Физиолого-биохимический статус разных половозрастных групп пушных зверей и его коррекция тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.03.01, доктор наук Беспятых Олег Юрьевич

• Беспятых Олег Юрьевич
• доктор наук
• 2017

Оглавление диссертации доктор наук Беспятых Олег Юрьевич

Введение

Основная часть

1. Обзор литературы

1.1. Биологические особенности роста, развития и кормления пушных зверей

1.2. Изменение физиолого-биохимических показателей органов и тканей пушных зверей в разные фазы постнатального онтогенеза

1.3. Оценка физиолого-биохимического состояния организма зверей

1.4. Факторы, оказывающие негативное влияние на физиолого-биохимический статус организма пушных зверей

1.5. Влияние биологически активных веществ на физиолого-биохимический статус сельскохозяйственных животных и пушных зверей

2. Материал и методы исследований

3. Результаты собственных исследований

3.1. Физиолого-биохимический статус разных половозрастных групп

пушных зверей

3.1.1. Половозрастные изменения биохимического профиля крови пушных зверей разных видов

3.1.2. Особенности минерального обмена в организме в зависимости от возраста и вида пушных зверей

3.1.3. Динамика роста молодняка пушных зверей в зависимости от вида и пола

3.1.4. Формирование продуктивных качеств у разных видов пушных зверей

3.1.5. Влияние бактериальных и вирусных агентов на биохимическую картину крови пушных зверей

3.2. Влияние янтарной кислоты на физиолого-биохимический статус разных половозрастных групп пушных зверей

3.2.1. Половозрастные изменения биохимических показателей крови и волосяного покрова у разных видов пушных зверей под влиянием янтарной кислоты

3.2.2. Изменение гистологической структуры печени и почек под влиянием янтарной кислоты

3.2.3. Динамика роста молодняка пушных зверей в зависимости от вида и пола при воздействии янтарной кислоты

3.2.4. Повышение продуктивных качеств у разных видов пушных зверей под влиянием янтарной кислоты

3.2.5. Влияние янтарной кислоты на изменение биохимического профиля крови после введения бактериальных и вирусных агентов в организм пушных зверей

4. Заключение

4.1. Итоги выполненого исследования

4.2. Рекомендации

4.3. Перспективы дальнейшей разработки темы

Список сокращений и условных обозначений

Список литературы

Приложения

Табличный материал

Патенты РФ на изобретение

Акты внедрения результатов исследования

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физиолого-биохимический статус разных половозрастных групп пушных зверей и его коррекция»

Введение

Актуальность. Физиолого-биохимический статус организма является интегрированным показателем, включающим в себя физиологические эффекты органов и тканей организма, оптимальные концентрации биологически активных веществ и других соединений в тканях и органах, в частности, в крови и волосяном покрове животных.

В этом аспекте особый интерес представляет изучение онтогенетических изменений биохимического состава крови, волосяного покрова и установление взаимосвязей между ними и составами рационов пушных зверей, их влияние на резистентность и продуктивные качества животных (Берестов В.А. и др., 1984; Тютюнник Н.Н., 2002; Илюха В.А., 2004; Санжиева С.Е. и др., 2011; Староверова И.Н., 2011; Максимов В.И. и др., 2014; Березина Ю.А. и др., 2016; и др.). Знание физиолого-биохимических показателей здоровых животных на разных этапах постнатального онтогенеза необходимо для расширения и обновления базы системы мониторинга, данные из которой необходимо использовать в качестве фоновых при проведении мониторинга состояния здоровья пушных зверей клеточного разведения в современных условиях. Это будет способствовать более быстрому выявлению отклонений в состоянии здоровья животных и разработке методов его коррекции биологически активными веществами (Тютюнник Н.Н., Кожевникова Л.К., 1996; Тютюнник Н.Н., 2002; Зарудная Е.Н., 2011; Санжиева С.Е. и др., 2011; Староверова И.Н., 2011; Максимов В.И. и др., 2014), в частности, янтарной кислотой с целью повышения резистентности и продуктивности пушных зверей.

Степень разработанности темы исследования. Для решения поставленной научной цели нами проведено изучение и анализ отечественных и зарубежных публикаций материалов экспериментальных и теоретических исследований за последние 40 лет.

К настоящему времени имеется значительное количество сведений о физиолого-биохимическом статусе организма пушных зверей (лисиц, норок и песцов) и его формирования в процессе постнатального онтогенеза (Берестов В.А. и др., 1984; Унжаков А.Р., 1993; Тютюнник Н.Н., 2002; Илюха В.А., 2004; Кожевникова Л.К. и др., 2004; Берестов В.А., 2005; Ильина Т.Н. и др., 2007; Санжиева С.Е. и др., 2010, 2011; Староверова И.Н., 2011; Максимов В.И. и др., 2014; Балакирев А.Н., 2015; Березина Ю.А. и др., 2015, 2016; Mertin D., Stepanok V., 2003; Ucan U.S. et al., 2003; Ilyukha V.A. et al., 2003, 2010; Uzenbaeva L.B. et al., 2007; Sergina S. et al., 2013, 2015; и др.).

Однако, в этих работах приведены данные, пригодные в основном для решения отдельных вопросов по данной проблеме. Кроме того, некоторые биохимические референтные показатели крови зверей должны быть пересмотрены, так как они не являются стабильными и изменяются с годами, в первую очередь, в следствие изменения общего уровня кормления и других технологических и селекционных процессов (Тютюнник Н.Н., Кожевникова Л.К., 1996; Тютюнник Н.Н., 2002; Берестов В.А., 2005; Санжиева С.Е. и др., 2011). Немаловажную роль играет организация контроля за сбалансированностью кормов по питательным компонентам. И, если несбалансированность кормов по белкам, жирам, углеводам очевидна сразу, то установление и устранение минерального дефицита у пушных зверей, как правило, пролонгировано по времени. Поскольку данные по минеральному обмену в организме пушных зверей фрагментарны, разрознены и противоречивы, кроме того, количество изученных минеральных элементов, как правило, невелико. В последних работах большое внимание уделено минеральному составу рационов, кожи и волоса зверей, а минеральному обмену в крови уделяется меньше внимания (Староверова И.Н., 2011; Максимов В.И. и др., 2014; Балакирев А.Н., 2015; Березина Ю.А. и др., 2015).

Отметим, что данные по применению янтарной кислоты в звероводстве немногочисленные и даже - противоречивые (Блохин Г.И. и др., 2007; Тютюнник Н.Н. и др., 1999, 2002), недостаточно изучено ее действие на

физиолого-биохимический статус организма, в том числе на биохимические показатели крови и формирование поствакцинального иммунного ответа. Поэтому проблема изучения применения янтарной кислоты для оптимизации физиолого-биохимического статуса, повышения резистентности и продуктивных качеств пушных зверей является, без сомнения, актуальной и требует решения.

Полученные сведения расширят представления о физиолого-биологических особенностях пушных зверей разных видов и одновременно дополнят и обновят базу системы мониторинга за здоровьем животных, что позволит корректировать физиолого-биохимическое состояние организма пушных зверей.

Цель работы: изучение физиолого-биохимического статуса пушных зверей разных половозрастных групп и способы его коррекции.

Для выполнения цели были поставлены задачи:

- изучить физиолого-биохимический статус пушных зверей разных видов в процессе постнатального онтогенеза;

- определить изменения биохимических показателей крови и волосяного покрова в ходе постнатального онтогенеза у лисиц, норок и песцов;

- выяснить особенности становления продуктивных качеств у пушных зверей разных видов и пола;

- исследовать закономерности изменения биохимических показателей крови пушных зверей разных видов под влиянием бактериальных и вирусных агентов;

- выяснить физиологическое воздействие янтарной кислоты на биохимические показатели крови и волосяного покрова у лисиц, норок и песцов;

- оценить структурно-функциональное состояние печени и почек под влиянием янтарной кислоты;

- изучить влияние янтарной кислоты на продуктивные качества пушных зверей разных видов и возможности ее применения;

- исследовать воздействие янтарной кислоты на биохимические показатели крови после введения бактериальных и вирусных агентов в организм пушных зверей разных видов;

- определить оптимальные дозы и схемы применения янтарной кислоты для коррекции физиолого-биохимического статуса лисиц, норок и песцов на разных этапах постнатального развития.

Научная новизна работы заключается в том, что впервые:

- выявлены видовые и возрастные различия в биохимических показателях крови и волосяного покрова лисиц, норок и песцов на разных этапах постнатального развития организма, которые расширяют и дополняют базу системы мониторинга за состоянием здоровья пушных зверей;

- установлены закономерности обмена макро- и микроэлементов, в частности, изменения их содержания в крови и волосяном покрове лисиц, норок и песцов. На основании этих референтных значений можно контролировать минеральную обеспеченность рационов пушных зверей;

- показаны закономерности изменения биохимических показателей крови пушных зверей разных видов под влиянием бактериальных и вирусных агентов;

- выявлено физиологическое воздействие янтарной кислоты на организм пушных зверей разных видов и возможности ее применения, в том числе, определено ее дозозависимое и видоспецифическое воздействие на организм пушных зверей: у молодняка лисиц и норок она корректирует биохимические показатели крови и волосяного покрова, а у песца - негативно влияет на биохимический профиль крови. Кроме того, препарат способствует сохранению структурно-функционального состояния печени и почек.

- установлено, что янтарная кислота ускоряет рост и улучшает качество волосяного покрова у молодянка лисиц и норок, а у молодняка песца, наоборот, - замедляет рост, и качество волосяного покрова;

- установлено, что янтарная кислота повышает воспроизводительную способность всех изученных видов хищных млекопитающих;

- показано, что янтарная кислота корректирует уровень биохимических показателей крови норок после заражения вирусом алеутской болезни;

- установлено, что включение янтарной кислоты в рацион пушных зверей перед вакцинацией способствует формированию более высокого уровня поствакцинального иммунного ответа и улучшению протекания метаболических процессов;

- определены оптимальные дозы и схемы применения янтарной кислоты для коррекции физиолого-биохимического статуса пушных зверей разных видов на разных этапах постнатального онтогенеза.

Новизна работы подтверждена 4 патентами РФ на изобретение (Приложения): № 2411724 «Способ подготовки к гону лисицы и песца» (Зарегистрировано в Гос. Реестре изобретений 20.02.2011г.), № 2412610 «Способ выращивания молодняка лисиц» (Зарегистрировано в Гос. Реестре изобретений 27.02.2011г.), № 2431498 «Способ вакцинации пушных зверей» (Зарегистрировано в Гос. Реестре изобретений 20.10.2011г.), № 2465782 «Способ кормления норки» (Зарегистрировано в Гос. Реестре изобретений 10.11.2012г.)

Теоретическая и практическая значимость работы: Полученные данные расширяют и обновляют имеющиеся представления о физиолого-биохимическом статусе лисиц, норок и песцов на разных этапах постнатального онтогенеза и его коррекции янтарной кислотой с целью повышения резистентности и улучшения продуктивных качеств пушных зверей.

Закономерности изменения биохимических показателей у клинически здоровых животных, в том числе содержания макро- и микроэлементов в крови и волосяном покрове молодняка лисиц, норок и песцов в ходе постнатального развития, могут быть использованы специалистами зверохозяйств в качестве индикаторов в системе мониторинга за состоянием

здоровья у пушных зверей в условиях клеточного содержания. Кроме того, установленные закономерности поступления макро- и микроэлементов из рационов в кровь и волосяной покров лисиц, песцов и норок могут быть использованы специалистами зверохозяйств для оценки минеральной обеспеченности рационов пушных зверей.

Выявлено физиологическое воздействие янтарной кислоты на организм пушных зверей разных видов и возможности ее применения. В частности, у молодняка лисиц и норок она вызывает ускорение роста, корректировку биохимического профиля крови и улучшение качества волосяного покрова; у молодняка песца, наоборот, - замедление роста, негативное влияние на биохимический профиль крови и качество волосяного покрова; у взрослых зверей препарат повышает воспроизводительную способность.

Показано, что препарат можно применять норкам, больным алеутской болезнью, с целью поддержания их жизнедеятельности до периода формирования зимнего волосяного покрова. Кроме того, янтарную кислоту можно включать в рацион пушных зверей в течение 5 дней перед вакцинацией, что будет способствовать формированию более высокого уровня поствакцинального иммунного ответа и улучшению протекания метаболических процессов.

Установленные оптимальные дозы и схемы применения янтарной кислоты могут использоваться специалистами зверохозяйств для коррекции физиолого-биохимического статуса пушных зверей разных видов на разных этапах постнатального онтогенеза, в частности, для улучшения качества волосяного покрова, повышения воспроизводительной способности зверей, резистентности и уровня поствакцинального иммунного ответа. За счет улучшения качества волосяного покрова можно дополнительно получить (в зависимости от дозы): от лисицы - 47...270; норки - 37...380 руб/гол., за счет повышения воспроизводительной функции - от лисицы - 1280.1791; норки -107.1380; песца - 1897. 5900 руб. расчете на 1 самку.

Основные положения диссертации используются в научно -практической работе и в учебном процессе, в том числе в качестве учебно-методических пособий и научных разработок: «Нормы добавок янтарной кислоты в рационе красных лисиц, обеспечивающие повышение продуктивности и улучшение качества их шкурок» (2008), «Физиология системы крови» (2009), «Наставление по применению в звероводстве янтарной кислоты для повышения продуктивности пушных зверей (2011), «Физиологические критерии возрастных и сезонных изменений показателей крови песцов» (2014), «Научно-обоснованные параметры референтных границ концентрации гормонов и биохимических показателей крови пушных зверей семейства Сашёае, разводимиых в неволе» (2015).

Методология и методы исследования. Методологической основой проведенных исследований явились работы некоторых специалистов в области возрастной и частной физиологии и биохимии животных, а также звероводства. Методология исследования находит целесообразность применения комплексного методического подхода, который включает: определение биохимических показателей крови, исследование минерального состава крови и волосяного покрова у пушных зверей в разные фазы постнатального онтогенеза, изучение воспроизводительной способности животных, оценку качества волосяного покрова, изучение биохимических показателей крови при введении бактериальных и вирусных агентов в ораганизм животных, а также определение минерального состава рациона с целью выявления закономерностей изменения физиолого-биохимического статуса лисиц, норок и песцов в разные фазы постнатального развития под влиянием внешних факторов и его коррекции янтарной кислотой.

Положения, выносимые на защиту:

1. Каждый этап постнатального онтогенеза лисиц, норок и песцов характеризуется определенным физиолого-биохимическим статусом.

2. Значения биохимических показателей крови и волосяного покрова пушных зверей разных видов можно использовать в качестве индикаторов состояния организма.

3. Содержание макро- и микроэлементов в крови и волосяном покрове можно применять для оценки обеспеченности рационов минеральными элементами.

4. Янтарная кислота оказывает дозозависимое и видоспецифическое действие на физиолого-биохимический статус лисиц, норок и песцов на разных этапах постнатального онтогенеза.

Степень достоверности результатов. Достоверность результатов проведенных исследований, научных положений, выводов и рекомендаций, полученных в работе, подтверждается согласованностью результатов исследований, выполненных на значительном и достаточном количестве животных с применением современных методов исследований, а также широкой апробацией полученных результатов и внедрением их в производство. Полученные данные обработаны статистическими методами с использование прикладных компьютерных программ.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы были доложены и обсуждены на следующих конференциях: Международной научно-практической конференции, посвященной 85-летию ВНИИОЗ «Современные проблемы природопользования, охотоведения и звероводства», 22-25 мая 2007 г. (г. Киров); Международной научной конференции, посвященной 100-летию со дня рождения доктора биологических наук, профессора, основателя кафедры биохимии ГОУ ВПО «Мордовский госуниверситет им. Н.П. Огарева» Е.В. Сапожниковой «Биология: теория, практика, эксперимент», 2008 г. (г. Саранск); II Международной научно-практической конференции «Вопросы физиологии, содержания, кормопроизводства и кормления, селекции с. -х. животных, биологии пушных зверей и птиц, охотоведения», 2008 г. (г. Киров); Всероссийской научно-практической конференции «Научное обеспечение

животноводства и кормопроизводства», 4-6 июля 2008 г. (г. Саранск); Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях», 17-19 сентября 2008 г. (г. Воронеж); Международной научно-практической конференции «Достижения супрамолекулярной химии и биохимии в ветеринарии и зоотехнии», 22-25 сентября 2008 г. (г. Москва); XII Международной научно-практической конференции молодых ученых и специалистов «Вклад молодых ученых в реализацию приоритетного национального проекта «Развитие агропромышленного комплекса», 25-27 ноября 2008 г. (г. Троицк); Международной научно-практической конференции, посвященной 80-летию кафедры анатомии и гистологии с.-х. животных, 110-летию со дня рождения проф. Н.И. Акаевского и 15-летию кинологического центра «Актуальные проблемы биологии и ветеринарной медицины мелких домашних животных», 19-21 мая 2009 г. (г. Троицк); Всероссийской конференции, посвященной 100-летию со дня рождения проф. Е.Д. Ильиной «Достижения науки и практики в клеточном пушном звероводстве», июнь 2009 г. (г. Москва); 4-м Международном симпозиуме «Современные проблемы и методы экологической физиологии и патологии млекопитающих, введенных в зоокультуру», 23-25 сентября 2009 г. (г. Петрозаводск); Международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию МГАВМиБ имени К.И. Скрябина «Актуальные проблемы ветеринарной биологии», 2009г. (г. Москва); Международной научно-практической конференции, посвященной 80-летию Вятской ГСХА и 45-летию подготовки биологов-охотоведов «Биологические ресурсы», 3-5 июня 2010 г. (г. Киров); V Международной конференции, посвященной 50-летию ВНИИФБиП с.-х. животных «Актуальные проблемы биологии в животноводстве», 14-16 сентября 2010 г. (г. Боровск, Калужской обл.); XXI съезде физиологического общества имени И.П. Павлова, 19-25 сентября 2010 г. (г. Калуга); Международной научно-практической конференции «Современные научно-практические достижения в ветеринарии», 14-15 апреля 2011 г. (г. Киров);

Международной научно-практической конференции, посвященной 90-летию ВНИИОЗ «Современные проблемы природопользования, охотоведения и звероводства», 22-25 мая 2012 г. (г. Киров); межвузовской научной конференции «ВятГГУ - 100 лет: инновационные научные проекты», 2 июля 2014 г. (г. Киров).

Личный вклад автора. Личный вклад диссертанта складывается из непосредственного участия в выборе направления научного поиска, разработки цели и задач исследований, проведения физиологических, биохимических и других исследований, обработки полученных результатов, формулирования выводов и практических предложений. Результаты исследований получены автором лично или при его определяющем участии, что отражено в совместных публикациях с проф. Домским И.А., проф. Максимовым В.И., д.б.н. Староверовой И.Н. и другими.

