Иммунопатогенетическая характеристика экспериментальной инфекции эндотелия сосудов человека вирусом простого герпеса I типа тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.00.36, кандидат медицинских наук Миронченкова, Екатерина Владимировна

• Миронченкова, Екатерина Владимировна
• кандидат медицинских наук
• 2004

Оглавление диссертации кандидат медицинских наук Миронченкова, Екатерина Владимировна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

I. Характеристика эндотелия сосудов человека

1.1. Гетерогенность и многообразие физиологических 13 функций эндотелия сосудов человека

1.2. Характеристика цитокинов, обеспечивающих 16 взаимодействие ЭК и лейкоцитов крови

1.3. Особенности взаимодействия ЭК и лейкоцитов крови

1.3.1. Классификация МКА

1.3.2. Экспрессия МКА на поверхности ЭК

1.3.3. Стадии взаимодействия ЭК и лейкоцитов крови 29 II. Герпетическая инфекция

2.1. Классификация герпесвирусов

2.2. Особенности строения и взаимодействия ВПГ-1 с 32 клеткой-мишенью

2.3. Патология, вызванная вирусами группы герпеса

2.4. Патогенез герпетической инфекции

2.5. Иммунный ответ при герпетической инфекции

2.6. Вирусная инфекция эндотелия

ГЛАВА II МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

1. Культуральные среды, реактивы и пластик

2. Культуры клеток человека

2.1. Культура ЭК пупочной вены человека

2.2. Культура ЭК аорты человека

2.3. Культура ГМК интимы аорты человека

2.4. Совместное культивирование ЭК и ГМК

2.5. Культура ДФЧ и клеток линии VERO

2.6. Выделение и культивирование мононуклеаров 50 периферической крови человека

3. Вирусы

3.1. Вирус простого герпеса человека первого типа

3.2. Вирус энцефаломиокардита мышей

3.3. Вирус болезни Ньюкастла

4. Инфицирование ЭК и лейкоцитов ВПГ-1, оценка 52 репродукции вируса в инфицированных клетках

5. Адгезия лейкоцитов на культивируемые ЭК

6. Фиксация культивируемых ЭК и лейкоцитов крови 53 глутаровым альдегидом

7. Выявление вирусных антигенов и МКА.

8. Индукция лейкоцитов

9. Определение уровней интерферонов и цитокинов

10. Оценка содержания вирусной ДНК в 58 инфицированных ЭК методом ПЦР

11. Статистический анализ

ГЛАВА III РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

1. Характеристика репродукции ВПГ-1 в культурах ЭК и 59 клональных популяциях ЭК

2. Взаимодействие лейкоцитов с ЭК, инфицированными 65 ВПГ

2.1. Экспрессия МКА ЭК, инфицированными ВПГ

2.2. Адгезия лейкоцитов крови на ЭК, инфицированные 67 ВПГ

2.3. Исследование способности ЭК, инфицированных

ВПГ-1, индуцировать в лейкоцитах крови продукцию ИФН и цитокинов

2.4. Влияние среды, кондиционированной 71 активированными лейкоцитами, на развитие вирусной инфекции в культуре ЭК

2.5. Влияние KC-JI, полученной от доноров с высокой 75 спонтанной продукцией цитокинов

2.6. Влияние KC-JI на экспрессию эндотелиальными 76 клетками МКА

3. Влияние ГМК интимы кровеносного сосуда на 77 репродукцию ВПГ-1 в культуре ЭК человека

4. Сравнительный анализ цитокинов, продуцируемых 82 лейкоцитами крови, при разных типах взаимодействия с ВПГ

ГЛАВА IV ОБСУЖДЕНИЕ

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Иммунопатогенетическая характеристика экспериментальной инфекции эндотелия сосудов человека вирусом простого герпеса I типа»

Актуальность проблемы. Заболевания, вызываемые вирусами группы герпеса, широко распространены в человеческой популяции. По данным ВОЗ, герпесвирусная инфекция занимает 2-ое место (15,8%) после гриппа и ОРВИ (35,8%) как причина смерти от вирусных инфекций. Антитела к вирусу простого герпеса обнаруживаются у 80-90% взрослых людей и у 50% детей, достигших десятилетнего возраста [Шувалова Е.П., 2001; Покровский В.И. и др., 2000; Львов Н.Д. и др., 1999; Баринский И.Ф. и др., 1986; Johnson R.E. et al., 1986]. Наибольшую опасность герпетическая инфекция представляет для беременных в связи с возможностью проникновения вируса через плацентарный барьер, последующим внутриутробным инфицированием плода и возможной его пре- или постнатальной гибелью [Исаков В.А. и др., 1999; Сухих Г.Т. и др., 1997; Цинзерлинг А.В. и др., 1988; Баринский И.Ф. и др., 1986]. У пациентов, находящихся на иммуносупрессивной терапии после трансплантации органов, реактивация герпесвирусной инфекции может приводить к развитию симптомокомплекса хронического отторжения трансплантата вследствие поражения его сосудов. Распространенный характер герпес приобретает у субъектов с онкологическими, гепатологическими заболеваниями [Кологривова Е.Н. и др., 2000]. Кроме этого, в настоящее время рецидивирующий простой герпес рассматривается как СПИД-индикаторное состояние, поскольку рецидивы заболевания чаще возникают на фоне иммунодефицита [Покровский В.И. и др., 2000]. Также, имеются данные об участии вирусов группы герпеса в патогенезе атеросклероза кровеносных сосудов человека [Vercellotti G.M., 2001, 1998; Herzum М. et al., 1998; HajjarD.P., 1991].

Вирус простого герпеса 1 типа (ВПГ-1) является одним из наиболее известных вирусов группы герпеса. Обычно, после инфицирования контактным, воздушно-капельным или вертикальным путем, развивается острая стадия инфекции, которая затем переходит в хроническую или латентную форму. Различные провоцирующие факторы (переохлаждение, стресс, травма, иммуносупрессивные состояния) способствуют манифестации инфекции из латентного состояния. Вирус герпеса сохраняется в организме пожизненно, как правило, в клетках паравертебральных сенсорных ганглиев, используя латенцию как механизм для поддержания своей жизнеспособности в организме хозяина и для уклонения от воздействия его иммунной системы [Mossman K.L., 2002; Rajcani J. et al., 2000; Everett R.D., 2000; Millhouse S. et al., 2000; Roizman В., 1999; Miller C.S., 1998; Steiner I. et al., 1996, 1991; Fraser N.W. et al., 1991]. К настоящему времени известно, что ВПГ-1 может инфицировать не только эпителиальную и нервную ткани; вирус обнаруживается также в эндотелиальных клетках (ЭК) сосудов роговицы [Klein R. J., 1982], плаценты [Сухих Г.Т. и др., 1997; Цинзерлинг А.В. и др., 1988], мозга [Stumpf Т.Н. et al., 2002; Holbach L.M. et al., 1998].

Эндотелий, выстилающий внутреннюю поверхность кровеносных сосудов, является естественным барьером между кровью и тканями организма и играет важную роль в регуляции проникновения циркулирующих клеток и молекул в ткани, то есть является одной из основных клеточных систем, участвующих в поддержании гомеостаза организма [Фрейдлин И.С. и др., 2001; Biedermann B.C., 2001; Cines D.B. et al., 1998; Beilke M.A., 1990; Pober J. et al., 1990; Springer T.A., 1994]. Функционирование эндотелия регулируется гладкомышечными клетками (ГМК) стенки кровеносных сосудов и лейкоцитами крови путем продукции цитокинов, хемокинов и факторов роста. Эти же факторы участвуют в развитии большинства известных физиологических и патологических процессов, таких как рост, дифференцировка и миграция клеток, воспаление, репаративные процессы, реакция на инфекционные агенты [Pozo М.А. et al., 1996; Springer Т.А., 1994; Mantovani A. et al., 1992; Shimizu Y. et al., 1992]. В отдельных случаях цитокины способны активировать распространение инфекционных агентов по организму [Campbell I.L., 1991]. С другой стороны, и резидентные (ГМК и ЭК), и циркулирующие в крови клетки способны воздействовать на клеточные и гуморальные типы эффекторных механизмов иммунитета благодаря активации продукции цитокинов [Mossman T.R. et al., 1996; Farby Z. et al., 1993]. Таким образом, эндотелиальные, гладкомышечные клетки интимы кровеносного сосуда и лейкоциты крови являются основными типами клеток, постоянно взаимодействующими на уровне кровотока и сосудистой стенки, как в норме, так и при развитии патологического процесса. Однако, влияние гладкомышечных клеток интимы сосуда и лейкоцитов периферической крови на инфекцию эндотелиальных клеток ВПГ-1 до настоящего времени не было изучено.

