Грибы на растительных субстратах в малых озерах тундровой и лесной зон Восточной Европы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.24, доктор биологических наук Воронин, Леонид Владимирович

• Воронин, Леонид Владимирович
• доктор биологических наук
• 2005

Оглавление диссертации доктор биологических наук Воронин, Леонид Владимирович

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. СТЕПЕНЬ ИЗУЧЕННОСТИ

И ОСНОВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ

МИКОБИОТЫ ОЗЕР

Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.1. Озера Большеземельской тундры (Воркутинский промышленный район и окрестности)

2.2. Озера Карелии

2.3. Озера Вологодской области

2.4. Малые реки и озера Ярославской области

2.5. Озера Эстонии

2.6. Отбор проб и обработка материалов

Глава 3. СОДЕРЖАНИЕ КОЛОНИЕОБРАЗУЮЩИХ ЕДИНИЦ

ПРОПАГУЛ) ГРИБОВ В ВОДЕ И ДОННЫХ ОТЛОЖЕНИЯХ

ИССЛЕДОВАННЫХ ОЗЕР

3.1. Микобиота воды озер Большеземельской тундры в окрестностях Воркуты)

3.2. Микобиота воды озер Карелии

3.3. Микобиота воды и илов озер Вологодской области

3.4. Микобиота воды озер Эстонии

3.5. Общие особенности численности, состава и путей формирования пула диаспор грибов в малых озерах

Глава 4. МИКОБИОТА ФИЛЛОПЛАНЫ ГИДРОФИТОВ

4.1. Структура и формирование комплексов микобиоты филлопланы гидрофитов

4.2. Изменения микобиоты филлопланы при отмирании растений

Глава 5. ПИОНЕРНЫЕ КОМПЛЕКСЫ ГРИБОВ НА ОТМЕРШИХ

РАСТИТЕЛЬНЫХ СУБСТРАТАХ

5.1. Грибы на отмерших растительных субстратах в озерах Большеземельской тундры (в окрестностях Воркуты)

5.2. Пионерные комплексы грибов на отмерших макрофитах и листовом опаде в озерах Карельской тайги

5.3. Пионерные комплексы грибов на отмерших макрофитах и листовом опаде в озерах Вологодской области (южная тайга)

5.4. Пионерные комплексы грибов на отмерших макрофитах в озерах Эстонии

Глава 6. СЕЗОННОЕ РАСПРОСТРАНЕНИЕ ГРИБОВ

И НЕКОТОРЫЕ АСПЕКТЫ СУКЦЕССИЙ ИХ КОМПЛЕКСОВ

6.2. Сезонные изменения видового состава и основные направления сукцессий комплексов грибов на растительных субстратах в озерах южной тайги (Дарвинский государственный заповедник)

6.3. Сукцессии комплексов грибов плейсгофита Nuphar lutea в малой реке и старице бассейна Рыбинского водохранилища (Ярославская обл.)

ITA ОТМЕРШИХ РАСТИТЕЛЬНЫХ СУБСТРАТАХ 6.1. Сезонное распространение грибов и сукцессии их комплексов на растительных субстратах в озерах Воркугинской тундры

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Грибы на растительных субстратах в малых озерах тундровой и лесной зон Восточной Европы»

Грибы — неотъемлемая составная часть биоты любой экосистемы, однако до настоящего времени неоправданно мало внимания уделяется их месту в структуре и роли в функционировании экосистем, особенно водных. В то же время Д.Л. Хоуксворт (1992) отмечал, что пищевые сети в основе своей базируются на микроорганизмах, в том числе и на грибах, и отражают ход эволюции. Грибы в гидроэкосистемах играют значительную (а возможно, и ключевую) роль в передаче потока энергии от аллохтонных и автохтонных частиц другим компонентам в пищевой цепочке. Ещё Ю. Одум (1975) высказывал предположение, что «среди сапротрофов бактерии и грибы, населяющие водоём, имеют, вероятно, одинаково важное значение». Однако, изученность микобиоты в пресноводной среде крайне недостаточна. В 1990 г. Д.Л. Хоуксворт в президентском обращении Британскому микологическому обществу доказательно сообщил, что на тот момент известно было только 4.6% существующих в природе видов грибов (Хоуксворт, 1992). И хотя в последующие годы описывалось в среднем по 1700 видов ежегодно, список обитающих в воде грибов остаётся наиболее далёким от удовлетворительной полноты. Если имеются довольно представительные данные о видовом составе и различных аспектах функционирования грибов в водотоках (Gessner et al., 1997), то сведения о микобиоте стоячих вод минимальны. Они ограничены изучением отдельных таксономических или эколого-систематических групп, либо разнообразных грибов на 1—2-х субстратах в каком-то конкретном водоёме. Причём, большинство даже этих исследований микобиоты стоячих вод (в частности, озёр) выполнено в Западной Европе, Америке и Японии. Данные о распространении грибов в водоёмах на территории России и бывшего СССР единичны и очень отрывочны.

Нам чрезвычайно мало известно об элементах микобиоты в озёрных экосистемах, поэтому изучение видового разнообразия грибов, прежде всего ассоциированных с их основным субстратом — живыми и отмершими растениями в озёрах, а также выяснение путей и закономерностей формирования их комплексов в зависимости от экологических факторов, несомненно, являются актуальными.

Выяснение хотя бы некоторых аспектов этой проблемы способствует расширению списка гидробионтов, пополнению сведений о составе и структуре экосистем, познанию роли грибов в поддержании их гомеостаза.

Цель работы — установление видового разнообразия и структуры ми-кобиоты растительных субстратов в малых озёрах тундровой и лесной зон Восточной Европы.

При этом выполнялись конкретные задачи:

1. Установление общих закономерностей формирования состава и структуры микобиоты малых озёр.

2. Определение количественного и качественного состава пропагул грибов в воде разнотипных озёр тундровой и лесной зон.

3. Выяснение видового разнообразия и структуры комплексов грибов филлопланы гидрофитов в зависимости от экологических факторов.

4. Установление качественного состава и структуры пионерных комплексов грибов на отмерших макрофитах и погруженном опаде в разнотипных озёрах тундровой и лесной зон.

5. Выявление сезонного распространения грибов и основных этапов сук-цессий их комплексов на погруженных растительных субстратах в разнотипных озёрах тундры и южной тайги.

Экологические исследования базировались на принципе системности как общем методологическом направлении. Система (в данном случае экосистема озера) понимается как «совокупность элементов, находящихся в определённых отношениях друг с другом и со средой» (Берталанфи, 1973), система - открытая, находящаяся в состоянии динамического равновесия.

Система представляет собой целостность, в которой все элементы настолько тесно связаны друг с другом, что выступают по отношению к окружающей среде и другим системам как нечто единое. Под элементом обычно понимают минимальный компонент системы или «минимальную единицу, способную к относительно самостоятельному осуществлению определённой функции» (Блауберг и др., 1969).

Микобиоту можно считать элементом озёрной экосистемы, но приемлемо и её рассмотрение как системы более высокого порядка (подсистемы экосистемы озера), элементами в таком случае являются микопланктон, микобен-тос, комплексы грибов на растительных субстратах и т. д. В любом случае элементы служат сохранению и поддержанию в целостности более высокоорганизованной экосистемы озера. Чем более богата видовыми и функциональными компонентами экосистема, тем она устойчивее, т. е. устойчивость экосистемы пропорциональна её сложности. При элиминировании микобио-ты или какой-либо из её частей, особенно в результате антропогенного воздействия (хотя негативное влияние на микобиоту может оказывать и повышенная минерализация, значительное повышение или снижение уровня рН естественного характера), практически происходит ликвидация одного из элементов системы. Параллельно с этим может наблюдаться и исчезновение других элементов, что делает систему менее устойчивой, трансформирует её вплоть до лишения способности к восстановлению и поддержанию го-меостаза.

Наши знания о микобиоте стоячих континентальных гидроэкосистем настолько малы, что в различных теоретических и модельных представлениях о таких экосистемах микологический компонент не рассматривается, а это делает предлагаемые концепции далеко не полными, с упущением одного из важных элементов данных систем.

В большинстве учебников по экологии в качестве наиболее удобного из-за простоты примера для объяснения структуры и функционирования экосистемы приводится озеро, но при этом микобиота обычно даже не упоминается.

Таким образом, рассматриваемая тема является актуальной не только для микологии, но и для общей экологии.

Наше исследование микобиоты малых озёр направлено на максимально возможное выявление её видового состава и структуры в разнотипных озёрах тундровой и лесной зон на разнотипных растительных субстратах. Мы исходим из гипотезы о зависимости микологических показателей от географического положения, трофического статуса озера и особенностей субстрата.

Природа взаимоотношений между видами и средой их обитания (типом озера, минерализацией, субстратом и т. д.), а также структура многовидовых группировок (комплексов) грибов рассматривались с позиций изучения экологии сообществ как особого уровня организации живого, т. е. в одной пространственно-временной точке (Бигон и др., 1989).

Нами были использованы различные методы исследования: маршрутные и стационарные натурные наблюдения, методы накопительной культуры в воде и «влажной камеры», глубинного посева на агаризованные питательные среды, мезо- и микроскопирование субстратов и приготовление для определения временных препаратов, выделение грибов в чистую культуру с последующей идентификацией, а также экспериментальные методы для выяснения влияния уровня рН и гумификации воды на рост и спорогенез грибов.

Результаты основаны на обработке материала и анализе данных, полученных за 14 лет при обследовании более 60 малых озёр тундровой и лесной зон. Важно, что сбор данных по численности и видовому составу пропагул грибов в воде и на поверхности листьев плейстофитов, по частоте встречаемости и плотности грибов в пионерных комплексах отмерших макрофитов и погруженного листового опада и хвои проводился в разных регионах в максимально сопоставимые сроки; методы количественного учёта и видовой идентификации грибов были практически неизменными. При обработке данных применялся стандартный статический анализ; идентификация грибов проводилась с помощью различных современных источников. Для анализа и обоснования полученных результатов были использованы все доступные, опубликованные в мировой литературе, сведения.

Работа выполнена в лаборатории биологии низших организмов и лаборатории высшей водной растительности Института биологии внутренних вод им. И.Д. Папанина РАН и на кафедре ботаники Ярославского государственного педагогического университета им. К.Д. Ушинского.

Научная новизна

Работа не имеет аналогов, так как целенаправленные исследования мико-биоты растительных субстратов в ряду разнотипных озёр не проводились. Она является вкладом в изучение проблем биоразнообразия, в понимание экологической роли грибов и знание факторов, определяющих их нишу в экосистемах пресноводных стоячих водоёмов.

Получены дополнительные результаты, свидетельствующие о формировании микобиоты озёр по общим закономерностям, присущим и другим биотическим компонентам экосистем. Установлено, что принципы формирования микобиоты и распространения грибов в разных экологических нишах едины, но количественное и качественное наполнение той или иной ниши определяется целым комплексом факторов среды.

Выявлены два главных комплексных градиента, вдоль которых в максимальной степени изменяются параметры микобиоты малых озёр: широтно-зональный и трофического статуса водоёмов. Показано, что географический тренд для таких показателей, как уровень заспоренности воды, соотношение численности мицелиальных грибов и дрожжей, видовое разнообразие грибов существует только в рядах одноуровневых по трофическому статусу озёр.

Использование индекса значимости грибов открывает путь к количественной оценке роли конкретных видов в комплексах грибов на определённых растительных субстратах.

Выявлена зависимость комплексов грибов на растительных субстратах в малых озёрах от различных гидрохимических параметров озера. Установлено снижение видового разнообразия и увеличение показателя доминирования грибов при ацидификации водоёмов.

Установлено, что различия микобиоты разнотипных озёр выражены меньше, если озера расположены в пределах слаборасчленённого ландшафта, нежели в расчленённом ландшафте.

Выявлены различные аспекты антропогенного воздействия на микоби-оту озёр. Определено изменение микобиоты при эвтрофировании, до определённого уровня аналогичное происходящему при естественном эвтрофировании. Показано негативное влияние антропогенного прессинга на аборигенные виды микобиоты и элиминирование даже убиквитных видов при гипертрофии.

Предложена схема сукцессионных изменений комплексов грибов на отмерших растительных субстратах в малых озёрах тундры и южной тайги.

Практическая значимость работы

Применяемый анализ комплексов грибов на отмерших растительных субстратах может быть использован для оценки состояния экосистем озёр и предложен для их мониторинга.

Результаты работы используются в курсе лекций по дисциплинам «Ботаника», «Экология» и спецкурсе «Экология грибов».

Сборы послужили началу создания гербария микромицетов в Гербарии кафедры ботаники Ярославского государственного педагогического университета им. К. Д. Ушинского.

Основные защищаемые положения

Микобиота малых озер формируется по общим закономерностям, присущим и другим биотическим компонентам экосистем. Выделяются два главных комплексных градиента, вдоль которых в максимальной степени изменяются параметры микобиоты малых озер: широтно-зональный и трофического статуса водоемов. Выявление географического тренда для таких показателей, как уровень заспоренности воды, соотношение численности мицелиальных грибов и дрожжей, видовое разнообразие, возможно только в рядах одноуровневых по трофическому статусу озер.

Грибы-эккрисотрофы колонизуют листья плейстофитов с самого момента их появления, формируя к завершению периода роста листьев динамично-равновесные комплексы. Видовое разнообразие и структура этих комплексов зависят прежде всего от прижизненных выделений субстрата, а экологические условия влияют на концентрацию доминирования.

При формировании комплексов грибов на отмерших растительных субстратах ведущим становится фактор трофического статуса озера. По роли водных гифомицетов в комплексах грибов выделяются ряды субстратов, укорачивающиеся параллельно повышению трофического статуса озера.

На отмерших растительных субстратах происходит гетеротрофная сукцессия комплексов грибов. Географическая широта в наибольшей степени определяет скорость сукцессии, а трофический статус озера и тип субстрата — состав и структуру меняющихся комплексов.

Антропогенное загрязнение малых озер приводит к перестройке комплексов грибов вплоть до элиминации аборигенных обитателей и доминирования терригенных. Наиболее чувствительны к загрязнению водные гифомицеты. При антропогенной гипертрофии озер ингибируется вся микобиота.

Апробация работы

Основные положения работы были представлены и докладывались на Всесоюзном совещании «Антропогенные изменения экосистем малых озёр причины, последствия, возможность управления)» (Ленинград, 1990); Международной экологической конференции «Методы исследования и использования гидроэкосистем» (Юрмала, Латвия, 1991); совещании «Индикация состояния среды Крайнего Севера» (Воркута, 1992); I Международной конференции «Город в Заполярье» (Воркута, 1994); Национальной конференции «Сохранение биоразнообразия в Украине» (Канев, Украина, 1997); Международной конференции, посвященной 80-летию кафедры микологии и альгологии МГУ и 90-летию со дня рождения М.В. Горленко (Москва, 1998); на отчетных сессиях ИБВВ РАН (1987—1994); Первом съезде микологов России (Москва, 2002); Всероссийской научно-практической конференции «Физиология растений и экология на рубеже веков» (Ярославль, 2003).

Заключение диссертации по теме «Микология», Воронин, Леонид Владимирович

выводы

1. В малых озерах тундровой и лесной зон выявлено 138 таксонов грибов в ранге вида и разновидности в воде и донных отложениях, 112 — в филлоплане плейстофитов и 191 — на погруженных в воду отмерших растительных субстратах. Микобиота складывается из представителей разнообразных эколого-систематических групп, имеющих специфические особенности биологии и функционирования в экосистемах озер.

2. Прослеживаются тенденции изменения микобиоты озер с широтой местности. Установлено увеличение КОЕ наземных грибов в воде по линии тундра — тайга — смешанные леса с изменением соотношения мицелиаль-ные грибы/дрожжи от 0.01—1.0 в тундровых озерах до 1.2—4.8 в зоне смешанных лесов. Формирование микобиоты малых озер во многом определяется ландшафтом и водосбором, поэтому ее широтные изменения в значительной степени отражают зональные особенности почвенной и фитофильной микобиоты.

3. В направлении тундра — смешанные леса установлено уменьшение видового разнообразия водных гифомицетов (от 23 в тундре до 13 в южной тайге и 3 — в смешанных лесах) и возрастание степени заселения ими субстратов вегетативным путем вместо конидиального. В этом же направлении увеличивается и количество видов наземных грибов, способных расти на погруженных растительных субстратах (21 — 42 — 66).

4. При ацидификации озер наблюдается сохранение численности КОЕ грибов, либо даже ее увеличение, но при этом снижаются значения индекса видового разнообразия Шеннона и возрастание показателя доминирования Симпсона.

5. Установлено, что на вновь появляющихся субстратах происходит концентрация (скопление) грибов. Так, листья Nuphar lutea, будучи еще в неразвернутом состоянии под водой, заселяются эккрисотрофами. Сначала это случайные виды с пятнистым распределением, затем распределение становится более или менее равномерным, а видовой состав стабилизируется. Он довольно однообразен в разнотипных озерах, расположенных в пределах единого ландшафтного комплекса, что свидетельствует о ведущем значении субстрата (прижизненных выделений) в формировании комплексов эккри-сотрофов.

6. Показано, что при формировании комплексов грибов на отмерших растительных субстратах ведущим становится фактор трофического статуса озера. Для водных гифомицетов установлен ряд их распространения по уменьшению частоты встречаемости и интенсивности конидиогенеза на различных субстратах: листовой опад—хвоя сосны—листья сабельника—листья плей-стофитов. Данный ряд сокращается вплоть до полного исчезновения с повышением трофического статуса озер.

