Эволюция геномов пшениц и их дикорастущих сородичей: Молекулярно-цитогенетическое исследование тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.03, доктор биологических наук Бадаева, Екатерина Дмитриевна

• Бадаева, Екатерина Дмитриевна
• доктор биологических наук
• 2000

Оглавление диссертации доктор биологических наук Бадаева, Екатерина Дмитриевна

введение

глава 1. обзор литературы

1.1. История систематики родов Triticum и Aegilops.

1.1.1. Классификация рода Triticum L.

1.1.2. Систематика рода Aegilops L.

1.2. Геномный анализ для изучения филогенетического родства видов Triticum и Aegilops

1.2.1 Цитологические методы геномного анализа

Анализ мейотической конъюгации хромосом

Анализ числа и морфологии хромосом 31 Изучение рисунков дифференциального окрашивания хромосом

1.2.2. Молекулярные методы геномного анализа 36 Анализ повторяющихся последовательностей нуклеотидов 40 Семейства 18S-5,8S-26S (45S) и 5S рРНК генов 44 Исследования малокопийной ДНК 47 Гибридизация in situ

1.2.3. Биохимические методы геномного анализа 51 Иммунохимический анализ 51 Электрофоретический анализ белков и изоферментов

1.2.4. Исследования цитоплазмы в геномном анализе

1.3. Происхождение полиплоидных пшениц

1.3.1. Определение доноров геномов мягкой пшеницы

4-геном

В-геном

О-геном

1.2.3. Происхождение пшениц группы ~ПторЬееу'|

1.4. Гомеология хромосом злаков. Генетическая классификация хромосом ТпНсит аевНуит

1.4.1. Разработка генетической классификации хромосом мягкой пшеницы

1.4.2. Анализ структуры 4А хромосомы ТпНсит аезНуит и идентификация видоспецифических транслокаций в двух эволюционных линиях пшеницы

1.4.3. Эволюция геномов Тпйсеае. Гомеология хромосом злаков и способы ее определения:

1) компенсационная способность

2) способность к гомеологичной конъюгации

3) анализ чужеродно-дополненных и замещенных линий пшеницы с помощью изоферментных и биохимических маркеров

4) сравнительное генетическое картирование

5) морфология хромосом

1.4.4. Идентификация хромбсом мягкой пшеницы

Заключение диссертации по теме «Молекулярная биология», Бадаева, Екатерина Дмитриевна

выводы

1. На основании исследования кариотипов пяти гексаплоидных и семи тетрапло-идных видов пшеницы разработана обобщенная идиограмма хромосом А-, В- и D- геномов. Показано, что тетраплоидные и гексаплоидные виды не отличаются по распределению С-блоков на хромосомах А- и В-геномов, однако у 6х пшениц отмечено небольшое изменение системы полиморфизма ГХ районов. Установлено, что наиболее древним видом гексаплоидной пшеницы является Triticum spelta.

1. При анализе интрогрессивных линий определено соответствие индивидуальных хромосом А' и G геномов Т. timopheevii гомеологичным группам мягкой пшеницы и разработана генетическая классификация хромосом этого вида. Установлено, что частота замещений определяется уровнем дивергенции гомеологичных хромосом двух видов. Показано, что спектры замещений хромосом зависят от генотипа родительского сорта мягкой пшеницы, условий выращивания и направления искусственного отбора.

3. Показано, что внутривидовая дивергенция дикорастущей Т. araraticum связана с изменением системы полиморфизма ГХ районов и хромосомными перестройками. Аберрантные кариотипы отличались от нормального по 1—4 транслокациям; частота перестроек хромосом G генома была вдвое выше, чем А'-генома. Каждая географическая популяция характеризовалась определенным спектром перестроек. Северный Ирак явился центром происхождения, а Армения —вторичными центром разнообразия Т. araraticum.

А. Анализ линий Т. araraticum с межгеномными транслокациями с помощью геномной гибридизации in situ показал, что точки разрывов могут локализоваться в центромерных или проксимальных районах хромосом. Данное наблюдение свидетельствует о том, что возникновение перестроек связано скорее с действием гаметоцидных генов, чем неправильным расхождением унивалентов и слиянием телоцентрических хромосом.

5. Показано, что предки пшениц линии Emmer и Timopheevi возникли независимо от скрещиваний одних и тех же родительских видов; линия Emmer является более древней, чем Timopheevi. Донором В- и G-геномов послужил диплоидный вид, близкий современному Ае. speltoides. В процессе дальнейшей эволюции S-геном Ае. speltoides и B/G геномы полиплоидных пшениц значительно диверги-ровали относительно друг друга.

6. Методами С-дифференциального окрашивания и гибридизации in situ с 4-мя клонами ДНК исследованы кариотипы 12 диплоидных видов Aegilops и составлены обобщенные видовые идиограммы хромосом. Установлено, что рисунки распределения клонированных последовательностей ДНК являются более консервативными характеристиками геномов, чем рисунки С-окрашивания. Показано, что дифференциация диплоидных видов связана с амплификацией, элиминацией и перераспределением семейств повторяющихся последовательностей ДНК и реже с хромосомными аберрациями. Усиление асимметричности хромосом и повышение содержания гетерохроматина являлись общей тенденцией эволюции кариотипов.

7. Диплоидные виды Aegilops характеризуются высоким уровнем полиморфизма ГХ районов и низкой частотой хромосомных перестроек. Полиплоидные виды, наоборот, характеризовались сравнительно узким полиморфизмом рисунков бэндига и высокой частотой хромосомных аберраций.

8. Обнаружено, что механизмы формирования кариотипов полиплоидных видов Aegilops в значительной степени определяются базовым (pivotal) геномом. Виды кластера D-геномов характеризуются высокой стабильностью кариотипов, а модификации хромосом в процессе видообразования и внутривидовой дивергенции затрагивают оба родительских генома. Видоспецифические транслокации у полиплоидных пшениц (кластер А-геномов) включают хромосомы обоих геномов, однако при внутривидовой дивергенции перестройки хромосом В- или G-(diffenetial) геномов происходят значительно чаще, чем А- или А' (pivotal) геномов. Виды кластера U-геномов характеризуются высокой цитологической нестабильностью Преобразования геномов затрагивают в основном дифференциальные геномы и происходят за счет множественных транслокаций и, возможно, ин-трогрессивной гибридизации.

9. В соответствии с данными С-бэндинга и гибридизации in situ, Ае. crassa (4х) является древним видом, ведущим происхождение от предка Ае. squamosa и прародителя секции Sitopsis. Возможно, что образование Ае. triarisfata и Ае. columnaris связано с интрогрессивной гибридизацией. Их общим предком мог послужить гибрид двух тетраплоидов, имеющих с общим (U-) и вторым отличающимся геномом. Последующая дивергенция видов и биотипов Ае. columnaris по хромосомному составу была обусловлена отбором различных комбинаций хромосом гибридного генома в результате приспособления видов к отличающимся условиям обитания.

10. Показано, что наиболее значительные преобразования геномов происходят у тетраплоидных видов, тогда как образование гексаплоидов не приводят к значительным изменениям хромосом.

3.7. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Проведенное исследование выявило широкое разнообразие рисунков С-бэндинга и гибридизации in situ с клонированными последовательностями ДНК в кариотипах диплоидных и полиплоидных видов пшениц и эгилопсов. Специфичность распределения блоков позволила идентифицировать индивидуальные хромосомы и составить «видовые кариотипы» для всех исследованных форм. Как правило, особенности морфологии и рисунков дифференциального окрашивания хромосом диплоидных предков сохранялись в геномах их полиплоидных потомков. Этот принцип был положен в основу определения геномной принадлежности хромосом полиплоидов.

У диплоидных Aegilops выявлен значительный внутривидовой полиморфизм рисунков дифференциального окрашивания хромосом и небольшое число хромосомных аберраций. Полиплоидные виды, наоборот, характеризовались высокой долей генотипов с хромосомными перестройками и сравнительно узким полиморфизмом ГХ районов. Виды отличались по частоте, спектрам и преобладающим типам хромосомных аберраций. Наибольшее разнообразие перестроек обнаружено у дикорастущих тетраплоидных пшениц Т. dicoccoides и Т. araraficum и тетраплоид-ных видов Aegilops секции Pleionathera.

Цитогенетический анализ пшениц и Aegilops, проведенный в настоящей работе, результаты генетического картирования и исследования особенностей мейо-тической конъюгации хромосом в межвидовых гибридах свидетельствуют о том, что эволюция геномов диплоидных видов-происходила за счет двух основных механизмов. Первый - дивергенция геномов без перестроек групп сцепления только за счет амплификации, элиминации и перераспределения семейств повторяющихся последовательностей ДНК. Второй, характерный только для нескольких диплоидных видов, осуществлялся путем хромосомных аберраций и эволюции семейств повторов.

Все виды, эволюция которых не связана с хромосомными перестройками (7". топососсит, Т. urartu, Ае. spelioides, Ае. sharonensis, Ае. squarrosa) имели симметричные кариотипы. Структуры кариотипов в целом были сходными, за исключением комбинации спутничных хромосом. В то же время, виды значительно различались между собой по общему содержанию ГХ, рисункам С- и N-бэндинга, интенсивности мечения и распределению клонов некодирующих повторяющихся последовательностей ДНК —pScll9 и pAsl, числу и локализации основным и минорных NOR.

Модификация геномов путем хромосомных перестроек осуществлялась в основном посредством транслокаций с интерстициальными точками разрывов. Уровни преобразования хромосом разных видов существенно отличались. Известно, например, что Ае. longissima дивергировал от видов секции Sitopsis за счет одной транслокации, тогда как эволюция генома Ае. umbeliulata сопровождалась 12 перестройками - транслокациями и инверсиями (Naranjo, 1995; Zhang et al., 1998). В то же время, при формировании N-генома Ае. uniarístata доминировали парацентрические и перицентрические инверсии (Chennaveeraiah, 1960; Iqbal, 1998).

Все диплоидные виды, эволюция которых связано с хромосомными перестройками, имели асимметричные или смешанные кариотипы. В отличие от первой группы, структуры кариотипов значительно варьировали. Виды этой группы характеризовались средним или высоким содержанием ГХ, но различались по рисункам С-окрашивания, интенсивности мечения и распределения ДНК-зондов. В соответствии с этими показателями, Ае. umbellulata и Ае. caudata филогенетически родственны видам секции Sitopsis. В то же время, по характеру гибридизации с клонами повторяющихся последовательностей геномы Ае. comosa, Ае. heldreichii и Ае. uniaristata близки D-геному Ае. squamosa.

Морфолого-ботанические (Eig, 1929), цитогенетические (Сенянинова-Корчагина, 1932; Chennaveeraiah, 1960) и молекулярные (Dvorak and Zhang, 1992) данные указывают на то, что все виды с асимметричными кариотипами являются эволюционно «молодыми». Можно следовательно, предположить, что дивергенция геномов за счет повторяющихся последовательностей является более «древним» механизмом эволюции, чем хромосомные перестройки.

Сравнение кариотипов «примитивных» (Т. топососсит, Ае. squamosa, Ае. mutica, Ае. bicornis, Ае. sears/7) и эволюционно «продвинутых» видов (Ае. sharonen-sis, Ае. longissima, Ае. umbellulata, Ае. uniaristata) показало, что первые содержат сравнительно мало ГХ, выявляемого С- и особенно N-методом. Работами ряда авторов было установлено, что положение N-блоков соответствует локализации (GAA)n повтора (Dennis et al., 1980; Appels et al., 1982; Pedersen et al., 1996 и др.). Таким образом, можно говорить об общей тенденции к накоплению гетерохроматина в целом, и сателлитных последовательностей в частности, в процессе эволюции злаков.

Рассматривая интенсивность мечения и распределение классов высоких повторов можно выделить два направления эволюции. Одно из них, характерное для видов секции Sitopsis, Ае. umbellulata и Ае. caudata связано с амплификацией семейства pScll9 и постепенной элиминацией pAsl повтора. Второе сопровождалось постепенной утратой pScll9 и накоплением или поддержанием на прежнем уровне числа копий pAsl повтора (Т. топососсит, Ае. comosa, Ае. heldreichii и Ае. squarrosa). Дифференциация геномов по числу и локализации сайтов основных 18S-26S и 5S рРНК генов, по-видимому, произошла на ранних этапах эволюции Triticeae и не зависела от дивергенции высоких повторов. Она осуществлялась путем активации или полной делеции локусов на одной (или двух) парах хромосом 1, 5 или 6-й гомеологичной групп. Механизмы появления минорных NOR, не обладающих синтетической активностью, не совсем понятны.

Известно, что полиплоидия играла большую роль в эволюции пшениц и Ае-gilops. Установлено, что геномы некоторых полиплоидных видов практически не изменились по сравнению с исходными, тогда как у других они в различной степени модифицированы.

Появление модифицированных геномов объясняли или тем, что их доноры в настоящее время вымерли, или же они изменились за счет хромосомных перестроек, затрагивающих оба родительских генома в равной степени (Lilienfeld, 1951; Ki-hara, 1963а). Исследования ряда авторов, однако, показали, что скорость изменения родительских геномов в составе полиплоидов различается (Zohciry and Feldman, 1962). Один из геномов - «pivotal»- идентичен или же очень близок; родительскому. Другой - дифференциальный (differential) - геном может значительно отличаться от исходного. У пшениц и эгилопсов было идентифицировано три «pivotal» генома -А-, U- и D-, и в соответствии с этим виды были разделены на три кластера (Zohary and Feldman, 1962; Kimber and Feldman, 1977). Кластер A-геномов объединяет все диплоидные и полиплоидные пшеницы. Aegilops umbeilulata и восемь полиплоидных видов секции Peionathera входили в кластер tí-геномов, а три тетраплоидных и три гексаплоидных вида из секций Cylindropyrum и Vertebrata - в кластер D-геномов (Kimber and Feldman, 1977).

Анализ диплоидных и полиплоидных пшениц с помощью метода С- окрашивания выявил значительные модификации обоих родительских геномов в составе полиплоидов. Часть изменений обусловлено структурными преобразованиями хромосом в результате видоспецифических транслокаций (4А-5А-7В у Т. turgidum, Naranjo et al., 1987; и ЗАЧА + 1G-4G-6A' у Т. timopheevii, Gill and Chen, 1987, Jiang and Gill, 1994b; Maestra and Naranjo, 1999). Другие (возрастание количества гетерохроматина, инактивация районов ядрышкового организатора на 1А хромосоме) связаны с функциональным взаимодействием геномов в составе полиплоидов.

Сходное распределения pScll9 зонда на хромосомах В- и G-геномов Т. durum и Т. timopheevii, с одной стороны, и Ае. speltoides, с другой, свидетельствует о том, что этот диплоидный Aegilops послужил предком обоих видов тетраплоидной пшеницы. В то же время, уровень дивергенции В- и S-геномов по рисункам дифференциального окрашивания хромосом, числу и локализация локусов 5S рРНК генов был значительно выше, чем G- и 5-геномов. Таким образом, Т. durum и Т. timophee-vii образовались от независимых скрещиваний одних и тех же родительских форм, причем твердая пшеница возникла намного раньше, чем пшеница 1 имофеева. Становление тетраплоидных видов сопровождалось структурными и функциональными преобразованиями хромосом, затрагивающих оба родительских генома в равной степени.

Обнаружено, что внутривидовая дивергенция дикорастущих видов, Т. dococ.-coides и Т. araraticum, представляющих две эволюционные линии пшеницы, сопровождалась изменениями системы полиморфизма и хромосомными аберрациями. В частности, у них были выявлены инверсии и транслокации, которые, в свою очередь, делились на центромерные и интерстициальные, одиночные и множественные, циклические и независимые. В целом, перестройки хромосом В- (G-) генома происходили значительно чаще, чем А-генома. Triticum dicoccoides и Т. araraticum различались по типам хромосомных аберраций: если у первого обнаружены преимущественно минорные транслокации, то у Т. araraticum преобладали центромерные транслокации, включающие от двух до шести пар хромосом.

Образование гексаплоидных пшениц (мягкой пшеницы, Т. zhukovsky, Т. ki-harae) не связано со структурными перестройками геномов родительских видов. К функциональным изменениям можно отнести инактивацию ядрышкообразующего района на 5D хромосоме и небольшие изменения системы полиморфизма ГХ районов. Высокий полиморфизм хромосом А-, В- и D-геномов и наличие вариантов, характерных как для тетраплоидных, так гексаплоидных пшениц в кариотипе Т. spelta свидетельствуют о том, что он является наиболее древним видом гекса-плоидной пшеницы.

Исследование видов Aegilops, представляющих кластер D-геномов, с помощью С-метода дифференциального окрашивания и гибридизации in situ с D-геном специфичным клоном ДНК pAsl подтвердил, что оба генома Ае. cylindrica практически идентичны родительским, тогда как в составе Ае. ventricosa, Ае. crassa, Ае. vavilovii, Ае. juvenalis исходные геномы были в различной степени модифицированы. Оценка уровня изменения хромосом этих видов несколько отличалась от данных мейотического анализа (Kimber and Zhao, 1983), но полностью соответствовала результатам исследования вариации RNS (Dvorak and Zhang, 1992; Zhang and Dvorak, 1992; Dubkovsky and Dvorak, 1994, 1995).

