Физиологические критерии стрессовых реакций при хирургических вмешательствах в полости носа тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 14.01.03, доктор наук Кастыро Игорь Владимирович

  • Кастыро Игорь Владимирович
  • доктор наукдоктор наук
  • 2022, ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов»
  • Специальность ВАК РФ14.01.03
  • Количество страниц 399
Кастыро Игорь Владимирович. Физиологические критерии стрессовых реакций при хирургических вмешательствах в полости носа: дис. доктор наук: 14.01.03 - Болезни уха, горла и носа. ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов». 2022. 399 с.

Оглавление диссертации доктор наук Кастыро Игорь Владимирович

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. Реакции организма на стрессовое воздействие и методы оценки хирургического стресса (обзор литературы)

1.1. Септопластика и ее роль в возникновении хирургического стресса в организме

1.1.1. Распространенность искривления перегородки носа

1.1.2. Физиологическая роль перегородки носа и последствия ее искривления

1.1.3.ИПН как причина нарушений в сердечно-сосудистой системе

1.1.4.Постоперационный болевой синдром при септопластике

1.1.5.Фотобиомодулирующая терапия

1.2. Поведенческие реакции животных при моделировании стресса

1.3. Вариабельность сердечного ритма как мера оценки баланса вегетативной нервной системы при стрессовых воздействиях

1.3.1.Показатели ВСР

1.3.1.1.Измерения во временной области

1.3.1.2.Измерения в частотной области

1.3.1.3.Факторы, влияющие на ВСР

1.3.2.Роль ВРС в оценке состояния ВНС

1.3.2.1.Спектральный анализ ВСР

1.3.2.2.Источники генерации ВСР

1.3.2.3.Сравнение краткосрочного и долгосрочного анализа ВСР

1.3.2.4.Применение спектрального анализа ВСР в различных случаях

1.3.3.Регулирующие механизмы и ВСР

1.3.4. Влияние нарушений носового дыхания и септопластики на изменения ВСР

1.4. Гиппокамп и стресс

1.4.1. Физиологическое значение гиппокамповой формации у крыс

1.4.2. Механизмы участия гиппокампа в стресс-ответе

1.4.3. Формирование темных нейронов в гиппокамповой формации

1.4.4. Экспрессия белка p53 в пирамидном слое гиппокампа

1.4.5. Активность нейронов гиппокампа при воздействии стрессовых факторов

1.5. Тучноклеточная популяция в организме и ее ответ на стресс

Глава 2. Материалы, пациенты и методы исследования

2.1. Методология экспериментального исследования стресс-реакций после моделирования септопластики

2.1.1. Тест в открытом поле

2.1.2. Электрокардиография и ВРС

2.1.3. Методы исследования морфологических изменений пирамидного слоя гиппокампа

2.1.4. Изучение общей воспалительной реакции

2.1.5. Анализ кортикостерона в плазме крови

2.1.6. Биологическая модель провоцирования стрессовых реакций при ринологических хирургических вмешательствах - септопластики

2.1.7. Оценка морфологических изменений перегородки носа после хирургической альтерации

2.1.8.Статистическая обработка данных экспериментальной части работы

2.2. Методы оценки стрессовых реакций у пациентов в периоперационный период при септопластике

2.2.1. Септопластика и анестезиологическое пособие

2.2.2. Оценка ВСР

2.2.3. Оценка острого постоперационного болевого синдрома

2.2.4. Методика оценки ВСР и острого болевого синдрома у мужчин и женщин

2.2.5. Оценка концентрации кортизола в крови

2.2.6. Оценка эффективности фотобиомодулирующей терапии после проведения септопластики

2.2.7. Статистическая обработка данных второго этапа исследования

Глава 3. Физиологические эффекты при экспериментальном моделировании септопластики

3.1. Поведение крыс в открытом поле после проведения моделирования септопластики

3.2. Анализ ВСР

3.2.1. Спектральный анализ ВРС

3.2.2. Анализ временной области ВРС

3.2.3. Анализ общей мощности и дыхания по ЭКГ

3.3. Изменения концентрации кортикостерона в плазме крови

3.4. Заключение к главе

Глава 4. Морфологические изменения в ответ на стрессовые реакции при моделировании септопластики

4.1. Морфологические реакции слизистой оболочки перегородки носа у крыс в ответ на моделирование септопластики

4.2. Изменения цитоархитектоники гиппокампа после септопластики в эксперименте

4.2.1. Оценка количества темных нейронов и нейрональных ниш в гиппокампе у крыс при окраске гематоксилином и эозином

4.2.2. Оценка количества темных нейронов в гиппокампе крыс при окраске толуидиновым синим по Нисслю

4.2.3. Экспрессия белка p53 в нейронах гиппокампа

4.3. Тучные клетки в брыжейке после проведения моделирования септопластики у крыс

4.4. Заключение к главе

Глава 5. Хирургический стресс-ответ у пациентов в раннем послеоперационном периоде после септопластики

5.1 Сравнение эффективности различных видов анестезиологического пособия при проведении септопластики на основании ВРС

5.1.1 Показатели частотного анализа ВРС

5.1.1.1Динамика изменений частотной области ВРС за сутки

5.1.1.2Динамика изменений частотной области ВРС за ночное время

5.1.1.3Динамика изменений частотной области ВРС за дневное время

5.1.2 Показатели временного анализа ВРС

5.1.2.1 Динамика изменений временной области ВРС за сутки

5.1.2.2Динамика изменений временной области ВРС за дневное время

5.1.2.3Динамика изменений временной области ВРС за ночное время

5.1.3 Влияние вида анестезии при септопластике на динамику болевого синдрома

5.1.3.1. Оценка болевого синдрома по ВАШ

5.1.3.2. Оценка болевого синдрома по ВШМ

5.1.3.4. Оценка болевого синдрома по ЦРШ

5.1.3.4. Оценка болевого синдрома по средним значениям трех шкал

5.1.4. Изменения концентрации кортизола в крови в зависимости от стратегии анестезии при септопластике

5.2 Роль длительности предоперационного периода у пациентов с искривлением перегородки носа в снижении постоперационных стрессовых реакций

5.2.1Сравнение предоперационного времени

5.2.2 Показатели частотного анализа ВРС

5.2.2.1 Динамика изменений частотной области ВРС за сутки

5.2.2.2Динамика изменений частотной области ВРС за дневное время

5.2.2.3Динамика изменений частотной области ВРС за ночное время

5.2.3 Показатели временного анализа ВРС

5.2.3.1 Динамика изменений временной области ВРС за сутки

5.2.3.2Динамика изменений временной области ВРС за дневное время

5.2.3.3Динамика изменений временной области ВРС за ночное время

Глава 6. Септопластика и стрессовые реакции у мужчин и женщин

6.1. Влияние гендерного фактора на показатели частотного анализа ВРС

6.1.1. Показатели частотного анализа ВРС у мужчин и женщин

6.1.1.1. Динамика изменений частотной области ВРС за сутки

6.1.1.2. Динамика изменений частотной области ВРС за дневное время

6.1.1.3. Динамика изменений частотной области ВРС за ночное время

6.1.2. Динамика изменений временной области ВРС

6.1.2.1. Динамика изменений временной области ВРС за сутки

6.1.2.2. Динамика изменений временной области ВРС за дневное время

6.1.2.3. Динамика изменений временной области ВРС за ночное время

6.2. Влияние гендерного фактора на динамику болевого синдрома после септопластики

6.2.1. Оценка болевого синдрома по ВАШ

6.2.2. Оценка болевого синдрома по ВШМ

6.2.3. Оценка болевого синдрома по ЦРШ

6.2.4. Оценка болевого синдрома по средним величинам трех шкал

6.3. Заключение к главе

Глава 7. Оценка эффективности ФБМТ после септопластики

7.1. Изменения ВСР при применении ФБМТ

7.1.1. Изменения мощности вариабельности сердечного ритма

7.1.2. Изменения вариабельности сердечного ритма во временной области

7.2. Влияние ФБМТ на интенсивность болевого синдрома

7.3. Заключение к главе

Глава 8. Септопластика и стресс (обсуждение полученных данных)

8.1 Моделирование септопластики у крыс

8.1.1. Влияние анестезии на морфофизиологические реакции

8.1.2. Изменения поведения крыс в открытом поле

8.1.3. Ответ ВНС в виде изменений параметров ВРС при моделировании септопластики

8.1.3.1.Вариабельность сердечного ритма и хирургический стресс

8.1.3.2.Вагосимпатический индекс

8.1.4.Взаимосвязь между дисбалансом вегетативной нервной системы и поведенческими реакциями крыс

8.1.5.Морфологические изменения в гиппокампе в ответ на физиологические реакции организма в условиях хирургического стресса при моделировании септопластики

8.1.5.1.Гистофизиологические реакции нейронов в гиппокампе в виде темных нейронов

8.1.5.2.Экспрессия белка p53 в нейронах гиппокампа - многофакторное явление

8.1.6. Влияние хирургического стресса у крыс после моделирования септопластики на морфо-физиологические особенности популяции нейронов в гиппокампе

8.1.7. Тучные клетки как показатель системной воспалительной реакции в модели септопластики

8.1.8. Влияние глюкокортикоидов на морфо-функциональные изменения организма в условиях хирургического стресса

8.2. Септопластика у пациентов - рутинная операция в полости носа или серьёзное хирургическое вмешательство в голове?

8.2.1. Стресс-ответ при септопластике

8.2.2. Болевой синдром и его гендерные особенности у пациентов, перенесших септопластику

8.2.2.1.Болевой синдром при применении различных схем анестезии при септопластике

8.2.2.2.Гендерные особенности болевого синдрома септопластики

8.2.3.Роль анестезиологического пособия как предиктора стресс-ответа после проведения септопластики

8.2.4.Значение предоперационного времени в постхирургических стрессовых реакциях

8.2.5.Механизмы ринокардиальных рефлексов и септопластика

8.2.6.Влияние ФБМТ на изменения стрессовых реакций и болевого синдрома после септопластики

8.3. Стрессовые реакции при проведении моделирования септопластики и их последствия

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

Практические рекомендации

Перспективы дальнейшей разработки темы

Список сокращений

Список использованной литературы

ВВЕДЕНИЕ.

Рекомендованный список диссертаций по специальности «Болезни уха, горла и носа», 14.01.03 шифр ВАК

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физиологические критерии стрессовых реакций при хирургических вмешательствах в полости носа»

Актуальность темы.

Распространенность хронических заболеваний полости носа и околоносовых пазух неуклонно растет как в России, так и за рубежом. К примеру, искривление перегородки носа выявляется у 40,24% подростков (Zielnik-Jurkiewicz В., 2006) и у 89,2% взрослых (Mladina R. et all., 2008). Искривление перегородки носа, как правило, способствует нарушению основных функций носа, развитию острых и хронических заболеваний носа и околоносовых пазух (Кичиков В.О., 2007), а в результате длительного хронического гиперпластического воспаления может формироваться и полипозный риносинусит. Для восстановления физиологичного носового дыхания важным мероприятием является своевременная коррекция искривлений перегородки носа с помощью таких хирургических вмешательств, как резекция перегородки носа или септопластика (Yang G. et al., 2017; Jin H.R., 2018).

Наиболее распространенным хирургическим вмешательством по поводу ИПН до сих пор остается септопластика (Bhattacharyya N., 2010; Bugten V. et al., 2016; Пустовит О.М. и соавт., 2018; Sommer F. et Hoffmann T.K., 2019; Van Egmond M.M.H.T. et al., 2019), которая может проводиться под местной и/или общей анестезией (Siegel N.S. et al., 2000).

Часто возникающими осложнениями после септоплатики являются носовое кровотечение, плохая репарация слизистой, перфорация перегородки носа, синехии, атрофический ринит, повреждение носонебного нерва и др. (Bloom J.D. et al., 2009; Shah J. et al., 2018; D^browska-Bien J. et al., 2018). Среди них не последнее место отводится острому болевому синдрому (Ocalan R. et al., 2015). Хирургические вмешательства влекут за собой развитие острого болевого синдрома, изменение психологических и поведенческих реакций и в целом, формирование стресса. Современные экспериментальные работы, проводимые на перегородке носа у животных, в основном посвящены

изучению роли разреза в развитии постоперационных осложнений, скорости репарации тканей, видам иссечения и восстановления хряща с последующей имплантацией между слизисто-надхрящничными листками и т.п. (Rancic D. et al., 2012; Heo S.J., Kim J.S., 2016). Однако, полноценных экспериментальных исследований, направленных на изучение стрессовых реакций организма, степени общего воспаления, изменений поведенческих реакций, развитию послеоперационных депрессивно-подобных состояний в последние годы не проводилось.

Интенсивность острого послеоперационного болевого синдрома при различных ринологических хирургических вмешательствах различна. Боль после септопластики остается одной из самых серьезных проблем, несмотря на прогресс в ринохирургии и периоперационном обезболивании (Simsek T. et al., 2019). Хорошо известно, что адекватная анальгетическая терапия в послеоперационном периоде сокращает продолжительность пребывания в больнице, уменьшает количество осложнений, связанных с острым болевым синдромом. Комбинированные анальгетические методы являются наиболее часто используемыми методами повышения эффективности обезболивания и снижения побочных эффектов и доз применяемых препаратов для анестезии (Altunkaya H. et al., 2004). Передняя тампонада носа дополнительно после септопластики увеличивает интенсивность боли (Pang W. et al., 1999). После септопластики невралгия лицевого нерва проявляется в тяжелой форме вследствие иссечения искривленных участков хряща, использования швов и/или носовых тампонов. В послеоперационном периоде после септопластики интенсивность боли может быть от слабой до умеренной. В этот период для облегчения боли как правило используются нестероидные противовоспалительные препараты и парацетамол (Sener M. et al., 2008). Однако одного лишь парацетамола недостаточно для обезболивания. Он имеет те же побочные эффекты, что и НПВП, и снижает комфорт пациента (White P.F., 2005).

Травматическое хирургическое повреждение влечет за собой развитие стрессовых реакций (Desborough J.P., 2000; Wetzel C.M. et al., 2006). Септопластика может вызывать значительное количество осложнений (D^browska-Bien J. et al., 2018), в том числе и нарушения сердечного ритма (Uluyol S. et al., 2016). Во многом это обусловлено нарушением в балансе вегетативной нервной системы (Uluyol S. et al., 2016), развитием острого постоперационного болевого синдрома, последующим посттравматическим воспалением и др. (Liao Z. et al., 2018).

Любое хирургическое вмешательство может спровоцировать и развитие депрессивно-подобного и собственно депрессивного состояний. Так, у женщин после риносептопластики высока вероятность развития психосоматизации, тревожности, беспокойства и др. (Kopacheva-Barsova G. et al., 2015). Подобные симптомы могут быть спровоцированы развитием острого болевого синдрома, гипоксией, расстройством баланса вегетативной нервной системы, нарушением иммунной функции (Won E., Kim Y.-K., 2016; Shin H.-C. et al., 2016). Длительное воздействие стрессовых факторов может способствовать развитию неадекватных физиологических реакций, т.е. хронического стресса или дисстресса. При этом как правило превалируют импульсы симпатической нервной системы и увеличение концентрации в плазме крови катехоламинов (Chrousos G.P., Gold P.W., 1992). На основании анкетирования, было показано, что при адекватно подобранном анестезиологическом пособии во время проведения септопластики в раннем постоперационном периоде снижается интенсивность болевого синдрома, отмечается отсутствие беспокойства и развития депрессивно-подобных состояний (Ocalan R. et al., 2015).