7. На отмерших макрофитах и погруженном опаде происходит гетеротрофная сукцессия комплексов грибов. Продолжительность сукцессии в тундровых озерах значительно больше, чем в озерах умеренной зоны. В лесной зоне замедляются сукцессии в экстремальных ацидных озерах. Кроме того, сукцессия в озере идет медленнее, чем в реке. Установлен основной сукцес-сионный ряд грибов: эккрисотрофы — водные гифомицеты — водные аско-мицеты — различные (терригенные или амфибийные) дейтеромицеты.

8. Установлено, что при антропогенном эвтрофировании и загрязнении озер промышленными и бытовыми стоками происходит существенная перестройка структуры и видового состава микобиоты воды и растительных субстратов: происходит снижение видового разнообразия водных грибов и замена их наземными до элиминирования грибов при гипертрофии озер.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Анализ данных, полученных при исследовании микобиоты более 60 озёр тундры и лесной зоны, позволил пополнить знания о видовом разнообразии и обобщить данные о структуре микобиоты этих водоёмов. Здесь излагаются преимущественно результаты, связанные с изучением грибов, ассоциированных с живыми и мёртвыми растительными субстратами.

Микобиота малых озёр формируется по общим закономерностям, присущим и другим биотическим компонентам экосистем. Грибы распространены во всех биотопах озёр, где их состав, численность и функции могут существенно различаться.

Микобиота озёр включает многочисленные виды разнообразных эколого-систематических групп. Всего выявлено 138 таксонов грибов в ранге вида и разновидности в воде и донных отложениях озер, 112 — в филлоплане плей-стофитов и 191 —на погруженных отмерших растительных субстратах.

Во-первых, это истинно-водные грибы (хитридиомицеты) и грибоподоб-ные организмы (оомицеты). Они являются постоянными обитателями водоёмов, весь жизненный цикл которых протекает в водной среде. Хитридиомицеты широко распространены в стоячих водах. Многие из них паразитируют на организмах фито- и зоопланктона. Сапротрофные грибы развиваются также, прежде всего, в планктоне на отмерших водорослях и беспозвоночных. Из растительных субстратов (высшие растения) они предпочитают пыльцу, и очень редко сообщалось об их развитии на отмерших макрофитах или находящемся в воде листовом опаде (Голубева, 1995). Нами ни на листьях живых, ни на листьях отмерших макрофитов и листовом опаде хитридимицеты не обнаруживались, за исключением Monoblepharis sp.

Оомицеты связаны с разлагающимися растительными остатками в большей степени. Они развиваются на плавающих субстратах, т.о. входят в состав нейстона и плейстона, а также на донных субстратах, являясь бентосными организмами, кроме того, в немалой степени представлены в перифитоне.

Нами установлено, что оомицеты, главным образом Сапролегниевые, реже Питиевые и Бластокладиевые, колонизуют листовой опад и фрагменты гидрофитов, но редко являются доминирующими организмами. Колонизация субстратов оомицетами зависит от температуры воды (она возрастает при температуре ниже 10°С) и трофического статуса озера (уровень заселения выше при эвтрофировании, однако в гипертрофных водоёмах оомицеты элиминируются). Они могут развиваться на субстратах осенью, в подлёдный период, и сохраняются до весенне-летнего прогревания воды. В основном оомицеты являются бентосными организмами, но, как показывают результаты анализа воды, их зооспоры и ооспоры становятся составной частью планктона.

Вторая группа микобиоты озёр — это вторично-водные грибы, главным образом, водные гифомицеты. Они заселяют листовой опад и отмершие плавающие и погруженные части макрофитов, т.е. являются населением бентоса и нейстона. Весь жизненный цикл водных гифомицетов происходит в воде, их конидии, адаптированные к пребыванию и распространению в толще воды, входят в состав планктона и отчасти — нейстона. Распространение и обилие этих грибов зависит от температуры, при +22°С и выше их развитие резко прекращается. Но наиболее ярко проявляется зависимость распространения водных гифомицетов от трофического статуса озера. Максимум их отличался нами в дистрофных, ультра- и олиготрофных, резкое снижение наблюдалось в мезотрофных и полное исчезновение — в гипертрофных озёрах. Помимо общего распространения водных гифомицетов в ряду серии озёр от олиго- до гипертрофных параллельно нами установлена зависимость их встречаемости и активности спорообразования от качества субстрата. При возрастании уровня трофности сначала исчезают водные гифомицеты на так называемых мягкотканных гидрофитах (кубышка, кувшинка), затем на сильно ку-тинизированных субстратах (хвоя), далее на таких прибрежно-водных макрофитах, как тростник и т.д., и, наконец, дольше всего при эвтрофировании они сохраняются на листовом опаде (ольха, берёза, осина, ива).

В эту же группу, возможно, следует включить преимущественно бентос-ные водные аскомицеты, однако их биология и жизненные циклы изучены крайне недостаточно и, вероятнее всего, хотя бы часть из них следует отнести к третьей группе.

Это воздушно-водные, или амфибийные, грибы, главным образом, воздушно-водные гифомицеты. Они развиваются на листовом опаде и отмерших гидрофитах в водной среде, однако, образование спор происходит только при обнажении части субстрата, т.е. в воздушной среде. Следовательно, в норме воздушно-водные гифомицеты проходят жизненный цикл только на мелководье, в прибрежье озёр и временных водоёмах. Эти грибы уже не являются истинно водными. Их геликоидные и сложно-шаровидные конидии адаптированы к передвижению даже в очень тонком слое воды, какой, например, наблюдается в лесной подстилке, поэтому часть жизненного цикла воздушно-водных гифомицетов может протекать у них вне водоёма.

Вероятно, приуроченность к двум средам свойственна и для так называемых водных аскомицетов, рост которых может происходить на субстратах в водной среде, а для образования аскокарпов у ряда видов нужна воздушная среда.

Так или иначе, грибы указанных трёх эколого-систематических групп тесно связаны с водной средой обитания, конкретно в нашем случае — малыми озерами.

Отдельную группу составляют так называемые наземные, или терриген-ные, дейтеромицеты и аскомицеты, в большей степени грибы различного систематического положения и биологии. Они попадают в озёра разными путями. Часть из них в виде спор, фрагментов мицелия приносится воздухом и со стоком вместе с частицами почвы, элементами подстилки и т.д. Эти диаспоры составляют значительную часть микобиоты малых озёр: чем меньше озеро, тем больше их численность в единице объёма воды. Гидрофобные споры довольно долго могут оставаться компонентами нейстона, многие диаспоры находятся в пелагиали, и некоторые способны прорастать в воде; наболее усточивые к существованию в водной среде пропагулы сохраняют жизнеспособность и после оседания и перехода в состав бентоса проявляют спорадическую активность, находясь в данных отложениях. Постоянно обнаруживаются наземные грибы на подводных частях воздушно-водных растений (тростник, рогоз, камыш и т.д.), т.е. в перифитоне. Большое количество разнообразных диаспор, имеющихся в воде озёр, концентрируется на отмерших макрофитах, но только небольшое их число способно прорастать на данных субстратах. Более того, во многих случаях прорастающие диаспоры дают начало лишь неспорулирующему мицелию, и только некоторые терригенные микромицеты способны к конидиогинезу в водной среде (некоторые виды родов Fusarium, Phialophlora, Acremonium и др.), являясь, таким образом, наиболее эврибионтными организмами по отношению к водному фактору.

Кроме указанного выше существует ещё один путь поступления наземных грибов в воду. На листьях всех деревьев, кустарников развиваются грибы филлопланы (чаще всего также дейтеромицеты, реже аскомицеты). Они и попадают в водоём вместе с опадом. Аналогично происходит поступление грибов и при погружении в воду из воздушной среды отмерших частей при-брежно-водных растений.

Развитие этих грибов продолжается на субстратах в водной среде, пока температура воды достаточно высока, но чаще всего только в форме вегетативного мицелия. Однако и в этих случаях неоднократно обнаруживаются дейтеромицеты, способные к конидиогинезу в воде (представители тех же, указанных выше, родов).

В целом роль грибов-мигрантов в озерах исследована крайне недостаточно. Их нахождение в воде хотя и отмечается постоянно, но нередко оно случайно и вовсе необязательно для прохождения жизненного цикла. Вероятнее всего, у многих из них весь жизненный цикл и не может протекать в воде. Наши многолетние наблюдения, однако, приводят к убеждению, что роль этих грибов в озерах, особенно малых, явно недооценивается, хотя М. Дик еще в 1971 году указывал на существование активных интродуцентов в экосистемах стоячих водоемов (Dick, 1971). Доля и значимость терригенных грибов возрастает при эвтрофировании озер, когда для аборигенных обитателей возрастает количество лимитирующих факторов, и их экологические ниши занимают интродуценты. Полное элиминирование настоящих водных грибов и замещение их терригенными наблюдается при гипертрофии.

Таким образом, микобиота складывается из представителей разнообразных эколого-систематических групп, имеющих специфические особенности биологии и функционирования в экосистемах озер. Численность и роль тех или иных грибов — очень вариабельные показатели. Исследуемая нами структура микобиоты малых озер формируется в зависимости от ряда факторов. Рассмотрим основные из них, влияние которых на структуру микобиоты выявлено.

Прослеживаются тенденции изменения микобиоты с широтой местности. Так, установлено увеличение общего уровня заспоренности воды диаспорами наземных грибов по линии тундра — тайга — смешанные леса в вегетационный период. При этом меняется соотношение мицелиальные грибы / дрожжи от 0.01-1.0 в тундровых озерах до 1.2-4.8 в зоне смешанных лесов. Следует отметить, что сравнение микобиоты в зональном аспекте правомерно производить только в ряду однотипных по трофическому статусу озер.

Формирование микобиоты малых озер во многом определяется водосбором, поэтому можно сказать, что широтные изменения ее в значительной степени являются отражением зональных особенностей почвенной и фито-фильной микобиоты.

Эколого-таксономический анализ микобиоты в широтном направлении показывает, что убиквиты (космополиты) есть везде. В то же время существует ряд видов грибов, прежде всего, сумчатых, специфичных для конкретных растительных субстратов, поэтому их разнообразие определяется наличием данных субстратов. Распространение растений носит ярко выраженную зависимость от географической широты. И хотя для водной растительности не характерна столь явная зональность, как для наземной, она все же имеется. Например, в озерах тундры встречаются далеко не все гидрофиты, известные в лесной зоне. Вдобавок и видовое разнообразие наземных грибов, способных включиться в функционирование экосистем озер, возрастает в направлении тундра — тайга — смешанные леса. Так, количество видов последних на отмерших макрофитах следующее: в озерах тундры — 21, Карелии — 36, Вологодской области — 42, Эстонии — 66.

В направлении тундра — смешанные леса наблюдается уменьшение количества видов водных гифомицетов: если в озерах окрестностей Воркуты выявлено 23 вида, Вологодской обл. — 13, то в озерах Эстонии только 3 вида. Во многом мы связываем это с температурным режимом, т.к. при повышении температуры воды возрастает конкуренция за субстрат водных гифомицетов с наземными микромицетами и бактериями. Параллельно снижению видового разнообразия водных гифомицетов происходит и преобладание заселения ими субстратов вегетативным путем над конидиальным.

В широтном градиенте изменяется и структура комплексов грибов на отмерших растительных остатках, она связана с указанными выше тенденциями распространения грибов.

Были предприняты попытки выяснить влияние различных гидрохимических параметров на микобиоту малых озер. Наиболее подробно исследована зависимость микобиоты от уровня рН воды.

При ацидификации озер наблюдается сохранение численности диаспор, либо даже повышение ее по сравнению с нейтральноводными озерами. Подобное явление наиболее отчетливо проявляется в озерах Дарвинского заповедника, расположенных в заболоченном ландшафте. Корреляционный анализ позволил выявить некоторые терригенные ацидотолерантные грибы, однако, в целом при ацидификации видовое разнообразие грибов снижается. Особенно явно это проявляется в структуре комплексов грибов на живых и мертвых растительных субстратах. При снижении уровня рН происходит уменьшение значения индекса видового разнообразия Шеннона и увеличение показателя доминирования Симпсона. Более того, в ацидных условиях преобладает мицелиальная форма существования аборигенных обитателей, — водных гифомицетов, при низком уровне конидиогенеза, что свидетельствует об их низкой активности (Suberkropp, 1991).

Достоверной зависимости численности и таксономического состава пропагул грибов в воде от концентрации ионов Са++ не обнаруживается. Это понятно, т.к. абсолютное большинство пропагул, выявляемых «чашечным методом», — терригенные, многие из них можно отнести к транзитным микроорганизмам, не проявляющим активности. Однако, некоторые терригенные микромицеты способны не только сохранять жизнеспособность, но и развиваться в илах озер. Это подтверждается высокими коэффициентами корреляции их распространения и содержания растворенного органического вещества в илах. Данные природных наблюдений и экспериментов позволяют сделать предположение о пригодности гуминовых и фульвокислот для развития микромицетов в илах, более того, эти кислоты стимулируют интенсивность роста и конидиогенез аборигенных обитателей озер — водных гифомицетов.

Из других гидрохимических показателей, существенно влияющих на ми-кобиоту озер, следует отметить высокий уровень минерализации воды. В ал-калитрофных и галотрофных озерах отмечается минимальный случайный набор диаспор в воде; очень незначительна, вплоть до отсутствия, колонизация растительных субстратов. Возможно, причиной тому служит не только общая высокая концентрация минеральных веществ, но и их состав, аналогичный во многом таковому в морской воде, а также неизбежное следствие — щелочная реакция среды.

Зависимости численности и таксономического состава грибов в воде от трофического статуса озер не выявлено.

Итак, анализ микобиоты воды (в том числе по F-критерию Фишера) чаще позволяет говорить лишь о некоторых тенденциях зависимости численности и видового состава грибов от различных гидрохимических и трофических параметров. Преобладающее значение приобретает характер водосбора и ландшафта. Микобиота воды и илов, выявляемая применявшимся методом, преимущественно терригенного характера, поэтому большое значение имеет водосбор. Установлено, что различия микобиоты воды разнотипных озер выражены меньше, если озера расположены в пределах слаборасчлененно-го (единообразного) ландшафтного комплекса (например, озера Дарвинского заповедника). Различия микобиоты воды в озерах более расчлененного ландшафта (например, озера Верхне-Судского района) проявляются в большей степени.

Диаспоры грибов распределены в воде дисперсно, наблюдается их повышенное содержание в придонном и прибрежных участках, т.е. там, где вблизи находятся активно функционирующие грибы. Концентрация, или скопление, грибов происходит на появляющихся субстратах. Так, листья Nuphar lutea заселяются грибами-эккрисотрофами с момента их появления под водой, еще в неразвернутом состоянии. Сначала это случайные виды, имеющие пятнистое распределение, затем распределение становится более или менее равномерным, а видовой состав стабилизируется. Таким образом, процесс формирования группировок грибов соответствует общеэкологическому понятию о первичной сукцессии.

Сложившиеся группировки грибов на растительных субстратах мы называем комплексами, а не микоценозами, или сообществами грибов (fungal community). В некотором отношении это согласуется с предложенным Д.Г. 3-вягинцевым (1987) понятием «комплекс» взамен понятия «микробоценоз» для почвенных микроорганизмов. Действительно, понятие «комплекс» более нейтральное и не предполагает обязательного взаимодействия отдельных элементов. Более того, мы считаем, что не следует использовать сложные слова со вторым корнем «ценоз» для компонентов биоценоза. Тем не менее комплексы грибов можно считать элементом микроценозов (например, на листьях) или биоценозов озер в целом.

Наиболее подробно и широко нами были исследованы комплексы грибов на отмерших растительных субстратах. Рассмотрим основные выявленные закономерности, основываясь на принятом в общей экологии положении об исследовании организации сообщества на уровне отдельных составляющих.

Комплексы грибов на различных растительных субстратах в разнотипных озерах имеют свои особенности, выражающиеся в видовом составе и доле (индексе значимости) каждого таксона. Для входящих в состав комплексов видов выявлены различные экологические ниши. Для одних характерна широкая ниша, когда вид может развиваться в широком диапазоне абиотических условий (в разнотипных озерах), на большом разнообразии субстратов и даже на значительном по времени этапе сукцессии. Ярким примером может служить Varicosporium elodeae. Для других видов характерна узкая экологическая ниша, когда вид может развиваться либо в озерах определенного типа, либо на определенном типе субстрата и т.д. (например, виды родов Gnomonia и Gnomoniella на растениях семейства Rosaceae; Dinemasporium strigosum — на Phragmites australis в олиготрофных озерах).

Роль субстрата специально исследовалась нами в лесном озере около деревни Чаяново (Брейтовский район Ярославской обл.), где в его зарастающей части сформировалась ассоциация Carex elongata + С. pseudocyperus + С. vesicaria + С. friesii (приблизительно в равных соотношениях), между кочками осок—прошлогодний листовой опад. Выявлена следующая картина: на погруженных отмерших листьях С. elongata и С. pseudocyperus встречался только Anguillospora longissima (40 и 20% соответственно); на С. vesicaria—тот же водный гифомицет (20%) и аскомицет Gaeumannomyces caricis (10%); на листьях С. friesii водные гифомицеты не были обнаружены, a G. caricis и Stagonospora sp. заселяли 40% листьев. Из полученных данных видно, что даже близкородственные виды растений, находящиеся совместно в одинаковых условиях, различаются как субстраты для грибов.

Для аборигенных обитателей озерных биоценозов, водных гифомицетов, установлен ряд их распространения по уменьшению частоты встречаемости и интенсивности конидиогенеза на различных субстратах. Он для озер Карелии следующий: листовой опад (ольха, береза, осина, ива) — хвоя сосны — листья сабельника — листья плейстофитов (кубышка, кувшинка). Причину выбора субстрата водными гифомицетами мы видим в лигноцеллюлозной основе растений.

