Исследование биологических эффектов воздействия преобразованного солнечного света тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.02, кандидат биологических наук Фахранурова, Лилия Ильгизовна

• Фахранурова, Лилия Ильгизовна
• кандидат биологических наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Фахранурова, Лилия Ильгизовна

Глава 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. Источники красного света

2.2. Механизмы действия красного света

2.3. Эффекты светового воздействия на культуру клеток и 24 эмбриональное развитие

2.4. Эффекты светового воздействия на сердечно-сосудистую 25 систему

2.5. Эффекты светового воздействия на физическую 28 работоспособность

Глава 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

3.1. Процедура облучения. Характеристики световых источников

3.2. Расчет доз излучения

3.3. Тест-система - клеточная культура

3.4. Тест-система - эмбриональные клетки

3.5. Тест-система - мыши линии CD-I

3.6. Тест-система - гипертензивные крысы

3.7. Определение концентрации АФК в водной среде

Глава 4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

4.1. Влияние преобразованного солнечного света на жизнеспособность клеток

4.1.1. Определение дозы солнечного света, оказывающего 47 повреждающее действие на клетки

4.1.2. Сравнительный анализ протекторного действия ПСС и светодиодной матрицы на жизнеспособность клеток.

4.1.3. Определение действия ПСС на жизнеспособность 49 эпителиальных клеток линии НЕр-2 и культуры фибробластов ЗТЗ clone

4.1.4. Влияние различных способов облучения на 50 фибробласты линии NCTC clone

4.2. Влияние преобразованного солнечного света на 51 предимплантационное эмбриональное развитие зародышей мышей в условиях in vitro

4.2.1. Облучение СС-УФ (9,6 Дж/см2) и ПСС (9,9 Дж/см2) в 51 течение 7,5 мин

4.2.2. Облучение СС-УФ (19,2 Дж/см2) и ПСС (19,8 Дж/см2) в 52 течение 15 мин

4.2.3. Облучение СС-УФ (48 Дж/см2) и ПСС (50 Дж/см2) в 54 течение 37,5 мин

4.2.4. Количество аномально развитых эмбрионов в 55 зависимости от облучения

4.3. Влияние преобразованного солнечного света на 57 физическую работоспособность мышей и на структурные характеристики клеток сердечной мышцы

4.3.1. Влияние преобразованного солнечного света на физическую работоспособность мышей

4.3.2. Влияние преобразованного солнечного света на 58 структурные характеристики клеток сердечной мышцы мышей

4.4. Влияние облучения преобразованным солнечным светом и 60 светодиодной матрицей на функциональные характеристики сердечной мышцы гипертензивных крыс

4.4.1. Ультраструктурный анализ миокарда крыс после 63 облучения преобразованным солнечным светом и светодиодной матрицей

4.4.2. Ультраструктурный анализ миокарда крыс после 66 облучения светодиодной матрицей

4.4.3. Анализ капилляров субэндокарда левого желудочка

4.5. Изучение роли активных форм кислорода, как возможных 67 регуляторов действия преобразованного солнечного света на культуре клеток фибробластов

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Исследование биологических эффектов воздействия преобразованного солнечного света»

Электромагнитные поля оптического диапазона низкой интенсивности оказывают влияние на функциональное состояние живых клеток, тканей и на организм в целом, поэтому из года в год растет интерес к лечению различных заболеваний естественными и искусственно создаваемыми физическими факторами. Наиболее часто в фототерапии применяют низкоинтенсивное излучение лазеров и светодиодных ламп (Oliveira et al., 2008; Ablon, 2010). Альтернативой является источник белого света, излучение которого модулируется с помощью светофильтров (Кару и др., 1984; Монич и др., 1992; Saczko et al., 2005). Светофильтры на основе фотолюминофоров (светопреобразующие материалы) позволяют использовать весь солнечный спектр, при этом УФ-компонента преобразуется в дополнительную к солнечному спектру оранжево-красную компоненту (преобразованный солнечный свет - ПСС). В литературе имеются лишь единичные упоминания об использовании таких материалов для биомодуляции функций животных организмов, в частности при фотостимуляции репаративных процессов (Воробьев, 1998).

Многие исследователи, получая положительный ответ при действии красного света, отмечают, что механизм данного влияния на живые системы пока не известен (Кару, 2005; Lane, 2006; Hamblin, 2008). В настоящее время показано, что основными первичными реакциями после светопоглощения в клетках и их окружении являются поглощение световой энергией фотоакцепторами (каталазой, супероксиддисмутазой, цитохром с оксидазой и др.), образование активных формы кислорода (АФК), образование оксида азота (NO), временное повышение локальной температуры (Владимиров и др., 2004; Grzelak et al., 2001; Jou et al., 2002; Karu, 2008; Xu et al., 2008).

Поскольку в настоящее время имеется лишь несколько работ, посвященных действию ПСС, мы исследовали влияние ПСС на различные тест-системы, начиная от воды до сложных систем - клетка, эмбрион, мышца, организм в стрессовых условиях.

Данное исследование направлено на изучение воздействия преобразованного солнечного света с дополнительной оранжево-красного компонентой (Атаах=626 нм) на биологические системы разных уровней организации, что является актуальным не только для решения ряда задач биомедицины, но и для выявления фундаментальных законов взаимодействия света с организмом млекопитающих.

Цель и задачи исследования

Целью работы является исследование воздействия преобразованного солнечного света на биологические объекты разного уровня организации.

Были поставлены задачи:

1. Исследовать влияние преобразованного солнечного света на жизнеспособность клеточных культур;

2. Исследовать влияние преобразованного солнечного света на раннее эмбриональное развитие зародышей мышей в условиях in vitro;

3. Исследовать влияние преобразованного солнечного света на физическую работоспособность мышей и на их структурные характеристики клеток сердечной мышцы;

4. Исследовать влияние преобразованного солнечного света на функциональные и структурные характеристики сердечной мышцы гипертензивных крыс. Провести сравнительный анализ полученных результатов с эффектами от светодиодной матрицы, широко используемой в медицине;

5. Исследовать роль активных форм кислорода, как возможных регуляторов действия преобразованного солнечного света на культуре клеток фибробластов.

Научная новизна.

Впервые показано, что добавление люминесцентной оранжево-красной компоненты на А,тах=626 нм в состав солнечного света приводит к дозозависимому воздействию на жизнеспособность культивируемых in vitro клеток млекопитающих. Определены дозы светового воздействия, при которых Л происходит угнетение (155 Дж/см при облучении СС) и повышение жизнеспособности клеток линии НЕр-2 и ЗТЗ clone N1H (13,3 Дж/см2 при облучении ПСС).

Впервые определены дозы светового воздействия и режимы облучения ПСС, при которых происходит угнетение (50 Дж/см2) и повышение жизнеспособности (20 Дж/см2) доимплантационных эмбрионов мыши и нормализация их развития в условиях in vitro.

-у

Впервые установлено, что воздействие ПСС (31,1 Дж/см ) увеличивает физическую работоспособность мышей линии CD-I (на 35%) и стимулирует у них активацию морфообразовательных процессов в клетках сердечной мышцы (наблюдается увеличение относительной площади сечения митохондрий, саркоплазматического ретикулума и миофибрилл).

Впервые обнаружено, что ПСС оказывает положительное влияние на структурно-функциональные характеристики клеток сердечной мышцы гипертензивных крыс линии SHR, проявляющееся в нормализации временных характеристик сокращения папиллярной мышцы крыс и в двукратном увеличении относительной площади сечения саркоплазматического ретикулума кар диомиоцитов.

Исследована гипотеза, объясняющая возможный механизм воздействия ПСС посредством стимуляции образования активных форм кислорода в водных растворах, запускающих каскады внутриклеточных реакций, в конечном счете, приводящих к структурно-функциональным изменениям в биологических системах, на примере культуры клеток фибробластов.

