Физиологические реакции фацелии рябинколистной (Phacelia tanacetifolia Benth.) на действие почвенной засухи при инокуляции семян штаммами ассоциативных ризобактерий тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, кандидат биологических наук Муратова, Рузиля Рамильевна

• Муратова, Рузиля Рамильевна
• кандидат биологических наук
• 2013

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Муратова, Рузиля Рамильевна

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Морфобиологические особенности и хозяйственное значение фацелии рябинколистной

1.2. Условия выращивания фацелии

1.3. Перспективы использования бактериальных препаратов при выращивании небобовых культур

1.4. Влияние засухи на физиолого-биохимические процессы растений

Заключение

II. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Биологические особенности фацелии рябинколистной сорта Наталия как объекта исследований

2.2. Характеристика используемых в опытах штаммов ризобактерий

2.3. Почвенно-климатические условия проведения экспериментов

2.4. Методика закладки и проведения вегетационных и полевых опытов

2.5. Физиолого-биохимические методы исследований

III. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ

3.1. Скрининг штаммов ассоциативных ризобактерий по выявлению стимулирующих эффектов на всхожесть и прорастание семян фацелии

3.2. Выявление оптимальной дозы минерального азота при выращивании фацелии рябинколистной

3.2.1. Влияние возрастающих доз минерального азота на всхожесть,

рост и развитие растений фацелии

3.2.2. Формирование площади листовой поверхности в зависимости от дозы минерального азота

3.2.3. Прирост биомассы фацелии рябинколистной при внесении возрастающих доз азотных удобрений

3.2.4. Содержание основных минеральных элементов питания в надземных органах фацелии рябинколистной на разном азотном фоне

3.3. Совместное действие бактериальных препаратов и минерального азота при выращивании фацелии рябинколистной

3.3.1. Влияние бактериальных препаратов на ростовые показатели фацелии

3.3.2. Некоторые параметры водного режима фацелии рябинколистной

3.3.3. Формирование зеленой массы фацелии в зависимости от штамма ассоциативных ризобактерий

3.4. Роль ассоциативных ризобактерий в формировании устойчивости фацелии рябинколистной к почвенной засухе

3.4.1. Влияние инокуляции семян фацелии рябинколистной на морфометрические параметры растений при водном стрессе

3.4.2. Показатели водного режима растений инокулированных штаммами ризобактерий при разных условиях увлажнения

3.4.3. Фотосинтетический потенциал фацелии рябинколистной при нормальном увлажнении и почвенной засухе

3.4.4. Влияние почвенной засухи на некоторые физиолого-биохимические показатели

3.4.5. Продуктивность фацелии рябинколистной при обработке семян бактериальными препаратами в условиях почвенной засухи

3.5.6. Индекс чувствительности к засухе - оценка засухоустойчивости фацелии рябинколистной при инокуляции семян ризобактериями

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физиологические реакции фацелии рябинколистной (Phacelia tanacetifolia Benth.) на действие почвенной засухи при инокуляции семян штаммами ассоциативных ризобактерий»

ВВЕДЕНЙЕ

Актуальность исследования. Особую актуальность приобретают исследования, посвященные изучению и разработке приемов выращивания

растений, обеспечивающих им устойчивость к действию негативных

i

факторов окружающей среды, в частности к почвенной засухе. Это связано с возрастающей нестабильностью климата и расширением площадей засушливых земель. Засуха является одним из внешних факторов, ингибирующих многие метаболические процессы, лимитирующих рост и продуктивность растений (Удовенко, 1973; Chaves, 2004; Кошкин, 2010).

Для увеличения продуктивности и устойчивости культурных растений особое внимание уделяется использованию бактериальных препаратов, изготовленных на основе штаммов ассоциативных ризобактерий (Кожемяков и др., 2004; Белимов, 2010). Они оказывают разностороннее положительное действие на протекание физиологических процессов у растений, формирование урожайности и качество растительной продукции, являются перспективным решением проблемы снижения химической нагрузки на окружающую среду и повышения устойчивости растений к действию стрессоров (Тихонович, 2000; Завалин, 2005; Кацы, 2007). Работы с применением ризобактерий на редких (нетрадиционных) культурах единичны или отсутствуют. К числу таких культур относится фацелия рябинколистная (Phacelia tanacetifolia Benth.) - однолетнее травянистое растение семейства водолистниковых, обладающее высоким биологическим и экономическим потенциалом, что делает ее перспективной для хозяйственного использования во многих регионах России. Однако отсутствуют данные по выявлению наиболее эффективных штаммов ризобактерий для повышения устойчивости фацелии к действию почвенной засухи, а так же не изучены реакции этой культуры на действие данного стресса при инокуляции семян ризобактериями. Все это необходимо для

оценки адаптационного потенциала инокулированных штаммами ассоциативных ризобактерий культуры и понимания механизмов повышения ее устойчивости к водному стрессу.

Цель и задачи исследований. Целью работы являлось изучение физиологических реакций фацелии рябинколистной на действие почвенной засухи при инокуляции семян штаммами ассоциативных ризобактерий.

Для решения цели поставлены следующие задачи:

1. Провести скрининг штаммов, которые в большей степени оказывают стимулирующее действие на прорастание семян фацелии и рост проростков;

2. Выявить оптимальную дозу минерального азота для установления эффективных растительно-микробных взаимоотношений;

3. Исследовать совместное действие ассоциативных ризобактерий и оптимальной дозы минерального азота на некоторые морфофизиологические процессы растений;

4. Определить действие ассоциативных ризобактерий на ростовые процессы, минеральное питание, водный режим, фотосинтез, ферментативную активность фацелии рябинколистной при водном стрессе.

Научная новизна. Получены новые данные, углубляющие представления о реакции растений фацелии рябинколистной инокулированной штаммами ассоциативных ризобактерий на действие почвенной засухи. В частности показано, что инокуляция семян этой культуры перед посевом определенными штаммами ассоциативных ризобактерий {Variovorax paradoxus, штамм 5С-2; Arthrobacter mysorens, штамм 7), в сочетании с рациональной дозой азотных удобрений (60 кг/Ы/га), при почвенной засухе оказывает стимулирующее действие на рост и развитие растений. Выявлена устойчивость функциональной активности фотосинтетического аппарата, а так же сохранение количественного состава

хлорофиллов. Показано повышение уровня ферментативной активности растений, а так же активности антиоксидантных систем. Установлено, что при использовании ризобактерий стабилизируются биохимические процессы и формируется качественная продукция.

Практическая значимость. Выполненные исследования имеют большое значение для экологически безопасного и ресурсосберегающего выращивания растений, а так же дополняют и углубляют представление о реакции инокулированных растений на действие стрессовых факторов окружающей среды, в частности к почвенной засухе. Результаты исследований позволяют рекомендовать использование препаратов 5С-2 и мизорин для выращивания фацелии рябинколистной в целях повышения ее засухоустойчивости. Полученные данные могут быть применены для увеличения эффективности использования ассоциативных ризобактерий в практическом земледелии, а так же для повышения устойчивости растений к действию водного стресса.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Внесение оптимальных доз минерального азота при возделывании фацелии рябинколистной позволяет оптимизировать микробно-растительные взаимоотношения.

2. Использование отобранных бактериальных штаммов оказывает стимулирующее влияние на всхожесть семян и дальнейшие физиологические процессы растений, в результате чего повышается их биомасса и улучшается качество растительной продукции.

3. При кратковременной почвенной засухе обработка семян ризобактериями способствует меньшему нарушению роста, минерального питания, фотосинтеза и активности ферментов, что приводит к стабилизации общего состояния растений, а так же сохранению продуктивности культуры.

Апробация результатов исследования. Материалы диссертации были представлены на XI окружной конференции молодых ученых «Наука и

инновации XXI века» (Сургут, 2010); Межвузовской конференции молодых ученых «Герценовские чтения» (Санкт-Петербург, 2011); XVIII Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов - 2011» (Москва, 2011); Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы образования и науки в регионе» (Бузулук, 2011); 56-й научной конференции студентов и аспирантов «Региональные проблемы экологии и природопользования» (Псков, 2011); Всероссийской научной конференции, посвященной 15-летию биологического факультета Сургутского государственного университета «Современные проблемы биологических исследований в Западной Сибири и на сопредельных территориях» (Сургут, 2011); УП-м Съезде Общества физиологов растений России «Физиология растений - фундаментальная основа экологии и инновационных биотехнологий» и Международной школе «Инновации в биологии для развития биоиндустрии сельскохозяйственной продукции» (Нижний Новгород, 2011).

Публикации результатов исследования. По материалам диссертации опубликовано 17 печатных работ, 3 из них в рецензируемых научных журналах, входящих в перечень ВАК РФ.

Структура диссертации. Диссертация изложена на 166 страницах печатного текста и состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследования, экспериментальной части, заключения, выводов, приложения и списка литературы. Работа иллюстрирована 28 таблицами и 19 рисунками, а так же содержит 26 приложений. Список литературы содержит 235 наименований, 67 из них на иностранных языках.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Морфобиологические особенности и хозяйственное значение

фацелии рябинколистной

Фацелия рябинколистная (РкасеИа 1апасей/оИа ВепШ.) или пижмолистная - однолетнее травянистое растение из семейства Водолистниковых (Нус1горку11асеае). В семейство входит около 18 родов и 250 видов растений, которые получили свое распространение в различных местах Земного шара (Тахтаджян, 1987; Губанов, 1992). Род Фацелия {РкасеИа) насчитывает около 200 видов, они получили распространение на западе Северной Америки. Родовое название РкасеИа произошло от греческого слова факел - пучок, в связи с расположением, похожем на языки пламени.