Листовой опад и хвоя содержат больше фенольных соединений, чем травянистые растения. Более того, молекула лигнина травянистых растений отличается от молекулы лигнина древесных пород и характеризуется пониженным содержанием метоксилов (Частухин, Николаевская, 1969). Особенно мало полифенольных соединений в листьях исследованных плейстофитов, поэтому в их утилизации с большим успехом могут принимать участие бактерии.

Водные гифомицеты обладают высокой пероксидазной активностью. В результате пероксидазного окисления фенолов образуются токсичные соединения (свободные радикалы), которые лимитируют развитие бактерий и других грибов. Затем происходит пероксидазная детоксикация соединений, и они включаются в метаболизм, являясь пищей для грибов. Токсичные выделения могут выполнять защитную для гифомицетов функцию, обеспечивать «успех» в потреблении субстрата. Большое количество окисленных нетоксичных соединений может быть источником питания не только для водных гифомицетов, но и «сахарных» грибов и бактерий.

Сама по себе специфика субстрата не может рассматриваться без учета условий внешней среды. Очень большое значение, в том числе и для колонизации разных субстратов, имеет трофический статус озера. Так, приведенный выше ряд субстратов, колонизуемых водными гифомицетами, непосредственно связан с трофическим рядом озер. Весь приведенный ряд субстратов, заселенных водными гифомицетами, прослеживается только в олиготрофных озерах. Он сокращается с увеличением степени эвтрофирова-ния: в олиго-мезотрофных озерах водные гифомицеты уже не заселяют кубышку, а в эвтрофных они сохраняются только на листовом опаде.

Исходя из этого, причину предпочтения грибами субстрата следует видеть не только в различиях химического состава растений. В эвтрофных водоемах ингибирующее действие на рост грибов оказывают токсичные выделения массово развивающихся там водорослей (особенно при отмирании последних), но активно функционируют выдерживающие их бактерии. Обилие водных гифомицетов в ацидных озерах связано, по-видимому, с ингибирующим действием низких значений рН на бактерии, тогда как оптимум пероксидазной активности грибов наблюдается в кислой среде.

Степень воздействия внешней среды на формирование комплексов грибов по-разному проявляется на живых и отмерших субстратах. Так, комплексы грибов-эккрисотрофов на листьях Nuphar lutea довольно однообразны в разнотипных озерах (светловодных и полигумозных; ацидных и нейтральных; олиготрофных, эвтрофных и дистрофных), расположенных в пределах единого ландшафтного природного комплекса. Следовательно, определяющую роль в формировании комплексов грибов филлопланы играет субстрат, более всего — состав прижизненных выделений, являющихся однотипной во всех озерах пищей грибов и, по-видимому, создающих в тонком пространстве около листьев особые микроэкологические условия. Некоторые особенности состава и структуры комплексов грибов в этом случае, связанные с трофическим статусом озера и уровнем рН, отражаются, в основном, на степени концентрации доминирования.

Фактор трофического статуса озера при формировании комплексов грибов на отмерших растительных субстратах становится ведущим. Если на живых листьях Nuphar lutea, как указывалось выше, формируются однообразные комплексы грибов в разнотипных озерах, то на отмерших листьях того же вида комплексы грибов, например, в олиготрофных и эвтрофных озерах существенно различаются.

При отмирании листьев происходит значительное изменение качества субстрата. Параллельно меняется структура и состав комплексов грибов. Данный процес по сути аналогичен вторичной сукцессии биоценоза.

Смена одних комплексов грибов на другие происходит не только на отмерших гидрофитах, но и на погруженном листовом опаде. На листьях и хвое к моменту их опада также имеются комплексы грибов-эккрисотрофов. При погружении опада в воду причиной смены комплексов грибов является уже не только качественное изменение субстрата, но и перемена среды обитания.

В работе подробно описано изменение комплексов грибов при отмирании листьев кубышки и формирование пионерных комплексов грибов-деструкторов. В олиготрофных озерах ведущее положение занимают водные гифомицеты. Чем выше трофический статус озер, тем меньше доля водных гифомицетов, место которых занимают терригенные микромицеты.

Различия комплексов грибов наблюдаются на разнотипных мертвых субстратах в пределах одного озера, что связано с указанными выше химическими особенностями субстратов. Но фактор трофического статуса озера для заселения грибами мертвого субстрата становится ведущим. Так, если в олиготрофных и дистрофных озерах водные гифомицеты встречаются на разнообразных растительных субстратах, то в гипертрофных они не встречаются даже на самом благоприятном субстрате—листовом опаде. Данное положение может быть использовано для оценки экологического состояния озер, особенно в пределах единого ландшафтного комплекса.

Формирование комплексов грибов-деструкторов происходит за счет разных источников. Во-первых, это грибы филлопланы, часть которых на первых этапах деструкции, особенно при благоприятных температурах, может входить в состав комплексов деструкторов. Во-вторых, это пул диаспор грибов терригенного происхождения. Часть из них, особенно вымываемые из донных отложений, может колонизовать погруженный субстрат. Доля терри-генных грибов в комплексах деструкторов возрастает пропорционально степени эвтрофирования. И, наконец, это колонизация субстрата аборигенными обитателями, прежде всего, водными гифомицетами конидиальным или вегетативным путем.

Структура комплексов грибов, таким образом, зависит от типа субстрата, но на нее факторы внешней среды (трофический статус) оказывают такое сильное влияние, что становятся ведущими.

Элементарной единицей экосистемы озера является отдельный лист плей-стофита с комплексом грибов. Это своего рода микроценоз, в который наряду с грибами входят бактерии и простейшие. Он существует по принципу динамического равновесия аналогично биоценозу острова. Грибы можно рассматривать как консорты, связанные трофически и топически с плейсто-фитом.

Погруженный листовой опад в озерах состоит не из дискретных единиц, как в водотоках, а образует скопления подобные лесной подстилке. Элементарной экологической единицей микобиоты в этом случае является не отдельный лист, как для плейстофитов, а в зависимости от количества субстрата, размеров озера и особенностей его котловины — сплошной придонный слой опада или его локальные скопления. При благоприятных условиях на погруженном опаде формируются полидоминантные комплексы деструкторов, обязательно включающие аборигенных обитателей. В экстремальных условиях значительные ацидификации или минерализация, гипертрофический статус озера) происходит уменьшение видового разнообразия в пионерных комплексах грибов и снижение доминантов до 1—2. В крайних случаях эти доминанты и являются вообще грибами, заселяющими субстраты. Часто данные грибы — не истинно водные или амфибийные, а терригенные. Их видовой состав не является идентичным в разных экстремальных условиях. Здесь «срабатывает» принцип дублирования, основанный на специфике лимитирующих факторов, дающих возможность функционировать тому или иному микромицету, пул которых в озере существенно зависит от поступления терригенных диаспор с водосбора. Но функционально эти грибы мы считаем равнозначными.

Начиная с момента функционирования пионерных комплексов грибов изменяются абиотические (температура и т.д.) и биотические (химический состав субстрата, новые колонизаторы, изменение соотношения с другими организмами и т.д.) факторы среды. Таким образом, экологические ниши изменяются во времени. Экологическая шкала времени (Джиллер, 1988) зависит от географической широты и типа озера.

На отмерших макрофитах и погруженном опаде происходит гетеротрофная сукцессия комплексов грибов, т.е. вначале количество энергии максимально и с разной скоростью уменьшается. Имеется ряд переходных стадий понижающегося энергетического градиента. Стационарного состояния при гетеротрофной сукцессии достичь невозможно. Такая система резко отличается от автотрофных сукцессий, в которых поток энергии продолжается неопределенно долго. Гетеротрофная система в конечном счете прекращает свое существование.

Продолжительность сукцессии в тундровых озерах значительно дольше, чем в озерах умеренной зоны, т.к. малые озера высоких широт на длительный срок промерзают до дна, и тем самым функционирование деструкторов приостанавливается. Здесь наблюдается своего рода цикличность, т.к. после оттаивания озер на погруженных осенью растительных субстратах продолжают развитие комплексы грибов того же таксономического состава, что и осенью. Такая же «задержка» наблюдается и в экстремальных ацидных озерах лесной зоны.

Следует отметить, что длительность гетеротрофной сукцессии различается в зависимости от субстрата: если в лесной зоне листья плейстофитов (кубышки) расчленяются на мельчайшие частицы той же осенью, то листовой опад и хвоя сохраняют свою форму и следующей весной.

Кроме того, замедление сукцессий в озерах связано с отсутствием течения, что показано нами при изучении комплексов грибов на отмерших листьях N. lutea в русле малой реки Латки и ее старице.

В общих чертах сукцессионный ряд грибов выглядит следующим образом: обитатели филлопланы—водные гифомицеты — водные аскомицеты — различные (чаще терригенные или амфибийные) дейтеромицеты. Такой ряд выявляется далеко не всегда, т.к. большое количество озер подвержены эвт-рофированию, когда аборигенные обитатели занимают очень незначительное место, заменяясь с начальных этапов наземными грибами. Кроме того, существуют и терригенные грибы, диаспоры которых способны при разных условиях заселять погруженные растительные субстраты. Они могут подключаться к процессу деструкции на разных этапах.

Происходящая в ходе сукцессии смена видового состава связана с изменением качества субстрата и окружающей среды (прежде всего температуры). Разные виды редуцентов появляются и исчезают поочередно, по мере истощения в ходе разложения органических веществ одних ресурсов и появления других веществ. Одновременно изменения в физическом состоянии субстрата и окружающей среде делают его благоприятным сначала для одних видов, затем для других. Данные положения применимы к смене грибов-эккрисот-рофов грибами мертвых субстратов; у этих групп организмов имеет место временное несовпадение максимального развития в экосистеме озера.

Вероятно, подобным образом складываются и отношения грибов и бактерий. В этом случае скорее происходит их пространственное и временное несовпадение, чем конкуренция. Дело в том, что грибы больше локализуются на жилках листа, а бактерии — в мезофилле. Грибы, особенно водные и воздушно-водные гифомицеты, утилизуют полифенольные и другие высокомолекулярные соединения. Присущее им пероксидазное окисление дает источник пищи и для самих водных гифомицетов, и для других грибов (так называемых «сахарных») равно как и для бактерий.

В целом вопрос о взаимоотношениях грибов и бактерий, как уже указывалось выше, — вопрос проблематичный, требующий экспериментальных и природных исследований. Заметим, что при выяснении взаимоотношений грибов и бактерий либо совсем не учитывались особенности среды, либо учитывались фрагментарно и однозначно. Мы считаем, что при таком подходе игнорируется один из важнейших факторов, определяющих направление и характер гетеротрофной сукцессии.

Гетеротрофная сукцессия завершается полным потреблением и минерализацией ресурса, в данном случае — растительного субстрата. На принципиально единый характер сукцессии грибных комплексов оказывают большое влияние условия окружающей среды (трофический статус озера, гидрофизические и гидрохимические параметры) и тип субстрата. Скорость сукцессии снижается с возрастанием географической широты, т.е. в направлении лесная зона — тундра, а также в экстремальных условиях (ацидификация озер).

Итак, исследования сукцессий комплексов грибов на растительных субстратах в малых озерах приводят к выводу, что элементы экосистемы повторяют те закономерности, которые установлены для экосистемы как целого. В данном случае направление и характер сукцессий комплексов грибов отражают принципы, утверждаемые для гетеротрофных сукцессий в других экосистемах.

Серьезные изменения в сукцессионных процессах, как и во всей микоби-оте малых озер, происходят при антропогенном воздействии на экосистемы. Так, при антропогенном эвтрофировании и загрязнении озер бытовыми стоками возрастает уровень заспоренности воды диаспорами терригенных микромицетов. Особенно увеличивается доля пенициллов и темнопигментирован-ных гифомицетов. Аналогичные изменения характерны и для проточных водоемов. Выше приводились сведения о существенной перестройке структуры и видового состава микобиоты воды и нормальной микобиоты рыб под влиянием аварийного сброса промышленных загрязнителей в Рыбинское водохранилище — это ярчайший пример такой перестройки.

Увеличение роли терригенных микромицетов происходит параллельно со снижением численности водных гифомицетов. Наиболее чувствительна к антропогенному воздействию микобиота озер тундры, как и в целом арктические и субарктические экосистемы. При эвтрофировании водные гифомицеты элиминируются на уровне мезо-эвтрофного статуса в озерах тундры, на уровне гипертрофного — в озерах зоны смешанных лесов (Эстония). Кроме того, при загрязнении водоемов сточными водами возрастает опасность для здоровья человека, т.к. обнаруживаются виды, штаммы которых известны как патогенные (например, Candida tropicalis в районе Воркуты).

Снижение видового разнообразия грибов и замена водных обитателей на наземные грибы явно проявляется и в комплексах грибов на растительных субстратах. Данный вопрос также требует в дальнейшем экспериментальных исследований с целью выяснения скорости и характера деструкционных процессов, определения продуктов, выделяющихся в окружающую среду на разных этапах, влияние их на гидробионтов.

Как показывает опыт, микологические параметры могут успешно использоваться для оценки экологического состояния водоемов при мониторинговых наблюдениях. Особенно показательна комплексная оценка, когда применяются различные данные по микобиоте (заспоренность воды, индекс значимости водных гифомицетов на погруженных растительных субстратах) совместно с данными по другим гидробионтам. Нами, в частности, были разработаны приемы расчета «индекса загрязненности» на основе результатов исследований микобиоты, бактериопланктона и зоопланктона в водоемах Вор-кутинского промышленного района, успешно применяемые при реализации программы «Экология Воркуты».

В целом исследования микобиоты стоячих вод оставляют открытыми еще очень много вопросов, важных для микологии и экологии.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Воронин, Леонид Владимирович, 2005 год

1. Алтон Л.В. Выживаемость некоторых видов рода Fusarium в морской и речной воде // Микол. и фитопатол. 1985а. Т.19. Вып.З. С.193—199.

2. Алтон Л.В. Жизнеспособность некоторых видов почвенных грибов при разных температурах морской и речной воды // Микробиол. журн. 19856. Т.47. № 6. С. 56—61.

3. Алтон Л.В. Влияние фосфора в морской и речной воде на жизнеспособность видов родов Fusarium и Penicillium // Микол. и фитопатол. 1989. Т.23. Вып.6. С.509—517.

4. Алтон Л.В. Жизнеспособность конидий видов рода Fusarium в почве и воде, загрязненных нитратами // Микол. и фитопатол. 1990. Т.24. Вып.З. С.193.

5. Алтон Л.В. Влияние повышенных концентраций нитратов на жизнеспособность некоторых видов рода Penicillium в морской и речной воде и в почве // Микол. и фитопатол. 1991а. Т.25. Вып.З. С. 189—195.

6. Алтон Л.В. Жизнеспособность некоторых видов микроскопических грибов в воде, загрязненной нитратами // Гигиена и сан. 19916. № 11. С.27—29.

7. Алтон Л.В. Жизнеспособность микроскопических грибов в морской и речной воде, загрязненной фосфором // Микол. и фитопатол. 1995. Т.29. Вып.1. С. 11—17.

8. Артемчук Н.Я. Микофлора морей СССР. М.: Наука, 1981.192 с.

9. Бабицкая В.Г. Мицелиальные грибы — продуценты белковой биомассы на лигноцеллюлозных субстратах // Микол. и фитопатол. 1986. Т.20. Вып. 5. С.377—385.

10. Бабьева И.П. Дрожжи в биогеоценозах разных природных зон // Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. М.: Наука, 1984. С.131—141.

11. Бабьева И.П., Зенова Г.М. Биология почв. М.: МГУ, 1989.336 с.

12. Белова М.А. Процессы бактериальной деструкции макрофитов в озёрах разного типа: Автореф. дис. канд. биол. наук. Киев, 1989.20 с.

13. Белова М.А., Распопов И.М. Макрофиты и их бактериальная деструкция в континентальных водоёмах // Гидробиол. журн. 1987. Т.23. № 3. С.З—9.

14. Берталанфи JI. История и статус общей теории систем // Системные исследования. М.: Наука, 1973. С.20—37.

15. Бигон М., Харпер Дж., Таунсенд К. Экология. Особи, популяции и сообщества. Т.2. М.: Мир, 1989.477 с.

16. Бискэ Г. С. Четвертичные отложения и геоморфология Карелии. Петрозаводск: Гос. изд-во АН Кар. АССР, 1959. 308 с.

17. Блауберг И.В., Садовский В.Н., Юдин Э.Г. Системные исследования и общая теория систем // Системные исследования. Общая теория систем: задачи и методы. Приложения системного подхода. Ежегодник. М.: Наука, 1969. С.30—54.

18. Борисова В.Н. Гифомицеты лесной подстилки в различных экосистемах. Киев: Наук, думка, 1988.252 с.

19. Василевич В.И. Статистические методы в геоботанике. М.: Наука, 1969. 232 с.

20. Васильева JI.H. Пиреномицеты и локулоаскомицеты севера Дальнего Востока. Л.: Наука,1987.257 с.

21. Васильева Л.Н. Микромицеты юга Магаданской области. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Владивосток, 1979. 24 с.

22. Великанов Л.Л., Сидорова И.И. Подходы к изучению сукцессии почвенных грибов и их функциональной роли в биогеоценозах // Методы выделения и идентификации почвенных микромицетов-биодеструкторов. Вильнюс, 1982. С.27—30.

23. Великанов Л.Л., Сидорова И.И. Проблеммы современной экологии грибов. / III Всесоюзн. миколог, школа. Звенигородская биостанция МГУ. 1982 // Микол. и фитопатол. 1983. Т.17. Вып.5. С.446—449.

