Функциональная активность лейкоцитов, перенесших крионабиоз при - 20\NаС тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.13, кандидат биологических наук Деветьярова, Ольга Нурзадиновна

• Деветьярова, Ольга Нурзадиновна
• кандидат биологических наук
• 0

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Деветьярова, Ольга Нурзадиновна

Список использованных сокращений.

Введение.

Глава I. Обзор литературы. Современное состояние проблемы введения лейкоцитов в холодовой анабиоз при температуре -20°С

1.1. Функциональные свойства лейкоцитов.

1.2. Методы получения лейкоцитного концентрата и его применение.

1.3.Сроки хранения лейкоцитов при различных температурах.

1.4. Концепции и теории криоповреждения и криозащиты плазматических мембран.

1.5. Криопротекторы и криоконсерванты, используемые,при замораживании лейкоцитов.

1.6. Методы криоконсервирования лейкоцитов.

Глава П. Материалы и методы исследований.

Глава III. Результаты экспериментальных исследований

3.1. Разработка метода введения лейкоцитов в холодовой анабиоз при -20°С.

3.1.1. Применение экспоненциальной программы для замораживания лейкоцитов до -20°С.

3.1.2. Выбор оптимального состава хладоограждающего раствора.

3.1.3. Изучение влияния длительности хранения применяемого хладоограждающего раствора на сохранение его криозащитных свойств.

3.2. Исследование функциональных и морфологических свойств лейкоцитов крови человека до введения в холодовой анабиоз (-20°С) и после выхода из него.

3.2.1. Действие криозащитного раствора на сохранность лейкоцитов.

3.2.2. Определение оптимального срока хранения лейкоцитов. .•.

3.2.3. Исследование функциональных и морфологических свойств лейкоцитов крови человека при оптимальном сроке хранения с разными вариантами хладоограждающего раствора.

3.3. Изучение биологических особенностей разработанного хладоограждающего раствора для лейкоцитов.

3.3.1. Изучение «острой токсичности» хладоограждающего раствора.

3.3.2. Изучение «хронической токсичности» хладоограждающего раствора.

3.3.3. Изучение пирогенности хладоограждающего раствора.

3.3.4. Изучение переносимости экспериментальными ^животными трансфузий концентрата лейкоцитов, замороженных с разработанным хладоограждающим раствором.

Глава IV. Обсуждение результатов экспериментальных исследований.

Выводы.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Функциональная активность лейкоцитов, перенесших крионабиоз при - 20\NаС»

Актуальность темы.

В настоящее время многими исследователями (Zhang Q., Tiersch T.R., 1995; Svedentsov Е.Р. et al., 1998; Goltsev A.N. et al, 2000; Halle P. et al, 2001; Nishimura M. et al, 2001; Сведенцов Е.П. и соавт., 2000, 2003, 2004;0сташко В.Ф., Осташко Ф.И., 2004; Смольянинова Е.И.и соавт., 2004) активно — изучаются механизмы криоповреждения и криозащиты клеток животного происхождения. Большое внимание уделяется изучению физиологии клеток крови после воздействия различных стресс-факторов, в том числе отрицательных температур (Терентьева Э.И. и соавт.,1966; Цуцаева A.A. и соавт., 2004). Ядерные клетки крови обладают сложной внутренней организацией, повышенными процессами метаболизма и являются весьма неустойчивыми к действию факторов холодового стресса (Белоус A.M., Грищенко В.И., 1994). Необходимость исследования физиологических свойств белых клеток крови человека и разработки способов сохранения их в биологически полноценном состоянии, прежде всего, связана с расширением показаний к применению лейкоцитных концентратов (ЛК). Трансфузии JIK являются эффективным средством профилактики и лечения инфекционного менингита, разлитого перитонита, сепсиса, лучевой болезни и других заболеваний (Ермолович C.B., 1981; Рыжков C.B. и соавт., 1992, 1995; Мельникова В.Н. и соавт., 1993; Cairo M.S. et. al., 1992; Bhatia S. et. al., 1994; Ханевич М.Д., Маринин A.B., 1995; Мирошниченко А.Г. и соавт., 1996; Neppert J., 1996; Herzog R., 1999; Балашов Д.Н., 2001).

На протяжении многих лет (Абезгауз H.H., Леонтович В.А., 1966; Пушкарь Н.С. и соавт., 1978; Ермолович C.B., 1981; Аграненко В.А. и соавт., 1982; Утемов C.B. и соавт., 1995, 1999; Сведенцов Е.П. и соавт., 1999, 2000, 2004) ведется поиск оптимальных методов замораживания и хранения лейкоцитов в состоянии холодового анабиоза. Накопленный опыт свидетельствует о том, что сохранить в биологически полноценном состоянии лейкоциты при положительной температуре (+4°С) можно до 24 часов (Цуцаева A.A., 1983), при температуре от О С до - до 48 часов (Белоус A.M., Грищенко В.И., 1994), при -5°С в условиях гипербарии (при 400 атм) - до 3 недель (Павленко P.A. и соавт., 1988), при -60°С -^-80°С - до 12 месяцев (Лаврик С.С., Когут Г.И., 1971; Утемов C.B., 1995; Galmes A., et al., 1996; Halle P. et-al.,---2001),-a. при -196°C - в среднем до 20 месяцев (Лобынцева Г.С. и соавт., 1974; Пушкарь Н.С. и соавт., 1974; Аграненко В.А. и соавт, 1982, 1997).

Анализ данных литературы позволяет заключить, что существующие методы замораживания-до--196-G и хранение при-данной температуре, хотя и являются наиболее результативными, но в тоже время требуют применения дорогостоящего криогенного оборудования, жидкого азота и привлечения высококвалифицированного обслуживающего персонала, что делает технологию криоконсервирования сложной, громоздкой и экономически неэффективной, существенно затрудняет ее использование в криобиологической практике.

Поэтому весьма актуальным является создание простого, эффективного и экономичного метода введения лейкоцитов в холодовой анабиоз без использования жидкоазотной технологии при других температурах, в том числе субумеренно-низких тем более, что в отечественной и зарубежной литературе метод сохранения лейкоцитов в функционально полноценном состоянии при температуре -20°С не описан.