В этой связи исследование особенностей межклеточных взаимодействий при инфекции ВПГ-1 в многоклеточной модельной системе может дополнить сложившиеся представления о патогенетических механизмах вирусных заболеваний человека.

Цель исследования - изучение роли межклеточных взаимодействий с участием гладкомышечных клеток интимы сосуда и лейкоцитов периферической крови человека в иммунопатогенезе инфекции эндотелиальных клеток, вызванной ВПГ-1.

Задачи исследования:

1. Разработать экспериментальную модель инфекции ВПГ-1 с использованием культивируемых эндотелиальных клеток человека и охарактеризовать ее по основным морфологическим и функциональным параметрам.

2. Охарактеризовать особенности развития герпетической инфекции и продукции цитокинов в культивируемых эндотелиальных клетках, полученных от разных доноров, а также в клональных популяциях культуры эндотелия.

3. Исследовать экспрессию молекул клеточной адгезии эндотелиальными клетками, инфицированными ВПГ-1, и ее взаимосвязь с процессом адгезии лейкоцитов на инфицированный эндотелий.

4. Изучить продукцию цитокинов лейкоцитами крови при взаимодействии с эидотелиальиыми клетками, инфицированными ВПГ-1. Выявить влияние цитокинов и интерферонов, продуцируемых при этом взаимодействии, на инфекционный процесс и экспрессию молекул клеточной адгезии в культурах эндотелиальных клеток.

5. Исследовать влияние гладкомышечных клеток интимы сосуда и отдельных цитокинов на репродукцию ВПГ-1 в культуре эндотелиальных клеток человека.

6. Сравнить продукцию цитокинов лейкоцитами крови при инфекции вирусом и при трех вариантах индукции: вирусом и вирусинфицированными эндотелиальными клетками и вирусинфицированными лейкоцитами.

Научная новизна. Впервые разработана культуральная модель, позволяющая оценивать влияние гладкомышечных клеток интимы сосуда и лейкоцитов периферической крови на развитие герпесвирусной и других инфекций в культивируемых эндотелиальных клетках человека.

Впервые установлено, что клеточные популяции, полученные из отдельных родоначальных колониеобразующих эндотелиальных клеток, а также культуры эндотелия от разных доноров, различаются по способности поддерживать репродукцию ВПГ-1 и продуцировать цитокины.

Показано, что с развитием вирусной инфекции фенотип эндотелиальных клеток меняется на провоспалительный, который характеризуется экспрессией на клеточной поверхности Р- и Е-селектинов и усилением адгезивных свойств эндотелиальных клеток для лейкоцитов периферической крови, что отражает начальные стадии патогенеза герпетической инфекции.

Впервые выявлено, что при контакте с эндотелиальными клетками, инфицированными ВПГ-1, лейкоциты периферической крови активируются и продуцируют интерфероны (ИФНа, ИФНу) и цитокины (ИЛ-ip, ИЛ-6, ИЛ-8, ФНОа), которые тормозят репродукцию ВПГ-1 в культурах эндотелия и меняют фенотип клеток на провоспалительный. Эти процессы могут приводить к формированию латенции вируса в эндотелии и развитию порочного круга воспаления в сосудистой стенке.

Впервые показано, что гладкомышечные клетки интимы кровеносного сосуда в условиях со-культивирования тормозят, а в отдельных случаях полностью ингибируют репродукцию ВПГ-1 в эндотелиальных клетках.

Сравнительный анализ цитокинов, продуцируемых лейкоцитами крови при различных типах взаимодействия с вирусом показал, что индукция лейкоцитов ВПГ-1, а так же эндотелиальными клетками или лейкоцитами, инфицированными ВПГ-1, приводит к секреции схожего спектра интерферонов и цитокинов, обладающих провоспалительный и противовирусной активностью. В тоже время, инфекция лейкоцитов ВПГ-1 сопровождается снижением продукции цитокинов, обладающих противовирусной активностью.

Научно-практическая значимость работы. Разработанная модель со-культивирования эндотелиальных клеток, инфицированных ВПГ-1, с гладкомышечными клетками интимы сосуда и лейкоцитами крови может быть использована для изучения механизмов патогенеза вирусных инфекций, тестирования противовирусных препаратов и разработки новых способов лечения вирусных заболеваний человека.

Способность цитокинов, продуцируемых активированными лейкоцитами, подавлять репродукцию ВПГ-1 в эндотелиальных клетках может быть учтена при разработке подходов к терапии герпесвирусных заболеваний.

Полученные данные позволяют расширить современные представления о клеточной биологии сосудистой стенки человека и механизмах развития сосудистой патологии, связанной с инфекцией ВПГ-1.

Заключение диссертации по теме «Аллергология и иммулология», Миронченкова, Екатерина Владимировна

ВЫВОДЫ

1. Впервые разработана экспериментальная модель со-культивирования эндотелиальных клеток с гладкомышечными клетками интимы кровеносного сосуда и лейкоцитами периферической крови человека, позволяющая исследовать механизмы патогенеза герпетической и других вирусных инфекций.

2. Выявлено, что культуры ЭК, полученные от разных доноров, а также клеточные популяции, полученные методом клонирования из отдельных родоначальных колониеобразующих эндотелиальных клеток, характеризуются функциональной гетерогенностью, связанной с избирательной способностью поддерживать репродукцию ВПГ-1, что в дальнейшем может определять топографию и локальность патологического процесса.

3. Показано, что развитие инфекции эндотелиальных клеток ВПГ-1 сопровождается умеренной продукцией провоспалительных цитокинов и увеличением поверхностной экспрессии Р- и Е-селектинов, что приводит к усиленной адгезии лейкоцитов периферической крови на инфицированные ЭК.

4. Установлено, что лейкоциты периферической крови доноров в результате контакта с эндотелиальными клетками, инфицированными ВПГ-1, активируются и продуцируют интерфероны (ИФНа и ИФНу) и цитокины (ИЛ-ip, ИЛ-6, ИЛ-8, ФНОа), которые тормозят репродукцию ВПГ-1 и увеличивают экспрессию молекул клеточной адгезии на эндотелиальных клетках. Полученные результаты отражают этапы формирования порочного круга воспаления в сосудистой стенке.

5. Впервые в экспериментах in vitro доказано, что гладкомышечные клетки интимы сосуда обладают способностью тормозить, а в отдельных случаях ингибировать репродукцию ВПГ-1 в эндотелиальных клетках в условиях со-культивирования.

6. Сравнительный анализ цитокинов, продуцируемых лейкоцитами крови при различных типах взаимодействия с ВПГ-1 показал, что индукция лейкоцитов как ВПГ-1, так и лейкоцитами или эндотелиальными клетками, инфицированными ВПГ-1, приводит к секреции схожего спектра интерферонов и цитокинов, обладающих провоспалительной и противовирусной активностью. Напротив, инфекция лейкоцитов вирусом сопровождается угнетением продукции противовирусных цитокинов.