24. Великанов Л.Л., Сидорова И.И. Водные гифомицеты Московской области // Микол. и фитопатол. Т.23. Вып.З. С.1—7.

25. Вельдре С.Р. О корреляционной структуре внешних морфологических признаков ушастой круглоголовки Phrynocephalus mystceus (Pallas, 1776) // Применение математических методов в биологии. Сб.З. Л.: 1964. С.75—85.

26. Вильчек Г.Е., Вайсфельд М.А. Антропогенная трансформация тундровых экосистем // Изв. АН СССР. Сер. геогр. 1990. № 2. С.47—56.

27. Власова Т.А. Гидрологические и гидрохимические условия биологического продуцирования в озерах Харбейской системы // Продуктивность озер восточной части Большеземельской тундры. JI.: Наука, 1976. С.6—26.

28. Воробьев Г.А., Коробейникова JI.A., Ляпкина А.А. Озера ландшафтов моренных и озерно-ледниковых равнин // Озерные ресурсы Вологодской обл. Вологда, 1981. С.94—139.

29. Воронин Л.В. Микофлора некоторых видов рыб Куйбышевского водохранилища // Биол. внутр. вод: Информ. бюл. Л., 1987. № 76. С.11—15.

30. Воронин Л.В. Грибы рода Phoma Sacc. из воды и рыб пресных водоемов // Микол. и фитопатол. 1989. Т.23. Вып.1. С. 19—27.

31. Воронихин Н.Н. К познанию перифитона р. Волги // Работы Волжской Биол. станции. 1925. Т.8. № 1—3. С.55—64.

32. Выханду Л. К. Об исследовании многопризнаковых биологических систем // Применение математических методов в биологии. Сб.З. Л.: 1964. С.19—22.

33. Геоботаническое районирование Нечерноземья европейской части РСФСР. Л.: Наука, 1989.61 с.

34. Гецен М.В., Стенина А.С., Патова Е.Н. Альгофлора Большеземельской тундры в условиях антропогенного воздействия. Екатеринбург: УИФ Наука, 1994. 148 с.

35. Голубева О.Г. Определитель грибов России. Класс Chytridiomycetes. Вып.1. Пор. Chytridiales. СПб.: Мир и семья 95. 1995.168 с.

36. Горбацкий Г.В. Физико-географическое районирование Арктики. 4.1. Полоса материковых тундр. Л.: ЛГУ. 1967.136 с.

37. Горленко М.В. Микология в X пятилетке и перспективы её развития в ближайшие годы // Микол. и фитопатол. 1981. Т. 15. Вып.5. С.353—360.

38. Грибова С.А. Тундры // Растительность Европейской части СССР. М.: Наука, 1980. С.29—64.

39. Григорьев С.В., Грицевская Г.Л. Каталог озёр Карелии. М.-Л.: изд-во АН СССР. 1959.240 с.

40. Гулис В.И. Водные гифомицеты Белорусской гряды и сопредельных территорий (видовой состав, особенности экологии, антибиотическая активность). Автореф. дис. канд. биол. наук. Минск: Ин-т эксп. бот. 1999. 20 с.

41. Гулис В.И., Стефанович А.И. Водные гифомицеты в культуре. II. Динамика роста и продукция антибиотических веществ // Весщ Нацыянальнай Акадэмп Навук Беларусь Сер. б!ялагичн. навук. 1988. № 4. С.112—115.

42. Дудка I.O. Матер1али до флори водних гриб1в УРСР. III. Водш аском-щети з околиць м. Киева // Укр. ботан. журн. 1963. Т.20. № 6. С.86—91.

43. Дудка I.O. Водш пфомщети Украши. Кшв: Наукова думка. 1974.240 с.

44. Дудка И.А. Грибы как компоненты пресноводных биоценозов // Ми-кол. и фитопатол. 1974. Т.8. № 5. С.444—449.

45. Дудка И.А. О связи флоры гифомицетов пресных водоёмов, подстилки и почвы // Систематика, экология и физиология почвенных грибов. Киев: Наук, думка. 1975. С. 14—16.

46. Дудка И.А. Водные несовершенные грибы СССР. Киев: Наук, думка, 1985а. 188 с.

47. Дудка I.O. Сумчасп гриби компонента пр1сноводних бюценоз1в. Укр. боташч. журн. 19856. Т.42. №4. С.86—95.

48. Дудка И.А., Бурдюкова Л.И. Флора грибов Украины. Оомицеты. Фи-тофторовые и альбуговые грибы. Киев: Наук, думка, 1996.208 с.

49. Дудка И. А., Вассер С.П. Грибы. Справочник миколога и грибника. Киев: Наук, думка, 1987. 536 с.

50. Дудка И.А., Давыдов О.Н., Исаева Н.М. Сапролегниозы рыб: теоретические и практические аспекты изучения (1980—1986). Ч. II. Киев: Ин-т зоол. АН УССР (препр.), 1988. 53 с.

51. Дудка I.O., Смицька М.Ф., Райтвшр А.Г. Рщгасний водний дискомщет Vibrissea truncorum (Alb. et Schw.) Fr. //Укр. ботан. журн. 1990. T.47. № 1. C.36—39.

52. Дунаев А.С. Некоторые пикнидиальные грибы на отмерших высших водных растениях водоемов бассейна Верхней Волги // Биол. внутр. вод: Ин-форм. бюл. Л., 1985. № 67. С.5—8.

53. Дунаев А.С. Виды грибов, новые для флоры СССР // Новости сист. низш. раст. Л.: Наука, 1986. Т.23. С. 124—128.

54. Дунаев А.С. Сезонная динамика численности и состава микромицетов озера Плещеево // Факторы и процессы эвтрофикации озера Плещеево. Сб. научн. тр. Ярославль: ЯрГУ, 1992. С. 161—179.

55. Еланский С.Н., Лекомцева С.Н. Встречаемость спор грибов различных систематических групп в приземном слое атмосферы средних широт России // Микол. и фитопатол. 1998. Т.32. Вып.1. С.37—43.

56. Жадин В.И. Общие вопросы, основные понятия и задачи гидробиологии пресных вод // Жизнь пресных вод. M.-JL: Изд-во АН СССР, 1950. Т.З. С.7—112.

57. Жданова Н.Н., Василевская А.Н. Экстремальная экология грибов в природе и эксперименте. Киев: Наук, думка, 1982. 168 с.

58. Зайцев Г.Н. Математический анализ биологических данных. М.: Наука, 1991. 184 с.

59. Захарова Л.И. Микологическое исследование некоторых северных водоемов // Биол. внутр. вод: Информ. бюл. Л., 1980. № 47. С.4—7.

60. Иофина И.В. Развитие водной микофлоры в период антропогенного эвтрофирования // Современное состояние экосистемы Ладожского озера. Л.: Наука, 1987. С. 167—171.

61. Исаева Н.М., Давыдов О.Н., Дудка И.А., Неборачек И.С. Микозы и микотоксикозы рыб. Киев: Ин-тзоол. НАН Украины, 1985.168 с.

62. Катанская В.М. Высшая водная растительность континентальных водоемов СССР. Методы изучения. Л.: Наука, 1987. 187 с.

63. Киргизбаева Х.М. К микофлоре водных грибов Ташкентской области (водные Ascomycetes и Pycnidiales) // Флора и значение споровых растений Ср. Азии. Ташкент: Фан, 1972. С. 160—162.

64. Кожевин П.А. Микробные популяции в природе. М.: МГУ, 1989.175 с.

65. Комов В.Т. Природное и антропогенное закисление малых озер Северо-Запада России: причины, последствия, прогноз. Автореф. дис.докт.биол. наук. СПб., 1999.46 с.

66. Константинов А.С. Общая гидробиология. М.: Высшая школа, 1972. 472 с.

67. Крылов А.В. Зоопланктон и качество вод малой реки в условиях воздействия промышленных стоков // Зооценозы водоемов бассейна Верхней Волги в условиях антропогенного воздействия. Труды ИБВВ РАН. Вып.69(72). СПб.: Гидрометеоиздат, 1993. С.39—47.

68. Кузнецов С.И., Дубинина Г.А. Методы изучения водных микроорганизмов. М.: Наука, 1989.

69. Кузьмичев А.И., Краснова А.Н., Довбня И.В., Ляшенко Г.Ф., Трусов Б.А., Артеменко В.И. Высшая водная растительность Волжского плеса Рыбинского водохранилища//Биол. внутр. вод: Информ. бюл. № 83. Л.: Наука, 1989. С. 19—22.

70. Кулиев А.Н. Влияние запыленности на растительность тундры в окрестностях Воркуты // Сб. научн. тр. Центр, лаб. охраны природы МСХ СССР. 1977. № 5. С.22—28.

71. Кулиев А.Н., Лобанов В.А. Распределение пылевидных загрязнений в окрестностях г. Воркуты // Изменение природной среды в связи с деятельностью человека. М., 1978. С.83—89.

72. Ларцева Л.В. Профилактика и терапия сапролегниоза икры осетровых и белорыбицы при искусственном их разведении. Автореф. дис. канд. биол. наук. М., 1987.22 с.

73. Линней К. Философия ботаники. М.: Наука, 1989.456 с.

74. Литвинов М.А. Методы изучения почвенных микроскопических грибов. Л.: Наука, 1969.124 с.

75. Литвинов М.А., Дудка И.А. Методы исследования микроскопических грибов пресных и соленых (морских) водоемов. Л.: Наука, 1975. 151 с.

76. Логвиненко Л.И. К флоре водных грибов р. Мож // Вест. Харьковского ун-та. 1981. №211. С.21—23.

77. Логвиненко Л.И. Водные оомицеты верхнего и среднего участков бассейна р. Северский Донец // Вестн. Харьковского ун-та. 1987. № 308. С.39—42.

78. Логвиненко Л.И., Король О.И. К изучению оогамных ксиломицетов пресных водоемов // XII Конф. по споровым раст. Средней Азии и Казахстана, Ташкент, А—6 сент. 1989: Тез. докл. Ташкент, 1989. С.106—107.

79. Лугаускас А.Ю., Микульскене А.И., Шляужене Д.Ю. Каталог микро-мицетов-биодеструкторов полимерных материалов. М.: Наука, 1987. 340 с.

80. Марковская (Новицкая) С. Водная микобиота восточной части Литвы. Автореф. дис. докт. естеств. наук. Вильнюс: Ин-т ботаники, 1993.24 с.

81. Марфенина О.Е., Попова Л .В. Действие кислотных осадков на эпифит-ные и почвенные грибы в лесных биогеоценозах // Биол. науки. 1990. № 9. С.83—89.

82. Мельник В.А. Определитель грибов рода Ascochyta Lib. Д.: Наука, 1977. 246 с.

83. Мещерякова Р.И. Водные грибы оз. Белого долины р. Северский Донец // Вестн. Харьковского ун-та. 1981. № 211. С. 18—20.

84. Миловцова М.А. Водные фикомицеты Харькова и его окрестностей // Тр. Харьковского ин-та Ботаники. 1935. T.l. С.28—37.

85. Милько А.А. Систематика рода Saprolegnia // Микол. и фитопатол. 1979. Т. 13. Вып.4. С.288—294.

86. Милько А.А. Систематика рода Achlya // Микол. и фитопатол. 1983а. Т. 17. Вып.4. С.289—296.

87. Милько А.А. Микологическая характеристика основных рек Европейской части СССР // Тез. докл. VII делегатского съезда Всесоюзн. ботан. об-ва. Донецк, 11—14 мая 1983 г. JL: Наука, 19836. С.111—112.

88. Милько АА., Дунаев А.С. Cladosporium strumelloideum Milko et Dunaev sp. nov. и новые данные о Dactylella submersa (Ingold) Nilsson // Новости сист. низш. раст. Л.: Наука, 1986. Т.23. С. 134—138.

89. МилькоАЛ., Захарова Л. И. Заспоренность грибами воды реки Волги // Микол. и фитопатол. 1976. Т. 10. Вып.5. С.222—225.

90. Милько А.А., Захарова Л.И. Роль микофлоры Волги и некоторых северных водоемов в процессах самоочищения и биоиндикации вод // Водные ресурсы. 1984. №2. С.94—98.

91. Милько А.А., Извекова Г.И. Протеолитические особенности некоторых оомицетов и дейтеромицетов //Тез. докл. VII конф.по споров, раст. Ср. Азии и Казахстана. Алма-Ата, 1984.

92. Мильков Ф.Н., Гвоздецкий Н.А. Физическая география СССР. Общий обзор. Европейская часть СССР. Кавказ. М.: Мысль, 1969.461 с.

93. Мирчинк Т.Г. Почвенные грибы как компонент биогеоценоза // Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. М.: Наука, 1984. С.114— 130.

94. Мирчинк Т.Г. Почвенная микология. М.: МГУ. 1988.202 с.

95. Михеева И.В. Микофлора илов рыбоводных прудов // Тр. ВНИИ пруд, рыбн. хоз-ва. Т. 18. С.135—141.

96. Мудрецова-Висс К.А., Колесник С.А., Гринюк Т.И. Руководство к лабораторным занятиям по микробиологии. М.: Экономика, 1975.151 с.

97. Мяэметс А.Х. Изменения зоопланктона // Антропогенное воздействие на малые озера. JL: Наука, 1980. С.54—64.

98. Надсон Г.А., Сулима-Самойло А.Ф. Микроорганизмы со дна Ладожского озера//Изв. СПБургск. Ботан. сада. 1908. Т.8. С. 102—111.

99. Наумов Н.А. Флора грибов Ленинградской области. I. Архимицеты и фикомицеты. М.-Л.: Изд-во АН СССР, 1954.182 с.

100. Новицкая С.И. Зависимость комплексов водных гифомицетов от гидрохимических особенностей системы водоемов парка Вяркяй // Микол. и фитопатол. 1992. Т.26. Вып.5. С.353—359.

101. Новицкая С.И., Станявичене С.И. К экологии некоторых видов водных гифомицетов, обнаруженных в юго-восточной части Литовской ССР // Тез. докл. 11 Симп. микол. и лихенол. Прибалт, респ. и Белоруссии. Таллин, 1988. С.55—58.

102. Оберман Н.Г. Выбор источников хозяйственно-питьевого водоснабжения на востоке Европейской субарктики // Нар. хоз-во респ. Коми. 1994. Т.З. №1.С.26—31.

103. Одум Ю. Основы экологии. М.: Мир, 1975. 740 с.

104. Осипян Л.Л., Айрапетян О.Г. Новые для Армянской ССР виды водных гифальных грибов // Еревани амагсаран, Гитакан тегекашр. Бнакан шту-тюннер. Уч. зап. Ереван, ун-та, Естеств. н. 1978. № 1. С. 104—110.

105. Осипян Л.Л., Акопян Л.А. Сравнительная характеристика видового состава водных грибов озер Армянской ССР, расположенных в различных высотных поясах// Лимнол. горн, водоемов (Тез. докл. Всес. совещ., Севан, 11—15 сент., 1984). Ереван, 1984. С.212—213.

106. Песенко Ю.А. Принципы и методы количественного анализа в фау-нистических исследованиях. М.: Наука, 1982.288 с.

107. Плохинский Н.А. Алгоритмы биометрии. М.: МГУ, 1980.150 с.

108. Присг Ф. Внеклеточные ферменты микроорганизмов. М.: Мир, 1987. 117 с.

109. Пыстина К. А. Определитель грибов России. Класс Oomycetes. Вып. 1. СПб.: Наука, 1994.186 с.

110. Пыстина К. А. Сезонное изменение видового состава водных оомице-тов // Пробл. ботан. на рубеже 20—21 вв.: Тез. докл., представл. 2(10) съезду Рус. ботан. об-ва, Санкт-Петербург, 26—29 мая 1998. Т.2. СПб., 1988. С.ЗЗ—34.

111. Распопов И.М. Высшая водная растительность больших озер Северо-Запада СССР. Л.: Наука, 1985.200 с.

112. Ребристая О.В. Флора востока Большеземельской тундры. Л.: Наука, 1977.334 с.

113. Ртищева А.И., Глебова Т.А. Видовой состав водных грибов на реликтовом растении Trapa natans L. и биоэкологические особенности гриба Centrospora angulata Pet. // Растит, покров Центр. Черноземья и его охрана. Воронеж: Воронежский ун-т, 1987. С.134—142.

114. Самуцевич М.М. Микофлора воды // Дневник Всесоюзн. съезда ботаников. Л., 1928. С.185—186.

115. Семенова Т.А. Антропогенная изменчивость микроскопических грибов в водных экосистемах (на примере водоемов Среднего Поволжья). Тольятти: ИЭВБ РАН, 1994а. 36 с.

116. Семенова Т.А. Микобиота водоемов Среднего Поволжья. Автореф. дисканд. биол. наук. М.: МГУ, 19946.23 с.

117. Симонян С.А., Мамиконян Т.О. К изучению микромицетов филлопланы гвоздики ремонтантной и каллы болотной // Бюл. Ботан. сада АН Арм. ССР. 1989. №29. С.132—142.

118. Согонов М.В., Марфенина О.Е. Особенности микобиоты приморских маршей Кандалакшского залива Белого моря // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 16. Биология. 1999. № 3. С.42-^7.

119. Солнцева И.О., Виноградова Г.И. Дрожжевая флора воды и рыб Рыбинского водохранилища (Шекснинский плес) // Биол. внутр. вод: Информ. бюл. Л., 1989. № 82. С.23—26.

120. Солнцева И.О., Виноградова Г.И. Сезонные исследования дрожжевой флоры воды и рыб в Рыбинском водохранилище // Биол. внутр. вод: Информ. бюл. Л., 1990. № 85. С. 17—22.

