивков В.Г.,Берестрвский Г.Н. Липидный бислой биологических мембран. -М.:Наука, 1982. -224 с.

19. Комиссаров И.В. Лекарственная регуляция адренергических процессов. -К.:Здоров"я, 1976. -112 с.

20. Конев С.В.,Аксенцев С.Л. Структурная лабильность мембран.-Биохимия, 1977, 42, 2, с.187-197.

21. Кононенко В.Я. .Савицкий С.В. Вплив rlnep- та г1потиреозуна bmIct серотон1ну й норадренал1ну та акгивн1сть моноам1но-ксидази в нервових зак1нченнях головного мозку щурХв. -Укр. биох.журнал, 1974, 46, 2, с.152-156.

22. Корниш-Боуден Э. Основы ферментативной кинетики / Пер. с англ. -М.: Мир, 1979. -280 с.

23. Крепе Е.М. Липиды клеточных мембран. Эволюция липидов моз-га.Адапгационная функция липидов.-Л.:НаукаД981. -339 с.

24. Криоконсервирование клеточных суспензий / Цуцаева А.А.Дгра-ненко В. А. Федорова Л.И.и др.; Под общ.ред.Цуцаевой А.А. -Киев: Наукова думка, 1983. -240 с.

25. Ланге С.З. Пресинаптические адренорецепторы и регуляция высвобождения.- В кн.*. Освобождение катехоламинов из адре -нергических нейронов. М.:Медицина, 1982, с.59-82.

26. Луговой В.И. Криоповреждения ферментов и ферментных систем.- В кн.:Актуальные проблемы криобиологии. Киев: Наукова думка, 1981, с.15-40.

27. Майсов Н.И. ,Толмачева Н.С. Влияние психотропных веществ и14наркотических анальгетиков на захват С -норадреналина си -напго сомами коры мозга крыс.' -§армакол.и токсикол. ,1980, 3, с.302-306.

28. Майстрах Е.В. Патологическая физиология охлаждения человека. -Л.';Медицина, 1975. -216 с.

29. Манухин Б.Н.г физиология адренорецепторов.-М.:Наука,1968.- 235 с.- но

30. Манухин Б.Н.,Голанд Л .Г. Закономерности действия адреналина и норадреналйна на изолированные органы теплокровных животных.- Физиол .журнал СССР, 1966, 52, с.894-896.

31. Манухин Б.Н.,Волина Е.В. Влияние адреноблокаторов на скорость синтеза и захвата катехоламинов-Н3 в семявыносящем протоке крысы. -Физиол.журнал СССР, 1975, 61, с.569-576.

32. Манухин Б.Н.,Волина Е.В. .Мелентьева А.А. Захват норадреналйна. -Н3 изолированными органами крыс при блокаде и активации адренорецепторов. -Физиол.журнал СССР,1977,63,1,с.79-85.

33. Манухин Б.Н.,Волина Е.В.,Мелентьева. А.А. Механизм регулятор-ного влияния эффекторной клетки на захват норадреналина-Н3 адренергическими нейронами.-Физиол.журнал СССР,1977, 63, 6, с.830-837.

34. Манухин Б.Н. ,Бердышева Л.В.,Волина Е.В. Роль адренорецепторов в адренергическом процессе. -В кн.:Катехоламинергические нейроны.М.: Наука, 1979, с.139-150.

35. Манухин Б.Н. Механизмы транссинапгической активации нейро -нального захвата норадреналйна. -В кн.:Девятая Всес.конф.по биохимии нервной системы: Тез.научн.сообщ.Ереван: Изд-во1. АН АрмССР, 1983, с.21-22.

36. Медведев Л.Н.,Кутумова Н.В.Субботина Л.А.и др. Снижение уровня норадреналйна при адаптации животных к холоду в прерывистом режиме. -Регулятор.эффекты и обмен моноаминов ициклонуклеотидов. Красноярск,1981,3,с.50-55.

37. Ноздрачев А.Д. Физиология вегетативной нервной системы.-Л.: Медицина, 1983. -296 с.

38. Окунь И.М.,Милютин А.А.,Ракович А.А.и др. Структурные перестройки в синапгосомальных мембранах мозга. -Биофизика,1976, 21, 2, с.289-293.- Ill

39. Опритов В.А.,Худяков В.А.,Пятыгин С.О. Температуро-зависи-мые фазовые переходы в липидах плазматических мембран клеток стеблей тыквы.-В кн.:3 Всес.межунив.конф.по физ-хим.биол., Тбилиси,25-29 окт.Х982:Труды,ч.2.Тбилиси,1982,с.378-379.

40. Осинская В.О. Исследование обмена адреналина и норадреналина в тканях животного организма.-Биохимия,1957,23,3,с.537-540.

