Использование мезенхимных стромальных стволовых клеток для минимизации последствий действия облучения экспериментальных животных тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.03.03, кандидат наук Полякова Маргарита Вячеславовна

• Полякова Маргарита Вячеславовна
• кандидат наук
• 2019

Оглавление диссертации кандидат наук Полякова Маргарита Вячеславовна

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Действие ионизирующего излучения на живые организмы

1.1.2. Становление понятия и начало изучения проблемы

1.1.3. Повреждение и репарация ДНК в ответ на непосредственное действие

ионизирующего излучения на клетку

1.1.4. «Немишенные» эффекты облучения и их роль в реакции клеток на

ионизирующее излучение

1.1.5. Повреждающее действие ионизирующего излучения на органы и ткани

организма

1.1.6. Терапевтические мероприятия, направленные на нивелирование

последствий действия ионизирующего излучения

1.2. Потенциал мультипотентных мезенхимных стромальных клеток в терапии

эффектов ионизирующего излучения

1.2.1. Природа и функции мультипотентных мезенхимных стромальных клеток

1.2.2. Возможности и перспективы применения мультипотентных мезенхимных

стромальных клеток в медицине

1.2.3. Механизм терапевтического действия мультипотентных мезенхимных

стромальных клеток на облученные организмы

1.2.4. Мультипотентные мезенхимные стромальные клетки как котрансплантат

при трансплантации гемопоэтических стволовых клеток

1.2.5. Терапевтическое действие мультипотентных мезенхимных стромальных

клеток в зоне повреждения

1.2.6. Паракринный механизм терапевтического эффекта мультипотентных

мезенхимных стромальных клеток

3

1.3. Внеклеточные везикулы как механизм межклеточной коммуникации и

сигналинга, их участие в физиологических и патофизиологических

процессах организма

1.3.1. История открытия и изучения внеклеточных везикул

1.3.2. Классификация, биогенез и выделение внеклеточных везикул

1.3.3. Особенности состава и функции внеклеточных везикул

1.3.4. Терапевтический и диагностический потенциал внеклеточных везикул

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Выделение и ведение клеточных культур

2.2. Мультипотентные мезенхимные стромальные клетки костного мозга

человека

2.3. Консервация и подготовка клеток для последующих манипуляций

2.4. Мультипотентные мезенхимные стромальные клетки жировой ткани крысы и

человека

2.5. Характеристика культур стволовых клеток

2.6. Выделение внеклеточных везикул

2.7. Просвечивающая электронная микроскопия (ПЭМ)

2.8. Анализ траекторий наночастиц (NTA)

2.9. Экспериментальные группы

2.10. Измерение веса животных

2.11. Поведенческий тест «Открытое поле»

2.12. Лазерная корреляционная спектроскопия (ЛКС)

2.13. Исследование изменений в картине крови

2.14. Оценка миграции ММСК

2.15. Гистологическое исследование селезенки, печени и поджелудочной

железы

4

2.16. Индекс повреждения тканей исследуемых органов

2.17. Статистическая обработка данных

ГЛАВА 3. ИССЛЕДОВАНИЕ ДЕЙСТВИЯ МУЛЬТИПОТЕНТНЫХ

МЕЗЕНХИМНЫХ СТРОМАЛЬНЫХ КЛЕТОК КОСТНОГО МОЗГА

ЧЕЛОВЕКА НА ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ПОСЛЕ ОСТРОГО

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ОБЛУЧЕНИЯ

3.1. Исследование изменений физиологических параметров после действия гамма-

излучения и введения ММСК КМ на организменном уровне

3.2. Исследование особенностей клеточных реакций после действия гамма-

излучения и введения ММСК КМ

3.3. Исследование сдвигов в субфракционном составе сыворотки крови после

действия гамма-излучения и введения ММСК КМ

3.4. Гистологическое исследование изменений на органном уровне после действия

гамма-излучения и введения ММСК КМ

3.5. Оценка миграции ММСК в облученном организме

ГЛАВА 4. ВЫДЕЛЕНИЕ И ХАРАКТЕРИСТИКА ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ВЕЗИКУЛ,

ПРОДУЦИРУЕМЫХ СТВОЛОВЫМИ КЛЕТКАМИ

ГЛАВА 5. ИССЛЕДОВАНИЕ ВНЕКЛЕТОЧНЫХ ВЕЗИКУЛ В КАЧЕСТВЕ

ЭФФЕКТОРОВ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ММСК КМ

ЧЕЛОВЕКА НА ОБЛУЧЕННЫХ ЖИВОТНЫХ

5.1. Изменение прироста массы тела животных после воздействия гамма-

излучения и введения внеклеточных везикул

5.2. Реакция системы кроветворения на облучение и после введения внеклеточных

везикул

5.3. Сдвиги в субфракционном составе сыворотки крови животных после

воздействия гамма-излучения и введения внеклеточных везикул

5

5.4. Изменения на органном уровне после воздействия гамма-излучения и

введения внеклеточных везикул

5.5. Оценка роли внеклеточных везикул в реализации терапевтического эффекта

мезенхимных стромальных стволовых клеток костного мозга человека

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Использование мезенхимных стромальных стволовых клеток для минимизации последствий действия облучения экспериментальных животных»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы

Разработка новых способов терапии острых и отдаленных последствий

облучения обусловлена все возрастающей террористической угрозой и

возможностью техногенных катастроф на ядерных объектах (UNSCEAR, 2018).

Острые эффекты высоких доз радиации, приводящие к лучевой болезни, изучены

достаточно хорошо. Наиболее ярко они проявляются в клетках костного мозга,

желудочно-кишечном тракте, сердечно-сосудистой и центральной нервной

системах (Mortazavi S.M.J. et al., 2016).

Облучение в сублетальных дозах с течением времени приводит к развитию

симптомокомплекса, сходного с синдромом полиорганной недостаточности, а

затем и к отказу отдельных органов (Williams J.P., McBride W.H., 2011). Хотя эти

эффекты считаются дозозависимыми, прогноз отказа того или иного органа

затруднен в связи с различной радиочувствительностью даже клеток одной ткани

(Williams J.P., McBride W.H., 2011), не говоря уже об индивидуальной

радиочувствительности.

В связи с этим появляется необходимость разработки эффективной терапии,

способной воздействовать не только на критически поврежденный орган, но и на

весь организм. Кроме того, обязательным условием должна быть возможность

применения данной терапии в течение короткого времени после повреждающего

воздействия, чтобы предотвратить смерть и защитить облученные клетки. В

настоящее время как прогрессивную методику такого подхода интенсивно

изучают трансплантацию мультипотентных мезенхимных стромальных клеток

костного мозга (ММСК КМ) (Shukai Q. et al., 2014; DiCarlo, A.L. et al., 2017).

Использование ММСК как профилактического и терапевтического средства

для минимизации последствий действия облучения изучено недостаточно.

Показано, что однократное введение ММСК мышам после облучения их гамма-

радиацией в дозе 9,5 Гр увеличивало долю выживших (Lange C. et al., 2011).

Существуют три основных механизма влияния ММСК на кроветворение. Во-

7

первых, несмотря на кратковременное повышение уровня цитокинов после

облучения, влияние их незначительно вследствие повреждения рецепторов

клеток. Известно, что ММСК секретируют большое количество цитокинов in

vitro, в том числе гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий

фактор (GM-CSF), стромальный клеточный фактор (SDF), фактор стволовых

клеток (SCF), тромбопоэтин (TPO), интерлейкины IL-6, IL-11 и др (Андреева Е.Р.,

Буравкова Л.Б., 2013). IL-6 является фактором, выполняющим несколько

функций: активирует иммунную и кроветворную системы, В-клетки и может

нормализовать количество тромбоцитов и гранулоцитов. IL-11 может усиливать

пролиферацию всех клеток крови. SDF индуцирует трансэндотелиальную

миграцию гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) в костном мозге. Некоторым

из перечисленных цитокинов (TPO, SCF) присущи радиомитигирующие свойства

(Гребенюк А.Н., Легеза В.И., Тарумов Р.А., 2014).

Во-вторых, полное восстановление кроветворной микросреды, разрушенной

облучением, является сложным и происходит медленно. МСК могут

дифференцироваться в стромальные клетки, клетки фибробластов и жировые

клетки, тем самым воссоздавая микросреду и улучшая количество

гемопоэтических островков (Liu S. et al., 2011).

В-третьих, ММСК защищают гемопоэтические клетки от апоптоза и

ускорят процесс восстановления клеточного цикла после облучения (Zhang J. et

al., 2016).

Таким образом, введение ММСК восстанавливает нормальный клеточный

цикл, улучшает параметры микросреды, ускоряет распространение и

дифференцировку стволовых клеток, и может быть эффективной стратегией для

лечения лучевой болезни (Hu Y. et al., 2002).

В настоящее время в качестве эффекторов паракринного механизма

терапевтического действия ММСК на облученный организм интенсивно изучают

внеклеточные везикулы (ВВ), которые секретируются практически всеми

клетками организма (Lamichhane T.N. et al., 2014). Полагают, что эти частицы

являются активными участниками процессов межклеточной коммуникации и

8

взаимодействия клеток с микроокружением, ярким примером чего является их

вовлеченность в реализацию механизма развития эффекта свидетеля под

действием ионизирующего излучения (Tünde S. et al., 2018).

Терапия внеклеточными везикулами имеет ряд преимуществ перед

клеточной терапией. Во-первых, снимается вопрос о реакции иммунитета на

чужеродный объект, так как внеклеточные везикулы характеризуются более

низкой иммуногенностью, чем секретирующие их клетки (Marote A. et al., 2016).

Во-вторых, при введении в кровоток значительный процент трансплантируемых

клеток может задерживаться в легких, в то время как внеклеточные везикулы

свободно распространяются по организму, практически без потерь достигая

поврежденных органов (Katsuda T. et al., 2013). Тот факт, что биохимический

состав содержимого внеклеточных везикул в некоторой степени отражает состав

секретирующей их клетки, позволяет рассматривать эти микрочастицы в роли

посредников в реализации эффектов изучаемых клеток (Ferguson S.W., Megna J.S.,

Nguyen J., 2018).

Актуальность исследований внеклеточных везикул подтверждает факт

вручения Нобелевской премии «за открытие системы везикулярного транспорта»

в 2013 году.

Несмотря на то, что механизмы действия ММСК и выделяемых ими

факторов изучены недостаточно, перспективы их применения, в частности, для

нивелирования последствий действия облучения, представляются весьма

многообещающими.

Цель работы заключалась в оценке терапевтического потенциала

мультипотентных мезенхимных стромальных клеток и их продуктов для

нивелирования последствий острого гамма-облучения организма и изучении

патофизиологических механизмов, вовлеченных в реализацию их эффектов.

Задачи исследования:

1. Изучение эффектов мультипотентных мезенхимных стромальных клеток

после острого гамма-облучения мышей в сублетальной дозе на интегральные

(смертность, вес, поведение, субфракционный состав сыворотки крови) и

9

системные (лейкоцитарная формула, субпопуляционный состав лимфоцитов,

гистология печени, селезенки, поджелудочной железы) показатели.

2. Выделение и предварительная характеристика внеклеточных везикул из

различных типов стволовых клеток.

3. Изучение действия внеклеточных везикул как эффекторов

мультипотентных мезенхимных стромальных клеток после тотального облучения

организма экспериментальных животных.

4. Сравнительная оценка эффективности мультипотентных мезенхимных

стромальных клеток и внеклеточных везикул из них при остром радиационном

воздействии.

Научная новизна

В данной работе впервые проведено исследование терапии ММСК костного

мозга или везикулами из них с оценкой ее эффективности на разных структурно-

функциональных уровнях организма. Проведен сравнительный анализ величины

воздействия двух видов терапий на облученных животных, и на основании

полученных данных определена роль внеклеточных везикул в механизме

реализации терапевтического эффекта изучаемых клеток. Частично

охарактеризованы внеклеточные везикулы, продуцируемые разными типами

клеток, показаны различия в изученных показателях, обусловленные тканевым

происхождением клеток-продуцентов.

Теоретическая и практическая значимость

В настоящее время разработаны стратегии терапии при остром лучевом

поражении (Meineke V. et al., 2003; Waselenko J.K. et al., 2004). Однако терапия

лучевой болезни, направленная на «критические» органы, приводит к улучшению

в них, но не исключает отсроченные последствия, называемые радиационно-

индуцированным полиорганным отказом (radiation-induced multi-organ failure)

(Meineke V., Fliedner T.M., 2005). Исходя из этого, изучение новых способов

терапии эффектов радиации, с нашей точки зрения, следует проводить в условиях

облучения целого организма с последующим исследованием изменений на разных

уровнях его организации.

10

Выявленные в проведенном исследовании эффекты ММСК КМ человека и

везикул, продуцируемых ими, на физиологические параметры животных,

облученных в сублетальной дозе, имеют фундаментальное значение для

понимания механизма реализации терапевтического эффекта ММСК костного

мозга человека. Дальнейшее развитие начатых исследований ведет к развитию

новых эффективных и обоснованных способов борьбы с лучевой болезнью, а

также к созданию дополнительных методов сохранения здоровья работников

атомных предприятий.

