Искусственные ассоциации бактерий Rhizobium leguminosarum с корнями томата и табака, трансгенными по гену psl лектина гороха тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.03, кандидат биологических наук Благова, Дарья Константиновна

• Благова, Дарья Константиновна
• кандидат биологических наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Благова, Дарья Константиновна

СОДЕРЖАНИЕ

Введение

Глава 1 Обзор литературы

1.1. Бактерии семейства ЯШгоЫасеае как РОРЯ и возможности их применения

1.1.1. Прямые механизмы влияния ризобий на рост растений

1.1.2. Контроль фитопатогенов

1.1.3. Защитное действие ризобий при загрязнении почв тяжелыми металлами и использование их в биоремедиации

1.1.4. Колонизация ризобиями корней небобовых растений и методы ее улучшения

1.2. Лектины бобовых растений и их роль в азотфиксирующем симбиозе

1.3. Растения, трансгенные по генам лектинов бобовых

растений

Глава 2. Материалы и методы

2.1. Объекты исследования, бактериальные штаммы и

векторы

2.2. Олигонуклеотидные праймеры, использованные при проведении

ПЦР

2.3. Реактивы и материалы

2.4. Составы использованных стандартных водных растворов

2.5. Методы исследований

2.5.1. Выделение и очистка ДНК растений

2.5.2. Выделение и очистка РНК растений

2.5.3. Синтез кДНК

2.5.4. Выделение и очистка плазмидной ДНК

2.5.5. Полимеразная цепная реакция

2.5.6. Расщепление ДНК рестрикционными эндонуклеазами

2.5.7. Аналитический гель-электрофорез ДНК

2.5.8. Подготовка компетентных клеток Е. coli

2.5.9. Трансформация компетентных клеток Е. coli плазмидной ДНК

2.5.10. Автоматическое секвенирование ДНК ферментативным методом

2.5.11. Компьютерный анализ нуклеотидных последовательностей

2.5.12. Приготовление электрокомпетентных клеток Agrobacterium sp

2.5.13. Электропорация компетентных клеток Agrobacterium sp

2.5.14. Получение композитных растений

2.5.15. Анализ ß-глюкуронидазной (gus) активности

2.5.16. Агробактериальная трансформация листовых пластинок табака

2.5.17. Оценка антагонистической активности бактерий

2.5.18. Проверка штаммов бактерий на синтез сидерофоров

2.5.19. Проверка штаммов бактерий на синтез цианида (HCN)

2.5.20. Обработка «бородатых корней» микросимбионтами на томатах, микроскопирование и оценка количества адгезированных на корнях бактерий

2.5.21. Совместная обработка растений патогенным грибом Fusarium oxysporum f.sp lycopersicum и бактериями R. leguminosarum 116

2.5.22. Определение содержания кадмия в растениях табака

Глава 3. Результаты и обсуждение

3.1. Получение флуоресцентно меченых штаммов ризобактерий

3.2..Получение трансгенных бородатых корней на растениях томата и

анализ их колонизации клубеньковыми бактериями R. leguminosarum

3.3. Изучение защитных свойств ризобий при заражении растений

патогенными грибами

3.3.1. Поиск штаммов бактерий обладающих фунгистатической активностью

3.3.2. Идентификация бактерий методом секвенирования гена 16S рРНК

3.3.3. Исследование синтеза бактериями фунгистатических метаболитов

3.3.4 Совместная обработка растений Т7. охуарогит /лр. \ycopersici и Я. ¡е^иттоБагит 116

3.4. Изучение влияния ризобий на растения табака при загрязнении почвы кадмием

3.3.1. Получение штаммов ризобий с псевдофитохелатиновым геном

3.4.2. Влияние ризобий на содержание кадмия в растениях табака

3.5. Создание векторных конструкций с геном лектина под контролем корнеспецифичного промотора ЯВ7

3.5.1. Клонирование двух вариантов промотора КВ7 в векторе рСатЫа 1281 Ъ

3.5.2. Проверка специфичности промотора в трансгенных растениях

табака

3.5.3. Клонирование гена рз1 под контролем промотора Ш37/2 в векторе рСатЫа 1301

3.5.4. Получение растений табака, экспрессирующих ген лектина под управлением промотора ЯВ7/2

Заключение

Выводы

Список сокращений и условных обозначений

Список литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Искусственные ассоциации бактерий Rhizobium leguminosarum с корнями томата и табака, трансгенными по гену psl лектина гороха»

Введение

Актуальность: В настоящее время важной задачей является увеличение эффективности использования аграрных ресурсов без ущерба для окружающей среды. Одним из возможных подходов для развития экологически-ориентированного земледелия может стать использование ростостимулирующих ризобактерий (Plant growth promoting rhizobacteria - PGPR). Исследования этой перспективной группы почвенных микроорганизмов вызывают большой интерес, как с фундаментальной, так и с практической точки зрения. Обнаружены штаммы PGPR, способные улучшать рост и урожайность растений, защищать их от фитопатогенов и негативного воздействия окружающей среды (Dimkpa, 2009; Pliego et al., 2011; Glick, 2012).

К хозяйственно полезным видам PGPR в числе прочих относятся ризобии -почвенные грамм-отрицательные бактерии, способные вступать в азотфиксирующий симбиоз с бобовыми растениями. Хотя ризобии способны вступать в эндосимбиоз, за редким исключением, только с бобовыми растениями, существуют работы, выявляющие их потенциал в качестве ассоциативных микросимбионтов для небобовых культур (Mishra et al., 20 06; Mehboob et al., 2012; Ashraf, 2013). Однако в естественных условиях искусственно интродуцированные ризобии с полезными признаками часто не выдерживают конкуренции и вытесняются более агрессивными микроорганизмами.

Для улучшения колонизации ризобиями корней небобовых растений и создания более стабильных ассоциативных симбиозов применяются различные методы, в том числе, получение трансгенных растений, синтезирующих вещества, участвующие в сигналинге на ранних этапах бобово-ризобиального симбиоза (Sreevidya et al., 2006; Li et al., 2011; Tirichine, 2012). Одними из таких веществ являются лектины - секретируемые белки, способные узнавать и избирательно связывать разнообразные углеводы. Они связываются с полисахаридами на клеточных стенках ризобий, тем самым фиксируя микроорганизмы на поверхности корневых волосков и вызывая у них перестройки, значимые для

формирования симбиоза (Карпунина и др., 2002; Садовникова и др., 2003; De Hoff et al., 2009).

Ранее в нашей лаборатории была исследована возможность использования лектинов для модификации процессов узнавания бобовыми растениями симбиотических партнеров и создания ассоциаций между ризобиями и такими небобовыми растениями как облепиха, рапс и табак (Вершинина, 2010). Дальнейшим направлением исследований, представленных в данной работе, стало изучение характеристик искусственных симбиотических ассоциаций между небобовыми растениями, трансгенными по гену лектина гороха {psl) и ризобиями, обладающими различными полезными свойствами, с точки зрения их возможного практического применения.

Целью данной работы являлось создание искусственных ассоциаций клубеньковых бактерий с несимбиотрофными растениями, трансгенными по гену psl лектина гороха, и исследование их свойств. Для выполнения поставленной цели были сформулированы следующие задачи:

1. Получить маркированные флуоресцентными белками штаммы клубеньковых бактерий для их детекции in vivo и in vitro;

2. Исследовать возможность и характер колонизации ризосферы растений табака и томата, трансгенных по гену psl, флуоресцентно меченым штаммом клубеньковых бактерий Rhizobium leguminosarum;

3. Изучить влияние колонизации ризобиями трансгенных по гену psl корней растений на их устойчивость к фитопатогенам (на примере возбудителей корневой гнили);

4. Исследовать возможность использования ассоциаций трансгенных по psl растений с ризобиями, вырабатывающими псевдофитохелатин, для биоремедиации земель, загрязненных кадмием;

5. Создать векторные конструкции с геном psl под контролем корнеспецифичного промотора RB7 и испытать специфичность экспрессии данного гена в растениях табака.

Научная новизна работы

Исследована возможность колонизации ризосферы томатов флуоресцентно меченым штаммом ризобактерий. Обнаружены штаммы бактерий с антагонистической активностью против фитопатогенных грибов рода Fusarium

среди изолятов из клубеньков дикорастущих бобовых растений Республики Башкортостан (РБ). Впервые получены ризобии, трансгенные по псевдофитохелатиновому гену, более устойчивые к большим концентрациям кадмия в почве, проанализировано их влияние на накопление кадмия растениями табака. На основе вектора рСатЫа 1301 созданы генетические конструкции, содержащие ген лектина гороха /л?/ под управлением корнеспецифичного промотора 11В7.

Научно-практическая значимость работы. Полученные результаты расширяют представление о возможных положительных эффектах при использовании лектина гороха как инструмента для создания ассоциативных симбиотических систем небобовых растений. Найденные штаммы бактерий с антагонистической активностью в отношении фитопатогенов могут стать основой для получения биопрепаратов, защищающих растения от болезней. Симбиотические системы с трансгенными по лектину растениями и ризобиями, продуцирующими псевдофитохелатин могут использоваться в фиторемедиации. Полученная генетическая конструкция, содержащая корнеспецифичный промотор, может использоваться для создания трансгенных растений с тканеспецифичной экспрессией целевого гена.

Положения, выносимые на защиту:

1. Искусственные ассоциации несимбиотрофных растений, трансгенных по генам лектинов бобовых, со штаммами бактерий, обладающими фунгистатической активностью, позволяют усилить защиту корневой системы растений от фитопатогенных грибов.

2. Улучшенная колонизация ризобиями корней трансгенных по растений табака может способствовать снижению содержания в них кадмия при выращивании на почве, загрязненной данным металлом. Использование в этих же условиях ризобий, экспрессирующих псевдофитохелатиновый ген ведет к накоплению тяжелых металлов в растениях.

3. Использование тканеспецифичного промотора КВ7 позволяет добиться экспрессии генов лектинов бобовых исключительно в корневой системе несимбиотрофных растений.

Апробация работы: Материалы диссертации были представлены на международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов» (Москва, 2010, 2011, 2012), Всероссийской конференции молодых ученых «Стратегия взаимодействия микроорганизмов и растений с окружающей средой (Саратов-2010), международной конференции «Актуальные проблемы науки» (Тамбов, 2011), 2 и 3-й школе-конференции молодых ученых Волго-Уральского региона «Биомика - наука XXI века» (Уфа, 2011, 2012), Всероссийской конференции «Инновационные направления современной физиологии растений» (Москва, 2013).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 14 печатных работ, в том числе 4 статьи в журналах, входящих в Перечень ВАК.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 116 страницах, содержит 23 рисунка, 5 таблиц и состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследований, результатов исследований и их обсуждения, заключения, выводов и списка цитированной литературы, включающего 256 работ.