121. Солнцева И.О., Виноградова Г.И. Численность и видовой состав дрожжей в воде малых озер Карелии // Биол. внутр. вод: Информ. бюл. СПб., 1992. №93. С.З—7.

122. Солнцева И.О., Виноградова Г.И., Черняковская Т.Ф. Характеристика дрожжевой флоры озёр Дарвинского заповедника // Редкол. Микробиол. журн. 1989. С. 10.

123. Структурно-функциональная организация фитоценозов на Крайнем Севере / под ред. М.В. Гецен, С.К. Назарова. Коми научный центр УрО РАН. Сыктывкар, 1994.152 с.

124. Тепла Н.И. Грибная флора тростника Phragmites communis Frin в Архангельской области // Ботан. журн. 1963. Т.48. №11. С.1681—1692.

125. Терехова В.А. Микобиота в мониторинге водных экосистем. Микол. и фитопатол. 1995. Т.29. Вып.1. С.36—40.

126. Терехова В.А., Семёнова Т.А. Изменчивость микобиоты в условиях интенсивной аторопогенной натрузки //Экол. Состояние бассейна р. Чапаевка в условиях антропог. воздействия: Биол. индикация. Тольятти, 1997. С. 156—161.

127. Фрейндлинг А.В. Зарастание разнотипных озёр Карелии (продуктивный и динамический аспекты). Автореф. дис. канд. биол. наук. М.: 1982. 24 с.

128. Хендерсон — Селлерс Б., Маркленд Х.Р. Умирающие озёра: причины и контроль антропогенного эвтрофирования. Л.: Гидрометеоиздат, 1990. 280 с.

129. Хоуксворт Д.Л. Общее количество грибов, их значение в функционировании экосистем, сохранение и значение для человека. Микол. и фитопатол. 1992. Т.26. Вып.2. С.152—166.

130. Частухин В.Я., Николаевская М.А. Биологический распад и ресин-тез органического вещества в природе. Л.: Наука, 1969. 326 с.

131. Чернов Ю.Н. О некоторых индексах, используемых при анализе структуры животного населения суши // Зоол. журн. 1971. Т.4. Вып.7. С. 1079—1093.

132. Шиголев А.А., Шиманюк А.П. Сезонное развитие природы Европейской части СССР. М.: Изд-во геогр. лит-ры. 1949.240 с.

133. Шкорбатов Л.А. Материалы к изучению водных грибов Харьковской губернии // Наукови записки по бюлогп. Харьков, 1927.

134. Шмидт В.М. Статистические методы в сравнительной флористике. JL: ЛГУ, 1980.176 с.

135. Щербакова А. А. История ботаники в России до 60х гг. XIX века (до-дарвиновский период). Новосибирск: Наука, 1979. 368 с.

136. Яценко Т.А., Дудка И.А. Современные тенденции развития гидромикологии в СССР // Микол. и фитопатол. 1991. Т.25. Вып.5. С 446—461.

137. Ячевский А.А. Определитель грибов. Т. 1. Совершенные грибы. СПб., 1913.934 с.

138. Ячевский А.А. Определитель грибов. Т.2. Несовершенные грибы. СПб., 1917. 802 с.

139. Аа Н.А. van der. A leaf spot disease of Nimphaea alba in the Netherlands //Neth. J. PI. Path. 1978. Vol. 84. P.l 109-115.

140. Аа H.A. van der, Noordeloos M.E., Gruyter de J. Species concepts in some larger genera of the Coelomycetes // Studies in Mycology. 1990. № 32. P.3—19.

141. Аа H.A. van der, Samson R.A. A new species of Helicoon // Mycol. Res. 1994. Vol. 98. P.74—76.

142. Abdel-Hafez A.I.I., Bagy M.M.K., Shoreit A.A.M. Keratinophilic fungi in mud of Ibrahamia Canal, Egypt // Cryptogamie. Mycol. 1989. Vol. 10. № 4. P.275—282.

143. Abdullah S.K. Additions to the aero-aquatic genus Helicodendron // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1983. Vol. 81. Pt. 3. P.638—641.

144. Abdullah S.K. Two new species of Helicodendron // Nova Hedwigia. 1987. № 3-4. P.339—343.

145. Abdullah S.K., Fisher P.J. Aero-aquatic fungal flora of two static water habitats in Devon//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1984. Vol. 82. Pt. 2. P.361—365.

146. Abdullah S.K., Fisher P.J., Webster J. Two new species of aero-aquatic Hyphomycetes //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1979. Vol. 72. P.324—329.

147. Abdullah S.K., Guarro J., Figueras M.J. New and interesting Helicoon species from Spain// Mycotaxon. 1996. Vol. 60. P.449—454.

148. Abdullah S.K., Horie Y., Udagawa S. New or interesting aero-aquatic conidial fungi from Japan // Nova Hedwigia. 1986. Vol. 43. P.507—513.

149. Abdullah S.K., Taj-Aldeen S.J. Extracellular enzymatic activity of aquatic and aero-aquatic fungi // Hydrobiologia. 1989. Vol. 174. P.217—223.

150. Abdullah S.K., Webster J. Lambertella tubulosa sp. nov. teleomorph of Helicodendron tubulosum//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1981. Vol. 76. Pt. 2. P.261—263.

151. Abdullah S.K., Webster J. New aero-aquatic genus Pseudaegerita I I Trans. Brit. Mycol. Soc. 1983. Vol. 80. Pt. 2. P.247—254.

152. Adhikari R.S. Phylloplane mycoflora of Themeda anathera in relation to environmental factors // Hymalayan J. Environ, and Zool. 1990a. Vol. 4. № 1. P.74—79.

153. Adhikari R.S. Phylloplane mycoflora of three grasses: A mycosociological study //Trop. Ecol. 1990b. Vol. 31. № 1. P.64—68.

154. Agrawal G.P., Hasija S.K., Agrawal P., Pandey A.K. Fungi associated with submerged decaying leaves and twigs from Jabalpur // Proc. Nat. Acad. Sci., India. 1991. Vol. 61. № 1. P.121—125.

155. Alexander M. Microbial ecology. New York: Acad, press, 1971.480 p.

156. Anastasiou C.J. Fungi from salt lakes. I. A new species of Clavariopsis // Mycologia. 1962. Vol. 53. P.l 1—15.

157. Andrews J.H., Kinkel L.L., Berbee F.M., Nordheim E.V. Fungi, leaves and the theory of island biogeography // Microb. Ecol. 1987. Vol. 14. № 3. P.277—290.

158. Apinis A.E., Chesters C.G.C., Taligoola H.K. Colonisation of Phragmites communis by Fungi//Nova Hedwigia. 1972. Vol. 23. № 1. P.l 13—124.

159. Apinis A.E., Taligoola H.K. Biodegradation of Phragmites communis Trin. by fungi // Biodegradation and humification (Eds. Kilbertus G., Reisinger O., Concela D., Fonseca J.A.). Pierron, 1974. P.24—32.

160. Arambarri A.M., Cabello M.N., Mengascini A.S. Estudio sistematicode los Hyphomycetes del rio Santiago (Provincia de Buenos Aires, Argentina) // Darwiniana. 1987a. Vol. 28. № 1-4. P.293—301.

161. Arambarri A., Cabello M., Mengascini A. New Hyphomycetes from Santiago river. II. (Buenos Aires province, Argentina) // Mycotaxon. 1987b. Vol. 30. P.263—267.

162. Arnaud G. La flore mycologique de mardcacges // Ann. Ecol. Agric. Montpellier. 1954. Vol. 29. P.23—27.

163. Au D.W.T., Hodgkiss I.J. Fungi and cellulolytic activity associated with decomposition of Bauhinia purpurea leaf litter in a polluted and unpolluted Hong Kong waterway // Can. J. Bot. 1992. Vol. 70. № 5. P.1071—1079.

164. Bagy M.M.K., Khallil A.M., Obuid-Allah A.H. Fungi inhabiting some aquatic macro-invertebrates and water plants of the Nile at Egypt // Zbl. Mikrobiol. 1992. Bd. 147. № 1. P.459—475.

165. Bandoni R.J. Terrestrial occurrence of some aquatic hyphomycetes // Can. J. Bot. 1972. Vol. 50. №11. P.2283—2288.

166. Bandoni R.J. Mycological observations on the aqueous films covering decaying leaves and other litter // Trans. Mycol. Soc. Jap. 1974. Vol. 15. № 4. Р.ЗОЗ—315.

167. Bandoni RJ. Aquatic hyphomycetes from terrestrial litter // The fungal community: its role in the ecosystem (Eds. Wicklow D.T., Carrol G.C.). New York: Marcel Dekker, 1981. P.639—703.

168. Barlocher F. The contribution of fungal enzymes to the digestion of leaves by Gammarus fossarum Koch (Amphipoda) // Oecologia (Berlin). 1982. Vol. 52. P. 1—4.

169. Barlocher F. Aquatic Hyphomycete spora in 10 streams of New Braunswick and Nova Scotia//Can. J. Bot. 1987. Vol. 65. P.76—79.

170. Barlocher F., Kendrick B. Role of aquatic hyphomycetes in the trophic structure of streams // The Fungal Community: its organization and role in the ecosystem (Eds. Wicklow D.T., Carrol G.C.). New York: Marcel Dekker, 1981. P.743—760.

171. Barlocher F., Mackay R.J., Wiggins G.B. Detritus processing in a temporary vernal pool in southern Ontario // Arch. Hydrobiol. 1978. Vol. 81. № 3. P.269— 295.

172. Barr D. J.S. Evolution and kingdoms of organisms from the perspective of a mycologist // Mycologia. 1992. Vol. 84. P. 1—11.

173. Batko A. Zaiys hydromikologii. Warszawa, 1975.478 p.

174. Benner R., Moran M.-A., Hodson R.E. Biochemical cycling of lignocellulose carbon in marine and freshwater ecosystems relative contribution of procariotes and eucariotes // Limnol. and Oceanogr. 1998. Vol. 31. P.89—100.

175. Bergbauer M., Moran M.-A., Hodson R.E. Decomposition of lignocellulose from a freshwater macrophyte by aero-aquatic fungi // Microb. Ecol. 1992. Vol. 23. P.159—167.

176. Bernhardt E.A., Duniway J.M. A new Papulaspora species from the pondweeds Potamogeton nodosus and P.crispus in California // Can. J. Bot. 1985. Vol. 63. №3. P.429—431.

177. Bessey F.A. Varicosporium elodeae Kegel, an uncommon soil fungus // Pap. Michigan Acad. Sci. Arts and Lett. 1939. Vol. 25. № 1. P.l5—17.

178. Beverwijk A.L. van. Zalewski"s «Clathrosphaera spirifera» // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1951a. Vol. 34. P.280—290.

179. Beverwijk A.L. van. Candelabrum spinulosum, a new fungus species // Antonie vanLeeuvenhoek. 1951b. Vol. 17. P.278—284.

180. Beverwijk A.L. van. Helicosporous hyphomycetes. I. // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1953. Vol. 36. P.ll 1—124.

181. Beverwijk A.L. van. Three new fungi: Helicoon pluriseptatum, Papulaspora pulmonaria, and Tricellula inaequalis // Antonie van Leeuwenhoek. 1954. Vol. 20. P. 1— 16.

182. Boerema G.H. Contributions towards a monograph of Phoma (Coelomy-cetes) II. Section Peyronellaea// Persoonia. 1993. Vol. 15. Pt. 2. P. 197—221.

183. Booth C. The genus Fusarium. Kew: Commonw. Mycol. Inst., 1971.2237 p.

184. Booth T. Ecotypic responses of chytrid and chytridiaceous species to various salinity and temperature combinations // Can. J. Bot. 1971. Vol. 49. P. 1757— 1767.

185. Bowerman L., Goos R.D. Fungi associated with living leaves of Nymphaea odorata//Mycologia. 1991a. Vol. 83. №4. P.513—516.

186. Bowerman L., Goos R.D. Physiological studies of two fungi isolated from Nymphaea odorata // Mycologia. 1991b. Vol. 83. № 5. P.624—632.

187. Brather I. The aquatic, stauroconidial hyphomycetes of Norway with notes on the Nordic species // Nord. J. Bot. 1984. Vol. 4. № 3. P.375—392.

188. Brierley W.B. The structure and life-history of Leptosphaeria lemaneae (Cohn.) // Mem. Manchr. lit. phil. Soc. 1913. Vol. 57. P.l—24.

189. Brinson M.M., Lugo A.E., Brown S. Primary productivity, decomposition and consumer activity in freshwater wetlands // Annu. Rev. Ecol. Syst. 1981. Vol. 12. P.123—161.

190. Brock Th.C.M. Aspects of the decomposition of Nymphoides peltata (Gmel.) O.Kuntze (Menyanthaceae)// Aquatic Botany. 1984. Vol. 19. P. 131—156.

191. Brutschy A. Tetracladium marchalianum de Wildeman. Ein nur wenig beachteter Wasserpilz // Microkosmos. 1927. Bd. 21. № 1. S. 145—146.

192. Butty A.-K N. Isolation of Saprolegniaceae from Tigris river and notes on their occurrence in winter season // Environ. Sci. and Health. A. 1989. Vol. 24. № 5. P.505—513.

193. Cabello M., Cazau C., Arambarri A. New hyphomycetes from Santiago River. III. (Buenos Aires Province, Argentina)//Mycotaxon. 1990. Vol. 38. P. 15—19.

194. Cantino E.C. The phisiology of the aquatic phycomycete, Blastocladia pringsheimii, with emphasis on its nutrition and metabolism //Am. J. Botany. 1949. Vol. 36. P.95—112.

195. Cantrell S.A., Betancourt С. Evaluation micologica preliminar de un estanque para la crianza del langostino Macrobrachium rosenbergii (De Man) en Puerto Rico / / Int. J. Mycol. and Lichenol. 1992. Vol. 4. № 3. P.379—383.

196. Casper S.J. Hyphomyceten-Studien. I. Die Siisswasser-Hyphomyceten des Stechlinsee-Gebietes // Limnologica. 1965. Bd. 3. № 3. S. 257—270.

197. Cazau C., Arambarri A., Cabello M. New hyphomycetes from Santiago River. IV. (Buenos Aires Province, Argentina) // Mycotaxon. 1990. Vol. 38. P.21—25.

198. Cernakova M., Kockova-Kratochvilova A, Suty L., Zemek S., Kuniak L. Biochemical similarities among strains of Aureobasidium pullulans (de Bary) Arnaud. // Folia microbiol. 1980. Vol. 25. № 1. P.68—73.

199. Chamier A.-C. Cell-wall-degrading enzymes of aquatic hyphomycetes: a review//Bot. J. Linn. Soc. 1985. Vol. 91. P.67—81.

200. Chamier A.-C., Dixon P.A., Archer S.A. The spatial distribution of fungi on decomposing alder leaves in a fresh water stream // Oecologia (Berlin). 1984. Vol. 64. P.92—103.

201. Chang H.S., Hsieh S.-Y. Freshwater ascomycetes of Taiwan // 6th Int. Mar. Mycol. Symp. (Incorp. Freshwater Mycol.): Meer. Brit. Mycol. Soc., Portsmouth, 8—15 July, 1995: Programme and Abstr. Portsmouth, 1995. P.41.

202. Chauvet E., Suberkropp K. Temperature and sporulation of aquatic hyphomycetes //Appl. Environm. Microbiol. 1998. Vol. 64. №4. P.l522—1525.

203. Chrowdhry P.N., Aggarwal G.P. Studies on distribution of some aquatic fungi in India // Indian. Phytopathol. 1980a. Vol. 33. № 1. P.107—109.

204. Chrowdhry P.N., Aggarwal G.P. Studies in seasonal variations of aquatic fungi from Delhi//Indian. Phytopathol. 1980b. Vol. 33. №4. P.614—615.

205. Cifeiri R. Osservazioni ecologiche su Ifomiceti acquatici // Omagu Lui Traian Savulesku cuprilejul implinirii a 70 de ani. Bucuresti: Acad. Rep. Pop. Roman. 1959. P.157—162.

206. Clausz J.C. Periods of activity of water molds in a North Carolina lake // Ecol. Stud. 1974. Vol. 8. № 1. P.191—203.

207. Collier K.J., Ball O.J., Graesser A.K., Main M.R., Winterbourn M.J. Do organic and anthropogenic acidity have similar effects on aquatic fauna? // Oikos. 1990. Vol. 59. P.33—38.

208. Collins V.G., Willoughby L.G. The distribution of bacteria and fungal sporesin Blelham Tarn with particular reference to an experimental overturn // Archiv fur Microbiol. 1962. Bd. 43. Hf. 3. S. 294—307.

209. Conway K.E., Kimbrough J. W. A new Doratomyces from waterhyacinth // Mycotaxon. 1975. Vol. 2. № 1. P.127—131.

210. Crane J.L. Freshwater Hyphomycetes of the Nothern Appalachian Highland including New England and three coastal plain states // Amer. J. Bot. 1968. Vol. 55. №8.P.996—1002.

211. Crane J.L. Illinois fungi. II. A new species of Phialocephala // Trans. Brit. My col. Soc. 1971. Vol. 56. Pt. 1. P.160—163.

212. Crane J.L. Illinois fungi. 4. A new species of Endophragmia and two additional state records // Mycologia. 1972. Vol. 64. № 3. P.657-662.

213. Crane J.L., Schoknecht J.D. Hyphomycetes from freshwater swamps and hammocks // Can. J. Bot. 1982. Vol. 60. № 4. P.369—378.

214. Crane J.L., Shearer C.A. Two new species of Trichocladium (Hyphomycetes) from submerged wood // Mycologia. 1978. Vol. 70. № 4. P.866—874.

215. Cunnel G.J. Some picnidial fungi on Carex // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1956. Vol. 39. Pt. 1. P.21—47.