41. Пастухов Ю.П. Изменения адренергической регуляции термогене-за при долговременной адаптации к холоду,- §изиол.журнал СССР, 1980, 66, 5,с.739-745.

42. Пушкарь Н.С.,Белоус A.M. Введение в криобиологию.- Киев: Наукова думка, 1975. -342 с.

43. Пушкарь Н.С.,Белоус A.M. Дуцаева А.А. и др. Низкотемпературное консервирование костного мозга.-Киев: Наукова думка, 1976. -285 с.

44. Пушкарь Н.С.,Шраго М.И.,Белоус A.M.,Калугин Ю.В. Криопротек-торы.-Киев: Наукова думка, 1978. -204 с.

45. Пушкарь Н.С.Дтевский А.М.Дуйко В.А.и др. Способ консерви -рования щитовидной железы человека.А.с.№ 935050. -Б.И.,1982, 22, с.26.

46. Пушкарь Н.С. Дтевский А.М.,Чуйко В. А. Дари ков екая Н.Г. Консервирование и трансплантация щитовидной железы человека.-В сб.; Криобиология и криомедицина, Киев'.Наукова думка,1983, вып.II,с.64-74.

47. Розен В.Б. Основы эндокринологии:Учеб.пособие для студ. унтов.- М.:Высш.школа,1980. -344 с.

48. Рокитский П.§. Биологическая статистика.-МинскД977.-326 с.

49. Смит 0. Биологическое действие замораживания и переохлаждения. -М.:Изд-во Иностр.Лит., 1963. -503 с.

50. Соболев В.И. Катехоламины и химическая терморегуляция приакклимации к холоду.- Физиол.журнал СССР, 1979, 25, 5, с.593-603.

51. Соболев В.И., Дингамтар Наджилем. Состояние и ^yGj-ад-ренергических реакций при акклимации к холоду.- Физиол. журнал СССР, 1982, 68, I, с.34-38.

52. Хочачка П.,Сомеро Дж. Стратегия биохимической адаптации.-М.: Мир, 1977. 398 с.

53. Утевский A.M. Ауторегуляция биологической системы на температурной шкале. В сб.: Криобиология и криомедицина. Киев: Наукова думка, 1977, вып.З, с.9-11.

54. Утевский А.М.,Чуйко В.А.,Губина Н.Ф. Влияние охлаждения на способность тканей к захвату норадреналина. Укр.биохим. журнал, 1980, 52, I, с. 16-19.

55. Утевский А.М.,Губина Н.Ф.,Чуйко В.А. Охлаждение биологических структур и адренергические механизмы.- В кн.Актуальные проблемы криобиологии. Киев: Наукова думка,1981, с.125-156.

56. Шаляпина В.Г.,Милушева Ц.Б.,Манухин Б.Н. Влияние гидрокортизона на поглощение и высвобождение норадреналина срезами коры головного мозга и изолированным гипоталамусом белых крыс. Физиол. журнал СССР, 1978, 64, 4, с.454-457.

57. Ahlquist K.P. Adrenoreсерtors. Trends Pharra. Sci., 1979, 1, 1, 16-17.

58. Amer M.S., Byrne J.E. Interchange of adenyl and guanyl cyclases as an explanation for transformation of to <*t> -adrenergic responses in the rat atrium. Nature, 1975, 256, 421-424.

59. Apps D.K. The uptake of amines by secretory granules. Trends Biochem. Sci., 1982, £, 4, 153-156.

60. Balasubramanian V., Dhalla IT.S.Biochemical basis of heart function. VI.Influence of cations on norepinephrine transport, storage and synthesis in the isolated perfused rat heart. Can. J. Physiol, and Pharmacol., 1972, £0, 5, 423-431.

61. Bareis D.L., Slotkin T.A. Synaptic vesicles isolated from rat heart: L- norepinephrine uptake properties. J. Neuro-chem., 1979, 32, 2, 345-351.

62. Barrett E.F., Barrett J.N., Botz D. et al. Temperature-sensitive aspects of evoked and spontaneous release at the frog neuromuscular junction. J. Physiol. (Lond.), 1978, 274, 253-273.

63. Bertoli E., Pinean J.B., Griffits D.E. The role of lipid in regulation of mitochondrial adenosine triphosphatase. PEBS Lett., 1976, 61, 2, 163-165.

64. Blakeley A.G.H., Nicol C.J.M. Accumulation of amines by rabbit erythrocytes in vitro. J. Physiol. (Gr.Brit.), 1978, 277. 77-90.

65. Blaustein M.P., Johnson E.M., Needleman P. Calcium-dependent norepinephrine release from presynaptic nerve endings in vitro. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 1972, 69i, 8, 2237-2240.

66. Bogdanski D.P., Tissari A., Brodie B.B. Role of sodium, potassium, oubain and reserpine in uptake, storage and metabolism of biogenic amines in synaptosomes. Life Sci., 1968, 7, 1, 419-428.

