Индукция морфогенеза в культуре соматических тканей сливы домашней: Prunus domestica L. тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.23, кандидат биологических наук Муратова, Светлана Александровна

• Муратова, Светлана Александровна
• кандидат биологических наук
• 2002

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Муратова, Светлана Александровна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. Обзор литературы.

1.1. Регенерация растений из соматических тканей Prunus.

1.1.1 .Клональное микроразмножение косточковых культур in vitro.

1.1.1.1. Введение в культуру.

1.1.1.2. Субкультивирование побегов.

1.1.1.3. Укоренение побегов.

1.1.1.4. Перевод растений в нестерильные условия.

1.1.2. Индукция морфогенеза из изолированных тканей.

1.1.3. Подбор оптимальных условий регенерации.

1.1.4. Генетическая стабильность растений, полученных методами культуры тканей.

1.2. Агробактериальная трансформация Prunus.

1.2.1. Agrobacterium - естественные векторы переноса генетической информации в растения.

1.2.2. Механизм вирулентности агробактерий.

1.2.3. Конструирование обезоруженных векторов, промоторы, селективные и репортерные гены.

1.2.4. Генетическая трансформация Prunus с использованием векторной системы Agrobacterium.

1.2.5. Регенерация трансгенных растений.

1.2.5.1. Выбор экспланта.

1.2.5.2. Действие трансформационного/селекционного стресса наэксплант.

1.2.6. Перспективы генетической инженерии в селекции сливы.

ГЛАВА 2. Цели и задачи исследований.

ГЛАВА 3. Объекты и методы исследований.

3.1. Объекты исследований.

3.2. Культивирование сливы in vitro.

3.3. Регенерация сливы из листовых и стеблевых эксплантов.

3.4. Определение чувствительности к антибиотикам листовых тканей.

3.5. Бактериальные штаммы и плазмиды.

3.6. Трансформация листовых эксплантов и селекция каллусных клонов.

3.7. Определение GUS-активности в трансгенных клетках.

3.8. Статистическая обработка результатов исследований.

ГЛАВА 4. Результаты исследований.

4.1. Культивирование сливы in vitro

4.1.1. Введение в культуру.

4.1.2. Субкультивирование побегов.

4.1.3. Укоренение микрочеренков и перевод растений в нестерильные условия.

4.2. Регенерация сливы домашней из стеблевых и листовых эксплантов.

4.2.1. Некоторые особенности морфогенеза в культуре листовых дисков косточковых.

4.2.2. Влияние минерального состава'среды на эффективность регенерации из листовых эксплантов сливы домашей.

4.2.3. Влияние регуляторов роста растений на индукцию морфогенеза в культуре листовых тканей сливы домашней

4.2.4. Влияние вида и концентрации углевода в среде на частоту регенерации побегов из листовых эксплантов сливы домашней.

4.2.5. Оценка регенерационного потенциала сортов сливы домашней.

4.2.6. Изменение морфогенетического потенциала в зависимости от типа и происхождения экспланта.

4.2.7. Влияние ориентации эксплантов на среде на каллусообразование и органогенез в культуре высечек листьев сливы домашней.

4.2.8. Сравнение морфогенетического потенциала высечек листьев, полученных in vivo и in vitro.

4.3. Чувствительность к антибиотикам листовых тканей сливы.

4.4. Образование и рост трансформированного каллуса на селективных средах.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Индукция морфогенеза в культуре соматических тканей сливы домашней: Prunus domestica L.»

Плоды косточковых культур, имея высокие пищевые и диетические свойства, занимают важное место в нашем рационе. Однако потребительский спрос на них в последнее время часто оказывается неудовлетворенным по ряду причин, в том числе из-за сильного подмерзания в неблагоприятные зимы, снижения урожайности в связи с распространением ряда опасных грибных и вирусных болезней.

Двадцатый век ознаменовался процессом быстрой смены сортимента косточковых культур. Значительно обогатился и сортимент сливы. Выведенные отечественными селекционерами новые сорта сочетают достаточно высокую зимостойкость с хорошими вкусовыми качествами плодов. Это Ренклод Харитоновой, Этюд, Заречная ранняя (ВНИИГиСПР), Смолинка, Яичная синяя (ВСТИСП), Теньковская синяя, Ренклод Теньковский (Татарский НИИСХ) и другие. Однако они не полностью адаптированы к климатическим условиям средней зоны плодоводства России и для создания на их основе промышленных садов необходима разработка специальных технологий.

Чтобы слива стала промышленной культурой в средней полосе России и в Поволжье, необходимо создание высокоадаптивных сортов, пригодных для интенсивных технологий возделывания, устойчивых к комплексу экстремальных факторов среды, прежде всего, зимостойких и устойчивых к основным болезням (шарка, бактериоз и др.), кроме того, обладающих высокими товарными и вкусовыми качествами. Для решения этих задач возникает настоятельная потребность в использовании новых технологий, позволяющих существенно сократить сроки получения новых форм и преодолеть трудности, связанные с половой несовместимостью при отдаленной гибридизации растений. В основе современных биотехнологических подходов лежат методы культивирования растительных тканей и органов в стерильных условиях.

По мнению Г.В. Еремина (1999), успешное выполнение программы производства плодов косточковых культур возможно, прежде всего, при условии 6 создания системы производства высококачественного посадочного материала, включающего обеззараживание, сертификацию сортов, клональное микроразмножение сортов и клоновых подвоев.

За последние 10-15 лет появилось ряд работ, в которых разрабатываются методы клонального микроразмножения растений рода Prunus. В то же время требуют детального выяснения сортовые особенности сливы домашней на разных этапах культивирования и связанные с ними вопросы повышения коэффициента размножения, укореняемости побегов и эффективности перевода полученных растений в нестерильные условия. Отработка метода клонального микроразмножения ряда районированных и перспективных сортов сливы {Prunus domestica) имеет большое практическое значение. Огромный потенциальный коэффициент размножения растений, культивируемых in vitro, и возможность перехода к производству безвирусного посадочного материала делают данный метод размножения сливы весьма актуальным. Кроме того, стерильные растения, полученные in vitro, являются удобным объектом для дальнейших работ по разработке методов регенерации и генетической трансформации сливы домашней.

Одним из важнейших направлений селекции в настоящее время является генетическая инженерия растений. Методы генетической инженерии позволяют переносить в геном растений, в частности, в плодовые и ягодные культуры, единичные гены, контролирующие ряд хозяйственно-ценных признаков. При этом исключается перенос сопутствующего генетического окружения, что имеет место, например, при отдаленной гибридизации растений и, следовательно, отпадает потребность в длительных возвратных скрещиваниях. Новая технология уже сейчас позволяет решить ряд классических для традиционной селекции проблем. Получены формы плодовых и ягодных растений устойчивые ко многим вирусам (трансформация генами синтеза белков оболочки вирусов, антисмысловых конструкций вирусных РНК, вирусных РНК-зависимых полимераз), грибным и бактериальным патогенам (трансформация генами дефензинов, хи-тиназ, пептидных белков), некоторым вредным насекомым (перенос в растения 7 генов 5-эндотоксинов B.thuringiensis, генов-ингибиторов протеиназ), гербицидам неселективного действия (глифосату, фосфинотрицину, хлорсульфуроно-вым и другим гербицидам). Возможно получить растения с измененным вкусом (ген тауматина II) и с увеличенной продолжительностью хранения плодов (антисмысловые РНК гена полигалактуроназы и ферментов биосинтеза этилена), с повышенной способностью к вегетативному размножению и измененной архитектоникой (ген rolC A.rhizogenes, биосинтеза ауксинов A.tumefaciens под контролем соответствующих промоторов) и многими другими хозяйственно-ценными признаками.

Прошедшие полевые испытания трансгенные сельскохозяйственные растения, устойчивые к экологически безопасным гербицидам, насекомым, вирусам вытесняют исходные аналоги сортов и в некоторых странах (США, Канада) начинают доминировать среди культур, для которых такие трансгенные формы получены. По данным международной службы по применению агробиотехно-логических разработок динамика распространения трансгенных растений следующая: 1996 -2,2; 1997 - 12,1; 1998 - 30-32; 1999 - 40 и 2000 - 44 млн.га. В настоящее время основными трансгенными культурами являются соя, кукуруза, хлопчатник, рапс, картофель. Большая часть трансгенных сельскохозяйственных растений представлена формами, устойчивыми к гербицидам (глифосату, фосфинотрицину, иммидазолинонам) и насекомым (колорадскому жуку, кукурузному пилильщику и др.).

Генетическая трансформация древесных плодовых растений оказалась сложной задачей из-за трудностей регенерации древесных растений in vitro. Тем не менее уже имеются сообщения об успешной трансформации ряда древесных плодовых растений, включая яблоню, грецкий орех, персик, абрикос, сливу, вишню, виноград, цитрусовые, киви, пекан, папайю, кофе и некоторые другие, маркерными и несколькими потенциально полезными генами (см. обзоры Shuerman, Dandekar, 1993; Strittmatter, Wegener, 1993; Oliveira et al., 1996; Кучук, 1997; Левенко, 1998; 2000). Наиболее широко и успешно применяется Agrobacterium - опосредованный метод переноса чужеродных генов в растения. 8

Однако большинство работ по трансформации древесных косточковых плодовых культур выполнено с использованием ювенильного материала зиготиче-ского происхождения или с использованием соматических тканей подвойных форм и межвидовых гибридов, имеющих более высокий по сравнению с сортами морфогенетический потенциал. Применительно к сливе, имеются сообщения об успешной регенерации трансгенных растений после агробактериальной трансформации сегментов гипокотиля сливы маркерными генами nptll и gus (Mante et al., 1991; Scorza et al., 1994; 1995b), геном белка оболочки вируса оспы сливы (PPV) (Scorza et al., 1994) и геном белка оболочки вируса кольцевой пятнистости папайи (PRV) (Scorza et al., 1995b). Получение трансгенных сортов тормозится отсутствием надежных методик, способных обеспечить достаточно высокую частоту регенерации побегов из соматических тканей сливы домашней. В литературе имеются лишь отдельные сообщения об успешной регенерации из листовых тканей некоторых зарубежных сортов Prunus domestica (Cossio, Bassi, 1991; Yancheva, Gercheva, 1993). Решение проблемы получения трансгенных сортов сливы осложняется и тем, что антибиотики, используемые для очистки растительных тканей от Agrobacterium и как селективные маркеры, также существенным образом влияют на регенерационный процесс. Следовательно, необходима детальная работа по разработке методики регенерации целых растений из соматических тканей перспективных сортов сливы домашней.

Протокол воспроизводимой системы регенерации сливы из изолированных соматических тканей требуется для проведения исследований по различным направлениям биотехнологии, включая соматическую гибридизацию, клеточную селекцию, мутагенез in vitro, генную инженерию. Прогресс, достигнутый в этом направлении, будет способствовать применению методов биотехнологии в селекции сливы, что, в конечном счете, приведет к созданию сортов с качественно новыми признаками, которые трудно или невозможно получить методами классической селекции. 9

Заключение диссертации по теме «Биотехнология», Муратова, Светлана Александровна

ВЫВОДЫ

1. Использование модифицированной питательной среды Кворина-Лепорье с соотношением регуляторов роста 1-2 мг/л 6-БАП, 1-2 мг/л ГК и 0,2 мг/л ИМК или ПУК позволяет получать в каждом пассаже из однопочковых эксплантов жизнеспособные конгломераты из 4-7 почек и побегов всех сортов, с достаточным выходом побегов, пригодных для укоренения.

2. Укореняемость побегов сливы зависит от особенностей сорта. Выделены легкоукореняемые сорта сливы, а именно, Евразия 21, Этюд, Ода. Эффективным способом укоренения побегов сливы на агаризованной питательной среде является использование ИМК в составе среды в концентрации 0,5-1,0 мг/л. Для индукции ризогенеза легкоукореняемых сортов сливы эффективно замачивание в растворе ИМК (50 мг/л) в течение 16-24 часов с последующей высадкой побегов на питательную среду.