Для защиты различных клеток организма от неблагоприятного воздействия холодового стресса используют различные криопротекторы: глицерин, диметилсульфоксид (ДМСО) и другие, которые не являются абсолютно безвредными для организма и требуют удаления перед их применением с помощью отмывания (Аграненко В.А., Тибилова Н.Н.Д997). Менее токсичный криопротектор диметилацетамид (ДМАЦ) в нашей стране не производится. Поэтому необходима разработка нетоксичного, эффективного и не требующего отмывания хладоограждающего раствора. С другой стороны, для сохранения функциональной активности клеток требуется применение щадящей и нетрудоемкой программы охлаждения. Данным условиям отвечает экспоненциальная программа замораживания (Гордиенко Е.А., Пушкарь Н.С., 1994).

Таким образом, дляизучения физиологических особенностей— лейкоцитов, перенесших холодовой анабиоз при -20°С, актуальной остается разработка технологии замораживания и хранения их в условиях субумеренно-низких температур.

Разработка данного метода сохранения лейкоцитов в полноценном^—' состоянии имеет и большое теоретическое значение, так как касается высокодифференцированных со сложными функциями клеток организма. Выяснение условий введения таких клеток в холодовой анабиоз при данной температуре и выведения из него создаст теоретическую основу для разработки подобных методов в отношении высокоорганизованных клеток и тканей организма млекопитающих и человека.

Цель исследования - определить функциональную активность лейкоцитов, перенесших холодовой анабиоз при —20°С, достигнутый применением экспоненциальной программы охлаждения и нового криозащитного раствора.

Задачи исследования: 1. С целью выбора оптимального хладоограждающего раствора провести сравнительную характеристику влияния трех вариантов растворов (№№ 1, 2, 3) на сохранение жизнеспособности и функциональной активности лейкоцитов крови человека, замороженных по экспоненциальной программе до -20°С и хранившихся в условиях холодового анабиоза в течение 24 часов

2. Изучить жизнеспособность и морфологический состав лейкоцитов, фагоцитарную и метаболическую активность нейтрофилов и моноцитов, перенесших криоанабиоз (-20°С) продолжительностью 1-90 суток под защитой оптимального варианта хладоограждающего раствора.

3. Оценить в опытах на животных острую и хроническую токсичность и пирогенность оптимального хладоограждающего раствора и установить переносимость аутологичных лейкоцитных концентратов после их--------------хранения в течение 1 суток при -20°С.

Научная новизна. В лабораторно-экспериментальном исследовании впервые изучены функциональные и морфологические свойства лейкоцитов, вышедших из холодового анабиоза при достигнутого с использованием оригинального хладоограждающего раствора и экспоненциальной программы замораживания, показано, что в этих условиях сохранить фагоцитарную активность нейтрофилов и моноцитов, целостность плазматической мембраны лейкоцитов, стабильность их морфологического состава и их общее количество на высоком уровне возможно в течение 21 суток.

Теоретическая и практическая значимость. Результаты работы расширяют представления о механизмах криоповреждения и криозащиты лейкоцитов крови человека, в том числе о высокой жизнеспособности лейкоцитов в условиях применения гексаметиленбистетраоксиэтилмочевины (ГМБТОЭМ) и оксиметилэтилпиридина сукцината (ОМЭПС) при -20°С. Дано научное обоснование криозащитных свойств разработанного хладоограждающего раствора, ингредиентами которого являются вещества отечественного производства - криопротектор смешанного действия ГМБТОЭМ и мембраностабилизирующее и антиоксидантное вещество -ОМЭПС. На данный раствор получен патент на изобретение № 2240000

РФ) от 20.11.2004 года. Кроме того, в опытах на экспериментальных животных доказана безвредность этого раствора на клеточном и организменном уровнях. Для высокой функциональной и морфологической сохранности лейкоцитов крови человека, подвергнутых холодовому анабиозу при -20°С, предложен эффективный недорогостоящий и доступный метод, включающий в себя применение хладоограждающего раствора, медленной экспоненциальной программы охлаждения, быстрого отогрева. Доказано,------что применение экспоненциальной программы замораживания лейкоцитов обеспечивает высокую эффективность криоконсервирования и является более предпочтительной, т.к. она значительно сокращает продолжительность и трудоемкость^ процедуры -замораживания,—подходит—для —взвеси, содержащей разные популяции клеток. Установлено, что для осуществления данной процедуры замораживания не требуется применение дорогостоящей жидкоазотной технологии, возможно использование электрического морозильника для осуществления экспоненциальной программы и не требуется высокой квалификации обслуживающего персонала. На основе данных об отсутствии пирогенности, острой и хронической токсичности оригинального хладоограждающего раствора, о полноценной морфофункциональной сохранности замороженных с ним клеток дано заключение о возможности и безопасности внедрения его в работу научных лабораторий и криобиологическую практику.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Функциональная активность и морфологическая полноценность лейкоцитов, введенных в холодовой анабиоз при -20°С, сохраняются на высоком уровне в течение 21 суток.

2. Хладоограждающий раствор, содержащий ГМБТОЭМ и ОМЭПС, и являясь нетоксичным, апирогенным, не требующим отмывания после оттаивания биообъекта, способствует сохранению функциональной активности лейкоцитов, подвергнутых криоанабиозу при -20° С. 3. Экспоненциальная программа введения лейкоцитов в холодовой анабиоз способствует сохранению их жизнеспособности и потому наряду с разработанным хлад о ограждающим раствором может использоваться для замораживания лейкоцитов при температуре —20°С.

Апробация работы. Результаты работы доложены на Всероссийской научной конференции «Актуальные проблемы регионального экологического мониторинга: теория, методика, практика» (Киров, 2003), на заседании Кировского отделения физиологического общества имени И.П. Павлова (Киров, 2004), на научной сессии Кировского филиала Российской Академии Естествознания (Киров, 2004), Ученом Совете Института физиологии Коми НЦ УрО РАН (Сыктывкар, 2004), Международной конференции «Сохранение генетических ресурсов» (Санкт- Петербург, 2004), заседании Кировского областного научного общества гематологов и трансфузиологов (Киров, 2005).

Личное участие автора в получении результатов. Автором были выполнены все исследования по изучению функциональных свойств нативных и размороженных лейкоцитов и проведена статистическая обработка результатов исследования. Автор принимал участие в разработке метода введения лейкоцитов в холодовой анабиоз при -20°С, в проведении биологических испытаний криозащитного раствора и в написании статей.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 7 печатных работ, из них 3 в центральной печати; имеется 1 патент.

