Физиологическое состояние лососевых рыб при использовании биотехнологий тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.02.06, кандидат биологических наук Ганжа, Екатерина Викторовна
Ганжа, Екатерина Викторовна
кандидат биологических наук
2012
- Специальность ВАК РФ03.02.06
- Количество страниц 189
Оглавление диссертации кандидат биологических наук Ганжа, Екатерина Викторовна
ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.
1.1. Гиногенез и триплоидизация рыб.
1.2. Искусственная гормональная регуляция пола у рыб.
1.3. Искусственное воспроизводство тихоокеанских лососей.
1.4. Биоинженерия в аквакультуре.
1.4.1. Биобезопасность и риски использования ГМО.
1:4.2. Законодательный аспект использования ГМО.
1.5. Изучение физиологического статуса рыб.
1.5.1. Основные биохимические показатели рыб.
1.5.2. Физиологическая характеристика триплоидных рыб.
1.5.3. Влияние наличия ГМО в кормах на физиологию гидробионтов.
1.5.4. Особенности физиологии трансгенных рыб.
1.6. Биология радужной форели.
1.7. Биология кижуча.
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКИ.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ.
ГЛАВА 3 ФИЗИОЛОГИЧЕСКОЕ СОСТОЯНИЕ РАДУЖНОЙ ФОРЕЛИ ПРИ КУЛЬТИВИРОВАНИИ В УСЛОВИЯХ ЮЖНОГО ВЬЕТНАМА.
3.1. Абиотические условия выращивания радужной форели.
3.2. Биологические показатели и анатомические нарушения диплоидной и триплоидной радужной форели.
3.3. Биохимические показатели крови радужной форели.
3.3.1. Содержание глюкозы.
3.3.2. Показатели белкового метаболизма.
3.3.4. Гуморальные факторы иммунитета.
3.3.5. Содержание гонадотропных гормонов.
3.3.6. Содержание половых стероидных гормонов.
3.4. Цитометрические показатели эритроцитов радужной форели.
ГЛАВА 4. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ КИЖУЧА ИЗ РАЗНЫХ ВОДОЁМОВ П-ОВА КАМЧАТКА.
4.1. Биологические показатели кижуча.
4.2. Биохимические показатели крови производителей кижуча.
ГЛАВА 5. ИЗУЧЕНИЕ КОМБИКОРМОВ НА
НАЛИЧИЕ/ОТСУТСТВИЕ В ИХ СОСТАВЕ ГМИ.
Рекомендованный список диссертаций по специальности «Ихтиология», 03.02.06 шифр ВАК
Состояние половых желёз лососевых рыб в условиях интродукции2011 год, кандидат биологических наук Павлов, Ефим Димитриевич
Липидный состав ткани радужной форели Parasalmo mykiss (Valbaum,1992), выращенной на различных комбикормах.2014 год, кандидат наук Назарова Марина Александровна
Развитие стероидсекреторных клеток в гонадах круглоротых и рыб в раннем онтогенезе2006 год, кандидат биологических наук Мосягина, Марина Васильевна
Рост и биологические особенности радужной форели при использовании ферментных препаратов и антиоксидантной смеси2009 год, кандидат сельскохозяйственных наук Дорофеева, Татьяна Александровна
Морфофизиологические особенности двух форм радужной форели при выращивании в условиях тепловодного садкового хозяйства2009 год, кандидат биологических наук Золотова, Анастасия Владимировна
Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физиологическое состояние лососевых рыб при использовании биотехнологий»
Актуальность проблемы. В ихтиологии существуют методы, позволяющие направленно изменять некоторые свойства рыб, в том числе физиологические: гибридизация и селекция (Николюкин, 1952, 1972; Бурцев, 1983; Черфас, Цой, 1984; Кирпичников, 1987), гиногенез (Черфас, Илясова, 1980; Грунина и др., 1998; Бадртдинов и др., 2008; Thorgaard, 1983; Thorgaard et al., 1981; Ihssen et al., 1990), полиплоидизация (Гомельский, Грунина, 1988; Арефьев, 1998; Васильев и др., 2005; Benfey, 1996; Piferrer, 2001; Koenig et al, 2011), инверсия пола (Гомельский, Черфас, 1982; Метальникова, 1992, 1995; Thorgaard, 1983; Chevassus et al., 1988; Piferrer, Donaldson, 1991; Piferrer et al., 1993; Krisfalusi, Cloud, 1999). Зачастую эти методы применяют в аквакультуре (Hulata, 2001) как биотехнологии для увеличения объёмов продукции рыбоводства и решения глобальной продовольственной проблемы в будущем. Трансгенез — биотехнологическое новшество, создающее генно-модифицированные (ГМ) организмы (Арефьев, 1998; Кузнецов и др., 2004; Pandian, 2001), в том числе, для применения в агропромышленном комплексе и рыбоводстве в составе комбикормов (Ганжа и др., 2011). Риски использования ГМ источников (ГМИ) в кормах связывают с возможными непредвиденными эффектами, обусловленными целенаправленным переносом искусственной генной конструкции в донорский организм (Жученко, 2003; Куликов, 2004; Cellini et al., 2001; Diao et al., 2006). Использование такого сырья в комбикормах может негативно повлиять на физиологическое состояние рыб как их потребителей (Herme et al., 2005; Sagstad et al., 2007).
Влияние традиционных и новых биотехнологий на рыб можно оценивать по биохимическим показателям, характеризующим протекающие внутриорганизменные реакции (Шатуновский, 1987; Tietz et al., 1995). Количественные и качественные изменения этих показателей, обусловленные геномными, гормональными и иными манипуляциями, характеризуют адаптивный ответ особи (Карпевич, 1998; Назаренко,
Кишкун, 2000), и могут быть использованы как маркёры её физиологического состояния. Биохимические маркёры гидробионтов уже применяют в водной токсикологии (Немова, Высоцкая, 2004; Немова, 2005; Цветков, 2009; Немова и др., 2011), детально изучены свойства многих белков крови рыб (Лукьяненко, 1971; Андреева, 1997). Биохимические показатели рыб в большинстве случаев оценивают трудоёмкими аналитическими методами, а данных, полученных экспресс-методами, ещё недостаточно для комплексной оценки их физиологического состояния, в том числе при использовании различных биотехнологий. Поиск новых достоверных маркёров функционального состояния рыб - объектов биотехнологий, и создание их референсных каталогов остаётся актуальной задачей.
Целью настоящей работы является комплексный анализ физиологического состояния лососевых рыб в связи с применением различных биотехнологий.
Для достижения данной цели были поставлены следующие задачи:
1) оценить влияние окружающей среды на физиологическое состояние самок радужной форели Опсогкупскт туЫзБ (=РагаБа1то туЫзя) разной плоидности в высокогорных условиях тропиков;
2) определить биохимические и цитометрические показатели диплоидной и триплоидной гиногенетической радужной форели;
3) охарактеризовать по биохимическим показателям физиологическое состояние самок триплоидной радужной форели из однополого стада после гормональной инверсии пола;
4) изучить биохимические показатели производителей кижуча Опсогкупскт ИзШск во время нерестовой миграции;
5) оценить наличие/отсутствие ГМИ в рыбных комбикормах, используемых в отечественной и зарубежной аквакультуре.
Научная новизна. Впервые проведён комплексный анализ физиологического состояния лососевых рыб по ряду биохимических маркёров. Проведено сравнение по этим показателям самок однополой диплоидной и триплоидной радужной форели при культивировании в высокогорных условиях южного Вьетнама, её триплоидных инверсантов, а также производителей кижуча из водоёмов, отличающихся гидролого-морфологическим режимом. Впервые выявлена иммунореактивность в крови лососевых рыб к специфическим факторам гуморального иммунитета и гонадотропным гормонам человека. Впервые проанализированы комбикорма для рыб на присутствие в их составе ГМИ.
Практическое значение. Подготовлены материалы для создания унифицированной референсной базы биохимических маркёров для комплексной оценки физиологического состояния ценных видов лососевых рыб. Рекомендованы проведение импактного мониторинга ГМИ в комбикормах для рыб, их маркировка подобно пищевой продукции и разработка методов и критериев оценки их воздействия на рыб.
Апробация работы. Основные результаты исследований представлены на II международной научно-практической конференции «Повышение эффективности использования водных биологических ресурсов» (Москва, 2008), V международном конгрессе «Биотехнология состояние и перспективы развития» (Москва, 2009), международной конференции «Arctic marine ecosystems in an era of rapid climate change» (Tramso, 2009); III международной конференции с элементами школы для молодых учёных, аспирантов и студентов «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов» (Петрозаводск, 2010), Всероссийской молодежной конференции «Вклад молодых учёных в рыбохозяйственную науку России» (Санкт-Петербург, 2010), а также III международной конференции «Проблемы иммунологии, патологии и охраны здоровья рыб» (Борок, 2011).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 15 работ, три из них в изданиях, рекомендованных ВАК.
Основные положения, выносимые на защиту:
1) Гиногенез, полиплоидизация, гормональная инверсия пола и специфические условия южного Вьетнама влияют на содержание биохимических показателей в крови радужной форели, характеризующих её физиологическое состояние.
2) Производители кижуча из разных водоёмов, во время нерестовой миграции, отличаются по содержанию ряда биохимических показателей в крови.
3) Производители комбикормов часто включают в их состав ГМИ, не указывая этого в доступной форме, что является риском для физиологического состояния рыб, потребляющих такие корма.
Структура и объём диссертации. Диссертация состоит из введения, 5 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы, включающего 506 источников, из которых 308 на иностранных языках. Работа изложена на 189 страницах текста, содержит 10 рисунков и 21 таблицу.
Похожие диссертационные работы по специальности «Ихтиология», 03.02.06 шифр ВАК
Эколого-физиологические и биотехнологические факторы эффективности лососеводства: на примере искусственного разведения тихоокеанских лососей на Северном побережье Охотского моря2005 год, доктор биологических наук Хованский, Игорь Евгеньевич
Оптимизация методов выращивания объектов индустриальной аквакультуры на ранних этапах онтогенеза2003 год, доктор биологических наук Пономарева, Елена Николаевна
Эпизоотическое состояние форелевых рыбоводных хозяйств Ленинградской области в зависимости от условий выращивания2003 год, кандидат биологических наук Нечаева, Тамара Алексеевна
Использование полножирной сои и продуктов ее переработки в комбикормах для рыб2004 год, кандидат сельскохозяйственных наук Чикова, Валентина Владимировна
Экологические особенности псевдомонад в составе аутофлоры радужной форели в условиях Карелии2013 год, кандидат биологических наук Обухова, Елена Сергеевна
Заключение диссертации по теме «Ихтиология», Ганжа, Екатерина Викторовна
выводы
1. Гиногенеические диплоиды радужной форели (1+), выращиваемые за пределами ареала, достоверно отличаются от гиногенетических триплоидов (1+) повышенным содержанием в крови общего белка, альбумина, С-реактивного белка, иммуноглобулинов А, О, М и Е, лютеинизирующего и фолликулостимулирующего гормонов, и, напротив, пониженной концентрацией креатинина, тестостерона и эстрадиола.
2. У двухлетних гиногенетических триплоидов радужной форели после воздействия метилтестостероном в крови достоверно увеличено содержание креатинина, мочевины, С-реактивного белка и тестостерона, но понижен уровень иммуноглобулинов А и О.
3. При инверсии пола у триплоидов гиногенетической радужной форели под воздействием экзогенного метилтестостерона в течение 2.5 мес. происходит нормализация метаболических и регуляторных гормональных показателей. При аналогичном воздействии в течение 3 мес. эти процессы менее выражены.
4. Постоянный фотопериод и высокая температура воды при культивировании радужной форели независимо от её плоидности, возраста и гормональных манипуляций приводят к хроническому стрессу и гормональной дисфункции в организме.
5. Показатели белкового обмена и факторы иммунитета у кижуча из р. Большой Воровской выше, чем из оз. Большой Вилюй, что характеризует динамику нерестовой миграции, а содержание ФСГ отражает его готовность к нересту.
6. В крови исследованных групп радужной форели и кижуча выявлена иммунореактивность к специфическим факторам иммунитета и гонадотропным гормонам человека, что указывает на наличие у рыб функционально аналогичных белков.
7. В 30% рыбных комбикормов, из которых 90% произведены за рубежом, выявлена трансгенная соя линии 40-3-2, что может представлять риск для функционального состояния рыб-потребителей.
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
Для комплексной оценки физиологического состояния лососевых рыб после воздействии биотехнологий рекомендовано использовать определение биохимических маркёров в их крови, с использованием клинических методов анализа.