Научно-практическая значимость работы и внедрение результатов исследования.

Полученные данные позволяют рекомендовать светопреобразующие материалы для использования в клинике и амбулаторно, как альтернативу применения других источников оранжево-красного света (светодиодная матрица, лазер). Светопреобразующие материалы могут найти применение при лечении сердечно-сосудистых заболеваний, в восстановительной и спортивной медицине (для повышения физической работоспособности) и в репродуктивных технологиях (для повышения жизнеспособности и нормализации развития культивируемых in vitro эмбрионов).

Работа выполнена в рамках исследований по проектам Российского фонда фундаментальных исследований (№04-04-27292) РФФИ; государственного контракта № 02.513.12.3006.

Публикации. Основные результаты работы опубликованы в 15 печатных работах, в том числе в 6 статьях.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на российских и международных конференциях: Международные школы-конференции молодых ученых «Биология-наука XXI века» (Пущино, 2007; 2008;

2009), 11-я школа-конференция молодых ученых «Биомедицинская инженерия-2007» (Пущино, 2007), 5-й Международный конгресс «Слабые и сверхслабые поля и излучения в биологии и медицине» (Санкт-Петербург, 2009), International Conference «Medical Radiations: Research and application» (Marrakech, Morocco,

2010), конференция молодых ученых «Экспериментальная и теоретическая биофизика'11» (Пущино, 2011).

Заключение диссертации по теме «Биофизика», Фахранурова, Лилия Ильгизовна

ВЫВОДЫ:

1. Преобразованный солнечный свет оказывает стимулирующие и пролиферативные действие на фибробласты линии ЗТЗ clone NIH, при этом не влияя на клетки эпидермоидной карциномы гортани линии НЕр-2.

2. Облучение преобразованным солнечным светом увеличивает жизнеспособность эмбрионов, способствует образованию и «выклевыванию» зрелых бластоцист и уменьшает количество аномально развитых бластоцист в условиях in vitro.

3. При облучении преобразованным солнечным светом наблюдается увеличение физической работоспособности мышей. Облучение преобразованным солнечным светом приводит к стимуляции морфогенетических процессов в кардиомиоцитах мышей, а именно к увеличению относительной площади сечения митохондрий, миофибрилл и саркоплазматического ретикулума.

4. Преобразованный солнечный свет нормализует сократительную активность папиллярных мышц гипертензивных крыс, приближая функциональные значения к характеристикам мышц нормотензивных животных. При этом улучшаются структурные характеристики КМЦ гипертензивных крыс, и наблюдается увеличение площади саркоплазматического ретикулума более чем в 2 раза. После облучения светодиодной матрицей, используемой в медицине, наблюдаются сопоставимые результаты.

5. Возможным механизмом облучения преобразованного солнечного света на клеточной культуре является образование малых доз АФК, которые, в свою очередь, запускают различные каскады клеточной трансдукции.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ:

В настоящее время существует огромное количество работ, посвященных воздействию солнечного света и отдельных участков его спектра. Однако оставался неизвестным тот факт насколько сильно могут изменяться эти эффекты при добавлении небольшой дополнительной оранжево-красной компоненты к солнечному свету (А.тах=626 нм). Как было обнаружено ранее, светопреобразующие материалы очень эффективны для стимуляции ростовых процессов у растений при естественном солнечном освещении (Кособрюхов и др., 2000), также показана фотостимуляция репаративных процессов у человека (Воробьев, 1998). Наша работа впервые посвящена исследованию воздействия преобразованного солнечного света (ПСС) на биологические объекты разного уровня организации.

В серии опытов по исследованию жизнеспособности при облучении ПСС культуры фибробластов линии ЗТЗ clone NIH обнаружено увеличение выживаемости клеток на 20% больше (р<0,05), по сравнению с интактным контролем. В ходе работы был найден оптимальный режим облучения ПСС, при котором наблюдается увеличение количества выходов бластоцист из блестящей оболочки, при этом было обнаружено уменьшение количества аномально развивающихся клеток.

Показано, что ПСС приводит к увеличению физической работоспособности мышей. Выявленные качественные и количественные изменения в соотношениях саркоплазматического ретикулума, миофибрилл и митохондрий в миоцитах, что указывают на развитие адаптативно-компенсаторных процессов, ведущих к активации биосинтетических процессов и возрастанию энергетического потенциала сердечной мышцы, увеличивающих ее функциональные возможности.

Как известно, основной вклад в удалении кальция из цитоплазмы после стимуляции у крыс и мышей, в отличие от других млекопитающих, вносит саркоплазматический ретикулум, который поглощает до 90% этих ионов (Bers, 2000). Облучение ПСС гипертензивных крыс приводит к значительному увеличению относительной площади сечения саркоплазматического ретикулума, что, возможно, ведет к пропорциональному росту его кальций-поглощающих возможностей. Это в свою очередь сказывается на работе папиллярной мышцы, а именно на улучшении кинетических характеристик ее сократительной способности.

В работе впервые сопоставлены эффекты, наблюдаемые после курсов облучения светодиодной матрицей и светопреобразующих материалов. По литературным данным, биостимуляция клеток, в частности стимуляция синтеза ДНК, вызванная облучением клеток непрерывным красным светом (к=633 нм), практически не зависит от источника излучения, т.е. эффект биостимуляции не связан с когерентностью излучения (Лобко и др., 1985; Кару и др., 1982). Аналогичные данные получены и другими исследователями (Клебанов и др., 2006; Vinck et al., 2002). Поэтому можно предположить, что светопреобразующие материалы могут служить также альтернативой низкоинтенсивному лазерному излучению (НИЛИ) в красном диапазоне спектра. Данное предположение было подтверждено в клинических исследованиях, где была показана высокая эффективность ПСС в плане стимуляции репаративных процессов, тем самым способствуя быстрому заживлению ран (Воробьев, 1998).

Одна из гипотез, объясняющих эффекты красного света, основывается на предположении об участии в этом процессе активных форм кислорода (АФК), как возможных регуляторов внутриклеточных реакций. Согласно литературным данным, при умеренном синтезе, АФК действуют как специфические сигнальные молекулы и участвуют в регуляции иммунных процессов, работы кровеносной, эндокринной и других физиологических систем (Турпаев, 2002; Thannickal and Fanburg, 2000). Также известно об образовании малых количеств АФК под действием видимого света (Гудков и др. 2010; Eichler et al., 2005; Lavi et al., 2010). В нашей работе впервые были получены данные свидетельствующие о том, что малые концентрации АФК приводят к увеличению жизнеспособности фибробластов NCTC clone L929. Учитывая, что под действием ПСС наблюдается увеличение образования сверхмалых концентраций АФК в воде, можно предположить, что ПСС, возможно, в ряде случаев действует посредством образования сверхмалых концентраций АФК, которые активируют сигнальные пути, приводящие к увеличению жизнеспособности клеток.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Фахранурова, Лилия Ильгизовна, 2012 год

1. Аджимолаев Т.А., Зубкова С.М., Крылов O.A., Соколова З.А. Характеристика действия монохроматического когерентного излучения на функции и метаболизм нервной клетки / Фотобиология животной клетки. JI. 1979.-С. 256-258.

2. Аксенов С.И. Вода и ее роль в регуляции биологических процессов. Москва Ижевск: Институт компьютерных исследований, 2004. С. 212.

3. Арлащенко Н.И., Опарина Д.Я., Адамчик Ж.Г., Шеин В.И. Сравнительная оценка методов исследования физической работоспособности облученных животных // Серия биологическая. 1986. №4. С. 577-582.

4. Афанасьева Н.И., Кару Т.Й., Тифлова O.A. Оксидазы bd и Ьо в качестве первичных фотоакцепторов при воздействии низкоинтенсивного видимого монохроматического излучения на клетку Esherichia coli // ДАН. 1995. Т. 345. №3. С. 404-406.

