Экологическая пластичность структуры ренальной ткани пресноводных и морских костистых рыб тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.16, кандидат биологических наук Назарова, Екатерина Александровна

• Назарова, Екатерина Александровна
• кандидат биологических наук
• 2009

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Назарова, Екатерина Александровна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Анатомия почек круглоротых и рыб.

1.2. Морфологические и функциональные особенности почек круглоротых и рыб.

1.3. Выделение и осморегуляция.

1.4. Проблема классификации форменных элементов кроветворной ткани.

1.5. Морфология и ультраструктура форменных элементов кроветворной ткани почек костистых рыб.

1.6. Лейкоцитарная формула.

1.7. Клеточные элементы почек костистых рыб не установленного генеза.

1.8. Токсичность и биоаккумуляция кадмия.

1.9. Влияние кадмия на морфо-фупкциональный статус рыб.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Экологическая пластичность структуры ренальной ткани пресноводных и морских костистых рыб»

Выяснение механизмов адаптаций рыб к различным биотическим и абиотическим факторам, систем биотестов для оценки здоровья рыб и определение нормы и патологии в условиях возрастающего антропогенного загрязнения является важным аспектом решения одной из проблем экологии - взаимодействие организма и среды. Согласно концепции биомаркеров, признанной в 1990-е гг., наиболее удачными являются биохимические, физиологические и гистологические показатели (Лукин, Шарова, 2005). Почки рыб, наряду с печенью и жабрами, являются важнейшими маркерами загрязнения, так как они незаменимы в процессе поддержания стабильной внутренней среды организма, включающего водно-солевой баланс, выведение продуктов обмена веществ и ксенобиотиков, формирование неспецифического и специфического иммунитета, синтез ряда гормонов и т.д. (Наточин, 1976; Межнин, 1978; Купер, 1980; Кауфман, 1990; Кондратьева и др.,2001; Микряков и др., 2001; Ellis, 1977; Zapata, 1979). Структура почек у рыб разных экологических групп как в норме, так и при воздействии токсикантов наиболее полно изучена на уровне световой микроскопии (Наточин, 1976; Турдаков, 1977; Аминева, Яржомбек, 1984; Кауфман, 1990; Галактионов, 1995; Микряков и др., 2001; Brown, 1957; Smith et al., 1970; Boomker, 1979). Однако многие вопросы, касающиеся топких внутриклеточных перестроек в паренхиме про- и мезонефроса у видов в зависимости от различных факторов среды обитания с привлечением электроино-микроскопических приемов отрывочны и не систематизированы. Вместе с тем, результаты таких исследований могут иметь несомненное значение для выяснения адаптивных изменений как к естественным факторам среды, так и к действию токсикантов различной природы, в том числе и тяжелых металлов, одним из которых является кадмий. Решением Европейского сообщества он внесен в «черный список» загрязняющих веществ, представляющих наибольшую опасность для гидробиопгов (Колпакова и др., 1996). С одной стороны, результаты исследований показали, что уровень аккумуляции кадмия в почках рыб по сравнению с другими органами наибольший (Кашулин, Гладышева, 2005; Борисов, 2006; Моисеенко и др., 2006; Чернова и др., 2006; Kraal, 1995; Berntssen, 2000; De Smet, Blust, 2001; Szebedinszky et al., 2001; Chowdhury et al., 2004; Franklin et al., 2005), с другой, — большинство работ направлено на изучение его действия в основном лишь у важных в рыбоводстве лососевых и карповых рыб, скудно представлены сведения по изучению свободноживущих видов (Elasser et al., 1986; Beena, Viswaranjan, 1988; De Smet, Biust, 2001; Hansen et al., 2002; Drastichova et al., 2003; Chowdhury et al., 2004). К тому же, имеющиеся в литературе данные по влиянию ионов кадмия на функционирование почек и патологические изменения и них достаточно противоречивы, практически не изучены изменения тонкой структуры клеток почек, особенно интерстициальной ткани, на ранних сроках действия сублетальных концентрации данного токсиканта (Dallinger et al., 1997; De Conto Cinier C. et al., 1997; Drastichova et al., 2003; Franklin et al, 2005; Panchanathan, Vattapparumbil, 2006). Исследование поставленных вопросов во многом поможет расширить знания об устойчивости различных видов костистых рыб, как важного компонента водных экосистем, к изменению физико-химических свойств природных вод (в том числе при антропогенном загрязнении их тяжелыми металлами).

Цель работы - выявить экологическую пластичность структуры почек костистых рыб на тканевом, клеточном и субклеточном уровнях в зависимости от факторов среды и физиологических особенностей видов. Задачи исследования:

1. Исследовать структуру ренальной ткани про- и мезонефроса и выявить ее особенности у пресноводных и морских видов рыб, принадлежащих к отрядам Cypriniformes и Perciformes.

2. Установить зависимость соотношения различных форм лейкоцитов в почках рыб от эколого-физиологических особенностей видов.

3. Исследовать ультраструктуру клеток паренхимы почек рыб и определить степень ее зависимости от условий обитания видов в воде с различной соленостью.

4. Изучить действие ионов кадмия в сублетальных концентрациях на структуру почечной ткани и ультраструктуру ее клеток у карпа, гольца и окуня.

Научная новизна

Для 12 видов рыб отр. Cypriniformes и Perciformes, обитающих в пресных и соленых водах получены новые данные о количественном соотношении различных форм лейкоцитов в почках. Обнаружена корреляционная связь этого показателя с чувствительностью рыб к дефициту кислорода в воде. Впервые изучена ультраструктура лейкоцитов у Barbatula barbatula (L.), Cobitis taenia L., Stizostedion volgense (Gmelin), Trachurus mediterraneus (Staindachner) и Diplodus annularis (L.). Выявлены клетки с радиально расположенными везикулами в почках Carassius auratus (L.), Abramis ballerus (L.). Barbatula barbatula (L.), Cobitis taenia L., Diplodus annularis (L.). Палочковые клетки — в почках Cobitis taenia L., Stizostedion lucioperca (L.), Stizostedion volgense (Gmelin) и Diplodus annularis (L.). Бокаловидные клетки - проксимальном отделе канальцев Stizostedion volgense (Gmelin). В паренхиме про- и мезонефроса исследованных видов впервые описаны клетки, структура которых подобна ионтрапепор гирующим клеткам жаберного эпителия рыб.

Впервые установлены отличия в количестве и размерах ряда клеточных органелл у эпителиоцитов морских и пресноводных видов. Выявлено 2 типа эпителиоцитов проксимального отдела канальцев у всех исследуемых видов, различающихся по линейным размерам и качественным характеристикам. Описан промежуточный отдел канальцев в нефроне синца и судака. Обнаружено наличие микроресничек в щеточной каемке эпителиоцитов проксимального отдела канальцев.

Установлено некробиотическое действие ионов кадмия на мезонефрос карпа, гольца и окуня, проявившееся в изменении площади, занимаемой интерстициальной тканью. У гольца выявлены изменения в количественном соотношении различных форм лейкоцитов в пронефросе, а также в ультраструктуре клеток лимфомиелоидной и нефрогенной тканей мезонефроса.

Теоретическая и практическая значимость

У костистых рыб выявлена взаимосвязь структурной организации почек с выполняемыми ими функциями, которая отражает адаптационные возможности рыб к дефициту кислорода и к обитанию в пресных и соленых водах. Полученные данные являются существенным вкладом в общие сведения об экологии этой группы рыб. Результаты исследований, посвященных действию ионов кадмия на рыб, расширяют знания о неспецифическом ответе клеток и тканей почек и могут использоваться при оценке экологического состояния водных объектов к действию хронического комплексного загрязнения водоемов. Материалы диссертационной работы могут быть использованы при чтении курса лекций: «Сравнительная цитология и гистология» и «Водная токсикология».

