Физико–химические основы получения микротрубок хитозана тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Бабичева Татьяна Сергеевна

• Бабичева Татьяна Сергеевна
• кандидат наук
• 2022

Оглавление диссертации кандидат наук Бабичева Татьяна Сергеевна

Введение

1. Литературный обзор

1.1. Основные физико-химические свойства растворов

хитозана

1.2. Физико-химические аспекты получения полых цилиндрических структур на основе хитозана

1.3. Реакции осадкаобразования в условиях однонаправленной диффузии

1.4. Выводы по литературному обзору для постановки цели и

задач исследования

2. Экспериментальная часть

2.1. Объекты исследования

2.2. Методы исследования

2.2.1. Физико-химические методы

2.2.2. Спектроскопические методы

2.2.3. Оптическая микроскопия

2.2.4. Физико-механические испытания

2.2.5. Конечно-элементное моделирование

2.2.6. Авторская методика исследования массопереноса в процессе протекания ионно-обменной реакции соль^основания хитозана

2.2.7. Биологические свойства

3. Физико - химические свойства растворов хитозана в гликолевой кислоте

3.1. Гидродинамические свойства разбавленных растворов хитозана

3.2. Реологические свойства разбавленных и умеренно-концентрированных растворов

3.3. Влияние температуры на физико-химические свойства растворов хитозана

3.4. Фазовая диаграмма системы хитозан - гликолевая кислота -гидроксид натрия - вода

4. Влияние условий протекания межфазной химической реакции на структуру и свойства микротрубок хитозана

4.1. Получение микротрубок хитозана межфазной реакцией на границе раздела фаз жидкость - жидкость

4.2. Структура и физико-механические свойства микротрубок, полученных «мокрым» способом формования

4.3. Получение микротрубок хитозана межфазной реакцией на границе раздела фаз твердое тело - жидкость

4.4. Морфология, физико-химические и физико-механические свойства микротрубок, полученных «сухо-мокрым» способом формования

4.5. Рентгеновская дифрактометрия

4.6. Влияние криообработки на морфологические и упруго-пластические свойства микротрубок

5. Исследование диффузии гидроксид ионов в условиях пространственно-временной реакции полимераналогичного превращения (соль^основание) хитозана

5.1. Морфология радиально-периодических структур хитозана

5.2. Подтверждение соответствия эмпирических законов «времени» и «пространства» в модельном эксперименте

5.3. Расчёт коэффициента диффузии гидроксид-ионов в периодических образованиях

6. Влияние добавок полиэтиленоксида на свойства микротрубок хитозана

6.1. Влияние добавки полиэтиленоксида на реологические свойства растворов хитозана

6.2. Влияние добавки полиэтиленоксида на физико-химические и физико-механические свойства микротрубок

7. Биологические свойства микротрубок хитозана

7.1. Оценка общебиологических свойств

7.2. Конечно-элементное моделирование артериального сосуда, протезированного микротрубокой хитозана

Заключение

Список литературы

Приложение

Список сокращений и условных обозначений

ГК - гликолевая кислота

ДБСН - додецилбензосульфонат натрия

ПАВ - поверхностно-активное вещество

ПЭО - полиэтеленоксид

СД - степень деацетилирования, мольн.%

СЭМ - сканирующая электронная микроскопия

ТЭА - триэтаноламин

СХТЗ - концентрация раствора хитозана, г/дл

СШаОН - концентрация раствора гидроксида натрия, моль/л

СТЭА - концентрация раствора триэтаноламина, моль/л

Сддбсн - концентрация раствора додецилбензосульфоната натрия, моль/л

Сешмн4 - концентрация раствора аммоний роданистого, моль/л

СШаС1 - концентрация раствора хлорида натрия, моль/л

СПЭО - концентрация добавки полиэтиленоксида, мас.%

С* - критическая концентрация образования флуктуационной сетки

зацеплений макроцепей, г/дл

_ л

В - коэффициент диффузии ОН , м /с й - диаметр стержня, мм

- внутренний диаметр полого цилиндра, мм й" - внешний диаметр полого цилиндра, мм

- диаметр волокна, мкм &п - диаметр пор, мкм

ЛЕа - энергия активации вязкого течения, кДж/моль

О'- модуль упругости, Па

О" - модуль потерь, Па

I - ионная сила среды, моль/л

3 - поток гидроксид-ионов, моль-м2/с

Мл - средневязкостная молекулярная масса, кДа

т - масса, г

~-ЫН3+ - протонированная форма хитозана ~-ЫН2 - хитозан

N - количество циклов «нагрузка-разгрузка» t - время, с (мин, час, сут)

и - скорость образования п-ой полосы, мм /мин р^а - константа диссоциации кислоты к - константа скорости химической реакции, л/моль-мин 5 - степень структурирования, % I - толщина, мм V - объём, мл

Ип - высота п-ой полосы, мм Ж - влажность,%

Хп - расстояние от границы раздела до положения п-го слоя, мм АХп - ширина п-ой полосы, мм а - степень протонирования, %

а', Р', у' - геометрические параметры ^ угла наклона прямой), м-1 (П-ПоУПо'Схта - число вязкости, дл/г [п] - предельное число вязкости, дл/г

[п]<х> - предельное число вязкости при бесконечно большой ионной силе, дл/г

П - сдвиговая вязкость, Па-с

Птах - наибольшая ньютоновская вязкость

х - напряжение сдвига, Па

ар - разрывное напряжение, МПа

£р - относительное удлинение при разрыве, %

ф - толщина стенки, мкм

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Физико–химические основы получения микротрубок хитозана»

Введение

Одной из актуальных задач физикохимии 3D-материалов медико-биологического назначения является разработка и исследование свойств полых цилиндрических структур с толщиной стенки в микронном диапазоне (микротрубок) из биорезорбируемых полимеров [1, 2]. Такие объекты перспективны в качестве имплантатов (протезов) кровеносных сосудов, мочеточников или нервных волокон, предполагают кратковременное нахождение в организме вследствие биодеградации естественным метаболическим путем и максимально возможное восстановление клеточного состава поврежденной ткани или даже части органа.

Многообещающим полимером для получения таких структур рассматривается биосовместимый и биорезорбируемый аминополисахарид хитозан. Однако температура термического разложения данного полимера значительно ниже температуры его плавления, что исключает возможность применения расплавной технологии, вследствие чего хитозансодержащие материалы получают преимущественно из растворов [3-9]. Традиционно для растворения хитозана используют водные растворы одноосновных неорганических и органических кислот - соляной, уксусной, реже муравьиной. При этом образуется водорастворимая солевая форма хитозана, понижается плотность водородных связей вследствие протонирования аминогрупп и полимер приобретает свойства катионного полиэлектролита. Наряду с этим, свойства хитозана в растворе определяются молекулярной массой и концентрацией полимера, кислотно-основными свойствами кислоты-растворителя, ионной силой среды, температурой [3, 6-8, 10-12]. С практической точки зрения, наиболее перспективными для растворения хитозана являются водно-кислотные среды на основе биологически активных карбоновых кислот, например, фармакопейной гликолевой (CH2(OH)COOH), позволяющие, с одной стороны, варьировать свойства получаемых материалов для наилучшего соответствия области применения, а с другой -объединить биохимические активности аминополисахарида и аниона кислоты с возможным синергетическим эффектом [13-16].

Ещё одна особенность заключается в том, что фазовый распад раствора хитозана при формировании твердофазных водонерастворимых материалов протекает в реакционной системе, диффузионный массообмен и

термодинамическая несовместимость компонентов которой индуцированы реакцией нейтрализации протонированных аминогрупп, в частности, полимераналогичного превращения соль^основание хитозана в среде №ОН (другие щелочные реагенты практически не используются), формирования водонерастворимого полиэлектролитного комплекса при использовании поверхностно-активных веществ (ПАВ) и др. [17-22]. В этой связи для построения фазовых диаграмм и получения достоверной информации о надмолекулярной структуре полимерной системы, формирующейся на разных этапах ее переработки в изделия, механизме фазового разделения, а также диффузионных характеристиках химически индуцированного фазового распада необходим учёт изменения не только концентрационного, но и (макро)молекулярного состава компонентов. Кроме того, представляется целесообразным исследование влияния природы нейтрализующего реагента на макрокинетику данных процессов, физико-химические, физико-механические и биологические свойства хитозансодержащих материалов, которые на данный момент практически не изучены.

По вопросу формирования микротрубок хитозана, то подавляющее большинство описанных в литературе способов являются многостадийными и трудоемкими [23-26]. В ряде случаев необходимо применение сложного и дорогостоящего оборудования, токсичных реагентов или «агрессивной» температурной обработки [26-30]. Разработка более экологически и экономически целесообразного способа, ко всему прочему предусматривающего ещё и использование фармакопейных органических кислот-растворителей хитозана, позволит получать микротрубчатые субстраты, соответствующие принципам «зелёной химии» и эффектам синергетического объединения биологической активности реагирующих веществ.

Цель работы: выявление закономерностей физико-химических свойств и фазового поведения тройной системы хитозан - гликолевая кислота - вода в широком диапазоне концентраций, ионной силы среды, температуры и кинетики однонаправленной диффузии ионов ОН- в процессе ионообменной реакции нейтрализации гликолята хитозана для получения микротрубок медико-биологического назначения.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи:

- изучить вязкостные, упруго-пластические, кислотно-основные и оптические свойства растворов хитозана в гликолевой кислоте при варьировании концентрации компонентов и ионной силы среды, а также влияние на эти свойства температуры и структурообразующих добавок (полиэтиленоксида);

- построить фазовую диаграмму тройной системы хитозан + CH2(OH)COOH + H2O и изотермические разрезы тетраэдра состава четверной системы хитозан + CH2(OH)COOH + NaOH + H2O, на основании которых определить оптимальные концентрационные диапазоны реагентов для формирования материала микротрубок;

- разработать способ получения полых цилиндрических структур на основе хитозана с использованием межфазных реакций ионно-индуцированного осаждения (№ОН, триэтаноламин (ТЭА)), формирования ПАВ-полиэлектролитного комплекса (додецилбензолсульфонат натрия (ДДБСН)) или высаливания в солевом градиенте (N0, КЫН^Ш);

- исследовать влияние природы нейтрализующих компонентов ионообменной реакции и структурирующего модификатора на морфоструктуру и физико-механические свойства образцов, выявить наиболее эффективные реагенты;

- проанализировать продвижение фронта диффузии ионов ОН- в растворах гликолята хитозана в процессе перехода полимерного вещества в водонерастворимую фазу, определить физико-химические параметры и пространственно-временные характеристики массопереноса, порядок и константу скорости химической реакции, средние коэффициенты диффузии гидроксид-ионов;

- оценить биологические свойства и прикладной потенциал микротрубок хитозана.

Методы исследования. Для решения поставленных в работе задач применяли комплекс физико-химических методов исследования: капиллярная и ротационная вискозиметрия, потенциометрия, гравиметрия, спектрополяриметрия, сорбционно-диффузионные анализ, инфракрасная спектроскопия, электронная и оптическая микроскопия, рентгеновская дифрактометрия, физико-механические испытания; биологические методы оценки гемо- и биосовместимости.

Научная новизна. В работе впервые:

- исследован комплекс физико-химических свойств растворов хитозана в гликолевой кислоте; определена концентрация образования флуктуационной сетки зацеплений макроцепей, установлено её повышение с увеличением ионной силы среды; показано, что перегиб температурной зависимости вязкости в координатах Аррениуса при 60°С обусловлен увеличением степени протонирования полимера, формированием ионных пар поликатион-противоион и изменением конформации макроцепи;

- построена фазовая диаграмма системы хитозан + СН2(ОН)СООН + Н20 и изотермические разрезы тетраэдра состава хитозан + СН2(ОН)СООН + ШаОН + Н20 в условиях индуцированного фазового разделения в среде №ОН, выделены области существования гомогенных растворов, гетерогенных смесей и твердофазного состояния полимерного вещества;

- разработаны способы формирования микротрубок хитозана на цилиндрическом темплате при варьировании границы раздела протекания межфазной ионно-обменной реакции (жидкость, твёрдое тело), природы нейтрализующего реагента, условий крио- и термообработки, добавок высокомолекулярного структурообразователя;

- проведена оценка влияния химической природы нейтрализующего агента на морфологию, физико-механические характеристики и упруго-деформационные свойства микротрубок; обнаружено, что для всех образцов характерна периодическая слоистая структура;

- доказано, что межфазная реакция полимераналогичного превращения соль^основание хитозана подчиняется классическим закономерностям ионно-обменных реакций, а кинетика образования и соотношение положений периодических структур описываются характерными для явления Лизеганга закономерностями; рассчитаны коэффициенты диффузии ионов ОН- в периодических образованиях.