Агроном и пчеловод Михаил Михайлович Глухов (1955) справедливо сравнивает по медопродуктивности фацелию с липой. В Шотландию из Северной Америки ее впервые привез исследователь Давид Дуглас (1832), а описал английский ботаник Г.Бентам (ВегйЬ) в 1837 году. Из Англии фацелия попала в Германию, а затем распространилась по Европе, в частности она попала и в Россию.

Наиболее распространенный вид рода РкасеИа - рябинколистная, она произрастает в диком виде на юге США. Она выращивается во многих странах Европы, также растение культивируется и в России, в частности в Европейской части, исключение составляют районы Крайнего Севера и зоны степей. В настоящее время ее культивирование отмечено в Западной Сибири и Алтайском крае. Однако в северо-западных частях нечерноземной зоны Российской Федерации использование фацелии рябинколистной практически не изучалось. Исследователей интересуют вопросы ее использования как медоносного, кормового и сидерального растения.

У фацелии очень хрупкий прямостоячий стебель, в зависимости от условий выращивания он может достигать до 90 сантиметров в длинну. Листья у нее распологаются поочередно, они сидячие, имеют ярко-зеленую окраску с голубоватым отливом. Листовая поверхность перисторассеченая, поэтому и название у фацелии «рябинколистная» (Бурмистров, 1999). Поверхность стеблей и листьев у растений фацелии покрыта волосками (Тахтаджян, 1987).

Цветки фацелии обоеполые, сидячие, актиноморфные, с двойным пятичленным околоцветником. Собраны цветки в завиток. Венчик колокольчатый, средняя длина 7-8 мм, имеет синюю или бледно-голубую окраску. В цветке насчитывается 5 тычинок. Пыльцевая обножка темно-фиолетового цвета. Пыльцевые зерна шестибороздные, широкоэллипсоидальной формы. Пыльца имеет бледно-голубой цвет. Трубка венчика у фацелии с 10-ю чешуевидными придатками. Пестик раздвоенный (Наумкин, 2001). На каждом семеносце расположено по 2 семяпочки. Плод -четырехсемянная коробочка.

На главном стебле фацелии образуется до 20 боковых ветвей, на которых распологаются веточки второго порядка. На крупных ветках, на которых находится соцветие, имеется большее количество завитков. Обычно соцветие растения состоит из 4-9 завитков. Главная ось заканчивается самым большим соцветием, на нем образуются наиболее крупные цветки и количество цветков у него может доходить до 70, а на соцветиях у боковых ветвей это количество не превышает 50. От способа посева зависит количество цветков на растении: при широкорядном до 1400, при сплошном до 180.

По классификации нектароносных растений, предложенной В.Н.Фоминых, фацелию по морфологическим признакам относят к группе полускрыто-нектарниковых.

Вегетационный период фацелии короткий: 75-90 дней. Всходы фацелии начинают появляться на четвертый день после посева. В зависимости от погодных условий и сроков посева цветение начинается через 40-45 дней, однако первые цветки иногда появляются на 30-й день. Цветение длятся 3040 дней.

Между началом бутонизации и цветением проходит около месяца. Следовательно, все внешние условия, влияющие на ход развития репродуктивных органов (температура среды, подкормка микроэлементами, качество и сила света), должны влиять на деление и дифференциацию клеток, т.е. на рост и развитие нектарника.

Продолжительность цветения составляет 1,5-2 месяца, это связано с тем, что соцветия фацелии представляют собой закрученные завитки. Каждый завиток имеет цветки, которые очень богатые нектаром. Раскручивается завиток в среднем в течении шести недель, в фазу полного цветения до 7 цветков на завитке бывает одновременно открытыми. Цветки у фацелии рябинколистной раскрываются снизу вверх, наиболее интенсивно во второй половине дня. Отмечено, что при очень высокой температуре воздуха, время цветение фацелии ускоряется, а в дождливую - затягивается (Глухов, 1955).

Количество цветков на 1 гектаре посева фацелии может превышать 500 миллионов (Бурмистров, 1999). В среднем цветок цветет 2 дня. Созревания семян у фацелии происходит не одновременно, они часто осыпаются, поэтому, чтобы избежать потери семян, уборку необходимо вести раздельно. Когда около двух трети семян на растениях побуреют. Растения необходимо срезать, а семена, расположенные на верхних коробочках дозреют на срезанных растениях. Средний урожай семян фацелии составляет 4 ц/га (Наумкин, 2001).

В России распространение получили только два вида фацелии, а практически используется только фацелия рябинколистная (Замяткин, 2002).

Ее используют как медонос, компостное растение, сидерат, выращивают в декоративных целях (Кривцов, 2007). Еще в конце XIX века пчеловоды советовали высевать фацелию как медоносное растение, так как она достаточно неприхотлива.

Пчелы посещают фацелию на протяжении всего дня. По нектаропродуктивности она уступает только липе. Установлено, что один гектар этой культуры может дать 200-300 кг меда, а при особо благоприятных условиях - до 500 кг и более. По данным А. К. Терещенко, 1 цветок фацелии в среднем выделяет 1,62 мг нектара. Сахаристость нектара доходит до 42-57%. В нектаре одного цветка за сутки образуется в среднем 0,6 мг сахара (Бурмистров, 1999; Кулаков, 2007). Нектар фацелии содержит до 53% сахарозы, остальная часть моносахариды - глюкоза (24,7%) и фруктоза (21,9%).

Средняя продуктивность фацелиевого меда в Западной Сибири составляет около 250 кг/га, на Дальнем Востоке - 200 кг/га, в Бурятии - 170 кг/га, в условиях Крайнего Севера - 160 кг/га (Наумкин, 2002).

Мед у фацелии светло-зеленоватый, с нежным вкусом и легким ароматом (Федоренко, 2003). Высокая нектаропродуктивность фацелии связана с особенностями ее биологии цветения: обилием цветков в соцветии, способностью к образованию цветущих боковых побегов, растянутостью периода цветения. Наибольшее количество медосборов отмечена во второй половине дня.

При исследовании питательной ценности и аминокислотного состава фацелиевого меда выявлено, что он характеризуется высоким содержанием валина (9,3% к белку), лейцина (9,3%), фенилаланина (8,7%) и пролина (3,6%), поэтому является ценным питательным продуктом, относящимся к первосортным сортам (Шорохов, 2004).

Общие указания о возможности возделывания фацелии не только для пчел, но так же на корм животным или удобрение почвы встречаются в

работах Г. Деревянко (1889), В. Агеенко (1899), А. Ф. Кунаховича (1910), Г. Бобяк (1909), Ф. И. Губина (1926), Г. М. Самохина (1974) и других авторов. Исследования Н.В. Семигановской (1934), Г. В. Копелькиевского (1956), а так же немецких ученых Шаррера и Шрайбера (1940), Прич (1955) и др. показали, что в растениях фацелии содержится сравнительно много протеина и золы. Концентрация белка пыльцы цветков фацелии составляет 30%. По данным лаборатории Всесоюзного института кормления животных, фацелия, взятая в конце фазы массового цветения, имела следующий химический состав:

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Муратова, Рузиля Рамильевна

Результаты исследования параметров ИФХ показали, что у растений перенесших почвенную засуху, уровень фоновой флуоресценции (F0) в среднем на 8% был выше, чем у растений, произраставших в нормальных условиях увлажнения (табл. 19, прил. 17). Внесение ризобактерий способствует снижению данного показателя. Так после ПЗ уровень фоновой флуоресценции в варианте с 5С-2 был ниже, чем у контрольных вариантов на 26%, а с мизорином на 16%.

Установлено, что и уровень максимальной флуоресценции (Fm) повышается при действии на растения почвенной засухи. Применение ассоциативных ризобактерий привело к небольшому снижению данного параметра относительно необработанных вариантов. В вариантах, где растения перенесли почвенную засуху, лучшие результаты отмечены у растений обработанных 5С-2 (81%) и мизорином (84%). Следует отметить, что показатель Рт растений, обработанных 5С-2 всего на 6% меньше, чем у растений соответствующих вариантов, выросших при НУ, в то время как в контрольном варианте эта разница составила 13%.

Заключение

Повышение стабильности урожайности, снижение энерго- и ресурсозатрат в земледелии и уменьшение глобальных нарушений процессов круговорота веществ можно достичь путем экологизации сельскохозяйственного производства (Кирюшин, 1996).

Одно из перспективных решений этих проблем - широкое внедрение экологически безопасных систем земледелия, базирующихся на севооборотах с перспективными культурами и применении биопрепаратов на основе полезных групп микроорганизмов. К числу таких перспективных, но малоисследованных культур относится фацелия.

Фацелия рябинколистная - малоисследованная, но перспективная для широкого использования сельскохозяйственная культура. Она является одним из лучших медоносов, хорошим сидератом и кормовым растением, универсальным предшественником для любых овощных культур, а также хорошо защищает почву от иссушения и эрозии. Культура перспективна для выращивания в различных почвенно-климатических районах благодаря своей неприхотливости и продуктивности.

В связи с этим, актуальность исследований, проводимых с целью изучения физиологических реакций фацелии рябинколистной инокулированной штаммами ризобактерий на действие почвенной засухи, не вызывает сомнений.

Использование биопрепаратов, изготовленных на основе штаммов ассоциативных ризобактерий, является перспективным решением проблемы снижения химической нагрузки на окружающую среду, а так же способом повышения продуктивности культурных растений (Тихонович, Проворов, 2011).