Заключение диссертации по теме «Физиология», Деветьярова, Ольга Нурзадиновна

выводы

1. Оптимальным криозащитным раствором, сохраняющим жизнеспособность, морфологический состав и фагоцитарную активность нейтрофилов, введенных в состояние криоанабиоза (-20°С) по экспоненциальной программе и хранившихся в течение 1 и 21 суток, признан раствор №2, содержащий криопротектор ГМБТОЭМ (14% в конечной концентрации) и мембраностабилизирующее, антиоксидантное и антигипоксантное вещество ОМЭПС (0,075%). В его присутствии сохраняется в течение 1 суток 95,25% лейкоцитов, жизнеспособными из которых являются 84,00%, а фагоцитарной активностью обладают 82,33% нейтрофилов. Способность проявлять криозащитные свойства у данного раствора сохраняется в течение 45 суток (при ~+60°С), что эквивалентно й годам хранения при+4°С.

2. Оптимальным сроком хранения лейкоцитов в условиях криоанабиоза (-20°С) являются 21 сутки, в течение которых сохраняется 90,91±7,56% лейкоцитов, из них 89,27±6,84% остаются жизнеспособными. Фагоцитарная активность нейтрофилов составляет 71,67±10,82%, их метаболическая активность (НСТ-тест) повышается в 3 раза. Фагоцитарная активность моноцитов не изменяется после размораживания при всех сроках хранения. Метаболическая активность моноцитов увеличивается в зависимости от сроков нахождения клеток в состоянии холодового анабиоза: через 1 и 14 суток - в 6 раз, через 21 сутки - в 12 раз, а через все последующие сроки (2890 суток) - в 26 раз.

3. Хладоограждающий раствор №2 является нетоксичным и апирогенным, так как не вызывает гибель животных и не изменяет их поведения, показателей ЭКГ, гемограммы, урограммы, не повышает ректальную температуру, не приводит к деструктивным изменениям органов. Физиологически активные аутологичные лейкоцитные концентраты, подвергнутые холодовому анабиозу при -20°С с хладоограждающим раствором, не требующим отмывания после размораживания, при внутривенном переливании не вызывают реакций и осложнений у экспериментальных животных

4. Применение экспоненциальной программы замораживания и оригинального хладоограждающего раствора является эффективным и доступным методом для хранения лейкоцитов в условиях субумеренно-низкой температуры (-20°С), что может использоваться для криофизиологии и трансфузиологии.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Деветьярова, Ольга Нурзадиновна, 0 год

1. Абезгауз H.H., Леонтович В. А. Замораживание белых клеток периферической крови для длительного хранения при ультранизких температурах // Пробл. гематологии и переливания крови. 1966. - № 9 - С. 24-30.

2. Аграненко В.А., Тибилова H.H. Консервирующие растворы для крови и ее компонентов // Кровезаменители, консерванты крови и костного мозга. Справочник.- М.: Медицина, 1997.- С. 120-161.

3. Актуальные проблемы криобиологии / Под ред. Пушкаря Н. С. Киев: Наукова Думка, 1981. - 605 с.

4. Алексеев H.A. Клинические аспекты лейкопений, нейтропений и функционалБНЫхпарушений^нейтрофилов. СПбтгФолиант^2002г-416-с;

5. Алмазов В.А. Физиология лейкоцитов человека.- Л.: Наука, 1973.-232 с.

6. Антимикробная активность миелопероксидазы пероксидазосом нейтрофила / П.Г. Бут, P.A. Муравьев, В.А. Фомина и др. // Изв. РАН. Сер.: Биологическая. 2002.-№ 3. - С.266-270.

7. Атлас клеток крови и костного мозга / Под ред. профессора Г. И. Козинца. -М.: Триада-X, 1998. 160 с.

8. Балашов Д.Н. Лечебные трансфузии гранулоцитов для лечения тяжелых инфекционных осложнений у пациентов с нейтропенией. Автореф. .канд.мед. наук (НИИДГ), М., 2001. 24 с.

9. Барабой В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов // Успехи современной биологии. 1991.-Т. 111.- Вып. 6. - С. 21-28.

10. Белова Л.А. Биохимия процессов воспаления и поражения сосудов. Роль нейтрофилов// Биохимия. 1997.-Т.62, №6. - с. 659-668.

11. Белоус A.M., Гордиенко Е.А., Розанов Л.Ф. Замораживание и криопротекция.-М.: Высшая школа,1987. 80 с.

12. Белоус A.M., Грищенко В.И. Криобиология. Киев: Наукова Думка, 1994.-430 с.

13. Биологические свойства криоконсервированных лейкоцитов и их клиническое применение / В.А. Аграненко, Ф.Э. Файнштейн, C.B. Ермолович и др. // Пробл. гематологии и переливания крови. — 1982. № 4. - С.6-10.

14. Биохимия/ Под ред. B.C. Северина. М. ГЭОТАР-МЕД.- 2003. - С. 36296

15. Биохимия человека/Р. Марри, Д. Греннер, П. Мейес, В. Родуэлл. Пер. с англ.: - М.: Мир, 1993. - Т.1.-384 с.

16. Бурлакова Е. Б., Храпова Н.Г. Перекисное окисление липидов мембран и природные антиоксидатны // Успехи химии. 1985. T. LIV. Вып. 9. С. 15401558.,

17. Быков B.J1. Цитология и общая гистология (функциональная "морфология клеток и тканей"человека)^СПбГГСОТИСГ19997 "520 с.

18. Виксман М.Е., Маянский А.Н. Применение реакции восстановления нитросинего тетразолия для оценки функционального состояния нейтрофилов человека//Казан. Мед. журн. 1997. - Т. 55, №5. - С.99-100.

19. Владимиров Ю. А., Арчаков А. И. Перекисное окисление липидов в биологических мембранах. М.: Наука, 1972. - 252 с.

20. Влияние мексидола и его структурных компонентов на содержание углеводов и перекисное окисление липидов при: остром стрессе/ Т.А. Девяткина, Р.В. Луценко, Е.М. Важничая, Л.Д. Смирнов// Вопросы медицинской химии.- 1999.-Т.45, вып. 3. С. 246-249.

21. Влияние низкотемпературной консервации на поверхностные свойства лимфоцитов крови / Г.С. Лобынцева, А.И. Полякова, Г.М. Щербак, Э.П. Обозный // Актуальные вопросы криобиологии и криомедицины: Мат-лы симпоз.- Киев, 1974.-С. 67-69.

22. Вода и водные растворы при температурах ниже 0°С / Пер. с англ.; Под ред. Ф. Франкса.-Киев: Наукова Думка, 1985. -387 с.

23. Временная инструкция по проведению работ с целью определения сроков годности лекарственных средств на основе метода ускоренного старения при повышенной температуре.-М., 1979.-7 с.