Рекомендовано разработать специальные (региональные) рецептуры комбикормов и модифицировать технологию кормления радужной форели разного возраста при её культивировании в условиях южного Вьетнама.
Рекомендовано введение обязательной маркировки искусственных кормов для рыбного хозяйства, подобно пищевой продукции, в качестве формы реализации права потребителя на своевременное получение необходимой и достоверной информации об их составе, и для обеспечения возможности правильного выбора потребителем. Рекомендовано проведение импактного мониторинга наличия ГМИ в комбикормах для рыб. Рекомендовано разработать сертифицированную методику косвенной оценки предполагаемого риска использования ГМИ в составе кормов.
Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Ганжа, Екатерина Викторовна, 2012 год
1. Абросимова H.A., Абросимов С.С., Саенко Е.М. 2005. Кормовое сырье и добавки для объектов аквакультуры. Ростов-на-Дону: Эверест. 144 с.
2. Айала Ф., КайгерД. 1988. Современная генетика. В 3-х томах. Т. 2. М.: Мир. 368 с.
3. Аминева В.А., Яржомбек A.A. 1984. Физиология рыб. М.: Пищевая промышленность. 200 с.
4. Андреева A.M. 1997. Физико-химические свойства основных групп белков крови у различных по экологии и таксономическому положению представителей хрящевых, хрящевых ганоидов и костистых рыб. Автореф. дисс. . к.б.н. Борок: изд-во ИБВВ РАН. 25 с.
5. Анисимова И.М., Лавровский В.В. 1983. Ихтиология. М.: Высшая школа. 255 с.
6. Апаликова О.В. 2008. Филогенетический анализ двух форм серебряного карася Carassius auratus gibelio Bloch на основе изменчивости митохондриальной ДНК. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Владивосток. 25 с.
7. Апекин B.C., Фандеева В.Н. 1972. К выяснению природы полостной жидкости осетровых рыб // Известия АН СССР. Биологическая серия. № 2. С. 262-265.
8. Арефьев В. А. 1998. Современные генетические методы повышения продуктивности объектов марикультуры // Биологические основы марикультуры. М.: изд-во ВНИРО С. 101-176.
9. Ахундов М.М., Федорова К.Е 1994. Влияние экзогенного эстраднола на формирование яичников у молоди стерляди (Acepenser ruthenus) II Вопросы ихтиологии. Том 34. Вып. 4. С. 557-563.
10. Баранникова И. А. 1978а. Гистофизиологические основы применения повторных и однократных гипофизарных инъекций в осетроводстве // Труды ВНИРО. Том. СХХХ. С 85-92.
11. Баранникова И.А. 19786. Функциональные основы миграций рыб. Л.: Наука. 210 с.
12. Баранникова H.A., Дюбин В.П., Буковская О.С. 1989. Гонадотропная функция гипофиза и динамика гонадотропных и половых стероидов крови осенней кеты (Oncorhynchus keta) р. Амур при завершении полового цикла // Вопр. ихтиологии. Т. 29. Вып. 5 С. 823-830.
13. Баранникова И.А., Баюноеа Л.В., Семенкова Т.Б., Груслоеа A.JI. 2003. Стероиды в регуляции миграции у рыб // Рос. Физиолог. Журнал им. Сеченова. Т. 89. № 11. С. 1380-1387.
14. Белова Н.В. 2008. Радиационное воздействие на воспроизводительную систему костистых рыб последствия Чернобыльской катастрофы. Автореф. дисс. . доктора биол. наук. М.: изд-во МГУ. 56 с.
15. Белова Н.В., Бурлаков А.Б. 1977. Состав липидов и изоферментный набор неспецифических эстераз и НАД-дегидрогеназ сперматозоидов и спермиальной жидкости белого толстолобика // Науч. Докл. Высшей Школы. Сер. Биологические науки. № 8. С. 32-35.
16. Берг JI.C. 1948. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран // М.-Л.: Изд-во АН СССР. Ч. 1. С. 466.
17. Богерук А.К. 2004. Породы карпа (Cyprinus carpió L.). Серия: Породы и одомашненные формы рыб. М.: ФГНУ «Росинформагротех». 400 с.
18. Богерук А.К. 2006. Породы радужной форели (Oncorhynchus mykiss W.). Серия: Породы и одомашненные формы рыб. М.: ФГНУ «Росинформагротех». 316с.
19. Бочков Н. П. 1997. Клиническая генетика. М.: Медицина. 288 с.
20. Бурлаков А.Б. 1985. Активность гонадотропинов в гипофизе и сыворотке крови самок толстолобика (Hypophthalmichthys molitrix, Val.) (Cyprinidae) на разных стадиях репродуктивного цикла // Вопросы ихтиологии. Т. 25. Выи 3. С. 494-502.
21. Бурлаков А.Б. 2002. Гормональная регуляция репродуктивной функции у икромечущих рыб. Автореф. дисс. . доктора биол. наук. М.: изд-во МГУ. 56 с.
22. Бурлаков А.Б., Белова Н.В., Емельянова Н.Г. 1987. Активность гонадотропина в сыворотке крови и качество икры белого толстолобика Hypophthalmichthys molitrix (Val.) при его искусственном воспроизводстве // Вопросы ихтиологии. Т. 27. Вып. 6. С. 962-970.
23. Бурцев И.А. 1983. Гибридизация и селекция осетровых рыб при полноцикловом разведении и одомашнивании // Биологические основы рыбоводства: генетика и селекция. JI: Наука. С. 102-113.
24. Ванякина Е.Д. 1969. Генетика определения пола и некоторые вопросы гормональной регуляции пола у рыб // Генетика, селекция и гибридизация рыб. М. С. 29-44.
25. Васильев В.П., Лебедева Е.Б., Васильева Е.Д., Левенкова Е.С., Рысков А.П. 2005. Уникальный диплоидно-тетраплоидный однополо-двуполый комплекс рыб (Pisces, Cobitidae) // Докл. акад. наук. Т. 404. № 4. С. 559-561.
26. Вихман A.A. 1996. Системный анализ иммунофизиологической реактивности рыб в условиях аквакультуры. М.: изд-во Экспедитор. 176 с.
27. Владовская С. А. 2002. Некоторые проблемы производства кормов, используемых в аквакультуре // Рыбное хозяйство. Сер. Аквакультура. Информационный пакет "Корма и кормление в аквакультуре". М.: изд-во ВНИЭРХ. Вып. №3. с. 7-19.
28. Воловик С П. 1967. Структура нерестовых стад и эффективность естественного воспроизводства горбуши на Южном Сахалине. Автореф. . диссер. к.б.н. Калининград. 25 с.
29. Ганжа Е.В. 2008. Биохимические показатели крови тихоокеанских лососей р. Большая Воровская (Западная Камчатка) // Повышение эффективности использования водных биологических ресурсов.
30. Материалы 2-ой международной научно-практической конференции Москва, ВВЦ 26-27 ноября 2008. М.: изд-во ВНИРО. С. 197-200.
31. Ганжа Е.В., Банникова М.А. 2010. Генетически модифицированные организмы (ГМО): новый глобальный вызов для аквакультуры // Труды ВНИРО. Т. 148. С. 86 -104.
32. Ганжа Е.В., Банникова М.А., Федорова Л.М., Микодина Е.В. 2011. Аквакультура и трансгенные технологии: области применения и проблемы безопасности (обзор) // Сельскохозяйственная биология. № 4. С 16-30.
33. Гербилъский H.JI. 1941. Метод гипофизарных инъекций и его роль в рыбоводстве // Метод рыбоводных инъекций и его роль в воспроизводстве рыбных запасов. Л. Т.1. С. 5-36.
34. Гербилъский H.J1. 1975. Метод гипофизарных инъекций и его роль в рыбоводстве // Труды ВНИРО. Том. CXI. Часть I. С 85-92.
35. Голованов В.К., Лапкин В.В., Валтонен Т. 1992. Реакция молоди радужной форели в градиенте температур при различных режимах освещенности // VIII Научн. конф. по экол. физиол. и биохим. рыб. Тез. докл. Т. I. Петрозаводск. С.70-71.
36. Голованов B.K. 1995. Термопреферендум гидробионтов как оптимальная зона жизнедеятельности // Современные проблемы гидроэкологии. Тез. Международн. совещ. СПб. С. 14-15.
37. Голованов В.К. 2011. Температура как фактор оптимизации в жизнедеятельности рыб. Естественные условия и эксперимент // Современное состояние биоресурсов внутренних водоемов. Т. 1. М.: изд-во Акварос. С. 169-180.
38. Голованов В.К., Валтонен Т. 2000. Изменчивость термоадаптационных свойств радужной форели Oncorhynchus mykiss Walbaum в онтогенезе // Биол. внутр. вод. № 2. С. 106-115.
39. Голованова И.Л., Папченкова Г.А. 2009. Влияние гербицида «Раундап» на активность карбогидраз рачкового зоопланктона и молоди плотвы // Токсикологический вестник. № 4. С. 32-35.
40. Головина H.A., Стрелков Ю.А., Воронин В.Н., Головин 77.77., Евдокимова Е.Б., Юхименко JI.H. 2010. Ихтиопатология. М.: Колосс. 512 с.
41. Гомельский Б.И., Черфас Н.Б. 1982. Гормональная инверсия пола у самок однополой формы серебряного карася // Онтогенез. Т. 13. №3. С. 235-242.
42. Гомельский Б.И, Грунта А. С. 1988. Искусственная полиплоидия у рыб и возможности ее использования в рыбоводстве // Рыбное хозяйство. Сельхоз. использов. внутр. водоемов. Центр. НИИ информации и техн.-эконом. исслед. рыбн. хоз-ва. М. Вып. 1. 55 с.
43. Гончаров Б.Ф. 1977. Гормональная регуляция вителлогенеза и созревания у рыб и амфибий // Современные проблемы оогенеза. М.: Наука. С. 173-199.
44. Горин C.JI. 2007. Гидролого-экологические условия эстуариев рек Камчатки в летний период // Вестник Московского Университета. Серия «География». № 5. С. 38-44.
45. Горин C.JI. 2009. Гидролого-морфологические процессы в эстуариях Камчатки. Автореф. дисс. . к.г. н. М.: изд-во МГУ. 26 с.
46. Горин C.JI. 2012. Гидролого-морфологические процессы в эстуариях Камчатки. Часть 1. Эстуарий реки Большой Вилюй. Гидролого-морфологические процессы в эстуарии реки Большой Вилюй (восточное побережье камчатки) // Водные ресурсы. Т. 39. № 3. (в печати).
47. ГОСТ Р 52173-2003 «Сырье и продукты пищевые. Метод идентификации генетически модифицированных источников (ГМИ) растительного происхождения» (введён в действие 01.01 2005 г.).
48. Гребельный С.Д. 2006. Много ли на свете клональных видов. Часть 2. Клонирование в природе, его роль в формировании разнообразия фауны и флоры III Зоология беспозвоночных. Вып. 3. № 1. С. 77-109.
49. Грибанов В.И. 1948. Кижуч Oncorhynchus kisutch (Walbaum) Il Изв. ТИНРО. T. 28. С. 45-101.
50. Григорьева Ю.В., Микулин А.Е., Любаев В.Я., Самсонова М.В. 2006. Изменение содержания углеводов в печени и теле кеты и кижуча присмене осмотнчности среды обитания // Научные труды МГПУ. Серия: Естественные науки. М.: изд-во Прометей. С. 400-404.
51. Григорьева Ю.В. 2006. Изменение метаболизма молоди дальневосточных лососей при смене среды обитания. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М.: изд-во МГУТУ. 26 с.
52. Гриценко О.Ф. 2002. Проходные рыбы острова Сахалин (систематика, экология, промысел). М.: изд-во ВНИРО. 247 с.
53. Гриценко О.Ф., Ковтун A.A., Косткин В.К. 1987. Экология и воспроизводство кеты и горбуши. М.: ВО «Агропромиздат». 166 с.
54. Грунина A.C., Рекубратский A.B., Нейфах A.A. 1998. Индуцированный диплоидный андрогенез у рыб // Проблемы репродуктивной биологии в трудах профессора С.И. Кулаева и его последователей. М.: изд-во МГУ. С. 314.
55. Грунина A.C., Рекубратский A.B. 2005. Индуцированный андрогенез у рыб: получение жизнеспособных ядерно-цитоплазматических гибридов // Онтогенез. Т. 36. №4. С. 254-264.
56. Груслова A.B. 2004. Стероидные гормоны в осуществлении репродуктивной функции русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii Вг.) в природе и в искусственных условиях. Автореф. дис. . канд. биол. наук. С.-П.: изд-во СПбГУ. 17 с.