В частности, было обнаружено, что N-геном Ае. ventricosa очень близок диплоидному Ае. uniaristata, тогда как его D-геном модифицирован относительно Ае. squarrosa и в целом стоял ближе к D-геному Ае. crassa, чем своему непосредственному предку. В процессе внутривидовой дивергенции Ае. ventricosa произошла T1N:3D транслокация с центромерными точками разрывов.

Результаты анализа кариотипа 4х Ае. crassa с помощью методов С-бэндинга и гибридизации in situ с pAsl клоном ДНК свидетельствуют о значительной модификации обоих геномов. Характер мечения хромосом pAsl зондом и сходство с хромосомами Ае. ventricosa по рисункам С-окрашивания подтверждают наличие модифицированного D- генома у этого вида. Полученные нами данные свидетельсвуют о том, что вторым предком Ае. сга55а мог послужить вид из секции Б^ор515. Значительные отличия хромосом тетраплоидного Ае. сгаэза от его предполагаемых предков предполагают, что его образование было связано как с изменениями семейств повторов, так и хромосомными перестройками. Модификации затрагивали оба родительских генома в равной степени. Внутривидовая дивергенция Ае. сгазэа происходила за счет изменения полиморфизма ГХ районов и транслокаций. Одна из них, центромерная, включала В и Н хромосомы (хромосомный тип I). Вторая, двойная, дивергировала от нее путем дополнительной транслокации между <3 и М хромосомами с интерстициальными точками разрывов.

Показано, что тетраплоидный Ае. сга$$а был предком всех трех гексаплоид-ных видов этого кластера, однако прародителем Ае. ¡иуепа1Ь послужила форма с нормальным хромосомным набором, а 6х Ае. сга$$а и Ае. уоуНоуи - хромосомный тип I. Явно выраженная дивергенция хромосом всех трех геномов Ае. ¡иуепаИв относительно родительских видов, указывает на то, что он является наиболее древним гексаплоидом. В то же время, сходство кариотипов 6х Ае. сгавза и Ае. уоуНоуН с их предками является показателем их сравнительно недавнего происхождение. Кариотип Ае. уоуНоуН полностью соответствовал хромосомным наборам 4х Ае.сга$$а и Ае-Беагэп по рисунку С-окрашивания хромосом и распределению р5с119 и рА$1 ДНК зондов. В то же время, у гексаплоидного Ае. сгшза идентифицирована видоспецифическая транслокация между А и N хромосомами, а в процессе внутривидовой дивергенции аберрантные В:Н хромосомы были вторично перестроены.

Полиплоидные виды кластера U-re нома в целом характеризовались высокой нестабильностью кариотипа. Сходство рисунков дифференциального окрашивания хромосом Ае. triuncialis с родительскими видами Ае. umbellulata и Ае. caudata подтверждает, что его образование не связано с хромосомными перестройками. Сходным образом, кариотип Ае. variabilis соответствовал хромосомным наборам Ае. umbellulata и Ле. longissima по распределению С-бэндов, рисунку мечения pScll9 зондом и локализации локусов 18S-26S и 5S рРНК генов.

Его ближайший сородич, Ае. kotschyi, имеющий идентичный геномный состав, отличался от Ае. variabilis по рисункам дифференциального окрашивания нескольких пар хромосом. Можно предположить, что эти тетраплоидные виды образовались от независимых скрещиваний. Предком 5-генома Ае. kotschyi, однако, послужил диплоидный Ае. sharonensis. Как у Ле. variabilis, так и Ле. kotschyi выявлен значительный внутривидовой полиморфизм, обусловленный вариацией ГХ районов, хромосомными перестройками и, возможно, интрогрессией чужеродного генетического материала.

В соответствии со структурой кариотипа, общим содержанием ГХ и рисунками С-окрашивания хромосом, тетраплоидные Ле. ovata и Ле. biuncialis образовались независимо от скрещивания Ле. umbellulata с Ле. comosa и Ле. hel-drechii, соответственно. Образование этих видов и внутривидовая дивергенция сопровождались структурными и функциональными перестройками обоих геномов.

Тетраплоидные Ле. columnaris и Ае. triaristata значительно отличались от этих видов по структуре хромосом, общему содержанию и характеру распределения гетерохроматина. У Ае. columnarís было идентифицировано два хромосомных типа. Один из них, А, был сходен, тогда как другой значительно отличался от кариотипа Ае. triaristata. Цитогенетический анализ подтвердил наличие U-геномов у обоих видов, однако, определить непосредственного донора второго генома оказалось невозможно. Тем не менее, гетерогенность Ае. columnarís по структуре кариотипа и сходство части хромосом с хромосомами Ае. triaristata указывают на то, что эти виды могли образоваться путем интрогрессивной гибридизации двух исходных видов, содержащих общий U-геном. Как и в случае тетраплоидных тритикале, приспособление к различным условиям обитания привело к стабилизации различных комбинаций хромосом в кариотипах этих видов, что и было обнаружено в данной работе.

Анализ Ае. reda показал полную идентичность его хромосом тетраплоидно-му Ае. triaristata и диплоидному Ае. uniaristata по рисункам дифференциального окрашивания. Таким образом, образование этого гексаплоидного вида не связано с хромосомными перестройками. В кариотипах отдельных линий Ае. triaristata и Ае. reda были идентифицированы несколько вариантов центромерных транслокаций.

Таким образом, кластер U-геномов в целом характеризуется значительной гетерогенностью и нестабильностью. Виды отличаются друг от друга по содержанию и распределению С-бэндов на хромосомах даже «pivotal» -U генома, у многих обнаружена высокая частота хромосомных аберраций. Уровень модификации вторых геномов Ае. columnarís и Ае. triaristata уже настолько велик, что невозможно определить их происхождение. Перестройки геномов этих видов, однако, не могут быть связаны с долгим сроком эволюции, поскольку даже диплоидный предок - Ае. ит-ЬеНиЫа - считается эволюционно молодым.

Естественно предположить, что высокая скорость эволюции хромосом у видов этого кластера обусловлена наличием и генома. Вполне вероятно, что он может содержать гены, способные индуцировать модификации хромосом аллополиплоидов. Помимо этого, и геном может обладать сильным «буферным» эффектом, обеспечивающим возможность дивергенции видов за счет интрогрессивной гибридизации.

На основании обобщения изложенного выше материала можно сделать следующие выводы.

Список литературы диссертационного исследования доктор биологических наук Бадаева, Екатерина Дмитриевна, 2000 год

1. Абрамова Л.И., 1986. Кариотип пшеницы. В кн.: Генетика культурных растений. Зерновые культуры. П.: Агропромиздат, стр. 28-37.

2. Айзатулина Х.С., Ячевская ГЛ., Переладова Т.П., 1989. Изучение геномной структуры Agropyron intermedium (Host.) Beauw. Цитология и генетика 23 (5): 15-21.

3. Антонов A.C., 1988. Структура и эволюция ДНК покрытосеменных растений. В кн.: Геном растений (под ред. К.М.Сытника), Киев: Наукова Думка, стр. 21-42.

4. Атаева Д.М., Иорданский A.B., Айзатулина Х.С., 1983. Кариотипический полиморфизм культурной ржи. Докл. Акад. Наук СССР 264 (1): 234-237.

5. Бадаев Н.С., 1989. Закономерности становления и организации генома злаков. Дисс. докт. биол. наук (03.00.03 03.00.15). Москва, Институт молекулярной биологии АН СССР, 35 стр.

6. Бадаев Н.С., Бадаева Е.Д., Максимов Н.Г., Волков Д.К., Зеленин A.B., 1982. Изменение хромосом ржи в кариотипе тритикале. Докл. Акад. Наук СССР, т. 267, № 4, стр. 953-956.

7. Бадаев Н.С., Бадаева Е.Д., Большева H.J1., Зеленин A.B., 1983. Идентификация хромосом А- и D- геномов пшеницы с использованием замещений и перестроек между гомеологами у пшениц и тритикале. Докл. Акад. Наук СССР. 273: 994-996.

8. Бадаева Е.Д., Богуславский Р.Л., Бадаев Н.С., 1988. Цитогенетическое исследование злаков. Тетраплоидные виды пшениц Зандури. Генетика, 24 (8): 1411-1418.

9. Ю.Бадаева Е.Д., Амосова A.B., Оноприенко B.C., Бадаев Н.С., 1989. Цитогенетическое исследование Triticum miguschovae и его родительских видов. Цитология и генетика 23 (5): 22-26.

10. П.Беридзе ТТ., 1988. Сателлитная ДНК растений. В кн.: Геном растений (под ред.

11. К.М.Сытника), Киев: Наукова Думка, стр. 62-72.

12. Бойко Е.В., 1985. Сравнительное исследование содержания ДНК у тритикале и исходных родительских форм. Дисс. канд. биол. наук, Москва, ИОГен, 153 стр.

13. Бойко Е.В., Бадаев Н.С., Фактор ВМ., Сиволап Ю.М., Зеленин A.B., Бродский В.Я., 1985. Сравнительное определение количества ДНК в ядрах клеток сельскохозяйственных злаков. Цитология 27 (5): 611-614.

14. Бойко Е.В., Бадаев Н.С., Максимов Н.Г., Зеленин A.B., 1988. Закономерности становления и организации генома злаков. Сообщение 1. Изменение количества ДНК при аллополиплоидизации. Генетика 24 (1): 89-97.

15. Большева Н.Л., Бадаева Е.Д., Курочкина А.И., Бадаев Н.С., 1984. Сравнение дифференциально окрашенных хромосом у двух родственных форм ржи. Генетика 20: 2025-2030.1 б.Босток К., Самнер Э., 1981. Хромосома эукариотической клетки. Мир: Москва, 598 сс.

16. Вавилов Н.И., 1926. О происхождении культурных растений. В сб.: Происхождение и география культурных растений. (Новое в агрономии, 1926).

17. Вавилов Н.И., 1935. Научные основы селекции пшеницы. В кн.: Теоретические основы селекции растений. 1.2. М.; П., Сельхозгиз, с. 3-244.

18. Вахитов В.А., Гималов Ф.Р., Шумятский Г.П., 1989. Нуклеотидная последовательность 5S рРНК генов полиплоидной пшеницы и видов Aegilops. Молекулярная биология 23: 431-440.

19. Вишнякова Х.С. Ячевская Г.П., Поляков В.Ю., 1994а. Изучение геномной структуры двух форм неполных пшенично-пырейных амфидиплоидов 2п=56. Генетика 30: 244-249.

20. Вишнякова Х.С. Ячевская Г.П., Поляков В.Ю., 19946. Изучение геномной структуры пшенично-пырейных дисомных дополненных линий. Генетика 30: 404-410.

21. Вишнякова Х.С., Бадаева Е.Д., Зеленин A.B., 1997. Изучение внутривидового полиморфизма по рисунку С-окрашивания хромосом Aegilops umbellulata L. Генетика, т. 33, № 5, стр. 623-627.

22. Воденичарова М.С., 1980. Электрофоретическое исследование девяти изофер-ментных систем у представителей субтрибы ТгЖсеае. Дисс. Канд. биол. наук, ИО-Ген, Москва, 101 стр.

23. Газарян К.Г., Тарантул В.З., 1983. Геном эукариот. М.: Изд-во Моск. Ун-та, стр. 736.

24. Голубовская И.Н., 1975. Генетический контроль поведения хромосом в мейозе. В кн.: Цитология и генетика мейоза. (под ред. В.В.Хвостовой и Ю.Ф.Богданова) М.: Наука, стр. 312-343.

25. Доувер Д., Браун С., Коэн Э., Даллас Дж., Стрэчен Т., Трик М., 1986. Динамика эволюции генома и дифференцировка видов. В кн.: Эволюция генома (пер. с английского). М.: Мир, стр. 329-356.

26. Дубовец Н.И., Бадаева Е.Д., Бадаев Н.С., Щербакова A.M., Бормотов В.Е., Зеленин A.B., 1987. Использование тетраплоидных тритикале для идентификации хромосом А- генома пшеницы. Генетика 23 (4): 693-697.

27. Жиров Е.Г., 1980. Синтез новой гексаплоидной пшеницы. Тр. Прикл. Бот. Генет. Селек. 68: 14-16.

28. Жуковский П.М., 1928а. Критико-систематический обзор видов рода Aegilops L. Тр. Пр. Бот. Генет. Селек. XVIII (1): 417-609.

29. Жуковский П.М., 1928б. Новый вид пшеницы. Тр. Пр. Бот., XIX (2): 59-66.31 .Жуковский П.М., 1971. Культурные растения и их сородичи. 3-е изд. П., 93-130.

30. Зеленин A.B., Бадаева Е.Д., Бадаев Н.С., 1987. Хромосомный анализ злаков. Теоретические и прикладные аспекты. Генетика 23 (10): 1749-1761.

31. Зурабишвили ТТ., Иорданский А.Б., Бадаев Н.С., 1974. Поликариограммный анализ и исследование дифференциальной окраски хромосом Triticum aestivum L. Докл. Акад. Наук СССР 218 (1): 207-210.

32. ЗЛ.Калинина Н.П., Будашкина Е.Б., Хвостова В.В., 1977а. Изучение электрофорети-ческих спектров глиадинов межвидовых гибридов пшеницы. Сообщение I. 42-хромосомные гибриды. Генетика 13 (3): 389-397.

33. Калинина Н.П., Будашкина Е.Б., Хвостова В.В., 19776. Изучение электрофоретических спектров глиадинов межвидовых гибридов пшеницы. Сообщение II. 28-хромосомные гибриды. Генетика 13 (4): 573-577.

34. Конарев A.B., 1998. Использование молекулярных маркеров в работе с генетическими ресурсами растений. С./Х. Биология 5: 3-25.

35. Конарев A.B., Мигушова Э.Ф., Гаврилюк ИЛ. и др., 1971. О природе генома пшениц группы Т. timopheevii Zhuk. по данным электрофореза и иммунохимического анализа. Докл. ВАСХНИЛ 4: 13-16.

36. Конарев A.B., Мигушова Э.Ф., Гаврилюк И .П., 1972. Дифференциация диких двузернянок по данным электрофореза и иммунохимического анализа глиадинов. Докл. ВАСХНИЛ 5: 4-6.

37. Конарев A.B., Гаврилюк И.П., Мигушова Э.Ф., 1974. Дифференциация диплоидных пшениц по данным иммунохимического анализа глиадина. Докл. ВАСХНИЛ 6: 12-14.

38. ЛЗ.Конарев В.Г., 1973. Принцип белковых маркеров в геномном анализе и сортовой идентификации пшеницы. Тр. по прикл. бот., генет. и селек. 49 (3): 46-58.

39. Конарев В.Г., 1980. Белки пшеницы. М.:Колос. 351 С.

40. Конарев В .Г., 1983. Белки растений как генетические маркеры. М.: Колос, 320 С.

41. Конарев В.Г., Губарева Н.К., Гаврилюк И.П., 1970. Белковые маркеры геномов пшениц и их диких сородичей. III. Специфичность глиадина по данным иммунохимического анализа. Вестник с./х. Науки 9: 91-97.

42. Конарев В.Г., Гаврилюк ЭЛ., Пенева Т.Н., Конарев A.B., Хакимова А.Г., Мигушова Э.Ф., 1976. О природе и происхождении геномов пшеницы по данным биохимии и иммунохимии белков зерна. С.-х. Биология 11(5): 656-665.

43. Левицкий Г.А., Сизова М.А., Поддубная-Арнольди В.А., 1939. Сравнительная морфология хромосом пшеницы. Докл. Акад. Наук СССР 25: 142-145.52Мак Кей Дж., 1968. Генетические основы систематики пшениц. С.-х. Биология, 3 (1): 12-23.

44. Маниатис Т., Фрич Э., Самб рук Дж., 1984. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование. Москва: Мир. 479 стр.

45. Навашин М.С., 1927. Об измененнии числа и морфологических признаков хромосом у межвидовых гибридов. Тр. По прикл. Бот. Генет. и Селек. 17 (3): 121-150.

46. Невский С., 1934. Triticum L. пшеница (Флора СССР. Т. 2). Л., с. 675-688.

47. РейтцЛ.П., 1970. Мировое распространение и значение пшеницы. В кн.: Пшеница и ее улучшение, (пер. с английского). М.: Колос, стр. 15-32.

48. Савченко Е.К., Бадаева ЕД.Г Бойко Е.В., Бадаев Н.С., Кунах В.А., Моргун В.В., Зеленин А.В., 1986. Кариотипический анализ различных генотипов кукурузы. Генетика 22 (1): 95-101.

49. Салина Е.А., Песцова Е.Г., Вершинин А.В., 1997. "Speltl" новое семейство тан-демных повторов злаков. Генетика 47: 1381-1387.