Практическая значимость работы.

Разработаны подходы к получению на основе хитозана полых цилиндрических структур с толщиной стенки в микронном диапазоне. Показано, что прочность и эластичность наилучших образцов микротрубок сопоставима с аналогичными характеристиками ксеноперекарда (биопротеза

из животной ткани) и артериальной стенки кровеносного сосуда.

Установленные гемо- и биосовместимость, контролируемая биодеградация, способность загрузки/высвобождения лекарственного вещества, а также результаты конечно-элементного моделирования показывают перспективность применения микротрубок хитозана в качестве аналогов биодеградируемых протезов кровеносных сосудов и графтов.

Установленные закономерности имеют справочный характер при выборе концентрации реагентов межфазной ионно-обменной реакции и разработке технологических рецептур получения полимерных материалов из раствора хитозана в гликолевой кислоте. По результатам работы получен патент РФ.

Материалы диссертации используются в учебном процессе при чтении лекционного курса дисциплины «Физикохимия природных полисахаридов» в Институте химии Саратовского государственного университета.

На защиту автор выносит:

- результаты исследования вязкостных, упруго-пластических, кислотно-основных и оптических свойств растворов хитозана в гликолевой кислоте без и с добавкой полиэтиленоксида; оптимальные концентрации полимера, диапазоны ионной силы среды и температуры для формирования микротрубок;

- фазовую диаграмму тройной системы хитозан + СН2(ОН)СООН + Н2О и изотермические разрезы тетраэдра состава четверной системы хитозан + СН2(ОН)СООН + №ОН + Н2О; оптимальные концентрации гликолевой кислоты и щелочного реагента для формирования материала микротрубок;

- новые способы получения полых цилиндрических структур; сравнительный анализ влияния физико-химических параметров процесса и химический природы нейтрализующего реагента на морфоструктуру, упруго -пластические и физико-механические характеристики образцов;

- авторскую методику исследования массопереноса межфазной реакции нейтрализации гликолята хитозана и визуализации образующихся в данном процессе периодических структур, результаты определения средних коэффициентов диффузии гидроксид-ионов в периодических образованиях.

Личный вклад автора в получении научных результатов заключался в постановке задач, выборе подходов к их решению, выполнении основных

экспериментальных работ по ключевым направлениям исследования, обобщении и анализе полученных результатов, формулировании выводов, представлении результатов исследований на всероссийских и международных конференциях, написании научных публикаций. Исследования СЭМ проводили совместно с к.ф.-м.н. Захаревичем А.М. (ОНИ НС и БС СГУ), расчёт коэффициентов диффузии - к.х.н. Шмаковым С.Л. (Институт химии СГУ), конечно-элементное моделирование - к.ф.-м.н. Голядкиной А.А. (ФФМиМТ СГУ).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 работ в журналах, входящих в перечень ВАК, включая библиографические базы данных Web of Science и Scopus, 8 статей в сборниках научных трудов и 17 тезисов докладов, получен патент РФ.

Достоверность научных результатов подтверждается литературными данными, применением современных методов исследования и аппаратуры, многоплановостью исследования и большим набором экспериментальных данных, использованием статистической обработки результатов, соответствием полученных данных основным закономерностям физико-химических свойств полимерных систем, апробацией результатов работы на Международных и Всероссийских конференциях.

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы были представлены на Всероссийской конференции с международным участием «Химия биологически активных веществ» (Саратов, 2012, 2019), Всероссийской конференции молодых учёных с международным участием «Современные проблемы теоретической и экспериментальной химии» (Саратов, 2013-2018, 2020, 2021), ежегодной Всероссийской научной школе-семинаре «Методы компьютерной диагностики в биологии и медицине» (Саратов, 2013-2015), Всероссийской научной конференции «Теоретические и экспериментальные исследования процессов синтеза, модификации и переработки полимеров» (Уфа, 2014, 2015, 2017, 2018), XXII Международной конференции студентов, аспирантов и молодых учёных «Ломоносов - 2015» (Москва, 2015), Симпозиуме по реологии (Москва, 2016, 2021), VI Всероссийской конференции с международным участием «Физикохимия процессов переработки полимеров» (Иваново, 2016), International School and Conference «Saint-Petersburg OPEN» (Санкт-Петербург, 2017, 2021), Седьмой Всероссийской Каргинской конференции «Полимеры 2017» (Москва, 2017), XXI Менделеевском съезде по общей и прикладной химии (Санкт-Петербург,

12

2019), Всероссийской научной конференции с международным участием преподавателей и студентов вузов «Актуальные проблемы науки о полимерах» (Казань, 2020) и др.

Объём и структура диссертационной работы. Диссертация состоит из введения, 7 глав (1 глава - обзор литературы по теме исследования, 2 глава -характеристика объектов и методов исследования, 3-7 главы - обсуждение полученных результатов), заключения, списка литературы из 272 наименований и приложения. Работа изложена на 174 стр., включает 57 рисунков и 13 таблиц.

Финансовая поддержка работы осуществлялась в рамках следующих грантов: фонда содействия развитию малых форм предприятий в научно-технической сфере «Разработка способа получения микротрубок хитозана - аналогов кровеносных сосудов» (программа «У.М.Н.И.К», № 4276ГУ1/2014, 2014-2016); Российского фонда фундаментальных исследований «Научные основы получения биодеградируемых 3D структур из природных полисахаридов для создания аналогов кровеносных сосудов» (№ 16-33-00953, 2016-2018), Российского научного фонда «Хиральные полимерные матрицы: получение, физико-химические свойства, взаимодействие с биообъектами» (№ 17-73-10076, 2017-2019), госзадания Минобрнауки России в сфере научной деятельности «Создание химических веществ и материалов с сенсорными, каталитическими, экстракционными и энергогенерирующими свойствами» (№ 4.1212.2014/К, 2014-2016).

1. Литературный обзор

1.1. Основные физико-химические свойства растворов хитозана

Хитозан (—КН2) - линейный аминополисахарид сополимерного строения, макромолекулы которого состоят из звеньев 2-амино-2-дезокси-Р-О-глюкопиранозы (О-глюкозамина, -КН2) и 2-ацетамидо-2-дезокси-Р-0-глюкопиранозы (К-ацетил-О-глюкозамина, -ЫНСОСН3), соединенных Р-(1^4)-гликозидными связями. Хитозаном принято называть сополимер со степенью дезацетилирования (СД) выше ~75 мольн.%. Получают данный полимер из ежегодно возобновляемой сырьевой базы (преимущественно панцири членистоногих, а также кутикулы саркофагидов и пчел, некоторые виды мицелиальных грибов) щелочным деацетилированием природного полисахарида хитина в гетерогенных условиях [3, 6]. Вследствие особенностей получения свойства твердофазного хитозана во многом определяются наличием свободных гидроксо- и аминогрупп, способных образовывать внутри- и межмолекулярные водородные связи [51].

Первые монографии, посвящённые хитину и хитозану, были опубликованы еще в конце прошлого столетия [11, 12]. В них отмечается широкий потенциал этих гликозаминогликанов, прогнозируются многочисленные области применения (медицина, фармацевтика, стоматология, экология, сельское хозяйство). За прошедшие с тех пор практически три десятилетия свойства хитозана были всесторонне изучены, что отражено в ряде обзоров и монографий мировых лидеров данной области науки [3-9]. Накопленный объём фундаментальных знаний лёг в основу ряда технологий, появились коммерчески доступные изделия на его основе, доказавшие свою полезность [6, 31-34]. Основные причины повышенного внимания исследователей к данному полимеру - биологическая совместимость вследствие близости его свойств к функциональным качествам живых тканей [35], биоцидность (антибактериальная [36, 37], антивирусная [38], антимикотическая [39, 40]), антитоксичность [13, 41], способность к ранозаживлению и регенерации тканей [43-46], а также формированию полиэлектролитных комплексов с противоположно заряженными ПАВ [19] или анионными природными и синтетическими полимерами [47-49]. Кроме того, хитозан метаболизируется некоторыми

ферментами человека, особенно лизоцимом, что позволяет рассматривать его как биорезорбируемый полимер [3, 7].

Вследствие температуры плавления, превышающей температуру термического разложения, хитозансодержащие материалы получают преимущественно из растворов, растворяя полимер в кислой водной среде. При этом образуется водорастворимая солевая форма хитозана, понижается плотность водородных связей вследствие протонирования аминогрупп (-NH3+) и полимер приобретает свойства катионного полиэлектролита (~-NH3+) [10, 51-55]:

[~-NH2] + HAn ^ [~-NH3+] + An- . Обычно для полного растворения необходима степень протонирования NH2-групп не менее 0.5 [10, 56]. Считается, что именно -NH3+ ответственны за биологическую активность данного полимера [3-9].

Классическими кислотами-растворителями хитозана являются одноосновные неорганическая соляная и органическая уксусная кислоты, реже - муравьиная кислота [10, 56-59]. При этом, кислотно-основные свойства используемой кислоты определяют степень протонирования аминогрупп (а) и характер зависимости а от концентрации кислоты в бинарном растворителе [10, 56, 60]. Так, в растворе сильной соляной кислоты степень протонирования МИ2-групп макроцепей монотонно возрастает по мере увеличения концентрации HCl и максимально возможное значение а достигается при мольном отношении кислота/хитозан, равным 0.8. В слабой уксусной кислоте концентрационная зависимость а имеет экстремальный характер и мольное отношение кислота/хитозан, при котором достигается максимальная степень протонирования, увеличивается до 7 [10, 56].

Природа кислоты-растворителя влияет также на полиэлектролитное поведение макромолекул хитозана в растворе и, соответственно, их гидродинамические параметры [10, 61-65]. Полиэлектролитный эффект (повышение числа вязкости при разбавлении) выражен в большей степени в растворах с низкой ионной силой. В них же реализуются наибольшие размеры макромолекул данного аминополисахарида вследствие усиления электростатического отталкивания протонированных аминогрупп и разбухания макроклубков. Отмечается, что наибольшим термодинамическим сродством к хитозану обладают 10-20% растворы CH3COOH, поскольку именно такие её концентрации обеспечивают наибольшее значение

предельного числа вязкости ([п]) и, следовательно, набухание макромолекулярного клубка и наименьшую степень ассоциации макромолекул [17]. Чем сильнее кислота, тем ниже удельная вязкость, число вязкости и предельное число вязкости, что объясняют экранирующим влиянием анионов. Например, для растворов хитозана в HCl значение [п] изменяется антибатно концентрации кислоты, что подтверждает эффект экранирования [10, 58]. Так или иначе, но во всех водно-кислотных средах реализуются высокие значения [п] (более 6-7 дл/г), свидетельствующие о повышенной жёсткостью молекулярной цепи хитозана.

В настоящее время уже не возникает сомнения, что макромолекулы хитозана относятся к классу полужесткоцепных полимеров [66-70]. Авторы [66], исследуя 33 образца хитозана разной молекулярной массы (65-425 кДа) с применением эксклюзионной хроматографии в совокупности с лазерным светорассеянием на разных углах, статистически достоверно определили константу а уравнения Марка-Куна-Хаувинка [п] = КММП, традиционно используемого для определения средневязкостной молекулярной массы (Мл) полимера [71]. Высокое значение а = 0.95, а также определенная ими персистентная длина цепи, равная 16 нм, отвечают конформации полужёсткого стержня, которая была дополнительно подтверждена экспериментами по седиментации в центробежном поле. Аналогичный вывод получен и в работах [61, 72]. Показано также, что равновесная термодинамическая жёсткость солевой формы хитозана складывается из собственно скелетной жёсткости макроцепи и электростатического взаимодействия заряженных групп (собственно полиэлектролитный эффект), в наибольшей степени проявляющиеся в случае высокомолекулярных образцов [54].

Увеличение ионной силы (I) среды введением низкомолекулярной соли-электролита (NaCl, CH3COONa и т.п.) подавляет полиэлектролитное набухание макроклубков [58, 74, 75]. Малые противоионы (Cl-, CH3COO-) экранируют протонированные аминогруппы хитозана, образуя нейтральный ассоциат, что сопровождается уменьшением предельного числа вязкости, имеющего физический смысл гидродинамического объема изолированной макромолекулы и особо чувствительного ко всем происходящим в растворах

ассоциативным изменениям. Так, авторы [75] наблюдали падение [п] с 29 до 7.1 дл/г при росте ионной силы с 0.009 до 0.46 М (молекулярная масса хитозана 850 кДа). Параллельно увеличивалась константа Хаггинса (понижение растворимости полимера), уменьшались радиус инерции и персистентная длина (24 нм при бесконечной I). О поджатии макромолекулярных клубков также свидетельствует увеличение концентрации их перекрывания (концентрации кроссовера, [п]-1) с ионной силой. При этом, несмотря на нейтрализацию -МН3+ групп, значения [п] крайне высокие [58, 74, 76], что еще раз подтверждает повышенную жесткость макроцепей хитозана. Отмечается также слабое влияние молекулярной массы на значение [п], полученное при экстраполяции на бесконечную ионную силу и отвечающее состоянию макромолекул аналогичного хитозану неионогенного полимера [58]. Уместно отметить, что при высоких концентрациях соли-электролита может наблюдаться высаливание хитозана из системы в виде водонерасворимой твердофазной фазы.