Заключение диссертации по теме «Экология», Назарова, Екатерина Александровна

ВЫВОДЫ

1. В мезонефросе костистых рыб доля лимфомиелоидной ткани от общей площади ренальной ткани убывает в ряду: пресноводные карпообразные - пресноводные окунеобразные - морские окунеобразные. Различие в соотношении нефрогенной и лимфомиелоидной тканей является адаптацией, позволившей окунеобразным освоить водоемы с широким диапазоном солености.

2. Соотношение различных форм лейкоцитов в головной почке коррелирует с чувствительностью рыб к дефициту кислорода в воде и не зависит от типа питания и миграционной активности.

3. У пресноводных и морских костистых рыб ультраструктура агранулоцитов, бокаловидных, палочковых клеток и клеток с радиально-расположенными везикулами сходна. Среди клеток миелоидного ряда выявлено 5 типов нейтрофилов и 3 типа эозинофилов по структурным признакам вторичных гранул. Зависимость ультраструктуры гранул от обитания видов в морской или пресной воде не обнаружена.

4. Ультаструктура основных отделов нефрона и хлоридных клеток у морских окунеобразных отличаются от таковой у пресноводных окунеобразных и карпообразных толщиной базальной мембраны боуменовой капсулы, большим количеством митохондрий в эпителиоцитах и хлоридных клетках, большим количеством везикул, а также более развитой системой клеточных мембран и гладкого эндоплазматического ретикулума в эпителиоцитах канальцев. Это отражает различие в способах ионной регуляции и является адаптациями к жизни в воде с различной соленостью.

5. У пресноводных и морских видов рыб длина эпителиоцитов, зоны эндоцитоза и щеточной каемки, диаметр микроворсинок меняются сходным образом от проксимального к дистальному отделу нефрона и являются критерием для выделения двух типов эпителиоцитов проксимального отдела канальцев. Различия же в количестве и плотности секреторных гранул, лизосом, положение митохондрий в цитоплазме эпителиоцитов отражают только их функциональную активность.

6. Негативное влияние кадмия выражается в развитии воспалительной реакции почек, выявленой на клеточном и субклеточном уровнях уже на начальном этапе воздействия. Опустошение специфичных гранул гранулоцитов, расширение цистерн шероховатого эндоплазматического ретикулума в лимфоцитах и клетках с радиально расположенными везикулами, увеличение количества и размеров фагосом в макрофагах свидетельствуют об усилении секреторной, синтетической и фагоцитарной активности лейкоцитов и способствуют снижению повреждающего эффекта токсиканта. Последовательность проявления выявленных изменений не зависит от концентрации кадмия, вида и возраста рыб.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Изучение структуры про - и мезонефроса показало, что изучаемые органы всех исследованных видов костистых имеют единый план строения с круглоротыми и другими группами рыб. В состав пронефроса входят обязательные компоненты: ретикулярная строма, кроветворная ткань, интерренальная ткань и эндотелий сосудов, создающий сосудистое русло. В состав мезонефроса - ретикулярная строма, кроветворная ткань, нефрогенная ткань и кровеносные синусы. Кроветворная ткань обоих органов содержит эритроциты, лимфоциты, плазматические клетки, макрофаги, мелано-макрофагальные центры и различные типы гранулоцитов.

Почки костистых рыб - это типичные полифункциональные органы. Они входят в состав наиболее древней почечно-селезеночной системы, осуществляющей кроветворную функцию, при этом пронефрос является основным органом кроветворения круглоротых и рыб. Кроме того, пронефрос входит в состав эндокринной системы, мезонефрос выполняет выделительную, осмо - и ионрегулирующую функции.

Вместе с тем, анализ полученных результатов однозначно свидетельствует о видовой специфике структуры тканей и клеток про- и мезонефроса как у пресноводных, так и морских костистых рыб.

Обнаружено, что в мезонефросе костистых рыб доля лимфомислоидной ткани от общей площади ренальной ткани убывает в ряду: пресноводные карпообразные -пресноводные окунеобразные — морские окунеобразные. Различное соотношение лимфомиелоидной и нефрогенной тканей возможно связано с увеличением количества нефронов на единицу площади ренальной ткани и последующей специализацией нефрогенной ткани в процессе эволюции, что позволило окунеобразным освоить водоемы с широким диапазоном солености.

Показано, что видовые особенности в количественном соотношении различных форм лейкоцитов сохраняются и в головной, и в туловищной почках исследованных видов, обитающих в пресных и соленых водах. Тем не менее, метод кластерного анализа позволил выделить 4 группы рыб, обладающие наибольшим сходством в соотношении различных типов лейкоцитов. Несмотря на то, что в литературе неоднократно упоминалось о зависимости соотношения лейкоцитов в периферической крови от факторов среды, типа питания, образа жизни, нам не удалось выявить связь лейкограмм почек у исследованных видов рыб с миграционной активностью или типом питания. Вместе с тем, наблюдается определенная зависимость количественного соотношения различных форм лейкоцитов в пронефросе от чувствительности рыб к дефициту кислорода в воде. По-видимому, адаптация рыб к кислородному режиму водоемов оказывается более важным и глубоким фактором, определяющим, в конечном итоге, параметры неспецифической защиты организма.

Анализ тонкой ультраструктуры лимфоцитов, плазматических клеток, макрофагов, мелано-макрофагальиых центров у костистых видов показал структурное подобие этих типов клеток с круглоротыми и другими группами рыб.

Различия выявлены в структуре вторичных специфичных гранул нейтрофилов и эозинофилов у исследованных видов рыб. На ультраструктурпом уровне выделено 5 типов гранул у нейтрофилов и 3 типа - у эозинофилов. Основываясь на собственных результатах и литературных данных выявлено, что как правило, гранулы нейтрофилов у всех карпообразных имеют сходную структуру (исключение составляют гранулы гольца обыкновенного), а гранулы окунеобразных отличаются большим разнообразием у морских и пресноводных видов. Анализ структуры гранул эозинофилов не выявил подобной тенденции. Помимо выше описанных гранулоцитов, у берша обнаружены клетки с III типом гранул, которые мы отнесли к базофилам, а у морского карася гранулоциты с гранулами, характерными как для нейтрофилов, так и эозинофилов.

Следует отметить, что впервые изучена ультраструктура лейкоцитов у Barbatula barbatula (L.), Cobitis taenia L., Slizostedion volgense (Gmelin), Trachurus mediterraneus (Staindachner) и Diplodus annularis (L.).

Таким образом, на основании полученных результатов и литературных данных, можно сделать вывод о том, что у разных видов круглоротых и рыб ультраструктура агранулоцитов подобна и не зависит от условий среды обитания. Несмотря на разнообразие типов и морфологических форм гранулоцитов у пресноводных и морских рыб, нам также не удалось обнаружить зависимости их ультраструктуры от среды обитания видов, но, привлекая морфометрические данные, можно говорить о том, что вторичные гранулы клеток являются признаками видовой специфики мислоидного ряда, которые у разных видов рыб могут быть связаны с различным набором ферментов и других антибактериальных факторов, а также характера их накопления в гранулах.

Несмотря на морфологическое разнообразие лейкоцитов, функция данных клеток заключается в осуществлении иммунных реакций, в результате которых уничтожаются чужеродные антигены, а так же собственные измененные клетки. Данные функции характерны и для лейкоцитов круглоротых и других групп рыб, а также высших позвоночных, однако имеется ряд морфологических и физиологических особенностей, присущих только костистым рыбам.

