Генетическая дифференциация нерки (Oncorhynchus nerka) азиатских стад тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.10, кандидат биологических наук Хрусталева, Анастасия Михайловна

• Хрусталева, Анастасия Михайловна
• кандидат биологических наук
• 2007

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Хрусталева, Анастасия Михайловна

Введение.

Глава 1. Сравнительная характеристика методов дифференциации стад нерки.

1.1. Особенности распространения и биологии нерки.

1.2. Популяционная организация нерки.

1.3. Обзор методов исследования популяционной структуры нерки.

1.3.1 .Морфологические методы.

1.3.2. Паразитологические методы.

1.3.3. Мечение.

1.3.4. Генетические методы.

1.3.4.1. Иммуногенетические маркеры (группы крови рыб).

1.3.4.2. Биохимические маркеры (аллозимы).

1.3.4.3. Молекулярно-генетические маркеры.

Маркеры митохондриальной ДНК.

RPLP-маркеры.

AFLP-маркеры.

RAPD-маркеры.

Микросателлитные последовательности ДНК.

SNP-маркеры.

1.3.4.4. Выбор молекулярных маркеров ядерной ДНК для популяционно-генетических исследований.

Глава 2. Материалы и методы.

2.1. Сбор материала.

2.2. Обработка данных биоанализа и определение возраста

2.3. Методики молекулярно-генетического анализа.

2.4. Статистическая обработка данных.

Глава 3. Эффективность использования различных типов маркеров для изучения популяционной структуры и определения популяционной принадлежности нерки Западной Камчатки.

3.1. Биологические показатели нерки рек западного побережья Камчатки.

3.2. Молекулярные ДНК-маркеры в изучении популяционной структуры и определении популяционной принадлежности нерки Западной Камчатки.

3.2.1. RAPD-маркеры.

3.2.2. Микросателлитные маркеры.

3.2.3. SNP-маркеры.

3.3. Сравнение эффективности биологических и молекулярных ДНК маркеров.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Генетическая дифференциация нерки (Oncorhynchus nerka) азиатских стад»

Нерка Oncorhynchus nerka (Walbaum) - анадромный моноцикличный вид с длительным пресноводным периодом жизни, представленный в пределах своего ареала множеством популяций различного иерархического уровня (Берг, 1948; Foerster, 1968; Коновалов, 1980; Крогиус, 1983; Burgner, 1991; Бугаев, 1995). В связи с высокой экологической пластичностью, морфологической и генетической изменчивостью, сложной внутривидовой и внутрипопуляционной организацией, характерной для данного вида, изучение популяционной структуры нерки имеет большое научное и практическое значение. Вопросам дифференциации стад нерки посвящено множество работ, использующих различные методологические подходы, само многообразие которых свидетельствует о сложности данной проблемы.

В целом, методы, используемые в решении подобного рода задач, могут быть разделены на две группы: классические ихтиологические (морфологические критерии, паразиты-индикаторы, мечение) и генетические методы. Ряд задач успешно решается с помощью биологических маркеров. К настоящему моменту накоплены обширные сведения о распространении американских и азиатских стад нерки, основанные на результатах многолетнего мечения (Myers et al., 1996), паразитологических (Margolis, 1963; Margolis et al., 1966; Коновалов, 1971; Beacham et al., 1998; Бирман, 2004) и морфологических (Bugaev, 2003; Бугаев, 2003a, 20036, 2003в) данных.

Однако далеко не всегда биологические маркеры позволяют установить принадлежность нерки к той или иной популяции (Бугаев, 2003а). В ряде случаев малоэффективными оказываются и методы биохимической генетики, имеющие ряд ограничений, связанных с низкой аллозимной изменчивостью, свойственной данному виду, вследствие стабилизирующего отбора по ряду ферментных генов

Varnavskaya, 1994a; Варнавская, 2006). Кроме того, последовательности ДНК, кодирующие белки, составляют лишь небольшую часть генома, а методом электрофореза выявляется не более 30% аминокислотных замещений в составе белковых молекул (Hallerman, Beckman, 1988). Поэтому в последние годы в России, США и Канаде наряду с изучением белкового полиморфизма в популяциях нерки активно проводятся молекулярно-генетические исследования (Beacham et al., 1995, 2004а, 2005а, 20056, 2006а, 20066; Bickham et al., 1995; Taylor et al., 1996; Nelson et al., 1998; Брыков и др., 2003, 2005; Corley-Smith et al., 2005). Сегодня уже существует обширный генетический банк данных по нерке Азии и Северной Америки. Однако остается ряд трудностей, связанных с различиями в процедуре анализа и интерпретации результатов в разных лабораториях (Zelenina et al., 2005). В итоге не всегда удается определить принадлежность нерки к американским или азиатским стадам, не говоря уже о принадлежности к популяциям более низкого ранга. Кроме того, до настоящего времени молекулярно-генетическими исследованиями не были охвачены популяции нерки ряда регионов Азии. К ним относятся популяции материкового побережья Охотского моря и Курильских островов. Вместе с тем изучение генетической изменчивости нерки на всем ареале является важным условием для понимания закономерностей эволюции и формирования представлений о популяционной структуре вида в целом.

Представляется очевидным, что, поскольку каждый из используемых в настоящее время методов оперирует данными, отражающими различные аспекты одного и того же биологического феномена - существования внутри вида в той или иной степени обособленных, сложным образом взаимодействующих локальных группировок - целостное представление о популяционной организации может быть составлено только на основе обобщения информации, поставляемой различными методами (Begg, Waldman, 1999). Наиболее перспективным в этой связи представляется комплексный подход к проблеме дифференциации стад нерки, базирующийся на основе различных методологических подходов, в частности использовании биологических и молекулярно-генетических маркеров.

Наконец, для корректной интерпретации результатов молекулярно-генетических исследований необходимо выполнение как минимум двух условий. Первое - тщательный подбор ДНК-маркеров и второе - изучение межгодовой изменчивости аллельных частот полиморфных локусов ДНК с целью ее исключения на этапе суждения о популяционной принадлежности особей.

Такой комплекс исследований азиатской нерки ранее не проводился.

В свете изложенного целью исследования является выявление генетической дифференциации популяций нерки азиатского побережья Тихого океана и разработка метода определения популяционной принадлежности особей. Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить эффективность использования различных типов маркеров для дифференциации популяций и определения популяционной принадлежности на примере нерки западной Камчатки и отобрать наиболее репрезентативные молекулярные маркеры ядерной ДНК для популяционно-генетических исследований азиатской нерки.

2. Оценить соотношение межгодовой (на уровне смежных поколений и подходов), сезонной (на уровне сезонных рас) и межпопуляционной компонент генетической изменчивости нерки азиатских стад.

3. Изучить размерно-возрастную структуру и генетическую изменчивость в популяциях азиатской нерки крупнейших озерно-речных систем западной и восточной Камчатки, Чукотки, северо-западного побережья Охотского моря и северных Курильских островов.

4. Разработать комплексный подход к дифференциации стад азиатской нерки с использованием биологических и молекулярно-генетических маркеров.

5. Оценить эффективность отобранных маркеров для индивидуальной идентификации и определения популяционной принадлежности нерки из смешанных морских уловов.

БЛАГОДАРНОСТИ

Автор выражает искреннюю благодарность коллегам из ВНИРО (д.б.н., профессору О.Ф. Гриценко, д.б.н. Н.В. Кловач, к.б.н. В.Н. Леману, С.П. Румянцеву, В.О. Романенко, Е.Д. Павлову, Д.А. Широкову, Е.В. Шульгиной), КамчатНИРО (д.б.н. В.Ф. Бугаеву, д.б.н. О.М. Запоржцу, Р.А. Збоеву, И.Н. Кирееву), Чукотского и Хабаровского отделений ТИНРО, а также сотрудникам ФГУ "Камчатрыбвод", Азабачинского наблюдательного пункта КамчатНИРО, ООО "Стиль", ООО "Дельта-фиш", ООО "Усть-Камчатск рыба", ООО "Народы Севера" принявшим участие в организации полевых работ и сборе материала; заведующей лаборатории экологии рыб ВНИРО, д.б.н. Е.Н. Кузнецовой за содействие в организации сбора и обработки материала; сотрудникам сектора молекулярной генетики ВНИРО А.А. Волкову, к.б.н. Д.А. Зелениной, В.А. Барминцеву, А.Е. Барминцевой, Д.С. Стоклицкой, к.б.н. Н.С. Мюге, И.М. Савченко, А.Ф. Киселевой за помощь в обработке материала, предоставление и освоение методик, а также сотруднице лаборатории биоресурсов морей Дальнего Востока к.б.н. Е.В. Ведшцевой за консультации по вопросам определения возраста нерки.

Особую признательность автор выражает своему научному руководителю д.б.н. Н.В. Кловач за организацию работы на всех ее этапах, ценные рекомендации и замечания по тексту рукописи.

Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Хрусталева, Анастасия Михайловна

выводы

1. Послеледниковое расселение азиатской нерки послужило основой ее пространственной генетической дифференциации. Вероятной причиной генетической дивергенции северокурильской нерки и нерки других исследованных нами популяций явилось заселение водоемов северных Курильских островов неркой из южных рефугиумов, расположенных к югу от п-ва Камчатка. Водоемы Чукотки, Камчатки и материкового побережья Охотского моря колонизировались неркой из северного рефугиума -Берингии.

2. Дифференциация стад азиатской нерки по биологическим характеристикам в первую очередь определяется эпигенетической изменчивостью пластических признаков.

3. Межпопуляционные различия нерки рек Большая и Озерная, определяемые по частотам аллелей микросателлитных локусов, соответственно в 7 и 15 раз превышают межгодовые различия и различия между поколениями нерки р. Большая. Строгой изоляции между сезонными расами нерки р. Камчатка не выявлено, а уровень попарной межвыборочной дифференциации для сезонных рас нерки бассейна р. Камчатка оказался в 4 раза ниже наименьшего межпопуляционного значения. Различий по частотам генотипов между выборками смежных лет, поколениями и сезонными расами азиатской нерки также не выявлено.