3. Выделены генотипы, обладающие достаточно высокой способностью к регенерации адвентивных побегов - сорта Стартовая, Этюд, Евразия 21, Радость. При оптимизированных условиях средняя частота регенерации побегов при использовании листового материала, выращенного in vitro, сорта Стартовая - 60%, Этюд - 46%, Евразия 21 - 33%, Радость - 28%.

4. В качестве базовой среды при регенерации побегов из листовых тканей и каллуса сливы предпочтительней использовать среду Мурасиге-Скуга, дополненную 4 мг/л цитокинина (6-БАП или ТДЗ) и 0,2 или 0,5 мг/л ауксина (НУК или ИМК). Сорт Этюд лучше всего регенерирует на среде, содержащей 5мг/л БАП, 0,5 мг/л ГК и 0,2 мг/л ИМК.

5. В качестве источника углерода при регенерации из соматических тканей сливы домашней эффективно использование сахарозы и глюкозы в концентрации 30-40 мг/л.

6. Листовые ткани обладают более высоким морфогенетическим потенциалом по сравнению с тканями стебля и корня. Морфогенетические процессы в большей степени имеют место в причерешковой области листа и на череш

152 ках. Экспланты следует помещать на поверхность питательной среды адак-сиальной стороной.

7. Использование листового материала, полученного in vivo, случаев повышает частоту регенерации побегов из каллуса листового поисхождения в зависимости от сорта до 90%.

8. Листовые ткани косточковых отличаются высокой чувствительностью к селективным антибиотикам канамицину и гигромицину. Канамицин при концентрации в среде 5-7 мг/л подавляет регенерацию побегов и при концентрации 10-30 мг/л значительно угнетает процесс каллусообразования. Гигромицин при концентрации 2,5-5,0 мг/л подавляет регенерацию из не-трансформированных тканей и при концентрации 5-10 мг/л полностью подавляет процесс каллусообразования. Наблюдаются некоторые видовые и сортовые различия по чувствительности к этим антибиотикам.

9. Бактериостатический антибиотик цефотаксим при концентрации в среде 250-1000 мг/л не оказывает негативного действия на процесс регенерации.

10. Использование супервирулентных штаммов A.tumefaciens СВЕ21 с бинарным вектором pBI121 (nptll, 35S-gus) и ЕНА105 с бинарным вектором p35S GUSint (hpt, 35S ^ж-интрон) позволяет получать потенциально трансгенные каллусы сливы с высокой частотой (75-94%).

153

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В результате проведенных исследований нами разработана эффективная методика культивирования in vitro и регенерации из соматических тканей ряда сортов сливы домашней отечественной селекции средней зоны плодоводства России, а также получены трансгенные каллусные линии с экспрессией гетеро-логичных генов. Оптимизированы условия введения, клонального микроразмножения и адаптации растений к нестерильным условиям. Установлено, что наиболее благоприятным периодом для введения в культуру in vitro сливы является фаза выхода растения из состояния покоя. Для поверхностной стерилизации эксплантов эффективно применение нитрата ртути в концентрации 0,150,30% (время обработки от 1 до 30 мин. в зависимости от типа экспланта). При сильном заражении сливы патогенами целесообразно использовать меристема-тические верхушки без жестких кроющих чешуй размером 0,2-0,4 см.

Результаты наших экспериментов показали, что для клонального микроразмножения сливы подходят питательные среды Мурасига-Скуга и Кворина-Лепорье. Целесообразно использовать модифицированную среду Кворина-Лепорье, поскольку на этой среде экспланты характеризуются несколько лучшим развитием и более высоким коэффициентом размножения. Коэффициент размножения сливы определяется, прежде всего, концентрацией цитокинина в питательной среде. Наиболее эффективно применение 6-БАП в составе питательной среды в концентрации 1-2 мг/л. Для увеличения выхода побегов длиной более 1,5 см на этапе микроразмножения рекомендуется использовать ци-токинин в сочетании с ГК - 1-2 мг/л и ИМК или НУК - 0,2 мг/л.

Результаты наших опытов показали, что укореняемость побегов сливы зависит от особенностей сорта. Выделены легкоукореняемые сорта сливы домашней, а именно, Евразия 21, Этюд, Ода. Эффективным способом укоренения побегов сливы на агаризованной питательной среде является использование ИМК в составе среды в концентрации 0,5-1,0 мг/л. Использование ауксина при укоренении сливы обязательно, поскольку на среде без регуляторов роста час

147 тота укоренения всех сортов значительно ниже, существенно уменьшается число корней на укорененное растение. Мы рекомендуем для каждого сорта применять допустимо низкую концентрацию ауксина, поскольку повышение его уровня в среде сопровождается нежелательным образованием значительного количества каллуса на средах побегов. Для предупреждения возможных изменений структуры образующихся корней рекомендуется растения, укорененные на среде с высокой концентрацией ауксина, перенести на безгормональную среду.

Для индукции ризогенеза легкоукореняемых сортов сливы эффективно использовать замачивание в растворе ИМК (50 мг/л) в течение 16-24 часов, с последующей высадкой побегов на питательную среду без ауксина.

Адаптацию растений к нестерильным условиям можно проводить как в специально оборудованных теплицах круглогодично, так и высаживая их в весенне-летний период непосредственно в грунт под пленочные укрытия, при наличии воздушно-капельного орошения.

Разработана методика регенерации целых растений из изолированных соматических тканей ряда районированных и перспективных сортов сливы домашней. Как показали результаты наших опытов, модель и эффективность регенерации из соматических тканей сливы домашней определяется рядом факторов, основными из которых являются: генотип растения, гормональный и углеводный состав питательной среды, тип экспланта.

Сравнение частоты регенерации на трех средах не выявило преимущества питательных сред Кворина-Лепорье и WPM по сравнению со средой Мурасиге-Скуга при регенерации адвентивных побегов из соматических тканей сливы. Полученные различия на этих средах статистически не достоверны. В большей степени частота регенерации зависела от генотипа и гормонального состава среды. Эффективность регенерации определялась как типом используемых ци-токининов и ауксинов, так и их соотношением.

По результатам наших опытов можно сказать, что регенерация побегов сливы домашней происходит только при количественном преобладании цито

148 кинина над ауксином в соотношении от 8 : 1 до 25 : 1. В культуре листовых эксплантов сливы наиболее эффективно индуцировали адвентивный органогенез комбинации регуляторов роста БАП + ИМК и ТДЗ + НУК. У сортов Радость и Синеокая немного чаще или с той же частотой вызывали форомирова-ние побегов БАП и НУК. Зеатин в сочетании с НУК или ИМК не эффективен при регенерации побегов из листовых тканей исследуемых сортов. Оптимальным для достижения регенерации почек и побегов является использование ци-токинина (1,65 - 5,00 мг/л) в сочетании с ауксином (0,1 - 0,5 мг/л).

Для регенерации корней не требуется преобладания ауксина над цитоки-нином. Корни активно регенерируют на средах с тидиазуроном или зеатином при соотношении цитокинин : ауксин от 1 : 1 до 4 : 1 и концентрации НУК или ИМК не менее 0,5 мг/л.

Каллус с высокой частотой образуется при любом соотношении гормонов, за исключением сред, содержащих только 6-БАП. Наиболее интенсивно каллусообразование происходит на средах, содержащих ТДЗ или зеатин и НУК в качестве ауксина. Каллусы на средах с разным гормональным составом отличаются по цвету, массе, структуре и морфогенетической способности.

По нашим наблюдениям для сливы характерно образование дифференцированных структур из первичного каллуса и прямая регенерация, главным образом, из тканей проводящей системы листа, путем образования меристематических очагов с последующим их развитием в почки и побеги. Максимальная частота регенерации побегов наблюдалась только при оптимальном для каждого генотипа сочетании и концентрации внесенных в питательную среду регуляторов роста растений.

Изучение регенерационного потенциала 9 сортов сливы позволило выделить генотипы, обладающие более высокой способностью к регенерации адвен-тиных побегов - сорта Стартовая, Этюд, Евразия 21, Радость. При оптимизированных условиях средняя частота регенерации сорта Стартовая - 60%, сорта Этюд - 46%, сорта Евразия 21 - 33%, сорта Радость - 28%.

149

Изучено влияние на морфогенетические процессы ряда других факторов: углеводов, типа экспланта и его ориентации на питательной среде.

При сравнении трех источников углерода показано, что лактоза не подходит для культивирования листовых эксплантов сливы. На средах с лактозой наблюдается только слабое каллусообразование, индукции морфогенетических процессов не происходит. Глюкоза и сахароза стимулируют образование и рост каллуса, а также дифференциацию адвентивных почек и побегов. Наиболее эффективным является наличие в среде глюкозы или сахарозы в количестве 30 и 40 г/л.

По нашим данным, для достижения регенерации побегов из неапикальных соматических тканей без проведения многоэтапных опытов лучше всего использовать листовые ткани, поскольку они обладают более высоким морфо-генетическим потенциалом по сравнению с тканями стебля и корня. Экспланты следует помещать на среду адаксиальной стороной. Морфогенетический потенциал неодинаков и по длине листа. В большинстве случаев частота регенерации выше при использовании оснований листьев с черешками. При этом, если использовать листовые ткани одной физиологической зрелости нет существенной разницы с каких (укорененных или неукорененных) побегов они срезаны. Использование листового материала (после соответствующей стерилизации), срезанного с растений открытого грунта, позволяет в ряде случаев повысить частоту регенерации побегов из каллуса листового происхождения до 90%.

Наши многолетние наблюдения не выявили каких-либо существенных фенотипических изменений у регенерантов из листовых тканей по сравнению с меристемными растениями. Растения сливы не отличались по своим характеристикам как в культуре in vitro, так и в теплице, и в открытом грунте. Таким образом, для сливы не характерна высокая частота самоклональной изменчивости, и она неоднократно может проходить стадию регенерации без существенных морфологических изменений.

Проведенные нами исследования показали высокую чувствительность листовых тканей косточковых к селективным антибиотикам - канамицину и гигромицину. Канамицин при концентрации в среде 5-7 мг/л подавляет регене

150 рацию побегов и при концентрации 15-20 мг/л значительно угнетает процесс каллусообразования. Для эффективной селекции трансформированных тканей использовали концентрацию Km в среде не менее 35 мг/л. Еще более токсичен для растительных тканей гигромицин. Этот антибиотик уже при концентрации в среде 2,5 - 10,0 мг/л, в зависимости от вида и сорта, полностью подавляет процесс каллусообразования и индукцию морфогенеза. Бактериостатический антибиотик цефотаксим в диапазоне 250-1000 мг/ л не является токсичным для растительных тканей.

Использование для трансформации листовых дисков супервирулентных штаммов A.tumefaciens СВЕ21 с бинарным вектором рВ1121 и ЕНА105 с бинарным вектором p35SGUSint позволяет получать потенциально трансгенные каллусы сливы с высокой частотой (75-94%). Каллусы, отселектированные на средах с 35 и 50 мг/л канамицина и 5 мг/л гигромицина в большинстве случаев демонстрировали высокую активность |3-глюкуронидазы. Однако использование жесткого селективного давления сразу после трансформации листовых дисков не позволило добиться регенерации побегов из трансформировнных тканей.

Пассируемые на селекционных средах более 3-4 месяцев трансгенные каллусы сливы оказались также не перспективными для получения побегов-регенерантов.

Разработанная нами методика культивирования in vitro и регенерации из соматических тканей ряда сортов сливы домашней, определение чувствительности листовых тканей к селективным антибиотикам, подбор вирулентных штаммов Agrobacterium tumefaciens позволяют продолжить работу по переносу в эту экономически важную культуру как селективных и репортерных, так и генов, кодирующих хозяйственно-ценные признаки.

151

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Муратова, Светлана Александровна, 2002 год

1. Армитидж Ф., Уолден Р., Драйпер ДЖ. Агробактериальные трансформирующие векторы растений//Генная инженерия растений. Лабораторное руководство/ Под ред. Драйпера Дж. и др.-М.: Мир, 1991.- С. 11-86.