Список литературы диссертационного исследования кандидат медицинских наук Миронченкова, Екатерина Владимировна, 2004 год

1. Антонов А.С., Крушинский А.В., Николаева М.А. и др. Первичная культура эндотелиальных клеток из пупочной вены человека: идентификация и характеристика растущей и конфлуэнтной культуры // Цитология, 1981,23: 1154-1159.

2. Баринский И.Ф., Шубладзе А.К и др. Герпес. Этиология. Диагностика, лечение// Москва, 1986, стр. 57-80.

3. Баринский И.Ф., Шубладзе А.К. Лейкоцитарные культуры в вирусологических исследованиях. Москва, «Медицина», 1980.

4. Ершов Ф.И. Система интерферона в норме и при патологии// Москва, 1996.

5. Ершов Ф.И. Эра цитокинов или язык клеток// Вестник РАЕН, 2002, 3, 24-26.

6. Исаков В.А., Аспель Ю.В. и др. Иммунопатогенез и лечение генитального герпеса и хламидиоза// Новгород-Санкт-Петербург, 1999.

7. Исаков В.А., Борисова В.В., Исаков Д.В. Герпес. Патогенез и лабораторная диагностика// 1999, стр.52-64.

8. Кашкин К.П. Цитокины иммунной системы: основные свойства и иммунобиологическая активность (лекция)// Клин. Лаб. Диагн. 1998, 11:21-32.

9. Ковальчук Л.В., Сайгитов Р.Т. Хемокины новое семейство цитокинов, регулирующих миграцию лейкоцитов// ЖМЭИ, 2000, 1: 90-94.

10. Кологривова Е.Н., Лебедев М.П. и др. Интенсивность гуморального ответа к герпес-вирусам как индикатор иммунологической недостаточности организма //Микробиол., Эпидемиол. и Иммунол., 2000, 6: 45-48.

11. Романов Ю.А., Антонов А.С. Морфологические и функциональные особенности эндотелия аорты человека. Два варианта организации эндотелиального монослоя при атеросклерозе // Цитология, 1991, 33 (3): 7-15.

12. Романов Ю.А., Антонов А.С. Морфологические и функциональные особенности эндотелия аорты человека. 2. Клеточный полиморфизм и включение 3Н-тимидина в культуре // Цитология, 1992, 34(2): 13-20.

13. Покровский В.И., Пак С.Г., Брико Н.И., Даиилкии Б.К. Инфекционные болезни и эпидемиология// Учебник. Москва, 2000, 254-257.

14. Сухих Г.Т., Ванько JI.B., Кулаков В.И. Иммунитет и генитальный герпес// Изд. НГМА, Нижний Новгород-Москва, 1997.

15. Фрейдлин И.С., Шейкин Ю.А. Эндотелиальные клетки в качестве мишеней и продуцентов цитокинов// Мед. Иммунол., 2001, 3(4): 499-514.

16. Фрейдлин И.С. Паракринные и аутокринные механизмы цитокиновой иммунорегуляции// Иммунология, 2001, 5: 4-7.

17. Цинзерлинг А.В., Индикова М.Г. Герпетическая инфекция (простой герпес)// 1988,3-12.

18. Шувалова Е.П. Инфекционные болезни// Учебник. Москва, 2001, 315-338.

19. Щегловитова О.Н. Новое о кислотолабильном а-интерфероне// ЖМЭИ, 1999, №00, 52-54.

20. Aarden L.A., De Groot E.R., Schaap O.L., et al. Production of hybridoma growth factor by monocytes II Eur. J. Immunol., 1987, 17: 1411-1416.

21. Albeda S.M., Buck C.A. Integrins and other cell adhesion molecules I I FASEB J., 1990,4: 2868-2880.

22. Albeda S.M., Muller W.A., Buck C., Mewman P.J. Molecular and cellular properties of PEC AM-1 (endo-CAM/CD31): a novel vascular cell-cell adhesion molecule II J. Cell Biol., 1991, 114: 1059-1068.

23. Albeda S.M., Smith C.W., Ward P.A. Adhesion molecules and inflammatory injury // FASEB J., 1994, 8: 504-512.

24. Andersson J., Bjork L., Dinarello C.A., et al. Lipopolysacharide induces human interleukin-1 receptor antagonist and interleukin-1 production in the same cell I I Eur. J. Immunol., 1992, 22: 2617-2623.

25. Ankel H., Westra D.F., Welling-Wester S., Lebon P. Induction of interferon a by glicoprotein D of herpes simplex virus:a possible role of hemokine receptors// Virology, 1998, 251: 317-326.

26. Antonelli-Orlidge A., Saunders K.B., Smith S.R., D'Amore P.A. An activated form of transforming growth factor is produced by co-cultures of endothelial cells and pericytes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 4544-4548.

27. Arend W.P. Interleukin-1 receptor antagonist 11 Adv. Immunol., 1993, 54: 167-227.

28. Arnaout M.A. Structure and function of the leukocyte adhesion molecules CD 11 /CD 18// Blood, 1990, 75: 1037-1050.

29. Babaev V.R., Antonov A.S., Zakharova O.S., et al. Identification of intimal subendothelial cells from human aorta in primary culture // Atherosclerosis, 1988,71:45-56.

30. Baroni C.D., Pezzella F., Mirolo M et al. Immunohistochemical demonstration of p24 HTLV III major core protein in different cell type within lymph nodes from patients with lymphadenopathy syndrome (LAS)// Histopathology, 1986, 10: 5-13.

31. Baumann H., Jahreis G., Sauder D.N., Koj A. Human keratinocytes and monocytes release factors which regulate the synthesis of major acute phase plasma proteins in hepatic cells from man, rat and mouse // J. Biol. Chem., 1984, 259: 7331-7342.

32. Bazzoni F., Cassatella M.A., Rossi F„ et al. Phagocytosing neutrophyls produce and release high amounts of the neutrophil-activating peptide-1/interleukin-8 II J. Exp. Med., 1991, 173: 771-779.

33. Bazzoni G., Dejana E., Lampugnani M.G. Endothelial adhesion molecules in the development of the vascular tree: the garden of forking paths// Curr. Opin. Cell. Biol., 1999, 11: 573-581.

34. Becker J.C., Kolanus W., Lonnemann C., Schmidt R.E. Human natural killer clones enhance in vitro antibody production by tumor necrosis factor alpha and gamma interferon // Scand. J. Immunol., 1990, 32: 153-162.

35. Becker J.C., Dummer R., Hartman A.A. et al. Shedding of ICAM-1 from human melanoma cells lines induced by IFNy and TNFa. Functional consequences on cell-mediated cytotoxity// J. Immunol., 1991,147:4398-4401.

36. Beilke V.A. Vascular endothelial in immunology and infectious disease// Rev.of Infect. Dis., 1989, 11( 2): 273-281.

37. Berg M., James S.P. Human neutrophils release the Leu-8 lymph node homing receptor during cell activation II Blood, 1990, 76: 2381-2388.

38. Beutler В., Krochin N., Milsark I.W., et al. Control of cachectin (tumor necrosis factor) synthesis: mechanism for endotoxin resistance // Science, 1986, 232: 977-985.

39. Beutler В., Tkacenko V., Milsark I., et al. Effect of gamma interferon on cachectin expression by mononuclear phagocytes. Reversal of the lpsd (endotoxin resistance) phenotype II J. Exp. Med., 1986, 164: 1791-1796.

40. Bevilacqua M.P. Endothelial-leukocyte adhesion molecules // Annu. Rev. Immunol., 1993, 11: 767-804.

41. Bevilacqua M.P., Pober J.S., Mendrick D.L., et al. Identification of an inducible endothelial-leukocyte adhesion molecule // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 9238-9242.