67. Bogdanski D.P., Brodie B.B. The effects of inorganic ions onоthe storage and uptake of H"-norepinephrine by rat heart slices. J. Pharmac. Езф. Ther., 1969, 165. 2, 181-189.

68. Bonaccorsi A., Hermsmeyer K., Smith C.B. et al. Norepinephrine release in isolated arteries induced by K-free solution. -Amer. J. Physiol., 1977, 232, 2, H140-H145.

69. Bonisch H,, Uhlig W., Trendelenburg U. Temperature sensitivity of the extraneuronal uptake and metabolism of isoprenaline in the perfused rat heart, llaunyn-Schmiedeberg's Arch. Pharmacol.,1979, 306, 3, 229-239.

70. Breckenridge W.C., Gombos G., Morgan I.G. The lipid composition of adult rat brain synaptosomal plasma membranes. Bio-chim. et Biophys. Acta, 1972, 266, 3, 695-707.

71. Brodie B.B., Davies L.I., Hynie S. et al. Interrelationships of catecholamines with endocrine systems. Pharmacol. Revs., 1966, J8, 1, 1, 273-277.

72. Bukowiecki L., Pollea N., Vallieres J. et al. ^-Adrenergic receptors in brown-adipose tissue. Characterization and alterations during acclimation of rats to cold. Eur. J. Biochem., 1978, 92, 1, 189-196.

73. Burn J.H. A pharmacological approach to the cause of asthma.-Proc. Roy. Soc. Med., 1933, 27, 1, 31-46.

74. Burn J.H. The discovery of uptake of adrenaline in 1930-1933 and the development of the adrenergic fibre from a cholinergic fibre. J. Pharmacy Pharmacol., 1976, 28, 4, 342-347*

75. Carlsson A., Hillarp N.-A., Waldeck B. Analysis of the Mg"1"*-ATP dependent storage mechanism in the amine granules of the adrenal medulla. Acta Physiol. Scand., 1963, j>S>, 215, 1-38,

76. Charlton M.P., Atwood H.L. Synaptic transmission: temperature sensitivity of calcium entry in presynaptic terminals. Brain Research, 1979, Ц0, 543-546.

77. Charnock J.S., Gibson R.A., McMurchie G.I. et al. Changes in the fluidity of myocardial membranes during hibernation: relationship to myocardial adenosine-triphosphatase activity. -Mol. Pharmacol., 1980, 18, 3, 476-482.- 116

78. Cohen I.S., Van Der Kloot W. Effects of low temperature and terminal membrane potential of quantal size at frog neuromuscular junction. J. Physiol., 1983, 336, 335-345.

79. Cornieh E.J., Krstew E.V. No evidence for reverse trans-synap-tic regulation of neuronal uptake by ^/3-adrenore сер tors in kitten atria. Biochem. Pharmacol., 1981, £0, 12, 1439-1442.

80. Cox R.F., Baust J.G. Variations in myocardial CPK and Na+-K+-ATPase following normo- and hypothermic exposure to dimethyl sulfoxide and glycerol. Cryobiology, 1979, 16, 2, 166-170.

81. Creutz C.E., Pazoles C.J., Pollard H.B. Synexin: an adrenalmedullary protein that may be an intracellular receptor for 2+

82. Ca in the process of axocytosis. Catecholamines; Basic and Clin. Front. Proc. 4th Int. Catecholamine Syrnp., Pacific Grove, Calif., 1978, 1, Hew York, e.a., 1979, 346-348.

83. Deupree J.D., Weaver J.A., Downs D.A. Catecholamine concent of chromaffin granule ghosts isolated from bovine adrenal glands.-Biochim. et Biophys. Acta, 1982, 714. 3, 471-478.

84. Douglas W.W., Rubin R.P. The role of calcium in the secretory response of the adrenal medulla to acetylcholine. J. Physiol. (London), 1961, 159, 1, 40-57.

85. Douglas W.W., Rubin R.P. The mechanism of catecholamine release from the adrenal medulla and the role of calcium in stimulus-secretion coupling. J. Physiol. (London), 1963, 167, 2, 288-^ 310.- 117

86. Dumont J.E., Van Sande J., Pochet R. et al. Adrenergic and cholinergic control of the thyroid: Biochemical Mechanisms. -Acta Endocrinol., 1977, 8£, 212, 14.

87. Edwards W., Phillips J.H., Morris S.J. Structural changes in chromaffin granules induced by divalent cations. Biochim. et Biophys. Acta, 1974, 356, 2, 164-173.

88. El-Halawani M.E., Waibel P.E., Appel J.R. et al. Effects of temperature stress on catecholamines and corticosterone of male turkeys. Amer. J. Physiol., 1973, 224. 2, 384-388.