2. Атанасов Д. Шарка по сливите. Една нова вирусна болеет.// Год. СУ, 1932-1933 1933.-11.-С.49-70.

3. Бурьянов Я.И. Успехи и перспективы генно-инженерной биотехнологии растений// Физиология растений.- 1999.-Т.46.-№ 6.- С.930-944.

4. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе: Учебное пособие.- М.: ФБК-ПРЕСС, 1999.-160 с.

5. Бутенко Р.Г., Кучко А. Фдзиологические аспекты получения, культивирования и гибридизации изолированных протопластов картофеля//Физиология растений.-1979.-Т.24.-№ 3.-С.660-665.

6. Высоцкий В.А. Клональное микроразмножение плодовых растений и декоративных кустарников// Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве: Сб. научн. тр. ВНИИС им .И.В.Мичурина.- Мичуринск, 1989.-С.З-8.

7. Высоцкий В.А. О генетической стабильности при клональном микроразмножении плодовых и ягодных культур // С.-х. биология.-1995.-№ 5.- С.57-63.

8. Высоцкий В.А. Биотехнологические методы в системе производства оздоровленного посадочного материала и селекции плодовых и ягодных растений: Автореф. дис. д-ра с.-х. наук/ ВСТИС и П.- М.,1998.-44 с.

9. Высоцкий В.А., Данькова Е.В. Регенерация побегов косточковых культур из корневого и листового каллусов// Плодоводство в Нечерноземье: Сб.научн.тр./ ВНИСиП.-М., 1993.-С.70-75.154

10. Высоцкий В.А., Леонтьев-Орлов О.А. Микроклональное размножение подвоев яблони// Садоводство и виноградарство.-1983.-№ 7.-С.20-21.

11. Высоцкий В.А., Олешко Е.В. Использование микропрививок при кло-нальном микроразмножении косточковых культур// С.-х. биология.- 1988.-№ 4.-С.75-77.

12. Геринг X. преодоление витрификации и улучшение акклиматизации растений при клональном микроразмножении// Биология культивируемых клеток и биотехнология растений.-М.: Наука, 1991.-С. 197-200.

13. Долгов С.В., Фирсов А.П., Бурьянов Я.И. Разработка методов регенерации и генетической трансформации вишни (Cerasus vulgaris)// Новые методы биотехнологии растений. II Российский симпозиум, 18-20 мая 1993 г., г.Пущино.-Пущино, 1993.-С. 18.

14. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта.-М.: Агропромиздат, 1985.-351 с.

15. Еремин Г.В. Косточковые сады XXI векаII Садоводство и виноградарство.-1999.-№ 5-6.-С.2-3.

16. Еремин Г.В., Проворченко А.В., Гавриш В.Ф., Подорожный В.Н., Еремин

17. B.Г. Косточковые культуры. Выращивание на клоновых подвоях и собственных корнях.- Ростов-на-Дону: Феникс,2000.-256 с.

18. Зверева С.Д., Романов Г.А. Репортерные гены для генетической инженерии растений: характеристика и методы тестирования// Физиология растений.-2000.-Т.47.-№ 3.-С.479-488.

19. Здруйковская-Рихтер А.И. Культура зародышей in vitro и получение новых форм растений: Автореф. дис. . д-рабиол. наук.-М., 1981.-33 с.

20. Иванова К. Нова техника на работе във фаза мултипликация при микро-размножаване на ябълкова подложки// Растениевъдни науки.-1987.-Т.24.-7.1. C.15-19.155

21. Калинин Ф.Л., Сарнацкая В.В., Полищук В.Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений.- Киев: Наук.думка, 1980.-488 с.

22. Катаева Н.В. Особенности микроразмножения трудноукореняемых сортов яблони// С.-х. биология.-1986.-№ 4.-С. 18-23.

23. Катаева Н.В., Александрова И.Г., Драгавцева Е.В. Значение гормонов в формировании верифицированных побегов яблони при микроразмножении// Биология культивируемых клеток и биотехнология растений.- М.: Наука, 1991.-С.189-192.

24. Катаева Н.В., Бутенко Р.Г. Клональное микроразмножение растений.-М.: Наука, 1983.-96 с.

25. Корнацкий С.А. Особенности клонального микроразмножения сливы в системе производства оздоровленного посадочного материала: Автореф. дис. . канд.с.-х. наук/ НИЗИСНП.-М., 1991.- 24 с.

26. Корнова Кръстина. Микроразмножаване на дива череша К-1 // Растени-евъд. науки.-1995.-Т.32.-№ 7-8.-С.97-98.

27. Курсаков Г.А. Отдаленная гибридизация плодовых растений/ Всесо-юзн.акад.с.-х. наук им. В.И.Ленина.-М.: Агропромиздат, 1986.-112 с.

28. Кучеренко Л.А. Подходы к разработке технологии массовой регенерации растений in vitro// Биология культивируемых клеток и биотехнология расте-ний.-М.: Наука, 1991.-С.232-242.

29. Кучук Н.В. Генетическая инженерия высших растений.- Киев: Наук, думка, 1997.-152 с.

30. Лебедев В.Г., Долгов С.В. Влияние селективного агента и растительного интрона на эффективность трансформации и экспрессию гетерологичных генов в растениях груши (Pyrus communis L.)ll Генетика.-2000.-Т.36.-№ 6.-С.792-798.

31. Левенко Б.А. Перенос генов и проблемы трансгенных растений// Физиол. и биохим. культ. раст.-1998.-Т.30.-№ 2.- С.83-111.

32. Левенко Б.А. Трансгенные растения. Современное состояние. Проблемы, Перспективы.-Киев: Дошкольник,2000.-305 с.156

33. Ли А., Тинлаид Б. Интеграция Т-ДНК в геном растений: прототип и реальность// Физиология растений.-2000.-Т.47.-№3.-С.354-359.

34. Лутова Л.А., Павлова З.Б., Иванова М.М. Агробактериальная трансформация как способ изменения гормонального метаболизма у высших растений// Генетика.-1988.-Т.34.-№2.-С. 165-182.

35. Марченко А. О. Реализация морфогенетического потенциала растительных организмов// Успехи современной биологии.- 1996.-Т.116.-Вып.З.-С.306-319.

36. Минев И., Доросиев Л., Атанасов А.И. Морфогенезис in vitro при Prunus domestica сортове Кюстендилска синя слива и Стенлей// Генет.Селекция.-1986.-Т.19.-№5.-С.400-402.

37. Моисеева Н.А. Иммунохимическое изучение белков при детерминации стеблевого морфогенеза в культуре ткани табака: Автореф. дис. . канд.биол.наук.-М., 1988.-25 с.

38. Моисеева Н.А. Молекулярные и клеточные механизмы морфогенеза в культуре клеток растений// Биология культивируемых клеток и биотехнология растений.-М.: Наука, 1991 .-С. 166-185.

39. Муратова С.А. Разработка методов органогенеза из соматических тканей косточковых культур// Использование биотехнологических методов для решения генетико-селекционных проблем: Сб.докл. и сообщ. XVIII Мичуринских чтений.-Мичуринск,1998.-С.56-59.

40. Муратова С.А., Долгов С.В., Фирсов А.П. Генетическая трансформация сливы домашней с использованием Agrobacterium tumefaciens II Бюллетень на-учн.информ. ВНИИГиСПР им.И.В.Мичурина.-Мичуринск,1998.- Вып.53.-С,3-8.

41. Неделчева С. Значението на рН на хранителната среда за развитието на микроразмножени култури от вишна//Почвозн., агрохим. и екол.-1999.-Т.34.-№ 2-3.-С.83-86.

42. Неделчева С., Ганева Р. Размножение in vitro на три вегетативни подложка от род Ргмиш//Растениевъдни науки.-1985.-Т.22.-№ 8.-С.98-104.157

43. Падегимас JI., Шульга О.А., Скрябин К.Г. Создание трансгенных растений Nicotiana tabacum и Solarium tuberosum , устойчивых к гербициду фосфи-нотрицину// Молекулярная биология.-1994.-Т.28.-В.2.-С.437-443.

44. Парашина Е.В., Сердобинский Л.А., Калле Е.Г., Лаврова Н.В., Аветисов

45. B.А., Лунин В.Г., Народницкий Б.С. Получение трансгенных растений рапса и томата, экспрессирующих ген дефензина редьки//Физиол.раст.-2000.-Т.47.-№3.1. C.471-478.

46. Полевой В.В. Фитогормоны: Учебное пособие.-Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1982.-248 с.

47. Попов Ю.Г., Высоцкий В.А. Культура стеблевых верхушек in vitro как метод ускоренного размножения плодовых и ягодных растений/ТВестн. с.-х. науки.-1978.-№4.-С. 124-127.

48. Пронина И.Н. Влияние способов воздействия ИМК на укоренение клоно-вых подвоев яблони и груши в условиях in vitro!Шутя повышения устойчивости садоводства: Сб.научн.тр./ВНИИС им.И.В.Мичурина.-Мичуринск,1998.-С.87-89.

49. Саксен Л., Тойвонен С. Первичная эмбриональная индукция.-М.: Изд-во иностр.лит., 1963.-343 с.

50. Скотт Р., Драйпер Дж., Джефферсон Р. и др. Анализ организации и экспрессии генов растений. Лаборатор. руководство/Под ред. Дж. Драйпера и др. -М.: Мир, 1991.-С.304-400.

51. Турецкая Р.Х. Роль природных ауксинов и ингибиторов роста в органо-образовании корней у стеблевых черенков//Новое в размножении садовых рас-тений.-М.,1969.-С.38-44.158

52. Туровская Н.И. Регулирование процесса ризогенеза при микроразмножении яблони// Микроразмножение и оздоровление растений в промышленном плодоводстве и цветоводстве: Сб.научн.тр./ВНИИС им.И.В.Мичурина.-Мичуринск,1989.-С.8-13.

53. Туровская Н.И. Пролиферация побегов яблони и груши in vitro!/Методы эффективного ведения садоводства: Сб.научн.тр./ВНИИС им.И.В.Мичурина.-Мичуринск, 1996.-С. 122-132.

54. Фаустов В.В., Орлов П.Н., Асадулаев З.М. Гормональная регуляция кси-лемной дифференциации в процессе укоренения зеленых черенков плодовых культур//Удобрения и регуляторы роста в садоводстве.-М.,1985.-С.50-58.

55. Хасси Г. Размножение сельскохозяйственных культур in угУга//Биотехнология сельскохозяйственных растений.-М.: Агропромиз-дат,1987.-С. 105-133.

56. Шелифост А.Е., Костышин С.С., Волков Р.А. Микроклональное размножение видов рода Ргшшя//Биотехнология.-1993.-№ 5.-С.19-21.

57. Aerts J. Ervaringer met, langs microvermeerdering bekomen, virusurije aard-beiplanten/ZMededel. Fakult. Landbauwwetenschappen Gent.-1979.-V.44.-P.981-991.

58. Aier N.B., Sharma S.D. Micropropagation in some plum cultivars//Fruit Sc. Rep. Skierniewice.-1990.-V. 17.-№2.-P.57-63.

59. Ahuja M.R. Aspen//Handbookof Plant Cell Culture/Ed. D.A. Evans, W.R. Sharp, P.V. Amiratto.-Macmillan, New York,1986.-V.4-P.626-651.

60. Akiyoshi D.E., Klee H., Amasino R.M., Nester E.W., Gordon M.P. T-DNA of Agrobacterium tumefaciens encodes an enzyme of cytokinin biosynthesis//Proc.Natl Acad.Sci.USA.-1984.-V.81.-P.5994-5998.

61. Ammirato P.V. Embryogenesis//Handbook of Plant Cell Culture / Eds. Evans D.A., Sharp W.R., Ammirato P.V. et al.-New York, 1983.-P.82-123.159

62. An G., Costa M.A., Ha S.-B. Nopaline synthase promotor is wound inducible and auxin inducible//Plant Cell.-1990.-V.2.-P.225-333.

63. An G., Johnson R., Narvaez J., Ryan C.A. Expression of proteinase inhibitors I and II in transgenic tobacco plants: Effects on natural devence against M.sexta larvae// Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1989.-V.86.-P.9871-9875.