Конкурсная поддержка работы. Данная работа проводилась при финансовой поддержке ФЦП «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» на 2009-2013 годы» (Госконтракт 16.740.11.0671, Соглашение 8115), РФФИ (Соглашения 12-04-31277, 12-04-31284).

Заключение диссертации по теме «Молекулярная биология», Благова, Дарья Константиновна

Выводы

1. Получены флуоресцентно меченые штаммы ризобий Rhizobium leguminosarum, R. tropici, R. galegae и Sinorhizobium meliloti, вступающих в симбиоз с дикорастущими и культурными видами бобовых растений.

2. Исследование колонизации трансгенных по гену psl корней томата флуоресцентно меченым штаммом R. leguminosarum 1078 показало, что количество бактерий, адгезированных на трансгенных корнях после 1 суток инкубации, было на порядок больше по сравнению с контролем, и подобное соотношение сохранялось через месяц выращивания растений в почве.

3. В коллекции микросимбионтов дикорастущих бобовых растений трибы Viceae, обнаружены штаммы R. leguminosarum, Pseudomonas sp. и Stenotrophomonas rhizophila, обладающие фунгистатической активностью в отношении фитопатогенов Fusarium solani, F. oxysporum, Fusarium sp. и F. oxysporum f. sp. lycopersici. Максимальная антагонистическая активность выявлена у штамма R. leguminosarum по отношению к Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici.

4. Обнаружено, что колонизация корней томата, трансгенных по гену psl бактериями R. leguminosarum с фунгистатической активностью может способствовать защите растений от фитопатогенных грибов.

5. Показано, что штамм бактерий R. leguminosarum 1078, содержащий псевдофитохелатиновый ген, более устойчив к высоким концентрациям кадмия в среде. Колонизация данными ризобиями корней растений табака, трансгенных по гену psl приводила к накоплению кадмия в таких растениях в несколько раз больше по сравнению с неинокулированными трансгенными и на 30% больше по сравнению с инокулированными контрольными растениями. Обработка трансгенных по psl растений штаммом ризобий дикого типа, напротив, приводила к уменьшению количества в них кадмия по сравнению с неинокулированными растениями.

6. С использованием вектора рСатЫа 12812 получены трансгенные растения табака, экспрессирующие ген gus под двумя вариантами корнеспецифичного промотора КВ7. Выявлено, что более высокой тканеспецифичностью характеризуется вариант промотора длиной 1358 п.н. На трансгенных растениях табака показана тканеспецифичность экспрессии гена /лу/ под управлением данного варианта промотора.

Список сокращений и условных обозначений

Нуклеотиды: дАТФ (А) - дезоксиаденозинтрифосфат дГТФ (G) - дезоксигуанозинтрифосфат дТТФ (Т) - дезокситимидинтрифосфат дЦТФ (С) - дезоксицитозинтрифосфат

PSL - лектин Pisum sativum GUS - ß-глюкуронидаза

CaMV 35S - 35S РНК вируса мозаики цветной капусты пн - пара нуклеотидов тпн - тысяча пар нуклеотидов

ПЦР - полимеразная цепная реакция

ПЭГ - полиэтиленгликоль

ТАЕ - трис-ацетатный буфер

TBE - трис-боратный буфер

ТЕ - трис-ЭДТА буфер

ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

IPTG - изопропилтио-Р-О-галактопиранозид

LB-среда - среда Лурия-Бертрани

TY-среда - триптон-дрожжевая среда

YM-среда - маннитно-дрожжевая среда

X-gal - 5-бром-4-хлор-3-индолил-Р-0-галактопиранозид

Заключение

За последнее время были достигнуты значительные успехи в изучении микробно-растительных взаимодействий. В частности, большое внимание уделяется исследованию ростстимулирующих ризобактерий (РОРЯ). Они способны положительно влиять на жизнедеятельность растений через синтез ростстимулирующих соединений, фиксацию атмосферного азота, улучшение минерального питания растений и защиту их от патогенов. Таким образом, использование РвРЯ может стать частичной альтернативой химическим удобрениям и пестицидам. Получение стабильных ассоциативных симбиозов между РОРЯ и хозяйственно важными культурными растениями имеет большое значение для сельского хозяйства. Бактерии семейства ЯЫгоЫасеае, вступающие в азотфиксирующий симбиоз с бобовыми растениями также способны оказывать положительное влияние и на несимбиотрофные виды растений. Однако подобные симбиозы не являются стабильными, и нуждаются в улучшении.

Для модификации процессов образования симбиозов применяются различные способы, в том числе и создание трансгенных растений, синтезирующих вещества, играющие роль при образовании бобово-ризобиального симбиоза. Лектины бобовых растений, отвечающие за распознавание и прикрепление ризобий к корням, являются одним из инструментов для расширения круга симбиотических партнеров у бобовых и получения ассоциативных симбиозов с клубеньковыми бактериями у небобовых растений.

Нами была поставлена цель, получить искусственные симбиотические ассоциации небобовых растений с клубеньковыми бактериями ЯЫгоЫит иттозагит, а также исследовать возможности их применения в народном хозяйстве. В качестве объектов исследования были выбраны томат, как важная сельскохозяйственная культура и табак, как модельное растение.

При изучении взаимодействия микроорганизмов с корнями растений возникает необходимость отслеживать клетки исследуемого штамма, не влияя на их жизнеспособность. С этой целью нами были получены флуоресцентно меченые штабы ризобий. При помощи штамма R. leguminosarum 1078, экспрессирующего ген RFP была проанализирована колонизация ризобиями трансгенных по psl корней томата, и обнаружено значительное увеличение количества адгезировавшихся на них бактерий по сравнению с корнями нетрансгенных растений, которое сохранялось и через месяц выращивания в почве. Таким образом, для растений томата, как и для исследованных ранее трансгенных по psl растений рапса и табака, была показана возможность образования относительного устойчивого ассоциативного симбиоза с клубеньковыми бактериями.

Для дальнейшего применения подобных симбиотических систем в сельском хозяйстве важным фактором является подбор штаммов клубеньковых бактерий, обладающих различными полезными признаками. Одним из вариантов применения PGPR является их использование в качестве биологических средств защиты растений от грибковых заболеваний. Нами был проведен поиск штаммов с фунгистатической активностью среди изолятов бактерий, ассоциированных с корнями дикорастущих бобовых Южного Урала, и обнаружены 7 штаммов, обладающих антагонистической активностью в отношении фитопатогенных грибов роды Fusarium. У некоторых из указанных штаммов выявлена способность синтезировать такие фунгистатические метаболиты как сидерофоры и цианид водорода. Показано, что колонизация трансгенных по psl корней томата ризобиями с фунгистатической активностью способна защитить растения от патогенов. Это расширяет возможности использования биологических средств защиты растений, что в перспективе позволит сократить использование химических пестицидов.

Большую угрозу для окружающей среды в настоящее время приобретает возрастающее загрязнение почв тяжелыми металлами (ТМ). Ризобии, прикрепляясь к корням растений способны защищать растения от негативного воздействия ТМ. Штаммы ризобий, способные изолировать ТМ из почвы, возможно использовать для повышения эффективности фиторемедиации. Одним из способов, который может применяться для получения таких штаммов, является перенос в бактерии псевдофитохелатинового гена, кодирующего синтетический белок, богатый цистеином и способный связывать кадмий. Нами была исследована способность к накоплению кадмия симбиотической системы, включающей растения табака, трансгенные по /«/ и ризобии, с псевдофитохелатиновым геном (ррк). Трансформированные ррк бактерии проявляли устойчивость к высоким концентрациям кадмия в питательной среде. При инокуляции этими бактериями растений табака, содержание кадмия в них значительно возрастала, причем, в тренсгенных по /«/ растениях кадмия было больше, чем в нетрансгенных. Обработка же трансгенных по рз1 растений штаммом ризобий дикого типа, напротив, снижала содержание в них кадмия, что также связано с увеличенной способностью таких растений прикреплять к своим корням клубеньковые бактерии, которые, возможно, сорбируют тяжелые металлы. Полученные данные открывают возможность использования данных симбиотических систем в фиторемедиации.

В настоящее время все больше внимания уделяется созданию векторных систем для трансформации растений с индуцибельными и тканеспецифичными промоторами. Представляет большой интерес создание небобовых растений, экспрессирующих ген лектина под контролем корнеспецифичного промотора. Нами была проанализирована специфичность двух вариантов промотора 11В 7, контролирующего экспрессию целевого гена в корнях растений и получены растения табака, экспрессирующие ген лектина гороха под управлением данного промотора. Показана наработка мРНК гена рэ1 только в корнях трансгенных растений. Получение растений, у которых продукт целевого гена будет накапливаться только в строго определенных органах, является перспективным подходом для создания симбиотических систем, которые в дальнейшем могут найти применение в сельском хозяйстве.

Таким образом, разработанный нами подход использования лектинов в качестве трансгенов для создания новых симбиотических систем может найти широкое применение в различных отраслях сельского хозяйства, а так же как инструмент для фиторемедиации.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Благова, Дарья Константиновна, 2013 год

Список литературы

1. Баймиев Ан.Х., Ямиданов P.C., Матниязов Р.Т., Благова Д.К., Баймиев Ал.Х., Чемерис A.B. Получ ение флуоресцентно меченых штаммов клубеньковых бактерий дикорастущих бобовых для их детекции in vivo и in vitro // Молекулярная биология. 2011. Т. 45, № 6. С. 984-991.

2. Баймиев Ан.Х., Птицын К.Г., Мулдашев A.A., Баймиев Ал.Х. // Экологическая генетика. 2011. № 2. С. 3-8

3. Белимов A.A., Тихонович И. А. Микробиологические аспекты устойчивости и аккумуляции тяжелых металлов у растений//Сельскохозяйственная биология, 2011, № 3, с. 10-15.

4. Белимов А. А.,. Сафронова В. И АЦК деаминаза и растительно-микробные взаимодействия: (обзор) // Сельскохозяйственная биология. 2011. № 3. С. 23-28

5. Вершинина З.Р. Лектины бобовых растений как инструмент для создания новых симбиотических систем. Автореф. канд. дисс.// Уфа, 2010.

6. Глаголева О.Б., Ковальская Н.Ю., Киреев И.И., Лобакова Е.С., Умаров М.М. Паранодуляция рапса при инокуляции азотфиксирующими ризосферными бактериями // Микробиология. 1997. № 66. - С. 545-552.