24. Герасимов И.Г., Игнатов Д.Ю. Функциональная неравнозначность нейтрофилов крови человека: генетика активных форм кислорода // Цитология. 2001. - Т. 43, №5. - С. 432-436.

25. Герасимов И.Г., Калуцкая O.A. Кинетика реакции восстановления нитросинего тетразолия нейтрофилами крови человека // Цитология. 2000. -Т. 42, №2.-G. 160-165.

26. Герман A.C. Пиридин. Большая медицинская энциклопедия. М.; 1981. -Т.17.-с. 1054-1055.

27. Гланц С. Медико-биологическая статистика. — М.: Практика, 1998. —459 с.

28. Гольдберг Е.Д., Дыгай A.M., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии. — Томск: Изд-во Томского гос. ун-та, 1992. 264 с.

29. Гордиенко Е.А., Пушкарь Н.С. Физические основы низкотемпературного консервирования клеточных суспензий. Киев: Наукова Думка, 1994. - 144 с.

30. Государственная фармакопея СССР: Вып. 2. Общие методы анализа, лекарственное растительное сырье / 11-е изд. — М.: Медицина, 1990. С.182-185

31. Гусейнов И.С., Федорова Л.И. Выделение лейкоцитов из крови доноров для экспериментальных и клинических целей // Пробл. гематологии и переливания крови. 1963. - №4. - С. 52-55.

32. Демин С.Ю. Основные типы и жизненные формы периферических и ФГА-стимулированных лимфоцитов человека, выявляемые in vitro // Цитология. 2003. - T. 45, №6. - С.535-547.

33. Ермолович C.B. Криоконсервирование лейкоцитов и их клиническое применение // Воен.-мед. журн. 1981. - №12. — С. 38-41.

34. Ермолович C.B. Современные подходы к использованию лейкоцитарной массы в гематологической клинике // Медицинский реферативный журнал. 1981. - №5. - С. 22-28.

35. Жибурт Е.Б. Трансфузиология. СПб.: Питер, 2002. -736 с.

36. Замораживание: факторы, механизмы и гипотезы криоповреждения биологический суспензий / Ю.А. Иткин, В. Л. Бронштейн, Е.А. Гордиенко,

37. B.Ф. Марценюк // Консервирование клеточных суспензий. Киев: Hayкова Думка, 1983.-С. 26-34.

38. Изучение поглотительной способности нейтрофилов крови с использованием инертных частиц латекса7 C.F. Потапова, B.C. Хрустиков, Н.В. Демидова, Г.И. Козинец // Пробл. гематологии и переливания крови. -1977. №9. - С.58-59.

39. Инструкция по применению полимерных контейнеров «Гемакон» и «Компопласт» / В.П. Кошивая, Е.М. Макарова, U.M. Шишов и др. М.,1983. — 1з с. ; v • '. ". • ■. .

40. Истаманова Т.С;, Алмазов В.А.; Каиаев С.В: Фу нщйональная гематология. JI.: Медицина,, 1973. - 310 с.

41. Калинин И.Н. Получение и применение концентрата тромбоцитов и лейкоцитов // Пробл. гематологии и переливания крови. 1980. - №10. - С. .50-56; ' /.".•■' ■■■■' . ''•'•■

42. Калинин И.Н. Получение концентрата тромбоцитов и лейкоцитов с помощью сепаратора клеток крови и их применение при миелодепрессии // Автореф. канд. дисс., 1978.-20 с.

43. Консервирование гранулоцитов с раствором «Лейкокриодмац» / В.А. Аграненко, H.H. Абезгауз, В.М. Трошина и др. // Гематология и трансфузиология. 1986. - № 12. - С.26-29.

44. Консервирование лейкоцитов замораживанием при низких температурах (-60ч--80°С) / Е.П. Сведенцов, C.B. Утемов, A.A. Костяев идр. //

45. Актуальные проблемы гематологии и трансфузиологии: Мат-лы науч.-практ. конф. (С.-Петербург, 6-8 июня, 2000 г.). СПб, 2000. - С. 261-262.

46. Корреляция скоростей охлаждения с ограждающей средой в поиске оптимальных режимов замораживания гранулоцитов / И.К. Махатадзе, JI.X. Каличава, H.H. Мгебришвили и др. // Пробл. гематологии и переливания крови. 1975. - №9. - С. 25-27.

47. Криоконсервирование клеточных суспензий / Под ред. A.A. Цуцаевой — Киев: Наукова Думка, 1983. 240 с.

48. Криоконсервирование лейкоцитов с новым ограждающим раствором / C.B. Утемов, Е.П. Сведенцов, A.A. Костяев и др. // Вопросы трансфузионной и клинической медицины: Мат-лы 6-й науч. конф. молодых ученых (29-30 марта 1999 г.). Киров, 1999. - С.28.

49. Криопротекторы / Н.С. Пушкарь, М.Н. Шраго, A.M. Белоус, Ю.В. Калугин. Киев: Наукова Думка, 1978. - 204 с.

50. Криоустойчивость лимфоцитов крови и лимфоидных тканей / A.A. Цуцаева, А.Н. Попов, Т.Н. Воскобойникова и др. // Консервирование крови и ее компонентов: Сб. мат-лов I Всесоюзн. симпоз. (Москва, 27-29 сентября, 1981 г.).-М.,1981. С.75-77.

51. Лаврик С.С., Зверкова A.C., Афанасьева Е.Ю. Консервирование клеток селезенки поливинилпирролидоном методом глубокого замораживания // Врачеб. дело. 1971. - №2. - С. 9-12.

52. Лаврик С.С., Когут Г.И., Афанасьева Е.Ю. Применение низкомолекулярного ПВП в качестве защитной среды для консервирования и длительного хранения лейкоцитов методом глубокого замораживания // Врачеб. дело. 1971. - №12. - С. 80-83.

53. Лебедев К.А., Понякина И.Д. Иммунограмма в клинической практике. М.: Наука, 1990.-224 с.

54. Леонтович В.А., Абезгауз H.H., Трошина В.М. Метод замораживания гранулоцитов с диметилацетамидом // Современные проблемы криобиологии и криомедицины. М., 1975. - С.75-84.

55. Леонтович В.А., Абезгауз H.H., Трошина В.М. Получение лейкоцитной массы из периферической крови человека и ее фракционирование на гранулоциты и лимфоциты //'Пробл. гематологии и переливания крови. -1971. №1. - С.51-57.

56. Лобынцева Г.С., Тимошенко Ю.П. Влияние скорости отогрева на выживаемость клеток крови // Криобиология и криомедицина. 1981. - №8. -С. 15-18.