64. An G., Watson B.D., Stachel S., Gordon M.P., Nester E.W. New cloning vehicles for transformation of higher plants//EMBO J.-1985.-V.4.-№2.-P.277-284.

65. Antonelli M., Druart P. The use of a brief 2,4-D treatment to induce leaf regeneration of Prunus canescens/ZBois. Acta Hortic.-l 990.-V.280.-P.45-50.

66. Attfield E.M., Evans P.K. Developmental pattern of root and shoot organogenesis in cultured leaf explants of Nicotiana tabacum cv. Xanthine// J.exp.Bot.-1991.-V.42.-P.51-57.

67. Archilleti Т., Lauri P., Damiano C. //Plant Cell Rep.-1995.-V.14.-P.267-272.

68. Arena M.E., Caso O.H. Factores que afectan la multiplication in vitro de los brotes de portainjertos de Prunus//Fyton.-1992.-V.53.-№l.-P.29-38.

69. Bagyan I.L., Revenkova E.V., Pozmogova G.E. et al. 5'-Regulatory region of Agrobacterium tumefaciens T-DNA gene 6b directs organ-specific, wound-inducible and auxin-inducible expression in transgenic tobacco/ZPlant Mol. Biol.-1996.-V.29.-P.1299-1304.

70. Baleriola-Lucac., Mullins M.G. Micropropagation of two French prune culti-vars: Prunus domestica L.//Agronomie.-1984.-V.4.-№5.-P.473-477.

71. Barker R.F., Idler I.B., Thompson D.V., Kemp J.D. Nucleotide sequence of the T-DNA region from the Agrobacterium tumefaciens octopine Ti plasmid pTi 15955//Plant Mol. Biol.-1983.-V.2.-P.335-350.

72. Baron C., Zambryski P.C. Notes from the underground: highlights from plant-microbe interaction//Trends in Biotechnology.-1995.-V.13.-P.356-362.

73. Barton K.A., Whiteley H.R., Yang N.-S. Bacillus thuringiensis 8-endotoxin expressed in transgenic Nicotiana tabacum provides resistance to lepidopteran in-sects//Plant Physiol.-1987.-V.85,№4.-P.l 103-1109.160

74. Barry G.F., Rogers S.G., Fraley R.T., Brand L. Identification of a cloned cyto-kinin byosynthetic gene//Proc. Natl Acad. Sci. USA.-1984.-V.81.-P.4776-4780.

75. Bayley C., Trolinder N., Ray C. Engineering 2,4-D resistance into cot-ton//Theor. Appl. Genetics.-1992.- V.-83, №5.- P.645-649.

76. Beachy R.N., Loesch-Fries S., Turner N.E. Coat protein-mediated resistance againts virus infection//Annu. Rev. Phytopathol.-1990.-V. 28.- P.451-474.

77. Beaty J.S., Powell G.K., Lica L. et al. Tzs, a nopaline Ti plasmid gene from Agrobacterium tumefaciens associated with transzeatin sinthesis//Moll. and Gen. Genet.- 1986.-V.203 .-P.274-280.

78. Beijersbergen A., Den Dulk Ras A., Schilperoort R.A., Hooykaas P.J.J. Conju-gative transfer by the virulence system of Agrobacterium tumefaciens!/Science.-1992.-V. 256.-P. 1324-1327.

79. Bevan M. Binary Agrobacterium vectors for plant transformation//Nucleic Acids Res.-1984.- V.12.- P. 8711-8721.

80. Bevan M., Barnes W.M., Chilton M.-D. Structure and transcription of the nopaline synthase gene region of T-DNA//Nucleic Acids Res.-1983.- V.l 1.- P. 369-385.

81. Bohnert H.J., Nelson D.E., Jensen R.G. Adaptation to enviromental stresses//Jhe Plant Cell.-1995.-V.7.-P. 1099-1 111.

82. Bottcher I., Zoglauer K., Goring H. Induction and reversion of vitrification of plants cultured in vitro//Physiol. plant.-1988.-V.72.-P. 560-564.

83. Boulay M. In vitro propagation of trees species//Plant Tissue and Cell Culture/Ed. C.E. Green, D.A. Somers, W.P. Hacket, D.D. Biesboer.-Alan Liss, New York, 1987.-P.367-382.

84. Boxus P. Commercial production of strawberry plants produced by meristem culture and micropropagation//Coll Sci., 15, Florales Int.-Montreal,1981.- P.310-348.

85. Boxus P., Damiano G., Brasseur E. Strawberry/ZHandbook of Plant Cell Culture, Crop Species.- 1984.-V.3.- P.453-486.

86. Boxus P., Quoirin M. Compartement en pepiniere L'arbres fruitierers issus de culture in vitro//Acta Horticulturae.-1977.-V.78.-P.373-379.161

87. Brasileiro A.C.M., Leple J.-C., Murrin J. et al. //Plant. Mol. Biol.-1991.-V.17.-P.441-452.

88. Braun A.C., Stonier T. Morphology and physiology of plant tu-mours//Protoplasmatologia.-1958.-V.5a.-P.l-93.

89. Broekart W.F., Terras F.R.G., Cammue B.P.A., Osborn R.W. Plant defensins: novel antimicrobial peptides as components of the host defense system//Plant Physiol.-1995.-V.108.-P. 1353-1358.

90. Broom J.C., Zimmerman R.H. Culture of shoot meristems: fruit plants//Cell culture and somatic cell genetics of plants.-1984.-V.1.-P. 111-112.

91. Buchaman-Wolaston V., Snape A., Cannon F. A plant selectable marker gene based on the detoxiiation of the herbicide delapon/ZPlant Cell.-1992.-V.l 1.-P.627-632.

92. Burgen D., Hackett W. Gradients of adventitious bud formation on excised epicotyl and root sections of Citrus//Plant Sci.-1986.-V.43.-P.229-232.

93. Callis J., Fromm M., Walbot V. Introns increase gene expression in cultured maize cells//Genes and Development.-1987.-V.1.-P. 1183-1200.

94. Cangelosi G.A., Martinetti G., Leigh I.A. et al. Role of Agrobacterium tumefa-ciens ChvA protein in export of b-1,2 glucan//J.Bacteriol.-1989.-l71.-P. 1609-1615.

95. Capelle S.C., Мок D.W.S., Kirchner S.C. et al. Effects of thidiazuron on cyto-kinin autonomy and metabolism of N 6-(A2-isopentenyl) 8-14C. adenosine in callus tissue of Phasceolus lunatus I.//Plant Physiol.-1983.-V.73.-P.796-802.

96. Carre M., Martin-Tanguy J., Mussillon P. et al. La culture de meristems et la multiplication vegetative "ш vitro" au service de la pepinicre//Bull. Petits Fruits.-1979.-14.-P.7-49.

97. Castle L.A., Morris R.O. A metod for the early detection of T-DNA transfer/Plant Mol. Biol. Reporter.-1992.-V.8.-P.28-39.

98. Cherubini S., Avanzato D., Liberali M. Radiazion diretta di microtalee "ex vitro" di mandorlo.Atti.//Soc.orticola ital.Giornate Sci.-1992.-S.l.-P.350-351.

99. Chevreau E., Skirvin R.M., Abu-Qaoud H.A. Adventitious shoot regeneration from leaf tissue of three pear (Pyrus sp.) cultivars in vitro//Plant Cell Rep.-1989.-V.7.-P.-688-691.162

100. Chilton M.-D., Drummond M.H., Merlo D.J., et al. Stable incorporation of plasmid DNA into higher plant cells: the molecular basis of crown gall tumorigene-sis//Cell.-1977.-V. 11 .-P.263-271.

101. Chilton M.-D., Saiki R.K. Yadav N. et al. T-DNA from Agrobacterium Ti-plasmid is in the nuclear DNA fraction of croun gall tumor cells//Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1980.-V.77.-P.4060-4064.

102. Chlyah H. Inter-tissue correlation in organ fragments: organogenetic capaciti of tissue excised from stem segments of Torenia fournieri bind, cultured separately in vitro//Plant Physiol.-1974.-V.-54.-P.341-348.

103. Chlyah H. Intercellular correlation: Regulation between DNA synthesis and cell division in ealy stages of in vitro bud neoformation//Ibid.-1978.-V.62.-P.482-485.

104. Chriqui D., David C., Adam S. Effect of the differentiated or dedifferentiated state of tobacco pith tissue on its behavior after inoculation with Agrobacterium rizo-genesllPlant Cell Rep.-1988.-V.7.-P.ll 1-114.

105. Christiansen J., Fannesbech M. Prevention by polivinilpyrrolidone of growth inhibition of Hamamelis shoot tips in vitro and browning of the agar medium//Acta Hort.-1975 .-V.54.-P. 101 -104.

106. Christianson M.L., Warnick D.A. Competence and determination in the process of in vitro shoot organogenesis//Dev.Biol.-1983.-V.95.-P.288-293.

107. Christianson M.L., Warnick D.A. Phenocritical times in the process of in vitro shoot organogenesis//Ibid.-1984.-V. 101 .-P.3 82-390.

108. Christianson M.L., Warnick D.A. Temporal requirement for phytohormone balance in the control of organogenesis in vitro//Ibid-1985.-V. 112.-P.494-497.

109. Colby S.M., Juncosa A.M., Meredith C.P. Cellular differenses in agrobacterium susceptibiliti and regenerative capacity restrict the development of transgenic grapevines //J.Amer.Soc.Hort. Sci.-1991.-V.l 16.-P.356-361.

110. Comai L., Facciotti D., Hiatt W et al. Expression in plants of a mutant Salmonella gene from Salmonella typhimurium confers tolerance to glyphosate//Nature.-1985.-V.317.-P.741-744.163

111. Conger B.V. (Ed.) Cloning agricultural plants via in vitro techniques Boca Raton, Florida: CRC Press, 1981.

112. Cornu D., Michel M.F. Bacteria contaminants in shoot cultures of Prunus avium L. Choice and phytotoxicity of antibiotics//Acta Hortic.-1987.-№212.-P.83-86.

113. Cossio F., Bassi G. Ricerche sulla organogenesi di alcuni Prunus'. rigenerazi-one "in vitro" cultivar "Bluefre'7/Riv. Fruttic. Ortofloric.-1991.-V.53.,№3.-P.77-81.

114. Dai Z., An G. Induction of nopaline synthase promoter activity by H2O2 has no direct correlation with salicylic acid//Plant Physiol.-1995.-109.-P.1191-1197.

115. Damiano C., Faedi W., Cobianchi D. Prove di stolonizzazione in vivaio e osservazioni agronomiche su piante di fragola ottenute da colture in vi-tro//Frutticolture.-1980.-V.42.,№ 1 .-P.51 -60.

116. Dandekar A. M. Transformation // Biotechnology of Perennial Fruit Crops/Eds.Hammerschlag F.A., Litz R.E. Wallingford: C.A.B. International, 1992.-P.141-168.

117. Dandekar A.M., McGranaham G.H., Vail P.V. et al. Low levels of expression of cry IA(c) sequensis of Bacillus thuringiensis in transgenic walnut// Plant Sci.-1994.-V.96.-P. 151-162.

118. De Beuckelleer., Lemmers M., De Vos G. et al. Further insight on the trans-ferred-DNA of octopine crown gall//Mol.Gen.Genet.-1981.-V.183.-P.283-288.

119. De Block M., Botterman J., Vandeviele M. et al. Engineering herbicide resistance in plants by expression of a detoxifying enzyme/ZEMBO J.-1987.-V.6.-P.2513-2518.

120. De Block M., Herrera-Estrella L., van Montagu M. Expression of foreign genes in plants and their progeny//EMBOJ.-1984.-3.-P.1681-1690.164

121. De Bondt A., Eggermont K., Penninckx I. et al. Agrobacterium-mediaiQd transformation of apple (Malm x domestica Borkh): an assesment of factors affecting regeneration of transgenic plants// Plant Cell Repts.-1996.-V.15.-P.549-554.