89. Evoniuk G. , Slotkin Th.A. pH Dependence of 3H . norepinephrine uptake into catecholamine storage vesicles isolated from rat brain, heart and adrenal medulla. Biochem. Pharmacol., 1981. 30, 20, 2872-2873.

90. Fillenz M., West D.P. Changes in DBH and noradrenaline resulting from cold exposure. Experientia, 1974, 30, 1, 55-56.

91. Pillens M., Stanford S.C., Benedict C.R. Changes in noradrenaline release rate and noradrenaline storage vesicles during prolonged activity of sympathetic neurones. Catecholamines:

92. Basic and Clin. Front. Proc. 4th Int. Catecholamine Symp., Pacific Grove, Calif., 1978, i, Hew York e.a., 1979, 936-938.

93. Fonteles M.C., Karow A.M. An alpha-adrenotropic study of the isolated rabbit kidney at normo- and hypothermia. Arch. Ind. Pharmacodyn. et Ther., 1976, 223. 2, 196-214.

94. Formby B. The binding of noradrenaline to monophosphoinositi-de: In vitro studies. Molec. Pharmac., 1968, 3, 288-292.

95. Gabizon R., Yetinson Т., Schuldiner S. Photoinactivation and identification of the biogenic amine transporter in. chromaffin granules from bovine adrenal medulla. J. Biol. Chem., 1982, Щ, 24, 15145-15150.

96. Garcia A.G., Kirpekar S.M., Sanche Z. et al. Release of noradrenaline from the cat spleen by nerve stimulation and potassium. - J. Physiol., 1976, 261, 301-317.

97. Gillespie I.S. Uptake of noradrenaline by smooth muscle. -Brit. Med.Bull,, 1973, 29, 2, 136-141.

98. Gillespie I.S., Towart R. Uptake kinetics and ion requirements for extraneuronal uptake of noradrenaline by arterial smooth muscle and collagen. Br. J. Pharmacol., 1973, 556-567.

99. Goldstein M., Sauter A., Hata F. et al. Studies on interactions of epinephrine neuronal systems with other neuronal systems. Cent. Regulation Endocrine Syst. Proc. Nobel Found Symp. 42 Princ., Stockholm, 1978. New York - London, 1979, 209-222.

100. Gombos G., Morgan I., Breckenridge W.C. et al. Isolement et structure biochimique de la membrane synaptosomale. C. r. Soc. Biol., 1971, Г65, 3, 499-506.

101. Gordon L.M., Sauerheber R.D., Esgate J.A. Spin label studies on rat liver and heart plasma membranes: effects of temperature, calcium and lanthanum on membrane fluidity. J. Supramo- 119 -lec. Structure, 1978, 9, 3, 299-326.

102. Graefe K.-H., Hermann W. Der Einfluss der Dichte der adrener-gen Innervation auf die Amin-Aufnahme in isolierte Gewebe der Ratte. Ber. Phys.-Med. Ges. Wurzburg, 1976, 8£, 105-119.

103. Graefe K.-H., Stefano P.J.E., banger S.Z. Stereoselectivity•3in the metabolism of ^H-noradrenaline during uptake into and efflux from the isolated rat vas deferens. Naunyn-Schmiede-berg's Arch. Pharmacol., 1977, 299. 3, 225-238.

104. Haan E.A., Bowen D.M. Protection of neocortical tissue prisms from freeze-thaw injury by dimethyl sulfoxide. J. Neurochem., 1981, 32, 1, 243-246.

105. Hahn Z., Szelenyi Z. Changes in hypothalamic noradrenaline and 5-hydroxytryptamine levels during the development of warm- and cold-adaptation in the rat. Acta Physiol. Acad. Sci. Hung., 1979 (1980), 3, 245-249.

106. Haining C.G., Heydon J.L., Murray L.R. Histochemical studies on the depletion of noradrenaline by adrenaline in adrenergic nerves of the rat iris. J. Pharmacy and Pharmacol., 1969, 21., 10, 639-647.

107. Hamberger B. Reserpine-resistant uptake of catecholamines in isolated tissues of the rat. Acta Physiol. Scand., 1967, 70, 295, 1-56.

108. Heber U., Volger H., Overbeck V. et al. Membrane damage and protection during freezing. Proteins Low Temp. Symp, 175th Meet., Anaheim, Calif., 1978. Washington, D.C., 1979, 159-189.

109. Horst W.D., Kopin I.J., Ramey E.R. Influence of aodium and calcium on norepinephrine uptake by isolated perfused rat hearts. Amer. J. Physiol., 1968, 215» 4, 817-822.

110. Hughes J. Evaluation of mechanisms controlling the release and inactivation of the adrenergic transmitter in the rabbit portal vein and vas deferens. Brit. J. Pharmacol., 1972, Н» 3, 472-491.