При повышении концентрации хитозана в растворе макромолекулярные клубки входят в зацепление, что отражается как на полиэлектролитном поведении полимера, так и на характере течения его растворов. Например, с увеличением концентрации хитозана в растворе уксусной кислоты степень его протонирования понижается [56]. Авторы объясняют данный эффект уменьшением доступности звеньев макроцепи при переходе к более концентрированным растворам. Общий характер зависимости а от концентрации СН3СООН и мольное соотношение между кислотой и полимером, при котором достигается максимально возможное значение а, сохраняется. Реограммы вязкости умеренно-концентрированных растворов хитозана показывают течение неньютоновских жидкостей (структурированных, псевдопластичных и т.п.) [77-79].

Реологические характеристики водно-кислотных растворов хитозана при концентрации, превышающей концентрацию кроссовера, в условиях сдвиговой деформации обусловлены концентрационным режимом вязкого течения [74, 76-79]. Как известно, определяющим параметром перехода из режима разбавленных в режим концентрированных растворов является концентрация образования флуктуационной сетки зацеплений макроцепей

(С*), определяемая из концентрационной зависимости наибольшей ньютоновской вязкости (птах). В случае солевой формы хитозана концентрационный диапазон такого перехода достаточно широкий вследствие электростатического отталкивания полиионов, что является типичным для полиэлектролитных систем [76, 80-83]. При этом, абсолютное значение С* в несколько раз превышает концентрацию кроссовера.

В работе [76] обсуждаются реограммы вязкости (^п =/(lgx), п -сдивиговая вязкость, т - напряжение сдвига) растворов хитозана (М^ = 200 кДа, СД = 82 мольн.%) в уксусной кислоте при варьировании концентрации полимера (0.5-8 мас.%) и кислоты (2-70%). Вязкость растворов концентрации 1.5 мас.% и менее слабо зависит от скорости сдвига. В диапазоне 3-4 мас.% растворы переходят в режим аномально вязкого течения структурированных жидкостей, т.е. lgq значимо уменьшается с повышением lgT, а при концентрации 5 мас.% и более - реализуется lgq = /(lgT) псевдопластических систем, вязкость которых при больших lgx уменьшается в большей степени, чем при малых. С использованием модифицированной математической модели Виноградова-Покровского получено численное решение реограмм п, позволившее с удовлетворительной точностью определить значения птах (традиционно определяемое визуальной графической экстраполяцией кривых течения) и С* (3 мас.%). Установлено также, что повышение концентрации CH3COOH (I среды) практически не влияет на структуру и характер течения растворов хитозана, концентрацию образования сетки зацеплений и эффективность ее лабильных узлов. Слабое влияние природы кислоты (HCl, CH3COOH) на вязкость концентрированных растворов хитозана (М^ = 830 кДа, СД = 82 мольн.%) в условиях максимально реализуемой степени протонирования макроцепей отмечалось и авторами [68]. Однако, учитывая ионогенную природу макроцепей хитозана, не исключено влияние на значение С* ионной силы среды, задаваемой введением сильного электролита.

Повышение температуры понижает вязкость умеренно-концентрированных водно-кислотных растворов хитозана, а энергия активации вязкого течения (АЕа) варьируется в пределах 19-40 кДж/моль [61 84-86]. Такие значения АЕа - типичны для полимеров с повышенной жесткостью цепи. Авторы [17], исследуя растворы итозана (М^ = 50-550 кДа)

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Бабичева Татьяна Сергеевна, 2022 год

Список литературы

1. Pankajakshan D., Agrawal D.K. Scaffolds in tissue engineering of blood vessels // Canadian journal of physiology and pharmacology. 2010. Vol. 88. No. 9. P. 855-873.

2. Zhang W.J., Liu W., Cui L., Cao Y. Tissue engineering of blood vessel // Journal of cellular and molecular medicine. 2007. Vol. 11. No. 5. P. 945-957.

3. Хитин и хитозан: Получение, свойства и применение / Под ред. К.Г. Скрябина, Г.А. Вихоревой, В.П. Варламова. М.: Наука. 2002. 368 с.

4. Rinaudo M. Main properties and current applications of some polysaccharides as biomaterials // Polymer International. 2008. Vol. 57. No. 3. P. 397-430.

5. Chitosan for biomaterials / Ed. R. Jayakumar, M. Prabaharan, R.A.A. Muzzarelli. New York: Springer. 2011. 243 с.

6. Rinaudo M. Chitin and chitosan: Properties and applications // Progress in polymer science. 2006. Vol. 31. No. 7. P. 603-632.

7. Muzzarelli R.A.A. Chitosan composites with inorganics, morphogenetic proteins and stem cells, for bone regeneration. Review Article // Carbohydrate Polymers. 2011. Vol. 83. No. P. 1433-1445.

8. Dutta P.K. Chitin and chitosan for regenerative medicine. New Delhi: Springer. 2016. 388 р.

9. Варламов В.П., Ильина А.В., Шагдарова Б.Ц., Луньков А.П., Мысякина И.С. Хитин/хитозан и его производные: фундаментальные и прикладные аспекты // Успехи биологической химии. 2020. Т. 60. С. 317-368.

10. Rinaudo M., Pavlov G., Desbrieres J. Influence of acetic acid concentration on the solubilization of chitosan // Polymer. 1999. Vol. 40. No. 25. P. 7029-7032.

11. Chitin in Nature and Technology / Ed. R. Muzzarelli, C. Jeniaux, G.W. Gooday. New York: Plenum Press. 1985. 644 p.

12. Chitin and Chitosan Sources: Chemistry, Biochemistry Physical Properties and Applications / Ed. J. Skajak-Braek, T. Anthonson, P. Stanford. New York: Elsevier Applied Science. 1989. 835 p.

13. Gegel N.O., Zhuravleva Y.Y., Shipovskaya A.B., Malinkina O.N., Zudina I.V. Influence of chitosan ascorbate chirality on the gelation kinetics and properties of silicon-chitosan-containing glycerohydrogels // Polymers. 2018. Vol. 10. No. 3. P. 259-276.

14. Галеева А.И., Селиванова Н.М., Галяметдинов Ю.Г. Реологические свойства лиотропных жидкокристаллических систем хитозан-молочная кислота // Жидкие кристаллы и их практическое использование. 2021. Т. 21. № 1. С. 23-33.

15. Ильина А.В., Варламов В.П. Влияние физико-химических параметров на процесс образования гелей на основе хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40. № 6. С. 688-692.

16. Kumari S., Singh R.P. Glycolic acid-g-chitosan-gold nanoflower nanocomposite scaffolds for drug delivery and tissue engineering // International journal of biological macromolecules. 2012. Vol. 50. No. 3. P. 878-883.

17. Вихорева Г.А., Роговина С.З., Пчелко О.М., Галъбрайх Л.С. Фазовое состояние и

151

реологические свойства системы хитозан-уксусная кислота-вода // Высокомолекулярные соединения. Серия Б. 2001. Т. 43. № 6. С. 1079-1084.

18. Агеев Е.П., Вихорева Г.А., Зоткин М.А., Матушкина Н.Н., Герасимов В.И., Зезин С.Б., Оболонкова Е.С. Структура и транспортные свойства хитозановых пленок, модифицированных термообработкой // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2004. Т. 46. № 12. С. 2035-2041.

19. Ринадо М., Кильдеева Н.Р., Бабак В.Г. ПАВ-полиэлектролитные комплексы на основе производных хитина // Российский химический журнал. 2008. Т. 52. № 1. С. 84-91.

20. Kumari B., Kesavan K. Effect of chitosan coating on microemulsion for effective dermal clotrimazole delivery // Pharmaceutical development and technology. 2017. Vol. 22. No. 4. P. 617-626.

21. Kesavan K., Kant S., Singh P.N., Pandit J.K. Mucoadhesive chitosan-coated cationic microemulsion of dexamethasone for ocular delivery: in vitro and in vivo evaluation // Current eye research. 2013. Vol. 38. No. 3. P. 342-352.

22. Thomas L., Zakir F., Mirza M.A., Anwer M.K., Ahmad F.J., Iqbal Z. Development of Curcumin loaded chitosan polymer based nanoemulsion gel: In vitro, ex vivo evaluation and in vivo wound healing studies // International journal of biological macromolecules. 2017. Vol. 101. P. 569-579.

23. Itoh S., Matsuda A., Kobayashi H., Ichinose S., Shinomiya K., Tanaka J. Effects of a laminin peptide (YIGSR) immobilized on crab-tendon chitosan tubes on nerve regeneration // Journal of Biomedical Materials Research. Part B. 2005. Vol. 73. No. 2. P. 375-382.

24. Freier T., Montenegro R., Koh H.S., Shoichet M.S. Chitin-based tubes for tissue engineering in the nervous system // Biomaterials. 2005. Vol. 26. No. 22. P. 4624-4632.

25. Madihally S.V., Matthew H.W. T. Porous chitosan scaffolds for tissue engineering // Biomaterials. 1999. Vol. 20. No. 12. P. 1133-1142.

26. Matsuda A., Kagata G., Kino R., Tanaka J. Preparation of chitosan nanofiber tube by electrospinning // Journal of nanoscience and nanotechnology. 2007. Vol. 7. No. 3. P. 852-855.

27. Wang X., Hu W., Cao Y., Yao J., Wu J., Gu X. Dog sciatic nerve regeneration across a 30-mmdefect bridged by a chitosan/PGA artificial nerve graft // Brain. 2005. Vol. 128. No. 8. P. 1897-1910.

28. Wang W., Itoh S., Konno K., Kikkawa T., Ichinose S., Sakai K., Watabe K. Effects of Schwann cell alignment along the oriented electrospun chitosan nanofibers on nerve regeneration // Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2009. Vol. 91. No. 4. P. 994-1005.

29. Tanaka N., Matsumoto I., Suzuki M., Kaneko M., Nitta K., Seguchi R., Takemura H. Chitosan tubes can restore the function of resected phrenic nerves // Interactive cardiovascular and thoracic surgery. 2015. Vol. 21. No. 1. P. 8-13.

30. Zhang L., Ao Q., Wang A., Lu G., Kong L., Gong Y., Zhang X. A sandwich tubular scaffold derived from chitosan for blood vessel tissue engineering // Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2006. Vol. 77. No. 2. P. 277-284.

31. Kurakula M. Prospection of recent chitosan biomedical trends: Evidence from patent analysis (2009-2020) // International Journal of Biological Macromolecules. 2020. Vol. 165. P. 1924-1938.

32. Sahariah P., Masson Mar. Antimicrobial Chitosan and chitosan derivatives: a review of the structure-activity relationship // Biomacromolecules. 2017. Vol. 18. No. 11. P. 3846-3868.

33. Khan S.A., Khan S.B., Kamal T., Asiri A.M., Akhtar K. Recent development of chitosan nanocomposites for environmental applications // Recent patents on nanotechnology. 2016. Vol. 10. No. 3. P. 181-188.

34. Sudheesh K., Shukla Ajay K. Mishra, Omotayo A. Arotiba, Bhekie B. Mam. Chitosan-based nanomaterials: A state-of-the-art review // International Journal of Biological Macromolecules. 2013. Vol. 59. P. 46-58

35. Samal S.K., Dash M., Vlierberghe S.V., Kaplan D.L., Chiellini E., Blitterswijk C.V., Moroni L., Dubruel P. Cationic polymers and their therapeutic potential // Chemical Society Reviews. 2012. Vol. 41. No. 21. P. 7147-7194.

36. Wu F., Meng G., He J., Wu Y., Gu Z. Antibiotic-loaded chitosan hydrogel with superior dual functions: antibacterial efficacy and osteoblastic cell responses // ACS applied materials and interfaces. 2014. Vol. 6. No. 13. P. 10005-10013.

37. Гегель Н.О., Зудина И.В., Малинкина О.Н., Шиповская А.Б. Влияние изомерной формы аскорбиновой кислоты на антибактериальную активность ее солей с хитозаном // Микробиология. 2018. Т. 87. № 5. С. 618-623.