122. De Framond A.J., Barton K.A., Chilton M.D. Mini-Ti: a vector strategy for plant genetic engineering//Biotechnology.-1983.-l.-P.262-269.

123. De Greve H., Decraemer H., Seurinck J. et al. The functional organization of the octopine Agrobacterium tumefaciens plasmid pTi B6S3//Plasmid.-1981.-6.-P.235-248.

124. De Klerk G.-J., Arnoldt-Schwitt В., Lieberei R. Regeneration of roots, shoots and embryos: physiological, biochemical and molecular aspects//Biologia Plan-tarum.-1997.-V.39,№l.-P.53-66.

125. Deogratias J.M., Lutz A., Dasba F. In vitro micrografting of shoot-tips from juvenile and adult Prunus avium L. and Prunus persica (L.) Batsch to produce virus-free plants//Acta Hortic. Wageningen.-1986.-193.-P.139-145.

126. Dijkstra J., van Oosten A.A. Culture experiments with strawberries//Annual report, Research Station for Fruit Growing, Wilhelminadorp. The Netherlands.-1979.-P.28-30.

127. Dixon R.A. Plant cell culture: a practical approach. Oxford. Washington: IPL Press Limited, 1985.-236 p.

128. Dolgov S.V. Genetic transformation of sour cherry (Cerasus vulgaris Mill)//Biotechnology in agriculture and forestry/Ed.Y.P.S. Bajaj Berlin; Heidelberg; N.Y.: Springer, 1999.-V.44 "Transgenic trees".-P.28-39.

129. Dolgov S.V., Lebedev V.G., Skryabin K.G. Transgenic apple and pear clonalArootstocks resistant to herbicide "Basta" 115 International Congress of Plant Molecular Biology Abstracts.-Singapore, 1997.-№ 1255.

130. Dolgov S.V., Firsov A.P. Regeneration and Agrobacterium transformation of sour cherry leaf discs//Proceedings of the Eucarpia Symposium on Fruit Breeding and Genetics, 1-6 September, 1996.-Acta Horticulturae.- № 484.-P.577-580.

131. Douglas C.J., Halperin W., Nester E.W., Agrobacterium chromosomal genes involved in attachment to plant cell//J.Cell.Biochem.Suppl.-1984.-8B.-251.

132. Douglas C.J., Staneloni R.J., Rubin R.A., Nester E.M. Identification and genetic analysis of an Agrobacterium tumefaciens chromosomal virulence re-gion//J.Bacterial.-1985 .-V. 161 .-P.85 0-860.

133. Druart P. Plantlet regeneration from root callus of different Prunus spe-czW/Scientia Hort.-1980.-V. 12, №4.-P.339-342.

134. Druart P. Embryogenese somatique et obtention de plantules chez Prunus in-sisax serrula (GM9) cultive' in vitro!I Bull. Rech. Agron Gembloux.-1981.-V.16., №3.- P.205-220.

135. Druart P. Recherche de variants somaclonaux cher les arbres fluitiers et les applications au cerisier//Parasitica.-V.40,№ 2-3 .-P. 107-113.

136. Druart P.,Gruselle R. Plum (Prunus domestica)!/Вiotechnology in Agriculture and Forestry/Ed. Y.P.S. Bajaj.-Springer-Verlag, 1986.-V. 1 :Trees 1.-P.130-154.

137. Druart P., Kevera C., Boxus P., Gaspart T. In vitro promotion of root formation by apple shoots through darkness effect on endogenous phenols and peroxy-dases//Z.pflanzephysiol.-1982.-V.108, №5.-P.429-436.

138. Dunstan D.I., Turner K.E., Lazaroff W.R. Propagation in vitro of the apple rootstock M4: effect of phytohormones on shoot quality/ZPlant Cell Tissue Organ Culture.-1985.-V.4.-P.5 5-60.166

139. Durrenbergen F., Crameri A., Hohn В., et al. Covalenty bound vir D2 protein of A.tumefaciens protects the T-DNA from exonucleolytic degradation//Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1989.-V.86.-P. 9154-9158.

140. Edens L., Heslinga L., Klok R. et al. Cloning of cDNA encoding the sweet-tasting protein thaumatin and expression in Ecerichia Coli//Gene.-V.18.-P.l-12.

141. Edwards D.L., Payne J., Soares G.G. Novel isolates of Bacillus thuringiensis having activity against nematodes//U.S.Patent 4.948.734.-1990.

142. Escalettes V., Dosba F. In vitro adventitious shoot regeneration from leaves of Prunus spp./ZPlant Science.-1993 .-V.90.-P.201-209.

143. Emershad R.L., Ramming D.W. //Plant Cell Rep.-1994.-V.14.-P.6-12.

144. Feitelson J.S., Payne J., Kim L. Bacillus thuringiensis: Insects and be-yond//Biotechnology.-1992.-V. 10.-P.271 -275.

145. Fellman C.D., Read P.E., Hosier M.A. Effects of thidiazuron and CPPU on meristem formation and shoot proliferation//Hort Sci.-1987.-V.22.-P.l 197-1200.

146. Feucht W., Dausend B. Root induction in vitro of easy-to-root Prunus pseudo-cerasus and difficult-to-root Prunus avmm//Sci.Hortic.-1976.-V.4.-P.49-54.

147. Feucht W., Schmid P.P.S., Schimmelpteng H. et al. Large-scale trial of raspberries propagated in vitro: 0,68% of off-types and enzyme pattern of atypical fruits//Erwerbsobstbay.-1985 .-27.-P. 167-169.

148. Fiola J.A.,Hassan M.A.,Swartz H.J. et al. Effect of thidiazuron, light, influence rates and kanamicin on in vitro shoot organogenesis from exciced Rubus cotyledons and leaves//Plant Cell Tiss.Organ.Cult.-1990.-V.20.-P.223-228.

149. Fischoff D.A., Bowdish K.S., Perlak F.J. et al. Insect tolerant transgenic tomato plants//Biotechnology.-1987.-V. 5 .-P.807-813.

150. Fitch M.M.M., Manshardt R.M., Gonsalves D. et al. Stable transformation of papaya via microprojectile bombardement//Plant Cell Rep.- 1990.-V.9.-P. 189-194.

151. Fitch M.M.M., Manshardt R.M., Gonsalves D. et al. Virus resistant papaya plants derived from tissues bombarded with coat protein gene of papaya ringspot vi-rus//Biotechnology.-1992.-V. 10.-P. 1466-1474.167

152. Fitch M.M.M., Manshardt R.M., Gonsalves D., Slightom J.L. /Plant Cell Rep.-1993.-V. 12.-P.245-249.

153. Flick C.E., Evans D.A., Sharp W.R. Organogenesis//Handbook of Plant Cell Culture/Eds. Evans D.A., Sharp W.R., Ammirato P.V., Yamada Y.-New York: Mac-millan Publishing Co., 1983 .-V. 1 .-P. 13-81.

154. Flinn B.S., Webb D.T., Newcamb W. The role of cell clusters and promeristo-mouds in determination and competence for caulogenesis by Pinus strobus cotule-dons in vitro//Canad. J. Bot.-1988.-V.66.-P.1556-1565.

155. Fraley R.T., Rogers S.C., Horsch R.B. et al. Expression of bacterial genes plant sells//Proc. Natl. Acad. Sci. USA.-1983.-V.8.-P.4803-4806.

156. Franck A., Guilley H., Jonard G et al. Nucleotide sequence of cauliflower mosaic virus DNA//Cell.-1980.-21.-P.285-294.

157. Franclet A. Rejeunissement des arbres adultes en vue de leur propagation vegetative//Annales de Rechercher Sylvicoles, AFOCEL. Etudes et Recherches.-1979.-6.-№12.-P.3-18.

158. Fulford R.M., Justin H.F.W. Propagation in vitro of fruit plants. Field performance of self-rooted apple and pear scions//Report of East Mailing Res. Stn.-1980.-87.

159. Gagani F., Mansky L.M., Medici R. et al. Genetic engineering of plants for virus resistance//Arch. Virol.-1990.-V.115.-P.l-21.

160. Gamborg O.L., Shyluc J.P., Shahin E.A. Isolation, fusion and culture of plant protoplasts/ZPlant Tissue Culture: Metods and Applications in Agriculture/Ed. T.A. Thorpe.-New.York: Academic Press, 1981.-P.115.

161. Garfinkel D.S., Simpson R.B., Ream L.W. et al. Genetic analysis of crown gall: fine structure map of the T-DNA by site-directed mutagenesis//Cell.-1981.-V.27.-P.143-153.

162. Garland P., Stolz L.P. Micropropagation of Pissardi plum//Ann.Bot.-1981.-V.48,№3.-P.387-398.

163. Gavish H., Vardi A., Fluhr R. Extracellular proteins and early embryo development in Citrus nucellar cell cultures//Plant Physiol.-1991.-V.82.-P.606-611.168

164. Geier Т., Sangwan R.S. Histology and chimeral segregation reveal cell-specific differences in the competence for shoot regeneration and Agrobacterium-mQdmtQd transformation in Kohleria intemode explants//Plant. Cell Rep.-l995.-15.-P.386-390.

165. Gercheva P., Zimmerman R.H., Owens L.D. et al. Paticle bombardment of apple leaf explants influenses adventitious shoot formation//Hort Science-1994.-V.29.-P.1536-1538.

166. Golosin В., Padojevic L. Micropropagation of apple rootstocks//Acta Hortic.-1987.-№212.-P.589-591.

167. Gioppa-della G., Bacur S.C., Taylor M.L. et al. Targeting herbicide resistant enzyme from Echerichia coli to chloroplasts of higher plants//Biotechnology.-1987.-5.-P.579-584.

168. Crey D.J., Meredith C.P. Grape//Biotechnology of Perennial Fruit Crops/Ed. Hammershad E.A., Litz R.E.- C.A.B. International, Wallingford,1992.-P.229-262.

169. Critz L., Davies J. Plasmid-encoded hygromycin В resistance: the sequence of hygromycin В phosphotransferase gene and its expression in Esherichia coli and Saccharomuses cerevwzae//Gene.-1983.-V.25.-P. 179-188.

170. Gurlitz R.H.Z., Lamb P.W., Matthysse A.G. Involvement of carrot cell surface proteins in attachment of Agrobacterium tumefaciens//Plant Physiol.-1987.-V.83.-P.546-568.

171. Hafte H., Whiteley H.R. Insecticidal crystal protein of Bacillus thuringien-m//Microbiol. Rev.-1989.-V.53.-P.242-255.

172. Hammatt N. Promotion by phloroglucinol of adventitious root formation in micropropagated shoots of adult wild cherry (Prunus avium L.)//Plant Crowth Regul.-1994.-V.14.-№2.-P. 127-132.

173. Hammatt N., Grant N.J. Apparent rejuvenation of mature wild cherry (Prunus avium L.) during micropropagation//J.Plant.Physiol.-1993.-V.141,№3.-P.341-346.

174. Hammerchlag F.A. Factors influencing in vitro multiplication and rooting of the plum rootstock Myrobalan (Prunus cerasifera £/zrt/.)//J.Amer.Soc.Hort.Sci.-1982.-V.107,№l.-P.44-47.169

175. Hammerchlag F.A., Bauchan G., Scorza R. Regeneration of peach plants from callus derived from immature embryos//Theor.Appl. Genet.-1985.-70.-P.248-251.

176. Hammerchlag F.A., Bauchan G., Scorza R. Factors influensing in vitro multiplication and rooting of peach cultivars//Plant Cell Tiss Organ Cult.-1987.-V.8., №3.-P.235-242.

177. Hammerchlag F.A., Owens L.D., Smigocki A.C. Agrobacterium-mQdiated transformation of peach cells derived from mature plants that were propagated in vitro// J.Amer.Soc.Hort.Sci.-1989.-V.114.-№3.-P.508-510.

178. Haseloff J., Siemering K.R., Prasher D.C., Hodge S. Removal of cryptic intron and subcellular localization of green fluorescent protein are required to mark transgenic Arabidopsis plants brightly//Proc.Nat.Acad.Sci USA.-1997.-V.94.-P.2122-2127.