111. Huttunen P. Biogenic monoamines and cold-exposure tolerance in guinea-pigs. Acta Univ. Ouluen., 1979, A, 80, 5-33.

112. Iversen L.L. The inhibition of noradrenaline uptake by drugs.-Advances in drug research, 1965 a, 2, 1-46.

113. Iversen L.L., Glowinski J., Axelrod J. The uptake and storageзof H -norepinephrine in the reserpine-pretreated rat hearts.-J. Pharmacol. Exp. Ther., 1965, 1j50, 2, 173-183.

114. Iversen L.L. The uptake and storage of noradrenaline in sympathetic nerves. Cambridge University Press, 1967.

115. Iversen L.L. The uptake of biogenic amines. In: Biogenic amines and physiological membranes in drug therapy. New York, 1971 a, 259-327.

116. Iversen L.L. Catecholamine uptakeprocesses. Brit. Med. Bull., 1973, 2£, 2, 130-135.

117. Iversen L.L. Uptake mechanisms for neurotransmitter amines. -Biochem. Pharmacol., 1974, 23, 14, 1927-1935.

118. Iwasawa Y., Gillis C.N., Aghajanian G. Hypothermic inhibition of 5-hydroxytryptomine and norepinephrine uptake by lung: cellular location of amines after uptake. J. Pharmacol, and Exp. Ther., 1973, 186. 3, 498-507.

119. Jones S.B., Musacchia X.J. Norepinephrine turnover in heart and spleen of 7-, 22- and 34°C-acclimated hamsters. Amer. J. Physiol., 1976, 230, 3, 564-568.

120. Kallvy D.M., Tsang J.С. The effect of dimethyl sulfoxide on human eryhtrocyte membrane. Trans. 111. State Acad. Sci., 1971, М» 4, 370-373.

121. Katz В., Miledi A. The effect of temperature on synaptic delay at the neuromuscular junction. J. Physiol, (bond.), 1965, 181t 656-670.

122. Kimelberg H.K. Alteration in phospholipid-dependent (Na*1*, K+)-ATPase activity due to lipid fluidity. Biochem. Biophys. Acta, 1975, £12, 1, 143-156.

123. Knight D.E. Temperature sensitivity of catecholamine release in response to different secretagogues. J. Physiol. (Gr. Brit.), 1980, 298, 41P-43P.

124. Kraus-Priedman N., Biber J., Carafoli E. Calcium uptake inisolated hepatic plasma membrane vesicles. Eur. J. Biochem., 1982, 129, 1, 7-12.

125. Krieger-Brauer H.I., Gratzl M. Ca2+ transport by isolated secretory vesicles from adrenal medulla. Eur. J. Cell Biol., 1982, 27, 1, 121.

126. Kukita P. Properties of sodium and potassium channels of the squid giant axon far below 0°G. J. Membrane Biol., 1982, 68, 2, 151-160*

127. Kunos G., Nickerson M. Evidence favoring the existence of a single adrenergic receptor. Nature, 1968, 217, 1077-1078.

128. Kunos G., Nickerson M. Temperature-induced interconversion of oC and J2> -adrenoreceptors in the frog heart. J. Physiol., Lond., 1976, 256, 23-40.

129. Kunos G., Hickerson M. Effects of sympathetic innervationand temperature on the properties of rat heart adrenoreceptors, Brit. J. Pharm., 1977, 59, 4, 603-614

130. Kurahashi M., Kuroshima A. Changes in adipocyte Jk -adrenergic receptor of cold-acclimated rats. Jap. J. Physiol., 1979, 29, 1, 15-23.

131. Lambotte L. Persistence of active and passive ionic transport during low temperature liver preservation. Surgery, 1973, 73, 1, 8-14.

132. Langer S.L. Selective metabolism pathways for noradrenaline in the peripheral and in the central nervous system. Med. Biol., 1974 a, 52, 372-383.

133. Langer S.Z. Presynaptic regulation of catecholamine release.-Biochem. Pharmacol., 1974 b, 23, 1973-1800.

134. Langer S.L., Dubocovich M.L. Subsensitivity of presynaptic6 -adrenoreceptors after exposure to noradrenaline, -Europ. J. Pharm., 1977, 41, 87-88.

135. Leder 0., Harms E., Kammermeier H. Aufnahme und Speicherung von and H^-markiertem Noradrehalin in Ratten. Histo-chemie, 1970, 24, 2, 130-141.

136. Llinas R., Walton K., Sugimori M. Voltage-clamp study of the effects of temperature on synaptic transmission in the squid.-Biol. Bull., 1978, 155, 454.

137. Lindmar R., Loffelholz K. Neuronal and extraneuronal uptake and efflux of catecholamines in the isolated rabbit heart» -Naunyn-Schmildeberger1s Arch. Pharm., 1974, 284, 1, 63-92.