7. Губайдуллин И.И., Баймиев Ал.Х., Баймиев Ан.Х. и др. Синтезированный в Е. coli лектин гороха посевного (PSL) способен инициировать клубенькообразование на люцерне посевной при ее инокуляции Rhizobium leguminosarum bv. viciae // Вест, биотехнол. и физико-хим. биологии. 2006. Т. 2. С. 11-16.

8. Доуни Дж.А. Функции ризобиальных генов клубенкобразования // Rhizobiaceae. Молекулярная биология бактерий, взаимодействующих с растениями / Ред. Спайнк Г., Кондороши А., Хукас П. СПб.: Бионт, 2002. С. 417451.

9. Дрейпер Д., Скотт Р., Армитидж Ф., Уолден Р. Генная инженерия растений (лабораторное руководство). М.: Мир, 1991. 173 с.

10. Кириченко E.B. Взаимодействие растительных лектинов с почвенными азотфиксирующими микроорганизмами // Физиология и биохимия культ, растений. 2005. т.37,№ 5. с. 402-405

11. Кириченко О.В., Перковська Г.Ю. Вплив екзогенного лектину пшенищ на вм1ст флавонодав та змшу лектиновоТ активност1 у проростках пшенищ за умов ультрафюлетового опромшення // Бюшшмери i клгаша. 2005. Т 21, № 5. С. 413-418

12. Карпунина JI.B. Значение углевод-белкового узнавания и роль лектинов при формировании различного рода азотфиксирующих систем // Успехи соврем, биологии. 2002. Т. 122, № 6. С. 548-556.

13. Ковальская Н.Ю., Лобакова Е.С., Умаров М.М. Формирование искусственного азотфиксирующего симбиоза у растений рапса {Brassica napus var. napus) в нестерильной почве // Микробиология. 2001. Т. 50, № 5. С. 701-708.

14. Коць С .Я. Лектины бобовых растений как фактор эффективного симбиоза: обзор // Физиология и биохимия культурных растений. 2007. Т. 39. № 6. Р. 463-^75.

15. Кулуев Б.Р., Князев A.B., Лебедев Я.П., Ильясова A.A., Чемерис A.B. Конструирование гибридных промоторов каулимовирусов и анализ их активности в трансгенных растениях // Физиология растений. 2010. Т. 57. С.623-632.

16. Михалюв Л.М., Маменко П.М. Вплив лектину на формування i функцюнування симбютичних систем люцерна — Sinorhizobium meliloti в умовах р1зного водозабезпечення // Сучасний стан i прюритети розвитку ф1зюлогп рослин, генетики та бютехнологй' :Матер1али X конф. молодих дослщниюв (Кшв, 25—26 жовтня, 2007). К., 2007. С. 16-17.

17. Пермяков А.И. Микротехника.: Учеб-метод, пособие для слушателей ФПК и студ. биол. фак. МГУ. М.: Изд-во Моск. ун-та. 1988.

18. Постригань Б. Н., Князев А. В., Кулуев Б. Р., Яхин О. И, Чемерис А. В. Активность синтетического псевдофитохелатинового гена в растениях табака. //Физиология растений. 2012. Т.59. № 2. С.303-308.

19. Садовникова Ю.Н., Беспалова JI.A., Антонюк Л.П. Агглютинин зародышей пшеницы является фактором роста для бактерии Azospirillum brasilense II Докл. Акад. наук. 2003. Т. 389. № 4. С. 544-546.

20. Степанян Т. У., Арутюнян С. А., Алексанян Н. М., Матевосян Ф. С., Акопян Ж. И. Использование клубеньковых бактерий в ассоциации с почвенными свободноживущими бактериями для инокуляции небобовых растений // Биологический журнал Армении. 2010. Т. 62. № 3. С. 86-90.

21. Тихонович И.А., Круглов Ю.В. Микробиологические аспекты плодородия почвы и проблемы устойчивого земледелия // Плодородие. 2006. № 5. С. 9-12

22. Тихонович И.А., Проворов Н.А. Принципы селекции растений на взаимодействие с симбиотическими микроорганизмами // Вестник ВОГиС. 2005. Т. 9. № 3. С. 295-305.

23. Янева О.Д. Механизмы устойчивости бактерий к ионам тяжелых металлов // Микробиол. Журн. 2009. Т. 71. № 6. С. 54- 65.

24. Abd-Alla М.Н. Phosphatases and the utilization of organic phosphorus by Rhizobium leguminosarum biovar viceae // Issue Letters in Applied Microbiology. 1994. V.18. P. 294-296.

25. Adesemoye A., Ugoji E. Evaluating Pseudomonas aeruginosa as plant growth-promoting rhizobacteria in West Africa. // Arch Phytopathol Plant Prot. 2009. V.42. P. 188-200

26. Ahmad F., Ahmad I., Khan M. S. Screening of free-living rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities. // Microb. Res. 2008. V. 163. P. 173-181.

27. Al-Garni S.M.S. Increased heavy metal tolerance of cowpea plants by dual inoculation of an arbuscular mycorrhizal fungi and nitrogen-fixer Rhizobium bacterium. И African Journal of Biotechnology. 2006. V. 5. P. 133-142.

28. Al-Mallah M. K., Davey M. R., Cocking E. C. Formation of nodular structures on rice seedlings by rhizobia //Journal of experimental botany. 1989. V. 40. №. 4. P. 473-478.

29. Al-Mallah M.K., Davey M.R., Cocking E.C. Nodulation of oilseed rape (Brassica napus) by rhizobia. // J. Exp. Bot. 1990. V. 41. P. 1567-1572.

30. Alami Y., Heulin T., Milas M., de Baynast R., Heyraud A.,Villain A. Polysaccharide microorganism and method for obtaining same composition containing it and application. 1998. European patent no. 97-1624970212.

31. Antoun H., Bordeleau L. M.,Gagnon C. Antagonisme entre Rhizobium meliloti et Fusarium oxysporum en relation avee lefficacite symbiotique. // Can J Plant Sci. 1978. V. 58. P. 75.

32. Arfaoui A., El Hadrami A., Mabrouk Y., Sifi B., Boudabous A., El Hadrami I., Daayf F., Cherif M. Treatment of chickpea with Rhizobium isolates enhances the expression of phenylpropanoid defense-related genes in response to infection by Fusarium oxysporum f. sp. ciceris. II Plant Physiol Biochem. 2007. V. 45. P. 470-479.

33. Arfaoui A., Sifi B., Boudabous A., El Hadrami I., Cherif M. Identification of Rhizobium isolates possessing antagonistic activity against Fusarium oxysporum f.sp. ciceris, the causal agent of Fusarium wilt of chickpea. // J Plant Pathol. 2006. V. 88. P. 67-75.

34. Arfaoui A., Sifi B., Hassni M.E., Hadrami I.E., Boudabous A., Cherif M. (2005) Biochemical analysis of chickpea protection against Fusarium wilt afforded by two Rhizobium isolates. // Plant Pathol J. V. 4. P. 35-40.

35. Araujo A. P., Plassard C., Drevon J. J. Phosphatase and phytase activities in nodules of common bean genotypes at different levels of phosphorus supply. // Plant and Soil. 2008. V. 312. P. 129-138.

36. Ashraf M. A. Asif M., Zaheer A., Malik A., Ali Q., Rasool M. Plant growth promoting rhizobacteria and sustainable agriculture: A review //African Journal of Microbiology Research. 2013. V. 7. №. 9. P. 704-709.

37. Avinash B. Ade L. Gangawane V Biocontrol of aflaroot and dry root rot of groundnut by transgenic Rhizobium // Indian Phytopathology. 2011 V. 63 P. 42-44.

38. Baier R., Schiene K., Kohring B., Flaschen E., Niehaus K.. Alfalfa and tobacco cells react differentially to chitin oligosaccharides and Sinorhizobium meliloti nodulation factors. // Planta. 1999. V. 210. P. 157-164.

39. Bauer W.D. Infection of legumes by rhizobia // Annu. Rev. Plant Physiol. 1981. V. 32. P. 407-409

40. Bardin S.D., Huang H.C., Pinto J., Amundsen E.J., Erickson R.S. Biological control of Pythium damping-off of pea and sugar beet by Rhizobium leguminosarum bv. Viceae. // Can J Bot. 2004. V. 82. P. 291-296.

41. Barone P, Rosellini D, Lafayette P, Bouton J, Veronesi F, Parrott W. Bacterial citrate synthase expression and soil aluminum tolerance in transgenic alfalfa. // Plant Cell Rep. 2008. V.27. №. 5. P. 893-901.

42. Bashan Y., Holguin G., de-Bashan L.E. Azospirillum-plant relationships: physiological, molecular, agricultural, and environmental advances (1997-2003). // Can J Microbiol. V. 50. P. 521-577.

43. Beauchamp C. J., Dion P., Kloepper J. W. Antoun H. Physiological characterization of opine-utilizing rhizobacteria for traits related to plant growth-promoting activity. // Plant Soil. 1991. V. 132. P. 273-290.

44. Benhamou N., Kloepper J. W., Quadt-Hallman A., Tuzun S., Induction of defense-related ultrastructural modifications in pea root tissues inoculated with endophytic bacteria // Plant Physiol. 1996. V. 112. P. 919-929.

45. Benhamou, N., Kloepper, J.W., Tuzun, S. Induction of resistance against Fusarium wilt of tomato by combination of chitosan with an endophytic bacterial strain: ultrastructure and cytochemistry of the host response // Planta. 1998. V. 204. P. 153168.

46. Berge O., Lodhi A., Brandelet G., Santaella C., Roncato M-A., Christen R., Heulin T., Achouak W. Rhizobium alamii sp. nov., an exopolysaccharide-producing species isolated from legume and non-legume rhizospheres. // Int J Syst Evol Microbiol. 2009. V. 59. P. 367-372.

47. Bhandal I. S., Hatinderdeep K., Bhandal K. B. Heavy metal inhibition of in vitro Rhizobium, growth, nodulation and nitrogen-fixation in Vigna radiata. // -Phyton 1990. V. 30. P. 57-63.

48. Biabani A.H., Kovalskaya N.Y., Umarov M.M. Bacterial nodulation of wheat plants // Molecular Plant-Microbe Interactions: New bridges between Past and Future.

11 -th Int. Congr. on Molecular Plant-Microbe Interactions (St. Peterburg, July 18-26 2003): Abstr. 2003. P. 350.