38. Smith A.A.A., Kryger M.B., Wohl B.M., Ruiz-Sanchis P., Zuwala K., Tolstrup M., Zelikin A.N. Macromolecular (pro) drugs in antiviral research // Polymer Chemistry. 2014. Vol. 5. No. 22. P. 6407-6425.

39. Куликов С.Н., Шакирова Д.Р., Тихонов В.Е., Безродных Е.А., Ильина А.В., Левов А.Н., Варламов В.П. Антимикотическая активность хитозана и его производных в отношении Candida albicans // Проблемы медицинской микологии. 2012. Т. 14. № 4. С. 50-54.

40. Luan F., Wei L., Zhang J., Mi Y., Dong F., Li Q., Guo Z. Antioxidant activity and antifungal activity of chitosan derivatives with propane sulfonate groups // Polymers. 2018. Vol. 10. No. 4. P. 395-408.

41. Vasiliev Y.M. Chitosan-based vaccine adjuvants: incomplete characterization complicates preclinical and clinical evaluation // Expert review vaccines. 2015. Vol. 14. No. 1. P. 37-53.

42. Gegel N.O., Zhuravleva Yu.Yu., Shipovskaya A.B., Malinkina O.N., Zudina I.V. Influence of chitosan ascorbate chirality on the gelation kinetics and properties of silicon-chitosan-containing glycerohydrogels // Polymers. 2018. Vol. 10. Is. 3. Article 259. 17 р.

43. Bonferoni M.C., Sandri G., Dellera E., Rossi S., Ferrari F., Mori M., Caramella C. Ionic polymeric micelles based on chitosan and fatty acids and intended for wound healing. Comparison of linoleic and oleic acid // European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 2014. Vol. 87. No. 1. P. 101-106.

44. Lau H.K., Kiick K.L. Opportunities for multicomponent hybrid hydrogels in biomedical applications // Biomacromolecules. 2015. Vol. 16. No. 1. P. 28-42.

45. Шиповская А.Б., Малинкина О.Н., Гегель Н.О., Зудина И.В., Луговицкая Т.Н. Структура и свойства солевых комплексов хитозана с диастереомерами аскорбиновой кислоты // Известия Академии наук. Серия химическая. 2021. № 9. С. 1765-1774.

46. Kim I. Y. et al. Chitosan and its derivatives for tissue engineering applications // Biotechnology advances. 2008. Vol. 26. No. 1. P. 1-21.

47. Nwe N., Furuike T., Tamura H. The mechanical and biological properties of chitosan scaffolds for tissue regeneration templates are significantly enhanced by chitosan from Gongronella butleri // Materials. 2009. Vol. 2. No. 2. P. 374-398.

48. Краюхина М.А., Самойлова Н.А., Ямсков И.А. Полиэлектролитные комплексы хитозана: формирование, свойства и применение // Успехи химии. 2008. Т. 77. № 9. С. 854-869.

49. Воронько Н.Г., Деркач С.Р., Соколан Н.И. Взаимодействие желатины с хитозаном: влияние концентрации полисахарида // Вестник Мурманского государственного технического университета. 2015. Т. 18. № 1. С. 80-89.

50. Muzzarelli R.A.A. Chitosan composites with inorganics, morphogenetic proteins and stem cells, for bone regeneration. Review article // Carbohydrate Polymers. 2011. Vol. 83. No. 4. P. 1433-1445.

51. Ogawa K., Yui T., Okuyama K. Three D structures of chitosan // International Journal of Biological Macromolecules. 2004. Vol. 34. No. 1-2. P. 1-8.

52. Михайлов Г.П., Тучков С.В., Лазарев В.В., Кулиш Е.И. Комплексообразование хитозана с уксусной кислотой по данным фурье-спектроскопии комбинационного рассеяния света // Журнал физической химии. 2014. Т. 88. № 6. С. 973-978.

53. Kobaisi M.A., Murugaraj P., Mainwaring D.E. Origin and influence of water-induced chain relaxation phenomena // Journal of Polymer Science. Part B. 2012. Vol. 50. No. 6. P. 403-414.

54. Zhang J., Zhou Q., Li W., Petrov O., Mattea C., Stapf S. Improved miscibility of PA6 and chitosan by the electric-field assisted phase inversion // Carbohydrate polymers. 2018. Vol. 189. P. 15-21.

55. Ломовской В.А., Абатурова Н.А., Ломовская Н.Ю., Галушко Т.Б., Золотаревский В.И. Локальные диссипативные процессы в композитной системе хитозан-поливиниловый спирт // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2019. Т. 61. № 4. С. 346-353.

56. Кузина Л.Г., Мурзагильдина А.С., Чернова В.В., Кулиш Е.И. Влияние степени протонирования хитозана на некоторые его свойства // Вестник башкирского университета. 2012. Т. 17. № 2. С. 902-905.

57. Kumar M. N. V. R. A review of chitin and chitosan applications // Reactive and functional polymers. 2000. Vol. 46. No. 1. P. 1-27.

58. Гамзазаде А.И., Скаляр А.М., Павлова С.А., Рогожкин С.В. О вязкостных свойствах растворов хитозана // Высокомолекулярные соединения. 1981. Т.23 А. № 3 С. 594-597.

59. Михайлов Г.П., Тучков С.В., Лазарев В.В., Кулиш Е.И. Комплексообразование хитозана с уксусной кислотой по данным Фурье-спектроскопии комбинационного рассеяния света // Журнал физической химии. 2014. Т. 88. № 6. С. 973-978.

60. Арбатский А.П., Трактина Е.П., Смирнова Л.А. Исследование химических свойств хитозана титриметрическим методом // Журнал прикладной химии. 2006. Т. 79. № 2. С. 272-274.

61. Козырева Е.В., Абрамов А.Ю., Шиповская А.Б. Особенности физико-химических свойств растворов хитозана // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. 2011. Т. 11. № 2. С. 25-31.

62. Costa C.N, Teixeira V.G., Delpech M.C., Souza J.V.S., Costa M.A. Viscometric study of

chitosan solutions in acetic acid/sodium acetate and acetic acid/sodium chloride // Carbohydrate Polymers. 2015. Vol. 133. P. 245-250.

63. Chattopadhyay D.P., Inamdar M.S., Inamdar M.S. Aqueous behaviour of chitosan // International Journal of Polymer Science. 2010. Vol. 2010. P.1-7.

64. Morris G.A. Macromolecular conformation of chitosan in dilute solution: A new global hydrodynamic approach // Carbohydrate Polymers. 2009. Vol. 76. Is. 4. P. 616-621.

65. Кулиш Е.И., Туктарова И.Ф., Чернова В.В., Абзальдинов Х.С., Заиков Г.Е. Метод вискозиметрии как способ оценки конформационного состояния хитозана в растворе // Вестник Казанского технологического университета. 2013. Т. 16. № 14. С. 140-143.

66. Morris G.A., Castile J., Smith A., Adams G. G., Harding S. E Macromolecular conformation of chitosan in dilute solution: A new global hydrodynamic approach // Carbohydrate Polymers. 2009. Vol. 76. No. 4. P. 616-621.

67. Colfen H., Berth G., Dautzenberg H. Hydrodynamic studies on chitosans in aqueous solution // Carbohydrate Polymers. 2001. Vol. 45. No. 4. P. 373-383.

68. Федосеева Е.Н., Смирнова Л.А., Федосеев В.Б. Вязкостные свойства растворов хитозана и его реакционная способность // Вестник Нижегородск. ун-та им. Н.И. Лобачевского. 2008. № 4. С. 59- 64

69. Mazeau K., Rinaudo M. The prediction of the characteristics of some polysaccharides from molecular modeling. Comparison with effective behavior // Food Hydrocolloids. 2004. Vol. 18. No. 6. P. 885-898.

70. Lamarque G., Lucas J.M., Viton C., Domard A. Physicochemical behavior of homogeneous series of acetylated chitosans in aqueous solution: role of various structural parameters // Biomacromolecules. 2005. Vol. 6. No. 1. P. 131-142.

71. Wang W., Bo S., Li S., Qin W. Determination of the Mark-Houwink equation for chitosans with different degrees of deacetylation // International Journal of Biological Macromolecules. 1991. Vol. 13. No. 5. P. 281-285.

72. Ortega A., Torre G.J. Equivalent radii and ratios of radii from solution properties as indicators of macromolecular conformation, shape and flexibility // Biomacromolecules. 2007. Vol. 8. No. 8. P. 2464-2475

73. Lim C., Hwang D.S., Lee D.W. Intermolecular interactions of chitosan: Degree of acetylation and molecular weight // Carbohydrate Polymers. 2021. Vol. 259. P. 117782.

74. Hwang J.K., Shin H.H. Rheological properties of chitosan solutions // Korea-Australia Rheology Journal. 2000. Vol. 12. No. 3-4. P. 175-179.

75. Cho J., Heuzey M.C., Bégin A., Carreau P.J. Viscoelastic properties of chitosan solutions: Effect of concentration and ionic strength // Journal of Food Engineering. 2006. Vol. 74. No. 4. P. 500-515.

76. Шиповская А.Б., Абрамов А.Ю., Пышнограй Г.В. Реологические свойства воднокислотных растворов хитозана: эксперимент и расчеты вискозиметрических функций на основе мезоскопической модели // Инженерно-физический журнал. 2016. Т. 89. № 3. С. 632-642.

77. Базунова М.В., Валиев Д.Р., Чернова В.В., Кулиш Е.И. Реологические свойства растворов хитозана и его комплексов с коллоидными частицами золя иодида серебра // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2015. Т. 57. № 5. С. 475-475.

78. EL-Hafian E.A., Elgannoudi E.S., Mainal A., Yahaya A.H.B. Characterization of chitosan in acetic acid: Rheological and thermal studies // Turkish Journal of Chemistry. 2010. Vol. 34. No. 1. P. 47-56.

79. Klossner R.R., Queen H.A., Coughlin A.J., Krause W.E. Correlation of chitosan's rheological properties and its ability to electrospin // Biomacromolecules. 2008. Vol. 9. No. 10. P. 2947-2953.

80. Muthukumar M. Dynamics of polyelectrolyte solutions // Journal of chemical physics.

1997. Vol. 107. No. 7. P. 2619-2635.

81. Орленева А.П., Королев Б.А., Литманович А.А., Захарова Ю.А., Касаикин В.А., Куличихин В.Г. Особенности реологического поведения водных растворов полидиметилдиаллиламмоний хлорида // Высокомолекулярные соединения. Серия А.

1998. Т. 40. № 7. С. 1179-1185.

82. Литманович Е.А., Сядук Г.В., Лысенко Е.А., Зезин А.Б., Кабанов А.В., Кабанов В.А. Влияние концентрационного режима на реологические свойства полиметакрилата натрия и его комплексов с блок-сополимером полистирол-поли-Ы-этил-4-винилпиридиний бромидом в водно-солевом растворе // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2006. Т. 48. № 9. С. 1682-1690.

83. Древаль В.Е., Васильев Г.Б., Литманович Е.А., Куличихин В.Г. Реологические свойства концентрированных водных растворов смесей анионных и катионных полиэлектролитов // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2008. Т. 50. № 7. С. 1172-1179.

84. Игнатьева П.Е., Жаворонок Е.С., Легонькова О.А., Кедик С.А. Композиции на основе водных растворов хитозана и глутарового альдегида для эмболизации кровеносных сосудов // Тонкие химические технологии. 2019. Т. 14. № 1. С. 25-31.

85. Базунова М.В., Валиев Д.Р., Тухватуллин Р.Ф., Кулиш Е.И. Полимерные гели биомедицинского назначения на основе водно-этанольных растворов сукцинамида хитозана // Научно-технический вестник Поволжья. 2015. № 2. С. 30-32.

86. Базунова М.В., Валиев Д.Р., Чернова В.В., Кулиш Е.И. Реологические свойства растворов хитозана и его комплексов с коллоидными частицами золя иодида серебра // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2015. Т. 57. № 5. С. 475-475.

87. Козырева Е.В. Физико-химические свойства системы хитозан-уксусная кислота-вода с добавкой полиэтиленоксида // Дисс. ... канд. хим. наук. Саратов: СГУ им. Н.Г. Чернышевского. 2013. 201 с.

88. Charlot A.l., Ly-Velty R.A., Rinaudo M. Specific interactions in model charged polysaccharide systems // Journal of Physical Chemistry. Серия B. 2003. Vol. 113. No. 107. P. 8248-8254.

89. Cho J., Heuzey M.C., Bergin A. Effect of urea on solution behavior and heat-induced gelation of chitosan-glycerophosphate // Carbohydrate Polymer. 2006. Vol. 63. No. 4. P. 507-518.