Полученные результаты дают нам основание объединять выборки, собранные в разные годы и в различные сроки в пределах нерестового хода, а также использовать в популяционно-генетических исследованиях азиатской нерки пробы, собранные единовременно.

4. Для дифференциации популяций азиатской нерки наиболее перспективными представляются микросателлитные ДНК-маркеры. При проведении параллельных исследований в различных лабораториях наиболее предпочтительными являются SNP-маркеры благодаря их высокой воспроизводимости. Для определения популяционной принадлежности особей наиболее эффективными являются RAPD-маркеры при соблюдении определенных требований к протоколу анализа.

5. Высокая разрешающая способность микросателлитных маркеров ДНК, относительная экономичность этого метода и воспроизводимость в различных лабораториях позволяет рекомендовать его для изучения популяционной структуры нерки.

6. Использование микросателлитных маркеров ДНК позволяет с высокой точностью определять принадлежность нерки, облавливаемой в период преднерестовых миграций у тихоокеанского побережья Камчатки к популяциям различных районов воспроизводства.

7. Предложенный комплексный подход в популяционных исследованиях азиатской нерки позволяет корректировать результаты молекулярно-генетического анализа с учетом биологических характеристик популяций.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Хрусталева, Анастасия Михайловна, 2007 год

1. Айвазян С.А., Бухштабер В.М., Енюков И.С., Мешалкин Л.Д. 1989. Прикладная статистика. Классификация и снижение размерности. Справочное издание. Под. ред. С.А. Айвазяна. М.: "Финансы и статистика". 610 с.

2. Акиничева Е.Г., Рогатных А.Ю. 1996. Опыт мечения лососей на рыбоводных заводах посредством термического маркирования // Вопр. ихтиологии. Т. 36. № 5. С. 693-698.

3. Акиничева Е.Г., Сафроненков Б.П., Рогатных А.Ю., 1999. Результаты и перспективы массового маркирования отолитов лососей на рыбоводных заводах Магаданской области // Вопросы взаимодействия естественных и искусственных популяций лососей. С. 10-15.

4. Алтухов Ю.П. 1974. Популяционная генетика рыб. М.: "Пищевая промышленность". 247 с.

5. Алтухов Ю.П. 2003. Генетические процессы в популяциях: Учеб. пособие. 3-е изд. М.: ИКЦ "Академкнига". 431 с.

6. Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А. 2002. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике //Генетика. Т. 38. №. 9. С. 1173-1195.

7. Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А., Курбатова О.Л. и др. 2004. Динамика популяционных генофондов при антропогенных воздействиях (ред. Алтухов Ю.П.). М.: Наука. 619 с.

8. Алтухов Ю.П., Салменкова Е.А., Омельченко В.Т. 1997. Популяционная генетика лососевых рыб. М.: Наука. 288 с.

9. Атлас распространения в море различных стад тихоокеанских лососей в период весенне-летнего нагула и преднерестовых миграций. 2002. Под ред. О.Ф. Гриценко. М.: Изд-во ВНИРО. 190 с.

10. Берг JI.C. 1948. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. Изд-во АН СССР. Т. 1.466 с.

11. Бирман И.Б. 1968. О миграциях лососей в Охотском море // Изв. ТИНРО. Т. 64. С. 35-43.

12. Бирман И.Б. 1985. Морской период жизни и вопросы динамики стада тихоокеанских лососей. М.: "Агропромиздат". 208 с.

13. Бирман И.Б. 2004. Морской период жизни и вопросы динамики стада тихоокеанских лососей. 2-е изд. М.: Изд-во ФГУП "Национальные рыбные ресурсы". 172 с.

14. Брыков Вл.А., Полякова Н.Е., Подлесных А.В. 2003. Дивергенция митохондриальной ДНК в популяциях нерки (Oncorhynchus пегка Walbaum) озера Азабачьего (Камчатка)// Генетика. Т.39. № 12. С. 16871692.

15. Брыков Вл.А., Полякова Н.Е., Подлесных А.В., Голубь Е.В., Голубь А.П., Жданова O.JI. 2005. Влияние биотопов размножения на генетическую дифференциацию популяций нерки (Oncorhynchus пегка) // Генетика. Т.41. № 5. С. 635-645.

16. Бугаев А.В. 2003г. Биология нерки Oncorhynchus пегка (Walb.) в период преднерестовых миграций в юго-западной части Берингова моря и сопредельных водах Тихого океана. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Владивосток. 24 с.

17. Бугаев В.Ф. 1976. К вопросу о дифференциации субизолятов красной в бассейне оз. Курильское // В кн.: Исследования по биологии рыб и промысловой океанографии. Владивосток. С. 88 101.

18. Бугаев В.Ф. 1983. Некоторые вопросы формирования чешуи нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) (Salmonidae) оз. Азабачье (Камчатка) в пресноводный период жизни //Вопр. ихтиол. Т. 23. Вып. 3. С. 412-418.

19. Бугаев В.Ф. 1987. Возрастная структура нерки Oncorhynchus пегка р. Камчатка//Вопр. ихтиологии. Т. 27. Вып. 4. С. 627 -636.

20. Бугаев В.Ф. 1991. Возрастная структура промысловых стад азиатской нерки Oncorhynchus пегка (Walb.) // В кн.: Исследования биологии и динамики численности промысловых рыб Камчатского шельфа. Петропавловск-Камчатский: КамчатНИРО. Вып. 1. 4.1. С. 46-54.

21. Бугаев В.Ф. 1992. Возрастная структура азиатской нерки Oncorhynchus пегка и метододические аспекты ее оценки.// Вопр. ихтиологии. Т. 32. Вып. 3. С. 36-51.

22. Бугаев В.Ф. 1995. Азиатская нерка (пресноводный период жизни, структура локальных стад, динамика численности). М.: Колос. 464 с.

23. Бугаев В.Ф., Дубынин В.А. 1991. О сезонных ритмах роста и скорости формирования склеритов на чешуе моложи нерки Oncorhynchus пегка в пресноводны период жизни в озерах Азабачье и Курильское (Камчатка) // Вопр. ихтиол. Т. 31. Вып. 3. С. 423-432.

24. Бугаев В.Ф., Дубынин В.А. 2002. Факторы, влияющие на биологические показатели и динамику численности нерки Oncorhynchus пегка рек Озерной и Камчатка // Изв. ТНИРО. Т. 130. С. 679 757.

25. Бугаев В.Ф., Дубынин В.А., Носова И.А. 1989. Межгодовая изменчивость структуры центральной части чешуи производителей нерки Oncorhynchus пегка (Walb.) оз. Курильское. // Вопр. ихтиологии. Т. 29. Вып. 3. С. 387 -398.

26. Бугаев В.Ф., Мидовская JI.B., Лепская Е.В., Бонк Т.В., Сиротенко И.Н., Остроумов А.Г. 20026. Исследования нерки Oncorhynchus пегка оз. Паланского в 1990 2001 гг. (северо-западная Камчатка) // Изв. ТНИРО. Т. 130. С. 777-791.

27. Бугаев В.Ф., Остроумов А.Г., Непомнящий К.Ю., Маслов А.В. 2001а. Нерка Oncorhynchus пегка р. Большая (Западная Камчатка) // Сохраненниебиоразнообразия Камчатки и прилегающих морей: Мат-лы 2-ой науч. конф. Петропавловск-Камчатский: Камшат. С. 35-38.

28. Бугаев В.Ф., Остроумов А.Г., Непомнящий К.Ю., Маслов А.В. 2002а. Некоторые особенности биологии нерки Oncorhynchus пегка р. Большой (Западная Камчатка) и факторы, влияющие на ее биологические показатели // Изв. ТНИРО .Т. 130. С. 758 776.

29. Варнавская Н.В. 1984. Распределение частот генов лактатдегидрогеназы и фосфоглюкомутазы в популяциях нерки {Oncorhynchus пегка Walbaum), предпочитающих различные типы нерестилищ // Генетика. Т. 20. № 1. С. 100-106.

30. Варнавская Н.В. 1988. Пространственная и темпоральная генетическая структура в популяционной системе нерки оз. Курильского (Камчатка) // III Всесоюзное совещание по лососевым рыбам. Тольятти. С. 49-50.

31. Варнавская Н.В. 2001. Принципы генетической идентификации популяций тихоокеанских лососей рода Oncorhynchus в связи с задачами рационального промысла. Автореферат дис. д-ра биол. наук. Институт общей генетики РАН. М.: ИОГен. 48 с.

32. Варнавская Н.В. 2006. Генетическая дифференциация популяций тихоокеанских лососей. Петропавловск-Камчатский: Изд-во КамчатНИРО. 488 с.

33. Варнавская Н.В., Варнавский B.C. 1988. О биологии карликовой формы нерки оз. Дальнее (Камчатка) // Биология моря. Т. 2. С. 16-23.

34. Варнавская Н.В., Варнавский B.C., Мидяная В.В. и др. 1996. Анализ генетической изменчивости в популяциях нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) Азии и Северной Америки методами многомерной статистики // Генетика. № 7. С. 962-977.

35. Ведищева Е.В. 2004. Особенности биологии и возможности промыслового использования лососей рода Oncorhynchus Северных Курильских островов: Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. биол. наук. М.: ВНИРО. 25 с.

36. Водные биологические ресурсы северных Курильских островов. 2000. Под ред. О.Ф. Гриценко. М.: Изд-во ВНИРО. 163 с.

37. Войнова Н.В., Чистяков В.А., Корниенко ИВ., Барминцев В.А. 2002. Новые технологии в рыбохозяйственных исследованиях. Ростов-на-Дону: "Эверест". 112 с.