57. Дёмкина Н.В. 2010. Генетически модифицированные продукты: учебное пособие. М.: Эконом-Информ. 100 с.
58. Дума В.В., Дума JI.H. 1982. О направленном формировании пола у радужной форели // Материалы V Всесоюзной конф. по экологии, физиологии и биохимии рыб. Т. II. С. 22.
59. Ермакова КВ. 2005. Об опасности использования генетически модифицированных организмов в продуктах питания// Аграрная Россия. №4. С. 21-23.
60. Ермакова И.В. 2007. Об опасности использования генетически модифицированных организмов в продуктах питания: ситуация в России и в мире // Экоинформ. №1. С. 8-15.
61. Жиденко А.О. 2009. Морфоф1зюлогичш адаптацп pÍ3hobíkobíx групп Cyprinus carpió L. за несприятливо1 дп еколопчних фактор!в // Автореф. дис. докт. бюл. наук. Одесса. 40 с.
62. Жученко A.A. 2003. Роль генетической инженерии в адаптивной системе селекции растений (мифы и реальность) // Сельхоз. биология. № 1. С. 1-33.
63. Заботкина Е.А., Микряков В.Р. 1997. Реакция иммунекомпетентных клеток печени карпа Cyprinus carpió L. на воздействие карбофоса // Доклады РАН. Т. 352. Вып. 4. С. 562-564.
64. Заки М.И, Элъ-Гарабави М.М., Камилъ С.А. 1994. Сезонные изменения гонадотропного и половых стероидных гормонов в сыворотке крови лобана Mugil cephalus в лагуне Эль-Бардавиль Средиземного моря // Вопр. ихтиологии. Т. 34. Вып. 6. С. 827-830.
65. Запорожец Г. В. 2006. Микроэлементы в теле молоди тихоокеанских лососей: прикладные аспекты // Изв. ТИНРО. Т 146. С. 35-55.
66. Запорожец Г. В., Запорожец О. М. 2011. Лососевые рыбоводные заводы Дальнего Востока в экосистемах Северной Пацифики. Петропавловск-Камчатский: изд-во Камчатпресс. 268 с.
67. Захаров В.М. 1987. Асимметрия животных. М.: Наука. 216 с.
68. Захарова Н.И., Чмилевский Д.А. 1985. Влияние пониженной температуры на развитие гонад радужной форели {Salmo gairdnerí)
69. Сообщение II. Воздействие на рыб в возрасте 5,5 месяца после вылупления // Сб. науч. тр. ГосНИОРХ. Вып. 229. С. 95-104.
70. Зеленникое О.В. 1997. Рост и гаметогенез радужной форели при оптимальной температуре в период от вылупления до полового созревания // I Конгр. ихтиологов России. Тез. докл. Астрахань. С. 251.
71. Зеленникое О.В. 1999. Гаметогенез радужной форели Parasalmo mykiss, выращенной в системе с оборотным водоснабжением от вылупления до полного созревания при оптимальной температуре // Вопр. ихтиологии. Т. 39. № 1.С. 89-97.
72. Золотова А.В. 2009. Морфофизиологические особенности двух форм радужной форели при выращивании в условиях тепловодного садкового хозяйства. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. М.: изд-во РГАУ-МСХА. 20 с.
73. Зорбиди Ж.Х. 1974. Динамика численности камчатского кижуча Oncorhynchus kisutch Walbaum (Salmonidae) и экология его молоди в пресных водах // Автореф. дис. . канд. биол. наук. Владивосток: изд-во ТИНРО. 35 с.
74. Зорбиди Ж.Х. 1975. Биологические показатели и численность камчатского кижуча // Труды ВНИРО. Т. 106. С. 61-73.
75. Зорбиди Ж.Х. 2003. Состояние запасов и структура стад кижуча Oncorhynchus kisutch Walbaum (Salmonidae) Западной Камчатки // Чтения памяти Владимира Яковлевича Леванидова. Вып. 2. С. 541-549.
76. Зорбиди Ж.Х. 2010. Кижуч азиатских стад. Петропавловск-Камчатский: изд-во КамчатНИРО. 306 с.
77. Игнатьева Г.М. 1975. Радужная форель Salmo gairdneri Richardson // Объекты биологии развития. М.: Наука. С. 278-307.
78. Канидьев А.Н. 1984. Биологические основы искусственного разведения лососевых рыб. М.: Легкая и пищ. промышленность. 216 с.
79. Карманова И.В. 2000. Паразитозы молоди чавычи и кижуча в бассейне р. Паратунка // Паразиты и болезни рыб. Сб. науч. тр. М.: изд-во ВНИРО. С. 72-81.
80. Карпевич А.Ф. 1998. Потенциальные свойства гидробионтов и их реализация в аквакультуре // Биологические основы марикультуры. С. 78100.
81. Карпенко В.И. 2000. Зараженность камчатских лососей личинками трематод Cryptocotyle sp. // Паразиты и болезни рыб. Сб. науч. тр. М.: изд-во ВНИРО. С. 81-86.
82. Касумян А. О. 1997. Вкусовая рецепция и пищевое поведение рыб //Вопр. ихтиологии. Т. 37. № 1. С. 78-93.
83. Кирпичников B.C. 1987. Генетика и селекция рыб. М.: Наука. 520 с.
84. Кловач Н.В. 2003. Экологические последствия крупномасштабного разведения кеты // Бюллетень журнала «Вопросы рыболовства». М.: изд-во ВНИРО. 164 с.
85. Ковтун A.A. 2005. Биология кижуча острова Сахалин. Южно-Сахалинск: изд-во СахНИРО. 96 с.
86. Коган А.Б., Косицкий Г.И., Кураев Г.А., Чораян О.Г. 1984. Физиология животных. М.: Высшая школа. 360 с.
87. Кондратьева И. А., Киташова A.A., Ланге М.А. 2001. Современные представления об иммунной системе рыб. 1. Организация иммунной системы рыб // Вест. Моск. Ун-та. Сер. 16. Биология. № 4. С. 1120.
88. Кондратьева H.A., Киташова A.A. 2002. Современные представления об иммунной системе рыб. 2. Функционирование и регуляция иммунной системы рыб // Иммунология. № 2. С.97-101.
89. Константинов A.C. 1997. Статический и астатический оптимум абиотических факторов в жизни рыб // I Конгр. ихтиологов России. Астрахань: изд-во ВНИРО. Сентябрь. 1997. Тез. докл. С.221-222.
90. КорнбергА. 1977. Синтез ДНК. М.: Мир. 305 с.
91. Котенев Б.Н., Богерук А.К. 2006. Состояние и перспективы развития аквакультуры в Российской Федерации // Рыбное хозяйство. Вып. 56. С. 25-26.
92. Кузнецов В.В. 2005. Возможные биологические риски при использовании генетически модифицированных сельскохозяйственных культур // Вестник ДВО РАН. №3. С. 40-54.
93. Кузнецов В.В. Куликов A.M., Митрохин H.A., Цыдендамбаев В.Д. 2004. Генетически модифицированные организмы и биологическая безопасность // Федеральный вестник экологического права. М.: Экосинформ. Вып. 10. 70 с.
94. Лавровская Н.Ф. 1973. Современные исследования по биохимии рыб. М.: Наука. 100 с.
95. Лапкин В.В, Поддубный А.Г., Свирский A.M. 1983. Термоадаптационные особенности рыб умеренных широт // Вопр. ихтиол. Т. 23. Вып. 2. С. 228-237.
96. Лебедева Е.Б. 2007. Структура и распространение клонально-бисексуальных комплексов рыб p. Cobitis (Cobitidae). Автореф. . к.б. н. М.: изд-во ИПЭЭ РАН. 25 с.
97. Леман В.И. 2003. Экологическая и видовая специфика нерестилищ тихоокеанских лососей p. Oncorhynchus на Камчатке // Чтения памяти В.Я. Леванидова. Вып. 2. С. 12-33.
98. Леман В.Н., Смирнов Б.П., Металъникова КВ. и др. 2006. Рыбоводно-биологическое обоснование перепрофилирования Вилюйского лососевого рыбоводного завода на двухлетнее выращивание кижуча. М.: изд-во ВНИРО. 89 с.
99. Лихатович Д. 2004. Лосось без рек. История кризиса тихоокеанского лосося. Владивосток: Издательский дом «Дальний Восток». 376 с.
100. Лукьяненко В.И. 1971. Иммунобиология рыб. М.: Пищевая промышленность. 360 с.
101. Лукьяненко В.И. 1986. Некоторые показатели углеводного обмена осетровых рыб в период нерестовой миграции // Энергетический обмен рыб. М.: изд-во ИБВВ АН СССР. С. 36.
102. Лукьяненко В.И. 1989. Иммунобиология рыб. Врожденный иммунитет. М.: Агропромиздат. 271 с.
103. Лукьяненко В.И. 2000. Физиолого-биохимические основывоспроизводства, акклиматизации и рационального промысла осетровых рыб // Экологическая физиология и биохимия рыб (материалы IX Всероссийской конференции). Ярославль: изд-во ВВО РЭА. Т. II. С. 18-24.
104. Макеева А. П. 1992. Эмбриология рыб. М. изд-во МГУ. 216 с.
105. Максимов Г.В., Василенко В.К, Максимов В.Г., Максимов А.Г. 2004. Теоретические и практические аспекты использования биотехнологии и генной инженерии. М. 208 с.
106. Металъникова К.В. 1992. Влияние синтетических аналогов тестостерона на передифференцировку пола у стальноголового лосося (ОпсогкупсНш туНяя (\Уа1Ь.). Автореф. дисс. канд. биол. наук М.: изд-во ВНИРО. 16с.
107. Металъникова К.В. 1995. Опыт применения метилтестостерона для реверсии пола у лососевых видов рыб в Заполярье // Матер. Совещ. по товарному форелеводству. Мурманск. С. 48-51.
108. Мешкова М.Г. 2006. Естественное и искусственное воспроизводство кижуча (ОпсогНупсНш ЫбШяИ) в озере Большой Вилюй (Камчатка). Автореф. дис. . к.б.н. Петропавловск-Камчатский: изд-во Камчатский ГТУ. 24 с.
109. Микодина Е.В., Ганжа Е.В. 2008. Генетически модифицированные источники в комбикормах для рыб // Рыбное хоз-во. №2. С. 84-87.
110. Микодина Е.В., Микулин А.Е. 1990. Анализ возможного механизма воздействия даларгина на физиологические процессы в организме рыб // Эколого-физиологические и токсикологические аспекты и методе рыбохозяйственных исследований. С. 130-143.
111. Микодина Е.В., Лаптева Т.И., Микулин А.Е., Седова М.А., Ганжа Е.В., Павлов Е.Д., Манухов А.И. 2012. Биохимические маркёры рыб (справочник). М.: изд-во ВНИРО. (в печати)
112. Микряков В.Р. 1969. Влияние фенола на количество белка в сыворотке карпов (Cyprinus carpió L.) в условиях хронического эксперимента // Тр. ИБВВ РАН. Вып. 19. № 22. С. 70-72.
113. Микряков В.Р. 1991. Закономерности формирования иммунитета у рыб. Рыбинск: изд-во ИБВВ РАН СССР. 154 с.
114. Микряков Д.В. 2004. Влияние некоторых кортикостероидных гормонов на структуру и функцию иммунной системы рыб. Автореф. дисс. . канд. биол. наук. Борок: изд-во ИБВВ РАН. 24 с.
115. МУК 4.2.1902-04 Методы определения конкретных линий ГМО в пищевых продуктах.
116. МУ 2.3.2.1917-04 Порядок и организация контроля за пищевой продукцией, полученной из/или с использованием сырья растительного происхождения, имеющего генетически модифицированные аналоги.
117. МУК 4.2.2304-07 Методы идентификации и количественного определения генно-инженерно-модифицированных организмов растительного происхождения.
118. Мурза И.Г., Христофоров О.Л. 1991. Определение степени зрелости гонад и прогнозирование возраста достижения половой зрелости у атлантического лосося и кумжи. Ленинград: изд-во ГосНИОРХ. 102 с.
119. Назаренко Г.И., Кишкун A.A. 2000. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. М.: Медицина. 544 с.
120. Немова H.H. 2005.Биохимические эффекты накопления ртути у рыб. М.: Наука. 215 с.
121. Немова H.H., Высоцкая Р. У. 2004. Биохимическая индикация состояния рыб. М.: Наука. 215 с.
122. Николюкин H.H. 1952. Межвидовая гибридизация рыб. Саратов: Саратовское областное государственное издательство. 312 с.
123. Николюкин H.H. 1972. Отдалённая гибридизация осетровых и костистых рыб. Теория и практика. М.: Пищевая промышленность. 335 с.