Положения, выносимые на защиту:

1. Стволовые клетки, влияя на последствия острого гамма-облучения,

частично реализуют свои эффекты путем высвобождения внеклеточных везикул.

2. Мезенхимные стромальные стволовые клетки и везикулы из них при

облучении целого организма действуют асинхронно и с разной эффективностью в

зависимости от органа-мишени.

Внедрение в практику

Основные результаты диссертационной работы, в частности, о

терапевтическом воздействии ММСК костного мозга человека на организм после

действия гамма-излучения в сублетальной дозе и о роли внеклеточных везикул,

секретируемых ими, в реализации этого воздействия, внедрены в учебный

процесс на ветеринарно-биологическом факультете ФГБОУ ВО «МГАВМиБ –

МВА имени К.И. Скрябина» по дисциплинам «Радиобиология и рентгенология»,

«Актуальные проблемы радиобиологии и биофизики», «Молекулярная биология»,

«Моделирование биологических процессов» (бакалавры и магистры биологии)

(справка от 29.08.2018).

Апробация работы

Результаты работы доложены на 1-ом и 2-ом Международных симпозиумах

«Physics, Engineering and Technologies for Biomedicine», Москва, Россия, 2016 и

2017; XX Международной медико-биологической конференции молодых

исследователей «Фундаментальная наука и клиническая медицина — человек и

его здоровье», Санкт-Петербург, Россия, 2017; XIII научно-практической

11

конференции «Биомедицина и Биомоделирование», Светлые горы, Россия, 2017;

Международной научно-практической конференции «Современные проблемы

радиобиологии, агроэкологии, клинической и экспериментальной ветеринарной

хирургии», Москва, Россия, 2018. Опубликовано 10 научных работ: 7 статей в

рецензируемых журналах (5 из них входят в Перечень изданий, рекомендованных

ВАК РФ) и 3 тезиса докладов на международных конференциях.

Личный вклад автора

Автор принимал непосредственное участие в сборе и анализе материала для

диссертационной работы. Самостоятельно проводил все этапы исследования и

статистическую обработку материала. Участвовал в написании основных

публикаций по выполненной работе. Просвечивающую электронную

микроскопию и анализ траекторий наночастиц образцов культуральных

жидкостей проводили совместно с Е.Г. Евтушенко, сотрудником химического

факультета ФГБОУ ВО МГУ им. М.В. Ломоносова; Н.А. Никитиным и Е.А.

Трифоновой, сотрудниками кафедры вирусологии биологического факультета

ФГБОУ ВО «МГУ им. М.В. Ломоносова». Цитометрию крови животных

проводили совместно с А.В. Таллеровой, н.с. лаборатории лекарственной

токсикологии ФГБУ «Научно-исследовательского института фармакологии им.

В.В. Закусова». Гистологическое исследование тканей проводили совместно с

А.А. Антиповым, ассистентом кафедры общей патологии им. В.М. Коропова

ФГБОУ ВО «МГАВМиБ – МВА им. К.И. Скрябина».

Структура и объем работы

Диссертационная работа содержит: введение, обзор литературы, материалы

и методы исследования, результаты собственных исследований, их обсуждение,

заключение, выводы, список сокращений и библиографический указатель,

включающий работы на русском (100) и иностранном (164) языках. Работа

изложена на 137 страницах машинописного текста и содержит 23 рисунка и 1

таблицу.

Заключение диссертации по теме «Патологическая физиология», Полякова Маргарита Вячеславовна

ВЫВОДЫ

1. Введение мезенхимных стромальных стволовых клеток облученным

мышам снижает выраженность тяжелого повреждения селезенки на 48% и

увеличивает количество животных с неизмененными тканями поджелудочной

железы на 54% по сравнению с облученным контролем через 3 недели после

облучения, а через 6 недель приводит к нормализации содержания лимфоцитов и

сегментоядерных нейтрофилов в периферической крови.

2. Меченые клетки выявлены через 6 недель и 3 месяца в печени и костном

мозге, что свидетельствует о достижении ими критических органов и

обусловливает длительный характер наблюдаемых эффектов.

3. Показаны различия в размерах внеклеточных везикул, продуцируемых

ММСК жировой ткани и ММСК костного мозга человека в диапазоне 68-166 нм,

что в совокупности с отсутствием различий в размерах ВВ из ММСК жировой

ткани человека и крысы свидетельствует о тканеспецифичности изучаемых

структур.

4. Обнаружено, что введение внеклеточных везикул, продуцируемых

ММСК костного мозга человека, облученным мышам приводит к тому, что через

3 недели содержание В-лимфоцитов (44%), сегментоядерных (18,9%), а через 6

недель – палочкоядерных нейтрофилов (1,3%) не отличается от соответствующих

показателей интактного контроля.

5. Сравнительная оценка эффективности клеток и продуцируемых ими

везикул на субфракционный состав сыворотки крови показала, что максимальное

снижение вклада в светорассеяние зоны, характерной для последствий облучения

(размер частиц – 4-15 нм), наблюдали через 3 недели после введения везикул и

через 6 недель после применения клеток.

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Полякова Маргарита Вячеславовна, 2019 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абдуллаев С.А., Антипова В.Н., Газиев А.И. Содержание внеклеточной

митохондриальной ДНК с мутациями резко повышено в плазме крови

облученных мышей // Молекулярная биология. – 2009. – Т. 43. – № 6. – С.

1063–1069.

2. Аклеев А.В. Радиобиологические закономерности реакций нормальных

тканей при лучевой терапии опухолей // Радиационная биология.

Радиоэкология. – 2014. – Т. 54. – №. 3. – С. 241-255.

3. Аклеев А.В. Реакции тканей на хроническое воздействие ионизирующего

излучения // Радиационная биология. Радиоэкология. – 2009. – Т. 49. – № 1.

– С. 5-20.

4. Аклеев А.В., Романская Ю.Ю., Киселев М.Ф., Важенин А.В. Использование

метода лазерно-корреляционной спектроскопии для обнаружения

опухолевых процессов и оценки эффективности их лечения. // Российский

биотерапевтический журнал. – 2005. – Т. 4. – № 4. – C. 102-108.

5. Аклеев А.В., Тряпицына Г.А., Симбирцев А.С., Аклеев А.А., Пряхин Е.А.,

Зурочка А.В. Влияние синтетического пептида активного центра GM-CSF

на восстановление гемопоэза у мышей С57Bl/6 после фракционированного

облучения. // Радиационная биология. Радиоэкология. – 2014. – Т. 54. – № 2.

– С. 117-126.

6. Аклеев Л.В., Овчарова Е.А. Иммунный статус людей, подвергшихся

хроническому радиационному воздействию, в отдаленные сроки //

Медицинская радиология и радиационная безопасность. – 2007. – Т. 52. –

№. 3. – С. 5-9.

7. Алчинова И.Б., Архипова Е.Н., Медведева Ю.С., Черепов А.Б., Карганов

М.Ю. Динамика изменения физиологических показателей мышей с

различной радиочувствительностью после острого гамма-облучения //

Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. – 2014. – Т. 157. – №.

2. – С. 150-153.

103

8. Ананьева Л.П., Алекперов Р.Т., Насонов Е.Л. Мезенхимальные клетки

костного мозга-перспективы использования при ревматических болезнях //

Научно-практическая ревматология. – 2013. –Т. 51. – № 1. – С. 59-67.

9. Андреева Е.Р., Буравкова Л.Б. Паракринная активность мультипотентных

мезенхимальных стромальных клеток и ее особенности в условиях

гипоксии // Физиология человека. – 2013. – Т. 39. – №. 3. – С. 104-104.

10.Анохина Е.Б., Буравкова Л.Б. Гетерогенность стромальных клеток-

предшественников, выделенных из костного мозга крыс // Цитология. –

2007. – Т. 49. – №. 1. – С. 40-47.

11.Архипова Е.Н., Алчинова И.Б., Хлебникова Н.Н., Егорова И.Ю., Бобе А.С.,

Семенов Х.Х., Антипов А.А., Содбоев Ц.Ц., Карганов М.Ю. Межлинейные

особенности физиологических реакций на разных уровнях организации у

мышей при остром облучении. // Биомедицина. – 2011. – Т. 1. – № 4. – С. 43-

48.

12.Архипова Е.Н., Алчинова И.Б., Черепов А.Б., Розанов Д.В., Медведева

Ю.С., Карганов М.Ю. Системные эффекты TRAIL (tnf-related apoptosis-

inducing ligand) при остром гамма-облучении // Бюллетень

экспериментальной биологии и медицины. – 2013. – Т. 156. – №10. – С. 438-

442.

13.Архипова Е.Н., Алчинова И.Б., Черепов А.Б., Розанов Д.В., Медведева

Ю.С., Карганов М.Ю. Системные эффекты TRAIL (TNF-related apoptosis-

inducing ligand) при остром g-облучении // Бюллетень экспериментальной

биологии и медицины. – 2013. – Т. 156. – № 10. – С. 438-442.

14.Бажора Ю.И. Лазерная корреляционная спектроскопия в медицине. / Ю.И.

Бажора, Л.А. Носкин. – Одесса: Друк., 2001. – 397 с.

15.Баранов А.Е., Рождественский Л.М. Аналитический обзор схем лечения

острой лучевой болезни, используемых в эксперименте и в клинике //

Радиационная биология. Радиоэкология. – 2008. – Т. 48. – № 3. – С. 287–302.

16.Беленков Ю.Н., Привалова Е.В., Чекнева И.С. Клеточная терапия в лечении

хронической сердечной недостаточности: виды применяемых стволовых

104

клеток, результаты последних клинических исследований // Кардиология и

сердечно-сосудистая хирургия. – 2008. – Т. 15. – №. 5. – С. 4-18.

17.Бландова З.К., Душкин В.А., Малашенко А.М., Шмидт Е.Ф. Линии

лабораторных животных для медико-биологических исследований. – М.:

Наука. – 1983. – 189 с.

18.Бондаренко А.П. Основы радиационной экологии: учебно-методическое

пособие. Ч. 2 // Павлодар: Изд-во ПГПУ – 2007. – 100 с.

19.Булмага И.И., Хрущев С.А., Глуханюк Е.В. Влияние ММСК на основные

морфометрические показатели селезенки в физиологических условиях и при

острой кровопотере. // IV Всероссийская научная школа-конференция

«Стволовые клетки и регенеративная медицина»: тезисы докладов. Москва,

24-27 октября 2011г. – М.:. Факультет фундаментальной медицины МГУ

имени М.В. Ломоносова. – С. 22-25.

20.Бурунова В.В., Васильев М.П., Ярыгин Н.В., Ярыгин К.Н. Перспективы

применения препаратов на основе мезенхимальных стволовых клеток в

терапии пост-трансплантационных осложнений, связанных с иммунной

несовместимостью // Курский научно-практический вестник «Человек и его

здоровье». – 2017. – №. 1. – С. 81-87.

21.Вагабов А.В., Темнов А.А., Толкачева В.В., Склифас А.Н., Кукушкин Н.И.

Мезенхимальные стволовые клетки: опыт применения в экспериментальной

и клинической медицине, механизмы действия // Клиническая

фармакология и терапия. – 2014. – Т. 23 – № 2. – C. 72-77.

22.Васин М.В. Классификация противолучевых средств как отражение

современного состояния и перспективы развития радиационной

фармакологии // Радиационная биология. Радиоэкология. – 2013. – Т. 53. –

№. 5. – С. 459-467.

23.Владимирская Е.Б. Мезенхимальные стволовые клетки (МСК) в клеточной

терапии // Онкогематология. – 2007. – № 1. – С. 4-16.

24.Воробьева Н.Ю., Боева О.В., Осипов А.Н., Боженко В.К. Радиационно-

индуцированные двунитевые разрывы ДНК и динамика апоптотической

105

гибели лимфоцитов периферической крови человека // Вестник

рентгенологии и радиологии. – 2008. – №. 4-6. – С. 50-54.

25.Гребенюк А.Н., Легеза В.И., Евдокимов В.И., Сидоров Д.А. Радиационная

медицина: Учебное пособие. Ч. I: Основы биологического действия

радиации / Под ред. С.С. Алексанина, А.Н Гребенюка. – СПб.: Политехника

сервис. – 2013. – 124 с.

26.Гребенюк А.Н., Легеза В.И., Тарумов Р.А. Радиомитигаторы: перспективы

использования в системе медицинской противорадиационной защиты //

Военно-медицинский журнал. – 2014. – Т. 335. – №. 6. – С. 39-43.

27.Гребнев Д. Ю. Возможность использования сочетанной трансплантации

стволовых клеток для активации гемопоэза у старых и зрелых лабораторных

животных в условиях воздействия ионизирующего излучения //

Патологическая физиология и экспериментальная терапия. – 2014. – Т. 58. –

№. 3. – С. 52–57.