50. Саматадзе Т.Е., Муравенко О.В., Климахин Г.И., Зеленин А.В., 1997. Изучение внутривидового полиморфизма по рисунку С-окрашивания хромосом Matricaria chamomilla L. (syn. M. recutita L.). Генетика 33 (1): 130-132.

51. Семенов B.M., Семенова Е.В., 1975. Дифференциальная окраска хромосом Zingeria biebersteiniana (Claus) P. Smirn. в митозе и мейозе. Изв. Сиб. отд. АН СССР 15 сер. биол. вып. 3: 80-84.

52. Сенянинова-Корчагина М.В., 1932. Кариосистематическое исследование рода Aegilops L. Тр. прикл. бот, генет. и селекц. раст., сер. II, 1: 1-90.

53. Сиволап Ю.М., 1988. Особенности организации и изменчивости генома сельскохозяйственных растений. В кн.: Геном растений (под ред. К.М.Сытника), Киев: Нау-кова Думка, стр. 42-62.

54. Сизова М.А., 1939. Изменения хромосомной структуры Trificum durum. Докл. Акад. Наук СССР 25: 75-77.

55. Синская E.H., 1955. Происхождение пшеницы. В кн.: Проблемы ботаники. М., Л., т. 2, с. 5-73.7'Л.Синская E.H., 1968. Исторический обзор работ ВИР по систематике. Тр. по прикл. ботанике, генет. и селек. 39 (2): 3-38.

56. Смирнов В.Г., 1999. Столетие Г.Д.Карпеченко столетие исследований по реконструкции геномов. Генетика 35 (10):

57. Сорокина О.Н., 1928. О хромосомах видов Aegilops. Тр. по прикл. бот., генет. и селекц. раст., 19 (2): 523-532.

58. Созинов A.A., 1985. Полиморфизм белков и их значение в генетике и селекции. Москва: Наука, 272 с.

59. Созинов A.A., Попереля ФА., Парфентьев М.Г., 1970. О наследовании некоторых фракций спирторастворимого белка при гибридизации пшениц. Научн.-Техн. Бюлл. ВСГИ, вып. 13, стр. 4-38.

60. Созинов A.A., Попереля Ф.А., Стаканова А.Н., 1975. Гибридологический анализ, как метод изучения генетических закономерностей биосинтеза глиадинов. Научн.-Техн. Бюлл. ВСГИ., вып. 24, ар. 10-15.

61. Таврин Э.В., 1963. Сравнительное изучение видов пшеницы Зандури как компонентов для скрещивания с мягкой и твердой пшеницами. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Л., ВИР, 16 стр.

62. Тихонович И.Т., 1974. Дифференциальная окраска метафазных хромосом ржи. Вестник Ленинградского ун-та. Сер. биол. 21 (4): 70-73.

63. Фадеева Т.С., 1986. Анеуплоидия у мягкой пшеницы. В кн.: Генетика культурныхрастений. Зерновые культуры. Л: Агропромиздат, стр. 53-65.

64. Фадеева Т.С., Соснихина СЛ., Иркаева Н.М., 1980. Сравнительная генетика растений. Л: Изд-во Ленинградского университета, 248 стр.

65. Чмелев В.М., Синютина Н.Ф., Конарев A.B., 1991. К вопросу о природе геномно-специфичных белков серологических маркеров геномов В у пшеницевых. С./х.-биол. 1: 83-87.

66. Шумный В.К. и Вершинин A.B., 1989. Организация генома в растительных клетках: является ли повторяющаяся ДНК лишней? В кн.: Структурно-функциональная организация генома (под ред. В.К. Шумного). Новосибирск: Наука, стр. 115-149.

67. Щапова А.И., 1971. Кариотип пшеницы. В кн.: Цитогенетика пшеницы и ее гибридов. (под ред. П.М.Жуковского). М.: Наука, стр. 30-57.

68. Щапова А.И., 1974. Дифференциальная окраска хромосом растений. 1. Seeale cereale L. Цитология 16: 370-372.

69. Маска В.Э., 1974. Происхождение тетраплоидных пшениц по данным электрофоре-тического изучения ферментов. Изв. АН Эст. ССР 23 (3): 201-220.

70. Яаска В.Э., 1976. Апкогольдегидрогеназа полиплоидных пшениц и их диплоидных сородичей. К филогенезу тетраплоидной пшеницы. Генетика, 12 (11): 22-88.

71. Якобашвили З.А., 1989. Установление филогенетических связей между видами пшеницы с помощью анализа полиморфизма и наследования запасных белков. Дисс. канд. биол. наук, М., ИОГен. 192 стр.

72. Якубцинер М.М., 1932. Пшеницы Сирии, Палестины и Трансиордании и их селекционно-агрономическое значение. Л.: ВИР, 157-160.

73. Янева Ю.Н., Антонов А.С., 1977. Изучение степени подобия фракции повторяющихся последовательностей ДНК видов родов Triticum и Aegilops методом гибридизации ДНК. Генетика 13: 578-583.

74. Ahn S. and Tanksley S.D., 1993. Comparative linkage maps of the rice and maize genomes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90: 7980-7984.

75. Ahn S., Anderson J.A., Sorrells M.E., and Tanksley S.D., 1993. Homoeologous relationships of rice, wheat and maize chromosomes. Mol. Gen. Genet. 241: 483-490.

76. Ainsworth C.C., Johnson H.M., Jackson E.A., Miller Т.Е., and Gale M.D., 1984. The chromosomal location of leaf peroxidase genes in hexaploid wheat, rye and barley. Theor. Appl. Genet. 69: 205-210.

77. Allaby R.G., Banerjee M., and Brown T.A., 1999. Evolution of high molecular weight glutenin loci of the A, B, D, and G genomes of wheat. Genome 42: 296-307.

78. Allard R.W. and Shands R.G., 1954. Inheritance of resistance to stem rust and powdery mildew in cytologically stable spring wheats derived from Triticum timopheevi. Phytopathology 44: 266-274.

79. Alonso L.C. and Kimer G., 1981. The analysis of meiosis in hybrids. II. Triploid hybrids. Can. J. Genet. Cytol. 23 (2): 221-234.

80. Ambros P.F., Matzke M.A., Motzke AJ.M., 1986. Detection of a 17-kb unique sequence (T-DNA) in plant chromosomes by in situ hybridization. Chromosoma 94: 1118.

81. Anamthawat-Jonsson K. and Heslop-Harrison J.S., 1993. Isolation and characterisation of genome-specific DNA sequences in Triticeae species. Mol. Gen. Genet. 240: 151-158.

82. Anamthawat-Jonsson K., Schwarzacher T.,Leitch A.R., Bennett M.D., Heslop-Harrison J.S., 1990. Discrimination between closely related Triticeae species using genomic DNA as a probe. Theor. Appl. Genet. 79: 721-728.

83. Aniol A., 1974. A serological investigation of wheat evolution. Z. Pflanzenzuecht. 73: 194-203.

84. Antonov A.S., 1986. Plant DNA: Structure and evolution. Sov. Srf. Rev. D. Physico-chem. Biol. 8: 1-32.

85. Appe/s R. and Dvorak J. 1982a. The wheat ribosomal DNA spacer region: Its structure and variation in populations and among species. Theor. Appl. Geriet. 63: 337348.

86. Appels R. and Dvorak J., 1982b. Relative rates of divergence of spacer and gene sequences within the rDNA region of species in the Triticeae: Implications for the maintenance of homogeneity of a repeated gene family. Theor. Appl. Genet. 63: 361-365.

87. Appe/s R. and Honeucutt R.L., 1986. rDNA evolution over a billion years. In: DNA systematics. Edited byS.K.Dutta. CRC Press, FL. pp. 81-125.

88. Appels R., Driscoll C., and Peacock WJ., 1978. Heterochromatin and highly repeated DNA sequences in rye (Seca/e cereale). Chromosoma 70 (1): 67-89.

89. Appe/s R., Gerlach W.L., Dennis E.S., Swift H., and Peacock WJ1980. Molecular and chromosomal organization of DNA sequences coding for the ribosomal RNAs incereals. Chromosoma, 78: 293-311.

90. Appels R., Dennis E.S., Smyth D.R., Peacock WJ., 1981. Two repeated DNA sequences from the heterochromatic regions of rye (Secale cereale) chromosomes. Chromosoma 70: 67-89.

91. Appels R., Gustafson J.P., and May C.E., 1982. Structural variation in the hetero-chromatin of rye chromosomes in triticales. Theor. Appl. Genet. 63: 235-244.

92. Appe/s R., Baum B.R., and Clarke B.C., 1992. The 5S rDNA unit of bread wheat {Triticum aestivum). Plant Syst. Evol. 183: 183-194.

93. Arrighi F.E. and Hsu T.C., 1971. Localization of heterochromatin in human chromosomes. Cytogenetics 10: 81- 86.

94. Badaev N.S., Badaeva E.D., Bolsheva N.L., Maximov N.G. and Zelenin A.V., 1985. Cytogenetic analysis of forms produced by crossing hexaploid triticale with common wheat. Theor. Appl. Genet. 70: 536-541.

95. Badaeva E.D., Boguslavsky R.L., Badaev N.S. and Zelenin A.V., 1990a. Intraspecific chromosomal polymorphism of Triticum araraticum (Poaceae) detected by C-banding technique. Plant Syst. Evol., 169: 13-24.

96. Badaeva E.D., Jiang J. and Gill B.S., 1995b. Detection of intergenomic translocations with centromeric and non-centromeric breakpoints in Trificum araraficum: mechanism of origin and adaptive significance. Genome, v. 38, № 5, p. 976-981.

97. Badaeva ED., Friebe B., Zoshchuk S.A., Zelenin A.V., and Gill B.S., 1998. Molecu-lar-cytogenetic analysis of tetraploid and hexaploid Aegilops crassa. Chrom. Res. 6: 629-637.

98. Baldauf F., Schubert V., and Metzlaff M., 1992. Repeated DNA sequences of Ae. markgrafii (Greuter) Hammer var. Markgrafii: cloning, sequencing ana analysis of distribution in Poaceae species. Hereditas 116: 71-78.

99. Bardsley D., Cuadrado A., Jack P., Harrison G., Castilho A., Heslop-Harrison J.S., 1999. Chromosome markers in the teraploid wheat Aegilops ventricosa analysed by insitu hybridization. Theor. Appl. Genet. 99 (1/2): 300-304.

100. UO.Bedbrook RJ., Jones J., O'Dell M., Thompson RJ., Flavell R.B., 1980. A molecular description of telomeric heterochromatin in Secale species. Cell 19: 545-560.

101. Belay G. And Merker A., 1999. C-band polymorphism and chromosomal rearrangements in tetraploid wheat (Trificum turgidum L.) landraces from Ethiopia. Wheat Inf. Serv. 88: 6-14.

102. Be/ea A. and Fejer O., 1980. Evolution of wheat (Trificum L.) in respect to recent research. Acta. Agron. Acad. Sci. Hung. 29: 306-315.

103. Bell CJ. and Ecker J.R., 1994. Assignment of 30 microsatellite loci to the linkage map of Arabidopsis. Genomics 19: 137-144.

104. Ben/fo C., Figuerias A.M. and Gonzales-Jaen M.T., 1984. Phosphoglucomutase, a biochemocal marker for group 4 chromosomes in the Triticinae. Theor. Appl. Genet. 68: 555-557.

105. Bennett M.D., Gustafson J.P. and Smith J.B., 1977. Variation in nuclear DNA in the genus Secale. Chromosoma 61 (1): 149-176.

106. Bennett M.D. and Smith J.B., 1976. Nuclear DNA amounts in angiosperms. Philos. Trans. R. Soc. Lond., B Biol. Sci. 274: 227-274.

107. Bennetzen J.L. and Kellogg E.A., 1997. Do plant have a one-way ticket to genomic obesity? Plant Cell 9: 1509-1513.

108. BennetzenJ.L. et al., 1998. Grass genomes. Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 95: 1975

109. Sevan M. and Murphy G., 1999. The small, the large and the wild: the value of comparison in plant genomics. TjG 15 (6): 211-214.

110. Berg K.H. von, 1937. Beitrag zur Genomanalyse in der Getreide-gruppe. Zuechter 9: 157-163.

111. Bietz J.A., 1987. Genetic and biochemical studies of nonenzymatic endosperm protein. . In: (E.G.Heyne Ed.), Wheat and wheat improvement, Second edition. Am. Soc. of Agron., Madison, Wisconsin, pp. 215-241.

112. Bietz J.A., Shepherd K.W., Wall J.S., 1975. Single-kernel analysis of glutenin: Use in wheat genetics and breeding. Cereal Chem. 52: 513-532.

113. Blake NX., Lehfeldt B.R., Lavin M., and Talbert I.E., 1999. Phylogenetic reconstruction based on low copy DNA sequence data in an allopolyploid: The B genome of wheat. Genome 42: 351-360.

114. Boissier P.E., 1844. Diagnoses plantarum orientalium novarum, Ser. 1(5): 73-74.

115. Bolsheva N.L., Badaev N.S., Tyurin Yu.N., Badaeva E.D., Muravenko O.V., Zelenin A.V., 1986a. Non-random distribution of intercalary heterochromatin along chromosome arms in cereals. Cereal Res. Commun, 14 (1): 101-102.

116. Bolsheva N.L., Badaeva E.D., Badaev N.S., Zelenin A.V., 1986b. Chromosome alterations in the karyotype of triticale in comparison with the parental forms. 2. Heterochromatin of the wheat chromosomes. Theor. Appl. Genet. , v. 71, № 1, p. 6671.

117. Bourdet A., Feilett P., Mettavant F., 1963. Sur le comportment electrophoretique de prolamines du ble' en gel d'amidon. C.-r. Acad. Sci., P., 256: 4517.

118. Bourgeois S.F., Dosba G., and Dounaire G., 1978. Analyse et identification des translocation reciproques presented chez le geniteur VPM et les varietes 'marne', 'Moisson' et 'Roazon'. Ann. Amelior Planted 28: 411-429.

119. Bowden W.M., 1959. The taxonomy and nomenclature of the wheats, barleys and ryes and their relatives. Canad. J. Bot. 37: 657-684.

120. Boyd WJ.R. and Wrigley C.W., 1969. The D-genome and the control of wheat gluten synthesis. Experientia 23: 332-333.

121. Bozzini A., CantagalU P., Piazzi S.E., and Sordi S., 1970. An immunochemical approach to species relationship in Triticum and some related species. Theor. Appl. Genet. 40: 300-304.

122. Bozzini A., CantagalU P., Piazzi S.E., and Sordi S., 1973. An immunochemical approach to species relationships in Triticinae. In: Proc. IV Int. Wheat Genet. Symp., Columbia, Missouri, USA, 1973. pp. 61-70.

123. Brady T., Clutter M.E., 1972. Cytolocalization of ribosomal cistrons in plant polytene chromosomes. J. Cell Biol. 53 (3): 827-832.

124. Britten RJ. and Kohne D.E., 1968. Repeated sequence in DNA. Science 161: 529540.

125. Britten RJ. and Kohne D.E., 1969. Implications of repeated nucleotide sequences. In: Handbook of Molecular Cytology (Lima-de-Faria, Ed.), North-Holland, Amsterdam, pp. 37.

126. Brown A.H.D., 1983. Barley. In: (S.D. Tanksley and T.J. Orton Eds.) Isozymes in plant genetics and breeding, Part B. Elsevier Science Publishers B.V., Amsterdam, pp. 57-77.

127. Brown S., Szewc-McFadden A.K., and Kresovich S., 1996. Development and application of simple sequence repeat (SSR) loci for plant genome analysis. In: Methods of Genome Analysis in Plants (P.P. Jauhar Ed.). CRC Press, Boca Raton, pp. 147-162.

128. Bryan GJ., Collins A J., Stephenson P., Orry A., Smith LB., Gale M.D., 1997. Isolation and characterization of microsatellites from hexaploid bread wheat. Theor. Appl. Genet. 94 (5): 557-563.

129. Burnouf T., Bouriquet R., and Poullard P., 1983. Inheritance of glutenin subunits in F1 seeds of reciprocal crosses between European hexaploid wheat cultivars. Theor. Appl. Genet. 64: 103-107.

130. Burr B., Evola S.V., and Burr F.A., 1983. The application of restriction fragment length polymorphism to plant breeding. In: Genet. Engineering Principles and methods (Set-low J.K. and Hollaender A., eds.), vol. 5, Plenum Press, NY, p. 45.

131. Busch W., Martin R., and Herrmann R.G., 1994. Sensitivity enhancement of fluorescence in situ hybridization on plant chromosomes. Chromosome Res. 2: 15-20.

132. Busch W., Martin /?., Herrmann R.G., and Hohmann U., 1995. Repeated DNA sequences isolated by microdissection. 1. Karyotyping of barley (Hordeum vulgare L.). Genome 38 (6): 1082-1090.