42. Bevilacqua M.P., Pober J.S., Wheeler M.E., et al. Interleukin-1 acts on cultured human vascular endothelium to increase the adhesion of polymorphonuclear leukocytes, monocytes, related leukocyte cell lines // J. Clin. Invest., 1985, 76: 2003-2011.

43. Bevilacqua M.P., Stengelin S., Gimbrone M.A.Jr., Seed B. Endothelial leukocyte adhesion molecule 1: an inducible receptor for neutrophils related to complement regulatory proteins and lectins // Science, 1989, 243: 11601165.

44. Bonfanti R., Furie B.C., Furie В., Wagner D.D. PADGEM (GMP-140) is a component of Weibel-Palade bodies of human endothelial cells // Blood, 1989: 1109-1112.

45. Brinker J.M., Ziaie Z., Kefalides N.A Differential suppression of host cell protein synthesis and mRNA levels in herpes simplex virus-infected endothelial cells// Virus res., 1991, 19(2-3): 209-221.

46. Campadelli-Fiume G., Cocchi F., Menotti L., Lopez M. The novel receptors that mediate the entry of herpes simplex virus and animal alphaherpesviruses into cells// Rev. Med. Virol., 2000, 10(5): 305-319.

47. Cantin E.M., Hinton D.R., Chen J., Openshaw H. Gamma interferon expression during acute and latent nervous system infection by herpes simplex virus type 1// J. Virol., 1995,75:4898-4905.

48. Capobianchi M.R., Facchini J., Di Marco P., Antonelli G., Dianzani F. Induction of alpha interferon by membrane interaction between viral surface and peripheral blood mononuclear cells// Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1985, 178: 551-556.

49. Carlos Т., Kovach N., Schwartz В., et al. Human monocytes bind to two cytokine-induced adhesive ligands on cultured human endothelial cells: endothelial-leukocyte adhesion molecule-1 and vascular cell adhesion molecule-1 // Blood, 1991,77: 2266-2271.

50. Carlos T.M., Harlan J.M. Membrane proteins involved in phagocyte adherence to endothelium // Immunol. Rev., 1990, 114: 5-28.

51. Carlos T.M., Schwartz B.R., Covach N.L., et al. Vascular cell adhesion molecule-1 adherence to cytokine-activated cultured human endothelial cells // Blood, 1990, 76: 965-970.

52. Chatterjee S., Burns P. Expression of herpes simplex virus type 1 glycoproteins in interferon-treated human neuroblastoma cells// J. Virol., 1990, 64: 52095213.

53. Cines D.B., Pollak E.S., Buck C.A. et al. Endothelial cells in physiology and in the pathophysiology of vascular disorders// Blood, 1998, 91: 3527-3561.

54. Collins Т., LaPierre L.A., Fiers W., et al. Recombinant tumor necrosis factor increases mRNA levels and surface expression of HLA-A,B antigens in vascular endothelial cells and fibroblasts in vitro // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1986, 83:446-443.

55. Cotran R.S., Gimbrone M.A.Jr., Bevilacqua M.P., et al. Induction and detection of a human endothelial activation antigen in vivo // J. Exp. Med., 1986, 164: 661-666.

56. Curfs J.H.A.J., Meis J.F.G.M., Hoogkamp-Korstanje J.A.A. Clin. Microb. Rev., 1997, v.10, №4, p.742-780.

57. Daheshia M., Feldman L.T. and Rous B.T. Herpes simplex viruses latency and immune response// Current Opinion in Microbiology, 1998, 1: 430-435.

58. Damle N.K., Klussman K., Linsley P.S., Aruffo A. Differentially costimulatory effects of adhesion molecules B7, ICAM-1, LFA-3, VCAM-1 on resting and antigen-primed CD4+ T lymphocytes II J. Immunol., 1992, 148: 1985-1992.

59. Davies P.F. Vascular cell interaction with special reference to the pathogenesis of atherosclerosis //Lab. Invest., 1986, 55: 5-24.

60. De Martin R., Hoeth M., Hofer-Warbinek R., Schmid J.A. The transcription factor NF-kappaB end the regulation of vascular cell function// Arterioscler. Thromb. Vase.Biol., 2000, 20: 83-88.

61. Dejana E., Corada M., Lampugnani M.G. Endothelial cell-to-cell junctions // FASEBJ., 1995, 9: 910-918.

62. Dianzani F., Sheglovitova O. et al. Interferon gamma stimulates cell-mediated transmission of HIV type 1 from abortively infected endothelial cells// AIDS Res. And Human Retroviruses, 1996, 12(7): 621-627.

63. Dinarello C.A. Biologic basis for interleukin-1 in disease // Blood, 1996, 87: 20952147.

64. Dinarello C.A. Interleukin-1 // Cytokine & Growth Factor Rev., 1997, 8: 253-265.

65. Dinarello C.A. Interleukin-1, interleukin-1 receptor and interleukin-1 receptor antagonist //Int. Rev. Immunol., 1998, 16: 457-499.

66. Dobrina A., Menegazzi R., Carlos T.M., et al. Mechanisms of eosinophil adherence to cultured vascular endothelial cells // J. Clin. Invest., 1991, 88: 20-26.

67. Domke-Opiz I., Kirchner H. Stimulation of macrophages by endotoxin results in the reactivation of persistent herpes simplex virus infection // Scand. J. Immunol., 1990, 32: 69-75.

68. Doukas J., Pober J.S. IFN-gamma enhances endothelial activation induced by tumor necrosis factor but not IL-1 II J. Immunol., 1990, 145: 1727-1733.

69. Dubravec D.B., Spriggs D.R., Mannick J.A., Rodrick M.L. Circulating human peripheral blood granulocytes synthesize and secrete tumor necrosis factor a UProc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 6758-6764.

70. Dudding L., Haskel S., Clark B.D. et al. Cytomegalovirus infection stimulates expression of monocyte associated mediator genes// J. Immunol., 1989, 143: 3343-3352.

71. Dustin M.L., Rothlein R., Bhan A.K., et al. Induction by IL-1 and interferon-y: tissue distribution, biochemistry, function of a natural adherence molecule (ICAM-1) II J. Immunol., 1986, 137: 245-254.

72. Erger R.A., Casale T.B. Interleukin-8 is a potent mediator for eosinophil chemotaxis through endothelium and epithelium // Amer. J. Physiol., 1995, 268: LI 17-L122.

73. Etingin O.R., Silverstein R.L., Friedman H.M., Hajjar D.P. Viral activation of the coagulation cascade: Molecular interactions at the surface of infected endothelial cells // Cell, 1990, 61: 657-662.

74. Etingin O.R., Silverstein R.L., Hajjar D.P. Identification of a monocyte receptor on herpes virus-infected endothelial cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88: 7200-7203.

75. Everett R.D. ICP0, a regulator of herpes simplex virus during lytic and latent infection// Bioassays, 2000, 22(8): 761-770.

76. Faggiotto A., Ross R. Harker L. Studies of hypercholesterolemia in the nonhuman primates. I. Changes that lead to fatty streak formation // Arteriosclerosis, 1984,4: 323-340.

77. Fajardo L.F. The complexity of endothelial cells// Am. J. Cell. Physiol., 1989, 92: 241-256.

78. Farby Z., Sandor M., Gajewski F., Herlein J.A. et al. Differential activation of Thl and Th2 CD4+ cells by murine brain microvessel endothelial cells and smooth muscle/pericytes// J. Immunol., 1993, 151: 38-47.

79. Folks T.M., Clouse K.A., Justement J., et al. Tumor necrosis factor a induces expression of human immunodeficiency virus in a chronically infected T-cell clone II Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 2365-2371.

80. Gallatin W.M., Wiessman I.L., Butcher E.C. A cell-surface molecule involved in organ-specific homing of lymphocytes // Nature, 1983, 304: 30-34.