На основе проведенного лабораторного опыта установлено, что ассоциативные ризобактерии оказывают стимулирующее действие уже на этапе прорастания семян, что проявилось в повышении энергии прорастания и всхожести семян. Одновременно наблюдалось увеличение длины зародышевого корня и стебля, что в дальнейшем обосновало преимущество в обеспечении растения водой и минеральными веществами. Увеличение длины стебля способствует более раннему выходу проростка на поверхность, в результате чего молодое, растение получает возможность быстрее начать процесс фотосинтеза. Для успешного взаимодействия ассоциативных ризобактерий и растений необходим подбор соответствующего штамма к конкретной культуре, а так же создание благоприятных условий для их роста и развития. Обеспеченность растительно-бактериальной ассоциации элементами минерального питания способствует установлению эффективных ассоциативных взаимоотношений. При достаточном содержании в почве фосфорных, калийных и других макро- и микроудобрений устраняется конкуренция растений и ризосферных бактерий за эти элементы питания. Так как они необходимы для жизнедеятельности, как растений, так и ризобактерий.

Особенно необходим тщательный подбор дозы минерального азота, так как недостаток этого элемента в почве, а так же избыток его приводят к нарушениям растительно-бактериального взаимодействия.

В результате полевых опытов нами установлена рациональная доза минеральных удобрений (Ы60РбоКбо), которая позволяет сформировать эффективные микробно-растительные взаимодействия. При внесении оптимального количества азотных удобрений оптимизируется азотфиксация и метаболическая активность ризобактерий. Обеспечение ими стимулирует ростовые процессы растений, особенно развитие листовой поверхности, повышает продуктивность фотосинтеза и увеличивает масштабы экзосмоса органических соединений в зону корней, которые являются энергетическим субстратом для жизнедеятельности нанесенного штамма.

Анализ данных опыта показал, что внесенные бактерии усилили поглотительную деятельность корневой системы, что связано со способностью инокулированных растений мобилизовать через корневые выделения питательные элементы в ризосфере. Это привело к повышению накопления основных элементов минерального питания (И, Р2О5, К20) в надземных органах. Также выявлено, что бактеризация семян ризобактериями способствовала снижению в зеленой массе растений концентрации нитратов, по сравнению с контрольным вариантом, в среднем на 16%, что объясняется повышением активности работы фермента нитратредуктазы. Результаты анализов по нитратредуктазной активности согласуются с данными по содержанию нитратов в зеленой массе растений фацелии, а также урожайностью культуры, что говорит об определенной зависимости этих показателей.

Таким образом, совместное применение минеральных удобрений и бактериальных препаратов при оптимальном их сочетании способствует более полной реализации потенциальных возможностей культуры и получению большего урожая высокого качества.

В условиях изменяющегося климата в сторону возникновения более частых и сильных засух применение бактериальных препаратов является перспективным направлением повышения устойчивости растений к водному дефициту.

Положительное действие бактериальных препаратов хорошо проявляется в условиях недостатка воды. Анализ данных вегетационных опытов показал, что инокуляция семян штаммами ассоциативных ризобактерий в условиях почвенной засухи оказывает стабилизирующее воздействие на ростовые процессы и сохранение площади листовой поверхности фацелии рябинколистной. Предпосевная инокуляция семян фацелии штаммами ассоциативных ризобактерий, в результате реализации потенциала микробно-растительных взаимодействий, способствует меньшему повреждению структуры мембран, увеличивает содержание в растительных клетках пролина, аскорбиновой кислоты, стабилизирует содержание общего хлорофилла и активность ферментов, в частности каталазы и нитратредуктазы.

Результаты параметров индукции флуоресценции хлорофилла выявили, что в условиях недостаточного увлажнения происходят нарушения в работе фотосинтетического аппарата, в частности фотосистемы II, что снижает эффективность фотосинтеза. Использование ризобактерий способствует снижению уровня фоновой и максимальной флуоресценции, что обуславливает меньшее падение доли фотосинтетически активной фракции энергии возбуждения и меньшее увеличение доли потенциально опасной избыточной энергии.

Инокуляция семян фацелии ризобактериями улучшает показатели водного режима растений. Причинами их устойчивости к обезвоживанию является повышенный водный потенциал, меньший водный дефицит листьев, более низкая интенсивность транспирации, обусловленная более высокой водоудерживающей силой, относительно необработанных растений.

У растений, обработанных бактериальными препаратами, в условиях недостаточного увлажнения меньше нарушаются физиологические процессы, повышается засухоустойчивость, что приводит к лучшему сохранению продукционных показателей. Применение препаратов способствовало увеличению массы корневой системы и надземной массы растений, увеличению количества семян, а так же увеличению их массы.

Таким образом, полевые и вегетационные исследования показали, что отобранные нами бактериальные препараты (5С-2 и мизорин) оказывают заметное стимулирующее влияние на протекание физиологических процессов, увеличивают биомассу растений фацелии рябинколистной в условиях нормального увлажнения и повышают ее засухоустойчивость в условиях недостаточного увлажнения почвы.

1. Инокуляция семян фацелии рябинколистной отобранными штаммами ассоциативных ризобактерий (Variovorax paradoxus, штамм 5С-2; Arthrobacter mysorens, штамм 7; Flavobacterium sp., штамм JI30; Pseudomonas fluorescens, штамм ПГ-5) повышает всхожесть семян и стимулирует рост проростков, что обеспечивает молодым растениям стартовые преимущества в снабжении минеральными элементами почвы.

2. Оптимальной дозой минеральных азотных удобрений на дерново-подзолистых супесчаных почвах, позволяющей более полно реализовать возможности микробо-растительного взаимодействия, является 60 Kr/N/ra, при которой наиболее интенсивно проходят ростовые и физиологические процессы.

3. Полевые опыты показали, что при использовании отобранных штаммов ризобактерий усиливаются ростовые процессы, увеличивается продуктивность (12-24%), повышается содержание минеральных элементов в надземных органах и снижается концентрация нитратов (12-18%). Последнее связано с увеличением активности нитратредуктазы при нормальных условиях увлажнения и меньшее падение ее активности в условиях почвенной засухи.

4. В условиях дефицита почвенной воды у растений фацелии при инокуляции семян отобранными штаммами ризобактерий проявляется меньшее нарушение основных звеньев метаболизма, включая стабилизацию роста, водного режима, минерального питания и фотосинтетических процессов.

5. Использование ризобактерий способствует меньшему нарушению целостности мембран по сравнению с необработанными растениями (на 4058%>). Запускается ряд адаптивных реакций, связанных с увеличением содержания свободного пролина (29-51%), аскорбиновой кислоты (22-35%) и повышением активности каталазы (22-33%), выполняющих защитную функцию в отношении всего метаболизма в условиях почвенной засухи.

6. При использовании ризобактерий в растениях повышается содержание хлорофилла, и усиливаются фотосинтетические процессы. В частности при почвенной засухе ризобактерии стабилизируют работу фотосистемы II, в результате чего снижается уровень фоновой (на 16%) и максимальной (на 15%) флуоресценции, по сравнению с контрольными растениями, что приводит к сохранению доли фотосинтетически активной фракции энергии возбуждения и снижению доли потенциально опасной избыточной энергии.

7. По комплексу изученных показателей наиболее заметное положительное влияние на анализируемые физиологические процессы в условиях нормального увлажнения и стабилизацию их в условиях почвенной засухи оказали бактериальные препараты 5С-2 и мизорин, что позволяет рекомендовать их для повышения засухоустойчивости фацелии рябинколистной.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Муратова, Рузиля Рамильевна, 2013 год

Список литературы

1. Абдул Ссалям Дахмуш, Использование ассоциативных ризобактерий в улучшении плодородия почв и питания растений / Абдул Ссалям Дахмуш, А. П. Кожемяков // Агрохимия. - 2007. - N 1. - С. 57-61

2. Аветисян Г. А. Пчеловодство/Г.А.Аветисян, Ю.А.Черевко. М.: Издательский центр «Академия», 2001.- 320 с.

3. Азубеков JI.X. Действие флавобактерина и удобрений на содержание NPK в растениях кукурузы в период вегетации // Бюлл. ВИУА №115, М., 2001, с. 111-112.

4. Алексеев A.A., Осипов В.А., Маторин Д.Н. Метод определения функционального состояния растений по флуоресценции хлорофилла: Учебное пособие. - Якутск: Издательство Якутского ун-та, 2006. - 65

5. Аленькина С.А., Наконечная О.И., Матора Л.Ю., Никитина В.Е. Изменения метаболизма корней проростков пшеницы под влиянием лектинов азоспирилл // Физиолого-биохимические основы продукционного процесса у культивируемых растений: Материалы докладов Всероссийского симпозиума с между-народным участием. - Саратов: Издательство «Саратовский источник» (Федеральное госу-дарственное учреждение науки «Российская книжная палата» г. Москва), 2010 - 102 с.

6. Аникиев В.В. К биологии критического периода у растений к недостатку воды в почве // Ученые записки ЛГПИ им. А.И. Герцена. - Л.: 1963.-Т. 249.-С. 5-207.

7. Антонюк Л.П. Растительные лектины как факторы коммуникации в симбиозах // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. - М.: Наука, 2005. - С. 118-159.

8. Антонюк Л.П., Евсеева Н.В. Лектин пшеницы как фактор растительно-микробной коммуникации и белок стрессового ответа // Микробиология. -2006. Т. 75. №4.-С. 1-6.

9. Байрамов Л.Э. Азотное питание и продуктивность ячменя при использовании биопрепаратов// Дисс. на соискание уч.степени к.б.н., М. 2001. с.37-39.

10. Бах А.Н., Опарин А.И. Определение каталазы // В кн.: Филиппович Ю.Б., Егорова Т.А., Севостьянова Г.А. Практикум по общей биохимии. М.: Наука, 1982. Стр. 151-152.