57. Лобынцева Г.С., Щербак Г.М., Полякова А.И. Низкотемпературное консервирование ядросодержащих клеток крови под защитой полиэтиленоксида различного молекулярного веса // Актуальные вопросы криобиологии и криомедицины: Мат-лы симпоз. Киев, 1974.- С. 69-70.

58. Максимов H.A. О замерзании и холодостойкости растений. СПб.: Изд. Лесн. института, 1913. - 136 с.

59. Машковский М.Д. Лекарственные средства: В 2 т. Т.2./ Изд. 14-е, перераб., испр. и доп.- М.: Новая волна. 2002.- 608 с.

60. Маянский А.Н., Маянский Д.Н. Очерки о нейтрофиле и макрофаге. 2 изд., перераб. И доп. - Новосибирск: Наука. Сиб. Отд-ние, 1989. - 344 с.

61. Мельникова В.Н. Получение и клиническое применение при гнойно-септических заболеваниях лейкоцитарной взвеси из крови иммунных доноров // Трансфузионная медицина. 1995. - №5. - С.32-36.

62. Механизм бактерицидной активности в фагосомах нейтрофилов / P.A. Муравьев, П.Г. Бут, В.А. Фомина и др. // Изв. РАН. Сер.: Биологическая. -2002. -№4.-С. 437-441.

63. Механизмы индукции и репарации нелетальных криоповреждений / A.A. Цуцаева, А.О. Котляров, О.В. Кудокоцева и др. // Цитология. 2004. -Т. 46, №9. - С. 879.

64. Мецлер Д. Биохимия. Химические реакции в живой клетке. М.: Мир, 1980.-Т.2. - с. 317-319, с. 321-322.

65. Мечников И.И. Учение о фагоцитозе и его экспериментальные основы // Вопросы иммунитета / И.И. Мечников. М.: Изд-во АН СССР, 1951. - С. 520-646.

66. Миелопероксидаза пероксидазосом нейтрофила / П.Г. Бут, В.А7 Фомина, P.A. Муравьев и др. // Изв. РАН. Сер.: Биологическая. 2003. - № 3. -С.261-265.

67. Муравьев P.A., Роговин В.В. Химические основы неспецифического иммунитета // Изв. РАН. Сер.: Биологическая. 2001. - №3. - С.284-292.

68. Муравьев P.A., Фомина В.А., Роговин В.В. Желатиназные гранулы нейтрофильных гранулоцитов // Изв. РАН. Сер.: Биологическая. -2003. №4. - С.389-394.

69. Набокина С.М. Внутриклеточная локализация белка LAMP 1 в нейтрофилах человека // Бюл. эксперим. биологии и медицины. - 2001. — Т. 131, №2. - С.160-161.

70. Наградова Н.К. Внутриклеточная регуляция формирования нативной пространственной структуры белков / Соросовский Образовательный Журнал. 1996. - № 7. - С. 10-18.

71. Низкотемпературная консервация лимфоцитов / Н.С. Пушкарь, А.И. Полякова, A.A. Цуцаева и др. // Пробл. гематологии и переливания крови. -1974. №7. - С.23-26.

72. Низкотемпературная консервация ядерных клеток крови / А.И. Полякова, Ю.А. Иткин, A.A. Цуцаева, O.A. Дроздова // Новая медицинскаятехника, медицинские изделия и их испытания. Сб. трудов. М, 1976. - с. 151-157

73. О возможных факторах повреждения биологических объектов и их ДНК при криоконсервации/А.В. Зинченко, В.Д. Зинченко, Е.Ф. Копейка, Е.В. Онищенко// Цитология. 2004. - Т. 46, №9. - С. 796.

74. Основы трансфузиологии / Под ред. М.Ф. Заривчацкого. Пермь: Изд-во Пермского ун-та, 1995. - С. 74-75.

75. Особенности антигипоксического действия мексидола, связанные с его специфическим влиянием на энергетический обмен / Л.Д. Лукьянова, В.Е. Романова и др. //Хим. фарм. журн. - 1990. - №8. - С.9-11

76. Осташко В.Ф., Осташко Ф.И. Температурный шок клеток как гидравлический удар в резонансной системе // Цитология. — 2004. Т. 46, №9.-С. 831-832.

77. Павленко P.A., Зельманович Б.М., Куденко Ю.А. Изучение фагоцитарной способности лейкоконцентрата донорской крови, хранившегося в условиях высокого давления и температуры ниже 0°С//Гематология и трансфузиология, №7, 1988. С. 16-18.

78. Патент на изобретение №2184449. Криозащитный раствор для замораживания лейкоцитов при умеренно-низкой температуре / Е.П. Сведенцов, Т.В. Туманова, А.Н. Семенов, С.А. Хомякова, A.A. Костяев, C.B. Утемов. Приоритет 18.04.2001. Опубл. 10.07.2002.

79. Перекисное окисление и стресс/ В.А. Барабой, И.И. Брехман, В.Г. Голотин Ю.Б. Кудряшов СПб.: Наука, 1992. - 148 с.

80. Пигаревский В.Е. Зернистые лейкоциты и их свойства. — М.: Медицина, 1978. С.104-108.

81. Пичугин Ю.И. Итоги и перспективы поиска новых эндоцеллюлярных криопротекторов// Проблемы криобиологии.- 1993.-№2.- С.3-10.

82. Полякова А.И. Влияние низкотемпературной консервации на клеточный состав лейкоконцентрата донорской крови // Актуальные вопросы криобиологии и криомедицины: Мат-лы симпоз. Киев, 1974. - С. 124-126.

83. Полякова А.И. Изучение влияния низких температур (196°С) и криопротектора (ПЭО-400) на сохранность клеток лейкоконцентрата и лимфоконцентрата периферической крови: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Харьков, 1975,- 14 с.

84. Попов C.B. Взаимодействие фагоцитов млекопитающих с полисахаридами растений. — Сыктывкар, 2002. 100 с.

85. Попов C.B.Функциональные реакции нейтрофилов и макрофагов на растительные полисахариды: Автореф. дис. . канд. биол. наук. Сыктывкар, 1999.-19 с.

86. Практическая трансфузиология / Г.И. Козинец, JLC. Бирюкова, H.A. Горбунова и др. -М., 1997.-435 с.

87. Применение лейкоконцентрата при гнойно-септических состояниях / C.B. Рыжков, А.Н. Плоцкий, С.Ф. Малахов и др. // Актуальные вопросы службы крови и трансфузиологии (Тез. докл. Рос. конф., 1995, С. Петербург) -СПб, 1995.-С.343-344.