В некоторых исследованиях было показано, что септопластика

провоцирует изменения баланса вегетативной нервной системы и острый

болевой синдром, который, как правило, приводит к изменениям

вариабельности сердечного ритма (Butruille L. et al., 2016; Karri J. et al., 2017;

Cremillieux C. et al., 2018). Кроме того, анализ ВСР помогает оценить в целом

10

состояние вегетативной нервной системы как в различных стрессовых условиях, так и при остром болевом синдроме (Riganello F. et al., 2019). Предыдущие исследования ВСР показали, что у пациентов с острыми и хроническими соматическими болевыми синдромами тонус СНС повышен (Storella R.J. et al., 1999; Koenig J. et al., 2014; Karri J. et al., 2017).

Считается, что ВСР отражает аффективные, физиологические, когнитивные и поведенческие аспекты боли. ВСР можно рассматривать, как возможный дескриптор функциональной организации головного мозга, способствующей гомеостазу, т.е. дескриптор саморегулирующегося процесса, с помощью которого организм стремится поддерживать стабильность, приспосабливаясь к условиям, оптимальным для выживания (Cooper S.J., 2008), и гомеостатическим процессам (Riganello F. et al., 2019) для организации реакции на раздражители путем восстановления оптимального баланса (Cooper S.J., 2008). По современным представлениям, центральная вегетативная нейрональная сеть является функциональной интегрированной моделью, участвующей в тоническом, рефлекторном и адаптивном управлении вегетативными функциями (Riganello F. et al., 2019). В частности, кора островка, вентромедиальная префронтальная кора, передняя поясная кора и миндалевидное тело участвуют в модуляции симпатической и парасимпатической импульсации на сердце. Они позволяют интегрировать сердечно-сосудистые реакции, связанные с поведением и эмоциями, через гипоталамическую область, парабрахиальную область дорсолатерального моста, ядро солитарного тракта, двойное ядро (n. ambiguous), рострально-вентролатеральный мозг и промежуточно-латеральные клеточные столбы 23e26 коры больших полушарий. На основании этого, очевидно, что ВСР может быть хорошим маркером нейрогуморальной регуляторной системы организма (Riganello F. et al., 2019).

До сих пор мало уделяется внимания использованию ВСР для оценки

острого болевого синдрома и степени стресса при хирургических

вмешательствах в челюстно-лицевой области. Это является еще более

11

актуальным в связи с отсутствием ярко выраженного болевого синдрома в ряде случаев при некоторых острых и хронических состояниях (Malmqvist L. et al., 2015; Serra-Añó et al., 2015; Rodrigues D. et al., 2016). Так же до конца не ясно, как меняются параметры ВСР у пациентов с ИПН (Acar B. et al., 2010) после септопластики в зависимости от вида анестезии.

Степень разработанности темы исследования. Хирургическое лечение хронических заболеваний полости носа и околоносовых пазух -сложная и многогранная задача. Изучению данного вопроса посвящён ряд работ, однако многие из них не позволяют дать объективную оценку параметров реакций адаптации после ринохирургических вмешательств, а также не объясняют их взаимосвязь и взаимообусловленность. Следует отметить, что практически отсутствуют исследования гендерного аспекта развития болевого синдрома и его оценки при проведении септопластики у пациентов.

Современные экспериментальные работы, проводимые на перегородке носа у животных, в основном посвящены изучению роли хирургического разреза тканей в развитии постоперационных осложнений, скорости репарации тканей, видам иссечения и восстановления хряща с последующей имплантацией между слизисто-надхрящничными листками и т.п. (Rancic D. et al., 2012; Heo S.J., Kim J.S., 2016). Однако, полноценных экспериментальных исследований, изучающих стрессорные реакции организма, степень развития воспалительных реакций, изменения поведенческих реакций, развитие послеоперационных тревожных состояний, морфо-функциональных изменений в гиппокамповой формации в последние годы практически не проводилось.

Цель исследования: определить физиологические критерии стрессовых реакций при проведении хирургических вмешательств в полости носа, разработать принципы персонализированной коррекции болевого синдрома при ринологических хирургических вмешательствах.

Задачи исследования:

1. Разработать модель хирургического повреждения перегородки носа (септопластики) в эксперименте на животных.

2. Оценить активность стресс-реализующих механизмов при ринохирургических вмешательствах у пациентов в зависимости от методов анестезии, времени проведения операции и фактора пола.

3. Разработать алгоритмы и принципы персонализированной коррекции болевого синдрома у пациентов ринохирургического профиля в условиях стационара.

4. Изучить роль фотобиомодулирующей терапии в профилактике реакций дезадаптации при развитии общего адаптационного синдрома у пациентов после септопластики.

5. Разработать критерии воздействия стресс-реализующих факторов на морфо-функциональные изменения в гиппокампе у экспериментальных животных при моделировании ринохирургических вмешательств.

6. Оценить влияние операционного стресса на поведение, вариабельность сердечного ритма и дегрануляцию тучных клеток в брыжейке кишки у животных при экспериментальном моделировании септопластики.

Научная новизна исследования.

Впервые создана модель хирургического повреждения перегородки носа у биологических объектов.

Разработаны критерии перехода реакций адаптации в реакцию дезадаптации после моделирования септопластики у животных в эксперименте и после ринохирургических вмешательств у человека.

Показано, что временная сенсорная депривация обонятельного анализатора после нарушения функции его периферического отдела у крыс приводит к развитию тревожного и депрессивно-подобного состояния, снижению двигательной и исследовательской активности в открытом поле, появлению темных и р53-позитивных нейронов в субполях СА1, СА2, СА3

гиппокампа и зубчатой извилине, повышению концентрации кортикостерона в плазме крови.

Показано, что при моделировании септопластики у биологических объектов появление ТН наряду с нейронами, у которых экспрессируется белок р53, свидетельствует не только об активации механизмов апоптоза, но и о механизмах защиты нейронов на фоне увеличения активности СНС, увеличении концентрации кортикостерона в плазме крови при воздействии хирургического стресса в полости носа.

Впервые при моделировании хирургической травмы в полости носа у животных возникают не только местные морфологические изменения поврежденных тканей, но и системные признаки развития общего адаптационного синдрома, проявляющиеся увеличением дегрануляции тучных клеток в брыжейке кишки.

Получены новые данные об эффективности применения различных видов анестезиологического пособия с позиций развития общего адаптационного синдрома у пациентов в раннем постоперационном периоде.

Выявлено, что при проведении септопластики применение местной анестезии с премедикацией или схем общей анестезии, не соответствующих концепции мультимодальной аналгезии, приводит к нарушению развития нормальных адаптивно-приспособительных реакций. Неадекватное анестезиологическое пособие не в полной мере препятствует развитию ОПБС с последующим дисбалансом ВНС, централизацией нервной регуляции сердечной деятельности, активации гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой оси (выбросу кортизола в плазму крови).

В условиях, когда после септопластики проводится передняя тампонада полости носа, преждевременное удаление тампонов - инициирует болевой синдром при развитии общего адаптационного синдрома.

Впервые изучена роль гендерного фактора в развитии стрессовых реакций при проведении хирургических вмешательств в полости носа (септопластики). При неадекватном анестезиологическом пособии стрессовые

14

реакции развиваются сильнее у женщин, чем у мужчин, что подтверждается снижением общей мощности вариабельности сердечного ритма, высоким уровнем болевого синдрома, снижению активности парасимпатической нервной системы и относительным сдвигом баланса ВНС в сторону симпатикотонии.

Персонализированный подход соответствующий концепции ММА при применении общей анестезии сопровождается минимальным болевым синдромом, при этом развивается физиологическое повышение активности СНС с одномоментным увеличением мощности высокочастотного компонента ВСР, что свидетельствует о ваготонии.

Впервые продемонстрировано, что многократные сеансы ФБМТ даже в условиях передней тампонады полости носа после проведения ринохирургических вмешательств способствуют снижению выраженности стресс-реализующих реакций, препятствуют развитию ОПБС и реакций дезадаптации при развитии общего адаптационного синдрома.

Теоретическая и практическая значимость.

Разработанная модель операционной травмы (хирургические стресс -реализующие факторы) в полости носа у биологических объектов позволяет оценить закономерности и механизмы течения ОАС, последствия хирургического стресса и сенсорную депривацию обонятельного анализатора.

Показано, что в условиях хирургического повреждения слизистой оболочки полости носа у крыс развивается тревожное и депрессивно-подобное состояние, что может быть использовано для решения прикладных задач по изучению ответных реакций организма после моделирования ринологических хирургических вмешательств и посттравматического стрессового расстройства.

Персонализированный подход, с учетом фактора пола, при хирургических вмешательствах в полости носа позволяет правильно оценить

выбор анестезиологического пособия в условиях длительного и кратковременного пребывания пациентов в стационаре.

Использование ФБМТ снижает риск развития ОПБС и минимизирует болевой синдром при переднем тампонировании носа после проведения хирургических вмешательств в полости носа.

Внедрение результатов исследования.

Результаты настоящего исследования внедрены в учебный процесс кафедры нормальной физиологии и кафедры оториноларингологии ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов». Полученные результаты применяются в хирургическом лечении и реабилитации пациентов с патологиями полости носа и околоносовых пазух ГБУЗ города Москвы «Городская клиническая больница №267 имени Л.А. Ворохобова», ГБУЗ города Москвы «Городская клиническая больница № 29 им. Н.Э. Баумана», ООО «Многопрофильный медицинский центр «МЕДПРАЙМ».

Положения, выносимые на защиту.

1. Персонализированный подход соответствующий концепции мультимодальной аналгезии при применении общей анестезии при септопластике сопровождается минимальным болевым синдромом. У женщин при использовании местной анестезии с премедикацией и/или неполноценной общей анестезией при проведении септопластики развиваются дисбаланс ВНС и выраженный острый постоперационный болевой синдром.

2. Применение фотобиомодуляционной терапии в первые послеперационные сутки после проведения септопластики с последующей тампонадой полости носа способствует минимизации острой боли и резким колебаниям со стороны ВНС в ответ на хирургический стресс.

3. Скарификационное повреждение слизисто-надхрящничного листка

перегородки носа - валидная модель стрессовых реакций при

16

хирургических вмешательствах в полости носа и сенсорной депривации у биологических объектов.

4. Хирургическая травматизация перегородки носа у биологических объектов инициирует развитие реакций общего адаптационного синдрома, проявляющихся изменением поведения животных, смещением баланса ВНС в сторону симпатикотонии, ростом степени дегрануляции тучных клеток в брыжейке кишки, а также провоцирует развитие тревожного и депрессивно-подобного состояния.

5. Экспериментальная хирургическая травма при моделировании септопластики и сенсорная депривация обонятельного анализатора способствует изменению цитоархитектоники пирамидного слоя гиппокампа во всех его субполях, а также в зубчатой извилине. Рост количества темных нейронов и увеличение экспрессии белка p53 в цитоплазме нейронов в пирамидном слое гиппокампа можно рассматривать как адаптивно-приспособительные реакции в ответ на воздействие факторов хирургического стресса.

Апробация работы

Материалы исследования были представлены докладами и обсуждались

на научно-практических конференциях различного уровня:

2nd Congress of European Academy of ORL and Head & Neck Surgery (май

2013, Nice, France); Научно-практическая конференция «Актуальное в

оториноларингологии. МОНИКИ» (сентябрь 2013, Москва, Росссия); IV

Форум оториноларингологов России СПб (апрель 2015, Санкт-Петербург,

Россия); 3rd Congress of European ORL-HNS (июнь 2015, Prague, Czech

Republic); XI Конгресс Российского общества ринологов (июнь 2015, Москва,

Россия); XIX Съезд оториноларингологов России (сентябрь, 2016, Казань,

Россия); Всероссийская конференция «АГАДЖАНЯНОВСКИЕ ЧТЕНИЯ»

(январь 2016, Москва, Россия); XXII Российская научно-практическая

конференция с международным участием «Боль - болезнь. от теории к

17

практике» (сентябрь, 2016, Волгоград, Россия); V Форум оториноларингологов России (апрель 2016, Санкт-Петербург, Россия); EUROPREVENT 2016 (май, 2016, Istanbul, Turkey); EUROPREVENT 2017 (апрель 2017, Malaga, Spain); ENT World Congress - IFOS (июнь 2017, Paris, France); XXIII Российская научно-практическая конференция с международным участием «Диагностика и лечение боли -междисциплинарное взаимодействие» (мая, 2017, Новосибирск, Россия); Международный конгресс «Физиология и здоровье человека" (октябрь 2017, Баку, Азербайджан) CEORL-HNS 2017 - 4th Congress of European ORL Head and Neck Surgery (октябрь 2017, Barcelona, Spain); XVII Всероссийский симпозиум «Эколого-физиологические проблемы адаптации» (май 2017, Рязань, Россия); XXIII Съезд Физиологического общества им. И.П. Павлова (сентябрь 2017, Россия); VI Международный междисциплинарный конгресс по заболеваниям органов головы и шеи (май 2018, Москва, Россия); VII Международный междисциплинарный конгресс по заболеваниям органов головы и шеи (май 2019, Москва, Россия); CEORL-HNS 2019 - 5th Congress of European ORL Head and Neck Surgery (июнь-июль 2019, Brussels, Belgium); 17th European Pathology Congress (май, 2019, Amsterdam, Netherlands); VIII междисциплинарный конгресс по заболеваниям органов головы и шеи с международным участием (май 2020, Москва, Россия)3Ы European Congress of Pathology (ECP 2019) (сентябрь 2019, Nice, France); 32nd European Congress of Pathology (ECP 2020) (сентябрь 2020, Glasgow, UK); XV Конгресс международной ассоциации морфологов (октябрь 2020, Ханты-Мансийск. Россия); International Conference on Chronobiology in Medicine and Sports Held (декабрь 2020, Москва, Россия); IX Международный междисциплинарный конгресс по заболеваниям органов головы и шеи (май 2021, Москва, Россия)European Rhinology Sosciety Congress 2021 (сентябрь 2021, Thessaloniki, Grece); XX съезд оториноларингологов России (сентябрь 2021, Москва, Россия).

Апробация работы проведена на совместном заседании кафедр нормальной физиологии и оториноларингологии медицинского института Российского университета дружбы народов 19.02.2022 г.

По материалам диссертации опубликовано 47 научных работ, из которых 13 работ в международных базах цитирования WoS и SCOPUS, 1 монография и 23 работы в научных изданиях, включенных ВАК Министерство образования и науки Российской Федерации в перечень изданий, рекомендуемых для опубликования основных научных результатов диссертации, 2 монографии.

Структура и объем диссертации.

Диссертация изложена на 399 страницах машинописного текста, работа состоит из введения, обзора литературы, описания объектов и методов исследования, 5-ми глав собственных исследований, обсуждения полученных результатов, заключения, выводов, практических рекомендаций, списка литературы, включающего 874 источника, в том числе 49 русскоязычных и 825 англоязычных научных работ. Диссертация иллюстрирована 75 рисунками, 35 таблицами.

Глава 1. Реакции организма на стрессовое воздействие и методы оценки хирургического стресса (обзор литературы).