124. Новиков Г.Г. 2000. Рост и энергетика развития костистых рыб в раннем онтогенезе. М.: изд-во Эдиториал УРСС. 295 с.
125. Павлов Е.Д. 2011. Состояние половых желёз лососевых рыб в условиях интродукции. Автореф. дисс. . к.б. н. М.: изд-во ВНИРО. 24 с.
126. Павлов Д.С., Касумян А. О. 1990. Сенсорные основы пищевого поведения рыб // Вопр. Ихтиологии. Т. 3. № 5. С. 720-732.
127. Павлов Д. С., Савваитова К.А., Кузищин К.И., Груздева М.А., Павлов С.Д., Медников Б.М., Максимов C.B. 2001. Тихоокеанские благородные лососи и форели Азии. М.: Научный мир. 200 с.
128. Павлов Е.Д., Нгуен Вьет Туи, Нгуен Tu Хуан Ту. 2010. Состояние половых желёз молоди триплоидной форели Oncorhynchus mykiss в условиях южного Вьетнама после искусственной инверсии пола // Вопр. ихтиологии. Т. 50. № 5. С. 675-684.
129. Павлова Г.В., Модестова Е.А., Венгрова С.Н., Ефанова A.A., Рыбцова H.H., Корочкин Л.И. 2001. Экспрессия человеческого гена gdnf в трансгенной линии Drosophila melanogaster II ДАН. T. 376. С. 694-696.
130. Правдш И.Ф. 1966. Руководство по изучению рыб. М.: Пищевая промышленность. 376 с.
131. Привольнее Т.Н. 1969. Эколого-физиологические и рыбохозяйственные особенности радужной форели // Физиологические основы разведения радужной форели. Изв. ГосНИОРХ. Т. 68. С. 3-22.
132. Продукты пищевые и корма экспресс-метод определения сырьевого состава (молекулярный). 2006. Федеральное агентство по техническому регулированию и метрологи. М.: изд-во Стандартинформ. 25 с.
133. Пустовит Н.С., Пустовит О.П. 2005. Некоторые гематологические показатели молоди камчатской микижи Parasalmo mykiss // Вопросы ихтиологии. Т. 45. № 5. С. 680-688.
134. Радченко В.Н. 1993. Нейроэндокринные основы циркадной и сезонной ритмики рыб // Экология моря. Вып. 43. С. 31-39.
135. Ройт А., Бростофф Дж., Мейл Д. Иммунология. М.: Мир. 2000. 581 с.
136. Романова H.H. 2005. Оценка стресс-реактивности рыб-объектов аквакультуры и ее коррекция писцином. Автореф. . канд. биол. наук. М.: ВНИИПРХ. 21 с.
137. Рослый Ю.С. 2002. Динамика популяций и воспроизводство тихоокеанских лососей в бассейне Амура. Хабаровск: Хабаровское книжное изд-во. 210 с.
138. Росселъхознадзор. Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору. Государственный реестр РФ. http://www.fsvps.ru/fsvps/regLicensing/index.html?language=ru
139. Савваитова К.А., Максимов В.А., Мина М.В., Новиков Г.Г., Кохменко Л.В., Мацу к В.Е. 1973. Камчатские благородные лососи (систематика, экология, перспективы использования как объекта форелеводства и акклиматизации). Воронеж: изд-во ВГУ. 120 с.
140. СанПиН 2.3.2.1842-04 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов. Дополнения и изменения № 3 к СанПиН 2.3.2.1078-01». На основании ФЗ №52 от 30.03.1999 г. и ФЗ №29 от 02.01.2000 г.
141. Сергеев Н.С., Вертель Ю.М., Костюкова Е.А. 2007. Контроль генетически модифицированных источников в рыбной муке и кормах для сельскохозяйственных животных // Рыбная промышленность. № 4. С. 44-46.
142. Смирнов А.И. 1975. Биология, размножение и развитие тихоокеанских лососей // М.: изд-во МГУ. 335 с.
143. Смирнов Б.П., Чебанова В.В., Введенская Т.Л. 1993. Адаптация заводской молоди кеты О. keta и О. tshawytscha к питанию в естественнойсреде и влияние голодания на физиологическое состояние молоди // Вопросы ихтиологии. Т. 33. №5. С. 637-643.
144. Смирнова Г.П. 1967. Экологическая физиология рыб. Зависимость теплоустойчивости меченосцев от количества потребляемого корма // Обмен веществ и биохимия рыб. С. 190-193.
145. Состояние мирового рыболовства и аквакультуры 2009. Департамент рыболовства и аквакультуры ФАО. Продовольственная и сельскохозяйственная организации объединенных наций. Рим. 2009. 199 с.
146. Строганов Н.С. 1962. Экологическая физиология рыб. Т. 1. М.: изд-во МГУ. 444 с.
147. Суховерхое Ф.М., Сиверцов А.П. 1975. Прудовое рыбоводство. М.: Пищевая промышленность. 470 с.
148. Титарев Е.Ф. 1980. Форелеводство. М.: Легкая и пищевая промышленность. 167 с.
149. Титарев Е.Ф. 2005а. Холодноводная аквакультура: Учеб. пособие. Ч. 1. Холодноводное форелевое хозяйство. Рыбное: изд-во ВНИИПРХ. 124 с.
150. Титарев Е.Ф. 20056. Холодноводная аквакультура: Учеб. пособие. Ч. 2. Разведение и выращивание тихоокеанских и атлантического лососей. Рыбное: изд-во ВНИИПРХ. 70 с.
151. Травкина Г.Л. 1977. Влияние эстрона и ацетонированных гипофизов сазана на переход половых клеток ранних стадий оогенеза у ерша Acerina cernua к мейозу и ранней профазе мейоза // Физиология и биохимия онтогенеза. Л.: Наука. С. 113-118.
152. Ушлет Э. 2008. Генетика без тайн. М.: изд-во Эксмо. 224 с.
153. Фёдоров К.Е. 1997. Гормональные аспекты регуляции раннего гамето- и гонадогенеза рыб // Проблемы надежности функционирования репродуктивной системы у рыб. СПб: изд-во СПбГУ. С. 100-116.
154. Фёдоров К.Е., Зубова С.Э., Семенов В.В., Бурлаков А. Б. 1990. Секреторные клетки в гонадах молоди стерляди Acipenser Ruthenus в период дифференцировки пола // Вопросы ихтиологии. Том 30. Вып. 1. 1990. С. 65-75.
155. Хлебович В.В. 1974. Критическая соленость биологических процессов. Д.: Наука. 120 с.
156. Цветков И.Л. 2009. Биохимические параметры стресс-редуцирующей реакции гидробионтов. Автореферат дисс. . доктора биол. наук. М.: изд-во МГОУ. 46 с.
157. Чазов Е.И., Исаченков В.А. 1974. Эпифиз: место и роль в системе нейроэндокринной регуляции. М.: Медицина. 238 с.
158. Ченцов Ю.С. 2004. Введение в клеточную биологию. М.: Академкнига. 260 с.
159. Черфас Н.Б., Илясова В.А. 1980. Индуцированный гиногенез у гибридов серебряного карася с карпом // Генетика. Т. 16. № 7. С. 1260-1269.
160. Черфас Н.Б., Цой P.M. 1984. Новые генетические методы селекции рыб. М.: Лёгкая и пищевая промышленность. 104 с.
161. Чмилевский Д. А. 2003. К вопросу о периодизации оогенеза костистых рыб (обзор) // Вопросы ихтиологии. Т.43. № 3. С. 375-387.
162. Чмилевский ДА., Лаврова Т.В. 1993. Влияние пониженной температуры на оогенез тиляпии Oreochromis mossambicus (Peters) с целью стимуляции их роста // Вопросы ихтиологии. Т. 33. Вып.5. С. 732-735.
163. Шатуновский М.И. 1980. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. М.: Наука. 288 с.
164. Шатуновский М.И. 1987. Роль эколого-физиологических исследований в интенсификации рыбоводства // Биологические ресурсы водоёмов бассейна Балтийского моря. Материалы 22 научной конференции по изучению водоёмов Прибалтики. Вильнюс: ИЗП. С. 215-216.
165. Щербина М.А., Гамыгин Е.А. 2006. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре. М.: изд-во ВНИРО. 360 с.
166. Энгдалъ У.Ф. 2009. Семена разрушения: тайная подоплека генетических манипуляций // СПб.: изд-во Нестор-История. 320 с.
167. Эрнст Л.К., Волкова H.A., Зиновьева H.A. 2009. Некоторые аспекты использования трансгенных технологий в животноводстве // Сельхоз. Биология. №2. С. 4—9.
168. Янкова Н.В. 2006. Эколого-морфологические особенности диплоидно-триплоидных комплексов серебряного карася Carassius auratus gibelio Bloch на примере озер междуречья Тобол-Тавда. Автореф. дисс. .канд. биол. наук. Тюмень. 23 с.
169. Яржомбек A.A., Лиманский В.В., Щербина Т.В., Бекина E.H., Лысенко П.В. 1986. Справочник по физиологии рыб. М.: Легк. и пищ. промышленность. С. 192 с.
170. Adkins-Regan, Е. 1987. Hormones and sexual differentiation // Norris, D.O., Jones, R.E. (eds.). Hormones and Reproduction in Fishes, Amphibians and Reptiles. Plenum. New York. P. 1-29.
171. Alestrôm P. 1996. Genetically modified Fish in future aquaculture: technical, environmental and management // ISNAR Biotechnology Seminar paper. 7 p.
172. Allen S.K., Stanley J.G. 1978. Reproductive sterility in polyploid brook trout, Salvelinus fontinalis II Transactions of the American Fisheries Society. V. 107. P. 473-478.
173. Altimiras J., Axelsson M., Claireaux G., Lefrançois C., Mercier C., Farrell A. P. 2002. Cardiorespiratory status of triploid brown trout during swimming at two acclimation temperatures // Journal of Fish Biology. V. 60. № 1. P. 102-116.
174. Amano M., Aida K., Okumoto N., Hasegawa Y. 1993. Changes in levels of GnRH in the brain and pituitary and GTH in the pituitary in male masu salmon, Oncorhynchus masou, from hatching to ovulation // Fish Physiol. Biochem. V. 11. P. 233-240.
175. Amano M., Ikuta K., Kitamura S., Aida K. 1997. The maturation of the salmon GnRH system and its regulation by gonadal steroids in masu salmon // Fish physiology and biochemistry. V. 17 P. 6-70.
176. Anderson L. 2004. Genetically engineered fish new threats to the environment // Report. Greenpeace International. 20 p.
177. Anderson L., Seilhamer J. 1997. A comparison of selected mRNA and protein abundances in human liver// Electrophoresis. V. 18. P. 533-537.
178. Assem S. S., El-Zaeem S. Y. 2005. Application of biotechnology in fish breeding. II: production of highly immune genetically modified red belly tilapia, Tilapia zillii /I African Journal of Biotechnology. V. 4. №5. P. 449-459.
179. Atkinson C.E., Rose J.H., Duncan T.O. 1967. Pacific salmon in the United States // Salmon of the North Pacific Ocean. Part IV. Spawning populations of North Pacific salmon. Int. North Pac. Fish. Comm. Bull. 23. P. 43223.
180. Baker I.J. Solar I.I., Donaldson E.M. 1988. Masculinization of chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) by immersion treatments using 17a-methyltestosterone around the time of hatching // Aquaculture. V. 72. P. 359-367.
181. Beamish R.J., Bouillon D.R. 1993. Pacific salmon production trends in relation to climate // Can. J. Fish. Aquat. Sci. V. 50. P. 1002-1016.
182. Behnke R.J. 1992. Native trout of Western North America // Amer. Fish. Soc. Monogr. № 6. 275 p.
183. Bengten E., Clem L.W., Miller N.W., Warr G.W., Wilson M. 2006. Channel catfish immunoglobulins: Repertoire and expression // Developmental and comparative immunology. V. 30. № 1-2. P. 77-92.
184. Benfey T.J. 1996. Use of all-female and triploid salmonids for aquaculture in Canada // Bull. Aquaculture Assoc. Can. № 2. P. 6-8.
185. Benfey T.J. 1999. The physiology and behavior of triploid fishes // Rev. Fish. Sci. V. 7. P. 39-67.
186. Benfey T.J. 2001. Use of sterile triploid Atlantic salmon {Salmo salar L.) for aquaculture in New Brunswick // ICES J. Mar. Sci. V. 58. P. 525-529.
187. Benfey T. J., Sutterlin A. M. 1984. Triploidy induced by heat shock and hydrostatic pressure in landlocked Atlantic salmon {Salmo salar L.) // Aquaculture. V. 36. P. 359-367.