88. Пушкарь Н.С., Белоус A.M. Введение в криобиологию. Киев: Наукова Думка, 1975.-342 с.

89. Разработка оптимальных программ охлаждения для замораживания гранулоцитов и лимфоцитов человека / В.А. Леонтович, H.H. Абезгауз, В.Я. Перфильев и др. // Пробл. гематологии и переливания крови. 1973. - №9. -С. 44-47.

90. Разработка оптимальных режимов программного замораживания лейкоцитов / Н.С. Пушкарь, Г.С. Лобынцева, А.И. Полякова и др. // Проблемы гематологии и переливания крови. 1966. - №1. -С.28-34.

91. Разработка оптимальных режимов программного замораживания лейкоцитов / Н.С. Пушкарь, Г.С. Лобынцева, А.И. Полякова и др. // Пробл. гематологии и переливания крови. 1978. - №8. - С.8-13.

92. Резник С.Е. Мечников. — М.: Молодая гвардия, 1973. 365 с.

93. Роговин В.В., Муравьев P.A., Муштакова В.М. Состав пероксидазосом нейтрофилов // Изв. РАН. Сер.: Биологическая. 2001. - №4. - С.396-401.

94. Руководство по общей и клинической трансфузиологии / Ю.Л. Шевченко, В.Н. Шабалин, М.Ф. Заривчацкий, Е.А. Селиванов. СПб.: Фолиант, 2003.-608 с.

95. Руководство по трансфузионной медицине / Под ред. Е.П. Сведенцова. -Киров, 1999.-715 с.

96. Рыжков С.В., Калеко С.П., Плоцкий A.IT. Клиническое применение лейкоконцентрата // Вест, хирургии. 1992. - №1-3. — С.78-82.

97. Сведенцов Е.П. К классификации разных уровней отрицательных температур, используемых для консервирования биообъектов // Материалы научной сессии (30-31 марта 2004 г.). Киров, 2004. - С.117-120.

98. Сведенцов Е.П. Получение и криоконсервирование костного мозга для клинического применения: Автореф. дис. . д-ра мед. наук. Л., 1987. - 45 с.

99. Сведенцов Е.П., Архиереев В.П., Симкин Д.С., Кузнецов Е.В. Средство для криоконсервирования костного мозга. Патент №2049391 (РФ) от 10.12.1995.

100. Сведенцов Е.П., Костяев A.A. Отечественные криоконсерванты для костного мозга // Вестник службы крови России.- 1997. -№1. С. 26-28.

101. Сезонные колебания неспецифической активности и сопротивляемости осмотическим и механическим воздействиям лейкоцитов периферической крови / М.З.Федорова, В.Н.Левин, В.Д. Горичева, О.Н.Семенова // Педагогический вестник, 2003. №11. - с.421

102. Скулачев В.П. В своем межмембранном пространстве митохондрия таит «белок самоубийства», который, выйдя в цитозоль, вызывает апоптоз // Биохимия. 1996. - Т. 61. - С. 2060-2063.

103. Славянский A.A. Цитоплазматическая зернистость нейтрофильных лейкоцитов // Клинич. лаб. диагностика. 2002. - №3. - С.39-42.

104. Смольянинова Е.И., Линник Т.П., Гордиенко О.И. Проницаемость мембран ооцитов мыши для криозащитных веществ ряда диолов и амидов// Цитология. 2004. - Т. 46, №9. - С. 855-857.

105. Способ введения лейкоцитов крови человека в холодовой анабиоз при -50°С / Е.П. Сведенцов, Т.В. Туманова, С.А. Якшина и др. // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 2003. - №11. - С.35-37.

106. Справочник ВИДАЛЬ. Лекарственные препараты в России/ Изд. 7 перераб., испр. и доп. М.: Астра ФармСервис, 2001. - 1536 с.

107. Субмикроскопическая организация клеток крови, хранившихся в замороженном состоянии/ Э.И. Терентьева, В.А. Леонтович, Л.И. Федорова и др.//Р.Ж. ВИНИТИ 04.Ai Общие проблемы биологии. 1966. - №1. - С.154-168

108. Трошина В.М. Криоконсервирование гранулоцитов с диметилацетамидом: Автореф. дис. . канд. биол. наук. -М., 1981.-14 с.

109. Трошина В.М., Абезгауз H.H., Леонтович В.А. Применение диметилацетамида в качестве криопротектора при замораживании гранулоцитов // Пробл. гематологии и переливания крови. 1977. - №5. -С.50-53.

110. Туманов И.И. Физиологические основы зимостойкости культурных растений. М.-Л., 1970. 56 с.

111. Ульянкина Т.И. Зарождение иммунологии. М.: Наука, 1994.-133с.

112. Утемов C.B. Методы выделения лейкоцитов для клинических целей // Препараты крови и кровезаменители производство, контроль и клиническое применение: Мат-лы науч.-практ. конф. - Киров, 1995. - С.68.

113. Утемов C.B., Сведенцов Е.П., Костяев A.A. Современные методы низкотемпературного консервирования лейкоцитов // Препараты крови и кровезаменители производство, контроль и клиническое применение: Мат-лы науч.-практ. конф. - Киров, 1995. - С.69-70.

114. Фагоцитарная активность нейтрофилов и лимфоцитов после различных сроков хранения в состоянии холодового анабиоза (-40°С) / Е.П. Сведенцов, О.О. Щеглова, Т.В. Туманова и др. // Бюл. эксперим. биологии и медицины. — 2004. Том. 138. - С.400 - 402.

115. Фармакологическая коррекция гипоксических состояний алкилзамещенными 3-окси-пиридинами / Л.Д. Смирнов, Т.А. Воронина и др. //Фармакологическая коррекция кислородзависимых патологических состояний. М., 1989 - С.87

116. Физико-химические механизмы криоповреждений биологических структур / Под ред. Н.С.Пушкаря. Итоги науки и техники, вып. Биофизика, Т.9-Москва, 1978.

117. Физиология человека: в 4-х томах / Под ред. Р. Шмидта и Г.Тевса.-М.: Мир, 1986.-Т.3.-288 с.

118. Фонталин Л.Н. Иммунологическая реактивность лимфоидных органов и клеток. Л.: Медицина, 1967. - 209 с.

119. Фролова O.E. Морфофункциональная характеристика моноцитов. Значение исследования нуклеолярного аппарата (обзор литературы) // Клинич. лаб. диагностика. 1998. - №10. - С.3-8.