133. Busch W., Herrmann R.G., and Hohmann U., 1996. Repeated DNA sequences isolated by microdissection. II. Comparative analysis of Hordeum vulgare and Triticum aes-tivum. Theor. Appl. Genet. 93 (1/2): 164-171.

134. Cabrera A., Friebe B., Jiang J., and Gill B.S., 1995. Characterization of Hordeum chilense chromosomes by C-banding and in situ hybridization using highly repeated DNA probes. Genome 38 (3): 435-442.

135. Cao W., Scoles G., Hud P., Chibbar R.N., 1999. The use of RAPD analysis to classify Triticum accessions. Theor. Appl. Genet. 98 (3/4): 602-607.

136. Castagna R., Gnocchi 5., Perenzin M., and Heun At, 1997. Genetic variability of the wild diploid wheat Triticum urartu revealed by RFLP and RAPD markers. Theor. Appl. Genet. 94 (3/4): 424-430.

137. CastilhoA., Heslop-Harrison J.S., 1995. Physical mapping of 5S and 18S-25S rDNA and repetitive DNA sequences in Aegilops umbellulata. Genome 38 (1): 91-96.

138. Cermeno M.C., Orellana J., Santos J.L., Lacadena J.R., 1984. Nucleolar activity and competition (amphiplasty) in the genus Aegilops. Heredity (U.S.A.) 52: 603-611.

139. Chao S., Sharp PJ., Worland AJ., Warham EJ., Koebner R.M.D., Gale M.D., 1989. RFLP-based genetic maps of wheat homoeologous group 7 chromosomes. Theor. Appl. Genet. 78: 495-504.

140. Chapman V. and Miller T.E. 1978. The realtionship of the D genomes of hexaploid Ae. crassa, Ae. vavilovii and hexaploid wheat. Wheat Inf. Serv. 47: 17-20.

141. Chapman V. and Riley R., 1966. The allocation of the chromosomes of Triticum aesti-vum to the A and B genomes and evidence on genome structure. Canad. J. Genet. Cy-toL8: 57-63.

142. Chapman V., Miller T.E. and Riley R. 1976. Equivalence of the A-genome of bread wheat and that of Triticum urartu. Genet. Res. 27 (1): 69-76.

143. Charlesworth B., Sniegowski P., and Stephan W., 1994. The evolutionary dynamics of repetitive DNA in eukaryotes. Nature 371: 215-220.

144. Chen P.D. and Gill B.S., 1983. The origin of chromosome 4A, and genomes B and G of tetraploid wheats. In: Proc. 6th Int. Wheat Genet. Symp., Kyoto, Japan, 1983. Pp. 39-48.

145. Chen Q. and Armstrong K., 1994. Genomic in situ hybridization in Avena sativa. Genome 37 607-612.

146. Chen Q. and Armstrong K., 1995. Characterization of a library from a single micro-dissected oat (Avena sativa L.) chromosome. Genome 38: 706-714.

147. Chennaveeraiah M.S., 1960. Karyomorphologic and Cytotaxonomic Studies in Aegilops. Acta Horti Gotob. 23: 85-186.

148. Chooi W.Y., 1971. Comparison of the DNA of six Vicia species by the method DNADNA hybridization. Genetics 68: 213-220.

149. Ciaffi K.M., Dominici L., and Lafiandra D., 1997. Gliadin polymorphism in wild and cultivated eincorn wheats. Theor. Appl. Genet. 94: 68-74.

150. Co/e E.W., Fullington J.G., and Casarda D.D., 1981. Grain protein variability among species of Triticum and Aegilops: Quantitative SDS-PAGE studies. Theor. Appl. Genet. 60: 17-30.

151. Cox A.V., Bennett M.D., and Dyer TA., 1992. Use of polymerase chain reaction to detect spacer size heterogeneity in plant 5S-rRNA gene clasters and to locate such das-ters in wheat (Triticum aestivum L.). Theor. Appl. Genet. 83: 684-690.

152. Crane C.F., 1996. Numerical meiotic models for the inference of genomic affinity in polyploids. In: Methods of genome analysis in plants (P.P.Jauhar Ed.). Boca Ration:CRC Press, pp 61-79.

153. Cullis C.A., Schweizer D., 1974. Repetitious DNA in some Anemone species. Chromosoma 44 (4): 417-421.

154. Cunado N., Cermeno M.C., and Orellana J., 1986. Interactions between wheat, rye and Aegilops ventricosa chromosomes on homologous and homoeologous pairing. Heredity 56 (2): 219-226.

155. Dalai K.S. and Sadanaga K., 1965. Identification of chromosomes involved in translocation in F1 hybrid of two species of tetraploid wheat. Can. J. Genet. Cytol. 7: 88-96.

156. Darlington C.D., 1950. The study of the cell in the understanding life. Proc. Vllth Int. Bot. Congr. Stokholm 1950. Pp. 88-103.

157. Darvey N.L. and Gustafson J.P., 1975. Identification of rye chromosomes in wheat-rye addition lines and Triticale by heterochromatin bands. Crop. Sci. 15: 239- 243.

158. Daud H.M. and Gustafson J.P., 1996. Molecular evidence for Triticum speltoides as a B-genome progenitor of wheat (Triticum aestivum). Genome 39 (3): 543-548.

159. Dekaprelevich L.L., 1961. The species Triticum macha Dek. Et Men. In the light of themost recent investigations on the origin of hexaploid wheat. Z. Pflanzenzuecht. 45: 1730.

160. Dennis E.S., Gerlach W.L., and Peacock WJ., 1980. Identical polypirimidine-polypurine satellite DNA in wheat and barley. Heredity 44: 349-366.

161. Deumling B. and Greilhuber J., 1982. Characterization of heterochromatin in different species of the Scilla siberica group (Liliaceae) by in situ hybridization of satellite DNAs and fluorochrome banding. Chromosoma 84 (4): 535-555.

162. Devos KM. and Gale M.D., 1993. Extended genetic maps of the homoeologous group 3 chromosomes of wheat, rye, and barley. Theor. Appl. Genet. 85: 649-652.

163. Devos KM., Athkinson M.D., Chinoy C.N., Francis H.A., Harcourt R.L., Koebner R.M.D., Liu CJ., Masojc D.X., Xie D.X., and Gale M.D., 1993a. Chromosomal rearrangements in the rye genome relative to that of wheat. Theor. Appl. Genet. 85: 673680.

164. Devos K., Millan T., and Gale M.D., 1993b. Comparative RFLP maps of homoeologous group-2 chromosomes in wheat, rye and barley. Theor. Appl. Genet. 85: 784-792.

165. Devos KM., DubkovskyJ., Dvorak J., Chinoy C.N., and Gale M.D., 1995. Structural evolution of wheat chromosomes 4A, 5A, and 7B and its impact on recombination. Theor. Appl. Genet. 91: 282-288.

166. Dobel P., Rieger R., Michaelis A., 1973. The Giemsa banding patterns of the standard and four reconstructed karyotypes of Vicia faba. Chromosoma 43 (4): 409-422.

167. DoebleyJ., Durbin M., Golenberg E.M., Clegg M.T., and Ma D.P., 1990. Evolutionary analysis of the large subunit of carboxilase (rbcL) nucleotide sequence among grasses. Evolution 44: 1097-1108.

168. Doerschug E.B., 1976. Placement of the genes for ribosomal RNA within the nucleolar organizing body of Zea mays. Chromosoma 55: 43-56.

169. Dover G., 1982. Molecular drive: a cohesive mode of species evolution. Nature (Lond.) 299: 111-117.221 .Driscoll CJ., 1983. Third compendum of wheat-alien chromosome lines. Waite Agricultural Research Institute. Glen Osmond, Australia.

170. Dubkovsky J. and Dvorak J., 1994. Genome origin of Triticum cylindricum, Triticum triunciale, and Triticum ventricosum (Poaceae) inferred from variation in repeated nucleotide sequences: A methodological study. Amer. J. Bot. 81: 1327-1335.

171. Dubkovsky J. and Dvorak J., 1995a. Genome identification of the Triticum crassum complex (Poaceae) with the restriction patterns of repeated nucleotide sequences. Am. J. Bot. 82: 131-140.

172. Dubkovsky J. and Dvorak J., 1995b. Ribosomal RNA multigene loci: Nomads of the Triticeae genomes. Genetics 140: 1367-1377.

173. Dubkovsky J., Lijavetzky D., Appendino I., and Tranquiili G., 1998. Comparative RFLP mapping of Triticum monococcum genes controlling vernalization requirement. Theor. Appl. Genet. 97 (5/6): 968-975.

174. Dubovets N.I., Badaev N.S., Bolsheva N.L., Badaeva E.D., Shcherbakova A.M., Bormotov V.E., Zelenin A.V., 1989. Regularities of karyotype formation in tetraploid triticale. Cereal Res. Commun., v. 17, № 3-4, p. 253-257.

175. Durante M., Cionini P.G., Avanzi S., Cremonini R., D'Amato F., 1977. Cytological localization of the genes for the four classes of ribosomal RNA (25S, 18S, 5.8S and 5S) in polytene chromosomes of Phaseolus coccineus. Chromosoma 60 (3): 269-282.

176. Dvorak J., 1998. Genome analysis in the Triticum-Aegilops alliance. In: Proc. 9th Int. Wheat Genet. Symp., Saskatoon, Saskatchewan, Canada 2-7 August 1998. Vol. 1, pp. 8-11.

177. Dvorak J. and Appels R., 1982. Chromosome and nucleotide sequence differentiation in genomes of polyploid Triticum species. Theor. Appl. Genet. 63: 349-360.

178. Dvorak J. and Dubkovsky J., 1996. Genome analysis of polyploid species employing variation in repeated nucleotide sequences. In: Methods in Genome analysis in Plants {P.P. Jauhar Ed.). CRC Press, Boca Raton, pp. 133-145.

179. DvorakJ. and Chen K.-C., 1984. Distribution of nonstructural variation between wheat cultivars along chromosome arm 6Bp: evidence from linkage map and physical map of the arm. Genetics 106: 325-333.

180. Dvorak J. and McGuire P.E., 1981. Nonstructural chromosome differentiation among wheat cultivars with special reference to differentiation of chromosomes in related species. Genetics 97: 391-414.

181. Dvorak J. and Zhang H.-B., 1992. Reconstruction of the phylogeny of the genus Triticum from variation in repeated nucleotide sequences. Theor. Appl. Genet. 84: 419429.

182. Dvorak J., Lassner M.W., Kota R.S., Chen K.C., 1984. The distribution of the ribosomal RNA genes in the Triticum speltoides and Elytrigia elongaia genomes. Can. J. Genet. Cytol. 62: 628-632.

183. Dvorak J., Mcguire P.E., and Cassidy B., 1988. Apparent sources of the A genomes of wheats inferred from polymorphism in abundance and restriction fragment length of repeated nucleotide sequences. Genome 30: 680-689.

184. Dvorak J., di Terlizzi P., Zhang H.-B., and Resta P., 1993. The evolution of polyploid wheats: identification of the A genome donor species. Genome 36: 21-31.

185. Dvorak J., DubkovskyJ., Luo M.-C., Devos K.M., and Gale M.D., 1995. Differentiation between wheat chromosomes 4B and 4D. Genome 38 (6): 1139-1147.

186. Dvorak J., Luo M.-C., Yang Z.-L, and Zhang H.-B., 1998. The structure of the Aegi-lops tauschii genepool and the evolution of hexaploid wheat. Theor. Appl. Genet. 97 (4): 657-670.

187. Dyck PI. 1992. Transfer of a gene for stem rust resistance from Triticum araraticum to hexaplois wheat. Genome 35: 788-792.

188. Eig A., 1929. Monographisch-kritische Ubersicht der Gattung Aegilops. Report Spec. Nov.reg. veg. Beith. 55: 1-228.

189. Elton G.A.H. and Ewart J.A.D., 1962. Starch gel electrophoresis of cereal proteins, i Sei. Food and Agr. 13: 62-72.

190. Elton G.A.H. and EwariJ.A.D., 1963. Immunological comparison of cereal proteins, i Food Agric. 14: 75-758.

191. Endo T.R., 1986. Complete identification of common wheat chromosomes by means of the C-banding technique. Jpn. J.Genet. 61: 89-93.

192. Endo T.R. and Tsunewaki K., 1975. Genetic diversity of the cytoplasm of Triticum and Aegilops. I. On the origin of the cytoplasm of Ae. triuncialis L. Seiken Ziho 25-26: 5566.

193. EwarfJ.A.D., 1966. Cereal proteins: Immunological studies. J. Food. Aqric. 17: 279284.

194. EwarfJA.D., 1969. Comparison of seed proteins of some Graminae species. J. Food. Agric. 20: 221-224.

195. Fedoroff N.V., 1979. On spacers. CelJ16: 697-710.

196. Feldman M., 1965a. Further evidence for natural hybridization between tetraploid species of Aegilops section Pleionathera. Evolution 19: 162-174.

197. Feldman M., 1965b. Fertility of interspecific Fi hybrids and hybrid derivatives involving tetraploid species of Aegilops section Pleionathera. Evolution 19: 556-562.

198. Feldman M., 1965c. Chromosome pairing between differential genomes in hybrids tetraploid Aegilops species. Evolution 19: 563-568.

199. Feldman M., 1966. Identification of unpaired chromosomes in Fi hybrids involving T. aestivum and T. timopheevii. Canad. J. Genet. Cytol. 8: 144-151.

200. Fernandez de Caleya R., Hernandez-Lukas C., Carbonero P., Garsia-Olmedo F., 1976. Gene expression in allopolyploids: genetic control of lipopurothionins in wheat. Genetics 83: 687-699.

201. Filion W.G., 1974. Differential Giemsa staining in plants. I. Banding patterns in three cultivars of Tulipa. Chromosoma 49: 51- 60.

202. Flavell R.B., 1980. The molecular characterisation and organisation of plant chromosomal DNA sequences. Annu. Rev. Plant Physiol. 31: 569-596.

203. Flavell R., 1982a. Sequence amplification, deletion, and rearrangement: major sources of variation during species divergence. In: Genome evolution (G.A.Dover and R.FIavell, Eds.). Academic press, New York, pp. 301-323.

204. Flaveli R., 1982b. Chromosomal DNA sequences and their organization. In: (B. Parthier and D. Boulter Eds.) Encyclopedia of plant physiology, New Ser., Vol. XlVb. Springer-Verlag, Berlin, pp. 46-74.

205. Flavell R.B. and Smith D.B., 1974. Variation in nucleolar organiser rRNA gene multiplicity in wheat and rye. Chromosoma 47: 327-334.

206. Flavell R.B. and Smith D.B., 1976. Nucleotide sequence organisation in the wheat genome. Heredity 37: 231-252.

207. Flavell R.B., Bennett AID., Smith J.B., and Smith D.B., 1974. Genome size and the proportion of repeated sequence DNA in plants. Biochem. Genet. 12: 257-269.

208. Flavell R.B., Rimpau J., and Smith D.B., 1977. Repeated sequence DNA relationships in four cereal genomes. Chromosoma 63: 205-222.

209. Flavell R.B., O'Dell At, Smith D., 1979. Repeated sequence DNA comparisons between Triticum and Aegilops species. Heredity 42 (2): 309-322.

210. Flavell R.B., O'Dell At, and Hutchinson J., 1981. Nucleotide sequence organization in plant chromosomes and evidence for sequence translocation during evolution. Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol. 45: 501-508.

211. Flavell R.B., Bennett M.D., Seal A.G., and Hutchinson J., 1987. Chromosome structure and organisation. In: (Lupton F.G.H. ed.) Wheat breeding. Its scientific base. Chapman and Hall, London, New York, pp. 469-475.

212. Forsskal P., 1775. Flora aegiptiano-arabica: 26.

213. Friebe B. and Heun M., 1989. C-banding pattern and powdery mildew resistance of Triticum ovatum and four T. aestivum-T. ovatum chromosome addition lines. Theor. Appl. Genet. 78 (3): 417-424.

214. Fr/efoe 8. and Gill B.S., 1994. C-band polymorphism and structural rearrangements detected in common wheat (Triticum aestivum). Euphytica 78: 1-5.

215. Friebe B., Mukai Y., Gill B.S., 1992b. C-banding polymorphism in several accessions of Triticum tauschii (Aegilops squarrosa). Genome 35: 192-199.

216. Friebe B.t Teller FJ., Mukau Y., Forster B.P., Bartos P., and Mcintosh R.A., 1992c. Characterization of rust-resistant wheat-Agropyron intermedium derivatives by C-banding, in situ hybridization and isozyme analysis. Theor. Appl. Genet. 83: 775-782.

217. Fr/efoe B., Mukai Y., Gill B.S., and Cauderon Y., 1992d. C-banding and in-situ hybridization analyses of Agropyron intermedium, a partial wheat x Ag. Intermedium amphiploid, and six derived chromosome addition lines. Theor. Appl. Genet. 84: 899905.

218. Friebe B., Tuleen N., Jiang J., Gill B.S., 1993. Standard karyotype of Triticumlongissimum and its cytogenetic relationship with T. aestivum. Genome 36: 731-742.