188. Benfey T.J., Dye H.M., Donaldson E.M. 1989. Estrogen-induced vitellogenin production by triploid coho salmon {Oncorhynchus kisutch), and its effect on plasma and pituitary gonadotropin // Gen. Comp. Endocrinol. V. 75. P. 83-87.
189. Benfey, T.J., McCabe L.E., Pepin P. 1997. Critical thermal maxima of diploid and triploid brook charr // Environmental Biology of Fishes. V. 49. P. 259-264.
190. Berejikian B.A., Tezak E.P., Schroder S.L., Knudsen C.M., Hard J.J. 1997. Reproductive behavioral interactions between wild and captively-reared coho salmon (Oncorhynchus kisutch) // ICES Journal of Marine Science. V. 54. P. 1040-1050.
191. Bidgood B.F. 1980. Tolerance of rainbow trout to direct changes in water temperature // Fish. Res. Rep. Fish Wildl. Div. № 15. lip.
192. Brinn J.E. Jr. 1973. The pancreatic islets of bony fishes // American zoologist. V. 13. № 3. P. 653-665.
193. Brugere C., Ridler N. 2004. Global aquaculture outlook in the next decades: an analysis of national aquaculture production forecasts to 2030 // FAO Fisheries Circular. № CI001. 56 p.
194. Busack C.A., Gall G. A.E. 1980. Ancestry of artificially propagated California Rainbow Trout strains // Calif. Fish Game. V. 66. P. 17-24.
195. Cartagena Protocol on Biosafety to the convention on biological diversity. 2000. Canada. Montreal. 31 p. (http://www.biodiv.org)
196. Cassani J. R., Caton W. E. 1986. Efficient production of triploid grass carp (Ctenopharyngodon idella) using hydrostatic pressure // Aquaculture. V. 55. P. 43-50.
197. Chainark P., Satoh S., Hino T., Kiron V., Hirono I., Aoki T. 2006. Availability of genetically modified soybean meal in rainbow trout Oncorhynchus mykiss diets // Fisheries Science. V. 72. P.1072-1078.
198. Chen T.T., Vrolijk N. H., Lu J.-K., Lin C.-M., Reimschuessel R., Dunham R. A. 1996. Transgenic Fish and its Application in Basic and Applied Research // Biotechnology Annual Review. V. 2. P. 205-236.
199. Chevassus B, Devaux A, Chourrout D, Jalabert B. 1988 Production of YY rainbow trout males by self-fertilization of induced hermaphrodites // J. Hered. V. 79. P. 89-92.
200. Clements S.P., Hicks B.J., Carragher J.F., Dedual M. 2002. The effect of trapping procedure on the stress response of wild rainbow trout // North American journal fisheries management. V. 22. P. 907-916.
201. Cousin-Gerber M., Burger G., Boisseau C., Chevassus B. 1989. Effect of methyltestosterone on sex differentiation and gonad morphogenesis in rainbow trout Oncorhynchus mykiss II Aquatic Living Resources. V. 2. P. 225230.
202. Cowey C. B., Higuera M., Adron J.W. 1977a. The effect of dietary composition and of insulin on gluconeogenesis in rainbow trout (Salmo gairdneri) II Br. J. Nutr. V. 38. P. 385-395.
203. Cowey C. B., Knox D., Walton M. J., Adron J. W. 1977b. The regulation of gluconeogenesis by diet and insulin in rainbow trout (Salmo gairdneri) II Br. J. Nutr. V. 38. P. 463—470.
204. Cox C. 2004. Glyphosate II J. of pesticide reform. V. 24. № 4. P. 10-15.
205. Crim L.W., Evans DM. 1983. Manipulation of the seasonal reproductive cycle of the landlocked Atlantic salmon (Salmo salar) By LHRH analogues administered at varies stages of gonadal development // Can. J. Fish. Aquat. Sci. Vol. 40. №1 P. 61-67.
206. Cuellar O., Uyeno T. 1972. Triploidy in rainbow trout // Cytogenetics. V. 11. P. 508-515.
207. Culp P., Nusslein-Volhard C., Hopkins N. 1991. High frequency germ-line transmission of plasmid DNA sequences injected into fertilized zebrafish eggs // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. V. 88 № 18. P. 7953-7957.
208. Cummins J., Ho M.-W. 2007. GM food animals coming. 10 p. http://www.fda.gov/ohrms/dockets/dockets/03n0573/03N-0573-EC2Q 11 -Attach-l.pdf.
209. Danilova N., Bussman J., Jekosch K., Steiner L.A. 2005. The immunoglobulin heavy-chain locus in zebrafish: identification and expression of a previously unknown isotype, immunoglobulin Z // Nature Immunol. V. № 3. P. 295-302.
210. Daugherty D.J., Sutton T.M., Greil R.W. 2003. Life-history characteristics, population structure, and contribution of hatchery and wild steelhead in a Lake Huron tributary // J. Great Lakes Res. V. 29. № 3. P. 511-520.
211. Devlin R.H., Donaldson E.M. 1992. Containment of genetically altered fish with emphasis on salmonids // Transgenic Fish. C.L. Hew, G.L. Fletcher (eds.). World Scientific. Singapore. P. 229-266.
212. Devlin R.H., Yesaki T.Y., Donaldson E.M., Du S.J., Hew C.L. 1995a. Production of germline transgenic pacific salmonids with dramatically increased growth-performance // Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences V. 52. P. 1376-1384.
213. Devlin R.H., Yesaki T.Y., Donaldson E.M., Hew C.L. 1995b. Transmission and phenotypic effects of antifreeze/GH gene construct in coho salmon (Oncorhynchus kisutch) II Aquaculture. V. 137. 161-169.
214. Devlin R. H., Nagahama Y. 2002. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences // Aquaculture. V. 208. P. 191-364.
215. Devlin R.H., Biagi C.A., Yesaki T.Y. 2004. Growth, viability and genetic characteristics of GH transgenic coho salmon strains // Aquaculture. V. 236. P. 607-632.
216. Diao X., Freeling M., Lisch D. 2006. Horizontal transfer of plant transposons 11 PLoS Biol. V. 4. № 1. P. 5.
217. Dillon C.J., Schill D.J., Teuscher DM. 2000. Relative Return to Creel of Triploid and Diploid Rainbow Trout Stocked in Eighteen Idaho Streams // North American J. of Fisheries Management. V. 20. P. 1-9.
218. DiBattista J.D., Anisman H., Whitehead M., Gilmour K. M. 2005. The effects of Cortisol administration on social status and brain monoaminergic activity in rainbow trout Oncorhynchus mykiss // J. Exp. Biol. V. 208. P. 27072718.
219. Dodge D.P. 1967. Some biology and vital statistics of rainbow trout, (,Salmo gairdineri) of Bothwells Creek, Lake Huron // M. Sc. Thesis. University of Guelph. Guelph. Ontario. 126 p.
220. Donaldson E.M., Devlin R.H., Piferrer F., Solar I.I. 1996. Hormones and sex control in fish with particular emphasis on salmon // Asian Fisheries Science V. 9. № l.P. 1-8.
221. Dorota F.B., Jankun M., Woznicki P. 2006. Chromosome number and erythrocyte nuclei length in triploid Siberian sturgeon Acipenser baeri (Brandt) // Caryologia. V.59. № 4. P. 319-321.
222. Du, S.J., Gong Z., Fletcher G.L., Shears M.A., King MJ., Idler D.R., Hew C.L. 1992. Growth enhancement in transgenic Atlantic salmon by the use of an 'all fish' chimeric growth hormone gene construct // Biotechniques. V. 10 P. 176-180.
223. Dunham R.A., Devlin R.H. 1998. Transgen animals in aquaculture // CAB International. Muray J.D. (eds.). Wallingford. UK. № 15. P. 91-98.
224. Dunham R.A., Warr G.W., Nichols A., Duncan P.L., Argue B., Middleton D., Kucuktas H. 2002. Enhanced bacterial disease resistance of transgenic channel catfish Ictalurus punctatus possessing cecropin genes // Marine Biotechnology. V. 4 P. 338-344.
225. DuBois R.B., Plaster S.D. 1989. Fecundity of spring- and fall-run steelhead from two western Lake Superior tributaries // Transactions of the American Fisheries Society. V. 118. P. 311-316.
226. Du Pasquier L. 1982. Ontogeny of immunological function in amphibians // The Reticuloendothelial System, Phylogeny and Ontogeny. Cohen N., Sigel M. M. (eds.). Plenum Press. New York. V. 3. 633 p.
227. Duston J., Bromage N. 2006. Photoperiodic mechanisms and rhythms of reproduction in the female rainbow trout // Fish physiol. and biochem. V. 2. № 1-4. P. 35-51.
228. Egfami N., Ishie S. 1962. Hypophyseal control of reproductive function in teleost fishes // Gen. Comp. Endocrinol. Suppl. V. l.P. 248-253.
229. Ermakova I.V. 2006. Influence of genetically modified soya on the birth-weight and survival of rat pups // Proc. «Epigenetics, Transgenic Plants and Risk Assessment». Frankfurt am Main. Germany. P. 41^18.
230. Ermakova I. V. 2007. GM soybeans revisiting a controversial format // Nature Biotechnol. V. 25. № 12. P. 1351-1354.
231. Ewen S.W.B., Pusztai A. 1999. Effect of diets containing genetically modified potatoes expressing Galanthus nivalis lectin on rat small intestine // The lancet. V. 354. October 16. P. 1353-1354.
232. Fagan J. 1993. Assessing the safety and nutritional quality of genetically engineered foods // US Congress Office of Technology Assessment
233. OTA). Harmful non-indigenous species in the United States. OTA-F-565. Washington. DC. USA. http://www.psrast.org/jfassess.htm
234. Fares N.H., El-Sayed A.K. 1999. Fine structural changes in the ileum of mice fed on endotoxin-treated potatoes and transgenic potatoes // Natural toxins. V. 6. P. 219-233.
235. Feist G., Yeoh C.G., Fitzpatrick M.S., Schreck C.B. 1995. The production of functional sex-reversed male rainbow trout with 17a-methyltestosterone and 1 lb-hydroxyandrostenedione // Aquaculture. V. 131. P. 145-152.
236. Fishelson L. 1970. Protogynous sex reversal in the fish Anthias squamipinnis (Teleostei, Anthiidae) regulated by presence or absence of male fish //Nature. V. 227. P. 90-91.
237. Fleming LA., Petersson E. 2001. The ability of released hatchery salmonids to breed and contribute to the natural productivity of wild populations // Nordic Journal of Freshwater Research. V. 75. P. 71-98.
238. Fletcher G.L., Davies P.L., Hew C.L. 1992. Genetic engineering of freeze-resistant Atlantic salmon // Transgenic Fish. Hew C. L., Fletcher G. L. (eds.). P. 190-208.
239. Fostier A., Jalabert B., Billard R., Breton B., Zohar Y. 1983. The gonadal steroid. Fish Physiology. Hoar W.S., Randal D.J., Brett J.R. (eds). Academic Press. New York. P. 277-372.
240. Francis G., Makkar H.P.S., Becker K. 2001. Antinutritional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish // Aquaculture V. 199. P. 197-227.
241. Friedman R.B., Young, D.S.I997. Effect of disease on clinical laboratory tests.3rd edition. AACC Press. Washington DC. 232 p.
242. Fry F.E.J. 1971. The effect of environmental factors on the physiology of fish // Fish Physiology. V. VI. New York-London. P. 1-98.
243. Fu C., Hu W., Wang Y, Zhu Z. 2005. Developments in transgenic fish in the People's Republic of China // Rev. Sci. Tech. Off. Int. Epiz. V. 24. № 1. P. 299-307.
244. Gall G.A.E., Crandell P.A. 1992. The rainbow trout // Aquaculture. Vol. 100. № 1-3. P. 1-10.
245. Garling D. L., Tanner H.A. 1985a. The use of heat shock to induce triploidy in chinook salmon (Oncorhyncus tshawytscha) // Department of Fisheries and Wildlife, Michigan State University. (Unpublished paper).
246. Garling D L., Tanner H.A. 1985b. Triploidy research progress report // Department of Fisheries and Wildlife, Michigan State University. (Unpublished paper).
247. Gervai J., Peter S., Nagy A., Horvath L., Csanyi V. 1980. Induced triploidy in carp, Cyprinus carpio L. // J. of Fish Biol. V. 17. P. 667-671.
248. Gielen J.T., Goos H.J.T., Peute J., Van den Bosch R.A., Van Oordt P.G.W.J. 1982. The brain-pituitary-gonadal axis in the rainbow trout, Salmogairdneri: Gonadal hormones and the maturation of gonadotropic cells // Cell Tiss. Res. V. 225. P. 45-56.