Организм реагирует на внешние раздражители, варьируя от незначительных до масштабных повреждений как локально, так и в целом. Общий ответ проявляется в виде широко распространенных эндокринных, метаболических и биохимических реакций по всему организму (Singh M., 2003). Величина ответа сильно зависит от серьезности, интенсивности и продолжительности стимула. Для запуска такого рефлекторного ответа и осуществления сложного взаимодействия активных веществ между гипоталамусом гипофизом приводится в действие классическая нейроэндокринная гормональная система и вегетативная нервная система, ответ которых называются «реакцией на стресс» или «реакцией на тревогу» (Arthur C., 1998)

Физическое разделение стресс-эффекторов (вегетативной нервной системы и гипоталамо-гипофизарно-адреналовой систем) в центральной нервной системе обеспечивает некоторую степень независимости двух каскадов в модуляции стресса, позволяя надлежащим образом настроить нейрональные и гормональные реакции на специфические характеристики реального или ожидаемого события. Тем не менее, эти две физиологические системы также работают вместе, как с точки зрения пересечения их основных нейронных путей, так и их физиологических функций стресс (Ulrich-Lai Y.M., Herman J.P., 2009).

Принимая во внимание, что эфферентные пути ВНС и ГГА оси, вероятно, имеют жесткий контроль, общий пул информации этих функциональных систем может быть подвержен значительным индивидуальным изменениям. Скорее всего, что дисфункция обработки информации в этих цепях возникает в результате неблагоприятных условий окружающей среды и/или наличия генетических факторов. Эта дисфункция

лежит в основе дезадаптивных стрессовых реакций, которые могут завершиться аффективным заболеванием (например, депрессия, посттравматическое стрессовое расстройство) и физическим недомоганием. (Ulrich-Lai Y.M., Herman J.P., 2009).

Наиболее распространенным хирургическим вмешательством в оперативной ринологии до сих пор остается септопластика (Пустовит О.М. и соавт., 2018; Sommer F. et Hoffmann T.K., 2019; Van Egmond M.M.H.T., et al., 2019). Выбор септопластики как метода лечения пациентов с искривлением перегородки носа не подлежит сомнению. Так, в течение последующих 6-12 месяцев септопластика приводит к улучшению носового дыхания и, как следствие, к улучшению качества жизни (Van Egmond M.M.H.T., et al., 2019)

Хирургические вмешательства в полости носа и верхних дыхательных путях приводят к изменениям в балансе ВНС (Celiker M., et al., 2018) возникновению нарушений ритма сердца (Uluyol S., et al., 2016).

При проведении септопластики важно использовать как местную, так и общую анестезию с седацией (Akça B., et al., 2016) Сильная боль может вызвать снижение частоты сердечных сокращений из-за преобладания тонуса парасимпатической нервной системы (ПНС), над симпатической (СНС), что, в свою очередь, снижая пульс, и приводит к опасному падению артериального давления (Fujiwara T. et al., 2018).

Таким образом, очевидна необходимость исследования взаимосвязи вида общей анестезии при проведении септопластики и последующей реакции организма в ответ на хирургический стресс.

1.1. Септопластика и ее роль в возникновении хирургического стресса в организме.

Перегородка носа принимает участие в формировании нормального тока воздуха в околоносовые пазухи и через глотку в трахею, а также обеспечивает большинство функций полости носа, играя одну из главных

ролей в физиологии дыхательного тракта и организма в целом (Пискунов С.3., Пискунов Г.3., 2003; Сергеева Н.В., 2019).

Искривление перегородки носа - распространенный и многофакторная клинически значимая патология, которая оказывает значительное влияние на качество жизни из-за множества осложнений, возникающих по мере прогрессирования заболевания (Fidan T. et al., 2011; Liao Z. et al., 2018). Обычно это вызвано травмой в период роста человека, а также генетическими факторами (Mays S., 2012). Из наиболее распространенных методов лечение искривления перегородки носа являются традиционная и эндоскопическая септопластика, которые могут уменьшить заложенность носа и кровотечения, но имеют свои и недостатки, в том числе послеоперационный болевой синдром (Hong C.J. et al., 2016).

1.1.1. Распространенность искривления перегородки носа.

Искривление перегородки носа является одной из наиболее распространенных причин обструкции верхних дыхательных путей (Lee J.Y. et al., 2010; Fidan V., Aksakal E., 2011; Celiker M. et al., 2018; Русецкий Ю.Ю. и соавт., 2019a; Кириченко И.М., 2020). Наиболее частым хирургическим вмешательством по поводу искривления перегородки носа является септопластика (Yang G. et al., 2017; Jin H.R., 2018; Русецкий Ю.Ю. и соавт., 2019b; Сергеева Н.В., 2019; Кириченко И.М., 2020).

Похожие диссертационные работы по специальности «Болезни уха, горла и носа», 14.01.03 шифр ВАК

Список литературы диссертационного исследования доктор наук Кастыро Игорь Владимирович, 2022 год

Список использованной литературы.

1. Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия. / М.: Медицина. - 1990. -С. 384.

2. Агаджанян Н.А. Адаптация и резервы организма. - М.: Физкультура и спорт. - 1983. - С. 176.

3. Агаджанян Н.А., Ермакова Н.В. Экологический портрет человека на севере. - М.: «КРУК». - 1997. - С. 208.

4. Асташов В.В. Лимфоидные органы и лимфа при воздействии на организм низкоэнергетического лазерного излучения с различной длиной волны в нормальных условиях гемодинамики и при ишемии тимуса. Дис. Доктора мед. наук.- Новосибирск. - 1998. - С. 393.

5. Асташов В.В., Горчаков В.Н., Майоров А.П., Казаков О.В. Морфология тимуса и система «тучные клетки-микрососуды» при лазерном облучении. // Лимфология: эксперимент, клиника: Труды ИКиЭЛ СО РАМН. - Новосибирск. - 1995. - С. 11-14.

6. Ахмедова Э.Б., Марданов Б.У., Мамедов М.Н. Определение нарушений вегетативной нервной системы в кардиологической практике: фокус на анализ вариабельности сердечного ритма. // Рациональная фармакотерапия в кардиологии. - 2015. - Т.11. - №4. - С. 426-430.

7. Баевский Р.М., Иванов Г.Г., Чирейкин Л.В., Гаврилушкин А.П., Довгалевский П.Я., Кукушкин Ю.А., Миронова Т.Ф., Прилуцкий Д.А., Семенов А.В., Федоров В.Ф., Флейшман А.Н., Медведев М.М. Анализ вариабельности сердечного ритма при использовании различных электрокардиографических систем (часть 1). // Вестник аритмологии. - 2002. -№24. - С. 65-87.

8. Берсенев Е.Ю., Баранов М.В., Валетова В.В., Тимербаев В.Х. Исследование динамики временных и спектральных показателей вариабельности сердечного ритма при реконструктивных операциях на сонных артериях. // Вариабельность сердечного ритма: Теоретические аспекты

и практическое применение. Тез. докл. IV всерос. симп. / Отв. ред. Н.И. Шлык., Р.М. Баевский; УдГУ. Ижевск. - 2008. - C. 36-40.

9. Бородулин В.Г., Филимонов С.В. Блокада крылонебного ганглия небным доступом в современной ринологической практике. // Вестник оториноларингологии. - 2016. - T.81. - №4. - C. 38-41.

10. Воячек В.И. Методика щадящих оториноларингологических воздействий. — Л. : Медгиз. - 1957. - C. 145.

11. Гарибова Т.Л., Крайнева В.А., Воронина Т.А. Поведенческие экспериментальные модели депрессии. // Фармакокинетика и Фармакодинамика. - 2017. - T.3. - C. 14-19.

12. Гомазков О.А. Нейрогенез как адаптивная функция взрослого мозга. // Успехи современной биологии. - 2013. - T.133. - №4. - C. 349-366.

13. Гостюхина А.А., Самощина Т.А., Çайцев К.В., Гутор С.С., Жукова О.Б., Светлик М.В., Абдулкина Н.Г., Сайцев А.А. Адаптивные реакции крыс после световых десинхронозов и физического переутомления. // Бюллетень сибирской медицины. - 2018. - T.17. - №3. - C. 22-34.

14. Должиков А.А., Бобынцев И.И., Белых А.Е., Должикова И.Н. Морфологические изменения нейральных и сосудистых структур гиппокампа при хроническом иммобилизационном и эмоционально- болевом стрессе в эксперименте и их анализ в связи со старением головного мозга и патогенезом болезни Альцгеймера. // Курский научно-практический вестник "Человек и его здоровье". - 2018. - T.4. - C. 95-103.

15. Елисеев В.Г. Соединительная ткань. М.: Медгиз. - 1961.

16. Заводник И.Б. Митохондрии, кальциевый гомеостаз и кальциевая сигнализация. // Биомедицинская химия. - 2016. - T.62. - №3. - C. 311-317.

17. Карпищенко С.А., Верещагина О.Е., Карпов А.А. Эндоскопическая септум-операция как этап эндоназальной дакриоцисториностомии. // Вестник оториноларингологии. - 2020. - T.85. - №6. - C. 56-59.

18. Катинас Г.С. Некоторые способы оценки пространственной и временной организации тканей /Временная и пространственная организация тканей. Л.: изд. I ЛМИ. - 1981. - C. 7-25.

19. Кириченко И.М. Биорегуляторные препараты в профилактике осложнений в раннем послеоперационном периоде у пациентов после септопластики и FESS. Вестник оториноларингологии. - 2020. - T.85. - №3. -C. 64-67.

20. Кичиков В.О. Устранение дефектов и деформаций перегородки носа как профилактика ряда заболеваний верхних дыхательных путей и уха: автореф. дис.... канд. мед. наук: 14.00.04. -М. - 2007. - C. 21.

21. Козлов B.C. Современная хирургия носа и околоносовых пазух с применением оптических систем. // Вестн. оториноларингологии. - 2006. - .№5 (Приложение). - C. 31-32.

22. Корнюшенков Е.А. Особенности клинической фармакологии препаратов для анестезии и седации мелких домашних животных. Часть 2. // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. -2013. - T.1. - C. 33-3.

23. Липский К.Б., Сидоренков Д.А., Аганесов Г.А., Малахов А.А. Эстетические осложнения метода резекции носовой перегородки по Киллиану и его модификаций. // Российская оториноларингология. - 2014. - T.4. - C. 6266.

24. Лопатин А. С. Эндоскопическая функциональная ринохирургия. // Рос. ринология. - 1993(1). - P. 71-84.

25. Лопатин А.С. Реконструктивная хирургия деформаций перегородки носа. // Рос.ринология. - 1994. - T.1. прил. - C. 3-28.

26. Мезенцева О.Ю. Некоторые функциональные показатели слизистой оболочки полости носа при искривлении его перегородки // Сб. тр. юбил. науч. конф. КГМУ и сес. Центр.-Чернозем. науч. центра РАМН, посвящ. 70-летию КГМУ / О.Ю. Мезенцева. Курск. - 2005. - C. 189-190.

27. Мельников М.Н., Вальгер А.С. Влияние тампонады носа на качество жизни в раннем послеоперационном периоде после септопластики. Вестник оториноларингологии. - 2017. - T.82. - №3. - C. 28-30.

28. Мысин И.Е., Казанович Я.Б., Кичигина В.Ф. Моделирование нейрональной сети медиальной септальной области как пейсмейкера тета-ритма. // Фундаментальные исследования. - 2013. - T.11. - №14. - C. 691-695.

29. Пальчикова Н.А., Кузнецова Н.В., Селятицкая В.Г. Глюкокортикоидная функция коры надпочечников крыс со стрептозотоциновым диабетом в динамике приема мифепристона per os. // Фундаментальные исследования. -2014. - T.8. - №1. - C. 100-104.

30. Пискунов B.C., Морозов С.А. Роль деформаций переднего отдела перегородки носа в развитии этмоидита. // Журн. ушных, носовых и горловых болезней. - 2001. - №3. - C. 140-141.

31. Пискунов В.С. Исследование аэродинамики воздушного потока в полости носа // Российская ринология. - 2000. - T.2. - C. 12-16.

32. Пискунов С.3., Должиков А.А., Мезенцева О.Ю. Морфофункциональные особенности слизистой оболочки полости носа, развивающиеся при искривлении носовой перегородки. // Рос. оториноларингология. - 2004. - T.2. - C. 90-92.

33. Пискунов С.3., Пискунов Г.3. Физиологическая и патофизиологическая роль перегородки носа. // Рос. ринология. - 2003. - №4. - C. 6-8.

34. Плужников М.С., Шантуров А.Г., Лавренова Г.В., Носуля Е.В. Слизистая оболочка носа, механизмы гомеостаза и гомеокинеза / М. С. Плужников, Шантуров А.Г., Лавренова Г.В., Носуля Е.В. // СПб: Медицина. -1995.

35. Пустовит О.М., Наседкин А.Н., Егоров В.И., Исаев В.М., Исаев Э.В., Морозов И.И. Воздействие ультразвуковой кавитации и фотохромотерапии на процесс репарации слизистой оболочки носа после септопластики и подслизистой вазотомии нижних носовых раковин. Голова и шея Head and neck Russian Journal. - 2018. - T.6. - №2. - C. 20-26.

311

36. Русецкий Ю. Ю., Лопатин А.С. Травмы носа. -М. - 2012. - C. 85-90.

37. Русецкий Ю.Ю., Спиранская О.А., Махамбетова Э.А., Сергеева Асп. Эндоскопическая септопластика и перспективы ее применения у детей (обзор литературы). Российская ринология. - 2019. - T.27. - №3. - C. 134-140.

38. Русецкий Ю.Ю., Спиранская О.А., Сергеева Н.В., Липский К.Б., Садиков И.С. Эндоскопическое закрытие перфорации перегородки носа у детей возвратным транссептальным лоскутом на ветвях решетчатых артерий // Вестник оториноларингологии. - 2019. - T.84. - №4. - C. 25-27.

39. Свистушкин В.М. Восстановление носового дыхания при деформации хрящевого отдела перегородки носа путем принципиально нового метода пластической хирургии с использованием высокоэнергетических лазеров: Дис. ... д-ра. мед. наук. М. - 2001. - C. 323.

40. Сергеева Н.В. Экспериментальное обоснование и определение клинической эффективности применения клеевых технологий в ринохирургии: автореф. дис. ... канд. мед. наук: 14.01.03. М. - 2019. - C. 26.

41. Сергеева Н.В., Русецкий Ю.Ю., Свистушкин В.М., Демура Т.А., Соболев В.П., Спиранская О.А. Фиксирующие свойства медицинского клея на основе этилового эфира 2- цианакриловой кислоты и морфологические результаты его использования при реимплантации перегородочного хряща (экспериментальное исследование). // Российская ринология. - 2019. - T.27. -№2. - C. 70-76.

42. Сергеева Н.В., Русецкий Ю.Ю., Свистушкин В.М., Решетов И.В., Спиранская О.А., Махамбетова Э.А., Липский К.Б., Садиков И.С. Методы реимплантации аутотканей при септопластике (обзор) // Вестник оториноларингологии. - 2019. - T.84. - №5. - C. 93-97.

43. Сидоренков Д.А., Липский К.Б., Аганесов Г.А., Горячих О.А., Володин А.В. Экстракорпоральная риносептопластика из открытого ринопластического доступа. // Вестник оториноларингологии. - 2019. - T.84. -№4. - C. 22-24.

44. Смоляков Ю.Н., Кузник Б.И., Калашникова С.А., Федоренко Е.В., Нольфин Н.А., Михаханов М.М. Адаптационные реакции гемодинамических систем на искусственно модулированный стресс у здоровых субъектов. // Российский медико-биологический вестник имени академика И.П. Павлова. -2019. - T.27. - №4. - C. 443-450.

45. Титова Л. А. Эндоназальные корригирующие операции при деформации носовой перегородки с применением металлокерамики и радиоволновой хирургии : автореф. дис. ... канд. мед. наук: 14.00.04. М. - 2002. - C. 16.

46. Фирсов М.Л., Астахова Л.А. Роль дофамина в регуляции функций фоторецепторов сетчатки позвоночных. // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. - 2014. - T.100. - №7. - C. 777-90.