Публикации. По теме диссертационной работы опубликовано 56 научных работ, в том числе 28 - в рецензируемых изданиях, рекомендованных ВАК РФ для отражения основных положений докторской диссертации, а также 4 патента РФ на изобретения.

Структура и объем диссертации. Диссертация изложена на 297 страницах и состоит из введения, обзора литературы, материала и методики исследований, результатов собственных исследований, обсуждения полученных результатов, заключения, выводов, предложений производству, списка литературы, а также приложения. Список литературы включает 323 источников, в том числе 109 - на иностранных языках. Работа иллюстрирована 89 таблицами и 23 рисунками.

Основная часть

1. Обзор литературы

1.1. Биологические особенности роста, развития и кормления пушных

зверей

Пушные звери - это целая группа животных, от которых получают шкурки для дальнейшего производства меховых изделий. Шкурки с высококачественным волосяным покровом получают от зверей разводимых в неволе. В зверохозяйствах нашей страны в основном разводят: норку, лисицу и песца. Не смотря на более чем вековую историю доместикации пушных зверей, они до настоящего времени сохранили биологические особенности, присущие диким предкам, сформировавшиеся в процессе адаптации к определенным условиям обитания (Ильина Е.Д. и др., 2004).

Биологические особенности роста и развития пушных зверей.

Норка (Neovison Vison Sch., 1777) является одним ценных пушных зверей и разводится в большинстве зверохозяйств страны. Она является типичным представителем семейства куньи. Выделяют два вида норок: европейскую и американскую. В звероводческих хозяйствах разводят американскую норку, так как она крупнее и у нее лучше качество волосяного покрова (у нее лучше структура волоса с более чистым опушением, более мягкий волос, плотнее, окраска темнее) (Ильина Е.Д. и др., 2004).

По размеру тела норок относят к средним животным, у которых хорошо выражен половой диморфизм: живая масса самцов в среднем составляет 2,5—3,0 кг, самок—2,0—2,5 кг (Балакирев Н.А., 2001; Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006). В настоящее время живая масса доместицированных норок больше в 4 раза, чем их диких сородичей (Колдаева Е.М., Колдаев Н.А., 2007; Федорова О.И., 2007).

Биологической особенностью всех пушных зверей является строгая сезонность всех морфо-физиологических процессов в организме, в том числе

репродуктивной функции, смены волосяного покрова, обмена веществ (Берестов В.А., 2005; Dunstone N., 1993).

Сезонность размножения норок проявляется в том, что спаривание у них происходит раз в году - в марте, щенки рождаются в конце апреля -начале мая. Большая продолжительность беременности (37-80 дн.) объясняется наличием латентной фазы, во время которой оплодотворенные яйцеклетки дробятся до стадии бластул и свободно лежат 10—40 дней в рогах матки, не прикрепляясь к ее стенке. Кроме того, у самок после покрытия и оплодотворения может возникнуть повторная охота и покрытие, в котором может участвовать несколько самцов. Это явление уникальное, но обычное для данного вида (Балакирев Н.А., 2001; Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006; Dunstone N., 1993). Щенки рождаются слабыми, массой всего 9—15 г, но они обладают достаточно достаточно большой скоростью роста и уже в четырехмесячном возрасте достигают 70% массы взрослых особей.

В постнатальном развитии норок выделяют 2 основных периода -интенсивного роста (от рождения до 2-месячного возраста) и замедленного (с 2-3 до 9-мес. возраста) (Hansen S.W. et al., 1997). В 1-й период у норок интенсивно развивается скелетно-мышечный аппарат, передние и задние конечности, увеличивается длина тела, и обхват груди. Молодняк норки переходит на питание обычной пищей, в 3-месячном возрасте у него заканчивается в активный рост костей черепа и конечностей. Необходимо отметить, что у норки отсутствует слепая кишка (Чопорова Н.В., 1994; Берестов В.А., 2002). Интенсивность роста норок после 3-х мес. возраста резко замедляется и к 6-месячному возрасту звери достигают размеров взрослых животных, хотя живая масса продолжает увеличиваться до 9-10-месячного возраста (Балакирев Н.А., 2001; Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006).

Формирование первичного волосяного покрова происходит к 10-сут., линька первичного и развитие вторичного волосяного покрова - к 25-30-сут.

возрасту. От 195 до 255-суточного возраста происходит формирование зимнего волосяного покрова. Сезонность смены волосяного покрова выражается в том, что линька происходит 2 раза в год: весеной и осенью. Весной выпадает зимнее опушение и вырастает летнее, осенью летнее вновь сменяется на зимнее. Осенняя линька начинается во второй декаде августа и заканчивается к началу-середине ноября. Весенняя линька начинается с головы, осенняя — с хвоста (Царева Е.Л., 1991; Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006).

Лисица (Vulpes vulpes L., 1758) относится к семейству псовых. Это достаточно крупный зверь: длина тела у самок составляет 59-65 см, у самцов - 64-70 см; средняя живая масса в декабре-январе, соответственно 5-5,5 и 5,96,4 кг. Живут лисицы около 10-12 лет, однако племенное использование ограничивается возрастом 5-7 лет (Буковская З.И., 1999; Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006).

Сезонная ритмичность репродуктивной функции проявляется в том, что спаривание зверей происходит 1 раз в году с января по март и длится обычно 7-11 суток (Мударисов P.M., 2003). Беременность продолжается 5152 дня, поэтому щенение у лисиц наблюдается с конца марта - до начала мая. Самка рожает в среднем 5-6 щенков, которые весят 80-100 г. В первые два месяца постнатального онтогенеза у щенков наиболее быстро растут конечности, в последующие два месяца - туловище. С четырех месячного возраста происходит быстрое увеличение обхвата и ширины груди и к 5-6-месячному возрасту щенки приобретают размеры взрослых животных (Буковская З.И., 1999; Мударисов P.M., 2003; Ильина Е.Д. и др., 2004).

Постнатальное развитие щенков лисиц условно подразделяют на 3 периода. Первый период - от рождения до отъема от матери, длится 45 суток. В это время щенки питаются молоком матери, т.к. им требуется приток большого количества питательных веществ для роста. Второй период - с 1,5-до 3,5-месячного возраста — характеризуется высокой скоростью роста лисят за счет отложения в организме белка и жира. В третий период - с 3,516

месячного возраста необходимо следить за уровнем кормления зверей, т.к. большая живая масса зверей осенью ухудшает их воспроизводительные качества (Перельдик Н.Ш. и др., 1987).

Сезонность смены волосяного покрова у лисиц заключается в том, что летнее опушение у молодняка появляется к 2-2,5-месячному возрасту, которое с 3-3,5-месячного возраста (конец июля-август) начинает выпадать и заменяется зимним волосяным покровом, окончательно формирующимся у 78-месячных животных (ноябрь-декабрь). У взрослых лисиц зимний волосяной покров развивается при одновременном сохранении и отрастании летнего волоса (Берестов В.А., 2002; Мударисов P.M., 2003).

Песец (Alopex lagopus L., 1758) как и лисица относится к семейству псовые. Но, отличие от лисицы, тело песца более приземистое, волосяной покров более пышный и мягкий. Средняя длина тела самок — 60-62 см, самцов — 65-67 см; средняя живая масса, соответственно 6,8-6,6 и 6,6-7,5 кг. В отдельных хозяйствах живая масса самок достигает 8,5-9,2 кг, самцов — 10-12 кг. Продолжительность жизни песцов составляет около 10 лет, хозяйственного использования - 4-5 лет (Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006).

Песцу также свойственна сезонность размножения, при этом в связи с задержкой наступления весны на севере спаривание, а следовательно, и щенение начинается у них на 2-4 недели позже (с середины февраля - до конца апреля), чем у лисиц. Беременность длится 52-56 дней (Чекалова Т.М., 1985; Ильина Е.Д. и др., 2004; Ilukha V.A. et al., 1997). Самка рожает в среднем 11-12 щенков, которые весят 50-70 г. Щенки песца обладают быстрой скоростью роста, т.к. 2-месячные щенки весят 2,0-2,4 кг; 4-месячные — 4,6-5,5 кг; 6-месячные — 4,9-7,1 кг. Отсаживают молодняк от матерей, как у лисиц, в возрасте 40-45 дней (Ильина Е.Д. и др., 2004; Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А., 2006).

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Беспятых Олег Юрьевич, 2017 год

□ ли

□ сер пе

□ ву

□ но

Рис. 3.1.4.2. Плодовитость самок и регистрация щенков у пушных зверей.

Наименьший показатель пропустования самок зафиксирован у вуалевого песца - 3,6 %, наибольший - у норки - больше в 6 раз, по сравнению с вуалевым песцом. Соответственно, благополучно ощенившихся самок было больше у вуалевого песца - 96,4 %, меньше - у норки - на 17,8 %. У лисицы зарегистрированы промежуточные показатели между песцом и норкой.

По плодовитости наибольший показатель также отмечен у вуалевого песца - 12,6 щенка, меньше у лисицы и норки - в 2,2 и 3 раза, соответственно. Сохранность щенков была набольшей у лисицы - 93,6 %, наименьшей у серебристого и вуалевого песца - на 13,3 % и 5 % меньше, по сравнению с лисицей. Количество щенков, зарегистрированных на ощенившуюся самку, наибольшее у вуалевого песца - 10,5 щенка, меньше у лисицы - в 1,9 раза и у норки - в 2,9 раза. По количеству щенков, полученных на племенную самку, межвидовая разница еще больше увеличивается. Наибольший показатель также у вуалевого песца - 10,1 щенка, меньше у лисицы и норки - в 2,3 и 3,6 раза, соответственно.

Таким образом, в видовом плане вуалевый песец обладет лучшими показателями вспроизводительной способности, далее следуют серебристый песец, лисица и норка. Такая закономерность объясняется адаптационными особенностями определенного вида (размер тела, плодовитость, количество молочных сосков и другое), которые выработались у зверей в процессе эволюционного развития в конкретных условиях существования.

3.1.5. Влияние бактериальных и вирусных агентов на биохимическую

картину крови пушных зверей

Изменение биохимических показателей крови изучали после введения в организм пушных зверей следующих бактериальных и вирусных агентов: у норок - вируса алеутской болезни, у лисиц - вакцины против сальмонеллеза, у песцов - вакцины против чумы плотоядных.

Динамика показателей крови норки после заражения вирусом алеутской

болезни

Изменение иммунологических показателей крови

У здоровых норок не отмечено значительных изменений в уровне иммунологических показателей крови на протяжении исследования.

У норок, зараженных вирусом алеутской болезни, уже через неделю после заражения в показателях крови зверей стали заметны отличия (Приложения, табл. 38). Так в крови зараженных норок достаточно резко увеличилось содержание общего белка - на 36,4 % (р<0,01), к концу наблюдения - 64,9 % (р<0,001). Количество у-глобулинов у зараженных зверей в первую неделю опыта понизилось на 81,9 % (р<0,001), но со второй недели начало повышаться и к концу исследования увеличилось на 80,4 (р<0,001) относительно показателя здоровых норок. Повышенный уровень белка и у-глобулинов в крови зараженных норок подтверждает наличие в ней

большого количества белковых соединений - антител, образующих иммунные комплексы.

В отличие от общего белка и у-глобулинов бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК) у зараженных норок на протяжение исследования снижалась. В первую неделю опыта она уменьшилась на 19,5 %, в конце исследования - на 82,9 % (р<0,05) в сравнении со здоровыми животными. Индекс фагоцитоза также снижался в крови зараженных норок и концу наблюдения уменьшился на 33 % (р<0,05) по сравнению со здоровыми зверями.

Изменения уровня иммунных белков в крови привели к различиям при образовании циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК). В крови зараженных зверей количество циркулирующих иммунных комплексов крупных размеров (С3) колебалось на протяжении опыта и к концу наблюдения было на 4,1 % ниже, а содержание циркулирующих иммунных комплексов средних и малых размеров (С4) - выше на 8,9 %, чем у здоровых норок. Диссоциация иммунных комплексов (С4/С3), отражающая инфекционность процесса, в крови зараженных зверей была выше на 12 % в сравнении со здоровыми животными.

Таким образом, в крови зараженных норок появились характерные признаки заболевания - резко увеличение содержание общего белка и у-глобулинов (гипергаммаглобинемия). Увеличилось значение инфекционности процесса, которую отражает показатель диссоциации иммунных комплексов (С4/С3). Уровни других факторы резистентности (БАСК, индекс фагоцитоза) снижались.

Изменение биохимической картины крови

У здоровых норок не отмечено значительных изменений в уровне биохимических показателей крови на протяжении исследования.

У инфицированных норок уже через неделю после заражения в биохимических показателях крови стали заметны отличия от здоровых зверей (Приложения, табл. 39). В крови зараженных норок достаточно резко

увеличилось содержание общего белка, которое через неделю после заражения было больше на 36,4 % (р<0,01), к концу наблюдения - на 64,9 % (р<0,001) в сравнении с здоровыми животными. Изменилось соотношение белковых фракций: резко повысился уровень глобулинов и снизилось содержание альбуминов. В сравнение со здоровыми норками у зараженных зверей содержание а-глобулинов было больше в первую неделю опыта на 46,7 % (р<0,05), в конце исследования - в 2,2 раза (р<0,01). Количество у-глобулинов в первую неделю опыта понизилось на 81,9 (р<0,001), но со второй недели начало повышаться и к концу исследования увеличилось на 80,4 (р<0,001). Содержание Р-глобулинов к 3-й неделе выросло в 2,8 раза (р<0,01), а затем резко снизилось. Снижение у зараженных норок количества альбуминов к концу опыта составило 23,4 % (р<0,001). Повышенный уровень белка и у-глобулинов в крови зараженных норок подтверждает наличие в ней большого количества белковых соединений (антител), образующих иммунные комплексы, а резкие колебания уровня Р-глобулинов -свидетельствует о нарушении работы почек, кровеносные протоки которых забиты иммунными комплексами.

Также в крови зараженных животных значительно возросло количество печеночных трансаминаз. Активность аспартатаминотрансферазы (АСТ) в начале эксперимента увеличилась на 34,1 % (р<0,001), затем продолжила повышаться, величившись в конце - на 53,3 % (р<0,001); уровень аланинаминотрансферазы (АЛТ) возрос на 47,4 % (р<0,01) и в 2,3 раза (р<0,001), соответственно. Уровень щелочной фосфатазы (ЩФ) в первые три недели после заражения у зверей был ниже на 20-27 % (р<0,05), а в последнюю неделю наблюдения - выше на 31 % в сравнении с здоровыми животными. Активность лактатдегидрогеназы (ЛДГ), наоборот, в начале исследования была выше на 24,9 %, а к концу эксперимента меньше на 5,1 % в сравнении со здоровыми норками. Значительное увеличение количества АСТ и АЛТ, резкие колебания активности ЩФ и ЛДГ у зараженных животных указывают на повреждение у них печени. Содержание мочевины у

зараженных зверей в начале эксперимента выше на 30,7% (р<0,01), в конце -на 24,8 % (р<0,01), количество креатинина - выше в 2,3 (р<0,001) и 3 раза (р<0,001), соответственно, в сравнение с здоровыми животными. Резкое повышение уровней мочевины и креатинина еще раз подтверждает нарушения в работе почек.

Следует отметить, что уровень ряда показателей (общий белок, а- и у-глобулины, ЩФ, мочевина) через 21-28 дни после заражения резко возрастал у зараженных норок, в сравнении со здоровыми, что указывало на прогрессирование болезни.

Таким образом, в крови зараженных норок появились характерные признаки заболевания - резкое увеличение содержание общего белка и у-глобулинов (гипергаммаглобинемия), снижение количества альбуминов и резкие колебания уровня Р-глобулинов, что свидетельствует о нарушении работы почек, кровеносные протоки которых забиты иммунными комплексами. То, что почки не справляются со своей работой еще подтверждается резким повышением уровней мочевины и креатинина. Характерно для заболевания также поражение печени, проявляющееся значительным увеличение активности АСТ и АЛТ, резкими колебаниями уровня ЩФ и ЛДГ.

Изменение показателей крови лисиц и песцов в процессе формирования

поствакцинального иммунного ответа Динамика иммунологических показателей крови Взрослая лисица. У нее в поствакцинальный период уровни иммунологических показателей изменялись незначительно (Приложения, табл. 40). Уровень общего белка на протяжении периода наблюдения изменялся лишь на 1-2,9 %. Количество у-глобулинов к 14-му дню после вакцинации несколько увеличилось (на 3,4 %), а 30-му дню уменьшилось на 9%, причем это ниже первоначальных значений. БАСК через 2 недели после иммунизации также несколько повысилась (на 5,4 %), а еще через 2 недели

незначительно уменьшилась (на 3 %). Аналогичную динамику зарегистрировали у фагоцитарной активности и индекса фагоцитоза. В лейкограмме лисиц преобладали сегментоядерные нейтрофилы, которых на 7-й день после иммунизации в крови взрослых лисиц было 88,3 %. Через 14 дней после вакцинакции их уровень снизился на 7 %, а затем вновь повысился до первоначальных значений.

Таким образом, уровень иммунологических показателей крови у врослой лисицы несколько увеличился (на 3-6 %) через 2 недели после вакцинации, а затем стал уменьшаться.

Молодняк лисицы. В крови молодняка красной лисицы в первую неделю после вакцинации резко возросли значения показателей иммунитета: у-глобулинов, общих иммуноглобулинов и титров антител к сальмонеллезным антигенам (Приложения, табл. 41). Уровень у-глобулинов на 7 день после иммунизации увеличился на 24,1 %, затем произошло падение уровня до исходных значений на 21 день после вакцинации, а к 28 дню - вновь увеличилось на 22 %. Содержание общих иммуноглобулинов через 7 дней после вакцинации снизилось на 52 % (р<0,01), затем вновь увеличилось на 52 % (р<0,01) и через месяц после вакцинации превышало исходные значения на 21 %. Титры антител к сальмонеллезным антигенам за неделю после вакцинации увеличились в десятки раз, затем их уровень постепено уменьшался. Тем не менее, через месяц после иммунизации он в 3 раза превышал исходные значения. БАСК в поствакцинальный период повышалась постепенно и достигла максимума через 3 недели, превосходя на 23 % исходного уровня, а затем снизилась. Индекс фагоцитоза увеличился уже через неделю после вакцинации на 23 % и удерживался на нем некоторое время, затем к 28 дню еще увеличился, превысив исходные значения на 46 % (р<0,05).

Таким образом, на введение бактериальных антигенов иммунная система молодняка лисицы реагирует максимально уже через неделю после

вакцинации, что можно объяснить повышенной реактивностью организма молодняка красной лисицы.