Обнаруженные нами в про - и мезонефросе клетки с радиально расположенными везикулами и палочковые клетки у всех исследованных видов, а также данные типы клеток у ранее исследованных видов рыб имеют сходную ультраструктуру, независящую от среды обитания видов.

Клетки с радиально расположенными везикулами нами впервые описаны в почках Carassius auratus (L.), Abramis ballerus (L.), Barbatula barbatula (L.), Cobitis taenia L., Diplodus annularis (L.).

Палочковые клетки - в почках Cobitis taenia L., Stizostedion lucioperca (L.), Stizostedion volgense (Gmelin) и Diplodus annularis (L.).

При рассмотрении функций этих клеток мы придерживаемся версии об их участии в осуществлении неспецифических защитных реакций.

Таким образом, разнообразие типов клеток в пределах одной систематической группы, наличие смешанных типов лейкоцитов свидетельствует о незаконченном процессе дифференцировки этих типов клеток, а дискуссии о функциях палочковых клеток и клеток с радиально расположенными везикулами, обнаруженные нами в мезонефросе берша, бокаловидные клетки свидетельствуют о незаконченном процессе формирования в филогенезе защитных реакций организма у костистых рыб и о возможных будущих изменениях во взглядах на функционирование механизмов неспецифической защиты организма.

В паренхиме головной и туловищной почек пресноводных и морских костистых рыб нами обнаружены клетки, ультраструктура которых подобна хлоридным (ион гранспортирующим) клеткам жаберного эпителия рыб. Особенности ультраструктуры этих клеток у исследованных нами пресноводных и морских видов рыб напрямую связаны с их функциями, которые, по-видимому аналогичны таковым в жабрах рыб и заключаются в поддержании ионного баланса в организме. Что является адаптацией к жизни костистых рыб в воде с различной соленостью.

Анализ ультраструктуры основных отделов нефрона всех видов исследуемых рыб показал единый план строения. Следует отметить, что размеры подоцитов и всех типов эпителиоцитов варьируют, но нами не выявлено зависимости этих показателей от видов, обитающих в пресной или морской воде. Тем не менее, вне зависимости от среды обитания для всех исследованных видов показано, что длина эпителиоцитов, зоны эндоцитоза и щеточной каемки, диаметр микроворсинок меняются сходным образом от проксимального к дистальному отделу нефрона и являются критерием для выделения двух типов эпителиоцитов проксимального отдела канальцев.

Выявлено 2 типа эпителиоцитов в проксимальном участке канальца и наличие в составе щеточной каемки не только микроворсинок, но и микроресничек.

Эпителиоциты промежуточного отдела канальцев нефрона нами описаны только для синца и судака, что скорее всего, связано с трудностями обнаружения данного отдела канальцев у других костистых. Структурное подобие этих клеток тонкому сегменту петли Генле позволяет предположить и их сходство функций.

Следует отметить, что такие признаки, как количество и плотность секреторных гранул и лизосом, положение митохондрий, плотность цитоплазмы, различные включения и.т.д., скорее всего, связаны пе с видовыми особенностями в морфологии различных типов эпителиоцитов, а с функциональной активностью клеток в определенный период времени.

Выявленные нами особенности в строении почечного тельца у морских и пресноводных видов, свидетельствуют о присутствии у морских видов барьера, трудно проницаемого для воды, поступающей в боуменову капсулу в результате ультрафильтрации. Показаны различия в количестве митохондрий и размерах микроворсинок в щеточной каемке эпителиоцитов I и II типов проксимального участка канальца у пресноводных и морских видов. В дистальном отделе канальцев наблюдаются отличия в количестве везикул и митохондрий в клетках пресноводных и морских костистых рыб. Исключение составляет обыкновенная щиповка, количество митохондрий у которой превышает этот показатель по сравнению с морскими видами. И если различия в количестве митохондрий между морскими и пресноводными видами связывают с разницей в осмотическом давлении крови, то выявленная особеннось у щиповки, по-видимому, компенсирует маленькие размеры этих орагнелл.

Таким образом, анализ структуры про- и мезонефроса у морских и пресноводных костистых рыб, принадлежащих к отрядам карпообразные и окунеобразные, позволил выявить как общие черты, характерные для всех видов, так и видоспецифичные признаки, позволяющие связать их со средой обитания и особенностями обмена веществ исследованных видов.

Анализ количественного соотношения различных форм лейкоцитов в пронефросе карпа, гольца и окуня под действием ионов кадмия подтвердил неспецифический характер сдвига соотношения клеток в сторону лейкопении и нейтрофилии, характерный при действии большинства токсикантов. Впервые исследован этот показатель у усатого гольца ВагЬаШ1а ЬагЬаЫа (Ь.). О причине различий в индексе сдвига лейкоцитов между карпом, гольцом и окунем однозначно сказать нельзя, так как они могут быть связаны как с различными концентрациями и сроками воздействия кадмием, так и зависеть от возраста и разной интенсивности обменных процессов у рыб.

В работе впервые показано развитие некробиотических процессов под влиянием кадмия, указывающих на течение воспалительной реакции в организме. Различие в протекании некробиоза в интерстициальной ткани почек, выразившееся в уменьшении доли этой ткани без некробиотических признаков от общей площади ренальной ткани у всех исследованных видов, возможно связано не только с различными факторами, перечисленными выше, но и со степенью развития ткани в мезонефросе у этих видов рыб.

Под действием ионов кадмия произошло опустошение специфичных гранул гранулоцитов (у эозинофилов всех исследемых видов, у базофилов карпа и нейтрофилов гольца) расширение цистерн шероховатого эндоплазматического ретикулума в лимфоцитах и КРВ, увеличение количества и размеров фагосом в макрофагах свидетельствуют об усилении секреторной, синтетической и фагоцитарной активности лейкоцитов и способствуют снижению повреждающего эффекта токсиканта.

Изменение структуры мезонефроса исследуемых видов также характеризуется повреждением митохондрий во всех клетках нефрогенной и лимфомиелоидной тканей, образованием ядерной петли в лейкоцитах, увеличением количества секреторных гранул, размыканием межклеточных контактов в проксимальных и дистальных отделах канальцев и последующим разрушением эпителиоцитов, образующих эти отделы, лизисом содержимого палочковых клеток, гиперемией кровеносных сосудов клубочка, утолщением базальной мембраны боуменовой капсулы и инфильтрацией нефрогенной ткани эритроцитами, лимфоцитами, нейтрофилами и КРВ

Таким образом негативное влияние кадмия выражается в развитии воспалительной реакции ночек, выявленой на клеточном и субклеточном уровнях уже на начальном этапе воздействия. Данные изменения имеют строго определенную последовательность и свидетельствуют о тяжелых функциональных нарушениях органа, в том числе концентрационной способности почек и, как следствие, возможной интоксикации рыб в результате нарушения выведения продуктов обмена.

Выявленную нами последовательность изменений в ренальной ткани под действием ионов кадмия можно рассматривать как систему неспецифических реакций на действие большинства токсикантов. Данные изменения могут служить дополнительным гистологическим критерием при проведении мониторинговых исследований по оценке влияния на рыб антропогенных факторов среды.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Назарова, Екатерина Александровна, 2009 год

1. Алмазов В. А., Афанасьев Б. В., Зарицкий А. Ю., Мамаев Н. Н., Рудакова Т. Л., Фрейдлин И. С., Цвейбах А. С., Шишков А. Л. Физиология лейкоцитов человека. Л.: Наука, 1979. 232 с.

2. Аминева В. А., Яржомбек А. А. Физиология рыб. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1984. 200 с.

3. Антипова П. С. Сезонные и возрастные изменения морфологического состава крови карпа// Вопросы ихтиологии. 1954. №3. С. 120-121.