38. Галь Э., Медеши Г., Верецкеи JI. 1982. Электрофорез в разделении биологических макромолекул. Пер. с англ. М.: Мир. 448 с.

39. Герасимов И.П., Марков К.К. 1939. Ледниковый период на территории СССР. М.-Л. 154 с.

40. Глазко В.И., Дунин И.М., Глазко Г.В., Калашникова Л.А. 2001. Введение в ДНК-технологии. М.: ФГНУ Росинформагротех. 436 с.

41. Глубоковский М.К. 1995. Эволюционная биология лососевых рыб. М.: Наука. 343 с.

42. Городовская С.Б. 2002. Сравнительный анализ состояния яичников покатной молоди нерки Oncorhynchus пегка из реки Озерная в разные годы // Труды ВНИРО. Т. 141. С. 146-153.

43. Гостимский С.А., Кокаева З.Г., Коновалов Ф.А. 2005. Изучение организации и изменчивости генома растений с помощью молекулярных маркеров // Генетика. Т. 41. №. 4. С. 480-492.

44. Гречко В.В. 2002. Молекулярные маркеры ДНК в изучении филогении и систематики // Генетика. Т. 38. №. 8. С. 1013 1033.

45. Дубынин В.А. 1986. Связь размерно-возрастных показателей покатной молоди с численностью поколений и производителей нерки Oncorhynchus пегка (Walb.) оз. Курильское (Камчатка) // Вопр. ихтиологии. Т. 26. Вып. 6. 1023- 1026.

46. Дубынин В.А., Бугаев В.Ф. 1988. Изменчивость качественных показателей смолтов нерки в связи с фертилизацией //В кн.: Проблемы фертилизации лососевых озер Камчатки. Владивосток. С. 83 104.

47. Егорова Т.В. 1970. Размножение и развитие красной в бассейне р. Озерная //Изв. ТИНРО. Т. 73. С. 39-53.

48. Егорова Т.В. 1977. Нерестовый ход и сроки нереста нерки Oncorhynchus пегка (Walb.) в бассейне р. Озерной. //Вопр. Ихтиологии. Т. 17. Вып. 4. С. 634-641.

49. Закс М.Г., Соколова М.М. 1961а. Иммунно-серологические различия между отдельными стадами нерки // Вопр. ихтиол. Т. 1. Вып. 4(21). С. 707715.

50. Закс М.Г., Соколова М.М. 19616. Установление различий между отдельными стадами нерки (Oncorhynchus пегка (Walbaum)) // Докл. АН СССР. Т. 139. № 6. С. 1491-1494.

51. Запорожец О.М. 2002. Этолого-физиологические и экологические аспекты искусственного воспроизводства тихоокеанских лососей: Автореф. дис. . докт. биол. наук. М.: ВНИИПРХ. 52 с.

52. Запорожец О.М., Запорожец Г.В. 1997. Метка для малька // Камчатка. № 3. С. 36-38.

53. Ильина J1.B. 1987. Динамика численности и генетического состава популяций нерки озера Азабачьего // Деп. ВИНИТИ. 17.11.87. 8060-В87. 21 с.

54. Каев A.M. 1998. Идентификация происхождения и истории жизни охотоморской кеты Oncorhynchus keta по чешуе // Вопр. ихтиологии. Т.38. № 5. С. 650-658.

55. Карпенко В.И. 1998. Ранний морской период жизни тихоокеанских лососей. М.: Изд-во ВНИРО. 165 с.

56. Кирпичников B.C. 1943. Экспериментальная систематика сазана (Ciprinus carpio L.) // Изв. АН СССР. Серия Биология. № 4. С. 189-218.

57. Кирпичников B.C. 1977. Селективный характер биохимического полиморфизма у камчатской нерки (Oncorhynchus пегка (Walb.)) // В кн.: Основы классификации и филогении лососсевидных рыб. J1. С. 53-60.

58. Кирпичников B.C. 1987. Генетика и селекция рыб. JI.: Наука. 520 с.

59. Кирпичников B.C., Муске Г.А. 1981. Попоуляционная генетика камчатской нерки Oncorhynchus пегка Walb. // В кн.: Генетика и размножение морских животных. Владивосток. С. 59-71.

60. Кловач Н.В. 2003. Экологические последствия крупномасштабного разведения кеты // Бюллетень журнала "Вопросы рыболовства". М.: Изд-во ВНИРО. 163 с.

61. Кловач Н.В., Заварина JI.O. 2001. Экспресс методдифференциации стад кеты Oncorhynchus keta в окене // Мировой океан. М.: ВИНИТИ. Вып. 2. С. 175-181.

62. Клоков В.К. 1970. К вопросу о динамике численности нерестовых стад лососей на северном побережье Охотского моря // Изв. ТИНРО. Т. 71. С. 169- 177.

63. Козыренко М.М., Артюкова Е.В., Реунова Т.Д. и др. 2004. Генетическая изменчивость и взаимоотношения лиственниц Сибири и Дальнего Востока по данным RAPD-анализа // Генетика. Т. 40. №. 4. С. 506-515.

64. Коновалов С. М. 1980. Популяционная биология тихоокеанских лососей. М.: "Наука". 237 с.

65. Коновалов С.М. 1966. Дифференциация локальных стад красной Oncorhynchus nerka (Walbaum) комплексным методом по паразитам-индикаторам и особенностям структуры чешуи // Вопр. ихтиологии. Т. 6. Вып. 4. С. 619-630.

66. Коновалов С.М. 1967а. К вопросу о разграничении локальных стад красной в море с помощью паразитов-индикаторов // Изв. ТИНРО. № 61. С. 182-195.

67. Коновалов С.М. 19676. Некоторые данные о распределении локальных стад красной Oncorhynchus nerka (Walbaum) в северной части Тихого океана (на основании анализа паразитологических данных) // Вопр. ихтиол. Т. 7. Вып. 6. С. 1086-1099.

68. Коновалов С.М. 1969. Изменчивость чешуи красной в пределах локального стада//Реф. научных работ Ин-та биологии моря. В. 1. С. 8790.

69. Коновалов С.М. 1971. Дифференциаця локальных стад нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum). Л.: "Наука". 229 с.

70. Коновалов С.М., Щербинин Г.Я. 1973. Возрастная структура тихоокеанских лососей // Ж. общ. биол. Т. 34. № 6. С. 837 854.

71. Кофиади И.А., Ребриков Д.В. 2006. Методы детекции полиморфизмов одиночных нуклеотидов: аллель-специфичная ПЦР и гибридизация с олигонуклеотидной пробой // Генетика Т. 42 № 1. С. 22-32.

72. Крогиус Ф.В. 1951. О динамике численности красной Oncorhynchus пегка (Walbaum) // Изв. ТИНРО. Т. 35. С. 3-16.

73. Крогиус Ф.В. 1958. О строении чешуи камчатской красной разных локальных стад // Биол. морск. периода жизни дальневост. лососей. М.: Изд-во ВНИРО. С. 52-63.

74. Крогиус Ф.В. 1970. О различных типах чешуи красной Oncorhynchus пегка (Walb.) в бассейне р. Камчатка и времени образования годового кольца//Изв. ТИНРО. Т. 74. С. 67-81.

75. Крогиус Ф.В. 1974. Значение вертикальных миграций в энергетическом балансе молоди красной оз. Дальнего // Изв. ТИНРО. Т. 90. С. 39-48.

76. Крогиус Ф.В. 1975. Динамика популяции и рост молоди нерки Oncorhynchus пегка Walb. озера Дальнего (Камчатка) // Вопр. ихтиологии. Т. 15. №4(93). С. 612-629.

77. Крогиус Ф.В. 1978. О значении генетических и экологических факторов в динамике популяции красной Oncorhynchus пегка (Walb.) оз. Дальнего // Вопр. ихтиологии. Т. 18. № 2(109). С. 211-221.

78. Крогиус Ф.В. 1983. Сезонные расы красной Oncorhynchus пегка (Walb.) и ее нерестилища в водоемах Камчатки Биологические основы развития лососевого хозяйства в водоемах СССР. М. С. 18 31.

79. Крогиус Ф.В., Крохин Е.М. 1956. Результаты исследования нерки (красной), состояние её запасов и колебания численности в водах Камчатки // Вопр. ихтиологии. Т. 7. Вып. 5. С. 3 20.

80. Крогиус Ф.В., Крохин Е.М., Меншуткин В.В. 1987. Тихоокеанский лосось нерка в экосистеме озера Дальнего (Камчатка). JL: Наука. 198 с.

81. Крогиус Ф.В., Лагунов И.И., Семко Р.С., Шишов Б.П. 1947. Лососи камчатки. П.-К. 34 с.

82. Крохин Е.М. 1960. Нерестилища красной Oncorhynchus пегка Walb. (очерк геоморфологии, температурного режима и гидрохимии) // Вопр. ихтиологии. Т. 16. С. 89-110.

83. Крохин Е.М. 1967. Материалы к познанию карликовой красной в оз. Дальнее (Камчатка) // Вопр. ихтиологии. Т. 6. Вып. 3. С.433 445.

84. Крохин Е.М., Крогиус Ф.В. 1937. Очерк бассейна р. Большой и нерестилищ лососевых, расположенных в нем // Известия ТИНРО. Т. 9. 80 с.

85. Куликова Н.И. 1975. Определение локальных стад кеты в море по структуре чешуи и некоторым морфологическим признакам // Труды ВНИРО. Т. СVI. С. 49-51.

86. Лимборская С.А., Хуснутдинова Э.К., Балановская Е.В 2002. Этногеномика и геногеография народов Восточной Европы. М.: Наука. 261 с.

87. Лукьяненко В.И. 1989. Иммунобиология рыб: врожденный иммунитет. Моногр. М.: Агропромиздат. 271 с.