49. Biabani A. Formation of artificial Nitrogen-fixing bacteria symbioses with wheat. // Journal of Applied Biosciences. 2008. V. 6. P. 169 - 172.

50. Bloemberg G.V., Lugtenberg B.J.J. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria. // Curr Opin Plant Biol. V. 4. P. 343-350.

51. Bohlool B. B., Schmidt E. L. Lectins: a possible basis for specificity in the Rhizobium—legume root nodule symbiosis //Science. 1974. V. 185. №. 4147. P. 269271.

52. Boiero L., Perrig D., Masciarelli O., Penna C., Cassan F., Luna V. Phytohormone production by three strains of Bradyrhizobium japonicum and possible physiological and technological implications. // Appl Microbiol Biotechnol. 2007. V. 74. P. 874-880.

53. Boisson-Dernier A., Chabaud M., Garcia F., Becard G., Rosenberg C. and Barker D.G. Hairy roots of Medicago truncatula as tools for studying nitrogen-fixing and endomycorrhizal symbioses // Mol. Plant-Microbe Interact. - 2001. - V. 14. - P. 693-700.

54. Brelles-Marino G., Costa G.A., Boiardi J.L. Enhancement of infection thread formation by Rhizobium etli incubated with bean seed lectin // Microbiol. Res. 1996. V. 151. P. 243-246.

55. Brewin N. J. Kardailsky, I. V. Legume Lectins and Nodulation by Rhizobium. // Trend in Plant Sci., 1997. V. 2. P. 92-98.

56. Cattelan A.J., Hartel P.G., Fuhrmann J.J. Screening for plant growth-promoting rhizobacteria to promote early soybean growth. // Soil Sci Soc Am J. 1999. V. 63. P. 1670-1680.

57. Chabot R., Antoun H., Kloepper J., Beauchamp C. Root colonization of maize and lettuce by bioluminescent Rhizobium leguminosarum biovar phaseoli. II Appl Envir Microbiol. 1996. V. 62. P. 2767-2772.

58. Chabot R., Antoun H., Cescas M.P. Growth promotion of maize and lettuce by phosphate-solubilizing Rhizobium leguminosarum biovar phaseoli. II Plant Soil. V. 184. P. 311-321.

59. Chaintreuil C., Giraud E., Prin Y., Lorquin J., Ba A., Gillis M., Lajudie P., Dreyfus B. Photosynthetic bradyrhizobia are natural endophytes of the african wild rice Oryza breviligulata. II Appl Envir Microbiol. 2000. V. 66. P. 5437-5447.

60. Chandra S., Choure K., Dubey R.C, Maheshwari D.K. Rhizosphere competent Mesorhizobium loti MP6 induces root hair curling, inhibits Sclerotinia sclerotiorum and enhances growth of Indian mustard {Brassica campestris ). // Braz J Microbiol. 2007. V. 38. P. 128-130.

61. Charungchitrak S., Petsom A., Sangvanich P., Karnchanatat A . Antifungal and antibacterial activities of lectin from the seeds of Archidendron jiringa Nielsen. II Food Chemistry. 2011. V. 126. P. 1025-1032.

62. Chen F., Wang M., Zheng Y., Luo J., Yang X., Wang X. Quantitative changes of plant defense enzymes and phytohormone in biocontrol of cucumber Fusarium wilt by Bacillus subtilis B579 II World J. Microbiol. Biotechnol. 2010. Vol. 26. P. 675-684.

63. Chen W., Xie Y., Chen T. Studies on para-nodulation of wheat and nitrogen fixation //10 Int. Congr. on Nitrogen fixation: Abst. St.-Petersburg, 1995. P. 358.

64. Cheng Q., Yang J, Day A., Dowson-Day M., Dixon R. Evolutionary Implication of Nitrogenase-Like Proteins in the Plant Kingdom and Prospects for nif Gene Transfer in Model Eukaryotes Biological Nitrogen Fixation, Sustainable Agriculture and the Environment. // Current Plant Science and Biotechnology in Agriculture. 2005. V. 41. P. 387-389.

65. Chi F., Shen S.H., Cheng H.P., Jing Y.X., Yanni Y.G., Dazzo F.B. Ascending migration of endophytic rhizobia, from roots to leaves, inside rice plants and assessment of benefits to rice growth physiology. // Appl Environ Microbiol. 2005. V. 71. P. 72717278.

66. Clemens S., Kim E.J., Neumann D., Schroeder J.I. Tolerance to Toxic Metals by a Gene Family of Phytochel atin Synthases from Plants and Yeast // EMBO J. 1999.V. 18. P. 3325-3333.

67. Clewell D.B., Helinski D.R. Supercoiled circular DNA-protein complex in Escherichia coli: purification and induced conversion to an open circular DNA form // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1969. V. 62, N 4. P. 1159-1166.

68. Cocking E.C., Davey M.R. Nitrogen from the air for non-legume crops // Chem. Industry. 1991. P. 831-835.

69. Cohen S., Chang A., Hsu L. Nonchromosomal Antibiotic Resistance in Bacteria - Genetic Transformation of E. coli by R-factor DNA // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1972. V. 69. P. 2110-2114.

70. Collier R., Fuchs B., Walter N., Kevin Lütke W., Taylor C. G.. Ex vitro composite plants: an inexpensive, rapid method for root biology //The Plant Journal. 2005. V. 3.№. 3.P. 449-457.

71. Conkling, Yamamoto Y.T. Root specific gene promoter. 1995. US patent № 5459252.

72. Contesto C., Desbrosses G., Lefoulon C., Bena F.G. Effects of rhizobacterial ACC-deaminase activity on Arabidopsis indicate that ethylene mediates local root responses to plant growth promoting rhizobacteria. // Plant Sei. 2008. V. 175. P. 178180.

73. Dakora F.D., Matiru V., King M., Phillips D.A. Plant growth promotion in legumes and cereals by lumichrome, a rhizobial signal metabolite. In: Finan TM, O'Brian M.R., Layzell D.B., Vessey J.K., Newton W (eds) 2002. Nitrogen fixation: global perspectives. CABI Publishing, Wallingford. P. 321-322.

74. Davey M.R., Webster G., Manders G., Ringrose F.L., Power J.B., Cocking E.C. Effective nodulation of micro-propagated shoots of the non-legume Parasponia andersonii by Bradyrhizobium. II J. Exp. Bot. V. 44. P. 863-867.

75. Dazzo F.B., Yanni Y.G. The natural rhizobium-cereal crop association as an example of plant-bacterial interaction. In: Uphoff N, Ball A.S., Fernandes E., Herren H., Husson O., Laing M, Palm C, Pretty J., Sanchez P., Sanginga N., Thies J. (eds) Biological approaches to sustainable soil systems. CRC Press, Boca Raton. P. 109-127.

76. Dazzo F.B., Truchet G.L. Interactions of lectins and their saccharide receptors in the Rhizobium-legume symbiosis // J. Membr. Biol. 1983. V. 73. P. 4-11.

77. Dazzo F.B. The beneficial plant growth-promoting association of Rhizobium leguminosarum bv. trifolii with rice roots. // Aust J Plant Physiol. 2001. V. 28. P. 845870.

78. Deng S., Summers M.L., Khan M.L., McDermott T.R. Cloning and characterization of a Rhizobium meliloti nonspecific acid phosphatase. // Arch Microbiol. 1998. V. 170. P. 18-26.

79. Deshwal V.K., Dubey R.C., Maheshwari D.K. Isolation of plant growth-promoting strains of Bradyrhizobium (Arachis) sp. with biocontrol potential against Macrophomina phaseolina causing charcoal rot of peanut. // Curr Sci. 2003. V. 84. P. 443-448.

80. Devi K.K., Seth N., Kothamasi S., Kothamasi D. Hydrogen cyanideproducing rhizobacteria kill subterranean termite Odontotermes obesus (Rambur) by cyanide poisoning under in vitro Conditions. // Curr. Microbiol. 2007. V. 54. P. 74-78.

81. Di Gregorio S., Barbafieri M., Lampis S., Sanangelantoni A.M.,Tassi E., Vallini G. Combined application of TritonX-100 and Sinorhizobium sp. Pb002 inoculum for the improvement of lead phytoextraction by Brassica juncea in EDTA amended soil. // Chemosphere. V. 63. P. 293-299.

82. Diaz C.L., Melchers L.S., Hooykaas P.J.J., Lugtenberg B.J.J., Kijne J.W. Root lectin as a determinant of host-plant specificity in the Rhizobium-legume symbiosis // Nature. 1989. V. 338. P. 579-581.

83. Diaz C.L., Van Spronsen P.C., Bakhuizen R., Logman G.J.J., Lugtenberg B.J.J., Kijne J.W. Correlation between infection by Rhizobium leguminosarum and lectin on the surface of Pisum sativum L. roots // Planta. 1986. V. 168. P. 350-358.

84. Dilworth M.J., Carson K.C., Giles R.G.F., Byrne L. T., Glenn A. R. Rhizobium leguminosarum bv viciae produces a novel cyclic trihydroxamate siderophore, vicibactin. //Microbiology. 1998. V. 144. P. 781.

85. Dimkpa C., Weinand T., Asch F. Plant-rhizobacteria interactions alleviate abiotic stress conditions. // Plant Cell Environ. 2009. V. 32. P. 1682-1694.

86. Dobbelaere S., Vanderleyden J., Okon Y. Plant growth-promoting effects of diazotrophs in the rhizosphere. // Crit Rev Plant Sci. 2003. V. 22. P. 107-149.

87. Duan J., Muller K.M., Charles T.C., Vesely S., Glick B.R. 1-Aminocyclopropane-lcarboxylate (ACC) deaminase gene in Rhizobium from Southern Saskatchewan. // Microbial Ecol. 2009. V. 57. P. 423^36.

88. Dubey P., Gupta G P, Dubey R C Culture Filtrates of Plant Growth Promoting Bradyrhizobium sp. (Vigna) Strains VR1 and VR2 Inhibit Growth and Sclerotia Germination of Macrophomina phaseolina in vitro II New York Science Journal. 2012. V. 5. №. 8. P. 1-9

89. Dutta A.K., Mishra B.S., Dileep K. Induction of systemic resistance against fusarial wilt in pigeon pea through interaction of plant growth promoting rhizobacteria and rhizobia. // Soil Biology and Biochemistry. 2008. V. 40. P. 452^61.

90. Dyachok J. V., Tobin A. E., Price N. P.J. Arnold S. Rhizobial Nod factors stimulated somatic embryo development in Picea abies. II Plant Cell Reports. 2000. V. 19. P. 290-297.