Молодняк песца. В крови молодняка песца (Приложения, табл. 42) отмечено резкое увеличение у-глобулинов на 14 день после вакцинации - в 2 раза (р<0,05), на 21 день - в 4 раза (р<0,001), затем небольшое уменьшение уровня у-глобулинов - разница с первоначальными значениями 3,3 раза (р<0,001). Уровень общих иммуноглобулинов увеличивается с первой недели и к второй достигает наибольших значений - на 39 % (р<0,05) больше, чем исходный уровень. Затем их содержание уменьшается и к концу наблюдения их стало на 9 % меньше, чем первоначально. Титр антител в поствакцинальный период резко возрос в несколько раз (р<0,001), достигнув максимума через 7 и 14 дней после иммунизации, затем содержание титров несколько уменьшилось и осталось на этом уровне до конца исследований. Подобная динамика отмечена у БАСК, уровень которой через неделю после вакцинации увеличился на 58 % (р<0,01), через 2 недели - на 96 % (р<0,05). В дальнейшем уровень БАСК резко снизился до уровня исходных значений. Индекс фагоцитоза в поствакцинальный период уменьшился: через неделю после вакцинации он составил от первоначального уровня 66 % (р<0,05), через 2 недели - 86 %, через 3 недели - 69 % и через месяц - 90 %.

Таким образом, на введение вирусных антигенов иммунная система молодняка песца начинает реагировать через неделю после вакцинации, а максимальные уровни большинства показателей наблюдаются через 2 недели после иммунизации. Исключение составляют факторы клеточного иммунитета (фагоцитоз), уровни которых в поствакцинальный период сильно снизились.

Изменение биохимического профиля крови Молодняк лисицы. Количество общего белка в поствакцинальный период постепенно увеличивалось и через 3 недели достигло максимума, превышая на 28 % первоначальный уровень (Приложения, табл. 43, 44). Затем его содержание в крови резко снизилось. Из белковых фракций в

первую неделю после иммунизации произошло снижение альбуминов на 13 % (р<0,05) и повышение остальных фракций на 18-34 %, к 21 дню, наоборот, альбумины увеличились на 11 %, а остальные фракции уменьшились на 1931 % в сравнении с первоначальными значениями.

Количество глюкозы в первую неделю после иммунизации уменьшилось на 37,4 % (р<0,05), во вторую - на 43 % (р<0,05). Затем содержание глюкозы стало повышаться, тем не менее, осталось ниже исходного уровня до конца опыта. Активность АСТ и АЛТ также понизилась в первую неделю после иммунизации на 3 и 22 %, соответственно. Затем уровень трансаминаз повысился и незначительно превышал исходные значения. Содержание ЩФ после вакцинации увеличилось и в течение 3-х недель оно было выше на 15-27 % в сравнении с первоначальным уровнем. К концу наблюдения количество ЩФ уменьшилось даже ниже уровня исходных значений на 10 %. Уровень ЛДГ в поствакцинальный период был ниже, чем до иммунизации. Так, в сравнении с исходными значениями активность ЛДГ через неделю после вакцинации снизилась на 24 %, через две недели - на 44 % (р<0,01). Затем уровень ЛДГ начал несколько повышаться, тем не менее, оставаясь ниже первоначального уровня на 11 %.

Активизация окислительных реакций для получения энергии на иммунологические перестройки в организме лисицы привели к увеличению количества продуктов перекисного окисления, в частности, малонового диальдегида (МДА) - на 35 % через неделю после вакцинации, затем уровень МДА снижается до исходных значений. Нейтрализацию продуктов перекисного окисления осуществляют звенья антиоксидантной защиты, в частности БИ-группы белков и церулопламин. Активность церулоплазмина в первую неделю после вакцинации уменьшается на 37 % (р<0,05), во вторую -на 27 % (р<0,05), а затем восстанавливается до первоначального уровня.

Повышение уровня общего белка подтверждает активизацию белоксинтезирующей функции печени, так как иммуноглобулины и антитела имеют белковую природу. Уменьшение альбуминов в крови связано с

повышением содержания фракции глобулинов. В поствакцинальный период в связи с формированием иммунного ответа требуются большие энергетические затраты, поэтому в крови произошло уменьшение источника энергии - глюкозы. Одновременно с уровнем глюкозы в крови изменялась активность фермента, участвующего в окислении глюкозы - ЛДГ.

Следовательно, уровень большинства показателей белкового углеводного обменов, трансаминаз, церулоплазмина достигает своего максимума или минимума через 3 недели после вакцинации, т.е. после достижения иммунологическими показателями максимальных значений через 1 неделю после вакцинации.

Молодняк песца. У песца количество общего белка на второй неделе уменьшилось на 21 %, на третьей неделе увеличилось на 28 % (р<0,05), затем вновь уменьшилось (Приложения, табл. 45, 46). Из белковых фракций в первую неделю после иммунизации произошло повышение количества альбуминов на 7 % и снижение концентрации а- и Р-глобулинов на 14-19 %, содержание у-глобулинов не изменилось. Через 2 недели после иммунизации отметили резкое повышение уровня у-глобулинов - 2 раза (р<0,05). Через 3 недели содержание альбуминов вернулось к первоначальному значению, количество у-глобулинов снова возросло в 2 раза (р<0,001), содержание а-глобулинов увеличилось и превысило исходный уровень на 13 %, а Р-глобулинов - продолжило снижаться, достигнув 36 % от первоначального уровня (р<0,001). В конце наблюдения уровни альбуминов и а-глобулинов соответствовали исходным значениям, содержание Р-глобулинов начало повышатья, а у-глобулинов снижаться к первоначальному уровню.

Количество глюкозы в первую неделю после иммунизации уменьшилось на 12 % (р<0,05) и в дальнейшем продолжило снижаться, достигнув к концу наблюдения 54 % (р<0,01) от исходного уровня. Активность АСТ и АЛТ в первую неделю после иммунизации повысилась на 36 % (р<0,05), затем постепенно уменьшалась и через 4 недели была ниже первоначальных значений на 21 (р<0,05) и 8 %, соответственно. Уровень ЩФ

в первые 2 недели увеличился на 7-9 %, в последующий период снизилось на 28 % от исходного уровня. Активность ЛДГ в поствакцинальный период была ниже, чем до иммунизации, за исключением резкого повышения на 22 % через 3 недели после вакцинации.

Содержание МДА через неделю после вакцинации увеличилось на 27 %, через 2 недели уровень МДА снизился на 12 % от исходных значений и затем снова стал повышаться. Составляющие антиоксидантной защиты уменьшили свою активность в поствакцинальной период, особенно церулоплазмин. Его уровень в крови песцов был меньше на 30-40 % (р<0,01).

Таким образом, у песца после вакцинации активизировался белковый обмен, максимально к 21 дню, когда наблюдалось наибольшее количество антител и иммуноглобулинов в крови зверей. Понизился уровень углеводного обмена и показателя антиоксидантной системы -церулоплазмина. Активность АСТ, АЛТ, ЩФ в первую неделю после вакцинации повышается, отражая напряженную работу печени, а затем снижается. Вероятно, уменьшение уровней углеводного обмена и активности ферментов является своеобразной защитной реакцией организма песца на внешние воздействия, что по-видимому, обусловлено его высокой гомеостатированностью, обеспечивающей адаптацию животного к суровым условия полярного климата (Сергина С.Н. и др., 2009).

3.2. Влияние янтарной кислоты на физиолого-биохимический статус разных половозрастных групп пушных зверей

3.2.1. Половозрастные изменения биохимических показателей крови и волосяного покрова у разных видов пушных зверей под влиянием

янтарной кислоты

Изменения биохимических показателей крови у разных видов пушных

зверей

Результаты исследования влияния препарата в дозах 5, 10 и 15 мг/кг живой массы (соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) на биохимическую картину крови молодняка пушных зверей показали следующее.

Лисица. Воздействие янтарной кислоты на организм самцов лисицы оценивали путем сравнения показателей крови в конце опыта у опытных групп животных с контрольной (Приложения, табл. 47). Содержание общего белка у животных всех подопытных группах несущественно отличалось между собой. В опытных группа было меньше альбуминов в сравнении с контрольной группой: в 1-й группе - на 11,8 %, во 2-й - несущественно, в 3-й - на 21,8 % (р<0,01). Содежание а-глобулинов относительно сравнения с контрольной группой изменилось в разных направлениях: повысилось в 1 -й -на 60,2 % (р<0,01), в 3-й группе - в 2 раза (р<0,001) и снизилось несущественно во 2-й группе. Количество Р-глобулинов в опытных группах было значительно выше, чем в контрольной группе: в 1-й - в 3,7 раза (р<0,001), во 2-й опытной группе - на 53,4 %, в 3-й опытной группе - в 3,3 раза (р<0,001). Содержание у-глобулинов, наоборот, в сравнении с контрольной группой, в опытных группах уменьшилась: в 1-й - на 16,3 % (р<0,001), во 2-й опытной группе - на 14 %, в 3-й опытной группе - на 51,6 % (р<0,001). Включение препарата в рацион лисицы увеличило показатели антиоксидантной защиты, в частности содежание церулоплазмина в крови. В опытных группах его уровень на 34,5, 37,7 и 39,6 % (везде р<0,001) (соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) превосходил значение в контрольной группе.

У самок содержание общего белка также несущественно отличалось между собой во всех подопытных группах (Приложения, табл. 48). Содержание альбуминов было снижено в 1-й опытной группе на 16,4 % (р<0,01), в 3-й опытной группе - на 22,8 % (р<0,001), а во 2-й опытной -превосходило на 15,8% (р<0,01) значения показателя в контрольной группе. Содержание а-глобулинов характеризовалось обратной закономерностью: в 1-й опытной группе - на 55,2 % (р<0,001), в 3-й опытной группе - на 35,5 % (р<0,001) превалировало и во 2-й опытной группе - на 35,8 % (р<0,05) было снижено относительно контроля. Количество Р-глобулинов значительно превосходило в опытных группах в 3,4 раза (р<0,001), на 4,7 %, в 4,7 раза (р<0,001) (соответственно, в 1, 2 и 3 опытных группах) значения показателя в контрольной группе. Содержание у-глобулинов снизилось во всех опытных: на 46,6 % (р<0,001), на 20,2 % (р<0,01), на 23,6 % (р<0,05) (соответственно, в 1, 2 и 3 опытных группах) относительно контрольной группы. Активность ЩФ была значительно снижена в 1-й опытной группе - на 45,7 % (р<0,001) и в 3-й опытной группе - на 33 % (р<0,01). Из показателей естественной резистентности наблюдали достоверное уменьшение общих иммуноглобулинов и ЛАСК во 2-й и 3-й опытных группах, в сравнении с контрольной группой. Общие иммуноглобулины уменьшились во 2-й опытной группе на 28,6 % (р<0,001), в 3-й опытной группе - на 17,5 % (р<0,001). Содержание ЛАСК было снижено во 2-й опытной группе на 19,7 % (р<0,01), в 3-й опытной группе - на 28,2 % (р<0,001). Произошло повышение активности церулоплазмина, как одного из показателей функционирования антиоксидантной системы, на 47,2 % (р<0,001), на 42 % (р<0,001), на 29,2% (р<0,01) (соответственно, в 1, 2 и 3 опытных группах) относительно контрольной группы. Это подтверждает сниженный уровень МДА в опытных группах, напрмиер в 3-й группе - на 15,9% (р<0,05), в сравнении с контролльной группой.

Следовательно, янтарная кислота оказала наибольшее влияние у самцов на белковый обмен, изменяя соотношение белковых фракций, в

частности, уменьшая уровень у-глобулинов, и на состояние антиоксидантной системы, повышая активность церулоплазмина. У самок под влиянием препарата также изменилось соотношение белковых фракций, в частности, понизилось содержание у-глобулинов, увеличился уровень церулоплазмина и, в отличие от самцов, уменьшилась активность ЩФ и содержание показателей неспецифической резистентности. Повышение активности показателей антиоксидантной системы приводит к снижению развития патологических процессов на уровне клеток и тканей, т.к. в организме уменьшается возникновение перекисей, которые вызывают нарушения в органах и тканях (Владимиров Ю.А., 2000). В результате этого в организме уменьшается количество скрытых патологических процессов и вполне естественно, что оптимизируется уровень факторов неспецифической резистентности (Рецкий М.И. и др., 2003).

Песец. Сравнивая в конце опыта показатели крови опытных групп самцов с контрольной группой выявили, что количество общего белка в 1 -й группе не изменилось, во 2-й группе увеличилось на 27,5 % (р<0,01), в 3-й -уменьшилось на 15,5 % (Приложения, табл. 49). Уровень альбуминов был несколько меньше в 1-й группе и несколько больше во 2-й и 3-й группах, в сравнении с контрольной. Содержание фракций а- и у-глобулинов снизилось, а Р-глобулинов возросло. Количество а-глобулинов относительно контроля уменьшилось: в 1-й группе - на 21,5 % (р<0,01), в 2-й - на 32,2 % (р<0,05) и в 3-й - на 21,5 % (р<0,01). В сравнении с контролем содержание Р-глобулинов значительно повысилось: в 1-й группе - в 3,9 раза (р<0,01), во 2-й - в 5,1 раза (р<0,001) и в 3-й - на 6,5 %. Фракция у-глобулинов, по сравнению с контрольной группой, была ниже: в 1-й группе - на 5,4 %, в 3-й - на 14,2 %. В подопытных группах самцов была выше активность трансфераз по отношению к контролю. Показатель АСТ был выше в 1-й группе - на 1,6 %, во 2-й - на 16 % (р<0,05), в 3-й - на 46,1 % (р<0,01). Уровень АЛТ превосходил контроль в 1-й группе - на 21 %, во 2-й - 57,2 % (р<0,05), в 3-й - в 2 раза (р<0,001). Активность ЩФ была выше: в 1-й группе - на 34,5 %

(р<0,01), во 2-й - на 7,9 %, в 3-й - на 76,2 % (р<0,01). Введение янтарной кислоты способствовало повышению уровня общих иммуноглобулинов в 1 -й группе - на 15,8 %, во 2-й - на 49 % (р<0,05), в 3-й - на 43,4 % (р<0,05) по сравнению с контрольной группой. Также произошло повышение уровня антиоксидатной защиты организма, особенно ее ферментного звена. В сравнении с контролем количество церулоплазмина выше во всех подопытных группах: в 1-й - на 22,2 %, во 2-й - на 36,9 % (р<0,01), в 3-й - на 16,2 %.

Сравнивая показатели крови опытных групп самок с контрольной группой установили, что количество общего белка во всех подопытных группах незначительно различалось между собой (Приложения, табл. 50). Количество альбуминов было ниже, по сравнению с контролем, в 1 -й группе

- на 7,2 %, в 2-й - на 5 %, в 3-й группе - на 25,2 % (р<0,01). Уровень а-глобулинов в 1-й и 2-й группах был таким же, а в 3-й группе выше на 36,4 % (р<0,05), по сравнению с контрольной группой. Фракция Р-глобулинов, наоборот, была выше в 1-й (на 76,6 % (р<0,01) и 2-й группах (19,5 %), а в 3-й

- ниже на 26 %, чем в контрольной группе. В результате перераспределения фракций альбуминов и Р-глобулинов уровень у-глобулинов в 1-й группе снизился на 37,8 %, а во 2-й и 3-й группах увеличился на 36,5 % и в 2,8 раза (р<0,001), соответственно. Влияние препарата на обмен трансфераз и показатели естественной резистентности было разнонаправленным и не сильно выраженным. Активность церулоплазмина в опытных группах, в сравнение с контрольной, повысилась: в 1-й - на 31,6 %, во 2-й - 37,4 % (р<0,01), в 3-й - на 19,3 % (р<0,05).

Таким образом, у самцов песца янтарная кислота оказала наибольшее влияние на белковый обмен, повысила активность трансфераз, содержание общих иммуноглобулинов и уровень показателя антиоксидантной системы -церулоплазмина. У самок препарат также оказал наибольшее влияние на белковый обмен и увеличил содержание церулоплазмина.

Норка. Введение в рацион самцов норок янтарной кислоты увеличило количество общего белка в опытных группах по сравнению с контролем: в 1 -й группе - в 2,3 раза (р<0,001), в 2-й - на 32,6 %, в 3-й - 10,1 % (Приложения, табл. 51). Содержание альбуминов и а-глобулинов было меньше, а в- и у-глобулинов было больше в опытных группах, чем в контрольной. Альбумины составляли в 1-й группе 90,3 %, во 2-й - 89,9 % (р<0,01), в 3-й - 91 % от уровня альбуминов в контрольной группе. Фракция а-глобулинов была уменьшена в 1-й группе на 14,6 % и без изменений в 3-й группе, в сравнении с контролем. Количество в-глобулинов в опытных группах значительно превосходило показатели контроля: в 1-й группе - на 68,9 % (р<0,01), во 2-й

- на 28,4 % (р<0,05), в 3-й - на 16,2 %. Уровень у-глобулинов был выше в 1-й группе - на 94,4 % (р<0,05), во 2-й - на 72,2 %, в 3-й - на 27,8 %, чем в контроле. Введение янтарной кислоты в рацион самцов норок способствовало повышению активности ферментного звена и уменьшению уровня неферментного звена антиоксидантной системы организма. В сравнении с контролем количество церулоплазмина было выше: в 1-й группе

- на 63,9 % (р<0,01), во 2-й - на 17,5 %. Уровень БИ-групп белков меньше: в 1-й группе - на 34,2 % (р<0,001), в 2-й - на 16,5 %, в 3-й - на 5,3 %, чем в контрольной группе.

Введение янтарной кислоты в рацион самок норок увеличило содержание общего белка, в сравнение с контролем в 1-й группе - на 84,7 % (р<0,001), в 2-й - на 32,4 %, в 3-й - на 15,7 % (Приложения, табл. 52). Показатель альбуминов был почти равным во всех группах. Уровень а-глобулинов под влиянием препарата уменьшился: в 1 -й группе - на 29,9 % (р<0,01), во 2-й - незначительно, в 3-й - на 20,9 % (р<0,05). Содержание в- и у-глобулинов было выше в опытных группах, чем в контроле. Фракция в-глобулинов превосходила контроль на 44,7 % (1 -я группа), на 55,3 % (2-я группа), на 43,5 % (3-я группа). Заметное увеличение у-глобулинов наблюдали в 1-й группе - на 16,9 % и во 2-й - 30,5 %. Активность трансфераз в опытных группах мало отличалась от показателей контрольной, за

исключением 3-й группы. В ней уровень АСТ был меньше на 26,6 %, АЛТ -на 32,8 % (р<0,01), чем в контроле. Содержание ЩФ колебалось в группах разнонаправлено. Количество глюкозы в опытных группах уменьшено: в 1-й группе - 15,4 %, во 2-й - на 30,7 %, в 3-й - на 20,9 %, по сравнению с контрольной. Из показателей естественной резистентности наблюдали повышение общих иммуноглобулинов под влиянием янтарной кислоты в 1 -й группе на 63 % (р<0,01), в других группах значительных изменений не отмечено. Произошло увеличение активности церулоплазмина в 1 -й группе -на 34 %, во 2-й - на 41,3 %, при одновременном уменьшении в этих же группах уровня БИ-групп белков на 37,7 и 19,5 %, соответственно, в сравнение с контролем.