216. Cunnel G J. Stagonospora spp. on Phragmites communis Trin. // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1957. Vol. 40. Pt. 4. P.443—455.

217. Cunnell G.J. On Robillardia phragmites sp. nov. // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1958. Vol. 41. Pt. 3. P.405—412.

218. Czeczuga B. Aquatic fungi of twelve Augustow Lakes with reference to the chemistry of the environment //Acta mycol. 1994a. Vol. 29(2). P.217—227.

219. Czeczuga B. Studies of aquatic fungi. 17. Aquatic fungi of Lake Hancza in the Suwalki Scenic lakes and some adjacent lakes (northeastern Poland) // Acta hydrobiol. 1994b. Vol. 36. № 3. P.371—385.

220. Czeczuga В., Orlowska M., Woronowicz L. Studies of aquatic fungi. X. Some rare species Hyphomycetes in North-Eastern Poland // Acta mycol. 1989 (1990). Vol. 25. №2. P.5—20.

221. Dal Bello G.M., Romagosa F.O. Septoria andropogonia JJ.Devis: agente causal de la mancha de la hoja sobre Agrostis platensis L.R.Parodi // Rev. Fac. agron. Univ. nac. La Plata. 1992. Vol. 68. P.77—78.

222. Dasgupta S.N., Rachel J. Additions to our knowledge of the zoosporic fungi // Indian Phytopathol. 1990. Vol. 43. № 4. P.564—567.

223. Descals E., Fisher P.J., Webster J. The Hymenoscyphus teleomorph of Geniculospora grandis //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1984. Vol. 83. P.541—546.

224. Descals E., Webster J. Hyaloscypha: perfect state of Clathrosphaerina zalew-skii //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1976. Vol. 67. Pt. 3. P.525—528.

225. Descals E., Webster J. Miladina lechithina (Pezizales), the ascigerous state of Actinospora megalospora//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1978. Vol. 70. P.466—472.

226. Dick M.W. The ecology of Saprolegniaceae in lentic and litoral muds with a general theory of Fungi in the lake ecosystem // J. of Gen. Microbiol. 1971. Vol. 65. P.325—337.

227. Dyko В .J., Sutton B.C. Two new genera of water-borne coelomycetes from submerged leaf litter//Nova Hedwigia. 1978. Bd. 29. P.167—178.

228. Eestijarved. Tallinn: Valgus, 1968.548 lk.

229. El-Dohob S.M., Ali B.Z. Fungal populations inhabiting polluted water of the river Shatt Al-Arab and its creeks at Basrah, Iraq // J. Univ. Kuwait (Sci.). 1981. Vol. 8. P.235—240.

230. El-Gholl N.E., Proffer T.J., Schubert T.S. Cercospora osirise sp. nov., the cause of a spot disease on emersed leaves of Echinodorus osiris in Florida // Mycotaxon. 1992. Vol. 43. P.261—270.

231. El-Gindy A. A. Phylloplane mycoflora of Mentha viridis L., M. arvensis Dc. and M. piperita L. // Zbl. Mikrobiol. 1990. Bd. 145. № 3. P.229—233.

232. El-Hissy F.T., Moharram A.M., El-Zayat S.A. Studies on the mycoflora of Aswan high dam lake, Egypt: monthly variations // J. Basic Microbiol. 1990. Vol. 30. №2.P.81—94.

233. El-Hissy F.T., Khallil A.M.A. Studies on aquatic fungi in delta region (Egypt) // Zbl. Mikrobiol. 1989a. Bd. 144. №6. P.421—432.

234. El-Hissy F., Khallil A.M. Combined effects of salinity and temperature on some morphological aspects of four zoosporic fungi // J. Basic Microbiol. 1989b. Vol. 29. №5. P.281—289.

235. El-Naqdy M.A., Abdel-Hafez S.I.I. Occurrence of zoosporic and terrestrial fungi in some ponds of Kharga Oases, Egypt // J. Basic Microbiol. 1990. Vol. 30. №4. P.233—240.

236. El-Sharouny H.M.M. Phyllosphere fungi of Myriophyllium spicatum growing in the Nile water of Egypt // Trop. Ecol. 1988. Vol. 29. № 2. P.33—40.

237. El-Sharouny H.M.M., Moubasher A.H., Badran R.A. Cellulose inhabitingfungi in the Nile mud receiving city refuses in upper Egypt // Acta mycol. 1989. Vol. 25.№1.P.131—139.

238. Emerson R., Cantino E.C. The isolation, growth, and metabolism of Blastocladia in pure culture // Am. J. Botany. 1948. Vol. 35. P. 157—171.

239. Esayan A.G. The application of information — search system «Grib» for the analysis of micromycetes in hydrocoenosis of the Armenian SSR // 10th Congr. of Eur. Mycol., Tallinn, Estonian SSR, Aug., 1989: Abstr. Tallinn, 1989. P.30.

240. Esho R.T., Benson-Evans K. Studies on the sewage fungus complex in the River Ely, South Wales, U.K. // Nova Hedwigia. 1983. Bd. 37. № 2—3. P.519—534.

241. Field J.I., Webster J. Anaerobic survival of aquatic fungi // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1983. Vol. 81. Pt. 3. P.365—369.

242. Field J.I., Webster J. Effects of sulphide on survival of aero-aquatic and aquatic Hyphomycetes//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1985. Vol. 85. Pt. 2. P. 193—199.

243. Findlay S. E., Arsiffi T. Microbial growth and detritus transformations during decomposition of leaf litter in a stream // Freshwater Biol. 1989. Vol. 21. № 4. P.261— 269.

244. Firdaus-e-Bareen, Iqbal S.H. Seasonal occurrence of freshwater hyphomycetes on submerged fallen leaves in canal waters // Can. J. Bot. 1994. Vol. 72. P. 1316— 1321.

245. Fischl G. A Balaton mocsdri novenyein elofordul6 mikroszkopikus gombafajok // Novenyvedelem. 1995. Vol. 31. № 5. P.229—232.

246. Fischl G., Ban R., Czeglet P., Szab6 J. Pathogenic fungi on uliginal plants ofKis-Balaton conservation area// Proc. Conf. «Res., Conserv., Manag.», Aggtelek, 1-5 May, 1996. Sopron, 1997. Vol. 1. P.179—183.

247. Fisher P.J. New method of detecting and studying saprophytic behaviour of aero-aquatic hyphomycetes from stagnant water//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1977. Vol. 68. Pt. 3. P.407—411.

248. Fisher P.J. Survival of aero-aquatic hyphomycetes on land // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1978. Vol. 71. Pt. 4. P.419^23.

249. Fisher P J. Colonization of freshly abscided and decaying leaves by aero-aquatic hyphomycetes //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1979. Vol. 73. Pt. 1. P.99—102.

250. Fisher P.J., Sharma P.D., Webster J. Cellulolytic ability of aero-aquatic hyphomycetes //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1977. Vol. 69. P.495—520.

251. Fisher P.J., Webster J. Effect of oxygen and carbon dioxide on growth offour aero-aquatic hyphomycetes // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1979. Vol. 72. Pt. 1. P.57—61.

252. Fisher P.J., Webster J. Ecological studies on aero-aquatic hyphomycetes // The fungal community: its organization and role in the ecosystem (Eds. Wicklow D.T., Carrol G.C.). New York: Marcel Dekker, 1981. P.709—730.

253. Gaur S., Singhal P.K., Hasija S.K. Relative contribution of bacteria and fungi to water hyacinth decomposition // Aquat. Bot. 1992. Vol. 43. № 1. P.l—15.

254. Gessner M., Chauvet E. Importance of stream microfungi in controlling breakdown rates of leaf litter //Ecology. 1994. Vol. 75.№6. P.1807—1817.

255. Gessner M., Chauvet E. Growth and production of aquatic hyphomycetes in decomposing leaf litter // Limnol. Oceanogr. 1997. Vol. 42. № 3. P.496—505.

256. Gessner M.O., Suberkropp K., Chauvet E. Decomposition of plant litter by fungi in marine and freshwater ecosystems // The Mycota. IV. Environmental and microbial relationships. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag, 1977. Р.ЗОЗ—322.

257. Gessner M.O., Thomas M., Jean-Louis A.-M., Chauvet E. Stable succes-sional patterns of aquatic hyphomycetes on leaves decaying in a summer cool stream // Mycol. Res. 1993. Vol. 97. Pt. 2. P.163—172.

258. Glen-Bott J.I. Helicodendron giganteum n. sp. and other aerial-sporing hyphomycetes of submerged dead leaves//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1951. Vol. 34. Pt. 3. P.275—279.

259. Glen-Bott J.I. On Helicodendron tabulosum and some similar species // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1955. Vol. 38. Pt. 1. P. 17—30.

260. Godeas A.M., Arambarri A.M. Helicoon septatissimum sp. nov., a new species from Tierra del Fuego (Argentina) // Mycotaxon. 1996. Vol. 60. P.481—484.

261. Godfrey B.E.S., Mehdi F.S. Microfungi of flooded gravel pits // Bull. Brit. Mycol. Soc. 1982. Vol. 16. №2. P.155—158.

262. Goh T.-K., Hyde K.D. Helicoon gigantisporum sp. nov., and an emended key to the genus//Mycol. Res. 1996. Vol. 100. Pt. 12. P. 1485—1488.

263. Goos R.D. Fungi with a twist: the helicosporous hyphomycetes // Mycologia. 1987. Vol. 79. № 1. P.l—22.

264. Goos R.D. On the anamorph genera Helicosporium and Drepanospora // Mycologia. 1989. Vol. 81. № 3. P.356—374.

265. Goos R.D., Abdullah S.K., Fisher P.J., Webster J. The anamorph genus Helicodendron//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1985. Vol. 84. Pt. 3. P.423—435.

266. Green J. Parasites and epibionts of Cladocera // Trans. Zool. Soc. Lond. 1974. Vol. 32. Pt. 6. P.417—515.

267. Grove W.B. British stem- and leaf-fungi (Coelomycetes). 1. Cambridge University Press, 1935.488 p.

268. Grove W.B. British stem- and leaf-fungi (Coelomycetes). 2. Cambridge University Press, 1937.406 p.

269. Gruyter J. de, Noordeloos M.E. Contribution towards a monograph of Phoma (Coelomycetes) -1.1. Section Phoma: Taxa with very small conidia in vitro // Persoonia. 1992. Vol. 15. Pt. 1. P.71—92.

270. Gulis V.I. Preliminary list of aquatic hyphomycetes from central Belarus // Mycotaxon. 1999. Vol. 72. P.227—230.

271. Gulis V.I., Marvanova L. Filosporella exilis sp. nov. on submerged plant debris from Belarus // Mycotaxon. 1998. Vol. 68. P.313—320.

272. Gulis V.I., Stephanovich A.I. Antibiotic effects of some aquatic hyphomycetes // Mycol. Res. 1999. Vol. 103. Pt. 1. P.l 1—115.

273. Gupta A.K., Mehrotra R.S. Seasonal periodicity of aquatic fungi in tanks at Kurukshetra, India // Hydrobiologia. 1989. Vol. 173. № 3. P.219—229.

274. Gupta P.C. Parasitic fungi on medicinal plants from India. II. Some pycnidial and perithecial forms // Mycopathol. et Mycol. appl. 1974. Vol. 54. № 1. P. 127—130.

275. Harley J.L. Fungi in ecosystems //J. Appl. Ecol. 1971. № 3. P.627—642.

276. Harrison J.L., Gareth E.B. J. Salinity tolerance of Saprolegnia parasitica Coker // Mycopathol. et Mycol. appl. 1971. Vol. 43. № 3-4. P.297—307.

277. Harvey J.V. Relationship of aquatic fungi to water pollution // Sewage and industrial wastes. 1952. Vol. 24. №9. P.l 159—1164.

278. Hedrick L.R., Soyugeng M. Yeasts and moulds in waters and sediments of Lake Ontario // Proc. 10th Conf. on Great Lakes Research. 1967. P. 10—30.

279. Hein В., Scheuer C. Neue Dermateaceen (Ascomycetes) aufGramineen, Cyperaceen und Juncaceen aus den Alpen // Sydowia, Ann. Mycol. Ser. II. 1986. Vol. 38. P.125—135.

280. Helander M.L., Rantio-Lehtiniaki A. Effects of watering and simulated acid rain on quantity of phyllosphere fungi of birch leaves // Microbial Ecol. 1990. Vol. 19. № 1. C. 119—125.

281. Hennebert G.L. New species of Spirosphaera // Ttans. Brit, mycol. soc. 1968. Vol. 51. P. 13—24.

282. Hesse M., Lysek G., Klodt M. Phylloplane inhabiting fungi on Ilex aquifo-lium L.// Nova Hedvigia. 1989. Vol. 49. № 3-^t. P.469-^74.

283. Hornby D. Akenomyces costatus sp. nov. and the validation of Akenomyces Arrnaud //Trans. Brit, mycol. soc. 1984. Vol. 82. P.653—664.

284. Hughes G.C. Seasonal periodicity of the Saprolegniaceae in the southeastern United Sstates // Trans. Brit, mycol. soc. 1962. Vol. 45. P.519—531.

285. Ingold C.T. Aquatic hyphomycetes of decaying alder leaves // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1942. Vol. 25. P.339-^17.

286. Ingold C.T. Further observation on aquatic hyphomycetes of decaying leaves //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1943. Vol. 26. P.104—115.

287. Ingold C.T. Aquatic Ascomycetes: Ceriospora caudaesuis n, sp. and Ophiobolus typhae//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1951. Vol. 34. Pt. 2. P.210—215.

288. Ingold C.T. Aquatic Ascomycetes: Discomycetes from lakes // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1954. Vol. 37. Pt. 1. P.l—18.

289. Ingold C.T. Aquatic Ascomycetes: further species from the English lake district //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1955. Vol. 38. Pt. 2. P.157—168.

290. Ingold C.T. Polycladium equiseti gen. nov., sp. nov.: An aquatic hypho-mycete on Equisetum fluviatile //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1959. Vol. 42. P.l 12—114.

291. Ingold C.T. An illustrated guide to aquatic and waterborne Hyphomycetes (Fungi Imperfecti) with notes on their biology // Freshwater Biol. Assoc., Sci. Publ. 1975. Vol. 30. P.l—96.

292. Ingold C.T., Chapman B. Aquatic Ascomycetes. Loramyces junicola Weston and L. macrospora n. sp. // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1952. Vol. 35. Pt. 4. P.268—272.

293. Iqbal S.H., Webster J. Aquatic hyphomycete spora of the River Exe and its tributaries // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1973. Vol. 61. Pt. 2. P.331—346.

294. Iqbal S.H., Webster J. Aquatic hyphomycete spora of some Dartmoor streams //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1977. Vol. 69. Pt. 2. P.233—241.

295. Jong S.C., Davis E.E. Contribution to the knowledge of Stachybotrys and Memnoniella in culture // Mycotaxon. 1976. Vol. III. № 3. P.409—485.

296. Jooste W.J., RoldanA., van der Merwe W.J.J., Honrubia M. Articulospora proliferata sp. nov., an aquatic hyphomycete from South Africa and Spain // Mycol. Res. 1990. Vol. 94. Pt. 7. P.947—951.

297. Joye G.F., Mitchell J.K. Biological control of aquatic weeds with plant pathogens // 197th ACS Nat. Meet., Dallas, Tex., Apr. 9-14, 1989: Abstr. Pap. Washington (D.C.)., 1989. P.64.

298. Kaiser J., Rajagopal D. Studies on the mycoflora of water hyacinth: their individual and combined effects on the phyllosphere // Indian J. Microbiol. 1986. Vol. 26. № 1-2. P.70—77.

299. Kaushik N.K., Hynes H.B.N. The fate of dead leaves that fall into streams // Archiv fur Hydrobiol. 1971. Bd. 68. P.465—515.

300. Kegel W. Varicosporium elodeae, ein Wasserpilz mit auffallender Koni-dienbildung // Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1906. Bd. 24. S. 213—216.

301. Khulbe R.D. Occurence of watermolds in some lakes of Naini Tal, Kuman Hill, India // Hydrobiologia. 1980. Vol. 74. № 1. P.77—80.

302. Khulbe R.D. Distribution of aquatic fungi in relation to some ecological factors // Geobios. 1981. Vol. 8. № 5. P.214—216.

303. Kirby J.J.H., Webster J., Baker J.H. A particle plating method for analisis of fungal community composition and structure // Mycol. Res. 1990. Vol. 94. Pt. 5. P.621—626.

304. Kobayasi Y., Hiratsuka N., Otani Y., Tubaki K., Udagawa S., Sugiyama J., Konno K. Mycological studies of the Angmagssalik region of Greenland // Bull. Nat. Sci. Mus. Tokyo. 1971. Vol. 14. № 1. P.l—96.

305. Kobayasi Y., HiratsukaN., KorfR.P., Tubaki K., Aoshima K., Soneda M., Sugiyama J. Mycological studies of the Alaskan Arctic // Ann. Rep. Inst. Fermentation. Osaka. 1967. №3. P.l—138.

306. Kiran U. Chytrids from leaf litter in ponds of Varanasi: Genus Sphaerita // Proc. Nat. Acad. Sci., India. B. 1993. Vol. 63. № 4. P.465-466.

307. Klich M.A., Tiffany L.H. Distribution and seasonal occurence of aquatic

308. Saprolegniaceae in Northwest Iowa // Mycologia. 1985. Vol. 77. № 3. P.373— 380.

309. Kok C.J., Haverkamp W., van der Аа H. A. Influence of pH on the growth and leaf-maceration ability of fungi involved in the decomposition of floating leaves of Nymphaea' alba in an acid water // J. Gen. Microbiol. 1992. Vol. 138. P.103-108.