90. Базунова М.В., Шуршина А.С., Лаздин Р.Ю., Кулиш Е.И. Тиксотропные свойства растворов некоторых полисахаридов // Химическая физика. 2020. Т. 39. № 7. С. 49-55.

91. Шиповская А.Б., Малинкина О.Н., Фомина В.И., Руденко Д.А., Щеголев С.Ю. Оптическая активность растворов и пленок ацетата хитозана // Известия Академии наук. Серия химическая. 2015. № 5. С. 1172-1172.

92. Шиповская А.Б., Фомина В.И., Казмичева О.Ф., Тимофеева Г.Н., Комаров Б.А. Влияние молекулярной массы на оптическую активность хитозана // Высокомолекулярные соединения. Серия Б. 2007. Т. 49. № 12. С. 2195-2199.

93. Lermontov S.A., Sipyagina N., Malkova A.N., Ivanov V.K. Chiral lactate-modified silica aerogels // Microporous and Mesoporous Materials. 2017. Vol. 237. P. 127-131.

94. Shipovskaya A.B., Shmakov S.L., Gegel N.O. Optical activity anisotropy of chitosan-based films // Carbohydrate Polymers. 2019. Vol. 206. Р. 476-486.

95. Shipovskaya A.B., Fomina V.I., Rudenko D.A., Shchyogolev S.Y. Influence ofphysical and chemical modification on the optical rotatory dispersion and biological activity of chitosan films //International Journal of Polymer Science. 2013. Vol. 2013. Article ID 825296.

96. Ильина А.В., Варламов В.П. Влияние физико-химических параметров на процесс образования гелей на основе хитозана // Прикладная биохимия и микробиология. 2004. Т. 40. № 6. С. 688-692.

97. Kasaai M.R., Arul J., Charlet G. Fragmentation of chitosan by acids // The Scientific World Journal. 2013. Vol. 2013. Article ID 508540.

98. Holme H.K., Davidsen L., Kristiansen A., Smidsrod O. Kinetics and mechanisms of depolymerization of alginate and chitosan in aqueous solution // Carbohydrate Polymers. 2008. Vol. 73. No. 4. P. 656-664.

99. Бойко И.С., Подколодная О.А., Лысачок С.Г., Шмаков С.Л. Вязкостная деградация кислотных растворов хитозана и её изучение методом ионного зонда // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. 2015. Т. 15. № 4. С. 21-30.

100.Филиппова О.Е., Корчагина Е.В. Хитозан и его гидрофобные производные: получение и агрегация в разбавленных водных растворах // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2012. Т. 54. № 7. С. 1130-1130.

101.Chen R H., Chen W.Y., Wang S.T., Hsu C.H., Tsai M L. Changes in the Mark-Houwink hydrodynamic volume of chitosan molecules in solutions of different organic acids, at different temperatures and ionic strengths // Carbohydrate Polymers. 2009. Vol. 78. No. 4. P. 902-907.

102.Кулиш Е.И., Чернова В.В., Володина В.П., Колесов С.В. О возможных причинах «непостоянства» значений характеристической вязкости хитозана // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2015. Т. 57. № 5. С. 390-390.

103.Sorlier P., Viton C., Domard A. Relation between solution properties and degree of acetylation of chitosan: Role of aging // Biomacromolecules. 2002. Vol. 3. No. 6. P. 1336-1342.

104.Фомина В.И., Солонина Н.А., Шиповская А.Б. Ионная агрегация макромолекул как причина кинетической (не)стабильности физико-химических свойств растворов хитозана

// Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. 2019. Т. 19. № 1. С.22-38.

105.Lugovitskaya T.N., Shipovskaya A.B., Shmakov S.L., Shipenok X.M Formation, structure, properties of chitosan aspartate and metastable state of its solutions for obtaining nanoparticles // Carbohydrate Polymers. 2022. Vol. 277. P. 118773.

106.Cho J., Heuzey M.C., Bergin A. Effect of urea on solution behavior and heat-induced gelation of chitosan-glycerophosphate // Carbohydrate Polymers. 2006. Vol. 63.No. 4. P. 507- 518.

107.Малинкина О.Н., Гегель Н.О., Шиповская А.Б. Влияние изоформы аскорбиновой кислоты на гидродинамическое поведение макромолекул аскорбата хитозана в водных растворах // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. 2019. Т. 19. № 2. С. 152-164.

108.Луговицкая Т.Н., Зудина И.В., Шиповская А.Б. Получение и свойства аспарагиновокислых растворов хитозана // Журнал прикладной химии. 2020. Т. 93. № 1. С. 90-99.

109.Park C.H. Oh J.H., Jung H.M., Choi Y., Rahman S.U., Kim, S., Woo K.M. Effects of the incorporation of s-aminocaproic acid/chitosan particles to fibrin on cementoblast differentiation and cementum regeneration // Acta Biomaterialia. 2017. Vol. 61. P. 134-143.

110.Malinkina O.N., Gegel N.O., Shipovskaya A.B. Hydrodynamic behavior of chitosan hydrochloride macromolecules in aqueous solutions of D-and L-ascorbic acid // Journal of Molecular Liquids. 2019. Vol. 284. P. 75-81.

111.Hamdine M., Heuzey M. C., Begin A. Effect of organic and inorganic acids on concentrated chitosan solutions and gels // International journal of biological macromolecules. 2005. Vol. 37. No. 3. P. 134-142.

112.Shamov M.V., Bratskaya S.Y., Avramenko V.A. Interaction of carboxylic acids with chitosan: effect of pK and hydrocarbon chain length // Journal of colloid and interface science. 2002. Vol. 249. No. 2. P. 316-321.

113.Li Q., Song B.Z., Yang Z.Q., Fan H.L. Electrolytic conductivity behaviors and solution conformations of chitosan in different acid solutions // Carbohydrate polymers. 2006. Vol. 63. No. 2. P. 272-282.

114.Badazhkova V.D., Raik S.V., Polyakov D.S., Poshina D.N., Skorik Y.A. Effect of double substitution in cationic chitosan derivatives on DNA transfection efficiency // Polymers. 2020. Vol. 12. No. 5. Article ID 1057.

115.Rahmani S., Hakimi S., Esmaeily A., Samadi F.Y., Mortazavian E., Nazari M., Tehrani M. R. Novel chitosan based nanoparticles as gene delivery systems to cancerous and noncancerous cells // International journal of pharmaceutics. 2019. Vol. 560. P. 306-314.

116.Ali A., Ahmed S. A review on chitosan and its nanocomposites in drug delivery // International journal of biological macromolecules. 2018. Vol. 109. P. 273-286.

117.Baghdan E., Pinnapireddy S. R., Strehlow B., Engelhardt K. H., Schäfer J., Bakowsky U. Lipid coated chitosan-DNA nanoparticles for enhanced gene delivery // International journal of pharmaceutics. 2018. Vol. 535. No. 1-2. P. 473-479.

118.Sharad J. Glycolic acid peel therapya current review // Clinical, cosmetic and

investigational dermatology. 2013. Vol. 6. P. 281-288.

119.Kim S.J., Park J.H., Kim D.H., Won Y.H., Maibach H.I. Increased in vivo collagen synthesis and in vitro cell proliferative effect of glycolic acid // Dermatologic surgery. 1998. Vol. 24. No. 10. P. 1054-1058.

120.Чалых А.Е., Петрова Т.Ф., Хасбиуллин Р.Р., Озерин А.Н. Сорбция и диффузия воды в хитинах и хитозанах // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2014. Т. 56. № 5. С. 526-526.

121.Зоткин М.А., Вихорева Г.А., Кечекьян А.С. Термомодификация хитозановых пленок в форме солей с различными кислотами // Высокомолекулярные соединения. Серия Б. 2004. Т. 46. № 2. С. 359-363.

122.Чалых А.Е., Петрова Т.Ф., Матвеев В.В., Герасимов В.К., Хасбиуллин Р.Р. Фазовые равновесия и фазовая структура смеси хитозан-поливиниловый спирт // Структура и динамика молекулярных систем. 2018. С. 384-395.

123.Дихтярук Е.В., Паентко В.В., Матковский А.К., Ничипорук Ю.Н., Котлярова А.Б., Гунько В.М. Криогели на основе композиции хитозан-поливиниловый спирт: синтез и свойства // Полимерные материалы и технологии. 2019. Т. 5. № 4. С. 56-63.

124.Chung H.J., Go D.H., Bae J.W., Jung I.K., Lee J.W., Park K.D. Synthesis and characterization of Pluronic grafted chitosan copolymer as a novel injectable biomaterial // Current Applied Physics. 2005. Vol. 5. No. 5. P. 485-488.

125.Лунёв И.А., Подорожко Е.А., Кильдеева Н.Р., Лозинский В.И. Композитные криогели поливинилового спирта, наполненные микрочастицами хитозана // На стыке наук. Физико-химическая серия. 2015. С. 156-160.

126. Speiciene V., Guilmineau F., Kulozik U., Leskauskaite D. The effect of chitosan on the properties of emulsions stabilized by whey proteins // Food Chemistry. 2007. Vol. 102. No. 4. P. 1048-1054.

127.Волкова И.Ф., Горшкова М.Ю., Изумрудов В.А. Водорастворимые нестехиометричные полиэлектролитные комплексы хитозана и полистиролсульфонатного аниона // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2008. Т. 50. № 9. С. 1648-1655.

128. Федосеева Е.Н., Алексеева М.Ф., Смирнова Л.А. Механические свойства пленок хитозана различной молекулярной массы // Вестник Нижегородского университета им. НИ Лобачевского. 2008. № 5. С. 58-62.

129.Кулиш Е.И., Шуршина А.С., Колесов С.В. Особенности транспортных свойств лекарственных хитозановых пленок // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2014. Т. 56. № 3. С. 282-288.

130.Подорожко Е.А., Ульябаева Г.Р., Кильдеева Н.Р., Тихонов В.Е., Лозинский В.И. Изучение криоструктурирования полимерных систем. Комплексные и композитные криогели поливинилового спирта, содержащие соответственно, растворимую и нерастворимую формы хитозана // Коллоидный журнал. 2016. Т. 78. № 1. С. 75-87.

131.Okuyama К., Noguchi K., Miyazawa T. Molecular and Crystal Structure of Hydrated Chitosan // Macromolecules. 1997. Vol. 30. No. 19. P. 5849-5855.

132.Нудьга Л.А., Петрова В.А., Гофман И.В., Абалов И.В., Волчек Б.З., Власова Е.Н.,

Баклагина Ю.Г. Химические и структурные превращения в хитозановых пленках в процессе хранения // Журнал прикладной химии. 2008. Т. 81. № 11. С. 1877-1877.

133. Федосеева Е.Н., Федосеев В.Б. Взаимодействие хитозана и бензойной кислоты в растворе и пленках // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2011. Т. 53. № 11. С. 1900-1907.

134.Zhang J.F., Yang D.Z., Xu F., Zhang Z. P., Yin R. X., Nie J. Electrospun сore-shell structure nanofibers from homogeneous solution of poly(ethylene oxide)/chitosan // Macromolecules. 2009. Vol. 42. No. 14. P. 5278-5284.

135.Uspenskiy S.A., Vikhoreva G.A., Sonina A.N. The Phase state and rheological properties of chitosan-acetic acid-ethanol-water system // Textile industry technology. 2011. No. 7. P. 81-86.

136.Chitosan based materials and its applications / Ed. S.P. Campana-Filho, L.A. de Almeida. Sharjah: Pinto Bentham Science Publishers. 2017. Vol. 3. 345 p.

137.Itoh S., Yamaguchi I., Suzuki M., Ichinose S., Takakuda K., Kobayashi H., Tanaka J. Hydroxyapatite-coated tendon chitosan tubes with adsorbed laminin peptides facilitate nerve regeneration in vivo // Brain research. 2003. Vol. 993. No. 1-2. P. 111-123.

138.Suzuki M., Itoh S., Yamaguchi I., Takakuda K., Kobayashi H., Shinomiya K., Tanaka J Tendon chitosan tubes covalently coupled with synthesized laminin peptides facilitate nerve regeneration in vivo // Journal of neuroscience research. 2003. Vol. 72. No. 5. P. 646-659.

139.Yamaguchi I., Itoh S., Suzuki M., Osaka A., Tanaka J. The chitosan prepared from crab tendons: II. The chitosan/apatite composites and their application to nerve regeneration // Biomaterials. 2003. Vol. 24. No. 19. P. 3285-3292.

140.Itoh S., Suzuki M., Yamaguchi I., Takakuda K., Kobayashi H., Shinomiya K., Tanaka J. Development of a nerve scaffold using a tendon chitosan tube // Artificial organs. 2003. Vol. 27. No. 12. P. 1079-1088.