Таким образом, у самцов и самок янтарная кислота оказала наибольшее влияние на белковый обмен, изменив соотношение белковых фракций, и повысила активность показателя антиоксидантной системы церулоплазмина. То есть, введение препарата в дозах 5, 10 и 15 мг/кг живой массы в рацион оптимизирует биохимические показатели крови пушных зверей.

При введении в рацион лисиц препарата в дозах 10, 50 и 100 мг/кг живой массы (соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) было выявлено, что в крови молодняка самцов красной лисицы контрольной и опытных групп в конце опыта уровень общего белка, альбуминов и у-глобулинов был равным (Приложения, табл. 53). Концентрация а-глобулинов в 1-й опытной группе была выше на 21,2 %, а в 3-й - ниже на 12,4 %, чем в контрольной группе. Количество Р-глобулинов, наоборот, в 1-й опытной группе было меньше на 31,8 % (р<0,05), а в 3-й - больше на 45,3 %, по сравнению с контролем. Уровень глюкозы в 1 -й опытной группе был незначительно понижен, во 2-й -выше на 30 % (р<0,05), в 3-й - на 13 %, в сравнении с контрольной группой. Активность щелочной фосфатазы в опытных группах превосходила данный показатель в контроле: в 1-й группе - на 49,1 % (р<0,05), во 2-й - на 21,4 %, в 3-й - на 12,2 %. Активность аспартатаминотрансферазы и

аланинаминотрансферазы в разных группах находилась примерно на одном уровне.

В крови молодняка самок красной лисицы контрольной и опытных групп был примерно равным уровень общего белка, у-глобулинов (Приложения, табл. 54). В сравнении с контрольной группой в опытных было больше количество альбуминов и меньше а-глобулинов. Так, альбуминов в 1-опытной группе было больше на 22,2 % (р<0,05), во 2-й - на 20,4 %, в 3-й - на 24 % (р<0,05), а-глобулинов в 1-й группе было меньше на 39,4 %, во 2-й - на 52 %, в 3-й - на 62,5 %, по сравнению с контролем. Уровень глюкозы был ниже в 1-й опытной группе на 18,6 % (р<0,05), во 2-й -на 18 %, в 3-й группе был выше на 11,8 %, по сравнению с контрольной группой. В активности ферментов: аспартатаминотрансферазы, аланинаминотрансферазы и щелочной фосфатазы, отмечены некоторые колебания в крови зверей разных групп.

В крови молодняка самцов серебристо-черной лисицы разных групп зафиксировано одинаковое количество общего белка (Приложения, табл. 55). Уровень альбуминов был ниже в крови зверей 1 -й опытной группы на 13,3 % (р<0,05), во 2-й - на 9,9 %, в 3-й - на 5,4 %, а количество у-глобулины было больше в 1-й группе - на 73,9 %, во 2-й - на 30,5 %, в 3-й - на 39,4 %, по сравнению с контрольной группой. Концентрация глюкозы в сыворотке крови опытных групп была несколько выше, чем в контроле. Активность аспартатаминотрансферазы также была выше в опытных группах, по сравнению с контрольной. Так, в 1-й группе этот показатель был больше на 57,4 % (р<0,05), во 2-й - на 55,3 % (р<0,05), в 3-й - на 68,1 % (р<0,05), чем в контроле.

У молодняка самок серебристо-черной лисицы опытных групп уровень общего белка был несколько понижен (Приложения, табл. 56). Концентрация альбуминов была выше в 1-й опытной группе на 14,2 % (р<0,05), во 2-й - на 9,4 % (р<0,05), а в 3-й группе ниже на 10 %, чем в контроле. Количество а-глобулинов меньше в 1-й группе на 29,1 % (р<0,05), а в других группах

больше, по сравнению с контрольной группой. Уровень у-глобулинов ниже в опытных группах, в сравнении с контролем, в 1 -й группе - на 30,7 %, во 2-й -на 43,8 %, в 3-й - на 37,4 %. Концентрация глюкозы в опытных группах повышена: в 1-й - 21 % (р<0,05), во 2-й - на 15,7 %, в 3-й - на 7,3 %, по сравнению с контрольной группой. В крови самок опытных групп уровни трансфераз ниже, чем в контроле. Так, активность аланинаминотрансферазы в 1-й группе была ниже на 6,8 %, во 2-й - 24,6 % (р<0,05), в 3-й - 16,1 %.

Несмотря на различные тенденции в изменениях уровень большинства показателей крови к концу эксперимента «стремился» к среднему значению. По-видимому, таким образом происходила нормализация обмена веществ у зверей.

Таким образом, в введение янтарной кислоты в больших дозах (50 и 100 мг/кг живой массы) в рацион не оказывет существенного влияния у самцов красной лисицы на биохимические показатели крови, за исключением повышенного содержания глюкозы и ЩФ; у самок - за исключением, белкового обмена (изменение соотношения белковых фракций) и уровня глюкозы. В отличие от красной лисицы у самцов серебристо-черной лисицы препарат оказал заметное влияние на белковый обмен (изменение соотношения белковых фракций), увеличение активности АСТ; у самок -влияние на белковый обмен, повышение уровня глюкозы и снижение активности трансфераз. То есть, препарат в больших дозах на красную лисицу существенно не влиял, а у серебристо-черной лисицы влиял в основном на белковый обмен и активность транфераз.

Изменения минерального состава крови и волосяного покрова у разных

видов пушных зверей

Кроме изучения влияния янтарной кислоты на рост и физиолого-биохимические показатели крови пушных зверей, важно также было исследовать влияние препарата на минеральный обмен в организме пушных зверей. Для этого были проведены исследования по изучению изменений

минеральных составов крови и волосяного покрова животных без добавления в корм янтарной кислоты и при ее наличии в рационе (Приложения, табл. 57).

При этом были проведены исследования по влиянию янтарной кислоты на концентрацию пяти наиболее важных для организма пушных зверей макроэлементов и жизненно необходимых микроэлементов: кальция, магния железа, меди и цинка. Сравнение уровня минеральных элементов в крови лисиц, песцов и норок, получавших янтарную кислоту, с уровнем элементов в крови зверей, не получавших ее, показало, что препарат не оказывал существенного влияния ни на минеральный состав крови, ни на минеральный состав волосяного покрова пушных зверей, за исключением уменьшения содержания кальция в волосяном покрове лисицы на 23,7 % (р<0,05) и норки - на 33,7 % (р<0,05).

Так как нами не выявлено значительных различий в минеральных составах крови и волосяного покрова разных видов пушных зверей как при приеме янтарной кислоты, так и без ее добавления в корм животным, то можно заключить, что на минеральный обмен этих макроэлементов в организме пушных зверей янтарная кислота существенно не влияет, за исключением обмена кальция, уровень которого снижается в волосяном покрове лисицы и норки.

Эти данные хорошо коррелируют с нашими данными по повышению качества волосяного покрова у лисиц и норок (за исключением песцов) под влиянием янтарной кислоты. Данный эффект объясняется тем, что избыточное содержание кальция в волосе приводит к его повышенной ломкости, т.е. такой волос чаще обламывается в ходе многочисленных передвижений животного через узкий лаз между вольерой и домиком. Это увеличивает количествою дефектов волосяного покрова, т.е. снижает качество шурки (Перельдик Н.Ш. и др., 1981; Берестов В.А. и др., 1984).

3.2.2. Изменение гистологической структуры печени и почек под

влиянием янтарной кислоты

Коррекция обмена веществ у пушных зверей должна отразиться на морфо-функциональном состоянии тканей и органов организма пушных зверей. Поэтому для подтверждения положительного влияния янтарной кислоты на биохимические показатели крови животных провели гистологические исследования тканей печени и почек, которые активно участвуют во всех обменах веществ в организме.

В печени у лисиц контрольной группы, не получавших янтарную кислоту, выявлено расширение междольковых и центральных кровеносных сосудов, переполнение кровью внутридольковых печеночных капилляров, увеличение желчных протоков; нарушение архитектоники печеночных долек, увеличение в объеме гепатоцитов в результате белково-жировой дистрофии, нарушение трабекулярного строения долек, трабекулы имеют неправильную форму с разрывами со спавшимися участками, заметно большое количество скоплений глыбок гемосидерина (рис. 3.2.2.1).

В печени зверей, которым скармливали препарат в дозе 5 мг/кг живой массы, отмечено снижение интенсивности сосудистых патологических процессов встречаются лишь единичные зерна гемосидерина, местами еще сохраняется мелкокапельный липидоз, часть гепатоцитов имееет рыхлую структуру с нечеткими границами клеток и грубозернистой цитоплазмой, но произошло восстановление большинства трабекул (рис. 3.2.2.2).

В почках у лисиц контрольной группы, не получавших янтарную кислоту, как в корковом, так и в мозговом веществе почек встречается большое количество скоплений глыб гемосидерина; между извитыми и прямыми канальцами, между клубочками в интерстициальной соединительной ткани зафиксировали пролиферацию лейкоцитов, лимфоцитов; выявили ярко выраженный диапедез эритроцитов, обнаружили гиперемию межканальцевых капилляров с выпотевание глыбок

гемосидерина; в просветах извитых канальцев встречаются гомогенные или зернистые цилиндры, эпителий извитых канальцев находится в состоянии зернисто-жировой дистрофии (рис. 3.2.2.3).

Почечные тельца у зверей, которым не давали препарат, широко изменялись по форме (от вытянутой до округлой) и размерам. Можно было обнаружить крупные, увеличенные в размере тельца, одновременно с ними регистрировали мельчайшие, атрофированные тельца, капиллярный клубочек в которых имел очень небольшой размер, или его невозможно было обнаружить. Были единичные случаи, когда увеличенные в размере почечные тельца заполоняли весь объем боуменовой капсулы. В этих тельцах фактически не было мочевого пространства. Кроме того, отмечали редкие случаи, в которых капиллярные клубочки делилиь на несколько долек, создавая дольчатость капиллярных клубочков.

В почках у зверей, которым давали препарат в дозе 5 мг/кг живой массы, установили, что структура почки не имела отклонений. Граница коркового и мозгового слоев была хорошо заметна. В корковом веществе почек еще сохраняются единичные зерна гемосидерина. В базальной части эпителиальных клеток извитых канальцев можно обнаружить отложение жировых капель. Капсула нефрона (капсула Шумлянского-Боумена) хорошо просматривается (рис. 3.2.2.4).

Следовательно, включение янтарной кислоты в рацион способствует сохранению гистологической структуры печени и почек лисиц, т.е. применение препарата уменьшает воздействие на печень и почки негативных факторов. Кроме того, это подтверждает положительное влияние препарата на биохимические показатели крови пушных зверей.

Рис. 3.2.2.1. Гистоструктура ткани печени лисиц, не получавших янтарную кислоту: скопления глыбок гемосидерина (1), сохранившиеся печеночные балки (2), нарушение балочных структур (3), белковая дистрофия (4)

Рис. 3.2.2.2. Гистоструктура ткани печени лисиц, получавших янтарную кислоту: единичные зерна гемосидерина (1), ядра гепатоцитов (2), балочная структура (3)

Рис. 3.2.2.3. Гистоструктура ткани почек лисиц, не получавших янтарную кислоту: скопления глыб гемосидерина (1), эпителий собирательный трубочек в состоянии белково-жировой дистрофии (2), гиперемия капилляров с выпотеванием глыбок гемосидерина (3)_

Рис. 3.2.2.4. Гистоструктура ткани почек лисиц, получавших янтарную кислоту: единичные зерна гемосидерина (1), почечный клубочек (2).

3.2.3. Динамика роста молодняка пушных зверей в зависимости от вида и пола при воздействии янтарной кислоты

Результаты предварительного исследования по введению в рацион лисиц янтарной кислоты в дозах 10, 50 и 100 мг/кг живой массы

(соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) показали, что самцы красной лисицы разных подопытных групп начали отличаться между собой по живой массе с сентября (Приложения, табл. 58). С этого времени и до убоя звери 2-й опытной группы превосходили животных контрольной группы. Самцы красной лисицы 1-й и 3-й опытных групп на протяжении исследований имели живую массу несколько ниже или одинаковую со зверями контрольной группы. Но, различия между группами недостоверны, за исключением массы зверей 2-й и 3-й опытных групп перед убоем. Необходимо отметить, что с октября и до убоя (ноябрь) вследствие объективных природных причин самцы красной лисицы всех групп несколько снизили массу тела.

Самки красной лисицы опытных групп по живой массе превосходили самок контрольной группы (Приложения, табл. 58). Перед убоем звери 1 -й, 2-й и 3-й опытных групп имели живую массу, в сравнении с животными контрольной группы, на 330, 530 и 285 г больше. Однако, в результате большого разброса данных достоверность установить не удалось. Самки красной лисицы всех групп, как и самцы красной лисицы, в последний месяц перед убоем несколько снизили живую массу.

Кроме живой массы, определяли и другие показатели, характеризующие рост и развитие организма животных, в частности, длину тела (Приложения, табл. 59). Опытные самцы и самки красной лисицы, несмотря на некоторое отставание в длине тела в начале исследований, по сравнению со зверями контрольной группы, перед убоем превосходили их по данному показателю: самцы от 0,5 до 1,5 см (3-я и 1-я опытные группы, соответственно), самки от 1,3 до 3,4 см (3-я и 1-я опытные группы, соответственно). Индекс телосложения самцов и самок красной лисицы по

своим изменениям повторял изменения живой массы этих зверей (Приложения, табл. 60).

Самцы серебристо-черных лисиц разных групп начали отличаться по живой массе с августа (Приложения, табл. 61). При этом звери контрольной группы были больше, чем животные опытных групп (в октябре различия достоверны). Тем не менее, к моменту убоя самцы серебристо-черной лисицы 1 -й и 2-й опытных групп сравнялись и даже стали превосходить (1 -я опытная группа) зверей контрольной группы. Обусловлено это тем, что с октября до ноября (убой) животные контрольной группы снизили живую массу, самцы опытных групп продолжали ее наращивать. Исключение составили самцы 3-й опытной группы, которые перед убоем достоверно отстали в росте от зверей в контрольной группе на 334 г (р<0,05).

Самки серебристо-черной лисицы всех групп имели некоторые различия в живой массе (Приложения, табл. 61). За месяц перед убоем самки контрольной группы незначительно уменьшили живую массу, а животные опытных групп продолжали ее увеличивать и поэтому превзошли зверей контрольной группы на 110-390 г (самки 1-й и 3-й опытных групп, соответственно).

Длина тела у опытных самцов и самок серебристо-черной лисицы (Приложения, табл. 62), также как у красной лисицы, несмотря на некоторое отставание в начале исследований, по сравнению со зверями контрольной группы, перед убоем превосходили их по данному показателю: самцы от 0,4 до 1,6 см (1-я, 2-я и 3-я опытные группы, соответственно), самки от 1,5 до 1,9 см (2-я и 3-я опытные группы, соответственно). К концу наблюдения индекс телосложения у самцов в контрольной группе стал выше, чем в опытных группах, у самок - индекс телосложения был наибольшим во 2-й и 3-й опытных группах, наименьшим - в 1-й опытной группе (Приложения, табл. 63). Уменьшение индекса телосложения в одной группе относительно другой при одинаковых живых массах может указывать на удлинение тела животного.

Таким образом, скармливание молодняку лисиц янтарной кислоты в больших дозах (50 и 100 мг/кг живой массы) не способствовало ускорению роста животных и даже приводило к его замедлению.

Поэтому в дальнейших исследованиях мы использовали другую схему введения препарата в рацион молодняка пушных зверей: были уменьшены дозы янтарной кислоты - 5, 10 и 15 мг/ кг живой массы (соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) и количество дней скармливания препарата. Результаты этих исследований представлены ниже.

Лисица. Самцы красной лисицы разных подопытных групп начали заметно отличаться между собой по живой массе тела уже через месяц после начала опыта (Приложения, табл. 64). С конца июля и до ноября звери 1 -й опытной группы превосходили животных контрольной группы. Но к моменту убоя наибольшую живую массу набрали самцы 2-й опытной группы, что на 400 г больше, чем у зверей контрольной группы (р<0,05). Лисицы из 3-й опытной группы с конца лета стали отставать в росте от животных других групп, причем различия по живой массе с 1 -й и 2-й опытными группами достоверны (р<0,05).

Самки красной лисицы 2-й и 3-й опытных групп по живой массе во время наблюдений превосходили самок контрольной группы, 1 -й опытной группы - немного отставали в росте. Заметные различия между группами наметились с августа. Как у самцов к моменту убоя наибольшей живой массой обладали самки 2-й опытной группы. Они почти на 700 г превосходили зверей контрольной группы. Однако, достоверность установить не удалось, вследствие большой статистической ошибки показателей.

В конце опыта была измерена длина тела молодняка. Самцы 1 -й и 2-й опытных групп на 0,4-0,6 см отстали в линейном росте от животных контрольной группы (Приложения, табл. 65). Хотя по живой массе они превосходили контрольных зверей. Из всех групп наибольшей длиной тела обладали самцы 3-й опытной группы. Они на 0,7 см превосходили зверей

контрольной группы. Самки всех опытных групп уступали в длине тела на 0,3-0,6 см лисицам контрольной группы. Различия между группами недостоверны.

Пропорциональность развития тела животного характеризует индекс телосложения - это отношение живой массы в граммах к длине тела в см. Так как по длине тела лисиц различия между группами небольшие, то большее влияние на индекс телосложения оказала живая масса (Приложения, табл. 65). Соответственно, он повторяет закономерности различий живой массы между группами. К концу исследований он наивысший у самцов и самок 2-й опытной группы, в сравнении со зверями контрольной группы на 7-11 %, наименьший у самцов 3-й опытной группы, у самок - 1-й опытной группы.

Песец. Живая масса молодняка песца достоверно различалась между группами, особенно по самкам к концу наблюдения. Наибольшей живой массой обладали животные контрольной группы, а наименьшей - 3-й опытной группы (Приложения, табл. 66).

Норка. Звери 2-й опытной группы обладали наименьшей живой массой в сравнении с другими группами (Приложения, табл. 67). Наибольшая живая масса была зафиксирована у норок 3-й опытной группы, несколько уступали им звери 1-й опытной группы. Животные контрольной группы имели промежуточные показатели между группами по живой массе.

Таким образом, включение в рацион молодняка лисиц и норок янтарной кислоты в небольших дозах (5, 10 и 15 мг/кг живой массы) в основном способствовало ускорению роста щенков, а у песцов, наоборот, -замедлению их роста.