81. Gamble J.R., Bradley S., Noack L., Vadas M.A. TGF-P and endothelial cells inhibit VCAM-1 expression in human vascular smooth muscle cells // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 1995, 15: 949-955.

82. Gerrity R.G. The role of the monocytes in atherogenesis: I. Transition of blood-borne monocytes into foam cells in fatty lesions // Amer. J. Pathol., 1981, 103: 181-190.

83. Gerrity R.G., Naito H.K., Richardson M., Schwartz C.J. Dietary-induced atherogenesis in swine II Amer. J. Pathol., 1979, 95: 775-793.

84. Gerrity R.J., Naito H.K., Richardson M., Schwartz C.J. Dietary induced atherogenesis in swine: morphology of the intima in prelesion stages // Amer. J. Pathol., 1979, 95: 775-792.

85. Gil J., Esteban M. Induction of apoptosis by the dsRNA-dependent protein Kinase (PKR): Mechanism of action// Apoptosis, 2000, 5: 107-114.

86. Gimbrone M.A., Obin M.S., Frock A.F., et al. Endothelial interleukin-8: a novel inhibitor of leukocyte-endothelial interactions // Science, 1989, 246: 16011603

87. Gimbrone M.A., Cotran R., Folkman J. Human vascular endothelial cells in culture. Growth and DNA synthesis II J. Cell Biol., 1974, 60: 673-684.

88. Goodborne S., Didcock L., and Randall R.E. Interferons: cell signaling, immune modulation, antiviral response and virus countermeasures. J. Gen. Virol, 2000,81:2341-2364.

89. Gown A.M., Tsukada Т., Ross R. Human atherosclerosis. II. Immunocytochemical analysis of the cellular composition of human atherosclerotic lesions // Amer. J. Pathol., 1986, 125: 191-207.

90. Graber N., Gopal T.V., Wilson D., et al. T cells bind to cytokine-activated endothelial cells via novel, inducible sialoglycoprotein and endothelial leukocyte adhesion molecule-1 II J. Immunol., 1990, 145: 819-830.

91. Greenfeder S.A., Nunes P., Kwee L., et al. Molecular cloning and characterization of a second subunit of the interleukin-1 receptor complex // J. Biol. Chem., 1995, 270: 13757-13765.

92. Guan J., Hynes R.O. Lymphoid cells recognize an alternatively spliced segment of fibronectin via the integrin receptor a4(31 // Cell, 1990, 60: 53-61.

93. Hajjar D.P. Herpesvirus infection prevents activation of cytoplasmic cholesteryl esterase in arterial smooth muscle cells II J. Biol. Chem., 1986, 261: 76117614.

94. Hajjar D.P. Viral pathogenesis of atherosclerosis. Impact of molecular mimicry and viral genes // Amer. J. Pathol., 1991, 139: 1195-1211.

95. Hajjar D.P., Fabricant C.G., Minick C.R., Fabricant J. Virus-induced atherosclerosis: Herpes virus infection alters aortic cholesterol metabolism and accumulation // Amer. J. Pathol., 1986, 122: 62-70.

96. Hajjar D.P., Falcone D.J., Fabricant C.G., Fabricant J. Altered cholesterol ester cycle is associated with lipid accumulation in herpesvirus infected avian arterial smooth muscle cells II J. Biol. Chem., 1985, 260: 6124-6128.

97. Hajjar D.P., Nicholson A.C., Hajjar K.A., et al. Decreased messenger RMA translation in herpesvirus-infected arterial cells. Effecs on cholesteryl ester hydrolase II Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 3366-3370.

98. Hajjar D.P., Pomerantz K.B., Falcone D.J., et al. Herpes simplex virus infection in human arterial cells: implications in atherosclerosis II J. Clin. Invest., 1987, 80: 1317-1321.

99. Hajjar K.A., Hajjar D.P., Silverstein R.L., Nachman R.L. Tumor necrosis factor mediated release of platelet-derived growth factor from cultured endothelial cells II J. Exp. Med., 1987, 166: 235-245.

100. Hakker B.C., Kuidjpers T.W., Leeuwenberg J.F.M., et al. Neutrophil and monocyte adherence to and migration across monolayers of cytokine-activated endothelial cells: the contribution of CD 18, ELAM-1, VLA-4 // Blood, 1991,78: 2721-2726.

101. Halford W.P., Gebhardt B.M., Carr D.J.J. Persistent cytokine expression intrigeminal ganglion latently infected with Herpes Simplex Virus Type III J. Immunol., 1996, 157: 3542-3549.

102. Hirschberg H., Bergh O.J., Throsby E. Immunologic interactions of T lymphocytes with vascular endothelium// Adv. Immunol, 1991, 50: 261-302.

103. Hirschberg H. Presentation of viral antigens by human vascular endothelial cells in vitro// Hum. Immunol., 1981, 2:235-246.

104. Hogg N. Roll, roll, roll your leukocyte gently down the vein. // Immunol. Today, 1992, 13: 113-115.

105. Houssiau F., Devogelaer J.-P., Van Damme J., et al. Interleukin 6 in synovial fluid and serum of patients with rheumatoid arthritis and other inflammatory arthritides // Arthr. Rheumathol., 1988, 31: 784-788.

106. Hsu-Lin S.C., Berman C.L., Furie B.C., et al. A platelet membrane protein expressed during platelet activation and secretion. Studies using a monoclonal antibody specific for thrombin-activated platelets II J. Biol. Chem., 1984,259: 9121-9126.

107. Jaattela M. Biologic activities and mechanism of action of tumor necrosis factor-a/cachectin // Lab. Invest., 1991, 64: 724-742.

108. Jobling S.A, Auron P.E., Gurka G., et al. Biological activity and receptor binding of human prointerleukin-lp and subpeptides // J. Biol. Chem., 1988, 263: 16372.

109. John J., McKendry R., Pellegrini S. Et al. Isolation and characterization of the new mutant human cell line unresponsive to alpha and beta interferons// Mol. Cell. Biol., 1991, 11:4189-4195.

110. Johnson D.R., Pober J.S. Tumor necrosis factor and immune interferon synergistically increase transcription of HLA class I heavy- and light-chaingenes in vascular endothelium // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 51835189.

111. Johnson R.E., Nahmias A.J., Magder L.S., et al. A seroepidemiologic survey of the prevalence of herpes simplex virus type 2 infection in the United States // N. Engl. J. Med., 1986, 321: 7-12.

112. Jung T.M., Gallatin W.M., Weissman I.L., Dailey M.O. Down-regulation of homing receptors after T cell activation // J. Immunol., 1988, 141: 41104117.

113. Kanangat S., Babu J.S., Knipe D.M., Rose B.T. HSV-1-mediated modulation of cytokine gene expression in a permissive cell line: selective upregulation of IL-6 gene expression// Virology, 1999, 219: 213-221.

114. Kasid A., Director E.P., Stovroff M.C., et al. Cytokine regulation of tumor necrosis factor-a and -P (lymphotoxin) -messenger RNA expression in human peripheral blood mononuclear cells // Cancer Res., 1990, 50: 5072-5078.

115. Keadle T.L., Usui N., Laycock K.A. et al. IL-1 and TNF-alpha are important factors in the pathogenesis of murine recurrent herpetic stromal keratitis// Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2000, 41(1): 96-102.

116. Keishnaswamy G., Kelly J., Yerra J et al. J. Interferon Cytokine Res., 1997, 19: 91-104.

117. Kishimoto Т., Hirano Т., Molecular regulation of В lymphocyte response // Ann. Rev. Immunol., 1988, 6: 485-512.

118. Kishimoto Т.К., Julita M.A., Berg E.L., Butcher E.C. Neutrophil MAC-1 and MEL-14 adhesion proteins inversely regulated by chemotactic factors // Science, 1989, 245: 1238-1241.