47. Худякова Л.А., Багатенкова А.И., Гончарова Д.М. Исследование вариабельности сердечного ритма с помощью статических и геометрических методов. // Вюник НТУУ "КШ". Серiя Приладобудування. - 2017. - T.53. - №1.

- C. 95-103.

48. Чернышева М.М., Егоров В.И., Голубовский Г.А. Клинический случай выраженной посттравматической деформации носа. Голова и шея Head and neck Russian Journal. - 2018. - T.6. - №3. - C. 44-47.

49. Юрина Н.А., Радостина А.И. Морфофункциональная гетерогенность и взаимодействие клеток соединительной ткани: монография. М.: Изд. УДН. -1990. - C. 322.

50. Abeles M., Bergman H., Gat I., Meilijson I., Seidemann E., Tishby N., Vaadia E. Cortical activity flips among quasi-stationary states. // Proc Natl Acad Sci USA.

- 1995. - V.92. - P. 8616-8620.

51. Abhishekh H.A., Nisarga P., Kisan R., Meghana A., Chandran S., Raju T., Sathyaprabha T.N. Influence of age and gender on autonomic regulation of heart. // J Clin Monit Comput. - 2013. - V.27. - P. 259-64. doi:10.1007/s10877-012-9424-3

52. Abrous D.N., Koehl M., Le Moal M. Adult neurogenesis: From precursors to network and physiology. // Physiol Rev. - 2005. - V.85. - P. 523-569.

313

53. Acar B., Yavuz B., Karabulut H., Gunbey E., Babademez M.A., Yalcin A.A., Kara§en M. Parasympathetic overactivity in patients with nasal septum deformities. // Eur Arch Otorhinolaryngol. - 2010. - V.267. - P. 73-76.

54. Adamopoulos S., Rosano G.M., Ponikowski P., Cerquetani E., Piepoli M., Panagiota F., Collins P., Poole-Wilson P., Kremastinos D., Coats A.J. Impaired baroreflex sensitivity and sympathovagal balance in syndrome X. // Am J Cardiol. -1998. - V.82. - P. 862-8. doi: 10.1016/S0002-9149(98)00493-7

55. Adlan A.M., Lip G.Y., Paton J.F., Kitas G.D., Fisher J.P. Autonomic function and rheumatoid arthritis: a systematic review. // Semin Arthritis Rheu. - 2014. -V.44. - P. 283-304.

56. Aeschbacher S., Schoen T., Dorig L., Kreuzmann R., Neuhauser C., Schmid, Trucksass A., et al. Heart rate, heart rate variability and inflammatory biomarkers among young and healthy adults. // Ann Med. - 2017. - V.49. -P. 32-41. doi:10.1080/07853890.2016.1226512

57. Agadzhanyan N.A., Batotsyrenova T.E., Severin A.E., Semenov Y.N., Sushkova L.T., Gomboeva N.G. Comparison of specific features of the heart rate variability in students living in regions with different natural and climatic conditions. // Human Physiology. - 2007. - V.33. - N.6. - P. 715-719.

58. Agelink M., Boz C., Ullrich H., Andrich J. Relationship between major depression and heart rate variability. Clinical consequences and implications for antidepressive treatment. // Psychiatry Res. - 2002. - V.113. - P. 139-49. doi:10.1016/ S0165-1781(02)00225-1

59. Agostini M., Melino G., Bernassola F. The p53 Family in Brain Disease. // Antioxid. Redox Signal. - 2018. - V.29. - P. 1-14.

60. Ahima R., Krozowski Z., Harlan R. Type I corticosteroid receptor-like immunoreactivity in the rat CNS: distribution and regulation by corticosteroids. // J Comp Neurol. - 1991. - V.313. - P. 522-538.

61. Ahima R.S., Harlan R.E. Charting of type II glucocorticoid receptor-like immunoreactivity in the rat central nervous system. // Neuroscience. - 1990. - V.39. - P. 579-604.

62. Ahmed A.K., Harness J.B., Mearns A.J. Respiratory control of heart rate. // Eur J Appl Physiol. - 1982. - V.50. - P. 95-104. doi: 10.1007/BF00952248

63. Ahn J.C., Lee W.H., We J., Rhee C.S., Lee C., Kim J.W. Nasal septal deviation with obstructive symptoms: Association found with asthma but not with other general health problems. // Am J Rhinol Allergy. - 2016. - V.30. - N.2. - P. 17-20.

64. Akfa B., Arslan A., Yilba§ A.A., Canbay O., Qelebi N. Comparison of the effects of patient controlled analgesia (PCA) using dexmedetomidine and propofol during septoplasty operations: a randomized clinical trial. // SpringerPlus. - 2016. -V.5. - N.1. - P. 572. doi: 10.1186/s40064-016-2245-y

65. Akers KG, Martinez-Canabal A, Restivo L, Yiu AP, De Cristofaro A, Hsiang HL et al. Hippocampal neurogenesis regulates forgetting during adulthood and infancy. Science - 2014. - V.344. - P. 598-602.

66. Akin C. Mast cell activation syndromes. // J. Allergy Clin. Immunol. - 2017.

- V.140. - P. 349-55.

67. Alegre-Sánchez A., Saceda-Corralo D., Segurado-Miravalles G., de Perosanz-Lobo D., Fonda-Pascual P., Moreno-Arrones O.M., Buendía-Castaño D., Perez-García B., Boixeda P. Pulsed dye laser on ecchymoses: clinical and histological assessment. Lasers Med Sci. - 2018. - V.33. - N.3. - P. 683-688.

68. Alhashemi J.A., Kaki A.M. Anesthesiologist-controlled versus patient-controlled propofol sedation for shockwave lithotripsy. // Can J Anaesth. - 2006. -V.53. - P. 449-455.

69. Ali M.H., Schlidt S.A., Chandel NS, Haynes KL, Schumacker PT, and Gewertz BL. Endothelial permeability and IL-6 production during hypoxia: role of ROS in signal transduction. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. - 1999. - V.277.

- P. 1057-1065.

70. Almeida-Santos M.A., Barreto-Filho J.A., Oliveira J.L., Reis F.P., da Cunha Oliveira C.C., Sousa A.C. Aging, heart rate variability and patterns of autonomic regulation of the heart. // Arch Gerontol Geriatr. - 2016. - V.63. - P. 1-8. doi: 10.1016/j. archger.2015.11.011

71. Al-Qudah M. Endoscopic sphenopalatine ganglion blockade efficacy in pain control after endoscopic sinus surgery. // Int Forum Allergy Rhinol. - 2016. - V.6. - P. 334-338.

72. Altunkaya H., Ozer Y., Kargi E., Ozkocak I., Mubin Hosnuter, Demirel C.B., Babuccu O. The postoperative analgesic effect of tramadol when used as subcutaneous local anesthetic. Anesth. Analg. - 2004. - V.99. - N.5. - P. 14611464.

73. Amadi U., Lim S.H., Liu E., Baratta M.V., Goosens K.A. Hippocampal Processing of Ambiguity Enhances Fear Memory. // Psychol Sci. - 2017. - V.28. -P. 143-161.

74. Amaral J.D., Xavier J.M., Steer C.J., Rodrigues C.M.P. The role of p53 in apoptosis. // Discovery Medicine. - 2010. - V.9. - P. 145-152.

75. Ambrogini P., Lattanzi D., Ciuffoli S., Agostini D., Bertini L., Stocchi V., Santi S., Cuppini R. Morpho-functional characterization of neuronal cells at different stages of maturation in granule cell layer of adult rat dentate gyrus. // Brain Res. - 2004. - V.1017. - P. 21-31.

76. Anand P., Singh B., Jaggi A.S., Singh N. Mast cells: an expanding pathophysiological role from allergy to other disorders. // Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. - 2012. - V.385. - N.7. - P. 657-70.

77. Anderson D.J., Chen L.F., Sexton D.J., Kaye K.S. Complex surgical site infections and the devilish details of risk adjustment: important implications for public reporting. // Infect. Control Hosp. Epidemiol. - 2008. - V.29. - N.10. - P. 941-946.

78. Annane D., Trabold F., Sharshar T., Jarrin I., Blanc A.S., Raphael J.C., Gajdos P. Inappropriate sympathetic activation at onset of septic shock: a spectral analysis approach. // Am J Respir Crit Care Med. - 1999. - V.160. - P. 458- 65. doi: 10.1164/ajrccm.160.2.9810073

79. Arany P.R., Cho A., Hunt T.D., Sidhu G., Shin K., Hahm E., Huang G.X., Weaver J., Chen A.C.-H., Padwa B.L., Hamblin M.R., Barcellos-Hoff M.H., Kulkarni A.B., Mooney D.J. Photoactivatio of endogenous latent transforming

316

growth factor-pi directs dental stem cell differentiation for regeneration. Sci. Transl. Med. - 2014. - V.6. - P. 238-269.

80. Armesilla-Diaz A., Bragado P., Del Valle I., Cuevas E., Lazaro I., Martin C., Cigudosa J.C., Silva A. p53 regulates the self-renewal and differentiation of neural precursors. // Neuroscience. - 2009. - V.158. - P. 1378-1389.

81. Armour J.A. Neurocardiology: Anatomical and Functional Principles. Boulder Creek, CA: Institute of Heart Math. - 2003.

82. Armstrong J.F., Kaufman M.H., Harrison D.J., Clarke A.R. High-frequency developmental abnormalities in p53-deficient mice. Curr Biol. - 1995. - V.5. - P. 931-936.

83. Astashov V., Kozlov V., Tsekhmistrenko T., Sidorov V., Gurova O., Antsyreva Y. Blood and lymph circulacirculation under normal conditions and in circulatory hyphoxia. // Archiv Euromedica. - 2019. - V.2. - P. 62-65. https://doi.org/10.35630/2199-885X/2019/9/2/62

84. Atkins F.M., Friedrtlan M.M., Rao P.V.S., Metcalfe D.D. Interactions between mast cells; fibroblasts and connective tissue components. // Int. Arch. Allergy Appt Immunol. - 1985. - V.77. - P. 96—102.

85. Attardo A., Fitzgerald J.E., Schnitzer M.J. Impermanence of dendritic spines in live adult CA1 hippocampus. // Nature. - 2015. - V.523. - N.7562. - P. 592-6.

86. Aubert A.E., Seps B., Beckers F. Heart rate variability in athletes. // Sports Med. - 2003. - V.33. - P. 889-919. doi:10.2165/00007256-200333120-00003

87. Avery R.B., Johnston D. Multiple channel types contribute to the low-voltage-activated calcium current in hippocampal CA3 pyramidal neurons. // J. Neurosci. -1996. - V.16. - P. 5567-82.

88. Baek H.J., Cho C.H., Cho J., Woo J.M. Reliability of ultra-short-term analysis as a surrogate ofstandard 5-min analysis of heart rate variability. // Telemed J E Health. - 2015. - V.21. - P. 404-14. doi:10.1089/tmj.2014.0104

89. Bailey K.R., Crawley J.N. Anxiety-related behaviors in mice. In J. Buccafusco (Ed.), Methods of behavior analysis in neuroscience. Boca Raton: CRC Press/Taylor & Francis. - 2009.

90. Bailon R., Mateo J., Olmos S., Serrano P., Garcia J., del Rio A., Ferreira I.J., Laguna P. Coronary artery disease diagnosis based on exercise electrocardiogram indexes from repolarisation, depolarisation and heart rate variability. // Med Biol Eng Comput. - 2003. - V.41. - P. 561-571.

91. Baker J.D., Ozsan I., Ospina S.R., Gulick D., Blair L.J. Hsp90 Heterocomplexes Regulate Steroid Hormone Receptors: From Stress Response to Psychiatric Disease. // Int J Mol Sci. - 2019. - V.20. - N.1. - P. 79. doi: 10.3390/ijms20010079

92. Ballard R.D. Sleep, respiratory physiology, and nocturnal asthma. Chronobiol Int. - 1999. - V.5. - P. 565-80. doi:10.3109/07420529908998729

93. Balocchi R., Cantini F., Varanini M., Raimondi G., Legramante J.M., Macerata A. Revisiting the potential of time-domain indexes in short-term HRV analysis. // Biomed Tech (Berl). - 2006. - V.51. - P. 190-193.

94. Baptistella E., Rispoli D.Z., de Brito Malucelli D.A., de Carvalho Fonseca V.R.D., de Trotta F., Costa A.F.C.B., Rispoli L., Watanabe S.S., da Silva T.P. Degree of the Patient Satisfaction and Post-operative Complications for Septoplasty Surgery With and Without the Use of Nasal Buffer. Intl. Arch. Otorhinolaryngol., Sao Paulo. - 2008. - V.12. - N.3. - P. 334-341.

95. Baraniuk J.N, Merck S.J. Nasal reflexes: implications for exercise, breathing, and sex. // Curr Allergy Asthma Rep. - 2008. - V.8. - N.2. - P. 147-53.

96. Barth A.L. Visualizing circuits and systems using transgenic reporters of neural activity. // Curr Opin Neurobiol. - 2007. - V.17. - N.5. - P. 567-71.

97. Basu J., Zaremba J.D, Cheung S.K., Hitti F.L., Zemelman B.V., Losonczy A., Gating of hippocampalactivity, plasticity, and memory by entorhinal cortex longrange inhibition. // Science. - 2016. - V.351. - N.6269. - P. 5694.

98. Baxandall M.L., Thorn J.L. The nasocardiac reflex. // Anaesthesia. - 1988. -V.43. - P. 480-481.

99. Beal M.F. Mitochondria, free radicals, and neurodegeneration. Curr. Opin. Neurobiol. - 1996. - V.6. - P. 661-666.

100. Bear M.F., Connors B.W., Paradiso M.A. Neuroscience: exploring the brain. 3rd ed. Baltimore, MD: Lippincott Williams and Wilkins. - 2007. - P. 665-669.

101. Beauchaine T.P., Thayer J.F. Heart rate variability as a transdiagnostic biomarker of psychopathology. // Int J Psychophysiol. - 2015. - V.98. - N.2. - P. 338-50. doi:10.1016/j.ijpsycho.2015.08.004

102. Beckers F., Ramaekers D., Aubert A.E. Approximate entropy of heart rate variability: validation of methods and application in heart failure. // Cardiovasc Eng. - 2001. - V.1. - P. 177-82. doi: 10.1023/A: 1015212328405

103. Beckers F., Verheyden B., Aubert A.E. Aging and nonlinear heart rate control in a healthy population. // Am J Physiol Heart Circ Physiol. - 2006. - V.290. - P. 2560-70. doi:10.1152/ajpheart.00903.2005

104. Beer Z., Vavra P., Atucha E., Rentzing K., Heinze H., Sauvage M. The memory for time and space differentially engages the proximal and distal parts of the hippocampal subfields CA1 and CA3. // PLoS Biol. - 2018. - V.16. -N.8. - P. e2006100.

105. Behbahani S, Dabanloo NJ, Nasrabadi AM. Ictal heart rate variability assessment with focus on secondary generalized and complex partial epileptic seizures. Adv Biores. - 2012. - V.4. - P. 50-8.

106. Bekinschtein P., Kent B.A., Oomen C.A., Clemenson G.D., Gage F.H., Saksida L.M., Bussey T.J. Brain-derived neu- rotrophic factor interacts with adult-born immature cells in the dentate gyrus during consolidation of overlapping memories. // Hippocampus. - 2014. - V.24. - P. 905-911.

107. Ben-Ari Y. Excitatory actions of GABA during development: the nature of the nurture. // Nat Rev Neurosci. - 2002. - V.3. - P. 728-739.