91. Edwards G.A., Hepher A., Clerk S.P., Boulter D. Pea lectin is correctly processed, stable and active in leaves of transgenic potato plants // Plant Molecular Biology. 1991. V. 17. P. 89-100.

92. Egamberdiyeva D. The effect of plant growth promoting bacteria on growth and nutrient uptake of maize in two different soils // Applied Soil Ecology. 2007. V. 36. №. 2. P. 184-189.

93. Ehteshamul-Haque S., Ghaffar A. Use of Bradyrhizobium japonicaum and fungicides in the control of root rot disease of sun fl ower. In: Ghaffar A, Shahzad S (eds) Proceedings of Status of Plant Pathology in Pakistan, Department of Botany, University of Karachi, Karachi - 75270, Pakistan. 1992. P 261-266

94. Ehteshamul-Haque S., Ghaffar A. Use of rhizobia in the control of root rot diseases of sunflower, okra, soybean and mungbean. // J Phytopathol. 1993. V. 138. P. 157-163.

95. El-Batanony N. H., Massoud O. N., Mazen M. M. Abd El-Monium M. M. The Inhibitory Effects of Cultural Filtrates of Some Wild Rhizobium spp. on Some Faba Bean Root Rot Pathogens and their Antimicrobial Synergetic Effect When Combined with Arbuscular Mycorrhiza (AM). // World J. Agric. Sci. 2007. V. 3. P. 721-730.

96. Elden T. C. Effects of proteinase inhibitors and plant lectins on the adult alfalfa weevil (Coleoptera: Curculionidae) //Journal of Entomological Science. 2000. V. 35. №. l.P. 62-69.

97. Elmayan T., Tepfer M. Evaluation in tobacco of the organ specificity and strength of the rolD promoter, domain A of the 35S promoter and the 35S2 promoter. // Transgenic Res. 1995. V. 4. P. 388-396.

98. Essalmani H., Lahlou H. In vitro antagonistic activity of some microorganisms towards Fusarium oxysporum f.sp. lentis. II Cryptogamie-Mycologie. 2002. V. 23. P. 221-234

99. Etzler M. E., Kalsi G., Ewing N. N., Roberts N. J., Day B. R., Murphy J. B. A nod factor binding lectin with apyrase activity from legume roots // Proc. Natl Acad. Sci. USA. 1999. V. 10. P. 5856-5861.

100. Ferguson L., Lessenger J.E. Plant growth regulators. In: Lessenger JE (ed) Agricultural medicine. Springer. 2006. New York. P. 156-166.

101.Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima K. Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells // Exp. Cell Res. 1968. V.50. P.151-158.

102. Garci'a-Fraile P., Carro L., Robledo M., Ramfrez-Bahena M-H., Flores-Fe'lix J-D. Rhizobium Promotes Non-Legumes Growth and Quality in Several Production Steps: Towards a Biofertilization of Edible Raw Vegetables Healthy for Humans. // PLoS ONE. 2012. V. 7. № 5. e38122. doi:10.1371/journal.pone.0038122

103. Gibson A.H., Child J.J., Pagan J.D., Scowcroft W.R. The induction of nitrogenase activity in Rhizobium by non-legume plant cells // Planta. 1976. V. 128. P. 233-242.

104.Giongo A. Diversity of soybean nodulating Bradyrhizobium elkanii and B. japonicum in soils from Rio Grande do Sul. PhD Thesis, Federal University of Rio Grande do Sul, Porto Alegre, Brazil. 2007.

105. Glagoleva O.B., Kovalskaya N.U., Umarov M.M. Nodule-like structures formation by nitrogen fixing Pseudomonas caryophylli strain on rape roots. // Intern. Workshop Assoc. Interactions Nitrogen-Fix. Bact. Plants (Saratov, June 5-8, 1995): Abstr. Saratov, 1995. P. 18.

106. Glick B.R. The enhancement of plant growth by free-living bacteria. // Can J Microbiol. V. 41. P. 109-117.

107. Gomaa A.M., Al-Fassi F.A., Al-Kenawy Z., Al-Gharbawi H.T. Role of Azospirillum and Rhizobium in Bio-Remediating Cd and Zn Polluted Soil Cultivated with Wheat Plant // Australian Journal of Basic and Applied Sciences. 2012. V.6. P. 550-556.

108. Gopalaswamy G., Kannaiyan S. The xylem of rice is colonized by Azorhizobium caulinodans. II Proc. R. Soc. London, Ser. B. 2000. V. 267. P. 103-107.

109. Gouws L.M., Botes E., Wiese A.J., Trenkamp S., Torres-Jerez I., Tang Y., Hills P.N., Usadel B., Lloyd J.R., Fernie A.R., Kossmann J., van der Merwe M.J. The plant growth promoting substance, lumichrome, mimics starch, and ethylene-associated symbiotic responses in lotus and tomato roots. // Front Plant Sci. 2012. doi: 10.3389/fpls.2012.0012

110. Govindarajulu M., Kim S. Y., Libault M., Berg R. H., Tanaka K., Stacey G., Taylor C. G. GS52 ecto-apyrase plays a critical role during soybean nodulation // Plant Physiol. 2009. V. 149. P. 994-1004.

111.Guerinot M. L., Meidl E. J. Plessner O. Citrate as a siderophore in Brady rhizobium japonicum. IIJ Bacteriol. 1990. V. 172. 3298-3303.

112. Gull M., Hafeez F.Y. Characterization of siderophore producing bacterial strain Pseudomonas fluorescens Mst 8.2 as plant growth promoting and biocontrol agent in wheat. // African Journal of Microbiology Research. 2012. V.6. P. 6308-6318.

113. Gutiérrez-Zamora M.L., Martínez-Romero E. Natural endophytic association between Rhizobium etli and maize {Zea mays L.) // J. Biotechnol. 2001. V. 91. P. 117— 126.

114. Gutierrez-Manero F.J., Acero N., Lucas J.A., Probanza A. The influence of native rhizobacteria on European alder growth. Characterizacion and biological assay of metabolites produced by growth promoting and growth inhibiting bacterial. // Plant Soil. 1996. V. 182. P. 67-74

115.Frugier F., Kosuta S., Murray J.D., Crespi M., Szczyglowski K. Cytokinin: secret agent of symbiosis. // Trends Plant Sci. 2008. V. 13. P. 115-120.

116. Hafeez F.Y., Naeem F.I., Naeem R., Zaidi A.H., Malik K.A. Symbiotic effectiveness and bacteriocin production by Rhizobium leguminosarum bv. viciae isolated from agriculturesoils in Faisalabad. // Environ Exper Bot. 2005. V. 54. P. 142147.

117.Hamblin J., Kent S.P. Possible role of phytohemagglutinin in Phaseolus vulgaris L. // Nature New Biol. 1973. V. 245. P. 28-29.

118.Hanahan D. Studies on transformation of E. coli with plasmids // J.Mol.Biol. 1983. V. 166, N4. P. 557-580.

119. Handelsman J, Stabb E.V. Biocontrol of soilborne plant pathogens. // Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1855-1869.

120. Hao X. Taghavi, S., Xie, P., Orbach, M. J., Alwathnani, H. A., Rensing, C., & Wei, G. Phytoremediation of heavy and transition metals aided by legume-rhizobia symbiosis //International Journal of Phytoremediation. 2013. №. just-accepted.

121.Hara-Nishimura I., Inoue K., Nishimura M. A unique vauolar processing enzyme responsible for conversion several proprotein precursors into the mature forms // FEBS Letters. 1991. V. 294. P. 89-93.

122.de Hoff P.L., Brill L.M., Hirsch A.M. Plant lectins: the ties that bind in root symbiosis and plant defense // Mol. Genet. Genomics. 2009. V. 282. P. 1-15.

123. Horsh R.B., Fry J.E., Hoffmann N.L., Eichholtz D., Rogers S.C., Fraley R.T. A simple and general method for transferring genes into plants // Science. 1985. V. 227. P. 1229-1231.

124. Huang C.-Y. Factors effect on the nitrogen fixation of rhizobia in the symbiotic rhizobium-callus tissue 1. Carbon sources // Taiwania. 1983. V. 28. P. 138145.

125. Ike A., Sriprang R., Ono H., Murooka Y., Yamashita M. Bioremediation of cadmium contaminated soil using symbiosis between leguminous plant and recombinant rhizobia with the MTL4 and the PCS genes. // Chemosphere. 2007. V. 66.P. 1670-1676.

126. Jayaraman V., Das H.R. Interaction of peanut root lectin (PRAII) with rhizobial lipopolysaccharides // Biochim. Biophys. Acta. 1998. V. 1381. N 1. P. 7-11.

127. Jayasinghearachchi H.S., Seneviratne G. Can mushrooms fix atmospheric nitrogen? // J Biosci. 2004a. V. 23. P. 293-296.

128. Jayasinghearachchi H.S., Seneviratne G. A bradyrhizobial-Penicillium spp biofilm with nitrogenase activity improves N2 fixing symbiosis of soybean. // Biol Fertil Soil. 2004b. V. 40. P. 432-434.

129. Jeun Y.C., Park K.S., Kim C.H., Fowler W.D., Kloepper J.W. Cytological observations of cucumber plants during induced resistance elicited by rhizobacteria // Biological Control. 2004. V.. 29. P. 34-42.

130. Jefferson R.A. Assaying Chimeric Genes in Plants: The GUS Gene Fusion System // Plant Mol. Biol. Rep. 1987. V. 5. P. 387-405.

131. Ji K.X., Chi F., Yang M.F., Shen S.H., Jing Y.X., Dazzo F.B., Cheng H.P..Movement of rhizobia inside tobacco and lifestyle alternation from endophytes to free-living rhizobia on leaves.// J Microbiol Biotechnol. 2010. V. 20. P.238-244.

132. Johnston A.W. Mechanisms and regulation of iron uptake in the Rhizobia. In: Crosa J.H., Mey A.R., Payne S.M. (eds) Iron transport in bacteria. ASM Press, Washington, 2004. P.469-488

133. Joo G.J., Kang S.M., Hamayun M., Kim S.K., Na C.I., Shin D.H., Lee I.J. Burkholderia sp. KCTC 11096BP as a newly isolated gibberellin producing bacteriu. // J Microbiol. 2009. V. 47. P. 167-171.

134. Jourdan E., Henry G., Duby F., Dommes J., Barthelemy J.P., Thonart P., Ongena M. Insights into the defense-related events occurring in plant cells following perception of surfactin-type lipopeptide from Bacillus subtilis II Mol. Plant Microbe Interact. 2009. V. 22. P. 456^168.