119. Kishimoto Т.К., Warnock R.A., Julita M.A., et al. Antibodies against human neutrophil LECAM-1 (LAM-1/LEU-8/DREG-56 antigen) and endothelial cell ELAM-1 inhibit a common CD18-independent adhesion pathway in vitro // Blood, 1991, 78: 805-811.

120. Kobayachi Y., Appella E., Yamada M., et al. Phosphorylation of intracellular precursor of human IL-1 II J. Immunol., 1988, 140: 2279-2287.

121. Kodukula P., Liu Т., Rooijen N.V. et al. Macrophage control of herpes simplex virus type 1 replication in the peripheral nervous system// J. Immunol., 1999, 162: 2895-2905.

122. Kohase S., May L.T., Tamm I., et al. A cytokine network in human diploid fibroblasts: Interaction of p-interferons, tumor necrosis factor, platelet-derived growth factor, and interleukin-1II Mol. Cell. Biol., 1987, 7: 273-280.

123. Krishnan K., Lim J.T., Krolewski J.J. et al. Dimerization of chimeric CD4-interferon-alpha receptor reconstitutes the signaling events preceding STAT phosphorilationII Oncogen., 1996, 13: 125-133.

124. Kuijpers T.W., Hoogerwerf M., van der Laan L.J.V., et al. CD66 nonspecific cross-reacting antigens are involved in neutrophil adherence to cytokine-activated endothelial cells II J. Cell Biol, 1992, 118: 457-466.

125. Majesky M.W., Lindner V., Twardzik D.R, et al. Production of transforming growth factor Pi during repair of arterial injury II J. Clin. Invest., 1991, 88: 904-910.

126. Manning A.M., Kukielka G.L., Dore M., et al. Regulation of GMP-140 mRNA in a canine model of inflammation // FASEB J., 1992, 6: A1060.

127. Mantovani A., Garlanda C., Introna M., Vecchi A. Regulation of endothelial cell function by pro- end anti-inflammatory cytokines// Transplant. Proc., 1998, 30: 4239-4243.

128. Marfaing -Koka A., Devergne O., Gorgone G. et al. Regulation of the production of the RANTES chemokine by endothelial cells. Sinergistic induction by

129. N-gamma plus TNF-alpha and inhibition by IL-4 and IL-13// J. Immunol., 1995, 154 : 1870-1878.

130. McEver R.P., Beckstead J.H., Moore K.L., et al. GMP-140, a platelet a/pha-granule membrane protein, is also synthesized by vascular endothelial cells and is localized in Weibel-Palade bodies // J. Clin. Invest., 1989, 84: 92-99.

131. Melnick J.L., Adam E., Debakey M.E. Cytomegalovirus and atherosclerosis // Eur. Heart J., 1993, 14: 30-38.

132. Melnick J.L., Adam E., DeBakey M.E. Possible role of cytomegalovirus in atherogenesis II J. Amer. Med. Ass., 1990, 263: 2207-2207.

133. Mendez-Samperio P, Hernandez M, Ayala H.E. Induction of transforming growth factor-beta 1 production in human cells by herpes simplex virus// J. Interferon Cytokine Res., 2001, 20(3): 273-280.

134. Miller A.C., Schattenberg D.C., Malkinson A.M., et al. Decreased content of the IL-la processing enzyme calpain in murine bone marrow-derived macrophages after treatment with the benzene metabolite hydroquinone // Tox. Lett., 1994, 74: 177-184.

135. Millhouse S., Wigdahi B. Molecular circuitry regulating herpes simplex virus type 1 latency in neurons// JNeurovirol., 2000, 6(1): 6-24.

136. Minami M., Kita M., Yan X.Q. et al. Role IFN-gamma and tumor necrosis factor-alpha in herpes simplex virus type 1 infection// J. Interferon Cytokine Res., 2002, 22(6): 671-676.

137. Miyake K., Medina K., Ishihara K., et al. A VCAM-like adhesion molecule on murine bone marrow stromal cells mediated binding of lymphocyte precursors in culture///. Cell Biol., 1991, 114: 557-565.

138. Mogensen Т.Н., Paludan S.R. Molecular pathways in virus-induced cytokine production// Microbiology and Molecular Biology Reviews, 2001, 65(1): 131-150.

139. Moser В., Loetscher P. Lymphocyte traffic control by chemokines// Nat. Immunol., 2001,2: 123-128.

140. Mossman K.L. Activation and inhibition of virus and interferon: the herpesvirus story// Viral Immunology, 2002, 15(1): 3-15.

141. Mossman K.L., Sad S. The expanding universe of T-cell subsets: Thl, Th2 and mordI Immunol. Today, 1996, 17: 138-146.

142. Muller W.A., Ratti C.M., McDonnell S.L., Cohn Z.A. A human endothelial cell restricted, externally disposed plasmalemmal protein enriched in intercellular junctions II J. Exp. Med., 1989, 170: 399-414.

143. Muller W.A., Weigl S.A., Deng X., Phillips D.M. PECAM-1 is required for transendothelial migration of leukocytes // J. Exp. Med., 1993, 178: 449-460.

144. Munro J.M., Cotran R.S. The pathogenesis of atherosclerosis: Atherogenesis and inflammation // Lab. Invest., 1988, 58: 249-261.

145. Munro J.M., Pober J.S., Cotran R.S. Tumor necrosis factor and interferon gamma induce distinct patterns of endothelial activation and associated leukocyte accumulation in skin of papio anubis // Amer. J. Pathol., 1989, 135: 121131.

146. Nawroth P.P., Stern D.M. Modulation of endothelial cell hemostatic properties by tumor necrosis factor II J. Exp. Med., 1986, 163: 740-746.

147. Newman P.J., Albeda S.M. Cellular and molecular aspects of PECAM-1 // Nouv. Rev. Fr. Hematol., 1992, 34: S7-S11.

148. Nicholson A, Hajjar D. Herpesviruses in atherosclerosis and thrombosis. Etiologic agents or ubiquitous bystanders?// Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 1998, 18: 339-348.

149. Nortamo P., Li R., Renkonen R., et al. The expression of human intercellular adhesion molecule-2 is refractory to inflammatory cytokines // Eur. J. Immunol., 1991, 21: 2629-2632.

150. Nyhlen K., Linden M., Andersson R. et al. Corticosteroids and interferons inhibit cytokine-induced production of IL-8 by human endothelial cells// Cytokine, 2000, 12: 437-444.

151. Okada M., Kitahara M., Kishimoto S., et al. IL-6/BSF-2 functions as a killer helper factor in the in vitro induction of cytotoxic T cells // J. Immunol., 1988, 141: 1543-1549.

152. Oppenheimer-Marks N., Davis L.S., Tompkins Bogue D., et al. Differential utilization of ICAM-1 and VCAM-1 during the adhesion and transendothelial migration of human T-lymphocytes // J. Immunol., 1991, 147: 2913-2921.

153. Osborn L., Hession C., Tizard R., et al. Direct expression cloning of vascular cell adhesion molecule 1, a cytokine-induced endothelial protein that binds to lymphocytes// Cell, 1989, 59: 1203-1211.

154. Osborn L., Kunkel S., Nabel G.L. Tumor necrosis factor a and interleukin 1 stimulate human immunodeficiency virus enhancer by activation of the nuclear factor /cB // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 2336-2343.

155. Paleolog E.M., Delasalle S.A.J., Buurman W.A., Feldman M. Blood, 1994, 84(8): 2578-2590.

156. Paludan S.R. Requirements for the induction of interleukin-6 by herpes simplex virus-1 infected leukocytes// J. Virol., 2001, 75(17): 8008-8015.

157. Paludan S.R., Mogensen S.C. Virus-cell interactions regulating induction of tumor necrosis factor alpha production in macrophages infected with herpes simplex virus// J. Virol., 2001,75(21): 10170-10178.