138. Luyet B.I. Attempt at correlating some of the extant data on low temperature preservation of various cells. Fed. Proc.- 124 -Suppl., 1975, 15, 315-322,

139. Lyons I.M. Phase transitions and control of cellular metabolism at low temperature. Cryobiology, 1972, 2, 5, 341-350.

140. MannistoP.T., Mattila J., Tuomisto J. Further evidence of the dual role of noradrenaline in regulation of thyrotrophin secretion in male rats. Acta Endocrinol., 1981, 97, 2, 213-220

141. Martinez T.T., McNeill J.H. The effect of temperature on cardiac adrenoceptors. J. Pharmacol, and Exp. Ther., 1977, 203. 2, 457-466.

142. Matheny I.L., Ahlquist K.P. Metabolic inhibitonad adrenoceptor interconversion. Arch. Int. Pharmacodyn. et Ther., 1975, 218, 1, 4-10.

143. Mazur P. Causes of injury in frozen and thawed cells. Fed. proc. Fed. Amer. Soc. Exp. Biol., 1965, 2£, 1, 175-182.

144. Mazur P. Limits to life at low temperatures and at reduced water contents and water activities. Orig. Life, 1980, 10, 2, 137-159.

145. McMurchie E.J., Raison J.K., Cairncross K.D. Temperature-induced phase changes in membranes of heart: a contrast between the thermal response of poikilotherms and homeotherms. -Сотр. Biochem. and Physiol., 1973, B44, 4, 1017-1026.

146. Mekanontchai R., Trendelenburg U. The neuronal and extraneu-ronal distribution of %(-)-noradrenaline in the perfused rat heart. Naunyn Schmiedenberg^ Arch. Pharmacol., 1979, 308, 199-210.

147. Melander A., Westgren U., Ericson L.E. et al. Influence of the sympathetic nervous system on the secretion and metabolism of thyroid hormone. Endocrinology, 1977, 101, 12281237.- 125

148. Meryman H.T. The exceeding of minimum tolerable cell volume in hypertonic suspension as a course of freezing injury. -In: The frozen cell, 1970, 51-63.

149. Miledi R. Transmitter release induced by injection of calcium ions into nerve terminals. Proc. Roy. Soc. London, 1973,1. В 183, Ю73, 421-425.

150. Mori K., Hashimoto H., Hasegawa H. et al. Influence of temperature on the sensitivity of the adrenoceptors in the isolated atria of guinea piga and rats. Eur. J. Pharmacol., 1979,2, 189-197.

151. Morris S.J., Haynes D.H. Structural changes in chromaffin granule membranes during exocytosis. Catecholamines: Basic and Clin Front. Proc. 4th Int. Catecholamine Symp., Pacific Grove, Calif., 1978, Л, New york, e.a., 1979, 325-327.

152. Mueller R.A., Shideman F.E. The stereospecificity of noradrenaline uptake by cat atria. J. Pharmacy Pharmacol., 1967, 19, 6, 398-400.

153. Munoz-Ramirez H., Ryan C.F., Buckntr C.K. Studies on the temperature-dependent sensitivity of mouse atria to adrenergic drugs. Eur. J. Pharmacol., 1975, 30, 1, 73-78.

154. Muscholl E. Adrenergic false transmitters. In: Handbook of experimental pharmacology, 33, Catecholamines. Berlin - New York, 1972 a, 618-660.

155. Nagai Y., Hosoya T. Properties of the Na+, K+-stimulated adenosine triphosphatase system associated with the plasma membrane of pig thyroid glands. J. Biochem., 1977, 81, 3, 721727.

156. Nakazato Y., Ohga A., Onoda Y. The effect of ouabain on noradrenaline output from peripheral adrenergic neurones of isolated guinea pig vas deferens. J. Physiol. (Gr. Brit.),1978, 278, 45-54.

157. Nash C.W., Tu Т., Martin M.J. The influence of inonganic ions on the uptake and retention of tritiated noradrenaline by isolated perfused rat hearts. Can. J. Physiol, and Pharmacol., 1972, ДО, 7, 645-654.

158. Nayar R., Hope M.J., Cullis P.R. Phospholipids as adjuncts for calcium ion stimulated release of chromaffin granule contents: implications for mechanisms of exocytosis. Biochemistry, 1982, 21, 14, 4583-4589.

159. Nelson D.L., Molinoff P.B. Differential effects of nerva impulses on adrenergic storage vesicles in rat heart. J. Pharmacol. and Exp. Ther., 1976, 198, 1, 112-122.

160. Nickerson M. Adrenoceptors of the cardiovascular system. -Proc. Int. Union Physiol. Soi. 27th Int. Congr., Paris, 1977, 12^. Paris, 1977, 78-79.

161. Norlander 0. Ether soluble compounds of adrenaline and noradrenaline with lecithin. Acta Physiol. Scand., 1950, 21, 4, 325-331.