135. Jung W., Yu O., Lau C.S.M., O'Keefe D.P., Odell J., Fader G., McGonigle B. Identification and expression of isoflavone synthase,the key enzyme for biosynthesis of isoflavones in legumes. //NatBiotechnol. 2000. V. 18. P. 208-212.

136. Kaneko T., Nakamura Y., Sato S., Asamizu E., Kato T., Sasamoto S., Watanabe A., Idesawa K., Ishikawa A., Kawashima K., Kimura T., Kishida Y., Kiyokawa C., Kohara M., Matsumoto M., Matsuno A., Mochizuki Y., Nakayama S., Nakazaki N., Shimpo S., Sugimoto M., Takeuchi C., Yamada M., Tabata S. Complete

genomic sequence of nitrogen- fixing symbiotic bacterium Mesorhizobium loti. II DNA Res. 2000. V. 7. P. 331-338.

137. Kennedy I.R., Pereggerk L.L., Wood C. et al. Biological nitrogen fixation in non-leguminous field crops facilitating the evolution of an effective association between Azospirillum and wheat // Plant Soil. 1997. V. 194. P. 65-79.

138. Khan M. S., Zaidi A., Wani A., Oves M. Role of plant growth promoting rhizobacteria in the remediation of metal contaminated soils. // Environmental Chemistry Letters. 2009. V. 7. P. 1-19.

139. Kijne J.W., Bauchrowitz M.A., Diaz C.L. Root lectin and Rhizobia // Plant Physiol. 1997. V. 115. P. 869-973.

140. Kitts C. L. Ludwig R. A. Azorhizobium caulinodans respires with at least four terminal oxidases. // J. Bacteriol. 1994. V. 176. P. 886-895.

141. Kloepper J.W., Leong J., Teintze M., Schroth M.N. Enhanced plant growth by siderophores produced by plant growth-promoting rhizobacteria. // Nature. 1980. V. 286. P. 885-886.

142. Kloepper J.W. A review of mechanisms for plant growth promotion by PGPR. // In: Sixth International PGPR Workshop. 2003. Calicut. India.

143.Knoester M., Pieterse C.M.J., Bol J.F., van Loon L.C. Systemic resistance in Arabidopsis induced by rhizobacteria requires ethylene-dependent signaling at the site of application // Mol. Plant-Microbe Interact. 1999. V. 12. P. 720-727.

144. Kosenko L. V., Mandrovskaya N. M. Influence of pea lectin on growth of pea microsymbiont and exoglycans biosynthesis //Microbiology (Russia). 1998. V. 67. P. 626-630.

145. Kovalchuk N. V., Melnykova N. M., Musatenko L. I. Role of phytolectin in the life cycle of plants // Biopolymers and Cell. 2012. V. 28. P. 171-180.

146. Krishnan H.B., Kang B.R., Hari K.A., Kim K.Y., Kim Y.C. Rhizobium etli USDA9032 engineered to produce a phenazine antibiotic inhibits the growth of fungal pathogens but is impaired in symbiotic performance. // Appl Environ Microbiol. 2007. V. 73. P. 327-30.

147. Lambers H., Shane M.W., Cramer M.D., Pearse S.J., Veneklaas E.J. Root structure and functioning for efficient acquisition of phosphorus: matching morphological and physiological traits // Ann. Bot. 2006. V. 98. P. 693-713.

148. Leach F., Aoyagi K. Promoter analysis of the highly expressed rolC and rolD root-inducing genes of Agrohacterium rhizogenes: enhancer and tissue-specific DNA determinants are dissociated. // Plant Sci. 1991. V.79. P.69-76.

149.Lehrman A., Ahman I., Ekbom B. Influence of pea lectin expressed transgenically in oilseed rape (Brassica napus) on adult pollen beetle (Meligethes aeneus). //Appl. Entomol. 2007. V. 131. P. 319-325.

150. Li X., Qin J.C., Wang Q.Y., Wu X., Lang C.Y., Pan H.Y., Gruber M.Y., Gao M.J. Metabolic engineering of isoflavone genistein in Brassica napus with soybean isoflavone synthase. // Plant Cell Rep. 2011. V. 30. P. 1435-1442.

151. Lôpez-Guerrero M. G., Ramirez M. A., Martinez-Romero E. Rhizobial Genetic Repertoire to Inhabit Legume and Nonlegume Rhizospheres //Molecular Microbial Ecology of the Rhizosphere: Volume 1 & 2. 2013. P. 495-500.

152.Loper J. E., Henkels M. D. Utilization of heterologous siderophores enhances levels of iron available to Pseudomonas putida in the rhizosphere //Applied and Environmental Microbiology. 1999. V. 65. №. 12. P. 5357-5363.

153.Lucchini A.E., Lisa T.A., Domenech C.E. Choline derivatives increase two different acid phosphatases in Rhizobium meliloti and Pseudomonas aeruginosa. II Arch Microbiol. 1990. V. 153. P. 596-599.

154. Ma W., Carles T.C., Glick B.R. Expression of an exogenous 1-aminocyclopropane -1-carboxylate deaminase gene in Sinorhizobium meliloti increases its ability to nodulate alfalfa. // Appl Environ Microbiol. 2004. V. 70. P. 5891-5897.

155.Mamaril J.C., Paner E.T., Alpante B.M Biosorption and desorption studies of chromium (iii) by free and immobilized Rhizobium (BJVr 12) cell biomass. // Biodégradation. 1997. V. 8. P. 275-285.

156. Martinez C. R., Albertini A. V. P., Figueirdo M. V. B., Silva V. L., Sampaio A. H., Cavada B. S., Lima-Filho J. L. Respiratory stimulus in Rhizobium sp. by legume lectins // World J. Microbiol. Biotechnol. 2004. V. 20. P. 77-83.

157. Martinuz A., Schouten A., Sikora R. A. Systemically induced resistance and microbial competitive exclusion: implications on biological control //Phytopathology. 2012. V. 102. №. 3. P. 260-266.

158.McCully M. The rhizosphere: the key functional unit in plant/soil/microbial interactions in the field. Implications for the understanding of allelopathic effects. // Proceedings of the 4th World Congress on Allelopathy. 2005. Wagga Wagga. Australia. P. 1-8.

159. Mehboob I., Naveed M., Zahir A. Z. Ashraf M. Potential of Rhizobia for Sustainable Production of Non-legumes // Crop Production for Agricultural Improvement. Springer Netherlands. 2012. P.659-704.

160. Mehry A., Akbar M., Giti E. Colonization and nitrogenase activity of Triticum aestivum (cv. Baccross and Mahdavi) to the dual inoculation with Azospirillum brasilense and Rhizobium meliloti plus 2,4-D. // Pak J Biol Sci. 2008. V.ll. P. 15411550.

161.Mishra R.P., Singh R. K., Jaiswal H. K., Kumar V., Maurya S. Rhizobium-mediated induction of phenolics and plant growth promotion in rice (Oryza sativa L.). // Curr. Microbiol. 2006. V. 52. P. 383-389.

162. Modi M., Shah K. S., Modi V. V. Isolation andcharacterisation of catechol-type siderophore from cowpea Rhizobium RA-1. // Arch Microbiol. 1985. V. 141. P. 156-158.

163.Mourad K., Fadhila K., Chahinez M., Meriem R., Philippe L., Abdelkader B. Antimicrobial activities of Rhizobium sp. strains against Pseudomonas savastanoi, the agent responsible for the olive knot disease in Algeria. // Grasas Aceites. 2009. V. 60. P. 139-146.

164. Murashige T., Skoog F. A Revised Medium for Rapid Growth and Bioassays with Tobacco Tissue Cultures // Physiol. Plant. 1962. V. 15. P. 473-497.

165.Naidu V. S. G. R., Panwar J. D. S., Annapurna K. Effect of synthetic auxins and Azorhizobium caulinodans on growth and yield of rice. // Indian J Microbiol. 2004. V. 44. P. 211-213.

166.Nambiar P.T.C., Sivaramakrishnan S. Detection and assayof siderophores in cowpea rhizobia {Bradyrhizobium) using radioactive Fe (59Fe). // Appl Microbiol Lett. 1987. V. 4. P. 37-40.

167.Neilands J. B. Microbial iron compounds. // Annu Rev Biochem. 1981. V. 50. P. 715-731.

168.Nicolson G. L. The interactions of lectins with animal cell surfaces. // Int. Rev. Cytol. V. 39. P. 89-190.

169. Nielsen S.-E., Sorensen G.M. Rhizobia transformants which symbiotically fixes nitrogen in non-legumes, a material for treating seeds of a non-legume plant, non-legume seeds, a non legume plant and a method for producing, Novo Industri A/S (Bagsvaerd), DK,US005229291A 20.06.1993

170. Noel T. C., Sheng C., Yost C. K., Pharis R. P., Hynes, M. F. Rhizobium leguminosarum as a plant growth-promoting rhizobacterium: direct growth promotion of canola and lettuce. // Can. J. Microbiol. 1996. V. 42. P. 279-283.

171. Okazaki S., Sugawara M., Minamisawa K. Bradyrhizobium elkanii rtxC gene is required for expression of symbiotic phenotypes in the final step of rhizobitoxine biosynthesis. // Appl Environ Microbiol. 2004. V. 70. P. 535-541.

172. Patel K.J., Vig S., Naresh K. G, Archana G. Effect of Transgenic Rhizobacteria Overexpressing Citrobacter braakii appA on Phytate-P Availability to Mung Bean Plants. // J. Microbiol. Biotechnol. 2010. V. 20. P. 1491-1499.

173. Perez-Gimenez J., Mongiardini E. J., Althabegoiti M. J., Quelas J. I., LopezGarcia S. L., Lodeiro A. R. Soybean lectin enhances biofilm formation by Bradyrhizobium japonicum in the absence of plants // Int. J. Microbiol. 2009. ID 719367.

174. Perigio B. F., Shoichiro A. The 2,4-D-induced wheat para-nodules are modified lateral roots with structure enhanced by rhizobial inoculation. // Plant and Soil. 1993. V. 157. P 121-129.

175. Persmark M., Pittman P., Buyer J. S., Schwyn B., Gill P. R., Neilands J. B., Isolation and structure of rhizobactin 1021, a siderophore from alfalfa symbiont Rhizobium meliloti 1021. //J Am Chem Soc. 1993. V. 115. P. 3950-3956.

176. Perveen S., Ehteshamul-haque S., Ghaffar A. Biological control of soilborne root infecting fungi in tomato and okra. // Pak. J. Bot. 1994. V. 26. №1. P. 181-186.