11. Безгодова И.JI. Влияние минеральных удобрений и биопрепаратов на урожайность и качество ячменя и гороха в одновидовых и смешанных посевах на дерново-подзолистой среднесуглинистой почве на северо-западе РФ // Дисс. на соискание уч.степени к.с-х.н., СПб. 2009. с.З

12. Белимов A.A. Взаимодействие ассоциативных бактерий и растений в зависимости от биотических и абиотических факторов: автореф. ... докт. биол. наук: 03.00.07 / А. А. Белимов; Санкт-Петербургский ун-т. - СПб., 2008.-46 с.

13. Белимов A.A., Иванченкова А.Ю., Юдин JI.B. и др. Характеристика и интродукция новых штаммов ассоциативных рост стимулирующих бактерий, доминирующих в ризосфере проростков ячменя // Микробиология, 1999, Т. 68., №3. С. 392-397.

14. Белимов A.A., Кожемяков А.П. Смешанные культуры азотфиксирующихтбактерий и перспективы их использования в земледелии // Сельскохозяйственная биология. 1992. №5. С. 77-87.

15. Белимов A.A., Кожемяков А.П., Поставская С.М., Хамова О.Ф. и др. Приживаемость и эффективность корневых диазотрофов при инокуляции ячменя в зависимости от температуры и влажности почвы// Микробиология. 1994. №5. с. 900-908.

16. Биопрепараты в сельском хозяйстве. (Методология и практика применения микроорганизмов в растениеводстве и кормопроизводстве). Отв. ред. И.А. Тихонович, Ю.В. Круглов. - М.: 2005. - 154 с.

17. Борисов В.А. Экологические проблемы накопления нитратов в окружающей среде. -М.: «Колос», 1992

18. Бородина М.Н. Медоносы вокруг пасеки//М.Н.Бородина «Пчеловодство» № 5 - 2004. - с.24-25

19. Воронин А.М. Ризосферные бактерии Pseudomonas, способствующие росту и развитию растений // Соросовский Образовательный журнал, 1998, №10. С 25-31.

20. Воронин А.М., Кочетков В.В. Биологические препараты на основе псевдомонад // АГРО XXI, №3, 2000 г.

21. Бурмистров А.Н. Пчеловодство. Маленькая энциклопедия /А.Н.Бурмистров, В.А.Губин, Н.И.Кривцов. М.: Научное издательство Большая Российская энциклопедия. - 1999. - 491с.

22. Бурмистров А.Н. Сроки и способы посева медоносных растений// А.Н.Бурмистров «Пчеловодство» № 1 - 2003. - с.22-24

23. Венедиктов П.С., Волгин С. Д., Казимирко Ю. В., Кренделева Т. Е., Кукарских Г. П., Макарова В. В., Лаврухина О. Г., Погосян С. И., Яковлева О. В., Рубин А. Б. Использование флуоресценции хлорофилла для контроля физиологического состояния зеленых насаждений в городских экосистемах // Биофизика. 1999. Т. 44, вып. 6. С. 1037 - 1047.

24. Веселов С.Ю., Иванова Т.Н., Саминян М.В., Мелентьев А.И. Исследование цитокининов, продуцируемых ризосферными микроорганизмами // Прикладная биохимия и микробиология. 1998. Т. 34. № 2.-С. 175- 179.

25. Волкогон В.В. Влияние стимуляторов роста растений на активность процесса ассоциативной азотфиксации // Микробиологичный журнал. 1997. Том 59. №4. С. 70-78.

26. Волкогон В.В. Приемы регулирования активности ассоциативной азотфиксации // Бюллетень института сильскогосподарской микробиологии. Чернигив, 1997. С. 17-19.

27. Воробейков Г.А. Микроорганизмы, урожай и биологизация земледелия (Учебное пособие). С-Пб., 1998. 120 с.

28. Воробейков Г.А., Дмитриева О.М., Павлова Т.К., Лебедев В.Н. Повышение урожайных показателей редьки масличной путем инокуляции семян ассоциативными ризобактериями // Физиологические и молекулярно-генетические аспекты сохранения биоразнообразия. Вологда: 2005. с. 37.

29. Воробейков Г.А., Лебедев В.Н. Продуктивность горчицы белой при инокуляции семян ассоциативными бактериальными штаммами // Кормопроизводство, 2007, №1. - 24-26 с.

30. Воробейков Г.А., Павлова Т.К., Кондрат C.B. и др. Исследование эффективности штаммов ассоциативных ризобактерий в посевах различных видов растений // Известия Российского государственного педагогического университета имени А. И. Герцена. -2011.-№ 141.-С. 114-123.

31. Генкель П.А. Принципы и направление исследований по повышению и диагностике жаро- и засухоустойчивости растений // С.-х. биология. 1982, № 2.-С.157-166.

32. Генкель П.А. Физиология жаро- и засухоустойчивости растений. М., 1982.-279 с.

33. Глик Б., Пастернак Дж. Молекулярная биотехнология. М., Мир, 2002 -589с.

34. Глухов М.М. Медоносные растения/ М.М.Глухов М.: Сельхозгиз.-1955.-512 с.

35. Гончарова Э.А. Водный статус культурных растений и его диагностика. - СПб.: ВИР, 2005. -112 с.

36. Гончарова Э.А. Изучение устойчивости и адаптации растений к абиотическим стрессам на базе мировой коллекции генетических ресурсов: научное наследие профессора Г. В. Удовенко / Э. А. Гончарова (ред. А. А. Жученко). - Санкт-Петербург, ГНУ ВИР, 2011. - 336 с.

37. Григорьев Ю.С., Пахарькова Н.В., Прудникова C.B., Крючкова O.E. Биологический контроль состояния окружающей среды // Учебное пособие по лабораторному практикуму. - Красноярск.: , 2008. - 80 с.

38. Губанов И.А. Определитель сосудистых растений/Губанов И.А., Киселева К.В., Новиков B.C., Тихомиров В.Н. М.: Издательство МГУ. - 1992. -400 с.

39. Гунес А., Инал А., Адак М.С. и др. Влияние засухи до и после зацветания растений нута на ряд физиологических параметров - возможных критериев засухоустойчивости // Физиология растений. - 2008. - Т. 55. № 1. -С. 64-72.

40. Гусев H.A. О связи минерального питания и водообмена растений // Сел.-хоз. биология. 1970. Т. 5. № 2. С. 284-291.

41. Даринский A.B. Ленинградская область / Л.: Лениздат, 1975, 384 с. ил.

42. Долгова Л.Г. Формы воды в растениях - показатели экологического состояния среды / Л.Г. Долгова // Вопросы биоиндикации и экологии. Межведомств, сб. научн. тр. - Запорожье. - 1997. - Вып. 2. - С. 115-120.

43. Доспехов Б.А. Методика опытного дела / Б.А. Доспехов. - М.: Агропромиздат, 1985. - 351 с.

44. Дубенская Г.И. Минеральное питание, рост и продуктивность эфирномасличных растений сем. Губоцветных при обработке семян бактериальными штаммами. Автореф. дис ... канд. биол. наук, СПб.: ВИР, 1999. - 17 с.

45. Дятлова К.Д. Микробные препараты в растеневодетве // Соровский образовательный журн. Биология.- 2001.- 7, №5.- с. 4-18.

46. Евсеева Н.В., Матора Л.Ю., Бурыгин Г.Л., Щеголев С.Ю. Физиолого-биохимические изменения в проростках пшеницы при инокуляции бактериями рода Azospirillum // Физиолого-биохимические основы продукционного процесса у культивируемых растений: Материалы докладов Всероссийского симпозиума с международным участием. - Саратов: Издательство «Саратовский источник» (Федеральное государственное учреждение науки «Российская книжная палата» г. Москва), 2010 - 102 с.

47. Емцев В.Г., Мишустин E.H. Микробиология Учебник для вузов. М., Дрофа, 2005 - 445 с.

48. Ермаков А.И. Методы биохимического исследования растений / А.И. Ермаков, A.A. Арасимович и др. 3-е изд., перераб. и доп. Д.: Агропромиздат, 1987. 430 с.

49. Ермошин A.A., Алексеева В.В., Малева М.Г., Чукина Н.В., Киселева И.С., Рукавцова Е.Б., Бурьянов Я.И. Реакции трансгенных растений табака с геномом HMG1 на биотипический и абиотипический стрессы // Физиолого-биохимические основы продукционного процесса у культивируемых растений: Материалы докладов Всероссийского симпозиума с международным участием. - Саратов: Издательство «Саратовский источник» (Федеральное государственное учреждение науки «Российская книжная палата» г. Москва), 2010 - 102 с.

50. Ефимов В.Н., Донских И.Н., Царенко В.П. Система удобрения / М.: КолосС, 2002. - 320 с.

51. Ефимов В.Н., Волкова E.H., Елисеев A.C. Оценка влияния диазотрофов на азотное питание листовых овощных культур// Современные проблемы опытного дела. С.-Петербург. 2000,-том 2.-е. 153-158.

52. Ефимов В.Н., Калиниченко В.Г., Горлова M.JI. Пособие к учебной практике по агрохимии. - JL, 1988 - 208 с.

53. Желюк В.М., Оврицкая З.Г., Молдован Н.И. Активность нитратредуктазы, нитрогеназы в листьях и клубеньках сои при разной водообеспеченности // Физиология и биохимия культ, растений. - 1985. - 17, № 1. - С. 34-39.

54. Жолкевич В. Н., Гусев Н. А., Капля А. В. и др. Водный обмен растений. М.: Наука, 1989.-256 с.

55. Журбицкий Н.В. Теория и практика вегетационного опыта. - М., 1968. - 264 с.

56. Завалин A.A. Биопрепараты, удобрения и урожай. М.: Изд-во ВНИИА, 2005.-302 с.

57. Завалин A.A., Духанина Т.М., Чистотин M.B. и др. Методика исследований эффективности препаратов ризосферных диазотрофов М: "Агроконсалт", 1998. - 76 с.