219. Friebe B., Tuleen N., Gill B.S., 1995a. Standard karyotype of Triticum umbellulatum and the characterization of derived chromosome addition and translocation lines in common wheat. Theor. Appl. Genet. 90:150-156.

220. Friebe B., Tuleen N., Gill B.S., 1995b. Standard karyotype of Triticum searsii and its relationship with other S-genome species and common wheat. Theor. Appl. Genet. 91: 248-255.

221. Friebe B., Jiang J., Gill B.S., 1995c. Detection of 5S rDNA loci and other repetitive DNA sequences on supernumerary B chromosomes of Trificum species. PI. Syst. Evol. 196: 131-139.

222. Friebe B., Tuleen N.A., Badaeva E.D., Gill B.S., 1996a. Cytogenetic identification of Triticum peregrinum chromosomes added to common wheat. Genome 39s 272-276.

223. Friebe B., Badaeva E.D., Hammer K., Gill B.S., 1996b. Standard karyotypes of Aegilops uniaristata, Ae. mutica, Ae. comosa subspecies comosa and heldreichii (Poaceae). PI. Syst. Evol. 202: 199-219.

224. Friebe B., Jiang J., Raupp WJ., Mcintosh R.A., and Gill B.S., 1996c. Characterization of wheat-alien translocations conferring resistance to diseases and pests: current status. Euphytica 91: 59-87.

225. Friebe B., Tuleen N.A., and Gill B.S., 1999. Development and identification of a set of Triticum aestivum Aegilops geniculata chromosome addition lines. Genome 42 (3): 374-380.

226. Fukasawa H., 1959. Nucleus substitution and restoration by means of successive bac-crosses in wheat and its related genus Aegilops. Jpn. J. Bot. 17: 55-91.

227. Fukui K., Minesawa M., Kamisugi Y., Ishikawa M., Ohmido N., Yanagasawa T., Fu-jishita M., and Sakai F., 1992. Microdissection of plant chromosomes by argon-ion laser beam. Theor. Appl. Genet. 84: 787-791.

228. Fukui K., Kamisugi Y., Sakai F., 1994. Physical mapping of 5S rDNA loci by direct-cloned biotinilated probes in barley chromosomes. Genome 37 (1): 105-111.

229. Funaki K., Matsui S., Sasaki M., 1975. Location of nucleolar oragnizers in animal andplant chromosomes by means of an improved N-banding technique. Chromosoma 49 (4): 357- 370.

230. Furuta Y., 1975. Quantitative variation of nuclear DNA in genus Aegilops. Jpn. J. Genet. 50 (5): 383-392.

231. Furuta Y.f Nishikawa K., Yamaguchi S., 1986. Nuclear DNA content in diploid wheat and its relatives in relation to the phylogeny of tetraploid wheat. Jpn. J. Genet. 61: 97105.

232. Gale M.D. and Devos KM., 1998. Comparative genetics in the grasses. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95: 1971-1974.

233. Galili G. And Feldman M., 1983. Genetic control of endosperm proteins in wheat. 2. Variation in high molecular weight glutenin and gliadin subunits of Triticum aestivum. Theor. Appl. Genet. 66: 77-86.

234. Gall J.G. and Pardue M.L., 1969. Formation and detection of RNA-DNA hybrid molecules in cytological preparations. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 63: 378-383.

235. Gall J.G., Kohen E.H., Polan M.L., 1971. Repetitive DNA sequence in Drosophila. Chromosoma 33: 319-344.

236. Georgoiu A., Karataglis S., and Roupakias D., 1998. Inter- and intravarietal polymorphism in C-banded chromosomes of Aegilops caudata L., Wheat Inf. Serv. 87: 514.

237. Gerlach W.L., 1977. N-banded karyotypes of wheat species. Chromosoma 62 (1): 49- 56.

238. Gerlach W.L. and Bedbrook J.R., 1979. Cloning and characterization of ribosomal RNA genes from wheat and barley. Nucleic Acid Res. 7: 1869-1885.

239. G/7/ B.S., 1981. Evolutionary relationships based on heterochromatin bands in six species of the Triticinae. J. Hered. 72: 391-394.

240. GUI B.S., 1987. Chromosome banding methods, Srandard chromosome band nomenclature, and applications in cytogenetic analysis. In: (E.G.Heyne Ed.) Wheat and wheat improvement. Am. S. of Agronomy, Inc., Madison, Wisconsin, pp. 243-254.

241. GUI B.S., 1991. Nudeo-cytoplasmic interadion (NCI) hypothesis of genome evolution and speciation in polyploid plants. In: Proc. Dr. H. Kihara Memorial Intern Cytoplasmic Engin. In Wheat, pp. 48-53.

242. G/7/ B.S. and Appels R., 1987. Relationships between Nor-loci from different Triticeae species. Plant Syst. Evol. 160: 77-89.

243. GUI B.S. and Kimber G., 1974a. The Giemsa C-banded karyotype of p/e. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 71: 1247-1249.

244. G/// B.S. and Kimber G., 19746. Giemsa C-banding and the evolution of wheat. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 71: 4086-4090.

245. G/7/ B.S. and Chen P.D., 1987. Role of cytoplasmic-specific introgression in the evolution of polyploid wheat. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 84: 6800-6804.

246. G/7/ B.S. and Sears R.G., 1988. The current status of chromosome analysis in wheat. In: (Gustafson J.P. and Appels R. Eds.): Chromosome structure and fundion. Plenum, New York, London, pp. 299-321.

247. Gill B.S., Morris S., Schmidt J.W., Maan M.S., 1963. Meiotic studies on chromosome morphology in the Wichita wheat variety by means of monosomies. Can. J. Genet. Cy-toL 5 (2): 326-337.

248. G/7/ B.S.„ Friebe B., Endo T.R., 1991. Standard karyotype and nomenclature system for description of chromosome bands and structural aberrations in wheat Triticum aestivum). Genome 34 (5): 830-839.

249. G/7/ K.S., Gill B.S., Snyder E.B., 1988. Triticum araraticum chromosome substitutions in common wheat, Triticum aestivum cv. Wichita. In: Miller T.E., Koebner R.M.D. (Eds):

250. Proc. 7th Int. Genet. Symp., Cambridge, England, 13-19 July 1988. Bath Press, Bath, pp. 87-92.

251. Gill K.S., Lubbers E.L., Gill B.S., Raupp WJ., Cox T.S., 1991. A genetic linkage map of Triticum tauschii (DD) and its relationshiop to the D genome of bread wheat (AABBDD). Genome 34: 362-374.

252. Giorgi B. and Bozzini A., 1969a. Karyotype analysis in Triticum. I. Analysis of Triticum turgidum (L.)Thell and some related tetraploid wheats. Caryologia 22: 249-258.

253. Goldberg R.B., Bemis W.P., and Siegel A., 1972. Nucleic acid hybridization studies within the genus Cucurbita.Genetics 72: 253-266.

254. Greilhuber J., 1977. Nuclear DNA and heterochromatin content in the Scilla hohe-nancheri group, S. persica and Puschikinia scilloides (Liliaceae). Plant Syst. Evol., 128: 243-257.

255. Greihuber J. and Speta F., 1977. Giemsa karyotypes and their evolutionary significance in Scilla bifolia, S. drunensis and S. vindobonensis (Liliaceae). Plant Syst. Evol., 127: 171-190.

256. Hadlaszky C.Y. and Belea A., 1975. C-banding in wheat evolutionary cytogenetics. Plant Sci. Lett. 4: 85-88.331 .Hammer K., 1980. Vorarbeiten zur monographischen Darstellung von Wildpflanzensortimenten: Aegilops L. Kulturpflanze 28: 46-144.

257. Hart G.E., 1979. Genetical and chromosomal relationships among the wheats and their relatives. In: (G.P.Redei Ed.). 11th Stadler Genet. Symp. Univ. Missouri Agric. Exp. Stn., Columbia, Mo, pp. 9-29.

258. Hart G.E., 1983. Hexaploid wheat (Triticum aestivum L. Em. Thell.). In: (S.D.Tanksleyand T.J. Orton Eds.). Isozymes in plamt genetics and breeding, Part B. Elsevier Science Publishers B.V., Amsterdam, pp. 35-56.

259. Hart G.E., 1987. Genetic and biochemical studies of enzymes. In: (E.G.Heyne Ed.), Wheat and wheat improvement, Second edition. Am. Soc. Of Agron., Madison, Wisconsin, pp. 199-214.

260. Hart G.E., 1996. Genome analysis in the Triticinae using isozymes. In: (P.P.Jauhar Ed.), Methods of genome analysis in plants. CRC Press, Boca Ration, USA, pp. 195210.

261. Hart G.E. and Langston PJ., 1977. Chromosomal location and evolution of isozyme structural genes in hexaploid wheat. Heredity 39: 263-277.

262. Hart G.E., Islam A.K.M.R., Shepherd K.W., 1980. Use of isozymes as chromosome markers in the isolation and characterization of wheat-barley chromosome addition lines. Genet. Res. 36: 311-325.

263. Heitz E., 1933. Die herkunft der chromocentren. Planta 18: 571-636.

264. Heitz E., 1935. Chromosomenstruktur und gene. Ind. Abst. Vererbgsl. 70: 402-447.341 .Helbaek H., 1959. Domestication of food plants in the Old World. Science 130:365.372.

265. Heneen W.K., 1962. Chromosome morphology in inbred rye. Hereditas 48 (1): 182-200.

266. Heslop-Harrison J.S., Schwarzacher T., 1996. Genomic southern and in situ hybridization. In: P.P.Jauhar (Ed): Methods in genome analysis in plants. Boca Ration:CRC Press. Pp 163-180.

267. Heun M., Kennedy A.E., Anderson J.A., Lapitan N.L.V., Sorrells M.E., and Tanksley S.D., 1991. Construction of a restriction fragment length polymorphism map for barley (Hordeum vulgare L.). Genome 34: 437-447.

268. Hohmann U., Graner A., Endo T.R., Gill B.S., Herrmann R.G., 1995. Comparison of wheat physical maps with barley Inkage maps for group 7 chromosomes. Theor. Appl. Genet. 91: 618-626.

269. Hohmann U., Badaeva K., Busch W., Friebe B., Gill B.S., 1996. Molecular cytogenetic analysis of Agropyron chromatin specifying resistance to barley yellow dwarf virus in wheat. Genome 39 (2): 336-347.

270. Hosono H., 1935. Karyogenetische Studien bei reinen Arten und Bastarden der Em-merreiche. I. Reifungsteilungen. Jpn. J. Bot. 7: 301-321.

271. Houben A., Pan Wv Macas J., Grant S., Schlegel R., 1992. The isolation of sex chromosomes of Melandrium album and microcloning of chromosome-specific DNA. The Chromosome, September 7-10 1992. Norwich, England, p. 1-2.

272. Hsu T.C. and Arrighi E.F., 1971. Distribution of constitutive heterochromatin in mammalian chromosomes. Chromosoma 34: 243-253.

273. Hueros G., Gonzales J.M., SanzJ.C., and Ferrer £., 1990. Gliadin gene location and C-banding identification of Aegilops longissima chromosomes added to wheat. Genome 34: 236-240.

274. Huguet T. and Jouanin L, 1972. Wheat DNA: study of the heavy satellites in Ag+ -CS2SO4 density gradient. Biochem Biophys. Res. Commun. 46: 1169-1174.

275. Hunter R. and Marked C., 1957. Histochemical demonstration of enzymes separatedby zone electrophoresis in starch gel. Science 125: 1294-1295.

276. Hutchinson J. and Lonsdale DM., 1982. The chromosomal distribution of cloned highly repetitive sequences from hexaploid wheat. Heredity 48 (3): 371-376.

277. Hutchinson J. and Miller T.E., 1982. The nucleolar organisers in tetraploid and hexaploid wheats revealed by in situ hybridisation. Theor. Appl. Genet. 61: 285-288.

278. Hutchinson J., Chapman V., Miller T.E., 1980. Chromosome pairing at meiosis in hybrids between Aegilops and Secale species: a study by in situ hybridisation using cloned DNA. Heredity 45: 245-254.

279. Hutchinson J., Miller T.E., Jahier J., Shepherd K.W., 1982. Comparison of the chromosomes of Triticum timopheevi with related wheats using the techniques of C-banding and in situ hybridization. Theor. Appl. Genet. 64: 31-40.

280. Aegilops uniarisiata chromosomes using molecular markers. In: Proc. 9th Int. Wheat Genet. Symp., Saskatoon, Saskatchewan 2-7 Aug. 1998. (A.E.SIinkard, Ed.). Vol. 3, pp. 114-116.

281. Kanazin V., Ananiev V., and Blake T., 1993. The genetics of 5S rRNA encoding multigene families in Barley. Genome 36: 1023-1028.

282. Kasarda D.D., Lafiandra D., Morris R., and Shewry P.R., 1984. Genetic relationships of wheat gliadin proteins. In: Proc. 3rd Symp. Seed Proteins (Gatersleben, GDR). Kulturpflanze, Berlin, 32: 41-61.

283. Kawahara T., 1987. Identification of reciprocal translocation chromosome types in the emmer wheats. III. Six chromosome types in Triticum dicoccoides. Jpn. J. Genet. 62: 197-204.

284. Kawahara T., 1988. Variation in chromosome structure in Aegilops kotschyi Boiss. and Ae. variabilis Eig. In: Miller T.E., Koebner R.M.D. (Eds): Proc. 7th Int. Genet. Symp., Cambridge, England, 13-19 July 1988. Bath Press, Bath, pp. 99-104.

285. Kawahara T. and Tanaka M., 1977. Six chromosome types in Triticum araraticum Jakubz. different with reciprocal translocations. Jpn. J. Genet. 52: 261-267.

286. Kawahara T. and Tanaka M., 1978. Identification of reciprocal translocation chromosome types in the emmer wheats. I. Trititcum dicoccoides Korn. Wheat Inf. Serv. 45-46: 29-31.

287. Kawahara T. and Tanaka M., 1981. Intraspecific differentiation in chromosome structure in the wild tetraploid wheats. Wheat. Inf. Serv. 52:33.

288. Kawahara T. and Tanaka M., 1983. Chromosomal interchanges and the evolution of the B and G genomes. In: Proc. 6th. Int. Wheat Genet. Symp., Kyoto, Japan. (Ed. by

289. Sakamoto S.). Kyoto, Japan: Plant Germ-Plasm Inst., Kyoto Univers.

290. Kawahara T. and Taketa S., 1999. Fixation of 2A-4B translocation infers monophy-letic origin of Ethiopian tetraploid wheat. Theor. Appl. Genet, (in press).

291. Kawahara T., Badaeva E.DBadaev N.S., Gill B.S., 1996. Spontaneous translocations in Triticum araraticum Jakubz. Wheat Inf. Serv. 83: 7-14.

292. Kazuhiko N., 1981. C-banding technique for wheat chromosomes. Wheat Inf. Serv. 52: 29-31.

293. Kellogg E.A., 1998. Relationship of cereal crops and other grasses. Proc. Natl. Acad. Sei. U.S.A. 95: 2005-2010.

294. Kellogg E.A. and Appels R., 1995. Intraspecific and interspecific variation in 5S rRNA genes are decoupled in diploid wheat relatives. Genetics 140: 325-343.

295. Keriby K., 1976. A cytoiogical and biochemical characterization of the potential B genome donors to common wheat, Triticum aestivum. Ph.D. Thesis, University of Alberta, Edmonton.

296. Kerby K. and Kuspira J., 1987. The phytogeny of the polyploid wheats Triticum aestivum (bread wheat) and Triticum turgidum (macaroni wheat). Genome 29: 722-737.

297. Kerby K., Kuspira J., and Jones B.L., 1988. Biochemical data bearing on the relationship between the genome of Triticum urartu and the B genomes of the polyploid wheats. Genome 30: 576-581.

298. Kihara H., 1919. Uber cytologische Studien bei einigen Getreidearten. I. Species-Bastarde des Weizens und Weizenroggen-Bastarde. Bot. Mag. (Tokyo) 33: 17-38.

299. Kihara H., 1924. Cytologische und Genetische Studien bei wichtigen Getreidearten mit besonderer Rucksicht auf das Verbaten der Chromosomen und die Sterilität in den Bastarden. Mem. Coll. Sei., Kyoto Imp. Univer.Bl, 200 PP.

300. Kihara H., 1931. Genomanalyse bei Triticum und Aegilops. II. Aegilotriticum and Aegilops cylinclnca. Cytologic» 2: 106-156.

301. Kihara H., 1937. Genomanalyse bei Triticum und Aegilops. VII. Kurze Ubersicht über die Ergenbisse der Jahre 1934-1936. Mem. Coll. Agric. Kyoto Imp. Univ. 41; 1-61.

302. Kihara H., 1940. Verwandtschaft fer Aegilops-arten im Lichte der Genomanalyse. Ein Uberlich. Der Zuchter 12 (3): 49-62.