3.2.4. Повышение продуктивных качеств у разных видов пушных зверей

под влиянием янтарной кислоты

Показатели качества волосяного покрова у пушных зверей

Результаты предварительного исследования по введению в рацион лисиц янтарной кислоты в дозах 10, 50 и 100 мг/кг живой массы

(соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) показали, что от самцов красной лисицы опытных групп, в сравнении со зверями контрольной группы, получено большее число шкурок 0 и 1 размера и меньше шкурок 2 размера (Приложения, табл. 68). В 1-й опытной группе была получена шкурка 20 размера, чего нет в других группах животных, в том числе у серебристо -черных лисиц. Поэтому площадь шкурки была наименьшей у самцов красной лисицы контрольной группы, а наивысшей - у зверей 1-й и 3-й опытных групп (на 0,4 и 0,5 дм2, соответственно).

От самцов красной лисицы контрольной группы получены все шкурки без дефектов волосяного покрова (Приложения, табл. 69). В опытных группах шкурок без дефектов волосяного покрова было меньше и были отмечены шкурки с малым с средним дефектами волосяного покрова.

От самок красной лисицы большее число шкурок 1 размера получено в 1-й и 3-й опытных группах, меньшее - в контрольной группе. Во 2-й опытной группе шкурок 1 размера нет. Поэтому площадь шкурок наименьшая зафиксирована во 2-й опытной группе, затем следует контрольная группа (на 0,7 дм2 больше). Наибольший показатель отмечен в 1-й опытной группе - на 0,5 дм2 больше, чем в контрольной группе.

У самок красной лисицы наибольший процент шкурок с качественным волосяным покровом также зафиксирован в контрольной группе, но в этой же группе получены еще шкурки со средним дефектом волосяного покрова. В 1-й и 2-й опытных группах наряду с шкурками без дефектов волосяного покрова были зарегистрированы шкурки с малым дефектом, а вот шкурок со средним дефектом в этих группах нет. В 3-й опытной группе получены шкурки как без дефектов волосяного покрова, так с малым и средним дефектами.

Зачет шкурок по качеству волосяного покрова от самцов красной лисицы был наименьшим у зверей 2-й опытной группы (Приложения, табл.

69), а наибольшим - от самцов красной лисицы контрольной группы и незначительно меньший - в 1 -й и 2-й опытных группах. Зачет шкурок по качеству волосяного покрова от самок красной лисицы был наименьшим в 3-й опытной группе (в сравнении с показателями контрольной и 1 -й опытной групп, Р<0,05), наибольшим - в 1-й опытной группе.

От самцов серебристо-черной лисицы наивысший процент шкурок 0 и 1 размера получен в контрольной и 1-й опытной группах. В 3-й опытной группе отсутствуют шкурки 0 размера. Поэтому наименьшая площадь шкурки зарегистрирована в 3-й как и во 2-й опытных группах, наибольшая -в контрольной и 1 -й опытной группах (Приложения, табл. 70).

От самцов серебристо-черной лисицы наименьшее количество шкурок с качественным волосяным покровом получено в контрольной группе, также у этих шкурок несколько меньше показатель цвета (Приложения, табл. 71). Наибольшее число шкурок с качественным волосяным покровом зафиксировано в 2-й опытной группе. Однако, в ней были наихудшие результаты по другим показателям: цвету и серебру шкурок. Наилучшие показатели оценки имел волосяной покров шкурок от лисиц 3-й опытной группы.

Среди самок серебристо-черной лисицы наибольший процент шкурок 1 размера отмечен во 2-й опытной группе. Однако, в этой же группе получено наибольшее число шкурок 3 размера. В 3-й опытной группе шкурок 1 размера нет. Поэтому наименьшая площадь шкурки зарегистрирована в 3-й опытной группе, затем следует 2-я опытная группа. Наибольшая площадь шкурки отмечена в контрольной и 1 -й опытной группе зверей - на 0,6 и 0,5 дм2 больше, чем в 3-й опытной группе.

От самок серебристо-черной лисицы в 1 -й опытной группе получены все шкурки с качественным волосяным покровом, но у этих шкурок несколько ниже показатель цвета, в сравнении с другими группами (Приложения, табл. 71). Наименьшее число шкурок с качественным волосяным покровом наряду с не лучшими показателями цвета отмечено в 3159

й опытной группе. В других группах зафиксированы промежуточные показатели качества волосяного покрова шкурок.

Зачет шкурок по качеству волосяного покрова от самцов серебристо -черной лисицы был наименьшим у зверей 2-й опытной группы (Приложения, табл. 72). Наибольший зачет шкурок по качеству волосяного покрова от самцов серебристо-черной лисицы зарегистрирован в 3-й опытной группе и незначительно меньший - в 1-й опытной группе. Зачет шкурок по качеству волосяного покрова от самок серебристо-черной лисицы был наименьшим в 3-й опытной группе (в сравнении с показателями контрольной и 1-й опытной групп, Р<0,05), наибольшим - в контрольной группе.

Таким образом, скармливание молодняку лисиц янтарной кислоты в больших дозах (50 и 100 мг/кг живой массы) не способствовало повышению качества волосяного покрова животных, а даже приводило к его уменьшению.

Поэтому в дальнейших исследованиях мы использовали другую схему введения препарата в рацион молодняка пушных зверей: были уменьшены дозы янтарной кислоты - 5, 10 и 15 мг/кг живой массы (соответственно, 1, 2 и 3 опытные группы) и количество дней скармливания препарата. Результаты этих исследований представлены ниже.

Лисица. После убоя молодняка красной лисицы их шкурки были оценены по размеру и наличию дефектов волосяного покрова. От самцов контрольной группы было получено шкурок 1 -го размера более 64 % и кроме шкурок 2-го размера имеются шкурки 3-го размера (Приложения, табл. 73). В 1-й опытной группе отмечено появление шкурок 0-го размера, чего нет в остальных группах. В сумме шкурок 0-го и 1-го размеров почти 80 %. Кроме того, в этой группе отсутствуют шкурки 3-го размера. Во 2-й и 3-й опытных группах количество шкурок 1 -го размера меньше чем контроле на 9 и 17 %, соответственно. Но во 2-й опытной группе имеются еще шкурки 3-го размера, как и в контрольной группе, а в 3-й опытной группе таких шкурок нет. Поэтому площадь шкурки самцов красной лисицы почти одинакова в

контрольной, 2-й и 3-й опытных группах, но это меньше, чем в 1 -й опытной группе на 0,5-0,6 дм2.

От самок красной лисицы в контрольной группе получено шкурок 2-го и 3-го размеров поровну. В сравнении с этой группой в 1 -й опытной группе при таком же количестве шкурок 2-го размера появились шкурки 4-го размера. Во 2-й опытной группе зафиксировано еще большее количество шкурок 4-го размера - 18 %. Но это уменьшение размера в группе компенсируется появлением в ней шкурок большого размера - 1-го. Наибольший размер шкурок в 3-й группе, в которой шкурок 2 размера почти 82 %, остальное приходится на шкурки 3 размера. Поэтому площадь шкурки в контрольной, 1 -й и 2-й опытных группах примерно равная, что меньше, чем 3-й опытной группе на 0,4-0,5 дм2.

Результаты оценки волосяного покрова шкурок на наличие дефектов показали следующее. От самцов красной лисицы опытных групп все шкурки получены с более лучшим качеством волосяного покрова, чем от зверей контрольной группы (Приложения, табл. 74). Наилучшее качество зафиксировано в 3-й опытной группе, хотя шкурки этой группы по размеру меньше, чем шкурки других групп. Необходимо отметить, что волосяной покров шкурок 3-го дефекта зарегистрирован только в контрольной группе.

У самок красной лисицы также наилучшие показатели по качеству волосяного покрова шкурок зафиксированы в опытных группах, по сравнению с контрольной (Приложения, табл. 74). Так в 1-й и 3-й опытных группах шкурок с 1 -м дефектом волосяного покрова на 24-25 % больше, чем в контрольной группе. Кроме того, в контрольной группе зарегистрированы шкурки с 3-м дефектом волосяного покрова, которые отмечены и во 2-й опытной группе.

Зачет шкурок по качеству волосяного покрова от самцов красной лисицы в опытных группах больше, чем в контрольной (Приложения, табл. 74). Наибольший показатель зафиксирован в 1 -й опытной группе, что на 6 % больше, чем в контрольной группе. Зачет шкурок по качеству волосяного

покрова от самок красной лисицы также был наибольшим в опытных группах. Но в отличие от самцов у самок наивысший показатель зарегистрирован в 3-й опытной группе, что на 8,4 % больше, чем в контрольной группе.

Песец. Площадь шкурки не всегда напрямую коррелирует с живой массой зверей (Приложения, табл. 49 и 75). Площадь шкурок песца оказалась наибольшей в контрольной группе и наименьшей - у самок в 3-й опытной группе. Наибольшее количество шкурок песцов с бездефектным волосяным покровом отмечено в контрольной группе, в сравнении с опытными группами.

Для специалистов-практиков наиболее важным критерием является зачет шкурок по качеству волосяного покрова (Приложения, табл. 75), который является совокупной оценкой показателей качества, включающей размер шкурки и наличие дефектов на волосяном покрове. Зачет шкурок песца по качеству волосяного покрова оказался наибольшим в контрольной группе, чем в опытных.

Норка. Площадь шкурки не всегда напрямую коррелирует с живой массой зверей. Площадь шкурки от зверей контрольной группы, в сравнении с другими группами, была одной из самых минимальных (Приложения, табл. 76, 77). Наибольшая площадь шкурок от самок и самцов норок получена в 1 -й опытной группе.

Наименьшее количество шкурок норок без дефектов волосяного покрова зарегистрировано также в контрольной группе, наибольшее - от самцов 1-й, самок - 1-й и 3-й опытных групп. Зачет шкурок норок по качеству волосяного покрова был наименьшим у самцов в контрольной группе, у самок - во 2-й опытной, наибольший - в 1 -й опытной группе.

Таким образом, включение в рацион молодняка лисиц и норок янтарной кислоты в небольших дозах (5, 10 и 15 мг/кг живой массы) в основном способствовало повышению качества волосяного покрова, а у песцов, наоборот, - его уменьшению.

Отсутствие стимулирующего влияния препарата и даже уменьшение показателей роста и качества волосяного покрова молодняка песца, по -видимому, обусловлены высокой гомеостатированностью организма песца, которая обеспечивает его адаптацию к суровым условия полярного климата (Сергина С.Н. и др., 2009). В сравнении с лисицей, песец обладает более поздними сроками размножения (примерно на 1 месяц) и более интенсивным энергетическим обменом (Перельдик Н.Ш. и др., 1987; Берестов В.А., 2005), а также высокой узкоспециализированной адаптацией, то есть меньшей пластичностью к изменяющимся условиям существования (8Шего-7иЬт С. е1 а1., 2004).

Повышение воспроизводительной способности самок пушных зверей

под влиянием янтарной кислоты

Учитывая положительный эффект от включения янтарной кислоты в рацион молодняка пушных зверей было решено исследовать влияние препарата на взрослых животных, в частности, на их воспроизводительную функцию.

Лисица. Включение янтарной кислоты в рацион племенных лисиц (опытные группы) способствовало снижению числа пропустовавших самок и повышению количества благополучно ощенившихся самок на 7,8-12,7 %, снижению числа мертворожденных щенков в 3-7 раз, что увеличило количество зарегистрированных щенков в расчете на племенную самку на 11,3-15,9 % (Приложения, табл. 78).

Следовательно, янтарная кислота дает наибольший эффект при введении в рацион зверей в течение месяца перед спариванием и перед щенением (2 группа). При этом включение препарата в корм лисицы только в течение месяца до спаривания также дает эффект (1 группа), но меньший, чем при скармливании им янтарной кислоты в течение месяца перед спариванием и щенением.

Если лисицы содержатся при разных уровнях освещенности, то препарат в опытных группах неоднозначно влияет на воспроизводительную способность самок (Приложения, табл. 79). Пониженная освещенность шедов у лисиц уменьшала количество благополучно ощенившихся самок на 20%, что приводило к снижению количества щенков на 13,6 % в расчете на основную самку. В условиях пониженной освещенности янтарная кислота способствовала повышению числа благополучно ощенившихся самок на 30,7%, внутриутробной сохранности щенков и, соответственно, количества щенков, полученных на основную самку - в среднем на 0,8-1,4 щенков в сравнении с другими группами. При повышенной освещенности применение добавки янтарной кислоты способствовало некоторому уменьшению числа щенков, полученных от самок к отсадке.

Песец. Скармливание препарата песцу в течение месяца перед спариванием и перед щенением (2 группа) способствовало уменьшению числа пропустовавших самок и повышению количества благополучно ощенившихся самок на 5,9-35,3 %, снижению числа мертворожденных щенков до 2 раз, увеличению сохранности щенков на 18,6-22,3 % и, как итог, повышению количества зарегистрированных щенков в расчете на племенную самку - на 18,4-57,1 % (Приложения, табл. 80).

Введение янтарной кислоты самкам только в течение месяца во вторую половину беременности способствовало повышению числа благополучно ощенившихся самок (серебристый песец) или сохранению (поддержанию) плодовитости зверей (вуалевый песец), но не оказало положительного влияния на сохранность новорожденных щенков (Приложения, табл. 81). Поэтому на количество зарегистрированных щенков препарат не оказал должного эффекта.

Таким образом, янтарная кислота дает наибольший эффект при введении в рацион зверей в течение месяца перед спариванием и перед щенением. При этом включение препарата в корм песца только в течение

месяца до спаривания также дает эффект, но меньший. Применение препарата только в течение второй половины беременности нецелесообразно.

Норка. Введение янтарной кислоты в рацион норки дало эффект только в 3-й опытной группе, в которой препарат вводили в рацион зверей в течение месяца перед спариванием и перед щенением. (Приложения, табл. 82). В сравнении с контрольной группой, в этой группе препарат способствовал снижению числа пропустовавших самок и повышению количества благополучно ощенившихся самок на 14,5 %, увеличению плодовитости норки на 12,2 %, повышению сохранности живых щенков на 13,9 %, что в результате позволило увеличить количество зарегистрированных щенков: на благополучно ощенившуюся самку на 27,8 %, на племенную самку - на 46,4 %.

Следовательно, янтарная кислота дает наибольший эффект при введении в рацион в течение месяца перед спариванием и перед щенением (3 группа). Введение препарата норке только в течение месяца до спаривания (1 группа) или только в течение месяца перед щенением (2 группа), оказывает на нее слабое влияние. Вероятно, это связано с наличием у норки латентного периода в течение беременности (Ильина Е.Д. и др., 2004). В это время приостанавливается развитие зародышей и янтарная кислота не может эффективно влиять на их жизнеспособность и развитие. Сравнение наших результатов с данными Г.И. Блохина и др. (2007) показало, что удлинение периода введения препарата в рацион норки перед спариванием с 1 -го до 3-х месяцев не повышает эффективность его применения.

В зависимости от уровня освещенности, при котором содержатся животные, препарат по разному влияет на их воспроизводительную способность (Приложения, табл. 83). Пониженная освещенность увеличивает число пропустовавших (р<0,05) и снижает количество благополучно ощенившихся самок на 30,8% (р<0,05), уменьшает плодовитость 15,9% при некотором увеличении сохранности молодняка. В итоге на племенную самку получено на 0,5 щенка меньше, чем при повышенной освещенности.

Применение добавки янтарной кислоты в условиях пониженной освещенности способствовала у норки увеличению числа благополучно ощенившихся самок на 22,9%, повышению плодовитости на 1,1 щенка, что увеличило выход щенков на племенную норку на 1 голову. При повышенной освещенности янтарная кислота способствовала повышению числа пропустовавших самок (р<0,05), снижению количества благополучно ощенившихся самок на 57 % (р<0,05) и уменьшению на 55 % числа щенков, полученных в расчете на племенную самку (р<0,05).

Вышеприведенные данные, вероятно, объясняются тем, что в условиях пониженной освещенности янтарная кислота за счет оптимизации/стимуляции метаболизма способствует восстановлению сниженной репродуктивной функции зверей. А применение препарата в условиях повышенной освещенности приводит к угнетению воспроизводительной способности самок, что, по-видимому, обусловлено совместным воздействием на организм двух сильных раздражителей (стимуляторов).

Таким образом, янтарная кислота наиболее эффективно повышает воспроизводительную способность племенного поголовья лисиц, норок и песцов при введении в рацион в течение месяца до спаривания и перед щенением. Несколько меньший эффект дает включение препарата в корм лисицы и песца только в течение месяца до спаривания.

Экономический эффект от повышения продуктивных качеств пушных зверей под влиянием янтарной кислоты Молодняк пушных зверей

Экономическая эффективность применения янтарной кислоты (ЯК) на молодняке пушных зверей складывается из увеличения площади шкурки и улучшения качества ее волосяного покрова. Для этого из денежной суммы, полученной от реализации шкурок, вычитали стоимость янтарной кислоты, израсходованной на протяжении всего исследования.

Во всех опытных группах лисиц (получавших ЯК в дозах 5, 10 и 15 мг/кг живой массы) отмечен хороший экономический эффект (Приложения, табл. 84). У самцов он наибольший при скармливании препарата в дозе 5 мг/кг живой массы (1 группа), у самок - 15 мг/кг живой массы (3 группа) и обусловлен в основном наибольшими размерами шкурок в этих группах, в сравнении с другими.

Введение янтарной кислоты в рацион молодняка песца (получавшего ЯК в дозах 5, 10 и 15 мг/кг живой массы) не оказало ожидаемого влияния на его рост, качество волосяного покрова шкурки и, как следствие, мы получили отрицательный экономический эффект (Приложения, табл. 85).

Экономический эффект от применения янтарной кислоты молодняку норки в дозах 5, 10 и 15 мг/кг живой массы достаточно значительный (Приложения, табл. 86), особенно от самцов и самок, получавших препарат в дозе 5 мг/кг живой массы (1 группа).

При включении янтарной кислоты в больших дозах (50 и 100 мг/кг живой массы) в рационы молодняка лисиц установили, что она оказывет негативный эффект на продуктивные качества зверей (Приложения, табл. 87, 88).

Таким образом, включение препарата в рацион молодняка лисицы и норки в дозе 5 мг/кг живой массы позволяет получить наибольший экономический эффект. Применение янтарной кислоты молоднаку песца, а также молодняку пушных зверей в больших дозах (50 и 100 мг/кг живой массы) нецелесообразно.

Племенные самки пушных зверей

Экономические расчеты подтверждают высокий эффект от включения янтарной кислоты в рацион красной лисицы в течение месяца до спаривания и во вторую половину беременности (2 группа) (Приложения, табл. 89). От дополнительно полученных и выращенных щенков можно получить шкурку стоимостью 1280-1790 руб. в расчете на племенную самку.

На племенных самках песца препарат также эффективен при применении в течение месяца до спаривания и во вторую половину беременности (2 группа), и менее эффективен - при применении только в течение месяца до спаривания (1 группа) (Приложения, табл. 89).