58. Завалин A.A., Кожемяков А.П. (отв. ред.) Новые технологии производства и применения биопрепаратов комплексного действия. - СПб.: ХИМИЗДАТ, 2010. - 64 с.

59. Заленский О.В. Эколого-физиологические аспекты изучения фотосинтеза. XXXVII Тимирязевское чтение.- JL: Наука,. 1977.- 56 с.

60. Замяткин И. Золушка синеокая// И.Замяткин «Арсеньевские вести» № 40 (449) от 03.10.2002. - с.З

61. Зарипов P.A. Схемы цветочно-нектарного конвейера для пчеловодства//Р.А.Зарипов, М.М.Акчурин. Сборник научных трудов по пчеловодству (по материалам научно-практической конференции) - выпуск 11. - Орел: ОрелГАУ. - 2004, с. 140-145

62. Злотников А.К. Применение биопрепарата для повышения устойчивости растений к засухе и другим стрессорам / А.К. Злотников, K.M. Злотников // Arpo XXI. - 2007. - № 10-12. - с. 37-38.

63. Иванов В.Б. Меристема как самоорганизующаяся система: поддержание и ограничение пролиферации клеток // Физиология растений. -2004.-Т. 51.-С. 926-941.

64. Игнатов В.В. (Ред.) Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. - М.: Наука, 2005. - 262 с.

65. Идрисов P.A. Возделывание сеяных медоносов на склонах Южного Урала//Р.А.Идрисов, А.Н.Талипов. Сборник научных трудов по пчеловодству (по материалам научно-практической конференции). - выпуск 11. - Орел: ОрелГАУ. - 2004, с. 146-150

66. Каменева С.В., Муронец Е.М. Генетический контроль процессов взаимодействия бактерий с растениями в ассоциациях // Генетика. - 1999. Т. 35.-С. 1480-1494.

67. Карпунина JI.В. Роль агглютинирующих белков ризобий и азотфиксирующих бацилл при взаимодействии с растениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. - М.: Наука, 2005. - С. 98-117.

68. Кацы Е.И. Молекулярно-генетические процессы, влияющие на ассоциативное взаимодействие почвенных бактерий с растениями / Под. Ред. В. В. Игнатова. - Саратов: Изд-во Сарат. Ун-та, 2003. - 2003 с.

69. Кацы Е.И. Молекулярная генетика ассоциативного взаимодействия бактерий и растений: состояние и перспективы исследований. - М.: Наука, 2007. - 86 с.

70. Кирюшин В.И. Экологические основы земледелия. М.: Колос, 1996. -367 с.

71. Кожемяков А.П. Эффективность и основные функции симбиотических и ассоциативных бактерий - инокулянтов сельскохозяйственных культур //Сельскохозяйственная микробиология в XIX-XXI вв. Тезисы Всероссийской конференции 14-19 июня. - СПб., 2001. - С. 25-26.

72. Кожемяков А.П., Белимов A.A. Перспективы использования ассоциаций азотфиксирующих бактерий для инокуляции важнейших сельскохозяйственных культур //Труды ВНИИСХМ, 1991, т. 61. - С. 7-18.

73. Кожемяков А.П., Белоброва С.Н., Орлова А.Г. Создание и анализ базы данных по эффективности микробных биопрепаратов комплексного действия // Сельскохозяйственная биология, 2011, № 3, с. 112-115.

74. Кожемяков А.П., Проворов H.A., Завалин A.A., Шотт П.Р. Влияние биопрепаратов и азотного удобрения на продуктивность кукурузы на обыкновенном черноземе / Агрохимия, 2004, № 3. - 33-44 с.

75. Кожемяков А.П., Тихонович И.А. Использование инокулянтов бобовых и биопрепаратов комплексного действия в сельском хозяйстве // Докл. РАСХН. - 1998. - № 6 - С. 7-10

76. Кожемяков А.П., Хотянович A.B. Перспективы применения биопрепаратов ассоциативных азотфиксирующих микроорганизмов в сельском хозяйстве // Бюлл. ВИУА №110. 1997. С. 4-5

77. Кожушко H.H. Методические указания по определению засухоустойчивости зерновых культур по изменению параметров водного режима (водоудерживающей способности, водопоглощающей способности, водного дефицита) / Под ред. Г.В. Удовенко - JI: 1982 - 16 с.

78. Кокорина АЛ, Кожемяков А.П., Тимофеева C.B. Эффективность влияния биопрепаратов комплексного действия на продуктивность овощных культур в различных регионах России / Известия СПбГАУ, 2005. -41-47 с.

79. Кондрат C.B. Рост и продуктивность полбы Triticum dicoccum (Schrank) Schuebl. при инокуляции семян ассоциативными штаммами бактерий и внесении возрастающих доз минерального азота // автореф. дисс. ... канд. биол. наук. - СПб.: 2007. - 19 с.

80. Корнеев Д.Ю. Информационные возможности метода индукции флуоресценции хлорофилла. - К.: «Альтпрес», 2002. - 188 с.

81. Кошкин Е. И. Взаимосвязь углеродного и азотного метаболизма как один из факторов регуляции продукционного процесса растений: Автореф. дис. докт. биол. наук. М. 1992. 44 с.

82. Кошкин Е.И. Физиология устойчивости сельскохозяйственных культур / Е. И. Кошкин. - М.: Дрофа, 2010.-638 с.

83. Кошкин Е.И. Частная физиология полевых культур / Кошкин Е.И., Гатаулина Г.Г., Дьяков А.Б. и др.- М.: КолосС, 2005,- 344 с.

84. Кравченко JI.B. Роль корневых экзометаболитов в интеграции микроорганизмов с растениями: Автореф. дис... д-ра биол. наук. М.: МГУ, 2000. 45 с.

85. Кретович B.JI. Биохимия усвоения азота воздуха растениями. М., Наука, 1994. - 168 с.

86. Кривцов Н.И. Пчеловодство / Н.И.Кривцов, В.И.Лебедев, Г.М.Туников. М.: Колос.-2007.-512 с.

87. Круглов Ю.В. Микробиологические аспекты плодородия почвы и проблемы устойчивого земледелия // Плодородие.- 2006.- №5.- 9-12.

88. Кудриш И.К. Гранулированные микробные препараты для растениеводства: наука и практика.- Киев: КВ1Ц, 2001.- 412 с.

89. Кузнецов В.В., Пустовойтова Т.Н., Яценко И. А., Борисова Н. Н., Жолкевич В. Н. Стрессовые белки и фитогормоны при адаптации растений Cucumis sativus к почвенной засухе// Докл. АН СССР, 1992, Т. 32, С. 204-207.

90. Кузнецов Вл.В., Дмитриева Ф.А. Физиология растений.- М: 2006,- 740 с.

91. Кузнецов Вл.В., Шевякова Н.И. Пролин при стрессе: биологическая роль, метаболизм, регуляция // Физиология растений. 1999. Т. 46. С. 321-336.

92. Кукреш С.П., Ходянкова С.Ф. Эффективность применения азобактерина под лен- долгунец // Бюлл. ВИУА№115, М., 2001, с.38-39.

93. Кулаков В.Н. Оценка нектарной и медовой продуктивности растений// В.Н.Кулаков «Пчеловодство» № 5 - 2007. - с.24-25

94. Кунакова А.М. Взаимодействие ассоциативных ризобактерий с растениями при различных агроэкологических условиях. Автореф. дисс. ... канд. биол. наук. СПб, 1998. - 18 с.

95. Кунакова А.М., Белимов A.A., Груздева Е.В. Влияние pH почвы на взаимодействие ассоциативных бактерий с ячменем // Микробиология. 1998. Т. 67. №4. С. 561-568.

96. Курьянович A.A., Кожушко H.H. Способ оценки засухоустойчивости сортов пшеницы по накоплению свободного пролина. Методические указания / Под. ред. В.Н. Синельниковой. - Л.: 1990. - 12 с.

97. Лепедуш X., Вильевач М., Цезар В., Любешич Н. Оценка функционального состояния фотосинтетического аппарата у хвои ели с признаками хлороза на слабом и сильном свету по измерениям флуоресценции хлорофилла in vivo // Физиология растений. - 2005. - Т. 52. №2.-С. 191-197.

98. Лихолат Т.В., Шишова Т.К. Роль инокуляции пшеницы почвенными культурами Azotobacter, Bacillus и Enterobacter в ослаблении воздействия неблагоприятных факторов среды //Тез. докл. III съезда Докучаев, о-ва почвоведов.-М., 2000.-Кн. 2.-С. 35-36.

99. Лютова М.И, Каменцева И.Е. Роль синтеза белка в восстановлении активности нитратредуктазы листьев пшеницы, подвергнутых тепловому стрессу//Физиология растений. 2001. - Т. 48.-№ 5.-С. 712-717.

100. Майсурян H.A. Растениеводство: лаб.-практ. занятия : для аграр. специальностей с.-х. вузов. - М.: Колос, 1964. - 399 с.

101. Макаров П.Н. Особенности ростовых процессов и формирование продуктивности физалиса в зависимости от сорта, способа выращивания и применения ассоциативных штаммов бактерий // автореф. дисс. ... канд. биол. наук. - СПб.: 2002. - 18 с.

102. Максимов H.A. Водный режим и засухоустойчивость. - М.: Изд-во АН СССР.-1952.-478 с.

103. Максимов H.A. Избранные работы по засухоустойчивости и зимостойкости растений Т.1 Водный режим и засухоустойчивость растений. М.: Изд-во АН СССР, 1952, 576 с.

104. Маторин Д.Н., Антал Т. К., Шаршенова А. А., Тыныбеков А.К., Отте M.JL, Ван де Верт X., Рубин А.Б. Изучение природного фитопланктона озера Иссык-Куль полученная с использованием погружного флуорометра // Вестн. МГУ. Сер. Биология, 2002. № 1 С. 43-45.