4. Аревшанян С. Г. Некоторые аспекты биоиндикации загрязнения тяжелыми металлами системы «вода-илы» р. Раздан // Тез. докл. всероссийской конференции: «Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем». Санкт-Петербург. 2006. С. 8-9.

5. Балабанова Л. В. Влияние кадмия на ультраструктуру иммунокомпетентных клеток мозамбикской тилапии Oreochromis mossambicus II Цитология. 1997. Т. 39. N 8. С. 677680.

6. Балабанова JI. В. Ультраструктура иммунокомпетентных клеток почек рыб сем. Cyprinidae // Биология внутренних вод. 1997. № 2. С. 65-69.

7. Балабанова Л. В. Влияние кадмия на ультраструктуру иммунокомпетентных клеток селезенки и почек осетра Acipenser baeri Brandt // Биология внутренних вод 1998. N 2. С. 80-85.

8. Балабанова Л. В. Ультраструктура гранулоцитов некоторых видов окунеобразных рыб // Биология внутренних вод. 2002. № 1. С. 79-84.

9. Балабанова Л. В. Палочковые клетки рыб разных видов // Биология внутренних вод. 2006. № 2. С. 83-88.

10. Балабанова Л. В., Заботкина Е. А. Ультраструктура клеток иммунной системы карпа Cyprinus carpió в норме и при иммунизации // Цитология. 1988. Т. 30. № 6. С. 657-661.

11. Балабанова Л. В., Заботкина Е. А., Лапирова Т. Б., Микряков В. Р. Влияние карбофоса и иммунизации бактериальным антигеном на некоторые показатели иммунной системы карпа Cyprinus carpió L. (Cyprinidae) // Вопросы ихтиологии. 2003. Т. 43. № 2. С. 262-271.

12. Баранникова И. А., Баюнова Л. В., Дюбин В. П., Саснко И. И., Семенкова Т. Б. Содержание кортизола в сыворотке крови и функция интерреналовой железы в жизненном цикле осетра Acipenser gueldenstaedtii II Вопросы ихтиологии. 2000. Т 40. №3. С. 379-388.

13. Баранникова И. А., Васильева Е. В., Тренклер И. В., Цепелован П.Г. Интерренальная железа в жизненном цикле проходных осетровых сем. Acipcnseridae // Вопросы ихтиологии. 1978. Т 18. Вып. 4(111). С. 719-735.

14. Белоцкий С. М., Авгалион Р. Р. Воспаление. Мобилизация клеток и клинические эффекты. М.: Изд-во БИНОМ, 2008. 240 с.

15. Бикбулатова Е.М, Бикбулатов Э.С., Степанова И.Э. Изменчивость показателей органического вещества в Рыбинском водохранилище // Мат. докл. конференции «Актуальные проблемы экологии Ярославской области». Ярославль. 2008. С. 121-124.

16. Борисов М. Я. Накопление тяжелых металлов в тканях и органах леща как показатель токсического загрязнения оз. Воже // Тез. докл. всероссийской конференции: «Биоиндикация в мониторинге пресноводных экосистем». Санкт-Петербург. 2006. С. 23-24.

17. Бочаров Ю. С. Эволюционная эмбриология позвоночных. М.: Издательство московского университета, 1988. 232 с.

18. Бубенкова Е. В. Назарова Е. А. Действие фенола и нафталина на структуру селезенки и туловищной ночки карася серебряного // В сб. Биотехнология охране окружающей среды. М.: МГУ, 2005. С. 68-71.

19. Бут П. Г., Муравьев Р. А., Фомина В. А., Роговин В. В. Антимикробная активность миелопероксидазы пероксидазосом нейтрофила // Известия АН. Серия биологическая. 2002. №3. С. 266-270.

20. Буторин Н. В. Гидрологические процессы и динамика водных масс в водохранилищах Волжского каскада. JL: Наука, 1969. 322 с.

21. Буторин Н.В., Зиминова H.A., Курдин В.П. Донные отложения всрхневолжских водохранилищ. JL: Наука, 1975. 160 с.

22. Валедская О. М., Сайед М. А., Зайцев В. Ф. Влияние тяжелых металлов на некоторые показатели иммунитета карпа // Исследования по рыбоводству в регионе Северного Прикаспия. 2001. С. 189-194.

23. Випниченко JI. И. Сравнительная ультраструктура нефрона. Атлас. JL: Наука, 1980. 136 с.

24. Виноградов Г. А. Процессы ионной регуляции у пресноводных рыб и беспозвоночных. М.: Наука, 2000.216 с.

25. Волкова О. В., Елецкий Ю. К. Основы гистологии с гистологической техникой. М.: Медицина, 1971.272 с.

26. Волынкип Ю. Л. Лейкоциты и тромбоциты периферической крови некоторых рыб отряда окунеобразных (Perciformes) // Вопросы ихтиологии. 1983. Т. 23. Вып. 5. С. 865869.

27. Гдовский П. А., Ружинская H.H., Мензиков С.А. Структурно-функциональная организация периферического отдела обонятельной системы рыб // Физиология и токсикология пресноводных животных. Сборник статей. Рыбинск: Рыбинский дом печати, 2007. С. 46-99.

28. Гинецинский А. Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия. М-Л.: Наука, 1964. 426 с.

29. Говядинова А. А. Исследование локализации и особенностей строения кроветворной ткани у осетровых рыб // Автореф. . дис. канд. биол. наук. М.: Издательство московского университета, 1998. 24 с.

30. Говядинова А. А., Ланге М. А., Хрущев Н. Г. Гемопоэтические органы уникальной локализации у осетровых рыб // Онтогенез. 2000. Т. 31. С. 440-445. Головина Н. А., Тромбицкий И. Д. Гематология прудовых рыб. Кишинев: Штиинца, 1989. 160 с.

31. Голодец Г. Г. Состав крови выращиваемой молоди осетра, леща и судака // Вопросы ихтиологии. 1954. Вып. 2. № 2. С. 114-119.

32. Глушко М. П. Головная почка рыб как кроветворный орган осетровых // В Сб. «Эколого-биологические проблемы Волжского региона и Северного Прикаспия». Астрахань. 2002. С. 118-119.

33. Гуртовский Н. Н., Матвеев Б. С., Дзержинский Ф. Я. Практическая зоотомия позвоночных. М.: Высшая школа, 1976. 351 с.

34. Житенева Т. С. О питании леща в Рыбинском водохранилище // Труды биологической станции «Борок» АН СССР. 1958. Вып. 3. С. 259-272.

35. Житенева Л. Д., Макаров Э. В., Рудницкая О. А. Основы ихтиогематологии (в сравнительном аспекте). Ростов-на-Допу: Эверест, 2004. 312 с.

36. Заботкина Е. А., Балабанова Л. В. Изменение ультраструктуры иммунокомпетентных клеток селезенки при иммунизации карпа Cyprinus carpió L. // Биология внутренних вод: информационная бюллетень. 1989. N 82. С. 64-71.

37. Заботкина Е. А., Лапирова Т. Б. Влияние тяжелых металлов на иммуно-физиологический статус рыб // Успехи современной биологии. 2003. Т. 123. № 4. С. 411-418.

38. Заботкина Е. А., Лапирова Т. Б. Влияние кадмия на структурно-функциональное состояние иммунокомпетентных органов карпа // Мат. докл. конференции: «Современные проблемы физиологии и биохимии водных организмов». Петрозаводск. 2004. С.46-47.

39. Заварзин А. А. Основы сравнительной гистологии. Л.: Издательство ленинградского университета, 1985. 400 с.

40. Зубаренко А. В., Кравченко Л. Г., Касьяненко Г.В. Нефропатп у д1тей з шдвищеним вмютом свинцю та кадм1ю в сироватщ кров1 // Пед1атр1я, акушерство та гшекол. 2000. N 6. С.85.