303. Kihara H., 1947. The genus Aegilops classified on the basis of genome analysis. Seiken Ziho 3: 7-25.

304. Kihara H., 1949. Genomanalyse bei Triticum und Aegilops. IX. Systematischer Aufbau der Gattung Aegilops auf genom-analytischer Grundlage. Cytologia !L9: 226-257.

305. Kihara H., 1951. Substitution of nucleus and its effects on genome manifestations. Cytologia 16; 177-193.

306. Kihara H., 1954. Considerations on the evolution and distribution of Aegilops species based on the analyser-method. Cytologia 19; 336-357.

307. Kihara H., 1957. Completion of genome-analysis of three 6x species of Aeq/Vops .Wheat Inf. Serv. 6: 11.

308. Kihara H., 1963. Nucleus and chromosome substitution in wheat and Aegilops. II. Chromosome substitution. Seiken Ziho 15: 13-23.

309. Kihara H., 1963a.lnterspecific relationship in Triticum and Aegilops. Seiken Ziho 15: 1-12.

310. Kihara H., 1975. Origin of cultivated plants with special reference to wheat. Seiken Ziho 25-26: 1-24.

311. Kihara H. and Katayama Y., 1931. Genomanalyze bei Triticum und Aegilops. III. Cytologia 2: 27-31.

312. Kihara H. and Matsumura Sv 1941. Genomanalyse bei Triticum und Aegilops. VIII. Ruckkreuzung des Bastards A. caudata x A. cylindrica zu den Eltern und seine Nachkommen. Cytologia 11: 493-506.

313. Kihara H. and Nishiyama I1928. New aspects of chromosome behaviour in pollen mother-cells of tri-, tetra-, and pentaploid wheat hybrids. Bot. Mag. 42: 221-231.

314. Kihara H. and Tanaka M., 1970. Attendum to the classification of the genus Aegilopsby means of genome analysis. Wheat Inf. Serv. 30: 1-2.

315. Kihara H. and Tsunewaki K., 1964. Some fundamental problems underlying the program for hybrid wheat breeding. Seiken Ziho 16: 1-14.

316. Kihara H., Yamashita K., and Tanaka M., 1959. Genomes of 6x species of Aegilops. Wheat Inf. Serv. 8: 3-5.

317. Kim W.K., Innes R.L., Kerber E.R., 1992. Ribosomal DNA repeated unit polymorphism in six Aegilops species. Genome 35: 510-515.

318. Kimber G., 1966. Estimate of the number of genes involved in the genetic supression of the cytological diploidization of wheat. Nature (London) 212: 317-318.

319. Kimber G., 1967. The addition of the chromosomes of Aegilops umbellulata to Triticum aestivum (var. Chinese Spring). Genet. Res. 9: 111-115.

320. Kimber G., 1968. The relationships of single alien chromosomes to the homoeologous groups of T. aestivum. In: Proc. 3rd Int. Wheta Genet. Symp. Austr. Acad. Sci., Canberra, pp. 62-68.

321. K\mberG., 1981. The B genome of wheat: the present status. In: Cytogenetics of crop plants (M.S.Swaminathan, P.K.Gupta, and U. Sinha Eds.), MacMillan, India, .p. 214224.

322. Kimber G., 1982. The genomic relationships of Triticum tripsacoides. Z. Pflanzen-zuecht. 89: 289-294.

323. Kimber G. and Abu-Bakar M., 1981. The genome relationships of Triticum dichasians and T. umbellulatum. Z. Pflanzenzuecht. 87: 265-273.

324. Kimber G. and Feldman M., 1987. Wild wheat, an Introduction. College of Agriculture University of Missouri, Columbia. 142 PP.

325. Kimber G. and Sears E.R., 1980. Uses of wheat aneuploids. In: Polyploidy: Biological Relevance. (W.H.Lewis Ed.), Plenum Publisher Corp., NY, 427-443.

326. Kimber G. and Sears E.R., 1983. Assignment of genome symbols in the Triticeae. In: S. Sakamoto (Ed.) Proc. 6th Int. Wheat Genet. Symp., Kyoto, Japan 28 Nov.- 3 Dec. 1983. Plant Germ-Plasm Inst., Fac. Agric, Kyoto Univ., pp. 1195-1196.

327. Kimber G. and Sears E.R., 1987. Evolution in the genus Triticum and the origin of cultivated wheat. In: Wheat and wheat improvement, Second edition. (E.G.Heyne Ed.). Am. Soc. Agron. Publ., Madison, Wisconsin, pp. 154-164.

328. Kimber G. and Tsunewaki K., 1989. Genome symbols and plasma types in the wheat group. Annual Wheat Newsletter 35: 24-26.

329. Kimber G. and Zhao Y.H., 1983. The D genome of the Triticeae. Can. J. Genet. Cytol. 25: 581-589.

330. Kimber G. and Yen Y., 1988. Analysis of pivotal-differential evolutionary patterns. Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 85: 9106-9108.

331. Kimber G. and Yen Y., 1989. Hybrids between wheat relatives and autotetraploid Triticum umbellulafum. Genome 32: 1-5.

332. Kimber G., Alonso L.C., and Sallee PJ., 1981. The analysis of meiosis in hybrids. I. Aneuploid hybrids. Can. J. Genet. Cytol. 23 (2): 209-219.

333. Kimber G., Pignone D., Sallee PJ., 1983.The relationships of the M and Mu genomes in Triticum.Can. J. Genet. Cytol. 25: 205-212.

334. Kimber G., Sallee PJ., and Feiner MM., 1988. The interspecific and evolutionary relationships of Triticum ovatum. Genome 30: 218-221.

335. Kimura M., 1981. Estimation of evolutionary distances between homologous nucleotide sequences. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 78: 454-458.

336. Kimura M. and Ohta T., 197'3. Eukaryotes-prokaryotes divergence estimated by 5Sribosomal RNA sequences. Nature (London) New Biology 243: 199-200.

337. King CJ. and Ingrouille M.J., 1987. Genome heterogeneity and classification of the Poaceae. New Phytol. 107: 633-644.

338. Koebner R.M.D. and Shepherd K.W., 1986. Controlled introgression to wheat of genes from rye chromosome arm IRS by induction of allosynthesis. 1. Isolation of recombinants. Theor. Appl. Genet. 73: 197-208.

339. Kornicke Fr. and Werner H., 1885. Handbuch des Getreidebaues I. Kornicke, Art. und Var., II Werner, Sort. Und Arib. Berlin-Bonn.

340. Ko/a R.S. and Dvorak J., 1985. A rapid technique for substiting alien chromosomes into Triticum aestivum and determining arm homoeology. Can. J. Genet. Cytol. 27: 549-558.

341. Kota R.S. and Dvorak J., 1988. Genomic instability in wheat induced by chromosome 6BS of Triticum speltoides. Genetics 120: 1085-1094.

342. Kota R.S., McGuire P.E., and Dvorak J., 1986. Latent nonstructural differentiation among homologous chromosomes at the diploid level. Genetics 114: 579-592

343. Kuckock V., 1964. Experimental investigation on the origin of wheat. Z. Pflanzenzucht.51:97-140.

344. Kuckuck H., 1964. Experimenfeile unfersuchungen zur enstehung der kulturweizen. Z. Pflanzenzucht. 51: 97-140.

345. Kushnir U. and Halloran G.M., 1981. Evidence for Aegilops sharonensis Eig as the donor of the B genome in wheat. Genetics 99: 495-512.

346. Kushnir U. and Halloran GM., 1983. Evidence on the saltatory origin of the G genome in wheat: the description of Triticum timopheevi-Uke mutant. Ann. Bot. 51: 561569.

347. Lagerscrantz U., Ellegren H., and Andersson L, 1993. The abundance of various polymorphic microsatellite motifs differs between plants and vertebrates. Nucleic Acid Res. 21: 1111-1115.

348. Lagudah E.S. and Halloran GM., 1988. Phylogenetic relationships of Triticum fauschii, the D genome donor, to hexapioid wheat. Theor. Appl. Genet. 75: 592-598.

349. Lagudah E.S., Clarke B.C., and Appels R., 1989. Phylogenetic relationships of Triticum tauschii, the D-genome donor to hexapioid wheat. IV. Variation and chromosomal location of 5S rDNA. Genome 32: 1017-1025.

350. Langer-Safer P.R., Levine M., V/ard D.C., 1982. Immunological method for mapping genes on Drosophila polytene chromosomes. Proc. Natl. Acd. Sci. (U.S.A.) 79: 43814385.

351. Lapitan N.L.V., Gill B.S., Sears R.G., 1987. Genomic and phylogenetic relationships among rye and perennial species in the Triticeae. Crop. Sci. 27 (4): 682-687.

352. Larsen J., 1973. The role of chromosomal interchanges in the evolution of hexapioid wheat, Triticum aestivum L. in: Proc. 4th Int. Wheat Genet. Symp., Mo. Agr. Exp. Stn, Columbia, Missouri, pp. 87-93.

353. Lawrence CJ. and Shepherd K.W., 1981a. Chromosomal location of genes controlling seed proteins in species related to wheat. Theor. Appl. Genet. 59: 25-31.

354. Leitch IJ. and Heslop-Harrison J.S., 1992. Physical mapping of the 18S-5.8S-26S rRNA genes in barley by in situ hybridization. Genome 35: 1013-1018.

355. Leitch I J., Leitch A.R., and Heslop-Harrison J.S., 1991. Physical mapping of plant DNA sequences by simultaneous in situ hybridization of two differently fluorescent probes. Genome 34: 329- 333.

356. Leitch A.R., Schwarzacher J., Jackson D., Leitch I J., 1994. In situ hybridization: a practical guide. Bios Scientific Publisher:Information Press LTD, Oxford, UK, 118 pp.

357. Lichfer P., Tang C.-J.C., Call K., Hermanson G., Evans G.A, Housman D., Ward D.C., 1990. High resolution mapping of human chromosome 11 by in situ hybridization with cosmid clones. Science 247: 64-69.

358. LHienfeld F.A., 1951. H. Kihara: Genome-analysis in Triticum and Aegilops. X. Concluding review. Cytologic. 16: 101-123.

359. Lilienfeld F. and Kihara H., 1934. Genomanalyze bei Triticum und Aegilops. V. Triticum timopheevi Zhuk. Cytologic 6: 87-122.

360. Linde-Laursen /., 1975. Giemsa C-banding of the chromosomes of «Emir» barley.1. Hereditas 81: 285-289.

361. Linde-Laursen /., 1978. Giemsa C-banding of barley chromosomes. 1. Banding pattern polymorphism. Hereditas 88: 55-64.

362. Linde-Laursen I., 1985. Cytology and cytogenetics of Hordeum vulgare and some allied species using chromosome banding technique. Riso R-529, 444 PP.

363. Linde-Laursen I. and von Bothmer R., 1986. Giemso C-banding in two polyploid, South American Hordeum species, H. tetraploidum and H. lechleri, and their aneuploid hybrids with H. vulgare. Hereditas 105 (2): 171-178.

364. Linde-Laursen /., Bothmer R. von, and Jacobsen N., 1986. Giemsa C-banded karyotypes of H. secalinum, H. capense and their interspecific hybrids with H. vulgare. Hereditas 105 (2): 179-186.

365. Linde-Laursen I., Bothmer R. von, and Jacobsen N., 1989. Giemsa C-banded karyotypes of South American Hordeum (Poaceae). I. 14 diploid taxa. Heredatas 110 (3): 289-305.

366. LinkH. Fr., 1834. Symbolae ad floram graecam. Linnaea 9: 132.

367. Link G., Friebe B., Kynast R., Molnar-Lang At, Kozegi B., Sutka J., and Gill B.S., 1999. Genome differentiation in Aegiiops cylindrica. Genome 42 (3): 497-503.

368. Liu B., Vega J.M. and Feldman M., 1998a. Differentiation of homoelogous chromosomes in polyploid wheat. In: Proc. 9th Int. Wheat Genet. Symp., Saskatoon, Saskatchewan, Canada 2-7 August 1998. (Siinkard A.E. Ed.), vol. 2, p. 70-71.

369. Liu B., Vega J.M., Segal G., Abbo S., Rodova M., and Feldman M., 1998b. Rapid genomic changes in newly synthesized amphiploid of Triticum and Aegiiops. I. Changes in low-copy non-coding DNA sequences. Genome 41: 272-277.

370. Liu B., Vega J.M., and Feldman At, 1998c. Rapid genomic changes in newly synthesized amphiploid of Triticum and Aegiiops. II. Changes in low-copy coding DNA sequences. Genome 41: 535-542.

371. Liu CJ., Atkinson M.D., Chinoy C.N., Devos KM., Gale AtD., 1992. Nonhomoeolo-gous translocations between group 4, 5 and 7 chromosomes within wheat and rye. Theor. Appl. Genet. 83: 305-312.

372. Long E.O. and Dawid I.B., 1980. Repeated genes in eukaryotes. Annu. Rev. Biochem. 49: 727-764.

373. Lukaszewsky A. and Gusfafson J.P., 1983. Translocations and modifications of chromosomes in triticale x wheat hybrids. Theor. Appl. Genet. 64: 239-248.

374. Ma Z.Q., Roder M., and Sorrells M.E., 1996. Frequencies and sequence characteristics of di-, tri-, and tetra-nucleotide microsatellites in wheat. Genome 39 (1): 123-130.

375. Maan S.S., 1973. Cytoplasmic variability in the Triticinae. In: Proc. 4th Int. Wheat Genet. Symp., Columbia, Mo. 6-11 August 1973 (E.R.Sears and L.M.S.Sears Eds.), pp. 367-373.

376. Maan S.S., 1975. In: Prairie: A multiple view., ed. Wali M.K. Univ. North Dakota Press, Grand Forks, ND, pp. 255-281.

377. Maan S.S., 1991. Cytoplasmic variability in wheat revealed by nucleo-cytoplasmic interactions. In: (Sasakuma T. and Kinoshita T. Eds.), Nuclear and organellar genomes of wheat species. Kihara Memorial Foundation, Yokohama, Japan, pp. 175-194.

378. MacKey J., 1970. Significance of mating system for chromosomes and gametes in polyploids. Hereditas 66: 165-176.

379. Maestra B. and Naranjo T., 1997. Homoeologous relationships of Triticum sharonense chromosomes to T. aesfivum. Theor. Appl. Genet. 94 (5): 657-663.

380. Maesfra B. and Naranjo T., 1998. Homoeologous relationships of Aegilops speltoides chromosomes to bread wheat. Theor. Appl. Genet. 97 (1/2): 181-186.

381. Maesfra B. and Naranjo T., 1999. Structural chromosome differentiation between Trificum timopheevii and T. furgidum and T. aesfivum. Theor. Appl. Genet. 98 (5): 744750.

382. Manuelidis L, Langer-Safer P.R., Ward D.C., 1982. High-resolution mapping of satellite DNA using biotin-labeled probes. J. Cell Biol. 95: 619-625.

383. Manila E.F. and Scoles GJ., 1996. The use of RAPD markers in Hordeum phylogeny. Genome 39 (4): 646-654.

384. Marino C.L., Nelson J.C., Li Y.H., Sorrells ME., Leroy P., Tuleen N.A., Lopes C.R., and Hart G.E., 1996. Molecular genetic maps of the group 6 chromosomes of hexap-loid wheat Trificum aesfivum L.). Genome 39 (2): 359-366.

385. Marks G.E. and Schweizer D., 1974. Giemsa banding: karyotype differences in some species of Anemone and Hepatica nobilis. Chromosoma 44 (4): 405-416.

386. Martin W., Gierl A., and Saedler H., 1989. Molecular evidence for pre-Cretaceous angiosperm origin. Nature 39: 46-48.

387. Martini G., O'Dell M., Flavell R.B., 1982. Partial inactivation of wheat nucleolar organiser chromosomes from Aegilops umbellulata. Chromosoma 84: 687-700.

388. Mafsui S., 1974. Nucleolus organizer of Vicia faba chromosomes revealed by the N-banding technique. Jpn. J. Genet. 49 (2): 93-96.

389. Matsui S. and Sasaki M., 1973. Differential staining of nucleolus organizers in mammalian chromosomes. Nature 246: 148- 159.

390. Matsumoto K. and Kondo N., 1942. The new amphiploids in Aegilops. Jpn. J. Genet. 18: 130-133.

391. Mcintosh R.A. and Gyarfas J., 1971. Triticum timopheevii as a source of resistance to wheat stem rust. Z. Pflanzenzucht. 66: 240-248.

392. Mcintosh R.A., Hart G.E., Gale M.D., 1990. Catalogue of gene symbols for wheat. Cereal Res. Commun. (Suppl.) 18: 141-157.

393. Mcintosh R.A., Welling C.R., and Park R.F., 1995. Wheat rusts: an atlas of resistance genes. CSIRO, Australia.

394. Mclntyre C.L., Clarke B.C., and Appels R., 1988. DNA sequence analyses of the ribo-somal spacer regions in the Triticeae. Plant Syst. Evol. 160: 91-104.