5. Байбеков И.М., Касимов A.JL, Козлов В.И., Мусаев Э.М., Самойлов Н.Т. Морфологические основы низкоинтесивной лазеротерапии. Ташкент: Ибн-Сина, 1991.216 с.

6. Барабанова Т.А., Михайлова И.А., Петрищев H.H. Влияние излучения He-Ne лазера на механическую активность миокарда крыс // Российский физиологический журнал. 2002. № 7. С.865-872.

7. Белякович А.Г. Изучение митохондрий и бактерий с помощью соли тетразолия п-НТФ. Пущино: ОНТИ НЦБИ АН СССР, 1990. 233 с.

8. Березин Ю.Д., Прочуханов P.A., Ростовцева Т.И. Структурные особенности действия низкоинтенсивного лазерного излучения переживающие ткани человека // Тр. ДАН СССР. 1983. Т. 273. № 3. С. 734-736.

9. Бобков Ю.Г., Виноградов В.М., Катков В.Ф., Лосев С.С., Смирнов A.B. Фармакологическая коррекция утомления. М.: Медицина, 1984. 208 с.

10. Брил ль Т.Е. Новые данные о первичных акцепторах и молекулярных механизмах биологического действия низкоинтенсивного лазерного излучения // Лазер и здоровье. 1999. С. 429-430.

11. Брилль Г.Е., Петросян В.И., Житнева Э.А. и др. Новые данные об изменении структуры биожидкостей под влиянием низкоинтенсивного лазерного излучения // Физическая медицина. 1996. Т. 5. № 1-2. С. 39-40.

12. Брук Т.М., Молотков О.В. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на уровень физической работоспособности животных в условиях измененного эндокринного статуса // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. 124(8). С. 165-167.

13. Брусков В.И., Масалимов Ж.К., Черников A.B. Образование активных форм кислорода в воде под действием тепла // ДАН. 2002. Т. 384. С. 821-824.

14. Векшин H.A. Светозависимое фосфорилирование в митохондриях // Мол.биол. 1991.4. С. 54-59.

15. Владимиров Ю.А., Клебанов Г.И., Борисенко Г.Г., Осипов А.Н. Молекулярно-клеточные механизмы действия низкоинтенсивного лазерного излучения //Биофизика. 2004. 49(2). С. 339-350.

16. Владимиров Ю.А., Осипов А.Н., Клебанов Г.И. Фотобиологические основы терапевтического применения лазерного облучения // Биохимия. 2004. 69(1). С. 103-113.

17. Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В. Лекции по медицинской биофизике. М.: Изд-во МГУ; ИКЦ «Академкнига», 2007. 432 с.

18. Владимиров Ю.А., Проскурнина Е.В. Свободные радикалы и клеточная хемилюминесценция // Успехи биологический химии. 2009. Т. 49. С.341-388.

19. Воробьев A.B. Фотостимуляция репаративных процессов видимым световым излучением в хирургии: дисс. д.м.н. Н.Новгород, 1998.

20. Гамалея Н.Ф. Механизмы биологического действия излучения лазеров / Лазеры в клинической медицине. М.: Медицина, 1981. С. 35-85.

21. Гамалея Н.Ф., Шишко Е.Д., Яниш Г.Б. Механизм лазерной биостимуляции факты и гипотезы // Известия АН СССР, серия физ. 1987. 50(5). С. 1027-103.

22. Глаголева В.В., Чечулин Ю.С. Ультраструктурная основа нарушения функции сердечной мышцы. М.: Наука, 1968. 174 с.

23. Гольдштейн Н. Активные формы кислорода как жизненно необходимые компоненты воздушной среды // Биохимия. 2002. Т. 67. С. 194-204.

24. Гончарова JI.J1., Покровская JI.A., Ушкова И.Н., Малькова Н.Ю. Роль антиоксидантных механизмов в реакциях организма на действие низкоинтенсивного лазерного излучения // Радиационная биология. Радиоэкология. 1994. Вып. 3. Т.34. С. 368-374.

25. Горбатенкова Е.А., Парамонов Н.В., Лукьященко И.В. Фотореактивация ферментов основной механизм терапевтического действия гелий-неонового лазера / Применение лазеров в хирургии и медицине: материалы междунар. симп. М., 1988. Т. 1. С. 438-440.

26. Гордеева A.B., Звягильская P.A., Лабас Ю.А. Взаимосвязь между активными формами кислорода и кальцием в живых клетках // Биохимия. 2003. Т. 68. С. 1318-1322.

27. Гудков C.B., Смирнова B.C., Брусков В.И. Образование перекиси водорода в воде при воздействии видимого света. // Вода. Химия и Экология. 2010. № 8. С. 40-45.

28. Гуляр С.А., Лиманский Ю.Л. Постоянные магнитные поля и их применение в медицине. Киев: Изд-во Ин-та физиол. им. A.A. Богомольца HAH Украины, 2006. 320 с.

29. Давиденко Ю. «Современные светодиоды» // Компоненты и технологии, №5, 2004. http://kit-e.ru/assets/files/pdf/20040638.pdf

30. Дворецкий Д.П., Тимошенко Т.Е., Белобокова Н.К. Влияние низкоинтенсивного излучения гелий-неонового лазера на микроциркуляцию в брыжейке крыс // Российский физиологический журнал им. Сеченова. 2004 т. 90. №11. С.1356-1361.

31. Долматова Т.И., Шрейберг ГЛ., Близнец Н.И. Использование гелий-неонового лазера для восстановления и повышения работоспособности // Теория и практика физической культуры. 1997. №4. С. 55-58.

32. Доровских В.А., Бородин Е.А. Влияние низкоэнергетических лазеров на свободнорадикальное окисление липидов в микросомах печени и активность глюкозо-6-фосфатдегидрогеназы и каталазы эритроцитов // Лазерная медицина. 1998. т.2. вып. 2-3. С. 16-20.

33. Другова О.В., Монич В.А., Житникова О.В. Эффекты воздействия красного света на постишемический миокард при реперфузии // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2001. Т. 131. №4. С. 386-387.

34. Елисеенко В.И. Механизмы взаимодействия низкоэнергетического лазерного излучения ИК-спектра с биологическими тканями / Лазеры и аэроионы в медицине: сб. докл., статей, сообщений и исследований. Калуга-Обнинск, 1997. С. 71.

35. Захаров С.Д., Иванов A.B. Светокислородный эффект физический механизм активации биосистем квазимонохроматичсеким излучением. М.: Изд-во Физического института им. П.Н. Лебедева, 2006. 50 с.

36. Зенков Н.К, Меныцикова Е.Б., Шергин С.М. Окислительный стресс. Диагностика, терапия, профилактика. Новосибирск: тип. СО РАМН, 1993. 181 с.

37. Зубкова С.М., Крылов O.A. Действие гелий-неонового лазера на окислительно-восстановительные процессы в митохондриях / Вопросыэкспериментальной и клинической физиотерапии: тр. ЦНИИ курортологии и физиотерапии. М., 1976. Т. 32. С. 18-19.

38. Изаков В.Я., Иткин Г.П., Мархасин B.C., Штейнгольд Е.Ш., Шуиаков В.И., Ясников Г.И. Биомеханика сердечной мышцы. М.: Наука, 1981. 326 с.

39. Илларионов В.Е. Основы лазерной терапии. М.: Респект, 1992. 123с.

40. Илларионов В.Е., Ларюшин А.И. Оптико-электронные устройства для медицины. Казань: Изд-во АБАК, 2000. 167 с.

41. Каплан Е.Я., Цыренжапова Л.Н., Шантанова Л.Н. Оптимизация адаптивных процессов организма. М.: Наука, 1990. 94 с.