41. Иванова М. Н. Соотношение кормовых объектов в пище щуки и судака и интенсивность их нагула // Биология внутренних вод: информационная бюллетень. 1977. №34. С. 47-51.

42. Иванова Н. Т. Материалы к морфологии клеток крови рыб. Ростов-на-Дону: РГПИ, 1970. 136с.

43. Иванова Н. Т. Атлас клеток крови рыб. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1983. 184 с.

44. Иванова Н. Т. Система крови (материалы к сравнительной морфологии системы крови человека и животных). Ростов-на-Дону: РГПИ, 1995. 156 с.

45. Калашникова 3. М. О классификациях морфологических элементов крови рыб // Вопросы ихтиологии. 1976. Т. 16. № 3 (98). С. 510-524.

46. Карпанин Д. П., Иванов А.П. Рыбоводство. М.: Пищевая промышленность, 1967. 372 с. Карпевич А. Ф. Теория и практика акклиматизации водных организмов. М.: Пищевая промышленность, 1975. 432 с. Kapp Я. Макрофаги. М.: Медицина, 1978. 187 с.

47. Касьяненко Г. В., Зубаренко О. В., Кравченко Л. Г. Вплив солей важких метал1в на стаи серцево-судинно1 системи у дггей // Пед1атр1я, акушерство та гшекол. N 2. 2000. С.47

48. Кауфман 3. С. Эмбриология рыб. М: ВО Агропромиздат, 1990. 272 с.

49. Козлов В. А., Громыхина Н. Н. Влияние макрофагов на гемопоэз и иммунопоэз //

50. Итоги науки и техники. Сер. Иммунология. 1984. Т. 13. с. 195-216.

51. Козловская В. И., Герман А. В. Полихлорированные бифенилы и полиароматическиеуглеводороды в экосистеме Рыбинского водохранилища // Водные ресурсы. 1997. Т.24. № 5. С. 563-569.

52. Колпакова Е., Лулоф И., Руттемаан Й. Проект «Волга в Череповце». Отчет об исследованиях, проведенных в г.Череповце в августе 1995 г. — Н.Повгород: Экоцентр «Дронт», 1996. 23 с.

53. Кондратьева И. А., Киташова А. А., Ланге М. А. Современные представления об иммунной системе. Вестник московского университета. Сер. 16. Биология. 2001. № 4. С. 11-20.

54. Коновалов Ю. Д. Связывание кадмия и ртути белками и низкомолекулярными тиоловыми соединениями рыб (обзор) // Гидробиологический журнал. 1993. Т.29. № 1. С. 42-51.2 ^

55. Короткое С. М., Скульский И. А. Изменение влияния Сс1 на дыхание изолированных митохондрий печени крысы после их преинкубации с Са 2+, Бг2+, Ва2+, Мп2+ и рутениевым красным // Цитология. 1996. Т. 38. № 4/5. С. 500-510.

56. Котов А. М. Сезонная динамика морфологического состава и углеводного обмена крови у ряда черноморских рыб // Тез. докл. всесоюзной конференции «Экологическая физиология рыб». 1973. С. 169-170.

57. Кэрролл Р. Палеонтология и эволюция позвоночных в 3-х томах М.: Мир, 1992. Т. 1. 280 с.

58. Лапирова Т. Б. Влияние сублетальных концентраций ртути, меди и кадмия на иммунофизиологическое состояние молоди ленского осетра // Биология Внутренних вод. 2001. №3. С. 80-84.

59. Линник П. Н., Искра И. В. Кадмий в поверхностных водах; содержание, формы нахождения, токсическое действие // Гидробиологический журнал. 1997. Т. 33. № 6. С. 72-87.

60. Манько В. М., Хаитов Р. М. Макрофаги: гетерогенность и роль в иммунных реакциях // Успехи современной биологии 1985. Т. 99. С. 110-122.

61. Мартемьянов В. И. Содержание катионов в плазме, эритроцитах и мышечной ткани рыб Волжского плеса Рыбинского водохранилища // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 1992. Т. 28. № 5. С. 576-581.

62. Мартемьянов В. И. Закономерности изменений уровня натрия в эритроцитах рыб при адаптации к температуре // Известия РАН. 2009. №4. С.491-495.

63. Матей В. Е. Жабры пресноводных костистых рыб: Морфофункциопальная организация, адаптация, эволюция. СПб.: Наука, 1996. 204 с.

64. Микряков В. Р., Лапирова Т. Б. Влияние солей некоторых тяжелых металлов на картину белой крови молоди ленского осетра Acipenser bueri Brandt // Вопросы ихтиологии. 1997. Т. 37. № 4. С. 538 542.

65. Миронов А. А., Комиссарчик Я. Ю., Миронов В. А. Методы электронной микроскопии в биологии и медицине. СПб.: Наука, 1994. 400 с.

66. Мурадова Г. Р., Габибов М. М., Мусаев Б. С., Рабаданова А. И. Влияние хлорида кадмия на показатели липидного обмена рыб // Вестник ДГУ. 2006. № 1. С. 94—98.

67. Наточин Ю. В. Ионрегулирующая функция почки. JT.: Наука, 1976. 268 с.

68. Наумов Н. П., Карташев Н. Н. Зоология позвоночных в 2 частях. М.: Высшая школа,1979. 4.2. 333 с.

69. Немова Н. Н. Биохимические эффекты накопления ртути у рыб. М.: Наука, 2005. 164 с. Никольский Г. В. Экология рыб. М.: Высшая школа, 1974. 357 с.

70. Отюкова Н. Г. Некоторые аспекты гидрохимического режима малой реки в условиях зоогенного нарушения // Водные ресурсы. 2009. Т. 36. №5. С. 1-6.

71. Отюкова Н. Г., Цельмович О. J1., Крылов А. В. Влияние количества атмосферных осадков и зарегулирования стока на химический состав воды и зоопланктон малой реки // Биология внутренних вод. 2007. № 3. С. 48-55.

72. Ошмарин П.Г., Ошмарин А.П. Мультиорганность функций как одна из основ филогенетических изменений органов // Эволюционные исследования. Вавиловские чтения. 1988. С. 123-125

73. Панфилов Н. Д. Фомин А. А. Краткий справочник фотолюбителя. М.: Искусство, 1985. 367 с.

74. Поддубный А. Г. Экологическая топография популяций рыб в водохранилищах. Л.: Наука, 1971.312 с.

75. Покровский В. М., Коротько Г. Ф. Физиология человека. В 2-х томах. М.: Медицина, 1998. Т. 2. 368 с.

76. Половкова С. Н. Питание синца и снетка на различных биотопах Рыбинского водохранилища // Труды ИБВВ АН СССР «Биологические и гидрологические факторы местных перемещений». 1968. Вып. 16 (19). С. 147-165.

77. Попов В. С. Картина крови в онтогенезе рыб в условиях нормы и патологии. Люберцы: ПИК. ВИНИТИ, 1986. 30 с.

78. Пронина С. В., Пронин H. М. Тканевые базофилы сиговых рыб в норме и при заражении цистодами // Тез. докл. 10-й конф. украинского общества паразитологов. Одесса-Киев, 1986. Ч. 2. С. 139.

79. Пронина С. В., Пронин H. М. Взаимоотношения в системе гельминт- рыбы. М.: Наука, 1988. 139 с.

80. Проссер Л. Сравнительная физиология животных. Пер. с англ. под ред. Смирнова, В 3-х томах. М: Мир, 1977. Том. 1. 608 с.