88. Лукьяненко В.И., Попов А.В., Мишин Э.А. 1971. Гетерогенность и полиморфизм сывороточных альбуминов у рыб // ДАН СССР. Т. 201. № 3. с. 737-740.

89. Мазин А.В., Кузнеделов К.Д. Краев А.С. и др. 1990. Методы молекулярной генетики и генной инженерии. Новосибирск: Наука. Сиб. Отд-ние. 248 с.

90. Макоедов А.Н., Мясников В.Г., Куманцов М.И. и др. 1999. Биоресурсы внутренних водоемов Чукотки и прилегающих вод Берингова моря. М.: Экономика и информатика. 219 с.

91. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. 1984. Молекулярное клонирование // М.: Мир. 480 с. (Maniatis Т., Fritsch Е.Е., Sambrook J. Molecular Cloning: A laboratory manual // Cold Spring Harbor Laboratory, 1982.)

92. Мацак E.A. 1983. Генетическое строение популяций нерки озера Курильского (Камчатка) // В кн.: Морфология, структура популяций ипроблема рационального использования лососевидных рыб: Тез. координац. совещ. Л. С. 129.

93. Мина М.В. 1973. Рост рыб (методы исследования в природных популяциях) // Сб.: Рост животных. Зоология позвоночных. Т. 4 ВИНИТИ. Итоги науки и техники. С. 68-115.

94. Мина М.В., Клевезаль Г.А. 1976. Рост животных. М.: "Наука". 291 с.

95. Никитина Т.В., Назаренко С.А. 2004. Микросателлитные последовательности ДНК человека: мутационный процесс и эволюция // Генетика. Т. 40. № 10. С. 1301-1318.

96. Николаев А.С. 1988. Некоторые результаты исследований экологии вертикального распределения пелагической молоди нерки до и после фертилизации оз. Курильского // Проблемы фертилизации лососевых озер Камчатки. Владивосток. С. 65-82.

97. Никулин О.А. 1975. Воспроизводство красной Oncorhynchus пегка (Walb.) в бассейне р. Охоты // Труды ВНИРО. Т. СVI. С. 97-105.

98. Новое в клонировании ДНК. Методы: Пер. с англ. Под ред. Д. Гловера. М.: Мир. 1989. 368 с.

99. Остроумов А.Г. 1970. Результаты аэровизуального учета и аэрофотосъемки красной и ее нерестилищ в бассейне оз Курильское // Изв. ТИНРО. Т. 78. С. 17-32.

100. Остроумов А.Г. 1975. Озеро Ушковское в бассейне р. Камчатки // Изв. ТИНРО. Т. 97. С. 129-139.

101. Правдин И.Ф. 1966. Руководство по изучению рыб. М.: Пищевая промышленность. 373 с.

102. Пустовойт С.П. 1993. Генетическая гетерогенность нерестового стада нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) р. Камчатки // Генетика. Т. 29. № 5. С. 807-818.

103. Пустовойт С.П. 1994а. Внутрипопуляционная генетическая изменчивость и межпопуляционная дифференциация азиатской нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum)//Генетика. Т. 30. № 1. С. 101-106.

104. Пустовойт С.П. 19946. Генетический мониторинг популяций горбуши Oncorhynchus gorbuscha, кеты О. keta и нерки О. пегка реки Пахача // Вопросы ихтиологии. Т. 34. № 3. С. 366-373.

105. Пустовойт С.П. 1995. Геногеографическое исследование нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) // Генетика. Т. 31. № 2. С. 239-244.

106. Пустовойт С.П. 2001. Генетическая изменчивость малочисленной популяции нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) р. Ола (северное побережье Охотского моря) // Генетика. Т. 37. № 12. С. 1657-1662.

107. Пустовойт С.П., Макоедов А.Н. 1992. Генетическая и фенетическая изменчивость нерки Oncorhynchus пегка (Walbaum) р. Камчатка // Генетика. Т. 28. № 6. С. 141-149.

108. Рысков А.П. 1999. Мультилокусный ДНК-фингерпринтинг в генетико-популяционных исследованиях биоразнообразия // Мол. Биол. Т. 33. № 6. С. 997-1011.

109. Селифонов М.М. 1970а. О структуре чешуи молоди красной оз. Курильское //Изв. ТИНРО. Т. 74. С. 94 100.

110. Селифонов М.М. 19706. Вопросы роста молоди красной оз. Курильское // Изв. ТИНРО. Т. 78. С. 33-41.

111. Селифонов М.М. 1975. Промысел и воспроизводство красной бассейна р. Озерной. Автореф. дис. канд. биол. наук. ТИНРО. Владивосток. 23 с.

112. Семко Р.С. 1964. Запасы западнокамчатских лососей и их промысловое значение //Изв. ТИНРО. Т. 41. С. 3 109.

113. Сидоров JI.K. 2005. Ихтиофауна пресных вод Южных Курильских островов: Автореф. дис. на соиск. учен. степ. канд. биол. наук. М.: ВНИРО. 24 с.

114. Симонова Н.А. 1974. К биологии размножения красной Oncorhynchus пегка (Walb.) на ключевых нерестилищах горного типа // Изв. ТИНРО. Т. 90. С. 71-80.

115. Сингер М., Берг П. 1998. Гены и геномы: в 2-х т. Т. 1. Пер. с англ. М.: Мир. 373 с.

116. Смирнов А.И. 1959. Отличия в биологии размножения и развития остаточной или карликовой и проходной нерки Oncorhynchus пегка (Walb.) // Науч. докл. высшей школы. Биология и почвоведение. Т. 3 С. 59 -65.

117. Смирнов А.И. 1975 Биология, размножение и развитие тихоокеанских лососей. М.: Изд во МГУ. 335 с.

118. Старцев А.В., Рассадников О.А. 1997. Особенности зимнего распределения охотоморской горбуши Oncorhynchus gorbusha в водах северной Пацифики // Вопр. ихтиологии. Т. 37. № 3. С. 323-328.

119. Темных О.С. 1998. Региональная и межгодовая изменчивость склеритограмм чешуи азиатской горбуши // Изв. ТИНРО. Т. 124. С. 375391.

120. Темных О.С., Питрук Д.Л., Радченко В.И., Ильинский Е.Н. 1994. Морфологическая и биологическая дифференциация горбуши в период анадромных миграций // Изв. ТИНРО. Т. 116. С. 60-74.

121. Темных О.С., Подлесных А.В., Малинина М.Е. 1997. Дифференциация анадромных миграционных потоков горбуши четных поколений в Охотском море в 90-е гг. // Изв. ТИНРО. Т. 122. С. 131-151.

122. Токарская О.Н., Ефремова Д.А., Кан Н.Г., Данилкин А.А. и др. 2000. Изменчивость мультилокусных маркеров ДНК в популяциях сибирской {Capreolus pygargus Pall.) и европейской (С. capreolus L.) косуль // Генетика. Т. 36. № 11. С. 1520-1530.

123. Филипченко Ю.А. 1978. Изменчивость и методы ее изучения. М.: Наука. 240 с.

124. Хедрик Ф. 2003. Генетика популяций. М.: Техносфера. 592 с.

125. Хериет Э.Р., Гатгер К.С. 1999. Иммуноцитохимия: световая микроскопия // Молекулярная клиническая диагностика. Методы: Пер. с англ. Под. Ред. С. Херрингтона, Дж. Макги. М.: Мир. 558 с.

126. Хлесткина Е.К., Санина Е.А. 2006. SNP-маркеры: методы анализа, способы разработки и сравнительная характеристика на примере мягкой пшеницы // Генетика. Т. 42. № 6. С. 725-736.

127. Чан В.Т.-В. 1999. Гибридизация нуклеиновых кислот // Молекулярная клиническая диагностика. Методы: Пер. с англ. Под. Ред. С. Херрингтона, Дж. Макги. М.: Мир. 558 с.

128. Черешнев И.А., Волобуев В.В., Шестаков А.В., Фролов С.В. 2002. Лососевидные рыбы северо-востока России. Владивосток: Изд-во "Дальнаука". 491 с.

129. Чугунова Н.И. 1959. Руководство по изучению возраста и роста рыб. М.: Изд-во АН СССР. 164 с.

130. Шибата Д.К. 1999. Полимеразная цепная реакция и молекулярно-генетический анализ биоптатов // Молекулярная клиническая диагностика. Методы: Пер. с англ. Под. Ред. С. Херрингтона, Дж. Макги. М.: Мир. 558 с.

131. Эллиот В., Эллиот Д. 2000. Биохимия и молекулярная биология. Пер. с англ. под ред. Арчакова А.И. и др. М.: Изд-во НИИ биомедицинской химии РАМН. 372 с.

132. Akinicheva E. 2003. Proposed thermal and dry marks for brood year 2003 salmon in Russia // NPAFC Doc. 689. 5p.

133. Allendorf F.W., Seeb L.W. 2000. Concordance of genetic divergence among sockeye salmon populations at allozyme, nuclear DNA, and mitochondrial DNA markers //Evolution. V. 54(2). P. 640-651.

134. Amos W., Sawcer S.J., Feakes R.W., Rubinsztein D.C. 1996. Microsatellites show mutational bias and heterozigote instability // Natute Genet. V. 13. P. 390391.

135. Arthur J.R., Arai H.P. 1980. Studies of the parasites of Pacific herring (Clupea harengus pallasi Valenciennes): a preliminary evaluation of parasites as indicators of geographical origin for spawning herring // Can. J. Zool. V. 58. P. 521-527.

136. Atkinson C.E., Rose J.H., Duncan Т.О. 1967. Pacific salmon in the United States // INPFC Bull. No. 23. P. 43 224.

137. Avise J. 1993. Molecular markers, natural history and evolution. Chapman & Hall. ITP International Thomson Pub. Сотр. USA. 511 p.