108. Berkley K.J. Sex differences in pain. // Behav Brain Sci. - 1997. - V.20. - P. 371-80.

109. Berkoff D.J., Cairns C.B., Sanchez L.D., Moorman C.T. Heart rate variability in elite American track-and-field athletes. // J Strength Cond Res. - 2007. - V.21. -P. 227-31. doi:10.1519/R-20135.1

110. Bernardi L., Valle F., Coco M., Calciati A., Sleight P. Physical activity influences heart rate variability and very-low-frequency components in Holter electrocardiograms. // Cardiovasc Res. - 1996. - V.32. - P. 234-7. doi:10.1016/ 0008-6363(96)00081-8

111. Bernardo M.T., Alves S., Lima N. B., Helena D., Conde A. Septoplasty with or without postoperative nasal packing? Prospective study. Brazilian Journal of Otorhinolaryngology. - 2013. - V.79. - N.4. - P. 471-474.

112. Berntson G.G., Bigger J.T. Jr., Eckberg D.L., Grossman P., Kaufmann P.G., Malik M., Nagaraja H.N., Porges S.W., Saul J.P., Stone P.H., van der Molen M.W. Heart rate variability: origins, methods, and interpretive caveats. Psychophysiology. - 1997. - V.34. - P. 623-48. doi: 10.1111/j.1469-8986.1997. tb02140.x

113. Berntson G.G., Bigger J.T., Eckberg D.L., Grossman P., Kaufmann P.G., Malik M. Heart rate variability: origins, methods, and interpretive caveats. // Pyschophysiology. - 1997. - V.34. - P. 623-648.

114. Berntson G.G., Cacioppo J.T., Grossman P. Wither vagal tone. // Biol Psychol. - 2007. - V.74. - P. 295-300. doi:10.1016/j.biopsycho.2006.08.006

115. Berntson G.G., Quigley K.S., Lozano D. "Cardiovascular psychophysiology," in Handbook of Psychophysiology, eds J.T. Cacioppo, L.G. Tassinary, Berntson G.G. (New York, NY: Cambridge University Press). - 2007. - P. 182-210.

116. Berntson G.G., Stowell J.R. ECG artifacts and heart period variability: don't miss a beat! Psychophysiology. - 1998. - V.35. - P. 127-32. doi:10.1111/1469-8986.3510127

117. Bersani I., Piersigilli F., Gazzolo D., Campi F., Savarese I., Dotta A., Tamborrino P.P., Auriti C., Di Mambro C. Heart rate variability as possible marker of brain damage in neonates with hypoxic ischemic encephalopathy: a systematic review. // European Journal of Pediatrics. - 2020. - V.27. - P. 1-11. https://doi.org/10.1007/s00431-020-03882-3

118. Betlejewski S., Betlejewski A, Burduk D., Owczarek A. Nasal-cardiac reflex. // Otolaryngol Pol. - 2003. - V.57. - N.5. - P. 613-618.

119. Bhattacharyya N. Ambulatory sinus and nasal surgery in the United States: demographics and perioperative outcomes. Laryngoscope. - 2010. - V.120. - P. 635-38.

120. Bigger J.T. Jr, Albrecht P., Steinman R.C., Rolnitzky L.M., Fleiss J.L., Cohen R.J. Comparison of time- and frequency domain-based measures of cardiac parasympathetic activity in Holter recordings after myocardial infarction. // Am J Cardiol. - 1989. - V.64. - P. 536-8. doi:10.1016/0002-9149(89)90436-0

121. Bigger J.T. Jr, Fleiss JL, Rolnitzky L.M., Steinman R.C. Frequency domain measures of heart period variability to assess risk late after myocardial infarction. // J Am College Cardiol. - 1993. - V.21. - P. 729-36. doi: 10.1016/0735-1097(93)90106-B

122. Bigger J.T. Jr., Fleiss J.L., Steinman R.C., Rolnitzky L.M., Kleiger R.E., Rottman J.N. Frequency domain measures of heart period variability and mortality after myocardial infarction. // Circulation. - 1992. - V.85. - P. 164- 71. doi: 10.1161/01.CIR.85.1.164

123. Bigger J.T., Fleiss J.L., Steinmann R.C., Rolnitzky L.M., Kleiger R.E., Rottman J.N. Correlations among time and frequency domain measures of heart period variability two weeks after acute myocardial infarction. //Am J Cardiol. -1992. - V.69. - P. 891-8.

124. Bigger JT, Fleiss JL, Steinman RC, Rolnitzky LM, Schneider WJ, Stein PK. RR variability in healthy, middle-aged persons compared with patients with chronic coronary heart disease or recent acute myocardial infarction. Circulation. - 1995. -V.91. - P. 1936-43. doi:10.1161/01.CIR.91.7.1936

125. Bilan A., Witczak A., Palusinski R., Myslinski W., Hanzlik J. Circadian rhythm of spectral indices of heart rate variability in healthy subjects. // J Electrocardiol. - 2005. - V.38. - P. 239-43. doi: 10.1016/j.jelectrocard.2005. 01.012

126. Billman G.E. Cardiac autonomic neural "remodeling" and susceptibility to sudden cardiac death: effect of endurance exercise training. // Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. - 2009. - V.297. - P. 1171-1193.

127. Billman G.E. Heart rate variability - a historical perspective. // Front. Physio.

- 2011. - V.2. - P. 86. doi: 10.3389/fphys.2011.00086

128. Billman G.E. The LF/HF ratio does not accurately measure cardiac sympatho-vagal balance. // Front Physiol. - 2013. - V.4. - P. 26. doi:10.3389/fphys.2013. 00026

129. Billman G.E., Huikuri H.V., Sacha J., Trimmel K. An introduction to heart rate variability: methodological considerations and clinical applications. // Front Physiol. - 2015. - V.6. - P. 55. doi:10.3389/fphys.2015.00055

130. Bista M. A Comparative Study of Pain and Discomfort in Septoplasty with Quilting of Nasal Septum and Nasal Packing. // Glob J Otolaryngol. - 2018. - V.13.

- N.4. GJO.MS.ID.555866.

131. Bitter T., Fox H., Gaddam S., Horstkotte D., Oldenburg O. Sleep-disordered breathing and cardiac arrhythmias. Can J Cardiol. - 2015. - V.31. - P. 928-934.

132. Blalock J.E. A molecular basis for bi-directional communication between the immune and neuroendocrine system. // Physiol Rev. - 1989. - V.69. - P. 1-32.

133. Blanchard D.C., Griebel G., Blanchard R.J. The mouse defense test battery: Pharmacological and behavioral assays for anxiety and panic. // European Journal of Pharmacology. - 2003. - V.463. - P. 97-116.

134. Bland J.M., Altman D.G. Measuring agreement in method comparison studies. // Stat Methods Med Res. - 1999. - V.8. - P. 135-60. doi: 10.1177/096228029900800204

135. Bloom J.D., Kaplan S.E., Bleier B.S., Goldstein S.A. Septoplasty Complications: Avoidance and Management. Otolaryngol. Clin. N. Am. - 2009. -V.42. - P. 463-481.

136. Bobrinskaya I.G., Yaltonsky V.M., Khaikin S.S., Bykova O.A. Impact of Premedication on Preoperative Anxiety in Females with Gynecological Diseases. // General Reanimatology. - 2007. - V.3. - N.4. - P. 65-69.

137. Boenisch M., Mink A. Clinical and histological results of septoplasty with a resorbable implant. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. - 2000. - V. 126. - N.11. -P. 1373-7.

138. Bonaduce D, Petretta M, Morgano G, Villari B, Bianchi V, Conforti G, et al. Left ventricular remodelling in the year after myocardial infarction: an echocardiographic, haemodynamic, and radionuclide angiographic study. // Coron Artery Dis. - 1994. - V.5. - P. 155-62. doi:10.1097/00019501-199402000-00009

139. Bonaguidi MA, Song J, Ming GL, Song H. A unifying hypothesis on mammalian neural stem cell properties in the adult hippocampus. Curr Opin Neurobiol. - 2012. - V.22. - P. 754-761.

140. Bonaguidi MA, Wheeler MA, Shapiro JS, Stadel RP, Sun GJ, Ming GL et al. In vivo clonal analysis reveals self-renewing and multipotent adult neural stem cell characteristics. Cell. - 2011. - V.145. - P. 1142-1155.

141. Bondy S.C. and Lee D.K. Oxidative stress induced by glutamate receptor agonists. Brain Res. - 1993. - V.610. - P. 229-233.

142. Bonfoco E., Krainc D., Ankarcrona M., Nicotera P., Lipton S. Apoptosis and necrosis: two distinct events induced, respectively, by mild and intense insults with NMDA or nitric oxide/superoxide in cortical cultures. Proc Natl Acad Sci USA. -1995. - V.92. - P. 7162-7166.

143. Bonnemeier H., Richardt G., Potratz J., Wiegand U.K., Brandes A., Kluge N., et al. Circadian profile of cardiac autonomic nervous modulation in healthy subjects: differing effects of aging and gender on heart rate variability. // J Cardiovasc Electrophysiol. - 2003. - V.14. - P. 791-9. doi:10.1046/j.1540-8167.2003. 03078.x

144. Brennan M, Palaniswami M, Kamen P. Do existing measures of Poincare plot geometry reflect nonlinear features of heart rate variability? IEEE Trans Biomed Eng. - 2001. - V.48. - P. 1342-7. doi:10.1109/10.959330

145. Brennan M, Palaniswami M, Kamen P. Poincare plot interpretation using a physiological model of HRV based on a network of oscillators. Am J Physiol Heart Circ Physiol. - 2002. - V.283. - P. 1873-86. doi: 10.1152/ajpheart.00405.2000

146. Britton A., Shipley M., Malik M., Hnatkova K., Hemingway H., Marmot M. Changes in heart rate and heart rate variability over time in middle-aged men and women in the general population (from the Whitehall II Cohort Study). // Am J Cardiol. - 2007. - V.100. - P. 524-7. doi:10.1016/j.amjcard.2007.03.056

323

147. Brotman D.J., Bash L.D., Qayyum R., Crews D., Whitsel E.A., Astor B.C., Coresh J. Heart rate variability predicts ESRD and CKD-related hospitalization. // J Am Soc Nephrol. - 2010. - V.21. - P. 1560-70. doi: 10.1681/ASN.20091 11112

148. Brown E.N., Pavone K.J., Naranjo M. Multimodal General Anesthesia. // Anesthesia & Analgesia. - 2018. - V.127. - N.5. - P. 1246-1258.

149. Brown T.E., Beightol L..A, Koh J., Eckberg D.L. Important influence of respiration on human R-R interval power spectra is largely ignored. // J Appl Physiol. - 1992. - V.75. - P. 2310-7.

150. Bruce S.M., Carla N., Jason D.G. Stress Effects on Neuronal Structure: Hippocampus, Amygdala, and Prefrontal Cortex. // Neuropsychopharmacology Reviews. - 2016. - V.41. - P. 3-23.

151. Brzezinska-Blaszczyk E. Mast Cells as a Source and Target for Histamine. Biomedical Aspects of Histamine. - 2010. - P. 247-284.

152. Buckner R.L. The role of the hippocampus in prediction and imagination. // Annual review of psychology. - 2010. V.61. - P. 27-48.

153. Bugten V., Nilsen A.H., Thorstensen W.M., Moxness M.H.S., Amundsen M.F., Nordgard S. Quality of life and symptoms before and after nasal septoplasty compared with healthy individuals. BMC Ear, Nose and Throat Disorders. - 2016.

- V.16 - N.1. - P.13.

154. Burghardt N.S., Park E.H., Hen R., Fenton A.A. Adult-born hippocampal neurons promote cognitive flexibil- ity in mice. // Hippocampus. - 2012. V.22. - P. 1795-1808.

155. Burns T. F. and El-Deiry W. S. The p53 pathwayand apoptosis. J. Cell. Physiol. - 1999. - V.181. - P. 231-239.

156. Burr R..L, Motzer S.A., Chen W., Cowan M.J., Shulman R.J., Heitkemper M.M. Heart rate variability and 24-hour minimum heart rate.// Biol Res Nurs. -2006. - V.7. - N.4. - P. 256-267.

157. Burton D., Nicholson G., Hall G. Endocrine and metabolic response to surgery. // Continuing Education in Anaesthesia Critical Care & Pain. - 2004. - V.4.

- N.5. - P. 144-147.

158. Butruille L., De Jonckheere J., Jeanne M., Tavernier B., Logier R. Analysing heart rate variability to improve the monitoring of pain. // Rev. Infirm. - 2016. -V.65. - N.226. - P. 38-39.

159. Buzsaki G. Hippocampal sharp waves: their origin and significance. // Brain Res. - 1986. -V.398. - P. 242-252.

160. Cai D.J., Aharoni D., Shuman T., Shobe J., Biane J., Song W. A shared neural ensemble links distinct contextual memories encoded close in time. // Nature. -2016. - V.534 - N.7605. - P. 115-118.

161. Cain W.S. Contribution of the trigeminal nerve to perceived odor magnitude. // Ann. N. Y. Acad. Sci. - 1974. - V. 237. - P.28-34.

162. Caldieraro M.A., Sani G., Bui E., Cassano P. Long-term near-infrared photobiomodulation for anxious depression complicated by Takotsubo cardiomyopathy. J. Clin. Psychopharmacol. - 2018. -V.38. - P. 268-270.

163. Caliskan E., Sener M., Kipri M. Comparison of the effects of intravenous dexketoprofen trometamol versus paracetamol on postoperative analgesia in patients undergoing septoplasty: a randomised doubleblindclinical trial. // Pak J Med Sci. -2018. - V.34. - P. 546-552.

164. Camm A.J., Malik M., Bigger Jr J.T. Heart rate variability. Standards and measurement, physiological interpretation, and clinical use. // Circulation. - 1996. V.93. - P. 1043-1065.

165. Cancino G.I., A Yiu.P., Fatt M.P., C Dugani.B., Flores E.R., Frankland P.W., Josselyn S.A., F Miller.D., Kaplan D.R. p63 regulates adult neural precursor and newly born neuron survival to control hippocampal-dependent behavior. // J. Neurosci. - 2013. -V.33. - N.31. - P. 12569-12585.

166. Canty P.A., Berkowitz R.G. Hematoma and abscess of the nasal septum in children. Arch Otolaryngol Head Neck Surg. - 1996. - V.122. - N.12. - P. 13731376.

167. Carney R.M., Blumenthal J.A., Stein P.K., Watkins L., Catellier D., Berkman L. F., Czajkowski S.M., O'Connor C., Stone P.H., Freedland K.E. Depression, heart

rate variability, and acute myocardial infarction. // Circulation. - 2001. - V.104. -P. 2024-2028.

168. Carney R.M., Freedland K.E., Stein P..K, Miller G.E., Steinmeyer B., Rich M.W., Duntley S.P. Heart rate variability and markers of inflammation and coagulation in depressed patients with coronary heart disease. // J Psychosom Res. -2007. - V.62. - P. 463-467.

169. Carpeggiani C., L'Abbate A., Landi P., Michelassi C., Raciti M., Macerata A., Emdin M. Early assessment of heart rate variability is predictive of in-hospital death and major complications after acute myocardial infarction. // Int J Cardiol. -2004. - V.96. - P. 361-368.

170. Casillan A.J., Gonzalez N..C, Johnson J.S., Wood J.G. Microvascular responses to hypoxia are mediated by PAF (Abstract). FASEB J. - 2000. - V.14. -P.143.