28.Григорян А.С., Кругляков П.В. Спонтанная злокачественная трансформация

мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток в культуре

происходит ли она в действительности? // Клеточная трансплантология и

тканевая инженерия. – 2009. – Т. 4. – №. 4. – С. 78-82.

29.Груздев Г.П. Острый радиационный костномозговой синдром. / Г.П.

Груздев. – М.: Медицина, 1988. – 144 с.

30.Евдокимовский Э.В., Патрушев М.В., Ушакова Т.Е., Газиев А.И. В клетках

крови облученных мышей наблюдается изменение количества копий и

транскрипция мтДНК, а в сыворотке появляются ее фрагменты. //

Радиационная биология. Радиоэкология. – 2007. – Т. 47. – № 4. – С. 402-407.

31.Еремеева М.В. Возможности применения стволовых клеток и клеток-

предшественников для стимуляции реваскуляризации и регенерации

органов // Вестник трансплантологии и искусственных органов. – 2014. – Т.

12. – № 1. – С. 86-93.

32.Еремин П.С., Пигалева Н.А., Мурзабеков М.Б., Лебедев В.Г., Лазарева Н.Л.,

Еремин И.И., Пулин А.А., Осипов А.Н., Бушманов А.Ю., Котенко К.В.

106

Исследование эффективности применения аутологичных клеточных

продуктов на основе жировой ткани для терапии тяжелых местных лучевых

повреждений // Саратовский научно-медицинский журнал. – 2014. – Т. 10. –

№. 4. – С. 838-844.

33.Иванов А.А., Дорожкина О.В., Ворожцова С.В., Абросимов А.Н., Булынина

Т.М., Гаевский В.Н., Ушаков И.Б., Красавин Е.А. Ранний ответ клеток

костного мозга мышей на кратковременное облучение в широком диапазоне

доз. // Радиационная биология. Радиоэкология. – 2016. – Т. 56. – № 4. – С.

389-396.

34.Иванова Е.В., Рамзаева П.В., Архангельской Г.В. Жителю Ленинградской

области о радиации и радиационной обстановке. – ЛАЭС, 1997.

[Электронный ресурс]. Режим доступа:

http://www.laes.ru/ciso/work/dosie/razdel/encikloped/radiation/radia.htm (дата

обращения: 30.05.2016).

35.Иванюк Д.И., Турчин В.В., Попандопуло А.Г., Гнилорыбов А.М., Гринь

В.К. Иммуносупрессивные свойства мезенхимальных стволовых клеток:

аналитический обзор // Вестник неотложной и восстановительной

медицины. – 2010. – Т. 11. – № 2. – С. 256-261.

36.Калинина Н.И., Сысоева В.Ю., Рубина К.А., Парфенова Е.В., Ткачук В.А.

Мезенхимальные стволовые клетки в процессах роста и репарации тканей //

Acta Naturae (русскоязычная версия). – 2011. – Т. 3. – №. 4(11). – С. 32-39.

37.Калмыкова Н.В., Александрова С.А. Терапевтическое действие

мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток после

радиационного воздействия // Радиационная биология. Радиоэкология. –

2016. – Т. 56. – №. 2. – С. 117-117.

38.Кардаш О.Ф., Василевич И.Б., Пинчук С.В., Лобанок Е.С., Юдина О.А.,

Владимирская Т.Э., Афонин В.Ю., Анисович М.В., Красненкова Т.П.,

Жердецкая Н.А., Корда А.В., Булгак Н.А., Булгак А.Г. Ксено- и

аллотрансплантация в экспериментальной кардиологии // Кардиология в

Беларуси. – 2013. – № 6. – С. 39-50.

107

39.Каршиева С. Ш., Красикова Л. С., Белявский А. В. Мезенхимные стволовые

клетки как средство противоопухолевой терапии // Молекулярная биология.

– 2013. – Т. 47. – № 1. – С. 50-60.

40.Князев О.В., Парфенов А.И., Щербаков П.Л., Хомерики С.Г., Ручкина И.Н.,

Конопляников А.Г. Эффективность и безопасность применения

мезенхимальных стромальных клеток костного мозга у больных с

рефрактерными формами болезни Крона // Гены и клетки. – 2013. – Т. 8. –

№ 1. – С. 76-84.

41.Корсунский И.А., Румянцев А.Г., Быковская С.Н. Роль регуляторных Т-

клеток cd4-cd25-и мезенхимальных стволовых клеток костного мозга в

подавлении реакции трансплантат против хозяина // Онкогематология. –

2008. – №. 3. – С. 45-51.

42.Корягин А.С., Ерофеева Е.А., Александрова О.И. Адаптогенные свойства

пчелиного яда при действии экстремальных факторов различной природы. //

Вестник Нижегородского университета им. НИ Лобачевского. – 2007. – №.

3. . – С. 113-115.

43.Корягин А.С., Ерофеева Е.А., Якимов В.Н., Логинов В.В., Гамова О.Н.,

Ванеева О.Ю. Сравнительная оценка противолучевых свойств животных

ядов по состоянию системы крови в условиях многократного гамма-

облучения. // Поволжский экологический журнал. – 2005. – №. 2. – С. 137-

146.

44.Котенко К.В., Еремин И.И., Мороз Б.Б. Бушманов А.Ю., Надежина Н.М.,

Галстян И.А., Гоинаковская О.С., Аксененко А.В., Дешевой Ю.Б., Лебедев

В.Г., Слободина Т.С., Жгутов Ю.А., Лаук-Дубицкий С.Е., Еремин П.С.

Клеточные технологии в лечении радиационных ожогов: опыт ФМБЦ им.

А.И. Бурназяна // Клеточная технологии и тканевая инженерия. – 2012. – Т.

7. – № 2. – С. 97–102.

45.Кругляков П. В., Похматова Е., Климович В.Б., Зарицкий А.Ю.

Мезенхимные стволовые клетки и иммунопатологические состояния

организма // Гены и клетки. – 2006. – Т. 1. – № 3. – С. 36-41.

108

46.Кругляков П.В., Похматова Е., Климович В.Б., Зарицкий А.Ю.

Мезенхимные стволовые клетки и иммунопатологические состояния

организма // Клеточная технология и тканевая инженерия. – 2006. – Т. 3. –

№ 5. – С. 36-41.

47.Кубатиев А.А., Боровая Т.Г., Жуховицкий В.Г., Адреевская С.Г., Шевлягина

Н.В. Микрочастицы тромбоцитов: образование и свойства // Патогенез. –

2017 – Т. 15 – № 2. – С. 4-13. DOI: 10.25557/GM.2017.2.7296

48.Курсова Л.В., Коноплянников А.Г., Коноплянников М.А., Кальсина С.Ш.,

Иванова И.Н. Кардиомиобласты, полученные из мезенхимальных

стволовых клеток, в комплексном лечении лучевых повреждений сердца //

Радиационная биология. Радиоэкология. – 2017. – Т. 57. – №. 1. – С. 5-11.

49.Кухарчук А.Л., Радченко В.В., Сирман В.М. Регенеративная медицина:

направления, достижения, проблемы и перспективы развития. Часть I:

Принципы и методы // Укр. мед. часопис. – 2004. – Т. 3. – С. 99-107.

50.Лазаревич Н.В. Радиобиология: курс лекций. В 4 ч. Ч. 3. Радиобиология

животных и человека. / Н.В. Лазаревич, И.И. Сергеева, С.С. Лазаревич. –

Горки: БГСХА, 2012. – 103 с.

51.Лазебник Л.Б., Голованова Е.В., Слупская В.А., Князев О В., Гендриксон

Л.Н., Хомерики С.Г., Гудкова Р.Б. Мезенхимальные стволовые клетки в

лечении хронических заболеваний печени – от эксперимента к клинической

практике // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. – 2012. –

№. 6. – С. 13-19.

52.Лазебник Л.Б., Трубицына И.Е., Агафонов М А., Князев О.В., Люндуп А.В.

(2011). Эффективность введения мезенхимальных стромальных клеток при

остром и хроническом панкреатите у крыс. // Экспериментальная и

клиническая гастроэнтерология. – 2011. – №. 7. – С. 28-31.

53.Ланге К. Мезенхимальные стромальные клетки защищают от острой

лучевой болезни: понимание возможных механизмов // Медико-

биологические и социально-психологические проблемы безопасности в

чрезвычайных ситуациях. – 2015 – № 1 – С. 58-70.

109

54.Легеза В.И., Попов А.В., Салухов В.В., Турлаков Ю.С. (2010).

Гранулоцитарный колониестимулирующий фактор лейкостим-средство

патогенетической терапии постлучевого костномозгового синдрома. //

Вестник Российской военно-медицинской академии. – 2010. – №. 2. – С.

135-139.

55.Лемберг В.К. Особенности патологоанатомической картины острой лучевой

болезни у человека в зависимости от характера и дозы воздействия //

Радиация и риск (Бюллетень Национального радиационно-

эпидемиологического регистра). – 2000. – №. S1. – С. 20-28.

56.Медведева Ю.С. Полисистемная оценка генетически обусловленной

радиочувствительности организма (экспериментальное исследование): дис.

… канд. биол. наук: 14.03.03 / Медведева Юлия Сергеевна. — М., 2017. —

133 с.

57.Медведева Ю.С., Архипова Е.Н., Алчинова И.Б., Озерова М.А., Бобе А.С.,

Содбоев Ц.Ц., Антипов А.А., Карганов М.Ю. Особенности организменного

ответа мышей разных линий на острое гамма-облучение // Биомедицина. –

2013. – Т. 1. – №. 2 – С. 61-73.

58.Мелихова B.C. Сравнение онкогенетического потенциала

культивированных мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток

костного мозга мыши и человека при их системном введении // Клеточная

трансплантология и тканевая инженерия. – 2007. – Т. 2. – №. 2. – С. 13-14.

59.Мельникова Е.В., Меркулова О.В., Чапленко А.А., Меркулов В.А. Дизайн

доклинических исследований биомедицинских клеточных продуктов:

особенности, ключевые принципы и требования // БИОпрепараты.

Профилактика, диагностика, лечение. – 2017. – Т. 17. – №. 3. – С. 133-144.

60.Меркулов Г.А. Курс патологогистологической техники. – Л.:Медицина. –

1969. – 424 с.

61.Мороз Б.Б., Онищенко Н.А., Лебедев В.Г. Дешевой Ю.Б., Сидорович Г.И.,

Лырщикова А.В., Расулов М.Ф., Крашенинников М.Е., Севастьянов В.И.

Влияние мультипотентных мезенхимальных клеток костного мозга на

110

течение местных лучевых поражений у крыс после локального β-облучения

// Радиационная биология. Радиоэкология. – 2009. – Т. 49. – № 6. – С. 688–

693.

62.Новикова Н.И., Ржанинова А.А., Скобцова Л.А., Мурашев А.Н.,

Гольдштейн Д.В. Исследование биобезопасности клеточных культур

мезенхимальных стромальных клеток на иммунодефицитных мышах линии

Nu/Nu B/C // Токсикологический вестник. – 2011. – №. 2. – С. 13-19.

63.Нягу А.И., Логановский К.Н. Нейропсихиатрические эффекты

ионизирующих излучений – Киев: Чернобыльинтеринформ – 1998. – 287с.

64.Осипов А.Н., Лизунова Е.Ю., Воробьева Н.Ю., Пелевина И.И. Индукция и

репарация двунитевых разрывов ДНК в лимфоцитах крови человека,

облученных в адаптирующей дозе // Радиационная биология.

Радиоэкология. – 2009. – Т. 49. – №. 1. – С. 42-45.

65.Пантелеев М.А., Абаева А.А., Нечипуренко Д.Ю., Обыденный С.И.,

Свешникова А.Н., Шибеко А.М. Физиология и патология внеклеточных

везикул // Онкогематология. – 2017. – №. 1. – С. 62-70.

66.Поздеев А.В. Использование сока петрушки в качестве средства,

повышающего радиационную устойчивость организма млекопитающих. //

Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. – 2012.

– №. 4. – С. 61-62.

67.Полянская Г.Г. Проблема нестабильности генома культивируемых

стволовых клеток человека // Цитология. – 2014. – Т. 56. – № 10. – С. 697-

707.

68.Пулин А.А., Сабурина И.Н., Репин B.C. Поверхностные маркеры,

характеризующие мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки

(ММСК) костного мозга человека // Клеточная трансплантология и тканевая

инженерия. – 2008. – Т. 3. – №. 3. – С. 25-30.

69.Пыко И.В., Корень С.В., Квачева З.Б., Федулов А.С. Мезенхимальные

стволовые клетки костного мозга: свойства, функции, возможность

111

использования в регенеративной и восстановительной терапии //

Медицинский журнал. – 2007. – №. 4-С. – С. 18-22.

70.Пятикоп В.А., Дж М.М.А., Щегельская Е.А., Кутовой И.А., Губина-Вакулик

Г.И. Особенности миграции меченых мезенхимальных стволовых клеток

костного мозга в организме крыс, у которых моделировали

паркинсоноподобный синдром // Український нейрохірургічний журнал. –

2014. – №. 3. – С. 42-48.