177. Phillips D. A., Joseph C. M., Yang G.-P., Martinez-Romero E., Sanborn J. R., Volpin H. Identification of lumichrome as a Sinorhizobium enhancer of alfalfa root respiration and shoot growth. // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1996. V.96. P. 1227512280.

178. Pieterse C.M.J., Van Wees S.C.M., Hoffland E., Van Pelt J.A., Van Loon L.C. Systemic resistance in Arabidopsis induced by biocontrol bacteria is independent of salicylic acid accumulation and pathogenesis-related gene expression // The Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1225-1237.

179. Pliego C., Kamilova F., Lugtenberg B. Plant Growth-Promoting Bacteria: Fundamentals and Exploitation // Bacteria in Agrobiology: Crop Ecosystems. 2011. Ed. by: Maheshwari D. K. P. 295-343.

180.Potenza C., Aleman L., Sengupta-Gopalan C. Invited review: Targeting transgene expression in research, agricultural, and environmental applications: Promoters used in plant transformation. II.In Vitro cell and Dev. Biol- Plant. 2004. V. 40. P. 1-22.

181. Preininger E. Gyurjan I., Boka K., Ponyi, T., Zatyko J., Koranyi P. A new approach for the biolistic method: bombardment of living nitrogen-fixing bacteria into plant tissues. // In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant . 2003. V. 39. P. 443-449.

182. Prabhavati E., Mallaiah K. V. Effect of Salt Concentration on Hydrocyanic Acid Production by Salt-Tolerant Root Nodulating Bacteria from Horse Gram [Macrotyloma uniflorum (Lam.) Verde.]. // The IUP Journal of Life Sciences, V. 4. P. 30-35.

183.Probanza A., Mateos J., Lucas Garcia J., Ramos B., de Felipe M., Gutierrez Manero F. Effects of inoculation with PGPR Bacillus and Pisolithus tinctorius on Pinus pinea L. growth, bacterial rhizosphere colonization, and mycorrhizal infection. // Microb Ecol. 2001. V. 41. P. 140-148.

184. Pueppke J.L. The genetics and biochemical basis for nodulation of legumes by rhizobia. // Crit Rev Biotechnol. 1996. V. 16:1-51

185. Rajendran L., Samiyappan R. Endophytic Bacillus species confer increased resistance in cotton against damping off disease caused by Rhizoctonia solani II Plant Pathol. J. 2008. V. 7. P. 1-12.

186. Recep K., Fikrettin S., Erkol D., Cafer E. Biological control of the potato dry rot caused by Fusarium species using PGPR strains. // Biol Control. 2009. V.50. P. 194198.

187. Reitz, M., Rudolph, K., Schroder, I., Hoffmann-Hergarten, S., Hallmann, J., and Sikora, R. A.. Lipopolysaccharides of Rhizobium etli strain G12 act in potato roots as an inducing agent of systemic resistance to infection by the cyst nematode Globodera pallida. II Appl. Environ. Microbiol. 2000. V. 66. P. 3515-3518.

188. van Rhijn P., Fujishige N.A., Lim P-O., Hirsch A.M. Sugar-binding activity of pea (Pisum sativum) lectin enhances heterologous infection of transgenic alfalfa plants by Rhizobium leguminosarum biovar viciae. //. Plant Physiol. 2001. V. 126. P. 133 — 144.

189. Rioux C. R., Jordan D. C., Rattray J B M. Iron requirement of Rhizobium leguminosarum and secretion of anthranilic acidduring growth on an iron-deficient medium. // Arch Biochem. 1986. V. 248. P.175-182.

190. Roberts N. J., Morieri G., Kalsi G., Rose A., Stiller J., Edwards A., Etzler M. E. Rhizobial and Mycorrhizal Symbioses in Lotus japonicus Require Lectin Nucleotide Phosphohydrolase, Which Acts Upstream of Calcium Signaling //Plant physiology. -2013. V. 161. №. l.P. 556-567.

191. Robleto E. A., Kmiecik K., Oplinger E. S., Nienhuis J., Triplett E. W. A. et al. Trifolitoxin production increases nodulation competitiveness of Rhizobium etli CE3 under agricultural conditions //Applied and environmental microbiology. 1998. V. 64. №. 7. P. 2630-2633.

192. Rodriguez H., Fraga R., Gonzalez T., Bashan Y. Genetic of phosphate solubilization and its potencial applications for improving plant growth-promoting bacteria // Plant Soil. 2006. V. 287. P. 15-21.

193. Rolfe B. G., Bender G. L. Evolving a Rhizobim for non-legume nodulation. in Nitrogen fixation: Achievements andobjectives. Ed.by P M Gresshofl L E Rolh. G Stacey & W E Newton. Chapman and Hall. New York. 1990. P. 329-339.

194.Rougé P, Culerrier R, Granier C, Raneé F, Barre A. Characterization of IgE-binding epitopes of peanut (Arachis hypogaea) PNA lectin allergen cross-reacting with other structurally related legume lectins. // Mol Immunol. 2010. V. 47. P.2359-2366.

195. Rouge P., Pere D., Bourne Y. In vitro cleavage of the Lathyrus nissolia isolectin // Plant Sci. 989. V. 62. P. 181-189.

196. Rudiger H. Structure and function of plant lectins // In: Glycosciences (Gabius H.-J., Gabius S., Eds.). Weinheim, Capman&Hall. 1997. P. 415-438.

197.Rudrappa T., Biedrzycki M.L., Kunjeti S.G., Donofrio N.M., Czymmek K.J., Paré P.W., Bais H.P. The rhizobacterial elicitor acetoin induces systemic resistance in Arabidopsis thaliana II Communicative & Integrative Biology. 2010. V. 3. P. 130-138.

198. Sabry S. R. S., Saleh S.A., Batchelor C.A., Jones J., Jotham J., Webster G., Kothari S.L., Davey M.R., Cocking E.C. Endophytic establishment of Azorhizobium caulinodans in wheat. // Proc R Soc Lond. 1997. V. 264. P. 341-346.

199. Saikia, S. P., Jain, V. and Srivastava, G. C., Effect of 2,4-D and inoculation with Azorhizobium caulinodans on maize. // Acta Agron.Hung. 2006. V. 54. P. 121125.

200. Samavat S, Besharati H, Behboudi K. Interactions of rhizobia cultural filtrates with Pseudomonas fluorescens on bean damping-off control. // J. Agr. Sci. Tech. 2011. V. 13. P. 965-976.

201. Santaella C., Schue M., Berge O., Heulin T., Achouak W. The exopolysaccharide of Rhizobium sp. YAS34 is not necessary for biofilm formation on Arabidopsis thaliana and Brassica napus roots but contributes to root colonization. // Environ Microbiol. 2008. V. 10. P. 2150-2163.

202. Schippers B., Bakker A., Bakker P. van Peer R. Beneficial and deleterious effects of HCN-producing pseudomonads on rhizosphere interactions. // Plant Soil. 1990. V. 129. P. 75-83.

203. Scott M.P., Jung R., Muntz K., Nielsen N.C. A protease responsible for post-translational cleavage of a conserved Asn-Gly linkage in glycinin, the major seed storage protein of soybean // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1992. V. 89. P. 685-662.

204. Seneviratne.G. Developing beneficial microbial biofilms on roots of non-legumes: a novel biofertilizing technique. In: M.S. Khan, A. Zaidi and J. Musarrat (Eds), Microbial Strategies for Crop Improvement. Springer-Verlag, Berlin Heidelberg, 2009. P. 51-62.

205. Sessitsch A., Hardarson G., de Vos W.M., Wilson, K.J. Use of marker genes in competition studies of Rhizobium // Plant and Soil. 1998. V. 204. P. 35^15

206. Sharif T., Khalil S., Ahmad S. Effect of Rhizobium sp. on growth of pathogenic fungi under in vitro conditions // Pakistan Journal of Biological Sciences. 2003. T. 6. №. 18. C. 1597-1599.

207. Sharon N., Lis H. Legume lectins - a large family of homologous proteins // FASEB J. 1990. V. 4. P. 3198-3208.

208. Shaukat S.S., Siddqui I.A. The influence of mineral and carbon sources on biological control of charcoal rot fungus, Macrophomina phaseolina by fluorescent pseudomonads in tomato. // Lett Appl Microbiol. 2003. V. 36. P. 392-398.

209. Shi S. L. Huo P. H., Li J. F., Zhang S. Q., Wen W. W., Yin J., Gao Y. Phosphate Solubilizing Microorganisms and Phosphate Solubilizing Rhizobium-Mini Review // Applied Mechanics and Materials. 2013. V. 295. P. 2328-2332.

210. Shukla S., Arora R., Sharma H.C. Biological activity of soybean trypsin inhibitor and plant lectins against cotton bollworm/legume pod borer, Helicoverpa armigera. II Plant Biotechnol. 2005. V. 22. P. 1-6.

211. Siddiqui I.A., Ehteshamul-Haque S., Ghaffar A. Effect of Rhizobia and fungal antagonists in the control of root infecting fungi on sunflower and chickpea. // Pak J Bot. 1998. V. 30. P. 279-286.

212. Siddiqui I.A., Ehteshamul-Haque S., Zaki M.J., Ghaffar A. Effect of urea on the efficacy of Bradyrhizobium sp. and Trichoderma harzianum in the control of root infecting fungi in mungbean and sunflower. // Sarhad J Agric. 2000. V. 16. P. 403-406.

213. Singh H., Sarathi S. Insight of Lectins- A review // International Journal of Scientific & Engineering Research. 2012. V. 3.1. 4.

214. Singh J. S., Singh D. P. Plant Growth Promoting Rhizobacteria (PGPR): Microbes in Sustainable Agriculture // Management of Microbial Resources in the Environment. Springer Netherlands, 2013. P. 361-385.

215.Sinha S., Rai U.N., Bhatt K.E.A.Fly-ash-induced oxidative stress and tolerance in Prosopis juliflora L. grown on different amended substrates. Environ. Monit. Assess., 2005, 102: 447-457.

216. Sitohy, M., Doheim, M., Badr, H. Isolation and characterization of a lectinwith antifungal activity from Egyptian Pisum sativum seeds. // Food Chemistry. 2007. V. 104. P. 971-979.

217. Skorupska A., Derylo M. Lorkiewicz Z., Siderophore production and utilisation by Rhizobium trifolii. II Biol Metals. 1989. V. 2 P. 45-49.

218. Smets B. F., Morrow J. B., Arango P. C. Plasmid introduction in metal-stressed, subsurface-derived microcosms: plasmid fate and community response. // Appl. Environ. Microbiol. 2003. V. 69. P. 4087-4097.