162. Oppermann J.A., Ryan C.P., Haavik C.O. Temperature dependent sensitivity of isolated guinea pig atria to sympathomimetic amines. Life Sci., 1971, part 1, 10, 11, 613-622.

163. Patenti C.G., Baracca A., Pato R. et al. A temperature-dependent structural change of mitochondrial ATPase. Biochem. and Biophys. Res. Commun., 1983, 111. 2, 366-372.

164. Paton D.M. Mechanism of K+-induced release of cytoplasmic noradrenaline fl-om adrenergic nerves. Brit. J. Pharm., 1975,2, P247.

165. Paton D.M., Golko D.S., Johns A. Characteristics of the calcium channel on peripheral adrenergic neurons. Proc. Can. Pedn. Biol. Soc., 1977, 20, 166.- 127

166. Pelayo F., Dubocovich M.L., banger S.Z. Regulation of noradrenaline release in the rat pineal through a negative feedback mechanism mediated by presynaptic oC -adrenoceptors. Eur# J. Pharmacol., 1977, 45, 3, 317-318.

167. Phillips J.H. Steady-state kinetics of catecholamine transport by chromaffin-granule ghosts. Biochem. J., 1974, 144» 2, 319-325.

168. Pletscher A., Graf M. Role of ATP in the uptake of noradrenaline by membranes of adrenal chromaffin granules. J. Pharm. and Pharmacol., 1976, 28, 12, 938-939.

169. Powis G. The binding of noradrenaline to connective and elastic tissue. In: Proceedings of the sixth International congress of pharmacology, 2, Neurotransmission, 1975, 131-137.

170. Raison J.K., Lyons J.M., Mehlhorn R.J. et al. Temperature-induced phase changes in mitochondrial membranes detected by spin labeling. J. Biol. Chem., 1971, 246, 12, 4036-4040.

171. Raison J.K., Lyons J.M., Thomson W.W. The influence of membranes on the temperature-induced changes in the kinetics of some respiratory enzymes of mitochondria. Arch. Biochem. Biophys., 1971, 142. 1, 83-90.

172. Raison J.K., Wright L.C. Thermal phase transitions in the polar lipids of plant membranes. Their induction by disaturated phospholipids and their possible relation to chilling injury. Biochem. et Biophys. Acta, 1983, 731, 1, 69-78.

173. Ramesha C.S., Thompson G.A. Cold stress induces in situ phospholipids molecular species changes? in cell surface membranes. Biochim. et Biophys. Acta, 1983, 731. 2, 251-260.

174. Rand M.J., Majewski J.C.M., McCulloch M.W. et al. Prejunctional receptors modulating autonomic neuroeffector transmission. Cardiovascular receptors. Supp. I. Circ. Res., 1980, ^6, 6, 70-76.

175. Rimle D., Morse Ph., Njus D. A spin-label study of plasma membranes of adrenal chromaffin cells. Biochim. et Biophys. Acta, 1983, 128, 1, 92-96.

176. Romey G., Chicheportiche R., Lazdunski M. Transition temperatures of the electrical activity of ion channels in the nerve membrane. Biochem. et Biophys. Acta, 1950, 602. 3, 610-620.

177. Rowe A.W. Biochemical aspects of cryoprotective agents in freezing and thawing. Cryobiology, 1966, 3, 12.

178. Sachs C. Noradrenaline uptake mechanisms in the mouse atrium. A biochemical and histochemical study. Acta Physiol. Scand., 1970, 341, 67.

179. Sanchez-Armass S., Orrego P. Noradrenaline transport by rat heart sympathetic nerves: a re-examination of the role of sodium ions. Naunyn-Schmiedbergs Arch. Pharmacol., 1978, 302. 3, 255-261.

180. Sanchez-Armass S., Orrego P. Plasma membrane noradrenaline transport: a rotary liquid pore model. Catecholamines: Basic and Clin. Front. Proc. 4th Int. Catecholamine Symp., Pacific Grove, Calif., 1978, U New York, e.a., 1979, 307-309.- 129

181. Scherman D., Henry J.-P., Douzou P. Effet du potentiel trans-membranaire our le transport de la noradrenaline par les granules chromaffines. C. r. Aoad. Sci., 1979, D289, 13, 911-914.

182. Schuldiner S., Maron R., Kanner B.I. Active transport of biogenic amines in chromaffin granule membrane vesicles. Neurobi-ol. Cholinerg. and Adrenerg. Transmitters. Basel e.a., 1980, 117-128.

183. Serck-Hanssen G., Helle K.B., Bolstad G. Stimulus-induced release of noradrenaline, adrenaline and dopamine-Jb «hydroxylase from bovine adrenals. IT euros ci. Lett., 1978, 1, 285.