171. Caumo W., Schmidt A.P., Schneider C.N., Bergmann J., Iwamoto C.W., Adamatti L.C., Bandeira D., Ferreira M.B. Preoperative predictors of moderate to intense acute postoperative pain in patients undergoing abdominal surgery. // Acta Anaesthesiol. Scand. - 2002. V.46. - P. 1265-1271.

172. Celiker M., Cicek Y., Tezi S., Ozgur A., Polat H.B., Dursun E. Effect of Septoplasty on the Heart Rate Variability in Patients With Nasal Septum Deviation. // J Craniofac Surg. - 2018. - V.29. - N.2. - P. 445-448.

173. Cepeda M.S., Carr D.B. Women experience more pain and require more morphine than men to achieve a similar degree of analgesia. // Anesth Analg. - 2003. - V. 97. - P. 1464-1468.

174. Cerutti S., Bianchi A.M., Mainardi L.T. "Spectral analysis of the heart rate variability signal," in Heart Rate Variability, eds M. Malik, A.J. Camm (Armonk, NY: Futura Publishing Company, Inc.). - 1995. - P. 63-74.

175. Chang C.C., Hsiao T.C., Hsu H.Y. Frequency range extension of spectral analysis of pulse rate variability based on Hilbert-Huang transform. // Med Biol Eng Comput. - 2014. - V.52. - P. 343-351.

176. Chang C.C., Hsu H.Y., Hsiao T.C. The interpretation of very high frequency band of instantaneous pulse rate variability during paced respiration. // Biomed Eng Online. - 2014. - V.13. - P. 46.

177. Chang K.Y., Dai C.Y., Ger L.P., Fu M.J., Wong K.C., Chan K.H., Tsou M.Y. Determinants of patient-controlled epidural analgesia requirements. A prospective analysis of 1,753 patients. // Clin. J. Pain. - 2006. - V.22. - P. 751-756.

178. Charriaut-Marlangue C, Aggoun-Zouaoui D, Represa A, Ben-Ari Y (1996a) Apoptotic features of selective neuronal death in ischaemia, epilepsy and gp 120 toxicity. Trends Neurosci. - 1996. - V.19. - P.109-114.

179. Charriaut-Marlangue C, Margialli I, Represa A, Popovici T, Plotkine M, Ben-Ari Y (1996b) Apoptosis and necrosis after reversible focal ischaemia: and DNA fragmentation analysis. J Cereb Blood Flow Metab. - 1996. - V.16. - P. 186 -194.

180. Checler, F., and Alves da Costa, C. (2014). p53 in neurodegenerative diseases and brain cancers. Pharmacol. Ther. - 2014.- V.142. - P. 99-113.

181. Chen N., Soneru C., Kacker A. Does a single dose of pregabalin help with postoperative pain after septoplasty? // The Laryngoscope. - 2017. -V.128. -N.5. -P. 1023-1024.

182. Chen W.L., Chen J.H., Huang C.C., Kuo C.D., Huang C.I., Lee L.S. Heart rate variability measures as predictors of in-hospital mortality in ED patients with sepsis. // Am J Emerg Med. - 2008. - V.26. - P. 395-401.

183. Chevaleyre V., Piskorowski R.A. Hippocampal Area CA2: An Overlooked but Promising Therapeutic Target. // Trends Mol Med. - 2016. - V.22. - N.8. - P. 645-655.

184. Chia Y.Y., Chow L.H., Hung C.C., Liu K., Ger L.P., Wang P.N. Gender and pain upon movement are associated with the requirements for postoperative patientcontrolled iv analgesia: A prospective survey of 2,298 Chinese patients. // Can J Anaesth. - 2002. - V.49. - P. 249-255.

185. Chin M.L., Fillingim R.B., Ness T.J. Pain in Women, 1st Edn. Published by Oxford University Press. - 2013. - V.335.

186. Cho D.Y., Drover D.R., Nekhendzy V. The effectiveness of preemptive sphenopalatine ganglion block on postoperative pain and functional outcomes after functional endoscopic sinus surgery. // Int Forum AllergyRhinol. - 2011. - V.1. - P. 212-218.

187. Choi K.Y., Cho S.W., Choi J.-J., Zhang Y.-L., Kim D.W., Han D.H., Kim H.J., Kim D.-Y., Rhee C.-S., Won T.-B. Healing of the nasal septal mucosa in an experimental rabbit model of mucosal injury. World Journal of Otorhinolaryngology

- Head and Neck Surgery. - 2017. - V.3.- N.1. - P. 17-23.

188. Choileain N.N., Redmond H.P. Cell response to surgery. // Arch. Surg. -2006. - V.141. - N.11. - P. 1132-1140.

189. Chopp M, Li Y, Zhang ZG, Freytag SO (1992) p53 expression in brain after middle cerebral artery occlusion in the rat. Biochem Biophys Res Commun. -1992.

- V.182. - P. 1201-1207.

190. Chrousos G.P, Gold P.W. The concepts of stress and stress system disorders. Overview of physical and behavioral homeostasis. - 1992. - V.267. - P. 1244-1252.

191. Chrousos G.P. Regulation and dysregulation of the hypothalamic-pituitary-adrenal axis. The corticotropin-releasing hormone perspective. Endocrinol Metab Clin North Am. - 1992. - V.21. - P. 833-858.

192. Chrousos G.P. Stress and disorders of the stress system. Nat Rev Endocrinol.

- 2009. - V.5. - N.7. - P. 374-381.

193. Chrousos G.P., Gold P.W. The concepts of stress and stress system disorders. Overview of physical and behavioral homeostasis. // JAMA. - 1992. - V.267. - N.9.

- P. 1244-1252.

194. Chung H., Dai T., Sharma S.K., Huang Y.-Y., Carroll J.D., Hamblin M.R. The nuts and bolts of low-level laser (light) therapy. Ann. Biomed. Eng. - 2012. -V.40. - P. 516-533.

195. Ciccone A.B., Siedlik J.A., Wecht J.M., Deckert J.A., Nguyen N.D., Weir J.P. Reminder: RMSSD and SD1 are identical heart rate variability metrics. // Muscle Nerve. - 2017. doi:10.1002/mus.25573

196. Ciccone G.K., Holdcroft A. Drugs and sex differences: A review of drugs relating to anaesthesia. - 1999. - V.82. - P. 255-265.

197. Ciriolo MR, De Martino A, Lafavia E, Rossi L, Carri MT and Rotilio G (2000) Cu,Zn-superoxide dismutase-dependent apoptosis induced by nitric oxide in neuronal cells. J. Biol. Chem. - 2000. - V.275. - P. 5065-5072.

198. Claydon V.E., Krassioukov A.V. Clinical correlates of frequency analyses of cardiovascular control after spinal cord injury. // Am J Physiol Heart Circ Physiol.

- 2008. - V.294. - P. 668-678.

199. Clelland C.D., Choi M., Romberg C., Clemenson G.D., Fragniere A., Tyers P., Jessberger S., Saksida L.M., Barker R.A., Gage F.H., Bussey T.J. A functional role for adult hippocampal neurogenesis in spatial pattern separation. // Science. -2009. -V.325. - P. 210-213.

200. Collavin L., Lunardi A., Del Sal G. p53-family proteins and their regulators: Hubs and spokes in tumor suppression. // Cell Death Differ. - 2010. - V.17. - N.6.

- P. 901-911.

201. Conover J.C. The neural stem cell niche. // Cell Tissue Res. - 2008. -V.331.

- N.1. - P. 211—224.

202. Cook J.A., Murrant N.J., Evans K.L., Lavelle R.J. Intranasal splints and their effects on intranasal adhesions and septal stability. Clin Otolaryngol Allied Sci. -1992. - V.17 -N.1. - P. 24-27.

203. Cooper S.J. From Claude Bernard to Walter Cannon. Emergence of the concept of homeostasis. // Appetite. - 2008. -V.51. -P. 419-427.

204. Cooper T.M., McKinley P.S., Seeman T.E., Choo T.H., Lee S., Sloan R.P. Heart rate variability predicts levels of inflammatory markers: evidence for the vagal anti-inflammatory pathway. // Brain Behav Immun. - 2015. - V.49. - P. 94-100.

205. Cosmo G. De, Congedo E., Lai C., Primieri P., Dottarelli A., Aceto P. Preoperative psychologic and demographic predictors of pain perception and tramadolconsumption using intravenous patient-controlled analgesia. // Clin J Pain.

- 2008. -V.24. - P. 399-405.

206. Costa O., Lago P., Rocha A.P., Carvalho M.J., Freitas A., Freitas J., Puig J., Brandao A., de Freitas F. Heart rate variability in 24-hour Holter recordings. Comparative study between shortand long-term time- and frequency-domain analyses. // J Electrocardiol. - 1994. - V.27. - P. 251-254.

207. Cowansage K.K., Shuman T., Dillingham B.C., Chang A., Golshani P., Mayford M. Direct Reactivation of a Coherent Neocortical Memory of Context. // Neuron. Elsevier Inc. - 2014. -V.84. - N.2. - P. 432-441.

208. Cremillieux C., Makhlouf A., Pichot V., Trombert B., Patural H. Objective assessment of induced acute pain in neonatology with the Newborn Infant Parasympathetic Evaluation index. // Eur. J. Pain. - 2018. -V.22. - N.6. - P. 10711079.

209. Crumrine R. C., Thomas A. L., and Morgan P. F. Attenuation of p53 expression protects againstfocal ischemic damage in transgenic mice. J. Cereb.Blood Flow Metab. - 1994. -V.14. -P. 887-891.

210. Crusio W.E. Genetic dissection of mouse exploratory behaviour. // Behavioural Brain Research. - 2001. -V.125. - P. 127-132.

211. Cui B., Wu M.Q., ZhuL.X., She X.J., Ma Q., Liu H.T. Effect of chronic noise exposure on expression of N-methyl-D-aspartic acid receptor 2B and Tau phosphorylation in hippocampus of rats. // Biomed Environ Sci. - 2013. - V.26. -N.3. - P. 163-168.

212. Curry N., Brohi K. Surgery in traumatic injury and perioperative considerations. // Semin. Thromb. Hemost. - 2020. -V.46. - P. 73-82.

213. Czeh B., Lucassen P.J. What causes the hippocampal volume decrease in depression? Are neurogenesisglial changes and apoptosis implicated? // Eur. Arch. Psychiatry Clin. Neurosci. - 2007. - V.257. - P. 250-260.

214. Da Silva E.Z.M., Jamur M.C., Oliver C. Mast Cell Function. // Journal of Histochemistry & Cytochemistry. - 2014. - V.62. - N.10. - P. 698-738.

215. D^browska-Bien J., Skarzynski P.H., Gwizdalska I., Laz^cka K., Skarzynsk H. Complications in septoplasty based on a large group of 5639 patients. European Archives of Oto-Rhino-Laryngology. - 2018. - V.275 - P. 1789-1794.

330

216. Dadgarnia M., Meybodian M., Karbasi A., Baradaranfar M., Atighechi S., Zand V., Vaziribozorg S. Comparing nasal packing with trans-septal suturing following septoplasty: a randomized clinical trial. Eur Arch Otorhinolaryngol. -2017. - V.274. - N.9. - P. 3513-3518.

217. Dai H., Korthuis R.J. Mast Cell Proteases and Inflammation. // Drug Discov Today Dis Models. - 2011. - V.8. - N.1. - P. 47-55.

218. Daily D, Barzilai A, Offen D, Kamsler A, Melamed E and Ziv I (1999) The involvement of p53 in dopamine-induced apoptosis of cerebellar granule neurons and leukemic cells overexpressing p53. Cell. Mol. Neurobiol. - 1999. - V.19. - P. 261-276.

219. Danielson N.B., Zaremba J.D., Kaifosh P., Bowler J., Ladow M., Losonczy A. Sublayer-Specific CodingDynamics during Spatial Navigation and Learning in Hippocampal Area CA1. // Neuron. Elsevier Inc. - 2016. - V.91. - N.3. - P. 652665.

220. David D.J., Samuels B.A., Rainer Q., Wang J.-W., Marsteller D., Mendez I., Drew M., Craig D.A., B Guiard.P., Guilloux J.-P., Artymyshyn R.P., Gardier A.M., Gerald C., Antonijevic I.A., David Leonardo E., Hen R. Neurogenesis-dependent and -independent effects of fluoxetine in an animal model of anxiety/depression. // Neuron. - 2009. - V.62. - P. 479-493.

221. Dayer A.G., Ford A.A., Cleaver K.M., Yassaee M., Cameron H.A. Shortterm and long-term survival of new neurons in the rat dentate gyrus. // J Comp Neurol. -2003. - V.460. - P. 563-572.

222. De Groot L.J., Chrousos G., Dungan K., et al., editors. Endotext. South Dartmouth (MA): MDText.com, Inc. - 2010.

223. De Groot LJ, Chrousos G, Dungan K, et al., editors. South Dartmouth (MA): MDText.com, Inc. - 2000.

224. De la Monte SM, Sohn YK and Wands JR (1997) Correlates of p53- and Fas (CD95)-mediated apoptosis in Alzheimer's disease. J. Neurol. Sci. - 1997. - V.152. - P. 73-83.

225. De la Monte SM, Sohn YK, Ganju N and Wands JR (1998) p53- and CD95-associated apoptosis in neurodegenerative diseases. Lab. Invest. - 1998.- V. 78. - P. 401-411.

226. Decimo I., Bifari F., Krampera M., Fumagalli G. Neural stem cell niches in health and diseases // Curr. Pharm. Des. - 2012. -V.18. - N.13. - P. 1755-1783.

227. DeGiorgio C.M., Miller P., Meymandi S., Chin A., Epps J., Gordon S., Gornbein J., Harper R.M. RMSSD, a measure of vagus-mediated heart rate variability, is associated with risk factors for SUDEP: the SUDEP-7 inventory. // Epilepsy Behav. - 2010. - V.19. - P. 78-81.

228. Delogu G., Moretti S., Famularo G., Santini G., Antonucci A., Marandola M., Signore L. Mitochondrial perturbations and oxidant stress in lymphocytes from patients undergoing surgery and general anesthesia. // Arch. Surg. - 2001. - V.136. - N.10. - P. 1190-1196.

229. DeMaria S. Jr, S. Govindaraj, Chinosorvatana N. Bilateral sphenopalatine ganglion blockade improves postoperative analgesia after endoscopic sinus surgery. // Am J Rhinol Allergy. - 2012. - V.26. - P. 23-27.

230. Denny C.A., Kheirbek M.A., Alba E.L., Tanaka K.F., Brachman R.A., Laughman K.B. Hippocampal memory traces are differentially modulated by experience, time, and adult neurogenesis. // Neuron. - 2014. -V.83. - N.1 - P. 189201.

231. Derin S., Akin F., Sxahan M., Altun L, §ahin C., Elifora S.§. Impact of markedly nasal septal deviation on 24-hour rhythm Holter findings. // Kulak Burun Bogaz Ihtis Derg. - 2015. - V.25 - P. 284-288.

232. Derin S., Akin F., Sxahan M., Altun L, Sxahin C., Elicxora S.Sx. Impact of markedly nasal septal deviation on 24-hour rhythm Holter findings. Kulak Burun Bogaz Ihtis Derg. - 2015. - V.25. - P. 284-288.

233. Desborough J.P. The stress response to trauma and surgery. // Br J Anaesth. -2000. - V.85. - N.1. - P. 109-117.

234. Dietrich A., Rosmalen J.G., Althaus M., van Roon A.M., Mulder L.J., Minderaa R.B., Oldehinkel A.J., Riese H. Reproducibility of heart rate variability

332

and baroreflex sensitivity measurements in children. // Biol Psychol. - 2010. - V.85.