81. Проценко В. А., Шпак С. И. Функциональная и метаболическая характеристика тканевых базофилов и базофильных грапулоцитов крови // Успехи современной биологии. 1983. Т. 95. Вып. 3. С. 408-420.

82. Пустовит Н. С., Пустовит О. П. Некоторые гематологические показатели молоди камчатской микижи Parasalmo mykiss // Вопросы ихтиологии. 2005. Т. 45. № 5. С. 680688.

83. Румянцев H. Н. О ретикуло — эндотелии и строении кроветворных органов некоторых видов костистых рыб // Архивы анатомии, гистологии и эмбриологии 1939. Т. 21. № 2. С. 162-180.

84. Сарис Н. Е. Л., Карафоли Э. Роль митохондрий в перераспределении внутриклеточного кальция: исторический обзор // Биохимия. 2005. Т. 70. Вып. 2. С. 231-239.

85. Световидов А. Н. Рыбы Черного моря. М.: Наука, 1964. 550с.

86. Серпунин Г. Г., Коробейникова Е. Г. Реакция системы крови карпа на воздействие тяжелых металлов П Мат. докл. I Конгресса ихтиологов России. Астрахань. 1997. С. 237-238.

87. Смирнова Л. И. О физиологии зернистых лейкоцитов рыб // Вопросы ихтиологии. 1968. Т. 8. Вып. 5 (52). С. 939-948.

88. Смит Л. С. Введение в физиологию рыб. М.: Агропромиздат, 1986. 168 с. Солдатов А. А. Особенности организации и функционирования системы красной крови рыб // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. 2005. Т. 41. № 3. С. 217223.

89. Строганов П. С. Экологическая физиология рыб. М.: МГУ, 1962. 144 с.

90. Токин Б. П. Общая эмбриология. М: Высшая школа, 1977. 512 с.

91. Точилина Л. В. Лейкоцитарная формула морских рыб // Гидробиологический журнал. 1994. Т. 30. № 3. С. 50-57.

92. Точилина Л. В. Картина крови у пелагических и придонных морских рыб при различной скорости плавания // Гидробиологический журнал. 1997. Т. 33. № 1. С. 9096.

93. Фортунатов М. А. Цветность и прозрачность воды Рыбинского водохранилища как показатели его режима // Труды Института биологии водохранилищ АН СССР. Москва-Ленинград. 1959. Вып.2 (5). С. 246-357. Фрейдсльф Е. И. Гематология. М.: Медгиз., 1947. 442 с.

94. Флеров Б. А., Томилина И. И., Кливленд Л., Баканов А. И., Гапеева М. В. Комплексная оценка состояния донных отложений Рыбинского водохранилища // Биология внутренних вод. 2000. №2. С. 148-155.

95. Хэм Ф., Кормак Д. Гистология. В 5 томах. Пер. с анг., под ред. Афанасьева, Ченцова. М. Мир, 1982. Т. 2. 120 с.

96. Черфас Б. И. Рыбоводство в естественных водоемах. М.: Пищспромиздат, 1956. 468 с. Шубникова Е. А. Лекции по гистологии. М.: МГУ, 1974. 272 с.

97. Яржомбек А. А., Лиманский В. В., Щербина Т. В., Бекина Е. Н., Лысенко П. В. Справочник по физиологии рыб. М.: Агропромздат, 1986. 192 с.

98. Ярыгин Н. Е., Серов В. В. Атлас патологической гистологии. М.: Медицина, 1977.200 с. Ястребов М .В. Об основах и способах филогенетического преобразования органов и функций // Журнал общей биологии. 1995. Т.56. №6. 662-676.

99. Яхненко В. М. Сезонная и возрастная динамика морфологического состава периферической крови некоторых рыб озера Байкал // Автореф. . канд. биол. наук. Москва. 1980. 24с.

100. Agius C., Roberts R. J. Melano-macrophage ccnters and their role in fish pathology // Journal of Fish Diseases. 2003. N 9. V. 26. P.499-509.

101. Barber D. L., Westermann J. E. M. Occurrence of the periodic acid-Schiff positive granular leukocyte (Pas-GL) in some fishes and its significance // Journal of Fish Biology. 1978. V. 12. P. 35-43.

102. Barber D. L., Westermann J. E. M., Jensen D. N. New observations on the rodlet cell (Rhabdospora thelohani) in the white sucker Catostomus commersoni (Lacepede): Lm and Em studies // Journal of Fish Biology. 1979. V.14. № 3. P. 277-284.

103. Barber D. L., Westermann, J. E. M. Comparison of the DNA of nuclei of rodlet cells and other in the chub Semotilus atromaculatus: hybridization in situ // Canadian Journal of Zoology. 1986. V. 64. P. 801-804.

104. Barber D. L., Westermann J. E. M, Whete M. G. The blood cells of the Antarctic icefish Chaenocephalus aceralys Lonnberg: light and electron microscopic observation // Journal of Fish Biology. 1981. V. I9.№ l.P. 11-28.

105. Benzer S. S., GUI A., Yilmaz M. The finding biology of Tinea tinea L., 1758 living in Hirfanli Dam Lake // Fen Bilimleri Dergisi. 2007. C. 28. S. 1. P.40-50.

106. Berntssen M. H. G., Lundebye A-K, Hamre K. Tissue lipid peroxidative responses in Atlantic salmon (Salmo salar L.) per fed high levels of dietary copper and cadmium // Fish Physiology and Biochemistry. 2000. N 1. V. 23. P. 35-48.

107. Bielek E. Elektronenmikroscopische Untersuchungen der Blutzellen der Teleostieren. II. Thrombocyten//Zoologische Jahrbücher. 1979. B.IOI. H. 1. S. 19-26.

108. Bielek E. Elektronenmikroscopische Untersuchungen der Blutzellen der Teleostier. III.Granulocyten//Zoologische Jahrbücher fur Anatomie. 1980. B. 103. H. 35. S. 105-121.

109. Bielek E. Elektronmikroscopische Untersuchungen der Blutzellen der Teleostier. IV. Monocyten und makrophagen // Zoologische Jahrbücher fur Anatomie. 1980. B. 103. H. 36. S. 498-509.

110. Bielek E. Developmental stages and localization of peroxidatic activity in the leucocytes of three teleost species (Cyprinas carpio L.; Tinea tinea L.; Salmo gairdneri Richardson) // Cell Tissue Response. 1981. V. 220. P. 163-180.

111. Bielek E. Rodlet cells in teleosts: new ultrastructural observations on the distribution of the cores in trout (Oncorhynchus mykiss, Salmo trutta L.). Journal of submicroscopic cytology and pathology. 2002. V. 34. P. 271-278.

112. Bielek E. Strauss B. Ultrastructure of the granulocytes of the South American lungfish, Lepidosiren paradoxal Morphogenesis and comparison to other leucocytes // Journal of Morphology. 1993. № 1. P. 29-41.

113. Bigaj J., Dulak J., Plytycz B. Lymphoid organs of Gasterosteus aculeatus II Journal of Fish Biology. 1987. V. 31. P. 233-234.

114. Brzoska M. M., Moniuszko-Jakoniuk J. Interactions between cadmium and zinc in the organism // Food and Chemical Toxicology. 2001. V. 39. P. 967-980.

115. Calzada A., Medina A., Gonzales De Canales M. L. Fine structure of the intestine development in cultured sea bream larvae // Journal of Fish Biology. 1998. V. 53. P. 340365.

116. Cannon M. S., Mollenhauer H. II., Cannon A. M., Eurell T. E., Lewis D. H. Ultrastructural localization of peroxidase activity in neutrophil leucocytes of Ictalurus punctata II Canadian Journal of Zoology. 1980. V. 58. P. 1139-1143.