219. Smith M. J., Shoolery J. N., Schwyn B., Holden I. Neilands J.B. Rhizobactin, a structurally novel siderophore from Rhizobium meliloti. II J Am Chem Soc. 1985. V. 107. P. 1739-1743.

220. Sreevidya V.S., Srinivasa Rao C., Sullia S.B., Ladha J.K., Reddy P.M. Metabolic engineering of rice with soybean isoflavone synthase for promoting nodulation gene expression in rhizobia. // J Exp Bot. 2006. V. 57. P. 1957-1969.

221.Sridevi M., Mallaiah K.V. Factors effecting chitinase activity of Rhizobium sp. from Sesbania sesban //Biologia 2008, V. 63. P. 307-312.

222. Sriprang R., Hayashi M., Yamashita M., Ono H., Saeki K., MurookaY. A novel bioremediation system for heavy metals using the symbiosis between leguminous plant and genetically engineered rhizobia. // J Biotechnol. 2002. V. 99. P. 279-293.

223. Staehelin C., Granado J., Muller J., Wiemeken A., Mellor R. B., Felix G., Regenass M., Broughton W. J., Boiler T. Perception of Rhizobium nodulation factor by

tomato cells and inactivation by root chitinases. // Proc. Nat. Acad. Sci. 1994. V. 91. P. 2196-2200.

224. Stajner D., Kevreaan S., Gasaic O. Nitrogen and Azotobacter chroococcum enhance oxidative stress tolerance in sugar beet. // Biol. Plant. 1997. V. 39. P. 441-445.

225. Stone P.J., O'Callaghan K.J., Davey M.R., Cocking E.C. Azorhizobium caulinodans ORS571 colonizes the xylem of Arabidopsis thaliana.ll Mol. Plant-Microbe Interact. 2001. V. 14. P. 93-97.

226. Stougaard J., Lene J., Madsen H., Sandal N., Tirichine L. Spontaneous nodulation in plants US 8273955 B2. 2012

227. Sullivan J.T., Trzebiatowski J.R., Cruickshank R.W., Gouzy J., Brown S.D., Elliot R.M., Fleetwood D.J., McCallum N.G., Rossbach U., Stuart G.S., Weaver J.E., Webby R.J., De Bruijin F.J., Ronson C.W. Comparative sequence analysis of the symbiosis island of Mesorhizobium loti strain R7A. // J Bacteriol. 2000. V. 184. P. 3086-3095.

228. Tak H. I., Ahmad F., Babalola O. O. Advances in the Application of Plant Growth-Promoting Rhizobacteria in Phytoremediation of Heavy Metals //Reviews of Environmental Contamination and Toxicology Volume 223. Springer New York, 2013. P. 33-52.

229. Tirichine L., Jensen J. S., Sandal N., Madsen L. H. Spontaneous nodulation in plants 8273955 2012.

230. Uchiumi T., Oowada T., Itakura M., Mitsui H., Nukui N., Dawadi P., Kaneko T., Tabata S., Yokoyama T., Tejima T., Saeki K., Oomori H., Hayashi M., Maekawa T., Sriprang R., Murooka Y., Tajima S., Simomura K., Nomura M., Suzuki A., Shimoda S., Sioya K., Abe M., Minamisawa K. Expression islands clustered on symbiosis island of Mesorhizobium loti genome. // J Bacteriol. 2004. V. 186. P. 2439-2448.

231. Untergasser A., Bijl G.J., Liu W., Bisseling T., Schaart J.G., Geurts R. One-step Agrobacterium mediated transformation of eight genes essential for rhizobium symbiotic signaling using the novel binary vector system pHUGE. // PLoS One. 2012. V. 7. e47885. doi: 10.1371/journal.pone.0047885.

232. Van Loon L.C., Glick B.R. Increased plant fitness by rhizobacteria // Ecological Studies. 2004. V. 170. P. 177-205.

233. Van Rhijn R., Vanderleyden J. The Rhizobium-plant symbiosis. //Microbiol Rev. 1995. V. 59. P. 124-142.

234. Vargas L.K., Lisboa B.B., Schlindwein G., Granada C.E., Giongo A., Beneduzi A., Passaglia L.M.P. Occurrence of plant growth-promoting traits in clover-nodulating rhizobia strains isolated from different soils in Rio Grande do Sul state. // R Bras Ci Solo. 2009. V. 33. P. 1227-1235.

235. Vatamaniuk O.K., Mari S., Lang A., Chalasani S.,Demkiv L.O., Rea P.A. Phytochelatin Synthase, a Dipeptidyltransferase That Undergoes Multisite Acylation with gamma-Glutamylcysteine during Catalysis: Stoichiometric and Site_Directed Mutagenic Analysis of Arabidopsis thaliana PCS 1-Catalyzed Phytochelatin Synthesis // J. Biol. Chem. 2004. V. 279. P. 22 449-22460.

236. Vaughan S.P, James D.J, Lindsey K. Massiah A.J. Characterization of FaRB7, a near root-specific gene from strawberry (Fragaria ananassa Duch.) and promoter activity analysis in homologous and heterologous hosts. // J. Exp. Bot. 2006. V. 57. P. 3901-3910.

237.Vessey J.K. Plant growth promoting rhizobacteria as biofertilizers. // Plant Soil. 2003. V. 255. P. 571-586.

238. Verma V., Joshi K., Mazumdar B. Study of Siderophore Formation in Nodule-Forming Bacterial Species. // Research Journal of Chemical Sciences. 2012. V. 2. P. 2629.

239. Vershinina Z.R., Baymiev An.K., Blagova D.K., Chubukova O.V., Baymiev Al.K., Chemeris A.V. Artificial Colonization of Non-symbiotic Plants Roots with the Use of Lectins.// Symbiosis. 2012. V. 56. P. 25-33.

240. Wani P.A., Khan M.S., Zaidi A. Impact of zinc-tolerant plant growth-promoting rhizobacteria on lentil grown in zinc-amended soil. // Agron. Sust. Develop. 2008a. V. 28. P. 449-455.

241.Wani P.A., Khan M.S., Zaidi A. Chromium reducing and plant growth promoting Mesorhizobium improves chickpea growth in chromium amended soil. // Biotechnol Lett. 2008b. V. 30. P. 159-163

242. Wani P.A., Khan M.S., Zaidi A. Effect of metal tolerant plant growth promoting Rhizobium on the performance of pea grown in metal amended soil. // Arch Environ Conatm Toxicol. 2007.doi: 10.1007/00244-9097-y

243. Wani P.A., Khan M.S., Zaidi A. Effect of metal tolerant plant growth promoting Bradyrhizobium sp. (vigna) on growth, symbiosis, seed yield and metal uptake by greengram plants. // Chemosphere. 2007. V. 70. P. 36-45

244. Wani P.A., Khan M.S., Zaidi A. Impact of zinc-tolerant plant growth promoting rhizobacteria on lentil grown in zinc-amended soil. // Agron Sustain Dev. 2007. doi: 10.105 l/agro-2007048

245. Wani P.A., Khan M. S. Bioremediation of Lead by a Plant Growth Promoting Rhizobium Species RL9. // Bacteriology Journal. 2012. V. 2. P. 66-78.

246. Webster G., Gough C., Vasse J., Batchelor C. A., O'Callaghan K. J., Kothari S. L., Davey M. R., Denarie J., Cocking E. C. Interactions of rhizobia with rice and wheat. //Plant Soil. 1997. V. 194. P. 115-122.

247. Whipps J.M. Effect of media on growth and interactions between a range of soil-borne glasshouse pathogens and antagonistic fungi. // New Phytologyst 1987. V. 107. P. 127-142.

248. Wright W, Little J., Liu F., Chakraborty R. Isolation and structural identification of the trihydroxamate siderophore vicibactin and its degradative products from Rhizobium leguminosarum ATCC 14479 bv. trifolii //BioMetals. 2013. P. 1-13.

249. Xie Z.-P., Staehlin C.,Vierheilig H.,Wiemken A., Jabbouri S., Broughton W. J., Vogeli-Lange R., Boiler T. Rhizobial nodulation factors stimulate mycorrhizal colonization of nodulating and nonnodulating soybeans.// Plant Physiol. 1995. V. 108. P. 1519-1525.

250. Yamamoto, Y. T.; Taylor, C. G.; Acedo, G. N.; Cheng, C.-L.; Conkling, M. A. Characterization of cis-acting sequences regulating root-specific gene expression in tobacco. // Plant Cell. 1991. V. 3. P. 371-382;

251. Yanni Y.G., Rizk R., Corich V., Squartini A., Ninke K., Philip-Hollingsworth S., Orgambide G., Fd B., Stoltzfus J., Buckley D., Schmidt T., Mateos P., Ladha J.K., Dazzo F.B. Natural endophytic association between Rhizobium leguminosarum bv. trifolii and rice roots and assessment of its potential to promote rice growth. // Plant Soil. 1997. V. 94. P. 99-114.

252. Yanni Y.G., Rizk R.Y., Abd El-Fattah F.K., Squartini A., Corich V., Giacomini A, De Bruijn F., Rademaker J., Maya-Flores J., Ostrom P., Vega-Hernandez M., Hollingsworth R. I., Martinez- Molina E., Mateos P., Velazquez E., Wopereis J., Triplett E., Umali-Gracia M., Anarna J.A., Rolfe B.G., Ladha J.K., Hill J, Mujoo R., Ng P.K., Dazzo F.B. The beneficial plant growth-promoting association of Rhizobium leguminosarum bv. trifolii with rice roots. // Aust J Plant Physiol. 2001. V. 28. P. 845870.

253. Young N.M., Oomen R.P. Analysis of sequence variation among legume lectins: a ring of hypervariable residues forms the perimeter of the carbohydrate-binding site // J. Mol. Biol. 1992. V. 228. P. 924-934.

254.Zaidi A., Khan M.S., Ahemad M., Oves M. Plant growth promotion by phosphate solubilizing bacteria. // Acta Microbiol Immunol Hung. 2009. V. 56. P. 263284.

255. Zhang J-X., Wang Y-P., Shen S-H., Wang Y-Q., Gao Y-F., Shan X-Q., Jing Y-X. Transformation of Pea Lectin Gene and Parasponia Haemoglobin Gene into Rice and Their Expressions. // Acta Botanica Sinica. V. 43. P. 267-274.

256. Ziedan E.H.E. Manipulating endophytic bacteria for biological control to soil borne diseases of peanut // J. Appl. Sci. Research. 2006. V. 2. P. 497-502.