158. Parkin J., Cohen B. An overview of the immune system// Lancet., 2001, 357: 1777-1789.

159. Peng H.B., Spiecker M., Liao J.K. Inducible nitric oxide: an autoregulatory feedback inhibitor of vascular inflammation// J. Immunol., 1998, 161: 19701976.

160. Perng G.C., Jones C., Ciacci-Zanella J. et al. Virus-induced neuronal apoptosis blocked by herpes simplex virus latency-associated transcript// Science, 2000, 287(5457): 1500-1503.

161. Picker L.J., Butcher E.C. Physiological and molecular mechanisms of lymphocyte homing // Annu. Rev Immunol., 1992, 10: 561-591.

162. Picker L.J., Kishimoto Т.К., Smith C.W., et al. ELAM-1 is an adhesion molecule for skin-homing T cells // Nature, 1991, 349: 796-799.

163. Picker L.J., Warnock R.A., Burns A.R., et al. The neutrophil selectin LECAM-1 presents carbohydrate ligands to the vascular selectins ELAM-1 and GMP-140 // Cell, 1991,66: 921-933.

164. Plaut M., Piercs J.H., Watson C.J., et al. Mast cell lines produce lymphokines in response to cross-link-age of FeRI or to calcium ionophores // Nature, 1989, 339: 64-67.

165. Pober J.S., Cotran R.S. The role of endothelial cells in inflammation // Transplantation, 1990, 50: 537-544.

166. Pober J.S., Cotran R.S. Cytokines and endothelial cell biology// 1990, 70(2): 427451.

167. Pober J.S., Gimbrone M.A.Jr., Lapierre L.A., et al. Overlapping patterns of activation of human endothelial cells by interleukin 1, tumor necrosis factor and immune interferon // J. Immunol., 1986, 137: 1893-1896.

168. Poli G., Kinter A., Justement J.S., et al. Tumor necrosis factor a functions in an autocrine manner in the induction of human immunodeficiency virus expression И Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 782-788.

169. Pozo M.A., Sanchez-Mateos P., Sanchez-Madrid F. Cellular polarization induced by chemokines: a mechanism for leukocyte recruitment?// Immunol. Today, 1996,17: 127-131.

170. Rajcani J., Durmanova V. Early expression of herpes simplex virus (HSV) proteins and reactivation of latent infection// Folia Microbiol.(Praha), 2000, 45(1): 7-28.

171. Rajcani J., Vojvodova A. The role of herpes simplex virus glycoproteins in the virus replication cycle// Acta Virol, 1998,42: 103-118.

172. Reape T.J., Groot P.H. Chemokines and atherosclerosis// Atherosclerosis, 1999, 147: 213-225.

173. Ribatti D., Nico В., Vacca A et al. Endothelial cell heterogenity and organ specificity// J. of Hematotherap. and Stem Cell Research, 2002, 11: 81-90.

174. Rice G.E., Bevilacqua M.P. An inducible endothelial cell surface glycoprotein mediates melanoma adhesion // Science, 1989,246: 1303-1306.

175. Rice G.E., Gimbrone M.A.Jr., Bevilacqua M.P. Tumor cell-endothelial interaction. Increased adhesion of human melanoma cells to activated vascular endothelium // Amer. J. Pathol 1988, 133: 204-210.

176. Rice G.E., Munro J.M., Bevilacqua M.P. Inducible cell adhesion molecule 110 (INCAM-110) as an endothelial receptor for lymphocytes. A CD 11 /CD 18-independent adhesion mechanism // J. Exp. Med., 1990, 171: 1367-1374.

177. Rice G.E., Munro J.M., Corless C., Bevilacqua M.P. Vascular and nonvascular expression of INCAM-110. A target for mononuclear leukocyte adhesion in normal and inflamed human tissues II Amer. J. Pathol 1991, 138: 385-393.

178. Rinaldo C.R., Richter B.S., Black P.H., Callery R. Replication of Herpes Simplex Virus and Cytomegalovirus in Human Leukocytes. 1978, 120(1): 130-136.

179. Roizman B. HSV gene functions: what have we learned that could be generally applicable to its near and distant cousins?// Acta virologica, 1999, 43: 75-80.

180. Rooney J.F. Epidemiology of herpes simplex, Herpes simplex virus infection: Biology, treatment and prevention // Ann. Intern. Med., 1985, 103: 404-419.

181. Ross R. The pathogenesis of atherosclerosis an update // N. Engl J. Med., 1986, 314: 488-500.

182. Ryan D.H., Nuccie B.L., Abboud C.N., Winslow J.M. Vascular cell adhesion molecule-1 and the integrin VLA-4 mediate adhesion of human В cell precursors to cultured bone marrow adherent cells // J. Clin. Invest., 1991, 88: 995-1004.

183. Sainz B.Jr., Halford W.P. Alpha/beta interferon and gamma interferon synergize to inhibit the replication herpes simplex virus type III J. Virol. 2002, 769(2): 11541-11550.

184. Sanceau J., Beranger F., Gaudelet C., Wietzerbin J. IFN-y is an essential cosignal for triggering IFN-P2/BSF-2 gene expression in human monocytic cell lines И Ann. N.Y. Acad. Sci., 1989, 557: 130-143.

185. Sanders W.E., Wilson R.W., Ballantyne C.M., Beaudet A.L. Molecular cloning and analysis of in vivo expression of murine P-selectin // Blood, 1992, 80: 795-800.

186. Sato Y., Rifkin D.B. Inhibition of endothelial cell movement by pericytes and smooth muscle cells: activation of a latent transforming growth factor-pl-like molecule by plasmin during co-culture // J. Cell Biol., 1989, 109: 309315.

187. Schroder J.M., Christophers E. Secretion of novel and homologous neutrophil-activating peptides by LPS-stimulated human endothelial cells // J. Immunol., 1989, 142: 244-251.

188. Schroder J.M., Mrowietz U., Christophers E. Purification and partial biologic characterization of a human monocyte-derived peptide with potent neutrophil-stimulating activity // J. Immunol., 1988, 140: 3534-3539.

189. Schroder J.M., Mrowietz U., Morita E., Christophers E. Purification and partial biochemical characterization of a human monocyte-derived, neutrophil-activating peptide that lacks interleukin-1 activity II J. Immunol., 1987, 139: 3474-3483.

190. Sheglovitova O., Capobianchi M.R. et al. CD 4-pozitive lymphoid cells rescue HIV-1 replication from abortively infected human primary endothelial cells// Arch. Virol., 1992, 132: 267-280.

191. Sheglovitova O., Scanio V., Fais S. et al. Antibody to ICAM-1 mediates enhancement of HIV-1 infection of human endothelial cells// Arch. Virol, 1995, 140: 951-958.

192. Schwartz B.R., Wayner E.A., Carlos T.M., et al. Identification of surface protein mediating adherence of CD1 l/CD18-deficient lymphoblastoid cells to cultured human endothelium II J. Clin. Invest., 1990, 85: 2019-2022.

193. Seigal F.P., Kadowaki N., Shodell M. et al. The nature of the principal type 1 interferon-producing cells in human blood//Science, 1999,284: 1835-1837.

194. Shalaby M.R., Waage A., Espevik T. Cytokine regulation of interleukin 6 production by human endothelial cells // Cell Immunol., 1989, 121: 372-382.

195. Shimizu Y., Shaw S., Graber N., et al. Activation-independent binding of human memory T cells to adhesion molecule ELAM-1 // Nature, 1991, 349: 799802.

196. Shimizu Y., Newman W., Tanaka Y., Show S. Lymphocyte interaction with endothelial cells// Immunol. Today, 1992,3: 106-112.

197. Sims J.E., Giri J.G., Dower S.K. The two interleukin-1 receptors play different roles in IL-1 activities // Clin. Immunol. Immunopathol., 1994, 72: 9-14.