42. Каплан М.А. Лазерная терапия механизмы действия и возможности / Тезисы межд. конф. "Laser Health'97". M.: фирма «Техника», 1997. С. 88-92

43. Капустина Г.М. Внутривенное лазерное облучение крови / Применение низкоинтенсивных лазеров в клинической практике. М.: ГНЦ лазерной медицины, 1997. С. 35-56

44. Кару Т.Й. Первичные и вторичные клеточные механизмы лазерной терапии // Низкоинтенсивная лазерная терапия / Под ред. C.B. Москвина и В.А. Буйлина. М.: ТОО «Фирма «Техника», 2000. С.71-94.

45. Кару Т.Й. Клеточные механизмы низкоинтенсивной лазерной терапии//Успехи современной биологии. 2001. 121(1). С.110-120.

46. Кару Т.Й. Клеточные механизмы низкоинтенсивной лазерной терапии // Лазерная медицина. 2001. 5(1). С. 7-15.

47. Кару Т.Й. Универсальный клеточный механизм лазерной биостимуляции: фотоактивация фермента дыхательной цепи цитохром-с-оксидазы / Современные лазерно-информационные и лазерные технологии. 2005. С. 131-142.

48. Кирьянова В. Антология света // 2003. URL: http://www.cosmonews.ru/article/cosm24063.htm.

49. Клебанов Г.И., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. Роль продуктов перекисного окисления липидов в механизме действия лазерного облучения на лейкоциты крови человека // Биофизика. 2005. т. 50. вып. 5. С. 862866.

50. Клебанов Г.И. Молекулярно-клеточные механизмы лазеротерапии / Лазер и здоровье 99: материалы Междунар. Конгр. М., 1999. С. 451-452.

51. Клебанов Г.И., Тесюлкин Ю.О., Бабенкова И.В. Свободно-радикальные механизмы действия лазеротерапии / Клиническое и экспериментальное применение новых лазерных технологий: материалы Междунар. конф. М.-Казань, 1997. С. 308-309.

52. Клебанов Г.И., Шураева Н.Ю., Чичук Т.В., Осипов А.Н., Владимиров Ю.А. Сравнительное исследование влияния излучения лазера и светодиодов на перекисное окисление липидов // Биофизика. 2006. Т. 51. №2. С. 258-291.

53. Князева Т.А., Бадтиева В.А., Зубкова С.М. Лазеротерапия у больных гипертонической болезнью в сочетании с коронарной недостаточностью // Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры. 1996. №2. С. 3-5.

54. Козлов В.И. Взаимодействие лазерного излучения с биотканями / Применение низкоинтенсивных лазеров в клинической практике. М.: ГНЦ лазерной медицины, 1997. С. 24-34

55. Козлов В.И. Лазерная терапия: итоги и перспективы / Лазер и здоровье 99: материалы Междунар. Конгр. М., 1999. С. 317-319.

56. Колпакова М.Э., Власов Т.Д., Петрищев H.H., Вислобоков А.И. Влияние излучения He-Ne лазера на устойчивость изолированного сердца к ишемическому и реперфузионному повреждению // Российский физиологический журнал. 2003. № 12. С. 1496-1502.

57. Корочкин И.М., Бабенко Е.В. Механизмы терапевтической эффективности излучения гелий-неонового лазера // Сов. Медицина. 1990. № 3. С. 3-8.

58. Корочкин И.М., Иоселиани Д.Г., Беркинбаев С.Ф. и др. Лечение острого инфаркта миокарда внутривенным облучением крови гелий-неоновым лазером // Сов. медицина. 1988. № 4. С. 34-38.

59. Корочкин И.М., Облокулов И.У., Федулаев Ю.Н. Эффективность применения инвазивной гелий-неоновой лазеротерапии в комбинации с тренталом у больных с хронической сердечной недостаточностью // Лазерная медицина. 2007. Т. 11. № 2. С. 4-7.

60. Кособрюхов A.A., Креславский В.Д., Храмов Р.Н., Браткова Л.Р., Щелоков Р.Н. Модифицирующее действие низкоэнергетического люминесцентного света на 625 нм на рост и фотосинтез растений // ДАН. 2000. 372 (6). С. 827-829.

61. Кудряшов Ю.Б. Радиационная биофизика. М.: Физматлит, 2004. С.448.

62. Кулинский В.Н. Активные формы кислорода и оксидативная модификация макромолекул: польза, вред и защита // Соросовский образ-ий журнал. 1999. №1.С.2-7.

63. Кузнецова Т.Н., Павлов С.Е. Методика применения физиотерапевтических средств (низкоэнергетических ик-лазеров) в тренировочном процессе пловцов: Методические разработки для преподавателей, аспирантов и студентов РГАФК. М.: Изд-во РГАФК, 1997. 54 с.

64. Кузьмичев В.Е., Каплан М.А., Чернова Г.В. Биологические эффекты низкоэнергетического лазерного излучения и нелинейное возбуждение биомолекул // Физическая медицина. 1996. Т.5. № 1-2. С. 65-69.

65. Лобко В.В., Кару Т.Й., Летохов B.C. Существенна ли когерентность низкоинтенсивного лазерного света при его воздействии на биологические объекты?//Биофизика. 1985. Т. 30, вып.З. С. 366-371.

66. Лупырь В.М., Самойлов Н.Г. Влияние лазеропунктуры на функциональные показатели организма млекопитающих // Радиобиология. 1990. т.ЗО. вып.5. С. 671-674.

67. Манк М. Биология развития млекопитающих. Методы. М.: Мир, 1990. 406 с.

68. Межевикина Л.М., Сахарова Н.Ю., Вепринцев Б.Н. В сб.: Проблемы сохранения и поддержания генетических коллекций лабораторных животных. Пущино, 1991, С. 102-112.

69. Меерсон Ф.З., Пшенникова М.Г. Адаптация к стрессорным ситуациям и физическим нагрузкам. М.: Медицина, 1988. 256 с.

70. Минц Р.И., Скопинов С.А., Яковлева С.В. Фотооптический отклик крови на низкоинтенсивный красный свет // Биофизика. 1990. № 6. С.998-1002.

71. Миронов A.A., Комиссарчик Я.Ю., Миронов В.А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицины. СПб: Наука, 1994. 400 с.

72. Михайлова С.Д., Соколов A.B., Семушкина Т.М., Сторожаков Г.И. Участие симпатической иннервации сердца в антиаритмическом эффекте внутрипредсердного лазерного облучения // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1998. 126 (11). С. 522-525.

73. Монич В.А., Малиновская С.Л., Монич Е.А. Монохроматизированный видимый свет, как фактор воздействия на биологические ткани // Нижегородский мед. журнал. 1992. № 1. С. 104-107.

74. Морозов И.С., Клейменова H.H. Влияние бромантана на физическую работоспособность лабораторных животных // Экспериментальная и физическая фармакология. 1998. т.61. №36. С. 51-53.

75. Москвин C.B., Ачилов A.A. Основы лазерной терапии. М.: Триада, 2008. 256 с.

76. Немцев И.З., Лапшин В.П. О механизме действия низкоинтенсивного лазерного излучения // Вопросы курортологии. 1997. №1. С. 22-24.

77. Овсянников В.А., Петров И.Б., Гельфонд М.Л., Мизгирев И.В. Расчеты биотепловых процессов для лазерных воздействий ближнего ИК-диапазона / Лазер и здоровье-99: материалы Междунар. Конгр. М., 1999. С. 468.

78. Олесин А.И., Максимов В.А., Мажара Ю.П., Павлова Р.Н., Лобанов Н. А., Дьячук Г.И. Биологическое действие лазерного излучения на функциональное состояние кардиомиоцитов // Патол. физиол. и эксперим. терапия. 1992. № 5-6. С. 17-20.