179. Hatanaka Т., Arakawa O., Yasuda T. et al. Effect of plant growth regulators on somatic embriogenesis in leaf cultures of Coffea canephora//F\mt Cell Reports.-1991.-V.10.-P.179-182.

180. Hedtrich C.M. Differentiation of cultivated leaf dises of Prunus mahalebUActa Hortic.-1977.-V.78.-P. 177-183.

181. Hejgaard J., Jacobcen S., Svendsen I. Two antifungal thaumatin like proteins from barley grain//FEBS letters.-1991.-291,№1.-P. 127-131.

182. Hendriks Т., De Vries S.C. The role of secreted proteins in carrot somatic em-bryogenesis//Current Issues in Plant Molecular and Biology /Ed.Terzi M., Cella R., Falavigna A.-Dordrecht-Boston-London: Kluwer Academie Publishers, 1995.-P.359-368.

183. Herrera Estrella L., De Block M., Messens F. et al. Chimeric genes as dominant selectable markers in plant cells//EMBO J.-1983.-V.2.-P.987-996.

184. Heuser C.W. Response of callus culture of Prunus persica, Prunus tomentosa and Prunus besseyi to cyanide//Can.J.Bot.-1972.-50.-P.2149-2152.170

185. Hicks G.S. Pattern of organ development in plant tissue culture and the problem of organ determination//Bot. Rev.-1980.-V.46.-P.l-23.

186. Hidaka Т., Omura M. Transformation of Citrus by electroporation//J.Japan Soc. Hort. Sci.-1993.-V.62.-P.371-376.

187. Hightower R., Baden C., Penzes E. et al. Expression of antifreeze proteins in transgenic plants//Plant Molecular Biology.-1991.-V.17.-P.1013-1021.

188. Hilder V.A. Gatehouse, Sheenman S.E. et al. A novel mechanism of insect resistance engineered into tobacco//Nature.-l 987.-330.-P. 160-163.

189. Hodal L., Bochardt A., Nielsen J.E. et al. Detection, expression and specific elimination of endogenous B-glucuronidase activity in transgenic and non-transgenic plants//Plant Sci.-1992.-V.87.-P.l 15-122.

190. Hoekema A., Hirsch P.R., Hookaas P.J J., Schilperoort R.A. A binary plant vector strategy based on separation of vir- and T-region of the Agrobacterium tume-faciens Ti-plasmid//Nature.-1983 .-303.-P. 179-180.

191. Holsters M., Silva В., Van Vliet F. et al. The functional organization of the no-paline A.tumefaciens plasmid pTiC58//Plasmid.-1980.-V.3.-P.212-230.

192. Hood E.A., Gelvin S.B., Melchers L.S., Hoekema A. New Agrobacterium vectors for plant transformation//Trangenic Res.-1993.-V.2.-P.208-218.

193. Hood E.A., Helmer G.L., Fraley R.T., Chilton M.D. The hypervirulence of Agrobacterium tumefaciens A281 is encoded in a region of pTiBo542 outside T-DNA//J.Bacteriol.-1986.-V. 168 .-P. 1291 -13 01.

194. Horsch R.B., Fraley R.T., Rogers S.G. et al. Inheritance of functional foreign genes in plants//Science.-1984.-V.223.-P.496-498.

195. Horward B.N., Jones O.P., Vasek J. Lond-term improwing apparent rejuven-tion//J.Hort.Sci.-1989.-V.64.-№2.-P.147-156.

196. James D.L., Dandekar A.M. Regeneration and transformation of apple (Malus pumila Mz7/)//Plant tissue culture manual: Fundamentals and applications/Ed.Lindsey K.-Dordrecht: Kluver Academic Publishers, 1991.-P.B8:1-18.

197. James D.J., Knight V.H., Thurbon I.J. Micropropagation of the red rasberry and the influence of phloroglucinol//J.Hort.Sci.-1980.-12.-P.313-319.

198. James D.J., Passey A.J., Barbara D.J., Bevan M. Genetic transformation of apple {Malus pumila Mill) using a disarmed Ti-binary vector//Plant.Cell.Rep.-1989.-V.7.-P.658-661.

199. James D.J., Passey A.J., Malhotra S.B. Organogenesis in callus derived from stem and leaf tissues of apple and cherry rootstocks//Plant Cell Tiss. Org. Cult.-1984.-V.3.-P.333-341.

200. James D.J., Passey A.J., Rugini E. Factors affecting high frequency plant regeneration from apple leaf tissues cultured in v#ro//J.Plant Physiol.-V. 132.-P.148-154.

201. James D.J., Thurbon I.J., Phenolic compounds and other factors controlling rhizogenesis in vitro in the apple rootstocks M.9 and M.26//Z.Pflanzenphysiol.-1981.-105.-P.l 1-21.

202. James D.J., Uratsu J., Cheng P. et al. Acetocyringon and osmoprotectants like betain or proline synergistically enhance Agrobacterium-mediated transformation of apple//Plant Cell Rep.-1993.-V.12.-P.559-563.

203. Jefferson R.A., Kavanagh T.A., Bevan M.W. GUS fusions: ^-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in higher plants//EMBO J.-1987.-V.6.-P. 3901-3907.

204. Jones O.P., Gayner J.A., Watkins R. Plant regeneration from callus tissue cultures of the cherry rootstock Colt {Prunus avium x P.cerasus) and the apple rootstock M.25 {Malus/>Mwz7a)//J.Hort.Sci.-1984 -59.-P.463-467.172

205. Jones O.P., Hopgood M.E. The successful propagation in vitro of two root-stocks of Prunus: the plum rootstock Pixy (P.insititia) and the cherry rootstock F12/1 (P.avmm)//J.Hort.Sci.-1979.-V.54.-№l.-P.63-66.

206. Jones O.P., Pontikis C.A., Hopgood M.E. Shoot and root development in vi-tro//Rep.East Mailing Res. Stn.-l977.-P. 176-178.

207. Jones O.P., Pontikis C.A., Hopgood M.E. Propagation in vitro of five apple scion cuItivars//J.Hort.Sci.-1979.-V.54.-P. 155-158.

208. Jones O.P., Waller B.J., Beech M.G. The production of strawberry plants from callus cultures//Plant Cell Tiss. Org. Cult.-1988.-V.12.-P.235-241.

209. Joos H., Inze D., Caplan A. et al. Genetic analysis of T-DNA transcripts in no-paline crown galls//Cell.-l983.-32.-P. 1057-1067.

210. Jordan M. In vitro kultur von Prunus, Pyrus and Ribes antheren/fPlmta Med.-1975.-P.95-101.

211. Julliard J., Sossountzov I., Habricot Y., Pelletier G. Hormonal requirement and tissue competency for shoot organogenesis in two cultivars of Brassica napus/fPhysiol Plant.-1992.-84.-P.521-530.

212. Kao K.N., Michayluk M.R. Nutrient requirements for growth of Vicia hajas-tana cell and protoplasts at a very low population density in liquid media//Ibid.-1975.-126.-P. 105-110.

213. Kester D.E., Tabachik L., Negueroles J. Use of micropropagation and tissue culture to investigate genetic dicorders in almond cultivars//Acta Hortic.-1977.-V.78.-P.95-101.

214. Kim S.-R, Kim Y.An G. Identification of methyl jasmonate and salicylic acid response elements from nopaline synthase (nos) promotor//Plant Physiol.-1993.-103.-P.97-103.

215. Klee H.J., Cordon M.P., Nester E.W. Complementation analysis of Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid mutations affecting oncogenicity//J.Bacteriol.-1982.-150.-P.327-331.

216. Klee H.J., White F.F., Iyer V.N. et al. Mutational analysis of the virulence region of an Agrobacterium tumefaciens Ti plasmid//J.Bakteriol.-1983.-153.-P.878-883.173

217. Komamine A., Kawahara R., Matsumoto M. Mechanism of somatic embryo-genesis in cell culture: Physiology, biochemistry and molecular biology11 In vitro Cell Dev. Biol.-1992.-V.28.-P.l 1-14.

218. Koncz C., Schell J. The promoter of TL-DNA gene 5 controls the tissue-specific expression of chimeric genes carried by a novel tupe of Agrobacterium binary vector/ZMol.and Gen.Genet.-1986.-204.-P.383-396.

219. Korber H., Strizhov N., Staiger D. et al/ T-DNA gene 5 of Agrobacterium modulates auxin responce by autoregulated synthesis of growth hormone antagonist in plants/ZEMBO J.-1991.-V.10.-P.3983-3991.

220. Kouider M., Korban S., Skirvin R., Chu M. Influence of embryonic dominance and polarity on adventitious shoot regeneration from apple cotyledons in vi-?ra//J.Amer.Soc.Hortic. Sci.-1984.-V.109., №3.-P.381-385.

221. Malehorn D.E., Borgmeyer J.R., Smith C.E., Shah D.M. Characterization and expression of an antifungal zeatin-like protein (zip) gene from Zea maysllVXmt. Physiol.-1994.-106.-P. 1471 -1481.

222. Mante S., Morgens P.H., Scorza R. et al. Agrobacterium-mediated transformation of plum (Prunus domestica L.) hypocotyl slices and regeneration of transgenic plants//Biotechnology.-1991.-V.9.-P.853-857.

223. Mante S., Scorza R., Cordts J.M. Plant regeneration from cotyledons of Prunus persica, Prunus domestica and Prunus cerasusllPlant Cell Tiss.Org.Cult.-1989.-V.19.-P.1-11.

224. Mathews H., Wagoner W., Cohen C. et al. Efficient genetic transformation of red raspberry, Rubus ideaus L.//Plant Cell Rep.-1995.-V.14.-P.471-476.175

225. Mathias R.J., Boyd L.A. Cefotaxime stimulates callus growth, embryogenesis and regeneration in hexaploid bread wheat (Triticum aestivum L. EM. Thell)!/Plant Sci.-1986.-V.46.-P.217-223.

226. Mathias R.J., Musaka C. The effect of cefotaxime on the growth and regeneration of callus from four varieties of barley (Hardeum vulgare L.)ll Plant Cell Rep.-1987.-V.6.-P.454-457 .

227. Marin J.A., Gella R. Acclimatization of the micropropagated cherry rootstock "Masto de montanana" (Prunus cerasus L.)//Acta Hort.-1987.-№ 212.- P.603-606.

228. Martinelli L., Mandolino G. Genetic transformation and regeneration of transgenic plants in grapevine (Vitis rupestris S.) //Theor. Appl. Genet.-1994.-V.88.-P.621-628.

229. McGranahan G.H., Leslie S.A., Uratsy S.L. et al. Agrobacterium-mediatQd transformation of walnut somatic embryos and regeneration of transgenic plants//Biotechnology.-1988.-6.-P.800-804.

230. McGranahan G.H., Leslie S.A., Uratsy S.L. and Dandekar A.M. Improved efficiency of the walnut somatic embryo gene transfer system//Plant Cell Rep.-1990.-V.8, № 9.-P.512-516.

231. McGranahan G.H., Leslie S.A., Dandekor A.M. et al. Transformation of pecan and regeneration of transgenic plants //Plant Cell. Rep.-1993.-V.12.-P.634-638.

232. Mehlenbacher S.A. Classical and molecular approaches to breeding fruit and nut crops for disease resistans//Hort Scince.-1995.-V.30.-P.466-477.

233. Meins F. Phenotypic stability and variation in plants//Curr. Top. Develop. Biol.-1986.-V.20.-P.373-382.

234. Mehra A., Mehra P.V. Organogenesis and plantlet formation in vitro in al-mond//Bot.Gaz.-1974.-135 .-P.61 -73.

235. Messens E., Lenaerts A., Van Montagy M., Hedges R.W. Genetic basis for opine secretion from crown gall tumour cells//Mol.and Gen. Genet.-1985.-199.-P.344-348.

236. Meyer P. Undenstanding and controlling transgene expression//Trends Bio-technol.-1995.-V.13.-P.332-337.

237. Мок M.C., Мок D.W.S., Turner J.E., Mujer C.V. Biological and biochemical effects of cytokinin-active phenylurea derivatives in tissue culture systems//Hort.Sci.-1987.-V.22.-P.1194-1196.