395. Melburn M.C. and Thompson W.P., 1927. The cytology of a tetraploid wheat hybrid (Triticum spelta x T. monococcum). Am. J. Bot. 14: 237-333.

396. Merker A., 1973. A Giemsa technique for rapid identification of chromosomes in Triticale. Hereditas 75 (2): 280-282.

397. Mettin D. and Kimber G., 1983. The monosomic analysis of the genes for «hybrid desinapsis» in common wheat. In: (Sakamoto S. Ed.) Proc. 6th Int. Wheat Genet. Symp. Kyoto-Japan: Plant. Germ.-Plasm Inst., Kyoto Univers., 315-319.

398. Miller Т.Е., 1984. The homoeologous relationship between the chromosomes of rye and wheat. Current status. Can. J. Gent. Cytol. 26: 578-589.

399. Nagaki K., Kishii M., Tsujimoto H., and Sasakuma T., 1999. Tandem repetitive Afa-family sequences from Leymus racemosa and Psathyrostachys juncea (Poaceae). Genome 42: 1258-1260.

400. Nagl W., Knapp P and Bill O. (1991). The complex satellite DNA of Tropaeolum majus L.: Partial characterization of isolated and cloned restriction fragments. Ann. Bot. 67: 347-355.

401. Nakai Y., 1979. The origin of the tetraploid wheats revealed from the study on esterase isozymes. In: Proc. 5th Int. Wheat Genet. Symp., New Dehli. p. 108-119.

402. Nakai Y., 1981. D-genome donors for Aegilops cylindrica (CCDD) and Triticum aesti-vum (AABBDD) deduced from esterase isozyme analysis. Theor. Appl. Genet. 60: 1116.

403. Nakai Y., 1982. D genome donors for Aegilops crassa (DDMM, DDDDMM) and Ae. vavilovii (DDMMSS) deduced from esterase analysis by isoelectric focusing. Jpn. J. Genet. 57: 349-360.

404. Naranjo T., 1982. Preferential occurrence of wheat-rye meiotic pairing between chromosomes of homoeologous group 1. Theor. Appl. Genet. 63: 219-225.

405. Naranjo T., 1990. Chromosome structure of durum wheat. Theor. Appl. Genet. 79: 397-400.

406. Naranfo T., 1992. The use of homoeologous pairing in the identification of homoeologous relationships in the Triticeae. Hereditas 116: 219-223.

407. Naranjo T., 1995. Chromosomal structure of Triticum longissimum relative to wheat. Theor. Appl. Genet. 91: 105-109.

408. Naranjo T., Roca A., Goicoecha P.G., Giraldez R., 1987. Arm homoeology of wheat and rye chromosomes. Genome 29: 873-882.

409. Naranjo T., Roca A., Goicoecha P.G., Giraldez R., 1988. Chromosome structure of common wheat: Genome reassignment of chromosomes 4A and 4B. In: Proc. 7th Int.

410. Wheat Genet. Symp., (T.E.Miller and R.M.D. Koebner, Eds). IPSR Cambridge, p. 115120.

411. Nasuda S., Terachi T., and Tsunewaki K., 1991. Chloroplast variation in Aegilops caudata L. Jpn. J. Genet. 66: 752.

412. Nasuda S., Friebe B., and Gill B.S., 1998. Gametocidal genes induce chromosome breakage in the interphase prior to first meiotic cell division of the male gametophyte in wheat. Genetics 149: 1115-1124.

413. Natarajan A J. and Sharma N.P., 1974. Chromosome banding patterns and the origin of the B genome in wheat. Genet. Res. 21: 103-108.

414. Nafh J., McNay J.W., Paroda CM., Gulafi S.C., 1983. Implication of Trificum searsii as the B-genome donor to wheat using DNA hybridization. Biochem. Genet. 21: 745759.

415. Nath J., Hanzel J J., Thompson J.P., McNay J.W., 1984. Additional evidence implicating Trificum searsii as the B genome donor to wheat. Biochem Genet. 22: 37-50.

416. Nathans D. And Smith H.O., 1975. Restriction endonucleases in the analysis and restructuring of DNA molecules. Ann. Rev. Biochem. 44: 273-275.

417. Nelson J.C., Van Deynze A.E., Autrigue E., Sorrells M.E., Lu Y.H., Merlino M., Athkin-son M., and Leroy P., 1995b. Molecular mapping of wheat. Homoeologous group 2. Genome 38: 516-524.

418. Nelson J.C., Van Deynze A.E., Autrigue E., Sorrells M.E., Lu Y.H.,Negre S., Bernard

419. M., and Leroy P., 1995c. Molecular mapping of wheat. Homoeologous group 3. Genome 38: 525-533.

420. Nevo £., Noy-Meir /., Beiles A., Krugman T., and Agami M., 1991. Natural selection of allozyme polymorphisms: micro-geographical spatial and temporal ecological differentiations in wild emmer wheat. Israel J. Bot. 40: 419-449.

421. Nishikawa K. and Sawai J., 1969. Relative amount of nuclear DNA in tetraploid wheats. Wheat Inf. Serv. 29: 2-3.

422. Nishikawa K. and Furuta Y., 1978. DNA content of nucleus and individual chromosomes and its evolutionary significance. In: Proc. 5th Int. Wheat Genet. Symp., New Dehli, India., 1978. 133-138.

423. Nishikawa K., Furafo Y., Wada T., 1980. Genetic studies on a-amylase in wheat. III. Intraspecific variation in Aegilops squamosa and the birthplace of hexaploid wheat. Jpn. J. Genet., 55: 325-336.

424. Nishikawa K., Furuta Y., Yamada T., and Kudo S., 1992. Genetic studies of a-amylase isozymes in wheat. VII. Variation in diploid ancestral species and phylogeny of tetraploid wheat. Jpn. J. Genet. 67: 1-15.

425. Noda K. and Koulin G., 1989. Chromosome structural changes and their role in the volution of tetraploid wheats. Genome 32: 257-261.

426. Ogihara Y. and Tsunewaki K., 1984. The diversity of chloroplast DNA among Triticum and Aegilops species. In: (S. Sakamoto Ed.) Proc. 6th Int. Wheat Genet. Symp., Kyoto, Japan, 28 Nov.-3 Dec. 1983. , pp. 407-413.

427. Pardue M.L and, Gall J.G., 1970. Chromosomal localization of mouse satellite DNA. Science 168: 1356-1358.

428. Pardue M.L. and GallJ.G., 1975. Nucleic acid hybridization to the DNA of cytological preparations. Methods Cell Biol. 10: 1-16.

429. Paris Conference (1971). Standardization in Human Cytogenetics, Birth defects: Original Article Series VIII: 7. The National Foundation, New York.

430. Paihak G.N., 1940. Studies in the cytology of cereals. J. Genet. 39: 437-467.

431. Payne P.I., Jackson E.A., and Law C.N., 1984. Wheat storage proteins: Their genetics and their potential for manipulation by plant breeding. Philos. R. Soc. Lond., ser. B, 304: 359-371.

432. Peacock WJ., Dennis E.S., Gerlach W.L., 1981. Molecular aspects of wheat evolution: repeated DNA sequences. In: Wheat science today and tomorrow. Ed. T. Evans and WJ.Peacock. Cambridge University Press, Cambridge, pp. 41-60.

433. Pedersen C., Rasmussen S.K., and Linde-Laursen I., 1996. Genome and chromosome identification in cultivated barley and related species of the Triticeae (Poaceae) by in situ hybridization with the GAA-satellite sequence. Genome 39: 93-104.

434. Pedersen C. and Langridge P., 1997. Identification of the entire chromosome complement of bread wheat by two-colour FISH. Genome 40: 589-593.

435. Peil A., Korzun V., Schubert V., Schumann E., Weber W.E., and Roder M.S., 1998. The application of wheat microsatellites to identify disomic Triticum aestivum Ae. mark-grafii addition lines. Theor. Appl. Genet. 96 (1): 138-146.

436. Penner G.A., 1996. RAPD analysis of plant genomes. In: Methods in Genome analysis in Plants (P.P. Jauhar Ed.). CRC Press, Boca Raton, pp. 251-270.

437. PercivalJ., 1921. The wheat plant. A monograph.

438. Pestsova E.G., Goncharov N.P., Salina E.A., 1998. Elimination of a tandem repeat of telomeric heterochromatin during evolution of wheat. Theor. Appl. Genet. 97: 13801386.

439. Phillips R.L and Freeling M., 1998. Plant genomics and our food supply: an Introduction. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95: 1969-1970.

440. Pinkel D., Straume T., Gray J. W., 1986. Cytogenetic analysis using quantitative, high-sensitivity, fluorescence in situ hybridization. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 83: 29342938.

441. Powell W., Mchray G.C., and Provan J., 1996. Polymorphism revealed by simple sequence repeats. Trends Plant Sci. 1: 215-222.

442. Powling A., Islam A.K.M.R., and Shepherd K.W., 1981. Isozymes in wheat-barley hybrid derivative lines. Biochem. Genet. 19: 237-254.

443. Preston K.R., Woodbury W., Orth R.A., and Bushuk W., 1975. Comparison of glia-din and glutenin subunits in the Triticinae by SDS-polyacrilamide gel electrophoresis. Can. J. Plant Sci., 55: 667-672.

444. Q/ X., Stam P., and Lindhout P., 1996. Comparison and integration of four barley genetic map. Genome 39 (2): 379-394.

445. Ramirez S.A. and Sindair J.H., 1975. Ribosomal gene localization and distribution (arrangement) within the nucleolar organiser region of Zea mays. Genetics 80: 505518.

446. Rao A.R., 1976. Phylogenetic relationships among Triticum and Aegilops species. Pak. J. Agric. Sci. 13: 139-146.

447. Rao P.S. and Smith E.L., 1968. Studies with Israeli and Turkish accessions of Triticum turgidum L. emend, var. Dicoccoides (Korn.)Bowden. Wheat Inf. Serv. 26: 6-7.

448. Rayburn A.L. and Gill B.S., 1985a. Use of biotin-labeled probes to map specific DNA sequences on wheat chromosomes. J. Hered. 76: 78-81.

449. Rayburn A.L. and Gill B.S., 1985b. Molecular evidence for the origin and evolution of chromosome 4A in polyploid wheats. Can. J. Genet. Cytol. 27 (2): 246-250.

450. Rayburn A.L. and Gill B.S., 1986. Isolation of a D-genome specific repeated DNAsequence from Aegilops squarrosa. Plant Mol. Biol. Report. 4: 104-109.

451. Reddy P., Appels R. and Baum B.R., 1990. Ribosomal DNA spacer-length variation in Secale ssp. (Poaceae). Plant Syst. Evol. 171: 205-220.643./fees H., 1963. Deoxyribonucleic acid and the ancestry of wheat. Nature (London) 198: 73-82.

452. Rees H. and M.LW. Walters, 1965. Nuclear DNA and the evolution of wheat. Heredity 20: 73-82.

453. Resta P., Zhang H.B., DubkovskyJ., and Dvorak J., 1996. Amer. J. Bot. 83: 15561565.

454. Rice N.R., 1972. Change in repeated DNA in evolution. Brookhaven Symp. 23: 4479.

455. Ried J., Baldini A., Rand J.C., Ward D.C., 1992. Simultaneous visualization od seven different DNA probes using combinatorial fluorescence and digital imaging microscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 89: 1388- .

456. RHey R., 1966. Genotype-environmental interaction affecting chiasma frequency in Triticum aesfivum. Chromosomes Today 1: 57-64.

457. Riley R. and Bell G.D.H., 1958. The evaluation of synthetic species. In: Proc. Is' Int. Wheat Genet. Symp., 1958. P. 161-180.

458. Riley R. and Chapman V., 1958. Genetic control of the cytologically diploid behavior of hexaploid wheat. Nature 182: 713-715.

459. RileyR. and Chapman V., 1963. The effect of the deficiency of chromosome V (5B) of Triticum aesfivum on the meiosis of synthetic amphiploids. Heredity 18 (4): 473.

460. Riley R., UnrauJ. and Chapman V., 1958. Evidence on the origin of the B genome of wheat. J. Hered. 49: 91-98.

461. Riley R., Kimber G. and Chapman V., 1961. Origin of genetic control of diploid-likebehaviour of polyploid wheat. J. Hered. 52: 22-25.

462. Rimpau J., Smith D.B., and Flavell R.B., 1978. Sequence organisation analysis of the wheat and rye genomes by interspecies DNA/DNA hybridization. J. Mol. Biol. 123: 327-359.

463. Rimpau J., Smith D.B., and Flavell R.B., 1980. Sequence organisation analysis in barley and oat chromosomes revealed by interspecies DNA/DNA hybridisation. Heredity 44: 131-149.

464. Roder M.S., Plaschke J., Konig S.U., Borner A., Sorrel M.E., Tanksley S.D., and Ganal M.W.,1995. Abundance, variability and chromosomal location of microsatellites in wheat. Mol. Gen. Genet. 246: 327-333.

465. Rogers S.O. and Bendich A J., 1987. Ribosomal RNA genes in plants: variability in copy number and in intergenic spacer. Plant Mol. Biol. 9: 509-520.

466. Rosenberg A., 1909. Cytologische und morphologische Studien an Drosera longifolia x rotundifolia.Kungl. Sv. Vetensk. Acad. Handl. 43: 1-64.

467. Sachs L., 1953. Chromosome behavior in species hybrids with Triticum timopheevi. Heredity 7: 49-58.

468. Sallares R. and Brown T., 1999. PCR-based analysis of the intergenic spacers of the NOR loci on the A genomes of Triticum diploids and polyploids. Genome 42 (1): 116128.

469. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T., 1989. Molecular cloning, a laboratory manual.

470. Second edition. DNA isolation and purification.

471. SanMiguel P. et a/., 1996. Nested retrotransposons in the intergenic region of the maize genome. Science 274: 765-768.

472. Saponaro C., Pogna N.E., Castagna R., Pasquini M., Cacciatori P., and Redaelli R., 1995. Allelic variation at the Gli-Alm, Gli-AT and Glu-Alm loci and breadmaking quality in diploid wheat Triiicum monococcum. Genet. Res. 66: 127-137.

473. Sardana R.K. and Flavell R.B., 1996. Molecular cloning and characterization of an unusually large intergenic spacer from the Nor-B2 locus of hexaploid wheat. Genome 39: 288-292.

474. Sarkar P. and Stebbins G.L., 1956. Morphological evidence concerning the origin of the B genome in wheat. Am. J. Bot. 43: 297-304.

475. Sax K., 1922. Sterility in wheat hybrids. II. Chromosome behaviour in partially sterile hybrids. Genetics 7: 513-552.

476. Sax K. and Sax H., 1924. Chromosome behaviour in a genus cross. Genetics 9: 454-464.

477. Schlegel R., 1996. A compendium of reciprocal translocations in wheat: 2nd edition. Wheat Inf. Serv. 83: 36-46.

478. Schlegel R. and Gill B.S., 1984. N-banding analysis of rye chromosomes and the relationship between N-banded and C-banded heterochromatin. Canad. J.Genet. Cytol. 26 (6): 765-769.

479. Schlegel R. and Gill B.S., 1987. Chromosome banding and a standard nomenclature in hexaploid wheat. EWAC Newsletter, Martonwasar (J. Sutka and A.J.Woralnd, Eds.). pp. 83-87.

480. Schmidt J.-Ch., Schubert V., and Bluthner W.-D., 1993. Use of isozymes to characterize Triticum aesfivum Aegilops markgrafii addition lines. Biochem. Physiol. Pflanzen. 188: 385-392.

481. Schondelmaier J., Martin R., Jahoor A., Houben A., Graner A., Koop H.-U., Herrmann R.G., and Jung C., 1993. Microdissection and microcloning of the barley (Hordeum vulgare L.) chromosome 1HS. Theor. Appl. Genet. 86: 629-636.

482. Schwarzacher T.f Leitch A.R., Bennett M.D., Heslop-Harrison J.S., 1989. In-situ localization of parental genomes in a wide hybrid. Ann. Bot. (London) 64: 315-324.

483. Schweizer D., 1973. Differential staining of plant chromosomes with Giemsa. Chromosoma 40 (3): 307-320.

484. Schubert I. and Wobus U., 1985. In situ hybridization confirms jumping nucleolus organizing regions in Allium. Chromosoma 92: 143-148.

485. Scoles GJ., Gill B.S., Xin Z.-Y., Clarke B.C., Mclnfyre C.L, Chapman C., Appels R., 1988. Frequent duplication and deletion events in the 5S RNA genes and the associated spacer regions of the Triticeae. Plant Syst. Evol. 160: 105-122.

486. Scuff C.P., Kamisugi Y., Sakai F., and Gilmartin P.M., 1997. Laser isolation of plant sex chromosomes: studies on the DNA composition of the X and Y sex chromosomes of Silene lafifolia. Genome 40: 705-715.