71.Романов Ю.А., Волгина Н.Е., Дугина Т.Н., Кабаева Н.В., Сухих Г.Т.

Экспрессия поверхностных маркеров микровезикулами мультипотентных

мезенхимальных стромальных клеток пупочного канатика человека

соответствует фенотипу родительских клеток // Клеточные технологии в

биологии и медицине. – 2018. – № 3. – С. 146-152.

72.Рудаков В.С., Восканян С.Э., Еремин И.И., Онницев Е.И., Деев Р.В.,

Найденов Е.В., Еремин П.С., Жгутов Ю.А. Применение мультипотентных

мезенхимальных стромальных клеток в лечении острой печеночной

недостаточности после обширной резекции печени в эксперименте // Гены и

клетки. – 2016. – Т. 11. – № 4. – С. 70-74.

73.Сагарадзе Г.Д., Ефименко А.Ю., Агеева Л.В., Калинина Н.И., Басалова Н.А.,

Нимирицкий П.П., Внукова А.А., Макаревич О.А., Ткачук В.А. Оценка

вклада внеклеточных везикул мультипотентных мезенхимных стромальных

клеток человека в регенеративные эффекты, опосредуемые секретомом этих

клеток. // Материалы IX международного конгресса «Биотехнология:

состояние и перспективы развития». Москва, 20-22 февраля 2017 г. – М.:.

ООО «Русские Экспо Дни Групп». – С. 236-237.

74.Самойлова Е.М., Кальсин В.А., Беспалова В.А., Девиченский В.М.,

Баклаушев В.П. Экзосомы: от биологии к клинике // Гены и клетки. – 2017.

– Т. 12. – №. 4. – С. 7-19.

75.Сарапульцев Б.И., Гераськин С.А. Генетическая природа феномена

радиационной устойчивости клетки // Радиобиология. – 1991. – Т. 31. – №.

4. – С. 593-599.

112

76.Сафонова В.А., Сафонова В.Ю. Влияние предварительного облучения

животных малой дозой радиации в сочетании с фитопрепаратами на

содержание клеток костного мозга и периферической крови при

последующем летальном радиационном воздействии. // Вестник

Красноярского государственного аграрного университета. – 2008. – №. 2. –

С. 190-195.

77.Семенова Н.А., Сидорин С.В., Ахадов Т.А., Семенова Ж.Б., Петряйкин А.В.,

Фуфаева Е.В., Карлош А.Н. Влияние клеточной терапии на уровни

метаболитов в структурах мозга детей с последствиями тяжелой черепно-

мозговой травмы: исследование методом 1Н магнитно-резонансной

спектроскопии // Клеточные технологии в биологии и медицине. – 2011. –

№2. – С. 99-102.

78.Сорочинская У.Б., Михайленко В.М. Применение метода ДНК-комет для

оценки повреждения ДНК, вызванных различными агентами окружающей

среды // Онкологія. – 2008. – Т. 10. – N 3. – С. 303-309.

79.Сперанский И.И., Самойленко Г.Е., Лобачева М.В. Общий анализ крови –

все ли его возможности исчерпаны? // Практична ангiологiя. – 2009. – № 6.

– С. 26-31.

80.Спивак Н.Я., Сухих Г.Т., Богданова И.М., Малайцев В.В., Шевчук В.А.

Генноинженерные технологии и стволовые клетки. // Фiзiол. журн. – 2008. –

Т. 54. – № 3. – С. 92-104.

81.Степанова О.И. Метод взятия крови из малой подкожной вены голени у

мышей // Биомедицина. – 2006. – № 2. – С. 137-139.

82.Степанова О.И., Каркищенко Н.Н., Онищенко Н.А., Баранова О.В.

Динамические показатели коррекции клетками костного мозга состояния

мышей линии C57BL/KsJYLeprdb/+ // Биомедицина. – 2011. – Т. 1. – № 2. –

С. 41-45.

83.Степанова О.И., Семенов Х.Х., Ревякин А.О., Касинская Н.В., Баранова

О.В. Культивирование как способ выявления и реализации биологических и

терапевтических эффектов стромальный фракции стволовых и

113

прогениторных клеток костного мозга // Биомедицина. – 2013. – Т. 1. – №. 4.

– С. 134-138.

84.Таллерова А.В., Коваленко Л.П., Дурнев А.Д., Середенин С.Б. Влияние

ладастена на субпопуляционный состав Т-лимфоцитов селезенки и

поведение мышей с57bl/6 при экспериментальном моделировании

тревожной депрессии // Российский биотерапевтический журнал. – 2012. –

Т. 11. – № 1. – С. 39-43.

85.Татаринова О.С., Осипова Е.Ю., Румянцев С.А. Биологические свойства и

возможности клинического использования мезенхимальных стволовых

клеток // Онкогематология. – 2009. – №. 4. – С. 33-44.

86.Темнов А.А., Астрелина Т.А., Рогов К.А., Лебедев В.Г., Насонова Т.А.,

Лырщикова А.В., Дешевой Ю.Б., Добрынина О.А., Мелерзанов А.В.,

Самойлов А.С., Бушманов А.Ю., Мороз Б.Б. Исследование влияния

факторов кондиционной среды, полученной при культивировании

мезенхимальных стволовых клеток костного мозга, на течение тяжелых

местных лучевых поражений кожи у крыс // Медицинская радиология и

радиационная безопасность. – 2018. – Т. 63. – №. 1. – С. 35-39.

87.Тестов Б.В., Пьянкова Д.А., Афонина Т.Д. Тимус и селезенка как

индикаторы энергетического состояния животных. // Вестник Пермского

университета. Серия: Биология. – 2004. – № 2. – С. 185-187.

88.Утегенова А.М., Мусайнова А.К., Ибраев С.С., Жетписбаев Б.А.

Отдаленные эффекты сублетальной дозы гамма-излучения на

иммунологическую реактивность организма // Наука и здравоохранение. –

2014. – №. 3. – С. 46-48.

89.Фриденштейн А.Я., Лурия Е.А. Клеточные основы кроветворного

микроокружения. – М.: Медицина. – 1980. – 214 с.

90.Хубутия М.Ш., Вагабов В.А., Темнов А.А., Склифас А.Н. Паракринные

механизмы противовоспалительного и органопротективного действия при

трансплантации мезенхимальных стволовых клеток. Обзор литературы. //

Трансплантология. – 2018. – № 1-2. – С. 20-32.

114

91.Цибулевский А.Ю., Дубовая Т.К., Щеголев А.И., Сергеев А.И., Пашина Н.Р.

Значение сосудистого фактора в механизме развития токсических

повреждений печени // Успехи современного естествознания. – 2011. – № 4.

– С. 179-179.

92.Цыб А.Ф. Радиация и патология: учебн. пособие / А.Ф. Цыб, Р.С. Будагов,

И.А. Замулаева и др.; под общ. ред. А.Ф. Цыба – М.: Высш. шк., 2005. –

341с.: ил.

93.Черешнев В.А., Юшков Б.Г. Патофизиология: Учебник. – М.: 2014. – 838с.:

ил.

94.Чешик А.А. Тканевые реакции органов кроветворения на воздействие

ионизирующей радиации (обзор литературы). // Проблемы здоровья и

экологии. – 2014. – № 1 (39) – С. 32-37.

95.Шаманская Т.В., Осипова Е.Ю., Румянцев С.А. Технологии

культивирования мезенхимальных стволовых клеток ex vivo для

клинического использования // Онкогематология. – 2009. – №. 3 – С. 69-76.

96.Шахпазян Н.К., Астрелина Т.А., Яковлева М.В. Мезенхимальные стволовые

клетки из различных тканей человека: биологические свойства, оценка

качества и безопасности для клинического применения // Гены и клетки. –

2012. – Т. 7. – № 1. – С. 23-33.

97.Штам Т.А., Нарыжный С.Н., Ланда С.Б., Бурдаков В.С., Артамонова Т.О.,

Филатов М.В. Получение и анализ экзосом, секретируемых злокачественно

трансформированными клетками человека в системах in vitro // Цитология.

– 2012. – Т. 54. – №. 5. – С. 430-438.

98.Яблоков А.В. Атомная мифология. Заметки эколога об атомной индустрии.

– М., 1997. [Электронный ресурс]. Режим доступа:

http://www.csgi.ru/gi/gi5/06.htm (дата обращения: 1.06.2016).

99.Ярцева А.А., Антушевич А.Е., Гребенюк А.Н. Экспериментальное изучение

механизмов гемостимулирующей активности органической соли

дисульфида глутатиона и инозина в условиях острого радиационного

воздействия. // Медико-биологические и социально-психологические

115

проблемы безопасности в чрезвычайных ситуациях. – 2016. – № 1. – С. 79-

84.

100. Ястребов А.П., Гребнев Д.Ю., Маклакова И.Ю. Экспериментальное

обоснование использования сочетанной трансплантации стволовых клеток

для коррекции регенерации быстрообновляющихся тканей после лучевого

повреждения. // Вестник Уральской медицинской академической науки. –

2012. – Т. 2. – №. 39. – С. 141.

101. Abusamra A.J., Zhong Z., Zheng X., Li M., Ichim T.E., Chin J.L., Min

W.P. Tumor exosomes expressing Fas ligand mediate CD8+ T-cell apoptosis //

Blood Cells, Molecules, and Diseases. – 2005. – Vol. 35. – №. 2. – P. 169-173.

102. Alchinova I., Arkhipova E., Medvedeva Yu., Cherepov A., Antipov A.,

Lysenko N., Noskin L., Karganov M. The complex of tests for the quantitative

evaluation of the effects of radiation on laboratory animals // American Journal of

Life Sciences. – 2015. – Vol. 3. – №. 1-2. – С. 5-12.

103. Aliotta J.M., Sanchez‐Guijo F.M., Dooner G.J., Johnson K.W., Dooner

M.S., Greer K.A., Greer D., Pimentel J., Kolankiewicz L.M., Puente N., Faradyan

S., Ferland P., Bearer E.L., Passero M.A., Adedi M., Colvin G.A., Quensenberry

P.J. Alteration of marrow cell gene expression, protein production, and

engraftment into lung by lung‐derived microvesicles: a novel mechanism for

phenotype modulation. // Stem cells. – 2007. – Vol. 25. – № 9. – P. 2245-2256.

104. Allers C., Sierralta W.D., Neubauer S., Rivera F., Minguell J.J., Conget

P.A. Dynamic of distribution of human bone marrow-derived mesenchymal stem

cells after transplantation into adult unconditioned mice // Transplantation. –

2004. – Vol. 78. – № 4. – P. 503-508.

105. Alvarez-Erviti L., Seow Y., Yin H., Betts C., Lakhal S., Wood M.J.

Delivery of siRNA to the mouse brain by systemic injection of targeted

exosomes. // Nat Biotechnol. – 2011. – Vol. 29. – P. 341–345. doi:

10.1038/nbt.1807

106. Andrade A.V.G., Riewaldt J., Wehner R., Schmitz M., Odendahl M.,

Bornhäuser M., Tonn T. Gamma irradiation preserves immunosuppressive

116

potential and inhibits clonogenic capacity of human bone marrow‐derived

mesenchymal stromal cells // Journal of cellular and molecular medicine. – 2014.

– Vol. 18. – №. 6. – P. 1184-1193.

107. Aoki N., Jin-no S., Nakagawa Y., Asai N., Arakawa E., Tamura N.,

Tamura T., Matsuda T. Identification and characterization of microvesicles

secreted by 3T3-L1 adipocytes: redox-and hormone-dependent induction of milk

fat globule-epidermal growth factor 8-associated microvesicles // Endocrinology.

– 2007. – Vol. 148. – №. 8. – P. 3850-3862.

108. Ashour R.H. Saad M.-A., Sobh M.-A., Al-Husseiny F., Abouelkheir M.,

Awad A., Elghannam D., Abdel-Ghaffar H., Sobh M. Comparative study of

allogenic and xenogeneic mesenchymal stem cells on cisplatin-induced acute

kidney injury in Sprague-Dawley rats // Stem cell research & therapy. – 2016. –

Vol. 7. – № 1. – P. 126. DOI: 10.1186/s13287-016-0386-0

109. Atoui R., Chiu R. C. J. Concise review: immunomodulatory properties of

mesenchymal stem cells in cellular transplantation: update, controversies, and

unknowns // Stem cells translational medicine. – 2012. – Т. 1. – № 3. – С. 200-

205.

110. Belov O.V., Krasavin E.A., Lyashko M.S., Batmunkh M., Sweilam N.H. A

quantitative model of the major pathways for radiation-induced DNA double-

strand break repair // Journal of theoretical biology. – 2015. – Vol. 366. – P. 115-

130.

111. Bensidhoum M., Gobin S., Chapel A., Lemaitre G., Bouet S., Waksman G.,

... Martin M. T. Therapeutic effect of human mesenchymal stem cells in skin after

radiation damage // Journal de la Societe de biologie. – 2004. – Vol. 199. – №. 4.

– P. 337-341.