79. Перелыгина Л.А. Ультраструктура кардиомиоцитов в условиях комбинированного влияния на организм физической нагрузки и лазерного излучения // Фотобиология и экспериментальная фотомедицина. 1999. №1. С. 64-68.

80. Плавский В. Ю., Барулин Н.В. Влияние поляризации и когерентности оптического излучения низкой интенсивности на эмбрионы рыб // Журнал прикладной спектроскопии. 2008. т. 75. №6. С. 843-856.

81. Ремизов А.Н., Максина А.Г., Потапенко А.Я. Медицинская и биологическая физика: учеб. для вузов. М.: Дрофа, 2007. 558 с.

82. Рогаткин Д.А., Черный В.В. Низкоинтенсивная лазерная терапия. Взгляд физика на механизмы действия и опыт применения / Взаимодействие излучения с веществом. Иркутск: ИГУ, 1999. С.366-378.

83. Рылова М.Л. Методы исследования хронического действия вредных факторов среды в эксперименте. Ленинград: Медицина, 1964. 228 с.

84. Сазонтова Т.Г., Архипенко Ю.В. Роль свободнорадикальных процессов в адаптации организма к изменению уровня кислорода // Проблемы гипоксии: молекулярные, физиологические и медицинские аспекты. М.Воронеж: Изд-во «Истоки», 2004. 590 с.

85. Самойлов Н.Г. Морфологические основы лазерной терапии / Низкоинтенсивная лазерная терапия под ред. Москвина C.B., Буйлина В.А. М.: Техника, 2000. С. 95-114.

86. Сейфулла Р.Д., Орджоникидзе З.Г. Лекарства и БАД в спорте. М.: Литгерра, 2003. 320 с.

87. Семионкин Е.И. Применение монохроматического света гелий-неонового лазера в лечении трофических язв. Автореф.дисс.канд. М., 1983.

88. Сонина P.C. Расширение артериол подчелюстной мышцы лягушки под влиянием видимого света // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1976. №2. С. 142-144.

89. Суковатая И. Е., Кратасюк В. А., Межевикин В. В., Свидерская И. В., Есимбекова Е. Н., Немцев Е. В. Фотобиофизика. Красноярск: ИПК СФУ, 2008. 438 с.

90. Сучков A.B., Панюшкин В.В., Португалов Влияние янтарной кислоты и ее солей на физическую работоспособность мышей BALB/c / Янтарная кислота в медицине, пищевой промышленности, сельском хозяйстве. Пущино: ОНТИ ПНЦ РАН, 1996. С.195-199

91. Тондий Л.Д., Коробов A.M., Журавлев В.А., Посохов Н.Ф., Божко Н.П., Бондар В.Н., Лесная Т.А., Коробов В.А. Опыт использования фотонных матриц Коробова «Барва-Флекс» для нормализации артериального давления // 2008. URL: http://kor-pml.com/articles/228/.

92. Туманов В.П., Глущенко Е.В., Серов Г.Г. Влияние лазерного излучения на пролиферативную активность клеток в культуре // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1994. № 3. С. 313-315.

93. Турпаев К.Т. Активные формы кислорода и регуляция экспрессии генов // Биохимия. 2002. Т.61, вып. 3. С. 339-353.

94. Узденский А.Б. Клеточно-молекулярные механизмы фото динамической терапии. С-Петербург: «Наука»., 2010. 327 с.

95. Черкасов A.B., Порецкий Ю.А., Прончатов Г.Г. Лечебное применение полупроводниковых ИК-лазеров / Применение полупроводниковых лазеров и светодиодов в биомедицине и медицинском приборостроении. Калуга, 1989. С. 77-78.

96. Черников A.B., Гудков C.B., Штаркман И.Н., Брусков В.И. Кислородный эффект при тепловых повреждениях ДНК // Биофизика. 2007. Т. 52. №2. С. 244-251.

97. Шейко Е.А., Шихлярова А.И., Златник Е.Ю., Закора Г.И., Иваненко Е.С. Воздействие монохроматического света на клетки культуры фибробластов кожи L929 // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2006. Т. 141 (6). С.689-691.

98. Шмидт В. Оптическая спектроскопия для химиков и биологов. М. Техносфера, 2007. 368 с.

99. Шорина Л.Н., Сметанина М.Д., Петров В.В., Брилль Г.Е. Влияние пантовых препаратов на выносливость белых крыс к физической нагрузке // Современные наукоемкие технологии. 2007. №6. С. 13-15.

100. Штаркман И.Н., Гудков C.B., Черников A.B., Брусков В.И. Образование перекиси водорода и гидроксильных радикалов в водных растворах L-аминокислот при воздействии рентгеновского излучения и тепла // Биофизика. 2008. Т. 53. № 1.С. 5-13.

101. Шутка Б.В., Ваняев Б.И. Ультраструктурные изменения в кардиомиоцитах и капиллярных сердечной мышцы при изготовлении ваготомии и физической нагрузки // Бюл. эскперим биологии и медицины. 1986. Т. 101. №9. С.353-355.

102. Ablon G. Combination 830-nm and 633-nm light-emitting diode phototherapy shows promise in the treatment of recalcitrant psoriasis: preliminary findings // Photomed Laser Surg. 2010. Feb. 28(1). P. 141-6.

103. Alexandratou E., Yova D., Handris P., Kletsas D., Loukas S. Human fibroblast alterations induced by low power laser, irradiation at the single cell level using confocal microscopy // Photochem Photobiol Sci. 2002. 1. P. 547-552.

104. Bers DM. Calcium fluxes involved in control of cardiac myocyte contraction // Circ Res. 2000. Aug 18;87(4). P. 275-81.

105. Breitbart H., Levinshal T., Cohen N., Friedmann H., Lubart R. Changes in calcium transport in mammalian sperm mitochondria and plasma membrane irradiated at 633 nm (He-Ne laser) //J Photochem Photobiol B. 1996. 34(2-3). P. 117121.

106. Briata P., Franzi A.T., Gherzi R. AP-1 activity during normal human keratinocyte differentiation: evidence for a cytosolic modulator of AP-l/DNA binding //Exp Cell Res. 1993. 204. P. 136-146.

107. Brilla CG, Janicki JS, Weber KT Impaired diastolic function and coronary reserve in genetic hypertension. Role of interstitial fibrosis and medial thickening of intramyocardial coronary arteries // Circ Res. 1991. Jul; 69(1). P. 107-15.

108. Butow R.A., Avadhani N.G. Mitochondrial signaling: The retrograde response // Mol Cell. 2004. 14. P. 1-15.

109. Byrnes K.R., Wu X., Waynant R.W., Ilev I.K., Ande J.J. Low Power Laser Irradiation Alters Gene Expression of Olfactory Ensheathing Cells In Vitro // Lasers Surg Med. 2005. 37. P. 161-171.

110. Capasso J.M., Strobeck J.E., Sonnenblick E.H. Myocardial mechanical alterations during gradual onset long-term hypertension in rats // Am J Physiol. 1981. Sep. 241(3). P. H435-41.

111. Chaudhry H., Lynch M., Schomacker K., Birngruber R., Gregory K., Kochevar I. Relaxation of vascular smooth muscle induced by low-power laser irradiation//Photochem Photobiol. 1993. 58. P. 661-669.

112. Chen C-H., Hung H-S., Hsu S-h. Low-Energy Laser Irradiation Increases Endothelial Cell Proliferation, Migration, and eNOS Gene Expression Possibly Via PI3K Signal Pathway // Lasers Surg Med. 2008. 40. P. 46-54.

113. Coleman B., Weiss A., Filkenbrand S., Silbermann M. Age and exercise-related changes in myocardial mitochondria in mice // Acta Histochem. 1988. 83. P. 81-96.

114. Davies K.J. The broad spectrum of responses to oxidants in proliferating cells: a new paradigm for oxidative stress // IUBMB Life. 1999. 48. P. 41-47.