249. GM Crop Database. CERA's database of safety information. http.7/cera-gmc.org/index.php?action=gmcrop database&mode=Synopsis
250. GM Crop Database. 2001. CGN-89564-2 Flavr Savr. http://cera-gmc.org/index.php?evidcode~FLAYR+SAYR&hstIDXCode=&gType=&AbbrCo de=&atCode=&stCode=&coIDCode=&action=gm cropdatabase&mode=Submit
251. Goudie C.A., Redner B.D., Simco B.A., Davis KB. 1983. Feminization of channel catfish by oral administration of steroid sex hormones // Transactions of the American Fisheries Society. V. 112. P. 670-672.
252. Greenberg A.S., Avila D., Hughes M., Hughes A., McKinney E.C., Flajnik M.F. 1995. A new antigen receptor gene family that undergoes rearrangement and extensive somatic diversification in sharks // Nature. V. 374. P. 168-173.
253. Guzel S., Yoruk M, Gullu K, Karaca T. 2008. Effects of oral administration of estradiol valerate on gonadal sex differentiation in the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss II J. of animal and veterinary advances. V. 7. №11. P. 1400-1404.
254. Hallerman E.M., Kapuscinski A.R. 1995. Incorporating risk assessment and risk manegment into public policies on genetically modified fmfish and shellfish // Acuaculture. V. 137. P. 9-17.
255. Heath D.D., Devlin R.H., Heath J.W., Iwama G.K. 1994. Genetic, environmental and interaction effects on the incidence of backing in Oncorhynchus tshawytscha (chinook salmon) // Heredity. V. 72. № 2. P. 146154.
256. Hew C., Davies P., Fletcher G. 1992. Antifreeze protein gene transfer in Atlantic salmon // Molec. Mar. Biol. Biotechnol. V. 1. № 4-5. P. 309-317.
257. Hirono I., Nam B.H., Enomoto J., Uchino K., Aoki T. 2003. Cloning and characterisation of a cDNA encoding Japanese flounder Paralichthys olivaceus IgD // Fish & Shellfish Immunology. V. 15. P. 63-70.
258. Hood L., Eichman K., Lackland H., Krause R.M., Ohms J.J. 1970. Rabbit antibody light chains and gene evolution // Nature. V. 228. № 5276. P. 1040-1044.
259. Hordvik I., Lindstrom C.D., Voie A.M., Jacob A.L.J., Endresen C. 1997. Structure and organization of the immunoglobulin M heavy chain genes in Atlantic salmon, Salmo salar II Molecular Immunology. V. 34. P. 631-639.
260. Hordvik I., Thevarajan J., Samdal I., Bastani N., Krossoy B. 1999. Molecular cloning and phylogenetic analysis of the Atlantic salmon immunoglobulin D gene // Scandinavian Journal of Immunology. V. 50. P. 202210
261. Hou T. 2001.Immunoglobulin M (IgM) secretions suppressed by intraperitoneal injection of testosterone in immature rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) II Can. J. Fish. Aquat. Sci. Vol.40. №3 P. 78-82.
262. Hulata G. 2001. Genetic manipulations in aquaculture: a review of stock improvement by classical and modern technologies 11 Genetica. V. 111. P. 155-173.
263. Hunter G.A., Donaldson E.M. 1983. Hormonal sex control and its application to fish culture. Fish Physiology. Hoar W.S., Randall D.J., Donaldson E.M. (eds.). New York. Academic Press. P. 223-303.
264. Hyndman C.A., Kieffer J.D., Benfey T.J. 2003. Physiology and survival of triploid brook trout following exhaustive exercise in warm water 11 Aquaculture. Vol. 221. №. 1-4. P. 629-643.
265. Idler D.R., Ng T.B. 1983. Teleost gonadotropins: isolation, biochemistry and function // Fish Physiol. V. 9A. P. 187-221.
266. Ihssen P.E., McKay L.R., McMillan I., Phillips R.B. 1990. Ploidy manipulation and gynogenesis in fishes: cytogenetic and fisheries applications I I Trans. Am. Fish. Soc. V. 119. P. 698-717.
267. Ingram M. 1988. Farming Rainbow Trout in Fresh Water Tanks and Ponds. Salmon and Trout Farming. I-st Edn. Laird L. Needham T. (eds.). Ellis Horwood Limited. England. P. 155-188.
268. Inue Y. 1969. Hepateectomy in eels. Its operation technique and effects on blood glucose // Bull. Jap. Soc. Scient. Fish. V. 35. P. 232-234. P. 975978.
269. Inyang I.R., Daka E.R., Ogamba E.N. 2010. Effect of sub-lethal concentrations of diazinon on total protein and transaminase activieties in Clarias gariepinus // Current research journal of biological sciences. V. 2. № 6. P. 390— 395.
270. Itoh H., Suzuki K., Kawauchi H. 1990. The complete amino acid sequences of a subunits of chum salmon gonadotropins // Gen. Comp. Endocrinol. V. 78. P. 56-65.
271. Iwama G. K. 1979. "One-Eye," A Disease of Rainbow Trout (Salmo gairdneri) at The Kootenay Trout Hatchery, British Columbia // Brit. Col. Fish and Wildligfe Br. Tech. Cir. № 42. 11 p.
272. Iyengar A., Muller F., Maclean N. 1996. Regulation and expression of transgenes in fish a review 11 Transgenic Res. V. 5. P. 147-166.
273. Jamalzadeh H. R., Oryan S., Ghomi M. R. 2008. Hematological characteristics and correlations of diploid and triploid Caspian salmon Salmo trutta caspius in juvenile stage // Journal of Cell and Animal Biology. V. 2. № 12. P. 195-198.
274. James C. 2009. Global status of commercialized biotech/GM crops: 2009 // ISAAA Brief № 41. Ithaca. New York. 44 p.
275. Jankun M., Kuzminski H., Furgala-Selezniow G. 2007. Cytologic ploidy determination in fish an example of two salmonid species // Environmental biotechnology. V. 3. № 2. P. 52-56.
276. Johnstone R., Simpson T.H., Youngson A.F., Whitehead C. 1979. Sex reversal in salmonid culture. Part II. The progeny of sex-reversed rainbow trout // Aquaculture. V. 18. P. 13-19.
277. Johnstone R., Maclachlan P.M. 1994. Further observations on the sex inversion of Atlantic salmon, Salmo salar L., using 17a-methyltestosterone // Aquaculture and Fisheries Management. V. 25. P. 855-859.
278. Jungalwalla. P.J. 1991. Production of non-maturing Atlantic salmon in Tasmania // Canadian Technical Report of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 1789. P. 47-71.
279. Kajimura S., Duan C. 2007. Insulin-like growth factor-binding protein-1: an evolutionarily conserved fine tuner of insulin-like growth factor action under catabolic and stressful conditions // Journal of Fish Biology. V. 71. Supplement C. P. 309-325.
280. Kawamoto S., Matsumoto Y., Mizuno K., Okubo K., Matsubara K. 1996. Expression profiles of active genes in human and mouse livers I I Gene. V. 174. P. 151-158.
281. Kawauchi H., Suzuki K., Itoh H., Swans on P., Naito N., Nagahama Y., Nozaki M., Nakai Y., Itoh S. 1989. The duality of teleost gonadotropins // Fish Physiol. Biochem. V. 7. P. 29-38.
282. Kime D.E. 1996. Use of computer assisted sperm analysis (CASA) for monitoring the effects of population on sperm quality of fish application to tlu effects of heavy metals // Coll. Repr. IZWO. Oostende. V. 26. P. 312-326.
283. Klyashtorin L.B. 2001. Climate change and long-term fluctuation of commercial catches: the possibility of forecasting. Rome. FAO Fisheries Technical Paper. № 410. 86 p.
284. Koenig M. K., Kozfkay J. R., Meyer K. A., Schill D. J. 2011. Performance of diploid and triploid rainbow trout stocked in Idaho Alpine lakes // North American Journal of Fisheries Management. V. 31. № 1. P. 124-133.
285. Kostow K. 2008. Factors that contribute to the ecological risks of salmon and steelhead hatchery programs and some mitigating strategies // Reviews in Fish Biology and Fisheries. V. 19. № l.P. 9-31.
286. Kostow K.E., Marshall A.R., Phelps S.R. 2003. Naturally spawning hatchery steelhead contribute to smolt production but experience low reproductive success // Trans. Am. Fish. Soc. V. 132. P. 780-790.
287. Koumansvandiepen J.C.E., Egberts E., Peixoto B.R., Taverne N., Rombout J.H.W.M. 1995. B-cell and immunoglobulin heterogeneity in carp (Cyprinus carpio L.) an immuno(cyto)chemical study // Developmental and Comparative Immunology. V. 19. P. 97-108.
288. Krisfalusi M., Cloud J.G. 1999. Gonadal sex reversal in triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // J. Exp. Zool. V. 284. № 4. P. 466-472.
289. Kuiper H.A., Kok E.J., Engel K.-H. 2003. Exploitation of molecular profiling techniques for GM food safety assessment // Current Opinion in Biotechnology. V. 14. P. 238-243.
290. Kuo C.M., Ting Y.Y., Yeh S.L. 1988. Induced sex reversal and spawning of blue-spotted grouper Epinephelus fario II Aquaculture. V. 74. P. 113126.
291. Le Menn F. 2000. A new approach to fish oocytevitellogenesis // Proc. 6th Int. Symp. Repr. Physiol. Fish. Bergen. P. 281-284.
292. Lee P., King H, Pankhurst N. 2004. Preliminary assessment of sex inversion of farmed Atlantic salmon by dietary and immersion androgen treatments // North Am. J. Aquacult. V. 66. № l.P. 1-7.
293. Lebedeva E.B., Vasil'ev V.P., Ryskov A.P. 2005.The gynogenetic form of fish from the genus cobitis (cobitidae) in a region of its geographic range is monoclonal: DNA fingerprinting data // Doklady Biological Sciences. T. 401. № 1-6. C. 107-109.
294. Leemans J. 1993. Ti to Tomato, Tomato to Market: A decade of plant biotechnology // BioTechnology. V. II. №3. P. S22-S23.
295. Levin P.S., Williams J.G. 2002. Interspecific effects of artificially propagated fish: an additional conservation risk for salmon // Conservation Biology. V. 16. P. 1581-1587.
296. Lightfoot G. 2004. Triploid trout in native trout waters: Phase 1-literature review and recommendations for Phase 2 // Trout News. V. 38. P. 2526.
297. Lin S., Gaiano N., Culp P., Burns J., Friedmann T., Yee Y., Hopkins N. 1994. Integration and germ-line transmission of a pseudotyped retroviral vector in zebrafish // Science. V. 265. № 5172. P. 666-669.
298. Lincoln R.F., Scott A.P. 1983. Production of all-female triploid rainbow trout // Aquaculture. V. 30. P. 375-380.
299. Liu Y., Iwasaki T., Watarai S., Kodama H. 2004. Effect of turpentine oil on C-reactive protein (CRP) production in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) // Fish Shellfish Immunol. V. 17 № 3. P. 203-210.
300. Lou Y.D., Purdom C.E. 1984. Polyploidy induced by hydrostatic pressure in rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson // Journal of fish biology. V. 25.3. 345-351.
301. Lu J-K., Chen T. T., Chrisman C. L., Andrisani O.M., Dixon J. E. 1992. Integration, expression, and germ-line transmission of foreign growth hormone genes in medaka (Oryzias latipes) // Mol. Mar. Biol. Biotech. V. l.P. 366-375.
302. Lu J.K., Fu B.H., Wu J.L., Chen T.T. 2002. Production of transgenic Silver sea bream (Sparus sarba) by different gene transfer method // Mar. Biotechnol. V. 4. P. 328-337.
303. MacCrimmon H.R., Gots. B.L. 1972. Rainbow trout in the Great Lakes // Ontario Ministry of Natural Resources. 66 p.
304. MacCrimmon H.R., Gordon J.D. 1981. Salmonid spawning runs and estimated ova production in Normandale Creek of Lake Erie // J. of Great Lakes Research. V. 7. P. 155-161.
305. Maclean N. 1998. Regulation and exploitation of transgenes in fish // Mutat. Res. №3 99. P. 255-256.
306. Maclean N., Penman D. 1990. The application of gene manipulation to aquaculture // Aquaculture. V. 85. P. 1-20.
307. Maclean N, Laight R.G. 2000. Transgenic fish an evaluation of benefits and risks // Fish fisher. V. l.P. 146-172.
308. Maclean N. Rahman M.A., Sohm F., Hwang G., Iyengar A., Ayad H., Smith A., Farahmand H. 2002. Transgenic tilapia and the tilapia genome // Gene. V. 295. P. 265-277.