112. Bessout R., Sémont A., Demarquay C., Charcosset A., Benderitter M.,

Mathieu N. Mesenchymal stem cell therapy induces glucocorticoid synthesis in

colonic mucosa and suppresses radiation-activated T cells: new insights into

MSC immunomodulation // Mucosal immunology. – 2014. – Vol. 7. – №. 3. – P.

656-669.

117

113. Bianco P., Riminucci M., Gronthos S., Robey P.G. Bone marrow stromal

stem cells: nature, biology, and potential applications. // Stem cells. – 2001. –

Vol. 19 – №3. – P. 180-192.

114. Biancone L., Bruno S., Deregibus M.C., Tetta C., Camussi G. Therapeutic

potential of mesenchymal stem cell-derived microvesicles // Nephrology Dialysis

Transplantation. – 2012. – Vol. 27. – № 8. – P. 3037-3042.

115. Bieback K., Netsch P. Isolation, Culture, and Characterization of Human

Umbilical Cord Blood-Derived Mesenchymal Stromal Cells // Mesenchymal

Stem Cells: Methods and Protocols. – 2016. – P. 245-258.

116. Bruno S., Grange C., Collino F., Deregibus M.C., Cantaluppi V., Biancone

L., Tetta C., Camussi G. Microvesicles derived from mesenchymal stem cells

enhance survival in a lethal model of acute kidney injury // PloS one. – 2012. –

Vol. 7. – №. 3. – P. e33115.

117. Bruno S., Tapparo M., Collino F., Chiabotto G., Deregibus M.C., Soares

Lindoso R., Neri F., Kholia S., Giunti S., Wen S., Quesenberry P., Camussi G.

Renal regenerative potential of different extra-cellular vesicle populations derived

from bone marrow mesenchymal stromal cells // Tissue Engineering Part A. –

2017. – Vol. 23. – №. 21-22. – P. 1262-1273.

118. Butturini A., Gale R.P., Lopes D.M., Cunha C.B., Ho W.G., Sanpai J.M.,

De Souzsa P.C., Cordiero J.M., Neto C., De Souza C.E.P., Tabak D.G. Use of

recombinant granulocyte-macrophage colony stimulating factor in the Brazil

radiation accident // The Lancet. – 1988. – Vol. 332. – №. 8609. – P. 471-475.

119. Chang P., Qu Y., Liu Y., Cui S., Zhu D., Wang H., Jin X. Multi-therapeutic

effects of human adipose-derived mesenchymal stem cells on radiation-induced

intestinal injury // Cell death & disease. – 2013. – Vol. 4. – №. 6. – P. e685.

doi:10.1038/cddis.2013.178

120. Chapel A., Bertho J.M., Bensidhoum M., Fouillard L., Young R.G., Frick

J., Demarquay C., Cuvelier F., Mathieu E., Trompier F., Dudoignon N., Germain

C., Mazurier C., Aigueperse J., Borneman J., Gorin N.C., Gourmelon P., Thierry

D. Mesenchymal stem cells home to injured tissues when co‐infused with

118

hematopoietic cells to treat a radiation‐induced multi‐organ failure syndrome //

The journal of gene medicine. – 2003. – Vol. 5. – №. 12. – P. 1028-1038.

121. Chargaff E., West R. The biological significance of the thromboplastic

protein of blood. // J. Biol. Chem. – 1946. – Vol. 166. – P. 189–197.

122. Chaudhary L.R., Spelsberg T.C., Riggs B.L. Production of various

cytokines by normal human osteoblast-like cells in response to IL1 and tumor

necrosis factor // Endocrinology. – 1992. – Vol.130. – P.2528–2534.

123. Chen K.-H., Chen C.-H., Wallace C.G., Yuen C.-M., Kao G.-S., Chen Y.-

L., Shao P.-L., Chen Y.-L., Chai H.-T., Lin K.-C., Liu C.-F., Chang H.-W., Lee

M.S., Yip H.-K. Intravenous administration of xenogenic adipose-derived

mesenchymal stem cells (ADMSC) and ADMSC-derived exosomes markedly

reduced brain infarct volume and preserved neurological function in rat after

acute ischemic stroke // Oncotarget. – 2016. – Vol. 7. – № 46. – P. 74537-74556.

124. Chen X., Liang H., Zhang J., Zen K., Zhang C.Y. Horizontal transfer of

microRNAs: molecular mechanisms and clinical applications // Protein & cell. –

2012. – Vol. 3. – №. 1. – P. 28-37.

125. Cheng A., Lora M., Rauch J., Rak J., Colmegna I. Licensing increases the

quantity and immunomodulatory cargo of mesenchymal stromal cell exosomes. //

Cytotherapy. – 2018. – Vol. 20. – № 5. – P. S15–S16.

DOI:10.1016/j.jcyt.2018.02.028

126. Chiba M., Monzen S., Iwaya C., Kashiwagi Y., Yamada S., Hosokawa Y.,

Mariya Y., Nakamura T., Wojcik A. Serum miR-375-3p increase in mice exposed

to a high dose of ionizing radiation. // Scientific reports. – 2018. – Vol. 8. – № 1.

– P. 1302.

127. Christensen D.M., Iddins C.J., Sugarman S.L. Ionizing radiation injuries

and illnesses // Emergency Medicine Clinics. – 2014. – Vol. 32. – №. 1. – P. 245-

265.

128. Colombo M., Raposo G., Théry C. Biogenesis, secretion, and intercellular

interactions of exosomes and other extracellular vesicles // Annual review of cell

and developmental biology. – 2014. – Vol. 30. – P. 255-289.

119

129. Conforti A, M Scarsella, N Starc, E Giorda, S Biagini, A Proia, R Carsetti,

F Locatelli and ME Bernardo. Microvescicles derived from mesenchymal stromal

cells are not as effective as their cellular counterpart in the ability to modulate

immune responses in vitro. // Stem Cells Dev – 2014. – Vol. 23. – P. 2591–2599.

130. Danchuk S., Ylostalo J.H., Hossain F., Sorge R., Ramsey A., Bonvillain

R.W., Lasky J.A., Bunnell B.A., Welsh D.A., Prockop D.J., Sullivan D.E. Human

multipotent stromal cells attenuate lipopolysaccharide-induced acute lung injury

in mice via secretion of tumor necrosis factor-α-induced protein 6 // Stem cell

research & therapy. – 2011. –Vol. 2. – № 3. – P. 27. DOI: 10.1186/scrt68

131. Dazzi F., Ramasamy R., Glennie S., Jones S.P., Roberts I. The role of

mesenchymal stem cells in haemopoiesis. // Blood reviews. – 2006. – Vol. 20. –

№ 3. – P. 161-171.

132. de Girolamo L. Lucarelli E., Alessandri G., Antonietta Avanzini M., Ester

Bernardo M., Biagi E., Teresa Brini A., D’Amico G., Fagioli F., Ferrero I.,

Locatelli F., Maccario R., Marazzi M., Parolini O., Pessina A., Mesenchymal

stem/stromal cells: a new''cells as drugs''paradigm. Efficacy and critical aspects in

cell therapy // Current pharmaceutical design. – 2013. – Vol. 19. – № 13. – P.

2459-2473.

133. De Toledo S.M., Azzam E.I. Adaptive and bystander responses in human

and rodent cell cultures exposed to low level ionizing radiation: the impact of

linear energy transfer // Dose-Response. – 2006. – Vol. 4. – №. 4. – P. dose-

response. 06-103. deToledo.

134. Denham J.W., Hauer-Jensen M. The radiotherapeutic injury–a complex

‘wound’ // Radiotherapy and Oncology. – 2002. – Т. 63. – №. 2. – С. 129-145.

doi:10.1016/s0167-8140(02)00060-9.

135. Devine S.M., Cobbs C., Jennings M., Bartholomew A., Hoffman R.

Mesenchymal stem cells distribute to a wide range of tissues following systemic

infusion into nonhuman primates // Blood. – 2003. – Vol. 101. – № 8. – P. 2999-

3001.

120

136. Dijkstra S., Birker I.L., Smit F.P., Leyten G.H.J.M., de Reijke T.M., van

Oort I.M., Mulders P.F.A., Jannink S.A., Schalken J.A. Prostate cancer biomarker

profiles in urinary sediments and exosomes // The Journal of urology. – 2014. –

Vol. 191. – №. 4. – P. 1132-1138.

137. Dominici M.L.B.K., Le Blanc K., Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini

F.C., Krause D.S., Deans R.J., Keating A., Prockop D.J., Horwitz E.M. Minimal

criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International

Society for Cellular Therapy position statement // Сytotherapy. – 2006. – Vol. 8.

– №. 4. – P. 315-317.

138. Dörr H., Meineke V. Acute radiation syndrome caused by accidental

radiation exposure-therapeutic principles // BMC medicine. – 2011. – Vol. 9. –

№. 1. – P. 126. DOI: 10.1186/1741-7015-9-126

139. Dreyer J.L. New insights into the roles of microRNAs in drug addiction

and neuroplasticity // Genome medicine. – 2010. – Vol. 2. – №. 12. – P. 92. DOI:

10.1186/gm213

140. El-Andaloussi S., Lee Y., Lakhal-Littleton S., Li J., Seow Y., Gardiner C.,

Alvarez-Erviti L., Sargent I.L., Wood M.J. Exosome-mediated delivery of siRNA

in vitro and in vivo // Nature protocols. – 2012. – Vol. 7. – №. 12. – P. 2112-

2126.

141. Fekete N., Erle A., Amann E.M., Fürst D., Rojewski M.T., Langonné A.,

Sensebé L., Schrezenmeier H., Schmidtke-Schrezenmeier G. Effect of high-dose

irradiation on human bone-marrow-derived mesenchymal stromal cells // Tissue

Engineering Part C: Methods. – 2014. – Vol. 21. – №. 2. – P. 112-122.

142. Fellows C.R., Matta C., Zakany R., Khan I.M., Mobasheri A. Adipose,

Bone Marrow and Synovial Joint-Derived Mesenchymal Stem Cells for Cartilage

Repair // Frontiers in Genetics. – 2016. – Vol. 7– P. 213. DOI:

10.3389/fgene.2016.00213

143. Feng D., Zhao W.L., Ye Y.Y., Bai X.C., Liu R.Q., Chang L.F., Zhou Q.,

Sui S.F. Cellular internalization of exosomes occurs through phagocytosis //

Traffic. – 2010. – Vol. 11. – №. 5. – P. 675-687.

121

144. Ferguson S.W., Megna J.S., Nguyen J. Composition, Physicochemical and

Biological Properties of Exosomes Secreted From Cancer Cells // Diagnostic and

Therapeutic Applications of Exosomes in Cancer. – 2018. – С. 27-57.

145. Fevrier B., Raposo G. Exosomes: endosomal-derived vesicles shipping

extracellular messages // Current opinion in cell biology. – 2004. – Vol. 16. – №.

4. – P. 415-421.

146. François S., François S., Bensidhoum M., Mouiseddine M., Mazurier C.,

Allenet B., Semont A., Frick J., Sache A., Bouchet S., Thierry D., Gourmelon P.,

Gorin N.-C., Chapel A. Local irradiation not only induces homing of human

mesenchymal stem cells at exposed sites but promotes their widespread

engraftment to multiple organs: a study of their quantitative distribution after

irradiation damage // Stem cells. – 2006. – Vol. 24. – № 4. – P. 1020-1029.

147. Friedenstein A.J., Gorskaja J.F., Kulagina N.N. Fibroblast precursors in

normal and irradiated mouse hematopoietic organs // Experimental hematology. –

1976. – Vol. 4. – №. 5. – P. 267-274.

148. Gaberman E., Pinzur L., Levdansky L., Tsirlin M., Netzer N., Aberman Z.,

Gorodetsky R. Mitigation of lethal radiation syndrome in mice by intramuscular

injection of 3D cultured adherent human placental stromal cells // PloS one. –

2013. – Vol. 8. – №. 6. – P. e66549. DOI: 10.1371/journal.pone.0066549

149. Gao S., Zhao Z., Wu R., Zeng Y., Zhang Z., Miao J., Yuan Z. Bone

marrow mesenchymal stem cell transplantation improves radiation-induced heart

injury through DNA damage repair in rat model // Radiation and environmental

biophysics. – 2017. – Vol. 56. – №. 1. – P. 63-77.

150. Gardiner C., Ferreira Y.J., Dragovic R.A., Redman C.W., Sargent I.L.

Extracellular vesicle sizing and enumeration by nanoparticle tracking analysis. //

Journal of extracellular vesicles. – 2013. – Vol. 2. – № 1. – P. 19671. DOI:

10.3390/ijms18061153. Режим доступа: http://www.mdpi.com/1422-

0067/18/6/1153/ Дата обращения: 20.11.2017

151. Gatti S., Bruno S., Deregibus M.C., Sordi A., Cantaluppi V., Tetta C.,

Camussi G. Microvesicles derived from human adult mesenchymal stem cells

122

protect against ischaemia–reperfusion-induced acute and chronic kidney injury //

Nephrology Dialysis Transplantation. – 2011. – Vol. 26. – №. 5. – P. 1474-1483.