115. Day RM, Suzuki YJ. Cell proliferation, reactive oxygen and cellular glutathione // Dose Response. 2006. 1, 3. P.425-42.

116. Drugova O., Zhotnikova O., Monich V., Mukhins I. Phototherapeutic effects of red light on processes of lipid peroxidation in myocardium tissue of rats after ischemia// SPIE. 2000. 4159. P.48-50.

117. Dube A., Bock C., Bauer E., Kohli R., Gupta P.K., Greulich K.O. He-Ne laser irradiation protects lymphoblasts from UVA-induced DNA damage //Radiat Environ Biophys. 2001. Vol. 40. P. 77-82.

118. Duda DG, Fukumura D, Jain RK. Role of eNOS in neovascularization: NO for endothelial progenitor cells // Trends Mol Med. 2004. 10(4). P.143-145.

119. Eichler M., Lavi R., Stainberg A., Lubart R. Flavins are source of visible-light-induced free radical formation in cells // Lasers in surgery and medicine. 2005. 37. P. 314-319.

120. Erdle BJ, Brouxhon S, Kaplan M, Vanbuskirk J, Pentland AP. Effects of continuous-wave (670-nm) red light on wound healing // Dermatol Surg. 2008. 34(3). P. 320-5.

121. Estler C.J., Ammon H.P., Herzog C. Swimming capacity of mice after prolonged treatment with psychostimulants. I. Effects of caffeine on swimming performance and cold stress // Psychopharmacology. 1978. Vol.58, № 2. P. 161-166.

122. Estler C.J., Gabrys M.K. Swimming capacity of mice after prolonged treatment with psychostimulants. III. Effects of fencamfamine on swimming endurance and availability of metabolic substrates // Psychopharmacology. 1979. Vol.63, №3. P. 281-284.

123. Feelisch M., Kolb-Bachofen V., Liu D., Lundberg J.O., Revelo L.P., Suschek C.V., Weller R.B. Is sunlight good for out heart? // European heart journal. 2010. Vol. 31. P. 1041-1045.

124. Fruehauf J.P., Meyskens F.L. Reactive oxygen species: a breath of life or death? // Clin Cancer Res 2007. 13 (3). P. 789-795.

125. Fujihara NA, Hiraki KRN, Marques MM. Irradiation at 780 nm Increases Proliferation Rate of Osteoblasts Independently of Dexamethasone Presence // Lasers Surg Med. 2006. P. 38. P. 332-336.

126. Gamaley I A, Klyubin IV. Roles of reactive oxygen species: signaling and regulation of cellular functions // Int Rev Cytol. 1999. 188. P. 203-55.

127. Garavello I., Baranauskas V., da Cruz Hofling M.A. The effect of low laser irradiation on angiogenesis in injured rat tibiae // Histol Histopayhol. 2004. 19. P. 43-48.

128. Gao X, Chen T, Xing D, Wang F, Pei Y, Wei X. Single Cell Analysis of PKC Activation During Proliferation and Apoptosis Induced by Laser Irradiation. // J Cell Physiol. 2006. 206. P. 441-448.

129. Gao X., Xing D. Molecular mechanisms of cell proliferation induced by low power laser irradiation // J Biomed Sci. 2009. Jan 12. 16. P. 1-16.

130. Gavish L., Asher Y., Becker Y., Kleinman Y. Low level laser irradiation stimulates mitochondrial membrane potential and disperses subnuclear promyelocytic leukemia protein // Lasers Surg Med. 2004. 35(5). P. 369-376.

131. Gavish L., Perez L., Gertz S.D. Low-level laser irradiation modulates matrix metalloproteinase activity and gene expression in porcine aortic smooth muscle cells // Lasers Surg Med. 2006. 38. P. 779-786.

132. Gourgouliatos Z.F., Welch A.J., Diller K.R., Aggarwal S.J Laser irradiation induced relaxation of blood vessels in vivo // Lasers Surg Med. 1990. 10. P. 524-532.

133. Grossman N, Schneid N, Reuveni H, Halevy S, Lubart R. 780 nm low power diode laser irradiation stimulates proliferation of keratinocyte cultures: involvement of reactive oxygen species // Lasers Surg Med. 1998. 22. P. 212-218.

134. Grzelak A, Rychlik B, Bartosz G. Light-dependent generation of reactive oxygen species in cell culture media // Free Radic Biol Med. 2001. 30. P. 1418-1425.

135. Halliwell N., Gutteridge J.M.C. Free radicals in biology and medicine. Oxford, New York: University Press, 1999. 936 p.

136. Hamblin M.R. Mechanisms of low level light therapy // 2008. URL: http ://www.photobiology. info/Hamblin.html#TOP.

137. Hashimoto A., Miyakoda G., Hirose Y., Mori T. Activation of endothelial nitric oxide synthase by cilostazol via a cAMP/protein kinase A- and phosphatidylinositol 3-kinase/Akt-dependent mechanism // Atherosclerosis. 2006. 189(2). P. 350-357.

138. Hawkins D, Abrahamse H. Effect of multiple exposures of low-level laser therapy on the cellular responses of wounded human skin fibroblasts // Photomed Laser Surg. 2006. 24(6). P. 705-714.

139. Hegele-Hartung C., Schumacher A., Fisher B. Effects of visible light and room temperature on the ultrastructure of preimplantation rabbit embryos: a time course study // Anat Embryol. 1991. 183. P. 559-571.

140. Hu W-P., Wang J-J., Yu C-L., Lan C-CE., Chen G-S., Yu H-S. HeliumNeon Laser Irradiation Stimulates Cell Proliferation through Photostimulatory Effects in Mitochondria // J Investigat Dermatol. 2007. 127. P. 2048-2057.

141. Huang Y.Y., Chen A.C., Carroll J.D., Hamblin M.R. Biphasic dose response in low level light therapy // Dose Response. 2009. 7(4). P. 358-83.

142. Ichihashi M., Ueda M., Budiyanto A., Bito T., Oka M., Fukunaga M. UV-induced skin damage // Toxicology. 2003. 189. P. 21-39.

143. Ikeuchi M., Koyama T., Takahashi J., Yazawa K. Effects of Astaxanthin supplementation on exercise-induced fatigue in mice // Biol. Pharm. Bull. 2006. Vol. 29. P. 2106-2110.

144. Jarmak A., Zawilska J.B., Nowak J.Z. The effect of light with various wavelengths and impulse times on nocturnal suppression of N'acetyltransferase activation by serotonin in the pineal gland of the chick // Klin Oczna. 1996. 98(6). P. 417-22.

145. Jou MJ, Jou SB, Chen HM, Lin CH, Peng TI. Critical role of mitochondrial reactive oxygen species formation in visible laser irradiation-induced apoptosis in rat brain astrocytes (RBA-1) // J Biomed Sci. 2002. 9. P. 507-516.

146. Kaneko M, Singal PK, Dhalla NS. Alterations in heart sarcolemmal Ca2(+)-ATPase and Ca2(+)-binding activities due to oxygen free radicals // Basic Res Cardiol. 1990. 85(1). P. 45-54.

147. Kara T.I. Molecular mechanism of the therapeutic effect of low-intensity laser radiation // Lasers Life Sci. 1988. 2. P. 53-74.

148. Kara T.I. Effect of visible radiation on cultured cells // Photochem and Photobiol. 1990. Vol. 52. №6. P. 1089-1098.

149. Kara T. Biophysical basis of low-power laser effects / Biologic effects of light. Editors Holink Jung, Berlin. New York, 1996. P. 246-248.

150. Kara T. Primary and secondary mechanisms of action of visible to near-IR radiation on cells // J Photochem Photobiol B. 1999. 49. P. 1-17.

151. Kara TI. Mitochondrial Signaling in Mammalian Cells Activated by Red and Near-IR Radiation // Photochem Photobiol. 2008. 84P. 1091-1099.