310. Konig J., Kuhlmann J., Thienemann A. Die chemische Zusammensetzung und das biologische Verhalten der Gewasser // Landwirtsch. Jahrb'ucher. 1911. Bd. 40. № 3-^. S. 409—474.

311. Kornillowicz T. The dynamics the quantitative changes of mycoflora in two lakes differing in trophicity (Poland). I. // Acta Mycol. 1994a. Vol. 29. № 1. P.23—31.

312. Kornillowicz T. The changes in the number and physiological properties of fungi in lakes differing in trophicity//Acta Mycol. 1994b. Vol. 29. № 1. P.33—42.

313. Kornillowicz T. The dynamics of quantitative changes of mycoflora in two lakes differing in trophicity (Poland). II. //Acta Mycol. 1994c. Vol. 29. № 2. P. 159— 168.

314. Krause R. Bildung der Oogonien bei Saprolegnia ferax (Gruith.) Thuret. // Arch. Microbiol. 1960. Bd. 36. S. 373—386.

315. Kuehn K.A., Koehn R.D. A mycofloral survey of an artesian community within the Edwards Aquifer of central Texas // Mycologia. 1988. Vol. 80. № 5. P.646— 652.

316. KuthubutheenA.J., Liew G.M., Nawawi A. Nawawia nitida anam. sp. nov. (Hyphomycetales) and further records of Nawawia filiformis from Malaysia // Can. J. Bot. 1992a. Vol. 70. № 1. P.96—100.

317. Kuthubutheen A.J., Nawawi A. New litter-inhabiting hyphomycetes from Malaysia: Isthmophragmospora verruculosa, Iyengarina asymmetrica and Iyengarina furcata// Can. J. Bot. 1992b. Vol. 70. № 1. P. 101—106.

318. Kuthubutheen A.J., Nawawi A. Three new and several interesting species of Sporidesmiella from submerged litter in Malaysia // Mycol. Res. 1993. Vol. 97. Pt. 11.P.1305—1314.

319. Kuthubutheen A J., Nawawi A. Paraciyptophiale kamaruddinii gen. et sp. nov. from submerged litter in Malaysia // Mycol. Res. 1994a. Vol. 98. Pt. 1. P. 125—126.

320. Kuthubutheen A.J., Nawawi A. Henicospora longissima sp. nov., Obelio-spora triappendiculata sp. nov. and other hyphomycetes from Malaysia // Mycol. Res. 1994b. Vol. 98. Pt. 6. P.677—685.

321. Landolt E. The family of Lemnaceae — a monographic study. Vol. 1 // Biosystematic investigations in the family of duckweeds (Lemnaceae). Vol. 2. (№ 71). Zurich: Stiftung Rubel, 1986. 551 p.

322. Legault D., Dessureault M., Laflamme G. Mycoflora of Pinus resinosa needls. II. Epiphytic fungi // Can. J. Bot. 1989. Vol. 67. № 7. P.2061—2065.

323. Leuven R.S.E.W., Wolfs W.J. Effects of water acidification on the decomposition of Juncus bulbosus L.//Aquatic Bot. 1988. Vol. 31. P.57—81.

324. Linder D.H. A monograph of the helicosporous Fungi Imperfecti // Ann. Mo. Bot. Gard. 1929. Vol. 16. P.227—388.

325. Linder D.H. Brief notes on the Helicosporeae with descriptions of four new species // Ann. Mo. Bot. Gard. 1931. Vol. 18. P.9—16.

326. Lund A. Studies on Danish freshwater Phycomycetes and notes on their occurrence particularly relative to the hydrogen ion concentration of the water // Mem. Acad. Roy. Sci. Danemark, Sect. Sci. 9. 1934. Vol. 6. P.l—97.

327. Lund J.W.G. Fungal diseases of plankton algae // Biological aspects of the transmission of disease. Edinburg and London: Oliver and Boyd, 1957. P. 19—23.

328. Maetmets A. On Estonian lake types and main trends of their evolution // Estonian wetlands and their life. Tallinn: Valgus, 1974. P.29—62.

329. Maemets A. Eesti NSVjarvedja nende kaitse. Tallinn: Valgus, 1977.264 lk.

330. Mallea M. Fungi from a Mediterranean salt-pan // Bot. Mar. 1992. Vol. 35. № 3. P.283—290.

331. Meyers S.P., Ahearn D.G., Cook W.L. Mycological studies of Lake Cham-plain//Mycologia. 1970. Vol. 52. P.505—515.

332. Michaelides J., Kendrick S. The bubble-trap propagules of Beverwykella, Helicoon and other aero-aquatic fungi // Mycotaxon. 1982. Vol. 14. № 1. P.247— 260.

333. Misra J.K. Geofungi inhabiting alkaline ponds // Geobios. 1983. Vol. 13. № 1. P.98—110.

334. Mishra R.C. Distribution of microfungi in the transitional zone of a subtropical lake in India // Can. J. Bot. 1995. Vol. 73. № 3. P.512—516.

335. Mishra R.R., Tiwari B.K. Fungi and bacteria associated with pine needles and teak leaf litters during processing in a freshwater lake // Hydrobiologia. 1983. Vol. 102. P.123—129.

336. Moharram A.M., El-Hissy F.T., El-Zayat S.A. Studies on the mycoflora of

337. Aswan high dam lake, Egypt: vertical fluctuations //J. Basic Microbiol. 1990. Vol. 30. №3.P.197—208.

338. Monod M. Monographie taxonomique des Gnomoniaceae // Beih. zur Sydowia. 1983. №9. P.l—315.

339. Monoharachary C., Karan D., Raghuveer R.P. Ecological distribution of certain Fungi imperfecti // New Bot. 1975. Vol. 2. № 2. P. 154—155.

340. Monoharachary C., Madhusudan R.M. Ecological studies on hyphomycetes associated with submerged leaves from India // Indian Phytopath. 1983. Vol. 36. № 1. P.62—65.

341. Morgan-Jones G. Studies in the genus Phoma. XIV. Concerning Phoma herbarum, the type species, a widespreal saprophyte // Mycotaxon. 1988. Vol. 33. P.81—90.

342. Morrison S.J., King J.D., Bobbie K.J., Bechtold R.E., White D.C. Evidence for microfloral succession on allochthonous plant litter in Apalachicola Bay, Florida // Mar. Biol. 1977. Vol. 41. P.229—240.

343. Miiller E., von Arx J. A. Die Gattungen der didymosporen Pyrenomyceten // Beitr. Krypt. Fl. Schweiz. 1962. Bd. 11. Hf. 2. S. 1—922.

344. Muller-Haeckel A., Marvanovd L. Periodicity of aquatic hyphomycetes in the subarctic // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1979. Vol. 73. Pt. 1. P. 109—116.

345. Muller-Haeckel A., Marvanova L. Hyphomycetes in the mouth of the river Angeran and their fate in the estuary // Coastal Research in the Gulf of Bothnia. Hague: Junk, 1982. P.105—114.

346. Nakagiri A., Ito T. Conidium development of an aero-aquatic hyphomycete, Peyronelina glomerulata // Res. Commun./ Inst. Ferment., Osaka, 1977. № 18. P.57— 62.

347. Nawawi A. Some interesting hyphomycetes from water // Mycotaxon. 1985. Vol. 24. P.217—226.

348. Nawawi A. Diplocladiella appendiculata sp. nov. a new aero-aquatic hyphomycete // Mycotaxon. 1987. Vol. 28. № 2. P.297—302.

349. Nawawi A., Kuthubutheen A.J. Clathrosporium intricatum gen. et sp. nov. an aero-aquatic hyphomycete//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1987. Vol. 89. Pt. 3. P.407— 411.

350. Nawawi A., Kuthubutheen A.J. A new taxon in Colispora (Hyphomycetes) from Malaysia // Mycotaxon. 1989. Vol. 34. № 2. P.497—501.

351. Nawawi A., Kuthubutheen A J. Nidulispora gen. nov., a hyphomycete genus with crateriform conidia // Mycotaxon. 1990. Vol. 36. P.329—336.

352. Nawawi A., Kuthubutheen A.L. Jerainum triquetrum gen. et sp. nov., a new hyphomycete with muriform and appendaged conidia // Mycotaxon. 1992. Vol. 45. P.409—415.

353. Netherland M.D., Shearer J.F. Integrated use of fluoridone and a fungal pathogen for control of Hydrilla // J. Aquatic Plant Manage. 1996. Vol. 34. P.4—8.

354. Niewolak S. Seasonal changes in number of some physiological groups of microorganism in Ilawa lakes // Pol. Arch. Hydrobiol. 1973. Vol. 20. P.349—369.

355. Nilsson S. A new Danish fungus, Dinemasporium marinum // Bot. Notiser (Lund). 1957. Vol. 110. Fasc. 3. P.321—324.

356. Nilsson S. On some swedish freshwater hyphomycetes // Svensk Botanisk Tidskrift. 1958. Bd. 52. Hf. 2. P.291—318.

357. Nilsson S. Studies on swedish Hyphomycetes. I.// Svensk Botanisk Tidskrift. 1960. Bd. 54. Hf. 3. P.468—476.

358. Nilsson S. Freshwater hyphomycetes: taxonomy, morphology and ecology // Symb. Bot. Ups. 1964. Vol. 18. P.l—130.

359. Nyvall R.F. Fungi associated with purple loosestrife (Lythrum salicaria) in Minnesota // Mycologia. 1995. Vol. 87. № 4. P.501—506.

360. Okane К. Распределение водных фикомицетов и содержание их зооспор в двух ацидотрофных реках Тамагава и Такаматугава // Нихон сэйтай гаккайси. Jap. J. Ecol. 1982. Vol. 31. № 4. P. 405—412 (по резюме).

361. Okane К. Распространение зооспор оомицетов в сфагновом болоте Кокенума в префектуре Акита (Япония)// Нихон сэйтай гаккайси, Jap. J. Ecol. 1986. Vol. 36. № 2. P.93—98 (по резюме).

362. Padgett D.E. Salinity tolerance of an isolate of Saprolegnia australis // Mycologia. 1978. Vol. 70. №6. P.1288—1293.

363. Padgett D.E., Hackney C.T., Sizemore R.K. A technique for distinguishing between bacterial and non-bacterial respiration in decomposing Spartina alterniflora // Hydrobiologia. 1985. Vol. 122. P.l 13—119.

364. Padgett D.E., Heitman W.P. Observation on saprolegniaceous fungi that grow actively on plant detritus submerged in freshwater // J. E.Mitchell Sci. Soc. 1981. Vol. 97. № 1. P.9—13.

365. Pandey R.R. Succession of microfungi on leaves of Psidium guajava L.// Bull. Torrey Bot. Club.//1990. Vol. 117. № 2. P.153—162.

366. Park D. On the ecology of heterotrophic microorganisms in freshwater // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1972. Vol. 58. Pt. 2. P.291—299.

367. Park D. Aquatic hyphomycetes in non-aquatic habitats // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1974. Vol. 63. Pt. 1. P. 183—187.

368. Paterson R.A. Infestation of chytridiaceous fungi on phytoplancton in relation to certain environmental factors // Ecology. 1960. Vol. 41. P.416—424.

369. Paterson R.A. Bentic and planktonic Phycomycetes from Northern Michigan//Mycologia. 1967. Vol. 59. P.405—416.

370. Peerally A. Cylindrocladium hawksworthii sp. nov. pathogenic on water-lilies in Mauritius // Mycotaxon. 1991. Vol. 40. P.367—376.

371. Perrot P.E. The ekology of some aquatic Phycomycetes // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1960. Vol. 43. Pt. 1. P.19—30.

372. Petersen H.E. An account of Danish freshwater — Phycomycetes, with biological and systematical remarcs //Ann. Mycologici. 1910. Vol. 8. P.494—560.

373. Petrak F. Beitrage zur Pilzflora Sudost-Galiziens und der Zentralkarpaten // Hedwigia. 1925. Bd. 64. № 4.

374. Petrovic M., Briski F., Kastelan-Macan M. Biosorption and biodegradation of humic substances by Trichoderma viride // Prehramb.-tehnol.: biotehnol. rev. 1993. Vol. 31.№4. P. 145—149.

375. Polunin N.V.C. The decomposition of emergent macrophytes in fresh water //Adv. Ecol. Res. 1984. Vol. 14. P.l 15—166.

376. Premads P.D., Kendrick B. Colonization of autumn-shed leaves by four aero-aquatic fungi // Mycologia. 1991. Vol. 83. № 3. P.317—321.

377. Programme draft «Ecology and protection of East European tundras (EET)». Komi Sci. Centre of Ural Division of Rus. Acad, of Sci. Syktyvkar, 1992. 28 p.

378. Pugh G. J.F. Leaf litter fungi found on Carex paniculata L.// Trans. Brit. Mycol. Soc. 1958. Vol. 41. Pt. 2. P.185—195.

379. Pugh G.J.F., Mulder J.L. Mycoflora associated with Typha latifolia // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1971. Vol. 57. Pt. 2. P.273—282.

380. Quinn J.P. Seasonal occurrence of yeast and other fungi in freshwater lake //Trans. Brit. Mycol. Soc. 1984. Vol. 83. P.53—58.

381. Rankovic В. Population of fungi in some reservoirs in Serbia // Cryptogamie. Mycol. 1998. Vol. 19. № 1—2. P.79—86.

382. Ranzoni F.V. The aquatic hyphomycetes of California // Farlowia. 1953. Vol. 4.№3.P.353—398.

383. Ranzoni F.V. The perfect stage of Flagellospora penicilloides //Amer. J. Bot. 1956. Vol. 43. P.13—17.

384. Ranzoni F.V. Aquatic hyphomycetes from Hawaii // Mycologia. 1979. Vol. 71. №4. P.786—795.

385. Rao M.M., Manoharachary C. Ecology of freshwater Phycomycetes from Andhra Pradesh, India // Indian Phytopathol. 1983. Vol. 36. № 3. P.431—437.

386. Rejmankova E., Blackwell M., Culley D.D. Dynamics of fungal infection in duckweeds (Lemnaceae)// Veroff. Geobot. Inst. ETH. Stiftung Rubel. Zurich. 1986. №87. P. 178—189.

387. Roberts R.E. A study of the distribution of certain members of the Sapro-legniales // Trans. Brit. Mycol. Soc. 1963. Vol. 46. P.213—224.

388. Rohfritsch O. A fungus associated gall midge, Lasioptera arundinis (Schiner), on Phragmites australis (Cav.) Trin.// Bull. Soc. Bot. Fr. Lett. Bot. 1992. Vol. 139. № 1. P.45—59.

389. Roldan A, Honrubia M. Dos celomicetos, nuevos para la flora Espanola, aislados en medio acuatico // An. Jard. Bot. Madrid. 1989. Vol. 47. № 1. P.3—9.

390. Rozek C.E., Timberlake W.E. Optimum conditions for synchronous oospore production in crosses of Achlya ambisexualis // Exp. Mycol. 1979. № 3. P.378—381.

391. Salama A.M., Tahany M.A., Abdel-Ellil A.H. Effect of cement dust as a pollutant on the phylloplane fungi of Ficus nitida at Helwan, Egypt // Egypt. J. Microbiol. 1988. Vol. 23. №2. P.329—342.

392. Sanders P.F., Webster J. Survival of aquatic hyphomycetes in terrestrial situations //Trans. Brit, mycol. Soc. 1978. Vol. 71. Pt. 2. P.231—237.

393. Schoenlein-Crusius I.H., Amorim P.C.L., Milanez A.I. Sucessao fungica em foliias de Quercus robur L. (Carvalho) submersas em um lago situado no municipio de Itapecerica da Serra, SP //Rev. Microbiol. 1990. Vol. 21. № 1. P.61—67.

394. Schoenlein-Crusius I.H., Milanez АЛ. Sucessao fungica em folhas de Ficus microcarpa submersas no lago frontal situado no Parque Estadual das Fontes do Ipiranga, Sao Paulo / SP // Rev. Microbiol. 1989. Vol. 20. № 1. P.95—101.

395. Schol-Schwarz M.B. Revision of the genus Phialophora (Moniliales)// Persoonia. 1970. Vol. 6. Pt. 1. P.59—94.

396. Schuchardt В., Holfeld H. On Podochytrium cornutum infecting the diatom Actinocyclus normanii in the inner part of the Weser Estuary // Nova Hedvigia. 1991. Vol. 52. № 3—4. P.337—347.

397. Scott W.W. A monograph of the genus Aphanomyces // Virginia Agr. Exp. Stat. Techn. Bull. 1961. Vol. 151.95 p.

398. Shaw D.E., Sutton B.C. A new aero-aquatic hyphomycete from Papua New Guinea and Australia // Bot. J. Linn. Soc. 1985. Vol. 91. P.25—36.

399. Shearer C.A. Biodiversity of freshwater ascomycetes // 6th Int. Mar. Mycol. Symp. (Incorp. Freshwater Mycol.): Meet. Brit. Mycol. Soc., Portsmouth, 8—15 July, 1995: Programme and Abstr. Portsmouth, 1995. P.31.

400. Shearer C.A. Fungi of Chesapeake Bay and its tributaries. III. The distribution of wood-inhabiting Ascomycetes and Fungi Imperfecti of the Patuxent River//Am. J. Bot. 1972. Vol. 59. P.961—969.

401. Shearer C.A., Crane J.L. Illinois fungi XI. Nakataea serpens sp. nov., an aero-aquatic hyphomycete//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1979. Vol. 73. Pt. 2. P.370— 372.

402. Shearer C.A., Crane J.L. Illinois fungi XII. Fungi and myxomycetes from wood and leaves submerged in southern Illinois swamps // Mycotaxon. 1986. Vol. 25. №2.P.527—538.