238. Morini S., Sciutti R., Fortuna P. In vitro growth response of Prunus cerasifera shoots as influenced by different light-dark cycles and sucrose concentrations//Plant Cell, Tissue Org. Cult.-1992.-V.28, № 3.-P.245-248.

239. Murashige Т., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures//Physiol. Plant.-1962.-V. 15, № 95.-P.473-497.

240. Negueroles J., Jones O.P. Production in vitro of root-stock/scion combinations of Prunus cultivars//J.Hort. Sci.-1979.-V.54.-P.279-281.

241. Nehra N.S., Stushnoff C., Kartha K.K. Regeneration of plants from immature leaf-derived callus of strawberry (.Fragaria ananassa)/Plant Sci.-1990.-V.66, № 1.-P.l 19-126.

242. Nelson R.S., McCormic S.W., Dellannay X. et al. Virus tolerance plant growth, and field performance of transgenic tomato plants, expressing coat protein from tomato mosaic virus//Biotechnology.-1988.-6.-P.403-409.

243. Nemeth G. Induction of rooting//Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol.1,Trees 1, chapter IV.-Sprigen-Verlag Berlin-Heidelberg, 1986.-P.49-64.

244. Neskovic M. Vegetativno razmnozavanje belosljive (Prunus domestica L.) u kulturi in v#ro//Arh.poljopr.nauke.-1985.-46.-№ 164.-S.375-380.177

245. Neuman K.H. Pflanzliche Zell- und Gewebekulturen.-Ulmer Verlag, Stuttgart, 1995.

246. Niedz R.P., Sussman M.R., Satterlee J.S. Green fluorescent protein: an in vivo reporter of plant gene expression//Plant Cell Rep.-1995.-V.14.-P.4'03-406.

247. Niemizowicz-Srezytt K., Malepszy S. Micropropagation from the meristems andyound leaves ofFraganW/Bull.Pol.Acad. Sci. Biol. Sci.-1980.-28.-P.335-340.

248. Norelli J.L., Aldwinckle H.S. The role of aminoglycoside antibiotics in regeneration and selection of neomycin phosphotransferase-transgenic apple tis-sue//J.Amer.Soc.Hort. Sci.-118.-P.311-316.

249. Norelli J.L., Aldwinckle H.S., Destefano-Beltran L., Jaynes M. Transgenic Mailing 2 apple expressing the attacin E gene has increased resistance to Erwinia amy/ovora//Euphytica.-1994.-77.-P. 123-128.

250. Novel G., Novel M. Mutants of E.coli K12 unable to grow on methyl-P-D-glucuronide: Map location of vidA locus of the structural gene of P-D-glucuronidase//Mol.Gen. Genet.-1973.-120.-P.319-335.

251. Ochatt S.J. The development of protoplast-to-three systems for Prunus cerasif-era and P.spinosa RosaceaellPlant Sci.-1992.-81.-P.253-259.

252. Ochatt S.J., Cocking E.C., Power J.B. Isolation, culture and plant regeneration of Colt cherry (Prunus avium x pseudocerasus) protoplasts//Plant Sci.-1987.-50.-P. 139-143.

253. Ochatt S.J., Potat-Ochatt E.M., Rech E.L. et al. Somatic hybridization of sexually incompatible top-fruit tree rootstocks, wild pear (Prunus communis var puraster L.) and Colt cherry (Prunus avium xpseudocerasus)!-V.1^,, № 1.-P.35-41.

254. Ochatt S.J., Power J.B. An alternative approach to plant regeneration from protoplasts of sour cherry (Prunus cerasus Z.)//Plant Sci.-1988.-V.56.-P.75-79.

255. Odell J., Caimi P., Sauer В., Russel S. Site-directed recombination in the genome of transgenic tobacco//Mol. Gen. Genet.-1990.-V.223.-P.369-378.

256. Offringa I.A., Melchers L.S., Regensburg-Tuin A.J.G. et al. Complementation of Agrobacterium tumefaciens tumor inducing auxin mutants by genes from the TR178region of the Ri plasmid of ^.r/zzz,ogewej//Proc.Natl.Acad.Sci.USA.-1986.-V.83.-P.6935-6939.

257. Oliveira M.M., Barroso J.G., Martins M., Pais M.S.//Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol.29, Plant Protoplasts and Genetic Engineering.-V.Y.P.S. Bajaj, ed. Springer-verlang, Berlin, Heidelberg, 1994.-P. 189-210.

258. Oliveira M.M., Migyel C.M., Raquel M.H. Transformation studies in woody fruit species//Plant Tissue Cult, and Biotechnology, 1996.-V.2, №2.-P.76-93.

259. Paques M., Boxus Ph. "Vitrification": Review of literature//Acta Hort.-1987.-V.212.-P.155-166.

260. Pasqualetto P.L., Zimmerman R.M., Fordham I. Gelling agent and growth regulator effects on shoot vitrification of "Gala" apple in vi-^//J.Amer.Soc.Hort.Sci.-1986.-V.lll.-P.976-979.

261. Pevalek-Kozlina В., Jelaska S. Micropropagation of Prunus avium L.//Acta Hort.-1987.-212.-P.599-602.

262. Pevalek-Kozlina В., Michler C.H., Jelaska S. Microclonal multiplication of wild cherry {Prunus avium L.) from shoot tips and root sucker buds//Acta bot.croat.-1994.-53.-P.31-38.

263. Pietropaolo P.A., Reisch B.I. Micropropagation of "Stanley" plum//Hortscience.-1984.-V. 19., №4.-P.535-536.

264. Pius J., George G., Eapen S., Rao R.S. Enhanced plant regeneration in pearl millet {Pennisetum americanum) by ethylene inhibitors and cefotaxime// Plant Cell Tiss. Org. Cult.-1993.-V.32.-P.91-96.

265. Pooler M.R., Scorza R. Regeneration of Peach Prunus persica (L.) Batsch. rootstock cultivars from cotyledons of mature stored seed//HortScience.-1995.-V.30, № 2.-P.355-356.179

266. Predieri S., Fasolo Fabbri Malavasi F., Passey AJ. et al. Regeneration from in vitro leaves of "Conference" and other pear cultivars (Prunus communis L.) //J.Hort.Sci.-1989.-V.64, №5.-P.553-559.

267. Puite K.J., Schaart J.G. Genetic modification of the commercial apple cultivars Gala, Golden Delicious and Elstar via an Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation metod//Plant Sci.-1996.-V.119.-P.125-133.

268. Puonti-Kaerlas J., Eriksson Т., Engstrom P. Production of transgenic pea (Pisum sativum L.) plants by Agrobacterium tumefaciens mediated gene trans-fer//Theor.Appl.Genet.-1990.-V.80.-P.246-252.

269. Quak F. Meristem culture and virus free plants//Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell, Tissue and Organ Culture/ Ed.Reiner J., Bajaj Y.P.S.-Berlin, Heidelberg and New York: Springer-Verlag, 1977.-P.598-615.

270. Quoirin M. Rapport d'activite du Centre de Recherches Agronomiques de Gembloux.-1974.

271. Quoirin M., Lepoivre P. Improved medium for in vitro culture of Prunus sp.llkcta. Hortic.-1977.-V.78.-P.437-442.

272. Raj Bhansali R.,Driver J. A., Durzan D. J.//Plant Cell Rep.-1990.-V.9.-P.280-284.

273. Rakoczy-Trojanowska M., Malepszy S. Wplyw czynnikow genetycznych na regeneracje rOslin w kylturach in vitro//Post. biol. komorki.-1990.-17.-№3.-S.247-257.

274. Ravelonandro M., Scorza R., Dunez J. Characterization of phenotype resistance to plum pox of transgenic plums expressing plum pox virus capsid gene//Acta virologica.-1998.-V.42, №4.-P.270-272.

275. Reisch В., Bingham E.T. The genetic control of bud formation from callus cultures of diploid alfalfa/ZPlant Sci. Lett.-1981.-V.20.-P.71-77.

276. Revencova E.V., Kraev A.S., Skryabin K.C. Construstion of disarmed derivative of the supervirulent Ti plasmid pTiBo 542//Plant biotechnology and molecular biology.- M., 1993.-P.67-76.

277. Ripetti V., Kevers C., Gaspar T.Two successive media for the rooting of walnut shoots in vitro. Changes in peroxidase activity and in ethylene production//Adv. in hortic Sc.-1994.-V.8, №l.-P.29-32.180

278. Rosaty P., Gaggioli D. Field perfomance of micropropagated peach rootstocks and scion cult: vars of sour cherry and apple//Acta Hort.-1987.-№ 212.- P.379-390.

279. Rosati P., Marino G., Swerczewski C. In vitro propagation of Japanese plum {Prunus salicina Lindl. сv. Calita)//J.Amer. Soc. Hort. Sci.-1980.-V.105, №1.-P. 126-129.

280. Ryan C.A. Protease inhibitors in plants: genes for improving defences against insects and pathogens//Annu. Rev. Phytopathol.-1990.-28.-P.425-429.

281. Sain S.L., Oduro K.K., Furtek D.B. Genetic transformation of cocoa leaf cells using Agrobacterium tumefaciens //Plant Cell Tissue Org. Cult.-1994.-37.-P.243-251.

282. Salesses G. Mouras A. In vitro multiplication of woody species//Proc. Raund Tabl, June 6-8, Gembloux,1978.

283. Schmulling Т., Schell J., Spena A. Single genes from Agrobacterium rhizo-genes influence plant development//EMBO J.-1988.-V.7.-P.2621 -2629.

284. Schroder G., Waffenschmidt S., Weiler E.W., Schroder J. The T-region of Ti plasmids codes for an enzyme synthesizing indol-3-acetic acid//Eur J. Biochem.-1984.-138.-P.387-391.

285. Schuerman P.L., Dandekar A.M. Transformation of temperate woody crops: Progress and potentials//Sci.Hortic.-1993.-V.55.-P.101-124.

286. Scorza R., Cordts J.M., Ramming D.W. and Emershad R.L.//Plant Cell Rep.-1995a.-V.14.-P.589-592.

287. Scorza R., Levy L., Damsteegt V. et al. Transformation of plum with the papaya ringsport virus coat protein gene and reaction of transgenic plants to plum pox virus//J.Amer. Soc. Hort. Sci.-1995b.-V.120.-P.943-952.

288. Scorza R., Morgens P.H., Cordts J.M. et al. Agrobacterium transformation of peach (Prunus persica L. Batsch) leaf segments, immature embryos, and long term embryogenic callusHln vitro Cell. Dev. Biol.-1990.-V.26.- P.829-834.181

289. Scorza R., Ravelonandro M., Callahan A.M. et al. Transgenic plums {Prunus domestica L.) express the plum pox virus coat protein gene//Plant Cell Repts.-1994.-V. 14,№1.-P. 18-22.

290. Shah D.M., Rommens C., Beachy R.N. Resistance to diseases and insects in transgenic plants: progress and application to agriculture// Trends in Biotechnology.-1995.-13.-P.362-368.

291. Skoog F., Miller C.O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissues cultured in vitro!/Symp. Soc. Exp. Biol.-1957.-11.-P. 118-131.

292. Snir I. In vitro propagation of "Canino" apricot//Hort. Science.-1984.-V.19, №2-P.229-230.

293. Smigocki A.C., Hammerschlag F.A. Regeneration of plants from peach embrio cells infected with a shooty mutant strain of Agrobacterium!7J. Amer. Soc. Hort. Sci.-1991 .-V. 116.-P. 1092-1097.

294. Spanier K., Schell J., Schreier P.H. A functional analysis of T-DNA gene 6b: The fine tuning of cytokinin effects on shoot development//Mol. and Gen. Genet.-1989.-V.219.-P.209-216.

295. Stachel S.E., Messens E., Van Montagu M., Zambryski P. Identification of the signal molecules produced by wounded plant cells that activate T-DNA transfer in Agrobacterium tumefaciens!18.-P.624-629.