309. Maclean N., Hwang G., Ashton T. 2005. GM fish in the context of biosafety // Collection of biosafety reviews. V. 2. P. 36-65.
310. Malatesta M., Caporalony C., Gavaudan S., Rocchi M.B.L., Tiberi C.,
311. Gazzanelli G. 2002. Ultrastructural, morphometrical and immunocytochemical analysis of hepatocyte nuclei from mice fed on genetically modified soybean // Cell Struct. Funct. V. 27. P. 173-180.
312. Malatesta M., Biggiogera M., Manuali E., Rocchi M.B.L., Baldelli B., Gazzanelli G. 2003. Fine structural analyses of pancreatic acinar cell nuclei from mice fed on GM soybean // Eur. J. Histochem. V. 47. P. 385-388.
313. Malison J.A., Held J.A., Weil L.S., Kayes T.B., Thorgaard G.H. 2001. Manipulation of ploidy in walleyes by heat shock and hydrostatic pressure shock // N. Am. J. Aquacult. V. 63. P. 17-24.
314. Martin B., Rotten D., Jolivet A., Guatray J.P. 1981. Binding of steroids by proteins in follicular fluid of the human ovary // J. Clin. Endicrinol. Metab. № 35. P. 443-^47.
315. Martinez-Porchas M., Martinez-Cordova L.R., Ramos-Enriquez R. 2009. Cortisol and glucose: reliable indicators of fish stress? // Pan-American journal of aquatic sciences. V. 4. № 2. P. 158-178.
316. Matsunaga T., Chen T., Tormanen V. 1990. Characterization of a complete immunoglobulin heavy-chain variable region germ-line gene of rainbow trout (immunoglobulin gene evolution) // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. Immunology. V. 87. P. 7767-7771.
317. Matty A.J. 1985. Fish Endocrinology // 1-st Edn. Timber Press Ltd. Portland. P. 220-241.
318. Maule A. G., Schreck R., Slater C., Fitzpatrick M.S., Schreck C.B. 1996. Immune and endocrine responses of adult Chinook salmon during freshwater immigration and sexual maturation // Fish Shellfish Immunol. V. 6. P. 221-233.
319. McAndrew B., Napier J. 2010. Foresight project on global food and farming futures. Application of genetics and genomics to aquaculture development: current and future directions // Journal of Agricultural Science. P. 1-9.
320. Melamed P., Rosenfeld H., Elizur A., Yaron Z. 1998. Endocrine regulation of gonadotropin and growth hormone gene transcription in fish // Comp. Biochem. Physiol. V. 119. P. 325-338.
321. Misra R.R., Crance K.A., Bare R.M. & Waalkes M.P. 1997. Lack of correlation between the inducibility of metallothionein mRNA and metallothionein protein in cadmium-exposed rodents // Toxicology. V. 117. P. 99-109.
322. Molony B. 2001. Environmental requirements and tolerances of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brown trout (Salmo trutta) with special reference to Western Australia // Fish. Res. rep. West Aust. № 130. P. 1-28.
323. Morrow J.E. 1980 The freshwater fishes of Alaska. University of. B.C. Animal Resources Ecology Library. 248p.
324. Muir W.M., Howard R.D. 1999. Possible ecological risks of transgenic organism release when transgenes affect mating success: Sexual selection and the Trojan gene hypothesis // Proceedings of the National Academy of Sciences USA V. 96. P. 13853-13856.
325. Muir W.M., Howard R.D. 2001. Fitness components and ecological risk of transgenic release: A model using Japanese medaka (Oryzias latipes) // American Naturalist V. 158. P. 1-16.
326. Nam Y.K., Noh J.K., Cho Y.S., Cho H.J., Kim C.G., Kim D.S. 2001. Dramatically accelerated growth and extraordinary gigantism of transgenic mud loach Misgurnus mizolepis II Transgenic Research. V. 10. P. 353-362.
327. Needham P.P., Taft A.S. 1934. Observation on the spawning of steelhead trout 11 Trans. Amer. Fish. Soc. V.64. P. 341-346.
328. Odell J.T., Nagy F., Chua N.H. 1985. Identification of DNA sequences required for activity of the CaMV promoter 11 Nature. V. 313. P. 810812.
329. Okuzava K. 2002. Puberty in teleosts 11 Fish physiology and biochemistry. V. 26. P. 31-41.
330. Olio R., Sikov V., Rougeon F. 1983. Structural relationships among mouse and human immunoglobulin VH genes in the subgroup III // Nucleic Acids Res. V. 11. № 22. P. 7879-7887.
331. Ozato K., Kondoh H., Inohara H., Iwamatsu T., Wakamatsu Y., Okada T.S. 1986. Production of transgenic fish: introduction and expression of chicken 5-crystallin gene in medaka embryos // Cell Diff. V. 19. P. 237-244.
332. Palmer T. K, Ryman B. E. 1972. Studies on oral glucose intolerance in fish // Journal of Fish Biology. V. 4. № 2. P. 311-319.
333. Pandian T.J. 2001. Guidelines for research and utilization of genetically modified fish // Current science. V. 81. № 9. P. 1172-1178.
334. Pandian T.J., Sheela S.G. 1995. Hormonal induction of sex reversal in fish // Aquaculture. V. 138. P. 1-22.
335. Pawson M.G. 2003. Triploid trout in native trout waters: Phase 1. Literature review and recommendations for Phase 2 // R&D Technical Report W2-078/TR1. 71 p.
336. Pascual P., Pedrajas J.R., Toribio F., Lopez-Barea J., Peinado J. 2003. Effect of food deprivation on oxidative stress biomarkers in fish (Sparus aurata) // Chemico-biological interactions. V. 145. 191-199.
337. Pearsons T.N., Hopley C.W. 1999. A Practical Approach for Assessing Ecological Risks Associated with Fish Stocking Programs // Fisheries Management. V. 24. № 9. p. 16-23.
338. Peterson M.S., Meador M.R. 1994. Effects of salinity on freshwater fishes in coastal plain drainages in the southeastern U.S. // Rev. Fish. Sci. V. 2. P. 95-121.
339. Pickering A.D., Pottiringer T.G. 1987. Lymphocytopenia and interregnal activity during sexual maturation in the brown trout // J. Fish Biol. V. 30. P. 41-50.
340. Pierce F.L., Fukada H., Dickhoff W.W. 2005. Metabolic hormones modulate the effect of growth hormone (GH) on insulin-like growth factor-I (IGF-I) mRNA level in primary culture of salmon hepatocytes // Journal of Endocrinology. V. 184. P. 341-349.
341. Piferrer F. 2001. Endocrine sex control strategies for the feminization of teleost fish // Aquaculture. V. 197. P. 229-281.
342. Piferrer F, Donaldson E.M. 1991. Dosage-dependent differences in the effect of aromatizable and nonaromatizable androgens on the resulting phenotype of coho salmon (Oncorhynchus kisutch) // Fish Physiology and Biochemistry. V. 9. P. 145-150.
343. Piferrer F., Donaldson E.M. 1992. The comparative effectiveness of the natural and a synthetic estrogen for the direct feminization of chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) // Aquaculture. V. 106. P. 183-193.
344. Pisano E., Coscia R. M., Mazzei F., Ghigliotti L., Coutanceau J.P., Ozouf-Costaz C., Oreste U. 2007. Cytogenic mapping of immunoglobin heavy chain genes in Antarctic fish // Genetica. V. 130. P. 9-17.
345. Piatt J.L. 1996. Xenotransplantation: recent progress and current perspectives // Cur. Opin. Immunol. V. 8 №5. P. 721-728.
346. Pusztai A. 1998. Report of Project Coordinator on data produced at the Rowett Research Institute // SOAEFD flexible Fund Project RO 818. 22.10.1998. http://www.rowett.ac.uk/gmo/aip.htm
347. Ramos F., Smith A.C. 1978. The C-reactive protein (CRP) test for the detection of early disease in fishes// Aquaculture. V. 14. № 3. P. 261-266.
348. Rechavi G., Bienz B., Ram D., Ben-Neriah Y., Cohen J.B., Zykut R., Givol D. 1982. Organization and evolution of immunoglobulin VH gene subgroups // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. V. 79. P. 4405-4409.
349. RehulkaJ., MinarikB., Adamec V., Rehulkova E. 2005. Investigations of physiological levels of total plasma protein in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) // Aquaculture Research. V. 36. № 1. P. 22-32.
350. Recoubratsky A.V., Gomelsky B.I., Emelyanova O.V., Pankratyeva E.V. 1992. Triploid common carp produced by hear shock with industrial fish-farm technology // Aquaculture. V. 108. P. 13-19.
351. Refstie T., Vassvik V., Gjedrem T. 1977. Induction of polyploidy in salmonids by cytochalasin B // Aquaculture. V. 10. P. 65-74.
352. Refstie T., Stoss J., Donaldson E. M. 1982. Production of all female coho salmon (Onchorhyncus kisutch) by diploid gynogenesis using irradiated sperm and cold shock // Aquaculture. V. 29. P. 67-82.
353. Reinboth R. 1962. Morphologische und funk-tionelle Zweigeschlecht Hchkeit bei marinen Teleostiern (Serranidae, Sparidae, Centracanthidae, Labridae) // Zool. Jb. Abt. Allg. Zool. Physiol. V. 69. P. 405-480.
354. Reinboth, R. 1967. Biandric teleost species // Gen. Corp. Endocrinol. V. 9. 146 p.
355. Reinboth R. 1972. Hormonal control of the teleost ovary // Amer. Hatching. Cell. Tissue Res. V. 224. № 2. P. 361-368.
356. Reinboth R. 1980. Can Sex Inversion Be Environmentally Induced? // Biol, of reproduction. V. 22. P. 49-59.
357. Reisenbichler R.R., Rubin S.P. 1999. Genetic changes from artificial propagation of Pacific salmon affect: the productivity and viability of supplemented populations // ICES Journal of Marine Science. V. 56. P. 459-466.
358. Rodgers D.W., Griffiths J.S. 1983. Effects of elevated thermal regimes on survival of rainbow trout (Salmo gairdneri) // J. Great Lakes Res. V. 9. P. 421^24.
359. SaeedS. S., Reza I. M., Bagher A. F., Saeed G. 2010. Study on Levels of 17-Beta Estradiol and Testosterone in Female Kutum Rutilus frisii kutum (Kamenskii, 1901) of Southern Caspian Sea // World J. of Zoology. V. 5. № 3. P. 217-224.
360. Salomons G. S., Wyss M. 2007. Creatine and creatine kinase in health and disease // Series: Subcellular Biochemistry. Vol. 46. XVIII. 352 p.
361. Savan R., Aman A., Sato K., Yamaguchi R., Sakai M. 2005. Discovery of a new class of immunoglobulin heavy chain from fugu // European Journal of Immunology. V. 35. P. 3320-3331.
362. Savanand R.D., Sakai M. 2009. Immunoglobulin Genes of Teleosts // Immunology. Discovery of New Immunoglobulin Class. Fish Defenses Vol. 1. Zaccone G., Meseguer J., Garcia-Ayala A., Kapoor B. G. (eds.). Science Publishers. P. 221-239.
363. Schafhauser-Smith D., Benfey T.J. 2002. The reproductive physiology of three age classes of female diploid and triploid brook trout (Salvelinus fontinalis) II Fish Physiol. Biochem. V. 25. №4. P. 319-333.
364. Scheerer P. D., Thorgaard G. H. 1983. Increased survival in salmonid hybrids by induced triploidy // Canadian J. of Fisheries and Aquatic Sciences. V. 40. P. 2040-2044.
365. Schultz R.J. 1969. Hybridization, unsexuality, and polyploidy in the teleost Poeciliopsis (Poecilidae) and other vertebrates // American Naturalist. V. 108. P. 605-619.
366. Scott W.B., Crossman E.J. 1973 .Freshwater fishes of Canada // J. Fish. Res. Board. Can. Bull. 184. Ottawa. 966 p.
367. Semenkova, T.B., Bayunova, L.V., Boev, A.A., Dyubin, V.P. 1999. Effects of stress on serum Cortisol levels of sturgeon in aquaculture // J. Appl. Ichthyol. Vol. 15. P. 270-272.
368. Seralini G.E., Cellier D., Vendomois J.S. 2007. New analysis of a rat feeding study with a genetically modified maize reveals signs of hepatorenal toxicity // Arch. Environ. Contam. Toxicol. V. 52. P. 596-602.