- P. 71- 78.

235. Dijk J.F.M. van, Wijck A.J.M. van, Schuurmans M.J. 'Bearable pain' is not the same for men and women. // European Journal of Pain. - 2009. - V.13. - P. 223224.

236. Dobrossy M.D.E., Aurousseau C., Le Moal M., Piazza P.V., Abrous D.N. Differential effects of learning on neurogenesis: Learning increases or decreases the number of newly born cells depending on their birth date. // Mol Psychiatry. - 2003.

- V.8. - P. 974-982.

237. Dobson G.P. Trauma of major surgery: A global problem that is not going away. // Int J Surg. - 2020. - V.81. - P. 47-54.

238. Dobson G.P., Morris J.L., Davenport L.M., Letson H.L. Traumatic-induced coagulopathy as a systems failure: a new window into hemostasis. // Semin. // Thromb. Hemost. - 2020. - V.46. - N.2. - P. 199-214.

239. Dong Y., Green T., Saal D., Marie H., Neve R., Nestler E.J. CREB modulates excitability of nucleus accumbens neurons. // Nature Neuroscience. - 2006. - V.9.

- N.4. - P. 475-477.

240. Dorning H., Blitzer E.M., Hofmann W., Schwartz F.W. Longitudinal data analysis of hospital claims data. - 1995. - V.57. - P. 631-637.

241. Dou Z., Xiquan H., Zhu H. The effects of two kinds of laser irradiation on patients with brain lesion. Chin. J. Phys. Med. Rehabil. - 2003. - V.2. - P. 38-43.

242. Drago§ D., Tanasescu M.D. The effect of stress on the defense systems. // J Med Life. - 2010. - V.3. - N.1. - P. 10-18.

243. Drapeau E., Mayo W., Aurousseau C., Le Moal M., Piazza P.V, et al. Spatial memory performances of aged rats in the water maze predict levels of hipppocampal neurogenesis. // Proc Natl Acad Sci USA. - 2003. - V.100. - P. 14385-14390.

244. Drieu C., Zugaro M. (2019) Hippocampal Sequences During Exploration: Mechanisms and Functions. Front. Cell. Neurosci. - 2019. - V.13. - P. 232. doi: 10.3389/fncel.2019.00232

245. Drugan R.C., Basile A.S., Ha J.H., Healy D., Ferland R.J. Analysis of the importance of controllable versus uncontrollable stress on subsequent behavioral and physiological functioning. // Brain Res. Brain Res. Protoc. - 1997. - V.2. - P. 69-74.

246. Drury R.L. Unraveling Health as a Complex Adaptive System:Data Mining, Cloud Computing, Machine Learning and Biosensors as Synergistic Technologies. // Int J Genom Data Min. - 2017. - P. 105. DOI: 10.29011/2577-0616.000105

247. Du C, Hu R, Csernansky CA, Hsu CY, Choi DW (1996) Very delayed infarction after local cerebral ischemia: a role for apoptosis. J Cereb Blood Flow Metab. - 1996. - V.16. - P. 195-201.

248. Dunn J.D., Orr S.E. Differential plasma corticosterone responses to hippocampal stimulation. Exp Brain Res. - 1984. -V.54. - P. 1-6.

249. Dunsmoor J.E., Paz R. Fear Generalization and Anxiety: Behavioral and Neural Mechanisms. // Biol Psychiatry. - 2015. - V.78. - P. 336-343.

250. Dupret D., Fabre A., Dobro M. D., Panatier A.,Rodriguez J. J.,Lamarque S.,Lemaire V.,Oliet S-H. R., P-V Piazza, Djoher Nora Abrous. Spatial Learning Depends on Both the Addition and Removal of New Hippocampal Neurons .//Journal .pbio.0050214. - 2007. - V.5 - N.8. - P. 1683-1694.

251. Duranteau J., Chandel NS, Kulisz A, Shao Z, and Schumacker PT. Intracellular signaling by reactive oxygen species during hypoxia in cardiomyocytes. J Biol Chem. - 1998. - V.273. - P. 11619-11624.

252. Eckberg D.L. Human sinus arrhythmia as an index of vagal outflow. // J Appl Physiol Respir Environ Exerc Physiol. - 1983. - V.54. - P. 961-966.

253. Eckberg D.L. Sympathovagal balance: a critical appraisal. // Circulation. -1997. - V.96. - P. 3224-3232.

254. Eckberg D.L., Eckberg M.J. Human sinus node responses to repetitive, ramped carotid baroreceptor stimuli. // Am J Physiol. - 1982. - V.242. - P.638-644.

255. Eckberg D.L., Sleight P. Human Baroreflexes in Health and Disease. Oxford: Clarendon Press. - 1992.

256. Egeland M., Zunszain P.A., Pariante C.M. Molecular mechanisms in the regulation of adult neurogenesisduring stress. // Nat. Rev. Neurosci. - 2015. - V.16.

- P. 189-200.

257. Egizio V.B., Eddy M., Robinson M., Jennings J.R. Efficient and cost-effective estimation of the influence of respiratory variables on respiratory sinus arrhythmia. // Psychophysiology. - 2011. - V.48. - P. 488-494.

258. Eichenbaum H., Otto T. The hippocampus— what does it do? Behav. // Neural Biol. - 1992. - V.57. - P. 2-36.

259. Eizenberg O., Faber-Elman A., Gottlieb E., Oren M., Rotter V., Schwartz M. p53 Plays a Regulatory Role in Differentiation and Apoptosis of Central Nervous System-Associated Cells // Molecular And Cellular Biology. - 1996. -V.16. - N.9.

- P. 5178-5185.

260. Ekici N.Y., Alagoz S. The effectiveness of endoscopic sphenopalatine ganglion block in management of postoperative pain after septal surgery. // International Forum of Allergy & Rhinology. - 2019. - V.9. - N. 12. - P. 1521-1525.

261. Elenkov I.J., Chrousos G.P. Stress system - organization, physiology and immunoregulation. // Neuroimmunomodulation. - 2006. - N.13. - P. 257-267.

262. Ellis M. The Mechanism of the Bronchial Movements and the Naso-pulmonary Reflex. // Proc R Soc Med. - 1936. - V.29. - N.5. - P. 527-536.

263. Elwood P.C., Pickering J., Gallacher J.E. Cognitive function and blood rheology: results from the Caerphilly cohort of older men. Age Ageing. - 2001. -V.30. - P. 135-139.

264. Encinas JM, Michurina TV, Peunova N, Park JH, Tordo J, Peterson DA et al. Divisioncoupled astrocytic differentiation and age-related depletion of neural stem cells in the adult hippocampus. Cell Stem Cell. - 2011. - V.8. - P. 566-579.

265. Enokido Y, Araki T, Aizawa S, Hatanaka H (1996a) p53 involves cytosine arabinoside induced apoptosis in cultures cerebellar granule neurons. Neurosci Lett.

- 1996. - V.203. - P. 1- 4.

266. Enokido Y, Araki T, Tanaka K, Aizawa S, Hatanaka H (1996b) Involvement of p53 in DNA strand break-induced apoptosis in postmitotic CNS neurons. Eur J Neurosci. - V.8. - P. 1812-1821.

267. Enokido Y., Hatanaka H. (1993) Apoptotic cell death occurs in hippocampal neurons cultured in a high oxygen atmosphere. Neurosci. - V.57. - P. 965-972.

268. Enwemeka C.S., Parker J.C., Dowdy D.S., Harkness E.E., Sanford L.E., Woodruff L.D. The efficacy of low-power lasers in tissue repair and pain control: a meta-analysis study. Photomed Laser Therapy. - 2004. -V.22. - N.4. - P. 323-329.

269. Erster S., Moll U.M. Stress-Induced p53 Runs a Direct Mitochondrial Death Program: Its Role in Physiologic and Pathophysiologic Stress Responses In Vivo; Cell Cycle. - 2004. -V. 3. - P. 1492-1495.

270. Esco M.R., Flatt A.A. Ultra-short-term heart rate variability indexes at rest and post-exercise in athletes: evaluating the agreement with accepted recommendations. // J Sports Sci Med. - 2014. -V.13. - P. 535-541.

271. E§ki E., Guvenf I.A., Hizal E., Yilmaz i. Effects of nasal pack use on surgical success in septoplasty. Kulak Burun Bogaz Ihtis Derg. - 2014. - V.24. - N.4. - P. 206-210.

272. Esposito M.S., Piatti V.C., Laplagne D.A., Morgenstern N.A., Ferrari C.C., Pitossi F.J., Schinder A.F. Neuronal differenti- ation in the adult hippocampus recapitulates embryonic development. // J Neurosci. - 2005. - V.25. - P. 1007410086.

273. Estevez-Baez M., Machado C., Montes-Brown J., Jas-Garcia J., Leisman G., Schiavi A., Machado-Garcia A., Carricarte-Naranjo C., Carmeli E.Very High Frequency Oscillations of Heart Rate Variability in Healthy Humans and in Patients with Cardiovascular Autonomic Neuropathy // Advs Exp. Medicine, Biology -Neuroscience and Respiration. - 2018. -V.39. - P. 49-70.

274. Fauchier L, Babuty D, Cosnay P, Fauchier JP. Prognostic value of heart rate variability for sudden death and major arrhythmic events in patients with idiopathic dilated cardiomyopathy. // J Am College Cardiol. - 1999. - V.33. - P. 1203- 1207.

275. Faustino A.I., Oliveira G.A, Oliveira R.F. Linking appraisal to behavioral flexibility in animals: implications for stress research. // Front Behav Neurosci. Frontiers. - 2015. - V.9. - P. 104.

276. Fazeli M.S., Pourrahmat M.M., Liu M., Guan .L, Collet J.P. The Effect of Head Massage on the Regulation of the Cardiac Autonomic Nervous System: A Pilot Randomized Crossover Trial. J Altern Complement Med. - 2016. - V.22 - N.1. - P. 75-80.

277. Fearon K.C., Ljungqvist O., von Meyenfeldt M. Enhanced recovery after surgery: a consensus review of clinical care for patients undergoing colonic resection. // Clin Nutr. - 2005. - V.24. - N.3. - P. 466-477.

278. Fedok F.G., Ferraro R.E., Kingsley C.P., Fornadley J.A. Operative times, postanesthesia recovery times, and complications during sinonasal surgery using general anesthesia and local anesthesia with sedation. // Otolaryngol Head Neck Surg. - 2000. - V.122. - P. 560-566.

279. Feliciano D.M., Bordey A., Bonfanti L. Noncanonical Sites of Adult Neurogenesis in the Mammalian Brain. // Cold Spring Harb. Perspect. Biol. - 2015. -P. 7.

280. Feng R, Rampon C, Tang YP, Shrom D, Jin J, Kyin M et al. Deficient neurogenesis in forebrain-specific presenilin-1 knockout mice is associated with reduced clearance of hippocampal memory traces. Neuron. - 2001. - V.32. - P. 911926.

281. Fenton A.A., Kao H.-Y., Neymotin S.A., Olypher A.V., Vayntrub Y., Lytton W.W., Ludvig N. Unmasking the CA1 ensemble place code by exposures to small and largeenvironments: more place cells and multiple, irregularly-arranged, and expanded place fields in the larger space. // J Neurosci. - 2008. - V.28. - P. 1125011262.

282. Fenton A.A., Muller R.U. Place cell discharge is extremely variable during individual passes of the rat through the firing field. // Proc Natl Acad Sci USA. -1998. - V.95. - P. 3182-3187.

283. Ferreira-Valente M.A., Pais-Ribeiro J.L., Jensen M.P. Validity of four pain intensity rating scales. // Pain. - 2011. - V.152. - P. 2399-2404.

284. Fidan T., Fidan V., Ak M., Sutbeyaz Y. Neuropsychiatrie symptoms, quality of sleep and quality of life in patients diagnosed with nasal septal deviation. // Kulak Burun Bogaz Ihtis Derg. - 2011. - V.21. - N.6. - P. 312-317.

285. Fidan V., Aksakal E. Impact of septoplasty on pulmonary artery pressure in patients with markedly deviated septum. J Craniofac Surg. - 2011. - V.22. - N.5. -P. 1591-1593. doi: 10.1097/SCS.0b013e31822e5e21.

286. Fillingim R.B. Sex, gender, and pain: Women and men really are different. //Curr Rev Pain. - 2000. - V.4 - P. 24-30.

287. Findikcioglu K., Findikcioglu F., Demirtas Y., Yavuzer R., Ayhan S., Atabay K. Effect of the menstrual cycle on intraoperative bleeding in rhinoplasty patients. // Eur J Plast Surg. - 2009. - V.32. - P. 77-81.

288. Finnerup N.B. Pain in patients with spinal cord injury. // Pain. 2013; 154: S71-S76. doi: 10.1016/j.pain.2012.12.007; Watson J.C., Sandroni P. Central neuropathic pain syndromes. // Mayo Clin. Proc. - 2016. - V.91. - P. 372-385. doi: 10.1016/j.mayocp.2016.01.017

289. Flagel S.B., Waselus M., Clinton S.M., Watson S.J., Akil H. Antecedents and consequences of drug abuse in rats selectively bred for high and low response to novelty. // Neuropharmacology. - 2014. - V.76. - P. 425- 436.

290. Flasbeck V., Atucha E., Nakamura N.H., Yoshida M., Sauvage M.M. Spatial information is preferentially processed by the distal part of CA3: implication for memory retrieval. // Behav Brain Res. - 2018. - V.347. - P. 116-123.

291. Frank A.C., Huang S., Zhou M., Gdalyahu A., Kastellakis G., Silva T.K. Hotspots of dendritic spine turnover facilitate clustered spine addition and learning and memory. // Nature Communications. Springer US. - 2018. - V.9. - N.1. - P. 422.

292. Freitas J., Lago P., Puig J., Carvalho M.J., Costa O., de Freitas A.F. Circadian heart rate variability rhythm in shift workers. // J Electrocardiol. - 1997. - V.30. -P. 39- 44. doi: 10.1016/S0022-0736(97)80033-7

338

293. Frenzel L., Hermine O. Mast cells and inflammation. // Joint Bone Spine. -2013. - V.80. - N.2. - P. 141-145.

294. Friedman A. A corticostriatal path targeting striosomes controls decisionmaking under conflict. Cell. - 2015. - V.161. - P. 1320-1333. [PubMed: 26027737]

295. Friedrich C., Rudiger H., Schmidt C., Herting B., Prieur S., Junghanns S., Schweitzer K., Globas C., Schöls L., Berg D., Reichmann H., Ziemssen T. Baroreflex sensitivity and power spectral analysis in different extrapyramidal syndromes. // J Neural Transm. - 2008. - V.115. - P. 1527-1536. doi: 10.1007/s00702-008-0127-3

296. Friedrich C., Rüdiger H., Schmidt C., Herting B., Prieur S., Junghanns S., Schweitzer K., Globas C., Schöls L., Berg D., Reichmann H., Ziemssen T. Baroreflex sensitivity and power spectral analysis during autonomic testing in different extrapyramidal syndromes. // Mov Disord. - 2010. - V.25. - N.3. - P. 315324. doi: 10.1002/mds.22844.

297. Frieri M. Asthma linked with rhinosinusitis: An extensive review. // Allergy Rhinol (Providence). - 2014. - V.5. - P. 41- 49.

298. Frieri M. Neuroimmunology and inflammation: Implications for therapy of allergic and autoimmune diseases. // Ann Allergy Asthma Immunol. - 2003. - V.90. - N.3. - P. 34 - 40.