120. Ханевич М.Д., Маринин А.В. Использование лейкоцитарной массы при лечении тяжелых форм разлитого перитонита // Актуальные вопросы службы крови и трансфузиологии: Тез. докл. Рос. конф. (С.-Петербург, 1995 г.). -СПб, 1995. С.344-345.

121. Цитохимия замороженной клетки / Э.И. Обозная, Н.С. Пушкарь, О.П. Маркова, Е.Я. Панков. Киев: Наукова Думка, 1981. - С.38-43.

122. Чередеев А.Н. Fc-рецепторы на фагоцитирующих клетках // Иммунология. 1995. - №3. - С. 21-25.

123. Шиффман Ф.Дж. Патофизиология крови. М. СПб.: БИНОМ -Невский диалект, 2000. - 448 с.

124. Энзиматическая диагностика криоповреждений клеток лейкоконцентрата / В.И. Луговой, А.Н. Дзюба, Л.П. Кравченко и др. // Консервирование крови и ее компонентов: Сб. мат-лов I Всесоюз. симпоз. (Москва, 27-29 сентября, 1978 г.). М., 1981. - С.64-65.

125. Ярилин А.А. Основы иммунологии. М.: Медицина, 1999. 605 с.

126. Яровая Г.А. Биорегулирующие функции и патогенетическая роль протеолиза. III. Физиологическая роль и биохимические механизмы протеолитической деградации белков //Лабораторная медицина №6. 2003. -С. 259-265.

127. A co-stimulatory signsl through ICAM (З2 integrin-binding potentiates neutrophil phagocytosis / N. Schnitzeler, G. Haase, A. Podbielski et al. // Nature Medicine - 1999. - Vol. 5. - P. 231-235.

128. Abdel-Mageed A., Rosalio M.L.U., Hutcheson C.E. Effect of temperature variation on cell number, viability and clonogenic potential // Blood. 1997.-Vol.90.-P. 321b (4194).

129. Asachina E. Cryobiology, Acad. Pres. N.Y. - London, 1966.- P.326-332.

130. Baggiolini M., Bretz U., Gusus B. Biochemical characterization of azurophil and specific granules from human and rabbit polymorphonuclear leukocytes. «Schweiz.med.Wschr.», 1974, Bd 104.S.129-132.

131. Babior B.M., Kipnes R.S., Curnutte J.T. Biological defense mechanisms. The production by leukocytes of superoxide, a potential bactericidal agent // J. Clin. Invest. 1973. - Vol. 52. - P. 741-744.

132. Baggiolini M. Chekines and leukocyte traffic// Nature. 1998. - Vol.392. -P.565-568. -----------: —. L. .

133. Bainton D.F., Ulliot J.L., Farquhar M.G. The development of neutrophilic polymorphonuclear leukocytes in human bone marrow //J. Exp.Med. 1971- Vol. 134(4): P.907-934

134. Bainton D.F. Distinct granule populations in human neutrophils and lysosomal organelles identified by immuno-electron microscopy // J. Immunol. Methods. 1999. -Vol.232. -P. 153-168.

135. Bainton D.F. Neutrophilic leukocyte granules: from structure to function // Adv. Exp. Med. Biol. 1993. -Vol.336. -P. 17-33.

136. Barnes D.W., Loutit J.F. The radiation recovery factor: preservation by the Polge-Smith-Parkes technique// J. Nat. Cancer Inst. 1955.- Feb; 15(4):901-5.

137. Bjerrum O.W., Borregaard N. Mixed enzyme-linked immunosorbent assay (MELISA) for HLA class I antigen: a plasma membrane marker // Scand. J. Immunol.- 1990.-Vol.31, №3.-P. 305-313.

138. Borregaard N., Cowland J.B. Granules of the human neutrophilic polymorphonuclear leukocyte// Blood. 1997. - V.89. №10.- P.3503-3521

139. Borregaard N. Development of neutrophil granule diversity //Ann. N.Y. Acad. Sci. 1997. Vol. 15.№832. - P. 62-68

140. Carroll M.C. The role of complement and complement receptors in induction and regulation of immunity // Annu. Rev. Immunol. 1998. Vol. 16. - P. 545-568.

141. Cham B.P., Gerrard J.M., Bainton D.F. Granulophysin is located in the membrane of azurophilic granules in human neutrophils and mobilizes to the plasma membrane following cell stimulation // Am. J. Pathol. — 1994. Vol.144. -P.1369-1380.

142. Clark R.A. The human neutrophil respiratory burst oxides // J. Infect. Dis. -1990.-Vol.161.-P.l 140-1147.

143. Cowland J.B., Borregaard N. Molecular characterization and pattern of tissue expression of the gene for neutrophil gelatinase-associated lipocalin from humans //Genomics. 1997. - Vol. 45,№1. - P.17-23

144. Cryomicroscopic determination of the membrane osmotic properties of human monocytes at subfreezing temperatures/ C. McCaa, K.R. Diller, S.J. Aggarwal, T. Takahashi //Cryobiology. 1991.- 28(4).- P.391-9.

145. Cryopreservation of hematopoetic progenitor cells with 5-percent dimethyl sulfoxide at -80°C without ratecontrolled freezing / A. Galmes, I. Besalduch, I. Barday et al. // Transfusion. 1996. - Vol.36. - P.794-797.

146. Daeron M. Fc receptor biology // Annu. Rev. Immunol. 1997. - Vol. 15. -P. 203-234.

147. Daniels R.H., Bokoch G.M. P- 21 activated protein kinase: a crucial component of morphological signaling // Trend Biochem. Sei. 1999. Vol. 24. №9. -P. 350-354.

148. Effect of dimethylsulphoxide on lipoproteins stored at low temperatures / Klein E., Luman R.B., Peterson L. et al. // Cryobiology.- 1967. 4, №3, p. 328334.

149. Effect of storage on stem cell concentration and viability in cord blood / W. Hubl, J. Iturraspe, C.E. Hutcheson et al. //Blood. 1997.- Vol.90. - P.4217.

150. Evidence for retrograde traffic between terminal lysosomes and the prelysosomal/late endosomal compartment / A. Jahraus, B. Storrie, Griffiths, M. Dejardins//J. Cell Sei.- 1994. Vol. 107.№1. - P.145-157.

151. Expression of the protein kinase C substrate pleckstriri in macrophagesT association with phagosome membranes / J. H. Brummell, J.C. Howard, K. Craig, S. Grinstein, A.D.Schreiber, M. Tyers // J. Immunol. 1999. - V. 163. - №6. P. 3388-3395.