152. Kara T., Pyatibrat L., Kalendo G. Irradiation with He-Ne laser increases ATP level in cells cultivated in vitro // J Photochem Photobiol B. 1995. 27. P. 219— 223.

153. Kara T.I., Pyatibrat L.V., Kalendo G.S. Photobiological modulation of cell attachment via cytochrome c oxidase // Photochem Photobiol Sci. 2004. 3. P. 211— 216.

154. Kara T.I., Pyatibrat L. V., Afanasyeva N.I. Cellular Effects of Low Power Laser Therapy Can be Mediated by Nitric Oxide // Lasers Surg Med. 2005. 36. P. 307314.

155. Kara T.I., Pyatibrat L.V., Kolyakov S.F., Afanasyeva N.I. Absorption measurements of a cell monolayer relevant to phototherapy: reduction of cytochrome c oxidase under near IR radiation // J Photochem Photobiol B. 2005. 81(2). P. 98-106.

156. Kara T., Smolyaninova N., Zelenin A. Long-term and short-term responses of human lymphocytes to He-Ne laser radiation // Lasers in the life sciences. 1991.4(3). P.167-178.

157. Karu TI, Tiphlova OA. Effect of irradiation with monochromatic visible light on cAMP content in Chinese hamster fibroblasts // II Nuovo Cimento. 1987. 9. P. 1245-1251.

158. Kato M., Shinizawa K., Yoshikawa S. Cytochrome oxidase is a possible photoreceptor in mitochondria // Photobiochem. Photobiophys. 1981. Vol. 2. P. 26369.

159. Kaufmann R. Interaction of laser light with lipoid systems: some base guide lines // Lasers Biol. And Med.: Proc. NATO. 1980. P. 69-75.

160. Khadra M, Lyngstadaas SP, Haanass HR, Mustafa K. Determining optimal dose of laser therapy for attachment and proliferation of human oral fibroblasts cultured on titanium implant material // J Biomed Mater Res. 2005. 73A. P. 55-62.

161. Khanna A, Shankar LR, Keelan MH, Kornowski R, Leon M, Moses J, Kipshidze N. Augmentation of the expression of proangiogenic genes in cardiomyocytes with low dose laser irradiation in vitro // Cardiovasc Radiat Med. 1999. 1(3). P. 265-269.

162. Kozlov V.l., Tumanov V.P., Baibekov I.M., Terman O.A. Structural and functional aspects of laser irradiation and magnetic field influence on biological objects // Biomedical Optics. SPIE. 1993. V. 2180. P. 49-59.

163. Lane N. Cell biology: power games // Nature. 2006. 26. 443(7114). P. 901-3.

164. Lavi R., Stainberg A., Shneyvays V., Hochauser E., Isaac A., Zinman T., Friedmann H., Lubart R. Detailed analysis of reactive oxygen species induced byvisible light in various cell types // Lasers in surgery and medicine. 2010. 42. P. 473480.

165. Lukas A, Bose R. Mechanism of frequency-induced potentiation of contractions in isolated rat atria // N-S Arch. Pharmacol. 1986. V.334. P. 480-487

166. Malinovskaya S.L., Drugova O.V., Monich V.A., Mukhina I.V. Effect of low-intensity luminescent radiation on recovery of heart function in postischemic period // Bull Exp Biol Med. 1999 №9. 920-921

167. Malinovskaya S.L., Monich V.A, Artifeksova A.A. Effect of low-intensity laser irradiation and wideband red light on experimentally ischemized myocardium // Bull Exp Biol Med. 2008. May;145(5). P.573-5

168. Manso A.M., Encabo A., Ferrer M., Balfagon G., Salaices M., Marin J. Changes of cardiac calcium homeostasis in spontaneously hypertensive rats // J Auton Pharmacol. 1999. Apr; 19(2). P. 123-30.

169. Miller D.M., Buettner G.R., Aust S.D. Transition metals as catalysts of "autoxidation" reaction // Free Radic Biol Med. 1990. V.8. P. 95-108.

170. Miller D., Malov S. Quantitative determination of stress-induced myocardial damage in rats // Pharmocol. Biochem. Behav. 1977. 7. P. 139-143.

171. Mirsky N, Krispel Y, Shoshany Y, Maltz L, Oron U. Promotion of angiogenesis by low energy laser irradiation // Antioxid Redox Signal. 2002. 4(5). P. 785-790.

172. Murase T., Haramizu S., Shimotoyodome A., Tokimitsu I., Hase T. Green tea extract improves running endurance in mice by stimulating lipid utilizationduring exercise // Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 2006. Vol. 290. №6. P. R1550-6.

173. Nakayama T., Noda Y., Goto Y., Mori T. Effects of visible light and other environmental factors on the production of oxygen radicals by hamster embryos // Theriogenology. 1994. vol. 41, № 2. P. 499-510.

174. Nishizuka Y. The molecular heterogeneity of protein kinase C and its implications for cellular regulation //Nature. 1988. 334. P.661-665.

175. Oh S.J., Gong S.P., Lee, S.T. Light intensity and wavelength during embryo manipulation are important factors for maintaining viability of preimplantation embryos in vitro // Fertil. Steril. 2007. Vol. 88. Issue 4. P. 1150-1157.

176. Oh T.W., Ohta F. Dose-dependent effect of capsaicin on endurance capacity in rats // Br J Nutr. 2003. Vol. 90. №3. P. 515-520.

177. Olson J.L. Schimmerling W. Laser microirradiation of cerebellar neuron in culture. Electrophysiological and morphological effects // Cell Biophys. 1991. Vol. 3.P. 349-371.

178. Pan Q., Qiu W.Y, Huo Y.N., Yao Y.F., Lou M.F. Low levels of hydrogen peroxide stimulate corneal epithelial cell adhesion, migration, and wound healing // Invest Ophthalmol Vis Sci. 2011. Mar 25;52(3). P. 1723-34.

179. Parsons SJ, Parsons JT. Src family kinases, key regulators of signal transduction // Oncogene. 2004. 23(48). P. 7906-7909.

180. Passarella S. He-Ne laser irradiation of isolated mitochondria // J Photochem Photobiol B 3. 1989. 3(4). P. 642-3.

181. Passarella S., Casamassima F., Molinari S. et al. Increase of proton electrochemical potential and ATP synthesis in rat liver mitochondria irradiated in vitro by He-Ne-laser// FEBS Lett. 1994.Vol. 175. P. 95-99.

182. Passarella S., Perlino E., Quagliariello E. Evidence of changes induced by He-Ne-laser irradiation in the biochemical properties of rat liver mitochondria // Bioelectrochem. Bioenerg. 1993. Vol. 10. P. 185-198.

183. Pastore D., Greco M., Passarella S. Specific helium-neon laser sensitivity of the purified cytochrome c oxidase // Int J Radiat Biol. 2000. 76. P. 863-70.

184. Patrolla A.K., Barnes C., Hackett D., Tchounhow P.B. Potassium dichromate induced cytotoxicity, genotoxicity and oxidative stress in human liver carcinoma (HepG2) cells // Int. J. Res. Public Health 2009. 6 (2). P. 643-53.

185. Pereira AN, Eduardo CP, Maison E, Marques MM. Effect of low-power laser irradiation on cell growth and procollagen synthesis of cultured fibroblasts // Lasers Surg Med. 2002. 31. P. 263-267.

186. Perez G, Petroff M, Mattiazzi A. Rested-state contractions and rest potentiation in spontaneously hypertensive rats // Hypertension. 1993. V. 22. P. 306314.

187. Pourzarandian A, Watanabe H, Ruwanpura S, Aoki A, Ishikawa I. Effect of low level Er.YAG laser irradiation on cultured human gingival fibroblasts // J Periodontol. 2005. 76. P. 187-193.