105. Медведев С.С. Практикум по минеральному питанию и водному обмену растений / С.С. Медведев, Н.Г. Осмоловская, А.Ю. Батов и др. / Под ред. В.В. Полевого, А.Ю. Батова. - С.-Пб: Изд-во С.-Петрербург. ун-та, 1996. - 164 с.

106. Медведев С.С. Физиология растений. Учебник. - СПб.: Изд-во СПбГУ, 2004.-336 с.

107. Мирзорахимов А.К., Бабаджанова М.А. Влияние температуры и pH на активность рибулозабифосфаткарбоксилазы-оксигеназы (РБФКО) из листьев

хлопчатника сорта 108-Ф и его продуктивного мутанта Дуплекс // Тез. докл. IV конф. Биохимиков Средней Азии и Казахстана.-Ташкент: Фан, 1991.-е. 203.

108. Москаленко И.Г. Климат // Санкт-Петербург: Энциклопедия. - СПб.; М.: «Российская политическая энциклопедия» (РОСПЭН), 2004. - 1024 с.

109. Муронец Е.М., Белявина Н.В., Митронова Т.Н. и др. Синтез индолилуксусной кислоты сапрофитной ассоциативной бактерией Agrobacterium radiobacter // Микробиология, 1997, Т. 66. № 4. С. 506 - 513.

110. Наумкин В.П. Цветение фацелии разных сроков посева // В. П. Наумкин «Пчеловодство» № 8 - 2001. - с. 18-19

111. Наумкин В.П. Медоносные ресурсы Орловской области/В.П.Наумкин. ОрелЮрелГАУ.- 2002 - 54 с.

112. Наумов Г.Ф., Подоба JI.B. и др. Агроэкологические основы использования биопрепаратов диазотрофных бактерий при выращивания ячменя и амаранта в условиях восточной лесостепи Украины // Микробиологичный журнал, 1997. Том 59. №4. С. 63-70.

113. Нестеренко Т.В., Тихомиров A.A., Шихов В.Н. Индукция флуоресценции хлорофилла и оценка устойчивости растений к неблагоприятным воздействиям // Журн. общ. биологии. 2007. Т. 68, № 6. С. 444-458.

114. Никитина В.Е., Пономарева Е.Г., Аленькина С.А. Лектины клеточной поверхности азоспирилл и их роль в ассоциативных взаимоотношениях с астениями // Молекулярные основы взаимоотношений ассоциативных микроорганизмов с растениями. - М.: Наука, 2005. - С. 70-97.

115. Ничипорович A.A. Фотосинтетическая деятельность растений, как основа их продуктивности в биосфере и земледелии / A.A. Ничипорович // Фотосинтез и продуктивный процесс. - М., 1998. - С. 5-28.

116. Нойбауер Вильфрид Выращивание промежуточных культур в сберегающем земледелии//Вильфрид Нойбауер «Новое сельское хозяйство» № 1 -2008. -с.60-62

117. Осипов А.И., Соколов O.A. Роль азота в плодородии почв и питании растений // СПб, 2001. - 356 с.

118. Патыка В.Ф. Роль азотфиксирующих микроорганизмов в повышении продуктивности сельскохозяйственных растений //Автореферат дисс. доктора биол. наук. - Киев, 1992. - 47 с.

119. Патыка В.Ф., Калиниченко A.B., Колмаз М.В., Кислухина М.В. Роль азотфиксирующих микроорганизмов в повышении продуктивности сельскохозяйственных растений // Микробиологичный журнал. 1997. Том 59. №4. С. 3-14.

120. Патыка В.Ф. Роль азотфиксирующих микроорганизмов в повышении продуктивности с.-х. культур: дис. . д-ра биол. наук / В.Ф. Патыка. JL, 1991.426 с.

121. Петинов Н.С. Водный режим растений в связи с минеральным питанием, обменом веществ и продуктивностью растений // Водный режим растений и их продуктивность. -М.: Наука, 1968. С.59-89.

122. Петров В.Б., Чеботарь В.К., Казаков А.Е. Микробиологические препараты в биологизации земледелия России. // Журнал «Достижения науки * и техники АПК», 2002. —№10. — С. 16-20.

123. Пищик В.Н., Проворов H.A., Воробьев Н.И. и др. Взаимодействие растений с ассоциативными бактериями при загрязнении почв тяжелыми металлами // Микробиология, 2009, т. 78, № 6. С. 826-835.

124. Племенков В.В. Введение в химию природных соединений. - Казань, 2001,-376 с.

125. Полевой В.В., Чиркова Т.В., Лутова Л.А. и др. Практикум по росту и устойчивости растений: учеб. пособие. - СПб.: Изд-во С.-Пеберб. ун-та, 2001. -212с.

126. Прянишников Д.Н. Избранные труды. М.: Наука, 1976. - 592 с.

127. Пшибытко Н.Л., Зеневич Л. А., Кабашникова Л.Ф. Состояние фотосинтетического аппарата в процессе фузариозного увядания томата // Физиология растений. - 2006. - Т. 53. №1. - С. 31-37.

128. Рубин А.Б., Кренделева Т.Е. Регуляция первичных процессов фотосинтеза // Успехи биологической химии. - 2003. - Т.43. - С. 225-266.

129. Савин А.П. Посевы медоносно-силосных культур//А.П.Савин «Пчеловодство» № 3. - 2003. - с.24-25

130. Самохин Г.М. Редька масличная и фацелия, как новые кормовае культуры в условиях Ленинградской области / Г.М. Самохин.- Ленинград.-1974. 18 с.

131. Самсонова И.Д. Выделение нектара позднецветущими медоносами// И.Д.Самсонова «Пчеловодство» № 9 - 2006. - с.23-24

132. Селиверстов Ю.П. Ленинградская область // Санкт-Петербург: Энциклопедия. - СПб.; М.: «Российская политическая энциклопедия» (РОСПЭН), 2004. - 1024 с.

133. Сказкин Ф.Д. Критический период у растений к недостаточному водоснабжению / Ф.Д. Сказ-кин. - М.: Колос, 1961. - 125 с.

134. Соловьева Е.А. Ростостимулирующий эффект ассоциативных диазотрофов, выделенных из ризосферы тритикале // Физиолого-биохимические основы продукционного процесса у культивируемых растений: Материалы докладов Всероссийского симпозиума с международным участием. - Саратов: Издательство «Саратовский источник» (Федеральное государственное учреждение науки «Российская книжная палата» г. Москва), 2010 - 102 с.

135. Су Х.С., Вэн С .Я., Ян Я. Влияние недостатка фосфора на параметры фотосинтеза у растений риса // Физиология растений. - 2007. - Т. 54. № 6. -С. 833-840.

136. Сысуев Ю.И. Медонос - фацелия//Ю.И. Сысуев, К.С.Шепталов, Г.И.Воловяшко «Пчеловодство» № 2 - 2005. - с.24

137. Тарчевский И.А. Метаболизм растений при стрессе. - Казань: Изд-во «ОФЭН», 2001.-448 с.

138. Тахтаджян А.Л. Система магнолиофитов/А.Л.Тахтаджян. Л.: Наука. -1987.-439 с.

139. Тихонович И.А. Создание высокоэффективных микробно-растительных систем // Сельскохозяйственная биология, 2000. № 1. С. 28-33

140. Тихонович И.А., Кожемяков А.П., Чеботарь В.К. и др. Биопрепараты в сельском хозяйстве (Методология и практика применения микроорганизмов в растениеводстве и кормопроизводстве). - М.: Россельхозакадемия, 2005. -154 с.

141. Тихонович И.А., Проворов H.A. Генетика симбиотической азотфиксации с основами селекции. М.: Наука, 1998. - 200 с.

142. Тихонович И.А., Проворов H.A. Сельскохозяйственная микробиология как основа экологически устойчивого агропроизводства: фундаментальные и прикладные аспекты // Сельскохозяйственная биология, 2011, № 3, С. 3-9.

143. Третьяков H.H. Практикум по физиологии растений / H.H. Третьяков, JI. А. Паничкин, М. Н. Кондратьев. - 4-е изд., перераб. и доп. - М.: КолосС, 2003.-288 с.

144. Третьяков H.H., Костюкович М.Ф. Определение уровня нитратного азота в продукции растениеводства — М.: 2007. — 22 с.

145. Третьяков H.H., Кошкин Е.И., Макрушин Н.М. и др. Физиология и биохимия сельскохозяйственных растений / Под ред. H.H. Третьякова. - М.: Колос, 2000. - 640 с.

146. Удовенко Г.В. Характер защитно-приспособительных реакций и причины разной устойчивости растений к экстремальным воздействиям // Труды по прикл. бот., ген. и сел., 1973., Т. 49, Вып. 3. С. 258-267.

147. Удовенко Г.В. (отв. ред.) Диагностика устойчивости растений к стрессовым воздействиям (методическое руководство) - Л.: ВИР, 1988.-228 с.

148. Удовенко Г.В. Физиологические механизмы адаптации растений к различным экстремальным условиям. Труды по прикладной ботанике, генетике и селекции, 1979, т. 64, вып. 3. С. 5-21.

«j

149. Умаров М.М., Фролова В.Д., Бурлуцкая Г.Р. и др. Инокуляция рапса активными штаммами почвенных диазотрофов и их мутантами с измененной азотфиксацией // Вестник МГУ. Сер. 17. Почвоведение. 1990.

150. Умаров, М.М. Ассотиативная азотфиксация / М.М. Умаров. М.: МГУ, 1986.- 136с.