141.Itoh S., Yamaguchi I., Shinomiya K., Tanaka J. Development of the chitosan tube prepared from crab tendon for nerve regeneration // Science and Technology of Advanced Materials. 2003. Vol. 4. No. 3. P. 261-268.

142.Fiqrianti I.A., Widiyanti P., Manaf M.A., Savira C.Y., Cahyani N.R., Bella F.R. Poly-L-lactic acid (PLLA)-chitosan-collagen electrospun tube for vascular graft application // Journal of functional biomaterials. 2018. Vol. 9. No. 2. P. 32-44.

143.Kim H., Tator C.H., Shoichet M.S. Design of protein-releasing chitosan channels // Biotechnology progress. 2008. Vol. 24. No. 4. P. 932-937.

144.Zahir T., Nomura H., Guo X.D., Kim H., Tator C., Morshead C., Shoichet M. Bioengineering neural stem/progenitor cell-coated tubes for spinal cord injury repair // Cell transplantation. 2008. Vol. 17. No. 3. P. 245-254.

145.Goraltchouk A., Scanga V., Morshead C.M., Shoichet M.S. Incorporation of protein-eluting microspheres into biodegradable nerve guidance channels for controlled release // Journal of Controlled Release. 2006. Vol. 110. No. 2. P. 400-407.

146.Hu N., Wu H., Xue C., Gong Y., Wu J., Xiao Z., Yang Y., Ding F., Gu X. Long-term outcome of the repair of 50 mm long median nerve defects in rhesus monkeys with marrow mesenchymal stem cells-containing, chitosan-based tissue engineered nerve grafts //

Biomaterials. 2013. Vol. 34. No. 1. P. 100-111.

147.Xue C., Ren H., Zhu H., Gu X., Guo Q., Zhou Y., Gu X. Bone marrow mesenchymal stem cell-derived acellular matrix-coated chitosan/silk scaffolds for neural tissue regeneration // Journal of Materials Chemistry. Part B. 2017. Vol. 5. No. 6. P. 1246-1257.

148.Ding F., Wu J., Yang Y., Hu W., Zhu Q., Tang X., Liu J., Gu X. Use of tissue-engineered nerve grafts consisting of a chitosan/poly (lactic-co-glycolic acid)-based scaffold included with bone marrow mesenchymal cells for bridging 50-mm dog sciatic nerve gaps // Tissue Engineering. Part A. 2010. Vol. 16. No. 12. P. 3779-3790.

149.Patel M., Vandevord P.J., Matthew H., Wu B., Desilva S., Wooley PH. Video-gait analysis of functional recovery of nerve repaired with chitosan nerve guides // Tissue engineering. 2006. Vol. 12. No. 11. P. 3189-3199.

150.Yin K., Divakar P., Wegst U.G.K. Freeze-casting porous chitosan ureteral stents for improved drainage // Acta biomaterialia. 2019. Vol. 84. P. 231-241.

151.Ao Q., Wang A., Cao W., Zhao C., Gong Y., Zhao N., Zhang X. Fabrication and characterization of chitosan nerve conduits with microtubular architectures // Tsinghua Science and Technology. 2005. Vol. 10. No. 4. P. 435-438.

152.Ao Q., Wang A. J., Cao,W. L., Zhao C., Gong Y.D., Zhao N.M., Zhang X.F. Preparation of porous multi-channeled chitosan conduits for nerve tissue engineering // Key Engineering Materials. Trans Tech Publications. 2005. Vol. 288. P. 27-30.

153.Li X., Tang J., Bao L., Chen L., Hong F.F. Performance improvements of the BNC tubes from unique double-silicone-tube bioreactors by introducing chitosan and heparin for application as small-diameter artificial blood vessels // Carbohydrate polymers. 2017. Vol. 178. P. 394-405.

154.Matsumoto I., Kaneko M., Oda M., Watanabe G. Repair of intra-thoracic autonomic nerves using chitosan tubes // Interactive cardiovascular and thoracic surgery. 2010. Vol. 10. No. 4. P. 498-501.

155.Prabhakaran M.P., Venugopal J.R., Chyan T.T., Hai L.B., Chan C.K., Lim A.Y., Ramakrishna S. Electrospun biocomposite nanofibrous scaffolds for neural tissue engineering // Tissue Engineering Part A. 2008. Vol. 14. No. 11. P. 1787-1797.

156.Pfister L.A., Alther E., Papaloizos M., Merkle H.P., Gander B. Controlled nerve growth factor release from multi-ply alginate/chitosan-based nerve conduits // European Journal of Pharmaceutics and Biopharmaceutics. 2008. Vol. 69. No. 2. P. 563-572.

157.Min B.M., Lee S.W., Lim J.N., You Y., Lee T.S., Kang P.H., Park W.H Chitin and chitosan nanofibers: Electrospinning of chitin and deacetylation of chitin nanofibers // Polymer. 2004. Vol. 45. No. 21. P. 7137-7142.

158.Schiffman S.D., Schauer C.L. A revie: electrospinning of biopolymer nanofibers and their application // Polymers Reviews. 2008. Vol. 48 No. 2. P. 317-352.

159.Kriegel C., Kit K.M., Mc Clements D.J., Weiss J. Electrospinning of chitosan-poly(ethylene oxide) blend nanofibers in the presence of micellar surfactant solutions // Polymer. 2009. Vol. 50. No. 1. P. 189-200.

160.Mengistu Lemma S., Bossard F., Rinaudo M. Preparation of pure and stable chitosan nanofibers by electrospinning in the presence of poly (ethylene oxide) // International journal of

molecular sciences. 2016. Vol. 17. No. 11. P. 1790-1806.

161.Bósiger P. Richard I. M., Le Gat L., Michen B., Schubert M., Rossi R. M., Fortunato G. Application of response surface methodology to tailor the surface chemistry of electrospun chitosan-poly (ethylene oxide) fibers // Carbohydrate polymers. 2018. Vol. 186. P. 122-131.

162.Pathalamuthu P., Siddharthan A., Giridev V.R., Victoria V., Thangam R., Sivasubramanian S., Hemamalini T. Enhanced performance of Aloe vera incorporated chitosan-polyethylene oxide electrospun wound scaffold produced using novel Spirograph based collector assembly // International journal of biological macromolecules. 2019. Vol. 140. P. 808-824.

163.Ziani K., Henrist C., Jerome C., Aqil A., Maté J.I., Cloots R. Effect of nonionic surfactant and acidity on chitosan nanofibers with different molecular weights // Carbohydrate Polymers. 2010. Vol. 83. No 2. P. 470-476.

164.Yilmaz E., Erdenizci N., Yilmaz O. Miscibility of chitosan and poly (ethylene oxide) in dilute solution // International Journal of Polymer Analysis and Characterization. 2003. Vol. 8. No. 5. P. 327-338.

165.Khoo C.G.L., Frantzich S., Rosinski A., Sjóstróm M., Hoogstraate J. Oral gingival delivery systems from chitosan blends with hydrophilic polymers // European journal of pharmaceutics and biopharmaceutics. 2003. Vol. 55. No. 1. P. 47-56.

166.Алексеев В.Л., Кельберг Е.А., Бронников С.В., Евмененко Г.А. Структурные и механические свойства пленок, полученных из смесей хитозана и полиэтиленоксида // Высокомолекулярные соединения. Серия Б. 2001. Т. 43. № 10. С. 1856-1860.

167.Внучкин А.В., Физико-химические исследование совместимости хитозана с поливиниловым спиртом и полиэтеленоксидом в растворах и пленках // Дисс. канд. хим. наук. СПБ.: Санкт-Петербург. гос. ун-т технологии и дизайна. 2011. 154 с.

168.Alexeev V.L., Kelberg E.A., Evmenenko G.A., Bronnikov S.V. Improvement of the mechanical properties of chitosan films by the addition of poly (ethylene oxide) // Polymer Engineering Science. 2000. Vol. 40. No. 5. P. 1211-1215.

169.Patel V.R., Amiji M.M. Preparation and characterization of freeze-dried chitosan-poly (ethylene oxide) hydrogels for site-specific antibiotic delivery in the stomach // Pharmaceutical research. 1996. Vol. 13. No. 4. P. 588-593.

170.Calvo P., Remunan Lopez C., Vila-Jato J.L., Alonso M. J. Novel hydrophilic chitosan-polyethylene oxide nanoparticles as protein carriers // Journal of applied polymer science. 1997. Vol. 63. No. 1. P. 125-132.

171.Saatchi A., Arani A.R., Moghanian A., Mozafari M. Synthesis and characterization of electrospun cerium-doped bioactive glass/chitosan/polyethylene oxide composite scaffolds for tissue engineering applications // Ceramics International. 2021. Vol. 47. No. 1. P. 260-271.

172.Govindasamy K., Dahlan N.A., Janarthanan P., Goh K.L., Chai, S.P., Pasbakhsh P. Electrospun chitosan/polyethylene-oxide (PEO)/halloysites (HAL) membranes for bone regeneration applications // Applied Clay Science. 2020. Vol. 190. Article ID 105601.

173.Li C.Y., Li R., Wang Y., Xiang X., Zhang C., Xu W. Fabrication and properties of carboxymethyl chitosan/polyethylene oxide composite nonwoven mats by centrifugal spinning //

Carbohydrate Polymers. 2021. Vol. 251. Article ID 117037.

174.Wang A., Ao Q., Cao W., Zhao C., Gong Y., Zhao N., Zhang X. Fiber-based chitosan tubular scaffolds for soft tissue engineering: fabrication and in vitro evaluation // Tsinghua Science and Technology. 2005. Vol. 10. No. 4. P. 449-453.

175.Wang A., Ao Q., Cao W., Yu M., He Q., Kong L., Zhang X. Porous chitosan tubular scaffolds with knitted outer wall and controllable inner structure for nerve tissue engineering // Journal of Biomedical Materials Research. Part A. 2006. Vol. 79. No. 1. P. 36-46.

176.Fu J., Yuan W., Shen J. Construction of anti-adhesive and antibacterial multilayer films via layer-by-layer assembly of heparin and chitosan // Biomaterials. 2005. Vol. 26. No. 33. P. 6684-6692.

177.Ariga K., Hill J.P., Ji Q. Layer-by-layer assembly as a versatile bottom-up nanofabrication technique for exploratory research and realistic application // Physical Chemistry Chemical Physics. 2007. Vol. 9. No. 19. P. 2319-2340.

178.Wang Z., Zhang X., Gu J., Yang H., Nie J., Ma G. Electrodeposition of alginate/chitosan layer-by-layer composite coatings on titanium substrates // Carbohydrate polymers. 2014. Vol. 103. P. 38-45.

179.Silva J.M., Duarte A.R.C., Custodio C.A., Sher P., Neto A.I., Pinho A.C., Mano J.F. Nanostructured hollow tubes based on chitosan and alginate multilayers // Advanced healthcare materials. 2014. Vol. 3. No. 3. P. 433-440.

180.Silva S.S., Duarte A.R.C., Carvalho A.P., Mano J.F., Reis R.L. Green processing of porous chitin structures for biomedical applications combining ionic liquids and supercritical fluid technology // Acta biomaterialia. 2011. Vol. 7. No. 3. P. 1166-1172.

181.Kildeeva N., Chalykh A., Belokon M., Petrova T., Matveev V., Svidchenko E., SazhnevN. Influence of genipin crosslinking on the properties of chitosan-based films // Polymers. 2020. Vol. 12. No. 5. Article ID 1086.

182.Kumar P., Sebok D., Kukovecz A., Horvath D., Toth A. Hierarchical Self-Assembly of Metal-Ion-Modulated Chitosan Tubules // Langmuir. 2021. Vol. 37. No. 43. P. 12690-12696.

183.Wang W., Itoh S., Matsuda A., Ichinose S., Shinomiya K., Hata Y., Tanaka J Influences of mechanical properties and permeability on chitosan nano/microfiber mesh tubes as a scaffold for nerve regeneration // Journal of biomedical materials research. Part A. 2008. Vol. 84. No. 2. P. 557-566.

184.Silva J.M., Rodrigues L.C., Silva S.S., Reis R.L., Duarte A R C. Engineered tubular structures based on chitosan for tissue engineering applications // Journal of biomaterials applications. 2018. Vol. 32. No. 7. P. 841-852.

185.Gegel N.O., Shipovskaya A.B., Vdovykh L.S., Babicheva T.S. Preparation and properties of 3D chitosan microtubes // Journal of Soft Matter. 2014. Vol. 2014. Article ID 863096.