138. Avise J. 2004. Molecular markers, natural history and evolution. Second edition. Sinauer Associates, Inc. Publishers. Sunderland. USA. 684 p.

139. Bagley M.J., Anderson S.L., May B. 2001. Choice of methodology for assessing genetic impacts of environmental stressors: polymorphism and reproducibility of RAPD and AFLP fingerprints //Ecotoxicology. V. 10. P. 239-244.

140. Bailey R.E., Margolis L., Groot C. 1988. Estimating stock composition of migrating juvenile Fraser River (British Columbia) sockeye salmon Oncorhynchus nerka, using parasites as natural tags // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 45. P. 586-591.

141. Banks M.A., Eichert W., Olsen J.B. 2003. Which genetic loci have greater population assignment power?//Bioinformatics. V. 19. No. 11. P. 1436-1438.

142. Beacham T.D., Lapointe M., Candy J.R., et al. 2004b. Stock identification of Fraser River sockeye salmon using microsatellites and major histocompatibility complex variation // Transactions of the American Fisheries Society. V. 133. P. 1117-1137.

143. Beacham T.D., Lapointe M., Candy J.R., Miller K.M., Withler R.E. 2004a. DNA in action: Rapid application of DNA variation to sockeye salmon fisheries management // Conservation Genetics V. 5. P. 411-416.

144. Beacham T.D., Margolis L., Nelson R. J. 1998. A comparison of methods of stock identification for sockeye salmon {Oncorhynchus nerka) in Barkley Sound, British Columbia // NPAFC Bull. 1. P. 227-239.

145. Beacham T.D., Mcintosh В., MacConnachie C. 2002. Microsatellite identification of individual sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) in Barkley Sound, British Columbia//Journal of Fish Biology. V. 61. P. 1021-1032.

146. Beacham T.D., Mcintosh В., MacConnachie C. 20046. Population structure of lake-type and river-type sockeye salmon in transboundary rivers of northern British Columbia, Canada // Journal of Fish Biology. V. 65. P. 389-402.

147. Beacham T.D., Mcintosh В., MacConnachie C. 2005b. Population structure and stock identification of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) in coastal lakes in British Columbia, Canada // Canadian Journal of Zoology. V. 83. P. 834-844.

148. Beacham T.D., Miller KM., Withler R.E. 1996. Minisatellite DNA variation and stock identification of coho salmon // J. Fish Biol.V. 49 P. 411-429.

149. Beacham T.D., Varnavskaya N. V., Mcintosh В., MacConnachie C. 2006a. Population structure of sockeye salmon from Russia determined with microsatellite DNA variation // Transactions of the American Fisheries Society. V. 135. P. 97-109.

150. Beacham T.D., Withler R.E., Wood. C.C. 1995. Stock identification of sockeye salmon by means of minisatellite DNA variation // North American Journal of Fisheries Management. V. 15. P. 249-265.

151. Beacham T.D., Wood C.C., Withler R.E., Le K.D., Miller K.M. 20006. Application of microsatellite DNA variation to estimation of stock composition and escapement of Skeena River sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) // NPAFC Bull. 2. P. 263-276.

152. Beacham T.D., Wood. C.C. 1999. Application of microsatellite DNA variation to estimation of stock composition and escapement of Nass River sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) // Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences V. 56. P. 1-14.

153. Beaumont A.R., Hoare K. 2003. Biotechnology and genetics in fisheries and aquaculture. Blackwell Science. UK. 158 p.

154. Begg G.A., Waldman J.R. 1999. A holistic approach to fish stock identification //Fish. Res. V. 43. P. 35-44.

155. Belfiore N.M. 2006. Discovering and Using Linked and Unlinked SNPs for Population Genetic Inference // SNP WORKSHOP II. Applications of SNP Genotyping in Fisheries Management. Girdwood, Alaska. September 21 -22. P. 13-14.

156. Bender М.М. 1999. Genetic Differentiation of Sockeye Salmon (Oncorhynchus nerka) Populations in the Wood River Lakes of Bristol Bay, Alaska // Diss. Abst. Int. Pt. В Sci. & Eng. V. 59. No. 11. P. 5685.

157. Bensch S., Akesson M. 2005. Ten years of AFLP in ecology and evolution: why so few animals? //Molecular Ecology. V. 14. P. 2899-2914.

158. Bernard R.L., Myers K.W. 1996. The performance of quantitative scale pattern analysis in the identification of hatchery and wild steelhead (О. mykiss) II Can. J. Aquat. Sci. V. 53. P. 1727-1735.

159. Bickham J.W., Wood C.C., Patton J.C. 1995. Biogeographic implications of cytochrome b sequences and allozymes in sockeye (Oncorhynchus nerka) II Journal of Heredity. V. 86. P. 140-144.

160. Boje J., Riget F., Koie M. 1997. Helminth parasites as biological tags in population studies of Greenland halibut (Reinhardtius hippoglossoides (Walbaum)), in the north-west Atlantic // ICES J. Mar. Sci. V. 54. P. 886-895.

161. Brookes A. 1999. The essence of SNP//Gene. V. 234. P. 177-186.

162. Brothers E. В. 1990. Otolith marking // In: Parker N.C., Giorgi A.E., Heidinger R.C. et al. (eds.). Fish-marking Techniques. Symposium 7. Am. Fish. Soc. Bethesda. Maryland. P. 183-202.

163. Buckley R.M., Blankenship H.L. 1990. Internal extrinsic identification systems: overview of implanted wire tags, otolith marks, and parasites // American Fisheries Society Symposium V. 7. P. 173-182.

164. Bugaev A.V. 2003. To the problem about accuracy using scale pattern analysis for identification of some local stocks of sockeye salmon from Asia and North America // NPAFC Doc. 699. 26 p.

165. Bugaev A.V 2005b. Some methodological aspects for identification of local stocks of pacific salmon by scale pattern analysis // NPAFC Technical Report. N.6.P. 109-111.

166. Bugaev A.V. 2005r. Scale pattern analysis estimates of age and stock composition of sockeye salmon Oncorhynchus nerka in r/v "TINRO" trawl catches in the Western Bering Sea and Northwestern Pacific Ocean in summer-autumn 2003 // NPAFC Doc. 866. 25 p.

167. Burger C.V, Spearman W.J., Cronin M.A. 1997. Genetic differentiation of sockeye salmon subpopulations from a geologically young Alaskan lake system // Trans. Am. Fish. Soc. V. 126. No. 6. P. 926-938.

168. Burger С.V., Scribner K.T., Spearman W.J., et al. 2000. Genetic contribution of three introduced life history forms of sockeye salmon to colonization of Frazer Lake, Alaska // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 57. No. 10. P. 2096-2111.

169. Burgner R.L. 1980. Some features of ocean migration and timing of pacific Salmon // In: Salmon in ecosystems of the North Pacific. Oregon State Univ. Press. P. 153 164.

170. Burgner R.L. 1991 Life history of Sockeye Salmon (Oncorhynchus пегка) II In: C. Groot and L. Margolis. Pacific Salmon Life Histories. UBC Press. Canada. P. 3 117.

171. Cadrin S.X., Friedland K.D. 1999. The utility of image processing techniques for morphometric analysis and stock identification // Fish. Res. V. 43. P. 129139.

172. Campbell D., Duchesne P., Bernatchez L. 2003. AFLP utility for population assignment studies: analytical investigation and empirical comparison with microsatellites //Molecular Ecology. V. 12. P. 1979-1991.

173. Carrera E., Garcia Т., Cespedes A., et al. 1999. PCR-RFLP for the identification of eggs of Atlantic salmon (Salmo salar) and rainbow trout (iOncorhynchus mykiss) // Arch. Lebensmittelhyg. V. 50. No. 4-5. P. 76-78.

174. Cavalli-Sforza, L.L., Edwards A.W.F. 1967. Phylogenetic analysis: models and estimation procedures // American Journal of Human Genetics V. 19. P. 233257.

175. Churikov D., Matsuoka M., Luan X., et al. 2001. Assessment of concordance among genealogical reconstructions from various mtDNA segments in three species of Pacific salmon (genus Oncorhynchus) // Molecular Ecology. V. 10. P. 2329-2339.

176. Corley-Smith G.E., Wennerberg L., Schembri J.A. et al. 2005. Assignment of sockeye salmon (iOncorhynchus nerka) to spawning sites using DNA markers // Mar Biotechnol. V. 7(5). P. 440-448.

177. Cummings S.A, Brannon E.L., Adams K.J., Thorgaard G.H. 1997. Genetic analyses to establish captive breeding priorities for endangered Snake River sockeye salmon // Conserv. Biol. V. 11. No. 3. P. 662-669.

178. Dieringer D., Schlotterer C. 2002. Microsatellite analyzer (MSA): a platform independent analysis tool for large microsatellite data sets // Molecular Ecology Notes. V. 3(1). P. 167-169.

179. Dinesh K.R., Phang V.P.E., Lim T.M. 1993. PCR-Based DNA Fingerprinting using Arbitrary Primers in few cultivable Fishes // Proceedings of the

180. Symposium on Fish Genetics and its Application to Aquaculture and Fishery Management. V. 52. P. 11-18.

181. Domanico M.J., Phillips R.B., Oakley Т.Н., et al. 1997. Phylogenetic analysis of Pacific salmon (genus Oncorhynchus) using nuclear and mitochondrial DNA sequences // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 54. No. 8. P. 1865-1872.

182. Efremov V.V. 2001. Genetic Variation and Differentiation among Populations of Chum Salmon Oncorhynchus keta Walbaum from Southern Russian Far East // Russian Journal of Genetics. Vol. 37. No. 3. P. 283-289.

183. Ellegren H. 2004. Microsatellites: simple sequences with complex evolution // Nature Reviews Genetics V. 5 P. 435-445.