198. Span A.H. van Dam-Mierras M.C. et al. The effect of virus infection on the adherence of leukocytes and platelets to endothelial cells// Eur.J. Clin. Invest., 1991,21(3): 331-338.

199. Springer T.A. Adhesion receptors of the immune system // Nature, 1990, 346: 425-434.

200. Springer T.A. Traffic signals for lymphocyte recirculation and leukocyte migration: the multistep paradigmII Cell, 1994, 67: 427-451.

201. Staats H.S., Lausch R.N. Cytokine expression in vivo during murine herpetic keratitis// J. Immunol., 1993, 151: 277-283.

202. Standiford T.J., Kunkel S.L., Basha M.A., et al. Interleukin-8 gene expression by a pulmonary epithelial cell line II J. Clin. Invest., 1990, 86: 1945-1948.

203. Staunton D.E., Dustin M.L., Springer T.A. Functional cloning of ICAM-2, a cell adhesion ligand for LFA-1 homologous to ICAM-1 // Nature, 1989, 339: 6164.

204. Stenberg P.E., McEver R.P., Shuman M.A., et al. A platelet a/pha-granule membrane protein (GMP-140) is expressed on the plasma membrane after activation II J. Cell Biol., 1985, 101: 880-886.

205. Strieter R.M., Koch A.E., Antony V.B. et al. J. Lab. Clin. Med., 1994, 123(2): 183197.

206. Strieter R.M., Phan S.H., Showell H.J., et al. Monokine-induced neutrophil chemotactic factor gene expression in human fibroblasts // J. Biol. Chem., 1989, 264: 10621-10627.

207. Strieter S.M., Kunkel S.L., Showell H.J., et al. Endothelial cell gene expression of a neutrophil chemotactic factor by TNF-a , LPS, and IL-ip // Science, 1989, 243: 1467-1469.

208. Stumpf Т.Н., Case R., Shimeld С et al. Primary herpes simplex virus type 1 infection of the eye triggers similar immune responses in the cornea and the skin of the eyelids// J. Gen. Virol., 2002, 83(Pt7), 1579-1590.

209. Van Snick J. Interleukin-6. An overview // Annu. Rev. Immunol., 1990, 8: 253-278.

210. Taga Т., Kawanishi Y., Hardy R., et al. Receptors for В cell stimulatory factor 2. Quantitation, specificity, distribution and regulation of their expression // J. Exp. Med., 1987, 166: 967-981.

211. Так P.P, Firestein G.S. NF-kappaB: a kay role in inflammatory diseases// J. Clin. Invest., 2001, 107: 7-11.

212. Tanaka N., Sato M.S. et al. Type I interferons are essential mediators of apoptotic death in virally infected cells// Genes Cells, 1998, 3: 29-37.

213. Tedder T.F., Steeber D.A., Chen A., Engel P. The selectins: vascular adhesion molecules HFASEBJ., 1995, 9: 866-873.

214. Tenser R.B. Role of herpes simplex virus thymidine kinase expression in viral pathogenesis and latency// Intervirology, 1991, 32(2): 76-92.

215. Topper J.N., Gimbrone M.A. Blood flow and vascular gene expression: fluid shear stress as a modulator of endothelial phenotype// Mol. Med. Today., 1999, 5: 40-46.

216. Uyttenhove C., Coulie P.G., Van Snick J. T cell growth and differentiation induced by interleukin-HPl/IL-6, the murine hybridoma/plasmacytoma growth factor// J. Exp. Med., 1988, 167: 1417-1427.

217. Van Damme J., Opdenakker G., Simpson R.J., et al. Identification of the human 26 kD protein, interferon p2 (IFN-Рг), as а В cell hybridoma/plasmacytoma growth factor induced by interleukin 1 and tumor necrosis factor // J. Exp. Med., 1987, 165: 914-919

218. Van Damme J., van Beeumen J., Opdenakker G., Billiau A. A novel, NH2-terminal sequence-characterized human monokine possessing neutrophil chemotactic, skin-reactive, and granulocytosis-promoting activity // J. Exp. Med., 1988, 167: 1364-1371.

219. Vercellotti G.M Effects of viral activation of the vessel wall on inflammation and thrombosis// Blood Coagul. Fibrinolysis, 1998, 9(suppl. 2): 3-6.

220. Vercellotti G.M Overview of infections and cardiovascular diseases// J. Allergy Clin. Immunol., 2001, 108 (suppl. 4): 117-120.

221. Waage A., Brandtzaeg P., Halstensen A., et al. The complex pattern of cytokines in serum from patients with meningococcal septic shock // J. Exp. Med., 1989, 169: 333-338.

222. Wahl L.M., Concoran M.L., Pyle S.W. et. al. Human immunodeficiency virus glycoprotein (gpl20) induction of monocyte arachidonic acid metabolites and interleukin 1// Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 621-625.

223. Waldman W.J., Knight D.A. Cytokine-mediated induction of endothelial adhesion molecule and histocompatibility leukocyte antigen expression by cytomegalovirus-activated T cells//Лгаег. J. Pathol., 1996, 148: 105-119.

224. Walz A.F., Meloni F., Clark-Lewis I., et al. Ca . changes and respiratory burst in human neutrophils and monocytes induced by NAP-l/interleukin-8, NAP-2 and GRO/MGSA II J. Leukocyte Biol., 1991, 50: 279-286.

225. Wayner E.A., Garcia-Padro A., Humphries M.J., et al. Identification and characterization of the T-lymphocyte adhesion receptor for an alternative cell attachment domain (CS-1) in plasma fibronectin // J. Cell Biol., 1989, 109: 1321-1330.

226. Warner S. J.C., Libby P. Human vascular smooth muscle cells. Target for and source of tumor necrosis factorII J. Immunol., 1989, 142: 100-109.

227. Weir J.P. Regulation of herpes simplex virus gene expression// Gene, 2001, 271: 117-130.

228. Weller A., Isenmann S., Vestweber D. Cloning of the mouse endothelial selectins. Expression of both E- and P-selectin is inducible by tumor necrosis factor // J. Biol. Chem., 1992, 267: 15176-15183.

229. Weller P.F., Rand Т.Н., Goelz S.E., et al. Human eosinophil adherence to vascular endothelium mediated by binding to vascular cell adhesion molecule-1 and endothelial leukocyte adhesion molecule-1 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88: 7430-7433.

230. Wong G.H.W., Goeddel D.V. Tumor necrosis factor alpha and beta inhibit virus replication and synergize with interferons // Nature (Lond.), 1986, 323: 819826.

231. Yokota S., Yokosawa N., Kubota T. et al. Herpes simplex virus type 1 suppresses the interferon signal pathway by inhibiting phosphorylation of STATs and janus kinases during an early infection stage// Virology, 2001, 286(1): 119124.

232. Yoshimura Т., Matsushima К., Tanaka S., Robinson E., et al. Purification of a human monocyte-derived neutrophil chemotactic factor that has peptide sequence similarity to other host defense cytokines // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 9233-9240.

233. Zajac B.A., O'Neill K., Friedman H.M., MacGregor R.R. Increased adherence of human granulocytes to herpes simplex vims type 1 infected endothelial cells// In Vitro Cell Dev. Biol., 1988, 24(4): 321-325.

234. Zimmerman G.A., Mclntyre T.M., Mehra M., Prescott S.M. Endothelial cell-associated platelet-activating factor: a novel mechanism for signaling intercellular adhesion///. Cell Biol., 1990, 110: 529-540.

235. Zimmerman G.A., Prescott S.M., Mclntyre T.M. Endothelial cell interactions with granulocytes: tethering and signaling molecules// Immunol. Today, 1992, 13: 93-100.

236. Zheng X., Yamaguchi V. et al. Experimental corneal endotheliitis in rabbit// Invest. Ophthalmol. Vis. Sci., 2000, 41(2): 377-385.