151. Федоренко С.О. Фацелия//С.О.Федоренко «Пчеловодство» № 7 - 2003. - с.26-28

152. Филатова JI.А. Некоторые показатели состояния фитогормональной системы у растений гороха в условиях засоления и влияние на них экзогенных регуляторов роста// Вопросы адаптации растений к неблагоприятным факторам среды. Пермь, 1993, С. 70 78.

153. Фирсов И.П. и др. Технология растениеводства. - М.: КолосС, 2006. -472с.

154. Хотянович A.B. Методы культивирования азотфиксирующих бактерий, способы получения и применения препаратов на их основе. Методические рекомендации. - Л.: ВНИИСХМ, 1991, 60 с.

155. Цавкелова Е.А., Климова С.Ю., Чердынцева Т.А., Нетрусов А.И. Микробные продуценты стимуляторов роста растений и их практическое использование: обзор // Прикл. Биохим. Микробиол. - 2006. № 2. - С. 133-143.

156. Цавкелова Е.А., Чердынцева Т.А. Нетрусов А.И. Образование ауксинов бактериями ассоциирующими с корнями орхидей // Микробиология, 2005 Т. 74. № 7 С. 55 - 62.

157. Чеботарь В.К., Завалин A.A., Кипрушкина Е.И.2007. Эффективность применения биопрепарата экстрасол. М.: Изд. Россельхозакадемии. — 216 с.

158. Чиркова Т.В. Физиологические основы устойчивости растении: учеб. пособие. - СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2002. - 244 с.

159. Шабаев В.П. Роль биологического азота в системе «почва-растения» при внесении ризосферных микроорганизмов: Автореферат дисс...докт. биол. наук. М.: МГУ, 2004. 46 с.

160. Шабаев В.П., Смолин В.Ю., Сафрина О.С. Азотфиксация в ризосфере, урожай столовой свеклы и баланс азота в пойменной почве при применении азотфиксирующих бактерий рода Pseudomonas ПАгрохимия. 1995. № 11. С. 3-14.

161. Шевелуха, B.C. Рост растений и его регуляция в онтогенезе/В.С. Шевелуха. - М.: Колос, 1992. - 594 с.

162. Шило A.A. Хозяйственно-биологическая характеристика индуцированных мутантов яблони. Дис. ... канд. с.-х. наук. - Орел, 1997. - 234 с.

163. Шматько И.Г., Кузнецова Т.А., Петренко Н.И. Водообмен и нитратредуцирующая система сортов яровой пшеницы при разной водообеспеченности // Физиология и биохимия культ, растений. - 1977. - 9, № 5.-С. 451-455.

164. Шматько И.Г., Григорюк И.А., Шведова O.E. Устойчивость растений к водному и температурному стрессам.- Киев.- Наукова думка, 1989,- 224 с.

165. Шорохов А.О. Медоносы пчелам - проблемы и решения// А.О.Шорохов «Пчеловодство» № 3 - 2004. - с.24-25.

166. Эргашев А., Каримова И. Влияние почвенной засухи на некоторые параметры водообмена листьев различных генотипов хлопчатника //Мат. науч. конф., посвященной 70-летию агрономического факультета Таджикского аграрного университета и 80-летию города Душанбе. Таджикский аграрный университет. 2004. С. 148-149.

167. Юргина B.C. Роль минерального азота и ассоциативных ризобактерий в формировании продуктивности редьки масличной // ArpoXXI. 2010. № 4-6. С. 20-21.

168. Юргина B.C. Морфофизиологические особенности и продуктивность редьки масличной (Raphanus sativus L. var. oleífera Metzg) при инокуляции семян ассоциативными ризобактериями в условиях нормального увлажнения и почвенной засухи.// автореф.дисс... канд.биол.наук. СПб, 2011. -18 с.

169. Ягодин Б.А., Жуков Ю.П., Кобзаренко В.И. Агрохимия. М.: Колос, 2002. - 582 с.

170. Ahmad A., Abdin M.Z. NADH: nitrate reductase and NAD(P)H: nitrate reductase activities in mustard seedlings // Plant Sci. 1999. - V. 143. - P. 1-8.

171. Alscher R.G. Reactive oxygen species and antioxidant: relationships in green cells / R.G. Alscher, J.L. Donahue, C.L. Cramer // Physiol. Plantarum. -1997. - V.100. -№ 2. - P. 224-233.

172. Appenroth K., Meco R., Jourdan V., Lillo C. Photochrome and post-translational regulation of nitrate reductase in higher plants // Plant Sci. 2000. -V. 159.-P. 51-56.

173. Aslam M., Travis R.L., Rains W.D. Enhancement of nitrate reductase activity and metabolic nitrate concentration by methionine sulfoximine in barley roots//PlantSci.-2001.-V. 161.-P. 133- 142.

174. Bashan Y., Holguin G., de-Bashan L.E. Azospirillum-plant relationships: physiological, molecular, agricultural, and environmental advances (19972003) 11 Can. J. Microbiol. - 2004. Vol. 50 - P. 521-577.

175. Belimov A.A., Kojemiakov A.P., Chuvarlieva C.V. Interaction between barley and mixed cultures of nitrogen fixing and phosphate solubilizing bacteria // Plant and Soil. 1995. V. 173. P. 29-37.

176. Belimov A.A., Kurnakova A.M., Gruzdeeva E.V., etal. Relationship between survival rates of associative nitrogen fixers on roots and yirld response of plants to inoculation. FEMS Microbiol. Ecol., 1995, V.17, p. 187-196.

177. Bohnert H.J., Sheveleva E. Plant stress adaptations-making metabolism move. Curr Opin plant Biol., 1998, 1 .-p.267-274.

178. Bolhar-Nordenkampf H.R., Long S.P., Baker N.R., Ouquist G.,Shreiber U., Lecher E.G. Chlorophyll Fluorescence as a Probe of the Photosyntetic Competence of Leaves in the Field: A Review of Current Instrumentation // Funct. Ecol. 1989. V. 3.P. 497-514.

179. Bray E.A., Bailey-Seres J., Weretinyk E. Responses to abiotic stresses. In: Graissem W, Buchannan B;, Jones R(eds) Biochemistry and molecular biology of

plants. American society-of Plant Physiologists, 2000, Rockville; MP; pp.11581249.

180. Buschmann C. Photochemical and non-photochemical quenching coefficients oft he chlorophyll fluorescence: comparison of variation and limits // Photosynthetica. - 1999. - V. 37, №2. - P217-224.

181. Cacciari J.G., Del Callo M, Ippoliti S., Pletrosanti T. Growth and survival of Azospirillum brasilense and Artrobacter giacomelloi in binary continuous culture//Plant and Soil, 1986, V.90, N1-3. P.107-116.

182. Cekic C., Paulsen G.M. Evaluation of a ninhydrin procedure for measuring membrane thermostability of wheat//Crop. Sci. - 2001. - V. 41.-P. 1351-1355.

183. Chaves M.M., Oliveira M.M. Mechanisms Underlying Plant Resilience to Water Deficits: Prospects for Water-Saving Agriculture // J. Exp. Bot. 2004. V. 55. P. 2365-2384.

184. Chumakov M., Solovova G., Velikov V., Kurbanoba J., Matora L., Shchyogolev S., Weat root associated Agrobacterium radiobacter // Proc/ 1 st Europ Nitrogen Fixation Conf a FEMS suppot meet application of Genetically Modofield Microoganizms in the Environment Suppot. BMFT, Szeged, Sept. 2-3, 1994. P 275-279.

185. Compant S., Duffy B., Nowak J. et al. Use of PGPB for biological control of plant diseases: principles, mechanisms of action and future prospects // Appl. Environ. Microbiol, 2005. Vol.71. №9. P.4951-4959.

186. Demming-Adams B, Adams W.W, Barker B.P, Logan B.A, Bowling D.R, Verhoeven A.S. Using chlorophyll fluorescence to assess the fraction of absorbed light allocated to thermal dissipation of excess excitation // Physiol. Plant. - 1996. - V. 98. - P.253-264.

187. Dencic S, Kastori R, Kobiljski B, Duggan B. Evaluation of grain yield and its components in wheat cultivates and landraces under near optimal and drought conditions // Euphitica. - 2000. - V. 113. - P. 43-52.

188. Dhanda S.S., Sethi G.S. Inheritance of excised-leaf water loss and relative water content in bread wheat (Triticum aestivum) II Euphytica. - 1998. - V.104. -P. 39-47.

189. Dobbelaere S., Vanderleyden J., Okon Y. Plant growth-promoting effects of diazotrophs in the rhizosphere // Crit. Rev. Plant Sci. - 2003. Vol. 22. - P. 107149.

190. Duffy, B.K., and Defago, G. Environmental factors modulating antibiotic and siderophore biosynthesis by Pseudomonas fluorescens biocontrol strains // Appl. Environ. Microbiol., 1999. 65: 2429-2438.

191. Emmett I.M., Walker D. Thermal uncoupling in chloroplasts. // Biochim. Biophys. Acta 1969. V.180. N 2. P. 424 425.

192. Ficek D., Ostrowska M., Kazio M., Pogosyan S.I. Variability of the portion of functional PS2 reaction centres in the light of a fluorometric study // Oceanología. 2000.V. 42. № 2. P. 243-250.

193. Ferreira M.C.B., Fernandes M.S., Dobereiner J. Role of Azospirillum brasilense nitrate reductase in nitrate assimilation by wheat plants // Biol. Fértil. Soils. - 1987. Vol. 4.-P. 47-53.

194. Foyer C.H., Noctor G. Redox Homeostasis and Antioxidant Signaling: A Metabolic Interface between Stress Perception and Physiological Responses // Plant Cell. 2005. V. 17. P. 1866-1875.

195. Gamliel, A., and Katan, J. Influence of seed and root exudates on fluorescent pseu-domonads and fungi in solarized soil // Phytopathology, 1992. 82: 320-327.