На самках норок наибольший эффект получен при введении янтарной кислоты в рацион в течение месяца перед спариванием и во вторую половину беременности - 3 группа (Приложения, табл. 90). Включение препарата в корм только в течение месяца перед щенением (2 группа) также дает эффект, но меньший, чем при скармливании им янтарной кислоты в течение месяца перед спариванием и щенением. Введение препарата норке только в течение месяца до спаривания (1 группа) не дает положительного эффекта. Вероятно, это связано с наличием у норки латентного периода в течение беременности. В это время приостанавливается развитие зародышей и янтарная кислота не может эффективно влиять на их жизнеспособность и развитие.

Таким образом, наиболее эффективно включение янтарной кислоты в рацион племенных самок в течение месяца перед спариванием и щенением.

3.2.5. Влияние янтарной кислоты на изменение биохимического профиля крови после введения бактериальных и вирусных агентов в организм

пушных зверей

Влияние янтарной кислоты на динамику показателей крови после заражения норки вирусом алеутской болезни Изменение иммунологического профиля крови

Различия в показателях крови были зарегистрированы через 7 дней после заражения (1 опытная группа - норки, зараженные вирусом алеутской болезни, 2 опытная группа - норки, зараженные вирусом и получающие янтарную кислоту) (Приложения, табл. 38). Количество у-глобулинов в 1-й и 2-й опытных группах в начале понизилось на 81,9 (р<0,001) и 14,5 %, соответственно, а затем увеличилось на 80,4 (р<0,001) и 99,3 % (р<0,01),

соответственно, в сравнении со значениями контрольной группы. Повышенный уровень у-глобулинов в сыворотке крови заболевших зверей подтверждает присутствие в ней наибольшего количества пептидных соединений - антител, которые формируют иммунные комплексы. БАСК у заболевших норок уменьшалась в течение наблюдения на 82,9 (р<0,05) и 57,1 % (соответственно, в 1 и 2 опытных группах) в сравнении со значениями контроля.

Изменения в содержании иммунных белков в сыворотке крови вызвали отличия при формировании ЦИК. Диссоциация иммунных комплексов (С4/С3), характеризующая инфекционность процесса, в сыворотке крови заболевших животных превосходила таковую у здоровых на 12-15 %. Наблюдали уменьшение значений индекса фагоцитоза у зараженных животных на 33-35 % в 1-й и 2-й опытных группах (р<0,05 - р<0,01), в сравнении со значениями в контроле.

Таким образом, янтарная кислота повышает уровень гуморального иммунного ответа организма норки на введение вирусного агента.

Изменение биохимической картины крови

В сыворотке крови заболевших зверей (1-я и 2-я опытные группы) резко возросло содержание белка (Приложения, табл. 39) на 64,9 % (р<0,001) и 41,4 % (р<0,01), соответственно. Изменилось соотношение белковых фракций. В частности, резко увеличилось содержание а- и у-глобулинов, уменьшился уровень альбуминов и Р-глобулинов. Высокое содержание белка и у-глобулинов в сыворотке крови зараженных зверей свидетельствует о присутствие в ней значительного уровня пептидных соединений - антител, формирующих иммунные комплексы. Резкие колебания количества Р-глобулинов у зверей 1 опытной группы, в сравнении со 2 опытной группой, указывают на нарушение работы почек.

В сывортке зараженных зверей существенно увеличилась активность трансаминаз, зарегистрировали резкие изменения содержания ЩФ и ЛДГ, свидетельствующие о поражении печени у заболевших норок. Тем не менее,

у животных 2-й опытной группы значения этих ферментов были меньше, чем в 1-й опытной группе. Таким образом, препарат способствовал сохранению функциональной активности печени.

У норок 2-й опытной группы, в сравнение с 1 -й опытной группой, уровень мочевины и креатинина был снижен (р<0,05 - р<0,001), что указывает на меньшую степень повреждения почек у больных норок, получавших янтарную кислоту, чем у больных зверей, не получавших ее.

Следует отметить, что уровень ряда показателей (общий белок, а- и у-глобулины,АЛТ, ЩФ, мочевина и креатинин) через 21-28 дни после заражения резко увеличивался у заболевших зверей, что указывало на прогрессирование заболевания. Однако, у норок, которым давали препарат, увеличение значений этих показателей произошло в меньшей степени, в сравнении с животными, которые, не получали ее.

Таким образом, янтарная кислота способствовала «поддержанию» работы почек и печени норки после заражения вирусным агентом, что внешне проявилось в коррекции уровня биохимических показателей крови.

Влияние янтарной кислоты на изменение показателей крови лисиц и песцов в процессе формирования поствакцинального иммунного ответа Изменение иммунологической картины крови

Взрослая лисица. В сывортке крови взрослой лисицы, которой скармливали янтарную кислоту (Приложения, табл. 40), были выше значения общего белка, гамма-глобулинов, БАСК, показателей фагоцитоза (рис. 3.2.5.1, 3.2.5.2).

Таким образом, янтарная кислота способствует повышению уровня факторов иммунитета у взрослых самок в поствакцинальный период, особенно фагоцитоза и БАСК. По факторам клеточного иммунитета это наблюдается на 7 день после иммунизации, по гуморальным факторам - на 14-й день и позднее.

40 -, 30 20 10

0

□ к

■ о:

Рис. 3.2.5.1. Фагоцитарная активность взрослых самок лисицы в поствакцинальный период

20 п 15 10 5 0

±

ы 1—1 —±— 1—1

—

7 дней

14 дней

30 дней

Рис. 3.2.5.2. Индекс фагоцитоза взрослых самок лисицы в поствакцинальный период

Учитывая эти положительные результаты мы перешли к более масштабным исследованиям влияния янтарной кислоты на формирование иммунитета у молодняка пушных зверей после вакцинации.

Молодняк лисицы. В первую неделю после вакцинации в крови молодняка красной лисицы резко возросли значения показателей иммунитета: у-глобулинов, общих иммуноглобулинов и титров антител к сальмонеллезным антигенам (Приложения, табл. 41). Уровень у-глобулинов на 7 день после иммунизации увеличился в наименьшей степени в контрольной группе - на 24,1 %, в наибольшей степени в 2-й опытной группе - на 72,4 % (р<0,05). На 21 день после вакцинации произошло снижение

уровня показателя на 24-42 % от максимальных уровней, но, тем не менее, он остался выше исходного значения на 17-26 %.

Уровень иммуноглобулинов через 7 дней после вакцинации возрос в контрольной и 1-й опытной группах на 41,8 % (р<0,05), наибольшее увеличение зафиксировано во 2-й опытной группе - на 66,7 % (р<0,01). На 14 день после иммунизации содержание общих иммуноглобулинов снизилось в 1-й и 2-й опытных группах до почти первоначального показателя (р<0,01), в контрольной группе значительно ниже - почти в 3 раза от максимального уровня (р<0,001). Еще через неделю количество общих иммуноглобулинов вновь почти достигло максимального уровня.

Титры антител к сальмонеллезным антигенам за неделю после вакцинации увеличились в несколько раз. Наименьшее повышение титров отмечено в контрольной группе, наибольшее - в 2-й группе. После чего значения показателя стали уменьшаться.

Таким образом, введение в организм молодняка лисицы янтарной кислоты в течение 5 дней до вакцинации способствовало повышению уровня иммунного ответа. Дополнительное включение препарата в рацион в течение 3 дней после вакцинации вызвало резкое и значительное увеличение содержания факторов иммунитета в крови молодняка зверей.

Молодняк песца. Наибольший уровень титров антител против вируса чумы плотоядных, общих иммуноглобулинов, у-глобулинов зафиксирован у вакцинированных песцов, получавших янтарную кислоты до и после иммунизации (Приложения, табл. 42). Их значения были выше в 1 ,3-2 раза, в сравнении с зверями контрольной группы. Результаты свидетельствуют, что формирование иммунного ответа у песца происходит на 14-21 день после вакцинации. Наибольший уровень показателей иммунного ответа отмечен при введении препарата за 5 дней до вакцинации, несколько меньший - при дополнительном введении янтарной кислоты после вакцинации в течении 3 дней.

Таким образом, введение в организм молодняка песца янтарной кислоты в течение 5 дней до вакцинации способствовало повышению уровня иммунного ответа. Дополнительное включение препарата в рацион в течение 3 дней после вакцинации оказалось менее эффективным.

Динамика биохимических показателей крови

Молодняк лисицы. Количество общего белка достигло максимума на 14 день после вакцинации в 1-й опытной группе - 32,3 %, на 21 день - в контрольной группе - на 24 % и во 2-й опытной группе - на 49,1 % (р<0,01). К концу наблюдения уровень общего белка снизился в наибольшей степени в 2-й группе - на 47,5 % (р<0,001), в наименьшей степени - в 1-й группе - на 31,6 % (р<0,05) от максимального уровня (Приложения, табл. 43, 44). Повышение уровня общего белка подтверждает активизацию белоксинтезирующей функции печени, так как иммуноглобулины и антитела имеют белковую природу.

Из белковых фракций в первую неделю после иммунизации произошло снижение альбуминов и повышение остальных фракций, к 21 дню наоборот -альбумины увеличились, остальные фракции уменьшились. Наибольшее повышение альбуминов зафиксировано в контрольной группе - на 10,7 %, наименьшее - в 1 -й и 2-й группах - на 6,7 % первоначальных показателей. Содержание а-глобулинов на 7 день после вакцинации почти не изменилось в 1-й группе и значительно возросло во 2-й группе - на 54,3 % (р<0,05) от исходного значения. Снижение а-глобулинов на 21 день после иммунизации отмечено в наименьшей степени в контрольной группе - на 30,3 % (р<0,05), в наибольшей степени - во 2-й группе - на 50 % (р<0,01) от максимального уровня. Количество Р-глобулинов через неделю после вакцинации повысилось в наименьшей степени в 2-й группе - на 31,5 %, в наибольшей степени в 1-й группе - на 70,9 % (р<0,01) от исходных показателей. На 21 день после вакцинации показатель уменьшился в 1-й и 2-й группах на 32-37 % (р<0,05), значительное снижение на 28 день - в контрольной группе - на

58,7 % (р<0,01) от максимальных значений. Уменьшение альбуминов в крови связано с повышением содержания фракции глобулинов.

Количество глюкозы в первую неделю после иммунизации уменьшилось в контрольной группе - на 37,4 % (р<0,05), в 1-й группе - на 28,3 %, в 2-й - на 26,3 % от исходного уровня. Затем содержание глюкозы стало повышаться, тем не менее, осталось ниже исходного уровня до конца опыта. В 1-й группе максимальная концентрация показателя отмечена на 14 день после вакцинации - на 25,3 %, на 28 день - в контрольной и 2-й группах - на 52,6 % (р<0,01) и 45 % (р<0,05) от минимума, соответственно.

Уровень ЛДГ снизился 14 день после иммунизации в наибольшей степени в контрольной группе на 43,7 % (р<0,01), в наименьшей степени - в 2-й группе - на 22,4 % (р<0,05) от исходного значения. Затем активность ЛДГ повысилась до первоначального уровня на 21 после вакцинации в 2 -й группе (р<0,01), на 28 день - в контрольной (р<0,01) и 1-й группах (р<0,05).

В первые три недели поствакцинального периода произошло уменьшение источника энергии - глюкозы. Ее уровень значительно снизился в крови животных контрольной группы. Введение янтарной кислоты в рацион лисиц способствовало менее резкому уменьшению показателя. Одновременно с уровнем глюкозы изменялась активность фермента, участвующего в окислении глюкозы - ЛДГ.

Активность АСТ на протяжении наблюдения колебалась в разных группах около первоначального значения. Содержание АЛТ в первую неделю после иммунизации понизилось в контрольной группе на 21,9 %, в 1-й - на 16,6 %, в 2-й - на 14,4 % от исходной концентрации и осталось до конца опыта несколько ниже уровня первоначального показателя. Соотношение АСТ/АЛТ (показатель Ритиса) свидетельствует о благоприятном влиянии на трансаминазы в поствакцинальный период янтарной кислоты, введенной в рацион зверей за 5 дней до вакцинации.

Содержание ЩФ после вакцинации увеличилось и достигло максимального значения на 21 день в контрольной группе - на 27,2 %, на 14

день - в 1-й группе - на 69,1 % (р<0,01), в 2-й - на 37,5 % (р<0,05) от исходного уровня. К концу наблюдения показатели уменьшились почти до первоначального значения.

Активность антиоксидантной системы у лисиц в начале поствакцинального периода уменьшилась. После завершения формирования иммунного ответа активность БИ-групп белков и церулоплазмина восстановилась, но быстрее это произошло в опытных группах.

Таким образом, янтарная кислота способствует оптимизации уровня биохимических показателй крови в поствакцинальный период.

Молодняк песца. В поствакцинальный период у молодняка песца активизировался белковый обмен, что проявилось к 21 дню повышением уровня общего белка и фракции у-глобулинов за счет снижения фракции Р-глобулинов (Приложения, табл. 45, 46). Именно в это время наблюдается максимальное количество антител и иммуноглобулинов в крови зверей. Концентрация глюкозы уменьшается. Наиболее низкая ее концентрация зафиксирована при введении препарата за 5 дней до вакцинации, что косвенно свидетельствует о повышении стрессоустойчивости зверей. Показатели АСТ, АЛТ, ЩФ в первую неделю после вакцинации повысились, в наибольшей степени - в контрольной группе. Включение янтарной кислоты способствовало более быстрой нормализации этих показателей. Активность ЛДГ после введения вакцинного антигена резко снизилась, оставаясь на таком уровне в течении 2-х недель. У зверей, которым вводили препарат, отмечены небольшие колебания ЛДГ. Также в начале поствакцинального периода произошло уменьшение активности антиоксидантной системы у песцов, в частности, БИ-групп белков и церулоплазмина. После завершения формирования иммунного ответа ее активность восстановилась, причем быстрее в группах, получавших янтарную кислоту.

Таким образом, янтарная кислота способствует оптимизации уровня биохимических показателй крови в поствакцинальный период.

Следовательно, у лисиц и песцов в поствакцинальный период янтарная кислота способствует повышению уровня иммунного ответа и более быстрой нормализации метаболизма. Наиболее эффективно включение препарата в рацион зверей в течение 5 дней до вакцинации, дополнительное введение препарата в течение 3 дней после вакцинации нецелесообразно.

4. Заключение

Результаты наших исследований свидетельствуют, что у молодняка пушных зверей с возрастом происходит закономерное изменение биохимических показателей крови. Увеличение содержания общего белка в сыворотке крови подтверждает снижение использования сывороточных белков по завершении периода интенсивного роста животных в возрасте в 7 месяцев. Подобная закономерность наблюдается по альбуминам. Окончание роста зверей к 7-месячному возрасту подтверждает и резкое снижение активности ЩФ, участвующей в формировании костной ткани. Повышение количество глюкозы в крови свидетельствует о замедлении обмена веществ, что взаимосвязано с возрастом зверей и сезоном года. У животных снижение катаболизма осенью способствует формирвоанию жировые запасов к зиме. Уровень у-глобулинов совместно с общими иммуноглобулинами и БАСК возрастает в постнатальном онтогенезе, свидетельствуя о формировании естественной резистентности организма.

Сравнивая полученные нами данные с данными по биохими крови В.А. Берестова (2005), Н.Н. Тютюнника, Л.К. Кожевниковой (1996), отмечаем некоторое увеличение активности ферментов крови за последние десятилетия. Это можно объяснить увеличением живой массы зверей на 30 -50 % в результате селекции и завоза в последние десятилетия крупных финских песцов (Балакирев Н.Н., 2007; Колдаева Е.М., Колдаев Н.А., 2007). Тем не менее, возрастные изменения белкового, углеводного обмена и ЩФ у зверей аналогичны закономерностям возрастных изменений, выявленным ранее В.А. Берестовым (2005).

Установлено, что возрастные изменения минерального состава крови и волосяного покрова у лисиц, норок и песцов взаимосвязаны друг с другом, при этом в отличие от лисиц и песцов, у норок корреляционные связи отмечаются лишь по отдельным элементам. Было установлено, что минеральный состав общехозяйственных рационов и минеральный состав

крови у лисиц, норок и песцов взаимосвязаны друг с другом. При этом сильные (положительные и отрицательные) корреляционные связи у лисиц, норок и песцов отмечены лишь по отдельным элементам.

По большинству макро- и микроэлементам установлены тесные и средние взаимосвязи между минеральными составами общепринятых в хозяйствах рационов для каждого вида и возраста пушного зверя и минеральными составами волосяных покровов, при этом сильные корреляционные связи для всех пушных зверей отмечены по большинству элементов. Следовательно, минеральный состав волосяного покрова можно использовать в качестве теста на сбалансированность рационов по минеральным элементам для разных видов пушных зверей.

Следует заметить, что при клеточном содержании и разведении у пушных зверей сильно повышается зависимость от искусственно сформирвоанной человеком окружающей среды (Никонова Э.Б., 2007). Как правило, нехватке или при избытке каких-либо макро- и микроэлементов у животных изменяется адаптация организма к окружающим условиям обитания (Берестов В.А. и др., 1984; Никонова Э.Б., 2007). В результате этого нарушается физиолого-биохимический статус у животных, что приводит к нарушению формирования волосяного покрова и возникновению дефектов на нем, например, белопухости у норок (Берестов В.А. и др., 1984; Старсуществующие отличия в использовании и накоплении макро- и микроэлементов разными тканями и органами у лисиц, норок и песцов обусловлены разной скоростью метаболизма и уровнем обмена веществ (Берестов В.А. и др., 1984; Тютюнник Н.Н., 2002). Каждому этапу постнатального онтогенеза свойственен определенный минеральный состав волосяного покрова. Этапы максимальных изменений волосяного покрова, тканей и органов (Берестов В.А. и др., 1984; Гудин В.А., 2005), взаимосвязанны с периодом интенсивного роста, развитием организма, определенным изменением морфологической структуры компонентов и производных составляющих его, сопровождаются потребностью

поддержания в нем более повышенных количеств некоторых макро- и микроэлементов, по сравнению с другими периодами постнатального онтогенеза, в частности, у норок - в переходную фазу питания, у песцов и лисиц в фазу естественного питания - от 2-х до 3-х месячного возраста.

Минеральный состав волосяного покрова, как важный показатель физиолого-биохимического состояния организма, является одним из самых надежных, простых, объективных и доступных прижизненных методов, который помогает отслеживать состояние здоровья организма животного по особенностям накопления макро- и микроэлементов волосяным покровом на протяжении длительного времени (Агаджанян Н.А., Скальный В.А., 2001; Скальный В.А., 2004; Мегйп Б. е1 а1., 1992; С1еБ1а А., Janiszewska I., 2000; Мегйп Б., Б1ерапок V. 2003; и др.). К большому сожалению, во многих работах рассматривается содержание в волосяном покрове только отдельных минеральных элементов (Берестов В.А. и др., 1984; Тютюнник Н.Н. и др., 2002; Мертин Д., 1989 и др.), несмотря на то, что очень нужны данные об уровне большего количества макро- и микроэлементов и о их значении в волосяном покрове, поскольку они развиваются в морфофизиологическом единстве (Берестов В.А. и др., 1984).