184. Elo K., Ivanoff S., Vuorinen J.A., Piironen J. 1997. Inheritance of RAPD markers and detection of interspecific hybridization with brown trout and Atlantic salmon//Aquaculture. V. 152. P. 55-65.

185. Estoup A., Presa P., Krieg F. 1993. (CT)n and (GT)n microsatellites: a new class of genetic markers for Salmo trutta L. (brown trout) // Heredity. V. 71. P. 488 -496.

186. Faugeron S., Valero M., Destombe C., Martinez E.A., Correa J.A. 2001. Hierarchical spatial structure and discriminant analysis of genetic diversity in the red alga Mazzaella laminarioides (Gigartinales, Rhodophyta) // J. Phycol. V. 37. P. 705-716.

187. Fillatre E.K., Etherton P., Heath D.D. 2003. Bimodal run distribution in a northern population of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka): life history and genetic analysis on a temporal scale // Mol Ecol. V. 12(7). P. 1793-1805.

188. Foerster R.E. 1968. The Sockeye Salmon, Oncorhynchus nerka II Fish. Res. Board of Canada. Bull. P. 162 442.

189. Fowler G.M., Stobo W.T. 1999. effects of release parameters on recovery rates of tagging groundfish species // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 56. P. 1732-1751.

190. French R., Bilton H., Osako M., Hartt A. 1976. Distribution and origin of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) in offshore waters of the North Pacific Ocean // Bull. Int. N. Рас. Fish. Comm. V. 34. 113 p.

191. Fukuhara F.M. 1961. Analysis of red salmon morphological data 1958 and 1959//INPFC Ann. Report. 1960. P. 99-107.

192. Fukuhara F.M., Murai S., LaLanne J.J., Sribhidhadh A. 1962. Continental origin of red salmon as determined from morphological characters // INPFC Bull. 8. P. 15-109.

193. Fukuwaka M., Kaeriyama M. 1994. A back-calculation method for estimating individual growth of juvenile chum salmon by scale analysis // Sci. Rep. Hokkaido Salmon Hatchery. No. 48. P. 1-9.

194. Gable J., Cox-Rogers S. 1993. Stock identification of Fraser River sockeye salmon: Metodology and Management application // Tech. Rep. Рас. Salm. Comm. No. 5. P. 40.

195. Garcia D.K., Benzie J.A.H. 1995. RAPD markers of potential use in penaeid prawn (Penaeus monodori) breeding programs // Aquaculture. V. 130. P. 137144.

196. Gilbert C.H. 1914-1920. Contributions of the life history of the sockeye salmon. Province of British Columbia // Ann. Report of the Commission of fisheries of the years 1913-1919.

197. Goldstein D.B., Pollock D.D. 1997. Launching microsatellites: a review of mutation processes and methods of phylogenetic inference // Journal of Heredity. V. 38. P. 335-342.

198. Goldstein D.B., Ruiz Linares A., Cavalli-Sforza L.L., Feldman, M.W. 1995. An evaluation of genetic distances for use with microsatellite loci // Genetics. V. 139. P. 463-471.

199. Gritsenko O.F., Karpenko V.I., Klovatch N.V., Gruzevich A.K. 2003. The problem of Pacific salmon stocks identification during the marine period of life (results and prospects) // Technical report No 5. Vancouver. Canada. P. 19-21.

200. Gupta P.K., Varshney R.K., Sharma P.C., Ramesh B. 1999. Molecular markers and their applications in wheat breeding // Plant Breed. V. 118. P. 369-390.

201. Gustafson R.G., Winans G.A. 1999. Distribution and population genetic structure of river- and sea-type sockeye salmon in western North America // Ecol. Freshwat. Fish. V. 8. No. 3. P. 181-193.

202. Hacia J.G., Collins F.S. 1999. Mutation analysis using oligonucleotide microarrays // J. Med. Genet. V. 36 P. 730-736.

203. Hadrys H., Balick M., Schierwater B. 1992. Application of random amplified polymorphic DNA (RAPD) in molecular ecology // Molec. Ecology. V. LP. 5563.

204. Hallerman E.M., Beckman J.S. 1988. DNA-level polymorphism as a tool in fisheries science //Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 45. P. 1075-1087.

205. Hanamura N. 1966. Salmon of the North Pacific Ocean. Part 3. A review of the life history of North Pacific Ocean. I. Sockeye salmon in the Far East // INPFC Bull. No. 18. P. 1-28.

206. Hanamura N. 1967. Salmon of the North Pacific Ocean. Part 4. Spawning populations of north pacific salmon. I. Sockeye salmon in the Far East // INPFC Bull. No. 23. P. 1 8.

207. Hanamura N., Osako S., Ito S., Inazawa M. 1962. Biological information on the condition of sockeye salmon in East Kamchatka // Fish. Agency Jap. INPFC Doc. 552.

208. Hansen M.M., Kenchington E., Nielsen E.E. 2001. Assigning individual fish to populations using micrasatellite DNA markers // Fish and Fisheries. V. 2. P. 93112.

209. Hartman W.L., Raleigh R.F. 1964. Tributary homing of sockeye salmon at Brooks and Karluk Lakes, Alaska // J. Fish. Res. Bd. Can. V. 21(3). P. 485504.

210. Hedrick P.W. 1999. Highly variable loci and their interpretation in evolution and conservation // Evolution. V. 53(2). P. 313-318.

211. Henderson S.T., Petes T.D. 1992. Instability of simple sequence DNA in Saccharomyces cerevisiae II Mol. Cell. Biol. V. 12. P. 2749-2757.

212. Horstkotte В., Rehbein H. 2003. Fish Species Identification by Means of Restriction Fragment Length Polymorphism and High-Performance Liquid Chromatography // J. Food Sci. V. 68. No. 9. P. 2658-2666.

213. Huang Q.-Y., Xu F.-H., Shen H. et al. 2002. Mutation pattern at dinucleotide microsatellite loci in humans // Am. J. Hum. Genet. V. 70. P. 625-634.

214. Isaksson A., Landegren U., Syvanen A.C., Bork P., et al. 2000. Discovery, scoring and utilization of human single nucleotide polymorphisms: a multidisciplinary problem // European Journal of Human Genetics. V. 8. P. 154156

215. Ishida Y., Nagasawa K.,Welch D.W., Eveson J.P. 1996. Distribution of pacific salmon (Oncorhynchus spp.) in the North Pacific ocean and its adjacent seas, 1956-1996 // NPAFC Doc. No. 232. 12 p.

216. Kimura M., Crow J. F. 1964. The number of alleles that can be maintained in a finite population // Genetics. V. 49. P. 725 738.

217. Kinghorn В., van der Werf J. 2000. Identifying and incorporating genetic markers and major genes in animal breeding programs. QTL Course: June 2000 Belo Horizonte Brasil. 112 p.

218. Kirpichnikov V.S., Muske G.A., Scholl-Engberts A.D., et al. 1990. Genetic structure and allele frequency dynamics in the sockeye salmon population of Lake Dalneye, Kamchatka // Aquaculture. V. 84. No. 1. P. 13-25.

219. Koljonen M.-L., McKinnell S. 1996. Assessing seasonal changes in stock composition of Atlantic salmon catches in the Baltic Sea with genetic stock identification // J. Fish. Biol. V. 49. P. 998-1018.

220. Kovalev M.Yu. 1995. Differentiation of two juvenile groups of sockeye salmon Oncorhynchus nerka (Walbaum) from Azabachye Lake, Kamchatka // Russ. J. Mar. Biol. (Biol. Morya). V. 21. No. 3. P. 168-173.

221. Kruglyak S., Durett R.T., Schug M.D.,Aquardo C.F. 1998. Equilibrium distribution of microsatellite repeat length resulting from a balance between slippage events and point mutations // Proc. Natl Acad. Sci. USA. V. 95. P. 10774-10778.

222. Kubo Т., Kosaka J. 1959. Study of sockeye salmon stocks by mean on the growth pattern of scales // Fish. Agency Jap. INPFC Doc. 326.

223. Kubo T. 1958. Study on the stock of red salmon by the growth pattern of scales // Fac. Fish. Hokkaido Univ. INPFC Doc. 206.

224. Landegren U., Nilsson M, Kwok P.Y. 1998. Reading Bits of genetic information: methods for single-nucleotide polymorphism analysis // Genome Research. V. 8. P. 769-776.

225. Landrum В.J., Dark Т. 1963. Morphological classification of 1960 red salmon //INPFCAnn. Report. 1961. P. 108-114.

226. Li Y.C., Korol A.B., Fahima Т., et al. 2002. Microsatellites: genomic distribution, putative functions and mutational mechanisms: a review // Molecular Ecology. V. 11. P. 2453-2465.

227. Lougheed S.C., Gibbs H.L., Prior K.A., Weatherhead P.J. 2000. A comparison of RAPD versus microsatellite DNA markers in population studies of the massasauga rattlesnake // J. of Heredity. V. 91. P. 458-463.

228. Mackill D.J., et al. 1996. Level of polymorphism and genetic mapping of AFLP markers in rice // Genome. V. 39. P. 969-977.

229. Manzer J.I., Ishida Т., Peteron A.E. et al. 1965. Salmon of the North Pacific Ocean. Part 5. Offshore distribution of salmon // INPAFC. Bull. V. 15. P. 452.

230. Margolis L. 1963. Parasites as indicators of the geographical origin of sockeye salmon Oncorhynchus nerka (Walbaum), occurring in tha North Pacific Ocean and adjacent seas // INPAFC. Bull. V. 11. P. 101-156.

231. Margolis L., Cleaver F.C., Fukuda J., Godfrey H. 1966. Salmon of the North Pacific Ocean. 6. Sockeye salmon in offshore waters // INPAFC. Bull. V. 20. P. 1-70.