196. George, E., Marschner, H., Jacobsen, I. Role of arbuscular fungi in uptake of phosphorus and nitrogen from soil // Crit. Rev. Biotechnol. 1995. 15: 257-270.

197. Glick B.R., Todorovic B., Czarny J., Cheng Z., Duan J., McConkey B. Promotion of plant growth by bacterial ACC deaminase // Critical Reviews in Plant Sciences. 2007. V. 26. № 1. P. 227-242.

198. Guinel F.C., Geil R.D. A model for the development of the rhizobial and arbuscular mycorrhizal symbioses in legumes and its use to understand the roles of ethylene in the establishment of these two symbioses // Can. J. Bot. - 2002. Vol. 80.-P. 695-720.

199. Gyaneshwar P., James E. K., Mathan N., Reddy P. M., Reinhold-Hurek B., Ladha J. K. Endophytic colonization of rice by a diazotrophic strain of Serratia marcescens // Ilbid. - 2001. - Vol. 183. N 8. - P. 2634-2645.

200. Haas, D., Blumer, C., Keel, C. Biocontrol abitily of fluorescent pseudomonads genetically dissected: importance of positive feedback regulation // Curr. Opin. Bio-thechnol. 2000. 11:290-279.

201. James E.K. Nitrogen fixation in endophytic and associative symbiosis // Field Crops Res. - 2000. Vol. 65. - P. 197-209.

202. Kautsky H., Hirsch A. Das fluoreszevzverhalten gruner pflanzen // Biochem Z. - 1934. - 274. - S. 422-434.

203. Kautsky H., Hirsch A. Neue versuche zur kohlenst off assimilation // Naturwissenenschaften. - 1931. - 19. - S. 964.

204. Kende H. Ethylene biosynthesis // Annu. Rev. Plant Physiol. - 1993. Vol. 44. - P. 283-307.

205. Khalid A., Arshad M., Zahir Z. A. Screening plant growth-promoting rhizobacteria for improving growth and yield of wheat // J. Appl. Microbiol. -

2004. - Vol. 96, N 3. - P. 473-480.

206. Kitajima M., Butler W.L. Quenching of chlorophyll fluorescence and primary photochemistry in chloroplasts by dibromothymoquinone // Biochim Biophys Acta. - 1975. - V. 376. - P. 105-115.

207. Klipp W., Masepohl B., Gallon J.R., Newton W.E. (Eds). Genetics and regulation of nitrogen fixation in free-living bacteria. Springer, Netherlands. -

2005.- 300 p.

208. Kloepper, J.W., Lifshitz, R., and Zabolotowicz, R.M. Free-living bacterial inocula for enhancing crop productivity // Trends. Biotechnol., 1989. 7: 39-43.

209. Lizana C., Wentworth M., Martinez J.P., Villegas D., Meneses R., Murechie E.H., Pastenes C., Lercari B., Vernieri P., Horton P., Pinto M. Differential Adaptation of Two Varieties of Common Bean to Abiotic Stress. I. Effects of Drought on Yield and Photosynthesis // J. Exp. Bot. 2006. V. 57. P. 685-697.

210. Mantelin S., Touraine B. Plant growth-promoting bacteria and nitrate availability: impacts on root development and nitrate uptake // J. Exp. Bot. - 2004. Vol. 55.-P. 27-34.

211. Melis A. Photosystem-II damage and repair cycle in chloroplast: what modulates the rate of photodamage in vivo // Trends of Plant Science. - 1999. - V. 4. №4.-P. 130-135.

212. Mitteler, R. Oxidative Stress, Antioxidants and Stress Tolerance / R.Mitteler I! Trends Plant Sci. 2000, V.7. P.405_409.

213. Montesinos E. Development, registration and commercialization of microbial pesticides for plant protection // Int. Microbiol. 2003b. V.6. P. 245-252.

214. Morgan, P.W., and M.C. Drew. 1997. Ethylene and plant responses to stress. Physiologia Plantarum 100(3):620-630.

215. Oxborough K., Baker N. Control of photosystem II photoinactivation by down-regulation // Proceedings of Annual Meeting of the ASPP, San Diego. -2000.-P. 114.

216. Pardo R., Herguedas M., Barrado E., Vega M. Biosorption of cadmium, copper, lead and zinc by inactive biomass of Pseadomonas putida II Anal. Bioanal. Chem. - 2003. Vol. 376. - P. 26-32.

217. Patten C.L., Glick B.R. Bacterial biosynthesis of indole-3-acetic acid /7 Can. J. Microbiol. - 1996. Vol. 42. - P. 207-220.

218. Penrose D. M., Glick B. R. Methods for isolating and characterizing ACC deaminase-containing plant growth-promoting rhizobacteria // Physiol. Plant -2003.-Vol. 118, N 1. - P. 10-15.

219. Persello-Cartieaux F., Nussaume L., Robaelia C. Tales from the

' 7 «w*

underground: molecular plant-rhizobacteria interactions -7 Plant CsSl Environ -2003/Vol. 26.-P. 189-199.

220. Rodriguez H., Fraga R. Phosphate solubilizing bacteria and their role implant growth promotion // Bfotechnol. Adv. - 1999. Vol. 17. - P. 319-39

221. Rohacek K., Bartak M. Technique of the modulated chlorophyll fluorescence: basis concepts, useful parameters, and some applications // Photosynthetica. - 1999. - V. 37. - P. 339-363.

222. Schreiber U., Schliwa U., Bilger W. Continuous recording of photochemical and non-photochemical chlorophyll fluorescence quenching with a new type of modulation fluorometer // Photosynth. Res. - 1986. - V. 10, № 1-2. - P. 51-62.

223. Singh R. P., Vara Prasaed, Sinita K. Giri S. N and Reddy K. R: Influence of High, Ann. Agric // Res. - 2007. 25, 268-273.

224. Smirnoff N. Plant resistance to environmental stress // Curr Opin.Biotech 9. 1998.-p, 214-219:

225. Smith, K.P., Handelsman, J., Goodman, R.M. Genetic basis in plant for interactions with disease-suppressive bacteria // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1999. 96: 47864790.

226. Spaepen S., Vanderleyden J., Remans R. Indole-3-acetic acid in microbial and microorganism-plant signaling // FEMS Microbiol. Rev. - 2007. Vol. 31. - P. 425.

227. Taiz L., Zeiger F. Plant Physioljgy. Sunderland. Massachusetts Sinauer Associates Inc. Pub-lishers, 2006, 764 p.

228. Taylor C.B. Proline and Water Deficit: Ups, Downs, Ins and Outs // Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1221-1224.

229. Tefler A., Oldham T.C., Philips D., Barber J. Singlet oxyden formation detected be near-infrared emission from isolated photosystem II reaction centres: direct correlation between P680 triplet decay and luminescence rise kinetics and its consequences for photoinhibition // Journal of Photobiochemistry and Photobiology B: Biology. - 1999. - V. 48. - P. 89-96.

230. Tugce Kalefetoglu, Yasemin Ekmekci., The effects of drought on plants and tolerance mechanisms. // G. U. Journal of Science, 2005, 18(4): p. 723-740.

tVi

231. Venkataraman G.S. Non-symbiotic nitrogen fixation /A. Trans. 12 Internal, congress Soil. Science. India, New Delhi, 1982, part 1. P.225.

232. Vera-Estrella R, Barkla B.J, Higgins V.J, Blumwald E. Plant defense response to fungal pathogens // Plant Physiology. 1994. V. 104. № l.P. 209-215.

233. Vierling Temperature and Breeding for Heat Tolerance in Gotton: A Review. Advancesin Agronomy, V.93; 2007. p. 315-385.

234. Wang W, Vinocur B, Altman A. Plants responses to drought, salinity and extreme temperatures; towards genetic engineering for stress tolerance. //Planta,-2003.-v. 218.-p. 1-14.

235. Whipps J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // J. Experim. Botany. 2001. V.52. P. 487-511.

236. Yamasaki H, Sakihama Y. (2000) Simultaneous production of nitric oxide and peroxynitrite by plant nitrate reductase: in vitro evidence for the NR-dependent formation of active nitrogen species // FEBS Letters, 468, 89-92.

Энергия прорастания и всхожесть семян фацелии рябинколистной в зависимости от штамма ассоциативных ризобактерий (лабораторный опыт, 2010-2012 гг.)

Вариант Энергия прорастания, % Всхожесть, %

2010 2011 2012 2010 2011 2012

Контроль 45±5,1 42±4,8 51±4,5 52±5,8 48±4,8 57±6,3

Агрофил 54±4,9 48±5,6 55±6,0 57±5,1 53±5,6 63±5,9

Азоризин 49±5,2 45±3,8 57±4,6 59±6,1 62±6,2 67±5,4

Бактосан 52±3,8 55±4,3 53±3,8 63±7,4 62±5,3 63±5,6

Мизорин 69±4,0 70±5,2 71±4,7 77±7,0 80±4,8 77±6,5

Мобилин 58±3,9 53±4,9 60±4Д 62±6,7 60±7,2 61±6,9

Ризоагрин 61±5Д 64±6Д 63±4,9 73±6,9 72±6,3 72±7,2

Флавобактерин 69±5,3 70±5,6 69±5,2 79±7,2 76±6,1 79±7,5

Экстрасол ПГ-5 68±5,5 67±4,8 70±5,5 73±5,9 72±6,9 72±6,9

Экстрасол ПГ-7 60±5,3 59±4,2 60±5,6 61±5,7 60±5,3 60±6Д

5С-2 72±4,8 74±3,9 71±5,8 81±7,4 83±4,9 83±7,5

НСР05 5,2 5,6 6,0 6,9 6,7 7,0