186.Гегель Н.О., Бабичева Т.С., Шиповская А.Б. Особенности получения микротрубок хитозана межфазной реакцией полимераналогичного превращения // Бутлеровские сообщения. 2015. Т. 41. № 3. С. 44-53.

187.Qiao C., Ma X., Wang X., Liu L. Structure and properties of chitosan films: Effect of the

type of solvent acid // Food Science and Technology. 2021. Vol. 135. Article ID 109984.

188.Macedo M.D.M. Tubular chitosan device for use as prosthesis coating in vascular surgery // Research, Society and Development. 2021. Vol. 10. No. 4. Article ID e25610414031.

189.Da Silva M.C., Leal Alves R.C., Da Silva H.N., Fook M.V. Biodegradable suture threads as controlled drug delivery systems // Materials Research Innovations. 2020. Vol. 24. No. 3. 161165 p.

190.Aussel A., Thébaud N. B., Bérard X., Brizzi V., Delmond S., Bareille R., Montembault A. Chitosan-based hydrogels for developing a small-diameter vascular graft: in vitro and in vivo evaluation // Biomedical materials. 2017. Vol. 12. No. 6. Article ID 065003.

191.Montembault A., Viton C., Domard A. Physico-chemical studies of the gelation of chitosan in a hydroalcoholic medium // Biomaterials. 2005. Vol. 26. No. 8. P. 933-943.

192.Peng P., Cao X., Peng F., Bian J., Xu F., Sun R. Binding cellulose and chitosan via click chemistry: synthesis, characterization, and formation of some hollow tubes // Journal of Polymer Science. Part A. 2012. Vol. 50. No. 24. P. 5201-5210.

193.Haastert-Talini K., Geuna S., Dahlin L. B., Meyer C., Stenberg L., Freier T., Gambarotta G. Chitosan tubes of varying degrees of acetylation for bridging peripheral nerve defects // Biomaterials. 2013. Vol. 34. No. 38. P. 9886-9904.

194.Gonzalez Perez F., Cobianchi S., Geuna S., Barwig C., Freier T., Udina E., Navarro X. Tubulization with chitosan guides for the repair of long gap peripheral nerve injury in the rat // Microsurgery. 2015. Vol. 35. No. 4. P. 300-308.

195.Zakhia Douaihy R., Al-Ghoul M., Hmadeh M. Liesegang Banding for Controlled Size and Growth of Zeolitic-Imidazolate Frameworks // Small. 2019. Vol. 15. No. 28. Article ID 1901605.

196.Dietrich S. Liesegang rings, spirals and helices // Spirals and Vortices Springer Cham. 2019. P. 129-140.

197.Rajurkar N., Ambekar B. Studies on Liesegang rings of cobalt hydroxide in 1% agar gel medium // Journal of Molecular Liquids. 2015. Vol. 204. P. 205-209.

198. Stone D.A., Goldstein R.E. Tubular precipitation and redox gradients on a bubbling template // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2004. Vol. 101. No. 32. P. 11537- 11541.

199.Sarode A., Annapragada A., Guo J., Mitragotri S. Layered self-assemblies for controlled drug delivery: A translational overview // Biomaterials. 2020. Vol. 242. Article ID 119929.

200.Ibrahim H., Ezzeddine D., Sultan R. Dynamics of Liesegang band formation in a multiple-precipitate toroidal reactor // Chemical Physics Letters. 2020. Vol. 755. Article ID 137742.

201.Duley J.M., Fowler A.C., Moyles I.R., O'Brien S.B.G. Regularization of the Ostwald supersaturation model for Liesegang bands // Proceedings of the Royal Society. Part A. 2019. Vol. 475. No. 2228. Article ID 20190154.

202.Saad M., Safieddine A., Sultan R. Revisited Chaos in a Diffusion-Precipitation-Redissolution Liesegang System // Journal of Physical Chemistry. Part A. 2018. Vol. 122. No. 29. P. 6043-6047.

203.Arango-Restrepo A., Barragán D., Rubi J.M. Nonequilibrium self-assembly induced Liesegang rings in a non-isothermal system // Physical Chemistry Chemical Physics. 2018. Vol.

20. No. 7. P. 4699-4707.

204.Shimizu Y., Matsui J., Unoura K., Nabika H. Liesegang mechanism with a gradual phase transition // Journal of Physical Chemistry. Part B. 2017. Vol. 121. No. 11. P. 2495-2501.

205.Antal T., Bena I., Droz M., Martens K., Racz Z. Guiding fields for phase separation: Controlling Liesegang patterns // Physical Review. Part E. 2007. Vol. 76. No. 4. Article ID 046203.

206.Ni H.M., Shi K., Zhou J., Wu M. Preparation of isometric Liesegang patterns and application in multi-pulsed drug release system // Journal of Sol-Gel Science and Technology. 2019. Vol. 91. No. 1. P. 216-224.

207.Molnar Jr F., Izsák F., Lagzi I. Design of equidistant and revert type precipitation patterns in reaction-diffusion systems // Physical chemistry chemical physics. 2008. Vol. 10. No. 17. P. 2368-2373.

208.Droz M. Recent theoretical developments on the formation of Liesegang patterns // Journal of Statistical Physics. 2000. Vol. 101. No. 1. P. 509-519.

209.Скоробогатов Г.А., Каменский А.В. Модель формирования колец лизеганга в условиях стимулированного осаждения // Журнал физической химии. 2006. Т. 80. № 5. С. 826-838.

210.Кузьмин В.И., Гадзаов А.Ф., Тытик Д.Л., Бусев С.А., Ревина А.А., Высоцкий В.В. Кинетика образования колец Лизеганга // Журн. структур. химии. 2013. Т. 54. № S2. С. 368-382.

211.Кузьмин В.И., Гадзаов А.Ф., Тытик Д.Л., Высоцкий В.В., Бусев С.А., Ревина А.А. Кинетика образования наночастиц как основа моделирования механизма формирования колец Лизеганга в гелях // Коллоидный журнал. 2014. Т. 76. № 4. С. 477-477.

212.George J., Varghese G. Liesegang patterns: Estimation of diffusion coefficient and a plausible justification for colloid explanation // Colloid and Polymer Science. 2002. Vol. 280. No. 12. P. 1131-1136.

213.Arango-Restrepo A., Barragán D., Rubi J.M. Nonequilibrium self-assembly induced Liesegang rings in a non-isothermal system // Physical Chemistry Chemical Physics. 2018. Vol. 20. No. 7. P. 4699-4707.

214.Shimizu Y., Matsui J., Unoura K., Nabika H. Liesegang mechanism with a gradual phase transition // The Journal of Physical Chemistry. Part B. 2017. Vol. 121. No. 11. P. 2495-2501.

215.Ni H., Pan M., Shi K., Zhou J., Wu M. Preparation of isometric Liesegang patterns and application in multi-pulsed drug release system // Journal of Sol-Gel Science and Technology. 2019. Vol. 91. No. 1. P. 216-224.

216.Чалых А.Е., Петрова Т.Ф., Хасбиуллин Р.Р., Озерин А.Н. Сорбция и диффузия воды в хитинах и хитозанах // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2014. Т. 56. № 5. С. 526-526.

217.Тюкова И.С., Борисова Т С., Плетнева Л.В. Сорбция паров воды интерполиэлектролитными комплексами хитозана и карбоксиметилцеллюлозы, полученными из растворов // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2005. Т. 47. № 12. С. 2111-2117.

218.Tsaih M.L., Chen R.H. Effects of ionic strength and pH on the diffusion coefficients and conformation of chitosans molecule in solution // Journal of Applied Polymer Science. 1999.

Vol. 73. No. 10. P. 2041-2050.

219.Yevlampieva N.P., Gubarev A.S., Gorshkova M.Y., Okrugin B.M., Ryumtsev E.I. Hydrodynamic behavior of quaternized chitosan at acidic and neutral pH // Journal of Polymer Research. 2015. Vol. 22. No. 9. P. 1-9.

220.Nie J., Lu W., Ma J., Yang L., Wang Z., Qin A., Hu Q. Orientation in multi-layer chitosan hydrogel: morphology, mechanism and design principle // Scientific reports. 2015. Vol. 5. No. 1. P. 1-7.

221.Li B., Gao Y., Feng Y., Ma B., Zhu R., Zhou Y. Formation of concentric multilayers in a chitosan hydrogel inspired by Liesegang ring phenomena // Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2011. Vol. 22. No. 17. P. 2295-2304.

222.Yan K., Ding F., Bentley W. E., Deng H., Du Y., Payne G. F., Shi X. W. Coding for hydrogel organization through signal guided self-assembly // Soft Matter. 2013. Vol. 10. No. 3. P. 465-469.

223.Yamamoto T., Tomita N., Maki Y., Dobashi T. Dynamics in the process of formation of anisotropic chitosan hydrogel // Journal of Physical Chemistry. Part B. 2010. Vol. 114. No. 31. P. 10002-10009.

224.Гётце К. Производство вискозных волокон / Пер. с немецкого Г.А. Будницкого, Л.В. Гуляевой, В.К. Лежнева, А.Т. Серкова, Г.Г. Фингера. Под ред. А.Т. Серкова. М.: Химия. 1972. 600 c.

225.Weber M., Steinle H., Golombek S., Hann L., Schlensak C., Wendel H.P., Avci-Adali M. Blood-contacting biomaterials: in vitro evaluation of the hemocompatibility // Frontiers in bioengineering and biotechnology. 2018. Vol. 6. P. 99-110.

226.Игидбашян В.М., Зудина И.В., Булкина Н.В., Китаева В.Н., Сирицина В.С., Зюлькина Л.А. Применение математического подхода при оценке антибактериальной активности серебросодержащих препаратов // Современные проблемы науки и образования. 2014. № 5. С. 471-471.

227.Бабичева Т.С., Шиповская А.Б. Вязкостные свойства растворов хитозана в гликолевой кислоте // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. 2020. Т. 20. № 2. С. 170-177.

228.Колсанова Е.В., Орозалиев Э.Э., Шиповская А.Б. Вискозиметрические свойства растворов хитозана в уксусной кислоте и натрий-ацетатном буфере // Известия Саратовского университета. Новая серия. Серия Химия. Биология. Экология. 2014. Т. 14. № 2. С. 5-9.

229.Шиповская А.Б., Щеголев С.Ю. Фазовый анализ и оптическая активность систем эфир целлюлозы - мезофазогенный растворитель // Саратов: Изд-во Саратовск. ун-та. 2014. 266 с.

230.Togrul H., Arslan N. Flow properties of sugar beet pulp cellulose and intrinsic viscosity-molecular weight relationship // Carbohydrate Polymers. 2003. Vol. 54. No. 1. P. 63-71.

231.Шипунов Б.П., Коптев В.Е., Маркин В.И. Особенности реологии растворов агар-агара // Химия растительного сырья. 2018. No. 1. P. 53-60.

232.Романовский Г.К., Раппопорт Л.Я., Павлов Н.Г. Межмолекулярные взаимодействия

и вязкость олигодиенуретандиэпоксида // Высокомолекулярные соединения. Серия. А. 1972. Т. 14. № 10. С. 2241-2245.

233.Karaffa L.S. The Merck Index: An Encyclopedia of Chemicals, Drugs, and Biologicals: Edition 15. Cambridge: Royal Society of Chemistry. 2013. 832 p.

234.Крамаренко Е. Ю., Ерухимович И. Я., Хохлов А. Р. Влияние образования ионных пар и мультиплетов на спинодальную устойчивость солевого полиэлектролитного раствора // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2004. Т. 46. № 9. С. 1570-1582.

235.Перепелкин К.Е. Методы получения полимерных мембран // Успехи химии. 1988. Т. 27. № 6. С. 956-973.

236.Ovcharenko E.A., Klyshnikov K.Y., Glushkova T.V., Nyshtaev D.V., Kudryavtseva Y.A., Savrasov G.V. Xenopericardial graft selection for valve apparatus of transcatheter heart valve bioprosthesis // Biomedical Engineering. 2016. Vol. 49. No. 5. P. 253-257.

237.Журавлева И.Ю., Карпова Е.В., Опарина Л.А., Кабос Н., Ксенофонтов А.Л., Журавлева А.С., Караськов А.М. Ксеноперикард, консервированный диипентаэпоксидами: молекулярные механизмы сшивки и механические свойства биоматериала // Патология кровообращения и кардиохирургия. 2018. Т. 22. № 3. С. 56-68.

238.Журавлева И.Ю., Карпова Е.В., Кузнецова Е.В., Юношев А.С., Коробейников А.А., Тимченко Т.П., Горбатых А.В. Клапаносодержащий ксеновенозный кондуит: terra incognita или tabula rasa // Сибирский научный медицинский журнал. 2016. Т. 36. № 2. С. 90-101.