188. Pustisek N, Situm M. UV-radiation, apoptosis and skin // Coll Antropol. 2011. Sep;35. Suppl 2. P.339-41.

189. Roberts R.M. Embryo culture conditions: what embryos like best // Endocrinology. 2005. May. 146(5). P. 2140-1.

190. Ryan M.T., Hoogenraad N.J. Mitochondrial-nuclear communications // Annu Rev Biochem. 2007. 76. P. 701-722.

191. Saczko J., Kulbacka J., Chwilkowska A., Drag-Zalesiniska M., Wysocka T., Lugowski M., Banas T. The influence of photodynamic therapy on apoptosis in human melanoma cell line // Folia Histochem Cytobiol. 2005. 43(3). P.129-32.

192. Sauer H., Wartenberg M., Hescheler J. Reactive oxygen species as intracellular messengers during cell growth and differentiation // Cell Physiol Biochem. 2001. 11. P. 173-186.

193. Scandalios J.G. Oxidative stress: molecular perception and transduction of signals triggering antioxidant gene defenses // Braz J Med Biol Res. 2005. 38(7). P. 995-1014.

194. Schindl A., Merwald H., Schindl L., Kaun C., Wojta J. Direct stimulatory effect of low-intensity 670 nm laser irradiation on human endothelial cell proliferation // Br J Dermatol. 2003. 148(2). P. 334-336.

195. Schroeder P, Pohl C, Calles C, Marks C, Wild S, Krutmann J. Cellular response to infrared radiation involves retrograde mitochondrial signalling // Free Radic Biol Med. 2007. 43. P. 128-135.

196. Schumacher A., Fischer B. Influence of visible light and room temperature on cell proliferation in preimplantation rabbit embryos // J. Reprod. Fertil. 1988. vol. 4, no. l.P. 197-204

197. Seger R., Krebs E.G. The MAPK signalling cascade // FASEB J. 1995. 9. P. 726-735.

198. Shefer G, Barash I, Oron U, Halevy O. Low-energy laser irradiation enhances de novo protein synthesis via its effects on translation-regulatory proteins in skeletal muscle myoblasts // Biocem Biophys Acta. Mol Cell Res. 2003. 1593. 131— 139.

199. Shefer G, Oron U, Irintchev A, Wernig A, Halevy O. Skeletal muscle cell activation by low-energy laser irradiation: a role for the MAPK/ERK pathway // J Cell Physiol. 2001. 187. P. 73-80.

200. Shefer G., Partridge T.A., Heslop L., Gross J.G., Oron U., Halevy O. Low-energy laser irradiation promotes the survival and cell cycle entry of skeletal muscle satellite cells // J Cell Sci. 2002. 115(Pt 7). P. 1461-1469.

201. Shibata H., Ghishan F.K. Intestinal brush border calcium uptake in spontaneously hypertensive rats and their genetically matched WKY rats // Proc Soc Exp Biol Med. 1991. 196(1). P. 54-60.

202. Shimizu N., Mayahara K., Kiyosaki T., Yamaguchi A., Ozawa Y., Abiko Y. Low-Intensity Laser Irradiation Stimulates Bone Nodule Formation Via InsulinLike Growth Factor-I Expression in Rat Calvarial Cells // Lasers Surg Med. 2007. 39. P. 551-559.

203. Skulachev V.P. Mitochondrial physiology and pathology; concepts of programmed death of organells, cells, and organisms // Mol. Aspeckt. Med. 1999. Vol. 20. P. 139-184.

204. Stadler I, Evans R, Kolb B, Nairn JO, Narayan V, Buehner N, Lanzafame RJ. In vitro effects of low-level laser irradiation at 660 nm on peripheral blood lymphocytes // Lasers Surg Med. 2000. 27. P. 255-261.

205. Stein A, Benayahu D, Maltz L, Oron U. Low-level laser irradiation promotes proliferation and differentiation of human osteoblasts in vitro // Photomed Laser Surg. 2005. 23(2). P. 161-166.

206. Stocker R, Keaney JJF. Role of Oxidative Modifications in Atherosclerosis // Physiol Rev. 2004. 84. P. 1381-1478.

207. Tafur J., Mills P.J. Low-intensity therapy: exploring the role of redox mechanisms // Photomedicine and Laser surgery. 2008. Vol. 26. 4. P. 323-328.

208. Takahashi M., Saka N., Takahashi H., Kanai Y., Schultz R.M., Okano A. Assessment of DNA damage in individual hamster embryos by comet assay // Mol. Reprod. Dev. 1999. vol. 54. no. 1. P. 1-7.

209. Takenaka M., Horiuchi T., Yanagimachi R. Effects of light on development of mammalian zygotes // Proc Natl Acad Sci USA. 2007. 104(36). P. 14289-93.

210. Thannickal VJ, Fanburg BL. Reactive oxygen species in cell signaling // Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2000. 279(6). P. L1005-28.

211. Tuby H, Maltz L, Oron U. Modulations of VEGF and iNOS in the Rat Heart by Low Level Laser Therapy are Associated With Cardioprotection and Enhanced Angiogenesis // Lasers Surg Med. 2006. 38. P. 682-688.

212. Tuby H, Maltz L, Oron U. Low-Level Laser Irradiation (LLLI) Promotes Proliferation of Mesenchymal and Cardiac Stem Cells in Culture // Lasers Surg Med. 2007. 39. P. 373-378.

213. Umaoka Y., Noda Y., Nakayama T., Narimoto K, Mori T, Iritani A. Effect of visual light on in vitro embryonic development in the hamster // Theriogenology. 1992. vol. 38. no. 6. P. 1043-1054.

214. Van Breugel HH, Bar PR. He-Ne laser irradiation affects proliferation of cultured rat Schwann cells in a dose dependent manner // J Neurocytol. 1993. 22(3). P. 185-190.

215. Ventura-Clapier R. Exercise training, energy metabolism, and heart failure // Appl Physiol Nutr Metab. 2009. 34(3). P. 336-9.

216. Vinck EM, Cagnie BJ, Cornelissen MJ, Declercq HA, Cambier DC. Increased fibroblast proliferation induced by light emitting diode and low power laser irradiation // Lasers Med Sci. 2003. 18(2). P. 95-99.

217. Ward J.F. DNA damage produced by ionizing radiation in mammalian cells: identities, mechanisms of formation and reparability // Prog. Nucl. Acid. Res. Mol. Biol. 1988. V. 35. P. 95-125.

218. Xu X, Zhao X, Liu TC-Y, Pan H. Low-Intensity Laser Irradiation Improves the Mitochondrial Dysfunction of C2C12 Induced by Electrical Stimulation //Photomed Laser Surg. 2008. 26(3). P. 197-202.

219. Yu W, Nairn JO, Lanzafame RJ. The effect of laser irradiation on the release of bFGF from 3T3 fibroblasts // Photochem Photobiol. 1994. 2. P.167-170.

220. Yu W, Nairn JO, McGowan M, Ippolito K, Lanzafame RJ. Photomodulation of oxidative metabolism and electron chain enzymes in rat liver mitochondria // Photochem Photobiol. 1997. 66(6). P.866-871.

221. Zhang J, Xing D, Gao X. Low-Power Laser Irradiation Activates Src Tyrosine Kinase Through Reactive Oxygen Species-Mediated Signaling Pathway // J Cell Physiol. 2008. 217(2). P.518-528.

222. Zhang W., Wu C., Pan W., Tian L., Xia J. Low-power Helium-Neon laser irradiation enhances the expression of VEGF in murine myocardium // Chinese Medical Journal. 2004. 117 (10). P. 1476-1480.

223. Zhang Y, Song S, Fong C-C, Tsang C-H, Yang Z, Yang M. cDNA microarray analysis of gene expression proteins in human fibroblast cells irradiation with red light // J Invest Dermatol. 2003. 120. P. 849-857.