232. Meng H.J., Stocker M. 1983. An evolution of morphometries and meristics for stocks separation of Pacific herring (Clupea harengus pallasi) // Can. J. Fish, aquat. Sci. V. 41. P. 414-422.

233. Miller M.P. 1997. Tools for population genetic analysis (TFPGA) 1.3: A Windows program for the analysis of allozyme and molecular population genetic data. Computer software distributed by author.

234. Moran P. 1994. Overview of commonly used DNA techniques // Application of DNA Technology to the Management of Pacific Salmon. Proceedings of the Workshop March 22-23,1993. Seattle, Washington. Edited by Park L.K., Moran P., Waples R.S. 15 p.

235. Moran P., Dightman D.A., Waples R.S., Park L.K. 1997. PCR-RFLP analysis reveals substantial population-level variation in the introns of Pacific salmon (Oncorhynchus spp.) // Mol. Mar. Biol. Biotechnol. V. 6. No. 4. P. 315-327.

236. Morin P.A., Luikart G., Wayne R.K., et al. 2004. SNPs in ecology, evolution and conversation // TRENDS in Ecology and Evolution. V. 19. No. 4. P. 208216.

237. Mosher K.N. 1963. Racial analysis of red salmon by means scales // INPFC Bull. 11. P. 31-56.

238. Mosquera J., Gomez-Gesteira M., Perez-Villar V. 2000. Using parasites as biological tags of fish populations: a dynamical model // Bull. Math. Biol. V. 62. P. 87-99.

239. Mueller U.G., Wolfenbarger L.L. 1999. AFLP genotyping and fingefprinting // Trends. Ecol. Evol. V. 14. P. 389 394.

240. Murta A.G. 2000. Morphological variation of horse mackerel (Trachurus trachurus) in the Iberian and North African Atlantic: implications for stock identification // ICES J. Mar. Sci. V. 57. P. 1240-1248.

241. Myers K.W. 1991. Scale pattern estimates of origin of sockeye salmon in 1990 port samples of the Japanese traditional landbased driftnet salmon fishery // INPFC Doc. No. 3695. 15 p.

242. Nagasawa K. 2000. Winter zooplankton biomass in the Subarctic North Pacific, with a discussion on the overwintering survival strategy of Pacific salmon (Oncorhynchus spp.) IINPAFC Bui. No. 2. P. 21-32

243. Nei M. 1972. Genetic distance between populations // American Naturalist. V. 106(949). P. 283-292.

244. Nelson R.J., Wood C.C., Cooper G., et al. 2003. Population Structure of Sockeye Salmon of the Central Coast of British Columbia: Implications for Recovery Planning // N. Am. J. Fish. Manage. V. 23. No. 3. P. 703-720.

245. Nielsen E.E., Hansen M.M., Loeschcke V. 1996. Genetic structure of European populations of Salmo salar L. (Atlantic salmon) inferred from mitochondrial DNA// Heredity. V. 77. No. 4. P. 351-358.

246. Nielsen R. 2000. Estimation of population parameters and recombination rates from single nucleotide polymorphisms // Genetics. V. 154. P. 931-942.

247. Nomura Т., Urawa S., Ueno Y. 2000. Variations in muscle lipid content of high-seas chum and pink salmon in winter // NPAFC Bui. N2. P. 347-352

248. O'Connell M., Wright J.M. 1997. Microsatellite DNA in fishes // Reviews in Fish Biology and Fisheries. V. 7. P. 331-363.

249. Okamoto Т., Suzuki Т., Yamamoto N. 2000. Microarray fabrication with covalent attachment of DNA using bubble jet technology // Nat. Biotechnol. V. 18. N. 4. P. 438-441.

250. Olsen J.B., Wilson S.L., Kretschmer E.J. et al. 2000. Characterization of 14 tetranucleotide microsatellite loci derived from sockeye salmon // Molecular Ecology. V. 9. P. 2185-2187.

251. Otha Т., Kimura M. 1973. The model of mutation appropriate to calculate the number of electrophoretically detectable alleles in a genetic population // Genet. Rez. V. 22. P. 201 -204.

252. Paetkau D., Calvert W., Stirling I., Strobeck C. 1995. Microsatellite analysis of population structure in Canadian polar bears // Mol. Ecol. V. 4. P. 347-353.

253. Page R.D.M. 1996. TREEVIEW: An application to display phylogenetic trees on personal computers // Computer Applications in the Biosciences V. 12. P. 357-358.

254. Park L.K. 1994. Introduction to DNA basics // Application of DNA Technology to the Management of Pacific Salmon. Proceedings of the Workshop March 2223, 1993. Seattle, Washington. Edited by Park L.K., Moran P., Waples R.S. 13 p.

255. Park L.K., Moran P. 1994. Developments in molecular genetic techniques in fisheries // Rev. Fish. Biol. V. 4. P. 272-299.

256. Penner G.A., Bush A., Wise R., at al. 1993. Reproducibility of random amplified polymorphic DNA (RAPD) analysis among laboratories // PCR Methods Appl. V. 2 (4). P. 341-345.

257. Ramstad K.M., Woody C.A., Sage G.K., Allendorf F.W. 2004. Founding events influence genetic population structure of sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) in Lake Clark, Alaska // Mol Ecol. V. 13(2). P. 277-90.

258. Raymond M., Rousset F. 1995. GENEPOP (version 1.2): population genetics software for exact tests and ecumenicism // J. Heredity. V. 86. P. 248-249.

259. Rehbein H., Devlin R.H., Rueggeberg H. 2002. Detection of a genetic alteration and species identification of coho salmon (Oncorhynchus kisutch): a collaborative study// Eur. Food Res. Technol. V. 214. No. 4. P. 352-355.

260. Review of the Fisheries Research Board of Canada. 1966. Ottawa. P. 5-103.

261. Rexroad III C.E., Coleman R.L., Hershberger W.K., Killefer J. 2002. Rapid communication: Thirty-eight polymorphic microsatellite markers for mapping in rainbow trout // J. Animal Sciences. V.80. P. 541-542.

262. Ricker W.E. 1938. "Residual" and kokanee salmon in Cultus lake // J. Fish. Res. Bd. Of Canada. V. 4(3). P. 192 218.

263. Ricker W.E. 1941. The consumption of young sockeye salmon by predaceous fish // J. Fish. Res. Bd. Can. V. 5(3). P. 293-313.

264. Ricker W.E. 1966. Sockeye salmon in British Columbia // In: Salmon of North Pacific Ocean. Part III. A review of the life history of North American Salmon. Int. North Рас. Fish. Comm. P. 59 70.

265. Ricker W.E. 1972. Hereditary and environmental factors affecting certain salmonid populations // In.: The stock concept of pacific Salmon. Univ. British Columbia. P. 19-160.

266. Ridgway G.J., Cushing J.E., Durall G.I. 1961. Serological differentiation of populations of sockeye salmon Oncorhynchus nerka II INPFC Bull. V. 3. P. 510.

267. Ridgway G.J., Klontz J.E., Matsumoto C. 1962. Interspecific differences in the serum antigens of red salmon demonstrated by immunochemical methods // NPFC Bull. V. 8. P. 1-13.

268. Robertson J.G. 1949. Sockeye fry production in a small British Columbia coastal watershed // Progr. Rep. Pacific Coast St. V. 80. P. 55 57.

269. Russell V.J., Hold G.L., Pryde S.E., et al. 2000. Use of Restriction Fragment Length Polymorphism To Distinguish between Salmon Species 11 J. Agric. Food Chem. V. 48. No. 6. P. 2184-2188.

270. Saiki R.K., Gelfand D.H., Stoffel S., Scharf S.J., Higuchi R., Horn G.T., Mullis K.B., Erlich H.A. 1988. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with termostable DNA polymerase // Science. V. 239. P. 487-491.

271. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. 1989. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. N.Y.: Cold Spring Harbor Lab. Press. 1626 p.

272. Schlotterer C. 2000. Evolutionary dynamics of microsatellite DNA // Chromosoma. V. 109. P. 365-371.

273. Schneider S., Kueffer J.-M., Roessli D., Excoffer L. 2000. Arlequin, Version 2.0. Genetics and Biometry Lab. Dept. of Anthropology. Univ. of Geneva. Switzerland.

274. Schwartzberg M., Fryer J.K. 1993. Identification of hatchery and naturally spawning stocks of Columbia basin spring chinook salmon by scale pattern analyses // N. Am. J. Fish. Manage. V. 13. No. 2. P. 263-271.

275. Seeb J.E., Habicht C., Olsen J.B., et al. 1998. Allozyme, mtDNA, and microsatellite variants describe structure of populations of pink and sockeye salmon in Alaska // NPAFC Bull. No. 1. P. 300-318.

276. Seeb J.E., Wilmot R.L., Urawa S., et al. 20056. Single nucleotide polymorphisms (SNPs) provide standard DNA data for Bering-Aleutian salmon international survey (BASIS) studies //NPAFC Technical Report. No. 6. P. 101103.

277. Seeb L., Decovich N., Smith C. 2006. SNPs Reveal High Levels of Genetic Diversity in Chinook Salmon From the Copper River, Alaska // SNP

278. WORKSHOP II. Applications of SNP Genotyping in Fisheries Management. Girdwood, Alaska. September 21 -22. P. 29.

279. Seeb L.W., Crane P.A. 1999. Allozymes and Mitochondrial DNA Discriminate Asian and North American Populations of Chum Salmon in Mixed-Stock Fisheries along the South Coast of the Alaska Peninsula // Trans. Am. Fish. Soc. V. 128. No. l.P. 88-103.

280. Seeb L.W., Templin W.D., Smith C.T., et al. 2005a. SNPs provide an easily-standardized baseline for NPAFC studies of chum salmon // NPAFC Doc. 907. 12 p.