487. Seal A.G., 1982. C-banded wheat chromosomes in wheat and triticale. Theor. Appl. Genet. 63 (1): 39-47.

488. Seal A.G. and Bennett M.D., 1981. The rye genome in winter hexaploid triticales. Can. J. Genet. Cytol. 23: 647-653.

489. Sears E.R., 1944. The amphiploids Aegilops cylindrica x Triticum durum and Ae. ven-tricosa x T. durum and their hybrids with T. aestivum. J. Agric. Res. 68: 135-144.

490. Sears E.R., 1952. Misdivision of univalents in common wheat. Chromosoma 4: 535550.

491. Sears E.R., 1954. The aneuploids of common wheat. Missouri Agricultural Experimental Station and U.S. Department of Agriculture cooperating. 57 pp.

492. Sears E.R., 1956. The B genome in wheat. Wheat Inf. Serv. 4: 8-10.

493. Sears E.R., 1966. Nullisomic-tetrasomic combinations in hexaploid wheat. In: Chromosome manipulations and Plant Genetics. (R. Riley and K.R.Lewis Eds.) Oliver and Boyd, London, pp. 29-45.

494. Sears E.R., 1976. Genetic control of chromosome pairing in wheat. Annu. Rev. Genet. 30: 31-51.

495. Shands H. and Kimber G., 1973. Reallocation of the genomes of Triticum timopheevii Zhuk. In: Proc. 4th Int. Wheat Genet. Symp., Columbia, Missouri, p. 101-108.

496. Shang X.M., Jackson R.C., Nguyen H.T., 1988. Heterochromatin diversity and chromosome morphology in wheats analyzed by HKG banding technique. Genome 30: 956-965.

497. Shang XM., Ngujen H.T., Jackson R.C., 1989. Heterochromatin differentiation and phylogenetic relationship of the A genomes in diploid and polyploid wheats. Theor. Appl. Genet. 77: 84-94.

498. Sharma N.P. and Natarajan A.T., 1973. Identification of heterochromatic regions in the chromosomes of rye. Hereditas 74: 233.

499. Sharp PJ., Chao S., Desai S., and Gale M.D., 1989. The isolation, characterization and application in the Triticeae of a set of wheat RFLP probes identifying each ho-moeologous chromosome arm. Theor. Appl. Genet. 78? 342-348.

500. Shepherd K.W., 1968. Chromosomal control of endosperm proteins in wheat and rye. In: (K.W.Finlay and K.W.Shepherd Eds.), Proc. Ill Intern. Wheat Genet. Symp., Canberra, 5-9 August. Australian Academy of Sciences, Canberra, pp. 86-96.

501. Siddiqui A.K. and Jones J.K., 1967. The D genomes of Aegilops crassa Boiss. Bol. Genet. Inst. Fitotec. Castelar. 4: 29-31.

502. Singer R.H. and Ward D.C., 1982. Actine gene expression visualized in chicken muscle tissue culture by using in situ hybridization with a biotinilated analog. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 79: 7331-7335.

503. Smith L, 1947. Irregularities in a hybrid between Triticum durum and T. persicum. J. Agric. Res. 75: 301-305.

504. Smith G.P., 1976. Evolution of repeated DNA sequences by unequal crossing-over. Science 191: 528-535.

505. Smith D.B. and Flavell R.B., 1974. The relatedness and evolution of repeated nucleotide sequences in the DNA of some Gramineae species. Biochem. Genet. 12: 243-256.

506. Smifh D.B. and Flavell R.B., 1975. Characterization of the wheat genome by renaturation kinetics. Chromosoma 50: 223-242.

507. Smith D.B. and Flavell R.B., 1977. Nucleotide sequence organisation in the rye genome. Biochim. Biophys. Acta 474: 82-97.

508. Sothern EM., 1975. Detection of specific sequences among DNA fragments separated by gel electrophoresis. J. Mol. Biol. 98: 503

509. Stebbins G.L., 1950. Variation and evolution in plants. Euthytica 32: 17-31.

510. Stebb;ns G.L., 1956. Taxonomy and the evolution of genera, with special reference to the family Gramineae. Evolution 10: 238-240.

511. Stebbins G.L., 1957. Self fertilization and population variability in the higher plants. Ann. Nat. 91: 337-354.

512. Stephenson P., Bryan G., Kirby J., Collins A., Devos K., Busso C., Gale M., 1998. Fifty new microsatellite loci for the wheat genetic map. Theor. And Appl. Genet. 97 (5/6): 946-949.

513. S/raus N.A., 1972. Reassociation of bean DNA. Carneghi Institution Year Book 71:257.257.715 .Sumner A.T., 1972. A simple technique for demonstrating centromeric heterochromatin. Exp. Cell Res. 75: 304-306.

514. Takehisa S. and Utsumi S., 1973. Visualization of metaphase heterochromatin in Vicia faba by the denaturation-renaturation Giemsa staining method. Experientia 29: 120126.

515. Taketa S. and Kawahara J., 1996. C-banding analysis on wild Emmer Triticum di-coccoides Korn.) strains with and without spontaneous reciprocal translocations. Theor. Appl. Genet. 92 (2): 173-178.

516. Takumi S., Nasuda S., Liu Y.-G., and Tsunewaki K., 1993. Wheat phylogeny determined by RFLP analysis of nuclear DNA. 1. Eincorn wheat. Jpn. J. Genet. 68: 73-79.

517. Talbert I.E., Magyar G.M., Lavin M., Moylan S.L., and Blake T.K., 1991. Molecular evidence for the origin of S-derived genomes of polyploid Triticum species. Am. J. Bot., 78: 340-349.

518. Talbert L.E., Kimber G., Magyar G.M., and Buchanan C.B., 1993. Repetitive DNA variation and pivotal-differentiatial evolution of wild wheats. Genome 36: 14-20.

519. Talbert I.E., Blake NX., Storlie E.W., and Lavin M., 1995. Variability in wheat based on low-copy DNA sequence comparisons. Genome 38: 951-957.

520. Talbert L.E., Smith L.Y., and Blake NX., 1998. More than one origin of hexaploid wheat is indicated by sequence comparison of low-copy DNA. Genome 41 (3): 402407.

521. Tanaka M., 1955. Chromosome pairing in hybrids between Aegilops sharonensis and some species of Aegilops and Triticum. Wheat Inf. Serv. 2: 7-8.

522. Tanaka M., 1956. Chromosome pairing and fertility in the hybrid between the new amphiploid S'S-AA and emmer wheat. Wheat Inf. Serv. 3: 21-22.

523. Tanaka M., Kawahara T. and Sano J., 1978. The evolution of wild tetraploid wheats. In: Proc. 5th Int. Wheat Genet. Symp., 1: 73-80.

524. Teoh S.B. and Hutchinson J., 1983. Interspecific variation in C-banded chromosomes of diploid Aegilops species. Theor. Appl. Genet. 65: 31-40.

525. Teoh S.B., Hutchinson J., Miller T.E., 1983a. A comparison of the chromosomal distribution of cloned repetitive DNA sequences in different Aegilops species. Heredity 51: 635-641.

526. Teoh S.B., Miller T.E., Reader S.M., 1983b. Intraspecific variation in C-banded chromosomes of Aegilops comosa and Ae. speltoides. Theor. Appl. Genet. 65: 343348.

527. Terachi T. and Tsunewaki K., 1986. The molecular basis of genetic diversity among cytoplasms of Triticum and Aegilops. 5. Mitochondrial genome diversity among Aegilops species having identical chloroplast genomes. Theor. Appl. Genet. 73: 175-181.

528. Terachi T., Ogihara, Y., Tsunewaki K., 1994. Wheat phylogeny revealed by the nucleotide sequence of rbcL gene. In: Molecular-genetic basis of polyploid evolution in plants (K. Tsuneqaki Ed.). Kyoto University, pp. 160-165.

529. Timmis J.N., Deumlung B., Ingle J., 1975. Localisation of satellite DNA sequences in nuclei and chromosomes of two plants. Nature (Lond.) 257: 152-155.

530. Thellung A., 1907. Species novae. I. Feddes Repert. 3: 282.

531. Tournefort J.P. de, 1700. Institutiones rei herbariae. Editio altera, vol. 1.

532. Tsujimoto H. and Tsunewaki K., 1984. Gametocidal genes in wheat and its relatives. I. Genetic analyses in common wheat of a gametocidal gene derived from Aegilops speltoides. Can. J. Genet. Cytol. 26: 78-84.

533. Tsunewaki K., 1980. Genetic diversity of the cytoplasm in Triticum and Aegilops. Japanese Soc. for the Promotion of Science, Tokyo, 288 PP.

534. Tsunewaki K., 1991. A historical review of cytoplasmic studies in wheat: In: Nuclear and organellar genomes of wheat species (Sasakuma T. and Kinoshita T. Ed.), pp. 1628.

535. Tsunewaki K., 1993. Genome-plasmon interactions in wheat. Jpn. J. Genet. 68: 1-34.

536. Tsunewaki K., 1996. Plasmon analysis as the counterpart of genome analysis. In: P.PJauhar (Ed): Methods in genome analysis in plants: their merits and piffals. Boca Ration:CRC Press, pp 271-299.

537. Tsunewaki K. and Mukai Y., 1970. Wheat haploids through the Salmon method. In: (Bajaj Y.P.S. Ed.), Biotechnology in Agriculture and forestry, Vol. 13. Springer-Verlag, Berlin, pp. 460-478.

538. Tsunewaki K., Liu Y.G., Terachi T., and Mori N., 1990. Wheat evolution revealed by the nuclear and organellar DNA analyses. J. Genet. Mol. Biol. 1: 83-96.

539. Tsunewaki K., Takumi S., Mori N., Achira T., and Liu Y.G., 1993a. Origin of polyploid wheats revealed by RFLP analysis. In: Molecular Genetical Basis of Polyploid Evolution in Plants. Kyoto Univ., 62-70.

540. Upadhia M.D. and Swaminathan M.S., 1969. Studies on origin of T. zhukovslyi and on the mechanisms regulating chromosome pairing in Triticum. Indian J. Genet. Plant Breed. 25: 1-12.

541. Van Deynze A.E., Sorrells M.E., Park W.D., Ayres N.M., Fu H., Cartinhour S.W., Paul E., McCouch S.R., 1998. Anchor probes for comparative mapping of grass genera. Theor. Appl. Genet. 97 (3): 356-369.

542. Von Niekerk HA. and Pienaar R. de V., 1983. Morphology and linear C-band differentiation of Triticum aestivum L. em Thell. V. aestivum cv. "Chinese Spring" chromosomes. Cereal Res. Commun. 11: 115-122.

543. Vega C. and Lacadena J.R., 1982. Cytogenetic structure of common wheat cultivars from or introduces into Spain. Theor. Appl. Genet. 61: 129-133.

544. Verma S.C. and Rees H., 1974. Giemsa staining and the distribution of heterochromatin in rye chromosomes. Heredity 32 (1): 118-121.

545. Vittozzi L. and Silano V., 1976. The Phylogenies of protein a-amylase inhibitor from wheat seed and the speciation of polyploid wheats. Theor. Appl. Genet. 48: 279-284.

546. Vosa C.G., 1973. Heterochromatin recognition and analysis of chromosome variation in Scilla sibirica. Chromosoma 43 (3): 269-278.

547. Vosa C.G. and Marchi P., 1972. Quinacrine fluorescence and Giemsa staining in plants. Nature New Biology 237: 191- 192.

548. Wagenaar E.B., 1961. Studies on the genome composition of Triticum timopheevii Zhuk. I. Evidence for genetic control of meiotic irregularities in tetraploid hybrids. Canad. J. Genet. CytoL 3 (1): 47-60.

549. Wagenaar E.B., 1966. Cytological studies of the development of metaphase I in Triticum hybrids. II. The behaviour of univalents in meiotic cell division. Canad. J. Genet. Cytol. 8: 204-225.

550. Waines J.G. and Payne P.I., 1987. Electrophoretic analysis of the HMW glutenin sub-units of Т. monococcum, T. urartu, and the A genome of bread wheat (Г. aestivum). Theor. Appl. Genet. 74: 71-76.

551. Wang Z., Weber J.L., Zhong G., and Tanksley S.D., 1994. Survey of plant short tandem DNA repeats. Theor. Appl. Genet. 88: 1-6.

552. Weber J.L. and May P.E., 1989. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction. Am. J. Hum. Genet. 44: 388396.

553. Whitkus R., Doebley J., and Lee M., 1992. Comparative genome mapping of sorghum and maize. Genetics 132: 1119-1130.

554. WiegantJ., Ried Т., Nederlof R.M., van der Ploeg M., Tankle И J., Raap A.K., 1991. In situ hybridization with fluoresceinated DNA. Nucleic Acids Res. 19: 3237-3241.

555. Wimber D.E. and Steffensen DM., 1970. Localization of 5S genes on Drosophila chromosomes by RNA-DNA hybridization in situ. Science (N.Y.) 170: 639-641.

556. Wimber D.E., Duffey P.A., Steffensen DM., Prensky W., 1974. Localization of the 5S RNA genes in Zea mays by RNA-DNA hybridization in situ. Chromosoma 47 (4): 353360.

557. Windemann H., Fritschy F., and Baumgartner E., 1982. Enzyme-linked immunosorbent assay for wheat a-gliadin and whole gliadin. Biochim Biophys. Acta 209: 110121.

558. Witcombe J.R., 1983. A Guide to the species of Aegilops L. Their taxonomy, morphology and distribution. IBPGR Secretariat, Rome, 74 PP.

559. Wolf G. and Lerch В., 3.974. Genome analysis in the triticinae using isoenzymes of phosphodiesterase. Wheat Inf. Serv. 38: 17-19.

560. Wolfe K.H., GouyM., Yang Y.-W., Sharp P.M., and Li W.-H., 1989a. Date of the monocot-dicot divergence estimated from the chloroplast DNA desquence data. Proc. Natl. Acad. Sci. (U.S.A.) 86: 6201-6205.

561. Wolfe K.H., Sharp PM., and Li W.-H., 1989. Rates of synonimous substitution in plant nuclear genes. J. Mol. Evol. 29: 208-211.

562. Yamamoto M. and Mukai Y., 1995. Physical mapping of ribosomal RNA genes in Aegilops and Triticum. In:(Li S., Z.Y.Xin, Eds): Proc. 8th Int. Wheat Genet. Symp., Bejing, China, 20-25 July 1993. pp. 807-811.

563. Yamamori M., 1994. An N-band marker for gene Lrl8 for resistance to leaf rust in wheat. Theor. Appl. Genet. 89: 643-646.

564. Yang Y.-C., Tuleen N.A., and Hart G.E., 1996. Isolation and identification of Triticum aestivum L. em Thell. cv. Chinese Spring T. peregrinum Haeckel disomic chromosome addition lines. Theor. Appl. Genet. 92 (5): 591-598.

565. Yasmineh W.G. and Yunis JJ., 1970. Localization of mouse satellite DNA in constitutive heterochromatiri. Exp. Cell Res. 59: 69-75.

566. Yen Y. and Kimber G., 1990. Reinvestigation of the S genome in Triticum kotschyi. Genome 33: 283-293.

567. Yen Y. and Kimber G., 1992. Genomic relationships on N-genome Triticum species. Genome 35: 962-966.

568. Yunis J J. and Yasmineh W.G., 1970. Satellite DNA in constitutive heterochromatin ofthe guinea pig. Science 168: 263-265.

569. Zhang J., Friebe B., and Gill B.S., 1995. Detection of maize DNA sequences amplified in wheat. Genome 38: 946-950.

570. Zhang H.-B., Dvorak J., and Waines J.G., 1992. Diploid ancestry and evolution of Triticum kofschyi and T. peregrinum examined using variation in repeated nucleotide sequences. Genome 35: 182-191.

571. Zhang H.B. and Dvorak J., 1992. The genome origin and evolution of hexaploid Triticum crassum and Triticum syriacum determined from variation in repeated nucleotide sequences. Genome 35: 806-814.

572. Zhang H.B., lia J., Gale M.D., and Devos KM., 1998. Relationships between the chromosomes of Aegilops umbellulata and wheat. Theor. Appl. Genet. 96 (1): 69-75.

573. Zhao Y.H. and Kimber G., 1984. New hybrids with D-genome wheat relatives. Genetics 106: 509-515.

574. ZoharyD., 1966. The evolution of genome in Aegilops and Triticum. In: Proc. 2nd Int. Wheat Genet. Symp., Sweden, Lund., 207-217.

575. Zohary D. and Feldman M., 1962. Hybridization between amphiploids and the evolution of polyploids in the wheat (Aegilops-Triticum) group. Evolution 16: 44-61.

576. Zurabishvili T.G., lordansky A.B., Badaev N.S., 1978. Linear differentiation of cereal chromosomes. II. Polyploid wheats. Theor. Appl. Genet. 51: 201-210.1. БЛАГОДАРНОСТИ

577. Выполнение работы было связано с деятельностью лаборатории функциональной морфологии хромосом Института молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН, всем сотрудникам которой также приношу искреннюю благодарность.