296. Stachel S.E., Timmerman В., Zambryski P.C. Generation of single-stronded T-DNA molecules during the initial stages of T-DNA transfer from Agrobacterium tumefaciens to plant cells//Nature.-1986a.-322.-P.706-712.

297. Stachel S.E., Zambryski P.C. virA and virG control the plant-induced activation of the T-DNA transfer process of Agrobacterium tumefaciens!!Cell.-1986b.-46.-P.325-333.

298. Standardi A. Effetti del GA3 nel substrato di proliterazione sulla radicazione di germoli di melo micropropagati// Ann. Fac. Agr./Univ. Studi Perugia.-1986.-V.38.-P.73-80.

299. Starbuck C.J., Preczewski J.L. Effect of root applied IBA on root and shoot growth of dwarf peach trees//J.environm Hortic.-1986.-V.4, №3.-P.80-82.182

300. Stephens K.M., Roush С., Nester E. Agrobacterium tumefaciens VirB 11 protein reguires a consensus nucleotide-binding site for function in virulence//Pev. Plant Pathol.-1995.-V.74.-P.681.

301. Sterch P., De Vries S.C. Molecular markers for plant embryos//Synsseeds-Application of Synthetic Seeds to crop Improvement/Ed. K. Redenbaugh.-CRC Press. Boca Raton., 1993 .-P. 115-132.

302. Street H.E. Laboratory organization/ZPlant tissue and cell culture/Ed.H.E. Street.-Oxford: Blackwell Scientific Publications, 1973 .-P.l 1-30.

303. Street H.E. (Ed.) Plant Tissue and Cell Culture.-London: Blackwell Scientific Publications, 1977.

304. Strittmatter G., Wegener D.//Z.Naturforsch.-1993.-48 C.-S.673-688.

305. Sutic D., Pine T.S. Sharka (Plum Pox) disease//Plant Dis. Rept.-1968.-V.52.-P.253-256.

306. Swartz H.J., Galetta G.J., Zimmerman R.H. Field performans and phenotypic stability of tissue culture-propagated strawberries//J. Amer. Soc. Hort. Sci.-1981.-V.106.-P.667-675.

307. Swartz H.J., Galetta G.J., Zimmerman R.H. Field performans and phenotypic stability of tissue culture-propagated thornless black-berries// J. Amer. Soc. Hort. Sci.-1983.-V.108.-P.285-290.

308. Tanaka A., Mita S., Ohta S. et al. Enhancement of foreign gene expression by a dicot intron in rice but not in tobacco is correlated with an increased level of mRNA and an efficient splicing of the intron//Nucl. Acid Res.-1990.-V.18.-P.6767-6770.

309. Tempe J., Goldman A. Occurence and biosynthesis opines//Molecular Biology Plant Tumours.-New.York: Acad, press, 1982.-P.575-584.

310. Thomas J.C., Katterman F.R. Cytokinin activity induced by thidiazuron //Plant Physiol.-1986.-V.81 .-P.681 -683.183

311. Thomashow L.S., Karlinsey J.E., Marks J.R., Hurlbert R.E. Identifications of a new virulence locus in Agrobacterium tumefaciens that affects polysacharide composition and plant cell attachment//J.Bacteriol.-1987.-169.-P.3209-3216.

312. Thomashow M.F., Nutter R., Montoya A.L. et al. Intergation and organisation of Ti-plasmid sequences in crown gall tumors//Cell.-1980.-19.-P.729-739.

313. Thomashov L.S., Reeves S., Thomashow M.F. Grown gall oncogenesis: Evidence that a T-DNA gene from Agrobacterium Ti plasmid pTiA6 encodes an enzyme that catalysed synthesis of indoleacetic acid//Proc. Nat. Acad. Sci. US A.-1984.-81.-P.5071-5075.

314. Thorpe T.A. Physiological and biochemical aspects of organodenesis in vi-tro/IFrontiers of plant tissue culture/Ed.T.A. Thorpe.-Calgary:IAPTC,1978.-P.49-58.

315. Thorpe T.A. Plant Tissue Culture: Methods and Applications in Agriculture.-New York: Acad. Press, 1981.

316. Timmerman В., Van Montagy M., Zambryski P. Vir induced recombination in Agrobacterium. Physical characterization of precise and imprecise T-circle forma-tion//J.Mol.Biol.-1988.-203.-P.373-384.

317. Tisserat В., Esan E.B., Murachige T. Somatic embryogenesis in angio-sperms//Horticultural Reviews.-1978.-1 .-P. 1-78.

318. Того N., Dalta A., Yanofsky M., Nester E. Role of the overdrive sequence in T-DNA border cleavage in Agrobacterium!fVvoc. Natl. Acad. Sci. USA.-1988.-V.85.-P.8558-8562.

319. Tran Tranh Van K.M. Control of morphogenesis in vitro cultures//Annu. Rev. Plant Physiol.-1981 .-V.33 .-P.291 -311.

320. Trifonov D. Susceptibility to the plum pox virus of twelve varieties of the cul-tivar Kjustendilska sinya sliva//Publ. House Bung. Acad. Sc. Virology.-Sofia, 1974.-P.131-138.

321. Turner N.E., O'Connel K.M., Nelson R.S. et al. Expression of alfalfa mosaic virus coat protein confers cross protection in transgenic tobacco and tomato plants//EMBOJ.-1987.-6.-P.l 181-1188.184

322. Uematsy С., Akihama Т. Effect of 4 PU on the dormant shoot tip culture of peach, nectarine, sweetcherry and plum//Japan. J. Breed.-1987.-V.37, №3.-P.283-290.

323. Vaek M., Reynaerts A., Hofte H. et al. Transgenic plants protected from insect attack//Nature.-1987.-328.-№l.-P.33-37.

324. Vain P., Finer K.R., Engler D.E. et al. Intron-mediated enhancement of gene expression in maize (Zea mays L.) and bluegrass (Poa pratensis L.)//Plant Cell Rep.-1996.-V. 15 .-P.489-494.

325. Valobra C.P., James D.J. In vitro shoot regeneration from leaf discs of Betula pendula "Dalecarlica" EM85//Plant Cell Tiss and Organ Cult.- 1990.-V.21.-P.51-54.

326. Van Nieuwkerk J.P., Zimmerman R.H., Fordham I. Thidiazuron stimulation of apple shoots proliferation in vitro//Hort. Sci.-21 .-P.516-518.

327. Vertesy J. Experiments on the propagation of virus- free raspberry propagation material by merystem culture//Acta Hortic.-l979.-95.-P.77-78.

328. Vilitez A.M., Ballester A., San Jose M.S., Vieitez E. Anatomical and chemical studes of vitrified shoots of chestnut regenerated in vitro//Void-1985.-V.65 .-P. 177-184.

329. Villalobos R.V., Yeung E.C., Thorpe T.A. Origin of adventious shoot in excised radiata pine cotyledons in vzYro//Canad.J.Bot.-1985.-V.63.-P.2172-2176.

330. Viseur J. Micropropagation of pear Purus communis L. in double-phase culture medium//Acta Hortic.-1987.-212.-P.l 117-1124.

331. Walkey D.G.A. In vitro methods for virus elimination//Frontiers of Plant Tissue Culture/Ed.T.A.Thorpe.-Calgary:Calgary University, 1978.-P.245-254.

332. Walkey D.G.A. Production of virus-free plants by tissue culture//Tissue Culture Methods for Plant Pathologists/Ed.D.S. Ingram, J.P. Helgeson.-London:Blackwell Scientific Publications, 1980.-P. 109-117.185

333. Wang G., Castiglione S., Chen Y. et al. poplar (Populus nigra L.) plants transformed with a Bacillus thuringiensis toxin gene: incecticidal activity and genomic analysis//Transgenic Res.-1996.-5.-P.289-301.

334. Wang K., Herrera-Estrella L., Van Montagy M., Zambryski P. Right 25 bp terminus sequences of the nopaline T-DNA in essential for and determines direction of DNA transfer from Agrobacterium to the plant genome//Cell.-1984.-38.-P.455-462.

335. Webster A.D., Ochl V.D. The ochard establishment growt and precocity of four micropropagated apple scion cultivars//J.Hort.Sci.-1985.-V.60.-P.169-180.

336. Welander M., Maheswaran Shoot regeneration from leaf explants of dwarfing apple root-stocks//J. Plant Physiol.-1992.-V. 140.-P.223-228.

337. Willmitzer L., DeBeukeller M., Lemmers M. et al. DNA from Tl-plasmid is present in the nucleus and absent from plasmids of plant crowngalls cells//Nature.-1980.-287.-P.359-361.

338. Willmitzer L., Simons G., Scell J. The TL-DNA in octopine crown gall tumours codes for seven well-defined polyadenylated transcripts//EMBO J.-1982.-1.-P.139-146.

339. Winans S.C., Allenza P., Stachel S.E. et al. Characterisation of the virE operon of the Agrobacterium Ti plasmid pTiA6//Nucl.Acid. Res.-1987.-15.-P.825-837.

340. Wunn J., Kloti A., Burkhardt P.K. et al. Transgenic indica rice breeding line IR 58 expressing a synthetic cry IA(b) gene from Bacillus thuringiensis provides effective insect pest control//Biotechnol.-1996.-14.-№2.-P. 171-176.

341. Yamamoto A., Iwahashi M., Yanofsky M.F. et al. The promotor proximal region of the virD lokus of Agrobacterium tumefasiens is necessary for the plant inducible circularization of T-DNA//Mol.and Gen.Genet.-1987.-206.-P.174-177.

342. Yancheva S., Gercheva P.//Biotechnol. and Biotechnol.-1993.-V.7,№l .-P.49-52.

343. Yancheva S., Vlahova M., Gercheva P., Atanasov A. Agrobacterium mediated transient expression of (3-glucuronidase GUS gene in plum (Prunus domestica) //Biotechnol. and Biotechnol.-1994.-V.8., №2.-P.12-13.

344. Yanofsky M.F., Nester E.W. Molecular characterization of a host-range-determining locus from v4.^Mweyac/era//J.Bacteriol.-1986.-V.168.-P.244-250.186

345. Yanofsky M.F., Poster S.G., Young C. et al. The vir D operon of Agrobacterium tumefaciens encodes a site-specific endonuclease//Cell.-1986.-47.-P.471-477.

346. Yao J.L., Cohen D., Atkinson R. et al. Regeneration of transgenic plants from the commerzcial apple cultivar Royal GaMPlant Cell Repts.-1995.-V.14,№7.-p.407-412.

347. Ye X., Brown S., Scorza R. et al.//J.Amer.Hort.Sci.-1994.-V.l 19, №2.-P.367-373.

348. Yepes L.M., Aldwinckle H.S. Factors that affect leaf regeneration efficiency in apple, and effect of antibiotics in morphogenesis//Plant Cell, Tiss. and Organ Cult.-1994.-37.-P.257-269.

349. Young P.M., Hutchins A.S., Cantield M.L. Use of antibiotics to control bacteria in shoot cultures of woody plants/ZPlant Sci. Lett.-1984.-V.34.-P.203-209.

350. Zimmerman R.H. Tissue culture of fruit trees and other fruit plants//Comb. Proc. Int. Plant Propagators' Soc.-1978.-V.28.-P.539-546.

351. Zimmerman R.H. Fruit plant micropropagation of Beltsville fruit laboratory and in North America//Riv. Ortoflorofruittil.-1980.-V.64.-P.241-248.

352. Zimmerman R. H., Fordham I. Simplifaied metod for rooting apple cultivars in vitro//J. Amer. Soc. Hort. Sci.-1985.-V.110.-P.34-38.

353. Ziv M., Schwartz A., Fleminger D. Malfunctioning stomata in vitreous leaves of carnation (Qianthus caryophyllus) plants propagated in vitro: Implications for hardenind//Plant Sci.-1987.-V.52.-P. 127-134.

354. Zorreguieta A., Ugalde R. A. Formation in Rizobium and Agrobacterium spp of a 235-kilodalton protein intermediated in (3-d-(l,2) glucan sunthesis//J. Bacterid.-1986.-V.167.-P.941-947.