239.Babak V.G., Merkovich E.A., Galbraikh L.S., Shtykova E.V., Rinaudo M. Kinetics of diffusionally induced gelation and ordered nanostructure formation in surfactant-polyelectrolyte complexes formed at water/water emulsion type interfaces // Mendeleev Communications. 2000. Vol. 10. No. 3. P. 94-95.

240.Жанкалова З.М. Показатели перекисного окисления липидов у больных с алкогольной болезнью печени // Медицина и экология. 2008. No. 3 (48). P. 31-33.

241.Bezrodnykh E.A., Antonov Y.A., Berezin B.B., Kulikov S.N., Tikhonov V.E. Molecular features of the interaction and antimicrobial activity of chitosan in a solution containing sodium dodecyl sulfate // Carbohydrate Polymers. 2021. Vol. 270. Article ID 118352.

242.Биомеханика сонной артерии / Под. ред. А.А. Голядкиной, Д.В. Иванова, И.В. Кирилловой, Е.Л. Коссович, О.Е. Павловой, А.В. Полиенко, Л.Ю. Коссовича. Саратов: Саратовский источник. 2015. 174 с.

243.Венедиктов А.А. Разработка биоматериалов для реконструктивной хирургии на основе ксеноперикардиальной ткани // Дисс. ... канд. биол. наук М.: ФГБУ Федеральный научный центр трансплантологии и искусственных органов им. академика В.И. Шумакова. 2014. 125 с.

244.Могилевская Е.Л., Акопова Т.А., Зеленецкий А.Н., Озерин А.Н. О кристаллической структуре хитина и хитозана // Высокомолекулярные соединения. Серия А. 2006. Т. 48. № 2. С. 216-226.

245.Mohamed A.S., Shukur M.F., Kadir M.F.Z., Yusof Y.M. Ion conduction in chitosan-

starch blend based polymer electrolyte with ammonium thiocyanate as charge provider // Journal of Polymer Research. 2020. Vol. 27. No. 6. P. 1-14.

246.Babicheva T.S., Gegel N.O., Shipovskaya A.B. Influence of the salting-out agent nature on the strength properties of chitosan microtubes // Journal of Nature Science and Sustainable Technology. 2015. Vol. 9. No. 2. P. 285-295.

247.Babicheva T.S., Gegel N.O., Shipovskaya А.В. Evidence of the layer structure formation of chitosan microtubes by the Liesegang ring mechanism // Proc. SPIE. Saratov Fall Meeting 2017: Optical Technologies in Biophysics and Medicine XIX. 2018. Vol. 10716. P. 107161X-1-107161X-5.

248.Woo E.M., Lugito G. Cracks in polymer spherulites: phenomenological mechanisms in correlation with ring bands // Polymers. 2016. Vol. 8. No. 9. Article ID 329.

249.Shipovskaya A.B., Shmakov S.L., Kazmicheva O.F., Shchyogolev S.Y. Optical activity of the anisotropic phases of cellulose acetates // Journal of Polymer Science. Part B. 2009. Vol. 47. No. 16. P. 1605-1615.

250. Cardoso J., Nava D., García-Morán P., Hernández-Sánchez F., Gomez B., Vazquez-Arenas J., González I. Synthesis, characterization, and theoretical insights of green chitosan derivatives presenting enhanced Li+ ionic conductivity // Journal of Physical Chemistry. Part C. 2015. Vol. 119. No. 9. P. 4655-4665.

251.Ding Y., Hu Y.L., Gu G., Xia X.H. Controllable synthesis and formation mechanism investigation of Prussian blue nanocrystals by using the polysaccharide hydrolysis method // Journal of Physical Chemistry. Part C. 2009. Vol. 113. No. 33. P. 14838-14843.

252.Даин И.А., Логинов С.В., Рыбаков В.Б., Офицеров Е.Н., Куликов Е.А., Стороженко П.А. Синтез трис(2-гидроксиэтил)аммониевых солей дикарбоновых кислот алифатического ряда // Бутлеровские сообщения. 2017. Т. 50. № 6. С. 1-12.

253.Rokugawa I., Tomita N., Dobashi T., Yamamoto T. One-dimensional growth of hydrogel by a contact of chitosan solution with high-pH solution // Soft Materials. 2014. Vol. 12. No. 1. P. 36-41.

254.Dobashi T., Yamamoto T. Analysis of heterogeneous gelation dynamics and their application to blood coagulation // Gels. 2018. Vol. 4. No. 3. Article ID 59.

255.Transport phenomena in aqueous solutions / Ed. T. Erdey-Grúz Budapest, A. Kiadó. London: Adam Hilger. 1974. 512 p.

256.Ramsthaler F., Schlote J., Wagner C., Fiscina J., Kettner M. The ring phenomenon of diluted blood droplets // International journal of legal medicine. 2016. Vol. 130. No. 3. P. 731- 736.

257.Giraud-Guille M.M., Belamie E., Mosser G. Organic and mineral networks in carapaces, bones and biomimetic materials // Comptes Rendus Palevol. 2004. Vol. 3. No. 6-7. P. 503-513.

258.Patiño B., Fernández-Alba J., Garcia-Rozado A., Martin R., López-Cedrún J.L., Sanromán B. Calcifying epithelial odontogenic (pindborg) tumor: a series of 4 distinctive cases and a review of the literature // Journal of oral and maxillofacial surgery. 2005. Vol. 63. No. 9. P. 1361-1368.

259.Jain D., Tikku G., Kumar Jaggi V. Liesegang rings in an Endometrioid adenocarcinoma of ovary // International Journal of Surgical Pathology. 2017. Vol. 25. No. 4. P. 323-325.

260.Babicheva T.S., Konduktorova A.A., Shmakov S.L., Shipovskaya A.B. Formation of Liesegang structures under the conditions of the 2 spatiotemporal reaction of polymer-analogous transformation 3 (salt ^ base) of chitosan // Journal of Physical Chemistry. Part B. 2020. Vol. 124. No. 41. P. 9255-9266.

261.Budtova T., Belnikevich N., Kalyuzhnaya L., Alexeev V., Bronnikov S., Vesnebolotskaya S., Zoolshoev Z. Chitosan modified by poly (ethylene oxide): Film and mixture properties // Journal of applied polymer science. 2002. Vol. 84. No. 6. P. 1114-1122.

262.Yuan T.T., Jenkins P.M., Di George Foushee A.M., Jockheck-Clark A.R., Stahl J.M. Electrospun chitosan/polyethylene oxide nanofibrous scaffolds with potential antibacterial wound dressing applications // Journal of Nanomaterials. 2016. Vol. 2016. P.1-10.

263.Попрядухин П.В., Иванькова Е.М., Елоховский В.Ю. Электроформование композиционных нановолокон на основе хитозана, полиэтиленоксида и нанофибрилл хитина // Высокомолекулярные соединения. 2016. Т. 58. № 2. С. 1-9.

264.Yudin V.E., Dobrovolskaya I.P., Neelov I.M., Dresvyanina E.N., Popryadukhin P.V., Ivan'kova E.M., Morganti P. Wet spinning of fibers made of chitosan and chitin nanofibrils // Carbohydrate polymers. 2014. Vol. 108. P. 176-182.

265.Singh Y.P., Dasgupta S., Nayar S., Bhaskar R. Optimization of electrospinning process & parameters for producing defect-free chitosan/polyethylene oxide nanofibers for bone tissue engineering // Journal of Biomaterials Science. 2020. Vol. 31. No. 6. P. 781-803.

266.Ammonium thiocyanate // База данных Pubchem. https://pubchem.ncbi.nlm.nih.gov/compound/15666#section=Uses

267.Тарасенко Л.М., Непорада К.С. Биохимия органов полости рта. Учебное пособие. Полтава. 2008. 70 с.

268.Kean T., Thanou M. Biodegradation, biodistribution and toxicity of chitosan // Advanced drug delivery reviews. 2010. Vol. 62. No. 1. P. 3-11.

269.Кулиш Е.И. Чернова В.В., Володина В.П., Колесов С.В. Биодеградация пленочных полимерных покрытий на основе хитозана // Вестник Башкирского университета. 2008. Т. 13. № 1. С. 23-26.

270.Cutting K.F., Keith F. Wound exudate: composition and functions // British journal of community nursing. 2003. Vol. 8. P. 4-9

271.Zhang L., Dou S., Li Y., Yuan Y., Ji Y., Wang Y., Yang Y. Degradation and compatibility behaviors of poly (glycolic acid) grafted chitosan // Materials Science and Engineering. Part C. 2013. Vol. 33. No. 5. P. 2626-2631.

272.Gegel N.O., Golyadkina A.A., Babicheva T.S., Skripachenko X.K., Papkina V.Yu. Complex biomechanical study of chitosan microtubes // Russian Open Medical Journal. 2019. Vol. 8. No. 1. P. 103-107.

Приложение

ш

№ 17 ЛАУРЕАТА

Премии имени ак.П.П. Шорыгина 2015 года за лучшие разработки в области хитинологии награждается

БАБИЧЕВА

Татьяна Сергеевна

ого Общества

Президент Российского Профессор В.П. Варламов 13 марта 2015 г. \

1гчини«„,

Председатель Наблюдательного совета

.Л/. Бортник

Генеральный директор Фонда содействия развитию малых форм предприятий в научно-технической сфере

С. Г. Поляков

«УТВЕРЖДАЮ» Директор Института химии

АКТ №4.1299.2014/К-З О ВНЕДРЕНИИ РЕЗУЛЬТАТА ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ В НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ПРОЦЕСС

РЕЗУЛЬТАТ ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ «Способ получения микротрубок из хитозана (варианты)», созданный в ходе выполнения научно-исследовательской работы в рамках проектной части государственного задания в сфере научной деятельности (Задание № 4.1299.2014/К), внедрен в научно-исследовательский и учебный процесс в Институте химии ФГБОУ ВПО «Саратовский государственный университет имени Н.Г. Чернышевского».

УКАЗАННЫЙ РЕЗУЛЬТАТ ИНТЕЛЛЕКТУАЛЬНОЙ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ

- используется при подготовке выпускной квалификационной работы магистрантки Бабичевой Т. С., обучающейся по направлению подготовки «04.04.01.68 Химия», магистерская программа «Химия синтетических и природных веществ» и специализирующейся на базовой кафедре полимеров;

- используется при выполнении учебно-исследовательской работы студентов Института химии по дисциплине «Физико-химия природных полисахаридов»;

- используется при чтении лекций по дисциплине «Полимерные материалы в биологии и медицине» для студентов Института химии, специализирующихся на базовой кафедре полимеров.

ОСНОВАНИЕ: решение заседания Ученого Совета Института химии СГУ (протокол № 5 11 января 2016 г.).

Ученый Секретарь Ученого Совета Института химии СГУ, доцент, к.х.н.

«УТВЕРЖДАЮ» Директор Института химии СГУ, д.х.н., профессор _ £_И.Ю. Горячева

«¿V» 2022 г.

АКТ О ВНЕДРЕНИИ РЕЗУЛЬТАТОВ ДИССЕРТАЦИОННОГО ИССЛЕДОВАНИЯ БАБИЧЕВОЙ ТАТЬЯНЫ СЕРГЕЕВНЫ В УЧЕБНЫЙ ПРОЦЕСС ИНСТИТУТА ХИМИИ СГУ

Результаты диссертационной работы Бабичевой Т.С. «Физико-химические основы получения микротрубок хитозана» используются при:

-чтении лекций по дисциплине «Физикохимия природных полисахаридов» для студентов Института химии СГУ, специализирующихся по направлению подготовки 04.04.01 (магистратура) «Химия», профиль «Химия синтетических и природных веществ»;

- выполнении лабораторных работ «Гидродинамическое поведение и конформационные параметры макромолекул в разбавленных растворах хитозана в гликолевой кислоте», «Реологические свойства и энергия активации умеренно-концентрированных и концентрированных водных растворов гликолята хитозана» при дистанционном изучении дисциплины «Физикохимия природных полисахаридов» для студентов Института химии СГУ;

- выполнении учебно-исследовательской работы «Определение физико-химических параметров и пространственно-временных характеристик массопереноса межфазной реакции полимераналогичного превращения соль—»основание хитозана» для студентов Института химии СГУ, специализирующихся по направлению подготовки 04.03.01 (бакалавриат) «Химия», профиль «Химия низко- и высокомолекулярных органических веществ».

Основание: решение заседания Ученого Совета Института химии СГУ (протокол №9 от 24.03.2022 г.)

Учёный секретарь Ученого Совета

Института химии СГУ,

профессор, д.х.н.

Н.А. Бурмистрова