152. Gouveia de Andrade A.V., Bertolino G., Riewaldt J., Bieback K.,

Karbanová J., Odendahl M., Bornhäuser M., Schmitz M., Corbeil D., Tonn T.

Extracellular vesicles secreted by bone marrow-and adipose tissue-derived

mesenchymal stromal cells fail to suppress lymphocyte proliferation // Stem cells

and development. – 2015. – Vol. 24. – №. 11. – P. 1374-1376.

153. Gouveia de Andrade A.V., Bertolino G., Riewaldt, J., Bieback K.,

Karbanová J., Odendahl M., Bornhäuser M., Marc Schmitz M., Denis Corbeil D.,

Tonn, T. Extracellular Vesicles Secreted by Bone Marrow- and Adipose Tissue-

Derived Mesenchymal Stromal Cells Fail to Suppress Lymphocyte Proliferation.

// Stem cells and development. – 2015. – Vol. 24. – № 11. – P. 1374-1376.

DOI:10.1089/scd.2014.0563.

154. Guo K., Ikehara S., Meng X. Mesenchymal stem cells for inducing

tolerance in organ transplantation // Frontiers in cell and developmental biology.

– 2014. – Vol. 2. – P. 8. DOI: 10.3389/fcell.2014.00008

155. Gutiérrez-Fernández M., Rodríguez-Frutos B., Ramos-Cejudo J., Vallejo-

Cremades M.T., Fuentes B., Cerdán S., Díez-Tejedor E. Effects of intravenous

administration of allogenic bone marrow-and adipose tissue-derived

mesenchymal stem cells on functional recovery and brain repair markers in

experimental ischemic stroke // Stem cell research & therapy. – 2013. – Vol. 4. –

№ 1. – P. 11. DOI: 10.1186/scrt159.

156. Haga H., Yan I.K., Takahashi K., Matsuda A., Patel T. (2017).

Extracellular vesicles from bone marrow‐derived mesenchymal stem cells

improve survival from lethal hepatic failure in mice. // Stem cells translational

medicine. – 2017. – Vol. 6. – № 4. – P. 1262-1272.

157. Hazawa M., Tomiyama K., Saotome-Nakamura A., Obara C., Yasuda T.,

Gotoh T., Tanaka I., Yakumaru H., Ishihara H., Tajima K. Radiation increases the

cellular uptake of exosomes through CD29/CD81 complex formation. //

123

Biochemical and biophysical research communications. – 2014. – Т. 446. – №. 4.

– С. 1165-1171.

158. Hood J.L., San R.S., Wickline S.A. Exosomes released by melanoma cells

prepare sentinel lymph nodes for tumor metastasis // Cancer research. – 2011. –

Vol. 71. – №. 11. – P. 3792-3801.

159. Horwitz E.M., Prockop D.J., Fitzpatrick L.A., Koo W.W., Gordon P.L.,

Neel M., Sussman M., Orchard P., Marx J.C., Pyeritz R.E., Brenner M.K.

Transplantability and therapeutic effects of bone marrow-derived mesenchymal

cells in children with osteogenesis imperfect // Nature medicine. – 1999. – Vol. 5.

– № 3. – P. 309-313

160. Hu Y., Ma L., Ma G.J., Jiang X.Y., Zhao C.H. Transplantation of

mesenchymal derived stem cells followed by G-CSF injection can reconstitute

hematopoiesis of lethally irradiated BALB/c mice // Zhongguo yi xue ke xue

yuan xue bao. Acta Academiae Medicinae Sinicae. – 2002. – Vol. 24. – №. 1. –

P. 20-24.

161. Huang S., Xu L., Sun Y., Wu T., Wang K., Li G. An improved protocol for

isolation and culture of mesenchymal stem cells from mouse bone marrow //

Journal of Orthopaedic Translation. – 2015. – Vol. 3. – №. 1. – P. 26-33.

162. Ivanov E.L., Sugawara N., Fishman-Lobell J., Haber J.E. Genetic

requirements for the single-strand annealing pathway of double-strand break

repair in Saccharomyces cerevisiae // Genetics. – 1996. – Vol. 142. – №. 3. – P.

693-704.

163. Jackson S.P., Bartek J. The DNA-damage response in human biology and

disease // Nature. – 2009. – Vol. 461. – №. 7267. – P. 1071-1078.

164. Jelonek K., Widlak P., Pietrowska M. The influence of ionizing radiation

on exosome composition, secretion and intercellular communication // Protein

and peptide letters. – 2016. – Vol. 23. – №. 7. – P. 656-663.

165. Johnstone R.M, Adam M., Hammond J.R., Orr L., Turbide C. Vesicle

formation during reticulocyte maturation. Association of plasma membrane

124

activities with released vesicles (exosomes). // J. boil. chem. – 1987. – Vol. 262. –

№. 19 – P. 9412–9420.

166. Kalra H., Simpson R.J., Ji H., Aikawa E., Altevogt P., Askenase P., Bond

V.C., Borràs F.E., Breakefield X., Budnik V., Buzas E., Camussi G., Clayton A.,

Cocucci E., Falcon-Perez J.M., Gabrielsson S., Gho Y.S., Gupta D., Harsha H.C.,

Hendrix A., Hill A.F., Inal J.M., Jenster G., Krämer-Albers E.-M., Lim S.K.,

Llorente A., Lötvall J., Marcilla A., Mincheva-Nilsson L., Nazarenko I.,

Nieuwland R., Nolte-'t Hoen E.N.M., Pandey A., Patel T., Piper M.G., Pluchino

S., Prasad T.S.K., Rajendran L., Raposo G., Record M., Reid G.E., Sánchez-

Madrid F., Schiffelers R.M., Siljander P., Stensballe A., Stoorvogel W., Taylor

D., Thery C., Valadi H., van Balkom B.W.M., Vázquez J., Vidal M., Wauben

M.H.M., Yáñez-Mó M., Zoeller M., Mathivanan S. Vesiclepedia: a compendium

for extracellular vesicles with continuous community annotation // PLoS biology.

– 2012. – Vol. 10. – №. 12. – P. e1001450. DOI: 10.1371/journal.pbio.1001450

167. Kang S. K., Shin I.S., Ko M.S., Jo J.Y., Ra J.C. Journey of mesenchymal

stem cells for homing: strategies to enhance efficacy and safety of stem cell

therapy // Stem cells international. – 2012. – Vol. 2012. DOI:

10.1155/2012/342968

168. Karganov M., Alchinova I., Arkhipova E., Skalny A.V. Laser Correlation

Spectroscopy: Nutritional, Ecological and Toxic Aspects. // In Biophysics. –

InTech, 2012. – P. 1-16. DOI:10.5772/35254

169. Katsuda T., Tsuchiya R., Kosaka N., Yoshioka Y., Takagaki K., Oki K.,

Takeshita F., Sakai Y., Kuroda M., Ochiya T. Human adipose tissue-derived

mesenchymal stem cells secrete functional neprilysin-bound exosomes //

Scientific reports. – 2013. – Vol. 3. – P. 1197. Режим доступа:

https://www.nature.com/articles/srep01197?WT_ec_id=SREP-20130205

170. Keller S., Ridinger J., Rupp A.K., Janssen J.W., Altevogt P. Body fluid

derived exosomes as a novel template for clinical diagnostics // Journal of

translational medicine. – 2011. – Vol. 9. – №. 1. – P. 86. DOI: 10.1186/1479-

5876-9-86

125

171. Kiang J. G., Gorbunov N. V. Bone marrow mesenchymal stem cells

increase survival after ionizing irradiation combined with wound trauma:

characterization and therapy // Journal of Cell Science & Therapy. – 2014. – Vol.

5. – №. 6. – P. 1. DOI: 10.4172/2157-7013.1000190

172. Kiang J.G., Zhai M., Liao P.J., Ho C., Gorbunov N.V., Elliott T.B. (2017).

Thrombopoietin receptor agonist mitigates hematopoietic radiation syndrome and

improves survival after whole-body ionizing irradiation followed by wound

trauma. // Mediators of inflammation. – 2017. – Vol. 2017. DOI:

10.1155/2017/7582079

173. Kim J.W., Wieckowski E., Taylor D.D., Reichert T.E., Watkins S.,

Whiteside T.L. Fas ligand–positive membranous vesicles isolated from sera of

patients with oral cancer induce apoptosis of activated T lymphocytes // Clinical

Cancer Research. – 2005. – Vol. 11. – №. 3. – P. 1010-1020.

174. Kiss J., Urbán S.V., Dudics V., Vas V., Uher F. Mesenchymal stem cells

and the immune system–immunosuppression without drugs // Orvosi Hetilap. –

2008. – Vol. 149. – № 8. – P. 339-346.

175. Kitazawa Y., Li X.K., Xie L., Zhu P., Kimura H., Takahara S. Bone

marrow-derived conventional, but not cloned, mesenchymal stem cells suppress

lymphocyte proliferation and prevent graft-versus-host disease in rats // Cell

transplantation. – 2012. – Vol. 21. – №. 2-3. – P. 581-590.

176. Kitty P., Patrick A. Dynamic Scaling of Exosome Sizes. // Langmuir. –

2018.

177. Kordelas L., Rebmann V., Ludwig A.K., Radtke S., Ruesing J., Doeppner

T.R., Epple M., Horn P.A., Beelen D.W., Giebel. B. MSC-derived exosomes: a

novel tool to treat therapyrefractory graft-versus-host disease. // Leukemia. –

2014. – Vol. 28. – №. 4. – P. 970-973.

178. Kotenko K., Moroz B., Nadezhina N., Galstyan I., Eremin I., Deshevoy J.,

Lebedev V., Slobodina T., Grinakovskaya D., Zhgutov Y., Bushmanov A.

Successful treatment of localised radiation lesions in rats and humans by

126

mesenchymal stem cell transplantation // Radiation protection dosimetry. – 2012.

– Vol. 151. – №. 4. – P. 661-665.

179. Kucharzewska P., Christianson H.C., Welch J.E., Svensson K.J., Fredlund

E., Ringnér M., Mörgelin M., Bourseau-Guilmain E., Bengzon J., Belting M.

Exosomes reflect the hypoxic status of glioma cells and mediate hypoxia-

dependent activation of vascular cells during tumor development // Proceedings

of the National Academy of Sciences. – 2013. – Vol. 110. – №. 18. – P. 7312-

7317.

180. Lai R.C., Chen T.S., Lim S.K. Mesenchymal stem cell exosome: a novel

stem cell-based therapy for cardiovascular disease // Regenerative medicine. –

2011. – Vol. 6. – №. 4. – P. 481-492.

181. Lamichhane T.N., Sokic S., Schardt J.S., Raiker R.S., Lin J.W., Jay S.M.

Emerging roles for extracellular vesicles in tissue engineering and regenerative

medicine // Tissue Engineering Part B: Reviews. – 2014. – Vol. 21. – №. 1. – P.

45-54.

182. Lässer C., Eldh M., Lötvall J. Isolation and characterization of RNA-

containing exosomes. // Journal of visualized experiments: JoVE. – 2012. – Vol.

59 – P. e3037. DOI: 10.3791/3037. Режим доступа:

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC3369768/ Дата обращения:

20.11.2017

183. Le Blanc K., Rasmusson I., Sundberg B., Götherström C., Hassan M.,

Uzunel M., Ringdén O. Treatment of severe acute graft-versus-host disease with

third party haplo-identical mesenchymal stem cells. // The Lancet. – 2004. – Vol.

363. – № 9419. – С. 1439-1441.

184. Lee R.H., Pulin A.A., Seo M.J., Kota D.J., Ylostalo J., Larson B.L.,

Semprun-Prieto L., Delafontaine P., Prockop D.J. Intravenous hMSCs improve

myocardial infarction in mice because cells embolized in lung are activated to

secrete the anti-inflammatory protein TSG-6. // Cell stem cell. – 2009. – Vol. 5. –

№ 1. – P. 54-63.

127

185. Leibacher J., Henschler R. Biodistribution, migration and homing of

systemically applied mesenchymal stem/stromal cells // Stem Cell Research &

Therapy. – 2016. – Vol. 7. – № 1. – P. 7. DOI: 10.1186/s13287-015-0271-2

186. Li Y., Cheng Q., Hu G., Deng T., Wang Q., Zhou J., Su X. Extracellular

vesicles in mesenchymal stromal cells: A novel therapeutic strategy for stroke //

Experimental and therapeutic medicine. – 2018. – Vol. 15. – № 5. – P. 4067-

4079.

187. Liechty K.W., MacKenzie T.C., Shaaban A.F., Radu A., Moseley A.B.,

Deans R., Marshak D.R., Flake A.W. Human mesenchymal stem cells engraft

and demonstrate site-specific differentiation after in utero transplantation in sheep

// Nature medicine. – 2000. – Vol. 6. – № 11. – P. 1282-1286.

188. Lim J.Y., Park M.J., Im K.I., Kim N., Jeon E.J., Kim E. J., Cho S.G.

Combination cell therapy using mesenchymal stem cells and regulatory T-cells

provides a synergistic immunomodulatory effect associated with reciprocal

regulation of TH1/TH2 and th17/treg cells in a murine acute graft-versus-host

disease model // Cell transplantation. – 2014. – Vol. 23. – №. 6. – P. 703-714.