369. Shears M.A., Fletcher G.L., Hew C.L., Gauthier S., Davies P.L. 1991. Transfer, expression and stable inheritance of antifreeze protein genes in Atlantic salmon (Salmo salar) II Molecular and marine biology and biotechnology. V. 1. 58-63.
370. Shireman J. V. 1984. Control of aquatic weeds with exotic fishes. Distribution, biology, and management of exotic fishes.Courtenay R., Stauffer J.R. (eds.). Johns Hopkins University Press. Baltimore. Maryland. P. 302-312.
371. Siiteri P.K., Murai J.T., Hammond G.L., Nisker J.A., Raymoure W.J., Kuhn RW. 1982. The serum transport of steroid hormones // Rec. Prog. Horm. Res. №38. 457-510 p.
372. Sin F. Y.T. 1997. Transgenic fish // Reviews in Fish Biology and Fisheries. V. 7. P. 417-441
373. Sin F. Y.T., Mukherjee U. K„ Walker L., Sin I.L. 1997. The application of gene transfer techniques to marine resource management: recent advances, problems and future directions // Hydrobiologia. V. 352. P. 263-278.
374. Slater C.H., Fitzpatrick M.S., Schreck C.B. 1995. Androgens and immunocompetence in salmonids: specific binding in an reduced immunocompetence of salmonid lymphocytes exposed to natural and syntetic androgens // Aquaculture. V. 136. P. 754-759.
375. Smith T. 2007. Transgenic fish stay in the pound // Research -Quality of life Genetically modified organisms - A review of results. 4 p. http://www.ec.europa.eu/research/quality-of-life/gmo/07-fish/07-intro.htm
376. Smith J. G., Walzem R. L., German J. B. 1993. Liposomes as agents of DNA transfer // Biochim. Biophys. Acta. V. 1154. P. 327-340.
377. Smith L. T., Lemoine H. L. 1979. Colchicine-induced polyploidy in brook trout // The Progressive Fish-Culturist. V. 41. P. 86-88.
378. Smith G.R., Stearley R.F. 1981. The classification and scientific names of rainbow and cutthroat trouts // Fisheries. Bethesda. V. 14. № 1. P. 4-10.
379. Solar I.I., Donaldson E. M., Hunter G.A. 1984a. Induction of triploidy in rainbow trout (Salmo qairdneri Richardson) by heat shock, and investigation of early growth // Aquaculture. V. 42. P. 57-67.
380. Solomon D.J. 2002. The potential for restocking using all-female triploid brown trout to avoid genetic impact upon // Trout news. № 35. P. 28-31.
381. Sowers JR., Beck F.W.J., Eggena P. 1984. Effect of ganglionic blockade with trimethapan on corticosteroid responses to metoclopramide in Rhesus monkeys // J. Hypertens. V. 2. P. 367-370.
382. Stolz J., Schnell J. 1991. Trout. Stackpole. Pennsylvania. 370 p.
383. Sun Y., Chen S., Wang Y., Zhu Z. 2000. The onset of foreign gene transcription in nuclear transferred embryos of fish // Science in China. Series C. V. 43. P. 597-605.
384. Sutterlin A.M., Stevens E.D. 1992. Thermal behaviour of rainbow trout and arcric char in cages moored in stratified water // Aquaculture. 1992. V. 102. № 1-2. P.65-75.
385. Suzuki K., Kawauchi H., Nagahama Y. 1988 a. Isolation and characterization of two distinct gonadotropins from chum salmon pituitary glands // Gen. Comp. Endocrinol. V. 71. P. 292-301.
386. Suzuki K, Kawauchi H., Nagahama Y. 1988 b. Isolation and characterization of two distinct gonadotropins from chum salmon pituitary glands // Gen. Comp. Endocrinol. V. 71. P. 302-306.
387. Suzuki Y., Orito M., Iigo M., Kezuka H., Kobayasi M., Aida K. 1996. Seasonal changes in blood IgM levels in goldfish, with special reference to water temperature and gonadal maturation // Fish Sci. V. 62. P. 754-759.
388. Suzuki Y, Otaka T„ Sato S., Hou Y.Y., Aida K. 1997. Reprouction related immunoglobulin changes in rainbow trout // Fish physiology and biochemistry. V. 17. P. 415-421.
389. Swanson P. Suzuki K., Kawauchi H., DickhojfW.W. 1991. Isolation and characterization of two coho salmon gonadotropins, GTH I and GTH II // Biol. Reprod. V. 44. P. 229-240.
390. Swanson P., Dickey J.T., Campbell B. 2003. Biochemistry and physiology of fish gonadotropins // Fish physiology and biochemistry. V.28. P. 53-59.
391. Tacke E., Salamini F., Ronde W. 1996. Genetic engineering of potato for broad-spectrum protection against virus infection // Nat. Biotechnol. V. 14. P. 1597-1601.
392. Tewari R., Vahnee M., Perrot E., Chourrout D, 1992. Mendelian transmission, structure and expression of trasngenes following their injection into the cytoplasm of trout eggs // Transgenic Res. V. l.P. 250-260.
393. Thorgaard G. H., Gall G. A. E. 1979. Adult triploids in a rainbow trout family // Genetica. V. 93. P. 961-973.
394. Thorgaard G H., Jazwin M. E., Stier A. R. 1981. Polyploidy induced by heat shock in rainbow trout // Transactions of the American Fisheries Society. V. 110. P. 546-550.
395. Tietz N.W. 1995. Clinical guide to laboratory tests 3rd ed. AACC. 1952 p.
396. Tiwary B.K. 2001. Plasmalevels of Gonadotropin-II and gonadal sex steroids in triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch) // Fish Physiology and Biochemistry. V. 24. P. 9-14.
397. Tiwary B.K., Kirubagaran R, Ray A.K. 2001. Plasma levels of gonadotropin-n and gonadal sex steroids in triploid catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch)//Fish physiology and biochemistry. № 24. P. 9-14.
398. Tyler C.R., Sumpter J.P., Kawauchi H., Swanson P. 1991. Involvement of gonadotropin in the uptake of vitellogenin into vitellogenic oocytes of rainbow trout, Oncorhyncus mykiss II Gen. Comp. Endocrinol. V. 84. P. 291-299.
399. Tyler C.R., Pottinger T.C., CowardK., Prat F., BeresfordN., Maddix S. 1997. Salmonid follicle-stimulating hormone (GtH I) mediates vitellogenic development of oocytes in rainbow trout, Oncorhyncus mykiss II Biol. Reprod. V. 57. P. 1238-1244.
400. Van Muiswinkel W.B. 2008. A History of Fish Immunology and Vaccination I. The early days // Fish & Shellfish Immunology. V. 25. P. 397-408.
401. Vesely T., Reschova S., Pokorova D., Hulova J., Nevorankova Z. 2006. Production of monoclonal antibodies against immunoglobulin heavy chain in common carp (Cyprinus carpio L.) I I Veterinarni Medicina. V. 51. № 5. P. 296-302
402. Virtanen E. 1987. Correlations between energy metabolism, osmotic balance and external smolt indices in smolting young salmon Salmon salar L. 11 Ann. Zool. Fennici. V. 24. P. 71-78.
403. Wang K, Hu W., Wu G., Sun Y., Chen S., Zhang F., Zhu Z, Feng J., Zhang X. 2001. Genetic analysis of 'all-fish' growth hormone gene transferred carp (Cyprinus carpio L.) and its F1 generation // Chin. Sci. Bull. V. 46. P. 11741177.
404. Wardle C.S. 1972. The changes in blood glucose in Pleuronectes platessa following capture from the wild: a stress reaction // Journal of the marine biological association of the United Kindom. V. 52. № 3. P. 635-651.
405. Warr G.W. 1995. The immunoglobulin genes of fish // Developmental and Comparative Immunology. V. 19. P. 1-12.
406. Wedemeyer G., Chatterton K. 1971. Some blood chemistry values for juvenile coho salmon {Oncorhynchus kisutch) // J. Fish. Res.Board Can. V. 28. P. 606-608.
407. Wei H, ZuoYan Zhu. 2010. Integration mechanisms of transgenes and population fitness of GH transgenic fish // Science China. Life Sciences. V. 53. №4. P. 401-408.
408. Weithman A.S., Haas M.A. 1984. Effects of dissolved-oxygen depletion on the rainbow trout fishery in Lake Taneycomo, Missouri // Trans. Am. Fish. Soc. V. 113. P. 109-124.
409. Wilson M.R., Wang A.C., Fish W.W., Warr G.W 1985. Anomalous behavior of goldfish IgM heavy-chain in sodium dodecyl-sulfate polyacrylamide-gel electrophoresis // Comparative Biochemistry and Physiology Biochemistry & Molecular Biology. V. 82. P. 41-49.
410. Winn R.N. 2001. Transgenic fish as models in enviromntal toxicology // ILAR Journal. V. 42. №3. P. 322-329.
411. Witten P.E., Gil-Martens L, Huysseune A., Takle H., Hjelde K. 2009. Towards a classification and an understanding of developmental relationships of vertebral body malformations in Atlantic salmon // Aquaculture. V. 295. P. 6-14.
412. Wlasow T., Kuzminsi H., Woznicki P., Ziomek E. 2004. Blood cell alteration in triploid brook trout Salvelinus fontinalis (Mitchill) // Acta vet. Brno. №73. P. 115-118.
413. Wolters W.R., Libey G S., Chrisman C.L. 1981. Induction of triploidy in channel catfish // Transactions of the American Fisheries Society. V. 110. P. 310-312.
414. Wolters W. R., Libey G. S., Chrisman C. L. 1982. Effect of triploidy on growth and gonadal development of channel catfish // Transactions of the American Fisheries Society V. 111. P. 102-105.
415. Woznicki P., Kuzminski H. 2002. Chromosome number and erythrocyte nuclei length in triploid brook trout (Salvelinus fontinalis) II Caryologia. V. 55. № 4. P. 295-298.
416. Wu J.-L., Lu J.-K. 2002. Transgenic fish for aquaculture // Marine Biotechnology. № 4. P. 328-337.
417. Xu K, Wei Y, Guo L, Zhu Z. 1991. The effects of growth enhancement of human growth hormone gene transfer and human growth administration on crucian carp (Carassius auratus gibelio, Bloch) // Acta Hydrobiol Sinica. V.15. P. 103-109.
418. Yamamoto. T. 1969. Sex differentiation // Fish physiology. V. III. New York. Academic Press. P. 111-111.
419. Yamazaki F. 1983. Sex control and manipulation in fish // Aquaculture. V. 33. P. 329-354.
420. Yaron Z. 1995. Blocks along the hypothalamo-hypophyseal-gonadal axis in immature black carp, Mylopharyngodon piceus II Proc. 5-th Int. Symp. Reproduct. Physiol. Fish. Austin. P.22-24.
421. Yildiz H.Y. 2006. Plasma lysozyme levels and secondary stress response in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) after Exposure to Leteux-Meyer Mixture // Turk. J. Vet. Anim. Sci. № 30. P. 265-269.
422. Yoon S.J., Liu Z., Kapuscinski A.R., Hackett P.B., Faras A., Guise K.S. 1990. Successful gene transfer in fish I INOAA Techn. Rept NMFS. № 92. P. 39^14.
423. Zapata A.G., Varas A., Torroba M. 1992. Seasonal variations in immune systems of lower vertebrates // Immunol. Today. V. 147. P. 142-147.
424. Zelenin A.V., Alimov A.A., Barmintez V.A., Beniumov A.O., Zelenina I.A., Krasnov A.M., Kolesnikov V.A. 1991. The delivery of foreign genes into fertilised fish eggs using high velocity microprojectiles // FEBS Lett. V. 287. P. 118-120.
425. Zeng Z., Zhu Z. 2001. Transgenes in F4 pMThGH transgenic common carp (Cyprinus carpio L.) are highly polymorphic // Chin. Sci. Bull. V. 46. P. 143— 147.
426. Zhao Y., Kacskovics /., Pan Q., Liberies D.A., Geli J., Davis S.K., Rabbani H., Hammarstom L. 2002. Artiodactyl IgD: The Missing Link // Journ. Immunol. V. 169. P. 4408^1416.
427. Zhao Y., Pan-Hammarstrom Q., Yu S., Wertz N., Zhang X., Li N., Butler J.E., Hammarstrom L. 2006. Identification of IgF, a hinge-region-containing Ig lass, and IgD in Xenopus tropicalis II PNAS. V. 103. № 32. P. 12087-12092.
428. Zhu Z.G., Li L.H., Chen S. 1985. Novel gene transfer into the fertilized eggs of gold fish (Carassius auratus L., 1758) // Journ. Appl. Ichtyol. V. LP. 31-34.
Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.