117. Cannon M. S., Mollenhauer H. II., Eurell T .E., Lewis D. H., Cannon A. M., Tompkins C. An ultrastructural study of the leucocytes of the channel catfish (Ictalurus punctatus) II Journal of Morphology. 1980. V. 164. N 1. P. 1 -23.

118. Chowdhury M. J., McDonald D. G., Wood C. M. Gastrointestinal uptake and fate of cadmium in rainbow trout acclimated to sublethal dietary cadmium // Aquatic Toxicology. 2004. V. 69. №2. P. 149-163.

119. Clawson C. C., Finstad J., Good R. A. Evolution of the immune response. V. Electron microscopy plasma cells and lymphoid tissue of the paddlefish // Laboratory Investigation. 1966. V. 15. P. 1830-1847.

120. Dallinger R., Egg M., Kock G., Hofcr R. The role metallothionein in cadmium accumulation of Arctic char (Salvelinus alpinus) from high alpine lakes // Aquatic Toxicology. 1997. V. 38. P. 47-66.

121. De Smet H., Biust R. Stress Responses and changes in Protein Metabolism in carp (Cyprinus carpio) during cadmium exposure // Ecotoxicology and Environmental Safety. 2001. V. 48. №3. P. 17-22.

122. De Smet H., De Wachter B., Lobinski R., Blust R. Dynamics of (Cd, Zn)-metallothioneins in gills, liver and kidney of common carp Cyprinus carpio during cadmium exposure // Aquatic Toxicology. 2001. V. 52. N 3-4. P. 269-281.

123. Drastichova J., Svestkova E., Luskova V., Svobodova Z. Cytochemical study of carp neutrophil granulocytes after acute eposure to cadmium // Journal of Applied Ichthyology. 2005. V. 21.N3. P.215-219.

124. Drastichova J., Syobodova Z., Luskova V., Machova J., Celechovska O., Svestkova E. The effect of cadmium on haematological and biochemical indices of carp (Cyprinus carpió L.) // Toxicology Letters. 2003. V.144. P. 174.

125. Ellis A. E. Leucocytes and related cells in the plaice (Pleuronectes platessa L.) // Journal of Fish Biology. 1976. V. 8. N 2. P. 143-156.

126. Ellis A. E. Ontogeny of the immune response in Salmo salar. Histogenesis of the lymphoid organs and appearance of membrane immunoglobuline and mixed leucocyte reactivity // Deviation of Immunobiology. 1977. P. 225-232.

127. Ellis A. E. The leucocytes of fish: a review // Journal of Fish Biology. 1977. V. 11. P. 435491.

128. Elasser M. S., Roberson B. S., Hetrick F. M. Effect of Metals on the Chemiluminescent Response of Rainbow Trout {Salmo gairdneri) phagocytes // Veterinary Immunology and lmmunopathology. 1986. V. 12. P. 243-250.

129. Feng J., Liu Y., Tian L., Wang Y., Gao L. // Shuichan xuebao. Journal of Fish China. 2004. V. 28. №2. P. 195-200.

130. Ferguson H. W. The ultrastructure of plaice {Pleuronectes platessa) leucocytes // Journal of Fish Biology. 1976. V. 8. N 2. P. 139-142.

131. Fey F. Fergleichende Hamozytologie niederer Vertebraten. Ill Granulozyten // Folia of Haematology. 1966. B.86. S. 133-147.

132. Filipovic V., Raspor B. Metallothionein and metal levels in cytosol of liver, kidney and brain in relation to growth parameters of Mullus surmuletus and Liza aurata from the Eastern Adriatic Sea// Water Research. 2003 V. 37. N 13. P.3253-3262.

133. Fishelson L., Becker. K. Rodlet cells in the head and trunk kidney of the domestic carp (Cyprinus carpió): enigmatic gland cells or coccidian parasites? // Naturwissenschaften. 1999. V. 86. P. 400-403.

134. Forlin L., Haux C., Karlsson-Norrgren L., Runn P., Larsson A. Biotransformation enzyme activities and histopathology in rainbow trout, Salmo gairdneri, treated with cadmium// Aquatic Toxicology. 1986. V. 8. P. 51-64.

135. Gambaryan S. P. Kidney morphology in sturgeons a microdissectional and structural study // Journal of Fish Biology. 1988. V. 33. № 3. P.383-398.

136. Ghosal T. K., Kaviraj A. Combined effects of cadmium and composted manure to aquatic organisms // Chemosphere. 2002. V. 46. № 5. P. 1099-1105.

137. Gill T. S., Pant J. C. Erythrocytic and leucocytic responses to cadmium poisoning in a freshwater fish, Puntius conchonius Ham // Environmental Research. 1985. V. 36. N 2. P. 327-337.

138. Griffin J. L., Walker L. A., Shore R. F., Nicholson J. K. Metabolic profiling of chronic cadmium exposure in the rat // Chemistry Research and Toxicology. 2001. V. 14. N 10. P.1428-1434.

139. Haaparanta A., Valtonen E. T., Hoffmann R., Holmes J. Do macrophage canters in freshwater fishes reflect the differences in water duality // Aquatic Toxicology 00. 1995. P. 1-20.

140. Hammer O., Harper D. A. T., Ryan P. D. PAST: Palaeontological Statistics software package for education and data analysis // Palaeontologica electrónica. 2001. V. 4. Iss. 1. Art. 4. 9 pp. (http://palaeo-electronica.org/2001-l/past/issuel~01 .htm).

141. Hartwig A. Recent advances in metal carcinogenicity // Pure and Applied Chemistry. 2000. N 6. V.72. P.1007-1014.

142. Hattink J., De Boeck G., Blust R. The toxicokinetics of cadmium in carp under normoxic and hypoxic conditions // Aquatic Toxicology 2005. V. 75. № 1. P. 1-15. Heath A. G. Water pollution and fish physiology. CRC Press, 1995. 359 p.

143. Hine P. M., Wain J. M. Observations on eosinophilic granule cells in peritoneal exudates ofeels, Anguilla australis //Journal of Fish Biology. 1989. V. 34. N 6. P. 841-853.

144. Hodgson E. A Text book of modern toxicology. Wiley-interscience, 2004. 543 c.

145. Julian L., Walker L. A., Shore R. F., Nicholson J. K. Metabolic profiling of chronic cadmium exposure in the rat// Chemistry Research and Toxicology. N 10. 2001. V. 14. P. 1428-1434.

146. Kaneko T., Katoh F. Functional morphology of chloride cells in killifish Fundulus heteroclitus, a euryhaline teleost with seawater preference // Fisheries Science. 2004. V.70. 723-733.

147. Kraal M. H., Kraak M. HS., Groot C. J. De Davids C. Uptake and tissue distribution of dietary and aquaeus cadmium by carp (Cyprinus carpio) II Ecotoxicology and Environ Safety. 1995. V. 31. № 2. P. 179-183.

148. Kramer C. R., Potter H. Ultrastructural observations on rodlet-cell development in the head kidney of the southern platyfish, Xiphophorus maculatus (Teleosteoi: Poeciliidae) // Canadian Journal of Zoology. 2002. N 8. V. 80. P. 1422-1436.

149. Madden E. F., Fowler B. A. Mechanisms of nephrotoxicity from metal combinations: A review // Drug and Chemical Toxicology. 2000. V. 23. N 1. P. 1-12.

150. Mahajan C. L., Jagmohan S. D. Cell types in the peripheral blood of an air breathing fish Channa punctatus // Journal of Fish Biology. 1979 V.14. P. 481-487.

151. Malins D. C., Ostrander G. K., Aquatic toxicology: molecular, biochemical and cellular perspectives. CRC Press, Inc., 1994. 547 p.