184. Shibata S., Hattori K., Timmerman D. Effect of cold storage on the response of guinea pig taenia coli to certain catecholamines and other agents. Eur. J. Pharmacol., 1970, Vli, 3, 321331.

185. Shibata S., Miyahara J.T., Mori J. et al. Adrenergic mechanism in cold stored taemia calcium after rewarming. Eur. J. Pharmacol., 1977, 1» 47-56.

186. Singer S.I., Nicolson G.L. The fluid mosaic model of the structure of cell membrane. Science, 1972, 175, 4, 720-731.- 130

187. Slotkin Т.A., Kirschner N. All-or-none secretion of adrenal medullary storage vesicle contents in the rat. Biochem. Pharmacol., 1973, 22, 2, 205-219.

188. Slotkin T.A., Bareis D.I. Uptake of catecholamines by storage vesicles. Pharmacology, 1980, 21., 2, 109-122.

189. Smith A.D., V/inkier H. Fundamental mechanisms in the release of catecholamines. In: Handbook of experimental pharmacology* 32* Catecholamines. Berlin - New York, 1972, 538-617.

190. Smith A.D. Mechanisms involved in the release of noradrenaline from sympathetic nerves. Brit. Med. Bull., 1973, 29, 2, 123-129.

191. Smith U., Smith D.S., V/inkler H. et al. Exocytosis in the adrenal medulla demonstrated by freeze-etching. Science, 1973, 179» 4068, 79-82.

192. Stene-Larsen G., Helle K.B. Evidence against a transformation of the Jb^ -adrenoceptor in the frog heart by changes in temperature or metabolic state. Life Sci., 1978, 23, 27-28, 2681-2688.

193. Stjarne L. Current issues in the study of norepinephrine secretion from noradrenergic nerves. Catecholamines: Basic and Clin Front. Proc. 4th Int. Catecholamine Symp., Pacific Grove Calif., 1978, 1,. New York e.a., 1979, 240-243.

194. Su C., Duckies S.P., Florence V. Uptake of %-norepinephrine in rabbit mesenteric blood vessels. Blood Vessels, 1977, 14, 2, 65-76.

195. Takehara I., Rowe A.W. Increase in ATPase activity in red cell membranes as a function of freezing regimen. Cryobio-logy, 1971, 8, 559-565.

196. Tempel G.E., Parks L.H, Brain norepinephrine and serotonin in the golden hamster during heat and cold acclimation and hypothermia. Сотр. Biochem. and Physiol., 1982, C73, 2, 377-381.

197. Tlorant G.L., Weitzman E.D., Iayant A. et al. Plasma catecholamine levels during cold adaptation and hibernation in wood-chucks (Marmota топах). J.Therm, Biol., 1982, 2» 3, 141-146.

198. Toll L., Gundersen C.B., Howard B.D. Energy utilization in the uptake of catecholamines by synaptic vesicles and adrenal chromaffin granules. Braih Res., 1977, 136, 1, 59-66.

199. Vizi E.S., Torok Т., Seregi A, et al. Na-K-activated ATPase and the release of acetylcholine and noradrenaline. J. Physiol. (Prance), 1982, 78, 4, 349-406.

200. Trendelenburg U. A kinetic analysis of the extraneuronal uptake and metabolism of catecholamines. Rev. Physiol., Biochem. and Pharmacol., 87. Berlin e.a,, 1980, 33-115.

201. Wakade A.R., Furchgott R.P. Metabolic requirements for the uptake and storage of norepinephrine by the isolated left atrium of the guinea pig. J. Pharmacol, and Exptl, Therap., 1968, 163, 1, 123-135.

202. Wakade A.R. Recycling of noradrenergic storage vesicles of isolated rat vas deferens. Nature, 1979, 281, 5730, 374-376.

203. Wakade A.R., Wakade T.D. Biochemical evidence for re-use of noradrenergic storage vesicles in the guinea pig heart. - J. Physiol. (Gr. Brit.), 1982, 327, 337-362.

204. Yfoitby L.G., Axelrod J., Weil-Malherbe H.The fate of ^-norepinephrine in animals. J. Pharmacol. Exp. Ther., 1961, 132» 2» 193-201.

205. Don C. Wood, Wood J. Pharmacologic and biochemical considerations of dimethyl sulfoxide. Biological actions of dimethyl sulfoxide. Annals of the New York Academy of Sciences, 1975, 243, 7-19.

206. Wright L.C., McMurchie E.J., Pomeroy M.K. et al. Thermal behavior and lipid composition of cauliflower plasma membranes in relation to ATPase activity and chilling sensitivity. -Plant Physiol., 1982, 6£, 6, 1356-1360.

207. Yanagidaira Y., Ueda G. Effect of cold exposure on noradrenaline and serotonin in brown adipose tissue of rats. Int. J. Biometeorol., 1979, 23, 2, 156-157.