189. Lin C.S., Lin G., Lue T.F. Allogeneic and xenogeneic transplantation of

adipose-derived stem cells in immunocompetent recipients without

immunosuppressants // Stem cells and development. – 2012. – Vol. 21. – № 15. –

P. 2770-2778.

190. Lin H.R., Heish C.-W., Liu C.-H., Muduli S., Li H.F., Higuchi A., Kumar

S.S., Alarfaj A.A., Munusamy M.A., Hsu S.-T., Chen D.C., Benelli G., Murugan

K., Cheng N.-C., Wang H.-C., Wu G.-J. Purification and differentiation of human

adipose-derived stem cells by membrane filtration and membrane migration

methods // Scientific Reports. – 2017. – Vol. 7. – P. 40069 Режим доступа:

https://www.nature.com/articles/srep40069

191. Linard C., Busson E., Holler V., Strup-Perrot C., Lacave-Lapalun J.V.,

Lhomme B., Prat M., Devauchelle P., Sabourin J.-C., Simon J.-M., Bonneau M.,

Lataillade J.-J., Benderitter M. Repeated Autologous Bone Marrow‐Derived

128

Mesenchymal Stem Cell Injections Improve Radiation‐Induced Proctitis in Pigs //

Stem cells translational medicine. – 2013. – Vol. 2. – №. 11. – P. 916-927.

192. Liu C., Yu S., Zinn K., Wang J., Zhang L., Jia Y., Kappes J.C., Barnes S.,

Kimberly R.P., Grizzle W.E., Zhang H.-G. Murine mammary carcinoma

exosomes promote tumor growth by suppression of NK cell function // The

Journal of Immunology. – 2006. – Vol. 176. – №. 3. – P. 1375-1385.

193. Liu S., Hu P., Hou Y., Li P., Li X., Tian Q. The additive effect of

mesenchymal stem cells and bone morphogenetic protein 2 on γ-irradiated bone

marrow in mice // Cell biochemistry and biophysics. – 2011. – Vol. 61. – №. 3. –

P. 539-550.

194. Liu T., Mu H., Shen Z., Song Z., Chen X., Wang Y. Autologous adipose

tissue-derived mesenchymal stem cells are involved in rat liver regeneration

following repeat partial hepatectomy // Molecular medicine reports. – 2016. –

Vol. 13. – № 3. – P. 2053-2059.

195. Lötvall J., Rajendran L., Gho Y.S., Théry C., Wauben M., Raposo G.,

Sjöstrand M., Taylor D., Telemo E., Breakefield X.O. The launch of Journal of

Extracellular Vesicles (JEV), the official journal of the International Society for

Extracellular Vesicles–about microvesicles, exosomes, ectosomes and other

extracellular vesicles // Journal of extracellular vesicles. – 2012. – Vol. 1. DOI:

10.3402/jev.v1i0.18514

196. Ma O.K.F., Chan K.H. Immunomodulation by mesenchymal stem cells:

Interplay between mesenchymal stem cells and regulatory lymphocytes. // World

journal of stem cells. – 2016. – Vol. 8. – № 9. – P. 268-278.

197. Mackenzie T.C., Flake A.W. Human mesenchymal stem cells persist,

demonstrate site-specific multipotential differentiation, and are present in sites of

wound healing and tissue regeneration after transplantation into fetal sheep //

Blood Cells, Molecules, and Diseases. – 2001. – Vol. 27. – № 3. – P. 601-604.

198. Mahaney B.L., Meek K., Lees-Miller S.P. Repair of ionizing radiation-

induced DNA double-strand breaks by non-homologous end-joining. // Biochem.

J. – 2009. – Vol. 417. – P. 639–650. DOI: 10.1042/BJ20080413

129

199. Marote A., Teixeira F.G., Mendes-Pinheiro B., Salgado A.J. MSCs-derived

exosomes: cell-secreted nanovesicles with regenerative potential // Frontiers in

pharmacology. – 2016. – Vol. 7. – P. 231. DOI: 10.3389/fphar.2016.00231

200. Mathivanan S., Fahner C.J., Reid G.E., Simpson R.J. ExoCarta 2012:

database of exosomal proteins, RNA and lipids // Nucleic acids research. – 2011.

– Vol. 40. – №. D1. – P. D1241-D1244.

201. Medvedeva Yu., Arkhipova E., Alchinova I. The effects of gamma-

irradiation in sub-lethal doses in mice with different radiosensitivity // American

Journal of Life Sciences. – 2015. – Vol. 3. – №. 1-2. – P. 13-17. DOI:

10.11648/j.ajls.s.20150303.13

202. Meineke V., Beuningen D.V., Sohns T., Fliedner T.M. Medical

management principles for radiation accidents //Military medicine. – 2003. – Vol.

168. – №. 3. – P. 219-222.

203. Meldolesi J. Exosomes and ectosomes in intercellular communication //

Current Biology. – 2018. – Vol. 28. – № 8. – С. R435-R444.

204. Méndez-Ferrer S., Michurina T.V., Ferraro F., Mazloom A.R., MacArthur

B.D., Lira S.A., Scadden D.T., Ma’ayan A., Enikolopov G.N., Frenette P.S.

Mesenchymal and haematopoietic stem cells form a unique bone marrow niche //

Nature. – 2010. – Vol. 466. – №. 7308. – P. 829-834.

205. Mortazavi S.M.J., Shekoohi-Shool, F., Aghamir S.M.R., Mehrabani D.,

Dehghanian A., Zare S., Mosleh-Shirazi M.A. The healing effect of bone

marrow-derived stem cells in acute radiation syndrome // Pakistan Journal of

Medical Sciences. – 2016. – Vol. 32. – №. 3. – P. 646-651.

206. Mukherjee D., Coates P.J., Lorimore S.A., Wright E.G. Responses to

ionizing radiation mediated by inflammatory mechanisms // The Journal of

pathology. – 2014. – Vol. 232. – №. 3. – P. 289-299.

207. Nieman K.M., Romero I.L., Van Houten B., Lengyel E. Adipose tissue and

adipocytes support tumorigenesis and metastasis // Biochimica et Biophysica

Acta (BBA)-Molecular and Cell Biology of Lipids. – 2013. – Vol. 1831. – №. 10.

– P. 1533-1541.

130

208. Niemeyer P., Vohrer J., Schmal H., Kasten P., Fellenberg J., Suedkamp N.

P., Mehlhorn A.T. Survival of human mesenchymal stromal cells from bone

marrow and adipose tissue after xenogenic transplantation in immunocompetent

mice. // Cytotherapy. – 2008. – Vol. 10. – № 8. – P. 784-795.

DOI:10.1080/14653240802419302.

209. Nombela-Arrieta C., Ritz J., Silberstein L.E. The elusive nature and

function of mesenchymal stem cells // Nature Reviews Molecular Cell Biology. –

2011. – Vol. 12. – №. 2. – P. 126-131.

210. O’Kane B.J., DeVetten M.D., Jackson J.J., Lacy J.P., Farrell T.L., Sharp

J.G. Multipotential Mesenchymal Stromal Cells (MMSC) Ameliorate Graft

versus Host Disease (GVHD) in a Mouse Model, But Major Suppression of

GVHD Permits Leukemic Relapse // Stem Cell Discovery. – 2014. – Vol. 4. – №

02. – P. 27-43.

211. Oberemko A.V., Popandopulo A.G. Extracellular vesicles: classification,

functions and clinical relevance // Biotechnologia Acta. – 2014. – Vol. 7. – №. 6.

– P. 102-108.

212. Oliver L., Hue E., Séry Q., Lafargue A., Pecqueur C., Paris F., Vallette

F.M. Differentiation‐related response to DNA breaks in human mesenchymal

stem cells // Stem cells. – 2013. – Vol. 31. – №. 4. – P. 800-807.

213. Parekkadan B., Van Poll D., Suganuma K., Carter E.A., Berthiaume F.,

Tilles A.W., Yarmush M.L. Mesenchymal stem cell-derived molecules reverse

fulminant hepatic failure // PloS one. – 2007. – Vol. 2. – № 9. – P. e941. DOI:

10.1371/journal.pone.0000941

214. Park J.O., Choi D.-Y., Choi D-.S., Kim H.J., Kang J.W., Jung J.H., Lee

J.H., Kim J., Freeman M.R., Lee K.Y., Gho Y.S., Kim K.P. Identification and

characterization of proteins isolated from microvesicles derived from human lung

cancer pleural effusions // Proteomics. – 2013. – Vol. 13. – №. 14. – P. 2125-

2134.

215. Patel D.B., Gray K.M., Santharam Y., Lamichhane T.N., Stroka K.M., Jay

S.M. Impact of cell culture parameters on production and vascularization

131

bioactivity of mesenchymal stem cell‐derived extracellular vesicles //

Bioengineering & translational medicine. – 2017. – Т. 2. – № 2. – С. 170-179.

216. Philippe B., Luc S., Valérie P.B., Jérôme R., Alessandra B.R., Louis C.

Culture and use of mesenchymal stromal cells in phase I and II clinical trials //

Stem cells international. – 2010. – Vol. 2010. DOI: 10.4061/2010/503593

217. Pouget J.-P., Georgakilas A.G., Ravanat J.-L. (2018). Targeted and Off-

Target (Bystander and Abscopal) Effects of Radiation Therapy: Redox

Mechanisms and Risk/Benefit Analysis. // Antioxidants & redox signaling. –

2018. – Vol. 29. – № 15. – DOI: 10.1089/ars.2017.7267.

218. Prendergast Á.M., Cruet-Hennequart S., Shaw G., Barry F.P., Carty M.P.

Activation of DNA damage response pathways in human mesenchymal stem cells

exposed to cisplatin or γ-irradiation // Cell Cycle. – 2011. – Vol. 10. – №. 21. – P.

3768-3777.

219. Principe S., Jones E.E., Kim Y., Sinha A., Nyalwidhe J.O., Brooks J.,

Semmes O.J., Troyer D.A., Lance R.S., Kislinger T., Drake R.R. In‐depth

proteomic analyses of exosomes isolated from expressed prostatic secretions in

urine // Proteomics. – 2013. – Vol. 13. – №. 10-11. – P. 1667-1671.

220. Rashed M.H., Bayraktar E., Helal G.K., Abd-Ellah M., Amero P., Chavez-

Reyes A., Rodriguez-Aguayo C. Exosomes: from garbage bins to promising

therapeutic targets // International journal of molecular sciences. – 2017. – Vol.

18. – №. 3. – P. 538. DOI:10.3390/ijms18030538

221. Rana S., Claas C., Kretz C.C., Nazarenko I., Zoeller M. Activation-induced

internalization differs for the tetraspanins CD9 and Tspan8: Impact on tumor cell

motility // The international journal of biochemistry & cell biology. – 2011. –

Vol. 43. – №. 1. – P. 106-119.

222. Rana S., Malinowska K., Zöller M. Exosomal tumor microRNA modulates

premetastatic organ cells // Neoplasia. – 2013. – Vol. 15. – №. 3. – P. IN14-IN31.

223. Record M., Subra C., Silvente-Poirot S., Poirot M. Exosomes as

intercellular signalosomes and pharmacological effectors // Biochemical

pharmacology. – 2011. – Vol. 81. – №. 10. – P. 1171-1182.

132

224. Renzulli II J.F., Del Tatto M., Dooner G., Aliotta J., Goldstein L., Dooner

M., Colvin G., Chatterjee D., Quesenberry P. Microvesicle induction of prostate

specific gene expression in normal human bone marrow cells // The Journal of

urology. – 2010. – Vol. 184. – №. 5. – P. 2165-2171.

225. Roddy G.W., Oh J.Y., Lee R.H., Bartosh T.J., Ylostalo J., Coble K., Rosa

Jr R.H., Prockop D.J. Action at a distance: systemically administered adult

stem/progenitor cells (MSCs) reduce inflammatory damage to the cornea without

engraftment and primarily by secretion of TNF‐α stimulated gene/protein 6 //

Stem cells. – 2011. – Vol. 29. – № 10. – P. 1572-1579.

226. Sacchetti B., Funari A., Michienzi S., Di Cesare S., Piersanti S., Saggio I.,

Tagliafico E., Ferrari S., Robey P.G., Riminucci M., Bianco P. Self-renewing

osteoprogenitors in bone marrow sinusoids can organize a hematopoietic

microenvironment // Cell. – 2007. – Vol. 131. – № 2. – P. 324-336.

227. Schoefinius J.-S., Brunswig-Spickenheier B., Speiseder T., Krebs S., Just

U., Lange C. Mesenchymal Stromal Cell-Derived Extracellular Vesicles Provide

Long-Term Survival After Total Body Irradiation Without Additional

Hematopoietic Stem Cell Support // Stem Cells. – 2017. – Vol. 35. – №. 12. – P.

2379-2389. DOI: 10.1002/stem.2716.