152. Flower D.R. The lipocalin protein family: structure and function// Biochem. J.- 1996. -Vol.318.-№1. P. 1-14.

153. Functional activity of blood polymorphonuclear leukocytes as an oxidative stress biomarker in human subjects /S.S. Chan, H.P. Monteiro, G.P. Deucher et al. // Free Radical Biology and Medicine. 1998. - Vol.24. - P. 1411-1418.

154. Granulocyte Transfusions: eficacy in treating fungal infections in neutropenic patients following bone marrow transplantation / S. Bhatia, J. McCullough, E.H. Perry et. al. // Transfusion. 1994. - Vol.134. - P. 226-232.

155. Griffiths M.T., Halestrap A.P. Mitochondrial non-specific Pores Remain Closed During Cardiac Isquemia, but Open upon Reperfusion // Biochem. J. -1995.-V. 307. -P. 93-98.

156. Herzog R. Kalteanwendung in der Medizin. Kryochirurgie // Ki Luft und Kaltetechn. - 1999. - Vol.35. - P.l 17-124.

157. Makino M., Baba M. A cryopreservation method of human peripheral blood mononuclear cells for efficient production of dendritic cells // Scand. J. Immunol. — 1997.-Vol.45.-P.618-622.

158. Mazur P. Cryobiology. The freezing of biological system // Science. 1970. -Vol.169.-P.939-949.

159. Meryman H.T. Crioprotective agents // Criobiology. 1971. - 3, № 2. - P. 173-183.

160. Mitochondrial Implication in Accidental and Programmed Cell Death: Apoptosis and Necrosis/ N. Zamzami, T. Hirsch, B. Dallaporta, P.X. Petit, G. ICroemer // J. Bioenerg. Biomembr. 1997. - V. 29. - P. 185-193.

161. Model for p-53-induced Apoptosis/ K. Polyak, Y. Xia, J.L. Zweier, K.W. Kinzler, B. A. Vogelstein //Nature. 1997. - V. 389. - P. 300-305.

162. Myeloperoxidase: active site strukture and catalyticmehanisms / J.K. Hurst, J. Everse, K.E. Everse, M.P. Grisham // Peroxidase in Chemistry and Biology. -Boston: CRG Press.-1991.- P: 37-62.

163. Nei T. Electron microscopic study of microorganisms subjected to freezing and drying: cinematographic observations of yeast and coli cells //Exp. Cell~Res. 1962.-№28.-P. 560-75 .

164. Neppert J. Therapie mit Granulozyten// Transfusions, medizin, Berlin: Verlog -Springer. - 1996. - S. 339-344.

165. Nishimura M., Mitsunaga S., Juji T. Frozen-stored granulocytes can be used for an immunofluorescence test to detect granulocyte antibodies // Transfusion. — 2001. Vol.41, №10. - P. 1268-1272.

166. Osmotic stress and the freeze-thaw cycle cause shedding of Fc and C3b receptors by human polymorphonuclear leukocytes/ T.Takahashi, S. Inada, C.G. Pommier, J.J. O'Shea, E.J. Brown // J Immunol. 1985. - 134(6). - P. 4062-8.

167. Oxidants in Mitochondria: from Physiology to Diseases/ Ch. Richter, V. Gogvadze, R. Laffranchi, R. Schlapbach // Biochem. Biophys. Acta. 1995. - V. 1271. - P. 67-74.

168. Peroxynitrite formation from activated human leukocytes / N. Fukuyama, K. Ichimori, Z. Su, H. Ishida, H. Nakazawa //Biochem. Biophys. Res.Commun. -1996. Vol. 224, №2.-P. 414-419.

169. Pennell C.A. Heat shock proteins in immune response in the Fall of 2004 // Immunology. 2005. - Vol. 114, №3. - P. 297-300.

170. Pettit E.J., Fay F.S. Cytosolic Free Calcium and the Cytoskeleton in the Control of Leukocyte Chemotaxis // Physiological Reviews. 1998. - Vol.78. -P.949-967.

171. Purvis A.C., Shewfelt R.L., Georgenie J.W. Superoxide Production by Mitochondria Isolated from Green Bell Pepper Fruit // Physiol. Plant. 1995. - V. 94. - P. 743-749.

172. Randomized trial of granulocyte transfusions versus intravenous immuneglobulin therapy for neonatal neutropenia and sepsis / M.S. Cairo, C.C. Worchester, R.W. Rset et. al. // J.Pediatr. 1992. - Vol.120. - P.281-285.

173. Scheck R. A method for counting the viable cells in normal and malignant cell suspension//Ann. J. Cancer- 1936.-Vol.28-P.389-391.

174. Scheiwe M.W., Korber C. Quantitative cryomicroscopic analysis of intracellular freezing of granulocytes without cryoadditive // Cryobiology. 1987. -Vol.24.-P.473-483.

175. Segal A.W., Shatwell K.P., The NADPH oxidase of phagocytic leukocytes //Ann. N.Y. Acad. Sci. 1997. -Vol. 832. -P.215-222.

176. Srivastava P.K. Immunotherapy for human cancer using heat shock protein-Peptide complexes // Curr. Oncol. Rep. 2005. - Vol. 7, №2. - P. 104-108.

177. Takahashi T, Hirsh A. Calorimetric studies of the state of water in deeply frozen human monocytes / Biophys J. 1985. - 47(3) - P. 373-80.

178. The sre-family protein tyrosine kinase p59hck is located on the secretory granules towards the phagosome during cell activation / H. Mohn, V. LeCabec, S. Fisher, J. Mordonnean Parini // Biochem. J. - 1995. - V. 309.№2. P.657-668.

179. Thioredoxin Peroxidase is a Novel Inhibitor of Apoptosis with a Mechanism Distinct from that of Bcl-2 / P. Zhang, B. Lui, S.W. Kang, M.S. Seo, G. Rhees, L.M. Obeid //J. Biol. Chem. 1997. - V. 272. - P. 30615-30618.

180. Weiner R.S., Normann S.J. Functional integrity of cryopreserved human monocytes / J Natl Cancer Inst. 1981. - 66(2). P.255-60.

181. Weis W.I., Taylor M.E., Drrickamer K. The C-type lectin superfamily in the immune system // Immunological Rev. 1998. - Vol. 163. - 19-34.

182. Zhang Q., Tiersch T. R. Cryopreservation of leucocytes of channel catfish gor subsequent cytogenetic analysis // J. Fish. Biol. 1995. - P. 1016-1025.

183. Список работ, опубликованных по теме диссертации