299. Fujiwara T., Kuriyama A., Kato Y., Fukuoka T., Ota E. Perioperative local anaesthesia for reducing pain following septal surgery. // Cochrane Database Syst Rev. - 2018. - V.23. - N.8. doi:10.1002/14651858.CD012047.pub2

300. Gagliese L. Pain and Aging: The Emergence of a New Subfield of Pain Research. The Journal of Pain. - 2009. - V.10. - N.4. - P. 343-353.

301. Gagliese L., Gauthier L.R., Macpherson A.K., Jovellanos M., Chan V.W. Correlates of postoperative pain and intravenous patient-controlled analgesia use in younger and older surgical patients. // Pain Med. - 2008. - V.9. - P. 299-314.

302. Gaia R., Coelho J., Brandäo F.H., Carvalho M.R.M.S., Aquino J.E.P., Paula S.H.P., Fabi R.P., Eiras B. Frequência de Sinéquia Nasal apos Cirurgia de

Septoplastia com Turbinectomia com e sem Uso de Splint Nasal. Arq Int Otorrinolaringol. - 2008. -V.12. -N.1. -P. 24-27.

303. Galli S.J., Tsai M. Mast cells: versatile regulators of inflammation, tissue remodeling, host defense and homeostasis. // J Dermatol Sci. - 2008. -V.49. - N.1.

- P. 7-19.

304. Gan T.J., Habib A.S., Miller T.E., White W., Apfelbaum J.L. Incidence, patient satisfaction, and perceptions of post-surgical pain: results from a US national survey. // Curr Med Res Opin. - 2014. - V.30. - N.1 - P. 149-160.

305. Gao X, Enikolopov G, Chen J. Moderate traumatic brain injury promotes proliferation of quiescent neural progenitors in the adult hippocampus. Exp Neurol.

- 2009. -V. 219. - P. 516-523.

306. Gao X., Zhi P., Wu X. Low-energy semiconductor laser intranasal irradiation of the blood improves blood coagulation status in normal pregnancy at term. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. - 2008. -V.28. - P.1400-1401.

307. Gao Z.-S., Zhang L., Qin C.-l. The relationship between hemorheological changes and the anxiety and depression symptoms in schizophrenia. Chin. J. Hemorheol. - 2004. - V.1.

308. Garcia AD, Doan NB, Imura T, Bush TG, Sofroniew MV. GFAP-expressing progenitors are the principal source of constitutive neurogenesis in adult mouse forebrain. Nat Neurosci - 2004. - V.7. - P. 1233-1241

309. Garrity E.R., Stimler N.P., Munoz N.M., Tallet J., David A.C., Leff A.R. Sympathetic modulation of biochemical and physiological response to immune degranulation in canine bronchial airways in vivo. // J Clin Invest - 1985. - V.75. -P. 2038-2046.

310. Ge S., Goh E.L., Sailor K.A., Kitabatake Y., Ming G.L., Song H. GABA regulates synaptic integration of newly generated neurons in the adult brain. // Nature. - 2006. - V.439. - P.589-593.

311. Ge S., Yang C.-H., Hsu K.-S., Ming G.-L., Song H. A critical period for enhanced synaptic plasticity in newly generated neurons of the adult brain. // Neuron. - 2007. -V.54. - P. 559-566.

312. Gellhorn E. Autonomic Imbalance and the Hypthalamus: Implications for Physiology, Medicine, Psychology, and Neuropsychiatry. London: Oxford University Press, - 1957.

313. Geng Y., R. S. Akhtar, J.J. Shacka, B.J. Klocke, J. Zhang, X. Chen, K.A. Roth. p53 Transcription-Dependent and -Independent Regulation of Cerebellar Neural Precursor Cell Apoptosis. // J Neuropathol Exp Neurol. -2007. -V.66. -N.1. - P. 6674.

314. Gestel A.J. van, Steier J. Autonomic dysfunction in patients with chronic obstructive pulmonary disease (COPD). // J Thorac Dis. - 2010. - V.2. - P. 215222.

315. Gevirtz R.N., Lehrer P.M., Schwartz M.S. Cardiorespiratory biofeedback. 4th ed. In: Schwartz MS, Andrasik F, editors. Biofeedback: A Practitioner's Guide. New York: The Guilford Press, - 2016. -P. 196-213.

316. Ghosh S., Chattarji S. Neuronal encoding of the switch from specific to generalized fear. // Nat Neurosci. - 2015. -V.18. - P. 112-120.

317. !!!!! Giannoudis P.V., Dinopoulos H., Chalidis B., Hall G.M. Surgical stress response. // Injury. - 2006. - V.37. -P. 3-9. doi:10.1016/s0020-1383(07)70005-0

318. Gillman G. Septoplasty. In: Myers E.., Kennedy D (eds) Rhinology. Wolters Kluwer, Alphen aan den Rijn, Netherlands, - 2016. - P. 7-21.

319. Gillman G.S., Egloff A.M., Rivera-Serrano C.M. Revision septoplasty: a prospective disease-specific outcome study. Laryngoscope. - 2014. Jun; - V.124. -N.6. - P. 1290-5. doi: 10.1002/lary.24356. Epub 2013 Sep 19.

320. Gilman CP, Chan SL, Guo Z, Zhu X, Greig N, Mattson MP. p53 is present in synapses where it mediates mitochondrial dysfunction and synaptic degeneration in response to DNA damage, and oxidative and excitotoxic insults. Neuromolecular Med - 2003. - V.3. - P. 159-72.

321. Glasper E.R., Schoenfeld T.J., Gould E. Adult neurogenesis: optimizing hippocampal function to suit the environment. // Behav Brain Res. - 2012. - V. 227. - P. 380-383.

322. Glover L.R., Schoenfeld T.J., Karlsson R-M., Bannerman D.M., Cameron H.A. Ongoing neurogenesis in the adult dentate gyrus mediates behavioral responses to ambiguous threat cues. // PLoS Biol. - 2017. - V.15. - N .4. e2001154.

323. Godin P.J., Buchman T.G. Uncoupling of biological oscillators: a complementary hypothesis concerning the pathogenesis of multiple organ dysfunction syndrome. // Crit Care Med. - 1996. - V.24. - N .7. - P. 1107-1116.

324. Goldberger A.L. Is the normal heartbeat chaotic or homeostatic? // News Physiol Sci - 1991. - V.6. - P. 87-91.

325. Goldsmith R.L., Bigger J.T. Jr., Steinman R.C., Fleiss J.L. Comparison of 24hour parasympathetic activity in endurance-trained and untrained young men. // J Am College Cardiol. - 1992. - V.20. - P. 552-8. doi: 10.1016/0735-1097(92) 90007-A

326. Goldstein D.S., Bentho O., Park M.Y., Sharabi Y. Low-frequency power of heart rate variability is not a measure of cardiac sympathetic tone but may be a measure of modulation of cardiac autonomic outflows by baroreflexes. // Exp Physiol. - 2011. - V.96. - P. 1255-61. doi:10.1113/expphysiol.2010.056259

327. Gonzalez NC, Wood JG. Leukocyte-endothelial interactions in environmental hypoxia. Adv Exp Med Biol - 2001. -V.502. - P. 39-60.

328. Gothard K.M, Skaggs W.E., McNaughton B.L. Dynamics of mismatch correction in the hippocampal ensemble code for space: interaction between path integration and environmental cues. // J Neurosci. - 1996. - V.16. - P. 8027-8040.

329. Gottwald T., Coerper S., Schaffer M., Koveker G., Stead R.H. The mast cellnerve axis in wound healing: a hypothesis. // Wound Repair Regen. - 1998. - V.6. - P. 8-20.

330. Gould E., Beylin A., Tanapat P., Reeves A., Shors T.J. Learning enhances adult neurogenesis in the hippocampal formation. // Nat Neurosci. -1999. - V.2. -P.260-265.

331. Gould E., Tanapat P. Stress and Hippocampal Neurogenesis. // Society of Biological Psychiatry. -1999. -V.46. -P. 1472-1479.

332. Gould T.D., Dao D.T., Kovacsics C.E. Mood and anxiety related phenotypes in mice. // Neuromethods. - 2009. - V.42. - P. 1-20.

333. Graeber TG, Osmanian C, Jacks T, Housman DE, Koch CJ, Lowe SW, Giaccia AJ (1996) Hypoxia mediated selection of cells with diminished apoptotic potential in solid tumors. Nature - V.379. - P. 88 -91.

334. Graeber TG, Peterson JF, Tsai M, Monica K, Fornace Jr AJ, Giaccia AJ (1995) Hypoxia induces accumulation of p53 protein, but activation of a G1-phase checkpoint by low-oxygen conditions is independent of p53 status. Mol Cell Biol -V.14. - P. 6264 - 6277.

335. Granger D.N., Grisham MB, and Kvietys PR. Mechanisms of microvascular injury. In: Physiology of the Gastrointestinal Tract (3rd ed.), edited by Johnson LR. New York: Raven, - 1994.- P. 1693-1722.

336. Grant C.C., van Rensburg D.C., Strydom N., Viljoen M. Importance of tachogram length and period of recording during noninvasive investigation of the autonomic nervous system. // Ann Noninvasive Electrocardiol. - 2011. - V.16. - P. 131-9. doi: 10.1111/j.1542-474X.2011.00422.x

337. Gray J.A., McNaughton N. The neuropsychology of anxiety: An enquiry into the function of the septo-hippocampal system. Second. Oxford University Press; -2000.

338. Gray L. Deviated nasal septum: incidence and etiology. // Ann. Otol. Rhinol. Laryngol. -1990. - V. 87. - P.3-20.

339. Greenspan J.D. et al. Studying sex and gender differences in pain and analgesia: a consensus report. / Greenspan J.D., Craft R.M., LeResche L., ArendtNielsen L., Berkley K.J., Fillingim R.B., Gold M.S., Holdcroft A., Lautenbacher S., Mayer E.A., Mogil J.S., Murphy A.Z., Traub R.J.; Consensus Working Group of the Sex, Gender, and Pain SIG of the IASP. // Pain. - 2007. - V. 132: -P.26-45.

340. Grieve R.J. Day surgery preoperative anxiety reduction and cop-ing strategies. // Br J Nurs. - 2002. -V. 11. -P. 670-678.

341. Gross C.G. Neurogenesis in the adult brain: Death of a dogma. // Nat Rev Neurosci. - 2000. - V. 1. - P.67-73.

342. Grossman P. Comment on heart rate variability and cardiac vagal tone in psychophysiological research - recommendations for experiment planning, data analysis, and data reporting. // Front Psychol. - 2017. - V.8. - P. 213. doi: 10.3389/ fpsyg.2017.00213

343. Grossman P., Taylor E.W. Toward understanding respiratory sinus arrhythmia: relations to cardiac vagal tone, evolution and biobehavioral functions. // Biol Psychol. - 2007. - V.74. -P.263-85. doi:10.1016/j.biopsycho.2005.11.014

344. Grunewald T., Beal M.F. Bioenergetics in Huntington's disease. // Ann. N.Y. Acad. Sci. -1999. - V.893. -P. 203-213;

345. Gubisch W. Twenty-five yearsexperience with extracorporeal septoplasty. // FacialPlast Surg.- 2006.- V. 22.- N.4.- P. 230-239.

346. Gulli G., Cemin R., Pancera P., Menegatti G., Vassanelli C., Cevese A. Evidence of parasympathetic impairment in some patients with cardiac syndrome X. Cardiovasc Res. - 2001. -V.52.-P. 208-16. doi: 10.1016/S0008-6363(01)00 369-8

347. Guyton A.C. The adrenocortical Hormones: Text book of Medical Physiology 9th edition W.B. Saunders Company - 1998. -V. 77. -P. 957-970.

348. Guyuron B., Uzzo C.D., Scull H. A. practical classification of septonasal deviation and an effective guide to septal surgery. // Plast Reconstr Surg. - 1999. -V.104. - N.7. - P. 2202-2209.

349. Guzik P, Piskorski J, Krauze T, Schneider R, Wesseling KH, Wykretowicz A, et al. Correlations between the Poincare plot and conventional heart rate variability parameters assessed during paced breathing. J Physiol Sci -2007. - V.57 -P.63-71. doi: 10.2170/physiolsci.RP005506

350. Guzowski J.F., Timlin J.A., Roysam B., McNaughton B.L., Worley P.F., Barnes C.A. Mapping behaviorally relevant neural circuits with immediate-early gene expression. // Current Opinion in Neurobiology. -2005. - V.15. -N. 5. -P. 599606.

351. Haapaniemi T.H., Pursiainen V., Korpelainen J.T., Huikuri H.V., Sotaniemi K.A., Myllyla V.V. Ambulatory ECG and analysis of heart rate variability in

Parkinson's disease. // J Neurol Neurosurg Psychiatry. - 2001. -V.70. -P. 305- 10. doi: 10.1136/jnnp.70.3.305

352. Hadase M., Azuma A., Zen K., Asada S., Kawasaki T., Kamitani T., Kawasaki S., Sugihara H., Matsubara H. Very low frequency power of heart rate variability is a powerful predictor of clinical prognosis in patients with congestive heart failure. // Circ J. - 2004. - V.68. - P. 343-7. doi:10.1253/circj.68.343

353. Hall G.M. The anesthetic modification of the endocrine and metabolic response to surgery. // Ann. R. Coll. Surg. Engl. - 1985. - V.67. -P. 25-29

354. Halova I., Draberova L., Draber P. Mast cell chemotaxis - chemoattractants and signaling pathways. // Front Immunol. - 2012. - V.3. -P. 119.

355. Han J.-H., Kushner S.A., Yiu A..P, Cole C.J., Matynia A., Brown R.A. Neuronal competition and selection during memory formation. // Science. -2007. -V. 316. -N.5823. -P.457-60.

356. Harris A.G., Costa JJ, Delano FA, Zweifach BW, Schmid-Sho'nbem GW. Mechanisms of cell injury in rat mesentery and cremaster muscle. Am J Physiol Heart Circ Physiol - 1998.-V.274. -P.1009-1015.

357. Haupt S., Berger M., Goldberg Z., Haupt Y.Apoptosis - the p53 network. // Journal of Cell Science. - 2003. -V.116. -P. 4077-4085.

358. Hayano J., Takahashi H., Toriyama T., Mukai S., Okada A., Sakata S., Yamada A., Ohte N., Kawahara H. Prognostic value of heart rate variability during long-term follow up in chronic haemodialysis patients with end-stage renal disease. // Nephrol Dial Transplant. - 1999. -V.14. -P. 1480-1488.

359. Heart rate variability Standards of measurement, physiological interpretation, and clinical use. // European Heart Journal. - 1996.-V.17. -P. 354-381.

360. Hennessy M., Hamblin M.R. Photobiomodulation and the brain: a new paradigm. J. Opt. -2016. -P.19. 013003.

361. Henriksen E.J., Colgin L.L., Barnes C.A., Witter M.P., Moser M.B., Moser El. Spatial representation along the proximodistal axis of CA1. // Neuron. - 2010. -V.68. -N.1. -P. 127-137.

362. Heo S.J., Kim J.S. Crosshatching incision technique in septoplasty: Experimental outcomes under actual surgical settings. // Auris Nasus Larynx. -2016. -V. 43. -N.5. -P .518-523.

Обратите внимание, представленные выше научные тексты размещены для ознакомления и получены посредством распознавания оригинальных текстов диссертаций (OCR). В связи с чем, в них могут содержаться ошибки, связанные с несовершенством алгоритмов распознавания. В PDF файлах диссертаций и авторефератов, которые мы доставляем, подобных ошибок нет.