152. Manera M., Dezfiili B.S. Rodlet cells in teleosts: a new insight their nature and functions // Journal of Fish Biology. 2004. V. 65. P. 597-619.

153. Mayberry. L. F., Marchiondo, A. A., Ubelaker, J. E., Kazic, D. Rhabdospora ihelohani Laguesse, 1895 (Apicomplexa): new host and geographic records with taxonomic consideration. // Journal of Protozoology. 1979. V. 26. 168-178.

154. Meseguer J., Esteban M. A., Munoz J., Lopez-Ruiz A. Ultrastructure of the peritoneal exudate cells of seawater teleosts, sea bream (Sparus aurata) and sea bass (Dicentrarchus lab rax) // Cell and Tissue Research. 1993. V. 273. N 2. P. 301-303.

155. Muiswinkel W. B. Fish immunology today // Immunology and immunization of fish. 1982. P. 1-2.

156. Olsson P-E, Hogstrand C. Subcellular distribution and binding of cadmium to metallothionein in tissues of rainbow trout after exposure to 109Cd in water // Environmental Toxicology and Chemistry. 1987. V. 6. P. 867-874.

157. Ooi V. E. C., Law F. K. Changes induced by cadmium in the kidney of black sea bream, Mylio makrocephalus (Teleostei) // Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 1989. V. 43. № 5. P. 769-775.

158. Panchanathan J. P., Vattapparumbil P. I. Patterns of cadmium accumulation in selected tissues of the catfish Ciarias balrachus (Linn.) exposed to sublethal concentration of cadmium chloride // Veterinary archive. N 2. 2006. V. 76. P. 167-177.

159. Parish N., Wrathmell A., Hart S., Harris J. The leucocytes of the clasmobranch Scyliorhinus canícula L. a morphological study // Journal of Fish Biology. 1986. V. 28. P. 545-561.

160. Rani K U., Rao K S. Cellular Composition of Blood of Marine Tcleost, Gerres filamentosus (Cuvier), from Visakhapatnam Harbour // Indian Journal of Marine Sciences. 1979. V. 8. № 1. P. 55-57.

161. Ray P. K. Immune responses to Aeromonas hydrorophila in Cat Fish (Heteropmustus fossilis) exposed to cadmium and hexacheorocyclonexane // Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 1992. V. 48. № 2. P. 194-201.

162. Rijkers G. T. Kinetics of humoral and cellular immune reactions in fish // Developmental and comparative immunology. 1982. S. 2.

163. Robohm R. A., Nitkowski M. F. Phisiological responses of the cunner, Tautogalabrus adspersus, to cadmium. IV. Effects on the immune system. U.S. Dept. Commer., NOAA Tech. Rep. NFMS SSRF-681. 1974. P. 15-20.

164. Roubal F. R. Blood and other possible inflammatory cells in the sparid Acanthopagrusaustralis (Genther) // Journal of Fish Biology. 1986. V. 28. № 5. P. 573-593.

165. Rough K. M., Nowak B. F., Reuter R. E. Haematology and leucocytes morphology of wildcaught Thunnus maccoyii II Journal of Fish Biology. 2005. V. 66. N 6. P. 1649-1659.

166. Ruparellia S. G., Verma J., Sayed S. R., Rawae U. M. Effect of cadmium on blood of

167. Tilapia, Jreochromis mossambicus (Peters), during prolonged exposure // Bulletin of

168. Environmental Contamination and Toxicology. 1990. V. 45. N 2. P. 305-312.

169. Satarug S., Baker J. R., Reilly P. E. B., Moore M. R., Williams D. J. Changes in zinc andcopper homeostasis in human livers and kidneys associated with exposure to environmentalcadmium // Human and Experimental Toxicology. 2001. V. 20. N 4. P.205-213.

170. Satarug S., Baker J. R., Urbenjapol S. Haswell-Elkins M., Reilly P .E. B., Williams D. J,

171. Moore M. R. A global perspective on cadmium pollution and toxicity in non-occupationallyexposed population // Toxicology Letters. 2003. V. 137. P. 65-83.

172. Secombes C. J., Van Groningen J. J. M., Egberts E. Separation of lymphocytes, subpopylation in carp Cyprinus carpio L. by monoclonal antibodies: immunohistochemical studies // Immunology. 1983. V. 48. P. 165.

173. Shrivastava A., Pandey A. K. Effect of CdCh of kidney in Puntius Sophore a fresh water fish

174. Comparative Physiology and Ecology. 1986. V. 11. N 4. P. 203-207.

175. Smith A. M., Nelson A. W., Potter M. Plasmacytopoiesis in the pronephros of the carp

176. Cyprinus carpio L.) // The Anatomical Records. 1970. V. 167. P. 351-370.

177. Shamoo A. E. Biological target sites of Mercurial // In: The Toxicity of Methyl Mercury. The

178. Jons Hopkins University press. Baltimore and London. 1987. 259 p.

179. Singhal R. N., Jain M. Cadmium induced changes in the histology of kidneys in common carp, Cyprinus carpio (Cyprinidae) // Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. 1997. V. 58. N 3. P. 456-462.

180. Sloman A. K., Skott R. G., Diao Z., Rouleau C., Wood M. C., McDonald D.G. Cadmium affects the social behavior of a trout of rainbow (Oncorhynchus mykiss) II Aquatic Toxicology. 2003. V. 65.P. 171-185.

181. Suchada T., Prayad P., Kashane C., Suchart U, Somphong S. // Ultrastructural alterations in the liver and kidney of white sea bass, Latcs calcarifer, in acute and subchronic cadmium exposure// Environmental Toxicology. 2004. 19 (1). P. 11-19 :

182. Tao S., Liu C., Dawson R., Long A., Xu F. Uptake of Cadmium Adsorbed on Particulates by Gills of the Goldfish (Carassius auratus) II Ecotoxicology and Environmental Safety. 2000. V.47. P.306-313.

183. Tejendra S. G. E. August Stress Related Changes in the Hematological profile of the American Eel (Anguilla rostratd) II Ecotoxicology and Environmental Safety. 1993. V. 25. P. 227-235.

184. Temmink J. H. M., Bayne C. J. Ultrastructural characterization of leucocytes in the pronephros of carp (Cyprinus carpio L.) // Developmental and Comparative Immunology. 1987. V. U.N1.P. 125-137.

185. Thelohan P. Sur des sporozoaires indetermines parasites des poissons. Journal d Anatomie et Phisiologie Paris. 1892. V 28. P. 163-171.

186. Toshiyuki A., Etsuko K., Yasushi O., Yasushi S., Teruhiko K., Shaikh Z. A., Nogawa K.

187. Application of path analysis to urinary findings of cadmium-induced renal dysfunction //

188. Velcheva I. Content and transfer of cadmium (Cd) in the organism of fresh-water fishes // Acta zoologica Bulgarica. 2002. V.54. N 3. P.109-114.

189. Viola A., Pregnolato G., Albergoni V. Effects of in vivi cadmium exposure on natural killer (NK) cells of catfish, Ictalurus melas // Fish and Shellfish Immunology. 1996. V. 6. P. 167172.

190. Witeska M. Changes in selected blood indiced of common carp after acute exposure to cadmium// Acta Veterinaria Brno. 1998. V 67. P. 289-293.

191. Zapata A. Ultrastructural study of the teleost fish kidney // Developmental and Comparative Immunology. 1979. № 3. P. 55-65.

192. Zapata A. Lymphoid organs or teleost fish. II Ultrastructure of renal lymphoid tissue of Rutilus rutilus and Gobio gobio // Developmental and Comparative Immunology. 1981. V. 5. P. 685-690.

193. Zapata A. Phylogeny of the fish immune system // Bulletin de L Institute Pasteur. 1983. V. 81. P. 165-186.