228. Schorey J.S., Bhatnagar S. Exosome function: from tumor immunology to

pathogen biology // Traffic. – 2008. – Vol. 9. – №. 6. – P. 871-881.

229. Sémont A., Demarquay C., Bessout R., Durand, C., Benderitter M.,

Mathieu N. Mesenchymal stem cell therapy stimulates endogenous host

progenitor cells to improve colonic epithelial regeneration // PLoS One. – 2013. –

Vol. 8. – №. 7. – P. e70170.

230. Shukai Q., Hanyun R., Yongjin S., Wei L. Allogeneic compact bone-

derived mesenchymal stem cell transplantation increases survival of mice

exposed to lethal total body irradiation: a potential immunological mechanism //

Chin Med J.(Engl). – 2014. – Vol. 127. – P. 475-482.

231. Shustova O.N., Antonova O.A., Golubeva N.V., Khaspekova S.G.,

Yakushkin V.V., Aksuk S.A., Alchinova I.B., Karganov M.Y., Mazurov A.V.

133

Differential procoagulant activity of microparticles derived from monocytes,

granulocytes, platelets and endothelial cells: impact of active tissue factor. //

Blood Coagulation & Fibrinolysis. – 2017. – Vol. 28 – № 5. – P. 373-382.

DOI:10.1097/MBC.0000000000000609

232. Sicco C.L., Reverberi D., Balbi C., Ulivi V., Principi E., Pascucci L.,

Becherini P., Bosco M.C., Varesio L., Franzin C., Pozzobon M., Cancedda R.,

Tasso R. Mesenchymal Stem Cell‐Derived Extracellular Vesicles as Mediators of

Anti‐Inflammatory Effects: Endorsement of Macrophage Polarization // Stem

cells translational medicine. – 2017. – Vol. 6. – №. 3. – P. 1018-1028.

233. Simpson R.J., Lim J.W., Moritz R.L., Mathivanan S. Exosomes: proteomic

insights and diagnostic potential // Expert review of proteomics. – 2009. – Vol. 6.

– №. 3. – P. 267-283.

234. Sokolova V., Ludwig A.-K., Hornung S., Rotan O., Horn P.A., Epple M.,

Giebel B. Characterisation of exosomes derived from human cells by nanoparticle

tracking analysis and scanning electron microscopy. // Colloids and Surfaces B:

Biointerfaces. – 2011. – Vol. 87. – № 1. – P. 146-150. DOI:

10.1016/j.colsurfb.2011.05.013.

235. Subra C., Laulagnier K., Perret B., Record M. Exosome lipidomics

unravels lipid sorting at the level of multivesicular bodies // Biochimie. – 2007. –

Vol. 89. – №. 2. – P. 205-212.

236. Sugawara N., Ira G., Haber J.E. DNA length dependence of the single-

strand annealing pathway and the role of Saccharomyces cerevisiae RAD59 in

double-strand break repair // Molecular and cellular biology. – 2000. – Vol. 20. –

№. 14. – P. 5300-5309.

237. Sugrue T., Brown J.A., Lowndes N.F., Ceredig R. Multiple facets of the

DNA damage response contribute to the radioresistance of mouse mesenchymal

stromal cell lines // Stem cells. – 2013a. – Vol. 31. – №. 1. – P. 137-145.

238. Sugrue T., Lowndes N. F., Ceredig R. Mesenchymal stromal cells:

radio‐resistant members of the bone marrow // Immunology & Cell Biology. –

2013б. – Vol. 91. – №. 1. – P. 5-11.

134

239. Szatanek R., Baj-Krzyworzeka M., Zimoch J., Lekka M., Siedlar M., Baran

J. The Methods of Choice for Extracellular Vesicles (EVs) Characterization. //

International Journal of Molecular Sciences. – 2017. – Vol. 18. – №. 6. – P. 1153.

DOI: 10.3402/jev.v2i0.1967.1 Режим доступа:

http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.3402/jev.v2i0.19671/ Дата обращения:

20.11.2017

240. Szatmári T., Persa E., Kis E., Benedek A., Hargitai R., Sáfrány G.,

Lumniczky K. Extracellular vesicles mediate low dose ionizing radiation-induced

immune and inflammatory responses in the blood. // International journal of

radiation biology. – 2018. – С. 1-11. DOI: 10.1080/09553002.2018.1450533

241. Tabera S., Pérez-Simón J.A., Díez-Campelo M., Sánchez-Abarca L.I.,

Blanco B., López A., Benito A., Ocio E., Sánchez-Guijo F.M., Cañizo C., San

Miguel J.F. The effect of mesenchymal stem cells on the viability, proliferation

and differentiation of B-lymphocytes. // haematologica. – 2008. – Vol. 93. – № 9.

– P. 1301-1309.

242. Takahara K., Ii M., Inamoto T., Nakagawa T., Ibuki N., Yoshikawa Y.,

Tsujino T., Uchimoto T., Saito K., Takai T., Tanda N., Minami K., Uehara H.,

Komura K., Hirano H., Nomi H., Kiyama S., Asahi M., Azuma H. microRNA-

145 mediates the inhibitory effect of adipose tissue-derived stromal cells on

prostate cancer // Stem cells and development. – 2016. – Vol. 25. – №. 17. – P.

1290-1298.

243. Toupet K., Maumus M., Luz-Crawford P., Lombardo E., Lopez-Belmonte

J., van Lent P., Garin M.I., van den Berg W., Dalemans W., Jorgensen C., Noël

D. Survival and biodistribution of xenogenic adipose mesenchymal stem cells is

not affected by the degree of inflammation in arthritis //PLoS One. – 2015. – Vol.

10. – № 1. – P. e0114962. DOI: 10.1371/journal.pone.0114962

244. Toupet K., Maumus M., Peyrafitte J.-A., Bourin P., van Lent P.L.E.M.,

Ferreira R., Orsetti B., Pirot N., Casteilla L., Jorgensen C., Noël D. Long‐term

detection of human adipose‐derived mesenchymal stem cells after intraarticular

135

injection in SCID mice // Arthritis & Rheumatism. – 2013. – Vol. 65. – № 7. – P.

1786-1794.

245. United Nations Scientific Committee on the Effects of Atomic Radiation.

UNSCEAR 2017 Report—Sources, Effects and Risks of Ionizing Radiation //

Report to the General Assembly. Scientific Annexes A and B. – New York:

UNITED NATIONS, 2018. [Электронный ресурс]. Режим доступа:

http://www.unscear.org/docs/publications/2017/UNSCEAR_2017_Report.pdf

(дата обращения 30.07.2018).

246. Valentin J. Low-dose extrapolation of radiation-related cancer risk //

Annals of the ICRP. – 2004. – Vol. 35. – №. 4. – P. 1-140.

247. Vestad B., Llorente A., Neurauter A., Phuyal S., Kierulf B., Kierulf P.,

Scotland T., Sandvig K., Haug K.B.F., Øvstebø R. Size and concentration

analyses of extracellular vesicles by nanoparticle tracking analysis: a variation

study. // Journal of extracellular vesicles. – 2017. – Vol. 6. – №. 1. – P. 1344087.

DOI: 10.1080/20013078.2017.1344087. Режим доступа:

http://www.tandfonline.com/doi/abs/10.1080/20013078.2017.1344087/ Дата

обращения: 20.11.2017

248. Vignard J., Mirey G., Salles B. Ionizing-radiation induced DNA double-

strand breaks: a direct and indirect lighting up // Radiotherapy and Oncology. –

2013. – Vol. 108. – №. 3. – P. 362-369.

249. Wang N., Chen C., Yang D., Liao Q., Luo H., Wang X., Zhou F., Yang X.,

Yang J., Zeng C., Wang W.E. Mesenchymal stem cells-derived extracellular

vesicles, via miR-210, improve infarcted cardiac function by promotion of

angiogenesis // Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Basis of

Disease. – 2017. – Vol. 1863. – №. 8. – P. 2085-2092.

250. Waselenko J. K., MacVittie T.J., Blakely W.F., Pesik N., Wiley A.L.,

Dickerson W.E., Tsu H., Confer D.L., Coleman C.N., Seed T., Lowry P.,

Armitage J.O., Dainiak N. Medical management of the acute radiation syndrome:

recommendations of the Strategic National Stockpile Radiation Working Group //

Annals of internal medicine. – 2004. – Vol. 140. – №. 12. – P. 1037-1051.

136

251. Watt S.M., Gullo F., van der Garde M., Markeson D., Camicia R., Khoo

C.P., Zwaginga J.J. The angiogenic properties of mesenchymal stem/stromal cells

and their therapeutic potential // British medical bulletin. – 2013. – Vol. 108. – №

1. – P. 25-53.

252. Wen S., Dooner M., Cheng Y., Papa E., Del Tatto M., Pereira M., Deng Y.,

Goldberg L., Aliotta J., Chatterjee D., Stewart C., Carpanetto A., Collino F.,

Bruno S., Camussi G., Quesenberry P. Mesenchymal stromal cell-derived

extracellular vesicles rescue radiation damage to murine marrow hematopoietic

cells // Leukemia. – 2016 – Vol. 30. – №. 11. – P. 2221-2231. DOI:

10.1038/leu.2016.107

253. Williams J.P., McBride W.H. After the bomb drops: a new look at

radiation-induced multiple organ dysfunction syndrome (MODS) // International

journal of radiation biology. – 2011. – Vol. 87. – №. 8. – P. 851-868.

254. Wolf P. The nature and significance of platelet products in human plasma.

// British J. Haematology. – 1967. – Vol. 13. – №. 3. – P. 269–288.

255. Wolfers J., Lozier A., Raposo G., Regnault A., Théry C., Masurier C.,

Flament C., Pouzieux S., Faure F., Tursz T., Angevin E., Amigorena S., Zitvogel

L. Tumor-derived exosomes are a source of shared tumor rejection antigens for

CTL cross-priming // Nature medicine. – 2001. – Vol. 7. – №. 3. – P. 297. Режим

доступа: https://www.nature.com/articles/nm0301_297

256. Xia C., Chang P., Zhang Y., Shi W., Liu B., Ding L., Liu M., Gao L., Dong

L. Therapeutic effects of bone marrow-derived mesenchymal stem cells on

radiation-induced lung injury // Oncology reports. – 2016. – Vol. 35. – №. 2. – P.

731-738.

257. Xu S., Liu C., Ma Y., Ji H. Human Umbilical Cord Mesenchymal Stem

Cell Delievers Exogenous miR-543 Via Exosome to Attenuate Radiation Induced

Lung Injury // In 31. Acute lung injury and ards: translational and mechanistic

studies. – American Thoracic Society, 2018. – P. A2964-A2964.

137

258. Yang X., Balakrishnan I., Torok-Storb B., Pillai M.M. Marrow stromal cell

infusion rescues hematopoiesis in lethally irradiated mice despite rapid clearance

after infusion // Advances in hematology. – 2012. – Vol. 2012.

259. Yu S., Liu C., Su K., Wang J., Liu Y., Zhang L., Li C., Cong Y. Kimberly

R., Grizzle W.E., Falkson C., Zhang H.-G. Tumor exosomes inhibit

differentiation of bone marrow dendritic cells // The Journal of Immunology. –

2007. – Vol. 178. – №. 11. – P. 6867-6875.

260. Yuan S., Jiang T., Zheng R., Sun L., Cao G., Zhang Y. Effect of bone

marrow mesenchymal stem cell transplantation on acute hepatic failure in rats //

Experimental and therapeutic medicine. – 2014. – Vol. 8. – № 4. – P. 1150-1158.

261. Zhang J., Zhou S., Zhou Y., Feng F., Wang Q., Zhu X., Ai H., Huang X.,

Zhang X. Hepatocyte growth factor gene-modified adipose-derived mesenchymal

stem cells ameliorate radiation induced liver damage in a rat model // PLoS One.

– 2014. – Vol. 9. – № 12. – P. e114670. DOI: 10.1371/journal.pone.0114670

262. Zhang J., Zhou S., Zhou Y., Feng F., Wang Q., Zhu X., Zhao J., Fu H., Lv

MM., Ai H.., Huang X., Zhang X. Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells

(ADSCs) With the Potential to Ameliorate Platelet Recovery, Enhance

Megakaryopoiesis, and Inhibit Apoptosis of Bone Marrow Cells in a Mouse

Model of Radiation-Induced Thrombocytopenia // Cell transplantation. – 2016. –

Vol. 25. – №. 2. – P. 261-273.

263. Zheng X.H., Cui C., Zhou X.X., Zeng Y.X., Jia, W.H. Centrifugation: an

important pre-analytic procedure that influences plasma microRNA quantification

during blood processing // Chinese journal of cancer. – 2013. – Vol. 32. – №. 12.

– P. 667.

264. Zuk P.A., Zhu M., Mizuno H., Huang J., Futrell J.W., Katz A.J., Benhaim

P., Lorenz P., Hedrick M.H. Multilineage cells from human adipose tissue:

implications for cell-based therapies. // Tissue engineering. – 2001. – Vol. 7. –

№2. – P. 211-228. DOI:10.1089/1076