Таким образом, установленные нами минеральные составы крови и волосяного покрова по большинству элементов коррелируют с минеральными составами рационов лисиц, норок и песцов, поэтому они могут быть индикатором обеспеченности рационов минеральными элементами для зверей определенного возраста.

В попытке повышения экономической эффективности производства многие современные животноводческие хозяйства сталкиваются с большим количеством дорогих и хорошо разрекламированных добавок, которые обещающих максимальные результаты, но при этом не описывают происхождение и механизм действия составляющих компонентов. Среди этого многообразия мы обратили внимание на достаточно известный, не

очень дорогой, но изучаемый до настоящего времени метаболит естественного происхождения - янтарная кислота.

Сама по себе янтарная кислота представляет универсальный биогенный стимулятор, играющий важную роль в обмене веществ живой клетки от растений до человека (Кондрашова М.Н., 1971). Механизм действия янтарной кислоты заключается в ее способности связывать свободные радикалы, оказывающие повреждающее действие на белки, липиды и биомембраны клеток, что является базисным фактором в патогенезе многих заболеваний, а также в процессе старения клеток и тканей организма. Также янтарная кислота считается ингибитором свободно-радикальных процессов перекисного окисления липидов, активизирует фермент супероксиддисмутазу, воздействует на физико-химические свойства мембраны, увеличивает в мембране уровень полярных фракций липидов, снижает соотношение холестерол/фосфолипиды, снижает вязкость липидного слоя и повышает текучесть мембраны, положительно воздействуя на энергетический обмен в клетке (Кондрашова М.Н., 1971; Евглевский А.А. и др., 2013).

Янтарная кислота не обнаруживется вне митохондрий или клетки, так как она практически отсутствует в кровотоке. Ее попадание в кровеносное русло является сигналом о том, что в определенном участке тела не достаточно энергетических ресурсов или наступило кислородное голодание. Организм животного реагирует на этот метаболический сигнал активизацией энергетического обмена. Подобная реакция организма животных возникает при попадании янтарной кислоты в организм из вне, но в этом случае она наблюдается в ответ не на фактически возникший гипоксический энергетический дефицит, а на сигнальный фактор (Кондрашова М.Н., 1971). Поэтому экзогенное введение янтарной кислоты становится активатором синтеза восстановительных эквивалентов в тканях и клетках. Биологическая роль этой реакции заключается в быстрейшем ресинтезе клетками АТФ и в увеличении их антиоксидантной резистентности. Таким образом, приводя к

нормальным значениям уровень общего обмена веществ в организме, янтарная кислота повышает уровень иммунитета, тем самым она приобретает функции активного адаптогена (Кондрашова М.Н., 1971, 1976; Евглевский А.А. и др., 2013).

Наши первоначальные исследования по скармливанию молодняку лисиц препарата в больших дозах (50-100 мг/кг живой массы) показали уменьшение показателей роста и качества волосяного покрова у самцов лисиц. При выборе этих пробных доз препарата мы ориентировались на опыты Н.Н. Тютюнника и др. (1999, 2002) по введению янтарной кислоты в рацион норки в дозе 50 мг/кг живой массы, в которых был получен хороший экономический эффект.

В ходе дальнейших исследований нами была уменьшена доза препарата. Это позволило установить оптимальную дозу для молодняка лисиц и норок - 5 мг/кг живой массы, которая способствовала у них повышению показателей роста и качества волосяного покрова. Выявленная нами оптимальная доза янтарной кислоты для молодняка лисиц ниже дозы, которую предлагают Н.Н. Новикова, А.Г. Черкашина (2006) и А.Г. Черкашина (2006) для щенков-гипотрофиков лисиц - 40 мг/кг живой массы. Установленная нами оптимальная доза янтарной кислоты для молодняка норок (5 мг/кг живой массы) совпадает с данными О.В. Березиной (2000), Г.И. Блохина и др. (2007), Е.Н. Селюковой (2007), предлагающими использовать такую же дозу для щенков и взрослых норок, что значительно ниже доз, которые рекомендовали ранее Н.Н. Тютюнник и др. (1999, 2002) для молодняка и племенных норок - 30-50 мг/кг живой массы.

Отсутствие стимулирующего влияния янтарной кислоты и даже уменьшение показателей роста и качества волосяного покрова молодняка песца, по-видимому, обусловлены высокой гомеостатированностью организма песца, которая обеспечивает его адаптацию к суровым условия полярного климата, а также высокой узкоспециализированной адаптацией, то есть меньшей пластичностью к изменяющимся условиям существования

(Сергина С.Н. и др., 2009; БШего-гиЪт С. е1 а1., 2004). Другими исследователями также отмечена подобная реакция организма песца на введение препаратов, в частности, на селенит натрия, хотя эффективность его применения доказана на животных других видов (Сергина С.Н. и др., 2009).

Введение янтарной кислоты в рацион молодняка в процессе постнатального развития оптимизирует биохимическую картину крови. Препарат изменяет количество общего белка и соотношение белковых фракций между собой. Заметное влияние препарат оказывает на уменьшение активности ЩФ в крови зверей в 7-месячном возрасте, что в совокупности с большей массой тела лишь подтверждает данные о большей скорости роста опытных животных. Показатели естественной резистентности (особенно у самок) несколько понижаются под воздействием янтарной кислоты, что в совокупности с другими показателями, может свидетельствовать об уменьшении скрытых воспалительных процессов в организме. Препарат улучшает состояние антиоксидантной системы организма, повышая активность ее ферментативного звена и несколько ослабляя неферментативное звено.

На содержание макро- и микроэлементов в крови и волосяном покрове пушных зверей янтарная кислота существенно не влияет, за исключением уровня кальция, который снижался в волосяном покрове лисицы и норки. Эти данные хорошо коррелируют с данными по повышению качества волосяного покрова у лисиц и норок (за исключением песцов) под влиянием янтарной кислоты. Данный эффект объясняется тем, что избыточное содержание кальция приводит к повышенной ломкости волоса, что с учетом многочисленных трений волоса о края узкого лаза между вольерой и домиком при передвижении животного, увеличивает количествою дефектов волосяного покрова, т.е. снижает качество шурки (Перельдик Н.Ш. и др., 1981; Берестов В.А. и др., 1984).

Положительное влияние препарата на биохимические показатели крови пушных зверей подтвержадаются гистологическими исследованиями,

которые показали, что включение янтарной кислоты в рацион способствует сохранению структурно-функциональной структуры печени и почек лисиц, т.е. применение препарата уменьшает воздействие на печень и почки негативных факторов.

Результаты исследований свидетельствуют, что янтарная кислота наиболее эффективно повышает воспроизводительную способность племенного поголовья лисиц, норок и песцов при введении в рацион в течение месяца до спаривания и перед щенением. Это проявляется в увеличении количества благополучно ощенившихся самок на 10,3-24 %, сохранности щенков - на 3,3-14,4 % и выхода щенков на племенную самку -на 0,5-1,3 гол. При этом включение препарата в корм самок только в течение месяца до спаривания также дает эффект, но меньший, чем при скармливании им янтарной кислоты в течение месяца перед спариванием и перед щенением.

Выявлено, что в условиях прогрессирующей хронической алеутской болезни янтарная кислота способствует коррекции биохимического профиля крови норок, что свидетельствует об уменьшении патологического поражения почк и печени. Поэтому ее можно применять на первых этапах заболевания норок алеутской болезнью в комплексе симптоматического лечения с целью поддержания жизнеспособности зверей до формирования зимнего волосяного покрова, т.е. до получения шкурковой продукции.

Исследование биохимического профиля крови лисиц и песцов в поствакцинальный период показало, что включение янтарной кислоты в рацион молодняка лисицы и песца в течение 5 дней до вакцинации способствует формированию более высокого уровня иммунного ответа и оптимизации метаболизма в поствакцинальный период. Применение препарата в течение 5-и дней до и 3-х дней после иммунизации вызывает у лисицы гипериммунную реакцию, что нежелательно для организма животных, а у песца - снижение уровня иммунного ответа. Поэтому

оптимальным является применение янтарной кислоты только в течение 5-и дней до вакцинации зверей.

Таким образом, каждому этапу онтогенетического развития лисицы, норки и песца свойственен определенный физиолого-биохимический статус. Включение в рацион янтарной кислоты способствует оптимизации физиолого-биохимического статуса, повышению продуктивных качеств, резистентности и уровня поствакцинального иммуннго ответа у пушных зверей.

4.1. Итоги выполненого исследования

1. Пушные звери (лисица, норка и песец) обладают разным физиолого-биохимическим статусом, зависящим от возраста, пола, условий содержания и кормления.

2. В ходе постнатального онтогенеза у пушных зверей происходит изменение биохимических показателей крови.

2.1 У молодняка лисицы повышается содержание общего белка на 32-37 %, у-глобулинов в 2 раза, уровень глюкозы на 10-21 %, активность АСТ на 12-77 %, АЛТ на 12-13 %, снижается содержание ЩФ на 49-58 %, увеличивается уровень показателей неспецифической резистентности организма 48-60 %.

2.2 У молодняка песца повышается содержание общего белка в 1,7-2,1 раза, у-глобулинов на 20-33 %, уровень глюкозы на 19 %, снижается активность АСТ на 41-58 %, АЛТ на 1,5-2 раза, ЩФ на 88 %, возрастает содержание показателей неспецифической резистентности организма в 2,2-2,9 раза.

2.3. У молодняка норки увеличивется количество общего белка на 20-36 %, уменьшается у-глобулинов на 40 %, повышается уровень глюкозы на 27-55 %, активность АСТ на 11-13 %, АЛТ на 1,9-2,2 %, снижается содержание ЩФ на 70-72 %.

2.4. С возрастом содержание общего белка в крови увеличвается в наибольшей степени у песца, затем идут лисица и норка; уровень у-глобулинов - повышается у самцов лисицы и песца, уменьшается - у норки, у самок - повышается у лисицы и норки, снижается - у песца; содержание глюкозы повышается в большей степени у норки, затем идут лисица и песец; активность АСТ и АЛТ возрастает у лисицы и норки, уменьшается у песца; содержание ЩФ снижается - в большей степени у песца, затем идут норка и лисица; уровень показателей неспецифической резистентности (общие иммуноглобулины и БАСК) увеличивается в наибольшей степени у песца, затем идут норка и лисица.

3. Каждая фаза постнатального онтогенеза лисиц, норок и песцов характеризуется наличием в крови и волосяном покрове определенного количества макро- и микроэлементов.

3.1. Концентрации минеральных элементов в крови пушных зверей изменяется от максимальных - в переходную и фазу естественного питания (у 2 и 3-месячных животных) до минимальных - в фазы полового созревания и сформированного тела (у 7 и 12-месячных зверей); в волосяном покрове - от максимальных в переходную фазу до минимальных в фазу полового созревания.

3.2. Наибольшие возрастные различия (свыше 80 %) в минеральном составе крови лисиц наблюдаются по содержанию мышьяка, кадмия, хрома, ртути, лития, марганца, селена, кремния и олова; в крови норок -по концентрации мышьяка, лития и марганца; песцов - по содержанию марганца, цинка, никеля, олова, ртути, кадмия и свинца. Наибольшие возрастные различия (от 80 до 97%) минерального состава волосяного покрова у лисиц имеются по концентрации бора, меди, никеля и кадмия; у норок - по содержанию меди, алюминия, бора и свинца; у песцов - по бору, меди, марганцу, ванадию, свинцу, мышьяку, ртути и кадмию.

4. В крови норок больше содержание минеральных элементов по сравнению с песцами во все фазы постнатального онтогенеза, а у песцов - по сравнению с лисицами.

4.1. Видовые различия в минеральном составе крови между песцами и лисицами наблюдаются по концентрации алюминия, мышьяка, кобальта, ртути, лития, марганца, никеля, свинца, кремния, олова, ванадия, цинка; между норками и лисицами - по содержанию в крови кальция, бора, мышьяка, кадмия, кобальта, марганца, ртути, лития, кремния, олова, ванадия и цинка; между норками и песцами - по концентрации марганца, никеля, кремния, кадмия.

4.2. Различия между минеральными составами волосяных покровов лисиц и песцов установлены по содержанию бора, никеля, кадмия, ртути и свинца; лисиц и норок - по меди, бору, мышьяку, кадмию и ртути; песцов и норок - по содержанию меди, бора никеля, натрия, алюминия, мышьяка, ртути, свинца. При этом наибольшие видовые различия по минеральным составам волосяных покровов у пушных зверей выявлены в переходную фазу и фазу естественного питания (у 2 и 3-месячных зверей).

5. Минеральный состав крови и волосяного покрова лисиц, норок и песцов по большинству макро- и микроэлементов коррелирует с минеральным составом рационов, поэтому он может быть индикатором обеспеченности рационов минеральными элементами для зверей определенного возраста.

6. Продуктивные качества зависят от вида и пола пушных зверей.

6.1. Наибольшим относительным приростом живой массы тела обладает лисица, затем идет песец и норка. При этом молодняк лисиц и норок, в отличие от песцов, обладает половыми различиями в скорости роста -самцы растут быстрее самок. От вида и пола пушных зверей зависит размер шкурок, а наличие на шкурках дефектов волосяного покрова не имеет половых различий.

6.2. Лучшими показателями воспроизводительной способности обладает вуалевый песец, далее следуют серебристый песец, лисица и норка.

7. В крови норок после заражения вирусом алеутской болезни резко увеличивается содержание общего белка, у-глобулинов, Р-глобулинов, С4/С3, АСТ, АЛТ, мочевины и креатинина при одновременном снижении уровня иммуноглобулинов, БАСК и фагоцитоза. Активность ЩФ, ЛДГ снижается в первые 3 недели после заражения, а затем возрастает.

8. После введения бактериальных и вирусных агентов в организме пушных зверей изменяются биохимические показатели крови.

8.1. Максимальный уровень иммунных факторов в крови взрослой лисицы наблюдается через 2 недели, у молодняка лисицы - через неделю, а у молодняка песца - через 2 недели после вакцинации. Исключением являются показатели фагоцитоза у молодняка песца, уровень которых в поствакцинальный период уменьшаются.

8.2. Наибольший уровень биохимических показателей крови (белковый обмен, глюкоза, АСТ, АЛТ, церулоплазмин) молодянка лисицы наблюдается через 3 недели после вакцинации. У молодняка песца также через 3 недели после вакцинации отмечено повышение белкового обмена и уменьшение уровня глюкозы, АСТ, АЛТ, ЩФ, активности церулоплазмина.

9. Янтарная кислота оказывает дозозависимое и видоспецифическое влияние на физиолого-биохимический статус лисиц, норок и песцов.

10. Янтарная кислота дозах 5-10 мг/кг живой массы способствует коррекции биохимических показателей крови и волосяного покрова пушных зверей. В крови она в основном влияет на белковый обмен, изменяя количество общего белка на 5-17 % и соотношение белковых фракций, повышает активность трансфераз - на 9-57 %, уменьшает содержание ЩФ - на 1146 %, повышает активность церулоплазмина - на 18-64 % и количество общих иммуноглобулинов - на 16-49 %; в волосе - снижает уровень кальция на 24-34 %. В дозах 50 и 100 мг/кг живой массы препарат не оказывет значительного влияния на биохимические показатели крови зверей.

11. Янтарная кислота способствует сохранению структурно -функциолнального состояния печени и почек.

12. Препарат, как правило, повышает продуктивные качества пушных зверей.

12.1. В дозах 5-10 мг/кг живой массы янтарная кислота способствует увеличению живой массы молодняка лисицы на 3,4-12,0 %; не влияет на рост молодняка норки; снижает живую массу молодняка песца на 4,3-18 %; в дозах 50-100 мг/кг живой массы препарат увеличивает живую массу самок лисицы на 1-2 %, у самцов уменьшает ее на 5,1-6,1 %.

12.2. В дозах 5-10 мг/кг живой массы препарат повышает качество волосяного покрова у лисиц и норок на 4,5-6 %, у песца - снижает на 4,45,2 %; в дозах 50-100 мг/кг живой массы - повышает у лисиц на 1-2 %. За счет улучшения качества волосяного покрова можно дополнительно получить (в зависимости от дозы): от лисицы - 47.. .270; норки - 37.. .380; песца- -35.-130 руб./гол.

12.3. Янтарная кислота повышает воспроизводительную способность пушных зверей, что проявляется в увеличении количества благополучно ощенившихся самок на 10,3-24 %, сохранности щенков - на 3,3-14,4 % и выхода щенков на племенную самку - на 0,5-1,3 гол. За счет повышения воспроизводительной функции можно дополнительно получить (в расчете на 1 самку): от лисицы - 1280. 1791; норки - 107. 1380; песца -1897.5900 руб.

13. У норок, зараженных вирусом алеутской болезни, янтарная кислота способствует коррекции биохимических показателей крови: повышает уровень гуморальных факторов иммунитета; увеличивает содержание общего белка и у-глобулинов, уменьшает колебания уровня Р-глобулинов, активность трансфераз, снижает содержание мочевины и креатинина.

14. Включение янтарной кислоты в рацион молодняка лисицы и песца способствует формированию более высокого уровня иммунного ответа и коррекции метаболизма в поствакцинальный период:

14.1. У взрослых лисиц она повышает уровень факторов иммунитета в поствакцинальный период, особенно фагоцитоза и БАСК. По клеточным факторам иммунитета это происходит на 7 день после вакцинации, по гуморальным - на 14-й день и позднее.

14.2. У молодняка лисицы и песца янтарная кислота введенная в течение 5 дней до вакцинации увеличивает уровень факторов иммунного ответа на 14 - 31 %. Дополнительное введение препарата в течение 3 дней после вакцинации вызывает у лисицы резкий и значительный иммунный ответ, у песца - снижает его уровень.

15. Дозы и схемы применения янтарной кислоты:

- в рационе молодняка лисиц и норок - в дозе 5 мг/кг живой массы в

течение первых 10 дней каждого месяца, делая через 5 дней скармливания 2-дневные интервалы;

- в рационе племенного поголовья пушных зверей - в дозе 10 мг/кг живой

массы в течение месяца до спаривания и во вторую половину беременности, делая через 5 дней скармливания 2-дневные интервалы;

- в рационе норок, зараженных вирусом алеутской болезни, - в дозе 5 мг/кг

живой массы и более;

- в корм пушных зверей перед вакцинацией - в течение 5 дней до

иммунизации в дозе 5 мг/кг живой массы.

4.2. Рекомендации

1. Установленные доверительные границы биохимических показателей, в том числе содержания макро- и микроэлементов в крови и волосяном покрове у норок, лисиц и песцов в разные фазы постнатального онтогенеза, рекомендуем использовать в качестве нормативных (базовых) показателей в системе мониторинга за состоянием здоровья зверей.