403. Shearer C.A., Crane J.L., Miller M.A. Illinois fungi 6. Two new species of wood-inhabiting hyphomycetes from freshwater // Mycologia. 1976. Vol. 68. № 1. P. 184—189.

404. Simard R.E., Blackwood A.C. Ecological studies on yeast in the St.Lawrence River//Can. J. Microbiol. 1971. Vol. 17. P.353—357.

405. Singh A, Wadhwani K. Adaptation of aero-terrestrial fungi in aquatic habitat // Geobios. 1986. Vol. 13. № 5. P.212—215.

406. Singh N, Musa T.M. Terrestrial occurence and the effect of temperature on growth, sporulation and spore germination of some tropical aquatic hyphomycetes // Trans. Brit, mycol. Soc. 1977. Vol. 68. Pt. 1. P.103—106.

407. Smith S.N., Rimmer G.J. Saprolegniosis in the carp Cyprinus carpio // Bull, of the Brit. Mycol. Soc. 1981. Vol. 16. № 1. P.l—12.

408. Smith S.N., Armstrong R.A., Rimmer GJ. Influence of environmental factors on zoospores of Saprolegnia diclina //Trans. Brit, mycol. Soc. 1984. Vol. 82. Pt. 3. P.413—421.

409. Sneh B, Stack J. Selective medium for isolation of Mycoleptodiscus terrestris from soil sediments of aquatic environments //Appl. and Environ. Microbiol. 1990. Vol. 56. №11. P.3273—3277.

410. Sparrow F.K. Aquatic Phycomycetes. Ann Arbor: Univ. of Michigan Press, 1960.1188 р.

411. Sparrow F.K. Ecology of freshwater fungi // The fungi. Vol. 3. New York and London: Acad. Press, 1968. P.41—93.

412. Sparrow F.K. Observations on chytridiaceous parasites of phanerogams. XXV. Physoderma johnsii Sparrow, a parasite of Caltha palustris L. // Amer. J. Bot. 1976. Vol. 63. № 5. P.602—607.

413. Sridhar K.R., Kaveriappa K.M. Occurrence and survival of aquatic hyphomycetes under terrestrial conditions //Trans. Brit, mycol. Soc. 1987. Vol. 89. Pt. 4. P.606—609.

414. Stecion M.M. Presencia de hongos zoosporicos en Rio Santiago у afluentes (Provincia de Buenos Aires, Argentina) Mastigomycotina // Darwiniana. 1993. Vol. 32. P.265—270.

415. Suberkropp K. Effect of temperature on seasonal occurence of aquatic hyphomycetes //Trans. Brit, mycol Soc. 1984. Vol. 82. Pt. 1. P.53—62.

416. Suberkropp K. Relationship between growth and sporulation of aquatic hyphomycetes on decomposing leaf litter // Mycol. Res. 1991. Vol. 95. Pt. 7. P.843— 850.

417. Suberkropp K. Aquatic hyphomycete communities // The Fungal Community: its organization and role in the ecosystem. New York: Marcel Dekker, 1992. P.729—747.

418. Suberkropp K., Chauvet E. Regulation of leaf break-down by fungi in streams: influence of water chemistry // Ecology. 1995. Vol. 76, № 5. P. 1433—1445.

419. Suberkropp K, Gessner M., Chauvet E. Comparison of ATP and ergosterol as indicators of fungal biomass associated with decomposing leaves in streams //Appl. Environm. Microbiol. 1993. Vol. 59. № 10. P.3367—3372.

420. Suberkropp К., Klug M.J. Degradation of leaf litter by aquatic hyphomycetes //The Fungal Community: its organization and role in the ecosystem. New York: Marcel Dekker, 1981. P.761—775.

421. Suberkropp K., Klug M.J. Fungi and bacteria associated with leaves during processing in a woodland stream // Ecology. 1976. Vol. 57. № 4. P.707—719.

422. Sutton B.C. The Coelomycetes. Fungi imperfecti with picnidia, acervuli and stromata. Kew: CMI, 1980.696 p.

423. Suzuki S. The diurnal migration of zoospores of aquatic fungi in a shallow lake // Botan. Mag. (Tokyo). 1961a. Vol. 74. P.138—141.

424. Suzuki S. The seasonal changes of aquatic fungi in the lake bottom of Lake Nakanuma // Bot. Mag. (Tokyo). 1961b. Vol. 74. P.30—33.

425. Suzuki S. Some consideration on anaerobic life of aquatic fungi in lake bottom //Japan. J. Ecol. 1961c. №11. P.219—221.

426. Suzuki S., Nimura H. Aquatic Hyphomycetes in lakes of Mt. Hakkoda // J. Jap. Bot. 1960a. Vol. 35. № 9. P.265—268.

427. Suzuki S., Nimura H. The microbiological studies of the lakes of Volcano Bandai. II. Ecological study of aquatic hyphomycetes in the Goshikinuma and Akanuma lake group // Bot. Mag. (Tokyo). 1960b. Vol. 73. № 867. P.360—365.

428. Suzuki S., Nimura H. Relation between the distribution of aquatic hyphomycetes in Japanese lakes and lake types // Bot. Mag. (Tokyo). 1961 a. Vol. 74. № 872. P.51—55.

429. Suzuki S., Nimura H. The aquatic hyphomycetes in the lake of Volcano Shiga//J. Jap. Bot. 1961b. Vol. 36. № 5. P.135—138.

430. Suzuki S., Nimura H. Ecological specificity of some aquatic hyphomycetes in Japan//Jap. J. Ecol. 1962a. Vol. 12. № 5. P.195—197.

431. Suzuki S., Nimura H. Distribution of aquatic hyphomycetes in the inorganic acidotrophic lakes in Japan // Jap. J. Limnol. 1962b. Vol. 23. № 3/4. P. 107—112.

432. Taligoola Т.К., Apinis A.E., Chesters C.G.C. Microfungi colonizing collapsed aerial parts of Phragmites communis Trin. in water//Nova Hedwigia. 1972. Bd. 23. Hf. 2+3. P.465—471.

433. Tan Т.К., Lim G. Effects of water pollution on fungi of submerged organic debris // Mycopathologia. 1983. Vol. 82. № 2. P.121—124.

434. Tan Т.К., Lim G. A comparison of fungi from polluted water // Environm. Pollut. (Ser. A). 1984. Vol. 35. P.57—65.

435. The ecology of aquatic hyphomycetes (Ed. F.Barlocher). Ser. Ecol. stud. Vol. 94. Berlin ets.: Springer-Verlag, 1992.225 p.

436. Thomas K., Chilvers G.A., Norris R.H. Aquatic hyphomycetes from different substrates: substrate preference and seasonal occurrence // Aust. J. Mar. Freshwater Res. 1992. Vol. 43. P.491—509.

437. Thomas M.R., Shattock R.C. Filamentous fungal association in the phyl-loplane of Loliumperrene//Trans. Brit, mycol. Soc. 1986. Vol. 87. Pt. 2. P.255—268.

438. Tiwari B.K., Mishra R.R. Temporal and depth-wise distribution on terrestrial fungi in a freshwater lake // Proc. Indian Nat. Sci. Acad. 1984. В 50. № 2. P.203—210.

439. Traaen T.S. Effect of acidity on decomposition of organic matter in aquatic environments // Ecological impact of acid precipitation. Proceed, of an intern, conf., Sandefjora, Norway, March 11—14,1980. SNSF project. Oslo—As, 1980. P.340—341.

440. Tubaki K. Studies of the Japanese hyphomycetes (III). Aquatic group // Bull, of the Nat. Sci. Mus. (Tokyo). 1957. №41. P.249—268.

441. Tubaki K. On the Japanese aquatic hyphomycetes. Scum and foam group, referring to the preliminary survey of the snow group // Nagaoa. 1960. № 7. P. 15— 28.

442. Tubaki K. An undescribed species of Hymenoscyphus, a perfect stage of Varicosporium//Trans. Brit. Mycol. Soc. 1966. Vol. 49. Pt. 2. P.345—349.

443. Tubaki K. Aquatic sediment as a habitat of Emericellopsis, with a description of an undescribed species of Cephalosporium // Mycologia. 1973. Vol. 65. № 4. P.938—941.

444. Tubaki K. Notes of the Japanese hyphomycetes VII. Cancellidium, a new hyphomycetes genus //Trans. Mycol. Soc. Japan. 1975. Vol. 16. № 4. P.357—360.

445. Tubaki K., Ito Т., Matsuda Y. Aquatic sediment as a habitat of thermophilic fungi //Ann. Micr. 1974. Vol. 24. P. 199—207.449! Tubaki K., Ito N., Matsuda Y., Yano H. Fungus flora of lake sediment // IFO Res. Comm. 1975. Vol. 7. P.37—52.

446. Tur N.M., Vobis G., Gabellone N.A. Presencia de Tetramyxa parasitica (Plasmodiophoraceae) en dos especies de Potamogeton (Potamogetonaceae)// Rev. Mus. La Plata, Bot. 1984. Vol. 13. № 82. P.239—246.

447. Ulfig K. Badania wst^pne nad wystepowaniem dermatofitow i innych grzybow keratinofilnych w osadach rzek i zbiornikow // Acta mycol. 1983 (1985). Vol. 19. №2. P.331—340.

448. Ulfig К. Grzyby keratinofilne w osadach dennych wod powierzchniowych I I Acta mycol. 1987 (1990). Vol. 23. № 2. P.3—12.

449. Ulfig K. Grzyby keratinofilne w osadach dennych zbiornika zaporowego «Przeczyce»//Arch. ochr. srodow. 1989. № 1—2. P.67—71.

450. Ulfig K. Grzyby keratinofilne w srodowisku // Wiad. bot. 1990. Vol. 34. № 4. P.5—10.

451. Ulfig K., Vidal P. A preliminary study on the distribution of keratinophilic fungi in bottom deposits of the Catalonia waters // Stud. bot. 1995. № 13. P. 107—108.

452. Ulken A., Sparrow F.K. Estimation of chytrid propagules in Douglas Lake by the MPN = Pollen grain method // Vefbff. Inst. f. Meersforsch. Bremerhaven. 1968. Bd. XI. S. 83—88.

453. Unestam T. Chitinolytic, cellulolytic and pectinolytic activity in vitro of some parasitic and saprophytic Oomycetes // Physiol. Plant. 1966. Vol. 19. F. 1.

454. Velde G. van der, Heijden L.A. van der, Grunsven P.A. van, Bexkens P.M.M. Initial decomposition of Nymphoides peltata (Gmel.) O.Kuntze (Menyanthaceae), as studied by the leaf-marking method // Hydrobiol. Bull. 1982. Vol. 16. № 1. P.51—60.

455. Voglmayr H. Helicoon myosuroides sp. nov. and Helicoon dendroides sp. nov., two new aero-aquatic hyphomycetes // Mycol. Res. 1997a. Vol. 101. Pt. 3. P.337—340.

456. Voglmayr H. Two new aero-aquatic species of the hyphomycete genus Helicodendron from Austria//PI. Syst. Evol. 1997b. Vol. 205. P.185—193.

457. Voglmayr H. Helicodendron praetermissum sp. nov. and Spirosphaera carici-graminis sp. nov., aero-aquatic fungi on monocotyledonous debris // Can. J. Bot. 1997c. Vol. 75. P.1772—1777.

458. Voglmayr H. Candelabrum desmidiaceum and Candelabrum clathrosphae-roides spp. nov., additions and key to Candelabrum // Mycol. Res. 1998. Vol. 102. Pt. 4. P.410—414.

459. Voglmayr H., Fisher P.J. Helicodendron fuscum and its allies // Mycol. Res. 1997. Vol. 101. Pt. 9. P.l 122—1126.

460. Voglmayr H., Krisai-Greilhuber I. Pseudoclathrosphaerina evamariae gen. et sp. nov. and Sympodioclathra globosa gen. et sp. nov., two aero-aquatic fungi similar to Clathrosphaerina // Mycologia. 1997a. Vol. 89. № 6. P.942—951.

461. Voglmayr H., Krisai-Greilhuber I. Akenomyces costatus, an interesting basidiomycetous anamorph with unknown affinities // Osterr. Z. Pilzk. 1997b. Vol. 6. P.61—66.

462. Walker J.Gaeumannomyces, Linocarpon, Ophiobolus and several other genera of scolecospored Ascomycetes and Phialophora conidial states, with a note onhyphopodia//Mycotaxon. 1980. Vol. 11. № 1. P.l—129.

463. Waterhouse G.M. Some water moulds of the Hogsmill River collected from 1937 to 1939//Trans. Brit, mycol. Soc. 1942. Vol. 25. P.315—325.

464. Waterhouse G.M. The genus Phytophthora de Bary. Diagnoses (o des-criptions) and figures from the original papers // Mycol. Pap. 1970. № 122. P. 1— 59.

465. Webster J. Hendersonia typhae the conidial state of Leptosphaeria typharum //Trans. Brit, mycol. Soc. 1955. Vol. 38. Pt. 4. P.405-408.

466. Webster J. Nectria lugdunensis sp. nov., the perfect state of Heliscus lugdunensis//Trans. Brit, mycol. Soc. 1959. Vol. 42. P.322—327.

467. Webster J. The Mollisia perfect state of Anguillospora crassa Ingold // Trans. Brit, mycol. Soc. 1961. Vol. 44. P.559—564.

468. Webster J. The perfect state of Pyricularia aquatica // Trans. Brit, mycol. Soc. 1965. Vol. 48. Pt. 3. P.449-452.

469. Webster J. Seasonal observation of «aquatic» hyphomycetes on oak leaves on the ground // Trans. Brit, mycol. Soc. 1977. Vol. 68. Pt. 1. P. 108—111.

470. Webster J. R., Benfield E.F. Vascular plant breakdown in freshwater ecosystems //Annu. Rev. Ecol. Syst. 1986. Vol. 17. P.567—594.

471. Webster J., Davey R.A. Sedimentation rates and trapping efficiency of cells of Candida aquatica//Trans. Brit, mycol. Soc. 1975. Vol. 64. P.437-^40.

472. Webster J., Davey R.A. Two aero-aquatic hyphomycetes from Malaysia // Trans. Brit, mycol. Soc. 1980. Vol. 75. Pt. 2. P.341—345.

473. Webster J., Descals E. The perfect states of waterborne hyphomycetes from fresh water//The Whole Fungus. Ottawa: Nat. M us. Can., 1979. P.419—451.

474. Webster J., Descals E. Morphology, distribution and ecology of conidial fungi in freshwater habitats // Biology of Conidial Fungi. New York: Acad. Press, 1981. Vol. 1. P.295—355.

475. Webster J., Scheuer C., Om-Kalthoum K. S. Hydrocina chaetocladia gen. et sp. nov., the teleomorph of Tricladium chaetocladium // Nova Hedwigia. 1991. Vol. 52. № 1—2. P.65—72.

476. Weston W.H. Observation of Loramyces, an undescribed aquatic ascomy-cete // Mycologia. 1929. Vol. 21. № 1. P.55—76.

477. Willen Т. Conidia of aquatic hyphomycetes amongst plankton algae // Bot. Notis. 1958. Vol. 111.№2. 3.431—435.

478. Willoughby L.G. The ecology of some lower fungi at Esthwaite water // Trans. Brit, mycol. Soc. 1961a. Vol. 44. P.305—332.

479. Willoughby L.G. Chitinophilic chytrids from lake muds // Trans. Brit, mycol. Soc. 1961b. Vol. 44. P.586—592.

480. Willoughby L.G. Some observations on the location of sites of fungal activity at Blelham Tarn // Hydrobiologia. 1965. Vol. 25. P.352—356.

481. Willoughby L.G., Archer J.F. The fungal spora of a freshwater stream and its colonization pattern on wood // Freshwater Biol. 1973. Vol. 3. P.219—239.

482. Willoughby L.G., Collins V.G. A study of the distribution of fungal spores and Bacteria in Blelham Tarn and its associated streams // Nova Hedwigia. 1966. Bd. XII. №1—2. P. 149—171.

483. Willoughby L.G., Copland J.W. Temperature-growth relationships of Saprolegnia pathogenic to fish, especially eels cultivated in warm water // Nova Hedwigia. 1984. Bd. 39. № 1/2. P.35—55.

484. Willoughby L.G., Minshall G.W. Futher observations on Tricladium giganteum Iqbal // Trans. Brit, mycol Soc. 1975. Vol. 65. P.77—82.

485. Willoughby L.G., Townley P.J. Two new saprophytic chytrids from the Lake District//Trans. Brit, mycol. Soc. 1961a. Vol. 44. P. 177—184.

486. Willoughby L.G., Townley P.J. A further contribution to our knowledge of Phlyctochytrium unispinum Paterson // J. Roy. Microscop. Soc. 1961b. Vol. 80. P. 131—136.

487. Wollett L.L., Hedrick L.R. Ecology of yeasts in polluted water // Antonie van Leeuwenhoek. 1970. Vol. 36. P.427-^35.

488. Yu Yong-nian, Li Jin-liang, Yu Jin-qin Notes on some aquatic hyphomycetes from Sichuan province of China//Acta mycol. Sinica. 1988. Vol. 7. № 3. P. 138—148.

489. ZemekJ., Marvanova L., Kuniak L., Kadlecikovd B. Hydrolytic enzymes in aquatic hyphomycetes // Folia Microbiol. 1985. Vol. 30. P.363—372.

490. Zhu Xu-long, Liu Xiao-juan, Yu Yong-nian Advances in aquatic hyphomycetes // Acta mycol. Sinica. 1991. Vol. 10. № 1. P.l—12 (по резюме).