281. Seeb L.W., Templin W.D., Tarbox K.E., Davis R.Z., Seeb J.E. 1997. Kenai River Sockeye Salmon Restoration. Restoration Project 96255-2. EXXON VALDEZ Oil Spill Restoration Project Final Report. 116 p.

282. Seliphonov M.M. 1982. Fluctuations in abundance of sockeye salmon in Ozernaja river // Stock Intern. Proc. North Aquaculture Symp. Anchorage. Alaska. P. 93 -96.

283. Sick K. 1961. Haemoglobin polymorphism in fishes // Nature. V. 192. P. 894896.

284. Single Nucleotide Polymorphisms: Methods and Protocols. 2003. Edited by Pui-Yan Kwok. Humana Press Inc. Totowa. New Jersey. 284 p.

285. Smith C., Seeb L. 2006. Number of Alleles as a Predictor of the Relative Assignment Power of SNP and STR Baselines for Chum Salmon // SNP WORKSHOP II. Applications of SNP Genotyping in Fisheries Management. Girdwood, Alaska. September 21 -22. P. 25.

286. Smith C.T., Baker J., Park L., et al. 2005. Characterization of 13 single nucleotide polymorphism markers for chum salmon // Molecular Ecology Notes. 4 p.

287. Smith H.D. 1987. Introduction // In: Smith H.D., Margolis L., Wood C.C (eds.). Sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) population biology and future management. Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. V. 96. 486 p.

288. Smith H.D., Margolis L., Wood C.C, 1987. Sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) population biology and future management // Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. V. 96. 486 p.

289. Smith P., McVeagh M. 2000. Allozyme and microsatellite DNA markers of toothfish population structure in the Southern Ocean // J. Fish Biol. V. 57. P. 7283.

290. Stewart I.J., Quinn T.P., Bentzen P. 2003. Evidence for fine-scale natal homing among island beach spawning sockeye salmon, Oncorhynchus nerka II Environ. Biol. Fish. V. 67. No. l.P. 77-85.

291. Suga C., Igarashi M., Watarai O. 1991. A study of the stock discrimination by the scale pattern fot chum salmon obtained from Katakishi River and Tsugaruishi River//J. Fac. Mar. Sci. Technol. Tokai Univ. V. 32. P. 37-43.

292. Swain D.P., Foote C.J. 1999. Stocks and chameleons: the use of phenotypic variation in stock identification // Fish. Res. V. 43. P. 113-128.

293. Taguchi K. 1948. On the scale and stock of the red salmon, Oncorhynchus nerka, migrating to Kamchatka // Bull. Japan. Soc. Sci. Fish. V. 13. N. 4. P. 158-160.

294. Taguchi K. 1956. The salmon fisheries and salmon resourses of the northern waters // Proc. North. Waters Fish. Res. Invest. Conf. 290 p.

295. Takashi K., Norimasa M., Naruya S. 1997. Phylogenetic relationship of the genus Oncorhynchus species inferred from nuclear and mitochondrial markers // Genes and Genetic Systems. V. 72. No. 1. P. 25-34.

296. Taylor E.B., Foote C.J., Wood C.C. 1996. Molecular genetic evidence for parallel life-history evolution within a Pacific salmon (sockeye salmon and kokanee, Oncorhynchus nerka) II Evolution. V. 50. No. 1. P. 401-416.

297. Taylor E.B., Harvey S., Pollard S., Volpe J. 1997. Postglacial genetic differentiation of reproductive ecotypes of kokanee Oncorhynchus nerka in Okanagan Lake, British Columbia // Mol. Ecol. V. 6. No. 6. P. 503-517.

298. Templin W., Antonovich A.B. 2006. Selecting the Best Subset of SNP Loci for Distinguishing Yukon River Chinook Salmon // SNP WORKSHOP II. Applications of SNP Genotyping in Fisheries Management. Girdwood, Alaska. September 21 -22. P. 23.

299. Templin W.D., Smith C.T., Seeb J.E., Seeb L.W. 2005. SNPs provide high-throughput resolution for migratory studies of Chinook salmon // NPAFC Doc. 908. 10 p.

300. Tong A.K., Ju J. 2002. Single nucleotide polymorphism detection by combinatorial fluorescence energy transfer tags and biotinylated dideoxynucleotides //Nucleic Acids Research. V. 30 No. 5. 7 p.

301. Utter F.M. 1991. Biochemical genetics and fishery management: an historical perspective // J. Fish Biol. V. 39. (Suppl. A). P. 1-20.

302. Utter F.M. 1991. Biochemical genetics and fishery management: an historical perspective // J. Fish. Biol. V. 39. Suppl. A. P. 1-20.

303. Utter F.M., Aebersold P., Helle J., Winas G. 1983. Genetic characterisation of population in south-eastern range of sockeye salmon // In: Proc. Olympic wild fish conf (eds Walton J.M., Houston D.B.) Port Angeles. USA. P. 17-32.

304. Van Doornik D.M, Winans G.A, Teel D.J. 1999. Allozyme Studies of Pacific Salmonids with Nonlethal Sampling of Fin Tissue // N. Am. J. Fish. Manage. V. 19. No. 3. P. 678-686.

305. Varnavskaya N.V. 1998b. The genetic estimations of stock composition in chum catches in Russian 200-miles zone of the Northern Pacific Ocean in 1997 // NPAFC Doc No. 376. 10 p.

306. Varnavskaya N.V. 1998a. The precision and accuracy of genetic baseline data sets for pink, chum and sockeye salmon stock identification in Pacific Ocean mixed-fisheries catches // NPAFC Doc No. 375. 13 p.

307. Varnavskaya N.V., Wood C.C., Everett R. 19946. Genetic variation in sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) populations of Asia and North America // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 51. (Suppl. 1) P. 132-146.

308. Vignal A., Milan D., SanCristobal M., Eggen A. 2002. A review of SNP and other types of molecular markers and their use in animal genetics // Genet. Sel. Evol. V. 34. P 275-305.

309. Volk C.E., Schroder S.L., Grimm J.J. 1994. Use of a bar code symbology to produce multiple thermally induced otolith marks // Trans. Amer. Fish. Soc. V. 123. P. 811-816.

310. Volobuev V., Mikodina E., Akinicheva E. 2002. Results of 2001 salmon research cruise of the RTM "Dalokean" // NPAFC. Doc.609. 22 p.

311. Vos P., Hogers R., Bleeker M., et al. 1995. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting // Nucleic Acids Research. V. 23. No. 21. P. 4407-4414.

312. Weber D., Ridgway G.L. 1967. Marking pacific salmon with tetracicline antibiotics // J. Fish. Res. Board Can. V. 24. No. 4. P. 849-865.

313. Weber J., Wong C. 1993. Mutation of human short tandem repeats // Hum. Mol. Genet. V.2.P. 1123-1128.

314. Weising K., Nybom H., Wolff K., Kahl G. 2005. DNA fingerprinting in plants: principles, methods, and applications. 2nd ed. Taylor and Francis Group. Boca Raton. USA. 444 p.

315. Welsh J., McClelland M. 1990. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers //Nucleic Acids Research. V. 18. No. 24. P. 7213-7218.

316. Williams J.G.K., Hanafey M.K., Rafalski J.A, Tingey S.V. 1993. Genetic analysis using random amplified polymorphic DNA markers // Methods Enzymol. V. 218. P. 704-740.

317. Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J., Rafalski J.A., Tingey S.V. 1990. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers // Nucleic Acids Research. V. 18. No. 22. P. 6531-6535.

318. Williamson K.S., Cordes J.F., May B. 2002. Characterization of microsatellite loci in chinook salmon (Oncorhyncus tshawytscha) and cross-species amplification in other salmonids // Molecular Ecology Notes. V. 2. P. 17-19.

319. Wilmot R.L., Burger C.V. 1985. Genetic differences among populations of Alaskan sockeye salmon // Trans. Am. Fish. Soc. V. 114(2). P. 236-243.

320. Xu X., Peng M., Fang Z., Xu X. 2000. The direction of microsatellite mutations is dependent upon allele length // Nat. Genet. V. 24. P. 396-399.

321. Ye S., Dhillon S., Ke X., et al. 2001. An efficient procedure for genotyping single nucleotide polymorphisms // Nucleic Acids Research. V. 29. No. 17. 8 p.

322. Young S.F., Downen M.R., Shaklee J.B. 2004a. Microsatellite DNA data indicate distinct native populations of kokanee, Oncorhynchus nerka, persist in232the Lake Sammamish Basin, Washington // Environ. Biol. Fish. V. 69. No. 1-4. P. 63-79.

323. Young S.F., Downen M.R., Shaklee J.B. 20046. Microsatellite DNA data indicate distinct native populations of kokanee, Oncorhynchus nerka, persist in the Lake Sammamish Basin, Washington // Genetics of subpolar fish and invertebrates. P. 63-79.

324. Zaporozhets O.M., Zaporozhets G.V. 2000. Using the coordinates of some character point of scales for differentiation of pacific salmon stocks // NPAFC Bull. No. 2. P. 325-329.

325. Zelenina D.A., Khrustaleva A.M., Volkov A.A., et. al. 2005. A case study of two genetic markers for inter-laboratory collaboration: SNPs provide transportability without standardization. // NPAFC Doc. No. 913. 14 p.

326. Zhang D.X., Hewitt G.M. 2003. Nuclear DNA analyses in genetic studies of populations: practice, problems and prospects // Molecular Ecology. V. 12. P. 563-584.

327. Zhivotovsky L.A. 1999. Estimating population structure in diploids with multilocus dominant DNA markers // Molecular Ecology. V. 8. P. 907-913.

328. Zhivotovsky L.A., Feldman M.W., Grishechkin S.A. 1997. Biased mutations and microsatellite variation // Mol. Biol. Evol. V. 14. P. 1-7.