2. Выявленные закономерности поступления минеральных элементов из рационов в кровь и волосяной покров лисиц, песцов и норок можно

использовать специалистами зверохозяйств для оценки минеральной обеспеченности рационов.

3. Данные о физиолого-биохимических особенностях постнатального развития организма пушных зверей рекомендуем использовать при содержании, разведении и кормлении пушных зверей в звероводческих комплексах, а также при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий по возрастной и частной физиологии и биохимии животных, звероводству, кормлению, клинической диагностике и терапии незаразных заболеваний животных в процессе подготовки специалистов биологического, зоотехнического и ветеринарного профилей.

4. В практике звероводства целесообразно применять янтарную кислоту:

- в рационе молодняка лисиц и норок - в дозе 5 мг/кг живой массы в

течение первых 10 дней каждого месяца, делая через 5 дней скармливания 2-дневные интервалы;

- в рационе племенного поголовья пушных зверей - в дозе 10 мг/кг живой

массы в течение месяца до гона и во вторую половину беременности, делая через 5 дней скармливания 2-дневные интервалы;

- в рационе норок, зараженных вирусом алеутской болезни, - в дозе 5 мг/кг

живой массы и более;

- в корм пушных зверей перед вакцинацией - в течение 5 дней до

иммунизации в дозе 5 мг/кг живой массы.

4.3. Перспективы дальнейшей разработки темы

Перспективы дальнейшей разработки темы заключаются в том, что необходимо продолжать исследования физиолого-биохимического статуса организма пушных зверей разных видов (лисица, норка, песец, енотовидная собака, соболь, шиншилла и другие) и особенностей его формирования в процессе постнатального онтогенеза, так как биохимические показатели крови и волосяного покрова зверей не являются стабильными и изменяются с

годами, в первую очередь, в следствие изменения общего уровня кормления и других технологических и селекционных процессов. Новые данные позволят дополнить и обновить базу системы мониторинга за здоровьем животных, что позволит корректировать физиолого-биохимическое состояние организма пушных зверей с целью получения от них максимального количества продукции.

Список сокращений и условных обозначений

Обозначения макро- и микроэлементов: Fe - железо; K - калий; Ca -кальций; Co - кобальт; Mg - магний; Mn - марганец; Cu - медь; Na - натрий; P - фосфор; Сг - хром; Zn - цинк; Se - селен; I - йод; Al - алюминий; B - бор; Si -кремний; Ni - никель; Cr - хром; Se - селен; V - ванадий; Cd - кадмий; Hg -ртуть; As - мышьяк; Pb - свинец; Sr - стронций; Li - литий; Sn - олово. О.Э. -обменная энергия.

Аланинаминотрансфераза - AЛT, аспартатаминотрансфераза - ACT, щелочная фосфатаза - ЩФ, лактатдегидрогеназа - ЛДГ, бактериальная активность сыворотки крови - БАСК, лизоцимная активность сыворотки крови - ЛАСК, малоновый диальдегид - МДА, циркулирующие иммунные комплексы - ЦИК.

КБП - коэффициент биологического поглощения, представляет собой отношение концентрации элемента в крови или волосяном покрове (Сорг, тк) к концентрации его в рационе (Срац), т.е. КБП = Сорг, тк / Срац .

1. Агаджанян Н.А., Скальный В.А. Химические элементы в среде обитания и экологический портрет человека. М.: КМК, 2001. 101 с.

2. Анакина Ю.Г. Селен в кормлении животных // Овцеводство. 1990. № 2. С. 44-45.

3. Антонов Б.И., Яковлева Т.Ф., Дерябина В.И. и др. Лабораторные исследования в ветеринарии: биохимические и микологические: Справочник. М.: Агропромиздат, 1991.

4. Арсанукаев Д.Л., Зайналабдиева Х.М., Митякова Е.Л. Влияние БАВ на липидный и азотистый обмен норок породы стандартная темно-коричневая (СТС) // Проблемы аграрной науки и образования: Сб. ст. Тверской ГСХА. Тверь, 2008. Ч. 1. С. 136-138.

5. Балакирев А.Н. Особенности минерального обмена в кожно-волосяном покрове стандартных норок в постнатальном онтогенезе: дис. ... к.б.н. М., 2015. 156 с.

6. Балакирев Н.А., Кузнецов Г.А. Звероводство. М.: КолосС, 2006. 343 с.

7. Балакирев Н.А., Кладовщиков В.Ф., Демина Т.М. и др. Нормы кормления и нормативы затрат кормов для пушных зверей и кроликов: справ. пособие. М.: РАСХН. 2007.186 с.

8. Балакирев Н.А. Основы норководства. М.: Высш.шк., 2001. 287 с.

9. Балакирев Н.А. Отбор пушных зверей по эволюционно несвойственным видам кормов и низкопротеиновому кормлению // Вестник ВОГиС. 2007. Т. 11. С.212-220.

10. Балакирев Н.А., Юдин В.К. Методические указания проведения научно-хозяйственных опытов по кормлению пушных зверей. М., 1994. 31 с.

11. Басанкин А.В., Антипов В.А. Применение янтарной кислоты при микотоксикозах цыплят-бройлеров // Ветеринарная патология. 2007. № 1. С. 15-18.

12. Батоев Ц.Ж., Санжиева С.Е., Бердников П.П., Мантатова Н.В. Экологическое значение сезонной изменчивости биохимических показателей крови американских норок и серебристо-черных лисиц // Вестник Бурятского государственного университета. 2013. № 4. С. 179184.

13. Батоев Ц.Ж., Санжиева С.Е. Пищеварительная функция поджелудочной железы животных и её адаптация к качеству видового питания // Вестник Бурятского государственного университета. 2012. № SB. С. 268-272.

14. Бежинарь Т.И., Филоненко А.В. Показатели содержания глюкозы в крови у телок разных генотипов в постнатальном онтогенезе в зоне Южного Урала и Северного Казахстана // Сб. науч. тр. Уфа, 2000. С. 3840.

15. Безбородова Е.А. Влияние янтарной кислоты на энергию роста и сохранность поросят сосунов // Актуальные проблемы экологии и зоокультуры. М., 1995. С. 99-102.

16. Бекетов С.В. Микроэлементы в кормлении пушных зверей // Комбикорма. 2009. № 8. С. 63-64.

17. Бекетов С.В., Топорова Л.В. Микроэлементы и показатели роста самцов серебристого песца // Актуальные проблемы клеточного пушного звероводства и кролиководства и России: Мат. междунар. научно-практ. конф., посв. 75-летию создания ГНУ НИИПЗК им. В.А. Афанасьева. М., 2007. С.36-39.

18. Белоусов Ю.Б. Этическая экспертиза биомедицинских исследований: практические рекомендации. М., 2005. 156 с.

19. Бердников П.П., Санжиева С.Е. Влияние экологических факторов среды на кортикостероидную активность у американских норок (Mustela Vizon Shr.) и серебристо-черных лисиц (Vulpes Vulpes L.) // Вестник Красноярского государственного аграрного университета. 2012. № 11. С. 158-161.

20. Бердников П.П., Санжиева С.Е. Формирование уровня кортикостероидных гормонов у американских норок (Mustela У^оп Shr.) и серебристо-черных лисиц (Vulpes Vulpes L.) под влиянием температурного фактора окружающей среды // Аграрный вестник Урала. 2011. № 5. С. 31-33.

21. Березина О.В. Сравнительная эффективность препаратов при железоде-фицитной анемии норок: автореф. дис. ... канд. вет. наук. Казань, 2000. 19 с.

22. Березина Ю.А., Беспятых О.Ю. Староверова И.Н., Максимов В.И. Концентрация минеральных элементов в крови взрослых песцов // Вестник ветеринарии. 2015. № 4 (75). С. 65-67.

23. Березина Ю.А., Кошурникова М.А., Домский И.А., Беспятых О.Ю. Биохимические показатели крови взрослого вуалевого песца в зависимости от пола и сезона // Ветеринария. 2016. № 1. С. 41-43.

24. Берестов В.А. Звероводство. СПб.: Лань, 2002. 480 с.

25. Берестов В.А. Клиническая биохимия пушных зверей: справ. пособие. Петрозаводск: Карелия, 2005. 168 с.

26. Берестов В.А., Тюрнина Н.В., Тютюнник Н.Н. Минеральный состав волосяного покрова норок и песцов. Сравнительная характеристика. Петрозаводск: Карелия, 1984. 160 с.

27. Блохин Г.И., Блохина Т.В., Селюкова Е.Н. Янтарная кислота и воспроизводительные качества самок норок // Аграрная наука. 2007. № 4. С. 21-22.

28. Брюхова И.В., Журов С.П. Показатели фосфорно-кальциевого обмена при патологии размножения песцов // Актуальные проблемы болезней молодняка в современных условиях: Мат. междунар. научно-практ. конф. Воронеж, 2002. С.143-145.

29. Бузлама В.С. Лигфол - антистрессовый препарат для норок // Ветеринарная патология. 2005. № 1. С. 110-112.

30. Буковская З.И. Пушное звероводство Якутии. Якутск: Сахаполиграфиздат, 1999. 166 с.

31. Булатова Э.Н. Морфологическое обоснование эффективности применения препаратов «Комбиолакс», «Сувар» и «Янтарос плюс» в звероводстве // Дисс. ... канд. вет. наук. Казань, 2005. 167 с.

32. Вагина М.С. Применение экологически безопасного препарата ПДЭ для коррекции естественной резистентнотси цыплят-бройлеров при выращивании их в клетках: автореф. дис... канд. вет. наук. М., 2005. 18 с.

33. Веревкин Б.Ф. и др. Технология производства шкурок норок: (наставление). М., 1985. 156 с.

34. Владимиров Н.И., Владимирова Н.Ю., Горшков В.В. Эффективность использования цист артемии в рационах пушных зверей // Инновационные процессы в АПК: Сб. ст. Российского ун-та дружбы народов. М., 2009. С. 233-235.

35. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы в биологических системах // Соросовский образовательный журнал. 2000. № 12. С. 13-19.

36. Волчкова Л.А., Холодная Н.И., Колюжный И.С. Эффективность влияния янтарной кислоты на сухостойных коров различной стельности // Современные вопросы интенсификации кормления, содержания животных и улучшение качества продуктов животноводства: Матер. конф., посвящ. 80-летию МВА им. К.И. Скрябина. М., 1999. С.171-172.

37. Гаврилов В.Б., Гаврилова А.Р., Мажуль Л.М. Анализ методов определения продуктов перекисного окисления липидов в сыворотке крови по тесту с тиобарбитуровой кислотой // Вопросы медицинской химии. 1987. № 1. С. 118-122.

38. Гайнуллина М.К. Природные минеральные сорбенты в оптимизации кормления молодняка песцов и норок: автореф. дис... д-ра с.-х. наук. Родники, 2006. 35 с.

39. ГОСТ 27769-88. Шкурки норки клеточного разведения невыделанные. Технические условия. М., 1988.

40. ГОСТ 2790-88. Шкурки лисицы клеточного разведения невыделанные. Технические условия. М., 1988. 13 с.

41. ГОСТ 7907-78. Шкурки песца голубого невыделанные. Технические условия. М., 1978.

42. Григорьев B.C., Максимов В.И. О бактерицидной и лизоцимной активности плазмы крови чистопородных и помесных поросят // Сельскохозяйственная биология. 2006. № 2. С. 115-117.

43. Гришин Ю.И., Ковалевская А.М., Стоник В.А. и др. Средство для профилактики и лечения алеутской болезни норок. Патент РФ № 2036654. 1995.

44. Гудин В.А. Функциональная активность и роль серотонинергической системы у сельскохозяйственных животных в постнатальном периоде онтогенеза: автореф. ... док. биол. наук. Казань, 2005. 38 с.

45. Давыдов А.Б., Солодкая Т.И., Цвик Б.С. Мелакрил - эффективный препарат для ускорения линьки волоса // Кролиководство и звероводство. 1998. № 4. С. 9.

46. Дашукаева К.Г., Бабанин А.В., Зибров М.А. Дипромоний и эндовит для повышения воспроизводительной способности лисиц // Ветеринария. 2001. № 11. С. 38-40.

47. Дашукаева К.Г., Клевцов А.Д., Зибров М.А., Кистенева С.А. Дипромоний и дипроанемин для повышения воспроизводительной способности норок // Ветеринария. 2002. № 1. С. 38-39.

48. Демина Т.М., Балакирев Н.А., Нагимуллин Ф.Ш., Вовченко Л.И. Использование пептидной добавки для стимулирования развития молодняка норок // Актуал. проблемы биологии в животноводстве: Тез. докл. III междунар.конф. Боровск, 2000. С. 283-284.

49. Демина Т.М. Возможность раннего прогнозирования репродуктивных качеств самцов норок // Разведение пушных зверей и кроликов: Сб. науч. тр. НИИПЗК, 1980. Т. 23. С. 189-194.

50. Директива Европейского парламента и Совета Европейского Союза 2010/63/ЕС «О защите животных, использующихся для научных целей». 2010.

51. Долгушин И.И., Бухарин О.В. Нейтрофилы и гомеостаз. Екатеринбург, УрО РАН, 2001. 284 с.

52. Дорофейчук В.Г. Определение активности лизоцима нефелометрическим методом // Лабораторное дело. 1968. № 1. С.28.

53. Евглевский А.А., Рыжкова Г.Ф., Евглевская Е.П. и др. Биологическая роль и метаболическая активность янтарной кислоты // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2013. № 9. С. 67-69.

54. Евглевский А.А., Рыжкова Г.Ф., Евглевская Е.П. Теоретическое обоснование разработки препарата метаболической направленности и эффективность его применения для коррекции обменных процессов у коров // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2013. № 1. С. 69-70.

55. Егорова А.Г. Увеличение выхода молодняка песцов и повышение качества их пушнины в промышленном звероводстве при использовании ПАБК: дис. .канд. с.-х. наук. М., 1991. 142 с.

56. Ежкова А.М. Нарушение фосфорно-кальциевого обмена у щенков норок и коррекция его некоторыми кормовыми добавками (Рахитоподобная карликовость): автореф. ... канд.вет.наук. Казань, 1999. 24 с.

57. Ежкова М.С., Якимов А.В., Гайнуллина М.К. и др. Морфологическая оценка влияния разных доз янтарной кислоты на организм беременных норок и щенков после отсадки // Матер. Респуб. научно-производ. конф. по актуальным проблемам ветеринарии и животноводства. Казань, 1997. С. 163.

58. Жаров А.В. Морфофункциональные изменения в регулирующих и репродуктивной системах животных при патологии обмена веществ // Роль зооветобразования в профилактике болезней и лечении животных:

Тез. докл. Междунар. конф. посв. 80-летию МВА им. К.И. Скрябина. М, 1999. С. 145-147.

59. Задорожная Е.А., Максимов В.И. К вопросу о становлении гормонального статуса собак в раннем постнатальном онтогенезе // Мат. одиннадцатого Московского международного ветеринарного конгресса. М., 2003. С. 99-100.

60. Зайцева Т.С. Влияние сукцината хитозана на воспроизводительные способности норок и продуктивные качества их потомства // Дис. . канд. биол. наук. М., 2004.

61. Зарудная Е.Н. Сравнительное исследование показателей физиолого-биохимического статуса парнокопытных животных с возрастом и физиологическим состоянием: дис. ... к.б.н. М., 2011. 250 с.

62. Землянская Н.И., Литвинова З.А. Вакцинация телят против сальмонеллеза на фоне применения иммуномодулирующих препаратов // Аграрная наука. 2008. № 12. С. 25-27.

63. Зенков Н.К., Меньшикова Е.Б. Активированные кислородные метаболиты в биологических системах // Успехи современной биологии. 1993. Т. 113. № 3. С. 286-296.

64. Зенков Н.К., Меньшикова Е.Б., Вольский Н.Н. и др. Внутриклеточный окислительный стресс и апоптоз // Успехи современной биологии. 1999. № 5. С. 440.

65. 3убов Н.Д., Нестеров В.В., Волчкова Л.А. и др. Повышение естественной резистентности телят путем применения янтарной кислоты в условиях учхоза «Леоновское» // Современные вопросы интенсификации кормления, содержания животных и улучшение качества продуктов животноводства: Матер, конф., посвящ.80-летию МВА им. К.И. Скрябина. М., 1999. С. 191 -192.

66. Иванников И.О., Сюткин В.Е. Общая гепатология. М.: Медпрактика, 2003. 159 с.

67. Иванов А.В. Влияние препарата "Янтарос плюс" на обменные процессы и продуктивность животных // Ветеринарный врач. 2000. № 1. С. 67-69.

68. Ильина Е.Д., Соболев А.Д., Чекалова Т.М., Шумилина Н.Н. Звероводство. СПб: Лань, 2004. 304 с.

69. Ильина Т.Н., Илюха В.А., Калинина С.Н., Горлякова Н.А., Беличева Л.А. Влияние генотипа на сезонные изменения антиоксидантной системы и изоферментного спектра лактатдегидрогеназы американских норок (Mustela vison Schreber, 1777) // Вестник ВОГиС, 2007, Том 11, № 1. С. 145-154.

70. Илюха В.А. Антиоксидантные ферменты в физиологических адаптациях млекопитающих (сравнительно-видовой, онтогенетический и прикладной аспекты): дис. ... д.б.н. Сыктывкар, 2004. 267 с.

71. Илюха В.А., Антонова Е.П., Хижкин Е.А. и др. Физиолого-биохимические адаптации ондатры к полуводному образу жизни // Вестник охотоведения. 2014. Т. 11. № 2. С. 231-234.

72. Илюха В.А., Калинина С.Н., Ильина Т.Н. и др. Участие антиоксидантной системы в адаптации млекопитающих к различному уровню кислорода: ныряние, спячка и высокогорное происхождение // Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов: мат. III Междунар. конф. с элементами школы для молодых ученых, аспирантов и студентов. Петрозаводск, 2010. С. 65-66.

73. Илюха В.А., Узенбаева Л.Б., Дамгаард Б.М. Активность антиоксидантных ферментов у песцов под влиянием голодания // Сельскохозяйственная биология. 2004. № 4. С. 47-51.

74. Илюха В.А. Ферменты антиоксидантной системы в постнатальном онтогенезе у норок // Онтогенез. 1995. Т. 26. № 2. С. 115.

75. Калинина С.Н., Подлепина Л.Г., Фатышева М.В., Илюха В.И. Влияние селенита натрия на антиоксидантную систему хищных млекопитающих, введенных в зоокультуру // Актуальные проблемы клеточного пушного звероводства и кролиководства в России: Мат. междунар. научно-практ.

конф., посв.75-летию ГНУ НИИПЗК им. В.А. Афанасьева. М., 2007. С. 65-68.

76. Камышников В.С. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике. Мн.: Беларусь, 2000.